Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Микробиологические аспекты экологии Listeria monocytogenes в морской среде
ВАК РФ 03.00.07, Микробиология
Содержание диссертации, , Терехова, Валерия Евгеньевна
Введение.
Глава 1. Обзор литературы.
1.1. Патогенные бактерии в морской среде и значение этого явления в эпидемиологии вызываемых ими инфекций.
1.2. Листерии в морской среде и ее резервуарное значение в эпидемиологии листериоза.
Собственные исследования
Глава 2. Материалы н методы.
2.1. Характеристика района исследований.
2.1.1. Физико-географические характеристики и гидрометеорологические условия района исследований.
2.1.2. Гидрологическая характеристика. температурный режим. распределение солености. система течений. ледовые условия. речной сток.
2.1.3. Газо-геохимическая характеристика района исследований.
2.1.4. Биолого-промысловые характеристики района исследований.
2.2. Материалы.
2.2.1. Микроорганизмы.
2.2.2. Среды для культивирования и идентификации микроорганизмов.
2.2.3. Использованная аппаратура.
2.3. Методы исследования.
2.3.1. Методы отбора проб.
2.3.2. Бактериологические методы.
2.3.3. Альгологнческие методы.
2.3.4. Биохимический метод.
2.3.5. Метод визуализации.
2.3.6. Спектроскопический метод.
2.3.7. Статистический анализ данных.
Глава 3. Изоляция н идентификация штаммов L. monocytogenes из морской среды.
3.1. Выделение штаммов л истерий из морской воды, донных осадков и гидробионтов.
3.2. Идентификация выделенных штаммов L. monocytogenes.
3.2.1. Культуральный, морфологические и тинкториальные свойства выделенных штаммов.
3.2.2. Биохимические свойства выделенных штаммов.
3.2.3. Антигенные свойства выделенных штаммов.
3.2.4. Вирулентность выделенных штаммов.
3.3. Характер распределения L. monocytogenes в воде и осадках северо-западной части Охотского моря.
3.3.1. Распределение L. monocytogenes в морской воде.
3.3.2. Распределение L. monocytogenes в толще льда.
3.3.3. Распределение L. monocytogenes в донных осадках.
Глава 4. Экспериментальное изучение возможности существования
L. monocytogenes в морской воде.
4.1. Динамика числености L. monocytogenes в морской воде.
4.2. Выживаемость L. monocytogenes в морском льду.
4.3. Изучение метанотрофии и метилотрофии L. monocytogenes.
4.3.1. Изучение метанотрофии листерий.
4.3.2. Изучение метилотрофии листерий.
4.4. Изучение изменчивости листериозного микроба в морской воде
Глава 5. Взаимодействие L. monocytogenes с морскими микроводорослямн.
5.1. Изучение выживаемости L. monocytogenes на экзометаболитах микроводорослей.
5.1.1. Влияние экзометаболитов экспоненциальной фазы роста микроводорослей на выживаемость листерий.
5.1.2. Влияние экзометаболитов стационарной фазы роста микроводорослей на выживаемость листерий.
5.2. Влияние метаболитов листерий на выживаемость микроводорослей на примере С. minutissima.
5.3. Изучение взаимодействия L. monocytogenes с диатомовыми водорослями при совместном культивировании.
5.3.1. Изучение взаимодействия L. monocytogenes с бентосной диатомеей Navicula sp.
5.3.2. Изучение характера взаимодействия L. monocytogenes с планктонной диатомеей P. tricornutum.
Введение Диссертация по биологии, на тему "Микробиологические аспекты экологии Listeria monocytogenes в морской среде"
Актуальность проблемы.
Listeria monocytogenes является возбудителем листериоза - тяжелого инфекционного заболевания людей и животных, зарегистрированного более чем в 65 странах мира. В 80-х гг. XX столетия листериоз вошел в пятерку наиболее часто встречаемых и опасных пищевых бактериальных инфекций, носящих как спорадический, так и эпидемический характер [Liston, 1990]. Особую актуальность проблеме пищевого листериоза придает тяжесть клинического течения, а также высокий уровень летальности, который в передовых зарубежных странах составляет от 24 до 40% [James, 1985; Rebiere, 1994; Mead et al., 1999]. He меньшую опасность представляет и оппортунистический листериоз, который с 1991 года внесен в список СПИД -индикаторных заболеваний [Гальцева и др., 1999].
Бактерии вида L. monocytogenes относят к факультативным паразитам, обладающим двойственной сапрофитной и паразитической природой. Это позволяет им выживать и размножаться не только в теплокровном организме, но и в объектах окружающей среды [Сомов, Литвин, 1988; Литвин, 1992]. Несмотря на проведенные в последние годы всесторонние исследования экологии внеорганизменных популяций L. monocytogenes [Поманская, 1962; Гершун, 1979; 1980; Литвин, 1988; Weiss, Seeliger, 1975], многие аспекты обитания возбудителя в морской среде остаются не изученными.
Первые упоминания о листериозе морского происхождения появились в 80-х годах прошлого столетия. Причиной тому послужили несколько вспышек листериоза, зарегистрированные в Новой Зеландии, Италии и США, вызванные употреблением в пищу инфицированных морских гидробионтов [Lennon et al., 1984; Facinelli et al., 1989; Riedo et al., 1994]. В последующие годы число случаев листериоза морского происхождения резко возросло [Nakama et al., 1992; Brett et al., 1998; Rait, Tzanalin, 1999; Elliot, Kvenberg, 2000; Rocourt et al.,
2000; Gram, 2001]. Это явилось основанием для разработки и внедрения в большинстве стран мира системы обязательного санитарно-микробиологического контроля присутствия L. monocytogenes в морепродуктах. В России нормативными документами, регламентирующими содержание L. monocytogenes в морской рыбе и беспозвоночных, являются МУК 4.2.1122-02 и ГОСТ Р 51921-2002.
По данным ряда авторов обсемененность сырых морепродуктов листериями невысока и составляет от 1 до 10% [Weagant et al., 1988; Nicolas et al., 1989; Johansson et al., 1999; Autio et al., 1999; Jinneman et al., 1999]. Однако, по мнению В. Embarek (1994), эти цифры явно занижены и не отражают реального уровня инфицированности свежей рыбы и других морепродуктов листериями.
Поскольку микрофлора морских гидробионтов является отражением микробного фона среды их обитания, возникла необходимость изучения традиционных районов промысла на присутствие L. monocytogenes в морской воде и донных осадках. Такие исследования регулярно осуществляются в США, Греции, Голландии, Германии [Colburn et al., 1990; Embarek, 1994; Papa et al., 1996; Gram, 2001 и др.]. Однако в России подобные работы до настоящего времени не проводились.
Как известно, основным промысловым районом России является Охотское море, на долю которого приходится до 40% добычи рыбы и нерыбных объектов [Сапожников, 1997]. Актуальность микробиологических исследований в отношении листерий в Охотском море очевидна, так как на рынках Дальневосточного региона доля охотоморских морепродуктов превышает 80%. Кроме того, Охотское море постоянно подвергается интенсивному антропогенному загрязнению стоками реки Амур, что может способствовать выносу листерий в морскую среду [Кондратьева, 1997; Бойко, Погорелова, 1998; Рябкова и др., 1999; Кондратьева и др., 2000; Чухлебова, 2002].
Целью исследования является установление возможности обитания L. monocytogenes в Охотском море, а также изучение условий, способствующих поддержанию жизнеспособности популяции листериозного микроба в морской среде.
Для достижения поставленной цели были определены и последовательно решались следующие задачи:
1. Изучение распространения L. monocytogenes на восточном шельфе и континентальном склоне о. Сахалин.
2. Выявление факторов морской среды, способствующих размножению и выживанию листериозного микроба.
3. Экспериментальное изучение длительности существования, возможности размножения и изменчивости L. monocytogenes в морской воде.
4. Исследование взаимодействия L. monocytogenes с различными видами морских микроводорослей.
Научная новизна работы.
Впервые:
- установлен факт обитания бактерий вида L. monocytogenes в морской воде, во льду и в донных осадках северо-западной части Охотского моря; экспериментально установлено, что низкая температура культивирования и предварительная адаптация штаммов листерий к условиям и среде культивирования оказывают благоприятное влияние на выживаемость L. monocytogenes в морской воде;
- выявлен диапазон изменчивости L. monocytogenes при длительном обитании в морской воде и установлен ее фенотипический характер;
- установлен различный характер взаимодействия листерий с разными видами морских микроводорослей и существенная роль последних в поддержании жизнеспособности L. monocytogenes в морской воде в условиях эксперимента.
Практическая ценность работы заключается в следующем:
- с целью более полного выявления и учета внеорганизменных популяций листерий, обитающих в морской среде, предложен способ накопления листериозного микроба (L. monocytogenes) в минеральной среде. Заявка на изобретение № 2002117336/13 (018246) от 04.07.2002 г.;
- отработана методика выделения штаммов L. monocytogenes из объектов морской среды, включающая многократное пассирование изолированных культур, отличающихся слабо выраженными биохимическими свойствами, на плотных питательных средах с целью усиления ферментативной активности для их дальнейшей адекватной идентификации; выявленные особенности (морфологические, биохимические, культуральные) биологических свойств штаммов L. monocytogenes, выделенных из морской среды, а также установленные данные по изменчивости листериозного микроба в морской воде позволили внести ряд рекомендаций для улучшения бактериологической диагностики листериоза. Указанные данные используются в качестве лекционного материала на курсах повышения квалификации для врачей бактериологов при КЦСЭН;
- для выявления альгобактериальных взаимодействий впервые применен экспресс-метод прямой прижизненной видеомикроскопии (VE-DIC), позволяющий без окрашивания и фиксации объектов изучать процесс взаимодействия в режиме реального времени, а также фиксировать полученные результаты на видеозаписи; Видеофильм «Взаимодействие L. monocytogenes с бентосной диатомеей Navicula sp.» используется как демонстрационный материал большого микробиологического практикума для студентов на Кафедре общей экологии ДВГУ.
- полученные результаты используются в курсе лекций по экологии бактерий на Кафедре общей экологии ДВГУ.
Апробация работы
Материалы диссертационной работы были представлены на:
- Международной конференции по проблемам Океана (Владивосток, 1999), Международном симпозиуме «Листериоз на рубеже тысячелетий» (Покров, 1999), III Рабочем совещании по Российско-Германскому сотрудничеству в Охотском море «Курило-Охотский Морской Эксперимент» (Москва, 2000), Международной междисциплинарной конференции «Человек в прибрежной зоне: опыт веков» (Петропавловск-Камчатский, 2001), Международном симпозиуме «Климатические процессы Севера» (Киль, 2002), III Интернациональном конгрессе «Микропалеонтология, Микробиология и Мейобентология окружающей среды» (Вена, 2002), I Международной школе «Микробиологическая индикация и ремедиация» (Морская биологическая станция «Восток», 2002), Международной научно-практической конференции «Приоритет России XXI века: от биосферы и техносферы к ноосфере» (Пенза, 2003).
- Всероссийских научно-практических конференциях: «Оценка современного состояния микробиологических исследований в ВосточноСибирском регионе» (Иркутск, 2002), VII съезде Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов (Москва, 2002), XI съезде Русского Ботанического Общества (Новосибирск-Барнаул, 2003).
- Региональных научно-практических конференциях «Инфекционная патология в Приморском крае» (Владивосток, 1999, 2000), Годичной научной конференции Института биологии моря ДВО РАН (Владивосток, 2001)
По теме данной работы опубликовано 8 статей (2 в сборнике трудов, 4 в центральной периодической печати, 2 в региональной) и 11 тезисов.
Структура н объем диссертации.
Диссертация состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, отраженных в 4-х главах, заключения, выводов, списка литературы. Работа изложена на 175 страницах, иллюстрирована 25 рисунками и 10 таблицами. Список литературы включает 385 источников, из которых 150 отечественных и 235 иностранных авторов.
Заключение Диссертация по теме "Микробиология", Терехова, Валерия Евгеньевна
выводы
1. Установлен факт обитания бактерий вида L. monocytogenes в морской воде, льду и донных осадках западной части Охотского моря. Пространственное распределение листериозного микроба приурочено к акватории моря, распресненной стоками р. Амур.
2. Амурские стоки в сочетании с низкотемпературным режимом водной толщи и наличием в воде аномальных концетраций метана, углекислого газа и водорода создают благоприятные условия для обитания листериозного микроба на северо-восточном шельфе и континентальном склоне о. Сахалин.
3. Показано, что в экспериметальных условиях низкая положительная температура среды и предварительная адаптация штаммов листерий к условиям и среде культивирования способствуют более длительному выживанию L. monocytogenes в морской воде в репродуктивном состоянии.
4. Установлено, что длительность выживания L. monocytogenes в морском льду зависит от биологических особенностей штаммов и температурного фактора, при этом низкие отрицательные температуры способствуют более длительному сохранению жизнеспособности исследуемых бактерий.
5. При обитании в морской среде листерии претерпевают изменения, носящие фенотипический характер, наиболее адекватные условиям существования, что следует учитывать при выделении и идентификации данных бактерий.
6. Установлен паразитический характер взаимоотношений L. monocytogenes с бентосной диатомеей Navicula sp. и взаимодействие типа "протокооперация" с планктонным видом диатомовых водорослей Р. tricornutum.
7. Морские микроводоросли в условиях эксперимента играют существенную роль в поддержании жизнеспособности популяций листериозного микроба.
8. Установленные экологические особенности L. monocytogenes обеспечивают им возможность обитания в морской среде, что позволяет квалифицировать ее, как дополнительный резервуар листерий в природе.
Рекомендации для внедрення в науку н практику
1. В микробиологической практике для более полного выявления и учета внеорганизменных популяций листерий, обитающих в морской среде рекомендуется использовать способ накопления листериозного микроба (.L. monocytogenes) в минеральной среде. Заявка на изобретение № 2002117336/13 (018246) от 04.07.2002 г. (соавторы: Бузолева Л.С., Айздайчер Н.А., Кривошеева А.М., Сомов Г.П.).
2. Для адекватной идентификации штаммов L. monocytogenes, выделенных из морской среды, отличающихся слабовыраженными биохимическими свойствами, рекомендуется перепассирование (4-5 пассажей) данных культур на плотных питательных средеах с целью усиления их ферментативной активности.
3. Для изучения альгобактериальных взаимодействий в научных и учебных целях рекомендуется использовать экспресс-метод прямой прижизненной вндеомикроскопии (VE-DIC).
4. Видеофильм «Взаимодействие L. monocytogenes с бентосной диатомеей Navicula sp.» рекомендуется использовать в качестве демонстрационного материала большого микробиологического практикума для студентов.
5. Материаллы диссертации рекомендуется использовать при препадовании курса медицинской микробиологии, экологии бактерий и эпидемиологии.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
В настоящее время в условиях повсеместного антропогенного загрязнения окружающей среды, а также роста иммунодефицита у населения резко обострилась проблема пищевых инфекций человека и животных. В 80-х гг. XX столетия в пятерку наиболее часто встречаемых и опасных пищевых бактериальных инфекций вошел листериоз [Liston, 1990]. Алиментарный путь передачи возбудителя инфекции, эпидемический характер заболевания, полиморфизм клинических проявлений, тяжесть клинического течения, а также высокий уровень летальности (24 - 40%) [James, 1985; Rebiere, 1994; Mead et al., 1999] явились основанием для разработки мер профилактики и борьбы с листериозом, связанных, в первую очередь, с контролем безопасности пищевых продуктов.
Проблема пищевого листериоза имеет также существенное социально-экономическое значение. Изъятие из торговой сети зараженных партий пищевых продуктов, ограничение их импорта и экспорта, остановка их производства наносят значительный ущерб экономике России и других стран производителей. В связи с этим, в России с 1996 года действует обязательная система контроля содержания L. monocytogenes в пищевых продуктах согласно утвержденным нормативным документам ГН 2.3.21010 (дополнение № 3 к СанПиН 2.3.2.560-96 по разделу 2.3.2.), МУК 4.2.1122-02 и ГОСТ Р 51921-2002).
Значение пищевого пути передачи данной инфекции хорошо иллюстрируют данные Центра по контролю и профилактике заболеваний США (CDC), показавшие, что 11% всех исследованных продуктов, хранившихся в домашних холодильниках, контамннированы листериями. В настоящее время доказана и широко освещена в литературе ведущая роль в распространении листериоза таких пищевых продуктов как молоко, сыры, сливочное масло, колбасы, мясные полуфабрикаты, салаты [Карликанова и др., 1999; Ferber, Peterkin, 1991; Schuchat et al., 1992; Mead et al., 1999;
Slutsker et al., 2000]. Однако не меньшую опасность представляют и морепродукты, так как большинство из них традиционно используются в пищу в сыром виде или после недостаточной термической обработки. Подтверждением этому служат многочисленные вспышки и спорадические случаи листериоза у людей, вызванные употреблением в пищу инфицированных L. monocytogenes морских продуктов [Nakama et al., 1992; Brett et al., 1998; Rait, Tzanalin, 1999; Elliot, Kvenberg, 2000; Rocourt et al., 2000; Gram, 2001].
По данным ряда авторов исходный уровень заражения листериями л сырых морепродуктов, как правило, низкий и не превышает 10 КОЕ/г продукта [Мухина и др., 2001; Weagant et al., 1988; Nicolas et al., 1989; Johansson et al., 1999; Autio et al., 1999; Jinneman et al., 1999]. Однако, no мнению В. Embarek (1994), эти цифры явно занижены и не отражают реального уровня обсемененности свежей рыбы и друпгх морепродуктов листериями. По данным Е.Ю. Дмитриевой с соавт. (2001), это обусловлено пониженной жизнеспособностью морских клонов L. monocytogenes и сложностью их идентификации из-за недостаточной изученности биологических свойств листерий, обитающих в морской среде.
Микробиологическая безопасность морских гидробионтов напрямую зависит от состояния среды их обитания, поэтому без знания вопросов морской экологии L. monocytogenes невозможно в полной мере оценить опасность, исходящую из морской среды, проявляющуюся в виде такой инфекции, как листериоз, так как эпидемиология сапронозных инфекций определяется экологией их возбудителя.
Решению этих принципиально важных для эпидемиологии и медицинской микробиологии вопросов посвящена настоящая работа, в которой освещены некоторые эколого-микробиологические аспекты обитания L. monocytogenes в морской среде умеренных широт на примере Охотского моря - главного промыслового района всего Дальневосточного региона.
Представленная работа является микробиологической частью комплексных исследований Охотского моря, проведенных в рамках Российско-Германского проекта КОМЕХ - 1 (Курило - Охотский морской эксперимент). В основу работы положен материал, отобранный в ходе трех экспедиций (Ice-99; Ge-99; G00-28), выполненных в период с марта 1999 по июнь 2000г.
В процессе бактериологических исследований, проведенных на акватории северо-восточного, восточного шельфа и склона острова Сахалин, было исследовано 802 образца различного материала (морская вода, лед, донные осадки, органы промысловых гидробионтов), из которых было выделено 25 штаммов Listeria sp. и 29 штаммов L. monocytogenes. Таким образом, был установлен факт обитания бактерий вида L. monocytogenes в морской воде, во льду и в донных осадках западной части Охотского моря. Пространственное распределение листериозного микроба в толще вод было приурочено к акватории моря, распресненной стоками реки Амур. Дальнейшее изучение характера распределения листериозного микроба в кернах льда и осадка показало, что обнаружение L. monocytogenes в западной части Охотского моря, по-видимому, обусловлено выносом исследуемых микроорганизмов жидким и твердым стоком реки Амур. Полученные результаты позволили сделать предположение, что амурские стоки в сочетании с низкотемпературным режимом водной толщи данного региона создают благоприятные условия для обитания листериозного микроба на акватории северо-восточного шельфа и континентального склона о. Сахалин.
Известно, что район северо-восточного шельфа и склона о. Сахалин является одним из наиболее активных в мире участков субмаринной разгрузки углеводородных газов, преимущественно метана [Обжиров и др., 1999]. Помимо метана в этой области отмечены повышенные концентрации углекислого газа и водорода. Листерии, как установила J1.C. Бузолева с соавт. (1997), являются газотрофоми в отношении углекислого газа и водорода. Это обусловило важность выяснения влияния «метановой составляющей» на выживание L. monocytogenes в морской среде.
Проведенные экспериментальные исследования не доказали наличия у листерий метанотрофии, однако установленная способность L. monocytogenes к утилизации Срсоединений (метанол, формальдегид), являющихся продуктами окисления метана, позволила отнести листернозный микроб к факультативным метилотрофам. Следовательно, жизнеспособность морских популяций L. monocytogenes может поддерживаться за счет продуктов метаболизма метанотрофной флоры, обитающей в местах субмаринной разгрузки природного газа.
Таким образом, можно предположить, что наличие на северовосточном шельфе и склоне о. Сахалин газогеохимнческих полей с аномально высокими концентрациями метана и продуктов его окисления, а также углекислого газа и водорода благоприятствует выживанию листерий в морской среде этого региона.
Очевидно, что попадание листериозного микроба в морскую среду предполагает обитание микроорганизма в сложных физико-химических и биологических условиях. В этой связи нас интересовала длительность существования, возможность размножения и изменчивость L. monocytogenes в морской воде, как среде обитания листерий.
В ходе проведенных экспериментальных исследований было установлено, что листернозный микроб в нестерильной морской воде сохранял репродуктивность не более недели, после чего наблюдался переход микроорганизма в покоящуюся форму с сохранением возможности к рекультивированию в течение двух месяцев. Предварительная адаптация культур L. monocytogenes к морской воде и температурному режиму культивирования удлиняла репродуктивный период в два раза, при этом размножения L. monocytogenes не наблюдалось. Аналогичный результат получен при культивировании листерий в талой морской воде, содержащей низкие концентрации сопутствующей микрофлоры. В стерильной же морской воде, т. е. в условиях отсутствия конкурентной сапрофитной микрофлоры листериозный микроб не только длительно сохранялся, но и размножался. При этом, температура 4-6°С оказалась наиболее благоприятной для выживания.
Полученные результаты позволили сделать вывод, что низкая положительная температура среды и предварительная адаптация штаммов листерий к условиям и среде культивирования способствуют более длительному выживанию L. monocytogenes в морской воде в репродуктивном состоянии. Кроме того, снижение численности сопутствующей микрофлоры морской воды значительно повышает конкурентоспособность морских популяций L. monocytogenes.
Учитывая факт выделения листериозного микроба из образцов морского льда, была исследована жизнеспособность возбудителя в замороженной морской воде. В ходе эксперимента установлено, что длительность выживания L. monocytogenes в морском льду зависит от биологических особенностей штаммов и температурного фактора. При этом низкие отрицательные температуры (минус 20°С) способствуют более длительному сохранению жизнеспособности исследуемых бактерий в морском льду, чем температура минус 4-6°С.
Продолжительное культивирование листерий в морской воде привело к изменению биологических свойств исследуемых бактерий. Изменение морфологических свойств L. monocytogenes в голодных трофических условиях морской воды проявилось в виде способности листерий к дроблению клеток. Это явление описано в литературе в отношении сапрофитных микроорганизмов [Хоменко и др.,1984; Коронелли и др.,1988; Morita, 1982]. В результате уменьшения размера бактерий увеличивается отношение клеточной поверхности к ее объему, за счет чего возрастает приток в клетку питательных веществ. Температурный фактор оказывал влияние на изменение биохимических свойств L. monocytogenes. Кроме того, листерии, культивируемые в морской воде, образовывали капсулу и в отличие от контрольных некапсулированных культур обладали более интенсивной нммунофлюоресценцней. Для «морских» штаммов листерий также было характерно формирование антибиотикорезистентности к пенициллинам, цефалоспоринам III поколения, аминогликозидам и рифампицину. Все полученные изменения носили фенотипический характер и являлись обратимыми, т.к. при благоприятных условиях существования первоначальные свойства листерий восстанавливались.
Таким образом, можно предположить, что при обитании листерий в морской воде, в результате селективного действия среды, формируются соответствующие субпопуляции микроорганизмов, наиболее адекватные условиям данной водной экологической ниши. Возникающие при этом модификационные изменения L. monocytogenes, следует учитывать при выделении и идентификации возбудителя из морской среды.
Еще одним важным аспектом обитания L. monocytogenes в морской среде являются взаимоотношения исследуемых бактерий с морскими организмами. Учитывая тот факт, что бактерии и фитопланктон занимают одни и те же местообитания в водной толще и донных осадках, а также формируют основу органического вещества в океане, являясь первым звеном пищевой цепи, нас интересовало метаболическое взаимодействие L. monocytogenes с морскими микроводорослями. В работе были использованы альгологнчески чистые культуры зеленых, диатомовых и криптомонадовых микроводорослей, распространенных в прибрежных водах дальневосточных морей.
При изучении влияния экзометаболитов (ЭМ) указанных микроводорослей на выживаемость L. monocytogenes установлено, что биологическая активность ЭМ водорослей в отношении листерий зависит от видовой принадлежности водорослей и стадии развития альгокультуры. Так, ЭМ, доминирующие в фазе логарифмического роста в культуральных средах водорослей, не обладают антилистериозной активностью и, по определению А.Х. Тамбиева с соавт. (1981), характеризуются низким энергетическим потенциалом, недостаточным для активизации процесса размножения листерии. ЭМ стационарной фазы роста микроводорослей оказывают явное стимулирующее действие на размножение L. monocytogenes. При этом лучше всего активизируют размножение листерий ЭМ зеленых и криптомонадовых водорослей, значительно меньше - ЭМ диатомей. Исключением явилась культура S. costatum, ЭМ которой независимо от фазы роста обладали антилистериозным эффектом, что согласуется с обширными литературными данными [Berge et al., 1997; Naviner et al., 1999 и др.]. По-видимому, в стационарной фазе роста микроводорослей происходит накопление в среде легкоусвояемых питательных веществ, характеризующихся высоким энергетическим потенциалом, что стимулирует гетеротрофную активность листерий и способствует их размножению.
Еще одной стороной альгобактериальных взаимодействий является влияние метаболитов бактерий на рост микроводорослей. Исследование влияния метаболитов листерий на выживаемость микроводорослей на примере зеленой водоросли С. minutissima показало, что ЭМ L. monocytogenes стимулируют размножение данной альгокультуры. При этом супернатант листериозного микроба в меньшей степени активизировал процесс размножения водорослей, чем присутствие живых бактерий тех же штаммов листерий. Известно, что зеленые водоросли (в том числе С. minutissima) не способны к выделению в среду литическнх ферментов [Садчиков и др., 1992]. В то же время для бактерий L. monocytogenes показано, что они обладают лецитиназной, ДНК-азной, РНК-азной и липазной активностью [Беленева, 1996; Тартаковский и др., 2002]. По-видимому, листерии, выделяя в среду ферменты, гидролизуют сложные органические соединения, содержащиеся в морской воде, до простых. Обогащение среды легкоусвояемыми продуктами гидролиза приводит к быстрой утилизации веществ микроводорослями и способствует их активному размножению. Кроме того, метаболиты листерий взаимодействуя с продуктами экскреции С. minutissima, возможно снижают их ингибирующие свойства, что замедляет естественный процесс самоингнбировання размножения С. minutissima описанный в литературе [Таутс, Семененко, 1971; Таутс, 1968, 1974; Pratt et al., 1944].
Учитывая тот факт, что одной из самых многочисленных групп фитопланктонного сообщества являются диатомовые водоросли нами была предпринята попытка изучения взаимодействия L. monocytogenes с бентосными и планктонными диатомеями при совместном культивировании. В качестве объектов исследования были использованы: P. tricornutum и Navicula sp.
Эксперимент показал, что присутствие L. monocytogenes (независимо от штамма) угнетало размножение Navicula sp. и стимулировало размножение Р.tricornutum. Для более точного изучения характера взаимодействия листерий с диатомеями была применена система прямого наблюдения микроорганизмов, а именно высокоразрешающая видеомикроскопия (VE -DIC).
Прямые наблюдения взаимодействия L. monocytogenes с бентосной альгокультурой показали, что листерии активно атаковали и разрушали клетки Navicula sp. При этом выделялись три последовательные стадии взаимодействия. Первая - стадия адгезии, вторая - стадия деструкции клеток водорослей, в процессе которой неповрежденным остается хлоропласт и кремниевый скелет диатомеи и третья стадия - стадия полного уничтожения клеток диатомеи. Совершенно иная картина наблюдалась при взаимодействии листерий с планктонной диатомовой водорослью Р. tricornutum. В этом случае, совместное культивирование привело к усиленному размножению как микроводорослей, так и бактерий.
Таким образом, применение методов классической альгологии и прямой прижизненной видеомикроскопин (VE-DIC) позволило установить паразитический характер взаимоотношений L. monocytogenes с бентосной диатомеей Navicula sp. и взаимодействие типа "протокооперация" с планктонным видом диатомовых водорослей P. tricornutum.
Механизмы возникновения столь разительных различий характера взаимодействия листерий с бентосным и планктонным видами диатомей пока не ясны. Однако, по-видимому, они эволюционно обусловлены, так как мы наблюдали один и тот же характер межвидовых отношений у штаммов листерий выделенных нами из морской среды и типовых штаммов L. monocytogenes, не имеющих ранее контакта с морскими микроводорослями.
Изложенные выше факты показывают, что существуют двухсторонние взаимоотношения листерий и морских микроводорослей. Так, листерии утилизируют вне- и внутриклеточный материал фитопланктона, а микроводоросли, в частности С. minutissima, размножаются на метаболитах, выделяемых исследуемыми бактериями. Таким образом, в условиях эксперимента присутствие в морской воде микроводорослей играет существенную роль в поддержании жизнеспособности L. monocytogenes.
Поскольку фитопланктон с сопутствующими бактериями, в том числе листериями, является начальным звеном пищевой цепи в океане, можно утверждать, что через морских беспозвоночных животных и рыб, листернозный микроб способен попадать в пищу человека, что создает предпосылки для возникновения неблагоприятной эпидемиологической обстановки в отношении листериоза в Дальневосточом регионе.
Таким образом, анализ данных, представленных в обзоре литературы настоящей работы, и результаты собственных исследований позволяют внести листернозный микроб в перечень патогенных бактерий успешно осваивающих различные экологические ниши морской среды (морская вода, донные осадки, организмы гидробионтов). Обитание листерий в сложных условиях морской среды становится возможным благодаря наличию у них целого набора адаптационных механизмов, включающих осмотолерантность, психрофильность, азотфиксацшо, олиго- и газотрофию. Учитывая показанную в данной работе значительную изменчивость биологических свойств L. monocytogenes, возникающую при обитании микроорганизма в морской среде, необходим особый подход к выделению и идентификации штаммов листерий морского происхождения.
В представленной работе морской среде отводится роль дополнительного резервуара листерий в биосфере, что вносит определенный вклад в решение основополагающего вопроса эпидемиологии, заключающегося в оценке резервуарной роли Мирового океана в отношении патогенных бактерий.
136
Библиография Диссертация по биологии, , Терехова, Валерия Евгеньевна, Москва
1. Айздайчер Н.А., Царенко П.М. К экологии Chlorella minutissima Fott et Novak. (Chlorophyta) // Альгология.- 1992.- Т. 2.- № 1.- С. 47-50.
2. Аксенов М.Ю., Мисуренко Е.Н., Шустрова И.М. и др. Выявление и изучение динамики численности некультивируемых форм Yersinia pseudotuberculosis во внешней среде при использовании полимеразной цепной реакции // Журн. микробиол.- 1995.- № 2.- С. 80-83.
3. Алленов А.В. Микробиологическая и эколого-эпидемиологическая характеристика вибрионозов в Приморском крае: Автореф. дис. . канд. мед. наук. Владивосток, 1999. 25 с.
4. Андреева В.М. Род Chlorella. Морфология, систематика, принципы классификации.- Л.: Наука, 1975.- 110 с.
5. Астапович Л.Г., Бакулов И.А., Котляров В.М. и др. Изменение морфологии листерий в зависимости от температуры культивирования // Вопр. вирусологии и микробиологии.- 1966.- № 2.- С. 14-17.
6. Атлас океанов. Тихий океан./ Под ред. С.Г. Горшкова.- МО СССР, 1977.
7. Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях.- М., 1982.- 180 с.
8. Байтаз В.А., Байтаз О.Н., Мишустина И.Е. Морфометрия клеток, численность и биомасса основных морфологических групп бакгериопланктона Баренцева моря // Океанология.- 1996.- Т. 36.- № 6.-С. 883-887.
9. Бакулов И.А., Васильев Д.Ф. Листериоз как пищевая инфекция. Вопросы диагностики и профилактики.- Ульяновск, 1991.
10. Бакулов И.А., Васильев Д.Ф. Бактериологический контроль пищевых продуктов на наличие листерий.- Изд-во Ульяновской гос. сельхоз. академии, 1999.- 37 с.
11. Беленева И.А. Психрофильность Listeria monocytogenes и ее эколого-эпндемиологическое значение: Дис. . канд. биол. наук. Владивосток: Дальнаука, 1996. 29 с.
12. Беленева И.А., Масленникова Э.Ф. Условно-патогенные бактерии, обнаруживаемые в культивируемых мидиях // Жури, микробиол.-2002.-№2,- С. 81-83.
13. Беляков В.Д., Ряпис JI.A. Сапрофиты медицинского значения и природа их полипатогенности на примере псевдомонад // Экология возбудителей сапронозов.- М., 1988.- С. 7-20.
14. Бершова О.И., Коптева Ж.П., Танцюренко Е.В. Взаимоотношения сине-зеленых водорослей возбудителей «цветения» воды - с бактериями // «Цветение» воды.- Киев: Наукова думка, 1968.- С. 159-170.
15. Биологические ресурсы Мирового океана / Под ред. С.А. Студенецкого.- М.: Наука, 1979.- 248 с.
16. Бойко А.В., Погорелова Н.П. Влияние техногенных загрязнений на бактериальные сообщества водоема // Журн. микробиол.- 1998,- № 5.-С. 23-25.
17. Бузолева JI.C., Зайцева Е.А., Терехова В.Е. Изменчивость патогенных бактерий, обитающих в почвах Приморского края // Сб. Статей посвящ. 60-летию Приморского края.- Владивосток, 1998.- С. 32-35.
18. Бузолева JI.C. Адаптация патогенных бактерий к абиотическим факторам окружающей среды: Автореф. дис. . д-ра. биол. наук. Владивосток, 2001. 48 с.
19. Бузолева JI.C., Чумак А.Д., Дзадзиева М.Ф. и др. Газотрофия патогенных бактерий // Журн. микробиол.- 1997,- № 5.- С. 63-67.
20. Буткевич B.C. О бактериальном населении морских вод в высокоширотных арктических районах // Докл. АН СССР.- 1938.- Т. 19.- №8.- С. 651-652.
21. Варвашевич Т.Н., Никифорова JI.C., Траценко А.Ф. и др. Механизмы низкотемпературной регуляции метаболизма у бактерий //
22. Психрофильность патогенных микроорганизмов.- Новосибирск, 1986.-С. 7-14.
23. Водоросли: Справочник.- Киев: Наук, думка, 1989.- 608 с.
24. Гайл Г.И. Определитель фитопланктона Японского моря // Изв. ТИНРО.- 1950.- Т. 33,- С. 3-177.
25. Гальцева Г.В., Цепко И.Н., Маевский М.П. и др. Методические подходы к лабораторной диагностике листериоза // Листериоз на рубеже веков. Тез. докл. Международ, симп. 18-20 мая 1999 г.- Покров, 1999.- С. 73-76.
26. Гвоздяк Р.И., Яковлева Л.М. Об особенностях патогенности Pseudomonas aeruginosa II Журн. микробиол.- 1987.- № 3.- С. 3-6.
27. Гершун В.И. Влияние различных почв на выживаемость возбудителя листериоза//Ветеринария.- 1971.-№ 1.- С. 32-33.
28. Гершун В.И. Способность листерий размножаться в растительных субстратах // Вестн. с.-х. науки Казахстана.- 1979.- № 4.- С. 91-92.
29. Гершун В.В. Влияние абиотических факторов на жизнеспособность листерий в почве // Сиб. вестн. с.-х. науки.- 1980.- № 3.- С. 78-81.
30. Гершун В.И. Экология листерий и пути их циркуляции в природном очаге // Экология возбудителей сапронозов,- М.: Медицина, 1988,- С. 80-85.
31. Гидрометеорология и гидрохимия морей. Гидрометеорологические условия: В 10 т. / Под ред. Ф.С. Терзиева.- Л.: Гидрометеоиздат. 1998. Т. IX: Охотское море.- Вып. 1. 342 с.
32. Горобец О.Б., Блинкова Л.П., Батуро А.П. Влияние микроводорослей на жизнеспособность микроорганизмов в естественной иискусственной среде обитания // Журн. микробиол.- 2001,- № 1,- С. 104-108.
33. Громашевский Л.В. Общая эпидемиология.- М.: Медицина, 1965.-290 с.
34. Гусева К.А. Взаимоотношения фитопланктона и сапрофитных бактерий в водоеме // Тр. пробл. и темат. совещ. Зоол. ин-та. АН СССР.- 1951.-Т. 17.-Вып.- 1.-С. 34-38.
35. Доронин Ю.П. Региональная океанография. Л.: Гидрометиздат, 1986. - 303 с.
36. Дьяков Ю.П. Влияние некоторых абиотических факторов на распределение западнокамчатских камбал (Сем. Pleuronectidae) // Комплексные исследования экосистемы Охотского моря.- М.: Издательство ВНИРО, 1997.- С. 231-234.
37. Дядичев Н.Р. Об определении понятия «эпидемический процесс» // Журн. микробиол.- 1965.- № 6.- С. 145-149.
38. Дятлов С.Е., Петросян А.Г. Phaeodactylum tricornutum Bohl. (Chrysophyta) как тест-объект. Общие положения // Альгология.- 2001.Т. 11.-№ 1.- С. 145-154.
39. Елкнн И.И. Очерки теории эпидемиологии,- М.: Медицина, 1960.-215 с.
40. Епифанова О.И., Терских В.В., Полуновский Е.А. Покоящиеся клетки.-М.: Наука, 1983,- 180 с.
41. Ермольева З.В. Холера.- М., 1942,- 128 с.
42. Зайцев С.В., Чернуха Ю.Г. Возможность переживания патогенных лептоспир в почве природного очага // Экология возбудителей сапронозов,- М.: Медицина, 1988.- С. 85-93.
43. Зайцева Е.А., Терехова В.Е. Эколого-эпидемические особенности Listeria monocytogenes в Приморском крае // Тихоокеанский Мед. журн.- 2001.-№ 2.- С. 29-31.
44. Зайцева Е.А., Бузолева JI.C., Терехова В.Е. и др. Изоляция Listeria monocytogenes из различных объектов в Приморском крае и их биологические свойства // Эпидемиология и инфекционные болезни.-2002.-№1.- С. 47-49.
45. Зеелигер X. Листериоз.- М.: Сельхозиздат, 1959.- 309 с.
46. Зимина Л.М., Сазыкина Т.Г. Выделение экзометаболитов микроводорослями как механизм регуляции численности популяции // Гидробиол. журн.- 1987.- Т. 23.- № 4.- С. 50-55.
47. Иванова Е.П., Шевченко Л.С. Сравнительное изучение бактерий, ассоциированных с губками некоторых районов Индийского Океана // Морская микробиология.- Владивосток: Издательство Дальневосточного университета, 1995.- С. 74-78.
48. Исаченко Б.Л. Исследование над бактериями Северного ледовитого океана // Тр. Мурм. научн-промысл. экспедиции 1906-1914 гг. -Петроград, 1914.- 297 с.
49. Казаков А.В. Листериоз // Руководство по эпидемиологии инфекционных болезней. М.: Медицина, 1993.- Т. 2.- С. 164-170.
50. Киктенко B.C. Лептоспирозы человека.- М.: Медицина, 1954,- 209 с.
51. Кольпикова Т.И., Бакулов И.А., Котляров В.М. Использование листериозных бактериофагов при диагностике и индикации листерий // Листериоз на рубеже веков. Тез. докл. Международ, симп. 18-20 мая 1999 г.- Покров, 1999.- С. 64-68.
52. Кондратьева Л.М. Микробиологическая оценка «фенол ьного» загрязнения р. Амур // Дальний Восток территория, природа, люди.-Биробиджан, 1997.- С. 40-45.
53. Кондратьева Л.М., Гаретова Л.А., Чухлебова Л.М. Микробиологическая оценка экологического риска трансграничногозагрязнения р. Амур // Фундаментальные проблемы воды и водных ресурсов на рубеже третьего тысячелетия.- Томск: HTJ1, 2000,- С. 332335.
54. Коровкина Г.В., Лобанов В.В., Трофименко Н.З. и др. Изучение свойств холерного вибриона Эль-Тор, выращенного на синтетической среде // Журн. микробиол.- 1972.- № 5.- С. 141.
55. Коронелли Т.В. Микробиологическая деградация углеводородов нефти и ее экологические последствия // Биол. науки.- 1982.- № 3.- С. 5-13.
56. Коронелли Т.В., Дермичева С.Г., Коротаева Е.В. Выживаемость углеводородокисляющих бактерий в условиях полного голодания // Микробиология .- 1988.- Т. 57.- Вып. 2.- С. 298-304.
57. Косенко Л.В. Клеточные и внеклеточные углеводы в культурах Anabaena variabilis 359 и Amorphonostoc paludosum 446 // Гидробиол. Журн.- 1975.-Т. 11.-№ 1-С. 58-64.
58. Краткий определитель бактерий Берджи / Под ред. Г.А. Заварзина.- М.: Мир, 1997.-Т. 1,2.-761 с.
59. Крисс А.Е. Микробное население в районе Северного полюса // Тр. Института микробиологии.- 1958.- № 5.- С. 186.
60. Кузнецов В.Г. Выделение бактерий рода Yersinia из различных водоисточников в Приморском крае // Гигиена и санитария.- 1983.- № 2.- С. 72-74.
61. Кузнецов В.Г., Тимченко Н.Ф. Взаимодействие между бактериями рода Yersinia в водной среде // Журн. микробиол.- 1998,- № 6.- С. 29-26.
62. Кустенко Н.Г. Влияние фильтратов из-под культуры водорослей Skeletonema costatum и Thalassionema nitzschioides на их собственный роет// Физиол. раст.- 1974,- Т. 21.- Вып. 5.- С. 1034-1037.
63. Кухаренко JI.A., Айздайчер Н.А. Зеленая водоросль Chlorella minutissima — перспективный объект для интенсивного культивирования в лабораторных условиях // Биол. моря.- 1996.- Т. 22.-№4.- С. 249-251.
64. Ланская Л.А. Культивирование водорослей // Экологическая физиология морских планктонных водорослей.- Киев: Наукова думка, 1971.- С.5-21.
65. Леонов А.К. Региональная океанография.- Л: Гидрометиздат, I960.— 165 с.
66. Литвин В.Ю. Природный очаг инфекции как экологическая система (функциональный анализ и моделирование процессов): Автореф. дис. . докт. биол. наук. М., 1979. 40 с.
67. Литвин В.Ю. Сапрофитическая фаза в экологии возбудителей инфекционных заболеваний // Журн. микробиол.- 1985.- № 6,- С. 98103.
68. Литвин В.Ю. Общие закономерности и механизмы существования патогенных микроорганизмов в почвенных и водных экосистемах // Экология возбудителей сапронозов,- М.- 1988а.- С. 20-34.
69. Литвин В.Ю. Случайный паразитизм микроорганизмов // Журн. микробиологии.- 1992.-№1.- С. 52-55.
70. Литвин В.Ю., Гинцбург А.Л., Пушкарева В.И. и др. Эпидемиологические аспекты экологии бактерий- М.: Фармпринт, 1998.- 229 с.
71. Максимова И.В. Взаимоотношения водорослей с бактериями и другими микроорганизмами в смешанных культурах // Тр. МОИП.-1966.-№24.-С. 160-183.
72. Максимова И.В., Сидорова О.А. Изучение светочувствительного антибиотического эффекта у фототрофных микроорганизмов // Изв. АН СССР сер. биол.- 1983,- № 2,- С. 225-232.
73. Максимова И.В., Сидорова О.А. Светозависимый антибактериальный эффект водорослей и его экологическое значение (обзор) // Гидробиол. Журн.- 1986.- Т. 22.- № 6.- С. 3-11.
74. Маракуша Б.И., Дарвиш К., Тартаковский И.С. Характеристика штаммов Listeria monocytogenes, выделенных в России и их типирование с помощью пульс-элекгрофореза // Журн. микробиол.-1996.- №3.- С. 60-64.
75. Маркина Н.П., Чернявский В.И. Количественное распределение планктона и бентоса в Охотском море // Известия ТИНРО.- 1084.- Т. 109.- С. 94-99.
76. Медицинская микробиология / Под ред. В.И. Покровского, O.K. Поздеева.- М.: ГЭОТАР МЕДИЦИНА, 1999.- 1200 с.
77. Мельников И.А. Экосистема Арктического морского льда.- М.: Институт океанологии им. П.П. Ширшова, 1989.- 191 с.
78. Меркуров А.Э., Тартаковский И.С. Легионеллы и простейшие в водных экосистемах // Потенциально патогенные бактерии в природе.- М.: Академия Медицинских Наук, 1991.- С. 69-75.
79. Миронов О.Г. О роли микроорганизмов, растущих на нефти, в самоочищении и индикации нефтяного загрязнения в море // Океанология.- 1970.- Т. X.- Вып. 5.- С. 820-827.
80. Михновская Н.Д., Шевцова И.И., Рубан Е.Н. и др. К вопросу о неспецифической токсигенности некоторых представителей рода Pseudomonas И Микробиол. журн.- 1988ю- Т. 50.- № 5.- С. 83-86.
81. Мишустина И.Е., Щеглова И.К., Мицкевич И.Н. Морская микробиология.- Владивосток: Издательство Дальневосточного университета,- 1985.- 184 с.
82. Мониторинг метана в Охотском море / А.И. Обжиров, В.А. Соснин, А.Н. Салюк и др.- Владивосток: Дальнаука, 2002.- 250 с.
83. Мукамолова Г.В. Образование и биохимическая характеристика покоящихся форм неспорулирующей бактерии Micrococcus lutens: Автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 1995. 25 с.
84. Обжиров А.И., Астахова Н.В., Липкина М.В. и др. Газогеохимическое районирование Охотского моря // Газогеохимическое районирование и минеральные ассоциации дна Охотского моря. Владивосток: Дальнаука, 1999.- 184 с.
85. Океанология. Химия вод океана / Под ред. А.С. Монина.- М.: Наука, 1979.-Том 1.-С. 133-164.
86. Павлова В.Е., Сорокин Ю.А. Бактериальное питание рачка Penilia avirostris Dana из Черного моря // Биол. моря. 1970,- Вып. 19.- С. 182198.
87. Пименова М.Н., Максимова И.В. Накопление органического вещества в автотрофных культурах водорослей // Биология автотрофных микроорганизмов,- М.: Изд-во МГУ, 1966.- С. 131-141.
88. Пименова М.Н., Максимова И.В., Жданникова Е.Н. Выживаемость некоторых представителей зеленых водорослей в зависимости от условий и длительности хранения // Микробиология.- 1969.- Т. 38.-вып. 3.- С. 538-543.
89. Поляк М.С. Определение чувствительности микроорганизмов к противомикробным препаратам «Метод дисков».- Санкт-Петербург.-Научно-исследовательский центр фармакотерапии, 1997.- 21 с.
90. Поманская А.А. О размножении листерий в воде // Журн. микробиол.-1962.- №9.- С. 102-105.
91. Прозоровский С.В., Покровский В.И., Тартаковский И.С. Болезнь легионеров (легионеллез).- М.: Медицина, 1984.- 207 с.
92. Прозоровский С.В., Покровский В.И., Тартаковский И.С. Случайные паразиты продукт цивилизации? // Будущее науки,- М.: Знание, 1987.-вып.20.-С. 165-177.
93. Пушкарева В.И., Константинова Н.Д., Тартаковский И.С. и др. Численность и изменчивость листерий в сообществе с инфузориями // Патогенные бактерии в сообществах.- М., 1994.- С. 48-55.
94. Пушкарева В.И., Емельяненко Е.Н., Литвин В.Ю. и др. Патогенные листерии в почве и в ассоциации с водорослями: обратимый переход в некультивируемое состояние // Журн. микробиол.- 1997.- № 3.- С. 3-6.
95. Пушкарева В.И., Емельяненко Е.Н., Диденко Л.В. Влияние микроводорослей на жизнеспособность Listeria monocytogenes II Журн. микробиол,- 1998.- № 5. с. 9-13.
96. Радченко В.И., Горбатенко К.М., Старцев А.В. и др. Особенности экологии тихоокеанских лососей, зимующих в южной части Охотского моря в 1990-1991 гг. // Комплексные исследования экосистемы Охотского моря.- М.: Издательство ВНИРО, 1997.- С. 231-234.
97. Разумов А.С. Микробиальный планктон воды // Тр. Всесоюзн. гидробиол. о-ва.- 1962.- С. 60-72.
98. Романова Ю.М. Некультивируемое состояние у патогенных бактерий на модели Salmonella typhimurium: феномен и генетический контроль: Автореф. дис. . д-ра. биол. наук. М, 1997. 48 с.
99. Россова Э.Я. Некоторые данные о численности, продукции бактериопланктона в юго-восточной части Баренцева моря // Океанология.- 1977,- Т. 17.- № 5.- С. 878-882.
100. Рубан E.JI. Физиология и биохимия представителей рода Pseudomonas.-М.: Наука, 1986.- 199 с.
101. Руководство к практическим занятиям по микробиологии / Под ред. Н.С. Егорова.- М.: Издательство МГУ, 1983,- 221 с.
102. Рябкова В.А., Хомик JI.A., Рябцева Е.Г. и др. Химико-биологический мониторинг реки Амур в нижнем течении зимой-весной 1999г. // Экология и здоровье человека: Тез. докл. Междунар. конгр. 23-27 сентября 1999г.-Самара, 1999.-С. 177-178.
103. Саввичев А.С., Русанов И.И., Пименов Н.В. и др. Микробиологические исследования северной части Баренцева моря в начале зимнего сезона // Микробиология.- 2000.- Т. 69, №.- 6.- С. 819-830.
104. Савельев Б.А. Строение и свойства ледяного покрова морских и пресных водоемов,- М.: Изд-во МГУ, 1963,- 541 с.
105. Садчиков А.П., Френкель О.А., Скобеева Т.Н. Ферментативная и гетеротрофная активность водорослей и бактерий // Гидробиол. журн.-1992,- Т. 28.-№6,- С. 51-55.
106. Сакевич А.И., Хамар И.С. Изменчивость антимикробной активности и состава внеклеточных карболовых кислот некоторых видов водорослей // Альгология.- 1997.- Т. 7.- № 2.- С. 115-125.
107. Сапожников В.В. Новые представления о функционировании экосистемы Охотского моря // Комплексные исследования экосистемы Охотского моря.- М.: Издательство ВНИРО, 1997.- С. 5-7.
108. Сахаров П.П., Гудкова Е.И. Листереллезная инфекция.- М.: Изд-во АМН СССР, 1950.- 205 с.
109. Селина М.С. Фитопланктон залива Восток Японского моря: Автореф. дис. . канд. биол. наук. Владивосток: Дальнаука, 1998. 25 с.
110. Скворцов В.В., Киктенко B.C., Кучеренко В.Д. Выживаемость и индикация патогенных микробов во внешней среде.- М.: Медицина, 1966.-350 с.
111. Слабова О.И., Никитин Д.И. Использование Ci-соединений газоокисляющими олиготрофами // Микробиология.- 1988,- Т. 57, Вып.- 3.- С. 373-377.
112. Сливко В.В. Листереллез сельскохозяйственных животных: Автореф. дис. . д-ра. вет. наук. М., 1959. 19 с.
113. Сомов Г.П. Дальневосточная скарлатиноподобная лихорадка.- М.: Медицина, 1979.- 184 с.
114. Сомов Г.П. Еще раз о сапронозах // Журн. микробиол.- 1985.- № 5.- С. 98-104.
115. Сомов Г.П., Варвашевич Т.Н. Ферментативные механизмы психрофильности псевдотуберкулезного микроба // Журн. микробиол.-1984.- №2.- С. 42-46.
116. Сомов Г.П., Литвин В.Ю. Сапрофитизм и паразитизм патогенных бактерий: экологические аспекты.- Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1988.- 208 с.
117. Сомов Г.П., Бузолева Л.С., Зайцева Е.А. и др. О существовании патогенных бактерий в окружающей среде // Вестн. ДВО РАН.- 2000,-№3.- С. 3-9.
118. Сорокин Ю.И. Методы отбора количественных проб микропланктона // Современные методы количественной оценю! распределения морского планктона.- М: Наука,1983.- С. 91-97.
119. Сталлибрасс К. Основы эпидемиологии.- М.-Л.: Биомедгиз, 1936.- 593 с.
120. Стейниер Р., Эдельберг Э., Ингрэм Дж. Мир микробов,- М.: Мир, 1979.- Т. 2.- С. 39-40.
121. Сучков Ю.Г., Худяков Н.В., Емельянов Е.Н. О возможности сохранения возбудителя чумы в почве в покоящейся форме (некультивируемой форме) // Журн. микробиол.- 1997.- № 4.- С. 16-20.
122. Тамбиев А.Х., Кирикова Н.Н. Выделение органического вещества у морских водорослей // Успехи современной биологии,- 1981.- Т. 92.-Вып. 1.-№4.- С. 100-114.
123. Тамбиев А.Х., Шелястина Н.Н., Болдырева JI.C. Изучение биологической активности экзометаболнтов одноклеточных морских водорослей // Физнол. раст.- 1981.- Т. 28.- № 3.- С. 627-634.
124. Тартаковский И.С., Палей О.С., Опочинский Э.Ф. и др. Листерии в инфекционно патологии человека современная концепция // Зни СО.-1994.- №3,- С.1-4.
125. Тартаковский И.С., Малеев В.В., Ермолаева С.А. Листерии: роль в инфекционной патологии человека и лабораторная диагностика.- М.: Медицина для всех, 2002.- 200 с.
126. Таутс М.И. Закономерности появления ингибирующих рост веществ в культуре Chlorella sp. и воздействие на этот процесс сопутствующей бактериальной микрофлоры // Фнзиол. раст.- 1968.- Т. 15.- вып. 4.- С. 665-673.
127. Таутс М.И., Семенко В.Е. Выделение и идентификация физиологически активных веществ индольной природы во внеклеточных метаболитах хлореллы // Докл. АН СССР.- 1971.- Т. 198.-С. 970.
128. Телитченко М.М. Гипотетические альготоксины и перекисное окисление растворенных органических веществ // Гидробиол. журн.-1974.- Т. 10.-№6.- С. 97-101.
129. Темных О.С. Структура ареала минтая в Охотском море в зимний период // Комплексные исследования экосистемы Охотского моря.- М.: Издательство ВНИРО, 1997,- С. 242-247.
130. Терских В.И. Сапроиозы (о болезнях людей и животных, вызываемых микробами, способными размножаться вне организма во внешней среде, являющейся для них местом обитания) // Журн. микробиол,-1958.-№8,-С. 118-120.
131. Тимченко Н.Ф. Материалы по микробиологической характеристике возбудителя дальневосточной лихорадки (псевдотуберкулеза человека): Автореф. . канд. биол. наук.-Владивосток, 1972.- 12 с.
132. Тихий океан. В Ют. / Под ред. А.В. Добровольского,- М.: Наука, 1968. Т. 2. Гидрология Тихого океана,- 524 с.
133. Триполитова А.А., Борисова Т.В. Листериоз.- Томск, 1965.- 257 с.
134. Тульчинская В.П., Губанов В.В. Изучение контаминации мидий бактериями кишечной палочки и парагемолнтическими вибрионами // Промысловые двустворчатые моллюски-мидии и их роль в экосистемах.-Л., 1979.-С. 120-122.
135. Федоров В.Д., Кушнер С.Г., Телитченко М.М. и др. Влияние развивающихся культур протококковых водорослей Chlorella vulgaris и Scenedesmus obliquus на выживаемость кишечной палочки // Биол.науки.-1962.-№2.-С. 160-165.
136. Хоменко А.Г., Фадеева Н.И., Голышевская В.И. Образование улырамикроформ у микобактерий // Пробл. туберкулеза.- 1984.- № 7.-С. 48.
137. Шарма Р.К. Обнаружение листерий в продуктах морей и океанов // Листериоз на рубеже веков. Тез. докл. Международ, симп. 18-20 мая 1999 г.- Покров, 1999,- С. 97-99.
138. Шлыгина К.Н. К вопросу об изменчивости возбудителя листериоза // Журн. микробиол.- 1957.-№ Ю,- С. 56-61.
139. Шнюкова Е.И. Продуцирование внеклеточных углеводов некоторыми синезелеными водорослями // Укр. бот. журн.- 1977.- Т. 34.- №3.- С. 225-229.
140. Шубин Ф.Н., Хорошко В.А., Ромазанов А.П. и др. Вода и гидробионты, как среда обитания Yersinia pseudotuberculosis // Журн. микробиол.-1981.-№10,- С. 26-29.
141. Шунтов В.П. Биологические ресурсы Охотского моря,- М.: Агропромиздат, 1985.- 224 с.
142. Шунтов В.П., Дулепова Е.П. Современный статус био- и рыбопродуктивности экосистемы Охотского моря // Комплексные исследования экосистемы Охотского моря,- М.: Издательство ВНИРО, 1997.- С. 248-261.
143. Щеглова И.К., Щеглов В.В. Микроорганизмы пищеварительного тракта мидий и их роль в пищеварении моллюсков Grenomytilus grayanus // Морская микробиология.- Владивосток: Издательство Дальневосточного университета, 1995,- С. 62-74.
144. Эрман Л.А. Об использовании трофических ресурсов водоемов планктонными коловратками // Бюл. МоИП. Отд. биол.- 1962.- Т. XYII.- Вып. 4.- С. 32- 47.
145. Ahmed F.E. Review assessing and managing risk due to consumption of seafood contamination with microorganisms, parasites and natural toxins in the United States // Int. J. Food Science Technol.- 1992.- V. 27.- № 3.- P. 243-260.
146. Anand C.M., Skinner A.R., Malic A. et al. Interaction of Legionella pneumophila and free-living amoeba (Acanthamoeba palestinensis) // J. Hyhiene, Cambridge.- 1983.- № 91.- P. 167-178.
147. Austin В., Garges S., Conrad B. et al. Comparative study of the aerobic, heterotrophic bacterial flora of Chesapeake Bay and Tokyo Bay // Appl. Environ. Microbiol.- 1979.- № 37.- P. 704-714.
148. Austin В., Austin D.A. Bacterial fish pathogens: Disease in farmed and wild fish.- New York: John Wiley and Sons, 1987.- 364 p.
149. Autio Т., Hielm S., Miettinen M. et al. Sources of Listeria monocytogenes contamination in a coid-smoked rainbow trout processing plant detected by pulsed-field gel electrophoresis typing // Appl. Environ. Microbiol.- 1999.-V. 65.-№1.-P. 150-155.
150. Baker K.H., Herson D.S. Interactions between the diatom Thallasiosira pseudonanna and an associated pseudomonad in a mariculture system // Appl. Environ. Microbiol.- 1978.- V. 35.- № 4.- P. 791-796.
151. Barbaree J.M., Fields B.S., Feeley J.C. et al. Isolation of protozoa from water associated with a Legionellosis outbreak and demonstration of intracellular multiplication of Legionella pneumophila II Appl. Environ. Microbiol.-1986.-№ 51.- P. 422-424.
152. Barber M. A comporative study of Listerella and Erysipelothrix I I J. Path. Bact.- 1939.-№48.-P. 11-12.
153. Barcina I., Gonzalez J.M., Iriberri J. et al. Role of protozoa in the regulation of enteric bacteria populations in seawater // Mar. Microbiol. Food Webs.-1992.-№5,-P. 179-188.
154. Baross J., Liston J. Occurrence of Vibrio parahaemolyticus and related hemolytic vibrios in marine environments of Washington state // Appl. Microbiol.- 1970.-№20.-P. 179-186.
155. Baross J.A., Hanus F.J., Morita R.Y. Survival of human enteric and other sewage microorganisms under simulated hydrostatic pressure // Appl. Microbiol.- 1970.-№20,-P. 179-186.
156. Bartley C.H., Slanetz L.W. Occurrence of Vibrio parahaemolyticus in estuarine waters and oysters of New Hampshire // Appl. Microbiol.- 1975.-№30.- P. 309-318.
157. Bauer J.C., Agerter C.J. Isolation of potentially bacterial flora from tropical sea urchins in selected west Atlantic and east Pacific sites // Bullet. Marine Science.- 1994.- V. 55.-№ l.-P. 142-150.
158. Bell W., Mitchell R. Chemotactic and growth responses of marine bacteria to algal extracellular products // Biol. Bull.- 1977.- V. 143.- P. 265-277.
159. Ben Embarek P.K. Presence, detection and growth of Listeria monocytogenes in seafoods: a review // Int. J. Food Microbiol.- 1994.- № 23.-P. 17-34.
160. Bergmann T. Untersuchunger zum vorkommen von Listeria species in lebensmitteln // Monatsh. Veterinar.- 1990.- V. 45.- № 22,- P. 801-802.
161. Berland B.R., Borrin D.J., Maestrini S.V. Study of bacteria associated with marine algae in culture. Organic substrates supporting growth // Mar. Biol.-1970.-№5.- P. 68-77.
162. Blake P.A., Allegra D.T., Snyder J.D. et al. Cholera a possible endemic focus in the United States // New Engl. J. Medicine.- 1980.- № 302.- P. 305309.
163. Bogosian G., Morris P.J.L., O'Neil J.P. A mix culture recovery method indicates that enteric bacteria do not enter the viable but nonculturable state // Appl. Environ. Microbiol.- 1998.- № 64.- P. 1736-1742.
164. Bohach G.A., Snyder I.S. Cyanobacterial stimulation of growth and oxygen uptake by Legionella pneumophila II Appl. Environ. Microbiol.- 1983.- № 46.- P. 528-531.
165. Brackett R.E., Beuchat L.R. Pathogenicity of Listeria monocytogenes grown in crabmeat // Appl. Environ. Microbiol.- 1990.- № 56.- P. 1216-1220.
166. Brett M., Short P., McLauchlin J. A small outbreak of listeriosis associated with smoked mussels // Int. J. Food Microbiol.- 1998,- № 43.- P. 223-229.
167. Buchnan R.L., Stahl H.G., Whiting R.C. Effects and interactions of temperature, pH, atmosphere, sodium chloride, and sodium nitrite on the growth of Listeria monocytogenes II J. Food Prot.- 1989.- V. 52,- № 3.- P. 844-851.
168. Bulstrode H.T., Klein J. Ouster culture in relation to disease // Rep. to L.G.B.- London: H.M.S.O.-1894.
169. Bunt J.I. Blue-green algae growth // Nature.- 1961.- № 192.- P. 1274.
170. Burnham J.C., Stetak Т., Locher G. Extracellular lisys of the blue-green algae Phormidium luridum by Bdellovibrio bacteriovorus II J. Phycol.-1976.-№12,- P. 306-313.
171. Buzolyova L.S., Somov G.P. Autotrophic Assimilation of CO2 and Cp Compounds by pathogenic bacteria // Biochemistry.- 1999.- V. 64,- № 10.-P. 1146-1149.
172. Buzolyova L.S., Somov G.P. Effects of low temperature on Listeria species survival in river and sea water // Proc. Int. Symp. Earth-Water-Humans.-Kanazava, Japan, 1999.-P. 164-165.
173. Cann D.C., Taylor L.Y. An evaluation of residual contamination by Clostridium botulinum in a trout farm following an outbreak of botulism in the fish stock // J. Fish Diseases.- 1984.- № 7. p. 391-396.
174. Caplenas N.R., Kanarek M.S., Dufour A.P. Source and extent of Klebsiella pneumoniae in the paper industry // Appl. Environ. Microbiol.- 1981.- № 42.- P. 779-785.
175. Carlucci A.F., Craven D.B., Henrichs S.M. Diel production and microheterotrophic utilization of dissolved free amino acids in waters off southern California // Appl. Environ. Microbiol.- 1984.- № 48.- P. 165-170.
176. Castellani Pastoris M., Passy C., Maroli M. Evidence of Legionella pneumophila in some arthropods and related natural aquatic habitats // FEMS Microbiol. Ecol.- 1989.- № 62.- P. 259-264.
177. Cloete Т.Е., Toerien D.F. Bacterial-algal interactions // Wast-water Aquacult. Proc. Workshop Biol. Prod. Syst. and Waste Treat. 12-13 March.-Bloemfontein, 1981.-P. 110-115.
178. Colbourne J.S., Dennis P.J. Distribution and persistence of Legionella pneumophila in water systems // Microbiol. Sci.- 1985.- V. 2.- № 2.- P. 4043.
179. Colburn K.G., Kaysner C.A., Abeyta C. et al. Listeria species in California coast estuarine environment // Appl. Environ. Microbiol.- 1990.- № 56.- P. 2007-2011.
180. Colwell R.R., Seidler R.J., Kaper J. et al. Occurrence of Vibrio cholerae serotype 01 in Maryland and Louisiana estuaries // Appl. Environ. Microbiol.- 1981,-№41.- P. 555-558.
181. Colwell R.R., Grimes D.G. Vibrio diseases of marine fish populations // Helgolander Meeresuntersuchungen.- 1984.- № 37.- P. 265-287.
182. Colwell R.R., Braiton P.R., Grimes D.J. et al. Viable but non-culturablle Vibrio cholerae and related pathogens in the environment: Implications for release of genetically engineered microorganisms // Biotechnol.- 1885.- № 3.- P. 817-820.
183. Cooper S., Battat A., Marot P. et al. Production of antibacterial activities by two bacillariophyceae grown in dialysis culture // Can. J. Microbiol.- 1883.-№29.- P. 338-341.
184. Csonka L.N., Epstein W. Osmoregulation // Escherichia coli and Salmonella Washington: ASM Press, 1996. V. 1: Cellular and molecular biology.- P. 12010-1223.
185. Davies C.M., Long J.A., Donald M. et al. Survival of fecal microorganisms in marine and freshwater sediments // Appl. Environ. Microbiol.- 1995.- № 61.-P. 1888-1889.
186. Degnan A.J., Kaspar C.W., Otwell W.S. et al. Evaluation of lactic acid bacterium fermentation products and food-grade chemicals to control Listeria monocytogenes in blue crab meat // Appl. Environ. Microbiol.-1994 V. 60,- № 9,- P. 3198-3203.
187. Dennis P.J., Green D., Jones B.P. A note on the temperature tolerance of Legionella //J. Appl. Bacieriol.- 1984.- V. 56.-№2.-P. 349-350.
188. De Pauw N., Persoone G. Micro-algae for aquaculture // Micro-Algal Biotechnology. Cambridge: Cambr. Univer. Press, 1988.- P. 128 -221.
189. Dillon R., Patel Т., Ratnam S. Occurrence of Listeria in hot and cold-smoked seafood products// Int. J. Food Microbiol.- 1994.- № 22.- P. 73-77.
190. Dupray E., Derrien A. Influence of the previous stay of Escherichia coli and Salmonella sp. in waste waters on their survival in seawater // Water Res.-1995.- №29.- P. 1005-1011.
191. Farber J.M. Listeria monocytogenes in fish products // J. Food Prot.- 1991.-V. 54,- № 12.- P. 922-924, 934.
192. Farber J.M. Listeria monocytogenes II J. Assoc. Off. Anal. Chem.- 1991.-№ 74,- P. 701-704.
193. Farber J.M., Peterkin P.I. Listeria monocytogenes, foodborn pathogen // Microbiol. Rev.- 1991.-№ 55.- P. 476-511.
194. Farmer J.J., Hickman-Brenner F.W., Kelly M.T. Vibrio II Manual of clinical microbiology.- Washington: American Society for microbiology.- 1985,- P. 282-301.
195. Fenlon D.R. Listeria monocytogenes in nature environment // Listeria, listeriosis and food safety.- New York: Marcel Dekker Inc.- 1999.- P. 21-37.
196. Ferguson C.M., Coote B.G., Ashbolt N.J. et al. Relationships between indicators pathogens and water quality in an estuarine system // Water Res.-1996.- V. 30.- № 9.- P. 2045-20-54.
197. Ferrer M.D., De Simon M. Detection of Listeria monocytogenes, Salmonella sp. and Yersinia enterocolitica in bivalve mollusks // Alimentaria.- 1993.- V. 30.-№247.-P. 33-35.
198. Fidalgo J.P., Cid A., Abalde J. et al. Culture of the marine diatom Phaeodactylum tricornutum with different nitrogen sources: Growth, nutrient conversion and biochemical composition // Cah. Biol. Mar.- 1995.-№36.- P. 165-173.
199. Fields B.S., Shotts E.B., Feeley J.C. et al. Proliferation of Legionella pneumophila as an intracellular parasite of the ciliated protozoan Tetrahymena pyriformis I I Appl. Environ. Microbiol.- 1984.- № 47,- P. 467471.
200. Fliermans C.B., Gorden R.W., Hazen T.C. et al. Aeromonas distribution and survival in a thermally altered lake // Appl. Environ. Microbiol.- 1977.- № 33.-P. 114-122.
201. Fliermans C.B., Cherry W.B., Orrison L.H. et al. Ecological distribution of Legionella pneumophila II Appl. Environ. Microbiol.- 1981.- V. 41.- № 1,-P. 9-16.
202. Fliermans C.B. Autecology of Legionella pneumophila IIRKJ -Ber.- 1983.-№2,- P. 52-57.
203. Fogg G.E., Boalch G.T. Extracellular products in pure cultures of a brown alga//Nature.- 1958.-№ 181.- P. 4611.
204. Fraser D.W., Deubner D.C., Hill D.L. et al. Nonpneumonic, short-incubation period Legionellosis (Pontiac Fever) in men who cleaned a stream turbine condenser// Science.- 1979.-№ 205.- P. 690-691.
205. Fuchs R.S., Sirvas S. Incidence of Listeria monocytogenes in an acidified fish product, ceviche // Lett. Appl. Microbiol.- 1991.- V. 12,- № 3.- P. 8890.
206. Garcia-Lara J., Martinez J., Vilamu M. et al. Effect of previous growth conditions on the starvation-survival of Escherichia coli in seawater // J. Gen. Microbiol.- 1993.-№ 139.- P. 1425-1431.
207. Garland C.D. Microbiological Quality of aquaculture products with special reference to Listeria monocytogenes in Atlantic salmon // The Eleventh Int. Symp. on problems of Listeriosis 2-26 October 1995.- Perth (West Australia), 1995,- P. 261-277.
208. Gauthier M.J., Bernard P., Aubert M. Production d'un antibiotiques lipidique photosensible par la diatomee marine Chaetoceros lauderi (Ralf) // Ann. Microbiol.- 1978.- V. 129,-№ j. p. 63-70.
209. Gauthier M.J., Munro P.M., Mohajer S. Influence of salt and sodium chloride on the recovery of Escherichia coli from seawater // Curr. Microbiol.-1987.- № 15.- P. 5-10.
210. Gauthier M.J., Munro P.M., Breittmayer V.A. Influence of growth conditions on low nutrient response of Escherichia coli in seawater // Can. J. Microbiol.-1989,- № 35.- P. 379-383.
211. Gauthier M.J., Flatau G.N., Clement R.L. Influence of phosphate ions and alkaline phosphatase activity on survival Escherichia coli cells in seawater // Microbiol. Ecol.- 1990.- № 20.- P. 245-251.
212. Gauthier M.J., Flatau G.N., Le Rudulier D. et al. Intracellular accumulation of potassium and glutamate specifically enhances survival of Escherichia coli in seawater // Appl. Environ. Microbiol.- 1991.- № 57.- P. 272-276.
213. Gauthier M.J., Flatau G.N., Clement R.L. et al. Sensitivity of Escherichia coli cells to seawater closely depends on their growth stage // J. Appl. Bacteriol.- 1992.- № 73.- P. 257-262.
214. Gellin B.G., Broome C.V. Listeriosis // JAMA.- 1989.- № 261.- P. 13131320.
215. Gonzalez J.M., Iriberri J., Egea L. et al. Characterization of culturability, protistan grazing, and death of enteric bacteria in aquatic ecosystems // Appl. Environ. Microbiol.- 1992.- № 58.- P. 998-1004.
216. Gram L. Potential hazards in cold-smoked fish: Listeria monocytogenes II J. Food Science.- 2001,- V. 66.- № 7.- P. 1072-1081.
217. Granhall U., Berg B. Antimicrobial effects of Cellvibrio on blue-green algae // Arch. Microbiol.- 1972.- № 84,- P. 234-242.
218. Gray M.L. A rapid methods for the detection of colonies of Listeria monocytogenes II Zentralbl. Bacteriol. Parasitenkd. Infectionskr.- 1957,-Inst. 169.-P. 309-382.
219. Grimes D.J., Singleton F.L., Colwell R.R. Allogenic succession of marine bacterial communities in response to pharmaceutical waste // J. Appl. Bacteriol.- 1984,-№ 57.-P. 247-261.
220. Grimes D.J., Brayton P.R., Colwell R.R. et al. Vibrios as autochthonous flora of neritic sharks // Systematic Appl. Microbiol.- 1985,- № 6.- P. 221226.
221. Grimes D.J., Attwell R.W., Brayton P.R. et al. The fate of enteric pathogenic bacteria in estuarine and marine environments // Microbiol. Sciences.-1986.-№3,-P. 324-329.
222. Grimes D. J. Ecology of estuarine bacteria capable of causing human disease: a review // Estuaries.- 1991.- V. 14.- № 4.- P. 345-360.
223. Guillard R.R.L., Ryther J.H. Studies of marine planktonic diatoms. 1. Cyclotella nana Hustedt, and Detonula confervacea (Cleve) Gran. // Can. J. Microbiol.- 1962.- V. 8.- № 2.- P. 229-239.
224. Gutnick D.L., Rosenberg E. Oil tankers and pollution: A microbiological approach // Annual Rev. Microbiol.- 1977.- № 31.- P. 379-396.
225. Hag I., Suhadi F. Incidence of Clostridium botulinum in coastal and inland areas of West Jara // Jap. J. Med. Sci. Biol- 1981.- V. 34.- № 4.- P. 231-235.
226. Hartemink R., Georgsson.F. Incidence of Listeria species in seafood and seafood salads //Int. J. Food Microbiol.- 1991.-12.- P. 189-195.
227. Harvey H.W. The chemistry and fertility of seawaters.- London: Cambridge University Press, 1955.
228. Haskell E.F. A classification of social science // Main Currents in Modern Thought.- 1949.- № 7.- P. 45-51.
229. Hayes S., Craig J.M., Pilcher K.S. The detection of Clostridium botulinum type E in smoked fish products in the Pacific Northwest // Can. J. Microbiol.- 1969.- № 16.- P. 207-209.
230. Hazen T.C., Fliermans C.B., Hirsch R.P. et al. Prevalence and distribution of Aeromonas hydrophila in United States // Appl. Environ. Microbiol.- 1978.-№36.- P. 731-738.
231. Hazen T.C., Esch G.W. Effect of effluent from a nitrogen fertilizer factory and a pulp mill on the distribution and abundance of Aeromonas hydrophila on Albermarle Sound, North Carolina // Appl. Environ. Microbiol.- 1983.-№45.- P. 31-42.
232. Heinitz M.L., Johnson J.M. The incidence of Listeria sp., Salmonella sp., and Clostridium botulinum in smoked fish and shellfish // J. Food Prot.-1998.- V. 61,- № 3.- P. 318-323.
233. Helmke Т., Weyland H. Abudance, distribution and activity of Antarctic sea ice bacteria during winter // Abstr.6th Int. Symp. Microb. Ecology (ISME-6). Barcelona, Spain.- 1992.- P. 272.
234. Higson F.K., Focht D.D. Degradation of 2-bromobenzoic acid by a strain of Pseudomonas aeruginosa II Appl. Environ. Microbiol.- 1990.- № 56.- P. 1615-1619.
235. Holden E.P., Winkler H.H., Wood D.O. et al. Intracellular growth of Legionella pneumophila within Acanthamoeba castellani Neff // Infection and Immunity.- 1984.- № 45.- P. 18-24.
236. Holmes В., Owen R.J., McMeekin T.A. Genus Flavobacterium II Bergey's Manual of Systematic Bacteriology.- Baltimor, Maryland: Williams and Wilkins, 1984.- P. 353-361.
237. Hornstrup C., Gahrnhansen B. Extraintestinal infections caused by Vibrio parahaemolyticus and Vibrio anginolyticus in a Danish county, 1987-1992 // Scand. J. Meet. Dis.- 1993.- V. 25.- № 6.- P. 735-740.
238. Hubalek Z., Hudec K., Neubauer M. et al. Botulismus vodnich ptakuna rybniku Stary u Pohorelic (okres Breslav) // Vet. Med.- 1984.- V. 29.- № 12.- P. 747-752.
239. Hummel H., Sepers В .J., de Wolf L. et al. Bacterial growth on the marine sponge Halichondria panicea induced by reduced waterflow rate // Mar. Ecol.- 1988.-№42.-P. 195-198.
240. Huq A., Small E.B., West P.A. et al. Ecological relationships between Vibrio cholerae and planktonic crustacean copepods // Appl. Environ. Microbiol.- 1983.- № 45.- P. 275-283.
241. Huss H.H. Distribution of Clostridium botulinum II Appl. Environ. Microbiol.- 1980.- № 39.- P. 764-769.
242. Hutchings J., Wheeler S. Cholera // Amer. J. Med. Sci.- 1903.- CXXVI.- P. 680.
243. Eklund M.W., Peterson M.E., Poysky F.T. et al. Botulism in juvenile coho salmon (Oncorhynchus risutch) in the United State // Aquaculture.- 1982.-№27.- P. 1-11.
244. Eklund M.W., Dowell V.R. Jr. Avian botulism: An international perspective.- Springfield, Illinois: Charles C. Thomas, 1987.- 405 p.
245. Eklund M.W., Poysky F.T., Paranjpye R.N. et al. Incidence and sources of Listeria monocytogenes in cold-smoked fishery products and processing plants // J. Food Prot.- 1995.- V. 58.- № 5.- P. 502-508.
246. Elliot E.L., Kvenberg J.E. Risk assessment used to evaluate the US position on Listeria monocytogenes in seafood // Int. J. Food Microbiol.- 2000.- № 62.- P. 253-260.
247. Enzinger R.M., Cooper R.C. Role of bacteria and protozoa in the removal of Escherichia coli from estuarine waters // Appl. Environ. Microbiol.- 1976.-№31.- P. 758-763.
248. Janda J.M., Bottone E.J., Reitano M. Aeromonas species in clinical microbiology: Significance, epidemiology and speciation // Diagn. Microbiol. Infect. Dis.- 1983.- № 1.- P. 221-228.
249. Jemmi T. Zum vorkommen von Listeria monocytogenes in importiertengeraucherten und fermentiertenfischen // Arch. Lebensmittelhyg.- 1990.-№ 41.-P. 107-179.
250. Jemmi Т., Keusch A. Occurrence of Listeria monocytogenes in freshwater fish farms and fish-smoking plants // Food Microbiol.- 1994.- № 11.- P. 309-316.
251. Jinneman K.C., Wekell M.M., Eklund M.W. Incidence and behaviour of Listeria monocytogenes in fish and seafood // Listeria, listeriosis and food safety.- New-York: M. Dekker, 1999.- P. 601-630.
252. Johansson Т., Rantala L., Palmu L. et al. Occurrence and typing of Listeria monocytogenes strains in retail vacuum-packed fish products and in a production plant // Int. J. Food Microbiol.- 1999.- № 47.- P. 111-119.
253. Jorgensen E.G. Antibiotic substances from cells and culture solutions of unicellular algae with special reference to some chlorophyll derivates // Ibid.- 1962.- V. 15.- № 3.- P. 530-545.
254. Jorgensen L.V., Huss H.H. Prevalence and growth of Listeria monocytogenes in naturally contaminated seafood // Int. J. Food Microbiol.-1998.-№42.-P. 127-131.
255. Joseph S.W., Colwell R.R., Kaper J.B. Vibrio parahaemolyticus and related halophilic vibrios // CRC Critical Rev. Microbiol.- 1982.- № 10.- P. 77-124.
256. Julianelle L., Pons C. Indification of Listerella monocytogenes // Proc. exper. Biol. a. Med.- 1939.- № 40.- P. 362-363.
257. Kaneko Т., Colwell R.R. The annual cycle of Vibrio parahaemolyticus in Chesapeake Bay // Microbiol. Ecol.- 1978.- № 4.- P. 135-155.
258. Kaper J.B., Lockman H., Colwell R.R. et al. Aeromonas hydrophila: Ecology and toxigenicity of isolates from an estuary // J. Appl. Bacteriol.-1981,-№50.- P. 359-377.
259. Karunasagar I., Segar K., Karunasagar I. et al. Incidence of Listeria species in tropical seafoods // The Eleventh Int. Symp. on problems of Listeriosis 21-22 May 1992.- Copenhagen: Egtved's Parhus, 1992.- P. 306-309.
260. Kelly M.T. Effect of temperature and salinity on Vibrio (Beneckea) vulnificus occurrence in Gulf Coast environment // Appl. Environ. Microbiol.-1982.- V. 44.- № 6.- P. 820-824.
261. Kelly M.T., Peterson J.W., Romanko M. et al. Toxigenic 01 and non-Ol V. cholerae from patients and the environment in Texas // Vibrios in the environment.- New-York: John Wiley and Sons, 1984.- P. 463-477.
262. Kennedy C.R. Population biology of parasites with special reference to the effect of ecosystem changes due to human activity // Proc. 1-st Intern. Congr. Ecol. Hague, 1974.- Wageningen, 1974.- P. 316-319.
263. Khardori N., Fainstein V. Aeromonas and Plesiomonas as etiological agents // Annual Rev. Microbiol.- 1988,- № 42.- P. 395-419.
264. Knittel M.D., Seidler R.J., Eby C. et al. Colonization of the botanical environment by Klebsiella isolates of pathogenic origin // Appl. Environ. Microbiol.- 1977.- № 34.- P. 557-563.
265. Kogure K., Simidu U., Taga N. Effect of Skeletonema costatum (Grev.) Cleve on the growth of marine bacteria // J. Exp. Mar. boil, and Ecol.-1979.-№36,- P. 201-215.
266. Kokubo Y., Nakama A., Iida T. et al. Listeria and safety of food products // Mod. Media.- 1991.- V. 37.-№ 10.- P. 3-10.
267. Kuentzl J.I. Bacteria, carbon dioxide and algal blooms // J. Water Pollut. Control Fed.- 1969.-№41.-P. 1737-1747.
268. Kuo S.C., McGrath J.L. Steps and fluctuations of Listeria monocytogenes during actin-based motility // Nature.- 2000,- 26 October.- P. 1026-1029.
269. La Croix S.J., Cabelli V.J. Membrane filter method for enumeration of Acinetobacter calcoaceticus from environmental waters // Appl. Environ. Microbiol.- 1982.- № 43.- P. 90-96.
270. Lange W. Effect of carbohydrates on the symbiotic growth of planktonic blue-green algae with bacteria // Nature.- 1967.- V. 215.- № 5107.- P. 12771278.
271. Lennon D., Lewis В., Mantell C., et al. Epidemic perinatal listeriosis // Pediatr. Infect. Dis.- 1984,- № 319.- P. 823-828.
272. Levinson H., Sonenshein A.L., Tipper D.J. Sporulation and germination.-Washington: American Society for Microbiology, 1981.- 317 p.
273. Linder K., Oliver J.D. Membrane fatty acid and virulence changes in the viable but nonculturable state of Vibrio vulnificus II Appl. Environ. Microbiol.- 1989,- V. 55.- № 6.- P. 2837-2842.
274. Liston J. Microbial hazards of seafood consumption. Toxins, bacteria and viruses are the principal causes of seafoodborne diseases // Food. Technol.-1990,- Vol.44.- № 12.- P. 58-62.
275. Lone G. Potential hazards in cold-smoked fish: Listeria monocytogenes II J. Food Science.- 2001,- V. 66,- № 7.- P. 1071-1081.
276. Loosanov V.K., Devis H.C. Rearing of bivalve mollusks // Advance in marine Biology. London: Academic Press, 1963.- V. 1.- P. 1-130.
277. Lopez-Torres A.J., Prieto L., Hazen T.C. Comparison of the in situ survival and activity of Klebsiella pneumoniae and Escherichia coli in tropical marine waters // Microbial Ecol.- 1988.- № 15.- P. 41-57.
278. Lowry P.W., Blankenship R.J., Gridley W. et al. A cluster of Legionella sternalwound infections due to postoperative topical exposure to contaminated tap water // New Engl. J. Medicine.- 1991.- № 324,- P. 109113.
279. Ludmann Т., Wong H.K. Gas hydrates in the Okhotsk Sea a first quantification of the associated paleomethane anomalies off NE Sakhalin // Climate drivers of the North: Proc. Kiel, 8-11 May, 2002. Berlin: Alfred-Wegener-Stiftung. 2002. P. 69.
280. Ly Thi Minh Chau, Miiller H.E. Interactions of Listeria monocytogenes, Listeria seeligery, and Listeria innocua with protozoans // J. Gen. and Appl. Microbiol.- 1990.- V/ 36.- № 3.- P. 143-150.
281. Maple P. Listeria monocytogenes in fish and fish products exports // The Eleventh Int. Symp. on problems of Listeriosis 2-26 October 1995.- Perth (West Australia), 1995.- P. 279-285.
282. Marion W.R., O'Meara Т.Е., Riddle G.D. et al. Prevalence of Clostridium botulinum type С in substrates of phosphate mine-settling ponds and implications from epizootics of avian botulism // J. Wildlife. Deasis.- 1983.-V. 19,-№4,-P. 302-308.
283. Marker A.F. Exstracellular carbohydrate liberation in the flagellates Isochrysis galbana and Primnesium parvum II J. Marine Biol. Assoc. U. K.-1965.- V. 45.-№3.- P. 755.
284. Martinezmanzanares C., Morinigo M.A., Castro D. et al. Influence of the fecal pollution of marine sediments on the microbial content of shellfish // Mar. Pollut. Bull.- 1992.- V. 24.- № 7.- P. 342-349.
285. McCarthy S.A. Listeria in the environment // Foodborne listeriosis.- New York: Elsevier.- 1990.- P. 25-29.
286. McLauchlin J., Audurier A., Taylor A.G. The evalution of phage-tiping system for Listeria monocytogenes for use in epidemiological studies // J. Med. Microbiol.- 1996.- № 22.- P. 357-365.
287. Mead P.S., Slutsker L., Dietz V. et al. Food-related illness and death in the Unites States // Emerg. Infect. Dis.- 1999.- V. 5.- P. 607-625.
288. Mitchell R. Factors affecting the decline of non-marine organisms in sea water // Water Res.- 1969.- № 2,- P. 535-543.
289. Mitchell R. Role of predators in the reversal of imbalances in microbial ecosystems // Nature.- 1971.- № 230 .- P. 257-258.
290. Mizuta G., Fukamachi Y., Ohshima K.I., Waratsuchi M. Southward current of east coast of Sakhalin in the Sea of Okhotsk observed from 1998 to 2000 // The 16-th Int. Symp. on Okhotsk Sea and Sea ice: Abstracts. Mombetsu. -2001.-P. 198-205.
291. Morita R.Y. Starvation and miniaturization of heterotrophs, with special emphasis on maintenance of the starved viable state // Bacteria in their natural environment.- London: Academ. Press, 1985.- P. 111-130.
292. Munro P.M., Laumond F., Gauthier M.J.A previous growth of enteric bacteria on salted medium increased their survival in seawater // Lett. Appl. Microbiol.- 1987.- № 4.- P. 121-124.
293. Munro P.M., Gauthier M.J., Brettmayer V.A. et al. Influence of osmoregulation processes on starvation survival of Escherichia coli in seawater//Appl. Environ. Microbiol.- 1989.- № 55.- P. 2017-2024.
294. Munro P.M., Clement R.L., Flatau G.N. et al. Effect of thermal, oxidative, acidic, osmotic, or nutritional stresses on subsequent culturability of Escherichia coli in seawater // Microbiol. Ecol.- 1994.- № 27.- P. 57-63.
295. Munro P.M., Flatau G.N., Clement R.L. et al. Influence of RpoS (KatF) sigma factor on maintenance of viability and culturability of Escherichia coli and Salmonella lyphimurium in seawater // Appl. Environ. Microbiol.-1995.-№61.-P. 1853-1858.
296. Muroga K. Viral and bacterial diseases in larval and juvenile marine fish and shellfish: Review // Fish Pathology.- 1995.- V. 30.- № 1.- P. 71-85.
297. Nakama F., Maruyama Т., Kokubo Y. et all. Incidence of Listeria monocytogenes in foods in Japan // Listeria 1992: 11 th Int. Symp. Probl. Listeriosis. Copenhagen, 11-14 May, 1992: ISOPOL XI: Book Abstr.- S.I., S.A.- P. 317-318.
298. Navier M., Berge J.P., Durand P. et al. Antibacterial activity of marine diatom Skeletonema costatum against aquacultural pathogens // Aquaculture.- 1999.- V. 174,-№ 1-2.-P. 15-24.
299. Neu H.C. The role of Pseudomonas aeruginosa in infection // J. Antimicrob. Chemother.- 1983.- № 11,- suppl. В.- P. 1-13.
300. Newell B.S., Dalpont G.A., Grant B.R. The production of extracellular nitrogenous substances by a Phaeodactylum tricornutum II Canad. J. Bot.-1972.- V. 50.-№12.- P. 2605.
301. Nicolas J.A., Cornuejols M.J., Hangard-Vidaus N. et al. Etude de la contamination par Listeria des aliments desfines a la consommationhumaine: viandes, fromages, poisons // Biologiste.- 1989.- V. 23.- № 179.-P. 41-45.
302. Nilsson L. Control of Listeria monocytogenes in cold-smoked salmon by biopreservation.- Lyngby: Technical University of Denmark, Danish Institute for Fisheries Research.- 1999.- 136 p.
303. Olafsen J.A., Mikkelsen H.V., Glaever H.M. et al. Indigenous bacteria in hemolymph and tissues of marine bivalves at low-temperatures // Appl. Environ. Microbiol.- 1993.- V. 59.-№ 6.-P. 1848-1854.
304. Oliver J.D., Warner R.A., Clelend D.R. Distribution of Vibrio vulnificus and other lactose-fermenting vibrios in the marine environment // Appl. Environ. Microbiol.- 1983.- V. 45.- № 6.- P. 985-998.
305. O'Neill K.R. Ecology and characterization of Vibrio vulnificus from Great Bay estuary of marine and New Hampshire: M.S. Thesis, Univers. New Hampshire, Durham.- 1991.
306. Ortiz-Roque C.M., Hazen T.C. Abundance and distribution of Legionellaceae in Puerto Rican waters // Appl. Environ. Microbiol.- 1987.-№53.- P. 2231-2236.
307. Papa A., Arvanitidou-Vayiona M., Konstantinidis T.S. et al. Causes of incidence of Listeria in superficial water// Acta microbiol. hell.- 1996.- V. 41.-№ 16.-P. 575-579.
308. Paterson I.S., Cook K.A. A method for the recovery of Pasteurella pseudotuberculosis from faeces \\ J. Path. Bact.- 1963.- V.85.- P. 241-242.
309. Pellett S., Bigley D.V., Grimes D.J. Distribution of Pseudomonas aeruginosa in a riverine ecosystem I I Appl. Environ. Microbiol.- 1983.- № 45,- P. 328-332.
310. Pratt R., Daniels T.C., Eller J.J. Chlorellin, and antibacterial substance from Chlorella // Science.- 1944.- V. 99,- № 2574.- P. 351-352.
311. Rait H., Tzanalin G. Incidence of Listeria sp. in seafood salads // Int. J. Food Microbiol 1999.- № 2.- P. 189-195.
312. Reim R.L., Shane M.S., Cannon R.E. The characterization of a Bacillus capable of blue-green bactericidal activity // Can. J. Microbiol.- 1974.- № 20,-P. 981-986.
313. Raymont J.E.G., Adams M.N.E. Studies on the mass culture of Phaeodactylum И Limnol. Oceanogr.- 1958.- V. 3.- № 2.- P. 119-136.
314. Ricard M. Atlas du phytoplankton marin. V. 2. Diatomophycees.- Paris: Centre National de la Recherche Scientiflque.- 1987.- 297 p.
315. Riedo F.X., Pinner R.W., de Lourdes Tosca M. et al. A point-source foodborne listeriosis outbreak: documented incubation period and possible mild illness // Infect. Dis.- 1994.- № 170.- P. 1533-1540.
316. Rippey S.R., Cabelli V.J. Occurrence of Aeromonas hydrophila in limnetic environment: Relationship of the organism to trophic state // Appl. Environ. Microbiol.-1980.- № 45.- P. 43-47.
317. Rivera S., Lugo Т., Hazen T.C. Autecology of Vibrio vulnificus and Vibrio parahaemolyticus in tropical waters // Appl. Environ. Microbiol.- 1989.- № 23,-P. 923-931.
318. Rocourt J., Jacquet C., Reilly A. Epidemiology of human listeriosis and seafood // Int. J. Food Microbiol.- 2000.- № 62.- P. 197-209.
319. Rorvik L. M., Yndestad M. Listeria monocytogenes in foods in Norwey // Int. J. Food Microbiol.- 1991.- V.13.-№ 12.- P. 9 -13.
320. Rosenberg M., Perry A., Bayer E.A. et al. Adherence of Acinetobacter calcoaceticus RAG-1 to human epithelian cells and to hexadecane // Infection and Immunity.- 1981.- № 33.- P. 29-33.
321. Rosenberg M. Microbial surfactants // CRC Critical Rev. in Microbiol.-1986,-№3,-P. 109-132.
322. Roszak D.B., Grimes D.J., Colwell R.R. Viable but nonrecoverable stage of Salmonella enteritidis in aquatic systems // Can. J. Microbiol.- 1984,- № 30.- P. 334-338.
323. Rozen Y., Belkin S. Survival of enteric bacteria in seawater // FEMS Microbiol. Rev.- 2002,- № 25.- P. 513-529.
324. Salas S.D., Geesey G.G. Surface attachment of a sediment isolate of Enterobacter cloacae // Microbial Ecol.- 1983.- № 9.- P. 307-315.
325. Salmon E.D., Rhong T. High-resolution video-enhanced differential interference contrast (VE-DIC) light microscopy // Methods in cell biology. London: Academic Press, 1998.-P. 153-184.
326. Schwartzbrod J., Papadopoulus O., Burdin C. Detection et comportement des Listeria dans les bones d'epuration // Microbiol., alim., nutr.- 1989.- V. 7.-№ 3.- P. 225-232.
327. Scullen O.J., Zaika L.L. Effect of temperature, salt and pH on growth inhibition of Listeria monocytogenes by sodium polyphosphate // Presented at 81st Annual Meeting of IAMFES. July 31- August 3.- 1994.- P. 130.
328. Seeliger H.P.R. Listeriosis.- Leipzig, 1955.- 152 p.
329. Seeliger H.P.R., Jones D. Genus Listeria И Bergey's manual of Systematic bacteriology. 9 01 Ed.- Williams and Wilkins, Co.: Baltimore, 1986.- Vol. 2,-P. 1235-1245.
330. Seeliger H.P.R. Listeriosis history and actual development // Infection.-1988.- №16.- P. 580-584.
331. Shewan J.M., McMeekin T.A. Taxonomy (and ecology) of Flavobacterium and related genera // Annual Rev. Microbiol.- 1983.- № 37.- P. 233-252.
332. Shiba Т., Taga N. Effects of the extracellular products of Enteromorpha linza on its epiphytic bacterial flora // Bull. Japan. Society Sci. Fish.- 1981.-№ 47.- P. 233-252.
333. Shilo M. Lisis of blue-green algae by Myxobacter II J. Bacteriol.- 1970,- № 104.- P. 453-461.
334. Sieburth J. McN. The influence of algal antibiosis on the ecology of marine microorganisms //Advances in microbiology of the sea.- London: Academic Press, 1968.- V. l.-P. 63-94.
335. Sizemore R.K., Colwell R.R., Tubiash H.S. et al. Bacterial flora of the hemolymph of the blue crab, Callinectes sapidus: Numerical taxonomy // Appl. Microbiol.- 1975.- № 29.- P. 393-399.
336. Slutsker L., Evans M.C., Schuchat A. Listeriosis // Emerging disease 4.-Washington: ASM Press.- 2000.- P. 83-106.
337. Smayda T.N., Mitchell-Innes B. Dark survival of autotrophic, planktonic marine diatoms // Mar. Biol.- 1974.- V. 25.- № 3.- p. 195-202.
338. Smith G.W., Hayasaka S.S. Nitrogenase activity associated with Halodule wrightii roots // Appl. Environ. Microbiol.- 1982.- № 43. p. 1244-1248.
339. Smith J.J., Howington J.P., McFeters G.A. Survival, physiological response, and recovery on enteric bacteria exposed to polar marine environment // Appl. Environ. Microbiol.- 1994,- № 60.- P. 2977-2984.
340. Smith R.E.H., Clement P. Heterotrophic activity and bacterial productivity in assemblaged of microbes from sea ice in high arctic // Polar Biol.- 1990.-V. 10.-№5.-P. 351-357.
341. Smith G.R., Oliphant J.C. Clostridium botulinum type С in the Marsey estuary // J. Hyg.- 1982.- V. 89.- № 3. p. 507-511.
342. Spira W.M., Huq A., Ahmed Q.S. et al. Uptake of Vibrio cholerae biotype eltor from contaminated water by water hyacinth (Eichornia crassipes) // Appl. Environ. Microbiol.- 1981.- № 42.- P. 550-553.
343. Spoehr H.A., Smith J.H., Straen H.H. et al. Fatty acid antibacterial from plants // Cam. Inst. Wash. Publ.- 1949.- № 586.- P. 1-67.
344. Stecha P.F., Heyness C.D., Rol J.T. et al. Effects of growth temperature on the ingestion and killing of clinical isolates of Listeria monocytogenes by human neutrophil^ // J. Clin. Microbiol.- 1989,- № 42.- P. 1572-1576.
345. Stewart J.R., Brown R.V. Cytophaga that kills or lyses algae // Science.-1969.-№164.-P. 1523-1524.
346. Strattan Ch. W. Pseudomonas aeruginosa // Infect. Control.- 1983.- V. 4,-№ 1.- P. 36-40.
347. Tamplin M.L., Rodrisc G.E., Blake N.J. et al. Isolation and characterization of Vibrio vulnificus from two Florida estuaries// Appl. Environ. Microbiol.-1982.-№44.-P. 1466-1470.
348. Tamplin M.L., Gauzens A.L., Huq A. et al. Attachment Vibrio cholerae serogroup 01 to zooplankton and phytoplankton of Bangladesh waters // Appl. Environ. Microbiol.- 1990.- № 56.- P. 1977-1980.
349. Thorne R. On cholera in England in 1893 // Rep. to L.G.B.- London: H.M.S.O.-1894.- P. 28-29.
350. Tison D.L., Pope D.H., Cherry W.B. Growth of Legionella pneumophila in association with blue-green algae (Cyanobacteria) // Appl. Environ. Microbiol.- 1980.-V.39.- № 2.- P. 456-459.
351. Toth D., Karelova E., Bricel j M. Regenerational ability of Pseudomonas aeruginos exposed in a deficient water environment // Biol. Vest.- 1983.- V. 31.-P. 139-149.
352. Tsakris C., Psifidis A., Douboyas J. Complisated suppurative otitis-media in a greek diver due to a marine halophilic Vibrio species // J. Laringol. Otol.-1995.- V. 109.-№ 11.-P. 1082-1084.
353. Tyndall R.L., Domingue E.L. Cocultivation of Legionella pneumophila and free-living amoebae // Appl. Environ. Microbiol.- 1982.- № 44.- P. 954-959.
354. Ventkateswaran K., Kim S.W., Nakano T. et al. The association of Vibrio parahaemolyticus serotypes with zooplankton and its relationship with bacterial indicators of pollution // Systematic Appl. Microbiol.- 1983.- № 46.-P. 1447-1449.
355. Viso A.C., Pesando D., Baby C. Antibacterial and antifungical properties of some marine diatoms in culture // Bot. Mar.- 1987.- № 30.- P. 41-45.
356. Wadowsky R.M., Yee R.B. Satellite growth of Legionella pneumophila with an environmental isolate of Flavobacterium breve II Appl. Environ. Microbiol.- 1985.- № 49.- P. 765-771.
357. Watkins J., Sleath K.P. Isolation and enumeration of Listeria monocytogenes from sewege, sewege sluge and river water // J. Appl. Bacterid.- 1981.- № 50.- P. 655-657.
358. Watkins J., Cabelli V.J. Effect of fecal pollution on Vibrio parahaemolyticus densities in an estuarine environment // Appl. Environ. Microbiol.- 1985.- № 49.-P. 1307-1313.
359. Weagant S.D., Sado P.A., Colburn K.G. et al. Incidence of Listeria species in frozen seafood products // J. Food Prot.- 1988,- № 51.- P. 655-657.
360. Weiss D.G. Visualization of the living cytoskeleton by video-enhanced microscopy and digital image processing // J. Cell Sci. Suppl.- 1986.- № 5.-P. 1-15.
361. Weiss J., Seeliger H. Incidence of Listeria monocytogenes in nature // Appl. Microbiol.- 1975.- V. 30.- №1.- P. 29-32.
362. Weiss E. Westfall H.N. Substrate utilization by Legionella cells after cryopreservation in phosphate buffer // Appl. Environ. Microbiol.- 1984.- № 48.- P. 380-385.
363. Welshimer H.J. Survival of Listeria monocytogenes in soil // J. Bacteriol.-1960.-№80.- P. 316-320.
364. Welshimer H.J. Isolation of Listeria monocytogenes from vegetation // J. Bacteriol.- 1968.- № 95.- P. 300-303.
365. Welshimer H.J., Donker-Voet J. Listeria monocytogenes in nature // Appl. Microbiol.- 1971.-№21.- P. 516-519.
366. West P.A., Lee J.V. Ecology of Vibrio species, including Vibrio cholerae, in natural waters of Kent, England // J. Appl. Bacteriol.- 1982.- № 52.- P. 435448.
367. West P.A., Colwell R.R. Identification and classification of Vibrionaceae -An overview // Vibrios in the environment.- New York: Jolm Wiley and Sons, 1984.-P. 285-363.
368. Wortman A.T., Somerville C.C., Colwell R.R. Chitinase determinants of Vibrio vulnificus: Gene cloning and applications of a chitinase probe // Appl. Environ. Microbiol.- 1986.- № 52.- P. 142-145.
369. Youshimizu M., Kimura T. Study of intestinal microflora of salmonids // Fish Pathol.- 1976.- V. 10.-№2.-P.243-259.
370. Yun Janet W., Orange Daniel L., Field Michael E. Subsurface gas offshore of northern California and its link to submarine geomorphology. // Marine Geol. 1999. № 154,- P. 357-367.
-
Терехова, Валерия Евгеньевна
-
-
Москва, 2005
-
ВАК 03.00.07
- Влияние факторов среды на биологические свойства Listeria Monocytogenes, контаминирующей пищевые продукты
- Разработка питательных сред и микротест-системы для накопления, выделения и идентификации листерий
- Контаминированность объектов ветеринарного надзора возбудителем листериоза и биологические свойства выделенных культур листерий
- Система анализа микробиологических и молекулярно-генетических маркеров для выявления высоковирулентных штаммов Listeria monocytogenes
- Идентификация и типирование Listeria monocytogenes на основе особенностей полиморфизма и экспрессии генов факторов патогенности
