Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур

Джигадло, Михаил Иосифович

Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему
Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур
ВАК РФ 06.01.05, Селекция и семеноводство

Автореферат диссертации по теме "Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур"

На правах рукописи

Джигадло Михаил Иосифович

Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур

Специальность 06.01.05 - селекция и семеноводство

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени кандидата сельскохозяйственных наук

Мичуринск - 2003

Работа выполнена в лаборатории биотехнологии Орловского государственного университета в 1980 - 2002 гг.

Научный руководитель - Заслуженный деятель науки РФ, доктор сельскохозяйственных наук, профессор А.Ф. Колесникова;

Официальные оппоненты - доктор сельскохозяйственных наук,

профессор Г. А. Седышева; кандидат сельскохозяйственных наук, С.Л. Расторгуев.

Ведущее предприятие - Всероссийский научно-исследовательский институт садоводства им. И.В. Мичурина

Защита диссертации состоится 18 июня 2003 года на заседании диссертационного совета Д 220.041.01 при Мичуринском государственном аграрном университете по адресу: 393760, Тамбовская область, г. Мичуринск, ул. Интернациональная, 101, МГАУ.

С диссертацией можно ознакомится в библиотеке Мичуринского государственного аграрного университета.

Автореферат разослан /б^^И ^_2003 г.

Отзывы на автореферат в двух экземплярах, заверенные и скреплённые гербовой печатью, просим направлять ученому секретарю совета.

Ученый секретарь диссертационного совета Д 220. 041. 01 кандидат сельскохозяйственных наук, старший научный сотрудник н.В. Андреева

2оо?-А

Общая характеристика работы

Актуальность темы. Проблема создания сортов плодовых и ягодных культур интенсивного типа требует использования в селекционном процессе новых методов, основанных на достижениях генетики, биотехнологии, биофизики, физиологии и других наук. Новые методы необходимы также в производстве оздоровленного от вирусов посадочного материала.

Использование методов биотехнологии позволяет:

- преодолевать с помощью культуры зародышей in vitro несовместимость отдаленных видов;

- ускорять размножение ценных генотипов, что особенно важно на первых этапах селекции, когда селекционер имеет единичные растения;

- управлять развитием органов растений-регенерантов после высадки их в условия in vitro воздействием разнообразных физических условий культивирования, сдвигать продуктивность растений в сторону увеличения вегетативной массы, если речь идет о питомниках, или в сторону максимальной закладки генеративных органов, когда растения предназначены для получения плодовой продукции;

- получать каллусную ткань и управлять способностью тканей к органогенезу, получать новые формы растений с хозяйственно-полезными признаками. (Сидоренко, Степура, 1967, Бутенко, Попов, 1970, Высоцкий, 1978).

- оздоравливать сорта методом микроклонального размножения в системе интенсивного производства посадочного материала высших категорий качества;

Биофизические методы в сочетании с культурой in vitro при воздействии на пыльцу, зародыши, меристематические ткани позволяют:

- использовать электростатические поля высокой напряженности при разделении пыльцы по уровню плоидности (Остапенко, Рыжков, 1967; Мо-лотковский, 1969);

- электросепарировать пыльцу для повышения её оплодотворяющей способности при отдаленной гибридизации;

- применять магнитные и электромагнитне поля (МП) (Ингрем, 1972); ультрафиолетовое (УФЛ) облучение растительных тканей (Kimbull, 1955, 1957, 1963; Setbou, 1957, Гурзадян, 1981; Камшилов, 1963, 1965); низкоинтенсивное когерентное излучение (НКИ) оптического диапазона в регуляции клеточного метаболизма (Гурвич, 1945, 1968, 1974; Brown, 1973, Бу-даговский, 1995, Шахов, 1974)

В связи с необходимостью ускорения селекционного процесса и повышения его эффективности использование биотехнологических и биофизических методов в селекции плодовых и ягодных культур представляет большой научный и производственный интерес.

Цель и задачи исследований. Цель настоящих исследований - выявить наиболее эффективные, из применяемых в селекции растений, биотехнологические и биофизические методы, оптимизировать их для плодовых и

ягодных культур и совершенствовать метод к ирд^д^адэдэдд ){Щ>£Ножения

БИБЛИОТЕКА I

данных культур в системе производства посадочного материала высших категорий качества.

Дня достижения постановленной цели необходимо было решить следующие задачи:

- изучить эффективность метода культуры зародышей in vitro при отдаленной гибридизации вишни и получить гибриды этой культуры на новой генетической основе;

- разработать метод получения индуцированных мутаций под воздействием биологических мутагенов;

- изучить эффективность метода микроклонального размножения для получения безвирусного посадочного материала земляники, черной и красной смородины, ежевики, сортов и подвоев вишни, сливы и ряда других культур;

- оценить стабильность морфологических и помологических признаков сортов, полученных путем микроклонального размножения;

- оценить эффективность биофизических методов, используемых в селекционных программах (электросепарирование, УФЛ, МП, лазерное излучение, импеданс, электробиолюминесценция - ЭБЛ - эффект Кирлиан), и выделить лучшие из них для применения на плодовых и ягодных культурах.

Научная новизна. Разработаны биотехнологические и биофизические приемы воздействия как на целые растения, так и на их отдельные части, находящиеся в культуре in vitro.

Впервые предложен способ выращивания растений отдаленных гибридов косточковых, основанный на сочетании культуры зародышей in vitro на ранних этапах культивирования и метода микроклонального размножения на более поздних этапах эмбриоспасения.

С использованием культуры in vitro получены отдаленные гибриды F] в оригинальных комбинациях скрещивания: вишня обыкновенная х вишня железистая, вишня обыкновенная х вишня войлочная, вишня обыкновенная х вишня пенсильвинская, вишня обыкновенная х вишня Маака.

Впервые разработан способ введения различных мутагенов во внутриклеточные структуры зародыша гидродинамическим воздействием.

Выявлен специфический характер воздействия различных биологических мутагенов на органогенез растений в культуре in vitro.

Используя совместное применение веществ стимуляторов и регенерации впервые в культуре in vitro получен смородинно-крыжовниковый гибрид, имеющий нетрадиционный набор хромосом (2п=4х=32).

Разработан комплект микроинструментов для работы с культурой зародышей, меристем и для манипуляции с микрорастениями на этапах субкультивирования, повышающий производительность труда в 8-12 раз (положительное решение на патент ВНИИГПЭ от 19.11.2001).

Разработан способ поверхностной стерилизации растительного материала, сокращающий время подготовки с 40-50 мин, до 10 -12 мин.

Проведена оценка сортов и подвоев косточковых на способность к мик-роклональному размножению и зеленому черенкованию.

Разработан и изготовлен прибор автономного типа для измерения импеданса растений непосредственно в условиях сада.

Впервые доказано, что при использовании излучения оптического квантового генератора с целью преодоления нескрещиваемости при отдаленной гибридизации, необходимо учитывать плоидность родительских форм, включенных в скрещивания.

Показано, что немодулированое когерентное излучение оптического диапазона не способно самостоятельно инициировать морфогенетические процессы. Необходима модуляция НКИ определенной информацией клеток доноров, при приеме которой в биосистеме начинается процесс, адекватный полученной информации.

Впервые эффект электробиолюминесценции (ЭБЛ) положен в основу разработки экспресс-метода для оценки устойчивости сортов, сеянцев и гибридов груши к бурой пятнистости, патент РФ №1166729. —1985, совместимости привойно-подвойных комбинаций плодовых культур на сверхранних этапах жизни саженцев. Показана возможность использования ЭБЛ для определения половых различий у растений, оптимальных доз и характера облучения растений различными излучениями.

Практическая ценность работы

В соавторстве выведены и зарегестрированы в Государственном реестре селекционных достижений, допущенных для использования в Центральном и Центрально-Чернозёмном регионах России, новые клоновые подвой-ные формы для вишни и черешни - В-2-180, В-2-230, В-5-88, В-5-172. Получено 5 патентов на изобретения: патенты РФ №1166729. -1985, № 35048, № 35050,35051,34593(1999).

Получены отдаленные гибриды вишни и высажены в открытый грунт для использования в дальнейшей селекционной работе.

Созданные на основе микроклонального размножения оздоровленные маточники во ВНИИСПК позволяют ежегодно производить посадочный материал плодовых и ягодных культур категории суперэлиты и элиты в объеме:

а) земляники с закрытой корневой системой - 140-180 тыс. штук 22 сортов;

б) саженцев смородины черной и красной - 30-40 тыс. 26 сортов.-

в) саженцев косточковых культур - 6-10 тыс. - 18 сортов.

г) саженцев нетрадиционных культур, ежевики, стевии и ряда других с закрытой корневой системой 5-7 тыс. штук.

Этим посадочным материалом заложены производственные плантации плодовых и ягодных культур в 33 - х областях России. Заложены маточно-черенковые плантации косточковых культур, черной и красной смородины из оздоровленного и размноженного методом in vitro посадочного материала.

Выпущен лабораторный практикум по биотехнологии сельскохозяйственных растений (в соавторстве).

Апробация работы. Основные положения и результаты исследований были доложены и представлены на международных, республиканских, региональных научных конференциях, научно-методических совещаниях и чтениях, посвященных важнейшим проблемам биотехнологии, биофизики, селекции и производству посадочного материала плодовых и ягодных культур:

Международные: Ш-й съезд радиобиологии (Киев, 1993), ЦГЛ им. И.В. Мичурина (Мичуринск, 1982), Петрозаводск (1976), съезд радиобиологии (Пущино, 1993), Белорусский институт плодоводства (Минск, 1992), институт садоводства (Киев, 2000), государственный педагогический институт (Пенза, 1996), институт биохимической физики (Москва, 1995); региональные: ЛТУ (Липецк, 2002), ВНИИГ и СПР (Мичуринск, 1988, 1996, 1998, 1999, 2000), НИЗИСНП (Москва, 1993), институт горного садоводства (Сочи, 1997).

Материалы демонстрировались на ВДНХ, где были отмечены серебряной медалью (1992).

Основные результаты исследований опубликованы в 48 научных работах. Получено 5 патентов на изобретения.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 210 страницах машинописного текста, включает - введение, 5 глав, выводы, практические рекомендации. Содержит 23 таблицы, 99 рисунков, 6 приложений. Список использованных литературных источников включает 442 наименования, в т.ч. 191 на иностранных языках.

Объекты, условия и методика проведения исследований.

Исследования выполнены в ВНИИГиСПР им. И.В. Мичурина (Мичуринск), ВНИИСПК и ОГУ (Орел) в 1980-2001 гг. в соответствии с программами НИР.

Объектами исследований послужили: отдаленные гибриды Fi и F2 поколений вишни (Cerasus Mill.), полученные во ВНИИСПК Джигадло, Колесниковой от скрещивания тетраплоидных сортов вишни обыкновенной с диплоидными видами подрода Pseudocerasus: С. sachalinensis, С. kurilensis, С. maximoviczii, С. serrulata, С. incisa, С. mahaleb; гибриды, полученные во ВНИИСПК от возвратных скрещиваний с триплоидными и тетраплоидными донорами F2 и F3, созданными на основе отдаленной гибридизации вишни обыкновенной с вышеназванными видами; сорта вишни обыкновенной: селекции ВНИИСПК: Шоколадница, Студенческая, Звездная, Тургеневка, Новелла, Ливенская, Мценская, Муза, Ровесница, Алексеевка; селекции ВНИИГиСПР Жуковская; селекции ВСТИСП: Черноокая; подвои вишни селекции ВНИИСПК (отдаленные гибриды С. vulgaris х С. maacki : В-2-180, В-2-230, В-5-172, В-5-88, Ц-8-101; сеянцы груши (Pyrus domestica Medik) сорта Нежность от свободного опыления; районированные отечественные и зарубежные сорта ягодных культур - земляники (Fragaria ananassa) Фестивальная, Зенга-Зенгана, Редгонтлит, Кулон, Надежда, Зенит, Золушка, Холидей,

Алый Парус, Рубиновый Кулон, Фейерверк, Урожайная, ЦГЛ, Фламинго, Светлячок, ' Кардинал, Лировидная, Богота, Женева-22, Tristar, Trubadur, Favett, Tenura, Гора Эверест; черной смородины (Ribes nigrum L.) Беллорус-ская сладкая, Минай Шмырев, Ершистая, Орловия, Лентяй, Сеянец Голубки; гибрид №34-17-81; сорта красной смородины (Ribes sylvestre Mert.): Голландская Красная, Ненаглядная, Щедрая, Натали, Каскад, Красная Виксне, Роте Шпетлезе, Розе Чайр;

- сорт ежевики (Rubus caesius L.) Торнфри;

- стевия (Stevia rebaudiana Bertoni).

В качестве материала исследований в опытах служили отдельные органы растений:

- у гибридов вишни всех поколений и груши использовали зародыши на разных этапах развития;

- у сортов и подвоев вишни, земляники, черной и красной смородины, стевии использовали меристематические верхушки;

- у сортов и видов косточковых культур использовали сформировавшуюся пыльцу и побеги,

- у груши, смородины, облепихи и др. использовали зародыши и листья. Исследования выполнены в соответствии с методиками: «Программа и

методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур» (Мичуринск, 1980), (Орёл, 1995); методические рекомендации по применению искусственной культуры тканей и органов в генетико-селекционных работах с плодовыми (Мичуринск, 1987); «Совместимость привоя и подвоя яблони» по методике (Коровин, 1979). Укореняемость зеленых черенков и отбор лучших из них выполняли согласно методике Тарасенко (1982), Татаринова, Зуева (1984).

Экспланты вычленяли в асептических условиях в ламинар-боксах КПГ-1 под бинокулярным микроскопом МБС-9 при 12-48-кратном увеличении. Размер экспланта 0,2-0,3 мм. Повторность при проведении исследований по микроклональному размножению была трехкратная, каждая повторность состояла из 100 культуральных сосудов. Посевы проводили на среде Мураси-ге и Скуга (микроклональное размножение), на среде Смирнова - культура зародышей.

Культивирование осуществляли в культуральных комнатах при температуре 25-28°С, 16-ти часовом фотопериоде при верхне-боковом освещении люминесцентными лампами типа ЛБ-40, ЛД-40, ЛФР-180, освещенность -3,5-5 тыс. люкс. Адаптацию микрорастений проводили в комнатах с освещенностью 7-9 тыс. люкс, используя лампы типа ДРИ-2000-6. При влажности 90-95% и 16-часовом фотопериоде. Субстрат автоклавировали. СЭ рассаду земляники пикировали в торфоперегнойные горшочки, изготовленные на переоборудованной машине ИГГ-10.

Гидродинамическое воздействие на зародыши осуществляли центрифугированием при 1000 g. Электросепарирование пыльцы проводили на сконструированном нами приборе по методике ВНИИГиСПР (Остапенко, Рыжков, 1967,1977).

Обработку пыльцы в постоянном магнитном поле проводили на сконструированной нами установке с самарий-кобальтовыми магнитами, напря-женость поля - 2,0 Т. и на сконструированной импульсной электромагнитной установке (ИЭМ). Напряженность МП в импульсе — 8 Т. Длительность импульса 1,0-1,5 мс. Для облучения растительных объектов УФ излучением применяли лампы типа БУВ-15, БУВ-30, ПРК-2, ПРК-7, СДВ-1000; для мутагенного воздействия - БУВ-15, БУВ-30 с X 2537 А, для стимулятивного действия - ПРК-2, ПРК - 7.

Для использования низкоинтенсивного когерентного излучения была создана нами установка, в качестве историка применялся гелий-неоновый лазер JITH-207 с длиной волны 632,8 нм. Для измерения импеданса был нами создан прибор на базе реохордного моста Р-38, частота 500 Гц, датчик сопротивления с глубиной погружения игл 1,5 мм и расстоянием между ними 7 мм.

Для перевода смородинно-крыжовникового гибрида №34-17-81 селекции д. с/х. н. Огольцовой на новый уровень плоидности использовали 0,1% раствор колхицина. Для работы по использованию эффекта ЭБЛ нами были созданы две установки с различными параметрами. Экспериментальные данные обрабатывали статистически, используя метод дисперсионного анализа (Доспехов, 1985).

Результаты исследований

Культура зародышей in vitro, отдаленная гибридизация.

Анализ экспериментальных данных показал, что оптимальной питательной средой на этапе введения в культуру зародышей косточковых культур является среда Смирнова без веществ цитокининовой группы. Дальнейшее размножение полученных микрорастений было наиболее эффективным на питательной среде Мурасиге и Скуга с введением 6-бензиламинопурина в концентрации 0,5-2 мг/л в зависимости от пассажа. От числа вычлененных зародышей получено 68,0-80,0 % растений отдаленных гибридов F2 в комбинации скрещивания Шоколадница х 1-9; х 1-10; х 2-11; х 2-9; х 1-30; 79,6 % -Шоколадницах 1-23; 80,0% - Шоколадница х 1-5 (табл. 1).

От скрещивания тетраплоидных сортов и триплоидных гибридов образуется определенное число зародышей, способных к прорастанию в культуре in vitro.

Полиплоидия. Совместное применение полиплоидизирующих химических соединений с культурой меристематических тканей in vitro может быть более успешным для перевода растений на новый уровень плоидности. Для исследований был взят смородинно-крыжовниковый гибрид № 34-17-81 (смородина Призовая х крыжовник Смена), имеющий набор хромосом 2п=2х=16. Меристематическую верхушку вычленяли общепринятым методом. Размер экспланта составлял 0,2-0,25 мм. Питательная среда Мурасиге -Скуга была обогащена ИУК - 3 мг/л. Пробирки с апексами помещали в термостат на 6 дней, температура - 22-23°С при отсутствии освещения. Убедившись в отсутствии контаминации, на меристематический купол наносили ка-

шло 0,1% колхицина. Через 72 часа меристему переносили на новую питательную среду, содержащую вместо ауксина цитокинин (6-БАП) 0,5 мг/л.

1. Выход отдаленных гибридов F2 между сортами вишни обыкновенной и гибридами Fi (сорта х диплоидные виды) с использованием культуры зародышей in vitro._

Комбинации скрещивания Число высаженных зародышей Число проросших зародышей %

Памяти Вавилова х 1-12 (Любская х Сахалинская

12-34-8) 1 1 100

Шоколадница х 1-5 (Жуковская х Курильская №4) 5 4 80,0±8,9

Шоколадница х 2-3 (Любская х Сахалинская фор-

ма Edwin Muller) 9 7 77,7±4,9

Шоколадница х 1-9 (Любская х Сахалинская фор-

ма 12-34-8) 25 17 68,0±1,9

Шоколадница х 1-10 (Любская х Сахалинская фор-

ма 12-34-8) 13 10 76,9±3,3

Шоколадница х 2-11 (Памяти Вавилова х Сахалин-

ская форма Edwin Muller) 3 1 33,3±19,2

Шоколадница х 2-9 (Любская х Сахалинская фор-

ма Edwin Muller) 5 4 80,0±8,9

Шоколадница х 1-30 (Любская Сахалинская форма

Edwin Müller) 12 11 91,6±2,4

Шоколадница х 1-22 (Любская х С. serrulata форма

lanesiana №2) 264 12 4,5±0,07

Шоколадница х 1-32 (Любская х Сахалинская

Edwin Muller) 152 49 32,2±0,3

Шоколадница х 1-23 (Любская х С. serrulata форма

lannesiana №2) 152 121 79,6±0,2

Жуковская х 1-14 (Любская х Сахалинская) 1 1 100

Жуковская х 2-11 (Памяти Вавилова х Сахалин-

ская форма Edwin Muller) 1 1 100

Поздний мутант Любской х 1-12 (Любская х Саха-

линская форма 12-34-4) 1 1 100

Поздний мутант Любской х 2-11 (Памяти Вавилова

х Сахалинская форма Edwin Muller) 2 1 50,0±35,3

Поздний мутант Любской х 1-10 (Любская х 12-34- 5 4 80,0±8,9

Поздний мутант Любской х 1-7 (Жуковская х Рг. 4 3 75,0±12,5

dawyckensis)

Освещение доводили до 4 тыс. люкс. После образования конгломерата почек проводили до трех субкультур и по достижении микрорастениями размера не менее 15 мм их пересаживали на среду укоренения. На этом этапе осуществляли цитологический контроль (лаборатория цитологии ВНИИСПК) (табл. 2). Как видно из таблицы 2, растений с тетраплоидным набором хромосом (32) было одно.

Данный гибрид был размножен методом микроклонирования, проведен повторный цитологический контроль, который подтвердил его тетраплоид-ность. Растения с 1999 года вступили в пору плодоношения. Вес ягоды до 2 г.

2. Плоидность растений смородинно-крыжовникового гибрида № 34-17-81, полученных __ методом культуры in vitro__

Название гибрида Число полученных растений Диллоиды (16 х) Миксоплоиды Тетраплоиды (32 х)

число % число % число %

№34-17-81 (смородина х крыжовник Смена) 30 25 83,3± 1,26 4 13,3±1,15 1 3,4±0,61

Культура зародышей in vitro и мутагенез. С целью выявления путей преодоления барьера клеточной проницаемости для водорастворимых биологических мутагенов была проведена серия опытов с использованием сил гидродинамического воздействия на зародыши груши. Установлено, что данное воздействие в значительной мере интенсифицирует диффундирование инфильтратов во внутриклеточные структуры зародыша. Результаты взвешивания показали, что средняя величина насыщения зародыша семян груши сорта Нежность при инфильтрации в течение 10 мин. составляет 100,5 %, при гидродинамическом воздействии - 110,2%. Отмеченная закономерность была впоследствии подтверждена путем спектрофотометрического контроля степени проникновения индикатора «Метиленовый синий» во внутриклеточные структуры зародыша.

Результаты исследований представлены на рисунке 1, показывающем динамику поглощения индикатора зародышами груши в зависимости от времени инфильтрации и гидродинамического воздействия на них. Проследить интенсификацию проникновения чужеродных экстрактов в клетки зародыша оказалось доступным и путем анатомических анализов. Экспериментальные данные показали, что указанные воздействия на зародыши снижают их способность к прорастанию.

Установлено, что процесс стеблеобразования, как более стабильный по сравнению с ростом корня, у проросших зародышей практически не нарушается при инфильтрации, в то время как при гидродинамическом воздействии, в присутствии того же биологического мутагена, он резко ингибируется (17,1±1,1 и 7,4±1,1 против 78,0±1,4 и 77,7±2,1) (табл.3).

Использование микроклонального размножения в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур. Показана перспективность метода клонального микроразмножения плодовых и ягодных растений в системе производства оздоровленного посадочного материала высших категорий качества.

Рис. 1.

Динамика проникновения индикатора метиленовый синий в зародыши груши

Ч?

1- инфильтрация 2- гидродинамическое воздействие 3- эталон

3. Прорастание изолированных зародышей и органогенез проростков в стерильной куль-

туре в зависимости от предпосевной обработки семян груши сорта Нежность

Вид обработки Продолжительность обработки, мин. Проросших зародышей через месяц после посева, % Длина растений через месяц после посева, мм.

Корень Надземная часть

Контроль (без обработки) 0 9б,7±1,8 34,1 ±2,6 71,8±1,5

Инфильтрация в водной вытяжке из семян айвы японской 6 30 93,3±2,9 80,0±1,7 72,0±1,8 38,0±2,3 78,0±1,4 77,7±2,1

Центрифугирование в водной вытяжке из семян айвы японской 6 30 91,4±1,6 40,6±3,1 8,5±0,9 2,9±0,1 17,1±1,1 7,4=1=1,1

Микроклональное размножение земляники.

Результаты исследований микроклонального размножения сортов земляники и коэффициенты их размножения, в зависимости от пассажа, приведены в таблице 4.

В производство посадочного материала высших репродукций входят элементы поддерживающего отбора. Необходимо по морфологическим признакам обеспечить соответствие выпускаемого материала типу сорта, поэтому все растения с какими-либо отклонениями должны быть выбракованы.

4. Коэффициент размножения сортов земляники (1986-1999)

Сорт земляники Коэффициент размножения

Пассажи

0 1 2 3 4 5

Алый парус 1 6 10 И 18 10

Богота 1 7 10 17 19 9

Гора Эверест 1 5 12 14 18 8

Зенга-Зенгана 1 5 11 12 10 7

Зенит 1 8 17 19 18 8

Золушка 1 7 13 14 11 6

Женева 22 1 5 10 10 12 4

Кардинал 1 6 16 18 20 11

Лировидная 1 6 11 12 18 8

Кулон 1 8 19 19 18 12

Надежда 1 7 15 16 12 13

Рубиновый кулон 1 8 16 18 17 11

Редгонтлит 1 5 12 12 11 10

Светлячок 1 7 15 17 12 8

Teñirá 1 5 15 18 21 12

Tristan 1 5 11 14 17 10

Trubadur 1 6 14 18 20 12

Favett 1 5 11 17 18 10

Фейерверк 1 8 16 17 19 14

Фламинго 1 6 14 15 17 10

Урожайная ЦГЛ 1 8 16 18 17 12

Холидей 1 4 10 10 7 10

Фестивальная 1 6 24 15 12 11

НСРоо! 0,95 2,77 2,28 3,04 1,93

Причинами наблюдаемой изменчивости могут быть мутационные изменения, индуцированные в процессе микроклонального размножения или скрытые мутации, ранее уже существовавшие во взятом для размножения материале, а в процессе микроразмножения лишь проявившиеся.

В результате исследований установлено, что вероятность мутационных изменений возрастает после шестого пассажа. Такие факты отмечены при микроклональном размножении сорта Фестивальная. Были выделены и забракованы химерные растения-полиплоиды. Пестролистность земляники связана с генетическим происхождением многих современных сортов (Уильяме I 1954). Анализ родословной и микроразмножение могут выявить склонность сорта давать подобного типа мутации. В частности, для сортов, имеющих в родословной в качестве одного из предков сорт Премьер (Фестивальная, Заря, Надежда, Золушка, Редкоут, Кокинская ранняя, Восход, Чернобровка, Рубиновый Кулон, Покахонтас), Ачинкруив Кпаймекс (Редгонтлит, Талисман), Кульвер (Алый парус, Вымпел, Коралловая 100, Кулон, Фея, Ясна, Южанка) образование таких мутаций, при микроклональном размножении и проведении свыше шести субкультур, генетически обусловлено.

Исходя из вышеизложенного, нами установлено, что оптимальным числом пассажей следует считать четыре - пять, так как при этом достигает-

ся высокий коэффициент размножения и сохраняется генетическая стабильность размножаемого сорта. Выбракованные растения можно использовать для селекционно-генетических исследований.

Высадка ССЭ растений земляники в теплицу для создания суперэлитного маточника показала, что наибольшее число розеток образуется у сортов Рубиновый Кулон, Редгонтлит, Зенга-Зенгана, наименьшее - у сорта Гора Эверест^(табл. 5). Для получения качественной рассады необходимо проводить не менее двух - трех отделений розеток.

5. Выход рассады земляники с суперэлитного маточника в условиях теплицы

Сорт ЧислоМ0 растений Выход рассады ССЭ, шт.

1-е отделение От 1-го 2-е отделение От 2-го

Золушка 36 1080 30 1512 42

Тенира 72 2376 33 3024 42

Фаветт 126 3528 28 3654 29

Кардинал 72 1800 25 2016 28

Лировидная 72 2016 28 2520 35

Зенит 108 3996 37 4536 42

Надежда 232 8816 38 10208 44

Фламинго 54 1620 30 1836 34

Трубадур 154 4928 • 32 5544 36

Гора Эверест 126 2268 18 2646 21

Рубиновый Кулон 126 5040 40 6174 49

Редгонтлит 232 9744 42 11832 51

Зенга-Зенгана 288 11520 40 13536 47

Микроклональное размножение черной и красной смородины.

Результаты исследований по коэффициенту размножения сортов черной и красной смородины приведены в таблице 6. Суперэлитные маточники черной и красной смородины были заложены во ВНИИСПК на базе комплекса биотехнологии в 1989 году. Выявлено, что при размножении черной смородины зелеными черенками, взятыми от маточных растений, полученных в культуре in vitro, процент укоренения у разных сортов был неодинаков. Так, у сорта Дачница он составил в среднем за 5 лет 83,64%, Ершистая - 86,00%, Орловия - 86,76%, Лентяй - 91,5%, Надина - 91,7%. Аналогичные данные получены при размножении красной смородины зелеными черенками. Процент укоренения у сортов был следующим: Розе Чайр - 72,24%, Красная Виксне -77,2%, Роте Шпетлезе - 78,98%, Рачновская - 79,96%, Ненаглядная - 82,3%, Йонкхир Ван Тете - 84,5%, Натали - 85,44%. Себестоимость одной тысячи саженцев, выращенных из зеленных черенков, в среднем за пять лет составила 2340 рублей в ценах 2000 года.

Микроклональное размножение сортов и подвоев вишни.

Размножение in vitro косточковых культур открывает большие возможности для ускорения производства посадочного материала высших категорий качества. Коэффициент размножения сортов вишни приведен в таблице 7. Наи-

большим - отличаются сорта Шоколадница, Тургеневка, Жуковская, Тихоновская. Среди подвоев вишни выделился В-5-88 (1:25 в пятом пассаже).

6. Микроклональное размножение сортов черной и красной смородины

Сорт Коэффициент размножения в зависимости от пассажа

П 1 ? 1

Черная смородина

Белорусская сладкая 1,0 3 6 8

Ершистая 1,0 5 7 9

Лентяй 1.0 7 8 12

Минай Шмырев 1,0 3 6 8

Сеянец Голубки 1,0 7 8 12

Орловия 1,0 4 7 9

Красная смородина

Голландская красная 1.0 5 7 10

Каскад 1,0 4 6 9

Красная Виксне 1,0 5 9 12

Ненаглядная 1,0 4 7 9

Розе Чайр 1,0 5 9 12

Роте Шпетлезе 1,0 4 8 12

Щедрая 1,0 5 8 И

НСРм 0,6 1*ф< Рхвр 1,6

Заложенные ССЭ маточники вишни в ВНИИСПК на комплексе биотехнологии и установки искусственного тумана позволили наладить зеленое черенкование сортов и подвоев косточковых культур.

Результаты исследований по зеленому черенкованию косточковых приведены в таблице 8, из которой видно, что к группе легко укореняющихся относится: Быстринка, Владимирская и элитный сеянец №21885; среднеуко-реняющихся - Муза, Тихоновская, Орлея, Ровесница, Золушка, Шоколадница, Антрацитовая; остальные исследуемые сорта отнесены к трудноукоре-няющимся.

7. Коэффициент размножения вишни в зависимости от числа пассажей

Сорт Номера пассажей

0 1 2 3 4

Алексеевка 1,0 6,3 7,6 11,6 12,8

Жуковская 1,0 7,1 9,4 14,7 15,6

Самородок 1,0 6,3 8,1 10,2 10,8

Тихоновская 1,0 6,4 8,7 12,1 13,2

Тургеневка 1,0 7,0 9,1 13,4 13,8

Шоколадница 1,0 7,1 9,4 14,7 13,8

НСР05 0,4 0,9 2,0 1,5

8. Укореняемость зеленых черенков косточковых культур 1990-1993 гг.

Сорт Число высаженных черенков Укоренившихся черенков

Число %

1 2 3 4

Вишня

Муза 24955 13973 55,9±0,001

Ровесница 28136 17549 62,4±0,001

Быстринка 8772 6815 77,7±0,01

Тихоновская 10840 6081 ' 56,1 ±0,001

Орлея 10756 5721 53,8±0,002

Владимирская 23776 15831 66,6±0,006

Шоколадница 16150 7826 48,5±0,001

Антрацитовая 10800 7921 45,6±0,01

Слива

Аленушка 7275 5329 73,3±0,01

Евразия 21 4356 3455 79,3±0,01

НСРо5 7,1

Использование биофизических методов в селекционных программах по плодовым культурам.

Электросепарирование пыльцы.

Исследования по оплодотворяющей способности электросепарирован-ной на анодную и катодную фракции пыльцы косточковых культур выявили более высокую эффективность при проведении отдаленной гибридизации (каждой фракции) по сравнению с контрольной (в 19 комбинациях из 21). Катодная фракция в среднем по всем комбинациям дала более высокий процент завязи (3,23 %) по сравнению с анодной (2,39 %). Исходя из полученных данных можно сделать вывод об эффективности применения электросепарирования при отдаленной гибридизации

Низкочастотное сопротивление (импеданс'). Известно, что импеданс многих видов растений служит показателем морозостойкости сортов.

Результаты исследований представлены в таблице 10. Как видно из полученных данных, предварительный отбор по импедансу на морозостойкость в осенний период можно проводить с вероятностью на 56-69%.

Исследования показали, что у растений наблюдаются общие закономерности изменения импеданса в годичном цикле развития. Весной и в первую половину лета величины импеданса сравнительно низки. В дальнейшем по мере прохождения фаз вегетации, замедления ростовых процессов и вызревания тканей, особенно при переходе растений в состояние покоя (ноябрь-январь) показатели импеданса резко возрастают и четко проявляются различия между видами, сортами и гибридами вишни разной морозостойкости.

Динамика импеданса в этот период показывает высокую корреляционную связь его величин с фактической морозостойкостью вишневого дерева.

Установлено, что по мере выхода растений из состояния покоя (февраль-март) показатели импеданса снижаются.

9. Величина низкочастотного сопротивления у сортов, видов и гибридов вишни в

ноябре (1987-1990)

№№ Объекты исследования Величина сопротивления побегов Р 105 ом

1987 1988 1989 1990 X

1 Любская (контроль) 1,23 1,34 1,21 1,17 1,27

2 Любская из Польши 0,72** 0,82**- 0,66** 0,74** 0,73

3 Эрди крупноплодная 0,76 0,65 0,90* 0,69** 0,75

4 Эврика 0,77 0,89 0,92 0,90 0,87

5 Черешневая 0,83** 1,11** 0,91** 0,80* 0,91

6 Эрди урожайная 0,84 1,04** 0,94** 0,86** 0,92

7 Алмаз 0,96 0,96 1,24 0,92 1,02

8 Гриот россошанский 0,88 1,29 1,26 0,88 1,07

9 Хейман 1,12 1,06* 1,01* 1,11 1,07.

10 Алексеевна 1,01 1,26 1,24 0,94 1,11

11 Ветеранка 1,10** 1,21** 1,04** 1,09* 1,11

12 Метеор 0,87 1,20 1,53 0,91 1,12

13 Любская клон 1,08 1,30 1,17 0,99 1,13

14 Рг. зеггикй 1,31 1,18 1,22 0,93 1,13

15 Молодежная 1,58 1,63 1,44 1,14 1,14

16 Студенческая 1,18 0,86 1,31 1,25 1,15

17 Россошанская черная 1,41 0,99 1,22 1,23 1,21

18 Самаркандская 1,05 1,45 • 1,22 1,12 1,21

19 Октава 1,15 1,15 1,32 1,29 1,22

20 Самородок 1,26 1,33 1,33 1,01 1,23

21 Антрацитовая 1,03 1,30 1,28 1,39 1,25

22 Тургеневка 1,24 1,16 1,35 1,28 1,25

23 Быстринка 1,11 1,48 1,19 1,26 1,26

24 Рг. сапеБсепз 1,36 1,37 1,17 1,17 1,26

25 Долгожданная 1,06 1,32 1,32 1,38 1,27

26 Гриот Остгеймский 1,35 1,04 1,40 1,33 1,28

27 Сахалинская №2 1,36 1,43 1,53 1,01 1,33

28 Надежда Крупская 1,40 1,37 1,22 1,40 1,34

29 Жуковская 1,24 1,48 1,41 1,26 1,38

30 Сахалинская №1 1,64 1,41 1,24 1,30 1,40

31 Золушка 1,30 1,39 1,53 1,58 1,45

32 Ровесница 1,07 1,41 1,99 1,48 1,48

33 №28889 1,38 2,13 1,53 1,30 1,58

34 ВП- 1 с 21 кв. 1,91** 1,82** 1,77** 1,50* 1,75

35 Войлочная 8-176 2,15** 1,83* 2,20** 1,69* 1,96

36 Вишня Мака 2,54** 1,94 2,81** 2,30* 2,39

37 железистая 2,70 2,03* 2,62** 2,83** 2,54

38 Отборная № 20 2,30** 2,73*** 2,71*** 2,58*** 2,58

Проведенное в ноябре месяце промораживание побегов при t -40°С с оценкой повреждения тканей позволило установить отрицательную корреляционную зависимость между показателями импеданса в ноябре без наложения повреждающих факторов. Так в 1986 году коэффициент корреляции был равен - 0,562**'", а в 1989 году - 0,693***. Исходя из полученных данных предварительный отбор по импедансу на зимостойкость в осенний период можно проводить с вероятностью 56-69%.

Обработка пыльцы и каллусных тканей УФЛ.

Исследования по воздействию УФ-излучения на каллусные ткани косточковых в культуре in vitro показали, что при работе с данным излучением необходимо учитывать явление фотореактивации. Культивирование облученных каллусов на свету оказывает репарирующее действие. Световую обработку необходимо применять непосредственно после облучения, т.к. способность к фотореактивации утрачивается объектами в процессе их пострадиационного культивирования. Действие видимого света на каллусные ткани вишни и апельсина после облучения их УФ-излучением с целью инициации органогенеза показало, что меристематические участки на каллусах культивируемых на свету образуются значительно активнее, чем на каллусах - в темноте. Данные по сортам вишни следующие: Студенческая - 16% против 1,7%, Быстринка - 26,0% против 0%, Шоколадница - 17,3% против 0%, Новелла - 16,4% против 0%, Конкуренка - 18,0% против 2%; апельсин сорта Гамлин - 48,1% против 2%.

Использование пыльцы, облученной УФ, в большинстве комбинаций отдаленных скрещиваний сортов вишни обыкновенной с диплоидными и триплоидными формами увеличивало число образовавшихся плодов. Так, в среднем за 5 лет (1990-1994) в комбинациях Жуковская х курильская (32 х 16) в варианте с УФ образовывалось 4,5%, в контроле - 2,53%, в комбинации Жуковская х железистая (32 х 16) соответственно 0,99%, в контроле 0,62%, в комбинации Тургеневка х сахалинская (32 х 16) соответственно 1,57%, в контроле 0,32%.

Влияние магнитных полей (МП) на биологические системы. Наиболее вероятным механизмом прямого действия магнитных полей на белковые структуры представляется его влияние на равновесную динамику белков за счет действия сил Лоренца на заряженные подвижные остатки аминокислот. Величина возможного смещения таких остатков под действием МП прямо пропорциональна индукции поля - больше 1Т. Отмечается высокая чувствительность клеточного деления, приводящая к несогласованности в перемещении ядерного материала в процессе митоза. Полученные данные позволяют сделать вывод о положительном результате использования ИЭМ при проведении отдаленных скрещиваний на примере косточковых культур. Под воздействием ИЭМ повышается процент выхода полноценных семян, способных прорастать не только в условиях in vitro, но и в in vivo (табл. 10).

10. Результаты гибридизации вишни с использованием ИЭМ 100 импульсов (1990 - 1994гг.)

Число Число обра-

Комбинации скрещивания опыленных цветков зовавшихся плодов М±т % t

Тургеневка х С. (1а\уускеп818 опыт 1367 123 8,9±0,02 8,5*"

контроль 1487 107 • 7,2±0,02

Тургеневка х курильская №4 опыт 2598 198 7,62±0,01 21,0*"

контроль 2432 119 4,89±0,009

Жуковская х железистая опыт 2722 101" 3,71±0,007 20,5"*

контроль 2529 42 1,66±0,00

Памяти Вавилова х железистая

опыт 783 23 2,93±0,02 11,4'"

контроль 1280 23 1,79±0,01

Россошанская черная х С. веггикш

опыт 1444 139 9,62±0,02 27,4*"

контроль 1685 116 6,88±0,01 •

Памяти Вавилова х 12-1*-300

опыт 1154 34 2,94±0,01 9,3*"

контроль 893 18 2,01 ±0,01

Памяти Вавилова х 12-Г-295

опыт 1479 63 4Д5±0,01 13,5*"

контроль 1513 44 2,90±0,01

Памяти Вавилова х 12-3-180

опыт 1135 49 4,31 ±0,01 9,2"*

контроль 2120 72 3,39±0,008

Памяти Вавилова х 12-1*-304

опыт 1123 22 1,95±0,01 7,2

контроль 2341 29 1,23±0,004

Жуковская х С. <1а№ускепз18 опыт 429 77 10,95±0,07 19,7*"

контроль 975 49 5,02±0,02

Музах 12-3-180 опыт 1019 107 10,5±0,009 21,6"*

контроль 857 53 6,18±0,03

Гексаплоид х 12-1 "-316

опыт 247 87 35,22±0,19 15,1*"

контроль 287 76 26,48±0,15

Использование лазерного излучения в селекционной практике.

Выявлен стимулирующий эффект скрещиваний представителей таксонов различных рангов и разной плоидности в зависимости от обработки пыльцы излучением лазера (табл. 11). Эксперименты с каллусными тканями косточковых и полностью сформировавшимися растениями вишни в культуре in vi, tro показали, что смодулированное когерентное излучение оптического диапазона не способно самостоятельно инициировать морфогенетические процессы в отсутствии клеток доноров. Необходима модуляция НКИ опреде-

ленной информацией, которую, на наш взгляд, селекционер волен выбирать по своему усмотрению, исходя из поставленной задачи. Были предприняты попытки вызвать морфогенетические процессы в каллусах вишни, которые при обычном культивировании не способны к образованию меристематиче-ских зачатков и получения растений регенерантов. Облучение велось расфокусированным лучем через короткофокусную линзу. Для исключения действия на каллусные ткани вторичных метаболитов объекты находились каждый в своем культуральном сосуде. Излучение лазера направлялось под углом 45° на микрорастение полностью сформировавшее стеблевую и корневую системы.

11. Результаты гибридизации вишни с использованием пыльцы, обработанной излучением _лазера25 мин (1990-1994 гг.) __

Комбинации скрещивания Число опыленных цветков Число образовавшихся плодов М±т % t

Тургеневка х С. сЬу/ускегшз опыт 1487 107 27,19±0,021 29,3'"

контроль 1385 181 3,06+0,02

Тургеневка х курильская №4 опыт 2598 198 7,62±0,01 27,8"*

контроль 3056 131 4,28±0,006

Жуковская х курильская №4 опыт 2051 52 2,53±0,008 12,0"*

контроль 2228 27 1,21 ±0,005

Жуковская х железистая опыт 2317 90 3,88±0,008 20,2"*

контроль 2529 42 1,66±0,005

Жуковская х С. ёауууске!^ опыт 361 25 6,92±0,07 39,5*"

контроль 975 29 2,97±0,005

Памяти Вавилова х 12-3-180

опыт 2120 72 3,39±0,008 12,7*"

контроль 1206 21 1,74±0,01

Музах 12-3-180 опыт 1019 107 10,5±0,03 27,5*"

Контроль 1359 68 5,00±0,02

Музах 12-2-31

опыт 376 1 0,26±0,01 2,6*

контроль 640 0 0

В результате облучения промодулированным НКИ у каллусов, которые без обработки проявили себя полностью неспособными к дифференцировке, появились морфогенные образования стеблевого типа. В дальнейшем эти участки ткани были отделены от «материнского» каллуса и пересажены в культуральные сосуды со свежей питательной средой. Растения, сформировавшие из этих участков корневую систему, пересаживались в нестерильные

условия. Проведенными исследованиями установлено, что: 1) низкоинтенсивное когерентное излучение (НКИ) оптического диапазона неспецифично по отношению к биосистемам; 2) для инициации de novo биопроцессов в клетке НКИ не самодостаточно.

Из полученных данных, можно предположить о дистанционной передаче морфогенетической информации от растения (донора), каллусу (рецепи-енту) с последующей его дифференцировкой и образованием микропобегов.

Электробиолюминесценция (ЭБЛ)

Данные опытов показывают, что ЭБЛ, с одной стороны, несет информацию о процессах, протекающих на субмолекулярном уровне, с другой -отражает связь физиологического состояния биообъектов, и их биоэлектрических свойств.

Положительные результаты дало применение ЭБЛ для оценки устойчивости плодовых культур к грибным болезням в селекции на иммунитет. Оценивали устойчивость по интенсивности свечения листьев к буроватой пятнистости груши. Интенсивность свечения устойчивых форм более слабая, в отличие от форм неустойчивых, где свечение очень сильное. Свечение изменяется в зависимости от токсинов различных штаммов гриба, таких как М, К-1, К-2, К-3, К-4. ЭБЛ может быть использована при экспресс-диагностике совместимости привойно-подвойных комбинаций у ряда форм плодовых культур. Наиболее сильное свечение наблюдается у корнесобственных растений. В случае несовместимости привойно-подвойной комбинации интенсивность свечения резко падает. Электробиолюминесценция также может быть использована для определения пола двудомных растений. Свечение листа женского растения намного сильнее (рис. 3), чем мужского (рис. 2). ЭБЛ дает возможность определения оптимальных доз и характера облучения растений различными излучениями, в частности излучением ОКГ.

Свечение листа мужского и женского растения альпийской смородины

Выводы

1. Биотехнологические и биофизические методы, оптимизированные нами для плодовых и ягодных культур, значительно ускоряют и повышают эффективность селекционного процесса. Микроклональное размножение позволяет производить посадочный материал высших категорий качества.

2. Лучшей питательной средой на этапе введения в культуру in vitro зародышей косточковых культур является среда Смирнова без цитокининов. Дальнейшее размножение микрорастений следует вести на среде Мураси-ге и Скуга с введением 6-БАП в концентации 0,5-2 мг/л в зависимости от пассажа.

3. Получение гибридов F2 с использованием тетраплоидных сортов и трип-лоидных гибридов дает определенное число зародышей, способных к прорастанию в культуре in vitro. Аномалии, препятствующие получению целого микрорастения способного, к развитию в условиях in vitro, можно преодолеть, используя метод микроклонального размножения.

4. Совместное применение веществ стимуляторов и регенерации повышает выход полиплоидов в культуре in vitro. Используя данный метод, получен плодовитый смородино-крыжовниковый гибрид-тетраплоид (2п=4х=32).

5. Гидродинамическое воздействие в значительной мере интенсифицирует диффундирование биологических мутагенов во внутриклеточные структуры зародыша. Обнаружен специфический характер воздействия различных биомутагенов на органогенез растений.

6. Реакция растений на асептическое культивирование находится в зависимости от сортовых особенностей и объясняется разной регенерационной способностью сортов.

7. На этапе введения эксплантов в культуру in vitro целесообразно применять питательные среды без регуляторов роста, витаминов, что позволяет экономить дорогостоящие препараты и снижает себестоимость продукции.

8. Развившиеся в первом пассаже конгломераты почек рекомендуется пересаживать без разделения в культуральные сосуды больших объемов. Данный прием позволяет получать микрорастения уже в первых пассажах, что дает экономию во времени до 30-50%.

9. Для успешной адаптации пробирочных растений к нестерильным условиям необходима освещенность 7-9 тыс. люкс, что достигается применением ламп типа ДРИ-2000-6.

Ю.При производстве посадочного материала высших репродукций оптимальным числом пассажей следует считать - четыре-пять, при этом достигается высокий коэффициент размножения, и сохраняется генетическая стабильность размножаемого сорта.

11.Группу легко укореняющихся сортов вишни образуют: Быстринка, Владимирская, Элитный сеянец № 21885; среднеукореняющихся - Муза, Тихоновская, Орлея, Шоколадница, Ровесница, Золушка, Антрацитовая; остальные сорта и элитные сеянцы (21) входят в группу трудноукореняю-щихся.

12.Электоросепарирование пыльцы повышает эффективность отдаленных скрещиваний. Больший процент завязи дает использование катодной фракции.

13.Предварительный отбор, по величине импеданса, на морозостойкость в осенний период можно проводить с вероятностью 56-69%, в феврале показатели импеданса сглаживаются, что связано, по всей вероятности, с прохождением растениями периода покоя, выхода из него и реакцией на погодные условия.

14.При использовании УФ-излучения необходимо учитывать явление фотореактивации. Световую обработку следует проводить сразу после облучения. При облучении каллусных тканей с целью индукции органогенеза наиболее пригодным оказался более плотный калдус.

15.При облучении пыльцы излучением оптического квантового генератора (ОКГ) необходимо учитывать плоидность включенных в скрещивания родительских форм.

16.Низкоинтенсивное когерентное излучение (НКИ) оптического диапазона неспецифично по отношению к биосистемам. Для инициации de novo биопроцессов в клетке НКИ несамодостаточно. Необходима модуляция НКИ определенной информацией при приеме которой в биосистеме начинается процесс, адекватный полученной информации.

17. Электробиолюминесценция (ЭБЛ) может быть положена в основу разработки методов экспресс-анализов: для оценки устойчивости сортов и гибридов к бурой пятнистости, диагностики совместимости привойно-подвойных комбинаций ряда плодовых на сверхранних этапах жизни саженцев, для определения половых различий растений, для определения оптимальных доз и характера воздействия облучения, в частности ОКГ.

Рекомендации для селекции и производства

1. Биотехнологические и биофизические методы, оптимизированные нами для плодовых и ягодных культур, предлагаются для использования в практической селекции при отдаленной гибридизации:

- на этапе введения в культуру in vitro зародышей косточковых культур рекомендуется использование среды Смирнова без цитокининов;

- для повышения выхода полиплоидов в культуре in vitro путем использования совместного применения веществ стимуляторов и регенерации;

- на этапе введения эксплантов в культуру in vitro путем применения питательных сред без регуляторов роста, витаминов;

- развившиеся в первом пассаже конгломераты почек пересаживать без разделения в культуральные сосуды больших объемов;

- для успешной адаптации пробирочных растений к нестерильным условиям необходимо доводить освещенность до 7-9 тыс. люкс:

2. Для дальнейшего испытания и вовлечения лучших в селекцию переданы совместно с ВНИИСПК (Джигадло) ряду НИИ садоводства Южной и

Центральной части России 86 отдаленных гибридов косточковых культур, полученных с помощью метода культуры in vitro.

3. Для промышленного размножения рекомендуются легко укореняющиеся новые клоновые подвои для вишни и черешни: В-2-180, В-2-230, В-5-88, В-5-172.

4. Для зеленого черенкования косточковых культур предлагаются новые и перспективные сорта с высокой степенью укореняемости: Быстринка, элитный сеянец 21885, Муза, Тихоновская, Золушка, Шоколадница, Ровесница, Антрацитовая, Орлея. Совместно с ВНИИСПК (Джигадло) заложены производственные плантации оздоровленным посадочным материалом плодовых и ягодных культур в 33-х областях России.

5. Предлагаем комплект микроинструментов для работы с культурой зародышей, меристем и для манипуляций на различных этапах субкультивирования, повышающий производительность труда в 8-12 раз.

6. Для ускорения процесса селекции и повышения его результативности предлагаем применение разработанных и изготовленных нами приборов для: электросепарирования пыльцы, обработки растительных объектов УФ-излучением, магнитными полями, излучением ОКГ, измерения импеданса плодовых и применения эффекта электобиолюминесценции (Кирли-ан).

Список опубликованных работ

1. Рыжков С.Д., Туровский И.И., Никольский Б.В., Джигадло М.И. Некоторые результаты электролюминесцентного и эмбриологического излучения пыльцы в связи с её электрополярностью // Тезисы докладов на симпозиуме АНССР. - Петрозаводск, 1976. -С. 168-169.

2. Рыжков С.Д., Джигадло М.И. Центрифугирование пыльцы отцовских исходных форм // Программа и методика биофизических исследований плодовых культур. - 1977. - С.

28-30.

3. Рыжков С.Д., Яковлев С.П., Джигадло М.И. Способ обработки зародышей семян плодовых культур мутагенами // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. -М.: Колос, 1979. - С. 77-85.

4. Рыжков С.Д., Мокроусова Г.И., Джигадло М.И. Определение половых различий у двудомных растений по свечению листьев в высокочастотном электрическом поле // Наука производству. - М., 1981. - С. 79-80.

5. Рыжков С.Д., Курсаков А.Г., Джигадло М.И. Использование электромагнитного поля ультрозвуковой частоты при гибридизации смородины // ЦГЛ. - 1981. - Вып. 37. - С.

29-31.

6. Джигадло М.И., Джигадло E.H. Диагностика устойчивости к буроватой пятнистости // Мичуринск, 1982. - С. 231-232.

7. Джигадло E.H., Джигадло М.И., Ищенко J1.A., Яковлев С.П. Способ оценки устойчивости растений к фитодиагостической микрофлоре // Авт. свид. №1166729. - 1985.

8. Джигадло E.H., Джигадло М.И., Ищенко JI.A., Яковлев С.П. Способ оценки устойчивости растений к фитопатогенной микрофлоре // Открытия и изобретения. - 1985. -№26.

9. Осипов Ю.В., Джигадло М.И. Производство оздоровленного посадочного материала земляники // Плодоовощеводство. - 1987. - №5. - С. 20-21.

10. Джигадло М.И., Джигадло E.H. Размножение вишни методом верхушечных меристем // ОЗПЯОС. - Тула, 1988. - С. 65-68.

11. Джигадло E.H., Джигадло М.И. Голяева О.Д. Использование культуры зародышей in vitro при селекции вишни на иммунитет к кокомикозу // ОЗПЯОС. - Тула, 1988. - С. 5256.

12. Огольцова Т.П. Джигадло М.И. Апробация сортов земляники при микроклональном размножении // Садоводство и виноградарство. - 1988. - №11. - С. 26-29.

13. Джигадло М.И. Клональное микроразмножение черной и красной смородины // Селекция и сортоизучение черной смородины. - Мичуринск, 1988. - С. 141-143.

14. Джигадло М.И. Некоторые вопросы микроклонального размножения плодовых и ягодных культур // ОЗПЯОС. - Тула, 1989. - С. 129-134.

15. Джигадло М.И. Микроклонапьное размножение розы'// ВНИИССПК, 1992. - С. 90-94.

16. Джигадло E.H., Джигадло М.И. Использование низкочастотного сопротивления в работе с косточковыми культурами // ВНИИССПК, 1992. - С. 86-93.

17. Гуляева О.В., Джигадло E.H., Джигадло М.И. Способность к размножению новых форм подвоев вишни // ВНИИСПК, Орел, 1992. - С.171-176.

18. Джигадло E.H., Джигадло М.И. Оценка морозостойкости сортов и гибридов вишни. -М„ 1993.-С. 112-114.

19. Джигадло М.И., Джигадло E.H. Применение когерентного излучения при миклокло-нальном размножении вишни // Пущино, 1993. - Ч. 1. - С. 309-310.

20. Джигадло М.И., Джигадло E.H. Когерентное излучение при миклоклональном размножении вишни // 3-ий съезд радиобиологии. - Киев, 1993. - С. 70-72.

21. Джигадло М.И. Рекомендации по размножению черной, красной смородины и ежевики методом in vitro // Информационный листок №2-93. Орловский ЦНТИ, 1993. - 4 с.

22. Огольцова Т.П., Джигадло М.И. Выделение полиплоидов при микроклональном размножении и интенсивных способах размножения ягодных культур // РАСХН. - Орёл, ВНИИСПК, 1993. - С. 40-41.

23. Джигадло E.H., Колесникова А.Ф., Гуляева A.A., Джигадло М.И. Подвой для вишни // Информационный листок №17-95. - Орловский ЦНТИ, 1995. - 4 с.

24. Джигадло E.H., Завьялова А.Ф., Джигадло М.И., Гуляева A.A. Зелёное черенкование вишни // Информационный листок № 61-95. - Орловский ЦНТИ, 1995. - 4 с.

25. Джигадло E.H., Джигадло М.И., Тюленев В.М.; Курсаков Г.А. Биотехнология в селекции // Методика селекции плодовых, ягодных и орехоплодных культур. - Орёл, 1995. -С. 114-131.

26. Джигадло E.H., Гуляева A.A., Джигадло М.И., Колесникова А.Ф. Оценки исходного материала вишни в селекции на устойчивость к грибным болезням // Проблемы оценки исходного материала и подбора пар в селекции растений. - Мичуринск, 1996. - С. 7881.

27. Джигадло М.И., Павловская Н.Е., Голышкина JI.B. Лабораторно-практические занятия по сельскохозяйственной биотехнологии. - Орёл, 1996. - 47 с.

28. Джигадло М.И.. Когерентные электромагнитные поля и передача морфогенетической информации в культуре каллусных тканей и органов. // Пущино, 1996. - С. 130-131.

29. Джигадло М.И., Левгерова Н.С., Хакулова Г.Г. Микроклональное размножение стевии и использование экстракта из нее при переработке плодово-ягодных культур. - Мичуринск, 1998. - С. 79-83.

30. Джигадло E.H.., Джигадло М.И.., Гуляева A.A.., Ожерельева З.Е. Использование биотехнологических методов в работе с косточковыми культурами. - Мичуринск, 1998. -С. 59-63.

31. Вехов Ю.К., Джигадло М.И., Головина Р.И. Укоренение, рост и выход клоновых подвоев яблони 62-396 из зеленых черенков при обработке различными ауксинами // ВНИИСПК. - Орёл, 1998. - С. 127-131.

32. Вехов Ю.К., Джигадло М.И. Роль ауксинов при выращивании клоновых подвоев яблони из зеленых черенков. - Мичуринск, 1999. - С. 41-42.

33. Вехов Ю.К., Джигадло М.И., Грязное А.П. Влияние обработки различными ауксинами на укоренение, развитие и выход клонового подвоя яблони 54-18. - Москва, 1999. - С. 65-66.

34. Колесникова А.Ф., Фролова J1.B., Джигадло М.И. Влияние ионов тяжелых металлов на рост эксплантов вишни // Достижения аграрной науки в решении экологических проблем Центральной России. - Орёл, 1999. - С. 87-88.

35. Подвой вишни В2-180 // Авторское свидетельство № 35050. - 1999 (в соавторстве).

36. Подвой вишни В2-230 // Авторское свидетельство № 35051. - 1999 (в соавторстве).

37. Подвой вишни В5-88 // Авторское свидетельство № 35048. - 1999 (в соавторстве).

38. Подвой вишни В5-172 // Авторское свидетельство № 34593. - 1999 (в соавторстве).

39. Колесникова А.Ф., Джигадло E.H., Джигадло М.И., Гуляева A.A., Ожерельева З.Е. Выведение экологически чистых адаптивных сортов и подвоев вишни. // Садоводство на рубеже тысячелетия. - Киев, 2000. - С. 51-53.

40. Колесникова А.Ф., Джигадло E.H., Джигадло М.И., Федотова Н.Э. Отдаленная гибридизация - приоритетный метод селекции в роде Cerasus Mill. - Мичуринск, 2000. - С. 16-17.

41. Голышкина Л.В., Джигадло E.H., Джигадло М.И. Анализ изоферментных систем эсте-разы и ЛГБ у сортообразцов вишни в условиях in vitro и оценки возможности использования для идентификации сортов И Плодоводство на рубеже XXI века. - Беларусь, Минск, 2000. - С. 29-30.

42. Колесникова А.Ф., Джигадло E.H., Джигадло М.И., Гуляева A.A.., Ожерельева З.Е. Сорта и клоновые подвои вишни для садов интенсивного типа. - Орёл, 2000. - С. 106107.

43. Павловская Н.Е., Голышкина Л.В., Голышкин Л.В., Джигадло М.И. и др. Лабораторный практикум по биотехнологии сельскохозяйственных растений. - Орёл: ОГАУ, 2001.-100 с.

44. Фролова Л.В., Колесникова А.Ф., Джигадло М.И., Джигадло E.H. Рост и развитие эксплантов вишни в зависимости от концентрации ионов тяжелых металлов на селективных средах. // Вопросы физиологи, селекции и технологии возделывания с/х культур. -Орел, 2001. - С. 76-80.

45. Джигадло E.H., Джигадло М.И. Микроклональное размножение сортов и клоновых подвоев сливы. - Липецк, 2002. - Т.Н. - С. 133-135.

46. Фролова Л.В., Колесникова А.Ф., Джигадло М.И., Джигадло E.H. Рост и развитие эксплантов вишни в зависимости от концентрации ионов ТМ на селективных средах. -Липецк, 2002. - Т.П. - С. 202-204.

47. Джигадло М.И., Ишкова H.A. Микроклональное размножение цитрусовых // Природные ресурсы - основа экономической стратегии Орловской области. - Орел, 2002. - С. 219-222.

48. Фролова Л.В., Джигадло М.И., Джигадло E.H., Колесникова А.Ф. Микроклональное размножение вишни й сливы // Природные ресурсы - основа экономической стратегии Орловской области. - Орел, 2002. - С. 246-249.

Отпечатано в отделе оперативной полиграфии Орловского областного комитета государственной статистики пер. Воскресенский, 24 индекс 302001 Подписано в печать 07.05.2003 г. Формат 60x84 1/16 Печать офсетная. Усл.п.л.1,2 Заказ № 27 Тираж 100 экз.

^•8943

Содержание диссертации, кандидата сельскохозяйственных наук, Джигадло, Михаил Иосифович

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА I. ТЕОРЕТИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИХ И БИОФИЗИЧЕСКИХ МЕТОДОВ В СЕЛЕКЦИИ РАСТЕНИЙ

1.1. Культура зародышей in vitro.

1.2. Культура изолированных меристем in vitro.

1.3. Использование биофизических методов в селекции плодовых культур.

ГЛАВА II. ЦЕЛЬ, ЗАДАЧИ, ОБЪЕКТЫ, МЕТОДИКА И УСЛОВИЯ ПРОВЕДЕНИЯ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1.Цель и задачи исследований.

2.2.Объекты исследований.

2.3.Методы исследований.

2.4.Условия проведения опытов.

ГЛАВА III. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ КУЛЬТУРЫ ЗАРОДЫШЕЙ

IN VITRO В СЕЛЕКЦИ ПЛОДОВЫХ РАСТЕНИЙ

3.1.Культура зародышей in vitro, отдаленная гибридизация.

3.2.Культура зародышей in vitro и мутагенез.

3.3. Получение полиплоидных растений.

ГЛАВА IV. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МИКРОКЛОНАЛЬНОГО РАЗМНОЖЕНИЯ ПРИ СЕЛЕКЦИИ И СОРТОРАЗВЕДЕНИИ ПЛОДОВЫХ КУЛЬТУР

4.1.Микроклональное размножение земляники.

4.1 а. Производство оздоровленной рассады земляники.

4.2.Микроклональное размножение черной и красной смородины.

4.2 а. Зеленое черенкование черной смородины.

4.2.6 Зеленое черенкование красной смородины.

4.3.Микроклональное размножение ежевики.

4.4.Микроклональное размножение стевии.

4.5.Микроклональное размножение сортов и подвоев вишни.

4.5 а. Зеленое черенкование вишни.

ГЛАВА V. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ БИОФИЗИЧЕСКИХ МЕТОДОВ В СЕЛЕКЦИОННЫХ ПРОГРАММАХ ПО ПЛОДОВЫМ КУЛЬТУРАМ

5.1. Электросепарирование пыльцы.

5.2. Низкочастотное сопротивление (импеданс).

5.3. Обработка биологических объектов физическими факторами воздействия

5.3 а. Обработка пыльцы и каллусных тканей

УФ-излучением.

5.3 б. Влияние магнитных полей (МП) на биологические системы.

5.3 в. Информационные торсионные поля (ИТП) и лазерное излучение в селекционной практике.

5.4.Электробиолюминесценция.

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур"

Решение современных селекционно-генетических задач опирается на новые методы, в которых аккумулированы последние достижения научно-технического прогресса с широким спектром направлений.

Научный подход к проблемам получения высоких устойчивых урожаев плодовых и ягодных растений подкрепляется фундаментальными знаниями в области генетики, биофизики, физиологии, биотехнологии и ряда других дисциплин. Достижения биотехнологии могут быть использованы в решении важных задач селекции.

Использование методов биотехнологии в селекционных целях позволяет:

- преодолевать с помощью культуры зародышей in vitro несовместимость отдаленных видов;

- ускорять размножение ценных генотипов, используя культуру in vitro, что особенно важно на первых этапах селекции, когда селекционер имеет единичные растения;

- хранить ценный генофондовый материал в виде пробирочных растений при пониженных температурах и всегда иметь под рукой нужные формы для использования в селекционном процессе;

- управлять развитием органов у растений-регенерантов после высадки их в условия in vitro воздействием разнообразных физических условий культивирования, что позволит сдвигать продуктивность растений в сторону увеличения вегетативной массы, если речь идет о питомниках, или в сторону максимальной закладки генеративных органов, когда растения предназначены для получения продукции;

- получать каллусную ткань из вегетативных органов плодовых растений и, управляя способностью каллусных тканей к органогенезу, получать новые формы растений с хозяйственно-ценными признаками (Бутенко, Попов, 1970; Высоцкий, 1978);

-оздоравливать сорта методом культуры изолированных меристем, который наряду с эффектом оздоровления, дает самый высокий коэффициент размножения в сравнительно комфортных условиях лаборатории практически круглый год.

-биофизические методы, в сочетании с культурой in vitro, позволяют более целенаправленно воздействовать на пыльцу, зародыши, меристематиче-ские и каллусные ткани. Более широкое применение из них получили: а) использование электростатических полей высокой напряженности 8105 в/м -12 105 в/м с целью разделения пыльцы по уровню плоидности (Остапенко, Рыжков, 1967; Молотковский, 1956); б) электросепарирование пыльцы для повышения её оплодотворяющей способности при отдаленных скрещиваниях плодовых растений (Остапенко, Рыжков, 1967); в) применение магнитных и электромагнитных полей, оказывающих существенное влияние на энергию прорастания зародышей, ростовые процессы микрорастений в культуре in vitro и их оплодотворяющую способность (Ланжевен, 1960; Пареелл, 1971; Уколова, 1971; Лю и др., 1979); г) применение ультрафиолетового (УФ) излучения для обработки пыльцы, растительных тканей, незащищенных покровными чешуями, в культуре in vitro, используя лучи сХ = 2800 - 2500 А характеризующиеся наиболее мутагенным действием (Франк, 1939; Kimball,1949, 1955, 1959, 1963; Setlow, 1957; Myers and De Wolfe, 1964; Гурзадян, 1981; Камшилов, 1963, 1965; Корогодин, 1958, 1963, 1964); д) использование лазерных, магнито-лазерных аппаратов в растениеводстве применение информационных торсионных полей (ИТП) в селекции (Гурвич, 1945, 1968, 1974; Brown, 1973; Басов, Афанасьев, 1984; Вебер и Хорцигер, 1984; Грезиев, 1979; Девятков, 1978; Рудь, 1974, 1978, 1979; Шахов, 1974; Инюшин, 1974, 1983; Шульгина, 1978; Гаряев, 1994; Бобров, 1997, 2000; Вяйзенен, 2002; Даниловских и др., 2003).

В связи с необходимостью ускорения селекционного процесса и повышения его эффективности испытание биотехнологических и биофизических методов в селекции многолетних плодовых и ягодных культур представляет большой научный и производственный интерес.

Заключение Диссертация по теме "Селекция и семеноводство", Джигадло, Михаил Иосифович

Основные выводы

3. Получение гибридов F2 с использованием тетраплоидных сортов и трип-лоидных гибридов дает определенное число зародышей способных к прорастанию в культуре in vitro. Аномалии, препятствующие получению целого микрорастения способного к развитию в условиях in vitro, можно преодолеть, используя метод микроклонального размножения.

4. Совместное применение веществ стимуляторов - регенерации повышает выход полиплоидов в культуре in vitro. Используя данный метод, получен плодовитый смородино-крыжовниковый гибрид-тетраплоид (2п=4х=32).

10. При производстве посадочного материала высших репродукций оптимальным числом пассажей следует считать - четыре-пять, при этом достигается высокий коэффициент размножения, и сохраняется генетическая стабильность размножаемого сорта.

11. Группу легко укореняющихся сортов вишни образуют: Быстринка, Владимирская, элитный сеянец № 21885; среднеукореняющихся - Муза, Тихоновская, Орлея, Шоколадница, Ровесница, Золушка, Антрацитовая; остальные сорта и элитные сеянцы (21) входят в группу трудноукореняю-щихся.

12. Электоросепарирование пыльцы повышает эффективность отдаленных скрещиваний. Больший процент завязи дает использование катодной фракции.

13. Предварительный отбор, по величине импеданса, на морозостойкость в осенний период можно проводить с вероятностью 56-69%, в феврале показатели импеданса сглаживаются, что связано, по всей вероятности, с прохождением растениями периода покоя, выхода из него и реакцией на погодные условия.

14. При использовании УФ-излучения необходимо учитывать явление фотореактивации. Световую обработку следует проводить сразу после облучения. При облучении каллусных тканей с целью индукции органогенеза наиболее пригодным оказался более плотный каллус.

15. При облучении пыльцы излучением ОКГ необходимо учитывать плоид-ность, включенных в скрещивания, родительских форм.

16. Лазерное излучение, точнее его торсионный компонент, несамодостаточен для инициации de novo процессов протекающих в организме. Для инициации этих процессов необходима модуляция данного торсионного поля информацией (матрицы) при приеме которой в организме начинается процесс адекватный полученной информации.

17. Электробиолюминесценция (ЭБЛ) может быть положена в основу разработки методов экспресс-анализов: для оценки устойчивости сортов и гибридов к бурой пятнистости, диагностике совместимости привойно-подвойных комбинаций ряда плодовых на сверхранних этапах жизни саженцев, для определения половых различий растений, для определения оптимальных доз и характера воздействия облучения, в частности ОКГ.

Практические рекомендации

1. В соавторстве выделены и зарегистрированы в Государственном реестре селекционных достижений, допущенных для использования в Центральном и Центрально-черноземном регионах новые клоновые подвои для вишни и черешни: В-2-180, В-2-230, В-5-88, В-5-172. Получены патенты на изобретения: № 35050, 1999, № 35051, 1999, № 35048, 1999, № 34593, 1999.

2. Для дальнейшего изучения и использования в селекции передано НИИ садоводства 86 отдаленных гибридов косточковых культур, полученных с помощью метода культуры зародышей in vitro.

3. Для зеленого черенкования косточковых культур рекомендованы новые и перспективные сорта и подвои с высокой степенью укореняемости. Совместно с ВНИИСПК заложены производственные плантации оздоровленным посадочным материалом плодовых и ягодных культур в 33-х областях России.

4. Создан и рекомендуется комплект микроинструментов для работы с культурой зародышей, меристем и для манипуляций на различных этапах субкультивирования, повышающий производительность труда в 8-12 раз.

5. Изготовлены и рекомендуются для применения в селекционном процессе установки и приборы по электросепарированию пыльцы, обработке растительных объектов УФ-излучением, магнитными полями, излучением ОКГ, для измерения импеданса плодовых, электобиолюминесценции (эффект Кирлиан).

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, кандидата сельскохозяйственных наук, Джигадло, Михаил Иосифович, Орёл

1. Абраменко Н.М. Культивирование стеблевых верхушек для получения растений, свободных от вирусной инфекции // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М.: Наука, 1970, - С. 312-315.

2. Абраменко Н.М. Вирусные болезни плодово-ягодных культур и винограда в Молдавии. Кишинев, 1973. - Вып. 2. - С. 22-25.

3. Абраменко Н.М. Вирусные, микоплазменные и бактериальные болезни винограда в Молдавии. Кишинёв, 1980. - С. 93-101.

4. Абраменко Н.М., Султанова О.Д. Технология выращивания безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда. Кишинёв, 1977. - С. 28-36.

5. Адлер С.Н. Бокарев К.С. Биофизические и физиологические изменения в тканях древесных растений и их устойчивость к неблагоприятным факторам. -Уфа, 1977,- 123 с.

6. Акимов А.Е. Эвристическое обсуждение проблемы поиска дальнодействий. EGS концепция. - МНТЦ ВЕНТ. - М., 1991. Препринт №7А, 78 С.

7. Акимов А.Е. Эвристическое обсуждение проблемы поиска дальнодействий. EGS концепция // Сознание и физический мир. - М.: Яхтсмен, 1995. -Вып. 1. - С.36-84.

8. Акимов А.Е., Бинги В.Н. О физике и психофизике // Сознание и физический мир. -М.: Яхтсмен, 1995.-Вып. 1.-С. 104-125.

9. Апрелева A.M. Влияние времени опыления на завязываемость семян яровой пшеницы // Вопросы растениеводства в Приамурье. 1973.- С. 85-56.

10. Артамонова Г.М. Влияние электрического сопротивления и клеточной проницаемости озимой пшеницы в связи с выходом из состояния покоя //Физиология растений. 1967. - Т. 14, вып 2. - С. 364.

11. Артамонова Г.М. Электрическое сопротивление тканей растений в период вегетации и состояния покоя // Физиол. раст. АН СССР, 1968. - С. 253.

12. Арциховская Е.В. Окислительные системы и дыхание органов запаса у растений: Автореферат дисс. . докт. биол. наук. М., 1956. - 43 с.

13. Атабеков И.Г. Иммунодиагностика вирусных растений резервные миллиарды в сельском хозяйстве // Биотехнология. - М.: Наука, 1984. - С. 234238.

14. Ахмедова Ж.В. Влияние некоторых факторов на процесс клонального микроразмножения сахарной свеклы // Вестн. е.- х. науки Казахстана. 1994. - №1.- С. 39-44.

15. Басов Н.Г., Афанасьева Ю.В. Световое чудо века. М.: Педагогика, 1984. -С. 3-6.

16. Баранова И.И. Влияние инъекции растительных экстрактов в полость соломины на анатомо-морфологические и биохимические признаки озимой ржи и озимой пшеницы // Индуцирование мутаций биологическими мутагенами.- Л.: «Наука», 1972. С. 55-63

17. Бартиш И.В., Меркулов С.М., Корховой В.И., Копань В.П. Микрокло-нальное размножение груши (Purys communis L) in vitro // Физиология и биохимия культ, растений. 1994. - Т. 26. - №1. - С. 84-90.

18. Бартиш И.В., Меркулов С.М., Корховой В.И. Отдаленная гибридизация, полиплоидия и генетическая инженерия в создании принципиально новых форм плодовых и ягодных культур // Молодые ученые садоводству России. -М., 1995.-С. 3-5.

19. Берг JI.C. Теории эволюций. Академия П.6., 1972. - 241 с.

20. Бивол Т.Ф. Технология выращивания безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда. Кишинёв, 1977. - С. 119-129.

21. Бленда В.Ф. Кириленко. Адаптация подвоев косточковых культур, полученных из изолированных меристем // Садоводство и виноградарство. -1995,-№3. С. 18-19.

22. Блузманас М., Брузгулис П., Рибокайте 3., Валайтите И. Влияние тиамина и никотиновой кислоты на рост изолированных зародышей фасоли и люпина

23. Биология Лит. ССР. 1966. - Вып. 6. - С. 101-108.

24. Бобров А.В. Торсионные модели психофизики. ВИНИТИ. Деп. № 821-97. -М., 1997.-71с.

25. Бобров А.В. Торсионный компонент электромагнитного излучения. Информационные торсионные поля в медицине и растениеводстве. ВНИНИТИ. Деп. № 635-В98. 1997. - 35 с.

26. Бобров А.В. Информационные торсионные поля фактор мутагенеза. -2000. - 17 с.

27. Ботев М. Культивиране на ткани и органы от растения // Научн. тр. Высш. мед. ин-т. София, Експерим. - теор. Катедри, 1985. - Вып. 5. - Т.2. - С. 1-3.

28. Бойко Г.Н. Изучение морозостойкости изолированных тканей вишни, яблони и груши // Физиология и биохимия растений. 1976. - Вып. 8. - Т.1. -С. 49-52.

29. Бритиков Е.А. К физиолого биохимическому анализу прорастания пыльцы и роста пыльцевых трубок в тканях пестика // Тр. ин-та физиол раст. Им К.А. Тимирязева. - АН СССР,1954. - Т. VIII. - Вып. II. - С. 161-164.

30. Бурдасов В.М. Пути использования метода изолированных зародышей в селекции яблони // Тканевые и клоновые культуры в селекции растений.- М.: Колос, 1979. С. 52-57.

31. Бутенко Р.Г. Культура изолированных растительных тканей // Физиол. Растений. 1956. - Т. 3. - Вып. 3. - С.277-286.

32. Бутенко Р.Г. Интенсивность синтеза нуклеопротеидов в верхушках стеблей сои и люпина на различной длине дня // Биология нуклеусного обмена у растений. АН СССР, 1959. - С. 13-17.

33. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей как метод изучения процессов роста и морфогенеза растений // Рост растений. Львов: Гос. ун-т, 1959 а. - С. 32-37.

34. Бутенко Р.Г. Применение метода культуры изолированных верхушечных почек для изучения процессов роста и органогенеза растений // Физиол. Растений. 1960. - Т.7. - Вып. 6. - С. 715-723.

35. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и клеток растений // Вестн. АН СССР, 1963 а. №2. - С. 76-79.

36. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964.- С. 60-80.

37. Бутенко Р.Г. От свободноживущей клетки к растению. М.: Колос, 1971. -110 с.

38. Бутенко Р.Г., Лунева М.З. Применение метода стерильных культур для выращивания отдаленных гибридов// Физиол. раст. 1966. - Т. 13. - Вып. 4. - С. 733-736.

39. Бирюков С.В. Методы биотехнологии в селекции сельскохозяйственных растений. Одесса, 1992 (1993). - С. 29-98.

40. Вавилов Н.И. Теоретические основы селекции растений. Москва-Ленинград, 1935.-Т. 1.-С. 293-343.

41. Вальдштейн Э.А., Жестянников В.Д. Защита и восстановление при радиационных повреждениях. М., 1966. - С. 5-19.

42. Вальдштейн Э.А., Жестянников В.Д. Цитология. М., 1967. - С. 1-20.

43. Вашакидзе Л.В. Культура изолированных зародышей и тканей как метод селекции винограда // Материалы Всесоюзн. симп.-1973.- С. 21-29.

44. Вебер X., Хорцигер Т. Лазеры. М.: Наука и исскуство, 1994. - С. 60-61.

45. Велчев В.Б., Младенова О. Микроразмножение аронии // Растен. науки. -1992.-Т. 29.-№1/2.-С. 85-89.

46. Верзилин А.В., Иванов Д.В., Трунов Ю.В. Использование биотехнологии для совершенствования селекционного процесса клоновых подвоев яблони с целью его ускорения // Сб. докл. XVIII Мичуринск, чтений 1997. Мичуринск, 1998. - С. 63-66.

47. Высоцкий В.А. Клональное микроразмножение растений // Культура клеток растений и биотехнология.- М.: Наука, 1986.- С. 91-101.

48. Высоцкий А.А., Леонтьев-Орлов О.А. Техника микроклонального размножения подвоев яблони.- М.: Наука, 1983. №7.- С. 20-21.

49. Высоцкий В.А., Олешко Е.В. Совершенствование питательной среды для микроклонального размножения вишни // Тр. НИЗИСНП. М., 1985, - С. 7277.

50. Высоцкий В.А., Данькова Е.В. Регенерация побегов косточковых культур из корневого каллуса//Тр. ВСТИСП. М., 1993. - С. 70-75.

51. Высоцкий В.А., Олешко Е.В. Совершенствование питательной среды для микроклонального размножения вишни // Тр. НИЗИСНП. М., 1985. - С. 7277.

52. Высоцкий В.А., Данькова Е.В. Регенерация побегов косточковых культур из корневого и листового каллусов // Сб. тр. НИЗИСНП.- М., 1993. -С. 70-76.

53. Высоцкий В.А. Особенности клонального микроразмножения некоторых форм ремонтантной малины // Сб. тр. ВСТИСП. М., 1996. - Т.З. - С. 90-95.

54. Высоцкий В.А. Опыт клонального микроразмножения ирги // Сб. тр. ВСТИСП. -М.,1995. Т. 2. - С. 123-127.

55. Высоцкий В.А., Упадышев М.Т. Морфозы при клональном микроразмножении Rubus occidentalis u Rubus Fruticosus (Rosaceae) // Ботан. журн. 1992. -Т. 71. -№7. С. 85-91.

56. Высоцкий В.А., Тарашвили З.Т. Микроразмножение здорового посадочного материала ягодных культур // Садоводство. 1982. - №3. - С. 22-23.

57. Гаряев П.П. Волновой геном // Энциклопедия русской мысли. М.,1994. -Т. «Общественная польза». - 280 с.

58. Гаряев П.П., Леонова Е.А. Пересмотр генетического кода // Сознание и физическая действительность. 1996. - Т. 1. - № 1-2. - С. 73-74.

59. Голодрига П.Я., Осипов А.В. Экспресс-метод и приборы для диагностики морозоустойчивости растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1972,- Т. 4. - Вып. 6. - С. 650-655.

60. Голодрига П.Я., Осипов А.В., Суятинов И.А. Способ определения геноти-пической специфичности морозо и холодустойчивости // А. С. № 357927.

61. Голубинская Е.С. Культура изолированных зародышей пиона // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений / Тр. Всесоюзн. конф. -М.: Наука, 1970.- С. 36-41.

62. Гончаров С.В. Синтез тритикале с помощью эмбриокультуры // Обеспечения эффективн. функционирования произв. потенциала АПК России в условиях рыноч. отношений. Воронеж, 1993. - С. 97-99.

63. Гирко B.C., Волощук С.И., Залисский А.А., Руденко Т.П. Оценка устойчивости пшеницы к действию культурных фильтратов грибных патогенов в культуре незрелых зародышей // Сельскохозяйственная биология / Сер. «Биология растений».-1993.- №1.- С. 62-70.

64. Грезиев В.Н. Предпосевное облучение как фактор повышения устойчивости томатов против вирусной, грибковой и нематодной инфекции // Проблемы биоэнергетики организма и стимуляции лазерным излучением / Тез. док. -Алма-Ата: Кайнар, 1979. С. 123.

65. Гунар И.И., Паничкин Л.А. О передаче электрического возбуждения у растений // Изв. ТСХА. 1970. - №5,- С. 16-18.

66. Гунар И.И., Паничкин Л.А. Распространение возбуждения по растению и биоэлектрическая реакция листа на раздражение черенка и корня // Изв. ТСХА. 1987. - Вып. 1. - С. 21-23.

67. Гурвич А.Г. Митогенетическое излучение. М.: Медгиз, 1945. - 284 с.

68. Гурвич А.А. Проблемы митогенетического излучения как аспект молекулярной биологии. Л.: Медицина, 1968. - 240 с.

69. Гурвич А.А., Ермеев В.Д., Карабчиевский Ю.А. Энергетические основы Митогенетического излучения и его регенерация на фотоэлектроных умножителях.- М.: Медицина, 1974,- 96 с.

70. Гуревич Б.Х. Специфическая связь в растении на основе околосуточных физиологических ритмов // Докл. АН СССР. 1967. - Т. 173,- №8. - С. 65-67.

71. Гурзадян Г.Г. Механизм инактивирующего действия лазерного ультрофиолето-вого излучения на вирусы и бактериальные плазмиды // Биофизика. 1981. - Т. 26. - №4,- С. 659-663.

72. Давиденко Е.А. Сравнительная оценка эффективности методов культуры тканей in vitro и индуцированного мутагенеза in vitro для расширения генетической изменчивости риса. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Краснодар, 1994,21 с.

73. Деменко В.И., Трушечкин В.Г. Размножение вишни методом in vitro // Сельскохозяйственная биология. 1983. - №7. - С. 51-52.

74. Дейненко Е.В. Применение методов биотехнологии и генной инженерии в селекционно-генетических программах // Генет. ресурсы и эффектив. методы создания нового селекционного материала с.-х. растений. Новосибирск, 1994. - С. 2224.

75. Девятков Н.Д. Результаты и задачи использования лазерного излучения для стимуляции и мутагенеза растений // Проблемы фотоэнергетики растений. 1978. -Вып. 5. - С. 129-135.

76. Джадайбаева Б.Н., Бобров Е.П. К излучению высокочастотной фотографии семян при их обработке лучом лазера и янтарной кислотой // Проблемы биоэнергетики организма и стимуляции лазерным излучением. Алма-Ата: Кайнар, 1978. - С. 156-158.

77. Джигадло М.И. Некоторые вопросы микроклонального размножения плодовых и ягодных культур // Пути интенсификации садоводства и селекции плодовых и ягодных культур,- Тула: Приок. кн. изд-во, 1989. С.129-134.

78. Джигадло Е.Н., Джигадло М.И., Голяева О.В. Использование культуры зародышей in vitro при селекции вишни на иммунитет к коккомикозу // Труды ОЗПЯОС. -Тула: Приок. кн. изд-во, 1988. С. 52-56.

79. Джигадло Е.Н., Джигадло М.И. и др. Использование биохимических методов в работе с косточковыми культурами / Сб. докл. Мичуринск, 1998. - с. 59-63.

80. Джигадло М.И., Джигадло Е.Н. Диагностика устойчивости к буроватой пятнистости / Тез. докл. Мичуринск, 1982. - С. 231-232.

81. Джигадло М.И. Клональное микроразмножение черной и красной смородины. Селекция и сортоизучение черной смородины. Мичуринск, 1988. -С.141-143.

82. Джигадло М.И., Джигадло Е.Н. Применение когерентного излучения при миклоклональном размножении вишни // Радибиол. Съезд / Тез. докл. -Пушино, 1993. Ч. 1. - С. 309-310.

83. Диас С., Долгих Ю.И. Шамина З.Б., Шевелуха B.C. Значение физиологических и генетических факторов в индукции эмбрионального каллуса у разных линий кукурузы. Докл. РАСХН, 1994.- №2. - С. 6-8.

84. Дорошенко Н.П. Оптимизация физических условий культивирования винограда in vitro // Виноград и вино России.- 1994. №6. - С. 14-16.

85. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта.- М.: Колос, 1979. 419 с.

86. Евсеева Р.П., Кравцов П.В. Влияние гибберелловой кислоты на прорастание изолированных зародышей яблони и груши в условиях стерильной культуры // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1971. - Т. 18. -с. 34-42.

87. Еникеев Х.К., Высоцкий В.А., Плотникова Г.А. Питательная среда для культивирования зародышей косточковых культур // А.С. 1261587, СССР, Бюлл. № 37, 1986.

88. Ерёмин Г.В. Отдаленная гибридизация в эволюции селекции косточковых растений // Тез. докл. Мичур. чтений. Мичуринск, 2000. - с. 4-5.

89. Еремин Г.В., Подорожный В.Н. Производство оздоровленного посадочного материала алычи и подвоев косточковых культур // Садоводство и виноградарство.- 1992. №8. - С. 11-12.

90. Еремин Г.В., Подорожный В.Н. Особенности клонального микроразмножения подвоя Л-2 и его гибридных сеянцев // Сб. научн. тр. по прикл. ботанике, генетике и селекции. ВИР. 1992. - Т. 148. - С. 115-118.

91. Жуков О.С., Рязанов А.А., Шекотова Л.А. Способность генеративных элементов цветка плодовых растений к росту на искусственной питательной среде в связи с апомиксисом // Тканевые и клеточные культуры в селекциирастений. М.: Колос, 1979. - С. 99-104.

92. Жуков О.С., Харитонова Е.Н. Использование новых генетических методов в селекции косточковых культур // Творческое развитие научного наследия Мичурина / ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1981.- С. 78-83.

93. Жуковский П.М. Культурные растения и их сородичи.- Л., 1964. С. 10-14.

94. Заар Э.И. Радиобиология.- 1965. Вып. 5.-е. 168-174.

95. Здруйковская А.И. Получение сеянцев раносозревающих сортов черешни путем воспитания зародышей на искусственной питательной среде // Бюлл. Гл. бот. сада АН СССР. 1955. - Вып. 22. - С. 56-67.

96. Здруйковская А.И. Воспитание зародышей «нежизнеспособных» семян плодовых растений // Проблемы современной эмбриологии. Л.: ЛГУ, 1956. - с. 71-74.

97. Здруйковская Рихтер А.И. Воспитание зародышей плодовых растений на искусственной питательной среде // Морфогенез растений. - М.: МГУ, 1961. -Т. 2.-С. 375-371.

98. Здруйковская Рихтер А.И. Воспитание зародышей раносозревающих сортов персика in vitro // Тр. Никит, ботан. сада. - 1962. - С. 36.

99. Здруйковская Рихтер А.И. Культура зародышей плодовых растений in vitro как метод селекции // Тр. Никит, ботан. сада. - 1969. - С. 40.

100. Здруйковская Рихтер А.И. Культура изолированных зародышей и пути её применения в биологических исследованиях // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений / Тр. I Всес. конф. - М.: Наука, 1970. - С. 2030.

101. Здруйковская Рихтер А.И. Культура изолированных зародышей и некоторые другие приемы выращивания ретений in vitro. - М., 1994. - 60 с.

102. Здруйковская Рихтер А.И. Культура изолированных зародышей и генеративных органов как метод селекции плодовых растений. // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений.- М.: Колос, 1979. - С. 57-70.

103. Здруйковская Рихтер А.И. Культура зародышей in vitro и получение новых форм растений: Автореферат дисс. . докт. биол. наук. М., 1981 -33 с.

104. Здруйковская Рихтер А.И., Бабасюк М.С. Некоторые итоги исследований по культуре изолированных зародышей, генеративных органов и тканей растений // Бюлл. Никит, ботан. сада. - 1981. - Т. 3.- № 46.- С. 88-91.

105. Зоточкина Т.В. Изменение интенсивности дыхания и активности некоторых окислительных ферментов в годичном цикле развития груши и яблони // ЦГЛ им. Мичурина. 1970. - Т. XI. - С. 103-104.

106. Зубкус Л.П. Культура изолированных зародышей и семян на искусственных питательных средах как метод интродукции декоративных растений Сибири. //1 Всес. конф., Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М. Наука, - 1970, С. 45-47.

107. Иванов М.В., Касинова Г.В., Семенова А .Я. Разработка модели селекционного процесса с использованием биотехнологических манипуляций // Разработка экол. безопасных методов ведения е.- х. СПБ, 1993. - С. 139-144.

108. Ивановская Е.В. Культура гибридных зародышей злаков на искусственной питательной среде // Докл. АН СССР. 1946. - 54. - №5 - С. 449-452.

109. Ивановская Е.В. Использование методов выращивания зародышей на искусственной питательной среде в работах по отдаленной гибридизации // Тр. совещ. по отдаленной гибридизации растений и животных. 1960. - С. 164174.

110. Ингрем Д. Электромагнитный резонанс в биологии. М.: Мир, 1972. -95 с.

111. Инюшин В.М. Лазерный свет и живой организм. Алма-Ата: Изд-во Казах. ун-та, 1970. - С. 54-56.

112. Инюшин В.М., Федорова Н.И., Юсупов М.З. Опыт использования электро-биолюминесценций для оценки первичных фотоэнергетических сдвигов при действии импульсного света // Светоимпульсная стимуляция растений. М.: Наука, 1971.-С. 77-96.

113. Инюшин В.М. Поляризация и когерентность как факторы нефотосинтетического и фотосинтетического действия световой энергии в растениях // Проблемы фотоэнергетики растений. Кишинев, 1974. - С. 29-42.

114. Инюшин В.М. Лазерна агротехника (теория, эксперимент и практика) // Първи национален конгрес фазиците в България / Резюмета на докладите и научните съобщения. 1983. - С. 480-482.

115. Иоффе М.Д., Жукова Г.Я. Обзорные статьи // Бот. журнал АН. СССР. -1965.-Т. L.-С. 1157-1182.

116. Исаенко В.В. Диагностические показатели морозоустойчивости в онтогенезе винограда // Плодоовощное хоз-во. 1986. - №5.- С. 41-45.

117. Казаков И.В., Заякин В.В., Нам И.Я. Оптимизация метода клонального микроразмножения для ускорения селекции ремонтантных форм малины // Сб. докл. XVIII Мичуринских чтений 1997. Мичуринск, 1998. - С. 16-21.

118. Камшилов М.М. Биологические процессы во внутренних водоемах. М.-Л., 1965. - С. 255-299.

119. Камшилов М.М. ДАН СССР. 1963. -150. - С. 1363-1365.

120. Калинин Р.Л. Культура незрелых зародышей редьки Raphanus sativus Z. в искусственных условиях. Док. АН СССР. - 1949. - 66. - №6. - С. 1191-1194.

121. Калинин Р.Л. Культура изолированных зародышей, как возможный путь переделки природы растений // Тр. ин-та физиологии растений АН СССР. -1951 а. Т. 7. - Вып. 2. - С. 153-192.

122. Калинин Р.Л. Физиолого-биохимические особенности эмбрионального развития растений: Автореферат дисс. . док. биол. наук. М., 1956. - 30 с.

123. Касинова Т.В. Автореферат дисс. . канд. биол. наук. -М.,1966. 20 с.

124. Кашин В.И., Высоцкий В.А. Перспективы использования, биотехнологических приемов в создании новых высокоадаптивных форм плодовых и ягодных растений // Докл. XVIII Мичуринских чтений 1997. Мичуринск, 1998. -С. 8-14.

125. Квамме Х.А. Селекция и отбор плодовых растений умеренного климата на морозостойкость // Холодоустойчивость растений. М., 1983. - С. 244-261.

126. Кеглер X., Вердеревская Т.Д. Технология выращивания безвирусного посадочного материала плодовых культур и винограда. Кишинёв, 1977. - С. 129-133.

127. Кеглер X., Вердеревская Т.Д., Трифонов Д., Шиманский X. Разработка методов создания генофонда, свободного от вирусных и микоплазменых болезней исходного материала плодовых, ягодных культур и виноградной лозы для селекции. София, 1978. - С. 14-24.

128. Кеглер X. и др. Борьба с вирусными болезнями растений. М.: Агропром-издат, 1986. - С. 326-438.

129. Кирлиан С.Д., Кирлиан В.Х. В мире чудесных разрядов. 1964. - М.: Знание. - 28 с.

130. Китлаев Б.Н. Биофизические методы для экспресс-определения термоустойчивости растений // С/х биология. 1976. -Т . XI. - №5. — С. 764-76Ковалев И.Ф. Уч. зап. Укр. инст. глазн. болезней. - 1949. - №1. - С. 385397.

131. Кожин А.В., Кравцов П.В. Влияние пиридоксина на рост изолированных зародышей яблони и груши в стерильной культуре // Физиология растений. -1973. Т. 20. - Вып. 4. - С. 693-699.

132. Комизерко Е.И., Бутенко Р.Г. Действие невысоких концентраций NaCl и Na2S04 на культуру ткани табака // Докл. АН СССР. 1968. - Вып. 178. - №3. - С. 735-736.

133. Константинова Т.И. Фотохимические и темновые реакции фотопериодизма растений // Успехи современной биологии. 1966. - Т. 61. - №1. - С. 118-119.

134. Конев С.В., Волотовский И.Д. Введение в молекулярную фотобиологию // Наука и техника. Минск, 1971. - С. 10-11.

135. Копылов В.И., Папунов Н.И. Морозостойкость сортов яблони и сливы в связи с изменениями температура и величины импеданса // Вестник с/х науки. 1975. -Вып. 38.-С. 100-106.

136. Корогодин В.И. Биофизика. 1958. - Т. 3. - С. 206-213.

137. Корогодин В.И., Балуши В., Маркова Л.И., Шехтман Я.Л. Радиобиология. 1963. - Т. З.-С. 39-44.

138. Корогодин Д.В. Основы радиобиологии. — М., 1964. С. 82-130.

139. Кравцов П.В., Касьянова В.Г. Опыт применения культуры изолированных зародышей для преодоления стерильности отдаленных гибридов плодовых растений // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1969. - Т. 10. - С. 236-244.

140. Кравцов П.В. Опыт применения культуры изолированных зародышей в селекции плодовых культур // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. 1970. - С. 42-45.

141. Кравцов П.В. Рост изолированных зародышей яблони на среде с различными концентрациями агара в стерильной культуре // ЦГЛ им. И.В. Мичурина,- 1971.- Т. 18. С. 43-48.

142. Кравцов П.В. Действие регуляторов роста на дифференциацию и органогенез зародышей плодовых растений в стерильной культуре // Применение физиологически активных веществ в садоводстве. 1974. -Т.2. - С. 87-94.

143. Кравцов П.В., Кравцова Л.В. Рост изолированных зародышей и семян плодовых растений в условиях стерильной культуры при добавлении в питательную среду дрожжевого экстракта // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1971. - Т. 12.-С. 241-244.

144. Кравцов П.В. Каллусогенез как универсальный тест при биологическом моделировании потенциальной устойчивости растений к стрессу // Пути ускорения селекционного процесса растений / Тез. докл. М., 1990. - С. 75-76.

145. Кузнецова А.П. использование метода биотехнологии в селекции черешни и вишни на устойчивость к коккомикозу // Сб. докл. XVIII Мичуринских чтений 1997. - Мичуринск, 1998. - С. 75-76.

146. Кузьмин Г.А. Электрофизиологические показатели однолетних побегов некоторых косточковых пород и гибридов // ЦГЛ им. И.В. Мичурина, 1982. -№39. С. 40-44.

147. Курсаков Г.А. Опыт применения искусственной культуры при отдаленнойгибридизации сливы // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1967. - Т.9. - С. 6-8.

148. Курсаков Г.А. Применение изолированной культуры зародышей и тканей при отдаленной гибридизации плодовых растений // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. - С. 70-77.

149. Курсаков Г.А. Применение культуры изолированных зародышей при отдаленной гибридизации сливы // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М.: Наука, 1970. - С. 47-51.

150. Курсаков Г.А. Способы сохранения аномальных проростков отдаленных гибридов плодовых растений / Методические рекомендации по применению искусственной культуры тканей и органов в генетико-селекционных работах с плодовыми. Мичуринск, 1987. - С. 16-19.

151. Курсаков А.Г., Рыжков С.Д. Содержание свободных аминокислот в разноименно заряженных фракциях пыльцы черной смородины // Физиология растений. 1980. - Т. 27. - Вып. 4. - С. 735-739.

152. Курсаков Г.А., Седышева Г.А., Дубовицкая Л.А. Особенности каллусооб-разования у плодовых растений в культуре in vitro // ЦГЛ им. Мичурина, 1981.- Т. 36.-С. 3-6.

153. Лазарев И.З. О возможности индикации периода покоя клубней картофеля и особенностей протекания его по кинетике электропроводности внутренней ткани // Физиология растений. 1959. - Т VI. - Вып. 5. - С. 7-9.

154. Ланжевен П. Избранные труды. АН СССР. М., 1960. - С. 1247.

155. Лебедев С.П., Бабиков Е.С., Ушаков С.И. Электромагнитные поля. 1974. -С. 176-189.

156. Леонтьев-Орлов О.А, Трушечкин В.Г., Высоцкий В.А. Особенности культивирования изолированных апексов яблони in vitro // НИЗИСНП. М., 1988. -С. 13-21.

157. Леонтьев-Орлов О.А. Разработка клонального микроразмножения яблони: Автореферат дисс. . канд. с.-х. наук. М., 1986. - 22 с.

158. Леонтьева-Орлова Л.А. Особенности развития и размножения растенийсмородины методом изолированных меристем // Проблемы современного садоводства. Киев, 1989. - С. 33-35.

159. Леонтьева-Орлова Л.А. Влияние регуляторов роста на ризогенез черной смородины in vitro // Эффективность регуляторов роста в различных почвен-но-климатических зонах. -М., 1990. С. 56-58.

160. Леонтьева-Орлова Л.А. Влияние новых регуляторов роста на ризогенез микрочеренков смородины in vitro // Перспективы отечественного садоводства.-Киев, 1991. С. 108-109.

161. Леонтьева-Орлова Л.А. Микроклональное размножение черной смородины: Автореферат дисс. . канд. с/х наук. М., 1991. - 22 с.

162. Леонченко В.Г. О содержании нуклеиновых кислот в побегах зимостойких и слабозимостойких сортов яблони // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1970. - Т. XIII. - С. 189-195.

163. Лю Б.Н. и др. Движение кислорода, растворенного в жидкости, в постоянном магнитном поле //Биофизика. 1979. - Т. XXIII. - Вып. I. - С. 159-161.

164. Махновская М.Л., Сечняк А.Л., Игнатова С.А., Симоненко В.К. Разработка условий получения регенерантов из незрелых зародышей пшенично-ржаных гибридов // Физиология и биохимия культ, растений. 1994. - Т. 26. - №6. -С. 584-587.

165. Майстров П.Д., Банникова В.П., Чередниченко В.Н. и др. Сравнение двух методов получения отдаленных гибридов при скрещивании тритикале с рожью // Цитология и генетика. 1993. - Т. 27. - №3. - С. 25-30.

166. Мельников В.К., Станкевич К.В. Азотный обмен различных по зимостойкости сортов яблони // ЦГЛ им. И.В. Мичурина, 1970. Т. XI. - С. 11-28.

167. Методические рекомендации по применению искусственной культуры тканей и органов в генетико-селекционных работах с плодовыми. Мичуринск, 1987. - 110 с.

168. Мичурин И.В. Сочинения. Т. 1. - Сельхозгиз. - М., 1948. - С. 20-250.

169. Молотковский Г.Х., Григоруца Г.В. Окислительно-восстановительныепроцессы в репродуктивных органах в связи с явлением полярности // Журнал общей биологии. 1956. - Т. XVII. - №3. - С. 50-70.

170. Назарова Н.М. Гидролиз глобулярных белков, трипсинов в сильных магнитных полях // Биофизика. -1982. Т. XXVII. - Вып. 4. - С. 720-721.

171. Николаева З.В. К методике выращивания зародышей хлопчатника на искусственных питательных средах // Ташкент, ун-т. 1973. - Вып. 5. - С. 271272.

172. Новел П. Физиология растительной клетки. М.: Мир, 1964. - С. 288-289.

173. Новикова В.М. К методике культивирования зародышей винограда в условиях in vitro // Прикладная ботаника и интродукция растений. 1973. - С. 124-136.

174. Овсянников В.В., Феофилов П.П. Молекулярная фотоника. Д.: Наука, 1970. -С.86-88.

175. Олешко Е.В. Особенности размножения вишни in vitro // Культура клеток растений и биотехнология. 1986. - С. 117-120.

176. Остапенко В.И. Некоторые показатели окислительных процессов в оплодотворении при межсортовых и отдаленных скрещиваниях у косточковых растений // Биология. 1958. - №4. - С. 82-87.

177. Остапенко В.И. Влияние электростатических полей высокой напряженности на оплодотворяющую способность пыльцы // Вестник с/х науки. 1963.-№7. - С 40-42.

178. Остапенко В.И., Жукова Н.В. Использование лазерного излучения в селекции малины на устойчивость к пурпурной пятнистости // Науч. достижения -производству. -М., 1987. С. 10-11.

179. Остапенко В.И., Рыжков С.Д. Метод электросепарирования пыльцы в селекционных целях // Генетика. 1967. - №12. - С. 20-23.

180. Остапенко В.И., Рыжков С.Д. Количественная оценка электрического заряда семяпочек плодовых растений // Вестник с/х науки. 1967. - №2. - С. 30-32.

181. Остапенко В.И., Рыжков С.Д. Биоэлектрические свойства пыльцы и семяпочек некоторых плодовых культур // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. -1967.- Т. IX.-С. 64-67.

182. Остапенко В.И., Горбань С.М. Физико-химические свойства пыльцы и пестиков отдаленных гибридов косточковых растений // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1969. - Т. 10. - С. 119-125.

183. Остапенко В.И., Рыжков С.Д. Электрическое сопротивление однолетних побегов некоторых двудомных растений // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1971. -Т. XIII. - С. 255-258.

184. Остапенко В.И., Рыжков С.Д. Развитие мичуринского учения об оплодотворении при отдаленной гибридизации плодовых растений с позиции биофизики, биохимии и физиологии // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1973. - Т. XIV. - С.127-136.

185. Остапенко В.И., Рыжков С.Д. Электросепарирование пыльцы плодовых растений // Программа и методика биофизических исследований плодовых растений. Мичуринск, 1977. - С. 32-42.

186. Остапенко В.И., Харитонова Е.Н. УФ-свет и фотоиндуцированная гибридизация плодовых растений // Тез. докл. 6-й Всес. конф. по фотоэнергетике растений. Львов, 1980. - С. 144-145.

187. Остапенко В.И., Харитонова Е.Н. Использование ультрафиолетового света в селекции косточковых пород // Проблемы фотоэнергетики растений и повышение урожайности. Львов, 1984. - С. 195-196.

188. Остапенко В.И., Харитонова Е.Н., Никитин Б.Л. Получение новых форм вишни с помощью воздействия на пыльцу УФ-светом и ионизирующими излучениями // Радиационный мутагенез вегетативно размножаемых растений. -М., 1985.-С. 181-185.

189. Павлов А.Н., Смирнов A.M. Использование культуры изолированных зародышей для улучшения качества белка в зерне кукурузы // Биологические основы повышения качества семян с.-х. растений. М.: Наука. - 1964. - С- 73

190. Павлова А.Н., Банникова В.П. Культивирование незрелых семян // Цитология и генетика. 1972.-Т. 6. - С. 117-121.

191. Панасюк Н.В. Автореферат дисс. . канд. биол. наук. -Львов, 1966. 23 с.

192. Парселл Э. Электричество и магнетизм.- М.: Наука, 1971. 351 с.

193. Перк А. А., Перк А .Я. Катионный состав водных вытяжек из побегов плодово-ягодных растений в связи с их морозоустойчивостью // Бюлл. НТИ Якутск. АН СССР. 1979. - №5. - С. 12-18.

194. Петров Д.Ф., Сухарева Н.Б., Геращенко В.И. Индуцированный мутагенез, соматический кроссинговер и их значение для селекции плодовых растений // Индуцированный мутагенез в селекции садовых растений. М., 1977. - С. 114-119.

195. Плотникова Г.А. Культура зародышей in vitro и получение гибридных форм вишни и черешни: Автореферат дисс. . канд. с/х наук. М., 1986.-22 с.

196. Поддубная-Арнольди В.А. Сравнительно-эмбриологическое исследование диплоидных и тетраплоидных форм гречихи // Бот. журнал. 1948. - Вып. 33. - Т. 2. - С. 181-195.

197. Поддубная-Арнольди В.А. Выращивание орхидей из семян // Бот. сад АН СССР. 1953. - Т.З. - С. 106-124.

198. Поддубная-Арнольди В.А. Общая эмбриология покрытосемянных растений. М.: Наука, 1964. С. 74-191.

199. Попов Ю.Г. Ускоренное размножение земляники с помощью метода культуры меристематических верхушек // С.-х. биология. 1977. - Вып. 12. - №1. - С. 45-43.

200. Попов Ю.Г., Равкин А.С. Применение метода культуры меристематических верхушек в селекционной работе с земляникой // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. - С. 140-144.

201. Попов Ю.Г., Трушечкин В.Г. Получение растений малины и земляники из верхушки побегов в культуре in vitro //1 Всесоюзн конф.- М.: Наука, 1970.1. С. 315-320.

202. Потапов С.В., Дронников А.П. Биологические основы повышения продуктивности с-х растений. М., 1974. - С. 34-36.

203. Приходько Ю.Н., Минин А.И., Солдаткин С.Ю. Культура изолированных зародышей сливы П Плодоводство в Нечерноземье. М., 1993. - С. 76-78.

204. Программа и методика биофизических исследований плодовых растений. -Мичуринск, 1977. 160 с.

205. Пытня М.А. Методы биотехнологии в селекции плодовых культур // Садоводство, виноградарство и виноделие в Молдавии. 1993. - №9/10. - с.3-5.

206. Раздорский В. Природа. 1938. - №7-8. - С. 129-131.

207. Рудь Г.Я. Изменчивость линий кукурузы от действия лазерного облучения // VI Всесоюзн. конф. по фотоэнергетике растений. Алма-Ата: Кайнар. -1978. -Вып5.-С. 150-166.

208. Рудь Г.Я., Бляндур О.В., Когут Ю.В. Применение лазерного облучения в селекционно-генетических исследованиях // VI Всесоюзн. конф. по фотоэнергетике растений. Кишинев, 1974. - С. 89-90.

209. Рудь Г.Я., Бляндур О.В., Девятков Н.Д. Изучение влияния лазерного света на изменчивость хозяйственно ценных признаков линий кукурузы // Симпоз. по с.-х. радиобиологии. Кишинёв, 1979. - С. 5-8.

210. Рыжков С.Д. Заряд пыльцы и динамика его изменения у косточковых растений // ЦГЛ им. Мичурина. 1976. - Вып. 23. - С. 38-71.

211. Рыжков С.Д. К электрофизиологическому анализу микроспор у высших цветковых растений // ЦГЛ им. Мичурина. 1974. - Вып. 21. - С. 50-53.

212. Рыжков С.Д. Биоэлектрические свойства половых элементов и избирательность оплодотворения и плодовых растений // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. -1972. Т. XIII. - С. 163-169.

213. Рыжков С.Д., Остапенко В.И. Влияние гамма и ультрафиолетовых лучей на биоэлектрические свойства пыльцы косточковых растений // ЦГЛ им И.В. Мичурина. - 1968. - Вып.15. - С. 23-26.

214. Рыжков С.Д., Остапенко В.И. Биоэлектрические свойства половых элементов плодовых растений и влияние на них электрических воздействий // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1969. - Т. 10. - С. 127-133.

215. Рыжков С.Д., Остапенко В.И. Биоэлектрические свойства пыльцы различных сексуальных групп растений // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1971.- Т. XII. -С. 258-260.

216. Рыжков С.Д., Остапенко В.И. Физический барьер половой несовместимости и механизм его возникновения при отдаленной гибридизации // ЦГЛ им. Мичурина. 1974. - Т. 15. - С. 61-68.

217. Рыжков С.Д., Жуков О.С. Влияние постоянного магнитного поля на физи-олго-биохимические процессы и функциональную активность мужского га-метофита при отдаленной гибридизации плодовых растений // Достижения науки производству. - Тамбов, 1978. - С. 88-89.

218. Рыжков С.Д., Курсаков А.Г. Содержание нуклеиновых кислот, моно и олигосахаридов в разноименно заряженных фракциях пыльцы черной смородины // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. - 1981. - С. 81-85.

219. Рыжков С.Д., Яковлев С.П., Джигадло М.И. Способ обработки зародышей семян плодовых культур мутагенами // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. - С. 90-94.

220. Рыжков С.Д., Мокроусова Г.И., Джигадло М.И. Определение половых различий у двудомных растений по свечению листьев в высокочастотном электрическом поле // Наука производству. М., 1981. - С. 79-80.

221. Рыжков С.Д., Курсаков А.Г., Джигадло М.И. Использование электромагнитного поля ультрозвуковой частоты при гибридизации смородины // ЦГЛ им. И. В. Мичурина, 1981. Вып. 37. - С. 29-31.

222. Рыжков С.Д., Джигадло М.И. Центрифугирование пыльцы отцовских исходных форм // Программа и методика биофизических исследований плодовых культур. 1977. - С. 28-30.

223. Рябчук О.П., Исаенко В.В., Осаучий И.Я. Диагностика морозорозоустойчивости винограда по импедансу тканей лозы // Методы оценки устойчивости растений к неблагоприятным условиям. 1976. - С. 23-25.

224. Самойлова К.А. Автореферат дисс. . канд. биол. наук. Л., 1964. - 23 с.

225. Самойлова К.А. Радиобиология. 1965. - Т.5. - С. 709-712.

226. Самойлова К.А. Реакция клеток и их белковых компонентов на внешние воздействия. 1966. - М.- Л. - С. 139-146.

227. Свитайло A.M. Размножение in vitro сортов вишни Метеор и Норд Стар // Садоводство. Киев, 1986. - Вып.34. - С. 57-58.

228. Седов Г.И., Чесноков Ю.В. Отбор трансформантов томата in vitro на стадии незрелых зародышей // Генетика. 1995. - Т. 31. - №4. - С. 499-503.

229. Соколова Т.В., Дмитриева О.В., Залукаева Г.А., Демченко С.И. Выращивание растений регенерантов орхидей с применением ПАБК // Хим. мутагенез и задачи с.-х. пр-ва. - М., 1993. - С. 204-206.

230. Соловьева М.А. Методы определения зимостойкости плодовых культур. -Л.: Гидрометеоиздат, 1982. С. 40-44.

231. Сокк Н.В. Изменчивость некоторых организмов при воздействии растительных экстрактов // Чкаловск. с.-х. инст. 1955. - №7. - С. 35-37.

232. Смит К., Хенеуолт Р. Молекулярная фотобиология. М.: Мир, 1972. - С. 39-65.

233. Старз Дж. Молекулы жизни. М.: Атомиздат, 1976. - 63 с.

234. Спицин И.П. Эффект использования ультрафиолетовых лучей в культуре изолированного зародыша // Наука производству. М., 1981. - С. 80-82.

235. Спицин И.П. Использование сорбиновой кислоты в культуре изолированных зародышей // Генетика. 1967. - Т. 9. - С. 174-175.

236. Станкевич К.В. Роль галактозосодержащих олигосахаридов в зимостойкости плодовых культур // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1970. - Т. XI. - С. 28-46.

237. Стент Г. Молекулярная биология вирусов и бактерий. М., 1965 - С. 7076.

238. Степлтон Д. Радиационная защита и восстановление. М., 1963. - С. 93

239. Суздальцева В.А. Водоудерживающая способность листьев однолетних побегов и генеративных почек яблони в связи с зимостойкостью // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1970. - Т. XI. - С. 86-94.

240. Суминов В.М. и др. Лазерная интенсификация производства овощной продукции в закрытом грунте // Конверсия. 1997. - № 10. - С. 69.

241. Тарасенко М. Т. Размножение растений зелеными черенками. М.: Колос, 1967.-30 с.

242. Тарашвили З.Т. Применение метода in vitro для размножения разных сельскохозяйственных культур на примере красной смородины // Сельское хозяйство / Груз НИИНТИ. Тбилиси. - 1983. - №79. - С. 24-26.

243. Тарашвили З.Т. Ускоренное размножение черной и красной смородины методом in vitro. Автореферат дисс. . канд. с/х наук. М, 1985.- 23 с.

244. Тарашвили З.Т. Микроразмножение здорового посадочного материала ягодных культур // Садоводство. 1982. - №3. - С. 22-23.

245. Тернавский М.Ф. Полиплоидия у растений. М, 1962. - С. 230-237.

246. Трушечкин В.Г., Высоцкий В.А., Леонтьев-Орлов О.А. Размножение кло-новых подвоев яблони методом культуры ткани // С/х биология. 1982. -Вып. 17.-№4.-С. 455-457.

247. Трушечкин В.Г., Высоцкий В.А., Походенко А.П. Производство безвирусного посадочного материала земляники // Садоводство. 1984. - №11. - С. 20-21.

248. Туманов И.И. Физиология закаливания и морозостойкость растений. М.: Наука, 1979.-350 с.

249. Тюленев В.М. Состояние и перспективы применения биотехнологических методов в селекции плодовых растений // XVIII Мичуринские чтения. Мичуринск, 1998. -С.3-8.

250. Уильяме У. Генетические основы и селекция растений. М.: Колос, 1968. -С. 448- 460.

251. Уколова М.А., Квакина Е.В. Влияние магнитных полей на биологические объекты. М.: Наука, 1971. - 147 с.

252. Упадышев М.Т. Клональное микроразмножение некоторых нетрадиционных культур рода Rubus // Ягодоводство в Нечерноземье. М., 1993. - С. 1018.

253. Упадышев М.Т. Оптимизация состава питательной среды на основании листовой диагностики // Плодоводство и ягодоводство России. М, 1994. - С. 63-69.

254. Фадеева Т.С. Генетика земляники. Л.: ЛГУ. - 1975. - 184 с.

255. Франк Г.М. Сборник работ по биологическому действию ультрафиолетовых лучей. М., 1939. - С. 105 - 116.

256. Хурошвили К.Г. Культура изолированных зародышей и тканей как метод селекции цитрусовых // Всесоюзн. ин-т чая и субтропических культур. 1957. - №1. - С. 180-147.

257. Чеботарева М.С., Фардзинова И.М. Культура зародышей in vitro рода Cerasus Mill, в селекции на устойчивость к Coceomyces hiemalis Higg // Embryology and seed reproduction / Proc of the XI Intern Symp. St. Petersburg, 1992.-P. 108-109.

258. Чувашина Н.П., Кравцов П.В., Касьянова В.Г. Морфоанатомическая характеристика отдаленных гибридов, полученных методом изолированной культуры // ЦГЛ им. И.В. Мичурина. 1969. - Т. 10. - С. 221-228.

259. Чугункова Т.В., Шевцов И.А. Преодоление нескрещиваемости автотетрап-лоидных и диплоидных растений ржи путем культуры зародышей // Цитология и генетика. 1972. - Т.6. - С. 512-515.

260. Цицин Н.В. Отдаленная гибридизация как фактор эволюции и важнейший метод создания новых видов, форм и сортов растений // Отдаленная гибридизация растений и животных. М., 1970. - С. 10-30.

261. Шахов А.А. Некоторые биофизические и биохимические аспекты действия фотоимпульсов // Светоимпульсное облучение растений.- М.: Наука, 1967.1. С. 180-186.

262. Шахов А.А. Светоимпульсная стимуляция растений // Стимуляция растений (Plant stimulation). София, 1969. - Р. 10-12.

263. Шахов А.А. Теоретические и практические проблемы интенсификации сельскохозяйственного производства на фотоэнергетической основе. Кишинев: Штиинца, 1974. - С. 6-24.

264. Шевчук В.К., Алексеева Е.С. Лучи лазера в создании исходного материала для селекции гречихи на устойчивость к болезням // Экспериментальный мутагенез. Киев, 1989. - С. 87-89.

265. Шевелуха B.C., Проблемы новой биотехнологии в селекции и растениеводстве // Вестник с/х науки. 1986. - №2. - С. 95-100.

266. Шевелуха B.C. и др. Сельскохозяйственная биотехнология // Состояние и перспективы развития. -М: ВНТИЦ, 1989.- С. 5-10.

267. Шевелуха B.C. Новая биотехнология в селекции и растениеводстве // Вестник с/х науки. 1986. - №2.- С. 3-7.

268. Шевелуха B.C., Эрнст Л.К. Горизонты биотехнологии // Сельская жизнь. -1 ав1уста 1989.

269. Шипов Г.Н. Явления психофизики и теория Физического Вакуум И Сознание и физический мир. М.: Яхтсмен. - 1995. Вып. 1. - С. 85-103.

270. Шульгина Л.М. Использование лазера при выращивании рассады томатов в пленочных теплицах // Проблемы биоэнергетики организма и стимуляция лазерным излучением. Алма-Ама: Кайнар, 1978. - С. 18-20.

271. Щеглов Н.И. Метод культуры зародышей в генетико-селекционном изучении косточковых культур // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. 1979. - С. 85-93.

272. Щербинин А.А., Лобанов Э.М. Низкочастотный электрический импеданс и формирование морозоустойчивости у древесных растений // Физиология растений. 1987. - Т. 34. - С. 1149-1158.

273. Щредер В.А. Определение морозоустойчивости винограда по импедансутканей // Генетика и селекция винограда на иммунитет.- Киев: Наукова думка. 1978.-С. 166-171.

274. Юшев А.А. Генофонд родов Microcerasus Webb Emend. Spach. Padellus Vass. и Cerasus Mill для селекции: Автореферат дисс. . докт. биол. наук. -Санкт-Петербург, 1993. 49 с.

275. Яковлева J1.B. Экспериментальный метод оценки зимостойких генотипов персика в полевых условиях // Никит. Бот. сад. 1985. Вып 56.- С. 44-48.

276. Яковлева J1.B. О возможностях экспрессной идентификации генотипов по фенотипам древесных растений // С.-х. биология. 1987. - №3. - С. 94.

277. Якобенчук Б.Ф., Кузьменко В.Г., Вильчинский Н.С. О лазерной стимуляции клубней картофеля в Львовской области // Проблемы биоэнергетики организма и стимуляция лазерным излучением. Алма-Ата: Кайнар, 1978. -С. 12-13.

278. Abranam F. and Thomas К. J. A note on the vitro culture of excised coconut embryos. Indian, coconut I. 1962, 15, p.84-88.

279. Abbot A.S. In vitro loss of nucleic acids from cells of aseptically cultured excised pea roots. Planta, 1971, 100, №3, p. 268-271.

280. Abou Zeid A. Embryoachsenkultur von Kirschen in fliissiger Nahrlosung. -Gartenbauwissenschaften, 1972 a, 37, №4, p. 237-280

281. Abou Zeid A.Eine Methode zur Anzueht normalwachsender Keischsamlinge aus Embryoachsen. - Gartenbauwissenschaften, 1972 b, 37, № 5, s. 399-407.

282. Anderson A.V. A note on the vitro culture of excised coconut embryos. Indian, coconut I. 1962, 15, p. 84-88.

283. Anderson C.W.: Plant dis. Rep. 1980, 12, p. 71-75.

284. Appelgren M. In vitro kultur som rejuvenerinsmetode. Norsk Landbruksforsch, 1992. Vol.6.№2. p.93-100. - Summ Eng L . Bibliogr.: p. 98-100.

285. Atabekov J.G., Dorokhov Yu. Z.Plant virus specific transport function and resistance of plants to viruses. Adv. in virus research, 1984, 29. p. 313-364.

286. Anagnostakis S.L. In vitro culture of immature embryos of American elm.

287. Hort Sci., 1977, 12, №1, p. 44.

288. Arya S., Arya I.D., Eriksson T. Rapid multiplication of adventious somatic embryos of Panax ginseng. Plant Cell Tissue Organ Cult. 1993. Vol. 34, №2. p. 157162.

289. Balaga H.Y., Guzman E.V. The growth and development of coconut "maka-puno" embiyos in vitro. -Philipp. Agr. 1970, 53, №10, p. 551-565.

290. Barakat M.N. Combining abilites of in vitro traits in Wheat (Triticum aestivum) immature embryo cultures. Euphytica. 1994. Vol. 76, №3. p. 169-175.

291. Bhoiwani S.S., Differentation of gaustoria in the germinating embryos of mistletoe without host stimulus.- Experementia, 1969,25, №5, p. 543-544.

292. Brand M.H. Initiating cultures of Halesia and Malus. Influence of flushing stage and benzyladenin. Plant Cell Tissue Organ Cult. 1993. Vol. 33. №2. p. 129-132.

293. Brand M.H. Abnormal growths on micropropagated elepidote rhododenrons. Сотр. Proc. Intern. Plant propagators Soc. Seattle, 1994. Vol. 42. p. 530-534.

294. Bassi P.P., Gaqqioli and Montalti P. Chilling effect on development of immature peach and sweet cherry embryos. In: Efficiency in plant breeding. 1994. Prog. Congress Eucarpia, Wageningen, Netherlands, p. 36-48.

295. Belletti P., Rota., Lantieri S. Effect of genotype, benzylaminopurine concentration, daylength and temperature on the formation of in vitro microtubers of potato (Solanum tuberosum L). Ann. Fuc. Sei. Agr. Univ. Studi Torino. 1992. Vol. 16 p. 45-55.

296. Berardi G., Infante R., Neri D. Micropropagation of Pyrus calleiyana Den. Sci. hortic. 1993. Vol. 53, № 1/2, p. 157-165.

297. Bergmann L. Uber die Kultur von Zellsuspensionen von Daucus carota, Natur-wissenschaften, 1959 a, 4b, №1 p.20-21.

298. Bergmann L. A new technique for isolating and cloning single cells of higher plants. Nature, 1959 b, 184, №4686, suppl. 9, p. 648-649.

299. Bergmann L. Growth and division of single cells of higher plants in vitro. — J. Gen. Physiol., 1960, 43, №4 p 841-851.

300. Bergmann L. Wachstum griiner Suspensionskulturen von Nicotiana tabacum Var. Planta, 1967, 74, №3. p. 243-249.

301. Bergmann B.A., Stomp A.M. Influence of taxonomie relatedness and medium composition on meristematic nodule and adventitious shoot formation in nine pine species. - Canad. J. Forest Res. 1992. Vol. 22. №5. p. 750-755.

302. Bieliukiene S. Tiamino in nikotino rugsties poveikis mezia izolinotugemalu Au-gimui in vitro. Lict. TSR. Mokslu Acad. Darbai, 1961, 25, p. 75-91.

303. Blakeslee A.F., Satina S. New hybrids form incompatible crosses in Datura through culture of excised embryos on malt media. 1944. sei., 99, p 2574.

304. Blowers J.W. Vacherot an Lecoufle pioneers of commercial mericlone production. - Orehid Rev., 1966. 74, p. 228-232.

305. Blowers J.W. Mericlones of Vacherot and Lecoufle, France. Amer. Orchid Soc. Bui., 1967, 36, p. 579-581.

306. Bouvinet J., Rabechault H. Recherehes sur la culture in vitro des embryons de palmier a huile. Oleagineux, 1965, 20, №2, p. 79-87.

307. Boxus Ph. La micropropagation „in vitro" dufraisier. Proc. XIX intern, hortic. congr. 1974, v. La, p 65.

308. Brink R.A., Cooper O.C., Asuherman P.A., J. Hered. 1944, №35, p. 96-100.

309. Brinduse E., Ionescu M. Cercetari preliminare privind folosirea culturilor de embrioni in scopul obtinerii de noi soiuri apirene de vita de vie. Cere. Genet. Veget, anim. Bucuresti, 1992. vol.2, p.183-191.

310. Brooks H.Y., Hough L.F. Proc. Amer. Sol. Hort. Sci, 1958, 71, p. 95.

311. Brown S.A., Tenniswood M. Aberrant coumarian metabolism in crown gall tumor tissue of tobacco. Can. J. Bot. 1974. 52, №5, p. 1091-1094.

312. Bulard C., Monin Y. Etude du compartment d' embryons de Fraxinus excelsior1. preleves dans des graines dormantes of cultives in vitro. Fyton, 1963, 20, №2, p. 115-125.

313. Burgos L., Ledbetter C.A. Improved efficiency in apricot breeding: effects of embryo development and nutrient media on in vitro germination seedling establishment. Plant Cell Tissue Organ Cult, 1993. vol. 35, № 3. p. 217-222.

314. Cams H.R., Addicott F.T. and Lynch R.S. Some effects of water and oxygen on abscission in vitro. Plant Physiol., 1959, 2b, p. 629-630.

315. Clayton R.K., Brayan W.C. and Frederick A.C. Areh. Microbiol., 1958, 29, p. 213-226.

316. Chen. Q., Jahier J., Cauderon Y. Production of embryo-callus - regenerated hybrids between Triticum aestivum and Agropyron eristatum possessing one В chromosome. - Agronomie. - 1992. vol. 12, №1. p. 551-555.

317. Dahmen W.J., Mock J.J. Sterilization techniques for seeds and excised embryos of corn (Zea maus L.). Jowa State Sci., 1971, 46, №1. p. 7-11.

318. Dahmen W.J., Mock J.J. Effects of nutrient media composition on growth of seedlings from intact seeds and excised embryos of maize, - Crop. Sci., 1972, 12, № 4, p. 549-550.

319. De Guzman E.V. and de Rosario D.A. The growth and development of Cocos nicifera L. makapuno embryo in vitro. Philipp. Agric., 1964, 48, p.83-94.

320. Dietrieh K. Uber die Kultur von Embryonen aueerhalB des Samens. Flora, 1924, № F., Bd. 17, p. 379.

321. Dixon M.A., Thompson R.J., Fensom D.S. Electrical resistance measurements of water potential in avocado and white Spruce. Canad. J. Forest. Res, 1978, № 1, v. 8. p. 73-74.

322. Diaz de Leon J.L., Garibaldi Meza C. Potential practical applications of in vitro culture of mature wheat embryos. - Cereal Res. Communic. Szeged, 1995. vol. 23, №1/2. p. 19-25.

323. Diederichsen E., Sacristan M.D. The use of ovule culture in reciprocal hybridization between B. campestris L. and B. oleracea.- Plant Breeding. 1994, vol- 113,1, p. 79-82.

324. Donelly D.J., Stacc Smith R., Mellor F.C. In vitro culture of three Rubus species // Acta Horticulturae. 1980, V.l 12, p. 69-75.

325. Dulien H.L. Pollination of excised ovaries and culture of ovules of Nicotiana ta-bacum L. Phytomorphology. 1963, 16, № 1. p. 13.

326. Emsweller S.L. and Vhring J. Tumor formation in interspecific hybrids of Lilum. Science, 1962, 136, 35 12, p. 266.

327. Emershad R.L., Ramming D.W. Effects of media on embryo enlargement, germination and plant development in earlyripening genotypes of Prunus grown in vitro. Plant Cell Tissue Organ Cult. 1994. vol. 37, №1. p. 55-59.

328. Ellis J.B. Proc. Linn Soc., London, 1962, 173, 2, p. 99-106.

329. Fensom D.S. A note on electrical resistance measurements in acer succharum. -Canad, J. Bot. 1960, v. 38, №2, p. 263.

330. Farshadfar M., Molnar Lang M., Sutka J. The crossability of different wheat (Triticum aestivum L.) genotypes with Triticum timopheevi Zhuk. under two types of conditions. - Cereal Res. Communic. Szeged, 1994. vol. 22, №1/2. p. 15-20.

331. Finne A. Micropropagation of Rubus spp.// J. of Agricultural Science in Finland. 1986, V. 58, p. 193-196.

332. Fisher H.E., Darrow G.M., Permutter F. Raspberry and blackberry breeding, production oftetraploid raspberry. Proc. Amer. Soc. Hort. Sci., 1943, 42.

333. Gambade G. Etude cyto-histologique de la germination chez les especes a em-bryons dormants. Bull. Soc. bot. France, 1972, 119, № 3/4 p.l51-165.

334. Garica-Ferris L., Serrano L., Pardos J.A. In vitro shoot organogenesis from excised immature cotyledons and microcultings production in Stone Pine. Plant Cell Tissue Organ Cult. 1994, Vol. 3b, № 1. p. 135-140.

335. Giles K. Perspectives on in vitro plant propagation. Chem. and Ind, 1984, №23, p. 838-842.

336. Gregory F.G., Purvis O.N. Studies in vernalization of cereals. Ann. Bot. New Ser., 1938, 2, p. 5-6.

337. Guzman E.V. The growth and development of coconut „macapuno" embryo in vitro I. The induction of rooting. Philipp. Agr., 1969, 53, №2, p. 65-87.

338. Guzman E.V. The growth and development of coconut „macapuno" embryo in vitro. Philipp. Agr., 1970, 53, №10, p. 566-579.

339. Greenleaf W.H. Genetics, 1941, 26, p. 303-306.

340. Glassman E. Molecular Approaches to Psychobiology, Belmont, California, 1967.

341. Haskell G. Biochemical differences between spontaneous and colchicine induced autotetraploids. Heredity, 3, 1968. P. 44-49.

342. Hayden K.J., Moyse C.A., Calder F.M. Electrical impedance studies on Potato and albalta tissue. J. Exp. Bot. 1969, v. 20, 63, p. 177-178.

343. Helgenson J.P., John P. Upper C.D. Modification of logarithmie growth rates of tobaco callus tissue by gibberelic acid. Plant Physiol., 1970, 46, № 1. p. 113-117.

344. Henderson J.H., Bonner J. Auxin metabolism in normal and crown gali tissue of sunflower. Amer. J. Bot., 1952, 39, №7, p. 444-451.

345. Henxe J. Untersuchungen uber die Anwendung von leitbeichigkeitsmethaden zur Bestimmung ider Frostresistens von obstgeholzen. Angeu. Bot., 1967, b, 40, n. 6. p.249.

346. Herzky L. A new atificial hybrid of species from the genera Fectuca and Lo-lium. Acta Agron. Acad. Sci. Rung, 1972, 21, 3-4, p. 363-368.

347. Hoshika E., Pasqual M., Chalfun N.N.J, et. al. Efeito de diferentes concentra-coes de acido indol butirico e agar sobre о enraizamento „in vitro" do porta enxerto de macieira „MI", Cienc. Prat. 1992. Vol. 16, №3. p. 363-367.

348. Hull J.W. and Britton D.M. Early detection of induced polyploidy in Rubus. Proc. Am. Soc. for. Hort. Sci. 1956, 68.

349. Jagger J. In: Radiation protection and recovery. 1960 a, Pergamon Press, p. 352357.

350. Jagger J., and Stafford R.S. Photochem. Photobiol., 1962, 1, p. 245-257.

351. Jagger J., and Stafford R.S. Biophys, 1965, 5, p. 75-88.

352. James D.J., Passey A.J. Regeneration of temporate fruit trees in vitro via organogenesis and embryogenesis. Len Manipulat Plant Breed. Proc. Symp., Berlin. Sept. 1985, 8-13. Berlin. N. York, 1986, p.433-435.

353. Jennings D.L., Topham D. Annual Report of the Scottish Hort. Res. Institute, 1959-1960.

354. Johri B.M. Controlled growth of ovary, ovule and embryo. Amer. J. Bot., 1961, 48, p. 528-530.

355. Johri B.M., Singh V.D. Bajaj, Behaviour of mature embryo of Dendrophthoe fajcata (L.F.) Ettingsh in vitro. Nature, 1962, 193, 4811. p. 112-113.

356. Kanta K., Ranga Swamy N.S., Maheshwary P. Test tube fertilization in a flowering plant. Nature, 1962, 194, №4835, p. 1214-1217.

357. Kartha K.K., Michayluk M.R., Kao K.N., Constabel F. Callus formation and plant regeneration from mesophylle protoplasts of rape plants (Brassica napus L. cv. Zephyr). Plant Sci. Lett., 1974, 3, p. 265-274.

358. Kartha K.K. Meristem culture. In. Plant tissue culture methods / Ed. O. L. Gamborg and L.R. Wetter. Saskatoon; Saskatchewen, Nat. Res. Counc. Canada, 1975 a. P. 56-59.

359. Kartha K.K., Gamborg O. L., Shyluk J.L., Constabel F. Morphogenetic investigations on in vitro leaf culture of tomato. Z. Pflanzenphysiol., 1976, 77, №4, p. 292-301.

360. Kimball R.A. GaitherN. and Wilson S.M. Rad. Res., 1959, 10: p. 490-497. Khan R.G., Randolph. Growth of excised embryos of wheat in different media with varying agar concentrations. Proceeding National Acad. Science (India), 1960,30. p. 391-396.

361. Khan R.G. Effects of added growth substances on seedling of Podocarpus Falca-tus. Austral J. Sci, 1968, 30, 9, p.372-378.

362. Knut Norstag, Klein Richard M. Development of cultural barley embryos. Pre-cocios germination and dormancy. Can. J. Bot., 1972, 50, № 9, p. 1887-1894.

363. Marin M.L., Gogoreena Y., Ortiz J., Duran-Vila N. Recoveri of whole plants of sweet orange from somatic embryos subjected ted to freezing thawing treatments. - Plant Cell Tissue Organ cult. 1993. vol. 34, № 1. p. 27-33.

364. Maheshwari N., et. al. In vitro culture of ovaries of Iberis amara L. Phytomor-phology, 1961, 11, № l.p. 17-23.

365. Maheshwari R. Application of plant tissue and cell culture in the study of physiology of parasitism Proc. Indian Acad. Sci. 1969, 69, №3, p. 152-172.

366. Matsubara Satoshi. Studies on a growth promoting substance «embryo factor», necessary for the culture of young embryos of Datura tatula in vitro. Bot. Mag., 1962, 72, p. 883.

367. Mellor T.C., Stace-Smith R. Virus-free potatoes by tissue culture. In: Applied and fundamental aspects of plant cell, tissue, and organ culture / Ed. J. Reinert and Y.P.S. Bajaj Berlin etc.: Springer-Verl, 1977, p. 616-636.

368. Mock J.J. Dahmen W.J. Sterile culture of immature maize seeds and embryos. Corp. Sci., 1973, 13, №6, p.764-766.

369. Monnier M. Croissance et development des embryons globulaires de capsella bursapastoris cultives in vitro dans un milieu a base d'unne nouvelle solution min-erale. Bull. Soc. bot. Fance mem., 1973, p. 179-192.

370. Monnier M. Action d'un gel de polyacrylamide employe comme support pour laculture de lembryon immature de capsella bursa pastoris. - C.r. Acad. Sci. D, 1975, 28, № 6, p.705-708.

371. Monnier M. Culture in virto de lembryon immature de Capsella bursa pastoris Moench. (1). - Rev. Cytol. et. biol. veget., 1976, 32, №1/2, p. 1-120.

372. Morel G. La culture in vitro du meristeme apical. Rev. cytol. biol. veget., 1964, 27, p. 307-314.

373. Morel G. Transformations des cultures de vigne produites par ё heteroauxine. -C.r. Soc.biol., 1976, 141, p. 280-282.

374. Morel G., Martin C. Guerison de Dablias atteints d'une malagie a virus. C.r. Acad, sci. D, 1952, 253, p. 1324-1325.

375. Morel G. Producing virus free Cymbidiums. - Amer. Orehid. Soc. Bull., 1960, 29, p. 495-497.

376. Morel G. Clonal propagation of orchids by meristem culture. Cymbidium Soc. News, 1965, 20, p. 3-11.

377. Mori K. Production of virus free plants by means of meristem culture. - Jap. Agr. Res. Quart., 1971, 6, p. 1-7.

378. Mori K. and Hosokawa D. Localization of viruses in apical meristem and production of virus free plants by means of meristems and tissue culture. Acta Hort. 1977, 78, p. 389-396.

379. Mohan Ran H.G., Swamy R. Dore. Growth and flowering, ofutricularia inflexa Torsk, var inflexa Tavlor in axenic culture. Naturwissenschaften, 1966, 53, 15. p. 387-388.

380. Murashige Т., Skoog F.A. Revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissul cultures. Physiol. plantarum,1962, 15. p. 437-497.

381. Myers D.K. and De Wolfe Slade D. Canad. J. Biochem, 1964, 42, p. 529-543. Murgai P. In vitro culture of the inflorescences, flowers, and ovaries of apomict (Aerva tomentosa) Forsk. 1959, Nature, v. 184, p. 72-73.

382. Narayanaswami S., Norstog K. Plant embryo culture. Bot. Rev., 1964, 4, p. 587. Naylor J.M., Simpson G.M. Bioassay of gibberellic acid using excised embryons of Avena Fatua L. Nature, 1961, 192, 4803, p. 676-680.

383. Nucu Cagao, Kabama Deumu, Toga Makuxuno. Phenonena in those hybridizations.-Bull. Horticult. Des. Stat., Tokyo. 1962, A, I, p. 111-156,

384. Nissila P.S., Fuchigami L.H. Xylem water potential and electrical impedance as measures of vegetative maturity in Red osier. J. Amer. Soc. Hort. Sci, 1978, № 103, 6, p. 708-710.

385. Nigren A. Kgl. Iantbrukshogskol, ann., 1957, 23,p. 393-404.

386. Nischi S., Kawata J. and Toda M. Studies on the embryo culture of vegetable crops. Bull natt. Inst. Agric. Sci. Hiratsuka, Ser. E, 1961, 9, p. 59-127.

387. Noe N., Eccher T. Influence of irradiance on in vitro growth and proliferation of Vaccinium corymbosum (highbush blueberry) and subsequent rooting in vitro. Physiol. Plantarum. 1994. vol. 91, iss. 2. p. 273-275.

388. Nysterakis Trancois. Reactions in siti et hors des tissus du pericaupe des graines mures et immatures de solanum lycopersicum. C.r. Acad. Sei., 1964, 258, 9, p. 2652-2655.

389. Overbeek J. van. Hormonal control of embryo and seeding. Cold Sping Harbor Symp. Quant. Biol., 1942, 10, p.126-133.

390. Overbeek J. van, Conclin M.F. Cultivation in vitro of smole Datura embryos. -Amer. J. Bot., 1942, 29, № 6, p. 472-477.

391. Overbeek J. van, Conclin M.E., Blakeslee A.E. Factors in coconut milk essential for growth and development of very young Datura embryos. Science, 1941, 94, № 1441, p. 350-351.

392. Page-Degivry M. Th. le. Influence de Г acide abscissigue sur le development des embryons de Taxus baccata L. cultives in vitro. Z. Pflanzenphysiol., 1973, 70, №5, p. 406-413.

393. Pierik R.L.M. In vitro culture of higher plants the transfer from nutrient medium to soil 1987, p. 127-132.

394. Pierik P.L.M., Steegmans H.H.M. Freesia plantlets from flower buds cultivated in vitro. - Neth J. Agr. Sci., 1975, 23, №4, p. 334-337.

395. Pukacki P. Laboratoryne metaly ocene adpornosci roslin ducwnstysk na niskue temperatury.- Arboretum Jork, 1973, v. 18, p. 187-188.

396. Philips G.C., Grosser J.W., Berger S. et. al. Interspecific hybridization between red clover and Trifolium alpestre using in vitro embryo rescue. - Crop. Sci.1992. Vol. 32, №5. p. 1113-1115.

397. Quak F. Heat treatment and substances inhibiting virus multiplication in meris-tem culture to obtain virus free plants. - Adv. Hortic. Sci. Appl., 1961, №1, p. 144-148.

398. Quak F. Review of heat treatment and meristem tip culture as methods to obtain virus free plants. -In: Proc. 18th Int. Hortic. Congr. Tel -Aviv, 1970, vol. 111, p. 12-23.

399. Quak F. Meristem culture and virus-free plants. In: Applied and fundamental aspects of plant cell tissue and organ culture /Ed. J. Reinert and Y.P.S. Bajaj. Berlin etc. Springer-Verl., 1977, p. 598-616.

400. Rabechault H., Ahee J. Beaherchs sur la culture in vitro des embryo embryons de palmiera huile Elaeis quineensis Jacq. Effect de la grosseur et de age des graines oleagineux, 1966, 21, 12. p. 729-734.

401. Ranga Swamy N.S. Culture of nucellar tissue of citrus in vitro. Experienta, 1958, p. 3, 14.

402. Ranga Swamy N.S. Experienta, studies of female reproductive structures of citrus microcarpa Bge. Phytomorph., 1961, 11, 1-2.

403. Ranga Swamy N.S. Plant Tissue and organ culture. A. Sympos. Internat. Soc. Plant Morphol. Univ. Delhi. P. Maheshwari and N.S. Pungaswamy (Eds). 1963, p. 345.

404. Randolph L.F., Cox L.G. Proc. Amer. Soc. Hort. Sci., 1943, 43, p. 284.

405. Randolph L.F., Bull. Amer. Jris. Soc., 1945, 97, p. 33.

406. Rao A.N. Tissue culture in the orchid industry. In: Applied and fundamental aspects of plant cell, tissue and organ culture / Ed. J. Reinert and Y.P.S. Bajaj. Berlin, New York: Springer Verl., 1977, p. 44-70.

407. Rappoport J. In vitro culture of plant embryos and factors controlling the growth. Bot. Rev., 1954, 20, № 4, p. 201-225.

408. Reinert J. Morphogenese in Gewebe und Zellkulturen. - Naturwissenschaften, 1968, 55, №4, p. 170-175.

409. Reinert J. Aspects of organization-organogenesis and embryogenesis. In: Plant tissue and cell culture: Botanical monograph / Ed. H.E. Street. Oxford: Blackwell, Sci. Publ., 1973, vol. 11. p. 338-355.

410. Remy P. Recherches physiologiques sur la maturation des graines d arbres fruiters a noyau Ann. Inst nat. rech. Agron. В. 1961, 11, 2, p. 113-298.

411. Rose J.B., Jones R.P., Simpson D.W. Anther culture and intergeneric hybridization of Fragaria ananassa. Advances in strawberry research. Simpson, 1993, vol.12. P. 64-66.

412. Rugayya Khan. Study of the growth of embryos of Solanum tuberosum 1. in vitro. J. Sci., 1974, 3, № 1/2, p. 70-73.

413. Rupert C.S. and Harm W. In: Advances in radiation biology, 1966, 2, N.Y. p. 181.

414. Sankhla N., Chatterjin., Baxi Dakscha. In vitro response of excised embryos of Merrenua dissecta (Jaeg) Hallies to Inositol. Naturwissenschaften, 1966, 53, 13, p. 334-340.

415. Sankhla N., Sankhla D., Chatterjih U. N. In vitro proliferation of colored callus from cotyledons of excised embryos of Merrenua dissecta Z. Pflanzenphysiol, 1967, 57, 2, p. 198-200.

416. Sengal C.B. Artifical induction of polyembryony in Foeniculum vulgare Mill. Curr., Sci., 1964, 33, p. 374-380.

417. Seabrook J.E.A., Coleman S., Levy D. Effect of photoperiod on in vitro tuberi-zation of potato. Plant cell Tissue organ Cult. 1993. vol. 34, № 1, p. 4343-51.

418. Setlow R.B. Adv. Biol. Med. Phys., 1957, 5, p. 37-74.

419. Setlow R.B. and Setlow J.K. Proc. Nate. Acad. Sci. VSA, 1962, 48, p. 12501257.

420. Setlow R.B. Garner W.L. and Bollum F.J., Abstr. Biophys. Soc., N.Y., 1963 b.

421. Shivanna K.R. In vitro fertilization and seed formation in Petunia violacea. Lindl. Phytomorhology, 1965, 15, № 2, p. 183-185.

422. Skirm G.W. Embryo culturing as an aid to plant breeding J. Hered., 1942, 33, №6, p. 210.

423. Schreiber H., Kreeb K. Model vorstellung zur leitung des elektrischen stromes in Blattern. - Biophys and pflantlicher syst. Lana: 1977 p. 233-235.

424. Smith C.W. The effect of growth substances on growth of excised embryo shoot apices of wheat in vitro Ann. Bot., 1968, 32, №127, p. 539-600.

425. Smith R.H., Murashige T. In vitro development of the isolated shoot apical mer-istem of angiosperms. Amer. J. Bot., 1970, 57, №5, p. 562-568.

426. Smith S.M., Street H.E. The dectine of embryogenic potential as callus and suspension cultures of carrot (Daucus Carota L.) are serially subcultured. Ann. Bot., 1974, 38, №155, p. 223-241.

427. Stebbins G.L. Brookhaven Sympos Quant. Biol., 1956, 9, p. 37-50.

428. Stoltz L.P. Agar restriction of the growth of excised mature iris embriyos. J. Amer. Soc. Hortic. Sci, 1971, 96, №5, p. 681-684.

429. Theiler R. Embryonenkultur fur die Anzuecht neuer Kirschenhybriden (Prunus avium). Schweit landwirt Forsch, 1971, 10.1, p. 65-93.

430. Tukey H.B. Artificial culture of sweet cherry embryos. J. Hered, 1933, 24, №1, p. 7-12

431. Tukey H.B. Artificial culture methods of isolated embryos of deciduous fruits. -Pros. Amer. Soc. Hortic. Sci, 1934, p. 32 313.

432. Veen H. The effect of various growth regulators on embryos of Capsella bursa -pastoris growing in vitro. Acta bot. neer, 1963, 12, №2, p. 129-171.

433. Ventura P.F. A progress report on the development of coconut embryo in artificial media. Philipp J. Plant Ind. 1966. 31. p. 81 -82.

434. Wall J.R, Interspecific hybrids of Cucurbita obtained by embryo culture Proc. Amer. Soc. Hortic. Sci, 1954, 63, p. 427.

435. Wang F.H, Chen Т.К. and Lee S.C. Experimental studies of young Ginkgo embryos Acta Bot. Sin, 1963,11, p. 217-222.

436. Wilmer J.C, Hildebrandt A.C, Riker A.J. Iron nutrition for growth and chlorophyll development of some plant tissue cultures. Nature, 1964,202, №4938, p. 1235-1236.

437. Wilner J. Proc. Amer. Soc. Hort. Sci., 1955, 66, p. 93-98.

438. Wilner J. Canad J. Plant. Sci., 1960,40, p. 563-565.

439. Wilner J. Res. Faram., 1964,9, №1. p. 91-121.

440. Yuzman E.V. The growth and development of coconut „macapuno" embryo in vitro. The induction of rooting. Philippine Agr., 1969, 53,2, p. 65-78.

441. Zagaja S.W. Growth of seedlings from immature fruct tree embryos. Hoygh L.F., Proc. Amer. Soc. Hort. Sci. 1960,75, p. 181-183.

442. Zagaja S.W. Wzzost in vitro medojzzalych zarodkow brzosk wini. Prace Inst. Sa-dow. W. Skiern, 1962,6,p.3-9.

443. Zdruikovckaya-Rikhter A.I. Embryoculture of Persica vulgaris L., P. vulgaris var. nec-tarina (Maxim) Holub and Armeniaca vulgaris Lam. in vitro Proc. of the XI Intern, symp „Embriology and seed reproduction". St. Petersburg, 1992. p. 628-629.

444. Zenkteler M., Huldebrandt A.C. and Cooper D.C. Growth in vitro of mature and immature carrot embryos-Phyto., Argentina, 1961, 17, p. 125-128.

Информация о работе

Джигадло, Михаил Иосифович
кандидата сельскохозяйственных наук
Орёл, 2003
ВАК 06.01.05

Диссертация

Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур - тема диссертации по сельскому хозяйству, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы