Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Генетика гаметофит-спорофитных взаимодействий у свеклы (Beta vulgaris L.)

ВАК РФ 03.00.15, Генетика

Содержание диссертации, доктора биологических наук, Коновалов, Александр Алексеевич

Общая характеристика работы 4- И

Глава 1. Обзор литературы 12

Введение

1.1. Генетика гаметофитного поколения

1.2. Генетика комбинационной способности

1.3. Частная генетика свеклы

Введение Диссертация по биологии, на тему "Генетика гаметофит-спорофитных взаимодействий у свеклы (Beta vulgaris L.)"

Актуальность темы исследования

Генетика систем размножения растений является одним из классических разделов экспериментальной биологии. Различные проблемы этого направления важны как в фундаментальном, так и в прикладном аспектах. Эволюция высших растений представляет собой в значительной степени эволюцию репродуктивных систем. Наиболее эволюционно продвинутыми и в то же время наиболее многообразными являются репродуктивные системы цветковых растений. Уникальное, характерное только для цветковых разнообразие генеративных признаков, и, соответственно, систем скрещивания, обеспечивает цветковым растениям господствующее положение в современной флоре.

Селекция растений (особенно в двадцатом столетии) также в значительной степени направлена на признаки репродуктивной сферы. Примечательно, что это относится и к тем культурным растениям, у которых хозяйственно полезную часть составляют исключительно вегетативные органы (корне- и клубнеплоды, листовые культуры, и др.). С экономической точки зрения получение высококачественных семян оказывается зачастую более важной задачей, чем получение непосредственно потребляемой части сельскохозяйственного растения.

В связи с этими проблемами генеративные признаки растений интенсивно изучаются с момента возникновения экспериментальной генетики. Однако генетические исследования касались в основном «видимых» признаков, таких как закладка и развитие генеративных органов (цветков и соцветий), сроки цветения, гаметная и семенная фертильность. Сравнительно с этими признаками, гены, контролирующие процессы опыления и оплодотворения изучены гораздо слабее. Зачастую дело ограничивается феноменологическим описанием процесса образования гамет и зигот. Генетические основы опыления и оплодотворения у цветковых растений изучены недостаточно и исследования в этой области являются актуальным направлением современной биологии.

Жизненный цикл высших растений состоит из двух чередующихся фаз: гаметофитной и спорофитной. Им соответствуют разные состояния одного и того же генома - гаплоидное (п) и диплоидное (2п). В процессе эволюции высших растений отчетливо прослеживается эволюционная тенденция к уменьшению размеров и времени жизни гаметофита. У цветковых растений гаметофитное поколение редуцировано до пыльцевого зерна и пыльцевой трубки (мужской гаметофит) и восьмиядерного зародышевого мешка (женский гаметофит).

С морфологической точки зрения мужской гаметофит выполняет чисто механическую функцию: пыльцевое зерно переносит мужские гаметы (спермин) от растения-опылителя к материнскому растению, а пыльцевая трубка доставляет спермин из пыльцевого зерна, попавшего на воспринимающую поверхность рыльца пестика, в семяпочку.

Однако редукция гаметофита цветковых растений по размерам и времени жизни вовсе не означает редукции генетической. Гаплоидный геном мужского гаметофита принимает активное участие в процессе опыления и оплодотворения. Об этом свидетельствуют данные о гаметофитной экспресии генов: из 30 тыс. генов цветкового растения более 2/3 экспрессируются в пыльцевых зернах (Ottaviano, Mulcahy 1989; Honnaza, Herrero 1992).

Большинство из них относится к генам с перекрывающейся экспрессией, которые функционируют как в спорофите, так и в гаметофите. Существуют, однако, гены с исключительно гаметофитной экспрессией, которые в спорофите "молчат". Лишь небольшое число таких генов описано к настоящему времени -гены гаметофитной несовместимости, гаметофитной стерильности, некоторые гаметные летали.

Слабая изученность гаметофитных генов в значительной степени связана с методическими проблемами. Методы выявления и локализации гаметофитных генов разработаны недостаточно. Лишь немногие из них имеют собственный фенотип на уровне пыльцевых зерен. Гораздо чаще гаметофитные гены проявляют свое действие, нарушая равновероятное объединение гамет и вызывая отклонения в расщеплении всех сцепленных с ними локусах. Анализ таких отклонений позволяет обнаружить гаметофитный ген и локализовать его. При этом, однако, возникают значительные методические трудности, вызванные особенностями проявления гаметофитных генов. Методы генетического анализа и локализации гаметофитных генов разработаны недостаточно, и работа в этом направлении, в том числе и математическое моделирование, представляет несомненный научный интерес.

Рост и развитие мужского гаметофита происходит в тканях пестика - специализированного органа для улавливания и отбора мужских гаметофитов. Как правило, мужские гаметофиты попадают на рыльце пестика в огромном избытке по отношению к числу семяпочек. Таким образом создаются идеальные условия для конкуренции мужских гамет и селективного (выборочного) оплодотворения. При этом селективной средой является ткань пестика, в которой происходит рост и развитие пыльцевых трубок. В процессе роста пыльцевых трубок происходит интенсивный биохимический обмен между ними и окружающими диплоидными клетками проводящих тканей столбика (КгоЬ, НеЬрег, 1974; НезЬр-Наптзоп, НезЬр-Нагпзоп, 1981; Ковалева 1991, 1992; Вишнякова 1994).

Рост пыльцевой трубки (то есть развитие мужского гаметофита) не является полностью автономным и требует участия веществ, поступающих из тканей пестика (МикаЬу, МикаЬу, 1983). Движение вегетативной и генеративных клеток в пыльцевой трубке, а также расхождение спермиев в синергиде происходит не пассивно (с током цитоплазмы), а активно - по микрофиламентам, с участием актино-миозинового механизма и с затратой АТФ (обзор: Васильев, 1996 (29). Таким образом, поставляя пластические и энергетические вещества. необходимые для роста и развития мужского гаметофита, пестик формирует селективную среду, на которой проявляется индивидуальная приспособленность гаплоидных генотипов мужских гаметофитов.

Кроме чисто трофических функций, взаимодействие клеток гаметофита и спорофита носит характер генотипического «узнавания» (recognition), в результате которого происходит выбор оптимального брачного партнера и формирование потомков, сочетающих в себе типичность вида и нетипичность особи.

Разумеется, первым этапом такого узнавания является видовая идентификация - ведь на рыльце пестика попадает и пыльца других видов, а также микроорганизмы, споры грибов и т.д. Следующим важным этапом является самонесовместимость - специфический механизм дискриминации собственных мужских гамет, функционирующий у большинства обоеполых видов растений. Наиболее широко распространенной и часто встречающейся является гаметофитная система самонесовместимости, при которой тип реакции пыльцевой трубки и пестика (совместимость или несовместимость) определяется генотипом гамето-фита. Спорофитная несовместимость встречается лишь в нескольких семействах и, как показано в последние годы, является на самом деле спорофитно-гаметофитной, т.к. в развитии реакции несовместимости участвуют продукты гаметофитной экспресии. Система внутривидовой самонесовместимости предотвращает инбридинг, обеспечивает перекомбинацию генов и поддержание необходимого уровня полиморфизма в популяциях.

Межвидовая и внутривидовая несовместимость являются лишь наиболее «заметными» функциями гаметофит-спорофитного взаимодействия. К настоящему времени накоплено достаточно фактов, что даже при совместимом опылении происходят сложные процессы конкуренции мужских гамет, имеющие значительные онтогенетические и популяционно-генетические последствия.

В ходе наших исследований по частной генетике свеклы (Коновалов, 1988) были получены результаты, свидетельствующие о значительном влиянии гаметного отбора на наследование отдельных признаков и на ряд популяцион-но-геиетических параметров в инбредных популяциях свеклы. Сопоставление полученных результатов с литературными данными позволяет предположить, что в основе этих эффектов лежат общие для цветковых растений процессы взаимодействия гаплоидного мужского гаметофита и диплоидных тканей пестика материнского растения при опылении и оплодотворении. Изучение генетических механизмов, онтогенетических и популяционно-генетических последствий гаметного отбора, а также возможного эволюционного значения гамето-фит-спорофитных взаимодействий составляет предмет настоящего исследования.

Цель и задачи исследования

Целью данной работы является изучение генетических механизмов взаимодействия гаметофита и спорофита у свеклы (Beta vulgaris L.), а также анализ генетических последствий такого взаимодействия в эволюционном и прикладном аспектах.

В соответствии с этим были поставлены следующие задачи:

• разработка методов анализа гаметофитных генов, включая генетические модели, описывающие расщепление по маркерным генам, сцепленным с гаме-тофитными генами;

• поиск маркерных генов, сцепленных с гаметофитными генами, у свеклы (Beta vulgaris L.);

• использование сцепленных маркеров для идентификации и картирования га-метофитных генов и изучения характера их действия;

• проведение повторяющегося гаметного отбора в сторону увеличения частоты мутантного полулетального гена;

• изучение последствий длительного гаметного отбора в инбредной популяции свеклы:

- влияние гаметного отбора на жизнеспособность мутантных гомозигот;

- влияние гаметного отбора на рекомбинацию;

- изучение комбинационной способности генотипов, полученных путем гаметного отбора;

- изучение проявления гетерозиса у гибридов р1 , полученных в результате гаметного отбора;

• обсуждение возможного эволюционного и прикладного (селекционного) аспектов гаметного отбора и гаметофитно-спорофитных взаимодействий.

Научная новизна и практическая ценность работы

Получены новые сведения по частной генетике свеклы - установлены новые гены, выявлены три новые группы сцепления. Впервые у растений обнаружен гаметофитный вариант фермента, являющийся продуктом посттрансляционной модификации основного ферментного белка.

Изучено разнообразие сортов-популяций и гибридов сахарной свеклы по частоте встречаемости аллельных вариантов ферментов. На основе полученных данных разработан способ идентификации сортов сахарной свеклы по частотам аллелей ферментных локусов, АС 1672999, 1989 г. (в соавторстве).

Изучены механизмы гаметного отбора в группе сцепления маркерных генов АёЬ 1-1(1112 Показано, что на расщепление генов в данной группе сцепления оказывают влияние не менее двух основных гаметофитных факторов, фланкирующих маркерный сегмент.

Разработаны генетические модели гаметного отбора по одному, двум и большему числу генов, в последнем случае предложено использовать интегрированный показатель В08 (степень гаметного отбора).

Впервые проведен эксперимент по многократному гаметному отбору в сторону увеличения частоты мутантного полулетального гена А(1Ы-8. Показано, что отбор по частоте приводит к существенным генетическим последствиям: восстановление жизнеспособности мугантных гомозигот и увеличение рекомбинации в маркерном сегменте АёЫ-ШЪ!, при одновременном уменьшении жизнеспособности нормальных гомозигот.

Установлено, что восстановление жизнеспособности мутантных гомозигот происходит в два этапа, сопровождающиеся изменениями комбинационной способности.

Разработанный в данном исследовании метод гаметного отбора на увеличение частоты полулетального мутантного аллеля может быть использован для получения генотипов свеклы с повышенной комбинационной способностью.

Рассмотрены эволюционные аспекты гаметофит-спорофитных взаимодействий у высших растений. Сопоставление собственных и литературных данных позволяет выдвинуть предположение, что проблема происхождения цветковых растений может быть сведена к происхождению микрогаметофитной экспрессии генов.

Место и время исследований

Работа выполнена в Институте цитологии и генетики СО РАН (г. Новосибирск) в 1982-1998 гг.

Апробация работы

Результаты исследований были представлены на следующих конференциях и совещаниях: «Адаптация и рекомбиногенез у культурных растений» (Кишинев, 1982); «Биологические основы повышения продуктивности сахарной свеклы» (Киев, 1983); «Физиолого-биохимические и биофизические основы гетерозиса и технологии гетерозисной селекции растений» (Харьков, 1983); «Экологическая генетика растений и животных» (Кишинев, 1984); «Физиолого-генетические основы интенсификации селекционного процесса» (Саратов, 1984); «Рекомбиногенез: его значение в эволюции и селекции» (Кишинев, 1986); «Использование гетерозиса в практической селекции сельскохозяйственных культур» (Киев, 1986); «Экологическая генетика растений и животных» (Кишинев, 1987); «Онтогенетика высших растений» (Кишинев, 1989); «ФизиоИ лого-биохимические основы продуктивности сахарной свеклы» (Киев, 1989); «Изогенные линии и генетические коллекции» (Новосибирск 1993); 1-е Международное совещание по молекулярно-генетическим маркерам растений (Киев, 1994); 1-й Всероссийский Съезд Общества Генетиков и Селекционеров (Саратов 1994); 50th SEB Simposium "Unifying Plant Genomes: Comparisons, Conservation and CoUinearity" (Cambridge, 1995); SEB Annual Meeting (Lancaster, 1996); 5th International Wheat Conference (Ankara, 1996); «Наука - агропромышленному комплексу Сибири» (Абакан 1996), а также на семинарах и отчетных сессиях ИЦИГ СО РАН в 1988-2001 г.г.

Благодарности

Автор выражает глубокую признательность коллегам, оказавшим помощь при проведении исследований и обсуждении полученных результатов: Н.С. Агафонову, Т.П. Жужжаловой, Ю.Н. Шаврукову, A.B. Мглинцу, З.А. Осиповой, С.К. Василенко, С.Ф. Ковалю, B.C. Ковалю, H.H. Гончарову, Т.Н. Аксенович, О.Г. Смирновой, Н.П. Калининой, А.Э. Келю.

Публикации

По результатам исследований опубликованы 47 печатных работ, из них одна монография (в соавторстве), 21 статья в журналах и 6 статей в сборниках.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, шести глав, заключения, выводов и списка цитированной литературы. Экспериментальная часть содержит 53 таблицы и 20 рисунков. Общий объем 267 машинописных страниц. Список цитированной литературы содержит 409 названий, из них 198 на русском языке.

Заключение Диссертация по теме "Генетика", Коновалов, Александр Алексеевич

Выводы

1. Обнаружены и изучены новые гены свеклы со спорофитной, спорофит-гаметофитной и гаметофитной экспрессией: Adhl и Adh-P (алкогольдегидро-геназа), Gdh2 (глутаматдегидрогеназа); Тс (окраска прицветников), т2 (раз-дельноплодность). Gal (гаметофитный фактор). При анализе сцепления этих генов между собой, а также с другими известными генами свеклы установлены три новые группы сцепления:

1. Gdh2 - Mdh2; 2. - Adhl - Idli2 - (m2) (reo) - Gal; 3. Te - S''

2. По локусам Adhl и Adh-P выявлен функциональный полиморфизм. По обоим генам обнаружены аллельные варианты, влияющие на свойства спорофита и гаметофита: а) По локусу Adhl аллель F преобладает в популяциях, аллели S и N редкие. Аллель S имеет пониженную экспрессию по сравнению с F, вследствие чего гомозиготы SS частично или полностью гибнут при прорастании семян из-за недостаточной алкогольдегидрогеназной активности. Степень летальности мутантного аллеля Adh-S зависит от средовых и генотипиче-ских факторов. б) Гаметофитный вариант Adh-P экспрессирован только в пыльце и по всей видимости является геном-модификатором, вызывающим посттрансляционную модификацию белка АДГ, продукта гена Adhl. Гаметы, несущие нормальный и модифицированный белок АДГ, различаются по конкурентоспособности. Эти различия зависят от генотипа женского растения-реципиента пыльцы, а также от условий опыления. Присутствие Adh-P у растений снижает псевдосовместимость, то есть способность к самоопылению.

3. Разработаны генетические модели, описывающие расщепление по маркерному локусу, сцепленному с гаметофитным фактором, для ряда конкретных случаев, в частности, в потомствах от группового опыления, а также при комплементарном взаимодействии нескольких гаметофитных генов.

4. В группе сцепления с генами Adhl и Idh2 присутствуют не менее двух гаметофитных генов, и Gal. Гаметофитные гены вызывают гаметный отбор, который в свою очередь вызывает отклонения при расщеплении всех генов, локализованных в данной группе сцепления. Суммарное действие гамето-фитных генов придает мужским гаметофитам собственную приспособленность. Эта приспособленность выражается в вероятности образования зиготы. Приспособленность мужских гаметофитов проявляется на специфической среде - ткани пестика - и, следовательно, зависит от генотипа материнского растения. Среди растений существует полиморфизм по способности селектировать мужские гаметы в том или ином направлении.

5. При проведении семи циклов повторяющегося гаметного отбора, направленного на увеличение частоты мутантного полулетального аллеля Adh-S, обнаружены значительные онтогенетические и популяционно-генетические последствия. Гаметофитный отбор, направленный на увеличение частоты мутантного полулетального аллеля алкогольдегидрогеназы Adhl-S, привел к появлению жизнеспособных мутантных гомозигот SS, начиная с четвертого поколения отбора. Восстановление жизнеспособности при отборе против летали описано в литературе, однако впервые такой результат получен с использованием гаметного отбора.

6. Установлено, что восстановление жизнеспособности мутантных гомозигот происходит в два этапа. Сначала появляются жизнеспособные мутантные гомозиготы с ослабленным («мутантным») фенотипом. Эти растения имеют повышенную комбинационную способность. Затем происходит дальнейшее восстановление фенотипа до почти нормального. При этом дальнейшего увеличения комбинационной способности не происходит, скорее наоборот, наблюдается отчетливая тенденция к ее уменьшению. Полученные данные позволяют заключить, что фактор, именуемый ККГ, срабатывает на определенной стадии процесса восстановления фенотипа, а затем его действие уменьшается или совсем исчезает.

7. Гетерозисный эффект у гибридов мутантных гомозигот выражается в значительной степени на ранних этапах онтогенеза, во время функционирования бескислородного дыхания, ключевым ферментом которого является АДГ. Гибриды мутантных гомозигот имеют повышенную всхожесть, большую длину и массу 7-дневных проростков. В ходе дальнейшей вегетации обнаружены различия по содержанию хлорофилла, которые оказывают дополнительное влияние на конечный показатель гетерозиса - массу корнеплода.

8. Впервые в экспериментах по отбору получено изменение фенотипа нормальных гомозигот. Появление жизнеспособных растений - гомозигот по мутант-ному аллелю S S сопровождается одновременным понижением ряда показателей у нормальных гомозигот FF. Вероятно, геном способен реагировать на отбор как целое, и повышение жизнеспособности одного генотипа достигается за счет каких-то качеств или свойств, отнимаемых от другого генотипа. Возможно, включение механизма компенсации происходит по действием какого-то цис-фактора, влияющего на аллель Adhl, расположенный с ним в одной хромосоме, и не влияющий на аллель в гомологичной хромосоме.

220

9. Обнаружена положительная корреляция между степенью гаметного отбора по локусу АдЫ и коэффициентом рекомбинации между этим локусом и сцепленным с ним локусом ЫЬ2. Усиление рекомбинации в данном сегменте, увеличивая диапазон и спектр рекомбинантных пыльцевых генотипов (гапло-типов), повышает возможности отбора.

10. Впервые обнаружена связь между частотным показателем гена и его фено-типическим проявлением. Увеличение частоты мутантного гены в потомстве отдельных растений приводит к восстановлению мутантного фенотипа до нормального. Механизмом, обеспечивающим такое влияние, вероятно являются гаметофит-спорофитные взаимодействия, возникающие во время опыления, а специализированной структурой, обеспечивающей такое взаимодействие, является ткань пестика цветкового растения.

11. На основе сопоставления полученных результатов с литературными данными выдвинута гипотеза о ведущей роли гаметофит-спорофитных взаимодействий в происхождении и дальнейшей эволюции цветковых растений.

Библиография Диссертация по биологии, доктора биологических наук, Коновалов, Александр Алексеевич, Новосибирск

1. Агафонов Н.С., Агафонова Г.А., Коновалов A.A. Выращивание и генетическое маркирование изолированных тканей сахарной свеклы // Пути повышения продуктивности и качества сахарной свеклы. Воронеж. 1983. С. 23-28.

2. Агафонов Н.С., Богомолов М.А., Коновалов A.A. Генетическое маркирование сахарной свеклы в селекции на гетерозис // Физиолого-генетические основы интенсификации селекционного процесса. Саратов. 1984. С. 56-57.

3. Агафонов Н.С., Жужжалова Т.П., Левитес Е.В., Федулова Т.П., Коновалов A.A. Способ идентификации сортов сахарной свеклы. АС 1672999. 1989.

4. Агафонов НС, Коновалов A.A. Изоферментный контроль генетической и физиолого-биохимической систем сахарной свеклы // Биологические основы повышения продуктивности сахарной свеклы. Киев. 1983. С. 86.

5. Агафонов НС, Коновалов A.A. Изоферменты как маркеры генетических рекомбинаций у сахарной свеклы // Экологическая генетика растений и животных. Кишинев: Штиинца, 1984. С. 30

6. Агафонов НС, Коновалов A.A. Экспрессивность и адаптивность гена Mod-1 у сахарной свеклы //Адаптация и рекомбиногенез у культурных растений. Кишинев: Штиинца, 1982. С. 97-98.

7. Агафонов Н.С., Коновалов Н.С. Экспрессия генов Modi и Mod2 в онтогенезе сахарной свеклы // Сель.-хоз. биол. 1984. №7. С. 31-34.

8. Антонов A.C. Происхождение основных групп наземных растений // Российская наука: Выстоять и возродиться. М.: Наука. Физмалит. 1997. С. 344-350.

9. Ю.Арапова ТС. О возможности апомиксиса у сахарной свеклы путем заимствования его элементов у диких видов // Генетика сахарной свеклы. Новосибирск: Наука (Сиб от-ние). 1984. С 171-177.

10. И.Балашова H.H., Валеева З.Т., Игнатов АН., Суслова Л.В., Ущаповский У.В., Жученко A.A., Даус В.В. К вопросу о роли микрогаметофита в адаптации растений к эконише возделывания // Сель.-хоз. биол. 1994. №3. С. 59-64.

11. Балков И.Я. Селекция сахарной свеклы на гетерозис. М.: Россельхозиздат, 1978, 166 с.

12. Батыгина Т.Б., Долгова O.A., Коробова С.Н. Поведение пыльцевых трубок при внутри- и межвидовой гибридизации // ДАН СССР. 1961. Т. 136. № 6. С. 1482-1485.

13. И.Беляев Д.К. Дестабилизирующий отбор // Развитие эволюционной теории в СССР (1917-1970 гг.) / СР. Микулинский, Ю.И. Полянский, ред. Л.: Наука. 1983. С. 266-277.

14. И.Беляев Д.К., Евсиков В.П., Шумный В.К. Генетико-селекционные аспекты проблемы моногибридного гетерозиса // Генетика. 1968. Т.4. №12. С. 46-62

15. Беляев Д.К., Трут ЛИ. Конвергентный характер формообразования и концепция дестабилизирующего отбора // Вавиловское наследие в современной биологии. М.: Наука. 1989. С. 155-169.

16. Бигон М., Харпер Дж., Таунсенд К Экология. Особи, популяции и сообщества. Т. 1. 1989. М.: Мир. 667 с.

17. Биология и селекция сахарной свеклы. М.: Колос. 1968. 775 с.

18. Болелова З.А., Тихонова В.Г., Лещенко Е.В. О генетических и физиологических особенностях признака цветушности у растений сахарной свеклы // Сель.-хоз. биол. 1984. №10. С. 95-99.

19. Болелова З.А., Тихонова В.Г., Лещенко Е.В., Лесневич Л.А. О создании новой формы сахарной свеклы с однолетним типом развития // Сель.-хоз. биол. 1985. №7. С. 59-62.

20. Буренин В.И. Гены и генетическая коллекция свеклы // Генетика сахарной свеклы. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1984. С. 37-44.

21. Буренин В.И., Гаврилюк И.П. Систематика и филогения рода Beta L. // Тр. по прикл. бот., генет. и селекц. 1982. Т. 72. Вып.З. С.3-13.

22. Вавилов Н.И. Теоретические основы селекции. М.: Наука. 1987. 512 с.

23. Вайсман Н.Я. Влияние генетических факторов и внешних условий на выражение признака несовместимости (псевдосовместимости) // Генетика сахарной свеклы. Новосибирск: Наука (Сиб от-ние). 1984. С. 108-120.

24. Вайсман Н.Я. Популяционно-генетическое изучение несовместимости у сахарной свеклы. Дисс. . канд.биол.наук. Новосибирск. 1981. 159 с.

25. Васильев А.Е. О механизме движения спермиев // Бот. жури. 1996. Т.81. №9. С. 1-9.

26. Васильева Л.А. Генетические, онтогенетические и цитогенетические особенности детерминации количественных признаков у дрозофилы. Дисс. . докт.биол.наук. Новосибирск. 1988. 380 с.

27. Вепрев С.Г. Фитоценогенетический анализ продуктивности посевов сахарной свеклы {Beta vulgaris L.). Дисс. . канд.биол.наук. Новосибирск. 1983. 225 с.

28. Вепрев С.Г., Дударева H.A., Малецкий СИ., Мглинец A.B. Женская двудомность: генетические системы контроля стерильности пыльцы // Генетический контроль размножения сахарной свеклы. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1991 С. 114-159.

29. Вербицкая Т.Г., Сиволап Ю.М., Соколов В.М. Генетический полиморфизм линий кукурузы и его связь с продуктивностью гибридов // Докл. РАСХН. 1997. №4. С. 10-12.

30. Вершинин A.B. О природе генов, формирующих гетерозисный эффект на основе хлорофилльной мутации у гороха и вероятный механизм этого эффекта // Структурно-функциональная организация генома эукариот. Новосибирск: ИЦИГ СО АН СССР. 1979. С. 5-16.

31. Вингедер Э. Классификация транскрипционных факторов эукариот // Мол. биол. 1997. Т. 31. №4. С. 584-600.

32. Вишнякова М.А. Проводниковый тракт пестика // Эмбриология цветковых растений. Т.2. Семя. (Т.Б. Батыгина, ред.). 1994. Санкт-Петербург: Мир и семья. С. 107-113.

33. Войлоков A.B., Фам Тхань Фыонг, Прияткина СП., Салтыковская H.A., Не-мова И.А., Смирнов В.Г. Идентификация и локализация мутаций автофер-тильности у инбредных линий ржи // Генетика. 1994. Т.30. № 8. С. 1057-1064.

34. Воронова Л.П., Сухоржевская Т.П., Реймерс Ф.Э., и др. Изоферментные системы и оценка генетического разнообразия линий кукурузы в связи с их комбинационной способностью // Докл. АН СССР. 1980. Т. 253. № 5. С. 12271232.

35. Гамильтон Д.А., Маскаренхас Дж.П. Специфика генной экспрессии в пыльце // Эмбриология цветковых растений. Т.1. Генеративные органы цветка. (Т.Б. Батыгина, ред.). 1994. Санкт-Петербург: Мир и семья. С. 109-111.

36. Гарифуллина Ф.Ш., Левитес Е.В., Тарасова P.C., Кергель X. Сцепление ло-кусов, контролирующих изоферменты малатдегидрогеназу, фосфоглюкому-тазу и глутаматдегидрогеназу у сахарной свеклы. Препринт. Новосибирск, 1990.5 с.

37. Генетика изоферментов (Л.И. Корочкин, О.Л. Серов, А.И. Пудовкин и др.). Новосибирск: Наука. 1977. 275 с.

38. Генетический контроль размножения сахарной свеклы // СИ. Малецкий, С.Г. Вепрев, Ю.Н. Шавруков, и др. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1991. 168 с.

39. Геодакян В.А. Количество пыльцы как передатчик экологической информации и регулятор эволюционной пластичности растений // Жури. общ. биол. 1978.№5. С. 743-753.

40. Герасимова-Навашина E.H. О гаметофите и об основных чертах развития и функционирования воспроизводящих элементов у покрытосеменных растений // Проблемы ботаники. Вып. Ш. М.-Л.: Изд-во АН СССР. 1958. С. 125167.

41. Гетерозис. (Турбин Н.В., Конарев В.Г., Хотылева Л.В. и др.). Минск: Наука и техника. 1982. 244 с.

42. Голубовская И.Н. Мейоз и гены // Российская наука: Выстоять и возродиться. М.: Наука. Физмалит. 1997. С.275-285.

43. Гончаров Н.П. Локализация генов у мягкой пшеницы. Новосибирск: ИЦиГ СОРАН. 1992. 150 с.

44. Гончаров Н.П., Коновалов A.A. Наследование глюкозофосфатизомеразы, остистости, опушения колоса и типа развития у Aegilops speltoides и Ае. Aucheri II Генетика. 1996. Т. 32. № 5. С. 656-662.

45. Гончаров Н.П., Коновалов A.A., Гайдаленек РФ., Горячковская Т.Н., Цеве-лева О.Н., Пельтек С.Е., Литковская Н.П., Христов Ю.А. Генетическое картирование короткого плеча хромосомы IB сорта мягкой пшеницы Salmon // Генетика. 1997. Т. 33. т. С. 475-481.

46. ГрантВ. Видообразование у растений. М.: Мир. 1984. 528.

47. Гринева Г.М. Регуляция метаболизма у растений при недостатке кислорода. М.: Наука. 1975.280 с.

48. Гуньков Ю.П. Сцепление генов несовместимости с некоторыми сигнальными генами у ржи // Исслед. по отдаленной гибрид, у растений. М. (ВИНИТИ №6505-85 ДЕП). 1985. С. 147-152.

49. Давыденко О.Г., Сычева И.М., Кнатько Е.В. Изоплазматические линии ячменя. Эффект цитоплазм на расщепление // Изогенные линии и генетические коллекции. Новосибирск: изд-во ИЦИГ СО РАН. 1993. С.49-52.

50. Долотий Л.А., Шевцов И.А., Парий Ф.Н. Применение различных тестеров для оценки общей комбинационной способности инбредных линий сахарной свеклы // Цитология и генетика. 1984. Т. 18. Х22. С. 97-100.

51. Жученко A.A., Король А.Б. Рекомбинация в эволюции и селекции. М.: Наука 1985. 400 с.56.3айковская Н.Э., Жужжалова Т.П. Развитие пыльцевых трубок у самофер-тильных линий сахарной свеклы при изоляции // Цитология и генетика. 1976. Т.10.№З.С.57-60.

52. Захаров И.А. Генетические карты высших организмов. М.: Наука. 1979. 158 с.

53. Иорданский A.B., Лутков АН. Цитоплазматическая мужская стерильность у сахарной свеклы // Экспериментальная полиплоидия в селекции растений. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1966. С. 147-150.

54. Кайданов Л.З., Мыльников СВ., Галкин А.П., Иовлева О.В., Кузнецова О.В., Зимина Н.В. Генетические эффекты дестабилизирующего отбора при селекции по адаптивно важным признакам в линиях Drosophila melanogaster II Генетика 1997. Т. 33. № 8. С. 1102-1109.

55. Квасова Э.В. Изучение популяций люцерны по признаку самофертильности. Автореф. дисс. . канд. био л. наук. Новосибирск 1975. 16 с.

56. Кель А.Э., Колчанов H.A., Кель О.В. TRRD: база данных транскрипционных регуляторных районов генов эукариот // Мол. биол. 1997. Т. 31. №4. С. 626636.

57. Кель OB., Кель А.Э., Ромащенко А.Г., Вингендер Э., Колчанов H.A. Композиционные регуляторные элементы: классификация и описание в базе данных Compel // Мол. биол. 1997. Т. 31. №4. С. 601-615.

58. Кимура М. Молекулярная эволюция: теория нейтральности. М.: Мир. 1985. 394 с

59. Ковалева Л.В. Межклеточные взаимодействия в системе пыльца-пестик в прогамной фазе оплодотворения // Усп. соврем, биол. 1991. Т. 111. №5. С.782-796.

60. Ковалева Л.В. Регуляторные механизмы роста пыльцевых трубок // Усп. соврем, биол. 1992. Т. 112. №3. С.373-382.

61. Ковалева Л.В., Мусатова H.A. Рибонуклеазная активность в генеративных органах петунии в связи с формированием механизма несовместимости // Докл. АН СССР. 1975. Т.223. №3. С. 762-765.

62. Коваленко В.И. Генетический анализ стерильных растений и выделение закрепителей ЦМС у сахарной свеклы. Автореф. дисс. . канд. биол.наук. Новосибирск. 1968. 32 с.

63. Коваль B.C., Коновалов A.A. Нарушения в расщеплении маркерных генов у ячменя {Hordeum vulgareL.) // Докл. РАН. 1996. Т.348. №2. С. 279-281.

64. Коваль С.Ф., Тараканова Т.К., Лисицина О.И. Изучение дисомных сибов в потомстве моносомных растений Мильтурум 553 // Докл. РАН. 1993. Т. 331. № 5. С. 647-648.

65. Козо-Полянский Б.М. Курс систематики высших растений. Воронеж: изд-во ВГУ. 1965. 407 с.

66. Колчанов H.A. Регуляция транскрипции генов эукариот: базы данных и компьютерный анализ // Мол. биол. 1997. Т. 31. №4. С. 581-583.

67. Коновалов A.A. Биохимические маркеры в генетике гаметофитного поколения цветковых растений // 1-е Междунар. совещание по молекулярно-генетическим маркерам растений. Киев 1994. С.

68. Коновалов А.А Взаимное расположение Idh2-, Adhl- и S -локусов в третьей группе сцепления у сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) // Генетика. 1990. Т. 26. №9. С. 1604-1609.

69. Коновалов A.A. Гаметный отбор в инбредной популяции сахарной свеклы // Изогенные линии и генетические коллекции. Новосибирск: изд-во ИЦиГ СО РАН. 1993. С. 23-26.

70. Коновалов A.A. Генетические карты свеклы: текущее состояние // 1-й Всероссийский съезд Общества генетиков и селекционеров. Саратов / Генетика. Т. 30 (приложение). Материалы 1-го съезда Вавиловского общ. ген. и селекц. 1994. С. 77.

