Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Создание гомозиготной по транслокации хромосом линии весенней капустной мухи Delia brassicae Bouche, пригодной для получения гибридов с высокой наследуемой стерильностью

ВАК РФ 03.00.09, Энтомология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Лепп, Наталия Владимировна

ВВЕДЕНИЕ 4 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1. Генетический метод как элемент интегрированной защиты растений

1.1. Интегрированная защита крестоцветных культур от капустных мух

1.1.1. Мониторинг, прогноз и математическое моделирование динамики числен- 11 4 ности капустных мух

1.1.2. Биологический метод защиты крестоцветных культур от капустных мух

1.1.3. Применение химических средств защиты против капустных мух

1.1.4. Использование сортов, устойчивых к повреждению капустными мухами

1.1.5. Агротехнические приемы снижения вредоносности капустных мух

1.1.6. Перспективы внедрения генетического метода в систему интегрированной защиты растений от капустных мух

1.2. Генетический метод борьбы с двукрылыми насекомыми на современном эта

1.2.1. Опыт генетического метода борьбы с луковой мухой

1.2.2. SIT программы борьбы со средиземноморской и другими плодовыми мухами

1.2.2.1. Массовое разведение насекомых - основополагающая часть генетическо- 29 го метода ф 1.2.2.2. Контроль качества живых культур при массовом разведении

1.2.2.3. Линии для получения только мужского потомства

1.2.2.4. Фильтр-система разведения средиземноморской плодовой мухи.

1.2.2.5. Технологии генной инженерии для совершенствования генетического ме- 36 тода борьбы с плодовыми мухами

1.2.3. Генетический метод борьбы с капустными мухами

1.2.3.1. Разведение капустных мух на естественном субстрате 37 и питательных средах

1.2.3.2. SIT и другие варианты генетического метода

1.2.4. Использование хромосомных мутаций в борьбе с двукрылыми насекомыми 41 щ 1.2.4.1. Индукция и выделение транслокаций хромосом у двукрылых насекомых

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 48 РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

3. Индукция и выделение линий с транслокациями хромосом

3.1. Анализ наследования частичной стерильности в F1 после облучения

3.2. Частота выделения наследственных изменений, приводящих к повышенному уровню ПЭЛ, в F1 после облучения

3.3. Линии с наследованием стерильности по типу транслокаций хромосом, в F2 69 после облучения

4. Отбор перспективных линий и выделение гомозигот по аутосомной транслокации

4.1. Репродуктивные показатели линий с транслокациями хромосом

4.1.1. Плодовитость весенней капустной мухи с аутосомными транслокациями 71 хромосом

4.1.2. Эмбриональная гибель

4.1.3. Выживаемость постэмбриональных стадий и соотношение полов

4.1.4. Половая активность

4.2. Освобождение носителей транслокации от дополнительного генетического груза

5. Выделение гомозиготной линии Т

5.1. Получение потомства, от скрещивания двух гетерозиготных по транслокации особей, в родительском поколении

5.2. Анализ потомства F1 от скрещивания двух гетерозигот по Т

5.2.1. Скрещивания самцов F1 с самками лабораторной популяции

5.2.2. Скрещивания самок и самцов F

5.2.3. Окончательное определение генотипов F1 по результатам анализа F

5.3. Окончательное выделение гомозиготной линии

6. Оценка и улучшение основных показателей рёпродуктивного потенциала 99 гомозиготной линии Т

6.1. Основные репродуктивные показатели при разведении с диапаузой и гомодинамно

6.2. Преодоление негативных последствий инбридинга

7. Получение и оценка межлинейных гибридов, наследующих две транслокации

7.1. Двойные гетерозиготы по аутосомным транслокациям

ВЫВОДЫ

Введение Диссертация по биологии, на тему "Создание гомозиготной по транслокации хромосом линии весенней капустной мухи Delia brassicae Bouche, пригодной для получения гибридов с высокой наследуемой стерильностью"

Система интегрированной защиты крестоцветных от капустных мух базируется на традиционных для сельского хозяйства России методах: агротехнические приемы (Прокофьева, 1980), обработки инсектицидами химической (Розова, 1988, Степанычева, 1988) и биологической природы (Должен-ко, 1986; Данилов, Бородавко, 1997). Перечисленные методы борьбы отличаются локальным действием. Они не затрагивают вредителя, который накапливается в естественных местах обитания. Для весенней капустной мухи это - дикие крестоцветные растения. Популяция вредителя может сильно увеличиваться также на сельскохозяйственных посевах, где не ведется борьба, например, в частном секторе.

Защита растений на современном этапе должна стремиться не к локальному снижению численности вредителя на конкретном поле, а к её долгосрочной регуляции на популяционном уровне (Анисимов, 2003). В зарубежной литературе эта стратегия защиты носит название "area-wide control" (Lindquist, 2000; Klassen, 2000).

Широкомасштабная борьба (борьба на больших территориях) предполагает сочетание новых высоких технологий и традиционных методов: s выпуск стерилизованных самцов (SIT - sterile insect technique); S возделывание устойчивых сортов; s отвлекающие посевы (trap crops); s биологический метод (сохранение и привлечение в агроценозы природных паразитов и хищников, колонизация энтомофагов, разведенных в искусственных условиях); S самцовый вакуум, ингибирование спаривания; обработки специфическими биологическими и химическими препаратами.

Большинство из перечисленных методов разрабатывались применительно к весенней капустной мухе: устойчивые сорта (Асякин и др., 1988; Freuler et al., 1990), SIT (Брадовский, 1980). Их эффективность была различной. В частности классический биометод (колонизация алеохары и триблио-графы) давал весьма ограниченный эффект.

Каждый из элементов "area-wide control" самостоятельно часто не способен долгосрочно удерживать популяцию вредителя на уровне, ниже экономического порога вредоносности. Только в комплексе эти методы и технологии, взаимно дополняя друг друга, дают искомый эффект длительной депрессии природной популяции вредителя на значительной территории (Lindquist, 2000).

Одним из элементов широкомасштабной борьбы является метод полной стерилизации (SIT). Это - наиболее распространенный вариант генетического метода борьбы, который предполагает снижение репродуктивного потенциала вредителя за счет введения в генофонд его популяции груза индуцированных доминантных летальных мутаций (ДЛМ). Эффективность SIT на капустной мухе была ограничена из-за низкой соматической устойчивости вида к облучению, а также в виду низкого уровня наследуемой стерильности, при использовании более низких доз облучения (Анисимов, 1985, 1997; Белякова, 1996; Белякова, Анисимов, 1998а).

Помимо SIT для капустной мухи отрабатывался вариант генетического метода на основе условно летальных мутаций (Анисимов, Гользберг, 1984; Гользберг, Анисимов, 1985а; Гользберг, 1985; Гользберг, Хайцев, 1985; Ап-isimov, 1988 et.al.; Гользберг, Анисимов, 1988 а, б, в) и транслокаций хромосом (Самойлов, Анисимов, 1984 а,б; Анисимов, Самойлов, 1985; Самойлов, 1985 а, б, в; 1988; Anisimov, Samoilov., 1987; Белякова, Анисимов, 1995; 2000; Белякова, 1996; Анисимов и др., 2001 а, б, 2002; Лепп, Анисимов, 2001).

Реализация транслокационного метода возможна при оптимизации массового разведения линий D. brassicae с транслокациями хромосом, которые для этого необходимо вывести в гомозиготное состояние. Если решить проблему с получением и разведением гомозиготных линий, то использование транслокаций м"зжно будет признать перспективным вариантом генетического метода борьбы с капустной мухой.

Транслокации хромосом, которые предполагается использовать в качестве механизма снижения численности вредителя, обладают рядом преимуществ по сравнению с ДЛМ, которые используют в SIT. Во-первых, носители транслокации, которых предлагается выпускать в природные популяции вредителя, сами не подвергаются действию радиации. Они - далекие потомки облученных насекомых. Поэтому, их половая и двигательная активность выше, чем у стерилизованных самцов, которых выпускают при реализации программ SIT. Нормальная половая активность носителей транслокаций хромосом обеспечивает быстрое проникновение мутаций в генофонд природных популяций вредителя.

Во-вторых, хромосомные перестройки, в частности транслокации, в отличие от ДЛМ, наследуются в ряду поколений, сохраняя стерилизующий эффект в далеком потомстве. Долгосрочное действие транслокаций хромосом хорошо вписывается в общую стратегию "area wide control", который предполагает длительное сдерживание численности вредителя на популя-ционном уровне.

Поэтому в дальнейшей работе по созданию генетического метода борьбы с капустной мухой основные усилия должны быть сосредоточены на вопросах, связанных с индукцией и выделением транслокаций, их гомозиго-тизацией и совмещением в одном генотипе для увеличения уровня наследуемой стерильности.

Закономерности, выявленные и доказанные на капустной мухе, можно будет распространять на другие виды двукрылых вредителей с аналогичной организацией хромосомного аппарата. Прежде всего, это родственные для D. brassicae виды. Среди потенциальных кандидатов можно назвать мух-цветочниц: летнюю капустную, луковую, ростковую и других представителей семейства Anthomyyidae, к которому принадлежит наш модельный объект -D. brassicae.

Цель работы - создать биологическую основу эффективный и технологичный вариант генетического метода борьбы с весенней капустной мухой на основе транслокаций хромосом.

Задачи работы:

1. Расширить коллекцию линий D. brassicae с наследуемой полустерильностью. Выбрать транслокации хромосом перспективные для гомозиготи-зации.

2. Выделить линию с транслокацией хромосом в гомозиготном состоянии. Оценить основные показатели репродуктивного потенциала у носителей транслокации в гомо- и гетерозиготном состоянии при длительном лабораторном разведении.

3. На основе гомозиготной линии получить межлинейные гибриды, наследующие две транслокации. Оценить уровень и характер наследования стерильности в потомстве гибридов.

Научная новизна. Впервые у весенней капустной мухи получена хромосомная перестройка в гомозиготном состоянии. Доказана возможность длительного внутрилинейного разведения линии гомозиготной по транслокации хромосом.

Проведена оценка основных показателей репродуктивного потенциала в ряду поколений у носителей гомозиготной транслокации хромосом.

Практическая значимость.

Выделение транслокации Т25 в гомозиготное состояние позволяет осуществлять массовое разведение носителей хромосомной перестройки. Наличие гомозиготной линии Т25 дает возможность получать в режиме массовых скрещиваний межлинейные гибриды, наследующие 2 транслокации и за счет этого имеющие повышенный уровень наследуемой стерильности (более 70%).

Цикл аутбредного разведения, методика которого отработана на примере линии, с транслокацией Т25, позволяет вводить гомозиготную транслокацию в генотип любой другой культуры или популяции D. brassicae, качества которой желательно совместить с наследованием хромосомной перестройки. За счет этого можно приблизить выпускаемых в природу носителей транслокации по основным биологическим показателям к особям дикого типа и облегчить интродукцию хромосомной перестройки в генофонд природной популяции вредителя.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение Диссертация по теме "Энтомология", Лепп, Наталия Владимировна

106 выводы

1. У весенней капустной мухи Delia brassicae Bouche выделено 25 новых мутаций, детерминирующих полустерильность гетерозиготных носителей. 8 индуцированных малыми дозами мутаций были введены в коллекцию. 3 мутации, с наследованием по типу аутосомных транслокаций хромосом, охарактеризованы по основным показателям репродуктивного потенциала.

2. Индукция транслокаций малыми дозами (не более 5 Gy) и длительное аутбредное разведение гетерозиготных линий позволяет свести к минимуму генетический груз мутаций, индуцированных при облучении, что должно увеличивать вероятность выделения транслокаций хромосом, жизнеспособных и в гомозиготном состоянии.

3. Частота ПЭЛ является достаточно результативным и надежным критерием разделения гетерозиготных по транслокации самцов от их братьев, не несущих мутацию, и может быть использована для гибридологического анализа. С его помощью у весенней капустной мухи удается классифицировать генотипы 99,2% оставляющих потомство самцов.

4. Разработана оригинальная схема гибридологического анализа, апробация которой у Delia brassicae позволила без дополнительных наследственных маркеров получить линию, со стабильно наследующейся транслокацией (Т25) в гомозиготном состоянии, пригодную для генетической борьбы с вредителем.

5. Транслокация Т25 в гомозиготном состоянии не оказывает негативного влияния на основные показатели репродуктивного потенциала самок и самцов весенней капустной мухи. Она пригодна для длительного внутрилинейного разведе ния с ежегодной индукцией диапаузы.

6. В потомстве от скрещивания гомозигот и гетерозигот по разным аутосом-ным транслокациям доля межлинейных гибридов F1, наследующих обе хромосомные перестройки, составляет 65%, что выше теоретически ожидаемого (62,5%). Уровень наследуемой стерильности у двойных гетерозигот по аутосом-ным транслокациям в среднем составляет 72,8%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Сочетание апробированных схем (основной и дополнительной) рекоменI дуются использовать как наиболее реалистичный, быстрый и надежный путь оценки жизнеспособности и выведения в гомозиготное состояние аутосомных транслокаций хромосом у весенней капустной мухи и других видов, со сходной биологией размножения, не имеющих дополнительных наследственных маркеров.

2. Гомозиготную линию Т25 рекомендуется использовать как основу для создания гибридов с высоким (65-70%) уровнем наследуемой стерильности за счет двух аутосомных транслокаций.

3. Прием гибридизации и повторного выделения, который был апробирован на линии, с транслокацией Т25, может быть включен в технологию производства гомозиготных линий как один из её элементов, что позволит преодолевать негативные последствия длительного внутрилинейного разведения гомозигот, а также вводить гомозиготную транслокацию в генотип любой другой культуры или популяции D. brassicae, качества которой желательно совместить с наследованием хромосомной перестройки.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Лепп, Наталия Владимировна, Санкт-Петербург

1. Адашкевич Б.П., Перекрест О.Н. Массовое разведение весенней капустной мухи Hylemya brassicae (Anthomyiidae) в лаборатории // Зоол. журнал. 1972. Т.51, № 8. С.1227-1232.

2. Адашкевич Б.П., Перекрест О.Н. Применение Aleochara bilineata Gyll. (Coieoptera, Staphylinidae) в борьбе с капустной и луковой мухами // Энтомо-фаги, фитофаги и микроорганизмы в защите растений. Кишинев, 1974. С. 916.

3. Анисимов А.И. Обоснование генентических методов борьбы с вредны-мит видами насекомых изотрядов Diptera и Lepidoptera: дисс. д-ра биол. наук в форме научного доклада. СПб, 1997. 43С.

4. Анисимов А.И. Новые формулы для рассчета коэффициентов конкурентоспособности стерилизованных и мутантных самцов насекомых // Xl-й съезд Рус. энтомол. общества / Сб. научн. трудов Проблемы энтомологии в России,1998. т. I, с. 17-18.

5. Анисимов А.И., Биотехнология в защите растений // Конспект лекций, читаемых на факультете Защиты и карантина растений СПбГАУ, Санкт-Петербург, Пушкин. 2003. 44с.

6. Анисимов А. И. , Белякова Н. А., Лепп Н. В. Последствие воздействия радиации на весеннюю капустную муху в ряду последовательных поколений // Биоразнообразие наземных и почвенных беспозвоночных: тез. докл. меж-дунар. конф. Сыктывкар, 1999. С.13-14.

7. Анисимов А.И., Белякова Н.А., Лепп Н.В., Выделение линии с транслокацией хромосом в гомозиготном состоянии у весенней капустной мухи Delia brassicae Bouche //XII съезд Рус. энтомол. общества. СПб, 2002. С. 16.

8. Анисимов А.И., Гользберг К.Л., Генетическая изменчивость капустных мух по способности к диапаузе // IX.съезд ВЭО: тез. докл. Киев, 1984. часть 1. С.25-26.

9. Анисимов А.И., Самойлов Ю.Б. Лабораторное испытание сцепленной с мужским полом транслокации для снижения численности весенней капустной мухи // Бюлл. ВПС МОББ. Л., 1985. №10. С.49-57.

10. Асякин Б. П. Зараженность энтомофагами капустных мух на разных сортах капусты // Вопросы экологии, физиологии насекомых и проблемы защиты растений. Л., 1979. С.34-38.

11. Асякин Б. П. Определение потерь по показателям вредоносности. Весенняя капустная муха / Методические рекомендации. П., 1981. 23С.

12. Асякин Б. П. Эффективность энтомофагов капустных мух на разных сортах капусты // Биоценотическое обоснование критериев эффективности природных энтомофагов. Л., 1983. Вып. 74.С. 62-66.

13. Асякин Б. П. Особенности взаимоотношений основных вредителей капусты и их энтомофагов в консортной системе растение фитофаг - энто-мофаг//тез. докл. XII съезда Рус. энтомол. общества. СПб, 2002. С.23.

14. Асякин Б.П., Иванова О.В. Особеннсти заселения капусты капустными мухами зав период онтогенеза // Тр. J1CXA. 1987. Вып.237. С. 15-20.

15. Асякин Б. П. Рапопорт Е. Г. Факторы устойчивости крестоцветных культур к капустным мухам и возможности их практического использования // Защита растений в республиках Прибалтики и Белоруссии. Вильнюс, 1981. С.5-6.

16. Асякин Б. П., Шапиро И. Д., Иванова О. В. Устойчивые сорта капусты в интегрированных системах защиты растений // Защита плодовых культур от болезней, вредителей и сорняков при интенсивной технологии возделывания. Вильнюс, 1988. С 89-90.

17. Бакасова И. Ф. Особенности непрерывного разведения Aleocara bilineata Gyll. Паразита капустных мух в лабораторных условиях. Массовое разведение насекомых. Кишинев, 1984. С.70-75.

18. Бакасова Н.Ф. Лабораторное разведение алеохары энтомофага весенней капустной мухи.// Интродукция, акклиматизация и селекция энтомо-фагов /сб. научн. трудов ВНИИЗР. Л., 1987. Т.84. С.41-48.

19. Белякова Н.А., Анисимов А.И., Конкурентоспособность гетерозиготных по двум транслокациями самцов весенней капустной мухи // Всероссийский съезд по защите растений: тез. докл. СПб, 1995. С. 286.

20. Белякова. Н.А., Анисимов А.И. Возможности использования частичной лучевой стерилизации для генетического метода борьбы с весенней капустной мухой Delia brassica (Diptera; Anthomyiidae) // Бюлл. ВИЗР. 19986. № 78. С. 7-14.

21. Белякова Н. А., Анисимов А. И. Частота хромосомных перестроек при облучении половых клеток веспнней капустной мухи (Delia brassicae Bouche) разными дозами рентгеновских лучей // Генетика. СПб, 2000. Т.36, №2. С.170-174.

22. Бондаренко Н. В., Сторожков Ю. В. Биологическая защита капусты от капустных мух и капустной моли // Труды ЛСХИ. 1979. Т.374. С. 6-8.

23. Брадовский В.А. Лабораторные и полевые опыты по стерилизации весенней капустной мухи Delia brassicaie Bouche // Новые методы в защите растений. Кишинев, 1980. с.51-60.

24. Гользберг К.Л. Модель генетической организации фотопериодического контроля диапаузы насекомых / Труды ВНИИЗР. Генетические и биофизические методы в защите растений. СПб, 1985. С. 38-44.

25. Гользберг К.Л., Анисимов А.И., Результаты селекции на отсутствие фотопериодической диапаузы у летней капустной мухи // Бюлл. ВНИИЗР. Л., 1985а. № 59, С. 19-22.

26. Гользберг К.Л., Анисимов А.П., Генетические основы индивидуальной изменчивости индуцируемой фотопериодом диапаузы у капустных мух (Diptera, Anthomyidae) // Зоол. журнал. 19856. Т. LXIV. Вып. 6. С. 857-864.

27. Гользберг К.Л., Анисимов А.И., Селекция на отсутствие диапаузы у весенней капустной мухи Delia brassicae, Bouche (Diptera, Anthonomyidae) // Энтомологическое обозрение. 1985в. Т. LXIV, Вып. 4. С. 669-674.

28. Гользберг К.Л., Анисимов А.И., Генетический полиморфизм и возможности селекции по характеру фотопериодической регуляции диапаузы в природных популяциях весенней капустной мухи // Информационный бюлл. ВПС МОББ, 1988а. №22 С. 32-37.

29. Гользберг К.Л., Анисимов А.И., 19886. Гетерогенность природных популяций весенней капустной мухи по качественной фотопериодической реакции // Журнал общ. биол., т. ILIX, № 5, С. 664-669.

30. Гользберг К.Л., Анисимов А.И. Принципы организации генетического контроля регуляции диапаузы // Журнал общ. биол., 1990а. Т. 51, № 3. С. 370-381.

31. Гользберг К.Л.Анисимов А.И. Индукция рекомбинации между двумя хромосомами, определяющими пол у весенней капустной мухи // Тезисы 3 Всес. конф. по с/х радиологии. Обнинск, 19906. Т.З. С.45-46.

32. Гользберг К.Л., Хайцев Н.В., Гибридологический анализ признаков Качественной фотопериодической реакции Delia brassicae (Diptera, Anthomyi-idae) // Труды ВИЗР «Генетические и биофизические методы в защите растений». 1985.С. 33-38.

33. Гусева О. Г. Влияние хищников на коэффициент размножения и вредоносность капустных мух в агроценозах капустного и рапсового полей // Бюлл. ВНИИЗР.1987.№68. С.15-17.

34. Гусева О.Г. Хищники и ЭПВ весенней капустной мухи // Защита растений. 1988. №1. С.33-34.

35. Гусева О.Г. Влияние инсектицидов на хищников и многолетняя динамика численности весенней капустной мухи // Защита растений . 1992. №8. С.21-23.

36. Гусева О. Г., Вол И. А. Роль антропогенного фактора в жизненной системе весенней капустной мухи Delia brassicae Bouche (Anthomyiidae) // Энтомологическое обозрение. 1995. Т.1. С. 154-159.

37. Данилов Л.Г., Карпова Е.В., Шиловская Т.С. Энтомопатогенные нематоды против капустных мух // Защита растений. 1995. №7. С.40.

38. Данилов Л. Г., Бородавко Н. Б. Применение энтомопатогенных нематод против капустных мух // Защита растений от вредителей, болезней и сорняков: Сб. научных трудов СПГАУ. 1997. С.31-35.

39. Долженко В. И. Выявление и оценка факторов, влияющих на развитие грибной эпизоотии.на примере энтомофтороза капустных мух // Микробиологические средства защиты растений: Сб. науч. Трудов. Новосибирск, 1986. С. 106-110.

40. Кайданов Л.З. , Лосина М.Б. Исследование генетики полового поведения Dr.melanogaster. Сообщение 1. Селекция и генетический анализ линий, различающихся по половой активности самцов // Генетика. Л., 1969. Т.5, №9. С.116-123.I

41. Касем М. Эффективностьбиологических средств борьбы с весенней капустной мухой на Северо-западе России //Автореф. дис. канд. биол. наук. СПб, Пушкин.1994. С.1-19.

42. Кирсанов Б. А. Механизм возникновения транслокаций у Drosophila melanogaster II Биол. журнал. 1937. Т. 6. №4. С. 845-906.

43. Климпиня А. Е.,Томан Г. А. Изыскание искуственной диеты для личинок весенней капустной мухи // Защита растений в республиках Прибалтики и Белоруссии. Вильнюс, 1981. С.46-47.

44. Клишина Л.И. Эффективность алеохары и факторы ее обуславливающие // Биоценгтическое обоснование критериев эффективности природных энтомофагов Л.,1983. С. 101-105.

45. Клишина Л.И. Экологическая оценка роли энтомофагов капустных мух в Аолго вятском регионе Нечерноземной зоны РСФСР // Дис. канд. биол. наук. Л., 1988. 153с.

46. Клишина Л.И, Экологическая оценка значения энтомофагов весенней капустной мухи в Волго-Вятском районе // Биологический метод борьбы с вредителями овощных культур. М., 1989. С.88-92.

47. Ковалев Ю.Б. Условно-летальные мутации, индуцированные X-лучами у весенней капустной мухи // тез. докл. 3 Всес. конф. по с/х радиологии. Обнинск, 1990. Т.З. С.47-48.

48. Корогодин В.И. Проблемы пострадиационного восстановления. М., 1966. С. 184.

49. Лакин Г.Ф. Биометрия. Высшая школа, М., 1973. 343 С.

50. Макаренко Г. Н. Биологические особенности и значение паразитов капустных и свекловичных мух в условиях Ленинградской области II Автореф. дис. канд. с.-х. наук. 1975.С.1-23.

51. Мамон Л.А., Петрухина Т.Е., Рашева В.И., Ватти К.В. Цитогенетическое изучение влияния гетерозиготных транслокаций на частоту кроссинговера у Drosophila melanogaster// Генетика. Л., 1977. Т.13, №8. С.1378-1386.

52. Митрофанов Ю.А. Индуцированная изменчивость хромосом эукариот. М„ 1994, с140 .

53. Обзор развития и распространения основных вредителей и болезней с/х культурв Ленинградской области 1997-2002гг.

54. Обатуров Г.М., Александров И.Д., Александрова М.В. О молекулярно-цитогенетическом механизме образования летальных аберраций хромосом // Инф. бюлл. науч. совещ. АН СССР по проблемам радиобиологии. 1989. №35. С. 27-28.

55. Омельянчук Л.В., Понимаскин Е.Г., Климова М.В. Число разрывов хромосом и вероятность их воссоединения при облучении зрелых спермиев дрозофилы // Генетика. 1993. Т. 29. № 7. С. 1088-1094.

56. Пайнтер Т. С., Меллер Г. Г. Параллельное Цитологическое и генетическое исследование транслокаций и потерь, вызванныхъ воздействием X-лучей на дрозофилу // Успехи экспериментю биол. 1929. Т.8, Вып.4. С.206-234.

57. Паснова А. Н., Степанычева Е. А. Полусинтетическая питательная среда для личинок капустных мух и ее применение для изучения действия ингибиторов синтеза хитина Бюлл. ВНИИЗР. Л., 1986. №65. С.8-11.

58. Перекрест О.Н. Особенности массового разведения весенней капустной мухи в лаборатории // Орошаемое земледелие и овощеводство (селекция, семеноводство, защита растений, механизация, экономика): тез. докл. Кишинев,1972. С. 105-107.

59. Перекрест О.Н. Биологическое обоснование массового разедения и применения алеохары против весенней капустной мухи // Автореф. дис. канд. биол. наук. Харьков,1977. С. 1-28.

60. Перекрест О. И. Влияние энтомофагов на вредоносность весенней капустной мухи // Биологическая борьба с вредителями и болезнями овощных культур. Кишинев. 1978. с. 42-49.

61. Плешкова Г.Н. Радиационно-индуцированные инверсии и реципрокныеtтранслокации у Anopheles atroparvus // Генетика. 1984. т.20, № 2. с.2011-2015.

62. Прищепа Л. И. Использование цветоловушек в интегрированной системе защиты капусты // Биологический метод защиты растений: тез. докл. научно-производственной конференции. Минск, 1990. с.47.

63. Прокофьева Н. А. Комплексная система борьбы с капустными мухами // Опыт работы пол развитию овощеводства в Сибири и на Дальнем Востоке. М„ 1980. С.131-133.

64. Прокофьева Н. А. К экономическим порогам плотности капустных мух // Селекция и агротехника овощных культур. Барнаул, 1982. С. 153-156.

65. Розова В. Н. Сохранение энтомофагов капустных мух при применеии гранулированного базудина // Защита плодоовощных культур от болезней вредителей и сорняков при интенсивной технологии возделывания. Вильнюс, 1988. С.70-72.

66. Розова В.Н. Возможность сохранения энтомофагов при рациональном применении инсектицидов на крестоцветных культурах // Экологические основы применения. инсектоакарицидов. СПб, 1991. С.69-78.

67. Самойлов Ю.Б. Выделение транслокаций для борьбы с весенней капустной мухой Delia brassicae // Пути Дальнейшего совершенствования защитырастений в республиках Прибалтики и Белоруссии: тез. докл. Рига, 1983. Ч. 1. С. 176-178.

68. Самойлов Ю.Б. Генетические методы борьбы с весенней капустной мухой. Сообщение 2. Локализация фактора детерминации мужского пола у весенней капустной мухи // Генетика. Т. XXI, 1985а. № 11. С. 1810-1815.

69. Самойлов Ю.Б., Стабильность наследования полустерильности в линии с транслокацией Т71 у весенней капустной мухи //Труды ВНИИЗР. Генетические и биофизические методы в защите растений. 19856. С. 29-33.

70. Самойлов Ю.Б., Выделение ианализ транслокаций хромосом для генетической борьбы с весенней капустной мухой // Дис. канд. биол. наук. СПб, Пушкин, ВНИИЗР, 1985в. 185С.

71. Самойлов Ю.Б. Этапы лабораторного исследования транслокационного метода борьбы с весенней капустной мухой // Инф. бюлл. ВПС МОББ. Л., 1988. №22. С.27-31.

72. Самойлов Ю. Б., Анисимов А. И. Наследование стерильности после облучения весенней капустной мухи // Вторая Всесоюзн. конф. по с/х радиологии: тез. докл. Обнинск, 1984а. Т.З, С. 79-80.

73. Самойлов Ю.Б., Анисимов А.И., 19846. Генетические методы борьбы с весенней капустной мухой. Сообщение 1. Выделение мутаций с наследуемой полустерильностью // Генетика. Т. XX; № 12. С. 1986-1991.

74. Серебровский А.С. О новом возможном методе борьбы с вредными насекомыми // Зоол. журнал. 1940. Т.19. №4. С.618-630.

75. Серебровский А.С. Теоретические основания транслокационного метода борьбы с вредными насекомыми. М., 1971. 87 С.

76. Список Пестицидов и агрохимикатов разрешенных к применению на территории Российской Федерации /,Приложение к журналу Защита и карантин растений. № 6, 2002.

77. Степанычева Е. А. Применение димилина для защиты капусты от капустных мух // Защита млодоовощных культур от болезней вредителей и сорняков при интенсивной технологии возделывания. Вильнюс, 1988. С.73-74.

78. Сторожков Б. В. Энтомофаги капустных мух и пути повышения их эффективности в Ленинградской области //Автореф. дис. канд. е.- х. наук. 1975. с. 1-23.

79. Халимов Ф.З. Видовой состав энтомофагов капустных мух в Ленинградской области // Экологически безопасные и беспестицидные технологии получения растениеводческой продукции. Пущино, 1994. С.75-77.

80. Харченко Н. Н., Вилимайтыс Н. В. Роль некоторых энтомофагов в качестве хищников весенней капустной мухи // Биологическеий метод защиты растений: тез. док. №инск,1990. С. 105-106.

81. Хвостова В.В., Гаврилова А.А. Изменения количества транслокаций у Drosophila melanogaster в зависимости от дозы Х-лучей // Биол. журнал. 1938. Т./. №2. С.381-390

82. Эдельман Н. М. Массовое разведение насекомых фитофагов // Итоги науки и техники. Энтомология. 1972. С. 170-200.

83. Эдельман Н. М. Выращивание фитофагов с разными типами питания на питательных средах с проростками бобовых // Тр. ВНИИЗР. 1974. Вып. 40. С.128-135.

84. Ahlstrom-Olsson, М. Developmental time of the parasitoids Aleochara bi-lineata and A. bipustulata the influence of temperature and host size // Bull OILB/SROP.1994. Vol.17. №8. P.137-140.

85. Ahlstrom-Olsson M.,Jonasson T. Mustard meal mulch (Sinapis alba)~ a pos-sibl cultural agent for attracting enemies of brassica root flies (Delia floralis and D. Redicum) into brassica crops //Bulletin IOBC/WPRS.1992. №4. P.171-176.

86. Anisimov A.I., Samoilov Y.B. Autosomal sex-determination in the cabbage root fly Delia brassicae // Proc. of the second intern. Sympos. fruit flie. Colymbari, Greece, 1987. P.241-244.

87. Baker R.H., Sakai R.K., Genetic studies on Culex tritaeniorhynchus H Use genet. Insect contr. Amsterdam, 1971. P. 133-182.

88. Baker R.H., Sakai R.K., Perveen A., Raana K. Isolation of a homozygous translocation in Anopheles culicifacies// J. Heredity. 1980. Vol.71. P.25-38.

89. Barbosa S., Mexia A., Pereira R. Dispersal and Survival of sterile Male (TSL strain) Mediterranean Fruit flies // Area^Wide Control of Fruit Flies and ther Insect Pests. Penang, 2000. P. 527-534.

90. Birch A. N. E. Field and glasshouse studies on components of resistance to root fly attack in swedes //Annals of Applied Biology. 1988. №113. P. 89-100.

91. Blackman R. К., Macy M., Koehler R., Grimaila R., Gelbart W. M. Identification of a fully-functional hobo transposable element and its use for germ-line transformation of Drosophila II EMBO J . 1989. №8. P. 211-217.

92. Blay S., Yuval B. Factors affecting the reprodactive success of male Mediterranean fruit flies. // Phytoparasitica. Israel, 1996. Vol. 24. №2. P.130-131.

93. Bloem K., Bloem S., Chambers D. Muniz E. Field evaluation of quality: release-recapture of sterile medflies of different sizes. // Fruit flies: biology and management. New York, USA, 1993. P. 295-296.

94. Bromand В. Investigation on the biological control of the cabbage root fly (,Hylemia brassica) with Aleochara bilineata. П International Control in Field Vegetable Crops: proceeding of the meeting. 1980. Vol. 3. P.49-62.

95. Bromand B. Three years experience of using awarning system to predict the times of attack by the cabbage root fly (Delia radicum). II Bull. SROP/WPRS .1988. № 1.P.77-88:

96. Brunei E., Fournet S. Fauna Associated with the cabbage root fly in sequential sowings of turnips//Bull. OILB /SROP. 1996 Vol. 19. № 11. P. 140-146.

97. Brunei E., Nenon J. P. Co-ordination of the work on biological control of the cabbage root fly in Brittany// Bull. OILB /SROP.1996.Vol. 19. №11. P. 147-151.

98. Burk Т., Webb J. Effect of male size on calling propensity, song parameters, and mating success in Caribbean fruit flies, Anastrepha suspensa (Loew) (Dip-tera:Tephritidae). //Ann. Entomol. Soc. Am. 1983. Vol. 76. P. 678.

99. Busch-Petersen E. Temperature sensitive lethal factors and puparial colour sex separation mechanisms in the Mediterranean fruit fly, Ceratitis capitata (Wied.) // Genetic sexing of the Mediterranean fruit fly. IAEA.Vienna, 1990. P.115-127.

100. Busch-Petersen, E. , Baumgartner .H Simulation of instability in genetic sexing strains: effects of wild type contamination in association with other biological parameters//Bull. Entomol. Res.1992. Vol. 82. P. 183-189.

101. Caceres C., Fisher K., Rendon P. Mass Rearing of the Medfly Temperature Sensitive Lethal Genetic Sexing Strainin Guatemala // Area-Wide Control of Fruit Flies and ther Insect Pests. Penang, 2000. P. 551-558.

102. Calkins C.O., Knight A., Richardson G., Bloem K. Area-wide population suppression of codling moth // FAO/IAEA Inter. Conf. on area-wide control of insect pests integrating the sterile insect and related nuclear and other techniques. Penang, 1998. P.38.

103. Collier R.H., Finch S. Emergence of flies from overwintering populations of cabbage root fly pupae // Ecol. Entomol.,1983. Vol. 8. P.29-36.

104. Collier R.H., Finch S. Accumulated temperatures for the time of emergence in the spring ofthe cabbage root fly, Delia radicum (L.) (Diptera: Anthomyiidae) // Bull, of Entomological Research. 1985.vol.75. №3.P. 395-404.

105. Collier R. H., Finch S. Thermal requirements for cabbage root fly, Delia radicum, development// Progress on Pest Management in Field Vegetables. 1988. P. 21-25.

106. Collier R. H.j Finch S.,Phelps K., Thompson A. R. Possible impact of gloval warming on cabbage root fly (Delia redicum) activity inthe UK // Ann. Appl. Biol.1990.Vol. 118.P.261-271.

107. Collier R. H., Finch S.,Phelps K. A. A simulation model for forecasting the timing of attacks of Delia radicum on cruciferous crops // Bull. OEPP. 1991. Vol. 21. №3. P.419-424.

108. Curtis C.F. Possible use of translocations to fix desirable genes in insect pest population // Nature. 1968. Vol.218. P.368.

109. Curtis C.F. Experiments on breeding translocation homozygotes in tsetse flies // Sterility principle for insect control or eradication. IAEA Vienna, 1971. P.424-435.

110. Dambre-Raes H. Nutrition of the cabbage root fly Hylemya brassicae (Bousche) An artifical diet and axenic culture method. // Veded. Fac. Kand-bouww. Rijksuniv. Gent. 1974, . Vol. 39,. №4, P. 1603-1610.

111. Dambre-Raes H., Hertvelet L. Artivicial diet for Delia Brassicae (Bousche): Evaluation of some reproductiv parameters. Meded. Fac. La Landbouww. Rijksuniv. Genet., 1977. Vol. 42/ №2. P. 1271-1278.

112. Eilenberg J. En'omophthorales on adult cabbage root flies(De//a radicum) Bull. IOBC/WPRS. 1991. Vol. 14. P. 46-48.

113. Eilenberg J., Philipsen H., Bresciani J. Ecological interaction between insect pathogens and insect pests of cabbage // Bull. OILB/SROP.1992. Vol.15. №4. P. 138-142.

114. El Titi A. A contribution towards the "economic threshold" of Hylemia brassicae II Bull. SROP/WPRS. 1980.Vol. 3. №1. 35-42.

115. Ellis P. R. Investigations of resistance in vegetable crops to root-feeding dipterous pests //Acta Horticulturae.1988.,№ 219. P.31-37.

116. Ellis P. R. Sources of resistance in brassicas to cabbage root fly // Bull. OILB/SROP.1992. Vol.15. №4. P.94-101.

117. Ellis P. R., Hardman J. A., Crisp P., Gray A. R. Investigations of resistance in cauliflowers to cabbage root fly attack // Proceedings of the Better Brassicas 84 Conference, St. Andrews, 1985. P.202-206.

118. Escobar J., Bianchi J., Murua F. Advances of fruit fly control and eradication programm in San Juan Argentina //.Fifth Inter. Symp. on Fruit Flies of Economic Importance. Penang, 1998. P.94.

119. Feldman a. Induction of structural chromosommutation in male and females of Tetranychus urticae Koch. //Sterility princ. For insect control. IAEA. Vienna, 1975. P.437-445.

120. Finch S. "Appropriate/inappropriate landings", a mechanism for describing how undersowingwith clover affects host-plant selection by pest insect of brassica crops // Bull. OILB /SROP. 1996a. Vol. 19. № 11. p. 102-106.

121. Finch S. Peroblems associated with controlling the cabbage root fly by inun-dativ releases of the rove beetle, Aleochara bilineata // Bull OILB/ SROP.19966.Vol.19. №11. P. 152-155.

122. Finch S., Elliott M. S. Predation of cabbage root fly eggs by carabidae // Bull. OILB/SROP.1992. Vol.15. № 4.Vol. 176-183.

123. Fisher, K. Genetic sexing strains of Mediterranean fruit fly (Dip-tera,Tephritidae):optimizing the high temperature treatment of mass reared temperature sensitive lethal // J. Econ.Entomol.,1998. Vol.91. P.1406-1414.

124. Fisher, К., Caceres С. A filter rearing system for mass reared genetic sexing strains of Mediterranean fruit fly (Diptera: Tephritidae) // Area-Wide Control of Fruit Flies and Other Insect Pests. Penang, 2000. P. 551-558.

125. Fisher, K., Hill A., Sprout A. Eradication of Ceratitis capitata (Wiedemann) (Diptera:Tephritidae) in Carnarvon, Western Australia // J. Aust. Entomol.1985. Soc. 24. P. 207-208.

126. Foster G., Whitten M. The development of genetic meyhods of controlling the Australian sheep blow fly Lucilia cuprina // Use genetics in insect control. Amsterdam, 1974. P. 19-43.

127. Franz G. The "Combi Fly Concept" Revisited: How Much Radiation is Required to Sterilise Males of a Genetic Sexing Strain? // Area-Wide Control of Fruit Flies and ther Insect Pests. Penang, 2000. P. 511-516.

128. Freuler J., Gagnebin F., Strasser R. Current studies on resistance to cabbage root fly (Delia redicum) in cauliflower // In: Breeding for Resistance to Insect and Mites. Bull. IOBC/WPRS. 1990.Vol. 13. №6.P. 4-12.

129. Fried M. Determination of sterile-insect competitive-ness. J. Econ. Entomol. 1971 .Vol. 64. № 4. P. 869-872.

130. Fryxell K. J., Miller T. A. Autocidal biological control: A general strategy for insect control based on genetic transformation with a highly conserved gene // J. Econ. Entomol.1995. №88. P. 1221-1232.

131. Gethmann R.C. Crossing over in males of hinger Diptera (Brachycera) // J. Heredity. 1988. Vol.79, №5. P.344-350.

132. Hendrichs, J., G. Franz and P. Rendon Increased effectiveness and applicability of the sterile insect technique through male-only releases for control of Mediterranean fruit flies during fruit seasons1. // J. Appl. Entomol. 1995. Vol.119. P.371-377.

133. Hertveldt L., van Keymeulen M., Pelerents C. Development of the sterile insect release method against the cabbage root fly, Delia brassicae B. in North Belgium // Integrated control in brassicae crops. Bull. WPRS. 1980. Vol.3, №1. P.63-87.

134. Hiraizumi Y. Spontaneos recombination in Drosophila melanogaster males // Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1971. Vol.68. P.268.

135. Hokkanen H. M. T. Trap cropping in pest menagement // Annu. Rev. Ento-mol.1991. №36. P. 119-138.

136. Holler T.C., Horris D.L. Efficacy of sterile releases of Caribbean fruit flies (Diptera: Tephritidae) against wild populations in urban hosts adjacent to commercial citrus//Florida Entomol. 1993. Vol.76, №2. P.251-258.

137. Hommes M.,Mul!er-Pietralla W., Gebelein D Simulationsmodelle fur Gemusefliegen Enscheidungshilfen fur Beratung und Anbau // Mitt. a.d. Biol. Bundesanst. 1993. Vol.289. P.111-122.

138. Hommes M., Gebelen D. Simulation models for the cabbage root fly and yhe carrot fly// Bull. OILB srop. 1996. Voi:i 9, № 11. P.60-65.

139. Hooper, G.H.S., A.S. Robinson and P.R. Marchland. Behaviour of a genetic sexing strain of Mediterranean fruit cly, Ceratitis capitata, during large scale rearing //.Fruit Flies Proc. 2nd Int. Symp. Columbari, Crete, Amsterdam, 1987. P. 349362.

140. Huasong W., Jianguo H., Daguang L., Kang Wen, Yua-nying L. Area wide control of Chinese citrus fly, Bactrocera (Tetra-dacus) minax, and studies on mating characteristics // Fifth Inter. Symp. on Fruit Flies of Economic Importance. Penang, 1998. P. 136.

141. IDAS, International Database on Insect Disinfestation and Sterilisation // Insect and Pest Control Newsletter, 2001, № 56, p. 22-25.

142. Johnsen S., Gutierrfez A. P., Freuler J. The within season population dynam-icsa of the cabbage root fly (Delia raicum(L)). A simulation model. // Mitteilungen der Schweizerischen Entomologischen Gesellschaft. 1990. Vol. 63.P. 451-463.

143. Johnsen T. J., Hals A. The biology of Delia radicum L. and D. floralis Fallen (Diptera: Anthomyiidae) in northern Norway (In Norwegian, English summary) // Norsk iandbruksforskning. 1990. №4. P. 337-350.

144. Jonasson T. Parasitoids of Delia root flies in brassica vegetable crops: Coexistence and niche separation in two Aleochara species (Coleoptera; Staphylinidae) //The orwegian J. of Agricultural Scieces. 1994. №16. P. 380-386.

145. Jones Т. H., Hassel М. P., Pacala S. W. Spatial heterogenety and the population dynamics of a host-parastoid system // J. of Animal Ecology. 1993. №62. P. 251-262.

146. Kacem N., Neveu N., Nenon J. P. Development of Trybliographa rapae, a larval parasitoid of the cabbage root fly Delia radicum II Bull. OILB/SROP. 1996. Vol. 19, №11. P.156-161

147. Kafu A.A., Wood R.J., Mani G.S., Busch-Petersen E. Spontaneous recombination between wp+ and translocation breakpoint in the T:Y (wp+) 30 С genetic sexing strain of Ceratitis capitata (Wied.) // Heredity. 1993. Vol. 71, №1. p. 104109.

148. Kaiser P.E., Se?wright J.A., Benedict M.Q., Narang S., Suguna S.G. Radiation induced reciprocal translocations and inversions in Anopheles albimanus II Can. J. Genet. Cytol. 1982. Vol. 24. P. 177-188.

149. Kerremans P., Franz G. Use of a temperature-sensitive lethal mutation strain of Mediteranean fruit fly (Ceratitis capitata) for the suppression of pest population //Theor. Appl. Genet. 1995. Vol. 90. №34. P.511-518.

150. Kerremans P., Gencheva E., Franz G. Genetic and cytogenetic analysis of Y-autosome translocations in the Mediterranean fruit fly Ceratitis capitata II Genome. 1992. Vol.35, №2. P.264-272.

151. Keymeulen M., Hertveldt L., Pe'lerents C. Methods for improving both the quantitative and qualitative aspects of rearing Delia brassicae for sterile release programmes//Entom. Exp. Et Appl. 1981. Vol.30, №3. P.231-240.

152. Klassen W;, Area-Wide Approaches to Insect Pest Management History and Lessons // Area-Wide Control of Fruit Flies and Other Insect Pests. Penang, 2000. P.21-35.

153. Knipling E. Possibilities of insect control or eradication through the use of sexually sterile males //J. Econom. Entomol. 1955. Vol. 48. P. 459-462.

154. Kostal V: Characteristics of plants that influence host-plant finding/acceptance by the cabbage root fly // Bull. OILB/SROP. 1992. Vol.15. №4. P. 154.

155. Krainacker D, Carey J., Vargas R. Size-specific survival and fecundity for laboratory strains of two tephritid (Diptera:Tephritidae) species:implication for mass rearing. // J. Econ. Entomol. Vol. 82. P. 104-108.

156. McCombs S.D Germline Transformation of the Mediterranean Fruit Fly, Ceratitis capitata // Area-Wide Control of Fruit Flies and ther Insect Pests. Penang, 2000. P. 535-540.

157. McCombs S.D., Lee S.G., Saul S.H. Translocation-based genetic sexing system to enhance the sterile insect technique against the melon fly (Diptera: Tephri-tidae)// Ann. Entom. Soc. Amer.1993. Vol.86, №5. P.651-654.

158. McCombs • S.D., Saul S.H. Flightless mutant in the melon fly and oriental fruit fly (Dip.:Tephritidae) and their possible role in the sterile insect release method //Ann. Entom. Soc. Amer. 1992. Vol.85. №3. P.344-347.

159. McDonald I.C., Overland D.E. House fly genetics: 1. Use of an inversion to facilitate the recovery of translocation homozygotes and reduce genetic recombination on translocated third chromosomes//J. Heredity. 1973. Vol.64. P.247-252.

160. McEven F.L., Ritcey G., Liu H.J. Laboratory studies of radiation-induced sterility on the onion fly, Delia antiqua (Diptera: Anthomyiidae) // Canadian Entomologist. 1984. Vol.116, №2. P.119-122.

161. Mclnnis D O., Tam S., Grace C., Miyashita D. Population suppression and sterility rates induced by variable sex ratio, sterile insect releases of Ceratitis capitata (Diptera: Tephritidae ) in Hawaii II Ann. Entom. Soc. Amer. 1994. Vol.87, №2. P.231-239.

162. McKinlay R. G.,McCreath M., Armstrong G. Undersowing cabbages with clover and its effect on the infestation levels of the cabbage root fly // Bull. OILB/SROP. 1996. Vol. 19, №11. P. 122-127.

163. Meadow R. A Nordic project on the cabbage root fly and the turnip fly(1991-1994) // Bull. IOBC/WPRS. 1992. №4. P.77-81.

164. Milby M.M., Nelson R.L., McDonald P.T. Release of heterozygous translocated adult males for. genetic control of Culex tarsalis at an isolated site // Mosquito News. 1980. Vol.40, №1. P.83-90.

165. Neveu N., Kacem N., Nenon J. P. A method for rearing Trybliographa rapae W. On Delia radicum L. // Bull. OILB/SROP. 1996.Vol. 19. №11. P. 173-178.

166. Opiyo E. Survival and reproductive potential of gamma irradiated male G/os-sina pallidipes Austen (Diptera: Glossinidae) // Ent. Exp. Appl. 2001. Vol. 99. P. 39.7-400.

167. Orozco D., Lopez R. Mating competitiveness of wild and laboratory mass-reared medflies: effect of male size. II Fruit flies: biology and management. New York, 1993. P. 185-188.

168. Parker W. E. Controlling cabbage root fly (Delia radicum) on outdoor radishin the UK //Bull. OILB/SROP.1996. Vol. 19, №11. P. 200-205.t

169. Patterson J.Т., Shone W.S., Bediches S., Suche M. The production of translocations in Drosophila II American Naturalist. 1934. Vol.68. P.358-369.

170. Prasher D. C., Eckenrod V. K., Ward W., Prendergast F. G., Cormier M. J. Primary structure of the Aequorea victoria green-fluorescent protein II Gene. 1992. №111. P. 229-233.

171. Product quality control, irradiation and shipping procedures for mass-reared Tephretid fruit flies for sterile insect release programmes // IAEA, Vienna, 1999. 29 pp.

172. Puro J. Mechanisms contributing to non-recovery of translocations induced in meiotic celJs// Mutat. Res. 1985. Vol.149, №2. P.179-187.

173. Rabbani M.G., Kitzmiller J.B. Chromosomal translocations in Anopheles al-bimanus W. //Mosquito News. 1972. Vol.32, №3.P.421-432.

174. Reid J.А.К., Mc Even F. L. Genetic insect control: chromosome rearrangements isolated using a sample system in the onion maggot, Hylemya antiqua (Diptera. Anthomyiidae)// Canadian Entomologist. 1977. Vol.109, №9. P. 1287-1291.

175. Reid J.A.K., Wehrhahn C.F. Genetic control of insect populations: isolated and fitness determination of autosomal translocations // Canadian Entomologist 1976. Vol.108, №12. P.1409-1415.

176. Rendon, P. Development and evaluation of a temperature sensitive lethal strain of the Mediterranean fruit fly Ceratitis capitata Wied // Ph.D.Thesis. Manchester University, UK,1996. P.267. ,

177. Robinson A.S. A reassessment of the use of chromosome inersions for insect control // J. Heredity. 1975 Vol.66. P.35-37.

178. Robinson A.S. Genetic control of Hylemya antiqua. 1. X-ray induced effects in the F and F generations // Mutat. Res. 1977. Vol.42, №1. P.79-88.

179. Robinson A.S. Genes for genetic sexing in the Mediterranean fruit fly, Ceratitis capitata, and the mosquito, Anopheles stephensi II Genetic sexing of the Mediterranean fruit fly. IAEA, Vienna, 1990. P.189-200.

180. Robinson, A.S., U. Cirio, G.H.S. Hooper and M. Capparella . Field cage studies with a genetic sexing strain in the Mediterranean fruit fly, Ceratitis capitata II Entomol. Exp. Appl. 1986. Vol.41. P. 231-235.

181. Robinson A.S., van Heemert C. Ceratitis capitata, a suitable case for genetic sexing // Genetica. 1982. Vol.58. P.229.

182. RossJer, Y. Effects of recombination in males of the Mediterranean fruit fly (Diptera: Tephritidae) on the integrity of "genetic sexing" strains produced for sterile-insect releases //Ann. Entomol. Soc. Am.1985. Vol.78. P. 265-270.

183. Rubin G. M., Spradling A. C. Genetic transformation of Drosophila using transposable element vectors//Science. 1982. №218. P. 348-353.

184. Sears M. K., Dufau.lt C. P. Flight Activity and oviposition of the Cabbage Maggot Delia radicum (diptera: Anthomyiidae), in Relation to damage to rutabages //J. of Economic Entomology. 1986. Vol.79, №1. P.54-58.

185. Snow J.W. Radiation, insects and'eradication in North America: An overview from screwworm to bollworm // Modern insect control: nuclear techniques and biotechnology . IAEA. Vienna, 1988. P.3-14.

186. Sobels F. H. The viability of 2-3 translocations in homozygous condition // Drjsoph. Inform. Serv. 1972. №48. P. 117.

187. Spradling A. C., Rubin G. M. Transposition of cloned P element into Droso-phila germline chromosomes // Science. 1982. Vol.218. P. 341-347.

188. Steffens, R.J. 1982. The combi-fly, a new concept for genetic control of fruit flies. Naturwissenschaften. 1982. Vol. 69. P.600-601.

189. Steffens R.J. Combination of radiation- and translocation-induced sterility for genetic control of fruit flies // Entomol. Exper. et Appl. 1983 Vol.33, №3. P.253-258.

190. Steiner ,L.F., W.C. Mitchell, A.H. Baumhover. Progress of fruit fly control by irradiation sterilisation in Hawaii and the Mariana Islands // J. Appl. Radiat. Isot. 1962. Vol.13. P.427-434. ,

191. Swailes Q. Laboratory studies on mating and oviposition of Hylemya brassicae 11 Can. Entom.1961. Vol.93, №10. P.940-944.

192. Swailes G.E. Reproductive behaviour and effect of the male accessory gland substance in the cabbage maggot, Hylemya brassicae // Ann. Entom. Soc. Amer. 1971. Vol.64, №1. P.176-179.

193. Taksdal G. Some aspects of the biology of brassica root flies in relation to IPM in south-west Norway// Bull. SROP/WPRS.1992.Vol.15, №4. P.53-61.

194. Theunissen J., Booij C. J. H., Schelling G., Noorlander J. Intercropping white cabbage with clovers // Bull. SROP/WPRS. 1992. Vol.15, №4. P.104-114.

195. Torti C., Gomulski L.M., Malacrida A. R., Capy P., Gasperi G. Transposable element in Ceratitis capitata (Medfly) population // Fifth International Symposium on Fruit Flies of Economic Importance. Current Global Scenario. Florida, USA, 1998. P. 90.

196. Van De Steene F., Benoit F., Ceustermans N. The use covers to reduce cabbage root fly and caterpillar damage in white cabbage crops // Bull. OILB/SROP. 1992. Vol.15, №4. P.155-156.

197. Vanninen I., Vainio A., Jaakkola S, Attempts to control Delia spp. With ento-mopathogenic nematodes // Bull. SROP/WPRS. 1992. Vol.15, №4. P. 143-153

198. Vosselman L. Fitness of a translocation homozygote in cage experiments with the onion fly Hylemya antiqua (Meigen) II Theor. Appl. Genet. 1980. Vol.58. P.79-85.

199. Vosselman L. Meiotic segregation of five different reciprocal translocations in the Onion fly, Hylemya antiqua (Meigen) // Chromosoma. Vol.81. 1981. P.727-738.

200. Wagoner D.E., Nickel C.A., Johnson O.A. Chromosomal translocation het-erozygotes in the house fly: Egg hatch, sex ratios and transmission to progeny of 193 translocation//J. Heredity. 1969. Vol.60, №5. P.301-304.

201. Willhoeft, U.,.G. Franz and D.O. Mclnnis. Towards the application of genetic sexing in Tephritid fruit fly SIT programmes// Fruit Fly Pests'- a World Assessment of their Biology and Management. Florida, USA. 1996. P. 179-184.

202. Wishart G. Survey of parasites of Hylemya spp.( Diptera: Anthomyidae) that attack cruciferous crops in Canada // Rev. App. Ent.,1959. №47. P.88.

203. Wong T.T.Y., R.M. Kobayashi and D.O. Mclnnis. Mediterranean fruit fly (Dip-tera:Tephritidae): Methods of assessing the effectiveness of sterile insect releases. J. Econ. Entomol. 1986. Vol.79. P. 1501-1506.

204. Yamagishii M., Kakinohana H. Mass Rearing of Melon fly in Okinawa, Japan Special Reference to quality control И Area-Wide Control of Fruit Flies and Other Insect Pest. Penang, 2000. P.559-565.

205. Ytterborn K.H. Homozygous lethal effects of 2-3 translocations in Drosophila melanogasterII Drosoph. Inform. Serv. 1970. №45. P.158-159.

206. Т ^-7 i 1 ; Л 1 ' . • N212 л 13 39,4% 8,51% j 931 ? ? .,: ■ ! % ., -v213 * 'SA. \ 4.9% 2., /'"% 939 49 i i I ■ ч > '1,1214 • ^ \ 233 99 : 1 •» •.

207. V-, 2.0 0 0 »1 > ■ V II 2.82 14 3 23 i » '33 35 > -л " , 283 18 1 105 i . S % 1 28-1 20 1 30 ■9 20 С) з «7зз. 7,« 285 25 11 16 г 1, , ■ '

208. Л , без яйцекладки 28«э без яйцекладки