Функционирование паразитарной системы в организме птиц и организация противоэпизоотических мероприятий в бройлерных птицефабриках Центрального района Нечерноземной зоны Российской Федерации

Вяткин, Александр Павлович

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Функционирование паразитарной системы в организме птиц и организация противоэпизоотических мероприятий в бройлерных птицефабриках Центрального района Нечерноземной зоны Российской Федерации
ВАК РФ 03.00.19, Паразитология

Автореферат диссертации по теме "Функционирование паразитарной системы в организме птиц и организация противоэпизоотических мероприятий в бройлерных птицефабриках Центрального района Нечерноземной зоны Российской Федерации"

На правах рукописи

□□3163333

вяткин

Александр Павлович

ФУНКЦИОНИРОВАНИЕ ПАРАЗИТАРНОЙ СИСТЕМЫ В ОРГАНИЗМЕ ПТИЦ И ОРГАНИЗАЦИЯ ПРОТИВОЭПИЗООТИЧЕСКИХ МЕРОПРИЯТИЙ В БРОЙЛЕРНЫХ ПТИЦЕФАБРИКАХ ЦЕНТРАЛЬНОГО РАЙОНА НЕЧЕРНОЗЕМНОЙ ЗОНЫ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

Специальности 03 00 19 - паразитология,

16 00 03 - ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксико-логией и иммунология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

2 4 ЯН В 2008

Иваново - 2007

003163333

Работа выполнена на кафедрах микробиологии, эпизоотологии и паразитологии ФГОУ ВПО «Ивановская государственная сельскохозяйственная академия имени академика Д К Беляева» и в ОАО «Ивановский бройлер»

Научные руководители

- доктор ветеринарных наук, профессор Гудкова Алла Юрьевна (ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА им академика Д К Беляева»)

- доктор ветеринарных наук Кузьмичев Василий Витальевич (ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА им академика Д К Беляева»)

Официальные оппоненты

- доктор ветеринарных наук Иванюк Василий Павлович (ФГОУ ВПО «Ивановская государственная сельскохозяйственная академия им академика Д К Беляева»)

- доктор ветеринарных наук Борисов Владимир Владимирович (ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных», г Владимир)

Ведущая организация ГНУ Самарская научно-исследовательская ветеринарная станция

Защита диссертации состоится « С » 2008 года в tf часов на

заседании диссертационного совета Д22'0 02§ 01 при ФГОУ ВПО «Ивановская государственная сельскохозяйственная академия им академика Д К Беляева» С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Ивановской ГСХА Адрес 153012, г Иваново, ул Советская, 45 Автореферат опубликован на официальном сайте ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА им академика Д К Беляева» http //www ivgsha tpi ru 3 января 2008r

Автореферат разослан « декабря 2007 года

Ученый секретарь диссертационного совета,

доцент

С В Егоров

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность ?емы. При напольном содержании на глубокой несменяемой подстилке аскаридиоз и гетеракидоз имеют широкое распространение и наносят существенные экономические потери птицеводческим хозяйствам Следует отметить, что эти гелъминтозы в хозяйствах протекают как микстинвазия (Ж А Агапо-вич, 1978, Ж А Агапович, М С Рустамова, 1986, А Г Воробушков, 1989, Е Ю Давыдова, 2005, С А Шишкарев, 2006 и др )

Работами ЮФ Петрова (1980-2006), Д И Панасюка (1984), А Г Воробуш-кова (1989), А Ю Гудковой (1999), В П Иванюка (2006), С А Шишкарева (2006) и других установлено, что под влиянием паразитов (гельминтов, членистоногих, простейших) в организме хозяина формируется паразитоценоз, сочленами которого являются гельминты на различных стадиях развития, патогенные простейшие, членистоногие, бактерии и грибы, в результате чего возникают ассоциативные гельминто-протозойно-бактерийные болезни При этом у инвазированных паразитами животных возникает дисбактериоз желудочно-кишечного тракта Однако данный вопрос у птиц при микстинвазиях практически не изучен

Известно, что при микстинвазии гельминтами существенно снижается резистентность организма птиц (А Г Воробушков, Ю Ф Петров, 1983, А Г Воробушков, 1989, С А Шишкарев, 2006 и др ) Однако характер иммунологической перестройки организма у кур к болезни Ньюкасла после вакцинации на фоне микстинвазии аскаридиями и гетеракисами не изучена

На птицефабриках Российской Федерации для профилактики эймериозов применяются вакцины Рагасох из Израиля и из штамма ВНИВИП, а также кокци-диостатики Однако вопрос формирования поствакцинального иммунитета против болезни Ньюкасла на фоне применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин практически не изучен

Цели и задачи исследований. Целью нашей работы являлась разработка оптимальной системы лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий на птицефабриках с учетом неблагополучия их по нематодозам и эймериозам Для чего были поставлены следующие задачи

-изучить динамику аскаридиоза и гетсракидоза на бройлерных птицефабриках центрального района Нечерноземной зоны РФ,

-изучить динамику микрофлоры кишечника у агельминтных птиц и при моноинвазии и микстинвазии их аскаридиями и 1етеракисами,

-изучить характер морфологического и биохимического состава крови птиц при гельминтозах,

-определить влияние микстинвазии аскаридиями и гетеракисами на формирование поствакцинального иммунитета против болезни Ньюкасла,

-определить динамику формирования иммунитета против болезни Ньюкасла на фоне применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин,

-разработать систему лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий для цеха выращивания мясных цыплят, в це\е ремонтного молодняка, в цехе родительского стада в условиях применения в хозяйстве антгельминтиков, кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин

Научная новизна Установлено, что при выращивании мясных цыплят на глубокой несменяемой подстилке в течение 42-45 дней они практически остаются

свободными от аскаридий и гетеракисов В цехе ремонтного стада аскаридиоз и гетеракидоз впервые выявляются у птиц с 50-дневного возраста В дальнейшем зараженность птиц возрастает и достигает своего максимального уровня к 100-110-дневному возрасту В цехе родительского стада зараженность птиц нематодами остается на довольно высоком (ЭИ= 10-20%) уровне, причем заболевание протекает как микстинвазия

Выявлено, что при моноинвазии и микстинвазии аскаридиями и гетеракиса-ми в кишечнике птиц возникает дисбактериоз, который умеренно выражен при ге-теракидозе, несколько глубже — при аскаридиозе и сильно - при микстинвазии При моноинвазии и микстинвазии нематодами организм птиц находится в состоянии сенсибилизации и иммунологической реакции в ответ на действие антигенов нематод и бактерий, интенсивно развившихся в кишечнике инвазированных птиц Установлено, что у птиц, вакцинированных против болезни Ньюкасла на фоне микстинвазии нематодами, применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин, существенно снижается интенсивность выработки специфических антител против вакцинного вируса. Для создания высокоиммунного стада кур против вирусных болезней в хозяйствах, неблагополучных по нематодозам и эймериозам, птиц необходимо дегельминтизировать, прекратить дачу им кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин за 20-30 дней до применения вирус-вакцин

Практическая ценность. На основании проведенных исследований разработана система лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий при напольном выращивании мясных цыплят, ремонтного молодняка и родительского стада кур, обеспечивающая благополучие хозяйства в отношении инфекционных, инвазионных и незаразных болезней, которая внедрена в ОАО «Ивановский бройлер»

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и одобрены на научных конференциях ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» (Москва, 2004-2007), на научных конференциях ученых ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА» (2004-2006), конференции ФГОУ ВПО «Казанская ГАВМ» (2006), ФГОУ ВПО «Кубанский ГАУ» (2006), конференции ГНУ ВНИВИП (Санкт-Петербург, 2007)

Основные положения, выносимые на защиту:

-сезонная и возрастная динамика аскаридиоза и гетеракидоза птиц в ОАО «Ивановский бройлер»,

-динамика микрофлоры кишечника птиц при моноинвазии и микстинвазии аскаридиями и гетеракисами, а также после освобождения их от нематод,

-динамика гематологических и некоторых биохимических показателей у птиц при моноинвазии и микстинвазии аскаридиями и гетеракисами, а также после дегельминтизации,

-влияние микстинвазии на формирование иммунитета против болезни Ньюкасла,

-влияние применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин на формирование иммунитета против болезни Ньюкасла,

-система лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий в цехе выращивании мясных цыплят, ремонтного молодняка и родительского стада кур

Публикации По материалам исследований опубликованы 8 работ, в том

числе 4 работы в изданиях, регламентированных ВАК РФ для докторских и кандидатских диссертаций, которые отражают основное содержание диссертации

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 123 страницах компьютерного текста, содержит 16 таблиц, 24 рисунка Состоит из введения, обзора литературы, 5 разделов собственных исследований, заключения, выводов, практических предложений Литература включает 169 источников, в том числе 140 отечественных, 29 иностранных авторов

2.СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 2 1 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Работу выполнили в 2001-2007 годы в ОАО «Ивановский бройлер», котрое объединяет птицефабрики мясного направления в Ивановской области, на кафедрах паразитологии, микробиологии и эпизоотологии ФГОУ ВПО «Ивановской государственной сельскохозяйственной академии имени академика ДК Беляева» Данная фабрика является типичной для центрального района Нечерноземной зоны РФ

В ОАО «Ивановский бройлер» принята единая технология выращивания цыплят-бройлеров напольным методом с 1 по 45 дней, напольный метод с глубокой несменяемой подстилкой выращивания ремонтного поголовья (с 1 по 140 сутки), напольный метод содержания кур родительского стада (с 4,5- до 18-месячного возраста)

Для определения зараженности птиц аскаридиями и гетеракисами в 20012007 гг ежемесячно проводили полные гельминтологические вскрытия мясных цыплят с 1 по 45 сутки выращивания (всего 5686 голов), ремонтного молодняка с 1 по 140 сутки выращивания (6415 голов), родительского стада с 5- до 18-месячного возраста (2540 голов) с определением экстенсивности (ЭИ, %) и интенсивности инвазии (ИИ, экз )

Изучение динамики микрофлоры, гематологических и некоторых биохимических показателей у птиц при нематодозах провели в одном опыте на 120 цыплятах-бройлерах 10-дневного возраста Подопытным цыплятам первой группы однократно скормили по 300 экз инвазионных яиц Ascaridia galli (моноинвазия), второй группы - по 300 инвазионных яиц Heterakis gallinarum (моноинвазия), третьей группы —по 150 яиц A gallit-no 150 яиц Н gallinarum (микстинвазия) Через 60 дней инвазии птиц опытных групп дегельминтизировали (фенбендазол по 10 мг/кг по ДВ) Птица четвертой группы была контрольной, ее не заражали Для определения количественного и качественного состава микрофлоры тощей и слепой кишок убой птиц (по 5 голов из каждой группы) проводили за 3 дня до инвазии, на 15-30-60 сутки инвазии, спустя 30 и 60 дней дегельминтизации

В течение одного часа после убоя птиц брали по 1г содержимого тощей и слепой кишок, затем проводили ряд последовательных разведений на физрастворе до I О"9, после чего из каждого разведения в стерильных условиях высевали по 0,1 мл на чашки Петри с соответствующими питательными средами МПА - для определения общего числа аэробных бактерий, солевой МПА - стафилококков, среда Гарро - стрептококков, среда Эндо — Escherichia coli, среда Вильсон-Блера - анаэробных микробов (кпостридий), на среду, предложенную ВНИИЖ (состоящая из глюкозы -0,5, томатного сока - 10,0, дрожжевой воды - 2,0, цистеина -0,05, агара-

1,5) - для определения лактобацилл, среду Блаурокка - бифидобактерий, на кровяной агар с колистином и налидиксовой кислотой - бактероидов, на среду Чапека -грибов Посевы инкубировали в термостате при температуре +37,5°С в течение 1824 часов в аэробных и анаэробных условиях для определения бактерий, при температуре +20 +22°С в течение 4 дней — для грибов

Для идентификации выделенных культур проводили микроскопические исследования с целью определения морфологических особенностей микробов, отношения их к окраске по Грамму Для определения видовой принадлежности микробов у них изучали биохимические и морфологические свойства общепринятыми методами

У изолированных из кишечника контрольных и опытных птиц стафилококков (всего 264 культуры), стрептококков (270 культур), Е coli (125 культур) изучали гемолитические свойства, способность выделять токсины, а также патогенность их для белых мышей Для чего суточные культуры изучаемых видов микробов вводили белым мышам внутрибрюшинно по 500 млн микробных тел Изолированных Е coli типизировали поливалентными и моновалентными агглютинирующими сыворотками

Гематологические исследования проводили общепринятыми методами, общий белок и его фракции в сыворотке крови определяли экспресс-методом, фагоцитарную активность нейтрофилов — по В А Косту, М И Стенко (1947) с использованием суточных агаровых кулыур Escherichia coli, изолированных из кишечника птиц Для суждения о поглотительной активности вычисляли показатель фагоцитарной активности (процент фагоцитирующих нейтрофилов) и фагоцитарный индекс (среднее число микробов, фагоцитированных одним нейтрофилом)

