Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Структура поднижнечелюстной слюнной железы в условиях термического ожога кожи и коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны
ВАК РФ 03.00.25, Гистология, цитология, клеточная биология

Автореферат диссертации по теме "Структура поднижнечелюстной слюнной железы в условиях термического ожога кожи и коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны"

Направахрукописи

Кирина Жанна Александровна

СТРУКТУРА ПОДНИЖНЕЧЕЛЮСТНОЙ СЛЮННОЙ ЖЕЛЕЗЫ В УСЛОВИЯХ ТЕРМИЧЕСКОГО ОЖОГА КОЖИ И КОРРЕКЦИИ ЛИМФАТИЧЕСКОГО ДРЕНАЖА ОЖОГОВОЙ РАНЫ

03.00.25 - гистология, цитология, клеточная биология 14.00.21 - стоматология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Новосибирск-2005

Работа выполнена в лаборатории ультраструктурных исследований ГУНИИ клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН и на кафедре терапевтической стоматологии Новосибирской государственной медицинской академии, г. Новосибирск

Научные руководители:

доктор биологических наук,

профессор Бгатова Наталия Петровна

доктор медицинских наук, профессор

Железный Павел Александрович

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук,

профессор Машак Светлана Владимировна

кандидат медицинских наук Саранчина Эллина Борисовна

Ведущая организация:

Омская государственная медицинская академия (г. Омск)

Защита состоится " 0*3" ¿РёДэсуЛ'Р 2005 г. на заседании диссертационного совета Д 208.062.05 Новосибирской государственной медицинской академии (630091, г. Новосибирск, Красный проспект, 52)

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Новосибирской государственной медицинской академии (630091, г. Новосибирск, Красный проспект, 52).

Автореферат разослан

Ученый секретарь диссертационного совета,

доктор медицинских наук,

профессор

А. В. Волков

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы

В последние годы получены новые сведения, подтверждающие важную роль слюны в поддержании гомеостаза полости рта (Edgar W.M., O'Mullane D.M., 1990). Установлено, что характер слюноотделения, количественные и качественные изменения слюны в значительной степени определяют устойчивость и восприимчивость зубов к кариесу (Defalianis P., Re Т., 2003). Важными являются реминерализующие свойства слюны (Edgar W.M., O'Mullane D.M., 1990). Наряду с секреторной функцией слюнные железы экскретируют продукты метаболизма, такие как креатинин, мочевая кислота. В слюнных железах образуются и выделяются в кровь биологически активные вещества, такие, как паротин, фактор роста нервов, фактор роста эпителия, фактор роста фибробластов, инсулино-подобный фактор и др. (Kagami H. et al., 2000; NagyG., 2003).

Известно, что неорганические вещества, в первую очередь кальций и фосфор поступают в эмаль из слюны. Слюна обеспечивает динамическое равновесие эмали зуба, постоянство ее состава за счет ионного обмена (Боровский Е.В., Леонтьев В.К., 2001).

Показано, что слюнные железы крайне чувствительны к различным воздействиям (Copper R.P. et al., 2002) и в условиях патологии снижается их функция (Noorafshan A., 2001). Тем не менее, исследованию структуры и функции слюнных желез, в медицинской практике, уделяется недостаточно внимания (Hebert G. et al., 1993; Gudziol H., 1995; Silver A.R., 1998; Lawler В. et al., 2004). Отсутствуют данные о структурно-функциональном состоянии слюнных желез в послеожоговом периоде, хотя проблема термических поражений кожи является одной из актуальных проблем современной медицины (Osgenel C.Y. et al., 2004).

Известно, что ожоговая травма сопровождается развитием неспецифического синдрома системного ответа на воспаление, который часто приводит к синдрому полиорганной недостаточности. Различные воспалительные медиаторы и цитокины инициируют системный воспалительный ответ, играющий решающую роль в развитии микроциркуляторных нарушений и деструкции органов (Wakabayashi G. et al., 1996; Sheridan R.L. et al., 1998; Nakae H. et al., 1999).

Важное место в поддержании жизнедеятельности органов и тканей занимает лимфатическая система (Бородин Ю.И., 1992-2004). Учитывая важную роль лимфатической системы в резорбции, транспортировке жизненно важных и токсичных для организма веществ (Кулиев Ш.Б., 1987), ее вклад в формирование компенсаторно-приспособительных реакций при экстремальных воздействиях, в том числе при термических

ожогах кожи (Бородин Ю.И. и др., 1995), необходимым является поиск способов саногенного воздействия на патологический очаг путем направленной коррекции функций регионарного лимфатического русла на микроциркуляторном уровне (Любарский М.С., 1989; Бородин Ю.И. и др., 1995; НимаевВ.В., 1995).

В последнее время в лечении ожогов наметилась тенденция к применению различных сорбционных материалов. Было показано, что применение сорбционно-аппликационной и лимфотропной терапии ускоряет процесс очищения ожоговых ран от микробного заражения, помогает быстрее ликвидировать гнойный и некротический налет, позволяет лимфатической системе выполнять основные функции (лимфодренажную, лимфодетоксикационную, иммунологическую) и уменьшает общую интоксикацию организма (Любарский М.С., 1989; Нимаев В.В., 1995; Slesarenko S.V., 1993). Использование сорбционно-аппликационной терапии способствует более быстрому заживлению ожоговой раны (Wright J.K. et al., 2004).

В литературе имеются единичные сведения об эффективности использования природных цеолитов в качестве местных сорбентов при лечении раневых, ожоговых травм, а также различных гнойно-воспалительных заболеваний (Богомолов Н.И., 1995; Богомолов Н.И., Кулиш Н.И., Минина Л.А и др., 1998; Богомолов Н.И. и др., 2001-2003, Maianskaia N.N. et al., 2004). Однако основные проблемы применения цеолитов в медицине связаны с недостаточной изученностью механизма действия природных минералов.

Цель исследования

Выявить особенности структурной организации поднижнечелюстной слюнной железы после термического ожога кожи ЗА степени в условиях спонтанного развития раневого процесса и при коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны.

Задачи исследования

1. Изучить структурную организацию поднижнечелюстной слюнной железы (ультраструктуру сероцитов, эндотелиоцитов кровеносных и лимфатических капилляров, структуру интерстиция) в динамике развития раневого процесса после термического ожога кожи ЗА степени при спонтанном заживлении ожоговой раны.

2. Исследовать структуру поднижнечелюстной слюнной железы (ультраструктуру сероцитов, эндотелиоцитов кровеносных и лимфатических капилляров, структуру интерстиция) в динамике развития раневого процесса после термического ожога кожи ЗА степени при местном использовании аппликаций мази "Левомеколь".

3. Изучить структурную организацию поднижнечелюстной слюнной железы (ультраструктуру сероцитов, эндотелиоцитов кровеносных и лимфатических капилляров, структуру интерстиция) в динамике развития раневого процесса после термического ожога кожи ЗА степени при аппликации цеолитовых контейнеров на ожоговую рану.

4. Провести сравнительный анализ морфологических изменений поднижнечелюстной слюнной железы при использовании различных подходов к лечению ожоговой раны.

Научная новизна результатов исследования

1. Методами световой, электронной микроскопии и морфометрии показано, что при термическом ожоге кожи ЗА степени в структуре поднижнечелюстной слюнной железы развиваются дистрофические изменения. Происходит уменьшение размеров интерстициальных пространств, возрастает плотность расположения концевых отделов, выводных протоков, микрососудов и клеток соединительной ткани. В сероцитах снижается содержание митохондрий и рибосом, имеет место избыточное накопление секрета. Развивается периваскулярный отек и набухание эндотелиоцитов кровеносных и лимфатических капилляров.

2. Выявлено, что в ранний послеожоговый период в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны использованием контейнеров с цеолитом, имеет место структурная гетерогенность поднижнечелюстной слюнной железы. В одних участках железы происходит возрастание размеров интерстициальных пространств и снижение плотности расположения концевых отделов, выводных протоков, микрососудов и клеток соединительной ткани, в других -отмечается накопление в интерстиции коллагеновых волокон и увеличение количества тучных клеток.

3. Впервые показано, что при использовании аппликаций мази «Левомеколь» на ожоговую рану, в ранний послеожоговый период в структуре поднижнечелюстной слюнной железы отмечаются структурные признаки развития системного воспалительного ответа.

4. Показано, что через 30 суток после термического ожога кожи, в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны использованием контейнеров с цеолитом, происходит более полное восстановление структуры поднижнечелюстной слюнной железы, чем при применении мази «Левомеколь».

Практическое значение работы.

Полученные количественные и качественные характеристики изменений в структурной организации поднижнечелюстной слюнной железы в условиях термического ожога кожи, могут быть использованы

в качестве критериев для оценки характера и степени поражения органа в условиях эндотоксикоза.

Выявленное протективное действие на структуру подчелюстной слюнной железы использования цеолитовых контейнеров, в качестве корректоров лимфатического дренажа ожоговой раны после термического ожога кожи, следует учитывать при разработке рекомендаций по профилактике послеожоговых осложнений в органе.

Положения, выносимые на защиту:

1. После термического ожога кожи ЗА степени в структуре поднижнечелюстной слюнной железы развиваются дистрофические изменения, выраженность которых со временем возрастает.

2. Коррекция лимфатического дренажа ожоговой раны при использовании аппликаций природного ионообменника и сорбента цеолита способствует более полному восстановлению структурной организации "микрорайона подчелюстной слюнной железы в послеожоговом периоде.

Апробация результатов исследования. Основные положения диссертации доложены на VII Конгрессе международной ассоциации морфологов (Казань, 2004); V Общероссийском съезде анатомов, гистологов и эмбриологов (Казань, 2004), Международной научной конференции (Минск, 2004); научной конференции с международным участием «Проблемы лимфологии и интерстициального массопереноса» (Новосибирск, 2004); международной научно-практической конференцией «Актуальные аспекты экологической, сравнительно-видовой, возрастной и экспериментальной морфологии» (Улан-Удэ, 2004).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 8 печатных работ.

Внедрение результатов исследования.

Результаты диссертационной работы используются в лекционных курсах и семинарских занятиях на кафедре анатомии, физиологии и валеологии Новосибирского государственного педагогического университета и кафедре морфологии Новосибирской государственной медицинской академии.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 198 страницах машинописного текста. Содержит 37 таблиц, иллюстрирована 46 рисунками. Диссертационная работа состоит из введения, материалов и методов исследования, результатов собственных исследований и их обсуждения, выводов. Указатель литературы включает в себя 328 работ из них 165 - отечественных и 163 - зарубежных автора.

Весь материал, представленный в диссертации, получен, обработан и проанализирован лично автором.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

В эксперименте использовали крыс-самцов породы Вистар (91 животное) массой 180-200 г. питомника «Рассвет» г. Томска. Работу с животными проводили в соответствии с «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных».

Под эфирным наркозом крысам выбривали участок кожи в грудопоясничной области и наносили ожог диаметром 2 см с помощью специально разработанного устройства, путем подачи водяного пара в течение 5 сек. В результате у экспериментальных животных развивалась ожоговая рана кожи ЗА степени, занимающая 8% поверхности тела.

Животные были разделены на 4 группы. Первая группа - интактные животные, не подвергавшиеся термическому ожогу. Вторая группа -животные, не получавшие лечения после ожога. Третья группа -животные, которым в течение 7-ми дней после ожога накладывали на раневую поверхность контейнеры с цеолитовым минеральным комплексом. Смену контейнеров производили ежедневно.

Нами был применен контейнер из полупроницаемой целлофановой оболочки (с диаметром пор не менее 10 нм), который заполнялся тонко измельченной цеолитсодержащей горной породой (фракция помола 0,01мм). В качестве сырья использовался цеолитизированный вулканический туф Милоградовского месторождения (Приморский край). В минеральном составе его, как и в шивыртуйских туфах, преобладали клиноптилолит (около 60%) и смектит (около 35%), как примеси присутствовали полевые шпаты, кварц и вулканическое стекло. Перед использованием порошок туфа прокаливали в течение 2 ч. при температуре 120°С. Перед употреблением в цеолитовые контейнеры добавлялся физиологический раствор.

Четвертая группа - животные, которым на ожоговую поверхность ежедневно наносили мазь «Левомеколь». Этим животным также делали ежедневные перевязки. «Левомеколь» использовали в качестве принятого местного лечения ожоговых ран (Спиридонова К.Л., 2002).

Все крысы были рассажены в индивидуальные просторные клетки.

Животных декапитировали под эфирным наркозом через 3,7,15 и 30 суток после нанесения ожога. В качестве объектов исследования использовали образцы поднижнечелюстной слюнной железы. На каждый срок исследования брали по 7 животных. Для исключения суточных колебаний структурно-функциональных свойств органов (Uchiama J., Asaгi Л., 1984), все экспериментальные воздействия и забор образцов органов проводили между 9.00 и 10.00 часами утра.

Для изучения образцов органа в просвечивающем режиме электронного микроскопа их фиксировали в 1% растворе 0304 на

фосфатном буфере (рН=7,4) (Milloning G., 1961), дегидратировали в этиловом спирте возрастающей концентрации и заключали в эпон (Lugt J.H., 1961). Из полученных блоков готовили полутонкие срезы толщиной 1 мкм, окрашивали толуидиновым голубым, изучали под световым микроскопом и выбирали необходимые участки тканей для исследования в электронном микроскопе. Из отобранного материала получали ультратонкие срезы толщиной 3545 нм на ультратоме LKB-8800, контрастировали насыщенным водным раствором уранилацетата (Уикли Б., 1975), цитратом свинца (Reynolds E.S., 1963) и изучали в электронном микроскопе JEM 1010.

Подготовку образцов органа, планирование и проведение морфометрических исследований выполняли в соответствии со ставшими общепринятыми принципами и методами, опубликованными в ряде отечественных и зарубежных работ (Автандилов Г.Г., 1984; Непомнящих Л.М., Лушникова Е.Л., Непомнящих Г.И., 1986; Шкурупий В.А., Самойлов К.О., Верещагина Г.Н., 2001; Weibel E.R. et al, 1969; Weibel E.R., 1979).

Структуру железы изучали и фотографировали в световом и электронном микроскопах. При увеличении 4000 в электронном микроскопе фотографировали экзокриноциты - мукоциты и сероциты концевых отделов; соединительно-тканные клетки, эндотелиоциты лимфатических и кровеносных микрососудов. Фотографии с негативов печатали при увеличении 8000-15000.

Морфометрию сероцитов подчелюстной слюнной железы (по 30 клеток на каждую группу) проводили при конечном увеличении в 32000 раз с помощью закрытой тестовой системы с 144 точками.

Эндотелиоциты лимфатических и кровеносных капилляров (по 20 клеток на каждую группу) морфометрировали при конечном увеличении в 30000 раз с помощью многоцелевой открытой тестовой системы.

Статистическую обработку результатов проводили с использованием программ Excel и Statistica. Различия между сравниваемыми средними считали достоверными при р<0,05 (критерий Стьюдента).

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

1. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс интактной группы.

В структуре поднижнечелюстной слюнной железы выявляли смешанные и белковые концевые отделы, которые образовывали группы, включающие 3-4 ацинуса. Между отдельными группами концевых отделов имелись достаточно выраженные интерстициальные

пространства, в которых располагались кровеносные капилляры, одиночные фибробласты, лимфоциты, плазматические клетки, макрофаги, определялись узкие щелевидные просветы лимфатических капилляров. Лимфатические микрососуды наиболее хорошо были видны в области исчерченных выводных протоков, где интерстициальные пространства отличались наибольшими размерами.

В связи с тем, что в сероцитах поднижнечелюстной слюнной железы хорошо выявляются все цитоплазматические органоиды, а в мукоцитах они маскируются большим количеством глобул слизистого секрета, в дальнейшем морфометрически исследовали только сероциты.

Сероциты поднижнечелюстной слюнной железы находились на разных стадиях секреторного цикла. Выделяли начальную стадию синтеза секрета, когда секреторный материал, расположенный в области скопления мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума, не был ограничен мембраной. Стадию сформированных секреторных гранул и их накопления в надъядерной области клетки. Стадию выведения секреторного материала, которая отличалась скоплением секрета в апикальной части клетки в области микроворсинок.

Кровеносные капилляры располагались между группами концевых отделов. В перикапиллярном пространстве наблюдали небольшие разнонаправленные скопления коллагеновых волокон, среди которых находились фибробласты, либо выявлялись их отростки. Эндотелиоциты кровеносных капилляров характеризовались большим содержанием микропиноцитозных везикул - люминальных, цитоплазматических и базальных. В митохондриях были хорошо выражены кристы, гранулярный эндоплазматический ретикулум, свободные полисомальные рибосомы и лизосомы были достаточно хорошо представлены. На люминальной поверхности эндотелиальных клеток обнаруживали микроворсинки и выросты. Среди межэндотелиальных контактов отмечали контакты типа наложения, конец в конец и интердигитации.

Лимфатические капилляры имели рельефную, складчатую люминальную поверхность эндотелиальной выстилки. Ядра эндотелиоцитов выбухали в просвет капилляров. В эндотелиоцитах лимфатических капилляров в меньшем количестве, чем в эндотелиоцитах кровеносных микрососудов, выявлялись микропиноцитозные везикулы и клеточные органоиды. В перикапиллярном пространстве располагались крупные пучки коллагеновых волокон.

2. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс после термического ожога кожи при спонтанном развитии ожоговой раны.

Через 3-е суток после термического ожога кожи отмечали структурные изменения в поднижнечелюстной слюнной железе.

Происходило резкое уменьшение размеров интерстициальных пространств. Возрастала плотность прилегания друг к другу концевых отделов. Исчезали, отмечаемые у интактных животных, широкие интерстициальные пространства вокруг исчерченных выводных протоков. Микрососуды и клетки соединительной ткани располагались плотно друг к другу в узких межтканевых щелях. Возрастало содержание клеток соединительной ткани. Просветы лимфатических капилляров были расширены.

В ультраструктурной организации сероцитов наблюдали дезинтеграцию органоидов. Не возможно было выделить стадии секреторного цикла, так, как секреторные включения, имеющие низкую электронную плотность, ограниченные и неограниченные мембраной обнаруживались в цитоплазме всех клеток концевых отделов. Митохондрии имели электронно-плотный матрикс. Происходила дезорганизация структуры гранулярного эндоплазматического ретикулума и комплекса Гольджи.

Известно, что нарушения в структуре гранулярного эндоплазматического ретикулума и митохондрий являются наиболее ранним и чувствительным показателем альтерации клеток (Браун А.Д.,-Моженок Т.П., 1987).

Морфометрические исследования ультраструктуры сероцитов выявили снижение объемной плотности митохондрий на 44%, при этом в 2 раза снижалась численная плотность органоидов. По-видимому, за счет набухания и дезорганизации мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума, его объемная плотность возрастала на 40%. Снижались численные плотности прикрепленных и свободных полисомальных рибосом на 20 и 26%, соответственно. На 44% увеличивалась объемная плотность лизосом. Значение объемной плотности секреторных включений достоверно не отличалось от соответствующего параметра у крыс интактной группы.

В структуре кровеносных капилляров отмечали истончение эндотелиальной выстилки. Наблюдали отек периваскулярного пространства, дезорганизацию пучков коллагеновых волокон в интерстиции.

В ультраструктурной организации эндотелиоцитов кровеносных капилляров происходило снижение на 68% объемной плотности митохондрий и на 36% снижалась численная плотность этих органоидов. Объемная плотность мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума и численная плотность прикрепленных рибосом имели тенденцию к снижению. Численная плотность свободных полисомальных рибосом уменьшалась на 26%. Объемная плотность люминальных

микропиноцитозных везикул снижалась на 22%. Объемная плотность цитоплазматических микропиноцитозных везикул достоверно не отличалась от соответствующего параметра у животных интактной группы, а объемная плотность базальных микропиноцитозных везикул возросла на 24%. Объемная и численная плотности лизосом достоверно не отличались от соответствующих значений в контроле.

При исследовании структуры лимфатических капилляров отмечали участки с нарушением целостности люминальной и базальной поверхности эндотелиальной выстилки. Наблюдали значительный отек периваскулярного пространства и дезорганизацию пучков коллагеновых волокон в интерстиции.

В ультраструктурной организации эндотелиоцитов лимфатических капилляров происходило снижение на 45% объемной плотности митохондрий и на 30%, снижалась численная плотность органоидов. Объемная плотность мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума уменьшалась на 32%, численная плотность прикрепленных рибосом - на 38%. Численная плотность свободных полисомальных рибосом снижалась на 47%. Объемная плотность люминальных микропиноцитозных везикул была меньше значения в контроле на 34%, цитоплазматических микропиноцитозных - на 28%, а объемная плотность базальных микропиноцитозных везикул уменьшалась на 35%. Объемная и численная плотности лизосом возросли на 27 и 32%, соответственно.

Описанные выше изменения структурных компонентов подчелюстной слюнной железы сохранялись, и возрастала степень их выраженности в течение всего исследуемого послеожогового периода.

Следовательно, после термического ожога кожи в структуре поднижнечелюстной слюнной железы развивались структурные изменения, свидетельствующие о нарушении ее функции. По-видимому, происходила дегидратация органа, так, как резко снижались размеры интерстициальных пространств, возрастала плотность расположения концевых отделов, выводных протоков, микрососудов и клеток соединительной ткани в структуре железы. Ультраструктурные изменения сероцитов, заключающиеся в снижении содержания в цитоплазме митохондрий и рибосом, вероятно, в связи с нарушением транспортных процессов, приводили к накоплению секрета во всех клетках и, в результате, нарушению цикличности синтетических процессов. Процессы набухания эндотелиоцитов кровеносных и лимфатических капилляров и отек интерстиция свидетельствовали о снижении эффективности обменных процессов в строме поднижнечелюстной слюнной железы.

3. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс после термического ожога кожи в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны

Через 3-е суток после термического ожога кожи при использовании аппликаций контейнеров с цеолитами на ожоговую рану отмечали мозаичность в структуре поднижнечелюстной слюнной железы. Наблюдали участки в органе, в которых происходило уменьшение размеров интерстициальных пространств, в том числе и вокруг исчерченных выводных протоков. Возрастала плотность прилегания друг к другу концевых отделов. В то же время отмечали участки железы с отечной стромой и стазом эритроцитов в кровеносных капиллярах. Просветы лимфатических капилляров были расширены.

При исследовании ультраструктурной организации сероцитов невозможно было выделить стадии секреторного цикла, так, как секреторные включения обнаруживались в цитоплазме всех клеток концевых отделов. Это, по-видимому, было связано с нарушением транспорта и выведения секреторных гранул в связи с деструкцией микротрубочек цитоскелета, в результате отека клеток (Dehpouг A.R. et а1., 1995; ScЫicMmg К, et а1., 1995).

Морфометрические исследования ультраструктуры сероцитов выявили снижение объемной плотности митохондрий на 27%, при этом на 55% уменьшалась численная плотность митохондрий. Объемная плотность мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума была снижена на 32%. Уменьшались численные плотности прикрепленных и свободных полисомальных рибосом на 69 и 60%, соответственно. Объемная и численная плотности лизосом достоверно не изменялись. Объемная плотность секреторных включений возрастала на 66%.

В ультраструктурной организации эндотелиоцитов кровеносных капилляров происходило снижение на 40% объемной плотности митохондрий. Объемная плотность мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума уменьшалась на 58%, а численные плотности прикрепленных и свободных полисомальных рибосом - на 44%. Объемная плотность люминальных микропиноцитозных везикул снижалась на 42%, цитоплазматических микропиноцитозных везикул - на 64%, а объемная плотность базальных микропиноцитозных везикул - на 32%.

При исследовании структуры лимфатических капилляров отмечали участки с нарушением целостности эндотелиальной выстилки. Наблюдали значительный отек периваскулярного пространства и дезорганизацию пучков коллагеновых волокон в интерстиции.

В ультраструктурной организации эндотелиоцитов лимфатических капилляров происходило снижение на 29% объемной плотности митохондрий и на 25% снижалась численная плотность органоидов. Объемная плотность мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума уменьшалась на 36%, численная плотность прикрепленных рибосом - на 41%. Численная плотность свободных полисомальных рибосом снижалась на 38%. Объемная плотность люминальных микропиноцитозных везикул была меньше значения в контроле на 26%, цитоплазматических - на 22%, а объемная плотность базальных микропиноцитозных везикул уменьшалась на 30%. Объемная и численная плотности лизосом возросли на 20 и 26%, соответственно.

Таким образом, в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны использованием контейнеров с цеолитом, в течение 3-х суток после термического ожога кожи в структуре поднижнечелюстной слюнной железы развивались деструктивные изменения, имеющие мозаичный характер. В одних участках железы происходила дегидратация органа, при этом снижались размеры интерстициальных пространств, возрастала плотность расположения концевых отделов, выводных протоков, микрососудов и клеток соединительной ткани. В других участках железы отмечали отек стромы органа.

Ультраструктурные изменения сероцитов, заключающиеся в снижении содержания в цитоплазме митохондрий, рибосом, мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума, были в большей степени выражены, чем в сероцитах железы органа животных со спонтанным развитием ожоговой раны. Однако при коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны не наблюдали дезорганизации мембран гранулярного ретикулума в сероцитах и, по-видимому, как следствие продолжающихся синтетических процессов, происходило возрастание объемной плотности секреторного продукта. В то же время секрет накапливался во всех клетках, что свидетельствовало о нарушении цикличности синтетических процессов. Так же, как и при спонтанном развитии ожоговой раны происходило набухание эндотелиоцитов кровеносных и лимфатических капилляров, отек интерстиция, что являлось отражением снижения транспортных процессов в тканевом микрорайоне поднижнечелюстной слюнной железы. Следовательно, коррекция лимфатического дренажа ожоговой раны не оказывала протективного действия на структурную организацию поднижнечелюстной слюнной железы в раннем послеожоговом периоде.

В последующие сроки эксперимента сохранялись дистрофические изменения в структуре микрорайона подчелюстной слюнной железы, но их выраженность уменьшалась.

К 30-м суткам после термического ожога кожи, в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны использованием контейнеров с цеолитом, происходило восстановление структуры поднижнечелюстной слюнной железы. Восстанавливались размеры интерстициальных пространств и плотность расположения концевых отделов и выводных протоков. Соответствовала уровню в контроле ультраструктурная организация сероцитов и эндотелиоцитов кровеносных капилляров. Однако просветы лимфатических микрососудов сохранялись расширенными. В эндотелиоцитах лимфатических капилляров была снижена объемная- плотность люминальных микропиноцитозных везикул. Сероциты были переполнены белковым секретом. Отмеченные факты свидетельствуют о сохранении недостаточности транспортных функций в структуре железы.

4. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс после термического ожога кожи в условиях лечения ожоговой раны с использованием мази «Левомеколь»

Через 3-е суток после термического ожога кожи при использовании аппликаций мази «Левомеколь» на ожоговую рану, так же как и при коррекции лимфатического дренажа, отмечали мозаичность в структуре поднижнечелюстной слюнной железы. В участках органа с преобладанием белковых концевых отделов происходило уменьшение размеров интерстициальных пространств, возрастала плотность прилегания друг к другу концевых отделов. В участках железы с преобладанием смешанных концевых отделов, интерстициальные пространства между группами ацинусов были расширены. Иногда, рядом со смешанными концевыми отделами, обнаруживали свободно лежащие сероциты белковых полулуний, что, по-видимому, было связано с нарушением их связи со слизистыми клетками.

Наблюдали отек периваскулярных пространств, увеличение в интерстиции количества макрофагов, лимфоцитов и тучных клеток, появление нейтрофилов. Отмечали дегрануляцию тучных клеток.

При исследовании ультраструктурной организации сероцитов, как и в предыдущих случаях, невозможно было выделить стадии секреторного цикла, так, как секреторные включения, имеющие низкую электронную плотность, ограниченные мембраной, обнаруживались в цитоплазме всех клеток концевых отделов.

Морфометрические исследования ультраструктуры сероцитов выявили снижение объемной плотности митохондрий на 63%. Объемная

плотность мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума достоверно не изменялась, а численные плотности прикрепленных и свободных полисомальных рибосом снижались на 72 и 47%, соответственно. Объемная и численная плотности лизосом и объемная плотность секреторных включений, так же, как и при спонтанном заживлении ожоговой раны, достоверно не отличались от соответствующих значений в контроле.

Наблюдали отек периваскулярного пространства. В ультраструктурной организации эндотелиоцитов кровеносных капилляров происходило снижение на 32% объемной плотности митохондрий. Объемная плотность мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума уменьшалась на 45%. Численные плотности прикрепленных и свободных полисомальных рибосом снижались на 35 и 40%, соответственно. Объемная плотность люминальных микропиноцитозных везикул снижалась на 40%, цитоплазматических микропиноцитозных везикул - на 52%, а объемная плотность базальных микропиноцитозных везикул уменьшалась на 36%.

При исследовании структуры лимфатических капилляров, так же как и в других группах животных с ожогом кожи, отмечали участки с нарушением целостности эндотелиальной выстилки. Наблюдали значительный отек периваскулярного пространства и дезорганизацию пучков коллагеновых волокон в интерстиции. В ультраструктурной организации эндотелиоцитов лимфатических капилляров происходило снижение на 34% объемной плотности митохондрий и на 29% снижалась численная плотность органоидов. Объемная плотность мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума уменьшалась на 26%, численная плотность прикрепленных рибосом - на 48%. Объемная плотность люминальных микропиноцитозных везикул была меньше значения в контроле на 29%, цитоплазматических - на 25%, а объемная плотность базальных микропиноцитозных везикул уменьшалась на 33%. Объемная и численная плотности лизосом возросли на 23 и 28%, соответственно.

Описанные выше изменения сохранялись в течение всего эксперимента.

Интерес представляет тот факт, что при использовании мази «Левомеколь» нами было отмечено возрастание в интерстиции железы макрофагов и нейтрофилов. Это может быть следствием активации клеток - эффекторов воспаления в ожоговой ране при данном способе лечения.

К 30-м суткам эксперимента, при лечении ожоговой раны путем использования аппликаций мази «Левомеколь», в структуре поднижнечелюстной слюнной железы сохранялись деструктивные изменения. Увеличенными были размеры интерстициальных

пространств. Снижалась плотность расположения концевых отделов и выводных протоков, в строме органа сохранялись явления отека. Восстановительные процессы развивались в сероцитах. В то же время секрет отмечался во всех клетках, не определялись различия в стадиях секреторного цикла, что свидетельствовало о сохранении нарушения цикличности синтетических процессов. В структуре эндотелиоцитов кровеносных капилляров сохранялись дистрофические изменения, хотя величины объемных плотностей микропиноцитозных везикул соответствовали значениям в контроле. Как и при использовании аппликаций на ожоговую рану контейнеров с цеолитом, в большей степени дистрофические изменения сохранялись в эндотелиоцитах лимфатических капилляров, что, по-видимому, являлось отражением присутствия токсичных метаболитов в интерстиции железы.

выводы

1.При термическом ожоге кожи ЗА степени в поднижнечелюстной слюнной железе развиваются структурные изменения, свидетельствующие о нарушении ее функции:

а) в сероцитах уменьшаются объемная плотность митохондрий и численные плотности рибосом, происходит дезорганизация мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума;

б) не выявляются стадии секреторного цикла сероцитов, так как секрет накапливается во всех клетках концевых отделов железы;

в) снижаются размеры интерстициальных пространств и возрастает плотность расположения концевых отделов, выводных протоков, микрососудов и клеток соединительной ткани в структуре железы;

г) происходит набухание эндотелиоцитов кровеносных и лимфатических капилляров.

2. В условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны использованием контейнеров с цеолитом и при аппликации мази «Левомеколь», имеет место структурная гетерогенность поднижнечелюстной слюнной железы. В одних участках железы происходит снижение размеров интерстициальных пространств, возрастает плотность расположения концевых отделов, выводных протоков, микрососудов и клеток соединительной ткани. В других участках железы отмечается отек стромы органа.

3.При аппликации на ожоговую рану цеолита и мази «Левомеколь» развиваются более выраженные, чем при спонтанном развитии раневого процесса, ультраструктурные изменения клеток подчелюстной слюнной железы в ранний послеожоговый период.

4. При использовании аппликаций мази «Левомеколь», в ранний послеожоговый период в структуре железы отмечаются признаки активации системного воспалительного ответа, что выражается в возрастании нейтрофилов и макрофагов в просветах кровеносных микрососудов железы, адгезии клеток-эффекторов воспаления к эндотелию, увеличении количества нейтрофилов и макрофагов в интерстиции железы, появлении тучных клеток вокруг сосудов микроциркуляторного русла.

5.Коррекция лимфатического дренажа ожоговой раны использованием аппликаций контейнеров с цеолитом обусловливает более быстрое и эффективное восстановление структуры поднижнечелюстной слюнной железы в послеожоговом периоде.

Практические рекомендации

1. Полученные данные о нарушении структуры поднижнечелюстной слюнной железы после термического ожога кожи следует учитывать при разработке схемы лечения ожоговых больных.

2. В связи с выявленным значением эффективности лимфатического дренажа ожоговой раны для развития восстановительных процессов в поднижнечелюстной слюнной железе, можно рекомендовать местное использование покрытий с сорбционными свойствами для коррекции гомеостаза организма.

Список печатных работ Кириной Ж.А. по теме диссертации.

1. Бородин Ю.И. Состояние органов ротовой полости и регионарного лимфатического узла экспериментальных животных в условиях термического ожога кожи/ Бородин Ю.И., Бгатова Н.П., Паничев A.M., Кирина Ж.А., Викторова Ю.М., Садыкова B.C. //Хирургия. Морфология, Лимфология. Научно-практический журнал. - 2004. - Т. 1. -№1.-С. 24-27.

2. Бгатова Н.П. Морфологические критерии эффективности использования природного сорбента в первой фазе раневого процесса при термическом ожоге кожи / Бгатова Н.П., Викторова Ю.М., Кирина Ж.А., Викторов А.В., Садыкова B.C.// Морфология. -2004. -Т. 126. -№ 4. - С. 18.

3. Бородин Ю.И. Исследование роли лимфатического дренажа в формировании процессов воспаления и регенерации при ожоге кожи / Бородин Ю.И., Бгатова Н.П., Викторова Ю.М., Кирина Ж.А.// Морфологические ведомости (приложение). - 2004. - № 1-2. - С. 15.

4. Бгатова Н.П. Структурная организация слизистой оболочки десны и подчелюстной слюнной железы в условиях термического ожога кожи

/Бгатова Н.П., Кирина Ж.А., Викторова Ю.М., Викторов А.В, Садыкова B.C.// Фундаментальные проблемы морфологии. Материалы международной научной конференции. Минск, 2004. - С. 18-19.

5. Бгатова Н.П. Морфологическое исследование различных органов в условиях термического ожога кожи. / Бгатова Н.П., Викторов А.В., Кирина Ж.А., Викторова Ю.М., Садыкова B.C., Долгова О.И. //Актуальные проблемы морфологии. Сборник научных трудов. Красноярск, 2004. - С. 36-38.

6. Долгова О.И. Структурная организация тканевых микрорайонов различных органов в условиях термического ожога кожи. / Долгова О.И., Викторов А.В., Кирина Ж.А., Садыкова B.C., Бгатова Н.П. // Материалы научной конференции с международным участием. «Проблемы лимфологии и интерстициального массопереноса». Новосибирск, 2004. Т. 10. Ч. 1.С. 153-155.

7. Бгатова Н.П. Использование экологически чистых природных минеральных комплексов для лечения ожоговых ран/ Бгатова Н.П., Паничев A.M. Викторов В.В, Кирина Ж.А., Викторова Ю.М., // Междун. научно-практическая конференция «Актуальные аспекты экологической, сравнительно-видовой, возрастной и экспериментальной морфологии». Улан-Удэ, 2004, С. 20-23.

8. Бгатова Н.П. Состояние лимфатического русла ожоговой раны кожи при использовании природного минерального комплекса. / Бгатова Н.П., Викторова Ю.М., Кирина Ж.А. //Сборник научных трудов посвящ. 80-летию проф. П.Ф. Степанова. Смоленск, 2004. - С. 39-42.

Подписано в печать 27.12.07. Формат 60x84/16. Бумага писчая. Печать офсетная. Гарнитура «Таймс». Уч.-изд. л. 1,0. Усл.-печ. л. 1,0. Тираж 100 экз. Заказ 339.

Полиграфический участок ГПНТБ СО РАН. 630200, Новосибирск, ул. Восход, 15.

i- t bí\¿

Содержание диссертации, кандидата медицинских наук, Кирина, Жанна Александровна

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1.0Б30Р ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Структурно-функциональная организация микрорайона поднижнечелюстной слюнной железы.

1.1.1. Структура паренхимы железы.

1.1.2. Строение эндотелиоцитов лимфатических капилляров.

1.1.3. Строение эндотелиоцитов кровеносных капилляров.

1.1.4. Структурная организация интерстициальных пространств.

1.2. Структурно-функциональные изменения в организме при термических ожогах кожи.

1.3. Современные подходы к лечению термических ожогов кожи.

1.4. Характеристика природного ионообмешшка и сорбента цеолита.

Глава II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Глава III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ. СТРУКТУРНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ ПОДНИЖНЕЧЕЛЮСТНОЙ СЛЮННОЙ ЖЕЛЕЗЫ КРЫС

ПОСЛЕ ТЕРМИЧЕСКОГО ОЖОГА КОЖИ

3.1. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс интактной группы.

3.2. Структура поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 3-е суток после термического ожога кожи при спонтанном заживлении ожоговой раны.

3.3. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 3-е суток после термического ожога кожи в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны.

3.4. Структура поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 3-е суток после термического ожога кожи в условиях лечения ожоговой раны использованием мази «Левомсколь».

3.5. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 7 суток после термического ожога кожи при спонтанном заживлении ожоговой раны.

3.6. Структура поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 7 суток после термического ожога кожи в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны.

3.7. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 7 суток после термического ожога кожи в условиях лечения ожоговой раны использованием мази «Левомеколь».

3.8. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 15 суток после термического ожога кожи при спонтанном заживлении ожоговой раны.

3.9. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 15 суток после термического ожога кожи в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны.

3.10. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 15 суток после термического ожога кожи в условиях лечения ожоговой раны использованием мази «Левомеколь».

3.11. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 30 суток после термического ожога кожи при спонтанном заживлении ожоговой раны.

3.12. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 30 суток после термического ожога кожи в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны.

3.13. Структурная организация поднижнечелюстной слюнной железы крыс через 30 суток после термического ожога кожи в условиях лечения ожоговой раны использованием мази

Левомеколь».

ОБСУЖДЕНИЕ.

ВЫВОДЫ.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Структура поднижнечелюстной слюнной железы в условиях термического ожога кожи и коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны"

Актуальность проблемы

В последние годы получены новые сведения, подтверждающие важную роль слюны в поддержании гомеостаза полости рта (Edgar WJvL, 1990). Установлено, что характер слюноотделения, количественные и качественные изменения слюны в значительной степени определяют устошшвость и восприимчивость зубов к кариесу (Gubarevskaia V.L., Rybakova M.G., 1992). Важными являются рем1шерализующие свойства слюны (Edgar W.M, 1990). Наряду с секреторной функцией сшо1шые железы экскретируют продукты метаболизма, такие как креаппиш, мочевая кислота. В слюнных железах образуются и выделяются в кровь биологически активные вещества, такие, как паротин, фактор роста нервов, фактор роста эпителия, фактор роста фибробластов, инсулино-подобный фактор и др. (Johns ME. 1977.; Weber AL. 1992).

Известно, что неорганические вещества, в первую очередь кальций и фосфор поступают в эмаль m слюны. Слюна обеспечивает динамическое равновесие эмали зуба, постоянство ее состава за счет ионного обмена (Боровский ЕЛЗ., Леонтьев В.К., 2001; СунцовВГ.идр. 1992; Макарова ОБ., Пожарицкая М.М. 1988; Mihailov W., et al 1980).

Показано, что слюнные железы крайне чувствительны к различным воздействиям (Kress Е, Schulz HG, Neumann., 1993) и в условиях патологии снижается их функция (Gudziol H. 1995). Тем не менее, исследованию структуры и функции слюнных желез, в медищшской практике, уделяется недостаточно внимания (Gudziol H., 1995; Silver A.FL, 1998; Buchner A, David R. 1978; Asojo TA, Aire TA. 1983). Отсутствуют данные о структурно-функциональном состоянии слюнных желез в послеожоговом периоде, хотя проблема термических поражении кожи является одной m актуальных проблем совремешшй медицины (Бирюков M.JL, Белякова Т.Н., Дмитриев Г.И. 1985;Sheridan R.L., Ryan С.М, Yin L.M et al. 1998; Mikhailov W., Rusanova AG, Chikina NA, Avakumov VM. 1984).

Известно, что ожоговая травма сопровождается развитием неспецифического синдрома системного ответа на воспаление, который часто приводит к сшщрому полиорганной недостаточности. Различные воспалительные медиаторы и цитокшы шшциируют систелшый воспалительный ответ, играющий решающую роль в развитии микроциркуляторных нарушений н деструкции органов (Wakabayashi G. et al., 1996; Sheridan RJL. et al., 1998; Nakae R et al., 1999).

Важное место в поддержании жизнедеятельности органов и тканей занимает лимфатическая система (Бородин Ю.И., 1992-2004). Учитывая важную роль лимфатической системы в резорбции, транспортировке жизненно важных и токсичных для оргашгзма веществ (Титова Г Л 1999), ее вклад в формирование компенсаторно-приспособительных реакций при экстремальных воздействиях, в том числе при термических ожогах кожи (Бородин Ю.И. и др., 1995), необходимым является поиск способов саногешюго воздействия на патологический очаг путем направленной коррекции функций регионарного лимфатического русла на микроциркуляторном уровне (Любарский М.С., 1989; Бородин Ю.И. и др., 1995; Нимаев В.В., 1995).

В последнее время в лечешш ожогов наметилась тенденция к применению различных сорбционных материалов. Было показано, что применение сорбщюшю-аппликациошюй и лимфогрогаюй терапии ускоряет процесс очшцешш ожоговых ран от микробного заражения, помогает быстрее ликвидировать гнойный и некротический налет, позволяет лимфатической системе выполнять основные функции (лимфодренажную, лимфодетоксикационную, иммунологическую) и уменьшает общую интоксикацию организма (Любарский М.С., 1989; Нимаев В.В., 1995). Использование сорбционно-аппликацнонной терапии способствует более быстрому заживлению ожоговой раны (BodnerL,, et al 1991).

В литературе имеются единичные сведешш об эффективности использования природных цеолитов в качестве местных сорбентов при лечении раневых, ожоговых травм, а также различных гнойно-воспалительных заболеваний (Богомолов RR, 1995; Богомолов RR, Кулиш RR, Мшшна ЛА. и др., 1998; Богомолов RR и др., 2001-2003). Однако основные проблемы применения цеолитов в медищше связаны с недостаточной изученностью механизма действия природных минералов.

Цель исследования.

Выявить особенности структурной организации поднижнечелюстной слюнной железы после термического ожога кожи ЗА степени в условиях спонтанного развития раневого процесса и при коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны.

Задачи исследования

1. Изучить структурную организацию поднижнечелюстной слюнной железы (ультраструктуру сероцитов» эндотелиоцнтов кровеносных и лимфатических капилляров, структуру шггерстиция) в динамике развития раневого процесса после термического ожога кожи ЗА степени при спонтагаюм заживлении ожоговой раны.

2. Исследовать структуру поднижнечелюстной слюнной железы (ультраструктуру сероцитов, эндотелиоцнтов кровеносных и лимфатических капилляров, структуру шггерстиция) в динамике развития раневого процесса после термического ожога кожи ЗА степени при местном использовании аппликации мази «Левомеколь.

3. Изучить структурную орпшизацшо поднижнечелюстной слюнной железы (ультраструктуру сероцитов, эндотелиоцнтов кровеносных и лимфатических капилляров, структуру шггерстиция) в динамике развития раневого процесса после термического ожога кожи ЗА степени при аппликации цеолитовых контейнеров на ожоговую рану.

4. Провести сравнительный анализ морфологических изменений поднижнечелюстной слюнной железы при использовании различных подходов к лечению ожоговой раны.

Научная новизна результатов исследования

1. Методами световой, электронной микроскопии и морфометрии показано, что при термическом ожоге кожи ЗА степени в структуре поднижнечелюстной слюнной железы развиваются дистрофические изменения. Происходит уменьшение размеров шггерстициалыилх пространств, возрастает плотность расположения концевых отделов, выводных протоков, микрососудов и клеток соединительной ткани. В сероцитах снижается содержание митохондрий и рибосом, имеет место избыточное накопление секрета. Развивается периваскулярный отек и набухаше эвдсшшиоцитов кровеносных и лимфатических капилляров.

2. Выявлено, что в ранний послеожоговый период в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны использованием контейнеров с цеолитом, имеет место структурная гетерогенность поднижнечелюстной сшонной железы. В одних участках железы происходит возрастание размеров интерстициальных пространств и снижение плотности расположения концевых отделов, выводных протоков, микрососудов и клеток соединительной ткани, в других - отмечается накопление в интерстиции коллагеновых волокон и увеличение количества тучных клеток.

3. Впервые показано, что при использовании аппликаций мази <(Левомеколь» на ожоговую рану, в ранний послеожоговый период в структуре поднижнечелюстной слюнной железы отмечаются структурные признаки развития системного воспалительного ответа.

4. Показано, что через 30 суток после термического ожога кожи, в условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны использованием контейнеров с цеолитом, происходит более полное восстановлише структуры поднижнечелюстной слюнной железы, чем при применении мази <(Левомеколь».

Практическое значение работы.

Полученные количественные и качественные характеристики изменений в структурной организацш! поднижнечелюстной слюнной железы в условиях термического ожога кожи, могут быть использованы в качестве критериев для оценки характера и степеш! поражения органа в условиях эндотоксикоза.

Выявленное протективное действие на структуру подчелюстной слюнной железы использования цеолитовых контейнеров, в качестве корректоров лимфатического дренажа ожоговой раны после термического ожога кожи, следует учитывать при разработке рекомендаций по профилактике послеожоговых осложнений в органе.

Положения, выносимые на защиту:

1. После термического ожога кожи ЗА степени в структуре поднижнечелюстной слюнной железы развиваются дистрофические изменения, выраженность которых со временем возрастает.

2. Коррекция лимфатического дренажа ожоговой раны при использовашш аппликаций природного ионообменника и сорбента цеолита способствует более полному восстановлению структурной организации микрорайона подчелюстной слюнной железы в послеожоговом периоде.

Апробация результатов исследования.

Основные положения диссертации доложены на VII Конгрессе международной ассоциации морфологов (Казань, 2004); V Общероссийском съезде анатомов, гистологов и эмбриологов (Казань, 2004), Международной научной конференции (Минск, 2004); научной конференции с международным участием «Проблемы лнмфолопш и интерстициального массопереноса» (Новосибирск, 2004); международной научно-практической конференции «Актуальные аспекты экологической, сравнительно-видовой, возрастной и экспериментальной морфологии» (Улан-Удэ, 2004).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 8 печатных работ.

Внедрение результатов исследования.

Результаты диссертационной работы используются в лекционных курсах и семинарских занятиях на кафедре анатомии, физиологии и валеологии Новосибирского государственного педагогического университета и кафедре морфологии Новосибирской государственной медицинской академии.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 198 страницах машинописного текста. Содержит 37 таблиц, иллюстрирована 46 рисунками. Диссертационная работа состоит из введения, материалов и методов исследования, результатов собственных исследований и их обсуждения, выводов.

Заключение Диссертация по теме "Гистология, цитология, клеточная биология", Кирина, Жанна Александровна

выводы

1. При термическом ожоге кожи ЗА степени в подшгжнечелюстнои слюнной железе развиваются структурные изменения, свидетельствующие о нарушении ее функции: а) в сероцитах уменьшаются объемная плотность митохондрий и численные плотности рибосом, происходит дезорганизация мембран гранулярного эндоплазматического ретикулума; б) не выявляются стадии секреторного цикла сероцитов, так как секрет накапливается во всех клетках концевых отделов железы; в) снижаются размеры интерстициальных пространств и возрастает плотность расположения концевых отделов, выводных протоков, микрососудов и клеток соединительной ткани в структуре железы; г) происходит набухание эндотелиоцитов кровеносных и лимфатических капилляров.

2. В условиях коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны использованием контейнеров с цеолитом и при аппликации мази «Левомеколь», имеет место структурная гетерогенность поднижнечелюстной слюнной железы. В одних участках железы происходит снижение размеров интерстициальных пространств, возрастает плотность расположения концевых отделов, выводных протоков, мнкрососудов и клеток соединительной ткани. В других участках железы отмечается отек стромы органа.

3. При аппликации на ожоговую рану цеолита и мази «Левомеколь» развиваются более выраженные, чем при спонтанном развитии раневого процесса, ультраструктурные изменения клеток подчелюстной слюнной железы в ранний послеожоговый период.

4. При использовании аппликаций мази «Левомеколь», в ранний послеожоговый период в структуре железы отмечаются признаки активации системного воспалительного ответа, что выражается в возрастании нейтрофилов и макрофагов в просветах кровеносных микрососудов железы, адгезии клеток-эффекторов воспаления к эндотелию, увеличении количества нейтрофилов и макрофагов в интерстиции железы, появлении тучных клеток вокруг сосудов микроциркуляторного русла.

5. Коррекция лимфатического дренажа ожоговой раны использованием аппликаций контейнеров с цеолитом обусловливает более быстрое и эффективное восстановление структуры поднижнечелюстной слюнной железы в послеожоговом периоде.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Полученные данные о нарушении структуры поднижнечелюстной слюнной железы после термического ожога кожи следует учитывать при разработке схемы лечения ожоговых больных.

2. В связи с выявленным значением эффективности лимфатического дренажа ожоговой раны для развития восстановительных процессов в поднижнечелюстной слюнной железе, можно рекомендовать местное использование покрытий с сорбционными свойствами для коррекции гомеостаза организма.

163

Библиография Диссертация по биологии, кандидата медицинских наук, Кирина, Жанна Александровна, Новосибирск

1. Азолов В.В., Пономарева H.A. Роль системы медицинской реабилитации в профилактике и снижении инвалидности вследствие ожогов //Междунар. конф. «Интенсивное лечение тяжелообожженных»: Тез. конф., 25-26 февр. 1992 г. - М., 1992. - С268-269.

2. Азолов В.В., Жепшов ВА., Перетягин С.П. Российская ожоговая служба на современном этапе проблемы и возможности их решения //Материалы седьмой науч.-практ. конф. По проблеме термических поражений. - Челябинск, 1999. - С.3.6

3. Алиев A.A. Лимфа и лимфообращение у продуктивных животных. Л.: Наука. -1982.-288 с.

4. Алимов ГЛ., Банин ВВ., Бобрик И.И. Сосудистый эндотелий. Киев: Здоровье. -1986.-248 с.

5. Арьев TJL. //Ожоги и отморожения. М Медицина", 1972. -120 с.

6. Бабаева AT. Иммунологические механизмы регуляции восстановительных процессов. М. Медицина, 1972. - 125 с.

7. Банин В.В., Алимов ГЛ. Эндотелий как метаболически активная ткань //Морфология. 1992. - Т. 102. - № 2. - С. 10-24.

8. Барабой В.А., Орел В.Э., Карнаух И.М Перекисное окисление и радиация. Киев: Наукова думка, 1991.- 255 с.

9. Ю.Батухтина Н. П. Соединительноткашшй остов поднижнечелюстной слюнной железы человека в пре- и посгнатальном онтогенезе // Краснояр. гос. мед. акад. канд. мед. наук, шифр спец-сти 14.00.02 Красноярск- 1997. С. 18.

10. П.Бгатов В.И. Минеральная среда и здоровье твое, мое и братьев наших меньших, или сладкие земли. Новосибирск, 1999. 70 с.

11. Бгатов В .И. Подходы к изучению литофагии // Природные литералы на службе человека (Минеральная среда и жизнь): Международная научно-практическая конференция.- Новосибирск, 1997. С.3-5.

12. Бгатов В.И, Бгатов A.B., Ван A.B., Паничев A.M. Проблемы сорбционной детоксикации внутренней среды организма: Международный симпозиум. -Новосибирск, 1995. С25-29.

13. М.Бгатов ВН., Ван A.B. Состав и распространите природных иошггов на юге Сибири//Яечебнсюздоров1шшы1ые факторы Алтая: Сб. научи. Трудов. -Новосибирск, Белокуриха: РУ СО РАМН, 1993. С. 8-9.

14. Бгатов В.И, Лазарев ПЛ., Спешилова МА. Литофагия и мамонтовая фауна. -Якутск: Якутский научный центр СО АН СССР, 1989. 32 с.

15. Бгатова Н.П., Новоселов Я.Б., Использование биолошчески активных добавок на основе природных минералов для детоксикации организма, Новосибирск, 2000 -237с.

16. Белицкий И.А., Панин JI.E. Мш1ералого-фго11ко-хтшческие свойства и биологическая акптность цеолитсодержащих горных пород // Физико-химические и медико-биологические свойства природных цеолитов : Сборник научных трудов. Новосибирск, 1990. - С. 5-13.

17. Беляков RA. Неивазивные сорбцнонные методы // Эфферентная терапия. 1996. -Т.2.-N4.-C. 17-19.

18. Беляков H.A. Эндогенные интоксикации и лимфатачесая система //Эфферентная терапия. 1998.-Т. 4.-N2.-С. 11-16.

19. Беляков RA. Энтеросорбция. JI.: Центр сорбционных технологии, 1991.-125с.

20. Беляков НА., Владыка A.C., Малахова MJL, Соломешшков AB., Шугаев А.И. Концентрация в крови и биологическая акптность молекул средней массы при критических состояниях организма // Анеспвиология и реаниматология. 1987. -N3.-С. 41-44.

21. Бижко Бондарь В.К., Слесаренко C.B. Локальная сорбщш при ожоговой травме // Новые средства и сферы клинического применения сорбщганной детоксикации оргашвма: Тез. докладов. -Днепропетровск, 1985.- С. 155 156.

22. Бирюков MJL, Белякова Т.Н., Дмитриев T.R Послеожоговые рубцы строение, разновидности, осложнения //Acta Chir. Plast, 1985.-T. 21, № 2.-C.85-92.

23. Блапггко Е.М., Полякевич A.C. "Литовит" в комплексном подходе к лечешпо ожоговой болезни /Методичка для врачей/.- Новосиб1грск, 1998.-С.ЗЗ.

24. Богомолов HJL Применение минерала "шивыртуин" для лечения перитошгга и ран // Сборшпс. тез. докл. юбилейной научно-пракпгч. конф., посвящешюй 75-летшо 354 окружного воешю-клншиеского госпиталя.- Екатеринбург, 1995.-С. 137-138.

25. Богомолов Н.И., Крюкова В.В., Богомолова H.H., Цепелев В.Л., Хатькова А.Н. Способ лечения гнойных ран. Заявка на патент. № входящ. 017106. Penieinie о выдаче № 2134809 от 04.062003.

26. Богомолов Н.И., Кулиш Н.И., Мшшна JLA. и др. Способ лечения перитонита // Патент РФ. №2123361 юг. А61М31/00, А61КЗЗ/06,1998.

27. Богомолов Н.И., Чередашк А.В., Богомолова Н.Н. и др. Способ лечения панкреонекроза// Патент РФ. № 2188045 кл. A61M31/00,A61K33/06,31/197,2002.

28. Богомолов Н.И., Чередник А.В., Богомолова НЛ., Богомолова Н.Н., Белинов Н.В. //Способ лечения гнойных ран. Патент РФ. № 2195291 кл. А61КЗЗ/06, А61Р17/02, 33/14,2001.

29. Боровский ЕВ., Леонтьев В.К. Биолопш полости рта. М, 2001. с. 126-289.

30. Боровский ЕВ., Леус П.А. Роль некоторых факторов в возникновении кариеса зубов // Стоматология. 2001. - N4. - С. 15.

31. Боровский ЕВ., Леус П.А., Кузьмина Э.М. Состав и свойства слюны в норме и при кариесе зубов: Методические рекомендации для субординаторов. М., 1980. - 37с.

32. Бородин Ю.И. Лимфодренажный фактор эндоэколошческого равновесия // Проблемы лимфолопш и эндоэколопш: Материалы междун. симпоз. Новосибирск, 1998. С. 50-53.

33. Бородин Ю.И. Лимфолопш как наука: некоторые итоги и перспективы// Проблемы клинической и экспериментальной лимфолопш: Материалы международной конференции. Новосибирск, 1996-С.31-42.

34. Бородин ЮЛ О функциональном взаимодействии сорбирующих веществ с лимфатическими структурами// Проблемы сорбционной детоксикации внутрешшй среды организма: Международный симпозиум.-Новосибирск, 1995.-С.З-7

35. Бородин Ю.И Репюнарная гемо- и лимфощфкуляция и ее место в реализации общей циркуляторной схемы организма // Лимфолопш. Эксперимент, клиника: Труды ИКиЭЛ СО РАМН, 1995.-Т.З.-С.5-8.

36. Бородш1 ЮЛ. Саногешюе влияше некоторых факторов экологических воздействийна лимфаппескую систему // Вестник Росс. Акад. мед. наук. 1994. -№7.-С. 18-21.

37. Бородин Ю.И., Бгатова ИНДТашиев А.М., Кокшарова В.П., Пожидаева A.A., Силкин С.Н., Гульков А.Н. Влияние природных цеолитов на лимфатический дренаж кожи и структуру печени в условиях тершгческого ожога. // Материалы

38. Первого съезда лимфологов. Бюлл. НЦССХ им. А.НЛэакулева. 2003.- Т. 4, N 5. -С.76.(А)

39. Бородин Ю.И., Ефремов А.В., Антонов А.Р., Начаров Ю.В., Калиничеенко А.В. Нарушения белкового и липидного обмена при синдроме длительного сдавления.-Новосиб1грск, 1997.- 78 с.

40. Бородат Ю.И., Ефремов А.В., Зыков А.А., Горчаков В.Н. Лимфатическая система и лимфотропные средства(пособие для практических врачей). Новосибирск, 1997. -136 с.

41. Бородин Ю.И., Зыков А А., Головнев В А., Горчаков В Л Природные биофлавоноиды как средства для эндоэколошческой санащш // Материалы конгресса «Человек и лекарство», Москва, 1998. - С. 30.

42. Бородин Ю.И., Любарский М.С., Летяпш А.Ю., Величко Я.И., Колосов НТ., Ефремов А.В., Смашн А.А., Нимаев В.В. Сорбищюгою-апликащютгые и лимфопропные методы в комплексном лечении ожогов. /СО РАМН ИКЭЛ. -Новосибирск. Изд-во МОРФ. - 1995. -143 с.

43. Бородин Ю.И., Сапин М.Р. Частная анатомия лимфатической системы. Кожа и опорно-двигательный аппарат. Новосибирск, 1995.-С 157.

44. Булай П.И. Биологические комплексы для заживления ожогов // Совремешгые подходы к разработке эффективных перевязочных средств. Мат. Междушр. Конф.-М., 1995.-С. 116-117.

45. Буянов В.М., Алексеев А А. Лимфолопш эндотоксикоза. М.:Мед1ЩИна, 1990. -272 с.

46. Быков BJT. Цитология и общая гистология: функциональная морфология клеток и тканей человека // Учеб.для мед.ин-тов.- СПб.: Сотис, 2001.- 520 с.

47. Валов С. Д. Морфофункщюнальная характеристика эпителия слюнных желез и нейроэндокринная регулящш его гистогенеза// Морфолошя -1995. 108. N 2. С. 52-53

48. Васильев И. А.В. Метаболшм ксенобиотиков в печенн и коррекщш его изменений в декомпрессионном периоде при синдроме длительного сдавления. Дисс. . канд. мед. наук. - Новосибирск, 1994. - 125 с.

49. Ван А.В. Биологическая роль минералов // Природные минералы на службе человека (Минеральная среда и жизнь): Международная наушо-практическая конференция. Новосибирск. -1997. - С. 14-15.

50. Виноградов В.В., Воробьева Н.Ф. Роль тучных клеток в структуре микроциркулягорного русла// Морфология и развитие сердечно-сосудистой системы в норме и эксперименте. М: Медицина, 1982. - С. 144-146.

51. Галиулнна MB. Электролитные компоненты смешанной слюны человека в условиях патолопш и физиолопш полости ртаУ/АМН ССР. Ин-т питшшя. Автореферат. M, 1988. - С. 17.

52. Гвазава И. Г., Шубникова Е. А., Погодина Л. С. Колебательные изменения в клетках поднижнечегаостных желез мышей в течение секреторного цикла// Архивы анатомии, гистологии и эмбриологии-1991. 101. N7,8. С. 74-80.

53. Герасимова Л Л, Смирнов C.B. Эффективность применения акгивировшшых растворов хлорида калия в лечешш ожоговых ранД Элеюрохимические методы в медицине/ Тез. Докл. Конф. Дагомыс. M., 1991. - с.61

54. Герасимова Л.И., Жижин В.Н., Кнжаев Е.В., Пугшщев А.Н. Термические и радиационные ожот. М.: Медицина,-1996.- С.245.

55. Дадашев А.И., Толстых Г.П., Дербенев В.А. антиоксидантные покрытия при лечешш ожоговых ран// Междунар. Конф. «Современные подходы к разработке эффективных перевязочных средств, шовных материалов. И полимерных имплантатов.-Москва, 1995.-С. 147-148

56. Душкин М.И., Саметова С.С. Гипохолестер1шем1гческий эффект энтеросорбции природной и протошгро ванной формам!! цеолитов Шивыртуйскош месторождения И Природные цеолиты России: Тез. Докл. Реепубл. совещ. -Новосибирск, 1992. С. 26-29.

57. Евтеев АЛ, Тюрников 1СШ, Смирнов С.В. Место тангенциального иссечения гранулирующих ран в оперативном лечешш глубоких ожогов//В кн.: УП научная конференция по проблеме «Ожопо>. СПб 1995. - С. 63-65.

58. Ерецкая Е.В., Сахно Л.А., Вовянко СЛ. и др. Экспериментальное обоснование раннего применения аппликационной сорбции в лечешш ран //Клин. хир. 1989. -N1.-С. 15-17.

59. Ефремов А.В. Морфофункциональные особенности лимфатического русла при СДС и его фармакологической коррекции. Дисс. . докт. мед. наук. -Новосибирск, 1992. - 539 с.

60. Жегалов ВЛ. Медицинская помощь обожженным на современном этапе// Актуальные вопросы лечешш термической травмы и ее последствий. М.: Медицина, 1995.-С. 19-25.

61. Жданов ДЛ. Анатолию и физиология лимфатической системы. Л.: Медгиз, 1952. - 336 с.

62. Зайцев В.Н. и др., Каденко И.Н., Василик Л.Н., Олейник В.Д. Природный цеолит-клиноптилолит как адсорбент для извлечения радионуклидов и солей тяжелых металлов// Изв. вузов. Химия и хим. технология. 1995. - Т. 38. - N 4-5. - С. 40-45.

63. Западнюк Ш1, Западнюк В.И., Захария Е.А. Лабораторные животные. Киев: Вища школа, 1974. - 304 с.

64. Каем Р.И. Ожош. Воспаление. Руководство для врачей/ Под ред. В.В. Серова,

65. B.C. Паукова. М., Медицина. -1995. - С. 457-468.

66. Казначеев В.П. «функционально-структурная единица тканей и органов -«микрорайот> // Трофическая функция шсто тематических барьеров в физиолопш и патолопш: Тез. докл. Всес. конф. Новосибирск, 1968. - С. 5-7.

67. Казначеев В JL, Субботин М.Я. Эподы к теории общей патолопш. Новосибирск: Наука Сибирское отделите, 1971. - 229 с.

68. Караганов Я.Л. Клеточная поверхность сосудистого эндотелия и ее роль в мехашомах транскапиллярного обмена // Архип анатомии, шстсшопш и эмбриолопш. -1978. Т. 62. - N11. - С. 5-21.

69. Караганов Я.Л., Кердиваренко RB., Левин В.Н. Микроанпюлопш. Кишшюв, 1982.-246 с.

70. Караганов ЯЛ, Миронов А.А., Сенатова И.Д. Реактивность сосудистого эндотелия // Сосудистый эндотелий/ Под ред. В.В. Куприянова. Киев: Наукова думка, 1986.1. C. 183-189.

71. Караганов Я.Л., Миронов ал., Сенатова И.Д. Сгрук1урно-фу1пщиональные аспекты сокрапшостн сосудистого эндотелия.// Успехи современной биологии. -1983. Т. 95. - N 3. - С. 42 М36.

72. Караганов ЯЛ, Романов RR Количественное изучите кровеносных капилляров в секретирующей слюнной железе. // Архив анатомии, гистол опт и эмбриологии.- 1979. Т. 76. -N 1. - С. 35-43.

73. Катинас Г.С., Полонский Ю.З. К методике анализа количественных показателей в цитологии //Цитология.- 1970.- Т. 12, №3.- С. 399^03.

74. Киселева Е.В., Шилов А.Г., Христолюбова Н.Б. Методы оценки основных параметров в стереолопш // Применение стереолошческих методов в цитологии. -Новосибирск: Наука, 1974. С. 33-53.

75. Кияшко А. А., Сморакж С. Л., Гарчян // Патология мембранной проницаемости 1975.-С. 30.

76. Коган Я.А. Сорбционные методы детоксикации при ожоговой болезни. Автореферат дисс—канд. мед. наук. М, 1984. -С. 20.

77. Козинец ГЛ, Самодумова ИМ., Грибовод А.Ф. и др. Применение кремнийорпшнческих сорбентов для местного лечения ожоговых ран // Клин. хир.- 1989.-N3.-С. 25-27.

78. Козлов B.R Гистофизнология системы микроциркуляции // Успехи физиол. наук. -1987. Т.18. - N 2. - С. 49-75.

79. Козлов В.И Некоторые морфологические особенности эндотелия сосудов шшроциркулягорного русла // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1971. -Т. 60.-N5.-С. 45-56.

80. Козлов В.И., Мельман Е JL, Нейко ЕМ., Шутка Б.В. Гистофизиология капилляров. С.-Петсрбурп Наука, 1994. - 233 с.

81. Копейкин В. Н., Денисов А. Б., Дубова JL В., Перова О. А. Оценка слюноотделительной функции. Создание референтных показателей// Пробл. нейростоматолопш и стоматолопш-1997. N2. С. 11-13.

82. Кудрин И.С. Анатомия органов полости рта. М.: Медицина, 1968. - 212с.

83. Кузин М.И. Синдром системного ответа на воспаление. // Хирургия.-2000.- №2.-С.54-59.

84. Кузин М.И., Сологуб В.К., Юденич В.В. Ожоговая болезнь.- М.'.Медицина, 1982.-С.160.

85. Куприянов В.В., Бородин Ю.И., Караганов Я.Л., Выренков IOJE. Микролимфология. М.:Медицина, 1983. - 240 с.

86. Куприянов В.В., Миронов А A., MirponoB В.А. Базальная мембрана сосудистого эндотелия //Успехи совр.биол. 1985. - Т.100. - N 2/5. - С. 36 -42.

87. Лавров В А. Молекулярные механизмы восспаления у обожженных. // Комбустиология -2003 С. 15

88. Лемус В.Б., Давыдов BJ3., Спивакова Р.П. Гемодинамика и энергетический обмен при ожоговом шоке и их взаимосвязь с тканевыми запасами катехоламинов// Травамтический шок. Л.: ЛенНИИСП, 1970. - С.93-95.

89. Леонтьев В.К. О функции слюнных желез и составе слюны при кариесе // Этиология и патогенез основных стоматологических заболеваний. М., 1977. - С. 36-41.

90. Леонтьев B.K. Об особенностях минерализующей функции слюны // Стоматология. 1983. - N6. - С. 5-8.

91. Лихачева Л.М., Турина OJO., Камышева BJB., Король А.П. Морфо-функциональные особенности трансэндотелиалыюго переноса в некоторых обменных микрососудах Адаптивные и компенсаторные механизмы системы мхгкроциркуляциии. М.:Медицина,1984. С. 72-80.

92. Логинов ЛЛ. Современные принципы местного лечения термических ожогов //Русский медицинский журнал, 2001 .-Т.9, №3-4.-С. 113-118.

93. Любарский М.С. Сорбционный способ лечения гнойных ран / Актуальные вопросы реконструктивной и восстановительной хирургии. Иркутск, 1989. С. 241.

94. Любарский М.С., Дремов Ю.И., Осадчая Н.М. и др. Аппликационно-сорбционные методы лечения ожогов у детей // Современные средства первой помощи и методы лечения ожоговой болезни: Тез. 3 Всесоюз. конф. М, 1986. - С. 119-120.

95. Любарский М.С., Мазушш В.Д. Сравнительная характеристика лечешш гнойных ран мягких тканей // Мат. конф. посвященной 50 летию ОКБ. -Новосибирск, 1990. С. 109 - 111.

96. Любинецкий АЛ., Соломко A.B., Лопатго Ю.С. и др. Сорбционные материалы в лечешш ран и раневой инфекции // Раны и раневая инфекция: Тез. 2 Всесоюз. конф. -М., 1986. С. 159 -160.

97. Ляпунов НА., Башура Г.С., Цыганенко АЛ. и др. Новые препараты для местного лечения ожогов//Междунар. Конф. Интенсивное лечение тяжел ообожженых.-Москва, 1992.-С. 112-114.

98. Ляпунов RA., Блатун Л.А., Куликовский Н.Ф. и др. Новые пенные препараты для местного лечешш ран и ожогов// Местное лечение ран: Материалы Всесоюзн. Конф. X, 1991. - С.93-94.

99. Макаридзе Н.Г. Адсрбцио1шая способность цеолитов к некоторым протеол!гпгчесюш ферментам // Сообще1ше АН ГССР, 1986. Т. 122. - N 3. - С. 621-623.

100. Макарова О.В., Пожарицкая М.М. Цитологическая характеристика смешшшой сшоны и оральных смывов у больных с хроническими воспалительными заболеваниями пародонта // Лаб. дело. 1988. - № 7. - С. 19-21.

101. Малахов С.Ф., Парамонов Б.А., Крашшк KB. Первая помощь и лечение при ожогах дистальных отделов конечностей// актуальные проблемы амбулаторной хирургии. Спб., 1992. - С. 55.

102. Марусанов В.Е., Михайлович В.А., Дрманская НА., Гуло С.Л. Характеристика стадий эндогенной шггоксикации // Эфферентная терапия. 1995. -T. 1.-N2. -С.26-30.

103. Маянская Н.Н., Ванюнина В.В., Новосёлов Я.Б. Биохимические основы профилактики и лечения заболеваний полости рта. Новосибирск, 2000.

104. Мовшев Б.Е.,Петров В.Н Изучение токсина обожженной кожи / Вопросы мед. Химш1,1975.- Т21.-№6.- С.633-637

105. Недошивина Р. В., Мовшев Б. Е., Федоров И. А. Фагоцитарная активность ретикуло-эвдотелиальной системы при ожоговой шггоксикации // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1981,-N8,- С. 22-24.

106. Непомнящих Л.М., Лушникова Е.Л., Непомнящих Г.И. Морфометрия и стереология пшертрофии сердца. Новосибрск: Наука, 1986. - 303 с.

107. Нетреба Г.К., Терещенко Т.М., Одинцова ГШ. Сорбционные свойства природных цеолитов. Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Естественные науки, 1993,3-4, С. 131-134.

108. Нимаев В.В. Микроанатомическая орпишзация репюнарного лимфатического русла и его сорбционная коррекция при термических ожогах ШБ степени. Автореф.дис. канд.мед.наук. Новосиб.медлп1-т. Новосибирск, 1995.-18 с.

109. Перехвальская Т.В. Вопросы стоматологической физиологаи.// Новосибирск, 2000. с. 36.

110. Парамонов БА., Порембский Я.О., Яблонский В.Г. Ожоги.// Руководство для врачей.- Спб. -СпецЛит. 2000. - 480 с.

111. Пауков B.C., Серов В.В. Сущность воспаления, его место в биологии и медицине// Воспаление. М.-.Медицина. -1995. - С. 30-39.

112. Пекарский ДЕ. Лечение ожоговых ран: Обзор.// Ортопедия, травматология и протезирование. -1981. №7. - С.70-74

113. Петрович Ю.А., Подорожная Р.П., Колосовский В.М. Связь секреции веществ в составе стоны с кариесом зубов // Материалы докладов V Всесоюзного съезда стоматологов. М, 1968. - С. 77-78.

114. Петров ПР. Роль центральной нервной системы, аденопшофнза и коры надпочечников при кислородной недостаточности. Л.:Медищша. -1967. -211 с.

115. Плохинский Н.А. Биометрия.- М.: Издательство Московского Утгоерситета, 1970.-368с.

116. Повстяной Н.Е. Физические методы лечения обожженных / Юпш. Х1гр. -1988.-N3.-С. 62-66.

117. Повстяной НЕ., Полищук С.А-, Перехрестенко ПЛ. Местное лечение глубоких ожогов / Клин. хир. 1982. - N 3. - С. 7 -12.

118. Правоторов Г.В. Гистофизиология оргшшых макрофагов в норме и при активирующих воздействиях. Авгореф.дис. . докт. биол. наук. Новосибирск, 1995.-42 с.

119. Правоторов ГЛ., Новиков В Д. Гистофизиология органных макрофагов (сравнительный анализ резидентных макрофагов и динамики их активации). -Новосибирск, 1996. 118 с.

120. Рабинович И. М., Банченко Г. В., Могилевский Г. М. Электронно-микроскопическая характеристика малых слюнных желез слизистой оболочки рта внорме//Здравоохранеш1еТуркме1П1Стана-1991. N4. С. 35-37.

121. Робу А.И. Стресс и гипоталамические гормоны. Кишинев: Штиинца. -1989.-220 с.

122. Романова JLK. Регуляция восстановительных процессов. М.: Издательство Московского университета, 1984. -176 с.

123. Рудовский В., Нзиловский В., Зиткевич В., Зинкевич К Теория и практика лечения ожогов.—М., 1980.-375 с.

124. Сапин М.Р., Борзяк Э.И. Внеорганные пути транспорта лимфы. — М.: Медицина, 1982.-246 с.

125. Саркисов ДС. Структурные основы гомеостаза // Гомеостаз. М.: Медицина, 1981. - С. 256-310.

126. Семерьянов Ю.Г. Состояние органов полости рта при заболевшшях слюнных желез: Автореферат диссертацш! кандидата медицинских наук. Омск, 1985.-23с.

127. Сенькова Т. М. Влияние некоторых факторов формообразования на структуры соедишггельноткаштого остова околоушной слюнной железы // Морфогенез тканей и органов в условиях адаптации : Сб. науч. тр. -Иркут. гос. мед. ин-т; Иркутск. 1990.- С. 47.

128. Серов ВВ., Шехтер А.Б. Соединительная ткань. М: Медицина, 1981. - 312 с.

129. Симбирцев A.C. Интерлейкин 1. Биологические свойства и перспективы применешгя в клиш1ке//Новости оториноларингологии и логопатолопш, 1997.-№4 (12).-С. 10-15.

130. Слесаренко C.B. Эффективность аппликационной сорбции в лечении ожоговой болезни. Автореферат дисс. .канд. мед. наук. -Харьков, -1990. 15 с.

131. Смирнов С JB., Логинов Л.П. Результаты лечения ожоговых ран с использованием отечественного антисептика мирами стина. В мат. симпоз.

132. Мирамистин новый отечестветшый антисептик широкого спектра действия". М., 2000, с. 17

133. Спиридонова TJT. Консервативное лечение ожоговых ран. // Русский Медицинский Журнал "Хирургия".- 2001 .-Т. 9.- №13-14.- С. 560-561

134. Спиридонова Т.Г. Патогенетические аспекты лечения ожоговых ран. // Русский Медицинский Журнал "Хирургия*Уролопш".- 2002.- Т. 10.- №8-9,- С. 395399

135. Сунцов ВТ., Дистель В.А., Леонтьев В.К. Первичная стоматологическая профилактика. Омск, 1992. - 117с.

136. Тарасевич ЮЛ Высокодисперсные литеральные адсорбенты //Журнал всесоюзного химического общества им.ДЛ.Менделеева. 1989. - Т.34. — С. 61-68.

137. Тарасенко М.Ю. профилактика и лечение ожоговой анемии: Дне. канд. мед. Наук.-СПб., 1994.-169 с.

138. Титова Т.П. Морфологические особенности изменений слизистой оболочки желудка при ожоговой болезни. Мат. гор. науч.-практ. конф.»Желудочно-кишечные кровотечения у тяжелопострадавших».- М.-1999.- С.7-10.

139. Умарова Б.А., Шапиро Ф.Б., Коган А.Е., Кулиева C.B., Струкова С.М. Участие тромбина в активации гепарина тучными клетками при иммобилизациошюм стрессе у крыс //Бюлл. эксперим. биол. мед. -1997. Т. 123. -N2.-С. 143-145.

140. Федоров Н.А, Мовшев Б.Е., Недошивина Р.В., Петров В.Н., Аверченко В Л Выделение токсических белковых фракций обожженной кожи и изучение их свойств //Вопросымед.Химии, 1974,Т20.-№4, С.371-375.

141. Харченко В. Г., Бижко И.П, Барвинский В Л. и др. Местное примените сорбента в лечении гнойных ран П Раны и раневая инфекция: Тез. 2 Всесоюз. конф. -М, 1986.-С. 153-154.

142. Хмельницкий O.K. Барьерно-защитные свойства слизистых оболочек пищеварительного тракта при кандидозных поражениях // Эферентная терапия. -1996. Т. 2.-N2.-С. 21-24.

143. Цамерян А.Г1 Ультраструктура стенки лимфатического капилляра диафрашы кролика //Ультраструктура и проницаемость стенки кровеносных капилляров в норме и патологии: Материалы симп. М., 1972. — С.30-31.

144. Чекмарева НА. Процессы репаративной регенерации в ране при действии биологически активных покрытий в эксперименте И Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2002, Том 133.- № 2 С. 226-230

145. Чернух А.М. Воспаление. М.: Медицина, 1979. - 448 с.

146. Чернух AM., Александров П.Н., Алексеев О.В. Микроциркуляция. М.: Медицина, 1975. - 456 с.

147. Чернышенко JLB., Котляров B.C., Кузьменко В.Н. Морфология лимфомикро-циркуляторного русла. Киев: Здоров я, 1985. 152 с.

148. Чернышенко JLB., Сушко А.А. Лимфатическая система в норме и патологии. Киев: Здоровья, 1973. - 200 с.

149. Шапорина М.Н. Цеолиты и глины как основа Б АД типа «Литовит». Природные минералы на службе человека. Новосибирск, «Экор». 2000.

150. Шахламов В.А., Цамерян A.IL Эндотелий лимфатических и кровеносных капилляров // Очерки по ультраструктурной организации сосудов лимифатической системы. Новосибирск, 1982. -210 с.

151. Ярема И.В., Уртаев Б.И. Трансфузия лимфы и ее компонентов. М.:ТОО "Журнал ЛКМ", 1995. - 240 с.

152. Allen SJ., Fraser R£., Laurent U.B., Reed jul, Laurent T.C. Turnover of hyaluronan in the rabbit pleural space // Appl Physiol. 1991. - V. 73. - N 4. - P. 14571460.

153. Agett P.J. Physiologi and metabolism of essential trace elements: An outline//Clin. Endocrinol Jvletab. 1985. - Vol.14. - N 3. - P.513-543.

154. Amarici C; Stroescu I; Motas C; Virtej P; Chelu F; Maer I; Tavitian O; Amarici A. Aspects of local secretory immunity, determined in the saliva, during physiologic pregnancy// Rev Chir Oncol Radiol O R L Oflalmol Stomatol Ser Stomatol- 33£- 19891997.

155. Anand S., Lai H., Dhaon B.K. Lymphoedema of the lower extremity as a complication of local burns. //Burns.-1998.- Dec.- Vol.24, N.8.- P.767-769.

156. Asojo TA, Aire TA. Microstereological and histochemical studies of the salivary glands of the giant rat (Cricetomys gambianus, waterhouse).// Acta Anat (Basel). — 1983 — V. 117.-№1.-P. 65-72.

157. Arturson G. Portv vears in burns research -the postbum inflammatory respons. Bums.- 2000.-N.26.- P. 599-604.

158. Aukland K. Nicolaysen G.Interstitial fluid volume: local regulatory mechanisms// Physiol. Rev. 1981. - V. 61. - N 3. - P. 556-643.

159. Banovac K.; De-Forteza R. The effect of mast cell chymase on extracellular matrix: studies in autoimmune thyroiditis and in cultured thyroid cells // Int. Arch. Allergy. Immunol. 1992. - V. 99. - N1. - P. 141-149.

160. Barone C.M, Jimenez D.F., Huxley VJH., Yang X.F. In vivo visualization of cerebral microcirculation in systemic thermal injury. // J Bum Care Rehabil.- 2002.- Jan-Feb.- Bd 21. -S20-25.

161. Baum BJ. Salivary gland fluid secretion during aging// J Am Geriatr Soc 1989-37(5)-p453-8

162. Bodner L, Knyszynski A, Adler-Kunin S, Danon D. The effect of selective desalivation on wound healing in mice. //Exp Gerontol.- 1991. V. 26. - №4. - P. 357363.

163. Bruns R.R., Palade G.R. Blood Capillares. II. Transport of ferritin molecules across the wall ogmuscle capillares //J. Cell. Biol. 1968. - V. 37. - N 3. - P. 277-299.

164. Bundgaard M. The three-dimentional organization of tight junction in a capillaiy endothelium revealed by serial-section electrone microscopy // J. Ultrastruct Res. 1984. -V. 88.-N l.-P. 1-17.

165. Buchner A, David R. Lipofuscin in salivary glands in health and disease//Oral Su^Oral Med Oral Palhol.- 1978. V.46. -№l.-P.79-86.

166. Bundgaard M, Hagman P., Crone C. The three-dimentional organization plasmalemmal vesicular profiles in the endothelium of rat heart capillaries // Microvasc. Res. -1983. -V. 25. -N4. P. 358-368.

167. Carter E.A. Insulin resistance in bum and trauma. // Nutr. Rev. -1998,-Jan.-Vol.561,N2.-P. 170-176.

168. Casley-Smith J.R. Ultrastructural studies of passage across cappllary walls // Microvasc. Res. 1980. - V. 19. - N 2. - P. 244-251.

169. Chang TJVtS. Sorbents and their clinical application. -New York, 1980. P. 195 -217.

170. Chappie C., Bowen B.D., Reed R.K., Xie S.L., Bert J.L. A model of human microvascular exchange: parameter estimation based on normals and nephrotics // Comput Methods. Programs. Biomed. 1993. - V. 41. - N 1. - P. 33-54.

171. Chevallier JM. The salivary glands// Soins Chir- 1989 -100-101>p38^7

172. Chicharro JL; Lucia A; Perez M; Vaquero AF; Urena R. Saliva composition and exercise// Sports Med -1998 -26(1> pl7-27

173. Cho K.W., Kim S.R, Hwang Y.R, Seul K.R Extracellular fluid translocation in perfused rabbit atria: implication in control of atrial natriuretic peptide secretion // J. Physiol. Lond. -1993. V. 468. - P. 591-607.

174. Collawn S.S. Re-epithelialization of the skin following C02 laser resurfacing. // J Cosmet Laser Then- 2001.- Sep.- Vol.3, N.3.- P. 123.

175. D'Ardenne A J.; Richman P.I.; Horton MA.; Mcaulay A.E.; Jordan-S. Co-ordinate expression of the alpha-6 integrin laminin receptor sub-unit and laminin in breast cancer // J. Pathol. 1991. - V. - 165. - N 3. - P. 213-220.

176. De Michelis B. Anatomy of the salivary glands// Minerva Stomatol -1968 -17(4)- pi 93218

177. Del is U, Emmelin N. Parasympathetic degeneration secretion of saliva in rats. // Q J Exp Physiol Cogn Med Sci. -1979.- V. 64. №2. - P. 109-117.

178. Defilippi P., Silengo L., Tarone G. Alpha 6.beta 1 integrin (laminin receptor) is down-regulated by tumor necrosis factor alpha and interleukin-1 beta in human endothelial cells//J. Biol. Chem. 1992. - V. 267. -N26. - P. 18303-18307.

179. Donath T. Current results of morphological studies on the salivary glands// Fogorv Sz-1980-73(12)-p381-3

180. Dowd FJ. Saliva and dental caries. Dent. Clin. North Am., 1999, Oct;43(4):579-97.

181. Edgar W.M. The role of salivz in the control of pH changes in human dental plague // Caries Res. 1990. - V. 10. - № 4. - P. 241 -254.

182. Ekstrom J, Mansson B, Tobin G. Relative secretory contributions of the three major salivary glands of the rat in response to substance P and super-sensitivity.// Arch Oral Biol. -1983. V. 28. №9. - P. 859-863.

183. Eroglu E., Sari A., Altuntas I, Delibas N, Candir C, Agalar F. The effect of GM-CSF (granulocyte macrophage colony stimulating factor ) on doxorubicin induced tissue necrosis and wound healing. // Indian J Cancet- 2000.- Dec.- Vol.37, N.4.-P.153-157.

184. Farber E. Programmed cell death: necrosis versus apoptpsis // Mod. Pathol. 1994. -V. 7.-N5.-P. 605-609.

185. Foldi M., Kaiserling E., Rau O., Preyer S. Is the «wick method» appropriate to determine the protein osmotic pressure of inters-titial fluid? // Lymphology. 1996. - N 29.-P. 91-94.

186. Garrett JR. The proper role of nerves in salivaiy secretion: a review// J Dent Res- 1987 -66(2)- p387-97

187. Gaur U; Choudhiy R; Anand C; Choudhiy S. Submandibular gland with multiple ducts//Surg Radiol Anal-1994-16(4>p439-40

188. Giacomo A. Bases morpholoques of ultrastructurales du systeme vas-cullaire lymphatique //Acta Bio-med. A teneo parm. -1990. V. 61. -N1-2. - P. MO.

189. Goldberg M. Salivary glands: structure, ultrastructure-current directions of certain research// Inf Dent-1976 -12-58(7)-p27-52

190. Grcenstein G. Periodontal.//1984.- Vol.55.-N.12.- P.684-688.

191. Guyton A.C., Coleman T.G., Granger H.J. Circulation: overal regulation // Ann. Rev. Physiol. -1979. Vol. 34. -N 1. -P. 13-46.

192. Gubarevskaia V.L., Rybakova M.G. The morphofunctional characteristics of the free cells and microvessels of the gingiva in inflammatory periodontal diseases // Stomatologia-Mosk. 1992. - № 1. - P. 27-29.

193. Gudziol H. Salivary gland diseases// Ther Umsch. 1995 - V. 52. -№11. P. 774779.

194. Haeckel R; Walker RF; Colic D. Reference ranges for mixed saliva collected lrom the literature// J Clin Chem Clin Biochem-1989 -27(4)- p249-52

195. Hagedom M, Pfrieme B, Mittermay C, Sandritter W. Intravital microscopy and post mortem histology of burn shock in rabbits (authors transl). // Beitr Pathol.- 1975.-Aug. -Vo1.-155, N 4. -P.398-409.

196. Halliwell B., Gutteridge JJvLC. Free Radicals in Biology and Medicine. 3-rd Ed. -Oxford, 1999.-P. 23.

197. Haneke E; Wilhelm G. Age-related changes of the labial salivary glands-a morphometric analysis// Dtsch Z Mund Kiefer Gesichtschir -1984 -8(4>p291-3

198. Hartmann G, Kim H, Piquette-Miller M. Regulation of the hepatic multidrug resistance gene expression by endotoxin and inflammatory cytokines in mice. // Int Immunopharmacol.- 2001.-V.l.-№2.-P. 189-199,

199. Hams H. et al. A light scattering assay for lymphocyte shape and its application to T and B lymphocete responses to culured ligh-walled endothelial cells // J. Immunol. Methods. 1996. -V. 192. -N1-2. -P. 179-185.

200. Harrison JD, Triantafyllou A, Garrett JR. The effect of sympathectomy on the occurrence of microliths in salivary glands of cat as studied by light and electron microscopy.// Arch Oral Biol. 1993. - V. 38. - № 1. - P. 79-84.

201. Harris P.R., Cover TJL.,Crowe D.R., Orenstein J.M.,Graham M.F., Blaser M.J.,Smith PD. Helicobacter pylori cytotoxin induces vacuolation of primary human mucosal epithelial cells // Infect Immun. 1996. - V. 64. - N 11. - P. 4867-4871.

202. Heckmann M., Douvves K., Peter R., Degitz K. Vascular activation of adhesion molecule mRNA and cell surface expression by ionizing radiation // Exp. Cell. Res. -1998. V. 238. - N 1. - P. 148-154.

203. Heckmann M., Pirthauer M., Plewig G. Adhesion of leukocytes to dermal endothelial cells is induced aflersingle-dose, but reduced after repeated doses of UVA // J. Invest Dermatol. 1997. - V. 109. - N 6. - P. 710-715.

204. HoIibka V. Lymphocyte migration through the wall of postcapillary venules in the fetal development of human palatine tonsil // Acta. Univ. Palacki. Olomuc. Fac. Med. 1991. -V. 130.-P. 71-86.

205. Holm C., Horbrand F., von Donnersmarck G.H., Muhlauer W. Acute renal failure in severely burned pattents. // Burns. -1999,- Mar. -Vol.25, N2,-P.171-178.

206. Hoying JJB. et al. Effect of basic fibroblast growth factor on human microvessel endothelial cell migration on collagen. 1. Correlates inversly with adhesion and cell density dependent. 1996. - V. 168. -N. 2. - P. 294-304.

207. Hu D., Chen B., Wang B., Ma D. The changes in the morphology and distribution of substance P and calcitonin-gene related peptide nerves in the anterior pituitary of scalded ats. // Zhonghua Shao Shang Za Zhi.- 2002.- Jun.-Vol.l 8, N 3.- P.l 76-179.

208. Huang Q, Xu W, Ustinova E, Wu M, Childs E, Hunter F, Yuan S. Myosin light chain kinase-dependent microvascular hyperpermeability in thermal injury. // Shock.-2003.- Oct -Vol.20, N 4. -P.363-368.

209. Huang Yuesheng, Li Ao, Yang Zongcheng. A prospective clinical study on the pathogenesis of multiple organ failure in severely burned patients// Burns. V.H. - P. 3034.

210. Hugoson A. Salivary secretion in pregnancy. A longitudinal study of flow rate, total protein, sodium, potassium and calcium concentration in parotid saliva from preganant women// Acta Odontol Scand 1972-30(l>p49-66

211. Hukkanen M; Konttinen Y.T.; Terenghi G.; Polak JJM. Peptide-containing innervation of rat femoral lymphatic vessels // Microvasc. Res. 1992. - V. 43. - N 1. - P. 7-19.

212. Humphrey SP; Williamson RT. A review of saliva: normal composition, flow, and function //J Prosthet Dent- 2001-;85(2> pi 62-9

213. Intaglietta M., Endrich B.A. Experimental and quantitative ana-lysis of microcirculatory water exchage // Acta physiol. Scand. -1979. Suppl. 463. - P.59-66.

214. Izutsu KT. Physiological aspects of salivary gland function// Compend Suppl- 1989-(13>pS450-6

215. Jelenko C., Wheeler V.L., Scott T.H. Stadies in burns. X-XI ethyl linoleat: The water holding lipid of the skin. A. The evidence. D. Effects on in vivo burn eschar// 1972. V.12. -№12.-P. 968-978.

216. Johns ME.The salivaiy glands: anatomy and embryology// Otolaryngol Clin North Am~ 1977 -10(2)- p261 -71

217. Kato S., Itonaga I., Ji R.C., Miura M. Enzyme triple staining for differentiation of lymphatics from venous and arterial capilaries // Lymphology. 1996. - N 29, - P. 15-19.

218. Kato S., et al, Miura M., Miyauchi R. Structural organization of the initial lymphatics in the monkey mesenteiy and intestinal wall as revealed by an enzyme-histochemical method//Arch. Histol. Cytol. 1993. - V. 56.-N2.-P. 149-160.

219. Kim D., Armenante P.M., Duran W.N. Transient analysis of macromolecular transport across microvascular wall and into interstitium // Am. J. Physiol. 1993. - V. -265. - N 3 Pt 2. - P. H993-H999.

220. Kostilenko Iu P; Mysliuk IV; Deviation EA. Structuro-functional units of the salivary and lacrimal glands// Arkh Anat Gistol Embriol 1986 -91 (9>p80-6

221. Kress E, Schulz HG, Neumann. Diagnosis of diseases of the large salivary glands of the head by ultrasound, sialography and CT-sialography. A comparison of methods// HNO. 1993 V. 41. №7.- P. 345-351.

222. Kugler B., Schriker Th., Schutz W. Effects of glucosae and xylitol on protein and caibohyd-rate metabolism afte trauma and in sepsis// Clin. Nutr. 1992. - V. 11, spec, sappl.—P. 43-46.

223. Laine M; Pienihakkinen K. Salivary buffer effect in relation to late pregnancy and postpartum//Acta Odontol Scand- 2000 -58(l>p8-10

224. Latha B, Ramakrishnan M, Jayaraman V, Babu M. Physicochemical properties of extracellular matrix proteins in post-bum human granulation tissue. // Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol.- 1999.- Nov. -Vol.124, N 3. -P.241-249.

225. Leont'ev V.K.; Galiulina M.V.; Ganzina I.V.; Anisimova I.V.; Dashina EX.; Ivanova O.I.; Panova I.G. Changes in the structural properties of the saliva with pH changes. Stomatologic (Mosk, 1999; 78 (2): p22-4.

226. Levick J.R. Capillary filtration-absorption balance reconsidered in light of dynamic extravascular factors // Exp-Physiol. 1991. - V. 76. - N 6. - P. 825-857.

227. Li X, Wang L, Nunes DP, Troxler RF, Oifner GD. Pro-inflammatory cytokines up-regulate MUC1 gene expression in oral epithelial cells.// J Dent Res. 2003. V. 82. -№11.-P. 883-7.

228. Li Z, Zhou Y, Rong X. Endothelial cell damage induced in vitro by subeschar tissue fluid j! Zhonghua Zheng Xing Shao Shang Wai Ke Za Zhi. -1999 -Vol.15.-N 5. -P.376-377.

229. Li Zhi-qing, Yang Zong-cheng, Wan Jia-han, Huang Yue-sheng. Effects early postburn scarectomy on permeability intimate and pulmonary blood of vessels at rats // Di-san junyi daxue xuebao, (Acta acad. med. mil. tertiae).-2001.-Vol.23, N 4.-P 298-302.

230. Lindblom L, Cassuto J, Yrcgard L, Tarnow P, Rantfors J, Lowhagcn Henden P. Role of vasoactive intestinal polypeptide in bum-induced oedema formation. // Bums. -2000.- Aug.- Vol.26, N 5. P.443-448.

231. Maekawa T, Kajihara H, Okabayashi K, Otani M, Yuge O. Impairment of splenic B and T lymphocytes in the early period after severe thermal injury: immunohistochemical and electron microscopic analysis. // Bums.- 2002.- Jun- Vol.28, N4. -P.329-339.

232. Makino H.; Shikata K.; Wieslander J.; Wada J.; Kashihara N.; Yoshioka K.; Ota Z. Localization of fibril/microfibril and basement membrane collagens in diabetic glomerulosclerosis in type 2 diabetes // Diabet Med 1994. - V. 11. - N 3. - P. 304-311.

233. Majono G., Joris I. Apoptosis, oncosis, necrosis. An overview of cell death. // Amer. J. Pathol. 1995. - V. 146. - N1. - P. 3-15.

234. Mans BJ, Venter JD, Coons LB, Louw AJ, Neitz AW. A reassessment of argasid tick salivary gland ultrastructure from an immuno-cytochemical perspective. //Exp Appl AcaroL 2004. -V. 33. - №1-2. -P. 119-129.

235. Marchetti C.,Poggi P., Farina A., Gritti A., Scelsi L., Scelsi R. Structure of the initial lymphatics of the human urinaiy bladder with invasive urothelial tumors // Lymphology. -1996. N 29. - P. 118-125.

236. Martin D., ReeceM., Maher J. Tissue debris at the injury site is coated by plasma fibronectin and subsequntly removed by tissue macrophages// Arch. Dermatol. — 1988. -V.124.-№2.-P. 226-229.

237. Martines-Hernandez A., Amenta P.S. The basement membrane in Pathology // Lab. investig. -1983. Vol. 48. - N 6. - P. 656-677.

238. McCampbell B, Wasif N, Rabbitts A, Staiano-Coico L, Yuit RW, Schwartz S. Diabetes and bums: retrospective cohort study. // J Burn Care Rehabil.- 2002,- May-Jun.-Vol. 23, N 3. P. 157-166.

239. Mcdonald W.S., Nichter L.S. Debridement of bacterial and particulate-contaminated wounds.// Ann Plast Suig.- 1994.- Aug.-Vol.33, N 2.- P.142-147.

240. McEwen DR; Sanchez MM.A guide to salivaiy gland disorders// AORN J -1997 065(3)- p554-6,559-67; quiz 568-9,571-2

241. McGregor JA; Hastings C; Roberts T; Barrett J Diurnal variation in saliva estriol level during pregnancy: a pilot study// Am J Obstet Gynecol 1999 -180(1 Pt3> p223-5

242. Mikhailov W, Rusanova AG, Chikina NA, Avakumov VM. Effect of methylcobalamine on the processes of posttraumatic regeneration of the salivaiy glands// Biull Eksp Biol Med -1984-V. 98.-№7.-P. 95-97.

243. Mihailov W, Chikina NA, Belopol'skii AA. Mechanism of disruption of histamine metabolism in salivaiy glands in experimental botulism.// Vopr Med Khim. -1980. V. 26. - №3. - P. 347-350.

244. Milici A.J., ct al Watrous N.E., Stukenbrok H., Palade G.E. Transcytosis of albumin in capillary endothelium // J. Cell Biol. 1987. - V. 105. - N 5. - P. 2603-2613.

245. Morse DR; Schacterle GR; Furst ML; Esposito JV; Zaydenburg M.Stress, relaxation and saliva; relationship to dental caries and its prevention, with a literature review// Ann Dent -1983-42(2)- p47-54

246. Munck A., Guere P.M., Hoolbrook N.J. Physiological function of glucocorticoid in stress and their relation to pharmacological action // Endocrin. Rev. 1984. - V. 5. - P. 25.

247. Murphy J.T., Duffy S., Purdue G.F., Hunt J.L. Thermal injury alters endotelial vasoconstrictor and vasodilatator response to endotoxin. // J Trauma 1999.- Sep.-Vol. 47, N 3. - P.492-498.

248. Nagler RM. Salivary Glands and the Aging Process-Mechanistic Aspects, Health-Status and Medicinal-Efficacy Monitoring. //Biogerontology.- 2004. V. 5. - №4. - P. 223-233.

249. Navas V., O Morchoe P.J., O Morchoe C.C.C. Lymphatic system of the rat pancreas // Lymphology. 1995. - N 28. - P. 4-20.

250. Nerlich A.G.; Schleicher E. Identification of lymph and blood capillaries by immunohistochemical staining for various basement membrane components // Histochemistry. 1991. - V. 96. - N 5. - P. 449-453.

251. Neumann H.A., Van-den-Broek MJ. Increased collagen IV layer in the basal membrane area of the capillaries in severe chronic venous insufficiency // Vasa. 1991. -Vol. 20.-Nl.-P. 26-29.

252. Newkirk KA; Ringel MD; Wartofsky L; Burman KD. Hie role of radioactive iodine in salivary gland dysfunction// Ear Nose Throat J -2000 -79(6> p460-8

253. Nucci A.D., Marchetti C., Serafini S.,Piovela F. P-selectin and wi-llebrand factor in bovine mesenteric lymphatics: an immunofl uores-cent study //Lymphology. 1996. -N29.-P. 25-28.

254. Onarheim H, Brofeldt B.T., Gunther R.A. Markedly increased lymphatic removal of hyaluronan from skin after major thermal injury. // Burns.-1996.- May.-Vol. 22, N.3. -P. 212-216.

255. Onarheim H., Missavage AJE., Gunther R.A., Kramer G.C., Reed R.K., Laurent T.C. Marked increase of plasma hyaluronan after major thermal injury and infusion therapy. //J Surg Res.- 1991.- Mar.-Vol.50, N 3. -P.259-265

256. Orosz M; Vasko A; Gabris K; Banoczy J. Changes in salivary pH and lactobacilli count in pregnant women// Proc Finn Dent Soc -1980-76(4)- p204-7

257. Palade G.E. Fine structure of blood capillaries // LAppl. Physiol. 1953. - V. 24. -N12.-P. 1424-1442.

258. Patil F., Vartar A., Keswani M. In vitro studies using zink suipadiazine and silcer suiphadiazine// The VIII Inter. Congress on Bum Injuries. New Delhi. -1990. — P. 510

259. Pawlik T.M., Carter EA., Bode B.P., Fischman A.J, Tompkins R.G. Central role of interleukin-6 in bum induced stimulation of hepatic amino acid transport // Int J Mol Med -2003.- Oct.-Vol.12, N 4.- P .541-548.

260. Petrow J.M. Formation and importance of lymph and edema in the organism Bildung und Bedeutung der Lymphe und der Ödeme im Organismus // Z. Gesamte. Ina Med. -1991. V 46.-N13 P. 467-473.

261. Phang YC; Rannie I .Oxytalan and elastic fibres in human salivary glands. A light microscopy study// Aust Dent J- 1982-27(5)- p288-90

262. Pierre E.J., Barrow R.E., Hawkin H.K., Nguyen T.T., Desai M., Wolfe R.R., Herndorn. Effects of insulin on wound healing. // J/ Trauma.- 1998.-Feb.-Vol.44, N 2. -P.342-345.

263. Qo S. Mast cell induction to the mouse testicular interstitium II Nippon. Hinyokika. Gakkai. Zasshi. 1994. - V. 85. - N 5. - P. 747-752.

264. Raicu M.; Alexandru D.; Fixman A.; Simionescu N. Albumin binding sites arc expressed on the abluminal plasma membrane of capillary endothelium II J. Submicrosc. Cytol. Pathol. 1991. -V. 23. -N 1. - P. 1-8.

265. Reed R.K.; Townsley M.I.; Pitts V.H.; Laurent T.C.; Taylor A.E. Increased lymphatic flux of hyaluronan from cat intestine during fat absorption // Am. J. Physiol. -1992. V. - 263. - N 1 Pt - 1 P.

266. Richter K.K., Fink L.M., Hughes B.M., Shmaysani H.M., Sung C.C., Hauer-Jensen M. Differential effect of radiation on endothelial cell function in rectal cancer and normal rectum // Am. J. Surg. -1998. V. 176. - N 6. - P. 642-647.

267. Riva A; Testa Riva F. Niels Stensen (Niccolo Stenone) and his first scientific offspring: the salivary glands// Eur J Morphol-1996 -34(3>pl37-41

268. Roberts A; Gardiner P. Systems of life. The digestive system, Part L//Nurs Times -1991 -87(ll>p45-8

269. Romero L.I., Zhang D.N., Herron G.S., Karasek M.A. Interleukin-1 induces major phenotypic changes in human skin microvascular endothelial cells // J. Cell. Physiol. -1997.-V. 173.-N1.-P. 84-92.

270. Salvolini E; Di Giorgio R; Curatola A; Mazzanti L; Fratto G. Biochemical modifications of human whole saliva induced by pregnancy//Br J Obstet Gynaecol 1998 -105(6>p656-60

271. Samson W.K., Skala K., Huang FJL, Gluntz S., Alexander В., Gomez-Sanchez C.E. Central nervous system action of endothelin-3 to inhibit water drinking in the rat // Brain.Res. 1991.- V. 539. - N 2. - P. 347-351.

272. Sato I., Matsusaka N., Kobayshi H. Availability of zeolite as an éliminant for the incorporated radionuclides.3. Studies on (437) Cs // Radioisotopes. 1994. - V, 43. - N 8. -P. 468-473.

273. Scelsi R., Scelsi L.,Gritti A., Gozo M., Reguzzoni M, Marchetti С. Structure of the lymphatica microcirculation in the human urinary bladder with different intraluminal pressure and distension // Lymphology. 1996. - N 29. - P. 60-61.

274. Shen Z., Lipowsky H.H. Image enhancement of the in vivo leukocyte-endothelium contact zone using optical sectioning microscopy // Ann. Biomed. Eng. 1997. - V. 25. -N3. P. 521-535.

275. Sheridan R.L., Ryan C.M., Yin L.M. et al. Death in the bum unit sterile multiple organ organ failure. // Burns.-1998.- N.24.-P.307-311.

276. Shields J.W. Lymph, lymphomania, lymphotrophy, and hiv Iymphocytopathy: an historical perspective //Lymphology. 1994. - V. 24. -N 1. - P. 21-40.

277. Sigal R. Oral cavity, oropharynx, and salivary glands// Neuroimaging Clin N Am -1996 -6(2>p379-400

278. Silvers AR; Som PM. Salivaiy glands// Radiol Clin North Am- 1998 -36(5> p941 -966

279. Simionescu N. Cellular aspects of transcapillary exchange // PhysiolJlev. 1983. -V.63.-N3.-P. 1536-1568.

280. Simionescu N.,Simionescu M., Palade G£. Segmental differentiation of cell junctions in the vascular endothelium: The microvasculature // J. Cell. Biol. 1981. -V.63.-N3.-P. 863-885.

281. Speiser B., Riess C.F., Schaper J. Hie extracellular matrix in human myocardium: Part I: Collagens I, HI, IV, and VI // Canlioscience. 1991. - V. 2. - N 4. - P. 225-232.

282. Spies M., Dasu MR., SvraJdc N., Nesic O., Bamow R.E., Perez-Polo J.R., Hemdon D.N. Gene expression analysis in burn wounds of rats. // Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. -2002.- Oct -Vol.283, N.4. -P.918-930.

283. Sugiyama H; Aiyama S. Histological study of oral glands of the anole lizard// Anolis carolinensis Shigaku- 1988 -75(7> pl291-313

284. Sviridova ^Intraorganic lymphatic bed in the human submaxillary salivary gland// Arkh Anat Gistol Embriol-1970 -58(1> p41-6

285. Tonge CH; Luke DA. Dental anatomy: the salivary glands// Dent Update- 1984 -11 (5)-p264,266,268-70

286. Tyler M.P., Watts A.M., Peny M.E., Roberts A.H., McGrouther DA. Dermal cellular inflammation in bums, an insight into the function of dermal microvascular anatomy //Bums.- 2001.- Aug. -Vol.27, N.-5. -P.433-438.

287. Valentin J.P.; Gardner D.G.; Ribstein J.; Mimran A.; Humphreys M.H. Extravascular transfer of fluids and proteins induced by endothelin in the binephrectomized rat//Arch. Mai. Coeur. Vaiss. 1991. - V. 84. - N 8. -P. 1159-1162.

288. Van den Bogaerdt A.J., van Zuijlen P.P., van Galen M., Lamme E.N. Midde The suitability of cells from different tissues for use in tissue-engineered skin substitutes. // Arch Dermatol Res.- 2002.- May. -Vol.294, N.-3. -P.135-142.

289. Vissink A; Spijkervet FK; Van Nieuw Amerongen A.Aging and saliva: a review of the literature// Spec Care Dentist- 1996-16(3> p95-103

290. Wang Y.C., Hsieh Y.S., Tang Y.W., Liu J.Y. Protein kinase C isoforms in the epidermal tissues of normal and postbum human skin // Biochem. Mol. Biol. Jnt 1999.-Apr.-Vol.47, N.4. -P.873-879.

291. Weber AL. Imaging of the salivary glandsV/Curr Opin Radiol. 1992. — V.4. -№1. -P.l 17-122.

292. White DK., Davidson HC., Hamsbeiger HR., Haller J., Kamya A. Accessory salivary tissue in the mylohyoid boutonniere: a clinical and radiologic pseudolesion of the oral cavity//AJNR Am J Neuroradiol -2001 -22(2> p406-12

293. Widerstrom L; Bratthall D. Increased IgA levels in saliva during pregnancy// Scand J Dent Res-1984 -92(1> p33-7

294. Williams RJ.P. Physico-chemical aspects of inorganic elements transfer through membranes/ZPhilosophical Transactions of the Royal Society of London. — London, 1981.—P.57—74.

295. Wittich GR; Scheible WF; Hajek PC .Ultrasonography of the salivary glands// Radiol Clin North Am -1985 -23(1> p29-37

296. Young WG, Ramirez-Yanez GO, Daley TJ, Smid JR, Coshigano KT, Kopchick J, Waters MJ. Growth hormone and epidermal growth factor in salivary glands of giant and dwarf transgenic miccV/J Histochem Cytochem. 2004. V. 52. - №9. - P. 11911197.

297. Yu Pei Wu, et al., Xiao GuangXia, Fu Wei Ling, Yuan Jian Cheng, Zhou Li Xin, Qin Xiao Jian Pathogenetic effects of platelet activating factor on enterogerac endotoxemia after bum// World J. Gastroenterol.- 2000.-Vol. 6, N. 3.-P. 451-453.

298. Zachariadis N; Xupoluta A; Skodra C. Physiology and histology of the salivary glands. Laboratory examination of the glands. Properties of saliva// Hell Stomatol Chron- 1977 -21(4>p28-38

299. Zhang XJ, Chinkes DL, Itrun O, Wolfe RR. Anabolic action on don wound protein is augmented by exogenous amino acids. // Am J Physiol Endocrinol Metad.-2002.- Jutl- Vol.282, N.6.- P.1308 -13015.

300. Zhu L., Yang Z.C., Li A., Cheng D.C. Protective effect of early enteral feeding on postbum impairment of liver function and its mechanism in rats // World J. Gastroenterol., 2002.-Vol. 6, N. 1.- P.79-83.

Информация о работе
  • Кирина, Жанна Александровна
  • кандидата медицинских наук
  • Новосибирск, 2005
  • ВАК 03.00.25
Диссертация
Структура поднижнечелюстной слюнной железы в условиях термического ожога кожи и коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно
Автореферат
Структура поднижнечелюстной слюнной железы в условиях термического ожога кожи и коррекции лимфатического дренажа ожоговой раны - тема автореферата по биологии, скачайте бесплатно автореферат диссертации