Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Влияние механического повреждения седалищного нерва на нейро-моторный аппарат парных трехглавых мышц голени крысы

ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Еремеев, Антон Александрович

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Посттравматические процессы в двигательной системе, вызванные повреждением нервного волокна.

1.2. Формирование компенсаторной иннервации мышц.

1.3. Билатеральная организация рефлекторных отношений спинного мозга

1.3.1. Структурная основа билатеральной интегративной деятельности спинного мозга.

1.3.2. Контралатеральные эффекты при односторонней травме нерва.

1.4. Вызванные электрические ответы мышцы.

2. ОБЪЕКТЫ, МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1. Состояние контралатерального нейро-моторного аппарата при одностороннем пережатии седалищного нерва

3.1.1. Исследование центральных структур нервно-мышечного аппарата 3.1.1.1. Влияние одностороннего пережатия седалищного нерва на параметры рефлекторных ответов контралатеральной ИМ крысы.

3.1.1.2. Влияние одностороннего пережатия седалищного нерва на характер импульсации двигательных единиц контралатеральной ИМ крысы.

3.1.1.3. Влияние одностороннего ограничения двигательной функции трехглавой мышцы голени на параметры рефлекторных ответов контралатеральной ИМ крысы.

3.1.1.4. Влияние одностороннего ограничения двигательной функции трехглавой мышцы голени на характер импульсации двигательных единиц контралатеральной ИМ крысы.

3.1.2. Исследование периферических структур нервно-мышечного аппарата

3.1.2.1. Влияние одностороннего пережатия седалищного нерва на параметры моторных ответов контралатеральной ИМ крысы.

3.1.2.2. Влияние одностороннего пережатия седалищного нерва на электрические ответы контралатеральной ИМ крысы при прямой стимуляции.

3.2. Состояние ипсилатерального нейро-моторного аппарата при пережатии седалищного нерва

3.2.1. Исследование центральных структур нервно-мышечного аппарата 3.2.1.1. Влияние пережатия седалищного нерва на параметры рефлекторных ответов ипсилатеральной ИМ крысы.

3.2.2. Исследование периферических структур нервно-мышечного аппарата

3.2.2.1. Влияние пережатия седалищного нерва на параметры моторных ответов ипсилатеральной ИМ крысы.

3.2.2.2. Влияние пережатия седалищного нерва на электрические ответы ипсилатеральной ИМ крысы при прямой стимуляции.

3.3. Качественный состав миозинов ипси- и контралатеральной КМ крысы после одностороннего пережатия седалищного нерва

3.3.1 Влияние одностороннего пережатия седалищного нерва на качественный состав миозинов контралатеральной КМ крысы.

3.3.2. Влияние пережатия седалищного нерва на качественный состав миозинов ипсилатеральной КМ крысы.

3.4. Состояние ипси- и контралатерального нервно-мышечного аппарата при односторонней операционной травме

3.4.1. Влияние операционной травмы на характеристики моторных и рефлекторных ответов ипси- и контралатеральной ИМ крысы.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Влияние механического повреждения седалищного нерва на нейро-моторный аппарат парных трехглавых мышц голени крысы"

Актуальность исследования

Рефлекторная организация двигательных актов на сегментарном уровне впервые была исследована C.S. Sherrington (1910), причем в качестве одного из важнейших условий двигательной активности были выделены билатеральные синергии. В последующем на моделях перекрестных рефлексов изучались общие закономерности интегративной рефлекторной деятельности нервной системы. Взаимодействие сигналов с билатеральных афферентных входов было обнаружено для многих спинальных нейронов (Lundberg А., 1964; Сафьянц В.И., 1976). Спинно-мозговые нейроны принимают участие в контроле как ипси-, так и контралатерального движения (Stein P.G., 1995). На физиологическом состоянии контралатерального двигательного аппарата сказывается и ограничение афферентного притока. Описано влияние травмы периферического нерва на параметры потенциалов симметричных дорсальных корешков (Wall P.D., Devor М., 1981); уменьшение в этих условиях количества рецепторов для нейротрофинов (Zhou X.F. et al., 1996). В работах A. De Albis et al., (1995), D.L. Bishop, R.L. Milton, (1997) говорится о трансформации качественного состава контралатеральных мышц при нарушении проведения по аксону. Н. Tang et al., (2000) обнаружили изменение экспрессии генов в мышце симметричной денервированной.

Активация симметричных нейро-моторных систем представляется одной из важнейших реакций центральной нервной системы на периферическое повреждение. Процессы, происходящие при этом в "интактных" парных мышцах, связаны, очевидно, с изменением состояния спинальных двигательных центров, а также структур, осуществляющих по отношению к этим центрам интегративную функцию.

Однако исследованию центральных механизмов билатеральных компенсаторных реакций, возникающих после одностороннего повреждения нервов, уделялось значительно меньше внимания, чем исследованиям периферической части травмированной двигательной системы. Во многом неясными и противоречивыми остаются данные о механизмах билатеральных изменений нейро-моторного аппарата при одностороннем нарушении нервного контроля (Abelous J.E., Lassalle Н., 1928; Gerren R.A., Luttges M.W., 1979; Cannas M. et al., 1982). Именно эти аспекты составили совокупность вопросов, ответы на которые мы попытались дать в настоящей работе.

Актуальность исследования билатерального вовлечения двигательных систем в процесс реорганизации нервного контроля при одностороннем повреждении нерва определяется значением этих данных для построения общих схем управления движениями и разработки методов лечения различных нервно-мышечных заболеваний и нарушений опорно-двигательного аппарата.

Цель и задачи исследования.

Целью работы явилось изучение влияния пережатия седалищного нерва крысы на состояние симметричного нейро-моторного аппарата трехглавой мышцы голени.

В соответствии с целью были поставлены следующие задачи:

I. Исследовать влияние пережатия седалищного нерва на:

1. Рефлекторную возбудимость мотонейронного пула ипси- (на стороне операции) и контралатеральной (на противоположной стороне) икроножной мышцы.

2. Поведение двигательных единиц контралатеральной икроножной мышцы.

3. Качественный состав миозинов симметричных камбаловидных мышц.

II. Изучить воздействие тенотомии на рефлекторную возбудимость мотонейронного пула контралатеральной икроножной мышцы.

Научная новизна.

В работе показано, что одностороннее пережатие седалищного нерва изменяет состояние контралатерального двигательного центра трехглавой мышцы голени крысы. Эти изменения, в целом, соответствуют преобразованиям, происходящим в ипсилатеральном двигательном центре. Впервые описана трансформация состояния мотонейронного пула и отдельных мотонейронов контралатерального двигательного центра в различные сроки после пережатия седалищного нерва. Установлено влияние механической травмы нерва на эффекторное звено контралатерального нейро-моторного аппарата. Результаты исследования уточняют сведения о взаимосвязи ипси- и контралатерального двигательного центра, опосредуемой различными внутриспинальными связями, в частности, латентными в норме и активирующимися после повреждающих воздействий.

Теоретическая и практическая значимость полученных результатов.

Полученные результаты дополняют существующие представления о некоторых механизмах управления движениями и раскрывают новые стороны дифференцированного влияния повреждения нерва на спинальные двигательные центры. Выявленный в работе характер воздействия травмы нервного волокна на рефлекторную возбудимость мотонейронов симметричных спинальных двигательных центров может лежать в основе процессов в центральной нервной системе, развивающихся в процессе восстановительной реорганизации системы моторного контроля. Полученные результаты могут стать новым инструментом для понимания билатерального характера процесса восстановления двигательной функции. 8

Проделанная работа может представлять интерес для физиологов и врачей, а также может быть использована в учебных курсах по физиологии центральной нервной системы.

Положение, выносимое на защиту.

Пережатие седалищного нерва изменяет состояние центрального и периферического звена не только ипси-, но и контралатерального нейро-моторного аппарата трехглавой мышцы голени крысы. Изменение состояния контралатерального спинального двигательного центра обусловлено активацией внутриспинальных нейронных систем. 9

Список сокращений

AT - антитела

ДЕ - двигательная единица

ИМ - икроножная мышца

КМ - камбаловидная мышца

МИИ - межимпульсный интервал

ПТП - посттетаническая потенциация

ФРН - фактор роста нервов

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Еремеев, Антон Александрович

ВЫВОДЫ

1. Рефлекторная возбудимость контралатерального двигательного центра икроножной мышцы крысы и характер импульсации его мотонейронов изменяются после пережатия седалищного нерва: через 1 сутки происходит снижение возбудимости центра, к 5, 10 суткам она увеличивается по сравнению с контролем; частота импульсации мотонейронов через 1 сутки увеличивается, через 5 суток - снижается, а на 10-е сутки восстанавливается до контрольных значений.

2. Рефлекторная возбудимость ипсилатерального двигательного центра через 1 сутки после пережатия седалищного нерва снижается, затем постепенно возрастает, достигая контрольных значений к 30-м суткам.

3. Максимальная амплитуда моторного ответа контралатеральной икроножной мышцы крысы через 1 сутки после пережатия седалищного нерва снижается, через 5 суток увеличивается до контрольных значений и в дальнейшем не изменяется. Амплитуда прямого мышечного ответа контралатеральной икроножной мышцы в этих условиях не изменяется.

4. Максимальная амплитуда моторного ответа ипсилатеральной икроножной мышцы снижается через 1 сутки после пережатия седалищного нерва и не восстанавливается до контрольных значений в течение всего времени наблюдения (30 суток). Амплитуда прямого мышечного ответа ипсилатеральной икроножной мышцы снижается по сравнению с контролем к 30-м суткам после пережатия нерва.

5. Тенотомия не вызывает значимых изменений параметров рефлекторных ответов контралатеральной икроножной мышцы; в этих условиях регистрируются эпизодические двойные разряды отдельных мотонейронов контралатерального двигательного центра.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Еремеев, Антон Александрович, Казань

1. Алатырев В.И., Плещинский И.Н. Взаимодействие афферентных влияний в механизмах координации двигательных актов: Отчет о НИР / Казань, 1995.12 с.

2. Артемьева Е.Н., Кудинова М.П., Залкинд М.С. Исследование механизмов нисходящих влияний на состояние сегментарного двигательного аппарата // Физиол. человека,- 1977,- Т. 3.-№ 5,- С. 922-923.

3. Бабский Е.Б., Глебовский В.Д., Коган А.В. и др. Физиология человека / Под ред. Косицкого Г.И., 3-е изд., перераб. и доп.- М.: Медицина, 1985,- 544с.

4. Богданов Э.И., Фасхутдинов P.P. Сократительные свойства мышц при нарушениях периферической иннервации // Журн. невропатол. и психиатр,-1991,-Т. 91,-№2,-С. 129-203.

5. Валиуллин В.В., Исламов P.P. Нейротрофический контроль синтеза миозинов медленной мышцы морской свинки // Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1991,-Т.111,- № 2,- С. 201-203.

6. Валлиулин В.В. Влияние дексаметазона на развитие денервационных изменений в быстрой и медленной скелетных мышцах // Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1999,- Т. 128,- № 7,- С. 51-53.

7. Викторов И.В. Возбудимые клетки в культуре ткани,- Пущино, 1984,- С. 4-18.

8. Волков Е.М. Гистофизиология трофической денервации скелетной мышцы лягушки,- В кн.: Системные свойства тканевых организаций. М,- 1977а,- С. 59-61.

9. Ю.Волков Е.М., Наследов Г. А., Полетаев Г.И. Электрические и хеморецептивные свойства мембраны мышечных волокон после блокады аксоплазматического транспорта колхицином // Нейрофизиология,- 1980,- Т. 12,-№5,-С. 550-557.

10. П.Волков Е.М., Наследов Г.А., Полетаев Г.И. Исследования нейротрофического контроля ионной проводимости мембраны фазных мышечных волокон лягушки // Цитология,- 1981,- Т. 23,- № 7,- С. 803-810.

11. Волков Е.М., Полетаев Г.И. Влияние денервации и возможные механизмы нейротрофического контроля хемочувствительной и электрогенной мембран скелетных мышечных волокон // Успехи физиол. наук,- 1982,- Т. 13,- № 3,- С. 9-30.

12. Волков Е.М. Влияние рН на мембранный потенциал покоя мышечных волокон у лягушки // Физиол. ж. СССР,- 1983,- Т. 69,- № 9,- С. 1170-1175.

13. Волков Е.М., Фросин В.Н. Неквантовый выход ацетилхолина из двигательных нервных окончаний и денервационные изменения мембраны мышечных волокон крысы после блокады аксонного транспорта // Нейрофизиология,- 1984,- Т.16,- № 2,- С. 46-47.

14. Волков Е.М., Кудрявцева Н.В., Наследов Г.А. и др. Роль ионов кальция и циклических нуклеотидов в нейротрофическом контроле свойств мембраны мышечных волокон лягушки // Физиол. ж. СССР,- 1985,- Т. 74,- № 6,- С. 744749.

15. Волков Е.М. Нейротрофический контроль функциональных свойств поверхностной мембраны фазных мышечных волокон. Автореф. дис. . доктора мед. наук,- Казань, 1986,- 39с

16. Волков Е.М., Полетаев Г.И., Хамитов Х.С. и др. Первичные постденервационные изменения электрогенных свойств мышечной мембраны у млекопитающих // Успехи совр.биол.- 1987,- Т.104,- № 6,- С. 412-425.

17. Волков Е.М. Факторы нейротрофического контроля ацетилхолиновой рецепции скелетных мышц // Успехи физиол. наук,- 1989а,- № 2,- С. 26-45.

18. Волков Е.М. Молекулярные механизмы нейрональной регуляции ацетилхолиновой рецепции скелетных мышц // Успехи соврем, биол.- 19896,Т. 108,- № 4,- С. 80-94.

19. Волков Е.М. Нейротрофический контроль Na проницаемости мембраны мышечного волокна//Успехи соврем, биол,- 1990,-Т. 109,-№3,-С. 339-351.

20. Волков Е.М. Нейротрофический контроль функциональных свойств поверхностной мембраны фазных мышечных волокон // Каз. мед. журнал.-1994,- Т. 75,-№3,-С. 180-183.

21. Гехт Б.Н., Никитин С.С. Механизмы компенсаторной реиннервации при повреждениях аксонов периферических нервов // Журн. невропатол. и психиатр,- 1986,- Т. 86,- № 2,- С. 294-300.

22. Гехт Б.Н., Касаткина Л.Ф., Никитин С.С. Нарушения нервной трофики и пластичность нервных клеток как факторы развития компенсациипатологического процесса при заболеваниях нервной системы // Вестник Акад. Мед. Наук,- 1988,- №11.- С. 26-34.

23. Гехт Б.Н. Теоретическая и клиническая электромиография. Л.: Наука, 1990.229 с.

24. Гехт Б.Н., Касаткина Л.Ф., Самойлов М.И. и др. Электромиография в диагностике нервно-мышечных заболеваний,- Таганрог: Изд-во ТГРУ, 1997.370 с.

25. Еремеев A.M., Алатырев В.И. Возбудимость мотонейронов спинного мозга и ее изменения при раздражении рецепторов брюшины // Физиол. ж. СССР,-1981,- Т. 67,- № 8,- С. 1168 1174.

26. Жук О.Н., Калюнов В.Н. Влияние фактора роста нервов на регенерацию волокон в седалищном нерве крыс // Морфология,- 1996,- Т. 110,- № 4,- С. 113-115.

27. Иоффе М.Е. Кортико-спинальные механизмы инструментальных двигательных реакций,-М,- 1975,- С. 153-157.

28. Карлсон Б. М. Регенерация,- М.: Наука, 1986,- 296 с.

29. Касаткина Л.Ф. Электрофизиологический анализ состояния двигательных единиц и мышечных волокон при хронических заболеваниях периферического нейро-моторного аппарата у человека: Автореф. дис. . канд. биол. наук,- М., 1980,- 22 с.

30. Касаткина Л.Ф. Плотность мышечных волокон в двигательных единицах мышц на разных стадиях развития денервационно-реиннервационного процесса у человека // Патол. физиол. и экспер. терапия.- 1985,- № 1.- С. 4247.

31. Киселева Т.М. Электрофизиологическое исследование некоторых спинальных механизмов управления произвольными движениями у человека //Автореф. дис. . канд. биол. наук,- Ереван,- 1976,- 23с.

32. Костюк П.Г. Структура и функция нисходящих систем спинного мозга.- JL: Наука, 1973.

33. КоцЯ.М. Организация произвольного движения. М.: Наука, 1975,- 248с.

34. Кудина Л.П. Тестирование в межимпульсном интервале возбудимости импульсирующего мотонейрона у человека // Нейрофизиология,- 1987,- Т.19,-С. 210-216.

35. Кудина Л.П., Чурикова Л.И. Соотношение частоты разряда импульсирующего мотонейрона и эффективности возбуждающей посылки 1а афферентов у человека // Нейрофизиология,- 1987,- Т.19,- № 5,- С. 595-600.

36. Макий Е.А., Сердюченко И.Я. Вызванная активность нейронов спинного мозга в ранние сроки после перерезки седалищного нерва // Нейрофизиология,- 1992,- Т.24,- № з,- С. 306-314.

37. Новоселова И.Л. Сравнительный анализ процессов денервационной атрофии и реиннервации скелетных мышц у позвоночных // Докл. АН СССР,- 1987.-Т.292,- № 6,- С. 1482-1484.

38. Персон Р.С. Электромиографические исследования рефлекторных ответов и F-волны в клинике.- М.: ИППИ АН СССР, 1983,- 41с.

39. Персон Р.С. Спинальные механизмы управления мышечным сокращением. -М. 1985,- 183с.

40. Плещинский И.Н., Тихвинская Т.Н., Кузнецова Р.Т. и др. Электрофизиологические критерии оценки состояния нервно-мышечного аппарата в процессе восстановительного лечения // Клиника и эксперимент в травмотологии и ортопедии / Казань, 1994,- С. 169.

41. Плещинский И.Н., Бабынина Т.В., Алексеева Н.Л. и др. Реакция импульсирующих двигательных единиц на афферентную посылку // Физиол. журн,- 1996,- Т.82,- № 1.- С. 25-32.

42. Плещинский И.Н., Богов А.А., Яфарова Г.Г. и др. Актуализация гетеронимных моносинаптических связей афферентов 1а в двигательных центрах мышц кисти человека // Патофизиология,- 2000,- № 1.- С. 9-12.

43. Поздняков О.М., Полгар А. А. Механизмы обеспечения надежного функционирования синаптического аппарата мышцы // Механизмы нейрональной регуляции мышечной функции. JL: Наука,- 1988,- С.27-41.

44. Полак Д., Ван Норден С. Введение в иммуноцитохимию: современные методы и проблемы,- М.: Мир, 1987,- 78с.

45. Резвяков Н.П. Гистохимическая характеристика белых и красных мышц в норме и при денервации // Архив анат., гистол. и эмбриол,- 1974,- Т. 66,- № 6,-С. 89-91.

46. Резвяков Н.П. Общие закономерности дифференцировки и пластичности скелетных мышц: Автореф. дис. . д-ра мед.наук,- Казань, 1982.-23 с.

47. Сафьянц В.И. Билатеральная интегративная деятельность спинного мозга.- JI: "Наука", 1976,- 188с.

48. Сепп Е.К. История развития нервной системы. М.: Медгиз, 1959.

49. Старобинец М.Х., Пшедецкая А.Д. Нервный центр и мышца при дефиците возбуждения. Петрозаводск. Изд.-во: Петрозаводск. Универс, 1973. - 195с.

50. Улумбеков Э.Г., Резвяков Н.П. Нейротрофический контроль фазных мышечных волокон,- В кн.: Нервный контроль структурно-функциональной организации мышц. JL: Наука, 1980,- С. 84-104.

51. Уразаев А.Х., Чикин А.В., Волков Е.М. и др. Влияние ацетилхолина и карбамилхолина на мембранный потенциал покоя денервированной мышцы крысы // Физиол.журн,- 1987,- Т. 73,- № 3,- С. 360-365.

52. Хэм. А., Кормак Д. Гистология. В пяти томах. / Под ред. Афанасьева Ю.И., Ченцова Ю.С.- М.: Мир, 1983,- Т. 3,- 291с.

53. Чикин А.В., Уразаев А.Х., Волков Е.М. и др. Влияние нарушения хлорной проводимости на развитие постденервационных изменений мембраны мышечного волокна крысы // Физиол. журн,- 1987,- Т.73,- № 1,- С. 51-55.

54. Шмидт Р., Тевс Г. Физиология человека. В четырех томах / М.: Мир, 1985.-Т.1.-212 с.

55. Abelous J.E., Lassalle Н. Modifications d'excitabilite d'un nerf au cours de la degenerescence du nerf homologue sectionne. Origine humorale de ces modifications // Comptes Rendus.- 1928,- V. 98,- P. 1105-1107.

56. Abrahamson I.K., Ferguson L.A., Rush R.A. Endogenous chicken nerve growth factor from sheath cells is transported in regenerating nerve // Dev. Biol.- 1987,- V. 124,-№2,-P. 551-556.

57. Aebischer P., Valentini R.F., Dario P. et al. Piezoelectric guidance channels enhance regeneration in the mouse sciatic nerve after axotomy // Brain Res.- 1987.-V. 436,-№ 1,-P. 165-168.

58. Aguayo A.J., Rasminsky M., Bray G.M. et al. Degenerative and regenerative responses of injured neurons in the central nervous system of adult mammals // Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci.- 1991,- V. 331,- № 1261,- P. 337-43

59. Albuquerqe E.X., Warni J.I., Kauffman F.C. Early membrane depolarization of the fast mammalian muscle after denervation // Pflugers Arch.-1971,- V.238.- P. 36.

60. Ambron R.T., Dulin M.F., Zhang X.-P. et al. Axoplasm enriched in a protein mobilized by nerve injury induces memorylike alterations in Aplysia neurons // J. Neurosci.- 1995,- V. 15,- P. 3440-3446.

61. Ambron R., Walters E. Priming events and retrograde injury signals. A new perspective on the cellular and molecular biology of nerve regeneration // Mol. Neurobiol.- 1996,- V. 13,- № 1,- p. 61-79.

62. Angel W., Hoffman W.W. The H-reflex in normal, spastic and rigid subjects studies // Arch. Neurol.- 1963,- V. 8,- № 6,- P. 591-596.

63. Arancio О., Cangiano A., De Grandis D. et al. Spontaneous activity in partial and total denervation // EEG Clin. Neurophysiol.-1981,- V. 61.- № 3,- P. 86-87.

64. Argiro V., Bunge M.B., Johnson M.I. A quantitative study of growth cone filopodial extension// J. Neurosci. Res.- 1985,- V. 13,- № 1-2,- P. 149-162.

65. Ashby P., Zilm D. Characteristics of postsynaptic potentials produced in single human motoneurons by homonymous group // Vollys. Exp. Brain Res.- 1982.-V.47.-P. 41-48.

66. Barbeau H., McCrea D.A., O'Donovan M.J. et al. Tapping into spinal circuits to restore motor function.- Brain Res. Brain Res. Rev.- 1999,- V. 30,- № 1,- P. 27-51.

67. Bawa P., Calancie B. Repetitive doublets in human flexor carpi radials muscle // J. Physiol.- 1983,- V. 339,- P. 123-132.

68. Bayol S., Loughna P.Т., Brownson C. Phenotypic Expression of IGF Binding Protein Transcripts in Muscle, in Vitro and in Vivo // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 2000,- V. 273.- № 1,- P. 282-286.

69. Bennet M.R. Raftos J. The formation and regression of synapses during the reinnervation of axolotl striated muscles // J. Physiol (London).- 1977,- V. 265,- P. 261-295.

70. Berkowitz A., Stein P.S. Activity of descending propriospinal axons in the turtle hindlimb enlargement during two forms of fictive scratching: phase analyses // J. Neurosci.- 1994а,- V. 14,- № 8,- P. 5105-5119.

71. Berkowitz A., Stein P.S. Activity of descending propriospinal axons in the turtle hindlimb enlargement during two forms of fictive scratching: broad tuning to regions of the body surface // J. Neurosci.- 1994b.- V. 14,- № 8,- P. 5089-5104.

72. Bishop D.L., Milton R.L. The site effect on the mixed fibres in self-reinnervating flat muscles of a mouse//Exp-Neurol.- 1997,- V. 147,-№ l.-P. 151-158.

73. Bishop D.L., Milton R.L. Nimodipine suppresses preferential reinnervation of mouse soleus muscles by slow alpha-motoneurons // Exp Neurol.- 1998,- V. 154.-№ 2,- P. 366-370.

74. Bowe C.B., Kocsis Y.D. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions // Dev. Braian Pes.- 1987,- V. 34,- № 1,- P. 123-131.

75. Bray J.J., Howken M.J., Hubbard J.J. at al. The membrane potential of rat diaphragm muscle fibers and the effect of denervation // J. Physiol.- 1972,- V. 255,-P. 651-667.

76. Bray J.J., Forrest J.W., Hubbard J.I. Evidence for the role of non-quantal acetylcholine in the maintenance of rat skeletal muscle // J. Physiol.- 1976,- V. 326,-P. 285-296.

77. Brecknell J.E., Fawcett J.W. Axonal regeneration // Biol. Rev. Camb. Philos. Soc.-1996,- V. 71,-№2,-P. 227-255.

78. Bromberg M.B., Forshew D.A., Nau K.L. et al. Motor unit number estimation, isometric strength, and electromyographyc measures in amyotrophic lateral sclerosis//Muscle & Nerve.- 1993,-V. 16.-P.1213-1219.

79. Brondgest P.Q. De Tono muscularum voluntati subditorum. Utrecht. 1860.

80. Brown M.C., Jronton R. Sprouting and regression of neuromuscular synapses in partially denervated mammalian muscles // J. Physiol. (London).- 1978,- V. 278,- P. 325-348.

81. Brown M.C., Ironton R. A central role for denervated tissues in causing nerve sprouting // Nature.- 1979,- V. 282,- P. 724- 726.

82. Brown W.F., Strong M., Snow R. Methods for estimating number of motor units in biceps-brachialis muscles and losses of motor units aging // Muscle Nerve.- 1988,-V. 11.-P. 423-432.

83. Brushart T. Preferential reinnervation of motor nerves by regenerating motor axons //J. Neurosci.- 1988,-V. 8.-№3.-P. 1026-1031.

84. Buchthal F. An introduction of electromyography.- Copenhagen: Gyldendal, 1957.43 p.

85. Buchthal F., Rosenfalk P., Ermino F. Motor unit territory and fiber density in myopathies // Neurology (Minneapolis).- 1960,- V. 10,- P. 389-408.

86. Buchtal F. Electromyography in the evaluation of muscles diseases // Methods in Clinical Neurophysiology.- 1992.- V. 2,- P. 25-45.

87. Bullens P., Daemen M., Freling G. et al. Motor dysfunction and reflex sympathetic dystrophy. Bilateral motor denervation in an experimental model // Acta Orthop Belg.- 1998,- V. 64,- № 2,- P. 218-223.

88. Burke R.E. Motor Units: anatomy, physiology and functional organization // Handbook of physiology. Sect. 1. The nervous system. Motor control.- 1981,- V. 2-P. 345- 322.

89. Burden-Gulley S.M., Lemmon V. 11, N-cadherin, and laminin induce distinct distribution patterns of cytoskeletal elements in growth cones // Cell Motil. Cytoskeleton.- 1996,- V. 35,- №1,- P. 1-23.

90. Cajal S.R. Degeneration and regeneration of the nervous system.- Oxford, London: Oxford Univ. Press, 1928. 47 p.

91. Cajal S.R. Degeneration and Regeneration of the Nervous System // New York.- V. 1,- 1959.-73 p.

92. Calvin W.H., Schwindt P.C. Steps in production of motoneuron spikes during rhythmic firing // J. Neurophysiol.- 1972,- V. 35,- № 3,- P. 297-310.

93. Campenot R.B. Local control of neurite sprouting in cultured sympathetic neuronsby nerve growth factor // Dev. Brain Res.- 1987,- V.37.- № 1-2,- P. 293-301.

94. Cancalon P. The relationship of slow Axonal flow to nerve elongation and degeneration // In. Axonal Transport Neuronal Growth and Regeneration / New York, London, 1984,- P. 211-241.

95. Cannas M., Giacobini G., Filogamo G. Behavior of the cholinergic system in the rat brachial plexus after contralateral neurotomy // Exp. Neurol.- 1982,- V. 11 P. 56-65.

96. Cannon W. В., Rosenblueth A. The supersensitivity of denervated structures. New Yore: The Macmillan Company.- 1949 (русск. перевод. Изд.-во: И.Л.М., 1950).

97. Carbonetto S., Evans D., Cochard P. Nerve fiber growth in culture on tissue substrate from central and peripheral nervous systems // J. Neurosci.- 1987,- V. 7,-№2,-P. 610-620.

98. Castaigne P., Held J.-P., Perrot-Deseilligny E. et al., Modifications de Г inhibition recurrente de Renshow induites par la sujet normal et la spastique // Rev. neurol.-1978,-V. 134,-№2,-P. 85-92.

99. Causey G., Stratman Y. The spirial of sajlunrs of conduction in degeneration // J. Physiol.- 1953,- V.l 19,- № 4,- P. 45-46.

100. Chatamra K.R., Daniel P.M. The loss of glycogen from denervated rat muscle // J. Physiol.- 1987,-V. 394,-P. 143.

101. Cheng X. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions // Dev. Braian. Pes.-1989.- V. 34,- P. 123-131.

102. Cheng H., Olson L. A new surgical technique that allows proximodistal regeneration of 5-HT fibers after complete transection of the rat spinal cord // Exp. Neurol.- 1995,- V. 136,- № 2,- P. 149-61.

103. Cossu G., Valls-Sole J., Valldeoriola F. et. al. Reflex excitability of facial motoneurons at onset of muscle reinnervation after facial nerve palsy // Muscle Nerve.- 1999,- V. 22,- № 5,- P. 614-620.

104. De Albis A., Couteaux R., Goubel F. et al. Response to denervation of rabbit soleus and gastrocnemius muscles // Biol. Cell.- 1995,- V. 85,- № 1.- P. 9-20.

105. De la Torre J.C. Spinal cord injury. Review of basic and applied research // Spine.- 1981,- V. 6,- № 4.- P. 315-35.

106. Desmedt J.E. The neuromuscular disorders in myasthenia gravis. Electrical and mechanical responses to nerve stimulation in hand muscles // New Development in EMG and Clinical Neurophysiology / Desmedt J.E. (Ed.).- Basel: Karger.- 1973,- P. 241-304.

107. Desypris G., Parry D.J. Relative efficacy of slow and fast alpha-motoneurons to reinnervate mouse soleus muscle // Am J Physiol.- 1990,- V. 258 (1 Pt 1).- P. 62-70.

108. Devor M., Govrin-Lippmann R. Retrograde slowing of conduction sensory axons central to a sciatic nerve neuroma // Exp. Neurol.- 1986,- V. 92,- № 3.- P. 522-532.

109. Dezawa M. The interaction and adhesive mechanisms between axon and Schwann cell during central and peripheral nerve regeneration // Kaibogaku Zasshi.- 2000,-V. 75,-№3,-P. 255-265.

110. Eccles R.M., Holmqvist В., Voorhoeve P.E. Presynaptic depolarization of cutaneous afferents by volleys in contralateral muscle afferents // Acta Physiol. Scand.- 1964,- V. 62,- P. 474-484.

111. Einsiedel L.J., Luff A.R. Activity and motor unit size in partially denervated rat medial gastrocnemius // J. Appl. Physiol.- 1994,- V. 76,- № 6,- P. 2663-2661.

112. Engel W.K., Warmolts J. The motor unit // New Developments in Electromyography and Clinical neurophysiology / Desmedt J.E. (Ed.).- Basel: Karger.- 1973,- V. 9,-P. 657-671.

113. Erlanger G., Scohple P. Quantitative histology of wallerian degeneration // J. Anat. London.- 1946,-P. 80.

114. Ermino F., Buchthal F., Rosenfalk P. Motor unit territory and muscle fiber concentration in paresis due to peripheral nerve injury and anterior horn cell involvement//Neurology.- 1959,- V. 9,- P. 657-671.

115. Erulkar S.D., Soller R.W. Interactions among lumbar motorneurones on opposite sides of the frog spinal cord: morphological and electrophysiological studies // J. Сотр. Neurol.- 1980,- V. 192,- P. 473-488.

116. Fadic R., Soza M.A., Inestrosa N.C. Changes in contralateral synaptic acetylcholinesterase following motor nerve section in rats // Neurosci Lett.- 1988.-V. 90,-№1-2,-P. 229-233.

117. Fawcett J.W. Astrocytic and neuronal factors affecting axon regeneration in the damaged central nervous system // Cell Tissue Res.- 1997,- V. 290,- № 2,- P. 371377.

118. Finol H.J., Lewis D.M., Owens R. The effects of denervation on contractile properties or rat skeletal muscle // J. Physiol-1981,- V. 319,- P. 81-92.

119. Fink D.J., Purkiss D., Mata M. Retrograde axonal transport in rat sciatic nerve after nerve crush injury // Brain Res. Bull.- 1987,- V. 19,- № 1,- P. 29-34.

120. Fisher R.A., Kim S., Woodfield B.F. et al. Specific heat of UPt3: Evidence for unconventional superconductivity // Phys. Rev. Lett.- 1989,- V. 62,- № 12,- P. 1411-1414.

121. Freeman J.A., Manis P.В., Snipes G. et al. Steady growth cone currents revealed by a novel circularly vibrating probe // J. Neurosci. Res.- 1985,- V. 13,- № 1-2,- P. 257-283.

122. Fugsang-Frederiksen A., Scheel U., Buchthal F. Diagnostic yield of analysis of the pattern of electrical activity and of individual motor unit potentials in myopathy // J. Neurol. Neurosurg. Psychiatr.- 1976,- V. 39,- P. 742-750.

123. Gerren R.A., Luttges M.W. Functional changes in undamaged sciatic nerves and spinal cord of mice following nerve damage // Exp. Neurol.- 1979,- V. 65,- P. 587607.

124. Gassel M.M., Diamantopoulos E. The Jendrassik maneuver // Neurology.- 1964.-V. 14,- P.555-560

125. Goldberger M.E. Motor recovery after lesions // Trends Neurosci.- 1980,- V. 3,-№ 11.- P.288-291.

126. Gordon Т., Stein R.B. Reorganization of motor-unit properties in reinnervated muscles of the cat // J. Neurophysiol.- 1982,- V. 48,- P. 234-238.

127. Granit R., Pompeiano O. Reflex control of posture and movement // Progr. Brain Res.- 1979,-V. 50,- P. 11-28.

128. Grinnell A.D. A stady of the interaction between motoneurones in the frog spinal cord.- J. Physiol. (Lond.).- 1966 V. 182,- P. 612-648.

129. Grothe С., Wewetzer К. Fibroblast growth factor and its implications for developing and regenerating neurons // Int. J. Dev. Biol.- 1996,- V. 40,- № 1,- P. 403-410.

130. Gundersen K. Early effects of denervation on isometric and isotonic contractile properties of rat skeletal muscles // Acta Physiol. Scand.- 1985,- V. 124,- № 4,- P. 549-55.

131. Gutali C.P. Reinnervated muscles fail to produce stretch reflexes // J. Neurophysiol.- 1988,- V. 71,- P. 817-820.

132. Guth L., Brewer C.R., Collins W.F. et al. Criteria for evaluating spinal cord regeneration experiments // Surg Neurol. 1980,- V. 14,- № 5,- P. 392.

133. Gutmann E. Neurotrophic relation // Ann. Rev. Physiol.- 1976,- P. 177-216.

134. Hagbarth K.E. Post-tetanic potentiation of myotatic reflexes in man // J. Neurol., Neurosurg., Psychiatr.- 1962,- V. 25,- P. 1-10.

135. Hall H., Walsh F.S., Doherty P. A role for the FGF receptor in the axonal growth response stimulated by cell adhesion molecules // Cell Adhes Commun.-1996.- V. 3.-№6.-P. 441-450.

136. Harper G.P., Banyard P.J., Sharpe P.C. The International Spinal Research Trust's strategic approach to the development of treatments for the repair of spinal cord injury // Spinal Cord.- 1996,- V. 34,- № 8,- P. 449-459.

137. Hawkins R.L., Seeds N.W. Effect of proteases and their inhibitors on neurite outgrowth from neonatal mouse sensory ganglia in culture // Brain Res.- 1986,- V. 398,-№ 1-2,-P. 63-70.

138. He B.P., Tay S.S., Leong S.K. Macrophage and microglial cell response after common peroneal nerve cut and crush in C57BL/6J mice // Neurodegeneration.-1996,-V. 5,- № l.-P. 73-80.

139. Herbison C.J., Jaweed M.M., Ditunno J.F. Response of type I fibers to weight lifting in rat plantaris // Arch Phys Med Rehabil.-1981.- V. 62,- № 7,- P. 342-4.

140. Heumann R., Lindholm D., Bandlow C. et al. Differential regulation of mRNA encoding nerve growth factor and its receptor in rat sciatic nerve // Proc. Nat. Acad. Sci., USA.- 1987,- V. 84,- № 23,- P. 8735-8739.

141. Hirsch S. Bahr M. Growth promoting and inhibitory effects of glial cells in the mammalian nervous system // AdvExp Med Biol.- 1999,- Y. 468,- P. 199-205.

142. Hoffman P. Uber die Beziehungen der Sehnenreflererur Willkurlichen Bewegung und zum tonus//Z. Biol.- 1918,-V. 69,-P. 351-370.

143. Hoffman P. Utersuchungen uber die Eigenreflexe / Sehnenreflexe / meuscheicher Muskeln // Berlin. J. Springer.- 1922.

144. Hoffman P., Keller C.J. Uber dleichzeitige Willkuzliche und Kunstliche Reizung Von Nerven // Z. Biol.- 1928,- V. 87,- P. 527.

145. Hoffman T.C., Goodgold J. A study of abnormal reflex patterns in spasticity // Am. J. Phys. Med.-1961.- V. 40,- № 2,- P. 52-55.

146. Hoffman P.N., Thompson G.W., Grifin J. et al. Changes in neurofilament transport coincide temporally with alterations in the caliber of axons in regenerating motor fibers // J. Cell Biol.- 1985,- V. 101.- № 4,- P. 1332- 1340.

147. Hofmann W.W., Peacock J.H. Postjunctional changes induced by partial interruption of axoplasmic flow in motor nerves // Exp Neurol.- 1973,- V. 41.- № 2,-P. 345-56.

148. Holubar Y. The degeneration of peripheral fibers // J.Newral., Newrosury and Psychiatry.- 1950,- V. 13,- № 2,- P. 89-105.

149. Hubbard J.I., Oscarsson O. Localization of the cell bodies of the ventral spinocerebellar tract in lumbar segments of the cat // J. Сотр. Neurol.- 1962,- V. 118,-P. 199-204.

150. Hughes S., Smith M.E. Pro-opiomelanocortin-derived peptides in transected and contralateral motor nerves of the rat // J. Chem Neuroanat.- 1989,- V. 2,- № 4,- P. 227-237.

151. Jacobsson G., Piehl F., Meister B. VAMP-1 and VAMP-2 gene expression in rat spinal motoneurones: differential regulation after neuronal injury // Eur J. Neurosci.- 1998,- V. 10,- № i.p. 301-316.

152. Jakubiec-Puka A., Ciechomska I., Morga J., at al. Contents of myosin heavy chains in denervated slow and fast rat leg muscles // Сотр. Biochem. Physiol. Biochem. Mol. Biol. 1999,- V. 122,- № 3,- P. 355- 362.

153. Jewett G.H., Walden K.J. Motor activity patterns in rat soleus muscle after neonatal partial denervation // Neuromusc. Disor.- 1985,- V. 5,- P. 179-186.

154. Johnson I.P., Duberley R.M. Motoneuron survival and expression of neuropeptides and neurotrophic factor receptors following axotomy in adult and aging rats // J. Neuroscience.- 1998,- V. 84.- № 1,- P. 141- 450.

155. Karpati G., Engel W.K. Type grouping in skeletal muscle and experimental reinnervation // Neurology (Minneapolis).- 1968,- V. 18,- P. 447-445.

156. Katz M.J. How straight do axons grow? // J. Neurosci.- 1985,- V. 5,- № 3,- P. 589-595.

157. Kaye P.L., Gunning P.W., Austin L. In vivo synthesis of stable RNA within the rat nodose ganglia following vagotomy // J. Neurochen.- 1977,- V. 28,- P. 12411243.

158. Kean C.J., Lewis D.M., McGarrick J.D. Dynamic properties of denervated fast and slow twitch muscle of the cat // J. Physiol.- 1974,- V. 237,- № 1,- P. 103-113.

159. Kernell D. The limits of firing frequency in cat lumbosacral motoneurones possessing different time course of afterhyperpolarization // Acta physiol. scand.-1965,-V. 65,-P. 87-100.

160. Kerns J., Levy F., Gramm J. D. Celectrical field influences on nerve regeneration //Anat. Rec.- 1987,- V. 218,- № 1,- P. 71.

161. Kilmer S.L., Carlsen R.C. Chronic infusion of agents that increase cyclic AMP concentration enhances the regeneration of mammalian peripheral nerves in vivo // Exp. Neurol.- 1987,- V. 95,- № 2,- P. 357-367.

162. Koeze Т.Н., Phillips C.G., Sheridan J.D. Thresholds of cortical activation of muslce spindles and alpha motoneurones of the baboon's hand // J. Physiol.- 1968.-V. 195,-№2,-P. 419-49.

163. Koliatsos V.E., Price D.L. Axotomy as an experimental model of neuronal injury and cell death // Brain Pathol.- 1996,- V. 6,- № 4. P. 447-465.

164. Krarup C. Electrical and mechanical responses in the platismo and in the adductor pollicis muscle in patients with myasthenia gravis // J. Neurol. Neorosurg. Psychiatr.- 1977,- V. 1,- № 2,- P. 241-249.

165. Kreutzberg G.W. Principles of neuronal regeneration // Acta Neurochir.- 1996,-V. 66,-P. 103-106.

166. Kudina L.P., Churikova L.I. Testing excitability of human motoneurones capable of firing double discharges // Electroencephalogr. Clin. Neurophysiol.- 1990,- V. 75,-№4,-P. 334-341.

167. Levi-Montalcini R., Skaper S.D., Dal Toso R. et al. Nerve growth factor: from neurotrophin to neurokine // Trends Neurosci.- 1996,- V. 19,- № 11.- P. 514-520.

168. Lewis D.M. The effect of denervation on the mechanical and electrical responses of fast and slow mammalian twitch muscle // J. Physiol.- 1972,- V. 222,- № 1,- P. 51-75.

169. Lindholm D., Heumann R., Thoenen H. Products of macrophages stimulate nerve growth factor mRNA synthesis in the injured peripheral nerve // J. Neuroimmunol.-1987,- V. 16,-№ l.-P. 107.

170. Lucas M.E., Willis W.D. Identification of muscle afferents which activate interneurons interneurons in the intermediate nucleus // J. Neurophysiol.- 1974,- V. 37,-P. 282-293.

171. Lundberg A. Ascending spinal hindlimb pathways in the cat.- Progr. in Brain Res.- 1964,- V. 12,-P. 135-163.

172. Lundborg D., Dahlin L.B., Danielsen N. et al. Tissue specificity in nerve regeneration// Scand. J. Plast. Reconstr. Surg.- 1986,- V. 20,- № 3,- P. 279-283.

173. Luttges M.W., Kelly P.T., Gerren R.A. Degenerative changes in mouse sciatic nerves: electrophoretic and electrophysiologic characterizations. // Exp. Neurol.-1976,-V. 50,-P. 706-733.

174. Magladery J.W., McDougal D.B. Electrophysiological studies of nerve and reflex activity in normal man // Bull. Johns Hopk. Hosp.- 1950,- V. 86,- P. 265-290.

175. Magladery J.W. Some observations on spinal reflexes in man // Pflugers Arch, ges Physiol.- 1955,- V. 261,- P. 302-321.

176. Maki Y., Yoshizu Т., Tajima T. et al. The selectivity of motor axons during regeneration with sensory axons // J. Reconstr. Microsurg.- 1996,- V. 12,- № 8,- P. 553-556.

177. Mario I., Romero I., Nagarathnamma R. at al. Extensive Sprouting of Sensory Afferents and Hyperalgesia Induced by Conditional Expression of Nerve Growth Factor in the Adult Spinal Cord // J. Neuroscience.- 2000,- V. 20,- № 12,- P. 44354445.

178. Marx J.L. Regeneration in the central nervous system // Science.- 1980,- V. 209,-№ 4454,- P. 378-80.

179. Masayki В., Hideaki K. Electrophysiological study of regeneration from constricted erve fibres // Electromyogr. abd clin. Newrophisiol.- 1986,- V. 26,- № l.-P. 3-11.

180. Matthews M.A., Willis W.D., Williams V. Dendrite bundles in lamina IX of cat spinal cord: A possible source for electrical interaction between motoneurones.-Anat. Rec.- 1971,- V. 171.- P. 313-328.

181. Matysiak G.R. Activity and motor units size in partially denervated rat medial gastrocnemius // J. Appl. Physiol.- 1986,- V. 76,- P. 2663-2671.

182. Matsushita M. Some aspects of the interneuronal connections in cats spinal gray matter. // J. Сотр. Neurol.- 1969,- V. 136,- P. 57-80.

183. McComas A.J. Neuromuscular function and disorder.- London.- 1977,- 364p.

184. McGeachie John K. Sustained cell proliferation in denervated skeletal muscle of mice // Cell Tiss. Res.- 1989,- V. 257,- № 2,- P. 234-256.

185. Meller K. Early structural changes in the axoplasmic cytoskeleton after axotomy studied by cryofixation // Cell Tiss. Res.- 1987,- V. 250,- № 3,- P. 663-672.

186. Menendez J.A., Cubas S.C. Changes in contralateral protein metabolism following unilateral sciatic nerve section // J. Neurobiol.- 1990,- V. 21,- № 2,- P. 303-12.

187. Miller D.J., Asakura K. Central nervous system remielinnation clinical application of basic neuroscience principles //Dep. of Immunolog.- 1996,- V. 6,- P. 331-334.

188. Mongia S.K. Significance of certain evoked responses in cases of neurogenic disorders // Electromyogr. and Clin. Neurophysiol.- 1972,- V. 12,- № 3,- P. 191211.

189. Moonen G., Malgrange В., Rigo J.M. et al. Neurotrophic factors: past and future // Acta Neurol. Belg.- 1996,- V. 96,- № 3,- P. 203-218.

190. Myers R.R., Heckman H.M., Rodriguez M. Reduced hyperalgesia in nerve-injured WLD mice: relationship to nerve fiber phagocytosis, axonal degeneration, and regeneration in normal mice // Exp Neurol.- 1996- V. 141.- № 1.- P. 94-101.

191. Newman J.P., Vetity A.N., Hawatmeh S. et al. Ciliary neurotrophic factors enhances peripheral nerve regeneration // Arch. Otolaryngol. Head, and Neck. Surg.- 1996,- V. 122,- № 14.- P. 399-403.

192. Perry M. Alteration to the levels of galanin in uninjured contralateral rat saphenous nerves after unilateral saphenous nerve section // Neurosci. Lett.- 1996,-V. 217,-№2-3,-P. 206-208.

193. Petajan J.H. Clinical EMG studies of motor unit // EEG Clin. Neurophysiol.-1974,- V. 36,-P. 395-401.

194. Pette D., Vrbova G. Neural control of phenotypic expression in mammalian muscle fibers // Muscle Nerve.- 1985,- V. 8,- № 8,- P. 676-689.

195. Politis M.J. Laminin induced regeneration in mammalian central and peripheral nervous system // J. Anat.- 1986,- V. 149,- № 2,- P. 254-255.

196. Pover C.M., Usney S.J.W. An electrophysiological and histological study of myelinated axon regeneration after peripheral nerve injury and repair in the cat // J. Neurol. Sci 1988,- V. 85,- № 3,- P. 281-291.

197. Puchala E., Windle W.F. The possibility of structural and functional restitution after spinal cord injury // A review. Exp Neurol.- 1977,- V. 55,- № 1.- P. 1-42.

198. Ribchester R.R., Taxt T. Repression of inactive motor nerve terminals in partially denervated rat muscle after regeneration of active motor axons // J. Physiol (Lond).-1984,- V. 347,- P.497-511.

199. Richardson P.M., Riopelle R.J. Uptake of nerve growth factor along peripheral and spinal axons of primary sensory neurons // J. Neurosci.- 1984,- V. 4,- № 7,- P. 1683-1689.

200. Riley D.A., Sanger J.R., Matloub H.S. et al. Identifying motor and sensory myelinated axons in rabbit peripheral nerves // Brain Res.- 1988,- V. 453,- № 1-2.-P. 79-88.

201. Robinson L.R. Role of neurophysiologic evaluation in diagnosis // J. Am. Acad Orthop. Surg.- 2000,- V. 8.- № 3,- P. 190-199.

202. Rossenberg M.E. Synaptic connexions of alpha extensor motoneurones with ipsilateral and contralateral cutaneous nerves // J. Physiol.- 1970,- V. 207,- P. 231255.

203. Rotshenker S. Synapse formation in intact innervated cutaneus-pectoris muscles of the frog following denervation of the opposite muscle // J. Physiol.- 1979,- V. 292,- P. 535-547.

204. Rotshenker S., Reichert F. Motor axon sprouting and site of synapse formation in intact innervated skeletal muscle of the frog // J. Сотр. Neurol.- 1980,- V. 193,- № 2,-P. 413-22.

205. Rotshenker S. Transneuronal and peripheral mechanisms for the induction of motor neuron sprouting // J. Neurosci.- 1982,- V. 2,- № 10,- P. 1359-1368.

206. Rotshenker S., Tal M. The transneuronal induction of sprouting and synapse formation in intact mouse muscles // J. Physiol.- 1985,- V. 96,- P. 360-387.

207. Sabel В.A., Stein D.G. Pharmacological treatment of central nervous system injury//Nature.- 1986,- V. 323,- № 6088,- P. 493.

208. Scheibel M.E., Scheibel A.B. Spinal motoneurons, interneurons, and Renshaw cells. A Colgi study // Arch. Ital. Biol.- 1966,- V. 104,- P. 328-353

209. Schlaepfer W.W., Zimmerman U. Calcium-activated pro-tease and the regulation of the axonal cytoskeleton // In. Axonal Transport Neuronal Growth and Regeneration / New York, London, 1984,- P. 261-273.

210. Sears T.A., Bostock H. Conduction failure in demyelination: is it inevitable? // Demyelinat. Diseases. Basic and clin. Electroph. / New York, 1981,- P. 357-375.

211. Seifert W. Neurotrophic factors // Endeavour.- 1985,- V. 9.- № 4,- P. 183-190.

212. Sherrington C.S. Flexion-reflex of the limb, crossed extension-reflex, and reflex stepping and standing//J. Physiol- 1910,- V. 40,- P. 28-121.

213. Shimamura M. Spino-bulbo-spinal and propriospinal reflexes in various vertebrates // Brain Res.- 1973,- V. 64,- P. 141-165.

214. Slack S.R., Hopkins W.G. Neuromuscular transmission at terminals of sprouted mammalian motor neurons // Brain Res.- 1982,- V. 237,- P. 121-135.

215. Slawinska U., Tyc F., Kasicki S. et al. Time course of changes in EMG activity of fast muscles after partial denervation // Exp. Brain Res.- 1998,- V. 120,- № 2,- P. 193-201.

216. Sotelo C., Taxi J. Ultrastructural aspects of electronic junctions in the spinal cord of the frog //Brain. Res.- 1970,- V. 17,-P. 137-141.

217. Steinbach J.H. Neuromuscular junctions and alpha-bungarotoxin-binding sites in denervated and contralateral cat skeletal muscles // J. Physiol- 1981,- V. 313,- P. 513-528.

218. Stalberg E. Single fiber EMG, macro-EMG and scanning EMG: New ways of looking at the motor unit // CRC Crit. Rev. in Clin. Neurobiology.- 1986,- V. 2,- P. 125-167.

219. Stein P.G. Bilateral control of hindlimb scratching in the spinal turtle: conralateral spinal circuited contributed to the normal ipsilateral motor pattern of fictive rostral scrathing // J. Neurosci.- 1995,- V. 6,- P. 4343-4355.

220. Sunderland S. Blood supply of peripheral nerves // Arch. Neurol. Psychiat.-1945,- V. 54,- № 280,- P. 248-261.

221. Syrovy I., Gutmann E., Melichna J. Effect of exercise on skeletal muscle myosin ATP-ase activity // Physiol. Bohemoslov.- 1972,- V. 21.- № 6,- P. 633-638.

222. Szczepanowska J., Borovikov Y.S., Jakubiec-Puka A. Effect of denervation, reinnervation and hypertrophy on the state of actin filaments in sceletal muscle fibres // Eur. J. Cell Biol.- 1998,- V. 43,- № 3,- P. 394-402.

223. Taboricova M. Traction of the motoneurone pod activated in the monosynartic H-reflexes in man // Nature.- 1966,- V. 209,- № 5019,- P. 206 207.

224. Talesara C.L., Jasra Pardeep K. Differential response of slow and fast twitch fibers to denervation in young and adult rat Edlmuscles // Indian J. Exp. Biol.-1985,- V. 23,-P. 247-252.

225. Talesara C.L., Mahant R. Critical evaluation of the validity of contralateral muscle as the in denervation studies: A correlative histochemical and biochemical stady//Indian J. Exp. Biol.-1981,- № 10,- P. 956-960.

226. Tamaki K. Further studies on the effect of section of one peroneal nerve of the albino rat on the intact nerve of the opposite side // J. Сотр. Neurol.- 1936,- V. 64.-P. 437-448.

227. Tang H., Cheung W.M. Identification and Characterization of Differentially Expressed Genes in Denervated Muscle // Mol. Cell Neurosci.- 2000,- V. 16,- № 2,-P. 127-140.

228. Theiler R.F., Mc Clure W.O. Rapid axoplasmic transport of proteins in regenerating sensory nerve fibers // J. Neurochem.- 1978,- V. 31.- P. 433-447.

229. Thomas P.K. Hereditary motor neuronopathies (spinal muscular atrophies) // Electromyography and evoked potentials / Ed. by A. Strapple et al. Berlin; Heidelberg, 1985. P.217-224.

230. Thompson W.J., Jansen K.S. The extent of sprouting of remaining motor units in partly denervated immature and adult rat soleus muscle // Science.- 1977,- V. 2,- P. 523-535

231. Titeca A. The reaction of muscle to denervation // Phisiol. Revs.- 1935,- V. 13,- P. 16-24.

232. Tower S.S. Atrophy and denervation in skeletal muscle // Amer. J. Anat.- 1935.-V. 56,-P. 1-44.

233. Tower S.S. The reaction of muscle to denervation // Physiol. Rev.- 1939,- V. 19,-P. 1-48.

234. Trevino D.L., Maunz R.A., Bryan R.N. et al. Location of cells of origin of the spinothalamic tract in the lumbar enlargement of cat // Exper. Neurol.- 1972,- V. 34. P. 64-77.

235. Tsujimoto Т., Umemiya M., Kuno M. Terminal sprouting is not responsible for enhanced transmitter release at disused neuromuscular junctions of the rat // J. Neuroscience.- 1990,- V. 10,- P. 2059-2065.

236. Tuszynski M.H., Gabriel K., Gage F.H. et al. Nerve growth factor delivery by gene transfer induces differential outgrowth of sensory, motor, and noradrenergic neurites after adult spinal cord injury // Exp. Neurol.- 1996,- V. 137,- № 1,- P. 15773.

237. Tyc F., Vrbova G. The effect of partial denervation of developing rats fast muscles on their motor unit properties // J. Physiol.- 1995,- V. 1,- № 482 (Pt 3).- P. 651-660.

238. Varon M., Conner P. Development and regeneration of the nervous system: a role for nervous system: a role for neurosteroids // Dev. Neurolog.- 1996,- V. 18,- P. 621.

239. Vogt L., Giger R.J., Ziegler U. et al. Continuous renewal of the axonal pathway sensor apparatus by insertion of new sensor molecules into the growth cone membrane // Curr. Biol.- 1996,- V. 6,- № 9,- P. 1153 1158.

240. Wall P.D., Devor. M. The effect of peripheral nerve injury on dorsal root potentials and on transmission of afferent signals into the spinal cord // Brain Res.-1981,- V. 209,-P. 95-111.

241. Waller A. Experiments on the section of the glossopharyngeal and hypoglossal nerves of the frog and observations produced the reby in the structure of their primitive fibres // Philosoph. Trans. London.- 1850,- V. 140,- P. 423-429.

242. Walter P.T. The recovery of peripheral nerves following tissue expansion // S. of Hand Surg.- 1993,- V. 17,- P. 78-85.

243. Wan D.C., Choi R.C., Cheung P.W. at al. Denervation decreases the ipsilateral expression of AChE in chick lumbaric motor neurons // J. Neurosci Lett.- 1997,- V. 232,-№2,-P. 83-86.

244. Watt J.A., Moffet C.W., Zhou X., et al. Central Peptidergic Neurons Are Hyperactive during Collateral Sprouting and Inhibition of Activity Suppresses Sprouting // The Journal of Neuroscience.- 1999,- V. 19,- № 5,- P. 1586-1598

245. Weiss P., Edds M. Spontaneous recovery of muscle following partial denervation // Am. J. Physiol.- 1946,- V.145.- P. 587-607.

246. Willard M., Skene J.H., Simon C. et al. Regulation of axon growth and cytoskeletal development // In Axonal Transport Neuronal Growth and

247. Regeneration / New York, London, 1984,- P. 171-183.

248. Wilner F., Stein G. The sprial of sajlunrs of conduction in degeneratiung // J. Physiol.-1981.- V. 119,-№4,-P. 45-46.

249. Wilson D.Z., Perry C.W. Regenerative processes after lesion in rat sciatic nerve // Restor. Neurol. Neurosci.- 1990,- V. 1,- № 3-4,- P. 197-203.

250. Wirski J. Wartse odruchu hoffmanna dla oceny stanu czynnoscia wego rdzenia kzegowego // Chiz. narz. ruchu i ortop. pol.- 1973,- V. 38,- № 1.- P. 97-103.

251. Wong J., Oblinger M.M. A comparison of peripheral and central axotomy effects on neurofilament and tubulin gene expression in rat dorsal root ganglion neurons // J. Neuroscience.- 1990,- V. 10,- P. 2215-2222.

252. Yoshinobu O. Effects of denervation and deafferentation on mass and enzyme activity in rat skeletal muscles // Jap. J. Physiol.- 1989,- V. 39,- № 1,- P. 21-31.

253. Zelenin P.V., Panchin Y.V. Selective regeneration of the neuromuscular connections in the pteropod mollusc // Clione limacina.- 1999,- V. 11,- № 5,- P. 1800-1808.

254. Zernicka E., Smol E., Langfort J. et al. Time course of changes in lipoprotein lipase activity in rat skeletal muscles during denervation-reinnervation // J. Appl. Physiol.- 2002,- V. 92,- № 2,- P. 535-540.

255. Zhang Z., Soucacos P.N., Beris A.E., at al. Long-term evaluation of rat peripheral nerve repair with end-to-side neurorhaphy // Microsurg.- 2000,- V. 16,- № 4,- P. 303-311.

256. Zhou X.F., Rush R.A, McLachlan E.M. Differential expression of the p75 nerve growth factor receptor in glia and neurons of the rat dorsal root ganglia after peripheral nerve transection // J. Neurosci.- 1996.- V. 16,- № 9,- P. 2901-2911.