Формирование поствакцинального иммунитета к болезни Ньюкасла на фоне микстинвазии аскаридиями и гетеракисами изучили в ОАО «Ивановский бройлер» в одном опыте на 10 тыс цыплятах-бройлеров Для чего из общего поголовья 10000 птиц выделили в отдельную секцию 500 голов, которым в 10-дневном возрасте однократно скормили в среднем по 150 инвазионных яиц Ascandia galli+no 150 инвазионных яиц Heterakis gallmarum Через 60 дней инвазии птиц дегельмин-тизировали (фенбендазол 10 мг/кг по ДВ) Остальное поголовье (9500 голов) содержалось в этом же помещении, их не заражали, они не имели прямого контакта с опытной группой Титр антител определяли до инвазии и вакцинации против болезни Ньюкасла (пассивный иммунитет, возраст птиц 10 дней), через 11 дней после вакцинации (возраст птиц 33 дня, или через 13 дней после вакцинации), через 20 дней после первой ревакцинации (возраст птиц 100 дней, ревакцинированы в 80-дневном возрасте, дегельминтизированы за 10 дней до ревакцинации) Через 20 дней после второй ревакцинации (возраст птиц 120 дней) Для удобства изложения фактического материала методика опыта подробно описана в соответствующем разделе диссертации

Динамика формирования поствакцинального иммунитета против болезни Ньюкасла на фоне применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин штаммов ВНИВИП (Санкт-Петербург) и Рагасох из Израиля изучили в двух сериях опытов, в которых использовали около 500 тыс птиц Подробно методика постановки опыта описана в соответствующем разделе

Весь полученный материал подвергнут математической обработке

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 2.2.1. ОСОБЕННОСТИ ЭПИЗООТОЛОГИИ АСКАРИДИОЗА И ГЕТЕРАКИДОЗА В ОАО «ИВАНОВСКИЙ БРОЙЛЕР»

Нами в 2001-2007 годы путем ежемесячных полных гельминтологических вскрытий (всего за 8 лет - 12860 голов) птиц изучена динамика зараженности птиц аскаридиями и гетеракисами

Наши многолетние исследования свидетельствуют, что мясные цыплята с 1 по 45 сутки, несмотря на выращивания их на глубокой несменяемой подстилке, практически остаются свободными от нематод Из исследованных нами 3546 бройлеров лишь у 13 цыплят 40-днсвного возраста мы обнаружили аскаридий (ЭИ=0,4%, ИИ - 1-2экз ), у 11 цыплят гетеракисов (ЭИ-0,3%, ИИ - 1-2экз ) Следует отметить, что из инвазированных бройлеров у 8 птиц регистрировали мик-стинвазию, у остальных - моноинвазию

Таким образом, в ОАО «Ивановский бройлер» при принятой технологии выращивания бройлеров они практически остаются свободными от нематод Поэтому они не подвергаются дегельминтизации

Несколько иная динамика зараженности птиц ремонтного молодняка (с 1 по 140 сутки) Так, независимо от сезонов года цыплята до 40-дневного возраста свободны от нематод Птица 50-дневного возраста заражена аскаридиями на 0,93% при ИИ - 1-3 экз , гетеракисами - на 0,97% и 1-2 экз В дальнейшем инвазирован-ность ремонтного стада постепенно нарастает и достигает своего максимального уровня на 90-110 сутки выращивания (ЭИ аскаридиями составляет 22,8% при ИИ -4-21 экз на голову, гетеракисами - соответственно 13,1% и 2-10 экз ) Следует отметить, что из пораженных нематодами птиц у 78% заболевание протекает как микстинвазия аскаридиями и гетеракисами, у остальных 32% птиц - как моноинвазия

По разработанной нами системе лечебно-профилактических мероприятий в ОАО «Ивановский бройлер» ремонтный молодняк подвергается дегельминтизации (фенбендазол, нилверм, реже пиперазин) в 100-дневном возрасте Поэтому резко снижается зараженность птиц нематодами Так, ремонтный молодняк 110-120-дневного возраста свободен от нематод Птица 130-дневного возраста заражена ас-каридями на 2,7% при ИИ - 1-6 экз, гетеракисами — на 1,8% и 1-5 экз, 140-дневного возраста - соответственно 4,1% и 1-7 экз, 2,2% и 1-6 экз

В 135-дневном возрасте птиц дегельминтизируют, после чего в 140-дневном возрасте их переводят в цех родительского стада

В цехе родительского стада птиц содержат напольным методом на глубокой несменяемой подстилке И\ деюльминтнзируют в 8-, 11- и 14-месячном возрасте Наши исследования свидетельствуют, что несмотря на дегельминтизацию, в 135140-дневном возрасте перед переводом птиц из цеха ремонтного стада в цех маточного поголовья, незначительная часть птицепоголовья (0,6%) оказывается пораженной аскаридиями и гетеракисами Эта птица в дальнейшем в цехе родительского стада является основным источником заражения кур-несушек

Так, куры-несушки 6-месячного возраста заражены аскаридиями на 1,2% при ИИ — 1-3 экз , гетеракисами — 1,2% и 1-2 экз , заражены одновременно аскаридиями и гетеракисами 1,2% птиц при ИИ - 2-5 экз Птица 7-месячного возраста инва-

зирована аскаридиями на 10,5% при ИИ - 1-8 экз, гетеракисами - на 7,6% и 1-5 экз , микстинвазия - 7,6% и 2-13 экз Куры 8-месячного возраста (до дегельминтизации) заражены аскаридиями на 12,1% при ИИ— 1-10 экз , гетеракисами - 8,8% и 1-7 экз , микстинвазия - 8,8% и 3-17 экз

В 9-месячном возрасте (спустя 30 дней после дегельминтизации) ЭИ и ИИ аскаридиями составляют 0,5% и 1 экз , гетеракисами - 0,5% и 1 экз В дальнейшем зараженность птиц постепенно нарастает и 11-месячная птица инвазирована аскаридиями на 14% при ИИ - 3-23 экз , гетеракисами - на 10,1% и 3-12 экз , микстинвазия - 10,1 % и 6-35 экз

Птица 12-месячного возраста (спустя 30 дней дегельминтизации) поражена аскаридиями и гетеракисами на 0,6% при ИИ - 3 экз на голову Куры 14-месячного возраста (до дегельминтизации) заражена аскаридиями на 20,2% при ИИ — 8-22 экз , гетеракисами - на 13,8% и 4-12 экз , микстинвазия — 13,8% и 12-34 экз

После дегельминтизации в 14-месячном возрасте в дальнейшем вплоть до убоя птица не подвергается противопаразитарной обработке Поэтому зараженность их аскаридиями и гетеракисами постепенно нарастает и в 18-месячном возрасте ЭИ их аскаридиями составляет 19,3% при ИИ - 5-26 экз , гетеракисами — на 10,6% и 5-12 экз, микстинвазия - 10,6% и 10-38 экз

Таким образом, при напольном методе выращивания мясных цыплят они до убоя (за 42-45 дней) остаются практически свободными от аскаридий и гетераки-сов В цехе ремонтного молодняка зараженность птиц нематодами постепенно нарастает и пик инвазии наблюдается в 100-дневном возрасте В дальнейшем, вследствие проведенной дегельминтизации, зараженность ремонтного поголовья резко падает, но в 130-дневном возрасте птица оказывается умеренно инвазированной нематодами

Несмотря на проводимую дегельминтизацию птиц 135-140-дневного возраста, незначительное поголовье ремонтного стада попадает в цех родительского стада зараженной аскаридиями и гетеракисами Эта птица в дальнейшем является источником заражения родительского стада кур Несмотря на проводимые ежеквартальные дегельминтизации зараженность кур-несушек аскаридиями и гетеракисами остается на достаточно высоком уровне, что следует учитывать при проведении профилактических мероприятий против заболеваний вирусной и бактерийной этиологии

2.2.2.ДИНАМИКА МИКРОФЛОРЫ КИШЕЧНИКА У БРОЙЛЕРОВ В НОРМЕ И ПРИ НЕМАТОДОЗАХ

В нашем опыте у контрольных, агельминтных птиц 10-120-дневного возраста в 1г содержимого тощей кишки общее число стафилококков колебалось в пределах 2,8±0,27-4,2±0,44 logio, стрептококков - 3,1±0,17-3,8±0,32, кишечных палочек - 1,9±0 11 -2,4±0,22, клостридии - 0,40,06-0,12+0,07, протея - 0,1±0,07, лак-тобацилл - 4,5±0,17-4,94±0,48, бифидобактерий - 2,2±0,23-5,0±0,31, бактероидов -0,8±0,03-1,22±0,36, грибов - 0,12±0,06-0,14±0,08 log,0

В 1г содержимого слепой кишки у агельминтных птиц содержится стафилококков 4,2±0,27-4,8±0,27 logio, стрептококков - 3,7±0 26-4,1±0,18, кишечных папочек - 2,1±0,12-3,6±0,27, клостридий 0,1 ±0,06-0,12±0,07, протея - 0,12±0,06-0,16±0,06, лактобацилл - 5,4±0,31-8,32±0,31, бифидобактерий - 3 23±0,16-

6,44±0,48, бактероидов- l,23±0,12-l,66i0,44, грибов -0,28±0,09-0,32±0,06 logl0

Следовательно, наименьшее число бактерий содержится у птиц 10-дневного возраста, полностью стабилизируется видовой состав микробов у птиц 70-120-дневного возраста Причем, количество факультативной и индигенной микрофлоры в толстом отделе кишечника в 1,5-2 раза больше, чем в тонком отделе кишечника

У агельминтных птиц стафилококки представлены видами Staphylococcus albus, Staph aureus, Staph citreus, Staph saprophyticus, Staph cereus flavus, Staph epidermidis Все изолированные виды Staph saprophyticus, Staph epidermidis были непатогенны для белых мышей Из изученных II культур Staphaibus 45,5% были патогенны для белых мышей, Staph aureus — 72,7%, Staph citreus - 72,7%, Staph cereus flavus - 27,3%

В кишечнике агельминтных птиц стрептококки представлены видами Streptococcus faecium, Strfaecalis, Strcinereus, Strepidemicus, Str inulinaceus, Strjodophilus, Str pyogenes, Strviridans, Str citrovorus, Strhaemoliticus Виды Str faecium, Strfaecalis, Strcinereus, Str^odophylus, Str citrovorus были непатогенны для белых мышей, тогда как патогенность Strepidemicus составила 20%, Str inulinaceus - 20%, Str pyogenes - 83,3%, Strviridans - 33,3%, Strhaemoliticus -60%

Изолированные из кишечника агельминтных птиц Escherichia coli серогрунп 011), 015, 0101, 0141 были непатогенными для белых мышей, тогда как патогенность серогруппы 011 составила 33,3-75%, 078 - 33,3-50%, 055 - 33,3%

На основании полученных данных можно заключить, что у клинически здоровых агельминтных птиц общее число факультативной микрофлоры кишечника составляет в среднем от 6% до 2,5%, индигенной - 94-97,5% от общего числа бактерий Общее число патогенных стафилококков в кишечнике агельминтных птиц колеблется в пределах 20-30%, патогенных стрептококков - 18-32%, патогенных ссрогрупп Ecoli — 20-26% or общего числа их Причем, наибольшее число патогенных стафилококков, стрептококков и Е coli наблюдается у птиц 10-25-дневного возраста, умеренное число - у молодняка 40-70-дневного возраста, минимальное число - у птиц 100-130-дневного возраста

У птиц, инвазированных однократно по 300 экз яиц Ascaridia galli мы регистрировали стадийные изменения состава микрофлоры Так, на 15 сутки в тонком кишечнике больных птиц общее число стафилококков увеличилось по сравнению с показателями агельминтных цыплят в 4,2 раза, в слепой кишке - в 5,2 раза, стрептококков - соответственно в 2,6 и 2,9 раза, Е coli - в 1,8 и 1,8 раза, клостридий - в 4,2 и 1,8 раза, протея - в 16,4 и 4,2 раза, но количество лактобацилл уменьшилось в 1,8 и 2 раза, бифидобактерий - в 1,4 и 1,6 раза, бактероидов - в 1,8 и 1,5 раза В дальнейшем (на 30 и 60 сутки инвазии) в кишечнике больных птиц продолжало увеличиваться количество факультативной микрофлоры при значительном снижении индигенной микрофлоры Наиболее глубокими были изменения состава микрофлоры кишечника птиц на 60 сутки инвазии

В кишечнике больных аскаридиозом птиц патогенные стафилококки составили 35-40%, гемолитические стрептококки - 40-55%, патогенные серогруппы Е coli - 30-40% от общего числа их

Соотношение факультативной и индигенной микрофлоры больных аскари-

диозом птиц на 15 сутки инвазии составило 6 94%, на 30 сутки - 7,5 92,5, на 60 сутки - 8,0 92%

После освобождения от аскаридий количественный и качественный состав микрофлоры кишечника у переболевших птиц постепенно улучшался и на 60 сутки по многим показателям он достиг уровня контрольных, интактных птиц.

У больных гегеракидозом птиц также происходили существенные изменения количественного и качественного состава микрофлоры кишечника, но они были выражены несколько слабее, чем при аскаридиозе Так, у птиц, получивших однократно по 300 яиц Heterakis gallinarum, на 15-30-60 сутки болезни общее число стафилококков в тощей и слепой кишках увеличилось по сравнению с контролем в 2,2-2,2-1,8 раза, стрептококков — соответственно в 1,8-2,2-2,2, Escherichia coli - в 1,8-1,8-2,2 раза, протея — в 4,2-6,6-6,2 раза, клостридий — в 3,8-6,8-6,4 раза, но уменьшилось бифидобактерий в 1,8-2,8-1,8 раза, лактобацилл - в 1,9-2,2-2,8 раза, бактероидов - в 1,4-2,2-1,8 раза В кишечнике больных гетеракидозом птиц патогенные стафилококки составили 28-35%, гемолитические стрептококки — 35-50%, патогенные серогруппы Е coli - 28-35% от общего числа их Следует отметить, что у больных гетеракидозом птиц хотя существенно меняется существенный состав бактерий, увеличивается патогенность их, но видовой состав факультативной микрофлоры существенно е меняется

После освобождения от гетеракисов у птиц постепенно улучшается количественный и качественный состав микрофлоры тощей и слепой кишок и на 60 сутки лечения по многим показателям они достигают уровня контрольных, интактных птиц

Наиболее глубокими являются изменения количественного и качественного состава микрофлоры кишечника при инвазии птиц аскаридиями и гетеракисами (микстиивазия). Так, у птиц, получивших однократно по 150 яиц A galli+150 яиц Н gallinarum, на 15-30-60 сутки болезни количество стафилококков в кишечнике увеличилось в 5,2-6,8-4,2 раза, стрептококков - в 3,6-3,8-2,2 раза, кишечных палочек - в 2,2-2,8-2,2 раза, протея - в 18,6-24,4-22,8 раза, клостридий - в 4,8-24,8-15,6 раза, но уменьшилось число лактобацилл в 2,2-2,6-2,3 раза, бифидобактерий — в 1,8-2,6-2,2 раза, бактероидов — в 1,9-2,9-2,6 раза по сравнению с показателями контрольных, агельминтных птиц

У инвазированных аскаридиями и гетеракисами птиц видовой состав стафилококков, стрептококков существенно не отличался от показателей контрольных, агельминтных птиц Однако при микстинвазии в кишечнике птиц патогенные стафилококки составили 30-50%, гемолитические стрептококки - 35-55% от общего число их, что значительно больше, чем у контрольных птиц и у птиц, подвергнутых моноинвазии с Ascaridia galli и Heterakis gallinarum Что же касается Е coli, при микстинвазии мы находили тех же серогрупп кишечной палочки, что у контрольных птиц и птиц, подвергнутых к моноинвазии Однако при микстинвазии многие серогруппы Е coli при тех же дозах чаще вызывали гибель белых мышей

После дегельминтизации фенбендазолом количественный и качественный состав микрофлоры у переболевших микстинвазией птиц постепенно улучшался Однако на 60 сутки лечения и количественный и качественный состав микробов кишечных у переболевших микстинвазией птиц существенно отличался от показателей контрольных птиц, а также от таковых кур, подвергнутых к моноинвазией

аскаридиями и гетеракисами

На основании проведенных исследований можно заключить при моноинвазии и микстинвазии с Ascaridia galli и Heterakis gallmarum в кишечнике больных птиц резко увеличивается количественный состав факультативной микрофлоры -стафилококков, стрептококков^ Escherichia coli, клостридий, протея и грибов при одновременном усилении их патогенности Одновременно в кишечнике больных птиц уменьшается количественный состав индигенной микрофлоры — лактоба-цилл, бифидобактерий, бактероидов Отмеченные изменения количественного и качественного состава микрофлоры кишечника характерные для дисбактериоза Последний умеренно выражен при гетеракидозе, сильно - при аскаридиозе, а при микстинвазии аскаридиями и гетеракисами эти изменения являются более глубокими

После освобождения от нематод микрофлора кишечника постепенно улучшается У птиц, переболевших гетеракидозом, микрофлора кишечника восстанавливается до нормы на 160 сутки лечения, тогда как у птиц, переболевших аскари-диозом, некоторые показатели микрофлоры имеют отклонения от физиологической нормы У птиц, переболевших аскаридиозом и гетеракидозом (микстинвазия), к 60 дню после лечения все показатели качественного и количественного состава имеют существенные отклонения от нормы

2.2.3. ДИНАМИКА ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ, ОБЩЕГО БЕЛКА И ЕГО ФРАКЦИЙ, ФАГОЦИТАРНОЙ АКТИВНОСТИ НЕЙТРОФИЛОВ ПРИ НЕМАТОДОЗАХ ПТИЦ

Наряду с изучением динамики микрофлоры кишечника, результаты которых описаны в разделе 2 2 2, мы в опыте определили динамику гематологических показателей, общего белка и его фракций, фагоцитарной активности нейтрофилов к Escherichia coli

У контрольных, агельминтных птиц 120-дневного возраста концентрация гемоглобина колебалась в пределах 9,86±0,42-9,96±0,47 г%, эритроцитов -2,92±0,38-3,33±0,27 млн/мкл, лейкоцитов - 21,fttl,18-29,6±l,24 тыс/мкл, общего белка - 3,12±0,31-3,48+0,18 г%, альбуминов - 41,5±0,22-44,8±0,32%, альфа-глобулинов - 14,6±0,23-24,2±0,76%, бета-глобулинов - 14,1±0,18-16,8±0,41%, гамма-глобулинов - 18,6±0,37-26,5±1,56% В лейкоцитарной формуле базофилы составили 1,4±0,06-1,6±0,11 %, эозинофилы - 6,1±0,12-8,2±0,44%, сегментоядерные нейтрофилы - 26,8±2,42-29,1±3,12%, лимфоциты - 55,9±3,86-60,1±4,12%, моноциты - 4,8±0,56-5,6±0,32% Отмеченные показатели не выходят за границы физиологической нормы для птиц данной возрастной группы (А М Смирнов, П Я Конопелько и др , 1988)

У птиц, инвазнрованных по 300 яиц Ascaridia galli, регистрировали существенные изменения гематологических и биохимических показателей Так, на 1530-60 сутки инвазии у больных птиц концентрация гемоглобина была соответственно на 10,7-15,7-17,0%, эритроцитов - на 15,2-25,2-25,1%, общего белка - на 6,415,3-18,1%, альбуминов - на 6,8-14,7-22,3% меньше показателей контрольных, агельминтных птиц У больных аскаридиозом птиц наблюдали увеличение гамма-глобулинов на 6 8-38,-23,7%, лейкоцитов - на 61-81,3-64%, в том числе эозинофи-

лов - на 34,2-72,2-56,!%, лимфоцитов - на 8,5-3,7-7,5% при снижении сегментоя-дерных нейтрофилов на 23,6-22,4-24,3% по сравнению с контролем У больных птиц повысилась фагоцитарная активность нейтрофилов к Е coli на 24,5-44,745,1%, фагоцитарное число — на 53,5% и в 3,5-3,3 раза по сравнению с показателями агельминтных птиц

Следовательно, при инвазии аскаридиями у птиц угнетается формирование эритроцитов, падает концентрация гемоглобина, общего белка и альбуминов, резко увеличивается количество лейкоцитов, наступает лимфоцитоз, эозинофилия, повышается фагоцитарная активность нейтрофилов к бактериям, концентрация гло-булиновых фракций, особенно гамма-глобулинов Отмеченные изменения свидетельствуют, что при аскаридиозе в результате комплексного действия антигенов гельминтов и бактерий, интенсивно развившихся в кишечнике инвазированных птиц, наступает аллергическое состояние, в результате чего происходят иммунологические реакции

У птиц, получивших по 300 яиц Heterakis gallinarum, регистрируется такая же динамика изменения гематологических показателей, как при аскаридиозе, но они при гетеракидозе выражены несколько слабее Так, на 15-30-60 сутки инвазии с Н gallinarum концентрация гемоглобина уменьшилась соответственно на 7,8-9,812,5%, эритроцитов - на 6,1-14,1-14,4%, общего белка - на 1,3-11,0-15,1%, альбуминов - на 3,6-9,8-13,8%, но увеличилась концентрация гамма-глобулинов на 3,426,6-6,4%, лейкоцитов - на 24,4-22,7-51,2%, в том числе эозинофилов - на 3,1-1,87,6% У больных гетеракидозом птиц фагоцитарный индекс нейтрофилов к Е coli увеличился на 12,9-32-38,9%, фагоцитарное число — в 2-3,5*2,9 раза по сравнению с показателями контрольных, агельминтных птиц

Следовательно, при гетеракидозе также наблюдается иммунологическая реакция организма птиц на антигены нематод и бактерий, интенсивно развившихся в кишечнике больных птиц Однако иммунологическая реакция организма птиц при гетеракидозе выражена несколько слабее, чем при аскаридиозе

У птиц, подвергнутых одновременному заражению по 150 яиц A.galli+no 150 яиц H.gaHinarum (микстинвазия), наблюдаются более глубокие изменения гематологических и биохимических показателей, чем при моноинвазии Так, на 1530-60 сутки микстинвазии у больных птиц концентрация гемоглобина уменьшилась по сравнению с контролем соответственно на 11,8-11,3-17,6%, эритроцитов -на 11,6-33,1-33,3%, общего белка - на 8,3-11,1-18,4%, альбуминов - на 8,6-14,025% но увеличилось число лейкоцитов в 1,7-1,97-2,1 раза, в том числе эозинофилов - в 1,4-2,1-1,8 раза, лимфоцитов - в 1,1-1,05-1,1 раза, гамма-глобулинов - на 18,0-45,7-26,9% по сравнению с показателями контрольных, агельминтных птиц У больных птиц фагоцитарная активность нейтрофилов к Е coli на 15-30-60 сутки инвазии была на 23,4-43,0-45,5%, фагоцитарное число - в 1,6-3,7-3,6 раза больше показателей контрольных птиц

Следовательно, при микстинвазии аскаридиями и гетеракисами происходят более глубокие изменения функций органов и систем, наблюдается интенсивная иммунологическая реакция организма хозяина чем при моноинвазии этими нематодами

2.2 4.ДИНАМИКА ФОРМИРОВАНИЯ ПОСТВАКЦИНАЛЬНОГО ИММУНИТЕТА У КУР ПРОТИВ БОЛЕЗНИ НЬЮКАСЛА НА ФОНЕ АСКАРИДИОЗНОЙ И ГЕТЕРАКИДОЗНОЙ ИНВАЗИИ

Влияние аскаридиозной инвазии на выработку специфических антител против болезни Ньюкасла при вакцинации вакциной «Бор-74 ВГНКИ» изучил С А Шишкарев (2006) По его данным, при инвазии аскаридиями в кишечнике птиц возникает дисбактериоз с преобладанием здесь патогенных стафилококков, стрептококков, Escherichia coli, клостридий, протея и грибов при значительном снижении представителей нормальной микрофлоры - бифидобактерий, лакгобацилл и бактероидов В условиях дисбактериоза кишечника у больных аскаридиозом птиц при вакцинации против болезни Ньюкасла значительно снижается напряженность иммунитета против этой вирусной болезни

В системе ОАО «Ивановский бройлер» у ремонтного молодняка и маточного стада наблюдается смешанная инвазия - аскаридиоз+гетеракидоз В связи с этим мы в одном опыте решили изучить влияние мнкстинвазии этими нематодами на интенсивность выработки специфических антител после вакцинации птиц вакциной «Бор-74 ВГНКИ» Для чего в птичнике, где содержится ремонтный молодняк, провели опыт Из общего поголовья 10 тысяч голов выделили в отдельную секцию 500 голов, которым в 10-дневном возрасге скормили в среднем по 150 яиц Ascaridia galli+no 150 яиц Heterakis gallinaruin на голову (микстинвазия) Остальное поголовье (9500 голов) содержалось в этом же помещении, они не имели прямого контакта с опытной группой

Средний титр антител к болезни Ньюкасла в сыворотке крови (пассивный иммунитет) до вакцинации и до заражения в 10-дневном возрасте у опытных и контрольных цыплят составил 1 13 — 1 14 (с колебаниями от 1 до 1 32) В 23-дневном возрасте птиц опытных групп вакцинировали против болезни Ньюкасла вакциной «Бор-74 ВГНКИ»

Через 10 дней после вакцинации (в 33-дневном возрасте) средний титр антител против болезни Ньюкасла у контрольных, свободных от нематод птиц составил 1 56 (колебания от 1 16 до 1 256) У птиц опытной группы (спустя 13 дней мнкстинвазии нематодами) средний титр антител против болезни Ньюкасла составил 1 26 (колебания от 1 8 до 1 64), что в 2,2 раза ниже показателей контрольных, агельминтных птиц

В 80-дневном возрасте птиц опытной и контрольной групп ревакцинировали против болезни Ньюкасла, спустя 20 дней (в 100-дневном возрасте) у них исследовали сыворотку крови для определения титра антител У контрольных, свободных от нематод птиц средний титр антител к болезни Ньюкасла составил I 82 (колебания 1 32 до 1 512) У опытных, ннвазированных аскаридиями и гетеракисами птиц, средний титр антител составил 1 28 (колебания от 1 8 до 1 64), что в 2,9 раза ниже показателей контрольных птиц

В 100-дневном возрасте птиц опытной группы дегельминтизировали фен-бендазолом (по 30 мг/кг по ДВ однократно с кормом) В 120-дневном возрасте птиц опытной и контрольной групп повторно ревакцинировали против болезни Ньюкасла, спустя 20 дней (в 140-дневном возрасте) исследовали сыворотки крови на наличие специфических антител У контрольных птиц средний титр антител

против болезни Ньюкасла составил I 88 (колебания от 1 16 до 1 512) У опытных птиц средний титр антител был 1 58 (колебания от 1 16 до 1 256), что в 1,52 раза ниже показателей интактной группы

Таким образом, при микстинвазии аскаридиями и гетеракисами у птиц в 1,52,9 раза снижается интенсивность выработки специфических антител на вакцинный вирус против болезни Ньюкасла Дегельминтизация птиц фенбендазолом за 20 дней до ревакцинации против болезни Ньюкасла значительно улучшает иммунную систему организма птиц, что позволяет создать иммунное стадо птиц против этой вирусной болезни

2.2 5.ДИНАМИКА ФОРМИРОВАНИЯ ПОСТВАКЦИНАЛЬНОГО ИММУНИТЕТА У КУР ПРОТИВ БОЛЕЗНИ НЬЮКАСЛА НА ФОНЕ ПРИМЕНЕНИЯ КОКЦИДИОСТАТИКОВ И ПРОТИВОЭЙМЕРИОЗНЫХ ВАКЦИН

В ОАО «Ивановский бройлер» для профилактики эймериоза применяются два подхода Во-первых, бройлерной птице, которую в течение 42-45 дней выращивают напольным методом, с 10 по 30 сутки дают с кормом в профилактической дозе кокцидиостатики В конце выращивания они достигают массы тела в среднем 1,8-2,1 кг Такой метод полностью обеспечивает профилактику эймериозов у молодняка Во-вторых, ремонтному молодняку в 6-7-дневном возрасте с кормом дают вакцину, предложенную Всероссийским научно-исследовательским институтом птицеводства (гСанкт-Петербург), содержащего эймерий четырех видов - Е tenella, Eacervulina, Е maxima, Е necatrix Кроме того, в 19-, 29-, 39-, 49-, 59-, 69-, 120-дневном возрасте им дают с кормом кокцидиостатики в лечебной дозе Вышеуказанная система полностью обеспечивает благополучие ОАО «Ивановский бройлер» в отношении эймериозов

В литературе нет сведений о влиянии кокцидиостатиков и противоэймериоз-ных вакцин на интенсивность выработки специфических антител при вакцинации птиц против болезни Ньюкасла В связи с этим в двух сериях опытов мы изучили влияние противоэймериозных вакцин и препаратов на выработку иммунитета против болезни Ньюкасла

В опытах птице первых групп (110846 голов) выпаивали в 9-дневном возрасте культуру эймерий из штамма Рагасох (Израиль), вторых групп (110846 голов) - с кормом давали культуру эймерий (ВНИВИП), третьих групп (107628 голов) - с 8-до 45-дневного возраста ежедневно с кормом давали кокцидиостатики в профилактической дозе Птица четвертой группы (500 голов) кокцидиостатики не получала и она не вакцинировалась против эймериозов, она содержалась в клетках, что исключало спонтанное заражение их эймериями

Птиц всех четырех групп иммунизировали против болезни Ньюкасла вакциной «Бор-74 ВГНКИ» в 20-дневном возрасте, ревакцинировали в 80- и 120-дневном возрасте Напряженность иммунитета определяли в 10-дневном (пассивный иммунитет), в 40-, 100- и 140-дневном возрасте, или через 20 дней аппликации вирус-вакцины

Во всех группах средний титр антител к болезни Ньюкасла (пассивный иммунитет) колебался в пределах 1 7,7-1 11,2 В контрольной группе, где птица не получала кокцидиостатики и не вакцинировалась против эймериозов, в течение

всего опыта не выявили ни одною случая клинического проявления эймериозов Среднии титр антител к болезни Ньюкасла у птиц данной группы в 40-дневном возрасте (через 20 дней первой вакцинации) составил 1 62,8, в 100-дневном возрасте (через 20 дней после первой ревакцинации) - 1 168, в 140-дневном возрасте (через20 дней повторной ревакцинации) - 1 158 (табл 16, рис 24) Следовательно, вакцина «Бор-74 ВГНКИ» при введении свободной от эймерий птице формирует достаточно высокой напряженности иммунитет против болезни Ньюкасла

У птицы, иммунизированной противоэймериозной вакциной Рагасох, 40-дневном возрасте (через 20 дней после аппликации вакцины «Бор-74 ВГНКИ») средний титр антител составил 1 58,2, в 100-дневном возрасте (через 20 дней после первой ревакцинации) - 1 176,6, в 140-дневном возрасте (через 20 дней после второй ревакцинации) - 1 148,4 (табл 16, рис 24) Следовательно, вакцинация птиц против болезни Ньюкасла на фоне применения противоэймериозной вакцины Рагасох позволяет создать достаточно напряженный иммунитет против вируса, обеспечивающей благополучие хозяйства против этой болезни Хотя следует отметить, что при применении противоэймериозной вакцины Рагасох несколько снижается интенсивность выработки специфических антител к вакцинному вирусу

Иммунизированные цыплята против эймериозов вакциной ВНИВИП спустя 20 дней после первой аппликации вакцины «Бор-74 ВГНКИ» имели средний титр антител против болезни Ньюкасла 1 34,3, в 100-дневном возрасте (через 20 дней после первой ревакцинации) - 1 104,2, в 140-дневном возрасте (через 20 дней после второй ревакцинации) — 1 118,2 (табл 16, рис 24) Следовательно, при вакцинации птиц против болезни Ньюкасла на фоне применения культур эймерий из ВНИВИП вырабатывается специфические антитела против вакцинного вируса, но напряженность иммунитета при этом несколько ниже, чем при применении вакцины Рагасох

Птица, получавшая с кормом кокцидиостатики в профилактической дозе, в 40-дневном возрасте (через 20 дней после вакцинации против болезни Ньюкасла) имела средний титр антител против болезни Ньюкасла 1 30,6, в 100-дневном возрасте (через 20 дней после первой ревакцинации) - 1 84,8, в 140-дневном возрасте (через 20 дней после второй ревакцинации) - 1 108,4, что подтверждает наличие иммунитета, но напряженность его несколько ниже, чем при использовании проти-воэймериозных вакцин

Анализ полученных данных позволяет заключить, что применение кокци-диостатиков для профилактики эймериозов несколько снижает интенсивность выработки специфических антител после аппликации вирус-вакцин Использование противоэймериозной вакцины Рагасох действует также, но у птицы приобретается достаточно напряженный иммунитет к эймериозам и болезни Ньюкасла Вакцина ВНИВИП тоже снижает интенсивность выработки антител на вирус-вакцины, однако создает противовирусный иммунитет, способный защитить хозяйство от болезни Ньюкасла

2.2.6. РАЗРАБОТКА СИСТЕМЫ ВЕТЕРИНАРНЫХ ЛЕЧЕБНО-ПРОФИЛАКТИЧЕСКИХ МЕРОПРИЯТИЙ ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ БРОЙЛЕРОВ, РЕМОНТНОГО МОЛОДНЯКА И РОДИТЕЛЬСКОГО СТАДА КУР В ОАО «ИВАНОВСКИЙ БРОЙЛЕР»

Учитывая возможность проявления заболеваний вирусной, бактерийной, паразитарной этиологии, а также незаразных болезней, мы в течение 15 лет разработали систему лечебно-профилактических мероприятий в цехе откорма бройлеров (1-45 дней), в цехе ремонтного молодняка (1-140 дней) и в цехе родительского стада Ниже приводим комплекс мероприятий, разработанных и внедренных нами в ОАО «Ивановский бройлер»

Цех откорма бройлеров. В первые 6 дней выращивания бройлеров с целью профилактики бактерийных заболеваний цыплятам выпаивают фторхинолоновые препараты в дозе 0,5-1 мл на 1л воды, дают комплексный поливитаминный препарат по 0,5-1 мл на 1л воды для стимуляции метаболизма

В 7-дневном возрасте цыплят вакцинируют против ИББ вакциной из штамма «БГ» путем выпойки. С 8 по 17 сутки им ежедневно дают с кормом ацидофилин по 1-2г на голову А с 10 по 14 сутки для профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта и дыхательной системы им дают с кормом противобактерийные препараты (нитрофураны, антибиотики, сульфаниламиды)

В 13-14 сутки птиц вакцинируют против болезни Ньюкасла вакциной «Бор-74 ВГНКИ» путем выпойки, иногда аэрозольно Одновременно бройлерам выпаивают в дозе 0,5-1мл на 1л воды комплексный витаминный препарат

С 20 по 23 сутки для профилактики бактерийных заболеваний птице выпаивают фторхинолоновые препараты по 0,5-1 мл на 1л воды С 15 по 40 сутки птица с кормом или водой получает антитоксические препараты (молочная кислота, лимонная кислота, натрий гидрокарбонат)

Для профилактики эймериозов с 8 по 35 сутки птица с кормом получает кок-цидиостатики с профилактической целью Следует отметить, что для избежания создания устойчивых штаммов эймерий, каждые 4 месяца меняются кок-цидиостатики

Еженедельно в цехе выращивания бройлеров проводится аэрозольная дезинфекция по инструкции Здесь же еженедельно проводятся дератизация, используют инсектоакарициды

Вышеописанная система лечебно-профилактических мероприятий полностью профилактирует возникновение заболеваний инфекционной и инвазионной этиологии, а также профилактирует внутренние незаразные болезни При использовании данной системы лечебно-профилактических мероприятий сохранность бройлеров составляет 93,7-94,4%, среднесуточный прирост - 39,8г, средняя живая масса их в 42-45-дневном возрасте достигает 1,784кг, выход мяса - 72,8%

Цех ремонтного молодняка В суточном возрасте цыплят для профилактики инфекционного бронхита вакцинируют вакциной из штамма Н-120 (спрей, крупнокапельным методом) С 1 по 7 сутки им выпаивают фторхинолоновые препараты (по 0,5-1 мл на 1л воды) для профилактики бактерийных заболеваний, комплексный витаминный препарат (по 0,5-1 мл на 1л воды) — для улучшения метаболизма, против стресса

С 7 по 30 сутки птице с кормом дают ацидофилин (по 1-2г на голову), аскорбиновую кислоту (по 50-100г на 1000л воды) — для профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта и дыхательной системы, улучшения метаболизма

В 6-7-дневном возрасте птиц вакцинируют против эймериозов вакциной из штамма ВНИВИП (Санкт-Петербург), иногда вакциной Рагасох из Израиля В дальнейшем три раза в месяц дают кокцидиостатики в лечебной дозе

В 9-дневном возрасте цыплят вакцинируют вакциной из штамма «БГ» против инфекционной бурсальной болезни (выпойка) в 16-18-дневном возрасте - против болезни Ньюкасла вакциной «Бор-74 ВГНКИ» (аэрозолыю или выпойка), в 30-дневном возрасте - против инфекционного бронхита (спрей, крупнокапельным методом) В 45-50-дневном возрасте птиц ревакцинируют против болезни Ньюкасла (аэрозолыю, выпойка), в 55-60-дневном возрасте - вакцинируют против реовирус-ной инфекции инактивированной вакциной ВНИИЗЖ (внутримышечно), в 75-80-дневном возрасте — вакцинируют против инфекционного энцефаломиелита (выпойка), в 110-120-дневном возрасте - вакцинируют против болезни Ньюкасла, инфекционного бронхита, инфекционной бурсальной болезни, реовирусной инфекции, синдрома снижения яйценоскости

Кроме вышеуказанных мероприятий в цехе ремонтного молодняка еженедельно проводят аэрозольную дезинфекцию, дератизацию, используют инсектициды и акарициды

Проведение вышеуказанных мероприятий полностью профилактирует появление паразитарных, бактерийных и вирусных заболеваний Сохранность ремонтного молодняка составляет 94,4%, деловой выход маточного стада - 86%

Цех родительского стада. Молодняк переводят в цех родительского стада в 135-140-дневном возрасте после дегельминтизации и комплексной вакцинации их против болезни Ньюкасла, инфекционного бронхита, инфекционной бурсальной болезни, реовирусной инфекции и синдрома снижения яйценоскости В дальнейшем в 120- и 180-диевном возрасте и далее каждые 2 месяца исследуют птиц на пулло-роз-тиф в ККРНГА В 140-дневном возрасте в течение трех дней птице дают с кормом кокцидиостатики в лечебной дозе В процессе содержания в цехе родительского стада птица ежемесячно (по 3 дня) получает антимикробные препараты (нитрофу-раны, антибиотики, сульфаниламиды) с кормом или водой, ежемесячно - тилан, тиамутин с водой для для профилактики микоплазмозов Кроме того, в цехе родительского стада еженедельно проводят дезинфекцию и дезинсекцию в присутствии птицы (аэрозольно), дератизацию

Птиц дегельминтизируют один раз в квартал с целью профилактики аскари-диоза и гетеракидоза (фенбендазол, тетрамизол, пиперазин)

Используемая система лечебно-профилактических мероприятий обеспечивает профилактику вирусных, бактерийных и паразитарных заболеваний Средняя масса кур-несушек составляет 3,32-3,34кг, средняя яйценоскость кур-несушек за год - 247248 яиц, оплодотворенность яиц - 94-94,3%, выводимость цыплят - 82,7-83,3%

Таким образом, разработанная нами система лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий полностью обеспечивает благополучие ОАО «Ивановский бройлер» в отношении вирусных, бактерийных, грибковых и инвазионных заболеваний, что позволяет получать высококачественную относительно дешевую продукцию

ВЫВОДЫ

1 На бройлерных птицефабриках центрального района Нечерноземной зоны РФ при напольном выращивании цыплята ]-45-дневного возраста практически свободны от аскаридий и гетеракисов При напольном выращивании ремонтный молодняк начинает интенсивно заражаться аскаридиями и гетеракисами с 50-дневного возраста, пик инвазии этими нематодами наблюдается у птиц 100-дневного возраста (ЭИ аскаридиями=22,8%, гетеракисами - 13,1%)

В цехе родительского стада при напольном содержании куры-несушк.1, несмотря на проводимые ежеквартальные дегельминтизации, умеренно заражены нематодами (ЭИ аскаридиями - 20,2%, гетеракисами - 13,8%) При напольном содержании птиц аскаридиоз, гетеракидоз протекают чаще как микстинвазия

2 При аскаридиозе, гетеракидозе и микстинвазии в кишечнике птиц интенсивно развиваются представители факультативной микрофлоры (патогенные стафилококки, стрептококки, Escherichia coli, протей, клостридии, грибы) при одновременном значительном снижении индигенной микрофлоры (лактобациллы, би-фидобактерии, бактероиды и др ), которые характерны для дисбактериоза При гетеракидозе дисбактериоз кишечника выражен умеренно, при аскаридиозе — сильно, при микстинвазии - более интенсивно

3 После освобождения от нематод постепенно улучшается количественный и качественный состав микрофлоры кишечника У птиц, переболевших гетераки-дозом, состав микрофлоры кишечника восстанавливается до нормы на 60 сутки, тогда как у птиц, переболевших аскаридиозом, к этому сроку многие показатели состава микрофлоры не достигают физиологической нормы У птиц, переболевших микстинвазией, на 60 сутки лечения состав микрофлоры кишечника имеет существенные отклонения от нормы

4 При аскаридиозе, гетеракидозе и микстинвазии птиц снижается концентрация гемоглобина, эритроцитов, общего белка, альбуминов, резко увеличивается количество лейкоцитов, наступает эозинофилия, увеличивается концентрация гамма-глобулинов, возрастает фагоцитарная активность нейтрофилов Отмеченные изменения сильно выражены при аскаридиозе, несколько слабее — при гетеракидозе Отмеченные изменения состава морфологического и биохимического состава крови свидетельствуют об аллергическом состоянии и интенсивно протекающей в организме инвазированных птиц иммунологической перестройке

5 При вакцинации птиц против болезни Ньюкасла на фоне применения про-тивоэймериозных вакцин и кокцидиостатиков уменьшается интенсивность выработки специфических антител против вакцинного вируса, что необходимо учитывать при использовании вирус-вакцин на птицефабриках

6 При вакцинации птиц против болезни Ньюкасла на фоне микстинвазии аскаридиями и гетеракисами уменьшается интенсивность выработки специфических антител против вакцинного вируса, что необходимо учитывать при проведении иммунизации птиц

7 На птицефабриках страны в целях создания высокоиммунного стада против заболеваний вирусной этиологии необходимо за 20-30 дней до применения вирус-вакцин прекратить применение кокцидиостатиков, противоэймериозных вакцин, птиц дегельминтизировать против нематодозов, что позволяет создать высокоиммунное стадо птиц против вирусных болезней

8 Разработана и внедрена в ОАО «Ивановский бройлер» система лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий, обеспечивающая устойчивое благополучие хозяйства в отношении заболеваний вирусной и паразитарной этиологии, позволяющая повысить продуктивность кур-несушек до 247,3 яиц в год, оп-лодотворенность яиц - 94,3%, выводимость цыплят - 83,3%, сохранность бройлеров - 94,4%, среднесуточные приросты бройлеров - 42,2г, выход мяса у бройлеров - 72,8%, себестоимость 1 кг птичьего мяса - 50-51 рубля, рентабельность производства птичьего мяса - 18%

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

На основании собственных исследований разработана и внедрена в производство

1 В птицеводческих хозяйствах с напольным содержанием птиц, неблагополучных по аскаридиозу и гетеракидозу, где применяются противоэймериозные вакцины, кокцидиостатики, в целях создания высокоиммунного стада против вирусных заболеваний необходимо за 20-30 дней до применения вирус-вакцин птиц дегельминтизировать против нематодозов, прекратить дачу кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин

2 Разработана и внедрена система лечебно-профилактических мероприятий в ОАО «Ивановский бройлер», обеспечивающая благополучие хозяйства в отношении заболеваний вирусной, бактерийной, грибковой, паразитарной этиологии и незаразных болезней, что позволяет получать от кур-несушек до 247,3 яиц в год, оп-лодотворенность яиц - 94,3%, выводимость цыплят - 83,3%, сохранность бройлеров - 94,4%, среднесуточные приросты бройлеров - 42,2 г, выход мяса бройлеров — 72,8%, себестоимость 1 кг птичьего мяса - 50-51 рубля, рентабельность производства птичьего мяса — 18%

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Гудкова А.Ю., Мухаммедов З.Р., Шишкарев С.А , Кузьмичева О.В., Вяткин А П. Влияние аскаридиозной инвазии на формирование иммунитета к болезни Ньюкасла// Труды ВИГИС. М , 2006, т.44, С.63-66.

2. Петров Ю.Ф., Вяткин А.П., Мухаммедов З.Р., Гудкова А.Ю., Кузьмичева О.В. Формирование иммунитета против ньюкаслской болезни на фоне применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин// Уч записки Казанской ГАВМ. Казань, 2006, том 187, С.96-99.

3 Петров Ю Ф, Вяткин А П , Вяткин М А , Гудкова А Ю Система лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий в ОАО «Ивановский бройлер»// Мат науч конф ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА» Иваново, 2007, том1, С 26-28

4 Вяткин АП, Вяткин МА, Гудкова АЮ, Петров ЮФ, Мухаммедов ЗР, Шишкарев С А , Кузьмичева О В Эффективность лечебно-профилактических мероприятий в цехе ремонтного молодняка и родительского стада кур в ОАО

«Ивановский бройлер»// Мат науч конф ВОГ «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» М , 2007, выл 8, С 59-60

5 Вяткин АП, Вяткин МА, Гудкова АЮ, Петров ЮФ, Мухаммедов ЗР, Шишкарев С А , Кузьмичева О В Эффективность лечебно-профилактических мероприятий при выращивании бройлеров в ОАО «Ивановский бройлер»// Мат науч конф ВОГ «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» М, 2007, вып 8, С 61-62

6. Петров Ю.Ф., Вяткин А.П., Мухаммедов З.Р., Гудкова А Ю., Шишкарев С.А., Кузьмичева О.В. Формирование иммунитета против ньюкаслской болезни// Ж-л «Птицеводство». М., 2007, №3. С.ЗЗ.

7. Гудкова А.Ю , Вяткин А.П., Мухаммедов З.Р., Шншкарсв С.А., Кузьмичева О.В. Формирование иммунитета против ньюкаслской болезни при немато-дозах птиц// Ж-л «Труды Кубанского ГАУ». Краснодар, 2007, вып.2(6), С. 153-155.

8. Петров Ю.Ф., Гудкова А.Ю., Мухаммедов З.Р., Вяткин А.П. Кузьмичева О.В. Микрофлора кишечника у кур в норме и при гельминтозах// Ж-л «Ветеринарный врач». Казань, 2007, № 2, С._.

одписапо в печать 03 12 2007 Формат издания 60\84 1/16 Печ л 1,25 Уел п л 1,16 Тираж J00 экз Заказ 482

Полиграфический отдел ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА имени академика Д К Беляева» 153012, г Иваново >л Советская, 45

Содержание диссертации, кандидата ветеринарных наук, Вяткин, Александр Павлович

ВВЕДЕНИЕ.:.

1.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Ы.Гетеракидоз кур.

1.2. Аскаридиоз кур.

1.3 .Динамика микрофлоры кишечника птиц при аскаридиозе и гетеракидозе.

1.4.Методы и средства дегельминтизации птиц при гетеракидозе и аскаридиозе.

1.5.Иммунопрофилактика болезни Ньюкасла на птицефабриках Российской Федерации.23 2.СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.2.1. ОСОБЕННОСТИ ЭПИЗООТОЛОГИИ АСКАРИДИОЗА И ГЕТЕРАКИДОЗА В ОАО «ИВАНОВСКИЙ БРОЙЛЕР».

2.2.2.ДИНАМИКА МИКРОФЛОРЫ КИШЕЧНИКА У БРОЙЛЕРОВ В НОРМЕ И ПРИ НЕМАТОДОЗАХ.

2.2.3. ДИНАМИКА ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ,' ОБЩЕГО БЕЖА И ЕГО ФРАКЦИЙ, ФАГОЦИТАРНОЙ АКТИВНОСТИ НЕЙТРОФИЛОВ ПРИ НЕМАТОДОЗАХ ПТИЦ.

2.2.4.ДИНАМИКА ФОРМИРОВАНИЯ ПОСТВАКЦИНАЛЬНОГО ИММУНИТЕТА У КУР ПРОТИВ БОЛЕЗНИ НЬЮКАСЛА НА ФОНЕ АСКАРИДИОЗНОЙ И ГЕТЕРАКИДОЗНОЙ ИНВАЗИИ.

2.2.5.ДИНАМИКА ФОРМИРОВАНИЯ ПОСТВАКЦИНАЛЬНОГО ИММУНИТЕТА У КУР ПРОТИВ БОЛЕЗНИ НЬЮКАСЛА НА ФОНЕ ПРИМЕНЕНИЯ КОКЦИДИОСТАТИКОВ И ПРОТИВОЭЙМЕРИОЗНЫХ ВАКЦИН.

2.2.6. РАЗРАБОТКА СИСТЕМЫ ВЕТЕРИНАРНЫХ ЛЕЧЕБНО-ПРОФИЛАКТИЧЕСКИХ

МЕРОПРИЯТИЙ ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ БРОЙЛЕРОВ, РЕМОНТНОГО МОЛОДНЯКА И

РОДИТЕЛЬСКОГО СТАДА КУР В ОАО «ИВАНОВСКИЙ БРОЙЛЕР».

Введение Диссертация по биологии, на тему "Функционирование паразитарной системы в организме птиц и организация противоэпизоотических мероприятий в бройлерных птицефабриках Центрального района Нечерноземной зоны Российской Федерации"

Актуальность темы. При напольном содержании на глубокой несменяемой подстилке аскаридиоз и гетеракидоз имеют широкое распространение и наносят существенные экономические потери птицеводческим хозяйствам. Следует отметить, что эти гельминтозы в хозяйствах протекают как микстинвазия (Ж.А. Агапович, 1978; Ж.А. Агапович, М.С. Рустамова, 1986; А.Г. Воробушков, 1989; Е.Ю. Давидова, 2005; С.А. Шишкарев, 2006 и др.)

Работами Ю.Ф. Петрова (1980-2006), Д.И. Панасюка (1984), А.Г. Воробушкова (1989), А.Ю. Гудковой (1999), В.П. Иванюка (2006), С.А. Шишкарева (2006) и других установлено, что под влиянием паразитов (гельминтов, членистоногих, простейших) в организме хозяина формируется паразитоценоз, сочленами которого являются гельминты на различных стадиях развития, патогенные простейшие, членистоногие, бактерии и грибы, в результате чего возникают ассоциативные гельминто-протозойно-бактерийные болезни. При этом у инвазированных паразитами животных возникает дисбактериоз желудочно-кишечного тракта. Однако данный вопрос у птиц при микстинвазиях практически не изучен.

Известно, что при микстинвазии гельминтами существенно снижается резистентность организма птиц (А.Г. Воробушков, Ю.Ф. Петров, 1983; А.Г. Воробушков, 1989; С.А. Шишкарев, 2006 и др.). Однако характер иммунологической перестройки организма у кур к болезни Ньюкасла после вакцинации на фоне микстинвазии аскаридиями и гетеракисами не изучен.

На птицефабриках Российской Федерации для профилактики эймериозов применяются вакцины Рагасох из Израиля и из штамма ВНИВИП, а также кокцидиостатики. Однако вопрос формирования поствакциналыюго иммунитета против болезни Ньюкасла на фоне применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин практически не изучен.

Цели и задачи исследований. Целью нашей работы являлась разработка оптимальной системы лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий на птицефабриках с учетом неблагополучия их по нематодозам и эймериозам. Для чего были поставлены следующие задачи:

-изучить динамику аскаридиоза и гетеракидоза на бройлерных птицефабриках центрального района Нечерноземной зоны РФ;

-изучить динамику микрофлоры кишечника у агельминтных птиц и при моноинвазии и микстинвазии их аскаридиями и гетеракисами;

-изучить характер морфологического и биохимического состава крови птиц при гельминтозах;

-определить влияние микстинвазии аскаридиями и гетеракисами на формирование поствакцинального иммунитета против болезни Ньюкасла;

-определить динамику формирования иммунитета против болезни Ньюкасла на фоне применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин;

-разработать систему лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий для цеха выращивания мясных цыплят, в цехе ремонтного молодняка, в цехе родительского стада в условиях применения в хозяйстве антгельминтиков, кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин.

Научная новизна. Установлено, что при выращивании мясных цыплят на глубокой несменяемой подстилке в течение 42-45 дней они практически остаются свободными от аскаридий и гетеракисов. В цехе ремонтного стада аскаридиоз и гетеракидоз впервые выявляются у птиц с 50-дневного возраста. В дальнейшем зараженность птиц возрастает и достигает своего максимального уровня к 100-110-дневному возрасту. В цехе родительского стада зараженность птиц нематодами остается на довольно высоком (ЭИ=10-20%) уровне, причем заболевание протекает как микстинвазия.

Выявлено, что при моноинвазии и микстинвазии аскаридиями и гетеракисами в кишечнике птиц возникает дисбактериоз, который умеренно выражен при гетеракидозе, несколько глубже - при аскаридиозе и сильно -1 при микстинвазии. При моноинвазии и микстинвазии нематодами организм птиц находится в состоянии сенсибилизации и иммунологической реакции в ответ на действие антигенов нематод и бактерий, интенсивно развившихся в кишечнике инвазированных птиц.

Установлено, что у птиц, вакцинированных против болезни Ньюкасла на фоне микстинвазии нематодами, применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин, существенно снижается интенсивность выработки специфических антител против вакцинного вируса. Для создания высокоиммунного стада кур против вирусных болезней в хозяйствах', неблагополучных по нематодозам и эймериозам, птиц необходимо дегельминтизировать, прекратить дачу им кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин за 20-30 дней до применения вирус-вакцин.

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и одобрены на: научных конференциях ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» (Москва, 2004-2007), на научных конференциях ученых ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА» (2004-2006), конференции ФГОУ ВПО «Казанская ГАВМ» (2006), ФГОУ ВПО «Кубанский ГАУ» (2006), конференции ГНУ ВНИВИП (Санкт-Петербург, 2007). Основные положения, выносимые на защиту: -сезонная и возрастная динамика аскаридиоза и гетеракидоза птиц в ОАО «Ивановский бройлер»;

-динамика микрофлоры кишечника птиц при моноинвазии и микстинвазии аскаридиями и гетеракисами, а также после освобождения их от нематод;

-динамика гематологических и некоторых биохимических показателей у птиц при моноинвазии и микстинвазии аскаридиями и гетеракисами, а также после дегельминтизации;

-влияние микстинвазии на формирование иммунитета против болезни Ньюкасла;

-влияние применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин на формирование иммунитета против болезни Ньюкасла;

Публикации. По материалам исследований опубликованы 8 работ, в том числе 4 работы в изданиях, регламентированных ВАК РФ для докторских и кандидатских диссертаций, которые отражают основное содержание диссертации.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 123 страницах компьютерного текста, содержит 16 таблиц, 24 рисунка. Состоит из введения, обзора литературы, 6 разделов собственных исследований, заключения, выводов, практических предложений. Литература включает 169 источников, в том числе 140 отечественных, 29 иностранных авторов.

Заключение Диссертация по теме "Паразитология", Вяткин, Александр Павлович

ВЫВОДЫ

1.Ha бройлерных птицефабриках центрального района Нечерноземной зоны РФ при напольном выращивании цыплята 1-45-дневного возраста практически свободны от аскаридий и гетеракисов. При напольном выращивании ремонтный молодняк начинает интенсивно заражаться аскаридиями и гетеракисами с 50-дневного возраста, пик инвазии этими нематодами наблюдается у птиц 100-дневного возраста (ЭИ аскаридиями=22,8%, гетеракисами - 13,1%).

В цехе родительского стада при напольном содержании куры-несушки, несмотря на проводимые ежеквартальные дегельминтизации, умеренно заражены нематодами (ЭИ аскаридиями - 20,2%, гетеракисами -13,8%). При напольном содержании птиц аскаридиоз, гетеракидоз протекают чаще как микстинвазия.

2.При аскаридиозе, гетеракидозе и микстинвазии в кишечнике птиц интенсивно развиваются представители факультативной микрофлоры (патогенные стафилококки, стрептококки, Escherichia coli, протей, клостридии, грибы) при одновременном значительном снижении индигенной микрофлоры (лактобациллы, бифидобактерии, бактероиды и др.), которые характерны для дисбактериоза. При гетеракидозе дисбактериоз кишечника выражен умеренно, при аскаридиозе - сильно, при микстинвазии - более интенсивно.

3.После освобождения от нематод постепенно улучшается количественный и качественный состав микрофлоры кишечника. У птиц, переболевших гетеракидозом, состав микрофлоры кишечника восстанавливается до нормы на 60 сутки, тогда как у птиц, переболевших аскаридиозом, к этому сроку многие показатели состава микрофлоры не достигают физиологической нормы. У птиц, переболевших микстинвазией, на 60 сутки лечения состав микрофлоры кишечника имеет существенные отклонения от нормы.

4.При аскаридиозе, гетеракидозе и микстинвазии птиц снижается концентрация гемоглобина, эритроцитов, общего белка, альбуминов, резко увеличивается количество лейкоцитов, наступает эозинофилия, увеличивается концентрация гамма-глобулинов, возрастает фагоцитарная активность нейтрофилов. Отмеченные изменения сильно выражены при аскаридиозе, несколько слабее - при гетеракидозе. Отмеченные изменения состава морфологического и биохимического состава крови свидетельствуют об аллергическом состоянии и интенсивно протекающей в организме инвазированных птиц иммунологической перестройке.

5.При вакцинации птиц против болезни Ньюкасла на фоне применения противоэймериозных вакцин и кокцидиостатиков уменьшается интенсивность выработки специфических антител против вакцинного вируса, что необходимо учитывать при использовании вирус-вакцин на птицефабриках.

6.При вакцинации птиц против болезни Ньюкасла на фоне микстинвазии аскаридиями и гетеракисами уменьшается интенсивность выработки специфических антител против вакцинного вируса, что необходимо учитывать при проведении иммунизации птиц.

7.На птицефабриках страны в целях создания высокоиммунного стада против заболеваний вирусной этиологии необходимо за 20-30 дней до применения вирус-вакцин прекратить применение кокцидиостатиков, противоэймериозных вакцин, птиц дегельминтизировать против нематодозов, что позволяет создать высокоиммунное стадо птиц против вирусных болезней.

8.Разработана и внедрена в ОАО «Ивановский бройлер» система лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий, обеспечивающая устойчивое благополучие хозяйства в отношении заболеваний вирусной и паразитарной этиологии, позволяющая повысить продуктивность курнесушек до 247,3 яиц в год, оплодотворенность яиц - 94,3%, выводимость цыплят - 83,3%, сохранность бройлеров - 94,4%, среднесуточные приросты бройлеров - 42,2г, выход мяса у бройлеров - 72,8%, себестоимость 1кг птичьего мяса - 50-51 рубля, рентабельность производства птичьего мяса -18%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

На основании собственных исследований разработана и внедрена в производство:

1.В птицеводческих хозяйствах с напольным содержанием птиц, неблагополучных по аскаридиозу и гетеракидозу, где применяются противоэймериозные вакцины, кокцидиостатики, в целях создания высокоиммунного стада против вирусных заболеваний необходимо за 20-30 дней до применения вирус-вакцин птиц дегельминтизировать против нематодозов, прекратить дачу кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин.

2.Разработана и внедрена система лечебно-профилактических мероприятий в ОАО «Ивановский бройлер», обеспечивающая благополучие хозяйства в отношении заболеваний вирусной, бактерийной, грибковой, паразитарной этиологии и незаразных болезней, что позволяет получать от кур-несушек до 247,3 яиц в год, оплодотворенность яиц - 94,3%, выводимость цыплят - 83,3%, сохранность бройлеров - 94,4%, среднесуточные приросты бройлеров - 42,2г, выход мяса бройлеров - 72,8%, себестоимость 1кг птичьего мяса - 50-51 рубля, рентабельность производства птичьего мяса - 18%.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Наши собственные исследования и данные литературы (А.Г. Воробушков, 1989; С.П. Куприенко, 2005; С.А. Шишкарев, 2006 и др.) свидетельствуют, что в бройлерных птицефабриках центрального района Нечерноземной зоны РФ цыплята в первые 40-45 дней остаются практически свободными от гельминтов. У ремонтного молодняка, выращиваемого напольным методом на глубокой несменяемой подстилке, первые случаи заражения аскаридиями и гетеракисами регистрируются в 50-дневном возрасте. В дальнейшем зараженность птиц нематодами постепенно нарастает и достигает своего пика при отсутствии дегельминтизаций на 130135 сутки выращивания.

Нами выявлено, что при моноинвазии и микстинвазии аскаридиями и гетеракисами в кишечнике больных птиц постепенно увеличивается факультативная микрофлора (стафилококки, стрептококки, Escherichia coli, протей, клостридии, грибы), усиливается их патогенность при одновременном значительном снижении индигенной микрофлоры (бифидобактерий, лактобацилл, бактероидов и непатогенных кокковых форм). Изменения количественного и качественного состава микрофлоры кишечника умеренно выражены при гетеракидозе, несколько сильнее - при аскаридиозе, весьма глубоко - при микстинвазии. Состав микрофлоры кишечника у переболевших гетеракидозом птиц восстанавливается на 60 сутки лечения, у птиц, переболевших аскаридиозом, к этому сроку по многим показателям микрофлора приближается к норме, тогда как у птиц при микстинвазии состав микрофлоры к этому сроку до нормы не восстанавливается. Наши данные согласуются с данными А.Г. Воробушкова (1989) и С.А. Шишкарева (2006), которые получены при инвазии птиц с Ascaridia galli.

Нами выявлено, что организм больных аскаридиозом и гетеракидозом птиц находится в состоянии сенсибилизации, у них наблюдаются процессы иммунологической перестройки. Поэтому применение вакцин против болезни Ньюкасла в этот период приводит к значительному снижению выработки специфических антител к вакцинному вирусу. Аналогичная картина снижения интенсивности иммунологической перестройки организма птиц к вакцинному вирусу болезни Ньюкасла регистрируется при вакцинации птиц на фоне применения кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин. Поэтому мы рекомендуем птицеводческим хозяйствам за 20-30 дней до иммунизации против вирусных болезней птиц дегельминтизировать против нематод , прекратить дачу им кокцидиостатиков и противоэймериозных вакцин, что позволяет создать высокоиммунное стадо против вирусных болезней.

На основании собственных исследований нами разработана система лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий, которая позволяет обеспечить благополучие птицеводческих хозяйств в отношении вирусных, бактерийных, грибковых, паразитарных и незаразных заболеваний. Данная система успешно внедрена с хорошими экономическими показателями в ОАО «Ивановский бройлер».

Библиография Диссертация по биологии, кандидата ветеринарных наук, Вяткин, Александр Павлович, Иваново

1. Агапович Ж.А., Рустамова М.С. Гельминтологическая оценка специализированных птицеводческих хозяйств// Ветеринария. -1986. №12. -С.50-52.

2. Алергант Г.И. Терапия кишечных нематодозов кур аскаридиоза, гетеракидоза и капилляриоза/1 Автореф.дис. .канд.вет.наук. -М. -1970.-С.22.

3. Алимова В.Д. Изучение эпизоотологии аскаридиоза и гетеракидоза кур в Узбекистане и некоторых вопросов наносимого этими гельминтозами экономического ущерба// Мат. конф. Уз. НИВИ, Ташкент,-1969.-с. 135-136.

4. Алимова В.Д. Снижение мясной продуктивности кур, пораженных аскаридиями/Дельминты пищевых продуктов: Тез. докл. межресп. конференции. Самарканд. -1972. -С.47-48.

5. Андриевская Н.Ю. Гельминтофауна домашних птиц Одесской области// В кн.: «Проблемы паразитологии». Тр.2-й науч.конф.парази-тол. УССР, Киев. -1956. -с.20-22.

6. Афанасьев В.И. Разработка комплекса лечебно-профилактических мероприятий по оздоровлению кур от аскаридиоза и гетеракидоза в зоне Северного Кавказа// Дисс.канд.вет.наук. -М. ВИГИС. -1964. -223с.

7. Байдевлятов А.Б. Система ветеринарно-санитарных мероприятий в промышленном птицеводстве. Киев. Урожай. -1975. -С. 173-174.

8. Бакулин В.А. Ньюкаслская болезнь// Журнал «Зооиндустрия». М. -2005. -№6. -С.4-8.

9. Бачинский В.П. Химиопрофилактика аскаридиоза кур// Автореф.дис. .канд.вет.наук./-М. -1961. -16с.

10. Ю.Битюков В.А., Чубис А.И. Изменение белковой картины крови при гетеракидозе кур// Сообщение 1. Мат.к науч.конф. ВОГ. -1965. -ч.2. -С.48-50.

11. Борисов В.В. Разработка средств и методов диагностики и специфической профилактики аденовирусных болезней кур// Автореферат докт.дисс. Иваново. -2007. -47с.

12. Величкин П.А. и др. Пиперазин и его соединения, применяемые при аскаридиозе и гетеракидозе кур// Тр.Всес. с.-х. Ин-та заочн.обр., М. -1964. -вып. 17. -4.2. -С.123-133.

13. Величкин П. А. Снижается ли яйценоскость при дегельминтизациях?//Ж-л «Птицеводство». М.- 1965. -№8. -С.32-33.

14. Величкин П.А., Голубков В.Ф. Экономический ущерб от аскаридиоза и гетеракидоза кур// Труды Всесоюз. с.-х. ин-та заочн.образования. М. -1973. -вып.52. -С.61-65.

15. Величкин П.А., Голубков В.Ф., Соловьянов В.В. Эффективность панакура (фенбендазол) при аскаридиозе и гетеракидозе кур// Мат.науч.конф. Всесоюз. об-ва гельминт. М. -1984. -т.34. -С.106-109.

16. П.Величкин П.А., Меркулов Е.В. Влияние дегельминтизации на яйценоскость и инкубационное качество яиц// Ж-л «Птицеводство». М.-1970. -№3. -с.45.

17. Величкин П.А., Тарасов JI.P. Опыт оздоровления кур от аскаридиоза и гетеракидоза// Ж-л «Птицеводство». М. -1961. -№2. -С. 18-23.

18. Виноходов В.О. Грипп птиц, ньюкаслская болезнь и болезнь Гамборо// Ж-л «Ветеринария в птицеводстве». М. -2002. -№5-6. -с.4-11.

19. Володин П.В. Некоторые аспекты экономики откорма петушков с использованием антгельминтных компонентов премиксов// Дисс. .канд.с.-х. наук.-Персиановка.-1975.-127с.

20. Володин П.В., Теплов О.В. Влияние аскаридиоза на экономические показатели откорма петушков в условиях птицекомбината// Бюл. Всесоюз. ин-та гельминтологии. М.-1972. -вып.9. -с.25-30.

21. Володин П.В., Теплов О.В. Экономическая эффективность применения пиперазина адипината при аскаридиозе у петушков на откорме// Бюл. Всесоюз. ин-та гельминтологии. М. -1973. -вып 10. -с.42-46.

22. Вольские Г. Изученность фауны фауны аскаридат птиц в Литве. -1976.-Vol.14, с.83-85.

23. Воробушков А.Г. Заболевание кур, вызываемое аскаридиями и микрофлорой в ассоциации// Автореф.дисс. .канд.вет.наук. Иваново, 1989.-c.25.

24. Воробушков А.Г., Петров Ю.Ф. и др. Патогенетическая терапия при аскаридиозе//Ж-л «Ветеринария». М. -1986. -№11. -39-41.

25. Голубков В.Ф. Экспериментальный аскаридиоз молодняка кур// Труды Всесоюз.с.-х. ин-та заоч.образования. М. -1969. -вып.31. -с. 149154.

26. Григорьев Н.Х. Патоморфологические изменения слепых кишок и печени кур при галлинарном гетеракидозе и испытание антгельминтной эффективности некоторых солей пиперазина// Канд.дисс. -М. -1959г.

27. Григорьев Н.Х. Гетеракидоз опасный гельминтоз кур// Ж-л «Ветеринария». М. -1963. -№1.-С.63.

28. Григорьев Н.Х. О роли Heterakis gallinarum в образовании узелков слепых кишок кур// Тр. MBA. М. -1959. -т.25. -С.237-244.

29. Григорьев Н.Х. Патогистологические изменения слепых кишок и печени кур при гетеракидозе// Тр.МВА, М. -1959. -т.25, С.245-254.

30. Григорьев Н.Х. Приживаемость Heterakis gallinarum у кур// Мат. 5-й науч.конф. По инфек. и инваз.заболеваниям с.-х. животных. М.-1959. -С.61-64.

31. Гришина Е.А. Морфологические и гистохимические исследования органов и тканей нематод Ascaridia galli, Heterakis gallinarum и их хозяина после применения антгельминтиковбензимидазолового ряда//Дисс. .канд.биол.наук. -М. -1987. -213с.

32. Гудкова А.Ю. Динамика формирования паразитоценозов в организме овец при гельминтозах и коррекция ее антгельминтиками и пробиотиками// Автореф. докт.дисс. Уфа. -1999. -52с.

33. Гудкова А.Ю., Мухаммедов З.Р., Шишкарев С.А., Кузьмичева О.В., Вяткин А.П. Влияние аскаридиозной инвазии на формирование иммунитета к болезни Ньюкасла// Труды ВИГИС. М., 2006, т.44, С.63-66.

34. Гудкова А.Ю., Мухаммедов З.Р., Шишкарев С.А., Кузьмичева О.Р. Динамика формирования паразитарной системы в кишечнике кур при инвазии нематодами// Мат.науч.конф. ВОГ. -2006. -вып.7. -с. 120121.

35. Гудкова А.Ю., Мухаммедов З.Р., Шишкарев С.А., Кузьмичева О.Р. Формирование поствакцинально иммунитета к болезни Ньюкасла при моноинвазии нематодами// Мат.науч.конф. ВОГ РАН. -М. -2006. -вып.7.-с.118-119.

36. Гудкова А.Ю., Вяткин А.П., Мухаммедов З.Р., Шишкарев С.А., Кузьмичева О.В. Формирование иммунитета против ньюкаслской болезни при нематодозах птиц// Ж-л «Труды Кубанского ГАУ». Краснодар, 2007, вып.2(6).

37. Гурченко РН. Развитие личинок нематод в дождевых червях// Ж-л «Ветеринария». -1970. -№8. -С.77-78.

38. Давыдов Ю.М. Эпизоотология, лечение, профилактика аскаридиоза, гетеракидоза кур в условиях зоны Нижнего Поволжья//Автреф.дисс. .канд.вет.наук. -Саратов. -1967. -с.214-219.

39. Давыдова Е.Ю. Терапевтическое действие некоторых антгельминтиков при аскаридиозе кур и их влияние на иммунныйстатус и естественный микробиоценоз кишечника птиц// Дисс. . канд.вет.наук. -Саратов-2005.

40. Даугалиева Э.Х. Влияние гетеракидоза на морфологический состав крови и на вес цыплят// Мат.к науч.конф. ВОГ. М.-1967. -ч.5. -С.127-129.

41. Даугалиева Э.Х. Влияние гетеракидоза на привес цыплят при различной интенсивности инвазии// В кн.: «Гельминты и гельминтозы домашних птиц Казахстана». Изд-во «Наука». Алма-Ата. -1964. -С.47-51.

42. Даугалиева Э.Х. Изучение физиологических сдвигов, иммунитета и химиопрофилактики при гетеракидозе кур и биологии возбудителя// Канд.дисс. -Алма-Ата.-1966.

43. Даугалиева Э.Х. К изучению патогенеза гетеракидоза кур// Тр. Каз.НИВИ. Казань. -1969. -т.13. -С.146-154.

44. Денисов А.И. Влияние аскаридиоза на привесы цыплят// Ж-л «Птицеводство». М. -1971. -№2. -с.47-48.

45. Денисов А.И. Вопросы эпизоотологии аскаридиоза и гетеракидоза кур на Кубани. Разработка и внедрение комплекса лечебно-профилактических мероприятий// Автореф. канд.вет.дисс. М. -1968.

46. Добилас Ю.-А.М. Универсальный электроаэрозольный аппарат//Ж-л «Ветеринария». М. -1990. -№7. -с.13-14.

47. Дольников Ю.Я. Опыт иммунизации кур против аскаридиоза// Автореф.дисс. .канд.вет.наук. М. -1954.

48. Иванова З.И. Эффективность пиперазин-сульфата при аскаридиозе кур// Тез.докл.науч.конф. Всес.о-ва гельминтол. М. -1958. -С.53-54.

49. Иванова З.И. Эффективность пиперазин-сульфата при аскаридиозе кур// Тр. ГНКИ вет.препаратов. М. -1959. -т.8. -С.222-227.

50. Иванюк В.П. Формирование паразитарной системы в организме свиней и меры борьбы с паразитоценозами в хозяйствах Нечерноземной зоны РФ// Автореф.докг.дисс. Иваново. -2006. -31с.

51. Казанцев И.В. Разработка оптимальной схемы иммунизации кур против ИББ, ИБК и НБ в птицехозяйстве// Автореф.дисс. . канд.вет.наук. -Владимир, -2003. -23с.

52. Кемнып К.П., Зариня Р.К., Федорова Э.Я., Мелюарде Р.Э. О применении гигрометина// Тез.науч.докл. ВОГ. -М. -1975. -С.104-107.

53. Киреев Н.А. К эпизоотологии аскаридиоза и гетеракидоза кур.//

54. Ж-л «Ветеринария». М. -1964. -№8. -С.49.

55. Коровин Р.Н., Зеленский В.П., Грошева Г.А. Лабораторная диагностика болезней птиц. ВО «Агропромиздат», М., 1989. -с.117-119.

56. Корчагин А.И. Опыты по химиопрофилактике аскаридиоза и гетеракидоза кур// Тез.докл.науч.конф. Всес.о-ва гельминтол. М. -1962. -4.1. -С.90-91

57. Корчагин А.И. Разработка методов химиопрофилактики и изучение нового антгельминтика пиперазиндитиокарбомата при аскаридиозе кур//Автореф. дисс. .канд.вет.наук. -М. -1966. -с.20.

58. Котельников Г.А. Аскаридиоз кур// Справочник ветер.врача птицеводческого предприятия. -М. -1982. -с.169-172.

59. Крикунов М.С., Вовченко Н.М., Бессмертный В.М. Опыт ликвидации смешанных гельминтозов кур на птицефабриках// Всесоюз.съезд паразитоценол.: Тез.докл. -Киев. -1983. -с.171-173.

60. Куприенко С.П. Микстинвазии кур и меры борьбы с ними// Дисс. .канд.вет.наук. -НижнийНовгород. -2005.

61. Ларионов С.В., Соловьянов В.В. Профилактика и ликвидация аскаридиоза и гетеракидоза кур в условиях птицефабрик Волгоградского бройлерного объединения// Сб.науч.тр.ученых Волгоградского ИИТИ ММС и ППЖ. Волгоград. -2001. -С.94-96.

62. Меркулов Е.В. Вопросы эпизоотологии аскаридиоза кур и опыт оздоровления племенных птицеводческих хозяйств от этой инвазии в предгорной зоне Северного Кавказа// Дисс. .канд.вет.наук. -М.-1973.-176с.

63. Мозговой А.А. Аскаридаты животных и человека и вызываемые ими заболевания// М. -АН СССР. -1953. -С.351.

64. Осипов A.H. Биология Heterakis gallinarum и эпизоотология гетеракидоза кур//Канд.дисс. -М. -1959.

65. Осипов А.Н. Выживаемость яиц Heterakis gallinarum в зимних условиях//Тр. MB А. М. -1957. -т. 19. -в.1. -С.350-355.

66. Осипов А.Н. К вопросу о биологии Heterakis gallinarum// Тез.докл.науч.конф. ВОГ. М. -1957. -ч.1. -С.233-234.

67. Осипов А.Н. Развитие яиц гетеракисов в естественных условиях//Тр. MB А. М. -т.27. -1958. -С.196-218.

68. Панасюк Д.И. Закономерности взаимоотношений сочленов паразитоценоза// В кн. «Паразитоценозы и ассоциативные болезни». М. -«Колос». -1984. -с.27-45.

69. Панина З.А. Опыт борьбы с аскаридиозом и гетеракидозом кур в совхозе «Семеновод»// В кн.: Сб. науч.работ Алтайской н.-и.вет.ст. -Барнаул. -1972.-вып.З. С.226-230.

70. Панина З.А. Эпизоотология аскаридиоза кур и меры борьбы в условиях Алтайской лесостепи// Автореф.канд.дисс,- Ульяновск. -1969.

71. Паршина А.В. Влияние аскаридий на разных стадиях развитияна морфологический состав крови цыплят// Сб.тр./Сиб. НИВИ. -Омск. -1970. -вып.17. -с.263-269.

72. Паудерс В.Я. Гельминтофауна и основные гельминтозы домашних птиц Латвийской ССР// Дисс. .канд.вет.наук. -М. -1960. -170с.

73. Паудерс В.Я. Гельминтофауна и основные гельминтозы домашних птиц Латвийской ССР// Тез.докл. 1-е н.-координ.совещ.по паразитол.пробл. Лит.ССР, Латв. ССР, Эст.ССР и БССР. -1957. -С.119-121.

74. Петров Ю.Ф. Опыт борьбы с пуллорозом-тифом и колибактериозом птиц// В кн. «Ветеринарное обслуживание животноводства в условиях интенсификации». Чебоксары. -1980. -с.65-66.

75. Петров Ю.Ф. Паразитоценозы и ассоциативные болезни сельскохозяйственных животных// Монография. Л-д.: ВО «Агропромиздат». -1988. -147с.

76. Петров Ю.Ф., Мухаммедов З.Р., Шишкарев С.А., Кузьмичева О.В., Вяткин А.П. Влияние аскаридиозной инвазии на формирование иммунитета к болезни Ньюкасла// Труды ВИГИС. -М. -2006. -т.44. -С.63-66.

77. Петров Ю.Ф., Вяткин А.П., Вяткин М.А., Гудкова А.Ю. Система лечебно-профилактических ветеринарных мероприятий в ОАО «Ивановский бройлер»// Мат. науч.конф. ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА». Иваново, 2007, том1, С.26-28.

78. Петров Ю.Ф., Вяткин А.П., Мухаммедов З.Р., Гудкова А.Ю., Шишкарев С.А., Кузьмичева О.В. Формирование иммунитета против ньюкаслской болезни//Ж-л «Птицеводство». М., 2007, №3. С.33.

79. Петров Ю.Ф., Гудкова А.Ю., Мухаммедов З.Р., Вяткин А.П.

80. Кузьмичева О.В. Микрофлора кишечника у кур в норме и при гельминтозах// Ж-л «Ветеринарный врач». Казань, 2007, №5, С.

81. Петроченко В.И., Котельников Г.А. Гельминтозы птиц// Монография. М.: Колос. -1976. -с.352.

82. Подгорнова Г.П. К нематодофауне домашних птиц Волгоградской области// Тез.докл.науч.конф. Всес.о-ва гельминтол. М. -1962. -4.2. -С.156-157.

83. Помрянская Н.А. К гельминтофауне кур Марийской АССР// Сб.работ по гельминтол. к 75-летию акад. К.И. Скрябина. АН СССР. -1953.-С.543-544.

84. Предыбайло Н.Д. Новые пути создания и способы применения вакцинных препаратов в птицеводстве// Состояние, пробл. и перспективы развития вет.науки России. -М., 1999. -Т.2. -с.230-232.

85. Пугай Б.Н. Изучение экономического ущерба от аскаридиоза кур и оценка рентабельности химиопрофилактических мероприятий// Материалы к науч.конф. Всес.о-ва гельминтол. М,- 1966. -4.1. -С.215-221.

86. Пугай Б.Н. Опыт химиопрфилактики аскаридиоза цыплят// Материалы науч.конф. Всес.о-ва гельминтологов. -М. -1963. -т.2. -С.52-54.

87. Романенко Т.П. Биология гельминтов, эпизоотология ипрофилактитка гельминтозов кур Дальнего Востока// Автореф.докт.дисс. -М. -1973.

88. Руденко Т.В. Вакцина против ньюкаслской болезни из штамма «ГАМ-61»// Дис. .канд.биол.наук. Москва. ВГНКИ., 2000. -198с.

89. Руденко Т.В., Смоленский В.И. Иммунопрофилактика ньюкаслской болезни в птицехозяйствах// Ж-л «Ветеринария». М. -1999.-№12.-с.18-20.

90. Савченко М.Е. К характеристике индивидуальной изменчивости и выживаемости геогельминта Heterakis gallinarum при разной плотности популяции//Ж-л «Общая биология». -М. -1962. -т.23. -С.318-319.

91. Ю1.Сазикова Т.Г. Влияние аскаридий на вес и яйценоскость кур породы «Белый леггорн»// Ж-л «Вопросы зоологии». -Челябинск. -1975. -вып.4. -с.40-43.

92. Седых О.Г., Лагуткин Н.А., Середа А.Д. Иммуногенность субъединичных липосомных и эмульсионно-масляных вакцин против ньюкаслской болезни// Доклады РАСХН. М. -2003. -№2. -с.45-47.

93. Смирнов A.M., Конополько П.Я., Пушкарев Р.П., Постников B.C. и др. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных// Учебное пособие для сельхоз. вузов. М. -ВО «Агропромиздат». -1988. -512с.

94. Ю4.Смоленский В.И., Руденко Т.В. Формирование невосприимчивости у цыплят, привитых вакциной против ньюкаслской болезни из вакцинного штамма ГАМ-61/ Сб.науч.тр. ВГНКИ. -М., 1996. -Т.59. -с.52-56.

95. Советников В.М. Влияние температурных факторов на развитие и жизнеспособность яиц аскаридий и гетеракисов вестественных условиях// Мат.и тез.обл.конф. НТО с/х. Оренбург. -1967. -С.116-118.

96. Советников В.М. Выяснение возможности заражения кур аскаридиозом и гетеракидозом в птичниках зимой//Мат.к науч.конф. ВОГ.-М.-1965.-4.3.-C.236-239.

97. Советников В.М. Гельминты, эпизоотология гельминтозов домашних птиц Оренбургской области и терапия кур при смешанных инвазиях//Автореф.канд.ди'сс. Оренбург. -1965.

98. Ю8.Соловьянов В.В. Некоторые вопросы экологии яиц Heterakis gallinarum в условиях центральной зоны Росси и зоны Нижнего Поволжья// Сб.науч.тр.ученых Волгоградского НИТИ МНС и ППЖ. Волгоград. -2001. -С.96-101.

99. Ю9.Соловьянов В.В. Эпизоотология и профилактика гетеракидоза кур в птицеводстве с различной технологией в условиях птицефабрик Нечерноземной зоны// Тр. ВСХИЗО. -М. -1983. -С.61-69.

100. ПО.Старов С.К. Современные принципы профилактики ньюкаслской болезни птиц/Актуальные проблемы инфекционной патологии животных: Матер. Междун. науч. конф., посвящ.45-летию ФГУ «ВНИИЗЖ». -Владимир. -2003. -с.284-289.

101. Ш.Сысоев И.В. Устойчивость кур разных пород, линий и гибридов к гетеракисам// Мат.науч.конф. ВОГ. -М. -1974. -вып.26. -С.284-294.

102. Ш.Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьев Б.В., Фомина Н.В. Вирусные болезни животных// Москва. -ВНИТИБП. -1998. -с.227.

103. ПЗ.Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьев Б.В., Фомина Н.В. Вирусные болезни животных// Москва. -ВНИТИБП. -1998. -с.227.

104. Тараненко И.Л. Некоторые показатели биохимии крови присмешанной гетеракидозной и гистомонозной инвазии индеек// Мат.к науч.конф. ВОГ. -М. -1966. -4.2. -С.204-205.

105. Тараненко И.Л. Снижение выводимости молодняка при аскаридиозе кур//Ж-л «Птицеводство». -М. -1962. -№11. -с.31.

106. Пб.Тараненко И. Л.Профилактическое действие пиперазин-сульфата при экспериментальном ларвальном аскаридиозе цыплят// Тр.Моск.вет.акад. -М. -1963. -т.47. -С.262-266.

107. Твердохлебов П.Г. Восприимчивость домашних птиц к Ascaridia galliZ/Ж-л «Ветеринария». М. -1966. -№8. -с.67-69.

108. Тимченко А.Д. Динамика аскаридиоза кур в условиях Крыма// Сб.работ по гельминтологии. -М. -МСХ СССР. -1959. -вып.1. -С.175-176.

109. Умняшкин В.Г., Величкин П. А. Оздоровление кур от аскаридиоза и гетеракидоза// Ж-л «Птицеводство». М. -1970. -№3. -с.44.

110. Федюшин А.В. Гельминты домашних кур Западной Сибири// Тр. Всес.ин-та гельминтол. -М. -1953. -т.5. -С.103-104.

111. Феоктистов П.И. Эпизоотология и профилактика аскаридиоза кур//Ж-л «Ветеринария». -М. -1949. -№4. -С.11-17.

112. Хазиев Г.З. Зависимость степени инвазированности и видового состава гельминтов кур от методов их содержания// Гельминты животных, человека и растений на Южном Урале. -Уфа. -1974. -вып.1. -С.145-149.

113. Хазиев Г.З., Муратшин Г.Н. Патоморфологические изменения у цесарок при гетеракидозе// Труды Баш.СХИ. Уфа. -1972. -С.118-124.

114. Хоргуани Э.Г. Эффективность различных методов вакцинацииптиц против ньюкаслской болезни// Ж-л «Ветеринария». М. -1990. -№6. -С.32-34.

115. Хуан Шен-И К гельминтофауне домашних птиц Хабаровского края// Тр.гельминтол.лаб. АН СССР, М. -1961. -т. 11. -С.303-308.

116. Хуан Шен-И К фауне нематод домашних и охотничье-промысловых птиц Хабаровского края// Тез.докл.науч.конф. Всес.о-ва гельминтол. -М. -1960. -С.147-148.

117. Ш.Цветаева Н.П. К патологии ранних стадий аскаридиоза кур// Труды гельминтлаборат. АН СССР. М.-1954. -Т.7. -с.304-319.

118. Цветаева Н.П. Патогенная роль гельминтов// Ж-л «Ветеринария». М. -1963. -№12. -С. 16-17.

119. Цветаева Н.П. Патоморфология основных гельминтозов птиц// М.-Колос.-1971.-С.255.

120. Черткова А.Н., Петров A.M. Гельминты домашних куриных птиц и вызываемые ими заболевания// М. -1961. -т.2.

121. Шамхалов В.М. Эпизоотология аскаридиоза и гетеракидоза кур и разработка методов борьбы и этими инвазиями в Прикаспийской низменности Дагестанской АССР// Канд.дисс -М. -1969.

122. Шевцов А.А. Ветеринарная паразитология// Колос. -М. -1965. -С.194-195.

123. Шихобалова Н.П. Экспериментальные данные об иммунитете при гетеракидозе домашних птицII Тр. ГЕЛАН. М. -1959. -т.9. -С.377-383.

124. Шишкарев С.А. Динамика паразитоценозов в организме птиц при аскаридиозе и влияние аскаридиозной инвазии на формирование иммунитета против ньюкаслской болезни// Автореф.канд.дисс. Иваново. -2007. -18с.

125. Шульц Р.С., Даугалиева Э.Х. Дальнейшие опыты по изучению инвазионных градиентов на модели цыплята-аскаридии// Сб. работ по гельминтол., посвящ. 90-летию со дня рожд. К.И.Скрябина. -М. -1971. -С.456-469.

126. Шульц Р.С., Даугалиева Э.Х. Иммунологическая толерантность в патологии и эпизоотологии гельминтозов// Материалы УП Всесоюз. конф. по природ.очаговости болезней общ.вопр.паразитол.жив-х. -Алма-Ата. -Самарканд. -1969. -С.80-87.

127. Шульц Р.С., Даугалиева Э.Х. Патологические и иммунологические явления у цыплят, зараженных возрастающими дозами яиц гельминтов// Тезисы 5 науч.конф.паразитологов УССР. Киев. -1967. -С.307-309.

128. Шумило Р.П. Гельминтофауна кур на птицефабриках колхозов Центральной Молдавии// Тез.докл.науч.конф. Всес.о-ва гельминтологов. М. -1962. -ч.2. -С.220-223.

129. Яременко Н.А., Яковлев С.С. Задачи по созданию эпизоотического благополучия птицеводства России// Ж-л «Ветеринария». М. -1998. -№12. -с.3-5.

130. Ackert J., Horrich С., Affects of nematode Ascaridia lineata (Schneider) on growing chickens//Parasitology, 1928, v. 15, p. 1-13.

131. Ackert J.E. Fowl resistance to parasitism affected by vitamine 'A' and 'B'//Arch.sool., 1932, v.16., p.1369-1379.

132. Ackert J.E. On the habitat of Ascaridia perapicullum (Roud)// Parasitology, 1923, v.10, p.101-103.

133. Aldous E.W., Alexander D.J. Technical review: Detection and differentiation of Newcastle disease virus (avian paramyxovirus type 1)// Avian Pathol. -2001. -V.30. N2. -P.l 17-129.

134. Alexander D.J. Newcastle Disease and Other Paramyxovirusinfection// Disease of Poultry: 9th edn. -Ames, iova state Univ.Prees. USA, 1991. -P.496-519.

135. Alexander D.J. Paramyxovirinae (Newcastle Disease and Other Viruses)// Poultry Discasis: 5th edn. -2001. -P.257-268.

136. Alexander D.J., Allan W.J. Newcastle disease virus pathotypes// Avian Pathol/ -1974 -V.3. -P.269-278.

137. Buchwalder R. et all. Experimented Untersuchungenrur Alters -und Rasseresistems des Haushuhnes bei Ascaridia galli Infektionen. -Veterivarmed., 1977, N23, P.898-902.

138. Darski J. Some factors influensing the infectiveness and fertility of Ascaridia galli in chickens . Biul. Inet. Wereryn. Pulavach., 6, N3-4,1962.

139. Dubinsky P., Rydes M. VitalstofFe, 1961, v. 1, N4. -P. 143-147.

140. Flensburg M.F., Ersbool A.K., Jorgensen P.P. Pisk factors associated with the in toduction of acute clinical infection is bursal disease among Danish broiler chickens in 1998// Avian Pathol. -2002. -Vol.3.Nl -P.23-29.

141. Gugwell R.L., Ackert J.E. On the tissue phace of the rife cycle of the fowl nematode Ascaridia galli (Schrank)// Parasitology, 1952, v.38, N.4, p.277-288.

142. Halvoroson B.A., Show D., Siranadon V.e.a. Serological response in chich to different Commercial Newcastle disease and infections bronchitis vaccines//Avian Dis. -1991. -V.35. -P.978-981.

143. Herrich C. Studies on the resistance of chickens to the nematode Ascaridia perspiculum// Amer.Journ.Hyg., 1926, v.6, p.153-172.

144. Hugnerford T.G. Studium exogenneho vyrinu vaji сок Heterakis gallinarum v prirodnyck podmienkach. "Veterin.med.", 1951. -10. -N9.-Р.551-568.

145. Jheme М.М. Pravis Veterinaria, 1971,19, N3,167-172.

146. Lund E.E., Wehr E.E., Ellis D.Y. Earthworm transmission of Heterakis and Histomonas to turkeys and chikens. 1966. J.of Parasitology. -v.52. -N5. -P.899-902.

147. Nol M., Gardenas N. et al. Correlation del cuadro hematologieo e infestacion por vermes intestinalis en las aves// Riv.avicult., 1975, v. 19, N3.,p.351-352.

148. Plamadeala S., Blidarik I., Baadii D. Lasota and LS79 Newcastle vaccines: Novel data. Note .II. Some Lasota and LS79 vaccine batches potency control upon-sheld life termination// Stud. Pes. Vet. Med. Pasteur Inst. -1992. -V.1.-N1.-P.51-52.

149. Raviicek J.; Dykova J. Experimental infection with Ascaridia galli: in goung chickens of different age. -Acta veter., 1975, v.44, N3, p.223-233.

150. Roach R. Autoimmunity and autoimmune disease. -Brit.J. Anesth., 1943, v.5,Nl. P. 13-20.

151. Sadum S.N. Resistanceinduced in chickens by infections with the nematode Ascaridia galli//Amer.Journ. Hyg., 1948, v.47, N3, p.282-289.

152. Sadum S.N. The antilogy Basis of Immunity in checkens to the nematoda Ascaridia galli//Amer.Journ. Hyg., 1949, v.49, N1, p.101-117.

153. Schroder I., Iburg M., Rebeski D.E. Amending von TAD Salmonella vac E in der Gettugelprexis unter besonderer Beruchsichtigung der imptstof. Application und-controle// Lohmann inform/ Lohmann Animal

154. Heelth GmbH Go.KG. -Cuxhaven, 2004. -P.31-34.

155. Tauev A.B., Hanson R.P. Interaction between Escherichia coli and Newcastle disease virus in chickens//Avian Dis. -2002. -Vol.46,33. -P.660-670.

156. Teletkov P., Genova K., Djambarova N. Preparation of trivalent inactivate vaccine against Newcastle disease infections bursal disease and infections bronchitis in chickens//Exp. Pathol. Parasitol. -2000. -N4. -p.31-34.

157. Yadin H. Aerosol vaccination against Newcastle disease: Virus inhalation and retention during vaccination. Avian Pathology. -1980. -V.9. -P. 163-170.

Информация о работе

Вяткин, Александр Павлович
кандидата ветеринарных наук
Иваново, 2007
ВАК 03.00.19

Диссертация

Функционирование паразитарной системы в организме птиц и организация противоэпизоотических мероприятий в бройлерных птицефабриках Центрального района Нечерноземной зоны Российской Федерации - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы