Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Регуляторные свойства и физиологическая роль изоформ гликолатоксидазы в листьях кукурузы

ВАК РФ 03.00.12, Физиология и биохимия растений

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Дмитриева, Елена Александровна

ВВЕДЕНИЕ В

ГЛАВА 1. ГЛИКОЛАТОКСИДАЗА И ЕЕ ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ 14 ЗНАЧЕНИЕ В РАСТЕНИЯХ С РАЗЛИЧНЫМ ТИПОМ МЕТАБОЛИЗМА

1.1. Фотодыхание у С3 - и С* - растений

1.1.1. Гликолатный путь у Сз - растений

1.1.2.Типы фотосинтетического метаболизма

1.1.2.1. Фотосинтез у С3 - растений

1.1.2.2. Фотосинтез у С4 - растений

1.1.2.3. САМ - метаболизм

1.1.3. Гликолатный путь у С4 - растений

1.2. Связь между ВПФП и фотодыханием

1.3. Гликолатоксидаза

1.3.1. Реакция и ее механизм

1.3.2. Распространение гликолатоксидазы

1.3.3. Очистка гликолатоксидазы

1.3.4. Свойства гликолатоксидазы

1.3.5. Кодирование гликолатоксидазы в геноме различных растений и 28 животных

1.4. Адаптация растений к воздействию стрессовых факторов

1.4.1. Общие представления о стрессе

1.4.2. Влияние освещения на метаболизм растительной клетки

1.4.2.1. Влияние света на темновое дыхание

1.4.2.2. Влияние света на фотодыхание

1.4.3. Ответная реакция растений на солевой стресс

1.4.4. Влияние гипотермии на метаболизм растений

1.4.5. Роль ферментов в адаптации растительного метаболизма к 55 неблагоприятным факторам среды

1.5. Значение гликолатного пути в метаболизме

1.5.1. Фотодыхание как энергетический процесс

1.5.2. Роль фотодыхательных интермедиатов в метаболизме растений 58 1.5.3 Функции пероксисомального метаболизма

ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Объекты исследования

2.2. Методы исследования

2.2.1. Метод выделения ферментов из растительных объектов

2.2.2. Метод разделения клеток обкладки и мезофилла кукурузы

2.2.3. Метод определения перекрестного загрязнения тканей

2.2.4. Методы определения активности ферментов

2.2.4.1.Метод определения активности гликолатоксидазы

2.2.4.2.Метод определения активности аконитатгидратазы

2.2.4.3.Метод определения активности фумаратгидратазы

2.2.4.4.Метод определения активности ФЕП - карбоксилазы

2.2.4.5.Метод определения активности НАДФ - МДГ

2.2.5. Методы очистки изучаемого фермента

2.2.5.1. Методика очистки ГО из целых листьев

2.2.5.2. Методика очистки ГО из клеток обкладки и мезофилла кукурузы

2.2.6. Исследование кинетических характеристик и регуляции ферментов

2.2.7. Метод определения количества белка

2.2.8. Метод определения содержания хлорофилла

2.2.9.Методы создания физиологических стрессов

2.2.9.1. Метод создания условий с повышенной освещенностью

2.2.9.2. Метод создания солевого стресса

2.2.9.3. Метод создания гипотермии

2.3. Статистическая обработка данных

ГЛАВА 3. ОСОБЕННОСТИ И ТКАНЕВАЯ СПЕЦИФИЧНОСТЬ 80 ГЛИКОЛАТОКСИДАЗЫ У С4 - РАСТЕНИЯ КУКУРУЗЫ

3.1. Распространение ГО в растениях с различным типом метаболизма

3.2. Распределение активности ГО между тканями листа С4 - растения 81 кукурузы

3.3. Определение перекрестного загрязнения между изучаемыми тканями 82 3.4.Очистка ГО из С3 - и С4 - растений

3.4.1. Очистка ГО из Сз - растения пшеницы

3.4.2. Очистка ГО из целых листьев С4 - растения кукурузы

3.4.3. Очистка ГО из мезофилла и клеток обкладки проводящих пучков 87 кукурузы

3.5. Изучение каталитических свойств ГО из листьев пшеницы и клеток 91 обкладки и мезофилла кукурузы

3.6. Изучение влияния некоторых метаболитов на активность ГО в 94 растениях

3.6.1. Изучение влияния изоцитрата и сукцината на активность ГО из С

- и С4 - растений

3.6.2. Изучение влияния глицина и серина на активность ГО из С3 - и С

- растений

ГЛАВА 4. РОЛЬ ГЛИКОЛАТОКСИДАЗЫ В АДАПТАЦИИ РАСТЕНИЙ 100 С РАЗЛИЧНЫМ ТИПОМ МЕТАБОЛИЗМА К ИЗМЕНЕНИЯМ УСЛОВИЙ СРЕДЫ

4.1. Изучение влияния интенсивности освещения на метаболизм 100 растений

4.1.1. Изучение влияния интенсивности освещения на темновое дыхание 100 растений

4.1.2. Влияние интенсивного освещения на гликолатный путь в 108 растениях с различным типом метаболизма

4.1.3. Изучение влияния интенсивного освещения на этиолированные 114 проростки кукурузы и пшеницы

4.2. Изучение влияния засоления на активность ГО в С3 - и С4 - 117 растениях

4.2.1. Изучение влияния кратковременного засоления на активность ГО в 117 С3 — и С4 — растениях

4.2.2. Изучение влияния длительного засоления на активность ГО в С3 - 122 и С4 - растениях

4.3. Изучение действия положительных пониженных температур на 126 активность ГО в Сз - и С4 - растениях

Введение Диссертация по биологии, на тему "Регуляторные свойства и физиологическая роль изоформ гликолатоксидазы в листьях кукурузы"

Актуальность проблемы. Растительные организмы представляют собой открытые системы, постоянно обменивающиеся веществом и энергией с окружающей средой. В клетке протекает множество разнообразных химических реакций, которые согласованы между собой по времени, скорости и локализации. Это достигается благодаря разнообразным внутри - и внеклеточным системам регуляции. Возможность сохранения клеточного гомеостаза в условиях постоянно меняющихся факторов среды определяется существованием различных метаболических путей, обеспечивающих сходные процессы. Это имеет важное теоретическое и практическое значение, так как позволяет приблизиться к пониманию механизмов функционирования организма, как целостной системы и, благодаря этому, создает условия для решения проблем, связанных с повышением устойчивости живых организмов к неблагоприятным факторам. И в этой связи одним из важнейших направлений является изучение координации фотосинтетических и дыхательных процессов, которые обеспечивают клетку энергией. Эта координация особенно важна при изменении условий окружающей среды, когда организму требуется интенсификация энергетического метаболизма для перестройки клеточных структур, необходимых для адаптации организма. Это относится в том числе к окислительному метаболизму митохондрий и функционированию восстановительного пентозофосфатного пути, которые взаимосвязаны между собой, в первую очередь, за счет фотодыхательного метаболизма, объединяющего в единую метаболическую цепь различные компартменты клетки. Фотодыхание представляет собой стимулируемое светом поглощение 02 и вызванное этим окисление промежуточных продуктов фотосинтеза с выделением С02. Так как при этом первичным продуктом является гликолевая кислота, то этот путь получил название гликолатного, в результате которого гликолат превращается в триозофосфат. Гликолатный путь включает в себя реакции, протекающие в хлоропластах, пероксисомах и митохондриях, которые в конечном итоге ведут к превращению двух молекул гликолата в ФГК, предшественник сахарозы у высших растений, т.е. данный путь является глюконеогенетическим (Igamberdiev A. U., 2002). При этом у С3-растений теряется до 50% ассимилированного углерода.

Многие методы, применяемые для обнаружения фотодыхания в целых листьях, говорят о том, что у С4-растений фотодыхание отсутствует, или же его активность не велика (Brown W. V., 1975; Глаголева Т. А., 1975). Это, однако, не связано с отсутствием ферментов фото дыхания. Вероятнее всего, обмен веществ, связанный с функционированием гликолатного пути, просто подавлен. У С4-растений для защиты от фотодыхательных потерь существует функциональное разделение фотосинтетических процессов между клетками обкладки и мезофилла. В клетках обкладки достигается уменьшение содержания Ог, что приводит к снижению оксигенирующей активности РУБФ-карбоксилазы (Chollet R., 1975). Предполагают, что в результате работы С4-цикла в клетках обкладки пучков в процессе фотосинтеза поддерживает относительно высокий уровень С02. В результате этого отношение СО2/ 02 у них выше, чем у С3-растений, а это благоприятствует фотосинтезу и способствует подавлению синтеза гликолата (Любимов В. Ю., 1985). Ключевым ферментом гликолатного пути является ГО - оксидаза L-2-гидроксикислот (гликолат: Ог-оксидоредуктаза, КФ 1.1.3.15), которая локализована в пероксисомах фотосинтетических тканей. Она окисляет различные 2-гидрокислоты, но более специфична к гликолату.

Ферменты гликолатного пути были выделены преимущественно из С3-растений. Однако имеются данные об их присутствии у некоторых С4-растений (Любимов В. Ю., 1984), но их локализация и функциональная роль остаются слабо изученными. Участие фотодыхания в адаптивной реакции растительного организма рассматривалось в ряде работ. Было показано, что этот процесс активируется при засолении (Cheesman J. М., 1988), изменении интенсивности освещения (Шахов А. А., 1993), повышенной температуре (Косулина Л. Г., 1993), развитии окислительного стресса (Калинкина Н. Г., 2001). Основным фактором, регулирующим интенсивность фотодыхания, является уровень освещенности, от которого зависит скорость оксигеназной реакции РуБИСКО. Однако, у С4 - растений, клетки обкладки, содержащие этот фермент, обеднены кислородом и изучение световой регуляции ферментов гликолатного пути в различных тканях остается нерешенной проблемой. В Сз-растениях основной поток окислительного С02 и О2 газообмена идет по пути оксегенирования РБФ и последующей метаболизации гликолата. Возможно, что какая-то часть гликолата у С4 растений синтезируется за счет РуБФ-оксигеназы, т.к. в обкладке проводящих пучков поддерживается определенная концентрация 02. Это особенно справедливо для С4-растений, у которых очень высокая активность фотосистемы II, а хлоропласты клеток обкладки характеризуются повышенной способностью к выделению 02 (Osmond С.В., 1971). Но, по -видимому, основным источником гликолата у С4-растений является окислительный путь от оксалоацетата через малонат или гидроксипируват с участием активных форм кислорода (Del Rio L. A. [et al.], 1998; Любимов В. Ю., 1985), образование которых интенсифицируется при воздействий стрессоров различной природы, таких как пониженная и повышенная температура, засоление, гипероксидная атмосфера, воздействие патогенов.

Развитие толерантности в стрессовых условиях зависит от энергетического статуса клетки, в которой индуцируются соответствующие изменения, поэтому многие ткани растения при стрессе испытывают повышенные потребности в быстрометаболизируемых углеводах, что может поддерживаться за счет обходных реакций, в том числе, и реакций гликолатного пути.

Цель и задачи исследований. Целью данной работы являлось изучение особенностей функционирования изоформ гликолатоксидазы в листьях кукурузы и выявление роли этого фермента в адаптивной реакции растений с различным типом метаболизма к условиям среды. Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить распространенность гликолатоксидазы у растений с различным типом метаболизма.

2. Осуществить разделение изоформ гликолатоксидазы из клеток обкладки и мезофилла листьев кукурузы и идентифицировать их тканевую специфичность.

3. Провести очистку изоформ гликолатоксидазы из различных тканей листа кукурузы.

4. Изучить каталитические и регуляторные свойства изоформ гликолатоксидазы, имеющих различную тканевую специфичность.

5. Исследовать динамику изменения активности гликолатоксидазы в растениях с различным типом метаболизма при варьировании условий освещенности и выявить корреляцию активности функционирования этого фермента с интенсивностью окислительного метаболизма митохондрий.

6. Изучить индукцию активности гликолатоксидазы в листьях этиолированных растений при зеленении.

7. Исследовать активность гликолатоксидазы у различных растений под влиянием хлоридного засоления.

8. Изучить функционирование гликолатоксидазы у Сз - и С4 -растений в условиях пониженной температуры.

Научная новизна работы. Нами была модифицирована методика разделения клеток обкладки и мезофилла С4 - растений, что позволило провести эффективное деление тканей листа кукурузы и обнаружить наличие нескольких изоформ ГО различной локализации. Впервые был очищен ферментный препарат ГО из клеток мезофилла кукурузы и изучены каталитические свойства этой изоформы в сравнении с ГО из клеток обкладки С4 - растения кукурузы и листьев Сз - растения пшеницы. Исследована регуляция активности различных изоформ ГО из С4 - растения кукурузы некоторыми метаболитами дыхания и гликолатного пути.

В представленной работе проведено исследование динамики активности ключевого фермента гликолатного пути - ГО в растениях с различным типом метаболизма, подвергавшихся стрессовым воздействиям. Изучен характер изменения активности ГО в растениях с различным типом метаболизма и различных по функциональной нагрузке тканях одного растения в условиях интенсивного освещения, засоления и гипотермии. Показано, что мезофилльная форма ГО менее устойчива к стрессорам различной природы, что указывает на возможную протекторную роль мезофилльных клеток кукурузы в защите фотосинтетического метаболизма С4 - растений от повреждающего действия факторов внешней среды.

Практическая значимость. Научные положения настоящей работы расширяют и углубляют современные представления о физиолого -биохимических механизмах участия пероксисомальных процессов в адаптации растительных клеток. Традиционно считается, что фотодыхание снижает продуктивность сельскохозяйственных культур, однако получение мутантных организмов, дефицитных по этому пути, показало снижение их жизнеспособности (Blackwell R. D.[et al.], 1990; Leegoon R. С. [et al.],1995; Igamberdiev A. U., 2001). Фото дыхание защищает растения от фотоингибирования, развивающегося при различных стрессовых условиях (Wingler А., 2000), а также участвует в поддержании энергетического статуса хлоропластов при лимитированном поступлении СОг и высокой интенсивности освещения (U. Heber [et al.], 1996). При изучение регуляции гликолатного пути нами получены данные о модуляции активности гликолатоксидазы, которые представляют интерес в понимании механизмов объединения энергетического и конструктивного обмена в единую целостную регулируемую систему, определяющую в конечном счете продуктивность растений. Представленные данные важны для получения новых сортов растений, обладающих повышенной экспрессией гликолатоксидазы как одного из механизмов устойчивости к изменениям факторов среды.

Модифицирован метод эффективного разделения клеток обкладки и мезофилла на примере С4 - растения кукурузы, у которого эти ткани несут различную функциональную нагрузку. Это позволит в дальнейшем изучить особенности локализации изоформ ферментов цикла Кальвина и гликолатного пути у различных представителей растений с С4 - типом метаболизма. Получены высокочищенные белковые препараты изоформ ГО из клеток обкладки и мезофилла, которые различаются по каталитическим свойствам, а также регуляцией дыхательными интермедиатами. Полученные предложенным путем препараты могут применяться для аналитического определения гликолата в биологических образцах.

Материалы работы используются в учебном процессе на биолого-почвенном факультете Воронежского госуниверситета. Результаты исследований вошли в курсы лекций по «Физиологии растений», спецкурсы «Дыхание растений» и «Фотосинтез».

Апробация работы. Материалы работы были представлены и обсуждались на 7-ой международной конференции по химии и физико-химии олигомеров «Олигомеры VII» (Пермь, 2000), III съезде фотобиологов (Воронеж, 2001), 6 - ой и 9-ой Пущинской школе - конференции молодых ученых «Биология - наука 21 -го века» (Пущино, 2002, 2005 гг.), V Съезде Общества физиологов растений России (Пенза, 2003), научных сессиях Воронежского государственного университета (1999, 2001, 2003).

Публикации. Результаты работы изложены в 12 публикациях: 7 статьях и 5 тезисах.

Структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 162 страницах машинописного текста. Состоит из введения, обзора литературных данных, результатов собственных исследований и их обсуждения, заключения, выводов и списка использованной литературы. В работе использовано 252 литературных источника, из них 91 отечественный и 161 иностранный. Иллюстрационный материал включает 39 рисунков, 8 таблиц.

Заключение Диссертация по теме "Физиология и биохимия растений", Дмитриева, Елена Александровна

ВЫВОДЫ

1. Показано, что активность гликолатоксидазы обнаруживается у растений с С3, С4 и САМ-метаболизмом. Причем данный фермент функционально активен как в зеленых, так и в этиолированных растениях.

2. С помощью модифицированной методики разделения различных по функциональной нагрузке тканей листа кукурузы установлено, что активность гликолатоксидазы локализована как в клетках обкладки (79% от общей активности), так и в клетках мезофилла (21%).

3. Впервые выделены три изоформы гликолатоксидазы из листьев С4 -растения кукурузы, имеющие специфическое тканевое распределение. Первая изоформа обнаруживается в клетках обкладки, вторая имеет исключительно мезофилльную локализацию, а третья молекулярная форма фермента присутствует в обоих типах тканей.

4. Получение высокоочищенных препаратов изоформ ГО с удельной активностью 1,26 Е/ мг белка для клеток обкладки, 0,43 Е/ мг белка для мезофилла и 0,32 Е/ мг белка для изоформы с двойственной локализацией и степенью очистки 46.7, 78.2 и 58.2 раза соответственно позволило провести сравнительное исследование их кинетических и регуляторных свойств.

5. Установлено, что молекулярные формы ГО характеризуются различными каталитическими свойствами: фермент из клеток обкладки обладает меньшим сродством к гликолату по сравнению с ГО из мезофилла кукурузы и его рН - оптимум сдвинут в кислую область.

6. Выявлено, что ГО в растениях с различным типом метаболизма является светоактивируемым ферментом, при этом максимальный эффект наблюдался в листьях С3 - растения пшеницы.

7. Обнаружено наличие гликолатоксидазной активности в листьях этиолированных растений. Выявлена индукция активности ГО у растений с разным типом метаболизма на свету. При зеленении активность ГО в листьях Сз- растения пшеницы возрастала в 2,4, а в листьях С4 - растения кукурузы - в 4,9 раза соответственно.

8. Солевой стресс вызывает увеличение активности ГО в листьях изученных растений. Активация работы фермента обнаружена в листьях пшеницы и различных тканях листа кукурузы. Динамика изменения активности ГО в стрессовых и пост-стрессовых условиях имеет сходный характер у С3-растения пшеницы и в клетках обкладки листьев кукурузы.

9. Экспонирование растений в условиях гипотермии вызывает увеличение активности ГО в листьях пшеницы, клетках мезофилла и обкладки кукурузы через 3 часа инкубации. Максимальный активирующий эффект наблюдался в клетках мезофилла. После 5 часов пребывания растений при 4°С активность ГО снижалась до 60-80% от контрольных значений во всех типах изученных тканей. Наиболее эффективное восстановление активности изучаемого фермента при возвращении к естественному температурному режиму осуществлялось в клетках обкладки.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

С4- фотосинтез присущ только таким покрытосеменным растениям, у которых есть фотосинтезирующие клетки двух типов: клетки мезофилла и кранц-клетки (клетки обкладки проводящих пучков). Главным продуктом фотосинтеза является С4-дикарбоновая кислота - оксалоацетат, превращающаяся затем в малат и аспартат. Углерод передается от С4-кислот в цикл Кальвина, функционирующий в клетках обкладки проводящих пучков. В проростках кукурузы имеет место Сз-фотосинтез, но в дальнейшем растение переходит к С4-пути. В С3-растениях основным источником гликолата является оксигеназная функция Рубиско.

Многие методы, применяемые для обнаружения фотодыхания в целых листьях, говорят о том, что у С4-растений фотодыхание отсутствует, или же его активность не велика (Brown R. Н., 1980). Это, однако, не связано с отсутствием ферментов фотодыхания. Вероятнее всего, обмен веществ, связанный с функционированием гликолатного пути, просто подавлен. Рубиско, помимо карбоксилазной и оксигеназной реакции, может катализировать т.н. транскетолазную реакцию, когда скорость карбоксилирования РуБФ превышает потенциальные возможности использования триозофосфатов в биосинтетических реакциях и в реакции окисления органических кислот под действием О2" (Кээрберг О.Ф., 1989). Кроме того, образование гликолата может быть связано с детоксикацией активных форм кислорода. Перекись водорода может химически реагировать с кетокислотами. Окисление щавелевоуксусной кислоты по этому механизму как раз и приводит к образованию гликолевой кислоты. Активное образование активных форм кислорода в растительной клетке связывается с работой электронтранспортных цепей, особенно в физиологических состояниях, характеризующихся высоким мембранным потенциалом (Ivanov В. N., 2003; Khorobrykh S., 2004).

Гликолатный путь отвечает за метаболизацию образующегося гликолата и включает в себя реакции, протекающие в хлоропластах, пероксисомах и митохондриях, которые в конечном итоге ведут к превращению двух молекул гликолата в ФГК, предшественник синтеза сахарозы у высших растений. Возможно, что какая-то часть гликолата у С4 растений синтезируется за счет РуБФ-оксигеназы, т.к. в обкладке проводящих пучков поддерживается низкая концентрация 02. Это особенно справедливо для С4-растений, у которых очень высокая активность фотосистемы II, а хлоропласта клеток обкладки характеризуются повышенной способностью к выделению 02. Однако, по-видимому, основным источником гликолата в клетках мезофилла, дефицитных по РуБИСКО, у С4-растений является окислительный путь от оксалоацетата через малонат или гидроксипируват с участием восстановленных форм кислорода.

В представленном исследовании показано, что ключевой фермент гликолатного пути гликолатоксидаза обнаруживается как в мезофилле, так и в клетках обкладки листьев кукурузы. Причем показано, что для разных тканей характерны различные изоформы данного фермента, отличающиеся по кинетическим и регуляторным характеристикам. Участие изоцитрата и сукцината в регуляции активности гликолатоксидазы может быть связана с координацией активностей гликолатного пути и цикла трикарбоновых кислот. Ранее было показано, что фотодыхательный глицин может монополизировать работу митохондриальной электронтранспортной цепи (Bergman A., Ericson I., 1983) и в этой связи накопление сукцината может снижать интенсивность образования глиоксилата и сответсвенно глицина, блокируя работу гликолатоксидазы. Баланс накопления сукцината и гиоксилата может также поддерживаться за счет внеглиоксисомальной формы изоцитратлиазы, которая превращает эти соединения в изоцитрат и которая обнаруживается в зеленых листьях (Бекина Р. М., 1986 Игамбердиев А.У., 1990).

Нами также показано, что гликолатоксидаза может участвовать в адаптивной реакции как Сз так и С4 - растений при изменении условий окружающей среды. Увеличение освещенности приводит к активации изучаемого фермента в растения со всеми типами метаболизма. Максимальный эффект наблюдался для С3 - растения пшеницы, где 72-часовое непрерывное освещение вызывало почти 3-х кратный рост активности ГО. Для С4 - и САМ растений подобные условия вызвали 2-х кратный рост активности. Причем для кукурузы показано, что активация ГО обеспечивается возрастанием ее активности как в клетках обкладки, так и мезофилле. Особый интерес вызывает наличие активности ГО как в зеленых, так и в этиолированных проростках. Эти данные коррелируют с проводившимися ранее исследованиями, где отмечается наличие гликолатного пути в альбиносных тканях, но из-за действия эндогенных ингибиторов оно слабо выражено (Магомедов И. М., 1985) По-видимому, гликолатный путь может играть важную роль в синтезе аминокислот, в частности глицина. Воздействие засоления и пониженных температур на целое растение вызывает существенное изменение активности гликолатоксидазы как у Сз -, так и у С4 - растений. Причем интересно отметить, что динамика изменения активности ГО в большей степени совпадает для Сз -растений и клеток обкладки С4 - растений. Тогда как клетки мезофилла имеют существенные особенности в регуляции активности ГО факторами внешней среды. На основании полученных данных нами предложена гипотетическая схема роли изоформ гликолатоксидазы в адаптивной реакции растений к изменениям условий окружающей среды (рис. 39).

Г00- изоформа ГО из клеток обкладки кукурузы, ГОм - изоформа ГО, локализованная в мезофилле кукурузы + положительное влияние действующего фактора на активность гликолатоксидазы ингибирующее влияние действующего фактора на активность гликолатоксидазы

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Дмитриева, Елена Александровна, Воронеж

1. Акимова Т. В. Динамика холодоустойчивости клеток листа и корня проростков пшеницы и огурца при общем и локальном охлаждении / Т. В. Акимова, Н. И. Балагурова, А. Ф. Титов // Физиология и биохимия культ, растений. 2000. - Т. 32, № 4. - С. 297-301.

2. Алехина Н. Д. Усвоение азота растениями при пониженной температуре / Н. Д. Алехина, А. И. Клюйкова // Физиология растений. 1986. - Т. 33, вып. 2. -С. 372.

3. Алина Н. В. Особенности хлоропластов зерновых культур в условиях хлоридного засоления среды / Н. В. Алина, Н. П. Чернобай // I съезд физиологов растений Узбекистана, Ташкент, 16-18 дек. 1991. : тез. докл. -Ташкент, 1991.-С. 99.

4. Асамов Д. К. Динамика нуклеиновых кислот у прорастающих семян хлопчатника в норме и при засолении / Д. К. Асамов, Б. О. Бенназаров // 1съезд физиологов растений Узбекистана, Ташкент, 16-18 дек. 1991. : тез. докл. Ташкент, 1991.-С. 101.

5. Бекина Р. М. Фотосинтез и фотоокислительные процессы / Р. М. Бекина, В. Е. Гусейнова // Физиология растений. 1986. - Т. 33, № 1. - С. 171-184.

6. Библь Р. Цитологические основы экологии растений / Р. Библь ; под ред. В. Я. Александрова. М.: Мир, 1965. -463 с.

7. Биль К.Я. Феномен кооперативного функционирования в листе САМ- и С4-фотосинтеза / К. Я. Биль, В. Ю. Любимов // Фотосинтетический метаболизм углерода. Свердловск, 1983. - С. 42-57.

8. Веселова Т. В. Стресс у растений / Т. В. Веселова, В. А. Веселовский, Д. С. Чернавский. М.: Изд - во МГУ, 1993. - 144 с.

9. Верхотурова Г. С. Работа цикла Кребса на свету и некоторые механизмы его регуляции / Г. С. Верхотурова, Т. П. Астафурова, Л. И. Кудинова // Вопросы взаимосвязи фотосинтеза и дыхания. Томск, 1988. - С. 19-29.

10. Ю.Гавриленко В. Ф. Большой практикум по физиологии растений / В. Ф. Гавриленко, М. Е. Ладыгина, Л. М. Хандобина. М.: Высшая школа, 1975. -391 с.

11. П.Гамалей Ю.В. Структурно-биохимические типы С^растений / Ю. В. Гамалей, Е. В. Воскресенская // Физиология растений. 1986. - Т. 33, № 4. -С. 802-819.

12. Генкель П.А. Физиология устойчивости растительных организмов / П. А. Генкель // Физиология сельскохозяйственных растений. 1967. - Т. 3. - С. 87265.

13. Влияние кислорода на фотосинтез и фотодыхание растений Юго -Восточных Каракумов / Т. А. Глаголева и др. // Ботанический журнал. -1975.-Т. 60,№7.-С. 927.

14. Голик К. Н. Темновое дыхание растений / К. Н. Голик. Киев : Наук. Думка, 1990.- 137 с.

15. Головко Е. К. Дыхание растений (физиологические аспекты) / Е. К. Головко. СПб.: Наука, 1999. - 204 с.

16. Гродзинский А. М. Краткий справочник по физиологии растений / А. М. Гродзинский, Д. М. Гродзинский. Киев : Наукова думка, 1973. - 273 с.

17. Гудвин Т. Введение в биохимию растений / Т. Гудвин, Э. Т. Мерсер. М. : Наука, 1986.-704 с.

18. Диксон М. Ферменты: в 3-х т. / М. Диксон, Э. Уэбб ; пер. с англ. Л. М. Гонодмана ; под ред. В. К. Антонова и А. Е. Браунштейна. М., 1982. - Т. 3. -С. 809-1118.

19. Дроздов С. Н. Терморезистентность активно вегетирующих растений / С. Н. Дроздов, В. К. Курец, А. Ф. Титов ; под ред. В. Д. Лопатина. Л. : Колос, 1984.- 168 с.

20. Жеребцов Н. А. Биохимия : Учебник / Н. А. Жеребцов, Т. Н. Попова, В. Г. Артюхов. Воронеж : Изд - во Воронеж, ун-та, 2002. - 696 с.

21. Заленский О. В. О метаболических связях между циклом Кальвина и циклом Кребса / О. В. Заленский, Е. К. Зубкова, Н. С. Мамушина // Физиология и биохимия культ, растений. 1985. - Т. 17, № 3. - С. 253-256.

22. Землянухин А. А. Действие видимого света на метаболизм этиолированных растений / А. А. Землянухин, JI. Н. Чеботарев // Тезисы докладов всесоюзной конференции "Свет и растения", Киев, 1975. : тез. докл. Киев, 1975. - С. 80-85.

23. Альтернативный путь метаболизма глиоксилата в растениях / А. А. Землянухин и др. // Физиология растений. 1987. - Т. 34, № 5. - С. 956.

24. Действие света на темновое дыхание альбиносных и зеленых участков листа ячменя / Е. К. Зубкова и др. // Физиология растений. 1988. - Т. 35, № 2. -С. 254-259.

25. Спектральная зависимость синтеза и выделения гликолата клетками хлореллы / Зу Гван Чхол и др. // Физиология растений. 1989. - Т. 36, № 6. -С. 1172-1177.

26. Игамбердиев А. У. Внеглиоксисомальная форма изоцитратлиазы в высших растениях / А. У. Игамбердиев, А. А. Землянухин, И. В. Мещерякова // Физиология растений. 1986. - Т. 33. - С. 852-858.

27. Игамбердиев А. У. Кинетические свойства ИЦЛ и ее видоизменение под действием аминокислот из листьев гороха / А. У. Игамбердиев, А. А. Землянухин // Биохимия. 1987. - Т. 52. - С. 1104-1111.

28. Игамбердиев А. У. Фотодыхание и биохимическая эволюция растений / А. У. Игамбердиев // Успехи совр. биологии. 1988. - Т. 105, вып. 3. - С. 488504.

29. Игамбердиев А. У. Метаболизм гликолата в семядолях и листьях белой акации / А. У. Игамбердиев, А. А. Землянухин, И. В. Мещерякова // Физиология растений. 1988. - Т. 33, вып. 6. - С. 1013.

30. Игамбердиев А.У. Очистка гликолатоксидазы из листьев пшеницы и сахарной свеклы: каталитические свойства и роль в биосинтезе оксалата / А. У. Игамбердиев, А. А. Землянухин, Л. Г. Родионова // Биохимия. 1988. - Т. 53, вып. 10.-С. 1738-1744.

31. Игамбердиев А.У. Микротельца в метаболизме растений / А. У. Игамбердиев. Воронеж : Изд-во Воронеж, ун-та, 1990. - 147 с.

32. Игамбердиев А.У. Роль микротелец в организации метаболических путей растений / А. У. Игамбердиев // Успехи современной биологии. 1990. - Т. 109, вып. 1.-С. 65-69.

33. Игамбердиев А.У. Роль фотодыхательных пероксисом в интеграции метаболизма фотосинтезирующей растительной клетки / А. У. Игамбердиев // Физиология растений. 1992. - Т. 39, вып. 4. - С. 836-843.

34. Игамбердиев А. У. Влияние интермедиатов гликолатного пути на превращение сукцината в листьях кукурузы и пшеницы, инкубированных в темноте / А. У. Игамбердиев, М. И. Родионова // Физиология растений. -1992.-Т. 39, вып. 1.-С. 126-133.

35. Измайлов С.Ф. Азотный обмен в растениях / С. Ф. Измайлов. М., 1986. - С. 32.

36. Калинкина Н. Г. Роль фотодыхания в накоплении свободного пролина в клетках Chlorella при засолении / Н. Г. Калинкина, Т. Г. Наумова // Физиология растений. 1993. - Т. 40, № 3. - С. 577.

37. Калинкина Н. Г. Развитие окислительного стресса в клетках Chlorella stigmatophora и их обесцвечивание при ингибировании гликолатного пути на фоне засоления / Н. Г. Калинкина, Т. Б. Ясюкова // Физиология растений. 2001. - Т. 48, №> 5. - С. 746-752.

38. Биосинтез белка при адаптации озимых злаков в связи с их морозоустойчивостью / Г. С. Карасев и др. ; под ред. С. Н. Дроздова, А. Ф. Титова. Петрозаводск : Ин-т биологии. Кар. науч. центр. РАН. - 1992. - С. 32-35.

39. Карпилов Ю.С. Участие митохондрий в фотодыхании С4-растений / Ю. С. Карпилов, И. J1. Новицкая // Проблемы фотоэнергетики растений. 1974. -Т. 2. - С. 77-79.

40. Карпилов Ю.С. Светозависимое окисление органических кислот хлоропластами кукурузы. / Ю.С. Карпилов, В.Ю. Любимов // Докл. АН СССР. 1977.-Т. 237, №5.-С. 1244-1247.

41. Карпилов Ю. С. Механизм фото дыхания и его особенности у растений различных типов : сб. статей / Ю. С. Карпилов ; под ред. Ю. С. Карпилова, А. К. Романовой. Пущино : АН СССР, НЦБИ, 1978. - 225 с.

42. Касперска-Палач А. Механизм закаливания травянистых растений. Холодостойкость растений / А. Касперска Палач ; под ред. Г. А. Самыгина. -М.: Колос, 1983.- 168 с.

43. Колесников П. А. К вопросу о месте фото дыхания по гликолатному пути и его роли в эффективности фотосинтеза у зеленых растений / П. А. Колесников // Физиология и биохимия культ, растений. 1985. - Т. 17, № 3. - С. 260-268.

44. Колесников П.А. Локализация гликолатоксидазы в клеточных фракциях из листьев водных макрофитов / П. А. Колесников, С. В. Зорэ, А. А. Мутускин // Физиология растений. 1985. - Т. 32, № 2. - С. 282-287.

45. Колесниченко А. В. Характеристика белков низкотемпературного стресса / А. В. Колесниченко, Т. П. Побежимова, В. К. Войников // Физиология растений. 2000. - Т. 47, № 4. - С. 624-630.

46. Колупаев Ю. Б. Действие солевого стресса на активность инвертазы и содержание растворимых углеводов в колеоптилях пшеницы / Ю. Б. Колупаев, С. А. Вишенский, Л. А. Сысоев // Физиология и биохимия культ, растений. 1991. - Т. 23, № 3. - С. 267-274.

47. Коровин А. И. Растения и экстремальные температуры / А. И. Коровин. -Л., 1984.- С. 12-98.

48. Косулина Л. Г. Физиология устойчивости растений к неблагоприятным факторам среды : учебн. пособие / Л. Г. Косулина, Э. К. Луценко, В. А. Аксенова ; отв. ред. А. Т. Мокроносов. Ростов н/Д. : Изд-во Ростов, гос. унта, 1993. - 236 с.

49. Кузьмин А. Н. Участие фотодыхания в поддержании концентрации АТФ in vivo / А. Н. Кузьмин, А. И. Маслов // ДАН СССР. 1980. - Т. 251, № 2. - С. 510-512.

50. Действие и последействие температуры на дыхание интактных растений / В. К. Курец и др. // Физиология растений. 2003. - Т. 50, № 3. - С. 349-353.

51. Кээрберг О.Ф. Количественная характеристика путей превращения углерода при фотосинтезе : автореф. дис. д-ра биол. наук / О. Ф. Кээрберг. М., 1989.-56 с.

52. Лакин Г. Ф. Биометрия / Г. Ф. Лакин. М.: Высшая школа, 1980. - 293 с.

53. Лайск А. X. Кинетика фотосинтеза и фотодыхания Сз растений / А. X. Лайск. - М.: Наука, 1977. - 195 с.

54. Любимов В.Ю. Роль перекиси в фотодыхании С4-растений / В. Ю. Любимов, О. М. Застрижная // Физиология растений. 1982. - Т. 39, вып. 4. - С. 701— 710.

55. Любимов В. Ю. Активация фотофосфорилирования щавелевоуксусной кислотой в листьях С4 растений / В. Ю. Любимов // Физиология растений.- 1984. Т. 31, вып. 4. - С. 728.

56. Любимов В. Ю. Ингибиторный анализ синтеза гликолата в листьях Сз и С4- растений / В. Ю. Любимов // Физиология и биохимия культ, растений. -1985.-Т. 17,№ 1.-С. 62.

57. Магомедов И. М. Некоторые эволюционные аспекты С4 фотосинтеза / И. М. Магомедов // Ботан. Журнал. - 1982. - Т.67, № 8. - С. 1094-1100.

58. Влияние кратковременного снижения ночной температуры на рост и холодостойкость растений огурца / Е. Ф. Марковская и др. // Физиология растений. 2000. - Т. 47, № 4. - С. 511-515.

59. Маслов А.И. Некоторые аспекты взаимодействия фотодыхания и темнового дыхания / А. И. Маслов, А. Н. Кузьмин // Азотное и углеродное питание растений и их связь при фотосинтезе : сб. науч. тр. / Ин-т фотосинтеза. -Пущино, 1987.-С. 58-66.

60. Маслов А. И. Роль света в метаболизации экзогенного глицина листьями шпината / А. И. Маслов, А. Н. Кузьмин, А. К. Романова // Физиология растений.-1991.-Т. 38, вып. 1.-С. 134-141.

61. Метаболизм органических кислот / А. А. Землянухин, Л. А. Землянухин. -Воронеж : Изд во Воронеж, ун-та, 1995. - 152 с.

62. Мокроносов А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза / А.Т. Мокроносов. -М.: Наука, 1981.- 196 с.

63. Мокроносов А.Т. Генотипический и фенотипический факторы в детерминации фотосинтетического метаболизма углерода / А.Т. Мокроносов // Фотосинтетический метаболизм углерода. Свердловск, 1983. - С. 7-23.

64. Мешкова Н. П. Практикум по биохимии / Н. П. Мешкова, С. Е. Северин. -М.: Изд-во МГУ, 1979. 30 с.

65. Назаренко JI. В. Влияние засоления на рост и содержание ионов Na и К у эвглены при разных типах питания / Л. В. Назаренко // Физиология растений. 1984.-Т. 31, вып. 2. - С. 401-403.

66. Назаренко Л. В. Влияние NaCl на активность рибулозо-бифосфаткарбоксилазы клеток эвглены / Л. В. Назаренко // Физиология растений. 1991. - Т. 39, № 4. - С. 748-752.

67. Петровская Баранова Т. П. Механизмы адаптации растений к низкой температуре / Т. П. Петровская — Баранова // Бюл. гл. бот. сада АН СССР. -1981.-Т. 119.-С. 40-44.

68. Ракитин А. В. Действие красного цвета в смешанном светопотоке на продукционный процесс растений / А. В. Ракитин. Томск, 2001. - С. 10-19.

69. Родченко О. П. Механизмы регуляции роста клеток корня при низких температурах / О. П. Родченко, Л. Е. Макарова, Р. С. Бурбанова // Повышение устойчивости растений к низким температурам. Киев, 1982. -С. 120.

70. Изменение темнового дыхания и его отдельных компонентов в процессе зеленения и после действия экстремальной температуры / Т. Д. Романова и др. // Физиология и биохимия культ, растений. 1987. - Т. 19, № 5. - С. 461-467.

71. Селье Г. На уровне целого организма / Г. Селье. М. : Мир, 1972. - 268 с.

72. Семененко В. Е. Фотосинтез и продукционный процесс / В. Е. Семененко. -М.: Наука, 1988.- 126 с.

73. Семихатова О. А. Энергетика дыхания растений в норме и при экологическом стрессе. XLVIII тимирязевские чтения / О. А. Семихатова. -М., 1990.-С. 28-47.

74. Семихатова О. А. Дыхательная цена произрастания растений в условиях засоления / О. А. Семихатова, Т. И. Иванова, О. С. Юдина // Физиология растений. 1993. - Т. 40, № 2. - С. 558.

75. Степанова А. М. Влияние света на обмен органических кислот в листьях ревеня и табака / А. М. Степанова, А. А. Баранова // Биохимия. 1972. - Т. 37, №3.-С. 520-526.

76. Строгонов Б. П. Структура и функции клеток растений при засолении / Б. П. Строганов. М: Наука, 1970. - 315 с.

77. Титов А.Ф. О роли специфических и неспецифических реакций в процессах термоадаптации активно вегетирующих растений / А. Ф. Титов, С. Н. Дроздов, С. П. Критенко // Физиология растений. 1981. - Т. 20, вып. 3. - С. 544.

78. Тищенко Н.Н. Регуляция NH4+ интенсивности фотодыхания у Zea mays / Н. Н. Тищенко, Н.П. Белоног // Физиология и биохимия культ, растений. -1985. Т. 17, № 3. - С. 283-289.

79. Удовенко Г. В. Солеустойчивость культурных растений / Г. В. Удовенко ; под ред. Д. Д. Брежнева. JI.: Колос, 1977. - 255 с.

80. Удовенко Г. В. Механизмы адаптации растений к засолению почвы: физиологические и генетические аспекты солеустойчивости / Г. В. Удовенко // Проблемы солеустойчивости растений. Ташкент, 1989. - С. 113-141.

81. Филлипова JI. А. О функционировании основных этапов темнового дыхания во время фотосинтеза / JI. А. Филлипова, Н. С. Мамушина, О. В. Заленский // Ботанич. Журнал. 1982. - Т. 67, № 9. - С. 1169-1178.

82. Филлипова JI. А. Развитие представлений о взаимосвязи фотосинтеза и дыхания / JI. А. Филлипова, Н. С. Мамушина, Е. К. Зубкова // Эколого-физиологические исследования фотосинтеза и дыхания растений. JL, 1989. -С. 168-183.

83. Хорватх Э. Оценка холодостойкости кукурузы с помощью физиологических методов / Э. Хорватх, Э. Дьетваи // Физиология и биохимия культ, раст. -2001.-Т. 33, №5.-С. 377-380.

84. Хочачка П. Биохимическая адаптация / П. Хочачка, Дж. Сомеро ; пер. с англ. Н. Н. Алипова; под ред. И. Б. Збарского. М.: Мир, 1988. - 567 с.

85. Чиркова Т. В. Физиологические основы устойчивости растений / Т. В. Чиркова. СПб.: Изд-во СпбГУ, 2002. - 241 с.

86. Шахов А. А. Фотоэнергетика растений и урожай / А. А. Шахов. М.: Наука, 1993.-416 с.

87. Шевякова Н. И. Метаболизм и физиологическая роль свободного пролина в растениях при водном и солевом стрессе / Н. И. Шевякова // Физиология растений. 1983. - Т. 30, № 4. - С. 768.

88. Шумилова А. А. Влияние света на функционирование цикла Кребса в листьях кукурузы / А. А. Шумилова, А. А. Федосенко, А. М. Степанова // Биол. Науки. 1976. - № 9. - С. 87.

89. Эдварде Дж. Фотосинтез С3- и С4-растений : механизмы и регуляция / Дж. Эдварде, Д. Уокер ; пер. с англ. М. И. Верховцевой ; под ред. А. Т. Мокроносова. М.: Мир, 1986. - 590 с.

90. Обесцвечивание клеток Chlorella stigmatophora при ингибировании гликолатного пути на фоне засоления / Т. Б. Ясюкова и др. // Физиология растений. 1999. - Т. 46, вып.1. - С. 124-131.

91. Amthor J. S. Respiration and crop productivity / J. S. Amthor. N. Y. : Springer, 1989.-215 p.

92. Atanasiu L. Relationship between proline content and resistance to low temperature in several winter wheat cultivars / L. Atanasiu, E. Petcu // Astr. 9th Congr. Fed. Eur. Soc. Plant Physiol., Brno, 3-8 July 1994. Brno, 1994. - P. 258.

93. Backer A.L. Purification and some properties of alternate form of glycolate oxydase / A. L. Backer, N. E. Tolbert // Biochim. Biophys. Acta. 1967. - Vol. 131,N 2. —P. 179-187.

94. Localization of nitric oxide synthase in plant peroxisomes / J. B. Barosso et al. //J. of Biological Chemistry. - 1999. - Vol. 274. - P. 36729-36733.

95. Bergman A. Effects of pH, NADH, succinate and malate on the oxidation of glycine in spinach leaf mitichondria / A. Bergman, I. Ericson // Physiol. Plant. -1983. Vol. 59, № 3. - P. 421-427.

96. Biehler К. Evidence for the contribution of the Mehler peroxidase reaction in dissipating excess electrons in drought - stressed wheat / K. Biehler, H. Fock // Plant Physiology. - 1996. - Vol. 112. - P. 265-272.

97. Solute accumulation in tobacco cells adapted to NaCl / M. L. Binzel et al. // Plant Physiol. 1987. - Vol. 84. - P. 1408-1415.

98. Bird I.F. Effects of temperature on photosynthesis by maize and wheat /1. F. Bird, M. J. Cornelius, A. S. Keys // J. Exp. Bot. 1977. -Vol. 28. - P. 519-524.

99. Black С. C. Photosynthetic carbon fixation in relation to net C02 uptake / C. C. Black // Ann. Rev. Plant Physiol. 1973. - Vol. 24. - P. 253-286.

100. Blackwell R. D. Photorespiratory mutants of the mitochondrial conversion of glycine to serine // R. D. Blackwell, A. J. S. Murray, P. J. Lea // Plant Physiol. -1990.-Vol. 94.-P. 1316-1322

101. Bohnert H. J. Strategies for engineering water stress tolerance in plants / H. J. Bohnert, R. G. Jensen // Trends in Biotechnology. - 1996. - Vol. 14. - P. 89-97.

102. Bolwell G. P. Mechanisms for the generation of reactive oxygen species in plant defence a broad perpective / G. P. Bolwell, P. Wojtaszek // Physiological and Molecular Plant Pathology. - 1997.-Vol. 51.-P. 341-366.

103. Bowes G. Phosphoglycolate production catalyzed by ribulose diphosphate carboxylase/ G. Bowes, W. L. Ogren, R. H. Hageman // Biochem Biophys. Res. Commun. 1971. -Vol. 45. - P. 716-722.

104. Brown W. V. Variations in anatomy, associations and origins of Kranz tissue / W. V. Brown // Amer. J. Bot. 1975. - Vol. 62. - P. 395-402.

105. Canvin D. T. Photorespiration and C02 concentrating mechanisms / D. T. Canvin // Plant Physiol. - 1990. - Vol. 98. - P. 253-273.

106. Chang С. C. Biogenesis of oxalate in plant tissue 1С.- C. Chang, H. Beevers // Plant Physiology. - 1968. - Vol. 43. - P. 1821-1828.

107. Cheesman J. M. Mechanisms of salinity tolerance in plants / J. M. Cheesman // Plant Physiol. 1988. - Vol. 87, № 3. - P. 547-550.

108. Chollet R. Regulation of photorespiration in C3 and C4 species / R. Chollet, W. L. Ogren // Bot. Rev. 1975. - Vol. 41. - P. 137-179.

109. Clarcson D. T. The mineral nutrition of higher plants / D. T. Clarcson, J. B. Hanson // Ann. Rev. Plant Physiol. 1980. - Vol. 31. - P. 239.

110. Close T. J. Dehydrins: a commonality in the responce of plants to dehydration and low temperature / T. J. Close // Physiol. Plant. 1997. - Vol. 100. - P. 291296.

111. Crosatti C. Accumulation and characterization of 75kD protein induced by low temperature in barley / C. Crosatti, F. Rizza, L. Cattivelli // Plant Sci. 1994. -Vol. 97. - P. 39-46.

112. Datta K. S. Effect of chloride and sulphate types of salinity on characteristics of chlorophyll content, photosynthesis and respiration of chick pea / K. S. Datta, D. D. Sharma // Physiol. Plant. 1990. - Vol. 32, № 5. - P. 391-395.

113. Davies D. D. Synthesis of oxalic acid by enzymes from lettuce leveas / D. D. Davies, H. Asker // Plant Physiol. 1983. - Vol. 72. - P. 134-138.

114. De Silva D. L. R. Where does all calcium go? Evidence of an important regulatory role for trichomes in two calcicoles / D. L. R. De Silva, A. M. Hetherington, T. A. Mansfield // Plant, Cell and Environment. 1996. - Vol. 19. -P. 880-886.

115. Activeted oxygen mediated metabolic functions of leaf peroxisomes / L. A. A Del Rio et al. // Physiol. Plant. - 1998. - Vol. 104. - P. 673-680.

116. The occurence of trhalose in the leaves of the dessication tolerant angiosperm Myrothamnys flabellifolius / P. V. Drennan et al. // J. of Plant Physiology. - 1993. - Vol. 142. - P. 493-496.

117. Ehleringer Y. Quntum yields for С02 untake in C3 and C4 plants. Dependence on temperature, C02 and 02 concentration / Y. Ehleringer, D. Bjorkman // Plant Physiol. 1977. - Vol. 56. - P. 86-90.

118. Emes MJ. Purification and properties of glycolate oxydase from lemna minor1. / M. J. Emes, К. H. Erismann // Int. J. Biochem. 1984. - Vol. 16, N 2. - P. 1373-1378.

119. Fendrich G. Studies of glycolate oxydase from pea leaves. Determination of stereospecificity and mode of inhibition by a hydroxybutynoate / Fendrich G., S. Ghisla // Biochim. Biophys. Acta. - 1982. - Vol. 702. - P. 242-248.

120. Flowers T. J. The effect of chloride on enzyme activities from four species of Chenopodiaceae / T. J. Flowers // Phytochemistry. 1972. - Vol. 11, № 6. - P. 1881-1887.

121. Foyer С. H. Oxygen processing in photosynthesis, regulation and signalling / С. H. Foyer, G. Noctor // New Phytologist. 2000. - Vol. 146. - P. 359-388.

122. Effect of salinity on grain and quality, vegetative growth and germination of semi dwarf and durum wheat / L. E. Francois et al. // Agron. J. - 1986. - Vol. 78.-P. 1053-1058.

123. Frederick S.E. The occurence of glycolate dehydrogenase and glycolate oxydase in green plants / S. E. Frederick, P. J. Gruber, N. E. Tolbert // Plant Physiol. 1973. - Vol. 52, N 4. - P. 318-323.

124. Frigerio N. A. Preparation and some properties of cristalline glycollic acid oxidase of spinach / N. A. Frigerio, H. A. Harbury // J. Biol. Chem. 1958. - Vol. 231.-P. 135-157.

125. Gardestrom P. Influence of photorespiration on ATP/ADP ratios in the chloroplasts, mitochondria and cytosol, studied by rapid fractionation of barley protoplasts / P. Gardestrom, B. Wigge // Plant Physiolgy. 1988. - Vol. 88. - P. 69-76.

126. Regulation of sucrose and starch metabolism in potato tubers in responce to short term water deficit / P. Geigenberger et al. // Planta. - 1997. - Vol. 201. -P. 502-518.

127. Givan С. V. The enzymic reduction of glyoxylate and hydroxypyruvate in leaves of higher plants / С. V. Givan, L. A.Kleczkowski // Plant Physiology. -1992.-Vol. 100.-P. 552-556.

128. Goyal A. Association of glycolate oxydation with photosynthetic electron transport in plant and algal chloroplasts / Goyal A., Tolbert N. E. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. - Vol. 93. - P. 3319-3324.

129. Graham D. Effects of light on "dark" respiration / D. Graham // The biochemistry of plants: A comprehensive treatise. N. Y., 1980. - Vol. 2. - P. 525-579.

130. Greenway H. Mechanism of salt tolerance in nongalophytes / H. Greenway, R. Munus // Ann. Rev. Plant Physiol. 1980. - Vol. 31. - P. 149-190.

131. Endogenous gibberrellin A. leveis control thermoperiodic stem elongation in Pisum sativum / G. Grindal et al.] // Physiol. Plantarum. 1998. - Vol. 102. - P. 523-531.

132. Gross W. Subcellular distribution of enzymes of glycolate metabolism in the alga Cyanidium caldarium./ W. Gross, H. Beevers // Plant Physiol. 1989. - Vol. 90. - P. 799-805.

133. Gutierrez M. Biochemical and cytological relationships in C4 plants / M. Gutierrez, V. E. Gracen, G. E. Edwards // Planta. 1974. - Vol. 119. - P. 279300.

134. Guy C. L. Sucrosephosphate Synthase and Sucrose Acculation at Low Temperature / C. L. Guy, J. L. Huber, S. C. Huber // Plant Physiol. 1992. - Vol. 100,- P. 502-508.

135. Hall N. R. Molecular weights of glycolate oxydase from C3 and C4 plants determined during early stages of purification / N. R. Hall, R. Reggiani, P. J. Lea //Phytochemistry. -1985. -Vol. 24.-P. 1645-1648.

136. Halliwell B. Free radicals, antioxidants and human disease: curiosity, cause or consequence? / B. Halliwell // Lancet. 1994. - Vol. 344. - P. 721-724.

137. Hanson A. D. One carbon metabolism in higher plants / A. D. Hanson, S. Roje // Ann. Rev. of Plant Physiol, and Plant Molecular Biology. - 2001. - Vol. 52.-P. 119-137.

138. Hare P. D. Metabolic implications of stress induced proline accumulation during stress / P. D. Hare, W. A. Cress // Plant, Cell and Environment. - 1998. -Vol. 21.-P. 535-553.

139. Harris J. I. Glyceraldehyde 3 phosphatedehydrogenase / J. I. Harris // The Enzymes / J. I. Harris, M. Waters. - N. Y., 1976. - Vol. 13. - P. 1-8.

140. Hatch M. D. Subdivision of C4 pathway species based on differing C4 acid decarboxylating systems and ultrastructural features / M. D. Hatch, T. Kagawa, S. Craig // Aust. J. Plant Physiol. - 1975. -Vol. 2. - P. 111-128.

141. Haupt W. Light mediated movement of chloroplasts / W. Haupt // Ann. Rev. Physiol. - 1982. - Vol. 33. - P. 205.

142. Control of photosynthesis in barley mutants with reduced activities of glutamine synthetase and glythamate synthase / R. E. Hausler et al. // Planta. -1996.-Vol. 200.-P. 388-396.

143. Havir E.A. Evidence for the presenct in tobacco leaves of multiple ensyme for the oxidation of glycolate and glyoxylate / E. A. Havir // Plant Physiol. 1983. -Vol. 71, N4.-P. 874-878.

144. Havir E.A. Inactivation of serine: glyoxylate and glutamate: glyoxylate aminotransferases from tobacco leaves by glyoxylate in the presence of ammonium ion / E. A. Havir // Plant Physiology. 1986. - Vol. 80. - P. 473-478.

145. Photorespiration is essential for the protection of the photosynthetic apparatus of C3 plants against photoinactivation under sunlight / U. Heber et al. // Botanica Acta.-1996.-Vol. 109.-P. 307-315.

146. Holaday A. S., Bowes G. C4 acid metabolism and dark C02 fixation in a submersed aqatic macrophyte (Hydrilla verticillata) / A. S. Holaday, G. Bowes // Plant Physiol. 1980. - Vol. 65. - P. 331-335.

147. Huang A. H. C. Metabolism in plant peroxisomes / A. H. C. Huang // Rec. Adv. Phytochem. 1982. - Vol. 16. - P. 85-123.

148. Huber S. C. Edwards G. E. Regulation of oxaloacetate, aspartate and malate formation in mesophyll protoplast extracts of several C4 plants / S. C. Huber, G. E. Edwards // Plant Physiol. 1975. - Vol. 56. - P. 324-331.

149. Cloning, Characterization and Expression of cDNA Encoding a 50 kD Protein Specifically induced by Cold Acclimation in Wheat / M. Houde et al. // Plant Physiol. 1992. - Vol. 99. - P. 1381-1387.

150. Igamberdiev A. U. Glyoxylate metabolism during photorespiration: a cytosol connection / A. U. Igamberdiev, L. A. Kleczkowski // Handbook of Photosynthesis / M. Pessarakli, M. Dekker. N. Y., 1997. - Vol. 1. - P. 269-279.

151. Igamberdiev A. U. Origins and metabolism of formate in higher plants / A. U. Igamberdiev, N. V. Bykova, L. A. Kleczkowski // Plant Physiol, and Biochem. -1999.-Vol. 37.-P. 503-513.

152. Igamberdiev A. U. Capacity for NADPH/NADP turnover in the cytosol of barley seed endosperm. The role of NADPH dependent hydroxypyruvate reductase / A. U. Igamberdiev, L. A. Kleczkowski // Plant Physiol, and Biochem. - 2000. - Vol. 38. - P. 747-753.

153. The role of photorespiration in redox and energy balance of photosynthetic plant cells, a study with a barley mutant deficient in glycine decarboxylase / A. U. Igamberdiev et al. // Physiol. Plant. 2001. - Vol. 111. - P. 427-438.

154. Igamberdiev A. U. The role of peroxysomes in the integration of metabolism and evolution of land plants / A. U. Igamberdiev, P. J. Lea // Phytochemistry. -2002.-Vol. 60.-P. 651-674.

155. Ivanov В. N. Parcipation of photosynthetic electron transport in production and scavenging of reactine oxygen species / B. N. Ivanov, S. Khorobrykh // Antioxid. Redox. Sygnal. 2003. - Vol. 5, № 1. - P. 43-53.

156. Iwamoto K. Purification and characterization of glycolate oxydase from brown alga Spatoglossum paciflcum / K. Iwamoto, T. Ikawa // Research in Photosynthesis. 1992. - Vol. 3. - P. 919-922.

157. Jackson W. A. Photorespiration / W. A. Jackson, R. J. Volk // Ann. Rev. Plant Physiol. 1970. - Vol. 21. - P. 385-432.

158. Jones C. A. Production of isoprene by leaf tissue / C. A. Jones, R. A. Rasmussen // Plant Physiol. 1975. - Vol. 55. - P. 982-987.

159. Jones J. M. Multiple distinct targetting signals in integral peroxisomal membrane proteins / J. M. Jones, J. C. Morrell, S. J. Gould // J. of Cell Biology. -2001.-Vol. 153. P. 1141-1149.

160. Kagawa T. Regulation of C4 photosynthesis: characterization of a protein factor mediating the activation and in activation of NADF malate dehydrogenase / T. Kagawa, M. D. Hatch // Arch. Biochem. Biophys. - 1977. - Vol. 184. - P. 290-297.

161. Kanai R. Separation of mesophyll protoplasts and bundle sheath cells of maise leaves for photosynthetic studies / R. Kanai, G. E. Edwards // Plant Physiol. -1973.-Vol. 51.-P. 1133-1137.

162. Salt stress-induced alkalization in Nitellopsis obtusa cells / Katsuhara M. et al. // Plant Physiol. 1989. - Vol. 90, № 3. - P. 1102-1107.

163. Keller F. Carbohydrate metabolism in drought stressed leaves of pigeopea (Cajanus cajan) / F. Keller, M. M. Ludlow // J. of Exp. Botany. - 1993. - Vol. 44. -P. 1351-1359.

164. Kennedy R. A. Photorespiration in C3 and C4 plant tissue cultures. Significance of Kranz anatomy to low photorespiration in C4 plants / R. A. Kennedy // Plant Physiol. 1976. - Vol. 58. - P. 573-575.

165. Kerr M.W. Purification and properties of glycolate oxydase from Pisum sativum leaves / M. W. Kerr, D. Groves // Phytochemistry. 1975. - Vol. 14, N 2. - P. 359-362.

166. Khorobrykh S. Photosystem I is not sololy responcieble for oxygen reduction in isolated thylakoides / S. Khorobrykh, M. Mubarakshina, B. N. Ivanov // Biochem. Biophys. Acta. 2004. - Vol. 1657, № 2-3. - P. 164-167.

167. Kleczkowski L. A. Identification of hydroxypyruvate and glyoxylate reductases in maise leaves / L. A. Kleczkowski, G. E. Edwards // Plant Physiology. 1989. - Vol. 91. - P. 278-286.

168. Kohler S. A. Molecular cloning of mouse glycolate oxidase. Hight evolutionary concervation and presence of an iron responsive element - like sequence in the mRNA / S. A. Kohler, E. Menotti, L. C.Kuhn // J. Biol. Chem. -1999.-Vol. 7.-P. 125-129.

169. Kowallik W. Blue light effects on respiration / W. Kowallik // Ann. Rev. Plant Physiol. 1982.-Vol. 33.-P. 51-72.

170. Kozaki A. Photorespiration protects C3 plants from photooxidation / A. Kozaki, G. Takeba // Nature. - 1996. - Vol. 384. - P. 557-560.

171. Photorespiratory energy dissipation in leaves and chloroplasts / G. Y. Krause et al. // Engl. Biochemical Society. 1978. - P. 299-310.

172. Cold-Shock Response of Protein, DNA and Phospholipid Synthesis in Bacillus subtilis / D. Kunclova et al. // Folia Microbiol. 1995. - Vol. 40. - P. 627-632.

173. Labirte G. Pyrroline-5-carboxilate reductase in Chlorella autitrophica and relation to osmoregulation / G. Labirte, J. A. Hellebust // Plant Physiol. 1989. -Vol. 8.-P. 1155-1163.

174. Lambers H. Cyanide resistant respiration. A non - phosphorylation electron transport pathway acting as energy overflow / H. Lambers // Physiol. Plant. -1986. - Vol. 55, № 4. - P. 478-484.

175. Lamport D. T. A. The isolation and partial characterization of hydroxyproline-rich glycopeptides obtaind by ensymatic degradation of primary cell wall / D. T. A. Lamport // Biochemistry. 1968. -Vol. 8. - P. 1155-1163.

176. The regulation and control of photorespiration / R. C. Leegoon et al. // J. of Exp. Botany. 1995. - Vol. 46. - P. 1397-1414.

177. Lerner H. R. Adaptation to salinity at the plant cell level / H. R. Lerner // Plant and Soil. 1985. - Vol. 89. - P. 3-14.

178. Lindquist Y. Structure of glycolate oxidase from spinach / Y. Lindquist, С. I. Branden // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. - Vol. 82. - P. 6855-6859.

179. Lorimer G.H. Plant photorespiration an inevitable conseguence of the existence of an oxygen atmosphere / G. H. Lorimer, T. J. Andrews // Nature. -1973. Vol. 243. - P. 359- 360.

180. Lowry О. H. Protein measurement with the Folin phenol reagent / О. H. Lowry // Arch. Biochem. Biophys. 1951. - Vol. 193. - P. 269-280.

181. Ludwig-Muller J. Indole-3-butyric acid in plant growth and development / J. Ludwig-Muller // Plant Growth Regulaton. 2000. - Vol. 32. - P. 219-230.

182. Lyons J. M. Chilling injury in plants / J. M. Lyons // Ann. Rev. Plant Physiol. -1973.-Vol. 24.- P. 445.

183. McFadden B. A. Isocitrate lyase / B. A. McFadden // Methods Enzymol. -1969.-Vol. 13.-P. 163-170.

184. McNew J. A. The targetting and assembly of peroxisomal proteins, some old rules do not apply / J. A. McNew, J. M. Goodman // Trends in Biochemical Sciences. 1996.-Vol. 21.-P. 54-58.

185. Mitev T. Z. Effect of salinity on the syntesis of Ribulose-1.5-bisfosfate carboxylase/oxygenase in barley leaves / T. Z. Mitev, N. Z. Zhelev, L. P. Popova // J. Plant Physiol. 1992. - Vol. 140, № 1. - P. 92-96.

186. Monteith J. L. Reassessment of maximum growth rates for C3 and C4 crops /J. L. Monteith // Expl. Agric. 1978. - Vol. 14. - P. 1-5.

187. Moyse A. La respiration des vegetaux a l'obscutite : Les effects de lalumiere sur cette respiration // Biol. Soc. Bot. France. 1982. - Vol. 129, № 2. - P. 53-72.

188. Munns R. Na+, K+ and СГ in xillem sap flowing to shoots of NaCl treated barley / R. Munns, J. Passioura // J. Exp. Bot. 1986. - Vol. 168, № 3. - P. 10321042.

189. Ni W. Purification and characterization of cytosolic isicitrate lyase dehydrogenase from Pisum sativum / W. Ni, E. F. Robertson, H. C. Reeves // Plant Physiol. 1987. - Vol.83. - P. 785-788.

190. Purification and characterization of glycolate oxidase from pumpkin cotyledons / M. Nishimura et al. // Arch. Biochem. Biophys. 1983. - Vol. 222. -P. 397-402.

191. Ion Homeostasis in NaCl stress Environments / X. Niu et al. // Plant Physiol. 1995. - Vol. 109. - P. 735-742.

192. Photorespiratory glycine enhances glutathione accumulation in both the chloroplastic and cytosolic compartments / G. Noctor et al. // J. of Exp. Botany. -1999.-Vol. 50.-P. 1157-1167.

193. Noctor G. Peroxide processing in photosynthesis, antioxidant coupling and redox signalling / G. Noctor, S. Veljovic-Jovanovic, С. H. Foyer // Philosophical Transactions of the Royal Society. London, 2000. - P. 1465-1475.

194. Chilling, oxidative stress and antioxidant responses in Arabidopsis thaliana callus / D. O' Kane et al. // Planta. 1996. - Vol. 198, № 3. - P. 371-377.

195. Omran R. G. Nicotinamide adenine dinucleotide phosphate specific isocitrate dehydrogenase from a higher plant. Isolation and characterization / R. G. Omran, D. T. Dennis // Plant Physiology. - 1971. - Vol. 47. - P. 43-47.

196. Osmond C.B. Photorespiration during C4 photosynthesis / С. B. Osmond, B. Harris // Biochem. Biophys. Acta. 1971. - Vol. 234. - P. 270-272.

197. Pace C. Oxidation-regulation properties of glycolate oxydase. Flavins and flavoproteins / С. Pace, M. Stankovich // Proc. 8th Int. Symp., Berlin, July 1984. -Berlin, 1984. P. 565-568.

198. Enhanced desiccation survival by engeneering osmolyte biosynthesis in plants / E. T. Palva et al. // Planta. 1996. - P. 171-175.

199. Peterson R. B. Regulation of glycine decarboxylase and L-serine hydroxymethyltransferase activities by glyoxylate in tobacco leaf mitochondrial preparations / R. B. Peterson // Plant Physiology. 1982. - Vol. 70. - P. 61-66.

200. Prakash L. Interactive effect of NaCI salinity and putrescine on shoot growth and activity of IAA oxidase, invertase and amilase in rice / L. Prakash, G. Pratapasenan // Biochem. and Physiol. Planz. 1989. - Vol. 184, № 132. - P. 6978.

201. Ramagopal S. Protein synthesis in maize callus exposed to NaCI and mannitol / S. Ramagopal // Plant and Cell Rept. 1986. - Vol. 5. - P. 430^134.

202. Rathnam С. M. C4 acid decarboxylation and C02 donation to photosynthesis in bundle sheath strands and chloroplasts from species representing three groups of C4 plants / С. M. Rathnam, G. E. Edwards // Arch. Biochem. Biophys. 1977. -Vol. 182.-P.1-13.

203. Rathnam С. M. C02 donation by malate and aspartate reduces photorespiration in Panicum milioides, a C3/C4 intermediate species / С. M. Rathnam, R. Chollet // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1978. - Vol. 85. - P. 801-808.

204. Recalcati S. Peroxisomal targeting of mammalian hydroxyacid oxidase 1 requires the С terminal tripeptide SKI / S. Recalcati, E. Menotti, L. Kuhn // J. Cell Sci.-2001.-Vol. 114.-P. 1625-1634.

205. Richmond T. A. A defect in В oxidation causes abnormal inflorescence development in Arabidopsis / T. A. Richmond, A. B. Bleeker // The Plant Cell. -1999.-Vol. 11.-P. 1911-1923.

206. Robinson S. P. Transport of glycerate across the envelope membrane of isolated spinach chloroplasts / S. P. Robinson // Plant Physiology. 1982. - Vol. 70.-P. 1032-1038.

207. Roch-Bejerano N. Glycolate oxydase content of microbodies as affected by nitrate / N. Roch-Bejerano, S. H. Lius // Plant Physiol. 1973. - Vol. 55, N 2. - P. 270-272.

208. Signal. Interrelationship between salt and light stress on primary processes of photosynthesis / Sanjay K. et al. // J. Plant Physiol. 1992. - Vol. 138, № 1. - P. 46-51.

209. Saradadevi K. Interaction between respiration, photosynthesis and photoinhibition in mesophyll protoplasts of pea (Pisum sativum) / K. Saradadevi, K. Padmasree, A. S. Raghavendra // Research in photosynthesis. 1992. - Vol. 91, № 1. - P. 34-38.

210. Savitch L. V. Feedback-limited Photosynthesis and Regulation of Sucrose-Starch Accumulation during Cold Acclimation and Low Temperature Stress in a Spring and Winter Wheat / L. V. Savitch, G. R. Gray, N. P. A. Huner // Planta. -1997.-V. 201.-P. 18-26.

211. Schafer L. Photoinactivation and protection of glycolate oxidase in vitro and in leaves / L. Schafer, J. Feierabend // Zeitschrift ftir Naturforschung. 2000. - C. 55.-P. 361-372.

212. Shitole M. G., Joshi G. V. Effect of sodium chloride on the balance between Сз and C4 carbon fixation pathways and growth / M. G. Shitole, G. V. Joshi // Photosynthetica. 1984. - Vol. 18, № 3. - P. 377-384.

213. Siedow J. N. The active site of the cyanide resistant oxidase from plant mitochondria contains a binuclear iron center / J. N. Siedow, A. L. Umbrach, A. L. Moore // FEBS Lett. - 1995. - Vol. 362, № 1. - P. 10-14.

214. Singh P. Effect of photosynthesis on dark mitochondria respiration in green cells / P. Singh, M. S. Naik // FEBS Lett. 1984. - Vol. 165, № 2. - P. 145-150.

215. Soldatini G.F. Changes of glycolate oxydase activity with leaf age in Zea mays L. / G. F. Soldatini // Z. Pflanzenphysiol. 1979. - Vol. 94, N 5. - P. 267-271.

216. Ting I. P Induction of acid metabolism in Portulacaria afra /1. P. Ting, Z. Hanscom // Plant Physiol. 1977. - Vol. 59. - P. 511-514.

217. Tolbert N. E. Products of the oxidation of glycollic acid and L lactat acid by enzymes from tobacco leaves / N. E. Tolbert, С. O. Clagget, R. H. Burris // J. Biol. Chem. - 1949. - Vol. 181. - P. 905-914.

218. Tolbert N. E. Glycolate biosynthesis. Current topics in cellular regulation / N. E. Tolbert. N. Y., 1973. - P. 21-49.

219. Tolbert N.E. Photorespiration / N. E. Tolbert // The Biochemistry of plants. A Comprehensive Treatise / P. K. Stumpf. N.Y., 1980. - Vol. 2. - P. 487-523.

220. Tolbert N.E. The oxydative photosynthesic carbon cycle and peroxysomal glycolate metabolism / N. E. Tolbert // Nitrogen fixation and C02 metabolism / P. W. Ludden, J. E. Burris. Elsevier, 1985. - P. 333-341.

221. Salt induced TAS-24 protein is highly phosphorylated in vivo / S. Torres-Schumann et al. // J. Plant Physiol.-1991.-Vol. 139, № l.-P. 115-118.

222. Cloning and sequencing of cDNA for glycolate oxidase from cotyledons and northern blot analysis / R. Tsugeki et al. // Plant Cell Physiol. 1993. - Vol. 34. -P. 51-58.

223. Yeo A. R. Molecular biology of salt tolerance in the context of whole plant physiology / A. R. Yeo // J. of Exp. Bot. - 1998. - Vol. 49, № 32. - P. 915-929.

224. Yokota A. Glycolate dehydrogenase and glycolate metabolism / A. Yokota // Phylogenetic Changes in Peroxisomes of Algae. Phylogeny of Plant Peroxisomes / H. Stabenau. Oldenburg, 1992. - P. 92-105.

225. Stress proteins on the yeast cell surface determine resisstance to osmotin, a plant antifungal protein / Yun D. Y. et al. // Plant Biology. - 1997. - Vol. 94. -P. 7082-7087.

226. Stadies on isocytrate lyase isolated from Lupinus cotyledons / P. Vanni P. et al.//Can. J. Biochem. 1979. - Vol. 57.-P. 1131-1137.

227. Wagner A. M. The alternative respiration pathway in plants: role and regulation / A. M. Wagner, K. Krab // Physiol. Plant. 1995. -Vol. 368, № 2. - P. 339-342.

228. Wagner A. M. Alternative oxidase: its possible role / A. M. Wagner, A. Moore //BioscienceReports.-1997.-Vol. 17.-P. 319-333.

229. Walker G. H. Photosynthetic electron transport in isolated maize bundle sheath cells / G.H. Walker, S. Izawa // Plant Physiol. 1979. - Vol. 63. - P. 133-138.

230. Wang J. Overexpression of an Arabidopsis peroxisomal ascorbate peroxidase gene in tobacco increases protection against oxidative stress / J. Wang, H. Zhang, R. D. Allen // Plant and Cell Physiol. 1999. - Vol. 40. - P. 725-732.

231. Wang W. J. The recognition of glycolate oxidase apoprotein with flavin analogs in higher plants / W. J. Wang // Acta Biochim. Biophys. 2004. - Vol. 36, № 4. - P. 290-296.

232. Weretilnic E. Betaine aldehyde dehydrogenase: a salt inducible enzyme in spinach and sugar beet / E. Weretilnic, K. F. Cue, A. D. Hanson // Ibid. (Suppl.). -1989. - Vol. 84, № 4. - Abstr. № 356.

233. Whittington J. Salinity induced malate accumulation in Chara / J. Whittington, F. A. Smith // J. Exp. Bot. - 1992. - Vol. 43, № 25. - P. 837-842.

234. Williams E. Identification and expression of a cDNA for human glycolate oxidase / E. Williams, D. Cregeen, G. Rumsby // Biochim. Biophys. Acta. 2000. -Vol. 78.-P. 1124-1129.

235. Wingler A. Photorespiratory metabolism of glyoxylate and formate in glycine-accumulating mutants of barley and Amaranthus edulis / A. Wingler, P. J. Lea, R. C. Leegood // Planta. 1999. - Vol. 207. - P. 518-526.

236. Regulation of leaf senescence by cytokinin, sugars and light-effects on NADH-dependent hydroxypyruvate reductase / A. Wingler et al. // Plant Physiol. -1999.-Vol. 116.-P. 518-526.

237. Wingler A. Photorespiration: metabolic pathways and their role in stress protection / A. Wingler // Philosophical Transactions of the Rojal Society / A. Wingler. London, 2000. - Vol. 3. - P. 517-529.

238. Intracellular localization of enzymes of carbon metabolism in Mesembryanthemum crystallinum exhibiting C3 photosynthetic characteristics or performing crassulacean acid metabolism/ K. Winter et al. // Plant Physiol. -1982.-Vol. 69.-P. 300-307.

239. Germin is a manganese containing homohexamer with oxalate oxidase and superoxide dismutase activities / E. J. Woo et al. // Nature Structural Biology. -2000. Vol. 7. - P. 1036-1040.

240. Evidence for light dependet recycling of respired carbon dioxide by the cotto fruit / S. D. Wullschleger et al. // Plant Physiol. - 1991. - Vol. 97, № 2. - P. 574-579.

241. Zelitch I. The photooxidation of glyoxilate by envelop free spinach chloroplasts and its relation to photorespiration /1. Zelitch // Arch. Biochem. Biophys. 1972. - Vol. 150. - P. 698-707.

242. Zelitch I. Synthesis of glycolate from pyruvate via isocitrate lyase by tobacco leaves in light /1. Zelitch // Plant Physiol. 1988. - Vol. 86. - P. 463^*68.

243. Zelitch I. Control of plant productivity by regulation of photorespiration /1. Zelitch // Bioscience. 1992. - Vol. 42. - P. 510-516.