Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Половая цикличность у коров и её коррекция при анафродизии иммуномодулятором тимогеном
ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Автореферат диссертации по теме "Половая цикличность у коров и её коррекция при анафродизии иммуномодулятором тимогеном"

На правах рукописи

ииЭ47£ЗВВ2

ПЕНЗЕВА Мария Николаевна

ПОЛОВАЯ ЦИКЛИЧНОСТЬ У КОРОВ И ЕЁ КОРРЕКЦИЯ ПРИ АНАФРОДИЗИИ ИММУНОМОДУЛЯТОРОМ ТИМОГЕНОМ

03.00.13 - физиология

- 1 ОПТ 2009

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Белгород 2009

003478662

Работа выполнена в ФГОУ ВПО «Белгородская государственная сельскохозяйственная академия».

Научный руководитель: Заслуженный ветеринарный врач РФ,

доктор биологических наук, профессор Безбородое Николай Васильевич

Официальные оппоненты: доктор биологических наук, профессор

Семенютин Владимир Владимирович;

доктор биологических наук, профессор Фёдорова Марина Зотовна

Ведущая организация: ФГОУ ВПО «Орловский государственный

аграрный университет»

Защита состоится 2009 г., в часов на заседании

диссертационного совета Д 220.004.01 при ФГОУ ВПО «Белгородская государственная сельскохозяйственная академия» по адресу: 308503, Россия, Белгородская область, Белгородский р-н, пос. Майский, ул. Вавилова 1.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Белгородская государственная сельскохозяйственная академия».

Автореферат разослан « /9 2009 г.

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат биологических наук ""'/ Ю.Н.Литвинов

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. В современных условиях ведения молочного скотоводства основным вопросом является его рентабельность, которая напрямую зависит от интенсификации воспроизводства стада, когда происходит сокращение сроков производственного использования основного стада, ускоряется его оборот и повышаются темпы воспроизводства животных. В свою очередь интенсификация предусматривает максимальное использование биологических особенностей коров путем создания для них оптимальных условий кормления и содержания, предупреждающих возникновение различных функциональных расстройств. Однако все же при промышленном ведении животноводства у животных по разным причинам возникают различные функциональные нарушения репродуктивных органов, а так же вторичные иммуноде-фициты, на фоне которых, в том числе, развиваются функциональные расстройства яичников (Шяуратов И.А. и др., 2007). Поэтому изучение и контроль физиологических возможностей организма животных на всех этапах индивидуального развития является актуальным и требует дальнейшего совершенствования, глубокого анализа и внедрения новых методов восстановления нарушенных функций органов и систем.

Изучение регуляции половой функции у самок и механизма её нарушения, проявляющегося анафродизией на почве персистентного желтого тела, которое является следствием, главным образом гормонального дисбаланса половых циклов, вызванным алиментарными, этологическими и техногенными факторами, послужило основой для широкого применения в скотоводстве различных биологически активных средств, в том числе и иммуномодуляторов из числа пептидэрги-ческих соединений, способных за короткий период активизировать половую активность у самок животных с последующим плодотворным осеменением.

В настоящее время одним из перспективных препаратов, оказывающих выраженное влияние на становление гомеостаза организма, является синтетический иммуномодулятор Тимоген. (Иванов И., 1972; Арион В.Я., 1981; Гречко А.Т., 1988; Загородняя Э.Д., 1990; Гомазков O.A., 1992; Жоголев К.Д., 1992; Забродский П.Ф., 1999; Полянцев Н.И., 1999; Добрица В.П., 2001; Смирнов B.C., 2004). Его применение основано на использовании существующей в организме универсальной системы биорегуляции, действующей посредством клеточных медиаторов, представляющих собой относительно короткие аминокислотные последовательности. Основной функцией этих молекул является селективная передача информации при взаимодействии клеток иммунной, нервной и эндокринной систем.

Цель и задачи исследований. Целью работы было изучение биохимических и морфологических изменений в тканях организма коров с нормальным половым циклом и после применения глутамил-триптофанового комплекса (тимоге-на) животным с анафродизией по причине прогестероновой доминанты.

Для достижения цели были поставлены на разрешение следующие задачи:

- изучить динамику гормональных изменений в крови коров при нормальном половом цикле и анафродизии, до и после введения тимогена;

- исследовать биохимические и морфологические показатели крови, характеризующие уровень обменных процессов в организме коров опытных групп;

- определить степень активизации факторов естественной резистентности у животных;

- изучить характер гистоструктурных изменений в половых и вторичных иммунокомпетентных органах, отражающих их функциональное состояние после применения тимогена коровам с анафродизией;

- определить эффективность применения тимогена для восстановления воспроизводительной функции у коров при анафродизии вследствие наличия персистентного желтого тела яичника;

- определить экономическую эффективность применения тнмогена при восстановлении половой цикличности у коров с персистенгным желтым телом яичника

Научная новизна работы. Впервые комплексными исследованиями изучены механизмы активизации обменных процессов и эффективность восстановления половой цикличности у коров с анафродизией по причине про-гестероновой доминанты после применения глутамил-триптофанового комплекса (тимогена). Полученные результаты исследований свидетельствуют, что синтетический дипептидный комплекс тимогена в целом повышает имму-но-гормональную активность организма животных и способствует стимуляции гипофизарно-гонадальных связей в системе нейро-эндокринной регуляции половой цикличности, вызывая регрессию желтого тела и активизацию фолликулогенеза в яичниках. Определена эффективная дозировка и способ восстановления половой цикличности у коров с данным типом функционального изменения. Результаты проведенных исследований расширяют существующие представления о механизмах коррекции половой цикличности пептидными регуляторами, имеющими физиологическую направленность действия и являющихся экологически чистыми для организма животных.

Теоретическая и практическая значимость работы. На основании полученных результатов исследований эффективности применения синтетического биокорректора тимогена дано научное обоснование активизации глу-тамил-триптофаном иммуно-гормональных связей. Даны практические рекомендации к его применению в ветеринарии в качестве средства восстановления воспроизводительной функции при функциональных нарушениях деятельности яичников, вызванных персистентным желтым телом.

Предложенный производству способ восстановления половой цикличности может быть использован для повышения рентабельности молочного скотоводства и рекомендован к применению при проведении акушерско-гинекологической диспансеризации животных.

Положения, выносимые на защиту

1. Биокорректор тимоген, как пептидный регулятор, стимулирует имму-но-гормональную активность у коров при анафродизии, вызванной прогесте-роновой доминантой;

2. Активизация тимогеном обменных процессов способствует повышению естественной резистентности и лизису желтого тела яичника;

3. Гистоструктурные изменения тканей половых и вторичных иммуно-компетентных органов подтверждают биокорригирующие свойства тимогена;

4. Применение тимогена в качестве средства восстановления половой цикличности при анафродизии у коров, вызванной персистентным желтым телом яичника.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на научно-практических конференциях: в Санкт-Петербургской государственной академии ветеринарной медицины на международной научной конференции по патофизиологии животных, 2006 г.; в Казанской государственной академии ветеринарной медицины, на Всероссийской научно-практической конференции «Особенности физиологических функций животных в связи с возрастом, составом рациона, продуктивностью, экологией и этологией», 2006 г.; в Ставропольском ГАУ на международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарного акушерства, гинекологии и биотехники размножения животных», 2007 г.; в Пензенской государственной сельскохозяйственной академии на международной научно-производственной конференции, 2007 г.; в Орловском ГАУ на международной конференции «Трансферт инновационных технологий в животноводстве», 2008 г.; в Всероссийском научно-исследовательском ветеринарном институте патологии, фармакологии и терапии Россельхозакадемии (ГНУ ВНИВИ), г. Воронеж, 2009 г.

Публикация результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 9 статей и одно учебно-методическое пособие.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 172 страницах печатного текста. Список литературы включает 306 отечественных и 94 зарубежных источников. Работа иллюстрирована 48 таблицами и 17 рисунками.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Работа выполнялась на кафедре диагностики болезней, терапии, акушерства и хирургии Белгородской государственной сельскохозяйственной академии в 2005-2008 гг. Экспериментальная часть основных исследований работы и научно-производственные опыты были выполнены в ОПХ «Белгородское» Белгородского района и ООО «Интеко-Агро». Основным объектом исследований были коровы симментальской породы, находящиеся в условиях молочно-товарной фермы на привязи в зимне-стойловый период времени и с выгоном на летний период в открытые прифермские загоны, годовой удой которых составил 5400 кг. Тип кормления коров силосно-концентратный.

Опытные группы коров формировали по принципу пар-аналогов исходя из физиологического состояния, в соответствии с породной принадлежностью, возрастом, продуктивностью, живой массой, стадией полового цикла и после гинекологического обследования.

В контрольную группу были подобраны здоровые коровы с нормальным половым циклом. В остальные опытные группы были отобраны животные, которые через 60 суток после отела не пришли в половую охоту, т.е. находя-

щиеся в состоянии анафродизии по причине активного желтого тела яичника. Возникновение данного функционального состояния яичников устанавливали на основании учета искусственных осеменений и при помощи ректальных исследований репродуктивных органов коров. Персистентным считали желтое тело, задержавшееся и функционирующее в яичнике коровы после родов более 45 суток. Диагностировали его путем двукратных ректальных исследований коров с интервалом в 2 недели и ежедневного наблюдения за животными (А.Г. Нежданов 1986, 1996; В.П. Иноземцев 1995; Э.Н. Грига 1983,2001). Коров в состоянии половой охоты выявляли визуально по рефлексу неподвижности при проявлении всех феноменов, присущих стадии полового возбуждения. В дальнейшем опытных коров осеменяли двукратно с 12-ти часовым интервалом маноцервикальным методом.

В качестве средства для коррекции воспроизводительной функции у коров с персистентным желтым телом яичника применяли синтетический иммуномодуля-тор тимоген, в состав которого входят глутаминовая кислота и триптофан (рис. 1).

Рис. 1 - Структурная формула L-глутамил — L-триптофана (тимогена)

Согласно проведенным исследованиям данный дипептид имеет высокое сродство с мембранными рецепторами тимоцитов, что обуславливает его иммунобиологическую активность (P.M. Хаитов, 1988; В.В. Морозов, В.Х. Ха-винсон, В.В. Малинин, 2000). Его иммуномодулирующие свойства путем трансляции содержащегося в нем сигнала реализуются через систему вторичных посредников, часть из которых также имеет пептидную природу. Данные качества глутамил-триптофанового комплекса обуславливают широкий спектр биокорригирующих свойств и возможность его эффективного применения при различных функциональных состояниях.

В качестве дополнительно сравниваемых средств коррекции воспроизводительной функции у коров с персистентным желтым телом яичника были использованы препараты сурфагон (аналог Гн-РГ) и магэстрофан (аналог простаглацдина F2a).

Основные лабораторные исследования были проведены на кафедре диагностики болезней, терапии, акушерства и хирургии ФГОУ ВПО Белгородской ГСХА, в Белгородской областной ветеринарной лаборатории, Прохоров-ской районной ветеринарной лаборатории, вирусологической лаборатории Центра Госсанэпиднадзора Белгородской области, клинико-диагностической лаборатории Белгородской клинической поликлиники №1 и патологоанато-мической лаборатории Белгородской городской больницы №2.

Всего в опытах была задействована 231 корова, на которых были проведены исследования по следующей схеме (рис. 2).

NH

он

Рис. 2 - Алгоритм исследований

Для изучения гормональных, морфологических и биохимических показателей крови были подобраны семь групп коров. В одну (п=6) из которых входили здоровые коровы с нормальным половым циклом, пришедшие после отела в половую охоту, что было установлено визуально по рефлексу неподвижности при проявлении всех феноменов присущих стадии полового возбуждения и наличия фолликула в яичнике (ректально). В остальные шесть групп коров (п=36) были отобраны животные, находящиеся в состоянии анафроди-зии спустя 45 дней после отела по причине задержавшегося желтого тела яичника, что было подтверждено ректальными исследованиями.

В первой серии опытов было проведено изучение биохимических и морфологических показателей крови коров опытных групп с целью определения характера обменных процессов и степени влияния на них тимогена.

В 1-ю (контрольную) группу (п=6) были подобраны здоровые коровы с нормальным половым циклом, пришедшие после отела в половую охоту, у которых для исследований кровь отбирали из яремной вены - 1-й раз на 1-е, 2-й раз на 10-е и 3-й раз - на 20-е сутки полового цикла.

Во 2-ю (контрольную, п=6) группу отобрали животных, проявляющих признаки анафродизии (не более 60 суток) после отела по причине наличия задержавшегося желтого тела яичника. Исследования в этой группе животных проводили без применения препаратов (интактные животные).

Затем для установления оптимальной кратности введения тимогена были сформированы 3-я, 4-я и 5-я группы (п=6) коров которых подбирали по тем же критериям, что и во 2-ю группу. Коровам вводили 0,01% раствор тимогена внутримышечно в дозе 15 мл/гол/сут в течение 3-х суток в 3-й группе, 6-ти - в 4-й и 9-ти - в 5-й группе.

С целью выявления оптимального сочетания иммуномодулятора ткмогена с базисно применяемыми при задержавшемся желтом теле яичника препаратами: сурфагоном и магэстрофаном были сформированы 6-я и 7-я опытные группы по 6 коров в каждой. Так как предварительно было установлено, что наилучшие гематологические показатели имеет 5-я опытная группа животных, которой тимоген вводили в течение 9 суток, исходя из этого, тимоген вводили этим группам в течение 9 суток в аналогичной дозе. После чего на 10-е сутки 6-й группе вводили сурфагон 50 мкг/гол однократно внутримышечно, а 7-й магэстрофан 2 (0,5 мг) мл/гол однократно внутримышечно. Кровь для проведения исследований отбирали так же из яремной вены - 1-й раз до начала исследований, 2-й раз на 10-е сутки и 3-й раз - на 20-е сутки исследований. Причем, кровь в 6-й и 7-й группе отбирали на 10-е сутки до введения соответственно сурфагона и магэстрофана. У всех опытных групп контролировали время прихода в охоту и количество осеменений.

Исследования количественного содержания стероидных гормонов в сыворотке крови опытных коров, вырабатываемых в яичнике: прогестерона, тестостерона, эстрадиола-17р, а также кортизола, проводили методом твердофазного им-муноферменгаого анализа (Головаченко В.А., Полыцев Д.Г., 2000). Определение общего белка проводили в соответствии с методикой, основанной на взаимодей-

ствии белков с ионами меди в щелочной среде (окраска синего цвета) (Титов В.Н., Творогова Т.Г., 1995; Лабораторные методы исследования в клинике, 1987). Определение альбуминов, а, ß, у-глобулинов в сыворотке крови проводили с помощью метода учета протекания электрофореза на бумаге (Kohn J., 1975; Сентебова H.A., Медведьева JI.A., Александровская Т.Н., 1978). Концентрацию глюкозы в сыворотки крови определяли энзиматическим колориметрическим методом без депротеинизации (Trinder Р., 1969; Городецкий В.К., Селиванив И.А., 1969; Лабораторное дело, 1976; Кондрахин И.П., 2004). Триацилглицерины определяли энзиматическим колориметрическим методом с помощью катапизирования липаз-ной реакции гидролиза триацшштцерина с образованием жирных кислот и экви-молярного количества глицерина (Trinder Р., 1969; Кондрахин И.П., 2004). Для определения концентрации холестерола использовали энзиматический колориметрический метод гидролиза эфиров холестерола холестеринэстеразой (ZIatkis A., ZakB., Boyle A.I., 1958; Trinder P.,1969; Кондрахин И.П., 2004). Определение активности аланинаминотрансферазы (АлАТ) и аспартатаминотрансферазы (АсАТ) проводили с помощью унифицированного метода Райтмана-Френкеля. (Вилкинсон Д., 1981; Reitman S., Frankel S.,1957; Лабораторные методы исследования в клинике, 1987). Для определения активности щелочной фосфатазы (ЩФ) использовали унифицированный метод (Bessey O.A.,1940). Лизоцимную активность сыворотки крови (ЛАСК) определяли с помощью фотоэлекгроколометри-ческого метода в модификации отдела зоогигиены УНИИЭВ (1979) с применением суточной культуры Micrococcus lysodeiticus, содержащей 500 млн. микробных тел в 1 мл (Храбустовский И.Ф., и др. 1974). Бактерицидную активность сыворотки крови (БАСК) определяли фотонефелометрическим методом так же по методике отдела зоогигиены УНИИЭВ (1979) с использованием суточной агаровой культуры Е. Coli, содержащей в 1 мл 2 млрд. микробных тел (Чумаченко В.Е., 1990). Определение фагоцитарной активности нейтрофилов сыворотки крови (ФАНСК) осуществляли по методу, основанному на учете числа бактерий, захваченных нейтрофилами в процессе их совместного инкубирования в термостате (Чумаченко В.Е., 1990). Содержание гемоглобина в крови определяли с помощью гемиглобинцианидного метода (метод Drabkm) (Смирнов И.В., Контуганов H.H., Майорова В.В., 2000). Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ) осуществляли с помощью унифицированного микрометода Панченкова (Коблов Л.Ф., 1979). Подсчет количества эритроцитов и лейкоцитов проводили в счетной камере Горяева (Коцдрахин И.П., 2004). Дифференциальный подсчет лейкоцитов (лейкограмму) проводили согласно общепринятой методике (Бажибина В Л., 1974).

Полученный цифровой материал был статистически обработан (Лакин Г.Ф., 1990). Результаты рассматривались как достоверные, начиная со значения р<0,05.

