Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Состояние генофонда башкирской популяции Apis mellifera mellifera L. и пути его сохранения

ВАК РФ 03.00.09, Энтомология

Содержание диссертации, доктора биологических наук, Николенко, Алексей Геннадьевич

Введение

Список сокращений

Глава 1. Генофонд медоносной пчелы

1.1. Сохранение генофонда

1.1.1. Состояние пчеловодства России

1.1.2. Сравнительное изучение рас и районирование 1 б

1.1.3. Методы идентификации генофонда

1.1.4. Внутривидовая систематика

1.1.5. Пчеловодство Башкирии

1.2. Селекция медоносной пчелы

1.2.1. Проблемы селекции

1.2.2. Перспективы развития селекции пчелы

1.2.3. Иммунитет насекомых

1.2.4. Антибактериальные пептиды насекомых

1.2.5. Особенности иммунитета медоносной пчелы 60 Заключение

Глава 2. Методы идентификации генофонда Apis mellifera mellifera L. в 66 Башкирии

2.1. Материалы и методы исследований

2.2. Полиморфизм локуса COI-COII мтДНК A.mellifera на 76 территории РБ

2.3. Модификация морфометрического метода

2.4. Структура и полиморфизм генов АБП 83 Заключение

Глава 3. Состояние генофонда башкирской популяции Apis mellifera 99 mellifera L.

3.1. Материалы и методы исследований

3.2. Полиморфизм мтДНК (локус COI-COII) A.mellifera на 105 территории РБ

3.3. Морфометрический полиморфизм A.mellifera на территории РБ

3.4. Источники восстановления генофонда башкирской популяции 120 A.m.mellifera.

3.5. Полиморфизм гена дефензина на территории РБ 132 Заключение

Глава 4. Биохимическая модель инфекционного стресса

4.1. Материалы и методы исследований

4.2. Начальная стадия развития инфекционного процесса у медоносной пчелы при действии препарата БТБ и культуры бактерий Bacillus thurengiensis

4.3. Биохимические закономерности защитной реакции пчелы на 171 инфекционный стресс

4.4. Динамика биохимических показателей при температурном стрессе

4.5. Экспрессия генов антибактериальных пептидов 185 Заключение

Глава 5. Биохимические различия защитных реакций у различных 192 географических рас медоносной пчелы

5.1. Материалы и методы исследований

5.2. Сравнение рас по хозяйственно-полезным признакам

5.3. Зимостойкость пчел и их устойчивость к заболеваниям

5.4. Биохимические показатели устойчивости пчел в норме

5.5. Биохимические показатели устойчивости пчел разных рас в модели 216 инфекционного стресса

5.6. Клеточный иммунный ответ на БТБ

5.7. Расовые особенности в экспрессии генов АБП 221 Заключение

Введение Диссертация по биологии, на тему "Состояние генофонда башкирской популяции Apis mellifera mellifera L. и пути его сохранения"

Критическое состояние генофонда медоносной пчелы является одной из основных причин современного кризиса в пчеловодстве России.

Естественный ареал медоносной пчелы охватывает значительную часть Старого Света. В пределах этого ареала вид Apis melHfera L. подразделяется как минимум на 25 географических рас (Ruttner, 1992), но только темная лесная пчела Apis mellifera mellifera L. освоила огромный регион вдоль северной границы ареала, протянувшийся вдоль лесной и лесостепной зон через всю Евразию. Apis mellifera mellifera L. уникально адаптирована к холодной продолжительной зиме, к сопутствующим этому болезням, а также к бурному, но кратковременному летнему взятку.

За последние два века ареал Apis mellifera mellifera L. существенно сократился из-за интенсивной вырубки лесов, гибридизации с другими расами пчел и распространения новых болезней. В настоящее время по всему ареалу доминируют гибриды темной лесной пчелы с серой горной кавказской, карпатской и итальянской пчелами. В Европе островки чистопородной Apis mellifera mellifera L. сохранились только в Великобритании, на Скандинавском полуострове и в Польше.

Россия еще обладает резервами для восстановления генофонда Apis mellifera mellifera L. Более того, освоение огромных медоносных ресурсов России, расположенных в центральных и северных районах Европейской части страны, на Урале и, особенно, в Сибири, невозможно без использования богатейшего генофонда этой самой зимостойкой из всех рас пчел (Гранкин, 1997). Одной из наиболее известных и крупных популяций темной лесной расы является башкирская популяция, при этом состояние генофонда башкирской пчелы до последнего времени остается неизвестным. Экспериментальные данные, на основе которых можно было бы нарисовать реальную картину, практически отсутствуют.

Современный уровень смешения рас сильно усложнил анализ данных, получаемых морфометрическим методом (Гранкин, 1997). Первый серьезный успех в поиске ДНК-маркеров для идентификации рас был достигнут на основе рестрикционного полиморфизма мтДНК (Smith, 1988). Тем не менее, до настоящего времени лишь отдельные работы, связанные с поиском маркеров для популяционной генетики медоносной пчелы, были посвящены другим методам анализа ДНК, а общее количество активно используемых популяционно-генетических маркеров не превышает одного десятка (Lobo et al., 1989; Meixner et al., 2000). В России лишь в последние годы появились первые молекулярно-генетические работы в этой области (Никоноров и др., 1997; Поздняков и др., 2000).

До сих пор ни в одной стране мира нет породы пчел, созданной человеком (Мельниченко, 1989), все они имеют естественное происхождение. Селекция пчел с акцентом на медовую продуктивность не дала существенного результата, поскольку пчелиная семья в течение сезона, как правило, реализует свой медосборный потенциал лишь на 20-30%. К тому же медоносная пчела - одно из немногих домашних животных, обитающих практически весь год в естественной среде, где на первый план выходит устойчивость. В настоящее время ущерб, наносимый российскому пчеловодству и вытекающий из низкого уровня устойчивости пчел, включает в себя ежегодную гибель 10-20% пчелиных семей в весенне-зимний период, 20-40% отход пчел в выживших семьях, весеннее ослабление многих семей, делающих их неспособными полноценно участвовать в главном медосборе. К этому следует добавить широкое распространение варроатоза, аскосфероза и др. болезней. Все это позволяет предположить перспективность селекции медоносной пчелы с акцентом на устойчивость к среде обитания.

Наконец, по-прежнему актуальным для пчеловодства остается обоснованный выбор оптимальной (и обязательно реализуемой) стратегии использования генофонда медоносной пчелы и последовательная политика государства по ее реализации.

Исследования, представляемые в данной работе, выполнялись в 1996-2002 годах в лаборатории биохимии адаптивности насекомых Института биохимии и генетики Уфимского научного центра РАН под руководством автора диссертации в рамках тем Российской академии наук: «Генетико-биохимические особенности башкирской популяции среднерусской расы медоносной пчелы» (РАН, № госрегистрации 01.9.60 001037, 1996-1998) и «Молекулярные механизмы адаптивности южно-уральской популяции Apis mellifera melliftra к современным условиям обитания» (РАН, № госрегистрации 01.99.00 08299, 1999-2001).

Исследования были поддержаны грантами Академии наук Республики Башкортостан и Российского фонда фундаментальных исследований.

• «Физиолого-биохимические особенности холодоустойчивости башкирской популяции среднерусской породы медоносной пчелы» (АН РБ, 1996-1998).

• «Разработка комплекса молекулярно-генетических методов для контроля состояния генофонда башкирской пчелы и изучения ее внутрипопуляционной генетической структуры» (АН РБ, 1999-2001).

• «Молекулярно-генетическая паспортизация генофонда башкирской популяции медоносной пчелы» (АН РБ, 1999-2001).

• Молекулярно-генетические основы адаптивного потенциала популяции башкирской пчелы (РФФИ, проект №02-02-97925).

Результаты диссертационной работы прошли апробацию на Научно-практической конференции по пчеловодству (Уфа, 1996), научной конференции «Экологический императив сельского хозяйства Республики Башкортостан» (Уфа, 1997), Intern. Congress «Animal Genetics at the Treshold of the Twenty First Century» (Auckland, 1998), Intern. Congress «Biologically Active Polysaccharides» (Oslo, 1998), научной конференции «Актуальные проблемы современной биохимии и биотехнологии» (Челябинск, 1999), The 3rd Carbohydrate Bioengineering Meeting, (England, 1999), научной конференции «Проблемы физико-химической биологии» (Пущино, 2000), научной конференции «Современное состояние проблемы резистентности» (Пушкин-Санкт-Петербург, 2000), научной конференции «Молодые ученые - возрождению сельского хозяйства России в XXI веке» (Брянск, 2000), научной конференции «Актуальные проблемы биологии и экологии» (Сыктывкар, 2000), 6th European Training Course on Carbohydrates (Hungary, 2000), 4th Congress of Animal Genetics (USA, 2000), Intern. Congress «Biodiversity and dynamics of ecosystems in North Eurasia (Novosibirsk, 2000), XII съезде РЭО (Санкт-Петербург, 2002).

Основные материалы диссертации изложены в 52 печатных работах, а также депонированы в международных банках данных EMBL/GenBank. Положения, выносимые на защиту.

1. На основе разработанной нами методологии возможна реализация стратегии чистопородного разведения, т.е. анализ состояния генофонда, его восстановление и сохранение, а также последующая селекция, в той основной части ареала Apis mellifera mellifera L., где популяционная система сильно нарушена.

2. Степень сохранности генофонда башкирской популяции медоносной пчелы, ее адаптированность к среде обитания и выявленные нами новые селекционные признаки устойчивости позволяют считать чистопородное разведение Apis mellifera mellifera L. в РБ оптимальной стратегией использования генофонда медоносной пчелы.

3. Сложная и эффективная система иммунитета медоносной пчелы является перспективным источником для поиска современных селекционных признаков и позволяет рассчитывать на успех селекции Apis mellifera mellifera L. с акцентом на устойчивость к среде обитания.

4. Условия интенсивного кратковременного стресса обеспечивают получение стабильных и информационно ёмких биохимических селекционных признаков, позволяют получить оптимальную оценку индивидуального адаптивного потенциала насекомого.

Автор благодарит инициатора этой работы профессора В.А.Вахитова за постоянную поддержку, без которой работа вряд ли была бы завершена, Г.Д.Билаша за ценные консультации, профессора Э.К.Хуснутдинову, профессора А.В.Чемериса и Ю.М.Никонорова за постоянную методическую помощь, сотрудников лаборатории биохимии адаптивности насекомых Г.В.Беньковскую, А.В.Поскрякова, Е.С.Салтыкову, В.Н.Саттарова, А.В.Львова, О.В.Сухорукову, Л.Р.Гайфуллину, М.Б.Удалова и других коллег за всемерную поддержку в работе.

Список сокращений

АБП - антибактериальные пептиды

БГАУ - Башкирский государственный аграрный университет

БОСП - Башкирская опытная станция пчеловодства

БТБ - битоксибациллин

ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота

ДОФА - диоксифенилаланин кДНК - комплиментарная ДНК

ЛПС - липополисахариды мРНК - матричная РНК мтДНК - митохондриальная ДНК

НИИП - Научно-исследовательский институт пчеловодства РАСХН

ПДАФ - полиморфизм длин амплифицированных фрагментов

ПДРФ - полиморфизм длин рестрикционных фрагментов

ПФО - профенолоксидаза

ПЦР - полимеразная цепная реакция

РБ - Республика Башкортостан

РНК - рибонуклеиновая кислота рРНК - рибосомная РНК

ФО - фенолоксидаза

ФОК - фенолоксидазный каскад

ХОС - хитоолигосахариды яДНК - ядерная ДНК

A.m. - Apis mellifera

CO-I - цитохромоксидаза I

CO-II - цитохромоксидаза II

RAPD - random amplified polymorphic DNA

RFLP - restriction fragment length polymorphism

Заключение Диссертация по теме "Энтомология", Николенко, Алексей Геннадьевич

Выводы

1. Анализ структуры локуса COI-COII мтДНК пчел башкирской популяции позволил разработать метод специфичной PCR для идентификации расового происхождения отдельной пчелиной семьи по материнской линии. На основе кластерного анализа (стратегия Варда, квадратичное Евклидово расстояние) адаптирован к современным условиям метод морфометрического определения расовой принадлежности пчел В.В.Алпатова (1948). Обнаружен ранее неизвестный диаллельный полиморфизм гена дефензина Apis mellifera L., регистрируемый методом специфичной PCR. Показана информативность данного типа полиморфизма в популяционно-генетических исследованиях. В итоге разработан комплекс методов для анализа генофонда Apis mellifera mellifera L., работающий в условиях высокой степени внутривидовой гибридизации медоносной пчелы в России.

2. Создан банк ДНК медоносной пчелы объемом более 1500 образцов. Методом специфичной PCR локуса COI-COII мтДНК показано, что в большинстве регионов РБ частота встречаемости аллеля PQQ колеблется в интервале от 0,40 до 0,62, т.е. основная часть ареала башкирской популяции Apis mellifera mellifera L. представляет собой гибридную зону. Методом морфометрического анализа определена доля гибридных семей в регионах РБ: от 0,58 до 0,99. Методом специфичной PCR гена дефензина показана генетическая неоднородность гибридной зоны, отражающая разные стадии межрасовой гибридизации и, как следствие, разную степень перспективности мероприятий по сохранению генофонда башкирской пчелы в регионах.

3. В качестве исключения из общей картины выделен Бурзянский район - 0,98 аллеля PQQ и 0,14 гибридных семей. Таким образом, на территории РБ сохранился как минимум один генетический резерват башкирской популяции - в заповеднике «Шульган-Таш» и на прилегающих территориях. Анализ расового состава медоносных пчел лицензированных (дотационных) селекционно-племенных пасек РБ показал, что доля чистопородной пчелы Apis mellifera mellifera L. на этих пасеках составляет 0,18. Критериям племенных пасек соответствуют две пасеки заповедника «Шульган-Таш», объем производства которых недостаточен для компенсации ежегодной убыли башкирских пчел вследствие межрасовой гибридизации.

4. Построена лабораторная модель инфекционного стресса у насекомых. Выявлены биохимические процессы, характерные для начальной стадии иммунного ответа насекомых: активация фенолоксидазного каскада, снижение активности антиокислительных процессов, угнетение активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, накопление гликозоаминогликанов.

5. Методом дот-блот-гибридизации показана экспрессия генов всех трёх антибактериальных пептидов у Apis mellifera L. в норме. Установлено увеличение уровня экспрессии генов антибактериальных пептидов Apis mellifera L. уже через 15 минут после введения битоксибациллина per os. Показано, что динамика уровня экспрессии антибактериальных пептидов определяется типом пептида и временным периодом развития инфекционного стресса.

6. Показаны различия в характере иммунного ответа Apis mellifera mellifera L. и пчел южных рас. Для пчел башкирской популяции характерны низкий уровень окислительно-восстановительных процессов в норме, более высокая реактивность антиокислительных ферментов, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, ферментов фенолоксидазного каскада, высокий и стабильный уровень содержания гликозоаминогликанов. Эти и другие особенности иммунного ответа Apis mellifera mellifera L. могут быть использованы в качестве селекционных всего комплекса необходимых мер по управлению генофондом пчелы.показателей, отражающих устойчивость пчелы к климатическим факторам северной части видового ареала.

7. Темная лесная пчела сохраняет более высокий адаптивный потенциал к условиям Южного Урала по сравнению с пчелами южных рас. Оптимальной стратегией использования генофонда медоносной пчелы в РБ остается чистопородное разведение пчел башкирской популяции Apis mellifera mellifera L. Однако данная стратегия целесообразна только в случае последовательной государственной политики, направленной на реализацию

Практические рекомендации по чистопородному разведению башкирской пчелы в РБ

1. Необходимо ввести в законодательство РБ обязательную отметку в паспорте пасеки о породности разводимых на территории данной пасеки пчел.

2. Паспортизация пчел на пасеках РБ должна проводиться специально сертифицированными организациями и только методами, соответствующими мировым стандартам.

3. Паспортизированные пасеки, разводящие чистопородных башкирских пчел, должны иметь экономические льготы или другие формы стимулирования.

4. Для сохранения башкирской популяции на территории РБ необходимо дополнительно создать два-три резервата генофонда. Наиболее перспективными регионами для этого являются Янаульский и Татышлинский районы и Южно-Уральский заповедник.

5. Для восстановления ареала популяции требуется сеть чистопородных пасек, способных полностью обеспечить нужды пчеловодов РБ. При этом объем производства за сезон должен составлять не менее 20000 пчелопакетов чистопородных пчел и полноценных плодных маток.

6. Важным стимулом для разведения чистопородных пчел должна стать соответствующая сертификация товарной марки «башкирская пчела» и «башкирский мед» и создание системы строгого контроля качества.

7. Для решения поставленных задач необходима концентрация имеющихся экономических и научных ресурсов (Таблица 6.1).

Библиография Диссертация по биологии, доктора биологических наук, Николенко, Алексей Геннадьевич, Санкт-Петербург

1. Аветисян Г.А. Разведение и содержание пчел. М.: Колос 1983. 319с.

2. Аветисян Г.А., Некрасов В.Ю. К сравнительному изучению хозяйственно-полезных качеств кавказских и среднерусских пчел // Сборник по селекции. ВИЖ. 1935. С.88.

3. Алексахина Н.В., Бочарникова И.М., Гончарова Н Ю., Королева Е.И., Телепнева В.И. Регуляция активности ферментов // Практикум по биохимии. Под редакцией проф. Н.П.Мешковой и акад. С.Е.Северина. М.: Изд-во Московского университета. 1979. С.296-353.

4. Алпатов В.В. К вопросу улучшения породы пчел // Пчеловодное дело. 1927. №8-9. С.327-377.

5. Алпатов В.В. Породы медоносной пчелы. М.: МОИП. 1948. 183 с.

6. Артеменко Р.П., Скрипник Е.И. Иммунитет у пчёл // Пчеловодство. 1984. №11. С.18-19.

7. Архипенко Ю.В., Газдаров А.К., Каган В.Е. и др. Перекисное окисление липидов в направление транспорта Са2+ через мембраны саркоплазматического ретикулума при Е авитаминозе //Биохимия. 1976. Т.42. №10. С.1898-1902.

8. Ахметова И.Э., Муллагалиев И.Р., Ахметов P.P., Хайруллин P.M. Получение биологически активных олигомеров хитина // Достижения биологического факультета БГУ. Уфа. 1998. С.17-21.

9. Байтеряков Р.Г. Бортевое пчеловодство в Южно-Уральском заповеднике // Леса Башкортостана: современное состояние и перспективы. Уфа. 1997. С.237-238.

10. Бакаева Т.Г. Пакетные пчелы на Южном Урале // Пчеловодство. 1998. №1. С.14-15.

11. Бароян О.В., Портер Д.Р. Международные и национальные аспекты современной эпидемиологии и микробиологии. М.: Медицина. 1975. С.6-58.

12. Бартникайте И.С., Кршцунене P.A. Цитопатологические и количественные изменения гемоцитов у личинок колорадского жука после обработки битоксибациллином // Тр. АН Лит. ССР. Серия В. 1988. Т.4(104). С.54-58.

13. Батурин В.В. Патология гемолимфы сибирского шелкопряда под воздействием кристаллофорных бацилл // Микроорганизмы в защите растений от вредных насекомых. Иркутск. 1978. С.93-97.

14. Батурин В.В., Батурина Л.И. Особенности инфекционного процесса у чешуекрылых и прямокрылых насекомых при заражении их кристаллофорными бактериями группы thurengiensis.) // Микроорганизмы в защите растений от вредных насекомых. Иркутск. 1978. С.97-108.

15. Батурин В.В., Батурина Л.И. Показатель водородных ионов (pH) пищеварительного канала насекомых при заражении кристаллообразующими бактериями // Микроорганизмы в защите растений от вредных насекомых. Иркутск. 1978. С.108-115.

16. Батурина Л.И. Механизм действия кристаллофорных бактерий на личинок капустной совки (Barathra brassicae L.) II В сб. Микроорганизмы в защите растений от вредных насекомых. Иркутск. 1978. С. 86-93.

17. Башкатов С.А. Гликозоаминогликаны в механизмах адаптации организма. Уфа. 1997. 144с.

18. Беляев Т.Г. Участие полифенолоксидазы в защитной реакции вредной черепашки (Eurygaster integriceps) при заражении ее паразитами-фазиями // Докл. АН СССР. 1979. Т.247. №4. С.963-966.

19. Бернет Ф. Клеточная иммунология. М.: Мир. 1971. С.13-55.

20. Бессонов К.К. Высокогорные кавказские пчелы в условиях Сибири // Пчеловодство. 1950. №9. С. 19.

21. Биктимиров А.Н. Кавказянки в Башкирии // Пчеловодство. 1963. №3. С. 15.

22. Билаш Г.Д. О сравнительной оценке семей-помесей первого поколения // Пчеловодство. 1954. С.10-12.

23. Билаш Г.Д. О хозяйственной ценности серых высокогорных пчел и их помесей //

24. Пчеловодство. 1956. №8. С.16-23. Билаш Г.Д. О породном районировании // Пчеловодство. 1963. №4. С.22-24. Билаш Г.Д. Условия медосбора и особенности различных рас пчел // Пчеловодство. 1991. №5. С.21-23.

25. Билаш Г.Д. Научно-исследовательский институт пчеловодства. М.: Информагротех. 1995. 104с.

26. Билаш Г.Д., Бурмистров А.Н., Гребцова В.Г. и др. Малая энциклопедия пчеловодства.

27. Болдырев A.A., Булыгина Е.Р., Волынская Е.А. Влияние пероксида водорода и гипохлорита на активность Na, К-АТРазы мозга // Биохимия. 1995. Т.60. Вып.10. С.1688-1695.

28. Бондарчук Л.И., Нагорная И.М., Левченко H.A. Новое об антибактериальныхсвойствах мёда // Пчеловодство. 1995. №4. С.48-43. Бородачев A.B., Бородачева В.Т. Хозяйственная ценность межпородных помесей //

29. Пчеловодство. 1982. №9. С. 13-15. Бочкарев Г.Д. К методике племенной работы в пчеловодстве // Пчеловодство. 1952. №4. С.ЗЗ.

30. Бочкарев Г.Д. Используем уральскую горно-таежную пчелу // Пчеловодство. 1952. №1. С.36-37.

31. Бояркин А.Н. Быстрый метод определения активности пероксидазы // Биохимия. 1951, Т. 16, №4, С.352-357.

32. Бургасов П.Н., Румянцев С.Н. Антимикробный конституциональный иммунитет. М.:

33. Медицина, 1985, 256с. Вавилов Ю.Л., Рунков С.В. Изучение активности ряда ферментов классов оксидоредуктаз и гидролаз в различных тканях пчел разных рас // Биол. ресурсы пчеловод, и их рац. использ. в нар. х-ве и мед., Горький, 1988, с.15-20.

34. Веприков П.Н. Пчел всех пород на красный клевер // Пчеловодство. 1948. №6. С.25-27.

35. Владимиров Ю.А., Азизова O.A., Деев А.И. и др. Свободные радикалы в живых системах // Итоги науки и техн., Сер. Биофиз., ВИНИТИ, 1991, т. 29, с. 1-252.

36. Вольский H.H., Козлов В.А., Лозовой В.П. Влияние гидрокортизона на продукцию супероксидного радикала фагоцитирующими клетками селезенки // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1987. №6. С.694-696.

37. Газизов Р.И. Племенное улучшение местных пчел Башкирии // Пчеловодство. 1987. № 5. С.7-8.

38. Галиаскарова Г.Г., Муллагалиев И.Р., Монаков Ю.Б. Применение в медицине хитина и его модифицированных производных // Башкирский химический журнал. 1996. Т.З.Вып. 5-6. С.3-12.

39. Генрих В.Г., Тюльпанов В.А. Башкирские бортевые пчелы // Пчеловодство. 1958. №8. С.7-10.

40. Гилмур Д. Метаболизм насекомых. М.: Мир. 1968. 216с.

41. Гиниятуллин М.Г., Шафиков И.В., Косарев М.Н., Юмагужин Ф.Г., Нугуманов Р.Г. Экстерьерные признаки бурзянской бортевой пчелы // Изучение природы в заповедниках Башкортостана. Миас, 1999. С.19-27.

42. Глински 3., Ярош Я. Свидетельства о неклеточном иммунитете у медоносной пчелы // AnnaKTa=Apiacta. 1993. Т.28. №3-4. С.69-77.

43. Глупов В.В. Некоторые аспекты иммунитета насекомых // Успехи современной биологии. 1992. Т. 112. Вып.1. С.62-73.

44. Глупов В.В. Фенолоксидазная и агглютинирующая активности гемолимфы хлопковой совки Heliothis armígera // Сибирский биологический журнал. 1993. №1. С.3-7.

45. Глупов В.В. Механизмы резистентности насекомых // Патогены насекомых: структурные и функциональные аспекты. М.: Круглый год. 2001. С.475-691.

46. Глупов В.В., Хвощевская М.Ф., Щепеткин И.А., Крюкова H.A. Морфофункциональная структура популяции гемоцитов Galleria mellonella L. (Lepidoptera: Piralidae) при инфекционном процессе // Изв. РАН. Серия биологическая. 1997. №6. С.645-653.

47. Горбунов П.С. Гемолимфа пчёл на ноземотозе // Автореф. дис. к.б.н. Л.: ЛГПИ. 1987. 20с.

48. Гранкин H.H. Селекция и воспроизводство среднерусских пчел для центральных и северных областей России. Автореферат дисс. д.с-х.н. М. 1997. 38 с.

49. Гробов О.Ф., Лихотин A.K. Болезни и вредители пчел. М.: Агропромиздат. 1989. 239 с.

50. Губин А.Ф. Опыление сельскохозяйственных растений // М.: 1936. С.25-30.

51. Губин А.Ф., Халифман И.А. Племенная работа на пасеках Московской области //

52. Пчеловодство. 1952. №2. С.26. Губин А.Ф., Халифман И.А. Влияние пищи на породные признаки медоносной пчелы //

53. Дворник В .Я. Оксидазные системы насекомых. Автореферат дисс. . к.б.н. Донецк: ДГУ. 1990.20с.

54. Джапаридзе Т.Г. План породного районирования пчел в СССР // Пчеловодство. 1988. №5. С.4-5.

55. Домороцкий М.И. О продуктивности кавказских пчел и улучшение их качеств //

56. Пчеловодство. 1948. №12. С.28-32. Дреер К. В защиту естественных пород пчел // Пчеловодство. 1985. №4. С.6-7. Дулькин А.Л., Ершов Н.М. Об алтайской горно-таежной пчеле // Пчеловодство. 1960. №9. С. 12-14.

57. Дулькин А.Л., Трескова Г.Ф. Об уральской горно-таежной пчеле //Пчеловодство. 1953. №4. С.26-29.

58. Животенко Е.Ю., Кутузова Н.М., Филиппович Ю.Б. Изменение активности монофенол-монооксигеназы в онтогенезе комнатных мух и тутового шелкопряда // Онтогенез, 1987, т. 18, №2, с.208-211.

59. Животовский JI.A. Популяционная биометрия. М.: Наука, 1991, 272с.

60. Запольских О.В. Морфологический и цитохимический анализ клеток гемолимфы рабочей пчелы // Цитология. 1976. Т.18. № 8. С.956-962.

61. Запольских О.В. Сравнительно-морфологическое и цитохимическое исследование клеток гемолимфы некоторых перепончатокрылых // Автореф. Дисс. к.б.н. JL, Институт цитологии АН СССР, 1978. 19 с.

62. Запольских О.В. Клетки гемолимфы трутневого расплода при варроатозе // Пчеловодство. 1983. №9. С.34-36.

63. Захваткин Ю.А. Курс общей энтомологии // М.: Агропромиздат. 1986. С.260.

64. Зильбер A.A. Основы иммунологии. М.: Медицина. 1958. 599с.

65. Зюман Б.В. Факторы естественного иммунитета // Пчеловодство, 1988, №11, с.21-23.

66. Зюман Б.В. Динамика нуклеиновых кислот в организме медоносной пчелы при вирозах // Доклады ВАСХНИЛ. 1990. №10. С.56-59.

67. Зюман Б.В. Лизоцим в жизнедеятельности семьи пчёл // Научно-технический бюл. Дальневосточный зональный н.-и. вет. институт. 1991. №2. С.28-31.

68. Зюман Б.В. О бактерицидности мёда // Пчеловодство. 1991 (а). №12. С.32-33.

69. Зюман Б.В. Факторы и механизмы неспецифической резистентности медоносной пчелы (Apis mellifera L.) // Автореф. дисс. д.в.н. М., ВИЭВ, 1991(6). 30с.

70. Зюман Б.В. Роль мёда и маточного молочка в естественной резистентности семьи медоносных пчёл // Вест. Рос. акад. с.-х. наук. 1992. №6. С.56-58.

71. Зюман Б.В. Почему болеют пчёлы // Пчеловодство. 1993. №4. С.24-25.

72. Зюман Б.В. Антибактериальные пептиды в неспецифической резистентности медоносной пчелы // Докл. РАСХН. 1993(а). №4. С.70-76.

73. Зюман Б.В., Гордиенко Л.Н Выявление комплемента в гемолимфе пчёл // Ветеринария. 1986. №11.С.29-31.

74. Зюман Б.В., Гордиенко Л.Н Комплемент в системе иммунитета у пчёл // Инфекц. патол. с.-х. животных и пчёл на Дал. Вост. Новосибирск. 1988. С.61-67.

75. Зюман Б.В., Шариков А.П., Лобаченко Н.И. Устойчивость пчёл к заболеваниям //

76. Пчеловодство. 1987. №5. С.12-13. Иванов Е.С., Самохвалова Т.П. Охраняем опылителей // Пчеловодство. 1991. №12. С.43-45.

77. Ишемгулов A.M., Косарев М.Н., Юмангужин Ф.Г. Бурзянская бортевая пчелаперспективы сохранения генофонда // Пчеловодство. 1997. №3. С.12-15. Кандыбин Н.В. Бактериальные средства борьбы с грызунами и вредными насекомыми.

78. М., Агропромиздат, 1989, 173 с. Картель H.A., Макеева E.H., Мезенко A.M. Генетика. Энциклопедический словарь.

79. Минск.: Технология. 1999.437с. Кашковский И.Г. Методика разработки системы испытания и ухода за пчелами. М.: ВАСХНИЛ. 1971.

80. Кожевников Г.А. Породы пчел и способы их улучшения. М.-Л.: 1929. 181с. Кожевников Г.А. Естественная история пчелы. М. 1931. 99с.

81. Коппел X., Мертинс Дж. Биологическое подавление вредных насекомых М. Мир. 1980.416с.

82. Косарев М.Н. Есть ли будущее у бурзянки // Пчеловодство. №12. 1989. С.12-15.

83. Косарев М.Н., Урманцева З.Ф., Ишемгулов A.M. и др. Полиморфизм локусов малатдегидрогеназы в Бурзянской популяции пчелы медоносной (Apis mellifera L.) // Изучение природы в заповеднике Башкортостана. Миасс. 1999. С. 32-35.

84. Кривцов Н.Й. Среднерусские пчелы. СПб.: Лениздат. 1995. 126с.

85. Кривцов Н.И., Билаш Г.Д. Племенная работа в пчеловодстве. М., ЦНТИПиР, 1995. 47с.

86. Кривцов Н.И., Лебедев В.И., ТуниковГ.М Пчеловодство. М.: Колос. 1999.

87. Кривцов Н.И, Козин Р.Б., Капунин В.П. Направления научно-технического прогресса // Пчеловодство. 2001. №5.

88. Кубайчук В.П. Показатели каталазы как возможные тесты для оценки уровня физиологического состояния насекомых // IX съезд Всесоюз. энтомол. о-ва. Киев. 1984. 4.1. С.260,

89. Кузнецов Н.Я. Основы физиологии насекомых. Т.1. Л.: Изд-во Академии наук СССР. 1948. 380с.

90. Кулаев И.С. Бактериолитические ферменты микробного происхождения в биологии и медицине// Соросовский образовательный журнал. 1997. №3. С.23-31.

91. Купер Э. Л. Сравнительная иммунология. М.: Мир. 1980. 422с.

92. Лабори Г. Регуляция обменных процессов (теоретический, экспериментальный, фармакологический и терапевтический аспекты). М.: Медицина. 1970. 384с.

93. Лаврехин Ф.А. Первый опыт акклиматизации Дикой Уссурийской пчелы в московской области //Пчеловодство. №4. 1949. С.18-22.

94. Лакин Г.Ф. Биометрия. М., Высшая школа, 1980, 293 с.

95. Лебедев В.И., Билаш Н.Г. Биология медоносной пчелы. М.: Агропромиздат. 1991. 239с.

96. Левин A.C., Завезенова Т.В., Левина И.И. Фракционный состав белка эндотоксинов и биохимическая характеристика энтомопатогенных бацилл группы thurengiensis // Микроорганизмы в защите растений от вредных насекомых. Иркутск. 1978. С.86-92.

97. Лухтанов В.А. Неспецифическая резистентность как показатель состояния популяции насекомых // Методика и результаты изучения физиологических состояний насекомых. 1985. Тарту. С.47-49.

98. Львов A.B., Николенко А.Г. Особенности экспрессии генов антибактериальных пептидов Apis mellifera mellifera // Актуальные проблемы современной биохимии и биотехнологии. ЧГМА. 1999. С. 159-162.

99. Любимов А.А. Кубанские пчелы в условиях Смоленской области // Пчеловодство. 1951. №3. С.52.

100. Мадебейкин И.Н., Тимошинова А.Е. Породы пчел и роение // Пчеловодство. 1973. №5. С.13.

101. Максимов В.И., Родоман В.Е., Лунцевич В.Г. Фитоактивные хитиновые соединения //

102. Николенко А.Г., Поскряков А.В. Полиморфизм локуса COI-COII митохондриальной ДНК медоносной пчелы Apis mellifera L. на Южном Урале // Генетика. 2002. Т.38. №4. С.1-5.

103. Никоноров Ю.М., Беньковская Г.В., Поскряков А.В., Николенко А.Г., Вахитов В.А. Использование метода ПЦР для контроля чистопородности пчелосемей Apis mellifera mellifera L. в условиях Южного Урала // Генетика. 1998. Т.34. №11. С. 1574-1577.

104. Орехов Д.А., Моисеенко Ю.Е Исследование клеток гемолимфы насекомых методом витальной окраски // Зоологический журнал. 1978. Т.57. 0ып.5. С.777-782.

105. Орлова С.Ф. Эффективность разведения трехпородных помесей в Молдавии. Автореф. дисс. К.с.-х.н. Кишинев. 1975. 28с.

106. Переверзев А.Е. Кроветворные колониеобразуюгцие клетки и физические стресс-факторы JI. Наука. 1986. 172с.

107. Перов П.А. О башкирской бортевой пчеле // Пчеловодство. 1947. С.6.

108. Петров Е.М. Башкирская бортевая пчела. Уфа: БКИ. 1983. 200 с.

109. Петров Пл. Распространение и история формирования пчёл рода Apis (Hymenoptera, Apidae) // Успехи современной биологии. 1992. Т.112. С.359-371.

110. Петров Р.В. Иммунология. М.: Медицина. 1982. 386с.

111. Поздняков В.Н., Абрамова A.B., Чудинов О.С. и др. Молекулярно-генетические подходы в изучении генетического полиморфизма различных пород пчёл // С-х. биология. 2000. №4. С.56-59.

112. Покровский В.И., Авербах М.М., Литвинов В.И., Рубцов И.В. Приобретенный иммунитет и инфекционный процесс. М.: Медицина. 1979. 280с.

113. Полевщиков A.B. Лектины в защитных реакциях беспозвоночных // Ж. общ. биол. 1996. Т.57. №6. С.718-739.

114. Полтев В.И., НешатаеваЕ.В. Болезни и вредители пчел. М., Колос. 1977. 160 с.

115. Помонецкий В.Д., Эфендиев A.M., Кубатиев A.A. Ферменты клеточной защиты и методы их исследования. М. 1986. 46с.

116. Проссер Л. Сравнительная физиология животных. М.: Мир, 1977. Т.2. С.84-141.

117. Раушенбах И.Ю. Стресс-реакция насекомых: механизм, генетический контроль, роль в адаптации//Генетика. 1997. Т.ЗЗ. №8. С.1110-1118.

118. Раушенбах И.Ю., Серова Л.И., Тимохина И.С. Изменение содержания биогенных аминов у двух линий Drosophila virilis и их гибридов в онтогенезе и при тепловом стрессе // Генетика, 1991, Т.27, №4, с. 657-666.

119. Раушенбах И.Ю., Серова Л.И., Тимохина И.С. Генетический анализ различий в метаболизме дофамина у двух линий Drosophila virilis в норме и при тепловом стрессе//Генетика, 1993, Т.29, №6, с.935-948.

120. Решетнев Л.Т. Перевозка пчел самолетом из Бухары в Калугу // Пчеловодство. 1949. №4. С.5.

121. Рождественский А.П. Хистамов М.Ф., Арсламов P.M. и др. Атлас Республики Башкортостан. М.: Комитет по геодезии и картографии Мин. экологии и природных ресурсов РФ. 1992. 40с.

122. Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. М.: Мир. 2000. 592с.

123. Руттнер Ф. Пчела Адансони // Пчеловодство. 1974. №10. С.30.

124. Руттнер Ф. Породы пчел Африки // XXV Международный конгресс по пчеловодству. Бухарест. 1978. С.330-349.

125. Салтыкова Е.С., Беньковская Г.В., Поскряков A.B., Николенко А.Г. Влияние хитосахаридов на медоносную пчелу Apis mellifera L. // Агрохимия. 2001. №2. С.70-73

126. Салтыкова Е.С., Поскряков A.B., Николенко А.Г., Хайруллин P.M. Иммуномодулирующее действие хитоолигосахаридов на медоносную пчелу Apis mellifera // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 2000. №5. С.563-568

127. Саттаров В.Н., Имангулов И.В., Поскряков A.B., Николенко А.Г. Бурзянская пчела существует // Экологический императив сельского хозяйства Республики Башкортостан. Уфа, 1988. С. 66-67.

128. Симоненкова Г. Антибиотики в мёде // Пчеловодство. 1990. №5. С.44-45.

129. Синцов В.А. Черная лесная пчела // Пчеловодство. 1951. №3. С.62.

130. Слуцкий Л.И. Биохимия нормальной и патологически измененной соединительной ткани. J1. Медицина. 1969. 376с.

131. Соколов А.И. Краткий очерк Башкирского заповедника // Социалистическое хозяйство Башкирии. 1940. С.З.

132. Сокольский С.С. Состояние и проблемы производства маток и пакетов пчел в России // Пчеловодство. 2001. №7.

133. Солбриг О., Солбриг Д. Популяционная биология и эволюция. М.: Мир. 1982. 488с.

134. Солодкова H.A. Серые высокогорные кавказские пчелы в условиях Татарской АССР // Пчеловодство. 1950. №7. С.15.

135. Солодкова H.A. Улучшение местной породы пчел // Пчеловодство. 1951. №11. С.23-24.

136. Стальная Д.И., Гаришвили Т.Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты // Современные методы в биохимии. П/р акад. АМН СССР В.Н. Ореховича. М., Медицина. 1977. С. 66-68.

137. Старостенко Е.В. Породы пчел и продолжительность летного периода //

138. Пчеловодство. 1971. №10. С.11-13. Таранов Г.Ф. О перестройке селекционной работы в пчеловодстве // Пчеловодство. 1949. №5. С.10.

139. Таранов Г.Ф. О результатах завоза южных пчел на север // Пчеловодство. №7. 1950. С.22.

140. Таранов Г.Ф. Биология пчелиной семьи. М.: ГИСХЛ. 1961. 349с.

141. Таранов Г.Ф. Методы исследований по разведению и содержанию пчел. М.:

142. ВАСХНИЛ. 1971. Таранов Г.Ф. Корма и кормление пчел. М.: РСХИ. 1972.

143. Таранов Г.Ф. Породы пчел и породное районирование // Пчеловодство. 1982. №9. С.26-27.

144. Филиппович Ю.Б., Егорова Т.А., Севастьянова Г.А. Практикум по общей биохимии. М.,1986. С.94-98.

145. Херрингтон С., Макги Дж. Молекулярная клиническая диагностика. Методы. М.: Мир. 1999. 558с.

146. Хочачка П., Самеро Д. Стратегия биохимической адаптации. М., Мир, 1977. 384 с.

147. Цитлидзе Б.С. Активность каталазы и зимостойкость грузинских пчел // Пчеловодство, 1979, №3, c.Í3.

148. Черевко Ю.А. Гетерозис при чистопородном разведении пчел // Пчеловодство. 1995. №2 С. 17-19.

149. Черевко Ю.А., Черевко Л.Д. Чистопородное разведение и доходность в пчеловодстве // Пчеловодство. 1998. №4. С.14-16.

150. Черныш С.И. Неспецифическая резистентность как показатель физиологического состояния насекомых // Методика и результаты изучения физиологических состояний насекомых. 1985, Тарту, С. 134-136.

151. Черныш С.И. Антимикробные факторы насекомых: эволюционное разнообразие структуры и функций // Проблемы энтомологии в России. 1998. Т.2. С. 197-198.

152. Черныш С.И. Нейроиммунология насекомых: опосредуемая мозгом индукция синтеза пептидных антибиотиков у двукрылого Calliphora vicina R.-D. (Díptera, Calliphoridae) // Проблемы энтомологии в России. 1998. Т.2. С.198-199.

153. Черныш С.И., Гордя H.A., Филатова H.A. Протекторные механизмы насекомых: темпы молекулярной и фенотипической эволюции // Исследования по генетике. 1999. Вып.12. С.52-59.

154. Черныш С.И., Лухтанов В.А., Симоненко И.П. Адаптация к повреждению у тутового шелкопряда Bombix mori. III. Адаптогены и устойчивость гусениц к стрессорной активации летентной вирусной инфекции // Энтомолог.обозрение. 1985, Т.64, №2, С.267-272.

155. Чиглинцев Г.И. Итоги двухлетней работы по охране, размножению и изучению башкирских бортевых пчел // Материалы шестого Всеуральского совещания по охране природы. Уфа. »1961. С.49-51.

156. Чиглинцев Г.И. О породных признаках бортевых пчел // Пчеловодство. 1962. №2. С. 14.

157. Чиркин A.A., Романовский Р.В., Соловьев Ю.А. Диагностическая ценность определения интенсивности пентозофосфатного пути обмена углеводов в эритроцитах.// Лабораторное дело. 1983. .№11. С35-39.

158. Шагимухаметов Р.Б. Сохранить башкирских пчел //Пчеловодство. 1999. №4. 14-15.

159. Шагун Я.Л. Методические указания к постановке экспериментов в пчеловодстве. М.: РСХА. 2000. 12с.

160. Шакиров Д.Т. Серые горные кавказские пчелы в Башкирии // Пчеловодство. 1966. №1. С.10.

161. Шараев П.Н., Пишков В.Н., Соловева Н.И. и др. Метод определения гликозоаминогликанов в биологических жидкостях // Лабораторное дело. 1987. №5. С. 330-332.

162. Шафиков И.В. Изучение и селекция бурзянских бортевых пчел Башкирского государственного заповедника: автореферат дисс. .канд. с.-х. наук. М.: ТСХА. 1978.16 с.

163. Adam B. Auf der Suche nach den besten Bienenstammen. München: Echrenwirth. 1985. 216s.

164. Adam A., Lederer E. Muramil peptides: immunomodulators, sleep factors, and vitamins //

165. Med. Results Rev. 1984. V.4. P.ll-117. Allen K.L., Molan P.C., Reid G.M. A survey of the antibacterial activity of some New

166. Zeland honeys // J. Pharm. Pharmacol. 1991. Y.43. No.12. P.817-822. Alpatow W.W. Uber die Verkleinerung der Russelange der Honigbiene von Süden nach dem Vörden hin // Zool. Anzeigen. 1925. H.3-4. S.103-111.

167. Apiservices. http://www.apiservices.com/databases/honey-market/index.htm. 2002.

168. Arias M.C., Sheppard W.S. Molecular phylogenetics of honey bee subspecies (Apis mellifera L.) inferred from mitichondrial DNA Sequence // Molecular phylogenetics and evolution. 1996. V.5. N.3. P.557-566.

169. Ashida M. The prophenoloxidase cascade in insect immunity // Res. Immunol. 1990. V.141. N9. P.908-910.

170. Ashida M. Prophenoloxidase activating system in cuticle of the larvae silkworm, Bombyx mori. // Zool. Sci, 1992, V.9, №6, P.1135.

171. Ashida M., Koizunu Y. Demonstration of the presence of profenoloxidase cascade in larval cuticle of the silkworm, Bombyx mori // Zool. Sci. 1993. ,V.10. N.6. P.12.

172. Ashida M., Ochiai M., Niki T. Immunolocalization of prophenoloxidase among hemocytes of the silkworm, Bombyx mori // Tissue and Cell, 1988, V.20, №4, P.599-610.

173. Ashida M., Yamazaki H.I. Biochemistry of the phenoloxidase system in insects: with special reference to its activation // Molting and Metamorphosis (Eds. Ohnishi E., Ishizali H.) / Japan Sci. Soc. Press, Tokyo; Springer Yerland, Berlin. 1990. P.239.

174. Ashida M., Yoshida H. Limited proteolysis of prophenoloxidase during activation by microbial products in insect plasma and effect of phenoloxidase on electrophoretic mobilities of plasma proteins // Insect Biochem. 1988. V.18. N 1. P. 11-19.

175. Asling B., Dushay Mitchell S., Hultmark D. Mechanisms of immune responses in insects: Abstr. Keystone Symp. "Toward Genet. Manipul. Insects", Tamarron, Colo, March 17-23, 1995 //J. Cell Biochem. 1995. Suppl.21a. P. 188.

176. Baines D., Downer R.G.H. Octopamine enhances phagocytosis in cockroach hemocytes involvement of inositol triphosphate // Arch. Insect Biochem. and Physiol., 1994, V.26, №4, P.249-261.

177. Barrett F.M. Phenoloxidases from larval cuticle of the sheep blowfly, Lucilia cuprina: Characterization, developmental changes, and inhibition by antiphenoloxidase antibodies // Arch. Insect Biochem. and Physiol., 1987, V.5, № 2, P.99-118.

178. Best-Belpomme M., Ropp M. Catalase is induced by ecdysterone and ethanol in Drosophila cells // Eur. J. Biochem., 1982, V.121, №2, P.349-355.

179. Blanchetot A. DNA fingerprinting analysis in the solitary bee Megachile rotundata: variability and nest mate genetic relationships // Genome. 1992. V.35. P.681-688.

180. Bucher G.E. Potential bacterial pathogens of insects and their characteristics // J. Insect

181. Pathol. 1960. V2. P. 172-195. Carter J.,Green E. Hemocytes of Baculovirus-Infected Tipula paludosa Larvae // J. Invertebr.

182. Casteels P., Romagnolo J. Castle M. et al. Biodiversity of apidaecin-type peptide antibiotics // J. Biol. Chem. 1994. V.269. No.42. P.26107-26115.

183. Casteels-Josson K., Capaci T., Casteels P., Tempst P. Apidaecin multipeptide precursor structure a putative mechanism for amplification of the insect antibacterial response //EMBO J. 1993. Y.12: (4). P. 1569-1578.

184. Chadwik J.M., Aston W.P. An overview of insect immunity // Animal Models of Comparative and Developmental Aspects of Immunity and Disease. N.Y.: Pergamon. 1979. P.1-14.

185. Charalambidis N., Bournazos S., Zervas C. Glycosylation and adhesiviness differentiate larval Ceratitis capitata tyrosinases //Arch. Insect Biochem. and Phisiol., 1994, V.27, №4, P.235-248.

186. Charalambidis N., Foukas L. Covalent association of lipopolisaccharide at the hemocyte surface of insects is an initial step for its internationalization protein-tyrosine phosphorilation requirement// Eur. J. Biochem., 1996, V.236, №1, P.200-206.

187. Chen F., Torres M. Activation of mitogen activated protein kinase by heat shock treatment in Drosophila // Biochem. J. 1995. 312. №2. P.341-349.

188. Chomezynski P, Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinum thio-cyanate-phenol-chloroform extraction // Anal. Biochem. 1987. V.162. P. 156-159.

189. Cociancich Stephane, Ghazi Alexandre, Hetru Charles et al. Insect defensin, an inducible antibacterial peptide, forms voltage-dependent channels in Micrococcus luteus // J. Biol. Chem. 1993. V.268. No.26. P.19239-19245.

190. Cornuet J.-M., Garnery L. Mitochondrial DNA variability in honeybees and its pylogeographic imlications // Apidologie. 1991. V.22. P.627-642.

191. Cornuet J.M., Garnery L., Solignac M. Pupative origin and function intergenic region between COI-COII of Apis mellifera L. mitochondrial DNA // Genetics. 1991. V.128. P.393-403.

192. Crawford E.C., Schmidt-Nielsen K. Temperature regulation and evaporative cooling in ostrich//Amer. J. Physiol. 1967. 212. P.347-353.

193. Crozier H.R., Crozier Y.C. The mitochondrial genome of Honeybee Apis mellifera: complete sequence and genome organization // Genetics. 1993. V.133. P.97-117.

194. Crozier H.R., Crozier Y.C., Mackinlay A.G. The CO-I and CO-II region of honeybee mitochondrial DNA: evidence for variation in insect mitochondrial evolutionary rates // Mol. Biol. Evol. 1989. V.6(4). P.399-411.

195. Crozier R.H., Crozier Y.C., Mackinay A.G. the CO-I and CO-II region honebee mitochondrial DNA: evidence for variation in insect mitochondrial evolutionary rates //Mol. Biol. Evol. 1989. V. 6(4). P. 399-411.

196. Culliney T.W. Origin and evolutionary history of the honey bees Apis mellifera // Bee World. 1983. No.l. P.29-38.

197. Dauterman W.C. Role of hydrolases and glutatione S-transferases in insecticide resistance // Pest Resistance to Pesticides. 1983. New York and London: Plenum Press. P.229-248.

198. De Azambuja P., Freitas C.C., Garcia E.S. Evidance and partial characterization of an inducible antibacterial factor in the haemolymph of Rhodnius prolixus // J. Insect Physiol. 1986. V.32. P.807-812.

199. De Martinez N.R., Garcia M., Salas M. Proteins with insulinlike activity isolated from Oyster hepatopancreas //Gen. Comp. Endocrinol., 1973, V.20, P.305-311.

200. Desmond J.R., Gilliam M. Peroxisomal enzymes in the honey bee midgut // Arch. Insect Biochem. and Physiol. 1996. 31. №3. P.87-103.

201. Dietrich C.P., Sampaio L.O., Toledo O.M. Characteristic distribution of sulfated mucopolysaccharides in different tissuse and their mitochondria II Biochem. and Biophys. Res. Commun., 1977. V.25. №2. P.329-336.

202. Dimarcq J.-L., Zachary D., Hoffman J.A. et al. Expression of the two major inducible antibacterial peptides, defensin and diptericin, in Phormia terranovae II EMBO J. 1990. V.9. No.8. P.2507-2515.

203. Dularay B., Lackie A. Haemocytic encapsulation and the prophenoloxidase-activation pathway in the locust Schistocerca gregaria Forsk // Insect. Biochem., 1985, V.15, №6, P.827-834.

204. Dulmage H.T., Rhodes R.A. Production of pathogens in artificial media // In: Microbial Control of Insect and Mites, Burges H.D., Hussey N.W. London-New York.: Academic Press. 1971. P.507-540.

205. Dunn P. Humoral Immunity in Insects Immune strategy appeart to correspond to life-history characteristics // Biosciense. 1990. V.40. №10. P.73 8-744.

206. Dunphy H., Webster J. Lipopolysaccharides of Xenorhabdus nematophilus (Efnterobacteriaciae) and their haemocyte toxicity in non immune Gallería mellonella larvae // J. Gen. Microbiol. 1988. V.134. №4. P.1017-1028.

207. DuPraw E.J. Non-Linnean taxonomy // Nature. L. 1964. V.202. N.4935. P.849-852.

208. DuPraw E.J. The recognition and handling of honeybee specimens in non-linean taxonomy // J. Apic. Res. 1965. V.4. C.71-84.

209. Eguchi M., Matsui Y., Matsumoto T. Developmental change and normal control of chymotrypsin inhibitors in the haemolymph of the silkworm, Bombyx mori // Comp. Biochem. and Physiol. 1986. V.84. No.3. P.327-332.

210. Eguchi M., Matsui Y., Matsumoto T. Developmental change and normal control of chymotrypsin inhibitors in the haemolymph of the silkworm, Bombyx mori // Comp. Biochem. and Physiol., 1986, B84, №3, P.327-332.

211. Elvin C., Vuocolo T., Pearson R. et al. Characterization of a major peritrophic membrane protein, peritrophin-44, from the larvae Lucilia cuprina: cDNA and deduced amino acid sequences // J. Biol. Chem. 1996. V.271.No.l5. P.8925-8935.

212. Engstrom A., Xanthopoulos K.G., Boman H.G., Bennich H. Amino acid and cDNA sequences of lysozyme from Hyalophora cecropia // EMBO J. 1985. V.4. No.8. P.2119-2122.

213. Estoup A., Garnery L., Solignac M., Cornuet J.-M. Microsatellite variation in honey bee (Apis mellifera L.) populations: hierarchical genetic structure and test of the infinite allele and stepwise mutation models // Genetics. 1995. V.140. P.679-695.

214. Evans P.D., Swales L.S., Whim M.D. Second messenger systems in insects: An introduction // Neurotox 88: Mol. Basis Drug and Pestic. Act.:Proc. 3rd Meet. Soc. Chem. Ind., Mottingham, 10-15 Apr., 1988. Amsterdam ect., 1988. P.225-234.

215. Farnandez-Sousa J.M., Gavilanes J.G., Municio A.M. et al. Lysozyme from the insect Ceratitis capitata egges // Eur. J. Biochem. 1977. V.72. P.25-33.

216. Faue I. Insect immunity: Early fate of bacteria injected in saturniid pupae // J. Invertebr. Pathol. 1978. V.31. P.19-26.

217. Faust R.M. Bacterial diseases // Insect Diseases. New York, Marcel Dekker. 1974, V.l. P.87-183.

218. Fehlbaum P., Bulet P., Chernysh S.I. et al. Structure-activity analysis of thanatin, a 21-residue inducible insect defense peptide with sequence homology to frog skin antimicrobial peptides // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. Y.93. P.1221-1225.

219. Felton G.W., Duffey S.S. Ascorbat oxidation reduction in Helicoverpa zea as a scaverging system against dietary oxidants // Arch. Insect Biochem. and Phisyol., 1992, V.19, №1, P.27-37.

220. Felton G.W., Duffey S.S. Protective action of midgut catalase in lepidopteran larvae against oxidative plant defehses //1. Chem. Ecol., 1991, V.17, №9, P. 1715-1732.

221. Felton G.W., Summers C.B. Antioxidant systems in insects // Arch. Insect Biochem. and Physiol., 1995, V.29, №2, P. 187-197.

222. Fernandez A. Haemocyte response as a possible and new parameter in the preliminary safety/toxitcity evaluation of biomaterials // Curr.Sci. (India). 1986. V.55. №15. P.719-720.

223. Fisher C., Brady U. Increased rate of melanization in hemolymph of American cockroaches and house crickets intoxicated by insecticides // Experientia, 1980, V.36, №1, P.93-94.

224. Flyg C., Dalhammar G., Rasmuson B., Boman H.G. Insect immunity. Inducible antibacterial activity in Drosophila // Insect Biochem. 1987. V.17. P.153-160.

225. Franc N., Dimarco J.L., Lagueux M. et al. // Immunity. 1996. V.4. P.431-443.

226. Fukumitsu T., Fujimoto K., Masuda K. Activation of profenoloxidase in Drosophila // Zool. Sci. 1992. V.9. No.6. P.l 133.

227. Furukawa S., Taniai K., Yang J. et al. Induction of gene expression of antibacterial proteins by chitin oligomers in the silkworm, Bombyx mori // Insect Mol. Biol. 1999. V.8: (1). P.145-148.

228. Garnery L., Cornuet J.-M., Solingnac M. Evolutionary history of the honey bee Apis mellifera inferred from mitochondrial DNA // Molecular Ecology. 1992. P. 145-154.

229. Gilliam M., Jeter W.S. Synthesis of agglutinating substances in adult honeybees against Bacillus larvae // J. Invert. Pathol. 1970. V.16. P.69-70.

230. Glinski Z., Grzegorczyk K. Apidaecins and lysozyme in the honeybee (Apis mellifera L.) from environment nonheavily contaminated with heavy metals // Ann. UMCS. DD. 1995. V.50. P.139-146.

231. Glinski Z., Jarocz J. Rola oksydazy polifenolowej w odpornosci przeciwzakaznej owadow // Wed. Wet. 1990. 46. №7. S.238-241.

232. Goetze G. Die beste Biene. Liedloff et al. 1940.

233. Goetze G. Die Honigbiene in naturlicher und kunstlicher Zuchtausless. Hamburg: Parey Verl. 1964.

234. Gole J.W.D., Orr G.L., Downer R.G.H. Octopamine-mediated elevation of cyclic AMP in haemocytes of the American cockroach, Periplaneta americana L. // Can. J. Zool., 1987, V.65, №6, P. 1509-1514.

235. Grecomoro G., Piccione F., Letizia G. Therapeutic synergism between hyaluronic acid and dexamethasone in the intra-articular treatment of osteoarthritis of the knee: a preliminary open study // Curr. Med. Res. Opin. 1992. Y.13. №1. P.49-55.

236. Gregoire Ch. Haemolymph coagulation in insects and taxonomy // Bull. Inst. Roy. Sei. Natur. Belg. Entomol. 1984. V.55. №12 P.l-48.

237. Grubor-Lajsic G., Block W. et al. Antioxidant enzymes in larvae of the Antarctic fly, Bélgica antarctica // Crio-Lett, 1996, V.17, №1, P.39-42.

238. Grunewald S., Reilander H., Mickel H. In vivo reconstitution of dopamine D25 receptor-mediated G-protein activation in baculovirus-infected insect cells: prefured coupling to Gii versus Gj2 // Biochemistry, 1996, V.35, №48, P.15162-15173.

239. Gupta A.P. Hemocyte type: their structure, synonymies, interrelationships and taxonomie significance // Insect hemocytes: development, form, functions and techniques. Cambridge, London: Cambridge University Press. 1979. P.85.

240. Hall H.G. DNA differences found between Africanized end European honeybees // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. V.83. P.4874-4877.

241. Hall H.G. Characterization of the African honey-bee genotype by DNA restriction fragments // Africanized Honey Bee and Bee Mites. New York. 1988. P.289-293.

242. Hall H.G. PCR amplification of a locus with RFLP alleles specific to African honey bees // Biochem. Genet. 1998. V.36. N.9/10. P.351-361.

243. Hall H.G. Paternal Analysis of Introgressiv Hybridization Between African and European Honeybees Using Nuclear DNA RFLPs // Genetics. 1990. V.125. P.611-621.

244. Hancock R.E.W., Lehrer R. Cationic peptides: a new source of antibiotics // Trends in biotechnology, 1998, V.16, P.82-88

245. Heimpel A.M., Angus T.A. Diseases caused by certain spore-forming bacteria // Insect Pathology: An Advanced Treatise. New York: Academic Press. 1963. V.2. P.21-73.

246. Heimpel A.M., Angus T.A. Diseases caused by certain spore-forming bacteria // Insect Pathology: An Advanced Treatise. New York, Academic Press. 1963. V.2. P.21-73.

247. Hiripi L., S.-Rozsa K. Octopamine- and dopamine-sensitive adenylate cyclase in the brain of Locusta migratoria during its development // Cell and Mol. Neurobiol., 1984, V.4, №3, P. 199-206.

248. Hoffman J.A., Richhart J.-M. Drosophila immunity // Trends Cell Biol. 1997. V.7. P.309-316.

249. Hung S.C., Wang W., Chan S.I., Chen H.M. Membrane lysis by the antibacterial peptides cecropins B1 and B3: A spin-label electron spin resonance study on phospholipid bilayers // Biophys. J. 1999. V.77. No.6. P.3120-3133.

250. Hunt G., Page R. Linkage map of the honey bee Apis mellifera, based on RAPD markers // Genetics. 1995. Y.139, P.1371-1382.

251. Hurlbert R.E., Karlinsey J.E., Spence K.D. Differential synthesis of bacteria-induced proteins of Manduca sexta larvae and pupae// J. Insect Physiol. 1985. V.31. P.205-215.

252. Jamazaki H.J. Activation of laccase-type phenoloxidase in the cuticle of insect: IX Properties of prolaccase in larvae cuticle of silcworm. Bombyx mori // Zool. Sci, 1992, V.9, № 6, P.1134.

253. Jamori T., Natori S. Function of the lipopolysaccharide-binding protein of Periplaneta americana as an opsonin // FEBS Letr. 1992, V.57, №11, P.2109-2113.

254. Jarosz J. Alterations in cathodal protein fractions in immune wax moth pupal blood // Cytobios. 1983. V.38. No. 150. P.71-81.

255. Jarosz J. Haemolymph immune proteins protect the insect body cavity from invading bacteria // Compar. Biochem. Physiol. 1995. V.l 11. No.2. P.213-220.

256. Jimenez D.R., Gilliam M. Peroxisomal enzymes in the honey bee midgut // Arch. Insect Biochem. and Physiol., 1996, V.31, №1, P.87-103.

257. Kaaya G.P., Flyg C., Bovan H.G. Insect immunity. Induction of cecropin and attacin-like antibacterial factors in the haemolymph of Glossina morsitans morsitans // Insect Biochem. 1987. V.17. P.309-315.

258. Kandemir I., Kence M., Kence A. Genetic and morphometric variation in honeybee (Apis mellifera L.) populations of Turkey // Apidologie. 2000. Y.31. P.343-356.

259. Kanost M.R., Dai W., Dunn P.E. Peptidoglycan fragments elicit antibacterial protein synthesis in larvae of Manduca sexta // Arch. Insect Biochem. Physiol. 1988. V.8. N.3. P. 147-164.

260. Kato Y., Nacamura T.,Takeuchi T. Haemagglutination activity of haemolymph of Bombix mori treated with a juvenile hormone analogue // J. Sericult. Sci. Jap. 1994. V.63. №3. P.221-228.

261. Kerr W.E. Multiple alleles and genetics load in bees // J Apic. Res. 1967. V.6. P.61-63.

262. Keppi E., Zachary D., Robertson M. et al. Induced antibacterial proteins in the haemolymph of Phormia terranovae (Diptera) // Insect Biochem. 1986. V.16. P.395-402.

263. Kramer K., Morgan T., Hopkins T. Catecholamines and p-alanine in the red flour beetle, Tribolium castaneum. Roles in cuticle sclerotization and melanization // Insect Biochem., 1984, V.l4, №3, P.293-298.

264. McDowell R. The Africanezed Honey Bee in the United States: What Will Happen to the U.S. Beekeeping Industry? US Dept. of Agric. W., 1984. AER. N.519.

265. Marchini D., Bernini L.F., Marri L. et al. The female reproductive accessory glands of the medfly Ceratitis capitata: Antibacterial activity of the secretion fluid // Insect Biochem. 1991. V.21. No.6. P.597-605.

266. Marmaras V.J., Charalanbodis N. Certain hemocyte proteins of the medfly, Ceratitis capitata, are responsible for nonself recognition and immobilization of Escherichia coli in vitro //Arch. Insect. Biochem. Physiol. 1992, V.21, N.4, P.281-288.

267. Massie H.R., Williams T.R. Influence of anti-inflammatory agents on the survival of Drosophila //1. Gerontol., 1985, V.40, №3, P.257-260.

268. Massie H.R., Williams T.R. Superoxide dismutase activity in two different wild-type stains of Drosophila melanogaster // Gerontology (Schweiz), 1981,V.27, №4, P.205-208.

269. Mathews M.C., Summers C.B., Felton G.W. Ascorbate peroxidase: A novel antioxidant enzyme in insects // Arch. Insect Biochem. and Physiol., 1997,V.34, №1, P.57-68.

270. Meixner M., Sheppard W. et al. Morphologiche und allozymatische Variabilitat von Honigbienen aus Kenia// Bienenvater. 1994. VI15. N.6. C.255.

271. Meixner M.D., M. Cristina Arias M.C., Sheppardb W.S. Mitochondrial DNA polymorphisms in honey bee subspecies from Kenya // Apidologie. 2000. V.31. P. 181 -190.

272. Michener C.D. // Annu. Rev. Entomol. 1975. V.20. P.399-416.

273. Minnick M., Rupp R., Spence K. A bacterial induced lectin Which. Triggers hemocyte coagulation in Manduca sexta // Biochem. and Biophys. Res. Commun. 1986. V.137. №2. P.729-735.

274. Miyanoshita A., Hara S., Sugiyama M. et al. Isolation and characterization of a new member of the insect defensin family from a beetle, Allomyrina dichotoma // Biochem. Bioph. Res. Comm. 1996. V.220. No.3. P.526-531.

275. Monro R.E. Protein turnover and the formation of protein inclusions during sporulation of Bacillus thurengiensis //Biochem. J. 1961. Y.2. P.225-359.

276. Moritz R.F.A., Hawkins C.F., Crozier R.H., Mackinlay A.G. A mitochondrial DNA polymorphism in honeybee (Apis mellifera L.) // Experientia. 1986. V.42. P.322-324.

277. Natori S. Dual functions of insect immunity proteins in defence and development // Res. Immunol. 1990. V.141. No.9. P.938-939.

278. Ngah W., Smith J. Acidic conjugate of phenols in insects: glucoside phosphate and glucoside sulphate derivatives II Xenobiotica.1983. Y.13. №6.P.383-389.

279. Nikolenko A.G., Sattarov V.N., Benkowskaya G.V. Molecular-genetical assessment of a gene pool state Apis mellifera mellifera // Biodiversity and dynamics of ecosystems in North Eurasia Y.3. Past 1. IC&G. Novosibirsk. 2000. P.87-89.

280. Oertel E. // Am. Bee J. 1976. Y.l 16. P.70-290.

281. Okada M., Natori S. Purification and characterzation of an antibacterial protein from haemolymph of Sarcophaga peregrina (flesh-fly) larvae II Biochem. J. 1983. V.211. P.727-734.

282. Olucola A.A., Jing-Qiu C. Distribution, stability and binding specificity of a hemagglutinin in the corn earworm, Helicoverpa zea (Lepidoptera: Noctuidae) // Eur. J. Entomol. 1997. V.94. No.2. P.167-176.

283. Orr W.C., Arnold L.A., Sohal R.S. Relationship between catalase activity, life span and some parametrs accociated with antioxidant defenses in Drosophila melanogaster // Mech. Ageing, and Dev., 1992, V. 63, №3, P.287-296.

284. Palacio M.A., Figini F.E., Ruffmengo S.R., Rodriguez E.M., del Hoyo M.L., Bedascarrasbure E.L. Changes in a population of Apis mellifera L. selected for hygienic behaviour and its relation to brood disease tolerance // Apidologie. 2000 V.31. P.471-478.

285. Papadopoulou-Karabela K, Iliadis N., Liakos V. Haemocyte changes in honeybee (Apis mellifera L.) artifically infected by Pseudomonas aeruginosa // Apidologie. 1993. V.24. P.81-86.

286. Pardini R.S., Wang J.L. Ancillary antioxidant enzyme activities and insect resistance to plant pro-oxsidants // Proc. 18th Int. Congr. Entomol., Vancouver, July 3rd-9th, 1988: Abstr. and Author Index., P. 130.

287. PellettF.C. History of American Beekeeping. 1938.

288. Pendland J., Boucias D. Hemagglutinin activity in the hemolymf of Anticarsia gemmtalis larvae infected with the fungus Nomuraea rilevi // Dev/ Comp. Immunal. 1985. V.9, №1, P.21-30.

289. Peng Z., Miles P.M. Oxidases in the gut of an aphid Macrosiphum rosae and their relation to dietary phenolics //1. Insect Physiol., 1991, V.37, №10, P.779-787.

290. Pizki T., Pizki R. The cellular defense system of Drosophila melanogaster // Insect Ultrastruct. Vol.2. New York. 1984. P.579-604

291. Powning R., Davidson W, Studies on insect bacteriolytic enzymes-II. Some physical and enzymatic properties of lysozyme from haemolymph of Galleria mellonella // Comp. Biochem. Physiol. 1976. V.55(B). P.221-228.

292. Price, C.D., Ratcliffe, N.A., A reappraisal of insect haemocyte classification by the examination of blood from fifteen insect orders. // Z. Zellforsch. Mikrosk. Anaut. 1974. V.147. P.537-149.

293. Ratcliffe N.A. The unvertebrate immune system // Immunol Lett. 1985. V. 10. P.253-270.

294. Ratcliffe N.A., Brookman J.L., Rowley A.F. Activation of the prophenoloxidase cascade and initiation of nodule formation in locusts by bacterial lipopolysaccharides // Dev. And Compar. Immunol. 1991. V.15. N1-2. P.33-39.

295. Ratcliffe N., Leonard C., Rowley A. Prophenoloxidase activation: nonself recognition and cell cooperation in insect immunity // Science, 1984, V.226, №4674, P.557-559.

296. Ratcliffe N., Rowley A. Recognition factors in insect hemolymph // Dev. Comp. Immunal. 1983, V.7, №4, P.653-656.

297. Rauschenbach I.Y., Shumnaya L.V., Khlebodarova T.M. et al. Role of penol oxidases and thyrosine hydroxilase in control of dopamine content in Drosophila virilis under normal conditions and heat stress // J. Insect Physiol. 1995. V.41. P.279-286.

298. Robertson M., Postlethwait J.H. The humoral antibacterial response of Drosophila adults // Dev. Comp. Immunol. 1986. V.10. P.167-179.

299. Roff D.A., Bentzen P. The statistical analysis of mitochondrial DNA: y} and problem of small samples // Mol. Biol. Evol. 1989. V.6. P.539-545.

300. Ross A. Systemic Acguired Resistance Induced by Localized Virus Infections in Plant // Virology. 1961. V. 14. №2. P.340-358.

301. Rothenbuhler W.C., Kulincevic J.M. Bee genetics // Annual Rewiew of Genetics. 1968. V.2. P.413-438.

302. Russell V., Dunn P.E. Antibacterial proteins in the midgut of Manduca sexta during metamorphosis // J. of Insect Physiology. 1996. V.42. No.l. P.65-71.

303. Ruttner F. Biometrical-statistical analysis of the geographic variability of Apis mellifera L. // Apidology. 1978. V.9. N.4. P.363-381.

304. Ruttner F. Biogeography and taxonomy of honey bees. Berlin: Springer-Verlag, 1988. 284p.

305. Ruttner F. Naturgeschichte der Honigbienen. Ehrenwirth Verlag, Munich, Germany. 1992

306. Sampson M.N., Gooday G.W. Involvement of chitinases of Bacillus thuringiensis during pathogenesis in insects // Microbiology-UK. 1998. V.144. No.8. P.2189-2194.

307. Sanger F., Nicklen S., Coulson A.R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1977. V.74. P.5463-5467.

308. Saul S., Sugumaran M. Protease inhibitor controls prophenoloxidase activation in Manduca sexta // FBS Lett. 1986. V.208. No.l. P.113-116.

309. Semsei I., Verzar F. Possible mechanism of alteration in activities of free radical scavenging enzymes, superoxide dismutase and catalase H Age. 1989, V. 12, №3, P. 111-112.

310. Sheppard W.S., Pheron A.M. Genetic variation in honey bees from in area of racial hybridization in western Czechoslovakia //Apidologie. 1986. V.17(l). P.21-32.

311. Silvestro L., Weiser J.N., Axelsen P.H. Antibacterial and antimembrane activities of cecropin A in Escherichia coli // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2000. V.44. No.3. P.602-607.

312. Sloley B., Downer R. Dopamine, N-acetyldopamine and dopamine-3-O-sulphate in tissues of newly ecdysed and fully tanned adult cockroaches (Periplaneta americana) // Insect. Biochem., 1987, V.17, №4, P.591-596.

313. Smirl M.J., Winston M.L. Detoxifying enzyme activity in worcer honey bees: an adaptation for foraging in contaminated ecosystems // Can. J. Zool. 1988. V.66. No.9. P. 19381942.

314. Smith D.R. Mitochondrial DNA polymorphisms in five Old World subspeciecies of honey bees and in New World hybrids // Africanized Honey Bee and Bee Mites. Halsted, Needham and Page, New York. 1988. P.301-312.

315. Smith D.R. Africam bees in the Americas: insights from biogeography and genetics // Trends in Ecology and Evolution. 1991. V.6. N.l. P. 17-21.

316. Smith D.R., Palopoli M.F., Taylor B.R., Garnery L., Cornuet J.-M., Solignac M., Brown W.M. Geographical overlap of two mitochondrial genomes in Spanish honeybees (Apis mellifera iberica) // J. Hered. 1991. V.82. N.2. P.96-100.

317. Smith D.R., Brown W.M. Polymorphisms in mitichondrial DNA of European and Africanized honeybees (Apis mellifera) // Experientia. 1988. V.44. P. 257-260.

318. Smith D.R., Broun W.M. Restriction endonuclease cleavage site and length polymorphism in mitochondrial DNA of Apis mellifera mellifera and A.m. carnica (Hymenoptera: Apidae) // Annals of the entomological society of America. 1990. V.83. N.l. P.81-88.

319. Smith W., Gielbert L., Bollenbacher W. Calcium-cyclic AMP interactions in prothoracicotropic hormone stimulation of ecdysone synthesis // Mol. and Cell. Endocrinol. 1985, V.39, №1, P.71-78.

320. Smith D.R., Taylor O.R., Brown W.M. Neotropical Africanized honey bees have African mitochondrial DNA //Nature. 1989. V.339. N.6221. P.213-215.

321. Spencer E.Y. Comparative amino acid composition of the parasporal inclusions of five entomogenous bacteria //J. Invert. Pathol. 1968. Y.10. P.444-445.

322. Spies A.G., Karlinsey J.E., Spence K.D. The immune proteins of the darkling beetle, Eleodes (Coleoptera: Tenebrionidae) // J. Invertebr. Pathol. 1986. V.47. P.234-235.

323. Stinen D., Peferoen M, DeLoof A. Proteins with haemagglutinin activity in larvae of the Colorado beetle Leptinotarsa decemlineata // J. Insect Physiol. 1982. V.25. No.5. P.465-470.

324. Stynen D., Peferoen M., DeLoof A. Proteins with haemagglutinin activity in larvae of the

325. Terra W.R. Evolution and function of insect peritrophic membrane // Cienc. e cult. 1996.

326. V.48.No.5-6. P.317-324. Vieira J, Messing J. Production of single-straded plasmind DNA // Methods in enzymology.

327. Xu Jh., Nishijima M., Kono Y. et al. Identification of a hemocyte membrane-protein of the silkworm, Bombyx mori, which specifically binds to bacterial lipopolysaccharide // Insect Biochem. Mol. Biol. 1995. V.25. No.8. P.921-928.

328. Xue C.H., Yu G.L. Hirata T. Antioxidative activities of several marine polisaccharides evaluated in a phosphatidylcholine suspension and organic solvents // Bioscience Biotechn. And Biochem. 1998. V.62. №2. P.206-209.

329. Yu X.Q., Kanost M.R. Developmental expression of Manduca sexta hemolin // Archives of insect biochemistry and physiology, 1999, V.42, No.3, P.198-212

330. Zachary D, Hoffmann D. Lysozyme is stored in the granules of certain haemocyte types in Locusta // J. Insect Physiol. 1984. V.30. P.405-411.

331. Zaman K., MacGill R.S., Johnson J.E. et al. An insect model for assessing oxidative stress related to arsenic toxicity // Arch. Insect Biochem. and Physiol., 1995, V.29, №2, P.199-209.

332. Zhu P., Lu Z. Studies on the antibacterial substances of Pieris rapae induced by delfamethrin and trichlorfon // 19 Int. Congr. Entomol., Beijing, June 28-July 4, 1992: Proc. Abstr. 1992. P.594.