Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Роль интрамуральных нервных механизмов в ответах гладкой мышцы дыхательных путей на гистамин и дексаметазон

ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Крюкова, Елена Николаевна

Введение.

Обзор литературы. 1 .Иннервация нижних дыхательных путей.

1.1 .Парасимпатическая иннервация.

1.2.Симпатическая иннервация.

1.3 .Метасимпатическая иннервация.

1.3.1 .Нервные сплетения дыхательных путей.

1.3.2.Ганглии нижних дыхательных путей.

1.3.3.Функциональный модуль. 14 1.4.Особенности строения и иннервации гладкомышечной стенки трахеи. 1.5 .Рецепторы нижних дыхательных путей.

2.Медиаторные системы нижних дыхательных путей.

2.1 .Холинергические механизмы дыхательных путей.

2.2. Адренергические механизды»дыхательных путей.

2.3. Действие других медиато-рцЫх систем (НАНХ-система)

3. Гистаминергические механизмы дыхательных путей.

3.1. Тучные клетки - основное депо эндогенного гистамина.

3.2. Физиологическая роль гистамина.

3.3. Действие экзогенного гистамина.

4. Влияние глюкокортикоидов на дыхательные пути.

АЛ. Физиологическая роль глюкокортикоидов.

4.2. Влияние глюкокортикоидов на проходимость бронхов.

2. Материалы и методы исследования.

3. Результаты исследования.

3.1. Влияние гистамина на дыхательные пути.

3.1.1. Влияние гистамина на гладкомышечный препарат трахеи и крупных бронхов морской свинки.

3.1.2. Влияние гистамина на гладкомышечный препарат трахеи и крупных бронхов крысы.

3.2. Влияние дексаметазона на дыхательные пути. 71 3.2.1. Влияние дексаметазона на гладкомышечный препарат трахеи и крупных бронхов крысы.

3.2.2. Влияние дексаметазона на гладкомышечный препарат трахеи и крупных бронхов морской свинки.

3.3. Совместное действие гистамина и дексаметазона на дыхательные пути.

3.3.1. Совместное действие гистамина и дексаметазона на гладкую мышцу дыхательных путей крысы.

3.3.2. Совместное действие гистамина и дексаметазона на гладкую мышцу дыхательных путей морской свинки.

3.4. Влияние блокады нервно-мышечной передачи на эффекты гистамина и дексаметазона.

3.5. Влияние блокады межнейронной передачи на эффекты гистамина и дексаметазона.

3.6. Влияние блокады трахеобронхиальных рецепторов на эффекты гистамина и дексаметазона.

3.6.1. Эффекты гистамина в условиях блокады трахеобронхиальных рецепторов.

3.6.2. Влияние блокады синтеза простагландинов на эффекты гистамина.

3.6.3. Влияние гистамина на гладкую мышцу трахеи и бронхов в условиях удаления их слизистой оболочки.

3.6.4. Влияние блокады трахеобронхиальных рецепторов на эффекты дексаметазона. 98 4. Обсуждение результатов.

4.1. Механизмы действия гистамина на гладкую мышцу трахеи и крупных бронхов.

4.2. Механизмы действия дексаметазона 106 Заключение 110 Выводы 111 Список литературы

Введение Диссертация по биологии, на тему "Роль интрамуральных нервных механизмов в ответах гладкой мышцы дыхательных путей на гистамин и дексаметазон"

Актуальность проблемы.

Основная функция воздухоносных путей - доставка вдыхаемого воздуха к альвеолам, где происходит газообмен. При этом стенка бронхов является своего рода границей, барьером между внешней и внутренней средой организма и в силу этого ее ткани должны реагировать на изменившиеся потребности внутренней среды или особенности внешней среды, тем самым обеспечивая должное поступление воздуха в респираторную часть легкого и предотвращая проникновение в организм различных патогенных частиц. Эти два момента в определенной мере и определяют необходимость местного регулирования тонуса бронхов и локального кровотока (Лаврова, 1984). В этом случае регулирование осуществляется благодаря взаимодействию интегрирующих систем организма - иммунной и нервной (Акмаев, 1996; Ноздрачев и др., 2000).

Как хорошо известно, в стенках дыхательных путей имеется хорошо выраженный аппарат иммунной защиты, представленный скоплением лимфоидной ткани в слизистой оболочке, а также рассеянными довольно многочисленными клетками лимфоидного ряда (Сапин, Этинген, 1996). Кроме того, многочисленные тучные клетки тканей и базофилы крови образуют диффузную систему эндокринных клеток. При их активации в среду выбрасывается содержимое их гранул - биологически-активные вещества (гистамин, серотонин, фактор активации тромбоцитов, медленно реагирующее вещество анафилаксии, простагландин Фга), которые и формируют клиническую картину анафилаксии (Лаврова и др., 1984; Пальцев, Иванов, 1995).

Со стороны нервной системы на местном, внутриорганном, уровне регуляция просвета респираторного тракта осуществляется с помощью метасимпатических нейронов интрамуральных ганглиев (Федин, 1995;

Федин, Ноздрачев, Бреслав, 1997; Ноздрачев и др., 2001). В настоящее время на основе электрофизиологических исследований предложена модель организации нейронального аппарата, управляющего гладкомышечными стенками респираторного тракта, в виде самостоятельных единиц, называемых функциональными модулями (Федин, 1994). Процессы возбуждения и торможения гладкой мышцы в этом случае обеспечиваются различными медиаторными системами: холинергической, адренергической, пептидергической и другими. Однако основным возбуждающим медиатором является ацетилхолин, выделяющийся из постганглионарных нервных окончаний. При аллергических заболеваниях дыхательных путей важную роль в сокращении мышцы играют высвобождающиеся из тучных клеток биологически активные вещества, наиболее важным из которых считается гистамин. Между тем показано, что экспериментальное введение гистамина не всегда приводит к однозначным реакциям.

Эффекты этого препарата могут существенно различаться не только у разных видов животных, но и в разных отделах респираторного тракта (Yen, 1979; Bathla et al., 1980; Chand et al., 1981; Ludwig et al., 1991). По всей вероятности, это связано с тем, что механизмы участия гистамина в реакциях дыхательных путей весьма многообразны (Федин, Ноздрачев, Бреслав, 1997). Возможно его непосредственное воздействие на гладкомышечные клетки и(или) опосредованное действие через различные структуры респираторного тракта, в частности, рефлекторно через эпителиальные рецепторы.

Лекарственная терапия на сегодняшний день остается наиболее эффективным методом снятия бронхоспазма при аллергических реакциях (Barnes, 1995). Среди использующихся в практике препаратов особое место занимают глюкокортикоиды. Они обладают выраженным антиаллергическим и противовоспалительным действием, подавляют синтез и выделение биологически активных веществ (гистамина, серотонина, простагландина Ф2а), вызывающих обструкцию бронхов, а также уменьшают отек их слизистой оболочки, обладают иммунодепрессивным эффектом (Зубцовская и др., 1984). Механизмы бронхолитического действия глюкокортикоидов остаются весьма спорными. Описано их прямое дилатационное действие на гладкую мышцу за счет уменьшения концентрации М-холинорецепторов (Marquardt et al., 1992; Emala et al, 1996), повышения активности р2-адренорецепторов (Мак et al., 1995), а также в результате торможения вызванного гистамином увеличения внутриклеточной концентрации кальция (Florio et al., 1992).

Все эти данные получены в результате многократного введения животным глюкокортикоидов или после многочасового культивирования гладкомышечных клеток в растворе, содержащем глюкокортикоиды. Механизмы снятия глюкокортикоидами гистамин-вызванного бронхоспазма при их кратковременном предъявлении экспериментально практически не изучены. Кроме того, вне поля зрения исследователей оставались вопросы роли периферических нервных структур при действии глюкокортикоидов.

Цель и задачи исследования.

Целью работы явилось изучение участия метасимпатических нервных образований в ответах гладкой мышцы дыхательных путей на гистамин и дексаметазон. Конкретными задачами явились:

1) изучение действия гистамина на изолированные препараты трахеи и крупных бронхов;

2) исследование действия дексаметазона на те же объекты;

3) анализ механизмов влияния дексаметазона на эффекты гистамина;

4) определение роли метасимпатических ганглиев в действии гистамина и дексаметазона;

5) определение роли трахеобронхиальных рецепторов в реакциях гладкой мышцы дыхательных путей. Научная новизна полученных результатов.

На основании комплексного исследования действия гистамина в широком диапазоне концентраций, а также дексаметазона на дыхательные пути крысы и морской свинки выявлено, что гистамин в зависимости от применяемой концентрации вызывает разные эффекты. Его низкие концентрации снижают амплитуду вызванных ответов при стимуляции преганглионарных нервных волокон, напротив высокие - увеличивают их. Однако с возрастанием мышечного тонуса, ответы снова снижаются. Впервые показано, что противоположные эффекты гистамина имеют сходные механизмы и связаны с медленно и быстро адаптирующимися трахеобронхиальными рецепторами. Влияния от этих рецепторов на гладкую мышцу могут передаваться по местным рефлекторным дугам. Глюкокортикоидный препарат дексаметазон при кратковременном предъявлении способен взаимодействовать с трахеобронхиальными рецепторами, и с этим, по-видимому, связано его антигистаминное действие.

Теоретическое и практическое значение работы.

Результаты помогают раскрыть механизмы участия метасимпатических нервных структур в управлении гладкомышечной стенкой трахеи и крупных бронхов, способствуют пониманию нервно-иммуных взаимодействий в дыхательных путях.

Результаты исследований используются в циклах лекций «Иммунология нижних дыхательных путей» в Санкт-Петербургском государственном университете, в цикле лекций «Нормальная физиология» Санкт-Петербургской государственной педиатрической медицинской академии, школах по физиологии дыхания.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Характер действия биологически активных веществ (гистамина и дексаметазона) на гладкомышечную стенку дыхательных путей зависит от применяемой концентрации, а также от длительности предъявления.

2. Влияния гистамина и глюкокортикоидов на гладкую мышцу опосредуются внутриорганными рефлексами с участием трахеобронхиальных рецепторов и нейронов метасимпатических ганглиев.

Апробация работы.

Материалы диссертации докладывались на 1-ой медико-биологической конференции молодых ученых Санкт-Петербурга, 1997 г.; обществе физиологов им. И.П. Павлова, Санкт-Петербург, 1999; конференции молодых ученых России «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины», Москва, 1998; на XVII Съезде Всероссийского физиологического общества, Ростов-на-Дону, 1998; 27-ой международной конференции по проблемам нейробиологии, Обйк^еп, 1999; на Всероссийской конференции с международным участием «Механизмы функционирования висцеральных систем», Санкт-Петербург, 2001.

По теме диссертации опубликовано 9 работ.

Структура и объем диссертации.

Диссертация изложена на 132 страницах и состоит из общей характеристики работы, обзора литературы, описания методов исследования, экспериментальной части, обсуждения результатов исследования, заключения, выводов, списка цитируемой литературы, включающего 38 источников на русском и 176 на иностранных языках. Работа содержит 2 таблицы и 31 рисунок.

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Крюкова, Елена Николаевна

Выводы

1. В дыхательных путях крысы гистамин вызывает незначительное увеличение тонуса гладкой мышцы лишь при высоких концентрациях. Дыхательные пути морской свинки более

11 7 чувствительны к гистамину. Низкие концентрации (10" -10" г/мл) вызывают стабильные тонические ответы, которые опосредуются внутренними структурами. Высокие концентрации (10"б-104 г/мл) дозо-зависимо увеличивают тоническое напряжение, и этот эффект имеет миогенное происхождение.

2. В диапазоне низких концентраций гистамин уменьшает амплитуду вызванных стимуляцией электрическим полем ответов гладкой мышцы. Использование высоких концентраций вещества сопровождается увеличением амплитуды сокращения. При применении концентраций гистамина, вызывающих значительное тоническое напряжение, ответы на стимуляцию снижаются. Принципиальных отличий в действии гистамина на дыхательные пути крысы и морской свинки не выявлено.

3. Глюкокортикоид дексаметазон оказывает наибольшее влияние на ответы гладкой мышцы воздухоносных путей, вызванные стимуляцией преганглионарных нервных волокон. Действие его низких концентраций связано со снижением амплитуды сокращения и увеличением амплитуды расслабления гладкой мышцы, высокие концентрации вещества увеличивают амплитуду сокращения мышцы. В дыхательных путях крысы дексаметазон снимает эффекты высоких концентраций гистамина.

4. Блокатор нервно-мышечной передачи атропин подавляет потенцирующий эффект гистамина, а также действие дексаметазона на эти эффекты при стимуляции нервных волокон. Блокатор ганглионарной передачи гексаметоний в дыхательных путях крысы снимает эффекты низких концентраций гистамина, а также совместное действие гистамина и дексаметазона, но не оказывает влияния на действие высоких концентраций. На препаратах бронхов морской свинки ганглиоблокатор снимает эффекты всех концентраций гистамина и дексаметазона. Это предполагает, что их

Заключение.

Результаты проведенных экспериментов свидетельствуют о том, что характер действия гистамина и дексаметазона на гладкую мышцу препаратов трахеи и бронхов определяется концентрацией этих веществ. Высокие концентрации обоих из них, как правило, оказывают влияние непосредственно на гладкомышечные клетки. Действие низких концентраций носит более сложный характер. Гистамин взаимодействует с трахеобронхиальными рецепторами, вызывая усиление или снижение реакций гладкой мышцы на стимуляцию электрическим полем. Пути реализации этих реакций связаны с участием нейронов метасимпатического функционального модуля. Однако, в осуществлении потенцирующих и дилатационных влияний могут участвовать различные группы нейронов.

Глюкокортикоид при кратковременном его предъявлении изменяет величину сокращений гладкой мышцы трахеи и крупных бронхов крысы и морской свинки, вызванных стимуляцией электрическим полем преганглионарных нервных волокон, оказывая влияние на сенсорные структуры, поскольку местный анестетик новокаин значительно изменял его эффекты. Можно предположить, что так называемые быстрые эффекты глюкокортикоидов, используемых в терапевтической практике для купирования приступов аллергического бронхоспазма, осуществляются рефлекторно через трахеобронхиальные рецепторы. Реализация этих эффектов дексаметазона осуществляется с помощью местных рефлекторных механизмов, поскольку ганглиоблокатор и атропин блокируют их.

Таким образом, роль метасимпатических нервных структур интрамуральных ганглиев дыхательных путей в механизме действия гистамина и дексаметазона несомненна.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Крюкова, Елена Николаевна, Санкт-Петербург

1. Акмаев ИГ. Современные представления о взаимодействиях регулирующих систем: нервной, эндокринной и иммунной.//Успехи Физиол.Наук. 1996, 27(1): 3-20.

2. Блаттнер Р., Классен X., Деннерт X., Деринг X. Эксперименты на изолированных препаратах гладких мышц.//М., Мир 1983, 206с.

3. Бреслав И.С., Глебовский В.Д. Регуляция дыхания.//Л., Наука, 1981, 280с.

4. Глебовский В.Д. Рефлексы с рецепторов легких и дыхательных мышц и их значение в регуляции дыхания.//Руководство по физиологии. Физиология дыхания. Л., Наука, 1981, с. 115-150.

5. Золотарев ВА, Пушкарев ЮП. Импульсная активность нейронов субэпикардиального сплетения в изолированном сердце кошки.// Рос. Физиол.Журн.им. ИМ Сеченова, 1993, 79(10): 29-38.

6. Зубцовская H.H., Беляева А.П., Трофимов В.И. Влияние гормонов эндокринных желез на проходимость бронхов.//Сб. «Физиологические и патофизиологические механизмы проходимости бронхов», Л, 1984, с.116-132.

7. Исаев ГГ. Регуляция дыхания при мышечной нагрузке. Л.: Наука, 1990, 121с.

8. Королева СВ, Ашмарин ИП. Нейропептид У: Многообразие и кажущаяся противоречивость функций. Анализ возможных опосредованных эффектов.//Успехи Физиол.Наук. 2000, 31(1): 31-46.

9. Лаврова ТР. Местные гуморальные механизмы регуляции дыхательной функции бронхов и их нарушения.//Сб. «Физиологические и патофизиологические механизмы проходимости бронхов». 1984, с. 133179.

10. Ю.Лашков В.Ф. Иннервация органов дыхания. //М., Медгиз.,1963, с.21.

11. П.Ленгли Дж. Н. Автономная нервная система. М.-Л., 1925, 4.1, 70с.

12. Марков ХМ. Окись азота и окись углерода новый класс сигнальных молекул .//Успехи Физиол.Наук. 1996, 27(4): 30-43.

13. Ноздрачев А. Д. О структуроно-функциональной организации вегетативной (автономной) нервной системы.//Физиол.Ж.СССР, 1980, 56(7): 937-961.

14. Ноздрачев А.Д. Физиология вегетативной нервной системы.//Л., Медицина, 1983, 327 с.

15. Ноздрачев А. Д. Некоторые элементы построения теории метасимпатической нервной системы. //Физиол. ж. СССР, 1987, т.73, N2,

16. Ноздрачев А.Д. Два взгляда на метасимпатическую нервную систему. //Физиол. ж. СССР, 1991, т.77, N9, с.21-38.

17. Ноздрачев АД. Химическая структура периферического автономного (висцерального) рефлекса.//Успехи Физиол. Наук, 1996, 27(2): 28-60.

18. Ноздрачев А.Д., Федин А.Н. Методика изучения нейронапьного аппарата ганглиев стенки трахеи.//Физиол. ж. СССР, 1984, т.70, N3, с.377-379.

19. Ноздрачев А.Д., Федин А.Н., Самойлова Л.А., Степанова Т.П., Егорова Т.А., Малов М.О. Фоновая активность нейронов трахеального сплетения крысы.//Физиол. ж. СССР, 1985, т.71, N6, с.724-730.

20. Ноздрачев АД, Янцев АВ. Автономная передача. СПб: изд-во СПбГУ, 1995. 254с.

21. Ноздрачев АД, Федин АН. Экспериментальное обоснование метасимпатических нервных механизмов астматических состояний.// БЭБМ, 1998, 126(7): 20-24.

22. Ноздрачев АД, Колосова ЛИ, Моисеева АБ, Рябчикова ОВ. Роль периферической нервной системы в реализации связи иммунной системы с мозгом.//Рос.Физиол.Журн.им. ИМ Сеченова, 2000, 86(6): 728-742.

23. Ноздрачев АД, Баженов ЮИ, Баранникова ИА и др. Начала физиологии. СПб, Лань, 2001, 1088с.

24. Ноздрачев АД, Поляков ЕП. Анатомия крысы. СПб, Лань, 2001, 427с.

25. Пальцев МА, Иванов АА. Межклеточные взаимодействия. М, Медицина, 1995, 224с.

26. Пушкарев ЮП, Иванова ОИ. Нейротрофический контроль гладких мышц мочевого пузыря.//Физиол.Журн.им. ИМ Сеченова, 1993, 79(1): 122-126.

27. Сапин МР, Этинген ЛЕ. Иммунные системы человека. М., Медицина, 1996, 182с.2 8. Селезнев Ю.М., Смирнов В.И. Молекулярные аспекты глюкокортикоидной регуляции метаболизма сердца. Вестник АМН СССР, 1980, N8, с.74-82.

28. Уразаев АХ, Зефиров АЛ. Физиологическая роль оксида азота.//Успехи Физиол.Наук, 1999, 30(1): 54-72

29. Федин А.Н. Роль холинергических механизмов в центральной регуляции двигательной активности таракана (Репр1апе1а атепсапа).//Ж.эвол.биохим.физиол.1980, т.16, N3, с.266-272.

30. Федин АН, Ноздрачев АД, Рыбакова ГИ, Пушкарев ЮП. Действие адренергических веществ на гладкую мышцу трахеи крысы.//Физиол.журн.им.И.М.Сеченова, 1993,79(11): 59-63.

31. Федин А.Н. Механизмы ритмических движений гладкомышечной стенки трахеи при дыхании.// Физиол.ж.им.И.М.Сеченова 1994, т.80, N4, с.46-51.

32. Федин А.Н., Ноздрачев А.Д. Ритмическая активность нейронов трахеального сплетения.//Доклады АН 1994, т.339, N3, с.413-416.

33. Федин АН. Трахеобронхиальные ганглии и их роль в управлении гладкомышечнойткани.//Автореф. дисс.докт.биол.наук. СПб, 1995.

34. Федин А.Н., Ноздрачев А.Д., Бреслав И.С. Физиология респираторной системы. СПб, изд-во СП6ГУ,1997, 187с.

35. Федин АН, Енукашвили НИ, Кривченко АИ, Некрасова ЭА. Механизмы действия вазоактивного интестинального пептида на гладкую мышцу трахеи крысы.//Журн.Эвол.Биохим.Физиол., 1999, 35(2): 123-126.

36. Чернышева М.П. Гормоны животных. СПб, изд-во «Глагол», 1995, 248с.

37. Шопотов И.К., Федин А.Н., Кривченко А.И. Ответы гладкой мышцы трахеи на ацетилхолин и электрическую стимуляцию.//Физиол.ж. СССР, 1991, т.77, N3, с.133-137.

38. Aas P. Serotonin induced release of acetylcholine from neurons in the bronchial smooth muscle of the rat.//Acta physiol.Scand. 1985, v. 117, N3, pp.477-480.

39. Agostoni E., J.E.Chinnock, M. De B.Daly, J.G.Murrey. Functional and histological studies of the vagus nerve and its branches to the heart, lungs and abdominal viscera in the cat. //J. Physiol., 1957, v. 135, p. 182-205.

40. Aizawa H, Inoue H, Miyazaki N, Hara N. Histamine-Induced Increase in Isometric Tension of Smooth Muscle Is Mediated by Local Vagus Nerve in Human Bronchus.//Respiration 2000 67(6):652-656

41. Aoki Y, Qui D, Zhao GH, Kao PN. Leukotriene B4 mediates histamine induction of NF-kB and IL-8 in human bronchial epithelial cells.//J.Appl. Physiol., 1998, 274(6), L1030-L1039.

42. Arrang JM, Garbarg M, Lancelot JC, Lecomte JM, Pollard H, Robba M, Schunack W, Schwartz J-C. Highly potent and selective ligands for histamine H3 recepnors.//Nature (Lond), 1989. 327: 117-123

43. Arzubiaga C., Morrow J., Robers J., Biaggioni I. Neuropeptide Y, a putative cotransmitter in noradrenergic neurons, induces mast cell de granulation but not prostaglandin D2 release.//J.Allergy Clin.Immunol. 1991, v.87, pp.88-93.

44. Backingham JC Stress and neuroendocrine-immune axis: the privotal role of glucocorticoids and lipocortin 1 .//Br. J. Pharmacol.,-1996, 118, 1-19.

45. Bai TR, Prasad FW. Epithelium modulation of cholinergic responses in human tracheal smooth muscle.//Can J Physiol Pharmacol, 1994. 72(3): 199204.

46. Barak N, Rubinstein R, Cohen S. Histamine-evoked acetylcholine release in sensitized tracheal preparation.//Respir Physiol 1997 May;108(2):181-5

47. Barmani W, McCarthly DF. Synaptic specialization of pulmonary parasympathetic ganglia a twice dimensional study.//Act.Anat., 1980, 107: 316-372.

48. Barnes P.J. Neural control of human airways in health and disease. //Am. Rev. Respir. Dis. 1986, v. 134, p. 1289-1314.

49. Barnes P.J. Regulatory peptides in the respiratory system. //Experientia, 1987, v.43, N7, 832-839.

50. Barnes P.J. Neural control of airways smooth muscle. The Lung: scientific foundation. Ed.R.G.Crystal, J.B.West et al.//Raven Press, New-York, 1991, pp.903-916.

51. Barnes PJ Pathophysiology of astlima.//Br.J.Clin.Pharmacol., 1996, 42(1): 310.

52. Basbaum CB, Grillo MA, Widdicombe JH. Muscarinic receptors: evidence for a nonuniform distribution in tracheal smooth muscle and exocrine glands.//J.Neurosci., 1984, 4(2): 508-520.

53. Bartlett W.K.R., Jeffary P., Sant'Ambrogio G., Wise J.C.M. Location of stretch receptors in the trachea and bronchi of the dog.//J.Physiol.,1976, v.258, pp.409-420.

54. Belvishi MG, Saunders MA, Haddad EB, Hirst SJ, Yacoub MH, Barnes PJ, Mitchell JA. Induction of cyclo-oxigenase-2 by cytokines in human airway smooth muscle cells: novel inflammatory role of this cell type.//Br.J. Pharmacol.-1997, 120, 910-916

55. Benson M.K., Graf P.D. Bronchial reactivity: interaction between vagal stimulation and inhaled histamine. //J. Appl. Physiol. 1977, v.43, N4, 643647.

56. Bhatla R., Ferguson C.C., Richardson I.B. The innervation of smooth muscle in the primary bronchus of the chicken.//Can.J.Pharmacol. 1980, v.53, N3, pp.310-315.58.Bilchikova et al., 1990

57. Birumachi J, Maeda M, Kuwahara M, Sugano S, Nishibata R, Mikami H, Tsubone H. Histamine-mduced airway contraction in congenitally bronchial-hypersensitive (BHS) and bronchial-hyposensitive (BHR) guinea pigs.//Exp. Animals, 1998, 47(1): 55-62.

58. Breschi MC, Nieri P, Lazzeri N, Martinotti E. Adenosine enhances the bronchocontractile response to histamine in anaesthetized and curarized guinea pigs through a mechanism partly blocked by hexamethonium.// Pharmacology 1994, 49(1):42-51

59. Breschi MC, Nieri P, Lazzeri N, Martinotti E. Effects of noise stress on EFS-mediated cholinergic and inhibitory NANC responses in tracheae from normal and sensitized guinea-pigs.//J Auton Pharmacol 1997, 17(6):353-63

60. Burgaud JL, Oudart N. Effect of an histaminergic H3 agonist on the non-adrenergic non-cholinergic contraction in guinea-pig perfused bronchioles.//! Pharm Pharmacol 1993, 45(ll):955-8

61. Calvet JH, D'Ortho MP, Jarreau PH, Levame M, Harf A, Macquin-Mavier I. Glucocorticoids inhibit sulfur mustard-induced airway muscle hyperresponsiveness to substance P.//J.Appl.Phisiol.-1994, 77(5), 2325-2332

62. Cameron A.R., Coburn R.E Electrical and anatomic characteristics of cell of ferret paratracheal ganglion. //Am. J. Physiol., 1984, v.246, n.5, C450-C458.

63. Camporesi EM, Mortola JP, Sant'Ambrogio F, Sant'Ambrogio G. Topical anesthesia of tracheal receptors.// J.Appl.Phisiol, 1979, 47(5): 1123-6

64. Canning BJ, Fischer A. Localization of cholinergic nerves in lower airways of guinea pigs using antisera to choline acetyltransferase.//Am J Physiol 1997, 272(4 Pt 1):L731-8

65. Cardell, Edvinsson. Characterization of the histamine receptors in the guinea-pig lung: evidence for relaxant histamine H3 receptors in the trachea.//Br J Pharmacol. 1994, Ul(2):445-54.

66. Carratu P, Scuri M, Styblo JL, Wanner A, Glassberg MK. ET-1 induces mitogenesis in ovine airway smooth muscle cells via ETA and ETB receptors.//Am J Physiol.1997, 272(5 Pt 1): L1021-L1024.

67. Chand N., Eyre P. Further studies of dog tracheobronchial smooth muscle. //Res. Commun. Chem. Pathol. Pharmacol. 1980, N2, 245-254.

68. Chand N., Dliawan B.N., Srimal R.C., Rahmani N.H., Shukla, Altura B.M. Reactivity of airway smooth muscles to bronchoactive agents in langur monkeys. //J. Appl. Physiol. 1981, N3, 513-516.

69. Chapman R.W., Danko G. Role of cholinerdic, vagal reflexeson the bronchoconstricor responses to histamine during carbon dioxide inhalation in conscious guinea-pigs. //Pharmac. Research. 1990, v.22, n.2, pp.133-141.

70. Chen X, Ye Y, Luo W. The relationship between H2 receptor and the pathogenesis of bronchial asthma in guinea-pigs/.// Chung Hua Chieh Ho Ho Hu Hsi Tsa Chili 1995, 18(4):221-3, 255

71. Chen G, Zhou D, Kim JT, Wu Z, Lee LY, Kang BC. Contractile responses to allergen and cholinergic stimulation in bronchus and trachea of cockroach allergen-sensitized guinea pigs.//Int Arch Allergy Immunol 1998, 116(2): 1329

72. Chesrown S.E., Venugopalan C.S., Gold W.M., Prozen J.M. In vivo demonstration of nonadrenergic inhibitory innervation of the guinea pig trachea.//J.Clin.Chivest. 1980, v.65, N2, pp.314-320.

73. Chiba T, Iwamoto I, Tanaka M, Ra C, Tomioka H, Yoshida S, Fujita Y, Inoue K. Differentiation in dose-response curves of airway responsiveness to inhaled methacholine between asthmatics and nonasthmatics. J Asthma. 1989;26(5):291-8.

74. Claes-Roland M. Sensory nerves containing tachykinins and CGRP in the lower airways. //Acta Physiol. Scand. 1987, v. 130, Suppl. N563, pp. 1-57.

75. Coburn R.F. Peripheral airway ganglia.//Ann.Rev.Physiol. 1987, N49, pp.573-582.

76. Collet P., Brancatizano I., Enoell D. Changes in the glottic aperture during bronchial asthma.//Amer.Ref.Resp.Dis. 1983, v.128, pp.719-723.

77. Costello RW, Evans CM, Yost BL, Belmonte KE, Gleich GJ, Jacoby DB, Fryer AD. Antigen-induced hyperreactivity to histamine: role of vagus nerves and eosinophils.// J. Appl. Physiol., 1999, 276(5): L709-L714.

78. Dahlovist A., Pequignot J.M., Hellstrom S. Sympathectomia provides evidence of dopamine storage in rat laryngeal nerve paraganglia.//Acta physiol.Scand. 1989, v.153, N2, pp.189-195.

79. Diamond L., Szarek JL, Gillespie MN, Altiere RJ. Neurogenic bronchodilatation: role of peptides.//Symp.Med.Hoechst., 1982, 18: 273-288.

80. Dixon M., Jackson D.M., Richards I.M. The effects of 5-hydroxytryptamine, histamine and acetylcholine on the reactivity of the lung of the anaesthetised dog. //J. Physiol. 1980,85-96.

81. Douglas J.M.,Duncan PG. The antagonism of histamine induced tracheal and bronchial muscle contraction by diphenhydramine: effect of maturation. //Br. J. Pharmac. 1984, v.83, p.697-705

82. Ellis JL, Farmer SG. Modulation of cholinergic neurotransmission by vasoactive intestinal peptide and peptide histidine isoleucine in guinea-pig tracheal smooth muscle.//Pulm Pharmacol. 1989; 2(2):107-12.

83. Elwood W, Sakamoto T, Barnes PJ, Fan Chang K. Allergen-induced airway hyperresponsiveness in Brown-Norway rat: role of parasympathetic mechanisms.// J. Appl. Physiol., 1993, 75(1), 279-284.

84. Emala CW, Clancy J, Hirshman CA. Glucocorticoid treatment decreases muscarinic receptor expression in cfnine airway smooth muscle.//Am.J. Phisiol.-1997, 272(4 Ptl), L745-L751

85. Eum SY, Norel X, Lefort J, Labat C, Vargaftig BB, Brink C. Anaphylactic bronchoconstriction in BP2 mice: interactions between serotonin and acetylcholine.//Br J Pharmacol 1999, 126(l):312-6

86. Evans R.M. The steroid and thyreoid hormone receptor superfamily.//Science,-1988, v.240, p.889-895.

87. Fantozzi R., Masini E., blandina P., Mannaioni P.F., Banni-Sacchi T. Release of hystamine from rat mast cells by acetylcholine.//Nature Lond. 1978, v.273

88. Fettes J., Kirkpatrick C.T., Morrow R.J., Tomita T. Spontaneous and induced slow-wave activity in bovine tracheal smooth muscle. //J. Physiol. 1981, v.312, P54-P55.

89. Fleisch J.H., Calkins P.J. Comparison of drug-induced responses of rabbit trachea and bronchus. //J. Appl. Physiol. 1970, v.41, N1, pp.62-66.

90. Florio C, Flessar M, Martin JG, Heisler S. Identification of adenilatecyclsase-coupled histamine H2 receptors in guinea pig smooth muscle cells in culture and effect of dexametasone.//Am.J.Respir.Cell Mol. Biol.-1992, 7(6), 582-589

91. Folkerst G., Engels F., Nijkamp F.R Respiratory airway hyperreactivity coincides with decreased epithelium-derived PGE. //Agent and Action. 1989, v.26, N1-2, 68-69.

92. Geddes BA, Jones TR, Dvorsky RJ, Lefcoe NM. Interaction of glucocorticoides and bronchodilatators on isolated guinea pig tracheal and human bronchial smooth muscle.//Am.Rev.Respir.Dis.- 1974, 110, 420-427

93. Ghatei M.A., Sheppard M.N., O'Shaughnessy D.J., Adrian T.E., McGregor G.P., Polak J.M., Bloom S.R. Regulation peptides in the mammalian respiratory tract.//Endocrinology 1982, v. Ill, N4, pp. 1248-1254.

94. Goldie RG, Papadimitriou JM, Paterson JW, Rigby PJ, Self HM, Spina D. Influence of the epithelium on responsiveness of guinea-pig isolated trachea to contractile and relaxant agonists.//Br.J.Pharmacol., 1986, 87(1): 5-14.

95. Gourgoulianis KI, Domali A, Molyvdas PA. Airway responsiveness: role of inflammation, epithelium damage and smooth muscle tension.// Mediators Inflamm 1999;8(4-5):261-3

96. Haigh RM, Jones CT, Milligan G. Glucocorticoids regulate the amount of G proteins in rat aorta.//J.Mol.Endocrinol.-1990, 5, 185-188

97. Hall IP, Daykin K, Widdop S. Beta-2-adrenoreceptor desensitisation in cultured human airway smooth muscle.//Clin.Sci.-1993, 84(2), 151-157

98. Hall IP. Second messengers, ion channels and pharmacology of airway smooth muscle.//Eur Respir J 2000, 15(6):1120-7

99. Hardy E, Farahani M, Hall IP. Regulation of histamine HI receptor coupling by dexametasone in human cultured airway smooth muscle.//Br.J.Pharmacol 1996, 118(4), 1079-1084

100. Hare JE, Viel L, Conlon PD, Marshall JS. Evaluation of an in vitro degranulation challenge procedure for equine pulmonary mast cells.//Can.J. Vet.Research., 1998, 62(2): 133-139.

101. Hirshman CA, Lande B, Croxton TL. Role of M2 muscarinic receptors in airway smooth muscle contraction.//Life Sci 1999;64(6-7):443-8

102. Hu JM, Bodwell JE, Munck A. Cell cycle-dependent glucocorticoid receptor phospholiration and activity.//Mol.Endocrinol.-1994, 8, 1709-1713

103. Ischinose M, Shetton CD, Schwartz J-C, Barnes PJ. Histamine H3-receptors inhibit cholinergic neurotransmission in guinea pig airways.//Br J Pharmacol. 1989, 97:13-15

104. Ito Y., Takeda K. Nonadrenergic inhibitory nerves and putative transmittens in the smooth muscle of cat trachea.//J.Physiol. 1982, N330, pp.497-511.

105. Jacques C.A., Spur B.W., Jonson M., Lee T.H. The effect of epithelium remove on leukothrien E4-induced histamine hyperresponsiveness in guinea-pig tracheal smooth muscle. //Br. J. Pharmac. 1992, v.106, n.3, p.556-562

106. Jeffry PK. The development of large and small airway.//Am J Respir Crit Care Med. 1998, 157(5): S174-S180.

107. John M, Hirst SJ, Jose PJ, Robichaud A, Berkman N, Witt C, Twort CHC, Barnes PJ, Chung KF. Human airway smooth muscle cells express and release RANTES in response to T helper 1 cytokines.//J.Immunol.-1997, 158, 18411847

108. Jonson SR, Knox AJ. Synthetic functions of airway smooth muscle in asthma.//Trends Pharmacol.Sci.-1997, 18, 288-292

109. Joos G., Pauwels R. The in vivo effect of tachykinins on airway mast cells of the rat.//Am.Rev.Respir.Dis. 1993, v. 148, pp.922-926.

110. Kannan M.S., Danial E.E. Structural and functional study of control of canine tracheal smooth muscle.//Amer.J.Physiol.,1980, v.238, N1, pp.27-33.

111. Kannan M.S., Prakash Y.S., Jonson D.E., Sieck G.C. Nitric oxide inhibits calcium release from sarcoplasmic reticulum of porcine tracheal smooth muscle cells.//Am.J.Physiol. 1997, v.272, N1, p.l, pp.Ll-L7.

112. Karczewski W., Widdicombe J.G. The role of the vagus nerves in the respiratory and circulatory responses to intravenous histamine and phenildiguanid in rabbits. //J. Physiol. 1969,271-291.

113. Kilbinger H, von Bardeleben RS, Siefken H, Wolf D. Prejunctional muscarinic receptors regulating neurotransmitter release in airways.//Life Sci 1995;56(ll-12):981-7

114. Kneussl M.P., Richardson J.B. Alpha-adrenergic receptors in human and canine tracheal and bronchial mu'scle.//J.Appl.Physiol. 1978, v.45, N2, pp.307-315.

115. Knight D.S., Hyman A., Kadovitz P.J. Innervation of intropulmonary airways smooth muscle of the dogs, monkey and baboon. //J.Auton.Nerv. 1981, v.3, N1, pp.31-43.

116. Kondo T, Kobayashi I, Hayama N, Tazaki G, Ohta YRole of cholinergic neural transmission on airway resistance in the dog.//J Auton Nerv Syst 2000, 80(l-2):64-70

117. LaiY.L. Role of the axon reflex in capsaicin-induced bronchoconstriction in guinea pigs. //Respir. Physiol. 1991,35-46.

118. Lee BP, Sant'Ambrogio G, Sant'Ambrogio FB. Afferent innervation and receptors of the canine extrathoracic trachea.//Respir.Physiol., 1992, 90(1): 55-65.

119. Linden AS, Desmecht DJM, Amory H, Lekeux PM. Parasympathetic component of 5-hydroxytryptamine-induced pulmonary disfunctions in healthy calves.//Am.J.Vet.Res., 1996, 57(6): 896-901.

120. Liu YC, Khawaja AM, Rogers DF. Effect of vasoactive intestinal peptide (VlP)-related peptides on cholinergic neurogenic and direct mucus secretion in ferret trachea in vitro. Br J Pharmacol 1999 128(6): 1353-9

121. Ludwig M.S., Robatto F.M., Sly P.D., Browman M., Bates J.H.T., Romero P.Y. Histamine-induced constriction of canine peripheral lung: an airway or tissue responce?//J.Appl.Physiol. 1991, v.71, N1, pp.287-293.

122. Lundberg J.E., Hokfelt T., Martlmg C.R., Saris A., Cuello C. Substanse P-mammals including man.//Cell and Tissue Res. 1984, v.235, N2, pp.251-261.

123. Maize DF, Fedan JS, Dey RD. Characterization of neural control and contractile function in airway smooth muscle of the ferret.//Pulm Pharmacol Ther 1998, ll(l):57-64

124. Mak JC, Nishikawa M, Shirasaki H, Miyayasu R, Barnes PJ. Protective effects of a glucocorticoid on downregulation of pulmanory beta-2-adrenergic receptors in vivo.//J.Clin.Invest.- 1996, 96(1), 99-106

125. Mak JC, Roffel AF, Katsunuma T, Elzinga CR, Zaagsma J, Barnes PJ. Up-regulation of airway smooth muscle histamine H(l) receptor mRNA, protein, and function by beta(2)-adrenoceptor activation.//Mol Pharmacol 2000 57(5): 857-64

126. Manzini S, Conti S, Maggi CA, Abelli L, Somma V, Del Bianco E, Geppetti P. Regional differences in the motor and inflammatory responses to capsaicin in guinea pig airways.//Amer.Rev.Respir.Disease, 1989, 140(4): 936-941.

127. Martin JG, Wang A, Lacour M, Biggs DF. The effects of vasoactive intestinal polypeptide on cholinergic neurotransmission in isolated innervated guinea pig tracheal preparation./ZRespir.Physiol., 1990, 79(2): 111-112.

128. Matsumoto S., Shimizu T., Kanno T., Yamasaki M., Nagayama Effects of histamine on slowly adapting pulmonary stretch receptor activities in vagotomized rabbits. //Jap. J. Physiol. 1990, v.40, 737-752.

129. Matsumoto K, Aizawa H, Takata S. Inoue H, Takahashi N, Hara N

130. Nitric oxide derived from sympathetic nerves regulates airway responsiveness to histamine in guinea pigs. J Appl Physiol 1997, 83(5): 1432-7

131. McCaig DJ. Autonomic responses of the isolated, innervated trachea of the guinea pig: interaction with autonomic drugs, histamine and 5-hydroxytryptamine.//Br. J.Pharmacol. 1986, 88: 239-248.

132. McGrogan I, Janssen LJ, Wattie J, O'Byrne PM, Daniel EE. Release of epithelium-derived PGE2 from canine trnchea after antigen inhalation.//Am J Physiol 1998, 274(2 Pt l):L220-5

133. Mitchell RW, Ndukwu IM, Leff AR, Padrid PA. Muscarinic hyperresponsiveness of antigen-sensitized feline airway smooth muscle in vitro.//Am J Vet Res 1997 58(6):672-6

134. Mortola J., Sant'Ambrogio G., Clement M.G. Localization of irritant receptors in the airways ofthe dog.//Respir.Physiol., 1975, v.24, pp.107-114.

135. Munakata M., Huang I., Mitzner W., Menkes H. Protective role of epithelium in the guinea pig airway.//J.Appl.Physiol. 1989, v.66,N4, pp. 15471552.

136. Mustafa S, Oriowo MA. Inhibitory effect of capsaicin on cholinergic transmission in ovine airways: evidence for non-cholinergic contractions .//Eur J Pharmacol 1999 385(2-3):203-8

137. Myers A.C., Bradley J.U. Muscarinic receptor regulation of synaptic transmission in airway parasympathetic ganglia.//Am.J.Physiol. 1996, v.270, pp.L630-L636.

138. Myers AC, Undem B, Kummer W. Anatomical electrophysiological comparison of the sensory innervation of bronchial and tracheal parasympathetic ganglion neurons.//J.Auton.Nerv.Syst., 1996, 61(2): 162-8.

139. Nabishah BM, Morat PB, Khalid BA, Kadir BA. Effect of acetylcholine on bronchial smooth muscle contraction and its modulation by steroid hormones.//Clin.Exp.Pharmacol.Physiol.-1990, 17, 841-847

140. Nabishah BM, Morat PB, Kadir BA, Khalid BA. Effect of steroid hormones on muscarinic receptors of bronchial smooth muscle.//Gen.Pharmacol.-1991, 22(2), 389-392

141. Nara M, Sasaki T, Shimura S, Oshiro T, Irokawa T, Kakuta Y, Shirato K. Effects of histamine and endothelin-1 on membrane potentials and ion currents in bovine tracheal smooth-muscle cells.//Am J Respir Cell Mol Biol 1998, 19(5):805-11

142. Nieri P, Lazzeri N, Martinotti E, Breschi MC Histaminic bronchospasm potentiated by adenosine: investigation of the mechanisms. Eur J Pharmacol 1997, 331(2-3):205-12

143. Nijkamp FP, Van Der Linde HJ, Folkerts G. Nitric oxide synthesis inhibitors induce airway hyperresponsiveness in the guinea pig in vivo and in vitro.// Am Rev Respir Dis. 1993, 148: 727-734

144. Nishino T, Anderson JW, Sant'Ambrogio G. Responses of tracheobronchial receptors to halothane, enflurane, and isoflurane in anesthetized dogs.//Respir.Physiol., 1994, 95(3): 281-94.

145. Olszewski MA, Zhang XY, Robinson NE. Pre- and postjunctional effects of inflammatory mediators in horse airways.// J.Appl.Physiol., 1999, 277(2): L327-L333.

146. Olszewski MA, Robinson NE, Zhu FX, Zhang XY, Tithof PK. Mediators of anaphylaxis but not activated neutrophils augment cholinergic responses of equine small airways.//J.Appl.Physiol., 1999, 276(3): L522-L529.

147. Patel HJ, Douglas GJ, Herd CM, Spina D, Giembycz MA, Barnes PJ, Belvisi MG, Page CP. Antigen-induced bronchial hyperresponsiveness in the rabbit is not dependent on M(2)-receptor dysfimction.//Pulm Pharmacol Ther 1999;12(4):245-55

148. Patel HJ, Venkatesan P, Halfpenny J, Yacoub MH, Fox A, Barnes PJ, Belvisi MG. Modulation of acetylcholine release from parasympathetic nerves innervating guinea-pig and human trachea by endomorphin-1 and -2.//Eur J Pharmacol 1999 374(l):21-4

149. Perez AC, Paul W, Harrison S, Page CP, Spina D. The effect of L-arginine on guinea pig and rabbit airway smooth muscle function in vitro.itBraz J Med Biol Res, 1998,31(6): 811-818

150. Preuss JM, Goldie RG. Age-related changes in muscarinic cholinoceptor function in guinea-pig and rat airways.//Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol 1999 360(2): 179-86

151. Preuss JM, Goldie RG. Muscarinic cholinoceptor subtypes mediating tracheal smooth muscle contraction and inositol phosphate generation in guinea pig and rat.// Eur J Pharmacol 1999, 372(3):269-77

152. Reinheimer T., Bernedo P., Klapproth H., Oelesrt H., Zeiske B., Racke K., Wessler Y. Acetylcholine in isolated airways of rat, guinea pig, and human: species differences in role of airway mucosa.//Am.J.Physiol. 1996, v.270, p.l, pp.L722-L730.

153. Reite OB. The must cell nature of granule cells in the digestive tract of the pike, Esox lucius similarity to mammalian mucosal mast cells and globule leucocytes.//Fish and Shellfish Immunology, 1996, 6(5): 363-369.

154. Richter M, Sirois P. Effects of eicosanoids, neuromediators and bioactive peptides on murine airways.// Eur J Pharmacol 2000, 389(2-3):225-34

155. Sakai N, Tamaoki J, Kobayashi K, Katayama M, Takizawa T. Adenosine potentiates neurally- and histamine-induced contraction of canine airway smooth muscle.//Int Arch Allergy Appl Immunol. 1989;90(3): 280-4.

156. Sant'Ambrogio G, Sant'Ambrogio FB, Davis A. Airway receptors in cough.//Bull Eur Physiopathol Respir, 1984, 20(1): 43-7

157. Sant'Ambrogio G. Afferent pathways for cough reflex.//Bull Eur Physiopathol Respir, 1987, 23 Suppl 10: 19s-23s

158. Sant'Ambrogio FB, Sant'Ambrogio G, Mathew OP, Tsubone H. Contraction of trachealis muscle and activity stretch receptors.//Respir Physiol, 1988, 71(3): 343-53

159. Satchell D. Non-adrenergic, noncholinergic nerves in mammalian airways: their function and the role of purine.//Comp.Biochem. 1982, v.720, pp. 189196.

160. Stewart AG, Fernades DJ, Tomlinson PR. The effect of glucocorticoids on proliferation of human cultured airway smooth muscle.//Br.J.Pharmacol.1995, 116, 3219-3226

161. Suzuki H., Morita K., Kuriyama H. Innervation of the smooth muscle of the dog trachea. //Jap. J. Physiol., 1976, v.26, n.3, p.303-320.

162. Tagaya E, Tamaoki J, Takemura H, Kondo M, Konno K. Inhibition of cAMP-mediated relaxation of rabbit tracheal smooth muscle by neuropeptide Y.//Regul Pept 1996, 63(2-3): 157-61

163. Takahashi Y, Ohno H, Misawa M. Characteristics of vagal reflex-mediated tracheal response induced by bronchoconstriction in guinea pigs.//Eur J Pharmacol 1996 Apr 29;302(l-3):89-97

164. Tanaka H, Watanabe N, Tamura N, Yoshida M. Arachidonic acid metabolites and glucocorticoid regulatory mechanism in cultured porcine tracheal smooth muscle.//Lung.-1995, 173, 347-361

165. Thompson WK, Marchak BE, Froese AB, Bryan AC. High-frequency oscillation compared with standard ventilation in pulmonary injury model.//J Appl Physiol. 1982, 52(3): 543-8.

166. Tsubone H. Characteristics of vagal afferent activity in rats: three types pulmonary receptors responding to collapse, inflation, and deflation of the lung.//Exp Neurol, 1986, 92(3): 541-52

167. Uhlig S, Nesing R, von Bathmann A, Featherstone RL, Klien T, Brasch F, Muller KM, Ullrich V, Wendel A. Cyclooxigenase-2-dependent bronchoconstriction in perfused rat lungs exposed to endotoxin./ZMol.Med.1996, 2(3), 373-83

168. Undem BJ, Myers AC, Barthlow H, Weinreich D. Vagal innervation of guinea pig bronchial smooth muscle.//J Appl Physiol, 1990, 69(4): 1336-46.

169. Vadas P, Strafanski E, Wlocli M, Gromx B, van den Bosch H, Kennedy B. Secretory non-pancreatic phospholipase A2 and cyclo-oxigenase-2 expression by tracheobronchial smooth muscle.//Eur.J.Biochem.-1996, 235, 557-563

170. Watanabe T, Tan N, Saiki Y, Makisumi T, Nakamura S. Possible involvement of glucocorticoids in the modulation of interleukin-1-induced response in rats.//J.Physiol.-1996, 491(1), 231-239.

171. Webber SE, Widdicombe JG. Reflex control of the trachea of sheep.//J Appl Physiol. 1993. 75(5): P 2173-9

172. Wessler I, Apel C, Garmsen M, Klein A. Effects of nicotine receptor agonists on acetylcholine release from the isolated motor nerve, small intestine and trachea of rats and guinea-pigs.//Clin Investig, 1992, 70(3-4): 182-9

173. Widdicombe J.G. Regulation of tracheobronchial smooth muscle. //Physiol. Rev. 1963, v.43, n.l, p.1-29.

174. Widdicombe J.G. Respiratory physiology. 1974, London, pp.

175. Widdicombe J.G. Pulmonary and respiratory tract receptors.//J.Exp.Biol., 1982, v.100, pp.41-57.

176. Wiklund CU, Lim S, Lindsten U, Lindahl SG. Relaxation by sevoflurane, desflurane and halothane in the isolated guinea-pig trachea via inhibition of cholinergic neurotransmission.//Br J Anaesth 1999 Sep;83(3):422-9

177. Wood J.D. Electrical and synaptic behaviour of enteric neurones. //Handbook of Physiology. The gastrointestinal system. Motility and circulation., 1989, v.l, Sect.6, p.465-517.

178. Yen S.S., Kreutner W. Histamine H-receptors in guinea pig peripheral airway smooth muscle. //Life Sci. 1979, v.25, N6, pp.

179. Young PG, Skinner SJM, Black PN. Effect of glucocorticoids and f3-adrenoceptor agonists on the proliferation of airway smooth muscle.//Eur.J.Pharmacol.-1995, 273, 137-143

180. Yu J, Schultz HD, Goodman J, Coleridge JC, Coleridge HM, Davis B. Pulmonary rapidly adapting receptors reflexly increase airway secretion in dogs.//J Appl Physiol, 1989, 67(2): 682-7

181. Yu J, Zhang JF, Roberts AM, Collins LC, Fletcher EC. Pulmonary rapidly adapting receptor stimulation does not increase airway resistance in anesthetized rabbits.//Am J Respir Crit Care Med 1999, 160(3):906-12

182. Zahnow CA, Panula P, Yamatodani A, Millhorn DE. Glucocorticoid hormones downregulate histidine decarboxylase mRNA and enzyme activity in rat lung.//Am.J.Physiol.-1998, 275(2), August, L407-L413

183. Zimmerman I, Ulmer WT, Park SH. Histamine release into tracheal lumen and bronchial reactivity. Effect of local histamine administration on histamine release and bronchial reactivity.//Res Exp Med (Berl).1983, 183(1): 67-75.