Обмен веществ и продуктивные качества гусей при использовании пробиотиков

Герасименко, Вадим Владимирович

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Обмен веществ и продуктивные качества гусей при использовании пробиотиков
ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Автореферат диссертации по теме "Обмен веществ и продуктивные качества гусей при использовании пробиотиков"

На правах рукописи

■Г

Герасименко Вадим Владимирович

ОБМЕН ВЕЩЕСТВ И ПРОДУКТИВНЫЕ КАЧЕСТВА ГУСЕЙ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ПРОБИОТИКОВ

03.00.13 - физиология 03 00 04 - биохимия

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук

003168594

Боровск - 2008

003168594

На правах рукописи

Герасименко Вадим Владимирович

ОБМЕН ВЕЩЕСТВ И ПРОДУКТИВНЫЕ КАЧЕСТВА ГУСЕЙ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ПРОБИОТИКОВ

03.00.13 - физиология 03.00 04 - биохимия

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук

Боровск-2008

Диссертационная работа выполнена в ГНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания сельскохозяйственных животных» и ФГОУ ВПО «Оренбургский государственный аграрный университет»

Научные консультанты - заслуженный деятель науки РФ,

доктор биологических наук, профессор Тараканов Б.В.; доктор сельскохозяйственных наук, профессор Никулин В Н.

Официальные оппоненты - доктор биологических наук, профессор

Галочкин В.А.;

доктор биологических наук, профессор Фомичев Ю.П.;

доктор биологических наук, профессор Шевелев Н.С.

Ведущее учреждение: Государственное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства»

Защита диссертации состоится «18» июня 2008 года в 10 часов на заседании диссертационного совета Д 006.030.01 при ГНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания сельскохозяйственных животных»

Адрес института: 249013, Калужская область, г. Боровск, пос. Институт, ВНИИФБиП с.-х. животных, тел. (495)9963415, факс -(48438)42088.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Всероссийского государственного научно-исследовательского института физиологии, биохимии и питания сельскохозяйственных животных

Автореферат разослан Алг/ие^Ц 2008 года

Ученый секретарь диссертационного совета кандидат биологических наук

Лазаренко В П

1 ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность работы. Повышение продуктивных качеств сельскохозяйственных животных и птиц возможно только при глубоком изучении физиоло-го-биохимических процессов, протекающих в их организме (Егоров И А., 2002, Фисинин В И, 1999,2005). Сравнительно недавно для нормализации метаболических процессов в организме сельскохозяйственных животных и птицы стали использовать пробиотические препараты, которые, по сути, являются живой микробной добавкой к корму и оказывают свое позитивное воздействие на организм за счет улучшения его кишечного микробного баланса (Тараканов Б.В , 2007, Данилевская Н В , 2006, Панин A R, Малик Н И., 2002, Fuller R, 1989)

Между тем, большая часть исследований посвящена определению эффективности воздействия пробиотиков на продуктивные качества сельскохозяйственных животных и птиц При этом доля физиолого-биохимических экспериментов по данному направлению чрезвычайно мала, а сами эксперименгы в основном ограничиваются определением минимальною набора клинических показателей. Однако не стоит забывать о гом, что новое столетие - это фундаментальные исследования физиологии и биохимии питания птицы (Фисинин В И, 2002). Кроме этого, в данный момент пробиотики практически не рассматриваются как регуляторы антиоксидантного статуса макроорганизма, что, однако, не исключает их вероятную и эффективную роль в поддержании устойчивости организма к активным формам кислорода.

Уникальным объектом для проведения экспериментов по выявлению характера и степени воздействия пробиотических препаратов на физиолого-биохимический статус макроорганизма являются гуси (Тараканов Б В , Никулин В Н с соавт, 2004) У гусей, как ни у каких других сельскохозяйственных птиц, пищеварительные процессы, а следовательно, и обмен веществ в целом зависят от микрофлоры желудочно-кишечного тракта Из этого следует и тот факт, что применение пробиотических препаратов именно в промышленном выращивании гусей должно оказывать максимальное воздействие на метаболические процессы, а также на продуктивные качества и экономическую эффективность.

С учетом высокого качества продукции гусеводства и потребности в ней продовольственного и промышленного рынка, а также большого спроса населения на молодняк закономерным должно быть повышение производства мяса, пера и пуха гусей. Однако в последние десятилетия в России отмечены отрицательные моменты в развитии гусеводства. Так, количество поголовья гусей на 2004 год достигло отметки 600 тысяч, что составляет около 0,2 % от общего количества всех видов сельскохозяйственной птицы, при этом доля мяса гусей от общей массы производимого мяса птицы составляет 0,1 % (Материалы общего собрания Росптицесоюза, 2004, Ройтер Я С , Лукьянов А.Ф. с соавт, 2004) Одной из причин данного снижения является недостаточная изученность физиолого-биохимических особенностей организма гусей.

Цель и задачи исследований. Целью настоящих исследований являлось выявление общих закономерностей воздействия пробиотических препаратов на физиолого-биохимический статус организма гусей и их продуктивные качества ,

Для достижения поставленной цели предусматривалось решение следующих задач:

1. Определить дозы пробиотических препаратов лактомикроцикола, лактоами-ловорина и микроцикола, обеспечивающие биологическую и экономическую эффективность промышленного выращивания гусей 2 Установить особенности физиолого-биохимического статуса организма гусей, выращиваемых на мясо и перо-пуховое сырье, при использовании лактомикроцикола, лакгоамиловорина и микроцикола. 3. Изучить воздействие пробиотических препаратов на показатели антиокси-

дактного статуса организма гусей. 4 Выявить характер и степень влияния пробиотиков на физиолого-биохимический статус организма гусынь-несушек и их репродуктивные качества.

5. Определить влияние пробиотиков на выводимость гусиных яиц, последующую сохранность и продуктивность молодняка.

6. Изучить эффективность выращивания гусей при их инокуляции кишечной микрофлорой взрослой птицы в раннем возрасте

7. Провести производственную апробацию новых пробиотиков при промышленном выращивании гусей.

Научная новнзиа. 1. Впервые получен фактический материал о возрастных изменениях гематологических, физиологических и биохимических показателей организма гусей, а также о характере и степени воздействия лакгоамиловорина, микроцикола и лактомикроцикола на данные показатели Выявлены особенности механизмов воздействия пробиотиков на белковый, углеводный, липидный и минеральный обмен в организме гусей Предложен способ снижения уровня холестерола в крови и продукции гусей за счет кратковременного использования в их кормлении штамма Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 (патент RU № 2270580)

2 Выявлено, что применение пробиотиков с целью стимуляции репродуктивных качеств гусынь-несушек неоднозначно, и на основании комплекса физиолого-биохимических и хозяйственных признаков доказано, что наиболее целесообразным является использование штамма Escherichia coll S 5/98, входящего в состав пробиотика микроцикола.

3. Впервые показано, что предварительная обработка инкубационных гусиных яиц пробиотиками повышает их инкубационные качества, а также выводимость, жизнеспособность и массу тела молодняка гусей, при этом максимальное положительное воздействие оказывает комплексный препарат лакто-микроцикол, содержащий штаммы Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 и Escherichia coli S 5/98.

4. Впервые установлено положительное воздействие кратковременного скармливания суточным гусятам комплекса микрофлоры взрослой птицы в виде кишечной массы гусаков на физиолого-биохимический статус организма молодняка птицы, а также на их продуктивные качества.

5. Доказано, что использование пробиотиков не влечет за собой глубоких изменений в анатомии гусей, а повышение массы тела происходит за счет уве-

личения абсолютной массы всех органов пропорционально. Установлено антистрессовое воздействие пробиотиков на организм гусей

6 Обнаружено качественно новое свойство пробиотических препаратов воздействовать на антиоксидантный статус макроорганизма На модели гусей получен новый фактический материал о воздейсгвии лактоамиловорина, мик-роцикола и лактомикроцикола на активность супероксидцисмутазы, глутатион-пероксвдазы и каталазы крови, содержание малонового диальдегида и общую антиокислигельную способность плазмы крови, что позволяет расширить и углубить знания по данному вопросу, а в некоторых случаях использовать про-биотики с целью коррекции антиоксидаитных процессов в организме птицы и животных

Практическая значимость. 1 Настоящая работа относится как к области фундаментальных, так и прикладных исследований Результаты комплексных исследований белкового, углеводного, липидного и минерального обмена, уровня естественной резистентности и, как следствие, продуктивности и сохранности гусей при использовании лактоамиловорина, микроцикола и лактомикроцикола позволяют рекомендовать применение данных пробиотиков в установленных дозах при выращивании гусей на мясо и перопуховое сырье (Положительное решение ФГУ ФИПС на выдачу от 14.03 2008 патента по заявке № 20061471 £.0/13(051539) от 28.12.2006). При этом наиболее эффективным является использование лактоамиловорина, который повышает сохранность молодняка на 2,6 %, живую массу - на 12,5 % и выход перопухового сырья - на 7 %

2 С целью стимуляции репродуктивных качеств гусынь-несушек рациональным является использование микроцикола, который повышает сохранность на 0,67 %, яйценоскость на среднюю несушку - на 2,61 %, выход инкубационного яйца - на 0,47 %, вывод и выводимость молодняка гусей - на 1,61 и 0,74 % соответственно, а также сохранность молодняка - на 0,45 %

3 Для повышения эффективности инкубирования гусиных яиц, увеличения продуктивных качеств молодняка гусей целесообразной является предварительная обработка инкубационного яйца лактомикроциколом, что позволяет повысить вывод гусят - на 7 %, выводимость - на 8,9 % и живую массу гусят -в среднем на 7 % (Положительное решение ФГУ ФИПС от 14 03.2008 на выдачу патента по заявке № 2006147160/13(051519) от 28 12 2006).

4 Применение микробно-ферментного инокулята от взрослых гусаков в кормлении молодняка гусей позволяет повысить сохранность и живую массу на 11 и 12,7 % соответственно, при этом валовой выход перопухового сырья возрастает на 21,2 % (Положительное решение ФГУ ФИПС от 25 03 2008 на выдачу патента по заявке № 2006147178/13 (051537) от 28 12 2006)

5. Вышеуказанные технологические приемы позволяют рекомендовать производству дополнительные резервы повышения экономической эффективности промышленного выращивания гусей за счет использования рациональных схем применения пробиотиков. Результаты диссертационной работы имеют важное народнохозяйственное значение, поскольку направлены на решение крупной научно-практической задачи - повышения эффективности промышленного выращивания гусей Осуществлено внедрение новых пробиотиков в

практику выращивания гусей в ОАО «Спутник», СПК «Птицефабрика «Гай-ская» и ЗАО «Птицефабрика Оренбургская»

6. В результате исследований разработаны и изданы: 1. Рекомендации по кормлению и использованию пробиотических препаратов при выращивании гусей (Рассмотрены и одобрены администрацией Оренбургской области департаментом агропромышленного комплекса Оренбург, 2004), 2. Методические рекомендации по использованию пробиотика лактоамиловорина в животноводстве и ветеринарии (Рекомендации одобрены и рекомендованы к изданию ученым советом ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных и на заседании секции физиологии и биохимии Россельхозакадемии. Боровск, 2007), а также монография «Научные и практические аспекты разведения гусей» для специалистов, занимающихся разведением гусей (Москва, 2004), монография «Методы фи-зиолого-биохимических исследований крови» для аспирантов и научных сотрудников (Оренбург, 2005) и монография «Биологические основы применения пробиотических препаратов в сельском хозяйстве» для специалистов сельского хозяйства (Оренбург, 2007).

7. Научные разработки использованы при подготовке учебного пособия «Основы аналитической химии» с грифом МСХ РФ № 13-03/1005 от 13.10.2004 и учебного пособия «Биохимия мяса и молока» с грифом МСХ РФ № 13-032/556 от 16.03.2005, а также обучающей компьютерной программы для студентов аграрных вузов. Результаты исследований используются в учебном процессе аграрных вузов Российской Федерации

8. Работа отмечена 2 дипломами и серебряной медалью на VI и VII Московском международном салоне инноваций и инвестиций (Москва, 2006,2007), дипломом на Ярмарке бизнес-ангелов и инноваторов (Саранск, 2006), дипломом на Российском экономическом форуме «Россия Единая» (Нижний Новгород, 2007), серебряной медалью на Российской агропромышленной выставке «Золотая осень» (Москва, 2007). За проведение и внедрение данной работы автор удостоен званий, лауреата премии администрации Оренбургской области для молодых ученых и специалистов (Оренбург, 2005; 2008), лауреата премии Губернатора Оренбургской области в сфере науки и техники (Оренбург, 2006), лауреата премии Правительства Оренбургской области (Оренбург, 2007), а также награжден нагрудным знаком «Участник ВВЦ» № 12, постановление от 21.11.2007 № 51 (Москва, 2007).

Связь исследований с научной программой. Диссертационная работа выполнялась в соответствии с тематическими планами научно - исследовательских работ Оренбургского ГАУ по теме № 01200105542 и ВНИИФБ и П с -х животных по разделу № 01.9.70 002735, согласно договорам о совместных научных исследованиях между ФГОУ ВПО ОГАУ и ГНУ ВНИИФБиП с -.х животных от 26.11.1996; от 6.12.2000; от 20.12.2005. По межведомственной координационной программе фундаментальных и приоритетных прикладных исследований РАСХН, МСХ РФ, РАН (Головное учреждение - ГНУ ВНИИФБиП с.-х. животных) по научному обеспечению развития агропромышленного комплекса РФ № V 1.03. По межведомственной координационной программе РАСХН (Головное учреждение - ГНУ ВНИТИП), Проблема - VII, Задание - 02.

усовершенствовать систему нормированного кормления птицы Данная научно-исследовательская работа выполнялась при финансовой поддержке грантов Губернатора Оренбургской области № 20/05 от 09 06 2005 и № 19/243-п от 19.07 2007, а также РФФИ и администрации Калужской области, грант № 01-04-96027.

Положения, выносимые на защиту. 1 Пробиотики лактомикроцикол, микроцккол и лактоамиловорин оказывают существенное воздействие на обмен белков, минеральных веществ, углеводов и липидов в организме гусей

2 Изменение эффективности межуточного обмена в организме гусей за счет использования пробиотиков сопровождается интенсификацией гемо- и эритропоэза и повышает уровень неспецифической резистентности.

3 Пробиотические препараты оказывают модулирующее действие на ан-тиоксидантный статус организма гусей.

4 Пробиотики стимулируют метаболизм основных питательных веществ в организме гусынь-несушек в репродуктивный период Обработка инкубационные яиц пробиотиками повышает выводимость гусят и их последующую продуктивность

5 Кратковременное введение с кормом михробно-фермснтного инокулята взрослой птицы стимулирует обмен веществ, а также факторы неспецифической защиты молодняка гусей и повышение их продуктивности

6 Использование лакхоамиловорина, микроцикола и лаетомикроцикола в промышленном гусеводстве повышает сохранность, живую массу, выход перо-пухоього сырья и увеличивает диетическую ценность мяса

Апробация работы. Основные материалы диссертационного исследования представлялись и одобрены на межрегиональных научно-практических конференциях «Пути увеличения производства и повышения качества животноводческой продукции» (Оренбург, 2001, 2002), расширенных заседаниях Ученого совета факультета технологии производства и переработки продукции животноводства Оренбургского ГАУ (Оренбург, 2001, 2002); заседаниях Ученого совета факультета ветеринарной медицины и биотехнологии ФГОУ ВПО ОГАУ (Оренбург, 2003, 2004, 2005, 2006, 2007); I Всероссийской научно-практической конференции «Здоровьесберегающие технологии в образовании» (Оренбург, 2003), I и II Международных научно-практических конференциях «Биоэлементы» (Оренбург, 2004; 2007), Международной научно-практической конференции «Научное наследие П Н. Кулешова и современное развитие зоотехнической науки и практики животноводства» (Москва, 2004), III Международном симпозиуме "Современные проблемы ветеринарной диетологии и нуг-рициологии" (Санкт-Петербург, 2005), Российской научно-практической конференции, посвященной 50-летию освоения целинных земель (Оренбург, 2004); региональной конференции молодых ученых и специалистов Оренбуржья (Оренбург, 2005); региональной конференции «Наука - Технологии - Производство - Рынок» (Оренбург, 2007), Российской научно-практической конференции, посвященной 75-летию основания Оренбургского государственного аграрного университета (Оренбург, 2005), I и II Российских научно-практических конференциях «Проблемы устойчивости биоресурсов теория и практика»

(Оренбург, 2004; 2007); III Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы экологии Южного Урала» (Оренбург, 2007), Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и биотехнологии» (Оренбург, 2006); заседании Ученого совета ГНУ ВНИИФБиП с.-х. животных (Боровск, 2007)

А также на. конкурсе на соискание премии научно-исследовательских работ молодых ученых и специалистов Оренбуржья (Оренбург, 2005), конкурсе на соискание звания «Лауреат премии Губернатора Оренбургской области в сфере науки и техники» (Оренбург, 2006); конкурсе на соискание премии Правительства Оренбургской области в сфере науки и техники (Оренбург, 2007), VI и VII Московском международном салоне инноваций и инвестиций (Москва 2006; 2007); Ярмарке бизнес-ангелов и инноваторов (Саранск, 2006), Российском экономическом форуме «Россия Единая» (Нижний^Новгород, 2007), Российской выставке «Золотая осень» (Москва, 2007).

Публикация результатов работы. По материалам исследований опубликовано 59 работ.

Объем и crpyicrypa работы. Материалы диссертации изложены на 382 страницах компьютерного текста и включают введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результатов исследований, выводы, практические предложения, список использованной литературы (638 источников, в т.ч 274 зарубежных авторов). Работа иллюстрирована 86 таблицами, 17 рисунками, имеет приложения.

2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЙ

Экспериментальная часть работы выполнялась в птицеводческих хозяйствах Оренбургской области, базовым являлось ОАО птицефабрика «Спутник» Соль-Илецкого района Оренбургской области. Лабораторные физиолого-биохимические исследования проводились в ФГОУ ВПО Оренбургский ГАУ, ГНУ ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных и ГНУ ВНИИМС. Объектом исследований являлись гуси итальянской белой породы Всего было проведено одиннадцать опытов на молодняке »усей, на гусынях-несушках первого года использования и на гусиных яйцах. Общая логическая схема диссертационного исследования представлена на рисунке 1.

Целью первого и второго опытов было определение оптимальных доз лактоамиловорина, микроцикола и лактомикроцикола при выращивании гусей в промышленных условиях, обеспечивающих максимальную биологическую и хозяйственную эффективность В первом опыте изучался лактоамиловорин, а исследования по определению наиболее эффективных доз микроцикола и лактомикроцикола проводили параллельно, и контрольная группа в данном случае была одна (опыт 2)

Третий и четвертый опыты выполнялись с целью определения физиолого-биохимических особенностей организма гусей, получавших лактоамиловорин, лактомикроцикол и микроцикол в эффективных дозах, установленных в первом и втором опытах В этот период были проведены эксперименты по определе-

ншо переваримости и усвоения, основных питательных веществ корма в возрасте 30 и 60 дней (3 и 4 опыты) Кровь для изучения динамики обменных процессов брали в возрасте 1, 10,20,30,40,60, 120, 150 и 180 дней.

Цель пятого опыта заключалась в определении влияния лактоамиловори-на, лактомикроцикола и микроцнкола на состояние антиоксидантных параметров организма гусей (опыт 5)

С целью уточнения возможного механизма воздействия пробиотиков лак-тоамиловорина и лактомикроцикола через естественные иммуномодуляторы -пептидогликаны, вероятно находящиеся в клеточной стенке шгамма Lactobacillus amylovorus БТ-24/88, входящего в вышеназванные препараты, был проведен шестой эксперимент (опыт б) Инактивацию штамма осуществляли следующим образом пробиотический препарат лактоамиловорин, содержащий 4,26*1010 жизнеспособных клеток в 1 г препарата, кипятили в стерильной колбе в течение 3-х часов на медленном огне, после чего прокипяченный препарат высушивали до постоянной массы в сушильном шкафу при t = 120° С Инактивированный препарат смешивали с кормом и растворяли в питьевой воде непосредственно перед кормлением Опытная птица в течение первого месяца жизни получала инактивированный штамм Lactobacillus amylovorus БТ-24/88 в дозе 7 г/100 кг комбикорма, кроме этого аналогично опытам с обычными пробиотиками инактивированный препарат дополнительно выпаивался с водой в течение первых трех дней жизни в дозе 0,7 г/л при неограниченном ее потреблении

В седьмом опыте изучалось влияние пробиотиков на репродуктивные качества гусынь Первая группа являлась контрольной и получала основной рацион, соответствующий нормам ВНИТИП для гусей в данном продуктивном периоде Вторая группа дополнительно получала лактоамиловорин в дозе 7 г/100 хг комбикорма в течение всего периода исследований Третья группа в составе рациона получала пробнотик микроцикол в количестве 10 г/100 кг комбикорма. Четвертая группа птицы дополнительно получала лактомикроцикол в дозе 11 г/100 кг корма Все пробиотаки схармливали в течение всего периода исследований, который длился с 250-дневного возраста до 370 дней. Гусаки содержались совместно с гусынями в соотношении 1 3

В восьмом эксперименте определялось воздействие обработки инкубационных гусиных яиц лактоамиловорином, микроциколом и лактомикроциколом на их инкубационные качества, выводимость и жизнеспособность молодняка. Для эксперимента, выполняемого методом групп-аналогов, было сформировано 4 группы гусиных яиц Перед закладкой яйца подвергали всем плановым ветеринарным мероприятиям Первая группа служила контролем, вторую группу яиц предварительно перед закладкой в инкубатор погружали на 1 минуту в водный раствор лактоамиловорина с концентрацией 7 г/л, а перед переносом яиц в выводной шкаф процедуру повторяли Третью и четвертую группы яиц перед закладкой в инкубатор погружали на 1 минуту в водные растворы лактомикроцикола и микроцихола с концентрацией пробиотиков 11 г/л и 10 г/л соответственно Для приготовления растворов использовали дистиллированную воду, а в момент погружения яиц в раствор с пробиотиками поддерживали его

температуру в пределах 35-37° С В данном эксперименте учитывались только зоотехнические показатели

Исследования по изучению влияния про-биотиков на физноло-го-биохимические и зоотехнические показатели при выращивании гусей на мясо и перопуховое сырье

Исследования по изучению влияния пробиоти-ков на репродуктивные качества гусей

Исследования по изучению влияния обработки инкубационных яиц пробиоти-камн

Исследования по изучению влияния скармливания микробяо-фсрментного инокулята взрослых гусаков при выращивании гусей

Физиологические

Гематологические показатели, уровень естественной резистентности, морфологические показатели отдельных органов

Биохимические

Состояние белкового, углеводного, липидного и минерального обменов, антиок-сидантного статуса

Зоотехнические

Интенсивность роста, сохранность молодняка, мясная и перопуховая продуктивность, химический состав мяса, яйценоскость, выход инкубационного яйца и его качество, результаты инкубации и экономическая эффективность

Результаты исследований

Производственная апробация в внедрение

Рекомендации производству

Рис 1 - Общая схема исследований

С целью определения влияния микробно-ферментного ииокулята взрос лой птицы на физиолого-биохимические и хозяйственные показатели молодняка гусей был проведен девятый эксперимент. В этом опыте гусятам опытно? группы в течение первых трех суток жизни дополнительно задавали измельченную кишечную массу взрослых клинически здоровых гусаков в дозе 500 г/10 кг комбикорма. Для получения кишечной массы забивали взрослых клинически здоровых гусаков, проводили анатомическую разделку и отрезали кишечник от мышечного желудка до клоаки После чего измельчали весь кишечник с содержимым с помощью бытовой мясорубки и тут же смешивали кишечную массу с комбикормом в вышеуказанной пропорции Скармливание приготовленной смеси гусятам производили немедленно Кровь для исследований брали в возрасте 30 и 60 дней. ч

Производственные опыты проведены на большом поголовье гусей Испытания с лактоамиловорином выполняли отдельно (опыт 10), а с микроциколом и лактомикроциколом осуществлены параллельно, и контрольная группа была одна (опыт 11) В данных опытах дозы и схемы использования препаратов были аналогичны установленным в первом и втором опытах.

В опытах № ], 2, 3, 4, 5, 6, 9, 10 и 11 группы формировались методом групп-аналогов, при соотношении самцов и самок 1.1 Гусят выращивали с суточного до 30-дневного возраста в помещении, а затем перевели на пастбище Во время проведения опыта соблюдались рекомендуемые специалистами птицефабрики зоотехнические параметры, такие, как плотность посадки на 1 м2 пола 8 голов, температура в первые три дня поддерживалась на уровне 29° С, и к концу первой декады ее снижали до 24° С, а затем до 20° С; относительная влажность воздуха находилась в пределах 65-75 %; освещение птичника в первые пять дней круглосуточное, при интенсивности 20-25 люкс/м2 пола, затем его сократили до 16 часов в сутки. Птица имела постоянный свободный доступ к корму и воде. В процессе опыта проводились также плановые ветеринарные мероприятия

Взвешивания проводили на электрических весах Kenwood, сохранность учитывали по количеству павшей птицы ежедневно Анатомическую разделку тушек проводили по методике ВНИТИП (2001). Количественный выход перо-пухового сырья определялся как с одной головы, так и в целом по группе. Кровь брали до утреннего кормления из крыловой вены (до возраста 1 месяца тотально) от 5 особей из каждой группы (3<? + 2$), а в опыте № 7 (5 ), в качестве ангикоагулянта использовали гепарин, или если того требовала методика -ЭДТА Для определения усвоения питательных веществ корма у гусей при использовании пробиотшсов (опыты № 3 и 4) были проведены физиологические (балансовые) опыты в возрасте 30 и 60 дней. Было отобрано по 6 гусаков от опытной и контрольной групп однородных по живой массе, отражающей среднюю по группе

В опытах использовали препараты с титром колониеобразующих единиц (КОЕ) Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 в пределах 0,243-4,26x1010 и Escherichia coli S 5/98 - 1,64x10s в 1 г препаратов, которые готовили в лаборато-

рии биотехнологии микроорганизмов ГНУ ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных, согласно патентам RU 2054478, № 2268297 и № 2268925

Производственные испытания пробиотиков проведены в ОАО птицефабрика «Спутник», ЗАО «Птицефабрика Оренбургская» и СПК «Птицефабрика «Гайская».

В крови определяли: эритроциты, лейкоциты и гематокрит (Болотников В.А., Соловьёв Ю.В., 1980); концентрацию гемоглобина в гемометре Сали (Предгеченский В Е., 1964); общий кальций и холестерол (Колб В Г., Камышников B.C., 1976); содержание железа, цинка и меди в сыворотке крови методом атомно-абсорбционной спектроскопии, аетивность церулоплазмина (Кузнецов С.Г., 1997); фосфор в сыворотке крови по Бригсу в модификации Лебедева П.Т. и Усовича А.Г (1965); общий белок в сыворотке крови рефрактометрическим методом (Меньшиков В.В., 1973); разделение и количественное определение соотношения отдельных фракций белков сыворотки крови электрофорезом на бумаге, общие липиды в сыворотке крови по цветной реакции с суль-фофосфованилиновым реактивом (Колб В Г., Камышников B.C., 1982), кислотную ёмкость крови по методу Неводова А П.; глюкозу в крови глюкозооксидаз-ным методом (Материкин А М с соавт., 1997).

Показатели неспецифической резистентности бактерицидную активность сыворотки крови по методу Смирновой О.В. и Кузьминой Т.А., татр ли-зоцима по методу Ермольевой З.В. и Буяновской И С., активность бета-лизина ускоренным методом Бухарина О В. (Маслянко Р.П., 1984)

Показатели антиоксидантного статуса активность супероксиддисму-тазы (Дубинина Е. Е. с соавт., 1983), активность глутатионпероксидазы (Мо-ин В.М., 1986), активность каталазы (Королюк М.А. с соавт, 1988), малоновый диальдегид (Андреева ЛИ. с соавт., 1988); антиокислительную активность плазмы крови (Клебанов Г.И. с соавт., 1988).

В кормах определяли: азот по Къельдалю, клетчатку по методу Генне-берга-Штомана, жир методом Рушковского, минеральные вещества путем сухого озоления, кальций и фосфор общепринятыми методами (Маслиева О.В., 1970), расчет БЭВ проведен по методу ВНИТИП (2001), крахмал методом Максакова (Материкин А М. с соавт., 1997)

В помете определяли: те же вещества теми же методами, что и в кормах, протеин после отгонки мочевой кислоты и её солей по методу Дьякова М И (Маслиева О.И., 1970)

В мясе определяли: количество белковых веществ, жира, минеральных веществ и воды общепринятыми методами (Маслиева О.В., 1970), количество триптофана и оксипролина в мясе по методу Белькова Г И. с соавт. (1984). Содержание общего холестерола в мясе по методу Зака, описанному Марганцовым В.М. с соавт., (1997).

Инкубационные качества яиц определяли: общепринятыми методами, разработанными сотрудниками ВНИТИП для установления морфологического и химического состава яиц (Агеева Л.Н с соавт., 1981; Дядичкина Л Ф с соавт 1992, 2001; Отрыганьев Г.К. с соавт., 1982; Тишенков А.Н. с соавт, 1982, Сергеева А.М., 1978).

Полученные в экспериментах цифровые данные обработаны методом вариационной статистики (Гатаулин А.М, 1992). Данные в таблицах представлены в виде Mini, где M - среднее арифметическое, m - ошибка средней арифметической В случае нормального распределения, то есть тождественности дисперсий в сравниваемых группах и разницы между средней арифметической (М) и медианой (Me) менее 10 %, оценку статистической значимости различий между группами проводили с помощью t-критерия Стьюдента. Если же сравниваемые показатели имели распределение, отличающееся от нормального, то сравнение проводили с помощью U-теста Манна-Уитни, то есть непараметрического аналога t-критерия Стьюдента Обработку проводили на персональном компьютере с использованием программы Microsoft Excel 2003 и Statistica 6.0. Достоверными считали различия при р<0,05.

3 РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Результаты первого и второго опытов свидетельствуют о том, чго использование лактомикроцикола, лактоамиловорина и микроцикола сопровождается повышением сохранности и живой массы молодняка гусей, а также оказывает воздействие на физиолого-биохимические показатели их организма. Оптимальные дозы пробиотиков составляют лактомикроцикола - 11 г, лактоамиловорина - 7 г и микроцикола - 10 г/100 кг комбикорма Все препараты задавались птице в установленных дозах с поправкой на титр КОЕ.

3.1 Воздействие пробиотиков на переваримость питательных веществ

корма

Применение микроцикола, лактоамиловорина и лактомикроцикола в первую очередь оказывало влияние на процессы пищеварения, то есть на начальный этап обмена веществ, а уже затем на промежуточный и конечный этапы обмена Применение пробиотиков приводило к повышению среднесуточного потребления корма как в 30-, так и в 60-дневном возрасте При скармливании лактомшфоцикола потребление корма увеличивается на 3,63 %, а усвоение протеина возрастает на 3,41-3,45 %, клетчатки - на 6,61 %, БЭВ на - 4,0410,55 %, золы - на 5,4-5,48 %, кальция на - 5,14-6,47 %, крахмала - на 3,235,79 %, а использование липидов снижается на 21,14-21,21 % (р<0,05). При применении лактоамиловорина возрастает потребление корма на 3,24 %, усвоение протеина повышается на 2,92 - 4,32 %, клетчатки - на 11,39 %, БЭВ - на 13,26 %, минеральных веществ - на 1,52-2,39 %, тогда как усвоение липидов снижается на 41,68-44,5 % (р<0,05). Введение в комбикорм микроцикола оказывает меньшее воздействие на процессы пищеварения в ЖКТ гусей, но тем не менее усвоение протеина корма увеличивается на 2,52 %, клетчатки - на 1,0110,51 %, БЭВ - на 3,9 %, минеральных веществ - на 7,31 %, кальция - на 2,34 % и фосфора - на 2,49-3,63 % (р<0,05)

При применении лактоамиловорина и лактомикроцикола повышение потребления кормов наиболее выражено. Вероятно, это сопряжено со снижением усвоения липидов корма, которые, как известно, имеют максимальную энергетическую ценность по сравнению с белками и углеводами. Аналогичная зависимость при повышении калорийности рационов и обратный эффект при понижении калорийности отмечена многими исследователями (Никулин В H, Тараканов Б .В., Синюкоза Т.В , 2007; Романов МП, 1962; Baldmi J.T et al, 1955, 1957; Bolton W., 1963; Dobson D.S et al., 1964; Donaldson WE. et al, 1955; Mc Daniel A.H. et al, 1957; Sandr ML, 1956; Schwarte-H.G. et al, 1958; Spring S L et al., 1957), при этом объяснение данного явления состоит в том, что энергетические потребности являются наиболее существенным стимулятором потребления корма, и если эти потребности удовлетворены, то прием корма прекращается. Это приводит к ограничению приема других нутриентов, в том числе протеина и минералов. Причиной снижения усвоения липидов корма у гусей, получавших лаюгоамиловорин и лактомикроцикол, является свойство, установленное Gilliland S.E. (1990), различных видов лактобацилл, обитающих в пищеварительном тракте, деконъюгировать таурохолиевую и гликохолиевую желчные кислоты, а поскольку деконъюгированные желчнь)е кислоты обеспечивают меньшее всасывание липидов из кишечного тракта, определенное количество липидов корма проходит через желудочно-кишечный тракт транзитом

Причиной незначительного повышения среднесуточного потребления корма гусями под воздействием микроцикола может быть активный рост лак-тобактерий под воздействием штамма Escherichia coh S 5/98, однако это предположение не находит подтверждения в опытах по переваримости отдельных питательных веществ корма, поскольку в этой группе наблюдалось некоторое повышение степени усвоения липидов корма. Возможно, под влиянием микроцикола усиливалась перистальтика кишечника и компоненты корма быстрее эвакуировались из кишечника, заставляя птицу более активно потреблять новые порции Впрочем, по данным Bengmark S. (2000), на жизнедеятельность микрофлоры кишечника макроорганизма в среднем расходуется до 10% поступившей энергии и 20% объема принятой пищи, а поскольку под воздействием пробиотиков количество микроорганизмов, колонизирующих кишечник гусей, возрастало, то закономерно увеличивалась и потребность их в питательных веществах, что и послужило причиной повышения среднесуточного потребления кормов.

3.2 Влияние пробиотиков на морфофизиологические показатели крови

По-разному пробиотики оказывали воздействие на гематологические показатели (табл. 1). Общим было то, что лактоамиловорин, микроцикол и лактомикроцикол повышали уровень гемоглобина, количество эритроцитов и величину гематокрита, но при этом под воздействием лактоамиловорина и лакто-мшфоцикола количество лейкоцитов несколько снижалось, а под воздействием микроцикола повышалось. Применение лактомикроцикола сопровождалось

Таблица 1 - Воздействие пробиотиков на гематологические показатели гусей

Возраст, сут Показатель

Эритроциты, 10|2/л Лейкоциты, 109/л Гемоглобин, г/л

1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

1 2,30±0,02 2,31 ±0,03 2,30±0,02 23,68±0,03 23,72=Ь0,12 23,68±0,03 101,8±0,51 102,5±0,32 101,8±0,51

10 2,34+0,03 2,34±0,02 2,32±0,03 23,33±0,03 23,33±0,17 23,36±0,03 99,4±0,58 99,1±0,62 98,5±0,54

20 2,50±0,04 2,53±0,14 2,46±0,03 23,77±0,04 23,62±0,39 23,89±0,04 96.7i0.49* 101,57 96.2i0.73* 101,8 95,4±0,48

30 2,79±0.03* 2,87±0,11 2,73±0,04 23.94i0.02* 23.33i0.02* 24.57±0,03* 98.1 ±1.05* 100.3i0.21* 96.2±0.67* 104,49

105,28 97,75 94,92 100,33 107,45 113,85

40 2,73±0,06 2,72±0,14 2,64±0,04 25.0Ü0.06* 25.02i0.24* 25,66±0,06 108.3±1.20* 109.2i0.65* 104.8±1.03*

97,62 96,38 107,54 108,55 104,07

60 2,78±0,09 2,77±0,12 2,71±0,Ю 24.58i0.09* 24,72±0,27 24,95±0,12 111.2±1.49* 112.4±0.35* 109.7±0.81*

98,60 104,02 106,74 102,62

120 2,75±0,09 2,74±0,09 2,74±0,09 23,82i0,21 23.42i0.17* 24,23±0,16 116.5±1.74* 118.2±0.38* U4.3il.45*

97,75 106,10 108,04 104,09

150 2,92±0,12 2,94±0,09 2,81±0,10 25,12±0,22 24.33i0.12* 25,70±0,20 121.9±2.12* 124.3i0.36* 118.lil.71*

96,66 108,45 111,58 105,07

180 3,01±0,12 3,05±0,09 2,95±0,11 24.49i0.13* 23.75i0.33* 25.17i0.07* 132.3±2.45* 137.3il.76* 124.7±2,17*

98,16 95,11 100,88 112,88 17,65 106,39

опытная - лактоамиловорин, 3-я опытная - микроцикол, *- различия между опытной и контрольной группами достоверны при р< 0,05; здесь и в таблицах 2,3, 4 и 5 в случае статистически значимых различий между опытной группой и контролем в числителе приведены абсолютные значения показателя, а в знаменателе - в процентах к контролю

повышением количества гемоглобина на 1,57-12,88 %, величины гематокрита на 2,21-3,56 %, количества эритроцитов на 5,28 % и снижает количество лейкоцитов на 1,42-2,44 % (р<0,05). Использование лактоамиловорина увеличивало уровень гемоглобина на 1,8 - 17,65%, величину гематокрита - на 2,21 - 7,41%, тогда как число лейкоцитов снижалось на 2,3 - 5,35% ({¿0,05), а скармливание микроциксша повышает количество гемоглобина на 2,62-6,39 %, лейкоцитов -на 0,33-0,88 % и величины гематокрита - на 1,72-1,82 % (р<0,05).

Все вышеперечисленные изменения не оказывали видимого отрицательного воздействия на организм гусей и не выходили за пределы физиологических норм. Наиболее вероятной причиной положительных сдвигов в составе красной крови гусей под влиянием пробиотиков является интенсификация процессов окисления и восстановления в организме птицы. Так как гусята опытных групп лучше переваривали питательные вещества корма, то и количество веществ, поступающих в кровь из желудочно-кишечного тракта, увеличивалось, а поскольку эти нутриенты могут изменять рН крови в ту или иную сторону, необходимо увеличение её буферной ёмкости Известно, что большая часть буферной ёмкости крови приходится на гемоглобин эритроцитов, в связи с чем количество эритроцитов и гемоглобина в крови гусей опытных групп было выше, чем в контроле. Похожие данные численности эритроцитов и количества гемоглобина в крови гусей получены в исследованиях Закраевской Г. (1970), Лукичевой В.А. (1989) и Крючковой М.А. (2007), а также возрастной динамики величины гематокрита Лукичевой В А. (1989) и Woszczyk J. et al (1981)

За весь исследуемый возрастной период количество лейкоцитов в крови гусей опытных групп, где использовали лактоамиловорин и лактомикроцикол было несколько ниже, чем в контроле, и поскольку никаких отрицательных моментов влияния лактоамиловорина и лактомикроцикола на организм гусей не выявлено, этот фага, вероятно, может быть расценен как результат положительного влияния пробиотиков на физиолого-биохимический статус организма гусей.

Аналогичные данные были получены в экспериментах Малик Н И. (2002) на цыплятах под воздействием пробиотика стрептобифида-форте, а также в опытах Данилевской НВ. (2007) на крупном рогатом скоте и цыплятах-бройлерах. Однако под воздействием микроцикола количество лейкоцитов возрастало, и этот факт, по-видимому, связан с действием штамма Escherichia coli S 5/98 на макрооргаяизм, поскольку такой же эффект отмечен в работах Тараканова Б.В. (2005), а также Соколовой Н.А. с соавт. (1991) под воздействием других пробиотиков на основе штаммов Escherichia coli. Вероятно штаммы Escherichia coli, входящие в состав нормобиозов макроорганизмов, каким-то образом оказывают воздействие на количество лейкоцитов, т.е. регулируют их содержание, а основной эффект от введения таких пробиотиков выражается в стимуляции лейкопоэза, что также стимулирует защитные силы макроорганизма. При этом не следует исключать и возможное ответное действие макроорганизма гусей на введение микробных агентов, воспринимающихся им как патогенные или условно- патогенные.

3.3 Воздействие пробиотиков на состояние естественной резистентности

организма гусей

Воздействие пробиотиков на защитные реакции организма гусей реализо-вывались не только за счет регуляции численности лейкоцитов, но и за счет повышения уровня сывороточного лизоцима, активности бета-лизина и, как следствие, бактерицидной активности сыворотки крови (табл. 2) При использовании лактомикроцикола БАСК увеличивается на 5,15-10,15 %, количество лизоцима - на 12,25-16,58 % и активность бета-лизина - на 9,17-13,87 % (р£0,05) Применение лактоамиловорина повышает бактерицидную активность сыворотки крови на 2,17-12,49 %, содержание лизоцима - на 13,48-^5,18 % и активность бета-лизина - на 8,3-34,87 % (р<0,05) Использование микроцикола увеличивает БАСК на 4,25-10,98 %, количество лизоцима - ка 11,16—12,0 % и активность бета-лизина - на 7,47-25,63 % (р< 0,05).

По данным Маслянко РП (1987), Иванова Ю.Б (2005), бактерицидная активность сыворотки крови (БАСК) является интегральным фактором естественной резистентности гуморального типа, свидетельствующим о способности крови к самоочищению. Применение всех трех пробиотиков стимулировало бактерицидную активность сыворотки крови опытных гусей. Данные возрастной динамики бактерицидной ахтивности сыворотки крови у гусей всех групп совпадают с данными, полученными Хаустовым ВН (2001) на утках и Лип-ской В.В. (1967) на гусях Последний автор сообщила, что уровень БАСК у гусей очень отзывчив на различные внешние факторы, например, добавление ме-тионина в рацион значительно повышает бактерицидную активность сыворотки крози

Люоцим относится к одному из важнейших факторов естественной резистентности организма (Бухарин О.В с соавт, 1977; Воронин Е С. с соавт., 2002, Карпуть И М, 1994; РйЛек Б е1 а!, 1985) Применение микроцикола, лактоамиловорина и лактомикроцикола позволило увеличить содержание лизоцима в крови гусей опытных групп, тем самым оказало сгимулирующее влияние на неспецифическую резистентность организма Данные возрастной динамики содержания лизоцима в крови гусей совпадают с данными, полученными Хаустовым В Н (2001) на утках.

Маслянко Р П. (1987) сообщил, что бета-лизин является одной из важных бактерицидных систем сыворотки крови животных, отличающейся термостабильностью и избирательностью в отношении грамположительных бактерий. По своей природе бета-лизин представляет катионный белок (1уапоу IВ е1 а1, 2005, 2006, 2007) По мнению авторов, бета-лизин имеет тромбоцитарное происхождение. Применение пробиотиков оказывало не столь выраженное стимулирующее влияние на активность бета-лизина, как, например, на бактерицидную активность сыворотки крови или содержание лизоцима. К сожалению, в доступной нам литературе не найдено данных возрастной динамики ахтивности бета-лизина у птиц вообще и у гусей в частности. Поэтому мы можем только констатировать, что с возрастом активность бета-лизина у гусей значительно снижается, тогда как содержание лизоцима и бактерицидная активность

Таблица 2 - Влияние пробиотиков на неспецифическую резистентность гусей

Возраст, сут Показатель

БАСК, % Лизоцим, мкг/мл Активность бета-лизина, %

1 -я опытная 2-я опытная 3-я опытная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

1 57,32±0,99 59,7±0,25 57,32±0,99 25,31±1,04 24,47±1,54 25,31il,04 27,53±1,1б 30,44il,23 27,53il,16

10 54.29iO.85* 55.87i0.23* 54.36±0,82ф 24.53il.02"' 24.42il.23* 23.89i0.63* 25,41i0,89 27,32il,02 26.18i0.49*

105,15 110,09 105,29 114,41 118,77 111,42 107,47

20 62.83±1,24* 64.72i0.17* 61.45i0.96* 21.29i0.97* 21.57i0.56* 20T46i0.47* 22,16i0,76 24,02i0,96 23.45i0.85*

109,77 110,77 107,36 116,53 124,54 112,0 111,3

30 67.58il.10* 69.93i0.35* 66.49i0.96* 17.86Ü0.84* 17.86±0.52* 17.03i0.76* 19,52i0,71 20,1 Ii0,84 20.34i0.51*

105,96 106,21 104,25 116,58 126,94 111,16 111,2

40 74.26il.48* 74.56i0.48* 74.82il.52* 18.37i0.61* 15.64i0.68* 17,84i0,85 16,27i0,43 16,03iJ,05 17.59i0.81*

110,15 112,49 110,98 113,3 135,18 114,07

60 75.34il.63* 75.83i0.62* 76.03il.44* 15.91±0,65* 12,56±0,65 15,17i0,81 12.38i0.12* 12.lli0.93* 13.27i0.56*

108,85 110,33 109,85 113,5 109,17 120,14 117,01

120 75.72Ü.24* 75.24±0.77* 76.12il.48* 14,08±0,95 I4.78i0.71* I3,65i0,67 8,44i0,32 8,51i0.72* 9.12±0.43*

105,81 102,17 106,37 134,0 134,87 123,57

150 84.41il.87* 85.76i0.89* 83.74il.45* 49.22il.79* 58.72i0.07* 44,01il,83 9,83i0,46 10.75i0.81* I0,26i0,61

107,67 107,43 106,82 112,25 113,27 130,3

180 81.05il.34* 83.30i0.14* 80.69il.ll* 43,85±2,25 56.07i0.06'1' 41,28i2,17 5.42i0.19* 2.60Í0.07* 5.98i0.48*

105,75 107,53 105,28 113,48 113,87 108,3 125,63

сыворотки крови с возрастом у гусей повышается По-видимому, эти процессы каким-то образом связаны между собой и требуют более детального изучения. Интересным представляется и тот факт, что на активность бета-лизина из всех трех препаратов наибольшее воздействие оказал микроцикол Эго, вероятно, связано с тем, что, по данным Гриценко В.А с соавт. (2001), Johnson J.R. (1991), Krzeska 1. et al (1992), Yamamoto S et al. (1996), бактерии рода Escherichia обладают способностью воздействовать на активность бета-лизина и некоторых других факторов неспецифическон резистентности организма по различным, еще до конца не выясненным, механизмам

3.4 Влияние пробиотичсскнх препаратов на концентрации белка и соотношение его отдельных фракции о сыворотке крови гусей

Более высокая степень усвоения протеина корма у гусей опытных групп, по-видимому, обусловлена несколькими факторами, такими, как повышение общей протеолитической активности кишечника за счет выделяемых микроорганизмами желудочно-кишечного тракта протеаз, во-вторых, применение изучаемых пробиотических препаратов позволило создать благоприятные условия для обитания и активной жизнедеятельности бактерий, способных продуцировать ферменты, гидролизующие клетчатку Этот факт важен не только тем, что продукты расщепления клетчатки, в частности моносахара, лучше, чем сама клетчатка, используются птицей в качестве питательных веществ, но и тем, что данные ферменты освобождают клетки растительных тканей от оболочек, состоящих из клетчатки, и делают содержимое клеток доступным воздействию пищеварительных ферментов, в том числе и протеаз

Вышеперечисленные факты лежат в основе повышения содержания общего белка в сыворотке крови гусей опытных групп (табл. 3) Так, при использовании лактомикроцикола увеличивается количество общего белка в сыворотке крови на 5,82-17,16 %, отмечается увеличение относительной доли альбуминов на 1,22-4,25 % и у-глобулинов на 0,86-4,1 %, за счет снижения доли ß-глобулинов на 1,65-8,98 % (р<0,05). Применение лактоамиловорина повышает содержание общего белка в сыворотке крови гусей на 3,49-25,33 %, увеличивает долю альбуминов на 1,44-5,47 % и у-глобулинов на 2,03 - 4,6 % за счет снижения таковой ß-глобулинов на 1,72 - 8,92 % (р< 0,05). Скармливание мик-роцикола приводит к повышению количества общего белка в сыворотке крови на 3,84-12,58 %. При этом увеличиваются доли альбуминов на 1,74-2,49 % и Y-глобулинов на 0,87-1,16 %, но снижаются а- и ß-глобулинов на 1,54-1,6 и 2,8-5,05 % соответственно (р<0,05).

Однако увеличение содержания белка в сыворотке может быть обусловлено не только этими факторами, но и тем, что применение лактоамиловорина, микроцикола и лактомикроцикола улучшает состояние микробиоценоза кишечника, и микроорганизмы, входящие в состав микробиоценоза, участвуют в синтезе аминокислот, используя в качестве источника азота аммиак, а в качестве источника углерода - углекислый газ, уксусную, пропионовую и другие органические кислоты Известно также, что и сами бактерии в результате лизиса,

под действием лизоцима и трипсина, могут быть источником белка для организма гусей (Боярский Л.Г., 1985; Мосякин В М., 1993; Николичева Т.А., 1975, Шендеров Б.А. с соавт., 1989; Abdulrabim S.M., 1996; Gibson S A. et al., 1989, Jan-Ho Son etal, 1995).

Таблица 3 - Содержание общего белка в сыворотке крови гусей, г/л

Возраст, сут Группа

1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

1 38,2±0,54 38,6±0,52 38,2±0,54

10 41.8±0.68* 105,82 42.4±0.72* 108,16 \ 40,6±0,54

20 44.3±0.57* 106,30 65.9±0.94* 150,46 43.2±0.37* 103,84

30 58.7±0.77* 117,16 66.3±0.89* 125,33 56.4±0.65* 112,58

40 58.9±1.36* 112,84 57.6±0.84* 107,26 57.7±0.97* 110,54

60 63.8±1.64* 114,54 693±0.93* 121,79 59.3±1.0 [* 106,46

120 64.5*1.51* 110,50 63.8±0.95* 110,76 60,1±1,40

150 65.Ш.25* 112,24 62.2±0.99* 103,49 60,8*1,76

180 66.7il.53* 112,48 64.6±0.63» 123,05 63.9dtl.28* 107,75

Сходные результаты возрастной динамики содержания общего белка в сыворотке крови гусей были получены Охрименко Е.М. и Нестерович РС (1968), Лукичевой В А. (1989), Жумабаевым М.К. (2004) и Крючковой М.А. (2007).

3.5 Содержание минеральных веществ в сыворотке крови гусей при применении пробиотиков

По мнению Шендерова Б.А. (2005), обобщившего большой фактический материал, механизмы, связанные с нормальной микрофлорой, обеспечивающие микроэлементный гомеостаз в живых организмах, состоят в превращении химических элементов в атомовиты, специфические для каждого вида живых организмов; осуществлении специфических ОВР с неорганическими и органическими соединениями, изменяющими растворимость, подвижность и усвоение химических элементов; продукции органических кислот и других веществ, изменяющих растворимость и биодоступность неорганических и органических химических соединений, образовании и выделении хелатирующих и комплек-

сообразующих соединений, влияющих на подвижность, адсорбцию и всасывание поступающих в организм естественным путем макро- и микроэлементов, восстановлении химических элементов из соединений до элементного и/или газообразного состояния, изменении биоусвояемости и токсичности за счет повышения или снижения транслокации химических элементов через слизистую пищеварительного тракта за счет дискриминации по транспорту анионов и катионов; опосредованной регуляции количественного и качественного содержания химических элементов в просвете кишечника и в биологических жидкостях организма за счет изменения скорости продвижения пищевого комка по кишечному тракту, влияния на другие физиологические функции, биохимические реакции организма, связанные с метаболизмом химических элементов На этом базируется современное понимание механизма действия пробиотических препаратов на метаболизм основных минералов (Мазо В_К с соавт., 2004, Мирош-ников С А с соавт., 2006, Сусликов В JI, 2002; Шендеров Б.А, 2005, Bjom-hag G, 1989, Elli M. et al, 2000, Khassanova L et al., 2002, Kot E. et al, 1999, Mead G.C., 1989, Menghen E et al., 1999, Roediger W E., 1986; Rojham A. et al, 1994, Santavirta J et al, 1991, Smith J.C. et al., 1984; Van den Berghe D, 2002, Watzke H J , 1998).

В наших исследованиях установлено, что гуси опытных групп лучше усваивали кальций и фосфор корма, что приводило к повышению их уровня в сыворотке крови (табл. 4).

Таблица 4 - Воздействие пробиотиков на содержание макроэлементов в сыворотке крови гусей, ммоль/л

Возраст, сут Показатель

Кальций Фосфор

1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

1 2,24±0,01 2,28±0,02 2,24±0,01 1,05±0,03 1,03±0,09 1,05±0,03

10 2,11±0,01 2,12*0,03 2,08±0,01 1,88±0,03 1,99±0,05 1,91±0,02

20 2.54±0.02* 104,53 2,56±0,09 2,46±0,02 1,90*0,04 2,01 ±0,04 1.93±0,01* 102,66

30 3.52±0.03* 104,14 3,61±0.04* 105,25 3,44±0,03 1,95±0,02 2,07±0.05* 106,7 1.97±0.01* 102,60

40 3.03±0.03* 118,36 3.02±0.05* 123,77 2.89±0.03* 112,89 2,04±0.02* 4,08 2.35±0.08* 119,29 2.08±0.03* 106,12

60 З.ЗШ.04* 112,59 3.27±0.08* 127,73 3.15±0,03* 107,14 2.14±0.02* 4,39 2.43±0.09* 120,30 2.21±0.04* 107,80

120 3.48±0.05* 115,23 3.43±0.11* 120,77 3.40±0.04* 112,58 2.18±0.01* 2,83 2.41 ±0.07* 116,43 2.23±0.03* 105,19

150 2,16±0.02* 110,77 1,32±0,05 2,09±0.02* 107,18 1.63±0.03* 5,84 1,24±0,12 1,76±0.02* 114,29

180 ?,41±0.05* 114,76 2.42±0Д 1* 151,25 2.20±0,.03* 104,70 1.78±0.03* 5,33 1.82±0,14* 162,50 1.82±0.03* 107,69

У гусей, получавших пробиотики, усвоение всех минеральных веществ корма было также выше, и с этим связано повышение содержания цинка и меди в сыворотке крови гусей, получавших лактоамиловорин и лактомикроцикол, но у них отмечено снижение уровня железа (табл 5). Воздействие микроцикола бьшо несколько иным, а именно: содержание цинка было также выше, а вот уровень меди снижался, тогда как количество железа возрастало. Различия во влиянии пробиотиков на содержание меда в сыворотке крови гусей, вероятно, связаны с селективным действием входящих в их состав микроорганизмов на этот микроэлемент, а также с его антагонистической активностью относительно железа в макроорганизме. Данный факт подтверждает предположение о том, что более активным микроорганизмом в пробиотике лактомихроциколе является штамм Lactobacillus amylovorus БТ-24/88, поскольку лактоамиловорин оказывает такое же воздействие на содержание изучаемых макро- и микроэлементов в сыворотке крови гусей.

Ясно, что воздействие пробиотиков на усвоение кальция и фосфора корма, а стало быть, и на их уровень в крови, реализуется по механизмам, описанным выше, а повышение общего уровня этих макроэлементов в организме гусей влечет за собой общеизвестные положительны^сдвиги в метаболизме, в конечном итоге выражающиеся в повышении продуктивных качеств.

Гораздо более интересным, с точки зрения глобальности воздействия пробиотиков, является изменение количественного состава микроэлементов сыворотки крови. Так, например, уровень цинка в сыворотке крови гусей всех групп повышался, но данный факт важен не столько с точки зрения собственного повышения количества данного атомовита, сколько с точки зрения последствий данного увеличения, потому что цинк является эссенциальным микроэлементом и входит в состав активного центра ряда ферментов, стимулирует регенерацию тканей, обладает бактериостатическим действием, а также регулирует функции иммунной системы - от модуляции проницаемости кожных покровов до влияния на дифференцировку иммунокомпетентных клеток (Гуре-вич К.Г., 2001; Панченко Л.Ф. с соавт., 2004, Beerli R R. et al, 2000, China S.E et al., 2000; Davis C.D. et al., 2000; Ekmekcioglu C., 2001; Rink L. et al, 2000, Wellmghausen N et al, 1998,2001; Yang Т.Н. et al, 2000)

На уровень меди пробиотики оказывали селективное действие Так, лактоамиловорин и лактомикроцикол повышали, а микроцикол несколько снижал концентрацию данного микроэлемента в сыворотке крови гусей Анализируя данные литературы, Панченко Л.Ф. с соавт. (2004) пришли к выводу, что медь -это эссенциальный элемент, входит в состав антиоксидантных ферментов и участвует в транспорте железа, а дефицит и избыток меди сопряжены с риском поражения некоторых внутренних органов.

Таблица 5 - Воздействие пробиотнков на содержание микроэлементов в сыворотке крови гусей, мг/л

Показатель

Возраст, Железо Цинк Медь

сут 1-я опыт- 2-я опыт- 3-я опыт- 1-я опыт- 2-я опыт- 3-я опыт- 1-я опыт- 2-я опыт- 3-я опыт-

ная ная ная ная ная ная ная ная ная

1 4,27±0,09 4,29±0,12 4,27±0,09 2,21±0,09 2,18±0,14 2,21 ±0,09 0,55±0,007 0,53±0,002 0,55±0,007

10 4,25±0,05 4,26±0,07 4,26±0,05 4.27±0.5* 104,66 4.36±0.04* 105,83 4.25±0.05* 104,17 0,59±0,010 0,59±0,003 0,57±0,008

20 4,14±0,05 3.96±0.04* 4,19±0,04 4. И ±0.02* 4.02±0.05* 4,09±0,05 0.56±0.005* 0.57±0.007* 0,53±0,0 06

95,65 102,24 107,49 103,70 107,55

30 4.7б±0.02* 4.17±0.03* 4.89±0.01* 4.15±0.03* 4.17±0.02* 4.16±0.04* 0,54±0.009* 0.54±0.008* 0,49±0,007

98,55 84,58 101,24 102,46 103,47 102,71 108,00 110,2

40 4,68±0,03 4,32±0,12 4.77±0.01 * 3,74±0.05* 3.56±0.14* 3,68±0.03* 0,58±0,017 0.59±0.008* 0,54±0,010

101,27 105,35 120,68 103,66 107,27

60 4,82±0.04* 4.56±0.12* 5,02±0,03 4,08±0,06 4,09±0,09 4.08±0.01* 0,55±0,012 0,57±0,014 0,53±0,007

96,98 91,02 101,74

120 4.80±0.05* 4.43±0.14* 4,98±0,05 4,20±0,06 4,23±0,08 4,17±0,05 0.57±0.008* 0.58±0.009* 0.52±0.004"

96,97 89,32 105,56 107,41 96,30

150 4.61 ±0.03* 4.45±0.08* 4,83±0,04 3.76±0.03* 3,73±0,05 3,70±0,04 0,60±0,016 0.61 ±0.008* 0,56±0,013

96,44 93,68 103,30 107,02

180 4,33±0,01 4,12±0,07 4,52±0.04* 2,84±0,08 2,84±0,03 2.83±0.02* 0.64±0.011* 0,62±0,018 0.59±0.005"

103,43 102,91 104,91 96,72

Количество железа в сыворотке крови под воздействием микроцикола повышалось, тогда как использование лактоамиловорина и лактомикроцикола оказывало обратное действие. По данным Кудрина А В с соавт (2000), в определенной степени медь и железо являются антагонистами, и, вероятно, штамм Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 способствует в большей степени усвоению меди и тем самым несколько ослабляет использование железа, тогда как штамм Escherichia coli S 5/98 оказывает обратный эффект При этом необходимо отметить, что особых видимых последствий данного селективного воздействия мы не наблюдали, что дает основание полагать, что уровни данных микроэлементов не понижались ниже физиологического оптимума, а данная вариабельность имела не столь значительный размах, чтобы оказать негативное воздействие. Тем не менее, данный факт требует пристального внимания, поскольку установленное нами селективное воздействие пробиотиков на количество микроэлементов возможно в последующем использовать с целью коррекции минерального статуса организма птицы, например, в регионах с повышенным содержанием железа или меди в рационе или, наоборот, с пониженным В качестве гипотезы можно предложить еще и следующий вариант объяснения данного феномена. Так, Yokoyama К et al. (2000) в своих исследованиях отмечают, что концентрации некоторых микроэлементов в сыворотке крови имеют циркадные ритмы Максимум концентрации меди и железа отмечается в 9 часов утра, а минимум в б часов вечера В наших исследованиях кровь всегда брали в 6 часов утра, то есть до утреннего кормления, и возможно, что использование пробиотиков сдвигает вышеупомянутые циркадные циклы данных микроэлементов за счет изменения активности пищеварения, и в одно и то же время мы наблюдали одну и ту же картину содержания железа и меди, тогда как возможно в другое время зависимость могла быть иной Сущность следующей гипотезы заключается в том, что к фракции Р-глобулинов относится трансферрин, который является основным белком, запасающим железо в плазме крови, а в опытной группе под воздействием лактоамиловорина и лактомикроцикола процентное содержание р-глобулинов несколько ниже, чем в контроле.

Таким образом, использование лактомикроцикола влечет за собой увеличение количества капьция на 4,14-18,36 %, фосфора - на 2,83-5,84 %, цинка -на 2,24-5,35 % и меда - на 3,7-8,0 %, при этом количество железа снижается на 1,47-3,69 % (р< 0,05). Применение лактоамиловорина увеличивает в сыворотке крови содержание кальция на 5,25-51,25 %, фосфора - на 6,7-62,5 %, цинка -на 3,47-20,68 %, меди - на 7,02-10,2 %, однако содержание железа уменьшается на 4,55-18,23 % (р<0,05). Воздействие микроцикола выражается в повышении количества кальция в сыворотке крови на 4,7-12,89 %, фосфора - на 2,614,29 %, железа - на 1,24-3,43 % и цинка - на 1,74-4,17 %, но сопровождается уменьшением концентрации меди на 3,39-3,85 % (р<0,05)

Некоторые исследователи считают, что активность такого фермента, как церулоплазмин, может служить критерием обеспеченности организма минеральными веществами (Кузнецов С Г., 1989, 1991, 1997, Кузнецова Т С., 1999, Микулец ЮИ с соавт, 2002; Freiden Е, 1974, 1981). При введении в комбикорм лактомикроцикола увеличивается активность церулоплазмина на 2,44-

15,82 %, кислотная емкость - на 3,69-6,88 %, количество глюкозы - на 5,8812,14 %, однако снижается количество общих липидов на 23,66-28,64 % и хо-лестерола на 8,41-28,03 % (р£0,05). Применение лактоамиловорина повышает активность церулоплазмина на 6,2 %, увеличивает содержание глюкозы в сыворотке крови на 12,75-13,14 % и кислотной ёмкости крови на 9,83 %, но уменьшает уровни общих липидов и холестерола на 22,69-36,57 % и 12,6-32,67 % соответственно (р<0,05). Использование микроцикола повышает активность церулоплазмина на 7,63-33,07 %, кислотную емкость крови - на 4,03-5,06 %, количество глюкозы - на 6,94 % (р<0,05) и не изменяет концентрации общих липидов и холестерола

3.6 Анткоксидантиый статус организма гусей при применении пробиотиков

На начальных этапах проведения экспериментов с лактоамиловорином было установлено, что применение данного препарата способствует активации церулоплазмина. Анализ литературы показал, что данный фермент обладает четко выраженными антиоксидантными свойствами Это позволило предположить, что пробиотики могут тем или иным образом оказывать регулирующее действие на антиоксидантный статус макрооргаяизма Проведенные эксперименты подтвердили правильность данной гипотезы (табл 6)

В любом макроорганизме важная роль принадлежит свободнорадикаль-ному окислению и генерации активных форм кислорода, поскольку свободно-радикальное окисление является эволюционно сложившимся естественным механизмом деструкции с целью последующего обновления клеток и тканей, а также для их приспособления к изменяющимся условиям окружающей среды, кроме этого происходит защита организма от различных агентов вирусной и инфекционной природы и образуются активные формы кислорода Антиокси-дантная система макроорганизма в определенной мере служит ликвидатором последствий активации свободнорадикального окисления и таким образом поддерживает биорадикальный гомеостаз (Владимиров Ю А с соавт., 1992; Галоч-кин В А, 2001; Немцова Е.Р с соавт, 2006; Beauchamp С.О. and Fndovich I, 1973; Feter J. et al, 1987; Halhwell В ct al., 1990; Kono Y. and Frtdovich 1, 1982, Slater T F, 1984; Stocks J , 1982)

В наших исследованиях было установлено, что использование пробиотиков влечет за собой повышение активности супероксиддисмутазы и, как следствие, увеличение ферментативной активности катал азы и глутатионпероксида-зы Вероятно, это связано в первую очередь с оптимизацией минерального статуса организма гусей, поскольку, исходя из канонов кинетики ферментативных реакций, становится ясным, что в относительно замкнутой системе, а мы определяли активность данных ферментов в системе m vitro, их активность может зависеть от ряда факторов, а именно, от температуры, рН, концентрации субстрата и наличия активаторов. Поскольку температура, рН и концентрация субстратов во всех пробах были одинаковыми, то их влияние мы вполне обоснованно можем исключить

Таблица 6 - Воздействие пробиотиков на состояние ферментативного звена антиоксидантного статуса организма гусей

Показатель

о* Й" л Активность супероксиддисмутазы цельной крови, уел ед /мл крови Активность глутатионпероксидазы эритроцитов крови, мкмоль/мин/г НЬ Активность каталазы сыворотки крови, мкат/л

и« кон- 1-я 2-я 3-я кон- 1-я 2-я 3-я кон- 1-я 2-я 3-я

м трольная опытная опытная опытная трольная опытная опытная опытная трольная опытная опытная опытная

1 21,43±0,72 325,16± 19,58 9Д5±0,24

10 17,31± 20,11± 19,76± 19,28± 243,28± 271,85± 269,37± 286,42± 12,72± 14,63± 15,43± 13,58±

0,43 0,86* 0,71* 0,51* 10,21 14,82 12,75 11,02* 0,31 0,37* 0,34* 0,42

20 14,64± 17,26± 17,53± 17,04± 217,49± 259,62± 263,25± 267,15± 13,88± 15,29± 16,28± 14,72±

0,54 0,73* 0,85* 0,63* 11,25 12,49 15,04 10,83* 0,36 0,33* 0,53* 0,45

30 9,52± 11,37± 10,65± 10,29± 238,62± 283,71± 289,63± 275,33± 9,03± 13,71± 14,11± 13,2б±

0,38 0,52* 0,63 0,50 11,28 10,36* 12,23* 13,59 0,28 0,54* 0,47* 0,53*

40 15,85± 17,48± 18,31± 17,53± 309,78± 361,29± 374,52± 343,86± 17,64± 18,54± 19,28± 18,25±

0,41 0,39* 0,72* 0,41* 15,46 17,04 16,38* 14,27 0,39 0,52 0,41* 0,46

60 6,03± 7,42± 7,58± 7,16± 258,14± 299,93± 288,16± 264,74± 10,49± 12,09± 12,89± 10,83±

0,35 0,46 0,41* 0,38 9,27 11,58* 17,62 9,85 0,34 0,44* 0,49 0,37

120 3,89± 4,10± 4,02± 3,91± 221,86± 242,14± 236,49± 230,51± 8,23± 9,11± 9,45з: 8,96±

0,29 0,35 0,33 0,37 12,36 13,27 14,16 12,74 0,42 0,46 0,38 0,34

150 9,48± 11,65± 12,83± 10,36± 341,07± 389,56± 401,52± 358,67± 16,52± 17,23± 18,76± 17,08±

0,78 0,89 0,85* 0,74 15,89 16,15 13,46* 14,61 0,53 0,48 0,57* 0,35

180 7,93± 9,07± 9,74± 8,97± 263,19± 278,38± 291,34± 271,28± 10,74± 11,08± 11,3 5± 10,84±

0,52 0,58 0,64 0,49 14,07 12,17 11,75 15,37 0,32 0,30 0,41 0,43

В этом случае на кинетику изучаемых ферментов будет действовать только один фактор - наличие и количество активаторов Активаторами суперок-сиддисмутазы, катал азы и глутатионпероксидазы являются различные микроэлементы, а поскольку их уровень в сыворотае крови опытных гусей возрастал, то и закономерно возрастала активность ферментов антиокислительной защиты Следствием этого явилось снижение уровня малонового диальдегида, который является одним из основных продуктов перекисного окисления липидов различными свободными радикалами (табл. 7). Антиокислительная активность плазмы крови зависит от наличия в ней различных антиоксидантов, ферментных систем обезвреживания перекисей и свободных радикалов, SH-соединений, стероидных гормонов, а-токоферола, церулоплазмина, трансферрина и др (Клебанов ГИ, 1988; Al-Timini DJ. et al., 1977; Stocks J. et al., 1974) Гуси опытных групп имели солидное преимущество над контрольными по данному показателю

Повышение антиокислительной активности плазмы крови является закономерным следствием активации ферментативного звена антиоксидантного статуса организма гусей, что, однако, не исключает и возможное влияние других вышеуказанных факторов неферментного происхождения.

Таблица 7 - Содержание малонового диальдегида и общая антиоксидантная ахтивность плазмы крови гусей при использовании пробиотиков

Возраст, сут Показатель

Содержание малонового диальдегида в сыворотке крови, мкмоль/л Антиоксидантн плазмы к] ая активность рови, %

контрольная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная контрольная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

1 9,83±0,15 25,30±2,41

10 8,24± 0,09 7,98± 0,11 7,91± 0,07* 8,0б± 0,08 34,82± 2,89 47,12± 3,16* 49,51± 3,28* 37,43± 2,45

20 7,92± 0,12 7,42± 0,09* 7,14± 0,13* 7,63± 0,15 42,53± 2,24 52,29± 2,51* 54,83± 3,63* 48,17± 3,36

30 5,43± 0,14 4,91± 0,11* 4,83± 0,16* 5,27± 0,14 51,79± 2,63 63,42± 3,06* 65,94± 3,92* 62,50± 2,61*

40 7,29± 0,18 6,77± 0,24 6,59± 0,17* 6,98± 0,19 64,22± 2,58 75,38± 2,91* 77,27± 3,75* 68,91± 3,02

60 4,68± 0,17 4,02± 0,16* 3,88± 0,21* 4,41± 0,18 73,18± 3,74 79,57± 3,98 82,09± 4,67 76,29± 4,17

120 3,5 6± 0,11 3,27± 0,17 3,34± 0,15 3,15± 0,09* 79,56± 5,62 82,34± 5,33 84,17± 6,89 81,73± 4,92

150 6,85± 0,14 6,52± 0,19 6,46± 0,21 6,64± 0,17 70,23± 5,23 73,46± 4,85 75,90* 5,74 72,38± 4,56

180 5,21± 0,19 5,09± 0,08 4,89± 0,22 5,18± 0,23 78,64± 6,08 81,07± 5,24 80,37± 6,27 78,85± 5,37

Также здесь стоит учитывать и данные, полученные в результате определения активности церулоплазмина, поскольку данный фермент также обладает антиоксидантной активностью (Ажипа ЯШ, 1983, Ярополов А И с соавт., 1986, Berry Е.В., 1992; Guttendge J, 1983, Sergeev A.G., 1993, Yamashoji S et al, 1993) Непосредственно в организме гусей активация могла происходить и за счет того, что свободные радикалы выполняют и защитную функцию, а повышенный уровень микрофлоры в кишечнике за счет применения пробиотиков на каком-то из этапов развития гусей мог служить причиной активации данных ферментов Стоит также отметить, что возрастные особенности антиоксидант-ного статуса организма гусей также были подвержены изменениям, а пиковые ситуации наблюдались после перевода птицы из птичника на пастбище и после проведения прижизненной ощипки Таким образом, нами впервые изучено влияние пробиотиков на антиоксидантный статус организма гусей, что позволяет расширить знания по данному вопросу, а в некоторых случаях использовать пробиотики с целью коррекции антиоксидантных процессов в организме птицы и животных

3.7 Воздействие мнактнвнрованного штамма Lactobacillus amylovorus БТ-24/88 на иеспецифическую резистентность организма гусей

В экспериментах с инактивированным штаммом Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 мы попытались изучить еще один возможный механизм реализации положительного влияния лактоамиловорина и лактомикроцнкола на иммунный статус организма гусей Методом групп-аналогов было сформировано две группы суточных гусят по 300 голов в каждой (опыт № 6)

Исследования показали, что введение инактивированного штамма Lactobacillus amylovorus БТ-24/88 не оказало видимого отрицательного воздействия на состояние здоровья гусят Более того, в опытной группе наблюдалось повышение сохранности птицы, а также незначительное повышение живой массы (табл 8) Данные факты свидетельствуют о том, что инактивированный штамм Lactobacillus amylovorus БТ-24/88 оказывает положительное действие на организм гусей.

Таблица 8 - Сохранность и живая масса гусей

Возраст, сут Группа

контрольная опытная

Поголовье, гол Живая масса, г Поголовье, гол Живая масса, г

1 300 100,63±2,8 300 100,63±2,8

10 291 237,24±4,1 294 241,32±4,5

20 282 594,46±11,8 288 610,53±15,7

30 270 1412,37±13,4 285 1495,88±17,3*

120 264 4193,59±43,8 279 4381,72±52,1*

180 258 4902,68±71,9 273 5067,54±82,6

Результаты исследований косвенно подтверждают нашу гипотезу об им-муномодулирующем действии пептидогликанов, входящих в состав клеточной стенки штамма Lactobacillus amylovorus БТ 24/88. Это подтверждается в ряде исследований (Бондаренко В.М. с соавт., 2003; Онищенко Г.Г. с соавт., 2002, Парфенов АН., 2000, Шендеров Б А , 2001, Clemmesen J, 1989; Cross М L. et al, 2002; Oda M. et al., 1983, Henderson В et al, 1996; Perdigon G. et al, 2001; Schell M.A. et al, 2002; Tannock G.W., 2001), в которых авторы считают одним из наиболее значимых механизмов иммуностимуляции организма-хозяина лак-тофлорой именно за счет наличия пептидогликанов.

Наших исследования показали, что использование инактивированного штамма Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 в кормлении гусят позволяет стимулировать бактерицидную активность сыворотки крови, повышать уровень сывороточного лизоцима и увеличивать активность бета-лизина (табл 9)

Таблица 9 - Показатели неспецифической резистентности

Возраст, сут БАСК, % Лизоцим, м кг/мл Активность бета-лизина, %

контрольная опытная контрольная опытная контрольная опытная

1 58,0б±0,92 25,64±0,98 28,04±0,73

10 52,41±0,41 54,39±0,54* 22,07±0,35 23,47±0,37* 24,28±0,30 25,49±0,33*

20 57,64±0,43 59,72±0,51* 19,42±0,41 21,03±0,39* 2 i, 17±0,52 23,24±0,49*

30 62,35±0,52 65,88±0,73* 16,21±0,38 18,34±0,40* 18,20±0,64 21,08±0,67*

40 66,49±0,95 72,67±1,12* 17,02±0,74 19,41±0,85 16,03±0,43 17,82±0,45*

60 68,23±1,21 74,51±1,17* 14,53±0,41 16,29±0,45* 12,72±0,53 13,95±0,49

120 69,54±1,58 72,46±1,67 12,76±0,76 14,01±0,68 8,12±0,31 8,51±0,28

150 77,72±1,43 78,34±1,52 44,05±1,24 44,27±1,17 9,24±0,27 9,33±0,32

180 75,97±1,54 76,21±1,58 42,78±1,05 42,81±0,99 4,98±0,24 5,01 ±0,26

3.8 Репродуктивные качества гусынь при использовании пробиотиков

В экспериментах на гусынях (опыт № 7) биологическое действие лактоа-миловорина, микроцикола и лактомикроцикола было аналогично таковому в опытах на гусятах (табл.10), но наблюдавшиеся изменения в физиолого-биохимическом статусе гусынь-несушек были несколько меньшими

Это объясняется тем, что в желудочно-кишечном тракте взрослой птицы микробиоценоз уже является вполне стабильным, и возможность колонизации и размножения в нем различных микроорганизмов, как патогенных, так и входящих в состав пробиотиков гораздо ниже, чем у суточного молодняка. Кроме этого, активность собственных пищеварительных ферментов также высока, что и не позволяет пробиотикам в этом возрасте проявлять максимальный эффект на организм птицы. Тем не менее все три препарата стимулировали функции гемо- и эритропозза, а также повышали уровень неспецифической резистентности и концентрации кальция и фосфора в сыворотке крови При этом воздейст-

вне лактоамиловорина и лактомикроцикола было более выраженным на уровень кальция, а микроцикола - на содержание фосфора. Под влиянием микро-цикола количество лейкоцитов повышалось, а при использовании лактоамиловорина и лак^омикро цикола снижалось. Эта же тенденция наблюдалась и по отношению к общим липидам Наблюдавшиеся изменения физиолого-биохимического статуса повлекли за собой во всех трех группах увеличение сохранности и повышение живой массы птицы, особенно выраженным это было в группах, где использовали лактоамиловорин и лактомикроцикол

Таблица 10 - Биохимические и морфологические показатели крови гусынь

Показатель Группа

контрольная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

Середина яйцекладки

Эритроциты, 10и/л 2,93±0,034 2,96±0,036 2,98*0,028 2,94*0,033

Лейкоциты, 10у/ л 26,91*0,107 26,85*0,113 26,03*0,098* 26,99*0,112

Гемоглобин, г/л 123,6±2,24 135,4*2,29* 139,7*2,16* 130,8*2,37

БАСК, % 65,14±1,12 65,94±1,25 66,09*1,23 65,52*1,16

Лизоцим, мкг/мл 38,25*1,93 38,82*1,89 39,11*2,06 38,64*2,01

3-лизин, % 8,52±0,58 8,81±0,49 8,83*0,63 8,76*0,52

Общий белок, г/л 63,8± 1,25 64,7±1,31 65,2*1,32 64,3*1,27

Общие липвды, г/л 25,35*1,20 24,32*1,17 23,19*1,08 25,43*1,18

Глюкоза, г/л 2,21*0,06 2,29±0,06 2,37*0,09 2,23*0,07

Кальций, ммоль/л 3,18±0,017 3,21±0,016 3,24*0,019 3,20*0,015

Фосфор, ммоль/л 2,23*0,012 2,26*0,015 2,27*0,014 2,31*0,018*

Конец яйцекладки

Эритроциты, 10"/л 2,76*0,028 2,79±0,029 2,80*0,030 2,78*0,031

Лейкоциты, 109/ л 26,43*0,093 26,33*0,091 26,28*0,089 26,45*0,096

Гемоглобин, г/л 117,5*2,38 124,5*2,42 126,7*2,43 121,8*2,34

БАСК, % 63,88*1,05 64,29*1,11 64,56*1,12 64,17*1,09

Лизоцим, мкг/мл 35,74±1,76 36,54*1,73 37,29*1,82 36,24*1,69

р-лизин, % 8,37±0,45 8,48*0,51 8,52*0,48 8,45*0,43

Общий белок, г/л 64,5±1,59 66,1*1,42 66,8*1,45 65,7*1,51

Общие липиды, г/л 22,04±1,16 21,83*1,19 21,07*1,22 22,09*1,28

Глюкоза, г/л 2,23±0,08 2,27*0,09 2,28*0,11 2,24*0,08

Кальций, ммоль/л 3,02±0,026 3,08*0,021 3,09*0,023 3,05*0,024

Фосфор, ммоль/л 2,11±0,017 2,14*0,018 2,15*0,019 2,17*0,021

Однако в группе, где применяли лактоамиловорин, отмечено снижение репродуктивных качеств гусынь-несушек и полученного от них инкубационного яйца (табл. 11, 12) Первой видимой причиной такого снижения может являться увеличение живой массы птицы, что вполне согласуется с тем, что у гусей, чем выше живая масса, тем ниже репродуктивные качества.

Второй причиной может служить некоторое снижение количества каро-тинондов в желтке, определяющих инкубационные качества яиц, по причине деконъюгации желчных кислот

Таблица 11 - Влияние пробиотиков на продуктивные качества гусынь

Показатель Группа

контрольная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

Поголовье на начало опыта, гол 300 300 300 300

Поголовье на конец опыта, гол 292 295 297 294

Яйценоскость на среднюю несушку, шт 35,62 35,46 35,30 36,55

Валовой сбор яиц, шт 10544 10549 10538 10856

в т ч инкубационных, шт 9689 9699 9687 10027

Масса яиц, г 179,23±3,74 183,96±4,02 185,72±4,58 182,81±3,97

Плотность яиц, г/см3 1,102±0,014 1,110±0,022 1,108±0,021 1,117±0,024

Содержание в желтке ка-ротиноидов, мкг/г 15,97±1,08 15,85±0,98 14,83±1,03 16,99±1,14

Таблица 12 - Инкубационные качества яиц

Показатель Группа

контрольная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

Количество яиц, шт 9669 9679 9667 10007

Средняя масса яиц, г 178,73±3,52 182,92±3,89 184,9! ±4,49 183,55±3,95

Оплодотворенность, шт 8194 8191 8173 8606

Кровяное кольцо, шт 384 382 386 389

Замершие, шт 467 469 465 475

Задохлики, шт 311 317 314 323

Тумаки, шт 289 274 267 286

Слабые и калеки, шт 391 391 389 398

Вывод гусят, шт 6352 6358 5963 6735

Вывод гусят, % 65,69 65,69 61,68 67,30

Выводимость, % 77,52 77,62 72,96 78,26

Живая масса гусят, г 100,8±2,03 102,2±2,54 103,3±2,81 102,0±2,49

Кроме этого, лимитирующим фактором могло явиться снижение количества общих липидов, и в частности холестерола, поскольку холестерол является предшественником половых гормонов (Баранова Е.И. с соавт, 2004, Климов А Н. с соавт, 1999, Нагорнев В А. с соавт, 1998, D'Angelo A et al, 1997, Grundy S.M , 1999; Hansson G К., 2005, Harpel P.C. et al, 1996, Harvey S et al,

2003, Hirsch A et al., 2004; Jacobsen DW, 1998, Scott T.M et al, 2004, Wnght C.B et al, 2004)

Вероятно, сниженный уровень холестерола в крови молодняка птицы все же остается в тех пределах, которые не снижают количества половых гормонов, регулирующих в том числе и соотношение катаболизма и анаболизма в организме гусей, однако снижение уровня половых гормонов в крови гусынь-несушек в репродуктивный период уже влечет за собой снижение продуктивных качеств В то же время микроцикол не оказывает антихолистеринемиче-ского воздействия на организм гусей, что в свою очередь не влияет на уровень половых гормонов, и не приводит к снижению репродуктивных качеств гусынь-несушек Повышение репродуктивных показателей в этой группе, по-видимому, является следствием общей интенсификации метаболизма в организме птицы под воздействием пробиотика

3.9 Воздействие обработки пробиотиками гусиных яиц на их инкубационные качества, выводимость и жизнеспособность молодняка

Создание надлежащей санитарной обстановки при инкубации яиц является одной из приоритетных задач при воспроизводстве птицы. В настоящее время с этой целью используют предннкубационную аэрозольную дезинфекцию яиц и инкубаторов Этот прием, обычно проводимый с использованием высокоэффективных бактериоцидов, приводит к уничтожению как патогенной, так и естественной микрофлоры поверхности яйца, а вылупившийся молодняк не получает нормальной микрофлоры пищеварительного тракта матерей, и его кишечник впоследствии колонизируется случайным образом нередко потенциально патогенными бактериями (энтеротоксигенные и геморрагические эшери-хии, сальмонеллы, протеи, клебсиеллы, кампилобактеры и другие бактерии) Это приводит к заболеваниям и гибели птицы ог колибахтериоза (до 55% от общих потерь) и сальмонеллеза

Чтобы установить степень и характер воздействия обработки пробиотиками лактоамиловорином, лактомикроциколом и микроциколом на выводимость гусиных яиц и последующую сохранность и продуктивность вылупившегося молодняка, был проведен опыт № 8

Для этого отобрано 1200 яиц от гусынь итальянской белой породы, которые методом групп-аналогов подразделили на четыре группы по 300 яиц в каждой Перед закладкой в инкубатор яйца подвергали плановым ветеринарным мероприятиям. Триста яиц служили контролем, а яйца 1-й, 2-й и 3-й опытных групп перед закладкой в инкубатор погружали на 1 минуту в водные растворы лактоамиловорина, лактомикроцикола и микроцикола соответственно

После вывода молодняк сортировали. При этом обращали внимание на внешний вид, активность молодняка, его устойчивость на ногах Слабых и калек сразу же отсаживали в отдельные ящики. Здоровый молодняк передавали на выращивание не позднее 8 ч после выборки Гусят, выведенных из яиц контрольной, 1-й, 2-й и 3-й опытных групп, сформировали в четыре соответствующие группы

Наиболее вероятной причиной повышения выводимости молодняка является образование защитной пленки на поверхности яйца, состоящей из бактерий, входящих в состав пробиотиков (табл. 13) Защитная пленка не позволяет развиваться патогенным бактериям на поверхности яйца, а также препятствует их проникновению внутрь яйца.

Таблица 13 - Инкубационные качества яиц при обработке их пробиотиками

Группа

Показатель контроль- 1-я опыт- 2-я опыт- 3-я опыт-

ная ная ная ная

Количество яиц, шт 300 300 300 300

Средняя масса яиц, г 178,2±3,5 177,8±4,1 178,4±3,7 179,1 ±4,2

Оплодотворенность, шт 254 257 252 254

Кровяное кольцо, шт 12 14 9 11

Замершие, шт 15 16 10 14

Задохлики, шт 9 7 5 7

Тумаки, цп- 9 3 1 5

Слабые и калеки, шг 12 14 9 10

Вывод гусят, шг 197 203 218 207

% 65,7 67,7 72,7 69

Выводимость, % 77,6 79,0 86,5 81,5

Живая масса гусят, г 102,3±2,4 102,5±2,8 102,2±1,9 101,8±3,1

Полученный из опытных яиц молодняк обладал высокой скоростью роста (табл. 14). В момент вылупления гусят их желудочно-кишечный тракт является стерильным, и первым объектом, с которым контактирует молодняк, является внутренняя и внешняя стороны яичной скорлупы

Таблица 14 - Динамика живой массы гусят, г

Возраст, сут Группа

контрольная 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

1 102,3±2,4 102,5±2,8 102,2±1,9 101,8±3,1

10 231,6±4,1 239,4±4,5 236,5±3,9 232,8±4,2

20 594,1±11,2 679,3±10,5' 658,7±12,4' 637,4±14,8*

30 1376,3±18,6 1440,8±20,4* 1435,2±19,7" 1421,7±21,3

40 2025,4±24,3 2117,5±22,7* 2114,9±23,5" 2102,9±24,5'

50 2б74,7±25,9 2954,2*27,3' 2983,1±26,3" 2718,4±26,7

Поскольку мы обрабатывали пробиотиками внешнюю сторону скорлупы перед переносом яиц в выводной шкаф, то в их кишечник обязательно поступают бактерии, входящие в состав пробиотика, тогда как у гусят, вылупившихся из необработанных яиц, в кишечник могут попадать потенциально патогенные микроорганизмы. Пробиотические бактерии, попавшие в желудочно-

кишечный тракт молодняка, быстро развиваются, предотвращая его заселение патогенами, и благоприятно влияют на становление естественной резистентности и метаболических процессов в организме птицы. Это и проявляется в повышении сохранности и живой массы птиц.

ЗЛО Эффективность выращивания гусей при их инокуляции кишечной микрофлорой в раннем возрасте

Из суточных гусят итальянской белой породы методом групп-аналогов были сформированы две группы по 100 голов в каждой (опыт № 9) В комбикорм для гусят опытной группы вводили мнкробно-ферментный инокулянт (МФИ) из расчета 500 г на 10 кг комбикорма.

Для приготовления МФИ, в состав которого входили кишечный химус, содержащий нормальную микрофлору, микробные и собственные ферменты гусей, а также измельченная кишечная стенка, забивали клинически здоровых гусаков, проводили анатомическую разделку и лигировали кишечник от мышечного желудка до клоаки Затем кишечник вырезали, измельчали его вместе с содержимым с помощью бытовой мясорубки и полученный фарш тут же смешивали с комбикормом, который немедленно скармливали гусятам в течение первых трех суток их жизни

Исследования показали, что включение в комбикорм МФИ в первые три дня жизни гусят не оказало неблагоприятного воздействия на их рост и развитие Птица была активной и хорошо потребляла корм. При этом скармливание добавки положительно сказалось на сохранности гусят, которая в опытной группе в течение первого критического месяца жизни составила 98%, тогда как в контроле только 90%. В целом за 6-месячный период выращивания в группе птицы, получавшей МФИ, пало всего лишь 4 гусенка, а в контрольной группе -15 голов (табл. 15).

Использование МФИ привело не только к снижению падежа гусей, но и стимулировало прирост их живой массы Начиная с 10-дневного возраста и на протяжении всего эксперимента живая масса гусей опытной группы превосходила (Р<0,05) таковую контрольной группы. В конце 1, 2 и 3-й декад выращивания гусята, которым скармливали МФИ, превышали по массе своих сверстников из контрольной группы на 15,3; 34,4 и 18% соответственно, а в конце выращивания они весили в среднем на 605 г, или на 12,4%, больше, нежели контрольная птица.

Среди причин положительного действия на рост и развитие гусей кратковременного применения МФИ можно отметить несколько, но главной, по нашему мнению, является своевременная инокуляция гусят полным комплексом отселекционированн ой микрофлоры желудочно-кишечного тракта взрослых гусей. Это приводит к быстрой колонизации пищеварительного тракта облигаг-ной микрофлорой и тем самым препятствует его заселению условно-патогенными и патогенными бактериями, поступающими в организм птицы из внешней среды с кормом и водой Адгезируясь на слизистой кишечника, мик-

рофлора способствует активации созревания иммунной системы и принимает участие в переваривании питательных веществ

Таблица 15 - Сохранность и показатели роста и продуктивности гусей

Показатель Группа

контрольная опытная

Поголовье гусей в возрасте, дней-

1 100 100

10 97 99

20 92 99

30 90 98

120 86 97

180 85 96

Живая масса гусей в возрасте (дней), г 1 102,4±2,3 101,9±2,5

10 232,7±4,7 268,3±5,1*

20 589,4±15,6 792,Ш7,8*

30 1341,5±45,8 1583,4±51,2*

180 4879,2± 102,5 5483,7±104,8*

Среднесуточный прирост живой массы гусей за 6-месячный период выращивания, г 26,5 29,9

Выход перо-пухового сырья с одной головы, г 41,1±1,3 44,15*1,6

Валовой сбор перо-пухового сырья по всему поголовью, кг 3,533 4,283

В этом ей активно помогают содержащиеся в МФИ пищеварительные ферменты, как микробного происхождения, так и синтезированные собственными железами гусаков, а образованные в результате переваривания корма в кишечнике взрослой птицы метаболиты (содержащиеся в добавке) легхо усваиваются организмом молодняка и тем самым облегчают адаптацию птицы к новым условиям обитания после вылупления

Экспериментальные данные, полученные при анализе крови, свидетельствуют, что добавка МФИ в первые три дня после вылупления способствовала активизации обменных процессов в организме гусей Так, в крови гусят опытной группы в течение двух месяцев сохранялась повышенная концентрация гемоглобина, общего белка, кальция и фосфора (Р<0,05), достоверно возрастала бактерицидная активность сыворотки крови, а также увеличивалась лизоцимная активность и содержание бета-лизина (табл. 16)

Таким образом, полученные данные позволяют констатировать, что высокая сохранность и стимуляция роста и продуктивности птицы обеспечивались при даче МФИ за счет активации иммунной системы, в частности ее гуморального звена, и повышения уровня обменных процессов в организме гусей

Таблица ¡6 - Морфологические и физиолого-биохимические параметры крови

гусей

Показатель Группа и возраст (дней) гусей

контрольная опытная

30 60 30 60

Эритроциты, Ю'^/л 2,65*0,112 2,68*0,145 2,88*0,143 2,79*0,152

Лейкоциты, Ю'/л 24,39*0,174 25,17*0,193 24,45*0,182 25,23*0,225

Гемоглобин, г/л 89,4± 1,68 106,2*1,17 101,3*1,42* 114,1*1,28*

Общий белок, г/л 53,2±2,55 57,3*2,34 67,4*2,78* 70,2*2,53*

Кальций, ммоль/л 3,45*0,034 2,58*0,077 3,63*0,035* 3.31*0,085*

Фосфор, ммоль/л 1,95*0,034 2,04*0,083 2,09*0,031* 2,45*0,092*

БАСК, % 65,91*0,90 68,79*0,75 69,98*0,93* 72,08*0,79*

Лизоцим, мкг/мл 14,12*0,64 10,97*0,59 17,95*0,78* 12,63*0,65

В-лизин, % 19,79*0,58 10,09*0,79 20,15*0,42 12,17*0,78

3.11 Результаты производственных испытании

Производственные испытания проведены в ОАО «Спутник» Соль-Илецкого района Оренбургской области, а также на базе ЗАО «Птицефабрика Оренбургская» и СПК «Птицефабрика «Гайская» Все три препарата повышали сохранность птицы. Увеличивались средний и валовой выход перопухового сырья при проведении прижизненной ошипки Так, при использовании микро-цикола сохранность возрастает на 2,92 %, валовой выход перопуховою сырья на 5,65 %, живая масса одной головы при убое - на 4,86 %, при этом возрастает количество протеина в мясе на 1,81 %, под воздействием лактомикроцикола увеличивается сохранность птицы на 4,0 %, валовой выход перопухового сырья на 12,59 %, живая масса одной головы при убое - на 7,73 %, при этом увеличивается содержание протеина в мясе на 5,03 % и снижается количество жира и холестерола на 2,58 и 25,98 % соответственно; при использовании лактоамило-ворина живая масса одной головы при убое возрастает на 12,53 %, сохранность увеличивается в среднем на 4,2 %, валовой выход перопухового сырья - на 7,09 %, при этом количество протеина в мясе возрастает на 5,72 %, однако снижается количество холестерола и жира на 49,59 и 3,0 %, что повышает диетическую ценность мяса.

Наилучшие результаты получены в экспериментах с лактоамиловорином, что вполне согласуется с результатами физиолого-биохимических исследований.

Выводы

1. В физиологических и производственных опытах изучено влияние пробиоти-ков лактомикрощшна, лактоамиловорина и микроцикола на здоровье, обмен веществ и продуктивность гусят итальянской белой породы Установлены оптимальные дозы пробиотических препаратов, обеспечивающие стимуляцию не-

специфической резистентности молодняка, активацию обменных процессов, улучшение использования питательных веществ, повышение продуктивности и качества продукции. Выявлены особенности действия каждого из изученных прсбиотиков

2. Включение в комбикорм для гусят в первый месяц их жизни лактоамилово-рина в дозе 7 г/100 кг и выпаивание в первые 3 дня его с водой увеличивает потребление корма, повышает переваримость и усвоение протеина, клетчатки, БЭВ и минеральных веществ, тогда как усвоение липидов снижается В крови повышается уровень гемоглобина, величины гематокрита, но отмечается снижение числа лейкоцитов на 2,3-5,4 % В сыворотке крови возрастают концентрации общего белка за счет альбуминов и у-глобулинов, кальция, фосфора, цинка и меди, а содержание железа уменьшается на 4,6-18,2 % Активность це-рулоплазмика, содержание глюкозы в сыворотке крови и кислотная емкость крови увеличиваются, тогда как уровни общих липидов и холестерола снижаются на 12,6-32,7 %. На этом фоне бактерицидная активность сыворотки крови возрастает на 2,2-12,5 %, содержание лизоцима - на 13,5-35,2 % и активность бета-лизина - на 8,3-34,9 %.

Принципиально важным является и тот факт, что при исключении про-биотика из рациона гусей его стимулирующее действие на подавляющее большинство физиолого-биохимических показателей сохраняется до 6-месячного возраста, что может свидетельствовать о приживлении и функционировании штамма Ь ашуЬуогиз БТ - 24/88, используемого для приготовления лактоами-ловорииа, в пищеварительном тракте птицы

3 Применение лактомикроцикола оказывает на организм гусей аналогичное лактоамиловорину биологическое действие Потребление корма увеличивается на 3,6 %, усвоение большинства питательных веществ корма возрастает, а использование липидов снижается в среднем на 21 %. В крови повышается количество гемоглобина, эритроцитов и величина гематокрита, но снижается количество лейкоцитов на 1,4-2,4 % Сыворотка крови содержит больше общего белка за счет альбуминов и 7-глобулинов, а также кальция, фосфора, цинка и меди, тогда как количество железа снижается на 1,5-3,7 % Активность церуло-плазмина, кислотная емкость и количество глюкозы увеличиваются, а концентрации общих липидов и холестерола снижаются на 8,4-28,0 % При этом увеличивается БАСК на 5,2-10,2 %, количество лизоцима - на 12,3-16,6 % и активность бета-лизина - на 9,2-13,8 %

4 Скармливание микроцикола, как и пробиотиков с лактобациллой, оказывает существенное влияние на обмен веществ в организме гусей, но имеются некоторые особенности. Переваримость и использование питательных веществ корма несколько снижаются, в крови повышается содержание железа, но снижается на 3,4-3,9 % концентрация меди На этом фоне возрастают активность церу-лоплазмина, кислотная ёмкость крови и уровень глюкозы, тогда как содержание общих липидов и холестерола не изменяется Применение микроцикола, как и других пробиотиков, стимулировало неспецифическую резистентность гусей (р<0,05)

5 Производственные испытания показали, что применение пробиотиков при выращивании гусей существенно повышает их продуктивность При включении в комбикорм лактоамиловорина, лактомикроцикола и микроцикола сохранность возрастает на 4,2; 4 и 2,9 %, живая масса одной головы при убое - на 12,5; 7,7 и 4,9 %, а валовой выход перопухового сырья - на 7,1; 12,6 и 5,7 % соответственно. В мясе гусей, получавших лактоамиловорин и лактомикроцикол, снижается количество жира и холестерола на 3 и 2,6 %; 49,6 и 26 %, а содержание протеина возрастает на 5,7 и 5 % соответственно, что повышает его диетическую ценность

6 Установлено, что применение пробиотиков оказывает модулирующее действие на антиоксидантную систему организма гусей. Все изученные пробиотиче-ские препараты стимулируют активность супероксиддисмутазы, глутатионпе-роксидазы и каталазы При этом общая антиоксидантная активность плазмы крови увеличивается, а концентрация малонового диальдегида снижается Наиболее существенные изменения в аитиоксидантном статусе организма гусей отмечаются при использовании лактоамиловорина.

7 Биологическое действие пробиотических препаратов на гусынь-несушек сходно с таковым на организм гусят, но интенсивность данного воздействия выражена слабее. Тем не менее, применение микроцикола оказывает положительное влияние на репродуктивные функции гусынь и инкубационные качества яиц Сохранность птиц возрастает на 0,7 %, яйценоскость на среднюю несушку на 2,6 %, а количество некондиционного яйца уменьшается на 0,5 % Вывод и выводимость молодняка повышаются на 1,6 и 0,7 % соответственно, а его сохранность - на 0,5 %

8. Показано, что обработка гусиных яиц пробиотиками перед закладкой на инкубацию и при переносе в выводной шкаф положительно влияет на их инкубационные качества и последующую продуктивность вылупившихся гусят. При этом максимальную эффективность проявляет лактомикроцикол, повышая вывод и выводимость молодняка на 7,0 и 8,9 % соответственно и живую массу гусят в 50-дневном возрасте на 11,5 %

9 Установлено, что эффективным приемом при выращивании гусей является их инокуляция в первые три дня жизни микробно-ферментным инокулятом от здоровой взрослой птицы. Скармливание инокулята повышает сохранность молодняка на 11 %, стимулирует неспецифическую резистентность, активирует синтез гемоглобина, общего белка и обмен макроэлементов в крови, на 12,4 % увеличивает живую массу гусей в 6-месячном возрасте и валовой выход перо-пухового сырья на 21,2 %.

10. Подтвержден ранее установленный факт иммуномодулирующего действия инактивированных лактобактерий на иммунную систему. Использование убитого нагреванием ш гамма Ь. ашу1оуогиз БТ-24/88, входящего в пробиотики лактоамиловорин и лактомикроцикол, сопровождалось стимуляцией неспецифической резистентности гусят как в период месячного применения препарата, так и в течение месяца после его отмены, но в последующем наблюдавшаяся разница в показателях гуморального иммунитета нивелировалась Сохранность

гусят в 86 % в контроле повышалась до 91 % в группе, получавшей неактивный лактоамиловорин

Практические предложения 1. Для стимуляции репродуктивных качеств гусынь-несушек и повышения инкубационных качеств полученных яиц целесообразно скармливать им в течение всего продуктивного периода микроцикол в дозе 10 г/100 кг комбикорма. Это позволяет повысить сохранность гусынь, их яйценоскость, выход инкубационного яйца, а также увеличить вывод и выводимость молодняка гусей 2 С целью повышения вывода и выводимости гусят предлагается перед закладкой в инкубатор погружать инкубационные яйца на 1 минуту в водный раствор лактомикроцикола с концентрацией 11 г/л, а перед переносом яиц в выводной шкаф процедуру повторять Это позволяет повысить эффективность инкубирования гусиных яиц, увеличить сохранность и живую массу молодняка гусей

3. С целью повышения продуктивности и качества продукции предлагается использовать лактоамиловорин в дозе 7 г/ 100 кг комбикорма в течение первого месяца жизни и в первые три дня после вылупления дополнительно вводить в питьевую воду 0,7 г пробиотика в расчете на 10 л. Это обеспечивает лучшую сохранность молодняка, повышает скорость роста гусят и улучшает диетические качества мяса

Список опубликованных работ Монографии, рекомендации, учебно-методические пособия 1. Ройтер, Я С. Научные и практические аспекты разведения гусей монография/ Я С Роитер, А.Ф. Лукьянов, В.В. Герасименко - М: Издательство «Весь Сергиев Посад», 2004, - 204 с • ил - ISB № 5-93585-042-7.

2 Родионова, Г.Б. Методы физиолого-биохимических исследований крови монография/ Г Б. Родионова, В В. Герасименко - Оренбург- Издательский центр ГНУ ВНИИМС, РАСХН, 2005. - 148 с.

3 Никулин, В Н. Биологические основы применения пробиотических препаратов в сельском хозяйстве монография/ В Н. Никулин, Б В. Тараканов, В.В Герасименко. - Оренбург. Издательский центр ОГАУ, 2007 - 111 с . ил. -ISB № 978-5-88838-427-5

4. Лукьянов, А Ф. Рекомендации по кормлению и использованию пробиотических препаратов при выращивании гусей1 методические рекомендации, рассмотрены и одобрены администрацией Оренбургской области департаментом АПК / А.Ф Лукьянов, В.В Герасименко. - Оренбург: Изд-во ОГАУ, 2004 -40 е.. ил

5 Герасименко, В В Использование пробиотика лактоамиловорина в животноводстве и ветеринарии- методические рекомендации, одобрены и рекомендованы к изданию ученым советом ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных и на заседании секции физиологии и биохимии Россельхозакаде-мии / ГНУ ВНИИФБиП с.-х. животных; разр В В Герасименко и др; под общей редакцией засл. деятеля науки РФ, д.б н., профессора Б.В. Тараканова. - Боровск. Изд-во ГНУ ВНИИФБиП с.-х. животных, 2007 - 24 с

6. Герасименко, B.B Основы аналитической химии: учебное пособие, допущено МСХ РФ для студентов выс уч завед. / В.В. Герасименко, Е В. Яковлева

- Оренбург Издательский центр ОГАУ, 2005. - 204 с • ил - ISB № 5-88838254-Х

7 Герасименко, В.В. Биохимия мяса и молока- практическое руководство учебное пособие, допущено МСХ РФ для студентов выс уч. завед / В В Герасименко. - Оренбург: Издательский центр ОГАУ, 2005 - 128 с • ил - ISB № 5-88838-268-Х

8 Герасименко, В В Тесты по химии программный продукт/ В.В Герасименко - Оренбург. ОГАУ, 2003, 786 кбайт.

Статьи в периодических, научных изданиях, рекомендуемых для публикаций основных результатов диссертации на соискание учёной степени доктора наук, патентные документы

9 Тараканов, Б В. Обмен веществ и продуктивность гусей при добавлении в рацион пробиотика лактоамиловорин/ Б.В. Тараканов, В.В. Герасименко, В Н Никулин // Сельскохозяйственная биология - 2004 - №4 - С 52-58

10 Тараканов, Б В Использование пробиотика при откорме гусят на мясо/ Б В. Тараканов, В Н. Никулин, В.В Герасименко, А Ф. Лукьянов // Птицеводство. - 2004. - №5 - С. 24-25.

П.Герасименко, ВВ. Морфокинетическое действие микрофлоры желудочно-кишечного тракта на организм гусей/ В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета -2005 -№2. -С 132-136

12.Тараканов, Б.В. Неспецифическая резистентность и продуктивность гусей при использовании лактоамиловорина/ Б.В Тараканов, В Н. Никулин, В В. Герасименко//Ветеринария -2005 -№ 2 -С 55-58

13 Герасименко, В.В Воздействие лактобацилл на обмен кальция в организме/ В В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета

- 2005. - № 2. (Биоэлементология) - С. 21-22

14 Герасименко, В.В. Характеристика возрастных изменений содержания цинка в сыворотке крови гусей при кратковременном использовании лактомикро-цикола/ В В. Герасименко II Вестник Оренбургского государственного университета -2006. 12(62) (Биоэлементология) - С 62-64

15 Патент 2270580 Российская Федерация, МПК А23К 1/165, А61К 38/43. Способ снижения содержания свинца в теле кур / Герасименко В.В. [и др.], заявитель и патентообладатель Госуд. образ учрежден, высш проф образ «Оренбургский государственный университет». - № 2004110916/13, заявл 09 04.04; опубл. 27.02 06, Бюл № 6 - 4 е.: ил

16.Никулин, В.Н. Влияние пробиотического препарата микроцикола на некоторые показатели минерального обмена кур-несушек/ В.Н. Никулин, В В Герасименко, О.В. Герасимова // Вестник Оренбургского государственного университета -2006 -№12(62) (Биоэлементология) - С 172-174

17 Никулин, ВН Метаболизм фосфора в организме гусей под воздействием микроцикола/ ВН. Никулин, В В Герасименко, Б В. Тараканов // Весгник Оренбургского государственного университета -2006 -№ 12(62) (Биоэлементология). - С 175-176

18.3аявка 2006147160/13 Российская Федерация, МПК А61К 35/74. Способ выводимости гусиных яиц/ Герасименко В В [и др.], заявитель и патентообладатель Фед. госуд. образ, учрежден высш. проф образ. «Оренбургский государственный аграрный университет». - № 2006147160/13(051519); заявл 28 12 2006; опубл. 14.03.2008; приоритет от 28 12.2008. - 7 е.: ил.

19.Ширяева, О.Ю. Влияние пробиотика и препаратов йода на минеральный обмен птицы/ О.Ю. Ширяева, В.Н. Никулин, В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 12(62). (Биоэле-ментология) -С.296-298.

20.Герасименко, В В. Воздействие Е coli 5/98 на метаболизм витамина А в организме птицы/ В В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006 -№ 13(63).-С. 125.

21 Заявка 2006147180/13 Российская Федерация, МПК А01К 67/02. Способ кормления гусей/ Герасименко В В. [и др.], заявитель и патентообладатель Фед. госуд. образ учрежден высш. проф. образ. «Оренбургский государственный аграрный университет» - № 2006147180/13(051539); заявл. 28.12.2006, опубл. 14.03 2008; приоритет от 28 12.2008 - 8 с : ил.

22 Герасимова, О В. Влияние пробиотика микроцикола на минеральный статус птицы/ О В Герасимова, П А. Кабешева, Е С. Глухова, В.В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 13(63). -С. 126-127.

23 Патент 2271173 Российская Федерация, МПК A61D 7/00. Способ снижения уровня холестерина в организме/ Герасименко В В. [и др.]; заявитель и патентообладатель Госуд. образ учрежден высш. проф образ. «Оренбургский государственный университет». № 2004126075/14, заявл 25.08 2004; опубл. 10 03 2006, Бюл. №7.-5 е.: ил.

24 Ширяева, О.Ю. Влияние комплексного применения препаратов иода и лак-тоамиловорина на специфическую защиту организма/ О.Ю. Ширяева, К А. Кряжев, В В. Герасименко // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - № 13(63). - С. 195-196

25.Тараканоз, БЗ. Лактомикроцикол при выращивании гусей/ Б.В. Тараканов, В В. Герасименко // Птицеводство. - 2007. - № 8. - С. 28

26 Никулин, В.Н Экологические аспекты влияния лактобактерий на переваримость питательных веществ корма сельскохозяйственной птицы при повышенном содержании йода в рационе/ В.Н Никулин, В.В. Герасименко, Т.В. Синюкова // Вестник Оренбургского государственного университета -2007.-№75.-С. 244-245.

27.Тараканов, Б В. Эффективность выращивания гусей при их инокуляции кишечной микрофлорой в раннем возрасте/ Б.В. Тараканов, Я С Ройтер, В.Н Никулин, В В Герасименко // Ветеринарная патология. - 2007. - № 3(22) - С. 145-149.

28 Патент 2292733 Российская Федерация, МПК А64К 1/00. Способ скармливания ферментного препарата курам-несушкам/ Герасименко В.В. [и др.]; заявитель и патентообладатель Госуд образ, учрежден высш. проф. образ.

«Оренбургский государственный университет». № 2004136100/13, заявл 9 12 2004; опубл 10 02.2007, Бюл № 4 - 4 с ил

29.Тараканов, Б. Влияние пробиотиков на выводимость гусиных яиц, последующую сохранность и продуктивность молодняка/ Б Тараканов, В Никулин, В Герасименко,А Лукьянов//Птицеводство -2008 -№2 - С 17-18

30 Тараканов, Б.В Использование микроцикола при выращивании гусей/ Б В Тараканов, В.В. Герасименко // Зоотехния. - 2008. - № 4. - С. 20-22

31.Заявка 2006147178/13 Российская Федерация, МПК А23К 1/00 Способ повышения продуктивности гусей/ Герасименко В В [и др ], заявитель и патентообладатель Фед госуд образ, учрежден высш. проф образ «Оренбургский государственный аграрный университет» 2006147178/13(051537), заявл 28.12.2006, опубл 25 03 2008, приоритет от 28.12.2008 -9с ил.

статьи в других периодических изданиях

32.Тараканов, Б.В. О целесообразности применения лактоамиловорина при выращивании гусей/ Б.В Тараканов, В Н Никулин, А Ф Лукьянов, В.В Герасименко //Био -2002.-№10(25).-С 17-18

33.Герасименко, В В Лактоамиловорин - высокоэффективное средство регуляции обменных процессов и повышения продуктивности гусей/ В В Герасименко, В.Н Никулин, Б В Тараканов//Био -2004 -№5(44) - С 6-8

34 Никулин, В Н. Пробиотики и содержание железа в сыворотке крови гусей/

B.Н Никулин, А.Ф. Лукьянов, В В Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета -2004.-№3 -С 153-154.

35 Герасименко, В В Лактоамиловорин - высокоэффективное средство регуляции обменных процессов и повышения продуктивности гусей/ В В Герасименко, В Н Никулин, Б.В Тараканов//Био.-2004.-№6(45) -С. 13-14

36 Герасименко, В.В Холестерин макроорганизма и пробиотики/ В В Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета -2004 -№3 -С 154-156

37.Герасименко, В.В Возрастные изменения показателей естественной резистентности гусей при использовании пробиотиков/ В В Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета - 2005 -№2(6) -С.37-39.

38 Герасименко, В В Возрастная динамика содержания общего белка и белковых фракций в сыворотке крови гусей/ В В. Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета - 2005 - № 4(8). -

C. 101-103.

39.Герасименко, В В. Опыт использования лактомикроцикола при промышленном выращивании гусей на мясо/ В В. Герасименко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета - 2006 - № 1(9). - С 9496

40.Тараканов, Б В Резистентность и продуктивность гусей при скармливании лактоамиловорина/ Б В Тараканов, В Н Никулин, В.В. Герасименко // Ветеринария сельскохозяйственных животных -2006 -№10 - С 61-65

Герасименко, В.В. Влияние микроцикола на факторы персистенции энтеро-бактерий/ В.В. Герасименко, В.Н. Никулин, А.Г. Гудков, OJI. Карташова, Б В. Тараканов // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2006. - № 1(9). - С. 98-100.

42 Герасименко, В.В. Воздействие штамма Escherichia colt S 5/98 на метаболизм железа в организме/ В.В. Герасименко // Микроэлементы в медицине -2007 - Т. 8. - Вып 1. М.-С. 61-62.

43 Герасименко, В.В. Применение лактоамиловорина и препаратов йода для повышения неспецифической резистентности организма кур-несушек / В В. Герасименко, В.Н. Никулин, О Ю. Ширяева // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2007. - № 1(13). - С. 137-140.

статьи в материалах конференций и сборниках научных трудов

44 Никулин, В.Н. Биологические предпосылки применения пробиотика лактоамиловорина при выращивании гусей/ В.Н. Никулин, Б В. Тараканов, А Ф. Лукьянов, В В. Герасименко // Проблемы зоотехнии, сб. науч. тр ф-та ТП и ППЖ. - Оренбург: Изд центр ОГАУ, 2001. - Вып IV - С. 217-22!.

45 Никулин, В.Н. Влияние лактоамиловорина на состояние метаболизма и рост гусей/ В Н. Никулин, А Ф Лукьянов, В.В. Герасименко, Б.В. Тараканов // Пути увеличения производства и повышения качества животноводческой продукции: мат-лы межрегион, науч.-пр. конф. ученых и специалистов. -Оренбург-Изд-воВНИИМС,2001 -С 87-88.

46.Никулин, В.Н Влияние лактоамиловорина на мясную продуктивность и химический состав мяса гусей/ В Н. Никулин, А Ф. Лукьянов, В В Герасименко, Б.В. Тараканов // Вестник ветеринарии: научные труды академии ветеринарной медицины - Оренбург: Изд. центр ОГАУ, 2002. - Вып. V. - С.163-166.

47 Никулин, В.Н. Влияние лактоамиловорина на зоотехнические показатели при выращивании гусей/ ВН Никулин, Б.В. Тараканов, А.Ф. Лукьянов, В В. Герасименко // Пути увеличения производства и повышения качества животноводческой продукции: мат-лы межрегион. науч.-пр. конф. ученых и специалистов - Оренбург- Изд-во ВНИИМС, 2002. - С.102-103.

48 Тараканов, Б.В. Влияние лактоамиловорина на естественную резистентность гусей/ Б.В Тараканов, В Н Никулин, А.Ф Лукьянов, В.В Герасименко // Вестник ветеринарии: научные труды академии ветеринарной медицины. -Оренбург: Изд. центр ОГАУ, 2002 -Вып. V. - С. 220-224.

49 Герасименко, В В. Влияние лактоамиловорина на белковый спектр сыворотки крови/ В.В Герасименко // Пути увеличения производства и повышения качества животноводческой продукции: мат-лы межрегион. науч.-пр. конф. ученых и специалистов - Оренбург. Изд-во ВНИИМС, 2002. - С.29-30.

50 Герасименко, В.В. Некоторые аспекты влияния лактоамиловорина на физио-лого-биохимические показатели крови гусей/ В.В. Герасименко // Вестник ветеринарии: научные труды академии ветеринарной медицины. - Оренбург: Изд центр ОГАУ, 2002 - Вып. V. - С 47-53.

51.Герасименко, В.В. Химический состав мяса и выход перо-пухового сырья при использовании лактоамиловорина в рационах гусей/ В.В. Герасименко,

И В Герасименко // Пути увеличения производства и повышения качества животчоводческой продукции мат-лы межрегион науч -пр конф ученых и специалистов - Оренбург Изд-во ВНИИМС, 2002. - С 30-31

52 Тараканов, Б В Применение лакгоамиловорина при выращивании гусей/ Б В Тараканов, В Н Никулин, А Ф Лукьянов, В В Герасименко // Научно-производственный опыт в птицеводстве экспресс-информация - Сергиев Посад Изд-во ВНИТИП, 2003. -№1 - С 3942.

53 Герасименко, В В. Влияние пробиотиков на обмен кальция и фосфора у гусей/ В В Герасименко, А А Шубина // Здоровьесберегшощне технологии в образовании научные труды 1 Всероссийской научно-практической конференции - Оренбург РИК ГОУ ОГУ, 2003 - С 193-196

54 Никулин, В Н Возрастная динамика содержания меди в сыворотке крови гусей и влияние на неё пробиотиков/ В Н Никулин, А Ф Лукьянов, В В Герасименко, А А Шубина // Биоэлементы научные труды I Международной научно-практической конференции -Оренбург РИК ГОУ ОГУ, 2004 -С 178-181

55 Герасименко, В В Влияние пробиотиков на содержание цинка в организме гусей/ В В Герасименко // Биоэлементы научные труды I Международной научно-практической конференции - Оренбург РЖ ГОУ ОГУ, 2004 - С 151-154

56 Герасименко, В В Переваримость питательных веществ корма у гусей при использовании пробиотика/ В В Герасименко // Материалы региональной научно-практической конференции молодых ученых и специалистов Оренбургской области сб ст Ч 1 - Оренбург ИПК ГОУ ОГУ, 2005 - С. 232-234

57 Герасименко, В В Возрастная динамика активности церулоплазмина крови гусей и влияние на нее пробиотиков/ В В Герасименко // Современные проблемы ветеринарной диетологии и нутрициологии материалы III Международного симпозиума, посвященного 60-летию со дня победы в Великой Отечественной войне и 5-летию образования ветеринарной ассоциации диетологов инутрициологов, 11-13 мая сб ст - СПб Изд-во СПбГАВМ, 2005 -С 71-72

58 Никулин, В Н Гематологические показатели гусей при использовании пробиотиков/ В Н Никулин, А Ф Лукьянов, В В Герасименко, Б В Тараканов // Научное наследие П Н Кулешова и современное развитие зоотехнической науки и практики животноводства сборник материалов Международной научно-практической конференции, посвященной 150-летию со дня рождения профессора П И Кулешова, 26-29 октября 2004 г сб ст - М Изд-во РГАУ-МСХА, 2006 - С 443-446

59 Герасименко, В В Особенности воздействия лактомикроцикола на обмен меди в организме гусят/ В В Герасименко // Биоэлементы материалы II Международной научно-практической конференции сб ст - Оренбург ИПК ГОУ ОГУ, 2006 - С 121-123

Автор выражает глубокую признательность своим научным консультантам - доктору биологических наук, профессору, заслуженному деятелю науки РФ Тараканову Б В, доктору сельскохозяйственных наук, профессору Никулину В Н за постоянную помощь в работе и ценные советы при оформлении диссертации

Считаю своим долгом выразить благодарность директору ОАО «Спутника Соль-Илецкого района Оренбургской области, доктору сельскохозяйственных наук Лукьянову А Ф, заведующей комплексном аналитической лаборатории ГНУ ВНИИМС, кандидату биологических наук Родионовой Г Б за предоставленную возможность проводить эксперименты.

За консультативную помощь, полезные советы, критические замечания, оказанные мне при подготовке диссертации, выражаю искреннюю признательность академику РАСХН Кальницкому БД, профессору Харитонову ЛВ, профессору Дудину В И, профессору Решетову В Б, профессору Жукову А П, профессору, заслуженному деятелю науки РФ Мешкову В М, профессору Топурия Г М, профессору Мирошникову С А

Благодарю за помощь в выполнении экспериментов всех сотрудников кафедры химии ФГОУ ВПО ОГАУ и студентов, выполняющих дипломные работы на кафедре Особую признательность за помощь выражаю сотрудникам, перечисленным в качестве соавторов в списке опубликованных работ Личный вклад автора в публикациях в соавторс1ве составляет 50 -75%

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук

Подписано в печать 21 04 08 Бумага офсетная Печать вЯ 3750 Формат 1/16, тираж 100 экз, зак 450

Отпечатано МУП «Потиграфист», Калужская обл ,г Боровск, пл Ленина,20

Содержание диссертации, доктора биологических наук, Герасименко, Вадим Владимирович

Введение.

1 Обзор литературы.

1.1 Гуси - как уникальный биологический и хозяйственный объект.

1.2 Физиолого-биохимические аспекты взаимодействия микрофлоры желудочно-кишечного тракта и организма хозяина.

1.3 Пробиотики - как новые регуляторы метаболических процессов в организме животных'и птицы.

2 Материалы и методы исследований.

2.1 Материалы и условия проведения исследований.

2.2 Применяемые в исследованиях физиолого-биохимические методы и методики.

2.3 Обработка полученных экспериментальных числовых данных.

3 Результаты собственных исследований.

3.1 Определение эффективных доз пробиотических препаратов.

3.2 Воздействие пробиотиков на биохимические и морфологические показатели крови гусей.

3.2.1 Влияние пробиотиков на морфофизиологические показатели крови.

3.2.2 Содержание минеральных веществ в сыворотке крови гусей при применении пробиотиков.

3.2.3 Влияние пробиотических препаратов на концентрации белка и соотношение его отдельных фракций в сыворотке крови гусей.

3.2.4 Воздействие пробиотиков на некоторые биохимические показатели крови гусей, характеризующие уровень обмена веществ.

3.3 Воздействие пробиотиков на переваримость питательных веществ корма.

3.4 Воздействие пробиотиков на естественную резистентность и некоторые показатели лимфоидной ткани гусей.

3.4.1 Влияние пробиотиков на бактерицидную активность сыворотки крови гусей.

3.4.2 Воздействие пробиотиков на содержания лизоцима в сыворотке кровигусей.

3.4.3 Влияние пробиотиков на активность бета-лизина сыворотки крови гусей.

3:4.4 Воздействие пробиотиков на абсолютные и относительные массы некоторых центральных и периферических лимфоидных органов гусей:.

3.4.4.1 Тимус.

3.4.4.2 Сумка Фабрициуса.

3.4;4-3 Селезёнка.

3 .5 Результаты анатомической<разделки тушек и определения химического состава мяса гусей.

3.6 Антиоксидантный статус организма гусей при применении пробиотиков.

3.7 Воздействие инактивированного штамма Lactobacillus amylovorus БТ-24/88 на состояние неспецифической резистентности организма гусей.

3.8 Репродуктивные качества гусынь при использовании пробиотиков.

3.9 Воздействие обработки пробиотиками гусиных яиц на их инкубационные качества, выводимость и жизнеспособность молодняка.

3 .10 Эффективность выращивания гусей при их инокуляции кишечной микрофлорой в раннем возрасте.

3.11 Производственные испытания эффективности применения пробиотических препаратов при выращивании гусей на мясо.

4 Обобщение и обсуждение результатов исследований.

Выводы.

Практические предложения.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Обмен веществ и продуктивные качества гусей при использовании пробиотиков"

Актуальность темы Повышение продуктивных качеств сельскохозяйственных животных и птицы возможно только на глубоком изучении фи-зиолого-биохимических процессов протекающих в их организме (Егоров И.А., 2002, Фисинин В.И., 1999, 2002, 2005). С целью интенсификации процессов метаболизма в организме применяют значительное количество различных препаратов. Это минеральные и витаминные добавки, ферментные и антистрессовые препараты, антибиотики и т.д. Сравнительно недавно для нормализации метаболических процессов в организме сельскохозяйственных животных и птицы стали использовать пробиотические препараты, которые, по сути, являются живой микробной добавкой к корму и оказывают свое позитивное воздействие на организм за счет улучшения его кишечного микробного баланса (Тараканов Б.В., 1998-2007; Данилевская Н.В., 2003-2006; Панин А.Н., Малик Н.И., 2002).

Уже сейчас становится очевидным, что пробиотики оказывают положительное воздействие на сохранность и скорость роста молодняка сельскохозяйственных животных и птицы (Тараканов Б.В., 1998-2007; Данилевская Н.В., 2003-2006; Панин А.Н., Малик Н.И., 2002). Кроме этого, их возможно использовать при дисбактериозах для регулирования микробиологических процессов в пищеварительном тракте, профилактике и лечении некоторых расстройств пищеварения инфекционной и алиментарной этиологии (Тараканов Б.В., 1998-2007; Абрамова Т., 2005 -2006; Панин А.Н., Малик Н.И., 2002). В конечном итоге пробиотики в некоторых случаях являются логичной альтернативой антибиотикам. При этом они не оказывают губительного действия на микрофлору желудочно-кишечного тракта, не накапливаются, а стало быть, не загрязняют продукты животноводства, птицеводства и окружающую среду, то есть являются экологически чистыми. Эра применения антибиотиков в сельском хозяйстве заканчивается и наступает эра использования про-биотиков (Тараканов Б.В., 1998-2007; Абрамова Т., 2005 -2006; Панин А.Н., Малик Н.И., 2002).

Между тем, большая часть исследований посвящена определению эффективности воздействия пробиотиков на продуктивные качества сельскохозяйственных животных и птицы, при этом доля физиолого-биохимических экспериментов по данному направлению чрезвычайно мала, а сами эксперименты в основном ограничиваются определением минимального набора клинических показателей. При этом не стоит забывать о том, что новое столетие - это фундаментальные исследования физиологии и биохимии питания птицы (Фисинин В.И., 2002).

Кроме этого, в данный момент, пробиотики практически не рассматриваются, как регуляторы антиоксидантного статуса макроорганизма, что, однако не исключает их вероятную и эффективную роль в поддержании устойчивости организма к активным формам кислорода. Изучение данных процессов может стать целым направлением, как в биологии, так и в медицине.

Все вышесказанное позволяет считать, что исследование степени воздействия пробиотиков на живой организм, и в частности организм птицы, а также выявление возможных механизмов реализации позитивного действия пробиотических препаратов на макроорганизм, является весьма перспективным и целесообразным.

Уникальным объектом для проведения экспериментов по выявлению характера и степени воздействия пробиотических препаратов на физиолого-биохимический статус макроорганизма являются гуси (Тараканов Б.В. и др., 2004). У гусей, как ни у какой другой сельскохозяйственной птицы пищеварительные процессы, а стало быть, и обмен веществ в целом зависят от микрофлоры желудочно-кишечного тракта. Из этого следует и тот факт, что применение пробиотических препаратов именно при промышленном выращивании гусей должно оказывать максимальное воздействие на метаболические процессы, и, следовательно, на продуктивные качества и экономическую эффективность.

Разведение гусей дает возможность получать мясо, гусиный жир, жирную печень, а также ценное для промышленности сырьё - перо и пух. Гусиный жир является одним из наиболее ценных, он легко усвояем, так как содержит большое количество непредельных жирных кислот, его вязкость близка к вязкости сливочного масла - 4,64. В гусином жире практически отсутствует холестерин, что ставит его выше всех животных жиров, в том числе и сливочного масла. Гусиное перо и пух отличаются наилучшей упругостью, эластичностью, прочностью, низкой гигроскопичностью и теплопроводностью, его минимальная износоустойчивость составляет 25 лет, что вдвое больше куриного (Ковацкий Н.С., 1988; Armour D.M., 1983; Blum I., 1971; Bogre I., 1971; Bucsai A., 1971; Kroop L.B., 1976).

Казалось бы, с учетом высокого качества продукции гусеводства и потребности в ней продовольственного и промышленного рынка, а также большой спрос населения* на молодняк, закономерным должно быть повышение производства мяса пера и пуха гусей. Однако в последние десятилетия в России отмечена тенденция спада в развитии гусеводства. Так, количество поголовья гусей на 2004 год достигло отметки 600 тысяч, что составляет около 0,2 % от общего количества всех видов сельскохозяйственной птицы, а доля мяса гусей от общей массы производимого мяса птицы составляет 0,1% (Материалы общего собрания Росптицесоюза, 2004; Ройтер Я.С., Лукьянов А.Ф. и др., 2004). Данный спад, по-видимому, связан не только с экономическим кризисом 90-х годов в нашей стране, но и с такими частными причинами, как высокая трудоёмкость выращивания гусей и низкая выживаемость молодняка в существующих промышленных условиях.

Таким образом, априори, можно предположить, что апробация новых пробиотических препаратов лактоамиловорина, микроцикола и лактомикро-цикола в промышленном гусеводстве позволит не только выявить общие закономерности воздействия пробиотиков на физиолого-биохимический статус организма гусей, но ^предложить производству новые наукоемкие ресурсосберегающие технологии промышленного выращивания гусей. Из чего следует, что настоящая работа имеет как фундаментальное, так и прикладное значение.

Для достижения поставленной цели предусматривалось решение следующих задач:

1. Определить дозы пробиотических препаратов лактомикроцикола, лактоа-миловорина и микроцикола, обеспечивающие биологическую и экономическую эффективность промышленного выращивания гусей.

2. Установить особенности физиолого-биохимического статуса организма гусей, выращиваемых на мясо и перо-пуховое сырье, при использовании лактомикроцикола, лактоамиловорина и микроцикола.

3. Изучить воздействие пробиотических препаратов на показатели антиок-сидантного статуса организма гусей.

4. Выявить характер и степень влияния пробиотиков на физиолого-биохимический статус организма гусынь-несушек и их репродуктивные качества.

6. Изучить эффективность выращивания гусей при их инокуляции кишечной микрофлорой взрослой птицы в раннем возрасте.

7. Провести производственную апробацию новых пробиотиков при промышленном выращивании гусей.

Научная новизна. 1. Впервые получен фактический материал о возрастных изменениях гематологических, физиологических и биохимических показателей организма гусей, а также о характере и степени воздействия лактоамиловорина, микроцикола и лактомикроцикола на данные показатели. Выявлены особенности механизмов воздействия пробиотиков на белковый, углеводный, липидный и минеральный обмен в организме гусей. Предложен способ снижения уровня холестерола в крови и продукции гусей за счет кратковременного использования в их кормлении штамма Lactobacillus amy-lovorus БТ 24/88 (патент RU № 2270580).

2. Выявлено, что применение пробиотиков с целью стимуляции репроч дуктивных качеств гусынь-несушек неоднозначно, и на основании комплекса физиолого-биохимических и хозяйственных признаков доказано, что наиболее целесообразным является использование штамма Escherichia coli S 5/98, входящего в состав пробиотика микроцикола.

3. Впервые показано, что предварительная обработка инкубационных гусиных яиц пробиотиками повышает их инкубационные качества, а также выводимость, жизнеспособность и массу тела молодняка гусей, при этом максимальное положительное воздействие оказывает комплексный препарат лактомикроцикол, содержащий штаммы Lactobacillus amylovorus БТ 24/88 и Escherichia coli S 5/98.

5. Доказано, что использование пробиотиков не влечет за собой глубоких изменений в анатомии гусей, а повышение массы тела происходит за счет увеличения абсолютной массы всех органов пропорционально. Установлено антистрессовое воздействие пробиотиков на организм гусей.

6. Обнаружено качественно новое свойство пробиотических препаратов воздействовать на антиоксидантный статус макроорганизма. На модели гусей получен новый фактический материал о воздействии лактоамиловори-на, микроцикола и лактомикроцикола на активность супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы и каталазы крови, содержание малонового диальдеги-да и общую антиокислительную способность плазмы крови, что позволяет расширить и углубить знания по данному вопросу, а в некоторых случаях использовать пробиотики с целью коррекции антиоксидантных процессов в организме птицы и животных.

Приоритет научного направления диссертационной работы подтвержден патентами ЕЛ № 2270580 и № 22927331

Практическая значимость. 1. Настоящая работа относится как к области фундаментальных, так и прикладных исследований. Результаты комплексных исследований белкового, углеводного, липидного и минерального обмена, уровня естественной резистентности и, как следствие, продуктивности и сохранности гусей при использовании лактоамиловорина, микроцикола и лактомикроцикола позволяют рекомендовать применение данных пробио-тиков в установленных дозах при выращивании гусей на мясо и перопуховое сырье (Положительное решение ФГУ ФИПС на выдачу от 14.03.2008 патента по заявке № 2006147180/13(051539). от 28.12.2006). При этом наиболее эффективным является использование лактоамиловорина, который повышает сохранность молодняка на 2,6 %, живую массу — на 12,5 % и выход перопу-хового сырья — на 7 %.

2. С целью стимуляции репродуктивных качеств гусынь-несушек рациональным является использование микроцикола, который повышает сохранность на 0,67 %, яйценоскость на среднюю несушку - на 2,61 %, выход инкубационного яйца - на 0,47 %, вывод и выводимость молодняка гусей — на 1,61 и 0,74 % соответственно, а также сохранность молодняка - на 0,45 %.

3. Для повышения эффективности инкубирования гусиных яиц, увеличения продуктивных качеств молодняка гусей целесообразной является предварительная обработка инкубационного яйца лактомикроциколом, что позволяет повысить вывод гусят - на 7 %, выводимость - на 8,9 % и живую массу гусят - в среднем на 7 % (Положительное решение ФГУ ФИПС от 14.03.2008 на выдачу патента по заявке № 2006147160/13(051519) от 28.12.2006).

4. Применение микробно-ферментного инокулята от взрослых гусаков в кормлении молодняка гусей позволяет повысить сохранность и живую массу на 11 и 12,7 % соответственно, при этом валовой выход перопухового сырья возрастает на 21,2 % (Положительное решение ФГУ ФИПС от 25.03.2008 на выдачу патента по заявке № 2006147178/13 (051537) от 28.12.2006).

5. Вышеуказанные технологические приемы позволяют рекомендовать производству дополнительные резервы повышения экономической эффективности промышленного выращивания гусей за счет использования рациональных схем применения пробиотиков. Результаты диссертационной работы имеют важное народнохозяйственное значение, поскольку направлены на решение крупной научно-практической задачи - повышения эффективности' промышленного выращивания гусей. Осуществлено внедрение новых пробиотиков в практику выращивания гусей в ОАО «Спутник», СПЕС «Птицефабрика «Гайская» и ЗАО «Птицефабрика Оренбургская».

6. В. результате исследований разработаны и изданы: 1. Рекомендации по кормлению и использованию пробиотических препаратов при выращивании гусей (Рассмотрены и одобрены администрацией Оренбургской области департаментом агропромышленного комплекса. Оренбург, 2004); 2. Методические рекомендации по использованию пробиотика лактоамиловорина в животноводстве и ветеринарии (Рекомендации одобрены и рекомендованы к изданию ученым советом ВНИИФБиП сельскохозяйственных животных и на заседании секции физиологии и биохимии Россельхозакадемии. Боровск, 2007), а также монография «Научные и практические аспекты разведения гусей» для специалистов, занимающихся разведением гусей (Москва, 2004), монография «Методы физиолого-биохимических исследований крови» для аспирантов и научных сотрудников (Оренбург, 2005) и монография «Биологические основы применения пробиотических препаратов в сельском хозяйстве» для специалистов сельского хозяйства (Оренбург, 2007).

7. Научные разработки использованы при подготовке учебного пособия «Основы аналитической химии» с грифом МСХ РФ № 13-03/1005 от 13.10.2004 и учебного пособия «Биохимия мяса и молока» с грифом МСХ РФ № 13-03-2/556 от 16.03.2005, а также обучающей компьютерной программы и для студентов аграрных вузов. Результаты исследований используются в учебном процессе аграрных вузов Российской Федерации.

8. Работа отмечена 2 дипломами и серебряной медалью на VI и VII Московском международном салоне инноваций и инвестиций (Москва, 2006; 2007), дипломом на Ярмарке бизнес-ангелов и инноваторов (Саранск, 2006), дипломом на Российском экономическом форуме «Россия Единая» (Нижний Новгород, 2007), серебряной медалью на Российской агропромышленной выставке «Золотая осень» (Москва, 2007). За проведение и внедрение данной работы автор удостоен званий: лауреата премии администрации Оренбургской области для молодых ученых и специалистов (Оренбург, 2005; 2008), лауреата премии Губернатора Оренбургской области в сфере науки и техники (Оренбург, 2006), лауреата премии Правительства Оренбургской области (Оренбург, 2007), а также награжден нагрудным знаком «Участник ВВЦ» № 12, постановление от 21.11.2007 № 51 (Москва, 2007).

Положения, выносимые на защиту:

1. Пробиотики лактомикроцикол, микроцикол и лактоамиловорин оказывают существенное воздействие на обмен белков, минеральных веществ, углеводов и липидов в организме гусей.

2. Изменение эффективности межуточного обмена в организме гусей за счет использования пробиотиков сопровождается интенсификацией гемо- и эритропоэза и повышает уровень неспецифической резистентности.

3. Пробиотические препараты оказывают модулирующее действие на антиоксидантный статус организма гусей.

4. Пробиотики стимулируют метаболизм основных питательных веществ в организме гусынь-несушек в репродуктивный период. Обработка инкубационных яиц пробиотиками повышает выводимость гусят и их последующую продуктивность.

5. Кратковременное введение с кормом микробно-ферментного иноку-лята взрослой птицы стимулирует обмен веществ, а также факторы неспецифической защиты молодняка гусей и повышение их продуктивности.

6. Использование лактоамиловорина, микроцикола и лактомикроцико-ла в промышленном гусеводстве повышает сохранность, живую массу, выход перопухового сырья и увеличивает диетическую ценность мяса.

Апробация работы. Основные материалы диссертационного исследования представлялись и одобрены на межрегиональных научно-практических конференциях «Пути увеличения производства и повышения качества животноводческой продукции» (Оренбург, 2001; 2002); расширенных заседаниях Ученого совета факультета технологии производства и переработки продукции животноводства Оренбургского ГАУ (Оренбург, 2001; 2002); заседаниях Ученого совета факультета ветеринарной медицины и биотехнологии ФГОУ ВПО ОГАУ (Оренбург, 2003; 2004; 2005; 2006; 2007); I Всероссийской научно-практической конференции «Здоровьесберегающие технологии в образовании» (Оренбург, 2003); I и II Международных научно-практических конференциях «Биоэлементы» (Оренбург, 2004; 2007); Международной научно-практической конференции «Научное наследие П.Н. Кулешова и современное развитие зоотехнической науки и практики животноводства» (Москва, 2004); III Международном симпозиуме "Современные проблемы ветеринарной диетологии и нутрициологии" (Санкт-Петербург, 2005); Российской научно-практической конференции, посвященной 50-летию освоения целинных земель (Оренбург, 2004); региональной конференции молодых ученых и специалистов Оренбуржья (Оренбург, 2005); региональной конференции «Наука - Технологии - Производство - Рынок» (Оренбург, 2007); Российской научно-практической конференции, посвященной 75-летию основания Оренбургского государственного аграрного университета (Оренбург, 2005); I и II Российских научно-практических конференциях «Проблемы устойчивости биоресурсов: теория и практика» (Оренбург, 2004; 2007); 1П Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы экологии Южного Урала» (Оренбург, 2007); Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и биотехнологии» (Оренбург, 2006); заседании Ученого совета ГНУ ВНИИФБиП с.-х. животных (Боровск, 2007).

А также на: конкурсе на соискание премии научно-исследовательских работ молодых ученых и специалистов Оренбуржья (Оренбург, 2005); конкурсе на соискание звания «Лауреат премии Губернатора Оренбургской области в сфере науки и техники» (Оренбург, 2006); конкурсе на соискание премии Правительства Оренбургской области в сфере науки и техники (Оренбург, 2007); VI и VII Московском международном салоне инноваций и инвестиций (Москва 2006; 2007); Ярмарке бизнес-ангелов и инноваторов (Саранск, 2006); Российском экономическом форуме «Россия Единая» (Нижний Новгород, 2007); Российской выставке «Золотая осень» (Москва, 2007).

Связь исследований с научной программой. Диссертационная работа выполнялась в соответствии с тематическими планами научно - исследовательских работ Оренбургского ГАУ по теме № 01200105542 и ВНИИФБ и П с.-х. животных по разделу № 01.9.70.002735, согласно договорам о совместных научных исследованиях между ФГОУ ВПО ОГАУ и ГНУ ВНИИФБиП с.-.х. животных от 26.11.1996; от 6.12.2000; от 20.12.2005. По межведомственной координационной программе фундаментальных и приоритетных прикладных исследований РАСХН, МСХ РФ, РАН (Головное учреждение - ГНУ ВНИИФБиП с.-х. животных) по научному обеспечению развития агропромышленного комплекса РФ № V 1.03. По межведомственной координационной программе РАСХН (Головное учреждение - ГНУ ВНИТИП), Проблема -VII, Задание — 02. усовершенствовать систему нормированного кормления птицы. Данная научно-исследовательская работа выполнялась при финансовой поддержке грантов Губернатора Оренбургской области № 20/05 от 09.06.2005 и № 19/243-п от 19.07.2007, а также РФФИ и администрации Калужской области, грант №01-04-96027.

1 Обзор литературы 1.1 Гуси — как уникальный биологический и хозяйственный объект

Гуси — спасли Рим. Гусь свинье не товарищ. И такие ставшие «крылатыми» выражения можно продолжать еще долгое время.

На Руси во все времена, гуси были неотъемлемым атрибутом крестьянского подворья. По поголовью этой птицы Россия занимала одно из, первых мест в мире. Русская национальная кухня славилась блюдами из гусятины. Нередко гусь становился одним из персонажей русских сказок, басен, анекдотов, но к 1999-му году численность гусей сократилась до 700 тысяч голов, в том числе в общественном птицеводстве до 218 тысяч голов, остальные находятся в личных хозяйствах (Девятов П., 1999).

Гуси - преимущественно мясная птица, дополнительно от неё получают перо и пух. Развитие скороспелых гусей — существенный резерв увеличения производства мяса. При интенсивном выращивании, молодняк гусей от-селекционированного маточного стада отличается высокой скоростью роста. Живая масса гусёнка с суточного до 56-60 - дневного возраста увеличивается в 40-45 раз и достигает в среднем 4 кг при затрате корма на 1 кг прироста около трех кормовых единиц. Однако, половозрелость гусей при обычных условиях обитания наступает в 240-310 - дневном возрасте. С возрастом гусей повышается их яйценоскость (Салеев П.Ф., 1982).

Реализовать потенциальные возможности продуктивности гусей возможно при организации полноценного кормления по сбалансированным по всем основным питательным и биологически активным веществам рационам, создании оптимальных для данного вида птиц условий содержания, отвечающих всем физиологическим потребностям организма. В связи с этим необходимо тщательное изучение физиологического состояния гусей в различные периоды их жизнедеятельности, установление параметров, по которым возможно судить об уровне обменных процессов в организме. Опираясь на данные, полученные при изучении обмена веществ, биохимического исследования крови, тканей, продукции животных, учитывая взаимодействие продуктов метаболизма, характер и степень депонирования различных веществ в органах и тканях и возможность последующего использования их организмом, можно с большей степенью эффективности нормировать питательные и биологически активные вещества в рационе, прогнозировать активизацию обменных процессов в организме и повышение продуктивности животных в различные сезоны года (Аликаев В.А. и др., 1982; Зайцев В.И., 1971).

Проблема изучения обмена веществ, продуктивного использования питательных веществ корма прямо связана с физиолого-биохимическими исследованиями обменных процессов в организме. В связи с этим необходимо отметить, что в доступной нам литературе недостаточно сведений, отражающих данные по составу крови, других тканей и яиц гусей.

По данным В.И. Зайцева (1971), норма удельного веса крови гусей от 1,045 до 1,063, скорость свёртывания - 4,8 минуты, СОЭ-1,5-3 мм/ч, количество гемоглобина - 16,1 г/100 мл крови, количество эритроцитов - 2,2-4,6 млн/мм крови, лейкоцитов- 6,8-54,8 тыс. в 1 мм крови.

Согласно данным В.М. Селянского (1972), нормой для взрослых гусей, являются следующие показатели: количество эритроцитов- 2,5-3,5 млн./мм3 крови, лейкоцитов-15-30 тыс./мм , уровень гемоглобина- 12,5 г в 100 мл.

Опытами Г.П. Мелехина и Н.Я. Гридина (1977) было установлено, что в крови взрослых гусей содержится 2,8-4,0 млн/мм эритроцитов, 20-38 тыс/мм лейкоцитов, 15,0-16,0 г% гемоглобина, а плазма крови гусей содержит 150-180 мг% глюкозы, 75-80 мг% общего фосфора. Этими же авторами, подтверждается ранее обнаруженная И.А. Бойко (1973) в исследованиях на бычках, зависимость между объёмом циркулирующей крови и количеством гемоглобина. Установлено также то, что эти показатели с возрастом повышаются.

И.В. Петрухин, Н.И. Петрухин (1992) утверждают, что кровь здоровых

•j о гусей содержит 3,3 млн/мм эритроцитов, 20-38 тыс/мм лейкоцитов, 15-17 г/100 мл гемоглобина при нормальном количестве крови 82-89 мл/кг живой массы.

По данным ряда авторов А.И. Быховец, 3:М. Градасова (1959); Н.П. Егоров (1967); Н.В. Николаева и др, (1975) содержание гемоглобина в периферической крови гусей колеблется в пределах 75-85 ед по Сали, а эритроцитов- 2,5-3,5 млн в 1мм3 и подвергается наибольшим изменениям в ранний период постэмбрионального развития. Материалы других авторов Э.И. Озолс, И.П. Гросман (1966), Г.С. Закраевская (1970), Е.М. Охрименко (1970), Я:Ф. Сулыма (1975) свидетельствуют о том, что в крови гусей содержится ^ больше гемоглобина, до 96 ед по Сали, и эритроцитов 3-4,5 млн в 1мм , и эти показатели подвергаются изменениям в основном в период репродуктивной деятельности птицы. По данным авторов, показатели красной- крови достоверно * снижаются во время интенсивной яйцекладки гусынь и половой деятельности гусаков. В период полового бездействия в организме птицы наступают регенеративные процессы, сопровождающиеся возрастанием количества эритроцитов и гемоглобина в периферической крови к верхним границам физиологической нормы.

Однако в работе С.Т. Щедровицкого (1936) при изучении морфологического состава крови у гусей, находящихся на однообразном кормлении, показано, что количество гемоглобина и эритроцитов не подвергается существенным изменениям в течение всего периода онтогенеза. Автор наблюдал относительную стабильность показателей красной крови не только у гусей, но и у уток.

По данным ряда авторов С.З. Веремейчик (1935), З.И. Озолс, И.И. Гросман (1966), Н.П. Егоров (1967), Г.С. Закраевская (1970), Е.М. Охрименко, P.C. Нестерович (1975), Н.В. Николаева и др. (1975), Я.Ф. Сулыма и др. (1975) у гусей установлена статистически достоверная зависимость между показателями красной крови и уровнем яйценоскости. Эти авторы утверждают, что минимальное количество гемоглобина в крови гусей приходится на период интенсивной яйцекладки.

При изучении межпородных изменений гемограммы у гусей Е.М. Охрименко (1970) установила наибольшее количество гемоглобина и эритроцитов в крови помесей и наименьшее у исходных пород, таких как крупная серая и китайская. В пределах породы, отмечает автор, у самцов показатели красной крови, как правило, выше, чем у самок.

Согласно A.B. Чечеткину (1966), образование всех видов продукции птицеводства, таких как мясо, яйца, перо, пух, непосредственно связано с интенсивностью процессов биосинтеза белков, активность которого зависит от состояния и характера белкового и других видов обмена.

Исходя из заключения Э.Э. Пенионжкевич (1962), сельскохозяйственная птица обладает большой энергией роста по сравнению с млекопитающими. Гуси, например, увеличивают свою массу за первые два месяца жизни в 40-50 раз, в то время как крупный рогатый скот только в 1,9 раза, а свиньи - в 10,8 раз. По данным П.Е. Божко, Н.М. Остривного (1966) за 50 дней выращивания гусят содержание общего азота в их теле увеличивается более чем в 30 раз.

На основании полученных данных Е.М. Охрименко, P.C. Нестерович (1968, 1973) пришли к выводу, что с интенсивностью роста гусей коррелирует содержание общего белка в сыворотке крови. Также было показано, что у гусынь в период интенсивной яйцекладки имеет место увеличение белков сыворотки крови до максимального уровня, а в период линьки - резкое их снижение.

В работе Е.В. Париной (1967) установлено, что концентрация белков в сыворотке крови птицы зависит от скорости синтеза и утилизации или распада. При этом имеет значение не только абсолютная скорость образования или последующего использования белков, сколько соотношение этих процессов. В период эмбриогенеза у птиц происходит интенсивный синтез сывороточных белков, который, как полагает В.И. Воронянский (1966, 1969, 1972, 1975), служит резервным пластическим материалом для компенсации значительных расходов белков в первые дни после вылупления птицы.

Большинство авторов Е.М. Вагонене (1964), И.П. Егоров (1967), Е.М. Охрименко, P.C. Нестерович (1968, 1973), JI.M. Бобылева (1970) считают, что содержание общего белка в сыворотке крови гусей с возрастом непрерывно повышается. Однако, в работе П.М. Дарьенко (1973) указывается, что концентрация сывороточного белка в крови наибольших величин, до 5,59 г%, достигает у трёхдневных гусят, а к 15- дневному возрасту, она снижается и вновь возрастает после одномесячного возраста.

Неоднозначные результаты получены разными авторами и при характеристике отдельных белковых фракций в крови птиц разного возраста, что, возможно, объясняется использованием разных методов исследования. Так, П.М. Дарьенко (1973), с помощью электрофореза на бумаге, показала, что количество альбуминов в сыворотке крови гусят увеличивается до 3- го дня после вылупления, затем происходит снижение их к 9- му дню и незначительное повышение в дальнейшем. Альбуминово - глобулиновый коэффициент (А/Г) при этом во все возрастные периоды составлял меньше единицы, что свидетельствует о преобладании глобулинов над альбуминами. В то же время электрофорететические исследования белков, выполненные Е.М. Ох-рименко, P.C. Нестеровичем (1973) в агаровом геле, позволили установить, что в крови гусей различного возраста содержится значительно больше альбуминов, в связи, с чем А/Г, как правило, больше единицы. Эти авторы наблюдали волнообразные колебания уровня альбуминов в онтогенезе гусей, что связывают с меняющейся интенсивностью роста организма, линькой и половым диморфизмом.

A.B. Чечеткин (1982) даёт общую для всех здоровых взрослых гусей картину биохимических показателей крови: общий белок- 4,8%, альбумины-60,4%, глобулины: а- 12,9, ß-11,2, у-15,5 %, липидов в крови содержится от 0,5 до 0,9%.

Исследования H.A. Деленько (1979, 1984, 1985) показывают, что содержание общего белка в сыворотке крови гусей определяется генотипом и возрастом. Самый высокий уровень общего белка выявлен в крови оброшин-ских серых гусей и их помесей от скрещивания с гусынями рейнской породы. В сыворотке крови самок различных генотипов содержание белка ниже, чем у самцов. Установлено, что в сыворотке крови оброшинских серых гусей и их помесей содержание глобулинов выше, чем у гусей других генотипов. После вылупления гусят содержание всех белков глобулиновой фракции в сыворотке крови, за исключением о.\- глобулинов, резко увеличивается. Отмечено также, что в единице объёма крови оброшинских серых гусей и их помесей содержится больше эритроцитов и гемоглобина по сравнению с гусями других генотипов, а половой диморфизм по показателям гемограммы выражен незначительно. Установлена прямая коррелятивная связь между содержанием гемоглобина в крови гусей и живой массой. Обнаружена зависимость интенсивности процессов переаминирования от возраста. Так, самая высокая активность AJIT и ACT характерна для гусей 30- и 150- дневного возраста, а самая низкая - для гусей 60-ти дневного возраста, и активность этих ферментов у самцов выше, чем у самок. Отмечено также, что в период ювенальной линьки содержание альбуминов в крови гусей резко повышается. У самок содержание альбуминов самого высокого уровня достигает в 60-ти дневном возрасте, тогда как у самцов - в период полового созревания.

В опытах В.А. Лукичёвой (1989) было установлено, что уровень общего белка в сыворотке крови гусей итальянской белой породы повышается с возрастом. Наименьшее количество общего белка приходится на суточный возраст- 35,2 г/л, а наивысшее- на конец периода интенсивного роста- 73,0 г/л. В периоды интенсивного роста- 50-60 сут, полового созревания- 150 сут и интенсивной яйцекладки- 240 сут повышаются уровни транспортных белков: альбуминов, трансферринов, преальбуминов, Р- липопротеидов и церу-лоплазмина, а также повышаются уровни иммуноглобулинов р2, a i и а 2 глобулинов, обеспечивающих гуморальный иммунитет организма гусей. В эти же периоды происходят интенсивные имм'уносупрессорные процессы, так содержание постальбуминов в возрасте 50 сут- 12,4 г/л, 120 сут- 10,1 г/л и 240 сут 12,9 г/л. Повышение активности церулоплазмина отмечается в период очень интенсивного роста-10 сут- 0,11 г/лив период полового созревания 120 сут- 0,12 г/л и зависит от усвоения меди из рациона, тогда как наивысшее содержание меди приходится на периоды: 10 сут- 62,6 мкг%, 150 сут- 64,1 мкг% и 180 сут- 60,6 мкг%, а в 40- дневном возрасте наблюдается прямая корреляционная зависимость между церулоплазмином и медью. Активность щелочной фосфатазы повышается в периоды очень интенсивного формирования костной ткани - в 20-сут- 0,52 нкат интенсивного роста-40 сут-0,48 нкат и яйцекладки 240 сут- 0,25 нкат. Уровень железа в сыворотке крови в онтогенезе гусей стабилен, в 40- суточном возрасте наблюдается прямая корреляционная зависимость между содержанием трансферринов и железа в сыворотке крови гусей. Отмечено также, что содержание цинка в сыворотке крови гусей в период интенсивного роста повышается с 215 мкг% в суточном возрасте до 403 мкг% в 60- суточном возрасте, в период полового созревания его уровень в сыворотке крови составляет 413 мкг%, а наивысшее содержание цинка в сыворотке крови отмечено в период интенсивной яйцекладки-509 мкг%.

П.М. Дарьенко (1973) отметил, что суммарный уровень а-глобулинов до 7-го дня после вылупления снижается, а затем закономерно увеличивается до 5-ти месячного возраста. В то же время Е.М. Охрименко, P.C. Нестерович (1973) констатировали, что количество а- глобулиновой фракции в сыворотке крови гусей снижается в течение всего постэмбрионального развития. Причем, как си-, так и а2- глобулины, наиболее низкого уровня достигают у самцов в 90- и 120- дневном возрасте, а у самок - в 150- дневном возрасте.

В отношении уровня бета-глобулинов, у исследователей также нет единого мнения об их возрастной динамике у гусей. По данным П.М. Дарьенко (1971, 1973), эта белковая фракция в сыворотке крови гусят до 3- го дня после вылупления незначительно повышается, затем, к 9-му дню снижается и повторно возрастает до двухмесячного возраста. Подобное повышение уровня ßj - глобулинов и отчасти Рг - глобулинов в крови гусят раннего возраста отмечали и Е.М. Охрименко, P.C. Нестерович (1973). Но, в дальнейшем, эти авторы регистрировали продолжительное снижение уровня обеих подфракций ß-глобулинов до минимальных величин у гусынь и гусаков в 150-дневном возрасте.

По изучению у-глобулинов в сыворотке крови гусей результаты разных авторов в основном согласуются. Так, было показано, что уровень у-глобулинов в крови гусят до 5- го дня после вылупления увеличивается, затем к 9-му дню их уровень несколько снижается, после чего мало изменяется до 15-ти дневного возраста. Повышенный уровень защитных белков в ранний период постэмбрионального развития гусей П.М. Дарьенко (1973), Е.М. Ох-рименко, P.C. Нестерович (1973) объясняют их значением в устойчивости птицы к неблагоприятным условиям среды.

По мнению И.И. Рудневой, Д.А. Сорокиной (1979), И.И. Рудневой (1980) соотношение отдельных белков в сыворотке крови птиц изменяется в процессе роста и развития количественно и качественно и служит молекулярным выражением генетического фонда организма птицы и отражает закономерности его дифференцировки. Показано, например, что у гусей с возрастом нарастает уровень глобулинов, особенно иммуноглобулинов, что, по мнению Е.М. Охрименко, P.C. Нестерович (1973) отражает разные этапы становления и развития защитных функций организма птицы. Этим же авторам удалось идентифицировать иммуноглобулины сыворотки крови гусей на подфракции, соответствующие отдельным классам. Ими показано, что по концентрации иммуноглобулинов в крови оброшинские серые гуси, полученные от скрещивания местных белых, китайских и крупных серых, во все возрастные периоды выгодно отличаются по этому показателю от исходных пород.

На основании полученных данных В.А. Аликаев (1982) пришел к выводу, что количество витамина А в норме у гусей в печени 190-420 мкг/г, в сыворотке крови 100-130 мкг/г, в желтке яиц- 10-13 мкг/г. Норма каротинои-дов в сыворотке крови составляет 100-300 мкг/г, в печени- 2,6 мкг/г, в яйце-10,0-13,0 мкг/г.

A.И. Петенко (1992) утверждает, что содержание каротиноидов в желтке инкубационных яиц гусей в период интенсивной яйцекладки- 2,6 мкг/г, а витамина А - 9,4 мкг/г, причем автор считает целесообразным снижение существующих норм уровня каротиноидов и витамина А в желтке яиц в связи со спецификой современного гусеводства с сухим типом кормления гусей. При этом, на основании полученных данных, автор пришел к выводу, что содержание витаминов в печени гусынь на пике яйцекладки следующее: каротина- 2,5 мкг/г, витамина А - 881,1 мкг/г, витамина Е - 2,5 мг%. При этом гуси имели нормальную продуктивность и состояние здоровья.

B.Н. Баканов, В.К. Менькин (1989) считают витаминное кормление гусей продуктивного стада полноценным, если 1 г желтка яиц содержит, до 20 мкг каротина и 10-13 мкг витамина А.

Исходя из-заключения С.И. Сметнёва (1965) следует, что содержание витаминов в инкубационных яйцах гусей следующее: каротиноиды - не менее 20 мкг, витамина А - от 10 до 15 мкг/г желтка.

К.Г. Сухомлин и В.А. Бусловский (1980) утверждают, что содержание общих липидов в сыворотке крови гусынь перед началом яйцекладки в возрасте 2-х и 3-х лет составляет: 7,48 и 11,62 г/л; в печени- 4,27 и 6,72 г/100 г соответственно. В период интенсивной яйцекладки эти цифры увеличиваются. Так, в сыворотке крови 2-х летних гусей уровень общих липидов достигает 41,4 г/л, в печени- 16,2 г/100г, в сыворотке крови 3-х летних гусей- 11,3 г/л, в печени- 11,4 г/100г ткани.

Особого внимания заслуживает анализ данных литературы по изменению количества лейкоцитов в крови гусей в различные периоды онтогенеза, поскольку этим клеточным элементам отводится ключевая роль в защитных процессах организма птиц. Следует отметить, что при изучении показателей белой крови у птиц различные исследователи получили в основном совпадающие результаты. В работе В.М. Селянского (1980), в частности, показано, что среди разных видов сельскохозяйственных птиц наибольшее число лейкоцитов в крови содержат гуси 37,9- 38,6 тыс в 1мм , тогда как у кур- 22-34, индеек 32-34, уток 34-35. В.Н. Никитин (1956) утверждает, что количество лейкоцитов может меняться не только в зависимости от вида птицы, но и от условий содержания, породных и сезонных факторов. Оно, как правило, повышается после приёма корма и усиленной мышечной нагрузки, а также при различных заболеваниях.

Следует отметить, что у птиц, вопрос о защитных функциях организма изучен достаточно глубоко, но подавляющее большинство исследований выполнено на курах. К сожалению, у гусей, недостаточно изучены вопросы становления и развития иммунной системы организма. Из имеющихся на эту тему сообщений заслуживают внимания результаты исследований В.В. Лип-ской (1965, 1966, 1967, 1976), которая при изучении и сравнении показателей резистентности гусей кубанской и крупной серой пород приходит к выводам, что иммунобиологической реактивности в индивидуальном развитии у гусей осуществляется постепенно: разные этапы онтогенеза отличаются различной степенью реакции естественного иммунитета на иммуногенные раздражители. Низкие показатели реактивности характерны для раннего постнатального периода - первых 10 дней жизни гусят, основную роль в защите организма в это время играет фагоцитоз. Гусята до 15-ти дневного возраста не реагируют на внутрикожное введение антигена, у них в крови отмечается уменьшение синтеза нормальных и специфических антител, а способность отвечать на введение антисыворотки местной воспалительной реакцией появляется в возрасте 30 дней. В 2- месячном возрасте наступает иммунобиологическое созревание гусей, выражающееся высокой степенью проявления иммунобиологических свойств крови и барьерных функций организма, показатели которых приходят в определённое соответствие и проявляются почти параллельно в процессе дальнейшего развития. Состояние наиболее высокой естественной резистентности присуще гусям 5-7- месячного возраста. Уровень защитных механизмов у гусей кубанской и крупной серой породы в первые 15 дней после вывода отличаются значительно: фагоцитарная активность крови кубанских была ниже на 20-40 %, бактериостатические свойства крови на 10

25 %, агглютинации с нормальными и иммунными сыворотками оценивалась меньшим средним баллом на 25-40 % и наблюдалась в меньших разведениях. В возрасте 15-60 дней различия в состоянии естественной резистентности сглаживаются, а с 4- месячного возраста практически отсутствуют. Общая реактивность кубанских гусей во все периоды исследования ниже, чем у гусей крупной серой породы на 40-65 %, что особенно чётко выражено у гусей месячного возраста, когда площадь воспалительного отёка у кубанских гусей была меньше на 65%. Автор сообщает также, что содержание гусей в клетках в первые две недели после вывода способствует повышению синтеза нормальных антител и фагоцитарной активности лейкоцитов, а содержание гусей в клетках до возраста 30- дней снижает уровень общей реактивности организма на 55-70 %, фагоцитарную активность крови - на 30-31 % и синтез нормальных антител на 50 %. Влияние клеточного режима содержания на состояние естественной резистентности сказывается и через 30 дней после смены содержания в клетках на выгульное, общая реактивность организма остаётся ниже на 28-54 %, фагоцитарная активность крови - на 30-36 %. Введение в рацион метионина, в количестве, недостающем к установленным нормам, в первые две недели жизни гусят повышает бактериостатическую активность крови на 17-22 %, а синтез нормальных антител - на 50 %. Добавление метионина на протяжении 30 дней после вывода повышает среднее фагоцитарное число на 26-50 %, показатель бактерицидной активности - на 44-51 %, синтез нормальных антител - на 50 % и общую резистентность - на 70-100 %. Через месяц после изъятия метионина из рациона среднее фагоцитарное число остаётся выше на 15-25 %, бактериостатическая активность - на 7-17 % и общая реактивность организма - на 57-70%. Кроме того, автор пришел к заключению, что яйца высокояйценоского маточного поголовья кубанских гусей имеют более низкие инкубационные качества, а именно оплодотворён-ность - 61 %, выводимость - 44 %, чем яйца гусей крупной серой породы, у которых оплодотворённость - 94 %, выводимость - 89%. Выведенные из яиц высокояйценоских гусынь птенцы обладают пониженной жизнеспособностью. У кубанских гусей, выведенных от высокояйценоского маточного поголовья, находящегося в интенсивных условиях содержания, в возрасте 5-10 дней резко снижаются фагоцитарные и бактерицидные свойства крови, на фоне чего можно ожидать появления любых заболеваний, вызванных не только патогенной, но и условно-патогенной микрофлорой.

В исследованиях Е.М. Охрименко (1970), Я.Ф. Сулымы и др. (1975) установлено, что общее число лейкоцитов в крови гусей находится в зависимости от породы, пола и физиологического состояния организма. Крупные серые, китайские и местные белые гуси характеризуются меньшим числом лейкоцитов, чем их помеси, а в пределах породы у самцов фагоцитов больше, чем у самок. У всех исследуемых групп гусей авторы наблюдали увеличение количества лейкоцитов в период относительного покоя их в течение интенсивной яйцекладки и спаривания.

При анализе литературных данных, по вопросу физиолого-биохимических аспектов пищеварения гусей, было отмечено, что работ в этом направлении, в доступной нам литературе, опубликовано немного.

В.И. Георгиевский (1990) отмечает, морфологическими особенностями пищеварительного тракта птиц являются: отсутствие зубов, наличие клюва, простая структура носоглотки, отсутствие надгортанника; наличие зоба, или соответствующее ему расширение пищевода у гусей и некоторых других видов птиц; наличие двухкамерного желудка с железистым и мышечным отделами; относительно короткий тонкий кишечник; хорошо развитые печень и поджелудочная железа, имеющие по 2-3 протока; наличие двух слепых кишок и клоаки, в которую открывается пищеварительный, половой и мочевой пути.

Н.С. Ковацкий (1988) утверждает, что пищеварительный тракт гусей в 11 раз длиннее туловища, тогда как у кур - только в 8 раз. Мышечный желудок гусей имеет силу давления в 2 раза большую, чем у кур. У гусей сильнее развиты слепые отростки кишечника. Эти особенности позволяют им в большей степени, чем другим видам птицы, переваривать клетчатку корма на 45-60 %). Это даёт возможность включать в рацион родительского стада гусей до 20-25 % травяной муки, столько же отрубей или других кормов с высоким содержанием клетчатки. Известно, что корма с повышенным содержанием клетчатки, как правило, дешёвые. Энергия корма гусятами используется по сравнению с курами и цыплятами выше на 5-13 %. Процент усвоения энергии корма у кур составляет в пределах 65, в то время как у гусей - 70-80 %. Высокая интенсивность роста гусят обусловлена повышенным уровнем метаболических процессов, что характерно как для молодняка, так и для взрослых гусей. У гусят в первые 5-6 дней жизни потребление кислорода и выделение углекислоты на единицу живой массы возрастают, а затем постепенно снижаются. В летний период интенсивность газообмена ниже, чем весной. С высоким уровнем метаболических процессов у гусей связано большое потребление воды. Установлено, что в условиях оптимальной температуры взрослым гусям и молодняку на каждый килограмм потреблённого корма требуется 4 л воды, тогда как мясным курам - 1,7, индейкам - 1,5 л. Кроме того, отмечает автор, у гусей очень интенсивный обмен веществ, с чем связано значительное выделение продуктов жизнедеятельности, так помёт у них избыточно влажен 83-85 %, а общее количество выделяемого гусятами помёта на 20-30 % больше потребляемого ими корма.

Многочисленными опытами Ц.Ж. Батоева (1966, 1970, 1971, 1972, 1973) выполненными на курах, утках, гусях и индейках установлено, что в поджелудочной железе гусей и индеек имеется по два, у кур и уток - по три протока. У кур, уток и гусей автор наблюдал непрерывное сокоотделение поджелудочной железы. У голодающих птиц установлены периодические колебания в секреции. В ночное время внешнесекреторная функция железы птиц уменьшается на 30-40 %. Поение птицы вызывает незначительное усиление секреции поджелудочной железы. Одновременная дача птицам воды и корма в наибольшей степени стимулирует внешнесекреторную функцию панкреас, особенно у уток и гусей. Автором также установлено, что повышение уровня внешнесекреторной деятельности поджелудочной железы, связанное с приёмом корма птицей, зависит от видовых особенностей кур, уток и гусей. По сравнению с уровнем в состоянии натощак при кормлении уток и гусей объём панкреатического сока увеличивается соответственно в 2,2 и 2,0 раза, активность амилазы - в 3,0 и 3,4 раза, протеаз - в 3,5-5,1 раза и липазы -в 2,7 и 5,7 раза. В течение дня соответственно периодам кормления птиц наблюдается примерно три одинаковых повышения в секреции поджелудочной железы, но обычно при утреннем кормлении наблюдалось наибольшее выделение ферментов. Сокоотделение и выделение ферментов поджелудочной железы кур имеют более плавные изменения по сравнению с динамикой секреции железы уток и гусей. В панкреатическом соке птиц в большинстве случаев обнаруживаются одновременные повышения и снижения амилазы, липазы и протеаз и в то же время прослеживается определённая последовательность в их секреции. Автор наблюдал, что в начале активной деятельности железы несколько больше выделяется амилазы, а в последующем увеличивается содержание протеолитических ферментов и липазы. Среднесуточное сокоотделение поджелудочной железы составляет у кур 50 мл, у уток 56 мл, у гусей 64 мл с активностью амилазы, соответственно, 9300, 8190, 16380 единиц, протеолитических ферментов - 532, 622, 250 единиц на 1 мл сока. Автором отмечен чрезвычайно интересный факт, что количество амилазы, содержащейся в среднем объёме панкреатического сока кур, уток и гусей, за 60 минут при 37° С может расщеплять 28, 27 и 63 кг крахмала, достаточного для обеспечения суточной потребности 560, 460 и 900 птиц. В этих же условиях у кур расщепляется 1,5 кг, у уток - 2,1 кг, у гусей - 1,0 кг казеина, необходимого для покрытия потребности в белках по 100 кур и уток, 30 гусей. В течение трёх часов после дачи птицам комбикорма активность липазы сока поджелудочной железы у кур составляет 5,0, у уток - 5,3, а у гусей - 2,2 единицы на 1 мл сока. В панкреатическом соке гусей, автором установлена, наивысшая активность амилазы и наименьшая - протеаз и липазы, в соке уток при наибольших концентрациях протеолитических ферментов и липазы содержание амилазы самое низкое. Панкреатический сок кур по содержанию ферментов занимает среднее положение между соком уток и гусей, но близок к соку уток. В соке поджелудочной железы птиц обнаружены определённые соотношения между активностью амилазы и протеаз: у кур - 18:1, у уток -13:1, у гусей - 65:1. Соотношения ферментов показывают видовое приспособление птиц к роду постоянного питания; они изменяются при адаптациях железы к качеству кормов, а также в разные периоды деятельности железы, отражая последовательность выделения ферментов. В исследованиях деятельности поджелудочной птиц обнаружено её приспособление к качеству кормов. Увеличение количества картофеля в рационе птиц повышает относительное содержание амилазы, то есть повышает соотношение между активностью амилазы, и протеаз, а повышенная* дача белкового корма, например, рыбного фарша, наоборот, усиливает активность протеолитических ферментов, то есть снижает амилазно - протеазное соотношение. Внешнесекретор-ная функция поджелудочной железы птиц находится в тесных взаимосвязях с процессами пищеварения в кишечнике и желудке, с их моторной и секреторной деятельностью.

На основании полученных данных Ю.М. Раевская (1970, 1971) пришла к выводам, что у гусей по мере продвижения питательных веществ корма от пищевода до толстых кишок соотношение азотистых фракций в нём изменяется в сторону возрастания небелкового азота и уменьшения белковой части его. В составе небелковой фракции повышается доля аминного азота, особенно в полости тощей кишки. Увеличение количества небелкового азота в содержимом пищевода, в сравнении с кормом, свидетельствует о начале расщепления кормового белка уже в этом участке пищеварительного канала. В желудке гусей до низкомолекулярных соединений расщепляется около 20-40 % кормового белка и только незначительная его часть, гидролизуется до аминокислот. Наивысший уровень протеолиза отмечен в желудке двух- и четырёхмесячных гусей. Химус тощей кишки гусей содержал в себе самый высокий процент азота всех фракций на протяжении всего времени исследования: общего азота 3,11-11,03 %; остаточного 2,33-6,85 %; аминного 0,09-1,03 тогда как в 12-перстной кишке соответственно: 3,01-9,08 %; 1,48-5,56 %; 0,07-0,77 %, а в подвздошной- 1,80-9,21 %; 1,2-6,0 %; 0,06-0,54 %. Процессы протеолиза в толстых кишках гусей сведены к минимуму, что подтверждается уменьшением азота всех фракций в содержимом этого отдела пищеварительного канала. Основная масса съеденного корма проходит через пищеварительный канал гуся за 8 часов. При этом 80 % принятого корма эвакуируется из пищевода в течение первого часа, в желудке наибольшее количество его обнаружено в первые два часа, а в тонких кишках - в первые четыре часа после кормления. Возрастной анализ данных по количеству содержимого в отдельных органах пищеварения показал, что к двухмесячному возрасту вместимость пищеварительного канала практически достигает таковой взрослых гусей. В последние часы исследования, когда основная масса принятого корма прошла через пищеварительный канал, в химусе всех участков тонкого кишечника, устанавливается сравнительно стабильный уровень азотистых веществ путём соответствующей регуляции всасывания, экскреции и синтетической функции стенки кишечника. Реакция среды в содержимом по ходу пищеварительного канала у гусей раннего возраста закономерно изменялась следующим образом: в пищеводе рН=3,97-6,37; в желудке рН=2,99-4,73; в тонких кишках- в двенадцатиперстной кишке рН=5,56-6,78, в тощей рН=5,90-7,71; в подвздошной рН=6,85-8,01 и в толстом отделе кишечника рН=4,80-6,97. Достоверные колебания рН с течением времени после кормления были отмечены только в содержимом желудка, а в химусе кишечника колебания этого показателя недостоверны. Периодические изменения соотношения фракций азота и колебания рН в содержимом пищеварительного канала дают основание автору предполагать наличие подъёмов и спадов в секреторной деятельности пищеварительных желез, как в возрастном аспекте, так и в течение одного опыта.

При изучении белкового обмена у гусей П.П. Калынюк (1986, 1987, 1988) установил, что активность общих протеаз и катепсинов, а также глута-минсинтетазы в слйзистой оболочке тонкого кишечника гусят с возрастом повышается, тогда как дипептидаз - снижается. Для слизистой оболочки тонкой кишки гусят характерен проксимально-дистальный градиент активности катепсинов и глутаминсинтетазы с максимумом в дистальном отделе. Активность глутаминсинтетазы в печени гусят на порядок выше, чем в слизистой оболочке тонкого кишечника. Кроме того, автор показал, что у гусят 60-дневного возраста на фоне скармливания мультиэнзимной композиции и целлотерина ГЗх увеличивается численность энтерококков в химусе тонкого кишечника и уменьшается количество лактобактерий и дрожжей в содержимом слепой кишки.

А.К. Бобылев (1989) на основании полученных данных пришел к выводам, что в течение суток у взрослых гусей непрерывно отделяется кишечный сок, в период кормления сокоотделение усиливается. Наивысшая секреция сока в 1 см2 кишечной стенки за сутки характерна для тощей кишки- 2,45 мл, что в 7 раз выше, чем в двенадцатиперстной и подвздошной, и в 12 раз выше, чем в слепых. Суточное количество сока, выделяемого всем кишечником годовалых гусей, в 20 раз превышает суточное количество поджелудочного сока, при этом протеолитическая активность кишечного сока почти в 20 раз ниже, чем поджелудочной железы. Во время кормления активность кишечных протеаз возрастает на 5 %. В условиях in vivo белок переваривается в 10 раз лучше, чем в условиях in vitro. В протеолизе корма основная функция принадлежит кишечному соку, так как он в течение суток способен гидроли-зовать в 2,6 раза больше белка, чем сок поджелудочной железы. Ведущую роль при этом играет пищеварительный сок тощей кишки.

Однако, в 1991 году этот же автор сообщает, что доминирующая роль в протеолизе корма принадлежит соку поджелудочной железы, так как его протеазы способны в течение суток гидролизовать в 6,6 раза больше белка, нежели ферменты кищечного сока. Автор объясняет это, тем, что в основе предыдущей публикации лежат предварительные расчеты. Кроме того, установлено, что самая низкая переваримость белка была у трёхмесячных гусей.

Опытами А.К. Бобылева (1990) установлено, что уровень секреции поджелудочного сока при кормлении во все возрастные периоды на 35 % выше, чем в состоянии натощак; протеолитическая активность сока при добавлении желчи, по сравнению с чистым соком при кормлении, выше на 4,91 %, а во время голодания - на 2,42 %.

Д.В. Гармаева (1999, 2000) сообщает, что у гусей протеолитическая активность пепсина мышечного желудка составила 37 мг расщепленного казеина 1 мл содержимого в течение одной минуты, что в 1,5 раза меньше, чем этот же показатель у кур. Было установлено, что у кур пищеварительные процессы протекают в условиях более кислой среды, чем в желудке гусей. рН органа у кур 2,8-3,0, у гусей- 3,0-3,2. Автор объясняет этот факт тем, что гуси - птица травоядно-растительного типа питания, тогда как куры представители всеядного питания.

Благодаря многочисленным совместным работам (Азаубаева Г.С. и др., 2004; Булатов А.П. и др., 2004, 2005; Махалов А.Г. и др., 2002; Суханова С. и др., 2003 - 2007; Твердохлебов А.А., 2004; БиЬапоуа 8.Р. & а1., 2003) становится ясным, что скармливание проращенного зерна позволяет увеличить живую массу гусят-бройлеров - на 5,4 %, выход потрошеной тушки - на 0,8 %, массу мышечной ткани - на 8,3 %, уровень рентабельности - на 8,2 %. Использование кукурузной глютеновой муки в составе комбикормов увеличивает прирост живой массы гусят-бройлеров — на 6,0 %, переваримость сухого вещества на 7,8 %, органического вещества - на 8,7, сырого протеина - на 3,7, сырого жира - на 8,6 и БЭВ - на 10,3 %, фагоцитарный индекс на 5,0 %, фагоцитарное число - на 3, фагоцитарную емкость - на 25,9, гемоглобин - на 7,5 % и снижает остаточный азот в 2 раза. Выход потрошеной тушки увеличивается на 4,0 %, выход съедобных частей в тушке - на 16,3 %, расход корма на 1 кг прироста сокращается на 3,9 %, общая стоимость комбикорма - на 33,3 %, а выручка от реализации 1 головы увеличивается - на 5,5 %. Бентонит Зырянского месторождения Курганской области при введении в состав комбикормов для гусят-бройлеров в дозе 1,0 % (по массе) эффективнее влияет на продуктивные показатели и физиологическое состояние птицы, по сравнению с другими дозами. Живая масса гусят-бройлеров, потреблявших комбикорм с 1, 2 и 3 % бентонита, была больше массы гусят контроля на 5,8 %, 4,9 и 3,8 % соответственно, переваримость сырого протеина - на 1,2 - 1,8, сырой клетчатки - на 3,3 - 4,8 %, а использование азота на 2,9 %, 1,8 и 2,0 % соответственно. Во все возрастные периоды клеточные факторы естественной резистентности гусят, получавших бентонит в составе комбикормов, были более выражены, по сравнению с контролем. В опытных группах больше выход потрошеной тушки на 2,5; 1,9 и 1,6%, содержание влаги в мышечной ткани на 2,6 %, 1,9 и 2,4 %, белка - на 1,3 %, 0,4 и 1,2 %, валовой энергии - на 11,8 %, 8,8 и 11,0 %, чем в контроле. Коэффициент конверсии протеина корма в пищевой белок при введении бентонита увеличился на 2,8; 1,1 и 1,4, коэффициент конверсии обменной энергии корма — на 1,2; 0,7 и 0,7, а уровень рентабельности на 10,5 - 12,8 %. Для получения гусиных инкубационных яиц и увеличения продуктивности маточного стада гусынь эффективным является стимулирование осенней яйцекладки, в результате чего валовой сбор яиц увеличивается на 4,2 %, яйценоскость - на 15,0, количество гусят - на 12,5 %. В целях увеличения яичной продуктивности гусынь маточного стада и качества полученного молодняка эффективной формой селена является органическая в препарате «Сел-Плекс™». Валовой сбор яиц увеличивается на 12,9 %, яйценоскость на среднюю несушку - на 14,4, выход инкубационного яйца -на 1,3, масса яиц - на 7,1, оплодотворенность - на 2,7, вывод - на 9,4, живая масса суточных гусят - на 5,2 %; переваримость сухого вещества кормосмеси -на 1,7 %, сырого протеина - на 5,4, сырой клетчатки - на 1,5, сырого жира -на 5,6 %, а использование азота - на 5,7 %. Яйца, полученные от гусынь, потреблявших «Сел-Плекс™», характеризовались большим содержанием селена (на 26,5 %), каротиноидов (на 10,0 %) и единиц Хау (на 8,6 %), но меньшим количеством «кровяных колец» (на 1,0 %), «замерших» эмбрионов и «задохликов» - на 0,6 и 0,6 % соответственно. Суточный молодняк характеризовался лучшими защитными реакциями организма: фагоцитарная активность больше на 11,3 %, фагоцитарный индекс - на 39,8 %, фагоцитарная емкость - в 2 раза. Показатели естественной резистентности (бактерицидная и лизоцимная активность сыворотки крови) у гусынь, потреблявших «Сел-Плекс™» больше, чем в контроле - на 5,7 и 2,9 % соответственно, а уровень рентабельности производства инкубационных гусиных яиц увеличивается на 27,5 %. Использование селена в органической и неорганической форме при выращивании гусят-бройлеров показало, что наиболее действенной является органическая форма. Так, использование селена в органической форме в препарате «Сел-Плекс™», по сравнению с контролем, и неорганической формой (селенит натрия) способствует увеличению живой массы гусят на 4,6 % и 8,1 %, переваримость сырого протеина - на 1,4 и 2,5 %, сырой клетчатки - на 1,9 и 3,1 %, сырого жира - на 1,9 и 4,0 %, массы потрошеной тушки на 6,2 и 9,6 %, выходу потрошеной тушки - на 1,0 и 1,1 %, выходу съедобных частей в тушке - на 7,8 и 12,8 %, массы мышечной ткани - на 9,9 и 13,7 %, энергетической питательности мяса - на 3,4 и 2,7 %. Коэффициент конверсии протеина корма в пищевой белок при введении селенита натрия и «Сел-Плекс™» больше, по сравнению с контролем, на 1,7 и 4,1 соответственно, а уровень рентабельности производства мяса гуся возрос на 7,2 - 12,6 %. При включении в состав комбикорма калия йодистого и «Иодказеина» наиболее эффективным оказался препарат, содержащий йод в органической форме. В возрасте 56 дней живая масса гусят-бройлеров контрольной группы была меньше гусят, потреблявших комбикорм с добавлением калия йодистого, на 8,3 %, а с «Йодказеином» на 15,2 %. Включение йодсодержащих препаратов в состав комбикорма повысило переваримость питательных веществ (%): сырого протеина - на 0,7 и 1,7, сырой клетчатки - на 1,8 и 3,2, сырого жира - на 3,1 и 5,2 %, а использование азота - на 1,2 и 2,3 % соответственно. Масса потрошеной тушки больше в опытных группах, по сравнению с контрольной, на 8,9 и 17,0 %, выход потрошеной тушки - на 0,8 и 0,9 %, количество съедобных частей в тушке - на 8,9 и 20,3 %, масса мышечной ткани на 11,2 и 20,3 %, коэффициент конверсии протеина корма в пищевой белок - на 0,9 и 1,8, коэффициент конверсии обменной энергии корма - на 0,3 и 0,6 соответственно. При скармливании «Иодказеина» затраты корма на 1 кг прироста живой массы у гусят-бройлеров снижаются на 14,6 %, при этом уровень рентабельности производства гусиного мяса возрастает - на 19,2 %. Для получения гусиной жирной печени наиболее эффективно использовать итальянскую белую породу в отличие от линдовской и шадринской, поскольку масса жирной печени от итальянской белой породы больше на 4,4 и 6,4 %, общая масса произведенной печени - на 21,3 и 22,9 %, количество печени I сорта - на 3,0 и 8,0 % соответственно. В период принудительного откорма, по сравнению с подготовительным, переваримость питательных веществ кормосмесей у гусей всех пород увеличивается (%): сухого вещества - на 11,8, органического вещества - на 10,2, сырого протеина - на 9,2, сырой клетчатки - на 10,0, сырого жира -на 7,8, БЭВ - на 7,1. В принудительный период откорма гуси итальянской белой породы использовали азот корма больше, по сравнению с опытными, на 1,7 и 7,0 %. В принудительный период откорма гусей на жирную печень увеличивается потребление валовой энергии, затраты энергии на теплопродукцию и на продукцию. Линдовские гуси эффективнее использовали обменную энергию корма, по сравнению с итальянскими и шадринскими, на 2,1 и 1,2 % соответственно. Коэффициент конверсии протеина корма в пищевой белок был максимальным у гусей итальянской белой породы (22,2), что больше, по сравнению с линдовской, на 0,6, с шадринской - на 4,4. По коэффициенту конверсии обменной энергии корма в продукцию гуси итальянской белой породы уступали линдовским — на 1,9 и превосходили шадринских - на 0,7. Уровень глюкозы в печени у гусей итальянской белой породы снижается - на 45,5 мг%, у линдовской - на 43,1 мг%, у шадринской - на 47,9 мг%. Содержание гликогена в печени в конце откорма резко уменьшается и составило у гусей итальянской белой породы - 1,49 мг%, что на 28,9 % больше, чем у линдовской и - на 8,7 %, по сравнению с шадринской. Содержание общих липи-дов и фосфолипидов в сыворотке крови гусей итальянской белой к концу откорма возрастает в 22,5 раза, у линдовской - в 20,3, шадринской - в 21,2 раза.

В конце откорма содержание НЭЖК у гусей итальянской белой породы на 0,2 мк.-экв. больше, чем у линдовской и на 0,3 мк.-экв., по сравнению с шад-ринской. Уровень рентабельности производства жирной печени при использовании итальянской белой породы больше, чем линдовской - на 17,1, шад-ринской - на 17,2 %. Откорм гусей итальянской белой породы на жирную печень с использованием белковой смеси в принудительный период откорма снижает расход кормов на 1 голову на 8,2 %, увеличивает прирост живой массы - на 3,4 %, выход потрошеной тушки - на 2,1 %, по сравнению с откормом кукурузой.

Противоречивые данные имеются в литературе о химическом составе мяса гусей, так И.А. Смородинцев (1952) сообщает, что мясо гусей содержит сухого вещества - 59,1 %, белка - 14,21 %, жира - 44,26 %, золы - 0,66 %, в противоположность этому Н.В. Ездаков (1976) показал, что мясо гусей содержит: сухого вещества - 35,1-38,7 %, белка - 17,5-18,2 %, жира - 16,6-19,02 %, золы - 0,96-1,1 %, тогда как П.Ф. Салеев (1982) утверждает, что мясо гусей состоит из 40,6-41,3 % сухого вещества, белка - 17,6-19,2 %, жира - 21,522,8 %, золы - 0,85-0,98 %.

Н.С. Ковацкий, В.В. Мамаев (1991) отметили, что разведение гусей даёт возможность получать мясо, гусиный жир, жирную печень, а также ценное для промышленности сырьё - перо и пух. Гусиный жир является одним из наиболее ценных, он легко усвояем, так как содержит большое количество непредельных жирных кислот. Его вязкость близка к вязкости сливочного масла - 4,64, в нём отсутствует холестерин, что ставит его выше всех других животных жиров, в том числе и сливочного масла. Гусиное перо и пух отличаются наилучшей упругостью, эластичностью, прочностью, низкой гигроскопичностью и теплопроводностью, а минимальная износоустойчивость его составляет 25 лет, что вдвое больше куриного. Только 3-кратная прижизненная ощипка гусей полностью окупит все затраты на их содержание и кормление, а из маховых перьев делают поплавки и сувенирные авторучки.

Таким образом, от гуся можно получить довольно широкий ассортимент продуктов питания и промышленных изделий, тем не менее, наблюдается спад в развитии гусеводства, возможно, это объясняется тем, что физио-лого-биохимические особенности гусей изучены недостаточно глубоко, а приводимые авторами данные исследований разрознены, неполны и часто противоречивы. Дальнейшие исследования в этом направлении позволят максимально использовать потенциальные возможности организма данного вида птиц.

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Герасименко, Вадим Владимирович

293 Выводы

1. В физиологических и производственных опытах изучено влияние пробиотиков лактомикроцикола, лактоамиловорина и микроцикола на здоровье, обмен веществ и продуктивность гусят итальянской белой породы. Установлены оптимальные дозы пробиотических препаратов, обеспечивающие стимуляцию неспецифической резистентности молодняка, активацию обменных процессов, улучшение использования питательных веществ, повышение продуктивности и качества продукции. Выявлены особенности действия каждого из изученных пробиотиков.

2. Включение в комбикорм для гусят в первый месяц их жизни лактоамиловорина в дозе 7 г/100 кг и выпаивание в первые 3 дня его с водой увеличивает потребление корма, повышает переваримость и усвоение протеина, клетчатки, БЭВ и минеральных веществ, тогда как усвоение липидов снижается. В крови повышается уровень гемоглобина, величины гематокрита, но отмечается снижение числа лейкоцитов на 2,3-5,4 %. В сыворотке крови возрастают концентрации общего белка за счет альбуминов и у-глобулинов, кальция, фосфора, цинка и меди, а содержание железа уменьшается на 4,6— 18,2 %. Активность церулоплазмина, содержание глюкозы в сыворотке крови и кислотная ёмкость крови увеличиваются, тогда как уровни общих липидов и холестерола снижаются на 12,6-32,7 %. На этом фоне бактерицидная активность сыворотки крови возрастает на 2,2-12,5 %, содержание лизоцима — на 13,5-35,2 % и активность бета-лизина - на 8,3-34,9 %.

Принципиально важным является и тот факт, что при исключении про-биотика из рациона гусей его стимулирующее действие на подавляющее большинство физиолого-биохимических показателей сохраняется до 6-месячного возраста, что может свидетельствовать о приживлении и функционировании штамма Ь. ату1оуогиз БТ - 24/88, используемого для приготовления лактоамиловорина, в пищеварительном тракте птицы.

3. Применение лактомикроцикола оказывает на организм гусей аналогичное лактоамиловорину биологическое действие. Потребление корма увеличивается на 3,6 %, усвоение большинства питательных веществ корма возрастает, а использование липидов снижается в среднем на 21 %. В крови повышается количество гемоглобина, эритроцитов и величина гематокрита, но снижается количество лейкоцитов на 1,4-2,4 %. Сыворотка крови содержит больше общего белка за счет альбуминов и у-глобулинов, а также кальция, фосфора, цинка и меди, тогда как количество железа снижается на 1,5-3,7 %. Активность церулоплазмина, кислотная ёмкость и количество глюкозы увеличиваются, а концентрации общих липидов и холестерола снижаются на 8,4-28,0 %. При этом увеличивается БАСК на 5,2-10,2 %, количество лизо-цима — на 12,3-16,6 % и активность бета-лизина - на 9,2-13,8 %.

4. Скармливание микроцикола, как и пробиотиков с лактобациллой, оказывает существенное влияние на обмен веществ в организме гусей, но имеются некоторые особенности. Переваримость и использование питательных веществ корма несколько снижаются, в крови повышается содержание железа, но снижается на 3,4-3,9 % концентрация меди. На этом фоне возрастают активность церулоплазмина, кислотная ёмкость крови и уровень глюкозы, тогда как содержание общих липидов и холестерола не изменяется. Применение микроцикола, как и других пробиотиков, стимулировало неспецифическую резистентность гусей (р<0,05).

5. Производственные испытания показали, что применение пробиотиков при выращивании гусей существенно повышает их продуктивность. При включении в комбикорм лактоамиловорина, лактомикроцикола и микроцикола сохранность возрастает на 4,2; 4 и 2,9 %, живая масса одной головы при убое - на 12,5; 7,7 и 4,9 %, а валовой выход перопухового сырья - на 7,1; 12,6 и 5,7 % соответственно. В мясе гусей, получавших лактоамиловорин и лак-томикроцикол, снижается количество жира и холестерола на 3 и 2,6 %; 49,6 и 26 %, а содержание протеина возрастает на 5,7 и 5 % соответственно, что повышает его диетическую ценность.

6. Установлено, что применение пробиотиков оказывает модулирующее действие на антиоксидантную систему организма гусей. Все изученные пробиотические препараты стимулируют активность супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы и каталазы. При этом общая антиоксидантная активность плазмы крови увеличивается, а концентрация малонового диальдегида снижается. Наиболее существенные изменения в антиоксидантном статусе организма гусей отмечаются при использовании лактоамиловорина.

7. Биологическое действие пробиотических препаратов на гусынь-несушек сходно с таковым на организм гусят, но интенсивность данного воздействия выражена слабее. Тем не менее, применение микроцикола оказывает положительное влияние на репродуктивные функции гусынь и инкубационные качества яиц. Сохранность птиц возрастает на 0,7 %, яйценоскость на среднюю несушку на 2,6 %, а количество некондиционного яйца уменьшается на 0,5 %. Вывод и выводимость молодняка повышаются на 1,6 и 0,7 % соответственно, а его сохранность — на 0,5 %.

9. Установлено, что эффективным приемом при выращивании гусей является их инокуляция в первые три дня жизни микробно-ферментным ино-кулятом от здоровой взрослой птицы. Скармливание инокулята повышает сохранность молодняка на 11 %, стимулирует неспецифическую резистентность, активирует синтез гемоглобина, общего белка и обмен макроэлементов в крови, на 12,4 % увеличивает живую массу гусей в 6-месячном возрасте и валовой выход перопухового сырья на 21,2 %.

10. Подтвержден ранее установленный факт иммуномодулирующего действия инактивированных лактобактерий на иммунную систему. Использование убитого нагреванием штамма L. amylovorus БТ-24/88, входящего в пробиотики лактоамиловорин и лактомикроцикол, сопровождалось стимуляцией неспецифической резистентности гусят как в период месячного применения препарата, так и в течение месяца после его отмены, но в последующем наблюдавшаяся разница в показателях гуморального иммунитета нивелировалась. Сохранность гусят в 86 % в контроле повышалась до 91 % в группе, получавшей неактивный лактоамиловорин.

Практические предложения

1. Для стимуляции репродуктивных качеств гусынь-несушек и повышения инкубационных качеств полученных яиц целесообразно скармливать им в течение всего продуктивного периода микроцикол в дозе 10 г/100 кг комбикорма. Это позволяет повысить сохранность гусынь, их яйценоскость, выход инкубационного яйца, а также увеличить вывод и выводимость молодняка гусей.

2. С целью повышения вывода и выводимости гусят предлагается перед закладкой в инкубатор погружать инкубационные яйца на 1 минуту в водный раствор лактомикроцикола с концентрацией 11 г/л, а перед переносом яиц в выводной шкаф процедуру повторять. Это позволяет повысить эффективность инкубирования гусиных яиц, увеличить сохранность и живую массу молодняка гусей.

298

Библиография Диссертация по биологии, доктора биологических наук, Герасименко, Вадим Владимирович, Оренбург

1. Абрамова, Т. Состояние печени у цыплят, откармливаемых на мясо/ Т.

2. Абрамова, Н. Данилевская // Птицеводство.- 2006.- №3.- С. 29-31.

3. Агеева, JT.H. Методические рекомендации по проведению исследований технологии производства мяса птицы / JI.H. Агеева и др.- М.: ВАСХ-НИЛ, 1981.-50 с.

4. Ажипа, Я.И. Медико-биологические аспекты применения метода электронного парамагнитного резонанса / Я.И. Ажипа.- М.: Наука, 1983.-527с.

5. Азаубаева, Г.С. Гематологические особенности и естественная резистентность суточных гусят / Г.С. Азаубаева, С.Ф. Суханова, A.A. Твер-дохлебов // Птицеводство. 2004.-№ 9. - С. 31.

6. Айдинян, Т.Г. Транспорт цинка и меди в желток и эмбриональная и постэмбриональная жизнеспособность потомства кур// Автореф. дисс. канд. биол. наук / Т.Г. Айдинян . Боровск, 1987. - 20 с.

7. Аленичкина, Г.Е. Динамика белка и холестерин-белковых соединений сыворотки крови уток в условиях круглогодового содержания без водоёмов: автореф. на соиск. уч. ст. канд. биол. наук.- Боровск, 1971. 18 с.

8. Аликаев, В.А. Справочник по контролю кормления и содержания животных / В.А. Аликаев, Е.А.Петухова, Л.Д. Халенева и др. М.: Колос, 1982.-320 с.

9. Андреева, Л. И. Модификация метода определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой / Л.И. Андреева, Л. А.Кожемякин, А. А. Кишкун //Лаб.дело.-1988.-№11.-С. 41-43.

10. Антагонистическая активность микробных популяций защитной флоры и её связь с характеристикой микробиоценоза и факторами питания / И.Б. Куваева, Г.Г. Кузнецова // Вопросы питания, 1993. №3. - С. 12-15.

11. Антипов, В.А. Биологические препараты симбионтных микроорганизмов и их применение в ветеринарии / В.А Антипов // Сельское хозяйство за рубежом.- 1981.-№2.-С. 43-47.

12. Антипов, В.А. Эффективность и перспективы применения пробиотиков / В.А. Антипов, В.М. Субботин // Ветеринария.- 1980.- №12,- С. 55-57.

13. Бакаева, JT.H. Прижизненная ощипка гусей / JI.H. Бакаева, А.Ф. Лукьянов // Сборник науч. тр. фак-та ТП и ППЖ Оренбургского ГАУ.- вып. 4.2002.- С. 224-228

14. Баканов, В.Н. Кормление сельскохозяйственных животных / В.Н. Баканов, В.К. Менькин.- М.: Агропромиздат, 1989. 511 с.

15. Баранова, Е.И. Клиническое значение гомоцистеинемии (обзор литературы) / Е.И. Баранова, О.О. Большакова // Артериальная гипертензия. — 2004. Т.10. - №1.

16. Батоев, Ц.Ж. Влияние некоторых кормов на секреторную деятельность поджелудочной железы сельскохозяйственных птиц / Ц.Ж. Батоев // Птицеводство.-1972.- № 8. -С. 17

17. Батоев, Ц.Ж. Внешнесекреторная функция поджелудочной железы гусей и её регуляция / Ц.Ж. Батоев // Сибирский вестник сельскохоз. науки.-1973.-№ 1 (13).- С. 50

18. Батоев, Ц.Ж. Внешнесекреторная функция поджелудочной железы сельскохозяйственных птиц / Ц.Ж. Батоев // Тр. Бурятского гос. пед. института им. Доржи Банзарова, Некоторые вопросы нервно-гуморальной регуляции функции организма.-1972.- С. 5

19. Батоев, Ц.Ж. Действие атропина и пилокарпина на процессы пристеночного и полостного пищеварения / Ц.Ж. Батоев // Сельскохозяйственная биология.-1970.- т. 5.- № 5.- 752 с.

20. Батоев, Ц.Ж. Динамика сокоотделения и выделения ферментов поджелудочного сока у птиц / Ц.Ж. Батоев // Физиол. журн. СССР.-1971.- т.58.-№ 11.-С. 1771

21. Батоев, Ц.Ж. Изучение пристеночного и полостного пищеварения в условиях хронических опытов / Ц.Ж. Батоев // Ветеринария : Тр. Бурятского СХИ.- 1970.- в. 19.- с. 276.

22. Батоев, Ц.Ж. Методика образования внешнего кишечного анастомоза у кур / Ц.Ж. Батоев // Ветеринария :Тр. Бурятского СХИ.-1966.- в. 18. -с. 310

23. Батоев, Ц.Ж. Некоторые материалы по анатомии поджелудочной железы у сельскохозяйственных птиц / Ц.Ж. Батоев, С.Ц. Батоева // Архив анатомии, гистол. и эмбриол.-1972,- т. 63.- № 11.- с. 105

24. Батоев, Ц.Ж. Фотометрическое определение активности протеолитиче-ских ферментов поджелудочного сока по уменьшению концентрации казеина /Ц.Ж. Батоев // Вопросы физиол. и пат. Животных: Тр. Бурятского СХИ.- 1971.-b.25.- с. 122

25. Батоев, Ц.Ж. Эвакуаторная деятельность тонкого кишечника у кур / Ц.Ж. Батиоев // Ветеринария: Тр. Бурятского СХИ.- 1966.-b.18. -с. 313

26. Белокрысенко, С.С. Этиологическое значение, экология и генетические механизмы формирования госпитальных штаммов бактерий семейства Enterobacteriaceae: автореф. дис. докт. мед. наук / С.С. Белокрысенко — М.,1993.- 45 с.

27. Бельков, Г.И. Оценка мясной продуктивности и качества мяса убойного скота / Г.И. Бельков, Ю.Ф. Куранов, С.Ф. Хруцкая, O.A. Ляпин.- Оренбург: ВНИИМС, 1984.- 58 с.

28. Беседин, В.Н. Влияние целловиридина 2000 на неспецифическую резистентность цыплят-бройлеров / В.Н. Беседин, С.А. Мирошников, Ю.Б. Иванов // Ветеринария.- 1999. № 8. - С. 56-58.

29. Биохимия животных. / А.В. Чечеткин.- М.: Высшая школа, 1982. 511 е., ил.

30. Бобылев, А.К. Изменение секреции поджелудочного сока у гусей с возрастом/ А.К. Бобылев // Известия ТСХА.- вып. 1.- 1990.- С. 159-166.

31. Бобылев, А.К. Роль протеаз поджелудочного и кишечного сока при переваривании белка у гусей в разные возрастные периоды / А.К. Бобылев // Известия ТСХА.- вып. 6.- 1991.- С. 153-162.

32. Бобылев, А.К. Секреторная и ферментовыделительная функции кишечника у гусей / А.К. Бобылев // Известия ТСХА.- вып. 6.- 1989.- С. 139143.

33. Бобылева, JI.M. Некоторые биохимические показатели крови гусят в связи с возрастом и качеством протеина корма / Л.М. Бобылева // Труды Костроме. с.-х. ин-та "Караваево".- 1970.- вып. 29.- с. 104-107.

34. Божко, П.Е. К вопросу изучения обмена веществ у сельскохозяйственной птицы / П.Е. Божко, И.М. Остривной // В кн.: Исследования в птицевод-стве.-Киев: Урожай, 1966.- С. 7-15.

35. Бойко, И.А. Возрастные изменения газообмена и показателей кровообращения / И.А. Бойко, Е.А. Надальяк // Труды ВНИИФБи П. Боровск, 1973.-С. 245-252.

36. Болотников, И.А. Гематология птиц / И.А. Болотников, Ю.В. Соловьёв .- Л.: Наука, 1980.- 116 с.

37. Болотников, И.А. Физиолого-биохимические основы иммунитета сельскохозяйственной птицы / И.А. Болотников, Ю.В. Конопатов .- Л.: Наука, 1987. 164 с.

38. Бондаренко, В.М. Дисбактериозы кишечника у взрослых / В.М. Бонда-ренко, Грачева Н.М., Мацулевич Т.В.- КМК Scientific Press.- Москва, 2003.- С.224.

39. Бондаренко, В.М. Препараты пробиотики, пребиотики и синбиотики в терапии и профилактике кишечных дисбактериозов / В.М. Бондаренко, Н.М. Грачева // Фарматека.- 2003.- № 7.- С.56-63.

40. Боровик — Романова, Т.Ф. Спектральное определение микроэлементов в растениях и почвах / Т.Ф. Боровик Романова, М.М.Фарафонов, И.Ф. Грибовская.- М.: Наука, 1973. - 112 с.

41. Боярский, Л.Г. Ферментные препараты в кормлении животных / Л.Г. Боярский.- М.: Россельхозиздат, 1985 110 с.

42. Булатов, А.П. Результаты откорма гусей на жирную печень / А.П. Булатов, С.Ф. Суханова // Птицеводство. 2004. - № 12.- С. 17-18.

43. Бухарин, О.В. Лизоцим и его роль в биологии и медицине / О.В. Бухарин, Н.В. Васильев.- Томск: Изд-во Том. ун-та, 1974. 209 с.

44. Бухарин, О.В. Система бета-лизина и ее роль в клинической и экспериментальной медицине / О.В. Бухарин, Н.В. Васильев.- Томск: изд-во Томского ун-та, 1977.- 188 с.

45. Быховец, A.C. Гематологические исследования, как показатель развития гусей в эмбриональный и постэмбриональный периоды / A.C. Быховец, З.М. Градасова // Науч. труды, укр. опыт, станции птиц-ва, 1959, т. 6, с. 231-237.

46. Вагонене, Е.М. Интенсивное выращивание гусят и их некоторые биологические особенности: автореф. дисс. канд. с.-х. наук / Е.М. Вагонене.-Каунас, 1964.-18 с.

47. Веремейчик, С.З. Морфологический состав и некоторые физико-химические свойства крови гусей / С.З. Веремейчик // Ученые записки Ветеринарно-зоотехн. ин-та.- Витебск, 1935.- т. 1.- С. 47-52.

48. Верширгора, А.Е. Общая микробиология / А.Е. Верширгора.- Киев, 1988.- С. 206-207.

49. Владимиров, Ю. А. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах / Ю. А. Владимиров, А. И. Арчаков. М. - 1972. - 252 с.

50. Владимиров, Ю.А. Оценка антиокислительной и антирадикальной активности веществ и биологических объектов с помощью железоиниции-рованной хемилюминесценции / Ю.А. Владимиров, М.П.Шерстнев, Т.К. Азимбаев//Биофизика.- 1992.-№6(37).- 1041-7.

51. Владимиров, Ю.А. Физико-химические основы фотобиологических процессов / Ю.А. Владимиров, А .Я. Потапенко.- М.: Высшая школа, 1989.

52. Возрастные особенности иммунобиологической реактивности организма / A.M. Хохлов // Ветеринарные и зооинженерные проблемы животноводства: тр. 1-ой Междун. науч.- практ. конф.:. Витебск, 1996. - С. 76.

53. Воробьев, A.A. Дисбактериозы у детей. Учебное пособие для врачей и студентов / A.A. Воробьев, С.Г. Пак.- М.,1998.- 64 с.

54. Воронин, Е.С. Иммунология / Е.С. Воронин, А.М.Петров, М.М.Серых, Д.А. Девришов,- М.: Колос-Пресс.- 2002.- 408 с.

55. Воронянский, В.И. Азотистые вещества сыворотки крови в динамике онтогенеза русских белых кур, леггорнов и их помесей / В.И. Воронянский // Труды Харьк. с.-х. ин-та.-1972.- т. 167.- с. 199-208.

56. Воронянский, В.И. Белки и гликопротеиды сыворотки крови кур в связи с возрастом и физиологическим состоянием / В.И. Воронянский // В кн.: Иссл. в птицеводстве.- Киев: Урожай.- 1966.- С. 66-74.

57. Воронянский, В.И. Динамика белков и других азотистых соединений в тканях кур при гетерозисе / В.И. Воронянский // Научн. труды. Харьк. зоовет. ин-та.- 1969.- т. 4 (15).- С. 284-290.

58. Воронянский, В.И. Скорость роста и её связь с уровнем белков, нуклеиновых кислот и активность нуклеаз в печени чистопородных и помесных цыплят / В.И. Воронянский, JI.A. Бегма // Труды Харьк. с.-х. ин-та,-1975.- Т. 213.- С. 162-168.

59. Галочкин, В.А. Новые горизонты повышения неспецифической резистентности и продуктивности животных / В.А. Галочкин.- Боровск, 2001.-91 с.

60. Гармаева, Д.В. Динамика и варианты сокращений мышечного желудка кур и гусей / Д.В. Гармаева // Эколого-географические проблемы Байкальского региона: труды молодых учёных. Улан-Удэ, 1999. - С. 142145.

61. Гармаева, Д.В. О пищеварительной функции мышечного желудка кур и гусей / Д.В. Гармаева // Исследования по морфологии и физиологии сельскохозяйственных животных: сб. научных трудов. Благовещенск, 1999.-С. 14-17.

62. Гатаулин A.M. Система прикладных статистико-математических методов обработки экспериментальных данных в сельском хозяйстве / A.M. Гатаулин.- М.: Изд-во МСХА, 1992. Ч. 2. 192 с.

63. Гатаулин, A.M. Система прикладных статистико-математических методов обработки экспериментальных данных в сельском хозяйстве / A.M. Гатаулин.- М.: Изд-во МСХА, 1992.- Ч. 1.-160 с.

64. Георгиевский, В.И. Физиология сельскохозяйственных животных / В.Н. Георгиевский . М.: Агропромиздат, 1990. — С. 336-339.

65. Голосов, Т.Б. Роль лизоцима в антимикробной резистентности организма / Т.Б. Голосов, Т.П. Аникина // Биологическая роль лизоцима и его лечебное применение: тез. симпозиума.-Караганда, 1972.-С.17-18.

66. Гончарова, Г.И. Бифидофлора человека, ее нормализующие и защитные функции / Г.И. Гончарова, Л.П.Семенова, A.A. Лянная и др. // Антибиотики и медицинская биотехнология.- 1987.- т. 32.- № З.-С. 11-15.

67. Горская, Е.М. Сравнительное исследование персистенции лактобацилл и холерных вибрионов на гнотобиотической модели / Е.М. Горская, А.Ю. Юлдашев // В кн.: Теоретические и практические проблемы гнотобиоло-гии.-М.: Агропромиздат, 1986.-С. 162-166.

68. Грачева, Н.М. Дисбактериозы кишечника, причины возникновения, диагностика, применение бактерийных биологических препаратов: пособие для врачей и студентов / Н.М. Грачева, Н.Д.Ющук, Р.П. Чупринина и др.- М, 1999.- 44 с.

69. Григорьев, A.B. Разработка и клиническая оценка пробиотика "Бифи-думбактерин форте"/ A.B. Григорьев, В.М. Бондаренко, H.A. Абрамов и др.// Журн. микробиол.- 1997.-№ З.-С 92-96.

70. Гриценко, В.А. Внекишечные эшерихиозы и проблема репродуктивного здоровья человека / В.А. Гриценко, М.Г. Шухман // Журн. микробиол. -2000.- №2.- С.111-115.

71. Гриценко, В.А. Внекишечные эшерихиозы как междисциплинарная проблема: Нозология, эпидемиология, патогенез / В.А. Гриценко // Эпидем. и инф. бол.- 2000.- №4.- С.49-53.

72. Гриценко, В.А. Внекишечные эшерихиозы как междисциплинарная проблема: Характеристика возбудителей, факторы риска / В.А. Гриценко // Эпидем. и инф. бол.- 2000.- №6.- С.52-55.

73. Гриценко, В.А. Механизмы уропатогенности бактерий / В.А. Гриценко, Д.Г.Дерябин, Ю.А.Брудастов, О.В. Бухарин // Журн. микробиол.- 1998.-№6.- С.93-97.

74. Гриценко, В.А. Патогенетическое обоснование клинико-микробиологической классификации бактериурии / В.А.Гриценко, А.А.Вялкова, О.В. Бухарин // Российский вестник перинатологии и педиатрии,- 1997.- №5.- С.43-48.

75. Гриценко, В.А. Роль факторов персистенции в биологии и экологии Esherichia coli: Дис. .д-ра мед. наук / В.А. Гриценко.- Оренбург, 2001.-315с.

76. Гриценко, В.А. Роль физико-химических свойств стафилококков разных видов в обеспечении их устойчивости к тромбодефенсинам / В.А. Гриценко, Ю.Б.Иванов, O.K. Журлов // Журн. микробиол.-2006.-№4.-С.16-19.

77. Гриценко, В.А. Факторы риска развития пиелонефрита у детей / В.А. Гриценко, О.В. Бухарин, A.A. Вялкова // Росс, вестн. перинат. и педиатрии." 1999.-№6.- С. 18-24.

78. Гуревич, К.Г. Нарушения обмена микроэлементов и их коррекция / К.Г. Гуревич // Фарматека. 2001. -№3.- С. 45-53.

79. Гуревич, К.Г. Патофизиологические аспекты нарушения обмена микроэлементов / К.Г. Гуревич. М.: МГМСУ, 2001.-47 с.

80. Данилевская Н.В., Субботин В.В., Вашурин O.A. и др. Лактобифадол длястимуляции продуктивности дойных коров// «Ветеринария» 2003 - № 2 - С.50 - 55.

81. Данилевская, Н.В. Коррекция дерматологических нарушений и обменавеществ у жеребых племенных кобыл в зимне-весенний период / Н.В.

82. Данилевская, М.А.Ливанова, Т.К. Ливанова // Коневодство и конный спорт 2004.- № 5 - С. 12-15.

83. Данилевская, Н.В. Критерии выбора фармакологических препаратов приих использовании мелким домашним животным / Н.В. Данилевская // Российский ветеринарный журнал.- 2005.- № 3.- С. 39-43.

84. Данилевская, Н.В. Проблема антибиотикорезистентности на приме лечения сальмонеллеза у домашних голубей / Н.В. Данилевская, Н.В. Пименов // Российский ветеринарный журнал.- 2005.- № 4.- С. 21-25.

85. Данилевская, Н.В. Тишкин Пробиотик: действие на перепелов разных пород / Н.В. Данилевская, В.В.Субботин, Н.Г. // Птицеводство.- 2005.- №8.-С. 14-15.

86. Данилевская, Н.В. Фармакологические аспекты применения пробиотиков

87. Н.В. Данилевская //Ветеринария 2005 - № 11 - С. 6-10.

88. Дарьенко, П.М. Возрастная динамика общего белка и белковых фракций сыворотки крови гусей / П.М. Дарьенко // Науч. труды Ставроп. с.-х. инта.- 1973.- вып.36.- С. 96-99.

89. Дарьенко, П.М. Динамика общего белка и белковых фракций сыворотки крови птиц в сравнительном и возрастном аспекте: автореф. дисс. . канд. биол. наук / П.М. Дарьенко.- Ставрополь, 1971. 19 с.

90. Девятов, П. Возродим гусеводство / П. Девятов // Птицеводство.- 1999.-№ 6.- с. 48-50.

91. Дедов, И.И. Сахарный диабет: ангиопатии и окислительный стресс / И.И. Дедов, М.И Балаболкин, Г.Г.Мамаева, Е.М.Клебанова, В.М. Креминская //Москва, 2003.- 88 с.

92. Деленько, H.A. Возрастная динамика тимуса гусей разных генотипов / H.A. Деленько, Э.М. Охрименко // Тез. докл. научно-практ. конф. молодых ученых.- Львов, 1985.- С. 26.

93. Деленько, H.A. Динамика сухого вещества печени разных пород гусей и их помесей / H.A. Деленько // Тез. докл. Республиканской научно-произв. конф.-Львов, 1984.-С. 189-190.

94. Деленько, H.A. Использование витаминно-аминокислотного премикса при выращивании гусят на мясо / H.A. Деленько, Э.М.Охрименко, P.C. Нестерович, И.С.Наконечный, В.И. Федис // Тез. докл. Республиканской научно-произв. конф.-Киев, 1979.-С. 147-148.

95. Деленько, H.A. Опыт аэрозольной иммунизации гусей / H.A. Деленько, А.И. Боресенкова // Птицеводство.- 1979.- № 7.-С. 51.

96. Деленько, H.A. Породные особенности содержания общего и остаточного азота в печени гусей / H.A. Деленько // Научно-техн. бюлл. Укр. НИ-ИФ и Б с.-х. животных.- Львов, 1984.-вып. 6 (2).- С. 8-11.

97. Деленько, H.A. Продуктивность оброшинских серых гусей и их помесей / H.A. Деленько, А.Д.Носач, Б.Н. Мойсеюк // Информационный листок № 246-85.- Львов, 1985. 4 с.

98. Доронин, А.Ф. Функциональное питание / А.Ф. Доронин, Б.А. тендеров М.: Грантъ, 2002.- 296 с.

99. Дубинина, Е. Е. Активность и изоферментный спектр супероксиддисму-тазы эритроцитов и плазмы крови человека / Е. Е. Дубинина, Л. Ф.Ефимова, Л. А. Сальникова И Лаб. дело. 1983. - № 10. - С. 30-32.

100. Дубинина, Е. Е. Биологическая роль супероксидного анион радикала и супероксиддисмутазы в тканях организма / Е. Е. Дубинина // Усп. совр. биол. 1989. - №108. - ч. 1(4).-С. 3-18.

101. Дубинина, Е. Е. Сравнительный анализ активности супероксиддисмутазы и каталазы эритроцитов и цельной крови у новорожденных детей при хронической гипоксии / Е.Е. Дубинина, Л.Ф.Ефимова, Л.Н.Софронова, А.Л. Геронимус // Лаб. дело. 1988. -№ 8. - С. 16-19.

102. Дядичкина, Л.Ф. Пособие по биологическому контролю при инкубации яиц сельскохозяйственной птицы/ Л.Ф. Дядичкина, Н.С.Позднякова, И.П. Кривопишин // ВНИТИП, Сергиев Посад, 1992. 57 с.

103. Дядичкина, Л.Ф. Руководство по биологическому контролю при инкубации яиц сельскохозяйственной птицы / Л.Ф. Дядичкина, Н.С. Позднякова // ВНИТИП, Сергиев Посад, 2001. 78 с.

104. Егоров, И. Использование витаминов в птицеводстве / И. Егоров // Птицеводство. 2002. - № 7. - С. 19 - 23.

105. Егоров, И. Научные аспекты питания птицы / И. Егоров // Птицеводст-во.-2002.-№ 1. С. 18-21.

106. Егоров, Н.П. Некоторые гематологические показатели у интенсивно выращиваемых гусят в зависимости от кормления и возраста / И. Егоров // Сб. работ молодых ученых. Материалы X Всес. конф. Аспирантов.- М., 1967.-вып. 9.- С. 187-195.

107. ПО.Ездаков, Н.В. Применение ферментных препаратов в животноводстве / Н.Е. Ездаков.- М.: Колос, 1976. 224 с.

108. Ш.Жданов, П.И. Применение споробактерина жидкого поросятам / П.И. Жданов // Ветеринария.- 1994.- № 7.- С. 41-43.

109. Жумабаев, М.К. Влияние ферментного препарата на рост и развитие ремонтных гусей / М.К. Жумабаев, А.Ф.Лукьянов, А.Я. Сенько // Сб. на-учн. Тр. Междунар. научн- практ. конф. Троицк, 2004, с. 121-122.

110. Жумабаев, М.К. Развитие репродуктивных органов гусей при разной технологии выращивания / М.К. Жумабаев, А.Я. Сенько, Т.Н. Позднякова // Матер. Всеросс. научн.-практ. конф./Тр. ВНИИМС, Оренбург, 2004.-С. 51-53.

111. Жумабаев, М.К. Убойные показатели гусей с применением экологически безопасных препаратов / М.К. Жумабаев, А.Я. Сенько // Известия ОГАУ.- 2004.- № 2.-С. 122-123.

112. Журавлев, А.И. Свободнорадикальная патология и методы ее профилактики биоантиокислителями / А.И. Журавлев, В.Г. Пантюшенко // С.- х. биология. 1989. -№ 2.-С. 17-24.

113. Забиров, И.Ш. Биологическая роль лизоцима и его лечебное применение /И.Ш. Забиров.- Караганда, 1972.-С. 67-69.

114. Зайцев, В.И. Клиническая диагностика внутренних болезней сельскохозяйственных животных/ В.И. Зайцев,-М.: Колос. 1971.-336 с.

115. Зайцева, JI.Г. Изменение функциональной активности клеток мононук-леарной фагоцитарной системы у мышей разного возраста / Л.Г. Зайцева, Ю.Н. Фаворская//Бюл. экспер. биолог., 1980. т. 11.-С. 576-578.

116. Зайцева, Л.Г. Усиление фагоцитарной активности клеток мононуклеар-ной фагоцитарной системы при пероральном введении лактобацилл / Л.Г. Зайцева, Е.М.Горская, А.А.Ленцнер, Н.М. Шустрова // Бюлл. экспер. биолог., 1985.-т. 6 С. 691-697.

117. Иванов, Ю.Б. Способность анаэробной фекальной микрофлоры к инактивации антимикробного белка тромбоцитов / Ю.Б.Иванов // Вестник Оренбургского государственного университета.- 2005.- №6.- С. 135-136.

118. Ильин, Г.К. Ферменты кишечника в норме и патологии / Г.К. Ильин. -М.: Медицина, 1967.-С. 12-136.

119. Иммунологические методы исследования в животноводстве / Р.П. Мас-лянко.- Львов, 1987. 48 с.

120. Калынюк, П.П. Активность глутаминсинтетазы в растущем организме / П.П. Калынюк // Проблемы патологии в эксперименте и клинике: труды Львовского мединститута.-1986.- Вып. 8,- С. 170-171.

121. Калынюк, П.П. и др. Микрофлора кишечного тракта гусят при скармливании мультиэнзимной композиции / П.П. Калынюк и др. // Науч.-техн. бюлл. Укр.НИИФ и Б с.-х. животных.- Львов, 1987. Вып.9 (3). - с. 4748.

122. Калынюк, П.П. и др. Показатели белкового обмена и продуктивность птицы при скармливании ферментной композиции / П.П. Калынюк и др. // Состояние и перспективы развития биотехнологии в животноводстве: респ. науч. конф.-Харьков, 1988.-С. 161.

123. Калынюк, П.П. и др. Протеолитическая активность в тканях гусят-бройлеров при скармливании ферментного препарата / П.П. Калынюк и др. // Науч.-техн. бюлл. Укр. НИИФ и Б с.-х. животных.- Львов, 1986. -вып.8 (З).-С. 55-58.

124. Калынюк, П.П. и др. Способ повышения продуктивности гусят-бройлеров / П.П. Калынюк и др. // Информационный листок № 87-200.-1987.-3 с.

125. Карпуть, И.М. Прогнозирование и диагностика иммунопатологии у животных / И.М. Карпуть // Уч. зап. Витебск, гос. акад. вет. медицины.-1994.- Т. 31.-С. 16-18.

126. Клебанов, Г.И. Оценка антиокислительной активности плазмы крови с применением желточных липопротеидов / Г.И. Клебанов,

127. И.В.Бабенкова, Ю.О.Теселкин, О.С.Комаров, Ю.А. Владимиров // Лаб. дело. 1988. - № 5. - С. 59-62.

128. Климов, А.Н. Обмен липидов и липопротеидов и его нарушения /

129. A.Н.Климов, Н.Г. Никульчева. СПб: Питер Ком, 1999. - 512 с.

130. Ковацкий, Н.С. Разводите гусей / Н.С. Ковацкий, В.В. Мамаев. М.: Аг-ропромиздат, 1991. - 48 е.: ил. - (Б-чка фермера).

131. Ковацкий, Н.С. Технология производства мяса гусей / Н.С. Ковацкий // В кн. Мясное птицеводство. Сост. Т.А.Столляр.- М.: Росагропромиздат, 1988.-С. 139-205.

132. Колб, В.Г. Клиническая биохимия / В.Г. Колб, B.C. Камышников.- Мн., 1976,311 с.

133. Колб, В.Г. Справочник по клинической химии / В.Г. Колб, B.C. Камышников.- Мн.: Беларусь, 1982. 367 с.

134. НО.Коляков, Я.Е. Ветеринарная иммунология / Я.Е. Коляков.- М.: Агро-промиздат.- 1986.- 270с.

135. Кондратьева, Т.А. Бактериальные липополисахариды / Т.А. Кондратьева // В кн.: Иммунология инфекционного процесса./ под ред. В.И. Покровского и др.- М., 1994.

136. Королюк, М.А. Метод определения активности каталазы / М.А. Коро-люк, Л.И.Иванова, И.Г.Майорова, В.Е. Токарев // Лаб. дело.-1988.-№ 1.-С. 16-19.

137. Коршунов, В.М. Характеристика биологических препаратов и пищевых добавок для функционального питания и коррекции микрофлоры кишечника / В.М. Коршунов, Б.А. Ефимов, А.П. Пикина // Журн. микро-биол.- 2000.-№3.- С. 86-91.

138. Красильников, H.A. Определитель микробов и актиномицетов / Н.А.Красильников.-М.:Из-во АН СССР, 1949.

139. Красникова, Л.В. Бифидобактерии и использование их в молочной промышленности.: Обзорная информация / Л.В. Красникова, И.В.Салахова,

140. B.И.Шаробайко, Т.М. Эрвольдер. М.: АгроНИИТЭИ, 1992.- 32 с.

141. Крючкова, М.А. Морфо-биохимические показатели крови гусят разных пород / М.А. Крючкова // Птицеводство.- №6.- 2007. С. 8.

142. Куваева, И.Б. Обмен веществ организма и кишечная микрофлора / И.Б. Куваева. — М.: Медицина, 1976.

143. Кудлай, Д.Г. Эписомы и инфекционная наследственность бактерий / Д.Г. Кудлай.- М.: Медицина, 1969.

144. Кудрин, A.B. Иммунофармакология микроэлементов / A.B. Кудрин, A.B.Скальный, А.А.Жавороноков, М.Г.Скальная, O.A. Громова. М.: Изд-во КМК, 2000. - 537 с.

145. Кудрявцев, A.A. Гематология сельскохозяйственных животных / A.A. Кудрявцев, JI.A. Кудрявцева.- М., 1974.- 123 с.

146. Кузнецов, С. Г. Биологическая доступность и метаболизм минеральных веществ у молодняка свиней: автореф. докт. биол. наук / С. Г. Кузнецов. 1989.-36 с.

147. Кузнецов, С. Г. Биохимические критерии обеспеченности животных минеральными веществами / С. Г. Кузнецов // С. х. биология. -1991. - № 2.-С. 16-33.

148. Кузнецов, С. Г. К методике определения активности церулоплазмина в плазме крови птиц / С. Г. Кузнецов // С.- х. биология. -1997. т. X. - № 2. - С. 290-293.

149. Кузнецова, Т.С. Антиоксидантный статус и неспецифическая резистентность организма свиней при использовании различных соединений селена / Т.С. Кузнецова // Автореф. на соиск. уч. ст. канд. биол. наук. Боровск- 1999. -27 с.

150. Кутафина, H.A. Активность общих протеиназ дуоденального химуса мясных мини-кур / H.A. Кутафина // Кормление, разведение и физиология с.-х. животных.-Омск, 1996-С. 129-132.

151. Лагодюк, П.З. Изменение уровня растворимых белков, активности протеиназ и амилазы в слизистых оболочках пищеварительного тракта кур в зависимости от кормления / П.З. Лагодюк, И.Б. Ратыч, З.Я. Стражник //Докл. ВАСХНИЛ.- 1983.- №9.-С. 35-37.

152. Ленцнер, A.A. Лактофлора и колонизационная резистентность / A.A. Ленцнер, Х.П.Ленцнер, М.Э. Микельсаар и др. // Антибиотики и химиотерапия.- 1987. №3. - С. 65-68.

153. Ленцнер, A.A. О способности лактобацилл микрофлоры человека продуцировать лизоцим / A.A. Ленцнер, Х.П. Ленцнер, М.А. Тоом // Микробиология.- 1975. № 8. - С. 77-81.

154. Ленцнер, A.A. Свойства лактобацилл, определяющие их защитную роль в организме / A.A. Ленцнер // IV съезд эпидемиологов, микробиологов, инфекционистов и гигиенистов. Тез. докл. - Эстония, Таллин, 1992.- С. 93-94.

155. Липская5 В.В. Естественная резистентность гусей в зависимости от их яйценоскости / В.В. Липская // Труды Кубан. с.-х. ин-та.- 1976.- вып. 126.- С. 65-68.

156. Липская, В.В. и др. Пробирочно-камерный метод подсчёта клеток крови у птиц / В.В. Липская // Ветеринария.- № 1.- 1967.- С. 14-15.

157. Липская, В.В. Изменение количества лейкоцитов и эритроцитов в периферической крови гусят в ранний период жизни /В.В. Липская // В кн.: "Материалы по животноводству ".- Краснодар, 1966.- С. 61-62.

158. Липская, В.В. Иммунобиологическая реактивность организма гусей и её возрастные изменения / В.В. Липская // В кн.: Индив. Развитие с.-х. животных и формирование их продуктивности., Киев, 1966. -С. 347-348.

159. Липская, В.В. К этиологии массового заболевания гусят / В.В. Липская, Т.М. Кравченко // Ветеринария.- № 8.- 1966.- С. 23-24.

160. Липская, В.В. Общая реактивность организма гусей / В.В. Липская // В кн.: Материалы научной конференции, посвященной Великой Октябрьской Социалистической революции., Краснодар, 1967.- С. 66-68.

161. Липская, В.В. Опсоно-фагоцитарная реакция у гусей / В.В. Липская // Первая конференция патофизиологов Северного Кавказа, посвященная 120-летию со дня рождения И.И.Мечникова: мат. конф.-Махачкала, 1965.-С. 56-57.

162. Липская, В.В. Пробирочно-камерный метод подсчета клеток крови птиц /В.В. Липская, Т.М. Кравченко // В кн.: "Материалы по животноводству".- Краснодар, 1966.- С. 45-47.

163. Лукичева, В.А. Металлопротеиды сыворотки крови гусей в онтогенезе: автореф. на соиск. уч. ст.канд. биол. наук / В.А.Лукичева.- Москва, 1989. 16 с.

164. Лыкова, Е.А. Нарушения микрофлоры кишечника и иммунитета у детей с аллергическими дерматитами и их коррекция / Е.А. Лыкова, А.О. Мурашова, В.М. Бондаренко и др. // Российский педиатрический журнал.-2000.- №2.- С. 20-24.

165. Мазо, В.К. И.В. Гмошинский, Е.А. Егорова, Л.И. Ширина // Клиническая диетология.-2004.- т.1.- № З.-С. 14

166. Малик, Н.И. Ветеринарные пробиотические препараты / Н.И. Малик, А.Н. Панин // Ветеринария. 2001. -№ 1. - С. 46-51.

167. Малик, Н.И. Новые пробиотические препараты ветеринарного назначения: автореф. на соиск. докт. биол. наук / Н.И.Малик.- Москва, 2002. 53 с.

168. Малик, Н.И. Применение пробиотиков в качестве ростостимулирующей кормовой добавки и средства профилактики неинфекционных желудочно-кишечных болезней поросят / Н.И. Малик, Ч.К. Авылов // Сб. науч. тр. ВГНКИ. 2001. - т. 62.-С. 221 -222.

169. Малик, Н.И. Пробиотики в промышленном животноводстве / Н.И. Малик, А.Н. Панин, Е.В. Малик // Животновод. 2000.- № 3.- С. 10-16.

170. Мальцева, H.H. // Антибиотики и химиотерапия. 1992. Т. 37, №12.

171. Малюшин, Е. Ферментный препарат в рационе курочек / Е. Малюшин, А.Осипов, Г.Левахин, С.Мирошников // Птицеводство 2001 - №4 - С. 29-32.

172. Маршалл, В.Дж. Клиническая биохимия / В.Дж. Маршалл. СПб.: Био-ком, 1999. - 368 с.

173. Маслиева, О.В. Анализ качества кормов и продуктов птицеводства / О.В. Мае лиева//М.: Колос, 1970.- 176 с.

174. Мелехин, Г.П. Физиология сельскохозяйственной птицы / Г.П. Мелехин, Н.Я. Гридин .- М.: Колос, 1977. 288 с.

175. Методические рекомендации для зоотехнических лабораторий птицеводческих предприятий / А.Н. Тишенков.- Загорск: ВНИТИП,1982,-с.155.

176. Методические указания по применению унифицированных клинических лабораторных методов исследования / В.В.Меньшиков.- М., 1973.- 174 с.

177. Методы биохимического анализа: справочное пособие / Б.Д. Кальницко-го.- Боровск, 1997.- 356 с.

178. Микулец, Ю.И. Биохимические и физиологические аспекты взаимодействия витаминов и биоэлементов / Ю.И. Микулец, А.Р. Цыганов,

179. A.Н.Тишенков, В.И.Фисинин, И.А. Егоров. Сергиев Посад, 2002. - 192 с.

180. Мирошников, С.А. Влияние мультиэнзимной композиции на эффективность промежуточного обмена в живом организме / С.А. Мирошников,

181. B.C. Фадеев // Вестник Ветеринарии. Научные труды Академии ветеринарной медицины Вып III. -Оренбург, 2000 .-С. 136-139.

182. Мирошников, С.А. Влияние непродолжительности скармливания мультиэнзимного препарата на организм цыплят-бройлеров / С.А. Мирошников // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. — 1999.-№6-С. 69-70.

183. Мирошников, С.А. Влияние состава комбикорма на эффективность включения в рацион бройлеров ферментных препаратов / С.А. Мирошников // Тез докладов научно-практич. конф. по проблемам повышения эффективности с-х производства. Оренбург, 1998 .- С. 73-74.

184. Мирошников, С.А. Влияние ферментного препарата на динамику конверсии и протеина корма в продукцию кур-несушек / С.А. Мирошников // Матер, межрегионал. научно-практич конф ученых и специалистов. -Оренбург, 2001. С. 81-82.

185. Мирошников, С.А. Влияние ферментного препарата на иммунитет цыплят / С.А. Мирошников, С.С. Мартыненко, Ю.Б. Иванов // Птицеводство. 2000. - №2. - С. 28.

186. Мирошников, С.А. Влияние ферментного препарата на обмен меди в организме цыплят-бройлеров / С.А. Мирошников, Г.Б. Родионова // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук 2000 - №3.- С. 58-60.

187. Мирошников, С.А. Влияние ферментного препарата на факторы неспецифического иммунитета животных / С.А. Мирошников, Ю.Б. Иванов // Тез. докладов научно-практич конф. по проблеме повышения эффективности с-х. производства. Оренбург, 1998. - С.71.

188. Мирошников, С.А. Влияние ферментных препаратов на использование питательных веществ и рост животных / С.А. Мирошников // Труды ВНИИМС. 2000. - № 53.- С. 411.

189. Мирошников, С.А. Зависимость действия ферментного препарата на эффективность межуточного обмена от витаминной обеспеченности / С.А. Мирошников // Матер, межрегионал. научно-практич. конф. ученых и специалистов. Оренбург, 2001. -С. 80-81.

190. Мирошников, С.А. К методике проведения опытов по кормлению животных // Тез. докл. региональной конференции молодых ученых и специалистов Оренбург. 1998 -с. 116-117.

191. Мирошников, С.А. К поиску путей снижения последствий кормового стресса / С.А. Мирошников // Труды ВНИИМС. 2001. - т. 54. - С. 299301.

192. Мирошников, С.А. Как использовать авизим при выращивании цыплят-бройлеров / С.А. Мирошников, С.С. Мартыненко // Комбикорма. — 1999.-№5.-С. 38.

193. Мирошников, С.А. Модулирующее действие ферментных препаратов на обмен веществ и энергии в организме птицы / С.А. Мирошников, С.С. Мартыненко // Актуал. проблемы в животноводстве: третья международная конфер. Боровск, 2000. - С. 170-171.

194. Мирошников, С.А. Новый метод повышения продуктивности птицы / С.А. Мирошников // Материалы межрегион, научно-практич. конфер по проблемам повышения эффектив с-х. производства.- Оренбург, 1999. — С. 65.

195. Мирошников, С.А. Оценка сбалансированности кормления по коэффициенту соответствия / С.А. Мирошников // Зоотехния. 2001. - № 6. - С. 18-19.

196. Мирошников, С.А. Продолжительность скармливания бройлерам ферментного препарата / С.А. Мирошников, С.С. Мартыненко // Птицеводство. 1999. - № 2 .- С. 24 - 25.

197. Мирошников, С.А. Способность кур к адаптации при даче ферментных препаратов / С.А. Мирошников, А.Я.Сенько, Е.П.Мирошникова // Труды Оренбургского аграрного университета Оренбург.- 1996. - С. 8-12.

198. Мирошников, С.А. Стабилизирующее действие мультиэнзимной композиции на организм цыплят-бройлеров при смене состава рациона / С.А. Мирошников, С.С. Мартыненко // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 2000. -№2. - С. 47-49.

199. Мирошников, С.А. Эффективность трансформации корма молодняком птицы при включении в рацион ферментного препарата / С.А. Мирошников, АЛ.Сенько, Е.П. Мирошникова // Тез докладов научно-практической конференции Оренбург, 1998 .- С. 73-74.

200. Мирошников, С.А. Эффективность ферментного препарата в рационах животных с однокамерным желудком / С.А. Мирошников // Тез. докладов научно-практич конф. по проблемам повышения эффективности с-х производства. Оренбург, 1998. - С. 71-72.

201. Моин, В. М. Простой и специфический метод определения активности глутатионпероксидазы в эритроцитах / В. М. Моин // Лаб. дело. -1986.-№12.-С. 724-727.

202. Мосолов, В.В. Протеолитические ферменты / В.В.Мосолов,.- М., 1971.-С. 239-264.

203. Мосякин, В.М. Развитие пищеварительного процесса у кур на протяжении продуктивного периода и его адаптация к различным условиям протеинового питания: Дис. канд.биол.наук / В.М. Мосякин. Борки, 1993.175 с.

204. Нагорнев, В.А. Атерогенез и реакция «острой фазы» печени. / В.А. На-горнев, П.Г.Назаров, В.А. Полевщиков и др. //Архив патологии. — 1998. — №6.

205. Немцова, Е.Р. Антиоксиданты — место и роль в онкологии / Е.Р. Немцова, Т.В. Сергеева, Р.И. Якубовская // В кн. Проблемы патогенеза и терапии иммунных расстройств. Ред. В.В.Лебедев.- М., 2002.- С. 60-79.

206. Немцова, Е.Р. Антиоксиданты место и роль в онкологии / Е.Р. Немцова, Т.В. Сергеева, O.A. Безбородова, Р.И. Якубовская // Российский онкологический журнал.- 2003.- №5.- С. 48-53

207. Никитин, В.Н. Гематологический атлас с.-х. животных / В.Н. Никитин.-М., 1956.

208. Николаева, Н.В. Исследования крови гусей в период принудительного откорма с целью получения жирной печени / Н.В. Николаева, И.С. Шпиц, JI.B. Грабко // Сб. трудов Моск. вет. акад.- 1975.- т. 81.- С. 166169.

209. Николаенко, В. Бактерицид экологически чистое антисептическое средство / В. Николаенко, И. Щедров // Птицеводство.- 2005.- № 5.- С. 34-35.

210. Николичева, Т.А. Роль микрофлоры в усвоении небелкового азота и процессах ферментации в пищеварительном тракте кур-несушек: авто-реф.дис. .к.б.н./ Т.А. Николичева.- Боровск, 1975.- 21-23 с.

211. Никулин, В. Н. Влияние различных доз целлобактерина Б на потребление сена телятами / В. Н. Никулин // Тез.докл. регион, научн.-практич. конф.- Оренбург, 1998 .- С.25.

212. Озолс, Э.М. Влияние скрещивания гусей на их биологические особенности и хозяйственно полезные качества / Э.М. Озолс, И.И. Гросман // В кн.: Наслед. изменчивость с.-х. птицы.- М.: Колос, 1966.- С. 47-56.

213. Ольшевская, О.Д. Рациональное питание / О.Д. Ольшевская,- Киев, 1988.- С. 55-57.

214. Онищенко, Г.Г. Иммунобиологические препараты и перспективы их применения в инфектологии / Г.Г. Онищенко, В.А. Алешкин, С.С. Афанасьев и др.-М.,2002.- 608 с.

215. Основные итоги деятельности Росптицесоюза в 2003 году и его задачина 2004 год /Материалы общего собрания Росптицесоюза 25 февраля 2004 года. М.: Российский птицеводческий союз, 2004. - 53 с.

216. Отрыганьев, Г.К. Рекомендации по диагностике причин эмбриональной смертности сельскохозяйственных птиц / Г.К. Отрыганьев, Ю.В. Исаев, Л.Ф. Дядичкина.- Загорск: ВНИТИП, 1982. 35 с.

217. Отрыганьев, Г.К. Технология инкубации / Г.К. Отрыганьев, А.Ф. Отры-ганьева. — М.: Россельхозиздат, 1982. 142 с.

218. Охрименко Е.М. Морфобкшм1чш особливост1 Kpoei гусей при вивченш гетерозису / Е.М. Охрименко, P.C. Нестерович // В кн.: Генетика i селекщя с.-г. тварин на Прикарпати.- Кшв, 1975.- С. 181-186.

219. Охрименко, Е.М. Гематолопчш показники у р1зних порщ гусей залежно вщ ix ф13юлопчного стану / Е.М. Охрименко // 36. Передпрне i прне землероб, i тваринництво.- Кшв, 1970.- вип. 8.- С. 104-106.

220. Охрименко, Е.М. Динамика общего белка и его фракций в крови гусей / Е.М. Охрименко, P.C. Нестерович // Птицеводство.- Киев, 1973.- вып. 16.-С.46.

221. Охрименко, Е.М. Изменение общего белка и его фракций в сыворотке крови гусей в зависимости от физиологического состояния / Е.М. Охрименко, P.C. Нестерович // Материалы IV респ. конф.- Львов, 1968.- С. 297.

222. Палагина, Т.Е. Биологическая оценка мяса птицы, получавших пробио-тик / Т.Е. Палангина // Биоэлементы: научные труды I Международной научно-практической конференции.- Оренбург: РИК ГОУ ОГУ, 2004.- С. 183-184.

223. Панин, А.Н. Повышение эффективности пробиотикотерапии у поросят / А.Н. Панин и др. // Ветеринария.- 1996.- № 3.

224. Панин, А.Н. Принципы и перспективы применения пробиотиков в ветеринарии / А.Н. Панин, Н.И. Малик // Тез. Всеросс. конф. "Пробиотики и пробиотические продукты в профилактике и лечении наиболее распространенных заболеваний человека". М. - 1999. — С.70.

225. Панин, А.Н. Пробиотики: Теоретические и практические аспекты / А.Н. Панин, Н.И.Малик, И.Ю. Вершинина // Био.- № 2-3.- 2002 (18).

226. Панченко, Л.Ф. Клиническая биохимия микроэлементов / Л.Ф. Панчен-ко, И.В.Маев, К.Г. Гуревич. М.: ГОУ ВУНМЦ МЗ РФ, 2004. - 368 с.

227. Парина, Е.В. Возраст и обмен белков / Е.В. Ларина.- Харьков, 1967. 286 с.

228. Парфенов, А.И. Энтерология / А.И. Парфенов.- Москва, 2000.-С.770.

229. Пенионжкевич, Э.Э. Сельскохозяйственная птица / Э.Э. Пенионжкевич.-М., 1962.-280 с.

230. Петенко, А.И. Эффективность различных способов повышения А-витаминной питательности кормосмесей для гусей / А.И. Петенко // Тр. КСХИ.- 1992. -Вып. 312 (340). С. 84-94.

231. Петрухин, И.В. Кормление домашних и декоративных животных: Справочная книга / И.В. Петрухин, Н.И. Петрухин. М.: Нива России, 1992. -336 с.

232. Пименов, Н.В. Антибиотикорезистентность сальмонелл, выделенных от домашних голубей / Н.В. Пименов, Н.В. Данилевская // Ветеринария.-2006.-№9.- С. 20-24.

233. Плященко, С.И. Влияние факторов внешней среды на резистентность животных в условиях современной технологии / С.И. Плященко, В.Т.Сидоров, В.И.Сапего, М.И. Лаврецкая.- Мн., 1980.-40с.

234. Плященко, С.И. Естественная резистентность организма животных / С.И. Плященко, В.Т. Сидоров.- Л.: Колос, 1979.- 184 с.

235. Плященко, С.И. Определение факторов естественной резистентности организма сельскохозяйственных животных: Методич. Рекоменд / С.И. Плященко.-Минск, 1985.- 12с.

236. Плященко, С.И. Повышение естественной резистентности организма животных основа профилактики болезней / С.И. Плященко // Ветеринария.- 1991.- №6.- С.49-52.

237. Плященко, С.И. Резистентность животных при различных типах кормления и условиях содержания / С.И. Плященко, В.Т. Сидоров // Ветеринария.- 1983.- №2.-С. 22-25.

238. Подпригора, Г.И. Иммунные и неспецифические механизмы колонизационной резистентности / Г.И. Подпригора // В кн.: Антибиотики и колонизационная резистентность / Под ред. Б.А. Шендерова. -М., 1990. -Вып 19.

239. Покровский, В.И. Инфекционный процесс / В.И. Покровский, И.В. Рубцов // В кн.: Иммунология инфекционного процесса./ Под ред. В.И. Покровского и др. М., 1994.

240. Поликарпов, H.A. Количественный уровень содержания нуклеазополо-жительных микроорганизмов, как показатель состояния аутомикрофло-ры человека.: Дисбактериозы и эубиотики / H.A. Поликарпов, А.Н. Викторов // Тез. докл. конф. М., 1996. - С. 26-28.

241. Поликарпов, H.A. Эндонуклеазная активность строго анаэробных бактерий, выделенных у больных и здоровых людей / H.A. Поликарпов, Г.Г. Окропиридзе, A.A. Петраков // Журнал микробиол.- 1994. № 3.

242. Предтеченский, В.И. Руководство по клиническим лабораторным исследованиям / В.И. Предтеченский.- М.: Медицина, 1964.- 146 с.

243. Производство препаратов для животноводства на основе микроорганизмов-симбионтов желудочно-кишечного тракта.: Обзорная информация / A.B. Платонов.- М., 1985. 43 с.

244. Раевская, Ю.М. Возрастные и суточные изменения pH содержимого пищеварительного канала гусей / Ю.М. Раевская, А.К. Бобылев, A.C. Глотов // Труды КСХИ "Караваево".- вып. 35.- Кострома, 1971.- С. 12-17.

245. Раевская, Ю.М. О протеолизе корма в пищеварительной трубке месячных гусят / Ю.М. Раевская // Труды КСХИ "Караваево".- вып. 35.- Кострома, 1971.- С. 70-73.

246. Раевская, Ю.М. Судьба протеина корма в пищеварительном канале 15-дневных гусят / Ю.М. Раевская // Труды КСХИ "Караваево".- вып. 35.-Кострома, 1971.- С. 67-69.

247. Разумовский, П.Н. Действие биологически активных веществ на микроорганизмы / П.Н. Разумовский и др.- Кишинёв, 1975.- С. 25.

248. Ройтер, Я.С. Научные и практические аспекты разведения гусей / Я.С. Ройтер, А.Ф. Лукьянов, В.В. Герасименко.- Москва: Изд. «Весь Сергиев Посад», 2004.- 204 с.

249. Романов, М.П. Нормирование протеина в рационе кур: автореф. на со-иск. уч. ст. канд. с.-х. наук / М.П.Романов.- Москва, 1962.-18 с.

250. Руднева, И.И. Состав и свойства белков сыворотки крови и печени гете-розисных гибридов кур в эмбриогенезе: Автореф. дис. . канд. биол. наук / И.И. Руднева.- Харьков, 1980. 26 С.

251. Руднева, И.И. Эмбриоспецифические особенности белкового состава сыворотки крови кур / И.И. Руднева, Д.А. Сорокина // Журн. эволюц. биохим. и физиол.- 1979.- т. 15.- С. 546-549.

252. Салеев, П.Ф. Промышленное гусеводство / П.Ф. Салеев.- М., 1982. 192 с.

253. Салеев, П.Ф. Разведение и откорм гусей / П.Ф. Салеев, Е.И. Ионова.- М., 1982.

254. Селянский, В.М. Анатомия и физиология сельскохозяйственной птицы / В.М. Селянский.- М.: Колос, 1972. 359 с.

255. Селянский, В.М. Анатомия и физиология сельскохозяйственной птицы / В.М. Селянский.- М., 1980. 280 с.

256. Сенько, А.Я. Повышение продуктивных и воспроизводительных качеств птицы при использовании нетрадиционных кормов и кормовых добавок: Автореф. дис. доктора с.-х. наук / А.Я.Сенько. Оренбург, 2000. - 46 с.

257. Сергеев, П.В. Роль цинка в нормальном функционировании иммунной системы / П.В. Сергеев, H.JI. Шимановский, К.Г. Гуревич // Аллергия, астма и клиническая иммунология. 2000. - № 12.- С. 19-23.

258. Сергеев, П.В. Цинксодержашие препараты как модуляторы иммунной системы / П.В. Сергеев, Н.Л.Шимановский, К.Г. Гуревич // Международный медицинский журнал. 2000. - № 4.- С. 99-102.

259. Сергеева, A.M. Требования к качеству инкубационных яиц сельскохозяйственной птицы / A.M. Сергеева.- Загорск: ВНИТИП, 1978. 6 с.

260. Сибирякова, Н.И. Биологическая активность пептидгликана бифидобак-терий: автореф. дис. канд. мед. наук / Н.И.Сибирякова. М., 1992. - 18 с.

261. Сидоров, М.А. Основы профилактики желудочно-кишечных заболеваний новорожденных животных / М.А. Сидоров, В.В. Субботин // Ветеринария.- 1998.- № 1.- С.24 -27.

262. Сидоров, М.А. Пробиотики в ветеринарии / М.А. Сидоров, В.В. Субботин, Н.В. Данилевская // Ветеринария. 2000. - № 11. - С. 17-22.

263. Синцерова, О.Д. Особенности использования питательных веществ мини-курами в связи с возрастом / О.Д. Синцерова, H.A. Жабронова //

264. Тез.докл.: Физиолого-биохим. и генет. основы повышения эффективности использования кормов в животноводстве.- М., 1973.

265. Скальный, A.B. Химические элементы в физиологии и экологии человека / A.B.Скальный. М.: Издательский дом «ОНИКС 21 век»: Мир, 2004.-216 е., ил.

266. Сметнев, С.И. Справочник птицевода / С.И. Сметнев.- М.: Колос, 1965. -415 с.

267. Смирнов, В.В. Спорообразующие анаэробные бактерии-продуценты биологически активных веществ / В.В. Смирнов, С.Р. Резник, И.А. Василевская. Киев, Наукова Думка.- 1982.

268. Смородинцев, И.А. Биохимия мяса / И.А. Смородинцев,- М.: Птице-промиздат, 1952.- 332 с.

269. Современное состояние Российского птицеводства // Комбикорма. — 2004.-№3.-С.7-9.

270. Соколова, H.A. Профилактика колибактериоза телят штаммом-продуцентом микроцина / H.A. Соколова, И.А. Хмель, Э.А. Шегидевич,

271. H.И. Евглевская, Е.М. Горская, Н.Е. Курепина // Ветеринария.- 1991.-№1.-С 24-25.

272. Степанчук, Ю.Б. Кишечная микрофлора и метаболизм оксалатов.: авто-реф. дис. канд. мед. наук / Ю.Б.Степанчук. М., 1994. - 20 с.

273. Субботин, В.В. Биотехнология пробиотиков ветеринарного назначения / В.В. Субботин, М.А. Сидоров // Аграрная наука.- 1998.- № 3.- С.20 21.

274. Сулыма, Я.Ф. Взаемозв"язок м1ж деякими морфолопчними i 61ох1м1чними показниками кров1 трипородних помюей гусей / Я.Ф. Сулыма, P.C. Нестерович, Е.М. Охрименко, О.В. Мисляк // Передпрне i прне землероб, i тваринництво,- 1975.- вип.- 20.- С.99-100.

275. Сусликов, B.JI. Геохимическая экология болезней, т.1. Диалектика биосферы и нообиосферы / В.JI.Сусликов.- М.: Гелиос АРВ, 1999.- 408с

276. Сусликов, B.JI. Геохимическая экология болезней.т.З.Атомовитозы / В.Л.Сусликов.- М.: Гелиос АРВ, 2002.- 546с

277. Суханова, С. Гусеводство Зауралья / С.Суханова др. //Животновод. -2003.-№4.-С. 10-11.

278. Суханова, С. Морфологические показатели у гусят, получавших бентонит / С. Суханова, Ю. Кармацких // Птицеводство. 2004. - № 6. - С. 16 -17.

279. Суханова, С. Неспецифический иммунитет у гусей, откармливаемых на жирную печень / С.Суханова, В. Богатырев // Птицеводство. 2004. - № 5. - С. 26 - 27.

280. Суханова, С.Ф. Бентонит в рационах гусят-бройлеров / С.Ф. Суханова, Ю.А. Кармацких //Птицеводство. 2003. - № 8. - С. 16 -17.

281. Суханова, С.Ф. Бентонит для животных и птицы: в рационах гусят-бройлеров / С.Ф. Суханова, Ю.А. Кармацких // Комбикорма. 2004. - № 4. - С.49.

282. Суханова, С.Ф. Влияние разных источников селена на продуктивность гусят-бройлеров / С.Ф. Суханова // Птицеводство. 2005. - № 5.- С. 17.

283. Суханова, С.Ф. Влияние селенсодержащих препаратов на переваримостьи использование питательных веществ кормосмесей организмом гусей / С.Ф. Суханова, O.A. Невзорова // Известия ОГАУ.- № 1(13).- 2007.- С. 143-145.

284. Суханова, С.Ф. Использование кукурузы с белковой смесью при откорме гусей на жирную печень / С.Ф. Суханова. .- М.: ВНИИТЭИагропром, 2005. 215/19311, №7 ВС. -160 с.

285. Суханова, С.Ф. Качественные изменения в мышечной ткани гусят-бройлеров при скармливании им бетонита / С.Ф. Суханова, Ю.А. Кар-мацких // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2004. - № 2. - С. 127-129.

286. Суханова, С.Ф. Комбикорма с бентонитом для гусят-бройлеров / С.Ф. Суханова // Животноводство России. 2004. - № 10. - С. 23 - 24.

287. Суханова, С.Ф. Конверсия протеина и энергии корма в продукцию у гусят-бройлеров / С.Ф. Суханова // Научные результаты агропромышленному производству: материалы Международной науч.-практ. конф. -Курган: ФГУИПП «Зауралье». Т. 2. - 2004. - С. 89-91.

288. Суханова, С.Ф. Научное и практическое обоснование использования Зырянского бентонита в составе комбикормов для гусят-бройлеров / С.Ф. Суханова, Ю.А. Кармацких. М.:ВНИИТЭИагропром, 2005. - №212/19308, №5 ВС 159 с.

289. Суханова, С.Ф. Проблемы гусеводства: теория и практика / С.Ф. Суханова. -Курган: ФГУИПП «Зауралье», 2004. 264 с.

290. Суханова, С.Ф. Продуктивные качества гусят итальянской белой породы, выращенных в ООО «Катайский гусеводческий комплекс» / С.Ф. Суханова, В.Н. Богатырев // Аграрный вестник Урала. 2003. - № 4 (16). -С.41 -43.

291. Суханова, С.Ф. Пути увеличения эффективности производства ООО «Катайский гусеводческий комплекс» / С.Ф. Суханова и др.// Достижения науки и техники АПК.- 2005.-№ 1.- С.44 45.

292. Суханова, С.Ф. Селеновые препараты в рационе гусей / С.Ф. Суханова, A.A. Твердохлебов // Птицеводство. 2004. - № 10. - С. 9.

293. Суханова, С.Ф. Содержание каротина и витамина Е в проращенном зерне злаков / С.Ф. Суханова // Актуальные проблемы кормления животных в южном Зауралье: Сб. научн. Тр. КГСХА им. Т.С.Мальцева. Курган, 1998.-С. 82-85.

294. Суханова, С.Ф. Эффективность использования организмом гусят-бройлеров итальянской белой породы кукурузной глютеновой муки / С.Ф. Суханова. М.: ВНИИТЭИагропром, 2003. - № 19108, №79 ВС. - 41 с.

295. Сухомлин, К.Г. Действие стрессов, вызывающих искусственную линьку гусей, на показатели липидного обмена / К.Г. Сухомлин, В.М. Буслов-ский // Тр. КСХИ. Вып. 265 (293). - Краснодар. - 1986. - 132 с.

296. Сухомлин, К.Г. Физиологические основы повышения продуктивности животных при стрессах / К.Г. Сухомлин и др. II Мат. XV Съезда Всес. физиол. об-ва им. Павлова. Кишинев. - 1987. - т. 2. - 594 с.

297. Тараканов, Б. В. Влияние целлобактерина Б на интенсивность биохимических процессов в рубце телят / Б.В. Тараканов, Т. А. Николичева, В. Н. Никулин // Тез. докл. Регион, научно-практ. конф. Оренбург, 1998.-С.74-75.

298. Тараканов, Б. В. Механизмы действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных / Б.В. Тараканов // Ветеринария.- 2001 .- №7,- С.47-54.

299. Тараканов, Б. В. Новые биопрепараты для ветеринарии / Б.В. Тараканов //Ветеринария.- 1999.-№7.-С. 45-50.

300. Тараканов, Б. В. Эффективность использования целлобактерина Б в рационах телят./ Б.В. Тараканов, Т. А. Николичева, В. Н. Никулин //Тез. докл. регион, научно-практ. конф.- Оренбург, 1998 .- С.99-100.

301. Тараканов, Б. Новый пробиотик / Б. Тараканов, А. Соловьёв, Т. Николичева, Т. Боброва // Птицеводство.- № 6.- 1999.- С. 32-33.

302. Тараканов, Б.В. Использование пробиотиков в животноводстве / Б.В. Тараканов.- Калуга, 1998.-54 с.

303. Тараканов, Б.В. Комкова Влияние продуцента микроцина типа В на телят/ Б.В. Тараканов, Т.А.Николичева, В.В.Алешин, Н.М. // Ветеринария. -2005.-№6.-С. 20-23.

304. Тараканов, Б.В. Обмен веществ и продуктивность гусей при добавлении в рацион пробиотика лактоамиловорин / Б.В. Тараканов, В.В.Герасименко, В.Н. Никулин // Сельскохозяйственная биология.-2004.- №4.- С. 52-58.

305. Тараканов, Б.В. Пробиотик лактомикроцикол, используемый для выращивания и откорма бройлерной птицы / Б.В. Тараканов, В.Н. Никулин и др. // Патент РФ № 2268925. Заявл. 26.02.2004. Опубл. 27.01.2006. Бюлл. №03.

306. Тараканов, Б.В. Штамм бактерий Escherichia coli, используемый для производства пробиотика микроцикола В5/98// Патент РФ № 2268297. Заявл. 29.12.2003. Опубл. 20.01.2006. Бюлл. № 02.

307. Тараканов, Б.В. Штамм бактерий Lactobacillus amylovorus, используемый для производства пробиотика лактоамиловорина.// Патент РФ № 2054478. Заявл. 01.10.1992. Опубл. 20.02.1996. Бюлл. № 5.

308. Тараканов, Б.В. Влияние микроцикола на микрофлору кишечника и продуктивность цыплят-бройлеров/ Б.В. Тараканов, Т.А. Николичева, В.Н. Никулин, Т.Е. Палагина// Ветеринария. 2007. - № 9. - с. 47-50.

309. Ткачев, И. Потребность яйценоских племенных кур в протеине и аминокислотах при фазовом кормлении / И.Ткачев, А. Хохлов, Е. Назаров // Сельское хозяйство за рубежом.- 1973.- № 3.

310. Ульянова, В.А. Переваримость кормов у гусей / В.А. Ульянова // Отчет ВНИИП, 1949,-С. 45-51.

311. Фисинин, В.И. Кормление сельскохозяйственной птицы / В.И. Фисинин, И.А. Егоров, Т.М. Околелова, Ш.А. Имангулов.- ВНИТИП, Сергиев Посад, 2001.-375 с.

312. Фисинин, В.И. Наука и развитие мирового и отечественного птицеводства на пороге XXI века / В.И. Фисинин // Зоотехния. 1999. - № 3. - С. 2 -9.

313. Фисинин, В.И. Нужен комплексный подход к развитию птицеводства / В.И. Фисинин // Комбикорма. 2005. - № 2. - С. 4 - 6.

314. Фисинин, В.И. Стратегия эффективного развития отрасли и научных исследований по птицеводству / В.И. Фисинин // Вестник РАСХН,- № 1 янв-фев.- 2002.- С. 56-58.

315. Улан-Удэ, 1973. С. 487-489.

316. Фонталин, JI.H. Иммунологическая толерантность / Л.Н. Фонталин, Л.А. Певницкий. -М.: Медицина, 1978.

317. Хаустов, В.Н. Влияние аскорбиновой кислоты на продуктивность и естественную резистентность уток / В.Н. Хаустов // Вестник Алтайского Гау.- №3.- 2001,-С. 44-45.

318. Хаустов, В.Н. Возрастные изменения показателей естественной резистентности крови утят кросса Х-11 / В.Н. Хаустов // Вестник Алтайского Гау.- №3.- 2001.- С. 29-30.

319. Хмель, И.А. Микроцины пептидные антибиотики энтеробактерий: генетический контроль синтеза, структура и механизм действия / И.А. Хмель //Генетика.- 1999.-Т. 31. -№ 1.- С. 5-16.

320. Чахава, O.B. Гнотобиология- учение о микрофлоре организма хозяина / О.В. Чахава // В кн.: Теоретические и практические проблемы гното-биологии. -М.: Агропромиздат, 1986. С. 14-19.

321. Чевари, С. Определение антиоксидантных параметров крови и их диагностическое значение в пожилом возрасте / С. Чевари, Т. Андял, Я. Штренгер // Лаб. дело.-1991.-№ 10.-С.9-13.

322. Чекмарев, А. Применение ЛАКТОБИФАДОЛа в сочетании с лизином при откорме бройлеров / А.Чекмарев, Н. Данилевская, А. Абдуллаев // Птицеводство 2005.- №2.-С. 15-16.

323. Чечеткин, A.B. Белок и нуклеиновые кислоты тканей кур в постнаталь-ный период и при гетерозисе / A.B. Чечеткин // Труды XI11 Всемирн. конгр. по птицеводству.- Киев: Колос, 1966,- С. 248-252.

324. Чечеткин, A.B. Гетерозис у кур с точки зрения белков и нуклеиновых • кислот в тканях / A.B. Чечеткин // В кн.: Иссл. в птицеводстве.- Киев: Урожай, 1966.- С. 56-66.

325. Шендеров, Б.А. Влияние антибиотиков на экскрецию с фекалиями некоторых микробных метаболитов / Б.А. Шендеров, С.Д. Митрохин, Е.В. Глухова и др. // Антибиотики и химиотерапия.- 1989.- вып. 34.

326. Шендеров, Б.А. Значение колонизационной резистентности в патогенезе инфекционных заболеваний / Б.А. Шендеров // В кн.: Иммунология инфекционного процесса./ Под ред. В.И. Покровского и др. -М., 1994.

327. Шендеров, Б.А. Медицинская микробная экология и функциональное питание, т.1. Микрофлора человека и животных и её функции / Б.А. Шендеров. -М.: Грантъ, 1998.- 288 с.

328. Шендеров, Б.А. Медицинская микробная экология и функциональное питание / Б.А. Шендеров.- М.,2001.-Том 3.- С.288.

329. Шендеров, Б.А. Микрофлора пищеварительного тракта важнейший фактор поддержания микроэлементного гомеостаза хозяина / Б.А. Шендеров // Клиническое питание.- 2005.- № 2.- с. 2-5.

330. Шендеров, Б.А. Микроэкологическая токсикология. Реальность, проблемы и перспективы / Б.А. Шендеров // В кн.: Антибиотики и микроэкология человека и животных / Под ред. С.М. Навашина, Б.А. Шендерова. -М., ВННИАнтибиотиков, 1988.

331. Шендеров, Б.А. Нормальная микрофлора и некоторые вопросы микроэкологической токсикологии / Б.А. Шендеров // Антибиотики и медицинская биотехнология.- 1987. т. 32. - №3. - С. 38-41.

332. Шенкман, Б.З. Бактериальные эндотоксины и медиаторные системы макроорганизма / Б.З. Шенкман // Успехи совр. биол.- 1991. т. 111. - № 3.- С.88-90.

333. Шепелева, И.Б. Изменение естественного иммунитета мышей при введении бластолизина гликопептида клеточной стенки L.bulgaricus / И.Б. Шепелева, Н.С. Захарова, Т.Н. Ремова и др. // Бюлл. экспер. биолог.,1985.-т.4.- С. 442-446.

334. Щедровицкий, С.Т. Изучение состава крови у уток и гусей при одностороннем кормлении / С.Т. Щедровицкий // Сб. работ Ленингр. зоотехн. ин-та.- 1936.- С. 51-54.

335. Ярополов, А.И. Механизм антиоксидантного действия церулоплазмина / А.И. Ярополов, А.Г. Сергеев, В.В. Басевич и др.// Докл. АН СССР.1986.- 291(1).-С. 237-41.

336. Abdo К.М., Cahilly С.М. Procede de preparation d'additifs alimentaris avec introduction de microorganizms des melanges nutritifs et nouveaux proodutis ainnnsi obtenus.// Pat. France A 61 k 27 / 00 No 2261757. Pybl. 19.09.75.

337. Abdulrahim S.M. The influence of Lactobacillus acidophilus and bacitracin on lauer performance of chickens and cholesterol content of plasma and egg yolk// British Poultry Science.- 1996.- V. 37.- P. 341-346.

338. Abrams G.D. Microbial effect on mucosal structure and function.// Amer.J. Clin. Nutr., 1977. vol.30. - P. 415-419.

339. Acuna-Castillo, Morales B., Huidobro-Toro P. Zinc and cooper modulate differentially the P2X4 receptor//J. neurochem. 2000. - V. 74. P. 1529-1537.

340. Akester A.R., Anderson R.S., Hill K.J. A radoigraphic study of urine flow in the domestic fowl// Br.Poult.Sci.- 1967.- V. 8.- P. 209-212.

341. Alam M. Modulation of gastrointestinal cell kinetics and endocrine cell populations by the microflora and andogenous prostoglandins. An experimental stady in germfree and convencional rats.// Tesis. Stockholm, Sweden. 1995.

342. Alarm M., Midtvet T. Microflora and gastrointestinal peptides.// Abstr. XII Intern. Sympos. Gnotobiology. Honolulu, 1996. — June 23-28.

343. Al-Timini D.J., Dormandy T.L. // Biochem. J.- 1977,- Vol. 168, № 2.- P. 283288.

344. Anand S.K., Srinivasan R.A., Rao L.K. Antibacterial activity associated with Bifidobacterium bifidum-11.// Cultured Dairy Prod.J., 1985. vol. 20. -№ 1. -P. 207-210.

345. Anderson Y.W., Gunningham J.D., Slinger S.J. Effect of protein level and penicillin on growth and intestinal flora of chickens// J.Nutrition.- 1952- V. 47, N2.-P. 175-189.

346. Andrieux C., Pacheco E.D., Bouchet B. et al. Contribution of the digestive tract microflora to amylomaize starch degradation in the rat.// Br.J.Nutr., 1992.-vol. 67.- P. 732-734.

347. Aoe S., Matsuyama H., Yahiro M. et al. Effect of intestinal microflora on the absorbcion of soluble calcium in milk.// J. Germfree Life Gnotobiol., 1994. -vol. 24.-№ 1. -P.201-210.

348. Armour D.M. Goos production //Agr.North.Irel. 1983. - Vol. 57. - № 2. - P.386.388.

349. Arnaud J. Copper // Internet, j. vit. nutr. res. 1993. - V. 63. - № 4. P. 308311.

350. Asensio C., Perez-Diaz V.C., Martinez M.C., Baquero F. A new family of low molecular weight antibiotics from Enterobacteria // Biochem. Biophys. Res. Communs. 1976. V. 69. P. 7-14.

351. Atsuko I. Anti-MRSA activity of Bifidobacterium breve and its purification.// J. Nara Medical Associat., 1994. vol. 45. - № 2. - P. 528-531.

352. Baker A., Turlcy E., Bonham M.P., O'Connot J.M., Strain J.J., Flynn A., Cashman K.D. No effect of copper supplindentation on biochemical marcers of bone metabolism in healthy adults // Br. j. nutr. 1999. - V. 82. - № 4. P. 283-290.

353. Baldini J.T., Rosenberg H.R. The effect of calorie-source in a chick diet on growth, feed utilization and body composition.// Poultry Science, v. 36, 1957, P. 432-435.

354. Baldini J.T., Rosenberg H.R. The effect of productive energy level of the diet on the methionine requirement of the chick.// Poultry Science, v. 34, № 6, 1955, P. 1301-1307.

355. Baquero F., Moreno F. The microcins // FEMS Microbiol. Lett. 1984. V.23. P.l 17-124.

356. Barnes E.M. Impey C.S. Some properties of the Nonsporing Anaerobes from Poultry caeca//J.appI.Bact.-1972.- v. 35.- P. 241-251.

357. Bax B., Blundell T.L., Murrey-Rust J., McDonald N.Q. Structure of mouse 7S NGF: a complex of nerve growth factor with four binding proteins // Structure. -1997. -V. 5. -№ 10. P. 1275-1285.

358. Bayston K.F., Cohen J. Bacterial endotoxin and current concepts in the diagnosis and treatment of endotoxaemia.// J. Med. Microbiol., 1990. vol.31. P. 617-620.

359. Beauchamp C.O. and Fridovich I. Isozymes of syperoxide dismutase from wheat germ // Biochemica et Biophysica Acta. 1973. - № 317. - P. 50-64

360. Beerli R.R., Schopfer U., Dreier B., Barbas C.F. Chemicaly regulated zinc finger trascription factors // J. biol. chem. 2000. - V. 275. - № 42. P. 3261732627.

361. Bell J.U., Lopez J.M., Bartos K.D. // Comp. Biochem. And Physiol. 1987. -A87. - № 3. - P. 561-564.

362. Bengmark S. Colonic food: pre- and probiotics. Am J Gastroenterol 2000; 95 (1) SuppI: S5-7.

363. Berman E. Application of atomic absorption spectrophotometry to the determination of copper in serum, urine and tissue.// Atomic Absorption Newsletter. 1965. - v. 4. - № 2. - P. 296-301.

364. Berry E.B. The effects of nutrients on lipoprotein susceptibility to oxidation. Current opinion in lipidology 1992; (1): 5-11.

365. Bjomhag G. Transport of Water and Food Particles Through the Avian Ceca and Colon//J. Exper.Zool. 1989. Suppl. 3.

366. Blum I. Weight of the fatty liver as influenced by nutritional and physiological status of the forced feed geese. International symposium of feeding and hygiene of geese. - Budapest, 1971. - P. 92 - 94.

367. Bogre I. The influence of cramming technology and age of life on the liver size of geese. International symposium of feeding and hygiene of geese. -Budapest, 1971.-P. 90-91.

368. Bolton W. Poultry Nutrition Bull.// Min. of Agricalture, № 174, London, 1963.

369. Borriello S.P. Bacteia and gastrointestinal secretion and motility.// Scand. J. Gastroenterology, 1984, № 93 (Sappl.).

370. Brashears M.M., Gilliland S.E., Buck L.M. Bilesalt de-conjugation and cholesterol removal from media by Lactobacillus casei // J. Dairy Science. 1998. V. 36. <3.

371. Braun O.H., Heine W.E. Zur physiologischen bedeutung der Bifidoflora und des faekalen lysozymes beim brustkind. Ein beitrag zur microecologie des in-testinums.//Klin. Pediatr., 1995. vol. 207. - № 1. - P. 804-808.

372. Bucsai A. Elaboration of the intensive fattening methods the production of genetically possible big liver. International symposium of feeding and hygiene of geese. - Budapest, 1971. - P. 91 - 92.

373. Burtis C.A., Ashwood E.R. (eds.) Tietz textbook of clinical chemistry. -Philadelphia, London, Toronto, Montreal, Sydney, Tokyo: W.B. Saunders Company, 1999. P. 982-1054.

374. Calomme M., J.Hu, Van Den Branden, D.A. Vanden Berghe. // Biological Trace Element Research, 1995, v.45,379-383

375. Cano-Gauci D.F., Sarkar B. Reversible zinc exchange between metal-lothionein and the receptor zinc finger // FEBS Lett/ 1996. - V. 386. - № 1. P. 1 -4.

376. Carlsted-Duke B. Intestinal mucin in rat and man. The role of the microflora upon mucin metabolism and its susceptibility to anaerobic treatment.// Tesis.-Stockholm, 1987.

377. Chausmer A.B. Zinc, insulin and diabetes // J. am. coll. nutr. 1998. - V. 17. -№2. P. 109-115.

378. China S.E., Ong C.N., Chua L.H., Ho L.M., Tay S.K. Comparison of zinc concentrations in blood and seminal plasma and the various sperm parameters between fertile and infertile men // J. androl. 2000. - V. 21. - № 1. P. 53-57.

379. Christl S.U., Murgstroyd P.R., Gibson G.R., Cummings J.H. Production, metabolism and excrecion of hydrogen in the large intestin.// Gastroenterology, 1992.-vol. 102.-P. 819-821.

380. Clark D.S., Tacacs J. Cases as presesrvatives.// In: Microbial Ecology of Food./Ed. J.H. Silliker. Academic Press, London, 1980.-P. 170-180.

381. Clemmesen J. Antitumor effect of lactobacillus substanses «L. bulgaricus effect» // Mol. Biother. 1989. N 1. P. 279-282.

382. Coleman J.E. Zinc enzymes // Curr. opin. chem. biol. 1998. - V. 2. P. 222234.

383. Collins E.B., Aramaki K. Production of hydrogen peroxiden by Lactobacillus acidophilus.//J. Daiiy Sci., 1980. vol. 63.- P. 353-357.

384. Cross M.L. et al. Microbes versus microbes: immune signal generated by pro-biotic lactobacilli and their role in protection against microbial pathogens // FEMS. 2002. №34(9). P.245-253.

385. Cuajungco M.P., Lees G.J. Zinc metabolism in the brain: revalence to human neurodegenerative disorders //Neurobiology of disease. 1997. - V. 4. P. 137169.

386. Cummings J.H. Short chain fatty in the human colon.// Gut, 1981.- vol. 22. -P. 530-532.

387. D'Angelo A., Selhub J. Homocysteine and thrombotic disease. //Blood. -1997. -Vol.90.-Nl.-P.l-ll.

388. Dahya R.S., Speck M.L. Hydrogen peroxide formation by lactobacilli and its effects on Staphylococcus aureus.// J. Dairy Sci., 1986. vol. 51. - P. 15681572.

389. Danielson A.D., Shahani K.M., Peo E.R., Whalen P,J. Anticholesteremic and antimicrobial properties of Lactobacillus acidophilus selective by isolated from porcine sources // J. Dairy Sci. 1987. V. 70. Suppl. 1. P. 82.

390. Davis CD., Milne D.B., Nielsen F.H. Changes in dietary zinc and copper affect zinc-status indicators of postmenopausal women, notably, extracellular superoxide dismutase and amyloid precursor proteins // Am. j. clin. nutr. -2000.-V. 71.-№3.P. 781-788.

391. Dobson D.S., Anderson J.O., Narnick R.E. A determination of the essential aminoacid proportions needed to allow rapid growth in chicks.// J. of Nutrition, v. 82, №1,1964, P. 67.

392. Donaldson W.E., Combs G.I., Suplle W.G. Body composition energy intake, feed efficiency, growth rate and feather condition of growing chickens as influenced by calorie-protein ration of the ration.// Poultry Science, v. 34, 1955, p. 1940.

393. Ekmekcioglu C The role of trace elements for the health of elderly individuals //Nahrung. 2001. - V. 45. -№ 5. p. 309-316

394. Elli M., Zink R., Rytz A. et al. // J. Appl. Microbiology, 2000,v.88, No.7, 695703

395. Erickson K.L., Hubbard N.E. Probiotic immunomodulation in health and disease //J.Nutr. 2000. - V.130. - 2S Suppl. - P.403S-409S.

396. Ferrari A., Brusa T., Rutili A., Canzi E. Human gastrointestinal tract and metanogenic bacteria.// Microecol. Terapy, 1995. vol. 25. - P. 644-647.

397. Feter J., Csomos G., Vereckei A. Free radical reactions in medicine / Budapest-Hamburg. 1987. - 191p.

398. Field M., Rao M.C., Chang E.B. Intestinal electrolyte transport and diarreal disease.// New. Engl. J. Medicine, 1989. vol.321. - № 13. - P. 83-90.

399. Fields M., Bureau I., Lewis C.G. Ferritin is not an indicator of available hepatic iron stores in anemia of copper deficiency in rats // Clin. chem. 1997. -V. 43. -№8. P. 1457-1459.

400. Frank J.F. Mechanisms of pathogen inhibition by lactic acid bacteria.// In: VII Intern. Sem. Lactic Acid Bacteria and Human Health. Seoul, Republic of Korea, 1991.-P. 84-91.

401. Frei B., Gaziano J.M. Content of antioxidants, preformed lipid hydroperoxides and cholesterol as predictors of the susceptibility of human LDL to metal ion-dependent and independent oxidation // J. Lipid Res. — 1993. — 34. — P. 2135-2145.

402. Frei B., Stocker R., Ames B.N. (1988) Antioxidant defenses and lipid peroxidation in human blood plasma // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 1988. — 85.—P. 9748-9752.

403. Freiden E. Metal Ions in Biological System. // New York. Chem. 1981. -V.13.-P. 117-142.

404. Freter R. Interdepence of mechanisms that control bacteria colonization of the large intestinale.// Microbiol. Terapy, 1984. vol.14. - P. 219-225.

405. Frieden E., Osaki S. Protein Metal Interaction.// Ed. M. Freiden. - New York.-1974.-P. 235-265.

406. Fukata T., Baba E., Arakawa A. Role of intestinal flora on prevention of Salmonella infection in chicen.// J. Germfree Life Gnotobiol., 1992. vol. 22.-№1.

407. Fuller R. Probiotics in man and animals. A review// J. Appl. Bacteriol. 1989. V. 66. № 5. P. 365-378.

408. Fuller R. The importance of epitelial attachment in colonization of the gut by bacteria.// Eur. J. Chemotherapy and Antibiotics, 1982. vol. 2. - P. 219-224.

409. Gebbers Jan-Olaf, Laissue J. A. Functional morfology of the mucosal barrier.// Microecol. Terapy, 1984. vol. 2. - P. 219-224.

410. Ghione M., Dellorto P. Human polypeptidic hormone-like substances in microorganisms.//Microbiologica., 1983. vol. 6. - № 4. - P. 417-420.

411. Gibbs MA. Ascorbic acid use in hyperesponders to Epoetin alfa // Nephrol, nurs. j. 2000. - V. 27. -№ 4. P. 413-415.

412. Gibson G.R., Wang X. Regulatory effect of bifidobacteria on the growth of other colonic bacteria.// J. Appl. Bacteriol., 1994. vol. 77. - № 4. - P.829-833.

413. Gibson S.A., McFarlan C, Hay S., McFarlan G.T. Significance of microflora in proteolysis in the colon// AppI.Environ.Microbiol., 1989, vol. 55, N3.

414. Gilliland S.E. Health and nutritional benefits from lactic acid bacteria // FEMS Microbiol. Rev. 1990. V.87. № 1-2. P. 175-188.

415. Gilliland S.E., Nelson C.R., Maxwell C. Assimilation of cholesterol by Lactobacillus acidophilus // Appl. Environ. Microbiol. 1985. V. 49. № 2. P. 377381.

416. Gilliland S.E., Speck M.L. Antagonistic action of Lactobacillus acidophilus towards intestinal and food-borne patogens in associative culture.// J. Food Protect., 1977. vol. 40. - P. 820-823.

417. Goldin B.R., Gorbach S.L. Impact of anaerobic bowel flora on metabolism of endogenous and exogenous compounds.// In: Anaerobic Infection in Humans.- Academic Press, 1989.

418. Gordon H.A. Contribution on the microbial flora to the physiological normality of the animal host.// In: Recent Advances in Germfree Research. — Tokai University Press, 1981.

419. Gordon H.A., Pesti L. The gnotobiotic animal as a tool in the stady of host-microbiol relationships.//Bact. Rev., 1971. vol. 35. - P. 611-619.

420. Grundy S.M. Primary Prevention of Coronary Heart Disease. Integrating Risk Assessment With Intervention. //Circulation. 1999. - V.100. -P.988-998.

421. Gutteridge J. Antioxidant properties of ceruloplasmin towards iron-and copper- dependent oxygen radical formation. FEBS Lett 1983; 157(1): 37-40.

422. Haenel H., Muller-Beuthow W. Zbl. for Bact.J.orig- 1963, 180, 70.

423. Halliwell B., Gutteridge J.M.C. The antioxidants of human extracellular fluids. Arch Biochem Biophys 1990; 280:1-8.

424. Hansson G.K. Inflammation, Atherosclerosis, and Coronary Artery Disease. //N.Engl.J.Med. -2005. -V.352. P. 1685-1695.

425. Harpel P.C., Zhang X., Borth W. Homocysteine and hemostasis: pathogenic mechanisms predisposing to thrombosis. //J.Nutr. 1996. - T.126. - Suppl.4. -P.1285-1289.

426. Harvey S., Hecht S., Mitchell Harman. Relation of aggressiveness of lipid-lowering treatment to changes in calcified plaque burden by electron beam tomography //The American Journal of Cardiology. 2003. - Vol.92 (3). -P.334-336.

427. Havarstein L.S., Holo H., Nes I.F. The leader peptide of colicin V shares cousensus sequences with leader peptides that are common amond peptide bacteriocins produced by gram-positive bacteria.// Microbiology, 1994. vol. 140.-P. 87-92.

428. Hayes J., Cundy K.R., Fernandes P.B., Hoober K.J. Purification and characterization of a bacteriocin from Bacteroides fragilis.// J. Bacteriol., 1983. — vol. 155. -№3.-P. 314-318.

429. Henderson B., Poole S., Wilson M. Bacterial modulins: a novel class of virulence factors which cause host tissue pathology by inducing cytokine synthesis // Microbiol.Mol.Biol.Rev. 1996.№ 60(2). P.316-341.

430. Hentges D. The protective function of the indigenous intestinal flora.// Pedi-atr. Infect. Dis., 1986. vol. 5. - Suppl. 1.

431. Hill R.R. Digestion of mucin polysaccharides in vitro by bacteria isolated from the rabbit cecum.// Curret Microbiol., 1986.- vol. 14. P. 573-576.

432. Hirsch, A.M.Ronco, M.Vasquez et al. Hyperhomocysteinemia in healthy young men and elderly men with normal serum folate concentration is not associated with poor vascular reactivity or oxidative stress. //J.Nutr. 2004. -T.134. -P.1832-1835.

433. Ho Y.S., Gargano M., Cao J., Bronsosn R.T., Heimler I., Hutz RJ. Reduced fertility in female mice lacking copper-zinc superoxide dismutasc // J. biol. chem. -1998. V. 273. -№ 13. P. 7765-7769.

434. Holland D.R., Cousens L.S., Meng W., Matthews B.W. Nerve growth factor in different crystal forms displays structural flexibility and reveals zinc binding sites // J. mol. biol. 1994. - V. 239. - № 3. P. 385-400.

435. Huang J.S., Mukherjee J.J., Chung T., Crilly K.S., Kiss Z. Extracellular calcium stimulates DNA synthesis in synergism with zinc, insulin and insulinlike growth factor I in fibroblasts // Eur. j. biochem. 1999. - V. 266. - № 3. P. 943-951.

436. Hudson M.J., Roberts A.D., Hill M.J. et al. The establishment of metagenic bacteria in human faeces.// Microecol. Terapy, 1984. vol. 14. - P. 358-360.

437. Ikeda M., Hosotani T., Kurimoto K. et al. Utilisation of vitamin B6 synthesized by intestinal microflora. // J. Germfree, 1979. vol. 9. - № 2. - P. 528530.

438. Ishikawa N., Onda M., Hurukawa K. et al. The effects of intestinal flora on the function of neutrophiles.// J. Germfree Life Gnotobiol., 1989.- vol. 19. -P. 641-645.

439. Ivanov I.B. In vitro resistance to human platelet microbicidal protein among urethral staphylococcal and enterococcal isolates with its correlation with prostatitis // Indian J. Med. Microbiol.- 2005.- Vol.23, N4.- P.253-255.

440. Ivanov I.B., Gritsenko V.A., Kusmin M.D. Staphylococcal secretory inhibitor of platelet microbicidal protein is associated with prostatitis source // J. Med. Microbiol. 2006- Vol. 55, P. 1645-1648.

441. Ivanov Y.B. Microbiological features of persistent nonspecific urethritis in men//J. Microbiol. Immunol. Infect. 2007- Vol.23.-P. 157-161.

442. Iwai H. Cecal size and intestinal motility in mice with different types of bacterial flora.//J. Germfree, 1973. -vol. 3. № 2.

443. Jacobsen D.W. Homocysteine and vitamins in cardiovascular disease //Clinical Chemistry. 1998. -N44. -P.1833-1843.

444. Jacoby E., Kruger P., Karatas Y., Wollmer A. Distinction of structural reorganisation and ligand binding in the T<=>R transition of insulin on the basis of allosteric models // Biol. chem. hoppe seyler. 1993. - V. 374. - № 9. P. 877-885.

445. Jamazaki Masayoshi. Ando Mikio, Kuboto Daisaku. Studies on the efficient utilization of feed protein by laying hens, effect of level dietary protein and age on N-retention of laying hens// Bull.Nat. inst.Animal Ind- 1982,- v. 38.-P.97-108.

446. Jan-Ho Son, Yutaka Karasawa. Comparative Effect of Ligation of Ceca on Nitrogen Unilization and Nitrogen Excretion in chickens Fed a Low Protein Diet plus Urea//Animal Science and Technology.-1995-P. 171-174.

447. Jin L.Z., Ho Y.W., Abdullah N., Jalaludin S. Growth performance, intestinal microbial populations, and serum cholesterol of broilers fed diets containing Lactobacillus cultures.// Poult. Sci. 1998. - № 77 (9). - P. 1259 - 1265

448. Johnson J.R. Virulence factors in Escherichia coli urinary tract infection// Clin. Microbiol. Rev.- 1991.- V.4.- P.80-128.

449. Kato I., Yokokura T., Mutai M. Macrophage activation by Lactobacillus casei in mice.// Microbiol, and Immunol., vol. 27. - P. 611-618.

450. Keefe W.E.// Infect. Immunol. 1976, v.14, N2, 590-592

451. Kelley D.S., Duda P.A., Taylor P.C., Mackey B.E., Tumlund J.R. Effects of low-copper diets on human immune response // Am. j. din. nutr. 1995. - V. 62. P. 412-416.

452. Khassanova L., P.Collery, I .Maym et.al. (eds.). Metal Ions in biology and medicine. John Libbey Eurotext, Paris. Proc.7th Intern. Symposium on Metal Ions in Biology and Medicine. Saint Petersburg, Russia, May 5-9, 2002, v.7, 660p. 225-230; 247-251

453. Kiesslinng K.M., Pettersen H., Sandholm K., Olsen M. Metabolism of aflotoxin, ochratoxin, zearaleance and tree trichothecenes by intact rumen fluid, rumen protozoa, and rumen bacteria.// Appl. Environ. Microbiol., 1984. -vol. 47.-№5.-P. 39-44.

454. Klaenhammer T.R. Antimicrobial and bactericin interaction of the lactic acid bacteria. Procedings 6th International Sumposium on Genetics of Industrial Microorganism. Strasbourg, 12-18 August, 1990. - vol. 1. - P. 433-445.

455. Klayman Daniel L. and Cunther Wolfgan H. H. Organic selenium compounds: their chemistry and biology. 1973. - 800 p.

456. Klein S. Short-chain fatty acids and the colon.// Gastroenterology, 1992. -vol. 102.-P. 1035-1038.

457. Komai M., Kimura S. Nutricional and phisiological profile of germfree animals.// J. Germfree Life Gnotobiol., 1994. vol. 24. - P. 462-469.

458. Komai M., Kimura S. Primary vitamin deficiency obtained by using germfree mice. Vitamin K and biotin.// J. Germfree Life Gnotobiol., 1990. vol. 20. -№ 1. - P. 476-477.

459. Kono Y. and Fridovich I. Superoxide radical inhibits catalase // J. Biol. Chemistry. 1982. - v. 257. - № 10. - P. 5751-5754.

460. Koshikawa T.5 Sasa T., Asai J. Historical and immunological characteristics of the bursa of Fabricicus in germfree chickens.// J. Germfree, 1983. vol. 13. - № 2. - P. 283-286.

461. Kot E., A.Bezkorovainy. // J.agricalt. food chemistry, 1999, v.47, N 11, 46064610

462. Krinsky N.L. Membrane antioxidants // Ann. NY. Acad. Sci.— 1988.— 551. —P. 17-33.

463. Kroop L.B. Pasture geese. Countryside. - 1976. - Vol. 60. - № 9. - P. 46 - 48.

464. Kropp L.B. Increasing goose production at a profit // Feedstuffs. 1976. - Vol. 48, .№26. - P. 16-17.

465. Krzeska I., Ostojska J., Dzierzanowska D. The role of E. coli adhesiveness in the pathogenesis and clinical course of urinary tract infections// Pol. Tyg. Lek.- 1992.- V.47.- № 7.- P.706-709.

466. Kurasawa Y., Kawai H., Hosono A. Ammonia production from amino acid and urea in the caecal contents of the chicktn.// Comp. Biochem. Physiol., 1988. vol. 90. - № 1. - 75-79.

467. Kwon O-C., Ohkubo T., Yamamura M., Suzuki Y. Comparative morfological study of anterior pituitary in germfree and specific patogen-free rats.// J. Germfree Life Gnotobiol., 1992. vol. 22. - № 1. - P. 911-915.

468. Lavina M., Gaggero C., Moreno F. Microcin H47, a chromosome encoded microcin antibiotic of Escherichia coli // J. Bacteriol. 1990. V. 172. № 11. P. 6585-6588.

469. Le Roith D., Pickens W., Vinic A., Shiloach J. Bacillus subtilis contains multiple forms of somatostatin-like material.// Biochem. Biophys. Res. Commun., 1985.-vol. 127.-№3.-P. 297-306.

470. Levenson M., Tennant B. Some metabolism and nutritional studies with germfree animals// Federation Proceedings.- 1963 v. 22, № 1.- P. 109-113.

471. Lievin V., Peiffer I., Hudault S. et al. Bifidobacterium strains from resident infant human gastrointestinal microflora exert antimicrobial activity.Gut.2000. Vol.47. P.646-652.

472. Lilly D.M., Stillwell R.H. Probiotics: growth promoting factors produced by microorganisms.// Science. 1965. V. 147. P. 747-748.

473. Lindenbaum J. Didoxin inactivation by anaerobic bacteria.// Microecol. Ter-apy, 1986. vol.137. - № 12. - P. 273-276.

474. Linder M.C., Hazegh-Azam M. Copper biochemistry and molecular biology // Am. j. din. nutr. 1996. - V. 63. (suppl.). P. 797S-811S.

475. Macfarlane G.T. Probiotics and prebiotics: Can regulating the activities of intestinal bacteria benefit health? / British Medical Journal. 1999. - V.318. - N 7189.-P.999-1003.

476. Mackie R.I., White B.A., Bryant M.P. Lipid metabolism in anaerobic ecosis-tems.// Critical Rev. Microbiol, 1991. vol. 17. - № 6. - P. 327-330.

477. Malik N.I., Panin A.N., Malik E.V. An efficacy study of Probiotic intestevit for protection against intestinal diseases in lohmann brown chickens.// Abstracts of the 10 th European Poultry Conference, Ierusalem, Israel. 1998. P. 73.

478. Maumas J. Les caecums der diseaux// Ann. de Sci.Kat.- 1902.- v. 15, NS.-P. 1-148.

479. Mc Alan A.B., Smith R.H. Degradation of nucleic acids in the rumen.// Br. J. Nutr., 1972.-vol. 11.-P. 387-395.

480. Mc Daniel A.H., Reid Couch J.R. Energy, protein level and source of fat in cage layer diets.// Poultry Science, v. 36, № 5, 1957, p. 1139.

481. Mead G.C. Microbes of the avian cecum: types present and substrates util-ized//J.Exp.Zool.Suppl., 1989, v. 3.

482. Mengheri E., Nobili F., Vignolini F. et al. // J. Nutrition, 1999, v.129, N12, 2251-2257

483. Mengheri E., Nobili F., Vignolini F., Pesenti M., Brandi G., Biavati B. Bifidobacterium animalis protects intestine from danage and zinc deficiency in rats // J. nutr. 1999. - V. 129. - № 12. P. 2251-2257.

484. Meslin J.C. Effect of amyloamaize strach on intestinal mucosal morphometry and ileal epithelial renewal. Comparison between germfree and conventional rats.// In: Gnotobiol. And its applications. Versales, France, 1987.

485. Meslin J.S., Sacquet E. Effect of microflora on the dimensions of enterocyte microvilli in the rat.// Reprod. Nutr. Dev.,1984. vol. 24. - № 3.

486. Midtvedt T. Intestinal microflora associated characteristics.// Microecol. Ter-apy, 1986. vol. 16. - P. 74-81.

487. Midtvedt T. Microflora-associated characteristics ( MACs) and germfree animal characteristics (GACs) in man and animal.// Microecol. Terapy, 1985. -vol. 15.-P. 207-220.

488. Miller G.G., Strittmatter W.J. Identification of human T cells that require zinc for growth // Scand. z. immunol. 1992. - V. 36. - № 2. P. 269-277.

489. Miller J.M., Smith C.D. Influence of the normal flora on mucosal morfology and cellular renewal in the ileum.// Lab. Invest., 1981. vol. 27. - P. 149-156.

490. Minesita T., Hirota K., Matsumura S. et al. Cecal enlargement in germfree rats.//J. Germfree, 1974. vol. 4. - № 1. - P. 214-218.

491. Mohan H., Verma J., Singh I., Mohan P., Marwah S., Singh P. Interrelationship of zinc levels in serum and semen in oligospermic infertile patients and fertile males // Indian j. pathol. microbiol. 1997. - V. 40. - № 4. P. 451-455.

492. Morichita Y., Mitsuoka Т., Kaneuchi C. et all. Specific establishment of lac-tobacilli in the digistive tract of germfree chickens.// Jap. J.Microbiol., 1971. -vol. 15.-P. 531.

493. Morris C.M., Candy J.M., Bloxham C.A., Edwardson J.A. Distribution of transferritin receptors in relation to cytochrome oxidase activity in the human spinal cord, lower brainstem and cerebellum //J. neural, sei.- 1992. -V. 111. -№2. P. 158-172.

494. Munro H. The ferritin genes: their response to iron status // Nutr. rev. 1993. -V. 51.-№3. P. 65-73.

495. Nacajima K., Hata V., Osono V. et al. Antihypertensive effect of extract of Lactobacillus casei in patients with hypertension // J. Cekin. Biochem. Nutr. 1995. V. 18. P. 181—187.

496. Nakamura H., Matsuzawa T. Kinetics of cellular renewal in the small intestine of germfree and conventional mice.// Jap. J. Germfree, 1972. vol. 2. - №1. — P. 103-105.

497. Nes I.F., Bao Diep B.D., Havarstein L.S. et al. Biosynthesis of bacteriocins in lactic acid bacteria// Antonie van Leeuwenhoek.l996;70:l 13-128.

498. Nhompson M.H. Metabolism of neutral Steroides.// In: Microbial Metabolism in the Digestive Tract./ Ed. M.S.Hill, 1986.

499. Nöda H., Akasaka N., Ohsugi M. Biotin production by Bifidobacteria.// J .Nutr. Sei. Vitaminol., 1994. vol. - 40. - № 2. - P. 240-243.

500. Norin K.E., Midtvedt T., Gustafsson B.E. Influense of intestinal microflora on the triptic activity during lactation in rats.// Lab. Animal., 1986. vol. 20. - P. 114-116.

501. Nugon-Bandon L., Lzylit O., Raibaund P. Production of toxic glucosinolates derivates from rape seed meal by intestinal microflora of rats and children.// In: Short-Term Bioassays Anal Complex Environ. Mixtures. 3. New York, London, 1983.

502. Oda M., Hasegawa H., Komatsu S. et al. Antitumor polysaccharide from Lactobacillus species // Agric. Biol. Chem. 1983. V. 47. N 7. P. 1623-1625.

503. Okumura J.I., Furuse M. Nutritional and physiological characteristics in germfree chickens.// J. Germfree Gnotobiol., 1990. vol.20. - № 1. - P. 117-120.

504. Olivares M., Uaay R. Copper as essential nutrition // Am. j. clin. nutr. 1996. -V.63. P.791S-796S.541.0rskov F., Orskov I. Escherichia coli serotyping and disease in man and animals// Can. J. Microbiol.- 1992.- V.38.- P.699-704.

505. Owen R.W. The metabolism of bile acid.// In: Microbial Metabolism in the Digestive Tract.// Ed. M.S.Hill, 1986.

506. Panin A.N., Malik N.I., Garaev I. Using of the Probiotics in Swine Herds.// Proc. of 13 Congress of the International Pig vets, society, Bangkok, 1994, p. 328.

507. Parker R.B. Probiotics the other half of the antibiotics story.// Anim. Nutrition and Health. 1974. V. 29. P. 4-8.

508. Perdigon G., Alvarez S., Rachid M., Aguero G., Gobbato N. Immune system simulation by probiotics. J. Dairy science, 1995, 78 (7), P. 1597-1606.

509. Perdigon G., De Macias M.E.N., Alvarez S. et al. Effect of perorally administrated lactobacilli on macrophage activation in mice.// Infection and Immunity, 1986.-vol. 53.-№2.-P. 404-410.

510. Perdigon G., Fuller R., Raya R. Lactic acid bacteria and their effect on the immune system //Curr.Issus.Intest.Microbiol. 2001.№2(1). P.27-42.

511. Peria M.M.O., Lee J., Thiele D J. A delicate balance: homeostatic control of copper uptake and distribution//J. nutr. 1999. - V. 129. P. 1251-1260.

512. Pfulek S., SlaninaL. Lysosym//Veter. Med.- 1985.- Vol.30.-№l.-P.21-28.

513. Phillips A. W. Serotonin in the germfree mouse and bacterial inhibition of intestinal serotonin.//Microecol. Terapy, 1984. vol. 14. -P. 637-640.

514. Ploom V., Ling K. Veiste vereseerumi mikroelementide sisalduse ja ensuumi-aktiivsuste vahelisest seosest / Loomakasvatus. -Tallinn, 1994. N 65. - S. 9296.

515. Porter J.R., Rettger L.F. Influence of diet on the distribution of bacteria in the stomacn, small intestine and cecum of the white rat// J.Infect.Dis 1940.- v. 66.-P. 104-110.

516. Predki P.F., Sarkar B. Cooperative interaction of oestrogen receptor "zinc finger" due polypeptides on DNA binding// Biochem J. 1995. - V. 305. Pt. 3. P. 805-810.

517. Ranken R., Wilson R., Bealmer P. Increased turnover of intestinal mucosal cell of germfree induced by cholic acid.// Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 1971. — vol. 138.- P. 361-366.

518. Rao M.S., Yeldandi A.V., Subbarao V., Reddy J.K. Role of apoptosis in copper deficiency-induced pancreatic involution in the art // Am. J. of Pathol. -1993.-V. 142. P. 1952-1957.

519. Retsky K.L., Freeman M.W., Frei B. Ascorbic acid oxidation product(s) protect human low density lipoprotein against atherogenic modification // J. Biol. Chem. — 1993. —268. —P. 1304-1309.

520. Rink L., Kirchner H. Zink-Altered immune function and cytokine production J. Nutr. 2000. - V. 130. P. 1407S-1411S.

521. Roediger W.E.W.// In:"Microbial Metabolism in the Digestive Tract (ed.Hill M.J.), 1986, 201 -211.

522. Rojhani A., Kies C.V. Selected nutrient intakes and blood serum mineral concentrations of elderly humans fed regulars and sweet acidophilus milks// J.Nutr.Elder., 1994, v. 13, № 3.

523. Rolfs A., Hediger M.A. Metal ion transporters in mammals: structure, function and pathological implications//.!. Physiol. 1999. - V. 518. -№ 1. P. 1-12.

524. Rowland I. Modification of gut flora metabolism by probiotics and oligosaccharides.// In: Old Herbon University Seminar Monograf. № 8. Probiotics: Prospects of use in Opprtunistic Infections/ Eds. R. Fuller, P.J.Heidt, D. Van der Waaij. -1995.

525. Ruchim M.A., Makino D., Zarling E.J. Volatile fatty acids production from amino acids degradation by human fecal suspesions.// Gastroenterol., 1984. -vol. 86.-P. 254-256.

526. Sakomoto K., Konishi K. Antitumor effect of normal intestinal microflora on ehrich ascites tumor.// Jpn.J.Cancer. Rev. (Gann), 1988. vol. 79. - P. 528536.

527. Salminen S, Isolauri E, Onnela T. Gut flora in normal and disordered states. Chemotherapy. 1995,41 (suppl.l):5-15.

528. Salmon R.A., Farias R.N. Microcin 25, a novel antimicrobial peptide produced by Escherichia coli // J. Bacteriol. 1992. V. 174. № 22. P. 7428-7435.

529. Sankari S. Analytical problems concerning glutatione peroxidase // Norve-gian J. of Agric. Sciences Supplement. 1993. - № 11. - P. 75-78.

530. Santavirta J., Harmoinen A., Karvonen A.L., Matikainen M. //In: Diseasese of the Colon and Rectum, 1991, v.34, N2, 115-118

531. Sarcar B. Metal protein interactions // Prog. Food Nutr. Sci. 1987. - V. 11.-№314.-P. 363-400.

532. Savage D.C. The normal human microflora composition.// In.: The regulatory and protective role of the normal microflora (eds. Grubb R. et al.). M-Stocton Press, New York, 1989.

533. Sawada H., Furushiro M., Hiral K. et al. Purification and characterization of an antihypertensive compound from Lactobacillus casei // Agric. Biol. Chem. 1990. V. 54. P. 3211-3216.

534. Schell M.A., Karmirantzou M., Snel B. et al. The genome sequence of Bifidobacterium longum reflect its adaptation to the human gastrointestinal tract. Proc.Natl.Sci.USA. 2002. Vol. 99. № 22. P. 14422-14427.

535. Schepach W. The contribution of the large intestine to blood acetate in man.// Clin. Sci, 1991.-vol. 80.-P. 88-90.

536. Schwartz H.G. et all. The effect of dietary energy concentrat and age on the lisine requirement of growing chicks.// J. of Nutrition, v. 65, 1958, p. 25.

537. Scott D. Antimicrobial enzymes.// Food Biotechnology, 1988/89. vol.2. - № 2.-P. 25-28.

538. Scott T.M., Tucker K.L., Bhadelia A. et al. Homocysteine and B vitamins relate to brain volume and white-matter changes in geriatric patients with psychiatric disorders. //Am.J.Geriatr.Psychiatiy. 2004. -N. 12. -P.631-638.

539. Secor C.K., Ascione R., Zweig R.H. Hidrogen production by non- phtosyn-hetic bacteria.// Int. J. Hydrogen Energy, 1985. vol. 10. - № 4. - P. 227-231.

540. Sergeev A.G. The mechanism of interaction of ceruloplasmin with superoxide radicals. Int JBiochem 1993; (11): 1549-54.

541. Shankar A.H., Prasad A.S. Zinc and immune function: the biological basis of altered resistance to infection // Am. J. Clin. Nutr. 1998. - V. 68 (suppl.). P. 447-463.

542. She Q.B., Huang J.S., Mukhcrjee J.J., Crilly K.S., Kiss Z. The possible mechanism of synergistic effects of ethanol, zinc and insulin on DNA synthesis in NIH 3T3 fibroblasts. // FEBS Lett. 1999. - V. 460. - № 2. P. 199-202.

543. Shenderov B.A., Mitrokhin S.D., Zaslavskaya P.L. The effect of antibiotics on excretion of different metabolites in the faeces of rats.// Microecol. Therapy, 1990.-vol. 20.-P. 183-186.

544. Shils M.E., Olson J.A., Shike M. (ed). Modern nutrition in health and disease. -Philadelphia, Baltimore, Hong Kong, London, Munich, Sydney, Tokyo: A Waverly Company. 1994. - V. 1. P. 112-286.

545. Slater T.F. Free-radicals mechanisms in tissue injury. J Biochem 1984; 222(1): 1-15 (84 ref.).

546. Smith H. Virulence determinants of Escherichia coli: present knowledge and questions// Can. J. Microbiol.- 1992.- V.38.- P.747-752.

547. Smith J.C, Soares J.H. Minerals.- In: The Germ-free animal in biomedical Research (eds. Coates M.E., Guatafsson B.E.), 1984.

548. Sorensen M.B., Bergdahi I.A., Hjollund N.H.I., Bonde J.P.E., Stoltenberg M., Ernst E. Zinc, magnesium and calcium in human seminal fluid: relations to other semen parameters and fertility // Mol. Hum. Reproduct. 1999. - V. 5. -№4. P. 331-337.

549. Spring S.L., Wilkinson W.S. The influence of dietary protein and energy level on body composition of broilers.// Poultry Science, v. 36, 1957, p. 1159.

550. Stahl J.L., Greger J.L., Cook M.E. Zinc, copper and iron utilization by chicks fed various concentrations of zinc//Br. Poult. Sci.- 1989.- V.30.-№ 1. P. 123134.

551. Stocker R., Frei B. Endogenous antioxidant defences in human blood plasma. In: Sies H. ed. Oxidative stress: oxidants and antioxidants. London: Academic Press. — 1991. — P.213-243.

552. Stocks J. Studies of the anti-oxidant component of humen serum and red cell: Ph D thesis. University of London, 1982.

553. Stocks J., Gutteridje J.H., Sharp R., Dormandy T./ Assay using brain ho-mogenate for measuring the antioxidant activity of biological fluids// Clin. Sci. Mol. Med. 1974. V.47, (3) .P. 215-222.

554. Strocchi A., Levitt M.D. Maintaining intestinal H2 balance: credit the colonic bacteria.//Gastroenterology, 1992.-vol. 102.-P. 822-825.

555. Sumi Y., Arakawa M., Kanzaki M., Miyakawa M. Stadies on utilization of florasynthesizes vitamin B1 , using germfree rats.// Jap J. Germfree, 1972. — vol. 2.-№2.-P. 417-421.

556. Swanson S.P., Helaszek C., Buck W.B. et all. The role of intestinal microflora in the metabolism of trichothecene mycotoxins.// Food Chem. Toxicol., 1988. vol. 26.- № 10. - P. 403-407.

557. Tanner M.S. Role of copper in Indian childhood cirrhosis // Am. J. Cli. Nutr. -1998. V. 68 (suppl.). P. 1074S-1081S.

558. Tannock G.W. Molecular assessment of intestinal microflora. Am.J.Clin.Nutr.2001. Vol. 73(suppl). P.410-414.

559. Tannock G.W. Probiotics. A Critical Review. Horizon Sci.Press,Norfolk, England. 1999.

560. Tannock G.W. The normal microflora: new concepts in health promotion.// Microbiol. Sciences. 1988. V. 5. P. 4-8.

561. Tazume S., Umehora K., Matsuzama H. et al. The effect of microbial statys and food restriction on longevity of mice.// Abstr. XI Intern. Symp. on Gnoto-biology. Belo-Horizonte, Brasil, 1993. - June 6-10.

562. Teraguchi S., Ono J., Kiyosawa I. Vitamin production by Bifidobacteria originated from human intestine.// JJpn.Soc.Nutr.Food Sci., 1984. vol. 37. -P. 114-117.

563. Toshio M., Toshihiro Y., Akihiro M. et al. Antimicrobial activités of organic acids determined by minimum ingibitory concentrations at different pH ranged from 4,0 to 7,0.// J.Jap.Soc.Food Sci. Technol., 1994. vol. 41. - № 10.-P. 603-606.

564. Troskot B., Simicevic V.N., Dodig M., Rotkvic I., Ivankovic D., Duvnjak I. The dynamics of endogenous zinc in different animals models gastroduodenal ulceration // Acta Med. Croatica. 1996. - V. 50. - № 4-5. P. 193-197.

565. Troskot B., Simicevic V.N., Dodig M., Rotkvic I., Ivankovic D., Duvnjak I. Endogenous zinc concentrations in cystamine-induced duodenos in the rat // Biometals. 1996. - V. 9. - № 4. P. 371-375.

566. Tsuda T., Ohnishi N., Tsuda M., Yamamura M. Fecal anarexigenic substance (FS-T) and feeding of conventional animal.// J. Germfree Life Gnotobiol.,1989.-vol. 19.-P. 312-315.

567. Tsuda T., Tsuda M., Yamamura M., Ohnishi N. Regulation of appetite and gastrointestinal microflora.// J.Germfree Life Gnotobiol., 1992. vol. 22.-№ 1.

568. Uchida K. Bile acid metabolismand intestinal bacteria.// J. Germfree Life Gnotobiol., 1992.-vol. 22. № l.-P. 490-491.

569. Ueno K., Ninomiya K., Watanabe K. et al. Intestinal anaerobes and ammonia production.//J. Germfree, 1975. vol. 5. - № l.-P. 561-563.

570. Ukai M., Okumura K., Itatsu T., Ito M. Studies of the gastro-entero-pancreatic hormones in germfree and conventional rats.// J. Germfree, 1979. vol. 9. - № 2.- P. 732-735.

571. Umehara K., Tasume S., Hashumoto K., Sasaki S. Analisis of the increased reproduction in contaminated germfree mice by bacteria.// J. Germfree Life Gnotobiol., 1991.-vol. 21.-№2.-P. 506-509.

572. Uribe A., Jaramillo E., Midtvedt T. Cell kinetics of the proximal jejunal epitelium in germfree rats.// Abstr. X Intern. Supos. Gnotobiology. Leiden,1990.

573. Ushijima T., Seto A. Selected fecal bacteria and nutrients essential for antagonism of Salmonella typhimurium in anaerobic continuous flow cultures.// J. Med. Microbiol., 1991. vol. 35. - P. 97-99.

574. Vallee B.L., Falchuk K.H. The biochemical basis of zinc physiology // Physiol. Rev. 1993. - V. 73. P. 79-118.

575. Van den Berghe DM United States Patent. 2002. No 6479050

576. Van der Waaij D. Evidence of immunoregulation of the composition of intestinal microflora and its practical consequences.// Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 1988. vol. 7. - P. 362-367.

577. Van Gylswyk N.O., Schwartz H.M. Microbial ecology of cellulose and hemi-cellulose metabolism in gastrointestinal ecosystems.// In.: Curr. Perp. Microb. Ecology./ Eds. C.A. IClug, M.A. Reddy. ASM, Washington DC, 1984.

578. Vogt J.R., Lamm-Kolonko L., Renz P. Biosynthesis of vitamin B12 in anaerobic bacteria. Experiments with Eubacterium limosom and D-erythrose 14c-labeled in different position.// J. Biochem., 1988. vol. 174. - № 4. - P. 1317-1320.

579. Wang Y.T., Suidan M.T., Pfeffer J.T. Anaerobic biodégradation of indole to metane.// Appl. Environ. Microbiol., 1984. vol. 48. - № 5. - P. 1242-1246.

580. Watanabe D.S.A., Michelin L.A., Montelli A.C. Urinary tract infections by Escherichia coli correlation of virulence, serogroups and clinical characteristics// Rev. bras, patol. clin.- 1991.- V.27.- №4.- P. 111-117.

581. Watzke H.J. // Trends Food Science & Technology, 1998, v.9, 320-327

582. Wellinghausen N. Immunobiology of gestational zinc deficiency // Br. J. Nutr. -2001. V. 85 (suppl 2). P. S81-S86.

583. Wellinghausen N., Rink L. The significance of zinc for leukocyte biology // J. Leukoc. Biol. 1998. - V. 64. -Jfe 5. P. 571-577.

584. Whittaker P. Iron and zinc interactions in humans // Am. J. Clin. Nutr. 1998. -V. 68 (suppl). P. 442S-446S.

585. Wikstrom A., Berglund H.M., Hambraeus C., van den Berg S., Hard T. Conformational dynamics and molecular recognition: back dynamics of the estrogen receptor DNA-binding domain // J. Mol. Biol. 1999. - V. 289. - № 4. P. 963-979.

586. Wostmann B.S., Snyder D.L., Johnson M. Metabolic effect of the germfree state in the adult diet-restricted rat.// In.: Abstr. X Sumpos. Gnotobiol. Leiden, 1990.

587. Woszczyk J., Karasinski D., Bielinski K. Wplyn nieku i intensywnosci zy-wierina nicktore weskozniki hematogiczne krwi bro jlerow gesich. // Rocz. naukzootechn.-1981.-V. 8. № 1.-P. 41-48.

588. Wright C.B., Lee H.-S., Paik M.C. et al. Total homocysteine and cognition in a tri-ethnic cohort. //Neurology. 2004. - T.63. - P.254-260.

589. Yamamoto S., Tsukamoto T., Teri A. et al. Persistent bacteriuria caused by uropathogenic Escherichia coli// Urol. Int.- 1996.- V.57 (2).- P.89-92.

590. Yamashoji S., Kajimoto G. Antioxidant effect of ceruloplasmin on microsomal lipid peroxidation. FEBS Lett 1993; 152(2): 168-70.

591. Yang L., Akao T., Kobashi K., Hattory M. A sennoside-hydrolyzing b-glucosidase from Bifidobacterium sp. Strain SEN is inducible.// Biol. Pharm. Bull, 1996.-vol. 19. -№5.-P. 153-155.

592. Yeh K.Y, Yeh M, Watkins J.A, Rodrigues-Paris J, Glass J. Dietary iron induces rapid changes in rat intestinal divalent metal transporter exporter expression // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2000. - V. 279. - № 5. P. G1070-G1079.

593. Yokoyama K, Araki S, Sato H, Aono H. Orcadian rhythms of seven heavy metals in plasma, erythrocytes and urine in men: observation in metal workers // Ind. I lealth. 2000. - V. 38. -№ 2. P. 205-212.

594. Yu J, Wessling-Resnick M. Influence of copper depletion on iron uptake mediated by SFT, a stimulator of Fe transport // J. Biol. Chem. 1998. - V. 273. -V. 12. P. 6909-6915.

595. Zalewski P.D. Zinc and immunity: implications for growth, survival and function of lymphoid cells // J. Nutr. Immunol. 1996. - V. 4. P. 39-80.

596. Zhou B., Gischier J. hCTRl: a human gene for copper uptake identified by complementation in yeast // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1997. - V. 94. P. 7481-7486.

597. Zulfiqar A.B., Nizami Sh,Q., Izani Z. Zinc supplementation in malnourished children with persisnet diarrhea in Pakistan // Pediatrics. 1999. - V. 103. - № 4. P. 1-9.

Информация о работе

Герасименко, Вадим Владимирович
доктора биологических наук
Оренбург, 2008
ВАК 03.00.13

Диссертация

Обмен веществ и продуктивные качества гусей при использовании пробиотиков - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему Обмен веществ и продуктивные качества гусей при использовании пробиотиков ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Автореферат диссертации по теме "Обмен веществ и продуктивные качества гусей при использовании пробиотиков"

Содержание диссертации, доктора биологических наук, Герасименко, Вадим Владимирович

Введение Диссертация по биологии, на тему "Обмен веществ и продуктивные качества гусей при использовании пробиотиков"

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Герасименко, Вадим Владимирович

Библиография Диссертация по биологии, доктора биологических наук, Герасименко, Вадим Владимирович, Оренбург

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Обмен веществ и продуктивные качества гусей при использовании пробиотиков
ВАК РФ 03.00.13, Физиология