Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему

Термо- и фотопериод в микроразмножении косточковых культур

ВАК РФ 06.01.07, Плодоводство, виноградарство

Содержание диссертации, кандидата сельскохозяйственных наук, Чивилева, Валентина Васильевна

Введение

Содержание

Глава 1. Обзор литературы

1.1. Современное состояние метода клонального микроразмножения растений

1.1.1. Направления развития техники in vitro и метод, наиболее пригодный для массового производства посадочного материала

1.1.2. Пролиферация побегов in vitro, укоренение микрочеренков и возможность депонирования материала на этих этапах.

1.1.3. Адаптация растений к нестерильным условиям и проблемы, связанные с ростом и развитием растений после культуры тканей.

1.2. Покой как биологическое явление и его роль в годичном цикле развития растений

1.2.1. Фазы покоя и их связь с зимостойкостью растений.

1.2.2. Теоретическое обоснование явлений начала и окончания периода покоя.

1.2.3. Температурный и световой режим как факторы, обуславливающие период и состояние покоя.

1.2.4. Диагностика покоя, методы его искусственного преодоления и способы управления этим процессом.

Глава 2. Цель, задачи, методика и условия проведения экспериментов

2.1. Цель и задачи исследований.

2.2. Характеристика места и объектов исследований.

2.3. Методика проведения экспериментов.

2.4. Элементы учётов и методы статистической обработки результатов исследований.

Глава 3. Результаты исследований

3.1. Введение в культуру и пролиферация побегов.

3.2. Укоренение микрочеренков и адаптация микрорастений.

3.3. Рост и развитие растений в процессе доращивания.

Глава 4. Экономические аспекты применения метода клонального микроразмножения.

Глава 5. Обсуждение результатов исследований.

Выводы.

Глава 6. Рекомендации производству.

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Термо- и фотопериод в микроразмножении косточковых культур"

В настоящее время основным способом размножения садовых культур является прививка, однако корнесобственная культура (в основном зелёное черенкование легкоукореняемых сортов и форм) также имеет широкое распространение. Эти методы наиболее отработанны и гарантируют относительно стабильный выход посадочного материала.

Одной актуальной задачей на сегодняшний день является разработка новых технологий, позволяющих в необходимом количестве получать оздоровленный посадочный материал, особенно древесных плодовых культур. Перспективным методом, реально позволяющим решить эту проблему, является культура in vitro.

В ряде стран (Великобритания, Германия, США, Италия) уже невозможно представить систему питомниководства без широкого использования методов культуры тканей. Уже в 1980 году в США около 3 тыс. питомников использовали этот метод для производства рассады и саженцев многих культур, в том числе вишни, сливы, абрикоса и других культур. К настоящему времени число видов, которые можно клонировать in vitro, составляет уже более тысячи (В.А. Высоцкий, 1995). Так, ежегодный выпуск только подвоев с использованием этого метода в мире достигает до 57 млн. пгг. в год.

Метод клонального микроразмножения взят на вооружение в ряде известных зарубежных фирм, таких как «Мелоу Лей к» в США, «Агромиллора Каталана» в Испании. В России к настоящему времени метод культуры in vitro применяется в основном при размножении редких и уникальных форм и сортов растений, в селекции и т.д. Причины такого редкого применения в производстве довольно перспективного метода: высокие требования относительно начальных капиталовложений, а также слабая отработка или отсутствие технологий получения посадочного материала многих растений.

Если на начальных этапах практически не возникает сложностей в применении технологии in vitro, то, начиная с получения микрорастений, проблемы имеют место.

Недостаточно чётко решён вопрос перевода пробирочных растений в нестерильные условия. Ещё большей проблемой представляется слабый и недружный рост адаптированных микрорастений после высадки. Известно, что для нормального развития растениям умеренного пояса требуется воздействие на них низких температур осенне-зимнего периода.

В связи с этим целью наших исследований было изучение возможности регулирования роста растений путём подбора оптимальных температурно-временных составляющих режима подготовки адаптированных микрорастений к пересадке, а также определение наиболее эффективных сочетаний элементов фотопериода для роста растений перед подготовкой при низких положительных температурах.

Научная новизна исследований заключается в том, что в качестве объектов исследований взяты адаптированные микрорастения, материал генетически однородный, не изучавшийся ранее в связи с периодом покоя. Было установлено, что развитие растений, получивших охлаждение при температуре +3-6°С в искусственных условиях, происходит аналогично с растениями, проходившими период покоя в естественных условиях. Установлено, что растения с закрытой корневой системой и извлечённые из контейнеров перед предпосадочной подготовкой при температуре +3-6°С, после высадки растут одинаково. Активизация роста подготовленных таким образом растений наступает на 3-5 день после пересадки в закрытый или открытый грунт. На основании исследований была разработана усовершенствованная технология доращивания адаптированных микрорастений, включающая подготовку к пересадке в искусственных условиях в качестве обязательного элемента, что позволяет на 1-2 года сократить доращивание материала.

Заключение Диссертация по теме "Плодоводство, виноградарство", Чивилева, Валентина Васильевна

Выводы

1. Не выявлено контрастных различий между изученными мериклонами вишни сорта Память Еникеева в процессе микроразмножения, укоренения и адаптации полученных растений к нестерильным условиям, а также между мериклонами разных лет введения в культуру (1996, 1997,' 1998, 1999, 2000 гг.). Различия между сортами вишни или сливы характеризуются сортовой реакцией на особенности культивирования.

2. Освещение красным светом (с длиной волны 660 нм) позволило получить увеличение процента укоренения на 12,8%, приживаемости при адаптации (611 нм) - на 11,4%. Комбинированный спектр с 25% синего света (450 нм) и 75% красного (611 нм) при температуре +16-20°С существенно стимулировал рост и обеспечил 47,3% разницу в высоте надземной части растений в сравнении с контролем, при более высокой температуре (+24-28°С), напротив, тормозил их рост, а наиболее эффективным был комбинированный спектр 87,5% красного + 12,5% синего света, при котором высота растений была на 32,8% больше, чем в контроле.

3. Удлинение фотопериода в качестве превентивной меры для предотвращения наступления периода покоя у растений сливы неэффективно, поскольку не выявлено существенных различий в динамике развития растений в диапазоне 12-21 ч.

4. Для успешного доращивания микрорастений в закрытом и открытом грунте в их жизненном цикле должен присутствовать период покоя при температуре воздуха ниже +7°С. Растения, впавшие в состояние покоя при температуре более +7°С, не возобновляют своего развития в течение 3-5 мес.

5. Проведение искусственного периода покоя in vitro недостаточно эффективно. Длительное (более 2 мес.) хранение укоренённых микрорастений в холодильнике приводило к их гибели. Кроме того, после адаптации через 1-1,5 мес. следует остановка активного роста, как и в контроле.

6. Высокую эффективность показала предпосадочная подготовка в искусственных условиях, имитирующих естественные, при температуре +3-6°С в течение 2-2,5 мес. Высота растений вишни в течение вегетации увеличивалась в 4-8 раз, сливы - примерно в 6-7 раз. При' этом растения, подвергавшиеся охлаждению (2,5 мес.), были более выровненными по высоте, чем не получившие его.

7. Наиболее рациональным вариантом подготовки является использование растений, извлечённых из контейнеров, что позволяет в 8-10 раз сократить площадь при хранении без ущерба качества подготовки. Растения, подготовленные таким образом, начинают активно и синхронно развиваться на 3-5 день.

8. Доращивание в теплице с туманообразованием растений, полученных in vitro и подвергнутых предпосадочной подготовке в искусственных условиях, дало положительный эффект. Растения в этих условиях обеспечили 3 волны роста, а средняя их высота в сравнении с контролем (полив вручную), была на 29,7% больше.

9. Реализация разработанной технологии в производственных условиях более чем в 4 раза повышает рентабельность производства посадочного материала косточковых культур.

Глава 6. Рекомендации производству

Полученные нами результаты позволяют дать следующие рекомендации.

1. При промышленном производстве посадочного материала косточковых культур с использованием метода клонального микроразмножения предпосадочная подготовка адаптированных микрорастений в искусственных условиях должна быть обязательным приёмом. Проводить подготовку растений к доращианию следует в климатокомнате на стеллажах, при режиме охлаждения +3-6°С в течение 2-2,5 мес., в условиях, исключающих высыхание растений (например, герметично закрытых полиэтиленовой плёнкой);

2. Для рационального использования площади климатокомнаты, растения, закладываемые на обработку, необходимо извлекать из контейнеров и группировать в ящики или другую тару по принципу мини-прикопки;

3. Доращивание растений после предпосадочной подготовки целесообразно проводить в плёночной теплице с искусственным туманообразованием, с середины апреля по конец августа.

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, кандидата сельскохозяйственных наук, Чивилева, Валентина Васильевна, Москва

1. Агафонов Н.В., Исачкин A.B., Воробьёв Б.Н. Особенности периода зимнего покоя у сортов и форм сливы коллекции Московской сельскохозяйственной академии. //Изв. Тимир. с.-х. акад. — 1994. —Вып. 1, с.153-164.

2. Алексеев A.A., Венедиктов П.С. Сезонные изменения состояния фотосинтетического аппарата в коре древесных растений. / Докл. МОИП. Общ. биол. 1991-1992 г. // Московское общ. испыт. природы МГУ. — М., 1994.— 15с.

3. Алексеенко Л.В. Особенности размножения нейтральнодневных и ремонтантных сортов земляники in vitro: Автореф. дисс . канд с.-х. наук -М., 1998.-20 е.: ил.

4. Атанасов A.A. Биотехнология в растениводстве . Пер с болг. канд. биол. наук Дейнеко Е.В. / РАН. Сибир. отд-е. Ин-т цитологии и генет. -Новосибирск, 1993. 241с.

5. Булатова Т. Г. Использование искусственных оттепелей для изучения зимостойкости яблони: Автореф. дисс . канд с.-х. наук М., 1973 — 23с.

6. Бутова Г.П., Скробова JI.JI. Морфогенез и регенерация растений дуба черешчатого в культуре in vitro. // Физиол. раст. 1988. - т. 35, вып 5. - с. 1023-1030.

7. Власов П. В. Трансформация и транспорт абсцизовой кислоты (АК) при росте и покое у растений.: Авторефер. дис. д-ра биол. наук / Ин-т физиол. раст. им. К.А Тимирязева. М., 1996.- 31с.

8. Воскресенская Н.П. Фотосинтез и спектральный состав света. / Ин-т физиол. раст. М.: Наука, 1965.- 311с., ил.

9. Воскресенская Н.П. Фоторегуляторные аспекты метаболизма растений. Доложено на 38 ежегодном Тимирязевском чтении 3 июня 1977г.-М.: Наука, 1979. 47с., ил.

10. Высоцкий В.А., Трушечкин В.Г., Корнацкий С.А. Способ пересадки растений, выращенных in vitro на питательной среде в культивационных сосудах с покрытием, в нестерильные условия. НИЗИСНП, A.C. 1493187, опубл. 15.07.89, Бюл. №26.

11. Высоцкий В.А. О генетической стабильности при клонировании микроразмноженных плодовых и ягодных культур. // С/х. биология. — 1995. №5. - с.57-63.

12. Генкель П.А., Окнина Е.З. О физиологии состояния покоя и способах его диагностики. // Физиология состояния покоя у растений. АН СССР. М.: Наука, 1968, с. 29-55.

13. Далецкая Т.В. Изменение активности гибберелинов в семенах клёна татарского при выходе из покоя. // Физиол. раст., 1980. т. 27, №1.- с. 113-121.

14. Дейнеко Е.В., Цевелева О.Н., Пельбек С.Е., Бабенко В.Н., Сидорчук Ю.В., Шумный К.В. Сомаклональная изменчивость морфологических и биологических признаков у растений-регенерантов люцерны // Физиол. раст., 1997. т. 44, №5.- с. 775-781.

15. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). — 5-е изд., доп. и перераб. — М.: Агропромиздат, 1985. — 351 е., ил. — (Учебники и учеб. пособия для высш. учеб. заведений).

16. Зауралов O.A., Пугачёв C.B. Гормональные системы у теплолюбивых растений при оптимальной и пониженных температурах. // 3-й Съезд Всерос. об-ва физиологов растений (24-29 июня, 1993, Санкт

17. Петербург): Тез. докл. 6. СПб, 1993. - с. 572.

18. Индукция морфогенеза и тканевая селекция плодовых и ягодных культур: Методические рекомендации /Под ред . канд. с.-х. наук В.М. Тюленева. Мичуринск, 1996. — 74с.

19. Катаева Н.В. Особенности микроразмножения трудноукореняемых сортов яблони. // С/х биология. 1987. - №4. - с. 18-20.

20. Кефели В.И. Рост растений и фотоморфогенез. // Физиол. раст., 1987 -т.34. вып.4. - с. 685-697.

21. Кефели В.И. Физиологические основы конструирования габитуса растений. М.: Наука, 1994.- 268с.

22. Климов С.В. Биоэнергетическая концепция устойчивости растений к низким температурам // Успехи соврем, биол. 1997. — 117, №2. — с. 133154.

23. Коломиец И.А., Парфёнова Т.М. Влияние гиббереллина на рост и развитие плодовых растений // Гиббереллины и их действие на растения (сборник). АН СССР, Москва, 1963.-е. 349-352.

24. Константинов JI.B. Исследование периодов годичного цикла жизнедеятельности плодовых и ягодных растений и их биометеорологическая характеристика // Физиол. раст. — 1980. т.27, вып. 2.-С.1296-1302.

25. Константинова Т.Н., Аксёнова Н.П., Сергеева Л.И., Чайлахян М.Х. Взаимное влияние света и гормонов на регуляцию морфогенетических процессов в кулыуре in vitro. // Физиол. раст. 1987. - т.34, вып. 2. — с. 795-802.

26. Корнацкий С.А. Способ пересадки растений, выращенных in vitro напитательной среде в культивационных сосудах с покрытием, в нестерильные условия. НИЗИСНП, Пат. №(21)4302632/30-15., опубл. 15.07.89, Бюл. №26.

27. Корнацкий С.А. Культура тканей как модель для изучения адаптационных процессов в онтогенезе плодовых и ягодных растений // Плодоводство и ягодоводство России (сб. науч. раб. ВСТИСП). — т.111. — М. 1996. - с.84-90.

28. Крокер В. Рост растений. М., изд. ин. лит., 1950. /Пер. с англ. М.Б.Штернберг.- 360с.

29. Кузина Г.В., Карникова Л.Д., Калинина Г.А., Трунова Т.И., Штильман М.И. Влияние полистимулина и 6-БАП на покой и морозостойкость древесных растений. // Физиол.раст. — 1988. т.35, вып.З. - с.574-583.

30. Кузина Г.В., Калинина Г.А. Содержание АБК в процессе прохождения осенней фотопериодической реакции, индукции глубокого покоя и морозостойкости абрикоса // Физиол. раст. — 1993. — 40 №3. — с. 397405.

31. Кулаева О.Н. Цитокинины, их структура и функция. — М.: Наука, 1973. — 264 с.

32. Ладыженская Э.П., Сухова Л.С, Кораблёва Н.П. Пути реализации физиологической эффективности фитогормонов при регулировании состояния покоя. //Физиол. и биохим. культурных растений. 1987. т. 19, №6, с. 567. рез. англ.

33. Леман В.М. Культура растений при электрическом свете. М.: Колос, 1971.-320с.

34. Леонтьев-Орлов О.А. Разработка клонального микроразмножения яблони //Автореф. дисс. канд. с/х наук. -М. 1986. -с.24.

35. Лисовский Г.М., Сидько Ф.Я., Полонский В.И., Тихомиров А.А., Золотухин И.Г. Интенсивность и качество света как факторы, определяющие формирование ценоза и урожайности растений в светокультуре. //Физиол. раст., 1987, т.34, вып.4, с.636-644.

36. Морозова Т.В. Связь продолжительности периода покоя и зимостойкости сеянцев вишни и абрикоса. Сб. науч. работ ВНИИС им. Мичурина, 1969, вып. 13, с. 144-148.

37. Мостоловица К.Ю. Развитие цветковых почек сливы в летне-осенний период. Труды по прикл. ботанике, генетике и селекции, 1977, т.59, вып. 2, с. 84-86.

38. Муромцев Г.С., Агнистикова В.Н. Гиббереллины и их действие на растения.- М.: Наука, 1984.- с.349-352.

39. Нестеров Я.С. Исследования периода покоя плодовых культур. Труды ЦГЛ им. И. В. Мичурина, 1979, т. 13. - с. 169-183.

40. Николаева М.Г. Физиология глубокого покоя семян. Л.: Наука, 1967.-207с. с ил. (АН СССР Бот. ин-т им. В.Л. Комарова).

41. Николаева М.Г. Покой семян и способы его преодоления // Онтогенез. — 1993. в. 24, №4. - с.75-86.

42. Николаева М.Г. Участвует ли абсцизовая кислота в регуляции процессов формирования и покоя семян? // Онтогенез. 1993. — в.24, №6. - с. 83-91.

43. Острейко С.А. Роль естественного отбора в онтогенезе растений (основы цитоклональной теории онтогенеза) // Физиол. раст., 1985, т. 32, вып. 3, с. 585-604.

44. Острейко С.А. Особенности реакции срезанных цветов тюльпана на обработку некоторыми ФАВ. / Плодоводство и ягодоводство России: Сб. науч. работ М., 2002. - т. 9. - с. 186-192.

45. Перекотий Г.П., Кудряков А.Г., Винников А.В. Стимулирующее действие электрического тока на корнеобразование посадочного материала винограда // Тр. Кубанского аграр. ун-та. — 1996. №346. -с.153-158, 184.

46. Полевой В.В. Физиология растений.: Учеб. для биол. спец. ВУЗов. М.: Высшая школа, 1989. - 464с.

47. Полевой В.В., Саламатова Т.С. Физиология роста и развития растений. Л., Изд. Ленинградского университета, 1991. 238с.

48. Сабинин Д.А. Физиология развития растений. М., «Наука», 1963 - с.

49. Савельев Н.И. Влияние пониженных температур на прохождение периода покоя у сливы. Докл. всесоюз. акад. с.-х. наук, 1976. № 10. - с. 24-25.

50. Самыгин Г.А. Причины вымерзания растений. — М.: Наука, 1974. — 191 е., фото. (АН СССР. Ин-т физиол. раст. им. К.А. Тимирязева).

51. СергееваКА. Физиологические и биохимические основы зимостойкости древесных растений. М.: Наука, 1971. - 174 е., ил. (АН СССР. Науч. совет по проблемам физиологии и биохимии растений).

52. Соловьёва М.А. Тр. Бот. Сада им. О.В. Фомина Киевского ун-та, №22, с. 103. Изд. Киевского ун-та, 1952.

53. Трушечкин В.Г., Высоцкий В.А., Леонтьев-Орлов О.А. Методические указания по клональному микроразмножению подвоев и сортов яблони — М.: ВАСХНИЛ, 1985. 19с.

54. Туманов И. И. Физиологические основы зимостойкости культурных растений. М.: Сельхозгиз, 1940.

55. Туровская Н.И., Стрыгина О.В. Микроклональное размножение малины // Садоводство и виноградарство. — 1990. №8. — с.26-29.

56. Фаустов B.B. Биологические основы размножения.// Плодоводство, М.: Колос, 1979.-с. 170-191.

57. Фаустов В.В. Проблемы регенерации и вегетативного размножения в садоводстве. //M.: ТСХА, 1985/ с.21-32.

58. Хашес Ц.М. О покое верхушечных меристем в связи с ритмом роста растений.- Труды Харьковского с.-х. Ин-та, 1970, т. 135, с. 109-114.

59. Хашес Ц.М. Морфолого-физиологическая характеристика глубокого покоя растений. Автореф. дис. на соиск. учёной степени д-ра биол. наук. 30.00.12. Харьков, 1974.-74 с.

60. Хмара К.А., Катаева Н.В. Влияние генотипа материнского растения и веществ цитокининового типа действия на способность тканей зародыша ели обыкновенной Picea abies к органогенезу // Физиол. раст. 1993. - вып. 40, №5. - с.802-805.

61. Шалин Ю.П., Адаменко П.В. Искусственный климат для растениеводства и селекции. JL, 1978.- с. 182.

62. Шульгин И.А. Растение и солнце. JL: Гидрометеоиздат, 1973. 251с.

63. Юсуфов А.Г. Регенерация высших растений. // Новое в жизни, науке, технике. Сер. Биология, 1981. №3. - 64с.

64. Яблонский Е.А. Взаимосвязь водного режима генеративных почек и однолетних побегов абрикоса в период зимнего развития.// Физиол. раст., 1980. Т.27. - №4. - с.828-835.

65. Albert В.А., Torres C.J.R. Germinación de semillas de lavandula latifolia M. influencia de la ecología y efectos del acido giberelico // 1 Jornadas Iber, plantas med., arom y aceites esenc., Madrid, 12-14 julio, 1989. Madrid,1992. — p.141-147.

66. Andreus C.J. How do plants survive ice? // Ann. Bot. (USA). 1996. -v. 78, №5. -p.529-536.

67. Appenroth K-J., Bergfeld R. Photophysiology of turion germination in Spirodela polyrhiza (L.) Schleiden. XI Structurial changes during red light induced responses // J. Plant. Physiol 1993.-v.141. - №5. - p.583-588.

68. Avitia García E., Castillo González A.M. Enzraizamento ex vitro de cuatro cultivares de zarzamora (Rubus spp.) // Rev. Chapingo. 1992. — v.16, №78. p. 107-109.

69. Aue H-L., Lecomte I., Pétel G. Changes in parameters of the plasmalemma ATPase during peach vegetative bud dormancy //Biol. Plant. — 2000. — v.43, №l.-p.25-29.

70. Binns A.N. Developmental variation in plant tissue culture // Enviramental and experimental Botany. 1981. - v.21. - № 3/4. -p.325-332.

71. Blok R. Massnahmen zur Verbesserung der in-vitro-Kultivierbarkeit ausgewählter Genotypen der Gattung Malus // Fak. Rhein. Friedrich-Wilhelms-Univ. Bonn, 1993. 122 p.

72. Borkiwska B., Michalczuk L. Effect of monochromatic light on growth of in vitro and ex vitro plants: Abstr. 9th Congr. Fed. Eur. Soc. Plant Physiol., Brno, 3-8 July, 1994 //Biol, plant. 1994. - v.36, Suppl. - p.59.

73. Boxus P., Druatr P. Mass propagation of finit trees. // In vitro technicues: propagation and longterm storage / ed. A. Schäfer — Menuhr. — 1985. -p. 2933.

74. Boxus Ph., Quoirin M. Compartementen pepiniere d'arbres fruittierers issusde culture in vitro. //Acta Horticulturae, 1997.- v.78, p. 373-379.

75. Brainerd K.E., Fuchigami L.H. Stomanal function of in vitro and greenhouse apple leaves in darkness, mannitol, ABA, and C02 // I. Exp. Bot. 1982. — v.33. -p.388-392.

76. Broome O.C., Zimmerman R.H. In vitro propagation of blackberry.// Hort Science. 1978. - v.3. - №2. - p.151-153.

77. Broquedis M., Bouard J. Identification of the trans isomers of abscisic acid and of abscisyl-ß-D-glukocpyranoside in latent buds on the grapevone and their evolution during the post-dormancy phase // Vitis. 1993. - v.32, №4. -p.223-228.

78. Brown C., Schuerger A. EPCOT, NASA study plant growth for space travel // Spacewatch. 1992. - v.9, №10. - p. 11-12.

79. Button J., Kochba J. Tissue culture in the citrus industry. // Plant Cell Tissue and Organ Culture, ed. J. Reinert, Y.P.S. Bajaj. 1977. - p.70-92.

80. Campbell P.L., Staden J. Plant Growth Regul. -1994. v. 14, №2. - p.97-108.

81. Carlson P.S. Somatic cell genetics as a tool for plant breeding // In: Inducted mutation in vegetatively propagated plans/ Proceedings of a panel IAEA. — Vienna. 1973. - p.167-178.

82. Carlson P.S., Polacco J.C. Plant cell cultures: genetic aspect of crop improvement //Science. -1975. v.l88. - p.622-625.

83. Champagnat P. Bub dormancy. Correlation between organs, and morfogénesis in woody plant. // Физиол. Раст. 1983. - т.30. - вып. 3. - с.587-595.

84. Chee R., Pool R.M. Morphogenic response to propagate trimming spectral irradiance, and photoperiod of grapevine shoots recultured in vitro. //Jour. Amer. Soc. Hort. Sei. 1989. - v. 144. - p. 350-354.

85. Clair-Maczulajtys D., Sartou C., Bory G. Effecrs of pruning on carbohydrate distribution in the trunk of sweet cherry (Prunus avium L.) // Sei. Hort. (Neth.).- 1994. v.59. - №1. — p.61-67.

86. Coleman W.K., Coleman S.E. Modification of potato microtuber dormancydurin induction and growth in vitro or ex vitro // Amer. J. Potato Res. 2000. -V.77. -№2. - p. 103-110.

87. Corbineau F., Poliakoff-Mayber A., Come D. Responsiveness to abscisic acid of embryos of dormant oat (Avena sativa) seeds. Involvement of ABA-inducible proteins // Physiol. Plant. 1991. - v.83, № 1. — p. 1 -6.

88. Christov C., Koleva A. Stimulation of root initiation in hardwood sweet and sour cherry rootstocks (Prunus mahaleb L.) //Bulg. J. Plant physiol. 1995. -v.21, №1. - p.68-72.

89. Degrandi-Hofïman G., Thropp R., Loper G., Eisikowich D. Describing the progression of almond bloom using accumulated heat units // Appl. Ecol. — 1996. v.33, №4. -p.812-818.

90. De Klerk G-J., Keppel M., Brugge J.T., Meekes H. Timing of the phases in adventitious root firmation in apple microcuttings // J. Exp. Bot. 1995. — v.46, №289. -p.965-972.

91. Donnelly D.J., Vadaner W.E. Leaf anatomy of red raspberry transferred from culture to soil // J. am. // Hortic. Sci. 1984. - v.l09a. - p.172-176.

92. Donnelly D.J., Vadaner W.E. Pigment content and gas exchange of red raspberry in vitro and ex nitro. // // Hort Science. 1984b. — v. 109.- p. 177 -181.

93. Dujíikoví M., Malá J., Chalupa V.Vegetativní rozmnozování breku (Sorbus torminalis L. Crantz) a oskeruse (Sorbus domestica L.) in vitro // Pr. VULHM. 1992. - №77. - p.27-48.

94. Evans D.A., Sharp W. Single gene mutation in tomato plants regenerated from tissue culture // Science. 1983. - v.221p.949-951.

95. Evans D.A. Aplicatious of somaclonal variation //Biotechnology inagriculture. Allan. 2/ Liss. - N. York. - 1988. - p.456-467.

96. Fabbri A., Sutter E., Dunston S.K. Anatomical changes in persistent leaves of tissue — cultured strawberry plant after removal from culture //Horticulturae. — 1986.-v.28. p.331-337.

97. Fallon K.M., Shacklok P.S., Trewavas A.J. Detection in vivo of very rapid red light-induced calcium-sensitive protein phosphorylation in etiolated wheat (Triticum aestivum) leaf protoplasts // Plant Phisiol. — 1993. — v.101. №3. — p. 1039-1045.

98. Fihlo Figueira E.S., Bárbara A.P., Tenente R.C.V. Production of grape plants free from nematodes using tissue culture: Abstr. 22nd Int. Symp. Eur. Soc. Nematol., Ghent, 7-12 Aug., 1994 // Nematologia. 1995. - 41, №3. p.300.

99. Finch-Savage W.E., Blake P.S., Clay H.A. Desiccation stress in recalcitrant Quercus robur L. seeds results in lipid peroxidation and increased synthesis of jasmonates and abscisic acid//J. Exp. Bot. 1996. - 47, №198. — p.661-667.

100. Frechilla S., Talbott L.D., Bogomolni R., Zeiger E. Reversal of blue light-stimulated stomatal opening by green light // Plant and Cell Phisiol. — 2000. — 41, №2. — p.171-176.

101. Fulford R.M., Justin H.F.M. Propagation in vitro of fruit plants. Field performance of sel-rooted apple and pear scions. / Report of East-Mailing Res. Stn. for 1980, 1980: 87.

102. Galerkova Z. A method for quick overcoming of the dormancy of beech masts // Докл. Былг. АН. 1993. - 46, №1. c.l 13-116.

103. Green C.E. Prospects for crop improvement in the field of cell culture //Hort. Sci. 1977. - v.12. - p.131-134.

104. Gribaudo Ivana., Novello V., Restagno M. Improved control of water loss from micropropagated grapevines (Vitis vinifera cv. Nebbiolo) //Vitis. — 2001. — v.40, №3. p.137-140.

105. Grill E. Genetic analysis abscisic acid action in Arabidopsis thaliana : Abstr.

106. Pap. Annu. Meet Amer. Soc. Plant Physiologists, Portland, Ore, July 30-Aug. 3,1994. //Plant Physiol 1994.- v.105, №1, Suppl. -p.9.

107. Gunse В., Elstner E.F. Formation of activated states of indoleacetic acid and cytokininis: An experimental approach to hypothesis concerning signal transduction // J. Plant Phisiol. 1992. - v.140. - №5. - p.536-540.

108. Hammatt N., Grant NJ. Apperent rejuvenation of mature wild cherry (Prunus avium L.) during Micropropagation // J. Plant Phisiol. 1993. — v. 141. - №2. — p.341-346.

109. Hasegawa R.M. In vitro propagation of rose // Hort. Science. — 1979. — v. 14. -№5.-p.610-612.

110. Jarret R.L., Florkowski W.J. In vitro active vs. Field genobank maintenance of sweet potato germplasm; major cost and considerations // Hort Science. — 1990. v.14. - №25. - p.141-146.

111. Jones O.P., Pontikis C.A., Hoopgood M.E. Shoot and root development in vitro / Report of East-Mailing Res. Stn. for 1976; 79.

112. Jones O.P., Hoopgood M.E., O'Farrell D. Propagation in vitro of M26 apple rootstocks. // J. of Hort. Sci. 1977. - v.52. - p.235-8.

113. Kevers C., Counmans M., Counmans-Gilles M.F., Gasspar Т.Н. Physiological and biochemical events leading to vitrification of plants cultured in vitro //

114. Phisiol. Plant. -1984. v.61 - p.69-74.122« Kronenberg H.G. Temperature influences on the flowering dates of Syringa vulgaris L. and Sorbus aucuparia L.//Sci. hort. (Neth.)-1994, —v.57.- №12. -p.59-71.

115. Lambrechts H., Rook F., Kolloffel C. Carbohidrate status of tulip bulbs during cold-indused flower stalk elongation and flowering // Plant Phisiol — 1994. -v. 104 №2. - p.515-520.

116. Letoure R., Beauchesne G. Action declairements monochromatigues sur la rhizogenese de tissues de topinambour //Comp. Red. Acad. Sci. — 1969. — v. 269.-p. 1528-1531.

117. Lewak S. Metabolic control of dotmancy: Abstr. 9th Congr. Fed. Eur. Soc. Plant Ph., Brno, 3-8 July, 1994 / Biol. Plant 1994 - v.36, suppl. - p.l 15.

118. Lindsey N.C., Antony I.C. Comparative water loss from leaves of Solanum latiniatum plant cultured in vitro and in vivo. II Plant Sci. -1984. — v.36. -№3.-p.241 -246.

119. Lin Chin-Ho, Lee Ling-Yann, Tseng Meng-Jiau. The effect of stratification and Thidiazuron treatment on germination and protein synthesis of Pyrus serotina Rehd cv. Niauli // Ann. Bot (USA). 1994. — v.73. - №5. - p.515 -523.

120. Loik M.E., Nobel P.S. Exogenous abscisic acid mimics cold acclimation for cacti differing in freezing tolerance // Plant Phisiol. 1993. - v. 103 - №3. -p.871-876.

121. Loreti F., Muleo R., Morini S. Tffect of light Quality on growth of in vitro cultured organs and tissues. // Comb. Proc. Juten. Plant Propagatirs Soc. -1991.-v.40, p. 615-623.

122. Mayrhofer D. A frozen future for endangered plants? // New Sci. 1993. — v. 13 7, № 1862. - p. 16.

123. Mc. Coun D.D. Plug system for micropropagules / In: Tissue culture as a plant production system for horticultural cropss // ed. R. Zimmerman. 1985.p. 53-60

124. Morini S., SciufFi R., Fortuna P. In vitro growth response of Prunus cerasifera shoots as influenced by different light-dark cycles and sucrose concentrations // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1992. - v. 28., №3. - p.245-248.

125. Muir W.H. Influence of variation in chromosome number on differentiation in plant tissue cultures // In: White P.R., Growe A.R. (Eds). Droc. Int. Plant Tissue Culture. -1965. Berkley. - p.485.

126. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Phisiol. Plant 1962. - v. 15 - №3. - p.473-497.

127. Nemeth G. Induction of rooting. In: biotechnology in Agriculture and Foresti 1. Shiringer-Verlag Berlin. Heidelberg, New york, Tokio, 1986: p.49-64.

128. Noda K., Kawabata C., Kawakami N. Response of wheat grain to ABA and imbibition at low yemperature // Plant Breed. 1994. - v. 113, №1. - p.53-57.

129. Noe N. Histological observations on leaves of highbush blueberry (Vaccinium corymbosum) developed in vitro and during acclimatization: Abstr. 9th Congr. Fed. Eur. Soc. Plant Ph., Brno, 6-8 July, 1994 / Biol, plant 1994. - v.36, Suppl. -p.89.

130. Olsen J.E., Junttila O., Mortiz T. A localized decrease of GAi in shoot tips of Salix pentandra seedlings precedes cessation of shoot elongation under shortphotoperiod // Physiol. Plant. 1995. - v.95, №4. - p.627-632.

131. Pritchard H.W., Tompsett P.B. Influence of chilling on germination, desiccation tolerance and longevity of horse chestnut seeds: Summ. Pap. Present. Int. meet. Soc. Low Temperature Biol., Leuven, 19-23 July, 1994 // Cryo-Lett.- 1995.16,№l.-p.66.

132. Rajashekar C.B., Lafta A. Cell-wall changes and cell tension in response to cold acclimation and exogenous abscisic acid in leaves and cell cultures // Plant Physiol. 1996. - v.l 11, №2. -p.605-612.

133. Reymond Ph., Short T.W., Briggs W.R. Blue light activates a specific protein kinase in higher plants // Plant Physiol. 1992. - v. 100, №2. -p.655-661.

134. Rinne P. Hormonal regulation of bud bursr and coppice shoot growth in Betula // Acta univ. ouluen. A. 1994. - №225. - p. 1-40.

135. Santamaria J.M., Kerstein G. The lack of control of water loss in microropagated plants is nit related to poor cuticle development // Physiol. Plant. -1994, №2.-p.191-195.

136. Schuch U.K., Azarenko A.N., Fuchigami L.H. Endogenous IAA levels and development of coffe flower buds dormancy to anthesis //Plant Growth Regul. 1994. - v. 15, №1. - p.33-41.

137. Schuurink R.C., Sedee NJ.A., Wang M. Dormancy of the barley grain is correlated with gibberellic acid responsiveness of the isolated aleurone layer // Plant Physiol. 1992. — v. 100, №4. -p. 1834-1839.

138. Sebánek J., KlTioví S., Psota V., Králk' J.,Vfkova H., Kudová D. Changes in the level of endogenous gibberellins and cytokinins in spruce (Picea abies) L. //Acta Univ. agt. В (Brno). 1991. -v. 6, №1-2. - p.27-36.

139. Shen Jia-Xiang, Niwan Toshio, Marumo Shingo. Сопоставление биологической активности природной (S)-(+) абсцизовой кислоты (АБК) и синтетической (R)-(-)- АБК // Zhiwu shengli xuebao = Acta phyitophysiol. sin. -1995. 21, №2. - p.166-174.

140. Silva Linda Lacerda da, Teixeira Silvio Lopes. Rev. ceres // Univ. fed. Vicosa. 1993. - v.40, №230. - p.390-396.

141. Silveira Conceicáo Eneida, Cottignies Alian. Period of harvest, sprouting ability of cutting, and in vitro plant regeneration in Fraxinus excelsior // Can. J. Bot. 1994. - v.72, №2. -p.261-267.

142. Singh S., Letham D.S. Cytocinins and sequential leaf senescence in tobacco: a laboratory exercise: Abstr. Pap. Annu. Meet. Amer. Soc. Plant Physiologists, Portland, Ore, July 30- Aug. 3, 1994. // Plant Physiol 1994. - v.105, №1, Suppl.-p.175.

143. Skirvin R.M., Shy M.G. In vitro propagation of "Forewer Yours" rose // Hort Science. 1979. - v.14. - №5. - p.608-610.

144. Sriskanda-rajan S., Skirvin R.M., Abu-Qaoud H. The effect of adventitious root development on scion apple cultivare in vitro. // Plant Cell Tissue Organ Cult. 1990. - v.21, №2. - p.185-189.

145. Steffens G.L., Stutte G.W. Thidiazuron substitution for chilling reguirement in three apple cultivare // J. Plant Growth Regul. 1989. - v.8, №3. - p.301 -307.

146. Steinbach H.S., Benech-Arnold R.L., Sánchez R.A. Hormonal regulation of dormancy in developing sorghum seeds // Plant Physiol. 1997. — v.l 13, №1. -p.149-154.

147. Street HL E. Plant cell cultures: present and projected application for studie in genetic // In: Ledoux L. (Ed). Genetic manipulations with plant material.

148. Plenum Press, New York. 1974. - p. 213-244.

149. Suttle J.C. Potato tuber dormancy: Role of endogenous ABA: Jt Annu. Meet. Amer. Soc. Plant Physiol., Can. Soc. Plant Physiol., Minneapolis, Minn. July 31- Aug. 4, 1993: Sci. Program: Abstr. Pap. // Plant Physiol. 1993. - v. 102, №l,SuppI. — p. 63.

150. Timann K.V. Plant hormones, grow and respiration. Biol. Bull., 1949, v.96. -p. 64-69.

151. Thomas T.H., Van Staden J. Dormancy break of celery (Apium graveolens L.) seeds by plant derived smoke extract // Plant Growth Regul. — 1995. v. 17, №3.-p. 195-198.

152. Torrey J.G. Morphogenesis in relation to chromosomal constitution in long-term plant tissue cultures // Physiol. Plant 1967. - v.20. - p. 265-275.

153. Varga Hernández J.J., González R.H. Morfogénesis in vitro de Pinys patula Schl. et. Champ. // Rev. Chapingo. 1991. - v. 15, №75. - p.7-17.

154. Veisz O., Galiba G., Sutka J. Effect of abscisic acid on the cold hardiness of wheat seedlings // J. Plant Physiol. 1996. - v. 149, №3-4. -p.439-443.

155. Vertucci C.W., Stushnoff C. The state of water in acclimating vegetative buds from Malus and Amelanchier and its relationship to winter hardness // Physiol. Plant. 1992. - v.86, №4. -p.503-511.

156. Vieitez A.M., Sánchez M.C., Amo-Marco J.B., Ballester A. Quercus of branch segment as a method for obtaining reactive explants of mature Quercusrobur trees for micropropagation // Plant Cell, Tissue Organ Cult. 1994. — v.37, №3. - p.287-295.

157. Voyatzis D. Dormancy and germination of olive as affected by temperature // Physiol. Plant. 1995. - v.95, №3. - p.444-448.

158. Wilen R.W., Ewan B.E., Gusta L.V. Interaction of abscisic acid and jasmonic acid on the inhibition of seed germination and the induction of freezing tolerance // Can. J. Bot. 1994. - v.72, №7. - p. 1009-1017.

159. Wilkins C.P., Doods J.H. Tissue culture conservation of woody spccics // Tissue culture of trees. Ed. J.H. Doods. Croom Helm., Lindon, Canberra. -1983.- p.113-136.

160. Whitehead C.S., Sutcliffe M.A. Effect of low temperatures and different growth regulators on seed germination in Ciclopia spp. //J. Plant Physiol. — 1995. v. 147, №1. - p. 107-112.

161. Yang Hond Min, Ozaki Takeshi, Ichii Takao, Nakanishi Tetsu, Kawai Yoshitaka. Diffusible and extractable auxins in young Japanese pear trees // Sci hort. -1992. v.51, №1-2. -p.97-106.

162. Zandvootr E.A., Hulshof M.J.H., Staritsky G. In vitro storage of Xanthosoma spp. Under minimal growth condition // Plant Cell Tissue Organ Cult. 1994. - v.36, №3. - p.306-316.

163. Zelena E., Zeleny F., Borkovec V., Reinohl V. Effect of light on ethylene production in IAA treated stem cuttings: Abstr. 9th Congr. Fed. Eur. Soc. Plant Ph., Brno, 3-8 July, 1994 / Biol, plant. 1994. - v.36, Suppl. - p.36.

164. Zimmerman R.H. Micropropagation of fruit plants / Acta Hort. 1983. - v. 120.-p. 217-222.

165. Zimmerman R.H. Factors affecting in vitro propagaion of apple cultivars. //

166. Acta Hort. -v. 131. 1983. - p. 171-178. 180.ZschÜttiig M. Untersuchungen zur Überwindung der In-vitro Vermhrung // Arch. Gartenbau. 1989. - v.37. - №7. - s. 465-470.