Морфологические особенности клещей Psoroptes cuniculi и эффективность акарицида Феноксифен при экспериментальном псороптозе кроликов

Боровина, Екатерина Геннадьевна

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Морфологические особенности клещей Psoroptes cuniculi и эффективность акарицида Феноксифен при экспериментальном псороптозе кроликов
ВАК РФ 03.02.11, Паразитология

Автореферат диссертации по теме "Морфологические особенности клещей Psoroptes cuniculi и эффективность акарицида Феноксифен при экспериментальном псороптозе кроликов"

па правах рукописи

ДВЭООои ( .

I /

БОРОВИНА Екатерина Геннадьевна

Морфологические особенности клещей /Ъого/^ея ситсиИ и эффективность акарицида Феноксифен при экспериментальном псороптозе кроликов

03.02.11 - паразитология

1 з ОПТ 2011

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Москва-2011

4856858

Работа выполнена в ФГБОУ ВПО «Московская государственная академия ветери нарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина» (ФГБОУ ВПО МГАВМиБ).

Научный руководитель: академик РАСХН, доктор ветеринарных наук, профессо

Василевич Федор Иванович

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, профессор

Енгашев Сергей Владимирович; доктор ветеринарных наук, профессор Майоров Анатолий Ильич

Ведущая организация:

Государственное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина» (ВИГИС).

Защита состоится ^О ■ 2011 г. в лЧ часов на заседании диссертационног совета Д 220.042.01 при ФГБОУ ВПО «Московская государственная академия ветер нарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина» по адресу: 109472, г. Мое ва, ул. Академика Скрябина, 23; тел.(495) 377-93-83.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГБОУ ВПО «Московская гос дарственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скряб на» (109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, 23) и на сай http://www.vak.ed.gov.ru.

Автореферат разослан <Д(0> . . 2011 г.

Ученый секретарь диссертационного совета, профессор

Грязнева Т.Н.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Псороптоз (рБоп^сшэ) - инвазионное заболевание кроликов, вызываемое клещами-накожниками Р.*>огор1е$ ситсиН.

Локализуются данные паразиты на внутренней поверхности ушной раковины и наружном слуховом проходе. Клещи прокалывают кожу, разрушают ткани, раздражая нервные окончания и вызывая при этом зуд; оказывают токсико-аллергическое воздействие; способствуют развитию воспалений, вызванных секундарной микрофлорой.

Доказано, что псороптоз угнетает воспроизводительную функцию кроликов, приплод от больных самок, как правило, погибает в первые дни жизни (Аббасов Т.Г., 1998; Майоров А.И., 2002).

Ущерб, причиняемый псороптозом, складывается из снижения на 10-35% массы кроликов, ухудшения качества мяса и шкурок, замедления роста и развития молодняка, падения цены племенных животных (Катаева Т.С., 1989).

Псороптоз распространен повсеместно, т.к. несмотря на проводимые обработки, затраты труда и средств, многие хозяйства из года в год остаются стационарно неблагополучными по данному заболеванию.

Для борьбы с птороптозом разработано множество препаратов, однако ни один из них не обладает овоцидным действием, т.е. убивая клещей, он не воздействует на яйца.

Все вышеизложенное вызывает необходимость более детально изучить морфологические особенности возбудителя псороптоза кроликов и осуществлять поиск эффективных, дешевых, малотоксичных и экологически безопасных форм акарицидов, обладающих овоцидным действием при данной болезни.

Цель и задачи исследований. Цель исследований - изучение морфологических особенностей клещей ситсиН с помощью электронной микроскопии и опре-

деление акарицидной и овоцидной активности препарата Феноксифен и его терапевтической эффективности при псороптозе кроликов.

Для решения были поставлены следующие задачи:

1. Изучить с помощью электронной микроскопии морфологические особенности клещей Ряоп^сб ситсиН.

2. Провести экспериментальное заражение кроликов клещами Ряого/^ея ситсиН и изучить патогенез болезни.

3. Определить влияние псороптоза на продуктивные показатели кроликов.

4. Оптимизировать компонентный состав препарата Феноксифен и определить его акарицидную и овоцидную активность.

5. Изучить терапевтическую эффективность препарата Феноксифеи при экспери ментальном псороптозе кроликов.

6. Определить влияние Феноксифена на гомеостаз организма кроликов.

Научная новизна. Впервые, с помощью сканирующего электронного микроскоп;

установлены морфологические особенности клещей Psoroptes cuniculi, изучены структурные компоненты их ротового аппарата, амбулакр, гнатосомы и педипальп и провс дены микрометрические измерения клещей и яиц.

Впервые, для ветеринарной практики предложено новое акарицидное лекарственно средство «Феноксифен» на основе S-фенвалерата и синтетических пиретроидов, пред назначенное для лечения псороптоза кроликов.

Доказано овоцидное действие Феноксифена в отношении яиц клещей Psoroptes cuni culi в концентрации его действующего вещества S-фенвалерата 0,048%. Тотальная ги бель имаго клещей происходит при концентрации S-фенвалерата 0,006% и концентра ции феноксиэтанола 0,1%.

При экспериментальном псороптозе у кроликов бактерицидная активность сыворот ки крови снижается на 30,2-55,46%, время свертывания крови увеличивается в 1,7 раза, наблюдаются гипопротеинемия, лейкоцитоз, уменьшение количества эритроци тов, тромбоцитов и гемоглобина.

Терапевтическая эффективность Феноксифена при псороптозе кроликов составляв 100% при однократном его наружном применении в дозе 1 мл в каждое ухо.

Практическое значение. Для применения в ветеринарии в качестве акарицида npi псороптозе кроликов предложен высокоэффективный препарат Феноксифен, которьн прошел лабораторные и производственные испытания.

В опытах на кроликах при экспериментальном псороптозе доказана безвредность i овоцидное действие Феноксифена, что подтверждено актами, утвержденными в уста новленном порядке.

Разработан проект инструкции по применению лекарственного препарата Фенокси фен для применения в ветеринарии.

Результаты исследований по изучению морфологических особенностей клещей Pso roptes cuniculi и терапевтической эффективности препарата Феноксифен при псоропто зе кроликов используются в учебном процессе в ФГБОУ ВПО МГАВМиБ по дисцип лине «Паразитология и инвазионные болезни животных», а также на курсах повыше ния квалификации ветеринарных врачей.

Личный вклад соискателя: Автору пренадлежит непосредственное осуществлени исследований по изучению акарицидной и овоцидной активности Феноксифена, опре

деление терапевтической эффективности препарата при псороптозе кроликов, клинико-гематологические, биохимические и акарологические исследования, а также анализ и обобщение полученных результатов.

Апробация результатов диссертации. Материалы диссертации изложены на научно-практических конференциях «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» (Москва, 2007, 2008, 2010); научно-практической конференции, посвященной 90-летию ФГБОУ ВПО МГАВМиБ (Москва, 2009); XIII и XIV Международном ветеринарном конгрессе (Москва, 2010, 2011).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 5 статей, в т.ч. 3 статьи в научных журналах, рекомендованных ВАК (Ветеринарный консультант, Ветеринарная медицина) и 2 - в сборниках научных трудов.

Структура диссертацонной работы. Материалы диссертации изложены на 150 страницах компьютерного текста и включают введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результатов исследований, выводы, практические предложения и список использованной литературы (160 источников, из них 33 иностранных авторов). Работа содержит 11 таблиц, 60 рисунков и 5 страниц приложений.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Особенности морфологии клещей Psoroptes cuniculi.

2. Клещи Psoroptes cuniculi влияют на морфологические, биохимические и иммунологические показатели организма кроликов при экспериментальном псороптозе.

3. Новый препарат Феноксифен обладает акарицидной и овоцидной активностью.

4. Феноксифен обладает высокой эффективностью при лечении псороптоза кроликов и не оказывает влияния на гомеостаз организма животных.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Исследования проводились на кафедрах паразитологии и инвазионных болезней животных и эпизоотологии и инфекционных болезней животных ФГБОУ ВПО МГАВМиБ, в ветеринарной клинике «Центр» (Москва), а также в лабораториях ГНУ ВНИИВЭА (Тюмень) и в УО Витебской академии ветеринарной медицины.

Для экспериментального заражения псороптозом было использовано 16 кроликов породы рыжий великан и серая шиншилла в возрасте 6 месяцев.

Клещей семейства Psoroptidae и их яйца отбирали от 2 больных псороптозом кроликов и проводили оценку акарицидной и овоцидной активности новых веществ и препаратов в сравнительном аспекте по методу Давлетшина А.Н. (2001).

Перед исследованием клещей в сканирующем электронном микроскопе СЭМ их об-

рабатывали по методу Ильященко В.И. (1992).

Всего было исследовано 120 клещей на различных стадиях развития.

Для оптимизации компонентного состава препарата Феноксифен скрининг акари цидных веществ проводили по методу Стринадкина П.С. с соавт. (1982).

Активизацию клещей до и после воздействия различными препаратами проводили п методу Давлетшина А.Н. с соавт. (2001).

Изучение эффективности акарицидных препаратов при псороптозе кроликов проводил на больных животных со средней и сильной степенью поражения. С целью установлен! i оптимально-эффективной концентрации действующего вещества Феноксифена при пс роптозе кроликов проводили изучение его овоцидной активности на яйцах, а длитель ность остаточного акарицидного действия изучали па имаго.

Величину СК5о, СКюо и СиПК5о, СиПКюо препаратов для клещей рассчитывали по вариа ционно-статистическому методу Павлова С.Д. (1982). Смертность клещей вычисляли п формуле Аббота (Непоклонов A.A., Таланов Г.А., 1973).

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ Особенности морфологии клещей Psoroptes cuniculi

Псороптидные клещи хорошо изучены с помощью световой микроскопии, однак исследование морфологических особенностей Р. cuniculi с помощью сканирующе электронной микроскопии не проводилось и в вопросах морфологии клещей на разны стадиях развития существует ряд противоречий.

В жизненном цикле Р. cuniculi различают фазы: яйца, личинки, нимфы первой (про тонимфы) и третьей (телеонимфы), половозрелого самца и самки (имаго).

Для выяснения морфологических возрастных и половых особенностей были прове дены микрометрические измерения клещей и яиц с помощью СЭМ.

Яйца удлиненно-овальной формы серовато-белого цвета, с блеском. Одна сторон яиц вогнутая, другая выпуклая. Оболочка яиц хорошо просвечивается и внутри яйц можно наблюдать разные стадии развития личинки.

Личинки светло-серого или слегка желтоватого цвета, имеют размеры в длин 0,306-0,425 мм, в ширину 0,238-0,315 мм. Гнатосома хорошо сформирована, имеет ко нусовидную форму. Ротовой аппарат имеет такое же строение, как у взрослых клеще и приспособлен к приёму жидкой пищи. Туловище удлиненно-овальное, имеет тольк один щиток - проподосомальный. Анальное отверстие расположено на задней сторон туловища и смещено на его вентральную сторону. У личинок 6 пар ног.

На дорзальной поверхности и боковых сторонах туловища имеются щетинки.

Протонимфы имеют более крупные размеры по сравнению с личинками и у них 4 пары ходильных конечностей. Анальное отверстие щелевидное, располагается на заднем крае туловища, ближе к его вентральной поверхности. В отличие от личинок, у протонимф на вентральной стороне идиосомы располагаются 2 короткие щетинки и впереди них два небольших круглых отверстия, которые представляют собой рудименты половых присосок.

Ротовой аппарат протонимфы имеет такое же строение, как у взрослых клещей. Половые органы отсутствуют.

Самцы протонимф удлиненно-овальной формы. Сеюгальные и продольные Б-образные борозды идиосомы не выражены. На спинной стороне имеются щетинки наружного и внутреннего ряда.

У самцов протонимф лапки и голени 1, 2 и 3-й пар конечностей имеют соленидии. Амбулакры имеются на лапках ног 1, 2 и 4-й пары.

Телеонимфы имеют четыре пары конечностей, овальное туловище и длинную конусовидную гипостому. Ротовой аппарат устроен также, как у взрослых клещей. На вентральной стороне туловища как у самцов, так и у самок телеонимф, расположены 4 рудиментарных половых присосок в виде небольших отверстий и рядом с ними 6 микрощетинок. Наружные половые органы у телеонимф отсутствуют.

Самки телеонимф отличаются от самцов наличием двух копулятивных бугров на заднем крае идиосомы и отсутствием амбулакров на лапках четвёртой пары конечностей. От самки протонимфы они отличаются формой идиосомы (у телеонимф нет плечевых выступов), наличием щетинок на вертлугах 1, 2 и 3-й пары конечностей, у них нет амбулакров на лапках ног 4-й пары, тогда, как у протонимф амбулакры здесь есть.

От половозрелых самцов и самок телеонимфы отличаются тем, что у них нет наружных половых органов, но есть копулятивные бугры на конце идиосомы.

Самки имеют размер в длину 0,663-0,888 мм, в ширину 0,451-0,610 мм. Идиосома самок широко-овальная, уплощенная в дорзо-вентральном направлении. Цвет кутикулы от светло-коричневого до тёмно-коричневого. Гнатосома хорошо развита, конусовидная, слегка изогнутая вниз.

Половозрелые самки отличаются от телеонимф большими размерами, наличием ко-пулятивного и яйцевыводного отверстий, амбулакров на 4-й паре конечностей; у телеонимф они отсутствуют. У самок нет копулятивных бугров.

От самцов самки отличаются размерами идиосомы (самцы меньше), у них отсутствуют опистосомальные лопасти, копулятивные присоски и опистосомальный щиток. У

самки иное расположение амбулакров на ногах: они есть на 1, 2 и 4-й парах конечно стей, а у самца - ещё и на 3-й паре.

Самцы имеют размеры в длину 0,612-0,677 мм, в ширину 0,451-0,610мм. Гипо стома самцов длинная, конусовидная, слегка изогнута вниз. Туловище короткое, широ ко-овальное, клиновидно-расширенное в задней части. Сеюгальная и 8-образная бо розда выражены, цвет кутикулы от светло-коричневого до тёмно-коричневого.

Самцы заметно отличаются от нимф и половозрелых самок. От мужских телеонимс они отличаются формой и размерами идиосомы.

От самок самцы отличаются меньшими размерами идиосомы, наличием шести угольного опистосомального щитка, опистосомальных лопастей, копулятивных присо сок на заднем конце идиосомы, расположением анального отверстия, размерами 3-пары конечностей и расположением амбклакров - у самки амбулакры имеют 1, 2 и 4-пары конечностей, у самцов длинностебельковые амбулакры есть на 1, 2 и 3-й парах, короткостебельковые амбулакры на 4-й паре.

Таким образом, у псороптидных клещей имеются морфологические отличия п полу и возрасту, которые хорошо заметны в фазу протонимфы и выражаются, прежд всего, в различной форме и размерах идиосомы, наличии или отсутствии органов дл образования копулятивных пар (копулятивные бугры, присоски, опистосомальные ло пасти), половых органов, в количестве половых присосок, склеротизированных щитко на спинной стороне идиосомы, размерах 3-й и 4-й пар конечностей, оснащении их ам булакрами и др.

Гематологические показатели и активность факторов неспецифическо иммунитета у кроликов при экспериментальном псороптозе

Для экспериментального заражения кроликов псороптозом было отобрано 16 голов возрасте 6 месяцев, обоих полов, породы серая шиншилла и рыжий великан, которы поделили на 2 группы, опытную и контрольную, по 8 животных в каждой.

От 2 больных псороптозом кроликов брали соскобы с кожи в 3 местах поражения.

Заражение кроликов опытной группы проводили путем подсадки им в ушные рако вины живых клещей и закладки корочек с яйцами паразитов. Кроликов контрольно группы не заражали и содержали изолированно. Ежедневно проводили наблюдение з опытными и контрольными животными.

На 5 день после заражения у кроликов опытной группы наблюдали покраснение ко жи на внутренней поверхности ушных раковин.

На 10 день в глубине ушных раковин на коже образовывался струпьевидный налет

появлялся сильный зуд.

На 20 день кролики трясли головой и чесали уши, в ушных раковинах наблюдали значительное увеличение корочек. Животные были угнетены, аппетит понижен.

На 25 день - кролики по-прежнему угнетены, аппетит отсутствует. При пальпации ушей - местная температура и чувствительность повышена.

На 30 день были взяты соскобы из ушных раковин у кроликов опытной группы с последующей микроскопией. В соскобах были обнаружены Рзогор(ег ситсиН на разных стадиях развития и их яйца.

Параллельно с этим исследованием у животных опытной и контрольной групп каждые 5 дней проводили взятие крови из краевой ушной вены для определения гематологических и биохимических показателей по общепринятым методикам, а также активности факторов неспецифического иммунитета. На 1, 5, 7, 10, 15, 20, 25, 30, 40 и 45 сутки с начала постановки опыта у зараженных псороптозом кроликову брали кровь из ушной вены и определяли лейкоформулу (табл. 1).

Таблица 1. Динамика изменения лейкограммы у кроликов, зараженных ____псороптозом (%)____

День на- Б Э Нейтрофилы Л М

блюдения М Ю П С

норма 0-2 1-3 0 0 5-9 33-39 43-62 1-3

1 0-1 1-3 0 0 5-8 33-38 30-50 1-2

5 0-1 2-4 0 0 5-11 29-45 42-60 0-1

7 1-3 3-5 0 0-1 5-10 13-27 53-62 0-1

10 2-3 4-6 0 0-1 5-9 15-20 65-71 0-1

15 2-3 7-10 0 0-1 4-7 10-18 66-75 0-1

20 1-3 7-13 0 1-2 4-7 14-22 63-68 0-1

25 1-3 8-11 0 0-1 5-9 13-21 62-71 0-1

30 1-2 6-8 0-1 1 6-9 19-26 57-64 1-2

40 2 6-9 1 1-4 6-8 34-39 44-50 1

45 2-3 5-9 0-1 2-3 6-11 33-49 42-55 1-3

Было установлено, что в течение всего периода наблюдений у зараженных псороптозом кроликов наблюдалась эозинофилия.

Первоначально аллергическая реакция развивалась как гиперчувствительность немедленного типа с участием тучных клеток, с эозинофильной инфильтрацией и васку-лонекротическими изменениями в органах мишенях. В дальнейшем к этому присоединяется лимфоцитарная инфильтрация и образование гранулем, характерных для гиперчувствительности замедленного типа.

Развитие аллергической реакции свидетельствует о том, что процесс, начавшийся первично, как местный, приобретает общий характер.

В следующем эксперименте изучалась активность факторов неспецифического им

мунитета (табл. 2).

Таблица 2. Факторы неспецифического иммунитета у кроликов при экспериментальном псороптозе

День после заражения БАСК, % ЛАСК, % Общее кол-во лейкоцитов, 109/л ФАЛ, % ФЧ

5 46,08 ±2,81 7,9 ± 0,24 8,9 ± 0,26 70,28 ±1,38 6,12 ±1,02

10 44,15 ±2,56 8,1 ±0,46 9,3 ± 0,34

15 42,85 ±2,29 8,9 ±0,31 9,5 ±0,41 56,32 ±2,64 3,96 ±0,98

20 43,01+2,35 7,5 ±0,25 9,2 ± 0,29

25 41,26 ±2,14 7,0 ±0,28 8,7 ±0,18 63,74 ±2,05 5,03 ± 1,27

30 28,15+3,01 7,1+0,32 9,5+0,27 55,88+3,35 4,92+0,91

45 35,05+2,54 6,3+0,15 8,6+0,15 68,75+2,01 5,34+1,36

Здоровые (контроль) 45,74 ±3,24 7,3 + 0,13 8,1 ±0,45 64,85 ±2,14 6,76 ±0,26

Анализируя активность факторов неспецифического иммунитета у кроликов, боль ных экспериментальным псороптозом, и сравнивая её активность у здоровых живо ных, мы можем отметить, что за период наблюдения у больных кроликов бактерици ная активность сыворотки крови снижалась на 30,2-55,46%.

Общее количество лейкоцитов у больных животных увеличилось по сравнению кроликами контрольной группы. Фагоцитарная активность лейкоцитов к 25-му и 45-м дню заражения у кроликов опытной группы была идентична таковой у здоровых ж вотных. К 45-му дню после заражения фагоцитарное число было на 26,65% ниже, чем здоровых животных и на 28,52% ниже, чем до заражения.

На 5-й день после заражения у кроликов опытной группы произошли изменения г матологических показателей - снизились количество эритроцитов и уровень гемогло бина, возросло количество лейкоцитов. К 15-му дню после заражения количество эри роцитов снизилось на (27,48-47,54)%, тромбоцитов - на (32,96-60,69)%, уровень гемо глобина упал на (15,31-38,46), количество лейкоцитов возрастало на (17,44-60,52)% п сравнению с показателями до заражения.

При изучении факторов свертываемости крови у больных псороптозом кролико было установлено, что к 10-му дню после заражения время кровотечения (ВК) у кроли ков увеличилось в 1,87 раз, время свертывания крови (ВСК) увеличилось в 1,4 раза, ко личество тромбоцитов (Т) уменьшилось в 1,67 раз по сравнению с периодом до зар жения (табл. 3).

Таблица 3. Факторы свертываемости крови у кроликов у кроликов при экспериментальном псороптозе

День наблюдения Т, 10'7л ВК,мин ВСК, мин.

до заражения 192,18+6,36 2,43+0,31 2,07+0,29

5 136,42+9,67 2,49+0,27 -

10 115,73+13,88 4,55+0,31 2,91+0,44

15 108,39+20,15 5,09+0,38 3,58+0,25

20 116,39+20,15 5,01+0,38 3,3+0,29

30 120,56+17,39 4,57+0,47 -

45 134,64+8,19 3,58+0,33 3,1+0,22

К 15-му дню после заражения продолжительность времени кровотечения у больных кроликов увеличилась в 2,09 раз, время свертывания крови - в 1,73 раз, а количество тромбоцитов уменьшилось в 1,77 раз по сравнению с периодом до заражения.

К 45-му дню после заражения время кровотечения у больных кроликов было в 1,47 раза больше показателей до заражения, время свертывания крови в 1,49 раз превышало продолжительность его до заражения, а количество тромбоцитов было ниже в 1,43 раза, чем до заражения. У больных псороптозом кроликов отмечалась гипопротеине-мия, наиболее ярко выраженная в период с 20 по 45-й день после заражения.

Таким образом, псороптоз кроликов приводит к нарушению показателей гомеостаза.

Влияние псороптоза на продуктивные показатели кроликов

Определение прироста массы здоровых и больных псороптозом кроликов показало, что уже с первых дней заражения наблюдается отставание в росте, а у 30% животных наблюдалась полная задержка прироста массы тела (табл. 4).

Таблица 4. Масса тела здоровых и больных псороптозом кроликов, г

День после заражения Здоровые Больные

до заражения 1954+140 1965+105

10 2067+62 1966+103

12 2181+128 1961+81

18 2299+129 1952+86

24 2419+113 1944+94

30 2540+148 1943+110

36 2651+68 1954+99

42 2747+109 1948+78

48 2852+101 1951+84

По минимальным требованиям ГОСТа к живой массе кроликов мясо-шкуровых пород все животные до заражения относились к третьему классу. По окончании опыта кролики контрольной группы относились ко второму классу, а экспериментально за-

раженные псороптозом кролики являлись не классными. Мясо, полученное от больных псороптозом кроликов, по биохимическим показателям и биологической ценности являлось продуктом низкого качества и оценивалось, как условно годное (табл. 5).

Таблица 5. Физико-химические показатели мяса больных и здоровых кроликов

Время после заражения

Показатели 20-й день 40-й день

Здоровые Больные Здоровые Больные

РН 6,28+0,06 5,84+0,15 6,44+0,11 5,98+0,09

Реакция на перексидазу Сомнит. Положит. Отрицат. Положит.

Реакция на полипептиды Отрицат. Отрицат. Положит. Отрицат.

Количество аминоамми-ачного азота, мг% 1,12+0,13 0,96+0,02 1,33+0,07 1,12+0,13

Наличие аммиака и солей аммония Отрицат. Отрицат. Сомнит. Отрицат.

Как следует из данных табл. 5, в мясе от больных псороптозом кроликов к 15-му дню после заражения изменяется реакция среды в щелочную сторону, выявляются продукты первичного распада белков и снижается активность тканевых ферментов, что создает благоприятные условия для развития микрофлоры, приводящей к порче мяса.

При бактериологическом исследовании органов и тканей больных псороптозом кроликов, убитых на 60 сутки после начала постановки опыта, было обнаружено, что наибольшей микробной обсемененности подвергается печень, мезентериальные лимфоузлы и селезенка. При этом выделяли такие микроорганизмы, как E.coli, Proteus vulgaris, Proteus mirabilis, Proteus rettgeri, Bacillus paracolli, Salmonella enteriditis, кокки (табл. 6).

Таблица 6. Обсемененность микроорганизмами внутренних органов кроликов,

больных псороптозом (%)

День после заражения

Вид микроорганизма 20-й 40-й

печень л/узлы селезенка печень л/узлы селезенк

E.coli 62,1 71,4 57,1 71,4 57,1 28,5

Proteus vulgaris 66,4 57,1 28,5 57,1 28,5 14,2

Proteus mirabilis 60 42,8 28,5 28,5 14,2 -

Proteus rettgeri 62 28,5 14,2 28,5 - -

Bacillus paracolli 57,1 28,5 42,8 42,8 14,2 -

Salmonella enteriditis - - - - - -

Кокковая микрофлора 58 42,8 - 28,5 14,2 -

Оценка биохимического состава крольчатины показала, что в мясе кроликов, боль ных псороптозом, отмечается повышение влаги на 3,27% к 20-му дню и на 10,24% 40-му дню после заражения по сравнению с мясом здоровых животных. Резко снижа-

ется содержание жира на 26,25% к 20-му дню и на 86,04% - к 40-му дню после заражения. К 20-му дню после заражения содержание белка в мясе от больных животных было на 3,1% выше, чем от здоровых кроликов, а на 40-й день - ниже на 12,22%.

Таким образом, псороптоз приводит к снижению массы тела больных кроликов, ухудшению качества мяса может повлечь за собой определенные последствия и нанести ущерб кролиководческим хозяйствам.

Эффективность Феноксифена при псороптозе кроликов

Оптимизация компонентного состава Феноксифена if определение его акари-цидной и овоцидной активности. С целью повышения акарицидной активности Феноксифена и придания ему овоцидных свойств был оптимизироваи состав препарата, путем смешивания известного состава «Пурофен» с феноксиэтанолом в соотношении 2:1 и добавления воды. Препарат локально наносили на пораженные псороптозом участки кожи кроликов, либо использованием его водные растворы. Для этого были приготовлены следующие концентрации испытуемого препарата, по действующему веществу S-фенвалерату: 0,003%; 0,006%, 0,012%, 0,024%, 0,048%.

Вначале комплексным препаратом «Пурофен»+феноксиэтанол (Феноксифен) в различных концентрациях обрабатывали клещей in vitro. Для этого 10 особей погружали в раствор препарата на 1 минуту, а затем помещали на фильтровальную бумагу. Учет результатов проводили через 24 часа. Гибель клещей наблюдалась при погружении их в препарат 0,003% концентрации.

Затем определяли действие испытуемого препарата в различных концентрациях на яйца P. cuniculi. Контролем служили яйца и имаго клещей P.cuniculi, обработанные составом «Пурофен», который не содержал феноксиэтанола и дистиллированной воды.

Далее каждый образец клещей и яиц, помещенных на фильтровальную бумагу обрабатывали определенной концентрацией комплексного препарата «Пурофен»+фенокси-этанол при помощи шприца из расчета 0,5 мл на 0,5 см2 образца. Обработку образцов каждой из концентраций производили в трехкратном повторении. Контролем служили образцы клещей и яиц, обработанные аналогично дистиллированной водой.

Все образцы были помещены во влажную камеру термостата при температуре 28°С. Учет результатов проводили на 3, 5 и 7 сутки.

Было установлено, что на 3 сутки в образцах, обработанных 0,012% эмульсией, была заметна деформация 10 яиц (67%), а 0,024% эмульсией - 12 яиц (80%) - яйца изменили свою форму, были сплюснуты с боков; 0,048% эмульсией - деформация всех яиц. Остальные образцы без изменений. На 5 сутки - расплод в контроле (15 особей - 100%).

Остальные образцы без изменений. На 7 сутки - расплод из недеформированных яиц в образцах, обработанных 0,003 и 0,006% эмульсией препарата (5 - 33%, 3 - 20% особей). Деформированные яйца сухие, серого цвета, плохо извлекаются из корочек.

Таким образом, наиболее оптимальная концентрация действующего вещества Фе-ноксифена, имеющая овоцидное действие, составила 0,048%.

Больным псороптозом кроликам в количестве 5 голов закапывали в каждое ухо по 2 мл Феноксифена с содержанием действующего вещества 0,048%, обладающего ово цидным действием. Животные контрольной группы были аналогично обработаны рас твором хлорида натрия. Учет результатов проводили на 3, 5 и 7 сутки.

На 3 сутки у кроликов опытной группы обнаруживали только мертвых клещей. От мечали размягчение струпьевидных корочек в ушах. Кролики чешут уши меньше, че до обработки. На 5 сутки - при взятии соскобов и их микроскопии: яйца в корочка деформированы, расплода нет. Визуально - ушные раковины менее красные, отторже ние струпьевидных корочек, частичное очищение слухорых проходов; при пальпации местная температура не повышена. На 7 сутки - микроскопия не проводилась, т.к. про изошло полное отторжение корочек и освобождение слухового прохода. Животные ве дут себя спокойно, аппетит сохранен, уши не чешут.

В соскобах, взятых из ушных раковин контрольных животных, на протяжении всег опыта были обнаружены клещи рода Р.ситсиИ во всех фазах развития и их яйца.

Было также установлено, что Феноксифен вызывает 100% гибель имаго клещей I яиц при концентрации 8-фенвалерата 0,006% и концентрации феноксиэтанола 0,1%.

Увеличение концентрации Б-фенвалерата и феноксиэтанола также обеспечива 100% гибель имаго и яиц.

Снижение концентрации феноксиэтанола в составе Феноксифена не обеспечивае 100% гибели яиц, а при обработке яиц составом «Пурофен» без феноксиэтанола ил просто дистиллированной водой - происходит выплод живых особей клещей из яиц Но, если обработать «Пурофеном» клещей - наблюдается их 100% гибель.

Таким образом, Феноксифен обладает акарицидным и овоцидным действием, а «Пу рофен» только акарицидным действием.

Терапевтическая эффективность Феноксифена. На следующем этапе проводил лечение 5 больных псороптозом кроликов, уменьшив объем применяемого препарата Для этого в каждое ухо кроликам закапывали по 1 мл Феноксифена с содержание действующего вещества 0,048%.

На основании исследования соскобов, взятых от животных после обработки Фенок сифеном было установлено, что эффективность препарата при псороптозной инвази

составила 100%. Об этом свидетельствует отсутствие на 3 сутки опыта живых клещей, а на 7 сутки при микроскопии соскобов различима деформация и частичное разрушение оболочки яиц паразитов, молодого расплода нет. Отсутствовали также клинические признаки псороптоза у опытных кроликов.

Таким образом, препарат Феноксифен при введении в ушную раковину кроликов в дозе 1 мл даёт положительный результат даже при самой низкой концентрации действующего вещества и объема препарата, что делает его расход экономным. Феноксифен обладает акарицидним и овицидным действием уже после однократной обработки, что также позволяет снизить расход препарата и кратность обработок. Отрицательного влияния препарата на организм животных не было выявлено.

Изучение влияния Феноксифена на организм кроликов

Для изучения влияния Феноксифена на организм кроликов были созданы 4 группы животных - 2 опытные и 2 контрольные, по 5 голов в каждой.

Для изучения безвредности препарата кроликам I опытной группы вносили в каждую ушную раковину по 5 мл феноксифена однократно, кроликам II опытной группы Феноксифен вводили по 5 мл двукратно с интервалом 24 часа. Кроликам контрольных групп аналогично вводили физраствор. Через 1, 3, 5, 7, 14 и 21 сутки у кроликов брали кровь для биохимических исследований (табл. 7).

Таблица 7. Изменение биохимических показателей сыворотки крови кроликов при однократном введении фенокифена (п=5, Р>0,05)

Биохим. показатели сыворотки крови Подопытные животные Время исследования, сут. Контр, жив.

1 3 5 7 14 21

а-амилаза, МЕ/л 701,33+2,6 697,8+8,7 699,66+7,73 702,33+3,07 697,33+3,07 700,3 3±5,4 704+7,78

АсАТ, МЕ/л 17,32+1,38 17,96+1,07 18,13+1,7 18,33+7,14 18,0+0 17,83+0,17 18,33+1,95

АлАТ, МЕ/л 13,03+0,87 13,5+0,4 13,63+0,37 13,75+0,25 13,53+0,47 13,4+0,6 13,78+0,48

ГГТ, МЕ/л 8,33+0,76 8,66+0,85 8,33+0,94 8,33+0,86 8,66+0,85 9,0+0 9,0+0,75

ЛДГ, МЕ/л 348,66+ 22,64 350,66+ 15,44 346,33+ 11,04 349,66+ 8,31 350,33+ 12,24 352,33+10,4 350,0+ 13,23

Холестирин, ммоль/л 1,65+0,05 1,64+0,05 1,69+0,11 1,65+0,05 1,64+0,05 1,64+0,05 1,89+0,29

Креатинин, мкмоль/л 92,82+1,77 94,59+2,65 93,7+4,42 92,82+1,77 93,7+3,53 95,47+5,3 96,35+ 7,07

Глюкоза, ммоль/л 6,07+1,25 6,57+0,21 6,61+0,07 6,66+0,15 6,66+0,08 6,6+0,24 6,69+1,26

Мочевина, ммоль/л 4,25+0,13 4,22+0,13 4,33+0,22 3,99+0,01 4,27+0,13 4,22+0,09 4,16+0,08

Мочевая к-та, мкмоль/л 41,04+0,59 42,23+1,19 39,26+0,59 40,44+0,59 38,66+0,59 39,85+0,59 44,62+2,97

При однократном введении Феноксифена в опытной группе кроликов содержани а-амилазы было в пределах физиологической нормы, а у контрольных животных со ставило 704,0+7,78 МЕ/л.

При диагностике фукционального состояния печени широко применяется определе ние АсАТ и АлАТ, а также соотношение активности АсАТ/АлАТ (коэффициент де Ри тиса), который в норме составляет 1,33. В опытной группе коэффициент де Ритиса течение всего опыта был равен 1,33, а изменения активности гамма-глутамилтранс феразы и лактодегидрогеназы по сравнению с контрольной группой недостоверны.

Содержание холестирина у контрольных животных составило 1,89+0,29 ммоль/л После однократного введения феноксифена колебания содержания холестирина было пределах физиологической нормы.

Содержание креатинина у контрольных животных составило 96,35+7,07 мкмоль/л. опытной группе содержание креатинина глюкозы, мочевой кислоты, мочевины поел введения феноксифена в течение опыта было в пределах физиологической нормы.

При двукратном применении Феноксифена было установлено, что содержание а амилазы у контрольных животных составило 704,0+7,78 МЕ/л, у животных подопыт ной группы наблюдали снижение активности а-амилазы на 5-й и 7-й дни, которая нор мализовалась достаточно быстро на 14 день (696,0+12,3 МЕ/л). В подопытной групп наблюдали понижение коэффициента де Ритиса до 1,06-1,31, к 7 дню это соотношени полностью восстановилось.

В опытной группе изменения активности гаммаглутамилтрансферазы и лактадегид рогеназы по сравнению с контрольной группой недостоверно.

Содержание холестирина у контрольных животных составило 1,89+0,29 ммоль/ После двукратного введения феноксифена колебания содержания холестирина было пределах физиологической нормы.

Содержание креатинина у контрольных животных составило 96,35+7,07 мкмоль/л. подопытной группе на 5 и 7-й дни наблюдали понижение содержания креатинин (58,35+4,42 и 79,56+5,3 ммоль/л, соответственно).

Содержание глюкозы, мочевой кислоты и мочевины у подопытных кроликов было пределах физиологической нормы.

Таким образом, препарат Феноксифен не обладает острой токсичностью и являете безвредным для кроликов при однократном и двукратном его нанесении в повышен ных дозах на кожу внутренней поверхности ушной раковины животных.

выводы

1. По результатам световой и электронной микроскропии выявлены следующие морфологические особенности клещей Psoroptes cimiculi:

- длинностебельковые амбулакры у всех возрастных фаз имеются на лапках 1- и 2-й пары ног (женских и мужских протонимф, взрослых самок и мужских телеонимф такие амбулакры есть на 4-й паре конечностей; у взрослых самцов на лапках 1-, 2- и 3-й пары, и по два короткостебельчатых амбулакра на лапках 4-й пары конечностей);

- гнатосома длинная, конусовидная; ротовой аппарат приспособлен для приёма жидкой пищи; хелицеры режуще-колющего типа, снабжены зубовидными выроситами, способствующими добыванию и приему жидкой пищи;

- на вентрально-боковой и дорзальной поверхности второго членика педипальп у клещей всех возрастов имеются по 2 хета.

2. При заражении кроликов клещами P. cimiculi на 5-й день снижается количество эритроцитов и уровня гемоглобина, возрастает количество лейкоцитов. К 15-му дню после заражения количество эритроцитов снизилось на (27,48-47,54)%, уровень гемоглобина - на (15,31-38,46)%, количество тромбоцитов на (32,96-60,69)% по сравнению с показателями до заражения. Количество лейкоцитов возрастало на (17,44-60,52)% по сравнению до заражения, бактерицидная активность сыворотки крови снижалась на 30,2-55,46%, по сравнению со здоровыми животными.

3. Фагоцитарная активность лейкоцитов к 45-му дню после заражения кроликов псо-роптозом соответствовала таковой у здоровых животных, фагоцитарное число было на 26,65% ниже, чем у здоровых животных и на 28,52% ниже, чем до заражения.

4. У кроликов зараженных P. cuniculi к 10-му дню после заражения время кровотечения увеличилось в 1,87 раз, время свертывания крови увеличилось в 1,4 раза, количество тромбоцитов уменьшилось в 1,67 раз по сравнению с периодом до заражения. К 15-му дню после заражения продолжительность времени кровотечения увеличилась в 2,09 раз, время свертывания крови - в 1,73 раз, а количество тромбоцитов уменьшилось в 1,77 раз по сравнению с периодом до заражения. К 45-му дню после заражения время кровотечения у кроликов данной группы было в 1,47 раза больше показателей до заражения, время свертывания крови в 1,49 раз превышало продолжительность его до заражения, и количество тромбоцитов в 1,43 раза было ниже количества до заражения.

5. В материале от зараженных кроликов, убитых на 60 сутки с начала постановки опыта, обнаружена его обсемененность условно-патогенной секундарной микрофлорой. Наибольшей микробной обсемененности подвергается печень, мезентериальные лимфоузлы, селезенка, из которых были выделены протеи (P. vulgaris, P. mirabilis, Р.

rettgeri), бациллы (В. paracolli), сальмонеллы (S. enteriditis), эшерихии, кокки.

6. Овоцидное действие Феноксифена в отношении яиц клещей Psoroptes cunicu проявляется при концентрации действующего вещества S-фенвалерата 0,048%. То тальная гибель имаго клещей наблюдалась при концентрации S-фенвалерата 0,006% концентрации феноксиэтанола 0,1%.

7. Терапевтическая эффективность Феноксифена при псороптозе кроликов составл ет 100% при однократном его наружном применении в дозе 1 мл в каждое ухо.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Лекарственный препарат Феноксифен, обладающий акарицидной и овоцидно активностью, рекомендуется для применения в кролиководстве для лечения больны псороптозом кроликов. Феноксифен необходимо применять наружно, однократно, з капывая в каждое ухо больного псороптозом кролика по 1 мл препарата.

2. Результаты сканирующей электронной микроскопии по изучению морфологич ских половых и возрастных особенностей клещей Psoroptes cuniculi, а также данны микрометрических измерений клещей и яиц рекомендуется использовать в ветерина ных лабораториях при постановке диагноза на псороптоз кроликов.

3. Результаты исследований по изучению морфологии клещей P. cuniculi и терапе тической эффективности Феноксифена при псороптозе кроликов рекомендуется и пользовать в учебном процессе в ВУЗах РФ по дисциплине «Паразитология».

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Акбаев P.M., Беликова Е.Г., Демин В.А. Инсектоакарицидные капли и спре «Барс», фармакотоксикологическая характеристика и противопаразитарные свойст //Ветеринарный консультант.- 2005.- № 10.- С. 25-26.

2. Боровина Е.Г., Василевич Ф.И. Эффективность феноксифена при псороптозе кр ликов //Сб.тр.Тюменского ВНИИВВЭиА,- 2007,- № 49,- С. 47-50.

3. Боровина Е. Г., Василевич Ф.И. Феноксифен и его эффективность при псороптозе кроликов //Вестник Саратовского ГАУ им. Н.И.Вавилова.- 2008.- № 4,- С. 11-13.

4. Василевич Ф.И., Боровина Е.Г. Клинико-гематологичексие и биохимические и менения, а также факторы неспецифического иммунитета при экспериментальном пс роптозе кроликов // Ветеринрная медицина.- 2009.- № 1/2.- С. 28-29.

5. Василевич Ф.И., Боровина Е.Г. Исследование морфологических особенностей п ловозрелого самца и самки (имаго) клещей P. cuniculi //Ветеринрная медицина,- 2011 №2,- С. 31-34.

Содержание диссертации, кандидата ветеринарных наук, Боровина, Екатерина Геннадьевна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Краткие сведения о систематике, биологии и морфологии клещей, РБОГС^еЭ сигисиН, вызывающих псороптоз у кроликов.

1.2. Эпизоотология и патогенез псороптоза кроликов.

1.3. Клинические признаки и диагностика псороптоза.

1.4. Терапия и профилактика псороптоза в кролиководстве.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1. Оценка акарицидной и овоцидной активности новых веществ и препаратов на клещах семейства РБогор^ае.

3.2. Особенности морфологии клещей Рвогор1е8 сишсиН.

3.3. Гематологические показатели и активность факторов неспецифического иммунитета у кроликов при экспериментальном псороптозе.

3.4. Влияние псороптоза на продуктивные показатели кроликов.

3.5. Эффективность феноксифена при псороптозе кроликов.

3.6. Изучение влияния феноксифена на организм кроликов.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Морфологические особенности клещей Psoroptes cuniculi и эффективность акарицида Феноксифен при экспериментальном псороптозе кроликов"

Актуальность темы. Псороптоз (рзогс^с^Б) — инвазионное заболевание кроликов, вызываемое клещами-накожниками Р$огор1е8 ситсиН.

Цель и задачи исследований. Цель исследований - изучение морфологических особенностей клещей^ РэогоргеБ ситсиН с помощью электронной микроскопии и определение акарицидной и овоцидной активности препарата Феноксифен и- его терапевтической эффективности при псороптозе кроликов.

Для решения были поставлены следующие задачи:

1. Изучить с помощью электронной микроскопии морфологические особенности клещей РБогс^еБ ситсиН.

2. Провести экспериментальное заражение кроликов- клещами Psoroptes ситсиН и изучить патогенез болезни.

3. Определить влияние псороптоза на продуктивные показатели кроликов.

4. Оптимизировать компонентный состав препарата Феноксифен и г определить его акарицидную и овоцидную активность.

5. Изучить терапевтическую эффективность препарата Феноксифен при экспериментальном псороптозе кроликов.

6. Определить влияние Феноксифена на гомеостаз организма кроликов.

Научная новизна. Впервые, с помощью сканирующего электронного микроскопа установлены морфологические особенности клещей РБОгоргея ситсиН, изучены структурные компоненты их ротового аппарата, амбудакр, гнатосомы и педипальп и проведены, микрометрические измерения клещей и яиц.

Впервые, для ветеринарной практики предложено1 новое акарицидное лекарственное средство «Феноксифен» на основе Б-фенвалерата и синтетических пиретроидов, предназначенное для лечения псороптоза кроликов.

Доказано овоцидное действие Феноксифена в отношении яиц клещей Р8огор1ез ситсиН в концентрации^ его действующего вещества Б-фенвалерата 0,048%. Тотальная1 гибель имаго клещей- происходит при концентрации Б-фенвалерата 0«006% и концентрации феноксиэтанола 0,1%.

При экспериментальном псороптозе у кроликов бактерицидная активность сыворотки крови снижается на 30,2—55,46%, время свертывания крови увеличивается в 1,73 раза, наблюдаются гипопротеинемия, лейкоцитоз, уменьшение количества эритроцитов, тромбоцитов и гемоглобина.

Терапевтическая эффективность Феноксифена при псороптозе кроликов составляет 100% при однократном его наружном применении в дозе 1 мл в каждое ухо.

Практическое значение. Для применения в ветеринарии в качестве акарицида при псороптозе кроликов предложен высокоэффективный препарат Феноксифен, который прошел лабораторные и производственные испытания.

В опытах на кроликах при экспериментальном псороптозе доказана безвредность и овоцидное действие Феноксифена, что подтверждено актами, утвержденными в установленном порядке.

Разработан проект инструкции по применению лекарственного препарата Феноксифен для применения в ветеринарии.

Результаты исследований по изучению морфологических особенностей клещей Psoroptes cuniculi и терапевтической эффективности препарата Феноксифен при псороптозе кроликов используются в учебном процессе в ФГБОУ ВПО МГАВМиБ по дисциплине «Паразитология и инвазионные болезни животных», а также на курсах повышения квалификации ветеринарных врачей.

Апробация работы. Материалы диссертации изложены на научно-практических конференциях «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» (Москва, 2007, 2008, 2010); научно-практической конференции, посвященной 90-летию ФГБОУ ВПО МГАВМиБ (Москву 2009); XIII и XIV Международном ветеринарном конгрессе (Москва, 2010, 2011).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Особенности морфологии клещей Psoroptes cuniculi.

3. Новый препарат Феноксифен обладает акарицидной и овоцидной активностью.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 5 статей, в т.ч. 3 статьи в научных журналах, рекомендованных ВАК (Ветеринарный консультант, Ветеринарная медицина) и 2 — в сборниках научных трудов.

Объем и структура диссертации. Материалы диссертации изложены на 150 страницах компьютерного текста и включают введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результатов исследований, выводы, практические предложения и список использованной литературы (160 источников, из них 33 иностранных авторов).

Работа содержит 11 таблиц, 60 рисунков и 5 страниц приложений.

Заключение Диссертация по теме "Паразитология", Боровина, Екатерина Геннадьевна

5. Выводы

1. По результатам электронной микроскопии установлено, что у клещей рода Рвогч^еэ длинностебельковые амбулакры на лапках ног первой и второй пары конечностей имеются у всех возрастных фаз. У женских и мужских протонимф, взрослых самок и мужских телеонимф такие амбулакры есть на четвёртой паре конечностей. У женских телеонимф лапки третьей и второй пар конечностей без амбулакров. У самцов длинностебельчатые амбулакры имеются на лапках первой, второй, третьей пары и по два короткостебельчатых амбулакра на лапках четвёртой пары конечностей. Все щетинки клещей гладкие, в большинстве волосовидные, на туловище — немногочисленны.

Гнатосома длинная, конусовидная; ротовой аппарат приспособлен для приёма жидкой пищи. Хелицеры псороптидных клещей режуще-колющего типа. Учитывая данные по строению гипостомы клещей, можно увидеть, что в процессе эволюции их ротовой аппарат усовершенствовался:

5-члениковые конечности второго сегмента редуцировались в хитинизированные 21члениковые хелицеры;

- хелицеры более вытянуты и снабжены зубовидными выростами;

- сильное развитие мышц хелицер и как следствие их сокращение помогает разрезанию эпидермиса кожи животного.

- появление на апикальной части гипостом полулунных органов и языковидных выростов, способствующих добыванию и приёму жидкой пищи из тканей животного.

На втором членике педипальп у клещей всех возрастных фаз отмечено наличие двух хет: вентрально-боковой и дорзальной.

У самцов опистосомальный щиток крупный, шестиугольной формы, опистосомальные лопасти широко расставлены и хорошо развиты. У самки протонимф и телеонимф копулятивные бугры высокие отстоят друг от друг на расстояние равное высоте бугра.

2. При заражении кроликов клещами Р. сишсиН уже на 5-й день произошли изменения гематологических показателей. Снизилось количество эритроцитов, уровень гемоглобина, возросло количество лейкоцитов. К 15-му дню после заражения количество эритроцитов снизилось на 27,48-47-54%, уровень гемоглобина на 15,31-38,46%, количество тромбоцитов на 32,96-60,69% по сравнению с показателями до заражения. Количество лейкоцитов возрастало на 17,44-60,52% по сравнению до заражения.

3. Анализируя активность факторов неспецифического иммунитета у кроликов, больных экспериментальным псороптозом, и сравнивая её активность у здоровых животных, за период наблюдения у больных кроликов бактерицидная активность сыворотки крови снижалась на 30,2—55,46% по сравнению со здоровыми животными.

4.Общее количество лейкоцитов увеличилось у больных животных по сравнению с кроликами контрольной группы. Фагоцитарная активность лейкоцитов к 25-му дню заражения у кроликов опытной группы была практически идентична таковой у здоровых животных в контрольной группе. К 45-му дню после заражения фагоцитарная активность лейкоцитов у инвазированных кроликов соответствовала таковой у здоровых животных, фагоцитарное число было на 26,65% ниже, чем у здоровых животных и на 28,52% ниже, чем до заражения.

5. У кроликов зараженных P. cuniculi к 10-му дню после заражения время кровотечения (ВК) увеличилось в 1,87 раз, время свертывания крови (ВСК) увеличилось в 1,4 раза, количество тромбоцитов (Т) уменьшилось в 1,67 раз по сравнению с периодом до заражения. К 15-му дню после заражения продолжительность времени кровотечения» увеличилась в 2,09 раз, время свертывания крови - в 1,73 раз, а количество тромбоцитов уменьшилось в 1,77 раз по сравнению с периодом до заражения. К 45-му дню после заражения время кровотечения у кроликов данной группы было в 1,47 раза больше показателей до заражения, время-свертывания крови в 1,49 раз превышало продолжительность его до заражения, и количество тромбоцитов в 1,43 раза было'ниже количества до заражения.

6. У зараженных животных отмечается четко выраженная гипопротеинемия, которая наиболее ярко выражена в период с 20 по 45-й день после заражения.

7. В материале от зараженных кроликов, убитых на 60-66 сутки, обнаружена его обсемененность микрофлорой. Проведенные исследования показали, что наибольшей микробной обсемененности подвергается печень, мезентериальные лимфоузлы, селезенка. При этом идентифицировали следующие микроорганизмы: Proteus vulgaris, Pr. mirabilis, Pr. rettgeri, Bacillus paracolli, Salmonella enteroditis, Gocci.

8.Наиболее оптимальная концентрация феноксифена, имеющая овицидное действие - 0,048%. 100% гибель имаго клещей и яиц происходит при концентрации S-фенвалерата 0,006% и концентрации феноксиэтанола 0,1% (Таблица 9.)

5. Практическое использование полученных результатов

1. Лекарственный препарат Феноксифен, обладающий акарицидной и овоцидной активностью, рекомендуется для применения в кролиководстве для лечения больных псороптозом кроликов. Феноксифен необходимо применять наружно, однократно, закапывая в каждое joco больного псороптозом кролика по 1 мл препарата.

2. Результаты сканирующей электронной микроскопии по изучению морфологических половых и возрастных особенностей клещей Psoroptes cuniculi, а также данные микрометрических измерений клещей и яиц рекомендуется использовать в ветеринарных лабораториях при постановке диагноза на псороптоз кроликов.

3. Результаты исследований по изучению морфологии клещей Р. cuniculi и терапевтической эффективности Феноксифена при псороптозе кроликов рекомендуется использовать в учебном процессе в ВУЗах РФ по дисциплине «Паразитология».

Библиография Диссертация по биологии, кандидата ветеринарных наук, Боровина, Екатерина Геннадьевна, Москва

1. Методические указания по испытанию пестицидов, предназначенных для борьбы с эктопаразитами животных", Москва 1973, С 12-13), в частности "Испытание эффективности препаратов против клещей -возбудителей псороптоза".

2. Аббасов Т.Г. Борьба с арахно-энтомозами животных и птиц / Т.Г. Аббасов, В А. Поляков // Проблемы ветеринарной санитарии и экологии: сб. науч.тр. -М.- 1998.-т. 106.-е. 59-66

3. Аббасов Т.Г. Влияние перметрина на воспроизводительную функцию кроликов / Т.Г. Аббасов, СБ. Аббасов // Проблемы ветеринарной санитарии и экологии: сб. науч.тр. М. - 1998. - т. 105.-е. 25-32

4. Аббасов Т.Г. Псороптоз (ушная чесотка) кроликов и препараты, применяемыепри лечении животных /Т.Г. Аббасов, СЕ. Шерешкова // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. М. - 2004. — т. 116.-е. 114117

5. Аббасов Т.Г. Препараты из группы пиретроидов для борьбы с эктопаразитамиживотных / Т.Г. Аббасов, Поляков В.А. // Ветеринарая патология. -М. 2005. - №2. - с. 15-17

6. Адетунджи Б. Распространение, патогенез и клинические проявления саркоптоидозов у кроликов / Б. Адетунджи, А.И. Майоров // Труды Всерос. Института гельминтологии им. К.И. Скрябина. М. - 2001. - т.37. - с.29-33

7. Адетунджи Банколе Саркоптоидозы кроликов: усовершенствование терапии ипрофилактики: автореферат дис. канд. вет. наук / Б. Адетунджи; Мое. гос. академия вет. мед. и биотехнологии М.,2002. —24с.

8. Акбаев М.Ш. Паразитология и инвазионные болезни животных / М.Ш. Акбаев, Ф.И. Василевич, А.Р. Российцева. М.: ВО «Агропромиздат», 1992.-е. 364-371

9. Акбаев М.Ш. Практикум по диагностике инвазионных болезней животных/

10. М:Ш. Акбаев, К.И: Абуладзе, . В.И. Тараканов; A.B. Степанов,/ В.Г. Меньшиков, Ф.И. Василевич, Т.Н. Федосеев: М.: Колос, 1994. -с. 188-194

11. Андриенко К.П. Упрощенная методика.обнаружения чесоточных клещей; Кожные болезни животных/ К.П. Андриенко // Тр. Гос. ин-та ветерин. дерматологии.- 1943. т.1. - с. 180-184

12. Андричук Б. В. Эффективность пиретроидных препаратов при псороптозе овец / Б.В. Андричук // Вопросы вет. токсикологии;, энтомологии и; дератизации. М. 1987.-е. 103-106

13. Архипов И?Av Оценка противопаразитарной активности Дектомакса / И: А. Архипов, К.Л: Мальцев, С.Д. Дурдусов, Г.М1 Лазарев; P.C. Садыков // Ветеринария.-.1997. №2: -С.34

14. Афанасьева А.И. Сравнительная терапевтическая; эффективность акарицидных препаратов при псороптозе кроликов /

15. А.И. Афанасьева, К.Д., Архипова, И.В. Богданов. // Актуальные проблемы патологии животных и человека. Барнаул. - 1996. - с. 112

16. Бауман В.В. Жизнепособность яиц клещей-накожников при; низких температурах/В:В. Бауман//Ветеринария. 1946. - №2.- с.27

17. Богданов I LH. Курс кожных болезней!животных / H.H. Богданов. Ml: Сельхозиздат, 1936.-c.368

18. Бондаренко В:0; Физико-химические, токсические свойства и акарицидная активность препарата биорекс / В.О. Бондаренко // Сб. науч: тр./ Всерос. гос. НИИ контроля; стандартизации;и сертификации вет. препаратов. —1996.Т. 60.-С. 19-26

19. Буланова-Захваткина Е.М. Семейство Psoroptidae Сап. — чесоточные клещи -накожники и кожееды / Е.М. Буланова-Захваткина // Клещи грызунов фауны СССР. -М.-Л. 1955. -с. 119-122

20. Водянов A.A. К вопросу видовой специфичности накожниковых клещей / А.А.Водянов// Диагностика, лечение, профилактика инфекционных и паразитарных заболеваний сельскохозяйственных животных. — Ставрополь, 1986. с.72-76

21. Водянов A.A. Стратегия борьбы с саркоптоидозами сельскохозяйственных животных / A.A. Водянов // Состояние, проблемы и перспективы развития ветеринарной науки России. М., 1999. - т.2. - с. 26-29

22. Волков Ф.А. Этапы и перспектива развития синтеза пиретроидов / Ф.А. Волков, B.C. Промоненков. М., 1984. - с.24

23. Волков Ф.А. Экономическая эффективность препаратов при псороптоидозах животных / Ф.А. Волков, М.Н. Корешков // Методология мероприятий по профилактике и ликвидации болезней с./х. животных: сб. научн. трудов ИЭВС и ДВ. Новосибирск, 1995. - с.211-216

24. Гарипов Т.В. Фармакология сульфоксидов нефтехимического синтеза / Т.В. Гарипов // Сб. науч. тр. Ленингр. вет. ин-т. Л., 1989 (1990). - №106. - с.29-32.

25. Гарипов Т.В. Влияние сульфоксидов на естественную реактивность кроликов пораженных псороптозом / Т.В. Гарипов, A.C. Гасанов // Физиол.аспекты ветеринарии и зоотехнии. — Казань, 1994. — с.69-71

26. Гончаров А.П. Особенности поведения кроличьего накожника в условиях внешней среды / А.П. Гончаров // Харьковский вет. ин-т. — Десятоесовещание по паразитологическим проблемам и природно-очаговым болезням 22-29 октября 1959. М. - Л., 1959. - с.53

27. Гончаров А.П. Морфологические особенности стадий развития кроличьего накожника / А.П. Гончаров // Сб. трудов Харьк. вет. ин-та. — Харьков, 1960. -Т.24.-С.321-329

28. Горбунов Ф.П. Гипосульфитотерапия ушной чесотки кроликов / Ф.П. Горбунов, О.М. Протопопова//Кролиководство. 1935. - №9. - с.22

29. Громов В.П. Болезни кроликов / В.П. Громов. Свердл., 1963. - 268с.

30. Демьянович М.П. Основы гипосульфитотерапии чесотки / М.П. Демьянович // Тр. ин-та вет. дерматологии. 1938. - т. 1. - с.6-16

31. Добычин Н.П. Изучение наиболее эффективных методов диагностики чесотки домашних животных/ Н.П. Добычин // «Советская ветеринария». -№4. с. 35-37

32. Дубовой Б.Л. Децис для борьбы с псороптозом кроликов / Б.Л. Дубовой, В.А. Циммерман // Актуальные вопросы диагностики и борьбы с болезнями с./х. животных. Ставорополь, 1999. - с. 177-178

33. Дубинин В.Б. Колебания численности популяций постоянных наружных паразитов млекопитающих и их причины /В.Б. Дубинин // «Журнал общейбиологии». -1950. -Т.П. №2.

34. Дубинин В.Б. Чесоточные клещи, их биология, вред в сельском хозяйстве,меры профилактики и борьбы с ними / В.Б. Дубинин. М.: Советская наука, 1954.-172с.

35. Дубинин В.Б. Надсемейство 8агсор1:о1с1еа (Megn. е! Тг1.)- чесоточные клещи /В.Б. Дубинин //Клещи грызунов фауны СССР. М. - Л.,1955. - с.110-124.

36. Дубинин В.Б. Современное состояние вопроса о классификации чесоточных клещей. Чесоточные клещи, их биология, вред в сельском хозяйстве, меры профилактики и борьбы с ними / В.Б. Дубинин. М.: Советская наука, 1954. — с. 12-17

37. Дубинина Е.В. Аллергические компоненты клещевых заболеваний/ Е.В. Дубинина // Возбудители и переносчики паразитов и меры борьбы с ними. Ташкент, 1988. — с.67

38. Дьяконов Л.П. Паразитарные болезни сельскохозяйственных животных / Л.П. Дьяконов, И.В. Орлов, И.В. Абрамов и др. -М.: Агропроиздат, 1985. —с. 287-289

39. Жуленко В.Н. Ветеринарная токсикология / В.Н. Жуленко, М.И. Рабинович, Г.А. Таланов. М.: «Колос С», 2004. - с.48-84

40. Ильященко Н.В. Аэрозольные пены акарицидов при псороптозе кроликов /Н.В. Ильященко, М.А. Симецкий, Е.И. Милинец // Ветеринария. — 1979.1. -с.70-71

41. Ильященко В.И. Некоторые вопросы биологии клещей РБогс^еэ сишсиИ /В.И. Ильященко // Вестник с/х науки Казахстана. Алма-Ата, 1981. №5. — с.72-74

42. Ильященко В.И. Исследование метаморфоза клещей рода Рзогс^ез (Рзогорйёае) /В.И. Ильященко // Химиопрофилактика, патогенез и эпизоотология паразитов сельскохозяйственных животных. Алма-Ата, 1981.-С.68-73

43. Ильященко В.И. Присоски на конечностях клещей как диагностический тест рода Рэогс^ез/В.И. Ильященко // Ветеринария. — 1982. — №8. -с.38-39

44. Ильященко В.И. К морфологии клещей рода Рзогс^еБ / В.И. Ильященко// Ветеринария. 1984. - №4. - с.36-37

45. Ильященко В.И. Исследование биологии псороптозных клещей / В.И. Ильященко // Пятое. Всес. Акарол. Совещание: тезисы докладов. Фрунзе, 1985.С.139-141

46. Ильященко H.B. Саркоптоидные клещи (Acariña Psoroptidae, Sarcoptidae). Совершенствование методов диагностики и борьбы с ними: автореф. дис. д-ра биол. наук / Н.В. Ильященко; Кустанай, 1992. - 42с.

47. Ильященко Н.В. Подготовка саркоптоидных клещей к исследованию в сканирующем электронном микроскопе / Н.В. Ильященко // Сб. науч. трудов / Всерос. НИИ вет. санитарии, гигиены и экологии. М., 1995. — Т.97.-С. 16-22

48. Катаева Т.С. Ивомек в борьбе с псороптозом кроликов / Т.С. Катаева // Эффективность применения пестицидов в снижении потерь сельскохозяйственной продукции: Тез. докл. обл. научно-практической конф. 24 декабря 1988 г. Тюмень, 1987. - с. 12

49. Катаева Т.С. Псороптоз кроликов и меры борьбы с ним в Свердловской области / Т.С. Катаева, А.Н. Давлетшин, СМ. Тихомиров // Рекомендации.-Свердловск, 1989.- 14с.

50. Катаева Т.С. Экологические особенности применения системных препаратов при паразитарных заболеваниях сельскохозяйственных животных / Т.С. Катаева// Тр. /КубГАУ. Краснодар, 1995. - вып.349.с. 12-25

51. Катаева Т.С. Возможность использования системных препаратов для одномоментного воздействия на экто- и эндопаразитов животных /

52. Т.С. Катаева, Э.Б. Кербабаев // Вестник РАСХН. 1997. - №2. - с.71-74

53. Кенигсберг Л.М. Ушная чесотка кроликов и лечение ее гипосульфитом и соляной кислотой / Л.М. Кенигсберг // Тр. гос. ин-та вет дерматологии. — 193 8.-Т. 1 .-С.52-62

54. Кербабаев Э.Б. Акарицид системного действия /

55. Э.Б. Кербабаев, ILC. Стринадкин, А.К. Метелица, Н.И. Аксенова // Пятое Всесоюзное акарологическое Совещание: тезисы докладов. — Фрунзе, 1985. —с. 149-150

56. Кербабаев Э.Б. Борьба с псороптоидными клещами / Э.Б. Кербабаев // Тр. ВИГИС им. К.И. Скрябина. -М., 1998. -т.34. с. 188-192

57. Кербабаев Э.Б. Препарат фьюри как инсекто-акарицид в ветеринарии/ Э.Б. Кербабаев, K.M. Хайдаров, Т.С. Катаева, A.A. Давлетклычев, E.H. Катаева // Проблемы энтомологии в России. СПб., 1998. - т. 1.-е. 183-184

58. Кербабаев Э.Б. Арахноэнтомозы сельскохозяйственных животных / Э.Б. Кербабаев, Ф.И. Василевич, Т. С. Катаева, М.В. Розовенко. М.: МГАВМиБ им. К.И. Скрябина, 2000. - с.4-14, 26-32, 50-5.

59. Коллар О.Л. Фармако-токсикологическое изучение неочищенных сульфонаи сульфоксида и их применение при псороптозе кроликов и отодектозе лисиц: автореф. дис. .канд. вет. наук / О.Л. Коллар; Казан, вет. ин-т им. Н.Э. Баумана. Казань, 1986. - 18с.

60. Комаров А.К. Эпизоотолгия псороптоза и цистицеркоза кроликов и их профилактика в условиях крупного кролиководческого хозяйства/ А.К. Комаров, А.П. Гончаров, И.Л. Смирных// Проблемы паразитологии. — Киев,-1975.- ч.1.-С.241-242

61. Комаров Ф.И. Биохимические исследования в клинике / Ф.И. Комаров, Б.Ф. Коровкин, В.В. Меньшиков. Л.: Медицина, 1981. - 408 с.

62. Константинов А.П. Эффективность дектомакса при псороптозе кроликов /А.П. Константинов, В.И. Шайкин, Ф.А. Волков, М.А. Климок // Проблемы адаптации сельскохозяйственных животных. — Новосибирск, 1997. — с. 172173

63. Кудрявцев A.A. Клиническая гематология животных / A.A. Кудрявцев, Л.А. Кудрявцева. -М.: Колос, 1974. с.350-352, 370-390

64. Кудрявцев Е.А. Биологическая активность аэрозолей препарата на основе перметрина / Е.А. Кудрявцев // Сб. науч. тр. Всерос. НИИ вет.санитарии, гигиены и экологии. — 1998. т. 104. - с.80-85

65. Кудрявцев Е.А. Разработка аэрозольных форм инсектоакарицидов и изучение их эффективности в борьбе с псороптозом кроликов / Е.А. Кудрявцев// Сб. науч. тр. Всерос. НИИ вет. санитарии, гигиены и экологии.-М., 2000.-Т. 108.-С.39-47

66. Кузнецов В.Д. Псороптоз кроликов / В.Д.Кузнецов, В.М. Коновалова, З.Н. Зыкова. // Ветеринария. 1997. - №7. - с.27-28

67. Кузнецов А.Ф Справочник ветеринарного врача / А.Ф. Кузнецов, Г.М. Андреев, В.У. Давыдов, B.C. Злобин, А.И. Курилов и др. СПб.: «Лань», 2001. -с.264-269, 848-851

68. Липницкий С.С. Справочник по болезням домашних и экзотических животных / С.С. Липницкий, В.Ф. Литвинов, В.В. Шимко, А.И. Гантимуров. Мн.: Ураджай, 1996. - с. 170.

69. Любашенко СЯ. Ушная чесотка / СЯ. Любашенко, A.M. Петров. М.: Колос, 1962.-С.146-149

70. Макаревский А.Н. Заразные болезни кроликов и зайцев / А.Н. Макаревский. — М.: Гос. торг. из-во. 1931. - 132с.

71. Метелица А.К. Препараты дельтаметрина при сароптоидозах животных / А.К. Метелица, А.Н. Давлетшин, G.H. Тихомиров, Г.И. Пашкевич // Сб. науч. тр. -Тюмень, 1994.-t.36.-c.74

72. Метелкин А.И. Инфекционные и инвазионные болезни кроликов / А.И. Метелкин, П1П. Сахаров. -М.: Сельхозгиз, 1940. с.205-218

73. Минина О.П. Сравнительная оценка эффективности иверсекта, аверсекта-3, фармацина и рустомектина при псороптозе кроликов / О.П. Минина, Л.В. Клейменова. Сиб.аграр.наука III тысячелетия. - Новосибирск, 2000. -с. 162163

74. Москалев В.Г. Применение бытового инсектицида «Прима-71» для лечения отодектоза домашних плотоядных и псороптоза кроликов в вивариях / В.Г. Москалев, М.Ш. Акбаев // Сб.науч. Тр. Ленингр. вет. ин-т, Л., 1989. т. 104. -с. 107-110

75. Мурадян М. Лечение кроликов больных псороптозом / М. Мурадян//

76. Ветеринарная газета. 1998. - №14. - с.5

77. Назаров-Г.С. Дустотерапия чесотки у кроликов и кошек / F.C. Назаров //Тезисы докл. науч. конф. по фармакологии, посвященной памяти A.A. Сошественского.-М, 1956. с. 276

78. Ненюков Д.Е. К вопросу о борьбе с ушной чесоткой у кроликов / Д.Е. Ненюков.-М.: Сов. ветеринария,-1933.-№12.— с.51

79. Оленев Н.О. Чесоточные клещи / Н.О. Оленев. JL: Изд Ан СССР, 1932. -с. 12-16, с.64

80. Орлов Н.П. Чесотка с/х животных и современные методы борьбы с ней / Н.П. Орлов. Алма-Ата: Казах. Гос. из-во, 1951. - т.З. - 240с.

81. Орлов Н.П. Биологические основы лечения и профилактики паразитарных заболеваний / Н.П. Орлов. М.: Сельхозгиз, 1961. - с.22

82. Палимпсестов М.А. Отличительные признаки личинок чесоточных клещей рода Psoroptes Gervais, 1841 / М.А. Палимпсестов/ Ветеринария. -1944. -№10.-с. 23-24

83. Палимпсестов М.А. Некоторые стороны биологического поведения чесоточных клещей рода Psoroptes Gervais, 1841 / М.А. Палимпсестов // Науч. тр. Укр. ИЭВ. Харьков, 1946. - т. 14. - с.35-45

84. Палимпсестов М.А. Отличительные признаки личинок, протонимф, телеонимф и взрослых чесоточных клещей рода Psoroptes Gervais, 1841 / М.А. Палимпсестов/ Науч. тр. Укр. ИЭВ. Харьков, 1946. - т. 14. - с.216-226.

85. Палимпсестов М.А. Особенности развития накожниковых чесоточныхклещей / М.А. Палимпсестов // Ветеринария. 1947. - №1. - с.6-9

86. Палимпсестов М.А. Новые представления о метаморфозе и половомдиморфизме чесоточных клещей / М.А. Палимпсестов // Сб. тр. Харьков, вет. ин-та, Харьков, 1948. т. 19. - вып.2. - с.5-10

87. Палимпсестов М.А. Особенности роста и превращения чесоточных клещей рода Psoroptes Gervais, 1841 / М.А. Палимпсестов// Сб. тр. Харьков, вет. инта, Харьков, 1948. т.19. - вып.2. - с.11-25

88. Палимпсестов М.А. Морфогенез чесоточных клещей рода Psoroptes Gervais, 18411 М.А. Палимпсестов// Сб. тр. Харьков, вет. ин-та, Харьков, 1948.-t.19. -вып.2. с.26-58

89. Палимпсестов М.А. Особенности развития накожниковых чесоточных клещей / М.А. Палимпсестов // Сб. трудов Харьковского вет. ин-та. — Харьков, 1948. т. 19 (Вып.2). - с.5-10

90. Петрухин И.В. Домашний ветеринар / И.В. Петрухин. М.: «Воскресенье», 1993.-С.160-161

91. Поляков В.А. Ветеринарная энтомология и арахнология: Справочник / В.А. Поляков, У .Я. Узаков, Г.А. Веселкин. М.: Агропромиздат, 1990. -с.163-166,196-197, 205-207

92. Приселкова Д.О. Патогенез и диагностика чесотки / Д.О. Приселкова // Ветеринария.- 1949.-№ 12.-е. 12-15

93. Приселкова Д.О. Морфология, биология и экология накожников лошадей/ Д.О. Приселкова // Проблемы ветернарной дерматологии, арахнологии и энтомологии. М., 1954. - с.59-68

94. Русаков СВ.Экологические аспекты применения ивомека, дуотина и фармацина в ветеринарии: автореферат дисс. . канд. вет. наук/ СВ. Русаков; М., 1997.-26с.

95. Рютова В.П. Болезни кроликов / В.П. Рютова. М.: Россельхозиздат, 1985.-c.6-14, 109-112

96. Рютова В.П. Чесотка кроликов / В.П. Рютова // Кролиководство и звероводство. 1992. - №2. - с.24-25

97. Седых A.C. Действие пиретроидных препаратов на членистоногих / A.C. Седых, Г.М. Абеленцев, Т.Н. Креманская // Ветеринария. 1985. — №6. — с.28-30

98. Симецкий М.А. Акродекс для борьбы с эктопаразитами / М.А. Симецкий, Е.А, Кудрявцев, JI.A. Руденко, В.А. Андреева // Ветеринария. 1984. - №9. -с.41-42

99. Симецкий М.А. Эффективность аэрозольных форм инсектоакарицидов,применяемых с помощью беспропеллентных баллонов М.А. Симецкий // Дезинфекция и санитария продуктов животного происхождения. — М., 1985.-С.24-27

100. Симецкий М.А. Акарицидная эффективность и безвредность аэрозольного применения акрозоля // М.А. Симецкий, Г.И. Павленко, Ж.М. Тункель//Ветеринария. -1993. -№4. -с.35

101. Симецкий М.А. Дерматозоль для борьбы с демодекозом и псороптозом животных / М.А. Симецкий // Проблемы вет. санитарии, гигиены и экологии-(дезинфекция, дезинсекция, дератизация). -М., 1999. с.83-84

102. Симецкий М.А. Псороптол в аэрозольных баллонах для борьбы с псороптозом- животных / М.А. Симецкий // Проблемы вет. санитарии, гигиены и экологии(дезинфекция, дезинсекция, дератизация). — М., 1999. — с.84-85

103. Сковронский Р.В. Экспресс диагностика чесотки у кроликов / Р.В. Сковронский//Кролиководство и звероводство. — 1984. -№4. — с.35

104. Староверов С.А. Лечение кроликов при псороптозе / С.А. Староверов, В.А. Сидоркин, В.Д. Пристенский // Ветеринария. 2003. - №8. - с.23

105. Стринадкин П.С. Обработка! кроликов и пушных зверей при саркоптоидозах / П.С. Стринадкин // Ветеринария. 1980. - №9. - с.44

106. Стринадкин П.С. Первичный отбор новых акарицидов и изучение их активности против саркоптоидных клещей /П.С. Стринадкин, Б.В. Андричук, Н.И. Домацкий// Науч. тех. бюллетень. Вопросы ветеринарной арахноэнтомологии. Тюмень, 1980. - вып.20. - с. 15-23

107. Стринадкин П.С. Методические указания по первичному отбору новых акарицидов и сравнительному изучению > их активности против саркоптоидных клещей/П.С. Стринадкин. -М.:ВАСХНИЛ, 1982. 13с.

108. Стринадкин П.С. Против псороптоза кроликов // Стринадкин П.С, Пашкевич Г'.И.// Кролиководство и звероводство. 1987. - №1.

109. Стринадкин П.С. Обработка кроликов и пушных зверей присаркоптоидозах / П.С. Стринадкин // Ветеринария. 1980. - №9. - с.44

110. Стринадкин П.С. Методические указания по первичному отбору новых акарицидов и сравнительному изучению их активности против саркоптоидных клещей /П.С. Стринадкин, Н.И. Домацкий, Б.В. Андричук.// Тр. ВНИИВЭА, ВНИИВС, 1982. 12с.

111. Стринадкин П.С. Эктомин, при саркоптоидозах животных / П.С. Стринадкин, А.К. Метелица, А.Н. Давлетшин, СМ. Тихомиров, В.П. Кононов, JI.H. Скосырских, Г.И. Пашкевич // Ветеринария. — 1991. с.48-49

112. Соколовский В.А. Кожные болезни животных / В.А. Соколовский, Н.Г. Толстова Пори, М.А. Палимпсестов, И.И. Лукашев. — М.: Колос, 1986. — с.269-278

113. Староверов С. А. Лечение кроликов при псороптозе / С.А. Староверов, В.А. Сидоркин, В.Д. Пристенский // Ветеринария. 2003. ■—№8. — с.23

114. Тимофеев Б.А. Токсичность и эффективность некоторых пиретроидов / Б.А. Тимофеев, В.О. Бондаренко, Г.В. Кирюткин, Л.П. Степанов и др. // Ветеринария. -1994. №10. - с.55

115. Тимофеев Б.А. Биорекс новое противочесоточное средство на основе циперметрина / Б.А. Тимофеев, Г.В. Кирюткин, В.О. Бондаренко, В.П. Сироткина, Л.И. Акаев, И.М. Плотинский // Ветеринария. - 1997. - №3. -с.54

116. Тимофеев Б.А. Метаболические изменения у животных, вызванные препаративными формами циперметрина/ Б.А. Тимофеев, Э.К. Рахматуллин, В.А.Кирилловских // Вестник РАСХН. 1997. - №3. — с.60-62

117. Уткин Л.Г. Кролиководство: справочник / Л.Г. Уткин. Справочник. -М.: Агропромиздат, 1987. - с. 189

118. Фролов Б.А. Эффективность применения препаратов на основе синтетических пиретроидов и ФОС при энтомозах и арахнозах животных /Б.А. Фролов, И.К. Казаков, В.И. Букштынов, Л.М. Омаров // Ветеринария.-1997.-№7.-с. 31-33

119. Чучина Т.В. Эффективность препарата ивомек при псороптозе кроликов и саркоптозе лисиц / Т. В. Чучина, О.Г. Бардасова, В.П. Лот, Р.У.Мухаметшин // Бюл. ВИЭВ. 1988. - т.65. - с.76-78

120. Якубовский М.В. Паразитарные болезни животных. Справочное пособие /М.В. Якубовский, Н.Ф. Карасев. -Мн.: Ураджай, 1991. с.60-67, 233-235

121. Якубовский М.В. Эффективность авермектинов при паразитозах животных / М.В. Якубовский // Изд. Акад. Аграр. Наук Респ. Беларусь. — 1996.-№1.-с.78-81

122. Ятусевич А.И. Перспективы использования лекарственных растений при паразитозах животных / А.И. Ятусевич, Карасев Н.Ф., Золотов В.М., Герасимчик В.А., Петрукович В.В., Стасюкевич С.И.,Ятусевич И.А. //

123. Экологические проблемы патологии, фармакологии и терапии животных.1. Воронеж, 1997.-С.279-280

124. Arlian L.G. Jnfestivity of Psoroptes cuniculi in rabbits /L.G. Arlian, S. Kaiser, S.A. Estes, B. Kummel // American j. of veterinary. Researc, 1981.- Vol. 42. -№10.-p. 1782-1784

125. Ashmawy K. Acaricidal efficiency of Ivomec against Psoroptic and Sarcoptic mites infesting rabbit /К. Ashmawy, M.M. Fahmy // J. Egup. Veter. Med. Assn., 1987. T. 47.- №1/2. - p. 315-319

126. Baker D.W. Studies on the use of DDT and benzene hexachlonde for control of external parasites on domestic animals. Report on the New York State Veterinary College at Cornell University for the year 1947-1948-Geneva, 1949.

127. Brown A.W.F. Chemical foundation of the development of risistense against insecticides /A.W.F. Brown // Chem. Pflanzenshutz und schadlings bekampfungsmittes, 1976. №3. -p. 229-258

128. Carter R.H, Habanks P.E., Mann H.D. Effect of Cooking on the DDT Content of Beet Sctince, 1998. - Vol. 107. - N 2779. - p. 347.

129. Chandra D. Incidence of ear canker in rabbits in North-Eastern hills region /D.

130. Chandra, S.S. Ghosh // Indian veter. J., 1990. T.67. - №2. - p. 187-188

131. Curtis S.K. Use of ivermectin for treatment of ear mite infestation in rabbits / S.K. Curtis, R. Housley, D.L. Brooks //J. Am. Veter. Med. Assn., 1990. -T.196.-№7.-p.ll39-1140

132. Curtis S.K. Diagnostic exercise: moist dermatitis on the hind guarters of a rabbit/ S.K. Curtis // Laboratory Animal Science, 1992. T.41. - №6. - p.623-624

133. Cutler S. L. Ectopic Psoroptes cuniculi infestation in a pet rabbit /S.L. Cutler // Journal of SmallAnimalPractice, 1998. N.39. - p.86-87

134. Egerton J.R. Ivermectin: un angent antiparasitare pour les chevaux/ J. R. Egerton, L. Sewal, B. L. Robin// Ree. Med. Vet, 1983.- Vol. 160. №6. -p.595-599

135. Fancon LP. Evolution des incidences de la deltametrine sur les problemes du cheptel apicole / LP. Fancon, C Flamini, M.E. Collin // Bull. Iuf. lab. serv. Vet., 1985.-№17.-p. 49-65

136. Kamboj D.S. Comparative efficacy of various acaricides against psoroptic mange in rabbits/ D.S. Kamboj, S.S. Khahra, P.J.Singh, D.S. Nauriyal // Indian Journal of Veterinary Medicine, 1995. Vol.15. - № 1. - p. 53

137. Kurade N.P. Effect of ivermectin against ear mange mite (Psoroptes cuniculi) in naturally infested rabbits / N.P. Kurade, T.K. Bhat, K.P. Jithendran // World Rabbit Sc, 1996. Vol.4. - fasc. - p.25-27

138. Liebisch A. Beitrag 2-ur Therapie Psoroptes und Sarcoptes rau Verschidener

139. Haus-tierarzten mit dem Phosphorsaureester Sebacil /A. Liebisch, M.C. Rahman //

140. Wet.med. Nochricht, -1980, -№1-S. 3-16

141. Malaka A. Diazinon in treatment of mange in farm animals / A. Malaka, S.

142. Samy //I. Rabbit mange 11. Sheep mange. I. Arab. Vet. Med. Assoc, 1965. -Vol.25,№.3,-P.41-48

143. Malaka A. Experiment on chlorinated hydrocarbons with comparison to organophosphates for treatment of mange in farm animals/ A. Malaka, E.

144. Hameda, E. Zenab//1, of Egypt. Vet. Med. Assoc, 1971. 31, (1/2).

145. Masselle R.M. Psoroptes cuniculi infestation in rabbits/R.M. Masselle, D.M.

146. Kambarage, S.I. Kimera, B.V.I. Mnembuka//Bull. Anim. Health Product. In Africa, 1995.- Vol.43.- №1.-p.77-79 147.0kerman L. Diseases of the skin. Diseases of Domestic Rabbits / L. Okerman // Oxford Blakwell Scientific, 1994.- p.52-53

147. Pandey V.S. Treatment of psoroptic mange of rabbit with ivermectin / V.S. Pandey//Programme and abstracts, 1987.-p. 32

148. Pandey V. S. Effect of ivermectin on the ear mange mite, Psoroptes cuniculi, of rabbits /V.S. Pandey II Brit. Veter. J., 1989. T.145. - №1. - p. 54-56 •

149. Pathak K.M.L. Efficacy of ivermectin against psoroptes in rabbits /K.M.L. Pathak, M. Kapoor // Indian J. Anim. Heaith., 1990. T.29. - №2. - p. 189-190 151.

150. Prosl H. Treatment of ear mange in rabbits with iwermectin/ H. Prosl, A.G.

151. Kanout// Berliner-und-munchener-Tierarztliche-Wochenschrift, 1985. №98.(2) -p.45-47

152. Restani R. Ricirche sull "attivita dell" ivermectina nella terapia della rogna psoroptica in conigli IR. Restani, M.P. Tampieri, G. Lorenzi II Riv. Coniglicolt, 1984.- T. 21.-№8.- p. 23-27

153. Smith K.E. The effects of temperature and humidity on the off-host survival of Psoroptes ovis and Psoroptes cuniculi / K.E. Smith, R. Wall, E. Berriatua, N.P. French //Veter. Parasitol., 1999. Vol. 83. - № 3/4. - p. 265-275

154. Solomon K.R. Acaricide resistance in tick/K.R. Solomon // Adv. In Veter. Sc. Сотр. Med. New York. London, 1989. - 27. - p.273-296

155. Srivastava C.P. Efficacy of ivermectin against mange mite infection in rabbits/ C.P.Srivastava, A. Maru, S.C. Dubey// Indian J. Vet. Med., 1991. №11. - p.74

156. Stein S. Rabbits/ S. Stein, S. Walshaw// Handbook of rabbit and Rodent Medicine. Oxford Pergamon, 1996.- p. 183-21

157. Sweatman G.K. On the life history and validity of the species in Psoroptes, a genus of mange mites/ G.K. Sweatman // Canadian Journal of Zoology, 1958. — №36.-p.905-929

158. Tripathi S.C. Therapeutic efficacy of ivermectin in rabbits (Oryctolagus cuniculus) experimentally infected with Psoroptic cuniculi / S.C. Tripathi, R.J. Sharma, V. Singh, R.C. Rathi //Indian J. anim. Health, 1993.- Vol. 32. № 1. -p.55-56

159. Varga I. Parazitak okozta betegsegek. Hazinyul-egeszsegtan. Szerk / I. Varga // Vetesi F.Mezugazdasagi Kiado, Budapest, 1990. p. 227-229.

160. Wagner R. Field efficacy of moxidectin in dogs and rabbits naturally infested with Sarcoptes spp., Demodex spp. And Psoroptes spp. mites / R. Wagner, U. Wendberger II Veter. Parasitol., 2000. Vol.93. -№ 2, - p. 149-158

161. УТВЕРЖДАЮ» /<Г7 хЙ|5^ректор по научной работе тебская ордена «Знак РР^Ш-ш>=1|Ьсударственная академиян*/V. л ГкЦг^ринарнои медицины» '/И А .П.Курдеко 2007 год1. АКТпроизводственных испытаний препарата «Пурофен-М» от 18.12.2006 г.

162. Во время опыта изменений состояния животных не отмечали.

163. Заключение. Комиссия считает, что препарат «Пурофен-М» в дозе 1 мл в каждое ухо при двухкратной обработке обеспечивает высокую эффективность при псороптозе кроликов.

164. Отрицательного влияния препарата на организм животного не установлено.

165. Профессор кафедры паразитологии, доктор ветеринарных наук Витебской ордена «Знак Почета» государственной академии ветеринарной медицины

166. Профессор Московской государственной академии ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина

167. Доцент кафедры паразитологии Витебской ордена «Знак Почета» государственной академии ветеринарной медицины

168. Магистрант кафедры паразитологии Витебской ордена «Знак Почета» государственной академии ветеринарной медицины

169. Аспирант Московской государственной академии ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина

170. Зав. виварием Витебской ордена «Знак Почета» государственной академии ветеринарной медицины

171. Ятусевич А.И. Василевич Ф.И. ¡тасюкевич С.И.

172. Столярова Ю.А. еликова Е.Г.1. Цвырко С.С.испытания эффективности концентрата 8 фенвалерат и ФОЭприпсороптозе кроликов/Л » ЛлА^Ал 2007 г.

173. Диагноз ставили на основании клинической признаков, таких: как зуд, расчесы, а также; появление корок в ушных раковинах животных, с подтверждением диагноза путем микроскопического исследования соскобов кожи и нахождении живых клещей и яиц.

174. Кроликам контрольной пятой группы вместо препарата аналогично вводили физиологический раствор хлорида натрия.

175. Учет результатов опытов проводили через 3, 5 и 7 дней путем взятия соскобов кожи для микроскопического исследования.

176. В соскобах, взятых из ушных раковин контрольных групп животных, при микроскопировании на протяжении всего опыта были обнаружены клещи во всех фазах развития.

177. Рецидив заболевания отмечен по истечении 40-50 дней после обработки животных выше перечисленными эффективными концентрациями препарата.

178. Зав. лаборатории акарологии ВНИИВЭА, к.б.н.1. Ю.В.Глазунов

179. Научный сотрудник ВНИИВЭА, к.в.н.1. О.А.Коротаева1. Младший научный сотрудник1. ВНИИВЭА1. Д.А.Подшиваловлт1. УТВЕРЖДАЮ1. Заместитель Руководителя1. Россельхознадзора1. Е.А. Непоклонов1. ИНСТРУКЦИЯпо применению Феноксифена для лечения псороптоза кроликов

180. Организация-разработчик: ЗАО Экспериментально-производственный центр «Дезинфекционист» (АО <<ДДД», г. Москва)).1. Общие сведения1. Феноксифен (Репох1Геп)

181. Международное непатентованное или* химическое и торговое наименование: феноксиэтанол+8-фенвалерат.

182. Выпускают лекарственный препарат расфасованным в стеклянные флаконы и бутылиОписание упаковки лекарственного средства (первичной и вторичной). Срок годности лекарственного препарата при соблюдении условий хранения 2 года со дня выпуска.

183. Хранят Феноксифен в закрытой заводской упаковке, в защищенном от света месте, отдельно от пищевых продуктов и кормов, при температуре от 0 до 40°С.

184. Лекарственный препарат необходимо хранить, в местах недоступных для детей;

185. Неиспользованный лекарственный препарат утилизируют в соответствии с требованиями законодательства.

186. П. Фармакологические (биологические) свойства

187. Феноксифен является инсектоарарицидным лекарственным препаратом контактного действия, обладающим овоцидной активностью по отношению клещам Рзогор1ез сишсиН.

188. По степени воздействия на организм животных Феноксифен относится к малоопасным веществам (4 класс опасности по ГОСТ 12.1.007-76), в рекомендуемых дозах не оказывает местно-раздражжающего и сенсибилизирующего действия.1. Ш. Порядок применения

189. Феноксифен предназначен для борьбы с псороптозом кроликов на всех стадиях развития клеща Рзогор1ез сшисиИ.9. Токсичен для рыб и пчел.

190. При псороптозной инвазии Феноксифен назначают по 1мл в каждое ухо кролика, однократно, с последующим массажем ушной раковины. Предварительно очистив слуховой проход от корочек.

191. При необходимости обработку можно повторить через 7 дней.

192. Симптомы передозировки не выявлены.

193. Феноксифен применяется однократно.

194. Специальных действий специалиста в области ветеринарии, владельца животного при пропуске приема одной или нескольких доз лекарственного препарата не предусмотрено.

195. Побочных действий при применении лекарственного препарата в соответствии с инструкцией по применению не установлено.

196. Феноксифен совместим с другими лекарственными препаратами, кормами и кормовыми добавками.

197. Мясо от кроликов после применения Феноксифена используют в пшцу без ограничений.1.. Меры личной профилактики

198. При работе с Феноксифеном следует пользоваться мерами профилактики, предусмотренными при работе с лекарственными средствами.

199. При попадании препарата на слизистые оболочки промыть проточной водой.

200. Наименование, адрес производителя лекарственного препарата: ООО «Научно-производственный центр ветеринарной дезинфектологии (ООО «НПЦ ВетДез»)

201. Адрес места производства: 109472, г. Москва, 7-я ул. Текстильщиков, д. 4

202. Инструкция разработана: ФГБОУ ВПО МГАВМиБ им. К.И. Скрябина совместно с АО «ДДД», г. Москва и ООО «НПЦ ВетДез».

Информация о работе

Боровина, Екатерина Геннадьевна
кандидата ветеринарных наук
Москва, 2011
ВАК 03.02.11

Диссертация

Морфологические особенности клещей Psoroptes cuniculi и эффективность акарицида Феноксифен при экспериментальном псороптозе кроликов - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы