Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Пространственно-временная изменчивость сообщества эпифитона реки Москвы и факторы ее регулирующие

ВАК РФ 03.00.18, Гидробиология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Русанов, Александр Геннадьевич

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Влияние гидролого-гидрохимических параметров на сообщество перифитона в реках.

1.2. Метаболические взаимоотношения системы эпифитон-макрофиты.

1.3. Трофические взаимоотношения фитофильной фауны и эпифитона.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Исследование временной динамики сообщества эпифитона.

2.1.1. Сбор и первичная обработка материала.

2.1.2. Анализ данных.

2.2. Исследование пространственной динамики сообщества эпифитона.

2.2.1. Сбор и первичная обработка материала.

2.2.2. Анализ данных.

ГЛАВА 3. СЕЗОННОЕ ИЗМЕНЕНИЕ СООБЩЕСТВА ЭПИФИТОНА.

3.1. Сезонное изменение гидрохимических и физических параметров реки Москвы.

3.1.1. Сезонная динамика биогенных элементов.

3.1.2. Сезонное изменение концентрации общего взвешенного вещества.

3.1.3. Сезонное изменение условий освещенности в зарослях рдеста.

3.2. Характер сезонных изменений структурно-функциональных характеристик сообщества эпифитона.

3.2.1. Сезонная динамика биомассы эпифитона.

3.2.2. Сезонная динамика функциональных характеристик эпифитона -первичная продукция и хемоорганотрофия.

3.2.3. Сезонная изменчивость видовой структуры эпифитона.

3.3. Влияние физико-химических факторов на структурнофункциональные показатели эпифитона.

ГЛАВА 4. СЕЗОННОЕ ИЗМЕНЕНИЕ СООБЩЕСТВА

ФИТОФИЛЬНЫХ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ.

ГЛАВА 5. ПРОСТРАНСТВЕННАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ СТРУКТУРЫ СООБЩЕСТВА ЭПИФИТОНА ОТНОСИТЕЛЬНО СКОРОСТИ ТЕЧЕНИЯ И КОНЦЕНТРАЦИИ БИОГЕННЫХ ЭЛЕМЕНТОВ. 5.1. Гидролого-гидрохимические характеристики верхнего участка реки Москвы.

5.1.1. Пространственная динамика биогенных элементов.

5.1.2. Отношение гидрохимических характеристик к скорости течения. 5.2. Структурные характеристики сообщества эпифитона.

5.2.1. Зависимость биомассы эпифитона от концентрации биогенных элементов и скорости течения.

5.2.2. Изменение структуры сообщества эпифитона относительно концентрации биогенных элементов и скорости течения

5.2.2.1. Биомасса таксономических отделов.

5.2.2.2. Видовая структура эпифитона.

5.3. Оценка качества воды по структурным и сапробиологическим показателям.

ВЫВОДЫ.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Пространственно-временная изменчивость сообщества эпифитона реки Москвы и факторы ее регулирующие"

Актуальность проблемы. Постоянно возрастающий уровень антропогенной нагрузки ведет к необратимым изменениям в водных биоценозах и ухудшению качества воды. В системе гидробиологического мониторинга водных экосистем одно из ведущих мест принадлежит эпифитону - сообществу водорослей, местообитанием которого служит поверхность макрофитов. Благодаря способности водорослей быстро реагировать на изменения условий среды и фиксированному положению в пространстве сообщество эпифитона считается хорошим объектом для оценки антропогенного влияния в водотоках.

Структурно-функциональные показатели сообщества речного эпифитона контролируются комбинацией факторов, одни из которых ответственны за ресурсы, а другие оказывают стрессовое влияние на сообщество. Ресурсы -концентрация биогенных элементов и интенсивность солнечной радиации -определяют прирост биомассы эпифитона путем регулирования видоспецифической скорости клеточного роста. Резкие изменения гидродинамических условий среды обитания и выедание водными беспозвоночными ведут к элиминации биомассы и видоизменяют структуру эпифитонного сообщества. Однако относительная роль данных факторов в контроле пространственно-временной динамики речного эпифитона изучена недостаточно, особенно в связи с антропогенным воздействием на фоне естественной изменчивости структурно-функциональных показателей эпифитона.

Цель работы. Цель настоящей работы - выяснение относительного вклада экологических факторов среды в пространственно-временную вариабельность структуры эпифитона на макрофите Potamogeton perfoliatus L. (Рдесте пронзеннолистном) в реке Москве.

Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи: 5

1. Изучение сезонной динамики структурно-функциональных характеристик сообщества эпифитона в зависимости от гидролого-гидрохимических параметров и светового режима в зарослях рдеста.

2. Исследование взаимосвязи сезонных изменений эпифитона и сообщества фитофильной фауны.

3. Выяснение зависимости пространственной структуры эпифитона от изменения скорости течения и концентрации минеральных форм азота и фосфора по тракту реки Москвы.

Научная новизна работы. Впервые описана временная структура сезонного развития эпифитона на Potamogeton perfoliatus L. в условиях реки Москвы. Стадии развития эпифитона были однозначно соотнесены с сезонным циклом вегетации рдеста. Показано, что основным фактором, определяющим сезонную динамику структурно-функциональных показателей эпифитона, являются условия освещенности, зависящие от плотности зарослей рдеста.

Выявлено, что уровень биогенных элементов в окружающей речной воде отвечает за процессы аккумуляции биомассы эпифитона в позднелетний-осенний период при благоприятном световом и гидрологическом режиме.

Установлена связь сезонной динамики численности фитофильной фауны преимущественно с функциональными показателями эпифитона. Депрессия сообщества эпифитона при недостатке света в плотных зарослях рдеста в середине летнего сезона приводит к ограничению пищевых ресурсов и, как следствие, падению численности беспозвоночных.

Пространственное изменение биомассы и видовой структуры эпифитона зависит, главным образом, от скорости течения, определяемой морфометрией русла реки, и в меньшей степени - от концентрации минерального фосфора. При этом выявлены виды-индикаторы водорослей эпифитона, по которым установлен характер антропогенного нарушения на исследованном участке реки Москвы. 6

Практическая значимость работы. Впервые проведен детальный анализ пространственно-временной изменчивости структуры сообщества эпифитона реки Москвы на Potamogeton perfoliatus и получены фактические данные о характере взаимосвязи эпифитона с некоторыми физико-химическими и биологическими факторами среды.

На основании полученных результатов рекомендуется при оценке качества речных вод по структурным характеристикам эпифитона учитывать плотность зарослей высшей водной растительности, от которой зависит степень депрессии эпифитона.

Наиболее приемлемым временным периодом для целей биоиндикации в условиях реки Москвы следует считать заключительный этап в сезонном развитии сообщества эпифитона (август-сентябрь), характеризующийся благоприятным световым режимом и в меньшей степени подвергающийся стрессовому влиянию гидрологических факторов. 7

Заключение Диссертация по теме "Гидробиология", Русанов, Александр Геннадьевич

ВЫВОДЫ.

1. Основными факторами, определяющими сезонную динамику продукции и биомассы водорослей эпифитона на Potamogeton perfoliatus L. в реке Москве, являются световые условия, зависящие от сезонного цикла вегетации рдеста, и скорость течения.

2. В период интенсивной вегетации рдеста (конец мая - июль) лимитирование светом в условиях повышенной скорости течения приводит к формированию устойчивой к механическому нарушению структуры эпифитона с преимущественным доминированием Cocconeis placentula, а При благоприятном световом и гидрологическом режимах уровень биомассы эпифитона определяется концентрацией биогенных элементов. В этих условиях наблюдается увеличение обилия подвижных диатомовых рода Navicula.

3. Увеличение фотосинтетической активности водорослей эпифитона приводит к увеличению метаболической активности бактерий, которая возрастает на заключительных стадиях сезонного развития эпифитона в августе-сентябре.

4. Численность фитофильных беспозвоночных в зарослях рдеста минимальна в период максимальной плотности зарослей макрофитов и

131 при низких значениях биомассы эпифитона. Одновременный рост численности беспозвоночных и продукционных показателей эпифитона наблюдается в позднелетний-осенний период.

5. На участке реки Москвы ниже устья реки Истры наблюдается увеличение общей численности фитофильной фауны, вызванное локальным поступлением взвешенного органического вещества из реки Истры. Интенсивное развитие фитофильной фауны в условиях ограничения светом приводит к снижению видового разнообразия эпифитона. При этом активность беспозвоночных приводит к механическому нарушению слоя эпифитона и сносу с поверхности макрофитов водорослей верхнего слоя.

6. Основным фактором, определяющим пространственную изменчивость биомассы и видовой структуры эпифитона на исследованном участке реки Москвы, является скорость течения. Установлена значимая отрицательная зависимость биомассы эпифитона от скорости течения в интервале от 2 до 60 см-сек1. Увеличение скорости течения приводит к сносу верхнего слабо прикрепленного слоя эпифитона и формированию сообщества прикрепленных диатомовых с доминированием Cocconeis placentula.

7. На нижнем участке реки Москвы при снижении скорости течения и увеличении концентрации минерального фосфора наблюдается подъем биомассы эпифитона. Установлена положительная зависимость биомассы мелкоклеточных г-видов диатомовых водорослей (Achnanthes linearis, Amphora perpussila) от концентрации фосфора.

8. Видовая структура эпифитона на нижнем участке реки Москвы характеризуется доминированием подвижных двушовных диатомовых (Navicula cryptocephala, N cryptocephala var. intermedia, N tripunctata), что, вероятно, обусловлено повышенным уровнем седиментации на данном участке реки.

132

ЗАКЛЮЧЕНИЕ.

Речные системы характеризуются продольным градиентом физических условий среды обитания, основными составляющими которого являются расход воды, ширина речного русла и размер седиментационных частиц (Vannote et al. 1980). Вследствие физических и биологических процессов размер минеральных и органических частиц, взвешенных в толще речной воды и оседающих на дно, постепенно снижается вниз по течению реки. Участки в нижнем течении реки служат местом осаждения и накопления мелкодисперсной фракции взвешенного вещества, сносимого с верхних участков. Значительную роль в седиментации играют макрофиты, в зарослях которых задерживается большое количество взвешенного вещества с высоким содержанием биогенных веществ (Sand-Jensen 1998). В полевых исследованиях отмечается, что на участках рек с высоким уровнем седиментации наблюдается увеличение обилия подвижных диатомовых (Leland et al. 2001), которые способны к активному потреблению неорганических и органических веществ в слое седиментов (Pringle 1990). Поскольку на нижнем участке реки Москвы доминировали подвижные двушовные диатомовые, мы полагаем, что данная видовая структура эпифитона формируется в результате увеличения осаждения взвешенного минерального и органического вещества, поставляемого с верхних участков реки и поступающего с водосборной площади.

Наши исследования показали, что увеличение доступности света в зарослях рдеста приводит к подъему первичной продукции эпифитона, означая увеличение количества автохтонного органического вещества, что согласуется с данными литературы. Каттанео и др. (1998) была установлена отрицательная зависимость биомассы эпифитона и численности фитофильной фауны от плотности зарослей макрофитов. Результаты экспериментальных исследований свидетельствуют о том, что на искусственно затененных речных участках наблюдается снижение численности личинок хирономид за счет недостатка пищевых ресурсов

130 водорослей перифитона (Towns 1981; Fuller et al 1986). Установленная нами корреляционная связь между сезонной динамикой продукционных показателей эпифитона и численностью фауны в зарослях рдеста указывает на наличие предполагаемой трофической зависимости фитофильных беспозвоночных от обилия микроводорослей и бактерий эпифитона. Однако, для более полного обоснования этой зависимости необходимо проведение дальнейших исследований в этом направлении.

Итак, структура и функционирование сообщества речного эпифитона в значительной степени определяется физическими условиями среды обитания. Сезонное развитие эпифитона в основном зависит от световых условий в зарослях рдеста и скорости течения. Поэтому при экологической оценке речных систем динамика пространственно-временной структуры эпифитона должна рассматриваться в контексте комплексного влияния светового и гидролого-гидрохимического режима водотока,

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Русанов, Александр Геннадьевич, Москва

1. Алекин О.А., Семенов А.Д., Скопинцев Б.А. 1973. Руководство по химическому анализу вод суши. Л.: Гидромет. С. 92-107.

2. Бульон В.В. 1994. Закономерности первичной продукции в лимнических экосистемах. Тр. Зоолог, ин-та РАН. Т. 216. Санкт-Петербург: Наука. 219 с.

3. Бурковский КВ. 1992. Структурно-функциональная организация и устойчивость морских донных сообществ. М.: МГУ. 207 с.

4. Васильева И.И., Комаренко JI.E. 1975. Пресноводные диатомовые и синезеленые водоросли водоемов Якутии. М. 270 с.

5. Васильева И. И, Комаренко JI.E. 1978. Пресноводные зеленые водоросли Якутии. М. 281 с.

6. Витвицкая Т.В. 1997. Фитопланктон показатель качества воды реки Москвы. Дисс. к.б.н. М.: МГУ. 155 с.

7. Витвицкая Т.В., Хромов В.М. 1991. Изменение сезонной и пространственной структуры фитопланктонного сообщества р. Москвы. Водные ресурсы. 6: 82-89.

8. Гутелъмахер Б.Л. 1986. Метаболизм планктона как единого целого: трофометаболические взаимодействия зоо- и фитопланктона. Л.: Наука. 155 с.

9. Калугина КС. 1963. Места обитания личинок и смена поколений у семи видов Gliptotendipes Kieff. и Endochironomus Kieff. (Diptera, Chironomidae) из Учинского водохранилища. В кн.: Учинское и Можайское водохранилища. М.: МГУ. 173-212.

10. Кисин КМ., Немальцев А. С. 1978. Результаты изучения трансформации воды Москворецких водохранилищ в русловом участке р. Москвы. В кн.: Комплексные исследования водохранилищ. М.: МГУ. Вып. 4. С. 170-176.

11. Копылов А.И., Крылова КН. 1993. Структура бактериопланктона Рыбинского водохранилища. В кн.: Современное состояние экосистемы Рыбинского водохранилища. Тр. РАН, вып. 67(70). С.-П.: Гидромет. С. 141173.

12. Костикова JI.E. 1979. Некоторые черты перифитона высших водных растений. В кн.: Мелководья Кременчугского водохранилища. Киев: Наук, думка. С. 104-121.133

13. Кузько О. А. 1990. Эпифитные группировки водорослей. В кн.: Гидробиология каналов Украинской ССР. Киев: Наук, думка. С. 77-86.

14. Кузъменко М.И. 1982. Миксотрофизм синезеленых водорослей и его экологическое значение. Киев: Наук, думка. 212 с.

15. Монакое А.В. 1998. Питание пресноводных беспозвоночных. РАН. Ин-т проблем экологии и эволюции им. А. Н. Северцева. М. 318 с.

16. Мостеллер Ф., ТьюкиД. 1982. Анализ данных и регрессия. Вып. 2. М.: Фин. и стат. 238 с.

17. Мэгарран Э. 1992. Экологическое разнообразие и его измерение. М.: Мир. 181 с.

18. Остроумов С.А., Колесников М.П., Русанов А.Г., Хромов В.М. 2000. Характеристика элементного состава взвеси в речной воде, оседающей под действием гравитации и собираемой в донные ловушки для седиментов. В кн.: Водные экосистемы и организмы 2. М. С. 59.

19. Скадовский С.Н., Мессинева М.А., Успенская В.И. 1961. Сезонные количественные изменения в биоценозах обрастаний. В кн.: Биоценозы обрастаний в качестве биопоглотителя. М.: МГУ. С. 143-180.

20. Сладечек В. 1967. Общая биологическая схема качества воды. В кн.: Санитарная и техническая гидробиология. М.: Наука. С. 26-31.

21. Смирнов Н.Н. 1971. Chydoridae фауны мира. Фауна СССР. Ракообразные. Л.: Наука. Т. 1. Вып. 2. 531 с.

22. Сорокин Ю.И. 1970. Определение активности гетеротрофной микрофлоры в океане с применением органического вещества, содержащего С14. Микробиология. Т. 39, вып. 1. С. 149-156.

23. Тюрин Ю.Н, Макаров А.А. 1995. Анализ данных на компьютере. М.: Финансы и статистика. 384 с.

24. Федоров В.Д., Илъяш Л.В., Смирнов Н.А., Сарухан-Бек К.К., Радченко И.Г. 1992. Экология планктона Белого моря. II. Кинетика потребления различных форм углерода фитопланктоном. Биол. Науки. №8. С. 77-90.

25. Федоров В.Д. О методах изучения фитопланктона и его активности. М.: МГУ. 166 с.

26. Федоров В Д., Каниковская А.А. 1986. Изучение сезонных изменений взаимоотношений фито- и бактериопланктона Можайского водохранилища. II. Потребление фито- и бактериопланктоном различных источников углерода. Биол. науки. 7: 70-75.134

27. Хромов В.М., Семин В.А. 1975. Методы определения первичной продукции в водоемах. М.: МГУ. 123 с.

28. Царенко П.М. 1990. Краткий определитель хлорококковых водорослей украинской ССР. АН УССР. Ин-т ботаники им. Н. Г. Холодного. Киев: Наук, думка. 208 с.

29. Щербак В.И. 1998. Фотосинтетическая активность доминирующих видов днепровского фитопланктона. Гидробиол. журн. 34(5): 11-21.

30. Allen H.L. 1969. Chemo-organotrophic utilization of dissolved organic compounds by planktic algae and bacteria in a pond. Int. Revue ges. Hydrobiol. 54 (1): 1-33.

31. Allen H.L. 1971a. Dissolved organic carbon utilization in size-fractionated algal and bacterial communities. Int. Revue ges. Hydrobiol. 56 (5): 731-749.

32. Allen H.L. 1971b. Primary productivity, chemo-organotrophy, and nutritional interactions of epiphytic algae and bacteria on macrophytes in the littoral of a lake. Ecological Monographs. 41 (2): 97-127.

33. Anderson E.L., Welch E.B., Jacoby J.M., Schimek G.M. & Horner R.R. 1999. Periphyton removal related to phosphorus and grazer biomass level. Freshwater Biology. 41 (3): 633-651.

34. Behrendt H. & Opitz D. 1999. Retention of nutrients in river systems: dependence on specific runoff and hydraulic load. Hydrobiologia. 410: 121-133.

35. Belsky A.J. 1986. Does herbivory benefit plants? A review of the evidence. American Naturalist. 127: 870-892.

36. Biggs B.J.F. 1995. The contribution of flood disturbance, cathment geology and land use to the habitat template of periphyton in stream ecosystems. Freshwater Biol. 33: 419-438.

37. Biggs B.J.F. & Close M.E. 1989. Periphyton biomass dynamics in gravel bed rivers: the relative effects of flows and nutrients. Freshwater Biol. 22: 209231.135

38. Biggs B.J.F., GoringD.G. & Nikora V.I. 1998. Subsidy and stress responses of stream periphyton to gradients in water velocity . as a function of community growth form. J. Phycol. 34: 598-607.

39. Borchardt M.A, Hoffman J.P. & Cook P.W. 1994. Phosphorus uptake kinetics of Spirogyra fluviatilis (Charophyceae) in flowing water. J. Phycol. 30: 403-417.

40. Bothwell M.L. 1985. Phosphorus limitation of lotic periphyton growth rates: an intersite comparison using continuous-flow troughs (Thompson River system, British Columbia). Limnology and Oceanography. 30: 527-542.

41. Bothwell M.L. 1988. Growth rate responses of lotic periphytic diatoms to experimental phosphorus enrichment: the influence of temperature and light. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 45(2): 261-270.

42. Bothwell M.L. 1989. Phosphorus-limited growth dynamics of lotic periphytic diatom communities: areal biomass and cellular growth rate responses. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 46: 1293-1301.

43. Brennan A., McLachlan A.J. & Wotton R.S. 1978. Particulate material and midge larvae (Diptera: Chironomidae) in an upland river. Hydrobiologia. 59: 6773.

44. Brown S.-D. 1973. Site variation in littoral periphyton populations: correlation and regression with environmental factors. Int. Revue ges. Hydrobiol. 58(3): 437-461.

45. Bunn S.E., Davies P.M. & Mosisch T.D. 1999. Ecosystem measures of river health and their response to riparian and catchment degradation. Freshwater Biology. 41(2): 333-345.

46. Burkholder J.M. & Sneath R.G. 1984. The seasonal distribution, abundance and diversity of desmids (Chlorophyta) in softwater, north temperate stream. J. Phycol. 20: 159-172.

47. Burkholder J.M. & Wetzel R.G. 1989a. Epiphityc microalgae on a natural substratum in a phosphorus-limited hardwater lake: Seasonal dynamics of community structure, biomass and ATP content. Arch. Hydrobiol. Suppl. 83: 1-56.136

48. Burkholder J.M. & Wetzel R.G. 1989b. Microbial colonization on natural and artificial macrophytes in phosphorus-limited, hardwater lake. J. Phycol. 25: 55-65.

49. Burkholder J.M. & Wetzel R.G. 1990. Epiphytic alkaline phosphatase on natural and artificial plants in an oligotrophic lake: Re-evaluation of the role of macrophytes as a phosphorus source for epiphytes. Limnol. Oceanogr. 35 (3): 736747.

50. Calow P. 1973. The food of Ancylus fluviatilis (Mull.), a littoral stone-dwelling herbivore. Oecologia. 13: 113-133.

51. Carlton R.G. & Wetzel R.G. 1987. Distributions and fates of oxygen in periphyton communities. Can. J. Bot. 65: 1031-1037.

52. Cattaneo A. 1983. Grazing on epiphytes. Limnol. Oceanogr. 28(1): 124-132.

53. Cattaneo A. 1987. Periphyton in lakes of different trophy. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 44: 296-302.

54. Cattaneo A., Galanti G., Gentinetta S. & Romo S. 1998. Epiphytic algae and macroinvertebrates on submerged and floating-leaved macrophytes in an Italian lake. Freshwater Biology. 39: 725-740.

55. Cattaneo A. & KalffJ. 1979. Primary production of algae growing on natural and artifical plants: a study of interactions between epiphytes and their substrate. Limnol. Oceanogr. 24:1031-1037.

56. Cattaneo A. & Kalff J. 1986. The effect of grazer size manipulation on periphyton communities. Oecologia. 69: 612-617.

57. Chessman B.C. 1986. Diatom flora of an Australian river system: spatial patterns and environmental relationships. Freshwater Biology. 16: 805-819.

58. Chessman B.C., Growns I., Currey J. & Plunkett-Cole N. 1999. Predicting diatom communities at the genus level for the rapid biological assessment of rivers. Freshwater Biology. 41(2): 317-331.

59. Chetelat J., PickF.R., Morin A. & Hamilton P.B. 1999. Perithyton biomass and community composition in rivers of different nutrient status. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 56: 561-569.

60. Cooper D.C. 1973. Enhancement of net primary productivity by herbivore grazing in aquatic laboratory microcosms. Limnol. Oceanogr. 18: 31-37.

61. Cuker B.E. 1983a. Competition and coexistence among the grazing snail Lymnaea, Chironomidae, and microcrustacea in an arctic epilithic lacustrine community. Ecology. 64(1): 10-15.137

62. Cuker B.E. 1983b. Grazing and nutrient interactions in controlling the activity and composition of the epilithic algal community of an arctic lake. Limnol. Oceanogr. 28:133-141.

63. Dillon P. J. & Rigler F.H. 1974. The phosphorus-chlorophyll relationship in lakes. Limnology and Oceanography. 19: 767-773.

64. Eichenberger E. & Schlatter A. 1978. The effect of herbivorous insects on the production of benthic algal vegetation in outdoor channels. Verhandlungen der Internationalen Vereinigung fur Theoretische und Angewandte Limnologie. 20: 1806-1810.

65. Elwood B.W. & Nelson D.J. 1972. Periphyton production and grazing rates in a stream measured with a P material balance method. Oikos. 23: 295-303.

66. Elwood J. W., Newbold J.D., Trimble A.F. & Stark R.W. 1981. The limiting role of phosphorus in a woodland stream ecosystem: effects of P enrichment on leaf decomposition and primary producers. Ecology. 62 (1): 146-158.

67. Eminson D. & Moss B. 1980. The composition and ecology of periphyton communities in freshwaters. 1. The influence of host type and external environment on community composition. Br. Phycol. J. 15: 429-446.

68. Fair child G.W. & Lowe R.L. 1984. Artificial substrates which release nutrients: Effects on periphyton and invertebrate succession. Hydrobiologia. 114: 29-37.

69. Fairchild G.W., Lowe R.L. & Richardson W.B. 1985. Algal periphyton growth on nutrient-diffusing substrates: an in situ bioassay. Ecology. 66:465-472.

70. Feminella J.W., Power M.E. & Resh V.H. 1989. Periphyton responses to invertebrate grazing and riparian canopy in three northern California coastal streams. Freshwater Biology. 22: 445-457.

71. Fischer H. & Pusch M. 2001. Comparison of bacterial production in sediments, epiphyton and the pelagic zone of lowland river. Freshwater Biology. 46(10): 1335-1348.

72. Flint R.W. & Goldman C.R. 1975. The effects of a benthic grazer on the primary productivity of the littoral zone of Lake Tahoe. Limnol. Oceanogr. 20: 935-944.

73. Fontaine T.D. Ill & Nigh D.G. 1983. Characteristics of epiphyte communities on natural and artificial submersed lotic plants: Substrate effects. Arch. Hydrobiol. 96: 293-301.138

74. Fuller R.L., Roelofs J.L. & Fry T.J. 1986. The importance of algae to stream invertebrates. J. North Am. Benthol. Soc. 5:290-296.

75. Geesey G.G., Mutch R„ Costerton J.W. & Green R.B. 1978. Sessile bacteria: An important component of the microbial population in small mountain streams. Lirnnol. Oceanogr. 23(6): 1214-1223.

76. Greenwood J.L., Clason T.A., Lowe R.L. & Belanger S.E. 1999. Examination of endopelic and epilithic algal community structure employing scanning electron microscopy. Freshwater Biology. 41(4): 821-829.

77. Grimm N.B, & Fisher S.G. 1986. Nitrogen limitation in a Sonoran Desert stream. J. N. Am. Benthol. Soc. 5: 2-15.

78. Grimm N.B. & Fisher S.G. 1989. Stability of periphyton and macroinvertebrates to disturbance by flash floods in a desert stream. J. N. Am. Benthol. Soc. 8:293-307.

79. Hann B. J. 1991. Invertebrate grazer periphyton interaction in a eutrophic marsh pond. Freshwater Biology. 26: 87-96.

80. Harper M.A. & Harper J.F. 1967. Measurement of diatom adhesion and their relationship with movement. British Phycological Bulletin. 9:195-207.

81. Harrison, P.G. & Durance C.D. 1985. Reductions in photosynthetic carbon uptake in epiphytic diatoms by water-soluble extracts of leaves of Zostera marina. Mar. Biol. 90: 117-119.

82. Hart D.D. 1985. Grazing insects mediate algal interactions in a stream benthic community. Oikos. 44:40-46.

83. Hart D.D. 1987. Experimental studies of exploitative competition in a grazing stream insects. Oecologia (Berlin). 73: 41-47.

84. Hart D.D. & Robinson C.T. 1990. Resource limitation in a stream community: phosphorus enrichment effects on periphyton and grazers. Ecology. 71(4): 1494-1502.

85. Hawkins C.P. & Sedell J.R. 1981. Longitudinal and seasonal changes in functional organization of macroinvertebrate communities in four Oregon streams. Ecology. 62: 387-397.

86. Hawkins C.P., Murphy M.L. & Anderson N.H. 1982. Effects of canopy, substrate composition, and gradient on the structure of the macroinvertebrate communities in Cascade Range streams of Oregon. Ecology. 63:1840-1856.

87. Hellebust J.A. & Lewin J. 1977. Heterotrophic nutrition. In The biology of diatoms. Edited by Werner D. Blackwell Scientific, London, England, pp. 169-197.139

88. Hickman M. & Klarer D.M. 1973. Methods for measuring the primary productivity and standing crops of an epiphytic algal community attached to Scirpus validus Vahl. Int. Revue ges. Hydrobiol. 58(6): 893-901.

89. Hill W.R. & Knight A.W. 1987. Experimental analysis of the grazing interaction between a mayfly and stream algae. Ecology. 68(6): 1955-1965.

90. Hill W.R., Boston H.L. & Steinman A.D. 1992. Grazers and nutrients simultaneously limit lotic primary productivity. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 49: 504512.

91. Hill W.R. & Harvey B.C. 1990. Periphyton responses to higher trophic levels and light in a shaded stream. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 12: 2307-2314.

92. Hill W.R., Ryon M.G. & Schilling E.M. 1995. Light limitation in a stream ecosystem: responses by primary producers and consumers. Ecology. 76: 12971309.

93. Home A.J. & Carmiggelt C.J. W. 1975. Algal nitrogen fixation in California streams: seasonal cycles. Freshwater Biology. 5: 461-470.

94. Horner R.R. & Welch E.B. 1981. Stream periphyton development in relation to current velocity and nutrients. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 38: 449-457.

95. Hudon C. & Bourget E. 1981. Initial colonization of artificial substrate: community development and structure studied by scanning electron microscopy. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 38:1371-1384.

96. Hunter R.D. 1980. Effects of grazing on the quantity and quality of freshwater Aufwuchs. Hydrobiologia. 69:251-259.

97. Huston M. 1979. A general hypothesis of spesies diversity. American Naturalist. 113:81-101.

98. James M.R., Hawesand I. & Weatherhead M. 2000. Removal of sediments and periphyton from macrophytes by grazing invertebrates in the littoral zone of a large oligotrophic lake. Freshwater Biology. 44(2): 311-326.

99. Jones J.R., Smart M.M. & Burroughs J.N. 1984. Factors related to algal biomass in Missouri Ozark streams. Verh. Int. Ver. Limnol. 22:1867-1875.

100. Jones J.I., Moss В., Eaton J.W. & Young JO. 2000. Do submerged aquatic plants influence periphyton community composition for the benifit of invertebrate mutualists? Freshwater Biology. 43(4): 591-604.140

101. JuttnerL, Rothfritz H. & Ormerod S.J. 1996. Diatoms as indicators of river quality in the Nepalese Middle Hills with consideration of the effect of habitat-specific sampling. Freshwater Biology. 36: 475-486.

102. Kairesalo T. 1983. Photosynthesis and respiration within an Equisetum fluviatile L. stand in lake Paajarvi, Southern Finland. Arch. Hydrobiol 96: 317328.

103. Kairesalo T. 1984. The seasonal succession of epiphytic communities within an Equisetum fluviatile L. stand in lake Paajarvi, Southern Finland. Int. Revue ges. Hydrobiol. 69(4): 475-505.

104. Kaplan L.A, Larson R.A. & Bott T.L. 1980. Patterns of dissolved organic carbon in transport. Limnol. Oceanogr. 25:1034-1043.

105. Kaplan L.A. & Bott T.L. 1982. Diel fluctuations of DOC generated by algae and in a piedmont stream. Limnol. Oceanogr. 27: 1091-1100.

106. Kaplan L.A. & Bott T.L. 1983. Microbial heterotrophic utilization of dissolved organic matter in a piedmont stream. Freshwat. Biol. 13:363-377.

107. Kesler D.H. 1981. Grazing rate determination Corynoneura scutellata Winnertz (Chironomidae: Diptera). Hydrobiologia. 80: 63-66.

108. Kilkus S.R., Laperriere J.D. & Bachman R. W. 1975. Nutrients and algae in some central Iowa streams. Journal of the Water Pollution Control Federation. 47: 1870-1879.

109. Klapwijk S.P. 1988. Biological assesment of the water quality in South-Holland (The Netherlands). Int. Revue ges. Hydrobiol 73 (5): 481-509.

110. Krammer K. & Lange-Bertalot H. 1986. Baeillariophyceae. Band 2/1. In: Ettle H., Gerloff J., Heynig H. & Mollenhauer D. (eds.): SuBwasser von Mitteleuropa. - Gustav Fischer Verlag, Stuttgart/Jena, 876 pp.

111. Krammer К & Lange-Bertalot H. 1988. Bacillariophyceae. In: Pascher B.A. (ed.): SuBwasser von Mitteleuropas Band 2/3, 536 p. Stuttgart, Jena.

112. Krammer K. & Lange-Bertalot H. 1991. Bacillariophyceae. In: Pascher

113. B.A. (ed.): SuBwasser von Mitteleuropas Band 2/3, 576 p.; Band 2/4, 437 p. Stuttgart, Jena.

114. Lamberti G.A., Feminella J.W. & Resh V.H. 1987. Herbivory and intraspecific competition in a stream caddisfly population. Oecologia (Berlin). 73: 75-81.

115. Lamberti G.A., Gregory S.V., Ashkenas L.R., Steinman A.D. & Mclntire

116. C.D. 1989. Productive capacity of periphyton as a determinant of plant-herbivore interactions in streams. Ecology, 70(6): 1840-1856.141

117. Lamberti G.A. & Resh V.H. 1983. Stream periphyton and insect herbivores: an experimental study of grazing by a caddisfly population. Ecology. 64(5): 11241135.

118. Lamberti G.A. & Steinman A.D. 1997. A comparison of primary production in stream ecosystems. J. N. Am. Benthol. Soc. 16: 95-104.

119. Leland H.V. & Porter S.D. 2000. Distribution of benthic algae in the upper Illinois River basin in relation to geology and land use. Freshwater Biology. 44(2): 279-301.

120. Leland H. V., Brown L.R. & Mueller D.K. 2001. Distribution of algae in the San Joaquin River, California, in relation to nutrient supply, salinity and other environmental factors. Freshwater Biology. 46(9): 1139-1167,

121. Lewin J.C. & Lewin R.A. 1960. Auxotrophy and heterotrophy in marine littoral diatoms. Canadian Journal of Microbiology. 6:127-134.

122. Lobo E.A., Katoh K. & Aruga Y. 1995. Response of epilithic diatom assemblages to water pollution in rivers in Tokyo metropolitan area, Japan. Freshwater Biology. 34:191-204.

123. Lock M.A. & John P.H. 1979. The effect of flow patterns on uptake of phosphorus by river periphyton. Limnol. Oceanogr. 24(2): 376-383.

124. Lock M.A., Wallace R.R., Costerton J.W., Ventullo R.M., & Charlton S.E. 1984. River epilithon: Toward a structural-functional model. Oikos. 42: 10-22.

125. Lohman K., Jones J.R. & Perkins B.D. 1992. Effects of nutrient enrichment and flood frequency on periphyton biomass in northern Ozark streams. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 49:1198-1205.

126. Lubchenco J. & Gaines S.D. 1981. A unified approach to marine plant-herbivore interactions. I. Populations and communities. Annual Review of Ecology and Systematics. 12: 405-437.

127. Mackey A.P. 1977. Quantitative studies on larval Chironomidae (Diptera) of the Rivers Thames and Kennet, 3. The Nuphar zone. Arch. Hydrobiol. 79: 62102.

128. Marcus M.D. 1980. Periphytic community response to chronic nutrient enrichment by a reservoir discharge. Ecology. 61(2): 387-399.

129. Marker A.F.H. 1976a. The benthic algae in some streams in southern England. I. Biomass of the epilithon in some small streams. J. Ecology. 64: 343358.142

130. Marker A.F.H. 1976b. The benthic algae in some streams in southern England. II. The primary productivity of the epilithon in a small chalk stream. J. Ecology. 64: 359-373.

131. Marks J.C. & Lowe R.L. 1989. The independent and interactive effects of snail grazing and nutrient enrichment on structuring periphyton communities. Hydrobiologia. 185: 9-17.

132. Mason C.F. & Bryant R.J. 1975. Periphyton production and grazing by chironomids in Alderfen Broad, Norfolk. Freshwater Biology. 5:271-277.

133. McAuliffe J.R. 1984. Resource depression by a stream herbivore: effects on distributions and abundances of other grazers. Oikos. 42: 327-333.

134. McDowell W.N. 1985. Kinetics and mechanisms of dissolved organic carbon retention in a headwater stream. Biogeochemistry. 1: 329-352.

135. Mclntire C.D. 1966. Some effects of current velocity on periphyton communities in laboratory streams. Hydrobiologia. 27: 559-570.

136. Mclntire C.D. 1968. Structural characteristics of benthic algal communities in laboratory streams. Ecology. 49: 520-537.

137. Mclntire C.D. 1973. Periphyton dynamics in laboratory streams: a simulation model and its implications. Ecol. Monogr. 43: 399-420.

138. Mclntire C.D. & Phinney H.K. 1965. Laboratory studies of periphyton production and community metabolism in lotic environments. Ecol. Monogr. 35: 237-258.

139. McLachlan A.J., Brennan A. & Wotton R.S. 1978. Particle size and chironomid (Diptera) food in upland river. Oikos. 31: 247-252.

140. Minshall G.W. 1978. Autotrophy in stream ecosystems. Bioscience. 28: 767-771.

141. Monakov A. V. 1972. Review of studies on feeding of aquatic invertebrates conducted at the Institute of Biology of Inland Waters, Academy of Science, USSR. Journal of the Fisheries Research Board of Canada. 29: 363-383.

142. Moore J.W. 1977. Some factors effecting algal densities in a eutrophic farmland stream. Oecologia. 29: 257-267.

143. Morin A. & Cattaneo A. 1992. Factors affecting sampling variability of freshwater periphyton and the power of periphyton studies. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 49:1695-1703.

144. Mosisch T.D., Bunn S.E. & Davies P.M. 2001. The relative importance of shading and nutrients on algal production in subtropical streams. Freshwater Biology. 46(9): 1269-1278.143

145. Mulholland P. J., Steinman A.D., Palumbo A. V, Elwood J. W. & Kirschtel D.B. 1991. Role of nutrient cycling and herbivory in regulating periphyton communities in laboratory streams. Ecology. 72(3): 966-982.

146. Murphy M.L. 1984. Primary production and grazing in freshwater and intertidal reaches of coastal stream, Southeast Alaska. Limnol. Oceanogr. 29(4): 805-815.

147. Nather Khan I.S.A. 1991. Effect of urban and industrial wastes on species diversity of the diatom community in a tropical river, Malaysia. Hydrobiologia. 224: 175-184.

148. Newbold J.D., Elwood J.W., O'Neill R.V. & Van Winkle W. 1981. Measuring nutrient spiralling in streams. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 38: 860-863.

149. Newbold J. D., Elwood J.W., O'Neill R.V. & Sheldon A.L. 1983. Phosphorus dynamics in woodland stream ecosystem: a study of nutrient spiralling. Ecology. 64(5): 1249-1265.

150. Newbold J.D., Mulholland PJ., Elwood J.W. & O'Neill R.V. 1982. Organic carbon spiralling in stream ecosystems. Oikos. 38:268-272.

151. Patrick R. 1970. Benthic stream communities. Am. Sci. 58: 546-549.

152. Patrick R. & Reimer C.W. 1966. The Diatoms of the United States Exclusive of Alaska and Hawaii. Proc. Phila. Acad. Nat. Sci. Monogr. 13 (1), 688 pp.

153. Patrick R. & Reimer СЖ 1975. The Diatoms of the United States Exclusive of Alaska and Hawaii. Proc. Phila. Acad. Nat. Sci. Monogr. 13 (2), 213 pp.

154. Perrin С J., Bothwell M.L. & Slaney P. A. 1987. Experimental enrichment of a coastal stream in British Columbia: effects of organic and inorganic addition on autotrophic periphyton production. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 44: 1247-1256.

155. Peterson B.J., Deegan L., Helfrich J. et al 1993. Biological responses of a tundra river to fertilization. Ecology. 74: 653-672.

156. Peterson B.J., Hobbie J.E., Corliss T.L. & Kriet K. 1983. A continuous-flow periphyton bioassay: test of nutrient limitation in a tundra stream. Limnology and Oceanography. 28: 583-591.

157. Poff N.L. & Ward J.V. 1989. Implications of streamflow variability and predictability for lotic community structure: a regional analysis of streamflow patterns. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 46:1805-1818.

158. Pringle C.M. 1987. Effects of water and substratum nutrient supplies on lotic periphyton growth: an integrated bioassay. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 44: 619-629.

159. Pringle C.M. 1990. Nutrient spatial heterogeneity: effects on community structure, physiognomy, and diversity of stream algae. Ecology. 71(3): 905-920.

160. Pringle СМ., Paaby-Hansen P„ Vam P.D. & Goldman CR, 1986. In situ nutrient assays of periphyton growth in a lowland Costa Rican stream. Hydrobiologia. 134: 207-213.

161. Redfield A.C., Ketchum B.H. & Richards F.A. 1963. The influence of organisms on the composition of sea-water. In M. N. Hill (ed.), The Composition of Sea Water: Comparative and Descriptive Oceanography. Interscience, N.Y.pp. 26-27.

162. Reisen W.K. & Spencer D.J. 1970. Succession and current demand relationships of diatoms on artificial substrates in Prater Creek, South Carolina. J. Phycol. 6: 117-121.

163. Reiter M.A. & Carlson R.E. 1986. Current velocity in streams and the composition of benthic algal mats. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 43:1156-1162.

164. Rempel L.L., Richardson J.S. & Healey M.C. 2000. Macroinvertebrate community structure along gradients of hydraulic and sedimentary conditions in a large gravel-bed river. Freshwater Biology. 45(1): 57-73.

165. Reynolds C.S. 1984. The ecology of freshwater phytoplankton. Cambridge University Press, N.Y. pp. 384.

166. Riber H.H. & Wetzel R.G. 1987. Boundary-layer and internal diffusion effects on phosphorus fluxes in lake periphyton. Limnol. Oceanogr. 32: 11811194.

167. Rinke K., Robinson СЛ. & Uehlinger U. 2001. A note on abiotic factors that constrain periphyton growth in alpine glacier streams. Int. Revue ges. Hydrobiol. 86(3): 361-366.

168. Rhee G.-Y. 1978. Effects ofN:P atomic ratios and nitrate limitation on algal growth, cell composition, and nitrate uptake. Limnology and Oceanography. 23(1): 10-25.145

169. Robinson C.T. & Rushforth S.R. 1987. Effects of physical disturbance and canopy cover on attached diatom community structure in an Idaho stream. Hydrobiologia. 154:49-59.

170. Romani A. & Sabater S. 1999. Effect of primary producers on the heterotrophic metabolism of a stream biofilm. Freshwater Biology. 41: 729-736.

171. Rooke J.B. 1986. Seasonal aspects of the invertebrate fauna of three species of plants and rock surfaces in a small stream. Hydrobiologia. 134: 81-87.

172. Rooke J.B. 1984. The invertebrate fauna of four macrophytes in a lotic system. Freshwater Biol. 14: 507-513.

173. Rosemond A.D. 1993. Interactions among irradiance, nutrients, and herbivores constrain a stream algal community. Oecologia. 94: 585-594.

174. Rosemond A.D., Mulholland P.J. & Elwood J.W. 1993. Top-down and bottom-up control of stream periphyton: effects of nutrient and herbivores. Ecology. 74(4): 1264-1280.

175. Sand-Jensen K. & Sonnergad M 1981. Phytoplankton and epiphytic development and their shading effect on submerged macrophytes in lakes of different nutrient status. Int. Revue ges. Hydrobiol. 66: 529-552.

176. Sand-Jensen K. 1998. Influence of submerged macrophytes on sediment composition and near-bed flow in lowland streams. Freshwater Biology. 39: 663679.

177. Schelske C.L. & Stoermer E.F. 1971. Eutrophication, silica depletion, and predicted changes in algal quality in Lake Michigan. Science. 173: 423-424.

178. Schindler D.W. 1977. Evolution of phosphorus limitation in lakes. Science. 195: 260-262.

179. Schumacher G.L. & Whitford L.A. 1965. Respiration and 32P uptake in various species of freshwater algae as affected by a current J. Phycol. 1:78-80.146

180. Scrimgeour G.L. & Winterbourn M.J. 1989. Effects of floods on epilithon and benthic maeroinvertebrate populations in an unstable New Zealand river. Hydrobiologia. 171: 33-44.

181. Skorik L.V., Vladimirova K.S., Yenaki G.A. & Palamarchuk I.K. 1972. Organic matter in Kiev Reservoir soil and its role in the development of benthic algae. Hydrobiologia. 8: 63-66.

182. Sperling J.A. & Hale G.M. 1973. Patterns of radiocarbon uptake by thermophilic blue-green alga under varying conditions of incubation. Limnology and Oceanography. 18:658-662.

183. Steinman A.D., Mclntire C.D., Gregory S.V., Lamberti G.A. & Ashkenas L.R. 1987. Effects of herbivore type and density on taxonomic structure and physiognomy of algal assemblages in laboratory streams. J. N. Am. Benthol. Soc. 6:175-188.

184. Steinman A.D., Mulholland P.J. & Hill W.R. 1992. Functional responses associated with growth form in stream algae. Journal of the North American Benthological Society. 11:229-243.

185. Stevenson R.J. & Stoermer E.F. 1982. Seasonal abundance patterns of diatoms on Cladophora in Lake Huron. J. Gt. Lakes Res. 8: 169-183.

186. Stevenson R.J. 1996. The stimulation and drag of current. In Algal ecology: Freshwater benthic ecosystems. Edited by R.J. Stevenson, M.L. Bothwell and R.L. Lowe. Academic Press, San Diego,Calif, pp. 321-340.

187. Stock M.S. & Ward A.K. 1989. Establishment of a bedrock epilithic community in a small stream: microbial (alga and bacterial) metabolism and physical structure. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 46: 1874-1883.

188. Stockner J.G. & Shortreed K.R.S. 1976. Autotrophic production in Carnation Creek, a coastal rainforest stream on Vancouver Island, British Columbia. Journal of the Fisheries Research Board of Canada. 33: 1553-1563.

189. Stockner J.G. & Shortreed K.R.S. 1978. Enhancement of autotrophic production by nutrient addition in a coastal rainforest stream on Vancouver Island. Journal of the Fisheries Research Board of Canada. 35: 28-34.

190. Tett P., Gallegos C., Kelly M.G., Hornberger G.M. & Cosby GJ. 1978. Relationships among substrate, flow and benthic microalgal pigment density in the Mediums River, Virginia. Limnol. Oceanogr. 3 (4): 785-797.

191. Tilman D. 1993. Species richness of experimental productivity gradients: How important is colonization limitation? Ecology. 74:2179-2191.

192. Towns D.R. 1981. Effects of artificial shading on periphyton and invertebrates in a New Zealand stream. N.Z. J. Mar. Freshwater Res. 15: 185-192.

193. Underwood G.J.C. & Thomas J.D. 1990. Grazing interactions between pulmonate snails and epiphytic algae and bacteria. Freshwater Biology. 23: 505522.

194. Vannote R.L., Minshall G. W., Cummins K. W., Sedell J.R. & Cushing C.E. 1980. The river continuum concept. Can. J. Fish. Aquat, Sci. 37:130-137.

195. Velju M.I. & Albright L.J. 1986. Microscopic enumeration of attached marine bacteria of seawater, marine sediments, fecal matter, and kelp samples following pyrophosphate and ultrasound treatments. Can. J. Microbiol. 32 (2): 121125.

196. Wallace J.B., Webster JR. & Woodall W.R. 1977. The role of filter feeders in flowing waters. Archiv fur Hydrobiologie. 79: 506-532.

197. Webster J.R. & Patten B.C. 1979. Effects of watershed perturbation on stream potassium and calcium dynamics. Ecological Monographs. 19: 51-72.

198. Welch E.B., Jacoby J.M., Horner R.R. & Seeley MR. 1988. Nuisance biomass levels of periphytic algae in streams. Hydrobiologia. 157: 161-168.

199. Welch E.B., Horner R.R. & Patmont C.R. 1989. Prediction of nuisance periphytic biomass: a management approach. Water Res. 23: 401-405.

200. Wellnitz T.A. & Ward J.V. 1998. Does light intensity modify the effect mayfly grazers have on periphyton? Freshwater Biology. 39: 135-149.

201. Wetzel R.G. 1964. A comparative study of the primary productivity of higher aquatic plants, periphyton, and phytoplankton in a large, shallow lake. Int. Revue ges. Hydrobiol. 49 (1): 1-64.148

202. Wetzel R.G. 1969. Excretion of dissolved organic compounds by aquatic macrophytes. Bioscience. 19: 539-540.

203. Whitford L.A. 1960. Current effect and the growth of fresh-water algae. Trans. Am. Microsc. Soc. 79: 302-309.

204. Whitford L.A. & Schumacher G.L. 1961. Effect of current on mineral uptake and respiration by freshwater algae. Limnol. Oceanogr. 6: 423-425.

205. Whitford L.A. & Schumacher G.L. 1964. Effect of current on respiration and mineral uptake in Spirogyra and Oedogonium. Ecology. 45:168-170.

206. Wiegert R.G. & Owen D.F. 1971. Trophic structure, available resources and population density in terrestrial vs. aquatic ecosystems. Journal of Theoretical Biology. 30: 69-81.

207. Winterbourn M.J. 1990. Interactions among nutrients, algae and invertebrates in a New Zealand mountain stream. Freshwater Biology. 23: 463474.

208. Wong S.L. & Clark B. 1976. Field determination of the critical nutrient concentrations for Cladophora in streams. J. Fish. Res. Boad Can. 33: 85-92.

209. Wright R.T. & Hobbie J.E. 1965. The uptake of organic solutes in lake water. Limnol. Oceanogr. 10: 22-28.

210. Wright R.T. & Hobbie J.E. 1966. The use of glucose and acetate by bacteria and algae in aquatic ecosystems. Ecology. 47: 447-464.

211. Wuhrmann K. 1974. Some problems and perspectives in applied limnology. Mitt. Ver. Theor. Angew. Limnol. Verh. 20: 324-402.

212. Wuhrmann K. & Eichenberger E. 1975. Experiments on the effects of inorganic enrichment of rivers on periphyton primary production. Int. Ver. Theor. Angew. Limnol. Verh. 19: 2028-2034.

213. YangJ.-R, Basu B.K., Hamilton P.B. & Pick F.R. 1997. The development of a true riverine phytoplankton assemblage along a lake-fed lowland river. Arch. Hydrobiol. 140(2): 243-260.149