Применение иммуномодулятора тимогена для стимуляции половой охоты и оплодотворяемости у коров

Логвинов, Александр Анатольевич

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Применение иммуномодулятора тимогена для стимуляции половой охоты и оплодотворяемости у коров
ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Автореферат диссертации по теме "Применение иммуномодулятора тимогена для стимуляции половой охоты и оплодотворяемости у коров"

□034/ЬЬЬх

На правах рукописи

ЛОГВИНОВ Александр Анатольевич

ПРИМЕНЕНИЕ ИММУНОМОДУЛЯТОРА ТИМОГЕНА ДЛЯ СТИМУЛЯЦИИ ПОЛОВОЙ ОХОТЫ И ОПЛОДОТВОРЯЕМОСТИ

У КОРОВ

03.00.13 - физиология

- 1 ОКТ 2009

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Белгород 2009

003478661

Работа выполнена в ФГОУ ВПО «Белгородская государственная сельскохозяйственная академия».

Научный руководитель: Заслуженный ветеринарный врач РФ,

доктор биологических наук, профессор Безбородов Николай Васильевич

Официальные оппоненты: доктор биологических наук, профессор

Ли Анатолий Ченсонович;

кандидат биологических наук Пальчиков Михаил Юрьевич

Ведущая организация: ФГОУ ВПО «Курская государственная

сельскохозяйственная академия»

Защита состоится « 009 г., в 43^4 асов на заседании

диссертационного совета Д 220.004.01 при ФГОУ ВПО «Белгородская государственная сельскохозяйственная академия» по адресу: 308503, Россия, Белгородская область, Белгородский р-н, пос. Майский, ул. Вавилова 1.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Белгородская государственная сельскохозяйственная академия».

Автореферат разослан «-¿ff » г.

Ученый секретарь

диссертационного совета,

кандидат биологических наук

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Воспроизводство сельскохозяйственных животных является основой технологии разведения, содержания и получения продукции при промышленном ведении животноводства. От состояния воспроизводства стада зависит продуктивность, экономичность и рентабельность отрасли. Рядом исследований (Дедов Ю.М., 1989; Ибрагимова А.Х., 1993, Мингазов Т.А., 1994) отмечено, что одним из способов интенсификации воспроизводства самок является применение различных медикаментозных средств и методов повышения оплодотворяемости (Нежданов А.Г., 1985; Полянцев Н.И., 1989; Равилов М.Н., 1994; Шубин A.A., 1996 и др.)

Современные физиологические, биохимические, иммунологические методы исследований позволяют накапливать объективные данные и глубже понять процессы, способствующие в организме самок обеспечивать половую цикличность и своевременную оплодотворяемость.

Дальнейшее решение проблемы повышения воспроизводительной способности самок животных, которое определяется запросами производства, связано с всесторонним изучением гормональных изменений при становлении половой цикличности, динамики клеточных и гуморальных факторов, характеризующих защитные силы организма, и на их основе внедрением современных методов стимуляции цикличности и оплодотворяемости коров.

Одним из таких методов стимуляции половой цикличности в ранний послеродовой период является применение иммуномодулирующих препаратов пептидной природы, к числу которых относится биокорректор Тимоген.

Цель и задачи исследований. Целью работы было изучение механизмов действия и определение эффективности применения пептидного регулятора тимогена для стимуляции половой охоты и повышения оплодотворяемости коров в ранний послеродовой период.

Дня достижения цели были поставлены на разрешение следующие задачи:

- определить динамику стероидных гормонов в крови коров до и после применения тимогена;

- изучить биохимические показатели крови, характеризующие уровень компенсаторно-приспособительных механизмов до и после введения тимогена;

- определить характер гистоструктурных изменений в половых и вторичных иммунокомпетентных органах коров до и после применения тимогена;

- определить эффективность применения тимогена в качестве средства стимуляции половой охоты и оплодотворяемости коров в ранний послеродовой период;

- отразить экономическую эффективность применения тимогена для стимуляции половой охоты и оплодотворяемости коров.

Научная новизна работы. Впервые комплексными исследованиями изучены процессы становления и активизации адаптационно-метаболических процессов у коров после стимуляции половой охоты в ранний послеродовой период синтетическим пептидным регулятором тимогеном.

Теоретическая и практическая значимость. Результаты проведенных исследований расширяют и дополняют существующие представления о механизмах регуляции и стимуляции половой цикличности с последующей оплодо-творяемостью у коров путем применения глутамил-триптофанового комплекса (Тимоген) в ранний послеродовой период. Предложенные производству способы ранней стимуляции половой охоты и оплодотворяемости коров обеспечивают повышение рентабельности молочного скотоводства и могут быть использованы при проведении акушерско-гинекологической диспансеризации и оптимизации сервис - периода.

Положения, выносимые на защиту.

1. Глутамил-триптофановый комплекс (Тимоген) обладает гормоно-корригирующим действием в отношении глюкокортикостероидов и половых стероидов у коров в ранний послеродовой период.

2. Активизация процессов становления адаптационно-метаболических изменений глутамил-триптофановым комплексом способствует повышению естественной резистентности и индукции половой охоты.

3. Гистоструктурные изменения в тканях вторичных иммунокомпе-тентных и половых органов коров подвергнутых стимуляции тимогеном, свидетельствуют о биокорригирующем влиянии препарата.

4. Применение тимогена в ранний послеродовой период стимулирует половую охоту и оплодотворение коров в оптимальные сроки.

Апробация работы. Материалы работы были представлены на ежегодных научно-производственных международных конференциях г. С-Петербург, СПбГАВМ (2006 г.), г. Казань, КГАВМ (2006 г.) и ежегодных отчетах аспирантов факультета ветеринарной медицины БелГСХА (2006-2008 гг.)

Публикация результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 5 статей.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 128 страницах печатного текста. Список литературы включает 209 отечественных и 62 зарубежных источников. Работа иллюстрирована 29 таблицами и 19 рисунками.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Научные исследования и производственные опыты проведены на коровах чёрно-пёстрой породы в ОПХ «Белгородское» Белгородского района, в летний и зимне-стойловый период. Животные находились на привязи в типовых коровниках, а в летний период на выгульных прифермских площадках. Тип кормления животных - силосно-концентратный. Рацион кормления сбалансирован по основным питательным компонентам. Среднегодовой удой по стаду 5050 кг молока. Хозяйство благополучно по инфекционным и инвазионным заболеваниям. Формирование опытных групп коров осуществляли на основании анализа воспроизводства стада (учет искусственного осеменения, амбулаторный журнал лечения гинекологически больных животных), учета физиологического состояния животных и после клинико-гинекологического обследования коров. При этом учитывали следующие показатели: длительность инволюции половых органов после родов, время и количество осеменений, длительность сервис-

периода, наличие заболеваний во время беременности и после родов, оплодо-творяемость (в том числе после первого осеменения). В сравниваемых группах подбирали пары-аналоги коров по породной принадлежности, возрасту, продуктивности, живой массе и физиологическому состоянию. Коров в состоянии половой охоты выявляли визуально по рефлексу неподвижности и при проявлении всех феноменов, присущих стадии полового возбуждения у самок животных (Студенцов А.П., 1980). В опыты по изучению механизма действия и возникших физиологических изменений со стороны репродуктивных органов коров, подвергнутых стимуляции половой охоты, включали животных на 2-е сутки после отёла. Осеменение коров опытных групп проводили маноцерви-кальным методом двукратно (с 12-часовым интервалом). Стельность после проведенной обработки коров определяли ректальным исследованием комиссионно через 3 месяца после осеменения.

В качестве средства, стимулирующего половую цикличность и оплодо-творяемость у коров, применяли препарат Тимоген®.

Тимоген - синтетический пептид, состоящий из остатков глутаминовой кислоты и триптофана (рис.1), оказывает регулирующее влияние на реакции клеточного и гуморального иммунитета, активизирует процессы регенерации и обмен веществ, повышает неспецифическую резистентность организма к неблагоприятным факторам внешней среды. При парентеральном введении тимоген, попадая в кровоток, распадается до аминокислот, которые затем используются организмом в синтезе пептидов. Период полураспада тимогена составляет от 30 до 60 мин.

Рис. 1 - Структурная формула Ь-глутамил-Ь-триптофана (тимоген).

Исследования иммуномодулирующих свойств тимогена показали высокое сродство дипептида тимогена с мембранными рецепторами тимоцитов. Исследованиями установлено (Смирнов B.C., 2004), что иммуномодулирующие свойства дипептида реализуются путём трансляции содержащегося в нем сигнала через систему вторичных посредников, часть из которых также имеет пептидную природу.

Всего было проведено три серии опытов по определению эффективности стимуляции половой охоты и иммуно-биохимических изменений в крови коров до и после применения тимогена.

В первой серии опытов была исследована эффективность применения тимогена самостоятельно коровам спустя двое суток после отёла, в дозе 15 мл/гол/сут, 0,01% раствора, внутримышечно в течение: 3-х суток (1-я группа,

ОН

п=26); 6-и суток (2-я группа, п=20); 9-и суток (3-я группа, п=24); а также совместно тимогена в дозе 15 мл/гол/сут, 0,01% раствора в течение 9-и суток и сур-фагона (Гн-РГ) в дозе 50 мкг/гол внутримышечно, однократно на 10-е сутки (4-я группа, п=26). Контрольной группе коров (п=25) препараты не вводили (5-я группа). Учёт эффективности применения тимогена осуществляли в течение сервис-периода (90 суток) и начала стимуляции коров ( п=121) по следующим показателям: время появления половой цикличности после введения препаратов, количество полноценных половых циклов, количество осеменений, наличие послеродовых заболеваний, количество оплодотворённых коров, в том числе после первого осеменения, индекс осеменения.

Во второй серии опытов приводили отбор крови из яремной вены в каждой группе коров (п=6) для проведения биохимических исследований. Взятие крови осуществляли четыре раза: первый раз - до введения тимогена и затем на 10-е, 20-е и 30-е сутки.

Изучение механизма действия пептидного комплекса (глутамил-трипто-фан) тимогена по показателям крови, отражающим физиологическое состояние организма во всех группах до и после курса стимуляции, определяли с помощью общепринятых методик (Кондрахин И.П., 2004).

В крови коров были определены следующие иммуно-биохимические показатели: прогестерон, эстрадно л, кортизол, тироксин, общий белок, альбумины, глобулины - а, р, у; АлАТ (апанинаминотрансфераза); АсАТ (аспартатами-нотрансфераза); ЩФ (щелочная фосфатаза); триацилглицерины, холестерол, глюкоза, Са, Р, резервная щёлочность, лейкоцитарная формула.

Основные лабораторные исследования проведены на кафедре диагностики болезней, терапии, акушерства и хирургии Белгородской ГСХА, в Белгородской областной ветеринарной лаборатории, вирусологической лаборатории Центра Госсанэпиднадзора Белгородской области и паталогоанатомического отдела городской больницы №2 г. Белгорода.

Всего в опытах было использовано 157 коров, на которых были проведены исследования по следующей схеме (рис.2).

Исследования содержания стероидных гормонов в крови коров проводили путём количественного определения в сыворотке крови уровня стероидных гормонов эстрадиола - 17 р, прогестерона и кортизола при помощи методики твёрдофазного иммуноферментного анализа (инструкция Департамента государственного контроля качества эффективности безопасности лекарственных средств и медицинской техники МЗ РФ от 5.01.2001 г., а также методики ООО «Хемамедико», 2000 г.).

Определение общего белка проводили по методике, основанной на взаимодействии белков с ионами меди в щелочной среде. Фотометрическое определение интенсивности окраски давало результат, соответствующий концентрации общего белка в пробе (Титов В.Н., Творогова Т.Г., 1995).

Рис. 2 - Алгоритм исследований

Триацилглицерины определяли путем катализирования липазной реакции гидролиза триацилглицерола с образованием жирных кислот и эквимолярного количества глицерина (Trinder Р., 1969; Кондрахин И.П., 2004).

Для определения холестерола использовали методику гидролиза эфиров холестерола холестеринэстеразой (Zlatkis A., Zak В., Boyle A.I., 1958; Trinder Р.,1969; Кондрахин И.П., 2004).

Определение альбуминов, а, ß, у-глобулинов в сыворотке крови проводили методом электрофореза на бумаге (Kohn J., 1975; Сентебова H.A., Мед-ведьева JI.A., Александровская Т.Н., 1978).

Для определения активности АлАТ, АсАТ и ЩФ использовали унифицированный метод Райтмана-Френкеля (Вилкинсон Д., 1981; Лабораторные методы исследования в клинике, 1987).

В третьей серии опытов проводили изучение гистоструктурных изменений в тканях иммунокомпетентных органов по гистопрепаратам от коров, подвергнутых стимуляции тимогеном в дозе 15 мл/гол/сут (1-я группа) в течение 9-и суток (п=3) и коров (2-я группа) интактных (п=3). Забой проводили на 12-е сутки от начала введения препарата. Гистопрепараты готовили согласно общепринятых методик классической гистотехники (Ролдугина Н.П. с соавт., 2004). Микроскопирование и фотодокументирование материалов проводили на микроскопе ЛОМО с фотонасадкой ФН-11. Полученный цифровой материал обработан статистически. При определении достоверности разницы между показателями опытных групп использовали аргумент Стьюдента и таблицу Фишера-Снедока по вычислению критерия достоверности. Результаты рассматривали как достоверные, начиная со значения р<0,05.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 3.1. Содержание стероидных гормонов в крови коров

Полученные результаты исследований по динамике уровня изучаемых гормонов в крови коров опытных групп представлены в табл. 1. Наиболее значимым отличием в изменении гормональных показателей после введения стимулирующих средств следует считать повышение к 20-м суткам концентрации прогестерона в 2-3 раза у коров 1-4-й групп, в отличие от контрольной группы, где уровень гормона был практически неизменным в течение всего исследуемого периода (30 суток). Учитывая то, что синтез гормона прогестерона яичниками индуцируется лютеинизирующим гормоном (ЛГ) и его выделение в свою очередь способствует запуску регуляции гипоталамо-гипофизарно-яичниковой системы по механизму обратной связи, а в дальнейшем и становлению половой цикличности у коров (Бабичев В.Н., 1984; Hebel S.K., 2003; Lasy C.F. et al., 2003; Дедов И.И., 2006), действие тимогена затрагивает высшие отделы нейро-эндокринной регуляции и носит выраженный гормоности-мулирующий характер, направленный на индукцию половой цикличности.

Повышение концентрации тироксина у коров З-й-4-й групп уже к 10-м суткам свидетельствует об активизации процессов перехода расщеплённого тироксина (Т4) в трийодтиронин (Т3) и связывания последнего внутри клеток со специфическим ядерными рецепторами тиреоидных гормонов. Образовавший-

ся комплекс гормон-рецептор взаимодействует с определёнными регуляторны-ми участками дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК). В результате происходит увеличение транскрипционной активности РНК, активизируется синтез белка и повышается внутриклеточный транспорт глюкозы и аминокислот. Таким образом, увеличивается потребление кислорода почти во всех тканях организма, повышается основной обмен и усиливается теплопродукция (Stokigt J.R., 1999; Gortner R., 2001; Hebel S.K., 2003; Lacy C.F., 2003; Larsen P.R., 2003; Моргунова Т.Б., 2005).

Таблица 1 - Содержание стероидных гормонов в крови коров

Группа Вводимый препарат Время исследований Прогестерон, нмоль/л Эсградиол-17ß, нмоль/л Кортизол, нмоль/л Тироксин, нмоль/л

1 Тймоген, 15мл/гол/ сут - 3-е суток До введения 0,52±0,08 0,17±0,02 29,9±2,19 28,2±3,1

На 10-е сутки 0,47±0,06 0,17±0,02 31,6±2,55 31,2±2,96

На 20-е сутки 1,35±0,2" 0,19±0,02 33,3±2,8 34,7±2,4

На 30-е сутки 1,7±0,22" 0,21±0,02 34,3±2,7 40,2±1,8

2 Тимоген, 15мл/гол' сут-6 суток До введения 0,57±0,07 0,68±0,39 38,25±7,72 35,2±3,47

На 10-е сутки 0,54±0,06 0,21 ±0,06 21,4±4,38 24,6±1,45*

На 20-е сутки 1,35±0,08" 0,44*0,11 15,3±3,45 37,8±2,0"

На 30-е сутки 1,63±0,12 0,5±0,01 19,25±1,04 43,2±1,14*

3 Тимоген, 15мл/гол/ сут-9 суток До введения 1,31±0,14 0,15±0,01 11,87±0,57 31,0*1,7

На 10-е сутки 1,7±0,48 0,15±0,01 12,23±0,5 52,0±2,5"

На 20-е сутки 1,6±0,43 0,23±0,04 12,Oil,85 56,0±2,2

На 30-е сутки 3,2±1,3 0,23±0,03 14,85±1,74 60,0±5,9

4 Тимоген, 15мл/гоя/ сут-9 суток +сурфагон 50 мкг/гол До введения 1,3±0,13 0,14±0,01 14,5±1,66 36,0±4,7

На 10-е сутки 1,25±0,13 0,16±0,01 11,6±0,71 51,0±3,7'

На 20-е сутки 2,6±0,59 0,19±0,01 14,5±1,8 54,5±5,7

На 30-е сутки 4,0±1,22 0,2±0,02 20,4±3,82 51,0±2,7

5 Контроль На 2-е сутки после родов 1,35±0,04 0,33±0,05 28,8±1,94 38,8±4,59

На 10-е сутки 1,25±0,12 0,37±0,07 23,5±2,35 46,3±5,07

На 20-е сутки 1,52±0,14 0,16±0,01' 22,6±4,6 57,5±3,5

На 30-е сутки 1,74±0,18 0,17±0,01 23,5±3,7 61,7±2,95

Примечание: * -р<0,05;** - р<0,001.

3.2. Белковые показатели в крови коров

У коров 1-й группы, которым вводили тимоген в дозе 15 мл/гол/сут внутримышечно в течение 3-х суток, изначальный уровень белковых веществ в крови составил: общий белок - 73,6±2,3 г/л; альбумины - 49,8±0,81% г/л, глобулины а -12,8±0,5 % р - 10,4±0,5 % у - 27,0±1,33 %. Через 10 суток отмечены следующие изменения: общий белок -76,7±1,3 г/л; альбумины - 43,3±0,8 %, р<0,01 (снижение на 13,0%); глобулины а - 14,3±0,42%; р - 11,4±0,4% и у -31,0±1,35%. В последующем на 20-е сутки было отмечено: общий белок -79,3±1,54г/л; альбумины - 46,7±0,55%; глобулины у - 13,7±0,3%, Р - 11,2±0,5% и у - 28,4±0,73%. Через 30 суток уровень белковых показателей характеризо-

вался следующими значениями: общий белок - 81,0±1,4г/л; альбумины -47,3±0,49%; глобулины а - 13,8±0,25%, 0 - 11,4*0,5% и у - 27,5±0,6%. У животных 2-4 групп были схожие изменения показателей белкового обмена. А у коров 5-й (контрольной) группы на 2-е сутки после родов содержание общего белка составило 87,5±4,0 г/л, альбуминов - 35,9±2,42%, глобулинов а -12,0±0,87%; р - 9,8±0,6%; у - 42,3±2,82%. В последующем через 10 суток количество общего белка имело тенденцию некоторого повышения до 92,8±3,88г/л, альбумины без изменений 35,4±2,19%, глобулины а - 13,8±0,57%; р -11,5±0,86% и у - 39,3±2,82%. Через 20 суток картина динамики белковых показателей мало изменилась: общий белок 90,5±2,2г/л, альбумины 39,5±1,1%, глобулины а - 12,1±0,55%, р - 10,5±0,7% и у - 37,9±1,6%. Через 30 суток содержание общего белка также имело тенденцию незначительного повышения до 94,2±1,6г/л; альбумины - 40,4±0,8%; глобулины а - 15,3±0,88%, (3 - 9,9±0,7% и у-34,4±1,8%.

Исследование содержания белков и белковых фракций в сыворотке крови коров показало, что после курса стимуляции тимогеном (1-3 группы) отмечены колебания (снижение) содержания альбуминов и повышение у-глобулинов в пределах 10-20 суток после начала обработки. Подобные изменения отсутствовали у коров 5-й (контрольной) группы. Учитывая то, что основные функции альбумина - связывание воды, обеспечение коллоидно-осмотического давления, транспорт ионов магния, кальция, стероидных гормонов и т.п., 10-20 сутки после начала введения тимогена будут являться наиболее информативными в характеристике биокорригирующих свойств глутамил-триптофанового комплекса на организм. Повышение у-глобулинов свидетельствуют, очевидно, об увеличении в основном иммуноглобулинов класса в и М, т.е. антител, которые синтезируют В-лимфоцигы.

Повышение содержания глобулинов а в крови коров 5-й контрольной группы к концу исследований характеризует процессы участия аг гликопротеина в транспорте прогестерона и тестостерона, а также свидетельствует о снижении содержания эстрогенов в крови (Кондрахин И.П., 2004), что и отмечено у коров этой группы (снижение эстрадиолда-17р в 2 раза от исходного уровня).

Полученные данные изменения белковых показателей крови, отражающих адаптационно-компенсаторные механизмы становления внутренней среды организма животных после действия глутамил-триптофанового комплекса, носят стимулирующий характер, направленный на активизацию иммуно-биохимических процессов в организме, являющихся важным звеном в активизации воспроизводительной функции у коров.

3.3. Содержание глюкозы и липидов в крови коров

Полученные результаты изменений концентрации глюкозы от нормы (рис. 3), очевидно, свидетельствуют о том, что в половых органах животных до начала стимуляции тимогеном имелись морфофункциональные нарушения. Кроме того снижение содержания глюкозы указывает на возможное наличие интоксикации печени при беременности. Отмеченное резкое снижение концен-

трации глюкозы у коров 1-й, 2-й и постепенное у животных 4-й группы к 10-м-20-м суткам, очевидно, следует связывать с поступлением глюкозы из печени в большой круг кровообращения и дальнейшего её транспорта кровью в органы и ткани, где она окисляется и используется доя возмещения энергетических затрат организма. У коров 4-й и 5-й групп часть глюкозы синтезируется в печени из гликогена, а неиспользованная пополняет уровень триацилглицеринов. Полученные данные подтверждают, что биокорригирующие свойства тимогена реализуются также через активизацию нейроэндокринной регуляции этапов углеводного обмена, что возможно посредством влияния на гипофизарно-надпочечниковую связь.

Полученные данные изменения уровня липидных компонентов и глюкозы после введения глутамил-триптофанового комплекса, имели в целом сходные колебания по группам коров, но наиболее выраженными они были у животных 1-й, 3-й и 4-й групп. Отмеченное снижение количества триацилглицеринов в крови коров 1-й и 3-й групп свидетельствует об усилении процессов молокоотдачи и активизации функции миометрия. Кроме того, повышенный изначально от физиологического (очевидно из-за жировой дистрофии печени) уровень триацилглицеринов у коров 1-й, 3-й и 4- й групп после ведения тимогена возвращается к норме. Снижение уровня глюкозы у коров 1-й -4-й группы

Рис.3 - Содержание триглицеридов, холестерина и глюкозы в крови коров

■ Триглицериды ■Холестерин □ Глюкоза

на 10-е - 20-е сутки в отличие от показателя у коров 5-й группы свидетельствует, очевидно, об имеющихся процессах повышения энергетических затрат, требующих превращения в печени глюкозо-1-фосфата в глюкозо-б-фосфат с последующим дефосфорилированием под действием фосфатазы в свободную глюкозу. Отмеченное повышение свободного холестерола в сыворотке крови коров 4-й группы находилось в пределах средних физиологических значений

3.4. Ферментативная активность крови коров

Активность ферментов в крови коров 1-й группы до начала введения ти-могена характеризовалась следующими значениями: АлАТ - 52,8±5,56 и/Ь; АсАТ - 108,4±27,8 и/Ь и ЩФ - 425,3±66,5 и/Ь. Через 10 суток после начала стимуляции тимогеном активность АлАТ имела тенденцию повышения до 108,4±27,8 и/Ь, АсАТ 150,1±22,24 ШЬ, а ЩФ - снижения до 264,9±44,1 и/Ь. В последующем через 20 суток отмечены малозначительные изменения: АлАТ -111,2±19,5 и/Ь; АсАТ - 139,0± 27,8 и/Ь и ЩФ - 251,1±46,1 и/Ь. Через 30 суток от начала исследований активность АлАТ составила 105,б±13,9 и/Ь; АсАТ -136,2±27,8 и/Ь и ЩФ - 246,8±36,4 и/Ь. Картина изменения содержания ферментов в крови коров 2-4 групп была схожей с животными 1-й группы. Изменения ферментативной активности после применения тимогена характеризовались снижением ЩФ к 10-м - 20-м суткам исследований у коров 1-й - 4-й групп. В контрольной группе таких изменений не отмечено. Известно, что активность ЩФ значительно повышается при заболеваниях печени и костной ткани (остеомаляция), которые возникают после беременности. Динамика изменений ЩФ после курса стимуляции тимогеном характеризует биокорриги-рующий характер его действия.

3.5. Резервная щёлочность и показатели водно-электролитного обмена в крови коров

Полученные результаты состояния бикарбонатной буферной системы крови, определенной у коров опытных групп по уровню резервной щёлочности, показали (табл. 2), что изначальный её уровень соответствовал физиологическим показателям в 1-й, 2-й и 5-й группах. В 3-й и 4-й он был ниже нижней границы физиологического значения на 5% и после введения тимогена щелочной резерв крови восстановился до среднего значения физиологической нормы, т.е. отмечен сдвиг в сторону алкалоза.

Изначальный уровень содержания общего кальция в крови коров 1-й и 4-й групп был в среднем на 60% ниже нижней границы физиологических показателей. Такое возможно при недостаточном поступлении кальция с кормом или плохом его усвоении при дефиците витамина Д и паратгормона, которые обеспечивают его всасывание в кишечнике и препятствуют выведению с мочой (Кондрахин И.П., 2004). Повышение его содержания до нормы у коров опыгаых групп очевидно следует связывать с активизацией функции паращиговидных желез через систему прямых и обратных связей нейроэвдокринной регуляции.

Таблица 2 — Резервная щёлочность и показатели водно-электролитного _^__обмена в крови коров__

Группа Вводимый препарат Время исследований Щелочной резерв, об.%С02 Фосфор неорганический, мг% Кальций общий, мг%

1 Тимоген, 15мл/гол/ сут - 3-е суток До введения 45,8±1,8 3,83±0,38 9,38±0,35

На 10-е сутки 49,7±1,4 4,92±0,05' 9,83±0,25

На 20-е сутки 52,3±1,2 4,5±0,13 9,91±0,15

На 30-е сутки 53,2±1,04 4,41±0,02 10,8±0,02

2 Тимоген, 15мл/гол/ сут - 6 суток До введения 46,2±2,5 3,92±0,35 9,8±0,27

На 10-е сутки 49,3±1,76 4,92±0,05" 9,83±0,25

На 20-е сутки 51,5±1,61 4,75±0,17 10,3±0,1

На 30-е сутки 53,2±0,9 4,66±0,25 10,3±0,1

3 Тимоген, 15мл/гол/ сут-9 суток До введения 44,0±3,6 3,1±0,3 9,3±0,1

На 10-е сутки 50,2±4,2 4,67±0,21' 9,75±0,2'

На 20-е сутки 51,0±4,0 4,8±0,31 9,8±0,22

На 30-е сутки 54,0±2,0 5,0±0,2б 9,9±0,18

4 Тимоген, 15мл/гол/ сут-9 суток +сурфагон 50 мкг/гол До введения 44,0±3,0 3,2±0,1 9,1±0,1

На 10-е сутки 51,0±2,8 4,0±0,26* 9,5±0,13*

На 20-е сутки 50,0±3,4 4,67±0,21 9,75±0,17

На 30-е сутки 50,0±3,5 4,67±0,21 9,7±0,13

5 Контроль На 2-е сутки после родов 50,0±1,Н 5,1±0,27 10,7±0,1

На 10-е сутки 49,0±0,9б 4,92±0,2 10,6±0,08

На 20-е сутки 53,37±1,36' 5,0±0,13 10,9±0,15

На 30-е сутки 53,8±1,2 5,0±0,26 10,6±0,1

Повышение уровня кальция в крови до физиологических значений характеризует активизацию процессов проницаемости клеточных мембран (ионизированный кальций), что весьма важно для становления уровня гомеостаза организма коров в ранний послеродовой период.

Содержание фосфора до введения тимогена у коров 1-й и 4-й групп было ниже физиологических значений в среднем на 22,3%. После курса стимуляции коров тимогеном у животных всех четырёх опытных групп уровень неорганического фосфора в крови достиг физиологических значений, в то время как в контроле (5-я группа) он оставался без изменений в течение всего (30 суток) времени исследований. Изначально пониженный уровень фосфора в крови, очевидно, связан с недостаточностью его в рационах кормления беременных коров и возможной гиперфункцией паращитовидных желез, когда увеличивается секреция паратгормона и уменьшается выработка кальцитонина, а также, что особенно часто встречается с содержанием коров в зонах с пониженным содержанием йода и имеющейся гипофункцией щитовидной железы (Сахнюк В.В., 1996; Романюк ВЛ., 2002). Проведенные исследования показали, что у всех групп изначальный уровень тироксина в крови был ниже в среднем на 30% от нижней границы физиологических значений для этого показателя.

З.б. Лейкоцитарная формула крови коров

Изучение процентного соотношения различных форм лейкоцитов (лейкоцитарная формула) показало (табл.3), что в основном содержание отдельных видов белых кровяных клеток в крови коров всех групп находилось в пределах физиологической нормы (Кондрахин И.П., 2004). В крови животных 2-й, 3-й и 4-й групп отмечена моноцитопения, которая проявляется на 10-е сутки после начала введения тимогена у коров 3-й группы. У животных 2-й группы она имелась изначально и к концу исследований уровень моноцитов восстановился до нормального. Та же картина отмечена у коров 4-й группы. Такие изменения у коров 2-й и 4-й групп возможно связаны с тем, что после родов значительное количество моноцитов выделяется в периваскулярную ткань половых органов, где они выполняют защитную и репаративную функции (Сысоев A.A., 1978), а уменьшение количества моноцитов у животных 3-й группы является следствием обеспечения иммунологических реакций, которые индуцируются глутамил-триптофановым комплексом препарата тимоген.

3.7. Показатели воспроизводительной функции коров

В результате проведённых исследований по изучению действия препарата тимоген самостоятельно и в комплексе с сурфагоном в качестве средств ранней стимуляции половой цикличности и оплодотворяемости у коров были получены следующие результаты (табл.4), отражающие эффективность их влияния на воспроизводительную функцию. Наиболее ранее проявление половой цикличности, в среднем на 24 сутки после начала стимуляции, отмечено у коров 4-й группы, где вводили тимоген совместно с сурфагоном. Время проявления половой цикличности у коров этой группы было в пределах 20-28 суток. Такой же интервал в 4 суток от среднего значения (29 суток) проявления половой цикличности был отмечен у животных 3-й группы, где стимуляцию осуществляли одним тимогеном в течение 9 сугок. У коров 2-й группы, где проводили введение тимогена в течение 6 суток, время проявления половой цикличности в среднем по группе составило 29 дней, но разброс прихода в охоту у животных составил от 22 до 36 дней. У коров 1-й группы, где стимуляцию половой цикличности осуществляли одним тимогеном, в течение 3-х дней был наибольший интервал прихода коров в охоту - 22-40 дней (31 день в среднем). У животных контрольной группы спонтанное проявление половой цикличности было отмечено в пределах 57-85 дней (71 день в среднем) после родов. Количество коров, осеменённых по одному разу, было наибольшим в 4-й группе - 69,2%, а наименьшим - в 1-й группе - 34,6%. При этом наилучший индекс осеменения -1,02 отмечен у коров 4-й группы при оплодотворяемости 76,9% коров. Наличие послеродовых заболеваний (воспалительного характера - эндометриты) после проведенного курса стимуляции половой цикличности было наименьшим в 4-й группе, что на 50,0% меньше, чем у коров в контрольной группе (83,3%).

Таблица 3 - Содержание различных видов лейкоцитов в крови коров 1-й и 2-й групп

Группа (п=6) Вводимый препарат Время исследований Нейтрофилы %

Лейкоциты, млн/л хЮ9 Базофи-лы, % Эозино-филы, % Палочко-ядерные Сегмен- то-ядерные Лимфоциты Моноциты,%

1 Тимоген, 15мл/гол/ сут - 3-е суток До введения 6,6±1,05 0,5±0,34 5,2±0,87 3,7±0,5 25,0±1,8 61,6±4,6 4,0±0,73

На 10-е сутки 6,7±0,83 0,3±0,21 6,0±0,82 3,5±0,43 26,0±1,5 60,2±3,3 4,0±0,58

На 20-е сутки 6,5±0,55 0,7±0,33 5,5±0,76 3,5±0,43 27,5±1,1 58,5±2,3 4,3±0,86

На 30-е сутки 6,7±0,5 0,5±0,22 5,7±0,95 3,5±0,56 26,7±2,1 59,3±1,5 4,3±0,76

2 Тимоген, 15мл/гол/ сут - 6 суток До введения 5,3±0,59 0,33±0,21 6,0±1,1 3,0±0,52 22,5±0,92 66,5±5,26 1,67±0,33

На 10-е сутки 5,6±0,51 0,5±0,34 5,3±0,88 2,7±0,4 24,5±2,3 6б,3±2,7 0,7±0,21*

На 20-е сутки 5,35±0,28 1,2±0,4 5,2±0,83 3,2±0,5 26,2±1,3 62,2± 1,56 2,0±0,36*

На 30-е сутки 5,8±0,21 0,3±0,21 4,5±0,5 3,5±0,56 29,2±1,8 60,3±0,8* 2,2±0,48

3 Тимоген, 15мл/гол/ сут-9 суток До введения 6,0±0,5 0,2±0,17 4,7±0,68 3,7±0,56 25,5±2,5 63,1±3,3 2,8±0,4

На 10-е сутки 5,9±0,39 0,3±0,21 4,0±0,86 3,0±0,58 23,5±1,0 68,0± 1,35 1,2±0,4*

На 20-е сутки 6,2±0,64 1,0±0,26 4,2±0,4 3,2±0,47 25,3±1,66 64,8±2,37 1,5±0,5

На 30-е сутки 5,8±0,б2 0,8±0,3 5,0±0,97 3,7±0,56 29,2±1,58 60,1±0,83 1,2±0,31

4 Тимоген, 15мл/гол/ сут - 9 суток +сурфагон 50 мкг/гол До введения 6,9±0,41 0,3±0,21 5,2±0,8 2,8±0,54 25,8±1,6 64,6±2,0 1,33±0,33

На 10-е сутки 6,5±0,38 0,3±0,24 3,0±О,52* 2,2±0,31 28,0±1,24 65 1,96 1,3±0,35

На 20-е сутки 7,3±0,95 1,0±0,26 4,2±0,4 3,2±0,48 25,3±1,67 64,8±2,37 1,5±0,5

На 30-е сутки 8,2±0,89 0,3±0,21 4,0±0,82 3,7±0,67 26,5±2,9 63,5±3,4 2,0±0,44

Таблица 4 - Эффективность ранней стимуляции половой цикличности у коров

№ группы Кол-во коров Вводимые препараты Появление половой цикличности через, сут Кол-во осеменений, гол.,(%) Индекс осеменения Оплодотворилось гол., (%) Наличие послеродовых заболеваний, гол, (%)

1 2 3

1 26 Тимоген 3-е суток 31 (22-40) 9 (34,6) 2(7,6) 1 (3,8) 1,6 10 (38,4) Эм+см - 6 (37,5) Зя-10 (62,5)

2 20 Тимоген 6 суток 29 (22-36) 8 (40,0) 3 (3,6) 1 (5,0) 1,5 10 (50,0) Эм+см-4 (40,0) Зя - 6 (60,0)

3 24 Тимоген 9 суток 29 (25-34) 12 (50,0) 4(16,6) 1 (4,1) 1,4 16(66,6) Эм+см-3(37,5) Зя - 5 (62,5)

4 26 Тимоген 9 суток +сурфагон 24 (20-28) 18 (69,2) 3(П-5) - 1,2 20 (76,9) Эм+см-2 (33,3) Зя - 4 (66,6)

5 25 Коньроль 71(57-85) 10 (40,0) 2(8,0) 1 (4,0) 1,3 13 (52,0) Эм+см -10 (83,3) Зя-2 (16,6)

Примечание: эм - эндометрит; см - субинволюция матки; зя - заболевания яичников.

3.8. Гистоструктурные изменения в половых и вторичных иммуно-компетентных органах коров

В сравнении с контрольными животными, у коров после применения тимогена имеют место более выраженные секреторные изменения в эндометрии, наличие активных светлых реактивных центров (центров размножения) в лимфатических фолликулах селезенки и лимфоузлах, что свидетельствует о процессах повышения иммунной активности.

Исходя из полученных результатов лабораторных и специальных методов исследований физиологического состояния органов и систем после применения глутамил-триптофанового комплекса (тимоген) как самостоятельно, так и в комплексе с ГН-РГ (сурфагон), можно заключить, что тимоген не всегда действует однозначно. Это в основном зависит от состояния обменных процессов в организме, где основным звеном будет гормональный баланс, степень его активности и иммуно-гормональные взаимоотношения в ранний послеродовой период. Вместе с тем, по направленности своего влияния на физиологические процессы в организме коров в этот период, действие тимогена является биокорригирующим, что подтверждается эффективностью становления воспроизводительных функций у животных.

ВЫВОДЫ

а) после введения самостоятельно в течение: 3-х суток - тенденция повышения содержания тироксина на 23,0%, прогестерона - в 2,5 раза; 6-и суток - повышением содержания тироксина на 7,3%, прогестерона - в 2,3 раза; 9-и суток - тенденцией повышения содержания тироксина в 1,8 раза, прогестерона-на 22,1%;

б) после введения тимогена в течение 9-и суток и сурфагона - тенденцией повышения содержания тироксина на 51,3%, прогестерона в 2 раза;

в) у интактных коров - тенденцией повышения тироксина в 1,48 раза, прогестерона - на 12,5% и снижением эстрадиола-17р в 2 раза.

2. Изменения белковых показателей крови коров к 20-м суткам исследований составили:

а) после введения тимогена в течение 3-х суток - снижение содержания альбуминов на 9,3%; 6-и суток - на 8,0%; 9-и суток - на 11,9%, повышением содержания у-глобулинов на 22,9%;

б) после введения тимогена в течение 9-и суток и сурфагона - тенденцией снижения содержания альбуминов на 11,8%;

в) у интактных коров - без значимых изменений.

3. Показатели липидного обмена к 20-м суткам исследований имели следующие значения:

а) после введения тимогена в течение: 3-х суток - снижение содержания триацилглицеринов на 26,1%, глюкозы в 2,1 раза; 6-и суток снижение содер-

жания глюкозы в 2 раза; 9-и суток - снижение содержания триацилглицери-нов на 16,7%, глюкозы - 28,2%.

б) после введения тимогена в течение 9 суток и сурфагона - снижение содержания триацилглицеринов на 13,1%, глюкозы - 35,0%.

в) у интактных коров - без значимых изменений.

4. Ферментативная активность к 20-м суткам исследований была следующей:

а) после введения тимогена в течение: 3-х суток - повышение активности АлАТ в 2,1 раза, АсАТ - 1,2 раза; 6-и суток - повышение активности АлАТ на 77,2%, АсАТ - в 2 раза, снижение активности ЩФ - в 2 раза; 9-и суток- снижение ЩФ на 32,8%;

б) после введения тимогена в течение 9 суток и сурфагона - повышение АсАТ на 18,5%, снижение ЩФ - на 48,4 %.

в) у интактных коров - снижение активности АлАТ на 9,4%, АсАТ -32,2%.

5. Содержание фосфора и кальция к 20-м суткам исследований составило:

а) после введения тимогена в течение: 3-х суток - повышение содержания фосфора на 21,1%; 6-и суток- на 54,8%, кальция на 5,3%;

б) после введения тимогена 9 суток и сурфагона - повышение содержания фосфора на 40,0%, кальция - 4,3%;

в) у интактных коров - без значимых изменений.

6. Лейкоцитарная формула к 20-м суткам исследований характеризовалась следующими изменениями:

а) после введения тимогена в течение: 3-х суток - без значимых изменений; 6-и суток - повышением содержания моноцитов на 19,7% (физиологическая норма); 9-и суток — снижением содержания моноцитов на 46,5% (на 35,0% ниже физиологической нормы);

б) после введения тимогена в течение 9-и суток и сурфагона без изменений;

в) у интактных коров — без значимых изменений.

7. Гистоструктурные изменения после курса стимуляции половой цикличности у коров тимогеном в течение 9-и суток характеризовались более выраженными секреторными изменениями в эндометрии, наличием активных светлых реактивных центров в лимфоузлах, что свидетельствует о процессах повышения иммунной активности, в отличие от интактных животных.

8. Эффективность применения тимогена для ранней стимуляции половой цикличности составила:

а) после введения тимогена в течение 3-х суток - появление половой цикличности в интервале 22-40 суток, оплодотворилось 38,4% коров при индексе осеменения 1,6; 6-и суток - появление половой цикличности в интервале 22-36 суток, оплодотворилось 50,0% коров при индексе осеменения 1,5; 9-и суток - появление половой цикличности в интервале 25-34 суток, оплодотворилось 66,6% коров при индексе осеменения 1,4.

б) после введения тимогена в течение 9 суток и сурфагона - появление половой цикличности в интервале 20-28 суток, оплодотворилось 76,9% коров при индексе осеменения 1,2.

в) у интактных коров - появление половой цикличности в интервале 5785 суток, оплодотворилось 52,0% коров при индексе осеменения 1,3.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Биокорректор тимоген рекомендуется для ранней стимуляции половой охоты у коров путем применения самостоятельно в дозе 15 мл/гол/сут 0,01% раствора внутримышечно в течение 9 суток или в комплексе с сурфагоном в дозе 50 мкг/гол внутримышечно однократно на 10-е сутки курса обработки.

Список опубликованных работ:

1. Логвинов A.A. Применение иммуномодулятора тимогена для индукции половой цикличности у коров в ранний послеродовой период/ А.АЛогвинов, Н.В.Безбородов// Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Баумана. - Казань, КГАВМ, 2006. - Том 185 - С.181-186.

2. Логвинов A.A. Гормонокорригирующие свойства тимогена, применяемого в ранний послеродовой период у коров / А.А.Логвинов, Н.В.Безбородов // Мат.межд.науч.конф. СПбГАВМ, 2006. - С.32.

3. Логвинов A.A. Некоторые показатели коррелятивной функции крови коров при использовании тимогена в ранний послеродовой период у коров / А.АЛогвинов, Н.В.Безбородов // Мат.межд.науч.конф. СПбГАВМ, 2006. - СЗЗ.

4. Логвинов A.A. Биохимические показатели сыворотки крови коров после введения тимогена в ранний послеродовой период. / А.А.Логвинов, Н.В.Безбородов // Мат.межд.науч.конф. СПбГАВМ, 2006. - С.34.

5. Логвинов A.A. Способ ранней стимуляции половой цикличности у коров / А.А.Логвинов, Н.В.Безбородов, В.Н.Позднякова // Бюл.научных работ, БелГСХА, 2008. - С.25-28.

Формат 60x84,1/16. Усл. печ. л. 1,0. Заказ № 3338. Тира;« 100 экз. Типография ВВЦ

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Логвинов, Александр Анатольевич

ВВЕДЕНИЕ.

Актуальность темы.

Цель и задачи исследований.

Научная новизна работы.

Практическая значимость работы.

Положения, выносимые на защиту.

Апробация работы.

Публикации.

1.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1.Половой цикл у животных.

1.2. Оптимальные сроки осеменения и оплодотворяемость коров.

1.3. Регуляция обменных процессов в основные периоды репродуктивной функции.

1.4. Иммунобиологическая реактивность и адаптация организма коров в различные периоды воспроизводительной функции.

1.5. Стимуляция воспроизводительной функции у коров.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Применение иммуномодулятора тимогена для стимуляции половой охоты и оплодотворяемости у коров"

Актуальность темы. Воспроизводство сельскохозяйственных животных является основой технологии, разведения, содержания и получения продукции при промышленном ведении животноводства. От состояния воспроизводства стада зависит продуктивность, экономичность и рентабельность отрасли. Рядом исследований (Дедов Ю.М., 1989; Ибрагимова А.Х., 1993, Мингазов Т.А., 1994) отмечено, что одним из способов интенсификации воспроизводства самок является применение различных медикаментозных средств и методов повышения оплодотворяемости (Нежданов А.Г., 1985; Полянцев Н.И., 1989; Равилов М.Н., 1994; Шубин А.А., 1996 и др.)

Дальнейшее решение проблемы повышения воспроизводительной способности самок животных, которое определяется запросами производства, связано с всесторонним изучением гормональных изменений при становлении половой цикличности, динамики клеточных и гуморальных факторов, характеризующих защитные силы организма, и на их основе внедрение современных методов стимуляции половой цикличности, и оплодотворяемости коров.

Одним из таких методов стимуляции половой цикличности в ранний послеродовой период, является применение иммуномодулирующих препаратов пептидной природы, к числу которых относится биокорректор Тимоген.

Для достижения цели были поставлены на разрешение следующие задачи:

- определить динамику стероидных гормонов в крови коров до и после применения тимогена;

Теоретическая и практическая значимость. Результаты проведенных исследований расширяют и дополняют существующие представления о механизмах регуляции и стимуляции половой цикличности с последующей оплодотворяемостью у коров, путем применения глутамил-триптофанового комплекса (Тимоген) в ранний послеродовой период. Предложенные производству способы ранней стимуляции половой охоты и оплодотворяемости коров обеспечивают повышение рентабельности молочного скотоводства и могут быть использованы при проведении акушерско-гинекологической диспансеризации и оптимизации сервис -периода.

Положения, выносимые на защиту.

1. Глутамил-триптофановый комплекс (тимоген) обладает гормонокорригирующим действием в отношении глюкокортикостероидов и половых стероидов у коров в ранний послеродовой период.

2. Активизация процессов становления адаптационно-метаболических изменений глутамил-триптофановым комплексом, способствует повышению естественной резистентности и индукции половой охоты.

3. Гистоструктурные изменения в тканях вторичных иммунокомпетентных и половых органов коров, подвергнутых стимуляции тимогеном, свидетельствуют о биокорригирующем I влиянии препарата.

Апробация работы. Материалы работы были представлены на ежегодных научно-производственных международных конференциях г.

С.Петербург, СПбГАВМ (2006 г.), г. Казань, КГАВМ (2006 г.) и ежегодных отчетах аспирантов факультета ветеринарной медицины

БелГСХА (2006-2008 гг.)

Публикации.

1. Логвинов А.А. Применение иммуномодулятора тимогена для индукции половой цикличности у коров в ранний послеродовой период/ А.А.Логвинов, Н.В.Безбородов//Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Баумана. - Казань, КГАВМ, 2006. - Том 185 - с.181-186.

2. Логвинов А.А. Гормонокорригирующие свойства тимогена, применяемого в ранний послеродовой период у коров / А.А.Логвинов, Н.В.Безбородов // Мат.межд.науч.конф. СПбГАВМ, 2006.-c.32.

3. Логвинов А.А. Некоторые показатели коррелятивной функции крови коров при использовании тимогена в ранний послеродовой период у коров / А.А.Логвинов, Н.В.Безбородов // Мат.межд.науч.конф. СПбГАВМ, 2006. - с.ЗЗ.

4. Логвинов А.А. Биохимические показатели сыворотки крови коров^ после введения тимогена в ранний послеродовой период. / А.А.Логвинов, Н.В.Безбородов // Мат.межд.науч.конф. СПбГАВМ, 2006. - с.34.

5. Логвинов А.А. Способ ранней стимуляции половой цикличности у коров / А.А.Логвинов, Н.В.Безбородов, В.Н.Позднякова // Бюл.научных работ, БелГСХА, 2008. - с.25-28.

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Логвинов, Александр Анатольевич

ВЫВОДЫ

1. Гормонокорригирующее действие дипептидного комплекса глутамил-триптофана после курса стимуляции половой охоты у коров к 20-м суткам исследований характеризовалось следующими значениями: а) после введения самостоятельно в течение: 3-х суток - тенденция повышения тироксина на 23,0%, прогестерона - в 2,5 раза; 6-и суток -повышением тироксина на 7,3%, прогестерона - в 2,3 раза; 9-и суток -тенденцией повышения тироксина в 1,8 раза, прогестерона - на 22,1%; б) после введения тимогена в течение 9-и суток и сурфагона -тенденцией повышения тироксина на 51,3%, прогестерона в 2 раза; в) у интактных коров — тенденцией повышения тироксина в 1,48 раза, прогестерона - на 12,5% и снижением эстрадиола-17(3 в 2 раза.

2. изменения белковых показателей крови коров к 20-м суткам исследований составили: а) после введения тимогена в течение 3-х суток - снижение альбуминов на 9,3%; 6-и суток - снижение альбуминов на 8,0%; 9-и суток - снижением альбуминов на 11,9%, повышением у-глобулинов на 22,9%; б) после введения тимогена в тичение 9-и суток и сурфагона -тенденцией снижения альбуминов на 11,8%; в) у интактных коров - без значимых изменений.

3. Показатели липидного обмена к 20-м суткам исследований имели следующие значения: а) после введения тимогена в течение: 3-х суток - снижение триацилглицеринов на 26,1%, снижение глюкозы в 2,1 раза; 6-и суток снижение глюкозы в 2 раза; 9-и суток - снижение триацилглицеринов на 16,7%, глюкозы - 28,2%. б) после введения тимогена в течение 9 суток и сурфагона — снижение триацилглицеринов на 13,1%, глюкозы - 35,0%. в) у интактных коров - без значимых изменений.

4. Ферментативная активность к 20-м суткам исследований была следующей: а) после введения тимогена в течение: 3-х суток — повышение АлАТ в 2,1 раза, АсАТ - 1,2 раза; 6-и суток — повышение АлАТ на 77,2%, АсАТ - в 2 раза, снижение ЩФ - в 2 раза; 9-и суток - снижение ЩФ на 32,8%; б) после введения тимогена в течение 9 суток и сурфагона - повышение АсАТ на 18,5%, снижение ЩФ - на 48,4 %. в) у интактных коров - снижение АлАТ на 9,4%, АсАТ - 32,2%.

5. Содержание фосфора и кальция к 20-м суткам исследований составило: а) после введения тимогена в течение 3-х суток - фосфор, повышение на 21,1%; 6-и суток - фосфор, повышение на 54,8%, кальций на 5,3%; б) после введения тимогена 9 суток и сурфагона - повышение фосфора на 40,0%, кальция - 4,3%; в) у интактных коров — без значимых изменений.

6. Лейкоцитарная формула к 20-м суткам исследований характеризовалась следующими изменениями: а) после введения тимогена в течение: 3-х суток - без значимых изменений; 6-и суток — повышением моноцитов на 19,7% (физиологическая норма); 9-и суток - снижением моноцитов на 46,5% (на 35,0% ниже физиологической нормы); б) после введения тимогена в течение 9-и суток и сурфагона без изменений; в) у интактных коров - без значимых изменений.

8. Эффективность применения тимогена для ранней стимуляции половой цикличности составила: а) после введения тимогена в течение 3-х суток - появление половой цикличности в интервале 22-40 суток, оплодотворилось 38,4% коров при индексе осеменения 1,6; 6-и суток - появление половой цикличности в интервале 22-36 суток, оплодотворилось 50,0% коров при индексе осеменения 1,5; 9-и суток - появление половой цикличности в интервале 25-34 суток, оплодотворилось 66,6% коров при индексе осеменения 1,4. б) после введения тимогена в течение 9 суток и сурфагона - появление половой цикличности в интервале 20-28 суток, оплодотворилось 76,9% коров при индексе осеменения 1,2. в) у интактных коров - появление половой цикличности в интервале 5785 суток, оплодотворилось 52,0% коров при индексе осеменения 1,3.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Биокорректор тимоген рекомендуется для ранней стимуляции половой охоты у коров путем применения самостоятельно в дозе 15 мл/гол/сут 0,01% раствора внутримышечно в течение 9 суток или в комплексе с сурфагоном в дозе 50 мкг/гол, внутримышечно однократно на 10- сутки курса обработки.

Заключение,

Рис.18.Срез участка лимфоузла коровы контрольной группы.Г+Э, об.40, ок.16. 1 - лимфатический фолликул; 2 - реактивный центр; 3 - периферическая х-; * i: ,-U.,' «^-" vi

-vr-'. . -v; -у J

Рис. 19.Срез участка лимфоузла коровы контрольной группы.Г+Э,об.40, ок. 16.

3.1.8. Показатели воспроизводительной функции коров опытных групп

В результате проведённых исследований по изучению действия препаратов тимоген самостоятельно и в комплексе с сурфагоном в качестве средств ранней стимуляции половой цикличности и оплодотворяемости у коров, были получены следующие результаты (табл.29), отражающие эффективность их влияния на воспроизводительную функцию.

Наиболее ранее проявление половой цикличности, в среднем на 24 сутки после начала стимуляции, отмечено у коров ,4-й группы, где вводили тимоген совместно с сурфагоном. Время проявления половой цикличности у коров этой группы было в пределах 20-28 суток. Такой же интервал в 4 суток от среднего значения (29 суток) проявления половой цикличности, был отмечен у животных 3-й группы, где стимуляцию осуществляли одним тимогеном в течение 9 суток. У коров 2-й группы, где проводили введение тимогена в течение 6 суток, время проявления половой цикличности в среднем по группе составило 29 дней, но разброс прихода в охоту у животных составил от 22 до 36 дней. У коров 1-й группы, где стимуляцию половой цикличности осуществляли одним тимогеном, в течение 3-х дней был наибольший интервал прихода коров в охоту - 22-40 дней (31 день в среднем). У животных контрольной группы спонтанное проявление половой цикличности было отмечено в пределах 57-85 дней (71 день в среднем) после родов. Количество коров, осеменённых по одному разу было наибольшим в 4-й группе - 69,2%, а наименьшим - в 1-й группе - 34,6%. При этом наилучший индекс осеменения - 1,02 отмечен у коров 4-й группы при оплодотворяемости 76,9% коров. Наличие послеродовых заболеваний (воспалительного характера - эндометриты) после проведенного курса стимуляции половой цикличности было наименьшим в 4-й группе, что на 50,0% меньше, чем у коров в контрольной группе (83,3%).

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Логвинов, Александр Анатольевич, Белгород

1. Аббасов Б.Х. Физиологические основы гормональной регуляции функции воспроизводства у коров: Автореф. дисс. . канд. биол. наук. Алма-Ата, 1982.- 20с.

2. Админ Е.И. Адаптация коров к режимам доения и содержания в условиях промышленной технологии // Проблемы технологии при интенсификации производства молока Тарту, 1984.-е. 16-18.

3. Айламазян Э.К. Акушерство / Э.К. Айламазян // СПб.: СпецЛит, 2002-536с.

4. Алесенко А.В. биохимия липидов и их роль в обмене веществ. М.: 1981.-c.3-5.

5. Алёшин Б.В. Изменения гипоталамо-гипофизарных соотношений вэволюции и онтогенезе. Киев, «Наукова думка», 1972.-342с.

6. Алиев А.А. Динамика концентрации ЛГ, прогестерона и эстрадиола-17-Р в крови, в период полового цикла и начальных стадий стельности / А.А. Алиев, Г.У. Петров, А.Н. Григорьев // Докл. ВАСХНИИЛ.-1991.-№ 9.-С.36-39.

7. Алимова М.Т., Маджидов А.В. Влияние пестицидов на иммунорегуляторные популяции лимфоцитов у мышей // Вторичные иммунодефицита: Сб. науч. тр. Ташкент, 1989.- с. 10-12.

8. Амагырова Т.О. Разработка биотехнологического метода иммунокоррекции и гормональной стимуляции воспроизводительной функции у коров: Дисс. . канд. биол. наук, Улан-Удэ, 2005,- 156с.

9. Апатенко В.М. Иммунодефицит у животных // Ветеринария.- 1992. №5.- с. 29-30.

10. Аргунов М.Н. Разработка и применение новых экологически безопасных фосфатов в животноводстве и ветеринарии / М.Н. Аргунов, Л.Б. Сафонова // Мат. науч. конф. ВГАУ. Воронеж, 1997.- ч. 2.-е. 11-12.

11. Арион В.Я. Иммунологически активные факторы тимуса. / Итоги науки и техники. Иммунология, 1981. №9.- с. 10-50.

12. Артёмов М.Н. Разработка и применение новых экологически безопасных фосфатов в животноводстве и ветеринарии / М.Н. Артёмов, Л.И. Ефанова, В.И. Дынин //Иммунодефициты с.-х. животных. Тез. докладов.- М.; 1994.- с.23-24.

13. Артёмов Б.Т., Ефанова Л.И., Дынин В.И. Патоморфология иммунокомпетентных органов животных, обусловленная длительным поступлением допустимых доз нитратов //Иммунодефициты с.-х. животных: Тез. докл. науч. конф.- М.: 1994.-С.23-24.

14. Асоев П. Применение гонадотропных препаратов в послеродовом периоде с целью повышения воспроизводительной функции у коров / П. Асоев, А. Ниятбеков // 1-й съезд вет. фармакологов. Воронеж. 2007. - с.99-100.

15. Ашмарин И.П. Регуляторные пептиды, редукционально-непрерывная совокупность / А.П. Ашмарин, М.Ф. Обухова // Биохимия.-1986.-Т.51.-№4.-с. 351-545.

16. Афанасьев И.Н. Морфологические и биохимические показатели крови и эндометрия у бесплодных коров бурой латвийской породы: Автореф.: дисс. . докт. вет. наук.- Львов, 1972.- 40с.

17. Афанасьев И.Н. Уровень каротина и витамина А в сыворотке крови у коров с различной плодовитостью / И.Н. Афанасьев, Л. Лаукс // Профилактика, диагн. и лечение болезней с.-х. животных// Тр. Латв. с.-х. академии .- Елгава, 1973.- Вып.68.-с.41-45.

18. Ахмадеев Р.Н. Препараты прополиса при акушерско-гинекологической патологии коров // Мат. 1-го съезда фармакологов РФ.-Воронеж, 2007.-С.103-106.

19. Бабенков В.Ю. Эффективность применения тимогена при трансплантации эмбрионов у коров / В.Ю. Бабенков, Н.В. Безбородов, Д.А. Попов // Мат. межд. конф.- СПбГАВМ, 2008.-С.8.

20. Бабичев В.Н. Нейрогормональная регуляция овариального цикла /В.Н. Бабичев. М.; 1984

21. Багманов М.А., Мухаметгалиев Р.Н. Некоторые морфологические, биохимические и иммунологические показатели крови коров до и после родов //Мат. науч. конф. Казань, 2001.-Ч.2.- с. 11-12.

22. Баранников В.Д. Действие некоторых стресс-факторов на организм телят / В.Д. Баранников, Г.К. Волков, Н.С. Маковлева //Ветеринария.- 1997-№10.-с.28-29.

23. Безбородов Н.В. Приёмы, повышения оплодотворяемости в молочном скотоводстве / Н.В. Безбородов, М.Ю. Пальчиков, А.В. Никулин //Методическое пособие, Белгородская ГСХА, 2004.-37с.

24. Болотников И.А., Михкиева B.C., Олейник Е.К. Стресс и иммунитет у птиц.- Д.: Наука, Ленинградское отд., 1983.-118с.

25. Буянов А.А. Рекомендации по диагностике, гормональной профилактике и терапии дисфункций яичников у коров. Л.: 1984.-е. 8-9.

26. Бэйрд Д.Т. Яичник. Гормональная регуляция размножения у млекопитающих / Д.Т. Бэйрд М.; Мир, 1978,- Гл.5 -с. 118-144.

27. Васильев P.M. Иммунобиологический статус коров до и после родов // Мат. науч. конф.- Казань, 2001.-4.2.-с. 20-22.

28. Васильев М.Ф. Иммунологические основы лечения больных кетозом коров и родившихся от них телят: Автореф. дис. . д-ра. вет. наук / М.Ф. Васильев // СПб., 1996.-35с.

29. Вилкинсон Д. Принципы и методы диагностики энзимологии/ Д. Вилкинсон// Пер. с англ. М.: Медицина, 1981. - 624 с.

30. Войтенко В., Спиваков А., Кузьменко И. Половой цикл и искусственное осеменение скота.- Молочное и мясное скотоводство, 1983, №10, с.33-34.

31. Волосков П.А. Основы борьбы с бесплодием крупного рогатого скота. М.: Сельхозгиз, 1960.-208с.

32. Вольф И., Янки Б., Лозанд Б. Чтобы из теленка выросла хорошая корова//Новое сельское хозяйство.- 200!.-№!.- с.30-33.

33. Воробьёв Н.Н. Профилактика эмбриональной смертности приплода /Н.Н. Воробьёв //Животноводство. 1980. - №7. - с.33-35.

34. Воронин Е.С. Иммунология/ Под ред. Е.С. Воронина, -М.; Колос-Пресс, 2002.-408с.

35. Вундер П.А. Эндокринология пола и размножения. Медицина, М,;1973

36. Галочкин В.А. Иммунобиотехнологический подход к регуляции репродуктивной функции, обмена веществ и продуктивности животных / В.А. Галочкин, Л.К.Эрнст, Л.И. Триндо и др.//Сельскохозяйственная биология.-1994.№2.-с.З-19.

37. Гармашева Н.Л. и др. Введение в перинатальную медицину. М.: Медицина, 1978.-84с.

38. Глазунова Н.М. Показатели естественной резистентности у коров, при стимуляции отделения последа биокорректором тимоген / Н.М. Глазунова, Н.В. Безбородов, В.Н. Позднякова // Мат. межд. конф., БелГСХА, 2007.-c.115.

39. Голиков А.Н. Физиология сельскохозяйственных животных. М.; Колос.-1980.-480с:

40. Головина И.В. Новый селеновый препарат в ветеринарии и санитарная оценка мяса при его применении: Автореф. дис. . канд. вет. наук.-Воронеж, 1999.-28с.

41. Григорьева Т.Е. Особенности иммунобиологической активности первотёлок при эндометритах. Вестник с.-х. науки.-1991.-№10.-с.29-31.

42. Грищенко В.И. гуморальная регуляция родовой деятельности и лечение ее нарушений. Харьков, 1976.-c.3-6.

43. Гугушвили Н.Н. Коррекция иммунного статуса организма коров фитопрепаратами //Современные вопросы ветер, мед. и биологии. Мат. межд. конф. 2000.- Уфа.-с. 108-111.

44. Дашукаева К.Т. Эндокринные аспекты фетоплацентарной недостаточности у коров в связи с гипофункцией половых желёз и её профилактика: Автореф. дис. . докт. вет. наук.- Воронеж, 1997.-291с.

45. Дедов И.И., Фадеев В.В., Мельниченко Г.А. Недостаточность надпочечников. М.; Знание. М.; 2002.-С.80-84.

46. Дедов И.И. Рациональная фармакотерапия заболеваний эндокринной системы и нарушений обмена веществ /И.И. Дедов., Г.Ф.Мельниченко// Из-во Литера,- М.; 2006.-1075с.

47. Дедов Ю.М. Применение гонадотропин рилизинг гормона (сурфагон) для повышения оплодотворяемости молочных коров // Биотехнология размножения с.-х. животных. ВИЖ.- 1989.- Вып. 95.-е. 22-24.

48. Денисенко В.Н., Грызлова О.Н., Печникова Г.Н., Емельяненко П.А. Влияние сезонности на естественную резистентность коров матерей и приплода// Ветеринария, 1978, №1.-с. 53-56.

49. Дойчев С. Промени в серумните бельтчикравата през различните периоди на размножителиня процесс /С.Дойчев // Ветер.-Мед. Науки, 1974.11.2.- с.35-42.

50. Долженков Ю.А. Влияние препаратов селена на уровень половых гормонов в крови коров в различные физиологические периоды / Мат.межд.конф., КГАВМ, 2008.-С.51-57.

51. Друдж М., Глиньской Я., МларикТ. Цинк биохимические и клинические аспекты //Новости фармации и медицины / Силезская мед. Академия, г. Катовище, Польша.- Варшава-1988. №2.-с. 51-56.

52. Джамбулатов М.М. Белково-углеводный статус организма коров при включении в их рацион биологически активного препарата мекцин / М.М. Джамбулов, А.А. Алиев, З.М. Ханбабаева // 1-й съезд вет. фармакологов. Воронеж. 2007. - с.241-245.

53. Држевецкая И.А. Основы физиологии обмена веществ и эндокринной системы / И.А. Држевецкая // 3-е изд.- М.: Высшая школа, 1994.-256с.

54. Ельчанинов В.В. Проблемы физиологии и патологии репродуктивной функции у коров /В.В. Ельчанинов, В.П.Белоножкин, Ш.Н. Насибов. М.; 1997.-291с.

55. Жабровский JI.C. Селекционная работа в условиях интенсификации животноводства.- Л., 1987.-246с.

56. Жирков О.Г. Диагностика эструса и повышения оплодотворяемости у коров // Биотехнология размножения с.-х. животных. ВИЖ.- 1989.- Вып. 95.-е. 26-27.

57. Зверева Г.В. Гинекологические болезни коров / Г.В. Зверева С.П. Хомин//Киев: Урожай, 1976.-152с.

58. Зухрабов З.М. Влияние Е-селена на состояния гемопоэза, иммунобиохимических показателей и на состояние репродуктивной системы коров /З.М. Зухрабов, Т.Д. Васильева //Мат. межд.конф., КГАВМ, 2008.-с.62-66.

59. Зюбин И.Н. Этиологическая роль условно-патогенной микрофлоры в возникновении метритов у коров: автореф. дисс. . докт. вет. наук.-Чита, 1998.-48с.

60. Ибрагимова А.Х. Эффективность применения жирорастворимых витаминов А, Д, Е для профилактики родовых и послеродовых заболеваний у коров: автореф. дисс. . канд. вет. наук. Воронеж, 1993.- 27с.

61. Ильина Е.А. Показатели липидного обмена и их изменения у коров черно-пестрой породы в период стельности: Автореф.: дисс. . канд. биол. наук//Москва, 1992,-16с.

62. Иванов В.И. Иммунодефициты сельскохозяйственных животных / Учебная лекция. М., 1994.-е. 56.

63. Иванов Н.Ф., Ковальский Н.А. Цитология, гистология и эмбриология / Н.Ф. Иванов, Н.А.Ковальский // М.: Колос, 1976.- с. 437-439.

64. Казеев Г.В. К вопросу теоретического обоснования выбора оптимального срока осеменения коров // Животноводство и ветеринария, 1982.- №6.- с.14-17.

65. Казначеев В.П. Современные аспекты адаптации.- Новосибирск: Наука, 1980.-191с.

66. Камано М.Ф. Влияние витамина А на иммунореактивность и оплодотворяемость коров / М.Ф. Камано, Ю.Л. Максимов // Мат. науч. конф. Горки, 1991.-с. 31-32.

67. Карш Ф.Д. Гипоталамус и передние доли гипофиза /Гормональная регуляция размножения у млекопитающих // М.: Мир, 1987.-Гл.1.- с.8-32.

68. Квасницкий А.В. Возрастная физиология животных // М.: Колос,1967.

69. Клеонов В.А. Лечение коров при задержании последа у коров // Ветеринария.-1980.№2.-с.44-45.

70. Клинский Ю.Д. Эндокринология и трансплантология зародышей с.-х. животных / Ю.Д. Клинский, A.M. Чомаев // ВИЖ. Дубровицы, 1983.-с.39-41.

71. Козло Н.Е. Воспроизводство животных. М.: Колос, 1984.-е.3-5, 120-135.

72. Кокорина Э.П., Кавешникова К.И., Туманова Э.Б. и др. Влияние стрессорного воздействия на поведение, молокоотдачу и продуктивность коров // Бюлл. ВНИИРГЖ.- Л., 1978.- с. 12-20.

73. Коломыльцев А.А., Калантаенко Ю.Ф., Лукьянов С.Б. и др. Значение стрессов в развитии отечной болезни // Ветеринарный консультант.-2002. № 1-е. 7-9.

74. Кондратьев Ю.Н., Аброськина С.Л., Шушлебин В.Н., Тимохин Г.Н. Дефицит микроэлементов в кормах. // Биологически активные вещества в профилактике и лечении незаразных болезней. Воронеж, 1988.

75. Копанев В.И. Невесомость как проблема антропоэкологии. Л.: Наука, 1982.-c.49-5 8.

76. Коркач В.И. Роль АКТГ и глюкортикоидов в регуляции энергетического обмена.- Киев, 1979.- 218с.

77. Костин А.П. гомеостаз внутренней среды жизнедеятельности и1стабильной продуктивности сельскохозяйственных животных //Вестник с.-х. науки, 1990.-№3.-с. 18.

78. Кот Е.П., Хомяк И.И., Яблонская О.В. Т- и В- клеточный иммунитет организма коров и тёлок в течение полового цикла // Диагностика и леч. проф. мероприятия . .- Кишинёв, 1986.- с. 31-34.

79. Кошевой В.П. Нарушение структуры и функции фетоплацентарного комплекса у коров при дефиците витамина А и меры профилактики / В.П. Кошевой, М.Е, Павлов // Тезисы докладов. Юрмала, 1987.-С.110-113.

80. Кощеев B.C. Физиология и гигиена индивидуальной защиты человека от холода. М.: Медицина, 1981.-283с.

81. Красов В.М. Электрофоретические исследования белков крови животных/ Алма-Ата: Наука, 1969.-325с.

82. Кремнев О.В. Некоторые биохимические и иммунобиохимические показатели крови у коров до и после родов / Науч. практ. конф. Волгоград, 2002.- Т.2.- с. 65-67.

83. Крепе Е.М. Липиды клеточных мембран. Л., 1981.

84. Кузнецов Н.И. новые препараты в ветеренарии / Н.И. Кузнецов, С.Р. Мелешкина//Мат. науч. конф. ВГАУ. Воронеж, 1997.- с.18-19.

85. Кузнецов Е.В. Взаимосвязь иммунобиологического статуса мясных коров с их репродуктивной способностью: Автореф. дис . канд. наук, Троицк.-2002-22с. ^

86. Кузник В.И. Иммуногенез, гомеостаз и неспецифическая резистентность организма. -М.: Медицина, 1988.-321 с.

87. Кузьмин А.Ф. Показатели крови у коров в разные периоды воспроизводительной функции / А.Ф. Кузьмин, Г.Л. Сололгуб, Н.П. Бугаева. Л.: 1976.-Вып. 46.-е. 211-212.

88. Куценогий К.П., Киров Е.И., Кнорр И.Б. Пестициды в экосистемах.- Новосибирск, 1994.-142с.

89. Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник/ Меньшиков В.В., Делекторская Л.Н., Золотницкая Р.П. и др.; Под ред. В.В. Меньшикова. М.: Медицина, 1987. - 368 с.

90. Лазарева Д.Н. Стимуляторы иммунитета / Д.Н. Лазарева, Е.К. Алёхин, М.; Медицина, 1985,-256с.

91. Логвинов А.А. Применение иммуностимулятора тимоген для индукции половой цикличности у коров в ранний половой период / А.А. Логвинов, Н.В. Безбородов // Ученые записки КГАВМ, Казань, 2006.-е. 181186.

92. Логвинов А.А. Способ ранней стимуляции половой цикличности у коров / А.А. Логвинов, Н.В. Безбородов, В.Н. Позднякова // Бюлл. научных работ, Белгородская ГСХА.- Вып.12.-2008.-с.25-28.

93. Манасян А.О. Некоторые показатели белкового обмена у коров при половом цикле / А.О. Манасян, Г.В. Баргесян, Н.А. Геркатерян // Мат. междвуз. науч. конф., 1971.- с.154-155.

94. Мари Р., Греннер Д., Мейес П., Родуэль В. Биохимия: в 2 т. М.; Мир, 1993.-c.415.

95. Машковцев А.А. Биологическое и физиологическое значение полового деморфизма у позвоночных животных // Журнал общей биологии, 1940.- т. 1 №.1.-е.153-176.

96. Медведев В.И. О проблеме адаптации // Компоненты адаптационного процесса.- Л.: Наука, 1984.-е. 3-16.

97. Меерсон Ф.З. Миокард при гиперфункции, гипертрофии и недостаточность сердца. -М.: Медицина, 1965.- 138с.

98. Мешкова Р.Я., Ковальчук Л.В., Коновалова М.Н. Клиника, диагностика, лечение некоторых форм иммунодефицитов и аллергических заболеваний. Смоленск: Полиграмма, 1995.-176с.

99. Мечников И.И. Вопросы иммунитета. М., 1951.

100. Милованов В.К. Племенное дело и искусственное осеменение с.-х. животных / В.К. Милованов, Н.Н. Соколовская // М.: Сельхозгиз, 1943.- с. 114-141.

101. Мингазов Т.М. Значение Жирорастворимых витаминов в воспроизведении животных. Алма-Ата: Наука, 1988.-141с.

102. Мисайлов В.Д. Меры борьбы с бесплодием и яловостью коров. Бурятское кн. изд-во: Улан-Удэ, 1976.-77с.

103. Миррахимов М.М. Адаптация человека к экстремальной природной среде и ее возможное значение для клиники внутренних болезней //Терапевт, арх.- 1986.№5.- с. 3-10.

104. Молоканова И,В. Влияние стрессовой чувствительности на собственную продуктивность и репродуктивность свиноматок. Автореф.: дисс. . канд. вет. наук.- Ставрополь, 2002.-19с.

105. Монгалев Н.П. Роль лейкоцитарного нуля в формировании эстральных циклов у коров / Н.П. Монгалев, Л.Ю. Рубцова// Мат. 2-го съезда физиологов СНГ, Кишинёв, 2008.-c.283.

106. Моргунова Т.Б. Заместительная терапия первичного гипотиреоза: монотерапия L тироксином и комбинированная терапия L -тироксином и трийодтиронином: Автореф. дисс. . канд. мед. наук .М., 2005.-28с.

107. Моукалюнас Р.Ч. Неспецифический иммунитет коров и воспаление матки в послеродовом периоде // Научные основы профилактики и лечения патологии воспроизводительной функции сельскохозяйственных животных.-Воронеж, 1988.-е.76.

108. Мышкин Н.Ф. Акушерство и гинекология сельскохозяйственных животных. М.; Сельхоз 1943.-470с.

109. Науменков А.И. Способ стимуляции репродуктивной функции коров. Авт. свид. 1666101 СССР. 1991.- Б.И. № 28.

110. Нежданов А.Г. Общая неспецифическая резистентность и воспроизводительная функция коров // Проблемы патологии обмена веществ в современном животноводстве. — Воронеж, 1981.- с. 53-55.

111. Нежданов А.Г. Биохимический контроль за воспроизводительной функцией коров / А.Г. Нежданов // Ветеринария, 1982.-№11.-е.50.

112. Нежданов А.Г. Изменение биохимических показателей крови у коров в динамике беременности / А.Г. Нежданов, B.C. Сапожков // Сб. науч. трудов, Воронеж, ВНИВИПФиТ, 1992.-С.75-80.

113. Нежданов А.Г. Доклиническая Диагностика акушерской патологии у коров / А.Г. Нежданов, К.Г. Дашукоева // Мат. межд. конф. Воронеж, 1994.-с.104.

114. Нежданов А.Г. Рациональные пути применения гормональных препаратов для коррекции воспроизводительной функции животных / А.Г. Нежданов, К.А. Лободин // 1-й съезд вет. фармакологов. Воронеж, 2007.-с.454 - 459.

115. Николаев А.С. Профилактика бесплодия коров и телок на промышленных фермах и комплексах // Животноводство и ветеринария, 1981,-№10.- с.9-16.

116. Николаев А.С. Бесплодие коров, профилактика и меры борьбы /Обзорная информация. ВНИИТЭИСХ, 1984.-49с.

117. Осетров А.А. Система показаний противопоказаний для восстановления, стимуляции и синхронизации воспроизводительной функции коров и тёлок // Науч. конф.- Казань, 1984.- с.62-63.

118. Осташко Ф.И. Биотехнология воспроизведения крупного рогатого скота. Киев.: Аграрная наука, 1995.-183с.

119. Павлов В.А. Физиология воспроизводства крупного рогатого скота. М.: Россельхозиздат, 1984, с.3-117.

120. Панков Б.Г., Жаров А.В., Соколова Н.А. и др. Профилактика алиментарных форм акушерско гинекологических заболеваний // Ветеринарный консультант.- 2001. №16.- с. 10-11.

121. Паршин П.А. Показатели обмена липидов, характеризующие резистентность коров в послеотельный период //Тез. докл. науч. конф. — Воронеж, 1988.-С.83-84.

122. Пензева М.Н. Содержание стероидных гормонов в крови коров с персистентным жёлтым телом после обработки тимогеном / М.Н. Пензева, Н.В. Безбородов//Мат. межд. конф.- СПбГАВМ., 2006.-c.37.

123. Петров Ю.Ф., Иванов В.И. Аутоиммунные состояния у коров как разновидность иммунного дефицита / Межд. симпозиум.1. СПб., -с. 42.

124. Пикалова Т.А., Бунина Т.С., Нежданов А.Г. Морфологические показатели крови беременных коров в норме и при акушерской патологии / Мат.науч. конф. Воронеж, 1988.-е. 113-114.

125. Плешкина К.И. Проявление и нормализация репродуктивной функции у коров после отёла и в ранний период стельности: автореф. дис. . канд. биол. наук.- Боровск, 1982.- 21с.

126. Полянцев Н.И. Акушерско-гинекологическая диспансеризация на молочных фермах / Н.И. Полянцев, А.Н. Синявин // 2-е издание -М.: Росагропромиздат, 1989.-176с.

127. Придыбайло Н.Д. Иммунодефициты у сельскохозяйственных животных и птиц, профилактика и лечение их иммуностимуляторами // обзор, информ. ВНИИМ и ТЭИ АПК, -М., 1994.-44с.

128. Прозорова Е.С., Перун М.М. Влияние магнитных бурь на организм лактирующих коров // Тезисы докл. -Львов, 1994.-е. 72-73.

129. Прокофьев М.И. Регуляция размножения сельскохозяйственных животных. Л.: Наука, 1983.-264с.

130. Прокофьев М.И. Биотехнология регуляции воспроизводительной функции у крупного рогатого скота / М.И. Прокофьев // Тр. ин-та ВНИИ физиологии, биохимии и питания с.-х. животных.-1983.-Вып. 27.- с.3-11.

131. Пронин Б.Г. Повышение эффективности контроля за состоянием воспроизводства стада /Мат.межд.конф., КГАВМ, 2008.-е. 119-123.

132. Прыгунова Е.В. Показатели липидного обмена при эндометритах коров / Е.В. Прыгунова, К.Г. Жиркова // Сб. науч. тр. М., 1998.- с. 68-71.

133. Пурэвжавэн Э. Состояние репродуктивной функции и обмена веществ у коров в условиях молочных ферм Монголии и рациональные методы их коррекции. Дисс. . докт. вет. наук,- Улан-Батор, Воронеж, 2000.-224с.

134. Пучковский А.И. Динамика общего белка, белковых фракций и сахара в крови коров в связи со стадиями и фазами полового цикла (А.И. Пучковский, Э.В. Шурупова / Матер, докл. науч. конф. // Казань, КГАВМ, 1963.-С.676-677.

135. Пучковский А.И. Белковый спектр крови и коров в различные периоды воспроизводительной функции и патогенез бесплодия при гипо- и диспротеинемии / А.И. Пучковский // Мат. докл. Всесоюз. науч. конф.-Казань, 1974.- т.2. -с. 43-45.

136. Равилов М.Н. Применение простагландинов для повышения оплодотворяемости.-М.; Моск. вет. академия, 1994.-с.76-79.

137. Рассадников С.А. Гонадотропин рилизинг гормон - как фактор повышения прогестагенной активности яичников у самок КРС // Проблемы профилактики и терапии незаразных болезней . Л., 1985.-С.64-67.

138. Решетников Н.М. Особенности процесса воспроизведения у коров в условиях промышленной технологии производства молока. М.: 1981.-е.54-62.

139. Розен В.Б. Основы эндокринологии.- М.: высшая школа, 1984.336с.

140. Ролдугина Н.П. Практикум по цитологии, гистологии и эмбриологии / Н.П. Ролдугина, В.Е. Никитченко, В.В. Яглов // Учебное пособие, «Колос»,2004.-е.6-8.

141. Романюк B.J1. Патоф1зюлопчш та еколопчш аспекта уродженого ендем1чного зоба у телят на Р1вненщиш; Автореф. дис. . канд.бюл. наук.-Кшв, 2002.-18с. '

142. Савченко О.Н. Гонадотропины, эстрогены и прегнендиол в нормальном менструальном цикле / О.Н.Савченко, Г.С.Степанов // Проблемы эндокринологии и гормонотерапии, 1964.- Т.10.-№ 4.-е.7-13.

143. Сапожков B.C. Применение дипровита и липамида при профилактике задержания последа и послеродового эндометрита у коров: Автореф.: дисс. . канд. вет. наук//Воронеж, 1995.-29с.

144. Сафонов В.К. Липиды и половые стероиды крови высокопродуктивных коров / Молочное и мясное скотоводство.- 2008.-№4-с.31-33.

145. Сахнюк В.В. Д1агностика лжування та профшактика А-гшовггамшозу у KopiB I телят; Автореф.дис. . канд.вет. наук.-Кшв, 1996.-18с.

146. Светлов П.Г. Вопросы цитологии и общей физиологии / П.Г. Светлов// Изд-во АН СССР.-М., I960.- с.263.

147. Селиванов А.А., ИвановскийЭ.В., Борисович Ю.Ф. Окружающая среда и иммунологическая реактивность организма // Ветеринария, 1984, №3.-с. 33-34.

148. Селиков М. Пътица за намаляване на безплоднето при кравите и юнищите. Животновъдство, 1979, г.32. №2, с.5-8.

149. Сергиенко А.И. Интенсификация воспроизводства крупного рогатого скота. Автореф. дис . д-ра. вет. наук.- Львов, 1981.-29с.

150. Сергиенко А.И. Профилактика бесплодия крупного рогатого скота. М.: «Колос», 1984.-187с.

151. Серов В.Н., Кожин А.А., Приленская В.Н. Клинико-физиологические основы гинекологической эндокринологии. Ростов н/д.; Эверест, 1998.-е. 129-239.

152. Сентебова Н.А. Унификация лабораторных методов исследования/ Н.А. Сентебова, JI.A. Медведева, Т.Н. Александровская. М., 1978. - Вып. VIII. - С. 39-49.

153. Сизенцов А.Н. Повышение воспроизводства крупного рогатого скота, как одного из источников биологических ресурсов в различных экологических зонах Оренбуржья: Автореф. дис . канд. наук, Оренбург.-2004.-23с.

154. Скопец Б.Г. Эффективность воспроизведения коров в связи с состоянием иммунной системы в период, предшествующий осеменению // Профилактика незаразных болезней у коров.-Таллин, 1988.-е. 126-127.

155. Слободяник В.И. Иммунобиологический статус у коров при различном функциональном состоянии молочной железы / В.И. Слободяник, Н.А. Сапожкова. Я.В. Смирнова // Сб. науч. тр.- Воронеж, ВНИВИПФиТ, 1992 .-с.99-103.

156. Слободняк В.И. Иммунологические аспекты патогенеза, новые принципы и средства лечения и профилактики мастита у коров: Дисс. . докт. вет. наук.- Воронеж, 1994.-243с.

157. Смирнов B.C., Хавинсон В.Х., Яковлев Г.М. Коррекция радиационных иммунодефицитов, СПб: Наука, 1992.-32с.

158. Смирнов B.C. Клиническая фармакология тимогена / Ред. В.С.Смирнов. Сиб.; ФАР Миндекс, 2004.-172с.

159. Смирнова Л.В. Перикисное окисление и антиокислительная способность липидов при при различных функциональных состояниях молочной железы у коров // Сб. науч. тр.-ВНИВИПФиТ, 1992 .-с. 103-107.

160. Соколовская И.И. Иммунология воспроизведения / И.И. Соколовская, В.К. Милованов // М.: Колос, 1982.- 363с.

161. Сороко С.И. Нейрофизиологические механизмы индивидуальной адаптации человека в Антарктиде.- JL: Наука, 1984.- 152с.

162. Сочнев В.Н. Рекомендации по выращиванию телят раннего возраста Горький, 1985.-18с.

163. Стравицкий Я.С. Влияние условий внешней среды на оплодотворение коров // Ветеринария. 1999. №9. -с. 39-42.

164. Студенцов А.П. Ветеринарное акушерство и гинекология / А.П. Студенцов М.; Колос, 1980.-241с.

165. Сухих Г.Т., Меерсон Ф.З. Подавление активности нормальных киллеров при эмоционально болевом стрессе.- Бюллетень, экспер. биол., 1983.- №11. - с.84.

166. Сысоев А.А. Повышение воспроизводства и продуктивности животных / А.А. Сысоев, М.П. Рязанский // Воронеж, 1968.-135с.

167. Сысоев А.А. Физиологические особенности воспроизводительной функции коров. М.: Колос, 1971.-352с.

168. Сысоев А.А., Рязанский М.П. Физиологические способности воспроизводительной функции коров.- М.: Колос, 1971.-325с.

169. Сысоев А.А. Физиология размножения сельскохозяйственных животных.- М.: Колос, 1978.-360с.

170. Сысоев А.А. Физиологические особенности становления половой функции и беременности животных. Воронеж, 1981, с. 1-10, 26-27.

171. Таов И.Х. Динамика показателей белкового обмена у беременных коров //Ветеринария. -2002. №7. с. 29-33.

172. Тарасевич А.Ю. Бесплодие сельскохозяйственных животных / А.Ю. Тарасевич. Ленинград, Сельхоз 1936.- 360с.

173. Теппермен Дж. и др. Физиология обмена веществ и эндокринной системы. М.; Мир, 1989.-c.656.

174. Титов В.Н., Творогова Т.Г. Клиническая лабораторная диагностика/В.Н.Титов, Т.Г. Творогова. -№3, 1995. С. 15-18.

175. Топурия Л.Ю. Лечебно-профилактическая эффективность и иммуностимулирующая активность препарата РИБАВ /Л.Ю. Топурия, Г.М. Топурия //1-й съезд вет. фармакологов,- Воронеж, 2007.-е.591-596.

176. Трифонова А.Н. Успехи современной биологии. М.: 1963,- Вып. 56,-№3(6).-с.381-382.

177. Турков В.Г. Эндокринные аспекты программированного воспроизводства крупного рогатого скота с использованием гонадолиберина и простагландина F2 а : автореф. дисс. . докт. вет. наук.- Воронеж, 1996.-36с.

178. Тюрев Г.В., Химина В.А. Эффективность выращивания телят в секционных профилакториях на открытом воздухе.- Омск, 1989.- с.59-61.

179. Устинов А.П. Влияние прогестерона на эмбриональную смертность у коров // Тр. ВНИИ мясного скотоводства. 1979. - Вып. 15. -с.279-284.

180. Федотова Н.А. Адаптационно-иммунные процессы в патогенезе послеродовой патологии у коров и способы их коррекции; Дисс. канд. вет. наук., Кострома, 2004-18с.

181. Фёдоров Ю.Н., Верховский О.А. Иммунодефициты домашних животных.- Москва, 1996.-94с.

182. Фёдоров Ю.Н., Верховский О.А. Иммунодефициты у животных, характеристика, диагностика и коррекция /Мат. межд. конф.- М., 1999.- т.2-с.138-141.

183. Флоринский М.А., Седова Е.А. Селен и окружающая среда // Агрохимия.-1992. №5.- с. 122-129.

184. Хаитов P.M. Иммуномодуляторы и некоторые аспекты их клинического применения /P.M. Хаитов, Б.В. Пинегин.-Клинич.мед.-1999.-№8.-с.7-12.

185. Хаитов P.M., Пенегин Б.В. Современные иммуномодуляторы: основные принципы их применения // Иммунология.- №5.-2000. с.4-7.

186. Хантер Р.Х.Ф. Физиология и технологоия воспроизводства домашних животных / Р.Х.Ф. Хантер // М.: Колос, 1984-319с.

187. Харитонов В.В. Естественная резистентность новорожденного телят при разном уровне микроминерального питания их матерей / Тезисы докладов конф,- 1989.- Иваново с.92.

188. Хочачка П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. -М.: Мир, 1977.-68с.

189. Цыганков П.Б. Совершенствование продуктивных и племенных качеств крупного рогатого скота / П.Б. Цыганков. Дон. с.-х. институт, 1992. -с.73-76.

190. Чекан В.А. Лечение коров при дисфункциях яичников и патологии матки, и их экономическая эффективность/ В.А. Чекан, Г.Г. Козлов// М.; Колос.-1990.-с.8.

191. Черемисинов Г.А. Биохимические показатели и воспроизводительная функция коров / Г.А. Черемисинов, А.Г. Нежданов, С.А. Власов //Ветеринария, 1981.- №4.- с. 53-55.

192. Черемисинов Т.А. Изыскание оптимальных доз отечественных простагландинов и гравогормона для регуляции половой функции каракульских овец // ВНИИПФ и Т.- Воронеж, 1992.-е. 117-122.

193. Чомаев A.M. Стимуляция овуляции у тёлок разными простагландинами / A.M. Чомаев, Р.И. Куксова, В.А. Анзоров, В.А. Дедов // Биотехнология в животноводстве. ВИЖ, 1987. - с.58-59.

194. Чомаев A.M. Влияние тироксина на воспроизводительную функцию коров красно-пёстрой и чёрно-пёстрой голштинской пород / A.M.

195. Чомаев, Ю.Д. Клинский, К.Н. Сейранов // Мат. всероссийск. конф. Черкесск. 2007.-е. 70-73.

196. Шамберев Ю.Н. Влияние гормонов на обмен веществ и продуктивность животных. М.; 1975.-83с.

197. Шахов А.Г. Иммуноферон новый биологический препарат для животных /А.Г. Шахов, JI.E. Баяринов, К.Н. Груздев.- Воронеж, 1999.-С.97-99.

198. Шевченко Б.Д. Профилактика бесплодия коров на молочных комплексах Молдавии // Кишинев, 1983. -с. 127-142.

199. Шевченко С.А. Использование аутокрови для коррекции воспроизводительной функции коров / С.А. Шевченко, А.И. Шевченко // Вестн. Кемер. с.-х. ин-та.- Кемерово, 1995.- с.37-38.

200. Шевякова И.Н. Половой цикл у телок в зимний период и время их осеменения: Автореф. дис . канд. вет. наук, Воронеж, 1982.-13с.

201. Шипилов B.C. Профилактика некоторых форм бесплодия у коров: Автореф. дис . д-ра. вет. наук.- JI., 1968.

202. Шипилов B.C. Профилактика бесплодия ремонтных телок при искусственном осеменении // Известия ТСХА, 1980, в.6.-с. 138-145.

203. Шубин А.А. Применение сурфагона и биостимуляторов для регуляции воспроизводительной функции высокопродуктивных коров // Ветеринария.- 1996.-№7.-с. 35-38.

204. Щедрин E.JT. Анаболические факторы тканевых препаратов и участие ферментов аденилатциклазной системы в передаче их фармакологического действия // Тканевая терапия.- Одесса, 1983.-С.45-47.

205. Щедрин E.JI. Прогнозирование интерфероноподобной активности стимуляторов резистентности / E.JI. Щедрин, Ю.Х. Креймер, JI.H. Тихонова // Ветеринария.- 1989.-№ 12.- с. 28-30.

206. Юдамов JI.A. Пестициды в окружающей среде // Аналит. обзор. -Новосибирск.-1989. -140с.

207. Юркив В.А. Микроэкологические и иммунные нарушения при нематодозов в зонах экологической нагрузки / Юркив В.А., Даугалиева Э.Х., Янгуразова и др.- Уфа: Издание Башкирск. ун-та, 1999,-252с.

208. Aiuti F., Businco В. // Immune system: function and therapy at dysfunction. London, 1980.-p.l39-157.

209. Barentsen R. Van de Weijer P.H.M. Progestogens; Pharmacological characterictics and clinically relevant differences. European Menopause J. 1996; 3(4):226-271.

210. Barr H. Beer at 40 days to reduce daus open. Hoard's Dairyman, 1975, v.120,№ 18, p.l 115.

211. Bemdtson A.K. Low and higt concentration of gonadotrophins different tially regulate hormone production by theca intone and granulosa cell s from bovine preovulatory follicles. Boil. Reproad. 1995.- №6. - p. 1334-1342.

212. Bostedt H. Aus der Gynekologischen und Ambulatorischen Tieeklinik der Universitat Munchen, 1977.

213. Britt I.H. Advances in Reproduction in Dairy Cattle.- J. of Dairy Science, 1981, v.64.- №6.-p. 1378-1402.

214. Chudoba-Drozdowska B. Seronowe nahania poziomu fosforu nieorganicznego w surawicy krwi krow rasy NCB / Zootechnika. Wroclaw, 1984,-26.-S. 119-124.

215. Clarca J.I. Evidence that the switch from negative to positive feedback at the level of the pituitary grand is an important timing event for the onset in LH in the ewe // J. Endocrinol. 1995.-145, №2.-p.271-282.

216. Cortner R., Haen E. Endokrinpharmakolodgi. Pharmakoterapie mit Hormonen. Jn; Forth W., Ed Allqemeine und spezielle Parmakologie und Toxikologie, 8. Aufl. Munchen; Urban-Fiscer, 2001 ;P 671-737.

217. Currlewis J.D. Effect of hypothalamic infusion of a dopamine D, receptor antagonist on prolaction secretion in the ewe. Brein Res. 1995.-697.- № 2.- p.480-525.

218. Dimitropoulos E. Quelques aspects sur le probleme de la feconditecher les bovines. Elevage Beiges, 1976, v.30, №10, p.43-45.

219. Driancourt M.A. Follicular Dynamics in sheep and cattle / Theriogenology, 1991.-35.- №l.-P.55-79.

220. Eger S. Conception rates of diary cows in relation to stage of estrus at insemination. J. Anim. Sci. suppl., 1983.-587p.

221. Flamming K. et al. Effect of bovine immunodeficiency, like virus infection on immune function in experimentally infected cattle // Vet. Immunopathol.- 1993 .(3 6).-p.91 -105.

222. Foote R.H. Optimizing conception rates and calving interval breeding.-Advanced Anim. Breeder, 1977, v.25, №6, p. 21-22.

223. Fortune I.E. Ovarian follicular grouth and development in mammals // Biol. Reprod., 1994.-50, №2.- P.225-232.

224. Goldstein G. Lan C.J. Immunoregulation by thymopoetin // J. Supramol. Struct. -1980.- V.14, №3.-p. 397-403.

225. Gortner R., Haen E. Endocrinpharmakologie. Pharmakotherapie mit Hormonen. Jn: Forth W., Ed. Allgemeine und spezielle Parmakoljgie und Toxikologie, 8. Aufl. Munchen: Urban Fischer,2001; p.671-737.

226. Goulding D. The effect of a single injection of KSH on day 1 of the cycle on the number of follicles and follicular fluid concentrations of estrogen, progesterone and inhibin in heifers. Theriogenology.- 1991.-35.- № l.-p.206.

227. Greco D.S., Harpold L.M. Immuniti and the endocrine sustem // Vet. Clin, of Nort Am., Small Anim. Drak., 1994 (24,4).-p. 768-782.

228. Haag W. Vitamin C. bein Rind: Vorkommen Wirkungen. Dt. Tierarzt Wschr.- 1987,- V.94.-№ 3.-s.181-186.

229. Hackett A.J. Pitnitary and hypothalamic endocrine changes during the bovine estrous cycle / A.J. Hackett, H.D. Hafs // J. Anim.Sci.,1969.V.28.-P.531-536.

230. Hahn R. La fecondita neH'allevamento bovino. Pezzata Rossa, 1983, v.16, №11, p.40-48.

231. Hansel W. Physiologi of estrus cycle / W. Hansel, E. Convey // J. Anim. Sci. suppl.- 1983.-V.57.- №2.-P.404-424.

232. Hebel S.K. Drug Facts and Comparisons. Pocket Version/ 8th ed. Wolters Kluwer 2003.

233. Hidiroglon M., Genlcink К,J. Effect of selenium and vitamin E and cupper administrations on weight of beef cattle raised in selenium deficient area // Can. J. Anim. Ici. 1975 (55). -p. 307-313.

234. Hodges J., Hiley H.G., Froese J. Effect of total environmental change on milk production // Can. J. Anim. Sci.- 1978.- V58.- №4.-p. 631-637.

235. Hunter A. Some nutritional factors affecting the fertility of dairy caftle. Veter.J., 1977.-V. 25.-№11.-P.305-307.

236. Jadhav S. Variabious in the serum cholesterol levels of zebu cows during pregnaney, parturition and puerperium // Indian Vet., 1977.-54,7.-P.536-540.

237. Kaneko J.I. Clinical biochemistry of domestic. 3d. ed. New. York, 1980.-832p.

238. Karg V. Neue Erkentnisse der Endokrinilogie der Fortpflanrung //Prakt. Tierartzt.,1978.-B.59-H.7-S.561-578.

239. Kent J.E., Ewbank R. The effect of road transportation on the blood constituents and behaviour of calves // Brit. Vet. J.- 1983.-V.139.- №3.- p. 228-235.

240. King G. Is failure to show heat areal or imaginary problem? Holstein Friesian J., 1975, v.37, №12, p. 32.

241. King G. et.al. VHI-th Inter. Congn. Anim. Reprod. Artific.Insemin, 1976. №3, p. 149-152.

242. Kohn J. In: Laboratory medicine. V. 1-Hagerstown e.a., 1975. Chap.12B.

243. Kupferschmiedt H. Untersuchungen iiber die postpartale Rastzeit beim Rind.- Schweizer Archiv fur Tierheilkunde, 1975, Bd. 117, H.5, s. 243-254.

244. Lacy C.F., Armstrong L.L., Goldman M.P., Lance L.L. Drug Information Handbook. 11th ed. Lexi-Comp, 2003.

245. Ladewing J. Endocrine aspect of stress: evalution of stress reactions in farm animals / J. Ladewing // Current topics veterinary medizine and animal scinse, 1987.-№42.- P.13-25.

246. Lamonthe P. Le glucose du sang et des secretions endonutriales chez deux groupes de feneelles bovines dout l'un est atbeinf d'infertilite siue materialis / Lamonthe P. et al. //Canad. Veter.,J., 1972.V.13.-№2.- P.29-32.

247. Larsen P.R., Davies T.F. Hypothyroidism and Thyroiditis. Jn: Larsen P.R., Ed. Williams Textbook of Endocrinology, 10th ed. Philadelphia: WB Saunders 20003; p.423-455.

248. Loose-Mitchell D.S., Stancel G.M. Estrogenes and progestines. Jn; Hardman, Limbizd L.E., Eds. Goodman-Gilmans. The Parmakologie Basis of Therapheuties, 10th ed New- York: Mc Grow- Hill,2001 ;P. 1597-1635.

249. Lunenfeld B. Stimulation, de l'ovulation: unenouvelle approche basee sur des dounees physiologques resentes. Perspective d'avenir. Contracept fertile -sex.-1993 .-21 .-№ 4.-suppl.-p. 1 -7.

250. Macha J., Masek N., Kimpl M. Adaptace dojnic na volne ustaj entisadojeni //Anim. Sci.- 1981.- V.26. №7.-p.507-514.

251. Matsuo H. Structure of the porcine LH and FSH releasing hormone. Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1971.-43.- p.1334-1339.

252. Nesson G.K. Relationship of peripheral estrogens and testosterone concentrations to sexual behavior normal and cystic cows. Can. Vet. 1988,- V.22.-№ 1,- p.9-11.

253. Olds D. 12 month calving within every dairyman's reach.- Dairy Herd Manag, 1976, v. 13, №6, p.30.

254. Rattenberger E. Progesteron test und Fruchtbarkeitsmanagement. Unser Milchvieh, 1983, B35, №8, s.1-4.

255. Roberts S.J. Veterinari obstetrics and genital diseases / S.J. Roberts // New-York state Veterinary College.-Ithaca.- №4., 1956.- P.253-254.

256. Rosea O., Dragulete P. Particularitatile organizazii repoductiei in complexele de vaci.- Rev. Czesterea Anim, 1979, an. 29,№3, p. 19-26.

257. Rossouw J.E. et al. Risks and Benefits ot Estrogen plus Progestin in Healthy Postmenopausal Women. Principal results from the Women's health Initiative Randomized Controlled Trial. Ja MA 2002; 288: 321-333.

258. Saacke R. Now important is a 365 day calving interval? Hoard's Dairyman, 1975, v. 120, №19, p. 1140-1141.

259. Sahukaz C.S. Cholesterol and alkaline phosphatase during various reproductive phases in crossbred cows / C.S. Sahukaz, R.K. Pandit, R.A. Channaw, M.Z. Porwar //Indian J. Anim. Sc., 1985 -V.55.-№6.-P. 421-423.

260. Salfen B.E. Effects of the presence of a dominant follicle and exogenous oestradiol on the du ration of the luteal phase of the bovine oestrous cycle. J. Reprod and Fert. 1999.-115.- № 1.- p. 15-21.

261. Schams D. Protiles of LH, FSH and progesterone in post-partum dairy cows and their relationship to the commencement of cyclic functions. Tieriogenology. V.10.- №6.- p.453- 468.

262. Silvia W.J. The role of uterine and ovarian hormones in luteolysis: A comparison among species // Reprod. Domest. Anim. -1999.-34.-№3-4, p.317-328.

263. Solomon C.G., Dlubhy R.G. Rethinking postmenopausal Hormone therapy. New England Journal of Medicine 2003; 348 (7): 549 p.

264. Soroff J.R. Estrus and ovulation in cows following use of progesterone-releasing devicea progesterone and estradiol valerate // Theriogenology -1984.-v.21.- n 2.-p.349-356.

265. Stryer L. Biochtmistiy. 4th ed. New. York, 1995.p. 1064.

266. Tappel A.L. Symposium on selenium in biomedicine. Publ.Com. Westport. Connecticut, 1967.-p. 46-48.

267. Trinder P., Ann. Clin. Biochem., 1969, Vol. 6, p. 24.

268. Whitmore H.L., Mather E.C. Don't depend on estrus signs other than standing heat.- Hoard's Dairyman, 1977, v.122, №21, p. 1285,1331.

269. Zlatkis A., Zak В., Boyle A.I. Lab. Clin. Med., 1957, Vol. 50, N2., P.

Информация о работе

Логвинов, Александр Анатольевич
кандидата биологических наук
Белгород, 2009
ВАК 03.00.13

Диссертация

Применение иммуномодулятора тимогена для стимуляции половой охоты и оплодотворяемости у коров - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы