Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему

Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35G и Энтероцин на продуктивность и естественную резистентность организма молодняка кроликов

ВАК РФ 06.02.09, Звероводство и охотоведение

Автореферат диссертации по теме "Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35G и Энтероцин на продуктивность и естественную резистентность организма молодняка кроликов"

На правах описи

005003152

Скрябин Сергей Олегович

ВЛИЯНИЕ ПРОБИОТИКОВ ВЕТОМ 2, ОРАЛИН 35С И ЭНТЕРОЦИН НА ПРОДУКТИВНОСТЬ И ЕСТЕСТВЕННУЮ РЕЗИСТЕНТНОСТЬ ОРГАНИЗМА МОЛОДНЯКА КРОЛИКОВ

06.02.09 - звероводство и охотоведение

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

- 1 ДЕН 2011

п. Родники Московской обл. - 2011

005003152

Работа выполнена в ГНУ Научно-исследовательский институт пушного звероводства и кролиководства имени В.А.Афанасьева Россельхозакадемии

Научные руководители: доктор ветеринарных наук, профессор

Майоров Анатолий Ильич доктор биологических наук, профессор Тинаева Елена Александровна

Официальные оппоненты: доктор сельскохозяйственных наук

Александров Владимир Николаевич доктор сельскохозяйственных наук, профессор Шумилина Наталья Николаевна

Ведущая организация: ФГБОУ ВПО «Российский университет дружбы

народов»

Защита состоится «22» декабря 2011 года в «11» часов на заседании диссертационного совета Д 006.047.01 при ГНУ НИИ пушного звероводства и кролиководства имени В.А.Афанасьева Россельхозакадемии по адресу: 140143, Московская область, Раменский р-н, п. Родники, ул. Трудовая, д.6.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГНУ НИИПЗК Россельхозакадемии.

Автореферат разослан ноября 2011 г.

Ученый секретарь диссертационного совета кандидат сельскохозяйственных наук

Н.Н.Лоенко

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ Актуальность темы. Кролиководство в России является перспективной отраслью, занимающей особую позицию в современном животноводстве. Основная продукция кролиководства- высокоценное диетическое мясо, а также шкурки и пух. Питательные достоинства кроличьего мяса выгодно отличаются от других видов мяса возможностью в любой сезон года, сразу после убоя животного, использовать для питания крольчатину, что повышает ее диетическую значимость. Высокая плодовитость и скороспелость кроликов позволяет в короткий срок получить значительное количество мяса. В месячном возрасте живая масса кролика увеличивается в 10 -12 раз. За год от одной крольчихи получают свыше 70 кг мяса и более 30 голов молодняка (Балакирев H.A., Тинаева Е.А., 2006).

Одним из ответственных периодов в процессе выращивания кроликов является отъем молодняка от крольчих. При этом организм кролика испытывает существенную стрессовую нагрузку, снижается интенсивность роста, возрастает восприимчивость организма к возбудителям инфекции и неинфекционным заболеваниям. Наиболее распространенными заболеваниями в этот период являются патологии, связанные с желудочно-кишечным трактом, которые, в свою очередь, могут быть вызваны эймериозом, колибактериозом, сальмонеллезом, гельминтными инвазиями и др. Подобные заболевания ведут к снижению молодняком интенсивности роста, живой массы, а также к летальному исходу, что, в итоге, выражается существенными материальными издержками производителя, величина которых может достигать 40% (Baselga и Blasko, 1989).

В этой связи в последние годы возрос интерес к пробиотическим добавкам, а именно к их способности лечить и предотвращать заболевания желудочно-кишечного тракта, а также восстанавливать нормальную микрофлору кишечника после антибиотикотерапии, что, безусловно, способствует повышению продуктивности животных (Tariq M.S., 2005).

В настоящий момент наблюдается тенденция к изучению различного

рода влияния пробиотических микроорганизмов на макроорганизм хозяина и можно предположить, что использование пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин позволит повысить продуктивность и естественную резистентность организма молодняка кроликов.

Цель и задачи исследований. Целью работы явилось изучение влияния пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин на продуктивные показатели молодняка кроликов, а также иммунологические и биохимические показатели крови.

В связи с поставленной целью были определены следующие задачи:

1. Изучить действие пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин на продуктивные показатели организма кроликов, в частности на динамику живой массы, абсолютный и относительный среднесуточный прирост живой массы.

2. Изучить влияние пробиотиков на естественную резистентность, а именно - на фагоцитарную активность нейтрофилов и уровень иммуноглобулинов сыворотки крови.

3. Определить влияние пробиотиков на некоторые биохимические показатели сыворотки крови кроликов.

4. Провести научно-хозяйственную апробацию применения пробиотика, оказавшего наиболее выраженное влияние в экспериментальных условиях и определить его экономическую эффективность в кролиководстве.

Научная новизна исследований. Впервые изучено влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35й и Энтероцин на продуктивные (динамика живой массы, среднесуточный прирост), иммунологические (фагоцитарная активность нейтрофилов, уровень иммуноглобулинов классов ^А, и ^М) и биохимические показатели организма кроликов, а также на динамику численности выделяемых с калом ооцист эймерий.

Практическая значимость исследований. Доказана эффективность применения пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин с целью повышения продуктивных показателей организма кроликов, стимуляции

факторов естественной резистентности и повышения иммунного статуса.

Разработаны рекомендации по применению пробиотика Оралин 35в с целью повышения эффективности производства продукции кролиководства.

Апробация и внедрение результатов исследований. Основные результаты научно-исследовательской работы были доложены, рассмотрены и одобрены на заседаниях Ученого совета института (2009-2011), на курсах повышения квалификации специалистов-кролиководов (2011), на конференции молодых ученых ГНУ НИИПЗК Россельхозакадемии (2010-2011).

Основные положения, выносимые на защиту. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин на продуктивные (динамика живой массы, среднесуточный прирост живой массы, сохранность), биохимические и иммунологические (фагоцитарная активность нейтрофилов крови, уровень иммуноглобулинов классов ^А, ^С; и показатели организма кроликов.

Публикации по теме диссертации. По материалам диссертации опубликовано 2 статьи в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена на 116 страницах компьютерного текста и состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, материал и методы, результаты собственных исследований, обсуждение результатов, выводы, предложения для производства, список использованной литературы и приложение. Список литературы включает 162 источника, в том числе 99 иностранных, работа иллюстрирована 18 таблицами и 11 рисунками.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Научные исследования проведены в 2009-2011 гг. в соответствии с тематическим планом научно-исследовательской работы ГНУ НИИ пушного звероводства и кролиководства имени В.А.Афанасьева Россельхозакадемии на базе экспериментальной кроликофермы «Наука», в лабораториях ГНУ НИИПЗК Россельхозакадемии на чистопородном молодняке кроликов породы белый великан.

Материалом служила сыворотка крови, цельная кровь и кал от кроликов.

Опытные и контрольные группы животных формировали с учетом возраста, массы, а также числа выделяемых ооцист эймерий, для эксперимента отбирали животных, у которых количество ооцист эймерий в двадцати полях зрения микроскопа не превышало 20.

В эксперименте были испытаны пробиотики Оралин 35G (производство Байер АГ, содержащий лиофилизированную культуру Enterococcus faecium DSM 106663 NCIMB, количество живых КОЕ 3,5 х 109/г), Ветом 2 (производство ООО НПФ «Исследовательский центр», содержащий пробиотические микроорганизмы - Bacillus subtilis штамм ВКПМ В 7048 и Bacillus licheniformis штамм ВКПМ В 7038) и Энтероцин (разработка лаборатории генно-инженерных препаратов ГНУ НИИПЗК Россельхозакадемии, содержащий апатогенный адгезивный штамм E.coli), в состав Энтероцина входят две плазмиды - Р74, отвечающая за синтез микроцина С51, и pLTB44, которая содержит ген В-субъединицы термолабильного энтеротоксина.

Пробиотики Ветом 2, Оралин 35G и Энтероцин вводили кроликам перорально в дозах 0,05 г/кг, 0,04 г/кг и 1 мл (2 х 105 КОЕ) соответственно. Животным из контрольной группы перорально вводили стерильный физиологический раствор. Схема проведения эксперимента представлена в таблице 1.

Влияние пробиотиков на организм животных оценивали по изменению продуктивных показателей, биохимических и иммунологических показателей крови и сыворотки крови, динамике выделения ооцист эймерий.

Проводили индивидуальное взвешивание кроликов в 75-, 90- и 105-дневном возрасте.

Абсолютный среднесуточный прирост живой массы молодняка кроликов по возрастным периодам высчитывали по формуле:

D = (W2 - Wl) / (t2 - tl), где D - абсолютный прирост за единицу времени, Wl и W2 - соответственно исходная и конечная живая масса, tl и t2 - время определения исходной и конечной живой массы.

Относительный прирост рассчитывали по формуле С. Броди.

На биохимическом анализаторе Hitachi 917 определяли содержание основных печеночных ферментов - аспартатаминотрансферазы (АсАТ) и аланинаминотрансферазы (АлАТ), общего билирубина, триглицеридов, иммуноглобулинов классов IgA, IgG и IgM.

Определение концентрации общего белка в сыворотке крови проводили на рефрактометре РПЛ-2.

Фракции белков сыворотки крови определяли методом электрофореза по методике Гурвича А.Е. (1964) в борно-боратном буферном растворе.

Цельную кровь брали непосредственно из кровяного русла для определения фагоцитарной активности крови по методике Федюка В.В. (патент РФ № 2138051, 2000г.). Тест-объектом служила суточная культура золотистого стафилококка (S. aureus) в концентрации 2 млрд/мм3 физраствора.

Содержание иммуноглобулинов IgA, IgG и IgM в сыворотке крови определяли на биохимическом анализаторе Hitachi 917.

Копрологические исследования для выделения в кале кроликов ооцист эймерий проводили по методу Фюллеборна, в качестве флотационной жидкости использовали насыщенный раствор хлорида натрия.

Для определения экономической эффективности испытуемых пробиотиков использовали методику В.Ф.Воскобойника (2008).

Статистическую обработку полученных результатов проводили с использованием компьютерной программы StatPlus 2009 5.7.6.0.

Таблица 1. Схема проведения исследований

Препарат Количество голов Доза препарата Способ введения Проводимые исследования

Ветом 6 0,05 г на кг живой массы Пероральный Определение: биохимических показателей сыворотки крови (АсАТ АпАТ, общий билирубин, триглицериды), общего белка и белковых фракций; фагоцитарной активности нейтрофилов; содержания иммуноглобулинов классов IgA, и ^М; зоотехнических показателей.

Оралин 350 6 0,04 г на кг живой массы Пероральный Определение: биохимические исследование сыворотки крови (АсАТ АпАТ, общий билирубин, триглицериды), общий белок и белковых фракций; фагоцитарной активности нейтрофилов; содержания иммуноглобулинов ^А, ^С и зоотехнических показателей.

Энтероцин 6 1 мл (содержание живых КОЕ 2x105) Пероральный Определение: биохимические исследование сыворотки крови (АсАТ АлАТ, общий билирубин, триглицериды), общий белок и белковых фракций; фагоцитарной активности нейтрофилов; содержания иммуноглобулинов 1§А, ^О и 1вМ; зоотехнических показателей.

Контроль 6 1 мл стерильного физиологического раствора Пероральный Определение: биохимические исследование сыворотки крови (АсАТ АлАТ, общий билирубин, триглицериды), общий белок и белковых фракций; фагоцитарной активности нейтрофилов; содержания иммуноглобулинов IgA, и ^М; зоотехнических показателей.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Динамика живой массы кроликов при использовании пробиотиков.

Результаты исследования динамики живой массы молодняка кроликов при использовании пробиотиков Оралин 350, Ветом 2 и Энтероцин представлены в таблице 2.

Таблица 2. Динамика живой массы кроликов при использовании пробиотиков, г

• Возраст кроликов, дней

Группа п Препарат 75 90 105

М±т М±т М±т

1 6 Ветом 2 1505,0 ±20,7 2001,6 ±38,1 2530,0 ±67,2

2 6 Оралин 35в 1501,6 ±30,6 2005,0 ± 57,5 2536,6 ±85,0

3 6 Энтероцин 1486,6 ±21,6 1975,0 ±32,7 2476,6 ± 55,0

4 6 Контроль 1501,6 ±27,8 1935,0 ±28,8 2421,6 ±45,3

Из полученных данных следует, что в группе кроликов, которые получали пробиотик Оралин 35в живая масса была выше, чем у животных из контрольной группы в среднем на 3,61% (70г) в возрасте 90 дней и на 4,74% (115г)-в 105 дней.

В опытной группе, животным которой давали пробиотик Ветом 2 живая масса крольчат была больше по сравнению с животными из контрольной группы на 3,44% (66,6г) в возрасте 90 дней и на 4,47% (108,Зг) в возрасте 105 дней.

У молодняка кроликов, получавших пробиотик Энтероцин живая масса в возрасте 90 дней превосходила таковую у контрольных животных на 2,07% (40г), и на 2,27% (55г) в возрасте 105 дней, соответственно.

Таким образом, использование пробиотиков в опытных группах положительно влияло на динамику живой массы кроликов, которая, хотя и не достоверно, но превышала таковую у животных из контрольной группы.

Среднесуточный прирост живой массы у молодняка кроликов, которым перорально вводили пробиотик Ветом 2, в возрастном интервале 75-90 дней был выше, чем у животных из контрольной группы на 14,6%, и на 8,5% и 11,3% в возрастных промежутках 91-105 и 75-105 дней соответственно (табл.

3).

Таблица 3. Среднесуточный прирост живой массы у кроликов при

использовании пробиотиков

Возраст кроликов, дней Группы

1 Ветом 2 М±т 2 Оралин 350 М±т 3 Энтероцин М± ш 4 Контроль М±т

Среднесуточный прирост, г

75-90 33,1 ± 1,7 33,5 ±2,4 32,5 ± 1,2 28,8 ± 1,9

91-105 35,2 ± 2,9 36,4 ± 3,5 33,4 ± 1,8 32,4 ± 2,8

75-105 34,1 ±2,2 35,0 ±2,7 33,0 ± 1,2 30,6 ± 1,4

У кроликов, получавших пробиотик Оралин 350, среднесуточный прирост живой массы в возрастном промежутке 75-90 дней был выше, чем у животных контрольной группы на 16,2%, и на 12,3% и 14,1% в интервалах 91-105 и 75-105 суток соответственно.

В группе животных, которые получали пробиотик Энтероцин, данный показатель был выше на 12,7% в возрастном промежутке 75-90 дней, на 3,1% и 7,6% в интервалах 91-105 и 75-105 дней.

3.2. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35в и Энтероцин на биохимические показатели сыворотки крови молодняка кроликов.

Биохимическое исследование сыворотки крови животных проводили в начале исследования и через 7 дней после дачи пробиотиков.

В сыворотке крови молодняка кроликов в через 7 дней после начала дачи пробиотиков отмечены следующие изменения: у животных,

получавших пробиотик Ветом 2 содержание аланинаминотрансферазы (АлАТ) повысилось на 8,67 ммоль/л и достигло уровня 53,33 ± 7,20 ммоль/л, что превысило таковой показатель у животных в контрольной группе на 6,31% (табл. 4).

Таблица 4. Биохимические показатели крови кроликов в опытных и контрольных группах после дачи пробиотиков

Показатели Группы

1 Ветом 2, М ± ш,п=6 2 Оралин 35G, М ± ш, п=6 3 Энтероцин, М ± ш, п=6 4 Контроль, М ± ш, п=6

АлАТ, ммоль/л 53,33 ± 7,20 51,83 ±4,30 51,0 ±6,26 50,16 ±4,87

АсАТ, ммоль/л 37,0 ±5,65 36,33 ±4,41 35,83 ±5,56 37,0 ±6,38

Коэффициент Ритиса 0,69 0,70 0,70 0,73

Билирубин: общий, ммоль/л 2,90 ± 0,34 3,0 ± 0,43 3,08 ± 0,28 3,28 ± 0,40

Триглицериды, ммоль/л 0,70 ±0,16 0,77 ± 0,20 0,67 ±0,16 0,56 ±0,13

Уровень аспартатаминотрансферазы (АсАТ) после дачи пробиотика не отличался от показателя в контрольной группе и составил 37,0 ммоль/л. Коэффициент Ритиса у животных первой группы также находился в пределах физиологического уровня и составил 0,69.

Концентрация триглицеридов в первой опытной группе после дачи пробиотика увеличилась на 66,6% с 0,42 ± 0,14 до 0,70 ±0,16 ммоль/л. Данный показатель выше на 0,14 ммоль/л, чем в сыворотке крови контрольных кроликов.

Содержание общего билирубина в сыворотке крови кроликов из первой группы увеличилось на 13,7% до 2,9 ммоль/л, что на 13,1% ниже, чем у кроликов в контрольной группе.

После применения пробиотика Ветом 2 происходила нормализация

содержания триглицеридов и общего билирубина, как показателей нормального функционирования печени.

После введения пробиотика Оралин 35в было выявлено повышение концентрации АлАТ на 19,6%, до 52,83 ± 4,3 ммоль/л. Одновременно фиксировали значительное увеличение содержания АсАТ сыворотки крови на 47,3% до показателя 36,33 ± 4,41 ммоль/л, однако следует заметить, что данный результат не является превышением физиологически нормального уровня.

Содержание общего билирубина в сыворотке крови животных второй группы увеличилось по сравнению с исходной на 9,1% и составило 3,0 ммоль/л. Данный показатель ниже результата у животных из контрольной группы на 9,3%, что свидетельствует о нормализации работы печени после дачи пробиотика Оралин 350.

При изучении содержания уровня триглицеридов в сыворотке крови кроликов второй группы отмечали повышение их содержания с 0,53 ± 0,27 до 0,77 ± 0,20, что составило 42,2%. В то же время данный результат был выше на 37,5% по сравнению с показателем у животных из контроля.

Из анализа полученных данных можно отметить, что при использовании пробиотика Оралин 350 наблюдалась нормализация уровня содержания общего билирубина и триглицеридов в сыворотке крови, при этом незначительно увеличивалось содержание АлАТ и существенно повышалась концентрация АсАТ.

В третьей опытной группе после использования пробиотика Энтероцин в сыворотке крови достоверно увеличивалось содержание АсАТ на 61,7% с 22,16 ± 3,60 до 35,83 ± 5,56 ммоль/л (Р>0,90). Отмечено увеличение на 19,1% уровня АлАТ по сравнению с показателем в начале исследования - до 51 ммоль/л.

Наибольший показатель уровня общего билирубина был выявлен в сыворотке крови молодняка кроликов из контрольной группы - 3,28 ± 0,40. Данный показатель указывает на начальную стадию патофизиологических

процессов в печени.

3.2.1. Влияние пробиотиков на содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови молодняка кроликов

Через 7 суток после введения пробиотика Ветом 2 отмечено уменьшение содержания общего белка на 0,84 г/л, что составило 1,6%, снижение концентрации альбуминов на 5,8% (табл. 5).

Таблица 5. Содержание белка и белковых фракций в сыворотке крови кроликов после дачи пробиотиков

Показатели и Группы

1 М±т 2 М±т 3 М ± га 4 Контроль М ± ш

Общий белок, г/л 6 51,66 ±6,12 50,60 ± 3,77 51,50 ±7,25 53,00 ± 6,92

Альбумины, % 6 35,54 ±7,16 34,73 ±3,17 32,49 ± 5,03 33,85 ±5,97

а-глобулины, % 6 27,47 ±5,91 30,54 ±4,22 26,47 ±4,10 25,06 ±3,27

р-глобулины, % 6 20,82 ± 4,53 17,85 ±5,02 21,21 ±3,71 23,48 ± 5,42

■у-глобулины, % 6 16,14 ±3,21 16,84 ±2,59 19,79 ± 6,46 17,58 ±2,06

Содержание а-глобулинов в сыворотке крови у кроликов первой опытной группы после дачи пробиотика увеличилось с 26,86 ± 2,45 до 27,47 ± 5,91%, концентрация р-глобулинов - с 18,59 ± 2,91 до 20,82 ± 4,53%.

В первой опытной группе наблюдалось незначительное уменьшение содержания у-глобулиновой фракции белка с 16,79 ± 2,81 до 16,14 ± 3,21%.

В сыворотке крови животных второй опытной группы наблюдалось увеличение концентрации альбуминов с 32,02 до 34,73 %, что свидетельствует о положительной работе печени и дает более значимую информацию, чем просто общий белок.

Использование пробиотика Оралин 35й способствовало повышению в

сыворотке крови а-глобулинов до уровня 30,54 %. Одновременно отмечено снижение концентрации (3-глобулинов до уровня 17,85г%, что, в целом, не имеет диагностического значения.

После дачи кроликам пробиотика Энтероцин наблюдалось увеличение содержания у-глобулинов сыворотки крови с 17,21 ± 4,18 до 19,79 ± 6,46 %. Данный результат свидетельствует о положительном влиянии пробиотика на гуморальные фактор иммунитета организма кроликов.

Повышенное содержание у-глобулинов в сыворотке крови контрольных животных рассматривали как показатель напряженности иммунной системы, так как у животных данной группы наблюдали клинические признаки желудочно-кишечных патологий, вызванные увеличением числа паразитирующих эймерий.

3.3. Влияние иробиотиков Ветом 2, Оралин 35С и Энтероцин на фагоцитарную активность крови.

Проведенные исследования позволили выявить ряд закономерностей, позволяющих определить влияние пробиотиков на уровень естественной резистентности, в частности на фагоцитарную активность нейтрофилов.

Добавление в рацион кроликам пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин оказали положительное влияние на уровень фагоцитарной активности нейтрофилов в крови. В целом динамика фагоцитарной активности по группам характеризовалась однонаправленным повышением (табл. 6).

В первой опытной группе фагоцитарная активность крови на начало опыта и на 15-й день эксперимента имели существенные различия. Наблюдалось достоверное увеличение фагоцитарной активности до уровня 44,12% (Р>0,95). Данный показатель был на 2,63% больше по сравнению с контрольной группой.

Во второй группе, животные которой получали Оралин 350, при исследовании показателя фагоцитарной активности нейтрофилов отмечено

достоверное повышение при сравнении с их уровнем на начало эксперимента (Р>0,95). Так, фагоцитарная активность на 15-е сутки эксперимента составила 45,27 ± 2,51%, при этом отмечали ее увеличение на 8,33% по сравнению с показателем первого исследования.

Таблица 6. Показатели динамики фагоцитарной активности нейтрофилов у кроликов в опытных и контрольной группах, п=6

Фагоцитарная активность нейтрофилов, %

1 М±т 2 М±т 3 М±т 4-контроль М±ш

на начало опыта 34,43 ±3,14 36,94 ± 1,67 33,52 ± 3,04 33,69 ±2,98

через 15 дней после дачи пробиотиков 44,21* ±2,64 45,17* ±2,51 41,57* ± 1,20 41,49 ±2,74

* - Р>0,95

При исследовании уровня фагоцитарной активности крови молодняка кроликов из третьей опытной группы было отмечено статистически достоверное увеличение этого показателя на 15-е сутки эксперимента до 41,57 ± 1,20 (Р>0,95).

В то же время в крови кроликов третьей опытной группы и контрольной группы существенных различий между показателями фагоцитарной активности нейтрофилов отмечено не было, что не является отрицательным показателем, а скорее нормальным физиологическим этапом становления иммунной системы.

Таким образом изменение фагоцитарной активности, как показателя естественной резистентности, в результате введения в рацион молодняку кроликов пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин следует рассматривать как следствие иммуномодулирующего действия последних.

3.4. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35в и Энтероцин на содержание в сыворотке крови иммуноглобулинов классов 1§С и

1ем.

Было изучено содержание сывороточных иммуноглобулинов классов ^А, и ^М у молодняка кроликов в 75- и 90 -дневном возрасте, что является клинически важным показателем, так как их уровень оказывает влияние на восприимчивость животных к заболеванию (табл. 7).

Таблица 7. Содержания фракций иммуноглобулинов в сыворотке крови

у кроликов (г/л), М ± т

группа на начало опыта после дачи пробиотиков

НА 18 М НА НС 18 М

1 0,40±0,09 6,31±0,74 0,47±0,09 0,67*±0,05 8,06±0,80 0,61 ±0,03

2 0,42±0,09 6,26±0,55 0,45±0,12 0,83**±0,04 8,43*±0,70 0,69±0,09

3 0,41±0,07 6,16±0,86 0,44±0,12 0,68*±0,02 7,93±0,94 0,68±0,12

4- контроль 0,42±0,12 6,46±0,84 0,45±0,13 0,63±0,05 6,83±1,05 0,61 ±0,05

** - Р>0,99 * - Р>0,95

При изучении содержания иммуноглобулина ^А в первой группе, животные которой получали пробиотик Ветом 2, отмечено достоверное повышение показателя к концу опыта (Р>0,95), и концентрация ^А превысила исходную на 0,27 г/л (67,5%). При использовании пробиотика Ветом 2 также увеличивалось содержание в сыворотке крови с 6,31 ± 0,74 до 8,06 ± 0,80 г/л, что превысило начальный показатель на 27,7%, концентрация 1§М в сыворотке крови кроликов увеличилась на 29,7% и достигла 0,61 г/л.

Установлено, что после добавления в рацион молодняку кроликов пробиотика Оралин 35в отмечено статистически достоверное повышение содержания иммуноглобулина класса ^А на 97,6% с 0,42 ± 0,09 до 0,83 ±

0,04 г/л (Р>0,99). Данное изменение происходило наряду с повышением фагоцитарной активности крови. Достоверно увеличивалось содержание иммуноглобулина ^ на 2,17 г/л, до уровня 8,43г/л (Р>0,95), что составило 34,7%.

Увеличение содержания иммуноглобулина ^А в среднем на 65,8% также наблюдали в третьей опытной группе, где данный показатель составил 0,68 ± 0,02 г/л.

При исследовании содержания иммуноглобулина класса 1§А в контрольной группе получен результат, составивший 0,63 ± 0,05 г/л. Следует отметить, что данный показатель оказался наименьшим по всем группам, что можно рассматривать как пониженный уровень гуморальной защиты. Также у кроликов контрольной группы был отмечен низкий показатель содержания ^М в сыворотке крови - 0,61 ± 0.05 г/л.

3.5. Влияние пробиотиков на динамику выделения ооцист эймерий.

В связи с существенным влиянием паразитирования эймерий на физиологическое состояние желудочно-кишечного тракта и иммунитет кроликов, определение воздействия пробиотиков Ветом 2, Оралин 35в и Энтероцин на данный патоген несомненно представляет практический интерес. Полученные результаты исследований представлены в таблице 8.

У молодняка кроликов первой опытной группы количество выделяемых с калом ооцист эймерий возрастало в первые 5 дней до 6,67 ± 2,50, в дальнейшем наблюдался некоторый спад до 5,67 ± 1,03 на 10-е сутки эксперимента и на конец опыта обнаруживали в среднем 4,83 ± 2,04 зрелых ооцисты.

Во второй опытной группе на начало опыта в кале молодняка кроликов, получавших пробиотик Оралин 35С, количество ооцист составило 5,83 ± 1,60. На 10-е сутки содержание ооцист уменьшилось на 1,67 ооцист.

В результате применения пробиотика Энтероцин в третьей опытной

группе динамика выделения ооцист эймерий характеризовалась следующими показателями: на начало опыта их количество составило 7,00 ± 2,09. В последующий экспериментальный период наблюдалось постепенное уменьшение содержания ооцист, при этом на 5-й день показатель составил 5,66 ± 2,73, на 10-й день - 4,50 ± 1,51, на конец опыта (15-й день) - 3,00 ± 1,89.

Таблица 8.Динамика выделения ооцист эймерий

Временной п Количество выделяемых с калом ооцист эймерий по группам, М±т

интервал Ветом 2 Оралин 35 в Энтероцин Контроль

на начало опыта 6 6,16 ± 1,83 5,83 ± 1,60 7,00 ± 2,09 5,00 ± 2,28

5-е сутки 6 6,67 ± 2,50 6,00 ± 2,09 5,66 ±2,73 11,83 ±3,45

10-е сутки 6 5,67 ± 1,03 4,16 ± 1,47 4,50 ± 1,51 10,17 ±6,96

15-е сутки 6 4,83 ± 2,04 4,00 ± 2,60 3,00 ±1,89 7,33 ± 3,47

Таким образом было установлено, что кролики опытных групп, получавших пробиотики, имели сходные показатели в динамике выделения ооцист эймерий. В контрольной группе на начало эксперимента число выделяемых ооцист составило 5,00 ± 2,28. При последующем мониторинге отмечено значительное увеличение числа ооцист в кале.

Максимальное количество паразитов отмечено на 5-е сутки - 11,83 ± 3,45, что составило 136,6% от исходного показателя. Следует отметить, что при таком увеличении числа паразитов клинических проявлений эймериоза зафиксировано не было.

При последующих исследованиях отмечено постепенное уменьшение содержания ооцист эймерий, на 10-й день их количество равнялось 10,17 ± 6,96, на 15-е сутки показатель составил 7,33 ± 3,47 ооцист в 20-ти полях зрения микроскопа.

Показатели выделения ооцист эймерий с калом у молодняка кроликов контрольной группы отличались стабильным высоким значением на

протяжении всего исследования, несмотря на некоторое снижение к 15 дню эксперимента, уровень их превышал исходные значения.

4. ПРОИЗВОДСТВЕННЫЕ ИСПЫТАНИЯ И ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОБИОТИКА ОРАЛИН 35й В КРОЛИКОВОДСТВЕ

Полученные данные позволяют считать, что наилучший эффект по влиянию на продуктивные и иммунные показатели организма кроликов показал пробиотик Оралин 350. В связи с чем для подтверждения достоверности результатов и эффективности использования данного пробиотика был проведен научно-производственный эксперимент на большом поголовье кроликов (200 голов). Группы формировали с учетом породы, живой массы и возраста.

4.1 Влияние пробиотика Оралин 35С на живую массу и среднесуточный прирост у кроликов.

Была изучена динамика живой массы молодняка кроликов при использовании пробиотика Оралин 35й путем их взвешивания в возрасте 60, 75 и 90 дней.

В группе кроликов, которые получали пробиотик Оралин Збв, живая масса была выше, чем у животных из контрольной группы на 10,4% (167,2г) в возрасте 75 дней и на 13,1% (240г) - в 90 дней. При этом в конце исследований разница между живой массой кроликов опытной и контрольной групп была статистически достоверной (Р>0,99).

4.2 Влияние пробиотика Оралин 35С на динамику выделения ооцист эймерий.

Согласно данным, представленные в таблице 9, следует отметить, что в опытной группе количество ооцист в двадцати полях зрения микроскопа на начало опыта составило 11,45 ± 2,31, на 5-й день эксперимента -19,03 ± 2,07, что достоверно ниже (Р>0,95), чем у кроликов в контрольной группе. На 10-е

сутки данный показатель в опытной группе был также ниже на 67,8%.

Таблица 9. Динамика выделения ооцист эймерий

Показатель Количество выделяемых с калом ооцист эймерий по группам, М ± т,п=100

Контрольная Опытная

на начало опыта 10,44 ±2,27 11,45 ±2,31

через 5 суток 31,79 ±5,71 19,03* ±2,07

через 10 суток 20,31 ±6,88 12,1 ±3,86

через 15 суток 9,6 ±2,38 4,2* ± 1,44

* - Р>0,95

На 15-е сутки эксперимента в кале кроликов опытной группы количество ооцист было достоверно ниже в 2,28 раза (Р>0,90) по сравнению с контролем.

4.3 Влияние пробиотика Оралин 35С на убойную массу, выход убойной массы и категорию тушки.

С целью определения мясной продуктивности проводили убой кроликов в возрасте 90 дней по общепринятой методике путем смещения шейных позвонков.

При оценке мясной продуктивности было отмечено, что у кроликов в опытной группе, получавших пробиотик Оралин 35в средняя убойная масса была достоверно больше, чем в контроле на 162,42 г (Р>0,95).

Следует отметить, что выход убойной массы кроликов опытной группы также был выше, чем в контрольной, и составил 50,97%.

Экономическая эффективность, прибыль от использования пробиотика Оралин 35й составила 5599,2 руб. Экономическая эффективность на 1 руб. затрат (на одного кролика) составила 12,5 руб.

21

6. ВЫВОДЫ

1. Включение в рацион кроликов пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин обеспечивает увеличение прироста живой массы в возрасте 90 дней соответственно на 14,6%, 16,2% и 12,7%; в возрасте 105 дней - на 8,5%, 12,3% и 3,1% соответственно.

2. Использование пробиотиков Ветом 2, Оралин 35в и Энтероцин способствует повышению естественной резистентности кроликов, усиливая фагоцитарную активность нейтрофилов крови до 44,1%, 45,3% и 41,6% соответственно, а также повышая поглотительную способность активных нейтрофилов до 162, 166 и 164 микробных тел.

3. Под влиянием пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин увеличивается содержание иммуноглобулинов классов ^А, ^О и ^М: в группе животных, получавших Ветом 2 - на 67,5%, 27,7% и 29,7%; Оралин 350 - 97,6%, 34,7% и 53,3%; Энтероцин - 65,8%, 28,7% и 65,8% соответственно.

4. Пробиотики Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин снижают степень инвазии эймериями, предотвращая развитие клинических признаков эймериоза.

5. Среди изученных пробиотиков для профилактики эймериоза кроликов, повышения их естественной резистентности и прироста живой массы наиболее эффективным является Оралин 350.

6. Использование пробиотика Оралин 350 обеспечивает повышение сохранности поголовья на 6%.

7. Экономическая эффективность применения пробиотика Оралин 350 в процессе выращивания молодняка кроликов составляет 12,5рублей на 1 рубль затрат.

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРОИЗВОДСТВА

С целью увеличения показателей продуктивности молодняка кроликов и снижения отхода от эймериоза рекомендуется после отсадки крольчат от

самок включать в их рацион пробиотик Оралин 350 в дозировке 0,04 г/кг живой массы, курс - 4 дня.

Препарат следует давать перорально: взрослым животным в смеси с кормом, молодняку кроликов - индивидуально на корень языка с помощью пипетки дозатора.

Пробиотик Оралин 35в рекомендуется применять указанным курсом после антибиотикотерапии или дачи кокцидиостатиков с целью восстановления нормальной микрофлоры кишечника.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Скрябин, С.О. Влияние пробиотиков ветома 1.1 и энтероцина на продуктивные показатели кроликов / Скрябин С.О.//Кролиководство и звероводство. - 2010. - № 5. - С. 16-17

2. Скрябин, С.О. Использование пробиотика оралин 35 О с целью профилактики эймериоза кроликов / Скрябин С.О.//Кролиководство и звероводство. - 2011. - №4. - С. 27-28

Подп. впеч. 18.11.2011. Формат60x90/16. Объем 1,0п.л.

Бумага офисная. Печать цифровая.

Тираж 100 экз. Заказ № 8 71

ФГБОУВПО «Государственный университет управления» Издательский дом ФГБОУВПО «ГУУ»

109542, Москва, Рязанский проспект, 99, Учебный корпус, ауд. 106

Тел./факс: (495) 371-95-10, e-mail: diric@guu.ru

www.guu.ru

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Скрябин, Сергей Олегович

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Понятие о микробиоценозе.

1.2. Общие сведения о пробиотиках и пробиотических микроорганизмах.

1.3. Влияние пробиотиков на продуктивные качества сельскохозяйственных животных.

1.4. Иммунокорректорный и иммуногенный эффект от применения пробиотиков.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35С и Энтероцин на продуктивные показатели молодняка кроликов.

3.1.1. Динамика живой массы кроликов при использовании пробиотиков.

3.2. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35С и Энтероцин на биохимические показатели сыворотки крови молодняка кроликов

3.2.1. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин на содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови молодняка кроликов.

3.3. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин на естественную резистентность организма кроликов.

3.3.1. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35в и Энтероцин на фагоцитарную активность крови

3.3.2. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35в и Энтероцин на содержание в сыворотке крови иммуноглобулинов классов ^А, 1^0 и IgM

3.4. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35G и Энтероцин на динамику выделения ооцист эймерий.

4. ПРОИЗВОДСТВЕННЫЕ ИСПЫТАНИЯ И ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОБИОТИКА ОРАЛИН 35G В КРОЛИКОВОДСТВЕ

4.1. Влияние пробиотика Оралин 35G на живую массу и среднесуточный прирост живой массы у кроликов.

4.2. Влияние пробиотика Оралин 35G на динамику выделения ооцист эймерий.

4.3. Влияние пробиотика Оралин 35G на убойную массу, выход убойной массы и категорию тушки

4.4. Расчет экономической эффективности от применения пробиотика Оралин 35G в производственных условиях.

5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ.

6. ВЫВОДЫ

7. ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРОИЗВОДСТВА.

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 35G и Энтероцин на продуктивность и естественную резистентность организма молодняка кроликов"

Актуальность темы. Кролиководство в России является перспективной отраслью, занимающей особую позицию в современном животноводстве. Основная продукция кролиководства — высокоценное диетическое мясо, а также шкурки и пух. Питательные достоинства, кроличьего мяса выгодно отличаются от других видов мяса возможностью в любой сезон года, сразу после убоя животного, использовать для питания крольчатину, что повышает ее диетическую значимость. Высокая плодовитость и скороспелость кроликов позволяет в короткий срок получить значительное количество мяса. В месячном возрасте живая масса кролика увеличивается в 10 - 12 раз. За год от одной крольчихи получают свыше 70 кг мяса и более 30 голов молодняка (Балакирев H.A., Тинаева Е.А., 2006).

Одним из ответственных периодов в процессе выращивания кроликов является отъем молодняка от крольчих. При этом организм кролика испытывает существенную стрессовую нагрузку, снижается интенсивность роста, возрастает восприимчивость организма к возбудителям инфекции и неинфекционным заболеваниям. Наиболее* распространенными заболеваниями^ в этот период являются* патологии, связанные с желудочно-кишечным трактом, которые, в свою- очередь, могут быть вызваны эймериозом, колибактериозом, сальмонеллезом, гельминтными инвазиями и др. Подобные заболевания ведут к снижению молодняком интенсивности роста, живой массы, а также к летальному исходу, что, в итоге, выражается существенными материальными издержками производителя, величина которых может достигать 40% (Baselga и Blasko, 1989).

В этой связи в последние годы возрос интерес к пробиотическим добавкам, а именно к их способности лечить и предотвращать заболевания желудочно-кишечного тракта, а также восстанавливать нормальную микрофлору кишечника после антибиотикотерапии, что, безусловно, способствует повышению продуктивности животных (Tariq M.S., 2005).

В настоящий момент наблюдается тенденция к изучению различного рода влияния пробиотических микроорганизмов на макроорганизм хозяина и можно предположить, что использование пробиотиков Ветом 2, Оралин 35в и Энтероцин позволит повысить продуктивность и естественную резистентность организма молодняка кроликов.

Цель и задачи исследований. Целью работы явилось изучение влияния пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин на продуктивные показатели молодняка кроликов, а также иммунологические и биохимические показатели крови.

В связи с поставленной целью были определены следующие задачи:

1. Изучить действие пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин на продуктивные показатели организма кроликов, в частности на динамику живой массы, абсолютный и относительный среднесуточный прирост живой массы.

2. Изучить влияние пробиотиков на естественную резистентность, а именно — на фагоцитарную активность нейтрофилов и уровень иммуноглобулинов сыворотки крови.

3. Определить влияние пробиотиков на некоторые биохимические показатели сыворотки крови кроликов.

4. Провести научно-хозяйственную апробацию применения пробиотика, оказавшего наиболее выраженное влияние в экспериментальных условиях и определить его экономическую эффективность в кролиководстве.

Научная новизна исследований. Впервые изучено влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин на продуктивные (динамика живой массы, среднесуточный прирост), иммунологические (фагоцитарная активность нейтрофилов, уровень иммуноглобулинов классов и и биохимические показатели организма кроликов, а также на динамику численности выделяемых с калом ооцист эймерий.

Практическая- значимость исследований. Доказана эффективность применения пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин с целью повышения продуктивных показателей организма .кроликов, стимуляции факторов естественной резистентности и повышения иммунного статуса.

Разработаны рекомендации по применению пробиотика Оралин 35С с целью повышения эффективности производства продукции кролиководства.

Апробация и внедрение результатов исследований. Основные результаты научно-исследовательской работы были доложены, рассмотрены и одобрены на заседаниях Ученого совета института (2009-2011), на курсах повышения квалификации специалистов-кролиководов (2011), на конференции молодых ученых ГНУ НИИПЗК Россельхозакадемии (2010-2011).

Основные положения, выносимые на защиту. Влияние пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и.Энтероцин на продуктивные (динамика живой массы, среднесуточный прирост живой массы, сохранность), биохимические и иммунологические (фагоцитарная активность нейтрофилов крови, уровень иммуноглобулинов классов ^А, и ^М) показатели организма кроликов.

Публикации по теме диссертации. По материалам диссертации опубликовано 2 статьи«в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена' на 116 страницах компьютерного текста и состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, материал и методы, результаты собственных исследований, обсуждение результатов, выводы, предложения для производства, список использованной литературы и приложение. Список литературы включает 162 источника, в том числе 99 иностранных, работа иллюстрирована 18 таблицами и 11 рисунками.

Заключение Диссертация по теме "Звероводство и охотоведение", Скрябин, Сергей Олегович

6. ВЫВОДЫ

1. Включение в рацион кроликов пробйогаков Ветом 2, Оралин 350

4 л и Энтероцин обеспечивает увеличение прироста живой массы в возрасте 90 дней соответственно на 14,6%, 16,2% и 12,7%; в .возрасте 105 дней -. на 8,5%, 12,3% и 3,1% соответственно.

2. Использование пробиотиков Ветом 2, Оралцн 350 и Энтероцин способствует повышению естественной резистентности-кроликов, усиливая фагоцитарную активность нейтрофилов крови до 44,1%, 45,3% и 41,6% соответственно; а также повышая поглотительную способность активных нейтрофилов до 162, 166 и 164 микробных тел.

3. Под; влиянием! пробиотиков Ветом 2, Оралин 350 и Энтероцин увеличивается содержание иммуноглобулинов; классов 1§0 и ^М: в группе животных, получавших Ветом 2 — на 67,5%, 27,7% и-29,7%; Оралин 350 - 97,6%, 34,7% и 53,3%; Энтероцин - 65,8%, 28,7% и> 65,8% соответственно. - "Ч-;

4. Пробиотики Ветом 2, Оралин 35в и Энтероцин снижают степень инвазии эймериями; предотвращая развитие клинических признаков эймериоза.

5. Среди1 изученных пробиотиков для профилактики эймериоза кроликов, повышения их естественной; резистёнпюсти . и прироста живой массы наиболее эффективным является Оралин 350.

6. Использование пробиотика Оралин 350 обеспечивает повышение сохранности поголовья на 6%.

7. Экономическая эффективность применения-пробиотика Оралин 350 в процессе выращивания молодняка кроликов составляет 12,5рублей на 1 рубль затрат.

7. ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРОИЗВОДСТВА

С целью увеличения показателей продуктивности молодняка кроликов и снижения отхода от эймериоза рекомендуется после отсадки крольчат от самок включать в их рацион пробиотик Оралин 350 в дозировке 0,04 г/кг живой массы, курс — 4 дня.

Препарат следует давать перорально: взрослым животным в смеси с кормом, молодняку кроликов — индивидуально на корень языка с помощью пипетки дозатора.

Пробиотик Оралин 350 рекомендуется применять указанным курсом после антибиотикотерапии или дачи кокцидиостатиков с целью восстановления нормальной микрофлоры кишечника.

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, кандидата биологических наук, Скрябин, Сергей Олегович, п. Родники Московской обл.

1. Александров, В.Н. Приусадебное хозяйство. Кролики. Нутрии./ В.Н.Александров, В.Ф.Кладовщиков. СПб.: «Агропромиздат», Пон «Диамант», 1993.-240с.

2. Алешкин, А.В, Бактерийный препарат нового поколения «Споробактерин» // А.В.Алешкин, С.С. Афанасьев, В.Ю. Давыдкин, Т.Н.Манько, И.Ю.Давыдкин; Мед. картотека. 2003. - №' 4.

3. Бакулина, Л.Ф. Пробиотики на основе спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus и их использование в ветеринарии // Л.Ф. Бакулина, Н.Г. Перминова, И.В.Тимофеев; Биотехнология. 2001. — № 2. — С. 48-56.

4. Балакирев H.A. Кролиководство / Н:А.Балакирев, Е.А. Тинаева, Н.И. Тинаев, H.H. Шушилина. М.: КолосС, 2006.-232с.

5. Бондаренко, В.М. Конструирование генно-инженерных препаратов — пробиотиков и их ■ безопасность. В.М., Бондаренко, В.А. Белявская http://www.gastroportal.rü/php/ conteht.php?id=1340&pr=print

6. Грачева, M.A. Эффективность нового бактерийного препарата биоспорина при лечении острых кишечных инфекций // М.А. Грачева, А.Ф. Гаврилов, А.И. Соловьева, В.В. Смирнов, И.Б. Сорокулова, С.Р. Резник, Н.В. Чудновская; Ж. микробиол. 1996. - № 1.— С. 75—77.К

7. Учасов, Д.С. Влияние пробиотического препарата «Проваген» на физиолого-биохимический статус и продуктивность молодняка свиней // Д.С. Учасов, Н.И. Ярован, О.Б. Сеин; Вестник ОрелГАУ. 2010. - №3. - С. 97-99.

8. Елфимова, И.А. Интестевит и биокорм,. • «Пионер»4 для повышения сохранности молодняка / Елфимова И.А;; Ясников' С.В., Перов

9. А.Н. // Ветеринария. 2006. - № 7. - С.16-17. ' '

10. Зайченко, А. А. Разработка новых методов борьбы с картофельной болезнью хлеба / Зайченко А.А. //Научный потенциал сту-денчества —гбудущему России: Материалы Всероссийской научной студенческойконференции. Ставрополь: СевКавГТУ, 2006. — 1 с.

11. Кийко, Е.И. Эффективное животноводство, зоотехник / Кийко Е.И., Шихов Р.И. // Тамбовский филиал ГНУ ВНИИЖ РАСХН, ОАО «Голицино», июнь 2008 год. . , ,.

12. Коршунов, В.М. Микрофлора кишечника '.¿у детей Монголии, России и Швейцарии // В.М. Коршунов, JI.B. Поташник, Б.А. Ефимов, Н.Н. Володин, О.В. Коршунова; Ж. микробиол. — 2001. — № 2. — С. 61-64.

13. Краткий определитель бактерий Берги. М.: Мир, 1980. - 495 с.j ,

14. Мазанкова, Л.Н. Пробиотики: характеристика препаратов и выбор в педиатрической практике / Мазанкова Л.Н., Лыкова Е.А. // Дет. инфекции. 2004. - № 1.- С. 18-23.

15. Малик, Н.И. Ветеринарные пробиотические препараты / Малик Н.И., Панин А.Н. // Ветеринария. 2001. - № 1. - С. 46-5.1.

16. Неустроев, М.П. Применение пробиотика «Сахабактисубтил» стельным коровам / Неустроев М.П., Татаринова С.С. // Зоотехния. — 2006. — № 12.-С. 21-23.

17. Осипова, И.Г. Доклинические испытания новых споровых пробиотиков / Осипова И.Г., Сорокулова И.Б., Васильева Е.А., Буданова Е.В: // Вести. РАМН.-2005. №12: - С. 36-40. ' " '

18. Осипова, И.Г. Изучение безопасности бактерий рода Bacillus, составляющих основу некоторых пробиотиков / Осипова И.Г., Сорокулова И.Б., Терешкина . Н.В., Григорьева JI.B. // Ж. микробиол. — 1998. — № 6. — С.68.70. . : ; . :

19. Осипова, ЖГ. Споровые пробиотики: d Осипова И;Г., Михайлова H.A., Сорокулова И.Б., Васильева Е.А., Гайдеров A.A. .//Ж. микробиол: 2003;- № 3; -С. L13-119:

20. Пат. 2181596 Российская Федерация, МПК С1, А61К35/74. Лекарственный препарат из ■ бактерий рода; Bacillus /' Байгузина Ф.А., Алсынбаев М1М1, Штроман E.A., Кулагин В:Ф., Осипова И.Г., Байгузина С.Н. Заявл. 05.04.01; опубл. .27.04.02, БИПМ, № 12.

21. Подберезный, В.В. Влияние эндобактерина на иммунный статус организма и паренхиматозные органы коров при умастите / Подберезный В.В., 11олянцев Н.И: // С.-х. биол. 1994. - № 6; - С:.:106М11.

22. Резник, С.Р. Серологический? ответ макроорганизма на патогенные бактерии под влиянием пробиотика, из бацилл / Резник СР., Выоницкая В.А., Афонская С.В., Смирнов В.В. // Микробиол. ж. — 1993. -Т. 55, № 5.-С. 81-83. "" s

23. Смирнов, В.В: Антибиотики и/или пробиотики: размышления и факты / Смирнов В.В. // Мед. картотека. 1998. - № 8.

24. Смирнов, В.В. Влияние комплексного пробиотика споролакта на микробиоценоз кишечника теплокровных / Смирнов ;В.В., Резник С.Р., Вьюницкая В.А., Сорокулова И.Б., Литвин BJI. // Микробиол. ж. — 1995. — Т. 57, №4. -С. 42 49.

25. Смирнов, В.В. Современные представления о механизмах лечебнопрофилактического действия пробиотиков из бактерий рода Bacillus /

26. Смирнов В.В., Резник С.Р., Вьюницкая В.А., Сорокулова И.Б., Самгородская Н.В., Тофан A.B. // Мпсробюл. ж. 1993.,- Т. 55, № 4. - С. 92-112. •

27. Сорокулова, И.Б. Влияние пробиотиков из бацилл на функциональную активность макрофагов / Сорокулова И.Б. // Антибиотики и химиотерапия. 1998. - Т. 43, № 2. - С. 20-23.

28. Тараканов Б.В. Использование пробиотиков в животноводстве. — Калуга: ВНИИФБ и-П с/х животных, 1998. С. 5-6.

29. Тарасова, Т.А. Комплексное лечение трихомонадных вагинитов во время беременности с использованием препарата Бактиспорин / Тарасова Т.А., Хамадеева JI.P. // Актуал. вопр. акушерства и гинекол. — 2001—2002. — Т. 1, № 1.

30. Швыдков, А.Н. Применение пробиотической мол очно-кислойдобавки в рационах кормлениясельскохозяйственных животных и птицы /

31. Швыдков А.Н., Мотовилов К.Я.; Чебаков В.П. //Фундкментальные исследования М , 2006 - № 8 - С 96-97

32. Белявская, В.А. Испытание нового пробиотика «Субалина-форте» в промышленном производстве / Белявская В.А., Калиперова Т.А., Хрусталева Н.С., Мотовилов Т.Я.'// Пипщ, Экология, Качество: Сб: мат-в междун. науч.-практ. конф. Новосибирск, 2001. С.89-90.

33. Воробьёв A.B., Фадеев А.И. Ii Акт. пробл. производства продуктов животноводства. Сб. науч. тр. Самара, 2001.-С.86-88.

34. Воскобойник, В.Ф. Организационно-коммерческий справочник ветеринарного специалиста / Воскобойник В.Ф. // М: Еуманит. Изд. Цент. ВЛАДОС, 2008.-368 с. ' ' X ! :' ss

35. Деминова, О.В. Повышение уровня молочной продуктивности и качества молока коров при использовании бактериального препарата (пробиотика): автореф. дисс. канд. вет. наук / Деминова О.В. Вологда-Молочное: 2002.22с: • ■ . ' . '

36. Емельяненко, П.А. Энтеротоксины кишечных бактерий, / Емельяненко П.А.//Ветеринария. 2000: №2. С.25.

37. Емельяненко, П.А. Токсикозы бактериальной этиологии у норок / Емельяненко ПА., КозловскишЮЖ;, Серебряков;С:Нй// Кролиководство и звероводство. №2. 1999. С.24-25. ^

38. Емельяненко, П.А. Защита норок от бактериальных энтеротоксинов / Емельяненко П1А., Егорова A.A., Мамушкин В.Н. И Кролиководство и звероводство. №6. 2000. С.24.

39. Зусман, Н.С. Кролиководство / Зусман Н.'С. // М:, «Колос». 1975. С.38-41.

40. Зернов, B.C. Сравнительное изучение пробиотическихпрепаратов для телят молочного периода выращивания / Зернов B.C., Алиев Г.Ф., Косолапое В.М. // Тез. докл. первой науч. гор. нац .конф. аспир-в соиск. Киров, 2001. С.59-60. , ; • .: -г " ;

41. Калунянц, К.А. Применение продуктов, мйкробиологического синтеза в животноводстве. / Калунянц К.А., Ездаков Н.В., Ливнях И.Г. // Киев: Колос. 1980.288с.

42. Литвинец, С.Г. Эффективность применения пробиотика «Лактоамиловорина» в рационах свиней в условиях интенсивной технологии производства: авто-реф; дисс. на соиск. уч. ст. канд. вет. наук. / Литвинец С.Р. Киров. 2001.26с,

43. Леонтюк, С.В. Предупреждение желудочно-кишечных заболеваний крольчат / Леонткж С.В // Ж.Кролиководстваи звероводство. 19631 № 5. ; ' • " • " J

44. Малик, Н.И. Новые пробиотические препараты ветеринарного назначения: автореф. дис. на соиск: уч. ст. канд. вет. наук. / Малик Н.И. Москва. 2002.56с. .

45. Никольский, В.В. Основы иммунитета,' сельскохозяйственных животных / Никольский В.В. М. «Колос». 1968. 224 с.

46. Парникова, С.И Изучение биологических свойств бактерий рода Bacillus и разработка пробиотического препарата, для профилактики и лечения диареи новорожденных телят: авторефл диссЯ • канд. вет. наук. / Парникова С.И. Якутск. 2002120с: ' "

47. Помыгко, В.Н. Сравнительные данные по естественной резистентности чистопородных кроликов и их помесей / Помытко В.Н., Рютова В.П., Тинаева Е.А // НИИПЗК: сборник научных трудов/НИИПЗК, 1976.-№ 14.-С.71-77. " ' •' V -Ч

48. Плященко, С.И. Естественная резистентность организма животных / Плященко С.И., Сидоров В.Т. // Л.: «Колос» Ленинградское отделение, 1979. 184 с.

49. Плохинский, Н.А. Биометрия / ПлЬхинскйй Н'.А. М. Изд-во МГУ,1969. -С.367.

50. Рютова, В.П. Бактерицидная активность" сыворотки крови кроликов в зависимости от условий содержания / Рютова В.П., Тинаева Е.А // НИИПЗК: сборник научных трудов / НИИПЗК, 1977, Т. 16, С.54-58.

51. Тараканов, Б.В. Механизмы действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных / Тараканов Б.В. //Ветеринария. -2000. №1. С.47-54.

52. Тараканов, Б.В. Биологические эффекты пробиотиков / Тараканов Б.В. // Современные проблемы биотехнологии продуктивных животных// ВНИИФБ и П с/х животных.: сборник научных трудов'/ ВНИИФБ и П с/х животных, Боровск, 1999. -Т.38.

53. Тараканов, Б.В. Пробиотический потенциал Lactobacillus casei subsp pseudoplantarum при выращивании телят / Тараканов Б.В., Николичева Т.А. // Ветеринария. 200Г. № 3. - С.46-48.t

54. Тараканов, Б.В. Использование • микробных препаратов и продуктов микробиологического синтеза в животноводстве / Тараканов Б.В. ИМ.: ВНИИТЭИ-Агропром, 1987, 48с

55. Тинаев, Н.Н. Эффективность применения, пробиотиков нового поколения в норководстве !> Тинаев' Н.И // Кролиководство и звероводство. 2006. № 4.-С.5-7. '' " ;

56. Хмель, И.А. Характеристика энтеробактерий, продуцирующих антибиотики широкого спектра действия микроцина / Хмель И.А., Манохина И.М., Басюк Е.И., Метлицкая А.З., Липасова В.А., Романова Ю.М. // Генетика, 1993. Т.29. № 5. С.768-776/ :

57. Abdel Samee A.M. Using some antibiotics and probiotics for alleviating heat stress on growing and doe rabbits in Egypt. World. Rabbit. Sc. 1995, Vol. 3, fasc.3, p. 107-111.

58. Adami A., Cavazzoni V. Occurrence of'selected bacterial groups in the feces of piglets fed with Bacillus coagulans as probiotic //'J. Basic Microbiol. -1999.-Vol. 39.-P. 3-9.

59. Adams M.R., Marteau P. On the safety of lactic acid bacteria from food // Int. J. Food Microbiol. 1995. - Vol. 27. - P. 263-264.

60. Andersson A., Granum P.E., Ronner U. The adhesion of Bacillus cereus spores to epithelial cells might be an additional vimlence mechanism // Int. J. Food Microbiol. 1998. - Vol. 39. - P. 93-99.

61. Ash C., Farrow J.A.E., Wallbanks S., Collins M.D. Phylogenetic heterogeneity of the genus Bacillus revealed by comparative analysis of small-subunitribosomal RNA sequence // Lett. Appl. Microbiol-. -1991. Vol. 13. - P. 202-206.

62. Beattie S.H., Williams A.G. Detection of toxigenic strains of Bacillus cereus and other Bacillus spp. with an improved cytotoxicity assay // Lett. Appl. Microbiol. 1999. - Vol. 28. - P. 221-225.

63. Bloksma N., Ettekoven H;, Hofhuis F.M. et -al.- Effects of lactobacilli on parameters of non-specific resistance5 of mice // Med. Microbiol. Immunol. — 1981. —V. 170, № 1. —P. 45-53.

64. Borriello S.P., Hammes W.P., Holzapfel W. et al. Safety of probiotics that contain lactobacilli or bifidobacteria// Clin. Infec.Diseases. — 2003. Vol. 36. -P. 775-780. - :

65. Caldini G., Trotta F., Cenci G. Inhibition of 4-nitroquinoline-l-oxide genotoxicity by Bacillus strains // Res. Microbiol. — 2002. Vol. 153. — P. 165— 171.

66. Casula G., Cutting S.M. -Bacillus probiotics:- spore germination in the gastrointestinal tract // Appl. and Environ. Microbiol. 2002. - Vol. 68. - P. 2344-2352.

67. Cavazzoni B., Adami A., Castro villi C. Performance of broiler chickens supplemented with Bacillus coagulans as probiotic'// Brit. Poult. Sci. -1998.-Vol. 39. -P. 526-529. ~ "

68. Chandra R.K. Effect of Lactobacillus on the incidence and severity of acute rotavirus diarrhoea in infants. A prospective placebo-controlled double-blind study // Nutrition research. — 2002. — Vol. 22, № 1. — P. 65-69.

69. Ciffo F. Determination of the spectrum of antibiotic resistance of the Bacillus subtilis strains of Enterogermina // Chemioterapia. — 1984. 111(1). - P. 45-51.

70. Ciprandi G., Scordamaglia A., Venuti D., Caria M., Canonica G.W. In vitro effects of Bacillus subtilis on the immune response // Chemioterapia. 1986. -Vol. 6.-P. 404-407.

71. Collins M.D., Jones D. Isoprenoid quinine composition as a guide to the classification of Sporolactobacillus and possibly related bacteria // J. Appl. Bacteriol. 1979. - Vol. 47. - P. 356-360.

72. Collins V.D. Probiotics, prebiotics, and synbiotics:approaches for modulating the microbial ecology of'the gut. Am J Clin Nutr 1999; (suppi)

73. Czerucka D., Rampal P. Experimental effects of Saccharomyces boulardii on diarrheal pathogens // Microb. and Infect. 2002. - Vol. 4. - P. 733739.

74. De Boer A.S., Diderichsen B. On the safety of Bacillus subtilis and B. amyloliquefaciens: a review // Appl. Microbiol; andfBiotechnol. 1991. - Vol. 36. -P. 1-4.

75. Dellaglio F., Bottazzi V., Vescovo* M. Deoxyribonucleic acid homology among Lactobacillus species of the subgenus Streptobacterium Orla-Jensen // Int. J. Syst. Bacteriol. 1975. - Vol. 25, - P: 160-172.

76. Dervenis C., Smailis D., Hatzitheoklitos E. Bacterial translocation and its prevention in acute pancreatitis // J. Hepato-Biliary-Pancreat. Surg. — 2003. -Vol. 10.-P. 415-418.

77. Donohue D.C., Salminen S. Saferty of probiotic bacteria // Asia Pacif. J. Clin. Nutr. — 1996. — Vol. 5. — P. 25-28.

78. Drago L., De Vecchi E. Should Lactobacillus sporogenes and Bacillus coagulans have a future? // J. Chemother. — 2009. — Vol. 21, № 4. — P. 371-377.

79. Due le H., Hong H.A., Barbosa T.M., Henriques-A.O., Cutting S.M. Characterization of Bacillus probiotics available for human use // Appl. and Environ. Microbiol. 2004. - Vol. 70, N 4. - P. 2161-2171. "

80. Fitzpatrick L.R. Effects of the probiotic formulation VSL3 on colitis in weanling rats / L.R. Fitzpatrick et al. // J. Ped. Gastroenterol. Nutr. — 2007. — V. 44. — № 5. — P. 561—570.

81. Fiorini G., Cimminello C., Chianese R. Bacillus subtilis selectively stimulates the synthesis of membrane bound and secreted IgA // Chemioterapia. — 1985. Vol. 4. - P. 310-315.

82. Fuller R. Probiotics in* man and animals. A review // J. Appl. Bacterid. 1989. -Vol. 66, N5.-P. 365-378.

83. Fuller R., Gibson G.R. Probiotics and1 prebiotics: microflora management for improved gut health // Clin. Microbiol: and Infect. 1998. — Vol. 4.-P. 477-480.

84. Gibson G.R., Roberfroid M.B. Dietary modulation of the human colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics // J. Nutr. — 1995. — Vol. 125.-P. 1401-1412. " • ;

85. Godic Torcar K., Matijasic B.B. Partial Characterisation of Bacteriocins Produced.by Bacillus cereus Isolates from Milk and'Milk Products // Food Technol. and Biotechnol. 2003. - Vol. 41, N 2. - P. 121-129.

86. Green D.H., Wakeley.P.R.', Page A., Barnes,A., Baccigalupi L., Ricca E., Cutting S.M. Characterization of two Bacillus probiotics?/ Appl. and Environ. Microbiol. 1999. - Vol. 65. - P. 4288-^291.

87. Green D.H., Wakeley P.R., Page A., et al. Characterization of two Bacillus probiotics // Appl. and Environ. Microbiol. 1999. - Vol. 65. - P. 42884291. " •

88. Guarner F., Malagelada J.R. Gut flora in health and disease // Lancet. -2003. Vol. 361. - P. 512-519.

89. Guinebretiere M.-H., Broussolle V., Nguyen-The Ch. Enterotoxigenic

90. Profiles of Food-Poisoning and FoodBorne Bacillus' ceretis > Strains // J. Clin.i * i*

91. Microbiol. 2002.-Vol. 40, N 8.-P. 3053-3056.

92. Guo X., Li D., Lu W., Piao X., Chen X. Screening of Bacillus strains as potential probiotics and subsequent confirmation of the in vivo effectiveness of

93. Bacillus subtilis MAI39 in pigs // Antonie van Leeuwenhoek. 2006. - Vol. 90, N 2.-P. 139-146.

94. Hattori Z., Misawa H., Igarashi I., Sugiya .Y." Effects of lactic acid-forming bacteria on Vibrio comma inoculated into intestinal segments of rabbits // J. Bacteriol. 1965. - Vol. 90. - P. 541-545.

95. Hess A., Hollander R., Mannheim W. Lipoquinone of spore-forming rods, lactic acid and actynomycetes // J. Gen. Microbiol.,— 1979. Vol. 115. - P. 247-252.

96. Hoa T.T., Baccigalupi L., Huxham A. et al. Characterization of Bacillus species used for oral bacteriotherapy and bacterioprophylaxis of gastrointestinal disorders // Appl. and Environ. Microbiol. — 2000. Vol. 66. - P. 5241-5247. • : "

97. Hollister A.G., Cheeke P.R., Robinson K.L. Effects of water-administered probiotics and acidifiers on growth ,feed conversion and ententis mortality of weanling rabbits. J. appl. Rabbit Res., 1989, Vol. 12, N 3, p.143-147.

98. Hong H.A., Due L.H., Cutting S.M. The use of bacterial spore formerstas probiotics // FEMS Microbiol'. Rev. 2005'. - Vol. 29, N 4.-- P. 813-835.

99. Hosoi T., Ametani A., Kiuchi K., Kaminogawa S. Changes in fecal microflora induced by intubation of mice with Bacillus, subtilis (natto) spores are dependent upon dietary components // Can. J. Microbiol. — 1999. Vol. 45. - P. 59-66.

100. Hosoi T., Ametani A., Kiuchi K., Kaminogawa S. Improved growth and viability of lactobacilli in the presence of Bacillus subtilis (natto), catalase, or subtilisin // Can. J. Microbiol. 2000. - Vol. 46. - P. 892-897.'

101. Hosoi T., Kiuchi K. Natto — a food made by fermenting cooked soybeans with Bacillus subtilis (natto) // Handbook of Fermented Functional Foods / Farnworth E.R. (editor). Boca Raton, Fla.: CRC Press, 2003. - P. 227245.

102. Hyronimus B., Le Marrec C., Hadj Sassi A., Deschamps, A. Acid and bile tolerance of spore-forming lactic acid bacteria // Int. J. Food Microbiol. —2000: Vol. 61. -P: 193—197. . - •

103. Hyronimus B., Le Marrec C., Urdaci M.C. Coagulin, a. bacteriocin-like inhibitory substance produced by Bacillus coagulans 14 // J: Appl. Microbiol. — 1998.-Vol. 85.-P. 42-50.

104. Kamra D: N., Chaudhary L. C., SinghiR., Pathak N. N. Influence of fleding probiotics on growht performance and nutrient digestibility. in rabbits. World. Rabbit. Sc. 1996, Vol. 4 , faso. 2, p. 85-88.-." : '

105. Kitahara K., Eai C.L. On the spore formation of Sporolactobacillus inulinus // J. Gen. and Appl. Microbiol. 1967. - Vol. 13. - P. 97-203.

106. Kitahara K., Suzuki J. Sporolactobacillus Nov. Subgen // J. Appl. Bacteriol. 1963. - VoL9. ^ P. 59-71; i ' ! : ;113: Kitahara K., Toyota T. Auto-spheroplastization in Sporolactobacillus // J. Gen. and Appl. Microbiol. 1972.- Vol. 18.- P! 99-107.

107. Lee K.H., Jun K.D., Kim W.S., Paik H.D. Partial characterization ofpolyfermenticin SCD, a newly identified bacteriocin of Bacillus polyfermenticus // Lett. Appl. Microbiol.-2001. Vol. 32. -P. 146-151.

108. Lilly D. M. Stilwell R.H. Probiotics growth promoting factors produced by microorganisms. Science, 1965,147:747-748.

109. Mazza P., Zani F., Martelli Pi Studies on the antibiotic resistance of Bacillus subtilis strains used in oral bacteriotherapy // Boll. chim. farm. — 1992. -Vol. 131.-P. 401-408.

110. Meroni P.L., Palmieri. R.,' Barcellini W;, de Bartolo G., Zanussi C. Effect of long-term treatment with Bacillus subtilis on: the -frequency of urinary tract infections in older patients // Chemioterapia 1983. -11(2). - P. 142-144.

111. Mohan J.C., Arora R., Khalilullah M. Preliminary observations on effect of Lactobacillus sporogenes on serum lipid levels in hypercholesterolemici Jpatients 11 Indian J. Med. Res. — 1990.:— V. 92. — P. 43-1-432.

112. Muscettola M., Grasso G., Blach-Olszewska Z., Migliaccio P., Borghesi-Nicoletti, C., Giarrantana, M., Gallo, V.C. Effects of Bacillus subtilis spores on interferon production // Pharmacol. Res. 1992. - Vol. 26, Suppl. 2. — P. 176-177., f

113. Nakano M.M., vZuber P. Anaerobic growth of a "strict aerobe" //

114. Annu. Rev. Microbiol. 1998. - Vol. 52. - P. 165-190.

115. Oggioni M., Ciabattini A., Cuppone A.M., Pozzi G. Bacillus spores for vaccine delivery // Vaccine. 2003. - Vol. 21, Suppl. 2. - P. 96-101.

116. Oggioni M.R., Pozzi G., Balensin P.E., Galieni P., Bigazzi C.

117. Recurrent septicemia in an immunocompromised patient due'to probiotic strains oft

118. Bacillus subtilis // J. Clin. Microbiol. 1998. - Vol. 36. - P. 325-326.

119. Ouhib O., Clavel Th., Schmitt Ph. The Production of Bacillus cereus Enterotoxins Is Influenced by Carbohydrate and Growth Rate // Curr. Microbiol. — 2006. Vol. 53, N 3. - P. 222-226.

120. Parker R. B. Probiotics the other half of the antibiotics story. Anim. Nutrition and Health, 1974, 29:4-8.

121. Petrof E. O. Probiotics inhibit nuclear factor-kB and induce heat shock proteins in colonic epithelial cells trough proteasome inhibition / E. O. Petrof, K. Kojima, M. Ropeleski // J. Gastroenterol. — 2004. —V. 127.,— P. 1474—1487.

122. Probiotics and immune response / S. Cunningham-Rundles et al. // Am. J. Gastroenterol. — 2000. — V. 95. — S. 1. — P. S22—25.

123. Probiotics Microbes: The Scientific Basis / R.J. Collier, et al. // A Report from American Academy of Microbiology. Washington, 2006. - 28 p.

124. Prokesova L., Novakova M. Effect of .Bacillus firmus and other sporulating aerobic microorganisms on in vitro stimulation of'human lymphocytes: a comparative study // Folia microbiol. 1994. - Vol. 39. — P. 501-504.

125. Przyrembel H. Consideration of possible legislation within existing regulatory frameworks // Amer. J. Clin. Nutr. 2001. - Vol. 73, suppl. - P. 471475.

126. Richard V., Auwera P., Snoeck R., Daneau D., Meunier F.

127. Nosocomial bacteremia caused by Bacillus species // Eur. J: Clin. Microbiol, and Infec. Diseases. 1988. - Vol. 7. - P. 783-785.

128. Rowan N.J., Deans K. Putative virulence factor expression by clinical and food isolates of Bacillus spp. after growth in reconstituted infant milk formulae 11 Appl. and Environ. Microbiol. 2001. - Vol. 67. - P. 387373881.

129. Samanya M., Yamauchi K.E. Histological alterations of intestinal villi in chickens fed dried Bacillus subtilis var. natto // Compar. Biochem. and Physiol. Ser. A. Mol. and Integr. Physiol. 2002. - Vol. 133. - P. 95-104.

130. Sanders M.E., Morelli-L., Bush S. "Lactobacillus sporogenes" is not a Lactobacillus probiotic // ASM News. 2001. - Vol. 67. - P.'385-386.

131. Sari F.N., Dizdar E.A., Oguz S. et al. Oral probiotics: Lactobacillus sporogenes for prevention^ of necrotizing enterocolitis, in very low-birth weight infants: a randomized, controlled trial //Eur. J. Clin. Nutr: — 2011.

132. Seki H., Shiohara M., Matsumura T., Miyagawa N., Tanaka M., Komiyama A. Prevention of antibiotic-associated diarrhea in children by Clostridium butyricum MIYAIRI // Pediat. Int. 2003. - Vol. 45. - P. 86-90.

133. Sharp R.J., Scawen MD.,,Atkinson T. Fermentation and downstreamt' processing of Bacillus // Biotechnology Handbook: Bacillus / Harwood C.R.editor). New York: Plenum Press, 1989. - P. 255-292.

134. Shida O., Takagi H., Kadowaki K., Komagata K. Proposal for twonew genera, Brevibacillus gen. nov. and Aneurinibacillus gen. nov. // Int. J. Syst. Bacterid. 1996. - Vol. 46. - P. 939-946.

135. Svetochi E.A., Stern, N. Isolation of . Bacillus circulans/ and Pacnibacillus polymyxa Strains Inhibitory; to. -Campylp^ jejuni and Characterization of Associated® acteriocins;// J. Food Prot. — 2005. — Vol ; 68, N 1. -P. 11-17.

136. Tariq M.S., Hussain I., Perveen R. Effect of probiotic and growth promoters on chemical composition of broiler carcass // Iht.' J^-Agr. Biol. — 2005. — Vol. 7, N 7. P: 1036-1037.' - - " '

137. Vacca A., Pantaleo G. Chemoimmunotherapy for multiple myeloma using an intermittent combination drug schedule (Mieiphalan;'+.»Prednisone): andalternating courses of Bacillus subtilisspores // Chemioterapia. — 1983. -11(5). — P. 300-306.

138. Validation of publication of new names and new combinations previously effectively published outside the IJSEM // Int. J. Syst. and Evol. Microbiol. 2003. - Vol. 53, Pt. 6. - P. 1701-1702.

139. Voichishina L.G. The use of sporulating.bacteria in treating patients with dysbacteriosis // Vrach. Delo. — 1991. — № 12. — P. 73-75.

140. Von Wright A. Regulating the safety of probiotics the European approach // Curr. Pharm. Des. - 2005. - Vol. 11. - P. 17-23.

141. Wood B.J. Lactic Acid Bacteria in Health and Disease. — Publisher: Elsevier Applied Science. — 1992. — P. 512.

142. Xavier R. J. How to get along friendly microbes in a hostile world / R. J. Xavier, O. K. Podolski // Science. — 2000. — V. 289. — P. 1483—1484.

143. Zahner V., Rabinovitch L., Suffys P., Momen H. Genotypic diversity among Brevibacillus laterosporus strains // Appl. and Environ. Microbiol. — 1999. -Vol. 65.-P. 5182-5185.