Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему

Туберкулез птиц в юго-восточном регионе Таджикистана

ВАК РФ 06.02.02, Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов

Автореферат диссертации по теме "Туберкулез птиц в юго-восточном регионе Таджикистана"

На правах рукописи ОДИНАЕВ КУРБОН АМИРШОЕВИЧ

ТУБЕРКУЛЕЗ ПТИЦ В ЮГО-ВОСТОЧНОМ РЕГИОНЕ ТАДЖИКИСТАНА (ЭПИЗООТОЛОГИЯ, ДИАГНОСТИКА И МЕРЫ БОРЬБЫ)

06.02.02 - ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология

АВТОРЕФЕРАТ на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Душанбе-2012

005045522

Работа выполнена в лаборатории микобактериозов Ветеринарного института Таджикской академии сельскохозяйственных наук и в хозяйствах Хатлонской области

Научный руководитель: доктор ветеринарных наук,

профессор, член-корреспондент ТАСХН Мнрзоев Давлатали Мнрзоевнч

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук,

Хабибов Абдужалнл Халиловнч

Защита диссертации состоится «30» мая 2012г. в 10.00 часов на заседании диссертационного совета ДМ 050.001.01 при Ветеринарном институте Таджикской академии сельскохозяйст -венных наук по адресу: 734005, Республика Таджикистан, г. Душанбе, ул. А.Каххарова 43, ВИ ТАСХН, тел. (+992-372) 27-51-92

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ВИ ТАСХН.

Автореферат разослан «30» апреля 2012г. и размещен на официальных сайтах ВИ ТАСХН www.tajnivi.tj и ВАКа России www.vak2.ed.gov.ru

кандидат ветеринарных наук Шарипов Абдугани

Ведущая организация:

НПП «Биопрепараты» ТАСХН

Ученый секретарь диссертационного совета, доктор ветеринарных наук, профессор

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ 1.1 Актуальность темы.

На современном этапе борьбы с туберкулёзом, в XXI веке, туберкулёз продолжает оставаться одной из наиболее сложных проблем инфекционной патологии.

Туберкулёзом поражаются почти все виды млекопитающих животных, птицы, рыбы, холоднокровные, а также человек.

Важнейшим мероприятием по борьбе с туберкулезом является своевременное выявление и убой всей инфицированной птицы. Куры, также являются источником М.аушт для диких гггиц, дополняющих природный резервуар (М.К. Юсковец, 1963; Р.В. Тузова, 1983). Изучением туберкулеза крупного рогоатого скота и птиц в Таджикистане занимались К.И. Михайлова (1969)., Р.К. Каюмов (1972)., У.Ю. Сироджидинова (1989), Н.Я. Ярбаев (1993)., Д.М. Мирзоев (1998)., А.Х. Хабибов (2000)., Н.Р.Хасанов(2001).

Перевод птицеводства на промышленную основу и сокращение сроков эксплуатации кур, оптимизация условий содержания, кормления, а также постоянный ветеринарно-санитарный контроль и проблема туберкулёза птиц становится менее значимой (В.П.Шишков, В.П.Урбан, 1991).

Одной из основных причин, затрудняющих диагностику туберкулеза птиц, особенно в частном секторе, является совместное содержание разных видов животных и тесный контакт их с людьми.

В настоящее время рост поголовья домашней птицы в частном секторе, нарушение ветеринарно-санитарных правил при содержании и кормлении их, стали одними из основных причин заболеваемости кур туберкулезом. Возросла и степень пораженности синантропной птицы туберкулезом. Следует отметить, что для хозяйств частного сектора более характерны бесконтрольное перемещение птицы, перевозка кормов и птицеводческой продукции и торговля продуктами птицеводства. Указанные выше факторы, как правило, осложняют проведение в полном объеме всего комплекса профилактических и оздоровительных мероприятий.

По данным А.С. Донченко (1998) и Д.Д. Новак (2000), в последние годы в ряде хозяйств источником заражения и сенсибилизации крупного рогатого скота стали больные туберкулезом куры.

Успех борьбы с туберкулезом животных определяется уровнем изученности болезни, наличием высокоэффективных методов и средств диагностики, экономическими возможностями хозяйств, материальным обеспечением и организацией профилактических и оздоровительных мероприятий.

Поэтому, учитывая сложившуюся эпидемическую и эпизоотическую ситуацию по туберкулезу в стране, а также недостаточную эффективность традиционных методов диагностики, изучение эпизоотической ситуации туберкулеза птиц в частном и общественном секторе, совершенствование методов диагностики птиц на современном этапе борьбы с этой болезнью является актуальным.

1.2 Цель исследований

Анализ эпизоотической ситуации туберкулеза птиц в частном и общественном секторе Хатлонской области республики Таджикистан, и совершенствование методов диагностики туберкулеза птиц.

1.3. Основные задачи исследований:

1. Выяснить эпизоотическую ситуацию туберкулеза птиц .

2. Установить источники заражения кур М.аушт в частном секторе и птицеводческих хозяйствах.

3. Уточнить роль и значение совместного подворного содержания различных видов животных и птицы, на проявление эпизоотического процесса туберкулеза в семьях, где имеются люди больные туберкулезом.

4. Провести сравнительную оценку прижизненных методов диагностики туберкулеза птиц.

5. Установить диагностическую ценность ПЦР при туберкулезе птиц.

6. Разработать систему оздоровительных и профилактических мероприятий туберкулеза птиц в условиях Хатлонской области республики Таджикистан.

1.4. Научная новизна исследований.

Проведен анализ эпизоотической обстановки по туберкулезу птиц в хозяйствах Хатлонской области. Дана сравнительная оценка специфичности и чувствительности внутрикожной и глазной туберкулиновых проб при туберкулезе кур. Изучена возможность заражения крупного рогатого скота туберкулезом птиц, при совместном их содержании в частном подворье, в семьях, от людей больных туберкулезом.

Впервые проведены ПЦР исследования помета и носовой слизи у подозрительных в заболевании туберкулезом кур, на наличие ДНК М. avium,

Впервые для республики Таджикистан разработана научно обоснованная система мероприятий по профилактике и борьбе с туберкулезом птиц.

1.5. Практическая ценность.

Результаты проведенных исследований использованы, при составлении системы мероприятий по профилактике и борьбе с туберкулезом птиц в республике Таджикистан.

Для диагностики туберкулеза птиц разработан и предложен метод ПЦР, как сигнальный метод мониторинга благополучия кур по туберкулезу.

1.6. Личный вклад соискателя.

Заключается в анализе и обобщении эпизоотической ситуации по туберкулезу птиц в Хатлонской области республики. В организации и проведении аллергических и лабораторных методов исследований на туберкулез, а также ПЦР исследований подозрительных в заболевании туберкулезом кур и объектов внешней среды. В разработке научно обоснованной системы мероприятий по профилактике и борьбе с туберкулезом птиц.

1.7. Основные положения диссертационной работы, выносимые на защиту:

• Анализ проявления эпизоотического процесса туберкулеза птиц в хозяйствах Хатлонской области.

• Результаты сравнительной оценки диагностической ценности внутрикожной и глазной туберкулиновых проб при туберкулезе кур.

• Взаимосвязь зараженности крупного рогатого скота, кур и людей в частных подворье различными видами микобакте-рий туберкулеза - при наличии в семье людей, больных туберкулезом.

• Роль и место ПЦР в комплексе диагностических и оздоровительных мероприятий при туберкулезе птиц.

• Научно обоснованная система мероприятий по профилактике и борьбе с туберкулезом птиц.

1.8. Апробация работы.

Материалы диссертационной работы доложены и обсуждены на: заседаниях ученого совета ВИ ТАСХН (2008-2011гг); Республиканской конференции «Вклад молодых ученых в развитие сельскохозяйственной науки», посвященной 20-летию независимости РТ и 20-летию организации ТАСХН (Душанбе, 2010); научно-практической конференции, посвященной 80-летшо ТНИИ профилактической медицины «Краевые аспекты инсектологии» (Душанбе, 2011г.).

1.9. Публикации. По материалам исследований опубликовано 5 научных работ, в том числе 4 в журналах, рекомендованных ВАК РФ.

1.10. Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 104 страницах, иллюстрирована 9 таблицами и 5 электрофореграммами. Список литературы содержит 212 источников, из них 67 зарубежных. В приложении включены материалы, подтверждающие внедрение результатов исследования в практику.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Материалы и методы

Работа выполнена в 2008-2011гг. в лаборатории микобакте-риозов ВИ ТАСХН и хозяйствах Хатлонской области республики.

Эпизоотическую ситуацию по туберкулезу птиц изучали методом анализа отчетных данных районных СББЖ и областного Управления ветеринарии, а также по данным архива Службы государственного ветеринарного надзора МСХ РТ и на ос-

новании собственных аллергических, патологоанатомических, бактериологических и ПЦР исследований.

Оценку и анализ эпизоотической ситуации по туберкулезу птиц проводили в соответствии с методологией, изложенной в работах И.А. Бакулова (2000, 2001, 2002, 2008); С.И. Джупины, В. А. Ведерникова (1981); С. И. Джупины, Д.Д. Колосова (1991); и с учетом рекомендаций и разработок К. А. Щиткова, Д.Д. Дудко (1956); Н.П.Овсянникова (1964); Д.Д. Новак с соавт. (1992).

Аллергические, бактериологические и патоморфологиче-ские исследования проводили в соответствии с «Наставлением по диагностике туберкулеза животных» (утвержденного департаментом ветеринарии Роспотребнадзора РФ 18 ноября 2002г.), и «Наставлением по применению туберкулина для млекопитающих и птиц» (республика Беларусь, Витебск 2011г.).

Для аллергических исследований птиц использован 1111Д-туберкулин для птиц, производства Курской биофабрики (Серия 16, контроль 16 изготовлена 06.11.2008г).

Аллергические исследования у 2334 голов кур и диких птиц проводили двукратно методом внутрикожной пробы. Для внутри-кожного введения использовали шприцы емкостью 1 мл с бегунком и иглами для внутрикожных инъекций. Для введения ППД-туберкулина на конъюктиву глаз использовали глазные пипетки. При внутрикожном методе туберкулин вводили птице в соответствии с наставлением, в дозе 0,1 мл. Офтальмопробу проводили на 2334 головах, двукратно с интервалом 5-6 дней между первым и вторым введением, в конътиктиву глаз по 1 капле.

Учет аллергической реакции при внутрикожной пробе проводили через 30-36 часов, а на глазную пробу через 6, 9, 12 часов после первого введения и через 3, 6, 9, 12 часов после повторного введения туберкулина. При образовании заметной отечности на месте внутрикожного введения туберкулина, а при глазном - при образовании слизисто-гнойного секрета, гиперемии и отеке конъюктиве глаз - птицу считали реагирующей.

При бактериоскопическом исследовании из патологического материала (кровь, слизь, смыв, вода, почва и помет) делали 64

мазка на предметных стеклах, окрашивали по методу Циль-Нильсена, и просматривали под микроскопом МБИ-3.

При культуральном исследовании, патматериал обрабатывали по методу А.П. Аликаевой. При этом патматериал размельчали стерильными ножницами на мелкие кусочки, растирали в стерильной ступке. В зависимости от степени загрязнения, патматериал заливали 3-6% раствором Нг804 и оставляли на 10-20 минут закрытым стерильной пергаментной бумагой. Затем кислоту удаляли и кусочки промывали несколько раз в течение 5 минут стерильным физиологическим раствором, меняя его 2-3 раза. После этого патматериал растирали со стерильном песком в 1-2 мл физиологического раствора, а полученную суспензию высевали на питательные среды (Левенштейна-Йенсена и Пет-раньяни). Посевы в пробирках выдерживали в термостате при температуре + 37-38° С до 3 месяцев.

Выделенные культуры микобактерий типировали по морфологической характеристике, скорости роста на питательных средах и по патогенности на морских свинках, кроликах и курах.

ПЦР исследование материала от птицы на туберкулёз, проводили с использованием тест-системы «АВИУМ» производства ФГНУ ЦНИИЭ Роспотребнадзора.

Для исследования использовали образцы культур микобактерий, фарингиальные смывы, помёт, кусочки паренхиматозных органов и лимфатических узлов.

Жидкость (кроме крови) для исследования отбирали в объеме 20 мл, из тканей и органов, вырезали кусочки размеров 1x1см3, а лимфоузлы брали целиком.

Кровь брали в объеме 2-5 мл в пробирки с 3%-ным раствором трилона Б (ЭТДА) из расчета 1:10.

Пробы жидкой культуры микобактерий и пробы цельной крови, консервировали трилоном Б, и использовали для выделения ДНК без предварительной подготовки.

Пробы фарингиальных смывов в объёме 5-10 мл центрифугировали при 3x100 об/мин в течение 10-15 мин.

Супернатант осторожно отбирали, так чтобы над осадком осталось примерно 0,5 мл жидкости. Осадок суспендировали и

оставшуюся надосадочную жидкость переносили в пробирку вместимостью 1,5 мл. Суспензию центрифугировали на микроцентрифуге при (10-12)х103 об/мин в течение 5 мин. Суперна-тант отсасывали, оставляя над осадком 0,1 мл жидкости. Осадок ресуспендировали и оставшуюся жидкость использовали для выделения ДНК.

Помёт массой 0,3-0,8 г тщательно суспендировали в 5 мл физиологического раствора. Суспензию центрифугировали на низкооборотной центрифуге при 1,5x103 об/мин в течение 5 мин и 0,1 мл супернатанта использовали для выделения ДНК.

Пробы паренхиматозных органов размером 1x1 см3, лимфатические узлы целиком, тщательно растирали в отдельных фарфоровых ступках пестиками, добавляли по 1 мл физиологи-чес-кого раствора и тщательно перемешивали. Смесь отстаивали при температуре 18-22()С в течение 30 мин, затем верхнюю фазу переносили в пробирки вместимостью 1,5 мл и 0,1 мл и ее использовали для выделения ДНК.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Анализ эпизоотической ситуации по туберкулезу птиц в хозяйствах Кулябской зоны Хатлонской области.

Кулябская зона расположена в юго - восточной части Хатлонской области, на северо - западе граничит с РРП, на востоке с ГБАО, на юге и юго-востоке - с Исламской Республикой Афганистан. Природно-климатические условия области отличаются неоднородностью, что связано с рельефом местности, большим диапазоном высот и горно-долинных систем.

Климат характеризуется большими суточными колебаниями температуры воздуха, интенсивной солнечной радиацией и малой облачностью.

Выпадение большей части осадков приходится в зимнее -весенний период, а для летнего периода характерны длительные засухи.

Ряд районов региона являлись неблагополучными по туберкулезу, что отрицательно сказывалось на эффективности ве-

дения птицеводства и создавало серьёзные препятствия в производственной деятельности. В числе наиболее распространенных опасных инфекционных болезней животных и птиц в Кулябской группе районов остаётся туберкулёз.

Впервые туберкулез у сельскохозяйственных животных в республике был диагностирован РВЛ в 1931 году. Данные СГВН МСХ РТ о распространении туберкулеза птиц в Кулябской области с 1957 по 1966 годы приведены таблице 1.

Таблица 1

Сведения о неблагополучных пунктов по туберкулеза птиц в Кулябской зоне Хатлонской области в РТ (1957-1966 гг.)

Районы ГОДЫ Всего

1957 1958 1959 1960 1961 1962 1963 1964 1965 1966

Куляб 1 1 - 1 - 1 7 - 4 2 17

Восе - 1 - - 3 4 1 - - - 9

Хамадони 3 4 - 1 5 3 1 1 - - 28

Фархор 1 - - 3 - 3 - 5 5 18

Дангара 3 1 2 - 3 1 1 - 1 4 15

Итого 7 7 2 5 11 22 10 1 10 11 87

Из таблицы видно, что наибольшее количество - 22 НП по туберкулезу птиц, в 1962 году было выявлено в пяти указанных районах. За весь период анализа наибольшее количество инфицированной туберкулезом птицы было выявлено: в районах Ха-мадони- 28 НП и Фархор - 18 НП (Таблица 1).

Нами изучена динамика распространения туберкулеза птиц в Хатлонской области в зависимости от сезонов года. (Таблица 2).

Таблица 2

Динамика распространения туберкулеза птнц в Хат^

лонской о( зластн в зависимости от сезонов 1957 - 1966гг.

Сезоны года Неблагоп. пункты Исследование на туберкулёз птиц в благополучных хозяйствах Выявлено реагирующих на туберкулин Пало от туберкулеза

Весна 89 843089 13217 1854

Лето 39 461624 17376 955

Осень 63 940370 16579 1287

Зима 86 1129813 111119 1364

Итого 285 3375396 59291 5460

Установлено, что 65-70% неблагополучных пунктов выявлены в зимний и весенний периоды, что объясняется недостаточным уровнем кормления и плохими условиями содержания.

Анализ архивных данных и статистической отчетности по эпизоотической ситуации Кулябской зоны показывают, что в период 1966-2009гг. аллергические исследования на туберкулез среди птиц не проводились. В связи с этим, для выяснения эпизоотической ситуации туберкулеза птиц в некоторых районах Кулябской зоны нами проведены аллергические исследования с охватом 1044 голов птиц, из них выявлено положительно реагирующих 13 голов, что составляет 1,25% (Таблица 3).

Таблица 3

Рзультаты аллергических исследований на туберкулез птиц в Кулябской группе районов Хатлонской области в

20С 19-2011гг.

Районы Поголовье на 01.01.20 Юг Исследовано голов Выявлено голов в %

Куляб 38413 211 2 0,95

Муминабад 29537 240 3 1,25

Хамадони 34108 200 2 1,0

Фархор 52624 189 3 1,06

Восе 67751 204 3 1,96

Всего 222433 1044 13 1,25

Из результатов исследования видно, что наибольший про' цент положительно реагирующих выявлен в Восейском и Му-минабадском, а наименьший - в Кулябском районе.

3.2. Сравнительное изучение диагностической ценности внутрикожной и глазной туберкулиновой пробы у птиц.

Исследования по изучению сравнительной диагностической ценности внутрикожной и глазной туберкулиновой пробы у птиц провели в джамоатах «Ватан» и «Комсомол» Фархорско-го района Хатлонской области.

При сравнительном изучении внутрикожной и глазной туберкулиновой пробы, ППД-туберкулин для птиц курам и цыплятам вводили одновременно: внутрикожно - в кожу бородки в дозе 0,1мл; а при глазном методе наносили на слизистую глаза 1 каплю туберкулина.

В джамоате «Ватан» исследовано этими методами 550 кур и 235 цыплят, в джамоате «Комсомол» исследовало - 1065 и 415 голов соответственно. В джамоате «Комсомол» внутрикожной и глазной пробой исследовано: индеек - 21 гол, голубей -15, воробьев - 18, ворон - 15. Птиц предварительно ловили сетками, а в период исследований их содержали в вольерах. Результаты исследований представлены в таблице 4.

Таблица 4.

Сравнительная оценка внутрикожной и глазной

туберкулннової 1 пробы в Фа [іхорском районе

п/ н Вид птицы Исслед всего Внутрикож. проба Исслед. всего Глаз .проба

Реаги-щих % Реагирующих %

джамоат «Ватан»

1 Куры 550 6 1Д 550 2 0,3

2 Молодняк птицы 235 - - 235 - -

джамоат «Комсомол»

1 Куры 1065 17 1,6 1065 5 0,4

2 Молодняк птицы 415 - - 415 - -

3 Индейки 21 - - 21 - -

4 Голуби 15 - - 15 - -

5 Воробьи 18 - - 18 - -

6 Вороны 15 1 6,6 15 - -

Всего 2334 24 1,0 2334 7 0,6

Из данных таблицы 4 видно, что в джамоате «Ватан» при исследовании кур внутрикожной туберкулиновой пробой из 550 голов реагировало - 6 (1,2%), при глазной пробе из 550 кур положительно реагировало 2, что составляет (0,3%). При исследовании внутрикожной и глазной пробой 235 молодняка птицы реагирующих не выявлено.

В джамоате «Комсомол» при исследовании внутрикожной туберкулиновой пробой 1065 кур и 1065 - глазной пробой, соответственно выявлены 17 (1,6%) и 5 (0,4%) реагирующих птиц. При исследовании 415 голов молодняка птицы, этими пробами реагирующих не выявлено.

Исследование внутрикожной и глазной пробой с туберкулином, имеют некоторые сложности, так в соответствии с «Настав-

лением по диагностике туберкулеза животных» учет результатов глазной пробы следует проводить через 6, 9, 12, 24 часов после первого и через 3, б, 9 ,12 часов после повторного введения туберкулина. Как показывает опыт, проводить учет результатов глазной пробой, через каждые 3 часа, неоднократно большого количества птицы при выгульном содержании, практически невозможен.

При исследовании внутрикожной и глазной пробой положительно реагирующих среда индеек, голубей и воробьев не выявлено. Нами выявлено у одной вороны, слабая реакция на внутрикож-ное ведение ППД-туберкулина для птиц (6,6%). При убое и патоло-гоанатомическом исследовании, реагирующей вороны, характерных для туберкулеза изменений не обнаружено, а при бактериологическом исследовании возбудитель туберкулеза не выделен.

Проведенные нами исследования по изучению в сравнительном аспекте двух аллергических методов (внутрикожная и конъ-юктивиальная) показывает, что диагностическая ценность внутрикожной и глазной туберкулиновых проб примерно неодинаковы (0,3% и 0,4%). Однако, ведение учета реакции при офтальмопробе сложнее. Аллергические методы диагностики туберкулеза птиц, являются трудоемким и недостаточно эффективным методом.

В связи с этим, на современном этапе борьбы с туберкулезом животных и птиц необходимо совершенствовать и изыскивать новые, более доступные для массовых исследований методы прижизненной диагностики.

3.3 Туберкулёз птиц, при совместном содержании различных видов животных в частном подворье, где имеются люди больные туберкулёзом.

В последние годы, в Кулябской группе районов Республики сложилась неблагоприятная эпидемиологическая обстановка по туберкулезу. Так, по данным Кулябской зональной санитарно-эпидемиологической службы в 2010г. на 100 тыс. населения; в Во-сейском районе регистрирована высокая заболеваемость людей туберкулезом - 230 человек, в районах Хамадо ни- 151, Куляб-93 и Фархор - 167 человек. При этом довольно часто устанавлива-

ли внелегочную форму туберкулеза. Приведенные данные показывают, что эпидемиологическая ситуация по туберкулезу в населенных пунктах этого региона является неблагоприятной. Поэтому, совершенствование мер борьбы с этой болезнью, применительно к местным условиям, являются актуальным.

Исследования КРС и птицы частного сектора проводили аллергическим методом - внутрикожной симультанной туберкулиновой пробой ППД для млекопитающих и ППД для птиц, а также глазной пробой.

Определение значения совместного содержания КРС и птицы в частном подворье, где имеются больные туберкулезом люди, проводили в джамоате «Комсомол» и «Ватан» Фархор-ского района, в период 2008- 2011гг.

Результаты исследований представлены в таблице 5.

Таблица 5.

Результаты аллергических исследований крупного рогатого

№ Вид жи- Ис- Внутри кожная проба "лазная проба

п/ вотных сле- ППД % ППД % ППД % ПП %

п до-вано млек птиц млек д пти Ц

1 Коровы 20 - - 6 30,0 - - - -

2 Нетели 15 - - 1 6.6 - - - -

3 Телята 10 - - - - - - - -

4 Куры 75 - - 3 4,0 - - - -

5 Молодняк кур 40 - - - - - - - -

Из таблицы 5 видно, что при исследовании 20 коров на ППД- туберкулина для млекопитающих, при внутрикожной туберкулиновой пробе, не выявлено положительно реагирующих животных. При исследовании с ППД-туберкулином для птиц внутрикожной пробой выявлено реагирующих 6 (30%) коров, а при исследовании 15 нетелей - 1 (6,6%).

Реагирующие коровы и нетели на ППД туберкулин для птиц, (при отсутствии реакций на ППД для млекопитающих) указывают, что исследованные коровы, нетели и телята не заражены возбудителем туберкулеза М. bovis, но они были сенсибилизированы микобакгериями туберкулеза птичьего вида (М. avium).

Отсутствие реагирующих животных при исследовании глазной пробой с применением ППД для млекопитающих и ППД для птиц указывает на недостаточную чувствительность глазного метода введения туберкулина. Поэтому глазная проба в последние годы изредка применяется при диагностике туберкулеза КРС и не применяется при диагностике туберкулеза птиц.

При исследовании 75 кур внутрикожной пробой ППД-туберкулином для млекопитающих, реагирующих - не выявлено, но при исследовании с ППД для птиц выявлено 3 (4,0%) реагирующие куры. При диагностическом убое 3 кур, положительно реагирующих и одной головы КРС обнаружены, характерные для туберкулеза, изменения в печени, селезенке и в одном случае в легких. Изменения характеризовались образованием множественных плотных серо-белых казеозных узелков, главным образом в печени и селезенке. Патматериал от убитых кур исследован лабораторными методами.

При лабораторном исследовании патологического материала от 3-х убитых кур и одной головы КРС выделена одна культура медленно растущей кислото-щелочно-устойчивой микобак-терии. В целях идентификации выделенной культуры микобак-терий биопробу ставили на морских свинках, кроликах и курах по 3 головы. Для заражения лабораторных животных использовали 4-х недельную культуру микобактерий; морским свинкам- подкожно во внутреннюю поверхность бедра, кроликам -внутривенно в краевую вену уха и курам - внутривенно в под-крыльцовую вену, в дозах по 1 мг, суспендированных в 1 мл физиологического раствора.

При биологическом методе исследования установлено, что кролики после заражения пали в течение 15-30 суток, с явлениями сепсиса и увеличением селезенки. У кур и коровы убитых через 3

месяца после заряжения, обнаружены множественные серо-желтые бугорки в печени и селезенке. При исследовании мазков из органов, окрашенных по Циль-Нильсену обнаружили ярко-красные палочки, что характерно для мико бактерии туберкулеза М. avium.

Анализ результатов, проведенных нами исследований показывает, что при тесном контакте больных туберкулезом людей с крупным рогатом скотом и птицей, животные не заражаются и не заболевают туберкулезом человеческого вида, а куры заражаются и болеют только туберкулезом свойственного им вида - М. avium.

3.4. Диагностическая ценность ПЦР при туберкулезе птиц

Исследования методом ПЦР проводили в два этапа. На первом этапе методом ПЦР исследовано 45 проб фекалий и 45 проб крови от крупного рогатого скота, исследованных аллергическим методом. Пробы материала отбирали в соответствии с наставлением к тест-системе. Для выделения ДНК использовали 10% суспензию фекалий, кровь - без предварительной подготовки. Амплификацию проводили по программе амплификации в соответствии с наставлением к тест-системе.

Из 45 исследованных проб крови крупного рогатого скота ДНК возбудителя туберкулёза птиц не выделена (элек-трофореграмма 1).

Электрофореграмма 1.

Результаты ПЦР — исследования крови

К+ - положительный контроль амплификации (280 пар нуклеотидов) К- - отрицательный контроль амплификации Пробы №№1-45

К+К-123 4 5 6 7 8 9 1011 12 13 14

К+16 17 18 19 20 2122 23 24 25 26 27 28 29 ЗО

К+ 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45

Анализ всех проб, показывает на отсутствие в треках специфических полос, что является отрицательным результатом.

При исследовании 45 проб фекалий в шести пробах (13,3%) выделена ДНК М.avium. По-видимому, эти животные не болея туберкулёзом, являлись носителями возбудителя туберкулёза птичьего вида и выделяли ее во внешнюю среду.

Электрофореграмма 2 Результаты исследования фекалий крупного рогатого скота.

К+ К- 1 15 16 18 20 45

В треках, соответствующих проб 1, 15, 16, 18, 20 и 45 присутствует специфическая полоса на уровне положительного контроля амплификации и из этих проб выделена ДНК М. avium. В остальных пробах ДНК микобактерий птичьего вида не

выделена. На втором этапе проведены исследование проб помёта от кур разных возрастных групп.

Методом ПЦР исследовано 115 проб помёта от кур разных возрастных групп. Пробы помёта отбирали в соответствии с наставлением к тест-системе. Для выделения ДНК использовали 10% суспензию помёта.

В результате проведенных исследований методом ПЦР выделена ДНК M.avium у 3-х проб, что составляет 2,6% от общего количества исследованных.

Электрофореграмма 3.

Результаты ПЦР - исследования 115 проб помёта кур

К+ - положительный контроль амплификации (280 п.н.) К- - отрицательный контроль амплификации

Пробы №№ 9, 38, 96 положительные пробы (в треках присутствует специфическая полоса на уровне положительного контроля амплификации (280 п.н.)

Анализ проведенных исследований и полученных результатов показывает, что методом ПЦР можно исследовать фекалии, помет и объекты внешней среды.

Результаты исследований позволяет нам рекомендовать ПЦР, как контрольный сигнальный метод мониторинга туберкулеза птиц, в связи с этим у ветеринарных специалистов появляются возможность проводить более целенаправленную работу по диагностике туберкулеза.

4. Научно-обоснованная система мероприятий профилактики и борьбы с туберкулезом птиц

На современном этапе борьбы с туберкулезом необходимы более совершенные методы борьбы, основанные, прежде всего на изменении технологии ведения птицеводства, учитывающие

К+К-93896

биологические особенности птиц, природно-климатические условия и максимальную защиту окружающей среды от загрязнения. Специальные противотуберкулезные мероприятия, должны быть направлены на профилактику - оздоровление и органично вписываются в технологию ведения птицеводства.

Возникновению туберкулеза среди кур - несушек способствует их длительная передержка после окончания интенсивной яйценоскости.

Укомплектование поголовья старой птицей, приводит к возникновению новых очагов заболевания.

Больные туберкулезом птицы, являются источником заражения крупного рогатого скота и свиней.

В связи с чрезвычайной устойчивостью туберкулезной палочки к физическим и химическим воздействиям, решающим фактором в борьбе с туберкулезом являются уничтожение возбудителя во внешней среде.

При замене неблагополучного поголовья вначале проводят дезинфекцию, механическую очистку помещения от мусора, помета а затем заключительную дезинфекцию 3%-ным щелочным раствором формалина или фенолом натрия, подогретого до 60-800С из расчета 1 л на 1 м2 помещения. Зимой для этого необходимо использовать смесь полиэтиленгликолиевой смолы (ПЭГС) и 1 - 2%-ный раствор каустической соды в соотношении 1:10 или смесь ПЭГС с 5%-ным техническим раствором фенола натрия в соотношении 2:3. В помещении нужно создать герметичность и проводить аэрозольную дезинфекцию 38-40%-ным раствором формалина из расчета 40мл/мЗ.

В помещениях необходимо снять деревянные полы, убрать слой почвы глубиной 10-15 см. Засыпать глину, известь-пушонку и настилать полы из нового стройматериала.

Территорию фермы нужно запить раствором, содержащим 3% едкого натрия и 3% формальдегида из расчета 2 л на 1 м2 площади, или раствором хлорной извести, содержащий не менее 5% активного хлора из расчета Юл на 1 м2 площади. Затем почву посыпать сухой хлорной известью содержащей не менее 25% активного хлора, и перепахать на глубину до 25см.

Выгульные дворы, базы, территорию фермы дезинфицировать хлорной известью-пушонкой, инвентарь - 3%-ным раствором формальдегида.

Эффективными дезинфицирующими средствами при туберкулезе являются препараты, выделяющие свободный активный хлор. Из них наибольшего внимания заслуживает хлорная известь, гипохлорид кальция, хлорамин, гипохлор, препарат ДТСГК (двутрехосновная соль гипохлорида кальция).

Хлорная известь в виде порошка, следует использовать для обеззараживания влажной почвы (1 часть извести на 3 части почвы), навозной жижи и помета.

Гипохлорид кальция содержит 80-90% активного хлора. Его применять для дезинфекции в виде 5%-ного водного раствора.

Хлорамин содержит 26-30% активного хлора, использовать 3-5%-ный раствор хлорамина Б, действие которого усиливается прибавлением аммонийных солей (хлористого или сернокислого аммония) в соотношении 1:1.

Препарат ДТСГК содержит 47-52% активного хлора и его использовать как хлорную известь.

Наряду с хлорсодержащими препаратами для обеззараживания птицеводческих объектов применять и другие дезинфицирующие средства. Побелку стен на НП проводить трехкратно, с часовым интервалом 20%-ной взвесью свежегашеной извести (известковое молоко).

Хорошие результаты дает щелочной раствор формалина, в котором содержится 3% едкого натрия и 3% формалина. Вначале в воде растворить, а затем добавить формалин из расчета 3% к общему количеству необходимого раствора. Дезинфекцию проводить подогретым до 35-40% ОС раствором из расчета 1 л на 1 м2 поверхности.

Для обеззараживания птицеводческих помещений целесообразно использовать наряду с указанными дезинфекционными средствами 1%-ный раствор глутарового альдегида и 5%-ный раствор фенола натрия.

Высокоэффективным дезинфекционным средством является феносмолин, представляющий собой смесь фенольной смолы и 20%-ного водного раствора едкого натрия, в соотношении 1:1. Надежное обезвреживание помещений, оборудования и инвентаря достигается при использовании 8%-ной эмульсии фе-носмолина из расчета 1л/м2.

Территорию птицефермы в течение лета 2-3 раза обрабатывают дисками на глубину 13-15 см, что позволит санировать почву за счет воздействия естественных физических факторов.

Необходимо широко использовать возможности санации помещений и территории солнечным светом в летние месяцы. Халаты, полотенца, резиновые сапоги погружать в 3%-ный раствор формалина и 3%-ный раствор едкого натрия на 2 часа.

5. Выводы

1. Ретроспективный анализ эпизоотической ситуации по туберкулезу птиц в Кулябской группе районов РТ показывает, что масштабные исследования птиц в республике проводились в 1957-1966 гг. В этот период выявлено 285 неблагополучных пунктов. Исследовано аллергическим методом в благополучных хозяйствах - 3375396, в неблагополучных - 3341595 птиц, выявлено положительно реагирующих - 59291 птиц, пало от туберкулеза 5460 птиц.

2. Наибольшее количество положительно реагирующих кур на туберкулин, выявлено в летне-осенний период, а наибольшее количество неблагополучных пунктов (до 70%) выявлено в зимний и весенний периоды.

3. Исследования птиц на туберкулез, в период 1966-2009 гг. проводились с частичным охватом поголовье. При исследовании птиц в Кулябской зоне Хатлонской области в 2010г. нами установлено НП по туберкулезу в районах: Кулябский-1 , Му-минабадский - 2, Хамадони - 3, Фархорский и Восе по 5 НП.

4. Специфичность и чувствительность внутрикожной и глазной туберкулиновой пробы идентичны (0,3% и 0,4%). Од-

нако, учет реакции при офтальмопробе значительно сложнее и длительнее по времени. В связи с этим, для аллергического исследования на туберкулез птиц, целесообразно использовать внутрикожную туберкулиновую пробу с ППД - туберкулином для птиц.

5. При тесном контакте с другими видами животных, при наличии очага куры заражаются М. avium, и заболевают только туберкулезом птичьего вида. При совместном содержании больных туберкулезом кур клинически здоровый КРС может сенсибилизироваться М. avium.

6. При ПЦР исследовании 45 проб фекалий крупного рогатого скота, находившегося в контакте с больной туберкулезом птицей, у 6 (13,3%) проб выделены ДНК М. avium., а при исследовании 115 проб помета кур, у 3 (2,6%) проб выделены ДНК М. avium.

7. ПЦР исследование помета птиц позволяет проводить контроль благополучия поголовья птицы по туберкулезу птиц и можно его использовать как сигнальный метод мониторинга туберкулеза птиц.

Практические предложения

1. С целью профилактики и ликвидации туберкулеза кур в частном и общественном секторе республике Таджикистан, рекомендовать содержание и эксплуатации кур не более 1,5-2 года.

2. Контроль благополучия по туберкулезу птиц следует подтвердить с использованием ПЦР, При этом один раз в год, отбирать сборные или индивидуальные пробы помета или носовой слизи из всех клеток и помещений птиц, и подвергать исследованию методом ПЦР. При выявлении ДНК М. avium, к дальнейшему исследованию на туберкулез, подвергают только птиц из клеток и помещений, где были выделены ДНК возбудителей туберкулеза.

3. Методические рекомендации по профилактике и оздоровлению животных хозяйств от туберкулеза. Душанбе - 2010.

Список использованной литературы

Грошева Г.А. - Справочник по инфекционным болезням птиц специализированных промышленных предприятий мелкотоварных ферм и приусадебных хозяйств / Г.А. Грошева, З.В. Тихонова - изограф / Москва, 2007г. - с.47

Бальчюнас И.И. - Сравнительная оценка прижизненной диагностики туберкулеза и пуллороза кур: Автореферат дисс. докт. вет. наук: 16.00.03 / И.И. Бальчунас - Харьков, 1974 - с.46

Душук Г.В. - Трансоварнальная передача возбудителя туберкулеза кур: Автореферат дисс. докт. вет. наук: 16.00.03 / Р.В. Душук - Москва, 1959-с. 13

Иванесова Б.П. - Данные экспериментальных исследований по аллергической диагностике туберкулеза кур: Автореферат дисс. докт. вет. наук: 16.00.03 / Н.Б. Иванесова - Москва, 1955 - с.15

Плеханов Б.К. - Зональная эпизоотология туберкулеза кур и опыт его искоренения: Дисс. канд. вет. наук: 16.00.03. Плеханов Б.П. - Москва - 1968 - с.261.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

*1. Одинаев К.А. Особенности современной диагностики туберкулеза в условиях высокогорья Республики Таджикистан/ Конференция молодых Ученых ТАСХН /Тезисы докладов конференции молодых ученых ТАСХН// Душанбе, 2010.-С.343-350.

*2. Мирзоев Д.М. Туберкулез сельскохозяйственных животных (Сатгоров С.Ф., Одинаев К.А.) /Доклады ТАСХН. -Душанбе, 2010 - № 3 - С.39-42

*3. Мирзоев Д.М. Эпизоотология, диагностика и профилактика туберкулеза птиц (К.А.Одинаев., С.Ф.Сатторов) / Доклады ТАСХН. - Душанбе, 2010 - № 4 - С.61-64.

4. Одинаев К.А. Достоинства и преимущества ПЦР-диагностики инфекционных заболеваний /ТрудыТаджикского НИИ профилактической медицины// Кровь аспекты инфектоло-гии. - Душанбе, 2011 - С.81-85 (Мирзоев Д.М.)

*5. Одинаев К.А. Аллергические методы диагностики туберкулеза животных и птиц /Доклады ТАСХН. - Душанбе, 2011 -№ 2 - С.41-45.

Примечание - * публикации в изданиях, рекомендованных ВАК для РФ и РТ.

ПРИНЯТЫЕ СОКРАЩЕНИЯ:

ВИ - Ветеринарный институт

ТАСХН - Таджикская академия сельскохозяйственных наук

РТ - Республика Таджикистан

ПЦР - полимеразная цепная реакция

СББЖ - станция по борьбе с болезнями животных

СГВН - служба государственного ветеринарного надзора

РРП - районы республиканского подчинения

ГБАО - горно-Бадахшанская автономная область

НЦВД - национальный центр ветеринарной диагностики

МСХ - министерство сельского хозяйства

НП - неблагополучные пункты

ППД - протеин префуит - деравит

ПЭГС - полиэтиленгенколиевая смесь

ДТСГК - двутрехосновная соль гипохлорида кальция

в печать 26.04.2012. Разрешено в печать 27.04.2012.

Бумага офсетная. Формата 60x841/16. Печать офсетная. Заказ 32. Тираж 100 экз. Издательство «ИЛМ»

Содержание диссертации, кандидата ветеринарных наук, Одинаев, Курбон Амиршоевич

1 ВВЕДЕНИЕ

1.1 Актуальность темы

1.2 Цель исследований

1.3 Задачи исследований:

1.4 Научная новизна исследований

1.5 Практическая ценность

1.6 Личный вклад соискателя.

1.7 Основные положения диссертационной работы, выносимые на g защиту

1.8 Апробация работы

1.9 Публикации

1.10 Объем и структура диссертации

2 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1 Общая характеристика заболевания

2.2 Эпизоотический процесс туберкулеза 13 2.3. Возбудитель туберкулеза

2.4 Источники М.avium и пути заражения

2.5 Распространение и выживаемость микобактерий туберкулеза

2.6 Патогенность М.avium

2.7 Механизм передачи, патогенез, клинические признаки и патологоанотомические изменения у больных туберкулезом

2.8 Аллергический метод диагностики туберкулеза птиц

2.9 Лабораторные методы диагностики туберкулеза

2.10 Молекулярно-генетические исследования 3 9 3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 46 3.1 Материалы и методы

4 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

4.1 Анализ эпизоотической ситуации по туберкулезу птиц в хозяйствах Кулябского региона Хатлонской области

4.2 Сравнительное изучение диагностической ценности внутрикожной и глазной туберкулиновой пробы у птиц

4.3 Туберкулез птиц, при совместном содержании различных видов животных, в частном подворье, где имеются люди, больные туберкулезом

4.4 Диагностическая ценность ПЦР при туберкулезе птиц

4.5 Научно - обоснованная система мероприятий по профилактике и борьбы с туберкулезом птиц

5 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНЫЕ МЕРОПРИЯТИЯ ПРИ ТУБЕРКУЛЕЗЕ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

6 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ

7 ВЫВОДЫ

8 ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Туберкулез птиц в юго-восточном регионе Таджикистана"

1.1 Актуальность темы.

На современном этапе борьбы с туберкулёзом, в XXI веке, туберкулёз продолжает оставаться одной из наиболее сложных проблем инфекционной патологии.

Туберкулёзом болеют почти все виды млекопитающих животных, птицы, рыбы и холоднокровные.

Эпизоотический процесс развития туберкулёза, как и при всех инфекционных болезнях, состоит из 3-х основных частей: источника инфекции, механизма передачи возбудителя и восприимчивых животных.

Следует отметить, что успех борьбы с туберкулёзом животных определяется уровнем изученности болезни, наличием высокоэффективных методов и средств диагностики, экономическими возможностями хозяйств, материальным обеспечением и организацией профилактических и оздоровительных мероприятий.

Борьба с туберкулезом птиц основана на проведении комплекса ветеринарно-санитарных и организационно-хозяйственных мероприятий, направленных на профилактику заболевания. Важнейшим мероприятием является своевременное выявление, изоляция и убой всей инфицированной птицы.

Известно, что при туберкулёзе птиц основным источником инфекции М. avium являются больные туберкулезом куры. Куры, также являются источником М. avium для диких птиц, дополняющих природный резервуар (М.К. Юсковец, 1963; Р.В. Тузова, 1983). Изучением туберкулеза крупного рогатого скота и птиц в Таджикистане занимались К.И. Михайлова (1969), Р.К. Каюмов (1972), У.Ю. Сироджидинова (1989), Н.Я. Ярбаев (1993), Д.М. Мирзоев (1998), А.Х. Хабибов (2000), Н.Р. Хасанов (2001).

Перевод птицеводства на промышленную основу резко снизил значимость проблемы туберкулеза в этой отрасли народного хозяйства, так как при сокращении сроков эксплуатации кур, оптимизации условий содержания, кормления и постоянном ветеринарно-санитарном контроле проблема туберкулёза птиц становится менее значимой (В.П.Шишков, В.П.Урбан, 1991). Тем не менее, эпизоотический процесс туберкулеза кур не прерывался. Этому видимо способствовала чрезвычайно высокая устойчивость М. avium, так как известно, что в поверхностных и даже в глубоких слоях (60-80 см) почвы М. avium сохраняет жизнеспособность до 9 и более лет. Кроме того, в последние годы, резко сократилось поголовье птицы в государственном секторе и увеличилось поголовье в частном секторе. Следует отметить, что для частного сектора более характерны бесконтрольные перемещения животных, перевозки кормов и птицеводческой продукции, бесконтрольная торговля продуктами птицеводства (мясом птицы и яйцами). Указанные выше факторы, как правило, осложняют проведение в полном объеме всего комплекса профилактических и оздоровительных мероприятий.

Немаловажной особенностью, затрудняющей диагностику туберкулеза, и особенно в индивидуальных хозяйствах, является совместное содержание и как следствие этого - тесный контакт людей и разного вида животных.

Поэтому, в последние годы рост поголовья домашней птицы в личных хозяйствах вызвал подъём заболеваемости туберкулезом кур. Возросла и степень пораженности синантропной птицы. Так, A.C. Донченко (1998), Д.Д. Новак (2000) указывают, что в последние годы в ряде хозяйств источником заражения крупного рогатого скота стали больные туберкулезом куры. В некоторых случаях переносчиками М. avium оказались доярки, содержащие кур в личных хозяйствах.

М.А.Харитонов, М.А.Сафин (1999) установили, что источником заражения и сенсибилизации крупного рогатого скота М. avium являются синантропные птицы, проникающие в животноводческие помещения и склады кормов.

А.И. Писарев (1999) установил, что распространителями М.avium в некоторых хозяйствах Орловской области стали зараженные голуби, трясогузки, галки и воробьи.

Поэтому, учитывая сложную эпидемическую и эпизоотическую ситуацию по туберкулезу в Таджикистане, недостаточную эффективность традиционных методов диагностики туберкулеза животных, изучение современной эпизоотической ситуации туберкулеза птиц в частном и общественном секторе, совершенствование методов диагностики птиц является актуальным на современном этапе борьбы с туберкулезом.

1.2 Цель исследований:

Анализ эпизоотической ситуации туберкулеза птиц в частном и общественном секторе Хатлонской области республики Таджикистан и совершенствование методов диагностики туберкулеза птиц.

Заключение Диссертация по теме "Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов", Одинаев, Курбон Амиршоевич

7. ВЫВОДЫ

1. Ретроспективный анализ эпизоотической ситуации по туберкулезу птиц в Кулябской группе районов РТ показывает, что широко масштабные исследования птицы в Республике проводились в 1957-1966 гг. В этот период выявлено 285 неблагополучных пунктов. Исследовано аллергическим методом в благополучных хозяйствах - 3375396, в неблагополучных -3341595 птиц, выявлено положительно реагирующих - 59291 птиц, пало от туберкулеза 5460 птиц.

2. Наибольшее количество положительно реагирующих кур на туберкулин, выявлено в летне-осенний период, а наибольшее количество неблагополучных пунктов (до 70%) выявлено в зимний и весенний периоды.

3. Исследования птиц на туберкулез, в период 1966-2009 гг. проводились с частичным охватом поголовья. При исследовании птиц в Кулябской зоне Хатлонской области в 2010г. нами установлено НП по туберкулезу в районах: Кулябский-1 , Муминабадский - 2, Хамадони - 3, Фархорский и Восе по 5 НП.

4. Специфичность и чувствительность внутрикожной и глазной туберкулиновой пробы идентичны. Однако, учет реакции при офтальмопробе значительно сложнее и длительнее по времени. В связи с этим, для аллергического исследования на туберкулез птиц, целесообразно использовать внутрикожную туберкулиновую пробу ППД - туберкулином для птиц.

5. При тесном контакте с другими видами животных, при наличии очага куры заражаются М. avium и заболевают только туберкулезом птичьего вида. При совместном содержании больных туберкулезом кур, КРС может сенсибилизировать М. avium и являются бактерионосителями и бактериовыделителями этого вида микобактерий.

6. При ПЦР исследовании 45 проб фекалий крупного рогатого скота, находившего в контакте с больной туберкулезом птицей, у 6 (13,3%) проб выделены ДНК М. avium, а при исследовании 115 проб помета кур, у 5 (4,3%) проб выделены ДНК М. avium.

7. ПЦР исследование помета птиц позволяет проводить контроль благополучия по туберкулезу кур по выделениям ДНК М. avium, и можно его использовать как контрольный - сигнальный метод мониторинга туберкулеза птиц.

8. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. С целью профилактики и ликвидации туберкулеза кур в частном и общественном секторе республике Таджикистан, рекомендовать содержание и эксплуатации кур не более 1,5-2 года.

2. Контроль благополучия по туберкулезу птиц следует подтвердить с использованием ПЦР. При этом один раз в год, отбирать сборные или индивидуальные пробы помета или носовой слизи из всех клеток и помещений птиц, и подвергать исследованию методом ПЦР. При выявлении ДНК М. avium, к дальнейшему исследованию на туберкулез, подвергают только птиц из клеток и помещений, где были выделены ДНК возбудители туберкулеза.

3. Методические рекомендации по профилактике и оздоровлению животных и хозяйств от туберкулеза; Душанбе - 2010.

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, кандидата ветеринарных наук, Одинаев, Курбон Амиршоевич, Душанбе

1. Абдулин Х.Х. О влиянии повторного внутрикожного введения туберкулина на аллергическое состояние при туберкулезе у кур. Ученые записки Казанского вет. института, т.65,1957, стр.149.

2. Акулов A.B. Сравнительная патоморфологическая оценка активности аллергических и серологических реакций при туберкулезе кур. Бюллет. науч. техн. Информации, ВИЭВ, 1958, 3, с.54

3. Александров H.A. Проведение противотуберкулезных мероприятий в особо сложной эпизоотической обстановке // Сб. научн.тр. / Саратов. НИВС Саратов, 1970.-Вып. 7. С. 3-10.

4. Алексеева Г.И., Ивашевская Е.Б. Сезоны года и аллергическая диагностика туберкулеза крупного рогатого скота //Профилактика болезней с-х животных в Сибири. Новосибирск, 1973. С. 83-85.

5. Аликаева А.П. Туберкулез. В кН. «Ветеринарная лабораторная практика» Т 1,1963, с.279.

6. Алипер Т.И. ПЦР в реальном времени для диагностики туберкулеза /Алипер Т.Т., Потапова Н.И., Непоклонов Е.А., Забрежный А.Д., Гребенникова Т.В.//Ветеринарная жизнь. 2006. - №7-8. С. 13.

7. Алыпинецкий М.В. диагностика туберкулеза зоопарковых животных. /Альшинецкий М.В. //Ветеринарная патология. 2004. - № 1-2. - С. 147-148.

8. Антонов Б.И. Использование метода ПЦР при диагностике острых инфекционных болезней животных /Антонов Б.И. //Медицинский центр «Наследственность»ю Новгород. - 2002.

9. Архангельский И.и. Ускоренные методы определения в молоке туберкулезных бактерий. «Ветеринария», 1962, №1, с. 73.

10. Бакулов И. А. Методические указания по эпизоотологическому обслуживанию./Бакулов И.А., Юрков Г.Г., Песковицков П.П., Ведерников В.В. /М. Колос. -1982. С. 1-17.

11. Бакулов И.А. Эпизоотологический словарь справочник. /Бакулов И.А., Юрков Г.Г., Ведерников В.В., Орлов Ф.М. //М. Россия. Хоз. издат. -1986. -89 с.

12. Бальчунас ИИ. «Значение яиц, полученных от туберкулезных кур, в распространение туберкулеза и ранния диагностика туберкулеза цыплят». Автореферат диссертации. Каунас, 1961.

13. Бальчунас И.И. Комплексная диагностика туберкулеза и цуллороза птиц. «Ветеринария», 1966, №5, с.32

14. Бальчунас И.И. Об эффективности комплексной диагностики туберкулеза и пуллороза птиц. Труды ВИЭВ, т.32, 1966, с. 152.

15. Бальчюнас И.И. Сравнительная оценка диагностики туберкулеза и пуллороза кур.Автореферат дисс. докт. вет. наук. 13.00.03. Харьков // -1974. -43 с.

16. Банников A.A. Степень активности различных типов туберкулинов при диагностике туберкулеза кур.

17. Батырева A.A. Применение люменесценитной микроскопии для выявления туберкулезных бактерий в спинномозговой жидкости. «Лабораторное дело», 1957, №2, с.42.

18. Беляев A.A., Малыгин В.И. О чувствительном аллергене для диагностики туберкулеза у кур и некоторых источниках инфекции. Сб. тр. Ленинградского НИВИ, 1959, вып.8, 145-151.

19. Белоусов A.B. Люминесцентная бактериоскопия микобактерий туберкулеза, не выявленных обычным методом. «Лабораторное дело», 1965,№5, с.312.

20. Бессарабов Б.Ф. Болезни кур. М.: Россельхозиздат // -1974. - 133 с.

21. Богданов И. Л. Аллергия в патогенезе, клинике и терапии инфекционных болезней. Москва, 1974.

22. Бокун А.О. Опыт профилактики и ликвидации туберкулеза// Эффективность мероприятий по борьбе с туберкулезом животных/ ВАСХНИЛ. Юж. Отделение. Киев, 1982,- С. 114-116.

23. Боядьян Г.К. Сравнительное изучение методов диагностики туберкулеза кур. Бюллет. научно-техн. шиф. ВИЭВ, 1959, 3, с.51-52

24. Боядьян Г.К. Влияние внешних факторов на течение туберкулеза у кур «Ветеринария», 1961, №6, с.49.

25. Буйвид О. Туберкулин, его приготовление и действие на организм животных, зараженных туберкулезом. Архив, биол. науки, т.1, 1892, с.212-234.

26. Бушмелева П.В. Экспериментальный туберкулез перепелов /Бушмелева П.В.// Актуальные вопросы ветеринарной медицины. Материалы УШ Сиб. конф. Новосибирск. -1988. - С. 169-171.

27. Васин A.B. Аллергия и парабиоз при туберкулезе. Сб. научных работ. Сарат. НИВс, т.4, 196о, с.3-46.

28. Васин A.B. Экспериментальный анализ механизмов аллергической реактивности при туберкулезе. Сб. научных, работ т.6, 1963, с.3-46.

29. Васин A.B. Значение доминантных раздражений и реализации аллергических эффектов при туберкулезе у кур. Тр. Сарат. Зоо-вет. Института, т. 13, 1965, с.265.

30. Владимиров A.A. Воспоминания микробиолога.- Москва, Медицина. 1991,- 112 с.

31. Водолазский Д.К., Трибанин A.C. Распространение и причины повторного возникновения туберкулеза крупного рогатого скота в

32. Ставропольском крае // Диагностика инфекц. и инв. болезней с-х животных и птиц. Новочеркасск, 1976. С. 15-17.

33. Гамалея Н.Ф. Туберкулез. В кн.: Собрание сочинений, т.5,М., 1953, с.89-101.

34. Гельман Х.И. О свойствах туберкулина, полученного из туберкулезных бацилл, выращенных на картофеле. Архив. Биол. Наук, т.1, 1892, с. 138-152.

35. Глазман М.Г. Дифференциальный диагноз по крови скрытых форм лейкоза, тифа и туберкулеза у кур. «Вестник сель-хоз. науки», Ветеринария, №4, . с.88.

36. Грен Я. Л., Хуршудянц Р.С., Тимина Н.Д. Оценка методов диагностики туберкулеза кур. Тр. Ставр. Сель-хоз. ин-та, 1965, вып. XX, с. 73.

37. Гутира Ф., Марек И. частная патология и терапия домашних животных, Том 1, М.-2. 1930.

38. Гутира Ф., Марек И. Частная патология и терапия домашних животных. //Инфекционные болезни. Москва, 1933. -Т1.- С. 609-759.

39. Джупина С.И. Контроль эпизоотического процесса. Новосибирск, 1994.-164 с.

40. Джупина С.И. К теории эпизоотического процесса // Актуальные вопросы общей эпизоотологии,- Москва, 1974,- С. 74-85.

41. Диагностическая ценность ПЦР-тест-систем при туберкулёзе животных /Калмыкова М.С, Найманов А.Х.//Материалы международной научно-практической конференции к 110-летию ВИЭВ.-Москва, 2008.-С. 142-158.

42. Дифференциация аллергических реакций на туберкулин /А. X. Найманов // Ветеринария, 2002. № 3. - С. 10-12.

43. Донченко H.A., Першикова H.J1. Использование полимеразной цепной реакции для обнаружения ДНК микобактерий туберкулеза.// Вестник Крас-ГАУ.-2007.-№5.-С. 129-131

44. Драбкина P.O. микробиология туберкулеза, М., Медгиз, 1963.

45. Дурнакова М.А., Малыгин В.И., Борисенкова А. Н., Болотников И.И. Парааллергические реакции на туберкулин у крупного рогатого скота, зараженного птичьим типом микобактерии. «Ветеринария», 1964, №3, с.23.

46. Ерохин В.В. Современные представления о строении микобактерий туберкулеза//ЖМЭИ. 1982,- №12,- С. 33-40.

47. Жумаш A.C. с соавт. Частота проявления неспецифических туберкулиновых реакций у животных в благополучных по туберкулезу хозяйств // Вестник Кыргызского НИИЖиВ и пастбищ им. А. Дуйшеева.-Бишкек,2007.-№1.-С.282-285

48. Заглухинская С.Б., Скрябина Л.Е, Порсон Ф, В. Исследование микобактерий туберкулеза методом люменесцентной микроскопии. «Проблемы туберкулеза», 1960, №7, с. 89.

49. Закомырдин A.A. Данные экспериментального изучения факторов, определяющих активность птичьего туберкулина. Автореферат дссертации. М. 1957.

50. Закриевский Е.Б. Люминесцентная микроскопия в клиникогемотологических исследованиях. Л., Медгиз, 1963.

51. Зубжицкий Ю.Н. Филюрисцентная микроскопия туберкулезной палочки и ее оценка в связи с возможными погрешностями метода и изменчивостью возбудителя. «Лабораторное дело», 1957, №6, с.22.

52. Зыков М.П. Сравнительная оценка трех методов обнаружения микобактерий туберкулеза в мазках отпечатках из органов. «Лабораторное дело», 1965, №6, с.362.

53. Иванов М.М. К вопросу типовой специфичности туберкулинов. Диссертация. М., 1940.

54. Иванов М.М. О типовой специфичности туберкулинов применительно к диагностике туберкулеза сельхоз. животных. Сб. работ молодых ученых в области ветеринарии. Изд. ВАСХНИЛ. Сельхозтисв, 1940, с. 115.

55. Иванов М.М. Экпериментальный туберкулез лошади. Научный отчет Контрольного института веет, препаратов, М., Сельхозгиз, 1947, с. 126.

56. Иванов М.М., Бабич М.А., Павловский В.В., Плотникова В.А., Кириллов Л.В., Шейн А.Н., Беляев A.C., и Белова К.Д. Освоение метода получения очищенного туберкулина и изучение его активности. Тр. ГНКИ, т.УШ, М., 1959, с. 15.

57. Иванов М.М. Современные меры борьбы с туберкулезом крупного рогатого скота. Международный сельхоз. журнал, 1962, №5, с. 15-18.

58. Иванов М.М. Вопросы ликвидации туберкулеза и бруцеллеза сельскохозяйственных животных. Материалы всесоюзного совещания работников сельского хозяйства и ветеринарии. М., Сельхозгиз, 1966, с. 4-8.

59. Иванов М.М., Кириллов Л. В., Дроздов Стабильность типов микобактерий туберкулеза, «проблемы туберкулеза», 1967, №4, с.64.

60. Иванов М.М. Некоторые вопросы диагностики туберкулеза крупного рогатого скота, скота. В сб. материалов обл.совещании зооветспециалистов. Приволское изд-во, Ульяновск, 1967. стр. 110.

61. Использование полимеразной цепной реакции в практических ветеринарных лабораториях / Обухов И.Л., Груздев К.Н., Панин А.Н. // Ветеринария. -1997,-№2. -С.24-27.

62. Кассич Ю.Я. Совершенствование и сравнительное изучение методов обработки материала, отобранного из объектов внешней среды для культуральной диагностики туберкулеза /Ю.Я. Кассич, П.М. Тихонов //Ветеринария . 1984,- №5,- С. 16-18.

63. Кассич Ю.Я. Туберкулез животных и меры борьбы с ним. Киев: Урожай, 1990,- 128 с.

64. Колычев Н.М. Сравнительная оценка двух методов бактериального контроля качества дезинфекции при туберкулезе /Н.М. Колычев // Патогенез,лечение и профилактика болезней жвачных животных в Западной Сибири. Омск, 1985.-С. 49-57.

65. Капитанаки М.В. Ликвидация туберкулеза фазанов с применением химиопрепаратов. В кн.: «Болезни птиц», Сборник трудов ВНИИ по болезням птиц, вып.1 (12), л., «Колос», 1965, стр.99.

66. Каркадиновская И.А. Некоторые запросы эпизоотологии туберкулеза разных видов животных. Сборник трудов ЛенНИВИ, вып.5, 1953, с.63.

67. Кириллов Л.В. К вопросу подбора наиболее туберкулиногенных штаммов для изготовления туберкулина птиц. Тр. ГНКИ, т.VIII, 1959, с.26.

68. Кириллов Л.В. Комплексный аллерген для диагностики туберкулезасельскохоз. животных и птиц». «Ветеринария» 1960, №8, стр.46.

69. Кириллов Л.В. Комплексный туберкулин и значение типовой специфичности в диагностике туберкулеза сельхоз.животных и птиц. Диссертация, 1960.

70. Киселев B.C., Аликаева А.П., Якушева О.В. Типовые аллергены в диагностике туберкулеза крупного рогатого скота, вызванного различными типами возбудителя, ВИЭВ, ВАСХНИЛ. Бюл. Научно-техн. информ. 1958, 3, с.76.

71. Клебанова A.A. Люминесцентная микроскопия измененных туберкулезных микобактерий. «Проблемы туберкулеза», 1960, №7, с.77.

72. Клепцов К.З.Эволюция туберкулезной палочки. Доклад на совещании бактериологов и эпидемиологов. М., 31.03.1912, с.8.

73. Коваленко Я.Р. Выступление на всесоюзном совещании работников сельскохозяйственной науки 19-23 июня 1956 г. М.,Сельхозгиз, 1957.

74. Козловский Г.А. Сравнительное изучение аллергического и серологического методов диагностики туберкулеза птиц. Сборник работ Вологодской НИВс, вып.4, 1959, с.73.

75. Кокуричев П.И. Туберкулез сельскохозяйственных животных. М., Сельхозгиз, 1954г.

76. Кокуричев П.И. Роль крупного рогатого скота в распространении туберкулеза среди домашней птицы. В кн.: «Борьба с туберкулезом сельскохозяйственных животных и птиц», Рига, 1959, с.75.

77. Кокуричев П.И. О птичьем туберкулезе крупного рогатого скота. Пробл. борьбы с туберкулезом сельскохоз. животных, Воронеж, 1965, с. 115.

78. Колесова А.И. Пассажирование как метод повышения вегетативных и вирулентных свойств производственных туберкулезных культур. Диссертация, М., 1949.

79. Кореневская М.И. Происхождение кровяных пластинок и методы их исследования. «Лабораторное дело», 1965, №5.с.259.

80. Корж Б.А. Аллергическая реакция при экспериментальном туберкулезе у цыплят различных возрастов. Тр. Львовского зоо-вет. ин-та, т. 10, 1959, с.181.

81. Корнилова А.Л. О повышении аллергии у кур на птичий туберкулин. «Ветеринария», 1965, №8, с.34.

82. Космодамианский В.Н. Бактериология и патогенез туберкулеза. М., Медгиз, 1950.

83. Креслинг K.M. К изготовлению туберкулина. Архив биологических наук, т.ХХШ, вып. 1-3, 1923, с.71-85.

84. Кроль М.Е. Иванова Н. М., Качаунова H.H. Применение люменесцентной микроскопии для лабораторной диагностики туберкулеза. «Проблемы туберкулеза», 1959, №7, с.84.

85. Кудрявцев A.A. Исследование крови в ветеринарной диагностике. 4.1, М.,1952.

86. Кузин А.Н. Материалы по эпизоотологии туберкулеза птиц. Труды Горьк. НИВс, вып. 1, 1955, с.55.

87. Кузин А.Н. Опыт ликвидации туберкулеза птицы в колхозах Горьковской области. В. кн.: «Профилактика и лечение болезней птиц», М., 1958, с.52.

88. Кузин А.Н.Аллергическая реакция на туберкулин у цыплят, выведенных из яиц туберкулезных кур. Труды Горьк. НИВс, вып. II, 1960, с. 17-21.

89. Курнакова М.А., Малыгин В.И., Поршнев В.И., Сюмина Г.В. Аллергия у кур при отсутствии туберкулезных поражений. «Ветеринария», 1965, №3, с.38.

90. Курнакова М.А., Поршнев В.И., Пирог П.П. Антипичные реакции на туберкулин у кур. XII Всемирный конгресс по птицеводству, Киев, 1966, с.422.

91. Левченко И.Д. Изучение вызываемое™ микобактерии туберкулеза птичьего типа в почве, воде, помете и глубокой подстилке. Автореферат диссертации, Харьков, 1965.

92. Леонтьев И.П. Птичий туберкулез у человека. «Природа», 1950, №2, с.36.

93. Линда-Геллер Б.А., Чудинская Т.Г., Малыгин В.И. Технология приготовления сухого очищенного туберкулина птичьего типа. В. кн.: «Болезни птиц». Сборник трудов ВНИИ по болезням птиц, вып 1 (12), Л., «Колос», 1965, с. 115.

94. Линникова М.А. Очищенный протеин-дериват. «Проблемы туберкулеза», 1939. №12, с.49.

95. Линникова М.А. Получение и применение сухого очищенного туберкулина. Научные основы производства вакцины сывороток. Сборник, М., 1955, с.288.

96. Лукашев И.И. К эпизоотологии туберкулеза лошади. Сборник трудов Харьк. вет.ин-та, вып.1. т. 19. 1940, с.97-116.

97. Малыгин В.И. Продукция птицеводства как возможный источник туберкулезной инфекции. В кн.: «Борьба с туберкулезом сель.-хоз. животных и птиц». Рига, 1959, с.59.

98. Малявин А.Г., Аганина JI.A. Изготовление и изучение цветного пуллорного антигена. «Ветеринария», 1965, №8, с. 112.

99. Мац А.Н. Лейкергия при туберкулезе у взрослых. «Лабораторное дело», 1964, №11, с.651.

100. Мац А.Н. Изучение лейкергии при туберкулезе легких. Автореферат диссертации, М., 1965.

101. Мухаммедшин P.A. О случаях положительной реакции на туберкулин у кур, больных лейкозом. Сборник трудов ЛенНИВИ. вып. 10, 1963, с.83.

102. Никитин В.Н. Атлас клеток крови сельско-хозяйственных и лабораторных животных. Госишдат сельхоз. литературы, 1948.

103. Одаренно К.И. О некоторых вопросах микробиологии, типовой принадлежности микобактерий и диагностики туберкулеза сельскохозяйственных животных Казахстана. Автореферат диссертации, Фрунзе, 1964.

104. Парнес В.А.Вирус лимфоматоза кур и пути ого распространения. В кн.: «Болезни птиц», сборник трудов ВНИИ по болезням птиц, вып.1 (12), Л., «Колос», 1965, с.51.

105. Перегудов Е.А. Влияние кислотаустойчивых микобактерий торфа на течение туберкулезной инфекции у кур. «Ветеринария», 1967, №9, с.64.

106. Поддубский И.В., Фомина А.Я., Акулов A.B. О диагностике и профилактике туберкулеза кур. «ветеринария», 1965, 32, с.24.

107. Поддубский И.В., Туберкулез птиц и меры борьбы с ним. В кн.: «Профилактика и лечение болезней птиц». М., 1958, с.32.

108. Поддубский И.В. Успехи и перспективы науки и практики в искоренении туберкулеза. «Ветеринария», 1967, №10, с. 16.

109. Полковникова P.C., Егошин И.С., Ефимова В.А. К изучению туберкулеза птиц в Киргизии и изменение мер борьбы с ним. «Ветеринария»,1957, №6, с.49.

110. Полякова О.А.Флюоросцентная микроскопия при диагностике туберкулеза и паратуберкулеза. «Ветеринария», 1957, №6, с.47.

111. Полякова O.A. Люмнесцентный метод ускоренной диагностики туберкулеза птицы. «Вестник сель-хоз. науки», 1959, №2, с.70.

112. Полякова O.A. Разработка метода ускоренной диагностики туберкулеза кур. Тр. ВИЭВ, т.25, 1961, с.78.

113. Прохоров A.B., Фошина А.Я.,Акулов A.B. Опыт применения ККРА для диагностики туберкулеза кур. «Ветеринария», 1955, №11, с.42.

114. Прохоров A.B., Акулов A.B. Диагностическая ценность крово-капельной реакции аггалуценации при туберкулезе кур. «Ветеринария»,1958, №2, с.45.

115. Прохоров A.B. Новый метод при жизненной диагностики туберкулеза птицы. «Ветеринария», 1958, №9, с.60.

116. Роскин Г.И. Кровяные пластинки человека и млекопитающих. Успехи совр. Биологии, т.37, в.З, 1954, с.325.

117. Ротов В.И. Двукратная внутрикожная туберкулинизация кур. Сб. трудов Харьк. вет. ин-та, т.21, 1952, с.255-263.

118. Рубцова И.Н. «Динамика картины крови при туберкулезе кур в различные возрастные периоды». Труды Семипалатинского зоо.вет. ин-та, т.З, 1963, стр.245.

119. Румянцов Н.В., шатерникова Т.Н. Серологическая диагностика лейкоза крупного рогатого скота. «Сельское хозяйство за рубежом», Животноводство, 1966, №3, стр.41.

120. Семенчук К.Л., Трибо Л.П. О серологической диагностике туберкулеза птиц. Труды ВИЭВ, т.32, 1966, с. 162.

121. Симналиев М.И., Петровский С.П. Выявление туберкулезных бактерий при помощи обычной бактериоскопии и методом флюороскопии. «Проблемы туберкулеза», 1961, №8, стр.78.

122. Сизов П.В. Руководство по болезням птиц. М., Сельхозгиз, 1931.

123. Схиладзе Ю.М. Диагностика туберкулеза птиц с туберкулезным антигеном. Материалы научно производственной конференции ГИКИ, М., 1967, стр.54.

124. Схиладзе Ю.М. Серологическая и аллергическая диагностика туберкулеза птиц. Труды ГИКИ, т. XIV, М., 1967, стр. 150.

125. Схиладзе Ю.М. О неспецифических серологических и аллергических реакциях при диагностике туберкулеза птиц. «Ветеринария», 1968, №3, с.

126. Схиладзе Ю.М. Механизм крове-капельной реакции аглутинации при диагностике туберкулеза птиц. Труды ГИКИ, т. XV, 1968, стр. 100.

127. Схиладзе Ю.М. О неспецифических серологических и аллергических реакциях при диагностике туберкулеза птиц. «Ветеринария». 1968, №3, с.

128. Тимофеева В.П. Положительные реакции на туберкулин у кур при токсической дистрофии. «Ветеринария» 1965, №8, стр. 32.

129. Тишина Н.Д. Изменения крови при естественном туберкулезе кур. Труды Ставрон. Сель.-хоз. ин-та, вып. 10, 1960. стр. 19-22.

130. Триус М., Клебанова А. Туберкулез человека на почве заражения птичьим. «Веет. Специалист на соц. стройке», 1931, №7, стр.26.

131. Тузова Р.В. Аллергодиагностика и некоторые вопросы патогенеза туберкулеза у кур. Труды ин-та микробиологии, вып. 10, Рига, 1959, стр.87.

132. Тузова Р.В. О диагностике и инфекционном процессе туберкулеза у кур. «Ветеринария», 1961, №6, с.48.

133. Тузова Р.В. Туберкулез птиц и пути оздоровления от него птицеводческих ферм Белоруссии. Труды юбилейной сессии отделения животноводство и ветеринарной Академии Сельхоз. Наук Белорусской ССР, Минск, 1958, стр. 113.

134. Фомина А.Я. Экпериментальные данные по аллергической диагностике туберкулеза кур. В кн.: «Профилактика и лечение болезней птиц». М.,1958, с.41.

135. Фомина А.Я., Акулов A.B. Туберкулез В кн.: «Болезни птиц». М., Изд.сел. хоз. литературы, журналов и плакатов, 1962, с.377.

136. Целлариус И. К. Усовершенствование бактериоокопической диагностики туберкулеза. «Ветеринария», 1961, №8, с.72.

137. Школьникова Е.М. Глубинный метод посева на туберкулез непосредственно из патологического материала. «Проблемы туберкулеза», 1948, №6, с.63-69.

138. Шопилов Н.С., Соколова И.В. Серологическая диагностика Львова Г.Ф. туберкулеза уток. «Ветеринария» 1965. у 6, с.28.

139. Юсковец М.К., Тузова Р.В. Сравнительное испытание туберкулина из местного штамма туберкулезной культуры. Бюллетень научно-техн. информации Минск, 1957, №1, с.12.

140. Юсковец М.К., Тузова Р.В. Пути ликвидации туберкулеза животных в Белоруссии. «Ветеринария» 1963, №10, с. 14.

141. Яковлева Г.П. Применение люминесцентной микроскопии для индикации возбудителя туберкулеза в воде. Военно-Московский мед. инст., 1 научная сессия по пробл.: «Новые методы диагностики». Тезиси докл., 1961, с.200.

142. Ярбаев Н., Мирзоев Д.М., Хасанов Н.Р. Система противотуберкулезных мероприятий в скотоводстве и протио-эпизоот. Эффективность Проблемы развития с-х науки РТ. Душанбе, 2001. С. 105107.

143. Adlam G. Н. Gurrent problems and future developments in disease eradication schemes // New Zeland veter. Journal.- 1977. V25. - № 10,- P.270-273

144. Arnold A., Ausgedehnte Hauttuberkulose beim Haushuhn. Ztschr. f. Fleisch Hyg., 1924, Bd 35, S. 71-72.

145. Arloing S. 1892. Цитировано по: Flukiger, 1963.

146. Armstrong J. Eradication of tuberculosis from an Extenively managed feld Herd // Australian Yeter. J. -1981. V.57. - №5. - P. 220-223.

147. Bang O. Tuberculoses Geglugel als Ursache von tuberculose.

148. Battelli G., Beancardi U. Evaluation of the cost and benefits of the control campaigns against bovine tuberculosis, brucellosis, foa and mouth disease and swine fever in claly // Bull, of Inter. Epizoot. -1980,- V.92, № 5-6. P. 231-300.

149. Bennett R.W. Ronyha L.D. The status of the state federed tuberculosis eradication program // Buffalo. N. V. - 1978.- V. 82,- P. 474-489.

150. Becker.L. Ein Beitrag ur Statistik der Geflugel-crankheiten . Mh. Vet. Med. 1954, 19, 431-434.

151. Betke P. Untersuchungen über die Frischblut-Aglutination ur Diagnose der Geflügel tuberculose. Arch. exp. Vetermed.1964, 19, 13, 507.

152. Boy I. Aplication de la fluoroscopic a la recherché des bacilis de Koch en pracique courante. Ann. biol.olin. 1949. 7. 3-4. 109-111

153. Beveridge W. Mycobacterial diseases // Animal Health in Australia 1983. V4. H. 344-350.

154. Bretenet G. La Lutte contery la tuberculose bovine en France // Bulletin de L Academie Veterinairy ву Franse. -1975. -V. 48. №6-7.- P. 359- 376.

155. Chilardi G. 1982; La malattia degli animali: un danno socioconomico cpy si puo prevenire // linformator agrario.- 1982. U. 38. - №41,- P. 865-867.

156. Csukas A. Gukomjr-es brucellamantesitesi doszerukerdesei // Magyar allatorv Japia-1972.-V.27. №3. - P. 150-155.

157. Gavrini C., Parmeggiani A. Saggi sulla prova allergia e sulla prova di aglutinazione nella tuberculosi aviaries. Veterin. lstal. 1959, 10,1, 3, 3-16.

158. Dragsted J. Avian tuberculosis in man. "Lancet", 1949, 2, 103-105.

159. Feldman W. Tuberculoses of chickens. Veterin. Med., 1939, 34, 12, 734742.

160. Fleck L. Myurozinska Z. Leukergy: dumping of white blood. Cells in cytologically homogenous groups; a new phenomenon of inflammation. Texas Biol. And Med. 1947, 5, 2, 156-168.

161. Fluckiger G. Bestehen Beziehungen zwischen Tuberculose von Gefligel und Seugerh Schweis. Arch. Tirhelk. 1963, 105, 8, 56.

162. Fried K., Iontosovic J. Erithrocyte sedimentation in fowis in the diagnosis of tuberculosis. Veter. Cas. 1962, 11, 4, 352-361.

163. Grimai R. Variation de la formule leucocytaire et du raport limpho-monocylaine dans la tuberculose aiguë la poule. C.R. Soc. Biol.1938, 20, 655-657.

164. Haîtic J. A blood of Serum slide agglutination test for the diagnosis of tuberculosis in poultry. Vet. Cas. 1960, 9,6, 550-559.

165. Huitema H., Van flöten I. Aviaire tuberculose. Tijdscher.diergeneesk. 1959, 84,7, 6-30.

166. Report entre la tuberculose aviaire et celle des mamiferes . Ann. Inst.Pesteur. Paris. 1910, 24, 11, 895-906.

167. Klein H., Steffke E. Zur epizootologischen Bedeutang der Gefiugeltubereulose und tiber die diagnostische Leistungefahigkeit der intrakutanen tuberculine prob beim Huhn.Mh. Veterin. Med. 1959, 14, 5, 142.

168. Klimes B., Celer. V. Das Blutbild bei der Gefiugeltubereulose. Sbor. cescosl. Akad. zemedelsk. ved. 1960, 33,10, 765.

169. Kolyakov X.E., Agababova N.B. role of the nervous system in the allergic reaction in hens infected with tuberculosis.Bull. office internat. Epizooties. 196, 63,9-10, 1503-1511.

170. Kruse W. Uber des Vorkommen der sog.Hiihnortuberculose bein Menchen und bei Saugetierien. Beitr. Z.path. Aat. u. z. allg. Path. Jena, 1892-1893, 12, 544552.

171. Langvaa -Nielsen E. Tuberk. El Tilfaelte af Lunget, chos Chest foraa. f. Dyrlaeger 1940,51, 546.

172. Moses H., Feldman W., Mann F. Micobacterial rapid agglutination antigens and their diagnostic velue in tuberculosis of fowl. Amer. J. Veterin. Res. 1943, 4, 12, 390-394.

173. Nasal J. Die tuberculose des Geflügels und ihre Bedeutung fur Mensch und tier. Zbl.Med., 1961, 3, 209.

174. Nasal J. Untersuchungen über die Brauchbarkeit der Frischblut schenllaglutination zur zur Feststellung der Tuberculose beim Huhn.Mh. Tierhelik. 1963, 15,6,106-116.

175. Nocard.M. Sur les relations qui existent entre la tuberculose aviaire. Ann. Inst. Pasteur.Paris, 1898, 2, 136.

176. Nocard.M., Poux E. Sur la culture du bacilli de la tuberculose. Ann. Inst. Pasteur.Paris, 1887, 50, 1, 19.

177. Pivovarsyk S. Proba aglutunacia v diagnostyce grulicy drobin. Arch. Weteryn. 1951,1, 101-102.

178. Plum.N. undersegelser over bacilyperne ved Tuberculose hos swin. Meandscrift for Dirlaegen, 1936, 48,17, 449-57.

179. Pullar E., Rushford B. The accuracy of avian instradernal tuberculin test in pigs. Avstralian Veterin. J. 1954, 30, 8, 104.

180. Richter W. Beitrage zur Tuberculose- Diagnostik des Pferdes.Arch. expl.vet.med. 1960,14, 1, 60-74.

181. Richter W. Die Entwisclung eines antigena fur die Frischblutshnellaglutination zur diagnose der Gefiugeltuberculose. Arch. expl.vet.med. 1965, 19, 1, 297-299.

182. Rozanska. M. Preparation of antigen for whole blood rapid aglutunation test and its specifity for diagnosis of avian tuberculosis. Bull, veteran. Inst. Puawy, 1965, 9, 1\2, 20-25.

183. Rubin H. Analysis of the assau of Rous Sarcons Colls in vitro by the infective center technique. Virology 1960, 10, 1, 29-50.

184. Tesink J.,Robijns, K.G. Occurrence of avian tuberculosis as indicated by rapid agglutination. Tijaschr. Diergencesk, 1963, 88,8.497-500.

185. Therdal-Christensen A. ein Fall genealisierter avieren tuberculose be einer kuh mit. Ausscheidung aviaren Tubercelbazillion mit der Wilch.Nord. Veterin. Med. 1952, (6), 577.

186. Tunkl B. A whole blood agglutination test in avian tuberculosis. Vet. Glasn. 1957, 10, 11, 960-984.

187. Vior C, Sirbu Z. Cercetari cuprivire la diagnostical tuberculozei aviare. Lucr, st. Inst. Pat. Anim. Bucuresti 1960, 10, 15-25.

188. Vior C., Untersuchung zur Herstellung eines Antigens für Frichblut-bei Geflugeltuberculose. Lucr, st. Inst. Pat. Anim. Bucuresti 1962, 12, 57-66.

189. Vogt P., Sandulescu S., Anghel V. Reciprocal of genetic resistanse to avian tumor viruses in two lines of chickens. Virology 1965, 26, 4, 664.

190. Vohringer K. Probleme der Geflugeltuberculose. Wissensch. Ztschr. Martin-Inther-univ. Halle-Witenberg. Math. Naturviss. Reihe 1962, 11, 12, 13591363.

191. Vohringer K. Infektionsmoglichkeiten zwischen Mencch und Tier mit den drei Warmbilitermtypen der Tuberculose. Mh. Vet. Med. 1964,19,19, 721-730.

192. Wojaczek-Stefke E. Untersuchungen über den wert der Tuberculin-Kehllapenprobe beim Huhn unter Verwerdung verschiedener technicen. Mh. Vet. Med. 1962, 17, 10, 404-410.

193. Feldman W. Tuberculosis in poultry. Int. deases of poultry. Ed. By H. E. biester and L.H. Schwarter. 4 ed. Ames, Iova, 1959, p.287-315.

194. Ivanoff K. Uber Geflugeltuberculose und ihre Verbreitung in Bulgarien. Ztschr. Infectionskrankh. Parasite. Krankh. u. Hyg. d. Haustiere 1933, 44, 243-249.

195. Ivanov M.M. Some poblems of tuberculosis control in cattle and specciflty of the tuberculin reaction. Bull. Office Internat Epizooties 1965, 63, 9-10, 14031418.

196. Klimmer M. Туберкулез людей и птиц. Веет. Специалист на социалистической стройке. 1931, 7, 26.

197. Lovenstein Е. Птичий туберкулез у человека. Вестник общественной ветеринарии 1913, 14, 496.

198. Möhler I.R., Washburn H.J. The transmission of avian tuberculosis to mammals. Rep. Bureau Anim. Industry. Wash. D.C. 1910, 165-176.

199. Nassal J. Туберкулез кур, как источник заражения крупного рогатого скота. (1963). Сельское хозяйство за рубежом (Животноводство), 1964, 12,40.

200. Pallaske-Eber R. Туберкулез птиц и млекопитающих. Ветеринарный специалист на социалистической стройке, 1931, 27, 27.

201. Robin A.N. Avian tuberculosis. Australian veteran. J. 1950, 2, 10, 274-273.

202. Thiesenhausen W. О неспецифических показаниях туберкулезной пробы. 1961.В: сельское хозяйство за рубежом. 1962, 12, 50.

203. Van es L., Martin H, Untersuchungen über die Ursachen des vermehrten Aufretens der Tuberculose beim Schwein. Dtsch. Tierarztl. Uchsehr. 1927, 16, 262.

204. Van es L.,Scalk A.F. Avian tuberculosis.North Dacota agr. Exp.st. Bull. 1914, no 108, p. 94.

205. Verse J. 1946. Цитировано по: К. Vohringer, 1964.

206. Villenin 1868. Цитировано по: Van Ea and A. F. Schelk, 1964.

207. Weber A., Bofinger A, 1904. Цитировано no: D. jong, 1910

208. Schliesser Т., Hiller К. Eine frischblut-Schnellaglutination zur diagnose der Gefiugeltuberculose. Mh. Tierhelik, 1963, 15,9, 164-169.

209. Svzeck S, Vrtiak J. Use of purified tuberculin for die nostie purposes in fowls. Vet. Med. Praha, 1965, 10, 9, 541-542.