Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему

Повышение продуктивности агрофитоценозов яровой пшеницы (Triticum aestivum L.) и гороха (Pisum sativum L.) в условиях Центрально-Черноземного региона

ВАК РФ 06.01.09, Растениеводство

Содержание диссертации, кандидата сельскохозяйственных наук, Прилепская, Нина Александровна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ РАСТИТЕЛЬНО-МИКРОБНЫХ ВЗАИМОДЕЙСТВИЙ ДЛЯ ПОВЫШЕНИЯ ПРОДУКТИВНОСТИ СЕЛЬСКО

• ХОЗЯЙСТВЕННЫХ КУЛЬТУР (обзор литературы).

1.1. Современное состояние производства зерна в мире, России и Орловской области.

1.2. Производство экологически чистой сельскохозяйственной продукции. ft 1.3. Растительно-микробные взаимодействия как инструмент получения экологически чистой продукции.

Ф 1.3.1. Бобово-ризобиальный симбиоз.

1.3.2. Симбиоз с эндомикоризными грибами.

1.3.3. Ассоциации растений с полезными ризосферными микроорганизмами.

1.3.4. Микробные препараты.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3. РОСТ, РАЗВИТИЕ И ФОТОСИНТЕТИЧЕСКАЯ ДЕЯТЕЛЬНОСТЬ ЦЕНОЗОВ ЯРОВОЙ ПШЕНИЦЫ И ГОРОХА ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ.

3.1. Густота стояния и выживаемость растений.

3.2. Продолжительность вегетационного периода и составляющих его фаз у яровой пшеницы и гороха.

3.3. Фотосинтетическая деятельность ценозов яровой пшеницы и гороха.

4. ФОРМИРОВАНИЕ И АКТИВНОСТЬ СИМБИОТИЧЕСКОГО АППАРАТА ГОРОХА ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ. ф 4.1. Особенности клубенькообразования у гороха.

4.2. Активность нитрогеназы гороха.

5. ПРОДУКТИВНОСТЬ И КАЧЕСТВО УРОЖАЯ ЯРОВОЙ ПШЕНИ

• ЦЫ И ГОРОХА ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ.

5.1. Накопление сухой биомассы.

5.2. Урожайность семян и его структура.

5.3. Качество урожая.

5.3.1. Белковая продуктивность ценозов яровой пшеницы и гороха.

Ф 5.3.2. Содержание и вынос макроэлементов растениями яровой пшеницы и гороха.

5.3.3. Содержание и вынос микроэлементов растениями яровой пшеницы и гороха.

5.4. Влияние микробиологических препаратов на устойчивость ценозов яровой пшеницы и гороха к болезням.

6. ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОИЗВОДСТВА ЗЕРНА ЯРОВОЙ ПШЕНИЦЫ И ГОРОХА ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ.

7. ЭНЕРГЕТИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОИЗВОДСТВА ЗЕРНА # ЯРОВОЙ ПШЕНИЦЫ И ГОРОХА ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ.

ВЫВОДЫ.

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ.

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Повышение продуктивности агрофитоценозов яровой пшеницы (Triticum aestivum L.) и гороха (Pisum sativum L.) в условиях Центрально-Черноземного региона"

Актуальность проблемы. Современное растениеводство базируется на использовании высокоурожайных сортов, выращивание которых требует повышенных доз минеральных удобрений и химических средств защиты, что ведет к более высоким энергетическим затратам и значительному истощению естественного потенциала и плодородия почв, загрязнению окружающей среды и снижению качества сельскохозяйственной продукции (Тихонович, Проворов, 2004; Парахин, Амелин, 2004). Взаимодействия растений с сим-биотическими и полезными ризосферными микроорганизмами могут сократить необходимость использования агрохимикатов для оптимального развития растений, повысить урожай и качество продукции, улучшить плодородие и микробиологическую активность почв.

В настоящее время на основе эффективных штаммов полезных микроорганизмов создана серия микробиологических препаратов, которые недостаточно широко используются в сельскохозяйственном производстве. В этой связи разработка и внедрение в производство экологически ориентированных агротехнологий, предусматривающих использование комплексных микробиологических препаратов для повышения биологического потенциала и качества зерна важнейших сельскохозяйственных культур является особенно актуальным.

Цель исследований - разработать приемы применения микробиологических препаратов, позволяющие полнее использовать потенциальные возможности агроценозов яровой пшеницы и гороха, уменьшающие антропогенную нагрузку на окружающую среду и повышающие качество зерна.

В соответствии с поставленной целью решались следующие задачи:

- выявить морфобиологические особенности яровой пшеницы и гороха посевного в зависимости от дозы внесения минеральных удобрений, ассоциативных и симбиотических азотфиксаторов, грибов арбускулярной микоризы;

- определить основные параметры фотосинтетической деятельности ценозов в зависимости от используемых микробиологических препаратов и различных доз минеральных удобрений;

- дать оценку эффективности применения ассоциативных и симбиоти-ческих азотфиксаторов, грибов арбускулярной микоризы в сочетании с минимизированными дозами минеральных удобрений в агроценозах яровой пшеницы и гороха;

- разработать экологически ориентированные, малозатратные агротехнические приемы возделывания яровой пшеницы и гороха посевного, обеспечивающие получение высокой урожайности за счет применения средств активизации биологических процессов;

- дать биоэнергетическую и экономическую оценку эффективности возделывания яровой пшеницы и гороха при комплексном использовании микробиологических препаратов и минеральных удобрений.

Научная новизна исследований. Впервые на темно-серых лесных почвах лесостепной зоны России изучено влияние микробиологических препаратов БисолбиСан и БисолбиМикс на повышение продуктивности агрофи-тоценозов яровой пшеницы (Triticum aestivum L.) и гороха посевного (Pisum sativum L.).

Практическое значение. Разработаны экологически ориентированные технологии возделывания яровой пшеницы и гороха посевного с применением микробиологических препаратов и минимизированных доз минеральных удобрений. Применение микробиологических препаратов будет способствовать повышению потенциала продуктивности сельскохозяйственных культур, улучшит качество и экологическую безопасность продуктов питания, снизит хемогенную нагрузку на окружающую среду в процессе производства продуктов растениеводства, повысит и будет поддерживать разнообразие почвенной микрофлоры. Одновременно будут снижены затраты сельскохозяйственного производства, что является крайне важным на современном этапе развития АПК России.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Научное обоснование использования микробиологических препаратов БисолбиСан и БисолбиМикс для повышения продуктивности агрофито-ценозов яровой пшеницы и гороха в условиях ЦЧР.

2. Определение оптимальных доз минеральных удобрений, обеспечивающих получение высококачественного урожая зерна яровой пшеницы и гороха при минимальной антропогенной нагрузке.

3. Обоснование агротехнических приемов возделывания яровой пшеницы и гороха, позволяющих наиболее полно использовать потенциальные возможности культурных растений.

4. Биоэнергетическая и экономическая оценка применения микробиологических препаратов БисолбиСан и БисолбиМикс в сочетании с минимизированными дозами минеральных удобрений при получении урожая зерна яровой пшеницы и гороха высокого качества.

