Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан

Идрисов, Айрат Минсагитович

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан
ВАК РФ 03.00.19, Паразитология

Автореферат диссертации по теме "Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан"

На правах рукописи

ЭХИНОКОККОЗ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В РЕСПУБЛИКЕ

ТАТАРСТАН (ЭПИЗООТОЛОГИЯ, МЕРЫ БОРЬБЫ)

Специальность 03.00.19 -Паразитология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Н.-Новгород - 2004

Работа выполнена на кафедре паразитологии и инвазионных болезней в Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана

Научный руководитель доктор ветеринарных наук,

Профессор М.Х. Лутфуллин

Официальные оппоненты: д.вет.н., профессор И.А.Архипов

к.вет.н., доцент О.Л.Куликова

Ведущая организация: ГУ Научно-исследовательский ветеринарный

Институт Нечерноземной зоны РФ (НИВИ НЗ РФ)

Защита диссертации состоится « марта 2004 г. в 14 часов на заседании диссертационного совета Д.220.047.02 в Нижегородской государственной сельскохозяйственной академии (603107, Н. Новгород, проспект Гагарина 97).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Нижегородской государственной сельскохозяйственной академии.

Автореферат разослан « ff » февраля 2004 г.

Ученый секретарь диссертационного Совета, доктор биологических наук, профессор

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность проблемы. Эхинококкоз селькохозяйственных животных имеет широкое распространение - во многих странах мира, в том числе в Российской Федерации (СИ. Исаков, 1982; А.И. Кротов, 1985; А.К. Журавец, 1999; С .А. Кенжебаев, 2000; P. Zlatibor, 1979; Н. Worbes, 1992; Н. Cohen et al., 1997) и наносит значительный экономический ущерб, который складывается от снижения количества и качества животноводческой продукции и затрат на проведение лечебно-профилактических мероприятий.

Изучением гельминтологической ситуации в Республике Татарстан занимались многие исследователи (В.Т. Эвранова, 1942, 1957; М.Х. Лутфуллин, М.Д. Корнишина, 1995; А.Х. Волков, 1997, 1999; М.Х. Лутфуллин, Ф.М. Шакурова и др., 1997; М.Х. Лутфуллин, Д.Г. Латыпов и др., 1999). Однако, ряд вопросов, касающихся эпизоотологии, совершенствования прижизненной диагностики, а также лечения ларвального эхинококкоза крупного рогатого скота требуют дальнейшего изучения.

При прижизненной диагностике эхинококкоза, кроме учета эпизоотических данных и симптомов болезни, большое значение придают серологическим методам диагностики — реакции гемагглютинации, латекс агглютинации (РЛА), реакции флуоресцирующих антител (РФА), иммуноферментному анализу (ИФА) и др. Однако в практических условиях наиболее удобная в применении внутрикожная аллергическая реакция Кацони.

По мнению большинства авторов (А.А. Дорофеев, 1926; П.М. Преображенский, 1926; Ф.Р. Шибрик и др., 1926; П.П. Вибе, 1963; В.И. Захаров, 1969), диагностическая эффективность реакции Кацони достигает 87 - 100%. Вместе с тем, по мнению других исследователей (В.А. Боровский, И.С. Бикташев и др., 1969; В.Т. Рамазанов, 1969 и др.), эта реакция выявляет до 32% неспецифических показаний на эхинококкоз и у здоровых животных. По данным этих авторов, реакция Кацони с эхинококкозным аллергеном дает также групповые реакции при наличии в организме животных других родственных гельминтов (цистицеркоз овец, ценуроз, кишечные тениидозы).

Разработка консервативной терапии эхинококкоза является одной из самых важных задач современной клинической гельминтологии. В настоящее время продолжаются интенсивные поиски лечебных препаратов при этой болезни. По данным некоторых исследователей (А.И. Кротов, О.Б. Милонов, 1980; В.И. Джабарова, А.И Кротов, 1987; А.А. Лурье, А.М. Щербаков, 1987; В.Т. Рамазанов, Я.М. Кереев, 1988; И.Ю. Геллер, 1989; Я.М. Кереев, 1994), ряд антгельминтиков показали обнадеживающие результаты при терапии ларвального эхинококкоза. Однако дальнейшее изыскание средств лечения этого опасного зооноза

БИБЛК01 С.П«ер< 09 ЮО

Поэтому изучение распространения ларвального эхинококкоза у крупного рогатого скота в РТ, изыскание более эффективных методов диагностики и лечения этого гельминтоза, остается актуальной проблемой.

Цель и задачи- исследований. Целью нашей работы является изучение эпизоотологии эхинококкоза крупного рогатого скота в Республике Татарстан, усовершенствование диагностики и лечения инвазированных животных. Для реализации указанной цели были поставлены следующие задачи:

- провести мониторинг эпизоотической ситуации по эхинококкозу крупного рогатого скота в Республике Татарстан за 1998-2002 гг;

- усовершенствовать прижизненную диагностику эхинококкоза крупного рогатого скота в реакции Кацони;

- .провести скрининг различных антгельминтиков in vitro на псотосколексах эхинококка;

- воспроизвести экспериментально эхинококкоз у кроликов и изучить дарвоцидное действие некоторых антгельминтиков при этом заболевании;

- изучить динамику гематологических и иммунобиологических

показателей у спонтанно инвазированного эхинококкозом крупного

рогатого скота после введения им авертина, аверсекта-2 и панакура.

Научная новизна. Впервые проведен мониторинг эпизоотической

ситуации по ларвальному эхинококкозу крупного рогатого скота в Республике Татарстан за1998-2002 гг.

Предложена методика получения эхинококкозного аллергена для реакции Кацони. Изучена специфичность и диагностическая эффек!ивнос1ь аллергической пробы при ларвальном эхинококкозе крупного рогатого cKoia.

- Проведения скрининга 12 препаратов in vitro на протосколексах эхинококка и отобраны наиболее эффективные антгельминтики.

Впервые изучена лечебная эффективность авертина, аверсекта-2 и панакура. сгранулята при ларвальном эхинококкозе кроликов и крупного рогатого скота.

Практическая ценность. По данным ветеринарно-санитарной экспертизы изучена эпизоотическая ситуация по эхинококкозу крупного рогатого скота в Республике Татарстан, определены зоны с различной степенью экстенсивности инвазии.

Разработан и предложен усовершенствованный эхинококкозный аллерген для реакции Кацони, который целесообразно применять в целях сценки эпизоотического состояния и прогнозирования данного гельминтоза.

/Для лечения эхинококкоза крупного рогатого скота рекомендуется использовать препарагявертин.

Диагностику эхинококкоза кроликов можно проводить с помощью аппарата для УЗИГ"

Внедрение • исследований. Приготовленный аллерген для реакции Ка'цони испытан и внедрен в отдельных и хозяйствах Республики Татарстан,

с целью изучения эпизоотической ситуации по эхинококкозу крупного рогатого скота.

На основании проведенных исследований разработаны следующие нормативно-технические документы:

1. Временная инструкция по изготовлению и контролю эхинококкозного аллергена для реакции Кацони. - Утв. ГУВ КМ РТ 22 декабря 2003 г.

2. Временное наставление по применению эхинококкозного аллергена в реакции Кацони для диагностики эхинококкоза крупного рогатого скота. - Утв. ГУВ КМ РТ 22 декабря 2003 г.

Результаты проведенных исследований, сформулированные в диссертации, внедрены в учебный процесс на кафедре паразитологии Казанской государственной академии ветеринарной медицины.

Апробация работы. Основные материалы диссертации доложены и обсуждены: на Всероссийской научно-производственной конференции-по актуальным проблемам ветеринарии и зоотехнии (Казань, 2002); на объединенной сессии координационного совета по ветеринарной гельминтологии (Москва, 2002); на Международной, научно-производственной конференции по актуальным проблемам агропромышленного комплекса (Казань, 2003); на научно-техническом совете КГАВМ (Казань, 2003); на расширенном заседании сотрудников кафедр паразитологии, эпизоотологии, анатомии, патологической анатомии,, гистологии, хирургии, ветеринарно-санитарной экспертизы и фармакологии (Казань, 2003).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан (распространение);

2. Усовершенствованный эхинококкозный аллерген — специфичный и эффективный препарат для прижизненной диагностики эхинококкоза крупного рогатого скота;

3. Сколексоцидное действие различных препаратов in vitro;

4. Патогенное влияние Echinococcus granulosus larva на организм кроликов. Ультразвуковая диагностика;

5. Лечебная эффективность некоторых антгельминтиков при ларвальном эхинококкозе кроликов и крупного рогатого скота.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 8 научных работ, и получено удостоверение на рационализаторское предложение (№ 441 от 30.06.03.).

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 141 страницах компьютерного текста, иллюстрирована 23 таблицами и 7 рисунками. Включает введение, обзор литературы, результаты собственных исследований, обсуждение, выводы, практические предложения и [Приложения. Список использованной литературы включает 214 источников (в том числе 72 и иностранных авторов).

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 1. Материалы и методы

Работа выполнена на кафедре паразитологии Казанской осударственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана, Казанском и Нурлатском мясокомбинатах, в отдельных хозяйствах и районах Республики Татарстан (Р1) в 2001-2003 гг.

Проведен ретроспективный статистический анализ эпизоотической ситуации по эхинококкозу крупного рогатого скота в районах Республики Татарстан по материалам ветеринарной отчетности, а также по результатам собственных исследований.

При изыскании оптимальной технологии получения эхинококкозных аллергенов для реакции Кацони были применены как цельные жидкости из эхинококкозных пузырей, ~ак и разные ее разведения (1:1, 1:3, 1:5, 1:10, 1:25, 1:50 и 1:100). Разбавителями служили физиологический раствор (0,85% NaCl) и глицерин.

Эхинококкозный аллерген крупному рогатому скоту вводили внутрикожно, в области средней трети шеи в дозе 0,2 мл. Оценку результатов реакции Кацони проводили сопоставлением толщины кожной складки до и спустя 2-3 часа после введения препарата. После убоя животных проводили ветеринарно-санитарную экспертизу их туш и внутренних органов, определяя при этом наличие личиночных и половозрелых форм других паразитов, а также каких-либо других изменений в них.

В экспериментах in vitro испытали сколексоцидное действие 12 поепаратов. Скрининг антгельминтиков проводили по методу Я М. Кереева (1999) в нашей модификации. Действие препаратов изучали на предметных С1еклах с лунками, в которые помещали 1,0, 0,1, 0,08, 0,05 и 0,01%-ные разведения анпельмитиков

Для получения яиц цестоды Е. granulosus использовали четырех беспородных щенков, которых заразили перорально в дозе (по 20000±500 протосколексов), а спустя 70 дней после заражения, их эвтанзировали. Полученные из просвета тонкого кишечника эхинококки, после 2-х недельного, выдерживания их в холодильнике служили материалом для заражения. .,

Контроль эффективности заражения кроликов проводили путем внутрикожного введения эхинококкозного аллергена (реакция Кацони), исследованием их сыворотки в ИФА и проведением ультразвукового исследования (УЗИ) через 5 месяцев после введения кроликам яиц , эхинококков.

ИФА ставили методом непрямого твердофазного иммуноферментного анализа по A. Voller et al (1976), для чего использовали эхинококкозный антиген. Ультразвуковое исследование печени проводили эхотомоскопом ЭТОС-МО-1.

При изучении гематологических показателей у кроликов и крупного рогатого скота из цельной крови делали мазки и окрашивали их по методу Романовского-Гимзы. Количество (эритроцитов и лейкоцитов) - определяли в камере Горяева, а лейкоформулу - по двухпольному методу Филипченко (П.С. Ионов и др., 1957). Количество эозинофилов подсчитывали по методике СМ. Бакмана (1958). Содержание гемоглобина в крови определяли по методу Сали. Скорость оседания эритроцитов (СОЭ) устанавливали по способу Панченкова (А.А. Кудрявцев, Л.А. Кудрявцева, 1974). Содержание общего белка определяли рефрактометрическим методом с помощью ИРФ — 22 (В.Я. Антонов, П.Н. Блинов, 1971), уровень белковых фракций сыворотки крови - нефелометрическим методом на фотоэлектроколоримитре (ФЭК).

Т-лимфоциты выявляли методом спонтанного розеткообразования с эритроцитами барана, а В-лимфоциты - реакцией комплиментарного розеткообразования с эритроцитами барана, образующими иммунные комплексы с противоэритроцитарными антителами и комплементом (М.Х. Лутфуллин, Н.А. Лутфуллина, 1996).

Проведено 1426 аллергических, 95 серологических, 158 гематологических, иммунологических и биохимических исследований и 977 неполных гельминтологических вскрытий.

Статистическую обработку цифровых данных проводили по разработанным программам в Microsoft Exsel.Достоверность установили по методу Стьюдента-Фишера (И.А. Плохинский, 1970).

2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 2.1 Эпизоотологическая ситуация по эхинококкозу крупного рогатого скота в Республике Татарстан

Проведен мониторинг эпизоотической ситуации по эхинококкозу крупного рогатого скота на основании 10 мясокомбинатов республики за 1998-2002 годы. Экстенсинзазированность (ЭИ) крупного рогатого скота эхинококкозом по данным ветеринарно-санитарной экспертизы на мясокомбинатах представлена на рисунке 1.

Из рисунка видно, что ЭИ крупного рогатого скота эхинококкозом в 1998 году по республике составила 5,0%. В 1999 году этот показатель увеличился до 9,3%. В последующие годы происходило, постепенное снижение заболеваемости и в 2000 году ЭИ составляла 6,1%, в 2001 году -4,6%, а в 2002 году — 3,3% от убойного поголовья.

По распространению ларвального эхинококкоза среди крупного рогатого скота республику можно разделить на три условные зоны: это зоны слабой, умеренной и сильной инвазированности.

В слабо инвазированную зону вошли все 11 северных районов республики (Арский, Атнинский, Балтасинский, Кукморский, Мамадышский, Сабинский, Тюлячинский, Высокогорский, Агрызский, Елабужский и Менделеевский), один район Заволжья (Апастовский) и один юго-восточный район (Бугульминский). В этой зоне инвазированность крупного рогатого скота составляла 0,4 - 3,0% от убойного поголовья.

Умеренная инвазированная зона включает пять Заволжских районов (Камско-Устинский, Зеленодольский, Кайбицкий, Верхне-Услонский и Дрожжановский), пять восточных районов (Актанышский, Мензелинский, Муслюмовский, Азнакаевский и Бавлинский), три центральных района (Лаишевский, Рыбно-Слободский и Нижнекамский) и один южный район (Спасский). В этой зоне ЭИ крупного рогатого скота в 1ечение последних пяти лет колебалась от 3 до 10%.

В сильно инвазированную эхинококкозом зону вошли 16 районов республики. Это 13 районов Закамья (Алькеевский, Аксубаевский, Нурлатский, Чистопольский, Новошешминский, Черемшанский, Альметьевский, Заинский, Лениногорский, Сармановский, Тукаевский, Ютазинский), два района Заволжья (Буинский и Тетюшский) и один центральный район (Пестречинский). По данным мясокомбинатов республики в этой зоне ЭИ крупного рогатого скота эхинококкозом варьировала от 10 до 50,3%.

2.2 Специфичность и диагностическая эффективность реакции Кацони при эхинококкозе крупного рогатого скота

Специфичность и диагностическую эффективность реакции Кацони изучали на Казанском и Нурлатском мясокомбинатах на 664 головах крупного рогатого скота. Перед убоем животных разделили на 9 групп. В первой группе крупному рогатому скоту, в количестве 99 голов вводили цельную эхинококкозную жидкость, во второй (120 голов) и в третьей (82гол) эхинококкозную жидкость соответственно в разведении 1:1 и 1:3 физиологическим раствором, в четвертой (106 гол.) эхинококкозную жидкость в разведении 1:3 (1 часть эхинококкозной жидкости, 1,5 части физиологического раствора и 1,5 части глицерина), в пятую (71 гол) — в разведении 1:5, в шестую (51 гол) - в разведении 1:10, в седьмую (61 гол) —в разведении 1:25, в восьмую (43 гол) - в разведении 1:50 и в девятую (31 гол) - в разведении 1:100.

При использовании цельной эхинококкозной жидкости утолщение кожной складки (УКС) у здоровых животных (55 гол) колебалось в пределах от 3 до 8 мм. При эхинококкозной инвазии (17 гол) УКС достигало 10 — 28 мм. У инвазированных фасциолами животных (6 гол) этот показатель был в пределах 6-17 мм, дикроцелиями (6 гол) — 3-7 мм, при абсцессе печени (8 гол) и при плеврите (7 гол) УКС составило 3-6 мм.

Аналогичные результаты были получены нами при разведении эхинококкозной жидкости физиологическим раствором в соотношении 1:1. При этом у здоровых животных (85 гол) УКС колебалось в пределах 3-7 мм, у инвазированных эхинококками (12) - 9-24 мм, фасциолами (8 гол) — 5-15 мм, дикроцелиями (3 гол) - 3-7 мм, у больных с абсцессом печени (7 гол) и плевритом (5 гол) - 2-6 мм.

При разведении эхинококкозной жидкости в соотношении 1:3 нами было отмечено заметное повышение специфичности реакции Кацони. При этом у здоровых животных (52 гол) УКС не превышал 2 мм. У крупного рогатого скота больного эхинококкозом (7 гол) УКС колебалось в пределах ст 5 до 12 мм. У инвазированных фасциолами (7 гол), дикроцелиями (4 гол)

животных, а также больных абсцессами печени (4 гол) и плевритами (8 гол) УКС не превышало 2 мм.

Наиболее специфичным и, диагностически эффективным оказался аллерген из эхинококкозной жидкости в разведении 1:3 с физиологическим раствором и глицерином (1 часть эхинококкозной жидкости, 1,5 части физиологического раствора и 1,5 части глицерина). При таком разведении у здоровых (65 гол), инвазированных фасциолами (10 гол) и дикроцелиями (7 гол) животных, а также у больных абсцессами печени(6 гол) и плевритом (7 гол) УКС не превышало 2 мм. У инвазировашюго эхинококками крупного рогатого скота (11 гол) УКС колебалось в пределах 7-14 мм.

-При более высоких разведениях эхинококкозной жидкости резко снижалось ее диагностическая эффективность. Так, при разведении 1:5 у больных эхинококкозом животных УКС составило 3-6 мм, при разведениях 1:10; 1:25; 1:50 и 1:100 этот показатель был равен 2-4 мм, 2-3 мм, 1-3 мм и 1-2 мм соответственно.

Таким образом, исследования показали, что реакция Кацони с цельной зхинококкозной жидкостью и при разведении ее физиологическим раствором в соотношении 1:1 дает позитивные неспецифические показания у животных тгои фасциолезе, дикроцелиозе, абсцессах печени и плевритах.

Наиболее специфичным и диагностически эффективным является аллерген из эхинококкознсй жидкости при разведении ее в соотношении 1:3 с физиологическим раствором и глицерином.

В 2002 году провели выборочное аллергическое исследование 475 голов крупного рогатого скота в 10 хозяйствах Черемшанского района. При этом было выявлено 219 голов (46,1%) положительно реагирующих на эхинококкозный аллерген животных. Наиболее сильно были иивазированы ьживогные в хозяйствах «Ватан» (4), «Фрунзе» (9), «Чапаева» (7), «Черемшанский» (2), где реагировало соответственно 68,1%, 56,6%, 55%, и 55% коров (рис. 2). Экстенсинвазированность в таких хозяйствах как «К. Маркса» (1), «Казанка» (3), «Ордженикидзе» (5), «Тукая» (6), «Шешма» (8) и «Красный Октябрь» (10) составляла соответственно 43,9; 47,6; 37,3; 48,2 и 34,2%.

Анализ результатов убоя крупного рогатого скота по данным Бугульминского мясокомбината за 2002 год показал аналогичную Закономерность.

Таким образом, используя реакцию Кацони с усовершенствованным эхинскоккозным аллергеном можно изучить и прогнозировать эпизоотическую ситуацию по ларвальному охинококкозу крупного рогатого скота.

123458709 1(1

хозяйства

----экстенсинвазированность при убое скота

-результаты аллергического исследования

Рис. 2. Зараженность крупного рогатого скота ларвальным эхинококкозом в хозяйствах Черемшанского района по данным убоя и аллергического исследования

2.3 Скрининг антгельминтиков на сколексах эхинококка in vitro

Результаты сколексоцидного действия 12- антгельминтиков в 1% растворе показали, что препараты альбакс, авертин, аверсект-2, клозантекс и панакур начинают действовать на сколексы спустя 30 минут, вермитан и куралис через 2 часа, готперазин - 4, тстрамизол — 6, левамизол — 9, фасковерм и цидектин спустя 11 часов.

В дальнейших своих исследованиях нами были испытаны наиболее сильно действующие на сколексы эхинококка антгельминтики, такие как авертин, аверсект-2, панакур, альбакс и клозантекс в более низких концентрациях.

В 0,1% разведении авертин и аверсект-2 разрушали сколексы через 30 минут, панакур спустя 1 час, альбакс — 13 часов и клозантекс через 14 часов. В 0,08% разведении авертин начинал разрушать сколексы эхинококка через 3 часа, а аверсект-2 спустя 5 часов. В 0,05% разведении авертин оказывал действие через 5 часов, а аверсект-2 - через 7 часов. Разрушительное действие на сколексы эхинококка авертина в 0,01% разведении проявилось только через 18 часов, а аверсект-2 в данном разведении активности не проявлял.

Таким образом, наиболее сильное действие на сколексы эхинококка in vitro оказал авертин, который разрушал сколексы эхинококка в течение 18 часов при концентрации равной 0,01%.

Препараты аверсект-2, альбакс, клозантекс и панакур также обладали сколексоцидным действием, но эффективность их оказалась значительно ниже.

2.4 Эхинококкоз у кроликов и изучение ларвоцидного действия некоторых антгельгаинтиков при этом заболевании

В целях изучения лечебной эффективности отобранных по скринингу антгельминтиков (авертин, аверсект-2 и панакур), нами был проведен опыт на 23 кроликах, 19 из которых заражали яйцами Е. granulosus в дозе 1000+500 экземпляров.

Спустя 15, 30, 60, 90, 120 и 150 дней после заражения у животных брали кровь, определяли количество эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов, Т - и В-лимфоцитов, СОЭ, белки и выводили лейкоформулу.

Через 5 месяцев после введения кроликам яиц проводили аллергическое исследование, в сыворотке крови животных определяли антитела в ИФА, а также проводили ультразвуковое исследование (УЗИ) печени. Кроме того, в этот период часть животных убивали и проводили ветеринарно-санитарную экспертизу органов.

Результаты исследований крови показали, что количество эритроцитов у кроликов опытной группы уменьшилось во все сроки исследования. На 15 и 30 сутки этот показатель снизился незначительно, соответственно на 3,2% и 10,5%. Достоверные изменения этого показателя отмечены на 60, 90, 120 и 150 сутки.

Содержание лейкоцитов в крови опытных животных на 15-ый день не претерпевал существенных изменений, на 30 и 60 сутки их количество увеличилось соответственно в 1,19 и 1,2 раза, а на 90-150-е дни отмечено достоверное повышение этого показателя.

Концентрация гемоглобина в крови у опытных кроликов на 15, 30, 60 и 90-ые сутки снизилась соответственно на 5,7, 7,1, 15,9 и 21,5%. Однако достоверное снижение этого показателя было на 120 и 150 дни.

СОЭ после заражения яйцами эхинококка на 15, 30, 60, 120 и 150 дни выросла по сравнению с фсновым показателем и составила соответственно 2,2+0,42; 2,9+0,37; 3,2+1,35; 3,29+1,01; 4,0+1,62 (Р<0,05) и 4,3+1,11 (Р<0,05) мм/час. В контрольной группе этот показатель в эти же сроки был ниже и равнялся 2,1+0,13; 1,95+0,42; 1,97+0,37; 2,0+0,15; 2,1+0,01 и 2,0+0,87 мм/час соответственно.

Следовательно, раззитие ларвального эхинококкоза у кроликов сопровождается снижением количества эритроцитов, гемоглобина, увеличением уровня лейкоцитов и скорости оседания эритроцитов.

Содержание общего белка в сыворотке крови кроликов опытной группы во все сроки исследования было незначительно выше фоновых показателей, его содержание колебалось от 1,9 до 4,1%.

Количество эозинофилов (по методу Бакмана) достоверно повышалось ка 60, 90, 120 и 150 сутки и составило в эти сроки соответственно 200+14,6; 220+13,7; 270+14,2; и 290+!5,5 в 1 мм3,против 158+18,3; 162+17,7; 160+16,5 и 159+18,3 в контроле. В содержании базофилов, палочкоядерных и мгсегментоядерных нейтрофилов, лимфоцитов и моноцитов в процессе

развития ларвального эхинококкоза существенных изменений не было выявлено.

В период после заражения кроликов яйцами Е. granulosus в крови происходило достоверное снижение относительного содержания Т-лимфоцитовв период с 30 по 150, а также В-лИхМфовдтов с 15 по 120 сутки.

Результаты аллергического исследования показали, что у здоровых (контрольные) животных при читке реакции через 3 часа местная реакция не наблюдалась, а у инвазированных эхинококками УКС колебалось в пределах от 2 до 4 мм.

В ИФА здоровые, не инвазированные эхинококкозом кролики реагировали отрицательно в разведении сыворотки крови 1:100, 1:200 и т.д. Опытные кролики, инвазированные яйцами эхинококка, в ИФА реагировали положительно в разведениях сыворотки от 1:400 до 1:1600,

Через шесть месяцев после заражения у всех инвазированных животных при сканировании паренхимы печени (методом УЗИ) зизуалировались анэхогенные образования диаметром от 5 до 15 мм. Эхогенные кисты хорошо определялись,, они были обычно округлой или еззльной формы и имели заметную стенку.

В печени 3-х убитых кроликов были выявлены ларвоцисты, интенсивность инвазии у одного кролика составляла 3, второго - 5, а третьего - 8 экземпляров.

Таким образом, результаты изучения- гематологических, биохимических, иммунологических показателей, а также результаты ультразвукового исследования показали, что выбранная доза яиц вызвала заражение кроликов ларвальным эхинококкозом.

Следующим этапом наших исследований являлось испытание отобранных при скрининге наиболее активных антгельминтиков для лечения этого гельминтоза.

Для этого 16 зараженных кроликов в возрасте 6-7 месяцев были разделены на 4 группы по 4 головы в каждой. В первой группе животным вводили авертин в дозе 0,05 мл/кг, второй - аверсект-2 в дозе 0,05 мл/кг, 3-ей - панакур в дозе 100 мг/кг. КроликахМ четвертой группы препараты не задавали. Все антгельминтики вводили в течение 7 дней один раз в день. Через 60 дней после лечения всех кроликов убивали и проводили ветеринарно-санитарную экспертизу их органов.

Исследования показали, что введение кроликам авертина привело к полной гибели (обызвествлению) эхинококковых цист в начальной стадии развития у всех 4-х кроликов. Во второй группе после введения аверсекта-2 у всех животных обнаружили пузыри, часть из которых была обызвествлена, а некоторые содержали творожистую массу желто-зеленого цвета. У кроликов третьей группы в печени выявлялись пузыри, внутри которых находились живые протосколексы. У животных четвертой группы в течение указанного периода эхинококковые цисты хорошо развивались и были жизнеспособными.

Следовательно, введение экспериментально зараженным яйцами Echinococcus granulosus кроликам авертина, аверсекта-2 и панакура показало, что все они обладают определенным ларвоцидным действием при эхинококкозе кроликов. Вместе с тем, авертин оказался более эффективным, t-ем аверсект-2. Панакур проявил недостаточное ларвоцидное действие, в результате чего протосколексы эхинококков оставались живыми.

2.5 Динамика гематологических и иммунологических показателей у крупного рогатого скота, спонтанно инвазированного эхинококкозом, после введения им авертина, аверсекта-2 и панакура

Опыты проводили з неблагополучном по эхинококкозу крупного рогатого скота хозяйстве КП «Черемшанский» Черемшанского района Республики Татарстан.

С помощью реакции Кацони выявили 16 голов спонтанно инБазированных эхинококкозом коров при читке реакции через 3 часа после введения эхинококкозного аллергена утолщение кожной складки у 4-х зараженных эхинококкозом хоров составило 9 мм, у двух соответственно 10 и 11 мм, у пяти - 12 мм, у трех - 13 мм, и у двух - 14 мм. У здоровых животных утолщение было 1-2 мм.

При исследовании сывороток крови животных в ИФА с эхинококкозным антигеном у 2-х голов были выявлены антитела в титре i:400, у 10 - в титре 1:800 и у 4-х - в титре 1:1600. В сыворотке крови здоровых" животных антитела в ИФА в разведении 1:100 и более не установили.

Опытные животные были разделены в 4 группы по 4 головы в каждой. В первой группе животным вводили авертин в дозе 0,02 мл/кг массы в течение 7 дней, второй - подкожно аверсект-2 в той же дозе в течение недели и з третьей группе скармливали панакур в дозе 130 мг/кг в течение 7 дней. Че гвертая группа зараженных эхинококкозом животных служила контролем и антгельминтики им не задавали. Пятая группа коров в количестве 3 голов, не реагирующих аллергически и в ИФА, служила контролем и антгельминтики также не получали.

Через 7, 15, 30 и 60 дней после дачи антгельминтиков проводили исследование крови.

Установлено, что количество эритроцитов у коров во всех опытных группах к 7-му дню исследования не претерпело существенных изменений. Начиная с 15 суток число эритроцитов начало повышаться и составило в первой группе 6,31+0,61, во второй - 6,52+0,11, в третьей - 6,35±0,20х10|2/л, а фоновые показатели равнялись соответственно 4,85+0,63, 4,45+0,12 и 4,73±0,23х1012/л. В последующие сроки этот показатель был выше фоновых ьа 30 сутки в первой группе в 1,4, во второй - 1,57, в третьей - 1,28 раза, на 60-е сутки выше соответстзенно в 1,55, в 1,67 и 1,3 раза. У животных четвертой группы (контрольной не леченой) к концу срока исследования (60-

е сутки) количество эритроцитов было меньше по сравнению с животными первой группы в 1,55, второй - в 1,54 и третьей - 1,27 раза, то есть в первых двух группах произошло, значительное повышение количества эритроцитов и этот показатель приблизился к норме.

Уровень лейкоцитов у спонтанно зараженного крупного рогатого скота эхинококкозом был высоким и колебался в пределах 12,0+1,23 - 12,8+0,71, против 8,7+1,30x10% у здоровых животных. Однако к концу срока исследования этот показатель у животных первой группы снизился в 1,54, во второй - 1,48 раза и приблизился к уровню лейкоцитов здоровых животных.

Количество гемоглобина через 7 дней после лечения существенно не изменилось. В последующие сроки отмечали повышение этого показателя, и максимальное значение было установлено к концу срока исследования и он составлял в первой группе 12,0+0,05, во второй - 12,3+0,08 г%. В третьей и четвертой группах значение этого показателя было меньше.

Скорость оседания эритроцитов (СОЭ) в крови у коров трех опытных групп во все сроки исследования снижался. К 7-му дню СОЭ был несколько ниже фонового показателя и в первой группе составил 1,90+0,25, во второй -1,88+0,28, в третьей - 1,79+0,14 мм/час. Значительное снижение этого показателя произошло на 60-е сутки. В этот период в первой группе он равнялся 0,81+0,1, во второй - 0,82+0,2, в третьей - 1,3+0,2 и в четвертой группе 1,9+0,1 мм/час, то есть в последних двух группах этот показатель был выше.

Результаты влияния антгельминтиков на лейкоцитарный профиль крови спонтанно зараженного эхинококкозом крупного рогатого скота показали, что базофилов в крови первой группы к кошгу опыта уменьшилось в 1,95, во второй — 2,2, в третьей - 1,94 раза, а в четвертой группе не изменилось. Число эозинофилов у всех зараженных коров было выше в сравнении со здоровыми и составило в первой группе 9,1 +1,14, во второй -8,9+0,8, в третьей - 9,2+1,16 и четвертой - 9,0+0,3%, против 4,3+1,2% у здоровых. После введения антгельминтиков в трех опытных группах произошло снижение и на 60 сутки этот показатель составил в первой группе 5,4+0,9, во второй 5,6+1,5 и в третьей 6,1+0,9%. В четвертой группе число эозинофилов было выше и находилось примерно на уровне фоновых показателей, а у здоровых животных составило 5,2+0,5%. Количество юных нейтрофилов в крови к концу опыта во всех группах уменьшилось. Число палочкоядерных нейтрофилов к 60-му дню в первой группе увеличилось на 0,3%, во второй группе уменьшилось на 0,8%, в третьей - на 1,1%, в четвертой - на 0,8% и в контрольной группе - на 0,6%. Количество сегментоядерных нейтрофилов к концу опыта во всех группах увеличилось и составило в первой группе 27,2+2,4, во второй - 27,3+1,9, в третьей -35,3+1,5, в четвертой - 36,5+1,4 и контроле - 25,2+1,4%. Число лимфоцитов у животных, спонтанно инвазированных эхинококкозом, колебалось в пределах от 47,6+1,9 до 56,2+7,3, против 57,2+1,8% у здоровых. В процессе лечения существенных изменений этого показателя не было установлено.

Содержаще моноцитов в крови коров первой группы к концу опыта уменьшилось с 4,4 до 3,4%, во второй группе - с 4,7 до 4,2%, в третьей - с 4,8 до 4,2%, в четвертой -6,1 до 5,0%, а в контрольной группе с 5,5 до 4,6%.

Содержание общего белка у инвазированных животных колебался в пределах 7,4±0,04 - 8,5±0,3 г% и в процессе лечения не претерпел существенных изменений. У здоровых животныхЛэтот показатель был также в пределах физиологической нормы. У зараженных животных содержание альбуминов до лечения было ниже (35,1±4,8 — 36,5±1,9), против 42,1±0,9 г% в контроле (здоровые). Однако в процессе лечения этот показатель постепенно повышался и составил в первой группе 42,1± 1,2, во второй — 41,3± 1,3, в третьей - 38,3±1,1, против 33,2±4Д у больных, но не леченных и 41,9±2,1 г% у здоровых. Количество у-глобулинов до лечения у животных первой, второй, третьей и четвертой групп было выше и составило соответственно АЗ,4±4,0, 39,8±4,9, 41,б±2,1 и 42,1±2,6, против 30,4±3,7 г% у здоровых. Лечение способствовало снижению этого показателя. Так, к концу исследования в сыворотке крови у животных первой группы содержалось 30,1±4,0, второй - 28,3±5,2, третьей - 35,3± 1,4 г% у-глобулинов, а у животных не леченой группы - 39,1+1,9 г%. Содержание а-глобулинов у больных колебалось в пределах 13,3+1,4 - 15,8+1,7 г%, (3-глобулинов 10,4+0,6 - 12,2+1,5 г%, а у здоровых соответственно 11,7+1,3 - 12,8+1,2 и 10,3+0,9 - 11,7+0,4 г%. В процессе лечения эти показатели существенно не изменялись.

У крупного рогатого скота, естественно зараженного эхинококкозом, выявлены существенные изменения в содержании Т-лимфоцитов в крови. Количество их до лечения было ниже, чем у здоровых и колебалось от 37,4+0,5 до 38,1+0,1, против 42,8+0,9% у здоровых живошых. Содержание В-лимфоцитов также было снижено и составило в первой группе 19,7+0,24, во второй - 20,1+0,66, в третьей - 20,2+0,48, четвертой — 19,8+0,59, против 25,0+0,2% у здоровых коров. После введения авертина (первая группа) через 7. и 15 дней количество Т - и В-лимфоцитов существенно не изменилось. Начиная, с 30-го дня отмечали повышение этих показателей, а максимального уровня они достигли на 60 сутки и приблизились к уровню здоровых животных. В этот период уровень Т-лимфоцитов составлял ,41,9+0,7, против 42,1+0,6% в контроле, а В-лимфоцитов 24,9+0,74, против 26,2+0,5% в контроле. После введения аверсекта-2 уровень Т - и В-лимфоцитов к концу срока исследования также приблизился к показателям здоровых животных. В третьей группе, где животным вводили панакур, содержание этих клеток было несколько ниже.

Следовательно, введение спонтанно зараженному эхинококкозом крупному рогатому скоту в течение 7 дней, авертина и аверсекта-2 в дозе соответственно 0,02 мл/кг, к 60-ым суткам вызывает повышение количества .эритроцитов, гемоглобина, альбуминов, Т - и В-лимфоцитов, а также снижение СОЭ, количества лейкоцитов, эозинофилов и у-глобулинов.

Сыворотки крови опытных и контрольных животных на 15, 30 и'60 сутки были исследованы в ИФА с эхинококкозным антигеном.

Через 15 дней после введения препаратов во всех группах в сыворотках крови антитела обнаруживались примерно в тех же титрах, как и до лечения и составляли в первой группе 1000+200, против 1200+230 (фон), во второй -600+115, против 800+282, в третьей - 700+100, против 800+0. Через 30 дней произошло снижение уровня антител в опытных группах и составило в первой - 600+114, во второй — 400+141, в третьей - 500+100. Спустя 60 дней титры антител в первой, второй и третьей группах равнялись 100+0, 175+25 и 35О+5О соответственно. В третьей группе титр составил 350+50. У животных четвертой группы уровень антител оставался примерно на одном уровне во все сроки исследования и колебался в пределах от 1000+200 до 1200+230.

По результатам вскрытия у одной коровы, которой вводили подкожно авертин, было найдено 6 цефалоцист с погибшими протосколексами. У одной коровы, леченой аверсектом-2 обнаружили 14 обызвествленных цист. В третьей группе у 1 коровы, которая получала панакур, обнаружили 7 цефалоцист с частично живыми протосколексами. В контрольной группе обнаружили 8 цефалоцист с живыми протосколексами.

Таким образом, можно констатировать, что авертин и аверсект-2 в дозе 0,02 мл/кг массы при применении в течение 7 дней при спонтанном эхинококкозе крупного рогатого скота проявляют 100%-ую эффективность. Панакур в дозе 130 мг/кг массы в течение 7 дней является недостаточно эффективным при пероральном применение в результате чего протосколексы эхинококков остаются живыми.

ВЫВОДЫ

1. В республике Татарстан выявлены 3 условные зоны распространения эхинококкоза крупного рогатого скота: слабого инвазирования (экстенсинвазированность до 3%); умеренного инвазирования (ЭИ до 10%) и сильного инвазирования (ЭИ от 10 до 50,3%).

2. При введении цельной и разведенной 1:1 эхинококкозной жидкости здоровому, а также больным фасциолезом, дикроцелиозом, абсцессами печени и плевритами крупному рогатому скоту отмечается неспецифическая местная реакция.

3. Реакция Кацони с эхинококкозным аллергеном, приготовленным по разработанной нами технологии, обладает высокой специфичностью, а также диагностической эффективностью и является надежным тестом для объективной оценки и прогнозирования эпизоотической ситуации по ларвальному эхинококкозу крупного рогатого скота.

альбакс, клозантекс и панакур также обладают сколексоцидным действием, но эффективность их значительно ниже.

5. Ультразвуковое исследование (УЗИ) является эффективным методом диагностики эхинококкоза кроликов. Через 6 месяцев после заражения животных эхинококковом при сканировании их печени визуалируются анэхогенные образования диаметром от 5 до 15 мм.

6. У кроликов, зараженных яйцами Echinococcus granulosus в дозе 1000+500 штук, в процессе развития эхинококкозного пузыря происходит снижение количества эритроцитов, гемоглобина, Т и В-лимфоцитов, повышение уровня лейкоцитов, эозинофилов и скорость оседания эритроцитов.

7. Введение кроликам авертина в дозе 0,05 мл/кг в течение 7 дней, через 6 месяцев после заражения их эхинококками в течение 2 месяцев приводит к полной гибели (обызвествлению) эхинококковых цист.

8. У крупного рогатого скота, естественно зараженного эхинококкозом, после введения авертина и аверсекта-2 в течение 60 дней происходит повышение до физиологической нормы уровня эритроцитов, гемоглобина, альбуминов, Т - и В-лимфоцитов и снижение скорости оседания эритроцитов, количества лейкоцитов, эозинофилов, у-глобулинов, а также титров специфических антител.

9. Авертин и аверсект-2, введенные подкожно в дозе 0,02 мл/кг в течение 7 дней крупному рогатому скоту, спонтанно зараженному эхинококкозом, вызывает гибель протосколексов и обызвествление эхинококковых цист в печени и легких. При пероральном применении панакур гранулят 22,2% в дозе 130 мг/кг в течение 7 дней у аналогичных животных проявляет недостаточное ларвоцидное действие. При этом в эхинококковых цистах остаются живыми от 15 до 37% протосколексов.

10. Наиболее эффективным при лечении ларвального эхинококкоза у крупного рогатого скота является авертин, введенный подкожно в дозе

0.02.мл/кг массы в течение 7 дней.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ:

1. Реакция Кацсни с эхинококкозным аллергеном, полученным по разработанной нами технологии, рекомендуется для диагностики ларвального эхикококкоза крупного рогатого скота.

2. Авертин в дозе 0,02 мл/кг при применении в течение 7 дней рекомендуется для широкого производственного испытания при лечении ларвального эхинококкоза крупного рогатого скота.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Латыпов Д.Г., Лутфуллин М.Х., Гайсин Г.Н., Идрисов A.M. Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан //«Ветеринарный врач». - Казань, 2002. - № 1. - С. 13-21.

2. Идрисов A.M., Лутфуллин М.Х., Корнишина М.Д. Изучение действия некоторых антгельминтиков на сколексы эхинококкового пузыря //Материалы Всероссийской научно-производственной конференции по актуальным проблемам ветеринарии и зоотехнии. - Казань, 2002. - Ч. 1.-С. 57-58.

3. Идрисов A.M. Эпизоотическая ситуация по эхинококкозу крупного рогатого скота в хозяйствах Черемшанского района Республики Татарстан //Ученые записки КГАВМ. - Казань, 2002. - Т. 174. - С. 98102.

4. Латыпов Д.Г., Лутфуллин М.Х., Идрисов А.М. Специфичность и диагностическая эффективность реакции Кацони при эхинококкозе крупного рогатого скота //Ученые записки КГАВМ. - Казань, 2003. - Т. 174.-С. 108-115.

5. Идрисов A.M., Латыпов Д.Г. Результаты экспериментального заражения кроликов эхинококкозом //Материалы Международной научно-производственной конференции по актуальным проблемам Агропромышленного комплекса. — Казань, 2003. - Ч. 1. — С. 56-58.

6. Идрисов А.М., Мавлитов С.С. Диагностика эхинококкоза кроликов //Магериалы Международной научно-производственной конференции по актуальным проблемам Агропромышленного комплекса. — Казань, 2003.-Ч. 1.-С. 88-89.

7. Идрисов A.M., Лутфуллин М.Х., Латыпов Д.Г. Изыскание средств химиотерапии ларзального эхинококкоза животных //Труды Всероссийского института гельминтологии им. К.И. Скрябина. -Москва, 2003.-Т. 1.-С. 121-126.

8. Идрисов A.M., Лутфуллин М.Х., Латыпов Д.Г., Латыпов Ф.Р. Усовершенствованный аллергический метод диагностики эхинококкоза крупного рогатого скота //Удостоверение па рацпредложение № 443 от 30.06.03.

На правах рукописи

Идрисов А.М.

Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан (эпизоотология, меры борьбы)

03.00.19 - паразитология

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

компьютерная верстка Т.В.Овсюхно

Корректор О.Ф. Костина Лицензия ЛР № 0402284 от

Подписано в печать Формат 60/84 1/16. Печать офсетная. Бумага офсетная. Усл. печ. л. - 1,0. Тираж - 100 экз. Заказ № 52

Типография НГСХЛ, 603107, Н. Новгород, ир. Гагарина, 97.

* - 30 68

Содержание диссертации, кандидата ветеринарных наук, Идрисов, Айрат Минсагитович

ВВЕДЕНИЕ

Глава I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Эпизоотология эхинококкоза

1.2 Патогенное влияние ларвального эхинококкоза

1.3 Диагностика

1.4 Лечение при эхинококкозе 23 *

Глава II. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Материалы и методы 28 РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2 Мониторинг эпизоотической ситуации по эхинококкозу крупного рогатого скота в Республике Татарстан

2.3 Специфичность и диагностическая эффективность реакции

Кацони при эхинококкозе крупного рогатого скота

2.4 Скрининг антгельминтиков на сколексах эхинококка in vitro

2.5 Эхинококкоз у кроликов и изучение ларвоцидного действия некоторых антгельминтиков при этом заболевании

2.6 Динамика гематологических и иммунологических показателей у крупного рогатого скота, спонтанно инвазированных эхинококкозом, после введения им авертина, аверсекта-2 и панакура

Глава III. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Введение Диссертация по биологии, на тему "Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан"

Актуальность проблемы. Эхинококкоз сельскохозяйственных животных имеет широкое распространение во многих странах мира, в том числе в Российской Федерации (С.И. Исаков, 1982; А.И. Кротов, 1985; А.К. Журавец, 1999; С.А. Кенжебаев, 2000; P. Zlatibor, 1979; Н. Worbes, 1992; Н. Cohen et al., 1997) и наносит значительный экономический ущерб, который складывается от снижения количества и качества животноводческой продукции и затрат на проведение лечебно-профилактических мероприятий.

Изучением гельминтологической ситуации в Республике Татарстан занимались многие исследователи (В.Т. Эвранова, 1942, 1957; М.Х. Лутфуллин, М.Д. Корнишина, 1995; А.Х. Волков, 1997, 1999; М.Х. Лутфуллин, Ф.М. Шакурова и др., 1997; М.Х. Лутфуллин, Д.Г. Латыпов и др., 1999). Однако, ряд вопросов, касающихся эпизоотологии, совершенствования прижизненной диагностики, а также лечения ларвального эхинококкоза крупного рогатого скота, требуют дальнейшего изучения.

При прижизненной диагностике эхинококкоза, кроме учета эпизоотических данных и симптомов болезни, большое значение придают серологическим методам диагностики - реакции гемагглютинации, латекс агглютинации (РЛА), реакции флуоресцирующих антител (РФА), иммуноферментному анализу (ИФА) и др. Однако в практических условиях наиболее удобно в применении внутрикожная аллергическая реакция Кацони.

По мнению большинства авторов (А. А. Дорофеев, 1926; П.М. Преображенский, 1926; Ф.Р. Шибрик и др., 1926; П.П. Вибе, 1963; В.И. Захаров, 1969), диагностическая эффективность реакции Кацони достигает 87 -100%. Вместе с тем, по мнению других исследователей (В.А. Боровский, И.С. Бикташев и др., 1969; В.Т. Рамазанов, 1969 и др.), эта реакция выявляет до 32% неспецифических показаний на эхинококкоз и у здоровых животных. По данным этих авторов, реакция Кацони с эхинококкозным аллергеном дает также групповые реакции при наличии в организме животных других родственных гельминтов (цистицеркоз овец, ценуроз, кишечные тениидозы).

Разработка консервативной терапии эхинококкоза является одной из самых важных задач современной клинической гельминтологии. В настоящее время продолжаются интенсивные поиски лечебных препаратов при этой болезни. По данным некоторых исследователей (А.И. Кротов, О.Б. Милонов, 1980; В.И. Джабарова, А.И Кротов, 1987; А.А. Лурье, A.M. Щербаков, 1987; В.Т. Рамазанов, Я.М. Кереев, 1988; И.Ю. Геллер, 1989; Я.М. Кереев, 1994), ряд антгельминтиков показали обнадеживающие результаты при терапии ларвального эхинококкоза. Однако дальнейшее изыскание средств лечения этого опасного зооноза является актуальной задачей.

Цель и задачи исследований. Целью нашей работы является изучение эпизоотологии эхинококкоза у крупного рогатого скота в Республике Татарстан, усовершенствование его диагностики и лечения у инвазированных животных. Для реализации указанной цели были поставлены следующие задачи:

- провести мониторинг эпизоотической ситуации по эхинококкозу крупного рогатого скота в Республике Татарстан за 1998-2002 гг.;

- усовершенствовать прижизненную диагностику эхинококкоза крупного рогатого скота в реакции Кацони;

- провести скрининг различных антгельминтиков in vitro на протосколексах эхинококка;

- воспроизвести экспериментально у кроликов эхинококкоз и изучить ларвоцидное действие некоторых антгельминтиков при этом заболевании;

- изучить динамику гематологических и иммунобиологических показателей у крупного рогатого скота, спонтанно инвазированного эхинококкозом после введения им авертина, аверсекта-2 и панакура.

Научная новизна. Впервые проведен мониторинг эпизоотической ситуации по ларвальному эхинококкозу крупного рогатого скота в Республике Татарстан за 1998-2002 гт.

Предложена методика получения эхинококкозного аллергена для реакции Кацони. Изучена специфичность и диагностическая эффективность аллергической пробы при ларвальном эхинококкозе крупного рогатого скота.

Проведен скрининг 12 препаратов in vitro на протосколексах эхинококка и отобраны наиболее эффективные антгельминтики.

Впервые изучена лечебная эффективность авертина, аверсекта-2 и панакура гранулята при ларвальном эхинококкозе кроликов и крупного рогатого скота.

Практическая ценность работы. По данным ветеринарно-санитарной экспертизы изучена эпизоотологическая ситуация по эхинококкозу крупного рогатого скота в Республике Татарстан, определены зоны с различной степенью экстенсивности инвазии.

Разработан и предложен усовершенствованный эхинококкозный аллерген для реакции Кацони, который целесообразно применять в целях оценки эпизоотического состояния и прогнозирования данного гельминтоза.

Для лечения эхинококкоза крупного рогатого скота рекомендуется использовать препарат авертин.

Диагностику эхинококкоза у кроликов можно проводить с помощью аппарата для УЗИ.

Внедрение исследований. Приготовленный аллерген для реакции Кацони испытан и внедрен в отдельных и хозяйствах Республики Татарстан, с целью изучения эпизоотической ситуации по эхинококкозу крупного рогатого скота.

На основании проведенных исследований разработаны следующие нормативно-технические документы:

1. Временная инструкция по изготовлению эхинококкозного аллергена для реакции Кацони. - Утв. ГУВ КМ РТ 22 декабря 2003 г.

2. Временное наставление по применению эхинококкозного аллергена в реакции Кацони для крупного рогатого скота. - Утв. ГУВ КМ РТ 22 декабря 2003 г.

Апробация работы. Основные материалы диссертации доложены и обсуждены: на Всероссийской научно-производственной конференции по актуальным проблемам ветеринарии и зоотехнии (Казань, 2002); на объединенной сессии координационного совета по ветеринарной гельминтологии (Москва, 2002); на Международной научно-производственной конференции по актуальным проблемам агропромышленного комплекса (Казань, 2003); на научно-техническом совете КГАВМ (Казань, 2003); на расширенном заседании сотрудников кафедр паразитологии, эпизоотологии, анатомии, патологической анатомии, гистологии, хирургии, ветеринарно-санитарной экспертизы и фармакологии (Казань, 2003).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан (распространение);

2. Усовершенствованный эхинококкозный аллерген - специфичный и эффективный препарат для прижизненной диагностики эхинококкоза крупного рогатого скота;

3. Сколексоцидное действие различных препаратов in vitro;

4. Патогенное влияние Echinococcus granulosus larva на организм кроликов. Ультразвуковая диагностика;

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 8 научных работ, и получено удостоверение на рационализаторское предложение (№ 441 30.06.03)

Заключение Диссертация по теме "Паразитология", Идрисов, Айрат Минсагитович

5. ВЫВОДЫ

1. В республике Татарстан выявлены 3 условные зоны распространения эхинококкоза крупного рогатого скота: слабого инвазирования (экстенсининвазированность до 3%); умеренного инвазирования (ЭИ до 10%) и сильного инвазирования (ЭИ от 10 и более %).

2. При введении цельной и разведенной 1:1 эхинококкозной жидкости здоровому крупному рогатому скоту, а также больным фасциолезом, дикроцелиозом, абсцессами печени и плевритами отмечается неспецифическая местная реакция.

3. Реакция Кацони с эхинококкозным аллергеном, приготовленны по разработанной нами технологии, обладает высокой специфичностью, а также диагностической эффективностью и является надежным тестом для объективной оценки и прогнозирования эпизоотической ситуации по ларвальному эхинококкозу крупного рогатого скота.

4. Изучено сколексоцидное действие 12 антгельминтиков in vitro. Наиболее сильное действие оказывает авертин. Он разрушает сколексы в 1% концентрации через 30 минут, в 0,01% - через 18 часов. Аверсект-2, альбакс, клозантекс и панакур также обладают сколексоцидным действием, но эффективность их значительно ниже.

5. Ультразвуковое исследование (УЗИ) является эффективным методом диагностики эхинококкоза кроликов. Через 6 месяцев после заражения животных эхинококкозом при сканировании их печени визуалируются анэхогенные образования диаметром от 5 до 15 мм.

6. У кроликов, зараженных яйцами Echinococcus granulosus в дозе 1000±500 штук, в процессе развития эхинококкозного пузыря снижаются количество эритроцитов, гемоглобина, Т и В-лимфоцитов, увеличиваются уровень лейкоцитов, эозинофилов и скорость оседания эритроцитов.

7. Введение кроликам авертина в дозе 0,05 мл/кг в течение 7 дней, через 6 месяцев после их заражения эхинококками, приводит к полной гибели (обызвествлению) эхинококковых цист в течение 2 месяцев.

8. У крупного рогатого скота естественно зараженного эхинококкозом, после введения авертина и аверсекта-2 в течение 60 дней происходит повышение до физиологической нормы уровня эритроцитов, гемоглобина, альбуминов, Т - и В-лимфоцитов и снижение скорости оседания эритроцитов, количества лейкоцитов, эозинофилов, у-глобулинов, а также титров специфических антител, которые восстанавливаются до физиологической нормы к 60-му дню.

9. Авертин и аверсект-2, введенные подкожно в дозе 0,02 мл/кг в течение 7 дней крупному рогатому скоту, спонтанно зараженному эхинококкозом, приводит к гибели протосколексов и обызвествлению эхинококковых цист в печени и легких. При пероральном применении панакур гранулят 22,2% в дозе 130 мг/кг в течение 7 дней у аналогичных животных проявляет недостаточное ларвоцидное действие. При этом в эхинококковых цистах остаются живыми от 15 до 37% протосколексов.

10. Наиболее эффективным при лечении ларвального эхинококкоза у крупного рогатого скота является авертин, введенный подкожно в дозе 0,02 мл/кг массы в течение 7 дней.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Реакция Кацони с эхинококкозным аллергеном, полученным по разработанной нами технологии, рекомендуется для диагностики ларвального эхинококкоза крупного рогатого скота.

Завершая работу, приношу искреннюю благодарность и глубокую признательность моему учителю, научному руководителю, заведующему кафедрой паразитологии доктору ветеринарных наук, профессору Лутфуллину Минсагит Хайруловичу за постоянную помощь при выполнении и оформлении диссертационной работы.

Выражаю сердечную благодарность кандидатам ветеринарных наук Латыпову Далису Гариповичу и Корнишиной Маргарите Дмитриевне, всем товарищам-коллегам, которые активно сотрудничали при выполнении отдельных этапов диссертационной работы.

Приношу свою искреннюю признательность всем сотрудникам кафедры паразитологии за чуткое отношение и товарищескую помощь в работе.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата ветеринарных наук, Идрисов, Айрат Минсагитович, Казань

1. Абуладзе К.И. Паразитология и инвазионные болезни сельскохозяйственных животных. М.: Колос, - 1982. - С. 93-97.

2. Акбаев М.Ш. Паразитология и инвазионные болезни животных. М.: Колос, 1999.-С. 138.

3. Аминжанов М., Лумидзе И. Изучение развития «овечьего штамма» Echinococcus granulosus в организме животных //Ветеринария. 1989. —№ 3.-С. 44.

4. Аминжанов М.А. Усовершенствование метода диагностики эхинококкоза овец //Болезни сельскохозяйственных животных. Труды УзНИВИ, 1978. -С. 9-15.

5. Аминжанов М.А., Демидов Н.В. Терапия ларвальных цестодозов животных //Бюл. Всесоюзн. ин-та гельминтологии. 1981. — Т. 29. — С. 5-6.

6. Антонов В.Я., Блинов П.Н. Лабораторные исследования в ветеринарии. Справочник. М.: Колос, 1971. - 648 с.

7. Анырбеков К.К., Шакиров А.Б., Касымбеков Б.К. Эхинококкоз животных в Кыргызстане //Материалы докладов научной конференции. Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. М., 2001. - С. 9-11.

8. Артеменко Ю.Г. Особенности биологии возбудителя эхинококкоза //Вестник сельскохозяйственной науки. М., 1987. - № 5. - С. 123-126.

9. Артеменко Ю.Г., Чикунова Л.И. //Бюл. Всес. ин-та гельминтол. 1986. -№44.-С. 5-8.

10. Ю.Артомошин А.С., Фролова А.А. Гельминтозы Крайнего Севера СССР //Медицинская паразитология. 1990. - № 2. - С. 52-54.11 .Атаев A.M. Гельминтозы в Дагестане //Материалы докладов научной конференции. М., 1999. - С. 20-22.

11. Аюпов Х.В. Гельминтозы сельскохозяйственных животных Башкирии и опыт оздоровления жвачных одного района от основных гельминтозов. Канд. дисс. М., 1954. - С. 14.

12. З.Бабаева О., Бабаев О. Экспериментальная терапия паразитарных болезней по паразитологии //Материалы 8-го международного конгресса по паразитологии. Измир. Турция, 10-14 октября - 1994. - С. 367.

13. Бакман С.М. К методике подсчета эозинофилов в периферической крови. -Лабароторное дело, 1958, № 5, - с 13-15.

14. Белоконев В.И. Проблема эхинококкоза в Самарской области //Internet. -1998.-С. 92-97.

15. Беляев А.Е., Константинова Т.Н. Эхинококкоз. М., 1980. - С. 26.

16. Бенхабилес Н., Ушфун А., Шкарин В.В. Особенности эпидемиологии эхинококкоза в Алжире //Медицинская паразитология и паразитарные болезни. Т. 51. -№ 4. 1982. - С. 10-14.

17. Бенхабилес Н., Ушфун А., Шкарин В.В., Особенности эпидемиологии эхинококкоза в Алжире. //Мед. паразитология и паразитар. болезни. Т. 51. -№4.-1982-С. 10-14.

18. Беэр С.А. Паразитологический мониторинг в России (основы концепции) //Медицинская паразитология и паразитарные болезни. -№ 1. 1997. - С. 38.

19. Биттиров A.M., Соттаев М.Х., Кожоков М.К., Алакаева А.В. //Тез. докл. научн. Конф.-М., 16-17 июня 1993.-С. 12-13.

20. Битюков В. А., Чурбанов Н.К. Изменения биохимического и морфологического состава крови при эхинококкозе крупного рогатого скота //Материал к научной конференции Всесоюзного общества гельминтологов. -М.- 1967.-С. 54-58.

21. Богоявлинский Ю.К., Казанцева Г.Н., Резник Г.К. Задачи эпидемиологии эхинококкозов и методов борьбы с ними //Тез. докл. IX съезда ВОГ. — М. — 1986.-С. 17-18.

22. Бондарь Л.Ф. Эхинококкоз животных в республике Молдова //Автореф. дисс. канд. вет. наук. М., 1992. - 25 с.

23. Боровский В.А. Выраженность аллергических реакций на эхинококковый аллерген в различных участках тела крупного рогатого скота //Вестн. с-х. Науки МСХ КазССР. № 2. - Алма-Ата. 1966. - С. 68-72.

24. Боровский В.А., Бикташев И.С., Ибрагимов Р. Проблемы патологии, иммунитета и химиопрофилактики гельминтозов сельскохозяйственных животных //Казахский научно-исследовательский ветеринарный институт. -Т. XIII.- 1968.-С. 79-86.

25. Бубашвили М.О. К эпизоотологии эхинококкоза сельскохозяйственных животных в Грузинской ССР //Материалы 4-й Закавказской конференции по паразитологии. Тбилиси. - 1985.-С. 191-193.

26. Бурделев Т.Е. Прижизненная диагностика эхинококкоза овец (тезисы диссертации) //Тр. гельминт, лаб., Т. 1. М.: изд. АН СССР, 1948. - С. 197198.

27. Валиуллин С.М. К вопросу оздоровления хозяйств от эхинококкоза в Башкирской АССР //«Проблемы паразитологии». Киев: «Наукова думка». - 1967.-С. 15-16.

28. Валиуллин С.М. К вопросу эпизоотологии эхинококкоза и альвеококкоза в Башкирии //«Материалы научной конференции ВОГ», ч. 1. М. — 1964. -С. 15-16.

29. Валиуллин С.М. К изучению роли различных плотоядных в эпизоотологии эхинококкоза и альвеококкоза в Башкирской АССР //ТР. БСХИ, т. 12. Уфа. 1966.-С. 14-16.

30. Валиуллин С.М. О распространении эхинококкоза у овец и крупного рогатого скота в условиях различных природных зон //Материалы 9-й конф. укр. об-ва паразитологов. Ч. 1. - 1980. - С. 108-110.

31. Валиуллин С.М. Опыт борьбы с эхинококкозом сельскохозяйственных животных в Башкирской АССР //Тр. БСХИ. Т. 15. - Уфа. 1973. - С. 22.

32. Вибе П.П. Изучение экономического ущерба от эхинококкоза и других ларвальных цестодозов и некоторых вопросов эпизоотологии //Дисс. канд. вет. наук. Самаркандский СХИ. Самарканд. - 1961. - 165 с.

33. Вибе П.П. Роль сельскохозяйственных животных в биологическом цикле многокамерного эхинококкоза //Докл. АН СССР, 129 (2), 1959, с. 471-472.

34. Волков А.Х. Зараженность крупного рогатого скота гельминтозами в хозяйствах Менделеевского района //Материалы республиканской научно-производственной конференции по актуальным проблемам ветеринарии и животноводства. Казань. - 1997. — С. 9.

35. Волков А.Х. Некоторые факторы, обуславливающие возникновение неспецифических реакций у крупного рогатого скота //Актуальные проблемы животноводства и ветеринарии. -Казань. 1999. - С. 21-22.

36. Гафурова Э.М. и др. Распространение гидатидозного эхинококкоза среди населения Республики Башкортостан//Мед. паразитол. 1996.- №3. -С 45-47.

37. Геллер И.Ю. Эхинококкоз. М.: Медицина, 1989. - 208 с.

38. Геллер И.Ю. Эхинококкоз. М.: Медицина. - 1985. - 208 с.

39. Геллер И.Ю. Эхинококкоз. М.: Медицина. - 1989. - С. 155-181.

40. Густавсон-Моринглейн И. Экспериментальна терапия паразитарных болезней по паразитологии //Материалы 8-го международного конгресса по паразитологии. Измир. Турция, 10-14 октября - 1994. - С. 367.

41. Давтян Э.А. О некоторых факторах патогенеза гельминтозов //Тезисы докладов научно-производственной конференции по гельминтологии в г. Джамбуле. Алма-Ата, Казсельхозгиз. - 1962. - С. 22-26.

42. Давыдов А., Смирнов Н. Распространение эхинококкоза сельскохозяйственных животных в Куйбышевской области //Труды Саратовской НИВС.- 10.- 1976.-С. 110-114.

43. Данияров И. К изысканию эффективности химиотерапевтических средств при спонтанном эхинококкозе овец //Болезни сельскохозяйственных животных. Труды УзНИВИ. -27. 1978. - С. 50-53.

44. Даугалиева Э.Х. Иммунитет при гельминтозах //Труды Всероссийского института гельминтологии им. К.И. Скрябина. М. - Т.36. - 2000. - С.27-49.

45. Джабарова В.И., Кротов А.И. Экспериментальная химиотерапия альвеококкоза. Сравнительная эффективность мебендазола, флубендазола и альбендазола //Мед паразитол. № 2. - 1987. - С 15-18.

46. Довгапев А.С. Эпидемиология и эпизоотология биогельминтов северных территорий зоны Восточного участка Байкало-Амурской магистрали //Тез. докл. 9-го съезда ВОГ. М. - 1986. - С. 53-54.

47. Ербалатов К.М. Гельминтозная ситуация в хозяйствах Казахской ССР с разной технологией содержания скота //Материалы научн. конф. ВОГ: Научные основы профилактики гельминтозов животных и человека. Вып. 33.- 1981.-С. 14-18.

48. Ермолин Г.А. История создания, области и перспективы применения количественного ферментного иммуноанализа (КФИА) //Иммунодиагностика тропических и паразитарных болезней (иммуноферментные методы диагностики заразных болезней). М. — 1980. -С. 14-24.

49. Желева Р. //Мед паразитол. и паразитар. болезни. 1975. - С. 455-460.

50. Журавец А.К. Особенности эпизоотологии эхинококкоза в Ростовской области с учетом социально-экономических изменений в сельском хозяйстве //Мат. докл. научн. конф. М. - 1999. - С. 100-102.

51. Иванов Л.И., Узаймагомедов P.M. Экономика ветеринарных мероприятий при эхинококкозе и ценурозе овец в колхозе имени Тельмана Акушинского района Дагестанской АССР за 1975-1977 г //Научн. тр. Казанского вет. ин-та-Т. 133.- 1980.-С. 124-127.

52. Ионов П.С., Мухин В.Г., Семушкин Н.Р. и др. Лабораторные исследования в ветеринарной клинической диагностике. М.: Сельхозгиз, 1957. - 288 с.

53. Исаков С.И. Развитие Echinococcus granulosus в организме животных //Науч. техн. бюл. СО ВАСХНИЛ. - Вып. 9. - 1982. - С.27-29.

54. Исаков С.И. Эхинококкоз и альвеококкоз животных в Якутской Саха ССР //Автореф. дисс. докт. вет. наук. М., 1991. - 42 с.

55. Исмагилова Р.Г. Аллергическая диагностика овец и крупного рогатого скота //Автореф. дисс. канд. вет. наук. КазНИВИ. - Алма-Ата. - 1959. - 9 с.

56. Исмагилова Р.Г. Иммунодиагностика эхинококкоза сельскохозяйственных животных и человека //Паразитарные болезни с-х животных и меры борьбы с ними. Алма-Ата. - 1979. - С. 65-79.

57. Кацова Л.Б. Белковый состав сыворотки крови овец, собак и кроликов в норме и при ларвальных цестодозах //Дисс. . канд. вет. наук. Алма-Ата, КазГУ.- 1965.-181 с.

58. Кенжебаев С.А. //Матер, докл. научн. конф. Актуальные вопросы теоретической и практической трематологии и цестодологии. М., — 24-25 сент. 1997 г.-С. 66.

59. Кенжебаев С.А. Биологическая модель ларвального эхинококкоза ECHINOCOCCUS GRANULOSUS (BATSCH, 1786).//Труды Всероссийского ин-та гельминтологии им. К.И. Скрябина. Т. 36., - М., 2000. - С. 54-57.

60. Кереев Я.М. Изыскание ларвоцидных средств //В кн.: Проблемы изыскания, синтеза и производства новых препаратов для ветеринарии //Тез. докл. научн. конф. Самарканд, 1994. - С. 54.

61. Коваленко Ф.П., Бирюков Ю.В., Моисеев B.C. Влияние низкочастотного и многокамерного эхинококков в эксперименте in vitro //Мед. паразитол. — №6.-1986.-С. 31-36.

62. Когальницкий Г.М. Реакция Каццони с разведением реактива //Клин. Мед. XIV,-№ 10-12.-1936.-С. 1842.

63. Константинова Т.Н., Алексеева М.И., Имманкулиев. Опыт лечения вермоксом больных эхинококкозом //Тропические и паразитарные болезни. -1981.-С. 49-55.

64. Кротов А.И. Эхинококкоз и альвеококкоз //Гельминтозы человека. М.: Медицина, - 1985.-С. 190-214.

65. Кротов А.И., Коваленко Ф.П. Альвеолярные формы однокамерного эхинококка (Echinococcus granulosus Batsch, 1786) //Мед. паразитол. — №2.-1987.-С. 12-13.

66. Кротов А.И., Милонов О.Б. Разработка методов химиотерапии альвеококкоза и эхинококкоза //Хирургия. № 2 - 1980. - С. 71-75.

67. Кудрявцев А.А., Кудрявцева J1.A. Клиническая гематология животных //М.: Колос, 1974. С. 399.

68. Курбанов А.Т., Степановская Л.П. Сравнительная оценка антигенной активности эхинококковых жидкостей от различных видов животных //Возбудители и переносчики паразитов и меры борьбы с ними. 1988. - С. 106.

69. Курманова Л.В., Цветков B.C., Ефремов Е.Е. Поэтапная процедура постановки реакции энзим-меченных антител //Иммунодиагностика тропических и паразитарных болезней (иммуноферментные методы диагностики заразных болезней). -М. 1980. - С. 24-31.

70. Ларбауи Д., Аллюля Р., Осийская Л.В. и др. Эхинококкоз в Алжире //Мед. паразитология и паразитар. болезни. Т. 49. - № 3, - 1980. - С. 21 -23.

71. Ларбауи Д., Аллюля Р., Осийская Л.В. Эхинококкоз в Алжимре //Мед. паразитология и паразитарные болезни.- Т. 49. № 3. - 1980. - С. 21-23.

72. Латыпов Д.Г., Лутфуллин М.Х., Гайсин Г.Н., Идрисов A.M. Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан //Ежекварт. н. произв. журнал «Ветеринарный врач» региона Поволжья и Урала. - № 1. - Казань, 2002.-С. 18-20.

73. Лейкина Е.С. Иммунология эхинококкоза и альвеококкоза и использование ее достижений в борьбе с этими гельминтозами //Биохимия и физиология гельминтов и иммунитет при гельминтозах. М. - 1984. - С. 68-78.

74. Лейкина Е.С. Эхинококкозы (этиология, эпидемиология, профилактика) //Мед. паразитол. -№ 6. 1985. - С. 62-70.

75. Лейкина Е.С., Яроцкий Л.С., Озерецковская Н.Н. Итоги и перспективы исследований по иммунологии эхинококкозов //Мед. паразитол. № 2. — 1987.-С. 3-7.

76. Лурье А.А., Джабарова В.И., Кротов А.И., Щербаков A.M. Использование растительных масел для повышения биодоступности мебендазола (на модели ларвального многокамерного эхинококкоза) //Мед. паразитол. — №2.-1987.-С. 19-22.

77. Лурье А.А., Щербаков A.M. Консервативная терапия эхинококковой болезни: оптимизация режима дозирования мебендазола с помощью компьютера //Мед. паразитол. № 5. - 1987 - С. 13-16.

78. Лутфуллин М.Х., Корнишина М.Д., Шакурова Ф.М., Волков А.Х. Ассоциативные инвазии животных в хозяйствах Республики Татарстан. — Казань.-1995.-С. 172-173.

79. Лутфуллин М.Х., Лутфуллина Н.А. Усовершенствование методики определения Т и В-лимфоцитов в крови крупного рогатого скота //Метод, указания. - Казань. ВНИВИ. - 1996. - 11 с.

80. Лутфуллин М.Х., Шакурова Ф.М., Гоголев В.Б., Тимербаева P.P. Гельминтозы жвачных. — Казань. — 1997. — С.28.

81. Лысенко А.Я., Ермолин Г.А. Современные тенденции в иммунодиагностике болезней (иммуноферментные методы диагностики заразных болезней) //М. 1980.-С. 3-13.

82. Маневелян Р.Л. К вопросу об эхинококкозе легких //Клин. Мед. № 24. — 1928.-С. 1602.

83. Маркин А.В. Вопросы профилактики важнейших гельминтозов в России //Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. № 1. — 1995.-С. 106-108.

84. Мартыненко В.Б., Яроцкий Л.С. Борьба с эхинококкозом в зарубежных странах: (Обзор лит.) //Мед. паразитология и паразитарн. болезни. — № 2. — 1987.-С. 83-89.

85. Мусаев Г.Х., Дадвани С.А., Коваленко Ф.П., Лотов А.Н. ECHINOCOCCUS GRANULOSUS: Новые аспекты биологии, оптимизация хирургического лечения инвазии //Мат. докл. научн. конф. М. - 1999. - С. 172-173.

86. Наумычева М.И. //Бюл. Всес. ин-та гельминтол. 1969. - № 2. - С. 80-86.

87. Немировская А.И., Некипелов В.Я., Яковлева Т.А. Проблема эхинококкоза и альвеококкоза в РСФСР //Мед. паразитол. — № 3. 1980 — С. 17-21.

88. Носик А.Ф. Эхинококкоз животных и меры борьбы с ним //Автореф. дисс. . докт. вет. наук Харьков, ветинститут, - 1953. - 28 с.94.0зерецковская Н.Н. Химиотерапия паразитарных болезней и иммунодепрессия //Мед. паразитол. — № 5. 1980.- С. 3-41.

89. Островский И.Р. К казуистике внутрикожной реакции при эхинококкозе //Врач. дело. № 24. - 1926. - С. 24-31.

90. Петров A.M. Распространение фасциолеза, эхинококкоза, аноплоцефалидоза и диктиокаулеза у жвачных в Азербайджане //Труды Азербайджанского ветер, н.-и. ин-та Сб. 2. - Баку. - 1935. - С. 20.

91. Петров A.M., Черткова A.H. Отличительные признаки однокамерного и альвеолярного эхинококка по личиночным и половозрелым формам //Труды ВИГИС, 7;- 1959.-С. 129-139.

92. Плохинский И.А. Биометрия. М.: МГУ. 1970. - 360 с.

93. Покровский В.И., Семенов Б.Ф. Проблема современной медицины и иммунохимия //Журн. Всесоюз. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева. — Т. 27. -1982.-С. 457-463.

94. Пулатов Г.С., Джумаев З.Д. Биологические основы борьбы с гельминтами животных и растений //Тез. докл. конф. ВОГ. М. - 1983. - С. 155-156.

95. Разаков Ш.А., Степановская Л.П., Юсупов К.А. Иммунология и иммунодиагностика эхинококкоза //Современные проблемы паразитологии. Самарканд. - 1983. - С. 176-179.

96. Рамазанов В.Т. Диагностика и меры борьбы с эхинококкозом сельскохозяйственных животных на юге-востоке Казахстана //Дисс. . канд. вет. наук. Алма-Атинский ЗВИ. - Алма-Ата. - 1967 - 164 с.

97. Рамазанов В.Т. Особенности эпизоотологии эхинококкоза в Казахстане //Тез. докл. 9-го съезда ВОГ. М. - 1986. - С. 127-128.

98. Ранчов Г.К. Формальные методы эпидемиологической классификации районов //Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. -№3.-1992.-С. 40-41.

99. Резяпкин И.Н. Иммунологическая реактивность поросят экспериментально зараженных Е. granulosus //В сб.: «Вопросы ветеринарии и ветеринарной биологии». М. - 2000. - С. 73-88.

100. Резяпкин И.Н. Локальный иммунитет при экспериментальном эхинококкозе свиней //Материалы XXVII межвузовской научно-практической конференции по проблемам биологии и медицины. — С. Петербург. 2000 - С. 46-47.

101. Резяпкин И.Н., Даугалиева Э.Х. Роль иммунологических механизмов в развитии эхинококкозов. //В сб.: «Актуальные вопросы диагностики,профилактики и борьбы с болезнями сельскохозяйственных животных». -Ставрополь. 1999. - С. 221-222.

102. Резяпкин И.Н., Ларионов С.В. РЛА как метод прижизненной диагностики эхинококкоза овец //Мат. междунар. Координационного совета «Экономические проблемы патологии, фармакологии и терапии животных». Воронеж. - 1997. - С. 245.

103. Рудой Е.М. К вопросу о симптоматологии, диагностике и лечении эхинококкоза легкого //Терапевт, архив. № 7. - 1929 - С. 214-221.

104. Садыхов И.А. Экологические и эпизоотологические особенности возбудителей эхинококкоза животных в Азербайджанской ССР //Тез. докл. 9-го съезда ВОГ. М. - 1986. - С. 139-140.

105. Сафронов М.Г., Исаков С.И. Подвиды и штаммы эхинококков и альвеококков в Якутии //Научн. техн. бюл. СО ВАСХНИЛ. - Вып. 9. -1982.- С. 29-31.

106. Сергиев В.П. Значение паразитарных болезней в паталогии человека //Медицинская паразитология. № 5. - 1991.- С. 3-6.

107. Сергиев В.П., Лебедева М.П., Фролова А.А. Паразитарные болезни человека, их профилактика и лечение //Эпидемиология и инфекционные болезни. №2.-1997- С. 8-12.

108. Сидоркин В.А. Справочник по диагностике и терапии гельминтозов животных и птиц. М.: «АКВАРИУМ ЛТД» 2001. - С. 77-78.

109. Скрябин К.И., Озерская В.Н. Гельминтологическая экспедиция в Грузию //Труды Московского ветеринарного института. Т. 1-2. - 1932. - С. 59-68.

110. Слепнев Н.К. К биологии E.granulosus (Batsch, 1786) //Труды Белорус, н.-и. вет. ин-та. Вып. 13. - 1975 - С. 113-116.

111. Слепнев Н.К. Эхинококкоз домашних животных в северной зоне Белоруссии //Труды Белорус, н.-и. вет. ин-та. Вып. 11. - 1973.- С. 130-135.

112. Тайматов Р., Багирова 3. Влияние ионов лекарственных веществ на жизнеспособность личиночных сколексов эхинококка //Труды Туркменского СХИ.-Т. 22. вып. 3.-Ашхабад. - 1980.-С. 108-109.

113. Тегги А. Экспериментальная терапия паразитарных болезней по паразитологии //Материалы 8-го международного конгресса по паразитологии. Измир. Турция, 10-14 октября - 1994. - С. 367.

114. Теплов О., Журавец А.К. Экономический ущерб, наносимый эхинококкозом животноводству Северного Кавказа //Труды ВИГИС. Т. 25. -М.- 1980.-С. 111-119.

115. Тимпнер К.Д. Иммунологическая недостаточность у детей. М.: Медицина, 1979. - 210 с.

116. Тодоров Т. Экспериментальная терапия паразитарных болезней //Материалы 8-го международного конгресса по паразитологии. — Измир. Турция, 10-14 октября 1994. - С. 367.

117. Тумольскаая Н.И., Дворяковский И.В. Ультразвуковое исследование печени при эхинококкозной болезни //Клин. мед. Т. 60. - № 4. - 1982 - С. 58-62.

118. Хазиев Г.З., Гафурова З.М. Распространение эхинококкоза в республике Башкортостан //Мат. докл. научн. конф. М., - 5-6 декабря 1995. - С. 186187.

119. Хортон И., Кристодоулу X. Экспериментальная терапия паразитарных болезней //Материалы 8-го международного конгресса по паразитологии. — Измир. Турция, 10-14 октября 1994. - С. 367.

120. Чигас И.Ю. Распространение главнейших гельминтозов свиней, крупного Сравнительное изучение аллергических проб на эхинококкоз у овец в области века и подхвостовой складки //Матер, научн. конф. ВОГ. — Ч. 1. — 1965.-С. 245-249.

121. Чигас И.Ю. Распространение главнейших гельминтозов свиней, рогатого скота и овец и их сезонная динамика в Литовской ССР //Труды Литовской вет. академии. вып. 3. - 1957. - С. 127-139.

122. Чуйко Л.С. К методике приготовления эхинококкового аллергена //Вестн. с.-х. науки МСХ КазССР. № 6. - Алма-Ата. - 1967 - С. 36-40.

123. Чуйко Л.С., Боровский В.А., Бочекалов А.Н. Сравнительное изучение аллергических проб на эхинококкоз овец в области века и подхвостовой складки //Матер, научн. конф. ВОГ, 1965. - Ч. 1. - С. 245-249.

124. Шамхалов В.М. К вопросу природной очаговости эхинококкоза и альвеококкоза //Труды Дагестанской н.-и. вет. ин-та. Т. 11. - 1980 - С. 6668.

125. Шварц Я.Э. К вопросу о диагностике эхинококковых заболеваний //Кл. мед. вып. 18. - 1940. - С. 110-120.

126. Шишкин К.М. Эффективность реакции латекс-агглютинации для диагностики эхинококкоза у животных //Научн. техн. бюл. НИИСХ Крайнего Севера. Вып. 3/4. - 1988. - С. 45-46.

127. Шульц Р.С. Изучение белкового состава сыворотки крови //В сб.: «Проблемы патологии, иммунитета и химиопрофилактики гельминтов сельскохозяйственных животных». Алма-Ата. - 1968. — С. 53-60.

128. Шульц Р.С. Рекомендации по искоренению эхинококкоза сельскохозяйственных животных и человека. Казсельхозгиз., Алма-Ата. -1962 — 11 с.

129. Шумакович Е.Е. К вопросу о прижизненной диагностике эхинококкоза у крупного рогатого скота с помощью аллергической пробы игельминтологического обследования пациента //Практ. ветеринария. Т. VI - 1929.-С. 1032-1036.

130. Щербаков A.M. Оптимизация химиотерапии эхинококковой болезни (современное состояние, проблемы и пути решения) //Мед. паразитол. — №5.- 1986.-С. 57-61.

131. Яроцкий JI.C., Мартыненко В.Б., Коваленко Ф.П. Штаммы эхинококков, их роль в эпидемиологии и эпизоотологии эхинококкозов //Мед. паразитол.-№4. -1987.- С. 35-40.

132. Яроцкий Л.С., Мартыненко В.Б., Колесников Н.С. и др. Штаммы эхинококков, их роль в эпидемиологии и эпизоотологии эхинококкозов //Мед. паразитолгия и паразитар. болезни. -№ 4, 1987. - С. 35-40.

133. Ястреб В.Б. //Ветеринария. № 12. - 1990. - С. 38-40.

134. Ястреб В.Б. Биолого-эпизоотические особенности штаммов Echinococcus granulosus эхинококкоза и их использование в целях профилактики //Автореф. дисс. . канд. вет. наук ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина. М. - 1986. - 24 с.

135. Akovbiantz A., Ammann R., Eckert J. Gibt es eine Chemotherapie Echinokokkose des Menschen? //Schweiz. Med. Wochenschr. 1978. - Vol. 108 29.-S. 1101-1103.

136. Amman R. Chemotherapy of human echinococcosis with mebendazole (Vermox): preliminary clinical results // Schweiz Med. Wochenschr. — 1979. Vol. 109, N 5. - P. 148-151.

137. Anadol D., Gocmen A., Kiper N., Ozcelik U. //Pediatr. Pulmonol. 1998. - Vol. 26, N3.-P. 190-196.

138. Arce J. Hydatid disease (hydatidosis). Pathology and treatment. //Archives of Surgery vol. 42, p.l and vol. 43. 1941. - 789 p.

139. Arru E., Leoni A., Marceddu L. //Clin. Vet. 1982. - V. 105, N 9-12. - p. 307315.

140. Arm E., Maida A., Gabriele F., Palmas C., Petracca G., Masala S. //16-th Intern. Congr. of Hydatidol. Beijng. China, 12-16 Oct. 1993. s. 103-104.

141. Ascoli V. Sur valore dell reazioni biologiche per la diagnosi di cisti d'echinococco. Nota de semiotica //Arch. ital. de chir.Bd 18. 1927. 45 p.

142. BaiIenger J., Cabannes A., Guy M. Medical treatment of hydatidoses. New data //Bordeaux Medical. 1979. - Vol. 12,N30.-P. 1829-1837.

143. Dixon K.E. //J. Helmintol. 1964. - V. 38. - P. 203-212.

144. Dixon I.B. et al. //J. Parasitol. 1978. - C. 64, № 5. - P. 950-979.

145. Beaglchole R., Bonita R., Kjellstrum T. Basic epidemiology. World Health Organization.-Geneva., 1994. - 184 p.

146. Beard T.C., Rickard M.D., Goodman H.T. Medical treatment for hydatids // Medical treatment for hydatids Med.J. Australia. 1978. - Vol. 1, N 12. -P. 663-635.

147. Beato V. Importancia de los rayos X en el diagnostico del quiste hidatico del pulmon //Rev. Med. Salmantina, febr. 1932. -N 621. - P. 168.

148. Boeva V., Todorov Т., Petkov A. et all. // 16-th Intern. Congr. of hydatidol. Beiling. China, 12-16 Oct. 1993.-P. 105-107.

149. Bouree P., Molimard R. Treatment of echinococcosis (Correspondence) // Brit. Med. J. 1978.-Vol. 1, N 6108.-P. 301.

150. Brandau D., Vasallo F., Olmo M. Tratamiento de la hidatidosis humana con mebendasol // 2 Congresso Nacional de Parasitologia, 1-4 octubre 1979. — Leon, 1979.-P. 159.

151. Casoni T. Diagnosi biologica dell'echinococco umane mediante rintradermoreazione. //Fol. Clin., et mier. 1912. - V 4. -N 3. - P. 5.

152. China P.P. //16-th Intern. Congr. of hydatidol. Beijing. China, 12-16 Oct. 1993. -P. 59-60.

153. Codounis A et Polidorides I. Sur Les constituants des liquides des kystes hydatiques. //Revue de Pathologie сотр. et d'Hygiene gener. 1937. — N 484. -P. 187.

154. Cohen J.E., Coman E., Dimitriu M. Present problem of the treatment of thoracic cysts // Poumon et Couer. 1974. - Vol. 30 N 6. - P. 421-426.

155. Craig Ph.S. Epidemiology and diagnosos of cystic Echinococcosis // Int. Symposium Surgeiy of echinococcosis. Khiva, 1994. - P. 11.

156. De Rosa F. Therapy of experimental peritoneal hydatidosis in BALB/C mice with mebendasole and flubendasole administred orally //Ann.Sclavo. 1980. -Vol. 22,N5.-P. 831-836.

157. Deplazes P., Guscetti F., Sardinas J.C. et al. // J. Amer. Anim. Hosp. Assoc.-1998. Vol. 34, N 4. - P. 309-314.

158. Eckerd J., Burkhardt B. Chemotherapy of experimental echinococcosis //Acta. Trop. 1980. - Vol. 37, N 3. - P. 297-300.

159. Eckert J. // Schwaizer Archiv eur tierheikude.- 1970. V. 112. - P. 443-457.

160. Erzurumlu K., Selcuk M.B., Yildiz C. //Eur. Surg. Res. 1996. - Vol. 28, N 6. -P. 466-670.

161. Eskert J., Wissler K. Immunodiagnosis and therapy of hydatidosis // Therapeutische Umschau. 1978. - Vol. 35, N 9. - P. 766-776.

162. Euzeby J. Preventive and curativ effecacy of albendazole of larval cestodiasis in animals // Ann. Pharm. Fr. 1981. - Vol. 39, N 1. - P. 45-49.

163. Fernandez F.J., Rodriguez-Vidigal F.F., Ledezma V. Et al. //Amer. J. Hematol. — 1996.-Vol. 53,N1.-P. 53-54.

164. Fiori L., Rubino S., Lubini G. In vitro susceptibility of cell cultures from Echinococcus granulosus to antimicrotubural drugs // Curr. Chemother. — Immunother. Proc. Int. Congr. Chemother. 12th. - 1981. -N 2. - P. 1402-1404.

165. Franchi C., Teggi A. //Recenti. Prog. Med. 1996. - Vol.87, N 7-8. - P. 346352.

166. Galanakis Emmanouil, Besis Solitirios et all. //Scand. J. Inf. Diseases. — 1997. — V. 29,N6.-P. 638-643.

167. Garsia- Liamazares J.L. //Parasitol. Res. 1998. - Vol. 84, N 5. - P. 417-420.

168. Glesson L.N. The reality of Echinococcosis-sursical sahari to Turkana // Irish. Vet. J. 1978. - Vol. - 32, N 2. - P. 34-39.

169. Goodman H.T. Hidatid disease-medical treatment in the experimental animal and man // Proc. 55-th Annual Conf. Australian Vet. Assoc. Sydney, 15-19 May, 1978; New South Wales, Australia. - 1978. - 37 p.

170. Grigoroff M., Sanger R. Die Echinokokkoseein noch ungelostes Problem.2. Mitt: Klinik, Diagnostik und Therapie // Dtsch. Gesundheitsw. 1979. - Bd 34, N 21. -P. 994-997.

171. Guo Zai-Xuan, He Duo-Long, Li Yo Qing et all. //16-th Intern. Congr. of hydatidol. Beijing. China, 12-16 Oct. 1993. P. 69.

172. Himonas C., Antoniadou-Sotiriadou K., Papadopoulos E. Hydatidosis of food animals in Greece: Prevalence of cysts containing viable protoscoleces // J.HelminthoI. 1994. - Vol. 68, N 4. - P. 311-313.

173. Ichok G. Le diagnostic de l'echinococcose a l'aide de Pintradermoreaction //Presse. Med. 1927. - V.35. - P. 118.

174. Kamhawi S. Et all. //Ann. Trop. Med. and Parasitol. 1995. - V. 89, N 6. - P. 621-624.

175. Kammerer W.S. Case 25-1979. Medical treatment of echinococcosis // New Eng. J. Med. 1979. - Vol. 301, N 13. P. 727.

176. Kammerer W.S., Miller K.L. Echinococcus granulosus: permeability of hydatid cysts to mebendazole in mice // Int. J. Parasitology. 1981. - Vol. 11, N 3. - P. 183-185.

177. Karimov Sh.I. Problem of echinococcosis in Uzbekistan achievements and perspectives // Int. Symposium Surgery of echinococcossis.- Khiva, 1994. -P. 1-3.

178. Kern P., Dietrich M., Volkmer K. Chemotherapy of Echinococcosis with Mebendazole. Clinical Observations of 7 Patients // Tropenmed und Parasitol. -1979.-Vol. 30,-P. 65-72.

179. Knapen F., Van., Franchimont J.H. et all. //Med. tijdschr. geneesk. 1987. - V. 131, N27.-P. 1168-1172.

180. Kumaratilake L.M., Thompson R.C.A. Hydatidosis / echinococcosis in Austrelia. Helminthol. Abstr. Ser. A., 1982, v.51, N 6, p. 233-252. - Bibliogr.: P. 247252.

181. Lari V.V., Moatekef M., Farid R. An epidemiological approach to the study of Echinococcosis in the north-eastern region of Iran (Khorassan). Rev. Iber. Parasitol., 1981, v. 41, N 4, p. 581-590. Summary in English. Bibliogr.: P. 590.

182. Larouze B. Epidemiologi of Echinococcosis // Int. Symposium Sutgery of echinococcosis. Kniva, 1994. — P. 12.

183. Matossian R. Hytatid cyst of the liver // Helminthologia. 1986. V. 23, N 4, P. 283-294.

184. Mollow W. Ueber die Beeinflussung der biologischen Reaktionen nach Anstellen der Casonischen Reaction bei der Echinokokkenkrankheit des Menschen //Arch. f. Schiffs. u. Fropen Hyg. - 1928. - B. 32. - P. 187.

185. Moro P.L. McDonald J., Gilman R.H. et al. // Bull. World Health. Organ. -1997. Vol. 75, N 6. - P. 553-561.

186. Nott D.B. Hydatid disease in man past, present and future // Austral. Vet. J. -1979.-Vol. 55,N3.- P. 136-139.

187. Palmes C., Affanasio E. et all. // Boll. 1st. Sieroter Milan. 1989. - V. 68, N 1.-P. 82-86.

188. Pandey V.S. // Ann. Trop. Med. and Parasitol. 1980. V. 74, N 5. - P. 519-527.

189. Petrovic Zlatibor// Parasitol Hang. 1979. - V. 12. - P. 37-40.

190. Polydorou K. Echinococcosis in Cyprus: Observations on the distribution by site of infection in sheep, cattle and goats. Austral. Vet. J. 1982, v. 58, N 2, P. 7576.

191. Radulescu S., Angelescu N., Horvat T. et al //Parasitol. Res. 1998, Sep. - Vol. 84,N9.-P. 715-719.

192. Rovira E., Castera R. //Med. Clin. Bare. 1998. - Vol. 110, N 12. - P. 477. 201.Sabbaghian H., Hoghoogghi N., Ghadirian E. // Bui. Soc. Pathol. Exot. - 1975.

193. V. 68, N6.-P. 574-578. 202.Saidi Farrokh. What is new in echinococcus is? // Iran J. Med. Sci. 1979.

194. Vol. 10, N 1-4.-P. 283-286. 203.Saygi A., Oztek I., Sungun F., Arman B. //Eur Respir. J. 1997. - Vol. 10. N 4. -P. 811-814.

195. Todorov Т., Boeva V. // Bui. World. Health Organisat. 1999. - V. 77, N 2. -P. 110-116.

196. Varma Т.К. //Riv. Parasitol. -1991. V. 52, N 3. - P. 281-289.

197. Varma Т.К., Malviya H.C. //Riv. Parasitol. 1991 - V. 49, N 1. - P. 45-51

198. Vieira Miguel Afpio, Oliveira Jayrson Araujo de, Barbosa Carlos Augusto Lopes et al. Atividade antiembriogenica.'Tn vitro" do Albendazol sobre ovos de Lagochilascaris minor Leiper, 1909 //Rev. patol. trop. — 1994. — N 23. — P. 221227.

199. Wang J.H., Wang Y.H., Zhahg J.H. et al. //Паразитология. 1996. - Vol. 113.-P. 111-121.

200. Weisse M.E., Raszka W.V. //Adv. Pediatr. Infect. Dis. 1996. - Vol. 12, N 3 -P. 109-153.

201. Worbes H. // Angew. Parasitol. 1992. - V. 33, N 4. - P. 193-198.

202. Xu Ming-Qian. //16-th Intern. Congr. of hydatidol. Beijing. China, 12-16 Oct. 1993.-P. 75-76.

Информация о работе

Идрисов, Айрат Минсагитович
кандидата ветеринарных наук
Казань, 2004
ВАК 03.00.19

Диссертация

Эхинококкоз крупного рогатого скота в Республике Татарстан - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно