Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Физиолого-биохимическая характеристика базидиомицета Panus tigrinus и его применение для получения прессованных материалов

ВАК РФ 03.00.23, Биотехнология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Шутова, Виталина Викторовна

СПИСОК ПРИНЯТЫХ СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Биоконверсия лигноцеллюлозных субстратов.

1.1.1. Общая характеристика лигнолитических грибов.

1.1.2. Химический состав лигноцеллюлозных субстратов.

1.1.3. Биодеградация лигноцеллюлозных субстратов.

1.2. Биодеградация лигнина.

1.2.1. Механизмы биодеградации лигнина.

1.2.2. Ферменты лигнолитического комплекса.

1.2.3. Продукты биодеградации лигнина.

1.3. Использование лигноцеллюлозных субстратов.

1.3.1. Технология получения древесных пластиков.

1.3.2. Роль физико-химичесшх с|

§ств древесины и связующих при изготовлении ДСП.

1.3.3. Перспективные технологии ДСП

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ.ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Микроорганизм.

2.2. Реактивы, субстраты и материалы.

2.3. Культивирование микроорганизма.

2.4. Методы определения активности лигнолитических ферментов.

2.5. Методы выделения лигнина и исследования продуктов его био деградации.

2.6. Аналитические методы.

2.7. Прессование биопластиков и определение их физико-механических показателей.

2.8. Статистическая обработка.

ГЛАВА 3. ПОЛУЧЕНИЕ ИНОКУЛЯТА КСИЛОТРОФНОГО ГРИБА раыштюшыш.

-33.1. Влияние молочной сыворотки и лигносульфоната на рост гриба и лигнолитическую активность.

3.2. Влияние условий культивирования на рост гриба и лигнолитическую активность.

ГЛАВА 4. ТВЕРДОФАЗНОЕ КУЛЬТИВИРОВАНИЕ P. TIGRINUS НА ЛИГНОЦЕЛЛЮЛОЗНЫХ СУБСТРАТАХ.

4.1. Исследование биодеградации лигнина различных субстратов.

4.2. Влияние среды выращивания инокулята и породы дерева на изменение химического состава опилок при твердофазном культивировании.

4.3. Влияние рН на деструкцию сосновых опилок и потребление грибом лигнина.

4.4. Влияние условий культивирования гриба Parvus tigrinus на изменение химического состава отходов хлопчатника.

ГЛАВА 5. ПОЛУЧЕНИЕ ПРЕССОВАННЫХ МАТЕРИАЛОВ ПОСЛЕ ВОЗДЕЙСТВИЯ ДЕРЕВОРАЗРУШАЮЩИХ ГРИБОВ НА ЛИГНИНСОДЕРЖАЩИЕ СУБСТРАТЫ.

5.1. Влияние условий культивирования гриба на физико-механические свойства биопластиков.

5.2. Влияние обработки сырья антиоксидантом на физико-механические свойства биопластиков.

5.3. Получение прессованных материалов из гузапаи.

ГЛАВА 6. ЗАВИСИМОСТЬ ФИЗИКО-МЕХАНИЧЕСКИХ СВОЙСТВ ПРЕССОВАННЫХ МАТЕРИАЛОВ ОТ БИОМОДИФИКАЦИИ

ЛИГНИНА И УСЛОВИЙ ПРЕССОВАНИЯ.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Физиолого-биохимическая характеристика базидиомицета Panus tigrinus и его применение для получения прессованных материалов"

Актуальность темы. Многотоннажные древесные отходы ежегодно скапливаются в отвалах и ухудшают экологическую обстановку. Изготовление из этих отходов древесностружечных плит дает возможность сэкономить огромные запасы леса. Однако в связи с высокой токсичностью формальде-гидных и карбамидных смол, используемых в качестве связующих в производстве композиционных материалов, возросли требования к экологической чистоте получаемых изделий. Предложен ряд технологий древесных пластиков с использованием природных клеящих веществ, однако они не нашли практического применения из-за низкой эффективности. Особенностью лиг-ноцеллюлозного сырья является сложная структура его основных компонентов. Лигнин составляет до 35% сухой массы древесины. Реакционные группы лигнина, возникающие при соответствующей химической или биологической обработке, могут обладать эффективными связующими свойствами. При этом лигноцеллюлоза приобретает пластифицирующие свойства, что позволяет изготавливать на ее основе древесные пластики. Наиболее целесообразной представляется предобработка лигнина с целью увеличения его адгезивных свойств при помощи биотехнологических процессов, экологически безопасных и экономичных.

Грибы белой гнили - наиболее активные деструкторы лигноцеллюлоз-ных субстратов. Биодеструкция ими лигнина - сложный и многоступенчатый процесс. Гриб белой гнили Рапиз Ид^тш обладает высокой скоростью роста на лигноцеллюлозных субстратах, эффективно разрушает компоненты сырья. Его можно использовать для модификации древесных отходов целлюлозно-бумажной и деревоперерабатывающей промышленности в производстве древесных пластиков. Однако механизм биодеградации лигноцеллюлозы этим грибом не выяснен, не определена роль отдельных ферментов в разложении компонентов древесины.

Цели и задачи исследования. Целью данной работы было изучение фи-зиолого-биохимических свойств дереворазрушающего гриба Р. Ндрчпш и возможности применения его для получения прессованных материалов из отходов древесины. В связи с этим решались следующие задачи:

1) подбор оптимальных условий для выращивания посевного материала гриба;

2) изучение деструкции основных компонентов различных лигноцел-люлозных субстратов при твердофазном культивировании Р. И^тт;

3) исследование влияния условий культивирования на изменение химического состава лигноцеллюлозных отходов при росте гриба;

4) выяснение влияния условий культивирования базидиомицета на физико-механические свойства прессованных материалов из растительного сырья, а также роли функциональных групп и свободных радикалов, образующихся при разрушении лигнина в адгезии;

5) подбор условий прессования сырья, обработанного Р. й%ппщ.

Научная новизна. Изучены условия культивирования гриба Р. й%гтш, их влияние на адгезивные свойства лигнина и физико-механические свойства композиционных материалов, получаемых на его основе. Изучены изменения, происходящие в химическом составе древесного сырья и, в частности, в лигнине при твердофазном культивировании базидиомицета. Получены композиционные материалы из обработанного грибом лигнинсодержащего сырья. Установлена связь между режимами прессования сырья, обработанного Р. й%гтш, и степенью модификации лигнина древесины.

Научно-практическая значимость работы. Данные об изменениях химического состава растительного сырья, вызываемые Р. расширяют представления о деструктивной активности гриба.

В производстве биопластиков применение биологической обработки для предварительной обработки лигноуглеводного сырья позволяет улучшить санитарно-гигиенические свойства изготавливаемых изделий, снизить расход энергии, решить проблему эффективной утилизации отходов различных отраслей промышленности (древесные опилки, стружки, гузапая, лигно-сульфонаты). Это дает возможность получать древесные пластики на основе экологически чистых связующих по технологическому режиму производства древесностружечных плит без применения синтетических вяжущих средств.

Заключение Диссертация по теме "Биотехнология", Шутова, Виталина Викторовна

выводы

1. Добавление в среду Чапека-Докса 1,5-2% лигносульфоната позволяет повысить лигнолитическую активность и количество биомассы гриба.

2. Биодеградация лигноцеллюлозных субстратов Р. Нд-тт зависит от их природы. Анализ химического состава древесины, гузапаи и целло-лигнина и продуктов их деструкции указывает на то, что механизмы деградации лигнина при этом происходят различными путями.

3. Использование лигноуглеводных комплексов, выделенных из березы и сосны, в качестве субстратов для гриба позволяет предположить, что на начальном этапе культивирования в лигнине преобладают полимери-зационные процессы, и лишь затем идет деструкция полимера.

4. Обработка растительного сырья трехсуточным инокулятом Р. И^гшт при рН 6,2 является оптимальной для целенаправленной модификации сырья. При этом в лигнине увеличивается количество фенольных гид-роксильных, карбонильных и карбоксильных групп.

5. При обработке растительного сырья лигнолитическим грибом Р. й-%гтт создаются условия для производства древесностружечных плит без применения токсичных синтетических связующих. При прессовании важную роль в образовании химических связей между опилками, обработанными Р. и^утт, играют, прежде всего, лигнин и гемицеллюлозы, а также белки и полисахариды базидиомицета. Определенный вклад в этот процесс вносят свободные радикалы, образующиеся при разложении лигнина.

6. Прессование опилок, обработанных базидиомицетом в течение 3-6 суток, при температуре 170°С, давлении 5 МПа в течение 20 мин позволяет получить экологически чистые древесностружечные плиты, по прочности не уступающие стандартным образцам.

-133

-131-ЗАКЛЮЧЕНИЕ

На основании результатов работы можно заключить, что при обработке растительного сырья лигнолитическим грибом Panus tigrinus создаются условия для производства древесностружечных плит без применения токсичных синтетических связующих. Для выращивания инокулята гриба целесообразно применять среду Чапека-Докса с 1,5-2% лигносульфоната. Гриб проявляет субстратную специфичность при росте на лигноцеллюлозном сырье. Процессы деструкции полимеров и механизмы деградации лигнина при этом происходят различными путями. Важную роль для твердофазного культивирования P. tigrinus и образования химических связей при прессовании сырья играет рН среды, оптимальным значением для данного штамма является рН 6,2. Базидиомицет вызывает глубокие изменения в лигниновой части лигно-целлюлозных субстратов. На начальном этапе культивирования в лигнине древесного сырья происходят полимеризационные процессы, и лишь затем идет деструкция полимера.

Показано, что важную роль в образовании химических связей между древесными частицами, обработанными Partus tigrinus, играют, прежде всего, лигнин и гемицеллюлозы, а также белки и полисахариды базидиомицета. Вероятно, что определенное влияние на этот процесс оказывают и свободнора-дикальные частицы, образующиеся при разложении лигнина.

Подобраны условия прессования биопластиков: температура 170°С, давление 5 МПа, продолжительность прессования 20 мин.

-132

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Шутова, Виталина Викторовна, Саранск

1. Анненков В.Ф., Гук В.К., Янцо В.М. Изготовление прессованных деталей и изделий из отходов древесины. Киев: TexHika, 1986. - 112 с.

2. Атыкян H.A. Физиологические особенности гриба Panus tigrinus ВКМ F-3616 D и свойства ферментов лигнолитического комплекса, продуцируемых им: Диссертация канд. биол. наук.- Воронеж. 2000.- 140 с.

3. Ахмедова З.Р., Белецкая О.П., Далимова Т.Н., Халикова М.М., Азим-ходжаева М.Н., Давранов К.Д., Шарипова А. Отбор и культивирование целлюлозо- и лигнинразрушающих грибов // Микробиология. 1994.-T.63,N5.-C. 929-936.

4. Бабицкая В.Г. Ферментативная деструкция лигнина, содержащегося в растительных субстратах мицелиальными грибами // Прикладная биохимия и микробиология.- 1994.- Т. 30, №6.- С. 827-835.

5. Бабицкая В.Г., Стахеев И.В. Изучение условий биотрансформации лиг-ноцеллюлозных субстратов мицелиальными грибами в условиях твердофазной ферментации // Прикладная биохимия и микробиология. -1986.- Т. 22, №4.- С. 470-478.

6. Бабицкая В.Г., Щерба В.В. Деградация природных полимеров мицелиальными грибами продуцентами биологически активных веществ // Прикладная биохимия и микробиология.- 1991.- №5.- С. 687-694.

7. Бабицкая В.Г., Щерба В.В. Особенности деградации лигнина природных полимеров ксилотрофами и почвенными сапротрофами // Микробиология. 1994. -№ 1С.65-72.

8. Бабицкая В.Г., Щерба В.В., Осадчая О.В. Антиокислительная активность некоторых микро- и макромицетов деструкторов лигноцеллюлозных субстратов // Прикладная биохимия и микробиология.- 1997.- Т. 33, №5.-С. 559-563.

9. Бадалян С.М. Систематика, биоэкология и физиологическая активность серно-желтого опенка. Ереван: Ереванский Университет, 1993.- 196 с.

10. Базарнова Н.Г., Галочкин А.И., Глебов Л.Ю. Прессованные материалы из гидротермически обработанной древесины осины и ангидридов дикарбоновых кислот // Химия растительного сырья. 1997а. - Т.1, №2. -С. 15-22.

11. И. Базарнова Н.Г., Галочкин А.И. Крестьянников B.C. Влияние гидротермической обработки древесины на свойства древесных прессованных материалов // Химия растительного сырья. 19976. -Т.1, №1. - С. 11-16.

12. Базарнова Н.Г., Галочкин А.И., Крестьянников B.C. Влияние мочевины на свойства прессованных материалов из древесины, подвергнутой гидротермической обработке // Химия растительного сырья. -1997в. -Т.1, №1. С.22-30.

13. Базарнова Н.Г., Ефанов М.В. Исследование содержания связанных ацильных групп в основных компонентах ацилированной древесины //Химия растительного сырья. 1999. - №1. - С. 99-106.

14. Бисько H.A., Бухало A.C. и др. Высшие съедобные базидиомицеты в поверхностной и глубинной культуре. / Под общ. ред. И.А.Дудки. Киев: Наукова думка, 1983.- 312 с.

15. Блажей А., Шутый JI. Фенольные соединения растительного происхождения. / Пер. со словац. М.: Мир, 1977. - 239 с.

16. Болобова A.B. Новая технология получения экологически чистых строительных материалов на основе ферментативной биодеструкции древесных отходов // Прикладная биохимия и микробиология. 1999. - Т.35. -№5.-С. 590-595.

17. Бухало A.C. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре. -Киев: Наукова думка, 1988.- 143 с.

18. Власенко Е. Ю., Кастельянос О., Синицын А. П. Реакционная способность различных видов целлюлозосодержащего сырья при гидролизе целлолитическими ферментами.// Прикладная биохимия и микробиология. -1993.-Т.29, Вып.б.-С.834-843.

19. Гандбаров X. Г. Эколого-физиологические особенности дерево-разрушающих высших базидиальных грибов. Баку: Элм, 1989. - 197 с.

20. Головлева Л.А., Леонтьевский A.A. Биодеградация лигнина // Успехи микробиологии.- 1990.-N.24,- С.128-155.

21. Головлева Л.А., Мальцева О.В. Биохимия разложения лигнина микроорганизмами. //Проблемы биоконверсии растительного сырья.- М.: Наука, 1986.- 295 с.

22. Головлева Л.А., Перцова Р.Н., Федечкина И.Е. О микробиологическом разложении лигнина и возможной роли диоксигеназ в процессе его деструкции // Прикладная биохимия и микробиология.- 1983.- Т. 19, №6.-С. 709-717.

23. Гончаров H.A., Курдюмова В.М. Плиты из стеблей хлопчатника // Плиты и фанера. М.: ВНИПИЭИлеспром.- 1981.- № 3.- С.14-15.

24. Горбач С.П., Арбузов В.В. Прогнозирование свойств прессованных материалов с отходами химической переработки древесины // Изв. ВУЗ. Строительство. 1997. - №5. - С.48-52.

25. Гордиенко В.В., Манжос Ф.М. Обработка древесностружечных плит давлением. М.: Лесная промышленность, 1987. - 120 с.

26. Гордон А., Ферт Р. Спутник химика. М.: Мир, 1976. - 543 с.

27. ГОСТ 10634-88. Плиты древесностружечные. Методы определения физических свойств. Взамен ГОСТ 10634-78; Введ. 19.12.88. - М.: Изд-во стандартов, 1989. - 5с.- (Межгосударственный стандарт).

28. ГОСТ 10635-88. Плиты древесностружечные. Методы определения предела прочности и модуля упругости при изгибе. Взамен ГОСТ 1063578; Введ. 19.12.88.- М.: Изд-во стандартов, 1989. - 5с. -(Межгосударственный стандарт).

29. Даниляк Н.И., Семичаевский В.Д., Дудченко Л.Г., Трутнева И.А. Ферментные системы высших базидиомицетов. Киев: Наукова думка, 1989. - 278 с.

30. Доронин Ю.Г., Мирошниченко С.Н., Шулепов И.А. Древесные пресс-массы (технология производства, применение). М.: Лесная промышленность, 1980.-112с.

31. Дроздова Т.Н., Белова Н.В. Ферментный спектр некоторых грибов семейства Polyporaceae //Микология и фитопатол. -1982.-T.16.-N1.- С.33-36.

32. Елкин В.В., Любавина О.В., Пауков В.Н. Исследование состава фракций лигноуглеводных комплексов методом газожидкостной хроматографии //Химия древесины. 1979. - № 6. - С. 60-64.

33. Ермаков А.И. Методы биохимического исследования растений.- Л.: Аг-ропромиздат, 1987.- 430 с.

34. Заводов Р.В., Иванова М.А. Химия древесины. М.: Лесн. промышленность, 1982. -400 с.

35. Закис Г.Ф. Функциональный анализ лигнинов и их производных. Рига: Зинатне, 1987.-230 с.

36. Запрометов М.Н. Фенольные соединения. Распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука, 1993. - 272 с.

37. Капич А.Н. Биосинтетическая активность дереворазрушающих базидиомицетов при глубинном культивировании // Микология и фитопатология.- 1990. Т.24. -N5. - С.377-384.

38. Капич А.Н. Биосинтетическая деятельность ксилотрофных базидиомицетов: основные особенности и их адаптационная значимость. Автореф. на соиск. учен. степ, д.б.н. Москва. 1993.

39. Клесов A.A. Ферменты целлюлазного комплекса //Проблемы биоконверсии растительного сырья.- М.: Наука, 1986.- С. 93-136.

40. Козаченко A.M., Модлин Б.Д. Общая технология производства ДСП. -М.: Высшая школа, 1990. 145 с.

41. Кочетов Г.А. Практическое руководство по энзимологии. М.: Высшая школа, 1980.- 272 с.

42. Купчинов Б.И., Немогай Н.В., Мельников С.Ф. Технология конструкционных материалов и изделий на основе измельченных отходов древесины. Минск: Навука и тэхнка, 1992. - 119 с.

43. Леонович A.A., Оболенская A.B. Химия древесины. Ленинград: ЛТА, 1989.-88с.

44. Леонтьевский A.A., Головлева Л.А. Организация лигнолитической ферментной системы гриба Panus tigrinus //Биотехнол. защиты окружающей среды. Пущино, 1994. - С.35-36.

45. Леонтьевский A.A. Лигнолитические ферменты гриба Panus tigrinus 8/18: биосинтез, выделение, свойства: Автореф. дис. канд. биол. наук.-Пущино. 1989.

46. Леонтьевский A.A., Мясоедова Н.М., Коломиец Э.И., Головлева Л.А. Индукция лигнолитических ферментов гриба белой гнили Panus tigrinus 8/18. //Биохимия.- 1991.- Вып.9.- С. 1665-1675.

47. Лобанок А.Г., Бабицкая В.Г., Богдановская Ж.Н. Микробный синтез на основе целлюлозы. Минск: Наука и техника. 1988. - 260 с.

48. Мальцева О.В., Леонтьевский A.A., Мясоедова Н.М., Головлева Л.А. Разложение лигнина грибами Phanerochaete chrysosporium F-1764 и Panus tigrinus 144 и роль пероксида водорода в этом процессе //Химия древесины,-1987. -N2. С.84-87.

49. Маслий Б.П. Основные направления развития производства древесных плит в России // Деревообрабатывающая пр-ть. -1999. -№4. -С.2-4.

50. Методы экспериментальной микологии /Под ред. В.И. Билай.- Киев: Наукова думка, 1982.- 538 с.

51. Михайличенко А.Л., Садовничий Ф.П. Древесиноведение и лесное товароведение. -М.: Высшая школа, 1991. 189 с.

52. Модлин Б.Д., Отлев И.А. Производство древесностружечных плит. М.: Лесн. пр-ть, 1983.-203 с.

53. Муратов Г.А., Рахимов М.М., Юлдашев Б.Т. Ферментативный гидролиз волокон коробочек хлопчатника // Прикладная биохимия и микробиология. -1998. Т.34, № 5.- С. 525-528.

54. Мухин В.А. Биота ксилотрофных базидиомицетов Западносибирской равнины.- Екатеринбург: УИФ Наука, 1993.- 231 с.

55. Мясоедова Н.М., Леонтьевский A.A., Головлева Л.А. Утилизация гидролизного лигнина грибом белой гнили Partus tigrinus. //Прикл. биохимия и микробиология.- 1995.- Т.31, №5 С. 505-509.

56. Оболенская A.B., Леонович A.A. Химия древесины. Л.: Наука, 1988. -215 с.

57. Общий практикум по органической химии. /Под ред. А.Н. Коста М.: Мир, 1965. - 700 с.

58. Озолиня Н.Р., Абрамович Ц.Л., Новиков A.B. Биотрансформация технических лигносульфонатов грибом белой шили Lentinus tigrinus 82-4 // Химия древесины.- 1991.- N6.- С. 51-56.

59. Онофрам Л.М. Микробная конверсия отходов агропромышленного комплекса в белковые кормовые добавки. Киев: Наукова думка, 1992.- 158 с.

60. Отливанчик А.Н. Производство ДСП на лесопильных и деревоперераба-тывающих предприятиях. М.: Гослесбумиздат. 1959. -63с.

61. Позднякова H.H., Леонтьевский A.A., Головлева Л.А. Новая лигнолити-ческая оксидаза гриба Panus tigrinus 11 Конференция Новые направления биотехнологии: Тез.докл. 24-26 мая, 1994. -Пущино, 1994. С.37.

62. Ревин В.В., Кадималиев Д.А., Атыкян H.A., Ситкин Б.В., Самуилов В.Д. Свойства пероксидазы гриба Panus tigrinus // Биохимия. 2000. - Т.65, №11.-С. 15-30.

63. Ревин В.В., Кадималиев Д.А., Шутова В.В. Влияние биодеградации древесного сырья грибом Panus tigrinus на физико-механические свойства биопластиков // Рациональное использование лесных ресурсов Сб. на-учн. тр. -Йошкар-Ола, 1999. С.61-62.

64. Ревин В.В., Прыткова Т.Н., Лияськина Е.В., Черкасов В.Д., Соломатов В.И. Свидетельство о депонировании микроорганизма Panus (Lentinus) tigrinus (Bulliard: Fries) Fries, 317. Регистрационный номер BKM F-3616 D присвоен 5 марта 1998 г.

65. Решетникова И. А. Деструкция лигнина ксилотрофными макромицетами. Накопление селена и фракционирование его изотопов микроорганизмами. М.: СП Новинтех-Пресс, 1997. - 202 с.

66. Решетникова И.А., Елкин В.В. Воздействие дереворазрушающих грибов на лигнинуглеводный комплекс березовой древесины при различных значениях pH среды //Микробиология. 1994. - Т. 63, Вып. 6. - С. 10451049.

67. Решетникова И.А., Елкин В.В., Газарян И.Г. Воздействие ферментного препарата пероксидазы гриба Phellinus igniarius на лигноуглеводный комплекс березовой древесины. // Прикладная биохимия и микробиология. 1995.- Т. 31, № 2. - С. 204-206.

68. Рипачек В. Биология дереворазрушающих грибов. М.: Лесная промышленность, 1967.- 275 с.

69. Салин Б.Н., Чемерис М.М., Андреева A.B. Влияние параметров прессования измельченной древесной щепы на свойства плитного материала "термобалит" // Изв. вузов. Строительство. 1997. - №10. - С. 52-55.

70. Салин Б.Н., Чемерис М.М. Слоистые плитные материалы из техногенных отходов переработки древесины и льна. 1. Условия обработки отходов и свойства плитных материалов // Изв. вузов. Строительство. 1995. -№12.-С. 61-64.

71. Семичаевский В.Д. Высшие базидиальные грибы продуценты целлю-лазных комплексов //Биотехнология.- 1988.- Т. 10.- С.97-126.

72. Сенкевич Г.Л., Ридель К. Молочная сыворотка: переработка и использование в агропромышленном комплексе М.: Агропромиздат, 1989.-256 с.

73. Синицын А.П., Черноглазов В.П., Гусаков A.B. Методы изучения и свойства целлюлолитических ферментов // Итоги науки и техники. Серия: Биотехнология. 1990. Т. 25. С.80-93.

74. Соломатов В.И., Абызова Т.Ю., Черкасов В.Д. Биотехнология получения клеев строительного назначения // Изв. вузов. Строительство.- 1999.- № 6.- С. 50-56.

75. Соломатов В.И., Селяев В.П., Черкасов В.Д. Перспективы применения биотехнологии в строительстве // Изв. вузов. Строительство. 1997. -№6. - С.34-38.

76. Соломатов В.И., Черкасов В.Д. Создание строительных биокомпозитов из древесного и другого растительного сырья. Сообщение 1. Теоретические предпосылки и принципы // Изв. вузов. Строительство. 1997а. - № 1-2.-С. 27-32.

77. Феофилова Е.П. Клеточная стенка грибов М.: Наука, 1983.- 248 с.

78. Феофилова Е.П. Современные направления в изучении биологически активных веществ базидиальных грибов // Прикладная биохимия и микробиология. 1998. Т. 34. № 6. С. 597-608.

79. Фенгел Д., Вегенер Г. Древесина (химия, ультраструктура, реакции). -М.: Лесная промышленность, 1988. 512 с.

80. Черкасов В.Д., Бузулуков В.И., Русаков В.А. Вяжущие, модифицированные окисленными лигносульфонатами // Изв. вузов. Строительство.1999.-№4.- С.33-36.

81. Шамаев В.А. Модификация древесины. М.: Экология, 1991. - 127 с.

82. Шапиро Д.К. Практикум по биологической химии / Под ред. A.C. Вечера Минск: Вышэйш. Школа, 1976.- 288 с.

83. Шарков В.И., Куйбина Н.И. и др, Количественный анализ растительного сырья. -М.: Лесная промышленность, 1986. -60 с.

84. Шварцман Г.М., Щедро Д.А. Производство древесностружечных плит. -М.: Лесная промышленность, 1987. -320с.

85. Шуберт В. Биохимия лигнина / Пер с англ. М.: Лесная промышленность, 1968.- 134 с.

86. Экспериментальные методы исследования белков и нуклеиновых кислот /Под. ред. М.А. Прокофьева. М.: Изд-во МГУ, 1985. - 248 с.

87. Юлдашев Б.Т., Рахимов М.М., Рабинович М.Л. Влияние предобработки на эффективность ферментативного гидролиза целлюлозосодержащих отходов хлопководства // Прикладная биохимия и микробиология. -1992. -T.28,N3.-С. 443-448.

88. Adaskaveg J.E., Gilbertson R.L., Blanchette R.A. Washington D.C. Comparative studies of delignification caused by Ganoderma species. // Appl. and environm. microbiol.- 1990.- Y.56, №6.- P. 1932-1943.

89. Aiken B.S., Logan B.E. Degradation of pentachlorophenol by the white rot fungus Phanerochaete chrysosporium grown in ammonium lignosulphonate media // Biodégradation. -1996.- V.7, №3.- P. 175-182.

90. Ander P., Eriksson K.-E. Lignin degradation and utilization by microorganisms.- In: Progress in industrial microbiology. Amsterdam. Elsevier.- 1978.-V. 14.-P. 1-58.

91. Ander P., Marzullo L. Sugar oxidoreductases and veratryl alcohol oxidase as related to lignin degradation // J. Biotechnol. 1997.- V.53, № 2-3. - P. 115131.

92. Aust S.D. Degradation of environmental pollutants by Phanerochaete chrysosporium.// Microbial Ecology.- 1990.- V.20.- P. 197-209.

93. Basaglia M., Concheri G., Cardinali S., Pasti-Grigsby M.B., Nuti M.P. Enhanced degradation of ammonium-pretreated wheat straw by lignocellulolytic Streptomyces spp. // Canadian Journal of Microbiology.- 1992,- V.38, №10.-P. 1022-1025.

94. Bateman D., Millar R. Pectic enzymes in tissue degradation // Ann. Phyto-patol.- 1966.- V.4, №1.- P. 119-128.

95. Boddy L. Development and function of fungal communities in decomposing wood //In: Carroll D.T., Wicklow D.T. (eds). The Fungal Community.- New York: Marcel Dekker, Inc., 1991. P. 749-782.

96. Boominathan K., Balachandra D.S., Randal T.A., Reddy C.A. Nitrogen-deregulated mutants of Phanerochaete chrysosporium a lignin-degrading basidiomycete 11 Arch. Microbiol.-1990.-V. 153, №6.- P. 521-527.

97. Boominathan K., Reddy A.C. Fungal degradation of lignin: biotechnological applications // Handbook of Appl. Mycol. V.4 Fungal Biotechnol.- New York, 1992.- P. 763-822.

98. Botello por J.I., Molina M.J., Rodriquez F. Incorporation de lignina a la síntesis de resinal fenol-formaldehido // Invest, y tech. Pap. -1998.- 35, №137.-C.515-535.

99. Bourbonnais R., Paice M.G., Freiermuth B., Bodie E., Borneman S. Reactivities of various mediators and laceases with kraft pulp and lignin model compounds. // Appl. Environ. Microbiol.- 1997.- V. 63, № 12.- P. 4627-4632.

100. Blanchette R. A. Degradation of the lignocellulose complex in wood. // Can. J. Bot. -1995. -V.73, № 1. P. 999-1010.

101. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the prinapll of protein-dye binding // Anal. Biochemistry, -1976.-vol.72. -P.248-254.

102. Buswell J.A., Odier E. Lignin biodegradation. // CRC Crit. Rev. Biotechnol.-1987.-V. 6. -P. 1-60.

103. Cancel A.M., Orth A.B., Tien M. Lignin and veratryl alcohol are not inducers of the ligninolytic system of Phanerochaete chrysosporium. I I Appl. Environ. Microbiol.- 1993.- V.59, № 9. P. 2909-2913.

104. Cornelius G.H., Pott G. T. Process for preparing cellulosic composites // CR and DOB.V. 1998. - №9. - P.36-39.

105. Crawford D.L. The role of actinomycetes in the decomposition of lignocellu-lose //FEMS Symp.- 1986.- V.34.- P.715-728.

106. Chen C.-L., Chang H., Kirk T.K. Carboxillic acids produced through oxidative cleavage of aromatic rings during degradation of lignin in spruse wood by Phanerochaete chrysosporium // J. Wood Chem. Technol.-1983.- V.3.-P.35-57.

107. Deguchi T. Nylon biodégradation by lignin-degrading fungi // Appl. and Environ. Microbiology, 1997. -V.63.-P. 329-331.

108. De Jong E., Casemier A.E., Field J.A., de Bont J.A.M. Physiological role of chlorinate aryl alcohols biosynthesized de novo by the white rot fungus Bjer-kandera sp. strain BOS55 // Appl. and Environm. Microbiol.-1994.- V.60, № l.-P. 271-277.

109. Dix N.J., Webster J. Fungal ecology- London: Chapman and Hall, 1995.- 549 P

110. Duran N., Ferraz A., Mansilla H. Piopulping a new view on wood delignifi-cation // Agr. Biol, and Technol.- 1990.- V.33, №2.- P. 295-315.

111. Eriksson K.-E.L., Blanchette R.A., Ander P. Microbial and enzymatic degradation of wood and wood components. Berlin: Springer-Verlag, Hedelberg, Fed. Rep. Germany, 1990. - 407 p.

112. Eriksson K.-E.L., Goodel E. Pleiorotropic mutant of the wood rotting fungus Polyporus adustus lacking cellulase, mannase and xylanase //Can. J. Micro-biol.- 1974.- V.20, №3.- P. 371-378.

113. Evans C.S. Lignin degradation //Progress Biochemistry.- 1987.-V.22, № 4.-P. 102-105.

114. Faison B.D., Kirk T.K. Relationship between lignin degradation and oxygen species by Phanerochaete chrysosporium I I Appl. Environ. Microbiol.- 1983.-V. 46, №5.-P. 1140- 1146.

115. Glenn J.K., Akileswaran L., Gold M.H. Mn(II) oxidation is the principal function of the extracellular Mn-peroxidase from Phanerochaete chrysosporium //Arch Biochem. Biophys.- 1986.- V.251.- P. 688-696.

116. Gold M.H., Alie M. Molecular biology of the lignin-degrading basidiomycete Phanerochaete chrysosporium II Microbiol. Rev.- 1993.- V. 57, № 3.- P. 605622.

117. Gutiérrez A., del Rio J.C., Martinez M.J., Martinez A.T. Fungal degradation of lipophilic extractives in Eucalyptus globulus wood // Appl. and Environ. Microbiology. 1999. -V.65,№4.-P. 1367-1371.

118. Haemmerli S.D., Frechter A., Leisola M. Lignin biodégradation: new developments //8th Int. Biotechnol. Symp., Paris.-1988.- V.2.- P. 1030-1041.

119. Haemmerli S.D., Leisola M.S.A., Fiechter A. Polymerisation of lignins by ligninases from Phanerochaete chrysosporium II FEMS Microbiol. Lett.-1986.-V. 35.-P. 33-36.

120. Hammel K.E. Fungal degradation of lignin. In: Plant litter quality and decomposition./ Eds. G. Cadisch and K.E. Giller.- United Kingdom: CAB International., 1997.- P.33-45.

121. Hammel K.E., Kalyanaraman B., Kirk T.K. Substrate free radicals are intermediates in ligninase catalysis // Proceedings of the National Academy of Sciences (USA).- 1986.- V.83, N11.- P. 3708-3712.

122. Harvey P.J., Palmer J.M. Oxidation of compound by ligninase. //J. Biotech-nol.-1990.- V.13, N2,3.- P.169-179.

123. Harvey P.J., Palmer J.M., Schoemaker H.E., Dekker H.L., Wever R. Pre-steady-state kinetic study on the formation of Compound I and II of ligninase // Biochem. Biophys. Acta.- 1989,- V.994.- P.59-63.

124. Harvey P.J., Schoemaker H.E., Bowen R.M., Palmer J.M. Single-electron transfer processes and the reaction mechanism of enzymic degradation of lignin // FEBS Lett.- 1985.- V.183.- P. 13-16

125. Harvey P.J., Schoemaker H.E., Palmer J.M. Veratryl alcohol as a mediator and the role of radical cations in lignin biodégradation by Phanerochaete chrysosporium II FEBS Lett.- 1986.- V.195.- P. 242-246.

126. Higuchi T. Biochemistry of lignin and its potential application // Proc. 4th Intern. Symp. Wood Pulping Chem. Paris.- 1987.- V.l.- P. 133-138.

127. Hudson H.J. Fungal biology.- Cambridge: Cambridge University Press, 1986 298 p.

128. Hüttermann A., Kharazipour A., Haars A., Nonninger K. Ersetzt ein biologisches bindemittel herkömmliche kunst harzleime // HK Holz und Nobelind.-1990.- 25, №11.- C.1215-1216, 1218-1219.

129. Iiyama K., Suzuki S., Tuyet Lam T.B. 5-Hydroxyguaiacyl nuclei in native lignin // Proceedings of the 41st lignin symposium, Nagoya Japan, 1996.- Oct. 3-4.-P. 37-40.

130. Janse B.J.H., Gaskell J., Akhtar M., Cullen D. Expression of Phanerochaete chrysosporium genes encoding lignin peroxidase, manganese peroxidases and glyoxal oxidase in wood // Appl. Environ. Microbiol.- 1998.- V. 64, №9.- P. 3536-3538.

131. Johansson M.A. Comparison between the cellulolytic activity of white and brown rot fungi // Physiol, plant. 1966. - V.19, №5.- P. 709-722.

132. Karhunen Е., Niku-Paavola М.Е. et al. A novel combination of prosthetic group in a fungal laccase, PQQandtwo copper atoms//FEB S Lett.- 1990.-V. 267, N1.- P.6-8.

133. Khindaria A., Barr D.R., Aust S.D. Lignin peroxidases can also oxidize manganese. //Biochemistry.- 1995.- V.34, N 23.- P. 7773-7779.

134. Kirk Т.К. Lignin-degraded enzymes.// Phil. Trans. R. Soc. Lond. 1987.-V.321.-P. 461-474.

135. Kirk Т.К. Prinsiples of lignin degradation by white-rot fungi //The Ekman Days: Int. Symp. Wood and Pulping Chem. (Stockholm, June 9-12, 1981).-V.3.- P.66-70.

136. Kirk T. K., Chang H.-M. Potential application of bioligninolytic systems. // Enzyme Microb. Technol. -1981.- V.3 P. 189-196.

137. Kirk Т.К., Farrell R.L. Enzymic combustion. The microbial degradation of lignin //Ann. Rev. Microbiol.-1987.-V.71.- P.465-505.

138. Kirk Т.К., Shimada M. Lignin biodégradation: the microorganism involved and physiology and biochemistry of degradation by white-rot fungi /Яn: Biosynthesis and biodégradation of wood components. Higuchi T. ed. AP Inc., 1985- P.579-605.

139. Kuhnigh T., Borst E.-M., Ritter A., Kampfer P., Graf A., Konig H., Degradation of lignin monomer by the hindgut flora of xylophagous termites //Syst. and Appl. Microbiol.- 1994.-V. 17, N1. P.76-85.

140. Leontievsky A., Mishurtsovs Z., Golovleva L. Ligninolitic activity of the fungus Panus tigrinus 8/18 during submerged and solid cultivation //VVP Symp.- 1988.- N88.- P.96-102.

141. Madan P.S. The microbial conversion of different agricultural residues and its biological efficiency//Acta biotechnol., 1995.- V. 15, № 1.- P.131-135.

142. Malonev T.V. Modern particle board and dry-process fiber board manufacturing. M.: Wood Industry, 1982.- 414 p.

143. Marita J.M., Ralph J., Hatfield R.D., Chappie C. NMR characterization of lignins in arabidopsis altered in the activity of ferulate 5-hydroxylase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1999.- V.96, №22.- P. 12328-12332.

144. Masanobu K. Pectolitic enzymes of Basidiomycetes // J. Agr. Chem. Soc. Jap.- 1973,- V.47, №9.- P. 523-527.

145. Mechra R.N., Mechra A.R. Lignosulphonates // Colourage.-1993.-V.40, №6.-P. 56-57.

146. Milstein O., Yde B., Huttermann A., Hansen T. Enzymatic oxydative transformation of lignin related compounds // 2nd Eur. Workshop. Lignocellul. And Pulp. (EWLP 92).- Grenoble, 1992.- P. 27-28

147. Otjen L., Blanchette R.A. A discussion of microstructural changes in wood during decomposition by white rot basidiomycetes //Can. J. Bot.-1986.-V.64.-P.905-917.

148. Palmer I. M., Schoemaker H.E. The role of peroxidases radial cations and oxygen in the degradation of lignin//Philos. Trans. Roy Soc. London. 1987. - Vol. A321, №1561. - P. 495-505.

149. Paszczynski A., Huynh V-B., Crawford R. Comparision of ligninase-1 and peroxidase-2 from the white-rot fungus Phanerochaete chrysosporium //Arch. Biochem. Biophys.-1986.-V. 244, N 2.- P.750-756.

150. Pedreno M., Ros Barcelo A., Sabater F., Munoz R. Control by peroxidase activity involved lignification // Plant Cell Physiol.- 1989. -V.30, N2.- P. 237241.

151. Pickard M.A., Roman R., Tinoco R., Vazquez-Duhalt R. Polycyclic aromatic hydrocarbon metabolism by white rot fungi and oxidation by Coriolossis gal-lica UAMH 8260 laccase I I Appl. and Environ. Microbiol.- 1999,- V. 65, № 9.- P. 3805-3809.

152. Pirhonen I., Hatakka A.I. Cellulolytic activity of some wood-rotting basidiomycetes //VTT Symp.- 1985.- № 60.- P. 35-46.

153. Raghukumar C., D^Souza T.M., Thorn R.G., Reddy C.A. Lignin-modifying enzymes of Flavodon flavus, a basidiomycete isolated from a coastal marine environment // Appl. and Environ. Microbiol.- 1999.- V. 65, № 5.- P. 21032111.

154. Reid I.D. Fate of residual lignin during delignification of kraft pulp by Trametes versicolor //Appl. Environ. Microbiol. 1998.- Vol. 64, No. 6 P. 2117-2125.

155. Rowell R.M., Sanadi A.R., Caulfield D.F., Jacobson R.E. Utilization of natural fibers in plastic composites: problems and opportunities. // Lignocellulo-sic-plastics composites. /Eds. A.L.Leâo, F.X. Carvalho, E. Frollini.- 1997.- P. 23-51.

156. Rowell R.M. A new generation of composite materials from agro-based fiber. // Proceeding of the 3d int. conference on frontiers of polymers and advanced materials, Kuala Lumpur, 1995. P. 659-665.

157. Ruel K., Joseleau J. Involvement of an extracellular glucan sheath during degradation of Populus wood by Phanerochaete chrysosporium II Appl. and Environ. Microbiol.- 1991.- V. 57, № 2.- P. 374-384.

158. Song H.-G. Biodégradation of aromatic hydrocarbons by several white-rot fungi // The Journal of Microbiology.- 1997.- Vol.35, №1.- P. 66-71.

159. Stevanovic Janezic T., Bujonovic B., Gelineo A. Transformation of the soluble part of krafit lignin by a microorganism screened from a pulp mill // J. Serb. Chem. Soc. 1993.-№10.- P.751-758.

160. Suzuki S., Izumi A., Ohi H., Kuroda K., Yamaguchi A. Structural analysis of alkaline cooked lignin by pyrolysis-gas chromatography. Evaluation of uniformity in delignification of beech wood chips // Kami Pa Gikuoushi.- 1994.-V.48, №9.- P. 1212-1220.

161. Suzuki S., Izumi A., Ohi H., Kuroda K., Yamaguchi A. Structural analysis of alkaline cooked lignin by pyrolysis-gas chromatography. II. Analysis of decayed wood lignin // Kami Pa Gikuoushi.- 1995.- V.49, №4.- P. 735-745.

162. Temp U., Eggert C., Eriksson K.-E.L. A small-scale method for screening of lignin-degrading microorganisms //Appl. and Environ. Microbiol.- 1998.- V. 64, № 4.- P. 1548-1549.

163. Temp U., Eggert C. Novel interaction between laccase and cellobiose dehydrogenase during pigment synthesis in the white rot fungus Pycnoporus cin-nabarinus // Appl. and Environ. Microbiol.- 1999.- V. 65, № 2.- P. 389-395.

164. Tien M., Kirk T.K. Lignin-degrading enzyme Phanerochaete chrysosporium: purification, characterisation and catalytic prorerties of a unique H202-requiring oxygenase //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1984.-V.81.- P.2280-2284.

165. Tien M. Properties of ligninase from Phanerochaete chrysosporium and their possible application //CRC Critical Rev. Microbiol.-1987.-V. 15.- P. 141-168.

166. Truter P., Pizzi A., Vermaas H. Gold-setting wood adhesive from kraft hardwood lignin // J. Appl. Polym. Sci. -1994.- V.51, №7.- P. 1319-1322.

167. Van Soest P.J. The nutritional ecology of the ruminant .-NY: Cornell University Press. Ithaca, 1994.- 476 p.

168. Waldner R., Leisola M.S.A., Fiechter A. Comparision of ligninolitic activités of selected white-rot fungi // Appl. Microbiol, and Biotechnol.-1988.- V.29, №4.- P. 400-407.

169. Wariishi H., Dunford H., Gold M. Reaction of lignin peroxidase from compound I and II with veratryl alcohol //J. Biol. Chem. -1991.- V.266.-P.20694-20699.

170. Yde B. Enzymatic modification of lignin by use of oxidoreductases // 2nd Eur. Workshop. Lignocellul. and Pulp. (EWLP 92).- Grenoble, 1992.- P. 25-26.

171. Yong H.-D., Kim K.-J., Maeng J.S., Han Y.-H., Jeong I.-B., Jeong G., Kang S.-O., Hah Y.C. Single electron transfer by an extracellular laccase from the white-rot fungus Pleurotus ostreatus //Microbiology.- 1995,- 141, N2.- P.393-398.

172. Zadrazil F., Brunnert H. The influence of ammonium nitrate supplementation on degradation and in vitro digestibility of straw colonized by higher fungi // European J. Appl. Microbiol. Biotechnol.- 1980.- V. 9.- P. 37- 44.

173. Zhao J., Kwan H.S. Characterization, molecular cloning, and differential expression analysis of laccase genes from the edible mushroom Lentinula edo-des II Appl. and Environ. Microbiol.- 1999.- V. 65.- P. 4908-4913.