Апробация работы. Материалы диссертации доложены на школе молодых ученых им. Кунакбаева (Уфа, 2003); на ежегодных научно-практических конференциях «Неделя науки» ОрелГАУ (Орел, 2004, 2005, 2006); на Всероссийском конкурсе среди учащейся молодежи высших учебных заведений РФ на лучшие научные работы по естественным наукам (Саратов, 2004); на VI Международном симпозиуме «Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования» (Пущино, 2005); на Всероссийской научно-практической конференции «Регуляция продукционного процесса сельскохозяйственных растений» (Орел, 2005).

Публикации. Основные положения диссертации опубликованы в 7 печатных работах.

Структура и объем диссертационной работы. Диссертационная работа изложена на 180 страницах компьютерного текста, состоит из введения,

Заключение Диссертация по теме "Растениеводство", Прилепская, Нина Александровна

выводы

1. Являясь важным условием получения высоких урожаев сельскохозяйственных культур, оптимальная густота стояния растений главным образом зависит от всхожести и сохранности растений к уборке, которые в свою очередь повышались в посевах яровой пшеницы на 3 и 7%, а гороха - на 9 и 5% соответственно за счет применения микробиологических препаратов на основе ассоциативных и симбиотических микроорганизмов.

2. Наибольшее фитостимулирующее действие на посевы яровой пшеницы и гороха оказывают микробиологические препараты с совместным применением минимизированных доз минеральных удобрений, что увеличивает ассимиляционную поверхность листьев по сравнению с контролем в 1,5.2,0 раза, а чистая продуктивность фотосинтеза повышается до 8,44 и л

8,63 г/м -сутки в посевах яровой пшеницы, а на горохе - до 4,91 и 5,16 г/м2-сутки за счет улучшения общего физиологического состояния растений.

3. Максимальную величину симбиотического аппарата посевы гороха, формировали в вариантах с совместным применением препаратов БисолбиСан и БисолбиМикс с N22,5P3oK45j чт0 способствовало увеличению числа активных клубеньков по сравнению с контрольным вариантом соответственно в 1,9 и 2,2 раза, а нитрогеназной активности — в 1,4 и 1,7 раза и обусловлено лучшим обеспечением симбиотической системы фотоассимилятами.

4. Максимальной хозяйственный эффект был получен в вариантах с комплексным применением удобрений и микробиологических препаратов, где прибавка к контролю составила в среднем по культурам 40.54%, что объяснялось наиболее высокими параметрами элементов структуры урожая.

5. За счет большей доступности элементов минерального питания для растений яровой пшеницы в вариантах N30P30K30 + БисолбиМикс и N60P6oK6o+ БисолбиМикс по сравнению с контролем складывались лучшие условия для формирования продуктивной кустистости (на 26 и 50%), увеличения озер-ненности колоса (на 46 и 48%) и семенной продуктивности растения (на 50 и 80%), что позволило получить с 1 га 3,62 и 4,07 т зерна.

6. Самая высокая урожайность гороха по сравнению с контролем была получена в вариантах с N45P60K90+ БисолбиСан (3,31 т/га) и БисолбиМикс (2,9 т/га) за счет увеличения количества выполненных бобов (на 24 и 29%) и семян (на 36 и 52%) на растении, а также роста числа продуктивных узлов (до 3,8 и 3,9 шт) и семенной продуктивности 1 растения (до 5,1 и 4,34 г).

7. Применение препарата БисолбиСан в наших исследованиях способствовало повышению иммунитета растений и менее интенсивному развитию болезней у яровой пшеницы и гороха. При этом у яровой пшеницы снижалась степень развития септориоза на 1,8-2,7%, бурой ржавчины на 1,6-3,5% и стеблевой ржавчины на 3,1-8,3%; у гороха - аскохитоза на 1,5-6,4%, корневых гнилей на 4,8-14,8%, мучнистой росы на 5,8-11,5%, что обусловлено фунгицидным действием препарата.

8. Изменение режима питания растений оказало влияние на качество урожая при использовании изучаемых нами микробиологических препаратов с минимальными дозами минеральных удобрений на горохе и обусловило усиление выноса азота, тем самым, увеличив сбор белка с единицы площади на 114,7-188,6 кг/га.

Получение зерна яровой пшеницы с высоким содержанием макро и микроэлементов в большей степени зависело от инокуляции семян препаратом БисолбиСан, а также использование его в комплексе с N30P30K30, что обусловило высокое содержание сырого протеина в зерне, сбор которого увеличился на 80-156 кг/га по сравнению с контролем.

9. Повышение продуктивности агроценозов яровой пшеницы и гороха при использовании препарата БисолбиСан обеспечивает минимальную себестоимость (94,0 руб./га и 160,5 руб./га) и высокую рентабельность (272,5% и 242,7%) производства зерна.

10. Наиболее энергосберегающим приемом возделывания яровой пшеницы было использование микробиологических препаратов в чистом виде, где биоэнергетический коэффициент достигал 2,31. Для производства зерна гороха менее энергозатратными были варианты БисолбиМикс и гороха менее энергозатратными были варианты БисолбиМикс и N45P60K90+ БисолбиСан, позволяющие получать урожайность 2,9 и 3,3 т/га.

11. Экологически ориентированным, малозатратным приемом повышения продуктивности агрофитоценозов яровой пшеницы является инокуляция семян БисолбиСан с применением N30P30K30; гороха - N45P60K90+ БисолбиСан и использование БисолбиСан без применения минеральных удобрений.

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ

1. Для получения высококачественного урожая зерна яровой пшеницы на темно-серых лесных почвах Центрально-Черноземного региона с минимальными экономическими и энергетическими затратами рекомендуется использовать микробиологический препарат БисолбиСан (2 л/т) + N30P30K30;

2. С целью повышения потенциала продуктивности гороха, улучшения качества и экологической безопасности получаемой продукции необходима предпосевная инокуляция семян препаратом БисолбиСан (2 л/т). Для хозяйств интенсивного типа возможно комплексное применение N45P60K90+ БисолбиСан (2 л/т).

140

Заключение

Анализ литературных источников показывает, что ризобиальный и эн-домикоризный симбиозы и ассоциации полезных ризосферных микроорганизмов имеют огромное значение для развивающегося экологически ориентированного сельскохозяйственного производства, позволяя сохранять природное плодородие почвы и поддерживать многообразие растительных сообществ (Hardarson, 1993; Heijden et al., 1998). Однако до сих пор не отработаны в полной мере технологические приемы применения микробиологических препаратов на основе симбиотических и ассоциативных микроорганизмов в посевах зерновых и зернобобовых культур. Изучение данных взаимодействий помогут разработать сортовые технологии с привлечением растительно-микробных взаимодействий в каждой природно-экономической зоне, тем самым, способствуя развитию сбалансированных адаптивных сельскохозяйственных систем.

И. УСЛОВИЯ, МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Работа выполнена в 2003-2005гг. на кафедре растениеводства Орловского государственного аграрного университета.

2.1. Климатические условия

Орловская область расположена в северо-западной части Центрального Черноземья, ее площадь составляет 24,7 тыс. км . Она занимает северный и западный склоны Среднерусской возвышенности. Протяжённость с запада на восток свыше 200 км, с севера на юг - 150 км. По рельефу область представляет собой сильно волнистую равнину, изрезанную глубокими долинами рек, оврагами и балками.

Климат территории умеренно-континентальный с достаточным количеством тепла и влаги, однако, с неравномерным распределением осадков.

Летом в области преобладают ветры южного, юго-западного, западного и юго-восточного направлений, а зимой - южного, юго-западного, западного и восточного. Западные и юго-западные ветры сопровождаются осадками. Восточные и особенно юго-восточные ветры - сухие, знойные, как правило, вызывают явления засухи. Они имеют большую повторяемость в период вегетации растений.

Среднегодовая температура воздуха в области - +4,9 °С. Абсолютный максимум - +37 °С. Абсолютный минимум - - 38 °С. Средняя температура воздуха наиболее тёплого месяца июля - составляет 17,9-19,6 °С, а наиболее холодного месяца - января - -9,0-10,5 °С.

Орловская область относится к полосе произрастания среднеранних и среднеспелых культур. Период со среднесуточными температурами выше 10°С начинается в начале мая и заканчивается в середине октября и продолжительность его в среднем составляет 141 день. Сумма положительных температур > 10 °С - 2200-2300. За период с температурой >10 °С в среднем выпадает 300 мм осадков. Гидротермический коэффициент равен 1,2-1,3, что является показателем достаточной влагообеспеченности растений в вегетационный период. За год выпадает 570-580 мм осадков, в дождливые годы их количество возрастает до 790 мм, а в засушливые - уменьшается до 360 мм. При этом наибольшее их количество выпадает в июле (в среднем 98 мм), а на вегетационный период приходится около 40-50 % от их общего количества.

Как правило, в первой половине вегетационного периода ощущается недостаток влаги в почве, а во второй возможно избыточное её увлажнение.

Влагообеспеченность сельскохозяйственных культур характеризуется запасом продуктивной влаги в почве. Наибольшие запасы продуктивной влаги в метровом слое (200 - 225 мм) имеют суглинистые почвы севера Орловской области в начале вегетации растений. Наименьшие запасы влаги (100 -125 мм) содержат песчаные почвы. В целом влагообеспеченность культур составляет 60 - 90% оптимальной.

К неблагоприятным метеорологическим явлениям, наносящим значительный ущерб сельскохозяйственным культурам, относятся заморозки, засухи, суховеи.

Весенне-летние засухи и суховеи различной интенсивности повторяются здесь 1 раз в 3 — 4 года, а иногда следуют 2 года подряд. Отрицательное действие этих погодных явлений компенсируется наличием запасов влаги в почве.

Устойчивость яровой пшеницы и гороха посевного к заморозкам в ранние фазы развития неодинакова. Яровая пшеница способна переносить заморозки до — 13 °С, а горох только -7-8 °С, более низкие температуры воздуха приводят к гибели посевов.

Установление среднесуточной температуры воздуха выше 0 °С считается началом весны. Такая температура воздуха в Орловской области бывает уже в третьей декаде марта. После 8 июня заморозки в области обычно не наблюдаются.

Лето в Орловской области начинается с установлением среднесуточных температур воздуха +12,5 °С. Летние месяцы - июнь, июль и август характеризуются тёплой погодой, дождями грозового характера, возможны ливни, сопровождающиеся выпадением града. В начале лета часто наблюдается засушливая погода, иногда с суховеями.

Таким образом, климатические условия Орловской области в целом благоприятны для возделывания многих сельскохозяйственных культур, в том числе яровой пшеницы и гороха.

2.2. Почвенные условия

Орловская область расположена в лесостепной зоне и представляет собой зону переходных почв от дерново-подзолистых к чернозёмам. По комплексу природных факторов (рельеф, климат, почвенный покров) на территории области выделено три агропочвенных района: западный, центральный, юго-восточный.

Полевые опыты закладывались в севообороте лаборатории генетики и микробиологии ГНУ ВНИИ зернобобовых и крупяных культур, который находится в Орловском районе Орловской области и относится к центральной зоне с преобладанием серых лесных, темно-серых лесных почв и оподзолен-ных чернозёмов.

Почвы опытных участков темно-серые лесные, средней окультуренно-сти. Микрорельеф участка выровненный. По основным физико-химическим показателям данные почвы пригодны под все районированные в области сельскохозяйственные культуры и являются типичными для данной природ-но-экономической зоны.

Пахотный и метровый слои почвы характеризуются высокой водо-удерживающей способностью (118 и 345 мм, соответственно). Возможные запасы доступной растениям влаги в слое 0 — 30 см — 88, а в метровом — 262 мм. Максимальная гигроскопическая влажность - 6,8 — 7,5 % от массы почвы, влажность устойчивого завядания - 9,6 — 13,3 %.

Характеристика почвы на участке проведения опыта приведена в таблице 1.

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, кандидата сельскохозяйственных наук, Прилепская, Нина Александровна, Орел

1. Андреева И.Н. Стимулирующее действие Azospirillum brasilense на бо-бово-ризобиальный симбиоз и продуктивность растений / И.Н. Андреева, Т.В. Редысина, К. Мандхан, Г.И. Козлова, С.Ф. Измайлов // Докл. АН СССР, 1990.- Т.314. — С. 1511-1514.

2. Берестецкий О.А. Фитотоксины почвенных микроорганизмов и их экологическая роль. JL, 1978. - С. 7-30.

3. Билай В.И. Микроорганизмы возбудители болезней растений/ В.И. Билай, Р.И. Гвоздяк, И.Г. Скрипаль // Киев: Наук, думка., 1988. — 522 с.

4. Борисов А.Ю. Эффективность использования совместной инокуляции гороха посевного грибами арбускулярной микоризы и клубеньковыми бактериями / А.Ю. Борисов, Т.С. Наумкина, О.Ю. Штарк, Т.Н. Данилова, В.Е. Цыганов // Доклады РАСХН, 2004. № 2. - С. 12-14.

5. Воробейков Г.А. Влияние молибдена на азотфиксирующую активность клубеньковых бактерий и продуктивность жёлтого люпина при засухе и переувлажнении почвы в критический период// Бюллет. ин-та ВНИ-ИСХМ, 1983. № 39. — С. 11-14.

6. Гордеев А.В. АПК долгосрочный стратегический потенциал // Экономика России XXI век, 2003. - № 10. - С. 3-12.

7. Гордеев А.В., Бутковский В.А. Россия — зерновая держава. — М.: Агро-промиздат, 2003. — 213 с.

8. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. — М.: Агропромиздат, 1985. — 351 с.

9. Дурынина Е.П. Продуктивность растений при их микоризации эндоми-коризными грибами / Е.П. Дурынина, П.К. Чилаппагари, И.А. Егорова, JI.E. Морозова // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 17, 1990. Т. 1. - С. 42-48.

10. Животков JI.A., Бирюков С.В., Степаненко А.Я. Пшеница. — К.: Урожай, 1989.-320 с.

11. Жученко А.А. Стратегия адаптивной интенсификации сельского хозяйства (концепция). — Пущино, 1994. — 148 с.

12. Н.Жученко А.А. Фундаментальные и прикладные научные приоритеты адаптивной интенсификации растениеводства в XXI веке. — Саратов, 2000.-252 с.

13. Казаков А.Е. Биологизация АПК РФ — путь к устойчивому развитию / А.Е. Казаков, А.Ю. Борисов, В.К. Чеботарь // Сб. науч.- практ. конф. «Пути повышения эффективности сельскохозяйственной науки». — Орел: ОрелГАУ, 2005. С.75-88.

14. Кожемяков А.П. Роль нитрагинизации в повышении урожая и накоплении белка бобовыми культурами / А.П. Кожемяков, JI.M. Доросинский // Тр. ВНИИСХМ-Л, 1987. Т.57. - С. 7-15

15. Кожемяков А.П. Использование инокулянтов бобовых и биопрепаратов комплексного действия в сельском хозяйстве / А.П. Кожемяков, И.А. Тихонович // Доклады РАСХН, 1998. № 6. - С.7-10.

16. Кожемяков А.П. Оценка взаимодействия сортов ячменя и пшеницы с ризосферными ростстимулирующими бактериями на различном азотном фоне / А.П. Кожемяков, Н.А. Проворов, А.А. Завалин, П.Р. Шотт // Агрохимия, 2004. № з. С.33-40.

17. Коломейченко В.В. Методические указания по изучению основных показателей фотосинтетической деятельности растений в посевах. — Орел, 1987.-9 с.

18. Котова В.В. Корневые гнили гороха и вики и меры защиты // Вестник защиты растений. Санкт-Петербург, 2004. — 144 с.

19. Кочетков В.В. Ризосферные псевдоманады для защиты растений от фи-топатогенов / В.В. Кочетков, А.Н. Дубейковский, A.M. Воронин // Новые направления в биотехнологии. — Пущино, 1990. — С. 36-37.

20. Кравцов С.А. О состоянии зерновой отрасли в АПК Российской Федерации в 2001 году / С.А. Кравцов, Н.А. Курмышева // Зерновое хозяйство, 2002. №2. - С. 2-7.

21. Кретович B.JI. Усвоение и метаболизм азота у растений. М.: Наука, 1987.-486 с.

22. Кретович B.JI. Биохимия усвоения азота воздуха растениями. — М.: Наука, 1994.-168 с.

23. Кузьмина JI.IO. Эффективность бактериальных препаратов при защите яровой пшеницы от твердой головни / Л.Ю. Кузьмина, О.Н. Логинов, Т.Ф. Бойко, Р.Ф. Исаев, Е.В. Свешникова, А.И. Мелентьев // Сельскохозяйственная биология, 2003. №5. - С.69-73.

24. Кулакова А.М. Взаимодействие ассоциативных бактерий с растениями при различных агроэкологических условиях // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Спб., 1998. - 19 с.

25. Летуновский В.И. Научно-технологические основы увеличения производства зернобобовых культур/ Автореферат диссертации докт. с.-х. наук, Немчиновка, Московская обл., 1999. — 57 с.

26. Логинов В.Г. Анализ развития зернового рынка // Зерновое хозяйство, 2002.-№5.-С. 2-5.

27. Методика биоэнергетической оценки технологий производства продукции растениеводства / Под общ. ред. Базарова Е.И., Глинки Е.В. // Москва, 1983. 43 с.

28. Методика по оценке устойчивости сортов полевых культур к болезням на инфекционных и провокационных фонах / Захаренко В.А. Медведев

29. A.M., Ерохина C.A., Коваленко Е.Д., Добровольская Г.В. Михайлов А.А. // Москва, 2000. 62 с.

30. Мильто Н.И. Клубеньковые растения и продуктивность бобовых растений // «Наука и техника». — Минск, 1982. — С.21-25.

31. Мишустин Е.Н., Шильникова В.К. Биологическая фиксация атмосферного азота. -М.: Наука, 1968. 531 с.

32. Мишустин Е.Н., Шильникова В.К. Клубеньковые бактерии и инокуля-ционный процесс. М., 1973. - 288 с.

33. Мишустин Е.Н. Микробиология. — М.: Агропромиздат, 1975. — 400 с.

34. Муромцев Г.С. Роль почвенных микроорганизмов в фосфорном питании растений / Г.С. Муромцев, Г.Н. Маршунова, В.Ф. Павлова, Н.В. Зольникова // Успехи микробиологии, 1985. Т. 20 - С. 174-198.

35. Муромцев Г.С. Повышение урожая овса и содержания в нем фосфора под действием эндомикоризных грибов / Г.С. Муромцев, JI.M. Якоби Л.М., Г.Н. Маршунова // Доклады ВАСХНИЛ, 1985. №3. - С.14-17.

36. Надежкина Е.В. Ассоциативная азотфиксация и продуктивность фотосинтеза растений яровой мягкой пшеницы под влиянием экологических условий и внесения удобрений // Сельскохозяйственная биология, 2004. №3. - С.85-89.

37. Наумкина Т.С. Эндомикоризный симбиоз / Т.С. Наумкина, АЛО. Борисов, О.Ю. Штарк // Научно-техн. бюллетень ВНИИ ЗБК, 2005. вып. 43. — С.85-90.

38. Панников В.Д. Почва, климат, удобрение и урожай / В.Д. Панников,

39. B.Г. Минеев. М.: Агропромиздат, 1987. — 512 с.

40. Парахин Н.В. Использование достижений науки для повышения эффективности сельского хозяйства // Сб. науч.- практ. конф. «Пути повышения устойчивости сельскохозяйственного производства в современных условиях».— Орел: ОрелГАУ, 2003. — С. 37-50.

41. Парахин Н.В. Биологическая интенсификация и повышение устойчивости растениеводства // Сб. науч.- практ. конф. «Пути повышения эффективности сельскохозяйственной науки» — Орел: ОрелГАУ, 2005.1. C.51-58.

42. Проворов Н.А. Взаимосвязь между таксономией бобовых и специфичностью их взаимодействия с клубеньковыми бактериями // Ботан. журнал, 1992.- Т. 77.-С. 21-32.

43. Протасова Н.А. Химические элементы в жизни растений / Н.А. Протасова, А.Б. Беляев // Соросовский Образовательный Журнал, 2001. — Т. 7. № 3. — С. 25-32.

44. Редькина Т.В. Бинарная ассоциация диазотрофных бактерий рода Azospirillum и Rhizobium, ее влияние на бобовые растения / Т.В. Редь-кина, И.Н. Андреева // Интродукция микроорганизмов в окружающую среду.-М., 1994.-С.84.

45. Романенко Г.А., Тютюнников А.И., Сычев В.Г. Удобрения: Значение, эффективность применения. Справочное пособие / РАСХН — М., 1998. -253 с.

46. Самошкин В.И. Влияние инокуляции эндомикоризными грибами вези-кулярно-арбускулярного типа на минеральное питание сои / В.И. Са-мошкин, О.Н. Постникова // Бюл. ВНИИ с.-х. микробиологии, 1986. -Т. 43.-С. 7-10.

47. Сдобникова О.В. Оптимизация питания сельскохозяйственных культур в интенсивном земледелии // Параметры плодородия основных типов почв, 1988.-С. 4-16.

48. Сдобникова О.В. Влияние инфицирования растений эндомикоризными грибами на урожай, усвоение азота и фосфора бобовыми культурами / О.В. Сдобникова, А.Н. Кулешова, И.В. Пайкова, О.П. Мазур, Г.Н. Маршунова//Вестн. с.-х. науки, 1991. Т. 7. — С.78-83.

49. Селиванов И.А. Микосимбиотрофизм как форма консортивных связей в растительном покрове Советского Союза. — М.: Наука, 1981. — С.81-126.

50. Сидоренко О.В. Динамика урожайности зерновых в Орловской области // Зерновое хозяйство, 2003. №5. - С. 12-14.

51. Сидоренко О.В. Рост урожайности зерновых — фактор устойчивого развития АПК // Зерновое хозяйство, 2004. №1. - С. 5-6.

52. Синякова JI.A., Иванова А.И. Методические указания по определению фотосинтетической и корневой деятельности растений. JL, 1981. — 9 с.

53. Смолин В.Ю. Химический состав растений сои при применении клубеньковых бактерий с ризосферными псевдомонадами или эндомикоризными грибами и локальном внесении азотного удобрения / В.Ю. Смолин, В .П. Шабаев // Агрохимия, 1992. №11. - С.84-90.

54. Терехов М.Б. Эффективность азотобактера и доз азотных удобрений при возделывании яровой пшеницы // Сб. научн. статей «Агрономическая наука агропромышленному комплексу». — Н.-Новгород, 2000. — С. 32-34.

55. Терехов М.Б. Использование ассоциативной азотфиксации в современном земледелии / М.Б. Терехов, JI.A. Ежова // Сб. научн. статей «Системы земледелия Нечерноземной зоны и пути их совершенствования». Н.-Новгород, 1997.-С. 167-169.

56. Тихонович И.А. Создание высокоэффективных микробно-растительных систем // Сельскохозяйственная биология, 2000. №1. — С. 28-33.

57. Тихонович И.А. Эволюционная генетика микробо-растительного взаимодействия и ее практическое значение / И.А. Тихонович, Н.А. Прово-ров // Экологическая генетика, 2004. Т. 1. - № 3. — С. 36-46.

58. Чекалин Н.М. Генетические основы селекции зернобобовых культур на устойчивость к патогенам. — Полтава: «1нтерграфжа», 2003. — 186 с.

59. Шатохина С.Ф. Эндомикоризные грибы улучшают фосфорное питание растений / С.Ф. Шатохина, Е.И. Лапта // Мелиорация и водное хозяйство, 1991.-Т. 7.-С. 29.

60. Шевчук В.Е. Бобовые культуры и использование их на зелёное удобрение в условиях Иркутской области / Автореф. дис. канд. с.-х. наук, Иркутск, 1964.-37 с.

61. Штарк О.Ю. Влияние корневых экзометаболитов пшеницы на антого-нистические свойства ризобактерий по отношению к фитопатогенным грибам / Автореферат диссертации канд. биол. наук, Санкт-Петербург, 2001.-19 с.

62. Ames R.N. Mycorrhizal fungi and the integration of plant and soil nutrient dynamics / R.N. Ames, G.J. Bethlenfalvay // Plant Nutrit, 1987. T. 10. - № 9/16.-P. 1313-1321.

63. Ames Q.N. Nitrogen sources and "A" values for vesicular-arbuscular and non- mycorrhizal sorghum grown at three rates of 15N-ammonium sulphate /

64. Q.N. Ames, L.K. Porter, T.V. StJohn, CPP. Reid // New Phytologist, 1984. -V. 97.-P. 269-276.

65. Andre S. Arbuscular mycorrhizal symbiosis changes the colonization pattern of Acacia tortilis spp. raddiana Rhizosphere by two strains of rhizobia / S. Andre, M. Neyra, R. Duponnois // Microbial Ecology, 2003. V. 45 — P. 137-144.

66. Azcon-Aguilar C., Barea JM. Interactions between mycorrhizal fungiand other rhizosphere microorganisms / In: Allen M.J. Mycorrhizal functioning an integrative plant-fungal process. — New York, 1992 — P. 163-198.

67. Azcon-Aguilar C., Barea JM. Saprophytic growth of arbuscular-mycorrhizal fungi / In: Hock B. and Varma A. Mycorrhiza structure function, molecular biology and biotechnology. Heidelberg, Germany, 1995. — P. 391-407.

68. Azcon-Aguilar C. Isotopic (15N) evidence of the use of less available N forms by VA mycorrhizas / C. Azcon-Aguilar, C. Alba, M. Montilla, J.M. Barea // Symbiosis, 1993. V. 15. - P. 39-48.

69. Azcon-Aguilar C. Arbuscular mycorrhizas and biological control of soil-borne plant pathogens — an overview of the mechanisms involved / C. Azcon-Aguilar, J.M. Barea // Mycorrhiza, 1996. V.6. - P. 457-464.

70. Badr El-Din S.M.SEnhancement of nitrogen fixation in lentil, faba bean, and soybean by dual inoculation with Rhizobia and mycorrhizae / S.M.S. Badr El-Din, H. Moawad // Plant Soil, 1988. T. 108. - № 1. - P. 117-123.

71. Bala S. Response of lentil to VA mycorrhizal inoculation and plant available P levels of unsterile soils / S. Bala, O.S. Singh // Plant Soil, 1985. T. 87. -№ 3. — P. 445-447.

72. Baltruschat H. Der Einfluss mineralischer Dungung auf die VA Mykorrhiza // Kali-Briefe (Buntehof). Hannover., 1990. T. 20. - № 1. - S. 77-91.

73. Barea J.M. The role of vesicular-arbuscular mycorrhizae in improving plant N acquisition from soil as assessed with 15N/ J.M. Barea, C. Azcon-Aguilar, R. Azcon // In: IAEA-SM 313/67 ed. Stable Isotopes in Plant Nutrition Soil

74. Fertility and Environmental Studies, Vienna: International Atomic Energy Agency, 1991.-P. 209-216.

75. Bashan Y. Factors affecting adsorption of Azospirillum brasilense Cd to root hairs as compared with root surface of wheat / Y. Bashan, H. Levanoni //Can. J. Microbiol., 1989.-V. 35.-P. 881-887.

76. Befhlenfalvay GW. Mycorrhizae and crop prodactivity // In: Befhlenfalvay GJ., Linderman RG., eds. Mycorrhizae in sustainable agriculture. Madison, USA: American Society of Agronomy, 1992. - P. 1-27.

77. Bhatia C.R. Mutation affecting modulation in grain legumes and their potential in sustainable cropping system / C.R. Bhatia, K. Nichterlein, M. Maluszynski // Euphytica, 2001. V. 120. - P. 415-432.

78. Bloemberg G.V. Molecular basis of plant growth promotion and biocontrol by rhizobacteria / G.V. Bloemberg, B.JJ. Lugtenberg // Current Opinion in Plant Biology, 2001. V. 4. - P. 343-350.

79. Brown M.E. Seed and root bacterization // Annu. Rev. Phytopathol., 1974. -V. 12. — P. 181-197.

80. Bumb B.L. The Role of Fertilizer in Sustaining Food Security and Protecting the Environment / B.L. Bumb, C.A. Baanante // Food, Agriculture and the Environment Discussion, 1996. Paper 17. - International Food Policy Research Institute, Washington, DC.

81. Champawat R.S. Effect of dual inoculation of Rhizobium and vesicular arbuscular mycorrhizal fungi on Pisum sativum // Folia microbiol, 1990. -T. 35. № 3. — P. 236-239.

82. Chanway C.P. Biomass increase and associative nitrogen fixation of mycorrhizal Pinus contorta Dougl. Seedlings inoculated with a plant growth promoting Bacillus strain / C.P. Chanway, F.B. Holl // Can. J. Bot., 1991. -V. 69.-P. 507-511.

83. Christiansen-Weneger C. Associativ N fixation and root exudation of organic acids from wheat cultivars of different cluminium tolerance / C. Christiansen-Weneger, A.F. Groneman, J.A. Van Vee // Plant and Soil, 1992.-V. 139. — P.167-174.

84. Costacurta A. Synthesis of phytogormones by plant-associated bacteria / A. Costacurta, J. Vanderleyden // Critical Rew. Microbiol., 1995. V. 21.-P. 1-18.

85. Costracurta A. Synthesis of phytohormones by plant-associated bacteria / A. Costracurta, J. Vanderleyden // Critical Rev. Microbiol., 1995. V. 21.-P. 1-18.

86. Crowley D.E. Utilization of microbial siderophores in iron acquisition by oat / D.E. Crowley, C.P.P. Reid, P.J. Szaniszlo // Plant Physiology, 1988. -V. 87.-p. 680-685.

87. Da Silveira A.P.D. Efeito do fosforo e da micorriza vesiculo-arbuscular na simbiose Rhizobium-feijoeiro / A.P.D. Da Silveira, E.J.B.N. Cardoso // Rev. brasil. Cienc. Solo, 1987. Т. 11. - № 1. - P. 31-36.

88. Dehne HW. Interactions between vesicular- arbuscular mycorrhizal fungi and plant pathogens // Phytopathology, 1982. V.72. - P.l 115-1132

89. Dehne HW. Arbuskulare Mykorrhizapilze als Faktoren im Integrierten Pflanzenbau // .Biol.Bundesanst.Land- Forstwirtsch, Berlin, 1997. H.332. -S. 8-18.

90. Elmerich C. Molecular biology and ecology od diazotrophs associated with non-leguminous plants // Bio Technology, 1984. V. 2. - P. 967-978.

91. Emmert E.A.B. Biocontrol of plant disease: a (Gram-) positive perspective / E.A.B. Emmert, J. Handelsman // FEMS Microbiol. Letters, 1999. -V. 171(1).-P.l-9.

92. Garbaye J. Helper bacteria: a new dimension to the mycorrhizal symbiosis//New Phytol., 1994.-V. 128.-P. 197-210.

93. Gianinazzi-Pearson V. Vesicular-arbuscular endomycorrhizae as determinants for plant growth and survival // Interrelationships between microorganisms and plants in soil. Praha, 1989. - P. 69-76.

94. Gianinazzi-Pearson V. Enzymatic studies on the metabolism of vesicular- arbuscular mycorrhizas V. Is H+ATPase a component of ATP-hydrolysing enzyme activities in plant-fungus interface? / V. Gianinazzi

95. Pearson, S.E. Smith, S. Gianinazzi, F.A. Smith // New Phytol., 1991. V. 117.-P. 61-76.

96. Gianinazzi-Pearson V. Plant cell responses to arbuscular mycorrhizal fungi: getting to the roots of the symbiosis // The Plant Cell., 1996. — V. 8. — P. 1871-1883.

97. Glick B.R. The enhancement of plant growth by free-living bacteria // Can. J. Microbiol., 1995.-V. 41.-P. 109-117.

98. Golotte A. Pisum sativum Immunodetection of infection thread glycoprotein and arbinogalactan protein in wild-type Pisum sativum L. or and isogenic mycorrhiza resistant mutant interacting with Glomus mosseae // Symbiosis, 1995. V. 18. - P. 69-85.

99. Gutterson N.I. Molecular cloning of genetic determinants for inhibition of fungal growth by a fluorescent pseudomonad / N.I. Gutterson, T.J. Layton, J.S. Ziegle, G.J. Warren // J. Bacteriol., 1986. V. 165. - P. 696703.

100. Hall I.R. Interactions between endomycorrhizas and soil nitrogen and phosphorus on the growth of ryegrass / I.R. Hall, P.D. Johnstone, R. Dolby // New Phytol, 1984. T. 97. - № 3. - P.447-453.

101. Hall I.R. Potential for esploiting vesicular-arbuscular mycorrhizas in agriculture // Adv. in biotechnol. Processes, New York, 1988. T. 9. — P.141-174.

102. Hao W.J. Effect of phosphorus fertilization on mycorrhizal response under unsterilised soil condition / W.J. Hao, X.G. Lin // Mycorrhizae in the next decade. Gainesville, 1987. - P. 22.

103. Hardarson G. Methods for enhancing symbiotic nitrogen fixation // Plant and Soil, 1993.-V. 152.-P.1-18

104. Harrier L.A. The arbuscular mycorrhizal symbiosis: a molecular review of the fungal dimension // Journal of Experimental Botany, 2001. -V.52-P. 469-478.

105. Heijden van der M.G.A. Mycorrhizal fungi diversity determines plant biodiversity, ecosystem variability and productivity / Heijden van der M.G.A., J.N. Klironomas, M. Ursic // Nature, 1998. V. 396. - P. 69-72.

106. Helal H.M. Zur Bedeutung der Mykorrhiza in einer imweltschonenden Landwirtschaft // Mitt. Biol. Bundesanst. Land-Forstwirtsch, Berlin, 1997. -H.332.-S. 47-53.

107. Hiltner L. Uber neuere Erfahrungen und Problem auf dem Gebeit der Bodenbakteriologie und unter besonderer Beracksichtigung der Grundungung und Brache // Arb Dtsch. Landwirt. Ges., 1904. V. 98. - P. 59-78.

108. Hirata H. Response of chickpea grown on ando-soil to vesicular-arbuscular mycorrhizal infection in relation to the level of phosphorus application / H. Hirata, T. Masunaga, H. Koiwa // Soil Sc. Plant Nutrit, 1988. T. 34. - № 3. — P. 441-449.

109. Hong Y. Biological consequences of plasmid transformation of the plant growth promoting rhizobacterium Pseudomonas putida GR 12-2 / Y.

110. Hong, J.J. Pasternak, B.R. Glick // Can. J. Microbiol., 1991. V. 37. - P. 796-799.

111. Howie W.J. Role of antibiotic biosynthesis in the inhibition of Py-thium ultimum in the cotton spermosphere and rhizosphere by Pseudomonas fluorescens / W.J. Howie, T.V. Suslow // Molecular Plant-Microbe Interactions, 1991.-V. 4. — P. 393-399.

112. Hunt S. / S. Hunt, D.B. Layzell // Annu Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1993. V. 44. - P. 483-511.

113. Ishac Y.Z. Effect of seed inoculation, mycorrhizal infection and organic amendment on wheat growth / Y.Z. Ishac, M.E.El-Haddad, M.J. Daft //Plant Soil, 1986a. -T. 90. -№1-3.-P.373-382.

114. Isobe K. The relationship between growth promotion by arbuscular mycorrhizal fungi and root morphology and phosphorus absorption in gramineous and leguminous crops / K. Isobe, Y. Tsuboki // Japan.J.Crop Sc., 1998. V.67. - № 3. - P. 347-352.

115. Jacuelinet-Jeanmougin J. Endo mycorrhizas in the Gentianaceae. II. Ultrastructural aspects of symbiont relationships in Gentiana lutea L. / J. Jacuelinet-Jeanmougin, V. Gianinazzi-Pearson, S. Gianinazzi // Symbiosis, 1987. — V. 3. P.269-286.

116. Jarak M. Primena inokulacije u proizvodnji lucerke i graska stanje i perspective / M. Jarak, N. Milosevic, M. Govedarica, V. Hadzic // Zb.Rad. Nauc.Inst.Ratarstvo Povrtarstvo, Novi Sad, 1997. - Sv.29. - S. 411-420.

117. Johansen A. Hyphal transport of 15N-labelled nitrogen by a vesicular-arbuscular mycorrhizal fungus and its effect on depletion of inorganic soil N / A. Johansen, I. Jakobsen, E.S. Jensen // New Phytologist, 1992. V. 122. -P. 281-288.

118. Johansen A. External hyphae of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi associated with Trifolium subterraneum L. 3. Hyphal transport of P and ,5N / A. Johansen, I. Jakobsen, E.S. Jensen // New Phytologist, 1993. -V. 124.-P. 61-68.

119. Johansen A. Transfer of N and P to barley interconnected by an arbus-cular mycorrhizal fungus / A. Johansen, E.S. Jensen // Soil Biology and Biochemistry, 1996. V. 28. - P. 73-81.

120. Kapulnik Y. Plant Growth Promotion by Rhizosphere Bacteria / Plant roots: the hidden half, edited by Yoav Waisei, Amram Eshel, Uzi Kafkafi. -2nd ed., rev. and expanded, 1996. P. 769-781.

121. Kardailsky IV. Expression of cysteine protease genes in pea nodule development and senescence / IV. Kardailsky, NJ Brewin // Molecular Plant-Microbe Interactions, 1996. V. 9. - P.689-695

122. Kaur S. Response of ricebean to single and combined inoculation with Rhizobium and Glomus in a P-deficient sterilized soil / S. Kaur, O.S. Singh // Plant Soil, 1988. Т. 112. - № 2. - P. 293-295.

123. Kawai Y. Increase in the Formation and Nitrogen Fixation of Soybean Nodules by Vesicurar-Arbuscular Mycorrhiza / Y. Kawai, Y. Yamamoto // Plant Cell Physiol., 1986. V. 27(3). - P. 399-405.

124. Kloepper J.W. Pseudomonas inoculants to benefit plant production / J.W. Kloepper, R. Lifshitz, M.N. Schroth // ISI Atlas Sci. Anim. Plant Sci., 1988. -P.60-64.

125. Kloepper J.W. Free-living bacterial inocula for enhancing crop productivity / J.W. Kloepper, R. Lifshitz, R.M. Zablotowicz // Trends Biotech-nol., 1989.-V. 7.-P. 39-43.

126. Klqller R. The presence of the arbuscular mycorrhizal Glomus intra-radices influences enzymatic activities of the root pathogen Aphanomyces euteiches in pea roots / R. Klqller, S. Rosendahl // Mycorrhiza, 1997. V.6. -P.487-491.

127. Lambrecht M. Indol-3-acetic acid: a reciprocal signaling molecule in bacteria-plant interactions / M. Lambrecht, Y. Okon, A. Vande Broek, J. Vanderleyden // Trends in Microbiology, 2000. V. 8. - P. 298-300.

128. Limonard T. The significance of VA-mycorrhiza to future arable farming in the Netherlands / Limonard Т., Ruissen M.A. // Netherl. J. Plant Pathol, 1989.-T. 95. -№ l.-P. 129-135.

129. Lynch J.M. The rhizosphere. John Wiley, New York, 1990. - 127P.

130. Manen JF. A nodulin specifically expressed in senescent nodules of winged bean in a protease inhibitor / JF. Manen, P. Simon, J-C. Van Slooten, M. Osteras, S. Frutiger, GJ.Hughes // Plant Cell, 1999. V.3 -P.259-270.

131. Marsh J.F. Analysis of arbuscular mycorrhizas using symbiosis-defective plant mutants / J.F. Marsh, M. Schultze // New Phytologist, 2001. -V. 150.-P. 525-532.

132. Marques M.S. Dual inoculation of a woody legume (Centrolobium tomentosum) with rhizobia and mycorrhizal fungi in south-eastern Brasil / M.S. Marques, M. Ragano, M. Scotti // Agroforestry System, 2001. V. 52 -P. 107-117.

133. Mauffras JY. Les maladies racinaires du pois / JY. Mauffras, E. Wicker, J. Sanssene // Perspectives Agricoles, 1997. -V. 226. -P.68-75.

134. Meyer J.R. Selective influence on population of rhizoplane bacteria and actinomycetes by mycorrhizas formed Glomus fasciculatum / J.R.

135. Meyer, R.G. Linderman // Soil Biol. Biochem., 1986. T. 18. - № 2. - P. 191-196.

136. Mohandas S. Field response of tomato (Lycopersicon esculentum Mill "Pusa Ruby") to inoculation with a VA mycorrhizal fungus Glomus fasicula-tum and with Azotobacter vinelandii // Plant Soil, 1987. T. 98. - № 2. - P. 295-297.

137. Narula N. Effect of ammonia-excreting strain of Azotobacter chroo-coccum of cereals and legumes / N. Narula, K.G. Gupta // Zbl. Microbiol., 1987.-V. 142.-№5.-P. 363-368.

138. Newsham K.K. Arbuscular mycorrhiza protect an annual grass from root pathogenic fungi in the field / K.K. Newsham, A.H. Fitter, A.R. Watter-son //Journal of Ecology, 1995. -V. 83 -P.991-1000.

139. Papavizas GC., Ayers WA. Aphanomyces species and their root diseases in pea and sugarbeet a review. - Washington, D.C., USA: US Department of Agriculture. — 1974.

140. Pacovsky R.S. Nutrient and growth interactions in soybeans colonized with Glomus fasciculatum and Rhizobium japonicum / R.S. Pacovsky, G. Fuller, A.E. Stafford, E.A. Paul // Plant Soil, 1986. T. 92. - № 1. - P. 37-45.

141. Park S.J. Inheritance of nitrate-tolera pernodulation in EMS induced mutants of common (Phaseolus vulgaris L.) / S.J. Park, B.R. Butterly // J. Hered., 1989. V. 80. - P. 488.

142. Paul E.A. Soil microbiology and biochemistry / E.A. Paul, F.E. Clark // Academic Press, San Diego, Calif., 1996.

143. Paula M.A. Efeito de micorrizas vesicular-arbusculares no cresci-mento, nodulacao e acumulo de nitrogenio pela soja / M.A. Paula, J.O. Siqueira // Pesq. agropec. brasil, 1987. T. 22. - № 2. - P. 171-178.

144. Paulitz T.S. Interactions between fluorescent pseudomonads and VA mycorrhizal fungi / T.S. Paulitz, R.G. Linderman // New Phytol., 1989. V. 13. — P.37-45.

145. Phillips D.A. // Annu Rev. Plant Physiol., 1980. V. 11. - P. 29-49.

146. Pirozynski K.A. Geological history of the Glomaceae, with particular reference to mycorrhizal symbiosis / K.A. Pirozynski, Y. Dalpe // Symbiosis, 1989.-V. 7.-P. 1-36.

147. Plazinski J. Influence of Azospirillum strains on the nodulation of clovers by Rhizobium strains / J. Plazinski, B.G. Rolfe // Applied and Environmental Microbiology, 1985. -V. 49-P. 984-989.

148. Plazinski J. Interaction of Azospirillum and Rhizobium strains leading to inhibition of nodulation / J. Plazinski, B.G. Rolfe // Applied and Environmental Microbiology, 1985a. -V. 49-P. 990-993.

149. Pradys D. Localization of a protease in protoplast preparations in infected cells of ranch bean nodules / D. Pradys, L. Dimitrijevic, J. Rigaud // Plant Physiology, 1991. V. 97. - P. 1174-1180.

150. Pradys D. Proteases from French-bean host-cells: in vitro effects on bacteroids / D. Pradys, J-C. Trinchant, J. Rigaud // Physiologie Vegetale, 1986.-V. 24.-P. 179-186.

151. Pradys D. Proteolysis during development and senescence of effective and plant gene-controlled ineffective alfalfa nodules / D. Pradys, C.P. Vance//Plant Physiology, 1993.-V. 103. -P.379-384.

152. Rajapakse S. Influence of phosphorus level on VA mycorrhizal colonization and growth of cowpea cultivars / S. Rajapakse, D.A. Zuberer, J.C. Miller//Plant Soil, 1989.-Т. 114. № 1.-P. 45-52.

153. Rao A. Aeroponic chambers for evaluating resistance to Aphanomy-ces root rot of peas (Pisum sativum) / A. Rao, ET. Gritton, GR. Grau, LA. Peterson // Plant Disease, 1995. V.79. - P. 128-132.

154. Remy W. Four hundred million years-old vesicular arbuscular my-corrhizae / W. Remy, T.N. Taylor, H. Hass, H. Kerp // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1994.-V. 91.-P.l 1841-11843.

155. Rosendahl S. Interactions between the vesicular- arbuscular mycorrhizal fungus Glomus fasciculatum and Aphanomyces euteiches root rot of peas // Phytopathology, 1985. V.l 14. - P.31-40.

156. Simon L. Origin and diversification of endomycorrhizal fungi and coincidence with vascular plants / L. Simon, J. Bousquet, RC. Levesque, M. Lalonde // Nature, 1993. V.363 - P.67-69.

157. Singh C.S. Associative effect of Azospirillum brasilense with Rh. ja-ponicum on nodulation and yield of soybean (Glucine max.) / C.S. Singh, N.S. Subba-Rao // Plant and Soil, 1979. V.53. - № 3. - P.387-392.

158. Singh O.S. Effects of phosphorus inoculation on nitrogen fixation, P uptake and yield of lentil (Lens culinaris Medic) grown on an unsterilized sandy soil / O.S. Singh, R.S. Singh // Environm. exper. Bot., 1986. T. 26. -№2.-P. 185-190.

159. Singh C.S. Interaction effect of Glomus fasciculatum and Azospirillum brasilense on yields of various genotypes of wheat (Triticum aestivum) in pots / C.S. Singh, J.S. Amawate, S.P. Tyagi, A. Kapoor // Zbl. Mikrobiol, 1990. T. 145. - № 3.- S. 203-208.

160. Smith S.E. Effects of mycorrhizal infection on plant growth, nitrogen and ihosphorus nutrition in glasshouse-grown Allium сера L. / S.E. Smith, B.J. John, F.A. Smith, J.-L. Bromley // New Phytol, 1986. T. 103. - № 2. -P.359-373.

161. Smith S.E. Structure and function of the interfaces in biotriphic sym-bioses as they relate to nutrient transport / S.E. Smith, F.A. Smith // New Phytol., 1990.-V. 114.-P.1-38.

162. Sprent J.I. Evolution and diversity in the legume-rhizobium symbiosis -chaos theory//Plant and Soil, 1994.-V. 161.-P. 1-10.

163. Steenhoudt O. Azospirillum, a free-living nitrogen-fixing bacterium closely associated with grasses: genetic, biochemical and ecological aspects / O. Steenhoudt, J. Vanderleyden // FEMS Microbiol Rev, 2000. V. 24. -P. 487-506.

164. Subba-Rao N.S. The unique root-nodule symbiosis between Rhizo-bium and aquatic legume, Neptunia natans (L.f.) Drace / N.S. Subba-Rao, P.P. Mateos, D. Baker, H.S. Pankratz, J. Palma, F. B. Dazzo, J.A. Sprent // Planta, 1995. —V. 196.-P. 311-320.

165. Subramanian K.S. Arbuscular mycorrhizas and water relations in maize under drought stress at Tasseling / K.S. Subramanian, C. Charest, L.M. Dwyer, R.I. Hamilton // New Phytologist, 1995. V.l29 - P.643-650.

166. Tchebotar V.K. The use of the GUS-reporter gene to study the effect of Azospirillum- Rhizobium coinoculation on nodulation of white clover / V.K. Tchebotar, U.G. Kang, C.A. Jr Asis, S. Akao // Biol Fertil Soils, 1998. — V.27 — P.349-352.

167. Thomashow L.S. Role of a phenazine antibiotic from Pseudomonas fluorescens in biological control of Gaeumannomyces graminis var. tritici / L.S. Thomashow, D.M. Weller // J.Bacteriol., 1988. V. 170. - P. 34993508.

168. Tilman D. Forecasting agriculturally driven global environmental change / D. Tilman, J. Fargione, B. Wolff, C. D'Antonio, A. Dobson, R.

169. Howarth, D. Schindler, W.H. Schlesinger, D. Simberloff, D. Swackhamer // Science 292, 2001. P. 281 -284.

170. Vance C.P. Symbiotic nitrogen fixation and phosphorus acquisition. Plant nutrition in a world of declining renewable resources // Plant Physiology, 2001.-V. 127.-P. 390-397.

171. Vance C.P. Nitrogen fixation in agriculture: application and perspectives / C.P. Vance, P.H. Graham // Nitrogen fixation: fundamentals and applications/ Eds Tikhonovich I et al. Dordrecht; Boston; London: Kluwer Acad. Publ., 1995. P.77-86.

172. Vance C.P. / C.P. Vance, G.H. Heichel // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1991. V. 42. - P. 373-392/

173. Vejsadova H. Effect of the VAM fungus Glomus sp. on the growth and yield of soybean inoculated with Bradyrhizobium japonicum / H. Vejsadova, D. Siblikova, H. Hrselova, V. Vancura // Plant Soil, 1992. V. 140. -P.121-125.

174. Verma L.N. Role of biotechnology in supplying plant nutrients in the nineties / L.N. Verma, P. Bhattacharyya // Fertil. News, 1990. T. 35. -№12.-P. 87-97.

175. Waterer D.R. Phosphorus concentration and application interval influence growth and mycorrhizal infection of tomato and onion transplants /

176. D.R. Waterer, R.R. Coltman // J. Am. Soc. Hortic. Sc, 1988. Т. 113. - № 5.1 P.704-708.

177. Xavier L.J.C. Selective interactions between arbuscular mycorrhizal fungi and Rhizobium leguminosarum bv. Viceae enhance pea yield and nutrition / L.J.C. Xavier, J.J. Germida // Biol Fertil Soils, 2003. V. 37 -P.261-267.

178. Yahalom E. Azospirillum effect on susceptibility to Rhizobium nodu-lation and on nitrogen fixation of several forage legumes/ E. Yahalom, Y.• Ocon, A. Dovrat // Can. J. Microbiol., 1987. V. 33. - P. 510-514.

179. Zambolin L. Redaction of the effects of pathogenic, root-infection fungi on soybean by the mycorrhizal fungus Glomus mosseae / L. Zambolin, NC. Schenck//Phytopathology, 1983. V. 73. -P. 1402-1405.

180. Zanetti S./ S. Zanetti, U.A. Hartwig, A. Luscher, T. Hebeisen, G.R. Hendrey, H. Blum, J. Nosberger // Plant Physiol, 1996. V. 63. - P. 231245.i t