Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему

Корневые и прикорневые гнили плодовых и ягодных культур, диагностика и меры борьбы

ВАК РФ 06.01.07, Плодоводство, виноградарство

Автореферат диссертации по теме "Корневые и прикорневые гнили плодовых и ягодных культур, диагностика и меры борьбы"

004615209

Головин Сергей Евгеньевич

Корневые и прикорневые гнили плодовых и ягодных культур, диагностика и меры борьбы

Специальность: 06.01.07 - защита растений

Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора сельскохозяйственных наук

- 2 ДЕК 2010

МОСКВА-2010

004615209

Работа выполнена в Государственном научном учреждении Всероссийский селекционно-технологический институт садоводства и питомниководсгва Россельхозакадемии

Официальные оппоненты: доктор сельскохозяйственных наук, профессор

Белошапкина Ольга Олеговна

Ведущая организация - Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт генетики и селекции плодовых растений им. И.В. Мичурина Россельхозакадемии

Защита диссертации состоится «23» декабря 2010 г. в 13 часов на заседании диссертационного совета Д 006.035.01 при ГНУ Всероссийский селекционно-технологический институт садоводства и питомниководства Россельхозакадемии, по адресу: 115598, г. Москва, ул. Загорьевская, 4, e-mail: vstisp@vstisp.org

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии

Автореферат разослан и выставлен на сайте ВАК РФ фМ» 2010 г.

доктор сельскохозяйственных наук Каширская Наталья Яковлевна

доктор сельскохозяйственных наук, профессор Атрощенко Геннадий Парфёнович

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат сельскохозяйственных наук

Марченко Людмила Александровна

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Корневые и прикорневые гнили плодовых и ягодных культур до настоящего времени в России являлись наименее исследованными болезнями, поражающими садовые культуры. Это было связано со сложностью их идентификации, отсутствием простых и надежных методов диагностики. Эти болезни наносят существенный ущерб при выращивании посадочного материала, а также могут вызывать выпады на промышленных плантациях, особенно это характерно для земляники и малины. Так выпады зеленых черенков плодовых и ягодных культур от этих патогенов, при их укоренении в теплице, могут достигать 70-80% [Метлицкий, Головин, 1989; Головин, 1994]. Выпады сеянцев плодовых культур в условиях Нечерноземной полосы в отдельные годы достигали 40-50% в условиях открытого грунта, а при выращивании в условиях теплицы - 60-80% [Головин, 1992]. Последние наиболее полные исследования в этом направлении проводились, в основном, на ягодных культурах еще в Советском Союзе [Барбатунова, 1986; Головин, 1990]. Значение этих болезней для плодовых культур в Российской Федерации серьезно не изучалось с 1970-х годов.

Широкая и не контролируемая интродукция декоративных и садовых растений из-за рубежа, имевшая место в 90-х годах XX века, создала возможность завоза новых патогенных видов и расс почвенных микромицетов, ранее не встречавшихся на территории России [Метлицкий и др., 2001]. В связи с этим, возникла необходимость всестороннего мониторинга фитосанитарной ситуации, сложившейся в отечественном садоводстве к началу XXI века Особенно это касается таких трудно диагностируемых патогенов, как почвенные микромицеты.

Слабая изученность распространенности возбудителей корневых и прикорневых гнилей и их значения для плодовых и ягодных культур в современных условиях России, также не позволяли разработать эффективные системы защиты в борьбе с этими болезнями.

К началу наших исследований были крайне не полно разработаны методы профилактики и защиты в питомниководстве и в промышленных насаждениях плодовых и ягодных культур. Также не было определено значение отдельных возбудителей корневых и прикорневых гнилей для ряда культур, особенно для плодовых.

Цель и задачи исследований. Целью исследований стало изучение видового состава почвенных микромицетов, связанных с корневыми гнилями плодовых и ягодных культур, и научное обоснование и разработка мер борьбы с корневыми и прикорневыми гнилями основных плодовых и ягодных культур в средней полосе России.

В задачи исследований входило:

1. Уточнить видовой состав, распространенность и элементы биоэкологии микромицетов - возбудителей корневых и прикорневых гнилей основных плодовых и ягодных культур.

2. Обобщить и уточнить фитосанитарную значимость и вредоносность микромицетов - основных возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур.

3. Отработать применительно к местным условиям методы обнаружения микромицетов - возбудителей корневых и прикорневых гнилей основных плодовых и ягодных культур.

4. Обосновать и разработать концепцию изменения патогенеза почвенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в условиях агроценозов.

5. Обосновать и разработать основные элементы системы защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей.

Новизна исследований

Впервые в России изучен комплекс почвенных микромицетов - возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных растений. Определены основные патогенные виды, поражающие эти культуры на разных стадиях их выращивания и размножения. Наиболее полно изучен видовой состав почвенных микромицетов на землянике садовой, на которой идентифицировано 52 вида, 10 из них ранее не были зарегистрированы на этой культуре, на территории РФ.

Выявлен ранее не встречавшийся в России возбудитель корневой гнили малины красной оомицет Phytophthora fragariae Hickman var. rubí Wilcox & Duncan, разработаны оригинальные методы его диагностики в растениях и почве, превосходящие по оперативности зарубежные аналоги, рассчитаны уравнения регрессионного прогноза развития фитофторозной корневой гнили. Определены факторы, препятствующие распространению этой болезни в условиях средней полосы России.

Впервые для условий России в насаждениях малины красной выявлен комплекс фитофторовых оомицетов (Phytophthora nicotianae, Ph. citricola, Ph. cactorum, Phytophthora sp.), встречающийся в том или ином видовом соотношении в насаждениях малины средней полосы России и Кабардино-Балкарии.

Установлено снижение вредоносности фитофтороза рожков земляники, связанное в основном со сменой сортимента этой культуры.

Выявлено возрастание вредоносности ризоктониозной корневой и прикорневой гнилей на землянике, а также и на плодовых культурах в первых полях питомника.

Выявлена взаимосвязь между развитием корневых гнилей в питомнике и заражением почвенно-патогенными микромицетами корнесобственных подвоев и сортов косточковых культур в теплице.

Разработаны схемы диагностики основных возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных растений. Разработан метод «модельных черенков» для диагностики зараженности почвы микромицетами - возбудителями гнилей зеленых черенков плодовых и ягодных культур при укоренении их в теплице. На основе этого метода рассчитаны регрессионные уравнения прогноза потерь зеленых черенков крыжовника и косточковых культур от микозных гнилей при укоренении их в условиях теплицы.

Разработана и обоснована концепция изменения патогенеза почвенных микромицетов на плодовых и ягодных культурах в условиях агроценозов, которая основывается на утверждении, что на патогенез почвенных микромицетов оказывают влияние три основных фактора: почвенно-климатический, биологический и антропогенный. Влияние этих факторов может выражаться, как стимулирующем, так и лимитирующем воздействие на патогенез возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур.

Разработан эффективный способ защиты от микозных гнилей зеленых черенков косточковых культур при их укоренении в пленочной теплице, с использованием в качестве налипателя для фунгицидов водоэмульсионной краски. Производственное испытание данного метода, примененного совместно с разработанной нами схемой защиты, показало его эффективность, проявившуюся в снижении развития гнилей и повышении укореняемости черенков вишни и сливы в 2-2,5 раза, при увеличении доли выхода стандартных саженцев в 1,5 - 3 раза.

Научно обоснованы и разработаны схемы защитных мероприятий при получении посадочного материала плодовых культур различными методами, направленные против корневых и прикорневых гнилей.

Научно обоснованы и разработаны схемы защитных мероприятий против корневых и прикорневых гнилей, при размножении и выращивании земляники и малины.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Видовой состав почвенных микромицетов - возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур, их распространенность и вредоносность.

2. Биологическая и экономическая значимость на плодовых и ягодных культурах наиболее распространенных и вредоносных почвенных микромицетов.

3. Научно-обоснованная система мониторинга основных почвенных микромицетов, включающая в себя упрошенные и доступные методы диагностики и элементы прогноза.

4. Концепция изменения патогенеза почвенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в условиях агроценозов.

5. Научно-обоснованная система защитных мероприятий, направленная против возбудителей корневых и прикорневых гнилей в насаждениях плодовых и ягодных культур.

Практическая ценность работы. Выявлен видовой состав, распространенность и вредоносность основных почвенных микромицетов, связанных с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур. Предложена усовершенствованная система мониторинга основных почвенных микромицетов -возбудителей корневых и прикорневых гнилей.

Разработаны простые и доступные методы диагностики почвы на зараженность основными почвенными микромицетами, ассоциирующимися с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур. В том числе, разработан метод диагностики корней и прикорневой почвы малины красной на зараженность карантинным объектом оомицетом Phytophthora fragariae var. rubí, который отличается простотой и экономичностью, а также оперативностью по сравнению с аналогичной зарубежной методикой. Предложенная методика для диагностики данного патогена требует в 3 раза меньше затрат на проведение теста, а также в 4-5 раз оперативней, чем зарубежная аналогичная методика.

Предложена методика прогноза потерь от микозных гнилей зеленых черенков плодовых и ягодных культур от микозных гнилей при укоренении их в грунтовых теплицах в условиях исскуственного тумана, рассчитаны уравнения регрессионного прогноза как общие для нескольких культур, так и индивидуальные для вишни и сливы.

Предложена методика регрессионного прогноза развития фитофторозной корневой гнили малины красной с учетом суммы осадков за апрель май и июнь, точность прогноза составляет 80-88%, в зависимости от используемого уравнения.

Разработан эффективный способ защиты от микозных гнилей зеленых черенков косточковых культур при их укоренении в пленочной теплице, который снижает развитие гнилей и повышает укореняемость черенков вишни и сливы в 2-2,5 раза, при увеличении доли выхода стандартных саженцев в 1,5-3 раза.

Разработаны схемы защитных мероприятий в борьбе с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур на разных этапах их выращивания.

Результаты проведенных исследований использованы при составлении 4-х методических указаний (25, 26, 28, 31) по диагностике, прогнозу и борьбе с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур.

Личный вклад автора. Постановка проблемы, цель и задачи исследований и её методологии, экспериментальные работы, анализ и обобщение полученных результатов выполненных автором лично. Отдельные разделы диссертации выполнены в сотрудничестве (доля участия автора не менее 75%) с с.н.с. Т.Н. Романченко (ГНУ ВСТИСП) (исследования корневых и прикорневых гнилей плодовых культур в питомниках открытого грунта в 2003-2007 гг.) и с с.н.с. А.Ю. Павловой, н.с. Н.Ю. Джурой (ГНУ ВСТИСП) (испытание средств борьбы с микозными гнилями зеленых черенков плодовых и ягодных культур при их укоренении в теплице в 1992-2008).

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены на научно практических и международных конференциях: Регуляторы роста и развития растений (Москва, 1991); Актуальные проблемы развития пигомниководства и научное обеспечение отрасли (Москва, 1991); Контроль фитосанитарного состояния сельскохозяйственных культур (Москва, 1994); Паразитарное загрязнение мегаполиса Москвы (Москва, 1994); Регуляторы роста и развития растений (Москва, 1995); Молодые ученые садоводству России (Москва, 1995); Всероссийский съезд по защите растений. Защита растений в условиях реформирования АПК (Санкт Петербург, 1995); Актуальные вопросы теории и практики защиты плодовых и ягодных культур от вредных организмов в условиях многоукладного сельского хозяйства (Москва, 1998); Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями (Москва, 1999); Промышленное производство оздоровленного материала плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур (Москва, 2001); 2-й Всероссийский Съезд по защите растений "Фитосанигарное оздоровление агроэкосистем" (Санкт-Петербург, 2005); Мониторинг и методика исследований в садоводстве в нестабильных экологических условиях (Москва, 2005); Методические аспекты создания прецизионных технологий возделывания плодовых культур и винограда (Краснодар, 2006); Инновационные направления в питомниководстве плодовых культур (Москва, 2007); Инновационные подходы к обеспечению стабильной продуктивности косточковых культур (Москва, 2008); Методы изучения продукционного процесса растений и фитоценозов (Нальчик, 2009); Инновационные направления в селекции и возделывании ягодных культур (Брянск - Кокино, 2009); Инновационные направления и проблемы в защите садовых культур от вредных организмов на современном этапе (Москва, 2010).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 47 печатных работы, из них 17 в рецензируемых научных журналах, одна монография и четыре методических указания (три в соавторстве).

Объём и структура диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, 8 глав (64 разделов), выводов и рекомендаций производству, списка использованных источников и 9 приложений.

Материалы диссертации изложены на 412 страницах машинописного текста, содержит 104 таблицы, 29 рисунков, список использованных источников включает 649 наименований, из которых 489 - зарубежная литература.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

В данной главе рассмотрены краткая история, состояние изученности почвенно-патогенных микромицетов - возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур в России и других странах. Уточнены особенности развития и вредоносности наиболее опасных видов почвенных микромицетов в агробиоценозах земляники, малины, смородины и крыжовника, а также семечковых и косточковых культур.

На основе мировой и отечественной литературы проанализированы сведения по методам диагностики почвы и растений на зараженность почвенно-патогенными микромицетами, дана оценка преимуществ и недостатков тех или иных методов.

На основе мировой и отечественной литературы приведены сведения о современных путях и принципах защитных мероприятий по борьбе с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур.

Сформулированные во введении цель и задачи настоящей работы были выбраны в свете необходимости научно-практического решения рассмотренных выше проблем защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ УСЛОВИЯ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ Объекты, материалы и условия исследований. Настоящие исследования проведены в 1990 - 2008 годы в ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии. Для сравнительного анализа видового состава почвенных микромицетов на землянике садовой по годам, использовали также данные, полученные автором ранее в 1984-1989 гг. Некоторые эксперименты были выполнены в АОЗТ «Совхоз им. Ленина» Московской области. Обследования проведены в 21 хозяйстве Московской, Рязанской, Тульской, Нижегородской, Пермской, Кировской областей, а также Чувашской и Мордовской республик. Кроме того, проводились микологические анализы растительных и почвенных

образцов из Вологодского и Кокинского опорных пунктов ГНУ ВСТИСП (соответственно Вологодской и Брянской областей), экспериментальных хозяйств Орловской, Самарской, Воронежской и Ленинградской областей, а также анализировали растительные и почвенные образцы из Калужской, Липецкой, Белгородской областей, Башкирской, Кабардино-Балкарской, Адыгейской республик, а также из Беларуси, Украины, Литвы, Польши и Германии.

Основными объектами исследований были почвенные микромицеты: грибы из родов Fusarium, Cylindrocarpon, Rhizoctonia, Alternaría, Cladosporium, Phoma, Coniolhyrium, Verticillium, Peslaloíia, Pyrenochaeta, Phomopsis и некоторые другие, а также псевдогрибы в основном из родов Pythium и Phytophthora. Кроме того, наблюдения проведены на 50 сортах земляники садовой (Fragaria ananassa Duch.), 30 сортах малины красной (Rubus idaeus L.), 5 сортах крыжовника (Glossularia reclinata [L] Nill.), 10 сортах и подвоях вишни {Cerasus vulgaris Mili.), 6 сортов и подвоев сливы (Prunus domestica L.), 2 подвоя черешни (Cerasus aviutrí), 25 сортов и подвоев яблони (Malus domestica L), 6 сортов и подвоев груши (Pirus communis L.).

В борьбе с корневыми и прикорневыми гнилями испытано 14 синтетических фунгицидов и 7 биопрепаратов (4 - на основе антагонистической бактерии Pseudomonas fluorescens (штаммы и Агат 25К); препарат Симбионт 1 - на основе ризосферной микофлоры женьшеня из актиномицета Actinomyces lavendulae [Гельцер, 1990]; препарат Кетомиум, содержащий хламидоспоры гриба Chaethomium sp. (Таиланд); препарат Микофунгицид на основе гриба Trichoderma viride (фирма БиО - БИС, Россия).

Методы проведения наблюдений и экспериментов. Видовой состав почвенных микромицетов, распространенность, вредоносность изучали в соответствии с методами, имеющимися в литературе (Кирай и др., 1974; Метлицкий и др., 1975; Пристанское, 1982; Поляков, Эберт, 1983). Для выделения фитопатогенных микромицетов из растений и почвы использовали методики следующих авторов (Наумов, 1937; Nadakavukaren, Horner, 1959; Flowers, Hendrix, 1969; Herr, 1973; Me Intosh, 1975; Maas, 1976; Tsao, Guy, 1977; Билай, 1977; Степанова, Сидорова, 1981; George, Milholland, 1986). Для выделения некоторых микромицетов из почвы использовали ряд методик, разработанных автором (3, 13, 16,25).

Опыты по подбору биоприманок для выделения видов из рода Phytophthora закладывали в лабораторных условиях при температуре 16-18°С. В качестве биоприманок испытывали черешки листьев и листья сортов и сеянцев малины красной (Rubus idaei L.), малинно-ежевичных гибридов Тайберри и Логанберри, ежевики сортов Агавам и Смутсен, малины черной (Rubus occidentalis), малины душистой (Rubus odoratus), лесной земляники

(Fragariae vesca L.) клон Альпина, земляники садовой (Fragaria ananassa Duch j, а также зеленые черенки золотистой смородины, крыжовника и чубушника. Каждый вариант включал три повторности, повторность - чашка Петри по шесть листьев или 10 черешков (черенков) на чашку, или 500 мл банку.

Патогенность выделенных чистых культур некоторых микромицетов проверяли на двухнедельных сеянцах земляники сорта Фестивальная от свободного опыления. Повторность в опытах 4-5-кратная, контейнер с пятью сеянцами - повторность. Для тестирования на патогенность видов Phytophthora на малине использовали трехнедельные сеянцы малины, выращенные в стерильном субстрате в условиях зимней теплицы.

Лабораторные, полевые (мелкоделяночные) и производственные испытания различных способов защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей проводили в соответствие с методикой опытного дела (Пирс, 1969; Литтл, Хиллз, 1981; Доспехов, 1985).

Опыты по испытанию эффективности фунгицидов и биопрепаратах на зеленых черенках крыжовника и косточковых культур были трех- и четырехфакторными. Опыты по испытанию эффективности фунгицидов и биопрепаратах на малине и в питомнике плодовых культур были трехфакторными.

Опыты по борьбе с микозными гнилями укореняемых зеленых черенков крыжовника проводили в период с 1990-1994 годов. В опытах использовали сорта крыжовника Русский, Колобок, Садко. В качестве защитных средств в опытах были использованы фунгициды Фундазол 50 % СП, Спортак 45 % ЭК, Ронилан 60 % СП, Топаз К 62,5 % СП, Атеми С 88 % ВГ, Панч 25 % КЭ, а также биологические препараты штаммы антагонистической бактерии Pseudomonas fluorescens и препарат Симбионт 1.

Для обработки зеленых черенков крыжовника фунгицидами применяли три способа внесения препаратов:

1) предпосадочное замачивание нижней части черенков в растворах фунгицидов с

экспозицией 15,30 и 45 минут;

2) пропитка почвы с нормой расхода 5 л/м2;

3) опрыскивание маточных кустов фунгицидами за 14 дней до срезки черенков.

Все опыты закладывались в 4-х кратной повторности, по 15-20 черенков в каждой

повторности.

За период с 2001 по 2007 г. было проведено шесть мелкоделяночных опытов по разработке мер борьбы с микозными гнилями зеленых черенков косточковых культур при их укоренении в пленочной теплицы в условиях исскуственного тумана. В опытах использовались зеленые черенки подвоя вишни Измайловский (ПН), черешневых подвоев

ЛЦ-52 и Колт, сорта сливы Евразия - 21 и Скороспелка красная. В производственном опыте использовали зеленые черенки вишни сортов Ардатовская, Владимировская, Светлая, вишневого подвоя Измайловский (ПН), и сорт сливы Скороспелка красная.

Эксперименты по защите подвоев яблони при высадке их в первое поле питомника были заложены в производственных условиях в 2004 и 2006 годах. Для защиты подвоев яблони от корневых гнилей в первом поле питомника применяли два фунгицида Фундазол 50% СП и Ридомил голд МЦСП, добавляемые в глиняную болтушку в концентрации 0,2%. Ридомил голд МЦ применялся только совместно с Фундазолом. Повторность опытов 5-и кратная (делянка - повторность, по 30 растений в каждой).

В опытах по борьбе с корневыми гнилями малины красной испыгывались фунгициды: Акробат МЦ 69 % СП, Гальбен 80 % СП, Ридомил 25 % СП и Сандофан М 67 % СП в концентрации ОД и 0,2 % по препарату. Фунгициды вносили вручную, методом пропитки прикорневой почвы под растениями малины, с нормой расхода 250 мл рабочего раствора на растение. Опыты заложены в 4-х кратной повторное™, по 15-25 растений в каждой повторности. Учеты поражения растений малины фитофторозной корневой гнилью проводили через два месяца после внесения фунгицидов по пяти бальной шкале В. Вашингтона [Washington, 1988]. Дополнительным фактором в некоторых опытах являлся микрорельеф участка, опытные делянки размещались, как в понижениях, так и на повышениях рельефа.

Для борьбы с фитофторозной корневой гнилью малины в 2000 г. был испытан препарат АгроХит в полевых условиях на лабораторном участке ГНУ ВСТИСП. Для закладки опыта использовали саженцы малины восприимчивых сортов Лазаревская (85 %) и Алый парус (15 %). Перед посадкой саженцы погружали на 30 минут в растворы 1% АгроХита или 0,2% Акробата МЦ. Повторность опыта 4-х кратная, по 8 растений в каждой повторности.

Лабораторная и статистическая обработки опытных данных, расчеты эффективности защитных мероприятий. Определение изолятов грибов и псевдогрибов до рода и далее проводилось по определителям: Литвинов, 1967; Waterhouse, 1968, 1970; Gilman, 1975; Билай,1977; Пидопличко, 1977; Ribeiro, 1978; Филиппов и др., 1980; Krober, 1985.

Степень развития болезней рассчитывали по общепринятой формуле [Степанов, Чумаков, 1972], биологическую эффективность обработок рассчитывали по формуле Эбота (Unterstehnhofer, 1964), хозяйственную и с использованием данных бухгалтерского учета хозяйств и при консультации с сотрудниками отдела экономики ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии.

Статистическую обработку полученных данных проводили с использованием угловой трансформации и множественного t - критерия Дункана, а также с помощью корреляционного анализа (Доспехов, 1978; Литгл, Хиллз, 1981). Расчет формул регрессионного прогноза проводили по методике В.А. Захаренко и др. (2001). Статистическую обработку большинства полученных данных проводили с помощью компьютерных программ в среде Excel.

Глава 3. Анализ видового состава, распространенности и вредоносности микромицетов, связанных с поражением корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур

3.1. Видовой состав микромицетов, связанных с корневыми и прикорневыми гнилями земляники садовой, их распространенность и вредоносность

Земляника садовая является наиболее чувствительной культурой к поражению почвенными микромицетами - возбудителями корневых и прикорневых гнилей, как в России, так и по всему миру, где возделывается эта культура. В связи с этим, в течение более чем 20 лет нами проводились исследования по выявлению причин возникновения этих заболеваний, определению возбудителей, их вредоносности и распространенности.

Из растений земляники, пораженных корневыми и прикорневыми гнилями наиболее часто выделялись такие микромицеты: возбудитель гнили рожков земляники - оомицет Phytophthora cactorum (Lebert et Cohn) Schroet., грибы Rhizoctonia solani Kflhn и Cylindrocarpon deslructans (Zins.) Sholten, виды из родов Pythium, Fusarium. Следует отметить, что грибы рода Verticillium, в частности, гриб V. albo-atrum Reinke et Berth., считавшиеся основными возбудителями увядания земляники в СССР в 70-х годах прошлого века [Пристансков, 1971; Константинова, 1974; Метлина, Попова, 1975], выделяли из больных растений очень редко и нерегулярно, средняя частота выделения 0,7 %, против 33,2 % для Phytophthora cactorum и 37,6 % для Rhizoctonia solani.

В таблице 1 представлены выделенные виды и роды микромицетов, которые упоминались другими исследователями, как возбудители корневых и прикорневых гнилей земляники или как ассоциирующиеся с этими болезнями. Так, род Pythium представлен 10 видами, выделявшихся из больных растений земляники и прикорневой почвы. Наиболее часто из некротизированных участков корней выделялись Р. ultimum (1,6 %), и Р. irreguläre (1,3 %), реже виды P. proliferum (0,32 %) и P. intermedium (0,53 %). Вид Р. mamillatum (0,32 %) чаще выделялся из черешков листьев. Некоторые виды, такие как Р. dissotocum, P. vanterpoolii, P. monospermum, отмечены только в прикорневой почве земляники, тогда как из растений выделены не были.

Грибы из рода Fusarium были представлены, в основном, семью видами. Наиболее часто из больных растений выделялись виды F. sambucinum (1,6 %) и F. oxysporum (0,79 %), реже F. solani (0,51 %) и F. gibbossum (0,35 %), другие виды отмечались значительно реже.

Таблица 1. Частота встречаемости видов микромицетов, ассоциирующихся с корневыми и прикорневыми гнилямм земляники садовой в Московской области (1984-2007 гг.)

Виды микромицетов Частота встречаемости, %

растения почва

Phytophthora cactorum(Lebert et Cohn) Schroet. 33,2 46,7

Phytophthora spp.de Bary 2,4 3,5

Ph. nicotianae van Breda de Haan 0,3 1,1

Ph. citricola Sawada 0,9 1,5

Ph. syringae (Kleb.)Klebahn - 0,2

Rhizoctonia solani Kühn 37,6 33,9

Rhizoctonia spp. D.C. 0,2 0,7

Cylindrocarpon destructans (Zins.) Sholten 33,9 9,6

Cylindrocarpon spp. Wr. 4,8 4,9

Pythium spp. Prigsheim 17,9 28,5

P .ultimum Trow 1,6 6,5

P. middletonii Sparrow, syn. :P. proliferum de Bary 0,3 5,0

P. salpingophorum Drechsler од 0,7

P. intermedium de Bary 0,5 1,4

P. acanticum Drechsler 0,1 0,1

P. monospermum Prinsh. - 0,9

P. irreguläre Buisman 1,3 1,4

P. mamillatum Meurs 0,3 0,3

P. dissotocum Drechsler - 0,5

P.vanterpoolii V. Kouy. et H. Kouy - 0,6

Fusarium spp. Link. 12,5 7,8

F. oxysporum Schlecht, et Hans 0,8 -

F. gibbossum App. et Wr. 0,4 -

F. moniliforme Shcld. 0,2 0,1

F. lateritium Nees. et Hans 0,2 -

F. sambucinum Fuskel 1,6 3,3

F.solani (Mart.) App. et Wr. 0,5 0,5

F.avenaceum (Fr.) Sacc. 0,1 -

Verticillium spp. Nees 0,7 -

Pestalotia spp. de Not. 1,7 -

Botrytis cinerea Pers. 1,8 -

Hainesia lythri Ell. et Sacc. 2,4 -

Alternaria spp. Nees. 3,2 -

Colletotrichum spp. Sacc. 0,8 -

Zythia fragariae Laibach 2,5 -

Phomaspp. Fr. 3,0 -

Также выделялись грибы Botrytis cinerea, Hainesia lythri, Zythia fragariae, Pestalotia spp., Colletotrichum spp., Alternaria spp., которые были чаще связаны с гнилью надземной части растений, вызывали некрозы и пятна на черешках листьев, цветоносах и усоплетях.

Изучая видовой состав микромицетов, ассоциирующихся с корневыми и прикорневыми гнилями земляники, мы проанализировали образцы из 15 областей и 4 республик в России, а также из Беларуси, Литвы, Украины и посадочный материал из Германии и Польши.

Оомицет Phytophthora cactorum отмечен на больных растениях земляники в девяти областях России и одной республике, в прикорневой почве в 11 областях, трех республиках РФ и в Литве. Таким образом, из 23 регионов выращивания земляники (областей, республик, стран) этот патоген был отмечен в образцах из 17 регионов.

Другим наиболее часто встречаемым грибом на землянике и в прикорневой почве был гриб Rhizoctonia solani, который был отмечен в 10 областях России, в трех республиках РФ, а также в образцах из четырех стран.

3.1.1. Симптомы проявления корневых и прикорневых гнилей земляники и микромицеты, ассоциирующиеся с ними

Поражение земляники микромицетами - возбудителями корневых и прикорневых гнилей может проявляться несколькими типами симптомов. Это внезапное или постепенное увядание растений, так называемый «вшгг» или скоротечная форма. Другой формой проявления симптомов поражения растений корневой гнилью может быть слабый рост или остановка в росте - «карликовость», так называемая хроническая форма. Такие симптомы могут вызывать различные возбудители корневых и прикорневых гнилей.

Фитофторозное увядание (гниль рожков). В большинстве случаев увядание растений земляники было вызвано заражением оомицетом Phytophthora cactorum, известным возбудителем гнили рожков земляники. Фитофтороз земляники во второй половине 80-х годов прошлого века наносил значительный ущерб этой культуре в Московской и других областях центральной России, как на плодоносящих плантациях, так и в маточниках [Барбатунова, 1986; Головин, 1990 а].

С середины 1990-х годов произошло снижение вредоносности фитофтороза земляники (возб. - Ph. cactorum) на территории России. Есть много гипотез о причине этого явления. Одной из основных причин снижения вредоносности фитофторозной гнили рожков явилась замена восприимчивых сортов на толерантные или устойчивые. Так, среди увядающих из-за поражения фитофторозной гнилью рожков растений земляники, встречаемость в анализируемых образцах сильно поражаемого сорта Фестивальная отмечали достаточно часто (до 1992 г. - 9 раз), а с 1997 по 2007 г. этот сорт упоминается

всего один раз. К этому же времени из производственных насаждений исчезают такие поражаемые сорта, как Надежда, Заря, Дубровский Родник, Луч, Ранняя Махерауха и другие.

Поражение РИ. сасЮгит часто приводит к «скоротечному» увяданию растений земляники. В зависимости от сорта возможно различное проявление симптомов, либо более молодые листья в жаркие часы дня теряют тургор, восстанавливая его ночью (за несколько дней до полного увядания), либо наоборот, подвядают старые наружные листья растений. Через несколько дней увядает и сморщивается все растение.

Ризоктониозная гниль земляники. Во время наших исследований мы наблюдали увядание растений земляники не связанное с поражением Рк сасЮгит. У таких растений отсутствовали симптомы некроза рожка, но интенсивно развивалась гниль коры рожка и основания черешков листьев, причем в первую очередь некротизировались основания черешков внешних листьев, которые затем увядали, вследствие чего куст разваливался. Корни таких растений были либо слабо некротизированы в начальной стадии заболевания, либо были некротизированы в значительной степени и бурели при сильном поражении, которое приводило к гибели растений. Следует отметить, что в таких случаях некротизация корней часто начиналась от рожка.

Таблица 2. Распространенность увядания в маточнике земляники посадки 2006 года в результате поражения ризоктониозом (пос. Спасское, Ленинский р-н, Московской обл., август, 2007)

Сорт Увядание в среднем по сорту, % Увядание в очагах, % Выпады в очагах, %

Найдена добрая 25-30 35-45 25-30

Редгонтлет 3-5 7-10 3-5

Трибъют 5-7 10-20 5-7

Холидей 2-3 7-10 3-5

Красавица Загорья 10-12 15-20 7-10

Дукат - - 3-5*

Зенга Зенгана - - 3-5*

Кама 5-7 10-15 5-7

Царскосельская 1-2 - 7-10*

Русич 0,5-1 - 1-1,5*

Примечание: * - выпады 2006 г.

Массовое проявление таких симптомов было отмечено в 2007 г. в июле на сортах: Найдена добрая, Трибьют, Красавица Загорья, Редгонтлет и др. В наибольшей степени увядание было отмечено на сорте Найдена добрая, в средней степени были поражены

сорта Трибъют, Красавица Загорья, Кама, а сорта Редгонтлет и Холидей были поражены в слабой степени (табл. 2).

Микологический анализ увядающих растений земляники (табл. 3) показал, что из некротизированных оснований черешков листьев с высокой частотой (77,8-100%) выделялся гриб Rhizoctonia solani, этот гриб выделялся также из рожков и корней.

Таблица 3. Частота выделения (%) почвенных микромицетов из увядающих растений земляники в маточнике 2006 года закладки, нос. Спасское, Ленинского р-на, Московской обл., от 16.08.07

Виды микромицетов Найдена добрая Трибъют Красавица Загорья

Кор.* Рож. Череш. Кор. Рож. Череш. Кор. Рож. Череш.

Rhizoctonia solani 100 50,0 100 50,0 55,5 100 88,7 83,3 100

Pythium spp. 16,7 11,1 16,7 0 0 0 0 0 0

Р. ultimum 0 0 0 50,0 - - 77,8 - -

Cylindrocarpon spp. - 11,1 - - 11,1 11,1 11,1 - -

Cdestructans 100 44,4 11,1 83,3 55,5 - 33,3 11,1 11,1

C.album - 33,3 - 16,7 - - 0 0 0

Fusarium spp. (F.sambucinum F.avenaceum F.gibbossum v. 33,3 77,8 16,7 22,2 50,0 16,7

Alternaria tenuissima - - 33,3 0 0 0 - - 16,7

Alternaria spp. - 11,1 - 0 0 0 0 0 0

A.consortiale 0 0 0 0 0 0 11,1 - -

Chalara sp. 16,7 33,3 44,4 83,3 44,4 16,7 - 50,0 -

Acremonium sp. 0 0 0 0 0 0 - 16,7 16,7

Phoma sp. 0 0 0 - - 16,7 0 0 0

Hainesia lythri 0 0 0 - - 16,7 - 83,3 -

Pestalotia trúncala 0 0 0 - - 33,3 0 0 0

Примечание: *- Кор. - корни; Рож. - рожки; Череш. - черешки листьев

Следует отметить, что гибель растений земляники от ризоктониоза отмечали и в предыдущие годы. Так, во второй половине июня 2006 г. наблюдалась массовая гибель новосадки земляники близ пос. Жабкино, Ленинского р-на, Московской области.

Плантация земляники, высаженная в начале мая 2006 г., прижилась к концу мая, а в июне при повышении дневных температур до + 27-30°С наблюдали симптомы увядания и выпады. Выпады восприимчивого сорта Юния Смайдс по отдельным рядам достигали 80%, а на сорте Красавица Загорья - 50%.

Микологические анализы показали, что с высокой частотой (до 100%) из рожков, черешков листьев и корней выделялся гриб Rhizoctonia solani, тогда как присутствия

другого возможного патогена, оомицета Ph. cactorum, не было обнаружено ни в растениях, ни в почве.

По нашим наблюдениям наибольшую вредоносность на землянике проявляет гриб R. solani в теплицах, так как в них поддерживается постоянная высокая влажность, а температура даже весной достигает 25°С. Так, в 2004 г. в теплице НПО «Фитогенетика» Тульской области наблюдали массовую гибель рассады земляники польского происхождения сортов Хонуэй Эльсанта, Дукат, Кама с симптомами интенсивной гнили надземной части и рожков.

В 2007 г. в зимней теплице ГНУ ВСТИСП наблюдалась массовая гниль надземной части и корней укореняемой рассады сортов Царскосельская, Трибъют и Марышка. Результаты микологического анализа также показали высокую частоту выделения гриба Rhizoctonia solani из корней, рожков и черешков листьев пораженных растений.

3.1.2. Корневые гнили земляники. Корневые гнили земляники часто ассоциировались с симптомами карликовости или остановки роста, особенно при выращивании земляники в тепличной горшечной культуре. Такие растения переставали расти, загнивали, а при выкопке на них отмечали симптомы интенсивной корневой гнили. Часто из корней и рожков таких растений выделяли виды Fusarium, Cylindrocarpon, Pythium, Botrytis, Rhizoctonia.

Питиозы земляники. Оомицеты из рода Pythium отмечались многими исследователями в качестве возбудителей корневых гнилей земляники [Hendrix, Campbell, 1974; Nemec, Sanders, 1970, Watanabe et al., 1977; Maas, 1984].

Впервые исследования особенностей проявления питиоза в теплице на адаптируемых растениях земляники сортов Редгонтлет и Дубровский Родник нами были проведены еще в 1985 году. Из пораженных растений был выделен оомицет P. ultimum, который заражал не только корни, но и рожки растений земляники. В 1988 году мы наблюдали пигиоз корней земляники как в теплице на сортах Гренада и Талисман, так и в условиях открытого грунта на сорте Золушка. Кроме того, в совхозе «Крекшино» (Нарофоминский р-н, Московской обл.) на молодой плантации земляники, расположенной на пойменной террасе, на фоне весеннего переувлажнения отмечали развитие интенсивной корневой гнили, вызванной оомицетами из рода Pythium - P. salpingophorum, P. acanticum. В 2004 году в АОЗТ «Совхоз им. Ленина» Ленинского р-на Московской обл. в маточнике, расположенном на пойменной террасе, наблюдали, развитие питиозной корневой гнили земляники на сортах Баунти и Хонэй, одним из возбудителей которой являлся оомицет Pythium intermedium.

Патогенность видов Pythium на сеянцах земляники. Как показали наши исследования из 5 видов Pythium (табл. 4), наиболее патогенными на сеянцах земляники в лабораторных условиях были виды Р. ultimum и Р. irreguläre. Эти виды вызывали интенсивную корневую гниль и гибель зараженных сеянцев, в пределах 70-75 % от общего числа.

Таблица 4. Результаты опыта по исскуетвенному заражению сеянцев земляники пятью видами Ру1Ишт

Виды Pythium происхождение Гибель в % через дней Гниль

7 19 38 корней, %

P. ultimum Земляничный изолят, из корней погибшего растения (ЗГ)* 50,0 65,0 75,0 83,0

P. irregulare Земляничный изолят из растений с черной корневой гнилью (ОГ) 35,0 60,0 70,0 76,7

P. intermedium Земляничный изолят из корней угнетенного растения (ОГ)** 30,0 40,0 55,0 65,0

P. salpingophorum Земляничный изолят, из корней погибшего растения (ОГ) 20,0 30,0 50,0 56,0

P. proliferum Изолят из прикорневой почвы земляники (ЗГ) 0 5,0 5,0 16,7

Контроль (без заражения) Без заражения 0 0 0 8,2

Примечание:*- ЗГ - защищенный грунт, ** - ОГ - открытый грунт

Виды P. intermedium и P. salpingophorum были умеренно патогенными, вызывали гибель 50-55 % сеянцев земляники, а вид P. proliferum был слабо патогенен, вызывая слабую корневую гниль зараженных сеянцев (некротизация корней 16,7 %, против 83 % у Р. ultimum). Контрольные сеянцы земляники выжили все, хотя некоторые из них имели несколько некротизированных корней (некротизация корней 8,2 %).

Черная корневая гниль. Симптомы черной корневой гнили земляники были отмечены в разных странах по всему миру [Maas. 1984; Wing et al., 1994] и установлено, что эту болезнь могут вызывать, как патогенные организмы, так и абиотические факторы окружающей среды.

В процессе проведения исследований мы неоднократно отмечали подобного рода симптомы на землянике. Часто они были связаны с отсутствием или угнетением роста растений, а иногда и с их скоротечной гибелью.

Следует отметить, что большинство случаев угнетения роста, карликовости растений земляники были напрямую связаны с симптомами черной корневой гнили. У

таких растений отмечено практически полное отмирание корневой системы, то есть корни становились темно бурыми, а в случаях продолжительного переувлажнения в - черными.

Микологические анализы растений земляники, пораженных черной корневой гнилью показали, что наиболее часто на пораженных корнях в комплексе микромицетов присутствовали виды Pythium spp. (84.8%), Rhizoctonia solani (65,2%), Fusarium spp. (65,2%), C. destructans (52,1%)

Симптомы черной корневой гнили земляники могут также проявляться и при так называемой хронической форме заражения растений такими патогенами, как Verticillium albo-atrum и Phytophthora cactorum. В частности, о наличии «хронической» формы вертициллезного вилта в Подмосковье сообщал Ю.П. Пристансков [1976], который выделял из корней угнетенных растений виды Pythium, Fusarium, Alternaria, считая их вторичными патогенами. В своих исследованиях в 1980-х годах мы также отмечали хроническую форму фитофтороза рожков земляники. Так, например, в Рязанской области на сорте Редгонтлет мы наблюдали угнетение роста растений земляники ранее пораженных оомицетом Ph. cactorum, а из корней таких растений выделялись виды Pythium и Fusarium.

При поражении растений земляники ризоктониозом (возб. Rhizoctonia solani) в дальнейшем могут проявляться симптомов черной корневой гнили, поскольку ослабленные ризоктониозом растения поражаются комплексом почвенных микромицетов, вызывающих интенсивную гниль корней земляники.

3.2. Видовой состав микромицетов, ассоциирующихся с корневыми гнилями малины красной, их распространенность и вредоносность.

Во время исследования причин корневых гнилей малины нами был выделен целый ряд почвенных грибов, которые периодически встречались на гниющих корнях и в основании стеблей больных растений малины. Так из гниющих корневых отпрысков в теплице часто выделялись виды Cylindrocarpon (46,7%), Rhizoctonia solani (36,7%), Thielaviopsis basicola (20%), другие виды, такие как Fusarium, Pestalotia, Verticillium albo-atrum и прочие встречались намного реже. Хотя следует отметить, что в 1992 г. гриб Verticillium albo-atrum вызывал увядание малины сорта Бальзам на одном из маточников в Подмосковье и был выделен нами как из корней, так из стеблей увядающих растений. 3.2.1. Фитофторозная гниль корней малины красной. В 1991 г. на селекционном участке ГНУ ВСТИСП отмечали внезапное усыхание и гибель гибридных растений малины красной семей № 445 и № 444 (Сенатор * Иркутская).

Болезнь проявлялась в виде усыхания отросших побегов в течение сезона. Часть растений малины отрастали весной и внезапно увядали, другие растения цвели и увядали в период завязывания ягод. У всех увядших побегов и стеблей растрескивалась кора на уровне почвы и отмечалась интенсивная корневая гниль. При микроскопическом анализе коры корней и оснований стеблей отмечено наличие крупных ооспор оомицета из рода Phytophthora от 27,0 до 45,9 мкм в диаметре.

Наши исследования морфологических и других характерных особенностей этого патогена, в частности, отмеченное оптимальное развитие при температурах от+15 до 20°С позволили отнести данный патоген к виду Phytophthora fragariae Hickman. Для этого вида также характерно образование спорангиев вначале сферических, позже обратно грушевидных, овальной или эллипсовидной формы, без папил (сосочков) и ножки, размером 34,8-84,5x25,8-43,5 мкм.

Попытка заражения этим патогенным видом корней и черешков листьев земляники была безуспешной, хотя корни, черешки листьев и листья малины заражались регулярно. Все перечисленные особенности выявленного вида позволили отнести его к малинному биотипу - Phytophthora fragariae v. rubí, что согласуется с описанием данного биотипа, в том числе с результатами зарубежных исследователей [Kennedy, Duncan, 1993; Wilcox et al., 1993].

Наблюдения, проводившиеся в ГНУ ВСТИСП с 1991 по 2008 гг., выявили периодичность интенсивности развития данного патогена по годам. Наиболее высокая интенсивность развития наблюдалась во влажные годы (рис. 1). Снижение интенсивности развития патогена наблюдалось в годы с жарким летом, это было отмечено в 1992, 1999 и 2002, 2006,2007 гг., а также в годы с умеренными летними температурами, но с меньшим количеством осадков и с весенней засухой.

Во влажные годы начала XXI века (2001, 2003, 2004, 2005) опять выявили вспышку развития этого патогена в посадках малины, где он был отмечен в предыдущие годы. Так, в 2001 году выявили сильную вспышку фитофтороза корней малины (возбудитель Phytophthora fragariae var. rubí) на лабораторном участке в пос. Измайлово (Ленинский р-н, Московская обл.). Начали сильно усыхать сорта Киржач (гибель до 40 % растений), Патриция (гибель очагах от 32 до 80 %), Таруса (гибель от 3,7 до 59 %), Арбат (гибель до 32 %), Форма ИК-21 (до 20%), Калашник (в зависимости от расположения насаждений, микрорельефа участка и близости очага инфекции - гибель от 0 до 80 %).

Годы учета (1991-2008)

Рисунок 1. Изменение интенсивности развития фитофтороза корней малины по годам (1991-2008).

В условиях средней полосы России при междурядной обработке плантаций малины из-за выноса верхнего слоя почвы происходит поднятие рядов при культивировании. Например, если в 2004 г. на плантации 2003 года посадки высота гряд в ряду колебалась от -4 до +6 см, то уже на плантации 2000 года закладки - от +4 до +15 см, а на плантации 1989 г. - от +17 до +35 см. Образование гряд служит естественным барьером для распространения патогена с дождевой и талой водой. С другой стороны, по данным зарубежных исследователей, метод посадки растений на гряды считается одним из эффективных способов ограничения инфекции этого патогена [Montgomery, Kennedy, 1982; Maloney et al., 1993; Helberg, 1995].

При исследовании промышленной плантации малины с очагами фитофторозной корневой гнили, мы также получили данные о продолжительности сохранения гриба Ph. fragariae v. rubi в почве при отсутствии растения - хозяина Так, предыдущая плантация малины на этом участке после обнаружения очагов фитофторозной корневой гнили была запахана осенью 1994 г. В течение шести лет участок находился под черным паром, а в 2000 г. в нижней части участка заложили новую плантацию малины, где в 2001 г. в очагах начали проявляться симптомы увядания. Имея схемы посадки плантации до 1994 г. с

отмеченными очагами корневой гнили, мы сравнили их с очагами на новой плантации и выяснили, что часть очагов в 2001 г. совпадает с таковыми, отмеченными ранее.

3.2.2. Фитофторозные гнили корней малины. Данные более чем за 15 лет исследований (1991-2008 гг.) показывают, что, не считая случаев с корневыми гнилями в теплицах, в открытом грунте, помимо основного патогена выделялось еще не менее трёх видов РкуЮрЫЬога (табл. 5).

Таблица 5. Виды рода РИ)1орШкога, ассоциирующиеся с корневыми гнилями малины красной в условиях открытого (ОГ) и защищенного грунтов (ЗГ)

Годы Виды Phytophthora Источник выделения

1988 Ph. cactorum* Ph. citricola Корневые отпрыски малины + почва (ЗГ)

1992 Ph. citricola* Ph. cryptogea Растения малины после термокамеры (ЗГ)

1993 Ph.fragariae v. rubí* Ph. nicotianae Ph. cactorum Phytophthora sp. Корни растений + почва (ОГ)

1994 Ph.fragariae v. rubí* Ph. nicotianae Ph. cactorum Ph. citricola Корни растений + почва (ОГ)

1995 Ph. fragariae v. rubí* Ph. nicotianae Ph. cactorum Phytophthora sp. Корни растений + почва (ОГ)

1996 Ph.fragariae v. rubi* Ph. nicotianae Phytophthora sp. Кории и корневые отпрыски растений + почва (ОГ)

1997 Ph. fragariae v. rubi* Ph. nicotianae Ph. cactorum Phytophthora sp. Корни растений + почва (ОГ)

1998 Ph. nicotianae Ph. cactorum Ph. citricola Кории растений + почва (ОГ)

1999 Ph. fragariae v. rubi* Ph. nicotianae Ph. cactorum Ph. citricola Кории растений + почва (ОГ)

2001 Ph.fragariae v. rubi* Ph. nicotianae Phytophthora sp. Кории растений + почва (ОГ)

2005 Ph.fragariae v. rubi* Ph. nicotianae Ph. cactorum Phytophthora sp. Кории растений + почва (ОГ)

Примечание: * - основной патоген

В частности, очень часто сопутствующими видами были Рк. тсоНапае и Рк. сасюгигп, реже вид Рк сНпсо1а. Следует отметить, что Рк тсоИапае относительно часто выделяли из корней больных растений, а два других вида наоборот выделяли очень редко, особенно в условиях открытого грунта.

Исследования, проведенные в 1996 и 2004 годах, показали, что виды Рк сШсоЬ и Рк тсоИапае заражали корневые отпрыски малины в условиях открытого фунта. Оба вида вызывали некрозы на этиолированных частях корневых отпрысков, а при сильном развитии гнили - усыхание.

Нами также выявлено, что подтопление насаждений малины усиливает фитофторозные корневые гнили, которые вызываются слабо патогенными видами из рода РкуЮрЫИога. Так уровень подтопления от - 5 см и выше до - 1 см резко увеличивал количество погибших и больных растений, а затопление участков на +1 см над поверхностью почвы вызывало 100%-ную гибель растений.

Статистический анализ данных показал, что существует прямая корреляционная зависимость между уровнем затопления и пораженностью малины фитофторозными корневыми гнилями с коэффициентами корреляции от 0,935 до 0,999.

3.2.3. Тесты на патогенность видов РИуЮрЫИога на сеянцах малины

Для выяснения роли видов РИуЮрЫИога, ассоциирующихся с корневыми гнилями малины, нами проведен лабораторный тест по испытанию патогенности 5 видов этого рода на сеянцах малины красной (табл. 6).

Таблица 6. Результаты опыта по оценке патогенности 5 видов РИуЮрМИога на сеянцах малины красной (1994)

Виды Phytophthora Происхождение изолятов Гибель сеянцев через дней, % Гниль корней, %

7 19 38

Ph.fragariae var. rubil* Малина, корни, открытый грунт (ОГ) 35,0 65,0 80,0 85,6(1

Ph.fragariae var. rubi 2** Малина, корни (ОГ) 45,0 75,0 90,0 91,5(1

Ph. nicotianae Малина, прикорневая почва (ОГ) 5,0 25,0 35,0 43,2 Ь

Ph. cryptogea Малина, прикорневая почва, (ЗГ) 10,0 40,0 50,0 57,0 Ьс

Ph. citricola Земляника, прикорневая почва, теплица (ЗГ) 20,0 50,0 60,0 65,0 с

Ph. caciorum Земляника, прикорневая почва, (ЗГ) 5,0 30,0 40,0 43,7 Ь

Контроль (без заражения) - 0 0 0 5,7 а

Примечание: 1*- инокуляция почвы; 2**- инокуляция растений

Для заражения использовали чистые культуры видов Phytophthora, таких как Ph. fragariae var. rubi, Ph. nicotianae и Ph. cryptogea (малинные изоляты), а также Ph. citricola и Ph. cactorum (земляничные изоляты).

Из приведенных данных (табл. 6) видно, что наиболее патогенным для сеянцев малины был вид Ph. fragariae var. rubi, который вызывал гибель 35-45 % сеянцев через 7 дней после инокуляции и 80-90 % растений через 38 дней. Поражение сеянцев малины этим патогеном характеризовалось интенсивной корневой гнилью, которая проявлялась почти полной некротизаций корней (85,6-91,5%) в конце опыта.

Другие виды Phytophthora проявляли умеренную патогенность для сеянцев малины, причем такие виды, как Ph. citricola и Ph. cactorum часто поражали не только корни, но и корневую шейку сеянцев, вызывая светло-коричневые некрозы.

3.3. Видовой состав почвенных мнкромицетов, ассоциирующийся с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых культур, распространенность и вредоносность 3.3.1. Корневые и прикорневые гнили сеянцев плодовых культур Потери семечковых и косточковых культур в школках сеянцев иногда достигают 5080 % от общего числа высеянных семян. Причинами выпадов, в основном, считают либо потерю всхожести семян из-за не правильной их подготовки (например, нарушение режимов стратификации), либо поражение почвенно-патогенными микромицетами.

Наши исследования показали, что с выпадами сеянцев было связано более 23 видов почвенных мнкромицетов, причем в разные годы и в различных условиях выращивания менялись виды основных возбудителей гнилей.

В разные годы и в различных условиях «черную ножку» сеянцев могли вызывать такие микромицеты, как Fusarium lateritium, Rhizoctonia solani, Pythium spp., Ph. cactorum и некоторые другие (табл. 7). Виды Fusarium часто ассоциировались с «черной ножкой» сеянцев яблони в условиях теплицы. Выпады от этих патогенов часто были связаны с первоначальной зараженностью ими семян яблони.

В полевых условиях гниль корневой шейки была обусловлена заражением сеянцев видами рода Pythium и Ph. cactorum, частота выделений которых составила 62,5 и 50 % соответственно (табл. 7).

Гибель сеянцев плодовых пород также может вызывать гриб R. solani, особенно если они выращиваются в теплице (табл. 7). Так, в апреле 1992 г. мы наблюдали гибель сеянцев сливы в теплице в результате поражения ризоктониозом. В этом же году в июне было отмечено поражение ризоктониозом сеянцев груши в условиях открытого грунта.

В то же время, в условиях открытого грунта наличие в почве школки сеянцев до посадки оомицета Р. ultimum обусловило, в дальнейшем, сильное развитие корневой гнили сеянцев яблони.

Таблица 7. Частота выделения почвенных микромицетов (%) из сеянцев плодовых культур пораженных корневыми пшлями в условиях открытого (ОГ) и защищенного грунтов (ЗГ)

1991 1992 1993 2007

Виды Яблоня Яблоня Слива Яблоня Яблоня Груша Алыча

микромицетов (ЗГ) (ОГ) (ЗГ) (ОГ) (ЗГ) (ОГ) (ОГ)

Ph. cactorum 0 50,0 0 0 0 0 0

Pythium sp. 0 - - - 0 10,0 20,0

Р. ultimum 0 333 0 50,0 0 0 0

Р. intermedium 0 16,7 0 0 0 0 0

Р. mamillatum 0 0 20,0 0 0 0 0

P.proliferum 0 16,7 0 0 0 0 0

Rhizoctonia solani 16,7 0 80,0 0 0 0 80,0

Fusarium spp. - 33,3 - 16,7 16,7 0 0

F. lateritium 833 0 0 0 100 0 0

F. sambucinum 0 0 60,0 0 80,0 0

F.avenaceum 0 16,7 0 16,7 0 0 0

F. solani 0 0 0 16,7 0 0 40,0

F.sporotrochiella 33,3 0 0 0 0 0 0

С destructans 0 0 40,0 40,0 16,7 90,0 80,0

Allernaria spp. 33,3 0 0 16,7 0 0 0

Phoma sp. 0 0 60,0 0 0 0 0

Thielaviopsis basicola 0 0 20,0 0 0 0 0

Verticillium sp. 0 0 0 33,3 0 0 0

Geotrichum candidum 0 0 0 0 83,3 0 0

Сеянцы плодовых культур могут поражаться почвенными микромицетами после

пересадки их в первое поле питомников. Этому способствуют механические повреждения корневой системы, наносимые при выкопке сеянцев. При неблагоприятных условиях выращивания (засуха, переувлажнение) раны на корневой системе сеянцев заселяются почвенными грибами, относящимися к раневым патогенам, которые вызывают гниль корней. Так, в 2007 г., во время жаркого засушливого лета, наблюдались интенсивные выпады сеянцев в первом поле питомника. Эти выпады сопровождались интенсивной корневой гнилью, с которой ассоциировались такие грибы, как Cylindrocarpon destructans, Fusarium sambucinum, F. solani и Rhizoctonia solani.

3.3.2. Корневые гнили подвоев и саженцев плодовых культур в питомнике. В плодовых питомниках ежегодно наблюдаются выпады саженцев, часть из которых нельзя объяснить поражением, например, грибами - возбудителями инфекционного усыхания.

Микологические анализы показали, что симптомы корневой гнили у клоновых подвоев и окулянтов яблони и сливы были связаны с заселением корней и базальной части саженцев почвенно-патогенным грибом Rhizoctonia solani, часто совместно с другими почвенными микромицетами, такими как Fusarium spp., Cylindrocarpon spp., Pythium spp., иногда Phytophthora spp. (табл. 8).

Таблица 8. Частота выделения почвенных микромицетов (%) из укорененных черенков сливы в теплице и после высадки в поле на доращивание

Виды микромицетов Пленочные теплицы Измайлово (подвои и сорта сливы в поле)

Загорье Измайлово

ОД-2-3 Новинка Скороплодная ОД-2-3 Новинка

Rhizoctonia solani 33,3 100 83,3 41,7 75,0

Fusarium spp. 25,0 66,7 22,2 8,3 33,3

F. sambucinum 50,0 100 11,1 0 33,3

F. sublunatum 0 0 5.0 26,0 16,6

F. aqueductum 0 0 0 0 8,3

F. gibbossum 0 0 0 0 8,3

Pythium spp. 8,3 0 0 8.3 0

P. mamillatum 41,7 0 0 0 0

Cylindrocarpon destructans 25,0 88,9 0 0 88,3

Alternaria tenuissima 25,0 22,2 16,6 25,0 83,3

Gliocladium spp. 33,3 66,7 5,0 8,3 8,3

Geotrichum candidum 0 0 11,1 16,6 8,3

Diplocladiella scalaroides 0 0 33,3 8,3 33,3

Subulispora sp. 41,7 55,5 16,6 8,3 16,6

Phomopsis mali 0 0 11,1 33,3 0

Pestalotia hartigii 0 0 11,1 16,6 0

Причиной корневых гнилей в первом поле плодового питомника часто бывает

заражение почвенными микромицетами клоновых подвоев еще на стадии укоренения их в теплице. Из приведенных данных (табл. 8) видно, что уже на стадии укоренения зеленых черенков сливы в условиях теплицы происходит их заражение почвенно-патогенным грибом R. solani, что в дальнейшем сказывается на приживаемости саженцев после высадки в открытый грунт.

Так в 2007 году выпады в 1-ом поле плодового питомника составили 10,5-58,9%. Причем наибольший процент выпадов (до 58,9%) приходился на клоновые подвои вишни, которые были получены при укоренении зеленых черенков в теплице.

3-33. Гнили зеленых черенков плодовых культур при их укоренении в теплице. Микологические исследования зеленых черенков плодовых и ягодных культур, пораженных микозными гнилями, показали, что наиболее часто встречающимся патогеном был гриб Rhizoctonia solani, который выделялся из некротизированных частей базальных частей с частотой встречаемости 80-100 %. Другой наиболее часто и постоянно

встречающейся группой грибов были виды из рода Fusarium, с преобладанием вида F. sambucinum. Встречаемость видов рода Pythium варьировала по годам от 5,5 до 57,1 %. Среди видов рода Pythium были идентифицированы три вида: P. mamillatum, Р. ultimum и Р. irreguläre, которые также ассоциировались с корневыми и прикорневыми гнилями саженцев и сеянцев плодовых культур.

В целом, наибольший ущерб при укоренении зеленых черенков в теплицах наносит гриб Rhizoctonia solani, вызывая гниль базальной части зеленых черенков и отмирание зоны корнеобразования.

ГЛАВА 4. Диагностика почвы и растений на зараженность микромицетами - возбудителями корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур, прогноз их развития

4.1. Метод плавающих биоприманок для диагностики почвы и корней растений на зараженность видов Phytophthora

В связи с тем, что в 1991 году нами была выявлена новая для России болезнь малины - фитофторозная корневая гниль, возбудитель Phytophthora fragariae var. rubi, возникла необходимость разработать доступные методы диагностики этого патогена в почве и в растениях.

В 1994 году был проведен ряд опытов по подбору приманок для диагностики Ph. fragariae var. rubi в почве и корнях растений. Наиболее подходящими для тестирования этого патогена в почве были листья и черешки листьев малины от микроразмноженных растений, адаптированных в теплице.

Для выделения этого патогена из корней малины было предложено в качестве приманок использовать черешки листьев малины, выращиваемой в условиях открытого грунта. Результаты опыта показали, что черешки листьев различных сортов отличались восприимчивостью к Ph. fragariae var. rubi. Максимальную некротизацию черешков листьев наблюдали у сортов Маросейка и Калашник, частота выделения патогена в этом случае достигала 70,0 и 55,5 %, соответственно. Наименее чувствительными к заражению этим патогеном были черешки листьев сортов Маллинг эксплайн и Норфолк Джайнт, которые проявляли некротизацию 0,12 и 0,15 %, соответственно, при низкой частоте выделения этого патогена. Следует отметить, что эти сорта по сообщениям зарубежных исследователей являются устойчивыми к фитофторозной гнили корней [Barritt et al., 1981; Duncan et al., 1993].

Результаты опытов 1997 г. по подбору наиболее селективной приманки для выделения Phytophthora fragariae var. rubi суммированы в таблице 9. Из представленных

данных видно, что лишь листья альпийской лесной земляники оказались совершенно

непригодными для выделения Phytophthorafragariae var. rubi из почвы.

Следует отметить, что средний коэффициент селективности у листьев малины

красной соответствовал 48,9 %, а у молодых листьев ежевики сорта Смугсен - 79,2 %

(наивысший коэффициент селективности из 8 испытанных биоприманок).

Таблица 9. Значения коэффициентов селективности (Кс) к Ph. fragariae var. rubi восьми типов биологических приманок

Вид биопрнманок Коэффициент селективности

18.02.97 12.02.97 9.04.97 Среднее по опытам

Малина красная 53,8* 50,0 42,8 48,9

Малина черная - 54,8 0 27,4

Малина душистая - 13,3 - 13,3

Ежевика Агавам 47,6 - - 47,6

Ежевика Смутсен - 87,5 71,0 79,2

Тайберри** 38,5 - - 38,5

Логанберри** 58,3 - 40,0 49,1

Земляника лесная (альпийская) - 0 0 0

Примечание: * - формула расчета коэффициента селективности: Кс= П0- Пгр х 100%,

П„

где П„ - общее число видов Phytophthora, Прр - число видов не относящиеся к Ph. fragariae var. rubi,

Нашими опытами также установлена возможность диагностирования Ph. fragariae var. rubi в почвенных образцах при лабораторных температурах от + 15 до +20°С и оптимуме + 17-18°С. Однако отобранные летом (в июле) образцы даже при оптимальных условиях тестирования в лаборатории не позволяют выявлять этого патогена. Его удавалось обнаружить в этих образцах лишь весной следующего года (марте, апреле) после продолжительного хранения в холодильнике при +5°С.

Из аналогичных методик по тестированию данного патогена в почве с помощью биоприманок известна методика Дж. М. Дункана [Duncan, Kennedy, 1993], но она требует больших материальных затрат и времени на диагностику. Так, если на диагностику Ph. fragariae var. rubi предложенными способами при благоприятных условиях уходит 4-6 дней, то по методике Дункана - 4-5 недель.

4.2. Метод зеленых черенков для диагностики почвенных микромицетов, возбудителей корневых гнилей плодовых и ягодных культур

Изучая микозные гнили зеленых черенков плодовых и ягодных культур, мы попытались использовать зеленые черенки, как модельные для диагностики почвенных микромицетов - возбудителей гнилей черенков, а также для определения риска возникновения гнилей.

Таблица 10. Гибель зеленых черенков косточковых культур от гнилей в теплице н процент некротизацни «модельных черенков» в тепличном субстрате перед посадкой (через 7-8 дней инкубации при 24-26°С)___

год Культура, сорт, подвой Гибель черенков в теплице, % Некротизация модельных черенков, % Наличие Rhizoctonia solani

1997 Вишня / подвой П-7 47,5 63,7 +++*

1997 Вишня / Владимирская 71,4 74,5 +++

1997 Вишня / Гриот Московский 77,8 68,5 +++

2001 Вишня / подвой Измайловский (ПН) 52,5 73,7 +++

2002 Вишня / подвой ПН* 60,0 69,1 +++

2002 Вишня / подвой ПН 0 7,7 -

2003 Вишня / подвой ПН 30,0 37,6 ++

2003 Вишня / подвой ПН* 15,0 17,5 +

2003 Вишня / подвой ПН 10,0 12,7 -

2003 Вишня / подвой ПН 85,0 75,5 +++

2003 Слива /подвой ЛЦ-52* 50,0 37,6 ++

2003 Слива /подвой ЛЦ-52 95,0 78,5 +++

2003 Слива /подвой ЛЦ-52 65,0 38,1 ++

2003 Слива /подвой ЛЦ-52 90,0 59,7 +++

2005 Слива/Скороспелка красная 50,0 72,0 +++

2005 Слива / Евразия 21 75,0 91,5 +++

2007 Слива/Евразия 21* 50,0 38,1 ++

2007 Слива / Евразия 21 63,2 51,1 +++

2007 Слива/Евразия 21 38,0 28,5 ++

Коэффициент корреляции (г) 0,823

Примечание *- укоренение проходило в разных теплицах

Из результатов опытов 1991-1992 гг. (табл. 10) видно, что выпады зеленых черенков напрямую были связаны некротизацни «модельных» черенков. В частности, статистический анализ данных показал прямую корреляционную зависимость между выпадами и скоростью некротизацни «модельных» черенков, при высоком коэффициенте корреляции (г = 0,823). Также была отмечена прямая корреляционная зависимость между выпадами укореняемых черенков и частотой выделения гриба Rhizoctonia solani из модельных черенков (г = 0,979).

4.3. Прогноз развития корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур

4.3.1. Регрессионный прогноз развития гнилей зеленых черенков при их укоренении в теплице

Для прогноза выпадов зеленых черенков при их укоренении в пленочных теплицах мы рассчитали уравнение регрессии, имеющее вид: У=5,30х-34,13 (1), где У - процент гибели зеленых черенков, л: - коэффициент некротизацни почвы, рассчитываемый по

некротизации «модельных» черенков золотистой смородины в тестируемой почве. В

таблице 11 приведены данные прогноза с помощью этого уравнения выпадов зеленых

черенков крыжовника, сливы, вишни и красной смородины и сравнение предсказанных

значений с фактическими показателями. В частности, из этих данных видно, что ошибка

прогноза не выходила за пределы 25 % от фактических значений выпадов.

Таблица 11. Регрессионный прогноз потерь зеленых черенков крыжовника при укоренении в теплице в зависимости от коэффициента (Кп) некротизации «модельных» черенков на почве (У=5,30х-34,13)

Культура Кп, % Выпады, % фактические Выпады, % теоретические Ошибка прогноза

Крыжовник * 19,8 90,0 70,8 -19,2

Смородина красная* 18,7 80,0 65,0 -15,0

Крыжовник** 23,2 87,0 88,9 1,9

Крыжовник** 23,0 78,0 87,8 9,2

Крыжовник** 10,0 7,5 18,9 11,4

Крыжовник** 14,8 27,5 44,3 16,8

Крыжовник** 3,8 2,5 -13,9 -12,4

Слива** 9,6 15,0 16,8 1,8

Слива** 18,4 72,5 63,4 -9,1

Крыжовник** 12,7 28,0 33,2 5,2

Вишня 13,2 45,0 35,8 -9,2

Крыжовник** 13,4 15,0 36,9 21,9

Суммарная ошибка 3,3

Средняя ошибка 0,3

Примечание: * - укоренялись одревесневшие черенки весной (март) в зимней теплице; ** - укоренение проходила одинаковых культур в разные годы.

Для упрощения процедуры диагностики и прогноза развития гнили зеленых

черенков в теплице вместо коэффициента некротизации почвы (Кп) мы применили

прямую оценку некротизации «модельных» черенков для расчета уравнения

регрессионного прогноза. Нами было рассчитано уравнение регрессионного прогноза для

косточковых культур имеющее вид: У=0,89х+7,48 (2), где х - общая некротизация

модельных черенков чубушника, У-прогнозируемая гибель черенков.

Для увеличения точности прогноза мы рассчитали отдельно формулу для

предсказаний для зеленых черенков:

- вишни У=1,02х-3,94 (В)

-сливы У=0,42х+41,99(С).

Расчеты по индивидуальным формулам показали, что в среднем ошибка по прогнозу для вишни была снижена почти в два раза, а для сливы поменяла знак с минуса на плюс, при уменьшении отклонений от фактических в 2 раза.

4.3.2. Регрессионный прогноз фитофторозной гнили корней малины

В ходе наших исследований установлено, что в условиях Московской области оомицет Phytophthora fragariae v. rubí проявляет периодичность в своей вредоносности в зависимости от погодных условий, преобладающих в вегетационный период. Результаты анализа показали, что отмечается высокая корреляционная зависимость (г=0,888) между индексом болезни и суммой осадков за апрель, май, июнь. Прогноз фитофторозной гнили осуществляли по введенному нами значению - индекс болезни (ИБ), который соответствует общепринятому термину - распространенность болезни, но в ИБ вводятся поправки на развитие болезни в текущий год учета.

Используя данные наблюдений за 17 лет, мы рассчитали два уравнения регрессионного прогноза, где в первом (У=0,56 х - 35,55} использовали в качестве независимой переменной х сумму осадков за 3 месяца (апрель, май, июнь), а во втором (У=9,94 х — 37,31) - х это коэффициент отношения суммы осадков за 3 месяца к максимальной среднемесячной температуре (К0/т). Анализ этих двух уравнений регрессионного прогноза показал, что по уравнению регрессии, где в качестве независимой переменной использовали сумму температур за 3 месяца, давал суммарную ошибку - 4,1 %, а среднюю -0,2%, что было на порядок ниже лучших регрессионных прогнозов по гнилям зеленых черенков.

Результатом исследований по диагностике и мониторингу явилось создание системы учетов и диагностики, корневых и прикорневых гнилей плодовых культур с использованием оптимальных сроков для учета болезней и проведения анализов. Данная система базируется в основном на разработанных нами методах диагностики с помощью биоприманок и предусматривает применение элементов прогноза для определения риска развития болезней вызываемых некоторыми почвенными патогенами.

ГЛАВА 5. Концепция изменения патогенеза почвенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в условиях агроценозов

Концепция изменения патогенеза почвенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в условиях агроценозов сформулирована следующим образом.

На патогенез почвенных микромицетов оказывают влияние три основных фактора: почвенно-климатический, биологический и антропогенный.

Влияние этих факторов может выражаться, как стимулирующем, так и лимитирующем воздействие на патогенез возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур.

Почвенно-климатический фактор является определяющим по своему влиянию на патогенез почвенных грибов и псевдогрибов, так как оказывает сильное влияние, как на структуры их популяции, так и на способность их изменчивости для преодоления устойчивости растения-хозяина.

Лимитирующая роль климатических условий может выражаться в виде «дробности» патогенеза или его периодичности, что ограничивает вредоносность большинства почвенно-патогенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в регионах с континентальным или с резко континентальным климатом.

Основными биологическими факторами являются - количественный и качественный состав популяции почвенно-патогенных микромицетов (плотность инокулюма и наличие вирулентных расс), состояние растения-хозяина (устойчивость или восприимчивость), антагонистическая активность почвы.

Антропогенные факторы, особенно при выращивании растений в искусственных условиях, могут быть определяющими для патогенеза некоторых почвенных микромицетов. Применение новых интенсивных технологий в садоводстве и ягодоводстве может усиливать патогенез почвенных грибов и псевдогрибов, которые ранее не имели значения для этих культур.

В условиях агроценозов, как правило, наблюдается взаимодействие факторов влияющих на патогенез почвенных микромицетов, которое может усиливать или снижать их способность к патогенезу. Изменение одного из взаимодействующих факторов может значительно изменять патогенез почвенных микромицетов, в ту или иную сторону.

Глава 6. Разработка приемов защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей

6.1. Борьба с гнилями зеленых черенков крыжовника при укоренении в пленочных теплицах

Результаты опытов по защите зеленых черенков крыжовника от гнилей базальной части показали, что при использовании в качестве предпосадочной обработки замачивание черенков с экспозицией 15 минут в 0,2 % водных суспензиях фунгицидов наиболее эффективным на зараженном субстрате был Фундазол 50 % с.п. Этот фунгицид снижал развитие базальной гнили на черенках в 2,4 раза, по сравнению с контролем.

В борьбе с гнилями черенков крыжовника был испытан такой прием, как профилактическое опрыскивание маточных черенков крыжовника системными фунгицидами Фундазол 50% с.п. и Спортак 45%к.э. (прохлораз) за две недели до заготовки черенков. Наиболее эффективно подавляло заселение черенков видами Fusarium опрыскивание 0,2% Фундазолом, что способствовало увеличению числа укоренившихся черенков крыжовника в 2 раза (табл. 12). Опрыскивание 0,2 % Спортаком

напротив увеличивало частоту выделения видов Fusarium до 100%, против 44,4% в контроле, что привело к ухудшению укореняемости черенков.

Таблица 12. Влияние фунгицидных обработок маточных кустов крыжовника сорта Русский и замачивания зеленых черенков в фунгицидах перед высадкой теплицу на приживаемость и корнеобразование

Тип обработки Приживаемость, % Средняя длина корней, см

Опрыскивание маточника Замачивание перед посадкой

Вода Вода 35,71 а 4,84

Вода Фундазол 0,2% 33,33 а 5,82

Вода Спортак 0,2% 60,0 b 8,86

Фундазол 0,2% Вода 71,43 bc 7,52

Спортак 0,2% Вода 40,0 а 4,40

Фундазол 0,2% Фундазол 0,2% 80,0 с 6,90

Спортак 0,2% Спортак 0,2% 72,73 Ьс 4,64

Для защиты зеленых черенков крыжовника сорта Колобок испытаны три штамма бактерии Pseudomonasßuorescens (№35, №163, №183). Данные штаммы испытывались по отдельности и в смеси. Результаты этого опыта показали, что все штаммы, при обработке черенков путем погружения их нижние части в бактериальный раствор с экспозицией 30 минут, были мало эффективны в борьбе с гнилью черенков. Повышение экспозиции до 60 минут повышало эффективность штаммов №35 и №163, приближая их по эффективности к Фундазолу.

Результаты опыта по применению препарата Симбионта 1 путем замачивания в нем зеленых черенков крыжовника на 30 минут совместно с 0,02 % C11SO4 или с 0,2 % Фундазолом несколько увеличивали укореняемость черенков (до 65,7 и 80,0 %, соответственно) и были на уровне эталонной обработки Фундазолом. Применение Симбионта 1 в тех же сочетаниях способом пропитки тепличного субстрата увеличивало эффективность препарата, который обеспечивал укоренение до 88,3 и 93,3 % черенков, против 61,6 % в контроле.

6.2. Борьба с гнилями зеленых черенков косточковых культур при их укоренении в пленочных теплицах.

В 2001 был проведен опыт по использованию биопрепаратов для защиты зелёных черенков вишни от почвенно-патогенных микромицетов. Наиболее эффективным было заблаговременное внесение гранул Кетомиума в пленочные пакеты с торфо-песчаным субстратом, которое в 2 раза снижало поражение зеленых черенков гнилями.

Влияние биологического препарата Агат 25 К на приживаемость и укореняемость зеленых черенков клонового подвоя вишни было не равнозначным и противоречивым, причём прослеживалась четкая тенденция снижения числа укоренных растений при повышении концентрации препарата с 0,01% до 0,05%. Пропитка почвенного субстрата

0,15 % водной суспензией фунгицида ТопсинМ 70% СП была более эффективной, чем замачивание черенков в этом препарате, и обеспечивала приживаемость 85 % черенков против 57,5 %, соответственно.

Второй опыт (2002 г.) заключался в обработке тепличных субстратов биопрепаратами (внесение перед высадкой черенков). В опыте использовались Агат 25 К - 1,0%, Кетомиум - 1,0%, Микофунгицид (на основе хламидоспор и мицелия Trichoderma viride) - 1,0 % и фунгицид Топсин М - 0,15 % (препарат-эталон). Применение биологических препаратов с черенками клонового подвоя Измайловский (ПН) в контейнерах было мало эффективным или заметно снижало выход подвоев со стандартной корневой системой, как в варианте с микофунгицидом - снижение до 30 %, так и в варианте с пониженной концентрацией агата (0,5 %). В варианте с черешневым подвоем Колт, который хуже укоренялся и образовывал крупные каллусы на базальтом срезе (от 1 до 5 см3), применение биопрепаратов заметно увеличивало выход подвоев с хорошо сформированной корневой системой. В частности, 1 % Агат увеличивал выход в 2 раза, также как и Кетомиум, а Микофунгицид в 2,8 раза.

В 2005 году был заложен опыт по испытанию двух налипателей, препятствующих смыву фунгицидов с базальной части, это 5% агар-агара и 50% водоэмульсионной краски при укоренении зеленых черенков сливы сорта Евразия 21. Для защиты черенков также применяли фунгициды Топсин М, Фундазол и Эупарен мульти. Укореняемость в опыте 2005 г. черенков в контрольном варианте составила 40 %, применение стимулятора ризогенеза - корневина (аналога ауксина) не способствовала увеличению укореняемости в среднем по всему опыту. Минимальная укореняемость наблюдалась при использовании в качестве налипателя агар-агара от 0 до 10,4 %. Применение водоэмульсионной краски обеспечивало укоренение у 65 % черенков сливы, это в 1,2-1,6 раза выше, чем в контрольных вариантах. Использование Фундазола и Эупарена мульти совместно с водоэмульсионной краской значительно снижало поражение коры черенков гнилями (в 1,8-2 раза) в зоне корнеобразования. Для контактного фунгицида Эупарен-мульти сохранение этого препарата с помощью водоэмульсионной краски (ВЭК) на черенках увеличило его эффективность в 2 - 6 раз, по сравнению с замачиванием черенков в водной суспензии фунгицида.

В 2007 году были продолжены исследования по применению налипателей для сохранения фунгицидов на базальной части зеленых черенков при их укоренении в теплице. В качестве налипателей испытывались водоэмульсионные краски: акриловая и латексная. Латексная краска заметно снижала эффективность Фундазола и Топсина М, по сравнению и акриловой краской. Особенно сильно такое снижение было заметно для

ТопсинаМ, так при использовании его с латексной краской приживаемость черенков составляла 28,6 % (19,0 % - с хорошо развитой корневой системой), а при использовании водной суспензии фунгицида 44 % (40 %, соответственно). В каждом варианте этого опыта с налипателями были свои наиболее эффективные фунгициды, В частности, при использовании латексной краски с Максимом укореняемость была 63,1 % (57,9 %) против 39,1 % (30,4 %) в контроле без обработок. Фундазол показал наибольшую эффективность в варианте с акриловой краской, укореняемость 91,7 % (87,5 %) против 39,1% (30,4 %) в контроле, а Ридомил голд оказался более эффективен в воде, без налипателей - 90,5 % (66,7 %) против 39,1 % (30,4 %).

По результаты своих исследований, мы пришли к выводу, что для полной защиты зеленых черенков от гнилей одной обработки бывает не достаточно, даже при использовании налипателей. Необходимо проводить 2-4 обработки фунгицидами во время укоренения и роста корней. Профилактические обработки также необходимы для борьбы с гнилями листьев, особенно серой гнилью, которая как показали наблюдения, представляет серьезную опасность, особенно в годы с влажным летом.

В 2008 году при проверке данного способа в производственных условиях, в тепличном комплексе ГУ ОС «Центральная» ВСТИСП, были включены дополнительные опрыскивания фунгицидами черенков, в период корнеобразования. Обработки проводились по следующей схеме: ВЭК + 0,2 % Фундазол (кратковременное погружение перед посадкой), 0,2 % фундазол (пропитка почвы через две недели); 2 - 0,15 % хорусом (опрыскивания против серой гнили с интервалом 14 дней) и пропитка почвы 0,2 % фундазолом через 20 дней (табл. 13).

Таблица 13. Влияние предлагаемого способа защиты на укореняемость зеленых черенков вишни и сливы при их укоренении в производственных условиях, в 2008 г.

Культура Сорт, подвой Укореняемость, %

средняя за 2 года до проведения испытания 2008 г.

Вишня Светлая 30,0 85,0

Владимирская 28,5 75,0

Подвой ПН 45,7 92,0

Ардатовская 25,7 75,0

Слива Скороспелка красная 37,8 87,5

Применение разработанной системы защиты зеленых черенков вишни и сливы увеличило их укореняемость в 2 - 2,5 раза, по сравнению с предыдущими годами, когда система защиты в полном объеме не проводилась. Рекомендованный способ защиты зеленых черенков от микозных гнилей способствовал повышению качества укорененных черенков в сравнении с данными, предшествующими началу испытания. В частности, у

сортов вишни Владимирская и Светлая выход саженцев первого сорта увеличился в 2,5 и 2,7 раза, а у клонового подвоя вишни Измайловский (ПН) - в 3 раза, а у сливы сорта Скороспелка красная - в 2,8 раз, соответственно.

6.3. Борьба с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых культур в первом поле питомника

Первый рекогносцировочный опыт по защите саженцев был заложен в производственных условиях в 2004 году. Была проведена предпосадочная обработка корней в глиняной болтушке, содержащей 0,2 % фундазола. Учеты, проведенные в 2005 году, показали, что в вариантах с обработкой таким способом значительно снизились выпады подвоев. Так, на клоновом подвое 54-118 выпады по сравнению с контролем сократились почти в 6 раз, а на подвоях 62-396 и ММ 106 в 3,6 и 5,3 раза, соответственно. На всех обработанных клоновых подвоях наблюдалось снижение в 2-2,5 раза числа растений с угнетением роста.

В 2006 году было расширен сортимент применяемых фунгицидов таким образом, чтобы они своим фунгицидным действием перекрывали большее количество видов почвенно-пагогенных микромицетов.

Обработка подвоев смесью фунгицидов (Фундазол + Ридомил Голд МЦ) обеспечивала приживаемость растений на 100 %, а биологическую эффективность борьбы с болезнями до 97,5 % (через месяц после обработки). Обработка одним фундазолом также была эффективна и обеспечивала приживаемость на уровне 99,2 %, а биологическую эффективность борьбы с болезнями до 92,6 % (табл. 14).

Обработка подвоев перед посадкой в первое поле питомника смесью фунгицидов обеспечивала приживаемость растений на 88,5 % (через полтора года после посадки), а приживаемость окулировок здесь, соответственно, составила 91,6%, в то время как сохранность подвоев в контроле была - 63,1 %, а приживаемость окулировок - 75,3 %. В сентябре 2007 года выход стандартных саженцев в варианте (Ридомил + Фундазол) составил 81,4 %, против варианта без обработки - 47,2 %.

Таблица 14. Эффективность применения предпосадочной обработки подвоев яблони и её влияние на приживаемость растений и их состояние (2006 г.)

Вариант Приживаемость % Пораженность в баллах Биологическая эффективность

Фундазол 0,2%+ глиняная болтушка 99,2 0,09 92,6

Фундазол 0,2%+ Ридомил Голд 0,2%+ глиняная болтушка 100,0 0,03 97,5

Контроль без обработки 89,7 1,21 -

6.4. Борьба с фитофторозными гнилями корней малины

Первый опыт по борьбе с этой болезнью был заложен в 1994 году в селекционных молодых посадках малины с естественным инфекционным фоном. Результаты опыта показали, что все фунгициды в той или иной мере снижали пораженность растений малины фитофторозной корневой гнилью (табл. 15).

Таблица 15. Эффективность пропитки почвы в рядах водными суспензиями фунгицидов в борьбе с корневой гнилью малины (1994)

Фунгицид Концентрация, % Средний балл поражения* Биологическая эффективность (%)

Гальбен 80% СП 0,1 1,22 55,63

0,2 1,42 48,36

Акробат МЦ 69% СП 0,1 1,02 62,91

0,2 0,97 64,73

Ридомил 25% СП 0,1 0,85 69,10

0,2 0,85 69,10

Сандофан М 67% СП 0,1 1Д5 54,54

0,2 1,55 43,63

Контроль - 2,75 -

Примечание: *- оценка по 5-ти бальной шкале (0 - растение внешне здорово, менее 20% корней некротизированы; 4 балл - растение погибло, 100 % корней загнило).

Наиболее эффективно снижал развитие болезни Ридомил 25 % СП (Б.Э. = 69,1%), причем увеличение концентрации рабочего раствора фунгицида с 0,1 % до 0,2 % не влияло на эффективность препарата. Вторым по эффективности был Акробат МЦ 69 % СП, который снижал развитие корневых гнилей в 2,7-2,8 раза, по сравнению с контролем. Фунгициды Сандофан М и Гальбен были менее эффективны (Б.Э.= 43,6 - 55,6 %), причем их эффективность несколько снижалась с увеличением концентрации.

В 1997 году опыт по оценке влияния микрорельефа участка на эффективность фунгицидов в борьбе с фитофторозными гнилями корней малины показал, что необработанные контрольные растения, росшие на делянках с повышенным микрорельефом, были в 2 раза менее поражены корневой гнилью, чем такие же растения в понижениях. На делянках обработанных Ридомилом и расположенных на повышении, средний бал поражения был всего 0,34, а на понижении - в два раза больше. Если на повышенных участках биологическая эффективность СандофанаМ была сравнима с таковой у Ридомила (64,2 % против 68,8 %), то на пониженных делянках эффективность

Сандофана М снижалась до 39,4 % против практически не изменившего своей эффективности Ридомила (БЭ = 66,5 %).

В 2000 году в полевых условиях испытали препарат на основе лактата хитозана -Агрохит. Предпосадочное 30-минутные погружения в 1 % (п.п.) Агрохит увеличивали рост растений малины примерно на 25 % в сравнении с контролем на возвышенном участке. На пониженном участке в варианте с Акробатом и в контроле произошло заметное ослабление роста растений малины (соответственно на 17 и 25 %). Это было связано с поражением корней растений фитофторовыми оомицетами, более активными во влажных условиях.

Таблица 16. Эффективность защитных мероприятий при посадке малины в борьбе с фитофторозной корневой гнилью (2004)

Виды грибов Частота выделения оомицетов из почвы, %

не обработанные обработанные

Киржач (старый) Патриция Калашник Таганка

РИуЮрЫНога /га^апае \ar.rubi 66,7 83,3 0 0

РЬ. тсоНапае уаг. 50,0 16,7 16,7 0

РЬуЮрИ&ога ¡р. 33,3 0 0 0

Рк сасюгит 16,7 11,1 0 16,7

РуМит ярр. 33,3 66,7 16,7 83,3

Средний балл поражения 236 3,52 0,26 0,17

Биологическая эффективность, % - - 92,6 95,2

В 2004 году было проведено производственное испытание защитных мероприятий

против фитофторозной гнили корней малины в производственных условиях. Результаты испытания показали, что обработка корней малины перед посадкой фунгицидом Ридомил Голд МЦ и летняя пропитка почвы в рядах Сандофаном М, практически предотвратила развитие болезни в условиях ее эпифитотии в этом году на необработанных участках. Развитие болезни было в 13,5-20,7 раза ниже, чем на сорте Патриция, который был оздоровлен, но высажен без обработки фунгицидами (табл. 16).

Глава 7. Методологические подходы к планированию и разработке защитных мероприятий в борьбе с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур

На основе результатов исследований были разработаны схемы защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей, которые основываются на учете уязвимых для почвенно-патогенных микромицетов фаз развития этих культур или этапов

выращивания. Наибольшее внимание, при разработке данных схем защиты, уделялось профилактическим обработкам.

Основное внимание в этих схемах защиты уделяется профилактическим мероприятиям при производстве посадочного материала плодовых и ягодных культур. Борьба с корневыми и прикорневыми гнилями на этапах размножения и выращивания посадочного материала снижает риск возникновения этих болезней на промышленных плантациях.

Для повышения эффективности предложенных схем защиты можно использовать разработанные нами относительно простые методы диагностики и регрессионного прогноза.

ГЛАВА 8. РАСЧЕТ ЭКОНОМИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ

8.1. Расчет экономической эффективности оригинального метода диагностики корней малины и прикорневой почвы на зараженность Phytophthora fragariae var. Rubi

Для расчета экономической эффективности предложенного нами метода диагностики возбудителя фитофторозной гнили корней малины сравнивали его с методом Дункана [Duncan, 1990], широко используемого до недавнего времени в Европе для тестирования патогена Phytophthora fragariae var. rubi.

Таблица 17. Материальные затраты на тестирование одного почвенного образца на зараженность Phytophthora fragariae var. rubi, руб.

Статья расхода Оригинальный метод Метод Дункана

Электроэнергия 4,2 31,1

Отопление 5,3 39,2

Водоснабжение 3,5 25,9

Амортизация оборудования 8,3 16,6

Амортизация помещения 1,2 27,3

Зарплата с начислениями 102,3 433,1

Расходные материалы 31,9 90,1

Сумма прямых затрат 155,7 663,3

Общепроизводственные 141,9 475,2

затраты

Себестоимость теста 297,6 1138,5

Из данных расчета (табл. 17) видно, что материальные затраты на проведение диагностики одного почвенного образца оригинальным методом, по сравнению с методом Дункана, в 3,8 раза меньше. Так, себестоимость диагностики одного образца почвы или растения нашим методом составят 297,6 руб., а аналогичным методом диагностики по Дункану увеличивается до 1138,5 руб. Тем не менее, при одновременном тестировании

предлагаемым методом десяти и более образцов себестоимость теста одного образца снижается еще в 1,5-2 раза.

8.2. Экономическая эффективность предлагаемого способа защиты укореняемых зеленых черенков от микозных гнилей, при получении подвоев косточковых культур в сравнении со стандартным

Таблица 18. Экономическая эффективность предлагаемого способа защиты укореняемых зеленых черенков от микозных гнилей, при получении подвоев косточковых культур в сравнении со стандартным

Показатели Единица измерения Предлагаемый метод защиты Практикуемый метод зашиты

Выход стандартных подвоев (на 50 м2) шт. 14585 6035

Стоимость 1 подвоя руб. 25 25

Стоимость полученных подвоев руб. 364625 150875

НДС 18% руб. 65632,5 27157,5

Сумма полученная от реализации саженцев с учетом НДС руб. 298993,5 123718,5

Расходы на производство подвоев

Электроэнергия руб. 6751,5 6751,5

Водоснабжение руб. 4580 4580

Амортизация оборудования, текущий ремонт руб. 3519,5 3519,5

Ядохимикаты (кг, руб.) руб. 6249,5 10170,3

Зарплата с начислениями руб. 33120,3 30109,7

Расходные материалы руб. 1130,5 790,5

Сумма прямых затрат руб. 55353,3 50922,5

Общепроизводственные затраты руб. 47050,3 43284,1

Всего затрат руб. 102403,6 99206,6

Себестоимость 1 подвоя руб. 7,0 16,4

Прибыль руб. 178589,9 29511,9

Рентабельность % 174,4 29,7

Применение разработанного нами метода защиты зеленых черенков плодовых и

ягодных культур при их укоренении в теплице от микозных гнилей также дает значительный экономический эффект. Это достигается тем, что при использовании данного метода происходит увеличение укореняемосги зеленых черенков в 2 раза, также происходит увеличение выхода стандартных подвоев в 1,5 - 3 раза, в зависимости от типа и формы подвоя (табл. 18).

В отличие от стандартного способа защиты, где использовалась предпосадочная пропитка почвы фунгицидами широкого спектра действия, предлагаемый способ

предусматривает применение в качестве напипатедя для фунгицида водоэмульсионной акриловой краски, что продлевает период защитного действия в два раза. Предлагаемый способ также снижает расход фунгицида в 2 раза, что дает снижение материальных затрат на фунгициды, а также снижает пестицидную нагрузку на окружающую среду.

Сравнивая разработанный метод защиты укореняемых зеленых черенков косточковых культур в теплице, с ранее используемым, установлено, что предлагаемый метод обеспечивает рентабельность 174,4 %, против 29,7% при традиционном (табл. 18).

ОБЩИЕ ВЫВОДЫ

1. Установлено, что в настоящее время на Европейской части России из всех изученных почвенных патогенов для земляники наибольшую опасность представляют такие виды, как Phytophthora cactorum и Rhizoctonia solani, а также комплекс почвенных микромицетов (Cylindrocarpon destructans, Pylhium spp., Fusarium spp. и др.), вызывающий черную корневую гниль земляники садовой.

2. Отмечено снижение вредоносности фитофторозной гнили рожков земляники (возб. Ph. cactorum), связанное со сменой сортамента земляники, в ходе которой восприимчивые сорта постепенно заменялись устойчивыми.

3. Установлено, что в последние годы, в условиях открытого грунта, повысилась вредоносность ризоктониозной корневой и прикорневой гнили (возб. Rhizoctonia solani) на землянике и на плодовых культурах в питомнике.

4. Выявлена новая для России и вредоносная болезнь малины - фитофторозная корневая гниль (возб. Phytophthora fragariae var. Rubi,), установлено влияние на ее распространение и вредоносность погодных условий и некоторых агротехнических приемов, характерных для средней полосы России. Разработаны методы диагностики корней малины и прикорневой почвы на зараженность возбудителем фитофторозной корневой гнили Ph. fragariae var. rubi, с помощью плавающих приманок - листьев и черешков листьев малины красной, отличающиеся своей простотой и доступностью, наличие патогена устанавливается в 8-9 раз быстрее, по сравнению с аналогичным зарубежным методом. Рассчитаны две регрессионные модели прогноза развития фитофторозной гнили корней малины в зависимости от суммы осадков за три месяца (апрель, май, июнь) и коэффициента отношения суммы осадков к максимальной средней температуре, которые позволяют с точностью 82,4 % и 88,2 %, прогнозировать развитие болезни в текущем году.

5. Впервые для условий России выявлен комплекс оомицетов (Phytophthora nicotianae, Ph. citricola, Ph. cactorum, Ph. sp.), встречающийся в том или ином видовом

соотношении в насаждениях малины красной в средней полосе России и Кабардино-Балкарии. Было выявлено, что непродолжительное затопление участка может усиливать патогенносгь «сопутствующих» видов Phytophthora, которые в этих случаях могут вызывать развитие сильной корневой гнили.

6. Полегание сеянцев плодовых культур в разных условиях выращивания вызывали такие виды, как Pythium spp., Ph. caclorum, R. solani, Fusarium spp. Виды R. solani и Fusarium spp. (F. avenaceum, F. lateritium) вызывали сильные корневые гнили сеянцев в условиях теплицы, а оомицеты Pythium spp., Ph. cactorum в условиях открытого грунта.

7. Установлено, что гриб Rhizoctonia solani является основным и наиболее агрессивным патогеном для зеленых черенков плодовых и ягодных культур, укореняемых в теплице. Заражение зеленых черенков в период укоренения этим патогеном и другими микромицетами - возбудителями прикорневых гнилей сказывается на качестве посадочного материала, отрицательно влияет на их приживаемость при доращивание в открытом и защищенном грунте.

8. Разработан метод «модельных» зеленых черенков для диагностики почвы на зараженность комплексом микромицетов - возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур. С его помощью разработана методика оценки риска возникновения корневых и прикорневых гнилей, а также рассчитаны регрессионные уравнения прогноза развития гнилей зеленых черенков плодовых и ягодных культур в период их укоренении в теплице.

9. Результатом исследований явилось создание системы учетов и диагностики корневых и прикорневых гнилей плодовых культур с использованием оптимальных сроков учета болезней и проведения анализов. Данная система базируется в основном на разработанных нами методах диагностики с помощью биоприманок и предусматривает применение элементов прогноза для определения риска возникновения и развития болезней, вызываемых некоторыми почвенными патогенами.

10. Разработана концепция изменения патогенеза почвенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в условиях агроценозов, в которой оценивается влияние трех основных факторов (почвенно-климатического, биологического и антропогенного) и их взаимодействие, на изменение патогенеза возбудителей корневых гнилей. В данной концепции также рассматривается регулирование факторов, влияющих на патогенез почвенных микромицетов, которое является основным элементом при разработке защитных мероприятий с возбудителями корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур.

11. Использование системных фунгицидов широкого спектра действия, таких как Фундазол 50 % СП и Топсин М 70% СП, для предпосадочной обработки зеленых черенков и пропитки тепличного субстрата, снижает поражение черенков гнилями в 1,5-2 раза и увеличивает их укореняемость в 1,5-1,7 раза. Использование водоэмульсионной акриловой краски (ВЭК), как налипателя, для обработки черенков совместно с фунгицидом увеличивает эффективность системных фунгицидов в 1,5 - 3 раза, а контактных в 2-6 раз, по сравнению со стандартной предпосадочной обработкой черенков водной суспензией этих фунгицидов.

12. Установлено, что применение предпосадочной обработки корней клоновых подвоев яблони глиняной болтушкой с фунгицидами (0,2 % Ридомил Голд МЦ + 0,2 % Фундазол) в обычные годы в 1,5 раза снижало количество выпадов в 1 поле питомника и в 1,5-2 раза увеличивала выход стандартных саженцев.

13. Фунгициды Ридомил 25 % СП, Акробат 67 % СП, Ридомил Голд МЦ снижали развитие фитофторозных корневых гнилей малины красной в 2-3 раза. Для защиты оздоровленного посадочного материала малины от фитофторозной корневой гнили в год эпифитотии было достаточно двух обработок фунгицидами (предпосадочной обработки растений и пропитки почвы в рядах в июне).

14. Разработанные схемы защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей основываются на учете уязвимых для почвенно-патогенных грибов фаз развития этих культур или этапах выращивания. Основное внимание в схемах защиты уделяется профилактическим мероприятиям при производстве посадочного материала плодовых и ягодных культур. Борьба с корневыми и прикорневыми гнилями на всех этапах производства посадочного материала снижает риск распространения этих болезней на промышленных плантациях.

Предложения производству

1. На основе полученных результатов разработаны и внедрены в производство четыре методических указания:

1.1. Методические указания «Усовершенствованная система фитосанитарии в питомниководстве» (Москва, 2001)

1.2. Методические указания «Методические указания по диагностике и учету болезней корней и стеблей земляники и малины, передающихся через почву» (Москва, 2001)

1.3. Методические указания «Комплексная система защитных мероприятий в насаждениях яблони в Нечерноземной зоне РФ» (Москва, 2006).

1.4. Методические указания по долгосрочному прогнозу снижения численности вредных организмов в садах (Москва, 2006).

2. Диагностировать наличие в прикорневой почве и корнях малины карантинного объекта оомицета Phytophthora fragariae var. rubí, а также других видов Phytophthora на малине с помощью разработанных нами методов биоприманок, с использованием молодых листьев и черешков листьев малины красной.

3. Использовать для прогноза интенсивности развития фитофторозных корневых гнилей малины в условиях средней полосы России формулу регрессионного прогноза (У=9,94 х - 37,31), где х - отношение суммы осадков за апрель, май и июнь к максимальной средней температуре в июне.

4. Для диагностики пригодности тепличных субстратов для укоренения в них зеленых черенков плодовых и ягодных культур использовать метод «Модельных черенков». Для прогноза риска возникновения гнилей черенков крыжовника, вишни и сливы на основе предлагаемого метода использовать формулы регрессионного прогноза: У=5,30х-34,13, рассчитываемую по коэффициенту некротизации модельных черенков, или формулу: У=0,89х+7,48 - упрощенную, рассчитываемую по общей некротизации.

5. Для защиты зеленых черенков плодовых и ягодных культур в период укоренения в теплице, от микозных гнилей проводить следующие защитные мероприятия:

а) профилактическую обработку 0,1% Фундазолом 50% СП за 2 недели до заготовки черенков;

б) перед посадкой обрабатывать нижнюю часть черенков 50% водным раствором акриловой водоэмульсионной краски, содержащей фунгицид: 0,2 % Фундазол или 0,15 % Топсин М, или 0,3 % Эупарен мульти 50 % ВДГ;

в) в условиях жаркого лета и нагреве тепличного субстрата выше 25°С на старых грунтах проводить пролив черенков и субстрата 0,2% фундазолом или 0,15 % Топсином М через 2-3 недели после посадки черенков на укоренение;

г) при пасмурной и прохладной погоде во время укоренения для борьбы с серой гнилью проводить опрыскивание 0,2 % Эупареном мульти или 0,3 % Хорусом 75 % ВДГ, в случае установления таких погодных условий более двух декад, обработку повторить через 7-10 дней.

6. Для снижения риска развития корневых гнилей в первом поле плодового питомника необходимо обрабатывать корни высаживаемых подвоев глиняной болтушкой, содержащей смесь фунгицидов: 0,2 % Ридомил Голд МЦ + 0,2 % Фундазол. В годы с экстремальными погодными условиями (очень влажное или засушливое лето) проводить

дополнительные обработки путем полива фунгицидами прикорневой почвы в рядах с нормой расхода рабочего раствора 2000-2500 л/га. В год с сухим летом для дополнительной обработки использовать 0,2 % Фундазол или 0,15 % Топсин М, а в сезон с избыточным увлажнением - 0,2 % Ридомил Голд МЦ.

7. При разработке защитных мероприятий для борьбы с корневыми и прикорневыми гнилями в питомниках и маточниках, а также молодых промышленных насаждениях (не вступивших в пору плодоношения) плодовых и ягодных культур взять за основу разработанные схемы зашиты, с учетом особенностей данного региона.

Список публикаций по теме диссертации

1. Головин С.Е. Пути распространения фитофторозной гнили рожков и борьбы с ней на маточниках земляники // сб. науч. тр. ВНИИС им. И.В. Мичурина, Мичуринск, 1990.-С. 195-196.

2. Головин С.Е. Предупреждение загнивания черенков черной смородины // Садоводство и виноградарство, 1991. №4.-С. 20-21.

3. Головин С.Е. Основные виды почвенных грибов, связанные с гнилью зеленых черенков плодовых и ягодных культур, и методы их диагностики // Плодоводство и ягодоводство России. - М., 1994. -Т. 1., С. 118-123.

4. Головин С.Е., Павлова Н.Ю. Использование системных фунгицидов для борьбы с гнилями зеленых черенков крыжовника при окоренении в пленочных теплицах //Сб. конф. Актуальные проблемы развития питомниководства и науч. обеспечение отрасли. Тез. докл., ВСТИСП. - М., 1993.-С. 42-44.

5. Головин С.Е., Метлицкий О.З. Влияние фитопатогенных грибов на развитие гнилей черенков смородины и крыжовника // Вест. Российской академии с./х. наук. 1993. №5. С. 31-34.

6. Головин С.Е., Павлова Н.Ю. Влияние фунгицидов на укореняемость зеленых черенков крыжовника // Рабочее совещание: «Регуляторы роста и развития растений». - Тез. докл. ТСХА, М., 1992.-С. 118.

7. Головин С.Е. Корневые гнили малины в питомниках, причины возникновения и борьба с ними // Ягодоводство в Нечерноземье - тр. ВСТИСП, М., 1993. - С. 30-38.

8. Головин С.Е., Павлова Н.Ю. Защита зеленых черенков крыжовника от гнилей при их укоренении в пленочных теплицах с использованием искусственного тумана // ж. Садоводство и виноградарство. - №5(6), 1994. - С. 12-13.

9. Метлицкий О.З., Белозёрова Г.С., Головин С.Е. Пути использования биоиндикаторов при диагностике здоровья почв // Тез. докл. координационного совещания: «Контроль фитосанитарного состояния с/х культур». - М., 1994.-С.41-42

10. Головин С.Е. Фитофтороз малины - новая опасная болезнь для маточников и промышленных плантаций России // Паразитарное загрязнение мегаполиса Москвы - Тез. док. научно-практическое совещание, М., 1994. - С. 14.

11. Павлова Н.Ю., Белозёрова Г.С., Павлова А.Ю., Головин С.Е. Применение препарата Симбионт-1 в плодовом питомнике// Тез. докл. III межд. конф. Регуляторы роста и развития растений, М., 1995.-С. 172-173.

12. Головин С.Е. Фитофтороз малины - новая опасная болезнь в маточниках и промышленных плантациях России // Тез. докл. Всеросс. совещание: «Молодые ученые садоводству России». - М., ВСТИСП, 1995. - С. 222 - 225.

13. Головин С.Е. Фитофторозная гниль корней малины, причины возникновения, диагностика и меры борьбы // Сб. научн. тр. ВСТИСП. «Плодоводство и ягодоводство России". - М. - 1995, Т.2. - С. 203-209.

14. Метлицкий О.З., Головин С.Е. Фитофтороз красной малины в России // Тез. докл. Все-росс. съезда по защите растений «Защита растений в условиях реформирования агропромышленного комплекса»,- СПб.- 1995,- С. 65.

15. Головин С.Е. Основные виды почвенных грибов, вызывающих гибель сеянцев семечковых и косточковых культур в условиях открытого и защищенного грунта// Сб. научн. тр. ВСТИСП. Плодоводство и ягодоводство России. - М. - 1996, Т.З. -С. 188-192.

16. Головин С.Е. Комплекс фитофторовых грибов на малине, особенности диагностики // Сб. научн. тр. ВСТИСП - Плодоводство и ягодоводство России. -М. - 1997, Т.4. - С. 172-179.

17. Головин С.Е. Корневые гнили ягодных культур // Ж. Защита и карантин растений, М„ 1998, №7. - С.34-35.

18. Метлицкий О.З., Головин С.Е. Фитофтороз на малине // Ж. Защита и карантин растений, 1996, №11 - С. 46-47

19. Головин С.Е. Фитофторозная гниль корней малины в России и ее диагностика // Актуальные вопросы теории и практики защиты плодовых и ягодных культур от вредных организмов в условиях многоукладного сельскохозяйственного производства // Тез. докл. Всеросс. совещание - М., ВСТИСП. - 1998. - С. 346 -349.

20. Головин С.Е., Павлова А.Ю. Млечный блеск в питомниках и маточниках косточковых культур, его распространение с посадочным материалом и влияние на укореняемость зеленых черенков вишни //тр. ВСТИСП - «Плодоводство и ягодоводство России», 1998; Т.5, - С. 158-164

21. Головин С.Е. Интродукция новых патогенных расс фитофторовых грибов с посадочным материалом // тез. конф. - Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями, М., 1999. С. 19-18.

22. Головин С.Е. Проблемы распознавания фитофторовых грибов на ягодных, декоративных и цветочных культурах и разработка способов их диагностики П Сб. научн. тр. ВСТИСП - «Плодоводство и ягодоводство России». - М. - 1999. - Т.6. -С. 197-204.

23. Головин С.Е. Почвенная микофлора как ограничивающий фактор размножения и выращивания плодовых и ягодных культур // Сб. научн. тр. ВСТИСП -«Плодоводство и ягодоводство России». - М. - 2000. - Т.7. - С. 205-215.

24. Кашин В.И., Дроздовский Э.М., Головин С.Е., Романченко Т.И., Белозёрова Г.С., Наумова Л.В., Артюхов В.Ф., Корнацкая Г.А., Аристов А.Н., Булыгина Л.В //Справочник-определитель вредителей и болезней плодовых культур. - ВСТИСП. -М,-2000.-316 с.

25. Головин С.Е. Методические указания по диагностике и учйту болезней корней и стеблей земляники и малины, передающихся через почву // ВСТИСП. М,- 2001. -43 с.

26. Метлицкий О.З., Аристов А.Н., Головин С.Е.,. Метлицкая К.В, Романченко Т.И., Зейналов A.C., Наумова Л.В. Усовершенствованная система фитосанитарии в питомниководстве // М,- ВСТИСП.- 2001.-154 с.

27. Головин С.Е. Причины вспышки фитофтороза корней малины в Подмосковье в 2001 году // Сб. научн. тр. ВСТИСП - «Плодоводство и ягодоводство России». -М. -2002. -Т.9. - С. 334-342.

28. Головин С.Е., Дроздовский Э.М., Белозерова Г.С., Романченко Т.И., Корнацкая Г.А., Наумова Л.В. Методические указания по долгосрочному прогнозу снижения численности вредных организмов в садах // ВСТИСП. - М. - 2006. - 104 с.

29. Головин С.Е., Романченко Т.И. Корневые гнили плодовых культур в питомнике, вредоносность и распространенность // Сб. науч. тр. ВСТИСП,- «Плодоводство и ягодоводство России». -2004. -T.l 1. - С. 376-389.

30. Дроздовский Э.М., Белозерова Г.С., Романченко Т.И., Головин С.Е., Наумова Л.В. Повышение эффективности защиты садов и ягодников от вредителей и

болезней в Нечерноземье (Семечковые сады) // Ж. Садоводство и виноградарство. -2005.№ 5. -С.15-18.

31. Дроздовский Э.М., Белозерова Г.С., Романченко Т.Н., Головин С.Е. Комплексная система защитных мероприятий в насаждениях яблони в Нечерноземной зоне РФ (Методические указания) //ВСТИСП. - М. -2006. - 115 с.

32. Головин С.Е. Фитосанитарные проблемы питомниководства России спустя столетие после первых питомников И.В. Мичурина // Тр. ВСТИСП -«Плодоводство и ягодоводство России», T. XIII, 2005. - С. 110-114.

33. Головин С.Е., Павлова А.Ю., Джура Н.Ю. Защита зелёных черенков сливы при укоренении в теплице с использованием фунгицидов и налипателей // Материалы 2-ого Всероссийского Съезда по защите растений "Фитосанитарное оздоровление агроэкосистем" 5-10декабря 2005 г. Санкт-Петербург. С-П6.-2005. -Т.2.-С.271-273.

34. Головин С.Е. Методические подходы к фитосанитарной диагностики почвы на наличие фитопатогенных грибов и риска возникновения заболеваний растений // тр. ВСТИСП - «Плодоводство и ягодоводство России», Т. 14,2005. - С. 101-104.

35. Белозерова Г.С., Романченко Т.И., Головин С.Е. Микозное усыхание в питомниках - причины возникновения и пути снижения вредоносности, возможности реализации биологического потенциала сада // Тез конф. Сб. «Методические аспекты создания прецизионных технологий возделывания плодовых культур и винограда» - Краснодар. - 2006. - С. 315-318.

36. Головин С.Е., Романченко Т.И. Фитосанитарные проблемы в питомниках плодовых культур // Тез. Конф. В сб. тр. ГНУ ВСТИСП - «Плодоводство и ягодоводство России» Т. 18, M., 2008.-С. 73-79.

37. Метлицкий О.З., Головин С.Е., Холод H.A., Ундрицова И.А. Антракноз садовой земляники // Ж. «Arpo XXI век». М. - 2007. - №4-6. - С. 40-41.

38. Метлицкий О.З., Головин С.Е., Зейнапов A.C., Метлицкая К.В., Ундрицова И.А. Биологическое загрязнение экосистем насаждений ягодных культур // М.-РАСХН, ВСТИСП. 2007.-68 с.

39. Метлицкий О.З., Головин С.Е., Зейнапов A.C., Метлицкая К.В., Ундрицова И.А. Защита ягодников // Ж. «Садоводство и виноградарство».-2005.- № 5.-С. 20-22.

40. Александров И.Н., Головин С.Е. Фитофторозная корневая гниль малины // Защита и карантин растений, №7,2007. С. 32-34.

41. Головин С.Е., Романченко Т.И. Проблемы защиты косточковых культур при производстве корнесобственного посадочного материала // Сб. тр. ГНУ ВСТИСП, -«Плодоводство и ягодоводство России» М. 2008. - Т. 20. С.47-54.

42. Головин С.Е. Возрастание вредоносности ризоктониоза земляники в средней полосе России // Сб. тр. ВСТИСП - «Плодоводство и ягодоводство России» Т.22, Ч.1,М. 2009. - С. 250-260.

43. Головин С.Е. Регрессионный прогноз фитофторозной гнили корней малины // Сб. тр. ВСТИСП, «Плодоводство и ягодоводство России» Т. 22, Ч. 1., М. 2009. -С.261-269.

44. Головин С.Е., Алхасов Э.Б. Метод микологической оценки субстратов для выращивания черенков плодовых культур /Яез. конф. «Методы изучения продукционного процесса растений и фитоценозов», Нальчик, 2009. - С. 57-59.

45. Куликов И.М., Борисова A.A., Метлицкий О.З., Грачйва Т.А., Упадышев М.Т., Головин С.Е., Мельникова H.H., Романченко Т.И., Зейналов A.C. Производство и сертификация посадочного материала ягодных культур и винограда в России. Контроль качества. (Методические указания). Часть 1. Ягодные культуры (издание второе, дополненное) // ФГУ «Российский сельскохозяйственный центр). - Москва -2009.-164 с.

46. Головин С.Е. Корневые и прикорневые гнили ягодных и плодовых культур, их диагностика (монография) // ГНУ ВСТИСП. - М.: ООО НИЦ «Инженер», 2010. -306 с.

47. Головин С.Е., Алхасов Э.Б. Регрессионный прогноз развития гнилей зеленых черенков при их укоренении в теплице // Сб. тр. ВСТИСП - «Плодоводство и ягодоводство России». - М., 2010. - Т 24., Ч. 2. - С. 302-310.

Подписано в печать:

06.10.2010

Заказ № 4230 Тираж - 100 экз. Печать трафаретная. Типография «11-й ФОРМАТ» ИНН 7726330900 115230, Москва, Варшавское ш., 36 (499) 788-78-56 vvvvw.autoreferat.ru

Содержание диссертации, доктора сельскохозяйственных наук, Головин, Сергей Евгеньевич

Введение

Глава 1. Состояние изученности микозов корней и корневой части плодовых и ягодных культур

1.1. Основные корневые и прикорневые гнили ягодных культур

1.2. Основные корневые и прикорневые гнили плодовых культур

1.3. Методы диагностики и прогноза риска поражения почвенными -патогенными микромицетами

1.4. Способы защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей

Глава 2. Условия проведения эксперимента

2.1. Цель и задачи исследований

2.1.1. Предмет исследований

2.1.2. Объект исследований

2.1.3. Новизна исследований

2.1.4. Актуальность исследований

2.2. Место и время проведения экспериментов

2.3. Агроклиматические условия

2.4. Методы полевых исследований

2.5. Выделение фитопатогенных микромицетов из растений и почвы, и их идентификация

2.6. Оценка эффективности способов борьбы с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур

Глава 3. Анализ видового состава, распространенности и вредоносности микромицетов, связанных с поражением корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур

3.1. Видовой состав микромицетов, связанных с корневыми,и прикорневыми гнилями земляники садовой, их распространенность и вредоносность

3.1.1. Симптомы проявления корневых и прикорневых гнилей земляники и микромицеты ассоциирующиеся с ними

3.1.2. Корневые гнили земляники

3.1.3. Пути распространения возбудителей корневых и прикорневых гнилей земляники

3.2. Видовой состав микромицетов, ассоциирующийся с корневыми гнилями малины красной, их распространенность и вредоносность

3.2.1. Фитофторозная гниль корней малины красной

3.2.2. Фитофторозные гнили корней малины

3.2.3. Тесты на патогенность видов РНу^рШкога на сеянцах малины

3.3. Видовой состав почвенных микромицетов, ассоциирующийся с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых культур, распространенность и вредоносность 125 3.3.1. Корневые и прикорневые гнили сеянцев плодовых культур

3.3.2. Корневые гнили подвоев и саженцев плодовых культур в питомнике

3.3.3. Гнили зеленых черенков плодовых культур при их укоренении в теплице

3.3.4. Корневые и прикорневые гнили саженцев плодовых культур при их доращивание в теплицах

3.4. Обсуждение результатов исследований

3.4.1. Корневые и прикорневые гнили земляники и малины

3.4.2. Корневые и прикорневые гнили плодовых культур

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Корневые и прикорневые гнили плодовых и ягодных культур, диагностика и меры борьбы"

Согласно данным ФАО по потреблению и производству таких жизненно важных продуктов как плоды и ягоды, Российская Федерация заметно отстает от среднемирового уровня. Экономические и политические реформы 90-х годов прошлого века привели к значительному сокращению площадей, используемых для промышленного садоводства. Следует отметить, что и оставшиеся промышленные садовые насаждения значительно уступают по продуктивности аналогичным насаждениям большинства Европейских стран.

Решение этой проблемы Российского садоводства лежит во всемерной интенсификации производства на основе внедрения современных технологий, что требует закладки новых насаждений чистосортным посадочным материалом, свободным от комплекса наиболее опасных возбудителей болезней и вредителей.

Такой материал можно эффективно производить только в специализированных питомниках, закладываемых на специально подготовленных, искусственно орошаемых землях, часто с использованием защищенного или полузащищенного грунта, где возможность плодосмена крайне ограничена. Кроме того, при интродукции новых и перспективных сортов возможен занос целого ряда вредных, трудно искореняемых организмов, в частности грибов-возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных растений [Метлицкий и др., 2001; Maas, 2004]. Эти патогены становятся не только причиной снижения качества и выхода выращиваемого посадочного материала, но и, распространяясь с ним, часто в латентной форме, резко снижают продуктивность и долговечность садовых насаждений.

Степень проявления корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных растений зависит от почвенно-климатических и агротехнических факторов, уровня обеднения почвенной агроэкосистемы, а также взаимодействия и сукцессии видов различных патогенов. Успех в борьбе с ними зависит, прежде всего, от обеспечения на должном уровне профилактических мероприятий, основанных на своевременной и точной диагностике заражения растений и почвы. Это обуславливает необходимость изучения всего комплекса грибных патогенов в конкретных условиях с использованием надежных и доступных для широкого использования методов обнаружения патогенов [Baker, 1984; Molot, Nourrisseau, 1978; Harris, Stickeis, 1981; D'Ercole, 1986; Duncan et al., 1987; Метлицкий и др., 2001; Maas, 2004].

В России до настоящего времени корневые и прикорневые гнили плодовых и ягодных культур являлись наименее исследованными болезнями. Это было связано со сложностью их идентификации, отсутствием простых и надежных методов диагностики. К началу наших исследований были крайне не полно разработаны методы профилактики и защиты в питомниководстве и в промышленных насаждениях плодовых и ягодных культур. Также не было определено значение отдельных возбудителей корневых и прикорневых гнилей для ряда культур, особенно для плодовых. Осложнение фитосанитарной обстановки в садоводстве России в последние 10-15 лет выявило ряд проблем, в том числе связанных с почвенно-патогенными грибами, которые ранее не имели существенного значения.

Заключение Диссертация по теме "Плодоводство, виноградарство", Головин, Сергей Евгеньевич

ОБЩИЕ ВЫВОДЫ

1. Установлено, что в настоящее время на Европейской части России из всех изученных почвенных патогенов для земляники наибольшую опасность представляют такие виды, как Phytophthora cactorum и Rhizoctonia solani, а также комплекс почвенных микромицетов {Cylindrocarpon destructans, Pythium spp., Fusarium spp. и др.), вызывающий черную корневую гниль земляники садовой.

2. Отмечено снижение вредоносности фитофторозной гнили рожков земляники (возб. Ph. cactorum), связанное со сменой сортимента земляники, в ходе которой восприимчивые сорта постепенно заменялись на устойчивые.

3. Установлено, что в последние годы, в условиях открытого грунта, повысилась вредоносность ризоктониозной корневой и прикорневой гнили (возб. Rhizoctonia solani) на землянике и на плодовых культурах в питомнике.

4. Выявлена новая для России и вредоносная болезнь малины -фитофторозная корневая гниль (возб. Phytophthora fragariae var. rubi), установлено влияние на её распространение и вредоносность погодных условий и некоторых агротехнических приемов, характерных для средней полосы России. Разработаны методы диагностики корней малины и прикорневой почвы на зараженность возбудителем фитофторозной корневой гнили Ph. fragariae var. rubi, с помощью плавающих приманок — листьев и черешков листьев малины красной, отличающиеся своей простотой и доступностью, наличие патогена устанавливается в 8-9 раз быстрее, по сравнению с аналогичным зарубежным методом. Рассчитаны две регрессионные модели прогноза развития фитофторозной гнили корней малины в зависимости от суммы осадков за три месяца (апрель, май, июнь) и коэффициента отношения суммы осадков к максимальной средней температуре, которые позволяют с точностью 82,4 % и 88,2 %, прогнозировать развитие болезни в текущем году.

5. Впервые для условий России выявлен комплекс оомицетов (Phytophthora nicotianae, Ph. citricola, Ph. cactorum, Ph. sp.), встречающийся в том или ином видовом соотношении в насаждениях малины красной в средней полосе России и Кабардино-Балкарии. Было выявлено, что непродолжительное затопление участка может усиливать патогенность «сопутствующих» видов Phytophthora, которые в этих случаях могут вызывать развитие сильной корневой гнили.

6. Полегание сеянцев плодовых культур в разных условиях выращивания вызывали такие виды, как Pythium spp., Ph. cactorum, R. solani, Fusarium spp. Виды R. solani и Fusarium spp. (F. avenaceum, F. lateritium) вызывали сильные корневые гнили сеянцев в условиях теплицы, а оомицеты Pythium spp., Ph. cactorum в условиях открытого грунта.

7. Установлено, что гриб Rhizoctonia solani является основным и наиболее агрессивным патогеном для зеленых черенков плодовых и ягодных культур, укореняемых в теплице. Заражение зеленых черенков в период укоренения этим патогеном и другими микромицетами - возбудителями прикорневых гнилей сказывается на качестве посадочного материала, отрицательно влияет на их приживаемость при доращивание в открытом и защищенном грунте.

8. Разработан метод «модельных» зеленых черенков для диагностики почвы, на зараженность комплексом микромицетов — возбудителей; корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур. С его помощью разработана методика оценки риска возникновения корневых и прикорневых гнилей, а также рассчитаны регрессионные уравнения прогноза развития гнилей зеленых черенков плодовых и ягодных культур в период их укоренения в теплице.

9. Разработана система учетов и диагностики корневых и прикорневых гнилей плодовых культур с использованием оптимальных сроков учета болезней и проведения анализов. Данная система базируется в основном на разработанных нами методах диагностики с помощью биоприманок и предусматривает применение элементов прогноза для определения риска возникновения и развития болезней, вызываемых некоторыми почвенными патогенами.

10. Разработана концепция изменения патогенеза почвенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в условиях агроценозов, в которой оценивается влияние трех основных факторов (почвенно-климатического, биологического и антропогенного) и их взаимодействие, на изменение патогенеза возбудителей корневых гнилей. В данной концепции также рассматривается регулирование факторов, влияющих на патогенез почвенных микромицетов, которое является основным элементом при разработке защитных мероприятий для борьбы с возбудителями корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур.

11. Использование системных фунгицидов широкого спектра действия, Фундазол 50 % СП и Топсин М 70% СП для предпосадочной обработки зелёных черенков и пропитки тепличного субстрата, снижаетпоражение черенков гнилями в 1,5-2 раза и увеличивает их укореняемость в 1,5-1,7 раза. Использование водоэмульсионной акриловой краски (ВЭК), как налипателя, для обработки черенков совместно с фунгицидом увеличивает эффективность системных фунгицидов в 1,5 — 3 раза, а контактных в 2-6 раз, по - сравнению со стандартной- предпосадочной обработкой черенков водной-суспензией этих фунгицидов.

12. Установлено, что применение предпосадочной обработки корней клоновых подвоев яблони глиняной болтушкой с фунгицидами (0,2 % Ридомил Голд МЦ + 0,2 % Фундазол) в обычные годы в 1,5 раза снижало количество выпадов в 1 поле питомника и в 1,5-2 раза увеличивала выход стандартных саженцев.

13. Фунгициды Ридомил 25 % СП, Акробат 67 % СП, Ридомил Голд МЦ снижали развитие фитофторозных корневых гнилей малины красной в 2-3 раза. Для защиты оздоровленного посадочного материала малины от фитофторозной корневой гнили в год эпифитотии было достаточно двух обработок фунгицидами (предпосадочной и пропитка в рядах в июне). 14. Разработаны схемы защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей, которые необходимо проводить с учетом уязвимых для почвенно-патогенных микромицетов фенофаз развития этих культур. Проведение профилактических мероприятий на всех этапах производства посадочного материала плодовых и ягодных культур снижает распространение этих болезней на промышленных плантациях.

Предложения производству

1. Диагностировать наличие в прикорневой почве и корнях малины карантинного объекта оомицета Phytophthora fragariae var. rubí, а также других видов Phytophthora на малине с помощью разработанных нами методов биоприманок, с использованием молодых листьев и черешков листьев малины красной.

2. Использовать для прогноза интенсивности развития фитофторозных корневых гнилей малины в условиях средней полосы России формулу регрессионного прогноза (У=9,94 х - 37,31), где х — отношение суммы осадков за апрель, май и июнь к максимальной средней температуре в июне.

3. Для, диагностики пригодности тепличных субстратов, для-укоренения в них зеленых черенков плодовых и ягодных культур использовать метод «Модельных черенков». Для прогноза риска возникновения гнилей черенков крыжовника, вишни и сливы на основе предлагаемого метода использовать формулы регрессионного прогноза: У=5,30х-34,13, рассчитываемую по коэффициенту некротизации модельных черенков, или формулу: У=0,89х+7,48 - упрощенную, рассчитываемую по общей некротизации.

4. Для защиты зеленых черенков плодовых и ягодных культур в период укоренения в теплице, от микозных гнилей проводить следующие защитные мероприятия: а) профилактическую обработку 0,1% Фундазолом 50 % СП за 2 недели до заготовки черенков; б) перед посадкой обрабатывать нижнюю часть черенков 50% водным раствором акриловой водоэмульсионной краски, содержащей фунгицид: 0,2 % Фундазол или 0,15 % Топсин М, или 0,3 % Эупарен мульти 50 % ВДГ; в) в условиях жаркого лета и нагреве тепличного субстрата выше 25°С на старых грунтах проводить пролив черенков и субстрата 0,2% Фундазолом или 0,15 % ТопсиномМ через 2-3 недели после посадки черенков на укоренение; г) при пасмурной и прохладной погоде во время укоренения для борьбы с серой гнилью проводить опрыскивание 0,2 % Эупареном мульти или 0,3 % Хорусом 75 % ВДГ, в случае установления таких погодных условий более двух декад, обработку повторить через 7-10 дней.

6. Для снижения риска развития корневых гнилей в первом поле плодового питомника, необходимо обрабатывать корни высаживаемых подвоев глиняной болтушкой, содержащей, смесь фунгицидов: 0,2 % Ридомил Голд МЦ + 0,2 % Фундазол. Вгоды с экстремальными;погодными-условиями (очень влажное или засушливое лето) проводить дополнительные обработки путем полива.фунгицидами прикорневой почвы в рядах с нормой расхода рабочего раствора 2000-2500 л/га. В год с сухим летом для дополнительной обработки использовать 0,2% Фундазол или 0,15% Топсин М, а в сезон с избыточным увлажнением - 0,2 % Ридомил Голд МЦ.

7. При разработке защитных мероприятий для борьбы с корневыми и прикорневыми гнилями в питомниках и маточниках, а также молодых промышленных насаждениях (не вступивших в пору плодоношения) плодовых и ягодных культур взять за основу разработанные схемы защиты, с учетом особенностей данного региона.

7.3. Заключение

Предлагаемые нами схемы защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей основываются на учете уязвимых для почвенно-патогенных микромицетов фаз развития этих культур или этапов выращивания. Наибольшее внимание, при разработке данных схем защиты, уделялось профилактическим обработкам.

Основное внимание в этих схемах защиты также уделяется защитным мероприятиям при производстве посадочного материала плодовых и ягодных культур. Борьба с корневыми и прикорневыми гнилями на этапах размножения и выращивания посадочного материала этих культур снижает риск возникновения этих болезней на промышленных плантациях.

Для повышения эффективности предложенных схем защиты можно использовать разработанные нами относительно простые методы диагностики и регрессионного прогноза.

Разработанные нами схемы защитных мероприятий могут служить основой для дальнейшей разработки систем защиты от корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур.

ГЛАВА 8. РАСЧЕТ ЭКОНОМИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ

8.1. Расчет экономической эффективности оригинального метода диагностики корней малины и прикорневой почвы на зараженность Phytophthora fragariae var. rubi

Для расчета экономической эффективности предложенного нами метода диагностики возбудителя фитофторозной гнили корней малины сравнивали его с широко используемым до последнего времени в Европе для тестирования этого патогена метода Дункана [Duncan, 1990]. Для сравнения этих методов учитывали основные требования к условиям проведения теста каждым из методов. Так, для проведения диагностики одного образца предлагаемым методом, требуется: лабораторное помещение, листья малины красной (одно маточное растение малины в открытом грунте), 100 мл дистиллированной воды, 3 - чашки Петри, 10 мл этилового спирта и микроскоп, для просмотра некротизированных приманок, Длительность диагностики от 5 до 7 дней. Для проведения теста методом Дункана требуются: зимняя теплица, здоровые, молодые растения малины красной, горшки со стерильным грунтом (3 на образец), также требуется стерильный бокс для посева некротизированных корней на селективную среду, химикаты и антибиотики для среды, микроскоп для просмотра препаратов. Длительность диагностики этим методом от 5 до 6 недель (от 35 до 42 дней).

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, доктора сельскохозяйственных наук, Головин, Сергей Евгеньевич, Москва

1. Абеленцев, В.И. Адаптация некоторых патогенных грибов к беномилу / В.И. Абеленцев, Н.М. Голышин // Химия в сельском хоз-ве. 1973. -Т. 11.-№6.-С. 32-36.

2. Аблакатова, A.A. Микофлора и основные грибные болезни плодово-ягодных растений юга Дальнего Востока / A.A. Аблакатова // Наука. М., Л.: 1965.- 146 с.

3. Абрамова, С.Л. Диагностика фитопатогенных грибов Septoria tritici и Stagonospora nodorum методом FLASH-ПЦР / С.Л. Абрамова, Д.Ю. Рязанцев, Т.М. Воинова, С.К. Завриев // Биоорганическая химия. — 2008.-Т. 34.-№ 1.-С. 107-113

4. Агафонова, З.Я. Борьба с фузариозным увяданием земляники / З.Я. Агафонова, Н.Ф. Андреева // Защита растений. 1972. - № 4. - С. 23-24.

5. Азимджанов, И.М. Методы выделения грибов рода Verticillium из почвы / И.М. Азимджанов, С.С. Замазанова // Докл. АН. УзССР. -1969.-Т 12.-С. 38-40.

6. Азимджанов, И.М. Вертициллезное усыхание плодовых культур в Узбекистане / И.М. Азимджанов: Автореф. дис. канд. биол. наук. -Ташкент, 1972. 19 с.

7. Андреева, Н.Ф. О фитофторе на землянике / Н.Ф. Андреева // Микология и фитопатология. 1968. - Вып. 6. - Т. 2. - С. 471-474.

8. Ануфриева, В.Г. Применение регуляторов роста при зеленом черенковании вишни / В.Г. Ануфриева, Н.М. Книга // Садоводство. -1989.-Т. 37,-С. 44-49.

9. Аристов, А.Н. Фитосанитариые мероприятия в насаждениях малины / А.Н. Аристов // Плодоводство и ягодоводство России: Сб. науч. тр. ВСТИСП М., 1994. - С. 105-109.

10. Атрощенко, Г.П. Обеззараживание зеленых черенков смородины / Г.П. Атрощенко // Садоводство. 1981. - № 6. - С. 21.

11. Аширова, Л.П. Применение Агата-25К для защиты яровых зерновых культур против корневых гнилей / Л.П. Аширова // Эффективность адаптив. технологий. Ижевск, 2003. - С. 3-7

12. Барбатунова, Г.А. Изучение фитофтороза земляники и изыскание мер борьбы с ними в центральных районах Нечерноземной полосы / Г.А. Барбатунова // Автореф. дис. канд. биол. наук. Москва, 1986. - 24 с.

13. Белошапкина, О.О. Использование биопрепаратов и регуляторов роста при защите земляники от вертициллезного увядания / О.О. Белошапкина, Д.Н. Говоров // Изв. ТСХА. 2000. - Вып. 1. - С. 116128.

14. Бенкен, A.A., Упрощенный метод количественного определения инфекции Verticillium dahliae Kleb, в почве / A.A. Бенкен, A.C. Доценко // Микология и фитопатология. 1971. - № 5, - С. 282-287.

15. Билай, В. И. Фузарии / В. И. Билай: Наукова думка. Киев, 1977. - 442 с.

16. Бородин, И.Ф. Воздействие импульсного электромагнитного поля сверхвысокой частоты на микроорганизмы / И.Ф. Бородин, С.Г. Кузнецов // Вестн. с.-х. науки. 1991. - Т. 3. - С. 84-86.

17. Брукиш, Д.А. Развитие корневых гнилей при зеленом черенковании голубики высокорослой / Д.А. Брукиш, Е.А. Вакульчик // Защита растений проблемы и перспективы. Гродно, 2002. - С. 14-16

18. Вандерпланк, Я. Генетические и молекулярные основы патогенеза у растений / Я. Вандерпланк М.: Мир, 1981. - 232 с.

19. Веденякина, Е.Г. Исследования почв агрофитоценоза с плодовыми культурами на присутствие фитофторовых грибов (Методика) /Е.Г. Веденякина // Вест. Ленинградского университета. 1979. -№ 15.-Биология. - Вып. 3. - С. 23-30.

20. Власова, Э.М. Малоизученные болезни в Ленинградской области / Э.М. Власова // Культура земляники в СССР. М., 1972. - С. 478-482.

21. Власова, Э.М. Методические указания по инвентаризации болезней и микофлоры культурных и дикорастущих ягодных растений / Э.М. Власова, В.И. Кривченко Л., 1976. - 248 с.

22. Власова, Э.М. Методические указания по систематике грибов и общей фитопатологии / Э.М. Власова, Н.Л. Полозова, Л.Е. Колесников -СПб., 2004. 24 с.

23. Волевачев, М.А. Практический опыт пятилетнего применения биопрепаратов / М.А. Волевачев // Производство экологически безопасной продукции растениеводства. Пущино, 1996 (1997). - Вып. 2. - С. 212-214.

24. Гавриленко, Л.А. Вертициллезное усыхание сливы / Л.А. Гавриленко, И.К. Голица, Э.П. Кропис // Садоводство, виноградарство и виноделие Молдавии. 1977. - № 1. - С. 43-47.

25. Гвритишвили, М.Н. Грибы рода Cytospora Fr. / М.Н. Гвритишвили: Тбилиси, 1982.-214 с.

26. Гельцер, Ф.Ю. Стимулятор роста Симбионт 1 / Ф.Ю. Гельцер // Природа. 1973.-№8.-С. 111-112.

27. Гельцер, Ф.Ю. Симбиоз с микроорганизмами — основа жизни растений / Ф.Ю. Гельцер М.: МСХИ, 1990. - 134 с.

28. Гельцер, Ф.Ю. Препарат Симбионт 2, стимулирующий урожайность растений /Гельцер Ф.Ю., Игнатьев H.H. //Авторское свидетельство № 921482. Бюл. изобрет. № 15. 1982.

29. Говорова, Г.Ф. Болезнь земляники, вызываемая грибом Phytophthora fragariae Hickm. / Г.Ф. Говорова // Бюл. Глав. Ботан. Сада. 1966. - № 54. - С. 476-482.

30. Говоров, Д.Н. Биологические препараты защиты земляники от вертициллеза / Д.Н. Говоров // Фитосанитарное оздоровление экосистем / ВНИИЗР. СПб., 2005. - Т. 2. - С. 153-155.

31. Головин, С.Е. Вопросы защиты ягодных культур от корневых и стеблевых гнилей при производстве посадочного материала / С.Е. Головин: Афтореф. дис. канд. с.-х. наук. М., 1990 а. - 20 с. *

32. Головин, С.Е. Пути распространения фитофторозной гнили рожков и борьбы с ней на маточниках земляники / С.Е. Головин // Сб. науч. тр. ВНИИС им. И.В. Мичурина Мичуринск, 1990 б. - С. 195-196.

33. Головин, С.Е. Предупреждение загнивания черенков черной смородины / С.Е. Головин // Садоводство и виноградарство. 1991. -№4.-С. 20-21.

34. Головин, С.Е. О роли грибов в отмирании (ломкости) стеблей малины / С.Е. Головин // Совершенствование технологий выращивания ягодных культур в Нечерноземье: Сб. науч. тр. НИЗИСНП. М., 1992. - С. 6573.

35. Головин, С.Е. Основные виды почвенных грибов, связанные с гнилью зеленых черенков плодовых и ягодных культур, и методы их диагностики / С.Е. Головин // Плодоводство и ягодоводство России. -М. 1994.-T. 1.-С. 118-123.

36. Головин, С.Е. Корневые гнили плодовых культур в питомнике, вредоносность и распространенность / С.Е. Головин, Т.И. Романченко // Плодоводство и ягодоводство России: Сб. научн. тр. ВСТИСП. М., 2004.-Т. 8.-С. 378-391.

37. Головин, С.Е. Влияние фитопатогенных грибов на развитие гнилей черенков смородины и крыжовника / С.Е. Головин; О.З. Метлицкий // Вестн. Росс. акад. с.-х. наук. 1993. - №5. - С. 31-34.

38. Голышин, Н.М. Фунгициды в сельском хозяйстве / Н.М. Голышин. -М.: Колос. 1982.-279 с.

39. Горленко, C.B. Функциональное усыхание гвоздики ремонтантной / C.B. Горленко, B.C. Кобзарова // Краткие докл. Неверонский тепличный комбинат. Вильнюс. 1989. - С. 23-24.

40. Горьковенко, B.C. Патогенная микрофлора черенков при вегетативном размножении фундука / B.C. Горьковенко, З.Н. Ткаченко // Тр. Кубанского гос. Аграр. ун-та. 2001. - № 390. - С. 163-166.

41. Гребенюк, И.Н. Проявление фузариоза на землянике в питомнике / И.Н. Гребенюк, И.Т. Бокин // Болезни и вредители культурных растений Западной Сибири и меры борьбы с ними. 1983. - С. 37-42.

42. Гуляев, А. Г. Эффект термотерапии земляники / А. Г. Гуляев, Н.И. Акинин, Б.И. Соколов, 0.3. Метлицкий, Ю.П. Пристансков // Садоводство, виноградарство и виноделие Молдавии. 1985. - № 9. -С. 44-45.

43. Девятов, A.C. Полевой микроделяночный метод тестирования почвоутомления в плодовом саду / A.C. Девятов // Плодоводство. -Минск, 1994(1995). Т. 9. - Ч. 1, - С. 112-118

44. Дерновская, Л.И. Вертициллезное и цитоспорозное усыхание сливы и других косточковых культур в Алма-атинской области Казахстана / Л.И. Дерновская: Автореф. Дис. канд. биол. наук. Л.: ВИЗР, 1980. -22 с.

45. Дзагнидзе, Ш.И. Фузариозное увядание сеянцев и саженцев груши в Грузии (возб. Fusarium oxysporum) / Ш.И. Дзагнидзе, Э.А. Квадзе // Тр. ин-та ЗАРА ГССЗ. 1969. - Т. 21. - С. 113-116.

46. Дзагнидзе, Ш.И. Результаты изучения корневой гнили сеянцев и саженцев косточковых плодовых в Грузии / Ш.И. Дзагнидзе, 3. Пурцеладзе // Тр. НИИ защиты растений МСХ ГССР. 1979. - Т. 30. -С. 35-38.

47. Дзагнидзе, Ш.И. Rhizoctonia bataticola (Taub.,) вызывающая корневую гниль косточковых культур / Ш.И. Дзагнидзе, 3. Пурцеладзе // Тр. НИИ защиты растений МСХ ГССР. 1979. - т. 28. - С. 48-50.

48. Джибгашвили, Н.О. Исследование плодовых культур Грузии на зараженность латентными грибами с целью обоснования путей и способов их оздоровления / Н.О. Джибгашвили: Автореф. дис. канд. биол. наук. Тбилиси. 1989. - 18 с.

49. Доспехов. Б.А. Методика опытного дела / Б.А. Доспехов М.: Урожай, 1978. - 363 с.

50. Дроздовский. Э.М. О методике выделения гриба Phytophthoracactorum из пораженных растений земляники и почвы / Э.М. Дроздовский, Г.А. Барбатунова // Прогрессивные способы возделывания и сортоизучение ягодных культур. М. 1985. - С. 112-115.

51. Дроздовский, Э.М. Виды фитофторы, поражающие плодовые и ягодные культуры в Нечерноземной зоне / Э.М. Дроздовский, Г.А. Барбатунова // Плодоводство в Нечерноземной полосе. М. 1988. - С. 116-122.

52. Еланский, С.Н. Гетероплазмоз у Phytophthora infestans / С.Н. Еланский, Д.И. Милютина // Генетика. 2007. - Т. 43. - № 3. - С. 333336

53. Илиева, Е.И. Морфологические особенности грибов рода Phytophthora возбудителей фитофтороза земляники / Е.И. Илиева // Изв. ТСХА. -1988-Т. 1,-С 119-127.

54. Илиева, Е. И. Вертицилийно увяхване нова болеет по малината / Е. И. Илиева, Р. Бойчева // Селскостоп. Наука, 1999. - Г. 37. - Бр. 1. - С. 5860.

55. Илюхина, М.К. Применение биологически активных веществ в борьбе с корневыми гнилями стевии / М.К. Илюхина, Т.П. Жужжалова //

56. Первый межд. симп. Новые и нетрадиц. растения и перспективы их практ. использ.: Тез. докл. Пущино, 1995. - С. 612-613

57. Ищенко, JI.A. Дефицит иммунитета и его регуляция у плодовых растений в условиях холодовых стрессов / JI.A. Ищенко, И.Н. Чеснокова, М.И. Козаева, Н.Н. Федорчук // Состояние и проблемы садоводства России. Новосибирск, 1997. - 4.2. - С. 131-136.

58. Захаренко, В.А. Оптимизация фитосанитарного состояния сельскохозяйственных угодий с использованием программ для ПЭВМ / В.А. Захаренко, Г.В. Судариков, Ю.С. Хардиков, А.В. Захаренко // М.: РАСХН, 2001. Вып. 4. - 80 с.

59. Злотина, Г.Д. Биология возбудителя вертициллезного ожога яблони в условиях Таджикистана и меры борьбы с ним / Г.Д. Злотина: Автореф. дисс. канд. с.-х. наук. Душанбе, 1966. - 20 с.

60. Жвакина, Г.Н. Грибные болезни плодовых культур в питомниках Тамбовской области / Г.Н. Жвакина // Сб. науч. тр. ВНИИС им. И.В. Мичурина. 1982. - Вып. 36. - С. 25 -28.

61. Кананов, Б.А. Обоснование системы мероприятий по защите земляники от комплекса грибных болезней / Б.А. Кананов, А.Ф Константинова // Защита растений при интенсивных технологиях- -1989:-С. 58-64.

62. Канчавели, З.С. Цилиндрокарпозное усыхание плодовых / З.С. Канчавели // Защита и карантин растений. 1997. - N 10.- С. 33.

63. Картушин, А.Н. Маточник ювенильного типа для размножения подвоев плодовых культур зелеными черенками / А.Н. Картушин // Садоводство и виноградарство.- 2000. № 5-6. - С. 22-23.

64. Киреева, Т.С. Ускоренный метод диагностики / Т.С. Киреева, Н.С. Мирпулатова // Защита растений. 1964. - № 5. - С. 49-50.

65. Киселева, Н.И. Эффективность нового комбинированного биоудобрения в защищенном грунте / Н.И. Киселева // Arpo XXI. -2003/2004. N 7/12. - С. 136-139.

66. Козаева, М.И. Роль биотических и абиотических факторов в устойчивости плодовых растений к фитофторозу / М.И. Козаева // Соврем, проблемы микологии, альгологии и фитопатологии, т М. 1998. С.54-55

67. Козаева, М.И. Саморегуляция патогенности у возбудителя фитофтороза плодовых культур Р. cactorum / М.И. Козаева // Молодые ученые садоводству России. - М. 1995. - С. 213-214

68. Коноплева, В. Ф. Вертициллезное увядание.черной смородины / В'. Ф. Коноплева // Земля сибирская, дальневосточная. 1978. - № 9. - С. 58.

69. Константинова, А.Ф. Вилт земляники / А.Ф. Константинова // Садоводство. 1970. - № 3". - С. 24-25.

70. Константинова, А.Ф. Вертициллезное увядание земляники / А.Ф. Константинова // Микология и фитопатология. 1974. - Т. 8. - Вып. 2. -С. 113-117.

71. Королева, Н.С. Устойчивость Verticillium dahliae Kleb. (возб. вилта хлопчатника) к фунгициду беномилу / Н.С. Королева, A.C. Касьяненко, И.И. Рябова // Микология и фитопатология. 1978. - Т. 12. - Вып. 3. - С. 29-30.

72. Котова, В.В. Увядание земляники, вызываемое грибом Verticillium albo-atrum R. et. В. / B.B. Котова II Записки Ленинградского СХИ. -1960.-Т. 80.-Т. 164-165.

73. Кошкина, Т.Е. Достижения в ПЦР диагностике фитовирусов / Т.Е. Кошкина, С.К. Завриев // Экологическая генетика культурных растений / Всерос. науч. исслед. ин-т риса. - Краснодар. 2005. - С. 172179

74. Кузнецов, М.Н. Влияние многолетних трав на почву после раскорчевки сада / М.Н. Кузнецов, Т.П. Уколова, Т.А. Роева, Л.И. Леонтьева // Селекция и сортовая агротехника плодовых^ культур. ВНИИСПК / Орел. 2004. С. 101-106

75. Куликов, И.М. Комплексная система защитных мероприятий в насаждениях яблони в Нечерноземной зоне РФ / И.М. Куликов, Э.М. Дроздовский, Г.С. Белозерова, Т.И. Романченко, С.Е. Головин // Методические рекомендацию. М.: ВСТИСП, 2006. - 116 с.

76. Кураков, A.B. Нитрифицирующая активность и фитотоксичность почвенных микроскопических грибов / A.B. Кураков, А.И. Попов // Почвоведение. 1995. - № 3. - С. 314-321

77. Литвиненко, А.И. Перспективность использования почвенных антагонистов р. Bacillus и р. Streptomyces в снижении комплексной инфекции, вызывающей увядание и корневые гнили растений / А.И.

78. Литвиненко // Защита с.-х. культур от вредителей, болезней и сорняков. Л. 1991. - С. 43-49

79. Литвинов, М.А. Методы изучения почвенных микроскопических грибов / М.А. Литвинов. Акад. Наук СССР. - Л.: Наука, 1969. - 124 с.

80. Литвинов, М.А. Определитель микроскопических почвенных грибов/ М.А. Литвинов. Л.: Наук, 1967. - 346 с.

81. Литтл, Т. Сельскохозяйственное опытное дело / Т. Литтл, Ф. Хиллз. -М.: Колос, 1981.-319 с.

82. Малюга, A.A. Эффективность препаратов Бизар и Максим против ризоктониоза на двух уровнях минерального питания и их влияние на урожайность картофеля / A.A. Малюга, H.H. Енина // Сиб. вестн. с.-х. науки. 2004. - № 2. - С. 102-104.

83. Матвеев, В.В. Перспективные средства в борьбе с болезнями гвоздики / В.В. Матвеев, H.A. Пастухов // Цветоводство. 1981.-№2.-С.28.

84. Метлина, B.C. Поражаемость земляники вертициллиозным увяданием в условиях Костромской области / B.C. Метлина, И.В. Попова // Сб. тр. НИЗИСНП. 1975. - Т. 8. - С. 225-232.

85. Метлицкий, О.З. Методические указания по выявлению и учету паразитических нематод ягодных культур / О.З. Метлицкий, М.А. Матвеева, И.В. Андреева М.: Колос, 1975. - 39 с.

86. Метлицкий, О.З. Борьба с микозами при ускоренном размножении посадочного материала ягодных культур / О.З. Метлицкий, С.Е.

87. Головин //Ягодоводство в Нечерноземье: Тр. НИЗИСНП. М. 1989. -С. 36-41

88. Метлицкий, О.З. Усовершенствованная система фитосанитарии в питомниках / О.З. Метлицкий, А.Н. Аристов, С.Е. Головин, A.C. Зейналов, Т.Н. Романченко и др. М.: ВСТИСП. - 2001. - 154 с.

89. Миркова, Е., Качармазов В. Корневое гниение по ягодата причинено от Phomaprunicola (Opiz.) Wr. & Hopha. / E. Миркова, В. Качармазов // Градин, лозарска Наука. 1978. - Т. 15. - № 5/6. - С. 58-64.

90. Миркова, Е. Ризоктониоза по оранжерийния карамфил причинители и химични средства за борба / Е. Миркова, А. Хасан, С. Ванев // Растен. Науки. - 1988. - Т. 25. - № 10. - С. 58-61

91. Мироненко, Н.В. Филогенетические отношения видов грибов рода Cochliobolus, специализированных к разным хозяевам / Н.В. Мироненко // Вестн. защиты растений. 2000. - № 1. - С. 49-54

92. Мирошниченко, Н.В. Септориоз вишни при размножении зелеными черенками / Н.В. Мирошниченко // Тр. Курганской гос. с.-х. академии им. Т.С. Мальцева. 2006. - С. 47-48.

93. Мирпулатова, Н.С. К методике определения наличия гриба Verticillium dahliae в почве / Н.С. Мирпулатова, Г.С. Киреева // Тр. Среднеазиатского НИИ защиты растений. Ташкент. 1966. - № 8. - С. 191-194.

94. Мирчинк, Т.Г. Почвенная микология / Т.Г. Мирчинк М.: Московский университет, 1988. - 219 с.

95. Молодых, JI.B. Эффективность действия биопрепаратов на развитие обыкновенной парши картофеля / JI.B. Молодых, Е.В. Найда // Защита растений от вредителей и болезней. СПб., 1994 (1995). - С. 57-60

96. Натальина, О.Б. Болезни ягодников / О.Б. Натальина М.: С.-х. литературы, журналов и плакатов, 1963. - 272 с.

97. Наумов, H.A. Методы микроскопических и фитопатологических исследований / H.A. Наумов М.- JI. 1937. - 272 с.

98. Наумов, В.Д. Влияние почвоутомления на рост и развитие яблони на лугово-черноземных почвах Крыма / В. Д. Наумов, В.К. Шильникова, Абдулла аль-Исса, Н.Е. Гаврилюк // Эколог, проблемы почвоведения. М. 1999. - С. 29-38.

99. Новотельнова, Н. С. Переноспоровые грибы патогены культурных растений в СССР / Н. С. Новотельнова, К.А. Пыстина, О.Г. Голубева Л.: Наука, 1979. - 172 с.

100. Осмоловская, М.Б. Виды рода Verticillium на плодовых культурах / М.Б Осмоловская., Г.Д. Злотина // Микология и фитопатология. 1969. - Т. 3. - Вып. 3. - С. 266-268.

101. Осташева, H.A. Микофлора усыхающих деревьев груши и патогенность основных возбудителей / H.A. Осташева // Научн. тр. ВНИИ горного садоводства и цветоводства. 1988 (1989). - Вып. 35. -С. 97-103.

102. Ошхерели, М.П. Трахеомикозное усыхание яблони в Грузии / М.П. Ошхерели: Автореф. дис. канд. биол. наук. — Тбилиси, 1974. 21 с.

103. Петрова, В.И. Почвоутомление в яблоневом саду сверхнормативного периода эксплуатации / В.И. Петрова, С.Н. Коновалов, Ф.А. Волков // Плодоводство и ягодоводство России. 2001. -Т. 8.-С. 131-138

104. Петухова, М.И. Обзор видового состава патогенной микрофлоры в БССР / Петухова М.И. // Матер, науч. теор. конф. по естеств. наукам (Мин. пед. Ин.). - Минск. 1971. - С. 95-100.

105. Пидопличко, Н. М. Грибы-паразиты культурных растений / Н. М. Пидопличко // Определитель. Т. 1. Грибы совершенные. Киев: Наукова думка, 1977. - 299 с.

106. Пидопличко, Н.М. Грибы — паразиты культурных растений / Н. М. Пидопличко // Определитель. Т.-2. Грибы несовершенные. — Киев: Наукова думка, 1977. 290 с.

107. Поляков, И.Я. Контроль и прогноз основа целенаправленной защиты растений / И.Я. Поляков, В. Эберт // Академия сельскохозяйственных наук, ГДР. - 1983.-352с.

108. Попова, И.В. Проявление устойчивости к вертициллезу у гибридного потомства земляники / И.В. Попова, JI.C. Меркулова // Агрономия: Вестн. РГАЗУ. М. 2004. - С. 151-153

109. Пристансков, Ю.П. Вилт яблони в питомниках / Ю.П. Пристансков // Защита растений. 1970. - № 8. - С. 44.

110. Пристансков, Ю.П. Вертициллез земляники и посадочный материал / Ю.П. Пристансков // Защита растений. 1971. - № 8. - С. 5455.

111. Пристансков, Ю.П. Определение почвенного запаса возбудителя вертициллезного увядания на земляничных плантациях / Ю.П. Пристансков // Методы фитопатологических исследований в селекции растений. -М.: Колос. 1975. С. 200-206.

112. Пристансков, Ю.П. Распространенность возбудителя вилта земляники и других культур / Ю.П. Пристансков // Защита плодовых и ягодных культур от вредителей и болезней в НЧЗ РСФСР: Сб. науч. тр. НИЗИСНП. 1978. - Т. 12. - С. 29-34.

113. Пристансков, Ю.П. Полевая устойчивость к вилту районированных и перспективных сортов земляники / Ю.П. Пристансков // Ягодоводство в Нечерноземье: Сб. науч. тр. НИЗИСНП. 1982. - С. 145-152.

114. Пыстина, К.А. Методы выделения грибов рода Pythium Pringsh из природных местообитаний / К.А. Пыстина // Микология и фитопатология. 1973. - Т. 7. - Вып. 3. - С. 249-252.

115. Романченко, Т.И. Болезни скелетных частей яблони и пути снижения их вредоносности в центральных районах Нечерноземнойзоны России / Т.И. Романченко: Автореф. дис. канд. с.-х. наук. М., 1993.-24 с.

116. Романченко, Т.И. О присутствии грибной инфекции во внешне здоровых черенках яблони / Т.И. Романченко // Плодоводство и ягодоводство России: Сб. Научн. Тр. ВСТИСП. 1999.-Т. 6. - С. 190196.

117. Романченко, Т.И. Фомопсиоз плодовых культур, пути снижения вредоносности / Т.И. Романченко // Плодоводство и ягодоводство России: Сб. Научн. Тр. ВСТИСП. 2003. - Т. 10. - С. 240-249.

118. Романченко, Т.И. Вырождение яблоневых садов в средней полосе России и микофлора, ассоциирующаяся с этим процессом / Т.И. Романченко, С.Е. Головин // Плодоводство и ягодоводство России: Сб. Научн. Тр. ВСТИСП. 1998. -Т. 5. - С.138-144.

119. Ротаренко, А. Новая болезнь земляники / А. Ротаренко, М. Штейнберг// Сельское хоз-во Молдавии. 1987. - № 1. - С . 58-59.

120. Седов E.H. Почвоутомление в насаждениях яблони / E.H. Седов, A.A. Муравьев, З.М. Серова // Вестник РАСХН. 2000. - № 2. - С. 4243

121. Смольякова, В.М. Биологические особенности грибов, вызывающих преждевременное усыхание яблони в зоне Северного Кавказа/ В.М. Смольякова // Тр. ЛСХА. 1979. - Вып. 176. - С. 156158.

122. Смольякова, В.М. Болезни плодовых пород Юга России/ Смольякова В.М. Краснодар: ИПК Весть, 2000. - 192-с.

123. Соловьева, А.И. Методика испытания препаратов в отношении вертициллеза / А.И. Соловьева // Вестник сельскохозяйст. Науки, МЕХ. В.М. 1956. - № 2. - С. 87-92.

124. Соловых, Н.В. Селекция земляники на устойчивость к патогенам с использованием биотехнологических методов Грибные болезни. / Н.В. Соловых // II съезд им. Вавилова генетиков и селекционеров: Тез. докл. СПб., 2000. - Т.1. - С. 330.

125. Список пестицидов и агрохимикатов разрешенных к применению не территории Российской Федерации, 2008 год// Защита и карантин растений. 2008. - №6. - 540 с.

126. Степанова, М.Ю. Метод количественного определения Fusarium oxysporum (Schlecht) в полевой почве / М.Ю. Степанова, С.Ф. Сидорова // Микология и фитопатология. 1981.-Т. 15.- Вып. 1. - С. 67-71.

127. Степанов, Н.М. Прогноз болезней сельскохозяйственных растений /Н.М. Степанов, А.Е. Чумаков JL: Колос, 1972. - 271 с.

128. Сухоцкая, С.Г. Влияние сроков черенкования на укоренение зеленых черенков вишни сорта Любская / С.Г. Сухоцкая // Приемы повышения урожайности* плодовых, ягодных и овощных культур в Западной Сибири. 1984, - С. 24-33.

129. Филиппов, В.В. Фитопатогенные грибы рода Verticillium / B.B. Филиппов, JI.H. Андреев, Н.В. Базилинская. М.: Наука, 1980. - 447 с.

130. Флория, М.Б. Грибы рода Verticillium Wallr. и их значение в усыхании плодовых культур/ М.Б. Флория: Автореф. дис. Канд. биол. наук. Л., 1970.-20 с.

131. Чазова, Л.Н. Эффективность биопрепарата Планриз и фунгицидов в. борьбе с болезнями картофеля / Л.Н Чазова // Достижения науки* и техники АПКю 2004. - № 11. - С. 24

132. Цакадзе, Т. Гриб Gliocladium roseum (Rink.) возбудитель усыхания вишни / Т. Цакадзе, Ш. Канчавели // Тр. НИИ защиты растений МСХ ГССР. 1979. - Т. 30. - С. 24-29.

133. Цакадзе, Т. Вертициллез груши в Грузии / Т. Цакадзе, М.П. Ошхерели, Л.Г. Лилуашвили // Защита растений от болезней. -Тбилиси, 1984. С. 1-9.

134. Шалимов, С.И. Предпосадочная подготовка почвы при повторной посадке яблони / С.И. Шалимов // Сортоизучение и агротехника плодовых культур -М., 1985. С. 51-62

135. Широких, И.Г. Антифунгальный потенциал актиномицетов из ризосферы ячменя на дерново-подзолистых почвах / И.Г. Широких // Почвоведение. 2003. - № 4. - С. 458-464

136. Щербаков, А.П. Структура комплекса микромицетов чернозема -показатель эффективности агротехнических приемов / А.П. Щербаков, И.Д. Свистова, Н.В. Малыхина // Докл. РАСХН. 2002. - № 1. - С. 1719.

137. Устименко-Бакумовская, Е.М. Зависимость укоренения зеленых черенков вишни от физиологического состояния побегов маточных растений / Е.М. Устименко-Бакумовская // Плодоводство Нечерноземной полосы. 1984. - С. 45-52.

138. Хетман, Б. Исследование воздействия грибов из родов Trichoderma и Gliocladium на избранные патогены корней клубники / Б. Хетман // Защита растений на рубеже XXI. Минск, 2001. - С. 259262.

139. Христова, Е. Причин за корнево гниеня- при ягодите / Е. Христова, А. Христов // Растительна Защита. 1960. - № 1. - С. 4-24.

140. Abad, G.Z. Methods for identification of Phytophthora species / G.Z. Abad // Fighting Phytophthora: How Detect, Investigative and Manage Phytophthora. ASP Centennial Meeting. 2008. - 162 p.

141. Abele, U. Naturliche Wirkstoffe gegen Umfallkrankheiten / U. Abele // Dt. Baumschule/ 1987. - T. 39. - № 4. - S. 172-173

142. Aerts, J. Symptomes de fletrissement eher le fraisier cause par Phytophthora cactorum / J. Aerts // Fruit Beige. 1969. - Vol. 37. - № 335. -P. 263-268.

143. Aerts, J. Control of Phytophthora cactorum (Leb. et Cohn.) Schroet. in strawberries by addition of prothiocarb / J. Aerts // Meeded. Fac. Londbouww. Rijrsuniv. Gent, 1975. - Vol. 40. - № 2. - P. 631-641.

144. Aerts, J. Bestijdin van Rhizoctonia solani Kuch. In glasaarbeien / J. Aerts // Meeded. Fac. Londbouww Rijrsuniv. Gent, 1978. - Vol. 43. - № 2. -P. 997-1005.

145. Ajwa, H.A. Drip Application of Alternative Fumigants to Methyl Bromide for Strawberry Production / H.A. Ajwa, T. Trout // Hort Sei. -2004. Vol. 39. - N 7. - P. 1707-1715.

146. Alcock, N.L. A note on raspberry canker (Nectria rubi Osterwalder) / N.L. Alcock // Trans. Proc. Bot. Soc. Edinburgh. 1925. - Vol. 29. - P. 197198.

147. Alexander, B.J.R. Glasshouse screening for biological control agents of Phytophthora cactorum on apple {Malus domestica) / B.J.R. Alexander, A. Stewart // N.Z.J. Crop hortic. Sei. 2001. - Vol. 29. - № 3. - P. 159-169

148. Amouzou-Alladaye, E. Immunoenzymatic detection of Phytophthora fragariae in infected strawberry plants / E. Amouzou-Alladaye, J. Dunez, M. Clerjeau // Phytopathology. 1988. - T. 78. - №-8, - P: 1022-1026

149. Ancay, A. Methodes culturales de lutte centre le deperissement des racines du framboisier / A. Ancay, R. Carron, V. Michel // Rev. suisse Vitic. Arboric. Hortic. 2005. - Vol.37. - N 4. - P. 199-206

150. Andersen, T.F. A study of hyphal morphology in the form genus Rhizoctonia / T.F. Andersen // Mycotaxon. 1990. - Vol. 30 - P. 25-46.

151. Anderson, H.M. Survival and vigor of cold-stored strawberry plants after pre-storage treatment with thiophanatmethyl / H.M. Anderson, T. Hunter // Hortic. Research. 1980. - Vol. 20. - P. 9-17.

152. Awuah, R.T. SA sorbose-based selective medium for enumerating propagules of Fusarium oxysporum f. sp. apii race 2 in organic soil / R.T.; Awuah, J.W. Lorbeer // Phytopathology. 1986. - T. 76. - N 11. - P. 12021205.

153. Azaki, T. The present situation of soilborne disease and their control in Japan / T. Azaki // Japan. Pesticide Inf. 1979. - Vol. 36. - P. 5-13.

154. Baker, K.F. System for producing healthy container-grown plants / K.F. Baker // Univer. of California. Division of Agric. Exper. Station: Extension Servis Manual, 23. 1957. - 332 p.

155. Baker, K.F. Soil treatment with steam-or chemicals / K.F. Baker // S.W. Maslalers and E.J. Holeomb (eds.) Geromiums (3 rd. ed.). 1983. - P. 25-46.

156. Baker, K.F. Development of nursery techniques. / K.F. Baker // The international plant propagators Society Combined Proceeding. 1984. -Vol. 34.-P. 152-164.

157. Baker, K.F. Soil treatment by microwave energy to destroy plant pathogens / K.F. Baker, W.H. Fuller // Phytopathology. 1969. - Vol. 59. -p. 193-197.

158. Balakrishna, R. Prevalence and virulence of Pythium species associated with- root rot of Corn in Poorly drained soil // R. Balakrishna, A.F. Schmitthener, R. Caldevel, C.W. Ellet // Phytopathology. 1978. -Vol. 68.-Nil.-P. 1121-1129.

159. Balestra, G.M. Biocontrol of phytopathogenic bacteria by using organic compost / G.M. Balestra, E. Di Mattia, M. Muganu // Mitt, aus der

160. Biol. Bundesanstalt for Land- und Forstwirtschaft, Berlin Dahlem, Berlin, Braunschweig, 2006. - H. 408. - P. 177-180.

161. Barritt, B.H. Breeding for root rot resistance in red raspberry / B.H. Barrit, P.C. Crandall, P.R. Bristow // J. Am. Soc. Hort. Sei. 1979. - N 1. -P. 85-89.

162. Benson, D.M. Spatial pattern of phytophthora root rot and dieback of azalea in container-grown nursery stock / D.M. Benson, C.L Campbell // Plant Dis. 1985. - T. 69. - N 12. - P. 1049-1054

163. Berkeley, G.H. Root rots of strawberry in Britain. The "black lesion" type of strawberry root rot / G.H. Berkeley, I. Lauder-Thompson // J. Hort. Sei. 1934. - Vol. 12. - P. 222-246.

164. Berkeley, G.H. Root rots of raspberry / G.H. Berkeley // National research council of Canada. 1936. - N 14. - P. 306-317.

165. Biesbrock, J.A. Influence of soil water and temperature on root necrosis of peach caused to Pythium spp. / J.A. Biesbrock, F.F. Hendrix // Phytopathology. 1970. - Vol. 60. - N 5. - P. 880-882.

166. Bielenin, A. Phytophthora crown rot of apple trees: Influence of the scion cultivar on rootstock susceptibility / A. Bielenin // J. Fruit ornamental Plant Res. 1995. - Vol. 3. - N 2. - P. 53-60

167. Bielenin, A. Zgnilizna korony truskawki nowa choroba w warunkach Polski / A. Bielenin // Progress in plant protection. -Poznan, 1999. - Vol. 39. - N 1. - P. 332-335.

168. Bielenin, A. Prevalence and pathogenicity of Phytophthora spp. from sour cherry trees in Michigan / A. Bielenin, A.L. Jones // Plant dis. 1988. -Vol. 76. - N 6. - P. 473-476.

169. Blaid, J.E. A multi locus phylogeny for Phytophthora utilizing markers derived from complete genome sequences/ J.E. Blaid, M.D. Coffey, S-Y. Park, D.M. Geiser, K. Scogchan // Fungal Genetics and Biology. - 2008. - Vol. 45. - P. 266-277.

170. Bolay, A. Essais de traitements fongicides enterepris en 1987-1988 contre le Phytophthora du framboisier / A. Bolay, V. Ducrot // Rev. Suisse Viticult., Arboricult. et Horticult. 1989. - Vol. 21. - N 3. - P. 155-159.

171. Bollen, G.J. Fungal recolonization of heat treated glasshouse soils / G.J. Bollen // Agro Ecosystems.- 1974. - Vol. 1. - N 2. - P. 139-155.

172. Bompeix, G. Phytophthora cactorum (L. Et. C.) Schroet., P. syringae Kleb., Phytophthora spp., parasites des pommes et des poires / G. Bompeix, X. Mourichon // C.R. Acad. Agr. Fr. 1977. - Vol. 63. - N 8. - P. 493-501.

173. Bonants, P.J.M. Characterization and detection of Phytophthora fragariae in plant, water and soil by molecular methods / P.J.M. Bonants, M.P.E. van Gent-Pelzer, M. Hagenaar-de Weerdt // Bull.OEPP. -Oxford, 2000. Vol. 30. - N 3/4. - P. 525-531.

174. Borecka, H. Zamieranie piodow malin / H. Borecka // Owoce, Waziwa. Kwiaty. 1970. - R. 10. - N 15/16. - S. 4-5.

175. Borecki, Z. Werticiliozy roslin sadowniczycn / Z. Borecki // Sad. nowoczesny. 1975. - N 10. - P. 11-14.

176. Bouhot, D. Technique selective et quantitative d'estimation du potential infestes par Pythium spp. / D. Bouhot // Mode D'emploi. Ann. Phytopathol. 1975. - Vol. 7. - N 2. - P. 147-154.

177. Bouhot, D. Les tests biologiques pour le diagnostic sanitaire des sols et des raciness / D. Bouhot // Collog. INRA. 1983. - № 17. - P.145-148.

178. Bouhot, D. Etat actuel des travaux sur la fatique des sols en culture de fraisiers / D. Bouhot, L. Bonnel // In 23 ene. Coloq. De la Societe Franc. De Phytopat. La fatique des sols. (Versailles. 21-22 oct. 1982). P. 71-75.

179. Bouwens, H: Investigations about the mycorrhiza of fruit trees, especially of quince (Cydonia vulgaris) and strawberry (Fragaria vesca) / H. Bouwens // Zentralblatt, Bakteriologie. Abt. II. 1937. - Vol. 97. - P. 3449.

180. Bovey, R. The production release and performance of healthy planting material of vegetatively propagated crops / R. Bovey // Plant Protect, for human welfare. (Brighton 20-25 nov. 1983). Vol. 70. - P. 456-460.

181. Braun, P.G. The combination of Cylindrocarpon lucidum and Pythium irreguläre as a possible cause of apple replant disease in Nova Scotia / P.G. Braun I I Canad. J. Plant Pathol. 1991. - Vol. 13. - № 14. - P. 291-297.

182. Braun, P.G. Effects of Cylindrocarpon and Pythium species on apple seedlings for potential in apple replant disease / P.G. Braun // Canad. J. Plant Pathol. 1995. - Vol. 17. - P. 336-341.

183. Brautigam, S. Fusarium lateritium Nees et Link ein übersehener Rindenbranderreger an Apfel. / S. Brautigam, A. Gille // Nachrbl. Pflzschutz in DDR. - 1985. - Jg. 39. - N 12. - S. 240-242.

184. Brayford; D. Nectria canker of raspberry / D. Brayford // Compendium of Raspberry and Blackberry Disease and Insects. APS Press. St. Paul. Minnesota, 1991. P. 20.

185. Browne, G.T. Relative resistance of eighteen selections of Malus spp. to three species- of Phytophthora / G.T. Browne, S.M. Mircetich, J.N. Cummins // Phytopathology. 1995. - Vol. 85. - N 1. - P. 72-76.

186. Bruin, G.C. Induced resistance to ridomil of some Oomycetes / G.C. Bruin, I.V. Edgington // Phytopathology. 1980. - Vol. 70. - P. 456-460.

187. Brunner-Keinath, S. Zur Diagnose der Phytophthora Wurzelfaule der Himbure / S. Brunner-Keinath, E. Seemuller // Nachrichtenbl. Dent. — 1992.-Jg.4. - №8. - S.179-182.

188. Bumbeiris, M. Phytophthora species in apple and cherry orchards in South Australia / M. Bumbeiris, T.J. Wicks, B.E. Windle // Australas. Plant Pathol. 1982.-Vol. 11.-N3.-P. 28-29.

189. Burpee, L.L. Effects of plant growth regulators and fungicides on rhizoctonia blight of tall fescue / L.L. Burpee // Crop Protect. 1998. - Vol. 17.-N6.-P. 503-507.

190. Butler, E. Strawberry root rot of Minnesota / E. Butler, T.H. King // Plant Dis. Rep. 1981. - Vol. 35. - P. 238-239.

191. Burr, T.J. A root rot of apple caused by Rhizoctonia solani in New York nurseries / T.J. Burr, J.E. Hunter, J.M. Ogana, G.S. Abawi // Plant Dis. Rep. 1978. - Vol. 62. - № 6. - P. 476-479.

192. Burns, J.R. Biocontrol of damping-off of Catharanthus roseus caused by Pythium ultimum with Trichoderma virens and binucleate Rhizoctonia fungi / J.R. Burns, D.M. Benson // Plant Dis. 2000. - Vol.84. - N 6, - P. 644-648.

193. Campanella, V. Activity of calcium salts in controlling / V. Campanella, A. Ippolito, F. Nigro // Phytophthora root rot of citrus / Crop Protect. 2002. - Vol. 21. - N 9. - P. 751-756.

194. Canova, A. Aspectti délia fitopatie da crittopanie e da sfavorevoly condizioni edofïche e climatiche / A. Canova, N. D'Ercole // Atti. Conf. National Fragola. Cesena, 1970. P. 1-60.

195. Canova, A. Midello rosso délia radici di fragola da Phytophthora fragariae / A. Canova, N. D'Ercole II Inf. Fitopathologie. 1972. - Vol. 11. -N12.-P. 9-11.

196. Canova, A. Degentrazione qualifiazion del materiale di moltiplicfzione dell fragola / A. Canova // Frutticoltural. 1975. - Vol. 37(12).-P. 27-33.

197. Canova, A. Fungi pathogeni di fragola di piante arbustive ed arberee da frutte: situzione italiana e problemi diquaranteus / A. Canova // Inf. Fitopathologie. 1983. - An. 33. - N 2. - P. 57-64.

198. Catska, V. Artificial induction of the apple replant problem by Pénicillium claviforme inoculation / V. Catska, V. Vancura, Z. Prikryl, G. Hudska//Plant Soil. 1988. - T. 107.-Nl.-P. 127-136.

199. Celadrin, F. Métaux lourds dans les compost / F. Celadrin // Rev. hortic. Suisse. 1990. - T. 63. - N 3. - P. 45-51.

200. Chalandon, A. Utilization du phosethyl AL (Aliette) pour by contre le Phytophthora cactorum L. et. C. du fraisier / A. Chalandon, P. Gristenel, I. Paviot // Meded. Facultiet Landbouw Rijksuniversit. Gent, 1980. - Vol. 45.-N2.-P. 207-219.

201. Cheisten, A.A. A selective medium for isolating Verticillium albo-atrum from soil / A.A. Cheisten // Phytopathology. 1982. - Vol. 72. - P. 47-49.

202. Chen, W. Microbiol activity and biomass in container media for predicting suppressiveness to damping-off caused by Pythium ultimum / W.

203. Chen, H.A.J. Hoitink, L.V. Madden // Phytopathology. 1988. - Vol. 78. -N11.-P. 1447-1450.

204. Cho, J.H. Isolation and identification of Fusarium solanif. sp. glycines from soil on modified Nash and Snyder's medium / J.H. Cho, J.C. Rupe, M.S. Cummings, E.E. Gbur // Plant Dis. 2001. - Vol. 85. - N 3. - P. 256-260.

205. Chuang, T. Suppressive soils: Detection by chlamydospores germination / T. Chuang, W. Ko // Ann. Phytopathol. Cos. Japan. 1988. -Vol. 54.-P. 158-163.

206. Cieslinski, G., Lis E. Studies on the infection of strawberry roots

207. Fragaria grandiflora Duch.j by fungi of the genus Fusarium "in vitro" conditions / G. Cieslinski, E. Lis // Fruit Sci. Rep. 1989. - Vol. 16. - N 1. -P. 7-16.

208. Clarke, A.F. Technique for assessing respiratory health hazards from hay and other source materials / A.F. Clarke, T. Madelin // Equine veter. J.- 1987. T. 19. - N 5. - P. 442-447.

209. Cohen, M.F. Brassica napus seed meal soil amendment modifies microbial community structure, nitric oxide production and incidence of Rhizoctonia root rot / M.F. Cohen, H. Yamasaki, M. Mazzola // Soil Biol. Biochem. 2005. - Vol. 37. - P. 1215-1227.

210. Converse, R.H. A root rot of red raspberry caused by Phytophthora erythroseptica / R.H. Converse, C.D. Schwartze // Phytopathology. 1968. -Vol. 58. -N 1. - P. 56-59.

211. Converse, R.H. Diseases of raspberries and erect and trailing blackberries / R.H. Converse // Agriculture handbook. USDA. ARS. 1966.- N 310. 111 p.

212. Conway, K. Selective medium for isolation of Pythium spp. from soil / K. Conway // Plant Dis. 1985. - Vol. 69. - P. 393-395.

213. Conway, K. Biological and chemical control of Rhizoctonia serial blight of Rosemary (Rosmarinus officinalis) / K. Conway, C. Foor, N. Manness // Phytopathology. 1992. - Vol. 8. - № 4. - P. 497.

214. Conway, K.E. Integration of biological and chemical controls for rhizoctonia aerial blight and root rot of rosemary / K.E. Conway, N.E. Maness, J.E. Motes // Plant Dis. 1997. - Vol. 81. - N 7. - P. 795-798.

215. Cook, R.T.A. Strawberry black spot caused Colletotrichum acutatum

216. R.T.A. Cook // British Crop Protection Council Monograph. 1993. - N 54. - P. 301-304.

217. Covey, R.P. Phytophthora fruit rot / R.P. Covey, D.C. Harris // Compendium of Apple and Pear Diseases / A.L. Jones and H. S. Aldwinckle. Eds. APS, St. Paul., 1990. - P. 30-31.

218. Dance, M.N. Bioassay of Phytophthora spp. in soil / M.N. Dance, F.J. Newhook, J.S. Cole // Plant Dis. Rep. 1975. - Vol. 59. - P. 523-527.

219. Datnoff, L.E. The interaction of Fusarium oxysporum and Rhizoctonia solani in causing root rot of soybeans / L.E. Datnoff, J.B. Sinclair // Phytopathology. 1988. - T. 78. - N 6. - P. 771-777.

220. Davidse, I. Occurrence resistance to metalaxyl the Netherlands / I. Davidse, D. Daniel, C. Van Westen // Netherlands Plant Pathology. 1983. -Vol. 89.-Nl.-P. 1-20.

221. Davino, M. Valoracion de la eficacia preventiva y curativa de ridomil R y de ridomil 5 G en huertos de citricos / M. Davino, A. Catara, M. Sapienza//Levante agr. 1996. - An. 35. - N 335. - P. 188-191.

222. Denoyes, B. Spesies Identification and Pathogenicity Study of French Colletotrichum strains isolated from strawberry using Morfological and cultural Characteristics / B. Denoyes, A. Baudry // Phytopathology. 1995. -Vol. 85. - N 1. - P. 53-57.

223. D'Ercole, N. Maledies fongigues et bactériennes du fraisier / N. D'Ercole // Bull. OEPP. Oxford, 1986. - Vol. 16. - N 2. - P. - 343-352.

224. D'Ercole, N. Necrosi del colleto e del rizoma délia fragola. IV. Sensibilita di piante frigoconsevate et divivaio / N. D'Ercole, P. Costa // Inform. Fitopatol. 1972. - Vol. 22. - N 3. - P. 14-17.

225. D'Ercole, N. La Verticilliose délia fragola / N. D'Ercole, M. Cavina, E. Pelatti // IV Sensibilita di piante frigoconsevate et divivaio: Informatore fitopatologico. 1977. - S. 9-11.

226. D'Ercole, N. Research on root rot complex of strawberry plants / N. D'Ercole, P. Nipoti, D. Manzali // Acta Hort. 1989. - Vol. 265. - P. 497506.

227. Deutschmann, F. Eine wurzelfaule au Erdbeeren hervorgeru fen durch Phytophthora cactorum (Leb. Et Cohn) Schroet. / F. Deutschmann // Nachrichtenbl. des Deutschen. Pflanzenschutz. — 1954. Vol. 6. - P. 7-9.

228. Diab, H.G. Suppression of Rhizoctonia solani on impatiens by enhanced microbial activity in composted swine waste-amended potting mixes / .H.G. Diab, S. Uu, D:M. Benson // Phytopathology. 2003. - Vol. 93. - N 9. - P. 1115-1123.

229. Drozdowski, J. A survey of fungi associated with strawberry black root rot in commercial fields / J. Drozdowski // Adv. in Strawberry Product Mukwonago, Wis., 1987. - T. 6. - p. 47-49

230. Duncan, J.M. A technique for detecting red stele {Phytophthora fragariae) infection of strawberry stocks before planting / J.M. Duncan // Plant Dis. 1980. - Vol.64. (11). - P. 1023-1025.

231. Duncan, J.M. Phytophthora species attacking strawberry and raspberry / J.M Duncan. // Bull. OEPP. Oxford, 1990. - T. 20. - N 1. - P. 107-115.

232. Duncan, J. Identities and pathogenicities of Phytophthora spp. causing root rot of red raspberry / J. Duncan, D. Kennedy, E. Seemiiller // Plant Pathology. 1987. - Vol. 36. - № 3. - P. 276-289.

233. Duncan, J. Water relations in Phytophthora root rot of raspberries./ Duncan J., Kennedy D. // Proc. Brighton crop protection conf. pests and diseases. - Thornton: Heath (Sur.), 1988. - Vol. 2. - P. 637-643.

234. Duncan, J. Control of Phytophthora fragariae on strawberry and raspberry in Scotland. / J. Duncan, D. Kennedy // Plant Health and the European Single Market: Monograph. 1993. - N 54. - P. 305-308.

235. Duncan, J.M. Effect of temperature and host genotype on the production of inoculum by Phytophthora fragariae var. fragariae from the roots of infected strawberry plants / J.M. Duncan, D.M. Kennedy // Plant Pathol. 1995. - Vol. 44. - N 1. - P. 10-21

236. Duniwaj, J.M. Management of soilborne of strawberry / J.M. Duniwaj // Phytoparasitica. 1998. - Vol. 26. - N 3. - P. 247-248.

237. Eayre, C.G. Evaluation of methyl iodide for control of peach replant disorder / C.G. Eayre, J.J. Sims, H.D. Ohr, B. Mackey // Plant Dis. 2000. -Vol. 84. - N 11. - P. 1177-1179.

238. Eissa, M. The effect of partial soil sterilization a plant parasitic nematodes and plant growth / M. Eissa // Mededelingen Landbouwhogeschove Wageningen. 1986. - P. 7-14.

239. Elena, K. Evaluation of resistance of stone fruit rootstocks to phytophthora crown rot / K. Elena, K. Tsipouridis // J. Phytopathol. 2000. -Vol. 148.-N6. -P. 365-369.

240. Ellis, M. Evaluation of Metalaxyl and Captafol Soil Drenches Composted Hardwood Bark Soil Amendments, and Graft Union Placement on Control of Apple Collar Rot / M. Ellis, D. Ferree // Plant Dis. 1986. -Vol. 70.-Nl.-P. 24-26

241. Elmer, W.H. Chitosan inhibits Rhizoctonia fragariae but not strawberry black root / W.H. Elmer, J.A. Lamondia // Adv. in Strawberry Res. S. 1. 1994. - Vol. 13. - P. 26-31

242. Elmer, W.H. Influence of ammonium sulfate and rotation crops on strawberry black root rot / W.H. Elmer, J.A. Lamondia // Plant Disease. -1999. Vol. 83 - N 2. - P. 119-123.

243. Engel, A. Einflüsse von Kompost und Holzhacksel auf Nahrstoffdynamik im Boden, vegetatives Wachstum, Fruchtertrag und Fruchtqualitat bei Apfel im Nachbau / A. Engel, A. Kunz, M. Blanke // Erwerbsobstbau. 2001. - Jg. 43. - H. 6. - S. 153-160.

244. Erwin, D. C. Phytophthora diseases worldwide. / D.C. Erwin, O.K. Ribeiro //American Phytopathol. Soc., St. Paul, Minn. 1996. - 263 p.

245. Esker J.M., Tsao P.Y. Selective medium for isolation of Phytophthora and Pythium from plant roots / J.M. Esker, P.Y. Tsao // Phytopathology. -1962.-Vol. 52.-P. 771-777.

246. Evans, G. Quantative bioassay for determining low concentrations of Microsclerotia of Verticillium dahliae in field soil / G. Evans, C. McKeen // Canad. Journ. Microbiology. 1974. - Vol. 20. - N 2. - P. 119-124.

247. Evans, J. Progress with diseases and disease control. / J. Evans // The International plant propagators society combined proceedings. 1986. -Vol. 35. - P. 400-406.

248. Faby, R. Versuche zur Bekämpfung von Verticillium in Erdbeeren / R. Faby, O. Themann // Obstbau. 1999. - Jg. 24. - N 4. - S. 209-214.

249. Fang, J.G. Evaluation of Pythium nunn as a potential biocontrol agent against Phytophthora root rots of azalea and sweet orange/ J.G. Fang, P.H. Tsao // Phytopathology. 1995. - Vol. 85. - N 1. - P. 29-36.

250. Freeman, S. Long-term effect of soil solarization for the control of

251. Rosellinia necatrix in apple / S. Freeman, A. Sztejnberg, E. Shabi, J. Katan // Crop Protect. 1990. - Vol. 9. - N 4. - P. 312-316

252. Ferguson, A.J. Detecting multiple species of Phytophthora in container mixes from ornamental crop nurseries / A.J. Ferguson, S.N. Jeffers // Plant Dis. 1999. - Vol. 83. - N 12. - P. 1129-1136.

253. Ferrierre, H. Sensibilite du fraisier a Rhizoctonia solani et Rhizoctoniafragariae en function du mode d'obtention du plant / H. Ferrierre, P.M. Molot, J.C. Navatel // Rev. hortic. 1987. - N 274. - P. 45-47.

254. Ferrierre, H. Le Rhizoctone sur fraisier cause de Deperissement? / H. Ferrierre, J.M. Leumaire, P.M. Molot // Strawberry Diseases, Intern. V shop (16-18 October 1991). Bordeaux, France, 1991. - P. 125-127.

255. Ferriss, R.S. Effect of microwave oven on microorganisms in soil / R.S Ferriss // Phytopathology. 1984. - Vol. 74. - N1. - P. 121-126.

256. Fiola, J.A. Inheritance of tolerance to Verticillium albo-atrum in raspberry / J.A. Fiola, H.J. Swartz // Hort Sei. 1994. - Vol. 29. - N 9. - P. 1071-1073.

257. Flowers, R.A. Gallic acid in a procedures for Pythium spp. from soil / R.A. Flowers, J.W. Hendrix // Phytopathology. 1969. - Vol. 59. - P. 725731.

258. Follín, J.C. Use of benomyl in selective isolation of Pythiaceae / J.C. Follin // Cotton et Fibres tropicales. 1971. - Vol. 26. - P. 467.

259. Fordyce, W. Production of virus tested raspberries in Scotland / W. Fordyce, A.T. Jones, R.A. Rankin // Symposium on healthy planting material: BCPC. Monograph., 1986. P. 259-260.

260. Frank, A. Diseases and insect pests of blackberries, loganberries and strawberries / A. Frank // West. Wash. Agr. Exp. Sta. Mo. Bull. 1920. -vol. 8.-P. 14-16.

261. Fried, A. Rhizomfaule bei Erdbeeren / A. Fried // Obstbau. 2000. -Jg. 25. - N4.-S. 228-231.

262. Harms, H. Organische Schadstoffe in Siedlungsabfallen: Herkunft, Gehalt und Umsetzung in Boden und Pflanzen / H. Harms, D. Sauerbeck // Angew. Bot. 1984. - T. 58. - N 2. - S. 97-108.

263. Harris, D.C. Orchard trials on the control of apple collar rot / D.C. Harris // J. hortic. Sei. 1987. - Vol. 62, N 4. - P. 441-447.

264. Harris, D.C. Determining the risk wilt management / D.C. Harris // Grower. 1989. - Vol. 112. - N 2. - P. 24-25.

265. Harris, D.C. Control of verticillium wilt of strawberry in Britain by chemical soil disinfestation I D.C Harris // J: hortic, Sei. 1989. - Vol. 64, N6.-P. 683-686.

266. Harris, D.C. The Phytophthora diseases of apple / D.C. Harris // J. Horticult. 1991. - Vol. 66. - P. 513-544.

267. Harris, D.C. Integrated control of diseases of fruit crops / D.C. Harris // Phytoparasitica. 1998. - Vol. 26: - N 4. p. 331-332.

268. Harris, D.C. Crown rot (.Phytophthora cactorum) in glasshouse — grown strawberries at East Mailing Research station / D. Harris, J. Stickels // Plant Pathology. 1981. - Vol. 30. - N 4. - P. 205-212.

269. Harris, D.C. Studies on the possible role of micropropagation in the dissemination of the strawberry crown rot pathogen Phytophthora cactorum

270. D.C. Harris, D.W. Simpson, J.A. Bell // J. hortic. Sci. 1997. - Vol.72. - N l.-P. 125-133.

271. Harris, D.C., Bielenin A. Evaluation of selective media and bait methods for estimating Phytophthora cactorum in apple orchard soils/ D.C. Harris, A. Bielenin // Plant Pathol. 1986. - Vol. 35. - N 4. - P. 565-574.

272. Harutiunian, M.N. Premature apoplexy of apricot trees in Armenia. / M.N. Harutiunian // Acta hortic. Budapest, 1986. - N 192. - P. 227-230.

273. Hayes, J.E. Root and grown rots of cherry in New York caused by Phytophthora megasperma and Phytophthora cryptogea / J.E. Hayes, H.S. Aldwinckle, S.N. Jeffers // Acta Horticulturae. 2008. - Vol. 169. - P. 241249.

274. Herr, L.J. Disk plate method for selective isolation of Rhizoctonia solani from soil / L.J. Herr I I Can. J. Microbiol. - 1973. - Vol. 19. - P. 12691273.

275. Heiberg, N. Control of root rot of red raspberries caused by Phytophthora fragariae var. rubi / N. Heiberg // Plant Pathology. 1995. -Vol. 44.-N l.-P. 153-159. 1

276. Hendrix, F.F. Pythium as plant pathogens / F.F. Hendrix, F.A. Campbell // Ann. Rev. Phyt. 1973. - Vol. 11. - P. 77-98. i

277. Heimann, M. Uber die Ausbreitung des pilzparositaren Bleiglanzes (Stereum purpureum Pers.j durch Wurzelverwachsungen/ M. Heimann // Deutsche Baumschule. 1976. - Vol. 28. - N 2. - P. 34-37.

278. Hickman, C.J. The red core root disease of the strawberry caused by Phytophthora fragariae sp. nov. / C.J. Hickman // The'J. of Pomology and Hort. Sci. 1940. - Vol. 18. - P. 89-118.

279. Hiltunen, L.H. The potential for the biological control of basal rot of Narcissus by Streptomyces sp. / L.H. Hiltunen, C.A. Linfield, J.G. White // Crop Protect. 1995. - Vol. 14. - N 7. - P. 539-542.

280. Hine, R.B. The role of fungi in the peach replant problem / R.B. Hine // Plant Dis. Rep. 1961. - Vol.45. - P. 462-465.

281. Hoitink, H.A.J. Soil organic matter quality and induced resistance of plants to roots and foliar diseases / H.A.J. Hoitink, M.S. Krause; D.Y. Han, T.J.J. De Ceuster // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators Soc. 1999. - S.l. -Vol.48.-P. 361-367.

282. Horner, I J. Spatial distribution of Phytophthora cactorum in New York apple orchard soils / IJ. Horner, W.F. Wilcox // Phytopathology. -1996. Vol. 86. - N 10. - P. 1122-1132.

283. Horner, I.J. SADAMCAP, a technique for quantifying populations of Phytophthora cactorum in apple orchard soils / I.J. Horner, W.F. Wilcox // Phytopathology. 1995. - Vol. 85. - N 11. - P. 1400-1408.

284. Hosomi, A. Screening of fig varieties for rootstocks resistant to soil sickness / A. Hosomi, M. Dan, A. Kato // J. Japan. Soc. Hortic. Sci. 2002. -Vol. 71.-N2.-P. 171-176.

285. Huang, J.W. Recovery and pathogenicity of Rhizoctonia solani and Binucleate Rhizoctonia-Wks Fungi in Forest Nurseries/ J.W. Huang, E.G. Kuhlman // Plant Disease. 1989. - Vol. 73. - N 12, - P. 968-972.

286. Huisman, O.C., Asherth L. Verticillium albo-atrum quantitative isolation of Microsclerotia from soil / O.G. Huisman, L. Asherth // Phytopathology. 1974. - Vol. 64. - N 9. - P. 1159-1163.

287. Hunter, T. Fruit blotch- of strawberry caused by Fusarium sambucinum Fuckel. / T. Hunter, V.W.F. Jordan // Plant Pathology. - Vol. 23.-P. 118.

288. Husain, S.S. Rhizoctonia fragariae sp. nov. in relation to strawberry degeneration in Southwestern Ontario / S.S. Husain, W.E. McKeen // Phytopathology. 1963. - Vol. 53. - P. 532-540.

289. Hutchinson, D. Disease control in Ericas and Callunas / D. Hutchinson // Intern. Plant propagators Soc. Combin. Proc. 1982. - Vol. 32. - P. 228-230.

290. Hwang, J. Biocontrol of Rhizoctonia stem and root rot of poinsettia with Burkholderia cepacia and binucleate Rhizoctonia / J. Hwang, D.M. Benson // Plant Dis. 2002 - Vol. 86. - N 1. - P. 47-53

291. Ilieva, E. Phytophthora multivesiculata, a new species causing rot in Cymbidium / E. Ilieva, W.A. Veld, W. Veenbaas-Rijks, R. Pieters // Europ. J. Plant Pathol. 1998. - Vol. 104. - N 7. - P. 677-684.

292. Ilieva, E. Phytophthora root rot of raspberry in Bulgaria / E. Ilieva, F.X. Arulappan, R. Pieters // Europ. J. of Plant Pathol. 1995. - Vol. 101. -P. 623-626.

293. Gamliel, A. Non-chemical approach to soilborne pest management -organic amendments / A. Gamliel, M. Austerweil, G. Kritzman // Crop Protect. 2000. - Vol. 19. - N 8/10. - P. 847-853.

294. Garrett, S.D. Ecological groups of soil fungi: a survey of substrate relationships / S.D. Garrett // New Phytologist. 1951. - Vol. 50. - P. 149166.

295. Gasztonyi, M. Beochemical background of resistance to benomyl in genetically different strains of Fusarium oxysporum / M. Gasztonyi, G. Josepovits, A. Molhar, L. Hornok // Pesticide Biochem. Physiol. 1987. -Vol. 29.-N l.-P. 17-24.

296. George, S.W. Growth of Phytophthora fragariae on various clarified natural media and selected antibiotics / S.W. George, R.D. Milholland-// Plant Dis. 1986. - Vol. 70. - N 12. - P. 1100-1104.

297. Gilles, G. Le probleme de la fatigue du sole en culture du fraisier // Revue de e'Agriculture. 1966. - vol. 7/8. - p. 789-799.

298. Gilles, G. Protection phytosanitarie en culture de fraisier / G. Gilles // Fruit Belts. 1976. - Vol. 44. - N 375. - P. 219-222.

299. Gilles, G. Le probleme des maladies des racines sur fraisier / G. Gilles, E. Bai // Le Fruit Beige. 1985. - Vol. 53. - N 410. - P. 92-96.

300. Gilman, J.C. A manual of Soil Fungi / J.C. Gilman The Iowa State University Press. Ames. Iowa. USA. - 1975. - 450 p.

301. Giraud, M. Fatique de soil / M. Giraud, J. Faure // Infos. 1990. -Vol. 60. - p. 21-26

302. Glaser, B. Pythium spp. als Erreger einer Rindenekrose an der Sauerkirsche / B. Glaser, D. Schwarz // Nachbl. Pflzschutz. in DDR. 1986. -J. 40.-N6.-S. 125-128.

303. Golebniak, B. Wplyw wybranych fiingicydow na rozwoj skorzastej zgnilizny owocow truskawki (Phytophthora cactorum) / B. Golebniak, A. Jarosz / Progress in plant protection. -Poznan, 2001 Vol. 41. - N 2. - P. 766-768.

304. Gordon, T.R. Differential infection of mother and runner plant generations by Verticillium dahliae in a high elevation strawberry nursery / T.R. Gordon, S.C. Kirkpatrick, D.V. Shaw, K.D. Larson // Hort Sei. 2002 -Vol. 37.-N 6.-P. 927-931.

305. Gourley, C.O. Microfungi of crowns and roots of apparently healthy dormant strawberry plants / C.O. Gourley // Canadian J. Botany. 1969. -Vol. 47.-N4.-P. 943-949.

306. Graf, H. Pilze als Ursache fur das kummern und Absterben von Erdbeerpflanzen / H. Graf // Mitteilungen des Obstbau Ringes des Alten Landes. 1979. - Vol. 34. - N 4. - P. 128-134.

307. Graham, K.M. Control of storage of strawberry plants / K.M. Graham, M.P. Harrison, C.E. Smith // Canad. Plant Dis. Sur. 1962. - Vol. 42. - P. 205-207.

308. Gronsbo, G. Containment and eradication of Phytophthora fragariae in Sweden//Bull. OEPP. 1984. - Vol. 14. -N3. p. 349-351.

309. Gu, Y.-H. Impact of carbon starvation on stress resistance, survival in soil habitats and biocontrol ability of Pseudomonas putida strain 2C8 / Y.-H. Gu, M. Mazzola //Soil Biol. Biochem. 2001. - Vol. 33. - N 9. - P. 1155-1162.

310. Gullino, C. Rinvenimento su rododendro di Phytophthora ramorum / C. Gullino, M.C. Garofalo, F. Moretti, G. Gianetti, E. Mainenti // Inform, agr. 2003 - An. 59. - N 19. - P. 87-89.

311. Ingram, R.K. Tissue culture methods for plant pathologists / R.K. Ingram, O. Cohen // Blackwell. Oxford, 1980. - 272 p.

312. Jacobs, K.A. Ornamental cherry tolerance of flooding and phytophthora root rot / K.A. Jacobs, G.R. Johnson // Hort. Sci. 1996. -Vol. 31.-N 6.-P. 911-915.

313. Jaffes, B.A. Etiology of an apple replant disease / B.A. Jaffes // PH. Thesis Cornel University. Idaho, 1981. - 65 p.

314. Jaffes, B.A. Fungi associated with roots of apple seedlings grown in soil from an apple replant site / B.A. Jaffes, G.S. Abawi, W.F. Mai // Plant Dis. 1982. - Vol. 66. - N 10. - P. 942-944.

315. Jaffes, B.A. Grown reduction of apple seedlings by Pratylenchus penetrans as influenced by seedlings age on inoculation / B.A. Jaffes, W.F. Mai//J. Nematol. 1979.-Vol. 11.-P. 161-165.

316. Jamart, G. The control of red core caused by Phytophthora fragariae on strawberries in N.F.T. / G. Jamart, O. Kamoen, J. Vaerenbergh // Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 1985. Vol. 50. - N 3B. - P. 1087-1096.

317. Jarvis, W.R. Internal necrosis of strawberry gowns / W.R. Jarvis, A.J. Hargreaves //Rep. Scottish hort. Res. Inst. 1972. - P. 48.

318. Jarvis, W.R. Biology and control of Botrytis diseases / W.R. Jarvis, A.J. Hargreaves // Rep. Scott. Hort. Res. Inst. Seria E. 1973. - N 2. - P. 121-124.

319. Jee, H.-J. Outbreak of Phytophthora Rot on Pear Under Environmental Conditions Favourable to the Disease / H.-J. Jee, W.-D. Cho, K.-W. Nam, Y.-S. Park // Plant Pathol. J. of Korean. 2001. - Vol. 17. -N4. - P. 231-235.

320. Jeffers, S.N. Phytophthora grown, collar rots / S.N. Jeffers, W.F. Wilcox // Jones A.L. and Aldwinckle H.S. Eds. Compendium of Apple and Pear Diseases. ASP Press, St. Paul, MN, USA. - 1990. - P. 43-45.

321. Jeffers, S.N. Ex cited twig assay for study of apple tree crown rot pathogens in vitro / S.N. Jeffers, H.S. Aldwinckle, T.J. Burr, P.A. Arneson //Plant Dis. 1981. - Vol. 65. - P. 823-825.

322. Jeffers, S.N. Phytophthora and Pythium species associated with grown rot in New York apple orchards / S.N. Jeffers, H.S. Aldwinckle, T.J. Burr, Arneson P.A // Phytopathology. 1982. - Vol. 72. - P. 533-538.

323. Jordan, V.W.L. Control of Verticillium wilt transmission in strawberry runners with systemic benzimidazole type fungicides / V.W.L. Jordan // Ann. app. Biology. 1975. - Vol. 81. -N 1. - P. 43-50.

324. Johnson, F.L. Methods for research on the ecology of soil-borne plant pathogens/ F.L. Johnson, E.A. Curl Burgess. Publishing. Co. -Minneapolis, 1972. - 247 p.

325. Jovaisiene, Z. Phytophthora fragariae, a new fungi species / Z. Jovaisiene // Bot.lith. 2004. - Vol. 10. - N 3. - P. 233-236.

326. Kao, C.W., Leu L.S. Strawberry fruit rot by Phytophthora cactorum and P. citrophthora / C.W. Kao, L.S. Leu // Plant Prot. Bull. Taiwan, 1979.-Vol. 21.-P. 239-243.

327. Kari, J.M. Cylindrocarpon rot-root of tea in Kenya / J.M. Kari, J.J. Onduki // E. Afr. Agric. For. J. 1972. - Vol. 37. - P. 212-214.

328. Katherine, B.W. Strawberry Black Root Rot: A Review / B.W. Katherine, P.P. Marvin, W.F. Wilcox // Adv. in Strawberry Research. -1994.-Vol. 13.-P. 13-19.

329. Keer, A. The root rot Fusarium complex of pea / A. Keer // Australian J. Biol. Sei. - 1963. - Vol. 16. - P. 55-69.

330. Kennedy, D.M., Duncan J.M. Occurrence of races in Phytophthora fragariae var. rubi on raspberry // Acta Horticulture. 1993. - N 352. - P. 555-562.

331. Kim, C.H. Studies on varietals resistance and control to the wilt of strawberry caused by Fusarium oxysporum / C.H. Kim, H.D. Seo, W.D. Cho, S.D. Kim // Korean J. Plant Prot. 1982. - Vol. 21. - P. 61-67.

332. Kim, B.S. Structure elucidation and antifungal activity of an anthracycline antibiotic, daunomycin, isolated from Actinomadura roseola / B.S. Kim, S.S. Moon, B.K. Hwang // J. Agr. Food Chem. 2000 - Vol. 48. -N5. - P. 1875-1881.

333. Kinsbursky, R.S. Influence of soil on inoculum density, disease incidence relationships of Rhizoctonia solani / R.S. Kinsbursky, A.R. Weinhold // Phytopathology. 1988. - Vol. 78. - N 2. - P. 127-130.

334. Kirk, P.M. Ainsworth and Busby's Dictionary of the Fungi / P.M. Kirk, P.F. Cannon, J.C. David, J.A. Stalpers // CAB International. 2001.

335. Kloczko M. Untersuchungen zur Phytophthora — Himbeersterben und zur den Moglichkeikeiten seiner Bekämpfung / M. Kloczko, H. Graf, D.

336. Knosel // Mitt. Obstbau ver suchsringes Alten Landes. 1990. - Vol.45. - N 9. - S. 298-307.

337. Ko, W.H. A selective medium for quantitative determination of Rhizoctonia solani in soil / W.H. Ko, T.K. Hora // Phytopathology. 1971. -Vol. 61.-P. 707-710.

338. Ko, W.H. Infection and colonization potential of sporangia, zoospores and chlamydospores of Phytophthora palmivora in soil / W.H. Ko, M.J. Chan//Phytopathology. 1974. - Vol. 64. - P. 1307-1309.

339. Kohl, J. Biological control of Botrytis cinerea in cyclamen with Ulocladium atrum and Gliocladium roseum under commercial growing conditions / J. Kohl, M. Gerlagh, B.H. Haas, M.C. Krijger // Phytopathology. 1998. - Vol. 88. - N 6. - P. 568-575.

340. Komada, T. A new selective medium for isolating Fusarium from natural soil / T. Komada//Phytopat. Proceeding. 1976. - Vol. 3. - P. 221.

341. Komada, T. Application for control of Fusarium wilt of strawberry / T. Komada, T. Fukui I I Ann. Phytopathol. Soc. Japan. 1982. - Vol. 48. - N 5. - P. 570-577.

342. Kooistra, T. Rhizoctonia solani as a component in the bottom rot complex of glasshouse lettuce / T. Kooistra // Verslagen en Mededelingen. -1983. 145 pp.

343. Korolev, N. Improved medium for selecting nitrate-nonutilizing (nit) mutants of Verticillium dahliae / N. Korolev, T. Katan // Phytopathology. -1997. Vol. 87. - N 10. - P. 1067-1070.

344. Kouyeas, H. On the apoplexy of stone fruit trees caused by Phytophthora spp. / H. Kouyeas // Ann. Inst. Phytopathol. Benaki, 1977. -Vol. 10.-P. 163-170.

345. Krober, H. Erfahrufen mit Phytophthora de Bary und Pythium Prigsheim / H. Krober // Mittelunben aus Biologische Bundesanstalt Fur Land und Forstui rtschaft. - Berlin-Dahelem, 1985. - H.225. - 175 s.

346. Kudeka, V. Priciny odumirani maliniky / V. Kudeka, E. Kovacikova // Ochr. Rostl. 1989. - Vol. 25.-N2.-P. 109-115.

347. Labrie, C. Effect of chitin waste-based compost produced by two-phase composting on two oomycete plants pathogens / C. Labrie, P. Leclerc, N. Cote, S. Roy, R. Brzezinski, R. Hogue, C. Beaulieu // Plant and soil. 2001. - N 235. - P. 27-34.

348. Labrousse, F. Apoplexie du fraisier / F. Labrousse // Rev. de pathologie Vegetele en Entomologie Agricole. 1933. - Vol. 20. - P. 76.

349. Lacicowa, B. Badania nad pzzyczyna zgnilizy korzeni truckawki (Fragaria grandiflora) / B. Lacicowa // Roczniki Nauk. Rolniczych Ser. E. 1977. - Vol. 6, N 2. - S. 201-209.

350. LaMondia, J.A. Effects of Pratylenchus penetrans and Rhizoctonia fragariae on vigor and yield of strawberry / J.A. LaMondia // J. Nematol. -1999. Vol. 31. - N4. - P. 418-423.

351. LaMondia, J.A.; Elmer W.H. Influence of chitin soil amendments and flutolanil application on black root rot / J.A. LaMondia, W.H. Elmer // Adv. in Strawberry Res. 1992. - Vol. 11. - P. 21-27.

352. LaMondia, J.A. Effect of entomopathogenic nematodes and Trichoderma harzianum on the strawberry black root rot pathogens Pratylenchus penetrans and Rhizoctonia fragariae / J.A. LaMondia, R.S. Cowles // J. Nematol. 2002. - Vol. 34. - N 4. - P. 351-357.

353. LaMondia, J.A. Field performance of Twenty-one Strawberry Cultivars in a Black Root Rot-Infested Site / J.A. LaMondia // J. Am. Pomol. Soc. 2004. - Vol. 58. - N 4. - P. 226-232.

354. LaMondia, J.A. The influence of Pratylenchus penetrans and temperature on black root rot of strawberry by binucleate Rhizoctonia spp. / J.A. LaMondia, S.B. Martin // Plant Dis. 1989. - Vol. 73. - N 2. - P. 107110.

355. Latorre, B.A. Phytophthora species associated with crown and root rot of apple in Chile / B.A. Latorre, M.E. Rioja, W.F. Wilcox // Plant Dis. -2001. Vol. 85. - N 6. - P. 603-606.

356. Laurent, A.S. Long-term orchard groundcover management system affect soil microbial communities and apple replant disease severity /A.S. Laurent, I.A. Merwin, J.E. Thies // Plant Soil. 2008. - Vol. 304. - P. 209225.

357. Laun, N. A comparison of the resistance against Phytophthora fragariae var. rubi, the causal agent of a raspberry root rot./ N. Laun, V. Zinkernagel // J. Phytopathol. 1997. - Vol. 145. - N 5/6. - P. 197-204.

358. Lee, S.-B. Resistance of selected Malus germplasm to Rosellinia necatrix / S.-B. Lee, K. Ko, H.S. Aldwinckle // J. Am. Pomol. Soc. 2000 -Vol. 54.-N4.-P. 219-228.

359. Leroux, P., Gredt M. Phenomenes de resistance aux fongicides antimildious: Que LQVES / P. Leroux, M. Gredt // Phytiatrie -Phytopharmacie. 1981. - Vol. 30. - P. 273-282.

360. Lihnel, D. Forsok rorande vissnesjuka hos azaleor / D. Lihnel // Abstract in Rev. appl. Mycol. 1945. - Vol1. 25, p. 215.

361. Linderman R.C., Zeitoun F. Phytophthora cinnamoni causing root rot and wilt of nursery-grown nature Western azalea and salad / R.C. Linderman, F. Zeitoun // Plant Dis. Rep. -1977. Vol. 61. - P. 1045-1048.

362. Litterick, A.M. Rhizoctonia spp. associated with container-grown ericaceous plants in Scotland / A.M. Litterick, M.P. McQuilken, S.J. Holmes // J. Phytopathol. 1995. - Vol. 143. - N 8: - P. 509-510.

363. Lockhart, C.L. A systemic fungicide for Verticillium wilt of strawberries / C.L. Lockhart, A.A. Mac Nab, B. Bolwyn // Canadian Plant Dis. Sur. 1969. - Vol. 49. - N 2. - P. 46-48.

364. Lockwood, J.L. Evolution of concepts associated with soil borne plants pathogens / J.L. Lockwood // Ann. Review Phytopathol. 1988. -Vol. 26.-P. 93-121.

365. Lopes-Aranda, J.M. Strawberry production in Spain: Alternatives to MB, 2008 Results / J.M. Lopes-Aranda, L. Miranda, C. Soria et. al. // Ann. Intern. Res. Conf. of Methyl Bromide Alternatives and Emissions Reductions. 2008. - 59 pp.

366. Ludaskas, A. Problems of a longtimes strawberry growing in one plot

367. A. Ludaskas, J. Repeckiene, N. Uslis, A.B. Rasinskiene // Acta Sei. Pol. -2003.-N2.-P.56-68.

368. Ludvikova, J. Odruda jahodniku "Pegasus" Vedecke prace ovocnarske / J. Ludvikova, F. Paprstein // Holovousy. 2003. - N 18. - S. 173-174.

369. Lutz, M. Das Wuzzelsterbender Himbeere / M. Lutz, H. Lauber // Erwerbsobstbau. 1981. - Vol. 23. - N 10. - P. 237-238.

370. Maas, J.L. Response of strawberry cultivars to fall application of benomyl for storage decay protection / J.L. Maas // Horticultural Sei. -1976.-Vol. 9.-P. 201-202.

371. Maas, J.L. Compendium of strawberry diseases / Maas J.L. APS Press. St. Paul, 1984, 138 pp.

372. Maas, J.L. Strawberry Disease Management. / J.L. Maas // Diseases of Fruits and Vegetables. Netherlands, 2004. - Vol. 11. - P. 441-483.

373. Maas, J.L. Compendium of strawberry diseases, 2 ed. / J.L. Maas //APS Press. St. Paul, 1998. 98 pp.

374. Maas, J.L. Response of strawberry cultivars to fall application of benomyl for storage decay protection / Maas J.L. // Hortic. Sei. 1976. -Vol. 9.-P. 201-202.

375. Mai, W.F. Determining the cause and extent of apple, cherry and pear replant disease under controlled conditions / W.F. Mai, G.S. Abawi // Phytopathology. 1978. - Vol. 68. - P. 1540-1544.

376. Maloney, K.E. Raised beds and metalaxyl for controlling Phytophthora rot of raspberry. / K.E. Maloney, W.F. Wilcox, J.C. Sanford // Hort. Sci. 1993. - vol. 28. - N 11. - P. 1106-1108.

377. Manil, L.M. Additional experiences to elucidate the microbial component of soil suppressive ness towards strawberry black root rot complex / L.M. Manil, F. Caputo, G. Barruzi // Ann. of appl. Biology. -2005. Vol. 146. - N 4. - P. 421-431.

378. Martin, F. Investigation on root heath and rhizosphere ecology of strawberry / F. Martin // Phytoparasitica. 1998. - Vol. 26. - N 3. - P. 261.

379. Matheron, M.E. Comparative ability of six fungicides to inhibit development of Phytophthora gummosis on citrus / M.E. Matheron, M. Porchas // Plant Dis. 2002. - Vol. 86. - N 6. - P. 687-690.

380. Mazzola, M. Identification and pathogenicity of Rhizoctonia spp. isolated from apple roots and orchard soils / M. Mazzola // Phytopathology. 1997. - Vol. 87. - N 6. - P: 582-587.

381. Mazzola, M. Suppression of specific apple root pathogens by Brassica napus seed meal amendment regardless of glucosinolate content / M. Mazzola, D. M. Granatstei, D.C. Elfving, K.M. Mullinix // Phytopathology. -2001.-Vol. 91.-P. 673-679.

382. Mazzola, M. Progress toward development of biologically based strategies for the management of apple replant disease / M. Mazzola, J. Brown, A. Izzo, A. Ghanen, M.F. Cohen // Phytopathol. Pol. - Vol. 39. -Poznan, 2006.-p. 11-18.

383. May, L.L. Controle de Phytophthora parasitica com fungicidas e efeito desses produtos no crescimento micelial de Trichoderma / L.L. May, H. Kimati // Summa phytopathol. 2000 - Vol. 26. - N 1. - P. 52-57.

384. Mcintosh, D.L. Collar rot of pear trees in British Columbia / D.L. Mcintosh // Phytopathology. 1959. - Vol. 49. - P. 795-797.

385. Mcintosh, D.L. Phytophthora spp. in soil of the Okanagan and Simikameen valleys of British Columbia // Canad. J. Botany. 1964. - Vol. 42.-P. 1411-1445.

386. Mcintosh, D.L. An improved agar medium for isolating Phytophthora cactorum from soil / D.L. Mcintosh // Canadian Botany. 1975. - Vol. 53. -N. 14.-P. 1444-1445.

387. Mcintosh, D.L. Phytophthora cactorum propagule density in orchard soil / D.L. Mcintosh // Plant Disease Rep. 1977. - Vol. 41. - P. 528-532.

388. McKeen, C.D. A measure of control of Verticillium wilt in eggplant and tomato with soil applications of benomyl / C.D. McKeen // Proceedings of the Canadian Phytopathological Soc. 1972. - Vol. 39. - P. 35.

389. McQuilken, M.P. Gliocladium catenulatum as a potential biological control agent of damping-off in bedding plants / M.P.

390. McQuilken, J. Gemmell, M.-L. Lahdenpera // J. Phytopathol. 2001. - Vol. 149.-N3/4/-P. 171-178.

391. Merkle, F. Eliminierung von Phytophthora fragariae durch Meristemkultur / F. Merkle, E. Seemuller// Gartenbauwissenschaft. 1984. -J. 49.-N5/6.-S. 227-230.

392. Meszka, B. Occurrence and harmfulness of verticillium wilt on strawberry plantations in Poland / B. Meszka, A. Bielenin, A. Masny // Progress in plant protection. Inst, of plant protection. Poznan, 2006. - Vol. 46. - N 1. - P. 446-450.

393. Meyer, J.R. Selective influence on populations of rhizosphere or rhizoplane bacteria and actinomycetes by mycorrhizas formed by Glomus fasciculatum / J.R. Meyer, R.G. Linderman // Soil Biol. Biochem. 1986. -Vol. 18.-N2.-P. 191-196.

394. Milholland, R.D. Criteria of Identifying Pathogenic Races of Phytophthora fragariae on Selected Strawberry Genotypes / R.D. Milholland, W.O. Cline, M.E. Daykin // Phytopathology. 1989. - Vol. 79. -N5. - P. 535-538.

395. Miller, P.W. Studies on the cause of strawberry root rot in Oregon: second report of progress / P.W. Miller // Plant Disease Rep. 1948. - Vol. 32,.-P. 309-316.

396. Miller, P.W\ Hot water treatment of fungi infecting strawberry roots / P.W. Miller, R.D. Stoddard // Phytopathology. 1956. - Vol. 46. - P. 694696.

397. Michai, S.H. Fungi associated with strawberry root rot and the role of centain amino acids in their pathogenicity / S.H. Michai, A.M. Tarabeih, M.A. Madkour, H.H. Aly // Egyptian J. Phytopathology. 1980. - Vol. 12. -N 1-2. - P. 107-112.

398. Mircetich, S.M. The role of Pythium in feeder roots of diseased and symptom less peach trees and in orchard soils in peach trees decline / S.M. Mircetich//Phytopathology. 1971. - Vol. 61. - P. 357-360.

399. Mircetich, S.M. Peach root rot caused by Phytophthora cinnamoni / S.M. Mircetich, H.L. Keil // Phytopathology. 1969. - Vol. 59. - P. 1041.

400. Mircetich, S.M. Phytophthora root and grown rot of cherry trees / S.M. Mircetich, M.E. Matheron // Phytopathology. 1976. - Vol. 66. - P. 549-558.

401. Mishra, P.K. Integrated and biological control of gladiolus corm rot and wilt caused by Fusarium oxysporum f. sp. gladioli / P.K. Mishra, A.N. Mukhopadhyay, R.T.V. Fox // Ann. appl. Biol. 2000. - Vol. 137. - N 3. -P. 361-364.

402. Mitchell, PJ. Relationship of inoculum levels of several soil-borne species of Phytophthora and Pythium to infection of several hosts/ P.J. Mitchell //Phytopathology. 1978. - Vol. 68. - N 12. - P. 1754-1759.

403. Mohan, S.B. Evaluation of antis era raised against Phytophthora fragariae for detecting the red core disease of strawberries by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) / S.B. Mohan // Plant Pathol. 1988. -Vol. 37.-N2.-P. 206-216.

404. Mohan, S.B. Assessment of red core resistance of strawberry using enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) / S.B. Mohan, D.M. Kennedy, J.M. Duncan // J. Phytopathol. 1989. - Vol. 126. - N 2. - P. 97103.

405. Molot, P.M. Recheres sur la necrose du fraisier prologue par le Phytophthora cactorum (Leb. et. Conch.) Schroet. / P.M. Molot, J.G. Nourrisseau // Ann. Phytopath. 1970. - Vol. 2. - N 1. - P. 117-137.

406. Molot, P.M. Mise en- evidence et etude de la conservation olu Phytophthora cactorum dans la soil (travaux realises sur le fraisier) / P.M. Molot, J.G. Nourrisseau // Actas de III Cong. Da Uncao Fitopathol. Mediterrane, (22-28 October 1972). P. 87-92.

407. Molot, P.M. Le Phytophthora cactorum sur fraisier / P.M. Molot, J.C. Navatel, J.G. Nourrisseau, P. Germain, J.P. Leroux // Centre Technique1.terprofessionnal des Fruits et Legumes. Documents N 40. (4-e Trimester). 1973.-P. 49.

408. Molot, P.M. Bilan des recherches realisees par 1 NGN pour lutte contre le Phytophthora cactorum du fraisier / P.M. Molot, J.G. Nourrisseau // Pepinieristes Horticult. Varaichess Revue Hortícola. - 1978. - N 191. -P. 23-33.

409. Molot, P.M. Contamination in vitro de la fraise et de la tomate immature par diverses especes de Phytophthora / P.M. Molot, A. Beyries // Ann. Phytopathol. 1976 - Vol. 8 - P. 91-94.

410. Montgomery, I.G. Red core disease of strawberry / I.G. Montgomery // Horticult. Rev. 1997. - N 5. - P. 1-47.

411. Montgomery, I.G. The pathogenicity of Phytophthora species to red raspberry / I.G. Montgomery, D.M. Kennedy // Acta Horticulture. 1980. -N112.-P. 167-171.

412. Montgomery,.I.G. The effect of dazomet, fenaminosulf and soil ridges on red core disease of strawberry. / I.G. Montgomery, D.M. Kennedy // Ann. Appl. Biology. 1982. - Vol. 100. - P. 443-445.

413. Moyls, A.L. Heat transfer model for a heated cylinder of replant soil / A.L. Moyls // Appl. Engg in Agr. 1994. ,- Vol. 10. - N 1. - P. 53-57.

414. Mudler, D. A rot of the primary root of the apple seedlings / D. Mudler // Nederlands J. Plant Pathology. 1968. -Vol. 74. - P. 30-32.

415. Mudler, D. The pathogenicity of several Pythium species to rootlets of apple seedlings / D. Mudler // Nederlands J. Plant Pathology. 1969. - Vol. 75. - № V2. - P.178-181.

416. Mudler, D. Soil disinfestations. / D. Mudler. Amsterdam, 1979. -386 p.

417. Muller, H. W. K. Zur Bekämpfung der Erdbeer Verticilliose durch systemiche Fungizide / H. W. K. Muller // Mitteillung. Erwerbsobstabau. -1975.-Vol. 17.-N3.-P. 36-38.

418. Nakada, T. Effect of topsin M plus frowncide on the control of white root rot on Japanese pear / T. Nakada // Agchem. Age. 1997. - N 175. - P. 16-19.

419. Nakamura, H. Conidioma production of the white root rot fungus in axenic culture under near-ultraviolet lath radiation / H. Nakamura, K.-I. Ikeda, M. Arakawa, N. Matsumoto // Mycoscience. 2002. - Vol. 43. - P. 251-254.

420. Nattrass, R.M. Notes on Nectria rubi / R.M. Nattrass // II Trans. Br. Mycol. Soc. 1927. - Vol. 12. - P. 23-27.

421. Navatel, J.C. La production de plants de fraisiers certifies dans quelques pays Europeans / J.C. Navatel, B. Fournier // Bull. OEPP. 1986. -Vol. 16. - P. 389-393.

422. Nelson, P.E. Pathogenicity of Idriella lunata on strawberry plants / P.E. Nelson // Phytopathology. 1957. - Vol. 47. - P. 438-444.

423. Nelson, S.O. Use of microwave and lower frequency Rf energy alfalfa seed germination / S.O. Nelson // J. Microwave Power. 1976. - Vol. 59. -N3.-P. 270-277.

424. Nemec, S. Mycoflora succession on strawberry roots developing root rot symptoms / S. Nemec // Mycopathologia. 1975. - Vol. 56. - N 2. - P. 67-72.

425. Nemec, S. Fungi associated with strawberry root rot in Illinois / S. Nemec // Mycopathologia et. Mycologia appl. 1970. - Vol. 42. - N 3-4. -P. 331-346.

426. Nemec, S. Pythium species associated with strawberry root necrosis in southern Illinois / S. Nemec, H. Sanders // Plant Dis. Rep. 1970. - Vol. 54. -Nl.-P. 49-51.

427. Neubauer, C. Verticillium an Erdbeeren / C. Neubauer //Obstbau. -1999. Jg. 24. - N 5. - S. 279-281.

428. Neuweiler, R. Anbautechnische Kniffe gegen das Himbeerwurzelsterben / R. Neuweiler // Obstbau. 2000. - Jg. 25. - N 5. -S. 310-313.

429. Nickerson, N.L. Canadian races of the red stele root rot fungus, Phytophthora fragariae var. fragariae / N.L. Nickerson, A.R. Jamieson // Adv. of Strawberry Res. 1995. - Vol. 14. - P. 31-35.

430. Nolan, R.E. A root rot of strawberry caused by a species of Diplodia / R.E. Nolan//Phytopathology. 1935. - Vol. 25. - P. 474.

431. Nourrisseau, J. G. Un Phytophthora cause de Deperissement du Fraisier eh France / J. G. Nourrisseau, A. Baudry // Phytoma. 1987. - N 384.-P. 39-41.

432. Nourrisseau, J. G. Une nouvelle maladies du fraisier en France: Le cocur rouge des raciness / J. G. Nourrisseau, G. Malato, A. Baudry // Phytoma. 1983.-N350.-P. 31-35.

433. Nyczepir, A.P. Incidence of Fusarium and Pythium spp. in Peach Feeder Roots as Related to Dibromochloropropane Application for Control of Criconemalla xenoplax / A.P. Nyczepir, S.A. Lewis // Plant Dis. 1984. -Vol. 68. - P. 497-499.

434. Okamoto, Y. A new diseases "Yellows" of strawberry plants / Y. Okamoto, S. Fujii, K. Kato, A. Yoshioka // Ann. Phytopathol. Soc. Japan. -1970.-Vol. 36.-P. 166.

435. Olsson, C.H.B. Diagnosis of Phytophthora infections in raspberry and strawberry plants by ELISA tests / C.H.B. Olsson // J. Phytopathol. 1995. -Vol. 143.-N5.-P. 307-310.

436. Olsson, C.H.B. Sensitivity of the ELISA test to detect Phytophthora fragariae var.rubi in raspberry roots / C.H.B. Olsson, N. Heiberg // J. Phytopathol. 1997. - Vol. 145. - N 7. - P. 285-288.

437. O'Neill, T.M. Effect of fosetyl aluminium and captafol on red core disease and fruit yield of established strawberries / T.M. O'Neill, G.W. Griffin // Plant Pathol. 1987. - Vol. 36. - N 3. - P. 258-263.

438. Orlikowski, L.B. Efficacy of metalaxyl and phosethyl-aluminium in the control of Phytophthora cactorum on apple trees / L.B. Orlikowski, M. Leoni-Ebeling, A Schmidle // Z. Pflanzenkrnkh. 1986. - Vol. 93. - N 2. -. P. 202-209.

439. Orlikowski, L.B. Occurrence and control of Rhizoctonia rot on Ficus pumila / L.B. Orlikowski, C. Skrzypczak // Phytopathol. pol. Poznan, 1995.-N9(21).-P. 29-35.

440. Orlikowski, L.B. First record of Phytophthora ramorum in Poland / L.B. Orlikowski, G. Szkuta // Phytopathol. pol. Poznan, 2002. - N 25. - P. 69-79.

441. Osterwalder, A. Uber eine neue auf kranken Himbeerwurzeln vorkommende Nectria und die georige Fusarium generation / A. Osterwalder // Ber. Dtsch. Bot. Ges. -1911.- Vol. 29. P. 611-622.

442. Otto, G. Bodenmudigkeit bei Apfel-nur ein Nachbauproblem / G. Otto // Gartenbau. 1992. - N 3. - S. 97-99.

443. Otto, G. Stand und Methoden der Bekämpfung von Nachbauschaden in Baumschulen / G. Otto, H. Winkler // Gartenbau. 1989. - Vol. 36. - N 3. - S. 5-6.

444. Overman, A.J. Organophosphates soil fumigants and strawberry / A J. Overman // Proc. Soil and crop Sei. Soc. of Florida. 1965. - Vol. 25. - P. 351-356.

445. Paavi, P. Strawberry root rot in Finland / P. Paavi // Ann. Agric. Fennial. 1981. - Vol. 20. - P. 192-197.

446. Pacholak, E. The effect of different methods of preventing-replanting disease and different levels of irrigation on soil and leaf mineral content / E. Pacholak, Z. Zydlik, M. Zachwieja // J. Fruit ornamental Plant Res. 2004. -Vol. 12.-P. 69-81.

447. Palti, J. Cultural Practices Infections Crop Disease / J. Palti. Berlin, Heidelberg, New York, 1981. - 163 p.

448. Papavizas, G. S. Evaluation and various media and antimicrobial agents for isolation of Fusarium from soil / G. S. Papavizas I I Phytopathology. 1967. - Vol. 57. - P. 848-852.

449. Parikka, P. Strawberry root rot in Finland. / P. Parikka // Arm. Agr. Fenniae / Ser. Phytopathologia. 1981. - Vol. 20. -N 85. - P. 192-197.

450. Parmeter, J.R. Affinities of some Rhizoctonia species that resemble mycelium of Thanatephorus cucumeris / J.R. Parmeter, H.S. Whitney, W.D. Piatt// Phytopathology. 1967. - Vol 57. - P. 218-223.

451. Patkowska, E. Effectiveness of grapefruit extract and Pythium oligandrum in the control of bean and peas pathogens / E. Patkowska // J. of Plant Protection Res. Poznan-Warsaw, 2006. - Vol. 46. - N 1. - P. 15-28.

452. Pattison, J. A. Assessing the resistance of red raspberry (Rubus idaeus L.) genotypes to Phytophthora fragariae var. rubi in hydroponic culture / J.A. Pattison, W.F. Wilcox, C.A. Weber // Hort Sci. 2004. - Vol. 39. - N 7.-P. 1553-1556.

453. Peet, F.G. A New Simulator for the Spread of Forest Root Diseases by Individual Root Contacts / F.G. Peet, R.S. Hunt // Forest Sci. Bethesda, 2005. - Vol. 51. - N 5. - P. 425-437.

454. Piquemal, J.P. Deperissement du Poirier: Role de quelques champignons telluriques / J.P. Piquemal, C. Grosolaude, B. Ganne // Rev. Hortic. 1985. - N 253. - P. 37-38.

455. Pinkerton, J.N.K. The use of soil solarization for the management of soilborne plant pathogens in raspberry and strawberry production / J.N.K.

456. Pinkerton, K.L. Ivors, P.W. Reeser, R.R. Bristow, G.E. Windon // Plant Disease. 2002. - Vol. 86. - P. 645-651.

457. Pinto de Torres, A. Pythium ultimum Trow. Causate de pudricion del tronco en plantutas de carozo y en almendros y damascos de dosanos / A. Pinto de Torres, S.M. Mircetich // Agr. Tech. 1976. - Vol. 39. - N 4. - P. 171-173.

458. Pinzon, R. C. Stratego DC 250 a new means of control for Pyricularia oryzae, Rhizoctonia solani, and other important rice-disease pathogens in Columbia / R. C. Pinzon // Pflanzenschutz-Nachr. Bayer. -2003. - Vol. 56. - N 2. - S. 399-416.

459. Plakidas, A.G. Pythium root rot of strawberry in Louisiana / A.G. Plakidas // Phytopathology. 1930. - Vol. 20. - P.121-122.

460. Plakidas, A.G. Strawberry diseases / A.G. Plakidas. Lousiana State University Press, Baton Rouge. - 1964. - 195 pp.

461. Pohto, A. Survey for Phytophthora fragariae var. fragariae in Finland / A. Pohto // Bull. OEPP. Oxford, 1999. - Vol. 29. - N 14. - P. 159-162.

462. Pommier, J.J. Experimentation: Desinfection et fatigue des sols / J.J. Pommier // Fruits Legumes. 1987. - Vol. 39. - P. 37-38.

463. Preece, T.F. Laboratory technology for plant pathologists: yesterday, today and tomorrow / T.F. Preece // Rev. Plant Pathol. 1981. - Vol. 60. -N4.-P. 150-152.

464. Priyatmojo, A. Characterization of Rhizoctonia spp. causing root and stem rot of miniature rose/ Y. Yotani, K. Hattori, K. Kageyama, M. Hyakumachi// Plant Dis. 2001. -Vol. 85. -N 11. -P. 1200-1205.

465. Rankin, M. Raspberry mosaic and blue stem / M. Rankin. Circular: New York State Agric. Exp. Sta. - Geneva, 1924. - N 751. - 4 p.

466. Raski, DJ. Pratylenchus penetrans tested on strawberries grown black root rot in soil / D.J. Raski // Plant Disease Rep. - 1956. - Vol. 40 (8). - P. 690-698.

467. Reynolds, K.M. Effect of weather variables on strawberry leather rot epidemics / K.M. Reynolds, L.V. Madden, M.A. Ellis // Phytopathology. -1988. Vol. 78. - N 6. - P. 822-827.

468. Ribeiro, O.K. The mycorrhizal nature of Rhizoctonia fragariae with strawberry plants and its role in black root rot / O.K. Ribeiro // M.S. thesis. West Virginia Univ. Morgantown, 1967. - p. 74.

469. Ribeiro, O.K. Rhizoctonia fragariae\ A mycorrhizal and pathogenic fungus of strawberry plants / O.K. Ribeiro, L.L. Black // Plant Dis. Rep. -1971. Vol. 55. - N 7. - P. 599-603.

470. Ribeiro, O.K. A source book of the genus Phytophthora / O.K. Ribeiro. Depart. Of Plant Pathology Univ. of California. - Riverside, California, 1976. -360 p.

471. Richards, B. G. Strawberry root rot in Utah / B. G. Richards, H.H. McKay // Proc. Utah. Acad. Sei. 1936. - Vol. 13. - P. 17-19.

472. Roudeillac, P. Les Deperissement du fraisier et la fatique du sol / P. Roudeillac // La fatique des sols. 23 erne coloque SFP. (21-22 October. 1982.). Ed. INRA. Publ. Versailles, France, 1983. - N 17. - P. 65-70:

473. Roudeillac, P. Phytophthora du fraisier: experimentation et preconisations actuelles de T'Aliette // P. Roudeillac // Infos. 1987 - Vol. 36. - P. 9-14.

474. Royse, D.I. A cortical decay of petioles and; stolons of strawberry caused by Pestalotia / D.I. Royse, S.M. Ries // Plant Dis. Rep. 1976. - N 11.-P. 901-902.

475. Ruokola, A.L. Fungus diseases of raspberry (Rubus idaeus L.) in? Finland / A.L. Ruokola // J. Sei. Agricultural Soc. Finland. 1982. - Vol. 52.-N 2.-P: 91-111.

476. Rutkowska, B. Ocena zagrozen dla srodowiska glebowego wynikajacych z wnoszenia metali ciezkich w komposcie ze smieci miejskich "Dano" / B. Rutkowska, G. Ozarowski, J. Labetowicz, W. Szulc

477. Przyczyny i skutki degradacji srodowiska glebowego. Warszawa, 2003. - Cz. 3. - S. 839.

478. Saikia, L. Linear model for predicting yield loss in rice {Oryzae sativa) due to shiethblight (Rhizoctonia solani) incidence / L. Saikia, B.P. Baruah I I Indian J. Agr. Sci. 1990. - Vol. 60. - N 3. - P. 360-361.

479. Sanchez, J. Suitability of ten plant baits for the rapid detection of pathogenic Pythium species in hydroponic crops / J. Sanchez, J. Sanchez-Cara, E. Gallego // Europ. J. Plant Pathol. 2000. - Vol. 106. - N 3. - P. 209-214.

480. Sanchez, M.E. First report of Cylindrocarpon destructans as a Root Pathogen of Mediterranean Quercus species in Spain / M.E. Sanchez, F. Lora, A. Trapero // Plant Dis. 2002. - Vol. 86. - P. 693.

481. Saniewska, A. Oddzialywanie biopreparatu polyversum na Phoma narcissi i Fusarium oxysporum f. sp. tulipae / A. Saniewska // Biul. nauk. Univ. Warminsko Mazurski. -Olsztyn, 2001. - N 12. - S. 353-359.

482. Savary, S. simulation model of rice sheath blight epidemics. Model performance derived from sensitivity analysis / S. Savary, L.A. Willocquet // Intern. Rice Res. Notes. 1996. - Vol. 21. - N 2/3. - P. 86-87.

483. Scherer, W. Die Phytophthora-WurzelfaulQ der Himbeere / W. Scherer, M. Riedel // Obstbau . 1988. - Vol. 13. - N 9. - S. 413-417.

484. Scherer, W. Die Phytophthora-Wurzelfzmle der Himbeere / W. Scherer // Obstbau 1993. - Vol. 18. - N 2. - S. 62-64.

485. Scheewe, P. Identification of pathogenic races of Phytophthora fragariae Hickman in Germany / P. Scheewe // Euphytica. 1994. - Vol. 77. - N - P. 25-29.

486. Schmidle, A. Uber eine Rhizom und wurzelfaule der Erdbeeren / A. Schmidle // Bad. Obst. Gartenbau. 1961. - Vol. 19. - P. 401-402.

487. Schmitthener, A.F. Isolation and identification methods for Phytophthora and Pythium / A.F. Schmitthener // Proc. X Woody ornamental Disease Workshop. Univ. Missouri, Columbia, 1973, - P. 94110.

488. Schoemakers, J. Schwermetalle in Boden und Pflanze nach Anwendung hoher Gaben Mullkompost / J. Schoemakers // Kali-Briefe (Buntehof). Hannover, 1985. - Vol. 17. -N 10. - S. 785-798.

489. Schwinn, F.J. Der Waeweis von P. cactorum (Leb. & Cohn.) Schroet. in Bode / F.J. Schwinn // Mitt. BbF. of Land und F. orstw. - 1961. -Bd. 104. - S.42-44.

490. Seemuller, E. Uber die Schwarze Wurzelfaule und Rhizomfaule der Erdbeer / E. Seemuller // Erwerbsobstbau. 1970. - Vol. 12. - S. 64-66.

491. Seemuller, E. Interktiositat und Pathogenität verschieddener Pilze an Himbeeruten / E. Seemuller // Phytopatenzverhalten Zeitschrirt. 1974. -Vol. 80. -N 4.- S. 340-354.

492. Seemuller, E. Versuche Zur Bekämpfung der Rhizomfaule bei Erdbeeren mit Metalaxyl und Aluminiumfosetyl / E. Seemuller //'Nachrbl. Detsch. Pfl. Schutzd. Braunschweig. 1982. - Vol. 34. - N. 8. - P. 118-122.

493. Seemuller, E. Eliminierung von Phytophthora fragariae durch Meristemkultur / E. Seemuller, F. Merkle // Gartenbauwissenschaft. 1984. - Vol. 49. - N 5/6. - P. 277-230.

494. Seemuller, E. Phytophthora sp. als Ursacheeiner Wuzzelfaule an Himbeere / E. Seemuller, J.V. Duncan, D.M. Kennedy, M. Riedel // Nachrichtenblatt'des Deutschen Pflanzenschutzdienst. 1986. - J. 38. - N. 2. -S. 17-21.

495. Seemuller, E. Auftreten von Metalaxyl-Resistenz bei Phytophthora fragariae / E. Seemuller, C. Sun // Nachrbl. Dt. Pflzschutzd. 1989. - Vol. 41.-N.5.-S. 71-73.

496. Seipp, D. Einfluss einer Bodenintsenchung auf das tuftreten der Rhizomfaule {Phytophthora cactorum) bei Erdbeeren und mögliche Bekampfiings massnahmen / D. Seipp // Obstbau. - 1983. - J. 8. - N 3. - S. 102-109.

497. Sewell, G.W.F. Resistance trials of some apple rootstock varieties to Phytophthora cactorum (Leb. & Cohn.) Schroet. / G.W.F. Sewell, J.F. Wilson // J. Hortic. Sei. 1959. - Vol. 34. - P. 51-58.

498. Sewell, G.W.F. Phytophthora collar rot of apple: Seasonal effects on infection and disease development / G.W.F. Sewell, J.F. Wilson // Ann. Appl. Biol. 1973. - Vol. 74. - P. 149-158.

499. Sewell, G.W.F. Seasonal variations in the activity in soil of Phytophthora cactorum, P. syringae, and P. citricola in relation to collar rot disease of apple / G.W.F. Sewell, J.F. Wilson, J.T. Dakwa // Ann. Appl. Biol. 1974 - Vol.76. - P. 179-186.

500. Sewell, G.W.F. Effects of Pythium species on growth of apple and their possible causal role in apple replant disease / G.W.F. Sewell // Ann. Appl. Biol. 1981. - Vol. 97. - P. 31-42.

501. Scherer, W. Die Phytophthora-Wurzelfaule der Himbeere / W. Scherer, M. Riedel // Obstbau. 1988. - Vol. 13, N 9. - S. 413-417.

502. Simone, G.W. Fungicides for Rhizoctonia root rot / G.W. Simone // Interior Landscape Ind. 1989. - Vol. 6. - N 2. - P. 63-66.

503. Sing, R.S. Techniques for selective isolation of some soil-borne pathogens / R.S. Sing // Proc. Consult. Group. Disease, Resist, soil-borne diseases Legumes Patanchere. 1979. - Vol. 6. - N 4. - P. 75-96.

504. Sing, R.S. A selective medium for isolation and measuring the population of Pythium in soil /R.S. Sing, J.E. Mitchell // Phytopathology. -1978.-Vol. 68.-P. 1754-1759.

505. Skoudridakis, M.T.; Bourbos V.A. Study on the biological control of the citrus dry root rot / M.T. Skoudridakis, V.A. Bourbos // Proc. 2nd Intern, meet, on Mediterranean tree crops. Chania, 1989. - P. 110-113

506. Smith, H.C. Strawberry disease in New Zealand / H.C. Smith // Rev. Appl. Mycol. 1952. - Vol. 32. - P. 388.

507. Smither, M.L. Pythium species associated with sour cherry and effect P. irreguläre on the growth of Mahaleb cherry / M.L. Smither, A.L. Jones // Canad. J. Plant. Pathology. 1989. - Vol. 11. - N 1. - P. 1-8.

508. Springer, P. Bodenmudigkeit aktueller Stand der Bekämpfung / P. Springer // Baumschulpraxis. - 1990. - Vol. 20. - N 5. - S. 220-223.

509. Stangellini, M. Bioassay for quantification of Pythium aphanidermatum in soil / M. Stangellini, E. Bouhot, W.C. Kronland // Phytopathology. 1985. - Vol. 75. - N 1. - P. 1224-1245.

510. Stensvand, A. Presence of Phytophthora fragariae var. fragariae in Norway / A. Stensvand, M.L. Herrero // Bull. OEPP. -Oxford, 1997. Vol. 27.-N2/3.-P. 243-248.

511. Stephens, C.T. Characterization of Rhizoctonia isolates associated with damping-off of bedding plants / C.T. Stephens, A.F. Schmitthener, C.C. Powell // Plant Dis. 1982. - Vol. 66. - N 8. - P. 700-703.

512. Stroberl, J.W. Verticillium wilt of strawberry in Dade County Florida / J.W. Stroberl // Proc. Fla. St. Hort. Soc. 1964.- Vol. 76. - P. 111-114.

513. Strong, F. C. Investigation on the black root of strawberries / F. C. Strong, M.S. Strong//Phytopathology. 1931. - Vol. 21. - P. 1041-1060.

514. Stylianides, D.C. Evaluation of resistance to Phytophthora spp. and Rhizoctonia solani in stone fruit rootstocks / D.C. Stylianides, A. Chitzanidis, I. Theochari-Atahanassiou // Ciheam Options Mediterraneennes. - 1985. - N 1. - P. 73-78.

515. Stump, W.L. Azoxystrobin and post emergence herbicide combinations for rhizoctonia and weed management in sugar beet / W.L. Stump, G.D. Franc, S;D. Miller, R.G Wilson // J. Sugar Beet Res. 2002. -Vol. 39.-N1/2.-P. 37-58.

516. Sweetingham, M. W. Studies on the pathogenicity of soil-borne Cylindrocarpon species / M. W. Sweetingham: Diss, of Doctor of Philosophy. Univ. of Tasmania. -Hobart, 1983 . 202 p.

517. Szczygiel, A. Bodenmudigkeit im Obstbau / A. Szczygiel // Erwerbsobstbau. 1989. - Vol. 31. - N 5. - S. 122-127.

518. Szczech, M. Comparison of suppressiveness of vermicompost produced from animal manures and sewage sludge against Phytophthora nicotianae Breda de Haan var. nicotianae / M. Szczech, U. Smolinska // J. Phytopathol. 2001. - Vol. 149. - N 2. - P. 77-82.

519. Szczech, M. The possibility of the use of plants to reduce Phytophthora cactorum in soil / M. Szczech, J.Y. Uhm // Vegetable crops research bull. Research inst. of vegetable crops. -Skierniewice, 2004. Vol. 61.-P. 109-119.

520. Sztejnberg, A., Omary N., Pinkas G. Control of Rosellinia necatrix by deep placement and hot treatment with methyl bromide / A. Sztejnberg, N. Omary, G. Pinkas // Bull. OEPP. Paris, 1983. - Vol. 13. - N 3. - P. 483485.

521. Tahvonen, R. Puna ja musteherukan kantojen sienet ja Lanoisuus vuoden kuluttua lei kkaukses ta ja lei kkausajau vai kutus mustanerukau rasvuun / R. Tahvonen // J. Sci. Agr. Soc. Finland. - 1983. - Vol. 55. - N 2. -P. 81-90.

522. Takanashi, H. Breeding of Fusarium wilt-resistant strawberry cultivar suitable for field culture in Northern Japan / H. Takanashi, Y. Yoshida, H. Kanda, H. Furuya, T. Matsumoto // Asta Hort. 2003. - N 626. - P. 113118.

523. Talboys, P.W. Verticillium wilt (V. dahliae) in some strawberry varieties on site previously cropped with potatoes / P.W., Talboys, M. Bennett // Ann. Rep. East Mailing Res. St. 1962/1963. - Vol. 46. - p. 9396.

524. Tambong, J. T. Oligonucleotide Array for Identification and Detection of Pythium Species / J. T. Tambong, W. A. M. Cock, N. A. Tinker, C. A. Levesque //Appl. Environ. Microbiol. 2006. - Vol. 72. - № 4. - P. 26912706.

525. Tanaka, M.A. de S. Patogenicidade de Rhizoctonia solani em morangueiro / M.A. de S. Tanaka, M.F. Ito, F.A. Passos // Bragantia. -Campinos, 1995. Vol. 54. - N 2. - P. 319-324.

526. Taylor, P.A., Washington W.S. Curative treatments for Phytophthora cactorum in peach trees using metalaxyl and phosethyl A1 // Austral. Plant Pathol. - 1984. - Vol. 13. - P. 31-33.

527. Tezuka, N. Outbreak of Fusarium wilt of strawberry / Tezuka N., Makino T. // Plant Protect. 1984. - Vol. 38. - N 12. - P. 10-14.

528. Thomidis, T. Effects of metalaxyl, fosetyl-Al, dimethomorph and cymoxanil on Phytophthora cactorum of peach tree / T. Thomidis, K. Elena I I J. Phytopathol. 2001. - Vol. 149. - N 2. - P. 97-101.

529. Thomidis, T. Pathogenicity and relative virulence of 11 Greek Phytophthora species on apple and pear rootstocks / T. Thomidis, C. Tsipouridis, J. Cullum // N.Z.J. Crop Hortic. Sci. 2002. - Vol. 30. - N 4. -P. 261-264.

530. Thomidis, T. Relative resistance of four peach rootstocks to Phytophthora cactorum and Phytophthora megaspermat T. Thomidis, J. Cullum, K. Elena, S.N. Jeffers // J. Phytopathol. 2001. - Vol. 149. - N 10. - P. 599-604

531. Tidball, C.J. Phytophthora rot and stem, root of stool beds / C.J. Tidball, M.D. Linderman // Plant Dis. 1990. - Vol. 74. - P. 141-146.

532. Togashi, J. Studies on the black root rot of strawberry in Shonai dune of Yamagata prefecture / J. Togashi, T. Hayasaka // Bull. Yamagata Univ. Agr. Sci. 1986. - Vol. 10. - N 1. P. 8-9.

533. Tomasino, S.F. Spatial pattern, inoculum density-disease incidence relationship, and population dynamics of Sclerotium rolfsii on applerootstock / S.F. Tomasino, K.E. Conway // Plant Dis. 1987. - Vol. 71. - N 8.-P. 719-724.

534. Toyoda, H. Selection for Fusarium wilt disease from regenerants derived from leaf callus of strawberry / H. Toyoda, K. Horikoshi, Y. Yamano, S. Ouchi // Plant Cell Reports. 1991. - Vol. 10. - P. 167-170.

535. Topp, G. Rosen unter Glas / Topp G. // Rosenbogen. 1987. - T. 1. -S. 44-49.

536. Traquar, J.A. Fungal biocontrol of diseases endomicorrhizal suppression of Cylindrocarpon root rot / J.A. Traquar // Can. J. Bot. 1995. - Vol. 73. - suppl. 1. - sec. A-D. - P. 89-95.

537. Truscott, J.H.L. Fungus root rot of the strawberry / J.H.L. Truscott // Canadian J. of Research. 1934. - Vol. 11. - P. 1-17.

538. Tsao, P.H. Selective media for pathogenic fungi / P.H. Tsao // Ann. Rev. Phytopathology. 1970. - Vol. 8. - P. 157-186.

539. Tsao, P.H. Why many Phytophthora rots of the tree and horticultural crops remain undetected / Tsao P.H. // Bull. OEPP. Oxford. 1990. - Vol. 20. - N 1. - P. 11-14.

540. Tsao, P.H. Selective isolation of Phytophthora from natural soils on improved antibiotic medium / P.H. Tsao, G. Ocana // Nature. 1969. - Vol. 233.-P. 636-638.

541. Tsao, P.H., Guy S.O. Inhibition of Mortierella and Pythium in Phytophthora isolation medium containing hemexazol / P.H. Tsao, S.O. Guy // Phytopathology. - 1977. - Vol. 67. - P. 796-801.

542. Tuitert, G. Suppression of Rhizoctonia solani in potting mixtures amended with compost made from organic household waste / G. Tuitert, M. Szczech, G.J. Bollen // Phytopathology. 1998. - Vol. 88. - N 8. - P. 764773.

543. Tuset, J.J. Phytophthora foot rot control in citrus with Myrothecium roridum / J.J. Tuset, C. Hinarejos, J. Garcia // Bull. OEPP. Oxford , 1990. -Vol. 20. - N 1. - P. 169-176.

544. Tuset, J.J. Podredumbre de los frutos del peral causada por Phytophthora cactorum en el area mediterranea espanola / J J.; Tuset C.; Hinarejos, J.L. Mira // Bol. Sanid. Veg. Plagas, 2002. - Vol. 28. - N 4. - P. 639-645.

545. Unestam, T. Involvement of Cylindrocarpon destructans in root death of Scotch pine seedlings: pathogenic behaviour and predisposing factors / T. Unestam, L. Beyer-Ericsson, M. Strand // Scand. J. For. Res. 1989. - N 4.-P. 521-535.

546. Unterstehnhofer, G. Die Grundigen des Pflanzenschutz -Freilandversuches / G. Unterstehnhofer // Pflanzensinutz Nathrichten Bayer. - 1963. - B. 46. - N 3. - P. 81-164.

547. Utkhede, R.S. Field resistance of apple rootstocks to Phytophthora cactorum infection / R.S. Utkhede, E.M. Smith // J. hortic. Sei. 1994. -Vol. 69. - N 3. - P. 467-472.

548. Utkhede, R.S. The effect of three irrigation practices on phytophthora crown and root rot of apple trees under field conditions / R.S. Utkhede, E.M. Smith // Canad. J. Plant Pathol. 1996. - Vol. 102. - P. 507-510.

549. Utkhede, R.S. In vitro inhibiliton of plant pathogens by Bacillus subtilis and Enterobacter aerogenes and in vivo control of two postharvest sherry diseases /R.S. Utkhede, P.L. Sholberg // Canad. J. Microbiol. -1986. Vol. 32. - N 12. - P. 963-967.

550. Utkhede, R.S. Chemical and biological control of crown and root rot of apple caused by Phytophthora cactorum / Utkhede R.S. // Canad. J. Plant Pathol. -.1987. Vol. 9. - N 4. - P. 295-300:

551. Valdebenito-Sanhueza, R.M. Biocontrole de Rosellinia necatrix com rizobacterias em macieiras / R.M Valdebenito-Sanhueza // Summa phytopathol. 2001. - Vol.27. - N 1. - P. 43-49.

552. Van Assche, C. Possibilities of microwaves in soil disinfection / Van C. Assche, P. Uyttebrook // Bull. OEPP. 1981. - Vol. 13. - N 3. - P. 491497.

553. Van der Scheer, H. A. T. Erfahrungen bei der Bekämpfung von Phytophthora Faule bei Erdbeeren / H. A. Van der Scheer // Obstbau. -1977. - Vol. 2. - N 8. - P. 238-240.

554. Van Wambeke, E. Alternatives for chemical crop growing substrate disinfestation / E. Van Wambeke, I. Wijsmans, A. Vanachter, C. Van Assche // Medeling Faculteit Landbouwwetenschappen Rijksunivesiteit Gent. 1981. - Vol. 46. - N 3. - P. 961-967.

555. Veld, W. Gene flow analysis demonstrates that Phytophthora fragariae var. rubi constitutes a distinct species, Phytophthora rubi'comb." nov. / W. Veld // Mycologia. 2007. - Vol. 99. - N 2. - P. 222-226.

556. Vico, I. Black crown and root rot of strawberries in Yugoslavia / Vico I.// Zastita Bilja. 1994. - Vol. 45. - N 207. - S. 53-60.

557. Vigolski H. Hardening of iris bulbs for hot water treatment // Jour. Hortic. Sei. 1970. - Vol. 45, N 1. - P. 87-97.

558. Viret, O. Maladies du frambo isier / O. Viret // Rev. Suisse viticulture, arboculture et horticulture. 1998. - Vol. 30. - N 2. - P. 124-126.

559. Vlug, H.J. Sampling of leatherjackets / H.J. Vlug, Paul H. // Meded. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent. 1986. - Vol. 51. - N 3a, - P. 939-942.

560. Xue, A.G. Biological control of pathogens causing root rot complex in field pea using Clonostachys rosea strain ACM941 / A.G. Xue // Phytopathology. 2003. - Vol. 93. - N 3. - P. 329-335.

561. Walker, A. R. Strawberry root rot / A. R. Walker // Proc. Canad. Phytopathol. Soc. 1930. - Vol. 19. - N 29. - P. 16-19.

562. Walther D. Antagonism of Rhizoctonia spp. to Pythium oligandrum and damping-off fungi / D.Walther, D. Gindrat // J. Phytopathol. 1987. -Vol. 119.-N3.-P. 248-254.

563. Wardlaw, C.W. Note on the occurrence of Pythium proliferum de Bary on the roots of the strawberry / C.W. Wardlaw // Ann. Bot. 1927. -Vol. 41.-P. 817-818.

564. Washington, W. Phytophthora cryptogea as a cause of root of raspberry in Australia: resistant of raspberry cultivars and control by fungicides / W. Washington // Plant Pathology. 1988. - Vol. 37. - P. 225230.

565. Watanabe, T. Pythium species associated with strawberry roots in Japan and their role in the strawberry stunt disease / T. Watanabe, K. Hashimoto, M. Sato // Phytopathology. 1977. - Vol. 67. - P 1324-1332.

566. Watanabe, T. Pathogenic fungi associated with forest seeds including Pythium species from cherry seeds / T. Watanabe // Trans. Mycol. Soc. Japan. 1988. - Vol. 29. - N 3. - P. 197-203.

567. Watanabe, T. Root Fungus Floras in Relation to growth of strawberry plans in Pasteurized soil in Field / T. Watanabe, I. Snoje // Ann. Phytopathol. Soc. Japan. 1980. - Vol. 46. - P. 471-479.

568. Watanabe, T. Distribution and Population of Pythium species in the Northern and Southern paths of Japan / T. Watanabe // Ann. Phytopathol. Soc. Japan. -1981. Vol. 47. - P. 449-456.

569. Watherhouse, G. The genus Pythium Prigsheim / G. Watherhouse. -Mycological papers. Kew: Surrey, 1968. № 110-121. - 71 p.

570. Watherhouse, G. The genus Phytophthora de Bary. Diagnoses (or descriptions) and figures from the original papers. / G. Watherhouse. -Mycological papers. Kew. Surrey, 1970. - № 122. - 59 p.

571. Wehunt, E.J. Effect of nematodes and Fusarium oxysporum on the growth of reach seedlings in greenhouse / E.J. Wehunt, D.J. Weaver // J. Nematol. 1972. - Vol. 4. - P. 236.

572. Wendt, K. Planung der Erdbeerproduktion innerhelb einer Gemusefruchtfolge fur die territoriale Versorgung / Wendt K. // Gartenbau. 1985. - Vol. 32. - N 4. - P. 114-115.

573. Werres, S. Nachweis von Phytophthora fragariae Hickman in Wurzeln der Erdbeerkultursorte "Tenira" mit Hilfe des enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) / S. Werres, R. Casper // J. Phytopathol. -1987. Vol. 118. - N 4. - P. 367-369.

574. Werres, S. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) as a method for detection of Phytophthora fragariae Hickman in strawberry roots / S. Werres //Nachrbl. Dt. Pflzschutzd. 1988. - Vol. 40. - N 10. - S. 146-150.

575. Westcott, S.W. Infection of Apple Roots by Actinomycetes Associated with Soils Conductive to Apple Replant Disease / S.W. Westcott, S.V. Beer, C. Warren // Plant Diseases.- 1986. Vol. 70. - P. 1125-1128.

576. Wicks, T. Field evaluation of soil fumigation and fungicide drenches for control of Phytophthora fragariae in Red Gauntlet strawberries / T. Wicks // Plant Disease. 1983. - vol. 67. - N 1. - P. 1255-1258.

577. Wilcox, W.F. Identity, virulence, and isolation frequency of seven Phytophthora spp. causing root rot of raspberry in New York / W.F. Wilcox // Phytopathology. 1989. - Vol. 79 - P. 93-101.

578. Wilcox, W.F. Incidence and severity of crown and rots on four apple rootstocks following exposure to Phytophthora species and waterlogging / W.F. Wilcox // J. of the Amer. Soc. For Hort. Sci. 1993. - Vol. 118. - P. 63-67.

579. Wilcox, W.F. Effects of flooding duration on the development of phytophthora rot and crown rots of cherry / W.F. Wilcox, S.M. Mircetich // Phytopathology. 1985. - Vol. 75. - N 12. - P. 1451-1455.

580. Wilcox, W.F. Identity of a Phytophthora species attacking raspberry in Europe and North America / W.F. Wilcox, P.H. Scott, P.D. Hamm, D.M. Kennedy, J.M. Duncan, C.M. Brasier, E.M. Hansen // Mycol. Res. 1993. -Vol. 97.-P. 817-831.

581. Wilcox, W.F. Integrated control of Phytophthora root rot of red raspberry / W.F. Wilcox, M.P. Pritts, M.J Kelly // Plant Dis. 1999 - Vol. 83.-N 12.-P. 1149-1154.

582. Wilcox, W.F. Identities and geographic distributions of Phytophthora spp. causing root rot of red raspberry in Chile / W.F. Wilcox, B.A. Latorre // Plant Dis. 2002 - Vol. 86. - N 12. - P. 1357-1362.

583. Wilhelm S. Verticillium wilt and black root rot of strawberry / S. Wilhelm // California Agr. 1952. - Vol. 1 (6). - P. 8-9.

584. Wilhelm, S. Pythium ultimum and the soil fumigation growth response / S. Wilhelm // Phytopathology. 1965. - Vol. 55. - P. 1019-1020.

585. Wilhelm, S. Pathology of strawberry root rot caused by Ceratobasidium species / S. Wilhelm, P.E. Nelson, H.E. Thomas, H. Johnson //Phytopathology. 1972. - Vol. 62. - P. 700-705.

586. Williams, R.J. Increased incidence of Pythium stem rot in cowpeas with benomyl and related fungicides / R.J. Williams, A. Ayanaba // Phytopathology. 1975. - Vol. 65. - N 2. - P. 217-218.

587. Windermann, H. Probleme der Rhizomfaule Bekämpfung im Erdbeeranbau / H. Windennann // Obst, und Garten. - 1980. - Vol. 99. - N 8.-P. 348-350.

588. Wing, K.B. Strawberry Black Root Rot: A Review / K.B. Wing, P. Marvin, A. Pritts, W.F. Wilcox // Adv. in Strawberry Res. 1994. - Vol. 13. -P. 13-19.

589. Winks, B.L. A wilt of strawberry caused by a new form of Fusarium / B.L. Winks, Y.N. Williams // Queensland J. of Agric. and Animal Husb. -1965.-Vol. 22.-P. 475-479.

590. Wiseman, A. A study of the respiratory diseases of adult cattle in Britain: 3. Farmers"s lung / A. Wiseman, E.M. Allan, I.E. Selman // Irish Veter. J. 1984. - Vol. 38. - N 2. - P. 22-27.

591. Wolfe, D. The influence of soil fumigation on strawberry yield and economics in black root rot infested fields / D. Wolfe, J.R. Hartman, G.R. Brown, J. Strang // Appl. Agr. Res. 1989 - Vol. 5. - N 1 - P. 17-20.

592. Woodward, S. Occurrence of Phytophthora species in European forests / S. Woodward, W.J.A. Bodies, T. Oszako // Folia forestalia Polonica. Ser. A. -Warsaw, 2005 N 47. - P. 5-12.

593. Wubben, J.P. Detection of soil-borne pathogens in glasshouse-grown ornamentals / J.P. Wubben, A. Numansen, A. Kerssies // OEPP/EPPO, bull. -2000. -N30. P. 481-484.

594. Xue, A.G. Biological control of pathogens causing root rot'complex in field pea using Clonostachys rosea strain ACM941 / A.G. Xue // Phytopathology. 2003. - Vol. 93. - N 3. - P. 329-335.

595. Ylimaki, A. Root rot of strawberry / A. Ylimaki // Ann. Agric. Fenn. -1970.-Vol. 9.-P. 287-289.

596. Zentmyer, G.A. Phytophthora cinnamoni disease it cause / G.A. Zentmyer // Amer. Phyt. Soc. Monogr. St. Paul. Mim., 1980. - N 10. - P. 1-96.

597. Ziedan, E.H.E. Biological control of root-rot disease on mandarin by antagonistic strain of Bacillus megatherium / E.H.E. Ziedan, E.S.H Farrag // Ann. Agr. Sei. 2002. - Vol. 47. - N 3. - P. 1021-1031.

598. Bodenburige krankneiten in Erdbeerkulturen Norddeutschands und ihre Urssachen. II. Wurrel und Rhizomfaule der Erdbeeren / V. Zinkernagel //Z. Pflanzenkr. Pflanzensch. - 1970. - Vol. 9. - P. 287-289.