Особенности выращивания саженцев ягодных культур из укорененных черенков с закрытой корневой системой

Полянская, Анна Евгеньевна

Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему
Особенности выращивания саженцев ягодных культур из укорененных черенков с закрытой корневой системой
ВАК РФ 06.01.07, Плодоводство, виноградарство

Автореферат диссертации по теме "Особенности выращивания саженцев ягодных культур из укорененных черенков с закрытой корневой системой"

На правах рукописи

ПОЛЯНСКАЯ АННА ЕВГЕНЬЕВНА

□□3487080

ОСОБЕННОСТИ ВЫРАЩИВАНИЯ САЖЕНЦЕВ ЯГОДНЫХ КУЛЬТУР ИЗ УКОРЕНЕННЫХ ЧЕРЕНКОВ С ЗАКРЫТОЙ КОРНЕВОЙ СИСТЕМОЙ

Специальность 06.01.0?- плодоводство и виноградарство

1 О ДЕК 2009

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата сельскохозяйственных наук

Москва 2009

003487080

Работа выполнена на кафедре плодоводства ФГОУ ВПО Российского государственного аграрного университета - МСХА имени К. А. Тимирязева

Защита состоится 21 декабря 2009 года в \Ъ-Ъ0 часов на заседании диссертационного совета Д 220.043.01 при Российском государственном аграрном университете - МСХА имени К.А. Тимирязева по адресу: 127550, г. Москва, ул. Тимирязевская, д. 49, тел/факс (495) 976-24-92

С диссертацией можно ознакомиться в Центральной научной библиотеке РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева

Научный руководитель:

доктор сельскохозяйственных наук, профессор

Аладина Ольга Николаевна

Официальные оппоненты:

доктор сельскохозяйственных наук, доцент

Маланкина Елена Львовна

кандидат сельскохозяйственных наук, старший научный сотрудник Павлова Анна Юрьевна

Ведущая организация:

ГОУ Белгородский государственный университет

Автореферат разослан университета \vw\v. timakad.ru

размещен на сайте

Ученый секретарь диссертационного совета, доктор сельскохозяйственных наук

Стрелец В.Д.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы диссертации. Эффективность размножения некоторых ягодных культур зависит не только от корнеобразовательной способности вида или сорта, но и от качества укорененного материала, устойчивости молодых растений к неблагоприятным условиям зимнего периода, способности саженцев к интенсивному начальному росту весной и сохранению активности ростовых процессов как надземной, так и корневой системы в течение периода вегетации. Известно, что укорененные черенки большинства сортов крыжовника, жимолости съедобной, декоративных видов и форм барбариса плохо переносят пересадку в открытый грунт, их гибель при перезимовке может достигать 50% и более (Smith D. R., Torpe Т. А., 1975; Schooley К, Dale А., 1992).

В наших предыдущих исследованиях разработаны эффективные способы укоренения зеленых черенков ягодных и декоративных кустарников в пластиковых ячейках (диаметр, состав субстрата, внекорневые обработки регуляторами роста). Но не изучены особенности выращивания саженцев из укорененных черенков с неповрежденными корнями в открытом грунте и в контейнерах. Не выявлено последействие новых субстратов и внекорневых обработок, использованных при укоренении, на качество посадочного материала. Актуален вопрос о возможности использования экологически безопасных регуляторов роста, в том числе в малых и сверхмалых концентрациях. Недостаточно исследована устойчивость черенков с закрытой корневой системой к неблагоприятным факторам при раннелетних и позднелетних сроках пересадки в открытый грунт. Мало сведений о способах хранения черенков с закрытой корневой системой и влияния их на последующее развитие саженцев. Требуют разработки и совершенствования способы ускоренного выращивания посадочного материала ягодных культур в контейнерах.

Цель исследовании - разработка эффективных способов выращивания посадочного материала ягодных культур из укоренённых зеленых черенков с закрытой корневой системой.

Поставленная цель достигается решением следующих задач:

1. Изучить последействие субстратов для укоренения зеленых черенков в ячейках на их сохранность при перезимовке, рост и развитие саженцев.

2. Определить влияние внекорневых обработок новыми биологически активными веществами (БАВ) (в том числе в сверхнизких концентрациях) на выход жизнеспособного укорененного и посадочного материала ягодных культур с закрытой корневой системой.

3. Изучить влияние новых адапто генных препаратов на устойчивость укорененных черенков с закрытой корневой системой к неблагоприятным внешним факторам.

4. Определить оптимальные сроки пересадки черенков из ячеек в контейнеры и открытый грунт.

5. Изучить влияние способов зимнего хранения укорененного материала с закрытой корневой системой на рост и развитие саженцев в контейнерах.

6. Разработать оптимальный состав субстратов и регламенты применения регуляторов роста при ускоренном выращивании посадочного материала в контейнерах

7. Определить оптимальные способы содержания саженцев ягодных культур с закрытой корневой системой в летний период.

8. Оценить экономическую эффективность использования субстратов с ОГСВ и внекорневых обработок новыми гуминовыми препаратами в технологии выращивания саженцев в контейнерах.

Научная новизна исследований. На разных видах и сортах ягодных культур показано положительное последействие приемов, использованных на этапе укоренения зеленых черенков в пластиковых ячейках (состав субстрата, внекорневые обработки БАВ), на сохранность растений в зимний период и качество саженцев с открытой и закрытой корневой системой.

Выявлены новые БАВ для внекорневых обработок, эффективные в сверхнизких концентрациях, разработаны безотходные способы зимнего хранения укорененных черенков с закрытой корневой системой, лучшие сроки их пересадки в открытый грунт и в контейнеры. Оптимизированы субстраты и составы для внекорневых обработок, ускоряющие рост и развитие саженцев в контейнерах. Разработаны способы содержания саженцев ягодных культур с закрытой корневой системой в период вегетации.

Практическая значимость полученных результатов. Приемы, разработанные для этапа укоренения в ячейках (субстраты, внекорневые обработки ФАВ) и для этапа доращивания в контейнерах (способы хранения, сроки пересадки укорененного материала, субстраты, внекорневые обработки, способы содержания контейнерных растений в течение периода вегетации) стимулируют корнеобразование и позволяют эффективно сохранить укорененные черенки ягодных культур, увеличить выход хорошо развитых саженцев с закрытой корневой системой и существенно сократить цикл их выращивания.

Положения, выносимые на защиту: 1. Последействие используемых субстратов и новых внекорневых обработок на этапе укоренения черенков в ячейках на их устойчивость к неблагоприятным внешним факторам и качество посадочного материала.

2. Приемы выращивания саженцев из укорененных черенков с закрытой корневой системой в контейнерах (способы зимнего хранения, сроки пересадки, состав субстратов, внекорневые обработки, прищипка и пр.).

3. Способы содержания контейнерных растений ягодных культур в течение периода вегетации.

Апробация работы и публикации. Основные положения диссертационной работы докладывали на научных конференциях РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева в 2007-2009 годах; Международной конференции молодых ученых и специалистов РГАУ МСХА посвященной выдающимся педагогам Петровской академии 5-6 июня 2008 г., конференции «Нанобиотехнологии в сельском хозяйстве» 15-19 декабря 2008 года; VI международной научно-практической конференции «Интродукция нетрадиционных и редких растений» 24-27 мая 2006 г., г. Белгород. По теме диссертации опубликовано 4 печатные работы (в том числе 1 статья в рецензируемом научном журнале, утвержденном ВАК РФ и 1 патент на изобретение).

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 250 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, выводов, рекомендаций производству, 2 приложений. Содержит 52 таблицы, 77 рисунков. Список использованной литературы включает 336 работ, в том числе 133 на иностранных языках.

УСЛОВИЯ И МЕТОДИКА ПРОВЕДЕНИЯ ИССЛЕДОВНИЙ

Исследования выполнены в отделе ягодных культур лаборатории плодоводства РГАУ - МСХА имени К.А. Тимирязева в 2007-2009 годах в условиях защищенного и открытого грунта. Укоренение зеленых черенков проводили в летних необогреваемых пленочных теплицах с системой автоматизированного туманообразования - ТОУ; доращивание - в контейнерах (зимняя обогреваемая теплица, адаптационная теплица с регулируемыми условиями) и в открытом грунте.

Объекты исследований: разные по способности к размножению виды и сорта ягодных и декоративных кустарников (13 сортов крыжовника, 7 сортов жимолости съедобной, 2 сорта красной смородины, 2 вида и 5 декоративных форм барбариса). Возраст маточных растений - 3-7 лет. Технология выращивания и уход за маточниками - общепринятые. Зеленое черенкование проводили по общепринятой методике (Тарасенко М.Т., 1991). Черенки высаживали в ячейки диаметром 5 см и получали укорененный материал с закрытой корневой системой (ЗКС).

Субстраты для укоренения в ячейках: торф низинный:перлит в соотношении 2:1 - контроль; торф верховой:перлит (2:1); торф низинный: перлиг.ОГСВ (доля осадков 30, 50%); торф верховой: перлиг.ОГСВ (доля

осадков 30, 50%). Свежие (1 год хранения) стабилизированные, обезвоженные осадки городских сточных вод (ОГСВ) получены на Курьяновской станции аэрации г. Москвы. Часть черенков перед посадкой обрабатывали ИМК (40 мг/л), часть высаживали в ячейки без обработки регуляторами роста. В опытах по подготовке субстратов их насыщали водными растворами препаратов Экогель и Экогель «Турбо» (20 и 30 мл/л) за 5 дней до посадки черенков.

На этапе корнеобразования проводили однократные и двукратные внекорневые обработки черенков препаратами: Цитодеф (40 мг/л) в сочетании с Крезивалом (Крезацин+Мивал = 1:1) (20 мг/л) - прототип, этилсилатраны Черказ-2 и его модификации Черказ-2а (Черказ-2: Крезивал=1:4), Черказ-2б (Черказ-2: Крезивал=1:2) (35 мг/л) отдельно или в сочетании с Цитодефом (40 мг/л) - обработки одно- или двукратные (вторая обработка через 2 недели после первой). Кроме того, испытывали препараты: Эпин (0,2 мл/л), Циркон (0,1 мл/л), производные хитозана - Экогель и Экогель «Турбо» (10, 20 мл/л), гуминовые препараты - лигногумат калия марки «Б» (20 %-ный водный раствор), лигногумат калия в сочетании с регулятором роста Новосил (2,5 мл/л), Лексин (Лигногумат калия в сочетании с ауксиновыми компонентами) (5,0 мл/л), препарат на основе эндофитных грибов - Мицефит (10 мг/л), меламиновая соль бис(оксиметил) фосфиновой кислоты - Мелафен (10"5...Ю'15 М); этилсилатраны Черказ-2, Черказ-2а и Черказ2б (7,5Т0"2...7,5-10'15 М). Разведение растворов мелафена, Черказа-2 до низких и сверхнизких концентраций проводили по рекомендации производителя (со сменой посуды и пипеток). Для индукции корнеобразования маточные растения крыжовника за 7 дней до начала черенкования обрабатывали водным раствором Пикса (0,4 мл/л). Зеленые черенки барбариса, красной смородины и лапчатки перед укоренением обрабатывали водным раствором ИМК (30-40 мг/л). Повторность опытов трехкратная, в повторности 50-100 черенков.

Через 10 дней после внекорневых обработок определяли содержание хлорофилла в листьях - колориметрическим, фотосинтетическую активность -газометрическим методом, водный дефицит - методом насыщения тканей с последующим высушиванием. В начале сентября проводили учеты укореняемости и развития черенков. Определяли число, среднюю и суммарную длину, массу корней, выход черенков 1 и 2 разбора с хорошо развитой корневой системой, наличие приростов и общую площадь листовой поверхности к концу укоренения.

Черенки по вариантам пересаживали на доращивание в открытый грунт (10x90); сроки посадки - III декада июня, августа, сентября и октября. Повторность трехкратная, в повторности - 10 растений. В течение зимнего периода (2008/2009 года) определяли содержание свободной и связанной воды в

клетках тканей методом Окунцова-Маринчик, содержание углеводов в тканях определяли в ноябре, январе, апреле методом Макэна — Шоорля.

Пересадку на доращивание в контейнеры проводили в условиях зимней теплицы, сроки посадки -1 декада октября и II декада февраля.

Субстраты для выращивания саженцев в контейнерах: торф низинный (или верховой), дерновая земля, перлит (1:1:1) - контроль; торф низинный (или верховой)дерновая земля:перлит (в равном соотношении) и ОГСВ доля в субстрате 30-50% от объема).

Укорененные зеленые черенки хранили в открытом грунте на месте укоренения (кассеты без укрытия; укрытие смесью низинного торфа и перлита (1:1), дубовой листвой, спанбондом); в подвале (-2...+2°С), холодильнике (0...+2°С) и зимней теплице (+7...+10°С). Повторность опыта трехкратная, в повторности 50 укорененных черенков. Весной следующего года учитывали процент перезимовавших черенков, характер зимних повреждений (верхушки, верхушечные и боковые почки, кора, древесина).

Растения в контейнерах содержали в условиях обогреваемой зимней теплицы в течение всего периода вегетации или в открытом грунте (со второй декады мая по вторую декаду октября) с размещением на земле, спанбонде, черной пленке, песке. Контейнеры размещали на стеллажах в адаптационной геплице в контролируемых условиях, прикапывали или содержали по системе «роМп-рМ» (Р1Р). Повторность трехкратная, в повторности - 5 растений.

В первой декаде мая проводили одно-двукратные внекорневые обработки саженцев в контейнерах гуминовыми препаратами (Лигногумат калия марки «Б» (5 мл/л); Лигногумат калия в сочетании с регулятором роста Новосил (2,5 мл/л), Лексин (5 мл/л)); производными хитозана (Экогель «Турбо», 30 мл/л); цитокининами (Цитодеф, 20-40 мг/л); мочевиной (5 г/л), силатранами (Черказ-26, 75 мл/л) отдельно или в составе смесей. Вегетирующие растения в контейнерах проливали раствором Экогель «Турбо» (30 мл/л, 300 мл раствора на один контейнер).

В опыте «роЫп-роЬ) укорененные черенки с закрытой корневой системой после хранения в подвале в III декаде февраля пересаживали в горшки (1,2 л). Во Д декаде мая растения переваливали в контейнеры большего объема (2 л). Подготовку продукционных горшков проводили за 2 дня до перевалки растений. Паклобутразол (П, культар, 0,05 мл/л; 0,1 мл/л; 0,5 мл/л и 1 мл/л) или медный купорос (100 г/л) смешивали с воднодисперсионной краской, наносили смесь кистью на всю внутреннюю поверхность контейнеров или на дно. В водные растворы паклобутразола (те же концентрации) и медного купороса (4 г/л) добавляли небольшое количество краски (30-50 мл/л) и смесью опрыскивали внутренние стенки продукционных контейнеров. Закладку участка «роЫп-роЬ) проводили во второй декаде мая. Растения выносили и устанавливали в

подготовленные места в третьей декаде мая. В I декаде июня проводили внекорневую обработку растений водным раствором паклобутразола (1 и 2 мл/л) и 2-ХЭФК (0,035% и 0,05%). В период вегетации учитывали динамику роста растений в открытом грунте и в контейнерах, среднюю и суммарную длину побегов, площадь листовой поверхности. Осенью оценивали среднюю, суммарную длину и количество корней, диаметр условной корневой шейки, а также выход корней из дренажного отверстия контейнера.

Экономическую эффективность новых элементов технологии рассчитывали по технологическим картам выращивания посадочного материала ягодных культур зеленым черенкованием с учетом типовых норм по методикам и рекомендациям кафедры организации сельскохозяйственных предприятий (Никифоров М.А., Яковлев Б.И., 1972) и Методическим указаниям по определению экономической эффективности применения регуляторов роста (1983). Статистическую обработку экспериментальных данных проводили методом дисперсионного анализа по Доспехову Б.А. (1985) и с использованием пакета статистического анализа Statistica 6.0.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ Последействие субстратов для укоренения зеленых черепков в ячейках и внекорневых обработок на их устойчивость и развитие саженцев при доращивании в контейнерах и открытом грунте Последействие субстратов

Ранее нами было показано, что эффективным компонентом искусственных субстратов для укоренения зеленых черенков ягодных культур в пластиковых ячейках являются осадки городских сточных вод (ОГСВ). Задачей настоящих исследований является оценка характера последействия субстратов на дальнейшее развитие растений барбариса, крыжовника, жимолости и их устойчивость к неблагоприятным внешним условиям.

Зеленые черенки легко- и среднеукореняемых форм барбариса (барбариса Тунберга f. golden ring, aurea; Барбариса оггавского), сорта жимолости (Берель, Герда) успешно укореняются на субстратах, содержащих торф низинный, перлит и ОГСВ в равном соотношении (барбарис) и торф верховой, перлит и ОГСВ (3050%) (жимолость) без предварительной обработки ИМК благодаря высокому содержанию элементов питания и гормональной активности осадков (Аладина О.Н. и др., 2009). Укореняемость черенков барбариса f. golden ring - 62-87% против 36% в контроле; доля черенков с хорошо развитой корневой системой 6192%, в контроле - 42%. Для успешного укоренения крыжовника в ячейках необходим любой способ подготовки черенков к укоренению. Независимо от вида торфа, преимущество имеют варианты с высоким содержанием осадков в субстрате (50%).

Таблица 1 - Влияние субстрата на регенерационную жимолости съедобной в ячейках (сорт Герда) (2006-2007 год)

способность зеленых черенков

Варианты Укореняе мость, % Доля черенков с сильной корневой системой, % Перезимо вка, % Среднее число побегов(в т.ч. 2,3 порядков), шт Суммарная длина побегов, см Среднее число корней, шт Суммарная длина корней, см Диаметр условной К.Ш., мм Выход стандса женцев от числа укор.чер, %

ТнП (контроль) 57,5 85,7 80,6 5,1 128,6 11,3 165,2 7,6 80,1

ТнПО 30 75,6 88,9 100 8,3(4,1) 132,4 13,2 247,4 8,1 82,4

ТнПО 50 62,5 86,6 100 7,4 147,3 15.4 305,3 9,4 100

ТвПО 30 68,7 100 100 6,9 204,3 14,3 395,4 10,3 100

ТвПО 50 56,9 94,2 84,9 8,2(3,2) 161,7 12,1 276,3 7,8 83,2

ТнП (контроль) 60,7 77,3 91,7 9,1(3,0) 135,7 10,3 170,1 6,1 78,2

ТнПО 30 62,5 53,4 90,5 8,4(2,4) 134,6 11,1 152,3 9,8 76,4

ТнПО 50 56,5 76,9 100 11,4(2,1) 169,4 12,7 244,1 8,6 89,9

ТвПО 30 91,7 96,4 100 13,2(5,2) 309,6 15,5 485,8 10,8 100

ТвПО 50 77,5 80,4 90,7 14,5(2,0) 305,7 14,8 364,1 9,7 100

НСР05 для частных различий 10,9 10.2 8,1 2.8 29,9 3,0 42,7 1,7 13,2

Тн -торф низинный, Тв - торф верховой, П - перлит, О- ОГСВ

Отмечено положительное последействие субстрата, с 30-50% ОГСВ на перезимовку черенков ягодных культур в открытом фунте. В лучших вариантах черенки сохраняются до 90-100% с минимальным повреждением верхушек и пазушных почек (табл. 1). Состав субстрата для укоренения влияет на интенсивный начальный рост и развитие корневой системы у саженцев (виды и формы барбариса - ТнПО (30-50%); сорта жимолости - ТвПО (30-50%); крыжовника - Тн(Тв)ПО (50%)).

А В

Рис. 1. Последействие субстрата на развитие корневой системы (А) и внешний вид саженцев (В) барбариса Тунберга f.golden ring в контейнерах (на рис. В: слева направо -контроль (ТнП). ТнПО (30%))

Подготовка субстрата к укоренению с использованием препаратов Экогель и Экогель «Турбо» 30 мл/л (пролив водными растворами) положительно сказывается на укореняемости черенков крыжовника и их качестве без использования стимуляторов корнеобразования (у трудноразмножаемого сорта крыжовника Зеленый дождь укореняемость - 70,8-87,5% против 55,8% в контроле (ИМК 30 мл/л); у среднеукореняемого сорта Садко выход черенков с сильной корневой системой достиг 100% (в контроле 60%) и перезимовке в открытом грунте 94-100% против 66-82% в контроле. Подготовка субстрата

оказала значительное влияние на развитие корневой системы саженцев (суммарная длина корней в 3,4-4,5 раз больше, чем в контроле). Эти препараты (20-30 мл/л) также весьма эффективны при проливе кассет в конце периода укоренения за неделю до осенней пересадки укорененных черенков крыжовника (Лада, Снежана) в открытый грунт (сохраняемость без видимых повреждений до 100% против 60,4-81,2% в контроле, где подмерзание верхушек отмечено у 76100% черенков). В опытных вариантах суммарная величина прироста в 2-2,5 раза, суммарная длина корней - в 2-4,5 раз выше контрольных значений.

Последействие внекорневых обработок

Ранее нами была обоснована целесообразность применения внекорневых обработок зеленых черенков в ячейках физиологически активными веществами на этапе корнеобразования. Были разработаны эффективные составы, содержащие цитокинины (Дропп, 6-БАП, Цитодеф), соли крезоуксусной кислоты (Крезацин) и силатраны (Мивал). По результатам настоящих исследований можно рекомендовать новые более эффективные БАВ и смеси на :ix основе для усиления регенерационной способности и устойчивости черенков к неблагоприятным внешним факторам и для усиления роста и развития саженцев в контейнерах и открытом грунте.Среди испытанных нами БАВ наиболее перспективными следует признать следующие вещества и составы на их основе: этилсилатраны (Черказ-2, Черказ-2а и 26; 75 мг/л, двукратная обработка) и их смеси с Цитодефом (35+40 мг/л) (табл. 2); новые гуминовые препараты (Лексин и Лигногумат калия в сочетании с Новосилом); Мицефиты (10 мг/л) и производные хитозана (Экогель, Экогель «Турбо»), Мелафен.

Таблица 2 - Влияние внекорневых обработок зеленых черенков крыжовника (Изумрудный) этилсилатранами и их смесями с Цитодефом на перезимовку и развитие саженцев в открытом грунте (2007-2008 годы)___

Вариант Число обработок Перезимовка, % Среднее число побегов, шт Суммарная длина побегов, см Диаметр условной К.Ш., мм

.Контроль (б/О) 87,7 9,2 167,4 10,2

КВ20+Ц40 (прототип) 1 95,3 5,1 97,9 12,2

2 92,1 9,0 175,1 9,4

Черказ - 2 1 100 6,3 144,9 11,1

2 100 11,2 325,9 13,4

Черказ - 2а 1 90,3 7,2 148,9 9,2

2 82,4 10,6 301,1 9,1

Черказ - 26 1 93,1 8,1 130,4 10,8

2 80,4 6,3 113,4 11,5

Ч2+Ц 1 92,3 5,2 124,8 12,3

2 100 9,4 331,8 8,5

Ч2а+Ц 1 84,2 8,2 158,3 10,6

2 100 12,3 354,2 14,7

426+Ц 1 96,1 10,4 232,9 10,6

2 100 14,2 278,3 13,9

НСРо.5 8,3 2,8 26,6 2,3

42 - Черказ-2, Ч2а - Черказ-2а, 426 - Черказ-26, Ц - цитодеф

При двукратной обработке препаратами Черказ-2, 2а и 26 и их смесями с Цитодефом черенки крыжовника и жимолости зимой сохраняются полностью, без повреждений (в контроле соответственно 87,7-77%). Сохранность черенков жимолости при перезимовке также заметно увеличилась (в варианте Цитодеф+Черказ-2а - 100%, в контроле - 77%) (табл. 2). Адаптогенные свойства препаратов подтверждаются более высоким содержанием в тканях связанной воды и углеводов (табл. 3).

Таблица 3 - Содержание свободной, связанной воды и углеводов в тканях черенков крыжовника (Изумрудный) после двукратной внекорневой обработки Черказом-2 и его смесью с Цитодефом (2007-2008 г)__

Вариант Перезимовка, % Фракционный состав воды, % Содержание углеводов, %

свободной связанной ноябрь январь апрель

Контроль 87,7 ±4,2 77,Г±2,1 22,5 ± 1,5 5,80 ±0,5 5,21 ± 0,9 2,41 ±0,8

КВ20+Ц40 (прототип) 92,1 ±2,9 65,5 ±3,0 34,5 ± 2,0 7,13 ±0,4 6,75 ± 0,7 2,95 ± 0,5

Черказ - 2 100 52,7 ±2,7 47,3 ± 2/Р 9,64 ± 1,1 9,05 ± 0,6 4,72 ± 0,7

Ч2+Ц 100 58,4 ±2,4 41,6 ± 3,1 8,95 ± 0,6 8,58 ±0,8 4,03 ± 0,4

При доращивании опытных черенков барбариса (Барбариса Тунберга f.aurea, golden ring, rose glow), крыжовника (сорта Нежный, Изумрудный) и жимолости (Герда, Бакчарская, Нижегородская ранняя) в контейнерах суммарная длина корней в 1,5-3,2 раза больше, чем в контроле и эталонном варианте. У саженцев усиливается побегоообразовательная способность и ветвление, растения становятся более компактными, несмотря на большой суммарный прирост. При использовании силатранов совместно с цитокининами концентрацию можно сократить вдвое.

Таблица 4 - Последействие внекорневых обработок черенков ягодных культур

Вариант Перезимовка, % Среднее число побегов, шт Суммарная длина побегов, см Среднее число корней, шт Сумм арная длина корней, см Диаметр условной к. ш., мм

Крыжовник (Родник)

Контроль (б/о) 75,2 2,0 35,0 3,0 51,1 8,0

Лиг К+ Новосил 2,5 мл/л 100 2.0 130,5 8,5 272,4 8,0

Лексин 5,0 мл/л 100 2,0 96,4 7,5 247,5 8,0

НСР„5 12,3 _ 30,8 3,5 32,4 _

Барбарис оттавский В. ottawiensis f.auricoma

Контроль (б/о) 84,3 4,0 157,6 14,0 76,0 7,0

Лиг К+ Новосил 2,5 мл/л 100 4,5 114,8 16,0 177,0 8,0

Лексин 5,0 мл/л 100 3,5 99,1 14,5 132,8 8,0

НСР05 14,1 0,8 - 2,3 24,6 -

Смородина красная (Константиновская)

Контроль (б/о) 92,3 1,6 91,2 14,5 259,2 7,5

Лиг К + Новосил 2,5 мл/л 100 1,8 80,6 32,4 362,6 9,0

Лексин 5,0 мл/л 100 2,2 163,0 54,0 993,6 10,0

НСРщ 8,1 0,6 28,7 9,6 39,4 2,3

Сходные результаты обеспечивает внекорневая обработка черенков красной смородины, крыжовника, барбариса Мицефитом (10 мг/л), Экогелем «Турбо» (10-20 мл/л) (рис. 2), Лексином (5 мл/л) и Лигногуматом калия в сочетании с Новосилом (2,5 мл/л) (табл. 4). Обработки черенков Лигногуматом калия марки «Б» (5 мл/л), Эпином (0,2 мл/л), Цирконом (0,1 мл/л) неэффективны.

Выяснилось также, что при временном обезвоживании тканей в период укоренения черенков (частые перебои в работе туманообразующей установки) перечисленные препараты оказывают положительное влияние на устойчивость черенков и выход жизнеспособного укорененного материала (на 17-25%). Обработки обеспечивают хорошую сохраняемость листьев, особенно у крыжовника и барбариса, и развитие корневой системы. Анализ оводненности тканей листьев подтверждает стрессопротекторные свойства препаратов (рис. 2). 80 70 60 50 40 30 20 10 0

Конт(6/о) ЛягР(5 Лиг+Новосил Лексин(5 Экогель Миц«фит(10 Эпим (0,2 Циркон(0,1 мл/л) [2.5 мл/л) мл/л) Турбо (30 мг/л) мл/л) мл/л)

мл/л)

Рис. 2. Содержание воды (%) б листьях черенков крыжовника (Родник) через 2 дня после обработки ФАВ (2008 год)

Большой интерес вызывает возможность использования для внекорневых обработок биологически активных веществ в малых и сверхмалых концентрациях. К числу перспективных БАВ нового поколения относится Мелафен - производное меламина и фосфоновой кислоты. Препарат обладает высокой физиологической активностью в низких концентрациях благодаря гидрофильности и наличию фосфорной группы, влияет на энергетические процессы в растительной клетке и состояние биологических мембран.

Мы провели 2-х летние опыты по оценке влияния обширного диапазона концентраций водных растворов Мелафена (10"3.. ,10"'5М) на регенерационную способность и показатели развития зеленых черенков крыжовника (Изумрудный), барбариса Тунберга f. Golden ring и красной смородины (Натали).

При оценке укореняемости крыжовника три пика ответной реакции на внекорневую обработку зеленых черенков Мелафеном в следующих областях концентраций: 10"5; 30"'0... 10"11; 10"14... 10~!= М чередовались с «молчащими зонами», где процент укоренения не превышал контрольных значений. Пики укореняемости соответствуют максимальному развитию черенков крыжовника: в отмеченных вариантах суммарная длина корней в 1,7-3,8 раза больше, чем в контроле, доля растений с хорошо развитой корневой системой — 70-76 %

(против 35% в контроле) (рис.3).

Укореняемость, %

Суммарная длина корней, см

70 ■ 60 50 -40 30 20 10 О

l.ll

-9 -10 -11 -12 -13 -14 -15

А В

Рис. 3. Влияние внекорневой обработки черенков крыжовника (Изумрудный) Мелафеном на их укореняемость (А) и качество корневой системы (В), 2008-2009 годы

При внекорневой обработке Барбариса тунберга f. golden ring можно различить две области концентраций Мелафена с максимальной в опыте укореняемостью черенков: 10"5 и Ю"10М. Кривая зависимости более плавная, так как уровень укореняемости в целом высокий. Однако при анализе суммарной длины корней отмечено три отчетливых и резких пика положительного отклика та обработку Мелафеном 10'5, Ю~10, 10'14 М. Этот показатель выше, чем контроле в 1,5-2 раза. При обработке Мелафеном зеленых черенков красной смородины выделяются 3 пика укореняемости: 10"4...10"5; 10"8...Ю"10; 10"15М.

При использовании ИМК в малых и сверхмалых дозах (ЗТ0"3...3-10"Ь М) -эффекта не отмечено: лучшие результаты получены в зоне физиологических концентраций - 10"3 М, в которой обычно и используют этот препарат.

Такая же нелинейная зависимость отмечена нами в опыте с Черказом-2 (от 7,5-Ю"2 до 7,5-Ю"15 М). Выявлены пики ответной реакции в разных областях концентраций, в том числе и сверхмалых.

Влияние сроков пересадки укорененных черенков с закрытой корневой системой на развитие саженцев в открытом грунте и контейнерах Срок пересадки влияет на перезимовку зеленых черенков в открытом грунте и качество посадочного материала. В опытах с крыжовником и барбарисом было показано, что самым сильным развитием отличались саженцы из черенков, высаженных в летний и раннеосенний сроки. По совокупности показателей предпочтительнее раннеосенние: для легкоукореняемых видов и сортов (Грушенька, Барбарис оттавский) - конец августа-начало сентября, для среднеукореняемых (Родник) - конец сентября: сохраняемость увеличивается на на 20-25% (табл. 5). При пересадке в раннелетний (конец июля) и позднеосенний (конец сентября) сроки теряются преимущества укоренения черенков в ячейках, поскольку в первом случае корни черенков еще не успевают оплести земляной ком, и почва с корней осыпается при пересадке, во втором - растения не

успевают прижиться к зимнему периоду, и наличие сформированного кома в этом случае не имеет большого значения.

Таблица 5 - Влияние сроков пересадки на приживаемость и качество саженцев

Вариант Приживаем ость после посадки, % Перези мовка, % Среднее число побегов, шт Суммарная длина побегов, см Среднее число корней, шт Суммарная длина корней, см Диаметр корневой шейки, мм

Крыжовник (Грушенька)

29 июля 71,8 72,3 5,5 150,5 25,5 382,5 8,8

25 августа 98,2 100 5,2 125,6 22,1 309,4 8,5

20 сентября 100 95,4 4,5 98,5 19,8 237.6 8.0

25 октября 95,2 86,5 2,8 61,2 16,2 194.4 7,7

Крыжовник (Родник)

29 июля 51,8 57,6 3,6 118,4 24,5 366,8 8,2

25 августа 76,7 83,6 3,2 92,4 17,4 256,2 8,0

20 сентября 88,7 86,2 3,4 109,6 22,1 306,4 8,0

25 октября 91.2 64,5 2,5 62,5 15,2 182,4 7,2

Барбарис отгавский В. ottawiensis f.auricoma

29 июля 82,2 85,3 4,5 143,5 32,4 356,4 8,0

25 августа 100 100 4,0 137,2 25,8 309,6 8,0

20 сентября 100 100 3,2 110,2 24,1 242,5 7,5

25 октября 97,6 88,4 1.7 97,7 19,0 152,0 7,0

HCPoj для частных различий 12,1 13,2 1,0 24,7 3,1 41,4 1,0

При доращивании укорененных черенков с закрытой корневой системой в контейнерах явное преимущество имеет осенний срок пересадки (с декабря по март горшечные растения проходили период покоя при низких положительных температурах). Вероятно, при ранней пересадке в контейнеры субстрат с ОГСВ в корневом коме способствует быстрой приживаемости черенков, что совпадает с началом осеннего роста корней (второй осенний максимум) и в дальнейшем сказывается на развитии при доращивании не только корневой системы, но и чадземной части саженца, особенно начальный рост и динамику роста побегов.

А В

Рис. 4. Динамика роста побегов (А) барбариса Тунберга f.golden ring и развитие корневой системы (В) в зависимости от сроков пересадки черенков в контейнеры (на рис. В: слева - осенний срок, справа - весенний)

Влияние способа зимнего хранения укорененных черенков на развитие саженцев при доращивании

Лучшие способы хранения черенков с ЗКС - при низких положительных температурах в подвале и холодильнике: черенки сохраняются практически без повреждений. При хранении черенков барбариса и крыжовника в подвале все показатели развития саженцев достигают максимальных значений. В остальных вариантах (в холодильнике и зимней теплице; в открытом грунте на месте укоренения - кассеты без укрытия, укрытие смесью низинного торфа и перлита (1:1), дубовой листвой, спанбондом) - сохранность черенков - 80-90%.

Суммарная длина корней, см

Рис. 5. Развитие корневой системы саженцев крыжовника (Лада) в зависимости от способа хранения укорененного материала с ЗКС и его предварительной обработки Экогелем

При таких способах хранения целесообразно проливать субстрат в ячейках Экогелем (20-30 мл/л) за неделю до пересадки черенков в контейнеры (рис. 5).

Разработка способов выращивания саженцев ягодных культур из укорененных черенков с закрытой корневой системой

При выращивании посадочного материала в контейнерах в защищенном грунте большое значение имеет не столько устойчивость черенков к действию внешних факторов, сколько возможность ускоренного получения стандартных

саженцев к весеннее-летнему периоду.

160

140... ......

120 100 -- -.....

Суммарная длина корней, см

....... Контроль

-30% 1 лет

---- 50% 1 лет

--ЭО%Ьла

- • 50%5лет

300 250 200 150 ■ 100

........ ш

шш

—Itl ш & i

Sf ■

01.05.07 01.06.07 01.07.07 0i.0S.07 Нот 1|3«£) 1{50ЗД 5|10°л] 5(50%)

А В

Рис. 6. Динамика роста побегов (А) и суммарная длина корней у саженцев крыжовника (Садко) в контейнерах в зависимости от срока хранения ОГСВ и его содержания в субстрате

Результаты наших исследований показали, что для выращивания посадочного материала крыжовника и декоративных форм барбариса в контейнерах наиболее активный и дружный рост саженцев обеспечивает применение субстратов на основе верхового торфа с включением 1-летних ОГСВ: больше площадь листовой поверхности, суммарный прирост, раньше формируется крона; корневая система густомочковатая, отличается мощным развитием. При выращивании саженцев крыжовника (рис. 6) оптимальная доля осадков в субстрате - 30%, саженцев барбариса - 50%.

Применение внекорневых обработок гормональными препаратами также оказывает влияние на габитус растений в контейнерах и развитие корневой системы. В опытах с крыжовником и барбарисом мы оценивали влияние БАВ, минеральных подкормок и прищипки на рост надземной и корневой системы у контейнерных растений. Наилучшие результаты обеспечило использование внекорневых обработок растений в контейнерах препаратами Цитодеф (40 мг/л) и Черказ-2б (35 мг/л). Оправдано применение смеси, содержащей перечисленные препараты и мочевину, с одновременной прищипкой молодых побегов (во второе декаде мая) для усиления ветвления надземной системы и придания кроне компактности (табл. 6).

Таблица 6 - Влияние обработок ФАВ на показатели роста и развития саженцев

Вариант Среднее число побегов (в т.ч. 2 порядка), шт Суммарная длина побегов, см Среднее число корней, шт Суммарная длина корней, см Диаметр корневой шейки, мм

Контроль (б/о) 2,3 88,3 11,0 143,0 8.0

N (мочевина, 5 г/л) 3,6 113,4 14,2 142,0 9,8

Цитодеф (40 мг/л) 6,0(2,8) 142,4 19,2 481,9 12,0

Черказ-2б (35 мг/л) 9,2 (3,0) 159,2 27,4 575,4 10,5

N + Цитодеф 4,2 128,8 13,2 165,0 11,0

N + Цитодеф + Черказ-2б 6,6 137,8 17,5 393,8 11,0

Экогель «Турбо» (30 мл/л) внекорневая обработка 5,8 144,2 22,0 319,0 10,2

Экогель «Турбо» (30 мл/л) пролив субстрата 3,8 126,4 13,2 145,2 12,0

Прищипка (б/о) 7,4(4,4) 132,4 15,5 193,8 10,0

Прищипка + N + Цитодеф + Черказ-2б 9,0(6,8) 121,6 25,0 475,0 12,0

НСР„5 2,4 29,8 4,1 43,5 2,1

Сходный эффект отмечен нами при внекорневых обработках саженцев барбариса Тунберга f. golden ring и крыжовника (Родник) во второй декаде мая Лексином и Лигногуматом калия со стимулятором роста Новосил (2,5 мл/л).

Применение двукратных внекорневых обработок гуминовыми препаратами на фоне осадков (30%) обеспечили значительный суммарный эффект, который проявился в усилении развития корневой системы, более раннем отрастании побегов и формировании компактного габитуса (рис. 7).

500 450 400 350 300 250 200 150 100 50

Рис. 7. Влияние субстрата и двукратной внекорневой обработки гуминовыми лрепаратами на суммарную длину корней у саженцев барбариса Тунберга f.golden ring

Влияние условий содержания саженцев ягодных культур в i контейнерах на их рост и развитие

I Со второй половины мая до октября саженцы ягодных культур с

закрытой корневой системой лучше содержать в открытом грунте: из-за высокой температуры воздуха в теплице в летний период растения рано I прекращают рост, у чувствительных культур (крыжовник) рано желтеют и ' опадают листья.

Горшечные растения размещали на поверхности почвы, укрытой черной пленкой, спанбондом, слоем песка. Но в этих вариантах велика парусность, отмечены колебания температуры и влажности субстрата и врастание корней в I почву. Прикапывание контейнеров целиком в грунт обеспечивает хорошее самочувствие растений, но при этом стенки траншеи при извлечении 1 контейнеров осыпаются, усиливается врастание корней в почву, при

извлечении контейнеров они неизбежно обрываются. | В системе «pot-in-pot», разработанной в передовых хозяйствах США,

( оптимальным образом сочетаются преимущества контейнерного способа ( выращивания и способа доращивания саженцев в поле. Саженцы с закрытой { корневой системой содержатся одновременно в двух контейнерах: J продукционный контейнер с растением («production pot») помещается в контейнер большего размера («socket pot»), вкопанный в почву на специально подготовленной площадке (рис. 8, 9).

Этот способ позволяется ставить и извлекать из почвы горшки с растениями в любое время года, что невозможно при доращивании саженцев в поле. Исключаются возможные колебания температуры в зоне корней и вероятность сдувания и опрокидывания контейнеров ветром.

Однако при всех преимуществах этой системы, нерешенной остается проблема закручивания корней саженцев по стенкам контейнера и врастания корней в почву. Особенно это актуально для культур быстрорастущих, а также долго находящихся при беспересадочном содержании.

|£инШгяшь гЗШаВ»ШнЯИЯрЯИЕ* Рис. 9. Система содержания саженцев в Рис. 8. Площадка «роЫп-роЬ.июль 2009 контейнерах «ро!-т-ро1»

«Химическая обрезка» корней способствует развитию мощной мочковатой корневой системы, занимающей весь объем контейнера, а не только его пристенную часть. Наиболее часто используют соединения меди, которые в больших концентрациях смешивают с латексной основой и наносят на внутренние стенки контейнеров. Недостаток способа - признаки медной токсикации (хлороз листьев, потемнение значительной части корневой системы) и возможность использования только на декоративных культурах. Мы применяли паклобутразол (Культар), который разрешен к использованию на плодовых культурах. Известно его положительное влияние на регенерацию и рост корневой системы. Внутреннюю поверхность продукционных контейнеров обрабатывали смесью паклобутразола (П) с латексной воднодисперсионной краской или водным раствором препарата.

Суммарная длина побегоо, см

водный раствор

Суммарная длина корней, с

800 700 -бОО 5 ОО 400 300 200 ЧОО

водный раствор

внек. обр.

Рис. 10. Влияние паклобутразола и меди на показатели развития надземной (А) и I корневой системы (В) крыжовника (сорт Северный капитан)

Метод PIP в значительной степени нивелирует колебания температуры в зоне корней: в ясные безоблачные дни субстрат в контейнерах на поверхности почвы нагревается до 45°С, в системе PIP температура на 8-10°С ниже.

Растения в контроле характеризовались наличием длинных стержневых корней, часть их подкручивалась по дну горшка, часть - выходила в почву через дренажные отверстия (на 9,5 см) (рис. 11). Использование медного купороса,

Рис. 11. Развитие корневой системы Рис. 12. Развитие саженцев саженцев саженцев (сентябрь): слева - контроль, крыжовника, слева направо: контроль; справа - П (1 мл/л) с краской П(1 мл/л)+краска; П(1 мл/л) вод. раствор

Эффективно применение паклобутразола на основе латексной краски (рис. 11). При этом отмечено сокращение длины прироста, сближение междоузлий, увеличение общей площади листовой поверхности и суммарной длины корней (в 1,4-2,5 раза). Более стабильный эффект достигается при обработке ретардантом (0,5 мл/л) с краской всей внутренней поверхности контейнера. В этом зарианте -оптимальный баланс между сокращением суммарной длины надземной системы и увеличением суммарной длины корней. Корни из дренажных отверстий практически не выходят.

Применение водного раствора паклобутразола для опрыскивания внутренней поверхности контейнера оказалось еще более эффективным, чем окрашивание: существенно (до 3,5 раз) возрастает суммарная длина корней. При использовании оптимальной концентрации (0,1 мл/л) отмечено увеличение прироста побегов в 1,4 раза, суммарной листовой поверхности - в 1,8 раз, суммарной длины корней - в 3,1 раз по сравнению с контролем, но корни выходят из дренажного отверстия на 3-4 см. С увеличением концентрации (0,5 мл/л) корни выходят на 1,5-2 см, но начинает сокращаться листовая поверхность. С дальнейшим увеличением концентрации до 1 мл/л страдает прирост, но развитие корней - максимальное в опыте (рис. 12).

Внекорневая обработка растений крыжовника водным раствором паклобутразола (2 мл/л) дает такой же результат, что и опрыскивание внутренних стенок контейнера (0,1 мл/л). При снижении концентрации до 1 мл/л увеличивается суммарная длина приростов и общая площадь листовой

поверхности, но при этом не предотвращается врастание корней в почву, несмотря на сокращение суммарной длины корней.

Полученные нами данные говорят о целесообразности вкапывания внешних горшков не на всю глубину, а лишь на 1/3, что существенно снижает затраты ручного труда. Контейнеры с растениями рекомендуется выносить в открытый грунт в начале апреля-конце мая. Предпосадочную подготовку контейнера можно заменить внекорневой обработкой растений раствором паклобутразола (1 или 2 мл/л) в период начала активного роста побегов (в первой половине июня), что значительно упрощает технологию. Для получения более развитой надземной системы целесообразно использовать более низкие концентрации (1 мл/л), более мощной корневой системы - более высокие (2 мл/л). Этот способ содержания контейнеров позволяет к сентябрю получить компактные разветвленные саженцы крыжовника с мощной корневой системой.

Экономическая эффективность. При использовании новых элементов технологии выращивания посадочного материала крыжовника (Родник) с закрытой корневой системой (субстраты с включением ОГСВ, двукратная внекорневая обработка Лигногуматом марки «Б») уровень рентабельности увеличивается соответственно в 1,7-1,8 раза по сравнению с традиционным методом выращивания. Совместное использование приемов обеспечивает увеличение рентабельности производства саженцев с закрытой корневой системой в 2,5 раза.

ВЫВОДЫ

1. При укоренении зеленых черенков в ячейках добавление в состав субстрата ОГСВ (30-50%) оказывает не только положительное влияние на регенерационную способность видов и сортов ягодных культур, но и заметное положительное последействие на качество посадочного материала с минимальными выпадами при перезимовке и доращивании. При укоренении жимолости и декоративных видов и форм барбариса наилучшие результаты получены при использовании субстратов, содержащих торф низинный, перлит и ОГСВ (30%). При укоренении черенков крыжовника доля осадков должна быть выше (50%), вид торфа не имеет значения.

2. При укоренении в ячейках легкоразмножаемых культур (жимолость съедобная, Барбарис оттавский, Барбарис Тунберга f. aurea, golden ring) на субстратах с ОГСВ, высокая укореняемость и хорошее развитие черенков и саженцев достигаются без предварительной обработки черенков ауксинами. При укоренении тредноразмножаемых формы барбариса (барбарис Тунберга f. Rose Glow) и сортов крыжовника необходимо применение стимуляторов корнеобразования.

3. Использование двукратных внекорневых обработок этилсилатранами (Черказ-2, Черказ-2а и 26, 75 мг/л), их смесями с Цитодефом (35 + 40 мг/л),

однократных - гуминовыми препаратами в сочетании с регуляторами роста (Лексин, 5 мл/л; Лигногумат калия+Новосил, 2,5 мл/л), производными хитозана (Экогель, Экогель «Турбо», 10-20 мл/л) в начале корнеобразования оказывает положительное влияние на укореняемость крыжовника, барбариса, жимолости и качество корневой системы у черенков и саженцев. Преимущество новых препаратов-адаптогенов проявляется также в повышении устойчивости укорененных черенков к неблагоприятным условиям при укоренении, перезимовке и доращивании.

4. Препараты нового поколения Мелафен и Черказ-2 проявляют биологическую активность в сверхнизких концентрациях; зависимость эффекта от дозы препарата носит нелинейный характер. Выявлено 3 пика положительной ответной реакции на внекорневые обработки в области физиологических и сверхнизких концентраций: Мелафен - 10'5, 10"'°, 10"15 М; Черказ-2 -10"2, 10"6...0'8,10"12...10_мМ.

5. Очевидно преимущество осеннего срока пересадки (I декада октября) черенков с закрытой корневой системой в контейнеры с последующим хранением при низкой положительной температуре (до середины февраля). Саженцы отличаются более активным ростом надземной системы и более мощным развитие корней. При посадке весной (II декада февраля - I декада марта) черенки с неповрежденным корневым комом рекомендуется обрабатывать перед хранением водным раствором Экогеля (30 мл/л). Лучший срок для пересадки черенков в поле — с середины августа до третьей декады сентября.

6. Для ускоренного выращивания контейнерных саженцев крыжовника, барбариса с хорошо сформированной кроной и мощной корневой системой оптимальны субстраты, содержащие верховой торф, перлит и свежие ОГСВ в равном соотношении. Эффективна последующая двукратная внекорневая обработка в 1-П декаде мая лигногуматом калия марки «Б» (5 мл/л), Лигногуматом калия в сочетании с Новосилом (2,5 мл/л), Черказом-2б или составом, содержащим мочевину (5 г/л), Черказ-2б (35 мл/л) и Цитодеф (40 мг/л) с одновременной прищипкой побегов во второй декаде мая.

7. С конца мая по октябрь крыжовник с закрытой корневой системой рекомендуется содержать в открытом грунте по системе «роЫп-ро!:» для устранения парусности растений, исключения колебания температуры и влажности в зоне корней, что положительно сказывается на развитии саженцев.

раствором ретарданта (1-2 мл/л), что существенно упрощает технологию. В этом случае внешние горшки можно вкапывать на глубину не более 1/3 высоты.

9. Совместное использование субстратов с ОГСВ и двукратной внекорневой обработки Лигногуматом калия марки «Б» способствуют увеличению рентабельности производства саженцев крыжовника и снижению их себестоимости за счет увеличения выхода качественного посадочного материала с закрытой корневой системой.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ

1. Для получения хорошо развитого посадочного материала легкоразмножаемых видов и сортов ягодных культур рекомендуется укоренять зеленые черенки в ячейках на субстратах, содержащих низинный торф, перлит (2:1) и ОГСВ (30%) без использования стимуляторов корнеобразования.

2. В фазу появления зачатков корней проводить однократные внекорневые обработки зеленых черенков ягодных культур Лигногуматом калия в сочетании с Новосилом (2,5 мл/л) или Лексином (5 мл/л); двукратные -препаратами Черказ-2, Черказ-2а, Черказ-2б (75 мг/л) отдельно или в сочетании с цитодефом (Черказ-2 35 мг/л+Ц40 мг/л).

3. Хранить укорененные черенки с закрытой корневой системой в подвале в завязанных полиэтиленовых пакетах с небольшим количеством влажного сфагнума.Пересаживать черенки из ячеек в открытый грунт - с середины августа до III декады сентября; в контейнеры - в I декаде октября с последующим хранением контейнеров при низкой положительной температуре с I декады декабря до середины февраля. За две недели до посадки или закладки на хранение черенки в ячейках проливать водным раствором Экогеля (20-30 мл/л).

4. При выращивании посадочного материала ягодных культур в контейнерах рекомендуется использовать субстрат: торф верховой, перлит и ОГСВ в равном соотношении; в конце апреля-начале мая проводить двукратную (с интервалом 2 недели) внекорневую обработку Лигногуматом калия в сочетании с Новосилом (2,5 мл/л) или Лигногуматом марки «Б» (5 мл/л). Эффективна прищипка во II декаде мая в сочетании с опрыскиванием смесью мочевины (5 г/л), Черказа-2б (35 мг/л) и цитодефа (40 мг/л).

Список работ, опубликованных по теме диссертации:

1. Акимова C.B., Полянская А.Е., Аладина О.Н. Особенности размножения сортов жимолости синей зелеными черенками. Сборник статей конференции молодых ученых и специалистов РГАУ МСХА посвященной выдающимся педагогам Петровской академии 5-6 июня 2008 г. - С 5.

2. Аладина О.Н, Акимова C.B., Чернова С.Ю., Полянская А.Е. Влияние

субстратов и внекорневых обработок на эффективность укоренения зеленых черенков крыжовника в пластиковых ячейках. Доклады ТСХА. Вып. 280. -М.-.ФГОУ ВПО РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева, 2008. - С. 222-226.

3. Аладина О.Н., Акимова C.B., Чернова С.Ю., Полянская А. Е., Скоробогатова И.В., Никиточкин Д.Н.. Роль субстратов и внекорневых обработок в укоренении зеленых черенков крыжовника в пластиковых ячейках. Известия ТСХА. - 2008.-№1.-С. 1-12.

4. Аладина О.Н., Акимова C.B., Аладин С.А., Полянская А.Е., Никиточкин Д.Н. Способ укоренения зеленых черенков легкоразмножаемых ягодных и декоративных кустарников // Патент на изобретение № 2367140. - 2009. - С. 1-16.

Отпечатано с готового оригинала-макета

Формат 60х84716 усл. печ. л. 1,4. Тираж 100 экз. Зак. 583.

Издательство РГАУ - МСХА имени К.А. Тимирязева 127550, Москва, ул. Тимирязевская, 44 Тел.: 977-00-12, 977-26-90

Содержание диссертации, кандидата сельскохозяйственных наук, Полянская, Анна Евгеньевна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Укоренение черенков в контейнерах.

1.1.1. Сроки пересадки, способы хранения укорененного материала.

1.2. Субстраты в технологии зеленого черенкования.

1.3. Применение внекорневых обработок в технологии зеленого черенкования.

1.4. Способы доращивания укорененного материала.

1.4.1. Выращивание посадочного материала с открытой корневой системой.

1.4.2. Доращивание укорененных черенков в контейнерах.

1.4.3.1. Суть, преимущества и недостатки технологии «РоЫп-Ро1».

1.4.3.2. Закладка участка «роЫп-роЪ» и рекомендации по эксплуатации.

1.4.3.2. Способы борьбы с врастанием корневой системы в почву.

2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ.

2.1. Цель и задачи исследований.

2.2. Объекты, методика и условия проведения опыта.

2.3. Результаты исследований.

2.3.1. Последействие состава субстратов при укоренении зеленых черенков в ячейках на развитие саженцев при их доращивании в контейнерах и открытом грунте.

2.3.1.1. Влияние состава субстрата на укореняемость черенков барбариса в ячейках и его последействие при доращивании саженцев.

2.3.1.2. Влияние состава субстрата на укореняемость черенков крыжовника в ячейках и их последействие при доращивании саженцев.

2.3.1.3. Влияние состава субстратов для укоренения черенков жимолости съедобной и их последействие при доращивании саженцев.

2.3.2. Влияние внекорневых обработок новыми препаратами на укореняемость зеленых черенков и развитие саженцев при доращивании в контейнерах и открытом грунте в поле

2.3.2.1. Влияние внекорневых обработок препаратом Черказ-2 на укореняемость и развитие черенков ягодных культур и последействие при доращивании саженцев в контейнерах и в открытом грунте.

2.3.2.2. Влияние внекорневых обработок черенков ягодных культур препаратами Эпин и Циркон на укореняемость черенков и развитие саженцев.

2.3.2.3. Влияние внекорневых обработок черенков ягодных культур лигногуматами на укореняемость и качество укорененного материала и саженцев.

2.3.2.4. Влияние внекорневых обработок новыми препаратами в малых и сверхмалых дозах на укореняемость и развитие черенков ягодных культур и их последействие при доращивании саженцев в контейнерах и в открытом грунте.

2.3.2.5. Другие способы применения новых физиологически активных веществ (насыщение субстрата перед укоренением черенков, обработка корневого кома препаратами Экогель и Экогель «Турбо»).

2.3.3. Влияние способа зимнего хранения укорененных черенков на развитие саженцев при доращивании.

2.3.4. Влияние сроков пересадки укорененных черенков с закрытой корневой системой на развитие саженцев при доращивании в поле.

2.3.5. Особенности доращивания зеленых черенков с закрытой корневой системой в контейнерах.

2.3.5.1. Влияние состава субстрата в контейнере на рост и развитие саженцев ягодных культур с закрытой корневой системой.

2.3.5.2. Эффективность применения внекорневых обработок при выращивании саженцев ягодных культур с закрытой корневой системой.

2.3.5.3. Условия содержания саженцев ягодных культур в контейнерах.

2.3.5.4. Эффективность новой технологии доращивания саженцев в контейнерах «Pot-in-Pot».

2.4. Организационно-экономическая оценка применения новых БАВ и субстратов в технологии выращивания саженцев крыжовника с закрытой корневой системой.

ВЫВОДЫ.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ.

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Особенности выращивания саженцев ягодных культур из укорененных черенков с закрытой корневой системой"

Одной из важных задач современного питомниководства является разработка эффективных способов ускоренного размножения садовых растений. В настоящее время технологии зеленого черенкования отводится ведущее место в размножении ягодных кустарников.

Эффективность размножения некоторых ягодных культур зависит не только от корнеобразовательной способности вида или сорта, но и от качества укорененного материала, устойчивости молодых растений к неблагоприятным условиям зимнего периода, способности саженцев к интенсивному начальному росту весной и сохранению активности ростовых процессов как надземной, так и корневой системы в течение периода вегетации. Известно, что укорененные черенки большинства сортов крыжовника, жимолости съедобной, декоративных видов и форм барбариса плохо переносят пересадку в открытый грунт, их гибель при перезимовке может достигать 50% и более (Schooley К., Dale А., 1992; Плеханова М.Н. и др., 2002). Кроме того, растения некоторых ягодных культур (декоративные формы барбариса Тунберга, сорта крыжовника) отличаются медленным ростом и развитием, особенно в контейнерах, и саженцы на следующий год часто не достигают стандартных показателей, поэтому их приходится доращивать в течение двух лет и более (Knowles R., 1988; Безух Е.П., 1999; Качалкин М.В., Рупошев А.Р., 2000).

Поэтому актуальны все приемы, позволяющие увеличить не только регенерационную способность черенков, но и их устойчивость к неблагоприятным внешним факторам и позволяющие получить саженцы в закрытой и открытой корневой системой в сжатые сроки.

Настоящие исследования могут сыграть положительную роль в разработке способов, позволяющих существенно повысить эффективность вегетативного размножения ягодных кустарников, в том числе трудноразмножаемых форм и сортов.

Заключение Диссертация по теме "Плодоводство, виноградарство", Полянская, Анна Евгеньевна

ВЫВОДЫ

2. При укоренении в ячейках легкоразмножаемых культур (жимолость съедобная, Барбарис оттавский, барбарис Тунберга f. aurea, golden ring) \ на субстратах с ОГСВ, высокая укореняемость и хорошее развитие черенков и саженцев достигаются без предварительной обработки, черенков ауксинами. При укоренении трудноразмножаемых форм барбариса (барбарис Тунберга f. rose glow) и сортов крыжовника необходимо применение стимуляторов корнеобразования.

3. Использование двукратных внекорневых обработок этилсилатранами (Черказ-2, Черказ-2а и 26, 75 мг/л), их смесями с Цитодефом (35 +40 мг/л), однократных - гуминовыми препаратами в сочетании с регуляторами роста (Лексин, 5 мл/л; Лигногумат калия+Новосил, 2,5 мл/л), производными хитозана (Экогель, Экогель «Турбо», 10-20 мл/л) в начале корнеобразования оказывает положительное влияние на укореняемость крыжовника, барбариса, жимолости и качество корневой системы у черенков и саженцев. Преимущество новых препаратов-адаптогенов проявляется также в повышении устойчивости укорененных черенков к неблагоприятным условиям при укоренении, перезимовке и доращивании.

4. Препараты нового поколения Мелафен и Черказ-2 проявляют биологическую активность в сверхнизких концентрациях; зависимость эффекта от дозы препарата носит нелинейный характер. Выявлено 3 пика положительной ответной реакции на внекорневые обработки в области физиологических и сверхнизких концентраций: Мелафен - 10"5, 10"10, 10"15 М; Черказ-2 - 10"2, 10"6.0-8, 10"12. ЛО-14 М.

5. Очевидно преимущество осеннего срока пересадки (I декада октября) черенков с закрытой корневой системой в контейнеры с последующим хранением при низкой положительной температуре (до середины февраля). Саженцы отличаются более активным ростом надземной системы и более мощным развитие корней. При посадке весной (II декада февраля - I декада марта) черенки с неповрежденным корневым комом рекомендуется обрабатывать перед хранением водным раствором Экогеля (30 мл/л). Лучший срок для пересадки черенков в поле - с середины августа до третьей декады сентября.

7. С конца мая по октябрь крыжовник с закрытой корневой системой рекомендуется содержать в открытом грунте по системе «ро^т-роЪ) для устранения парусности растений, исключения колебания температуры и влажности в зоне корней, что положительно сказывается на развитии саженцев.

8. Для борьбы с врастанием корней эффективна обработка внутренней поверхности контейнеров до посадки растений водным раствором паклобутразола (0,1 мл/л). Предпосадочную подготовку горшков молено заменить внекорневой обработкой растений (в середине-конце июня) водным раствором ретарданта (1-2 мл/л), что существенно упрощает технологию. В этом случае внешние горшки можно вкапывать на глубину не более 1/3 высоты.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ

3. Хранить укорененные черенки с закрытой корневой системой в подвале в завязанных полиэтиленовых пакетах с небольшим количеством влажного сфагнума. Пересаживать черенки из ячеек в открытый грунт - с середины августа до III декады сентября; в контейнеры - в I декаде октября с последующим хранением контейнеров при низкой положительной температуре с I декады декабря до середины февраля. За две недели до посадки или закладки на хранение черенки в ячейках проливать водным раствором Экогеля (20-30 мл/л).

4. При выращивании посадочного материала ягодных культур в контейнерах рекомендуется использовать субстрат: торф верховой, перлит и ОГСВ в равном соотношении; в конце апреля - начале мая проводить двукратную (с интервалом 2 недели) внекорневую обработку Лигногуматом калия в сочетании с Новосилом (2,5 мл/л) или Лигногуматом марки «Б» (5 мл/л). Эффективна прищипка во II декаде мая в сочетании с опрыскиванием смесью мочевины (5 г/л), Черказа-2б (35 мг/л) и цитодефа (40 мг/л).

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, кандидата сельскохозяйственных наук, Полянская, Анна Евгеньевна, Москва

1. Агафонов Н.С. // Сб. науч. работ НИИСХ ЦЧП им. В.В. Докучаева, 1975.-Т. 9, вып. 1.-С. 5-10.

2. Акимова C.B. Разработка новых элементов технологии зеленого черенкования ягодных кустарников: Автореф. дис. на соиск. учен. степ. канд. с.-х. наук. М., 2005. - С. 23.

3. Акимова C.B., Аладина О.Н., Чернова С.Ю., Никиточкин Д.Н. Укоренение и выращивание крыжовника в контейнерах // Докл. ТСХА — М., 2006. Вып. 278. - С. 407-410.

4. Акимова C.B., Полянская А.Е., Аладина О.Н. Особенности размножения сортов жимолости синей зелеными черенками // Сборник статей конференции молодых ученых и специалистов РГАУ МСХА посвященной выдающимся педагогам Петровской академии, 2008. — С. 5.

5. Аксененко В.Ф., Хапохов Х.Б. Размножение клоновых подвоев косточковых культур // Материалы междунар. науч.-практ. конф."Садоводство и виноградарство 21 в.". Краснодар, 1999. - Ч. 2. - С. 101-104.

6. Аладин С.А., Власов В.В. Ускоренное компостирование осадков городских сточных вод // Надежда планеты, 2001. №9. - С. 6-7.

7. Аладина О.Н, Акимова C.B., Чернова С.Ю., Полянская А.Е. Влияние субстратов и внекорневых обработок на эффективность укоренения зеленых черенков крыжовника в пластиковых ячейках // Доклады ТСХА. М.: ФГОУ ВПО РГАУ-МСХА, 2008. - Вып. 280. - С. 222-226.

8. Аладина О.Н., Акимова C.B., Аладин С.А., Полянская А.Е., Никиточкин Д.Н. Способ укоренения зеленых черенков легкоразмножаемых ягодных и декоративных кустарников // Патент на изобретение № 2367140. — 2009.-С. 16.

9. Аладина О.Н., Акимова C.B., Карсункина Н.П. Совершенствование технологии ускоренного выращивания крыжовника с изолированной корневой системой // Докл. ТСХА. -М., 2005. Вып. 277. - С. 533-537.

10. Аладина О.Н., Акимова C.B., Карсункина Н.П., Скоробогатова И.В., Никиточкин Д.Н. Роль внекорневых обработок в зеленом черенковании крыжовника// Докл. ТСХА, 2006. Вып. 278. - С. 410-413.

11. Аладина О.Н., Акимова C.B., Тараканов И.Г. Применение мицефитов в технологии зеленого черенкования ягодных и декоративных кустарников // Плодоводство и ягодоводство России, 2008. Т. 18. - С. 16-28.

12. Аладина О.Н., Акимова C.B., Тараканов И.Г., Никиточкин Д.Н. Мицефиты в технологии зелёного черенкования ягодных культур // Сборник трудов международной научно-практической конференции «Агротехнологии XXI века», 2007. С. 171-173.

13. Аладина О.Н., Акимова C.B., Чернова С.Ю., Полянская А. Е., Скоробогатова И.В., Никиточкин Д.Н. Роль субстратов и внекорневых обработок в укоренении зеленых черенков крыжовника в пластиковых ячейках // Известия ТСХА, 2008. №1. с. 1-12.

14. Аладина О.Н., Жаркова И.В. Влияние обработки маточников вишни паклобутразолом на способность к размножению черенкованием в стерильной культуре // Регуляторы роста и развития растений: Тез. доклада IV Междунар. кофн. M.: МСХА, 1997. - С. 144.

15. Аладина О.Н., Лесничева А.Н. Использование физиологически активных соединений в размножении крыжовника зелеными черенками // Интенсивное возделывание ягодных культур. Л., 1988. - С. 31-36.

16. Аладина О.Н., Лесничева А.Н., Агафонов Н.В. Применение регуляторов роста в технологии размножения крыжовника // Изв. ТСХА, 1989.-№4.-С. 107-113.

17. Аладина О.Н., Шарафутдинов Х.В., Агафонов Н.В. Использование паклобутразола при размножении вишни зелеными черенками // Изв.ТСХА, 2003.-№1.-С. 116-129.

18. Антонова Т.А. Формирование урожая, зимостойкость и качество зерна озимой ржи при использовании мелафена в условиях лесостепи Поволжья: Автореф. дис. канд. с.-х. наук. Пенза, 2004. - С. 19.

19. Антонова Т.А., Фаттахов С.А. Влияние мелафена на зимостойкость озимой ржи // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях, 2001. -С. 209-210.

20. Байданова Е.А., Соколова Е.А. Последействие обработок вегетирующих растений рострегулирующими нарцисс и черказ // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях, 2001. С. 211-212.

21. Баславская С.С., Трубецкова О.М. Практикум по физиологии растений.- М.: Изд-во Московского университета, 1964. 328 С.

22. Бауэр К. Анализ органических соединений. М.: Издательство иностранной литературы. 1953. - С. 234

23. Безух Е.П. Пути повышения эффективности производства саженцев плодовых и ягодных культур с закрытой корневой системой // Плодоводство и ягодоводство России: Сб. науч. Работ ВСТИСП. М., 1999. - Т. 6. - С. 117121.

24. Белов В.В. Модификация структуры биологических мембран а-токоферолом в широком диапазоне концентраций: Автореферат диссертации. -2007.-С. 26.

25. Белов В.В., Мальцева Е.Л., Пальмина Я.Я., Бурлакова Е.Б. Роль полярности растворителя в механизме действия биологически активных веществ в сверхмалых дозах // Докл. АН/РАН, 2004. Т. 399, №4. - С. 548550.

26. Белостоцкий H.H. О производстве культур саженцами с закрытой корневой системой / / Лесное хозяйство и лесная промышленность, 1979. -№3. С. 30-32.

27. Бочарова М.А., Трунова Т.И., Шаповалов A.A. // Физиология растений, 1983. Т. 30, Вып. 2. - С. 360-369.

28. Брыкалов A.B., Головкина Е.М. Исследование биологической активности активированной формы лигногумата // Биоресурсы, биотехнологии, экологически безопасное развитие регионов юга России, 2007.-С. 77.

29. Бурлакова Е.Б. Сверхмалые дозы и нанонаука // Биологически активные вещества в серхмалых дозах: Тезисы докладов к 8-й специализированной выставке «Изделия и технологии двойного назначения 04 октября 2007 года». М., 2007. - С. 3-4.

30. Буш М.К. Новый вид посадочного материала «Брика», его развитие и перспективы применения // Выращивание и использование посадочного материала с закрытой корневой системой. Рига: Зинатне, 1975. - С. 5-6.

31. Ваге Т. Краткий отчет об опытах с горшочками «Джиффи» в лесоводстве. М.: ВНИИТП, 1970. - №47. - С. 1-3.

32. Вареник В.И. Вегетативное размножение клематисов в Центральном ботаническом саду АН БССР // Всесоюз. семинар-конф. по клематисам. — Л., 1989.-С. 26-27.

33. Васюкова Н.И., Герасимова Н.Г., Озерецковская О.Л. // Прикл. биохим. микробиол., 1999. Т. 35, №5. - С. 557-563.

34. Васюкова Н.И., Зиновьева C.B., Ильинская Л.И. // Прикл. биохимия и микробиология, 2001. Т. 37, №1, - С 115-122.

35. Вехов Ю.К., Уколова Т.П., Головина Р.И. Зеленое черенкование клоновых подвоев яблони и вишни с добавкой к грунту цеолита и биогумуса // Садоводство и виноградарство, 2002. №6. - С. 10-12

36. Воробьева Р.П., Додолина В.Т., Мерзлая Г.Е. Экологически безопасные методы использования отходов. Барнаул: МСХ РФ, 2000. - С. 555

37. Гаранович И.М., Антонкж Е.Д., Шпитальная Т.В. Разработка агротехнических приемов ускоренного выращивания саженцев облепихи // Изв.Акад.аграр.наук Беларуси, 1994; N 4. С. 40-48

38. Гашенко A.A., Тарасенко М.Т. Размножение яблони зелеными черенками // Садоводство и виноградарство, 1990. Т. 6. - С. 22-26.

39. Генкель П.А., Зенкина Е.З. Состояние покоя и морозоустойчивость плодовых растений. М.: Наука, 1964.

40. Генкель П.А., Кушниренко C.B. Холодостойкость растений и термические пути ее повышения. — М.: Наука, 1966. С. 223.

41. Генкель П.А., Окнина Е.З. О состоянии покоя у растений // Доклады АН СССР, 1948. Т. 62, №3.

42. Гольбрайх Э.С. Устойчивость саженцев с закрытой корневой системой // Лесное хозяйство, 1974. №1. - С. 58-62.

43. Горбатенко И.Ю. Сверхмалые дозы биологически активных веществ и перспективы их использования // Изв. АН/РАН.Сер.биол., 1997; N 1. С. 107110

44. Гордеева П.В. Интродукция представителей рода пеперомия и перспективы использования их в озеленении // Тезисы докладов. Кишинев, 1989.-С. 38-40.

45. ГОСТ Р 17.4.3.07-2001. Охрана природы. ПОЧВЫ. Требования к свойствам осадков сточных вод при использовании их в качестве удобрений.

46. Гунар И.И. Практикум по физиологии растений.- М.: Изд-во «Колос», 1972.-С. 48-50.

47. Гуревич К.Г. Закономерности и возможные механизмы действия сверхмалых доз биологически активных веществ // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 2. Химия, 2001. Т. 42, №2. - С. 131-134.

48. Деева В.П., Шелег З.И., Санько Н.В. Избирательное действие химических регуляторов роста на растения. Минск: «Наука и техника», 1988.-С. 256.

49. Дементей П. А. Исследования показателей роста контейнеризированных сеянцев хвойных пород // 55-я студенческая науч.-техн. конф. Минск, 2004. - С. 68-69.

50. Долгополов В.Г. Выращивание посадочного материала и создание лесных культур за рубежом // Лесное хозяйство, 1972. №8. - С. 90-92.

51. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М.: Агропромиздат, 1985. — С. 351.

52. Дудорев М.А., Арестова C.B. Опыт зимнего хранения саженцев лиственницы сибирской с закрытой корневой системой // Лесн. хоз-во, лесомелиорация и охрана природы. Саратов, 1993. — С. 20-25.

53. Ежов Л.А., Василенко Е.В. Некоторые вопросы размножения клюквы болотной в условиях Предуралья // Тр. междунар. науч.-практ. конф. "Пробл.развития садоводства и овощеводства". Ижевск, 2002. - С. 33-37.

54. Ермаков Б.С. Выращивание саженцев методом черенкования. М.: Лесная промышленность, 1975. - С. 152.

55. Ермаков Е.И., Попов А.И. Аспекты управления круговоротом органического вещества в системе почва растение. // Вестник РАСХН?> 2001.-№ 1.-С. 58-63.

56. Жиганов Ю. Новые способы выращивания посадочного материала за рубежом // Лесное хозяйство, 1969. №9. - С. 90-91.

57. Жигачева И.В., Фаткуллина Л.Д., Русина И.Ф., Шугаев А.Г., Генерозова И.П., Фаттахов С.Г., Коновалов А.И. Антистрессовые свойства препарата мелафен // Докл.АН/РАН, 2007. Т. 414, №2. - С. 263-265.

58. Жигачева И.В., Фаткуллина Л.Д., Шугаев А.Г., Бурлакова Е.Б., Фаттахов С.Г., Коновалов А.И. Препарат мелафен и физико-химическое состояние биологических мембран // Докл.АН/РАН, 2006. Т. 409, №4. - С. 547-549.

59. Жигачева И.В., Фаткуллина Л.Ф., Шугаев А.Г., Фаттахов С.Г., Резник B.C., Коновалов А.И. Препарат мелафен и энергетический статус клеток растительного и животного происхождения // Докл.АН/РАН, 2006. Т. 409, №1. - С. 123-125.

60. Жученко A.A. Адаптивный потенциал культурных растений (эколого-генетические основы). — Кишинев: Штиинца, 1973.

61. Загоскина Н.В., Алявина А.К., Гладышко Т.О., Фаттахов С.Г., Резник

62. Загоскина Н.В., Пинаев A.C., Алявина А.К., Гладышко Т.О., Фаттахов

63. C.Г., Коновалов А.И. Активация мелафеном роста и накопления фенольных соединений в каллусной культуре чайного растения не связана с его возможной цитокининовой активностью // Докл.АН/РАН, 2007. Т. 413, №6. -С. 841-844.

64. Зиновьев В.Г., Верейкина H.H., Харченко H.H., Любимов В.Б. Прогрессивные технологии размножения деревьев и кустарников. — Белгород: Воронеж, 2002. С. 136.

65. Зубарева Г.М., Каргаполов A.B., Ягужинский JI.C. Влияние сверхмалых количеств пероксида водорода на водную основу растворов // МИС-РТ, 2004 г.-№32, С. 1-2.

66. Исайчев В. А. Оптимизация продукционного процесса сельскохозяйственных культур под воздействием микроэлементов и росторегуляторов в условиях лесостепи Поволжья: Автореф. дис. на соиск. учен. степ, д-ра с.-х. наук. Казань, 2004. - С. 46.

67. Кабанина С.В., Сергадеева М.Ю., Балина К.В., Михайлов О.В., Любимов В.Б. Контейнерный метод выращивания посадочного материала и перспективность его внедрения в питомники Саратовской области: Методические рекомендации. Балашов, 2004. - С. 20.

68. Качалкин М.В., Рупошев А.Р. Разработать и создать в производстве полифункциональные насаждения садовых и пряно-ароматических культур: Отчет за 2000г //Гос. унитар. предприятие "Племсадпитомник" С. 304

69. Кашина O.A. Исследование влияния фосфороорганического соединения мелафена на рост и энергетические процессы клеток хлореллы: Автореф. дис. на соиск. учен. степ. канд. биол. наук. — Казань, 2004. С. 22.

70. Кашина O.A., Лосева Н.Л., Алябьев А.Ю., Трибунских В.И., Фаттахов С.Г. Влияние мелафена на физиолого-биохимические процессы и урожайность некоторых злаковых культур // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях, 2001. С. 97-98.

71. Кашина O.A., Фаттахов С.Г., Лосева Н.Л., Коновалов А.И., Гордон Л.Х., Алябьев А.Ю., Резник B.C. Сравнительное изучение влияния мелафена и кинетина на рост и энергетические процессы растительной клетки // Докл.АН/РАН, 2005. Т. 405, №1. - С. 123-124.

72. Кефели В.И. Природные ингибиторы роста и фитогормоны. М.: Наука, 1974.-С. 353.

73. Кинякин М.Ф., Тутов М.Х., Каминский М.А. Об эффективности применения КФ-пенопласта при зеленом черенковании // Докл. ТСХА, 2004. Вып. 276. - С. 527-529.

74. Кириллова И.Г., Воронина Е.А. Влияние регулятора роста мелафена на физиологические процессы картофеля // Регуляция продукционного процесса сельскохозяйственных растений. — Орел, 2006. Ч. 2. - С. 261-264.

75. Кирсанова Е.В. Экологически чистый препарат Черказ как фактор повышения продуктивности агроценоза // Природ, ресурсы основа экон. стратегии. - Орел, 2002. - С. 223-227.

76. Кичина В.В. Повреждающие факторы зимнего периода и генетические возможности повышения зимостойкости у плодовых растений // Плодоводство и ягодоводство России, 1999. — Т. 6. — С. 13-24.

77. Козлова Р.Ю., Винтер В.Г., Фаттахов С.Г. Мелафен как регулятор вторичного метаболизма растений // II Всерос.конф."Химия и технология раст.веществ": Сб. материалов. Казань, 2002. — С. 73.

78. Козлова Р.Ю., Винтер В.Г., Фаттахов С.Г., Резник B.C., Коновалов А.И. Меламиновая соль бис(оксиметил)фосфиновой кислоты (мелафен) как регулятор специализированного обмена раувольфии змеевидной // Докл.АН/РАН, 2005. Т. 401, №4. - С. 556-559.

79. Коротков Н.И. Способ размножения черной смородины // Бюлл. научной информации ЦГЛ им. И.В. Мичурина, 1991. С. 51-53.

80. Косолапова Г.Н., Фирсова C.B. Зимостойкость и холодостойкость жимолости синей в условиях Кировской области // VI Международный симпозиум «Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования»: материалы. -М. 2005. Т. 3. - С. 118-120.

81. Костин В.И., Антонова Т.А., Фаттахов С.Г. Мелафен как новый перспективный регулятор роста и развития растений // Вестн. Ульян, гос. с.-х. акад. Сер. "Агрономия", 2001. - №5. - С. 44-47.

82. Костин В.И., Исайчев В.А. Влияние мелафена на зимостойкость, урожайность и качество озимой пшеницы // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях, 2001. С. 249.

83. Крутьков В.М. Вероятный механизм действия сверхмалых доз БАВ // IV Международный симпозиум «Механизмы действия сверхмалых доз» 2829 октября 2008 года. Тезисы докладов. -М., 2008. С.60-61.

84. Кузнецова JIM. Использование торфа в защищенном грунте // Торф в сельском хозяйстве Нечерноземной зоны: Справочник. JL: Агропромиздат, 1987.-С. 109-130.

85. Кузнецова JI.M., Галактионова A.A. Торфяные грунты // Труды ВНИИТП. Л., 1985. - Вып. 55. - С. 99-108.

86. Куприянова А.Г. Экспериментальное исследование температурного режима корневой системы в субстрате контейнера при изменении температуры окружающей среды // Ландшафтная архитектура: вчера, сегодня, завтра / Марийс. гос. техн. ун-т, 2007. С. 76-83

87. Лештаева Е.А. Гуминовые удобрения — новые резервы повышения урожайности и качества продукции в хозяйствах защищенного грунта // Теплицы России, 2007. №1. - С. 48-50.

88. Лисица Л. А. Размножение отборных форм смородины красной зелеными черенками. Биология и особенности агротехники овощных, плодовых и ягодных культур в Зап. Сибири, 1987. С. 35-38.

89. Макаров Ю.В., Даньков В.В. Выращивание саженцев черной смородины из одревесневших черенков по системе «Брикет» // Интенсификация возделывания ягодных культур. Л., 1988. - С. 18-24.

90. Маковская A.A. Выращивание саженцев яблони с использованием метода зимней/комнатной/ прививки: Информ. листок / ВАСХНИЛ. Минск, 1990.-С. 4.

91. Максимов И.В., Хайрулин P.M., Ахметова И.Э., Черепанова Е.А. // Материалы VI Междунар. конф. «Новые достижения в исследовании хитина и хитозана». -М.:ВНИРО, 2001. С. 88-91.

92. Максимов H.A. О вымерзании и холодостойкости растений // Изв. Лесного ин-та, 1913. №25. - С. 330.

93. Мельников С. Выращивание фруктовых деревьев в контейнерах // Вестник УКРОП, 2004.http://www.toptropicals.com/vestnik/cultivation/lighting.htm.

94. МУ 2.1.7.730-99. Методические указания. Гигиеническая оценка почвы населенных мест.

95. МУК 4.2.796-99. Методические указания. Метожы санитарно-паразитических исследований окружающей среды./ МЗ РФ 2000 г.

96. Муромцев Г.С., Чкаников Д.И., Кулаева О.Н., Гамбург К.З. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: «Агропромиздат», 1987. — С. 384

97. Муртазина Л.И., Рыжкина И.С., Фаттахов С.Г., Шерман Е.Д., Коновалов А.И. // IV Международный симпозиум «Механизмы действия сверхмалых доз» 28-29 октября 2008 года. Тезисы докладов. М., 2008. -С.74-75.

98. Налобова В.Л., Шкляров А.П., Аутко A.A. Особенности размножения котовника гибридного зелеными черенками // Земляробства i ахова раслш, 2005.-№1.-С. 52-53.

99. Нгуен Хьеу Льем. Выращивание сеянцев древесных и кустарниковых пород в контейнерах на различных основаниях: Автореф. дис.канд. с.-х. наук / Воронеж, лесотехн. ин-т. Воронеж, 1989. - С. 21

100. Негода В.И. Влияние субстратов на рост и развитие однолетних саженцев яблони в постоянных контейнерах // Совершенствование технологии возделывания плодовых культур: Сб. науч. тр. Киев, 1990. — С. 36-38.

101. Нестеров Я.С. Сроки вступления в состояние покоя и зимостойкость плодовых культур // Докл. ВАСХНИЛ, 1970. №7.

102. Озерецковская О.Л., Васюкова Н.И., Зиновьева C.B. Хитозан как элиситор индуцированной устойчивости растений // Хитин и хитозан: получение, свойства и применение. М.: Наука, 2002.-С.368.

103. Павлова А.Ю., Борисова A.A., Казакова В.Н. Влияние силатранов и их германиевого аналога на укореняемость зеленых черенков сливы сорта Скороспелка красная // Плодоводство и ягодоводство России, 1999. — Т. 6. — С. 102-110.

104. Павлова Н.Ю., Крылова И.И. Использование цеолита для контейнерной культуры крыжовника // Плодоводство и ягодоводство России, 1996. Т.З, -С. 135-140.

105. Плеханова М.Н., Сорокин A.A., Арсеньева Т.В. Особенности зеленого черенкования жимолости синей // Тр.междунар.науч.-практ.конф.:»Пробл. развития садоводства и овощеводства».-Ижевск, 2002.- С. 66-69.

106. Поликарпова Ф.Я. Влияние лактата хитозана на индукцию ризогенеза у стеблевых черенков садовых культур // Материалы VII Международной конференции «Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана». М.: ВНИРО, 2003. - С. 108-111.

107. Поликарпова Ф.Я. Инновационные направления метода зеленого черенкования плодовых и ягодных культур // Плодоводство и ягодоводство России / Всерос. селекц.-технол. ин-т садоводства и питомниководства, 2008. -Т. 18.-С. 275-285.

108. Поликарпова Ф.Я., Леонтьев-Орлов O.A., Леонтьева-Орлова Л.А., Столярова Л.Г., Воронина С.С. Влияние новых регуляторов роста на укоренение стеблевых черенков // Плодоводство и ягодоводство России. М.: ВСТИСП, 1994. - С. 50-55.

109. Прилуцкий A.B., Терновская О.И. Применение осадка отстойников водопроводных станций для выращивания сеянцев шелковицы // Шелководство, 1990. Т. 18. - С. 8-9.

110. Промышленная ресурсосберегающая технология ускоренного производства посадочного материала с закрытой корневой системой в контейнерах способом В.М. Колесника // Садоводство, виноградарство и виноделие Молдавии, 1990. №5. - С. 18-20.

111. Прохорова З.А. Зеленое черенкование садовых культур // Обзорная информация /МСХ СССР, ВНИИ информации и тех.-эконом. исследований по с.-х.-М., 1972.-С. 44.

112. Прохорова З.А. Размножение смородины и облепихи зелеными и одревесневшими черенками // Интенсивные способы выращивания посадочного материала садовых культур. М., 1984. - С. 57-63.

113. Ракош JL, Штранц П. Опыт с применения Лигногумата и продуктов на его основе в сельском хозяйстве Чешской республики // Гуминовые кислоты и фитогормоны в растениеводстве. 12-16 June. Kiev, Radostim.: 2007. — С. 114-121.

114. Решецкий Н.П. Эффективность комплексных гранулированных удобрений на основе осадка городских сточных вод // Соврем, пробл. использ. почв и повышения эффективности удобрений. Горки, 2001. - Ч. 2. -С. 153-156.

115. Родионова C.B. Компосты из древесной коры и осадка сточных вод-эффективное средство повышения плодородия почв лесных питомников // Рациональное использование природных ресурсов и охрана окружающей среды, 1988.-С. 124-128.

116. Романенко Е.С., Брыкалов A.B., Мазницына О.В., Павленко H.A. Применение лигногумата на посевах озимой пшеницы сорта Донская юбилейная // Проблемы экологии и защиты растений в сельском хозяйстве, 2006.-С. 175-177.

117. Рябушкин Ю.Б. Размножение клоновых подвоев и выращивание саженцев плодовых культур в условиях Нижнего Поволжья: Автореф. дис. д-ра с.-х. наук. Мичуринск, 2003. - С. 47.

118. Савин Е.З., Башкардин А.Д. Подбор субстратов при зеленом черенковании облепихи // Пробл. вегетативного размножения в садоводстве. -М., 1985.-С. 106-111.

119. Саженцы смородины и крыжовника. Общие технические условия // ОСТ 10 127-88

120. Салаш П. Проблема стресса растений в контейнерах // Проблемы дендрологии, цветоводства, плодоводства: Материалы VI междунар. конф. — Ялта, 1998.-С. 50-56.

121. Самощенков Е.Г. Опилки и мох как компоненты субстратов для зеленого черенкования сливы и алычи // Садоводство и виноградарство, 2000. №1. - С. 9-11.

122. Самощенков Е.Г., Аладина О.Н., Овезова М.Р. Влияние обработки ретардантами маточных растений сливы на укореняемость зеленых черенков // Тр. научной конференции молодых ученых. М., 1991. - С. 511-522.

123. Самусь В.А., Матвеева Р.Ф. Особенности роста саженцев плодовых культур с закрытой корневой системой // Посадочные материалы для интенсивных садов: Матер, науч.-техн. конф. Варшава, 1994. - С. 63.

124. Самусь В.А., Матвеева Р.Ф., Карницкая Т.А. Влияние субстратов на основе верхового торфа на рост и развитие саженцев плодовых культур в контейнерах // Плодоводство: Сб. научн. тр. Минск: БелНИИП, 1994. — Т. 9. -С. 162-172.

125. СанПиН 2.1.7.573-96. Почва, очистка населенных мест, бытовые и промышленные отходы, санитарная охрана почвы. Гигиенические требования к использованию сточных вод и их осадков для орошения и удобрения. М.: Минздрав России, 1997.

126. Седов E.H., Еремин Г.В., Казаков H.B. Садоводство России: Методы ускоренного выращивания саженцев. — Тверь: Агентство «Дайджест», 1994. -С. 281.

127. Седых Э.М., Аджиенко В.Е., Старшинова Н.П., Банных JI.H., Таций Ю.Г., Гулько Н.И. Анализ осадков городских стоков // РИА Стандарты и качество. Партнеры и конкуренты, 2001. №1. - С. 16-20.

128. Селивановская С.Ю., Латыпова В.З., Ведерников Н.М. Эффективность компоста из осадков сточных вод при выращивании сеянцев сосны обыкновенной в питомниках // Лесн.хоз-во, 2007. №6. - С. 35-37.

129. Сизенко Ю.М. Зимнее хренение укорененных черенков // Новое в размножении садовых растений: Сб. науч. тр. / ТСХА. М., 1969. С. 155-157.

130. Сизов Ю.М., Несмеянова Н.И., Шоломов Ю.А. Эффективность биостимулятора "Черказ" в вегетационных опытах с различными культурами // Пробл. повышения продуктивности полевых культур. — Самара, 1998. С. 97-101.

131. Скалий Л.П. Изучение новых субстратов в технологии зеленого черенкования // Состояние и перспективы развития плодоводства и овощеводства в соврем, условиях. Горки, 1998. - С. 67-75.

132. Скалий Л.П. Использование субстратов с растительными добавками в технологии зеленого черенкования // Докл. ТСХА, 2005. Вып. 277. - С. 577582.

133. Скалий Л.П. Субстраты в технологии зеленого черенкования // Докл. ТСХА / Рос. гос. аграр. ун-т МСХА им. К.А. Тимирязева, 2006. - Вып. 278. -С. 440-443.

134. Скалий Л.П. Укоренение зеленых черенков в контейнерах / ТСХА. -М., 1989.-С. 10.

135. Скалий Л.П. Эффективность применения отработанного шампиньонного субстрата и опилок в искусственных смесях при укоренении зеленых черенков садовых растений // Изв. ТСХА, 2005. №3. - С. 48-58.

136. Скалий Л.П., Самощенков Е.Г. Размножение растений зелеными черенками. М.: МСХА, 2002. - С. 115.

137. Скалий Л.П., Шарафутдинов Х.В. Укоренение зеленых черенков плодовых культур на минераловатном субстрате. М., 1990. - С. 19.

138. Скрябин К.Г., Вихорева Г.А., Варламов В.П. Хитин и хитозан. Получение, свойства и применение. М.: НАУКА, 2002. - С. 366.

139. Соколова Е.В., Чиркова Л.В. Влияние физиологически активных веществ и субстратов на укореняемость зеленых черенков калины обыкновенной в условиях Западного Предуралья // Роль сортов и новых технологий в интенсив, садоводстве. Орел, 2003. - С. 332-333.

140. Сократова Э.Г., Фаустов В.В. Облепиха в Бурятии. Улан-Удэ: Бур. кн. изд-во, 1974. - 52 с.

141. Солина Ю.В. Некоторые вопросы совершенствования технологии производства посадочного материала смородины красной // Молодые ученые — садоводству России. Тезисы докладов Всероссийского совещания. М., 1995.-С. 148-150.

142. Соловьева М.А. Зимостойкость плодовых культур при разных условиях выращивания. М.: Колос, 1967. — С. 238.

143. Спивак Н.А. Размножение клоновых подвоев яблони зелеными черенками с использованием защищенного грунта: Автореф. дис. канд. с.-х. наук; Мичур.гос.с.-х.акад. Мичуринск, 1995. - С. 24.

144. Ступин В.А., Фирсова И.В. Новые методы репродукции плодово-ягодных растений и винограда // Интродукция растений. Ростов на Дону, 1993.-С. 77-80.

145. Стыценко В.Н. Технология зеленого черенкования клоновых подвоев сливы в условиях ЦЧР: Автореф. дис. канд. с.-х. наук / Воронеж, гос. аграр. ун-т им. К.Д.Глинки. Воронеж, 2001. - С. 27.

146. Сухоцкая С.Г. Размножение плодовых культур зелеными черенками в Западной Сибири. Омск, 1990. - С. 24.

147. Тарасенко М.Т. Вегетативное корнесобственное размножение яблони // Известия ТСХА. М.: Колос, 1974. - Вып. 3. - С. 127-142.

148. Тарасенко М.Т. Зеленое черенкование садовых и лесных культур. — М.: ТСХА, 1991.-С. 272.

149. Тарасенко М.Т. Проблема вегетативного размножения в садоводстве (итоги исследований в ТСХА) // Изв. Тимирязев, с.-х. акад, 1987. Т. 6. - С. 122-136.

150. Тарасенко М.Т. Размножение растений зелеными черенками. — М.: Колос, 2001.

151. Тарасенко М.Т. Размножение смородины и крыжовника черенками с листьями (зеленое черенкование) // Известия ТСХА, 1958. Вып. 5. - С. 125149.

152. Тарасенко М.Т., Бакун В.К., Загурский С.Ф. Совершенствование технологии выращивания клоновых подвоев яблони // Известия ТСХА. — 1980.-Вып. 5.-С. 101-110.

153. Тарасенко М.Т., Ермаков Б.С., Прохорова З.А., Фаустов В.В. Новая технология размножения зелеными черенками: Методические указания. — М.: ТСХА, 1968.-С. 79.

154. Тарчевский И.А. // Прикл. биохим. микробиол., 2001. Т. 37, №5. - С. 517-532.

155. Телегин Н.П. Лесовосстановление в Швеции. М.: ЦБНТИ лесхоза, 1973.-С. 47.

156. Терещенко H.H., Коурова C.B. Использование отработанных соломенных субстратов после грибов в тепличном хозяйстве // Докл. РАСХН, 1997. №4. - С. 22-23.

157. Тимофеев Б.А., Макаров В.В. Особенности действия лекарственных препаратов и биологически активных веществ в сверхмалых дозах // Вестн. РАСХН, 2007. №2. - С. 92.

158. Типовой технологический регламент использования осадков сточных вод в качестве удобрений. М.: Минсельхоз РФ, ГУЛ НИИССВ «Прогресс», 2000.- 20 с.

159. Точицкая А.И. Выращивание саженцев плодовых культур в контейнерах // Плодоводство, ин-т плодоводства Нац. акад. Наук Беларси. — Самохваловичи, 2006. Т. 18, Ч. 1. - С. 215-225.

160. Трунов И.А., Юмашев Н.П., Карташов В.П. Осадки сточных вод -источник удобрений // Роль науки в повышении устойчивости функционирования АПК Тамбовской области, 2004. Т. 2. - С. 182-186.

161. Туманов И.И. Физиология закаливания и морозостойкости. М.: Наука, 1979. - С. 350.

162. Туов М.Т., Шеховцова Л.И. Интенсификация производства вегетативных саженцев чая. Науч. тр. НИИ горного садоводства и цветоводства, 1985; Т. 32, - С. 51-57.

163. Турецкая Р.Х., Поликарпова Ф.Я. Вегетативное размножение растений с применением стимуляторов роста. М.: Наука, 1968.

164. Туровская Н.И. Выращивание посадочного материала с закрытой корневой системой // Сб. науч. тр. ВНИИ садоводства, 1986. - Т. 48. - С. 6568.

165. Тюрина М.М. Морозоустойчивость растений в состоянии вегетации и покоя: Дис. докт. биол. наук. Л., 1975. - С. 417.

166. Фаустов В.В. Регенерация и вегетативное размножение садовых растений // Известия ТСХА, 1987. Вып. 6. - С. 137-160.

167. Фаустов В.В., Аладина О.Н., Лесничева А.Н., Агафонов Н.В. Интенсивная технология размножения крыжовника зелеными черенками с применением регуляторов роста // ВДНХ, Биотехнология агропромышленному комплексу, 1989. С. 5.

168. Филатов В.Н., Сазонова Е.С., Заварзина Ю.С. Размножение различных форм туи западной для озеленения населенных пунктов // Оптимизация ландшафтов зональных и нарушенных земель / Воронеж, гос. лесотехн. акад., 2005.-С. 294-297.

169. Хазинов И.Б., Лубягина В.М., Сыроижко А.Н., Базулина Л.В., Пентелькин С.К., Пентелькина Н.В. О применении стимуляторов роста. — Лесн. хоз-во, 1997. №6. - С. 30-31.

170. Харламова C.B. Укоренение черенков можжевельника обыкновенного // Лесн. хоз-во Поволжья, 1996. Вып. 2. - С. 180-183.

171. Царькова Т.Ф. Размножение жимолости на цеолитовом субстрате // плодоводство и ягодоводство России / ВСТИСП. М., 1996. - С. 128-134.

172. Цецько 3., Харниш М. Сравнительный анализ удобрительной ценности различных видов компоста, полученного из отстоев сточных вод // Соврем.пробл.использ.почв и повышения эффективности удобрений. -Горки, 2001.-4.2.-С. 183-186.

173. Чайко В.В. Черенкование чайно-гибридных роз на различных субстратах // Труды / Кубан. гос. аграр. ун-т, 2004. — Вып. 408(436). — С. 185191.

174. Чеботарев Н.Т. Агроэкологическая оценка осадков сточных вод в качестве удобрений сельскохозяйственных культур // Бюл. ВИУА, 2002. — №116.-С. 521-524.

175. Чекаев Н.П., Лошкарев Д.А. Компостирование осадков сточных вод -один из способов обеспечения экологической безопасности их применения // Бюл. Всерос. науч.-исслед. ин-та удобрений и агропочвоведения. М., 2003. -№118.-С. 253-255.

176. Чернова С.Ю. Оптимизация условий укоренения зеленых черенков крыжовника и барбариса в пластиковых ячейках: Автореф. дис. на соиск. учен. степ. канд. с.-х. наук. М., 2008. - С. 19.

177. Чернова С.Ю., Акимова C.B., Аладина О.Н. Новые элементы в технологии получения укорененного материала крыжовника с изолированной корневой системой // Докл. ТСХА, 2007. Вып. 279, Ч. 1. - С. 548-550.

178. Шабаев Н.Е. Использование лигнина и биорганического концентрата для получения посадочного материала облепихи: материалы научн. конф., посвящ. 85-летию со дня рождения И.И. Синягина. Новосибирск, 1996. - С. 60-62.

179. Шелестов Ю.В., Юрковский И.М. Использование древесных опилок для выращивания саженцев хмеля с закрытой корневой системой // Интенсификация технологии пр-ва и хранения техн. культур на Украине. — Киев, 1988.-С. 63-65.

180. Шенгелия Н.И. Выращивание привитых саженцев грецкого ореха в оранжереях // Междунар. с.-х. журн. 2005. - №5. - С. 56-57.

181. Шубакова Н.В., Хапаева О.В. Особенности размножения черной смородины с закрытой корневой системой. // Науч.-техн. бюл. ВИР, 1991. — Т. 207. С. 34-35.

182. Шутов И.В. Новое в лесовыращивании. — М.: Лесная промышленность, 1977.-С. 199.

183. Adolph R. Pot-in-pot: from concept to reality // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators'Soc. S. 1., 2000. - Vol. 49. - P. 434-436.

184. Aguilar F.J., Gonzalez P., Revilla J., Leon J.J.de, Porcel O. Agricultural use of municipal solid waste on tree and buch crops // J. Agr. Engg Res., 1997. Vol. 67, N. 1.-P. 73-79.

185. Allen D.L., Jarrel W.M. Proton and cooper absorption to maize and soybean root cell walls // Plant Physiol., 1989. N. 89. - P. 823-832.

186. Anon L.P. Autovegetativni minozeni smrru ztepileho (Picea Abies Karst.) ve vegetachich obalech //Lesnictvi. 1984, T. 30, N 11, s. 983-992.

187. Archibold D.D., Houtz R.L. Photosynthetic characteristics of strawberry plants treated with paclobutrazol of flurprimidol // Hort. Science, 1988. N. 23. -P. 200-202.

188. Argo B. Understandint pH management and plant nutrition Part 4: Substrates. 2004. http://www.f1estravs.com/Part%24020-20substrates.pdf.

189. Arnold M.A. Timing, acclimation period, and cupric hydroxide concentration after growth responses of the Ohio production system // J.Environ.Hort., 1992.-N. 10.-P. 114-117.

190. Arnold M.A., Struve D.K. Cupric carbonate controls green ash root morphology and root growth // HortScience, 1989. Vol. 24, N. 2. - P. 262-264.

191. Arnold M.A., Struve D.K. Green ash establishment following transplant // J.Amer.Soc.Hort.Sci., 1989.-N. 114.-P. 591-595.

192. Arnold M.A., Struve D.K. Growing green ash and red oak in CUCO3-threated containers increases root generation and short growth following transplant // J.Amer.Soc.Hort.Sci., 1989. N. 114. - P. 402-406.

193. Arnold M.A., Wilkerson D.C. Putting a different spin on container production // The texas Nurseryman, 1993. Vol. 24, N. 9. - P. 54-58.

194. Artlett E., Artlett G. Propagation of Pieris japonica // Comb. Proc. /Intern. Plant Propagators' Soc, 1986. -T. 35. P. 128-129.

195. Ashokan, P.K., Chaney W.R., Premachandra G.S. Soil applied paclobutrazol affects leaf relations and growth of American elm (ulmus Americana L.) seedlings //Plant Grows Reg.Soc.Amer.Quar., 1995. -N. 23. P. 1-12.

196. Bausher M.C., Yelenosky G. Sensitivity of potted citrus plants to top sprays and soil applications of paclobutrazol // HortScience, 1986. -N. 21. P. 141-143.

197. Beeson R.C., Haydu J. Cyclic microirrigation in container-grown landscape plants improves plant growth and water conservation // J. Environ. Hort., 1995. — N.13.-P 6-11.

198. Beeson R.C., Yeager T.H. Physical and Nutritiolal Properties of Compost-Amended Container Substrates: A Preliminary Determination. — 2001.http://\vvvw.floridaforcc.irg/iinage.s/articles/Phisical%2Qand%20nutri tional.pdf.

199. Bennett A.C., E.W. Carson. Toxic effect on root growth // The plant root and its environment. University Press of Virginia, Charlottesville, Virginia, 1971. -P. 675-677.

200. Besson R.C., Newton Jc., Newton R. Shoot and root responses of eighteen southeastern woody landscape species grown in cupric hydroxide-threated containers // J.Environ.Hort., 1992. -N. 10. P. 214-217.

201. Blessing S.C., Dana M.N. Post-transplant root system expansion in Juniperus chinensis L. as influenced by production system, mechanical root disruption and soil type // J. environm. Hortic, 1987. T. 5, N. 4. - P. 155-158.

202. Brass T.J., Keever G.J., Gilliam C.H., Eakes D.J. Styrene lining and container size affects medium temperature // J.Environ.Hort., 1996. N. 14. - P. 184-186.

203. Brass T.J., Keever G.J., Gilliam C.H., Eakes D.J. Styrene-lined and copper-coated containers affect production of Comus florida // J.environm.Hortic., 1997. -Vol. 15, N. 3. P. 131-134.

204. Brophy T.F., Laing M.D., Kruger M. Tray sterilization: a preliminary trial // The leaflet, 1990. V. 4, N. 1. - P. 9-10.

205. Burch P.I., Wells R.H., Kline W.N. Red maple and silver maple growth evaluated 10 years after application of paclobutrazol tree growth regulator // J.Arboric, 1996.-N. 22.-P. 61-66.

206. Cayford J.H. Container planting systems in Canada // The Forestry Chronicle, 1972.-V. 48,N. 5.-P. 235-239.

207. Chen Y., Hadar Y., Inbar Y. The use of composted agricultural waste as peat substitute in horticulture. Processing and use of organic sludge and liquid agricultural wasted, 1986. P. 389-392.

208. Cox D.A., Keever G.J. Paclobutrazol as a growth retardant for geranium and zinnia // Research rep. ser. Alabama Agr. experiment station, 1987. — T. 5. — P. 18-19.

209. Crawford M.A. Multiple uses of spin out in the nursery and landscape // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators' Soc., 1999. Vol. 48. - P. 627-631.

210. Cullen W.J. Pot in pot: from concept to reality // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators'Soc. S. 1., 2000. - Vol. 49. - P. 437-441.

211. Davis D., Andersen A.S. Post-production growth and flowering of triazole treated Verbena rigida bedding plants // Gartenbauwissenschaft, 1989. N. 54. - P. 109-112. :

212. Davis T.D., Sankhla N., Walser R.H., Upadhyaya A. Promotion of adventitious root formation on cuttings by paclobutrazol // HortScience, 1985. N. 20.-P. 883-884.

213. Duncan W.G., Ohlrogge A.J. Principles of nutrient uptake from fertilizer bands. II. Root development in the band // Agron. J., 1958. N. 50. - P. 605-608.

214. Early J.D. Jr., Martin G.C. Sensitivity of peach seedling vegetative growth to paclobutrazol // J. Amer. Soc. Hort. Sci., 1988. -N. 113. P. 23-27.

215. Ellyard R., Ollerenshaw P., Hadobas H. Growool as a cutting medium for Australian native plants // Austral. Hortic, 1985. T. 83, N 7. - P. 26-27.

216. Fain G.B., Tilt K.M, Gilliam C.H., Ponder H.G., Sibley J.I. Effects of cyclic micro-irrigation and substrate in pot-in-pot production // J.environm.Hortic, 1998. -Vol. 16, N. 4.-P. 215-218.

217. Fare D.C., Gilliam C.H., Cobb G.S. Pruning effects on ornamentals // Research rep. ser. Alabama Agr. experiment station, 1987. - T. 5. - P. 11-12.

218. Fare D.C., Gilliam C.H., Keever G.J., Reed R.B. Cyclic irrigation and media affect container leachate and ageratum growth // J. Environ. Hort., 1996. -N. 14. — P. 17-21.

219. Fidler A.R. Pot-in-pot system: a container-grown-in-the ground approach for diverse crops // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators'Soc. S. 1., 2000. - Vol. 49. - P. 297-299.

220. Firoz Z.A., Chowdhury A.K., Hoque A.F.M.E., Hossain A.K.M.A. Effect of different growth media and parts of shoot on the success of pear cuttings // Bangladesh J. agr. Res., 1994. Vol. 19, N. 2. - P. 221-224.

221. Fretz T.A. Influence of physical conditions on summer temperatures in nursery containers // HortScience, 1971. -N. 6. P. 400-401.

222. Furuta T., Humphrey W.C., Mock T. Chemically controlling root growth in containers // California Agriculture, December 1972.

223. Halter M.R., Chanway C.P., Harper G.J. Growth reduction and root deformation of containerized lodgepole pine saplings 11 years after planting // Forest Ecol. And Management, 1993.-Vol. 56, N. 1-4.-P. 131-146.

224. Harris R.W. Factors influencing root development of container-grown trees // Proc. Intl. Shade Tree Conf., 1967. -N. 43. P. 304-314.

225. Havis J.R. Root hardiness of woody ornamentals // HortScience, 1976. — N. 11.-P. 385-386.

226. Haydu J.J., Beeson R.C. Economic feasibility of microirrigating container grown landscapeplants. // J. Environ. Hort., 1997. — N. 15. — P. 23-29.

227. Hemberg T. The occurrence of acid inhibitors in resting terminal buds of fraxinus // Physiol plantarum, 1958. Vol. 11, N. 3.

228. Hentig W.-U.v., Gruber G. Vermehrungssystem "Cultoplant" bei Zierpflanzen: Stecklingsgrosse und Substrat entscheidende Faktoren // Dt. Gartenbau, 1987. T. 13. - S. 774-778.

229. Hoag T., Schmidt D. The propagation of rose stem cuttings in three propagation media // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators' Soc. S. 1., 1996. — Vol. 45.-P. 546-549.

230. Hoogendoorn D.P. Propagating Acer griseum from cuttings // Comb. Proc. /Intern. Plant Propagators' Soc, 1985. T. 34 . - P. 570-573.

231. Horowitz M. Comparison of paclobutrazol and uniconizole applied as a foliar spray and soil drench // Meded. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 1990. — T. 55, N. 3b.-P. 1241-1248.

232. Hubackova M. The grapevine buds cold hardiness in juvenile plants // Ochr.Rostl, 1994. R. 30, C. 4. - S. 305-309.

233. Ingram D.L., Johnson C.R. Influence of orientation, spacing and placement patterns of production container on "Formosa" azalea growth // Proc.Southern Nurserymen's Assoc. Res. Conf., 1981. -N. 26. P. 20-21.

234. Ingram D.L., Martin C.A., Ruter J.M. Effect of heat stress on container-grown plants // Proc.Intern. Plant Prop. Soc., 1989. N. 39. - P. 348-353.

235. Janshen L. Calluna vulgaris eine sehr dynamische Kultur // Gartnerborse Gartenwelt, 1985. - T. 85, N. 29. - S. 1108-1109.

236. Jenks M.A., Andersen L., Teusink R.S., Williams M.H. Leaf cuticular waxes of potted rose cultivars as affected by plant development, drought and paclobutrazol treatments // Physiol.Plantarum, 2001. Vol. 112, Iss. 1. - P. 62-70.

237. Johnson C.R., Ingram D.L. Pittosporum tobira response to container medium temperature // HortScience, 1984. -N. 19. P. 524-525.

238. Karam N.S., Niemiera A.X., Leda C.E. Cyclic sprinkler irrigation of container substrates affects water distribution and marigold growth // J. Environ. Hort., 1994.-N. 12.-P. 208-211.

239. Keever G.J., Cox D.A. Growth inhibition in marigold following drench and foliar-applied paclobutrazol // Hort. Science, 1989. N. 24. - P. 390.

240. Knowles R. Containing the problems of intensive systems // Grower, 1988. -T. 109, N. 18.-P. 25-26, 28.

241. Kramer H.I. Plant end soil water relationships // Mc. Craw-Hill Book Co N. Y., 1949.

242. Landis T.D., Tinus R.W., McDonald S.E., Barnett J.P. Containers and growing media // The container tree nursery manual Agric. Handbk. 674. Washington, D.C: U.S. Department of Agriculture, Forest Service. 1990. - Vol. 2.

243. Laporte G., Arnold N. Multiplication du rosier par boutures de rameaux feuilles // Quebec vert, 1988. T. 10, N. 10. - P. 50-52.

244. Leatherman M. The use of cooper resinate as a treatment for paper pots // Proc. Amer. Soc. Hort. Sci., 1939. -N. 37. P. 951-955.

245. LeCain D.R., Schekel K.A., Wample R.L. Growth retarding effects of paclobutrazol on weeping fig // Hort. Science, 1986. N. 21. - P. 1150-1152.

246. Liu K., Host B.C., Elrod M.J., Rzepiela J.A., Pugliano N., Loeser J.G., Saykally R.J. Far-IR laser vibration-rotation-tunneling spectroscopy of water clusters // Journal of chemical physics, 1993. Vol. 98, N. 9.

247. Liyembani S., Taylor B.H. Growth and development of young peach trees as influenced by foliar sprays of paclobutrazol or XE-1019 // HortScience, 1989. — N. 24.-P. 65-68.

248. Lohr V.I. Spent mushroom compost in soilless media and its effects on the yield and quality of transplants // J. Am. Soc. Hortic. Sc., 1984. T.109, N. 5. - P. 693-697.

249. Looney N.E., McKellar J.E. Effect of foliar- and soil surface-applied paclobutrazol on vegetative growth and fruit quality of sweet cherries // J. Amer. Soc. Hort. Sci., 1987.-N. 112.-P. 71-76.

250. Martin C.A. Container dimension affects rooting medium temperature patterns //HortScience, 1993. Vol. 28. - P. 18-19.

251. Martin C.A., McDowell L.B., Bhattacharya S. Below ground pot-in-pot effects on growth of two southwest landscape trees was related to root membrane thermostability // J.environm.Hortic., 1999. Vol. 17, N. 2. - P. 63-68.

252. Maunder C. A comparison of propagation unit systems. Comb. Proc./ Inten. Plant Propagators/ Soc, 1984; T 33, p. 233-238.

253. McDaniel G.L. Comparison of paclobutrazol, flurprimidol, and tetcyclasis for controlling poinsettia height // Hort. Science, 1986. N. 21. - P. 1161-1163.

254. McDonald S.E., Tinus R.W., Reid C.P.P. Modification of ponderosa pine root systems in containers // J. Environ. Hort., 1984. — Vol. 2, N. 1. — P. 1-5.

255. McNiel R.E. Pot-in-pot production of nursery stock // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators' Soc. S. 1., 1998. - Vol. 47. - P. 637-638.

256. Miller S.S. Growth and branching of apple seedlings as influenced by pressure-injected plant growth regulators // HortScience, 1982. N. 17. - P. 775776.

257. Nawrocka-Grzeikowiak U. Influence of coir on the rooting of Calluna vulgaris L. cuttings // Postep w produkcji roslin ozdobnych Cz. 1 Cz. 1, 2005. -Cz. 2. P. 479-486.

258. Nelson W.R. Measuring cooper root-pruning effect // Comb.Proc./Intein.Plant Propagators'Soc., 2000. Vol. 49. - P. 119-123.

259. Nelson W.R. Root pruning can influence first order lateral root development of containerized plants // Comp.Proc./Intern.Plant Propagators'Soc., 2000. Vol. 49.-P. 96-103.

260. Newman S.E., Davies F.T. High root-zone temperatures, mycorrhizal fungi, water relations, and root hydraulic conductivity of container-grown woody plants // J.Amer.Soc.Hort.Sci., 1988.-N. 113.-P. 138-146.

261. Nussbaum J.J. Chemical pinching for roots of container plants // Calif. Agric., 1969.-Vol. 23, N. 10.-P. 16-18.

262. Owen J.S., Warren S.L., Bilderbarck T.E. Amending Pine Bark Substrate with Clay to Increase Nutrient and Water efficiency. 1992.http://w\v\v.ncan.com/nursei">'%20nolcs20articlcs%202003/novdcc/clav.pdf.

263. Pandya G.A., Sachidanad S., Modi V.V. Potential of recycling gamma-irradiated sewage sludge for use as a fertilizer: A study on chickpea (Cicer arietinum)//Environm. Pollut, 1989. T. 56,N. 2. -P. 101-111.

264. Pardos M., Pardos J.A., Montero G. Growth responses of chemically root-pruned cork oak seedlings in the nursery // J. Environm. Hortic., 2001. V. 19, N. 2.-P. 69-72.

265. Passian C.C. Paint/paclobutrazol mix on the inside surface of rooting wedge cells to control poinsettia cutting height // Spec.circular/Ohio agr.research and development center. Wooster(Ohio), 1998.-N. 157.-P. 109-112.

266. Passian C.C., Struve D.K. Paclobutrazol/Paint Mix on the Inside Surface of Plug Cells to Control Plug Height // Ohio Agricultural Research and Development Center. Special Circular 154, 1996. P. 66-69.

267. Passian C.C., Struve D.K. Painted containers: a new method for paclobutrazol application // HortScience, 1996. Vol. 21, N. 4. - P. 655.

268. Passian C.C., Struve D.K. Response of poinsettias to paclobutrazol in paint applications // Spec.circular/Ohio agr.research and development center. Wooster(Ohio), 1998.-N. 157.-P. 113.

269. Pellett H., Litzov M., Mainquist L. Use of metal compounds as root pruning agents // HortScience, 1980. Vol. 15, N. 3. - P. 308-309.

270. Pomper K.W., Layne D.R., Jones S.C. Incident irradiance and cupric hydroxide container treatment effects on early growth and development of container-grown pawpaw seedlings // J.Am.Soc.Hortic.Sc., 2002. Vol. 127, N. 1. -P. 13-19.

271. Preece J.E. Basics of propagation by cuttings temperature // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators' Soc. - S.I., 1994; Vol.43. - P. 441-444.

272. Privett D.W., Hummel R.J. Root and shoot growth of "Coral Beauty" Cotoneaster and Leyland Cypress in porous and noporous containers // J. Enriron. Hort., 1992. Vol. 10, -N. 3. - P. 133-136.

273. Reed A.N., Curry E.A., Williams M.W. Translocation of triazole growth retardants in plant tissues // J. Amer. Soc. Hort. Sci., 1989. N. 114. - P. 893-898.

274. Regan R.P., Landis T.D., Green J.L. The potential for chemical root pruning in containers nurseries // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators' Soc,, 1994. Vol. 43.-P. 208-212.

275. Rieger M., Scalabrelli G. Paclobutrazol, root growth, hydraulic conductivity and nutrient uptake of "Nemaguard" peach // HortScience, 1990. N. 25. - P. 9598.

276. Rizzitelli S., Vernieri P., Malorgio F., Serra G., Tognoni F. Paclobutrazolo e pinolene contro lo stress idrico in arbusti ornamentali // Colt.prot., 2000. — An. 29, N. 10.-P. 81-89.

277. Ruter J.M. Fertilizer rate and pot-in-pot production increase growth of Heritage river birch // J.environm.Hortic., 1998. Vol. 16, N. 3. - P. 135-138.

278. Ruter J.M. Growth and landscape establishment of Pyracantha and Juniperus after application of paclobutrazol // HortScience, 1994. N. 29. - P. 1318-1320.

279. Ruter J.M. Growth and landscape performance of tree landscape plants produced in conventional and pot-in-pot production systems // j. Environ. Hort., 1993.-N. 11.-P. 124-127.

280. Ruter J.M. Growth of three species produced in a pot-in-pot production system // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators' Soc. S. 1., 1994. - Vol. 43. - P. 418-420.

281. Ruter J.M. Growth responses of four vigorous-rooted tree species in cupric hydroxide-treated containers // HortScience, 1994. N. 29. - P. 1089.

282. Ruter J.M. Pot-in-pot production and cyclic irrigation influence growth and irrigation efficiency of "Okame" cherries // J.environm.Hortic., 1998. Vol. 16, N. 3.-P. 159-162.

283. Ruter J.M., Martin C.A. Effects of contrasting climate and paclobutrazol on the growth and water use of two container-grown landscape plants // J.Environ.Hort., 1994. -N. 12. P. 27-32.

284. Sanchez L.E., Prieto F., Becerra M. Control of vegetative growth of stone fruits with paclobutrazol // Hort. Science, 1988. -N. 23. P. 467-470.

285. Sani P., Magherini R. Influenza dell"epoca di prelievo delle talee legnose e dei fitoregolatori sulla radicazione de vitis vinifera L. // Informatore Agrario, 1985. -T. 41, N. 12.-P. 83-86.

286. Saul G.H. Copper safely controls roots of tubed seedlings // Tree planters Notes (USDA), 1968. -N. 19. P. 7-9.

287. Schacher G., Matschke J., Kohlstock N. Zum Stand der autovegetativen Vermehrung in der DDR // Soz. Forstwirtsch, 1986. T. 36, N. 7. - S. 215-218.

288. Scott R. Propagation of Camellia japonica using horticultural rockwool // Comb. Proc. / Intern. Plant Propagators' Soc, 1985. T. 34 . - P. 48-50.

289. Single W.Y. Frost injury and the physiology of the wheat plant. Farrer memorial oration, 1984 // J. Austral. Inst. Agr. Sc, 1985. T. 51, N. 2. - P. 128134.

290. Smale P.E. Progress with green tea and cultivated sphagnum moss production // Comb.Proc./Intern.Plant Propagators' Soc. -S.I., 1998. Vol. 47. - P. 163-165.

291. Stinson R.F. Agral growth and the performance of flowering plants in clay pots treated with cooper naphthenate // Proc. Amer. Soc. Hort. Sei., 1956. N. 68. -P. 564-568.

292. Struve D.K. Effect of cooper-treated containers on transplant survival and regrowth of four tree species // J.Environ.Hort., 1993. N. 11. - P. 196-199.

293. Swane B. Preparation and development of Australian native plants for propagation // Comb. Proc. /Intern. Plant Propagators' Soc, 1985. T. 34. - P. 577-582.

294. Swietlic D., Miller S.S. The effect of paclobutrazol on growth and response to water stress of apple seedlings // J.Amer.Soc.Hort.Sci., 1983. N. 108. - P. 1076-1080.

295. Tahvonen R. The disease suppressiveness of light-coloured sphagnum peat and biocontrol of plant diseases with streptomyces sp. // International Symposium on Horticultural Substrates other than Soil in situ, 1982.

296. Tayama H.K., Caver, S.A. Zonal Geranium growth and flowering responses to six growth regulators // HortScience, 1990. N. 25. - P. 82-83.

297. Tompa K. A vegetativ szaporitasrol // Erdo, 1988. T. 37, N. 9. - P. 410412.

298. Tyler H.H. Irrigation and fertilizer management in containerized horticultural crop production. Ph. D. Dissertation. North Carolina State University, Raleigh, NC, 1995.

299. Tyler H.H., Warren S.L., Bilderback T.E. Cyclic irrigation increases irrigation application efficiency and decreases ammonium looses // J. Environ. Hort., 1996.-N. 14.-P. 194-198.

300. Van de Werken H. Nursery container design for improved root environments //J. environm. Hortic, 1987. T. 5, N. 3. - P. 146-148.

301. Van Steenis E. Growing in cooper treated containers requires greater awareness // BC Silviculture, 1994. Vol. 7, N. 2. - P. 4-5.

302. Verdonck O. New developments in the use of graded perlite in horticultural substrates // Acta hortic. Wageningen, 1984. T. 150. - P. 575-581.

303. Wang S.Y., Faust M. Effect of growth retardants on root formation and polyamine content in apple seedlings // J.Amer.Soc.Hort.Sci., 1986. N. 111. - P. 912-917.

304. Watson G.W. Soil applied paclobutrazol affects root growth, shoot growth, and water potential of American elm seedlings // J.environm.Hortic., 2001. Vol. 19,N. 3.-P. 119-122.

305. Wenny D.L., Liu Y, Dumrose R.K., Osborne H.L. First year field growth of chemically root pruned containerized seedlings // New Forests, 1988. — N. 2. — P. 111-118.

306. Wieland W.F., Wample R.L. Root growth, water relations and mineral uptake of young 'Delicious' apple trees treated with soil- and stem-applied paclobutrazol // Scientia Hortic., 1985. N. 26. - P. 129-137.

307. Wilkinson, R.L and Richards, D. Effects of paclobutrazol on growth and flowering of Bouvardia humboldtii // HortScience, 1987. N. 22. - P. 444-445.

308. Williamson J.G., Coston D.C., Grimes L.W. Growth responses of peach roots and shoots to soil and foliar-applied paclobutrazol // HortScience, 1986. T. 21, N. 4. - P. 1001-1003.

309. Wilson P.J. Containers for tree nurseries in developing countries // Commonwealth Forestry Review, 1986. Vol. 65. - P. 233-240.

310. Wojciechowska M. Uprawa leszvzyny // Halso ogrodnicze, 2004. N. 6. -P. 71-77.

311. Wong T.L., Harris R.W., Fersell R.E. Influence of high soil temperatures on five woody-plant species // J. Amer. Soc. Hort. Sci., 1971. N. 96. - P. 80-82.

312. Yin-Tung Wang and Gregg, L.L. Uniconazole affects vegetation, growth, flowering and stem anatomy of Hibiscus // J.Amer.Soc.Hort.Sci., 1989. N. 114. -P. 927-932.

313. Young R.E., Bachman G.R. Temperature distribution in large pot-in-pot nursery containers // J. Environ. Hort., 1996. N. 14. - P. 170-176.

314. Zinovieva S.V., Ozeretskovskaya O.L., Illinskaya L.L // Russian J. Nematology, 1995.-V. 3, N. l.-P. 65-67.

Информация о работе

Полянская, Анна Евгеньевна
кандидата сельскохозяйственных наук
Москва, 2009
ВАК 06.01.07

Диссертация

Особенности выращивания саженцев ягодных культур из укорененных черенков с закрытой корневой системой - тема диссертации по сельскому хозяйству, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы