Создание и результативность научно-обоснованной системы повышения эффективности вакцинопрофилактики инфекционных заболеваний у животных с выраженным иммунодефицитным состоянием

Шилова, Евгения Николаевна

Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему
Создание и результативность научно-обоснованной системы повышения эффективности вакцинопрофилактики инфекционных заболеваний у животных с выраженным иммунодефицитным состоянием
ВАК РФ 06.02.02, Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов

Автореферат диссертации по теме "Создание и результативность научно-обоснованной системы повышения эффективности вакцинопрофилактики инфекционных заболеваний у животных с выраженным иммунодефицитным состоянием"

005002654

Шилова Евгения Николаевна

СОЗДАНИЕ И РЕЗУЛЬТАТИВНОСТЬ НАУЧНО-ОБОСНОВАННОЙ

СИСТЕМЫ ПОВЫШЕНИЯ ЭФФЕКТИВНОСТИ ВАКЦИНОПРОФИЛАКТИКИ ИНФЕКЦИОННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ У " ЖИВОТНЫХ С ВЫРАЖЕННЫМ ИММУНОДЕФИЦИТНЫМ

СОСТОЯНИЕМ

06.02.02 - ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук

1 7 НОЯ 2011

Екатеринбург - 2011

005002654

Работа выполнена в отделе вирусных инфекций ГНУ Уральского научно-исследовательского ветеринарного института Российской академии сельскохозяйственных наук

Научный консультант: академик РАСХН,

доктор биологических наук, профессор Донник Ирина Михайловна

Официальные оппоненты: Заслуженный ветеринарный врач РФ,

доктор ветеринарных наук, профессор Околелов Владимир Иванович

доктор биологических наук, профессор Сидорова Клавдия Александровна

доктор ветеринарных наук Ибншов Джалаир Фейруз-оглы

Ведущая организация: ФГУ «Федеральный центр

токсикологической и радиационной безопасности животных», г. Казань

Защита состоится « 2011 года в » часов на заседании

диссертационного совета JV 006.099.01 при Уральском научно-исследовательском ветеринарном институте РАСХН (корпус №2, ул. Главная, 21)

Адрес: ГНУ Уральский НИВИ Россельхозакадемии 620142 г. Екатеринбург, ул. Белинского, 112а тел/факс (343) 257-64-82, 257-82-63

Адрес сайта института: http:// www.iirnivi.ru E-mail: info@urnivi.ru

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГНУ Уральского научно-исследовательского ветеринарного института Россельхозакадемии

Автореферат разослан «\3_» /¿-¿ье^/ 2011 г.

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат ветеринарных наук ' Печура Е.В.

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Инфекционные болезни животных и птиц распространены во всем мире и наносят большой ущерб животноводству (Бакулов И.А. 2008; Джавадов Э.Д., 2008; Панин А.Н., 2008; Ибишов Д.Ф., 2008; Околелов В.И., 2009; Смирнов П.Н., 2009; Самуйленко А.Я. 2010; Ощепков В.Г., 2010; Рахманов A.M. и др., 2010; Смирнов A.M., 2010; Донник И.М., 2010; Wright P.F. et al., 1992; Relman D.A. et al., 2010; OIE, 2010 и др.). В системе мер их ликвидации широкое применение имеет вакцинопрофилактика, однако по ряду причин ее проведение не всегда может стабилизировать ситуацию. В сложившихся экономических условиях многие сельхозорганизации не имеют возможности проводить профилактические прививки (Гуленкин В.М. и др., 2001).

Среди остропротекающих инфекционных заболеваний животных наибольший материальный ущерб во многих странах мира причиняют острые респираторные болезни крупного рогатого скота (ОРВИ), ведущим патогенном в которых является возбудитель инфекционного ринотрахеита (Юров К.Л., 2001; Глотов А.Г. и др., 2009; Мищенко В.А., 2011; Taylor J.D., Fulton R.W., Lehenbauer T.W., 2010; J.Rola et al., 2010; E. Jacevicius et al„ 2010).

В Уральском регионе оздоровление племенных и товарных хозяйств от ОРВИ проводится с 1999 г., широкое внедрение оздоровительной программы позволило купировать эпизоотический подъем (Петрова О.Г., Татарчук А.Т., Хаматов М.Ф. и др., 2005-2007). Однако, вирусоносительство среди племенного стада продолжает служить причиной формирования респираторной и гениталыюй патологии (Юров К.П. и др., 2003; Нежданов А.Г. и др., 2011).

При управлении эпизоотическим процессом ОРВИ эффективная вакцинопрофилактика, как правило, предотвращает появление клинических признаков у крупного рогатого скота, но в условиях иммунодефицитов, как следствия воздействия разного рода факторов, необходимы новые комплексные подходы к организации противоэпизоотических мероприятий (Смирнов П.Н.,

2009; Донник И.М., 2010).

В последнее время одной из наиболее значимых зоонозов, представляющих угрозу современному птицеводству, является и высокопатогенный грипп A (H5N1) (Смирнов A.M., 2006, 2010; Джавадов Э.Д., 2008; Lee Y.-J. et al., 2008; Grabkowsky B.J., Windhorst H.-W., 2010 и др.). В 2010 г. ситуация в мире по гриппу А птиц остается эндемической, неблагополучие отмечено в ряде азиатских и европейских стран, которые продолжают сообщать о возобновлении вспышек (OIE, 2010). Болезнь продолжает оказывать значительное влияние на здоровье птиц и наносит значительный экономический ущерб при ограничении производства птицеводческой продукции и торговле. При этом, наиболее эффективный способ контроля гриппа птиц - ранняя диагностика и иммунизация (Kapczynski D.R., Swayne D.E., 2009; Hamilton К, Bruckner G., 2010).

В Российской Федерации особая опасность в распространении гриппа связана с птицей, содержащейся на личных подворьях и крупных комплексах

открытого типа для выращивания водоплавающей птицы (Смирнов A.M., 2010). Очевидной является также обоснованность проведения вакцинопрофилактики гриппа в зонах массовых скоплений диких перелетных водоплавающих птиц. Применение эффективной системы иммунизации данных популяционных групп позволит создать «иммунное кольцо» вокруг птицефабрик и предупредить выделение возбудителя в случае его заноса с дикой птицей (Ирза В.Н., 2006). Поэтому поиск наиболее иммуногенной вакцины, разработка способов повышения эффективности вакцинации является одной из приоритетных задач науки.

Цель исследований: Разработать и оценить результативность научно-обоснованной системы комплексной профилактики инфекционных болезней на примере острых вирусных инфекций крупного рогатого скота и птиц. Задачи исследований:

1. Дать оценку эпизоотической ситуации в регионе по острым и хроническим инфекциям и инвазиям, выделить основные значимые нозологии и охарактеризовать существующую систему противоэпизоотических мероприятий в регионе.

2. Изучить иммуногематологический и биохимический статус животных по ряду показателей. Определить экзо- и эндогенные факторы, влияющие на формирование иммунных реакций при проведении специфической профилактики (наличие ксенобиотиков, микотоксинов, тяжелых металлов, паразитов, вакцинных и прочих антигенов, генетические особенности, продуктивность).

3. Изучить клинические и серологические показатели эффективности специфической профилактики острых респираторных вирусных инфекций крупного рогатого скота при использовании инактивированных и живых вакцин.

4. Изучить формирование иммунитета и методы его повышения при специфической профилактике острых инфекционных заболеваний на примере гриппа птиц А.

5. Разработать научно-обоснованную систему комплексной профилактики инфекционных заболеваний животных и птиц с учетом региональных особенностей и оценить ее результативность.

Научная новизна:

В условиях региона проведена комплексная оценка факторов, оказывающих влияние на эффективность вакцинации животных при разных нозологиях. Впервые в племенных и товарных предприятиях Уральского региона проведена оценка эффективности вакцинации против острых инфекций крупного рогатого скота на примере ОРВИ с учетом региональных особенностей. Изучена эффективность живых и инактивированных вакцин против ОРВИ крупного рогатого скота. Учтена роль технологических факторов в возникновении вирусных заболеваний. На основании полученных данных дополнен Регламент оздоровительных мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота и разработана комплексная научно-обоснованная система профилактики инфекционных болезней животных в регионе.

Впервые на поголовье промышленной птицы была изучена иммуногенность разных вакцин против гриппа птиц А и предложены способы ее повышения.

Практическая значимость работы. Основные материалы исследования вошли в Регламент оздоровительных мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота в племенных и товарных хозяйствах Свердловской области и внедрены в 28-ми сельскохозяйственных организациях. Результаты работы учтены при составлении «Комплексного плана мероприятий по предупреждению возникновения и распространения гриппа птиц на территории Свердловской области в 2008-2009 гг.». По результатам исследований разработано 11 рекомендаций, из которых 4 утверждены научно-техническим советом Министерства сельского хозяйства и продовольствия Свердловской области, 1 рекомендации утверждены Бюро отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии, 1 рекомендации и Руководство имеют гриф МСХ РФ.

Проведенные исследования позволили сделать существенный вклад в эпизоотическое благополучие Свердловской области по острым инфекциям животных и птиц, сократить заболеваемость ОРВИ на 18-30%, успешно профилактировать грипп птиц при острой угрозе заноса инфекции в субъект.

Положения, выносимые на защиту:

1. Эпизоотическая ситуация на Среднем Урале по основным острым и хроническим заболеваниям крупного рогатого скота и птиц является благополучной (ликвидированы туберкулез, бруцеллез, лейкоз), основные нозологии представлены факторными инфекциями (колибактериоз, сальмонеллез, пастереллез), природноочаговыми (лептоспироз, бешенство), из острых наиболее актуальны острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота и угроза заноса гриппа А птиц, чем обусловлена существующая система противоэпизоотических мероприятий.

2. Иммуногематологический и биохимический статус крупного рогатого скота в Уральском регионе неоднороден, зависит от экологических факторов (в отдельных территориях), генетических особенностей популяции, уровня продуктивности. Выявлена иммунопатология у 90% животных.

3. На формирование иммунных реакций у животных и птицы в Уральском регионе преимущественно оказывают влияние ксенобиотики, микотоксины, поступающие с кормами, а также доля кровности по голштинскому скоту и продуктивность.

4. Эффективность специфической профилактики острых респираторных вирусных инфекций крупного рогатого скота в регионе неодинакова и преимущественно зависит от состояния иммунной системы, а также от вида вакцины.

5. Формирование иммунитета при вакцинопрофилактике острых инфекций у птиц решающее значение имеют клинико-биохимический статус и

иммуногенность вакцин.

6. Разработанная и внедренная в производство региональная научно-обоснованная система комплексной профилактики инфекционных болезней животных и птиц показала значительную эффективность при оздоровлении от

ОРВИ крупного рогатого скота и профилактике заноса гриппа птиц А в регионе.

Личное участие диссертанта в получении научных результатов, изложенных в работе. Автор принимала личное участие в проведении эпизоотологического исследования ситуации по острым инфекциям животных в сельхозорганизациях, проведении клинических, патоморфологических исследованиях, отборе проб, проведении лечебных и профилактических обработок животных, проведении пробоподготовки, вирусологических и серологических исследований. В работу вошли исследования, проведенные совместно с научными сотрудниками отдела экологии и иммунопатологии Уральского НИВИ: зав. отделом докт. вет. наук, профессором И.А. Шкуратовой, канд. ветер, наук, доцентом М.В. Ряпосовой, канд. ветер, наук А.И. Белоусовым, канд. ветер, наук О.С. Бодровой, канд. ветер, наук A.C. Заслоновым, канд. биол. наук E.H. Беспамятных и др., за что автор приносит им большую благодарность.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на международных (Саранск, 2004 г.; Щелково, 2005г.; Троицк, 2006 г.; Омск, 2009 г.; Самара, 2009 г.; Санкт-Петербург, 2011 г.; Екатеринбург, 2005, 2007, 2008, 2010 гг.), всероссийских (Челябинск, 2004 г.; г.Санкт-Петербург, 2007; Новочеркасск, 2009 г.) конференциях, на Ученых советах ГНУ Уральского НИВИ РАСХН (2008-2010 гг.),

Публикации. Всего по теме диссертации опубликовано 61 печатная работа, из них 15 в изданиях, рекомендованных ВАК РФ (журнал «Ветеринария» - 1, журнал «Ветеринария Кубани» - 6, журнал «Аграрный вестник Урала» - 8). Опубликовано 11 рекомендаций, из которых 4 утверждены научно-техническим советом Министерства сельского хозяйства и продовольствия Свердловской области и 1 с грифом УМО, а также 1 руководство с грифом МСХ РФ.

Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 302 страницах компьютерного текста, состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследований, результатов собственных исследований, обсуждения результатов исследований, выводов, практических предложений, списка литературы и приложения. Материалы диссертации иллюстрированы 46 таблицами и 74 рисунками. Список литературы включает 322 источника, в том числе 108 - иностранных авторов.

Выражаем большую благодарность за всестороннюю научно-методическую помощь в выполнении работы докт. ветер, наук, профессору И.А. Шкуратовой, канд. ветер, наук А.Т. Татарчуку, начальнику управления ветеринарии МСХиП Свердловской области, канд. ветер, наук В.А. Красноперову, специалистам МСХиП Свердловской области и ОГУ ветеринарии, всем научным сотрудникам ГНУ УрНИВИ за помощь в организации и проведении исследований.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Работа выполнена в отделе вирусных инфекций ГНУ Уральского научно-исследовательского ветеринарного института Российской академии сельскохозяйственных наук. Экспериментальные исследования проводили на базе племенных и товарных сельскохозяйственных организациях молочного направления Уральского региона (Свердловской, Тюменской, Курганской, Челябинской области), выбранных в качестве модельных.

Работа проведена в 2006-2011 гг. в соответствии с планом научно-исследовательских работ по теме: «Разработка и внедрение эффективной системы оздоровительных мероприятий при смешанных острых респираторных болезнях крупного рогатого скота, обеспечивающей получение здорового молодняка, высокое качество биопродукции племпредприятий» (№ государственной регистрации 01.2.00613099).

Лабораторная диагностика проведена на базе лабораторно-диагностического центра Уральского НИВИ, вирусологического отдела ОГУ «Свердловская областная ветеринарная лаборатория», имеющих государственную аккредитацию на проведение исследований.

Ретроспективную оценку эпизоотической ситуации по инфекциям на территории Среднего Урала, изучение противоэпизоотической эффективности технологических, ветеринарно-санитарных и специальных мероприятий, внедряемой системы, осуществляли на основе материалов учета и отчетности ветеринарной службы (сведения по ф.1, 1а, 2, 4).

Вирусологические исследования патологического (трахея, доли легкого) и биоматериала (смывы с носовых оболочек) проводили согласно ГОСТ 2575591 «Методы лабораторной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота». Наличие вируса в культуре клеток устанавливали по цитопатическому действию в первично трипсинизированных клеточных культурах (КСТ - клетки сердца теленка, ПЭК - почки эмбриона коровы) и перевиваемой линии почки телёнка МДВК.

Для диагностики вирусной диареи крупного рогатого скота полимеразной цепной реакцией применяли метод Real-Time на RotorGene 3000 (Corbett Reserch, Австралия). Применяли «Тест-систему «ВД» для выявления возбудителя вирусной диареи крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме «реального времени» (ООО «ИнтерЛабСервис», г. Москва).

ПЦР-диагностику инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота, хламидиоза и микоплазмоза проводили методом гель-документации, амплификацию проводили на термоциклере Applied Biosystems 2720, визуализацию и учет - на трансиллюминаторе Biorade. Использовали тест-системы: «ХЛА-КОМ», «МИК-КОМ», «Тест-систему для диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции» (НПО «Нарвак», г. Москва), согласно наставлению по применению.

Серологические исследования проводили согласно ГОСТ 25755-91 "Методы лабораторной диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота".

Специфический иммунитет к возбудителям инфекционного ринотрахеита оценивали исследованием сыворотки крови иммуноферментным анализом (ИФА) с антигенами инфекционного ринотрахеита, реакции непрямой гемагглютинации (РИГА) с антигенами инфекционного ринотрахеита. Постановку реакции, учет и интерпретацию полученных данных проводили согласно инструкции каждого из наборов, рекомендованных фирмой-производителем, утвержденной в установленном порядке. Использовали «Набор диагностикумов для серологической диагностики ринотрахеита крупного рогатого скота методом непрямой гемагглютинации (РНГА)» (ООО «Агровет», г. Москва), «Набор диагностикумов парагриппа-3 крупного рогатого скота (РТГА)» (ФГУП «Курская биофабрика»), «Набор для выявления антител к вирусу инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота иммуноферментным методом «ИРТ-СЕРОТЕСТ» (AHO «НИИ ДПБ», г. Москва). Иммуноферментный анализ проводили согласно инструкции к диагностическому набору, реакцию учитывали на ридере Tecan Sunrise, USA.

Титры антител к вирусам ИРТ, ПГ-3 КРС выражали в обратных величинах в виде log2 и lg.

Специфические антитела к возбудителям ОРВИ определяли в сыворотке молозива новотельных коров. Молозиво брали из каждой четверти вымени в равных объемах и объединяли для получения средней пробы. Получение сыворотки молозива проводили, обезжиривая пробы центрифугированием (1020 мин при 3000-5000 об./мин), удаляли верхний слой, хранили в замороженном виде при температуре -20°С до исследования (В .А. Мищенко, В.М. Захаров и др., 2003). Определение содержания антител в сыворотке молозива проводили с использованием перечисленных диагностических наборов согласно инструкции к применению.

Гематологические исследования по общепринятым методикам включали: определение количества эритроцитов, лейкоцитов (Г.А. Симонян, Ф.Ф. Хисамутдинов, 1995). Массовую концентрацию гемоглобина в крови определяли гемоглобинцианидным методом по JI.M. Пименовой и Г.В. Дервизу (1974) с использованием набора химических реактивов. Лейкограмму выводили при подсчете процентного соотношения клеток в мазках крови, окрашенных по Романовскому-Гимзе. Определяли показатели клеточного и гуморального звена иммунитета: содержание Т-лимфоцитов (E-POJ1) в реакции спонтанного розеткообразования с эритроцитами барана (М.А. Бажин, 1989; Р.В. Петров, 1992), B-лимфоцитов (M-POJ1) - методом спонтанного розеткообразования с эритроцитами мыши (Д.К. Новиков, В.И. Новикова, 1996), определяли соотношение Т и B-лимфоцитов (индекс Т/В). Фагоцитарную активность нейтрофилов определяли методом опсоно-фагоцитарной реакции (П.Н. Смирнов, 1989) с использованием культуры золотистого стафилококка (штамм 209).

Биохимические исследования проведены на полуавтоматическом биохимическом анализаторе «Vitalon 400» с использованием стандартных наборов реактивов фирмы «Vital Diagnostics Spb», а также на автоматическом биохимическом анализаторе ChemWell Combi (Awareness Technology, USA).

Гельминтологические исследования флотационным комбинированным методом Дарлинга с центрифугированием, использовали насыщенный раствор сахарозы. Наличие трематодозов и ларвальных цестодозов оценивали по данным отчетов лабораторий ВСЭ и мясоперерабатывающих предприятиях (ОГУ «Свердловская областная ветеринарная станция по борьбе с болезнями животных»).

Определение макро- и микроэлементов в кормах проводили на атомно-адсорбционном спектрофотометре АА-6800 FG. Для уменьшения потерь элементов использовали метод СВЧ-минерализации в фторопластовых автоклавах в системе MARS 5, СЕМ, USA. Определяли содержание меди, цинка, селена, железа.

Иммуноферментный анализ кормов и сырья на содержание микотоксинов проводили в соответствии ГОСТ Р 52471-2005 «Иммуноферментный метод определения микотоксинов» на приборе «Sunrise-Besic Тесап», укомплектованным программным обеспечением «BioChec», с использованием тест-систем Agra-Quant (США). Определяли содержание фумонизина, Т-2 токсина, деоксиниваленола (ДОН), зеараленона, охратоксина, афлотоксина.

Для микробиологических, молекулярно-биологических, биохимических, спектральных исследований применяли деионизированную воду, полученную с использованием системы очистки воды Milli-Q Gradient (Millipore, France).

Для вакцинации крупного рогатого скота разных возрастных групп против инфекционного ринотрахеита и парагриппа-3 в сельскохозяйственных предприятиях Уральского региона применяли следующие вакцины:

- Комбовак-Р, инактивированная комбинированная вакцина против ИРТ, ВД, ПГ-3, респираторно-синцитальной инфекции, рота-коронавирусной болезни телят, пастерелеза (НПО «Нарвак», г. Москва, Россия),

- Бови Шилд Голд FP5 L5, вакцина из двух компонентов, содержащих живые аттенуированные возбудители инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота (IBR), вирусной диареи (BVD), парагриппа-3 (PI3), респираторно-синтициальной инфекции (BRSV), а также инактивированные лептоспиры серогрупп: L. Canicola, L. Grippotyphosa, L. Hardjo L. Icterohaemorrhagiae и L. Pomona с добавлением гентамицина (не более 30 мкг/мл) и мертиолята (не более 0,01 %) качестве консервантов (Pfizer, США).

- Бовилис® IBR Marker - живая маркированная вакцина для специфической профилактики от инфекционного ринотрахеита КРС (Intervet, Нидерланды)

- Бовилис Bovipast - инактивированная вакцина против парагриппа-3 (ПГ-3), респираторно-синцитиальной инфекции (PC) и пастереллеза крупного рогатого скота (Intervet, Нидерланды).

Пробы сыворотки крови для серологического исследования отбирали через 14, 30 дней после введения вакцины, а также при оценке эффективности отдельных вакцин - через 45, 60,90 дней.

Оценку эффективности вакцинации против гриппа экспериментальной (виварной) и промышленной птицы проводили на базе вивария ГНУ Уральский НИВИ, птицефабрики Камышловской (Свердловская обл.), Катайском гусеводческом комплексе (Курганская обл.).

Изучение иммуногематологических показателей у экспериментальной и виварной птицы включало определение содержания гемоглобина (по J1.M: Пименовой и Г.В. Дервизу, 1974) с использованием набора химических реактивов (И.П. Кондрахин, 2004), количество эритроцитов и лейкоцитов (И.А. Болотников, Ю.В. Соловьев, 1980). Для характеристики клеточного и гуморального иммунитета проводили количественное определение Т- и В-лимфоцитов в реакции розеткообразования по И.Ю. Ездаковой, О.М. Чуйко, Е.О. Чадиной (2008). Лизоцимную активность сыворотки крови птиц определяли фотоэлектроколометрическим методом по Дорофейчуку А.Г. с культурой М. lisodecticus и изменением температурного режима реакции сыворотки крови гусей с 37 до 39°С.

Бактерицидную активность сыворотки крови определяли по методу Мишеля Теффера в модификации О.В. Смирновой и Т.А. Кузьминой (1966) с суточной культурой E.coli и изменением температурного режима реакции сыворотки крови гусей с 37 до 39°С. Фагоцитарную активность нейтрофилов методом опсонофагоцитарной реакции (П.Н. Смирнов, 1989) с использованием культуры тест-микроба St. aureus.

Напряженность поствакцинального иммунитета к возбудителю гриппа птиц А определяли в реакции торможения гемагглютинации (РТГА) с использованием стандартного диагностического набора. Применяли «Набор антигенов и сывороток для диагностики гриппа птиц в реакции торможения гемагглютинации (РТГА)» (ООО «Щелковский завод фармацевтических и ветеринарных препаратов»). Среднегеометрический титр антител выражали в обратных величинах в виде log2.

Для оценки эффективности вакцин против гриппа А птиц применяли следующие биопрепараты:

- Инактивированная эмульгированная вакцина против гриппа птиц из штамма H5N1 (ОАО «Покровский комбинат биопрепаратов», г. Покров);

- Экспериментальная инактивированная вакцина против высокопатогенного гриппа птиц (ВПГП) подтипа Н5 (ГНУ ВНИВИП РАСХН, г. С. -Петербург);

- Инактивированная эмульгированная вакцина против гриппа птиц подтипа Н5 (ФГУП «Ставропольская биофабрика», г. Ставрополь).

Экономический эффект проводимых лечебно-профилактических мероприятий рассчитывали согласно методическим рекомендациям по определению экономической эффективности ветеринарных мероприятий, утвержденным ГУВ МСХ и П РФ 21.02.1997 г.

Всего выполнено: 1380 серологических исследований у крупного рогатого скота в РИГА, 488 серологических исследований у крупного рогатого скота в РТГА, 320 серологических исследований у крупного рогатого скота в ИФА, 1574 серологических исследований у птиц в РТГА, 186 проб кормов исследовано на микотоксины иммуноферментным анализом, 128 проб исследовано методом ПЦР на инфекционные заболевания крупного рогатого скота, проведено 35 вирусологических исследований патологического и биоматериала от телят и коров, 9513 биохимических, 2262 иммуногематологических исследований у крупного рогатого скота, 3366 иммуногематологических и 342 биохимических исследований у птиц.

Достоверность результатов подтверждали путем статистической обработки и определения различий средних значений с помощью критерия Стьюдента. Результаты считали достоверными при Р<0,05. Для обработки полученных данных использовали программу Microsoft Excel, входящую в пакет программ Microsoft Office Pro.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1 Оценка эпизоотической ситуации по инфекционным заболеваниям в

регионе

Мониторинг эпизоотической ситуации по основным острым и хроническим заболеваниям крупного рогатого скота и птиц показал благополучие по большинству инфекций. Свердловская область стационарно благополучна по основным инфекционным заболеваниям крупного рогатого скота: сибирская язва не регистрируется с 1978 г., эмфизематозный карбункул отмечен в виде единичных случаев (в 2010 г.). Отмечено эпизоотическое благополучие по ящуру, туберкулезу (с 2005 г.), бруцеллезу (с 1986 г.), лейкозу (с 2011 г.). Основные регистрируемые нозологии представлены природно-

очаговыми и факторными инфекциями.

Из природно-очаговых инфекций наиболее часто регистрируются случаи бешенства животных. В 2006-2010 гг. отмечали рост случаев: в 2006 г. было лабораторно подтверждено 29 случаев бешенства, в 2007 г. - 54 случая, в 2008 г. - 36, в 2009 - 20, в 2010 - 79 случаев. При этом, бешенство в 2010 г. у крупного рогатого скота регистрировали в 18% выявленных случаев.

В области отмечено наличие природных очагов лептоспироза в ряде сельскохозяйственных районов, обусловленных циркуляцией L.interrogans (серотипы Pomona, Tarrasovi, Icterohaemorrhagiae, Sejroe, Canicola и Hebdomadis). Ежегодно, по данным Областной ветеринарной лаборатории, выявляется более 20% положительно реагирующих в РМА животных, антитела к патогенным лептоспирам отмечаются более, чем у 40% абортирующих коров, однако из абортплодов и мочи возбудитель не выделяется.

В течение 2006-2009 г., не смотря на отсутствие эпизоотических очагов, Свердловская область являлась угрожаемой по гриппу птиц А, т.к. вспышки ГП отмечали в соседних Тюменской, Курганской, Челябинской областях. На период угрожающей эпизоотической ситуации был реализован разработанный

совместно с Управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства и продовольствия Свердловской области «Комплексный план мероприятий по предупреждению возникновения и распространения гриппа птиц на территории Свердловской области», утвержденный распоряжением Председателя Правительства Свердловской области, способствующий предупреждению заноса инфекции.

При проведении мониторинга биоматериала от домашней и дикой птицы возбудитель гриппа H5N1, а также антитела к полевому штамму не выделяли на всей территории субъекта.

С 01.01.2010 г. инструктивным письмом №25-25/130 от 28.01.2010 Департамента ветеринарии Минсельхоза России были сокращены зоны вакцинации против гриппа птиц А/Н5, в Уральском регионе угрожающими остались территории Курганской и Тюменской области, через которые пролегают пути сезонной миграции перелетных птиц.

Факторные инфекции в сельскохозяйственных организациях Свердловской области (колибактериоз, сальмонеллез, пастереллез) являются основной причиной отхода молодняка в виде падежа, санитарного убоя, технологического отхода. В отдельных районах общий отход к обороту стада в 1,5-1,9 раз превышает средние значения по области. При этом, доля отхода телят по причине падежа по Свердловской области в 2008-2010 гг. была на уровне 85-87%, вынужденного убоя по причине заболеваний 57-59%. Санитарный убой молодняка крупного рогатого скота составил 40-53% от общего убоя. По колибактериозу телят (штаммы E.coli F41, К88, К99, А20) ежегодно регистрируют неблагополучие в 30-ти фермах (при этом диагноз в подтверждали, в среднем, в 48% случаях). Сальмонеллез телят (Salm, dublin, Salm, enteritidis, Salm, typhymurium) ежегодно подтверждается, в среднем, в 24% случаев (до 20 ферм). Выделение возбудителей пастереллеза из патологического материала при подозрении на пастереллез отмечено, в среднем, в 8% случаев (Past.multocida).

Во всех модельных хозяйствах были выявлены нозологии молодняка крупного рогатого скота, обусловленные наличием условно-патогенной и патогенной бактериальной микрофлоры. В 2006-2010 гг. у телят, содержащихся в данных хозяйствах, отмечали все значимые бактериальные болезни молодняка (колибактериоз, сальмонеллез, пастереллез), в двух предприятиях неблагополучие по факторным инфекциям было представлено только одной нозологической единицей - сальмонеллезом.

Анализ распространения основных гельминтозов крупного рогатого скота показал, что наибольшее распространение в модельных хозяйствах имеют фасциолез (встречается в 58,3%) и цистицеркоз (отмечен в 41,7%). Также распространены стронгилятозы желудочно-кишечного тракта (отмечены в 33,3%), и диктиокаулезы (в 25%), которые, помимо поражения желудочно-кишечного тракта, участвуют в формировании респираторной патологии у молодняка крупного рогатого скота.

В плане реализации противоэпизоотических мероприятий во всех хозяйствах взрослые животные получают ежегодно до 11-ти иммунизаций

(считая ревакцинации), молодняк - до 12 иммунизаций, из которых в отдельных фермах 4 введения вакцины проводят в первый месяц жизни. Непрерывная схема иммунизации животных на фоне воздействия разнообразных факторов внешней среды, в т.ч. экологических, оказывает влияние на полноценность иммунного ответа у животных. Поэтому в таких условиях эффективность вакцинации как профилактического мероприятия резко снижается, а временами она оказывается нецелесообразной.

3.2 Оценка воздействия факторов внешней среды, обуславливающих накопление поллютантов в организме и приводящих к развитию иммунодефнцитных состояний у животных

В промышленных регионах часть сельскохозяйственных организаций расположены или имеют угодья для выращивания кормов в зоне интенсивного антропогенного загрязнения продуктами радиоактивных аварий и инцидентов (аварии в НПО «Маяк», 1957, 1964 гг.), промышленными выбросами предприятий, в основном, металлургического профиля. Приоритетными загрязнителями при этом являются радиоактивные элементы ( Sr, Cs) и тяжелые металлы (Pb, Cd, Си, Ni и др.). Наиболее высокое загрязнение радиоактивными элементами на Среднем Урале зарегистрировано в районах с наиболее развитым животноводством и птицеводством.

Ранее проведенными исследованиями (И.М. Донник и соавт., 1996-2010) на данных территориях отмечено высокое содержание 90Sr в снеговых осадках -в Каменском районе 19-65 МБк/км2 (в среднем, 42,74МБк/км ), в Богдановическом - 34-41 МБк/км2 (в среднем, 37,76 МБк/км ). Также высокие значения отмечены в Белоярском районе - в среднем, 32,9 МБк/км . Выпадение радионуклидов со снеговыми осадками коррелировало с накоплением их в тканях и органах животных (превышение допустимых уровней Sr в костях в 1,5-3 раза).

У животных из районов, испытывающих техногенный прессинг, уровень накопления меди в печени превышал МДУ (максимально допустимые уровни) в 6-28 раз, свинца в мышцах и печени - в 2-10 раз, цинка в печени - в 1,5-2 раза, кадмия - в 1,4-2 раза, никеля - в 9-12 раз.

В сельскохозяйственных организациях, расположенных в других районах (Ирбитский, Алапаевский, Сысертский) экологическую ситуацию можно охарактеризовать как благополучную, что связано с отсутствием на их территории предприятий металлургической промышленности и радиоактивного следа. В Красноуфимском районе, как в месте складирования и хранения монацитового концентрата, в отдельных зонах мы отмечали высокую концентрацию радона в припочвенном воздухе (И.М.Донник, Е.Н.Корсакова, 1999). Красноуфимский и Ачитский районы являются природными биогеохимическими провинциями по недостатку селена, в этих же районах отмечается недостаток меди и железа, а в отдельных местах - цинка.

Исследования, проведенные совместно с И.А.Шкуратовой, А.И. Белоусовым (2010) показали, что во всех кормах, отобранных в

сельскохозяйственных организациях Уральского региона, был выявлен дефицит эссенциальных элементов.

В отдельных изучаемых хозяйствах дефицит кобальта в рационе дойного стада составил 1,3-3,8 раз, селена - в 1,4-2,3 раз. Избыток поступления железа с кормом отмечен на юго-западе регионе (в 1,8 раз), дефицит его поступления - на юго-востоке (до 3,3 раз). Недостаток поступления меди и цинка отмечен также в южных районах: в 1,9-3,5 и 2,7-3,2 раз соответственно. Как избыток, так и хроническая недостаточность этих биоэлементов могут приводить к развитию патологических состояний у животных.

Кроме того, неудовлетворительные погодные условия, затрудняющие качественную заготовку кормов, приводили к накоплению микотоксинов в кормах, превышающих МДУ в 66,7%, в 50% исследованных проб при этом были выделены микотоксины в количествах, превышающих допустимые уровни.

Наиболее неблагоприятная обстановка по контаминации микотоксинами кормов отмечена в предприятиях Белоярского, Сысертского, Сухоложского районов. В Белоярском районе при оценке суммарного поступления микотоксинов со всеми видами корма установлено, что, в среднем, уровень Т2-токсина был превышен в 26 раз, содержание афлотоксина превышало МДУ в силосе - в 8,2 и зерносмеси - в 5,6 раз, охратоксина в сенаже - в 12 раз (рис.1). В Сысертском районе установлено повышенное содержание Т2-токсина и ДОН в силосе - в 7,2 и 3,1 раз соответственно, охратоксина в силосе и зерносмеси - в 6 и 21 раз соответственно.

Рисунок 1 - Поступление микотоксинов с кормами на фермах Белоярского района

В Сухоложском районе отмечали превышение МДУ по двум видам микотоксинов одновременно: ДОН - в 1,3 раза и охратоксин - в 5,78 раз.

Таким образом, определяющим фактором, действующим на животных в промышленных регионах, является массовое поступление в организм экотоксикантов с питьевой водой, кормами, что сопровождается их значительным накоплением в органах и тканях.

Вторым значимым фактором является поступление с кормом

микотоксинов в количествах, превышающих МДУ.

3.3 Оценка эндогенных факторов, влияющих на формирование иммунного ответа при проведении специфической профилактики (на примере модельных хозяйств)

У животных из сельскохозяйственных организаций, расположенных в разных районах, отмечена разная степень развития иммунодефищггаых состояний, связанных, прежде всего, с недостаточностью клеточного звена иммунитета и обусловленных действием как внешних (радиологических, геохимических, экологических), так и внутрихозяйственных факторов (Шкуратова И.А. и др., Верещак H.A. и др., 2007; Беспамятных E.H. и др.,

2008).

К 2011 г. в Свердловской области поголовье крупного рогатого скота является чистопородным и на 84,7% отнесено к высшим бонитировочным классам (элита и элита-рекорд). Среди выбранных модельных хозяйств 6 племзаводов, 4 племрепродуктора и 2 товарных хозяйства. При этом, высокая доля кровности (более 85%, 7/8) по голштинскому скоту отмечена в 58,3/о модельных хозяйств. У таких животных средний возраст в отелах ниже 2,5. Отмечена отрицательная корреляция данного показателя с долей кровности (г=-0,38), положительная корреляция (г=0,736) со средним возрастом выбытия коров, что свидетельствует о снижении продуктивного долголетия. Развитие иммунодефицитных состояний при повышении доли кровности до 85% и более, продуктивности выше 5000 кг/год характеризовалось достоверным снижением уровня Т-лимфоцитов на 34% (до 1,32±0,05 тыс./мкл), содержания В-лимфоцитов - на 17% (до 1,3±0,06), индекс Т/В-лимфоцитов - на 22% (1,03±0,04 ед.), при этом уровень фагоцитарной активности неитрофилов

достоверно не менялся.

При скармливании коровам кормов, содержащих микотоксины в количествах, превышающих МДУ, у животных отмечали иммуносупрессию, связанную с подавлением клеточного звена иммунитета.

Установлено, что у коров, потребляющих корма, загрязненные микотоксинами, содержание Т-лимфоцитов было ниже на 26%, В-лимфоцитов - на 31% по сравнению с интактными животными (табл. 1). Уровень фагоцитоза при поступлении микотоксинов в организм также был ниже на 30%,

фагоцитарный индекс на 47%.

При оценке состояния иммунной системы животных из районов техногенного прессинга нами также установлена иммунологическая недостаточность. У коров из данных территорий отмечены низкие количественные значения уровня Т- и В- лимфоцитов, подавление активности фагоцитоза нейтрофилов. Содержание Т-лимфоцитов составляло 1,13±0,29

тыс/мкл., В-лимфоцитов - 1,01±0,2 тыс/мкл., активность фагоцитоза -11,9±1,03%, что в 2-3 раза ниже аналогичного показателя у коров из экологически благополучных территорий. Индекс фагоцитоза, характеризующий его интенсивность, при этом был ниже в 6-10 раз.

Таблица 1 - Иммунологические показатели коров при поступлении в организм микотоксинов (х±5х) __

Показатель При скармливании При скармливании

кормов, содержащих доброкачественных

микотоксины кормов

Эритроциты, млн/мкл 5,39±0,54 6,42± 0,49

Гемоглобин, г/л 101,01±8,43 121,0 ±7,40

Лейкоциты, тыс/мкл 5,75±0,60 6,72± 0,70

Эозинофилы, % 7,25±4,43 8,11 ±2,40

Базофилы, % 0,90±0,90 0,01+0,00

П/я нейтрофилы, % 1,64±1,05 2,44+1,48

С/я нейтрофилы, % 22,67±5,80 20,4+ 5,83

Моноциты, % 2,93±1,27 5,33±0,63

Лимфоциты, % 63,87+6,94 63,7±7,56

Лимфоциты, тыс./мкл 3,66±0,50 4,28±0,70

Т-лимфоциты, % 41,10±7,80 44,67+5,18

В-лимфоциты, % 35,07±0,42 39,11 ±2,07

Индекс Т/В 1,22±0,34 1,15+0,12

Т-лимфоциты, тыс./мкл 1,53±0,12* 1,93±0,13*

В-лимфоциты, тыс./мкл 1,27+0,15* 1,67±0,08*

Лейкоцитарный индекс (ЛТИ) 4,28+0,23 3,71±0,84

Фагоцитарная активность (ФА), % 33,18±1,22* 43,4±1,72*

Фагоцитарный индекс (ФИ), у.е. 6,11±1,80* 9,00±0,54*

*Р<0,05

Иммунологическая недостаточность отмечена у телят во всех модельных хозяйствах. При изучении в динамике в первый месяц жизни формирования иммунных реакций при проведении вакцинации против ряда заболеваний установлено, что введение согласно схеме противоэпизоотических мероприятий инактивированной вакцины против сальмонеллеза телятам в 7 дней и инактивированной вакцины против ОРВИ и пастереллеза в 21 день стимулировало лейкопоэз, что выражалось в повышении содержания лейкоцитов и лимфоцитов в крови после каждого введения вакцины (табл.2).

При этом, повышение лейкоцитов (в 1,2 раза) после первой вакцинации было не продолжительно, ко времени повторного проведения вакцинации их уровень снова снизился до начальных значений (7,44 тыс/мкл).

Также было отмечено повышение уровня лимфоцитов - в 1,6 раз после первой вакцинации, в 1,9 раз после второй. Однако, динамика Т- и В-лимфоцитов была противоположной: введение первой вакцины вызывало их снижение, при введении второй вакцины количество иммунокомпетентных клеток возрастало на 10-30% (Т-клетки) и 40-50% (В-клетки) по сравнению с фоновым уровнем.

Таким образом, введение вакцины в 7-ми дневном возрасте на фоне физиологически низких значений иммунологических показателей может вызывать иммуносупрессивный эффект, и эффективность вакцинации может быть тоже низкая. В дальнейшем, к 1-месячному возрасту, формирование иммунных реакций проходит более активно.

Таблица 2 - Формирование иммунных реакций у телят при проведении вакцинаций (х^Бх)

Показатель

Эритроциты, млн/мкл

Гемоглобин, г/л

Лейкоциты, тыс/мкл

П/я

нейтрофилы,%

С/я

нейтрофилы, %

Эозинофилы,

Новорожд.

5,90± 0,86

121,10 ± 1,27

12,!0± 0,08* "

2,14± 0,95 '

46,86+ 18,96

1,14+0,38 '

Моноциты, %

Базофилы, %

Лимфоциты, %

Лимфоциты, 1С ./мкл

2,86+ 0,90 •

47,00 ±0,27

5,11+0,90 '

Т- лимфоциты, %

В- лимфоциты, % _

Т- лимфоциты, тыс./мкл

В-лимфоциты, тыс./мкл

Т/В, у.е.

ЛТИ, у.е.

ФА, %

ФИ, у.е.

12,57±6,00 '

5,8б±3,44 •

0,96±0,30 '

0,30±0,02 •

3,69±2,06

30,81+2,12 '

18,29±7,61 '

0,53±0,30'"

Телята 1-2 дня

Телята 7 дн.

5,80 ±0,10

113,0±3,74

9,43±0,29

0,95±0,14

47,14±1,78

0,43±0,16

0,48±0,13

0,05±0,04

50,86±1,66

5,90±0,31

100,90±4,70

7,48 ± 0,42

5,10±0,78

37,9±2,52

0,35±0,17

3,40±0,69

4,76±0,17

52,75+2,87

3,87±0,26

18,29±0,80

14,38±0,82

0,87±0,04

0,70±0,05

1,33±0,07

10,55±1,25

34,57±1,60

2,55±0,10

45,78±2,23

31,11±1,98

1,76±0,15

1,21±0,12

1,54±0,15

4,56+0,44

27,86+2,87

1,26±0,23

Телята 14 дней

Телята 21 д.

5,54±0,20

97,90+6,36

90,60 ±2,12"

9,16±0,63

0,50±0,22

28,60±2,56

0,20±0,13

0,90+0,31

0,20+0,13

69,60+2,57

6,25+0,24

21,40±0,84

19,40±0,73

1,34+0,06

1,20+0,03

5,95± 0,99

87,40+6,51

7,44± 1,18"

3,60+1,67

42,60± 12,93

0,80± 0,45

2,00 ±1,41

51,00+3,84

2,73 ±0,84

14,60+ 6,50

29,80± 3,03"

1,43+ 0,30"

1,12+0,06

6,78+0,84

32,60+1,86

2,70+0,17

1,26± 0,07*

0,77 ±0,74"

5,27+0,64

17,60± 6,07

0,59+ 0,20

Телята 1 мес.

5,07+0,16

8,73+0,89

5,16+0,59 '

31,05+3,04

0,37+0,14

1,95+0,42

61,47+2,98

5,41+0,62

39,12+3,91

29,92+2,80

1,94+0,24

1,79+0,31

1,3+0,23

5,03+0,54

24,25+2,34

0,99+0,18

-первая вакцинация против сальмонеллеза, вторая вакцинация против ОРВИ и

пастереллеза, *-между фоном и телятами до вакцинации, **-между фоном .. телятами после вакцинации, Р<0,05

Характеристика биохимического статуса крупного рогатого скота по ряду показателей выявила снижение содержания макро- и микроэлементов, снижение у 80% коров каротина в 3,45 раз, у 64-66% животных щелочной фосфатазы в 1,3 раза. Особенно это было выражено у коров с продуктивностью

6-7 тыс. кг/год. Дефицит железа у животных в отдельных хозяйствах был значительно выражен у 89% коров.

Таким образом, анализируя роль экзогенных и эндогенных факторов при формировании иммунного ответа при специфической профилактике, можно сделать вывод, что у животных с повышенным уровнем накопления в организме экополлютантов, а также микотоксинов и пр., выявляется иммунологическая недостаточность, проявляющаяся в достоверном снижении содержания популяций лимфоцитов и активности фагоцитоза.

3.4 Усовершенствование и результаты внедрения комплексной системы профилактики инфекционных болезней крупного рогатого скота

на примере острых респираторных вирусных инфекции (ОРВИ)

3.4.1 Оценка эффективности специфической профилактики ОРВИ крупного рогатого скота при использовании живых и инактивированных вакцин

Исследованиями, проводимыми в течение ряда лет О.Г. Петровой, H.A. Кушнир, Е.В. Печура и др. (2007-2009) установлено, что фермы крупного рогатого скота, выбранные нами в качестве модельных, имеют статус неблагополучия по ОРВИ крупного рогатого скота и реализуют программу оздоровления. Основным этиологическим агентом в них является возбудитель инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота, что подтверждено нами при исследовании патологического материала и парных проб сывороток крови от животных из данных хозяйств.

Клинические признаки острых респираторных вирусных инфекций у животных были представлены респираторной и генитальной формами. Респираторная форма была выявлена у телят в 41% модельных хозяйств, генитальная у коров - в 17%, смешанная - в 42% хозяйств.

Респираторная форма у телят проявлялась остро, появлением катаральных истечений из носа, чиханием, влажным кашлем, апатией у 60-80% телят. Генитальная форма у коров и телок проявлялась, как правило, латентно, у 57-74% животных в эпителии слизистой влагалища, его преддверии и вульве отмечали многочисленные разной величины пустулы (пустулезный вульвовагинит). В данных хозяйствах уровень абортов коров и нетелей был в пределах 4-5% от количества оплодотворенных самок, причем уровень абортов у нетелей был, в среднем, в 1,3 раза выше, чем у коров. Возбудитель инфекционного ринотрахеита в данных племпредприятиях выделяли из абортплодов во всех случаях обращения. При латентном течении инфекционного ринотрахеита период от родов до оплодотворения был увеличен до 120-127 дней.

Проводимые нами в течение ряда лет исследования показали, что протективный иммунитет у восприимчивого поголовья после введения инактивированных вакцин был достаточно неоднородным в разных сельхозорганизациях.

Установлено, что у телят, вакцинированных против инфекционного ринотрахеита, при использовании инактивированных вакцин уровень популяционного иммунитета варьировал от 0 до 100%. Только в 24% обследованных сельскохозяйственных организациях протективный иммунитет отмечали у 70% и более телят. Еще в 48% ферм регистрировали только 50% телят с высокими титрами антител на введение вакцинного антигена.

Анализируя качество поствакцинального иммунитета молодняка можно отметить, что протективный иммунитет к инфекционному ринотрахеиту отмечали только у 52% иммунизированных телят. При этом установлена положительная корреляция (к=0,85) между уровнем поствакцинальных антител в сыворотке крови телят и числом телят, имеющих поствакцинальные антитела

в протективном титре.

Наиболее высокие значения среднегеометрических титров антител к возбудителю инфекционного ринотрахеита отмечали на фермах Ирбитского, Алапаевского района (61og2 и 6,941og2 соответственно), при этом число телят с эффективной иммунизацией в популяции было свыше 80%. В этих хозяйствах уровень ксенобиотиков в организме животных был незначительным, в кормлении всегда используют качественные корма.

Животные ряда исследуемых ферм характеризовались низкими значениями среднегеометрических титров антител (1,74-2,2 log2) и низким числом телят с протективным иммунитетом к инфекционному ринотрахеиту (16-35%). В этих предприятиях отход телят по причине смешанных респираторных заболеваний регистрировали на уровне 5-7% к обороту стада. Установлено, что крупный рогатый скот' в этих предприятиях имеет в организме повышенные концентрации тяжелых металлов, радионуклидов, имелись случаи скармливания кормов, пораженных плесневыми грибами.

При вакцинации коров против инфекционного ринотрахеита эффективность иммунизации была значительно выше - популяционный иммунитет отмечен у 72%. Это связано, прежде всего, с иммунологической зрелостью и наличием компенсаторных механизмов у взрослых животных (Верещак H.A., 2007; Федоров Ю.Н., 2008).

Вакцинация телят и коров против парагриппа-3 была еще более эффективна, протективный иммунитет в титре 4 log2 и выше был отмечен у 100% телят и коров в 66,7% обследованных ферм. В остальных фермах - у 7085% животных. Особенность формирования иммунитета к данному заболеванию характеризуется тем, что у крупного рогатого скота в течение жизни восприимчивость к парагриппу снижается и образуется естественный иммунитет (Юров К.П., 2001).

Анализируя зависимость формирования поствакцинального иммунитета от действия эндо- и экзогенных факторов, можно отметить их влияние на уровень антителообразования и количество животных с полноценным

иммунным ответом (табл. 3).

Установлено, что на эффективность вакцинации против инфекционного ринотрахеита оказывают влияние все изучаемые факторы, снижающие

антителообразование на 15-20%. Число животных с активным поствакцинальным иммунитетом при этом уменьшалось в 1,2-1,5 раз.

Таблица 3 - Поствакцинальный иммунитет к возбудителям ОРВИ у телят при воздействии эндо- и экзогенных факторов__

Факторы Поствакцинальный иммунитет к ИРТ Поствакцинальный иммунитет к парагриппу-3

Уровень антител, log2 Число животных с протекти- вным иммунитетом, % Уровень антител, log2 Число животных с протекти- вным иммунитетом, %

1 Доля кровности по голштинской линии и молочная продуктивность на фуражную корову Доля кровности более 85%, продуктивность более 5000 кг/год 4,03 44,83 6,16 87,13

Доля кровности менее 60%, продуктивность менее 5000 кг/год 4,96 67,75 6,48 93,75

2 Накопление экополлютантов в организме Животные из зон экологического прессинга 4,25 51,64 6,13 88,0

Животные из зон экологического благополучия 4,85 53,07 6,34 90,3

3 Поступление микотоксинов с кормом Превышение МДУ микотоксинов в кормах 4,26 47,1 5,6 79,4

Отсутствие загрязнение корма микотоксинами 4,93 56,31 6,7 96,42

На эффективность вакцинации против парагриппа-3 преимущественное влияние оказало поступление с кормом микотоксинов. При этом, среднегеометрический титр антител у животных в этих фермах был ниже на 20%.

Одним из наиболее важных факторов в системе профилактических мероприятий против острых респираторных вирусных инфекций является вакцинация стельных коров для создания колострального иммунитета у новорожденных телят (Фельдман И.И., 1992; Юров К.П, 2001; Мищенко В.А., 2003; Шахов А.Г., 2005; Сисягин П.Н., 2005; Шкуратова И. А., 2010 и др.).

Нами проведено определение антител к возбудителям инфекционного ринотрахеита и парагриппа-3 крупного рогатого скота в молозиве у новотельных коров, вакцинированных против ОРВИ за 3 мес. до стельности по сравнению с вакцинированными в разные сроки стельности и лактации.

Исследования показали, что у невакцинированных во время 3-го триместра стельности коров после отела титр специфических антител в ИФА к возбудителю ИРТ составил от 0 до 1:800 (в среднем, 2,381ё) (рис. 2), к возбудителю парагриппа в РТГА 1:8-1:128 (4,4 1о§2)._____

3,5 з 2,5

I 1,5

0,5

3,7

3,1

2,38

40% проб

3,26

80% проб

□ сыворотка крови О молозиво

проте ктивныи титр 2,6!д

вакцинированные в разные триместры стельности

вакцинированные в третьем триместре

возбудителю инфекционного

Рисунок 2 - Содержание специфических антител к ринотрахеита в молозиве у новотельных коров и сыворотке крови

У вакцинированных за 3 мес. до отела коров в данный период наблюдения титр специфических антител к возбудителю ИРТ составил от 1:100 ' до 1:3200 (в среднем, 3,7^), к возбудителю парагриппа - 1:128 у всех животных (7,0 1оё2).

При определении содержания специфических антител в молозиве оказалось, что средний титр антител к ИРТ у коров при разных сроках вакцинации не отличался достоверно, однако антитела обнаруживали в 40% проб молозива коров, вакцинированных в разные периоды стельности и у 80% коров, вакцинированных в третьем триместре.

Антитела к возбудителю парагриппа-3 обнаруживали в молозиве в 100/о случаев у коров обеих групп. При этом, при вакцинации коров в последний триместр стельности средний титр антител был выше на 13%, чем у коров, вакцинированных в другие периоды стельности.

В сыворотке крови телят, получавших молозиво от коров, вакцинированных в последнем триместре стельности, обнаруживали антитела к инфекционному ринотрахеиту в титрах, сопоставимых с их концентрацией в

молозиве (3,131§, в ИФА).

Специфические антитела к возбудителю парагриппа-3 в сыворотке крови новорожденных телят определяли в титрах, в 1,4 раза превышающих среднегеометрические титры антител к данной инфекции в молозиве (4,5 и 6,3

1о§2 в РТГА соответственно).

Однако, несмотря на необходимость колостральной защиты при профилактике ОРВИ до начала вакцинации, к моменту ее проведения у телят,

как правило, сохранялись достаточно высокие титры колостральных антител к возбудителям данных инфекций, которые могли нейтрализовать вакцинный антиген и снизить уровень активного антителообразования.

Нами была изучена напряженность поствакцинального иммунитета при вакцинации телят с высоким уровнем колострального иммунитета с применением инактивированной вакцины против ОРВИ.

У телят к началу проведения вакцинации (21-й день жизни) отмечали в сыворотке крови высокий среднегеометрический титр антител к возбудителям инфекционного ринотрахеита - 6,81og2 и возбудителю парагриппа-3 - 7,0 log 2 (рис.3).

Рисунок 3 - Уровень антител к возбудителям инфекционного ринотрахеита и парагриппа-3 крупного рогатого скота после вакцинации телят на фоне колострального иммунитета

Установлено, что у телят даже на 30-й день после вакцинации среднегеометрический титр антител достоверно не изменялся, при этом уровень поствакцинальных антител к возбудителю инфекционного ринотрахеита увеличился незначительно, а к возбудителю парагриппа -3 даже снизился по сравнению с фоновыми значениями.

Таким образом, при применении инактивированных вакцин на фоне высокого колострального иммунитета эффективность вакцинации может быть недостаточной.

Для изучения возможности повышения эффективности вакцинации против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота нами в одном из модельных хозяйств была внедрена схема применения комплексной вакцинации с применением вакцин производства Intervet, Нидерланды. Применяли вакцины Бовилис® IBR Marker (живая маркированная вакцина для специфической профилактики от инфекционного ринотрахеита КРС), а также Бовилис Bovipast RSP (инактивированную вакцину против парагриппа-3 (ПГ-3), респираторно-синцитиальной инфекции (PC) и пастереллеза крупного рогатого скота) согласно инструкции производителя.

Перед вакцинацией колостральные титры антител у 50% 14-дневных телят были на уровне 51og2. Через 14 дней после вакцинации живой вакциной (у телят 1-мес. возраста) среднегеометрические титры антител составили в РИГА 7,12 log2 у 89% иммунизированных животных, через 45 дней (у 2-х мес. телят) - 5,37 log2 у 81,8% телят. Ревакцинацию проводили 3-х месячным телятам, и через 90 дней после начала опыта (через 14 дней после ревакцинации) титр антител был еще выше на уровне 6,llog2 у 100% телят.

При сравнительной оценке эффективности инактивированной вакцины и живой маркированной вакцины установлено, что среднегеометрический титр антител к возбудителю инфекционного ринотрахеита у телят через 14 дней после вакцинации разными вакцинами был в 1,4 раза выше при применении живой маркированной вакцины, число телят с протективным иммунитетом был выше при этом в 2,3 раза (рис. 4).

инфекционного ринотрахеита

То есть, живая маркированная вакцина даже при раннем применении на фоне колострального иммунитета способна формировать напряженный иммунитет у телят в условиях иммунологической недостаточности, что позволяет профилактировать заболевание у наиболее восприимчивых телят в возрасте 1- 3-х мес. и старше.

Эффективность инактивированной импортной вакцины по уровню антител к возбудителю парагриппа-3 была выше по сравнению с вакциной отечественного производства. Так, при применении отечественной вакцины уровень популяционного иммунитета через 14 дней после ревакцинации составил 84%, среднегеометрический титр антител - 6,3 log2. При введении импортной - 100% и 7,0 log2 соответственно.

Установлено, что после введения схемы профилактики с применением импортных вакцин сохранность телят в 2010 г. повысилась в 1,4 раза по сравнению с 2009 и 1,2 раза по сравнению с 2008 г., количество вынужденно убитых по причине респираторных болезней телят снизилось в 7 и 5 раз

соответственно, общий отход к обороту стада - в 7 и 8,7 раз. Отмечена отрицательная корреляция (к—0,81) между уровнем сохранности и снижением

отхода к обороту стада.

Экономическая эффективность применения данных вакцин по итогам 2010 г. в хозяйстве составила 1,9 млн. руб., экономический эффект на каждый рубль дополнительных затрат - 12,7 руб.

Для сравнения эффективности коммерческих вакцин против ОРВИ крупного рогатого скота нами была изучена напряженность поствакцинального иммунитета к инфекционному ринотрахеиту крупного рогатого скота (п-50) при использовании живой вакцины Бови Шилд Голд (Pfälzer, США) в одном из модельных хозяйств (Тюменская область), вакцину применяли согласно

инструкции производителя.

Установлено, что у взрослых коров при проведении как первичнои, так и ежегодной иммунизации данной вакциной отмечались высокие среднегеометрические титры антител 7,5-7,74 log2, охват популяции протективным иммунитетом отмечали более 75% при первичной вакцинации и 100% - при дальнейшей. При этом у вакцинированных коров в сухостойном и новотельном периодах титр антител оставался высоким, что влияло на формирование высокого колострального иммунитета у всех полученных от них телят (6,51og 2). Но, к моменту проведения вакцинации (3 мес.) у телят отмечалось существенное снижение уровня пассивных антител к ИРТ в сыворотке крови. Через 1 мес. после вакцинации и ревакцинации их среднегеометрический титр составил 41og2 и отмечался только у 40% телят.

Как отмечают, недостатком данной вакцины является позднее начало вакцинации у телят - 3 мес. и старше, в то время как максимальная заболеваемость ОРВИ отмечена в возрасте 1-3 мес. (Юров К.А., 2001; Глотов

A.B., 2005; Печура Е.В., 2007).

Таким образом, наиболее эффективной в системе профилактических мероприятий против ОРВИ крупного рогатого скота у животных с иммунологической недостаточностью оказались вакцины Бовилис (Intervet, Нидерланды).

3.4.2 Оценка технологических факторов в системе комплексной профилактики ОРВИ крупного рогатого скота

Технологические факторы могут стать основными предрасполагающими причинами развития респираторных заболеваний (скученность животных, нарушение вентиляции в помещении, высокая контаминация воздуха бактериальными, вирусными, грибковыми агентами, значительная концентрация аммиака). В последнее время в сельскохозяйственных организациях стали возрождать метод выращивания телят на открытом воздухе в условиях умеренно-низких регулируемых температур в индивидуальных домиках, «холодным» методом выращивания.

Для возможности использования данного метода в системе профилактики ОРВИ крупного рогатого скота в неблагополучных по респираторным заболеваниям хозяйствам, нами изучены иммунологические показатели,

характеризующие формирование адаптивных реакций у телят, содержащихся «холодным методом» в разных племпредприятиях Среднего Урала. У данных телят также учитывали уровень падежа, сохранности, среднесуточный привес.

Установлено, что при выращивании телят в условиях регулируемых умеренно-низких температур отмечены адаптивные реакции, выраженные в увеличении значений показателей гемоглобина (на 10%), содержания лейкоцитов (в 1,3-1,4 раза), количества иммунокомпетентных клеток (Т-лимфоцитов и В-лимфоцитов - в 2,2 раза). Особенно выраженные изменения регистрировали к 30-дневному возрасту.

На фермах, где телят выращивают «холодным методом», падеж по причине вирусно-бактериальных респираторных болезней молодняка составил 0,4% к обороту стада, тогда как в контрольных хозяйствах данный показатель был достоверно выше в 6,25 раз и составил 2,5%.

Вследствие активизации и оптимизации обменных процессов, снижения антигенной нагрузки возбудителями вирусных и бактериальных инфекций, у телят при содержании в условиях умеренно низких температур отмечается достоверное повышение среднесуточного прироста (ССП) в 1,6 раз с контролем. Экономическая эффективность внедрения данной технологии составила 1,5 млн. руб./год., экономический эффект - 5,98 руб./1 рубль затрат.

Таким образом, выращивание телят в условиях умеренно-низких температур в индивидуальных клетках на несменяемой подстилке является эффективной мерой в системе профилактических мероприятий при оздоровлении от острых респираторных вирусных инфекций крупного рогатого скота.

3.4.3 Регламент оздоровительных мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота

Проведенные исследования позволили нам дополнить схему оздоровительных мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота, принятую в хозяйствах Свердловской области разной направленности (Петрова О.Г., Хаматов М.Ф. с соавт., 2007).

Особенностями данного Регламента является подход к оздоровлению при неблагополучии по ОРВИ с учетом выявления экзо- и эндогенных факторов, которые обуславливают развитие иммунодефицитов у животных, применение молодняку крупного рогатого скота живой маркированной вакцины, а взрослому крупному рогатому скота - применение инактивированных вакцин с введением вакцинации перед осеменением для профилактики внутриутробного инфицирования, применение в племенных организациях «холодного» метода выращивания молодняка до репродуктивного возраста (рис. 5), что позволило снизить заболеваемость ОРВИ на 18-30%.

я "а

я я о

3 3

-I я

pj о

3 я

-тз

п>

3 »

За О •а о ш

tr Я

2 п *и о я

"О

43 S

О -а СО S

• Контроль заболеваемости ОРВИ •Контроль этиологической структуры факторных инфекций •Контроль экзо- и эндогенных факторов, влияющих на иммунный ответ

•Контроль эффективности мероприятий (заслушивание отчетов _ветеринарных специалистов)_

Товарные хозяйства

Коровы

Телята

HiiKiiiiiMtnin сгельныч корон in чес. лп «челл с нспощлппаиием ниамнкнронаниои Ппкипт.« с Ком но мл к» туяратп. с тиериа.юм

I -1-21 nein.

i oiltpo.qi. напряженное П1

1ммчmiretn черсч I после ппишнапин.

Племенные хозяйства

Телята

ппепремепмая пмшшка молоита н наиюм ooi.cmi

npMMCIU'IMIt? 1«.'ЛЯ»ПМ И t П лсмижкшн ГМПОрОГКМ

реконналесиенгоп 20 мл.,Von и* к лиГт 50 мп/r од орально

Ктпро/н. слпмгарппго COCMVllMHI ЖНИОТИОИОП-

ческих помещений

Применение иммумо-чодудягорои согласии cnmcv хтннстна

Пакиннапин «Компоиам 17-21 ■ лнеишчо тпрастп лпулр;лно. с Интерполом 14-21 лет., m.imu тспвт черел ?• дмсП

Памншапня с 14 .inert макшшами Попилие IHR и Покнтс Поинпаст RSP. Реиакиипаннч черел 6 игл. и в о мес.

Контроль напряженности имм\ ни i et а мерс« ЗП nieil после реппкпнпаиии^

Реплкиинанпя при окутепши напряженнпгп iiMMVHincta Репакмшшшн телок п f> и 12 мес.

I1рнмеиеине ангиГшиернальнмх ирсипратоп в laiuiciiMoeiH огсопугстпуюшнх инфекций

Исппгть ижанис »poio.naiwx nöp;too"ir>k _н_дотих ■ i.iicpt-ft__

«.Xnmvmwfl \«en>i: иырашиианич

Коровы

Гжекпартаи.нос нронелсине гинекологическое! нкчынссри wmiu

Плкнннпинч ia 14-2! л?нь л о осеменения с (см^'н.чпнаннем плкшнм. ■ Комоопак». олнокра I по

Намшнанин с тельных корон \\\ * мес. До о геля, щукрагнп. с иигерц.ллпм 1*1-21 юиь.

Применение преиарша Um плат им перс л иаитнаинеП

Hifpo fL илпрюкспмоет и mmnHinein нерол 1 мес. после накнинлнии.

K'ap:uiiHH и определение пирусологичсского статуса ремонтных иетелеП щ др\п»\ пдемхчпяПст»

Племпредприятия

Быки-производители

Исследование спермы 1 раз в квартал

Вакцинация имакпшироваштП ва к ц ш i о ii « Ко м бо в а к » _1 раз п 4 мое.

Исследование эффективности нпкпннашт через 70 niici'i.

Обшие мероприятия: карам типнропанпе н исслелопания ил инфекционные таболеиапня II Uli MX жшипшл

3.5 Характеристика специфической профилактики гриппа птиц А у разных видов сельскохозяйственной птицы

3.5.1 Эффективность применения разных вакцин против гриппа птиц А у экспериментальной и промышленной птицы

Среди инфекционных болезней птиц грипп занимает особое положение, что обусловлено чрезвычайной изменчивостью возбудителя, большим падежом и серьезными экономическими затратами. Малая эффективность вакцин, нарушения антителогенеза-, нарушения сроков и схем вакцинации может служить одной из причин начала эпизоотического процесса в регионе. Поэтому, актуальным становится постоянный мониторинг напряженности поствакцинального иммунитета у птиц, изучение у них «критических точек» иммунного ответа на вакцину против гриппа птиц.

Уральский регион с 2006 года является угрожаемой зоной по заносу гриппа птиц А. Схема специфической профилактики предусматривает ежегодное применение инактивированной вакцины против гриппа птиц Н5Ы1, вакцинация цыплят при продаже населению предусмотрена в суточном возрасте.

Нами проведены исследования по эффективности применения разных вакцин против гриппа А птиц у птиц разного возраста и вида. Исследование эффективности инактивированной вакцины против гриппа птиц Н5Ы1 проводили на экспериментальной (виварной) птице: цыплятах 1-дн. возраста, курах в возрасте 4-мес., гусях в возрасте 24 мес.

При исследовании поствакцинального иммунитета у цыплят, вакцинированных в суточном возрасте, установлено, что первые антитела к вакцинному антигену появлялись на 21-й день после вакцинации, в титрах ниже протективного у 50% вакцинированного поголовья (рис.6).

ЦЫПЛЯТ

Показатели иммунной системы цыплят суточного возраста характеризовались низким содержанием иммунокомпетентных клеток. К 14-21-тидневному возрасту количество их нарастало, что свидетельствовало о начале

антителообразования.

Однако, формирование у цыплят полноценного иммунитета у всего поголовья было отмечено только через 60 дней после вакцинации, т.е. применение данной вакцины против гриппа в суточном возрасте возможно не целесообразно.

.При вакцинации более взрослых курочек в возрасте 3-4 мес. установлено, что антитела в сыворотке крови появлялись через 7-10 дней у 40% поголовья и сохранялись в протективных титрах в течение 4-5 мес. Остальные 60% птиц

оставались неиммунными.

У гусей исследования формирования иммунного ответа проводили более детально, кровь для оценки уровня антителообразования брали каждую декаду в течение года.

Установлено, что антитела к возбудителю гриппа обнаруживали уже через 10 дней после введения вакцины, но число птиц с антителообразованием составляло всего 33% от вакцинированного поголовья.

После ревакцинации согласно инструкции через 30 дней титр антител у птиц начинал снижаться - критический период составил 40-60 дней. В это время количество антител было ниже протективного (4 ^2). В связи с этим мы провели дополнительную вакцинацию (третью с начала опыта), через 30 дней после второй. После этого антителообразование отмечали у 100% поголовья, среднегеометрические титры антител были выше протективных (рис.7).

Начиная со 110-го дня опыта (одиннадцатая - двенадцатая декада), отмечено снижение концентрации антител к вакцинному антигену. Также установлено, что в экспериментальной группе вакцинированных против ГП

птиц ежемесячно отмечалось наличие, в среднем, 30-40% гусей, не имеющих иммунной защиты к вакцинному антигену, а, следовательно, к возбудителю гриппа птиц А. У остальных птиц концентрация специфических гемагглютининов оставалась низкая, но достаточная для защиты от

заболевания (1/16-1/64).

Обобщая полученные данные, можно отметить, что, в целом, все поголовье опытной птицы можно было условно разделить на три группы: с высоким уровнем антителообразования, со средним и с низким. При этом, если у птиц после первой вакцинации отмечались высокие титры антител, то и на протяжении всего периода наблюдения они продолжали оставаться высокими (1/128-1/512). Количество таких гусей в экспериментальной популяции было, в среднем, 15%.

У гусей, которые после первой вакцинации показывали низкие значения напряженности иммунитета, и в дальнейшем уровень антител продолжал оставаться низким, а спустя 4-5 мес. после начала опыта, исчезал совсем. Данная группа птиц более половины срока наблюдения оставалась неиммунной после трехкратной вакцинации, их количество составляло, в среднем, 37%. Поголовье птицы, которое показывало средние уровни антителообразования

(1/16-1/64), составляло 48%.

При проведении биохимических и гематоиммунологических исследований установлено, что у гусей перед вакцинацией отмечали низкое содержание 7-глобулинов - 17,6% (при норме 35-37%). Также у гусей отмечено достаточно низкое содержание тимоцитов и В-клеток (34% и 21 % соответственно), изменение их соотношения (2,1 у.е.), что свидетельствовало об иммунной недостаточности.

В качестве альтернативы данной вакцине, которая была недостаточно иммуногенна у птицы с дефективностью иммунной системы и обменными нарушениями, были изучены другие вакцины (экспериментальные и допущенные к реализации и применению на территории РФ).

На экспериментальной птице была изучена экспериментальная вакцина против гриппа А производства ВНИВИП в сравнении с широко используемой инактивированной вакциной против гриппа птиц А (г.Покров).

При вакцинации гусей обеими вакцинами активное антителообразование начиналось на 7-й день после вакцинации, пик антителообразования приходился на 14 день опыта (рис. 8). Напряженность поствакцинального иммунитета, выраженная в титре антител к возбудителю гриппа А, была более высокой при использовании вакцины производства ГНУ ВНИТИП (г. Санкт-Петербург). Так, на 14-й день опыта средние титры поствакцинальных антител у вакцинированной данной вакциной птиц были выше на 22%, на 21-й день -выше на 30%. Но, к 60-му дню разница между среднегеометрическими титрами в обеих группах была несущественной. Аналогично, при вакцинации кур также была отмечена высокая иммуногенность вакцины ВНИИВИП. Уровень антител у вакцинированных кур в обеих группах уже через 7 дней после вакцинации был выше минимального протективного (41(^2) (рис. 9).

дни после вакцинации, сут.

Рисунок 8 - Интенсивность антитело- Рисунок 9 - Интенсивность антитело-образования у гусей при применении разных образования у кур при применении разных вакцин против гриппа птиц вакцин против гриппа птиц

На 14-й день опыта при применении вакцины ВНИВИП среднегеометрические титры антител были выше в 1,5 раза, на 14-й день - в 1,23 раза, на 21-й день - в 1,6 раз, на 30-й день - в 1,3 раза и в дальнейшем оставались на том же уровне, чем у кур, иммунизированных другой вакциной.

Максимальное антителообразование в обеих группах кур после вакцинации отмечали на 28-й день опыта. При этом, при применении вакцины производства ВНИИВИП максимальные титры антител составили 1:2048, при применении вакцины Покровского биокомбината- 1:512.

Исследования показали, что инактивированная вакцина против высокопатогенного гриппа птиц (ВПГП) подтипа

Н5 производства (г. Санкт-Петербург) является более иммуногенной даже при однократном применении, о чем свидетельствовало активное антителообразование у птиц после вакцинации и более высокие титры антител (на 20-30% у гусей, на 50-60% у кур), чем у птиц, привитых инактивированной вакциной против гриппа птиц А из штамма Н5Ш (г. Покров). Поэтому данную вакцину можно рекомендовать к применению для вакцинации домашней птицы, особенно содержащейся в открытых загонах.

Нами проведены исследования разных вакцин против гриппа птиц у гусей в промышленных условиях на птицефабрике Камышловской. Были сформированы 3 группы птиц одного возраста (30-45 дней). Птице 1-й группы (п=46) вакцинацию проводили вакциной производства ВНИВИП, 2-ю группу (п=47) птиц иммунизировали вакциной производства г.Покров, 3-й группе (п=45) вводили вакцину против гриппа птиц производства ФГУП «Ставропольская биофабрика». Через 30 дней после первой вакцинации всем группам проводили ревакцинацию.

Через 14 дней после первой вакцинации протективные антитела к возбудителю гриппа обнаруживали у 44% птиц 1-й группы, 36% птиц 2-й группы. К 30-му дню опыта (к моменту ревакцинации) количество гусей с протективным иммунитетом снизилось в обеих группах.

После ревакцинации (через 60 дней от начала опыта) в первой группе вакцинированных птиц протективный иммунитет к гриппу отмечен у 90%

гусей, через 90 дней - у 66,7%. Во второй группе было у 73,5 и 56,7% соответственно, в третьей - у 85,7-83,3%.

Максимальный титр антител отмечали после ревакцинации. При этом титр антител у гусей был аналогичен при применении вакцин производства ВНИВИП (г. С.-Петербург) и ФГУП «Ставропольская биофабрика» (1:16-1:128) (табл. 4).

Таблица 4 - Среднегеометрические титры антител после вакцинации гусей разными вакцинами против гриппа А _

N Гр Применяемая вакцина п Дни после вакцинации

14 30 60 90

1 ГНУ ВНИВИП РАСХН (г.Санкт-Петербург) 46 3,67 3,67 6,26 4,52

2 ОАО "Покровский завод биопрепаратов" 47 3,95 3,15 5,11 4,34

3 ФГУП "Ставропольская биофабрика" 45 3,00 3,23 6,38 4,82

Протективный титр 4,00

Таким образом, исследование показало, что наиболее раннюю защиту птиц от возбудителя гриппа у максимального количества вакцинированной птицы обеспечивает вакцина против гриппа птиц производства ВНИВИП г. Санкт-Петербург, поэтому данная вакцина может быть рекомендована в системе противоэпизоотических мероприятий при профилактике гриппа птиц А в нашем регионе. В более поздние сроки эффективными были все испытанные вакцины.

3.5.2 Эффективность применения иммунотропных средств для повышения эффективности вакцинопрофилактики у птиц

Для повышения эффективности вакцинопрофилактики у птиц с выраженным иммунодефицитным состоянием было изучено влияние Гермивита на уровень формирования поствакцинального иммунитета у молодняка гусей при экспериментальной вакцинации против гриппа А птиц. Для иммунизации применяли инактивированую эмульгированную вакцину против гриппа птиц из штамма Н5Ы1 (ОАО "Покровский завод биопрепаратов").

Гермивит - это натуральный продукт с высоким содержанием обменной энергии (не менее 12,5 МДж/кг), получаемый из спящего зародыша пшеницы, содержащий в своем составе около 32% протеина, 5% сырой золы, витамины А, В,, В2, В3, В5, В6, В12, Б, Е (0.71 г/кг), 17 аминокислот (в т.ч. 9 незаменимых) и 11 полиненасыщенных жирных кислот (производитель ООО «Розовый лотос», г.Екатеринбург). В состав рациона Гермевит вводили из расчета 3% по объему в периоды между вакцинацией и первой ревакцинацией (с 15 по 45), а также между первой и второй ревакцинациями (с 45 по 75 дни жизни). Общая продолжительность скармливания добавки составила 60 дней. Контрольная группа гусят получала только основной рацион.

Исследования, проведенные совместно с канд. вет. наук A.C. Заслоновым показали, что замена части рациона Гермивитом оказывает иммунотропное действие на организм и активизирует как гуморальные, так и клеточные факторы иммунитета.

Напряженность специфического поствакцинального иммунитета через месяц после 2-й ревакцинации в опытной группе гусят, получавших Гермивит, достигала 85,71%, у контрольной птицы - 77,14 %. При этом наиболее часто встречаемое разведение сыворотки, при котором обнаруживали антитела в контрольной группы 1:32 - 25,71%, в опытной 1:64 - 30%, среднегеометрический титр антител в опытной группе был выше в 2 раза.

У вакцинированных гусят в опытной группе было отмечено более выраженное увеличение количества лейкоцитов. Так, в 45-дневном возрасте количество лейкоцитов у гусят опытной группы было на 10%, больше чем у контрольных аналогов. В возрасте 75 дней различия в пользу гусят, получавших Гермивит, составили 17% (Р<0,05). В 105-дневном возрасте количество лейкоцитов в крови птицы опытной группы было выше на 13,33% (Р<0,01), чем в контрольной.

Таким образом, регулярная дача кормовой добавки Гермивит молодняку гусей с целью повышения эффективности иммунного ответа на введение вакцин может быть рекомендовано к практическому применению.

Нами проведены исследования по определению влияния препарата Полифит ПМ на гематологические и иммунологические показатели кур в возрасте 3-х месяцев.

Полифит ПМ - фитосорбент, содержащий ферментированные масла и соки растений череда, шиповник, мать-и-мачеха, подорожник, мелисса, орех грецкий, зверобой, тысячелистник, крапива, хвощ полевой, ромашка, солодка, чабрец, вероника (производитель МНПФ «Гиппократ», г. Луганск). Полифит ПМ применяли орально, при индивидуальном выпаивании, в виде суспензии с водой, в дозе 0,07 г на голову два раза в день, в течении 4-рех дней. Установлено, что применение препарата сопровождалось увеличением количества гемоглобина на 10% по сравнению с контрольной птицей, лейкоцитов и содержания лимфоцитов (тыс/мкл) на 47% через 14 дней после скармливания препарата. У контрольных кур по сравнеЕШЮ с опытными отмечался лейкоцитоз (до 30,0 тыс/мкл), высокое содержание псевдоэозинофилов 27% в контроле, 22% в опыте). Анализируя показатели иммунитета, можно отметить, что через 14 дней после применения препарата в крови цыплят повысилось содержание Т-лимфоцитов (на 33%) по сравнению с контролем, соотношение Т/В стало оптимальным (1,31 ед.) по сравнению с контролем. Т.е., препарат Полифит ПМ благоприятно влиял на резистентность кур, оказывал влияние на эффективность вакцинации против гриппа.

Результаты исследования эффективности вакцинопрофилактики гриппа птиц А у разных видов птиц, а также изучение возможности ее повышения путем применения иммунотропных препаратов позволило нам также усовершенствовать комплексный план профилактики гриппа птиц А, что

позволило сохранить эпизоотическое благополучие субъекта в условиях острой угрозы заноса инфекции.

3.6 Создание и результативность научно-обоснованной системы профилактики инфекционных болезнен животных н птиц

На основании проведенных исследований разработана научно-обоснованная система профилактики острых инфекционных болезней животных и птиц, предусматривающая воздействие факторов разного происхождения на организм животных, а также оценку напряженности иммунитета при вакцинации и контроль за соблюдением противоэпизоотических мероприятий. Система включает проведение мониторинга эпизоотической ситуации, выявления роли экзогенных и эндогенных факторов, и, по итогам исследований, подбор наиболее эффективных методов специфической профилактики инфекций (рис. 10).

Экономическая эффективность от внедрения отдельных звеньев системы составила в 2009-2010 гг. более 116 млн. руб.

4. ВЫВОДЫ

1. Мониторинг эпизоотической ситуации на Среднем Урале по основным острым и хроническим заболеваниям крупного рогатого скота и птиц показал благополучие по большинству инфекций (сибирская язва, туберкулез, бруцеллез, лейкоз и пр.). В нозологическом профиле заболеваний крупного рогатого скота актуальны острые респираторные вирусные инфекции. Противоэпизоотические мероприятия предполагают ежегодное проведение напряженной специфической профилактики, включающей до 11-12 иммунизации.

2. Установлено, что у животных из индустриальных территорий имеет место поступление экотоксикантов в организм животных, сопровождающееся превышением их допустимых уровней в органах и тканях: 8г в костях - в 1,5-3 раза; меди в печени в 6-28 раз, свинца в мышцах и печени - в 2-10 раз, цинка в печени - в 1,5-2 раза, кадмия - в 1,4-2 раза, никеля - в 9-12 раз.

3. У крупного рогатого скота в большинстве предприятий промышленных зон регистрировали иммуносупрессию преимущественно клеточного звена иммунитета, выражающуюся в снижении уровня Т- и В-лимфоцитов в 2-3 раза, показателей фагоцитоза - в 6-10 раз по сравнению с животными из более благополучных в экологическом плане территорий.

4. Основными экзогенными и эндогенными факторами, влияющими на развитие иммунодефицитных состояний у животных можно считать техногенный прессинг, поступление с кормами микотоксинов, а также генетические особенности происхождения.

а -в-

а>

§ 8

О о

Я ^

а ®

1Г о

х *

ы «в

О! § «=>

со

01 I £ 8«

Й Я

Я р ш X о ,3

Й и

я о

Оценка эпизоотической ситуации

о <31 о о

а о а р и я

о и

л)

2 р

Я 43

►е-

а ё 3

Оценка воздействия экзогенных факторов

Выявле- Выявле- Выявле-

ние ние ние

острых , природио фшгтор-

караитнн -очаговых II ых

них болезнен заболеоа-

болезнен: 1(11)>

! 1 1

Про веде- Предуире 0|пт1М»за

ние жденнс пня

карантин контакта техноло-

них с гии

меропрня 1 вектором содержи-

Т11Й ПИЯ

Выявление наразито-

Исследование тканей ЖИВОТНЫХ

Исследование поды

Проведение ирошпона-рачптарных мероприятий

Выявление накопления тшшгаппш

(Шяиле-1

ипе микогокен нов

Применение сорбепто» животным

Обработка

КОрМОВ II.

добавление

в них адсорбента

Оценка воздействия эндогенных факторов

Исследование кормов;

Выявление дефицита микро- II макроэлементов

Опенка Онвхтиш - чтекога : статус»

Оценка иммунного статуса

Оценка генотипа и

продуктивное-ти

Подбор и применение адаптированных внтамипио-Мниералъных добавок

Выявление иммунологической недостаточности

Подбор и применение иммунокорректороп

Подбор эффективного препарата для вакцшюпрофштктпкц

Оценка эффективности вакцинации определением напряженности иммунитета

Контроль проведения нротмвоэшиоотических мероприятии

5. У животных с выраженным иммунодефицитным состоянием клиническое проявление инфекционного ринотрахеита отмечено в виде респираторной формы у 60-80% поголовья. У коров генитальная форма инфекционного ринотрахеита в виде пустулезной сыпи проявлялась у 57-74% животных. У 4-5% нетелей и коров регистрировали аборты, период от родов до оплодотворения составлял 120-127 дней, что на 10-17 дней больше среднего.

6. Для профилактики и ликвидации ОРВИ в Уральском регионе создана система оздоровительных мероприятий (Петрова О.Г., Хаматов М.Ф. и др., 2007), предусматривающая использование инактивированных вакцин. Установлено, что у вакцинированных животных на фоне иммунологической недостаточности поствакцинальные антитела к инфекционному ринотрахеиту были выявлены только у 52% телят в среднегеометрических титрах 4,3±1,3 \cig2. У коров протективные титры антител к ИРТ после вакцинации регистрировали только у 72% (6,9±0,7 1о§2).

Поствакцинальный иммунитет к парагриппу-3 при введении инактивированных вакцин вырабатывался более активно по сравнению с ИРТ, но выявлялся у 100% животных только в 66,7% ферм, среднегеометрические титры у телят составили 6,26±0,8 1052, у коров - 5,82±0,9 1о§2.

7. При введении инактивированных вакцин в разные сроки стельности наибольший эффект был отмечен при вакцинации коров в 3-м триместре -появление антител к инфекционному ринотрахеиту отмечали у 80% животных. При вакцинации в другие сроки стельности (1й- и 2-й триместры) антитела к ИРТ в молозиве выявляли только у 40% коров.

8. В профилактике ИРТ у крупного рогатого скота, особенно на фоне выраженного иммунодефицитного состояния и с высоким колостральным иммунитетом, наибольшую эффективность у телят показала живая маркированная вакцина, что позволяет рекомендовать ее в производство.

9. В планах противоэпизоотических мероприятий существенная роль отводится специфической профилактике гриппа птиц А. Применение цыплятам инактивированной эмульгированной вакцины против гриппа птиц из штамма Н5Ы1 (г. Покров) на фоне снижения иммунологической резистентности и метаболических нарушений у птиц вызывало образование протективных титров антител у них только через 60 дн. После введения вакцины более взрослым курочкам в возрасте 3-4 мес. поствакцинальные антитела обнаруживали только у 40% поголовья, при вакцинации гусей - у 60% птиц.

10. Инактивированная вакцина против высокопатогенного гриппа птиц (ВПГП) подтипа Н5 (г. Санкт-Петербург) в эксперименте была наиболее иммуногена в применении курам и гусям, поствакцинальные антитела в протективных титрах появлялись в более ранние сроки (на 7-й день), уровень антителообразования был выше по сравнению с другими вакцинами у гусей на 20-30%, у кур - на 50-60%.

другого препарата Полифит ПМ у кур вызывало увеличение количества тимоцитов на 33%, гемоглобина на 10%, лейкоцитов и лимфоцитов - на 47%, что позволяет рекомендовать данные добавки в производство.

12. На основании проведенных исследований разработана научно-обоснованная система профилактики инфекционных болезней животных и птиц, включающая мониторинг эпизоотической ситуации, выявление экзогенных и эндогенных факторов, влияющих на развитие иммунодефицитных состояний у животных, подбор наиболее эффективного метода специфической профилактики и технологии выращивания молодняка. На ее основе разработаны дополнительный Регламент оздоровительных мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота и Комплексный план профилактики гриппа птиц А.

Внедрение Регламента в 28-ми предприятиях позволило снизить заболеваемость ОРВИ на 18-30%, экономическая эффективность в 2009-2010 гг. составила 116,44 млн. руб. На 1 рубль дополнительных затрат получено 17,28 прибыли.

Внедрение Комплексного плана профилактики гриппа птиц А позволило сохранить эпизоотическое благополучие субъекта в условиях острой угрозы заноса инфекции.

5. ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ

Для осуществления эффективных мероприятий при инфекционных болезнях животных рекомендуем использовать разработанную научно-обоснованную систему профилактики инфекционных болезней с учетом региональных особенностей ведения животноводства и птицеводства, базирующуюся на проведения мониторинга эпизоотической ситуации, выявлению экзо- и эндогенных факторов, влияющих на формирование иммунодефицитных состояний и подборе оптимальных препаратов специфической профилактики.

6. СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Корсакова, E.H.1 Адаптация сельскохозяйственных животных в условиях техногенного загрязнения/Е.Н.Корсакова// Физиология человека и животных: от теории к практике: Сб. научн. трудов Института физиологии РАН - Сыктывкар, 2000. - С.88-89.

2. Корсакова, E.H. Оценка иммунного статуса крупного рогатого скота и свиней в Свердловской области/С. В. Ермолаев, Е.Я.Ермолаева, А.Г. Исаева, Е.Н.Корсакова, В.М.Мельникова, И.М.Донник// Актуальные вопросы диагностики, профилактики и борьбы с лейкозами сельскохозяйственных

1 Фамилия Корсакова была изменена на Шилова в связи со вступлением в брак

животных и птицы: Сб. научн. трудов Свердловской НИВС. - Екатеринбург, 2000.-С. 211-216.

3. Корсакова, E.H. Использование иммуномодуляторов для повышения эффективности вакцинопрофилактики телят в экологически неблагополучных территориях/ Е.Н.Корсакова //Материалы научно-производственной конференции по актуальным проблемам ветеринарии и зоотехнии. Ч. 1. -Казань, 2001. - С. 44-47.

4. Корсакова, E.H. Особенности формирования иммунного ответа в зонах техногенного загрязнения/ Е.Н.Корсакова //Сб. научн. тр. УрГСХА. -Екатеринбург: Изд-во УрГСХА, 2001. - С. 231-234.

5. Корсакова, E.H. Повышение эффективности вакцинопрофилактики телят в экологически неблагополучных территориях/ Е.Н.Корсакова// Новые фармакологические средства в животноводстве и ветеринарии: Материалы научно-практической конференции. - Краснодар, 2001. - С. 201-202.

6. Корсакова, E.H. Сальмонеллез животных и птиц/И.М.Донник, В.М. Мельникова В.М., Е.Н.Корсакова, А.Г. Исаева// Учебно-методическое пособие (с грифом У МО). - Екатеринбург, 2001. - 32 с.

7. Корсакова, E.H. Особенности применения иммунокорректоров при вакцинации телят с иммунодефицитным состоянием/ Е.Н.Корсакова// Сб. материалов международной научно-практической конференции. - Воронеж, 2002.-С. 154-155.

8. Шилова, E.H. Адаптация организма человека и животных в условиях неблагоприятной экологической обстановки/ Е.Н.Шилова, В.Б. Шилов, И.М. Донник// Адаптация биологических систем к естественным и экстремальным факторам среды: Материалы Всероссийской научной конференции. -Челябинск: Изд-во ЧГПУ, 2004. -С. 269-272.

9. Шилова, E.H. Повышение эффективности вакцинопрофилактики у животных в районах экологического неблагополучия/ Е.Н.Шилова// Журнал «БИО». - Екатеринбург: Изд-во ООО «Восточный Дом», 2004. - №7. - С. 17-18.

10. Шилова, E.H. Иммунологическая адаптация организма животных в условиях неблагоприятной радиоэкологической обстановки/ Е.Н.Шилова, И.М.Донник// Актуальные проблемы экологической физиологии, биохимии и генетики животных: Материалы Международной научной конференции. -Саранск: Изд-во Мордовского университета, 2005. - С. 276-277.

11. Шилова, E.H. Экологическая адаптация сельскохозяйственных животных в индустриальных территориях/ Е.Н.Шилова, С.Н.Глушко// Научные основы профилактики и лечения болезней животных: Сб. научных трудов ведущих ученых России, СНГ и др. стран. Научное издание. - Екатеринбург: УрНИВИ, 2005. - С. 429-433.

12. Шилова, E.H. Состояние здоровья животных на территориях экологического неблагополучия/Е.Н.Шилова, В.Б. Шилов// Экологические механизмы динамики и устойчивости биоты: Материалы конференции молодых ученых. - Екатеринбург: Уро РАН, 2005. - С. 305-306.

13. Шилова, E.H. Эффективность вакцинации телят против лептоспироза в техногенно загрязненных территориях/ Е.Н.Шилова// Научные основы

производства ветеринарных биологических препаратов: Материалы международной научно-практич. конференции, посвященной 35-летию института. - Щелково: ВНИИТИБП, 2005. - С. 369-373.

14. Шилова, E.H. Показатели новорожденных телят в территориях техногенного загрязнения/Е.Н.Шилова, В.М. Тумакова// Актуальные проблемы патологии животных: Материалы Международного съезда терапевтов, диагностов. - Барнаул, 2005. - С. 204-205.

15. Шилова, E.H. Иммунный и клинико-гематологический статус крупного рогатого скота в разных экологических зонах/ И.М.Донник, В.Б.Шилов, Е.Н.Шилова//Методические рекомендации. - Екатеринбург, 2003. -24 с.

16. Шилова, E.H. Методология экологического мониторинга аграрных предприятий в зоне Урала/И.М. Донник, И.А.Шкуратова, Н.А.Верещак, E.H. Шилова и др. // Научно - методические рекомендации. - Екатеринбург, 2005. -19 с.

17. Шилова, E.H. Возрастная динамика иммунологических показателей крупного рогатого скота при техногенных воздействиях/ И.М. Донник, Н.А.Верещак, И.А.Шкуратова, Е.Н.Шилова и др.// Научно - методические рекомендации. - Екатеринбург, 2005. - 20 с.

18. Шилова, E.H. Применение сорбентов в условиях экологического неблагополучия/ И.М. Донник, И.А.Шкуратова, JI.H. Аристархова, Е.Н.Шилова и др. // Научно - методические рекомендации. - Екатеринбург, 2005. - 30 с.

19. Шилова, E.H. Иммунологические показатели новорожденных телят в территориях техногенного загрязнения/ Е.Н.Шилова// Физиология человека и животных: от эксперимента к клинической практике: Материалы V Молодежной научной конференции Института физиологии Коми НЦ УрО РАН. - Сыктывкар, 2006. - С.66-68.

20. Шилова, E.H. Иммунореактивность телят в индустриальных территориях при вакцинации против трихофитии/Е.Н.Шилова, М.А.Исаев//Теоретические и практические вопросы ветеринарной медицины: Сб. статей Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 90-летию со дня рождения д.в.н. проф. Лыжиной В.А. - Киров: Вятская ГСХА, 2007.-С. 134-137.

21. Шилова, E.H. Эффективность иммунопрофилактики у телят в индустриальных территориях/ И.М. Донник, E.H. Шилова, В.Б. Шнлов//Журн. Аграрный вестник Урала. - г. Екатеринбург, 2007. - № 3 (39) - С. 30-31.

22. Шилова, E.H. Формирование иммунных реакций у телят в индустриальных территориях при вакцинации против трихофитии/Е.Н.Шилова, И.М. Донник// Актуальные вопросы ветеринарной медицины: Материалы Международной научно-практич. конфер., Т.2. - Екатеринбург: Изд-во УрГСХА, 2007. - С. 15-18.

23. Шилова, E.H. Эффективность вакцинопрофилактики гриппа А у птиц в Свердловской области/ И.М. Донник, Е.Н.Шилова// Болезни птиц в промышленном птицеводстве. Современное состояние проблемы и стратегия

борьбы: Материалы науч.-практич. конф., посвящен, памяти академика РАСХН Р.Н.Коровина. - СПб.: ГНУ ВНИВИП РАСХН, 2007. - С. 27-29.

24. Шилова, E.H. Оптимизация контроля загрязнения ферм экополлютантамн в зоне интенсивных техногенных эмиссий/ Е.Н.Беспамятных, И.М. Донник, М.А.Исаев, М.П. Михеев, Е.Н.Шилова//Журн.Аграрный вестник Урала. - г. Екатеринбург, 2007. -№6 (42). - С. 38-40.

25. Шилова, E.H. Вакцинация суточных цыплят против гриппа птиц А/ И.М.Донник, Е.Н.Шилова, С.Г. Анисимов, C.B. Садчикова// Биотехнология и перспективы развития Российского сельского хозяйства: Сб. научн. трудов Региональной науч.-практич. конференции. - г.Екатеринбург, 2007. - С. 5-8.

26. Шилова, E.H. Система эпизоотической безопасности в птицеводческих организациях Свердловской области/ И.М. Донник, Н.В. Садовников, Р.Б. Кондратьев, E.H. Шилова// Научно-методические рекомендации, г. Екатеринбург, 2008. - 64 с.

27. Шилова, E.H. Эффективность вакцинопрофилактики гриппа птиц А в Свердловской области./И.М. Донник, Е.Н.Шилова // Современные проблемы диагностики, лечения и профилактики болезней животных и птиц: Сб. научных трудов ведущих ученых России, СНГ и др. стран. Вып. 2. - Екатеринбург, УрНИВИ, 2008. - С.159-163.

28. Шилова, E.H. Комплекс мероприятий, проводимых в Уральском федеральном округе для предупреждения эпизоотии гриппа птиц AI И.М.Донник, Е.Н.Шилова, В.А.Красноперов, С.М.Суханов, С.И. Бекешев// Современные проблемы диагностики, лечения и профилактики болезней животных и птиц: Сб. научных трудов ведущих ученых России, СНГ и др. стран. Вып. 2. - Екатеринбург, УрНИВИ, 2008. - С.258-262.

29. Шилова E.H. Гематологические и иммунологические показатели цыплят разного возраста/ Е.Н.Шилова, C.B. Садчикова//Журн. Аграрный вестник Урала - г. Екатеринбург, 2008. - №11(53). - С. 86-87.

30. Шилова E.H. Гематологические и иммунологические показатели цыплят разного возраста/ Е.Н.Шилова, C.B. Садчикова//Актуальные вопросы ветеринарно-зоотехнической науки и практики: Сб. статей Международной науч.-практ. конф. - г. Екатеринбург, 2008. - с. 201-203.

31. Руководство по лабораторной диагностике вирусных болезней животных / Бейкин Я.Б., Беседина Л.Г., Булатова C.B., Василевич Ф.И., Гулюкин М.И., Донник И.М., Исаева А.Г., Кривоногова A.C. , Шилова E.H. и др.; под ред. A.M. Смирнова, А.Я. Самуйленко, И.М.Донник, Я.Б. Бейкина. -М.: РАСХН, 2008. - 858 с.

32. Шилова, E.H. Сравнительная эффективность подкожного и внутрикожного способа введения вакцины «Комбовак» у телят в системе специфической профилактики ОРВИ КРС в Свердловской области/ Е.Н.Шилова, М.А. Исаев, В.А. Михляев// Современные проблемы диагностики и профилактики хронических инфекций животных: Сборник трудов Международной научно-практической конференции. - г. Омск, 2009.- С. 174177.

33. Шилова, E.H. Применение дезинфицирующего нейтрального анолита для обезвреживания кормов для крупного рогатого скота/ Е.Н.Шилова, Я.В. Подчезерцева, М.А. Исаев// Повышение продуктивности сельскохозяйственных животных и птицы на основе инновационных достижений: Материалы Всероссийской науч.-практ. конф.- г.Новочеркасск, 2009. - С. 129-131.

34. Шилова, E.H. Эпизоотический мониторинг инфекционных болезней животных на основе молекулярно-генетических методов исследования/ Е.Н.Шилова, С.В.Садчикова//Журн. Ветеринарный доктор. - г. Екатеринбург,

2009. - №4. - С. 5-7.

35. Шилова, E.H. Динамика напряженности поствакциналыюго иммунитета у экспериментальной птицы при гриппе А/ И.М. Донник, Е.Н.Шнлова //Журн. Ветеринария Кубани - г. Краснодар, 2009. - №3. - С. 23.

36. Шилова, E.H. Мониторинг специфической профилактики гриппа А у экспериментальной птицы// И.М. Донник, Е.Н.Шилова//Журн. Ветеринария. - М., 2009. - №7. - С. 6-8.

37. Шилова, E.H. Дезинфицирующая активность препарата «Анолит» при аэрозольной дезинфекции животноводческих помещений/ Е.Н.Шилова, М.А. Исаев//Журн. Ветеринария Кубани - г. Краснодар, 2009. - №4. - С.6-7.

38. Шилова, E.H. Мониторинг инфекции животных в Уральском регионе/ И.М. Донник, Е.Н.Шилова, В.А. Красноперов//Журн. Ветеринария Кубани - г. Краснодар, 2009. - №4. - С.8-10.

39. Шилова, E.H. Сравнительная оценка эффективности разных вакцин против гриппа птиц у экспериментальной птицы/ И.М. Донник, Е.Н.Шилова, В.А. Михляев//Журн. Аграрный Вестник Урала - г. Екатеринбург, 2009. - №9 (63) - С. 74-75.

40. Шилова, E.H. Эффективность вакцин против гриппа птиц А в эксперименте/ И.М. Донник, Е.Н.Шилова, В.А. Михляев//Материалы международной конференции, поев. 80-летию Самарской НИВС Россельхозакадемии. - г. Самара, 2009. - С. 129-132.

41. Шилова, E.H. Содержание специфических антител к ОРВИ в молозиве у вакцинированных коров/ Е.Н.Шилова, В.А. Михляев, М.А. Исаев/Материалы международной конференции, поев. 80-летию Самарской НИВС Россельхозакадемии. - г. Самара, 2009. - С. 535-538.

42. Шилова, E.H. Орнитоз птиц: диагностика, профилактика, ликвидация/ И.М.Донник, Е.Н.Шилова, Е.В.Печура, С.В.Садчикова// Научно-практические рекомендации. - Екатеринбург, 2009. - 30 с.

43. Шилова, E.H. Профилактика смешанных вирусно-бактериальных инфекций молодняка крупного рогатого скота/ И.М. Донник, И.А.Шкуратова, Е.Н.Шилова и др.// Научно - Методические рекомендации (утв. НТС при МСХиП Свердловской обл., окт. 2009 г.). - Екатеринбург, 2009. - 35 с.

44. Шилова, E.H. Методы вакцшюпрофнлактики при ОРВИ крупного рогатого скота/И.М.Донник, Е.Н.Шнлова, М.А.Исаев,

В.А.Мнхляев, Е.В.Печура//Жури. Ветеринария Кубани. - г. Краснодар,

2010. - №1. - С.2-3.

45. Шилова, E.H. Эффективность вакцин против гриппа птиц А у гусей/ Е.Н.Шилова// Современные проблемы диагностики, лечения и профилактики болезней животных и птиц: Сборник научных трудов ведущих ученых России и Зарубежья. - Выпуск 3. - Уральское изд-во, Екатеринбург, 2010. - С. 267-269.

46. Шилова, E.H. «Холодный метод» выращивания телят в системе профилактических мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота/ Е.Н.Шилова, В.А. Михляев, О.Г. Субботина, Е.В. Печура//Современные проблемы диагностики, лечения и профилактики болезней животных и птиц: Сборник научных трудов ведущих ученых России и Зарубежья. - Выпуск 3. -Уральское изд-во, Екатеринбург, 2010. - С. 270-274.

47. Шилова, E.H. Бактерицидная и микоцидная активность дезинфицирующих средств в условиях сельскохозяйственного производства и лаборатории/ Е.Н.Шилова, В.А.Михляев, О.Г.Субботина//Современные проблемы диагностики, лечения и профилактики болезней животных и птиц: Сборник научных трудов ведущих ученых России и Зарубежья. - Выпуск 3. -Уральское изд-во, Екатеринбург, 2010. - С. 275-276.

48. Шилова, E.H. Эффективность вакцин против гриппа птиц А у гусей/Е.Н.Шилова, И.М.Донник, В.А. Михляев//Ветеринарный вестник -Екатеринбург, 2010. - №10 (121). - С. 6.

49. Шилова, E.H. Распространение и этиология хронических эндометритов у коров в сельскохозяйственных организациях Свердловской области/ М.В. Ряпосова, Е.Н.Шнлова, О.В.Соколова// Жури. Ветеринария Кубани. - г. Краснодар, 2010. - №6. - С.22-24.

50. Шилова, E.H. Регламент оздоровительных мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота в племенных и товарных хозяйствах Свердловской области/ И.М.Донник, И.А.Шкуратова, Е.Н.Шилова и др./ Научные рекомендации (утв. НТС при МСХиП Свердловской обл., окт. 2010). -

Екатеринбург, 2010. - 26 с.

51. Шилова, E.H. Система контроля эффективности вакцинопрофилактики бройлеров против болезни Нью-Касла при различных технологиях содержания/И.М.Донник, И.А.Шкуратова, Е.В.Печура, Е.Н.Шилова и др.// Научные рекомендации (утв. НТС при МСХиП Свердловской обл., окт. 2010). - Екатеринбург, 2010. - 18 с.

52. Шилова, E.H. Технология дегельминтизации в сельскохозяйственных предприятиях Свердловской области разных форм собственности/ И.М.Донник, И.М.Сажаев, И.А.Шкуратова, Е.Н.Шилова// Научно-методические рекомендации (утв. НТС при МСХиП Свердловской обл., окт. 2010). -

Екатеринбург, 2010. - 36 с.

53. Шилова, E.H. Распространение бешенства животных в Уральском регионе// И.М.Донник, Е.Н.Шилова, В.А.Красноперов, М.Ф.Хаматов// Науч,-практ. журн. "Пэст-Менеджмент" (РЭТ-ИНФО). - М., 2010. - №4. — с. 30-34.

54. Шилова, E.H. Экономическая целесообразность применения «холодного метода» выращивания телят в системе профилактики ОРВИ

крупного рогатого скота/Е.Н.Шилова, И.М.Донник//Журн. Аграрный вестник Урала. - г. Екатеринбург, 2011. - №5 (84). - С. 117-118.

55. Шилова, E.H. Клиническое проявление инфекционного рннотрахеита крупного рогатого скота в племенных организациях Уральского региона// Е.Н.Шилова, И.М.Донник, М.В. Ряпосова// Журн. Аграрный вестник Урала. - г. Екатеринбург, 2011. - №6 (85). - С. 24-25.

56 Шилова, E.H. Эффективность примеиения живых и инактивированных вакцин при профилактике ОРВИ крупного рогатого скота//И.М.Донник, Е.Н.Шилова// Журн. Аграрный вестник Урала. - г. Екатеринбург, 2011. - №7 (86). - С. 28-29.

57. Шилова, E.H. Совершенствование технологии выращивания телят в системе профилактических мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота/И.М.Донник, Е.Н.Шилова// Журн. Ветеринария Кубани. - г.

Краснодар, 2011. - №4. - С.20-21.

58 Шилова E.H. Применение Гермивита для повышения эффективности вакцинопрофилактики гриппа А у гусей/Е.Н.Шилова, И.М.Донник И А. Шкуратова, И.А. Рубинский//Журн. Птицеводство. - М., 2011. - №7. - С.32-33.

59 Шилова, E.H. Колостральный иммунитет у телят при вакцинации коров против ОРВИ/Е.Н. Шилова// Жури. Аграрный вестник Урала.-г. Екатеринбург, 2011. -№8(87).-С. 30-31.

60 Шилова, E.H. Особенности вакцинации гусей против гриппа А птиц/ Е Н Шилова, И.М.Донник, А.С.Заслонов, В.А. Михляев, О.Г.Субботина//Новые подходы к решению актуальных ветеринарно-санитарных и зоотехнических проблем в птицеводстве на современном этапе: Материалы международной научно-практической конференции. - Санкт-Петербург, 2011. - С.29-31.

61 Шилова, E.H. Роль молозива в формировании иммунного ответа к ОРВИ у новорожденных телят/Е.Н.Шилова, В.А.Михляев//Стратегия развития кормопроизводства в условиях глобального изменения климатических условий и использования достижений отечественной селекции: Материалы Междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 55-летию Уральского НИИСХ. - Том II. Зоотехния и экономика сельского хозяйства. - Екатеринбург, 2011. - с. 94-96.

На правах рукописи

Шилова Евгения Николаевна

СОЗДАНИЕ И РЕЗУЛЬТАТИВНОСТЬ НАУЧНО-ОБОСНОВАННОЙ ИСТЕМЫ ПОВЫШЕНИЯ ЭФФЕКТИВНОСТИ ВАКЦИНОПРОФИЛАКТИКИ ИНФЕКЦИОННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ У ЖИВОТНЫХ С ВЫРАЖЕННЫМ ИММУНОДЕФИЦИТНЫМ СОСТОЯНИЕМ

06.02.02 - ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук

Подписано в печать 14.06.2011. Формат 60x84 1/16 Усл. печ.л. 1,0 Бумага для множительных аппаратов. Печать офсетная. Гарнитура Times New Roman. Объем 2 п.л. Заказ № 495/1 Тираж 100 экз.

Отпечатано в типографии ООО «Таймер» 620219, Екатеринбург, ул. Луначарского, 136

Содержание диссертации, доктора ветеринарных наук, Шилова, Евгения Николаевна

Введение

1. Обзор литературы

1.1. Роль специфической профилактики в ликвидации 13 эпизоотически значимых заболеваний животных и птиц

1.1.1. Особенности вакцинопрофилактики острых и хронических 16 инфекций

1.1.2. Специфическая профилактики острых респираторных 19 инфекций крупного рогатого скота и ее эффективность в оздоровлении хозяйств

1.1.3. Специфическая профилактика гриппа птиц в мировой практике

1.2. Основные механизмы формирования иммунного ответа при 33 вакцинации животных и птиц

1.3. Факторы, влияющие на эффективность вакцинации у животных 35 и птиц

1.4. Способы повышения эффективности вакцинации

2. Собственные исследования

2.1. Материалы и методы

2.2. Оценка эпизоотической ситуации по инфекционным 66 заболеваниям и уровня антигенной нагрузки на организм животных в регионе и модельных хозяйствах

2.2.1. Результаты эпизоотологического анализа по острым 66 карантинным, природноочаговым и хроническим инфекциям животных

2.2.2. Эпизоотическая ситуация по гриппу птиц в Уральском регионе

2.2.3. Распространение факторных болезней животных в 82 Свердловской области и модельных хозяйствах

2.2.4. Роль гельминтозов в нозологическом профиле стад в 92 модельных хозяйствах

2.2.5. Система противоэпизоотических мероприятий в 98 сельскохозяйственных организациях Свердловской области

2.3. Оценка воздействия факторов внешней среды, 103 обуславливающих накопление поллютантов в организме и приводящих к развитию иммунодефицитных состояний у животных

2.4. Оценка эндогенных факторов, влияющих на формирование 118 иммунного ответа при проведении специфической профилактики животных

2.5. Усовершенствование и результаты внедрения комплексной 143 системы профилактики инфекционных болезней крупного рогатого скота на примере острых респираторных вирусных инфекций

2.5.1. Оценка эффективности специфической профилактики ОРВИ 143 крупного рогатого скота при использовании живых и инактивированных вакцин

2.5.2. Технологические факторы в системе комплексной 178 профилактики ОРВИ крупного рогатого скота

2.5.3. Регламент оздоровительных мероприятий при ОРВИ крупного 196 рогатого скота

2.6. Характеристика специфической профилактики гриппа птиц А у 202 разных видов сельскохозяйственной птицы

2.6.1. Эффективность применения инактивированной вакцины 203 против гриппа птиц у виварной птицы

2.6.2. Эффективность применения разных вакцин против гриппа птиц 214 А у экспериментальной и промышленной птицы

2.6.3. Эффективность применения иммунотропных средств для 220 повышения эффективности вакцинопрофилактики у птиц

2.6.3.1 Коррекция показателей иммунологического статуса птиц с 220 использованием фармпрепаратов

2.6.3.2 Повышение эффективности вакцинопрофилактики гриппа А 224 птиц у гусей с использованием препарата Гермивит

2.6.4. Комплекс мероприятий по профилактике гриппа птиц А в 228 Уральском регионе

2.7. Создание и результативность научно-обоснованной системы 235 профилактики инфекционных болезней животных и птиц при открытой системе содержания

3. Обсуждение результатов исследования

4. Выводы

5. Практические предложения

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Создание и результативность научно-обоснованной системы повышения эффективности вакцинопрофилактики инфекционных заболеваний у животных с выраженным иммунодефицитным состоянием"

Актуальность темы. Инфекционные болезни животных и птиц распространены во всем мире и наносят большой ущерб животноводству (Бакулов И.А. 2008; Джавадов Э.Д., 2008; Панин А.Н., 2008; Ибишов Д.Ф., 2008; Околелов В.И., 2009; Смирнов П.Н., 2009; Самуйленко А.Я. 2010; Ощепков В.Г., 2010; Рахманов A.M. и др., 2010; Смирнов A.M., 2010; Донник И.М., 2010; Wright P.F. et al., 1992; Relman D.A. et al., 2010; OIE, 2010 и др.). В системе мер их ликвидации широкое применение имеет вакцинопрофилактика, однако по ряду причин ее проведение не всегда может стабилизировать ситуацию. В сложившихся экономических условиях многие хозяйства не имеют возможности проводить профилактические прививки (Гуленкин В.М., Яременко H.A., Гусева Е.В. и др., 2001).

Среди остропротекающих инфекционных заболеваний животных наибольший материальный ущерб во многих странах мира причиняют острые респираторные болезни крупного рогатого скота (ОРВИ), ведущим патогенном в которых является возбудитель инфекционного ринотрахеита (Юров К.Л., 2001; Глотов А.Г. и др., 2006; Мищенко В.А., 2011; Taylor J.D., Fulton R.W., Lehenbauer T.W., 2010; Rola J. et al., 2010; Jacevicius E. et al., 2010).

В Уральском регионе оздоровление племенных и товарных хозяйств от ОРВИ проводится с 1999 г., широкое внедрение оздоровительной программы позволило купировать эпизоотический подъем (Петрова О.Г., Татарчук А.Т., Хаматов М.Ф. и др., 2005-2007). Однако, вирусоносительство среди племенного стада продолжает служить причиной формирования респираторной и генитальной патологии (Юров К.П. и др., 2003; Шабунин C.B., Нежданов А.Г. и др., 2011).

В последнее время одной из наиболее значимых зоонозов, представляющих угрозу современному птицеводству, является и высокопатогенный грипп A (H5N1) (Смирнов A.M., 2006, 2010; Джавадов Э.Д., 2008; Lee Y.-J. et al, 2008; Grabkowsky B.J, Windhorst H.-W, 2010 и др.). В 2010 г. ситуация в мире по гриппу А птиц остается эндемической, неблагополучие отмечено в ряде азиатских и европейских стран, которые продолжают сообщать о возобновлении вспышек (OIE, 2010). Болезнь продолжает оказывать значительное влияние на здоровье птиц и наносит значительный экономический ущерб при ограничении производства птицеводческой продукции и торговле. При этом, наиболее эффективный способ контроля гриппа птиц - ранняя диагностика и иммунизация (Kapczynski D.R, Swayne D.E., 2009; Hamilton К, Bruckner G, 2010).

В Российской Федерации особая опасность в распространении гриппа связана с птицей, содержащейся на личных подворьях и крупных комплексах открытого типа для выращивания водоплавающей птицы (Смирнов A.M., 2010). Очевидной является также обоснованность проведения вакцинопрофилактики гриппа в зонах массовых скоплений диких перелетных водоплавающих птиц. Применение эффективной системы иммунизации данных популяционных групп позволит создать «иммунное кольцо» вокруг птицефабрик и предупредить выделение возбудителя в случае его заноса с дикой птицей (Ирза В.Н, 2006). Поэтому поиск эффективной вакцины, разработка способов повышения эффективности вакцинации является одной из приоритетных задач науки.

Цель: Разработать и оценить результативность научно-обоснованной системы комплексной профилактики инфекционных болезней на примере острых вирусных инфекций крупного рогатого скота и птиц.

Задачи:

Научная новизна:

1. Учебно-методическое пособие Сальмонеллез животных и птиц (с грифом МСХ РФ), Екатеринбург, 2001. - 32 с.

2. Методические рекомендации Иммунный и клинико-гематологический статус крупного рогатого скота в разных экологических зонах, Екатеринбург, 2004. - 24 с.

3. Научно - методические рекомендации Методология экологического мониторинга аграрных предприятий в зоне Урала, Екатеринбург, 2005. - 19 с.

4. Научно - методические рекомендации Возрастная динамика иммунологических показателей крупного рогатого скота при техногенных воздействиях, Екатеринбург, 2005. - 20 с.

5. Научно - методические рекомендации Применение сорбентов в условиях экологического неблагополучия, Екатеринбург, 2005. - 30 с.

6. Научно-методические рекомендации Система эпизоотической безопасности в птицеводческих организациях Свердловской области, г. Екатеринбург, 2008. - 64 с.

7. Научно-практические рекомендации Орнитоз птиц: диагностика, профилактика, ликвидация, Екатеринбург, 2009. - 30 с.

8. Научно - методические рекомендации Профилактика смешанных вирусно-бактериальных инфекций молодняка крупного рогатого скота (утв. НТС при МСХиП Свердловской обл., окт. 2009 г.), Екатеринбург, 2009. - 35 с.

9. Научные рекомендации Регламент оздоровительных мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота в племенных и товарных хозяйствах Свердловской области (утв. НТС при МСХиП Свердловской обл., окт. 2010). - Екатеринбург, 2010. - 26 с.

10. Научные рекомендации Система контроля эффективности вакцинопрофилактики бройлеров против болезни Нью-Касла при различных технологиях содержания (утв. НТС при МСХиП Свердловской обл., окт. 2010). - Екатеринбург, 2010. - 18 с.

11. Научно-методические рекомендации Технология дегельминтизации в сельскохозяйственных предприятиях Свердловской области разных форм собственности (утв. НТС при МСХиП Свердловской обл., окт. 2010). - Екатеринбург, 2010. - 36 с.

12. Руководство по лабораторной диагностике вирусных болезней животных (под ред. A.M. Смирнова, А.Я. Самуйленко, И.М.Донник, Я.Б. Бейкина) (с грифом МСХ РФ). - М.: РАСХН, 2008. - 858 с.

Проведенные исследования позволили сделать существенный вклад в эпизоотическое благополучие Свердловской области по острым инфекциям животных и птиц, позволили сократить заболеваемость ОРВИ на 18-30%, успешно профилактировать грипп птиц при острой угрозе заноса инфекции в субъект.

Положения, выносимые на защиту:

2. Иммуногемато логический и биохимический статус крупного рогатого скота в Уральском регионе неоднороден, зависит от экологических факторов (в отдельных территориях), генетических особенностей популяции, уровня продуктивности. Выявлена иммунопатология у 90% животных.

5. Формирование иммунитета при вакцинопрофилактике острых инфекций у птиц решающее значение имеют клинико-биохимический статус и иммуногенность вакцин.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на Международных, Всероссийских и Региональных научно-практических конференциях: Всероссийской научной конференции «Адаптация биологических систем к естественным и экстремальным факторам среды» (Челябинск, 2004 г.); Международной научной конференции «Актуальные проблемы экологической физиологии, биохимии и генетики животных» (Саранск, 2004 г.), Международной научной конференции «Научные основы профилактики и лечения болезней животных» (Екатеринбург, 2005 г.); Международной научно-практич. конференции, посвященной 35-летию ВНИИТИБП «Научные основы производства ветеринарных биологических препаратов» (Щелково, 2005 г.); V Молодежной научной конференции Института физиологии Коми НЦ УрО РАН «Физиология человека и животных: от эксперимента к клинической практике» (Сыктывкар, 2006 г.); Международной науч.-практич. конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и производства продукции животноводства и растениеводства» (Троицк, 2006 г.); Международной научно-практич. конфер. «Актуальные вопросы ветеринарной медицины» (Екатеринбург, 2007 г.); Науч.-практич. конф, посвящен, памяти академика РАСХН Р.Н.Коровина «Болезни птиц в промышленном птицеводстве, современное состояние проблемы и стратегия борьбы» (Санкт-Петербург, 2007 г.); Международной научно-практической конференции «Современные проблемы диагностики, лечения и профилактики болезней животных и птиц» (Екатеринбург, 2008 г.); Международной научно-практической конференции «Современные проблемы диагностики и профилактики хронических инфекций животных» (Омск, 2009 г.); Всероссийской науч. - практ. конф. «Повышение продуктивности сельскохозяйственных животных и птицы на основе инновационных достижений» (Новочеркасск, 2009 г.); Международной конференции, поев. 80-летию Самарской НИВС Россельхозакадемии (Самара, 2009 г.); Международной науч.практич. конференции «Современные проблемы диагностики, лечения и профилактики болезней животных и птиц» (Екатеринбург, 2010 г.); Международной научно-практической конференции «Новые подходы к решению актуальных ветеринарно-санитарных и зоотехнических проблем в птицеводстве на современном этапе» (Санкт-Петербург, 2011 г.), на Ученых советах ГНУ УрНИВИ РАСХН (2008-2010 гг.).

Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 302 страницах компьютерного текста, состоит из введения, обзора

Заключение Диссертация по теме "Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов", Шилова, Евгения Николаевна

4. Выводы

2. Установлено, что у животных из индустриальных территорий имеет место поступление экотоксикантов в организм животных, сопровождающееся превышением их допустимых уровней в органах и тканях: 908г в костях - в 1,5-3 раза; меди в печени в 6-28 раз, свинца в мышцах и печени - в 2-10 раз, цинка в печени - в 1,5-2 раза, кадмия - в 1,4-2 раза, никеля - в 9-12 раз.

3. У крупного рогатого скота в большинстве предприятий промышленных зон регистрировали иммуносупрессию преимущественно клеточного звена иммунитета, выражающуюся в снижении, уровня Т- и В-лимфоцитов в 2-3 раза, показателей фагоцитоза - в 6-10 раз по сравнению с животными из более благополучных в экологическом плане территорий.

6. Для профилактики и ликвидации ОРВИ в Уральском регионе создана система оздоровительных мероприятий (Петрова О.Г., Хаматов М.Ф. и др., 2007), предусматривающая использование инактивированных вакцин. Установлено, что у вакцинированных животных на фоне иммунологической недостаточности поствакцинальные антитела к инфекционному ринотрахеиту были выявлены только у 52% телят в среднегеометрических титрах 4,3±1,3 \о%2. У коров протективные титры антител к ИРТ после вакцинации регистрировали только у 72% (6,9±0,7 к^2).

7. При введении инактивированных вакцин в разные сроки стельности наибольший эффект был отмечен при вакцинации коров в 3-м триместре - появление антител к инфекционному ринотрахеиту отмечали у 80% животных. При вакцинации в другие сроки стельности (1й- и 2-й триместры) антитела к ИРТ в молозиве выявляли только у 40% коров.

9. В планах противоэпизоотических мероприятий существенная роль отводится специфической профилактике гриппа птиц А. Применение цыплятам инактивированной эмульгированной вакцины против гриппа птиц из штамма Н5М1 (г. Покров) на фоне снижения иммунологической резистентности и метаболических нарушений у птиц вызывало образование протективных титров антител у них только через 60 дн. После введения вакцины более взрослым курочкам в возрасте 3-4 мес. поствакцинальные антитела обнаруживали только у 40% поголовья, при вакцинации гусей - у 60%) птиц.

11. Для повышения эффективности вакцинопрофилактики гриппа птиц у гусей применяли витаминную кормовую добавку Гермевит, обладающую иммунотропным действием. Замена добавкой 3% рациона гусят вызывало увеличение содержания иммунокомпетентных клеток на 10-17%. Применение другого препарата Полифит ПМ у кур вызывало увеличение количества тимоцитов на 33%, гемоглобина на 10%, лейкоцитов и лимфоцитов - на 47%), что позволяет рекомендовать данные добавки в производство.

Внедрение Регламента в 28-ми предприятиях позволило снизить заболеваемость ОРВИ на 18-30%), экономическая эффективность в 2009-2010 гг. составила 116,44 млн. руб. На 1 рубль дополнительных затрат получено 17,28 прибыли.

5. Предложения производству

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, доктора ветеринарных наук, Шилова, Евгения Николаевна, Екатеринбург

1. Алескеров, З.А. Гипохлорит натрия для дезинфекции при сальмонеллезе овец / З.А. Алескеров // Ветеринария. 2009. - №5 - С. 14-15.

2. Антипов, В.А. Эффективные зооветеринарные технологии по повышению воспроизводства, сохранности и продуктивности животных / В.А.Антипов//Под ред. В.А. Антипова. Краснодар: ООО «КНИВИФАРМ», 2005.-78 с.

3. Апалькин, В.А. Эколого-эпизоотологическое обоснование разработки и реализации новых схем ветеринарно-профилактических мероприятий в Алтайском крае: Автореф. дисс. докт. ветер, наук/ В.А. Апалькин: Новосибирск, 1998. 34 с.

4. Арриола, Х.М. Практика использования вакцины против птичьего гриппа/Х.М. Арриола// БИО. 2004. - №8(47). - с. 9-10.

5. Афонюшкин, В.Н. Структура рынка вакцин для профилактики болезней птиц и оценка потребностей в новых вакцинах/ В.Н.Афонюшкин//БИО. 2010. - №12 (123) - с. 17-18.

6. Ахмадышин Р. Применение адсорбентов микотоксинов в кормах для животных и птицы/Р. Ахмадышин, А. Канарский, 3. Канарская, М. Тремасов и др.//Птицефабрика. 2007. - N 6. - с.32.

7. Бажин М.А. Методы оценки Т и В систем иммунитета у крупного рогатого скота при бруцеллезе и туберкулезе/ М.А. Бажин // Методические рекомендации ВАСХНИЛ в НИИ БТЖ.-Омск.-1989,- 36 с.

8. Бажин М.А. Результаты иммунологических исследований при бруцеллезе и туберкулезе животных за период с 1985 по 2008 г./ М.А. Бажин

9. Современные проблемы диагностики и профилактики хронических зооантропонозных инфекций: материлы Всеросс.науч.-практ. конф. посвящ. памяти заслуженного деятеля науки РФ, д.в.н., проф. И.А.Косилова. Омск,2009. с. 7-11.

10. Бакулин, А.Ю. Возрастная динамика физиологического статуса цыплят-бройлеров при промышленном выращивании / А.Ю. Бакулин // Вопросы ветеринарной биологии. М., 1994.- С. 81-82.

11. Батищева, Е.В. Коррекция иммунного статуса у коров и телят селедантом при специфической профилактике колибактериоза, парагриппа-3 и инфекционного ринотрахеита: дис. . канд. ветерин. наук: 16.00.03. -Воронеж, 2009. -217 с.

12. Безбородова, H.A. Мониторинг микотоксинов в кормах и кормовом сырье и клинико-иммунологические особенности микотоксикозов в Уральском регионе H.A. Безбородова // Автореф. дис. .канд. вет. наук -Екатеринбург, 2009 21 с.

13. Безель B.C. Популяционная экотоксикология/ B.C. Безель, В.Н.Большаков, E.J1. Воробейчик- М.: Наука, 1994. 81 с.

14. Белик, Е.В. Ведомственная целевая программа борьбы с бешенством в Российской Федерации/ Е.В. Белик, С.С. Рыбаков, К.Н.Груздев, А.А.Егоров, A.B. Метлин//Российский ветеринарный журнал. -2008. Специальный выпуск, сентябрь. - С. 4-5.

15. Белоусов, А.И. Клинико-эпизоотологический мониторинг высокопродуктивных коров в племенных предприятиях Свердловской области / А.И. Белоусов // Автореф. дисс.канд. вет. наук, Екатеринбург.2010.-23 с.

16. Блинов Н.И. Морфологический состав крови новорожденных телят/Н.И. Блинов//в кн. Ветеринарная гематология (Симонян Г.А., Хисамутдинов Ф.Ф.). М.: Колос, 1995. - с. 107.

17. Бодрова О.С. Оценка и коррекция иммунного статуса коров в зависимости от продуктивности, сезона года, физиологического состояния и генотипа/О.С. Бодрова//Дисс. .канд. ветер, наук: Екатеринбург, 2009. 135 с.

18. Болотников, И.А. Гематология птиц / И.А. Болотников, Ю.В. Соловьев. Л.: Наука, 1980.- 114 с.

19. Борисов, A.B. Комплекс совместных мер государств СНГ по предупреждению проникновения и распространения гриппа птиц/ A.B. Борисов, В.В. Борисов, H.A. Власов и др.// Российский ветеринарный журнал. 2008. - Сентябрь. - с. 61-64.

20. Брейтенбах, Дж.Х. Контроль над инфекцией птичьего гриппа -заслуга вакцинации./ Дж.Х. Брейтенбах// БИО. 2006. - №5(68). - С.25.

21. Будагов, P.C. Чувствительность облученных животных к возбудителям особо опасных инфекций (обзор литературы)/ P.C. Будагов//Радиационная биология. Радиоэкология. 2004. - Т.44. - №5. - с. 544-546.

22. Будулов, Н.Р. Респираторные болезни крупного рогатого скота в Дагестане: автореф. .дисс. докт. вет. наук. 16.00.03,.16.00.01/Н.Р.Будулов: Краснодар, 2009. 41 с.

23. Бузлама, В. С. Ветеринарная фармакология: сегодня и в будущем /B.C. Бузлама // Материалы междунар. научно-произв. конф. по актуальнымпроблемам Агропромышленного комплекса. Ч. 2. - Казань, 2002. - С. 176— 178.

24. Бутко, М.П. Аэрозольная дезинфекция для профилактики инфекционных болезней животных / М.П. Бутко, B.C. Тиганов, B.C. Фролов, и др. // Ветеринария. 2006. - №2 - С. 10-12.

25. Вагапова, O.A. Влияние генотипа на молочную продуктивность коров черно-пестрой породы/ O.A. Вагапова // Аграрный вестник Урала.2006.-№3(33).-С. 62-63.

26. Ведерников, В.А. Обзор эпизоотической ситуации по бешенству в Российской Федерации в 2007 году и I полугодии 2008 г./ В.А.Ведерников, М.И. Гулюкин, И.К.Рождественский и др. М., 2008 г. - 25 с.

27. Верещак, H.A. Оценка показателей иммунной системы и методы коррекции иммунной недостаточности у продуктивных животных и птицы в Уральском регионе. Дисс. . докт. вет. наук/Н.А.Верещак: Екатеринбург,2007. 304 с.

28. Вислогузов A.M. Экология и проблемы ветеринарии// Экологические проблемы патологии, фармакологии и терапии животных/ A.M. Вислогузов// Мат. Междунар. координац. совещания. Воронеж: ВНИВИПФиТ, 1997. - С. 56-57.

29. Воробейчик E.JL К методике измерения мощности лесной подстилки для целей диагностики техногенных нарушений экосистем/ E.JI. Воробейчик // Экология, 1997. №4.- С.263-267.

30. Воронин, Е.С. Влияние иммуномодуляторов на иммунологический статус телят при экспериментальном ринотрахеите / Е.С. Воронин, Д.А. Девритов, В.Н. Денисенко // Ветеринария. 1991. - № 8. - С. 25-27.

31. Гертман, A.M. Особенности лечения бронхопневмонии телят в техногенной провинции Южного Урала/А.М. Гертман, К.Х. Папуниди// Актуальные проблемы патологии животных: Материалы Международного съезда терапевтов, диагностов. Барнаул, 2005. - с. 43-44.

32. Гизатулина, С.Р. Иммунокорригирующие свойства миксоферона, циклоферона и вакцины при инфекционном ринотрахеите у телят: Автореф. дисс. канд. вет. наук/С.Р. Гизатулина: Троицк, 2001. 20 с.

33. Гладков, Б.А. Некоторые физиологические и возрастные особенности иммунной системы у кур / Б.А. Гладков // Диагностика, патоморфология. патогенез и профилактика болезней в промышленном животноводстве. 4.2. - Саратов, 1990. - С. 132-135.

34. Глотов, А.Г. Вирусные заболевания крупного рогатого скота в Сибири и на Урале: метод, рекомендации / А.Г. Глотов и др. // РАСХН, Сиб. отделение, ИЭВСиДВ. Новосибирск, 2001. - 36 с.

35. Глотов, А.Г. Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота/ А.Г. Глотов, А.Ф. Шуляк, Т.И. Глотова, А.Н. Сергеев// РАСХН, Сиб. отделение, ГНУ ИЭВСиДВ. Новосибирск, 2006. - 196 с.

36. Глотов, А.Г. Респираторные болезни телят вирусно-бактериальной этиологии / А.Г. Глотов, Т.И. Глотова; РАСХН. Сиб. отд-ние. ГНУ ИэВСиДВ. Новосибирск, 2008. - 256 с.

37. Гуленкин, В.М. Эпизоотологическое прогнозирование особоопасных болезней/Н.А. Еременко, Е.В. Гусева, В.М. Захаров, и др.//Ветеринария. 2010. - №12 - с. 3-5.

38. Гунашев, Ш.А. Вакцинация новорожденных телят против ПГ-3 и ИРТ крупного рогатого скота / Ш.А. Гунашев, Д.Г. Мусиев // Актуальные проблемы ветеринарии в современных условиях. Краснодар: Символика, 2006.-С. 135-136.

39. Даугаллиева, Э.Х. Гельминтозы и проблемы иммунодефицитов животных/Э.Х. Даугаллиева// Состояние, проблемы и перспективы развития вет. науки России: сб. мат. научн. сессии РАСХН/ Под ред. А. Н. Смирнова. -Т. 2.-М., 1999.-С. 53.

40. Деева, A.B. Применение иммуномодуляторов продуктивршм животным/А.В. Деева, Г.Г. Мехдиханов, В. Д. Соколов, Р.В.Белоусова//Ветеринария. 2008. - №6. - С. 8-12.

41. Джавадов, Э.Д. Возможности вакцинопрофилактики гриппа птиц /Э.Д.Джавадов // Грипп птиц: профилактика и меры борьбы: сб. матер, науч.-практ. конф.- М., 2007.- С. 55.

42. Джамбулатов, З.М. Мониторинг по гриппу птиц в популяциях орнитофауны Дагестана//З.М. Джамбулатов, Н.Т. Карсаков, С.А.Плакса, С.М.Попандопуло//Ветеринария. 2008. - №3. - С. 24-27.

43. Джупина, С.И. Эпизоотический процесс и его контроль при факторных инфекционных болезнях/С.И. Джупина. М., 2002. - 250 с.

44. Донник, И.М. Эффективность иммунопрофилактики лептоспироза у телят в индустриальных территориях/ И.М. Донник, E.H. Шилова, В.Б. Шилов//Журн. Аграрный вестник Урала. г. Екатеринбург, 2007. - № 3 (39)-С. 30-31.

45. Донник, И.М. Применение витадаптина в животноводстве/ И.М. Донник, И.А. Шкуратова, М.В. Ряпосова, H.A. Верещак и др. // Рекомендации. Екатеринбург: Уральское издательство, 2008. - 38 с.

46. Донник, И.М. Оптимизация показателей резистентности и обменных процессов основа повышения продуктивного долголетия коров. / И.М.Донник, И.А. Шкуратова, О.В. Соколова и др. //Ветеринария Кубани. -2010.-№ 3-е. 11.

47. Донник, И.М. Экологические аспекты агропромышленного производства Уральского региона/И.М. Донник, В.Н. Большаков// Современные проблемы диагностики, лечения и профилактики инфекционных болезней животных и птиц; сб. науч.тр. ведущих ученых

48. России и Зарубежья; Вып. 3. Екатеринбург: Уральское издательство, 2010. -с.52-60.

49. Дунин, И.М. Ежегодник по племенной работе в молочном скотоводстве в хозяйствах российской федерации /И.М. Дунин, Г.И. Шичкин, В.И Шаркаев и др.- М.: Изд-во ВНИИплем 2007.- 222 с.

50. Ездакова, И.Ю. Динамика розеткообразующих клеток кур в онтогенезе / Ездакова И.Ю., Чуйко О. М., Чадина Е.О. //Ветеринарная патология.-2008.-№ 2.-С. 62-64.

51. Заслонов, А.С. Иммунно-биохимические показатели молодняка гусей разного возраста при специфической профилактике: автореф. дисс. . канд. ветер. наук/А.С. Заслонов: Екатеринбург, 2010. 23 с.

52. Здродовский, П.Ф. Проблема инфекции, иммунитета и аллергии / П.Ф. Здродовский. М.: Медицина, 1969.

53. Зотова, З.В. Эпизоотологический мониторинг и профилактика гриппа птиц в Москве и Московской области: дис. . канд. ветер, наук: 16.00.03./З.В.Зотова: М., 2008. 176 с.

54. Ибишов, Д.Ф. Исследование животных в зоне экологического неблагополучия /Д.Ф. Ибишов // Аграрная наука. 2008. - №7. - С.25-26.

55. Идрисов, Г.Г. Коррекция иммунного статуса при вакцинации животных против болезни Ауески на фоне иммунодефицита: дис. . канд. биол. наук: 16.00.03. /Г.Г. Идрисов: Казань, 2009. 157 с.

56. Ильясова, Г. Ф. Ксимедон как средство повышения эффективности специфической профилактики /Г. Ф. Ильясова, А. П. Цибулькин, Г. X. Ильясова // Человек и лекарство: докл. VI Российск. национ. конгресса. М. 1999.- С. 297.

57. Иммуноферментный метод определения микотоксинов: ГОСТ Р 52471-2005. Введ 2005-12-29. М.: Изд-во стандартов, 2006. - 13 с.

58. Кадочников, М.Ю. Эколого-биологические особенности крупного рогатого скота в районах интенсивного техногенного загрязнения окружающей среды: дис. . канд. ветерин. наук: 16.00.03., 03.00.16./ М.Ю.Кадочников: Екатеринбург, 2007. 141 с.

59. Камышников, B.C. Клинико-биохимическая лабораторная диагностика: Справочник. Вып.2 Т.1 / B.C. Камышников. -Мн.: Интерпрессервис, 2003. -495 с.

60. Кашин, A.C. Антропогенные экологические болезни животных/А.С. Кашин// Продовольственная безопасность XXI век: эколого-экономические аспекты: сб. науч. тр. Екатеринбург, 2000. - С.259-263.

61. Клиническая иммунология и аллергология: Уч. пособие. / Под.ред. A.B. Караулова// М.: Мед.информ. агенство. — 2002. 651 с.

62. Кобцев, М. «Холодный метод выращивания телят»/М. Кобцев, Е. Рябцева//Животноводство России. 2008. - №12. - С.46-47.

63. Коваленко, A.M. Показатели крови крупного рогатого скота, иммунизированного ПКП-З/А.М. Коваленко, Л.В. Коваленко, A.A. Евглевский, В.А. Бусол//Ветеринария. -2002. №2 - с.17-19.

64. Коваленко, Я.Р. Пути повышения эффективности специфической профилактики инфекционных болезней/Я.Р. Коваленко// Труды ВИЭВ. Т. 43.-М., 1975.-С. 5.

65. Коломыцев, A.A. Анализ эпизоотической ситуации и эффективности мер борьбы с болезнью Ауески в мире//А.А. Коломыцев, А.А.Стрижаков, И.В. Амирова//Ветеринарная патология. 2008. - №1(24) - с. 157-162.

66. Корма, комбикорма, комбикормовое сырьё. Методы определения общей токсичности: ГОСТ Р 52337-2005. Введ: 2005-05-30. М.: Стандартинформ, 2005. - 15 с.

67. Корсакова, E.H. Эффективность вакцинации телят против лептоспироза, трихофитии, паратифа в разных экологических зонах Среднего Урала: автореф. дис. канд. вет.наук / E.H. Корсакова. Барнаул, 2001. - 22 с.

68. Крюков, Д.А. Влияние свинца ацетата и полихлорированных бифенилов на формирование поствакцинального иммунитета к ньюкаслской болезни: дис. . канд. биол. наук: 06.02.03, 06.02.02/Д.А.Крючков: Казань, 2010.- 106 с.

69. Кудрявцев, A.A. Клиническая гематология животных / A.A. Кудрявцев, J1.A. Кудрявцева. М.: Колос, 1974. - С. 196 - 203.

70. Кузнецова, Т.С. Эффективность применения премикса и вакцины против респираторных болезней свиней/Т.С. Кузнецова, В.В. Коржов// Ветеринария. 2008. - №2 - с. 12-13.

71. Кузьмин, В.А. Система мероприятий по защите птицефабрик от диких перелетных птиц/ В.А. Кузьмин, И.В. Ильинский, С.А. Чунин, Е.А. Кречмар и др.//Сб. материалов III Международного ветеринарного конгресса по птицеводству. Москва, 2007. - С. 43.

72. Кузьмин, С.Н. Местный иммунитет и проблемы фенотипической иммунокоррекции/ С.Н. Кузьмин, Б.Б. Першин, И.Г. Овсянникова// Проблемы ветеринарной иммунологии. М., 1985. - С. 25.

73. Кушнир, A.B. Биоразнообразие адаптивной реакции телят черно-пестрой породы на ранней стадии онтогенеза при низких температурах среды/А.В. Кушнир, А.И. Выставной // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2008. - №9 (189) - с. 35-39.

74. Львов, Д.К. Межпопуляционные взаимодействия в системе вирусы гриппа А животные - человек/ Д.К.Львов, С.С. Ямникова, А.Д. Забережный и др. // Вопр. вирусол. - 2005. - Т. 50, № 4. - С. 4 - 11.

75. Макаров, B.B. К проблеме причинности инфекционных заболеваний/В.В.Макаров//Вестник РАСХН. 2003. - №5 - с.11-14.

76. Макаров, В.В. Сапронозы, факторные и оппортунистические инфекции (к истории этиологических воззрений в отечественной эпидемиологии и эпизоотологии)/ В.В. Макаров//Ветеринарная патология. -2008. -№1(24)-с. 7-17.

77. Макаров, В.В. Совершенствование и внедрение современных методов и средств диагностики, терапии и профилактики инфекционных, инвазионных и незаразных болезней животных/В.В. Макаров//Ветеринарная патология. 2007. - №1(20) - с. 187-199.

78. Малков, C.B. Иммуноморфологические показатели телят, иммунизированных вакциной из шт.82 Br. abortus в разных экологических условиях Свердловской области / C.B. Малков // Дис. . канд. вет. наук. -Екатеринбург, 1999. 178 с.

79. Медуницын, Н.В. Вакцинология /Н.В. Медуницын М., Триада, 1999.-272 с.

80. Методика определения экономической эффективности ветеринарных мероприятий/Составители: Ю.Е. Шатохин, И.Н. Никитин, П.А. Чулков, В.Ф. Воскобойник. М:МГАВМиБ им. К.И. Скрябина, 1997. - 36 с.

81. Мирошниченко, Е.Б. Селен-цеолитовые препараты при диарее телят / Е.Б. Мирошниченко // Ветеринария. — 2008. № 6. — С. 50-52.

82. Мищенко, A.B. Особенности противоящурного поствакцинального иммунитета у КРС/ A.B. Мищенко, В.М. Захаров, В.И. Диев и др.// Российский ветеринарный журнал. 2008. - Сентябрь. - с. 28-30.

83. Мищенко, В.А. Вакцинация новорожденных телят против ИРТ и ПГ-3 КРС / В.А. Мищенко, Ю.А. Костыркин, H.A. Яременко и др.// Ветеринария. 2003. - № 7. - С. 19 - 22.

84. Мищенко, В.А. Влияние физиологического и иммунобиологического статуса крупного рогатого скота на уровень поствакционного иммунитета/ В.А. Мищенко, A.B. Кононов, A.B. Мищенко и др.//Ветеринария Кубани. 2008. - №2. - С. 35.

85. Мищенко, В.А. Особенности иммунодефицитов у крупного рогатого скота / В.А. Мищенко, H.A. Яременко, А.В.Мищенко, А.В Кононов, В.В. Думова// Ветеринария. 2006. - №11. -С. 17 - 20.

86. Мищенко, В.А. Особенности массовых ассоциированных респираторных заболеваний крупного рогатого скота/ В.А. Мищенко, В.В. Думова, Черных О.Ю.//Ветеринария Кубани. 2011. - №3. - с. 6.

87. Монастырев, A.M. Физиологические основы стресса и адаптации в скотоводстве при производстве говядины / A.M. Монастырев, Н.Г. Фенченко. Уфа-Троицк, 2001. -173 с.

88. Мымрин, B.C. Черно-пестрый скот на Урале/ B.C. Мымрин. -Екатеринбург: Урал ГСХА, 2003. 145 с.

89. Невинный, В.К. Гермивит в кормах сельскохозяйственных животных и птицы (рекомендации) /В.К. Невинный, И.А. Рубинский, И.М. Донник, И.А. Шкуратова и др. Екатеринбург: Уральское изд-во, 2010 г. Изд.2-е, перераб. и дополн. - 49 с.

90. Новиков, Д.К. Оценка иммунного статуса/Д.К. Новиков, В.И. Новикова. М.: Медицина. - 1996. - 281 с.

91. Ожерелков, C.B. К вопросу о применении иммуномодулирующих препаратов при вирусных инфекциях / С. В. Ожерелков // Матер. XII

92. Междунар. Моск. Конгр. по болезням мелких домашних животных. М. 2004. - С. 9.

93. Олейник, A.B. Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота / A.B. Олейник // Ветеринария. 2007. № 1. - С. 7 - 9.

94. Оуэн, P.JT. Иммунная система птицы / P.JI. Оуэн // Птицеводство, 1996.- №2.- С.39-41.

95. Ощепков, В.Г. Повышение протективных свойств противобруцеллезных вакцин/В.Г. Ощепков, О.В. Львова, Т.Г. Попова и др.//Ветеринария. 2010. - №6 - с. 19-22.

96. Панин А.Н. Пробиотики как неотъемлемый компонент рационального кормления животных и птицы/ А.Н. Панин //Птица и птицепродукты. 2008. - №3. - с. 13-16.

97. Папуниди, К.Х. Техногенное загрязнение окружающей среды как фактор заболеваемости животных/ К.Х. Папуниди, И.А. Шкуратова // Ветеринарный врач. 2000. - №2. - С. 60.

98. Папуниди, Э.К. Применение цеолитов для коррекции нарушения обмена веществ и содержания тяжелых металлов в организме животныхЮ.К. Папуниди//Ветеринарный врач. 2008. -№1 - с. 13-15.

99. Петров, Р.В. Донозологическая диагностика нарушений иммунной системы/Р.В.Петров, P.M. Хаитов // Иммунология.- 1995.- №2.- с.4-5.

100. Петров, Р.В. Оценка иммунной системы при массовых обследованиях: Методические рекомендации / Р.В. Петров, P.M. Хаитов. Б.В. Пинегин // Иммунология. 1992. -№6. - С.51—62.

101. Петрова, О.Г. Иммунопрофилактика инфекционного ринотрахеита среди быков-производителей с применением иммуномодулятора / О.Г. Петрова и др. // Журнал "Практик" № 3. - С-Петербург, 2006. - с. 65-69.

102. Петрова, О.Г. Особенности эпизоотического процесса и динамика распространения ОРВИ КРС на Среднем Урале / О.Г. Петрова, А.Т. Татарчук, Е.В. Печура, Е.Ю. Белоусова и др.// Ветеринарная патология.2006.-№3.-С. 101-103.

103. Петрова, О.Г. Острые респираторные заболевания крупного рогатого скота: учебно метод, пособие / О.Г. Петрова, А.Т. Татарчук и др. -Екатеринбург: Уральское изд-во, 2007 . - 278 с.

104. Петрова, О.Г. Профилактика острых респираторных заболеваний крупного рогатого скота/О.Г. Петрова, К.П. Юров, И.А. Рубинский, А.Т. Татарчук и др.// Методические рекомендации, утв. на бюро Ветеринарной медицины. Екатеринбург, 2005. - 48 с.

105. Петропавловский М.В. Эффективность диагностических тестов в выявлении вируса лейкоза крупного рогатого скота в оздоравливаемых от лейкоза стадах: автореф. дисс. .канд. ветер, наук/ М.В. Петропавловский: Екатеринбург, 2010. 24 с.

106. Печура, Е.В. Особенности управления эпизоотическим процессом при острых респираторных заболеваниях крупного рогатого скота в Уральском регионе. Дисс. . канд. вет. наук/Е.В. Печура: Екатеринбург,2007. 140 с.

107. Притулин, П.И. Основы профилактики инфекционных болезней животных/П.И. Притулин// Труды ВИЭВ. Т. 64. - М., 1987.

108. Разумовская В.В. Совершенствование мер борьбы с лейкозом крупного рогатого скота в Алтайском крае/ В.В. Разумовская // Проблемы профилактики и лечения заболеваний сельскохозяйственных животных: Тр. Свердловской НИВС. Екатеринбург, 1995. - С.71-73.

109. Рахманов, A.M. Выполнение программы совместных действий стран СНГ по профилактике и борьбе с ящуром животных/А.М. Рахманов, Е.В. Велик, В.В. Борисов//Ветеринария. 2010. - №9. - с. 3-7.

110. Рыбаков, С.С. Безопасность и иммуногенность оральных антирабических вакцин/ С.С. Рыбаков, Е.В. Велик, А.Е. Метлин и др.//Ветеринария. 2010 - №8 - с. 18-22.

111. Рявкина, Е.М. Иммунный ответ у животных на введение вакцины "Тривак" / Е.М. Рявкина, А.Ф. Шуляк, О.В. Майджи, К.П. Юров // Ветеринария. 1998. - № 6. - С. 25-27.

112. Ряпосова, М.В. Распространение и этиология хронических эндометритов у коров в сельскохозяйственных организациях Свердловской области/ М.В. Ряпосова, Е.Н.Шилова, О.В.Соколова// Журн. Ветеринария Кубани. г. Краснодар, 2010. - №6. - С.22-24.

113. Саввин, A.B. Основные принципы специфической профилактики бешенства, обеспечивающие эффективность антирабических мероприятий/ A.B. Саввин, Ю.В. Пашкина, К.Н. Груздев, В.В. Сочнев// Ветеринарная патология. 2005 г. - №4 (15).- С. 102-106.

114. Садовников, Н.В. Общие и специальные методы исследования крови птиц промышленных кроссов/Н.В.Садовников, Н.Д. Придыбайло,

115. Н.А.Верещак, A.C. Заслонов. Екатеринбург - Санкт-Петербург: Уральская ГСХА, НПП «АВИВАК», 2009. - 85 с.

116. Самуйленко С.А. Функция лимфоцитов и макрофагов в клеточноопосредованном иммунитете при инфекционном ринотрахеите КРС/ С.А. Самуйленко, Д.П. Кузнецов // Материалы международной конференции молодых ученых. Щелково, 2001. - с. 15-18.

117. Самуйленко, А.Я. Иммуноферментный анализ в ветеринарной медицине/ А.Я. Самуйленко, Д.П. Кузнецов, C.B. Кузнецова//Ветеринария. -2001.-№12-с. 20-23.

118. Саркисов, А.Х. Дерматомикозы животных и современные средства профилактики/ А.Х.Саркисов // Бюлл. ВИЭВ. 1981. - вып. 42. - С. 4.

119. Сергеев, В.А. Вирусы и вирусные вакцины/В.А.Сергеев, Е.А. Непоклонов М., 2007. - 524 с.

120. Сергеев, О.В. Иммунобиологические и патогенетические особенности вирусной диареи крупного рогатого скота/О.В.Сергеев//Ветеринария Кубани. 2009. - №5. - с. 16.

121. Сидоров, Г.Н. К вопросу о прогнозировании эпизоотического процесса при бешенстве на территории России/ Г.Н. Сидоров, Д.Г.Сидорова, Н.М. Колычев, Е.М. Полещук// Ветеринарная патология. 2007. - №3 (22) -С. 17-22.

122. Сидоров, Г.Н. К вопросу о прогнозировании эпизоотического процесса при бешенстве на территории России/ Г.Н. Сидоров, Д.Г. Сидорова, Н.М. Колычев, Е.М.Полещук// Ветеринарная патология. 2007. - №3 (22) -С. 17-22.

123. Сидорова, К.А. Функциональная активность органов детоксикации/К.А.Сидорова, Ш.М. Жумадина, Н.К. Гайнанова и др. (под ред. засл. деятеля науки РФ, докт. мед. наук, проф. П.В.Дунаева). Тюмень, 2002. - 188 с.

124. Симонян, Г.А. Ветеринарная гематология/ Г.А. Симонян, Ф.Ф. Хисамутдинов- М.: Колос, 1995. 99 - 104 с.

125. Сисягин, П.Н. Влияние гликопина на эффективность вакцинации телят при вирусных респираторных болезнях/ П.Н. Сисягин, Г.Р. Реджепова, C.B. Втюрин и др. // Ветеринарная патология. 2005. - №4 (15) - с. 116-118.

126. Сисягина, Е.В. Эффективность применения зоолана и гликопина при вакцинации телят против вирусных респираторных болезней//Е.В. Сисягина, Г.Р.Реджепова, П.Н. Сисягин// Российский ветеринарный журнал.- 2008. Сентябрь. - с. 42-43.

127. Смирнов, A.M. Экологические проблемы в ветеринарии//

128. A.М.Смирнов// Состояние, проблемы и перспективы развития вет. науки России: сб. мат. научн. сессии РАСХН. Под ред. А. М. Смирнова. Т. 2. -М., 1999.-С. 82.

129. Смирнов, A.M. История и реальность вируса гриппа птиц штамма H5N1 / А.М.Смирнов, М.А. Шесточенко, В.А. Исаченко М.: Издательство РАСХН, 2006.- 100 с.

130. Смирнов, A.M. Новые методы исследований по проблемам ветеринарной медицины. Методы исследований по проблемам незаразной патологии у продуктивных животных. Ч. 3: научное издание/ A.M. Смирнов, C.B. Шабунин, М.И. Рецкий Москва: РАСХН, 2007 .- 418 с.

131. Смирнов, П.Н. Генотипическое разнообразие вируса лейкоза крупного рогатого скота разной породной принадлежности/ П.Н.Смирнов,

132. B.А.Белявская, Н.В.Грачева, В.А.Рябинина//Аграрный вестник Урала. 2009.- №7. с. 89-91.

133. Смирнов, П.Н. Новые аспекты методологии иммунопрофилактики болезней сельскохозяйственных животных/П.Н. Смирнов//Труды СНИВС. -Екатеринбург, 1994. С. 24-25.

134. Смирнов, П.Н. Оценка естественной резистентности крупного рогатого скота и овец: метод, рекомендации/ П.Н. Смирнов. Новосибирск, 1989.- С.20.

135. Смирнов, П.Н. Патогенетические особенности возникновения и развития гемобластозов крупного рогатого скота / П. Н. Смирнов// Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2009. - № 4. - С. 10-13.

136. Солдатенко, H.A. Микотоксины скрытая опасность в кормах / H.A. Солдатенко и др. // Современное состояние и перспективы исследований по инфекционной и протозойной патологии, животных, рыб и пчёл: сб. науч. тр. -М., 2008. -С.356-361.

137. Татарчук, А.Т. Дифференциальная диагностика неспецифических реакций у крупного рогатого скота при диагностическом исследовании на туберкулез/А.Т. Татарчук, Н.В. Чурина, Л.Н. Аристархова и др.// Рекомендации. Екатеринбург, 2004. - 24 с.

138. Ткаченко, A.B. Влияние стронгилоидозной инвазии на морфологические, биохимические и иммунобиологические показатели крови и разработка методов их коррекции при терапии лошадей: дис. . канд. биол. наук: 03.00.19/А.В.Ткаченко: Тюмень, 2009. 146 с.

139. Топурия, Г.М. Влияние гермивита на здоровье новорожденных телят/ Г.М.Топурия, А.И. Чернокожев, И.А. Рубинский// Ветеринария. -2010.-№8-с.14-15.

140. Топурия, Г.М. Радиационные иммунодефициты и их коррекция / Г.М. Топурия. Оренбург, 2002. - 140 с.

141. Топурия, Л.Ю. Фармакокоррекция иммунодефицитных состояний у животных: монография / Л.Ю. Топурия, A.A. Стадников, Г.М. Топурия. Оренбург: Издательский центр ОГАУ, 2008. - 176 с.

142. Тремасов, М.Я. Изучение токсикогенеза Fusarium sporotrichiella при повышенной температуре культивирования / М.Я. Тремасов,

143. A.И. Сергейчев, А.З. Равилов // Микология и фитопатология. 2000. - №4 -С. 59.

144. Трушников, В.А. Животноводство Алтая: учебно методическое пособие / В.А. Трушников, Т.В. Лобанова, И.Ю. Попова. - Барнаул: Изд-во АГАУ, 2005.-595 с.

145. Тулеева, Н.П. Иммунопрофилактика респираторных вирусных болезней телят /Н.П. Тулева, Ю.В. Тулев// Ветеринария. 2004. - №8 - с. 1819.

146. Урбан, В.П. Иммунопрофилактика инфекционных болезней животных/В.П.Урбан// Проблемы ветеринарной иммунологии. М., 1985. -С. 13-15.

147. Уткин, В.И. Особенности радиационной обстановки на Урале /

148. B.И. Уткин, М.Я. Чеботина, A.B. Евстигнеев, Н.М. Любашевский // Екатеринбург, УрО РАН, 2004.-151 с.

149. Федоров, Ю.Н. Иммунодефицита крупного рогатого скота / Ю.Н. Федоров // Ветеринария. 2006. - №1.- С. 3 - 6.

150. Фельдман, И.И. Диарея, бронхопневмония, полиартриты телят (эпизоотология, здоровьесберегающие технологии)/ И.И. Фельдман//РАСХН. Сиб. отд-ние. ИЭВСиДВ.- Новосибирск, 1992. 48 с.

151. Фисинин, В.И. Состояние и перспективы развития мирового и отечественного птицеводства/В.И. Фисинин// Сб. материалов III Международного ветеринарного конгресса по птицеводству. Москва, 2007. -С. 5.

152. Цибулькин, А. П. Иммуностимуляторы в профилактике герпетической инфекции /А. П. Цибулькин, Г. Ф. Ильясова, Г. X. Ильясова// Объединенный иммунологический форум Russian Jornal of Immunology.- V.9. -S. 1.-2004.-C.344.

153. Цюпко, B.B. Физиологические основы питания молочного скота / В.В. Цюпко. Киев, 1987.-С. 151.

154. Шабунин, C.B. Проблемы профилактики бесплодия у высокопродуктивного молочного скота/ C.B. Шабунин, А.Г. Нежданов, Ю.Н.Алехин//Ветеринария. 2011. - №2 - с. 3-8.

155. Шатрова, Н.Г. Эффективность энтеросорбентов для профилактики перинатальной патологии крупного рогатого скота в условия Свердловской области / Н.Г. Шатрова // Автореф. дисс. .канд. вет. наук. Казань. - 2001. -20 с.

156. Шахов, А.Г. Этиология факторных инфекций животных и меры их профилактики/А.Г.Шахов// Ветеринарная патология 2005. - №3 - с. 22-24.

157. Шилов, В.Б. Клинико-гематологические особенности лейкоза крупного рогатого скота в техногенно загрязненных территориях Урала/В.Б.Шилов//Автореф. дисс.канд. вет. наук: Екатеринбург, 2004. 22 с.

158. Шилова, E.H. Дезинфицирующая активность препарата «Анолит» при аэрозольной дезинфекции животноводческих помещений/ Е.Н.Шилова, М.А. Исаев//Журн. Ветеринария Кубани г. Краснодар, 2009. - №4. - С.6-7.

159. Шилова, E.H. Повышение эффективности вакцинопрофилактики у животных в районах экологического неблагополучия/ Е.Н.Шилова// Журнал «БИО». Екатеринбург: Изд-во ООО «Восточный Дом», 2004. - №7. - С.17-18.

160. Шилова, E.H. Показатели новорожденных телят в территориях техногенного загрязнения/Е.Н.Шилова, В.М. Тумакова// Актуальные проблемы патологии животных: Материалы Международного съезда терапевтов, диагностов. Барнаул, 2005. - С. 204-205.

161. Шкуратова, И.А. Биогеоценотическая патология крупного рогатого скота на Среднем Урале и методы ее коррекции / И.А. Шкуратова // Автореф. дис. . .д-ра вет. наук. Казань, 2001. - 41 с.

162. Шкуратова, И.А. Коррекция иммунного статуса высокопродуктивных коров/ И.А. Шкуратова, H.A. Верещак//Ветеринария. -2008.-№2-С.11-12.

163. Шкуратова, И.А. Коррекция нарушений обмена веществ и воспроизводительной функции у высокопродуктивных коров/ И.А. Шкуратова, А.Н. Стуков, М.В. Ряпосова и др. // Ветеринария. 2007. - № 9 -С. 9-11.

164. Шкуратова, И.А. Эффективность применения комплекса БАВ в технологии выращивания молодняка крупного рогатого скота/ И.А.Шкуратова, О.Г. Петрова, С.К. Эйриян, Т.Б. Березина и др.//Нивы Урала. 2006. - № 10-с. 11-13.

165. Эзергаль, К.В. Научное и практическое обоснование приемов и способов коррекции стрессов у молодняка крупного рогатого скота: автореф. дис. докт. биологических наук/ К.В. Эзергаль; Волгоград, 2002. - 47 с.

166. Юлмухаметова, А. М. Т- и B-системы иммунитета при микотоксикозах телят / А. М. Юлмухаметова // Повышение эффективности и устойчивости развития агропромышленного комплекса: матер. Всерос. научно-практ. конф. Часть III. Уфа, 2005. - С. 238.

167. Юров, К.П. Профилактика инфекционных болезней телят / К.П. Юров, А.Ф. Шуляк, // Болезни сельскохозяйственных животных вирусной и других этиологий и меры борьбы с ними. Новосибирск, 2001. - С. 9-10.

168. Юров, К.П. Распространение инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи болезней слизистых оболочек крупного рогатого скота в различных регионах России/ К.П. Юров, А.Ф. Шуляк, О.Г. Петрова, О.В. Майджи // Тр. ВИЭВ. - 2003. - Т.73. - С. 22-25.

169. Якубовский, М.В. Особенности иммунитета и профилактика фасциолеза крупного рогатого скота/М.В. Якубовский, Н.Ю. Щемелева//Ветеринария. 2011. - №2 - с. 34-38.

170. Ямникова, С.С. Стратегия профилактики и борьбы с гриппом птиц// С.С. Ямникова, В.И. Смоленский, H.A. Власов и др.// II Междунар. вет. конгресс по птицеводству. -М., 2006. с.38-41.

171. Ярилин, A.A. Основы иммунологии: учеб-метод пособие / A.A. Ярилин. М.: Медицина, 1999. - 608 с.

172. Ackermann, М., Pro and contra IBR-eradication/ M. Ackermann, M. Engels//Vet Microbiol. 2006. Mar 31/ - V.l 13(3-4). - P. 293-302.

173. Adair, B.M. Effect of parainfluenza-3 virus challenge on cell mediated immune function in parainfluenza-3 vaccinated and non-vaccinated calves. / B.M. Adair, H.E. Bradford, D.G. Bryson et al. // Res. Vet. Sei. 2000. Vol. 68.-№2.-P. 197-199.

174. Anderson, D.E. Current veterinary therapy: food animal practice. Fifth Volume/ D.E. Anderson, D.M. Ring// UK: Saunders, an imprint of Elsevier Inc. -2009.-pp. 652-658.

175. Araujo, A.C. Respiratory disease associated with Coronavirus in adult cattle in northern Portugal/ A.C. Araujo, E. Silva, A. Muller, G. Tompson // ESVV-8th International Congress of Veterinary Virology.- Budapest, 2009. P. 131.

176. Artois, M. Outbreaks of highly pathogenic avian influenza in Europe: the risks associated with wild birds/ M. Artois, D. Bicout, D. Doctrinal, R. Fouchier, D. Gavier-Widen et al. //Rev. sei. tech. Off. int. Epiz. 2009/ - 28 (1). -pp. 69-92.

177. Avellaneda, G. Differentiation of infected and vaccinated animals (DIVA) using the NS1 protein of avian influenza virus/G. Avellaneda, E. Mündt, C.W. Lee et al. // Avian Dis. 2010, Mar;54(l Suppl):278-86.

178. Bublot, M. Development and use of fowlpox vectored vaccines for avian influenza/M. Bublot, N. Pritchard, D.E. Swayne, P. Selleck et al. //Ann N Y Acad Sei. 2006, Oct; 1081:193-201.

179. Berggren-Thomas, P.L. Inheritance of active and ascuired immunity traits in sheep/ P.L. Berggren-Thomas, S. Kaattari, W.D. Hohenböken et al. // J. Anim. Sei. 1987.-V. 64.-p. 1302-1312.

180. Biowey, R. W. Color atlas of diseases and disorders of cattle. Second edition/R.W. Biowey, D. Weaver //United Kingdom, Oxford: Elsevier Science limited, 2003.-223 p.

181. Bryson, D.G. Studies on the efficacy of intranasal vaccination for the prevention of experimentally induced parainfluenza type 3 virus pneumonia incalves/D.G. Bryson, B.M. Adair, M.S. McNulty, M. McAliskey et al.// Vet. Ree. -1999, Jul 10;145(2):33-9.

182. Buschmann, H. Selection auf immunologische Parameter ein neuer Weg zur Zucht auf Krankheitsresistenz/H. Buschmann // Zuchtungskunde. - 1982. -V. 54.-N4.-s. 239-244.

183. Callan, R.J. Biosecurity and bovine respiratory disease/ R.J. Callan, F.B. Garry// Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 18:57-77, 2002.

184. Capua, I. Increased resistence of vaccinated turkey to experimental infection with an H7N3 low-pathogenicity avian influenza virus/ I. Capua, C. Terregino, G. Cattoli, A. Toffan/ Avian Pathol. 2004. - V.33- P.47-55.

185. Capua, I. DIVA~a vaccination strategy enabling the detection of field exposure to avian influenza/ I. Capua, G. Cattoli, S. Marangon//Dev. Biol. (Basel). -2004; 119:229-33.

186. Castrucci, G. Vaccination of calves against bovine herpesvirus-1: assessment of the protective value of eight vaccines/G. Castrucci, F. Frigeri, D. Salvatori, M. Ferrari et al. //Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2002 Jan;25(l):29-41.

187. Castrucci, G. The use of immunomodulators in the control of infectious bovine rhinotracheitis/ G. Castrucci, B.I. Osburn, F. Frigeri, M. Ferrari et al. // Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2000, Jul;23(3): 163-73.

188. Castrucci, G. A non-specific defence inducer in preventing clinical signs of infectious bovine rhinotracheitis in calves. /G. Castrucci, M. Ferrari, B.I. Osburn et al. // CoTp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 1996. Vol. 19, № 3. -P. 163-169.

189. Chase, C.L. The immune response to bovine viral diarrhea virus: a constantly changing picture/ C.L. Chase, G. Elmowalid, A.A. Ausama//Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2004. - 20:95-114.

190. Chen, H. Development and application of avian influenza vaccines in China/H. Chen, Z. Bu// Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2009;333:153-62.

191. Condon, K. Detection of Chlamydiaceae DNA in veterinary specimens using a family-specific PCR/ K. Condon, J. Oakey// Lett. Appl. Microbiol. 2007 Aug;45(2):121-7.

192. Confer, A.W. Immunogenicity of recombinant Mannheimia haemolytica serotype I outer membrane protein PipE and augmentation of a commercial vaccine/A.W. Confer, S. Ayalew, R.J. Panciera et al.//Vaccine. -2003,21:2821-2829.

193. Coretese, V. Bovine vaccines and herd vaccination programs / V. Coretese//In Smith BP, editor: Large animal internal medicine, ed 3, St. Louis, 2002, Mosby.

194. Dabo, S.M. , Taylor JD, Confer AW. Pasteurella multocida and bovine respiratory disease/S.M. Dabo, J.D. Taylor, A.W. Confer//Anim. Health Res. Rev. -2007, Dec; 8(2): 129-50.

195. Dimov, V. Immunosuppression in an experimental infection with the infectious rhinotracheitis virus / V. Dimov, E. Slavcheva, A. Toshkov et al. // Acta Microbiol. Bulg. 1990. Vol. 25. - P. 46-53.

196. Diver, T.J. Rebhun's diseases of dairy cattle/T.J. Diver, S.F. Peek //Elsevier Inc. 2008. p.686.

197. Deshpande, M.S. Induction of cytotoxic T-lymphocytes specific for bovine herpesvirus-1 by DNA immunization / M.S. Deshpande // Vaccine. 2002. -№20.-P. 3744-3751.

198. Donovan, D.C. Effect of maternal cells transerred with colostrum on cellular respons to pathogen antigens in neonatal calves/D.C. Donovan, A.J. Reber, J.D. Gabbard et al. //Amer.J.Vet.Res. 2007, 68, 7, p. 778-782.

199. GAO. Flu Vaccine: Supply Problem Yeighten Need to Ensure Access for High-Risk People. Washington, 2001.- № 5.

200. Gupta, P.K. Induction of immune responses in cattle with a DNA vaccine encoding glycoprotein C of bovine herpesvirus-1 / P.K. Gupta // Vet. Microbiol. 2001. - № 78. - P. 293-305.

201. Gymerys, J. Replikacja konskiego herpesvirusa typi 1 ENB-1. w neuronach myszy. Opracowanie metody hodowli mysich neuronow in vitro / J. Gymerys, M. Baribura // Materialy naukowe IX konferencji, Warszawam 2006. -P. 34-38.

202. Grabowsky, B. Investigation and quantification of prevalent risk factors for the introducing of avian influenza in European poultry farms/B. Grabowsky, H.-W. Windhorst//Worlds Poultry Science Journal. 2010. -Vol.66. N3.

203. Guarino, H. Prevalence of serum antibodies to bovine herpesvirus-1 and bovine viral diarrhea virus in beef cattle in Uruguay. / H. Guarino, A. Nunez, M.V. Repiso et al. // Prev. Vet. Med. 2008. - Vol. 85. - № 1-2. - P. 34-40.

204. Hamilton, K. Good governance for early detection and rapid response/K. Hamilton, G. Bruckner// Avian Diseases. 2010. - Vol.54. - P. 384- 386.

205. Hammon, D.S. Neutrophil function and energy status in Holstein cows with uterine health disorders/ D.S. Hammon, I.M. Evjen, T.R. Dhiman et al.// Vet.Immunol. Immunopathol. 2006. - 15(113):21-29.

206. Haque, A. Confronting potential influenza A (H5N1) pandemic with better vaccines/A. Haque, D. Hober, L.H. Kasper//Emerg. Infect. Dis. 2007, Oct; 13(10): 1512-8.

207. Have, P. Assesment of the risk of rabies introduction into UK, Ireland, Sweden, Malta as a consequence of abandoning the serological test measuring protective antibodies to rabies/P. Have, M. Sanaa, L. Alban et al.// EFSA J. -2006,436.-P. 1-54.

208. Holloway, N.M. Serum immunoglobulin G concentrations in calves fed fresh colostrum or a colostrum supplement/N.M. Holloway, J.W. Tyler, J. Lakritz et al.// J. Vet. Intern. Med. 2002. - 16:187-191.

209. Horimoto, T. Designing vaccines for pandemic influenza/T. Horimoto, Y. Kawaoka// Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2009. - 333:165-76.

210. Hunsaker, B.D. Efficacy of intradermal vaccination/ B.D. Hunsaker, L.J. Perino//Vet. Immunol. Immunopathol. 2001. - 79(1-2): 1-13.

211. INAP, 2010. Integrated National Action Program on avian and humaninfluenza in sub saharan Africa: Lessons for the future. Project completion report.

212. Jacevicius, E. Five year serological study of bovine herpesvirus type-1Vin cattle in Lithuania/ E. Jacevicius, A. Salomskas, J. Milius, S. Petkevicius, I. Jaceviciene, G. Pridotkas et al.//Bull Vet. Inst. Pulawy. 2010. - V. 54. - P. 289292.

213. Kamaraj, G. Serological response in cattle immunized with inactivated oil and Algel adjuvant vaccines against infectious bovine rhinotracheitis/G. Kamaraj, S.K. Rana , V.A. Srinivasan//New Microbiol. 2009. - Apr;32(2):135-41.

214. Kapczynski, D.R. Influenza vaccines for avian species/D.R. Kapczynski, D.E. Swayne //Curr. Top. Microbiol Immunol. 2009. - 333:133-52.

215. Kapil, S. Cellular immune status of coronavirus-infected neonatal calves /S. Kapil, S.M. Goyal, A.M. Trent // CoTp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. -1994. Vol. 17, № 2. - P. 133-138.

216. Kelling, C.L. Evolution of bovine viral diarrhea virus vaccines/ C.L. Kelling//Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2004. - 20:115-129.

217. Koch, G. Vaccination of birds other than chickens and turkeys against avian influenza/G. Koch, M. Steensels, T. van den Berg//Rev. Sci. Tech. 2009. -Apr;28(l):307-18.

218. Lee, Youn-Jeong. Highly Pathogenic Avian Influenza Virus (H5N1) in Domestic Poultry and Relationship With Migratory Birds, South Korea/Youn-Jeong Lee, Young-Ki Choi, Yong-Joo Kim et al. //Emerging Infectious Diseases. -2008. -14(3):487-490.

219. Lundborg, G.K. Herd-level factor for infectious diseases in Swedish dairy calves aged 0-90 days/ G.K. Lundborg, E.C. Svensson, P.A. Oltenacu // Prev. Vet. Med. 2005. - V.68. - P.123-143.

220. Lunn, D.P. Clinico-pathological diagnosis of immunodeficiency / D.P. Lunn, J.T. Mc Clure // Equine Vet. Edu. 1993. - P. 30-32.

221. Lupton, H.W. Evaluation of experimental subunit vaccine for infectious bovine rhinotracheitis / H.W. Lupton // Am. J. Vet. Res. 1980. - № 41. - P. 383390.

222. McGuirk, S.M. Managing the production, storage, and delivery of colostrum/S.M. McGuirk, M. Collins//Vet. Clin. N. Am. Food Anim. Pract. -2004.-20:593-603.

223. Makoschey, B. A live bovine herpesvirus-1 marker vaccine is not shed after intramuscular vaccination/B. Makoschey, M. Beer//Berl. Munch. Tierarztl. Wochenschr. 2007. - Nov-Dec;120(l l-12):480-2.

224. Mensik, J. Objective evaluation of the immunogenic effectiveness of polyvalent vaccines against enteral infections of newborn calves under enzootic conditions/J. Mensik, F. Pecka, J. Stepanek, A. Zuffa et al.//Vet. Med. (Praha). -1989. Jan;34(l):l-12.

225. Moran, J. Calf rearing: a practical guide. Second Edition. Australia: Land Link Press, 2002. - p. 211.

226. Muylkens, B. Bovine herpesvirus 1 infection and infectious bovine rhinotracheitis/B. Muylkens, J. Thiry, P. Kirten //Vet. Res. 2007. - Mar-Apr^ 8(2): 181-209.

227. Nandi, S. Bovine herpes virus infections in cattle/S. Nandi, M. Kumar, M. Manohar, R.S. Chauhan//Anim. Health Res. Rev. 2009. - Jun;10(l):85-98.

228. Nardelli, S. Dynamics of infection and immunity in a dairy cattle population undergoing an eradication programme for Infectious Bovine Rhinotracheitis (IBR)/S. Nardelli, G. Farina, R. Lucchini et al. //Prev. Vet. Med. -2008.-Jun. 15;85(l-2):68-80.

229. Obremski, K. Mycotoxins dairy cattle breeding problem. A case report/ K. Obremski, L. Zielonka, M. GajDcka, E. Jakimiuk et al.// Bull. Vet. Inst. Pulawy. - 2009. - V. 53. - P. 221-224.

230. OIE. Disease Information. 2010. - Vol. 23. №1-21.

231. OIE: Prevention and control of animal diseases worldwide Final Report. Part I: Economic analysis: prevention versus outbreak costs. - 2007.

232. OIE WAHID, 2010. World Animal Health Information Database.

233. Электронный ресурс. Режим доступа:http://www.oie.int/wahis/public.php?page==home

234. OIE World Organization For Animal Health (2008). Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals (mammals, birds and bees). Sixth Edition. Vol. 1. P.473.

235. Orsel, K. The effect of vaccination on foot and mouth disease virus transmission among dairy cows/K. Orsel, A. Dekker, A. Bouma, J.A. Stegeman et al.//Vaccine. 2007 Jan 4;25(2):327-35. Epub 2006 Aug 2.

236. Orsel, K.Vaccination against foot and mouth disease reduces virus transmission in groups of calves/K. Orsel, A. Dekker, A. Bouma, J.A. Stegeman et al.//Vaccine. 2005.- Sep. 30;23(41):4887-94.

237. Osweiler, G.D. Mycotoxins. Contemporary issues of food animal health and productivity/ G.D. Osweiler//Vet. Clin. North. Am. Food Anim. Pract. 2000. -Nov; 16(3):511-530, vii.

238. Osweiler, G.D. Diagnostic guidelines for ruminant toxicoses/ G.D. Osweiler//Vet. Clin. North. Am. Food Anim. Pract. 2011. - Jul; 27(2):247-254, vii.

239. Peek, S.E. Isolation of Salmonella spp. from the environment of dairies without any history of clinical salmonellosis/ S.E. Peek, F.A. Hartmann, C.B.Thomas et al.//J. Am. Vet. Med. Assoc. 2004. - 225:574-577.

240. Peterhans, E. Cytopathic bovine viral diarrhea viruses (BVDV): emerging pestiviruses doomed to extinction/ E. Peterhans, C. Bachofen, H. Stalder, M. Schweizer// Vet. Res. 2010. - Nov-Dec;41(6):44.

241. Peterhans, E. How the bovine viral diarrhea virus outwits the immune system/ E. Peterhans, T.W. Jungi, M. Schweizer//Dtsch. Tierarztl. Wochenschr. -2006. Apr; 113(4): 124-9.

242. Potzsch, C.J. Rabies in Europe trend and development/ C.J. Potzsch, A. Kliemt, D. Kloss et al. //Dev. Biol. (Bazel) - 2006. - V. 125 - P. 59-68.

243. Rao, S.S. A gene-based avian influenza vaccine in poultry/S.S. Rao, D. Styles, W.Kong, C. Andrews et al.// Poult. Sci. 2009. - Apr;88(4):860-866.

244. Recuento, S. Potential cost savings with terrestrial rabies control/ S. Recuento, B. Cherry, M. Eidson//BMC Public Health, 2007.

245. Relman, D.A. Infectious Disease Movement in a Borderless World: Workshop Summary/D.A. Relman, E.R. Choffnes, A.Mack//The National Academies Press, Washington. 2010. ISBN: 0-309-14448-5. - 324 p.

246. Rola, J. Genetic profiles of bovine herpesvirus 1 strains isolated from cattle in Poland/J. Rola, J.F. Zmudzinski// Bull. Vet. Inst. Pulawy. 2010. - № 54.- P.457-460.

247. Rola, J Ocena stophia zakazenia wirusem BNV1 budla importowanego do Polski na podstawie badan serologicznych / J. Rola, J.F. Zmudzinski // Medycyna Wet. 2003. - N 59. - P. 990-992.

248. Sanderson, M.W. Records and epidemiology for production medicine. In Chenoweth P.J., Sanderson M.W. editors: Beef practice: cow-calf production medicine, Ames, Iowa. 2005. - Blackwell Publishing. - pp. 29-64.

249. Snowder, G.D. Bovine respiratory disease in feedlot cattle: environmental, genetic, and economic factors/G.D. Snowder//J. Anim. Sci. 2006.- Aug;84(8): 1999-2008.

250. Song, H. A new generation of modified live-attenuated avian influenza viruses using a two-strategy combination as potential vaccine candidates/H. Song, G.R. Nieto, D.R. Perez//J. Virol. 2007. - Sep;81(17):9238-48.

251. Stec, A. Selected elements of metabolic profile and condition state of dairy cattle on farms of different management systems and methods of fodder application / A. Stec, L. Kurek, J. Mochol, Bull Vet Inst Pulawy, 2006.- Vol. 50, P. 199-203.

252. Swayne, D.E. Vaccine for list A poultry diseases; emphasis on avian influenza/ D.E. Swayne// Dev. Biol. (Basel). 2003. - V. 114, 2003. - P. 201212.

253. Swayne, D.E. Principles for vaccine protection in chickens and domestic waterfowl against avian influenza: emphasis on Asian H5N1 highpathogenicity avian influenza/ D.E. Swayne//Ann. N. Y. Acad Sci. 2006. -0ct;1081:174-181.

254. Swayne, D.E. Efficacy of recombinant fowl poxvirus vaccine in protecting chickens against a highly pathogenic Mexican-origin H5N2 avian influenza virus /D. E. Swayne, J. Beck, T. Mickle //Aian. Dis. 1997.- V. 41, № 4.- P. 910-922.

255. Tarpey, I. Future poultry vaccines: A 15-year perspective/I. Tarpey// XXIII World's Poultry Congress in Brisbane, Australia. 2008. - P. 43-44.

256. Taylor, J.D. The epidemiology of bovine respiratory disease: What is the evidence for predisposing factors?/J.D. Taylor, R.W. Fulton, T.W. Lehenbauer, D.L. Step et al. //Can. Vet. J. -2010. Oct;51(10): 1095-1102.

257. Trenholm, H.L. Ingestion of vomitoxin (deoxynivalenol) contaminated wheat by non-lactating cows/ H.L. Trenholm, B.K. Thompson, K.E. Hartin, R. Geenhalgh et al.//J. Dairy Sci. 1985, 68: 1000.

258. Trybala, E. An intradermal test for the diagnosis of BHV-1 infection. The effect of repeated testing on the immune status of cattle/ E. Trybala , J .Wisniewski //Zentralbl. Veterinarmed. B. 1993. - Feb;40(l):73-77.

259. Wilson, D.D. Manual of laboratory and diagnostic tests/ D.D. Wilson.-The McGraw Hill Companies, 2008. - 681 p.

260. Wright, P.F. Animal health: Global support for diagnosing infectious diseases/ P.F. Wright//IAEA BULLETIN. 1992. - № 4. - P. 34-38.

261. Yurov, K.P. Dutradermal immunization against IBR//K.P. Yurov, A.F. Shulak, O.G. Petrova, O.V. Maidgi//The 18-th International Symposium on Veterinary Epidemiology and Economics. 1997. - Paris, Juli 8-11th - p. 18.

Информация о работе

Шилова, Евгения Николаевна
доктора ветеринарных наук
Екатеринбург, 2011
ВАК 06.02.02

Диссертация

Создание и результативность научно-обоснованной системы повышения эффективности вакцинопрофилактики инфекционных заболеваний у животных с выраженным иммунодефицитным состоянием - тема диссертации по сельскому хозяйству, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы