Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Морфометрические особенности постнатального развития околоушной слюнной железы крыс в условиях питания диспергированной пищей
ВАК РФ 03.03.04, Клеточная биология, цитология, гистология
Автореферат диссертации по теме "Морфометрические особенности постнатального развития околоушной слюнной железы крыс в условиях питания диспергированной пищей"
На правах рукописи
СЕМЕНОВА МАРИНА АНАТОЛЬЕВНА
МОРФОМЕТРИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ПОСТНАТАЛЬНОГО РАЗВИТИЯ ОКОЛОУШНОЙ СЛЮННОЙ ЖЕЛЕЗЫ КРЫС В УСЛОВИЯХ ПИТАНИЯ ДИСПЕРГИРОВАННОЙ ПИЩЕЙ
03.03.04 - клеточная биология, цитология, гистология
Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук
Оренбург - 2011
1 о (.¡А? 2011
4840270
Работа выполнена при Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Ульяновский государственный университет»
Научный руководитель: доктор медицинских наук, профессор
Хайруллин Радик Магзинурович
Официальные оппоненты: доктор медицинских наук, профессор
Валов Сергей Дмитриевич
доктор биологических наук, профессор Сеитов Марат Султанович
Ведущая организация: Государственное образовательное учреждение
высшего профессионального образования «Мордовский государственный университет имени Н.П. Огарева».
Защита диссертации состоится » М^СцЦ^Л— 2011 года в часов
на заседании Диссертационного совета Д ¿08.066.04 при Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Оренбургская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию РФ» по адресу: 460000, г. Оренбург, ул. Советская, 6, зал заседаний диссертационного совета.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Оренбургская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию РФ», а с авторефератом на сайте ВУЗа - http://www.orgma.ru.
Автореферат разослан « 2011 г.
Ученый секретарь диссертационного совета, доктор биологических наук, профессор
Н.Н. Шевлюк
Актуальность работы
В классических опытах И.П. Павлова по изучению секреторной функции слюнных желез показано, что количество выделяемой слюны определяется химическим составом и физическими свойствами пищи и регулируется специальными рефлексами в ответ на разные виды механической и химической возбудимости (Павлов И.П., 1949). От физических свойств пищи зависит также состав секрета слюнных желез (Ikawa М. et al., 1991). Влияние консистенции пищи на деятельность околоушной слюнной железы изучалось, главным образом, с точки зрения ее влияния на размеры, строение и секреторную функцию сероцитов и эпителиоцитов (Wilbom W.H., Schneyer
C.А., 1970; Scott J., Gunn D.L., 1991, 1994; Leal S.C. et al., 2003). Обнаруженные изменения трактовались авторами как следствие угнетения физиологического рефлекторного процесса синтеза слюны. В ряде исследований показано изменение числа рецепторов на мембране сероцитов для нейромедиато-ров в слюнных железах взрослых крыс, находящихся на жидкой молочной диете (Ekström J., 1973; Schneyer С.A. et al., 1987b; Johnson D.A., Cardenas H.L., 1993), а также изменение ферментативной активности слюны (Johnson
D.A., 1982; Zelles Т. et al., 1989), снижение общей массы желез (Johnson, D.A., 1982; Scott J., Gunn D.L., 1994). В то же время результаты исследования W.H. Wilbom и С.A. Schneyer (1970) свидетельствуют о том, что содержание 180-суточных крыс в течение двух недель на жидкой диете не влияет на морфологические особенности вставочных и исчерченных протоков. Исследованиями P.N. Baer, T.N. Tarpley (1976) показано, что содержание крыс на жидкой диете с 13-го по 365-й день постнатального онтогенеза не вызывает каких-либо морфологических изменений клеточных структур слюнных желез. Перевод животных, питавшихся жидкой пищей, на диету, состоящую из целлюлозы и твердой пищи, также сопровождалось неоднозначными результатами (Schneyer С.A., Hall H.D., 1976; Humphreys-Beher M.G., Schneyer С.А., 1987).
Исследованиями последнего десятилетия убедительно продемонстрировано существенное изменение структуры питания не только человека, но и домашних, а также сельскохозяйственных и лабораторных животных (Покровский В.И., 2002; Kalka S.P., 1997; Robinson М.К., 1999; Center S.A., 2000; Anderson R., 2001). Потребление быстро съедаемой, мелкоизмельченной и пастообразной пищи, не требующей длительного пережевывания и сокращающей общее время питания (Уголев A.M., 1991; Волгарев М.Н., 1997; Kimua Y., 1996; Davis С.М., 1997), нарушает ассимиляцию биологически ценных веществ, что способствует снижению адаптационно-компенсаторных возможностей организма и развитию патологических процессов (Graham H.N.,. 1992; Jain А.К., 1993; Fuhrman В, 1997; Hollman P.C., 1997). С учетом этого явления, а также противоречивости результатов, полученных в предыдущих исследованиях, научная задача по изучению влияния физических свойств пищи на структурно-функциональные показатели околоушных слюнных желез остается актуальной.
Цель исследования
Установить особенности постнатального морфогенеза околоушной слюнной железы белых крыс на основе морфометрии ее структурных элементов при длительном питании диспергированной пищей.
Задачи исследования
1. Определить динамику морфометрических показателей тканевых и клеточных структур околоушной слюнной железы в постнатальном онтогенезе белых крыс.
2. Установить морфометрические особенности постнатального морфогенеза ацинусов околоушной слюнной железы белых крыс при длительном питании диспергированной пищей.
3. Провести анализ возрастной динамики морфометрических показателей структур внутридольковых выводных протоков околоушной слюнной железы в условиях длительного питания диспергированной пищей.
4. Выявить особенности морфогенеза околоушной слюнной железы белых крыс, длительно питавшихся диспергированной пищей, с последующим переходом на обычный рацион на основе ее морфометрических параметров.
Научная новизна
В настоящем исследовании автором впервые с использованием приемов количественного морфометрического анализа на клеточном и тканевом уровнях экспериментально обосновано морфогенетическое значение фактора физических свойств пищи в развитии околоушной слюнной железы в по-стнатальном онтогенезе белых беспородных крыс. На тканевом уровне установлено, что длительное питание диспергированной пищей вызывает обратимые морфологические изменения ацинусов железы, выражающиеся гипотрофией и последующей атрофией, сменяющиеся к периоду возмужания восстановлением их размеров до значений контрольных животных. Просветы выводных внутридольковых протоков сужаются в репродуктивном периоде онтогенеза животных, а толщина их стенок уменьшается к периоду возмужания. На клеточном уровне структурно-функциональные изменения железы опытных животных на протяжении большего периода постнатально-го развития характеризуются значительным снижением функциональной активности сероцитов, определяемой по ядерно-цитоплазматическому отношению, с последующим ее повышением к периоду возмужания.
Научно-практическая значимость работы
Результаты настоящей работы существенно расширяют представления о постнатальном развитии околоушной слюнной железы белых крыс, а также ее адаптивных преобразованиях в процессе развития и жизнедеятельности организма. Система новых данных об особенностях морфогенеза околоушной слюнной железы при потреблении диспергированной пищи представляет интерес для теоретических и прикладных разделов морфологии животных и биологии развития. Полученные данные могут быть использованы для раз-
работки практических рекомендаций по профилактике функциональных расстройств и патологий пищеварительного тракта. Результаты исследования представляют интерес как информационная основа для разработки конкретных способов коррекции морфогенеза органов пищеварительной системы животных. Данные о возрастных изменениях околоушной слюнной железы, особенностях ее перестройки при длительном питании диспергированной пищей и адаптации к питанию пищей различной консистенции могут быть использованы в решении проблем ветеринарной и клинической медицины, зоотехнии и гигиены при обосновании рационального питания, профилактики заболеваний пищеварительной системы.
Положения, выносимые на защиту
1. Длительное питание диспергированной пищей у беспородных белых крыс в фазу интенсивного роста вызывает снижение морфометрических параметров структурных тканевых элементов околоушной слюнной железы и функциональной активности сероцитов.
2. Перевод опытных животных после длительного питания диспергированной пищей на обычный рацион характеризуется полной обратимостью значений морфометрических параметров контрольных животных в концевых отделах и частичной - во внутридольковых выводных протоках.
Апробация работы
Основные положения и результаты исследования доложены на VI Всероссийском съезде анатомов, гистологов и эмбриологов (Саратов, 2009), III Всероссийской конференции с международным участием «Медико-физиологические проблемы экологии человека» (Ульяновск, 2009), III конференции молодых ученых медико-биологической секции Поволжской ассоциации государственных университетов (Ульяновск, 2009), Региональной научно-практической конференции «Экология, город и мы» (Ульяновск, 2009). По теме диссертации опубликовано 7 научных работ, из них 4 - в
журналах по Перечню, рекомендованному ВАК РФ для опубликования результатов кандидатских и докторских диссертаций.
Внедрение
Результаты диссертации внедрены в программу обучения студентов медицинского факультета Института медицины, экологии и физической культуры Ульяновского государственного университета специальностей «Лечебное дело», «Педиатрия» по курсам «Гистология, цитология и эмбриология» и «Патологическая анатомия» на кафедре морфологии, а также студентов Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии ветеринарного факультета на кафедре морфологии, физиологии и фармакологии по дисциплинам «Гистология, цитология и эмбриология», «Морфология и физиология животных» и биотехнологического факультета на кафедре частной зоотехнии и технологии животноводства по дисциплине «Звероводство».
Объем и структура диссертации
Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, результатов собственных исследований, их обсуждения, выводов, списка литературы. Текст диссертации изложен на 148 страницах машинописного текста, иллюстрирован 32 рисунками и 9 таблицами. Список использованной литературы содержит 285 работ, из которых 104 отечественных и 181 иностранных авторов.
Содержание работы
Материал и методы исследования
Экспериментальные исследования проведены на 56 самцах беспородных белых крыс (табл. 1). Для периодизации постнатального онтогенеза крыс использована схема, предложенная В.И. Махинько и В.Н. Никитиным (1975). Забор материала осуществляли в возрасте 21 (поздний молочный период), 60 (препубертатный период), 120 (пубертатный период), 180 (репро-
дуктивный период), 240 (период возмужания) суток развития. На 21-е сутки после рождения животных произвольно разделяли на контрольную и две (I и И) опытные группы. Животные контрольной группы (контроль) содержались в обычных условиях вивария на естественном для грызунов корме. Животных I опытной группы (опыт I) с 21-х по 240-е сутки эксперимента кормили диспергированной пищей того же состава (измельченная в механической мельнице зерновая смесь, переработанные посредством мелкой терки овощи и мясной фарш). Животные II опытной группы (опыт II) питались диспергированной пищей до 120-х суток постнатального онтогенеза, после чего переводились до окончания эксперимента (240-е сутки онтогенеза) на корм животных контрольной группы. Забор материала животных II опытной группы, осуществляли на 180-е и 240-е сутки постнатального онтогенеза. Все эксперименты проводились в соответствии с «Правилами проведения работ и использования экспериментальных животных», утвержденных Приказом МЗ СССР №755 от 12 августа 1977г., а также положениями Хельсинкской Декларации от 1964 г., дополненной в 1975, 1983, 1989 и 2000 гг. На проведение исследований было получено разрешение Этической Комиссии Ульяновского государственного университета № 03 от 22 января 2010 г.
Описание, сравнительно-морфологический анализ и морфометрия структур околоушных слюнных желез производились на гистологических препаратах, окрашенных гематоксилин-эозином Майера и гематоксилин-пикрофуксином по методу Ван-Гизона с помощью бинокулярного микроскопа Motic ВЗ (Motic, КНР) при увеличении 10x100. Также срезы околоушной слюнной железы окрашивали метиловым зеленым-пиронином по Браше, а также проводили ШИК-реакцию (Елисеев В.Г., 1967). Для морфометриче-ского исследования использовалась компьютерная система, включающая микроскоп, цифровую видеокамеру JVC (Victor company, Япония) и компьютерную программу денситофотометрии «Мекос-Ц1» (Россия). В процессе
морфометрических исследований руководствовались рекомендациями Г.Г. Автандилова (1990).
Таблица 1
Материал и методы исследования
\ Методы Хисследова-\ ния Гуппа \ животных, \ возраст \ (сутки) \ Анатомические Гистологические (количество животных / препаратов) Морфометрические
Определение веса и д лины тела Измерение длины кишечника Ацинусь! (4 параметра) Ядра сероцитов (2 параметра) i Вставочные протоки (6 параметров) Ядра эпителиоцитов вп i (2 параметра) | Исчерченные протоки (о параметров) Ядра эпителиоцитов ИП (2 параметра)
КотрашгОпьгг21 5 - 5/12 251 1017 90 563 89 819
Контроль-60 5 4 5/20 246 1045 87 547 96 863
Опыт 1-60 5 5 5/18 211 842 38 244 64 579
Контроль-120 5 5 5/21 253 1091 88 589 114 1027
Опыт 1-120 5 5 5/22 231 946 58 365 107 940
Контроль-180 5 5 5/19 251 1120 68 447 142 1318
Опыт 1-180 5 5 5/19 254 1171 55 356 133 1230
Опыт II-180. 5 5 5/27 231 1010 61 416 177 1660
Контроль-240 5 5 6/14 261 1272 74 511 128 ' 1213
Опыт 1-240 5 5 5/19 249 1168 64 444 164 1571
Опыт II-240 5 5 5/17 254 1216 85 583 161 1526
Всего 55 49 56/217 2692 11898 768 5065 ПГ375 12746
Морфометрические исследования включали определение:
- площади сечения ацинусов, просветов и стенок внутридольковых протоков, ядер и цитоплазмы сероцитов и эпителиоцитов внутридольковых протоков (мкм2);
- эквивалентного диаметра ацинусов, просветов внутридольковых протоков и их диаметра, ядер сероцитов и эпителиоцитов (мкм);
- количества клеток на площади сечения ацинусов, а также в стенке внутридольковых протоков на их поперечных срезах;
- ядерно-цитоплазматического отношения (ЯЦО) сероцитов и эпителиоцитов внутридольковых протоков.
Определялись также вес животных, индивидуальное количество потребляемой пищи в граммах, длина тела, тонкого и толстого кишечника в
сантиметрах. Полученные данные подвергали статистической обработке с помощью пакета прикладной компьютерной программы «Statistica 6.0» (StatSoft Inc., USA). При описании данных использовались основные показатели описательной статистики (Реброва О.Ю., 2002). Сравнение выборок проводилось с использованием непараметрического критерия Манна-Уитни. Поскольку в диссертации исследованы морфологические параметры органа животных разных возрастных групп, то проводился дисперсионный анализ Краскела-Уоллиса. Оценка прямолинейной зависимости параметров проводилась при помощи корреляционного анализа по методу Пирсона.
Результаты исследования и их обсуждение
Постнатальный морфогенез околоушной слюнной железы белых
крыс
Ранние этапы постнатального морфогенеза околоушной слюнной железы белых крыс характеризуются статистически значимым уменьшением диаметра ацинусов с 16,92±0,12 мкм до 16,41±0,13 мкм, обуславливая тенденцию снижения их площади (табл. 2). При этом ЯЦО сероцитов последовательно увеличивается, а затем к 120-м суткам снижается и стабилизируется до 240-х суток. В более позднем периоде онтогенеза с 60-х по 240-е сутки происходит рост площади сечения и диаметра ацинусов, вероятно, обусловленный увеличением площади сечения цитоплазмы сероцитов, а в период возмужания (180-240-е сутки) увеличением их числа на площади сечения ацинуса.
Период с 60-х по 120-е сутки характеризуется статистически значимым увеличением площади сечения и диаметра просветов вставочных протоков, а также уменьшением их стенок и диаметра. Последнее, на наш взгляд, обусловлено снижением площади сечения ядер и цитоплазмы эпителиоцитов на фоне увеличения их количества в стенках протоков. В указанный период постнатального онтогенеза ЯЦО эпителиоцитов уменьшается (р<0,01). После-
дующему периоду (120-240-е сутки) свойственны как увеличение площади сечения стенок, так и просветов вставочных протоков, что сопровождается одновременным увеличением площади ядер и цитоплазмы эпителиоцитов и их числа на площади сечения протока, аналогично ацинусам. К концу периода возмужания (240-е сутки) величина ЯЦО эпителиоцитов вставочных протоков достоверно снижается (табл. 3). Возрастная динамика изменений морфометрических параметров исчерченных выводных протоков принципиально не отличается от гаковой вставочных протоков.
Таким образом, в норме морфогенез околоушной слюнной железы в период с 21-х по 240-е сутки характеризуется увеличением в 1,5 раза площади сечения концевых отделов, в основе которого лежит увеличение как количества сероцитов на площади сечения ацинуса, так и размеров самих клеток. При этом, судя по ЯЦО, функциональная активность сероцитов отличается максимальной интенсивностью в пубертатном периоде (60-120-е сутки) постнатального онтогенеза. Изменения морфометрических параметров внут-ридольковых выводных протоков околоушной слюнной железы характеризуются двухэтапностыо. Уменьшение площади сечения стенок вставочных и исчерченных протоков в раннем постнатальном онтогенезе сменяется их увеличением на более поздних этапах. Эти явления сопровождаются аналогичными изменениями размеров ядер и цитоплазмы эпителиоцитов. Функциональная активность эпителиоцитов внутридольковых выводных протоков наиболее интенсивно увеличивается на поздних этапах постнатального онтогенеза.
Особенности постнатального морфогенеза ацннусов околоушной слюнной железы белых крыс при питании диспергированной пищей
Препубертатный период характеризуется уменьшением площади сечения и диаметра ацинусов животных I опытной группы, что обусловлено статистически значимым снижением площади ядер и цитоплазмы сероцитов.
Таблица 2
Морфометрические показатели ацинусов околоушной слюнной железы контрольных и опытных животных в разные периоды постнатального развития
\ Показатель Возраст \ (сутки), группа \ Площадь ядер сероцитов (мкм2) Диаметр ядер сероцитов (мкм) Площадь сечения цитоплазмы сероцитов (мкм2) ЯЦО (%) сероцитов Количество сероцитов на срезе ацинуса Площадь сечения ацинусов (мкм2) Диаметр ацинусов (мкм)
21 9,06±0,06 3,39±0,01 56,81 ±0,73 17,53±0,18 4,01 ±0,04 263,78±3,42 16,92±0,12
60 Контроль 9,77±0,05х 3,52±0,01х 51,24±0,55х 19,49±0.23х 4,19±0,05 254,88±3,72 16,41±0,13х
Опыт I 9,14±0,06* 3,41±0,01 * 53,72±0,78х 17,09±0,22* 3,96±0,05* 243,94±3,43х 16,24±0,12х
120 Контроль 8,53±0,05х 3,29±0,01х 59,00±0,73х 14,55±0,17х 4,31 ±0,04 294,61±4,46х 17,97±0,14х
Опыт I 9,08±0,06* 3,40±0,01 * 60,78±0,86х 15,23±0,17х* 4,05±0,04* 279,15±3,36х 17,52±0,1 Iх
180 Контроль 9,07±0,05х 3,40±0,01х 65,08±0,88х 14,51±0,19 4,38±0,05 326,34±4,15х 18,93±0,12х
Опыт I 8,88±0,05 3,36±0,01 56,77±0,81х* 16,27±0,23х* 4,54±0,05х 307,08±4,62х* 18,35±0,15х*
Опыт И 9,63±0,06*у 5,01±0,01*у 72,15±1,05*у 14,57±0,21v 4,35±0,05 352,94±4,95*v 19,73±0,14*v
240 Контроль 10,76±0,05х 3,67±0,01х 77,27±0,95х 14,28±0,17 4,82±0,05х 421,40±4,88х 21,59±0,13х
Опыт I 8,94±0,05* 3,38±0,01 * 77,59±0,84х 11,65±0,16х* 4,64±0,05 419,94±5,76х 21,71±0,15х
Опыт II 9,92±0,05х*у 3,56±0,01х*у 74,15±0,71у 13,62±0,14x*v 4,77±0,05х 409,73±5,44л 21,15±0,13х
Примечание.
х - статистически значимые отличия от предыдущего возраста (р<0,01); * - статистически значимые отличия от контрольных значений (р<0,01); у - статистически значимые отличия от значений животных I опытной группы (р<0,01).
Пубертатный период, наоборот, характеризуется увеличением площади сечения ацинусов и повышением функциональной активности сероцитов, на которую указывает снижение их ЯЦО (табл. 2). В репродуктивный период происходит увеличение площади сечения ацинусов, в основе которого лежит существенное увеличение количества сероцитов на единицу площади сечения ацинусов. При этом площадь цитоплазмы сероцитов и их ЯЦО уменьшаются. Указанные показатели у 180-суточных животных составляют 56,77±0,81 мкм2 и 16,27±0,23 %. В период возмужания отмечается рост площади сечения ацинусов до 419,94±5,76 мкм2 за счет увеличения площади цитоплазмы сероцитов. При этом, судя по уменьшению значений ЯЦО, функциональная активность сероцитов повышается.
В период с 21-х по 120-е сутки отмечается уменьшение количества сероцитов на площади сечения ацинусов у животных I опытной группы по отношению к контрольным животным. Судя по ЯЦО, функциональная активность сероцитов у животных I опытной группы в ггрепубертатный период выше, чем у животных контрольной группы. Наблюдающееся снижение размеров ацинусов 180-суточных животных I опытной группы обусловливается соответствующими изменениями площади цитоплазмы сероцитов (рис. 1). Значения ЯЦО сероцитов 120- и 180-суточных животных 1 опытной группы превышают аналогичные показатели контрольных животных соответствующего возраста. Уменьшение размеров ацинусов околоушной слюнной железы обусловлено питанием предварительно измельченной пищей и, как следствие, сокращением продолжительности акта жевания. Раздражение рецепторов ротовой полости во время жевания является главным механизмом в регулировании синтеза белков слюны (Anderson D.J., Hector М.Р., 1987; Ikawa M. et al., 1991; Johnson D.A., Cardenas H.L., 1993). Время нахождения в ротовой полости предварительно измельченной пищи сокращается, что ведет к угнетению физиологического рефлекторного процесса синтеза секрета околоушной слюнной железой (Mackie D.A., Pangborn R.M., 1990;
С.-К. Yeh el al., 1990). Как следствие, наблюдается снижение объема ацину-сов, которое обусловлено уменьшением объема сероцитов (Wilborn W.H., Schneyer С.А., 1970; Sreebny L.M. et al., 1971; Johnson D.A., Cardenas H.L., 1993; Scott J., Gunn D.L., 1994; Leal S.C. et al„ 2003).
Рис. 1. Ацинусы (1) околоушной слюнной 180-суточных животных контрольной группы (А) и I опытной группы (Б). Окраска гсматоксилин-эозином, увеличение ><1000.
К 240-м суткам площадь сечения ацинусов и цитоплазмы сероцитов, а также их количество на площади сечения ацинусов животных I опытной группы достигают значений контрольных животных. При этом у 240-суточных животных I опытной группы ЯЦО сероцитов оказывается ниже, чем у 240-суточных контрольных животных. Увеличение площади сечения ацинусов 240-суточных животных 1 опытной группы, вероятно, связано с потреблением большего количества пищи. В ходе исследования установлено, что к 240-м суткам животные I опытной группы потребляли пищи в 2,3 раза больше, чем животные контрольной группы (р<0,001). Последнее мы склонны связывать с более поздним наступлением преабсорбтивного (сенсорного) насыщения вследствие более позднего наступления рефлекторных раздражений от механорецепторов слизистой оболочки полости рта, обусловленных слабым раздражающим действием на них диспергированной пищи.
Таким образом, длительное питание диспергированной пищей вызывает изменения ацинусов околоушной слюнной железы беспородных белых крыс, которые в целом можно охарактеризовать как гипо- и атрофические. К концу периоду возмужания происходит увеличение морфометрических показателей ацинусов животных I опытной группы до значений контрольных животных.
Особенности постнатального морфогенеза внутридольковых протоков околоушной слюнной железы белых крыс при питании диспергированной пищей
Период с 2]-х по 180-е сутки характеризуется стабильными значениями площади сечения стенок и просветов вставочных протоков. При этом ЯЦО эпителиоцитов протоков, составляя у 21-суточных животных 31,84±0,61 %, существенно не изменяется у 60-суточных животных. К 120-м суткам ЯЦО уменьшается, затем этот показатель стабилизируется до 240-х суток. Период возмужания характеризуется увеличением площади сечения стенок и просветов вставочных протоков, что происходит за счет увеличения количества эпителиоцитов в стенках протоков (табл. 3 и 4).
Препубертатный период не сопровождается изменениями площади сечения стенок и диаметра исчерченных протоков, в то время как площадь сечения цитоплазмы эпителиоцитов уменьшается с 40,18±1,07 мкм2 у 21-суточных животных до 33,64±0,79 мкм2 у 60-суточных животных (р<0,001). При этом отмечается также увеличение ЯЦО эпителиоцитов с 29,12±0,62 % до 39,48±0,90 %. В пубертатный период площадь сечения и диаметр исчерченных протоков уменьшаются, однако площадь цитоплазмы эпителиоцитов и их количество на площади поперечного сечения исчерченных протоков сохраняют стабильные значения. ЯЦО эпителиоцитов уменьшается до 27,46± 0,57 %, не изменяясь до конца исследованного периода онтогенеза.
В репродуктивный период площадь сечения стенок и диаметр исчерченных протоков не изменяются на фоне увеличения количества эпителио-цитов в стенках исчерченных протоков. Площадь сечения и диаметр просветов, сохраняющие стабильные значения до 120-х суток, в репродуктивный период уменьшаются. Период возмужания характеризуется увеличением площади сечения стенок и просветов исчерченных протоков, что обусловлено увеличением площади цитоплазмы эпителиоцитов.
Период с 21-х по 180-е сутки характеризуется отсутствием различий в площади сечения стенок и диаметра внутридольковых протоков между животными контрольной и I опытной группы. Однако внутридольковые протоки 60-суточных животных 1 опытной группы имеют меньшую площадь цитоплазмы эпителиоцитов по сравнению с таковой 60-суточных контрольных животных (р<0,01). Репродуктивный период отличается большими значениями площади сечения и диаметра просветов внутридольковых протоков контрольных животных, чем соответствующие показатели животных I опытной группы. В период возмужания площадь сечения и диаметр просветов внутридольковых протоков животных, питающихся диспергированной пищей, увеличиваются, достигая значений соответствующих показателей животных контрольной группы, в то время как площадь сечения стенок внутридольковых протоков контрольных животных оказывается большей, чем у животных I опытной группы (р<0,01). Площадь сечения стенок внутридольковых протоков 240-суточных животных I опытной группы соответствует значениям, свойственным 21-суточным животным. В период с 21-х по 180-е сутки ЯЦО эпителиоцитов вставочных протоков животных контрольной и I опытной группы имеет сходные значения. Однако ЯЦО эпителиоцитов исчерченных протоков 60-суточных животных I опытной группы превышает таковое животных контрольной группы (р<0,01). В период возмужания ЯЦО эпителиоцитов внутридольковых протоков контрольных животных оказываются ниже, чем у животных I опытной группы (табл. 3).
Таблица 3
Морфометрическне показатели внутридольковых протоков околоушной слюнной железы контрольных и опытных животных в разные периоды постнаталыюго развития
Показатель 21 Контроль-60 Опыт 1-60 Контроль-120 Опыт 1-120 Контршь-18С Опыт 1-180 Опыт II-180 Кошрать-24С Опыт 1-240 Опыт П-240
5 ПР ВП 13,70±0,51 13,01±0,50 12,43±0,80 15,40±0,47х 14,02±0,79 21,16±0,96х 14,48±0,84* 23,82±1,15 26,291«,89х 28Д4± 1,40х 21,79±0,73*у
ИП 34,69±1,46 35,96±1,63 39,53±1,84 43,34±1,63х 4336±1,70 49,14±1,51х 35,87±1,23х* 46,88±1ДЗ 56,82±1,57х 60,49± 1,94х 63,76±2,13х
ОПР вп 4,16±0,08 4,01±0,08 3,91 ±0,12 4,38±0,07х 4,13±0,12 5,10±0,12х 4,20±0,12* 537±0,14у 5,72±0,10х 5,83±0,14х 5,14±0,08*У
ИП 6,75±0,15 6,62±0,14 6,98±0,16 7Л9±0Д2Х 7Д9±0,14 8,09±0,15х 6,7б±0,12х* 8,45±0,15У 9,23±0,19х 9Д8±0,19Х 8,82±0,14
КЭСП вп 6,26±0,08 6Д8±0,09 6,42±0,14 6,62±0,06х 6,29±0,09* 6,57±0,09 6,47±0,10 6,82±0,08у 6,91±0,06х 6,94±0,09х 7,01 ±0,0 Iх
ип 9,14±{),10 8,99±0,10 9,03±0,12 9,01 ±0,08 8,79±0,08 9Д8±0,10 9,22±Д10Х 9,38±0,09 9,83±0,10х 9,57±0,10 9,47±0,10
5 ЯЭ вп 11,71±0,11 9,02±0,09х 8,77±0,14х 8,15±0,07х 8,99±0,11* 9,43±0,08х 9,15±0,12 10,10±0,11*у 10,21±0,08х 9,7(Ш),10Х* 9,84±0,07*
ип 11,13±0,09 9,55±0,08х 9,47±0,10х 8,25±0,05х 8,92±0,07х* 8,87±0,06х 9,58±0,07х* 9,85±0,05*у 10,16±0,06х 9,96±0,06х 9,81 ±0,05*
ОЯЭ вп 3,85±0,02 3,38±0,02х 3,32±0,03х 3,21±0,01х 3,37±0,02* 3,49±0,02х 3,41±0,02* 3,58±0,02*у 3,61 ±0,01х 3,51±0,02х* 3,54±0,01*
ип 3,76±0,02 3,48±0,01х 3,47±0,02х ЗД4±0,01Х 3,34±0,01х* 3,35±0,01х 3,36±0,01 3,52±0,01*У 3,62±0,01Х 3,62±0,01х 3,64±0,01х
БЦЭ вп 36,42±0.81 37,83±0,88 33,64±0,78* 31,04±0,62х 33,68±0,87 34,24±1,02 32,85±0,95 34,10±0,82 44,32±1,02х 36,28±0,95* 37,67±0,86*
ип 40,18±1,07 37,82±0,69 33,64±0,79х* 31,08±0,56х 31,82±0,50 33,12±0,62 33,21±0,58 35,19±0,50+%/ 45,88±0,87х 38,65±0,64х* 38,79±0,75х*
ЯЦО Э вп 31,84±0,61 30,32±0,57 33,15±1,18 27,24±0,58х 27,31±0,60х 28,16±0,54 27,93±0,74 30,11 ±0,74 23,83±0,22х 27,98±0,60* 27,82±0,54*
ип 29,12±0,62 36,05±0,59х 39,48±0,90х* 27,62±0,46х 27,46±0,57х 28,45±0,49 29,35±0,59 29Л7±0,52 23,43±0,39х 27,94±0,45* 25,99±0,38х>4'
Примечание. ВП - вставочный проток; ИП - исчерченный проток; Б - площадь сечения (мкм ); Б - диаметр (мкм); ПР - просвет; КЭСП - количество эпителиоцитов на площади поперечного сечения стенки протока; ЯЭ - ядра энителиогнггов; ЦЭ - цитоплазма эпи-телиоцитов;х - статистически значимые отличия от предыдущего возраста (р<0,01); * - статистически значимые отличия от контрольных значений (р<0,01); у - статистически значимые отличия от значений животных I опытной группы (р<0,01).
Приведенные результаты в целом позволяют констатировать наличие отклонений в морфогенезе ацинусов околоушной слюнной железы белых крыс в период длительного питания диспергированной пищей, которые к концу исследуемого периода онтогенеза частично восстанавливаются. Значения же площади сечения стенок внутридольковых выводных протоков животных, питающихся диспергированной пищей, к концу исследованного периода онтогенеза достигают лишь значений 21-суточных животных (табл. 4).
Таблица 4
Морфометрические показатели внутридольковых протоков околоушной слюнной железы белых крыс животных контрольной и опытных групп в разные периоды развития
Возраст (сутки) показатель ГрупиаЧ Площадь сечения (мкм2) стенок внутридольковых протоков Диаметр (мкм) внутридольковых протоков
ВП ип ВП ИП
21 Контроль 310,13±7,32 4б7,58±12,40 17,19±0,23 21,47±0,31
60 Контроль 306,05±7,05 470,38±9,72 17,21 ±0,21 20,90±0,22
Опыт I 288,34±11,1 457,59±14,43 16,52±0,37 20,33±0,34
120 Контроль 261,19±4,37л 361,29±7,25х 16,06±0,14л 1В,92±0,19Х
Опыт I 270,03±7,93 369,09±7,30х 16,18±0,23 19,12±0,19х
180 Контроль 284,75±4,63х_ 378,50±6,22 16,79±0,21х 19,6040,19*
Опыт I 277,00±7,53 393,13±7,31 16,51 ±0,25 19,89±0,21
Опыт 11 306,94±7,17у 407,02±6,04* 17,28±0,22 20,37±0,18*
240 Контроль 376,40±7,87х 523,96±9,61х 19,61 ±0,2 Iх 23,32±0,23х
Опыт I 311,45±7,04х* 469,14±8,63х* 17,26±0,18* 21,51±0,20х*
Опыт II 323,85±6,05* 461,37±8,59х* 17,92±0,19* 21,42±0,21х*
Примечание. - статистически значимые отличия от предыдущего возраста (р<0,01); * - статистически значимые отличия от контрольных значений (р<0,01); у - статистически значимые отличия от значений животных I опытной группы (р<0,01).
Особенности морфогенеза околоушной слюнной железы белых крыс, питавшихся диспергированной пищей, и в последующем переведенных на питание недиспергированной пищей
После перехода от питания диспергированной пищей к питанию недиспергированной пищей (120-180-е сутки) площадь сечения и диаметр ацинусов 180-суточных животных И опытной группы превышают таковые
180-суточных животных контрольной и I опытной группы (р<0,01). Гипертрофия ацинусов животных II опытной группы обусловлена ростом площади сечения ядер и цитоплазмы сероцитов (табл. 2). При этом ЯЦО сероцитов животных II опытной группы уменьшается. В период возмужания статистически значимые различия значений площади сечения и диаметра ацииусов между 240-суточными животными всех экспериментальных групп утрачиваются. ЯЦО сероцитов 240-суточных животных II опытной группы уступает соответствующему показателю контрольных животных (р<0,01).
Вследствие увеличения количества эпителиоцитов в стенках вставочных протоков в репродуктивный период площадь сечения стенок протоков животных II опытной группы превышает таковую животных 1 опытной группы. Площадь сечения стенок исчерченных протоков 180-суточных животных II опытной группы оказывается больше таковой контрольных животных. Площадь цитоплазмы эпителиоцитов исчерченных протоков, а также площадь сечения и диаметр их ядер 180-суточных животных II опытной группы превышают таковые животных контрольной группы (р<0,01).
В период возмужания площадь сечения стенок и диаметр внутридоль-ковых протоков животных II опытной группы уступают соответствующим показателям 240-суточных контрольных животных. При этом если площадь сечения и диаметр просветов вставочных протоков 240-суточных животных II опытной группы оказываются меньше, чем у животных контрольной группы, то статистически значимые различия в этих показателях исчерченных протоков между животными всех экспериментальных групп отсутствуют. Площадь сечения цитоплазмы эпителиоцитов и их ЯЦО внутридольковых протоков животных II опытной группы уступает соответствующим показателям животных контрольной группы (табл. 3).
Для определения баланса морфофункциональных связей, отражающихся в линейных корреляциях значений исследуемых параметров, нами был проведен корреляционный анализ анатомических и морфометрических
параметров животных контрольной, I и II опытных групп. Количество корреляций по критерию Фишера животных контрольной группы значительно превышает таковые животных I и II опытных групп на всем исследуемом периоде постнатального онтогенеза (р<0,05). Значимые различия в структуре корреляций между животными контрольной и I опытной группы обнаруживаются лишь на ранних этапах постнатального онтогенеза.
Таким образом, питание диспергированной пищей вызывает гипо-и атрофические изменения ткани околоушной слюнной железы, а также вносит дисбаланс в структуру морфофункциональных связей организма животных. Перевод животных с питания диспергированной пищей на питание не-диспергированной пищей приводит к уменьшению числа корреляционных связей по сравнению с животными контрольной и I опытной группы, что свидетельствует о морфофункциональных изменениях, обусловленных изменением физических свойств потребляемой пищи.
Выводы
1. Морфогенез ацинусов околоушной слюнной железы беспородных белых крыс в целом характеризуется увеличением их размеров на протяжении 240-ка суток постнатального онтогенеза, а внутридольковых протоков характеризуется двухэтапностью динамики. Ранний постнатальный онтогенез характеризуется уменьшением площади сечения стенок протоков и увеличением просветов, на более поздних этапах оба показателя статистически значимо возрастают.
2. В морфогенезе ацинусов околоушной слюнной железы беспородных белых крыс, длительно питающихся диспергированной пищей, выделяются два неравномерных по продолжительности этапа динамики изменений их морфометрических параметров:
- первый этап (21-180-е сутки) характеризуется увеличением ядерно-цитоплазматического отношения сероцитов и уменьшением размеров ацину-сов;
- второй этап (180-240-е сутки) характеризуется увеличением размеров ацинусов и снижением ядерно-цитоплазматического отношения сероцитов.
3. Морфогенез внутридольковых протоков в условиях питания животных диспергированной пищей носит монотонный характер: в период прогрессивного роста с 21-х по 180-е сутки питание диспергированной пищей не оказывает существенного влияния на морфометрические параметры структур внутридольковых протоков. В последующем (180-240-е сутки) происходит уменьшение их значений.
4. Перевод животных, длительно питавшихся диспергированной пищей, на обычный корм на 120-е сутки развития сопровождается повышением значений морфометрических параметров секреторных концевых отделов околоушных слюнных желез до уровня контрольных. Морфометрические параметры внутридольковых выводных протоков возрастают, но остаются статистически значимо меньшими по сравнению с контрольными животными.
Практические рекомендации
1. Результаты исследования рекомендуется учитывать при разработке пищевых технологий и рационов кормления лабораторных, домашних и сельскохозяйственных животных.
2. Данные о морфофункциональных изменениях околоушной слюнной железы в норме и при потреблении диспергированной пищи могут быть использованы как информационная основа для решения научных задач в области сравнительной, возрастной морфологии и адаптации физиологии органов пищеварительной системы позвоночных животных.
Список работ, опубликованных по теме диссертации
1. Семенова, М.А. Морфометрические показатели околоушной слюнной железы белых крыс в условиях длительного потребления диспергированной нищи / В.Ф. Сыч, М.А. Семенова, Т.И. Кузнецова // Морфологические ведомости. - 2008. - № 1-2. - С. 107-109.
2. Семенова, М.А. Гистоморфологические особенности околоушной слюнной железы белых крыс при длительном питании диспергированной пищей / В.Ф. Сыч, М.А. Семенова // Морфологические ведомости. -2009.-№1-2.-С. 51-53.
3. Семенова, М.А. Влияние длительного питания диспергированной пищей на морфологические особенности околоушной слюнной железы белых крыс / М.А. Семенова, А.Н. Овсянникова, В.Ф. Сыч // Вестник новых медицинских технологий. - 2009. - Т. XVI, № 3. - С. 226-227.
4. Семенова, М.А. Особенности морфологии ацинусов околоушной слюнной железы белых крыс в условиях длительного питания диспергированной пищей / В.Ф. Сыч, М.А. Семенова, Е.П. Дрождина // Морфология. - 2009. - Т. 136, №4. - С. 134-135.
5. Семенова, М.А. Некоторые морфометрические показатели околоушной слюнной железы белых крыс в условиях длительного потребления диспергированной пищи / В.Ф. Сыч, М.А. Семенова // Материалы региональной научно-практической конференции «Экология, город и мы». - Ульяновск: УлГУ, 2009.-С. 86-90.
6. Семенова, М.А. Морфологическая адаптация околоушной слюнной железы белых крыс к длительному питанию диспергированной пищей / В.Ф. Сыч, М.А. Семенова // Материалы III Всероссийской конференции с международным участием «Медико-физиологические проблемы экологии человека». - Ульяновск: УлГУ, 2009. - С. 290-292.
7. Семенова, М.А. Морфометрические показатели околоушной слюнной железы белых крыс в условиях длительного потребления диспергированной пищи / В.Ф. Сыч, М.А. Семенова //. Материалы II конференции молодых ученых медико-биологической секции Поволжской ассоциации государственных университетов. - Ульяновск, 2009. - С. 122-124.
Подписано в печать 14.02.11 Формат 60x84/16. Гарнитура Times New Roman. Усл. п.л. 1,0. Тираж 100 экз. Заказ Ш215&
Отпечатано в Издательском центре Ульяновского государственного университета 432000, г. Ульяновск, ул. Л. Толстого, 42
Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Семенова, Марина Анатольевна
ВВЕДЕНИЕ.
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1. Морфофункциональная характеристика околоушной слюнной железы млекопитающих.
1.2. Морфологические особенности постнатального развития околоушной слюнной железы.
1.3. Влияние факторов внешней среды и экспериментальных воздействий на морфофункциональные особенности околоушной слюнной железы млекопитающих.
1.4. Особенности развития и функционирования околоушной слюнной железы в связи с различиями характера питания.
2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.!.
3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.
3.1. Постнатальный морфогенез околоушной слюнной железы в норме.
3.1.1. Морфогенез адинусов околоушной слюнной железы.
3.1.2. Морфогенез внутридольковых выводных протоков околоушной слюнной железы.
3.2. Особенности постнатального морфогенеза ацинусов околоушной слюнной железы белых крыс при питании диспергированной пищей.
3.3. Особенности постнатального морфогенеза внутридольковых протоков околоушной слюнной железы белых крыс при питании диспергированной пищей.
3.4. Особенности морфогенеза околоушной слюнной железы белых крыс, питавшихся диспергированной пшцей, и в последующем переведенных на питание недиспергированной пищей.
3.4.1 Корреляционный анализ анатомических и морфометрических параметров животных контрольной, I и II опытных групп в постнатальном морфогенезе.
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ СОБСТВЕННЫХ
ИССЛЕДОВАНИЙ.
ВЫВОДЫ.
Введение Диссертация по биологии, на тему "Морфометрические особенности постнатального развития околоушной слюнной железы крыс в условиях питания диспергированной пищей"
Актуальность работы. В классических опытах И.П. Павлова по изучению секреторной функции слюнных желез показано, что количество выделяемой слюны определяется химическим составом и физическими свойствами пищи и регулируется специальными рефлексами в ответ на разные виды механической и химической возбудимости (Павлов И.П., 1949). От физических свойств пищи зависит также состав секрета слюнных желез (ikawa М. et al., 1991). Влияние консистенции пищи на деятельность околоушной слюнной железы изучалось, главным образом, с точки зрения ее влияния на размеры и строение сероцитов и эпителиоцитов и их секреторную функцию (Wilborn W.H., Schneyer С.А., 1970; Scott J., Gunn D.L., 1991, 1994; Leal S.C. et al., 2003). Обнаруженные изменения трактовались авторами как следствие угнетения физиологического рефлекторного процесса синтеза слюны. В ряде исследований показано изменение числа рецепторов на мембране сероцитов для нейромедиаторов в слюнных железах взрослых крыс, находящихся на жидкой молочной диете (Ekström J., 1973; Schneyer
C.А. et al., 1987 б; Johnson D.A., Cardenas H.L., 1993), а также изменение ферментативной активности их слюны (Johnson D.A., 1982; Zelles Т. et al., 1989), снижение общей массы железы (Johnson, D.A., 1982; Scott J., Gunn
D.L., 1994). В то же время результаты исследования W.H. Wilborn и С.A. Schneyer (1970) свидетельствуют о том, что содержание 180-суточных крыс в течение 2 недель на жидкой диете не влияет на морфологические особенности вставочных и исчерченных протоков. Исследованиями P.N. Baer, T.N. Tarpley (1976) показано, что содержание крыс на жидкой диете с 13-го по 365-й день постнатального онтогенеза не вызывает каких-либо морфологических изменений клеточных структур слюнных желез. Перевод животных с длительного питания жидкой пищей на диету, состоящую из целлюлозы и твердой пищи, также сопровождалось не однозначными результатами (Schneyer С.А., Hall H.D., 1976; Humphreys-Beher M.G., Schneyer C.A., 1987).
Исследованиями последнего десятилетия убедительно продемонстрировано существенное изменение структуры питания не только человека, но и домашних, а также сельскохозяйственных и лабораторных животных (Покровский В.И., 2002; Kalka S.P., 1997; Robinson М.К., 1999; Center S.A., 2000; Anderson R., 2001). Потребление быстро съедаемой, мелкоизмельченной и пастообразной пищи, не требующей длительного пережевывания и сокращающей общее время питания (Уголев A.M., 1991; Волгарев М.Н. и др., 1997; Kimua Y., 1996; Davis С.М., 1997), нарушает ассимиляцию биологически ценных веществ, что способствует снижению адаптационно-компенсаторных возможностей организма и развитию патологических процессов (Graham H.N., 1992; Jain А.К., 1993; Fuhrman В., 1997; Hollinan P.C., 1997). С учетом этого явления, а также противоречивости результатов, полученных в предыдущих исследованиях, научная задача по изучению влияния физических свойств пищи на структурно-функциональные показатели околоушных слюнных желез остается актуальной.
Цель и задачи исследования. Целью настоящей работы явилось установление особенности постнатального морфогенеза околоушной слюнной железы белых крыс на основе морфометрии ее структурных элементов при длительном питании диспергированной пищей.
Достижение указанной цели основывалось на решении следующих задач:
1. Определить динамику морфометрических показателей тканевых и клеточных структур околоушной слюнной железы в постнатальном онтогенезе белых крыс.
2. Установить морфометрические особенности постнатального морфогенеза секреторных концевых отделов околоушной слюнной железы белых крыс при длительном питании диспергированной пищей.
3. Провести анализ возрастной динамики морфометрических показателей структур внутридольковых выводных протоков околоушной слюнной железы в условиях длительного питания диспергированной пищей.
4. Выявить особенности морфогенеза околоушной слюнной железы белых крыс, длительно питавшихся диспергированной пищей, с последующим переходом на обычный рацион на основе ее морфометрических параметров.
Научная новизна. В настоящем исследовании автором впервые с использованием приемов количественного морфометрического анализа на клеточном и тканевом уровнях экспериментально обосновано морфогенетическое значение фактора физических свойств пищи в развитии околоушной слюнной железы в постнатальном онтогенезе белых беспородных крыс. На тканевом уровне установлено, что длительное питание диспергированной пищей вызывает обратимые морфологические изменения ацинусов железы, выражающиеся гипотрофией и последующей атрофией, сменяющиеся к периоду возмужания восстановлением их размеров до значений контрольных животных. Просветы выводных внутридольковых протоков сужаются в репродуктивном периоде онтогенеза животных, а толщина их стенок уменьшается к периоду возмужания. На клеточном уровне структурно-функциональные изменения железы опытных животных на протяжении большего периода постнатального развития характеризуются значительным снижением функциональной активности сероцитов, определяемой по ядерно-цитоплазматическому отношению, с последующим повышением к периоду возмужания.
Научно-практическая значимость работы. Результаты настоящей работы существенно расширяют представления о постнатальном развитии околоушной слюнной железы белых крыс, а также ее адаптивных преобразованиях в процессе развития и жизнедеятельности организма. Система новых данных об особенностях морфогенеза околоушной слюнной железы при потреблении диспергированной пищи представляет интерес для теоретических и прикладных разделов морфологии животных и биологии развития. Полученные данные могут быть использованы для разработки практических рекомендаций по профилактике функциональных расстройств и патологий пищеварительного тракта. Результаты исследования представляют интерес как информационная основа для разработки конкретных способов коррекции морфогенеза органов пищеварительного канала животных. Данные о возрастных изменениях околоушной слюнной железы, особенностях ее перестройки при длительном потреблении диспергированной пищи и адаптации к питанию пищей различной консистенции могут быть использованы при разработке прикладных проблем клинической гастроэнтерологии, диетологии, а также при подготовке к переизданию учебных пособий по сравнительной и возрастной морфологии, адаптивной физиологии животных.
Положения, выносимые на защиту.
1. Длительное питание диспергированной пищей у беспородных белых крыс в фазу интенсивного роста вызывает снижение морфометрических параметров структурных тканевых элементов околоушной слюнной железы и функциональной активности сероцитов.
2. Перевод опытных животных после длительного питания диспергированной пищей на обычный рацион характеризуется полной обратимостью значений морфометрических параметров контрольных животных в концевом отделе и частичной - во внутридолысовых выводных протоках.
Апробация работы. Основные положения и результаты исследования представлены на VI Всероссийском съезде анатомов, гистологов и эмбриологов (Саратов, 2009), III Всероссийской конференции с международным участием «Медико-физиологические проблемы экологии человека» (Ульяновск, 2009), III конференции молодых ученых медико-биологической секции Поволжской ассоциации государственных университетов (Ульяновск, 2009), Региональной научно-практической конференции «Экология, город и мы» (Ульяновск, 2009).
Публикации. По теме диссертации опубликовано 7 научных работ, из них 4 - в журналах по Перечню, рекомендованному ВАК РФ для опубликования результатов кандидатских и докторских диссертаций.
Внедрение. Результаты диссертации внедрены в программу обучения студентов медицинского факультета Института медицины, экологии и физической культуры Ульяновского государственного университета специальностей «Лечебное дело», «Педиатрия» по курсам «Гистология, цитология и эмбриология» и «Патологическая анатомия» на кафедре морфологии, а также студентов Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии ветеринарного факультета на кафедре морфологии, физиологии и фармакологии по дисциплинам «Гистология, цитология и эмбриология», «Морфология и физиология животных» и биотехнологического факультета на кафедре частной зоотехнии и технологии животноводства по дисциплине «Звероводство».
Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, результатов собственных исследований, их обсуждения, выводов, библиографического списка. Текст диссертации изложен на 148 страницах машинописного текста, иллюстрирован 32 рисунками и 9 таблицами. Список использованной литературы содержит 285 работ, из которых 104 отечественных и 181 иностранных авторов.
Заключение Диссертация по теме "Клеточная биология, цитология, гистология", Семенова, Марина Анатольевна
1. Результаты исследования рекомендуется учитывать при разработке пищевых технологий и рационов кормления лабораторных, домашних и сельскохозяйственных животных.
2. Данные о морфофункциональных изменениях околоушной слюнной железы в норме и при потреблении диспергированной пищи могут быть использованы как информационная основа для решения научных задач в области сравнительной, возрастной морфологии и адаптации физиологии органов пищеварительной системы позвоночных животных.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Семенова, Марина Анатольевна, Оренбург
1. Абуладзе, К.С. Изучение рефлекторной деятельности слюнных и слезных желез / К.С. Абуладзе. М.: Изд-во Академии мед. наук СССР, 1953. -108 с.
2. Автандилов, Г.Г. Медицинская морфометрия. Руководство / Г.Г. Автандилов. М.: Медицина, 1990. - 384 с.
3. Анисимова, Е.В. Морфологические особенности микроциркуляторного русла мышц челюстного аппарата при гиподинамии в раннем постнатальном онтогенезе белых крыс: автореф. дис. канд. биол. наук: 03.00.25 / Е.В. Анисимова. Саранск, 2005. - 23 с.
4. Афанасьев, В.В. Значение синтопии лимфатических узлов и паренхимы околоушной слюнной железы в развитии лимфогенного паротита / В.В. Афанасьев, В.И. Виноградов // Стоматология. 1985. - Т. 64, № 6. - С. 30-41.
5. Бабаева, А.Г. Изменения в функционировании околоушной слюнной железы морской свинки в процессе регенерации / А.Г. Бабаева // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1957. - Т. 43, № 1. - С. 92-95.
6. Бабаева, А.Г. Регенерация околоушной слюнной железы морской свинки / А.Г. Бабаева // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -1957.-Т. 43, №3.-С. 95-98.
7. Бабаева, А.Г. Регенерация околоушной слюнной железы крысы / А.Г. Бабаева // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -1960. Т. 50, № 10. - С. 113-118.
8. Бабаева, А.Г. Структура регенерирующей околоушной слюнной железы крыс / А.Г. Бабаева, P.C. Бургилова // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1960. - Т. 51, № 5. - С. 92-94.
9. Бабаева, А.Г. Топография слюнных и слезных желез крысы / А.Г. Бабаева // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1962. -Т. 54, №12.-С. 114-115.
10. Бабаева, А.Г. Восстановительная способность подчелюстной и околоушной слюнных желез крыс / А.Г. Бабаева // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1964. — Т. 57, № 6. - С. 99-102.
11. Бабаева, А.Г. Иммунологические механизмы регуляции восстановительных процессов / А.Г. Бабаева. -М.: Медицина, 1972. 159 с.
12. Бабаева, А.Г.Структура, функция и адаптивный рост слюнных желез / А.Г. Бабаева, Е.А. Шубникова. -М.: МГУ, 1979. 191 с.
13. Бабаева, А.Г. Иммунология процессов адаптивного роста, пролиферации и их нарушений / А.Г. Бабаева, Е.А. Зотиков. М.: Наука, 1987. - 206 с.
14. Бердников, П.П. Электронно-микроскопическая характеристика околоушной слюнной железы крупного рогатого скота / П.П. Бердников, И.А. Чекарова // Аграрный вестник Урала. 2009. - Т. 61, № 7. - С. 71-73.
15. Бердников, П.П. Сравнительная морфометрическая гистология околоушной слюнной железы жвачных и всеядных / П.П. Бердников, И.А. Чекарова // Аграрный вестник Урала. 2009. - Т. 63, № 9. - С. 70-71.
16. Биров B.B. Гистохимические особенности активности ферментов эпителия выводных протоков слюнных желез / В.В. Биров // Поджелудочная и слюнные железы: тезисы докладов всесоюзного симпозиума. Львов, 1975. -С. 14-15.
17. Боровиков, В.П. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере: для профессионалов / В.П. Боровиков. СПб.: Питер, 2003. - 688 с.
18. Вариантная топография околоушной слюнной железы, значимая при лечении слюнно-каменной болезни / В.В. Пирогова и др. // Экспериментальная и клиническая медицина. 2008. - Т. 1, № 1. - С. 186193.
19. Варшавский А.И. Состояние регионального кровообращения околоушной железы и коррекция его нарушений при хроническом интерстициальном паротите / А.И. Варшавский, Т.А. Губерская, К.И. Панченко // Стоматология. 1992. - Т. 71, № 1. - С. 40-44.
20. Васильев, Н.В. Морфологические особенности околоушной и подчелюстной слюнных желез после неонатальной тимэктомии / Н.В. Васильев, Н.М. Тихинова, М.Н. Зобнина // Проблемы эндокринологии. -1991.-Т. 34, №4.-С. 46-49.
21. Васильев, Н.В. Секреторная и иммунологическая функции околоушной и подчелюстной слюнных желез после тимэктомии / Н.В. Васильев, Н.М.
22. Тихинова, B.B. Яковлева, М.Н. Зобнина // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. — 1991. Т. 112, № 7. - С. 69-72.
23. Возрастные изменения секреторной функции слюнных желез / М.М. Пожарницкая и др. // Стоматология. 1992. - Т. 71, № 3-6. - С. 53-54.
24. Волгарев, М.Н. Питание в патогенезе, терапии и профилактике заболеваний системы пищеварения / М.Н. Волгарев, В.А. Тутельян, М.А. Самсонов // Вестник Российской академии наук. 1997. - № 11. - С. 18-21.
25. Газаль, A.C. Морфологические основы совершенствования пункции околоушной слюнной железы (экспериментально-клиническое исследование): автореф. дис. канд. мед. наук: 03.00.25 / A.C. Газаль. -Иркутск, 2007. 22 с.
26. Герловин, Е.Ш. Гистогенез и дифференцировка пищеварительных желез /Е.Ш. Герловин. -М.: Медицина, 1978. -264 с.
27. Григорьев, И.В. Белковый состав смешанной слюны человека: механизмы психофизиологической регуляции / И.В. Григорьев, Е.А. Уланова, A.C. Богданов // Вестник РАМН. 2004. - № 7. - С. 36-47.
28. Гусак, П.П. Пролиферация клеток больших слюнных желез крыс при репаративной регенерации / П.П. Гусак / Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1966. - Т. 62, № 10. - С. 106-109.
29. Денисов, А.Б. Механизмы патологических и приспособительных процессов при заболевании слюнных желез: дис. . док. мед. наук: 14.00.16 / Аркадий Борисович Денисов. Москва, 1995. — 335 л.
30. Денисов, А.Б. Слюнные железы тест-объект для оценки биосовместимости в стоматологии / А.Б. Денисов / Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2001. - Т. 131, № 2. - С. 124131.
31. Дрождина, Е.П. Влияние диспергированной пищи на морфологические особенности ободочной кишки белых крыс в раннем постнатальном онтогенезе: автореф. дис. канд. биол. наук: 16.00.02 / Е.П. Дрождина. -Саранск, 2006. 22 с.
32. Елисеев, В.Г. Основы гистологии и гистологической техники / В.Г. Елисеев, М.Я. Субботина, К.И. Афанасьев. М.: Медицина, 1967. - 268 с.
33. Калинин, В.И. Электронномикроскопическое исследование плазматических мембран клеток слюнных желез у белых крыс / В.И. Калинин, А.И. Неворотин // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1973. - Т. 65, № 7. - С. 85-90.
34. Келасьева, Н.В. Особенности постнатального морфогенеза мышечной оболочки пищевода белых крыс в условиях длительного потребления диспергированной пищи: автореф. дис. канд. биол. наук: 16.00.02 / Н.В. Келасьева. Ульяновск, 2008. - 22 с.
35. Клишов, A.A. Проблема ядерно-цитоплазматических отношений (морфологический аспект) / A.A. Клишов // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1967. - Т. 50, № 2. - С. 106-117.
36. Курносова, H.A. Постнатальный морфогенез челюстной мускулатуры при пониженной функциональной нагрузке: автореф. дис. канд. биол. наук: 16.00.02 / H.A. Курносова. Саранск, 2002. - 25с.
37. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте / И.П. Западнюк и др.. Киев: Вища школа, 1983. - 383 с.
38. Лейтес, А.Л. Особенности окольного кровотока околоушной слюнной железы после выключения сосудов на фоне ее асептического воспаления в эксперименте // А.Л. Лейтес, В.Ю. Шейман // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1970. - Т. 58, № 2. - С. 44-50.
39. Леонтьева, Г.Р. Об адренергической иннервации слюнных желез млекопитающих / Г.Р. Леонтьева, В.А. Говырин // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1972. - Т. 63, № 10. - С. 40-45.
40. Макроанатомическая характеристика околоушной слюнной железы человека / A.C. Газаль и др. // Фундаментальные исследования. 2005. - № 9.-С. 83-84.
41. Марченко, Я.В. Структурная организация микрососудистого русла лицевой области: автореф. дис. канд. мед. наук: 14.00.02, 03.00.25 / Я.В. Марченко. Саранск, 2009. - 25 с.
42. Махинько, В.И. Константы роста и функциональные периоды развития в постнатальной жизни белых крыс / В.И. Махинько, В.Н. Никитин // Молекулярные и физиологические механизмы возрастного развития.- Киев: Наукова думка, 1975. С. 308-326.
43. Могильная, Г.М. Гистохимическое изучение полисахаридов слюнных желез млекопитающих / Г.М. Могильная // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1966. - Т. 50, № 3. - С. 24-28.
44. Молдавская, A.A. Современные тенденции в изучении структурных преобразований пищеварительной системы в зависимости от типов питания в эксперименте / A.A. Молдавская // Рациональное питание, пищевые добавки и биостимуляторы. — 2004. № 1. - С. 62-66.
45. Молдавская, A.A. Закономерности формирования пищеварительной системы в онтогенезе и при экспериментальном моделировании / A.A. Молдавская // Морфология. 2006. - Т. 129.№ 4. - С. 86-87.
46. Нестерин, М.Ф. Методические подходы к изучению парентерального и зондового питания в эксперименте / М.Ф.Нестерин, Л.Ф.Порядков // Вестник АМН СССР, 1986. № 11. - С. 74-79.
47. Нечаева, Н.В. Динамика синтеза белка в клетках внутридольковых протоков околоушной слюнной железы крысы в пищевом цикле / Н.В. Нечаева, В.Н. Фатеева // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1973. -Т. 65, № 12.-С. 60-64.
48. Нечаева, Н.В. Исследование содержания аминокислот в клетках околоушной слюнной железы с ритмичной функцией // Н.В. Нечаева, В.И. Фатеева // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1974. -Т. 78, № 9. - С. 47-49.
49. Новикова, О.Н. Нарушение функции слюнной железы на фоне развития экспериментальных нейродистрофий / О.Н. Новикова // Поджелудочная и слюнные железы: тезисы докладов всесоюзного симпозиума. Львов, 1975. -С. 105.
50. Обнаружение околочасового ритма синтеза белка в биоптатах желез человека / В.Я. Бродский и др. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1984. - Т. 97, № 5. - С. 612-314.
51. Об участии слюнных желез в регуляции моторно-секреторной и экскреторной деятельности желудка / В. Д. Суходоло и др. // Фундаментальные проблемы гастроэнтерологии: тезисы докладов XII всесоюзной конференции. Львов, 1977.-С. 136-137.
52. Овсепян, A.A. Сравнительная характеристика регенерации слюнных желез у некоторых млекопитающих при ее стимуляции / A.A. Овсепян // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1971. - Т. 71, № 3. -С. 98-101.
53. Околочасовой ритм 3',5'-цАМФ в срезах околоушной железы крысы / К.Н. Ярыгин и др. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1979.-Т.88, №12.-С.711-712.
54. Особенности кровоснабжения околоушной слюнной железы / В.В. Пирогова и др. // Экспериментальная и клиническая медицина. 2008. — Т. 1, № 1.-С. 181-186.
55. Павлов, И.П. Полное собрание сочинений. Т. 3. / И. П. Павлов. М.: АН СССР, 1949.-605 с.
56. Павлова, Г.Т. Структура слюнных желез после резекции поджелудочной железы / Г.Т. Павлова // Пищеварительные и эндокринные железы после резекции поджелудочной железы; под ред. Р.И. Поляка. Ставрополь. -1977. - С. 15-19.
57. Пачес, А.И. Лечение опухолей околоушных слюнных желез / А.И. Пачес. М.: Медицина, 1968. 207 с.
58. Покровский, В.И. Политика здорового питания. Федеральный и региональный уровни / В.И. Покровский, Г.А. Романенко, В.А. Княжев. -Новосибирск: СУИ, 2002. 19 с.
59. Пузырев, A.A. Адаптация организма к действию экологических факторов на клеточном и субклеточном уровнях / A.A. Пузырев, В.Ф. Иванова, В.Г. Маймулов // Морфология. 1997. - Т. 112, № 4,- С. 23-28.
60. Реброва, О.Ю. Статистический анализ медицинских данных. Применение прикладных программ 81айзйса / О.Ю. Реброва. М.: МедиаСфера. - 2002. - 312 с.
61. Савицкая, Л.А. Эпителий околоушной слюнной железы человека в онтогенезе и эксперименте у животных: автореф. дис. канд. мед. наук: 773 / Л.А. Савицкая. Москва, 1970. - 20 с.
62. Сазама, Л. Болезни слюнных желез / Л. Сазама. — Прага, 1971. 252 с.
63. Сай, В.Г. Функциональная морфология артериального русла больших слюнных желез в условиях измененного кровообращения: автореф. дис. канд. мед. наук: 14.751 / В.Г. Сай. Львов, 1971. - 19 с.
64. Санжапова, А.Ф. Особенности постнатального морфогенеза слизистой оболочки фундального отдела желудка белых крыс при длительном потреблении диспергированной пищи: автореф. дис. канд. биол. наук: 16.00.02 / А.Ф. Санжапова. Ульяновск, 2008. - 22с.
65. Саркисов, Д.С. Воспроизведение болезней человека в эксперименте / Д.С. Саркисов, П.И. Ремезов. М.: Медицина, 1960. - 680 с.
66. Свиридова, И.К. Внутриорганное лимфатическое русло околоушной слюнной железы человека / И.К. Свиридова // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1970. - Т. 59, № 12. - С. 10-18.
67. Свиридова, И.К. Внутриорганная лимфатическая система околоушной и подчелюстной слюнных желез человека: автореф. дис. канд. мед. наук: 751 / И.К. Свиридова. Москва, 1972. - 26 с.
68. Суходоло, В.Д. Периодическая деятельность главных пищеварительных желез / В.Д. Суходоло, И.В. Суходоло. Томск: Изд-во Томского ун-та. — 1987.- 152 с.
69. Суходоло, И.В. Влияние экзогенной активации киногенеза на функциональную морфологию фундальных желез желудка в эксперименте / И.В. Суходоло // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -1985. Т. 100, № 11. - С. 528-530.
70. Сыч, В.Ф. Влияние питания диспергированной пищей на морфогенез слизистой оболочки желудка крыс / В.Ф. Сыч, А.Ф. Санжапова, Ю.Н. Кондратенко // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2007. - Т. 17,№ 1. - С. 38-42.
71. Сыч, В.Ф. Некоторые морфометрические показатели двенадцатиперстной кишки белых крыс после длительного потребления диспергированной пищи / В.Ф. Сыч, O.A. Овсянникова, С.М. Слесарев // Морфологические ведомости. 2005. — № 3-4. - С. 97-99.
72. Ткачев, Е.З. Секреция и ферментовыделение слюнных желез у свиней / Е.З. Ткачев // Поджелудочная и слюнные железы: тезисы докладов всесоюзного симпозиума. — Львов, 1975. С. 142-143.
73. Уголев, A.M. Пищеварение и его приспособительная эволюция / A.M. Уголев. -М.: Высш. шк., 1961.-306 с.
74. Уголев, A.M. Адаптация пищеварительной системы / A.M. Уголев, Н.М. Тимофеева, A.A. Груздков / Физиология адаптационных процессов. -М.: Наука, 1986. С. 371-480.
75. Уголев, A.M. Теория адекватного питания и трофология /A.M. Уголев. -СПб.: Наука, 1991.-270 с.
76. Федоров, Ю.А. Влияние возраста и функционального состояния щитовидной железы на секрецию слюны у крыс / Ю.А. Федоров, А.Д. Луканева // Поджелудочная и слюнные железы: тезисы докладов всесоюзного симпозиума. Львов, 1975. - С. 147-148.
77. Ферментовыделительная функция слюнных желез в норме и при патологии / А.П. Левицкий и др. // Фундаментальные проблемы гастроэнтерологии: тезисы докладов XII всесоюзной конференции. Львов, 1977.-С. 158-159.
78. Фоменкова, Т.Е. Цитологический анализ реактивных изменений больших слюнных желез при нарушении оттока секрета: автореф. дис. канд. мед. наук: 14.00.23 / Т.Е. Фоменкова. Ленинград, 1975. - 20 с.
79. Чучмай, Г.С. Реакция смешенной слюны человека в зависимоти от состояния зубочелюстной системы / Г.С. Чучмай, В.В. Пинчук, Л.Д. Чучмай // Фундаментальные проблемы гастроэнтерологии: тезисы докладов XII всесоюзной конференции. Львов, 1977. - С. 292-293.
80. Хесин, Я.Е. Размеры ядер и функциональное состояние клеток / Я.Е. Хесин. М.: Медицина, 1967. - 423 с.
81. Цой, К.Г. Морфофункциональный анализ реакции околоушной слюнной железы при нарушении ее симпатической иннервации / К.Г. Цой, Ю.К. Елецкий, Н.В. Нечаева // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1974. -Т. 70,№5.-С. 68-73.
82. Цой, К.Г. Ультраструктура и функция околоушных слюнных желез крысы в норме / К.Г. Цой, Н.В. Нечаева, Ю.К. Елецкий // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1974. - Т. 67, № 7. - С. 69-75.
83. Цыганова, H.A. Особенности постнатального морфогенеза мышечной оболочки тощей кишки белых крыс при питании диспергированной пищей: автореф. дис. канд. биол. наук: 16.00.02 / H.A. Цыганова. Ульяновск, 2009.-25 с.
84. Шубникова, Е.А. Гистохимические исследования околоушных слюнных желез крыс в процессе их развития / Е.А. Шубникова, М.З. Чунаева // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1966. - Т. 51, № 7. - С. 18-23.
85. Шубникова, Е.А. Цитология и цитофизиология секреторного процесса / Е.А. Шубникова. -М.: Издат-во Моск. ун-та, 1967. 116 с.
86. Шубникова, Е.А. Секреция желез / Е.А. Шубникова, Г.Ф. Коротысо. -М.: Изд-во Моск. ун-та, 1986. 131с.
87. Ягупов, Н.Ф. О строении нервного аппарата главного выводного протока околоушной сшонной железы человека / Н.Ф. Ягупов // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1974. - Т. 66, № 6. - С. 13-17.
88. Adrienn, В. Examination of amylase secretion in rat parotid gland / B. Adrienn Budapest, 2006. - 15p.
89. Amylase secretion from rat parotid glands as dependent on co-operation between sympathetic and parasympathetic nerves / B. Asking et al. // Experientia. 1979. - Vol. 35. - P. 1336-1337.
90. Anderson, D.J. Periodontal mechanoreceptors and parotid secretion in animals and man / D.J. Anderson, M.P. Hector // J Dent Res. 1987. - Vol. 66, № 2. - P. 518-523.
91. Anderson, D.J. The possible relation between mastication and parotid secretion in the rabbit / D.J. Anderson, M.P. Hector, R.W. Linden // J. Physiol. -1985.-Vol. 364.-P. 19-29.
92. Anderson, L.C. Advantages of burst stimulation for inducing sympathetic salivary secretion in rats / L.C. Anderson, J.R. Garrett, G.B. Proctor // Quarterly Journal of Experimental Physiology. 1988. - Vol. 73, № 6. - P. 1025-1028.
93. Anderson, R. Potential antioxidant effects of zinc and chromium supplementation in people with type 2 diabetes mellitus / R. Anderson, A. Roussel, N. Zouari // J. Am. Coll. Nutr. 2001. - Vol. 20; № 3. - P. 212-218.
94. Asking, B. Amylase in rat parotid saliva on prolonged parasympathetic stimulation / B. Asking, G. Clarce, G.B. Proktor // J. Physiol. 1987.- Vol. 390. -P. 171.
95. Asking, B. Degeneration secretion of amylase from the parotid gland of the rat / B. Asking, N. Emmelin, P. Gjorstrup // Quarterly Journal of Experimental Physiology. 1982. - Vol. 67, № 1. - P. 1-6.
96. Asking, B. Parasympathetic activation of amylase secretion in the intact and sympathetically denervated rat parotid gland / B. Asking, G.B. Proctor // Quarterly Journal of Experimental Physiology. 1989. - Vol. 74. - P. 45-52.
97. Association of salivary flow rates with maximal bite force / C.-K. Yeh et al. //J Dent Res. -2000. Vol. 79, № 8. - P. 1560-1565.
98. Baer, P.N. Long-term effects of a liquid diet on salivary glands, periodontium and palatal keratinization / P.N. Baer, T.N. Tarpley // J Dent Res. 1976. - Vol. 55, №3.-P. 549.
99. Bailey, C.B. Saliva secretion and its relation to feeding in cattle / C.B. Bailey, C.C. Balch // British Journal of Nutrition. 1961. - Vol. 15, № 3. - P. 371-382.
100. Barka, T. Secretory behavior of hypertrophic and hyperplastic salivary gland / T. Barka, G.T. Burke // The Histochemical Journal. 1977. - Vol. 9, № 4. - P. 453-466.
101. Baum, B.J. Evaluation of stimulated parotid saliva flow rate in different age groups / B.J. Baum // J Dent Res. 1981. - Vol. 60, № 7. - P. 1292-1296.
102. Bondi, A.M. The hare parotid gland: ultrastructure and histochemistry of acinar and ductal cells / A.M. Bondi, G. Menghi, L. Marchetti // Biol Struct Morphog. 1992. - Vol. 4, № 3. - P. 69-77.
103. Brodsky, V.Ya. Circahoralian (ultradian) cellular rhythms: initial studies and some results / V.Ya. Brodsky // Russian Journal of Developmental Biology. — 2000. Vol. 31, № 6. - P. 345-353.
104. Brodsky, V.Ya. Protein synthesis rhythm / V.Ya. Brodsky // Journal of Theoretical biology. 1975. - Vol. 55, № 1. - P. 167-200.
105. Buchner. A. Effect of prolonged food reduction on the rat parotid gland and exocrine pancreas / A. Buchner, L.M. Sreebny // J. Nutr. 1969. - Vol. 100, № 6. - P. 655-663.
106. Burgess, L.K. Cell population changes during atrophy and regeneration of rat parotid gland / L.K. Burgess, I. Dardick // Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology, Oral Radiology, and Endodontology. 1998. - Vol. 85, № 6. - P. 699706.
107. Cardesa, A. Pathology of the Head and Neck / A. Cardesa, P.J. Slootweg. -Springer Berlin Heidelberg, 2006. 316 p.
108. Carpen, E. Histological and histochemical study of rat salivary glands during their postnatal development / E, Carpen, V.V. Papilian // Morphol Embryol (Bucur). 1980. - Vol. 26, № 3. - P. 259-264.
109. Carter, R.R. The effect of feeding frequency and meal size on amounts of total and parotid saliva secreted by sheep / R.R. Carter, O.B. Allen, W.L. Grovum // British Journal of Nutrition. 1990. - Vol. 63, № 2. - P. 305-318.
110. Castle, J.D. Intracellular transport and secretion of salivary proteins / J.D. Castle, A.M. Castle // Critical Reviews in Oral Biology and Medicine. 1998. -Vol. 9,№ l.-P. 4-22.
111. Castle, J.D. Protein secretion by rat parotid acinar cells / J.D. Castle // Ann NY Acad Sci. -1998. -Vol. 842.-P. 115-124.
112. Castle, J.D. Radioautographic analysis of the secretory process in the parotid acinar cell of the rabbit / J.D. Castle, J.D. Jamieson, G.E. Palade // The Journal of Cell Biology. 1972. - Vol. 53, № 2. — P. 290-311.
113. Castle, J.D. Sorting and secretion of salivary proteins / J.D. Castle, A.M. Castle // Critical Reviews in Oral Biology and Medicine. 1993. - Vol. 4, № 3-4. -P. 393-398.
114. Castle. J.D. Two regulated secretory pathways for newly synthesized parotid salivary proteins are distinguished by doses of secretagogues / J.D. Castle, A.M. Castle // Journal of Cell Science. 1996. - Vol. 109, № 10. - P. 2591-2599.
115. Center, S.A. The clinical and metabolic effects of rapid weight loss in obese pet cats and the influence of supplemental oral-carnitine / S.A. Center, J. Marie, D. Watrous // J. Vet. Intern. Med. 2000. - Vol. 14, № 6. - P. 598-608.
116. Chitosan-containing gum chewing accelerates antibacterial effect with an increase in salivary secretion / Y. Ilayachi et al. // Journal of Dentistry. — 2007. -Vol. 35,№11.-P. 871-874.
117. Comparative ultrastructure of intercalated ducts in major salivary glands: a review / B. Tandler et al. // The Anatomical record. 1998. - Vol. 252, № L - P. 64-91.
118. Composition of human saliva, parotid gland secretory rate, and electrolyte concentration in mentally subnormal persons / R.A. Winer et al. // J Dent Res. -1965. Vol. 44, № 4. - P. 632-634.
119. Cutler, L.S. The role of extracellular matrix in the morphogenesis and differentiation of salivary glands / L.S. Cutler // Adv Dent Res. 1990. — Vol. 4, № l.-P. 27-33.
120. Davis, C.M. Chromium oligopeptide actives insulin receptor tyrosine kinase activity / C.M. Davis, J.B. Vincent // Biochemistry. 1997. - Vol. 36, № 15. - P. 4382-4385.
121. Dawes, C. Effect of diet on salivary secretion and composition / C„ Dawes // J Dent Res. 1970. - Vol. 49, № 6. -P. 1263-1272.
122. Dawes, C. Gland size estimation and body mass index improve salivary flow rate assessment / C. Dawes // Archives of Oral Biology. 2007. - Vol. 52, №5-P. 409-410.
123. Dawes, C. Salivary flow patterns and the health of hard and soft oral tissues / C. Dawes // J Am Dent Assoc. 2008. - Vol. 139, № 2. - P. 18-24.
124. Dawes, C. The effects of different stimuli on the composition of saliva in man IC. Dawes. G.N. Jenkins // J. Physiol. 1964. - Vol. 170, № 1. - P. 86-100.
125. Development of exocrine cells of the pancreas and parotid giand in rats relation between morphological and biochemical changes / T. Takeuchi et al. // Digestion. 1978. - Vol. 18, № 3-4. - P. 266-279.
126. Different role of isoproterenol and NOS inhibitors on salivary ducts of rats / A.C. Issy et al. // Micron. 2009. - Vol. 40. - P. 343-349.
127. Dodds, M.J. Health benefits of saliva: a review / M.J. Dodds, D.A. Johnson, C-K. Yeh // Journal of Dentistry. 2005. - Vol. 33. - P. 223-233.
128. Dodds, M.J. The effect of increased mastication by daily gum-chewing on salivary gland output and dental plaque acidogenicity / M.W.J. Dodds, S.C. Hsieh, D.A. Johnson // J Dent Res. 1991. - Vol. 70, № 12. - P. 1474-1478.
129. Domon, M. Postnatal development of the duct system in the mouse parotid gland / M. Domon, T. Kurabayashi // The- Anatomical Record. 1987. - Vol. 217, № 4. - P. 391-394.
130. Edwards, A.V. Autonomic control of protein production by the parotid salivary gland of the sheep / A.V. Edwards, D.A. Titchen // Autonomic Neuroscience: Basic and Clinical. 2003. - Vol. 103, M> 1-2. - P. 38-49.
131. I.Edwards, A.V. Synergism in the autonomic regulation of parotid secretion of protein in sheep / A.V. Edwards, D.A. Titchen // J. Physiol. 1992. - Vol. 451. - P. 1-15.
132. Edwards, A.V. The effect of parasympathetic postganglionic denervation on parotid salivary protein secretion in anaesthetized sheep / A.V. Edwards, D.A. Titchen // Autonomic Neuroscience: Basic and Clinical. — 2002. VoL 100, №1. -P. 50-57.
133. Ekstrom, J. Choline acetyltransferase activity in rat salivary glands after cellulose rich diet or treatment with an atropine-like drug / J. Ekstrom // Quarterly Journal of Experimental Physiology. 1974. - Vol. 59, № 3, - P. 191-199.
134. Ekstrom, J. Choline acetyitransferase and secretory responses of the rat's salivary glands after liquid diet / J. Ekstrom // Quarterly Journal of Experimental Physiology. 1973. - Vol. 58, № 2. - P. 171-179.
135. Emmelin, N. Nerve-induced secretion of parotid acinar granules in cats / N. Emmelin, J.R. Garrett // Cell Tiss. Res. 1989. - Vol. 257, № 3. - P. 549-554.
136. Estecondo, S. Histological study of the salivary glands in Zaedyus pichiy (Mammalia, Xenerthra, Dasypodidae) / S. Estecondo, S.M. Codon, E.B. Casanave // Int. J. Morphol. 2005. - Vol. 23, № 1. - P. 19-24.
137. Exocytosis in human salivary glands visualized by high-resolution scanning electron microscopy / A. Segawa et al. // Cell and Tissue Research. 1998. -Vol. 291, №2,-P. 325-336.
138. Faquin, W.C. Salivaiy Gland Cytopathology / W.C. Faquin, C.N. Powers -Springer US. 2008 - 268 p.
139. Finley, J.W. Selenium from high selenium broccoli protects rats from colon cancer / J.W. Finley, C.D. Davis, Y.Feng // J. Nutr. 2000. - Vol. 130, № 9. - P. 2384-2389.
140. Flink, H. Studies on the prevalence of reduced salivary flow rate in relation to general health and dental caries and cffect of iron supplementation / H. Flink. -Stockholm, 2007.-50 p.
141. Fuhrman, B. Tomato lycopene and b-carotene inhibit low density lipoprotein oxidation and this effect depends on the lipoprotein vitamin E contcnt / B. Fuhrman, L. Ben-Yaish, J. Attias // Nutr. Mctab. Cardiovasc. Dis. 1997. - Vol. 7, № 6. - P. 433-443.
142. Garrett. J.R. Acid phosphatase and peroxidase in 'resting' acinar cells of the major salivary glands of cats and their possible movement into secretory granules / J.R. Garrett, A. Kidd // Histochemical Journal. 1976. - Vol. 8, № 5. - P. 523538.
143. Garrett, J.R. Alkaline phosphatase and myoepithelial cells in the parotid gland of the rat / J.R. Garrett, Parsons P. A. // Histochemical Journal. — 1973. Vol. 5, № 5.-P. 463-471.
144. Garrett, J.R. Changes in parotid acinar cells accompanying salivary secretion in rats on sympathetic or parasympathetic nerve stimulation / J.R. Garrett, A. Thulin // Cell Tiss. Res. 1975. - Vol. 159, № 2. - P. 179—193.
145. Garrett, J.R. Structural changes associated with parotid "degeneration secrtetion" after postganglionic sympathectomy in rats / J.R. Garrett, A. Thulin //Cell Tiss. Res. 1975. - Vol. 162, №1.-P. 1-12.
146. Garrett, J.R. The proper role of nerves in salivary secretion: a review / J Dent Res. 1987. - Vol. 66, № 2. -P. 387-397.
147. Garrett, J.R. Variations in parasympathetic secretory and structural responses resulting from differences in the pre- stimulation slate of parotid acini in rats / J.R. Garrett, A. Thulin, A. Kidd // Cell Tiss. Res. 1978. - Vol. 188, № 2. - P. 235250.
148. Gaviao, M.B.D. Chewing behavior and saliva Secretion / M.B.D. Gaviao, L. Engelen, A. Bill // European Journal of Oral Sciences. 2004. - Vol. 112.- P. 1924.
149. Gaviao, M.B.D. Salivary secretion and chcwing: stimulalory effects from artificial and natural foods / M.B.D. Gaviao, A. Bilt // J Appl Oral Sci. 2004. -Vol. 12, j\r9 2. — P. 159-163.
150. Gender difference in unstimulated whole saliva flow rate and salivary gland size / 11. Inoue et al. // Archives of Oral Biology. 2006. - Vol. 51, № 12. - P. 1055-1060.
151. Gorr, S.-U. Parotid sccrctory granules: crossroads of secrctory pathways and protein storage / S.-U. Gorr, S.G. Venkatesh, D.S. Darling // J Dent Res. -2005. -Vol. 84, №6. -P. 500-509.
152. Graham, H.N. Green tea composition, consumption, and polyphenol chemistry / H. N. Graham // Prev. Med. 1992. - Vol. 21. - P. 334-350.
153. Hall, H.D. Functional mediation of compensatory enlargement of the parotid gland / H.D. Hall, C.A. Schneycr // Cell Tiss. Res. 1977. - Vol. 184, № 2. - P. 249-254.
154. Hall, H.D. Neural regulation of compensatory enlargement of the parotid gland of the rat / TI.D. Hall, C.A. Schneyer // Cell Tiss. Res. 1978. - Vol. 187, № J.-P: 147-151.
155. Hand, A.R. Endocytosis of proteins by salivary gland duct cells / A.R. Hand, R. Coleman, M.R. Mazariegos, J. Lustmann, L.V. Loiti // J Dent Res. 1987. -Vol. 66, № 2. - P. 412-419.
156. Hand, A.R. Mitosis and hypertrophy of intercalated duct cells and endothelial cells in the isoproterenol-treated rat parotid gland / A.R. Hand, B. Ho // J Dent Res. 1985. - Vol. 64, № 8. - P. 1031-1038.
157. Harrop, T.J. Effects of preganglionic sympathectomy on secretory changes in parotid acinar cells of rats on eating / TJ. Harrop, J.R. Garrett // CcJl Tiss. Res. -1974.-Vol. 154, jNo 2, — P. 135—150.
158. Heft, M.H. Unstimulated and stimulated parotid salivary flow rate in individuals of different ages / M.H. Heft, B J. Baurn // J Dent Res. 1984. - Vol. 63, №10.-P. 1182-1185.
159. HolIman, P.C. Absorption, metabolism and health effects of dietary flavonoids in man / P.C. Hollman, M.B. Katan // Biomcd. Phannacother. -1997. -Vol. 51, № 5. P. 305-310.
160. Hully, J.R. Isoprenaline-induced ceil proliferation in mouse salivary glands: the effect of castration / J.R. Hully, H.P. Benton, M.R. Alison // Virchows Arch. -1984.-Vol. 47.-P. 95-105.
161. Humphreys-Beher, M.G. Cell surface expression of 4|3-galactosyltransferase accompanies rat parotid gland hypertrophy induced by changes in diet / M.G. Humphreys-Beher, C.A. Schneyer // Biochem. J. 1987. - Vol. 246, № 2. - P. 387-391.
162. Hyperplasia of myoepithelial cells expressing calponin during atrophy of the rat parotid gland induced by duct ligation / M.C.C. Miguel et al. // The Histochemical Journal. 2002. - Vol. 34, № 10. - P. 499-506.
163. Ikawa, M. Parotid protein secretion from the rabbit during feeding / M. Ikawa, M. P. Hector, G. B. Proctor // Experimental Physiology. 1991. - Vol. 76, № 5. -P. 717-724.
164. Immunohistochemistry of myoepithelial cells during development of the rat salivary glands / Y. Ogawa ¡et al. // Anatomy and Embryology. 1999. — Vol. 200, №2.-P. 215-228.
165. Inhibition of rat parotid gland growth response induced by chronic isoproterenol following treatment with quinolone antibiotics / B, Kelentey et al. // Molecular and Cellular Biochemistry. 1996. - Vol. 165, № 1. - p. 55-63.
166. Intercalated duct cells in the rat parotid gland may behave as tissue stem cells / O. Katsumata et al. // Anat Sci Int. 2009. - Vol. 84, №. 3 - P. 148-154.
167. Isoproierenoi-meaiaied parotid giand hypertrophy is inhibited by effectors as 4p-galactosyltransferase / M.G. Humphreys-Beher et al. // J. Biol. Chem. 1987. - Vol. 262, № 24,- P. 11706-11713.
168. Jain, A.K. Can garlic reduce levels of serum lipids? A controlled clinical study / A.K. Jain // Amer. J. Med. 1993. - Vol. 94. - P. 632-635.
169. Jenkins, G.N. The effect of daily gum-chewing on salivary flow rates in man / G.N. Jenkins, W.M. Edgar // J Dent Res. 1989. - Vol. 68, № 5. - P. 786-790.
170. Johnson, D.A. Changes in rat parotid salivary proteins following surgical thyroidectomy / D.A. Johnson, J. Cortez // J Dent Res. 1985. - Vol. 64. - P. 326.
171. Johnson, D.A. Effect of a liquid diet on the protein composition of rat parotid saliva / D.A. Johnson // J. Nutr. 1982. - Vol. 112, № 1. - P. 175-181.
172. Johnson, D.A. Effect of increasing the bulk content of the diet on the rat parotid gland and saliva / D.A. Johnson, L.M. Sreebny // J Dent Res. 1982. -Vol. 61, № 5. - P. 691-696.
173. Johnson, D.A. Effect of protein deficiency and diet consistency on the parotid gland and parotid saliva of rats / D.A. Johnson, H. Lopez, J.H. Navia // J. Dent Res. -1995. Vol. 78, № 4. -P. 1444-1452.
174. Johnson, D.A. Effect of protein-energy malnutrition and of a powdered diet on the parotid gland and pancreas of young rats / D.A. Johnson, L.M. Sreebny, C.O. Enwonwu // J. Nutr. 1977. - Vol. 107, № 7. - p. 1235-1243.
175. Johnson, D.A. Effects of food mastication on rat parotid gland adrenergic and cholinergic cell surface receptors / D.A. Johnson, H.L. Cardenas // Critical reviews in Oral Biology and Medicine. 1993. - Vol. 4, № 3-4. - P. 591-597.
176. Johnson. D.A. Influence of thyroxine in the regulation of rat parotid salivary protein composition / D.A. Johnson. D.N. Kalu // J Dent Res. 1988. - Vol. 67, № 5.-P. 812-816.
177. Kalka, S.P. Appetite and body weight regulation: is it all in brain / S.P. Kalka // Neuron. 1997. - Vol. 19. - P. 227-230.
178. Kimua, Y. Effects of soiubie sodium alginate on cholesterol excretion ana glucose tolerance in rats / Y. Kimua, K. Atanabe, H. Okuda // J. Ethnopliarmacol. -1996.-Vol. 54.-P. 47-54.
179. Klein, R.M. Acinar cell proliferation in the parotid and submandibular salivary glands of the neonatal rat / R.M. Klein // Cell Tissue Kinet. 1982. - Vol. 15,№2.-P. 187-195.
180. Klein, R.M. isoproterenol and G2 acinar cells in the developing rat parotid gland / R.M. Klein, D.B. Harrington // J Dent Res. 1977. - Vol. 56, № 2. - P. 177-180.
181. Kurahashi, M. Effects of dietary consistency and water content on parotid amylase secretion and gastric starch digestion in rats / M. Kurahashi, K. Inomata // Archives of Oral Biology. 1999. - Vol. 44. - P. 1013-1019.
182. Kurahashi, M. The effect of dietary consistency and water content on the parotid glands of submandibular and sublingual duct-ligated rats / M. Kurahashi // Archives of Oral Biology. 2002. - Vol. 47, № 5. - P. 369-374.
183. Lamster l.B. improving Oral Health for the Elderly / LB. Lamster, M.E. Northridge. Springer, 2008. - 510 p.
184. Lawson, K.A. Morphogenesis and functional differentiation of the rat parotid gland in vivo and in vitro / K.A. Lawson // J. Embryol. exp. Morph. 1970. - Vol. 4, №2.-P. 411-424.
185. Leal, S.C. Morphological alterations of the parotid gland of rats maintained on a liquid diet / S.C. Leal, O.A. Toledo, A.C.B. Bezerra // Braz Dent J. 2003. -Vol. 14, №3. -P. 172-176.
186. Leeson. C.R. Postnatal development and differentiation of the secretory elements of the rabbit parotid and submandibular glands / C.R. Leeson, D.E. Forman // Anat Ariz. 1981. - Vol. 149, № 3. - P. 210-225.
187. Leonora, J. Parotid gland function and dentin apposition in rat molars / J. Leonora, L. Tjaderhane, J.M. Tieche // J Dent Res. 2002. - Vol. 81, № 4. - P. 259-264.
188. Liiiie, J.H. Secretory prorein synthesis in the stimulated rat parotid gland /' J.H. Lillie, S.S. Han // The Journal of Cell Biology. 1973. - Vol. 59, № 3. - P. 708-721.
189. Lotti, L.V. Endocytosis of parotid salivary proteins by striated duct cells in streptozotocin-diabetic rats / L.V. Lotti, A.R. Hand // The Anatomical Record.-2005. Vol. 221, № 4. p. 802-811.
190. L-thyroxine, Cortisol and diet affect the level of amylase in the parotid gland of developing rats / M. Kumegawa et al. // J Endocrinol. 1980. - Vol. 87, № 1. -P. 65-71.
191. Mackie, D.A. Mastication and its influence on human salivary flow and alpha-amylase secretion / D.A. Mackie, R.M. Pangborn // Physiol Behav. 1990. - Vol. 47, №3.-P. 593-595.
192. Mandel, I.D. A contemporary view of salivary research / T.D. Mandel // Critical Reviews in Oral Biology and Medicine. 1993. - Vol. 4, № 3-4. - P. 599604.
193. Mangos, J.A. Micropuncture study of postnatal functional maturation of the rat parotid / J.A. Mangos // J Dent Res. 1978. - Vol. 57, № 7-8. - P. 826-833.
194. Martinez, J.R. Developmental aspects of fluid and electrolyte secretion in salivary glands / J.R Martinez // Critical reviews in Oral Biology and Medicine. -1994. Vol. 5, № 3-4. - P. 281-290.
195. McFadden, L.R. Effect of controlled dietary consistency and cage environment on the rat mandibular growth / L.R. McFadden, K.D. McFadden, D.S. Precious // Anat Rec. 1986. - Vol. 215, № 4. - P. 390-396.
196. Mitogenic activity of rat salivary glands after electrical stimulation of parasympathetic nerves / C.A. Schneyer et al. // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1993. - Vol. 264, № 5. - P. 935-938.
197. Muscarinic receptors of rat parotid gland enlarged by gland ablation and bulk diet. Effects of denervation / C.A. Schneyer et al. // J Auton Nerv Syst. 1987. -Vol. 18, №3.-P. 207-211.
198. Myers, E.N. Salivary Gland Disorders / E.N. Myers; R.L. Ferris. Springer Berlin Heidelberg, 2007. - 518 p.
199. Myoepithelial cells actively proliferate during atrophy of rat parotid gland / L.K. Burgess et al. // Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology, Oral Radiology, and Endodontology. 1996. - Vol. 82, № 6. - P. 674-680.
200. Nagato, T. Intercellular material in the basal and lateral folds of parotid serous cells in four species of bats IT. Nagato, B. Tandler, C.J. Phillips // The Anatomical Record. 1998. - Vol. 251, № 1. - P. 72-79.
201. Norberg, K.-A. Adrenergic innervation of the parotid salivary glands in the rat / K.-A. Norberg, L. Olson // Z. Zellforsch. 1965. - Vol. 68, № 2. - P. 183-189.
202. Okugawa, J. Comparative anatomical study on the ductal system of rabbit and cat parotid gland / J. Okugawa, H. Fujii // Meikai Daigaku Shigaku Zasshi. 1990. -Vol. 19, № 1.-P. 21-42.
203. Ontogenesis of alpha-amylase in rat parotid gland during postnatal development / S.L. Bellavia et al. // Histochemistry. 1981. - Vol. 71, № 1. - P. 125-133.
204. Ozelci, A. Influence of a liquid diet and meal pattern on body weight and body fat in rats / A. Ozelci, D.R. Romsos, G.A. Leveille // J. Nutr. 1978. - Vol. 108, №7.-P. 1128-1136.
205. Parotid secretion of fluid, amyiase and kailikrein during reflex stimulation under normal conditions and after acute administration of autonomic blocking agents in man / I.L. Jensen et al. // Acta Physiol. Scand. 1991.- Vol. 143, № 3. -P. 321-329.
206. Pautonen, P. Salivary flow and composition in healthy and adults / P. Pautonen. Helsinki, 2003. - 97 p.
207. Percival, R.S. Flow rates of resting whole and stimulated parotid saliva in relation to age and gender / R.S. Percival, S.J. Challacombe, P.D. Marsh // J Dent Res. 1994. - Vol. 73, № 8. - P. 1416-1420.
208. Perez-Castillo, A. Synthesis and release of glucagon by human salivary glands / A. Perez-Castillo, E. Blazquez // Diabetologia. 1980. - Vol. 19, № 2. - P. 123129.
209. Precocious differentiation of mouse parotid glands and pancreas induced by hormones / T. Takuma et al. // Biochim Biophys Acta. 1978. - Vol. 538, № 2. -P. 376-383.
210. Proctor, G.B. Factors influencing the movement of parotid amylase info the serum of rats on feeding /G.B. Proctor, B. Asking, J.R. Garrett // Experimental Physiology. 1990. - Vol. 75, № 5. - P. 709-712.
211. Proctor, G.B. Muscarinic receptors and salivary secretion / G.B. Proctor // J Appl Physiol. -2006. Vol. 100, № A. - P. 1103-1104.
212. Purushotham, K.R. The role of phosphotyrosine signaling pathway in parotid gland proliferation and function / K.R. Purushotham, M.G. Humphreys-Beher // Critical Reviews in Oral Biology and Medicine. 1995. - Vol. 6, № 2. - P. 119131.
213. Quantitative study on the rat parotid gland after orchiectomy / D. Jezek et al. // Veterinarski Arhiv. 1999. - Vol. 69, № 1. - P. 49-59.
214. Ramesh, G. Effect of dietary fat on aieihylnitrosamine induced hepatocarcinogenesis in Wistar rats / G. Ramesk, U.N. Das // Cancer Lett. 1995. -Vol. 95, № 1. - P. 237-245.
215. Rat parotid gland acinar cell proliferation: signal transduction at the plasma membrane / K.R. Purushotham et al. // Critical reviews in Oral Biology and Medicine. 1993. - Vol. 4, № 3-4. - P. 537-543.
216. Redman, R.S. Myoepithelium of salivary glands / R.S. Redman // Microscopy Research and Technique. 1994. - Vol. 27, № 1. - P. 25-45.
217. Redman, R.S. Proliferative activity by cell type in the developing rat parotid gland / R.S. Redman // The Anatomical record. 1995. - Vol. 241, № 4. - P. 529540.
218. Redman, R.S. Proliferative behavior of differentiating cells in the developing rat parotid gland / R.S . Redman , L.M . Sreebny // The Journal of Cell Biology. -1970. Vol. 46, № 1. - P. 81-87.
219. Regulation of salivary proteins / D.A. Johnson et al. // J Dent Res. 1987. -Vol. 66, №2.-P. 576-582.
220. Relationship of chewing-stimulated whole saliva flow rate and salivary gland size / K. Ono et al. // Archives of Oral Biology. 2007. - Vol. 52, № 5. - P. 427431.
221. Rossoni, R.B. A histochemical study of catecholamines and cholinesterases in the autonomic nerves of the human minor salivary glands / R.B. Rossoni, A.B. Machado, C.R.S. Machado // Histochemical Journal. 1979. - Vol. 11, № 6. - P. 661-668.
222. Saliva and gastrointestinal functions of taste, mastication, swallowing and digestion / A.M. Pedersen et al. // Oral Diseases. 2002. - Vol. 8, № 3. - P. 117129.
223. Sato, A. Ultrastructure of the main excretory duct epithelia of the rat parotid and submandibular glands with a review of the literature / A. Sato, S. Miyoshi // The Anatomical Record. -1988. Vol. 220, № 3. -P. 239-251.
224. Schneyer, C.A. Beta-adrenergic and muscarinic recepiors of parotid gland following maintenance of rats on liquid diet / C.A. Schneyer, M.G. Humplireys-Beher, H.D. Hall // Proc Soc Exp Biol Med. 1987. - Vol. 184, № 1. - P. 102106.
225. Schneyer, C.A. Growth pattern of posnatally developing rat parotid / C.A. Schneyer, H.D. Hall // Pros. Soc. Expt. Biol, and Med. 1969. - Vol. 130. - P. 603-607.
226. Schneyer, C.A. Neurally mediated increase in mitosis and DNA of rat parotid with increase in bulk of diet / C.A. Schneyer, H.D. Hall // Am J Physiol. 1976. -Vol. 230,№4.-P. 911-915.
227. Schneyer, C.A. Parasympathetic regulation of mitosis induced in the rat parotid by dietary change / C.A. Schneyer, H.D. Hall // Amer. J. Physiol. 1975. -Vol. 229, No 6. -P. 1614-1617.
228. Scott, J. A comparative quantitative histological investigation of atrophic changes in the major salivary glands of liquid-fed rats / J. Scott, D.L. Gunn // Arch Oral Biol. 1991. - Vol. 36, № 11. -P. 855-857.
229. Scott, J. Functional characteristics of atrophic parotid acinar cells from rats after liquid feeding / J. Scott, D.L. Gunn // J Dent Res. 1994. - Vol. 73, № 6. - P. 1180-1186.
230. Scott, J. Morphological and functional characteristics of acinar atrophy and recovery in the duct-ligated parotid gland of the rat / J. Scott, P. Liu, P.M. Smith // J Dent Res. 1999. - Vol. 78, № U. - P. 1711-1719.
231. Secretion by Striated ducts of mammalian major salivary glands: review from an ultrastructural, functional, and evolutionary perspective / B. Tandler et al. 11 The Anatomical record. 2001. - Vol. 264, № 2. - P. 121-145.
232. Shannon, T.L. Parotid fluid flow rate as related to whole saliva volume / T.L. Shannon // Archives of Oral Biology. 1962. - Vol. 7, № 3. - P. 391-394.
233. Sreebny, L.M. Functional regulation of protein synthesis in the rat parotid gland / L.M. Sreebny, D.A. Johnson, M.R. Robinovitch // The Journal of Biological Chemistry. 1971. - Vol. 246, № 12. - P. 3879-3884.
234. Sreebny, L.Ivi. Saiiva in neaiih and disease: an appraisai and update / L.IvI. Srcebny // international Dental Journal. 2000. - Vol. 50, № 3. - P. 140-161.
235. Staneva-Dobrovski, L. Lysozyme expression in the rat parotid gland: light and electron microscopic immunogold studies / L. Staneva-Dobrovski // Histochemistry and Cell Biology. 1997. - Vol. 107, № 5. - P. 371-381.
236. Taga, R. Cell population growth in the rat parotid gland during postnatal development / R. Taga, A. Sesso // Archives of Oral Biology. 2001. - Vol. 46, № 10.-P. 909-918.
237. Takahashi, S. Origin of acinar cell regeneration after atrophy of the rat parotid induced by duct obstruction / S. Takahashi, E. Schoeli, N.I. Walker II Int. J. Exp. Path. 1998. - Vol. 79, № 5. - P. 293-301.
238. Takeuchi, T. Effects of various hormones and adrenalectomy on the levels of amylase in rat pancreas and parotid gland / T. Takeuchi, M. Ogawa, T. Sugimura // Experientia. 1977. - Vol. 33, № 11. - P. 1531-1532.
239. Talamo, B.R. Parasympathetic denervation decreases muscarinic receptor binding in rat parotid / B.R. Talamo, S.C. Adler, D.R. Burl // Life Sciences. — 1979. Vol. 24, № 17. - P. 1573-1580.
240. TandIer, B. interlobular excretory ducts of mammalian salivary glands: structural and histochemical review / B. Tandler, C.A. Pinkstaff, C.J. Phillips // The Anatomical Record Part A. 2006. - Vol. 288A, № 5. p. 498-526.
241. Tandler, B. Salivary gland changes in disease / B. Tandler // J Dent Res. -1987. Vol. 66, № 2. - P. 398-406.
242. Tandler, B. Structure of the duct system in mammalian major salivary glands / B.Tandler // Microscopy Research and Technique. 1993. - Vol. 26, № 1. - P. 5774.
243. The effects of diet, overfeeding and moderate dietary restriction on Sprague-Dawley rat survival, disease and toxicology / R.H. Keenan et al. // J. Nutr. -1997. Vol. 127.-P. 851-856.
244. The rat parotid gland a renewing cell population / D. Schwartz-Arad et al. // J. Anat. - 1988. - Vol. 161, №6.-P. 143-151.
245. Triantaíyiiou, A. organic secreiory proauci, adaptive responses ana innervation in the parotid gland of ferret: a histochemical study / A. Triantafyllou, D. Fletcher, J. Scott // Archives of Oral Biology. 2005. - Vol. 50, № 9. - P. 769777.
246. Trophic effect of the sympathetic nervous system on the early development of the rat parotid gland: a quantitative ultrastractural study / G.D. Bloom et al. // The Anatomical Record. 1981. - Vol. 201, № 4. - P. 645-654.
247. Warren, A.W. Age changes in the parotid glands of Wistar Institute rats with special reference to the occurrence of oncocytes in senility / A.W. Warren // Am J Anat. 1949. - Vol. 85, № 2. - P. 157-197.
248. Whole saliva flow rate and body profile in healthy young adults / K. Yamamoto et al. // Archives of Oral Biology. 2009. - Vol. 54, № 5. - P. 464469.
249. Whole-saliva secretion rates in old and yoimg healthy subjects / H. Ben-Aryeh et al. // J Dent Res. 1984. - Vol. 63, № 9. - P. 1147-1148.
250. Wilborn, W.II. Effect of postganglionic sympathectomy on the ultrastructure of the rat parotid gland / W.H. Wilborn, C.A. Schneyer // Z. Zellforsch. 1972. -Vol. 130, №4.-P. 471-480.
251. Wilborn, W.H. Ultrastructural changes of rat parotid glands induced by a diet of liquid metrical / W.H. Wilborn, C.A. Schneyer // Z„ Zellforsch. 1970. - Vol. 103, №1.-P. 1-11.
252. Wilson, A.D. Parotid saliva and rumen digestion in the sheep / A.D. Wilson // British Journal ofNutrition. 1964. - Vol. 18, № 1. -P. 163-172.
253. Yu. J.H. Parasympathetically evoked parotid salivary secretion of chronically amitriptyline-treated rats / J.H. Yu, C.A. Schneyer// Experientia. 1982. - Vol. 38, № 8. - P. 945-946.
254. Zelles, T. Effects of liquid diet on amylase activity and mRNA levels in rat parotid gland / T. Zelles, M.G. Humph revs-Be her, C.A. Schneyer // Arch Oral Biol. 1989. - Vol. 34, № 1. - p. 1-7.
- Семенова, Марина Анатольевна
- кандидата биологических наук
- Оренбург, 2011
- ВАК 03.03.04
- Возрастная морфология органокомплекса околоушной слюнной железы собак-мезоцефалов
- Постнатальная динамика структурных особенностей и некоторых функций печени белых крыс при питании диспергированной пищей
- Развитие экзокринных панкреоцитов и ацинусов поджелудочной железы белых крыс в норме и при питании диспергированной пищей
- Морфология больших слюнных желез млекопитающих с разным типом питания
- Морфофункциональные изменения слюнных желез белых крыс в условиях воздействия высокой внешней температуры