Вторая серия опытов включала проведение исследований по изучению гистоструктурных изменений в половых и вторичных иммунокомпетенгных органах подопытных коров. Для исследования гистопрепаратов органов были подобраны две группы животных по 3 коровы в каждой с задержавшимся

желтым телом яичника. Первой группе (п=3) животных вводили тимоген в дозе 15 мл/гол/сут. 0,01% р-ра внутримышечно в течение 9-ти суток. Второй группе (п=3) животных препарат не вводили (контрольная). В первой группе по окончанию курса введения препарата (на 12-й день), а во второй спустя 12 дней после начала исследований производили забой и отбор органов (яичники, матка, лимфоузел, селезенка, печень) для приготовления гистопрепаратов. Окрашивание гистосрезов согласно методам классической гистотехники проводили гематоксилин-эозином (Гудков Д.Д., 2001). Микроскопическое исследование и фотодокументирование полученных материалов проводили на микроскопе ЛОМО и микрофотонасадке ФН-11.

Третью серию опытов проводили с целью определения эффективности применения иммуномодулятора тимогена в качестве средства коррекции половой цикличности у коров с задержавшимся желтым телом яичника. Были подобраны 5 групп коров. Животным 1-й (п=32) группы вводили внутримышечно 0,01% раствор тимогена в дозе 15 мл/гол/сут. в течение 9 суток; 2-й (п=26) группе вводили сурфагон 50 мкг/гол однократно, внутримышечно, 3-й (п=26) группе - магэстрофан 2 мл/гол однократно, внутримышечно. А в 4-й (п=32) и 5-й (п=67) группах коров комплексно применяли тимоген в течение 9 суток в аналогичной с 1-й группой дозе с однократным введением на 10-е сутки 4-й группе сурфагона (50 мкг/гол) и 5-й группе магэстрофана (2 мл/гол).

Учет эффективности применения тимогена контролировали после курса обработки по следующим показателям: времени наступления половой цикличности, количеству осеменений, проценту оплодотворенных животных и индексу осеменения.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 3.1. Содержание стероидных гормонов в крови коров

Полученные данные изменения уровня стероидных гормонов, формирующих половую цикличность, показали (рис.3, За), что у коров 1-й группы при нормальном половом цикле в период наступления половой охоты уровень прогестерона был минимальным (0,46±0,08 нмоль/л). При сравнении с уровнем прогестерона на начало исследований во 2-й группе (наличие активного желтого тела яичника) при анафродизии у коров, где он составил 2,58±1,05 нмоль/л, концентрация гормона была ниже в 5,5 раза. Аналогичная картина повышения уровня в начале исследований по сравнению с количеством прогестерона в 1-й группе отмечена у коров 3-й, 4-й, 5-й, 6-й и 7-й групп соответственно в: 9,2; 5,4; 22,9; 9,2 и 23,9 раза. Повышенный уровень прогестерона приводит к секреторной трансформации пролиферирующего под влиянием эстрогенов эндометрия, блокирует гипо-таламо-гипофизарно-яичниковые связи по механизму обратной связи, способствует активизации катаболических и других процессов, блокирующих наступление половой цикличности (антиэстрогенный эффект).

Через 10 суток исследований у коров 1-й группы повышается уровень прогестерона в 17,3 раза от первоначального значения, что соответствует лю-

теальной фазе полового цикла. В крови интактных коров 2-й группы при анафродизии эта тенденция повышения была выражена в 1,7 раза, а у животных 3-й, 4-й, 5-й, 6-й и 7-й групп после введения тимогена к 10-м суткам отмечено снижение уровня прогестерона соответственно в: 1,6; 3,5; 1,6; 1,8; и 4 раза. Данные изменения уровня гормона после введения тимогена характеризуют биокорригирующую направленность действия препарата, что проявляется в лизисе клеток желтого тела, вырабатывающего прогестерон и тормозящего наступление половой цикличности.

Концентрация эстрадиола-17р в опытных группах за весь период исследований не имела значимых изменений. Однако у коров 1-й группы прослеживаются три периода изменения концентрации эстрогенов: 1-й период - во время половой охоты, 2-й - в середине цикла и 3-й - к концу цикла при наступлении следующей половой охоты (Сысоев A.A., 1978). Эти данные согласуются с результатами исследований других авторов (Henricks D.M., 1972; Mason B.D. et al., 1972). В группах № 3-7 коров, где вводили тимоген, отмечена аналогичная тенденция уменьшения к 10-м суткам уровня эстрадиола-17р.

Полученные результаты изменения концентрации кортизола в сыворотке крови коров опытных групп показали, что при нормальном половом цикле в 1-й группе идет нарастание уровня гормона. У коров 2-й группы с активным желтым телом повышение колебаний кортизола в течение 20-и дней исследований крайне незначительно. У животных 3-й и 4-й групп, где вводили тимоген соответственно в течение 3-х и 6-и дней, так же отмечена тенденция повышения кортизола к 20-м суткам. Иную картину изменения гормона наблюдали в 5-й, 6-й и 7-й группах, где концентрация кортизола в сыворотке крови наоборот снизилась к 10-му и последующим дням (очевидно, вследствие введения тимогена в течение 9-и дней). Снижение кортизола указывает на уменьшение ответной реакции организма на стресс и увеличение выработки АКТГ по принципу обратной связи. Кроме того, достоверное снижение к 10-м суткам кортизола у коров 6-й группы и тенденция его снижения у животных 7-й группы указывают на повышение активности гиалуронидазы, являющейся активным соединением синтеза гиалуроновой кислоты и в последующем про-стагландинов (Зайцев С.Ю. с соавт., 2005).

Уровень тестостерона в крови коров 1-й группы имел тенденцию незначительного повышения к 10-м суткам (на 21,7%) и достоверно увеличился в 1,6 раза к 20-м суткам исследований. Аналогичная картина изменений отмечена у коров 5-й группы, где к 10-м суткам повышение тестостерона было в 4,7 раза. Учитывая это, возможно предполагать, что фермент аромаггаза, содержащийся в печени, жировой ткани и клетках гранулезы яичников, превращает некоторое количество тестостерона в эстрадиол и тем самым способствует запуску половой цикличности (Gortner R., 2001 ; Snyder Р J., 2001 ; Nieschlag Е., 2005).

6-* 7-я группа

Ковшол

Тестостерон

К|>П1|ИО.|

Ткгостики

6■ 7-я группа

ж ш

Г1ГП 1 в

5• &я 7-я группа

Содержание гормонов в крови коров: на 1-е сутки исследования ........Итон есгстт.........__................ )сп)атол - 17В___

на 10-е сутки исследования

Пплгргтапли _____^ГТПЯПИПЛ — 17И

Рис. 3 - Содержание гормонов в крови коров за период исследований

на 20-е сутки исследования

Рис. 3 а - Содержание гормонов в крови коров на 20-е сутки исследований

3.2. Содержание глюкозы и белковых компонентов в крови коров

Содержание глюкозы в крови коров опытных групп соответствовало физиологическим значениям и имело малозначимые изменения за период исследований. Отмечена тенденция незначительного снижения количества глюкозы к 10-м суткам исследований у коров 3,4 и 5-й групп.

У животных 1-й (контрольной) группы к 20-м суткам исследований наблюдали тенденцию снижения количества общего белка в крови на 5,1%. Во 2-й группе коров его содержание мало изменилось. А вот в 3-й, 4-й, 6-й и 7-й группах отмечено незначительное повышение его уровня от пониженного в начале исследований до пределов физиологической нормы на 20-е сутки, что характеризует биокорригирующий характер действия тимогена.

Среди изменений в белковых фракциях на 10 - 20-е сутки следует выделить повышение альбуминов, а - и р - глобулинов у коров 4-й группы. Отмеченные изменения согласуются с ранее проведенными исследованиями других авторов, где установлен наиболее оптимальный курс применения тимогена с целью вызывания иммуномодулирующего эффекта — 7 дней. Повышение уровня альбуминов от изначального на 7,0%, очевидно, связано с активизацией его синтеза в печени под действием пептидов тимогена.

3.3. Содержание липидных компонентов в крови коров

Концентрация липидных компонентов в крови коров 1-й группы на 1-е сутки исследований была следующей: триацилглицеринов - 0,46±0,05 ммоль/л и хо-

лестерола- 1,55±0,15 ммоль/л. Через 10 суток концентрация изучаемых показателей практически не изменилась и составила: триацилглицеринов - 0,47±0,06 ммоль/л; холестерола - 1,55±0,20 ммоль/л. По окончанию периода наблюдений к 20-м суткам был отмечен подъем уровня липидов в крови коров: триацилглицеринов на 12,8% - 0,53±0,07 ммоль/л, а холестерола на 5,2% - 1,63±0,16 ммоль/л.

Схожее содержание липидов отмечено и у коров других групп. Однако, в отличие от 1-й и 2-й группы, в остальных группах наметилась тенденция снижения уровня триацилглицеринов к концу исследований. Хотя эти изменения были незначительными и находились в пределах физиологических значений, возможно полагать, что происходит усиление обменных процессов под действием пептидов тимогена.

3.4. Ферментативная активность крови коров.

Результаты активности ферментов в крови коров опытных групп показали, что наиболее значимыми следует считать снижение АсАТ к 10-м суткам в 3-й группе коров (в 2 раза) и повышение к этому времени АсАТ у коров 6-й группы (на 25,5%). Тенденция незначительного повышения АсАТ отмечена уже у 4-й и последующих групп. Курс введения тимогена в течение 3-х суток показал наиболее сильное влияние препарата на скорость выведения ферментов. Таким образом, снижение активности АсАТ у коров 3-й группы отражает биокоррегирующее влияние тимогена. Отмеченная тенденция снижения активности ЩФ после введения тимогена в 3 - 7-й группах так же свидетельствует о нормализации обменных процессов и функции печени в организме животных.

3.5. Лейкоцитарная формула крови коров

Содержание отдельных видов лейкоцитов в крови коров показало, что в основном эти значения были в пределах физиологической нормы. У коров 1-й группы отмечено снижение к 10-м суткам уровня лимфоцитов на 22,0%, такое снижение было кратковременным, и к 20-м суткам уровень лимфоцитов вернулся к исходным показателям. Снижение количества лимфоцитов возможно вследствие смены физиологического состояния животных в лютеальную фазу полового цикла.

3.6. Показатели естественной резистентности

Изучение гуморальных факторов неспецифического иммунитета показало (рис. 4), что наиболее выраженными были изменения у коров 3-й - 7-й групп. В 3-й группе, где вводили один тимоген (3 дня), превышение к 10 - 20-м суткам исследований от первоначального уровня по бактерицидной активности составило в 2,4 раза. В 4-й группе, где вводили тимоген в течение 6-и дней, отмечено уже повышение бактерицидной (на 45,6%) активности крови и фагоцитарной активности нейтрофилов на 13,1% от исходного состояния. В 5-й группе тимоген вводили 9 дней, активизация факторов неспецифического иммунитета отмечена по бактерицидной (повышение на 66,8%), фагоцитарной (повышение на 15,9%) и лизоцимной (повышение на 50,8%) активностям. Подобная динамика изменений ответной иммунной реакции организма сохранилась к 10-м - 20-м суткам у коров 6-й и 7-й групп.

Показатели неспецифическои резистентности крови коров: на 1-е сутки исследования

на 10-е сутки исследования

на 20-е сутки исследования

Ш 7-я группа

Рис. 4 - Показатели естественной резистентности

Таким образом, суммарное превышение от исходного состояния к 20-м суткам факторов естественной резистентности составило: 1-я группа - 10,7%; 2-я - 18,2%; 3-я - 20,5%; 4-я - 10,5%; 5-я - 53,6%; 6-я - 53,7%; 7-я - 74,2%. Данные показатели отражают наиболее эффективную активизацию процессов ответной иммунной реакции организма коров с активным желтым яичника после комплексного применения тимогена в течение 9-и суток и простаглан-дина Рг- альфа (магэстрофана) на 10-е сутки.

3.7. Эффективность применения тимогена

Проведенные исследования по определению эффективности применения тимогена (табл.1) с целью восстановления половой цикличности у коров, имеющих анафродизию на почве задержавшегося желтого тела яичника, показали, что после введения тимогена в/мышечно в дозе 15 мл/гол/сут 0,01% р-ра в течение 9 дней совместно с простагландином Р2- альфа (магэстрофан) в дозе 2 (0,5 мг) мл/гол оплодотворилось 77,6% коров. Эффективность самостоятельного применения тимогена составила 59,4%, магэстрофана - 69,2% оплодотворенных коров.

3.8. Гистоструктурные изменения в половых и вторичных иммуно-компетснтных органах коров

Полученные данные гистоструктурных изменений в органах 1-й и 2-й опытных групп коров свидетельствуют об имеющихся одинаково протекающих процессах и их функциональной активности, что свидетельствует о неглубоких изменениях в яичниках, связанных с наличием персистентного желтого тела. Однако следует отметить, что в сравнении с контрольными животными 2-й опытной группы, у коров 1-й опытной группы после применения тимогена имеет место начало стадии обратного развития желтого тела. Со стороны эндометрия просматриваются пролиферативные изменения на фоне секретирующих желез, то есть наблюдается стимуляция деятельности эндометрия, которая способствует активизации половой цикличности и оплодо-творяемости животных. Кроме того, изменения со стороны лимфатических узлов и селезенки у животных после применения тимогена, свидетельствуют о повышении иммунной активности.

По своей активности и направленности действия влияние тимогена на обменные процессы было нормализующим, что характеризует глутамил-триптофановый комплекс препарата, как регуляторный дипептид. Отмеченные разнообразные изменения от действия глутамил-триптофанового комплекса на организм коров с активным желтым телом яичника объясняются, очевидно, не только непосредственным действием глутаминовой кислоты и триптофана на обменные реакции, но и модуляцией эффектов нервной и гуморальной регуляции. Таким образом, действие регуляторных пептидов и тесно взаимодействующих с ними рецепторно-ферментных систем и комплексов следует рассматривать как сложную систему организма, определяющую адаптационно-приспособительные реакции на всех уровнях ее интеграции.

Таблица 1 - Результаты применения препаратов коровам с анафродизией

Группа Вводимые препараты и их дозы Кол-во животных, гол. Появление половой цикличности, сут. (среднее) Количество осеменений после введения препаратов, гол. Количество оплодотворенных коров, (%) Индекс осеменения

1 2 3

1. Тимоген - 15 мл/гол/сут. в течение 9 дней 32 38,7 15 5 2 19 (59,4) 1,6

2. Сурфагон 50 мкг/гол однократно 26 33,4 14 3 1 16(61,5) 1,4

3. Магэстрофан 2 мл/гол однократно 26 31,6 16 2 1 18(69,2) 1,3

4. Тимоген - 15 мл/гол/сут. в течение 9 дней, на 10-е сутки сурфагон 50 мкг/гол однократно 32 35,0 17 4 1 21(65,6) 1,3

5. Тимоген - 15 мл/гол/сут. в течение 9 дней, на 10-е сутки магэстрофан 2 мл/гол (Р2а) однократно 67 29,5 56 6 2 52 (77,6) 1,4

ВЫВОДЫ

1. Глутамил-триптофановый комплекс (тимоген) индуцирует иммуно-гормонапьную активность, способствует активизации нейро-эндокринных связей, стимуляции половой цикличности и оплодотворяемости у коров.

2. Уровень прогестерона у коров с нормальным половым циклом повысился к 10-м суткам (лютеальная фаза полового цикла) после спонтанной половой охоты в 17,3 раза. При половой охоте уровень прогестерона был минимальным - 0,46±0,08 нмоль/л.

3. У коров с анафродизией по причине задержавшегося желтого тела яичника превышение концентрации прогестерона в крови к началу исследований было в 5,6 раз больше, чем при нормальном половом цикле. За период исследований (20 суток) уровень гормона не имел значимых изменений.

4. Гормонокорригирующее действие глутамил-триптофана при введении коровам с активным желтым телом яичника в дозе 15 лм/гол/сут, в течение 3,6, и 9-и суток, проявилось снижением прогестерона к 10-м суткам соответственно на: 38,6; 71,5; 40,0%.

5. Повышение концентрации тестостерона в 4,7 раза к 10-м суткам после введения тимогена коровам с активным желтым телом яичника способствует активизации и запуску половой цикличности. У коров с нормальным половым циклом уровень тестостерона к 10-м суткам повышался на 21,7%.

6. Биокорригирующий характер действия тимогена характеризуется повышением уровня общего белка в крови коров до физиологических значений.

7. Снижение активности АсАТ после введения тимогена в течение 3-х дней и тенденция снижения ЩФ после введения тимогена во все группах коров отражает гепатопротекторное действие глутамил-триптофанового комплекса препарата. Бионормализующие свойства дипептид+а+ тимогена проявляются в повышении до физиологической нормы уровня гемоглобина во всех группах, кроме контрольной с нормальным половым циклом и группы ин-тактных животных с прогестероновой доминантой.

8. Повышение от исходного состояния факторов естественной резистентности было наиболее выраженным в группах где применяли тимоген. Наиболее эффективной (повышение на 53,6%) ответная иммунная реакция организма к 10-м суткам отмечена после применения тимогена в течение 9-и суток. А к 20-м суткам исследований (повышение на 74,2%) после применения тимогена - 9 суток и магэстрофана на 10-е сутки.

9. Гистоструктурные изменения в половых органах отражают лютеоли-тические процессы в яичнике на 12-е сутки после начала введения тимогена в течение 9-и суток и стимуляцию пролиферативных процессов в эндометрии, характерных для наступления стадии возбуждения полового цикла.

10.Эффективность применения тимогена в/мышечно 15 мл/гол/сут 0,01% р-ра - 9 суток совместно с магэстрофаном в дозе 2 мл/гол коровам с анафродизией по причине задержавшегося желтого тела составила 77,6% оплодотворенных коров с индексом осеменения 1,4.

Эффективность самостоятельного применения тимогена в аналогичной дозе в течение 9-и суток составила 59,4% оплодотворенных коров с индексом осеменения 1,6, а после самостоятельного применения магэстрофана в дозе 2 мл/гол однократно оплодотворилось 69,2% животных с индексом осеменения 1,3.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Биокорректор тимоген рекомендуется в качестве стимулирующего половую цикличность у коров с персистентным желтым телом яичника средства, в дозе 15 мл/гол/сут 0,01% р-ра внутримышечно, в течение 9-и суток, самостоятельно или в комплексе с магэстрофаном на 10-е сутки, в дозе 2 мл/гол, внутримышечно, однократно.

Список опубликованных работ:

1. Пензева М.Н. Коррекция обменно-трофических процессов у коров с персистентным желтым телом яичника иммуномодулятором тимоген/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородое // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Баумана. - Казань, КГАВМ, 2006. - Том 185 - С. 229-233.

2. Пензева М.Н. Содержание стероидных гормонов в крови коров с персистентным желтым телом после обработки тимогеном/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородое // Мат. межд. науч. конференции по патофизиологии животных. - СПб, СПбГАВМ, 2006. - С. 37-38.

3. Пензева М.Н. Некоторые показатели обмена веществ у коров с персистентным желтым телом яичника после введения синтетического тимогена/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородое // Мат. межд. науч. конференции по патофизиологии животных. - СПб, СПбГАВМ, 2006. - С. 38-39.

4. Пензева М.Н. Биокоррегирующие свойства тимогена при индукции половой цикличности у коров с персистентным желтым телом яичника/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородое // Мэт. межд. науч.-практич. конференции. - Ставрополь, СГСХА, 2007. - С. 45-48.

5. Пензева М.Н. Коррекция обменно-трофических процессов у коров с персистентным желтым телом иммуномодулятором тимоген/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. науч.-произв. конференции. - Пенза, ПГСХА, 2007. - С. 73-75.

6. Пензева М.Н. Пептидный регулятор тимоген при комплексном лечении коров с персистентным желтым телом яичника/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. конференции. - Орел, Орл. ГАУ, 2008. - С. 150-152.

7. Пензева М.Н. Показатели естественной резистентности при различных вариантах применения иммуномодулятора тимогена для лечения коров с персистентным желтым телом яичника/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. науч.-практич. конференции «Современные проблемы ветеринарного обеспечения репродуктивного здоровья животных». - Воронеж, ВНИВИП-ФиТ, 2009. - С. 302-306.

8. Пензева М.Н. Применение синтетического тимогена при восстановлении половой цикличности у коров / М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. науч.-практич. конференции «Инновационные пути развития животноводства». - Черкесск, Аграрный инстшут Карачаево-Черкесской государственной технологической академии, 2009. - С. 341-345.

9. Пензева М.Н. Гистоструктурные изменения в половых и вторичных иммунокомпетентных органах после применения коровам с желтым телом иммуномодулятора тимогена / М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. ХП1 межд. науч.-практич. конференции. - Белгород, БелГСХА, 2009. - С. 75.

10. Пензева М.Н. Учебно-методическое пособие для самостоятельной работы студентов по дисциплине «Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных» / М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов, Зуев Н.П., Безбородов П.Н., Зуев С.Н. - Белгород: БелГСХА, 2009. - 50 с.

Формат 60x84, 1/16. Усл. печ. л. 1,0. Заказ № 3339. Тираж 100 экз. Типография ВВЦ

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Пензева, Мария Николаевна

ВВЕДЕНИЕ.

Актуальность темы.

Цель и задачи исследований.

Научная новизна работы.

Теоретическая и практическая значимость работы.

Положения, выносимые на защиту.

Апробация работы.

Публикации.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Морфофункциональное становление репродуктивной системы у коров.

1.2. Нейрогуморальная регуляция половой цикличности у самок животных.

1.3. Функциональные изменения деятельности яичников в послеродовой период.

1.4. Методы и средства возобновления половой цикличности у коров с персистентным желтым телом яичника.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Половая цикличность у коров и её коррекция при анафродизии иммуномодулятором тимогеном"

Актуальность темы. В современных условиях ведения молочного скотоводства основным вопросом является его рентабельность, которая напрямую зависит от интенсификации воспроизводства стада, когда происходит сокращение сроков производственного использования основного стада, ускоряется его оборот и повышаются темпы воспроизводства животных. В свою очередь интенсификация предусматривает максимальное использование биологических особенностей коров путем создания для них оптимальных условий кормления и содержания, предупреждающих возникновение различных функциональных расстройств. Однако все же при промышленном ведении животноводства у животных по разным причинам возникают различные функциональные нарушения репродуктивных органов, а так же вторичные иммунодефицита, на фоне которых, в том числе, развиваются функциональные расстройства яичников (Шкуратов И.А. и др., 2007). Поэтому изучение и контроль физиологических возможностей организма животных на всех этапах индивидуального развития является актуальным и требует дальнейшего совершенствования, глубокого анализа и внедрения новых, прогрессивных методов восстановления нарушенных .функций органов и систем.

Изучение регуляции половой функции у самок и механизма её нарушения проявляющегося анафродизией на почве персистентного желтого тела, которое является следствием, главным образом гормонального дисбаланса половых циклов, вызванным алиментарными, этологическими и техногенными факторами, послужило основой для широкого применения в скотоводстве различных биологически активных средств, в том числе и иммуномодуляторов из числа пептидэргических соединений, способных за короткий период активизировать половую активность у самок животных с последующим плодотворным осеменением.

В настоящее время одним из перспективных препаратов оказывающих t выраженное влияние на становление гомеостаза организма является синтетический иммуномодулятор Тимоген. (Иванов И., 1972; Арион В .Я., 1981; Гречко А.Т., 1988; Загородняя Э.Д., 1990; Гомазков O.A., 1992; Жоголев К.Д., 1992; Забродский П.Ф., 1999; Полянцев Н.И., 1999; Добрица В.П., 2001; Смирнов B.C., 2004). Его применение основано на использовании существующей в организме универсальной системы биорегуляции, действующей посредством клеточных медиаторов, представляющих собой относительно короткие аминокислотные последовательности. Основной функцией этих молекул является селективная передача информации при взаимодействии клеток иммунной, нервной и эндокринной систем.

Цель и задачи исследований. Целью работы было изучение биохимических и морфологических изменений в тканях организма коров с нормальным половым циклом и после применения глутамил-триптофанового комплекса (тимогена) животным'с анафродизией по причине прогестероновой доминанты.

Для достижения цели были поставлены на разрешение следующие задачи:

- изучить динамику гормональных изменений в крови коров при нормальном половом цикле и анафродизии, до и после введения тимогена;

- исследовать биохимические и морфологические показатели крови, характеризующие уровень обменных процессов в организме коров опытных групп;

- определить степень активизации факторов естественной резистентности у животных;

- изучить характер гистоструктурных изменений в половых и вторичных иммунокомпетентных органах, отражающих их функциональное состояние после применения тимогена коровам с анафродизией;

- определить эффективность применения тимогена для восстановления воспроизводительной функции у коров при анафродизии вследствие наличия персистентного желтого тела яичника;

- определить экономическую эффективность применения тимогена при восстановлении половой цикличности у коров с персистентным желтым телом яичника.

Научная новизна работы. Впервые комплексными исследованиями изучены механизмы активизации обменных процессов и эффективность восстановления половой цикличности у коров с анафродизией по причине прогестероновой доминанты, после применения глутамил-триптофанового комплекса (тимогена). Полученные результаты исследований свидетельствуют, что синтетический дипептидный комплекс тимогена в целом повышает иммуно—гормональную активность организма животных и способствует стимуляции гипофизарно-гонадальных связей в системе нейро-эндокринной регуляции половой цикличности, вызывая регрессию желтого тела и активизацию фолликулогенеза в яичниках. Определена эффективная дозировка' и способ восстановления половой цикличности у коров с данным типом функционального изменения. Результаты проведенных исследований расширяют существующие представления о механизмах коррекции половой цикличности пептидными регуляторами, имеющими физиологическую направленность действия и являющихся экологически чистыми для организма животных.

Теоретическая и практическая значимость работы. На основании полученных результатов исследований эффективности применения синтетического биокорректора тимогена дано научное обоснование активизации глутамил-триптофаном иммуно-гормональных связей. Даны практические рекомендации к его применению в ветеринарии в качестве средства восстановления воспроизводительной функции при функциональных нарушениях деятельности яичников, вызванных персистентным желтым телом.

Предложенный производству способ восстановления половой цикличности может быть использован для повышения рентабельности молочного скотоводства и рекомендован к применению при проведении акушерско-гинекологической диспансеризации животных.

Положения, выносимые на защиту.

1. Биокорректор тимоген, как пептидный регулятор, стимулирует иммуно-гормональную активность у коров при анафродизии, вызванной прогестероновой доминантой;

2. Активизация тимогеном обменных процессов, способствует повышению естественной резистентности и лизису желтого тела яичника;

3. Гистоструктурные изменения тканей половых и вторичных иммунокомпетентных органов, подтверждают биокорригирующие свойства тимогена;

4. Применение тимогена в качестве средства восстановления половой цикличности при анафродизии у коров вызванной персистентным желтым телом яичника.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на научно-практических конференциях: в Санкт-Петербургской государственной академии ветеринарной медицины на международной научной конференции по патофизиологии животных, 2006 г.; в Казанской государственной академии ветеринарной медицины, на Всероссийской научно-практической конференции «Особенности физиологических функций животных в связи с возрастом, составом рациона, продуктивностью, экологией и этиологией», 2006 г.; в Ставропольском ГАУ на международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарного акушерства, гинекологии и биотехники размножения животных», 2007 г.; в Пензенской государственной сельскохозяйственной академии на Международной научно-производственной конференции, 2007 г.; в Орловском ГАУ на международной конференции «Трансферт инновационных технологий в животноводстве»,

2008 г.; в Всероссийском научно-исследовательском ветеринарном институте патологии, фармакологии и терапии Россельхозакадемии (ГНУ ВНИВИ), г. Воронеж, 2009 г.

Публикации.

1. Пензева М.Н. Коррекция обменно-трофических процессов у коров с персистентным желтым телом яичника* иммуномодулятором тимоген/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородое // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Баумана. — Казань, КГАВМ, 2006. - Том 185 - С. 229-233.

2. Пензева М.Н. Содержание стероидных гормонов в крови коров с персистентным желтым телом после обработки тимогеном/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. науч. конференции по патофизиологии животных. - СПб, СПбГАВМ, 2006. - С. 37-38.

3. Пензева М.Н. Некоторые показатели обмена веществ у коров с персистентным желтым телом яичника после введения синтетического тимогена/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. науч. конференции по патофизиологии животных. - СПб, СПбГАВМ, 2006. - С. 38-39.

4. Пензева М.Н. Биокоррегирующие свойства тимогена при индукции половой' цикличности у коров с персистентным желтым телом яичника/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. науч.-практич. конференции. -Ставрополь, СГСХА, 2007. - С. 45-48.

5. Пензева М.Н. Коррекция обменно-трофических процессов у коров с персистентным желтым телом, иммуномодулятором тимоген/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. науч.-произв. конференции. - Пенза, ПГСХА, 2007.-С. 73-75,

6. Пензева М.Н. Пептидный регулятор тимоген при комплексном лечении коров с персистентным желтым телом яичника/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. конференции. — Орел, Орл. ГАУ, 2008. — С. 150-152.

7. Пензева М.Н. Показатели естественной резистентности при различных вариантах применения иммуномодулятора тимогена, для лечения коров с персистентным желтым телом яичника/ М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. науч.-практич. конференции «Современные проблемы ветеринарного обеспечения репродуктивного здоровья животных». - Воронеж, ВНИВИПФиТ, 2009. - С. 302-306.

8. Пензева М.Н. Применение синтетического тимогена при восстановлении половой цикличности у коров / М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. межд. науч.-практич. конференции «Инновационные пути развития животноводства». — Черкесск, Аграрный институт Карачаево-Черкесской государственной технологической академии, 2009. - С. 341-345.

9. Пензева М.Н. Гистоструктурные изменения в половых и вторичных иммунокомпетентных органах после применения коровам с желтым телом иммуномодулятора тимогена / М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов // Мат. XIII межд. науч.-практич. конференции. - Белгород, БелГСХА, 2009. - С. 75.

10. Пензева М.Н. Учебно-методическое пособие для самостоятельной работы студентов по дисциплине «Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных» / М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов, Зуев Н.П., Безбородов П.Н., Зуев С.Н. - Белгород: БелГСХА, 2009. - 50 с. J

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Пензева, Мария Николаевна

ВЫВОДЫ

1. Глутамил - триптофановый комплекс (тимоген) индуцирует иммуно-гормональную активность, способствует активизации нейро-эндокринных связей, стимуляции половой цикличности и оплодотворяемости у коров.

2. Уровень прогестерона у коров с нормальным половым циклом повысился к 10-м суткам (лютеальная фаза полового цикла) после спонтанной половой охоты, в 17,3 раза. При половой охоте уровень прогестерона был минимальным - 0,46±0,08 нмоль/л.

3. У коров с анафродизией по причине задержавшегося желтого тела яичника, превышение концентрации прогестерона в крови к началу исследований было в 5,6 раз больше, чем при нормальном половом цикле. За период исследований (20 суток) уровень гормона не имел значимых изменений.

4. Гормонокорригирующее действие (глутамил - триптофана, при введении коровам с активным желтым телом яичника в дозе 15 лм/гол/сут, в течение 3, 6, и 9-и суток, проявилось снижением прогестерона к 10-м суткам соответственно на: 38,6; 71,5; 40,0%.

5. Повышение концентрации тестостерона в 4,7 раза, к 10-м суткам после введения тимогена коровам* с активным желтым телом яичника, способствует активизации и запуску половой цикличности. У коров с нормальным половым циклом уровень тестостерона к 10-м суткам повышался на 21,7%.

6. Биокорригирующий характер действия тимогена характеризуется повышением уровня общего белка в крови коров до физиологических значений.

7. Снижение активности АсАТ после введения тимогена в течение 3-х дней и тенденция снижения ЩФ после введения тимогена во все группах коров, отражает гепатопротекторное действие глутамил - триптофанового комплекса препарата.

8. Бионормализующие свойства дипептида тимогена проявляются в повышении до физиологической нормы уровня гемоглобина во всех группах, кроме контрольной с нормальным половым циклом и группы интактных животных с прогестероновой доминантой.

9. Повышение от исходного состояния! факторов естественной резистентности было наиболее выраженным в группах где применяли тимоген. Наиболее эффективной (повышение на 53,6%) ответная иммунная реакция организма к 10-м суткам отмечена после применения тимогена в течение 9-и суток. А к 20-м суткам исследований (повышение на 74,2%), после применения тимогена - 9 суток и магэстрофана на 10-е сутки.

10. Гистоструктурные изменения в половых органах отражают лютеолитические процессы в яичнике на 12-е сутки после начала введения тимогена в течение 9-и суток, и стимуляцию пролиферативных процессов в эндометрии, характерных для наступления стадии возбуждения полового цикла.

11. Эффективность применения тимогена в/мышечно 15 мл/гол/сут 0,01%) р-ра - 9 суток совместно с магэстрофаном в дозе 2 мл/гол коровам с анафродизией по причине задержавшегося желтого тела, составила 77,6%) оплодотворнных коров с индексом осеменения 1,4.

Эффективность самостоятельного применения тимогена в аналогичной дозе в течение 9-и суток, составила 59,4% оплодотворенных коров с индексом осеменения 1,6, а после самостоятельного применения магэстрофана в дозе 2 мл/гол однократно, оплодотворилось 69,2% животных с индексом осеменения

1,3

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Биокорректор тимоген рекомендуется в качестве стимулирующего половую цикличность у коров с персистентным желтым телом яичника средства, в дозе 15 мл/гол/сут 0,01 % р-ра внутримышечно, в течение 9-и суток самостоятельно или в комплексе с магэстрофаном на 10-е сутки, в дозе 2 мл/гол, внутримышечно, однократно.

1.5. Заключение

Анализ литературных данных свидетельствует, что создание высокого уровня воспроизводства стада в молочном скотоводстве невозможно без эффективного осеменения, залогом которого является нормализация, активизация и коррекция нейро-эндокринных процессов в репродуктивной системе коров.

Репродуктивная система самок взаимосвязана со всеми органами и системами организма посредством нейроэндокринной регуляции, в которой центральное место занимает гипоталамус. Через него происходит интеграция информации поступающей из высших отделов центральной нервной системы, периферических эндокринных желез, и преобразование этих импульсов в гуморальный сигнал, направляемый в гипофиз, тем самым он оказывает влияние на всю эндокринную функцию организма. Этой системой прямых и обратных связей контролируются все сложные биохимические реакции в организме самок на протяжении всех стадий полового цикла, беременности и послеродового периода.

Показателями физиологически нормального состояния репродуктивной системы является проявление у коров в определенные сроки половой цикличности и последующая оплодотворяемость. Для наступления полноценных половых циклов необходимо своевременное завершение инволюционных процессов в половых органах коров после отела и отсутствие осложнений во время послеродового периода. Поэтому исследователи единодушны во мнении, что успешно решить эти вопросы можно только на основе глубоких знаний о нейроэндокринной регуляции воспроизводительной функции, сущности процессов протекающих в организме и половых органах животных в течение полового цикла, и в послеродовой период. Однако по данным литературы многие вопросы остаются до конца не раскрытыми, существуют значительные расхождения в оценке нормальной физиологии и ранних признаков нарушений инволюционных процессов в половых органах, что имеет огромное значение для организации ранней диагностики и контроля над течением послеродового периода и воспроизводительной» функцией животных.

В последние годы появилось значительное количество исследований посвященных применению в ветеринарной практике новых экологически безопасных методов направленной коррекции и активизации физиологических процессов за счет применения биорегулирующих препаратов. Такими например, являются препараты на основе регуляторных пептидов состоящие из 2—4-х аминокислотных остатков, которые способствуют нормализации обмена веществ, восстанавливают гомеостаз в организме животных, тем самым благоприятно влияют на инволюционные процессы, активизацию и коррекцию половой цикличности у коров.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Работа выполнялась на кафедре диагностики болезней, терапии, акушерства и хирургии Белгородской^ государственной сельскохозяйственной* академии в>2005 - 2008 гг. Экспериментальная часть основных исследований* работы и научно-производственные опыты были, выполнены- в ОПХ «Белгородское» Белгородского района и ООО «Интеко-Агро». Основным объектом исследований были коровы симментальской породы находящиеся в условиях молочно-товарной фермьг на привязи в зимне-стойловый период времени и с выгоном на летний период в открытые прифермские загоны, годовой удой которых составил 5400 кг. Тип кормления коров силосно-концентратный.

Опытные группы коров формировали по принципу пар - аналогов^ исходя из физиологического состояния в соответствии с породной принадлежностью, возрастом, продуктивностью, живой массой, стадией полового цикла и после гинекологического обследования.

В контрольную группу были подобраны здоровые коровы с нормальным половым циклом. В остальные опытные группы были отобраны животные, которые через 60 суток после отела не пришли в половую охоту, т.е.

5 !■ находящиеся в состоянии анафродизии по причине активного желтого тела яичника. Возникновение данного функционального состояния яичников устанавливали на основании учета искусственных осеменений и при помощи ректальных исследований репродуктивных органов коров. Персистентным считали желтое тело, задержавшееся и функционирующее в яичнике коровы после родов более 45 суток. Диагностировали его путем двукратных ректальных исследований коров с интервалом в 2 недели и ежедневного наблюдения за животными (А.Г. Нежданов 1986, 1996; В.П. Иноземцев 1995; Э.Н. Грига 1983, 2001). Коров в состоянии половой охоты выявляли визуально по рефлексу неподвижности при проявлении всех феноменов присущих стадии полового возбуждения. В дальнейшем опытных коров осеменяли двукратно с 12-ти часовым интервалом маноцервикальным методом. Через 3 месяца после осеменения комиссионноректальным исследованием определяли стельность коров.

В качестве средства для коррекции воспроизводительной функции у коров с персистентным желтым телом яичника применяли синтетический иммуномодулятор тимоген в состав, которого входят глутаминовая кислота и триптофан (рис. 1).

МН2

NN

ОН

НО О

НЫ

Рис. 1 Структурная формула Ь-глутамил — Ь-триптофана (тимогена)

Согласно проведенным исследованиям данный дипептид имеет высокое I сродство с мембранными рецепторами тимоцитов, что обуславливает его иммунобиологическую активность (Р.М1 Хаитов, 1988; В.В. Морозов, В.Х. Хавинсон, В.В! Малинин, 2000). Его иммуномодулирующие свойства путем трансляции- содержащегося в нем сигнала реализуются через систему вторичных посредников, часть из которых также имеет пептидную-природу. Данные качества глутамил-триптофанового комплекса, обуславливают широкий спектр биокорригирующих свойств и ч возможность его эффективного применения- при различных функциональных состояниях.

В настоящее время 0,01% раствор синтетического тимогена выпускает ЗАО-Медико-биологический научно-производственный комплекс «Цитомед» (г. Санкт-Петербург).

Тимоген как субстанция является мононатриевой солью дипептида, состоящего из остатков<глутаминовой кислоты и триптофана. Его химическая формула - С^НгоИзОзШ. Препарат представляет собой бесцветный прозрачный раствор без запаха. Тимоген совместим со всеми лекарственными» средствами.

Действие синтетического* дипептидного глутамил-триптофанового-комплекса тимогена основано на оказании' регулирующего влияния на реакции клеточного.« и гуморального'- иммунитета, активизации> процессов регенерации и обмена веществ, повышении неспецифической резистентности организма к неблагоприятным факторам внешней среды; а • так же нормализации метаболических процессов в организме.

Согласно результатам исследований на токсичность и безвредность 0,01% раствор тимогена по степени воздействия на организм относится к малоопасным веществам (4 класс опасности по- ГОСТ 12.1.007.76) и не обладает местно-раздражающими, гепатотоксическими, тератогенными, эмбриотоксическими и мутагенными свойствами. При попадании в кровоток тимоген быстро метаболизирует до составляющих его аминокислот, которые затем используются организмом в биосинтетических целях. Иных катаболитов в результате его введения не образуется. Период полураспада тимогена колеблется от 30 до 60 минут. Побочных явлений и осложнений при применении препарата не наблюдалось. Противопоказаний для его применения не установлено (Смирнов В.С.,'2004).

В качестве дополнительно сравниваемых средств коррекции воспроизводительной функции у коров с персистентным желтым телом яичника были использованы препараты сурфагон (аналог Гн-РГ) и магэстрофан (аналог простагландина Р2а), которые применяют в хозяйствах в-настоящее время в качестве базисно используемых отечественных препаратов при активизации половой цикличности у коров с данной' дисфункцией яичников.

Основные лабораторные исследования были проведены на кафедре диагностики болезней, терапии, акушерства и хирургии ФГОУ ВПО Белгородской ГСХА, в Белгородской областной ветеринарной лаборатории; Прохоровской районной ветеринарной лаборатории, вирусологической лаборатории Центра Госсанэпиднадзора Белгородской области, клинико-диагностической лаборатории Белгородской клинической поликлиники №1 и патологоанатомической лаборатории'Белгородской городской больницы №2.

Всего в опытах была задействована 231 корова, на которых были проведены исследования по следующей схеме (рис. 2).

Для изучения гормональных, морфологических и биохимических показателей крови были подобраны семь групп коров. В одну (п=6) из которых входили здоровые коровы с нормальным половым циклом, пришедшие после отела в половую охоту, что было установлено визуально по рефлексу неподвижности при проявлении всех феноменов присущих стадии полового возбуждения и наличия фолликула в яичнике (ректально). В остальные шесть групп коров (п=36) были отобраны животные находящиеся в состоянии анафродизии спустя 45 дней после отела, по причине задержавшегося желтого тела яичника, что было подтверждено ректальными исследованиями.

В первой серии опытов было проведено изучение биохимических и морфологических показателей крови коров опытных групп с целью

Рис. 2. Алгоритм исследований определения характера обменных процессов и степени влияния на них глутамил - триптофанового комплекса (тимогена).

В 1-ю (контрольную) группу (п=6) были подобраны здоровые коровы с нормальным половым циклом, пришедшие после отела в половую охоту, у которых для исследований кровь отбирали из яремной вены - 1-й раз на 1-е, 2-й раз на 10-е и 3-й раз — на 20-е сутки полового цикла.

Во 2-ю (контрольную, п=6) группу отобрали животных проявляющих признаки анафродизии (не более 60 суток) после отела по причине наличия задержавшегося желтого тела яичника. Исследования в этой» группе животных проводили без применения препаратов (интактные животные).

Затем для установления^ оптимальной кратности введения тимогена были сформированы 3-я, 4-я и 5-я группы (п=6), коров для которых подбирали по тем же критериям что-и во 2-ю группу. Коровам'вводили 0,01% раствор тимогена внутримышечно в дозе 15 мл/гол/сут в течение 3-х суток в 3-й-группе, 6-ти - в 4-й и 9-ти - в 5-й*группе.

С целью выявления- оптимального сочетания иммуномодулятора тимогена-с базисно» применяемыми при задержавшемся желтом теле яичника А препаратами: сурфагоном (ГН-РГ) и магэстрофаном- (простагландином Р2-альфа), были сформированы 6-я^и 7-я, опытные группы по 6 коров в каждой. Так как предварительно было установлено, что наилучшие гематологические показатели имеет 5-я опытная группа животных, которойттимоген вводили в течение 9 суток, исходя из этого, тимоген вводили этим группам в течение 9 суток в аналогичной дозе. После чего на 10-е сутки 6-й группе вводили сурфагон 50 мкг/гол однократно внутримышечно, а 7-й магэстрофан 2 (0,5 мг) мл/гол однократно внутримышечно.

Кровь для проведения исследований отбирали так же из яремной вены -1-й раз до начала исследований, 2-й раз на 10-е сутки и 3-й раз - на 20-е сутки исследований. Причем, кровь в 6-й и 7-й группе отбирали на 10-е сутки, до введения соответственно сурфагона и магэстрофана.

У всех опытных групп контролировали время прихода в охоту и количество осеменений.

Исследования количественного содержания стероидных гормонов в сыворотке крови опытных коров вырабатываемых в яичнике: прогестерона, тестостерона, эстрадиола-17р, а* также кортизола, проводили методом, твердофазного иммyнoфepмeнтнoгoi анализа (Инструкция Департамента государственного контроля качества, эффективности1 безопасности лекарственных средств и медицинской техники МЗ РФ* от 20.11.2000 г.): Данные измерения основаны на показаниях* спектрофотометра оптической I плотности связанных гормонов^ со1 специфическими.- антителами, фиксированными* в твердой' фазе, с последующим расчетом их концентрации по калибровочной кривой (Головаченко В.А., Полыцев-Д.Г., 2000).

Определение общего» белка проводили в соответствии с методикой; основанной на взаимодействии* белков с ионами меди в щелочной среде (окраска синего* цвета). При этом- фотометрическое ' определение интенсивности окраски давало результат соответствующей, концентрации общего белка, в пробе (Титов В.Н., Творогова Т.Г., 1995; Лабораторные методы исследования.в клинике, 1987):

Определение альбуминов, а, ß, у-глобулинов в, сыворотке- крови проводили с помощью1 метода учета протекания электрофореза на бумаге, принцип которого состоит в том; что смесь белков, под, воздействием постоянного электрического поля при определенном градиенте потенциалов и pH среде разделялась на фракции. Для подсчета числа и величины фракций использовали обработку бумажных полос красками, окрашивающими белки, с последующим количественным определением белковых фракций методом элюирования краски (Kohn J., 1975; Сентебова H.A., Мёдведьева JI.A., Александровская Т.Н., 1978).

Концентрацию глюкозы в сыворотки крови определяли энзиматическим-колориметрическим методом. без депротеинизации (Trinder Р., 1969; Городецкий В.К., Селиванив И.А., 1969; Лабораторное дело, 1976; Кондрахин

И.П., 2004). Глюкоза под действием фермента глюкозооксидазы окисляется до глюконолактона, а образующаяся перекись водорода при участии фермента пероксидазы способствует окислительному азосочетанию аминоантипирина и фенола с образованием, окрашенного соединения (хонониминовый краситель). При этом интенсивность окраски реакционной среды пропорциональна содержанию глюкозы в пробе и определяется фотометрически.

Триацилглицерины определяли энзиматическим колориметрическим методом с помощью катализирования липазной реакции гидролиза триацилглицерина с образованием жирных кислот и эквимолярного количества глицерина. В свою очередь глицерин при наличии АТФ гексокиназы и глицерофосфатазы окислялся кислородом воздуха с образованием эквимолярного количества перекиси водорода. При этом пероксидаза катализировала окисление хромогенных субстратов перекисью водорода в присутствии хромогенных субстратов и хлорфенола с образованием окрашенного продукта, интенсивность окраски которого прямо пропорциональна концентрации триглицеридов в пробе, что измерялось фотометрически (Trinder Р., 1969; Кондрахин И.П., 2004).

Для< определения концентрации холестерола использовали энзиматический колориметрический метод гидролиза эфиров холестерола холестеринэстеразой. Образовавшийся в результате гидролиза и имеющийся в пробе холестерин, окислялся кислородом воздуха под действием холестериноксидазы с образованием эквимолярных количеств перекиси водорода. Затем под действием пероксидазы перекись водорода окисляла хромогенные субстраты с образованием окрашенного • соединения, интенсивность окраски которого прямо пропорциональна концентрации холестерола в пробе, что также измерялось фотометрически (Zlatkis A., Zak В., Boyle A.I., 1958; Trinder Р., 1969; Кондрахин И.П., 2004).

Определение активности аланинаминотрансферазы (АлАТ) проводили с помощью унифицированного метода Райтмана-Френкеля.

Аланинаминотрансфераза катализировала в присутствии а—кетоглутарата переаминирование L-аланина с образованием пирувата1, содержание которого ■в -пробе определяли. фотометрически по реакции с 2,4-динитрофенилгидразином (Вилкинсон-Д., 1981).

Активность аспартатаминотрансферазы (АсАТ) также определяли при помощи ' унифицированного метода Райтмана-Френкеля.

Аспартатаминотрансфераа катализировала в-, присутствии* а-кетоглутората> переаминирование L—аспартата с образованием оксалоацетата. Его содержание в пробе так же измеряли фотометрически, по реакции с тем же веществом (Reitman S., Frankel S^,1957; Лабораторные методы исследования в клинике,- 1987).

Для определения^ активности щелочной' фосфатазы (ЩФ) использовали унифицированный метод по «конечной точке». Щелочная фосфатаза катализирует реакцию* гидролиза n-нитрофенилфосфата с образованием эквимолярного количества- n-нитрофенола и, фосфата. В связи с тем- что, скорость образования» n-нитрофенола прямо пропорциональна активности ЩФ ее измерения^проводилафотометрически (Bessey О.А.,1940).

Лизоцимную активность сыворотки крови* (ЛАСК) определяли с помощью, фотоэлектроколометрического метода в модификации отдела" зоогигиены, УНИИЭВ1. (1979) с npHMeHeHHeMv суточной^ культуры Micrococcus^ lysodeiticus,'содержащей. 500 млн. микробных тел в Л мл. Сущность метода, заключается в учете изменений оптической плотности, так как непрямая количественная оценка реакции лизоцима1 основана на его способности вызывать лизис бактерий (Храбустовский И.Ф., и др. 1974).

Бактерицидную активность сыворотки крови (БАСК) определяли фотонефелометрическим методом так же по методике: отдела зоогигиены УНИИЭВ- (1979) с использованием суточной агаровой культуры Е. Coli, содержащей в 1 мл 2 млрд. микробных тел. Сущность метода заключается в учете изменений оптической плотности среды, содержащей-микробную взвесь и сыворотку крови, вследствие угнетения размножения тест микроба испытуемой сывороткой (Чумаченко В.Е., 1990).

Определение фагоцитарной активности нейтрофилов сыворотки крови-(ФАНСК) осуществляли по методу основанному на учете числа бактерий, захваченных нейтрофилами в процессе их совместного инкубирования в термостате (Чумаченко В:Е., 1990).

Содержание гемоглобина в крови * определяли с помощью гемиглобинцианидного* метода (метод Drabkin). Принцип метода основан на взаимодействии гемоглобина с железосинеродистым калием (красная кровяная соль) в процессе которого происходит его* окисление до метгемоглабина (гем и глобин) образующего с ацетонциангидрином гемиглобинцианид (цианметгемогобин), интенсивность окраски которого пропорциональна, концентрации гемоглобина в крови и измеряется фотометрически при длине волны 540 (500-560) нм (Смирнов И.В., Контуганов H.H., Майорова В.В., 2000).

Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ) осуществляли с помощью унифицированного'микрометода Панченкова. Его суть5заключается» в том, что кровь, смешанная^'цитратом натрия, не свертывается гпри стоянии, а разделяется на два слоя: верхний - плазму, нижний - эритроциты; в зависимости от изменений химических и физических свойств, исследуемой4 крови оседание эритроцитов^ и разделение на слои1 происходит с различной, скоростью (Коблов Л.Ф;, 1979).

Подсчет количества эритроцитов проводили в счетной-камере Горяева в 5-ти больших квадратах, при разведении 20 мкл пробы крови в 4 мл изотонического или 3%-го раствора хлорида натрия.

Подсчет количества лейкоцитов осуществляли с помощью счетной камеры Горяева в 50 больших квадратах, при разведении 20 мкл пробы крови в 0,4 мл 3%-й ледяной уксусной кислоты (Кондрахин И.П., 2004).

Дифференциальный подсчет лейкоцитов (лейкограмму) проводили согласно их способности по-разному окрашиваться под воздействием красителя Романовского-Гимза и последующей дифференциацией их форм с помощью иммерсионной'системы! микроскопа при-помощи 11-клавишного счетчика лейкоцитов-(Бажибина В.Я., 1974).

Полученный цифровой материал был статистически обработан. При определении достоверности разницы» между показателями контрольных и опытных групп использовали аргумент Стъюдента и таблицу Фишера-Снедока по вычислению критерия достоверности (Лакин Г.Ф:, 1990)1 Результаты рассматривалисьжак достоверные начиная со значения р<0,05.

Вторая серия опытов.включала проведение исследований по изучению гистоструктурных. изменений в половых и вторичных иммунокомпетентных органов подопытных коров.

Для исследования- гистопрепаратов органов- были подобранны- две группы животных по 3- коровы в каждой с задержавшимся желтым телом яичника. Первой группе (п=3) животных вводили тимоген в дозе 15 мл/гол/сут. 0,01% р-ра внутримышечно^ в течение 9-ти суток; Второй группе (п=3) животных препарат не вводили (контрольная).

В первой группе по окончанию-курса введения препарата (на< 12-й день), а во. второй спустя 12 дней после начала исследований-производили забой и отбор* органов, (яичники, матка, лимфоузел, селезенка, печень)1 для приготовления- гистопрепаратов.- Консервацию органов * производили с помощью 10%-ного раствора' нейтрального» формалина. Окрашивание гистосрезов согласно методам классической гистотехники проводили гематоксилин-эозином (Гудков Д.Д., 2001). Микроскопическое исследование и фотодокументирование полученных материалов проводили на микроскопе ЛОМО и микронасадки ФН-11.

Третью серию,опытов,проводили с целью определения эффективности применения иммуномодулятора тимогена в качестве средства коррекции половой цикличности у коров с задержавшимся желтым телом яичника. Были подобраны 5 групп коров. Животным 1-й (п=32) группы вводили внутримышечно 0,01% раствор тимогена в дозе 15 мл/гол/сут. в течение 9 суток; • 2-й (п=26) группе вводили сурфагон 50 мкг/гол однократно, внутримышечно, 3-й (п=26) группе - магэстрофан 2 мл/гол однократно, внутримышечно. А в 4-й (п=32) и 5-й (п=67) группах коров комплексно применяли тимоген в течение 9 суток в аналогичной с 1-й группой дозе с однократным введением на 10-е сутки 4-й группе сурфагона (50 мкг/гол) и 5-й группе магэстрофана (2 мл/гол).

Учет эффективности применения тимогена, контролировали после курса обработки по следующим показателям: времени наступления половой цикличности, количеству осеменений, проценту оплодотворенных животных и индексу осеменения.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 3.1. Биохимические и морфологические показатели крови коров с нормальным половым циклом

До начала исследований содержание гормонов в сыворотке крови здоровых коров с нормальным половым циклом, пришедших в половую охоту после отела (1-я контрольная группа) (табл. 1) было следующим: прогестерон - 0,46±0,08 нмоль/л; эстрадиол-17Р - 0,43±0,07 нмоль/л; кортизол - 26,1 ±3,67 нмоль/л; тестостерон - 1,15±0,27 нмоль/л.

Через 10 суток показатели гормонов находились в следующих пределах: достоверно увеличилось в 17 раз содержание прогестерона - 7,97±1,76 нмоль/л, р<0,01; снизился уровень эстрадиола-17Р на 23,0% - 0,33±0,05 нмоль/л и кортизола на 3,4% — 25,2±4,2 нмоль/л; а тестостерона увеличился на 21,7%- 1,4±0,23 нмоль/л.

На 20-е сутки, картина содержания гормонов в крови коров 1-й опытной группы была следующей: прогестерон - 3,12±1,5 нмоль/л (снижение в 2,5 раза); эстрадиол-17р — 0,39±0,08 нмоль/л (повышение на 18,2%); кортизол -38,25±4,95 нмоль/л (повышение в 1,5 раза); тестостерон - 2,34±0,34 нмоль/л, (достоверное увеличение в 1,7 раза), р<0,05.

Полученные данные подтверждают ранее имеющиеся исследования, что у коров с нормальным половым циклом к середине лютеальной фазы повышается уровень прогестерона, а повышение тестостерона способствует возобновлению стадии возбуждения полового цикла.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Пензева, Мария Николаевна, Белгород

1. Аббасов Б.Х. К вопросу механизма действия гормональных и простагландиновых препаратов на функцию яичников/ Б.Х. Аббасов, А.-Ш.М. амарбаев, И.Ю. Бабаев. Тр. ин-та эксперим. биол. АН Каз.ССР, 1986. - №19. -С. 140-147.

2. Авдеенко B.C. Перинатальная патология и методы её коррекции у крупного рогатого скота: Автореф. дис. . .д.в.н. Воронеж, 1993. - 41 с.

3. Авдеенко B.C. Сроки завершения инволюционных процессов воспроизводительных органов у коров разного возраста/ B.C. Авдеенко// Науч. тр./ Сиб. науч.-иссл. и проектно-технологического ин-та животноводства. 1973. - Т. 27. - С. 63-65.

4. Акатов В.А. Энуклеация желтых тел яичников один из методов борьбы с яловостью коров/ В.А. Акатов// Тр./ Киргиз, филиал, ин-та биологии АН СССР. - 1950.-Вып. 8.-С. 3-38.у

5. Александровская О.В. Цитология, гистология и эмбриология/ О.В. Александровская, Т.Н. Радостина, H.A. Козлов. М.: Агропромиздат, 1987. -448 с.

6. Арион В.Я. Иммунологически активные факторы тимуса// Итоги науки и техники. Иммунология. 1981. -№9. - С. 10-50.

7. Ахмадеев А.Н. Биогеценотические основы повышения эффективности воспроизводства высокопродуктивных коров/ А.Н. Ахмадеев. -Казань: Издание Казанского ветеринарного института, 1986. 84 с.136

8. Бабичев B.II. Непрогормональная регуляция овариального цикла/ ;.ВЖ.Бабичев:-Мё:Медицина,.1984.-237 с.

9. Бажибииа В.Я: Лабораторные исследования в ветеринарии/ В.Я. Бажибина, П.И. Блинов. -М.: Колос, 1974. 320 с.

10. Г. Бараненков М.А. Характер половой; цикличности у коров1; при . задержании желтых тел после родов/ М.Л. Бараненков// Сб. науч. тр./ Белорус. С.-х. акад. 1978. — Вып. 41, -С.78-80;, .'

11. Баранов А.Г., Троп М.В. Гормоны, регуляция секреции и механизма действия/ А.Г. Баранов// Руководство^ по- клинической эндокринологии. -М.: Медицина, 1977. С 7-30.

12. Батраков А.Я; Разработка и совершенствование' профилактических мероприятий? при« воспроизводстве крупного рогатого скота с высокой молочной: продуктивностью: Док. дис. в виде научного: доклада. — Воронеж; 1991. -52 с. ( , .;.

13. Бахитов К.И. Проявление анэструса у новотельных; коров, разной; продуктивности/К.И; Бахитов. Зоотехния, 19981 - №9. - С. 28-30.

14. Беляков С.П., Гаибов А.Г. Гормональные и- нейротропные, препараты при бесплодии у коров/ С.П. Беляков,1 А.Г. Гаибов// Ветеринария. -1965. -№8.-С. 82-84.

15. Бесхлебнов A.B. Предупреждение и: ликвидация яловости коров/ A.B. Бесхлебнов: М.: Москов. рабочий, 1947. — 35 с.

16. Бесхлебнов A.B. Функциональное состояние матки и яичников у коров после отела/ А.В: Бесхлебнов// Акушерство, гинекология искусственное осеменение и болезни.молочной железы с.-х: животных. Л., 1976. - С. 59-61.

17. Бесхлебнов A.B. Яловость,крупного рогатого скота и борьба с ней/

18. A.B. Бесхлебнов. M.: Сельхозиз, 1952. - 192 с.

19. Бочаров И.А. Бесплодие сельскохозяйственных животных/ И.А. Бочаров М.; -JL: Сельхозгиз, 1956. - 284 с.

20. Бочаров И.А. Основные способы терапии и профилактики бесплодия и яловости/ И.А. Бочаров JL: Лениздат, 1967. - 42 с.

21. Бочаров И.А. Яловость коров и борьба с ней/ И.А. Бочаров Л.: Лениздат, 1945. - 59 с.

22. Бочаров И.А., Вайнтрауб A.M. Некоторые обоснования по борьбе с бесплодием с.-х. животных/ И.А. Бочаров и A.M. Вайнтрауб// Сб. раб./ Ленинград, вет. ин-т. Л., 1959. - Вып. 19. - С. 142-162.

23. Бриль Э.Е. Гормоны и воспроизводство крупного рогатого скота/ Э.Е. Бриль. Минск.: Ураджай, 1979. - 88 с.

24. Буданцев А.И. Коррекция гормональных механизмов регуляции половой функции коров при послеродовой патологии/ А.И. Буданцев// Фармакологические и токсикологические аспекты. М., 1992. - С. 47-48.

25. Буданцев А.И. Диагностика и лечение заболеваний яичников у коров/ А.И. Буданцев, В.Н. Сиденко, П.Д. Узун// Диагностика и лечебно-профилактические мероприятия при бесплодии и травматизме в промышленном животноводстве. 1986. - С. 34-38.

26. Бурксер Г.В., Беляков С.П. Борьба с яловостью и перегулами коров/ Г.В. Бурксер, С.П. Беляков// Ветеринария. 1950. - №12. - С. 39-41.

27. Бурман Л.М., Варюшин В.Я. Испытание эффективности различных средств для стимуляции половой охоты у коров и телок/ Л.М. Бурман, В.Я. Варюшин// Сб. науч. раб./ Курск, обл. науч.-производ. лаб. -1962.-Вып. З.-С. 141-148.

28. Булгаков Н.М., Садыков Г.М., Ковалев Е.С. Лечение некоторых гинекологических заболеваний коров и коз бийохинолом/ Н.М. Булгаков, Г.М. Садыков, Е.С. Ковалев// Сельское хозяйство Поволжья. 1959. - №8. - С. 7578.

29. Буянов A.A. Эндокринные механизмы патогенеза и совершенствование гормональной терапии при дисфункциях яичников у коров: Автореф. дис. д-ра вет. наук/ A.A. Буянов. Л., 1986, - 46 с.

30. Валюшкин К.Д. Акушерско-гинекологическая диспансеризация коров и телок/ К.Д. Валюшкин. Минск: Ураджай, 1987. - 126 с.

31. Валюшкин К.Д., Воробьев И.Г., Соловьев В.И. Гинекологическая диспансеризация в условиях крупных ферм/ К.Д. Валюшкин, И:Г. Воробьев, В.И. Соловьев// Ветеринария. 1957. - №9. - С. 83-85.

32. Васин A.B. Влияние разных факторов на воспроизводительную функцию у коров/ A.B. Васин// Животноводство. 1965. - №8. — С. 83-86.

33. Васин A.B. Влияние СЖК и гонадостимулина на половую функцию коров/ A.B. Васин// Животноводство. 1965. - №11. - С. 84-86.

34. Вилкинсон Д. Принципы и методы диагностики энзимологии/ Д. Вилкинсон// Пер. с англ. М.: Медицина, 1981. - 624 с.

35. Волкова О.В. Функциональная морфология женской репродуктивной системы/ О.В. Волкова. М., 1983. — 224 с.

36. Волосков П.А. Основы борьбы, с бесплодием крупного рогатого скота/ П.А. Волосков. М.: Сельхозгиз, 1960. - 208 с.

37. Волосков П.А. Физиология послеродового периода и эффективные сроки осеменения коров/ П.А. Волосков// Животноводство. 1959. - №8. - С. 67-71.

38. Воскобойников В;М. Энуклеация желтого тела стимулирует половую функцию/ В.М. Воскобойников// Ветеринария. 1965. - №2. - С. 82I

39. Минск.: Ураджай, 1976. 191 с.

40. Гомазков O.A. Функциональная биохимия регуляторных пептидов / O.A. Гомазков. М.: Наука, 1992. - 160 с.

41. Гомулкин A.A., В.А. Бердникова Влияние гормоностимуляции на оплодотворяемость коров/ A.A. Гомулкин, В.А. Бердникова// Материалы 11 конференции по физиологическим и биохимическим основам повышения продуктивности с.-х. животных. М., 1963. - С. 167-169.

42. Гончаров В.П., Карпов В.А. Профилактика и лечение »гинекологических заболеваний коров/ В.П. Гончаров, В.А. Карпов. М.:

43. Росагропромиздат, 1981. 190 с.

44. Городецкий В.К. Прикладная биохимия и микробиология/ В.К. Городецкий, И.А. Селиванов. -М., 1969. Т.5. - №3. - С 353.

45. Гречко А.Т. Контроль воспроизводства сельскохозяйственных животных: Пер. с англ. М.: Агропромиздат, 1988. — 237 с.

46. Грига Э.Н. Детерминированность функции яичников структурой желтых тел/ Э.Н. Грига// Вестник ветеринарии. 1999. - № 13. - С. 18-22.

47. Грига Э.Н. Задержавшееся желтое тело беременности причина гинекологической патологии/ Э.Н. Грига// Вестник ветеринарии. - 1998. - №9. - С. 87-98.

48. Грига Э.Н. О персистенции желтых тел беременности/ Э.Н. Грига// Вестник ветеринарии. 2001. - № 19. - С. 28-31.

49. Грига Э.Н. Опыт лечения коров при бесплодии/ / Э.Н. Грига// Ветеринария. 2003. - №10. - С. 39-40.

50. Грига Э.Н. Продолжительность инволюционных процессов в матке у коров/ Э.Н. Грига// Вестник ветеринарии. 1999. - № 14. - С. 22-23.

51. Грига Э.Н. Роды и послеродовые осложнения у коров/ Э.Н. Грига// Вестник ветеринарии. — 1997. № 3. - С. 13-14.

52. Грига Э.Н. Симптоматическое бесплодие у коров при персистентных желтых телах, их лечение и профилактика/ Э.Н. Грига// Физиол., морфол., и биохим. показатели и продукт. Ставрополь, 1983. - С. 11-15.

53. Грига Э.Н. Функциональные особенности желтого тела полового цикла/ Э.Н. Грига// Вестник ветеринарии. 2000. - № 15. - С. 11.

54. Грига Э.Э. Этиология послеродовых осложнений у коров/ Э.Э.

55. Грига, Э.Н. Грига, В.В. Родин, О.Э. Грига// Вестник ветеринарии. 2007. -№43. - С. 44-49.

56. Гришок A.A. Персистентное желтое тело яичников как причина нарушения оплодотворяемости коров/ A.A. Гришок// Науч.-тех. бюл./ Укр. НИИ животноводства степных р-нов «Аскания-Новая». — 1974. — 4.2. С. 4649.

57. Губаревич Я.Г., Конге Г.А. Экспериментальные данные о влиянии матки на функцию яичников/ Я.Г. Губаревич, Г.А. Конге// Сб. науч. тр./ Ленинград, ин-т усоверш.-ветврачей. Л., 1950. - С. 79-81.

58. Гугушвили H.H. Иммунологическая реактивность коров и методы ее коррекции //Ветеринария. № 12. - 2003. - С. 34.

59. Гудков Д.Д. Практикум по цитологии, гистологии и эмбриологии/ Д.Д. Гудков, В.И. Соколов, Е.В. Гусева. Владимир: Фолиант, 2001.

60. Даркова Кваси Бови Сравнительная оценка некоторых методов лечения коров с гипофункцией и персистентным желтым телом яичника/ Кваси Бови Даркова// Львовский зооветеринарный институт. Львов, 1989. -С. 15.

61. Дейл М.М.' Руководство по иммунофармакологии: Пер. с англ./ Под ред. М.М. Дейла, Дж. К. Формена. М.: Медицина, 1998. - 332 с.

62. Деева A.B. Применение иммуномодуляторов продуктивным животным/ A.B. Деева, Г.Г. Мехдиханов, В.Д. Соколов, Р.В. Белоусова// Ветеринария. 2008 - №6. - С. 8-12.

63. Джураев Х.Ж Биостимуляторы при бесплодии коров/ Х.Ж Джураев// Ветеринария. 1967. - №8. - С. 95-97.

64. Добрица В.П. Иммуномодуляторы* животного происхождения// Современные иммуномод. СПб., 2001. - С. 188-198.

65. Долинина Э.В. Материалы к изучению морфологии и функции желтых тел яичников коров: Дис. канд. вет. наук/ Э.В. Долинина. Киров, 1977.-217 с.

66. Долинина Э.В. Материалы к изучению морфологии и функции желтых тел яичников"коров: Автореф. дисс. . канд. вет. наук/ Э.В. Долинина. -Киров, 1978.- 19 с.

67. Дуников B.C. Клинико-экспериментальное обоснование некоторых методов лечения.коров при персистентном желтом теле яичников: Автореф. дис. . канд. вет. наук/B.C. Дуников. Л., 1974. - 13 с.

68. Дуников B.C. Некоторые данные о наличии персистентныхжелтых тел у бесплодных коров/ B.C. Дуников// Сб. раб./ Ленинград, вет. ин-т. 1974.-Вып. 39.-С. 56-59.

69. Дуников B.C. Оплодотворяемость коров после энуклеации персистентных желтых тел яичников/ B.C. Дуников// Материалы науч,-производ. конф. ветработников. Вологда, 1974. - С. 44-46.

70. Дюденко B.C. К вопросу бесплодия коров/ B.C. Дюденко// Ветеринария. 1966. - №10. - С. 72-73.

71. Дюденко'B.C. Причины и профилактика бесплодия коров/ B.C. Дюденко// Племенное дело и искусственное осеменение с.-х. животных: Материалы 10 науч.-теорет. конф. Киев, 1964. - С. 159-162.ч

72. Елисеев В.Г. Основы общей гистологии и гистологическая техника/В.Г. Елисеев. — М.: Медиз., 1972. 56 с.

73. Ельчанинов В.В. Проблемы физиологии и патологии репродуктивной функции у коров/ В.В. Ельчанинов, В.П. Белоножкин, Ш.Н. Насибов. М.: Щербинская тин., 1997. - 291 с.

74. Еремин С.П. Функциональная морфология яичников у коров в онтогенезе, процессе развития послеродовой патологии, её диагностика, профилактика и терапия: Автореф. дис. . докт. вет. наук/ С.П. Еремин. С.-П., 2004.-23 с.

75. Жоголев К.Д. Препараты тимуса в комплексной терапит инфекционных больных/ К.ДС Жоголев; MiH. Бойко; KD:HL Буланьков, ВЩЭ: Никитин// Пептидные биорегуляторы;- цитомедины. Сиб, 1992. - С. 56-57.

76. Жукова Е.С. (Малецкая E.G.) Синтетический« тимоген для восстановления половой цикличности коров/ Н.В. Безбородов; Е.С. Малецкая// Ветеринария. 2007. - №11. - С. 8-9. •

77. Заварзин А.А. Руководство по гистологии/ А.А. Заварзин, С.И. Щелкунов.' Л., 1954. - 234 с.

78. Загородняя Э.Д. Применение иммунорегуляторпых полипептидов в акушерстве, и гинекологии/ Э.Д. Загородняя// Тез. Докл. науч. симпоз: -Пущино, 1990.-С. 60.

79. Загорская E.A. Метаболизм прогестерона/ Е.А. Загорская// Проблемы эндокринологии. 1975. - Т. 21. - № 3. - С. 102-110.90; Зайцев С.Ю. Биохимия животных/ С.Ю. Зайцев; Ю.В: Конопатов// М;: Изд-во «Лань» 2005. 384 с.

80. Заянчковский И.Ф. Задержание последа, и послеродовые заболевания у коров/ И:Ф. Заянчковский: Mi: Колос, 1964. - 383 с.

81. Заянчковский И.Ф. Профилактика и лечение акушерско-гинекологических заболеваний у коров/ И.Ф. Заянчковский. — Уфа.: Башкир, кн. изд., 1968.- 172 с.

82. Зверева Г.В. Еще раз о профилактике бесплодия коров/ Г.В. Зверева// Ветеринария. — 1974. №5. - С. 73-76.

83. Зверева Г.В. Основные принципы терапии гинекологических заболеваний у коров/ Г.В. Зверева// Гинекологические заболевания и яловость с.-х. животных: Тезисы докладов научно-методического семинара. Рига, 1974.-С. 105-108.

84. Зверева Г.В. Профилактику бесплодия животных на научную основу/ Г.В. Зверева// Ветеринария. 1969. - №3. - С. 76-80.

85. Зверева Г.В. Теория и практика воспроизводства крупного рогатого скота в условиях интенсивного животноводства/ Г.В. Зверева// Воспроизводство и профилактика бесплодия с.-х. животных: Науч>. тр./ ВАСХНИЛ. М., 1976. - С. 22-76.

86. Зверева Г.В., Хомин С.П. Влияние некоторых гормональных1препаратов на течение послеродового периода у коров/ Г.В. Зверева, С.П. Хомин// Науч. техн. бюл./ Укр.НИИ физиологии и биохимии с.-х. животных. - 1980.-Вып. 1/4-С. 25-26.

87. Зверева Г.В., Хомин С.П. Гинекологические болезни коров/ Г.В. Зверева, С.П. Хомин// Киев: Урожай, 1976. 150 с.

88. Зиновьев Е.И., Беляков С.П., Першин В.А. Восстановлениеполовой функции коров с персистентными желтыми телами яичников/ Е.И.

89. Зиновьев, С.П. Беляков, В.А. Першин// Ветеринария. 1988. - №11. - С. 47-49.

90. Иванов И. Влияние некоторых биогенных стимуляторов на воспроизводительную функцию коров/ И. Иванов, Н. Швец// Профилактика и лечение заболеваний,с.-х. животных. 1972. - С. 239-241.

91. Иванов И.Ф. Гистология с основами эмбриологии домашних животных/ И.Ф. Иванов, П:А. Ковальский. М., 1962. - 524 с.

92. Ильинский Е.В. Физиология размножения и предупреждение бесплодия крупного рогатогоскота/ Е.В. Ильинский. Краснодар: Краснодар, кн. изд., 1972*. -223 с.

93. Ильинский Е.В. Профилактика бесплодия коров в условиях интенсификации молочного скотоводства/ Е.В. Ильинский. Краснодар: Краснодар, кн. изд., 1983. - 172 с.

94. Калашник И.А. Тканевая терапия в ветеринарии/ И.А. Калашник. -М.: Сельхозиздат, 1960. 112 с.

95. Калужский В.Е. Магэстрофан — новый простагландин отечественного производства / В.Е. Калужский; Ю.Д. Клинский, А.Д. Чомаев// Зоотехния. 2000. - № Ю. - С. 25-26.

96. Карш Ф.Д. Гипоталамус и передняя доля гипофиза/ Ф.Д. Карш// М.: Мир, 1987. Гл. 1. - 8-32 с.

97. Карш Ф.Д., Линкольн Д.У., Линкольн Д.А. Гормональная регуляция размножения у млекопитающих/ Ф.Д. Карш, Д.У. Линкольн, Д.А.

98. Линкольн. -М.: Мир, 1987. 305 с.

99. Квасницкий A.B. Формирование половой системы животных в эмбиогенезе/ A.B. Квасницкий// Возрастная физиология животных. М., 1967. -С. 354-412.

100. Китаев Э.М. Элиминация половых клеток в процессе гаметогенеза и значение её в репродукции/ Э.М. Китаев// Акушерство и гинекология. 1977.ъ8.С. 13-18.

101. Клинский Ю.Д. Рилизинг-гормоны/ Ю.Д. Клинский, Г.Ф. Жирков, Р.И. Куксова, A.M. Чомаев// Эндокринология и трансплантация зародышей с.-х. животных. ВИЖ. - Дубровицы. - 1983. - С. 39-41.

102. Коблов Л.Ф. Методы и приборы-для клинических исследований/ Л.Ф. Коблов. М.: Медицина, 1979. - 187 с.

103. Ковалев М.И. Лечение коров с персистентными желтыми телами/ М.И. Ковалев// Болезни с.-х. животных в Забайкалье и на Дальнем Востоке. -Благовещенск, 1979. С. 49-50.

104. Колчина А.Ф., Шкуратова И.А. Особенности воспроизводства крупного рогатого скота в экологически неблагоприятных районах/ А.Ф. Колчина, И.А. Шкуратова// Вестник ветеринарии. 1999. - №14 (3). — С. 3134.

105. Кондрахин И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики/ И.П. Кондрахин. М.': КолосС, 2004. - 520 с.

106. Кот А.И. Раздавливание кист яичников и энуклеация персистентного желтого тела у коров/ А.И. Кот// Ветеринария. — 1963. -№11. -С. 57-58.

107. Кочмар А.Г. Опыт профилактики бесплодия коров и телок/ А.Г.

108. Кочмар// Ветеринария. 1974. - №10. - С. 90.

109. Курило Л.Ф. Морфо-функциональная характеристика оогенеза млекопитающих: Автореф. дис. . докт. биол. наук/ Л.Ф. Курило. М.: 1985. -47с.

110. Курников Н.М., Сахаров Е.Д., Ильинский Е.В. Субинволюция матки и её значение в этиологии бесплодия коров/ Н.М. Курников, Е.Д. Сахаров и Е.В. Ильинский// Сб. раб./ Ленингрд НИВИ. 1957. - Вып. 7. - С. 222-227.

111. Лабораторное дело, 1976, №6. С. 373-374.

112. Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник/ Меньшиков В.В., Делекторская Л.Н., Золотницкая Р.П. и др.; Под ред. В.В. Меньшикова. -М.: Медицина, 1987. -368 с.

113. Лакин Г.Ф. Биометрия: Учебное пособие 4-е изд., пепераб. и доп./ Г.Ф. Лакин. - М.: Высшая школа. - 1990. - 352 с.

114. Лебедев А.Г. Гипофизрно-гонадальные взаимоотношения в цикле воспроизводства у крупного рогатого скота: Автореф. дис . канд. биол. Наук. -Л., 1982.-20 с.

115. Лисевич В.П. Некоторые вопросы этиологии и профилактики бесплодия телок: Автореф. дисс. канд. вет. наук/ В.П. Лисевич. Львов, 1970. -16 с.

116. Литвинова Л.Д. Возрастные изменения яичников у КРС: Автореф. дисс. канд. биол. наук/ Л.Д. Литвинова. Алма-Ата, 1964. - 17 с.

117. Логвинов Д.Д. Беременность и роды у коров/ Д.Д. Логвинов. -Киев.: Урожай, 1975. 35 с.

118. Максимов Ю.Л. Использование простагландинов и антиоксидантов с целью сокращения яловости коров/ Ю.Л. Максимов, Исаак Лаквалерут// Пути увеличения производства молока и говядины. — Горки, 1987.-С. 8-11.

119. Малигонов-А.А. О росте главнейших тканей и органов во вторую половину эмбрионального и постэмбрионального периода/ A.A. Малигонов,

120. Г.Ф. Расходов// Избранные труды. М., 1968. С. 20-64.

121. Манасян А.О. Предупреждение бесплодия коров/ А.О. Манасян// Ветеринария. 1968. - №1. - С. 81-83.

122. Манвелян A.M. Клинико-гинекологическая диагностика персистентного желтого тела' яичника/ у коров/ A.M. Манвелян// Материалы межвуз. науч.-метод. конф. по акушерству, гинекологии и искусственному осеменению с.-х. животных. Львов, 1969. - С. 81-84.

123. Мартынов В.Г. Основные причины бесплодия коров и телок/ В.Г. Мартынов// Уральские нивы. 1974. - №6. - С. 46-47.

124. Матвеев1 И.М. Сроки инволюции желтых тел стельных коров/ И.М. Матвеев//Сб. науч. раб./ ВИЖа. 1967. - Вып. 12. - С. 44-45.

125. Матрос В., Примакин И. Взаимосвязь молочной продуктивности и воспроизводительной способности коров/ В. Матрос, И: Примакин// Молочное и мясное скотоводство. 1999. - №5. - С. 22-24.

126. Медведев Г.Ф. Послеродовые изменения в половых органах у коров/ Г.Ф. Медведев// Ветеринария. 1981. - № 1. - С. 58-60.

127. Милованов В.К. Воспроизводство стада на крупных молочных фермах и комплексах/ В.К. Милованов// Животноводство. 1980. - №7. - С. 16-18.

128. Морозов В.В. Пептидные тимометики/ В.В. Морозов, В.Х. Хавинсон, В.В. Малинин. С. Петербург.: Наука, 2000. - 158 с.

129. Муруев A.B., Кононов Г.А, Степанов Г.С., Коган Е.М. Гормональный статус молочных коров/ A.B. Муруев, Г.А Кононов, Г.С. Степанов, Е.М. Коган// Ветеринария. 1985. - №7. - С. 17-18.

130. Мышкин Н.Ф. Акушерство и гинекология сельскохозяйственных животных. М.; Сельхоз 1943. - 470 с.

131. Мягков М.Г. Из опыта борьбы с бесплодием коров/ М.Г. Мягков// Ветеринария. 1964. - №3. - С. 85.

132. Нежданов А.Г. Ветеринарный контроль за воспроизводством крупного рогатого скота и свиней/ А.Г. Нежданов, В.Д. Мисайлов, A.M. Вислогузов// Ветеринария. 2003. - №12. - С. 3-7.

133. Нежданов А.Г. Общая неспецифическая резистентность и воспроизводительная функция коров// Проблемы патологии обмена веществ в современном животноводстве. Воронеж, 1981.- С. 53-55.

134. Нежданов A.F. Послеродовая инволюция половых органов у коров/ А.Г. Нежданов// Ветеринария. 1983. - №2. - С. 48-51.

135. Нежданов А.Г. Профилактика бесплодия и воспроизводство, крупного рогатого скота/ А.Г. Нежданов, В.П. Иноземцев// Ветеринария'. -1999.-№ 5.-С. 3-7.

136. Нежданов А.Г. Современное представление о половом цикле самок животных/ А.Г. Нежданов// Ветеринария. 2003. - № 11. - С. 32-36.

137. Нежданов* А.Г. Стероидные гормоны, в крови и послеродовые болезни у коров/ А.Г. Нежданов// Ветеринария. 1983. - №5. - С. 49-51.

138. Нежданов А.Г. Физиологические основы профилактики симптоматического бесплодия коров: Автореф. дис. .д-ра вет. наук/ А.Г. Нежданов. Воронеж, 1987. - 39 с.

139. Нежданов А.Г., Лободин К.А., Дюльгер Г.П. Гормональный контроль за воспроизводством крупного рогатого скота/ А.Г. Нежданов, К.А. Лободин, Г.П. Дюльгер// Ветеринария. 2008. - №1. - С. 3-7.

140. Нежданов А.Г., Соловьев H.А Гормональная функция1 яичников в течение полового цикла/ А.Г. Нежданов, Н.А Соловьев// Ветеринария. 1986. №4.-С. 56-58.

141. Некрасов Д.К. Изменение интерьера телок и коров черно-пестрой породы в зависимости от интенсивности их выращивания и возраста использования для воспроизводства/ Д.К. Некрасов, Д.Г. Гвазава, М.А.ч

142. Косимцева, М.К. Болушрев// Известия ТСХА, 1991. 5. С. 139-156.

143. Никитенко A.M. Биологическая активность гормонов тимуса/ A.M. Никитенко// Сельскохозяйственная» биология. 1987. - №3. - С. 79-83.

144. Никитин В.Я. Бесплодие коров и меры борьбы с ним/ В.Я. Никитин. Ставрополь, 1973. - 56 с.

145. Никитин В.Я. Рациональные сроки осеменения коров/ В.Я:J

146. Никитин// Ветеринария. 1966. - №3. - С. 89-91.

147. Никитин В.Я: Современное понятие о половом цикле сельскохозяйственных животных/ В.Я. Никитин// Вестник ветеринарии. -2007.-№40-41.-С. 21-23.

148. Никишев Н.В. Половой цикл у коров красной степной породы/ Н.В. Никишев// Ветеринария. 1974. - №3. - С. 70-71.

149. Николаев A.C. Профилактика бесплодия коров и телок на промышленных фермах и комплексах /A.C. Николаев // Достижения с.-х.науки и практики. Сер. «Животноводство и ветеринария». - 1981. - № 10. — С. 9-16.

150. Осташко Ф^И. Воспроизведение стада в промышленном скотоводстве/ Ф.И. Осташко, В.А. Чирков, А.Д. Бугров. Киев: Урожай, 1982. - 168 с.

151. Осетров A.A. Распространение бесплодия и восстановление плодовитости коров/ A.A. Осетров// Материалы межвуз. науч.-метод. конф. по акушерству, гинекологии и искусственному осеменению с.-х. животных. -Львов, 1969.-С. 36-38.

152. Осетров A.A. Система показаний и противопоказаний для восстановления, стимуляции и синхронизации воспроизводительной функции коров и телок/ A.A. Осетров// Науч. конф. — Казань, 1984. С. 62-63.

153. Осташко Ф.И. Биотехнология воспроизведения крупного рогатогоtскота. Киев.: Аграрная наука, 1995. 183 с.

154. Панков Ю.А. Структура-и свойства гипофизарных гормонов/ Ю.А. Панков// Проблемьгэндокринологии, 1974. № 2. - С. 106-115.

155. Пашаев Ю.Ж. Профилактика эксплуатационного бесплодия у коров/ Ю.Ж. Пашаев// Материалы докл. всесоюз. конф., посвящ. 90-летию Казан, вет. ин-та. Казань, 1963. - С. 669-672.

156. Пертросян С.Л., Караханян С.Г., Данилов М.А. Морфологические и гистологические изменения в яичниках бесплодных коров/ С.Л. Пертросян, С.Г. Караханян, М.А. Данилов// Ветеринария. 1976. - №6. - С. 76-79.

157. Петров С.П. Лечебное действие сапропеля при некоторых заболеваниях яичников у коров/ С.П. Петров// Тр./ Свердлов. СХИ. 1965. -Вып. 12.-С. 315-320.

158. Полянцев Н.И. Акушерско-гинекологическая диспансеризация на молочных фермах/ Н.И. Полянцев, А.Н. Синявин// 2-е изд. М.: Росагропромиздат, 1986. — 176 с.

159. Полянцев Н.И. Ановуляция как причина повторных осеменений и бесплодия коров/ Н.И. Полянцев// Ветеринария. 2000. - №1. - С. 35-38.

160. Полянцев Н.И. Воспроизводство в промышленном животноводстве/ Н.И. Полянцев. -М.: Росагропромиздат, 1990. — 236 с.

161. Полянцев Н.И. Практические советы по борьбе с яловостью коров/ Н.И. Полянцев. М.: Россельхозиздат, 1978. - 191 с.

162. Полянцев Н.И. Применение биорегуляторов половой функции коров/ Н.И. Полянцев// Зоотехния. 1999. - № 6. - С. 27-30.

163. К Полянцев Н.И. Профилактика и лечение болезней репродуктивных органов коров/ Н.И. Полянцев// Профилактика и лечение болезней репродуктивных органов коров. Сб. науч. трудов. Воронеж, 1986. -С. 15.

164. Полянцев Н.И. Система ветеринарных мероприятий при воспроизводстве крупного рогатого скота/ Н.И. Полянцев, В.В. Подберезный// Ветеринария, 2004. № 5. - С. 37-40.

165. Полянцев Н.И., Лашков Ф.Ф. Рекомендации по профилактике и лечению гинекологических болезней/ Н.И. Полянцев, Ф.Ф. Лашков. -Персановка, 1978.-40 с.

166. Полянцев Н.И., Подберезный В.В. Система ветеринарных мероприятий при воспроизводстве крупного рогатого скота/ Н.И. Полянцев, В.В. Подберезный// Ветеринария. 2004. - №5. - С. 37-40.

167. Полянцев Н.И., Синявин А.Н. Акушерско-гинекологическая диспансеризация на молочных фермах/ Н.И. Полянцев, А.Н. Синявин. М.: Россельхозиздат, 1989. - 176 с. •

168. Порфирьев И.А. Диспансеризация коров для создания здорового высокопродуктивного стада/ И.А. Порфирьев// Ветеринария. 2008. - №10. -С. 46-49.

169. Преображенский О.Н. Современные методы диагностики беременности и бесплодия животных/ О.Н. Преображенский// Ветеринария. — 2003. №7.-С. 32-33.

170. Прокофьев М.И. Гормональный контроль сроков овуляции у коров/ М:И.Ь Прокофьев, A.C. Бикулов, П.И. Леднев// Проблемы эндокринологии.с.-х. животных.- Л., Пушкин, 1975. С. 19-20.

171. Прокофьев М.И. Регуляция размножения сельскохозяйственныхt 9животных/ М.И. Прокофьев. М.: Наука, 1983. - 264 с.

172. Пронин Г.И. Тканевая терапия коров при гинекологических . заболеваниях/ Г.И. Пронин// Ветеринария. 1955. - №6. - С. 125-146.

173. Пучковский А.И. Профилактика бесплодия животных в комплексах/ А.И. Пучковский// Ветеринария. 1977. - №9. — С. 78-79.

174. Пятрашюнас А., Безбородина?В.В. Проявление половой охоты у коров после применения ГН-РГ сурфагона и диригистрана/ А. Пятрашюнас,

175. B.В. Безбородина// Научные основы профилактики и лечения патологии воспроизводительной функции с.-х. животных: Тез. докл. Всесоюз. науч. конф. Воронеж, 1988.-С. 84-85.

176. Решетняк B.C., Лебедев С.И. Хирургическое лечение при бесплодии коров/ B.C. Решетняк, С.И. Лебедев// Ветеринария. 1962. - №11.1. C. 59-60.

177. Розен В.Б. Рецепторы и стероидные гормоны/ В.Б. Розен, А.Н. Смирнов. -М.: МГУ, 1981.-310 с.

178. Савченко О.Н. Гормоны яичника и гонадотропные гормоны/ О.Н. Савченко. Л.: Медицина, 1967. - 98 с.

179. Савченко О.Н., Степанов Г.С. Гормональная регуляция функции половых желез/ О.Н. Савченко, Г.С. Степанов// Гормоны в животноводстве. -М.: Колос, 1977.-С. 34-51.

180. Сайко A.A., Буштедт JI.B. О роли* холинергетических процессов в регуляции половых,' гормонов у коров/ A.A. Сайко, JI.B. Буштедт// Ветеринария. 1989. - №6. - С. 64-65.

181. Сахарова Е.Д. Современный'взгляд на проблемы иммунотерапии /Е.Д. Сахарова, В.Н. Егорова //Вет. практик. 2002. - № 1. - С. 31-33.

182. Селунская Е.И. Клинико-гинекологические изменения в генеталиях коров при бесплодии/ Е.И. Селунская// Ветеринария. 1975. - №4. - С. 69-74.

183. Сентебова H.A. Унификация лабораторных методов исследования/ H.A. Сентебова, Л.А. Медведева, Т.Н. Александровская. М., 1978. - Вып. VIII. - С. 39-49.

184. Сергеев П.В. Стероидные гормоны/ П.В. Сергеев. М.: Наука, 1984.-240 с.

185. Середин В.А. Еще раз о цикле воспроизводства и половом цикле/ В.А. Середин// Вестник ветеринарии. 2008. - №44. - С. 63-66.

186. Середин В.А. Цикл воспроизводства, половой цикл и его регуляция/ В.А. Середин// Вестник ветеринарии. 2007. - №40-41. - С. 24-51.

187. Сковородин E.H. Анализ причин» бесплодия самок КРС/ E.H. Сковородин// Животноводство на Европейском Севере: фундаментальныепроблемы и перспективы развития: Тез. докл. конф. Баренц Евро

188. Арктического региона 1-3 окт. 1996 г. Петрозаводск, 1996. С. 50-51.

189. Сковородин E.H. Возрастная морфология органов размножения самок КРС/ E.H. Сковородин, A.A. Мельникова. Брянск, 2002. - 208 с.

190. Сковородни E.H. Научно-практические рекомендации по улучшению воспроизводства КРС/ E.H. Сковородин, В.Г. Денисов, Н.С. Кудряшов. Саранск, 2000. - 55 с.

191. Сковородин E.H. Прижизненное морфологическое исследование персистентного желтого телаУ E.H. Сковородин// Вестн. ветеринарии. 1998. -№9.-С. 52-55.

192. Сковородин E.H. Функциональная морфология яичников КРС в онтогенезе: Автореф. дисс. докт. вет. наук/ E.H. Сковородин. Иваново, 1999. -24 с.

193. Сковордин E.H., Шарипов А.Р. Микроморфология желтых тел яичников коров/ E.H. Сковордин, А.Р. Шарипов// Ветеринария. 2007. - № 3. -С. 38-44.

194. Смирнов B.C. Клиническая фармакология тимогена/ Ред. B.C. Смирнов. Сиб.: ФАР Миндекс, 2004. - 172 с.

195. Смирнов B.C., Хавинсон В.Х., Яковлев Г.М. Коррекция радиационных иммунодефицитов, СПб: Наука, 1992. - 32 с.\

196. Смирнов И.В., Контуганов H.H., Майорова В.В. Инструкция по применению набора реагентов для определения гемоглобина в крови гемиглобинцианидным методом, 2000.

197. Солебери Г.У. Теория и практика искусственного осеменения коров в США/ Г.У. Солебери, H.JT. Ван-Демарк. М., 1966. 68 с.

198. Спиваков А.Н. Методы выявления охоты у крупного рогатого скота/ А.Н. Спиваков// Молочное и мясное скотоводство, 1983. № 1. - С. 3033.

199. Стоянов С.С. Роды и послеродовой период у коров-первотелок: Автореф. дис. .канд. вет. наук/ С.С. Стоянов. Львов, 1980. — 18 с.

200. Студенцов А.П; Ветеринарное акушерство и гинекология/ А.П. Студенцовю М., 1961. - 524 с.220: Студенцов А.П: Ветеринарное акушерство и гинекология/ А.П; Студенцов. М.: Колос, 1980. - 241 с.

201. Студенцов А.П: Ветеринарное акушерство и гинекология/ А.П. Студенов, B.C. Шипилов, Л.Г. Субботин, О.Н. Преображенский. М. 1986. -480 с.

202. Студенцов- А.П; Диагностика беременности и . бесплодия сельскохозяйственных животных/ А.П. Студенцов. М., 1950. - 136 с.

203. Студенцов А.П. Клинические методы диагностики;беременностиш бесплодия сельскохозяйственных животных/А.П. Студенцов. Казань, 1947. -48 с. • , . . ;

204. Субботин А.Д. Формирование половой доминанты/ А.Д. Субботин А.Д.// Зоотехния, 1996. № 10. - С. 24^-26.

205. Субботина Л.Г. К вопросу о практическом изменении операции желтого тела у коров/ Л.Г. Субботина// Учен, зап./ Казан, вет. ин-т. — Казань, 1947.-Т. 55.-С. 79-84.

206. Сысоев t A.A. Физиология размножения сельскохозяйственных животных/ A.A. Сысоев. М.: Колос, 1978. - 360 с.

207. Таллер Б.Г. Ветеринарный контроль за воспроизводством крупного рогатого скота/Б.Г. Талер// Ветеринария. — 2001. №10. — С. 13-15.

208. Тарасевич А.Ю. Бесплодие сельскохозяйственных животных. -М.; Л., 1936.-316 с.

209. Техвер Ю.Т. Гистология мочеполовых органов и молочной железы домашних животных/ Ю.Т. Техвер, 1968. ч.2. С. 140-305.

210. Титов В.Н., Творогова Т.Г. Клиническая лабораторная диагностика/ В.Н.Титов, Т.Г. Творогова. -№3, 1995. С. 15-18.

211. Тумилович Л.Г. Нейроэндокринная регуляция функции репродуктивной системы/ Л.Г. Тумилович// Акушерство и гинекология. -1987.-№3.-С. 3-6.

212. Турков В.Г. Эндокринные аспекты программированного воспроизводства крупного рогатого скота с использованием гонадолиберина и простагландина F2a.: Автореф. дис. . д-ра вет. наук. Воронеж, 1996.-36 с.

213. Трукунов В.Г., Нежданов А.Г. Гормональный контроль за воспроизводством крупного рогатого скота/ В.Г. Трукунов, А.Г. Нежданов// Ветеринария. 1998. - №12. - С. 32-35.

214. Федоров A.A., Мальцева Г.А. Опыт выготовления и применения СЖК/ A.A. Федоров, Г.А. Мальцева// Ветеринария. 1964. - №2. - С. 82-83.

215. Флегматов H.A. Замедленное обратное развитие (субинволюция)* матки у крупного рогатого скота/ H.A. Флегматов// Ветеринария. 1952. - №2. -С. 48-51.

216. Филатов В.П. К вопросу о природе биогенных стимуляторов/ В.П.I

217. Филатов, Бибер В.А.// Изв. АНСССР. 1948. - T.XII. №2. - С. 12.

218. Хаитов P.M. Современные мммуномодуляторы: основные принципы их применения/ P.M. Хаитов, Б.В. Пинегин// Иммунология. 2000. - №5. - С. 4-7.

219. Хачатурян Ю.С. Основные принципы бесплодия коров/ Ю.С. Хачатурян// Ветеринария. 1967. - №8. - С. 93-94.

220. Хватов Б.П. Строение и физиологические изменения половой системы»самок домашних животных/ Б.П. Хватов. Симферополь, 1955. 176 с.

221. Хилькевич Н.М., Джихаев Э.Л., Базаева З.К. Комплексное лечение гинекологических болезней коров/ Н.М. Хилькевич, Э.Л. Джихаев, З.К. Базаева// Вестник ветеринарии. 1998. - №11. - С. 23-26.

222. Холодков Н., Буйнов А. Борьба сбесплодиемкоров/, Н. Холодков, А. Буйнов// Сельское хозяйство Киргизии. 1980. - №5. - С 30.

223. Хонина Г.А. Морфология и гистология яичников КРС в онтогенезе: Автореф. канд. вет. наук/ Г.А. Хонина. Омск, 1984. - 18с.

224. Дубровицы: ВНИИ животноводства, РУЭЦ, 2003; - С. 26-30.

225. Храбустовский И.Ф. Методические рекомендации по определению естественной резистентности животных в условиях интенсивного их использования/ И.Ф. Храбустовский, Ю.М. Марков идр.// Харьков, Укр НИИ эксп. ветеринарии. 1974. - С. 7-18.

226. Храмцов В.В., Шундулаев P.A., Савенко H.A. Влияние сезонных факторов на воспроизводительные функции и продуктивность коров/ В.В. Храмцов, P.A. Шундулаев, H.A. Савенко// Ветеринария. 2004. - №11. - С13-15.

227. Хэммонд А.Н. Плодовитость с.-х. животных/ А.Н. Хэммонд// С.х. за рубеж. Сер. Шив-во. 1965. 4. С. 34-36.

228. Черемисинов Г.А. Биохимические показатели и воспроизводительная функция коров/ Г.А. Черемисинов, А.Г. Нежданов, С.А. Власов//Ветеринария, 1981.-№4 .- С. 53-55.

229. Черемисинов Г.А. Влияние СЖК на яичники у коров при инволюции и задержании желтых тел/ Г.А. Черемисинов// Ветеринария. -1969. -№7.-С. 87-89.

230. Черемисинов Г.А. Генеративная функция яичников у животных/ Г.А. Черемисинов// Ветеринария. 1980. - №11. - С. 48-49.

231. Черемисинов Г.А. Гормональная регуляция функции яичников у коров/ Г.А. Черемисинов// Ветеринария, 1972. № 11. - С. 34-37.

232. Черемисинов Г.А. Гормоны при нарушении половой функции у коров/ Г.А. Черемисинов, В.Н. Карымов// Ветеринария, 1984. № 4, С. 4245.

233. Черемисинов Г.А. Гравогормон и прогестерон для стимуляции половой функции у коров/ Г.А. Черемисинов// Ветеринария, 1973. № 3. - С. 80-81.

234. Черемисинов Г.А. Действие СЖК на яичник коров в различном морфофункциональном состоянии// Материалы межвуз. науч.-метод. конф. по акушерству, гинекологии и искусственному осеменению с.-х. животных. -Львов, 1969.-С. 96-101.

235. Черемисинов Г.А. Закономерности генеративной функции яичников и гормональные методы повышения плодовитости животных/ Г.А. Черемисинов// Вестник с.-х. наук. 1984. №6. - С. 102-114.

236. Черемисинов Г.А. Изменения в яичниках коров под действием гонадотропных препаратов/ Г.А. Черемисинов// Ветеринария. 1970. - №1. -С. 92-95.

237. Черемисинов Г.А. Изменения в яичниках коров под влиянием СЖК и КЖК/ Г.А. Черемисинов// Ветеринария. 1965. - №12. - С. 64-68.

238. Черемисинов Г.А. Изучение гистофункциональных изменений вяичниках у коров/ Г.А. Черемисинов// Ветеринария. 1974. - №2. - С. 88-91.

239. Черемисинов Г.А. Патоморфологические изменения в яичниках бесплодных коров/ Г.А. Черемисинов// Проблемы незаразных болезней вч современном животноводстве. — М., 1977. — Т. 1. С. 42-46.

240. Черемисинов Г.А. Особенности генеративной функции яичников и патогенез их функциональных нарушений/ Г.А.Черемисинов, А.Г. Черемисинов// Тезисы докладов научно-практической конференции. Горки, 1991.-С. 99-101.

241. Черемисинов Г.А. Разработка и- совершенство гормональных методов регуляции и стимуляции- воспроизводительной функции коров: Автореф. дис. д-ра вет. наук/ Г.А.Черемисинов// Воронеж, 1975. 57 с.

242. Черемисинов Г.А., Нежданов А.Г. Влияние прогестерона и гравогормона на яичники и матку коров/ Г.А. Черемисинов, А.Г. Нежданов// Ветеринария. 1973. -№12. - С. 76-77.

243. Черепченко Е.О. (Лопина Е.О.) Влияние сурфагона на показатели естественной резистентности у коров с гипофункцией яичников / Е.О. Черепченко, Н.В. Безбородов // Мат. XI межд. конференции. Белгород, 2007. -С. 145.

244. Чистяков И.Я., Амелина В.В., Зайцева Г.А. Гонадотропные препараты при лечении коров с нарушением половой функции/ И .Я. Чистяков, В.В Амелина, Г.А. Зайцева// Ветеринария. 1991. - №1. - С. 52-53.

245. Чомаев А.Д., Колодиев Ч.Б. Регуляция воспроизводительной функции коров простагландинами/ А.Д. Чомаев, Ч.Б. Колодиев// Ветеринария. 2003. - №1. - С. 17-18.

246. Чомаев A.M. Стимуляция воспроизводительной функции молочных коров эстрофаном/ A.M. Чомаев, М.В. Вареников, A.B. Хурсаченко, А.Н. Иванов// Ветеринария. 2007. - №11. - С. 12-14.

247. Чомаев A.M., M.B. Вареников Прогестагены при дисфункции яичников у первотелок/ A.M. Чомаев, Вареников М.В.// Ветеринария. 2003. -№3. - С. 38-39.

248. Чумаченко В.Е. Определение естественной резистентности и обмена веществ у сельскохозяйственных животных/ В.Е. Чумаченко, В.В. Сердюк. К.: Урожай, 1990. - 136 с.

249. Шалатонов И.С. Диспансеризация высокопродуктивных коров/ И.С. Шалатонов// Ветеринария. 2005. - №2. - С. 9-10.

250. Шалдуга Н.Е. Компенсаторная гипотрофия и репаративная регенерация у с.-х. животных: Автореф. дис. д-ра вет. наук/ Н.Е. Шалдуга. -Харьков, 1967. 31 с.

251. Шалдуга Н.Е. Лечение коров при патологии яичников/ Н.Е.

252. Шалдуга// Ветеринария. 1960. - №3. - С. 46-51.283'. Шалдуга Н.Е. Хирургическое лечение бесплодия коров/ Н.Е. Шалдуга. Киев, 1964. - 84 с.

253. Шаталов П.И. Бесплодие крупного рогатого скота и меры борьбы с ним/ П.И. Шаталов// Животноводство. 1960. - № 2. - С. 41-63.

254. Шаталов П.И. Значение крови жеребых кобыл, как гормонального препарата/ П.И. Шаталов// Ветеринария. 1962. - № 11. - С. 52-57.

255. Шаталов П.И. Изготовление и применение СЖК, КЖК/ П.И. Шаталов. М., 1971. - 144 с.I

256. Шаталов П.И. Применение крови беременных кобыл в животноводстве/ П.И. Шаталов// Материалы межвуз. науч.-метод. конф. по акушерству, гинекологии и искусственному осеменению с.-х. животных. -Львов, 1969.-С. 91-94.

257. Шипилов B.C. Акушерство и гинекология/ B.C. Шипилов в соавт. -М.: Агропромиздат, 1986.-480 с.

258. Шипилов B.C. Персистентное желтое тело у коров/В. С. Шипилов,

259. A.И. Филоненко// Известия ТСХА, 1979. Вып. 4. - С. 148-160.

260. Шипилов B.C. Послеродовая стимуляция половой функции коров/

261. B.C. Шипилов, B.C. Чирков. Киев: Урожай, 1987. - 184 с.

262. Шипилов B.C. Профилактика бесплодия животных важнейшая проблема/ B.C. Шипилов/ Ветеринария. - 1973. - №10. - С. 84-87.

263. Шипилов B.C. Профилактика некоторых форм бесплодия коров: Автореф. дис. . д.в.н./В.С. Шипилов. Львов, 1968.-41с.

264. Шипилов B.C. Физиологические основы профилактики бесплодия коров/ B.C. Шипилов. М.: Колос, 1977. - 336 с.

265. Шипилов B.C. Функциональное состояние яичников у коров в послеродовой,период/ В:С. Шипилов// Известия ТСХА. 1958. - С. 149-157.

266. Шипилов B.C., Никишев Н.В., Основные мероприятия по профилактике бесплодия у коров/ B.C. Шипилов, Н.В. Никишев// Известия ТСХА.- 1976.-Вып. 1.-С. 129-138.

267. Шипилов B.C., Филоненко А.И. О восстановлении половойIфункции у коров при персистентном желтом теле яичника/ В!С. Шипилов, А.И. Филоненко// Ветеринария. 1975. - №12. - С. 79-85. !

268. Шмыгин И.И. Оплодотворяемость коров после применения СЖК/ И.И.' Шмыгин// Ветеринария. 1964. - №11. - С. 76-78.

269. Шкуратов» И.А. Коррекция нарушений обмена' веществ и воспроизводительной функции коров/ И.А. Шкуратов, Ряпосова М.В., Стуков А.Н., Невинный В.К.// Ветеринария. 2007. - №9. - С. 9-11.

270. Шмыгин И.И., Беловицкий Г.С. О дозах и показаниях применения СЖК при бесплодии коров/ И.И. Шмыгин, Г.С. Беловицкий// Ветеринария. -1965. №6.-С. 75-77.

271. Щербаков В.М., Илиаш Л.П. Пути профилактики бесплодия коров/ В.М. Щербаков и Л.П. Илиаш// Ветеринария. 1964. - № 6. - С. 87-88.

272. Эрнст J1.K., Сергеев Н.И. Трансплантация эмбрионов сельскохозяйственных животных/ Л.К. Эрнст, Н.И. Сергеев. М.: Агропромиздат, 1989. - 159 с.

273. Эскин И.А. Основы физиологии эндокринных желез/ И.А. Эскин. -М., 1968.- 158 с.

274. Юдаев Н.А. Биохимия гормонов и гормональной регуляции/ Н.А. Юдаев. М.: Наука, 1976. - 379 с.

275. Юдаев Н.А. Современные представления о гипоталамических рилизинг-факторах/ Н.А. Юдаев// Современные вопросы эндокринологии. -Медицина, 1972. Вып. 4. - С. 8-20.

276. Юров В.И. Персистентные желтые тела у коров Казахской белоголовой породы и их терапия/ В.И. Юров// Сб. науч. раб./ Сататов. СХИ. -Саратов, 1979.-Вып. 130.-С. 104-106.

277. Ялакс М.Ю. Осложнение после энуклеации желтого тела у коров/ М.Ю. Ялакс// Материалы межвуз. науч.-метод. конф. по акушерству, гинекологии, искусственному осеменению и патологии молочной железы с.-х. животных. Ереван, 1971. - С. 319.

278. Agrawal К. et al. Post-parturition changes in the ovary and related endocrine glands in hiffalo/ K. Agrawal et al.// Indian J. Anima Sci. 1979. - V. 49.-N1.-P. 25-36.

279. Ajello P. Relive sullen modification histologique diluter noel corpo luteo persistent della bovine/ P. Ajello// Zootechn. e Veter. 1954. - V. 9. - N 2. -P. 47-56.

280. Alila H.W. Origin of different cell types in the bovine corpus luteum as characterized by specific monoclonal antibodies/ H. W. Alila, W. Hansel// Biol. Repr. 1984. 31. P. 1015-1025.

281. Amselgruber W. Evidence for paracrine action of GF in the bovine ovary/ W. Amselgruber, F. Sinowats, D. Schams// Ann. Anat. 1992. - 174. -№ 2. -S. 132.

282. Arbeiter K. Sterility des Rinds/ K. Arbeiter// Wien. Tierarztl Mschr.-1972. v! 59. -N 1. - P. 20-28.

283. Bertrand M., Deschamel J.F. Lees factors de la staritite animal/ M. Bertrand, J.F. Deschamel// Revue de medicine veterinarian. 19701 - V. 121. - N 6.-P: 561-575.

284. Bessey 0;A., J;. biol. Chem: 1940j,vol. 164., p. 321/.

285. Chegini N. Morphological and biochemical: characterization of small and large bovine luteal cells during pregnancy/ N. Chegini, N. Ramani,. C. Rao// Molec. Cell Endocrin. 1984. 37. P. 89-102.

286. Corner B. On the origin of the corpus luteum of the cow from both granulöse and theca interna/B; Corner//Am.J- Anat: 1921. №26. P. 124-127.

287. Curtis E. Normal ovarium histology in infancy and: childhood/ E. Curtis// Obstet. Gyn. 1962. v. 19. - P. 444-445.

288. Dawson F. Corpus luteum enucleating in the-cow. Therapeutic and: traumatic effects/ F. Dawson// Veter. Res. 1961. - N 27. - P. 73-75.

289. Dawson F. Reproduction and Infertility/ F. Dawson. New York, 1988. ;

290. Derivaux J., Blènfet V., Joarlette P. Histophysiologie genitale.

291. Contribution a 1'etude histologique de endometrie au course du cycle central cheese less bovines/ J. Derivaux, V. Blenfet, P. Joarlette// Ann. Med. Vet. 1958. - V. 101.-N8.-P. 527-563.

292. Dieter R. Untersuchungen über ubergebietliches Workmen von pathologist anatomist Veränderungen am Rinderovarein neuser Weg of dem Gibe der Sterilitatsbekampfung/ R. Dieter// Tierarztl. Umschau. - 1968. — Bd. 23. - N 11. -S. 516-518.

293. Dimitresch J. Recherche sure le corps jaune persistent chess la vache/ J. Dimitresch// Bull. Acad. Vet. de France. 1969. - V. 42. - N 9. - P. 905-907.

294. Dobeli M. Quantitative gexualhormonbestimmung beam Rind/ M. Dobeli// Schweiz. Iandwirt Monatsh. 1974. -V. 52. -N 10-11. - S. 398-404.

295. Donald Mc.L., Nutt Mc.S., Nichols R.E. On the essentiality of the bovine corpus luteum of pregnancy/ Mc.L. Donald, Mc.S. Nutt, R.E. Nichols// Am. J. Veter. Res. 1953.-N 14.-P. 53-58.

296. Donaldson L.E. Histological study' of bovine corpora lutea/' L.E. Donaldson, W. Hansel// h Dairy Sei. 1965. 48. P. 7-10.

297. Donovan B.T., Harris C.W. Neurohumoral1 mechanisms in reproduction/ B.T. Donovan, C.W. Harris// Brit. Med. Bull. 1955. - V. 11. - N 2. -P. 93-97.

298. Downey B. Regulation of the estrons cycle in domestic animals: A.

299. Erickson B.H. Development and redio-response of the prenatal bovine ovary/ B.H. Erickson// J. Reprod. Fertil. 1966. 10 P. 97-105.

300. Erickson B.H. Development and senescence of the postnatal bovine ovary/ B.H. Erickson// J. Anim. Sei. 1966. 25 P. 800-805.

301. Fraenkel A. Uber Corpus luteus Cysten/ A. Fraenkel// Arch. Gyak. 1899. 57. S. 12-16.

302. Fuller Lene B., Hansel William Estrogen stimulated progesterone synthesis by rabbit corpora lutea in vitro/ Lene B: Fuller, William Hansel// Proc. Sos. Exp. Biol. And Med., 1977. 137.-N 2. - S. 539-542.

303. Furll M. Vorkommen, Ätiologie, Pathogenese, Diagnostik und medikamenteile Beeinflussung von Leberschaden beim Rind. Habil. Ichrift,1. Leipzig, 1989.

304. Garbers D.L., First N.L. The effects of ICI 33828 and progesterone on oestrogen maintained corpora lutea in the cow./ D.L. Garbers, N.L. First// J. Reprod. Fert., 1969. v. 19. - P. 541-544.

305. Gasse H. Follikel-Lutein-Zyste und Corpus luteum periodicum des Rindes im Vergleich. Inaugural. Diss. . H: Gasse, 1983.

306. Gomercic H. Histochemical observations in the bovine mesonephros/ H. Gomercic// Rad. Jugosl. Akad. Znan. Umjetn. Zagreb, 1975. 371. S. 217-224.

307. Gortner R., Haen E. Endocrinpharmakologie. Pharmakotherapie mit Hormonen. Jn: Forth W., Ed. Allgemeine und spezielle Parmakoljgie und Toxikologie, 8. Aufl. München: Urban Fischer, 2001; p.671-737.

308. Guraya S.S., Recent advances in the morphology histochemistry and biochemistry of the developing mammalian ovary/ S.S. Guraya// Intern. Rev. Cytol. 4.-N. Y, 1977. P 49-132. '

309. Hammond J. The physiology of reproduction« in the cow/ J. Hammond. London, 1927. 127 p.

310. Hansel W. Control of steroidogenesis in small and large bovine luteal cells/ W. Hansel, H. Alila, J. Dowd, Z. Yang// Austr. J. Biol. Sei. 1987. 40. P. 331347.

311. Hansel W. Female infertility in domestic animals// Fertility and Sterility, 1959. №5, 10.

312. Hansel W. New concepts of the control of corpus luteum function/ W. Hanseli Ji Döwd//Ji Reprodi Pert. 1986: 2. P. 755-768:346: Hansel W. The estrous cycle or the cow// Reproduction in domestic animals. New-York and London. - 1959. - v.l. — P. 223-265.

313. Harrison R.S. Structure of the mammalian ovary/ R.S. Harrison, B. Weir//The ovary. N. Y., London, 1977. P. 113-184:

314. Harrison R.S. The structure of the ovary mammalian/ R.S. Harrison// The ovary. N. Y., London, 1962. P. 143-188.

315. Kohn J. In: Laboratory medicine. V. 1-Hagerstown e.a., 1975. Chap.12B.

316. Kohsaka T. Ultrastructure of bovine corpus luteum of pregnant cow/ T. Kohsaka, S. Niimura, K. Ishida// Japan J. Anim. Reprod. 1982. 28/2. P. 109-111.

317. Koos R.D, Hansel W. The large and small cells of the bovine corpus luteum: ultrastructural and functional differences/ R.D Koos, W. Hansel// Dynamics of ovarian function. N.Y., 1981. P. 197-203.

318. Labhsetwar Anant P. Exploration of site (S).of action of progesterone in ingibing ovulation innate./ Anant P. Labhsetwar// Biolog/ Reprod., 1971. — S. — N2.-S. 115-122.

319. Lamond D.R. Synchronisation of ovarian cycles in sheep and cattle/ D.R. Lamond// Animal Breed. Absrts. 1964. - V. 32. - N 3. - P. 269-285.

320. Loyd T.S. Amenorrhea and corpus luteum persistens/ T.S.- Loyd// Virginia Med. Mounthly. 1959. -N 4. -P. 86-89.

321. Mason B.D., Krishnamurti C.R., Kitts B.D. J Endocrinology, 1972, 55, 1, 141, 146.

322. Mauleon PI Ovarian development in- young mammals/ P. Mauleon// Control of ovulation. Butterworths, 1978. P. 141-158.

323. Mbassa G. K. Studies on the ovarian development in zebu cattle (Bos incus)/G. K. Mbassa//Anat. Histol. Embriol. 1989. 18. P. 143-149.

324. McNutt G.W. The corpus luteum of pregnancy in domestic cow and brief discussion of cystic changes/ G.W. McNutt// J. Amer. Vet. 1927. 72. P. 286293.

325. Moor R.M. Sintes of steroid production in ovine Graatian follicles in culture/ R.M. Moor//1. Endocrinology. 1976. - V. 73. - N 1. - P 143-145.

326. Mosti E. et al. Steroidhormon ehalt im Blut von Rindern vor und noch der physiologischen bzw. Glukokortikoid-induzirten Geburt/ E. Mosti et al.// Wien, tierarztl. Mschr. 1980. - V. 67. - N 2. - S. 56.

327. Murphy B.D. Models of luteinization/ B.D. Murphy// Biology of reproduction. 2000. 63. P: 2-11.

328. Nieschlag'E., Swerdloff R., Behre ILM:, et al. Investigation, treatment and: monitoring of lateonset hypogonadisms in males ISA, ISS AM; and EAU recommendations; International journal* of andi'ology 2005; 28: 125-127.

329. Ramirez V. Fluctuations in plasma luteinising honnone concentrations during the; estrous cycle! the rat / V; Ramirez, A. Domingo, S. M. Mc Cann // Endocrinology, 1964. V. 74. - N5. - P. 814-817.

330. Reitman S., Frankel S. Amer. J. Clin. Pathol., 1957, Vol. 28, p. 56.

331. Roberts S.J. Veterinari obstetrics and: genital diseases/ SJ. Roberts // New-York state Veterinary College. Ithaca. - №4., 1956.- P. 253-254.

332. Roche S.F; Turnover of dominant follicles in cattle of different reproducetive state/ S.F. Roche, M.P. Bolland// Theriogenology. 1991. - 35. -N l.-P. 81-91.

333. Sakai T. Studies pn the development of the embryonic ovary in swine; cattle and horse// Jap. j. vet. res. 1955: 3(4). P: 183-198.

334. Seren. Erando,, Bono C., De Fanti C. Variazioni della concentrazionecplasmatica degle estrogeni nella cavalla duzante il ciclo estrale// Atti soc. Ital. sei. vet:, 1973.- 27. S. 285-291.

335. Shea J.D. Cellular composition of the cyclic coipus luteum of the cow/ J.D. Shea, R.J. Rodgers, M.J. Occhio// J. Repr. Fert. 1989. 85. P. 483-487.

336. Snyder P.J. Androgens In: Hardman J.G., Limbird L.E., Eds. Goodman&Gilman's The Pharmacologic Basis of Therapeutics, 10th ed., New York: McGraw-Hill, 2001; 1635-1648.

337. Soliman F.A., Nass H. Effects of oestradiofse progesterone on FSHse LH contens of the pitreitaries se blood of ovariectomized ewes/ F.A. Soliman, H. Nass// Experintia, 1963. 19. -N 8. r S. 430-431.

338. Stanczyk F.Z. Structurefunction relationships, metabolism, phamacokinetics and potency of progestins. Drugs of Today 1996; 32 (Suppl. H): 114.

339. Stevenson J.S., Britt J.H. Luteinizing gormone, estradiol and progesterone before first ovulation in post-partum cows/ J.S. Stevenson, J.H. Britt// In: 69th Ann. Meet. Amer. Sjc. Anim; Sic. Madison, 1977. p. 211 (Abstr.).

340. Takahashi -MI et al. Onset of estrus foil wing calving in spring in Japanese Blask cows. Bull/ M. Takahashi et al.// Tohoku Nat, Agr. Exper. Stat. Morioke, Japan. - 1979. - V. 60. - P. 63-72.

341. Teske E. Rothuizen J. Corticosteroid induced alkaline phosphatase isoenzyme in the diagnosis of canine hypercorticism. Vet: Ree., 1989; 125, P. 1214.

342. Trinder P., Ann. Clin. Biochem., 1969, Vol. 6, p. 24.

343. Van Blerkom. The celluar basis of mammalian reproduction/ Van Blerkom, J.P. Motta. Baltimor, 1979. 252 p.

344. Varadin M., Penavin V. Untersuchungen über die Bedeutung und

345. Xtiologie des corpus luteum persistens bei Kuhen/ M. Varadin, V. Penavin// Welt Tierarztekongress. Kongressberichte. 1963. -Bd. - S. 1227-1234.

346. Vaughan L. A histological study of corpora lutea from superovulated beef heifers/ L. Vaughan, E. Fitzpatrick, M. Boland and J. Roche// Animal reproduction science. 1996. P. 1-14.

347. Wagner W.C., Hansel W. Reproductiwe physiology of the postpartum cow. 1. Clinical and histological findings/ W.C. Wagner, W. Hansel// I. Reproduct and Fertility. 1969.-V. 18.-N3.-P. 493-500.

348. Weber D.M. Functional differences between small and large luteal cells of the latepregnant vs. non-pregnant cow/ D.M. Weber, P. A. Fields, L.J. Romrell, S. Tumwatsorn, B.A. Ball, M. Drost, M. Fields// Biol. Repr. 1987. 37. P. 685-697.

349. Weir B.J. Ovulation and atresia/ B.J. Weir, W. Rowlands// The ovary. N. Y., 1977. P. 265-284.

350. Wenzel J. The mammalian rete ovarii: a literature review/ J. Wenzel/ S. Odendhal// The Cornell vet. 1985. 75. 3. P. 411-425.

351. Zayed A.E. Morphological and functional observations on the cyclic corpus luteum in Egyptian buffaloes (Bus bubalis)/ A.E. Zayed, G.A. Megahed// Assiut veter. med. J., 1999. 40/80. P. 1-16.

352. Zemjanis R. Clinical incidence of genital abnormalities in the cow/ R. Zemjanis, L. Larson, R. Bhalla// J. Am. Vet. Med. Ass. 1961. - Vol. 139. - N9. -P. 1015-1018.

353. Zemjanis R., Fahning M.L., Shultz R.H. Anestrus: the practitioner's dilemma. Vet. Scope, 1969, v. 14, 14-21.

354. Zlatkis A., Zak B., Boyle A.I. Lab. Clin. Med., 1957, Vol. 50, N2., P.t318.