Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Устойчивость сульфатредуцирующих бактерий к ионом двухвалентной меди

ВАК РФ 03.00.16, Экология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Курочкина, Светлана Юрьевна

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА СУЛЬФАТРЕДУЦИРУЮЩИХ БАКТЕРИЙ.

1.1. Сульфатредукция, как способ получения энергии.

1.2. Экология сульфатредуцирующих бактерий.

1.3. Биогеохимическая роль сульфатредуцирующих бактерий.

2. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ СУЛЬФАТРЕДУЦИРУЮЩИХ БАКТЕРИЙ В БИОТЕХНОЛОГИЯХ ОЧИСТКИ ОТ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ.

2.1. Механизмы осаждения металлов сульфатредуцирующими бактериями.

2.2. Сульфатредукционное осаждение металлов в ветландах.

2.3. Использование биореакторов в процессах очистки от металлов.

2.4. Использование чистых культур сульфатредуцирующих бактерий для очистки от металлов.

3. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДИКИ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Характеристика объектов исследований.

3.2. Культивирование сульфатредуцирующих бактерий.

З.З.Определение возможных доноров и акцепторов электронов для сульфатредуцирующих бактерий.

3.3.1 Определение возможных доноров электронов для роста сульфатредуцирующих бактерий.

3.3.2. Традиционные акцепторы.

3.3.2. Нерастворимые акцепторы электронов.

3.4. Схема постановки эксперимента по определению устойчивости сульфатредуцирующих бактерий к ионам меди в среде.

3.5. Схема постановки экспериментов по определению влияния малых концентраций двухвалентных катионов металлов на сульфатредукцию

3.6. Схема экспериментов по определению кинетических параметров роста сульфатредуцирующих бактерий.

3.7. Химический эксперимент по определению эквивалентного количества сероводорода, связываемого ионами двухвалентной меди

3.8. Измерение ростовых параметров культур сульфатредуцирующих бактерий.4 О

3.9. Статистическая обработка результатов экспериментов.

4. ВЫДЕЛЕНИЕ СУЛЬФАТРЕДУЦИРУЮЩЕЙ БАКТЕРИИ, УСТОЙЧИВОЙ К ПОВЫШЕННЫМ КОНЦЕНТРАЦИЯМ ДВУХВАЛЕНТНОЙ МЕДИ.

4.1. Выделение накопительной культуры СРБ.

4.2. Выделение чистой культуры сульфатредуцирующих бактерий.

4.3 Характеристика штамма R2.

4.4. Использование Desulfovibrio sp. R2 нерастворимых акцепторов электронов.5 О

4.5. Механизм использования нерастворимых акцепторов. электронов СРБ.

5. УСТОЙЧИВОСТЬ СУЛЬФАТРЕДУЦИРУЮЩИХ БАКТЕРИЙ К ПОВЫШЕННЫМ КОНЦЕНТРАЦИЯМ ДВУХВАЛЕНТНОЙ МЕДИ.

5.1. Влияние ионов Си на рост чистых культур СРБ.

5.2. Кинетика ингибирования роста Desulfovibrio sp. R2 ионами двухвалентной меди.

5.3. Образование сероводорода культурой Desulfovibrio sp. штамм R2 в присутствии ионов меди в среде.

6. СТИМУЛЯЦИЯ МАЛЫМИ КОНЦЕНТРАЦИЯМИ ДВУХВАЛЕНТНОЙ МЕДИ.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Устойчивость сульфатредуцирующих бактерий к ионом двухвалентной меди"

Актуальность работы

Загрязнение тяжелыми металлами является одним из наиболее серьезных последствий техногенного влияния на различные экосистемы. Медь попадает в окружающую среду в составе агротехнических препаратов, в составе сточных вод металлообрабатывающих производств, при сжигании угля, бензина, древесины, при производстве фосфатных удобрений (Мур, 1987). Содержание растворимых форм меди в незагрязненных поверхностных водах колеблется от 0,5 до 1 мкг/л, возрастая до 20 мкг/л в городских районах и более 1000 мг/л в сточных водах рудников и металлоперерабатывающих предприятий (Мур, 1987).

Биотехнологии с использованием сульфатредуцирующих бактерий являются эффективными при осаждении тяжелых металлов, в том числе и меди, из различных загрязненных сред (Rowley et al., 1997; Gadd, 2000). Использование биологических процессов при осаждении металлов имеет ряд преимуществ перед стандартными физико-химическими процессами. Сульфиды металлов являются более стабильными и химически инертными соединениями, чем гидроксиды, образующиеся после химической обработки. Кроме того, биологически осажденные сульфиды металлов могут быть преобразованы и использованы в последующих процессах. Использование биологической сульфатредукции в очистке загрязненных сред, содержащих сульфат и растворенные тяжелые металлы, является перспективным (Katsutaka, 1988; Cowling et al., 1992; Dvorak et al., 1992; Barnes et al., 1994; Hammack et al., 1994; Christensen et al., 1996; Chang et al., 2000).

В современных технологиях очистки от тяжелых металлов используются выделенные из различных местообитаний накопительные культуры сульфатредуцирующих бактерий, устойчивые к металлам (White et al., 1997). Использование чистых, специально подобранных культур СРБ, в биотехнологиях очистки, по мнению ряда исследователей является предпочтительным. Однако, устойчивость чистых культур сульфатредуцирующих бактерий к ионам тяжелых металлов изучена недостаточно. Сообщалось, что выделенная из сточных вод урановых рудников чистая культура сульфатредуцирующих бактерий была устойчива к 10 mM CuS04, но дальнейших исследований культуры не проводили (Hard et al., 1997). С другой стороны очень немного известно о физиологических механизмах взаимодействия сульфатвосстанавливающих бактерий с металлами хотя именно эта группа бактерий приоритетна в выборе агента биотехнологий очистки от металлов. Более того, восстановительный

4- 2+ потенциал комплекса Си /Си слишком высок (+340 мВ) для того, чтобы ионы меди участвовали в какой-либо физиологической реакции, свойственной сульфатредуцирующим бактериям (Cypionka,1995). Таким образом, изучение закономерностей роста сульфатредуцирующих бактерий при разных концентрациях меди является не только значимым с практической точки зрения, но и интересным в фундаментальном аспекте.

В связи с вышеизложенным целью исследования явилось изучение устойчивости сульфатредуцирующих бактерий к ионам двухвалентной меди. Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Определить минимальные ингибирующие концентрации двухвалентной меди для известных сульфатредуцирующих бактерий;

2. Выделить из сточных вод, содержащие тяжелые металлы, чистую культуру сульфатредуцирующих бактерий, устойчивую к Си2+;

3. Изучить кинетику роста устойчивого штамма и образования сероводорода в присутствии различных концентраций ионов меди;

4. Изучить характеристики устойчивого штамма, полезные с точки зрения биотехнологического использования.

Научная новизна работы

В результате исследований выделен и описан новый вид сульфатредуцирующих бактерий, устойчивый к повышенным концентрациям ионов двухвалентной меди. Рассчитаны кинетические параметры роста устойчивого штамма при разных концентрациях меди в среде. Впервые выявлена стимуляция роста СРБ малыми концентрациями ионов меди. Показана способность сульфатредуцирующих бактерий расти в присутствии нерастворимых соединений серы в качестве единственных акцепторов электронов, впервые предложен механизм такого роста.

Практическая значимость

1) Показано, что бактериальное образование сероводорода незначительно зависит от концентрации меди в среде.

2) На основании проведенных исследований выделенный нами и поддерживаемый в культуре штамм сульфатредуцирующих бактерий Desulfovibrio sp. штамм R2 может быть рекомендован для дальнейших испытаний in situ в качестве перспективного агента биотехнологий очистки от тяжелых металлов.

3) Кинетические характеристики изученной культуры могут быть использованы для моделирования процессов биоочистки при разных концентрациях меди в системах.

Апробация работы

Материалы диссертации были представлены на Всероссийском совещании, посвященном 120-летию Томского государственного университета и 75-летию кафедры физиологии и биотехнологии растений (Томск, 1998), на Всероссийской конференции "Экология и проблемы окружающей среды" (Красноярск, 1999), на Международном Симпозиуме по Биогидрометаллургии (Ouro Preto, Brazil, 2001).

Результаты диссертационной работы изложены в 2 тезисах и в 3 статьях.

Заключение Диссертация по теме "Экология", Курочкина, Светлана Юрьевна

ВЫВОДЫ

1. Впервые выделен штамм сульфатредуцирующей бактерии, способный расти при концентрации 800 мг л. Фенотипические и филогенетические характеристики штамма определяют его таксономическое положение внутри рода Desulfovibrio.

2. Для сульфатредуцирующих бактерий устойчивость к ионам меди не является характерной. Минимальные ингибирующие концентрации ионов двухвалентной меди для некоторых ранее описанных сульфатредуцирующих бактерий составляли от 50 до 75 мг/л.

3. Скорость роста Desulfovibrio sp. R2 снижалась на 45,4% при концентрации 20 мг аг/ л в среде. Механизмы защиты от токсического действия ионов меди у устойчивого штамма включаются при концентрациях выше 75 мг /л. Более высокие концентрации меди оказывают незначительное влияние на интенсивность сульфатного дыхания.

4. Впервые показана возможность использования нерастворимых сульфита кальция и сульфата свинца в качестве акцепторов электронов для сульфатредукции. Рост сульфатредуцирующих бактерий на малорастворимых субстратах обусловлен высоким сродством клеток к сульфат / сульфит ионам. Нерастворимые соединения серы, являющиеся отходами некоторых промышленных производств, могут быть использованы в качестве дешевых субстратов в биотехнологиях очистки сред от тяжелых металлов с использованием сульфатредуцирующих бактерий. Рост ульфатредуцирующих бактерий на малорастворимых субстратах обусловлен выским сродством клеток к сульфат / сульфит ионам.

5. Показан процесс стимуляции продукции белка и образования сероводорода СРБ малыми концентрациями меди и кадмия.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Интенсивная добыча полезных ископаемых, а также возрастающая доля предприятий тяжелой и металлургической промышленности, атомной энергетики приводят к постоянному накоплению тяжелых металлов в природных средах, что негативно отражается на состоянии окружающей среды и здоровья населения. Современные позиции комплексного подхода к решению экологических проблем основаны на возможно полном использовании биологических процессов в качестве стабилизирующего фактора. Биологические процессы являются основой экологических биотехнологий, которые представляют собой главный инструмент решения экологических проблем. К определенному типу нарушения экологического равновесия применяются определенные биологические процессы, отвечающие поставленным задачам.

Сульфатредуцирующие бактерии в последнее время привлекают внимание исследователей как потенциальные агенты очистки сточных вод, загрязненных тяжелыми металлами и сульфатами (Katsutaka, 1988; Cowling et al., 1992; Dvorak et al., 1992; Barnes et al., 1994; Hammack et al., 1994; Christensen et al., 1996; Chang et al., 2000). Примерами таких вод являются кислые дренажные шахтные воды (Rowley et.al., 1997), сточные воды предприятий по обогащению металлических руд (Barnes et.al., 1991), сточные воды кожевенных заводов (Shin et.al., 1997), фильтрат гипсовых отвалов (Deswaef et.al., 1996), сточные воды гальванических цехов (Зайнуллин с соавт.,1980), стоки производства синтетических жирных кислот (Губин с соавт., 1984).

Потенциально возможны три основных типа очистных процессов для вод, содержащих металлы и сульфаты: 1) ионный обмен; 2) применение жидких мембран; 3) использование сульфатредуцирующих бактерий. Первые два метода эффективны в отношении ионов металлов, но не приводят к очистке сред от сульфатов. В то время как присутствие сульфатредуцирующих бактерий способствует очистке сред и от тяжелых металлов и от сульфатов. Кроме того, даже низкая скорость образования сероводорода может способствовать эффективному осаждению металлов и уменьшению их концентрации до уровня, намного ниже допустимого (Webb et al,1998). Образующийся в присутствии сульфатредуцирующих бактерий осадок сульфидов металлов менее растворим и более стабильный, чем гидроксиды после химической обработки. Более того, токсичные осадки после химической обработки стоков требуют дальнейших затрат на детоксикацию. Биологически осажденные сульфиды металлов могут быть преобразованы и использованы в металлургическом производстве.

Технологическое воплощение проекта биологической очистки может иметь несколько вариантов (Бельков, 2001):

Биоремедиация in situ проводится непосредственно в месте загрязнения путем соответсвующей обработки почвы, воды и др. Эффективность данного типа очистки зависит от физико-химических, гидравлических, микробиологических факторов.

Биоремедиация ex situ состоит в следующем: среды, требующие очистки, извлекаются из места загрязнения и подвергаются биологической обработке в специальных устройствах, затем возвращаются в экосистему.

Биостимуляция in situ основана на стимулировании роста эндогенных микроорганизмов, потенциально способных утилизировать ксенобиотики. Эффективность данного процесса повышается при внесении в очищаемые среды необходимого набора ростовых факторов (N,P,K и др.)

Биостимуляция in vitro подразумевает извлечение образцов эндогенной микрофлоры из места загрязнения и культивирование изолята в ферментерах. Стимулированная микрофлора затем возвращается на загрязненный сайт.

Биоогментация представляет собой инокулирование загрязненного сайта чужеродными специализированными микроорганизмами, которые были ранее выделены из природных источников или генетически модифицированы. Данные микроорганизмы обладают высокой устойчивостью к ксенобиотикам и эффективно проводят их утилизацию.

Биоогментация, в отличие от вышеперечисленных способов очистки, является моделируемым, а значит управляемым процессом. Использование специализированных культур, осуществляющих интенсивное протекание определенного процесса, отражается на высокой эффективности очистки. Создание генетически модифицированных агентов с заданными свойствами имеет ряд неудобств (затраты на молекулярно-генетические манипуляции, прогнозирование взаимодействия чужеродного организма с эндогенной микрофлорой). В то же время, скрининг природных культур микроорганизмов с целью подбора штамма с нужными свойствами является полезным с теоретических позиций и более выгодным для практического использования.

В нашей работе мы получили специализированную культуру сульфатредуцирующих бактерий, эффективную в отношении очистки от ионов меди с целью рекомендации ее в качестве агента биоогментации вод, содержащих повышенные концентрации меди.

До наших исследований проблема устойчивости сульфатредуцирующих бактерий к ионам меди не рассматривалась, в то время как медь является распространенным загрязнителем водных систем (таблица 7.1.)

Были проведены исследования по влиянию ионов двухвалентной меди на сульфатредуцирующие бактерии. Нами было показано, что устойчивость к ионам меди не является общим свойством для сульфатредуцирующих бактерий.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Курочкина, Светлана Юрьевна, Томск

1. Багаева Т.В. Способность сульфатвосстанавливающих бактерий различных таксономических групп к синтезу внеклеточных углеводородов // Микробиология, 1997. Т. 66. С. 796-799.

2. Варфоломеев С.Д., Гуревич К.Г. Биокинетика: Практический курс.-М. :ФАИР-ПРЕСС.- 1999. 720 с.

3. Вельков В.В. Стандартизация формата описаний промышленных технологий биоремедиации //Биотехнология, 2001. -Т.2.- С. 34-38.

4. Губин В.Е., Смирнов Ю.Г., Смирнова Г.Ф., Горелов B.C. и др. Биохимическая очистка сульфатсодержащих сточных вод // Химия и технология воды, 1984. Т.6. С. 465-467.

5. Давыдова М.Н., Мухитова Ф.К., Ибатуллин P.P. Анаэробная трансформация нефти под действием экстрактов клеток Desulfovibrio desulfuricans // Микробиология, 1998. Т. 67. С. 202-207.

6. Зайнуллин Х.Н., Смирнова Г.Ф., Галиакбаров М.Ф., Ятафарова Г.Г. и др. Применение сульфатвосстанавливающих бактерий для биохимической очистки сточных вод машиностроительных предприятий // Химия и технология воды, 1980. Т. 2. С. 272-75.

7. Иванов М.В. (а) Круговорот серы в озерах и водохранилищах // Глобальный биохимический цикл серы и влияние на него деятельности человека. -М.:Наука.- 1983. С. 256-280.

8. Иванов М.В. (Ь) Основные потоки глобального биохимического цикла серы // Глобальный биохимический цикл серы и влияние на него деятельности человека. М.-.Наука,- 1983. -С. 402-413.

9. Ивасенко Д.А., Курочкина С.Ю. Устойчивость микроорганизмов к повышенным концентрациям тяжелых металлов в водной среде // Сборник тезисов Всероссийской студенческой конференции "Экология и проблемы защиты окружающей среды". Красноярск, 1999. - С. 59.

10. Илялетдинов А.Н., Энкер П.Б., Логинова Л.В. Участие сульфтаредуцирующих бактерий в осаждении меди // Микробиология, 1977. Т. 46. С. 113-117.

11. Карначук О.В. Бактериальная сульфатредукция в прибрежных морских осадках: Автореферат диссертации на соискание ученой степени канд.биол.наук: 03.00.07.- Абовян, 1989.- 23 с.

12. Карначук О.В. Влияние шестивалентного хрома на образование сероводорода сульфатредуцирующими бактериями // Микробиология, 1995. Т. 64. С. 335-342.

13. Кузнецов С.И., Саралов А.И., Назина Т.Н. Микробиологические процессы круговорота углерода и азота в озерах. М.: Наука.- 1985 . -214 с.

14. Лебедев B.C., Дейнега Е.Ю., Кузовникова Т.А., Федоров Ю.И. Си2+-индуцированная проницаемость цитоплазматичсекрй мембраны Е. coli //Биофизика, 1999. Т. 1. С.96-197.

15. Лету нова С.В. Проблемы геохимической экологии микроорганизмов.// Биологическая роль микроэлементов. М.:Наука.-1983.-С.55-60.

16. Лурье Ю.Ю. Справочник по аналитической химии: Справ.изд.- бе изд., перераб. и доп.,- М.: Химия.- 1989. 448 с.Майстренко В.Н., Хамитов Р.З., Будников Г.К. Эколого-аналитический мониторинг супертоксикантов.- М.: Химия.-1996. - С. 111.

17. Мур Д.В., Рамамурти С. Тяжелые металлы в природных водах: Контроль и оценка влияния.- М.: Мир.- 1987.- С. 286.

18. Назина Т.Н., Полтарус А.Б., Розанова Е.П. Оценка генетического родства палочковидных неспороносных сульфатвосстанавливающих бактерий//Микробиология, 1987. Т. 56. С. 845-848.

19. Никаноров A.M., Жулидов А.В., Емец В.М. Тяжелые металлы в организмах ветлендов России.- С.-Петербург: Гидрометеоиздат.- 1993.-294с.

20. Печуркин Н.С., Брильков А.В., Гуревич ЮЛ. Устойчивость популяций микроорганизмов в процессах биологической очистки воды // Тезисы докладов I Всесоюзн. конф "Микробиология очистки воды". -Киев: Наук.думка.- 1982 . С. 43-44.

21. Пикута Е.В., Жилина Т.Н., Заварзин Г.А. и др. Desulfonstronum lacustre gen. nov., sp. nov. новая алкалофильная сульфатвосстанавливающая бактерия, использующая этанол // Микробиология, 1998.Т .67. С. 123-131.

22. Пушева М.А., Питрюк А.В., Берестовская Ю.Ю. Особенности метаболизма экстремально алкалофильных сульфатредуцирующих бактерий Desulfonatronum lacustre и Desulfonatronovibrio hydrogenovorans // Микробиология, 1999. Т.68. С.657 663.

23. Розанова Е.П., Гурова Т.Г., Колганова Т.В., Лысенко A.M. Desulfacinum subterraneum sp.nov. Новая термофильная сульфатвосстанавливающая бактерия, выделенная из высокотемпературного нефтяного пласта.// Микробиология, 2001. Т.70. С. 536-542.

24. Розанова Е.П., Назина Т.Н. Сульфатвосстанавливающие бактерии (систематика и метаболизм) // Успехи микробиологии. М.: Наука.-1989.-С.191-226.

25. Савельева Л.С., Эпов А.Н. Очистка сточных вод на биоплато // Экология и промышленность России, 2000. Т.8. С.26-28.

26. Френей Д., Уильяме Ч. Круговорот серы в почве // Глобальный биохимический цикл серы и влияние на него деятельности человека.-М.:Наука,- 1983. С. 314-345.

27. Эрлих X. Жизнь микробов в присутствии тяжелых металлов, мышьяка и сурьмы // Кашнер Д. Жизнь микробов в экстремальных условиях. -М.Мир.-1981.- С. 444-446.

28. Яковлев С.В.Б Свиридов И.В. Проблемы очистки сточных вод // Биоценоз в природе и промышленных условиях. Пущино. - 1987.-С. 39-40.

29. Abdollahi H., Nedwell D.B. Seasonal temperature as a factor inffluencing bacterial sulfate reduction in a salt marsh sediment // Microbiol. Ecol. .V. 5. P.73-79.

30. Aubert C, Brugna M, Dolla A, Bruschi M, Giudici-Orticoni MT. A sequential electron transfer from hydrogenases to cytochromes in sulfate -reducing bacteria // Biochim. Biophys. Acta., 2000 . V. 1476. P. 85-92.

31. Aubert G, Lojou E., Bianco P. The Desulfuromonas acetoxidans Triheme Cytochrome c7 Produced in Desulfovibriodesulfuricans Retains Its Metal Reductase Activity//Appl. Environ. Microbiol., 1998. V.64. P.1308-1312.

32. Bak F., Cypionka H. A novel type of energy metabolism involving fermentation of inorganic sulphur compounds // Nature, 1987. V. 326. P.891-892.

33. Baldi F., Pepi M., Burrini D.,Kniewald G., Scall D., Lanciotti E. Dissolution of barium from barite in sewage sludge and cultures of Desulfovibrio desulfuricans // Appl. Environ. Microbiol. ,1996. V.62. P.2398-2404.

34. Banci L, В ertini I, В ruschi M , Turano P. N MR сharacterization and solution structure determination of the oxidized cytochrome c7 from Desulfuromonas acetoxidans // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1996. V. 93. P. 14396.

35. Barton L.L., Odom M., LeGall J., Peck H.D. Energy coupling to nitrite respiration in the sulfate-reducing bacterium Desulfovibrio gigas // J. Bacterid., 1983.V. 153. P.867-871.

36. Barton L.L., Tomei F.A. Characteristics and activities of sulfate-reducing bacteria // Sulfate-reducing bacteria (L.L.Barton,eds.). New York: Plenum Press. - 1995. - P. 1-32.

37. Beeder J., Torsvik Т., Lien T. Thermodesulforhabdus norvegicus gen. nov., sp. nov., a novel thermophilic sulfate-reducing bacterium from oil field water // Arch. Microbiol., 1995. V.164. P.331-336.

38. Benoit J.M., Gilmour C.C., Mason R.P. The influence of sulfide on solid-phase mercury bioavailability for methylation by pure cultures of Desulfobulbus propionicus // Environ. Sci. Technol., 2001. V. 35. V. 127132.

39. Berman M., Chase Т., Bartha R. Carbon flow in mercury biomethylation by Desulfovibrio desulfuricans // Appl. Environ. Microbiol., 1990. V. 56. P. 298-300.

40. Berner R.A. Exprimental studies of the formation of sedimentary iron sulfides // Biogeochemistry of sulfur isotopes (M.L. Jensen, ed.). Yale University Press. -New Haven, 1962. -P.156-172.

41. Blessing T.C, Wielinga B.W., Morra M.J., Fendorf S. CoIIIEDTA-reduction by Desulfovibrio vulgaris and propagation of reactions involving dissolved sulfide and polysulfides // Environ. Sci. Technol., 2001. V. 15. P. 1599-1603.

42. Boschker H.T., de Graaf W., Koster M., Meyer-Reil L., Cappenberg Т.Е. Bacterial populations and processes involved in acetate and propionate consumption in anoxic brackish sediment // FEMS Microbiol. Ecol., 2001. V. 35. P.97-103.

43. Boyle A.W., Phelps C.D., Young L.Y. Isolation from estuarine sediments of a Desulfovibrio strain which can grow on lactate coupled to thereductive dehalogenation of 2, 4, 6-tribromophenol // Appl. Environ. Microbiol., 1999. V. 65. P. 1133-1140.

44. Bradford M .M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding.// Anal. Biochem., 1976. V. 72. P. 248-254.

45. Bridge T.A.M., White C. and Gadd G.M. Extracellular metal-binding activity of the sulphate-reducing bacterium Desulfococcus multivorans // Microbiology, 1999. V. 145. P. 2987-2995.

46. Brierley C.L., Brierley J.A., Davidson M.S. Applied microbial processes for metal recovery and removal from waste water // Metal ions and bacteria (T.J.Berevidge, R.J. Doyle, eds). -J. Wiley and Sons. -New York, 1989. P. 359-382.

47. Burggraf S., Jannasch H.W., Nicolaus, В., Stetter, K.O. Archaeoglobus profundus sp. nov., represents a new species within the sulfate-reducing archaebacteria// Syst. Appl. Microbiol., 1990. V.13. P. 24-28.

48. Canfield D. E., Des Marais D. J. Aerobic sulfate reduction in microbial mats // Science, 1991. V. 251. P. 1471-1473.

49. Capone D.G., Reese D.D., Kiene R.P. Effects of metals on methanogenesis, sulfate reduction, carbon dioxide evolution, and microbial biomass in anoxic salt marsh sediments // Appl. Environ. Microbiol, 1983. V. 45. P. 1586-1591.

50. Castro H. F., Williams N. H, Ogram A. Phylogeny of sulfate-reducing bacteria // FEMS Microbiol. Ecol., 2000. V.31. P. 1-9.

51. Caumette P., Cohen Y., Matheron R. Isolation and characterization of Desulfovibrio halophilus sp.nov., a halophilic sulfate-reducing bacterium isolated from Solar Lake (Sinai) // System. Appl. Microbiol., 1991. V. 14. P. 33-38.

52. Chang I. S., Shin P. K., Kim В. H. Biological treatment of acid mine drainage under sulphate-reducing conditions with solid waste material as substrate // Wat. Res., 2000. V. 34. P. 1269-1277.

53. Choi S.C., Bartha, R. Cobalamin-mediated mercury methylation by Desulfovibrio desulfuricans LS // Appl. Environ. Microbiol., 1993. V. 59. P. 290-295.

54. Clancy P.B., Venkataraman N., Lynd L.R. Biochemical inhibition of sulfate reduction in batch and continuous anaerobic digesters // Water Sci and Technol., 1992. V. 25. P. 51-60.

55. Cloete Т.Е., de Bruyn E.E. The effect of culture media on antigenic expression in sulfate-reducing bacteria // Curr. Microbiol., 2001. V. 42. P.305-309.

56. Coates J.D., Anderson R.T., Lovley D.R. Oxidation of polycyclic aromatic hydrocarbons under sulfate-reducing conditions // Appl. Environ. Microbiol., 1996. V. 62. P. 1099-1101.

57. Codina J.C., Cazorla F. M., Perez-Garcia A., de Vicente A. Heavy metal toxicity and genotoxicity in water and sewage determined by microbiological methods // Environ. Toxicol, and Chem, 2000. V. 19. P. 1552-1558.

58. Compeau G. С., Bartha R. Sulfate-reducing bacteria: principal methylators of mercury in anoxic estuarine sediment // Appl. Environ. Microbiol, 1985. V. 50. P. 498-502.

59. Cooksey D. A. Characterization of a copper resistance plasmid conserved in copper-resistant strains of Pseudomonas syringae pv. Tomato // Appl. Environ. Microbiol., 1987. V. 53. P. 454-456.

60. Cooney M.J., Roschi E., Marison I.W., Comninellis C., von Stockar U. Physiologic studies with the sulfate-reducing bacterium Desulfovibrio desulfuricans: evaluation for use in a biofuel cell // Enzyme. Microb. Technol., 1996. V. 18. P. 358-365.

61. Cowling, S. J., Gardner, M. J., Hunt, D. Т. E. Removal of heavy metals from sewage by suphide precipitation: thermodynamic calculations and tests on a pilot-scale anaerobic reactor // Environ. Technol., 1992. V. 13. P. 281291.

62. Cypionka H. Solute transport and cell energetics // Sulfate-reducing bacteria (L.L.Barton,eds.). New York: Plenum Press. - 1995. - P. 1-32.

63. Cypionka H. Oxygen respiration by desulfovibrio species // Annu. Rev. Microbiol., 2000. V. 54. P. 827-848.

64. Dalsgaard Т., Bak F. Nitrate reduction in a sulfate-reducing bacterium, Desulfovibrio desulfuricans, isolated from rice paddy soil sulfide inhibition, kinetics, and regulation // Appl. Environ. Microbiol, 1994. V. 60. P. 291297.

65. Daly K., Sharp R.J., McCarthy A,J. Development of oligonucleotide probes and PCR primers for detecting phylogenetic subgroups of sulfate-reducing bacteria // Microbiology, 2000. V. 146. P. 1693-1705.

66. Deshmane V., Lee C.M., and Sublette K. L. Microbial reduction of sulfur dioxide with pretreated sewage sludge and elemental hydrogen as electron donors // Appl. Biochem. Biotech., 1993 . V. 39. P. 739-752.

67. Deswaef S., Salmon Т., Hiligsmann S., Taillien X., Milande N., Thonart P., Crine M. Treatment of gypsum waste in a two-stage anaerobic reactor // Wat. Sci Technol., 1996. V. 34. P. 367-374.

68. Devereux R., He S.H., DoyleC.L., Orkland S., Stahl D.A., LeGall J. , Whitman W.B. Diversity and origin of Desulfovibrio species: phylogenetic definition of a family // J. Bacterid., 1990. V.172. P. 3609-3619.

69. Devereux R., Hines M.E., Stahl D.A. S Cycling: Characterization of Natural Communities of Sulfate-Reducing Bacteria by 16S rRNA Sequence Comparisons // Microb. Ecol., 1996. V.32. P.283-292.

70. Devegt A.L., Bayer H.G., Buisman C.J. Biological sulfate removal and metal recovery from mine waters // Min. Eng. -November. -1998. -P. 67-70.

71. Dilling, W., Cypionka H. Aerobic respiration in sulfate-reduction bacteria // FEMS Microbiol. Lett., 1990. V. 71. P. 123-128.

72. Dolla A. Jr., Wall A. Cytochrome c3 Mutants of Desulfovibrio desulfuricans // Appl. Environ. Microbiol., 2000. V. 66. P. 671-677.

73. Drury W.J. Treatment of acid mine drainage with anaerobic solid-substrate.reactors // Wat. Environ. Res., 1999. V.71. P. 1244-1250.

74. Dvorak D.H., Hedin R.S., Edenborn H.M., Mclntyre P.E. Treatment of metal-contaminated water using bacterial sulfate reduction: results from pilot-scale reactors // Biotech. Bioeng., 1992. V. 40. P. 609-616.

75. Eccles H. Biotreatment of metals: site dependent? // OESD Documents "Wider application and diffusion of bioremediation technologies". The Amsterdam.-1995. P. 296-302.

76. Eger P., Lapakko K. Nickel and copper removal from mine drainage by a natural wetland // Mine Drainage and Surface Mine Reclamation IC9183, 1988. V.l. P. 301-309.

77. Esteve-Nunez A., Caballero A., Ramos J.L. Biological degradation of 2, 4, 6-trinitrotoluene // Microbiol. Mol. Biol. Rev., 2001. V. 65. P. 315-352.

78. Fareleira P., Legall J., Xavier A.V., Santos H. Pathways for utilization of carbon reserves in Desulfovibrio gigas under fermentative and respiratory conditions // J. Bacterid., 1997. V.179. P. 3972-3980.

79. Fauque C.D. Ecology of sulfate-reducing bacteria // Sulfate-reducing bacteria (L.L.Barton,eds.). New York: Plenum Press. - 1995. -P. 217-241.

80. Fauque C., Le Gall, Barton L.L. Sulfate-reducing and sulfur-reducing bacteria // Variations in Autotrophic Life (J.M Shively and L.L. Barton, eds).- London : Academic Press.- 1991. -P. 271-338.

81. Fortin D., Roy M., Rioux J., Thibault P. Occurrence of sulfate-reducing bacteria under a wide range of physico-chemical conditions in Au and Cu-Zn mine tailings // FEMS Microbiol. Ecol., 2000. V.33. P. 197-208.

82. Freke A.M., Tate D. The formation of magnetic iron sulfide by bacterial reduction of iron solutions // J. Biochem. Microbiol. Technol. Engr., 1961. V. 3. P. 29-39.

83. Fude L., Harris В., Urrutia M. M., Beveridge T. J. Reduction of Cr(VI) by a consortium of sulfate-reducing bacteria (SRB III) // Appl. Environ. Microbiol., 1994. V. 60. P. 1525-1531.

84. Gadd G. M. Bioremedial potential of microbial mechanisms of metal mobilization and immobilization // Current Opinion in Biotechnology, 2000. V.ll.P. 271-279.

85. Gilmour С. C., Henry E. A. Mercury methylation in aquatic systems affected by acid deposition // Environ. Pollut. Ser., 1991. V. 71. P. 131169.

86. Gilmour С. C., Henry E. A., Mitchell R. Sulfate stimulation of mercury methylation in freshwater sediments // Environ. Sci. Technol, 1992. V. 26. P. 2281-2287.

87. Gyure R.A., Konopka A., Brooks A., Doemel W. Microbial sulfate reduction in acidic (pH 3) strip-mine lakes // FEMS Microbiol. Ecol., V.73. P. 193-200.

88. Hammack R.W., Edenborn H.M. The removal of nickel from mine waters using bacterial sulfate reaction // Appl. Microbiol. Biotechnol., 1992. V. 37. P. 674-678.

89. Hansen T.A. Carbon metabolism о f sulfate-reducing bacteria // The Sulfate-reducing Bacteria: Contemporary Perspectives ( J.M. Odom and R. Singleton, eds). -Berlin: Springer-Verlag. -1993. -P. 21-40.

90. Hao O.J., Huang L., Chen J.M., Buglass R.L. Effect of metal additions on s ulfate r eduction activity in wastewaters // Toxicol. Environ. Chem., 1994. V. 46. P. 197-212.

91. Harms G., Zengler K., Rabus R., Alckersberg F., Minz D., Rossello-Mora R., Widdel F. Anaerobic oxidation of o-xylene, m- xylene, and homologous alkylbenzens by new types sulfate-reducing bacteria // Appl. Environ. Microbiol., 1999. V.65. P. 999-1004.

92. Hard B.C., Friedrich S., and Babel, W. Microorganisms and acid mine drainage from uranium mines // Ecological effect of microorganism action: Materials of international conference, October 1-4. -Vilnus.-1997. -P. 20-23.

93. Hawkins W.B., Rodgers J.H. Jr., Gillespie W.B. Jr., Dunn A.W., Dorn P.B., Cano M.L. Design and construction of wetlands for aqueous transfersand transformations of selected metals 11 Ecotoxicol. Environ. Safety., 1997. V. 36. P. 238-248.

94. Herlihy A.T., Mills A.L. Sulfate reduction in freshwater sediments receiving acid mine drainage // Appl. Environ.Mocrobiol., 1976. V. 73. P. 179-186.

95. Herrera L., Hernandez J., Ruiz P., Gantenbein S. Desulfovibrio desulfuricans growth kinetics // Environ. Toxicol. Wat. Qual., 1991. V. 6. P. 225-237.

96. Hiligsmann S., Jacques P., Thonart P. Isolation of highly performant sulfate reducers from sulfate-rich environments // Biodegradation, 1998. V.9. P. 285-292.

97. Hruby T. Assessments of wetland functions: what they are and what they are not // Environ. Manage., 1999. V. 23. P. 75-85.

98. Ivarson K.C., Hallberg R.O. Formation of mackinawite by the microbial reduction of jarosite and its application to tidal sediments // Geoderma, 1976. V. 16. P. 1-7.

99. Ivanov A.Yu., Khassanova L.A., Collery P. Microorganisms as tool of studying copper metal ions-induced changes in electrophysical cell properties // Cell. Mol. Biol.,1996. V. 42. P. 825-831.

100. Jackson В. E., Mcinerney M. J. Thiosulfate Disproportionation by Desulfotomaculum thermobenzoicum // Appl. Environ. Microbiol., 2000. V. 66. P. 3650-3653.

101. Jalali K., Baldwin S.A. The role of sulfate-reducing bacteria in copper removal from aqueous sulfate solutions // Wat. Res., 2000. V.34. P. 797-806.

102. Johnson D.B Acidophilic microbial communities: candidates for bioremediation of acidic mine effluents // Int. Biodeter. Biodegr., 1995. V. 35 P. 41-58.

103. Jorgensen В. B. Mineralization of organic matter in the sea bed the role of sulphate reduction // Nature, 1982. V. 296. P. 643-645.

104. Jorgensen В. В The sulfur cycle of a coastal marine sediment (Limfjorden, Denmark) //Limnol. Oceanogr., 1977. V. 22. P. 814-832.

105. Jorgensen B.B., Isaksen M.F.,Jannasch, H.W. Bacterial sulfate reduction above 1003C in the deep-sea hydrothermal vent sediments // Science, 1992. V. 258. P. 1756-1757.

106. Karnachuk O.V., Kurochkina S.Y., Nicomrat D., Frank Y.A., Ivasenko D.A. et al. Desulfovibrio strain resistant to divalent copper, in submitted.

107. Karnachuk O.V., Kurochkina S.Y., Tuovinen O.H. Growth of sulphate-reducing bacteria with solid-phase electron acceptors //Appl. Microbiol. Biotechnol., 2002. V.58. P. 482-486.

108. Katsutaka N. Biological metal removal from mine drainage // Inf. Circ. N 9183 Bur. Mines, US Dept. Interior., 1988. P. 274-278.

109. King J. K,. Kostka J. E, Frischer M. E., Michael F. Sulfate-Reducing Bacteria Methylate Mercury at Variable Rates in Pure Culture and in Marine Sediments // Applied and Environmental Microbiology, 2000. V. 66. P. 2430-2437.

110. Kramer M., Cypionka H. Sulfate formation via ATP sulfurylase in thiosulfate- and sulfite-disproportionating bacteria // Arch. Microbiol., 1989. V.151. P. 232-237.

111. Lemos R.S., Gomes C.M., Santana M., LeGall J., Xavier A.V., Teixeira M. The 'strict' anaerobe Desulfovibrio gigas contains a membrane-bound oxygen-reducing respiratory chain // FEBS Lett., 2001. V. 496. P.40-43.

112. Lloyd J. R., Yong P., Macaskie L. E. Enzymatic Recovery of Elemental Palladium by Using Sulfate-Reducing // Bacteria. Appl. Environ. Microbiol., 1998. V. 64. P. 4607-4609.

113. Loka Bharathi P.A., Sathe V., Chandramohan D. Effect of lead, mercury and cadmium on sulfate-reducing bacteria // Environ. Pollut., 1990. V. 67. P. 361-374.

114. Lovley D. R. Dissimilatory metal reduction // Annu. Rev. Microbiol. 1993. V. 47. P.263-290.

115. Lovley D. R., Phillips E. J. P. Reduction of uranium by Desulfovibrio desulfuricans // Appl. Environ. Microbiol. 1992. V.58. P. 850-856.

116. Lovley D.R., Widman P.K., Woodward J.C., Phillips E.J. Reduction of uranium by cytochrome c3 of Desulfovibrio vulgaris// Appl. Environ. Microbiol. 1998. V. 64. P. 2301-2303.

117. Lowry, О. H., Rosebrough N. J., Farr A. L., Randall R. J. Protein measurement with the Folin phenol Reagent // J. Biol. Chem., 1951. V. 193. P. 265-275.

118. Macalady J.L., Mack E.E., Nelson D.C., Scow K.M. Sediment microbial community structure and mercury methylation in mercurypolluted Clear Lake, California // Appl. Environ. Microbiol., 2000. V. 66. P. 1479-1488.

119. Macy J.M, Santini J.M., Pauling B.V., O'Neill A.H., Sly L.L Two new arsenate/sulfate-reducing bacteria: mechanisms of arsenate reduction // Arch. Microbiol., 2000 . V. 173. P. 49-57.

120. Marschall C., Frenzel P., Cypionka H. Influence of oxygen on sulfate reduction and growth of sulfate-reducing bacteria // Arch. Microbiol, 1993. V.59.P. 168-173.

121. Miller L.P. Formation of metal sulfides through the activities of sulfate reducing bacteria // Contr. Boyce Thomson Inst., 1950. V. 16. P. 8589.

122. Nagpal S., Chuichulcherm S., Livingston A., Peeva L. Ethanol utilization by sulfate-reducing bacteria: an experimental and modeling study // Biotechnol. Bioeng., 2000 . V. 70. P. 533-543.

123. Newman D.K., Kennedy E.K., Coates J.D., Ahmann D., Ellis D.J. and ets. Dissimilatory arsenate and sulfate reduction in Desulfotomaculum auripigmentum sp. nov. //Arch. Microbiol., 1997. V. 168. P. 380-388.

124. Nilsen R.K., Beeder J., Thorstenson Т., Torsvik T. Distribution о f thermophilic marine sulfate reducers in North Sea oil field waters and oil reservoirs // Appl. Environ. Microbiol., 1996. V. 62. P. 1793-1798.

125. Newport P. J., Nedwell D. B. The mechanism of inhibition of Desulfovibrio and Desulfotomaculum species by selenate and molybdate //J. Appl. Bacteriol., 1988. V. 65. P. 419-423.

126. Odom J. M. Industrial and environmental activities of sulfate-reducing bacteria //. M. Odom, R. Singleton J The sulfate-reducing bacteria:contemporary perspectives. -New York: Springer-Verlag. 1994. - P. 189210.

127. Okabe S., Itoh T.,.Satoh H., Watanabe Y. Analyses of Spatial Distributions of Sulfate-Reducing Bacteria and Their Activity in Aerobic Wastewater Biofilms //Appl. Environ. Microbiol., 1998. P. 1987-1990.

128. Ollivier В., Caumette P., Garcia J.L., Mah R.A. Anaerobic bacteria from hypersaline environments // Microbiol. Rev., 1994. V. 58. P. 27-38.

129. Oremland R. S., Capone D. G. Use of "specific" inhibitors in biogeochemistry and microbial ecology // Adv. Microb. Ecol., 1988. V.10. P. 285-383.

130. O'Sullivan A.D., McCabe О .M, Murray D.A., Otte M .L. Wetlands for rehabilitation of metal mine wastes// Biol. Environ. Proc. Roy. Irish. Acad., 1999. V.99. P. 11-17.

131. Overman J., Coolen M.J., Tuschak C. Specific detection of different phylogenetic groups of chemocline bacteria on PCR and denaturing gradient gel electrofhoresis of 16S rRNA gene fragments // Arch. Microbiol., 1999. V. 172. P. 83-94.

132. Oyaizu H., Woese C.R. Phylogenetic relationships among the sulfate respiring bacteria, myxobacteria and purple bacteria // Syst. Appl. Microbiol., 1985. V. 6. P. 257-263.

133. Pado R., Pawlowska-Cwiek L., Szwagrzyk J. Heavy metal detoxification in soil performed by sulfate-reducing bacteria // Ekol. Pol., 1994. V. 42. P. 103-123.

134. Pfennig N, Widdel F. The bacteria of the sulfur cycle. -Lond: Phil. Trans .R. Soc.- 1982 .- P. 433-441.

135. Perry J., Vanderklein E. Water Quality: Management of a natureal resource. Capital City Press: Blackwell Science. - 1996.-P. 259-264.

136. Postgate J.R Recent advanced in the study of the sulfate-reducing bacteria//Bacteriol. Rev., 1965.V. 29. P. 425-441.

137. Postgate J. R. The sulphate reducing bacteria, 2nd ed. Cambridge: Cambridge University Press. - 1984.

138. Poulson S.R., Colberg P.J.S., Drever J.I. Toxicity of .heavy metals Ni, Zn to Desulfovibrio desulfuricans // Geomicrobiol. J., 1997. V. 14. P. 41-49.

139. Purdy K.J., Nedwell D.B., Embley T.M., Takii S. Use of 16S rRNA-targeted о ligonucleotide probes to i nvestigate the d istribution о f s ulphate-reducing bacteria in estuarine sediments // FEMS Microbiol. Ecol., 2001. V. 36. P. 165-168.

140. Radha S., Seenayya G. Environmental factors affecting the bioavailability and toxicity of Cd and Zn to an anaerobic bacterium Desulfovibrio // Sci. Of the Total Environ., 1992. V. 125. P. 123-136.

141. Ravenschlag K., Sahm K., Pernthaler J., Amann R. High bacterial diversity in permanently cold marine sediments // Appl. Environ. Microbiol., 1999. V. 65. P. 3982-3989.

142. Ravenschlag K., Sahm K., Knoblauch C., Jorgensen B.B., Amann R. Community structure, cellular Rrna content, and activity of sulfate-reducing bacteria in marine arctic sediments // Appl. Environ. Microbiol., 2000. V. 66. P. 3592-3602.

143. Rees G.N., Harfoot C.G., Sheehy A.J. Aminoacid degradation by the mesophilic sulfate-reducing bacterium Desulfobacteriym vacuolatum // Arch. Microbiol., 1998. V. 169. P. 76-80.

144. Reichenbecher W., Schink B. Desulfovibrio inopinatus, sp. nov., a new sulfate-reducing bacterium that degrades hydroxyhydroquinone // Arch. Microbiolog., 1998. V. 169. P. 88.

145. Revis N.M. Conversion of inorganic ions to metal sulfides by microorganisms 11 United States Patent 4789478. Dec.6, 1988.

146. Risatti J.B., Capman W.C., and Stahl D.A. Community structure of a microbial mat: The phylogenetic dimension // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1994. V 91. P. 10173.

147. Roden E. E., Tuttle J. H. Inorganic sulfur turnover in oligohaline estuarine sediments // Biogeochemistry, 1993. V. 22. P. 81-105.

148. Rueter P., Rabus R., Wilkes H., Aeckersberg F., Rainey F. A., Jannasch H. W., Widdel F. Anaerobic oxidation of hydrocarbons in crude oil by new types of sulfate-reducing bacteria // Nature, 1994. V. 372. P. 455457.

149. Ruff J., Hitzler Т., Rein U., Ritter A., Cook A.M. Bioavailability of water-polluting sulfonoaromatic compounds // Appl . Microbiol. Biotechnol., 1999. V. 52. P. 446-450.

150. Sahm K., Knoblauch C., Amann R. Phylogenetic Affiliation and Quantification of Psychrophilic Sulfate-Reducing Isolates in Marine Arctic Sediments // Appl. Environ. Microbiol., 1999. V. 65. P. 3976-3981.

151. Saleh A.M., Macpherson R.A., Miller J.D.A. The effect of inhibitors on sulfate-reducing bacteria: a compila-tion // J. Appl. Bacteriol., 1964. V. 27. P. 281-293.

152. Sani R.K., Peyton B.M., Brown L.T. Copper-induced inhibition of growth of Desulfovibrio desulfuricans G20: Assessment of its toxicity and correlation with those of zinc and lead // Appl. Environ. Microbiol., 2001. V. 67. P. 4765-4772.

153. Scheid D, Stubner S. Structure and diversity of Gram-negative sulfate-reducing bacteria on rice roots // FEMS Microbiol. Ecol., 2001. V.36. P. 175-183.

154. Sigalevich P, Meshorer E, Helman Y, Cohen Y. Transition from anaerobic to aerobic growth conditions for the sulfate-reducing bacterium Desulfovibrio oxyclinae results in flocculation // Appl. Environ. Microbiol., 2000. V. 66. P. 5005-5012.

155. Singleton R. The Sulfate-reducing Bacteria : An Overview//Odom J.M. The Sulfate-reducing Bacteria : contemporary perspectives. New York: Springer-Verlag.- 1993. -P. 14-16 .

156. So C.M., Young L.Y. Isolation and characterization of a sulfate-reducing bacterium that anaerobically degrades alkanes // Appl. Environ. Microbiol, 1999. V.65. P. 2969-2976.

157. Shin H.S., Oh S.E., Lee C.Y. Influence of sulfur compounds and heavy metals on the methanization of tannery wastewater // Wat. Sci. Technol., 1997. V.35. P. 239-245.

158. Song Y.C., Piak B.C., Shin H.S., La S.J. Influence of electron donor and toxic materials on the activity of sulfate reducing bacteria for the treatment о f e lectroplating w astewater // Wat. S ci. T ech., 1 998, V. 3 8. P. 187-194.

159. Spear J.R., Figueroa L.A., Honeyman B.D. Modeling reduction of uranium U (VI) under variable sulfate concentrations by sulfate-reducing bacteria // Appl. Environ. Microbiol., 2000. V. 66. P. 3711-3721.

160. Stetter K.O. Archaeoglobus fulgidus gen. nov., sp. nov. a new taxon of extremely thermophilic archaebacteria // Syst. Appl. Microbiol., 1988. V.10.P. 172-173.

161. Tebo B.M, Obraztsova A.Y. Sulfate-reducing bacterium grows with Cr(VI), U(VI), Mn(IV), and Fe(III) as electron acceptors // FEMS Microbiol. Lett., 1998. V.162. P. 193-198.

162. Temple K.L., LeRoux N.W. Syngenesis of sulfide ores: sulfate-reducing bacteria and copper toxicity // Econ. Geol., 1964. V. 59. P. 271293.

163. Teske A., Ramsing N. В., Habicht K., Fukui M., Kuver J. et.al. Sulfate-reducing bacteria and their activities in cyanobacterial mats of solar lake (Sinai, Egypt) //Appl. Environ. Microbiol, 1998. V. 64. P. 2943-2951.

164. Traore A.S., Hatchikian C.E., Belaich J.P., Le Gall J. Microcalorimetric studies of the growth of sulfate-reducing bacteria: energetics of Desulfovibrio vulgaris g rowth //J. Bacteriol., 1981. V. 145. P.191-199.

165. Tucker M.D., Barton L.L., Thomson B.M. Reduction of Cr, Mo, Se and U by Desulfovibrio desulfuricans immobilized in polyacrylamide gels // J. Ind. Microbiol. Biotechnol., 1998. V. 20. P. 13-19.

166. Vosjan J.H., van der Hoek G.J. A continuous culture of Desulfovibrio on a medim, containing mercury and copper iones // Netherlands J. Sea Res., 1972. V. 5.P. 440-444.

167. Vargas E., Gutierrez S., Ambriz M.E., Cervantes C. Chromosome-encoded inducible copper resistance in Pseudomonas stains // Antonie Van Leeuwenhoek, 1995. Oct. P. 225-229.

168. Visser A. The anaerobic treatment of sulfate containing wastewater // Ph.D. thesis. Wageningen AgriculturalUniversity, Wageningen. The Netherlands, 1995.

169. Wagner M., Roger A.J., Flax J.L., Brusseau G.A., Stahl D.A. Phylogeny of dissimilatory sulfite reductases supports an early origin of sulfate respiration // J. Bacterid., 1998. V. 180. P. 2975-2982.

170. Wall J.D, Rapp-Giles B.J, Rousset M. Characterization of a small plasmid from Desulfovibrio desulfuricans and its use for shuttle vector construction // J. Bacterid., 1993. V. 175 .P. 4121-4128.

171. Webb J.S., McGinnes S., Lappin-Scott H.M. Metal removal by sulfate-reducing bacteria from natural and constructed wetlands // J. Appl. Microbiol., 1998. V. 84. P. 240-248.

172. Weider R.K A survey of constructed wetland for acid mine drainage treatment in the eastern United States // Wetlands, 1989. V. 9. P. 299-315.

173. Wielinga В., Lucy J.K., Moore J.N., Seastone O.F., Gannon J.E. Microbiological and geochemical characterization of fluvially deposited sulfidic mine tailings // Appl. Environ. Microbiol., 1 999. V. 65. P. 1 5481555.

174. Widdel F. Microbiology and ecology of sulfate and sulfur-reducing bacteria // A. J. В . Z ehnder Вiology о f anaerobic microorganisms.- N .Y:. Wiley. 1988. -P. 469-585.

175. Widdel F., Bak F. Gram-negative mesophilic sulfate-reducing bacteria // The Procaryotes, vol.4 (A. Balows, H.G.Truper, M. Dworkin, W. Harder, and K.-H. Schleifer, eds). Berling: Springer-Verlag, 1992,- P. 3352-3378.

176. Widdel, F., Pfennig. N. Studies on dissimilatory sulfate-reducing bacteria that decompose fatty acids. Illncomplete oxidation of propionate by Desulfobulbus propionicus gen. nov., sp. nov // Arch. Microbiol. 1982. V.131. P. 360-365.

177. White C., Sayer J.A., Gadd. G.M. Microbial solubilization and immobilization of toxic metals: key biogeochemical process for treatment of contamination // FEMS Microbiol. Rev., 1997. V. 20. P. 503-510.

178. White С., Gadd G.M. A comparison of carbon/energy and complex nitrogen sources for bacterial sulphate-reduction: potential applications to bioprecipitation of toxic metals as sulphides // J. Ind. Microbiol., 1996. V. 17. P. 116-123.

179. White C., Gadd G.M. An internal sedimentation bioreactor for laboratory-scale removal of toxic metals from soil leachates using biogenic sulphide precipitation // J. Ind. Microbiol, and Biotechnol., 1997. V.18. P. 414-421.

180. White, C., Gadd G.M. Copper accumulation by sulphate-reducing bacterial biofilms and effects on growth // FEMS Microbiol. Letters , 2000. V. 183. P. 313-318.

181. White C., Sayer J.A., Gadd G.M. Microbial solubilization and immobilization of toxic metals: key biogeochemical processes for treatment of contamination//FEMS Microbiol. Rev., 1997. V. 20. P. 503-516.

182. White C., Sharman A.K., Gadd G.M. An integrated microbial process for the bioremediation of soil contaminated with toxic metals // Nature Biotechnol., 1998. V. 16. P. 572-575.

183. Yspeert P., Buisman C. Full-scale biological treatment of groundwater contaminated with heavy metals and sulfate // OESD Documents "Bioremediation'Mhe Tokyo, 94. P. 234-237.

184. Ziomek E., Williams R.E. Modification of lignins by growing cells of the sulfate-reducing anaerobe Desulfovibrio desulfuricans // Appl. Environ. Microbiol., 1989. V.55. P. 2262-2266.