Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Изменение метаболома бактерий класса молликут под воздействием внешних факторов

ВАК РФ 03.01.04, Биохимия

Автореферат диссертации по теме "Изменение метаболома бактерий класса молликут под воздействием внешних факторов"



^¿гу^г?,

На правах рукописи

Ванюшкина Анна Алексеевна

ИЗМЕНЕНИЕ МЕТАБОЛОМА БАКТЕРИЙ КЛАССА МОЛЛИКУТ ПОД ВОЗДЕЙСТВИЕМ ВНЕШНИХ ФАКТОРОВ

03.01.04 - Биохимия

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

з ПАР 2015 005560025

Москва - 2014

005560025

Работа выполнена в Федеральном государственном бюджетном учреждении науки «Научно-исследовательском институте физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

Научный руководитель: кандидат биологических наук, доцент

Камашев Дмитрий Эдуардович

Официальные оппоненты: Мошковский Сергей Александрович

доктор биологических наук, Федеральное государственное бюджетное учреждение «Научно-исследовательский институт

биомедицинской химии имени В.Н. Ореховича», заведующий отделом

Пименов Николай Викторович

доктор биологических наук, профессор, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт микробиологии им, С.Н. Виноградского Российской академии наук, заведующий лабораторией

Ведущая организация: Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Ботанический институт им. В.Л. Комарова Российской академии наук (БИН РАН)

Защита состоится 26 марта 2015 года в 15 часов на заседании диссертационного совета Д 001.010.01 в Федеральном государственном бюджетном научном учреждении «Научно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В.Н. Ореховича» по адресу: Москва, ул. Погодинская, д. 10, стр.8.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ИБМХ и на сайте www.ibmc.msk.ru

Автореферат разослан // Ç/Jûépcr/Il 2015 г. Ученый секретарь диссертационного совета, /

кандидат химических наук ~ , / Карпова Е.А.

Актуальность исследования

Метаболомика, являющаяся частью системной биологии, предоставляет новые возможности для достижения понимания принципов организации живого и способности организмов адаптироваться к различным условиям. Исследования метаболического профиля организма позволяют получить мгновенный «снимок» клеточной активности и выявить новые взаимосвязи между закономерностями репликации, транскрипции и трансляции функционально сложных мультиферментативных систем. Одним из направлений системной биологии, использующих метаболомный анализ, является исследование принципов организации биологических объектов, характеризующихся малым размером генома и, следовательно, небольшими ресурсами регуляции. Проведение метаболомных исследований организмов с наиболее просто устроенным метаболизмом позволяет моделировать различные условия жизнедеятельности бактерии с целью определения механизмов адаптации. В качестве модельного объекта в данной работе были выбраны три вида бактерии класса молликут - Acholeplasma laidlawii, Spiroplasma melliferum, Mycoplasma gallisepticum. Ключевым моментом в использовании молликут в качестве модельного объекта стала именно простота их устройства. Бактерии класса молликут ведут паразитический образ жизни и имеют в естественной среде обитания одного или нескольких хозяев. Эти микроорганизмы являются основными возбудителями ряда респираторных и урогенитальных инфекционных заболеваний человека и животных, в том числе пневмонии и уретрита. Накопленные данные об отсутствии у молликут некоторых систем ферментативной регуляции наряду со способностью клеток адаптироваться к различным условиям роста, делают их удобным объектом для изучения принципов организации и механизмов адаптации минимальной живой системы на метаболомном уровне. Идентификация основных метаболитов и анализ изменения их внутриклеточной концентрации при различных воздействиях, взятые вместе с данными протеомного анализа и данными аннотирования генов, позволили выявить потенциальные механизмы адаптации А. laidlawii, S. melliferum, М. gallisepticum к внешним воздействиям и определить особенности метаболизма каждого вида бактерий.

Цель исследования

Исследовать метаболом трех видов молликут - М. gaШsepíicum, 5. теШ/егит, и А. ШсПами при культивировании клеток в оптимальных лабораторных условиях, а также при адаптации к кислотному и осмотическому внешним воздействиям.

Задачи исследования

1. Реконструировать метаболические карты А. Ыс11ами, Б. теШ/егит, М. gallisepticum.

2. Выбрать и отработать оптимальные условия для проведения анализа метаболитов в клетках молликут с использованием ВЭЖХ-МС/МС метода и провести анализ метаболома бактерий А. ЫсИап'П, М. %аШ$ерйсит, 5. теШ/егит, культивируемых в оптимальных условиях.

3. Сопоставить между собой данные метаболомного анализа для 5. теШ/етт. А.кйсИалмИ и М galIisepticum и выявить особенности метаболизма каждого вида.

4. Провести сравнительный анализ относительных концентраций метаболитов в клетках М. gallisepticum, А. ШсЯстИ и 5. теШ/егит.

5. Сопоставить данные о накоплении метаболитов с аминокислотными заменами в активных центрах ферментов 5. теШ/егит, М. gaШsepticum, А. 1шсИа\чп, катализирующих реакции с участием накапливающихся метаболитов для анализа влияния таких замен на активность ферментов.

6. Провести анализ изменения метаболома бактерий 5. теШ/егит, А. 1а1с11а\\'и и М gaUisepticum в условиях кислотного п осмотического воздействий для выяснения способов адаптации бактерий к осмотическому и кислотному воздействиям.

Личный вклад автора

Все экспериментальные научные результаты, изложенные в диссертации, их анализ, обобщение литературных данных и оценка результатов выполнены лично автором под руководством Камашева Д.Э.

Научная новизна и практическая значимость

Молликуты являются возбудителями инфекционных заболеваний человека, сельскохозяйственных животных и растений, поэтому исследование принципов регуляции их метаболизма имеет не только фундаментальную, но и практическую значимость для здравоохранения и сельского хозяйства. Демонстрация активации уникальных метаболических путей в клетках микоплазм позволит использовать их в качестве мишеней при разработке новых лекарственных средств.

С помощью метода гидрофильной хроматографии, совмещенной с времяпролетной масс-спектрометрией, в работе был впервые проведен анализ метаболома бактерий класса молликут и реконструированы карты метаболизма трех исследуемых видов. Кроме того, впервые был охарактеризовано изменение метаболома клеток А. \aidlawii, 5. теШ/егит, М. ^аШверйсит в условиях кислотного и осмотического воздействия. Благодаря полученным данным удалось определить различия в механизмах регуляции трех видов молликут на метаболомном уровне и предложить механизмы биохимической адаптации молликут к внешним воздействиям. Показаны отличия в механизмах приспособления к внешним воздействиям между 5. теШ/егит, А. Шс11смИ и М. ^аШЕерйсит. Определены специфические особенности метаболизма каждого вида. Полученные результаты могут быть использованы в дальнейших исследованиях принципов регуляции метаболизма и механизмов адаптации к различным воздействиям бактерий класса молликут.

Апробация работы

Результаты работы были представлены на конференции молодых ученых НИИ физико-химической медицины, Москва, 23-24 мая 2012 г.; на конференции Европейской молекулярно-биологической организации, Хайдельберг, 17-20 ноября 2012 г.; конференции молодых ученых НИИ физико-химической медицины, Москва, 28-29 мая 2013 г.; 9-ой ежегодной конференции метаболомного сообщества, Глазго, 1-4 Июля 2013 г.; 38™ конгрессе федерации европейских биохимических обществ, Санкт-Петербург, 6-11 ноября 2013 г.

Объем работы

Диссертация содержит следующие разделы: введение, литературный обзор, материалы и методы исследования, результаты и обсуждение, заключение, выводы, благодарности, список литературы и приложение. Работа изложена на 163 страницах, содержит 8 таблиц и 17 рисунков.

Публикации

По теме диссертационной работы опубликовано 8 работ, из которых 3 статьи в международных рецензируемых изданиях и 5 публикаций в трудах конференций.

ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Реконструкция метаболизма 5. теШ/егит, М. gaШsepticum и АЛа'кИаки

Реконструкция метаболизма исследуемых видов молликут позволяет визуализировать данные метаболомного анализа клеток. В нашей работе был выбран алгоритм реконструкции, заключающийся в построении схемы метаболизма на основе первичной протеогеномной аннотации и последующего уточнения наличия ферментативных реакций в схеме. Для того, чтобы построить первичную метаболическую карту, мы сопоставили результаты протеогеномной аннотации трех исследуемых видов, опубликованные в базе данных ишргоЖВ, с общими метаболическими схемами из базы данных КЕСО. Затем была составлена общая схема метаболизма для трех видов и проведено уточнение первичной реконструкции. Уточнение схемы метаболизма включает удаление реакций, которые не являются частью метаболических путей и приводят к образованию «мертвых концов»; поиск «пробелов» в метаболических путях; поиск аннотированных ферментов, способных катализировать реакции, соответствующие пробелам в схеме; проверку возможности утилизации или выведения всех конечных продуктов в клетке. Конечный результат представляет собой карты метаболизма трех видов молликут без «пробелов», изолированных реакций, или неполных метаболических циклов. Затем полученные схемы метаболизма были дополнены с учетом данных метаболомного анализа. В качестве примера на рисунке 1 представлена реконструированная карта метаболизма для М. gallisepticnm 86.

Рисунок 1. Реконструкция схемы метаболизма М. £аШ$срйсит 56.

Метаболиты отмечены кружками. Метаболиты, детектированные в наших экспериментах, отмечены зеленым цветом, недетектированные - красным. Ферменты, катализирующие реакции, отмечены ромбами.

Особенности метаболизма пуринов и пиримидинов в клетках молликут

У исследуемых видов молликут были выявлены специфические особенности в метаболизме пуринов и пиримидинов. В метаболизме пуриновых нуклеотидов всех молликут возможен синтез нуклеотидов напрямую из азотистых оснований (рис. 1), однако последовательное расщепление нуклеотидов в разных видах происходит не одинаково. Прямое превращение пуринового азотистого основания в мононуклеотид катализируется ферментом АМФ-пирофосфорилазой, которая аннотирована для трех исследуемых видов. Фермент 5'-нуклеотидаза позволяет дефосфорилировать АМФ. Рибоза, полученная из АМФ, может служить источником энергии благодаря вовлечению ее в пентозофосфатный путь. Белок 5'-нуклеотидаза не аннотированн в геноме S. melliferum в отличие от А. laidlawii и М. gallisepticum (однако аннотация М. gallisepticum содержит белок тимидинкиназу, способный выполнять функции 5'-нуклеотидазы). Мы предполагаем, что метаболизм пуринов в S. melliferum смещен в сторону синтеза нуклеотидов и ДНК и РНК, и что клетки S. melliferum не используют нуклеотиды в качестве источника рибозы.

Детектирование метаболитов с помощью метода ВЭЖХ-МС/МС

Метаболиты для анализа выделяли из клеток в логарифмической фазе роста. Фаза роста бактерий определялась исходя из времени удвоения числа клеток и pH среды. Для мгновенного тушения метаболизма и одновременной экстракции метаболитов был использован метод выделения метаболитов с помощью охлажденного метанола. Обнаружение метаболитов проводили с использованием метода высокоэффективной жидкостной хроматографии совмещенной с времяпролетной масс-спектрометрией и ионизацией методом электрораспыления. Параметры хроматографического метода, а также параметры записи спектра были оптимизированы с использованием внешних стандартов.

Идентификация метаболитов подтверждалась с помощью фрагментации обнаруженных родительских ионов методом таргетной масс-спектрометрии. Обычно за один ЖХ-МС анализ идентифицировалось около 120 пиков, со значениями m/z близкими к точным значениям m/z метаболитов (отклонение менее 10 ррт от теоретического значения m/z).

Research sample(®20V nvz113

42.034

OIS «.018 5 44.013

)3M+H 10 pp<n Score 80 [М'Ц]-

rrv'z=l 13.035

METUN Database ID: 258, Mass: 12.0273 CE: 20V

-100-I

Рисунок 2. Пример сопоставления спектра фрагментации урацила, полученного при анализе метаболома 5. теШ/егит в положительном режиме съемки (выше оси абсцисс) со стандартным спектром, полученным в тех же условиях (энергия соударения 20 эВ, режим съемки положительный) и представленным в базе данных МеШп (ниже оси абсцисс).

Спектры фрагментации были получены для большинства обнаруженных метаболитов. Полученные спектры фрагментации с помощью программы Metlin MS/MS Spectrum match были сопоставлены со стандартными спектрами фрагментации, которые были получены в аналогичных условиях (учитывались полярность ионизации и значение энергии столкновения). Оценка схожести полученного спектров фрагментации проводилась на основании соответствия масс и относительных интенсивностей ионов фрагментов в спектрах. На рисунке 2 продемонстрирован пример подтверждения идентификации урацила. Все спектры фрагментации подтвердили первичную идентификацию соединений на основе точного значения m/z. Большинство измеренных значений m/z не отклонялись от теоретического значения более чем на 10 ррш.

Результаты идентификации метаболитов бактерий А. 1а'и11ан'И, 5. теШ/егит и М. заШъерйсит

С помощью метода ВЭЖХ-МС с использованием гидрофильной (Н11ЛС) хроматографии удалось детектировать 75, 74 и 74 метаболита в клетках А. 1тй1а\т, М. ^аШъерисит, 5. теШ/егит соответственно. Полученные результаты были нанесены на реконструированные карты метаболизма А. ШсЧаюи, М. gallisepticum, 51. теШ/егит

(рис.1). Общими детектированными для трех видов метаболитами являются 50 соединений, среди которых компоненты метаболизма пуринов и пиримидинов, аминокислот, никотинамида и никотината, КоА биосинтеза, пентозофосфатного пути и др. (см. рисунок 3). Всего было обнаружено от 20 до 33% от списка всех предсказанных метаболитов для каждого вида. Анализ всех предсказанных метаболитов невозможен в связи с тем, что некоторые метаболиты не могут быть обнаружены методом ЖХ-МС в результате потерь во время отмывки клеток и экстракции метанолом. Другая часть метаболитов являются трудно детектируемыми в связи с высокой скоростью протекания реакций с их участием, например, компоненты гликолиза.

Всего было детектировано 95 различных внутриклеточных соединений, входящих в состав метаболома трех видов молликут (М gallisepticum, Б. теШ/егит и А. ШсЧамИ). Среди них продукты реакций основных метаболических путей, таких как гликолиз, метаболизм аминокислот, Сахаров и аминосахаров, синтез терпеноидов, метаболизм пуринов и пиримидинов и др. Наиболее равномерно и плотно заполнены детектированными соединениями карты метаболизма производных пуриновых и пиримидиновых оснований (см. рисунок 1). Были обнаружены не только азотистые основания, но и соответствующие нуклеозиды и нуклеотиды. Активная экспрессия белков, которые функционально связанны с метаболизмом пуринов и пиримидинов, была ранее продемонстрирована в исследованиях протеома и транскриптома молликут.

В метаболоме всех трех видов молликут были обнаружены углеводы и их производные (в том числе три соединения, входящих в состав гликолиза, см. рис. 1). Обнаружение фосфорилированных производных Сахаров хорошо согласуется с данными протеогеномной аннотации.

Во всех трех исследуемых бактериях наряду с фосфопроизводными мы обнаружили нефосфорилированные формы сорбитола и а,а-трегалозы/сахарозы (отличить такие структурные изомеры не удается, так как упомянутые сахара и аминокислоты имеют идентичные спектры фрагментации и близкое время удерживания). Системы белков АВС-транспортеров углеводов, которые не связаны с фосфорилированием, аннотированы для всех трех исследуемых видов.

■ Метаболизм аминокислот

7

■ Метаболизм пуринов и пиримидинов

12

■ Метаболизм Сахаров

■ S.melliferum

■ Кофакторы

50

A.laidlawii M.gallisepticum

Биосинтез

8

терпеноидов ■ Другие пути метаболизма

4

9

Рисунок 3. Диаграмма пересечения множеств детектированных метаболитов для трех видов молликут (слева) и диаграмма представленности компонентов различных путей метаболизма среди метаболитов, детектированных в клетках всех трех исследуемых видов (справа).

Мы обнаружили 18 из 20 аминокислот в трех исследуемых видах молликут (не были детектированы аспарагин и аланин). Поскольку в S. melliferum, М. gallisepticum и A. laidlawii не были аннотированы ферменты синтеза большинства аминокислот, мы предполагаем экзогенную природу их присутствия в метаболоме за счет активного импорта в клетки с помощью пермеаз. В идентичных экспериментах с Escherichia coli мы успешно детектировали аланин и аспарагин. Такие данные свидетельствуют о возможности анализа этих аминокислот используемым методом и о низком содержании аспарагина и аланина в метаболоме S. melliferum, М. gallisepticum и А. laidlawii.

В метаболоме всех трех молликут были детектировали промежуточные продукты биосинтеза рибофлавинов - диаминогидрокси-фосфорибозиламино-пиримидины и сами коферменты флавинмононуклеотид (ФМН) и флавинадениндинуклеотид (ФАД). Среди исследуемых трех видов только аннотация A. laidlawii содержит белки, ответственные за реакции биосинтеза рибофлавина с участием этих соединений. Однако в метаболоме S. melliferum и М. gallisepticum детектирован масс-спектрометрический пик соединения 5-амино-6-(5-фосфорибозиламино)-урацил. Детектирование промежуточного соединения биосинтеза ФАД и ФМН свидетельствует об активности этого пути в клетках 5. melliferum и М. gallisepticum, несмотря на отсутствие аннотирования ферментов.

Пентозофосфатный путь в клетках молликут

Одной из важных особенностей метаболизма молликут является отсутствие важнейшего фермента - трансальдолазы в пентозофосфатном метаболическом пути. Пентозофосфатный путь - связующее звено между пентозами и гексозами, единственный путь получения рибоз для синтеза нуклеотидов. В обратном направлении пентозофосфатный путь выполняет функцию вовлечения пентоз в метаболизм глюкозы. Во многих организмах, включая микоплазмы, представлена только неокислительная ветвь пентозофосфатного пути. В этой части пентозофосфатного пути участвуют два основных фермента - транскетолаза (tktA) и трансальдолаза (tal) (рисунок 4). В аннотации геномов всех молликут отсутствует фермент трансальдолаза что, очевидно, создает разрыв в метаболическом пути. Тем не менее, мы обнаружили в метаболоме клеток всех трех изучаемых видов молликут (наряду с менее специфическими промежуточными соединениями) уникальный промежуточный продукт реакции, катализируемой транскетолазой, - седогептулозо-7-фосфат. Такие данные указывают на то, что пентозофосфатный путь функционально активен в трех исследуемых видах. Кроме того, наличие потока метаболитов от гликолиза к образованию фосфорибозы было ранее продемонстрировано для близкого родственника исследуемых видов М. pneumoniae (эксперименты проводились с использованием 13С-6-меченных питательных веществ).

Glucose-6-P Fructose-6-P Xylulose-5-P

Рисунок 4. Неокислительная ветвь пентозофосфатного пути с альтернативными реакциями молликут. Метаболиты отмечены кружками, ферменты, катализирующие реакции, отмечены ромбами, предполагаемые реакции в пути отмечены зелеными стрелками, а отсутствующая реакция -красным цветом. - М. ¿аИЫерйсит, 5рш - 5. теШ/егит, Ас1- А. ШсЯсми.

О Ribulose-5-P

Phenylalanine Fruciose-6-P G-3-P Xylulose-5-P biosynthesis

Поиск по базам данных белков гомологов трансальдолазы во всех геномах молликут дает отрицательный результат. Чтобы заполнить пробел пентозофосфатного пути, можно предположить наличие трансальдолазной активности у неизвестного белка или определить другой возможный вариант протекания пути с использованием дополнительной активности известных ферментов. В литературе показано, что 6-фосфофруктокиназа (р&А) способна связываться с метаболитом седогептулозо-7-фосфат и фосфорилировать его с образованием с седогептулозо-1,7-бисфосфата. В свою очередь фермент фруктозо-бисфосфат-альдолаза (РЬа) способен связываться с седогептулозо-1,7-бисфосфатом и разлагать его на глицерон-фосфат и эритрозо-4-фосфат (см. рис.4). Глицерон-фосфат изомеризуется до глицеральдегид-3-фосфата с помощью изомеразы и затем встраивается в реакции гликолиза и другие биохимические превращения, а эритрозо-4-фосфат участвует в превращении, катализируемом транскетолазой. Предложенные изменения в пентозофосфатном пути дают возможность объяснить, как молликуты используют рибозу в качестве источника энергии, несмотря на отсутствие трансальдолазы. Описанный путь активен в обратном направлении в клетках 5. теШ/егит и А. ШсНаюИ за счет дополнительной активности аннотированных ферментов. Первая реакция - фосфорилирование седогептулозо-7-фосфата -катализируемая 6-фосфофруктокиназой, является необратимой. Однако дефосфорилирование седогептулозо-1,7-бисфосфата может быть обеспечено ферментом фруктозо-1,6-бисфосфатазой (РЬр1,2), аннотированным в геноме 5. теШ/егит. Фермент фруктозо-1,6-бисфосфатаза не аннотированн для бактерии А. 1а1с11а\\;и, поэтому фосфат эритрозы, образующийся в результате действия транскетолазы из фруктозо-6-фосфата и глицеральдегид-3-фосфата, должен быть вовлечен в какую-либо другую реакцию. Эритрозо-4-фосфат может быть использован в синтезе аминокислоты фенилаланин, так как все ферменты биосинтеза фенилаланина аннотированы для А. 1сис1/аи>И. В клетках М. gaШsepticum экспериментально показано отсутствие фруктозо-1,6-бисфосфатальдолазы, а также отсутствие трансальдолазной активности. Поэтому мы можем только предположить, что полученный метаболит эритрозо-4-фосфат в М. %аШ$ерйсит перерабатывается ферментом 0-фруктозо-6-фосфат-0-эритрозо-4-фосфат-лиазой (ХГр), который не аннотирован для М. заШъерйсит, но для других видов микоплазм аннотирован

(например, для M. fermentons). Мы считаем, что эта активность должна быть определена для M. gallisepticum в качестве способа реализации неокислительной ветви пентозофосфатного пути для M. gallisepticum.

Сравнительный количественный анализ метаболомов трех видов молликут Мы провели сравнительный анализ относительного содержания метаболитов в клетках M. gallisepticum, A. laidlawii и S. melliferum и выявили отличия в метаболизме этих видов. Среди компонентов метаболизма липидов мы обнаружили в метаболоме клеток A. laidlawii высокое содержание глицерин-3-фосфата и пониженное содержание ЦМФ по сравнению с S. melliferum и M. gallisepticum, что указывает на активный синтез фосфатидилглицерина. Фосфатидилглицерин является предшественником для синтеза фосфолипидов и активирует синтез гликолипидов в клетках. Таким образом, такие отличия в метаболоме свидетельствуют об активном синтезе гликофосфолипидов в клетках A. laidlawii. Идентифицированные нами отличия в метаболоме могут быть следствием отличия состава мембраны клеток А. laidlawii от состава мембраны клеток других видов молликут.

Существует два взаимоисключающих направления синтеза терпеноидов в живых организмах: мевалонатный путь («MVA») и немевалонатный путь («MEP/DOXP» путь). В аннотации A. laidlawii представлены ферменты, катализирующие реакции мевалонатного пути. В геномах M. gallisepticum и S. melliferum аннотированы ферменты «MEP/DOXP» пути биосинтеза терпеноидов. Однако у молликут путь представлен не полностью и «обрывается» на реакции образования 1-гидрокси-2-метил-2-бутенил-4-дифосфата. Мы обнаружили высокий уровень содержания 2-С-метил-0-эритритол-4-фосфата (компонента «MEP/DOXP» пути) в метаболоме A. laidlawii и не детектировали ни одного компонента мевалонатного пути, более характерного для этого вида. В метаболоме М. gallisepticum и S. melliferum мы обнаружили присутствие значительных количеств 2-С-метил-0-эритритол-2,4-пиклодифосфата (компонента «MEP/DOXP» ветви метаболизма). В клетках S. melliferum мы также детектировали геранил-геранил-дифосфат (важный предшественник в биосинтезе всех высших терпеноидов). Обнаружение компонентов этого пути позволяет предположить активность

биосинтеза терпеноидов по «МЕРЛЗОХР» ветви в М. gallisepticum и & теШ/егит, несмотря на неполную аннотацию ферментов пути.

Накопление метаболитов относительно компонентов отдельных метаболических путей Б. теШ/егит, М. gallisepticum, и А. Ш(11ап>н

Для понимания различий в регуляции биохимических процессов у 5. теШ/егит, М. ^¿¡Щ.^ер/^сит, и А. 1шс11акИ, мы проанализировали относительные концентрации веществ, принадлежащих к отдельным метаболическим путям. Для определения метаболических максимумов мы разделили реконструированные карты на простые непересекающиеся ветви (модули). Далее мы сравнили интегральную интенсивность масс-спектрометрических пиков, соответствующих метаболитам в каждом модуле. Таким образом, мы идентифицировали соединения с максимальным содержанием (узлы) в каждом модуле. Оказалось, что большинство узлов у 5. теШ/егит, М. gallisepticum, и А. \aidlawii представлены одинаковыми метаболитами. Однако есть и отличия, которые могут указывать на разницу в регуляции биохимических процессов трех видов, имеющих сходные генетические возможности.

В метаболоме А. 1сп<ЛакИ, М. gallisepticum и 51. теШ/егит основные узлы в метаболизме пуринов для всех трех видов представлены азотистыми основаниями, среди которых наиболее высоко представлен аденин. В отличие от М. gaUisepticltm и А. ЫсНапИ, в клетках теШ/егит наряду с азотистыми основаниями накапливаются нуклеотид-монофосфаты (ГМФ, дГМФ, АМФ) (см. рисунок 5). Накопление нуклеотидов наряду с их предшественниками свидетельствует об активности процессов их биосинтеза. Мы предполагаем, что метаболизм пуринов в & теШ/егит отличается от метаболизма пуринов М. gallisepticum и А. ЫсНамН тем, что он направлен в сторону образования нуклеотидмонофосфатов из азотистых оснований.

Мы обнаружили различия в клетках трех видов в метаболизме не только пуринов, но и пиримидинов. В клетках А. 1тс11аюп накапливается тимидин, в 5. теШ/егит накапливаются дТМФ и дТТФ, а в клетках М. gallisepticum накоплений пиримидинов не определено. Из полученных данных мы предполагаем, что в клетках М. gallisepticum процессы преобразования тимидина и его производных имеют более высокую скорость по сравнению с остальными видами, в клетках 5. теШ/егит

активен синтез тимидиновых нуклеотидов, а в клетках А. 1сис11аи'И процессы синтеза пиримидиновых нуклеотидов замедленны.

Во всех трех видах молликут в модуле синтеза липидов накапливается продукт импорта глицерина в клетки - глицерин-3-фосфат. Глицерин-3-фосфат является предшественником синтеза глицерофосфолипидов - компонентов мембраны клеток. Анализ данных показал, что в клетках А. 1аШ1стИ, в отличие от М. gaШsepticum и 5. теШ/егит, наряду с глицерин-3-фосфатом накапливается продукт его окисления глицерин-3-фосфат-дегидрогеназой - дигидроксиацетонфосфат/ Ц-глицеральдегид-З-фосфат. Мы предполагаем, что в клетках 5. теШ/егит и М. gallisepticum лимитированы процессы утилизации глицерин-3-фосфата, тогда как клетки А. ШсИсти демонстрируют активное использование этого вещества в качестве источника углерода.

Рисунок 5. Накопления метаболитов в метаболизме пуринов клеток 5. теШ/егит, М. цаИ'керИсит и А. 1аЫ1икИ. Метаболиты отмечены кружками, ферменты, катализирующие реакции, отмечены ромбами, метаболиты, детектированные в наших экспериментах, отмечены зеленым цветом. Стрелки указывают метаболиты, которые накапливаются в пути. Цвет стрелки соответствует виду бактерий как указано на рисунке.

Основными узлами в катаболизме углеводов клеток А. 1аЫ1сп»и являются как компоненты гликолиза, так и метаболиты, образующиеся в процессе протекания реакций пентозофосфатного пути. Тогда как 5. теШ/егит и М. gallisepticum накапливают только Б-глицеральдегид-З-фосфат/дигидроксиацетонфосфат - важные промежуточные продукты гликолиза. Такие отличия могут свидетельствовать о

лимитировании процессов расщепления углеводов в клетках A laidlawii и замедлении утилизации фосфо-рибозо-пирофосфата - продукта реакций пентозофосфатного пути, источника фосфо-рибозильной группы в синтезе нуклеотидов.

Влияние аминокислотных замен на активность ферментов

Накопление метаболитов свидетельствует об измененной по отношению к двум другим видам молликут скорости протекания реакций. Было предположено, что причиной таких изменений могут служить аминокислотные замены в активных центрах ферментов. Мы рассмотрели первичную структуру активных центров ферментов, ответственных за синтез или утилизацию метаболитов, соответствующих отличающимся максимумам. Для того чтобы найти среди всех замен те, которые могут влиять на активность фермента, мы сопоставили данные о накоплении метаболитов с наличием аминокислотных замен в последовательностях соответствующих ферментов трех видов молликут. Известно, что аминокислотные замены в активном центре обычно приводят к снижению эффективности связывания фермента с субстратом и, как результат, к снижению скорости протекания реакции и накоплению субстрата. Результаты наших исследований показывают, что некоторые аминокислотные замены в активном центре могут привести к увеличению ферментативной активности белка.

Мы определили аминокислотные последовательности активных центров выбранных ферментов, у S. melliferum, М. gallisepticum, A. laidlawii в соответствии с выравниванием их относительно последовательностей активных центров гомологов у E.coli и В. subtilis (см п. «Выравнивание последовательностей»). Активные центры ферментов определялись в соответствии с имеющимися в литературе данными о кристаллической структуре фермента. Мы не обнаружили аминокислотных замен в активных центрах следующих ферментов: пуриннуклеозид-фосфорилаза DeoD-типа, фосфоацилтрансфераза PlsX, енолаза, глицеральдегид-3-фосфат дегидрогеназа (GAPDH, gap), транскетолаза (Q7NC51MYCGA одной из двух представленных транскетолаз). Мы также не смогли провести поиск аминокислотных замен для глицерин-3-фосфат-ацилтрансферазы и транскетолазы Q7NAR4 MYCGA, так как расположение их активных центров неизвестно.

Особенный интерес представляют те мутации, которые предположительно способны увеличивать активность ферментов. Мы обнаружили такие мутации в активных центрах гипоксантин-гуанин-фосфорибозилтрансферазы (1158Р) и аденин фосфорибозилтрансферазы (Ь271 и Т131) аннотированным для теШ/егит и фруктозо-бисфосфат альдолазы (У50Л) - 5. теШ/егит и М. %аЩ$ерйсит.

Исследование адаптации молликут к кислотному воздействию

Инфицирование организма-хозяина бактериями 5. теШ/егит, А. \aidlawu и М. gallisepticum включает в себя этап адаптации бактерий к пониженным значениям рН среды. Поскольку в настоящее время механизмы адаптации молликут к кислотному воздействию недостаточно изучены, для уточнения таких механизмов было проведено исследование метаболома, отражающего состояние клеточной активности измененных условиях.

В нашей работе было определено, что минимальные значения рН среды, которые М. gallisepticum, А. 1аШсмИ и теШ/егит способны перенести без понижения титра в течение одного часа, составляют - 4.8, 5.2, 5.1 - соответственно. Были проведены масс-спектрометрические исследования изменения метаболома трех видов молликут при кислотном воздействии. Изменение метаболома оценивалось с помощью программы ХСМБ. Мы обнаружили общее и специфическое для трех видов изменение состояния клеток на метаболомном уровне (см. таблицу 1).

При понижении рН у всех трех видов молликут происходит уменьшение содержания нейтральных аминокислот и аминокислот с кислотными свойствами, а также накопление в клетках нефосфорилированных Сахаров и азотистые оснований. Это позволяет предположить, что при кислотном воздействии состояние клетки характеризуется высокими энергетическими затратами. Специфические изменения метаболома при кислотном воздействии на клетки молликут касаются в основном метаболизма аминокислот и нуклеотидов. В клетках 5. теШ/егит увеличивается содержание а,а-трегалозы/сахарозы и падает концентрация пролина, глутамина и глутамата. В клетках М. gaШsepticum наблюдается повышение содержания наработанного цитруллина, а также соединений- осмопротекторов - пролина, валина и а,а-трегалозы/сахарозы. Для А. 1аШ1т/И характерно значительно снижение содержания лизина, пролина, валина, глутамина и глутамата.

Таблица 1. Изменение содержания метаболитов в клетках трех видов моллнкут при

кислотном и осмотическом воздействии.

Название метаболита Выводы по изменению метаболомов при кислотном воздействии Выводы по изменению метаболомов при осмотическом воздействии

М. gal. S. mel. A. laidl. М. gal. S. mel. Л. laidl.

L-Цитруллин c<h c<h c<h

L-Пролин c<h c>h Oh c<h Oh

Бетаин/Ь-Валин c<h Oh c<h

L-Глутамин c>h c>h c<h c<h

L-Аргинин c<h

а-а-Трегалоза/Сахароза c<h c<h c<h c<h

L-Глутаминова к-та Oh c>h c<h c<h c<h

L-Лизин Oh

Обозначения - М. gal.- М. gallisepticitm, S. mel.- S. melliferum, A. laidl.- A. laidlawii

c>h - количество метаболита в контрольном образце (рН — 6.5, NaCl, 150 мМ) превышает количество этого соединения в клетках, подвергнутых воздействию;

c<h - количество метаболита в контрольном образце меньше, чем количество этого соединения в клетках, подвергнутых осмотическому воздействию (NaCl, 600 мМ) или воздействию кислоты;

Обычно бактерии реагируют на подкисление среды увеличением экспрессии ферментов, которые способны преобразовывать метаболиты с кислотными свойствами в нейтральные или метаболиты с нейтральными свойствами в щелочные производные. К таким ферментам относятся аргининдезаминаза, аргининдекарбоксилаза и глутаматдекарбоксилаза. В аннотации генома A. laidlawii эти ферменты отсутствуют, однако аннотирован фермент лизиндекарбоксилаза, что свойственно только этому представителю молликут. Лизин-декарбоксилаза -единственный белок в клетках A. laidlawii, способный использовать в качестве субстрата лизин, катализируя его расщепление до кадаверина. Снижение концентрации лизина в клетках A. laidlawii указывает на активацию лизиндекарбоксилазы при кислотном воздействии на клетки. Такой механизм не характерен для двух других видов микоплазм - М. gallisepticum и S. melliferum.

Одним из самых важных путей адаптации микроорганизмов к кислотному воздействию является путь дезаминирования аргинина, сопровождающийся образованием АТФ. В процессе реакций этого пути аргинин преобразуется в цитруллин и аммиак, орнитин транскарбамилаза преобразует цитруллин в орнитин и карбамилфосфат, аргинин/орнитинового антипорт избавляет клетку от орнитина, а карбаматкиназа расщепляет карбамилфосфат до аммиака и С02, генерируя АТФ (см.

рис. 6). Аммиак, производимый в процессе дезамииирования аргинина, способен подщелачивать внутриклеточную среду.

В двух из трех исследуемых нами бактерий этот путь аннотирован, но ферментативно незавершен. Согласно данным протеогеномной аннотации только 5. теШ/егит содержит белки, ответственные за проведение всех реакций пути дезамииирования. У М. %а1Шерйсит не хватает орнитин карбамоилтрансферазы и карбамат-киназы, тогда как у А. ЫсНамН отсутствует также и центральный фермент этого пути - аргининдезаминиза. В клетках & теШ/егит мы не наблюдаем значительных изменений содержания компонентов этого пути в процессе кислотного воздействия, что можно объяснить наличием всех ферментов, необходимых для выведения продуктов реакции. В случае бактерии М. gaШsepticum цикл дезамииирования аргинина прерван после реакции образования цитруллина. Мы предполагаем, что причиной накопления цитруллина в клетках М. %а1Шерйсит является отсутствие ферментов утилизации или эффлюкса цитруллина.

NHi L-Citrulline ^ arvA f L-Arginine

о -e--О

Pi О—

о о

II ^ОН С Р

H;N' -о' ->он Carbamoyl phosphate

2ADP, Pi О—?

Рисунок 6. Путь дезамшшрования аргинина.

Метаболиты отмечены кружками, ферменты, катализирующие реакции, отмечены ромбами, детектированные метаболиты отмечены зеленым цветом.

Мы обнаружили также увеличение содержания основных осмопротекторов (пролина, валина и трегалозы/сахарозы) в клетках М. %аШБерНсит. Накопление трегалозы при кислотном воздействии характерно также для клеток теШ/егит. Мы предполагаем, что механизм адаптации клеток М. gallisepticum к кислотному воздействию сопряжен с адаптацией к осмотическому воздействию. Накопление

трегалозы клетками молликут в условиях внешнего воздействия не является уникальным явлением. Многие микробы накапливают дисахариды в качестве ответа на осмотический и тепловой стрессы, а также голод и воздействие высушивания.

Исследование адаптации молликут к осмотическому воздействию

Уникальной особенностью исследуемых видов молликут является способность выживать при воздействии высоких концентраций соли в питательной среде - до 1000 мМ. Мы провели масс-спектрометрическое исследование изменения метаболома трех видов молликут при осмотическом воздействии (600 мМ ЫаС1).

В результате анализа изменений метаболома бактерий 51. теШ/егит, А. \aidlawii и М. gallisepticum в условиях высокого осмотического давления внешней среды было выявлено увеличение содержания нейтральных и отрицательно заряженных аминокислот; уменьшение содержания свободных азотистых оснований и увеличение содержания нефосфорилированных форм Сахаров в клетках всех трех видов. Накопление нейтральных аминокислот при осмотическом воздействии может быть связано с выравниванием давления внутри клеток. Аминокислоты, проявляющие кислотные свойства, способны диссоциировать с образованием анионов, поэтому они необходимы клеткам для компенсации заряда импортируемых внутрь клетки ионов калия. Снижение содержания свободных азотистых оснований и увеличение содержания Сахаров и их производных в клетках свидетельствуют о синтезе нуклеотидов при осмотическом воздействии.

Известно, что для бактерий наиболее частым ответом на осмотическое воздействие является увеличение внутриклеточной концентрации ионов К+. Увеличение внутриклеточной концентрации ионов К+ происходит за счет их импорта с помощью трех основных ферментов: Тгк, Кс1р и Кир. В геноме клеток М ^а!П.чер11сит, 5. теШ/егит и А. laidlaшi аннотированы гены только одной системы импорта ионов К+ - Тгк (МйА_0085, АСЬ_1025, 8РМ 01850). Накопление катионов К+ влечет за собой изменение концентраций анионных соединений в клетке. Основным анионным соединением, участвующим в осморегуляции бактерий (осмолитом), является анион глутаминовой кислоты - глутамат. Глутаминовая кислота может быть как импортирована из питательной среды, так и синтезирована в самих клетках молликут. В клетках А. laidlawii, например, аннотирована

аминотрансфераза, использующая 2-оксоглутарат и лейцин или валин в качестве субстратов для производства глутамата (АСЬ_1151). Клетки 5. теШ/егит имеют фермент ГМФ-синтазу, которая катализирует процесс преобразования ксантозин монофосфата в ГМФ с сопряженным переходом глутамина в глутамат. Некоторые соединения, присутствующие в среде, могут стимулировать рост бактерий при гиперосмотических воздействиях. Эти соединения по структуре молекулы представляют собой цвиттерионы и являются осмопротекторами. К потенциальным осмопротекторам относятся следующие соединения: а,а-трегалоза, пролин, бетаин, бетаиновый альдегид, пролинбетаин, холин, холин-о-сульфат, (3-диметилсульфопропионат и карнитин.

В метаболоме всех трех видов было выявлено увеличение содержания глутаминовой кислоты, что указывает на активацию классических механизмов адаптации к осмотическому воздействию. Кроме глутамат-иона в клетках М. gallisepticum и 51. теШ/егит было обнаружено увеличение содержания глутамина и цитруллина. Содержание глутамина в клетке находится в балансе с содержанием глутамата, так как их взаимный переход часто используется ферментами для переноса аминогруппы. Увеличение содержания цитруллина свидетельствует об активности аргининдезаминазного пути. Аргининдезаминазный путь кроме адаптации к кислотному воздействию используется клетками также в качестве дополнительного источника энергетического эквивалента АТФ (кроме того, в клетках 5. теШ/егит мы также наблюдаем увеличение содержания аргинина). Также в клетках М. ^аШхерйсит и 5. теШ/егит наблюдаются изменения содержания таких осмопротекторов, как пролин и трегалоза. Снижение содержания трегалозы в клетках теШ/егит может быть связано с тем, что клетки используют дисахариды в качестве источника энергии. Мы считаем, что для выживания в условиях осмотического воздействия клетки молликут используют классические механизмы адаптации, включающие импорт в клетку ионов К+, глутамата и основных осмопротекторов.

Характеристика изменения метаболома трех видов в условиях осмотического и кислотного воздействий.

Общей характеристикой изменений метаболомов трех видов в условиях осмотического и кислотного воздействий является активное накопление Сахаров в

клетке, что свидетельствует об энергетических затратах в процессе адаптации. В условиях осмотического стресса активируются процессы биосинтеза высокомолекулярных соединений. Мы предполагаем, что изменение аминокислотного состава клеток является одним из основных способов приспособления клеток молликут к внешнему воздействию. На активное участие аминокислот в адаптации указывают также данные исследований транскриптомных изменений в клетках Mycoplasma genitalium, проведенных группой профессора Бэйсмана. Авторы продемонстрировали увеличение экспрессии пермеаз, которые участвуют в импорте аминокислот и других субстратов из богатой среды в клетку при различных воздействиях. Специфические изменения метаболома в клетках S. melliferum, A. laidlawii и М. gallisepticum под влиянием кислотного и осмотического воздействия свидетельствуют о том, что механизмы адаптации у этих трех видов различны.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В ходе данной работы с использованием метода высокоэффективной хромато-масс-спектрометрии (ВЭЖХ-МС/МС) на метаболомном уровне исследованы принципы организации метаболизма трех видов бактерий класса Молликут А. laidlawii, S. melliferum, М. gallisepticum. На основе данных протеогеномной аннотации построены карты метаболизма A. laidlawii, S. melliferum, М. gallisepticum. Для каждого вида проведено уточнение первичной реконструкции и построены карты метаболизма без пробелов, изолированных реакций или неполных метаболических путей в схеме. Был проведен анализ метаболома бактерий A. laidlawii, М. gallisepticum, S. melliferum, культивируемых в оптимальных условиях. Метаболические пути трех исследуемых видов бактерий класса молликут были сопоставлены между собой. Выявлены особенности метаболизма, характерные для каждого вида. Проведен сравнительный анализ относительных концентраций метаболитов в клетках М. gallisepticum, A. laidlawii и S. melliferum. Данные об относительном содержании метаболитов в трех видах молликут сопоставлены с наличием аминокислотных замен в активных центрах ферментов, катализирующих реакции с участием этих метаболитов. Сделаны выводы о характере возможного

влияния таких замен на активность ферментов. Проведен анализ изменения метаболома бактерий & теШ/егит, А. 1аШаки и М. gallisepticum в условиях кислотного и осмотического воздействий и предложены механизмы адаптации А. Ыс11спчИ, Б. теШ/егит, М. %а.Ш$ерйсит к таким видам воздействия.

ВЫВОДЫ

1. На основе данных протеогеномной аннотации были реконструированы карты метаболизма для А. ШсНан'Н, Б. теШ/егит, М. gallisepticum.

2. С помощью метода ВЭЖХ-МС/МС были идентифицированы 75, 74 и 74 метаболита в клетках А. 1аиЯсми, М. gallisepticum, Б. теШ/егит соответственно.

3. В клетках исследуемых видов молликут были детектированы метаболиты пентозофосфатного пути, что указывает на его активность; были предложены варианты протекания реакций этого пути при отсутствии фермента трансальдолазы у 51. теШ/егит, А. ШсИсмИ и М. gaUisepticum. Была выявлена активность пути биосинтеза терпеноидов в клетках всех трех видов молликут. В клетках А. ШсИсми была продемонстрирована активность пути биосинтеза рибофлавинов.

4. Сравнение относительного содержания метаболитов в клетках показало, что метаболизм пуринов в & теШ/егит отличается от метаболизма М. gallisepticum и А. 1ыс11аюИ тем, что направлен в сторону образования нуклеотидмонофосфатов из азотистых оснований, а не на их расщепление. Найденные отличия в метаболизме углеводов свидетельствуют о лимитировании процессов расщепления углеводов в клетках А. Шс11а\\>И и замедленной утилизации фосфорибозилпирофосфата -источника фосфорибозильной группы в синтезе нуклеотидов, в то время как в Я. теШ/егит и М. gallisepticum активно расщепляют углеводы.

5. Полученные данные о накоплении метаболитов были сопоставлены с аминокислотными заменами в активных центрах ферментов. Были обнаружены аминокислотные замены, способные усиливать активность гипоксантин-гуанин-фосфорибозилтрансферазы, аденин фосфорибозилтрансферазы и фруктозо-бисфосфат-альдолазы.

6. Были проведены исследования изменения метаболома трех видов молликут при кислотном воздействии. Данные позволили предположить, что А. ШсНаюп имеет

механизм адаптации отличный от М. gallisepticum и S. melliferum и для выживания при кислотном воздействии использует декарбоксилирование лизина. В клетках М. gallisepticum механизм адаптации к кислотному воздействию связан с активацией цикла дезаминирования аргинина.

7. Были проведены исследования изменения метаболома трех видов молликут при осмотическом воздействии. Выявлено, что при осмотическом воздействии в клетках A. laidlawii, S. melliferum, М. gallisepticum происходит увеличение содержания глутамата, что указывает на активацию классических механизмов адаптации и является следствием импорта в клетку ионов К+. Накопление нейтральных и кислых аминокислот в клетке при осмотическом воздействии, вероятно, является способом выравнивания давления внутри клетки.

СПИСОК ПУБЛИКАЦИЙ

1. Ванюшкина А. А., Камашев Д.Э., Алтухов И. А., Говорун В.М. Идентификация внутриклеточных метаболитов Spiroplasma melliferum методом ВЭЖХ-МС. // Биохимия (Москва). 2012. Т. 77(8) С. 1052-1066

la. Vanyushkina A.A., Kamashev D.E., Altukhov I.A., Govorun V.M. Identification of intracellular Spiroplasma melliferum metabolites by the HPLC-MS method. // Biochemistry (Mosc). 2012. V. 77(8) P. 864-77

2. Alexeev D., Kostrjukova E., Aliper A., Popenko A., Bazaleev N., Tyakht A., Selezneva O., Akopian Т., Prichodko E., Kondratov I., Chukin M., Demina I., Galyamina M., Kamashev D., Vanyushkina A., Ladygina V., Levitskii S., Lazarev V., Govorun V. Application of Spiroplasma melliferum proteogenomic profiling for the discovery of virulence factors and pathogenicity mechanisms in host-associated spiroplasmas.// J Proteome Research. 2012. V. 11 № 1. P. 224-36.

3. Vanyushkina A. A., Fisunov G. Y., Gorbachev A. Y., Kamashev D. E., and Govorun V. M. Comparative Metabolite Analysis of Thee Mollicutes Species. // PloS One. 2014. V. 9№3.P. 1-16 (e89312).

Материалы российских и международных конференций

4. Ванюшкина А.А., Алтухов И.А. Идентификация внутриклеточных метаболитов молликут методом ВЭЖХ-МС. // Эфферентная и физико-химическая медицина. 2012. №2. С. 61-62 (тезисы конференция молодых ученых НИИ Физико-химической медицины «Молекулярная медицина и постгеномная биология» Москва, 23-24 мая 2012.

5. Vanyushkina А.А., Kamashev D.E., Govorun V.M. Metabolomic analysis of three bacteria of Mollicutes class // EMBO Conference. «From Functional Genomics to Systems Biology», Гейдельберг, 17-20 ноябрь 2012. P. 168

6. Ванюшкина A.A., Камашев Д.Э. , Горбачев А.Ю. , Фисунов Г.Ю. , Говорун В.М. Анализ метаболома бактерий класса молликут (S. melliferum, M. gallisepticum, А. laidlawii).// Конференция молодых ученых НИИ Физико-химической медицины. «Молекулярная медицина и постгеномная биология», Москва, 28-29 мая 2013. С. 60

7. Vanyushkina А.А., Gorbachev A.U., Fisunov G.U., Kamashev D.E., Govorun V.M. Mollicutes adaptation to low pH conditions.// 9th Annual Conference of the Metabolomics Society, Glasgow, 1-4 июль 2013. P. 13-2

8. Vanyushkina A.A., Gorbachev A.U., Fisunov G.U., Kamashev D.E., Govorun V.M. Mollicutes adaptation to low pH conditions.// 38th FEBS Congress «Mechanisms in Biology» Санкт-Петербург, 6-11 июля 2013. P. 555

Подписано в печать 17.02.2015 г. Формат А5 Бумага офсетная. Печать цифровая. Тираж 70 Экз. Заказ №2252-2-15 Типография ООО "Ай-клуб" (Печатный салон МДМ) 119146, г. Москва, Комсомольский пр-кт, д.28 Тел. 8-495-782-88-39