Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Некристаллические магнитные включения у бактерий
ВАК РФ 03.00.07, Микробиология
Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Арискина, Елена Викторовна
Введение
Обзор литературы
Глава 1. Магнитные свойства микроорганизмов.
1.1. Физико-химическая основа биомагнетизма.
1.2. Магнитная восприимчивость микроорганизмов.
1.2.1. Внеклеточные магнитоупорядоченные соединения.
1.2.2.Внутриклеточные соединения железа.
Глава 2. Реагирующие на магнит структуры в клетках бактерий.
2.1. Кристаллические магнитосомы в клетках магнитотактных бактерий.
2.1.1. Физиолого-морфологическая характеристика магнитотактных бактерий.
2.1.2. Магнитосомы.
2.1.3. Магнитотаксис.
2.1.4. Систематика магнитотактных бактерий.
2.1.5. Экология магнитотактных бактерий.
2.1.6. Перспективы применения бактериального магнетита.
2.2. Некристаллические магнитные включения у бактерий. 35 Экспериментальная часть
Материалы и методы.
1. Объекты исследований.
2. Среды и условия культивирования.
3. Обнаружение движения к магниту.
4. Световая микроскопия.
5. Электронная микроскопия.
6. Определение количества железа в клетках.
7. Определение количества белка и веса сухих клеток.
8. Выделение магнитных включений.
9. Спектрохимический рентгеновский анализ изолированных магнитных вклю- 46 чений.
10. Определение влияния магнитного поля на бактерий. 47 Результаты
Глава 1. Образование железосодержащих некристаллических магнитных вюпочений у бактерий различных физиологических и таксономических групп.
Глава 2. Изучение организации и внутриклеточной локализации железосодержащих магнитных включений у различных бактерий.
Глава 3. Количество железа в клетке в нормальных условиях и при образовании 71 магнитных включений. Элементный состав реагирующих на магнит структур.
Глава 4. Магнитные включения с кобальтом и хромом.
Глава 5. Влияние магнитного поля на бактерий с высоким содержанием магнит- 79 ных включений.
Обсуждение
Введение Диссертация по биологии, на тему "Некристаллические магнитные включения у бактерий"
Предполагается, что геомагнитное поле существовало еще до возникновения жизни на Земле, следовательно, вся органическая эволюция происходила в присутствии геомагнитного поля и под его непосредственным влиянием (Скайлс, 1989).
Реакция живых организмов на воздействие магнитных полей давно привлекает внимание исследователей. Однако только в последние тридцать лет было убедительно доказано, что у различных организмов - от бактерий до позвоночных - выявляются поведенческие реакции на изменение геомагнитного поля или искусственных магнитных полей, сравнимых с ним по величине. Имеющиеся данные свидетельствуют о том, что геомагнитное поле воспринимается этими организмами и является существенным компонентом их среды обитания (Скайлс, 1989).
Известна способность насекомых, рыб, птиц и дельфинов ориентироваться по магнитному полю Земли. Считается, что за магнитную чувствительность у животных отвечает часть головного мозга, известная как подкорковый центр зрения (Superior Colliculus) (Nemec et al., 2001), а рецепторами являются не объединенные в специальный орган клетки, содержащие включения ферримагнитных минеральных частиц магнетита в однодо-менном либо суперпарамагнитном состоянии (Diebel et al., 2000; Gould et al, 1978; Lowenstam, 1981; Shcherbakov, Winklhofer, 1999; Slowik, Thorvilson 1996; Wallcott et al., 1979; Zoeger et al., 1981). Включения частиц магнетита обнаружены также в головном мозге и коре надпочечников человека (Dunn et al., 1995; Kirschwink et al., 1992).
Кроме того, показана способность отдельных клеток, в частности, эритроцитов, к ориентации в сильном постоянном магнитном поле (Higashi et al., 1993; 1995).
Доказано также существенное влияние геомагнитного поля на бактерий, которые получили название магнитотактных. Они представлены гетерогенной и широко распространенной в природе группой микроорганизмов, которые синтезируют внутри клеток, в так называемых магнитосомах, кристаллы магнетита или/и грейгита и обладают способностью к магнитотаксису (Blakemore, 1975; Frankel, 1982).
В естественных условиях большие популяции магнитотактных бактерий обнаруживаются вблизи границы аэробной и анаэробной зон, которая обычно располагается на разделе вода - осадки в пресных водоемах или смещается выше в морях и океанах (Bazylinski, Frankel, 1992; Stolz, 1992). Магнитотактные бактерии накапливают в клетках до 4% железа и играют важную роль в круговороте этого элемента (Mann, 1993; Stolz, 1993).
Относительно влияния геомагнитного поля на другие микроорганизмы, не синтезирующие внутриклеточные кристаллы ферримагнитных минералов, мнения расходятся принципиально: от отрицания его влияния на развитие микроорганизмов (Громов, Павленко, 1989) до признания основным регулятором возникновения эпидемий (Чижевский, 1976; Ягодинский и др., 1971) и даже главным фактором эволюции микробов (Черноще-ков, Лепехин, 1993).
В 1997 году были описаны особые структуры, названные некристаллическими магнитными включениями, которые принципиально отличаются по составу и структуре от магнитосом и обеспечивают движение клеток в магнитном поле. Данные структуры, обнаруженные первоначально у пурпурных фотосинтезирующих бактерий, затем были найдены у самых различных микроорганизмов, представителей как бактерий, так и архей, в том числе у патогенных видов (Вайнштейн и др., 1997; Vainshtein et al., 1997).
Представляется актуальным изучение распространения некристаллических реагирующих на магнит (магнитных) структур среди бактерий различных физиологических и таксономических групп, определение условий формирования указанных включений, исследование их строения, состава и возможной роли, а также влияния искусственных магнитных полей на клетки бактерий, содержащих некристаллические магнитные включения.
Цель и задачи исследования.
Целью данной работы явилось изучение образования реагирующих на магнит включений у различных микроорганизмов: исследование их структуры, локализации внутри клетки, элементного состава, а также возможного влияния искусственного магнитного поля на бактерий.
В соответствии с целью работы были поставлены следующие задачи:
1. Определение условий, обеспечивающих формирование реагирующих на магнит структур бактериями различных таксономических и физиологических групп.
2. Изучение внутриклеточной локализации и организации реагирующих на магнит структур.
3. Проверка возможности формирования реагирующих на магнит включений при замене железа в среде на иные ферромагнетики - кобальт и хром.
4. Выделение и изучение реагирующих на магнит структур, содержащих железо, кобальт и хром.
5. Изучение влияния искусственного магнитного поля на бактерий с высоким содержанием указанных структур.
Научная новизна.
Показано, что микроорганизмы различных таксономических и физиологических групп способны формировать некристаллические реагирующие на магнит структуры в микроаэробных и аэробных условиях при наличии в среде источника железа. Обнаружена способность бактерий с указанными структурами к пассивному перемещению в искусственном магнитном поле.
Впервые показана способность молочнокислых бактерий к формированию магнитных структур. Полученные данные имеют принципиальное значение, так как бактерии этой группы не нуждаются в железе и не имеют специализированных систем его транспорта в клетку (Archibald, 1983; Neilands, 1974).
Описана внутриклеточная локализация и организация реагирующих на магнит структур у бактерий разных таксономических и физиологических групп. Впервые обнаружено, что при росте на средах с кобальтом или хромом бактерии образуют внутриклеточные магнитные структуры, аналогичные железосодержащим, при этом клетки также приобретают способность к перемещению под действием магнитного поля. Показано присутствие в магнитных частицах соответствующего металла при отсутствии фосфора и серы.
Обнаружено, что под воздействием искусственных магнитных полей (напряженностью 1.5 мТ (миллитеслы) и 2 Т) у бактерий с магнитными включениями происходит ряд цитологических изменений, приводящих к лизису клеток. В клетках, не содержащих магнитные включения, аналогичные воздействия не вызывают диагностируемых изменений.
Практическое значение работы.
Впервые получена детальная информация о форме, размерах, структуре и локализации некристаллических магнитных включений в клетках бактерий различных таксономических и физиологических групп. Эти сведения могут найти применение при исследовании роли бактерий в трансформации металлов, т.к. показывают аккумуляцию металлов в клетках и способность клеток притягиваться к магнитным материалам. Определены условия, провоцирующие накопление магнитных частиц. Полученные результаты могут найти применение для массовой продукции магнитных нанночастиц с целью их последующего использования в различных технологиях (магнитной жидкости-суспензии, магнитных микродисперсных покрытиях, в качестве носителей для мобилизации активных веществ в медицине).
Опубликованные данные применяются для диагностики окаменелых бактерий в палеонтологии и астробиологии (Hoover et al., 1998; Hoover, Rozanov, 2001; Klyce, 1998).
В качестве базиса для научных и биотехнологических работ создана коллекция культур бактерий, формирующих магнитные включения.
Апробация работы.
Результаты, полученные при выполнении данной работы, были доложены на международной SPIE конференции "Instruments, Methods, and Missions for Astrobiology" в Сан-Диего в 1998 г., представлены на совещании «Фундаментальные аспекты микробиологии» в Саратове в 2000 г., а также на семинарах Института биохимии и физиологии микроорганизмов РАН в 1998-2001 гг.
Публикации.
Основные материалы диссертации представлены в шести публикациях, в том числе в четырех статьях.
Благодарности.
Автор выражает искреннюю благодарность своему научному руководителю, д.б.н. М.Б Вайнштейну за поддержку и помощь в организации исследований, а также за постоянное и доброжелательное внимание к работе; коллегам, принимавшим участие в проведенных работах: к.б.н. Е.Б. Кудряшовой, В.В. Сорокину, Е.В. Кашпаровой и ныне покойному к.б.н. B.C. Герасимову. Особую признательность автор выражает к.б.н. Н.Е. Сузиной за неоценимую помощь в подготовке и проведении электронно - микроскопических исследований и обсуждении результатов. Автор благодарит руководителя Всероссийской коллекции микроорганизмов ИБФМ РАН, чл.-корр. JI.B. Калакуцкого, за активное и доброжелательное участие в обсуждении полученных материалов; д.б.н. В.И. Дуду и д.б.н. Ю.А. Троценко за внимательное прочтение текста диссертации и высказанные ценные замечания.
ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
Заключение Диссертация по теме "Микробиология", Арискина, Елена Викторовна
выводы
1. Впервые показано, что представители трех филогенетических групп, 6 классов, 12 семейств, 13 родов и 18 видов бактерий, вне зависимости от физиологических особенностей культур, способны образовывать реагирующие на магнит некристаллические включения. Определены условия, обеспечивающие формирование указанных структур.
2. Впервые описаны характерные для исследованных представителей разных групп бактерий типы локализации включений - линейная (вдоль центральной оси клетки) и нелинейная (под цитоплазматической мембраной и/или по всей цитоплазме). Обнаружено, что организация некристаллических магнитных структур одинакова у всех изученных культур.
3. Впервые показано, что при замене железа в среде на иные ферромагнетики (кобальт и хром) в клетках формируются реагирующие на магнит включения, по структуре аналогичные железосодержащим. Внутриклеточная локализация магнитных включений с разными ферромагнетиками может различаться.
4. Из клеток бактерий выделены фракции некристаллических магнитных частиц, содержащих железо, кобальт и хром. Показано, что организация всех включений с ферромагнетиками одинакова.
5. Впервые обнаружено, что под воздействием сильных (2 Т) и слабых (1,5 мТ) постоянных магнитных полей, а также электромагнитного поля в клетках, содержащих магнитные структуры, происходит ряд изменений, в том числе приводящих к лизису.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Бактерии многих таксономических и физиологических групп при культивировании в питательных средах с дополнительным внесением соединений железа, кобальта или хрома формируют однотипные по строению и реагирующие на магнит включения, которые состоят из электронно-плотного матрикса, обогащенного соответствующим ферромагнитным металлом, электронно-прозрачной центральной части и окружены однослойной гелеобразной оболочкой. В зависимости от вида и условий выращивания, эти включения располагаются в клетках линейно (вдоль центральной оси клетки) и / или нелинейно (пристеночно либо по всей цитоплазме). По строению описываемые включения отличаются от всех известных в бактериальных клетках структур, содержащих железо (или иные металлы).
Бактерии, содержащие магнитные включения, приобретают способность притягиваться к магниту. Под влиянием магнитных полей в клетках происходит ряд изменений. Приложение слабого магнита (1,5 мТ) вызывает «вытягивание» из клеток всех магнитных включений. Под воздействием сильного магнитного поля (2 Т) происходит исход мелких включений из клеток, слияние оставшихся мелких включений в крупные и выход последних через клеточную стенку с нарушением ее целостности. В обоих случаях приложение магнитного поля приводит к лизизу части клеток. Магнитные поля не вызывают видимых цитологических изменений у бактерий, не содержащих магнитных включений.
Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Арискина, Елена Викторовна, Пущино
1. Вайнштейн М.Б. Экологические аспекты бактериального восстановления сульфатов // Дисс.докт.биол.наук. Пущино. 2000.182 С.
2. Вайнштейн М.Б., Никитина М.Г. Питательные среды // ИБФМ РАН. ВКМ. Каталог культур микроорганизмов / Под ред. Калакуцкого Л.В., Фатеевой М.В. Пущино-Москва. ВИНИТИ. 1992. С.230-248.
3. Верховцева Н.В. Трансформация соединений железа гетеротрофными бактериями // Автореферат дисс. докт. биол. наук. Москва. 1993.
4. Верховцева Н.В. Трансформация соединений железа гетеротрофными бактериями // Микробиология. 1995. Т.64. N4. С.473-478.
5. Верховцева Н.В., Глебова И.К. Особенности накопления железа бактериями по данн-ным магнитных измерений // Биофизика. 1993. Т.ЗЗ. N1. С.150-153.
6. Верховцева Н.В., Бабанин В.Ф., Шипилин A.M. Изучение с помощью мессбауэровской спектроскопии и магнитных измерений превращения высокодисперсных гидроксидов железа под действием Azotobacter vinelandii II Биофизика. 1991. Т.36. N4. С.607-613.
7. Верховцева Н.В., Борисов С.А., Шпилькина И.В. Взаимодействие флюоресцирующих псевдомонад с Ре(Ш)-соединениями // Микробиология. 1992. Т.61. N6. С.800-807.
8. Верховцева Н.В., Глебова И.Н., Морозов В.В. Накопление железа Seliberia stellata при различных условиях культивирования // Микробиология. 1988. Т.57. N1. С.26-29.
9. Верховцева Н.В., Филина Н.Ю., Бабанин В.Ф., Пухов Д.Э. Биогенез магнитоупорядо-ченных соединений железа в культуре Aquaspirillum sp. //Биофизика. 1999. Т.44. N6. С.1054-1058.
10. Гирард Б., Снелл Э. Биохимические факторы // Методы общей бактериологии / Под ред. Герхардта Ф. М.: Мир. 1983. Т. 1. С.198-266.
11. Громов Б.В., Павленко Г.В. Экология бактерий // Л.: Изд. ЛГУ. 1989. С. 29-30.
12. Заварзин Г.А. Становление биосферы // Микробиология. 1997. Т.66. N.6. С.725-734.
13. Заварзина Д.Г. Биогеохимические факторы преобразования соединений железа в восстановительной обстановке // Автореферат дисс. канд. геолого-минералогич. наук. Москва. 2001.
14. Кох А. Измерение роста // Методы общей бактериологии / Под ред. Герхардта Ф. М.: Мир. 1983. Т. 1. С.442-511.
15. Ловенстам Х.А., Киршвинк Д.Л. Биоминерализация железа: геобиологический подход // Биогенный магнетит и магниторецепция. Новое о биомагнетизме / Под ред. Киршвинк Д., Джонс Д., Мак-Фадден Б. М.: Мир. 1989. T.l. С.15-31.
16. Манн С. Структура, морфология и рост кристаллов бактериального магнетита // Биогенный магнетит и магниторецепция. Новое о биомагнетизме / Под ред. Киршвинк Д., Джонс Д., Мак-Фадден Б. М.: Мир. 1989. Т.2. С.58-86.
17. Миркин Л.И. Справочник по рентгеноструктурному анализу поликристаллов // М.: . 1961.
18. Окороков JI.А. Полимерные ортофоефаты металлов и их роль в регуляции биохимических процессов // Проблемы регуляции веществ у микроорганизмов. Пущино. 1973. С.217-230.
19. Окороков Л.А., Холоденко В.П., Кулаев И.С. Полимерный ортофосфат железа у акти-номицетов // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1973. N 5. С.748-751.
20. Павлович С.А. Магниточувствительность и магнитовосприимчивость микроорганизмов // Минск: Беларусь. 1981.172 с.
21. Павлович С.А. Магнитная восприимчивость организмов // Минск: Наука и техника. 1985. 109 с.
22. Павлович Н.В., Павлович С.А., Гашшулин Ю.И. Биомагнитные ритмы // Минск: "Университетское". 1991.136 с.
23. Скайлс Д.Д. Геомагнитное поле, его природа, история и значение для биологии // Биогенный магнетит и магниторецепция. Новое о биомагнетизме / Под ред. Киршвинк Д., Джонс Д., Мак-Фадцен Б. М.: Мир. 1989. T.l. С.64-144.
24. Уокер М.М., Киршвинк Д.Л., Дайзон Э.Э Магниторецепция и биоминерализация магнетита у рыб // Биогенный магнетит и магниторецепция. Новое о биомагнетизме / Под ред. Киршвинк Д., Джонс Д., Мак-Фадден Б. М.: Мир. 1989. Т.2. С.188-214.
25. Филина Н.Ю. Биология и экология бактерий, образующих магнитоупорядоченные соединения железа // Автореф. дисс. канд.биол.наук. Москва. 1998.
26. Фихте Б.А., Заичкин Э.И., Ратнер Е.Н. Новые методы физического препарирования биологических объектов для электронной микроскопии. // М.: Наука. 1973.148с.
27. Чернощеков К.А., Лепехин А.В. Материализация идей А.Л.Чижевского в эпидемиологии и микробиологии // Томск. Сибирский медицинский университет. 1993.273 с.
28. Чижевский А.Л. Земное эхо солнечных бурь // М.: Мысль. 1976.112 с.
29. Чухров Ф.В., Ермилова Л.П., Звягин Б.Б., Горшков А.И. Общие данные о ферригидри-те // Гипергенные окислы железа / Под ред. Петровской Н.В. М.: Наука. 1975. С.33-41.
30. Шнайтман К. Получение клеточных фракций // Методы общей бактериологии / Под ред. Герхардта Ф. М.: Мир. 1983. Т. 1. С.138-162.
31. Эберт Г. Краткий справочник по физике // М.: Государственное издательство физико-математической литературы. 1963. С.419-474.
32. Яворский Б.М., Детлаф А.А. Магнитное поле в веществе // Справочник по физике. М.: Наука. 1985. С.223-236.
33. Ягодинский В.Н., Коноваленко З.П., Дружинин И.П. О зависимости эпидемического процесса от солнечной активности // Влияние солнечной активности на атмосферу и биосферу Земли / Под ред. Гневышев М.Н., Оль А.И. М.: Наука. 1971.С.81-97.
34. Amann R.I., Krumholz L., Stahl D.A. Fluorescent oligonucleotide probing of whole cells for determinative, phylogenetic and environmental studies in microbiology // J. Bacteriol. 1990. V.172. P .762-770.
35. Amann R.I., Springer N., Ludwig W., Gortz K.H., Schleifer K.H. Identification in situ and phylogeny of uncultured bacterial endosimbionts // Nature. 1991. V.351. P.161-164.
36. Archibald F. Lactobacillus plantarum, an organism not requiring iron // FEMS Microbiol. Lett. 1983. V.19. P.29-32.
37. Bahaj A.S., Croudace I.W., James P.A.B. Treatment of heavy metal contaminants using magnetotactic bacteria// IEEE Transactions on Magnetics. 1994. V.30. P.4707-4709.
38. Bahaj A.S., Croudace I.W., James P.A.B., Moeschler F.D., Warwick P.E. Continous radionuclide recovery from wasterwater using magnetotactic bacteria // J. Inorg. Biochem. 1998. V.59. P.107.
39. Balkwill D.L., Maratea D., Blakemore R.P. Ultrastructure of a magnetotactic spirillum // J. Bacteriol. 1980. V.141. P.1399-1408.
40. Baneijee S.K., Moskowitz B.M. Ferrimagnetic properties of magnetite // Magnetite biomin-eralization and magnetoreception in organisms / Eds. Kirschvink J.L., Jones D.S., MacFadden B.M. New York, London: Plenum Press. 1985. P.17-41.
41. Bauminger E.R., Cohen S.G., Dickson D.P.E., Levy A., Offer S., Yariv J. Mossbauer spectroscopy of Escherichia coli and its iron-storage protein // Biochem.Biophys. Acta. 1980. V.623. P.237-242.
42. Bazylinski D.A. Bacterial production of iron sulfides // Materials Research Society Symposium Proceedings. 1991. V.218. P.81-91.
43. Bazylinski D.A. Structure and function of the bacterial magnetosome // ASM News. 1995. V.61. P.337-343.
44. Bazylinski D.A. Controlled biomineralization of magnetic minerals by magnetotactic bacteria // Chem. Geol. 1996. V. 132. P.191-198.
45. Bazylinski D.A., Blakemore R.P. Denitrification and assimilatory nitrate reduction in Aquas-pirillum magnetotacticum II Appl. Environ. Microbiol. 1983. V. 46. P. 1118-1124.
46. Bazylinski D.A., Dean A.J., Schuler D., Phillips E.J.P., Lovley D.R. ^-dependent growth and nitrogenase activity in the metal-metabolizing bacteria, Geobacter and Magnetospirillum species // Environ. Microbiol. 2000. V.2. P.266-273.
47. Bazylinski D.A., Frankel R.B., Jannasch H.W. Anaerobic magnetite production by a marine magnetotactic bacterium//Nature. 1988.V.334. P.518-519.
48. Bazylinski D.A., Frankel R.B., Heywood B.R., Mann S., King J.W., Donaghay P.L., Hanson A.K. Controlled biomineralization of magnetite (Fe304) and greigite (Fe3S4) in a magnetotactic bacterium // Appl. Environ. Microbiol. 1995. V.61. P.3232-3239.
49. Bazylinski D.A., Frankel R.B., Garratt A.J., Mann S. Biomineralization of iron sulfides in magnetotactic bacteria from sulfidic environments // Iron Biominerals /Eds. Frankel R.B., Blakemore R.P. New York: Plenum Press. 1990. P.239-255.
50. Bazylinski D.A., Garrat-Reed A.J., Abedi A., Frankel R.B. Cooper association with iron sulfide magnetosomes in a magnetotactic bacterium // Arch. Microbiol. 1993. V.160. P.35-42.
51. Bazylinski D.A., Garrat-Reed A.J., Frankel R.B. Electron microscopic studies of magnetosomes in magnetotactic bacteria // Micros. Res. Tech. 1994. V.27. P.389-401.
52. Berson A.E., Hudson D.V., Waleh N.S. Cloning and characterization of the recA gene of Aq-uaspirillum magnetotacticum // Arch. Microbiol. 1989. V.152. P.567-571.
53. Berson A.E., Hudson D.V., Waleh N.S. Cloning of a sequence of Aquaspirillum magnetotacticum that complements the aroD gene of Escherichia coli II Mol. Microbiol. 1991. V.5. P.2262-2264.
54. Bertani L.E., Huang J.S., Weir B.A., Kirschvink J.L. Evidence for two types of subunits in the bacteriferritin of Magnetospirillum magnetotacticum // Gene. 1997. V.201. P.31-36.
55. Beveridge T.J. Role of cellular design in bacterial metal accumulation and mineralization // Annu. Rev. Microbiol. 1989. V.43. P.147-171.
56. Blakemore R. Magnetotactic bacteria// Science. 1975. V.190. N4212. P.377-379.
57. Blakemore R.P. Magnetotactic bacteria // Ann. Rev. Microbiol. 1982. V.36. P.217-238.
58. Blakemore R.P., Frankel R.B., Kalmijn A.J. South-seeking magnetotactic bacteria in the Southern hemisphere //Nature. 1980. V.286. P.384-385.
59. Blakemore R.P., Maratea D., Wolfe R.S. Isolation and pure culture of a freshwater magnetic spirillum in chemicaliiy defined medium // J. Bacteriol. 1979. V.140. P.720-729.
60. Blakemore R.P., Short K.A., Bazylinski D.A., Rosenblatt C., Frankel R.B. Microaerobic conditions are required for magnetite formation within Aquaspirillum magnetotacticum // Geo-microbiol. J. 1984. V.4. P.53-71.
61. Bock E., Behrens D., Ehrich S., Lebedeva H., Ludwig W. A new obligate lithoautotrophic nitrite oxidizing bacterium Nitrospira moscoviensis sp.nov. and its phylogenetic relationship //Arch. Microbiol. 1995. V.164. P.16-23
62. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing and principle of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. V.72. P. 248254.
63. Briat J.F. Iron assimilation and storage in prokaryotes // J. Gen. Microbiol. 1992. V.138. P.2475-2483.
64. Burgess J.G., Kawaguchi R., Sakaguchi Т., Thornhil R.H., Matsunaga T. Evolutionary relationships among Magnetospirillum strains inferred from phylogenetic analysis of 16S-rRNA sequences // J.Bacteriol. 1993. V.175. P.6689-6694.
65. Butler R.F., Banerjee S.K. Theoretical single-domain grain size range in magnetite and tita-nomagnetite // J. Geophys. Res. 1975. V.80. P.4049-4058.
66. Chaudhuri S.K., Lack J.G., Coates J.D. Biogenic magnetite formation through anaerobic bio-oxidation of Fe(II) // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V. 67. P.2844-2848.
67. Clement-Metral J.D. Direct observation of the rotation in a constant magnetic field of highly organized lamellar structures // FEBS Lett. 1975. V.50. N2. P.257-260.
68. DeLong E.F., Frankel R.B., Bazylinski D.A. Multiple evolutionary origins of magnetotaxis in bacteria// Science. 1993. V.259. P.803-806.
69. DeLong E.F., Wickham G.S., Pace N.R. Phylogenetic stains: ribosomal RNA-based probes for the identification of single microbial cells // Science. 1989. V.243. P.1360-1363.
70. Devouard В., Posfai M., Hua X., Bazylinski D.A, Frankel R.B., Buseck P.R. Magnetite from magnetotactic bacteria: size distributions and twinning // American Mineralogist. 1998. V.83. P.1387-1398.
71. Diebel C.E., Proksch R., Green C.R., Neilson P., Walker M.M. Magnetite defines a vertebrate magnetoreceptor //Nature. 2000. V.406. P.299-302.
72. Dubbels B.L., Dean A.J., Bazylinski D.A. Approaches to and studies in understanding the molecular basis for magnetosome synthesis in magnetotactic bacteria // Abstracts of the general meeting of the ASM. 1998. Atlanta. USA. P.290.
73. Dunn J.R., Fuller M., Zoeger J., Dobson J., Heller F., Hammann J., Caine E., Moskowitz B.M. Magnetic material in the human hippocampus // Brain Res. Bull. 1995. V.6. P.149-153.
74. Farina M., Esquivel D.M.S., Lins de Barros H.G.P. Magnetic iron-sulfur crystals from a magnetotactic organism //Nature. 1990. V.343. P.161-163.
75. Farina M., Kachar В., Lins U., Broderick R., De Barros H.L. The observation of large magnetite (Fe304) crystalls from magnetotactic bacteria by electron and atomic force microscopy // J. Microsc. 1994. V.173. P.l-8.
76. Fassbinder J.W.E., Stanjeck J., Vali H. Occurence of magnetotactic bacteria in soil // Nature. 1990. V.343. P.161-163.
77. Frankel R.B. Magnetotactic bacteria// Comments Mol. Cell. Biophys. 1982. V.l. P.293-310.
78. Frankel R.B., Bazylinski D.A. Structure and function of magnetosomes in magnetotactic bacteria // Design and Processing of Materials by Biomimicking / Eds. Aksay I., Sarikaya M. New York: American Institute of Physics. 1995. P.199-216.
79. Frankel R.B., Bazylinski D.A. Magnetotaxis in bacteria // www.calpoly.edu/~rfrankel/magbac 101 .html. 2002.
80. Frankel R.B., Blakemore R.P. Navigation compass in magnetic bacteria // J.
81. Magn.Magn.Mater. 1980. V.15-18. P.1562-1564.
82. Frankel R.B., Bazylinski D.A., Johnson M.S., Taylor B.L. Magneto-aerotaxis in marine coc-coid bacteria // Biophys. J. 1997. V.73. P.994-1000.
83. Frankel R.B., Bazylinski D.A., Schuler D. Biomineralization of magnetic iron minerals in magnetotactic bacteria// Supramolecular Science. 1998. V.5. P.383-390.
84. Frankel R.B., Blakemore R.P., Torres de Araujo F.F., Esquivel D.M.S., Danon J. Magneto-tactic bacteria et the geomagnetic equator // Science. 1981. V.212. P.1269-1270.
85. Frankel R.B., Papaefthymiou G.C., Blakemore R.P., O'Brien W. Fe304 precipitation in magnetic bacteria//Biochim. Biophys. Acta. 1983. V.763. P. 147-159.
86. Friedmann E.I., Wierzchosy J., Ascasospara C., Winklhofer M. Chains of magnetite crystals in the meteorite ALH84001: evidence of biological origin // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V.98 P.2176-2181.
87. Fukumori Y., Oyanagi H., Yoshimatsu K., Noguchi Y., Fujiwara T. Enzymatic iron oxidation and reduction in magnetite synthesizing Magnetospirillum magnetotacticum II J. Phys. 1997. V.7. P.659-662.
88. Garrity G.M., Holt J.G. The road map to the manual // Bergey's Manual of systematic bacteriology. Second edition / Eds. Boone D.R., Castenholz R.W., Garrity G.M. Springer-Verlag 2001. V. 1. P.155-166.
89. Geacintov N.E., Nostrand F., Becker J.F., Tinkel J.B. Magnetic field induced orientation of photosynthetic systems // Biochim. Biophys. Acta. 1972. V.267. P.65-79.
90. Glassauer S., Langley S., Beveridge T.J. Intracellular iron minerals in a dissimilatory iron-reducing bacterium // Science. 2002. V.295. P.l 17-119.
91. Gorby Y.A., Beveridge T.J., Blakemore R.P. Characterization of the bacterial magnetosome membrane // J. Bacteriol. 1988. V.170. P.834-841.
92. Gould J.L., Kirschvink J.L., Deffeyes K.S. Bees have magnetic remanence // Science. 1978. V.201. N4360. P.1026-1028.
93. Grunberg К., Wawer С., Tebo B.M., Schuler D. A lager gene cluster encoding several mag-netosome proteins is conserved in different species of magnetotactic bacteria // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V.67. P.4573-4582.
94. Harasko G., Pfutzner H., Futschik K. Domain analysis by means of magnetotactic bacteria // IEEE Transactions on Magnetics. 1995. V.31. P.938-949.
95. Harasko G., Pfutzner H., Rapp E., Futschik K., Schuler D. Determination of the concentration of magnetotactic bacteria by means of susceptibility measurements // Jpn. J. Appl. Phys. 1993. V.32. P. 252-260.
96. Heywood B.R., Bazylinski D.A., Garratt-Reed A.J., Mann S., Frankel R.B. Controlled biosyntheses of greigite (Fe3S4) in magnetotactic bacteria // Naturwissenschaften. 1990. V.77. P.536-538.
97. Higashi Т., Yamagishi A., Takeuchi Т., Kawaguchi N., Sagawa S., Onishi S., Date M. Orientation of erythrocytes in a strong static magnetic field // Blood. 1993. V.82. N4. P. 13281334.
98. Higashi Т., Yamagishi A., Takeuchi Т., Date M. Effects of static magnetic fields on erythrocyte rheology// Bioelectrochem. Bioenerg. 1995. V.36. P.101-108.
99. Hoover R.B., Rozanov A.Y. Chemical biomarkers and microfossils in carbonaceous meteorites // SPIE Proceedings. 2001. V.4495. P. 1-18.
100. Hoover R.B., Rozanov A.Y., Zhmur S.I., Gorlenko V.M. Further evidence of microfossils in carbonaceous chondrites // SPIE Proceedings. 1998. V. 3441. P. 203-216.
101. Jusator. 1984. P. 150-180.
102. Keim C.N., Lins U., Farina M. Elemental analysis of uncultured magnetotactic bacteria exposed to heavy metals // Can. J. Microbiol. 2001. V.47. P.l 132-1136.
103. Kirschvink J.L. Magnetite biomineralization and geomagnetic sensitivity in animals: an update and recommendations for future study // Bioelectromagnetics. 1989. V.10. P.239-259.
104. Kirschwink J.L., Lowenstam H.A. Mineralization and magnetization of chiton teeth: pa-leomagnetic, sedimenthologic, and biologic implications of organic magnetite // Earth Planet. Sci. Lett. 1979. V.44. P. 193-204.
105. Kirschwink J.L., Kobayashi-Kirschwink A., Woodford B.J. Magnetite biomineralization in the human brain // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V.89. P.7683-7687.
106. Klyce B. Fossilized magnetotactic bacterium in the orgueil meteorite // http://www.panspermia.org/magneto.htm. 1998.
107. Konhauser K.O. Bacterial iron biomineralisation in nature // FEMS Microbiol. Rev. 1997. V.20. P.315-326.
108. Laulhere J.P., Laboure A.M., van Wuytswinkel O., Gagnon J., Briat J.F. Purification, characterization and function of bacterioferritin from the cyanobacterium Synechocystis P.C.C. 6803 // BiochemJ. 1992. V.281. P.785-793.
109. Lins U., Farina M. Phosphorus-rich granules in uncultured magnetotactic bacteria // FEMS Microbiol. Lett. 1999. V.172. P.23-28.
110. Lins U., Farina M. Amorphous mineral phases in magnetotactic multicellular aggregates // Arch.Microbiol. 2001. V.176. P.323-328.
111. Lovley D.R. Magnetite formation during microbial dissimilatory iron reduction // Iron biominerals /Eds. Frankel R.B., Blakemore R.P. New York: Plenum Press. 1990. P.151-166.
112. Lovley D.R. Dissimilatory Fe(III) and Mn(IV) reduction // Ann. Rev. Microbiol. 1991. V.55. P.259-287.
113. Lovley D.R., Phillips E.J.P., Lovergan D.J. Hydrogen and formate oxidation coupled to dissimilatory reduction of iron or manganese by Alteromonas putrefaciens I I Appl. Environ. Microbiol. 1989. V.55. P.700-706.
114. Lovley D.R., Stolz J.F., Nord G.L., Phillips E.J.P. Anaerobic production of magnetite by a dissimilatory iron reducing microorganism // Nature. 1987. V.330. P.252-254.
115. Lowenstam H.A. Minerals formed by organisms // Science. 1981. V.211. P.l 126-1131.
116. Mann S. Molecular tectonics in biomineralization and biomimetic material chemistry // Nature. 1993. V.365. N6446. P.499-505.
117. Mann S., Frankel R.B., Blakemore R.P. Structure, morphology and crystal grows of bacterial magnetite //Nature. 1984. V.310. P.405-407.
118. Mann S., Sparks N.H.S., Board R.G. Magnetotactic bacteria: microbiology, biomineralization, paleomagnetism and biotechnology // Adv.Microbiol.Physiol. 1990a. V.31. P.125-181.
119. Mann S., Sparks N.H.C., Frankel R.B., Bazylinski D.A., Jannasch H. Biomineralization of ferrimagnetic greigite (Fe3S4) and iron pyrite (FeS2) in a magnetotactic bacterium // Nature. 1990b. V.343.P.411-412.
120. Matsunaga T. Applications of bacterial magnets // Trends Biotechnol. 1991. V.9. P.91-95.
121. Matsunaga Т., Kamiya S. Use of magnetic particles isolated from magnetotactic bacteria for enzyme immobilization // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1987. V.26. P.328-332.
122. Matsunaga Т., Kamiya S. Introduction of bacterial magnetic particles into red blood cellswith cell fusion // Biomagnetism'87 /Eds. Atsumi K., Kotani M., Ueno S., Katila Т., William-sen S.J. Tokyo: Tokyo Denki University Press. 1988. P.410-413.
123. Matsunaga Т., Hashimoto K., Nakamura N., Nakamura K., Hashimoto S. Phagocytosis of bacterial magnetite by leucocytes // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1989. V.31. P.401-405.
124. Matsunaga Т., Sakaguchi Т., Tadokoro F. Magnetite formation by a magnetic bacterium capable of growing aerobically // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1991. V.35. P.651-655.
125. Matsunaga Т., Tadokoro F., Nakamura N. Mass culture of magnetic bacteria and their application to flow type immunoassays // IEEE Trans.Magnet. Mag. 1990. V. 26. P. 15571559.
126. Matzanke B.F., Muller G.I., Bill E., Trautwein A.X. Iron metabolism of Escherichia coli studied by Mossbauer spectroscopy and biochemical methods // Eur.J.Biochem. 1989. V. 183. P. 371-379.
127. Meldrum F.C., Mann S., Heywood B.R., Frankel R.B., Bazylinski D.A. Electron microscopy study of magnetosomes in a cultured coccoid magnetotactic bacterium // Proc. R. Soc. London. 1993 a. B251. P.231-236.
128. Meldrum F.C., Mann S., Heywood B.R., Frankel R.B., Bazylinski D.A. Electron microscopy study of magnetosomes in two cultured vibrioid magnetotactic bacterium // Proc. R. Soc. London. 1993b. B251. P.237-242.
129. Moench T.T. Bilophococcus magnetotacticus gen. nov. sp. nov., a motile magnetic coccus // Antonie van Leeuwenhoek. 1988. V.54. P.483-486.
130. Moskowitz B.M. Biomineralization of magnetic minerals // Rev. Geophys. 1995. Vol. 33 Suppl. P. 123-128.
131. Moskowitz B.M., Frankel R.B., Bazylinski D.A., Jannasch H.W., Lovley D.R. A comparison of magnetite particles produced anaerobically by magnetotactic and dissimilatory iron-reducing bacteria// Geophys.Res.Lett. 1989. V.16. P.665-668.
132. Nakamura C.B., Burgess J.G., Sode K., Matsunaga T. An iron-regulated gene, magA, encodin an iron transport protein of Magnetospirillum sp. strain AMB-1 //J. of Biol. Chem. 1995a. V.270. P.28392-28396.
133. Nakamura N., Hashimoto K., Matsunaga T. Immunoassay method for the determination of immunoglobulin G using bacterial magnetic particles // Anal. Chem. 1991. V.63. P.268-272.
134. Nakamura C.B., Kikuchi Т., Burgess J.G., Matsunaga T. Iron-regulated expression and membrane localization of the magA protein in Magnetospirillum sp. strain AMB-1 // J. Bio-chem. 1995b. V.118. P.23-27.
135. Nakamura C., Sakaguchi Т., Kudo S., Burgess J.G., Sode K., Matsunaga T. Characterization of iron uptake in the magnetic bacterium Aquaspirillum sp. AMB-1 // Appl. Biochem. Biotechnol. 1993b. V.39/40. P.169-177.
136. Neilands J.B. Iron and its role in microbial physiology // Microbial iron metabolism: A comprehensive treatise /Ed. Neilands J.B. New York: Plenum Press. 1974. P.3-34.
137. Nemec P., Altmann J., Marhold S., Burda H., Oelschlager H.H.A. Neuroanatomy of magnetoreception: the superior colliculus involved in magnetic orientation in a mammal // Science. 2001. V.294. P.366-368.
138. Neugebauer D.-Ch., Blaurock A.E., Worcester D.L. Magnetic orientation of purple membranes demonstrated by optical measurements and neutron scattering // FEBS Lett. 1977. V.78. N1. P.31-35.
139. Noguchi Y., Fujiwara Т., Yoshimatsu K., Fukumori Y. Iron reductase for magnetite synthesis in the magnetotactic bacterium MagnetospiriUum magnetotacticum И J.Bacteriol. 1999. V. 181. P.2142-2147.
140. Nogueira F.S., Lins de Barros H.G.P. Study of the motion of magnetotactic bacteria // Eur. Biophys. J. 1995. V.24. P.13-21.
141. Okuda Y., Denda K., Fukumori Y. Cloning and sequencing of a gene encoding a new member of the tetratricopeptide protein family from magnetosomes of MagnetospiriUum magnetotacticum II Gene. 1996. V. 171. P.99-102.
142. Palleroni N.J. Genus Pseudomonas Migula 1894 // Bergey's manual of systematic bacteriology. /Eds. N.R. Krieg, J.G. Holt. Baltimore, London: Williams & Wilkins. 1984. V.l. P. 141-198.
143. Paoletti L.C., Blakemore R.P. Hydroxamate production by Aquaspirillum magnetotacticum // J. Bacterid. 1986. V.167. P.153-163.
144. Paoletti L.C., Blakemore R.P. Iron reduction by Aquaspirillum magnetotacticum I I Curr. Microbiol. 1988. V.17. P. 339-342.
145. Pauser S., Reszka R., Wagner S., Wolf K.J., Buhr H.J., Berger G. Liposome-encapsulated superparamagnetic iron oxide particles as markers in an MRI-guided search for turmor-specific drug carriers // Anti-Cancer Drug Design. 1997. V.12. P.125-135.
146. Petermann H., Bleil U. Detection of life magnetotactic bacteria in south-atlantic deep-sea sediments // Earth Plan. Sci.Lett. 1993. V.l 17. P.223-228.
147. Petersen N., Dobeneck T.V., Vali H. Fossil bacterial magnetite in deep-sea sediments from the South Atlantic Ocean // Nature. 1986. V.320. P.611-615.
148. Poindexter J.S. Genus Caulobacter Henrici and Johnson 1935 // Bergey's manual of systematic bacteriology. /Eds. Staley J.T., Bryant M.P., Pfennig N., Holt J.G. Baltimore, London: Williams & Wilkins. 1989. V.3. P.1924-1939.
149. Posfai M., Buseck P.R., Bazylinski D.A., Frankel R.B. Reaction sequence of iron sulfide minerals in bacteria and their use as biomarkers // Science. 1998. V.280. P.880-883.
150. Posfai M., Cziner К., Marton E., Marton P., Buseck P.R., Frankel R.B., Bazylinski D.A. Crystal-size distributions and possible biogenic origin of Fe sulfides // Europ. J. Mineral. 2001. V.13.P. 691-703.
151. Reynolds E.S. The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy. // J. Cell. Biol. 1963. v.17. P.208-213.
152. Rodgers F.G., Blakemore R.P., Blakemore N.A., Frankel R.B., Bazylinski D.A., Maratea D., Rodgers C. Intercellular structure in a many-celled magnetotactic procaryote // Arch. Microbiol. 1990. V.154. P. 18-22.
153. Sakagushi Т., Arakaki A., Matsunaga T Desulfovibrio magneticus sp. nov., a novel sul-fate-reducing bacterium that produces intracellular single-domain-sized magnetite particles // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002. V.52. P.215-221.
154. Sakagushi Т., Burgess J.G., Matsunaga T. Magnetite formation by a sulphate-reducing bacterium//Nature. 1993. V.365. P.47-49.
155. Sakagushi Т., Tsujimura N., Matsunaga T. A novel method for isolation of magnetic bacteria without magnetic collection using magnetotaxis // J. Microbiol. Meth. 1996. Y.26. P. 139-145.
156. Sand W., Rohde K., Sobotke В., Zennek C. Evaluation of Leptospirillum ferrooxidans for leaching // Appl. Environ. Microbiol. 1992. V.58. P.85-92.
157. Sarikaya M. An introduction to biomimetics: a structural viewpoint // Microscopy Res. 1994. V. 27. P.360-375.
158. Schuler D. Formation of magnetosomes in magnetotactic bacteria // J.Mol. Micro-biol.Biotecnol. 1999. V.l. P. 79-86.
159. Schuler D., Baeuerlein E. Iron transport and magnetite crystal formation of the magnetic bacterium Magnetospirillum gryphiswaldense II J.Phys. 1997. V.7. P.647-650.
160. Schuler D., Baeuerlein E. Dynamics of iron uptake and Fe3C>4 biomineralization during aerobic and anaerobic growth of Magnetospirillum gryphiswaldense 11 J. Bacteriol. 1998.1. V.180. Р.159-162.
161. Schuler D., Baeuerlein E., Bazylinski D.A. Localization and occurence of magnetosome proteins from Magnetospirillum gryphiswaldense studied by an immunological method // Abstracts of the general meeting of the ASM. 1997. P.332.
162. Schuler D., Spring S., Bazylinski D.A. Improved technique for the isolation of magnetotactic spirilla from a freshwater sediment and their phylogenetic characterization // Sys-tem.Appl.Microbiol. 1999. V.22. P.466-471.
163. Schultze-Lam S., Fortin D., Davis B.S., Beveridge T.J. Mineralization of bacterial surfaces // Chem.Geol. 1996. V.132. P.171-181.
164. Seong S., Park Т.Н. Swimming characteristics of magnetic bacterium, Magnetospirillum sp AMB-1, and implications as toxicity measurement // Biotechnol. Bioeng. 2001. V. 76. P.ll-16.
165. Shcherbakov V.P., Winklhofer M. The osmotic magnetometer: a new model for magnetite based magnetoreceptors in animal // Eur. Biophys. J. 1999. V.28. P.380-392.
166. Slowik T.J., Thorvilson H.G. Localization of subcuticular iron-containing tissue in the red imported fire ant // South. Entomol. 1996. N21. P.247-254.
167. Spring S., Schleifer K.-H. Diversity of magnetotactic bacteria // System. Appl. Microbiol. 1995. V.18.P.147-153.
168. Spring S., Amann R., Ludwig W., Schleifer K.H., Petersen N. Phylogenetic diversity and identification of nonculturable magnetotactic bacteria // System. Appl. Microbiol. 1992. V.15. P.116-122.
169. Spring S., Amann R., Ludwig W., Schleifer K.H., van Gemerden H., Petersen N. Dominating role of an unusual magnetotactic bacterium in the microaerobic zone of a freshwater sediment // Appl. Environ. Microbiol. 1993. V.59. P.2397-2403.
170. Spring S., Amann R., Ludwig W., Schleifer K.H., Schuler D., Poralla K., Petersen N. Phylogenetic analysis of uncultured magnetotactic bacteria from the alpha-subclass of Proteobacteria И System. Appl. Microbiol. 1994. V.17. P.501-508.
171. Spring S., Lins U., Amann R., Schleifer K.-H., Ferreira L.C.S., Esquivel D.M.S., Farina M. Phylogenetic affiliation and ultrastructure of uncultured magnetic bacteria with unusually large magnetosomes // Arch. Microbiol. 1998. V.169. P.l36-147.
172. Stolz J.F. Biogenic magnetite and the magnetization of sediments // J.Geophys. Res. 1990. V.95. P.4355-4361.
173. Stolz J.F. Magnetotactic bacteria: biomineralization, ecology, sediment magnetism, environmental indicator // Biomineralization Processes of iron and manganese sediments. /Eds. Skinner H.C.W., Fitzpatrick R.W. Braunschweic: Catena. 1992. P.133-135.
174. Stolz J.F. Magnetosomes // J. Gen. Microb. 1993. V.139. N8. P.1663-1670.
175. Stolz J.F., Chang S.-B.R., Kirschvink J.L. Magnetotactic bacteria and single-domain magnetite in hemipellagic sediments //Nature. 1986. V.321. P.849-851.
176. Stolz J.F., Chang S.-B.R., Kirschvink J.L. Biogenic magnetite in stromatolites: occurence in modern sedimentary environments // Precambrian Research. 1989a. V.42. P.295-304.
177. Tamegai H., Fukumori Y. Purification and some molecular and enzymatic features of a novel ccb-type cytochrome с oxidase from a microaerobic denitrifier, Magnetospirillum mag-netotacticum IIFEBS Lett. 1994. V.347. P.22-26.
178. Tamegai H., Yamanaka Т., Fukumori Y. Purification and properties of a cytochrom al-like hemoprotein from a magnetotactic bacterium, Aquaspirillum magnetotacticum II Bio-chim. Biophys. Acta. 1993. V.1158. P.137-243.
179. Tanaka T, Matsunaga T Detection of HbA(lc) by boronate affinity immunoassay using bacterial magnetic particles // Biosens. Bioelectronics. 2001. V.16. P.1089-1094.
180. Thornhill R.H., Burgess J.G., Matsunaga T. PCR for direct detection of indigenous uncultured magnetic cocci in sediment and phylogenetic analysis of amplified 16 S ribosomal DNA // Appl. Environ. Microbiol. 1995. V.61. P.495-500.
181. Towe K.M., Moench T.T. Electron-optical characterization of bacterial magnetite // Earth Planet. Sci. Lett. 1981. V.52. P.213-220.
182. Urban J.E. Adverse effects of microgravity on the magnetotactic bacterium Magnetospi-rillum magnetotacticum // Acta Austronaut. 2000. V.47. P.775-780.
183. Vainshtein M.B., Suzina N.E., Sorokin V.V. A new type of magnetsensitive inclusions in cells of photosynthetic purple bacteria// System. Appl. Microbiol. 1997. V.20. P. 182-186.
184. Vali H., Forster O., Amarentidis G., Petersen N. Magnetotactic bacteria and their magne-tofossils in sediments // Earth Planet. Sci. Lett.1987. V.86. P.389-400.
185. Wallcott C., Gould J.L., Kirschvink J.L. Pigeons have magnets // Science. 1979. V.205. N4410. P. 1027-1029.
186. Watt G.D., Frankel R.G.E., Papaefthymion G.C., Spartalian K., Stiefel E.I. Redox properties and Mossbauer spectroscopy of Azotobacter vinelandii bacterioferritin // Biochemistry. 1986. Y.25. N15. P.4330-4336.
187. Widdel F., Schnell S., Heisimg S., Ehrenreich A., Assmus В., Schink B. Ferrous iron oxidation by anoxygenic phototrophic bacteria // Nature. 1993. V.362. P.834-836.
188. Yamazaki Т., Oyanagi H., Fujiwara Т., Fukumori Y. Nitrite reductase from the magnetotactic bacterium Magnetospirillum magnetotacticum a novel cytochrome-cd(l) with Fe(II)-nitrite oxidoreductase actiwity // Eur J. Biochem. 1995. V.233. P.665-671.
189. Zoeger J., Dunn J.R., Fuller M. Magnetic material in the head of the common Pacific dolphin // Science. 1981. V.213. N4510. P.892-894.
190. СПИСОК ПУБЛИКАЦИЙ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ.
191. Вайнштейн М.Б., Сузина Н.Е., Кудряшова Е.Б., Арискина Е.В., Сорокин В.В. К разнообразию магнитотактных бактерий // Микробиология. 1998. Т.67. С.807-814.
192. Vainshtein М., Kudryashova Е., Suzina N., Ariskina Е., Sorokin V. On functions of non-crystal magnetosomes in bacteria// SPIE Proceedings. 1998. V. 3441. P. 280-288
193. Vainshtein M., Kudryashova E., Suzina N., Ariskina E., Voronkov V. Formation of bacterial nanocells // SPIE Proceedings. 1998. V. 3441. P. 95-104
194. Кудряшова Е.Б., Вайнштейн М.Б., Сузина Н.Е., Арискина Е.В. Образование внутриклеточных магниточувствительных включений у патогенных бактерий // Совещание «Фундаментальные аспекты микробиологии». Саратов. ИБФРМ РАН. 2000. www.ibppm.saratov.ru.8080
195. Vainshtein М., Suzina N., Kudryashova Е., Ariskina Е. New magnet-sensitive structures in bacterial and archaeal cells // Biology of the Cell. 2002. V.94, № 1. P. 29-35.
- Арискина, Елена Викторовна
- кандидата биологических наук
- Пущино, 2002
- ВАК 03.00.07
- Надмолекулярные структуры природных рентгеноаморфных веществ
- Изменения структурной организации бактериальных клеток при стрессовых воздействиях
- Экологические аспекты бактериального восстановления сульфатов
- Углеродистое вещество шунгитовых пород: структура, генезис, классификация
- Микро- и наноструктуры твердого минерального рентгеноаморфного вещества