Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Электрическая активность гладких мышц трахеи крыс при спонтанном дыхании

ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Карпушев, Алексей Валерьевич

Введение

1. Обзор литературы.

1.1. Строение нижних дыхательных путей.

1.2. Гладкомышечная стенка дыхательных путей.

1.3. Иннервация нижних дыхательных путей.

1.3.1. Парасимпатическая иннервация.

1.3.2. Симпатическая иннервация.

1.3.3. Метасимпатическая иннервация.

1.3.4. Нервные сплетения нижних дыхательных путей.

1.3.5. Ганглии и нейроны.

1.3.6. Рецепторы трахеи и бронхов.

1.3.7. Организация функционального модуля.

1.4. Медиаторы дыхательных путей.

1.4.1. Холинергические механизмы.

1.4.2. Адренергические механизмы.

1.4.3. Пептидергические механизмы.

1.4.4. Другие медиаторные системы.

1.4.5. Гистамин.

1.5. Активность гладкомышечной стенки и ритмические колебания просвета респираторного тракта.

1.5.1. Электрическая активность гл ад ко м ы ше чн ы х клеток дыхательных путей.

1.5.2. Ритмические колебания просвета респираторного тракта.

1.5.3. Участие рецепторов в бронхомоторных рефлексах.

2. Методические приемы и материалы, использованные в работе.

3. Результаты исследования.

3.1. Электрическая активность гладкой мышцы трахеи крысы. 3.1.1. Характеристика дыхания наркотизированных спонтанно дышащих крыс.

3.1.2. Характеристика электрической активности гладкомышечной стенки трахеи наркотизированных крыс при дыхании.

3.2 Влияние ваготомии на параметры дыхания и на электрическую активность гладкой мышцы трахеи.

3.2.1. Характеристика параметров дыхания ваготомированных животных.

3.2.2. Электрическая активность гладкой мышцы трахеи у ваготомированных крыс.

3.3. Электрическая активность гладкой мышцы трахеи при действии гистамина.

3.3.1. Электрическая активность гладкой мышцы трахеи крыс с интактными блуждающими нервами при аппликации гистамина на трахею.

3.3.2. Электрическая активность гладкой мышцы трахеи крыс с перерезанными блуждающими нервами при аппликации гистамина на трахею.

3.3.3. Влияние гистамина на частоту дыхания и длительность фаз дыхательного цикла у животных с интактными блуждающими нервами при внутрибрюшинном введении препарата.

3.4. Влияние на электрическую активность гладкомышечной стенки трахеи блокирования трахеобронхиальных рецепторов, межнейронной и нервно-мышечной передач.

3.4.1. Электрическая активность гладкой мышцы трахеи при блокировании трахеобронхиальных рецепторов.

3.4.2. Влияние блокирования межнейронной передачи на активность гладкомышечной стенки трахеи.

3.4.3. Электрическая активность гладкой мышцы трахеи при блокировании нервно-мышечной передачи.

4. Обсуждение результатов.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Электрическая активность гладких мышц трахеи крыс при спонтанном дыхании"

Актуальность проблемы.

Исследование управления висцеральными системами и органами, в том числе работой гладких мышц нижних дыхательных путей в процессе дыхания, является актуальной проблемой физиологии. Трахея и бронхи служат активным проводником воздушного потока и, благодаря наличию гладкомышечной ткани, просвет респираторного тракта может ритмично изменяться. На протяжении длительного периода изучения дыхательных путей представления о природе генерации ритмических изменений просвета трахеи и бронхов неоднократно менялись.

Сначала эти изменения связывали с перистальтическими движениями, подобными движениям желудочно-кишечного тракта (Dixon, Brodie, 1903). Затем установили, что на вдохе происходит расширение воздухоносных путей, а на выдохе сужение. И эти колебания объясняли изменением транспульмонального давления, вызванного движениями дыхательных мышц (Ellis, 1936; Loofborrow, 1957; Widdicombe, 1963).

В 1985 году Митчелл с соавторами (Mitchell et al., 1985) в опытах на наркотизированных обездвиженных кошках с искусственным дыханием показал, что сокращения сегментов трахеи в ритме дыхания определяются импульсацией, поступающей по эфферентным волокнам блуждающего нерва, то есть, имеют центральное происхождение. Немного позже, в начале 90-х годов было высказано предположение что ритмическая активность мышц формируется периферическими нервными механизмами и поддерживается афферентной импульсацией от рецепторов трахеи, активирующихся воздушным потоком через местные рефлекторные дуги (Федин, Ноздрачев, 1994). 6

В настоящее время считается, что гладкие мышцы респираторного тракта контролируются симпатическим и парасимпатическим отделами автономной нервной системы (Ноздрачев, 1991; Федин, 1994; Mitchell et al., 1985). На местном, внутриорганном, уровне регуляция просвета респираторного тракта осуществляется со стороны метасимпатических нейронов интрамуральных ганглиев. Эта система нейронов образует функциональный модуль (Федин, 1995) и обладает автоматизмом. Она содержит нейроны-генераторы ритма, обеспечивающие ритмическую генерацию сигналов управления. Эффекторные звенья модуля представлены двигательными нейронами, которые вызывают возбуждение и сокращение гладких мышц дыхательных путей, и тормозными нейронами, ответственными за расслабление мышц (Федин, Ноздрачев, 1994; Barnes, 1996). В состав функционального модуля входят также сенсорные нейроны. Процессы возбуждения и торможения гладких мышц обеспечиваются холинергическими, адренергическими, пептидергическими и другими медиаторными системами, непосредственно и при взаимодействии их друг с другом (Barnes, 1990).

Важную роль в регуляции активности гладкой мышцы респираторного тракта, особенно при осуществлении функции дыхания, играют сенсорные структуры нижних дыхательных путей. Известно, что в стенке трахеи и бронхов расположены медленно- и быстро адаптирующиеся рецепторы, которые реагируют не только на механические, но и различные химические раздражители. Одним из раздражителей для этих рецепторов является гистамин, широко представленный в стенках дыхательных путей и занимающий важное место в регуляции тонуса гладкомышечной стенки трахеи и бронхов. Результаты влияния этого вещества на гладкомышечные препараты существенно различаются, так как гистамин может оказывать влияние на разные структуры воздухоносных путей (Chand et al., 1981; Fleisch et al., 1970; Yen et al., 1979, Федин и др., 1997). По мнению одних авторов 7 освобожденный при активации тучных клеток гистамин действует непосредственно на гладкую мышцу, вызывая ее сокращение (Elwood et al., 1993). Другие указывают на то, что гистамин может активировать холинергические нервные окончания, в результате чего освобождается ацетилхолин, который и вызывает мышечное сокращение (Aizawa et al., 2000). Кроме того, он активирует рецепторы трахеи (Matsumoto et al., 1990).

Работы по изучению физиологии гладких мышц дыхательных путей выполнены главным образом на изолированных препаратах. Основная масса работ посвящена изучению сократительной активности мышц респираторного тракта. К сожалению, электрическая активность гладкомышечной стенки трахеи целых животных при дыхании остается почти не изученной. Это послужило основанием к проведению нашего исследования.

Цель и задачи исследования.

Целью настоящей работы явилось изучение электрической активности гладких мышц трахеи наркотизированных свободно дышащих крыс. Для достижения этого были поставлены следующие задачи:

1. Анализ электрической активности гладкомышечной стенки трахеи в зависимости от параметров дыхания.

2. Изучение влияния ваготомии на электрическую активность гладкомышечной стенки трахеи.

3. Определение влияния фармакологической стимуляции и блокады рецепторов трахеи на электрическую активность гладкомышечной стенки дыхательных путей.

4. Выяснение значения метасимпатических нейронов в формировании электрической активности гладкомышечной стенки трахеи. 8

Научная новизна полученных результатов.

В результате проведенных исследований впервые подробно рассмотрена электрическая активность гладких мышц стенки трахеи наркотизированной крысы в зависимости от характера дыхания, проанализированы влияния воздушного потока и ряда фармакологических препаратов. Впервые показаны эффекты влияния одного из наиболее распространенных биологически активных веществ -гистамина в широком диапазоне концентраций на показатели электрической активности трахеи на целом животном и установлено, что при низких концентрациях гистамин вызывает падение, а при высоких -возрастание импульсной активности гладкомышечной стенки трахеи. Рассмотрены механизмы этих эффектов. Влияния гистамина в низких концентрациях и при введении его интактному наркотизированному животному связаны с активацией рецепторов трахеи, а при высоких концентрациях непосредственно с действием на гладкомышечные клетки. Показано, что влияние низких концентраций гистамина на электрические процессы в гладких мышцах опосредуется через местные рефлексы с участием метасимпатических нейронов интрамуральных ганглиев.

Теоретическое и практическое значение работы.

Полученные данные помогают раскрыть возможные механизмы формирования мышечной активности дыхательных путей, а также дополняют общие представления о функциональной организации последних.

Результаты проведенной работы могут быть использованы в циклах лекций по Общему курсу физиологии человека и животных и в лекциях по физиологии дыхательной системы. 9

Основные положения, выносимые на защиту.

В формировании электрической активности трахеи наркотизированных крыс принимают участие метасимпатические нейроны интрамуральных ганглиев и рефлекторные влияния с рецепторов дыхательных путей.

Характер действия гистамина на электрическую активность гладких мышц трахеи крысы зависит от величины применяемой концентрации и обусловлен непосредственным влиянием на мышечные клетки, либо через активацию рецепторов стенки респираторного тракта по местным рефлекторным дугам.

Апробация работы.

Материалы диссертации докладывались на 1-ой Медико-биологической конференции молодых ученых Санкт-Петербурга, 1997; на 1-ой и 2-ой конференциях молодых ученых России «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины», Москва, 1998 и 2001; XVII и XVIII съездах Всероссийского Физиологического общества имени И.П. Павлова, Ростов-на-Дону, 1998 и Казань, 2001; на 27-ой и 28-ой конференциях Германского Нейрофизиологического общества, Геттинген, 1999 и 2001; 10-ой Европейской' студенческой конференции, Берлин, 1999; обществе Физиологов им. И.П. Павлова, Санкт-Петербург, 1999; на 7-ой Всероссийской школы молодых ученых «Актуальные проблемы нейробиологии», Казань, 2000.

По теме диссертации опубликовано 9 работ.

Структура и объем диссертации.

Диссертация изложена на 140 страницах и состоит из общей характеристики работы, обзора литературы, описания методов

10 исследования, экспериментальной части, обсуждения результатов исследования, заключения, выводов, списка цитируемой литературы, включающего 47 источников на русском и 144 на иностранных языках. Работа содержит 43 рисунка и 2 таблицы.

11

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Карпушев, Алексей Валерьевич

ВЫВОДЫ.

1. Гладкомышечная стенка трахеи наркотизированных спонтанно дышащих крыс обладает электрической активностью, состоящей из вспышек потенциалов, следующих в ритме дыхания. В составе вспышки выделяется ответ на вдыхаемый поток воздуха, отличающийся более высокой частотой импульсов. При частоте дыхания выше 90 цикл/мин возникновение мышечной активности совпадает по времени с ответом на вдох и отстает от начала вдоха. При частоте дыхания ниже 90 цикл/мин начало генерации мышечной активности опережает начало вдоха.

2. При сравнении электрической активности гладких мышц трахеи на одной и той же частоте дыхания (40 цикл/мин) ваготомированных животных и животных с интактными блуждающими нервами у первых число импульсов и частота их генерации во вспышке мышечной активности меньше, а продолжительность вспышки остается неизменной. Число электрических разрядов гладких мышц в ответе на вдыхаемый поток воздуха у ваготомированных крыс и крыс с интактными блуждающими нервами одинаково. Однако, частота импульсации у первых меньше, а продолжительность ответа на вдох больше.

3. Низкие концентрации гистамина (Ю'10 - 10"9 г/мл), вводимые в просвет трахеи, у крыс с интактными блуждающими нервами снижают величину импульсного потока и укорачивают длительность вспышки активности и ответа гладких мышц на вдох, а также увеличивают просвет респираторного тракта. Раствор гистамин в концентрации 10"5 г/мл приводит к противоположным результатам. У ваготомированных крыс из-за падения чувствительности дыхательных путей к гистамину снижение электрической активности мышцы наблюдается только при концентрации этого вещества 10"5 г/мл, а увеличение электрической активности - при концентрации 10"4 г/мл.

121

4. Блокада нервно-мышечной холинергической передачи снижает число и частоту импульсов гладкомышечной стенки трахеи во вспышке мышечной активности и в ответе на вдыхаемый воздушный поток. Блокада рецепторов трахеи, нервно-мышечной передачи, межнейронной передачи снимает эффекты низких концентраций гистамина и изменяет эффекты высоких концентраций.

5. Генерация электрической импульсной активности гладкомышечной стенки трахеи крысы осуществляется метасимпатическими нейронами интрамуральных ганглиев. В ответе гладких мышц стенки трахеи на воздушный поток вдыхаемого воздуха участвуют местные рефлекторные дуги, включающие рецепторы трахеи и ганглионарные нейроны.

122

ЗАКЛЮЧЕНИЕ.

Подводя итог проведенной работы, можно заключить, что у спонтанно дышащих крыс электрическая активность гладкомышечной стенки трахеи представляет собой вспышки импульсов, следующих в ритме с дыханием. Электрическая активность мышцы зависит от параметров внешнего дыханияt и, прежде всего от частоты дыхания или от частоты вентиляции дыхательных путей воздушным потоком. В свою очередь электрическая, а, следовательно, и сократительная активность гладкомышечной стенки трахеи влияет на условия прохождения воздушного потока.

Удаление центральных входов к гладкомышечной стенке трахеи приводит к изменению параметров внешнего дыхания и электрической активности гладкомышечной стенки, при этом многие параметры у животных с интактными блуждающими нервами и у ваготомированных животных изменяются в противоположном направлении.

118

Учитывая, сохранение электрической импульсной активности гладкой мышцы трахеи крысы и ответов на вдыхаемый воздушный поток после ваготомии, можно предположить, что они генерируются периферическими механизмами. Ведущую роль в формировании вспышек электрической мышечной активности играют метасимпатические нейроны функционального модуля дыхательных путей, а в ответе на поток вдыхаемого воздуха - местные рефлекторные дуги с участием рецепторов трахеи и метасимпатических нейронов интрамуральных ганглиев.

Аппликация гистамина на гладкую мышцу, трахеи со стороны эпителия приводит к изменениям электрической активности трахеи и параметров воздушного потока. Характер этих изменений зависит от применяемой концентрации вещества. Это позволяет предположить существование разных механизмов действия гистамина в низких и высоких концентрациях на дыхательные пути, а через них и на длительность фаз дыхательного цикла.

Блокада холинергической возбуждающей нервно-мышечной передачи атропином приводила к подавлению эффектов низких концентраций гистамина на длительность вдоха и выдоха. На фоне обработки трахеи атропином высокие концентрации гистамина уменьшали длительность вдоха и слабо влияли на длительность выдоха. Гексаметоний блокировал действие гистамина в низких концентрациях и изменял эффекты высоких концентраций. Предварительная обработка дыхательных путей местным анестетиком подавляла эффекты низкой и высокой концентраций гистамина, соответственно, на вдох и на выдох и приводила к задержке ответов гладкой мышцы на гистамин. Следовательно, можно предположить, что эти эффекты .опосредованы трахеальными рецепторами, а влияние гистамина в низких концентрациях опосредуется через интрамуральные ганглии.

Таким образом, можно с известной определенностью утверждать,

119 что наблюдаемые изменения электрической импульсной активности гладкомышечной стенки трахей при дыхании под действием гистамина связаны с влиянием последнего на рецепторы стенки дыхательных путей, путями реализации рефлекторных влияний от которых на гладкие мышцы дыхательного тракта могут являться местные рефлекторные дуги, включающие метасимпатические нейроны интрамуральных ганглиев.

Автор выражает глубокую признательность своему научному консультанту заведующему кафедрой Общей Физиологии биолого-почвенного факультета Санкт-Петербургского Университета академику РАН Александру Даниловичу Ноздрачеву за поддержку на всех этапах проведения исследования, доброжелательное отношение к работе и критический анализ рукописи диссертации.

120

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Карпушев, Алексей Валерьевич, Санкт-Петербург

1. Ахмедзянов Р.Х. Участие нейронов миентерального сплетения в организации ритмики сокращений гладкой мышцы тонкой кишки.//Физиол. ж. СССР, 1979, т. 65, N 1, 96-103.

2. Богач П.Г. Моторная деятельность тонкого кишечника.// Руководство по физиологии. Физиология пищеварения. JI. Наука. 1974. 478 с.

3. Бреслав И.С., Глебовский В.Д. Регуляция дыхания.//Л., Наука, 1981,280с.

4. Гнетов А.В., Степанова Т.П., Ноздрачев А.Д. Спонтанная и вызванная раздражением экстраорганных нервов моторика желудка мальмы. //Физиол. ж. СССР, 1990, т. 76, N10, 1432-1439.

5. Жданов В.А. Импульсная активность низкопороговых рецепторов растяжения легких кошки в динамических условиях.//Физиол. ж. СССР. 1$>77, т. 63, N 10, с. 1461-1469.

6. Жданов В.А. Влияние динамического фактора на частоту разрядов высокопороговых рецепторов растяжения легких у кошки.//Физиол. ж. СССР. 1978, т. 64, N 6, с. 810-817.

7. Золотарев В.А., Пушкарев Ю.П. Импульсная активность нейронов субэпикардиального сплетения в изолированном сердце кошки.// Рос. Физиол. Журн. Им. И.М. Сеченова, 1993, 79 (10): 29-38.

8. Иванов Г.Ф. Основы нормальной анатомии человека. Т 2. М, Медгиз, 1949, 458 с.

9. Исаев Г.Г. Регуляция дыхания при мышечной нагрузке. Д.: Наука, 1990, 121с.

10. Ю.Карпов О .И. Регистрация параметров дыхания у мелких лабораторных животных.//ВИНИТИ, 1990.

11. П.Кишш Ф., Сентаготаи Я. Анатомический атлас человеческого123тела, т 2. Медицина, Будапешт, 1972, 97 с.

12. Королева С.В., Ашмарин И.П. Нейропептид У: Многообразие и кажущаяся противоречивость функций. Анализ возможных опосредованных эффектов.//Успехи Физиол. Наук. 2000, 31 (1): 31-46.

13. Крюкова Е.Н. Роль интрамуральных нервных механизмов в ответах гладкой мышцы дыхательных путей на гистамин и дексаметазон.//Автореф. Дисс кщд. биол. наук. СПб, 2001.

14. Н.Крюкова, Е.Н., Карпушев А.В., Фролова С.А., Федин А.Н. Влияние гистамина на длительность фаз дыхательного цикла.//Рос. Физиол. Журн. им. И.М. Сеченова, т. 87 (3), с. 410-417, 2001.

15. Лэнгли Дж.Н. Автономная нервная система. M.-JL, 1925, Ч. 1,70 с.

16. Дашков В.Ф. Иннервация органов дыхания. //М., Медгиз., 1963,с. 21.

17. Ноздрачев А.Д. О структуроно-функциональной организации вегетативной (автономной) нервной системы.//Физиол. ж: СССР, 1980, 56 (7): 937-961.

18. Ноздрачев А.Д. Физиология вегетативной нервной системы.//Л., Медицина, 1983, 327 с.

19. Ноздрачев А. Д. Адренергические, холинергические, серотонинэргические и пептидэргические нейроны метасимпатической нервной системы.//Физиол. ж. СССР. 1984 а, т. 70, N 5, с. 649-661.

20. Ноздрачев А.Д. Взаимоотношения между симпатическими и парасимпатическими входами в ганглии метасимпатической нервной системы.//Физиол. ж. СССР, 1984 б, т. 70, N 10, с. 1402-1415.

21. Ноздрачев А. Д. Некоторые элементы построения теории метасимпатической нервной системы.//Физиол. ж. СССР, 1987, т. 73, К 2.

22. Ноздрачев А.Д. Два взгляда на метасимпатическую нервную систему .//Физиол. ж. СССР, 1991, т, 77, N 9, с. 21-38.124

23. Ноздрачев А. Д. Химическая структура периферического автономного (висцерального) рефлекса.//Успехи Физиол. Наук, 1996, 27 (2): 28-60.

24. Ноздрачев А.Д., Колосова Л.И., Моисеева А.Б., Рябчикова О.В. Роль периферической нервной системы в реализации связи иммунной системы с мозгом.//Рос. Физиол. Журн. им. И.М. Сеченова, 2000, 86 (6): 728-742.

25. Ноздрачев А.Д., Федин А.Н. Методика изучения нейронального аппарата ганглиев стенки трахеи.//Физиол. ж. СССР, 1984, т. 70, N 3, с. 377-379.

26. Ноздрачев А.Д., Федин А.Н. Влияние холинергических веществ на фоновую активность нейронов нижних дыхательных путей.//Физиол. ж. СССР, 1987, т. 73, N 6, с. 815-820.

27. Ноздрачев А.Д, Федин А.Н. Экспериментальное обоснование метасимпатических нервных механизмов астматических состояний.// БЭБМ, 1998, 126 (7): 20-24.

28. Ноздрачев А.Д., Федин А.Н., Самойлова JI.A., Степанова Т.П., Егорова Т.А., Малов М.О. Фоновая активность нейронов трахеального сплетения крысы.//Физиол. ж. СССР, 1985, т. 71, N 6, с. 724-730.

29. Ноздрачев А.Д., Чернышева М.П. Висцеральные рефлексы. JL, 1989. 166 с.и

30. Ноздрачев А.Д., Янцев А.В. Автономная передача. СПб: изд-во СПбГУ, 1995. 254 с.

31. Марков Х.М. Окись азота и окись углерода новый класс сигнальных молекул.//Успехи Физиол. Наук. 1996, 27 (4): 30-43.

32. Орлов Р.С. Физиология гладкой мускулатуры. М., 1967. 256 с.

33. Пальцев М.А, Иванов А.А. Межклеточные взаимодействия. М., Медицина, 1995, 224 с.

34. Пушкарев Ю.П., Иванова О.И. Нейротрофический контроль гладких мышц мочевого пузыря.//Физиол. Журн. им. И.М. Сеченова, 1993, 79 (1): 122-126.

35. Синельников Р. Д. Атлас анатомии человека, т. 3. Медицина, М., 1981, 186с.

36. Уразаев А.Х., Зефиров A.JI. Физиологическая роль оксида азота.//Успехи Физиол. Наук, 1999, 30 (1): 54-72

37. Федин А.Н. Роль холинергических механизмов в центральной регуляции двигательной активности таракана (Periplaneta americana).A0K. эвол. биохим. физиол. 1980, т. 16, N 3, с. 266-272.

38. Федин А.Н. Механизмы ритмических движений гладкомышечной стенки трахеи при дыхании.// Физиол. ж. им. И.М. Сеченова 1994, т. 80, N 4, с.46-51.

39. Федин А.Н. Трахеобронхиальные ганглии и их роль в управлении гладкомышечной ткани.//Автореф. Дисс докт. биол. наук. СПб, 1995.

40. Федин А.Н., Енукашвили Н.И., Кривченко А.И., Некрасова Э.А. Механизмы действия вазоактивного интестинального пептида на гладкую мышцу трахеи крысы.//Журн. Эвол. Биохим. Физиол., 1999, 35 (2): 123-126.

41. Федин А.Н., Ноздрачев А.Д. Анализ импульсной активности нейронов ганглиев мышечной стенки дыхательных путей. //Физиол. ж. СССР, 1986, т. 72, N 6, с. 792-798.

42. Федин А.Н., Ноздрачев А.Д. Ритмическая активность нейронов трахеального сплетения.//Доклады АН 1994, т. 339, N 3, с. 413-416.126

43. Федин А.Н., Ноздрачев А. Д., Бреслав И.С. Физиология респираторной системы. СПб, изд-во СПбГУ, 1997, 187 с.

44. Федин А.Н., Ноздрачев А.Д., Рыбакова Г.И., Пушкарев Ю.П. Действие адренергических веществ на гладкую мышцу трахеи крысы.//Физиол. журн. им. И.М. Сеченова, 1993, 79 (11): 59-63.

45. Шопотов И.К., Федин А.Н., Кривченко А.И. Ответы гладкой мышцы трахеи на ацетилхолин и электрическую стимуляцию.//Физиол.ж. СССР, 1991, т. 77, N 3, с. 133-137.

46. Aas P. Serotonin induced release of acetylcholine from neurons in the bronchial smooth muscle of the rat.//Acta physiol. Scand. 1985, v. 117, Nз, pp. 477-480.

47. Aizawa H., Inoue H., .Miyazaki N., Hara N. Histamine-induced increase in isometric tension of smooth muscle is mediated by local vagus nerve in human bronchus.//Respiration 2000, 67 (6): 652-656.

48. Aoki Y., Qui D., Zhao G.H., Kao P.N. Leukotriene B4 mediates histamine induction of NF-кВ and IL-8 in human bronchial epithelial cells.//J. Appl. Physiol., 1998, 274 (6), L 1030-L 1039.

49. Ash A.S.F., Schild, H.O. Receptors mediating actions of histamine.//Br. J. Pharmacol., 1966, 27: 427-439.

50. Arrange J.M., Garbarg M., Lancelot J.C. Autoinhibition of brain histamine realise mediated by a novel class H3 histamine receptors.//Nature, 302: 832-837.

51. Arrange J.M., Garbarg M., Lancelot J.C., Lecomte J.M., Pollard H., Robba M., Schunack W., Schwartz J.C. Highly potent and selective ligands for histamine H3 recepnors.//Nature (Lond), 1989, 327: 117-123.

52. Baluk P., Fugiwara Т., Matsuda S. The fine structure of the ganglia of the guinea pig trachea//Cell and Tissue Res. 1985, v. 239, N 1, 51-60.

53. Barak N., Rubinstein R., Cohen S. Histamine-evoked acetylcholine release in sensitized tracheal preparation.//Respir. Physiol. 1997 May; 108 (2): 181-5.

54. Barnes P.J. Neural control of human airways in health and disease.//Am. Rev. Respir. Dis. 1986, v. 134, p. 1289-1314.

55. Barnes P.J. Regulatory peptides in the respiratory system.//Experientia, 1987, v. 43^'N 7, 832-839.

56. Barnes P.J. M-receptors in airways: recentdevelopments.//J. Appl. Physiol., 1990, v. 68, N 5, 1777-1785.

57. Barnes P.J. Neural control of airways smooth muscle. The Lung: scientific foundation. Ed. R.G. Crystal, J.B. West et al.//Raven Press, New-York, 1991, pp. 903-916.

58. Barnes P.J. Pathophysiology of asthma.//Br. J. Clin. Pharmacol., 1996, 42(1): 3-10.

59. Bartlett W.K., Jeffary P., Sant'Ambrogio G., Wise J.C. Location of stretch receptors in the trachea ahd bronchi of the dog.//J. Physiol., 1976, v. 258, pp. 409-420.

60. Basbaum C.B., Grillo M.A., Widdicombe J.H.Muscarinic receptors: evidence for a nonuniform distribution in tracheal smooth muscle and exocrine glands.//J. Neurosci., 19„84, 4 (2): 508-520.

61. Bhatla R., Ferguson C.C., Richardson I.B. The innervation of smooth muscle in the primary bronchus of the chicken.//Can. J. Pharmacol. 1980, v. 53, N3, pp. 310-315.

62. Bilchikova L., Matyas S., Bauer V. Effect of stobadine and histamine Hj H2 blockers on histamine-induced contractions of guinea pig airways in vitro.//Respiration, 1990, 57 (2): 104-8.

63. Birumachi J., Maeda M., Kuwahara M., Sugano S., Nishibata R., Mikami H., Tsubone H. Histamine-induced airway contraction in congenitally bronchial-hypersensitive (BHS) and bronchial-hyposensitive (BHR) guinea pigs.//Exp. Animals, 1998, 47 (1): 55-62.

64. Black J.W. Definition and antagonism of histamine H2 receptors.//Nature, 1972, 226: 385-390.128

65. Breschi M.C., Nieri P., Lazzeri N., Martinotti E. Adenosine enhances the bronchocontractile response to histamine in anaesthetized and curarized guinea pigs through a mechanism partly blocked by hexamethonium.// Pharmacology 1994, 49 (1): 42-51.

66. Breschi M.C., Nieri P., Lazzeri N., Martinotti E. Effects of noise stress on EFS-mediated cholinergic and inhibitory NANC responses in tracheae from normal and sensitized guinea-pigs./Я. Auton. Pharmacol. 1997, 17 (6): 353-63.

67. Brown J.K., Shields R., Gold W.M. Parasympathetic innervation of the cervical trachealis muscle.//J. Appl. Physiol. 1982, v. 53, N 3, 617-625.

68. Burgaud J.L., Oudart N. Effect of an histaminergic H3 agonist on the non-adrenergic non-cholinergic contraction in guinea-pig perfused bronchioles.//!. Pharm. Pharmacol. 1993, 45 (11): 955-8

69. Cameron A.R., Coburn R.F. Electrical and anatomic characteristics of cell of ferret paratracheal ganglion.//Am. J. Physiol., 1984, v. 246, n. 5, С 450-C 458.

70. Canning B.J., Fischer A. Localization of cholinergic nerves in lower airways of guinea pigs using antisem to choline acetyltransferase.//Am. J. Physiol., 1997, 272 (4 Pt 1): L 731-8.

71. Cardell, Edvinsson. Characterization of the histamine receptors in the guinea-pig lung: evidence for relaxant histamine H3 receptors in the trachea.//Br. J. Pharmacol. 1994, 111 (2): 445-54.

72. Carratu P., Scuri M., Styblo J.L., Wanner A., Glassberg M.K. ET-1 induces mitogenesis in ovine airway smooth muscle cells via ETA and ETB receptors .//Am. J. Physiol. 1997, 272 (5 Pt 1): L 1021-L 1024.

73. Chand N., Eyre P. Further studies of dog tracheobronchial smooth muscle.//Res. Commun. Chem. Pathol.,.Pharmacol. 1980, N 2, 245-254.

74. Chand N., Dhawan B.N., Srimal R.C., Rahmani N.H., Shukla, Altura B.M. Reactivity of airway smooth muscles to bronchoactive agents in langur monkeys.//J. AppL Physiol. 1981, N 3, 513-516.129

75. Chen X., Ye Y., Luo W. The relationship between H2 receptor and the pathogenesis of bronchial asthma in guinea-pigs.// Chung Hua Chieh Ho Ho Hu Hsi Tsa Chih 1995, 18 (4): 221-3, 255.

76. Chesrown S.E., Venugopalan C.S., Gold W.M., Prozen J.M. In vivo demonstration of nonadrenergic inhibitory innervation of the guinea pig trachea.//J. Clin. Chivest. 1980, v. 65, N 2, pp. 314-320.

77. Chung K.F., Snashall P.D. Effect of prior bronchoconstriction on the airway response to histamine in normal subjects.//Thorax. 1984, v. 39, N 1,40-45.

78. Claes-Roland M. Sensory nerves containing tachykinins and CGRP in the lower airways.//Acta Physiol. Scand. 1987, v. 130, Suppl. N 563, pp. 1-57.

79. Clark L.A., Small R.C., Turnbull M.J. Do the recurrent laryngeal nerves provide an extrinsic input to nonadrenergic inhibitory neurones in guinea pig tracheali smuscle?//Br. J. Pharmacol. 1981, v. 72, N 3, P 554-P 555.

80. Coburn R.F. PeripheraLairway ganglia.//Ann. Rev. Physiol. 1987, N 49, pp. 573-582.

81. Colebatch H.J., Olsen C.R., Nadel J.A. Effectof histamine, serotonin eand acetylcholine on the peripheral airways.//J. Appl. Physiol. 1966, v. 21, N 1,217-226.

82. Collet P., Brancatizano I., Enoell D. Changes in the glottic aperture during bronchial asthma.//Amer. Ref. Resp. Dis. 1983, v. 128, pp. 719-723.

83. Costello R.W., Evans C.M., Yost B.L., Belmonte K.E., Gleich G.J., Jacoby D.B., Fryer A.D. Antigen-induced hyperreactivity to histamine: role of vagus nerves and eosinophils.// J. Appl. Physiol., 1999, 276 (5): L 709-L 714.

84. Dale M.M., Foreman J.C. Textbook of immunopharmacology. 1989,г130

85. Dahlovist A., Pequignot J.M., Hellstrom S. Sympathectomia provides evidence of dopamine storage in rat laryngeal nerve paraganglia.//Acta physiol. Scand. 1989, v. 153, N 2, pp. 189-195.

86. Dalsgaard C.J., Lundberg J.M. Evidence for a spinal afferent innervation of the guinea pig lower respiratory tract as studied by the horseradish peroxidase technique.//Neuroscience Letters. 1984, v. 45, N 2, 117-122.

87. Diamond L., Szarek J.L., Gillespie M.N., Altiere R.J. Neurogenic bronchodilatation: role of peptides.//Symp. Med. Hoechst., 1982, 18: 273288.

88. Dixon W.E., Brodie T.G. Contributions to the physiology of the lung.//J. Physiol., 1903, v. 29, N 2, 97-173. .

89. Dudzinska В., Wozniak W. Intramural plexuses in the trachea and bronchi of human fetuses.//Folia morphol., 1977,v. 36, N 2, 159-166.

90. E1-Bermani A.W., McCarthy L.F. Synaptic specialization of pulmonary parasympathetic ganglia: athree-dimensional study.//Acta. anat. 1980, v. 107, 361-372.

91. Ellis M. The mechanism of the rhythmic changes in the calibre of the bronchi during respiration. //J. Physiol. 1936, v. 87, N 3, 298-309.

92. Ellis J.L., Farmer S.G. Modulation of cholinergic neurotransmission by vasoactive intestinal peptide and peptide histidine isoleucine in guinea-pig tracheal smooth muscle.// Pulm. Pharmacol. 1989; 2 (2): 107-12.131

93. Elwood W., Sakamoto Т., Barnes P.J., Fan Chang K. Allergen-induced airway hyperresponsiveness in Brown-Norway rat: role of parasympathetic mechanisms.// J. Appl. Physiol., 1993, 75 (1), 279-284.

94. Eum S.Y., Norel X., L.efort (J., Labat C., Vargaftig B.B., Brink C. Anaphylactic bronchoconstriction in BP2 mice: interactions between serotonin and acetylcholine.// Br. J. Pharmacol. 1999, 126 (1): 312-6.

95. Fleisch J.H., Calkins P.J. Comparison of drug-induced responses of rabbit trachea and bronchus.//J. Appl. Physiol. 1970, v. 41, N 1, pp. 62-66.

96. Fleisch J.H., Maling H.M., Brodie B.B. Evidence for existence of alpha-adrenergic receptors in the mammalian trachea.//Amer. J. Physiol. 1970, v. 218, N2, 596-599.

97. Fleisch J.H., Spaethe S.M.^ Johnson W.D. Drug-induced effects on the longitudinal smooth muscle of rat bronchus.// Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1980, v. 164, 196-198.

98. Gabella G. Fine structure of myenteric plexus in guinea pigileum.//J. Anat., 1972, v. 111, 69-97.

99. Ghatei M.A., Sheppard M.N., O'Shaughnessy D.J., Adrian Т.Е., McGregor G.P., Polak J.M., Bloom S.R. Regulation peptides in the mammalian respiratory tract.//Endocrinology 1982, v.Ill, N 4, pp. 12481254.

100. Goldie R.G., Papadimitriou J.M., Paterson J.W., Rigby P.J., Self H.M., Spina D. Influence of the epithelium on responsiveness of guinea pig isolated trachea to contractile and relaxant agonists.//Br. J. Pharmacol., 1986, 87(1): 5-14.

101. Gourgoulianis K.I., Domali A., Molyvdas P. A. Airway responsiveness: role of inflammation, epithelium damage and smooth muscle tension.// Mediators Inflamm. 1999; 8 (4-5): 261-3.

102. Grunstein M.M., Tanaka D.T., Grunstein' J.S. Mechanism of substance P-induced bronchoconstriction in maturing rabbit.//J. Appl. Physiol. 1984, v. 57, N 4, 1238-1246.132

103. Guc М.О., Ilhan M., Kayaalp S.O. Epithelium-dependent relaxation of guinea-pig tracheal smooth muscle by histamine: evidence for non-Щ- and non-H2~histamine receptors.//Arch. Int. Pharmacodyn. Ther. 1988, 296: 57-65.

104. Dalsgaard C.J., Lundberg J.M. Evidence for a spinal afferent innervation of the guinea pig lower respiratory tract as studied by the horse radish paroxidase thechnique. //Neuroscience Letters. 1984, v. 45, N 2, 117122.

105. Hall LP. Second messengers, ion channels .and pharmacology of airway smooth muscle.//Eur. Respir. J. 2000, 15 (6): 1120-7.

106. Physiol. Sci., Budapest, Oxford 1981, pp. 363-368.

107. Ischinose M., Shetton C.D., Schwartz J.C., Barnes P.J. Histamine Нз-receptors inhibit cholinergic neurotransmission in guinea pig airways.//Br. J. Pharmacol. 1989, 97: 13-15

108. Ito Y., Takeda K. Nonadrenergic inhibitory nerves and putative transmittens in the smooth muscle of cat trachea.//J. Physiol. 1982, N 330, pp. 497-511.

109. Jacques C.A., Spur B.W., .Jonson M., Lee Т.Н. The effect of epithelium remove on leukothrien E4-induced histamine hyperresponsiveness in guinea-pig tracheal smooth muscle.//Br. J. Pharmac. 1992, v. 106, N 3, p. 556-562133

110. Jammes Y. Let onusdu muscle lisse tracheobronchi queetson controle reflexe//Arch. Int. Physiol. Biochim. 97 (4): 15-35, 1989.117Jeffry P.K. The development of large and small airways.//Am. J. Respir. Crit. Care Med., 1998, Ц7 (5): S. 174-180.

111. Joos G., Pauwels R. The in vivo effect of tachykinins on airway mast cells of the rat.//Am. Rev. Respir. Dis. 1993, v. 148, pp. 922-926.

112. Karczewski W., Widdicombe J.G. The role of the vagus nerves in the respiratory and circulatory responses to intravenous histamine and phenildiguanid in rabbits.//J. Physiol. 1969, 271-291.

113. Kneussl M.P., Richardson J.B. Alpha-adrenergic receptors in human and canine tracheal and bronchial muscle.//J. Appl. Physiol. 1978, v. 45, N2, pp. 307-315.

114. Knight D.S. A light and electron microscopic study of feline intrapulmonary ganglia.//J. Anat., 1980, v. 131, N 3, 413-428.

115. Knight D.$., Hyman A., Kadovitz P.J. Innervation of intropulmonary airways smooth muscle of the dogs, monkey and baboon. //J. Auton. Nerv. 1981, v. 3, N 1, pp,31-43.

116. Kondo Т., Tamura К., Опое K., Takahira H., Ohta Y., Yamabayashi H. In vivo recording of electrical activity of canine tracheal smooth muscle.//! Appl. Phisiol., 1992, 72 (1): 135-42.

117. Kondo Т., Kobayashi I., Hirokawa Y., Ohta Y., Yamabayashi H., Arita H. Centrally driven slow oscillating potentials of extrathoracic trachea.// J. Appl. Phisiol., 1993, 74 (3): 1066-72.

118. Kondo Т., Kobayashi I., Hirokawa Y., Suda S., Ohta Y., Arita H. Differences in motor control in the bronchus and extrathoracic trachea.//J. Auton. Nerv. Syst., 1995, 5;55 (1-2): 1-8.

119. Kondo Т., Kobayashi I., Hayama N., Tazaki G., Ohta Y. Role of cholinergic neural transmission on airway resistance in the dog.//J. Auton. Nerv. Syst. 2000, 80 (1-2): 64-70.134

120. Lai Y.L. Role of the axon reflex in capsaicin-induced bronchoconstriction in guinea pigs.//Respir. Physiol. 1991, 35-46.

121. Larsell O. The ganglia plexuses and nerve-terminations of the mammalian lung and pleura pulmonalis.//J. Сотр. Neurol., 1922, v. 35, N 1, 96-132.

122. Linden A.S., Desmecht D.J, Amory H., Lekeux P.M. Parasympathetic component of 5-hydroxytryptamine-induced pulmonary disfunctions in healthy calves.//Am. J. Vet. Res., 1996, 57 (6): 896-901.

123. Liu Y.C., Khawaja A.M., Rogers D.F. Effect of vasoactive intestinal peptide (VlP)-related peptides on cholinergic neurogenic and direct mucus secretion in ferret trachea in vitro.//Br. J. Pharmacol. 1999 a, 128 (6): 1353-9.

124. Loofbourrow G.N., Wood W.B., Baird J.L. Tracheal constriction in the dog.//Am. J. Physiol. 1957, v. 191, N 2, 411 -415.

125. Lorychta E., Richardson J.B. Control of smooth muscle in human airways.//Bull. Eur. Physiopathol. Respirat., 1980, v. 16, N 5, 581-586.

126. Ludwig M.S., Robatto F.M., Sly P.D., Browman M., Bates J.H., Romero P.V. Histamine-induced constriction of canine peripheral lung: an airway or tissue responce?//J. Appl. Physiol. 1991, v. 71, N 1, pp. 287-293.

127. Lundberg J.E., Hokfelt Т., Martling C.R., Saris A., Cuello C. Substanse P- mammals including man.//Cell and Tissue Res. 1984, v. 235, N 2, pp. 251-261.

128. Maize D.F., Fedan J.S., Dey R.D. Characterization of neural control and contractile function in airway smooth muscle of the ferret.//Pulm. Pharmacol. Ther.,1998, 11 (1): 57-64.135

129. Manzini S., Conti S., Maggi C.A., Abelli L., Somma V., Del Bianco E., Geppetti P. Regional differences in the motor and inflammatory responses to capsaicin in guinea pig airways.//Amer. Rev. Respir. Disease, 1989, 140 (4): 936-941.

130. Martin J.G., Wang A., Lacour M., Biggs D.F. The effects of vasoactive intestinal polypeptide on cholinergic neurotransmission in isolated innervated guinea pig tracheal preparation.//Respir. Physiol., 1990, 79 (2): 111-112.

131. Matsumoto S., Shimizu Т., Kanno Т., Yamasaki M., Nagayama Effects of histamine on slowly adapting pulmonary stretch receptor activities in vagotomized rabbits.//Jap. J. Physiol. 1990, v. 40, 737-752.

132. Matsumoto K., Aizawa H., Takata S., Inoue H., Takahashi N., Hara N. Nitric oxide derived from, sympathetic nerves regulates airway responsiveness to histamine in guinea pigs.//J. Appl. Physiol. 1997, 83 (5): 1432-7.

133. McCaig D.J. Autonomic responses of the isolated, innervated trachea of the guinea pig: interaction with autonomic drugs, histamine and 5-hydroxytryptamine.//Br. J. Pharmacol. 1986, 88: 239-248.

134. McGrogan I., Janssen L.J., Wattie J., O'Byrne P.M., Daniel E.E. Release of epithelium-derived PGE2 from canine trachea after antigen inhalation.//Am. J. Physiol. 1998, 274 (2 Pt 1): L220-5.

135. Misawa M., Takahashi, Y., Hosokawa Т., Yanaura S. Involvement of inhibitory innervation in reflex tracheal dilatation induced by lung inflation.//Jap. J. Physiol., 1990, v. 52, N 4, pp. 639-642.

136. Mitchell H.W., Yu L.L. Attenuation of tracheal smooth muscle contraction by connective tissue.//Eur. J. Pharmacol. 1985, 118 (1-2): 171-4.

137. Mitchell R.W., Ndukwu I.M., Leff A.R., Padrid P.A. Muscarinic hyperresponsiveness of antigen-sensitized feline airway smooth muscle in vitro.//Am. J. Vet. Res. 1997, 58 (6): 672-6.

138. Myers A.C., Bradley J.U. Muscarinic receptor regulation ofsynaptic transmission in airway parasympathetic ganglia.//Am. J. Physiol. 1996, v. 270, pp. L630-L636.i i

139. Myers A.C., Undem В., Kummer W. Anatomical electrophysiological comparison of the sensory innervation of bronchial and tracheal parasympathetic ganglion neurons.//J. Auton. Nerv. Syst., 1996, 61 (2): 162-8.

140. Nara M., Sasaki Т., Shimura S., Oshiro Т., Irokawa Т., Kakuta Y., Shirato K. Effects of histamine and endothelin-1 on membrane potentials and ion currents in bovine tracheal smooth-muscle cells.//Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 1998, 19 (5): 805-11.

141. Nieri P., Lazzeri N., Martinotti E., Breschi M.C. Histaminic bronchospasm potentiated by adenosine: investigation of the mechanisms.//Eur. J. Pharmacol. 1997, 331 (2-3): 205-12.

142. Nijkamp F.P., Van Der Linde H.J., Folkerts G. Nitric oxide synthesis inhibitors induce airway hyperresponsiveness in the guinea pig in vivo and in vitro.//Am Rev Respk Dis. 1993, 148: 727-734.

143. Nishino Т., Anderson J.W., SantrAmbrogio G. Responses of tracheobronchial receptors to halothane, enflurane, and isoflurane in anesthetized dogs.//Respir. Physiol., 1994, 95 (3): 281-94.

144. Olszewski M%A., Zhang X.Y., Robinson N.E. Pre- and postjunctional effects of inflammatory mediators in horse airways.//J. Appl. Physiol., 1999, 277 (2): L327-L333.

145. Olszewski M.A., Robinson N.E., Zhu F.X., Zhang X.Y., Tithof P.K. Mediators of anaphylaxis but not activated neutrophils augment cholinergic responses of equine ^mall airways.//J. Appl. Physiol., 1999, 276 (3): L522-L529.

146. Paintal A.S. The location and exitation of pulmonary deflation receptors by chemical substances.//Quart. J. Exp. Physiol., 1957, v. 42, pp. 56-71.137

147. Patel H.J., Douglas G.J., Herd C.M., Spina D., Giembycz M.A., Barnes P.J., Belvisi M.G., Page C.P. Antigen-induced bronchial hyperresponsiveness in the rabbit is not dependent on M2-receptor dysfunction.//Pulm. Pharmacol. Ther. 1999 a, 12 (4): 245-55.

148. Pearson K. G. General programming and reflex control of walking system of the cocroach.//J. Exp. Biol., 1972, v 56, 173-193.

149. Preuss J.M., Goldie R.G. Muscarinic cholinoceptor subtypes mediating tracheal smooth muscle contraction and inositol phosphate generation in guinea pig and rat.//Eur. J. Pharmacol. 1999, 372 (3): 269-77.

150. Reinheimer Т., Bernedo P., Klapproth H., Oelesrt H., Zeiske В., Racke K., Wessler Y. Acetylholine in isolated airways of rat, guinea pig and human: species differences in role of airway mucosa.//Am. J. Physiol., 1996, v. 270, p. l,pp.L722-L 730. „

151. Richter M., Sirois P. Effects of eicosanoids, neuromediators and bioactive peptides on murine airways.//Eur. J. Pharmacol. 2000, 389 (2-3): 225-34.

152. Sakai N., Tamaoki J., Kobayashi K., Katayama M., Takizawa T. Adenosine potentiates neurally- and histamine-induced contraction of canine airway smooth muscle.//Int. Arch. Allergy. Appl. Immunol. 1989; 90 (3): 280-4.

153. SantrAmbrogio G. Afferent pathways for cough reflex.//Bull. Eur. Physiopathol. Respir., 1987, 23 Suppl 10: 19s-23s.

154. SantrAmbrogio F.B., SantrAmbrogio G., Mathew O.P., Tsubone H. Contraction of trachealis muscle and activity stretch receptors.//Respir. Physiol., 1988, 71 (3): 343-53.

155. Satch.ell D. Non-adrenergic, noncholinergic nerves in mammalian airways: their function and the role of purine.//Comp. Biochem. 1982, v. 720, pp. 189-196.

156. Scaburskis M., Shardonofsky F., Milic-Emili J. Effect of serotonine on expiratory pulmonary resistance in cat.//J.Appl.Physiol. 1990, v. 68, N6, pp. 2419-2425.

157. Schramm C.M. Beta-adrenergic relaxation of rabbit tracheal smooth muscle: a receptor deficit that improves with corticosteroid administration.//J. Pharmacol. Exp. Ther. 2000, 292 (1): 280-7.

158. Shigyo M., Aizawa H., Koto H., Matsumoto K., Takata S., Hara N. Pre- and post-junctional effects of VIP-like peptides in guinea pig tracheal smooth muscle.//Respiration 1997; 64 (1): 59-65.

159. Stepanovic R.M. Analysis of the response of the guinea-pig common carotid artery to histamine.//Period. Biol., 1988, 90: 305-307.

160. Stephens N.L., Packer C.S., Mitchell R.W. Mechanical properties of airway smooth muscle//Bull. Eur. Physiopathol. respirat 1985, v. 22, Suppl., p. 178-190.

161. Tagaya E., Tamaoki J., Takemura H., Kondo M., Konno K. Inhibition of cAMP-mediated relaxation of rabbit tracheal smooth muscle by neuropeptide Y.//Regul. Pept. 1996, 63 (2-3): 157-61.

162. Takahashi Y., Ohno H., Misawa M. Characteristics of vagal reflex-mediated tracheal response induced by bronchoconstriction in guinea pigs.//Eur. J. Pharmacol. 1996, Apr 29; 302 (1-3): 89-97.

163. Thompson W.K., Marchak B.E., Froese A.B., Bryan A.C. High-frequency oscillation compared with standard ventilation in pulmonary injury model.//! Appl. Physiol. 1982, 52 (3): 543-8.

164. Timmerman H. Histamine agonists and antagonists.//Acta Otolaringol., 1991,479: 5-11. '

165. Toda N., Mechanism of histamine induced relaxations in isolated monkey and dog coronary arteries.//J. Pharmacol. Exp. Ther., 1986, 239: 529-535.

166. Todorov S. On the mechanism of guinea-pig tracheal relaxation induced by high histamine concentrations.//Acta Physiol. Pharmacol. Bulg., 1981, 7 (2): 33-7.

167. Tsubone H. Characteristics of vagal afferent activity in rats: three types pulmonary receptors responding to collapse, inflation, and deflation of the lung.//Exp. Neurol., 1986, 92 (3): 541-52.

168. Undem B.J., Myers A.C., Barthlow H., Weinreich D. Vagal innervation of guinea pig bronchial smooth muscle.//J. Appl. Physiol., 1990, 69 (4): 1336-46.

169. Valic Z., Vidruk E.H., Ruble S.B., Buckwalter J.B., Clifford P.S. Parasympathetic innervation of canine tracheal smooth muscle.//J. Appl. Physiol., 2001, 90: 23-28.

170. Vidruk E., Sorkness R. Relationships among efferent discharge airway smooth muscle tone and phrenic activity.//Fed. proc. 1986, v. 45, N 3, 314.

171. Webber S.E., Widdicombe J.G. Reflex control of the trachea of sheep.//J. Appl. Physiol. 1993, 75 (5): P 2173-9.

172. Wessler I., Apel C., Garmsen M., Klein A. Effects of nicotine receptor agonists on acetilcholine release from the isolated motor nerve, small intestine and trachea of rats and guinea pigs.//Clin. Investig., 1992, 70 (3-4): 182-9.

173. Widdicombe J.G. Regulation of tracheobronchial smooth muscle. //Physiol. Rev. 1963, v. 43, N 1, p. 1-29.

174. Widdicombe J.G. Action potentials in parasympathetic and sympathetic efferent fibres to the trachea and lungs of dogs and cats.//J. Physiol. 1966, v. 186, 56-88.

175. Widdicombe J.G. Respiratory physiology. 1974, London, pp. 300.

176. Widdicombe J.G. Pulmonary and respiratory tract receptors.//J.I

177. Exp. Biol., 1982, v. 100, pp. 41-57.

178. Wiklund C.U., Lim S., Lindsten U., Lindahl S.G. Relaxation by sevoflurane, desflurane and halothane in the isolated guinea-pig trachea via inhibition of cholinergic neurotmnsmission.//Br. J. Anaesth. 1999, Sep; 83 (3): 422-9.

179. Yen S.S., Kreutner W. Histamine H-receptors in guinea pig peripheral airway smooth muscle. //Life Sci. 1979, v. 25, N 6, pp.

180. Yu J., Schultz H.D., Goodman J., Coleridge J.C., Coleridge H.M., Davis B. Pulmonary rapidly adapting receptors reflexly increase airway secretion in dogs.//J. Appl. Physiol., 1989, 67 (2): 682-7.

181. Yu J., Zhang J.F., Roberts A.M., Collins L.C., Fletcher E.C. Pulmonary rapidly adapting receptor stimulation does not increase airway resistance in anesthetized rabbits.//Am. J. Respir. Crit. Care. Med. 1999, 160 (3): 906-12.