71. Коновалов A.A. Генетическое разнообразие в роде Beta: признаки, генные карты и перспективы использования // Генетические коллекции растений. Вып. 2. Новосибирск: изд-во ИЦиГ СО РАН. 1994. С. 33-86.

72. Коновалов A.A. Изоферменты в генетических исследованиях селективного оплодотворения и несовместимости у сахарной свеклы. Дисс. канд.биол.наук. Новосибирск. 1988. 142 с.

73. Коновалов A.A. Картирование S-генов у растений // Успехи соврем, биол. 1991 ,111(1): 3-18.

74. Коновалов A.A. О сцепленном наследовании локусов Morl и Gdhl у сахарной свеклы {Beta vulgaris) II Генетика, 1988. 24(10): 1822- 1829.

75. Коновалов A.A. Отбор по аллельным вариантам алкогольдегидрогеназы в инбредных и гибридных потомствах сахарной свеклы // Генетика. 1994. Т. 30. № 7. С. 945-950.

76. Коновалов A.A. Сцепление генов антоциановой окраски и несовместимости у сахарной свеклы // Докл. АН СССР. 1992. Т. 323. №4. С.112-115

77. Коновалов A.A. Сцепленное наследование изоферментов алкогольдегидро-геназы и признака раздельно- сростноцветковости у сахарной свеклы // Генетика. 1992. Т. 28. № 2. С. 123-128

78. Коновалов A.A. Экспрессия структурных генОв алкогольдегидрогеназы в онтогенезе сахарной свеклы // Онтогенетика высших растений. Кишинев: Шти-инца. 1989. С. 35.

79. Коновалов A.A., Агафонов Н.С. Наследование алкогольдегидрогеназы у сахарной свеклы. Полиморфизм по локусу Adhl в сортах-популяциях // Генетика. 1989. Т. 25. № 8. С. 1523-1526.

80. Коновалов A.A., Агафонов Н.С, Малецкий СИ. Генетический контроль ал-когольдегидрогеназы семян сахарной свеклы // Использование гетерозиса в практической селекции сельскохозяйственных культур. Республиканское совещание. Киев. 1986. С.

81. Коновалов A.A., Малецкий СИ. Генетический контроль глутаматдегидроге-назы у сахарной свеклы // Экологическая генетика растений и животных. Тез. 3-й Всес. конф. Кишинев, Штиинца. 1987. С. 137-138.

82. Коновалов A.A., Малецкий СИ. Генетический полиморфизм, наследование и тканевая специфичность алкогольдегидрогеназы у сахарной свеклы // Генетика, 1989,25, 7: 1230-1238.

83. Коновалов A.A., Малецкий СИ. Расщепление по S-локусам при инбридинге у сахарной свеклы // Генетика. 1990. Т. 26. № 8. С. 1440-1447.

84. Коновалов A.A., Мглинец A.B. Локализация гаметофитного гена Gal в третьей группе сцепления сахарной свеклы Beta vulgaris L. // Генетика, 1991, 27, 4: 685-694.

85. Корниенко A.B., Орлов СД. Методы селекции сахарной свеклы на гетерозис. М.: ИК Родник. 1996. 236 с.

86. Корочкин Л.И. Взаимодействие генов в развитии. М.: Наука. 1976. 280 с.

87. Красилов В.А., Бугдаева Е.В., Маркевич B.C., Маслова Н.П. Проангиоспер-мы и происхождение цветковых растений // Российская наука: Выстоять и возродиться. М.: Наука. Физмалит, 1997. С. 294-302

88. Кушев В.В. Механизмы генетической рекомбинации. Л.: Наука. 1971. 247 с.

89. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа. 1980. 294 с.

90. Левитес Е.В. Генетика изоферментов растений. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1986. 145 с.

91. Левитес Е.В. Генетика изоферментов у сахарной свеклы // Генетика сахарной свеклы. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние), 1984, с.45-60.

92. Левитес Е.В. Генетический контроль НАДФ-зависимого малик-фермента у сахарной свеклы (Beta vulgaris L.) // Докл. АН СССР, 1979а, 249(1):215-217.

93. Левитес Е.В. Изучение генетических систем, контролирующих малатдегид-рогеназы у сахарной свеклы // Структурно-функциональная организация генома эукариот. Новосибирск: ИЦИГ СО АН СССР, 19796, с. 64-77.

94. Левитес Е.В. К вопросу о связи структурной организации ядра и экспрессии генов // Характеристика генома некоторых видов сельскохозяйственных растений. Новосибирск: ИЦИГ СО АН СССР. 1990. С. 18-24

95. Левитес Е.В., Гарифуллина Ф.Ш., Уфыркина О.В. Изучение генетического контроля и групп сцепления у сахарной свеклы // Частная генетика сельскохозяйственных растений. Новосибирск: ИЦИГ СО АН СССР. 1989. С. 190205.

96. Левитес Е.В., Кудашова Т.Ю , Викслер Л.Н. Изучение групп синтенных генов у сахарной свеклы. Препринт. Новосибирск. 1988. 24 с.

97. ЮЗ.Левитес Е.В., Малецкий С.И.Авто- и эписегрегация по репродуктивным признакам в агамоспермных потомствах свеклы (Beta vulgaris L. ) // Генетика. 1999. Т. 35. № 7. С. 939-948.

98. Левитес Е.В., Овечкина О.Н., Малецкий СИ. Авто- и эписегрегация по признакам окраски в агамоспермных потомствах свеклы {Beta vulgaris L.) // Генетика. 1999. Т 35. № 8. С. 1086-1092.

99. Юб.Левитес Е.В., Шкутник Т., Овечкина О.П., Малецкий СИ. Псевдосегрегация в агамоспермных потомствах пыльцестерильных растений сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) // Докл. АН. 1998. Т. 362. № 3. С. 430-432.

100. Левитес Е.В., Юдина P.C., Малецкий СИ. Генетический контроль НАД-зависимой малатдегидрогеназы у сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) // Докл. АН СССР, 1980, 255(4): 989-991.

101. Ли Ч. Введение в популяционную генетику. М.: Мир. 1978. 555 с.

102. Лысенко Н.И., Николайчук В.И., Павлич ЭР., Кулиниченко ИТ. Изменчивость изоферментного спектра ß-глюкозидазы у сортов и самоопыленных линий сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) // Цитология и генетика, 1986, 20(2): 121-125.

103. Лях В. А. Микрогаметофитный отбор и его роль в эволюции покрытосеменных растений // Цитология и генетика. 1995. Т.29. №6. С. 76-82.

104. РМазлумов А.Л. Селекция сахарной свеклы. М.: Колос. 1970. 208 с.

105. Малецкий СИ. Получение, размножение и гибридизация инбредных линий сахарной свеклы (популяционно-генетические модели) // Усп. соврем, генетики. Вып. 11. М.: Наука. 1983. С. 196-240.

106. Малецкий СИ. Популяционно-генетические модели определения S-генотипов у растений с гаметофитным типом несовместимости // Генетика,1989. Т.25.№12. С.2234-2241.

107. Малецкий СИ., Вайсман Н.Я., Сагитова Ч.Ф. Анализ перекрестной совместимости при свободном размножении диплоидных линий сахарной свеклы {Beta vulgaris L.). //Генетика. 1977. Т. 13. №11. С. 1933-1944.

108. Пб.Малецкий СИ., Денисова Э.В., Лутков А.Н. Получение самоопыленных линий у самонесовместимых растений сахарной свеклы // Генетика. 1970. Т.6.№6.С.180-184.

109. Малецкий СИ., Коновалов A.A. Внутривидовая само- и перекрестная несовместимость // Генетический контроль размножения сахарной свеклы. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1991. С. 15-50.

110. Малецкий СИ., Коновалов A.A. Наследование алкогольдегидрогеназы у сахарной свеклы. 1. Анализ отклонений от моногенного расщепления // Генетика. 1985. Т. 21. № 9. С. 1527-1534.

111. Малецкий СИ., Левитес Е.В., Малецкая Е.И., Шаворская O.A. Автосегрегация в партеногенетических потомствах сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) // Докл. АН. 1997. Т. 354. № 5. С. 705-706.

112. Малецкий СИ., Малецкая Е.И. Самофертильность и агамоспермия у сахарной свеклы //Генетика. 1996. Т. 32. № 12. С. 1643-1650.

113. Малецкий СИ., Шавруков, Ю.Н. Генетический контроль раздельно-сростноцветковости // Генетический контроль размножения сахарной свеклы / СИ. Малецкий, СГ. Вепрев, Ю.Н. Шавруков, и др. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1991. С. 50-113.

114. Малецкий СИ., Шавруков, Ю.Н. Генетический контроль раздельно-сростноцветковостиУ/ Генетический контроль размножения сахарной свеклы / СИ. Малецкий, СГ. Вепрев, Ю.Н. Шавруков, и др. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1991. С. 50-113.

115. Малецкий СИ., Шавруков, Ю.Н., Мглинец A.B. Сцепление генов раздель-ноцветковости и несовместимости у сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) // ДАН СССР. 1989. Т. 308. № 1. С.203-206.

116. Мглинец A.B. Twist stem новая морфологическая мутация сахарной свек-лы//Генетика. 1992. Т.28. №12. С. 144-146.

117. Мглинец A.B., Вепрев С.Г., Плясова Н.К. Мутация Аз, вызывающая мужскую стерильность у сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) // Генетика. 1997. Т.ЗЗ. №12. С. 1713-1716.

118. Мелиян Л.Г., Балашова H.H. Метод пыльцевой селекции растений на устойчивость к фитопатогенам (на примере томата) // Сель.-хоз. Биол. 1994. № 1С. 121-129.

119. Мельцер Р.Ф. Методы создания нового исходного материала в селекции сахарной свеклы // Генетика сахарной свеклы. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1984. С. 31-36.

120. Мирюта Ю.П. Новые пути овладения гетерозисом у растений. Новосибирск: ИЦИГ СО АН СССР. 1991. 90 с.

121. Монастырева Л Е., Левитес Е.В., Реймерс Ф.Э. Генетический контроль кислой фосфатазы у сахарной свеклы // Докл АН СССР. 1984. Т.278. № 4. С. 1006-1008.

122. Парий Ф.Н., Долотий Л.А. Использование окрашенных образцов свеклы в качестве тестеров при оценке комбинационной способности // Сельскохозяйственная биология, 1983, N 9. С. 31-33.

123. Вб.Парий Ф.Н., Нуждина ВВ. О наследовании признака детерминантного габитуса растений сахарной свеклы // Цитология и генетика. 1991. Т. 25. № 4. С. 72-75.

124. Петров Д.Ф. Генетически управляемый апомиксис и его значение для эволюции и селекции // Апомиксис и некоторые новые методы селекции растений. Новосибирск; изд-во СО АН СССР. 1963. С. 7-34.

125. Поддубная-Арнольди В.А. Цитоэмбриология покрытосеменных растений. Основы и перспективы. М.; Наука. 1976. 508 с.

126. Подольская А.П. Изучение генетики селективного оплодотворения у однолетнего теосинте // Генетика, 20, 5, 808-816, 1984.

127. Полякова Е.В. Гетерозис в свете данных биохимической генетики // Попу-ляционно-генетические аспекты продуктивности растений. Новосибирск; Наука (Сиб. отд-ние). 1982. С. 87-126.

128. Полякова Е.В. Нуль-аллели генов, контролирующих синтез ферментов; распространение в природе и биологический полиморфизм // Усп. соврем, биологии. 1991. Т.111.№3. С.339-352.

129. Попова Т.М., Землянухин A.A. Выделение, очистка и исследование физико-химических свойств НАДФ-специфичной изоцитратдегидрогеназы из сахарной свеклы // Физиолог, и биохим. культурн. раст. 1990. Т.22. №3. С. 305-310.

130. ИЗ.Пташне М. Переключение генов. Регуляция генной активности и фаг X. М.: Мир. 1988. 160 с.

131. Ратнер В.А. Концепция лимитирующих генетических факторов экспрессии, организации и эволюции // Генетика. 1990. Т. 26. № 5. С. 789-803.

132. Ратнер В.А. Молекулярная генетика: принципы и механизмы. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1983. 256 с.

133. Ратнер В.А. Молекулярно-генетические системы управления. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1975. 288 с.

134. Ригер Р., Михаэлис А. Генетический и цитогенетический словарь. М.: Колос. 1967. 468 с. (R. Rieger, А. Michaelis. Genetisches und cytogenetisches Worterbuch. Zweite erweiterte aufläge. Berlin-Gottingen-Heidelberg. SpringerVerlag. 1958).

135. Рыбцов C A., Ежова Т.А., Гостимский C A . Использование культуры тканей in vitro для изучения гетерозиса у гороха // Генетика. 1997. Т. 33. № 11. С. 1517-1522.

136. Савицкий В.Ф. Генетика сахарной свеклы // Свекловодство. Киев: Госсель-хозиздат, 1940, т. 1, с. 551-684.

137. Савицкий В.Ф. Генетическое изучение свеклы // Осн. выводы науч.-иссл. работ ВНИСа за 1936 г. Киев 1937. с. 166-169.

138. Свекловодство. Киев: Госсельхозиздат, 1940, т. 1. 686 с.

139. Сеилова Л. Б. Апомиксис у сахарной свеклы н его использование в практической селекции. Автореф. дисс. . док. биол. наук. Алматы. 1996. 46 с.

140. Сеилова Л.Б., Коновалов A.A., Балков И.Я. Пути формирования апомикти-ческого потомства у сахарной свеклы с факультативным апомиксисом // Цитология и генетика. 1994. Т.28. №4. 44-47

141. Серебровский A.C. Генетический анализ. М.: Наука. 1970. 144 с.

142. Сидорова К.К. Влияние на развитие организма разных типов мутаций в го-мо- и гетерозиготном состоянии (на примере мутантов Pisum sativum L.) // Генетика. 1975. 11(1): 35-46.

143. Смирнов В.Г., Соснихина СП. Генетика ржи. Л.: изд-во ЛГУ. 1984. 264 с.

144. Соколов В.А. Изучение механизмов гетерозиса. Дисс. . докт.биол.наук. Новосибирск, 1992. 217 с.

145. Соколов В.А. Независимое наследование и экспрессия апомейоза и партеногенеза у гибридов кукурузы с трипсакумом //Докл. РАН. 2000. Т. 374. № 2. С 280-282.

146. Струнников В.А. Новая гипотеза гетерозиса: ее научное и практическое значение //Вестник сельскохозяйственной науки, 1983, №1. С. 34-40.

147. Струнников В.А. Природа гетерозиса и новые методы его повышения. М., Наука, 1994, 108 с.

148. Суриков И.М. Генетика внутривидовой несовместимости мужского гаме-тофита и пестика у цветковых растений // Усп. соврем, генетики, 1972а, вып. 4, с. 119-169.

149. Суриков И.М. Несовместимость и эмбриональная стерильность у растений. М.: Агропромиздат, 1991, 220 с.

150. Суриков И.М. Новая гипотеза генетического контроля самонесовместимости у растений // Бюл. ВИР. №24. 1972. С. 27-29.

151. Суриков И.М. Новая гипотеза генетического контроля самонесовместимости у растений // Бюлл. ВИР. 19726. №24. С. 27-29.

152. Суриков И.М., Романова Н.П. // Тр. прикл. бот. генет. селекц. 1980. Т.62. С.46-51

153. Тарасова P.C. Генетически детерминированные формы НАД-зависимой ма-латдегидрогеназы и использование их при биохимической паспортизации инбредных линий сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) // Генетика. 1987. T. 23. №9. С. 1630-1636.

154. Тахтаджан А. Л. Система магнолиофитов. Л. Наука. 1987. 439 с.

155. Тахтаджян АЛ. Основы эволюционной морфологии покрытосеменных. М.-Л.: Наука. 1964. 236 с.

156. ПО.Тахтаджян А.Л. Происхождение покрытосеменных растений. М.: Высшая школа. 1961. 133 с.

157. Тер-Аванесян Д.В. Опыление и наследственная изменчивость. М.: Сов. наука, 1957. 283 с.

158. Токарев Б.И., Сулейманова М.З., Азаров A.C. Сортовые особенности реакции спорофитов и микрогаметофитов гороха на засоление среды хлористым натрием // Сель.-хоз. биол. 1992. № 5. С. 48-54.

159. Трифонов Э.Н. Генетическое содержание последовательностей ДНК определяется суперпозицией многих кодов // Мол. биол. 1997. Т. 31. №4. С. 759767.

160. Трут Л.Н. Альтернативен ли отбор изменчивости или комплементарен ей? //Генетика. 1993. Т.29. №12. С.1941-1952.

161. Урсул СВ. Гетерозиготность, гетерозисность гибридов Pi и генетическая изменчивость в Рг томата. Автореф. канд. биол. наук. Минск. 1992. 17 с.

162. Фаворский Н.В. Материалы по биологии и эмбриологии сахарной свеклы // Труды НИС. 1928. Вып. 2. С. 1-18

163. Федоров B.C., Смирнов В.Г., Соснихина СП. Получение и изучение авто-фертильных линий у ржи Seeale céréale il Использование насыщающих скрещиваний и самонесовместимости в селекции сельскохозяйственных растений. Киев: Наукова думка. 1975. С. 132-139.

164. Филатов Г.В. Гетерозис: физиолого-генетическая природа. М.: Агропром-издат. 1988. 96 с.

165. Филатов Г.П., Левитес Е.В. Генетический контроль аконитатгидратазы и 6-фосфоглюконатдегидрогеназы у сахарной свеклы // Характеристика геноманекоторых видов сельскохозяйственных растений. Новосибирск: ИЦиГ СО АН СССР. 1990. С. 97-105

166. Филатов Г.П., Левитес Е.В. Наследование аконитазы и 6-фосфоглюконатдегидрогеназы у сахарной свеклы. Экспрессия, генетический контроль и анализ сцепления // Генетика. 1992. Т.28. №4. С. 136-143.

167. Финчем Дж. Генетическая комплементация. М.: Мир, 1968. 184 с.

168. Фишер P.A. Статистические методы для исследователей. М.: Госстатиздат. 1958. 268 с.

169. Френкель Р., Галун 3. Механизмы опыления, размножение и селекция растений. М.: Колос. 1982. 384 с.

170. Хаджинов М.И. Генетические основы цитоплазматической мужской стерильности // Гетерозис: теория и практика. Л.: Колос. 1968. С. 23-45.

171. Ханов СЕ. Популяционно-генетический анализ нестабильности признака раздельноцветковости у сахарной свеклы (Beta vulgaris L.) / Автореферат дисс. . канд.биол.наук, Новосибирск, 1995. 12 с.

172. Харборн Дж.Б., Симмондс Н.У. Распространение фенольных агликонов в природе // Биохимия фенольных соединений (под ред. Дж.Б. Харборна), М.: Мир, 1968, с. 70-108.

173. Харечко-Савицкая Е.И. Метод получения семян при самоопылении ауто-стерильных растений сахарной свеклы // Докл. АН СССР. 1938, Т. 18. С. 469474.

174. Харечко-Савицкая Е.И. Цитология и эмбриология сахарной свеклы // Свекловодство. Киев: Госсельхозиздат, 1940. Т.1. С. 453-548.

175. Холдейн Дж. Б.С. Факторы эволюции. М.-Л.: Биомедгиз, 1935. 122 с.

176. Цвелев H.H. Система злаков (Роасеае) и их эволюция: Комаровские чтения. Л.: Наука 1987. 76 с.

177. Четвериков С.С. Проблемы общей биологии и генетики. Новосибирск: Наука (Сиб. отд-ние). 1983. 272.

178. Шавруков Ю.Н. Наследование раздельно-сростноцветковости у сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) / Автореферат дисс. . канд.биол.наук, Новосибирск, 1990. 16 с.

179. Шахбазов В.Г., Чешко В.Ф., Шерешевская Ц.М. Механизмы гетерозиса: история и современное состояние проблемы. Харьков: «Основа». 1990. 120 с.

180. Шмальгаузен И.И. Факторы эволюции (теория стабилизирующего отбора). М.-Л.: изд-во АН СССР, 1946. 396 с.

181. Шумный В.К., Белова Л.И., Шарова Л.А. Исследование случаев моногибридного гетерозиса у гороха // Генетика 7(9): 36-41, 1971

182. Шумный В.К., Сидорова К.К., Белова Л.И. Исследование гетерозиготного состояния у гороха по девяти мутантным генам // Генетика 6(8): 12-19, 1970

183. Эмбриология растений: использование в генетике, селекции, биотехнологии: в 2-х томах. Т. 1 (К.Б. Амбегаокар, Ф. Боумен, Н.Н. Бхандари и др.). М.: Агропромиздат. 1990. 509 с.

184. Эмбриология растений: использование в генетике, селекции, биотехнологии: в 2-х томах. Т. 2 (КБ. Амбегаокар, Ф.Д. Бёзевинкель, Ф. Боумен и др.). М.: Агропромиздат. 1990. 463 с.

185. Abe J., Guan G.-P., Shimamoto Y. A gene complex for annual habit in sugar beet {Beta vulgaris L.) // Euphytica. 1997a. V. 94. P. 129-135.

186. Abe J., Guan G.-P., Shimamoto Y. A marker-assisted analysis of bolting tendency in sugar beet {Beta vulgaris L.) // Euphytica. 1997b. V. 95. P. 137-144.

187. Abe J., Guan G.-P., Shimamoto Y. Linkage maps for nine isozyme and four marker loci in sugarbeet (Beta vulgaris L.) // Euphytica. 1993. V. 66. P. 117-126.

188. Abe J., Tsuda Ch. Genetic analysis for isozyme variation in the section Vulgares, genus Beta // Japan J Breed. 1987. V.37. P. 253-261.

189. Abegg F.A. A genetic factor for the annual habit in beets and linkage relationship III Agricult. Res. 1936. V. 53. № 7. P. 493-511.

190. Ai Y., Singh A., Coleman C .E. et al. Self-incompatibility in Petunia inflata: isolation and characterization of cDNAs encodeng three S-allele-assotiated proteins // PlantCell. 1990. V.3.R130-138.

191. Aicher, L.D. and Saunders J.W. Inheritance studies and clonal fmgerprinting with isoenzymes in sugarbeet // Crop Sci., 1990. 30: 1064-1072.

192. Anderson E, de Winton D. The genetic analysis of an unusual relationship between self-sterility and self-fertility in Nicotiana II Ann. Missouri Bot. Gard. 1931. V. 18. R 97-116,

193. Anderson M.A., Cornish E.G., Mau S.-L. et al. Cloning of cDNA for a stylar gli-coprotein assotiated with expression of self-incompatibility in Nicotiana alata If Nature. 1986. V.321. P.38-44.

194. Artschwager E., Starret R.C. The time factor in fertilization and embryo development in the sugar beet. // J. Agricult. Res. 1933. V. 47. P. 823-843.

195. Ashby E Studies in the inheritance of physiological characters. 1. A physiological investigation of the nature of hybrid vigor in maize // Ann. Bot. 1930. V. 44. P. 457-469.

196. Ashby E. Studies in the inheritance of physiological characters. 2. Further experiments upon the basis of hybrid vigor and upon the inheritance of efficiency index and respiration rate in maize //Ann. Bot. 1932. P. 46. P. 1007-1032.

197. Banks J.A. The TRANSFORMER genes of the fern Ceratopteris simultaneously promote meristem and archegonia development and repress antheridia development in the developing gametophyte // Genetics. 1997. V. 147. No. 4. P. 18851897.

198. Barocka K.-H. Die Sektion Corollinea der Gattung Beta (Toumef) L. // Zeitschrift fur Pflanzenzuchtung (Journal of Plant Breeding). 1966 Bd. (Band) 56. № (Heft) 4. S. 379-388.

199. Barsen E., Mechelke W., Rutter E., Seitzer J.P., Salamini P. An extended map of the sugar beet genome containing RFLP and RAPD loci // Theor. Appl. Genet. 1995. V. 90. R 189-193.

200. Bateson PPG. Optimal outbreeding and the development of sexual preferences in the Japanese quail // Zeitschrift fur Tierpsychology. 1980. V.53. P. 231-244.

201. Bateson P.P.G. Sexual imprinting and optimal outbreeding // Nature (London). 1978. V. 273. P. 659-660.

202. Bemis, W.P. Selective fertilization in lima beans // Genetics. 1959. V. 44. V. 555-562.

203. Bianchi P. Ondersoek naar de Erfelijkheid van de Bloemvorm bij Petunia. Ph. D. Thesis. Amsterdam: Univ. Amsterdam, 1959

204. Bino R.J., Pranken J., Witsenbour H.M.A., Hille J., Dons J.J.M. Effects of Alternarla alternaria f sp. lycopersici toxins on pollen // Theor. AppL Genet. 1988. V.76. P. 204-208.

205. Bosemark N.O. Genetic poverty of the sugarbeet in Europe // Proc. Conf Broadening Genet. Base Crops. Pudoc, 7 Wageningen. 1979.

206. Brieger P.G, Mangelsdorf A.J. Linkage between a flower color factor and self-sterility factor//Proc. Natl Acad. Sci. USA, 1926. V.12. P. 248-255.

207. Bubar J.S. Genetics and cytotaxonomy in birdfoot trefoil (Lotus corniculatus). Ph. D. Thesis. Quebec: McGill Univ. 1967

208. Buchert, J.G. The stage of the genome-plasmon interaction in the restoration of fertility to cytoplasmically pollen-sterile maize // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1961. V. 47. R 1436-1440

209. Chao, L.P. The disturbing effect of the glutinous gene in rise on a Mendelian ra-tio//Genetics. 1928. V. 13. V. 191-199.

210. Clarke A.E., Newbigin E. Molecular aspects of self-incompatibility in flowering plants//Ann. Rev. Genet. 1993. V.27. P.257-279.

211. Cornish, M.A., Hayward, M.D. and Lowrens M.J. Self-incompatibility in ryegrass. 3. The joint segregation of S and Pgi-2 in Lolium peremte L. // Heredity. 1980. V. 44. P. 55-62.

212. Correns C. Scheinbare Ausnahmen von der Menddel'shen Spaltungsregel fur Bastarde // Ber. Deuts. Botan. Ges. 1902. Bd. 20. S. 159-172.

213. Crowe L.K. The polygenic control of outbreeding in Borago officinalis // Heredity. 1971. V.27. P. 111-118.

214. Denword T. The function of the incompatibility alleles in red clover {Trifolium pratense L.) // Hereditas. 1963. V. 49. P. 189-334.

215. Doney D.L., Theurer J.C., Wyse R.E. Mitochondrial complementation in sugar beet//Crop. Sci. 1972. V. 12. No4. R 493-494.

216. Emerson S/ Linkage relationship of two gametophytic characters in Oenothera organensis //Genetics. 1941. V. 26. No 5. P. 469-473.

217. Emerson, R.A. A possible case of selective fertilization in maize hybrids. // Ad-stract in Anat. Res. 1925. V. 26. P. 136

218. Emerson, R.A. Relation of the differential fertilization genes, Ga ga, to certain other genes of the Su-Tu linkage group of maize // Genetics. 1934. V. 18. P. 137142.

219. England, P.J.W. The use of incompatibility for the production of P i hybrids in forage grasses//Herebity 1974. V. 32. P. 183-188.

220. Pearon C.H., Hayward M.D., Lowrence M.J. Self-incompatibility in ryegrass. 5. Genetic control, linkage and seed-set in diploid Lolium multijlorum Lam. // Heredity. 1983. V.50. V.34-45.

221. Pisher R.A. Genetical theory of natural selection. Oxford: Clarendon press. 1930. 272 p.

222. Poote H., Ride J., Pranklin-Tong V., Walker E., Lawrence M., Pranklin P. Cloning and expression of a distinctive class of self-incompatibility (S) gene from Pa-paverrhoeas L. // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P. 2265-2269.

223. Freeling M., Cheng D.S.K. Radiation-indiised alcohol dehydrogenase mutants in maize following allyl alcohol selection of pollen // Genet. Res. 1978. V. 31. P. 107-129.

224. Frei O.M., Stuber C.W., Goodman M.M. Uses of allozymes as genetic markers for predicting performance in maize single-cross hybrids // Crop Sci. 1986. V. 26 P. 37-42.

225. Gertz, A. and Wricke G. Linkage between the incompatibility locus Z and a b-glucosidase locus in rye // Plant Breed. 1989. V. 102. P. 255-259.

226. Geyt J., van, Jacobs M. Mode of inheritance and some general characteristics of sugar beet alcohol dehydrogenase // Plant Science. 1986. V. 46. No 2. P. 143-149.

227. Geyt J.P.S.P. van, Smed E. Polymorphism of some marker enzymes of the sugar beet {Beta vulgaris L.) investigated by polyacrylamid gel electrophoresis and starch gel electrophoresis // Z. Pflanzenzucht., 1984. V. 92. No 4. P. 295-308.

228. Geyt J.P.S.P. van, Speckman Jr.G.J , D'Hhalluin K., Jacobs M. In vitro induction of haploid plants from unpollinated ovules and ovaries of the sugar beet {Beta vulgaris L.) // Theor App Genet. 1987. V. 73. No 6. P. 920-925.

229. Godshalk E.B., Lee M., Lamkey K.R. Relationship of restriction fragment length polymorphisms to single-cross hybrid performance of maize // Theor. Appl. Genet. 1990. Y. 80. No 2. R 273-280.

230. Golubovskaya I.N. Meiosis in maize: Mei-genes and conception of the genetic control of meiosis // Adv. Genet. 1989. V.26. P. 149-192.

231. Goncharov N.P., Konovalov A. A. GPI loci of Triticum aestivum L. and related species // 50th SEB Simposimn "Unifying Plant Genomes: Comparisons, Conservation and CoUinearity". Programme and Abstracts. Queens' College, Cambridge, 1995. p. 26.

232. Goncharov N. P., Konovalov A. A., Chikida N.N. Genetic variation at the Gpi-1 loci among Aegilops and Triticum genera and phylogeny of poliploid wheats // Журнал общей биологии. 1997. T. 58. № 2. С. 75.

233. Grant V. The regulation of recombination in plants // Cold Spring Harb. Simp. Quant. Biol. 1958. V. 23. P. 337-363.

234. Greenwood P.J., Harvey P.H., Perrins C M . Inbreeding and dispersal in the great tit//Nature (London). 1978. V. 271. P. 52-54.

235. Hadjinov M.I. Interrelationships between isozymic diversity and combining ability in maize lines // Maydica, 1982, 27, 135-149.

236. Harbert N.P., Edwards K.J.R. The effect ofmutation causing alcohol dehydroge-nase deficiency of flooding tolerance in barley // New Phytologist. 1982. V.90. P.631-644.

237. Haring V.,.McClure B.M., Clarke A.E. Molecular aspects of self-incompatibilite in the Solanaceae // Plant gene research. V.6. Molecular approach to crop improvement. Springer-Verlag. Wienn, New York. 1991. P. 149-160.

238. He slop-Harrison J. The forgotten generation: Some thoughts on the genetics and physiology of Angiosperm gametophytes // The Plant Genome (Davies D.A. and Horwood D. A., eds), 4* edn. J. Innes Symp. Crowe. Norwich, England. 1979. P. 114.

239. Heslop-Harrison J., Heslop-Harrison Y. The pollen-stigma interaction in the grasses. 2. Pollen tube penetration and the stigma response in Sécale // Acta Bot. Neerl. 1981. V.30. № 4. R 289-307.

240. Hickok L. G., Vogelien D. L., Wame T.R. Selection of a mutation conferring high NaCl tolerance to gametophytes of Ceratopteris // Theor. Appl. Genet. 1991 V.81. P. 293-300.

241. Hoefert L.L. Fine structure of sperm cells in pollen grain of Beta // Protoplasma. 1969. V.68. P. 237-240.

242. Holm S., Ghatnekar L., Bengtsson B.O. Selfmg and outcrossing but no apomixis in two natural populations of diploid Potentilla argéntea // J. Evol. Biol. 1997. V. 10. P. 343-352.

243. Hormaza J.I., Herrero M. Pollen selection //Theor. Appl. Genet. 1992. P. 83. P. 663-672.

244. Hosaka K., Hanneman R.E., Jr. Genetics of self-compatibility in a self-incompatible wild diploid potato species Solanum chacoense. 1. Detection of an S locus inhibitor (Sli) gene // Euphytica. 1998. V.99. P. 191-197.

245. Hurst C.C. Embrio-sac formation in diploid and poliploid species of Rosaceae // Proc. Roy. Soc, B. 1931. V.109. P.126-148.

246. Kaianus B. Uber die farbenvariation der Beta-Ruben // Zeitschr. Pflanzenzucht., 1917. V. 5. R 357-372.

247. Kajanus B. Genetishhe Studien en Beta // Z. Indukt. Abstamm. Vererbungsl., 1912. V. 12. No 6. P. 137-179.

248. Kajanus B. Uber die vererbungsweise gevisser merkmale der Beta- und Brassica-Ruben//Zeitschr. Pflanzenzucht. 1913. V. 1(2): P. 125-186.

249. Kamps T.L., McCarty DR., Chase C D . Gametophyte genetics in Zea Mays L.: dominance of a restoration-of-fertility allele (RO) in diploid pollen // Genetics, 1996. R 142. R 1001-1007.

250. Kaul M. L. H Male sterility in higher plants. Berlin et al.: Springer Verlag. 1988. 1005 s.

251. Keller W. Inheritance of some major color types in beets // J. Agricult. Res. 1936. V. 52. No l .R 27-38.

252. Kenrick J., Knox R.B. Quantitative analysis of self-incompatibility in trees of seven species of Acacia // J. Hered. 1989. V.80. P. 240-245.

253. Knapp E., Von. Apomixis bei der Zuckerrübe? // Zeitschrift fur Pflanzenzuch-tung (Journal ofPlant Breeding). 1975. Bd. (Band) 73. № (Heft) 1. S. 1-9.

254. Konovalov A.A. Linkage groups with S-genes in sugar beet and the likes in other plantsZ/Журнал общей биологии. 1994. Т. 55. No. 3. С. 318-327.

255. Konovalov A.A. Two gametophytic genes linked to a gene controlling recombination in sugar beet {Beta vulgaris L.) // Hereditas. 1995. V. 123. No. 3 P. 245250.

256. Konovalov A.A. Gametophytic variant of alcohol dehydrogenase Adh-P in sugar beet: expression and inheritanse // 1996 SEB Annual Meeting. University of Lancaster, 24-29 March 1996. Lancaster, United Kingdom. 1996.

257. Kroh M., Helsper J.PF.G. Transmitting tissue and pollen tube growth // Fertilization in Higher Plants. Linskens H.F., ed. Amsterdam: North-Holland Publ. Co. 1974. P. 167-178.

258. Labroche Ph., Proirier-Hamon S., Pernes J. Inheritance of leaf peroxidase isozymes in Nicotiana alata and linkage with the S-incompatibility locus // Theor. Appl. Genet. 1983. V.65. P. 167-170.

259. Lamkey K.R., Hallauer A.R., Kahler A.L. Allelic differences at enzyme loci and hybrid performance in maize // J. Hered. 1987. V. 78. P. 231-234.

260. Larsen, K. Self-incompatibility in Beta vulgaris L. 1. Four gametophytic, complementary S-loci in sugar beet // Hereditas. 1977. V. 85. P. 227-248.

261. Leach C.R., Hayman D.L. The incompatibility loci as indicators of conserved linkage groups in the Poaceae //Heredity. 1987. V. 58. P. 303-305.

262. Leach, C.A. Detection and estimation of linkage for a co-dominant structural gene locus linked to a gametophytic self-incompatibility locus // Theor. Appl. Genet. 1988. V. 75. R 882-888

263. Lee M., Godshalk E.B., Lamkey K.R., Woodman W.W. Association of restriction fragment length polymorphisms among maize inbreds with agronomic per-fonnance oftheir crosses // Crop Sei. 1989. V. 29. No. 4. P. 1067-1071

264. Lévites E. V., Gariphullina F.Sh. Use of isozymes as genetic markers for identification of sugar beet varieties // Biocemical identification of varieties (materials 111 International Simposium ISTA). Leningrad (US SA). 1988. P. 104-109.

265. Lewis D. A protein dimer hypothesis on incompatibility // Genetics Today (Geerts S.J., ed.). London, Pergamon Press. 1965. P.657-663.

266. Lewis D. Comparative incompatibility in angiosperms and fungi // Adv. Genet. 1954. V. 6. R 235-284

267. LÍ X., Nield, J., Hayman, D. and Langridge P. Cloning a putative self-incompatibility gene from the pollen of the grass Phalaris coerulescens II Plant Cell. 1994. V.6. '12. P. 1923-1932

268. Linde-Laursen I. A new locus for colour formation in beet. Beta vulgaris L. // Hereditas. 1972. V. 70. No. 1. R 105-112.

269. Loegering, W.Q. and Sears, E.R. Distorted inheritance of stem-rust resistance of timstein wheat caused by a pollen-killing gene // Can. J. Genet. Cytol. 1963. V. 5. R 67-72

270. Loewus F., Labarca C. The nutritional role of pistil exudate in pollen tube wall formation in Lilium longijlorum. II. Production and utilization of exudate from stigma and stylar canal // Plant Physiol. 1973. V. 52. P. 87-92.

271. Lundqist A. One-locus sporophytic S-gene system with traces of gametophytic pollen control in Cerastium arvense ssp. strictum (Caryophillaceae) // Hereditas. 1990. V.113. R 203-215.

272. Lundqvist A. Complex self-incompatibility system in angiosperms // Proc. Royal Soc. Lond. B. 1975. V. 188. P. 235-245.

273. Lundqvist A. Pour-locus S-gene control of self-incompatibility made probable in Lilium martagón Liliaceae // Hereditas 114, 57-63, 1991

274. Lundqvist A. Studies of self-sterility in rye. Sécale cércale L. II Hereditas 40, 278-294, 1954

275. Lundqvist A. The complex S-gene system for control of self-incompatibility in the buttercap genus Ranunculus 11 Hereditas. 1990. V. 113. P. 29-46.

276. Lundqvist A. The self-incompatibility systems in Lotus tenuis (Pabaceae) // Hereditas 1993. V. l 19. P. 59-66.

277. Lundqvist A. Variability within and among populations in the 4-gene system for control of self-incompatibility in Ranunculuspolyanthemos II Hereditas. 1990. V. 113. P. 47-61.

278. Lundqvist, A., Osterbye, U., Larsen, K., and Linde-Laursen, I. 1973. Complex self-incompatibility systems in Ranunculus acris L. and Beta vulgaris L. // Hereditas. V. 74. P. 161-168

279. Maletsky S.I., Konovalov A.A. Linkage of ADH gene with a lethal and self-fertility genes in sugar beet (Beta vulgaris L.) // Incompatibility Newsletter. 1985. №17. P. 24-26.

280. Maletsky S.I., Veisman N.J. Population genetic analysis of self- and cross-incompatibility in sugar beet (Beta vulgaris L.) // Theor. Appl. Genet. 1978. V.52. P.21-28.

281. MangeIsdorf, P.C. and Jones, D.P. The expression of Mendelian factors in the gametophyte of maize // Genetics. 1926. V. 11. P. 423

282. Martin P.W. The inheritance of self-incompatibility in hybrids of Lycopersicon esculentum Mill, x L. chilence Dun. // Genetics. 1961. V.46. p. 1443-1454

283. Mascarenhas J.P. Gene activity during pollen development // Aim. Rev. Plant Physiol, and Plant Mol. Biol. 1990. V. 41. P. 317-338.

284. McDaniel R.G., Sarkissian I.V. Heterosis: complementation by mitochondria // Science. 1966. V. 152. No. 3729. R 1640-1642.

285. McKenna M. A., Mulcahy D.L. Ecilogical aspects of gametophytic competition in Dianthus chinensis II Pollen: Biology and Applications for plant breeding (ads

286. D.L.Mulcahy and E.Ottaviano), Elsevier Biomedical, New York AmsterdamOxford, p. 419-424. 1983

287. Meinke D.W. Embrio-lethal mutants of Arabidopsis thaliana: evidensce for ga-metophytic expression of the mutant genes // Theor. Appl. Genet. 1982. V.63. P. 381-386.

288. Mglinets A.v., Veprev S.G. Creation and study of S-cytoplasm collection from varied sourses of sugar beet // Intern. Beta genetic resources network. Rome: IP-GRI. 1998. P. 46-51.

289. Moll R.H., Lormquist J.H., Velez Portuno J., Johnson E.G. The relationship of heterosis and genetic divergence in maize // Genetics 1965 52 1 139-144.

290. Mottinger J., Keller P., Campopiano L. More on aberrant ratio // Maize News Letters Coop. 1982. V.56. P.84

291. Mulcahy D.L., Mulcahy G.B. Gametophytic self-incompatibility reexamined // Science. 1983. V.220. P. 1247-1251

292. Mulcahy D.L , Mulcahy G.B. Tests of the heterosis model // Sex. Plant Reprod. 1988. V.l. P. 32-35.

293. Mulcahy G.B., Mulcahy D.L. A comparison ofpollen tube growth in bi- and tri-nucleate pollen // Pollen: biology and applications for plant breeding (ads D.L.Mulcahy and E.Ottaviano), Elsevier Biomedical, New York AmsterdamOxford, p. 29-33. 1983.

294. Mulinix C.A., lezzoni A.P. Microgametophytic selection in two alfalfa (Medi-cago sativaL.) clones // Theor. Appl. Genet. 1988. V. 75. P. 917-922.

295. Muntzing A. Pseudogamie in der Gattung Potentilla // Hereditas. 1928. V. 11. P. 267-283.

296. Muntzing A., Muntzing G Some new results concerning apomixis, sexuality and polymorphism in Potentilla II Bot. Not. 1941. V. 94. P. 237-278.

297. Muntzing A., Muntzing G. The mode of reproduction of hybrids between sexual and apomictic Potentilla argéntea II Bot. Not. 1945. V. 98. P. 49-71.

298. Nagamine T., Ford-Lloid B.V. New genetic markers in a wild species of Beta (Beta nana Boiss. et Heldr): prespects of utilization // Plant Breeding. 1989. V. 102. No 4. P. 343-347.

299. Nagamine T., Todd G.A., McCann K.R., et al. Use of restriction fragment lenght polymorphism to fmgerprint beets at the genotype and species level // Theor. Appl. Genet. 1989. V/78. No/847-851.

300. Nasrallah J.B., Kao T.-H., Goldberg M.L., Nasrallah M.E. A cDNA clone encoding an S locus-specific glycoprotein from Brassica oleraceae // Nature 1985. V.318. P. 263-267.

301. Nasrallah M.E., Wallase O.H. The influence of modifier genes on the intensity and stability of self-incompatibility in cabbage // Euphytica. 1968. V.17./V3. P.495-503.

302. Nelson O.E. A reexamination of the aberrant ratio phenomenon in maize // May-dica. 1981.V. 26. No 3. R 119-125.

303. Nesselhut Th., Hamischfeger G. Properties of glutamate dehydrogenase from Beta vulgaris L. // Physiol. Plant. 1980. V. 50. P. 1-5.

304. Nettancourt, D. de. Incompatibility in angiosperms. Springer-Verlag, Berlin. 1977.

305. Owen F.V. Mendelian male sterility in sugar beet // Proc. Amer. Soc. Sugar Beet Technol. 1952. V. 7. P. 371-376.

306. Owen P.V.) Inheritance of cross- and self-sterility and self-fertility in Beta vulgaris L. //J. Agricult. Res. 1942. V. 64. P. 679-698.

307. Owen P.v., Pyser O.K. Some mendelian charakters in Beta vulgaris and linkages observed in the Y-R-B group // J. Agricult. Res. 1942. V. 65. No 3. P. 155-171.

308. Pandey K.K. S gene polymo^hism in Nicotiana II Genet. Res. 1967. V.IO. P. 251-259.

309. Pandey K.K. S gene polymo^hism in Nicotiana II Genet. Res. 1967. V.IO. P. 251-259.

310. Pedersen, S., Simonsen, V. and Loeschcke, V. Overlap of gametophytic and spo-rophytic gene expression in barley // Theor. Appl. Genet. 1987. V. 75. P. 200-206

311. Pillen K., Steinrucken G., Herrmann R.G., Jung C. An extended linkage map of sugar beet (Beta vulgaris L.) including nine putative lethal genes and the restorer gene X // Plant Breeding. 1993. V. 111. 4. P. 265-272.

312. Pillen K., Steinrucken G., Wricke R. G., Herrmann R.G., Jung C. A linkage map of sugar beet (Beta vulgaris L.) // Theor. Appl. Genet. 1992. V. 84. P. 129-135

313. Poon A., Otto S.P. Compensating for our load of mutations: freezing the meltdown of small populations // Evolution. 2000. V. 54. No. 5. P. 1467-1479.

314. Price M. V., Waser N.M. Pollen dispersal and optimal outcrossing in Delphinium nelsoni//Nature (London). 1979. V. 277. P. 294-297.

315. Price S.C., Kahler A.L., Hallauer A.R., Charmley P., Giegel P. Relationships between performance and multilocus heterizygosity at enzyme loci in single-cross hybrids of maize //J. Hered. 1986. V. 77. P. 341-344.

316. Rajora, O.P. and Zsuffa L. Sporophytic and gametophytic gene expression in Populus deltoides Marsh., P. nigra L., and P. maximowiczii Henry. // Can. J. Genet. Cytol. 1986. V. 29. P. 476-482.

317. Reamon-Ramos S.M., Wricke G. A full set of monosomic addition lines in Beta vulgaris from Beta webbiana: moфhology and isozyme markers // Theor. Appl. Genet. 1992. V. 84. No 3/4. R 411-418.

318. Richey F.D. The convergent improvement of selfed lines of corn // Amer. Naturalist. 1947. V. 61. R 430-439.

319. Rick, C M . The tomato Ge locus: Linkage relations and geographic distribution of alleles. // Genetics. 1971. V. 67. P. 75-85

320. Riley H.P. Linkage of the buff and bicolor genes and the self-sterility alleles in Nemesia strumosa//Amer. J. Bot. 1944. V. 31. 5s.

321. Roundy Т.Е., Theurer J.C Linkage and inheritance studies involving an annual pollen restorer and other genetic characters in sugar beet // Crop Sei. 1974 V. 14. No 2. R. 230-232.

322. Sano, Y. The genie nature of gamete eliminator in rice. // Genetics. 1990. V. 125. R 183-191

323. Sari Gorla, M., Flova, C, Binelli, G. and Ottaviano, E. The extent of gameto-phytic-sporophytic expression in maize // Theor. Appl. Genet. 1986. V. 72. P. 4247.

324. Sassa H., Nishio Т., Kowyama Y., Hirano H., Koba Т., Ikehashi H. Self-incompatibility (S) alleles of the Rosaceae encode members of a distinct class of the T2/S ribonuclease superfamily // Mol. Gen. Genet. 1996. V.250. P.547-557.

325. Savitsky V.F. A genetic study of monogerm and multigerm characters in beets // Proc. Amer. Soc. Sugar Beet Technol. 1952. V. 7. P. 331-338.

326. Savitsky V.F. Genetische Studien und Zuchtungsmethoden bei monogermen Zuckerrüben // Z. Pflanzenzucht. 1958. V. 40. No 1. P. 1-36.

327. Savitsky V.P. Monogerm sugar beet in the United States // Proc. Amer. Soc. Sugar Beet Technol. 1950. V. 6. P. 156-159.

328. Scandalios J.G., Liu E.N., Campeau M.A. The effects of intragenic and inter-genic complementation on catalase structure and function in maize: a molecularapproach to heterosis // Arch. Biochem. and Biophis. 1972. V. 153. No 2. P. 695705.

329. Schlegel R., Melz G., Mettin D. Rye cytolody, cytogenetics and genetics Current status // Theor. Appl. Genet. 1986. V.72. No 6. P.721-734.

330. Schwartz D. Genetic control of alcohol dehydrogenase: a competition model fer regulation of gene action // Genetics. 1971. V.67. No. 3. P.411-425.

331. Schwartz D. Genetic studies of mutant enzyme in maize: synthesis of hybrid enzymes by heterozygotes // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1960. V. 46. No 8. P. 12101215.

332. Schwartz D. Single gene heterosis for alcohol dehydrogenase in maize: the nature of subunit intersction // Theor. Appl. Genet. 1973. V.43. No 3/4. P. 117-120.

333. Searcy K. B., Mulcahy D .L. Comparison of the response to aluminum toxicity in gametophyte and sporophyte of four tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) culti-vars // Theor. Appl. Genet. 1990. V. 80. P. 289-295.

334. Shavrukov Y.N. Localization of a second monogerm gene in sugar beet using RPLP markers // Report of working group IPGRI on Beta. IPGRI. Rome. 2000a. P. 75.

335. Shavrukov Y.N. Localization of new monogerm and late-bolting genes in sugar-beet using RPLP markers // J of Sugar Beet Research. 2000b. V. 37. No. 4. P. 107115.

336. Shull G.H. What is «Heterosis»? // Genetics. 1948. V. 33 No 5. P. 439-446.

337. Simmonds N.W. Linkage of the S-locus in diploid potatoes // Heredity. 1966. V.21.R 473-479

338. Singh M.B., Khox R.B. Gene controlhng P-galactosidase deficiency in pollen of oilseed rape//J. Hered. 1985. V.76. '3. P. 199-201.

339. Singleton W.R., Mangelsdorf P.C. Genetic lethal on the fourth chromosome of maize // Genetics. 1940. V.25. № 4. R366-390.

340. Smith S.M. Sugar beet. // Principles of cultivar development (W.R.Fehr, ed.). New-York: McMillan. 1987. P. 577-625.

341. Smith-White S. Polarised segregation in the pollen mother cells of a stable trip-loid // Heredity. 1948. V.2. P.l 19-129.

342. Snedecor, G.W. Statistical methods applied to experiments in agriculture and biology. Pifth Edition. The Iowa State College Press. Ames, Iowa. 1957.

343. Spraque G.P. Pollen tube establishment and the deficiency of waxy seeds in certain maize crosses // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1933. V.19. P. 838-841.

344. Srivastava D K., Dwiveri U.N., Pandey G.P. Effect of fluoride ions on alcohol and lactate dehydrogenases in germinating Green Gram (Phaseolus aureus) II Bio-cham. Physiol. Pflanzen. 1980. V. 175. P. 268-272.

345. Stadler J.R., Theurer J.C. Inheritance and linkage of a virescens and a chlorina in Beta vulgaris L. // Crop Science. 1970. V. 10. No 5. P. 548-549.

346. Stuber C.W. Heterosis in plant breeding // Plant Breeding Rev. 1994. V. 12. P. 227-251.

347. Tabata, M. Studies of a gametophyte factor in barley // Japan J. Genet. 1961. V. 36. P. 157-161.

348. Tanksley S.D. and Loaiza-Pigueroa, P. Gametophytic self-incompatibility is controlled by a single major locus on chromosome 1 in Lycopersicon peruvianum II Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1985. V. 82. P. 5093-5096

349. Tanksley, S.D., Zamir, D. and Rick, CM. Evidence for extensive overlap of sporophytic and gametophytic gene expression in Lycopersicon esculentum II Science. 1981. V. 213. R 453-455.

350. Ter-Avanesian D.V. The effect of varying the number of pollen grains used in fertilization // Theor. Appl. Genet. 1978. V. 52 P. 77-79.

351. Theurer J.C. Inheritance of feather leaf and plantain leaf characters in sugar beet // Crop Sci. 1984. V. 24. No 3. P. 463- 464.

352. Theurer J.C. Linkage tests of mendelian male sterility and other genetic characters in sugarbeet. Beta vulgaris L. // Crop Sci. 1968. V. 8. No 6. P. 698-701.

353. Thorogood D., Hayward M.D. The genetic control of self-compatibility in an inbred line of Lolium perenne L. // Heredity. 1991. V.67. № 2. P.175-180.

354. Uphoff H., Wricke G. Random amplified polimorphic DNA (RAPD) marker in sugar beet (Beta vulgares L.): mapping the genes for nematode resistance and hy-pocotil colour//Plant Breebing. 1992. V. 109. № 2. P. 168-171.

355. Urban R. Analyse der farbungen der Beta-Ruben, insbesondere der fiitterruben // Zuchter. 1958. V. 28. No. 6. P. 275-283.

356. Ursin V.M., Yamaguchi J., McCormick S. Gametophytic and sporophytic expression of anther-specific genes in developing tomato anthers // Plant Cell. 1989. V.l. R 727-736.

357. Vernon L.P. Spectrophotometric determination of chlorophylls and pheophytins in plant extracts // Analytical Chemistry. 1960. V.32. № 9. P. 1144-1150 (188194).

358. Vishnyakova M.A. Willemse M.T.M. Pollen-pistil interaction in wheat // Acta Bot. Neerl. 1994. V.43. № 1. R 51-64.

359. Wagner H., Weber W.E., Wricke G. Estimating linkage relationship of isozyme markers and morphological markers in sugar beet (Beta vulgaris L.) including families with distorted segregations // Plant Breeding. 1992. V. 108. No 2. P. 8996.

360. Wagner H., Wricke G. Genetical control of five isozyme systems in sugar beet (Beta vulgaris L.) // Plant Breeding. 1991. V. 107 P. 124-130.

361. Weber E. Grandriss der biologiscen Statistik. Stuttgart: Gustav Pischer. 1986. 652 S.

362. Wehling P., Hackauf B., Wricke G. Characterization of the two-factor self-incompatibility system in Sécale cereale L. //Adv. Plant Breed. 1995. V. 18. P. 149-161.

363. Wendel J.P., Edwards M.D., Stuber Ch.W. Evidence for multilocus genetic control of preferential fertilisation in maize // Heredity. 1987. V. 58. P. 297-301.

364. Willing R.P., Bashe D., Mascarenhas J.P. An analysis of the quantity and diversity of messenger RNA from pollen and shoots ofZea mays II Theor. Appl. Genet. 1988. V. 75. 5. R 751-753.

365. Willing R.P., Mascarenhas J.P. Analysis of the complexity and diversity of mRNAs from pollen and shoots of Tradescantia II Plant Physiol. 1984. V.75. P. 865-868.

366. Wolyn D.J., Gabelman WH. Inheritance of root and petiol pigmentation in red table beet//J. Hered. 1989. V. 80. No. 1. P. 33-38.

367. Wricke G., Wehling P. Linkage between an incompatibility locus and a peroxi-dase isozyme locus (Prx7) in rye // Theor. Appl. Genet. 1985. V.71. P.289-291.

368. Yamada M. Heterosis in embrio of maize, Zea mays L. // Bull. Natl Inst. Agro-biol. Resour. (Japan). 1985. No 1. P. 85-98.

369. Yamada M. Selective fertilization in maize. Zea mays L. 3. Independence of ga-metophyte factors on superiority of pollen grains from Pi plants // Japan J. Breed. 1984. V. 34. P. 9-16.

370. Yamada M., Ishige T., Ohkawa Y. Reappraisal of Ashby's hypotesis on heterosis of physiological traits in maize. Zea mays L. // Eupliytica. 1985. V. 34. No 3. P. 593-598.

371. Yamada M., Murakami K. -1. Superiority in gamete competition of pollen derived from Fi plant in maize // Pollen: Biology and Applications for plant breeding (ads258

372. D.L.Mulcahy and E.Ottaviano), Elsevier Biomedical, New York-Amsterdam-Oxford. 1983. P. 389-395.

373. Zamir D., Tanksley S.D., Jones R.A. Haploid selection for low temperature tolerance oftomato pollen//Genetics. 1982. V. 101. P. 129-137.

374. Zavada M.S. The relation between pollen exine sculpturing and self-incompatibility mechanisms // Plant Systematics and Evolution. 1984. V. 147. No.1.2. P. 63-78.

375. Zuberi M.I., Lewis D. Gametophytic-sporophytic incompatibility in the Cruciferas Brassica campesths//UQTQdity. 1988. V.61. '3. P.367-377.

376. Zuberi M.I., Verma S.C., Lewis D. Gametophytic-sporophytic incompatibility in the Cruciferae Raphanus sativas II Heredity. 1988. V.61. No. 3. P.355-366.

377. Zuberi M.I., Zuberi S., Lewis D. The genetics of incompatibility in Brassica. 1. Inheritance of self-incompatibility in Brassica campestris II Heredity. 1981. V.46. No. l.P.175-190.259