Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Пространственная организация хромосомных территорий в ядрах нормальных и анеуплоидных клеток

ВАК РФ 03.00.03, Молекулярная биология

Автореферат диссертации по теме "Пространственная организация хромосомных территорий в ядрах нормальных и анеуплоидных клеток"

На правах рукописи УДК 576 315 42

ПЕТРОВА НАТАЛЬЯ ВАЛЕНТИНОВНА

ПРОСТРАНСТВЕННАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ ХРОМОСОМНЫХ ТЕРРИТОРИЙ В ЯДРАХ НОРМАЛЬНЫХ И АНЕУПЛОИДНЫХ КЛЕТОК

Специальность 03 00 03 - молекулярная биология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Москва 2007

003060794

Работа выполнена в лаборатории Структурно-функциональной организации хромосом Института биологии гена РАН

Научный руководитель. доктор биологических наук

Яровая О В

Официальные оппоненты: доктор биологических наук

Георгиева С Г

кандидат биологических наук Карпова О И

Ведущая организация* Институт биоорганической химии

им М М Шемякина и Ю А Овчинникова РАН

Защита диссертации состоится 30 мая 2007 года в ■{■{час на заседании Диссертационного совета Д 002 037 01 при Институте биологии гена РАН по адресу 119334, Москва, ул Вавилова, д 34/5

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института молекулярной биологии им В А Энгельгардта РАН по адресу 119991, Москва, ул Вавилова, д 32

Автореферат разослан 27- апреля 2007 года

Ученый секретарь диссертационного совета

Грабовская Л С

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы

Хотя геном человека и целого ряда других организмов расшифрован, мы еще очень далеки от полного понимания того, как он функционирует В последнее время фокус исследований, посвященных принципам регуляции экспрессии генов, смещается от детального анализа молекулярных механизмов, контролирующих активность отдельных генов, к глобальному изучению общей картины структурно-функциональной организации генома в пространственном и временном отношении Становится все более и более очевидным, что слаженное и оперативное функционирование генома не может обеспечиваться только регуляторными элементами, присутствующими в ДНК Огромную роль в регуляции экспрессии генов и реализации генетических программ играют эпигенетические механизмы (метилирование ДНК, модификации гистонов, замещение нормальных гистонов на их вариантные формы) и пространственная организация клеточного ядра Активное развитие микроскопии и усовершенствование экспериментальных подходов позволили установить, что внутреннее пространство ядра - это не беспорядочная смесь различных составляющих, а четко структурированная система, отдельные компоненты которой связаны друг с другом сложными иерархическими взаимоотношениями

Хромосомы на любой стадии клеточного цикла представляют собой более или менее компактные структуры, занимающие отдельные не перекрывающиеся друг с другом области ядерного пространства, получившие название хромосомных территорий (ХТ) Хромосомные территории - не просто способ компактной упаковки больших объемов хроматина в ограниченном ядерном пространстве, но и, главным образом, аппарат, приспособленный для обеспечения слаженного функционирования генома Динамичная структура хромосомных территорий обеспечивает доставку нужных генов к системам транскрипции, репарации и сплайсинга, в то время как неактивные гены остаются компактно упакованными во внутреннем пространстве хромосомной территории Локализация генов внутри хромосомной территории, взаимное расположение хромосомных территорий и позиционирование их относительно центра ядра имеют важное значения для проявления активности тех или иных генов

Несмотря на то, что в последние 15 лет принципы организации хромосомных территорий очень активно изучались, многое еще остается непонятным Установлены некоторые закономерности расположения и организации хромосом в интерфазе клеточного цикла Так, согласно многочисленным наблюдениям локализация ХТ внутри ядра определенным образом связана с генной плотностью Наблюдается тенденция, согласно

которой более активные участки генома располагаются ближе к центру ядра, а менее активные сдвинуты к периферии Однако ядерные структуры, определяющие и поддерживающие такой порядок, все еще остаются не охарактеризованными То же можно сказать и о значимости установленных закономерностей для правильного функционирования генома

Все вышесказанное определяет актуальность темы настоящей диссертационной работы, которая посвящена изучению структур и механизмов, поддерживающих упорядоченную пространственную организацию хромосом в период интерфазы в ядрах фибробластов человека, а также изучению нарушений этой организации, возникающих при появлении дополнительных копий хромосом

Цели и задачи исследования

Основной целью работы являлось выяснение роли ядерного матрикса в поддержании специфической пространственной организации хромосом в ядре, а также анализ изменений этой пространственной организации при полисомии по Х-хромосоме Для реализации поставленной цели были определены следующие экспериментальные задачи

• проверить, сохраняются ли характерные позиции хромосомных территорий в ядре при удалении большей части хроматина и РНК,

• выяснить, занимают ли дополнительные копии Х-хромосомы при полисомии ХХХХУ такие же позиции в ядрах анеуплоидных клеток, как единственная Х-хромосома в ядрах нормальных мужских фибробластов,

• определить, влияет ли появление дополнительных копий Х-хромосом на положение других хромосом на примере хромосомы 1

Научная новизна и практическое значение работы

В работе впервые было показано, что характерные радиальные позиции центромерных участков хромосом, выбранных в качестве маркеров позиций целых хромосомных территорий, в ядрах первичных фибробластов человека не изменяются после удаления из них большей части хроматина Более того, продемонстрировано, что дополнительное удаление из ядра РНК также не оказывает влияния на характер распределения хромосомных территорий внутри клеточного ядра Полученные результаты позволили опровергнуть ранее существовавшую гипотезу о том, что простого электростатического отталкивания отрицательно заряженных хромосом достаточно для поддержания упорядоченной организации ядерного пространства, и продемонстрировать ключевую роль ядерного матрикса в поддержании специфических радиальных позиций хромосомных территорий

При изучении положений хромосом в ядрах клеток с генотипом ХХХХУ показано, что дополнительные копии Х-хромосомы инактивированы, компактно упакованы и сдвинуты к периферии ядра Кроме того, показано, что в клетках, содержащих три дополнительные копии Х-хромосомы, изменяются позиции активной копии Х-хромосомы и хромосомы 1, не затронутой полисемией, что может иметь определенное значение при развитии патологических эффектов, вызванных этим видом полисомии

Результаты данной работы вносят существенный вклад в развитие представлений о пространственной организации ядра, обеспечивающей надлежащее функционирование генома Кроме того, они позволяют по-новому взглянуть на причины возникновения наследственных заболеваний человека, связанных с появлением дополнительных копий хромосом

Апробация работы.

Результаты диссертационной работы были представлены на 6-ой международной конференции по молекулярной генетике соматических клеток (Звенигород, 2005) и на 10-ой международной конференции молодых ученых "Биология - наука XXI века" (Пущино, 2006) (два сообщения)

Публикации.

По материалам диссертации опубликовано 5 печатных работ Из них статей - 2, материалов конференций - 3

Структура и объем работы.

Диссертация изложена на 96 страницах, содержит 14 рисунков и 1 таблицу и включает следующие разделы «Введение», «Обзор литературы», «Материалы и методы», «Результаты и обсуждения», «Выводы» и «Список литературы» (110 цитированных работ)

ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Роль ядерного матрикса в поддержании специфической пространственной организации хромосом в период интерфазы.

К настоящему времени установлено, что в интерфазном ядре хромосомы занимают ограниченные, не перекрывающиеся друг с другом области ядерного пространства, получившие названия хромосомных территорий (Schardm, 1985, Cremer, 1993) Хромосомные территории разных хромосом разделены так называемым межхроматиновым доменом (ICD, mterchromatm domain compartment) Как было продемонстрировано в различных исследованиях, каждая хромосома в интерфазе занимает определенное радиальное положение относительно центра ядра Так, хромосомы с большим количеством генов обычно располагаются ближе к центру ядра, в то время как для хромосом, содержащих относительно мало генов, характерны периферические позиции (Croft, 1999)

Однако до сих пор не выяснено, какими механизмами создается и поддерживается такая организация хромосом в интерфазе Одно из предположений заключается в том, что простого электростатического отталкивания отрицательно заряженных хромосомных территорий достаточно для поддержания необходимого расстояния между ними и формирования таким образом межхроматинового домена (Cremer, 1993, 2000) Согласно альтернативной гипотезе целостная ядерная архитектура, включающая хромосомные территории и межхроматиновый домен, поддерживается ядерным матриксом (Razm, 1995, Ma, 1999) Чтобы выяснить, какая из этих гипотез верна, мы решили проверить, изменяется ли относительное расположение интерфазных хромосом после удаления из ядер первичных фибробластов человека большей части хроматина

Поскольку сложно выявить остатки хромосомных территорий после удаления большей части ДНК, мы сравнивали относительные позиции центромер хромосом X и 19 в необработанных ядрах и ядрах, из которых была удалена большая часть хроматина Были выбраны именно эти хромосомы, потому что, как сообщалось ранее, они располагаются в разных ядерных слоях Хромосома X в ядрах первичных фибробластов занимает преимущественно периферическую позицию, в то время как хромосома 19 располагается ближе к центру ядра (Croft et al, 1999, Bolzer et al, 2005)

1. Анализ расположения центромер хромосом X и 19 в ядрах первичных фибробластов человека.

Чтобы проверить, отличаются ли радиальные позиции центромер хромосом X и 19 так же существенно, как позиции целых хромосомных территорий, мы проанализировали расположение этих центромер в ядрах первичных фибробластов человека Центромеры выявлялись методом флуоресцентной гибридизации in situ (FISH) с пробами к альфоидным сателлитам, специфичным для хромосом X и 19 (рис 1 Г, Д) Биотинилированная проба к альфоидному сателлиту, специфичному для хромосомы 19, была любезно предоставлена Ю Б Юровым Фрагмент а-сателлитного повтора, специфичного для Х-хромосомы, размером примерно 1200 по, был получен путем ПЦР-амплификации соответствующего участка геномной ДНК человека и клонирован в векторе pGEM-T Easy (Promega) Этот фрагмент использовали для синтеза пробы, меченой дигоксигенином

Распределение гибридизационных сигналов анализировалось на плоских препаратах, поскольку ранее было показано, что такой тип анализа адекватно отражает положение хромосомных территорий в относительно плоских и длинных ядрах фибробластов (Croft et al, 1999, Boyle et al, 2001) Площадь ядра была поделена на 5 концентрических зон с границами, находящимися на расстоянии равном 20, 40, 60 и 80% радиуса ядра (расстоянии от центра масс до границы ядра) (рис 1 А-В) Распределение сигналов между этими зонами определялось не менее чем в 150 случайно выбранных клетках с помощью специально созданной для этого компьютерной программы Nucleus Marker, способной определять относительное удаление гибридизационного сигнала от центра ядра (в процентах от длины вектора, проведенного через сигнал от центра ядра до границы ядра) Результаты анализа, представленные в виде диаграммы, отражают долю сигналов, расположенных в каждой зоне (рис 1 Е, Ж) Поскольку границы этих концентрических зон были установлены на равных расстояниях друг от друга, площадь зон линейно увеличивалась по направлению от центра к границе ядра Если бы сигналы распределялись внутри ядра случайным образом, то их количество в каждой зоне определялось бы исключительно площадью зоны и, следовательно, линейно возрастало бы по мере удаления от центра ядра Полученные распределения гибридизационных сигналов сравнивали с теоретически вычисленным случайным равномерным распределением Очевидно, что распределение центромер хромосом X и 19 не является случайным Значимость этого заключения была подтверждена путем статистического анализа с использованием критерия согласия у} Распределение внутри ядра как Х-хромосомы, так и хромосомы 19 статистически значимо отличается от случайного равномерного Уровень значимости р<0,001 Это означает, что вероятность

относительное удаление относительное удаление

от центра ндра,% от центра ядра,%

Рисунок !. Анализ прост ран етвсщщгО распределения центромер хромосом X и 19 I) ядрах нормальных фнбробластов человека.

А-В: Экспериментальный подход, использованный для определения положения сигналов внутри ядра. (Л) ядра, окрашенные ОЛГЧ; (Ь) гнбридизациоиные сшиии; (В) совмещение А и Б н разбиение площади ядра на 5 концентрических слоев. Г, Д: Ядра первичных фнбробластов, в которых выявлено положение ценромер хромос-ом X (Г) и 19 (Д): ядра окрашены ОЛР1. гпбриднзаниоипые сигналы показаны черными точками. К, Ж: Распределение пел громе р хромосом X (Е) и 19 (Ж) внутри ядра к сравнении со случайным равномерным распределением; белыми прямоугольниками показано наблюдаемое распределение сигналов между 5 зонами, упомянутыми выше; черные прямоугольники отражают теоретически вычисленное случайное распределение, обозначено тонкими вертикальными линиями.

ошибки составляет менее 0,1% Центромеры хромосомы 19 занимает более центральные позиции по сравнению с центромерами Х-хромосомы В среднем центромеры 19 и X-хромосомы удалены от центра ядра Соответственно на 50 4% и 60 9% (относительно радиуса ядра) Эти результаты в целом согласуются с данными, полученными ранее другими авторами (Croft et al, 1999, Boyle et al ,2001 Bolzer et al, 2005)

2. Характерные радиальные позиции центромер хромосом X и 19 поддерживаются ядерным матриксом.

Чтобы выяснить, зависит ли пространственная организация интерфазных хромосом от присутствия в ядре большого количества хроматина (то есть, существенно ли электростатическое отталкивание хромосомных территорий друг от друга для поддержания обнаруженной разницы в расположении центромер хромосом 19 и X), аналогичный анализ был проведен на препаратах in situ ядерных матриксов Эти препараты были получены посредством обработки ДНКазой I или ДНКазой II пермеабилизированных клеток, предварительно выращенных на предметных стеклах, и последующей экстракции отщепившихся фрагментов хроматина 0,5М раствором NaCl При такой экстракции удаляется гистон HI (что обеспечивает возможность солюбилизации отщепившихся фрагментов хроматина), но гистоны нуклеосомного ядра остаются связанными с ДНК Поэтому ассоциированная с матриксом ДНК остается организованной в нуклеосомы Это обеспечивает сохранение на хроматине такого же электростатического потенциала, как и в интактных ядрах

Количество оставшейся в ядре ДНК оценивали по понижению уровня флуоресценции DAPI (4'6-диамидо-2-фенилиндол), которым ядра окрашивались до и после расщепления и экстракции хроматина (рис 2 А-В) Эти приблизительные оценки мы подтвердили, определив в дополнительных экспериментах относительное количество ДНК, оставшееся в кислотонерастворимой фракции после переваривания и экстракции отщепившегося хроматина из ядра Для этого ДНК была помечена путем включения трития при культивировании клеток на среде с добавлением тимидина, меченого тритием, в течение 2024 часов

После интенсивной обработки ДНКазой примерно 60-80% ДНК удалялось из ядер при последующей экстракции 0,5 М раствором NaCl Однако, несмотря на удаление значительной части ДНК, ядра сохранили свою форму и размеры В приготовленных таким образом in situ ядерных матриксах выявляли центромеры хромосом 19 и X (методом

# *

#

р С, О

S 3

s о е "Э

— с

s Я

G i

1 к

С"1 3 1

" л

at

X s

f *

Ol Kl

fJ Cl й .i1

I

S

и g

S S1

Ol

s g

a 2

"a ■6 о и s

ti

с 1 2 я

ТЗ g

о £

>rj О

s g

1= о

2 S

£ S

I ь В s

~7>. О

íi: Ol "TÍ3

■а я

о '

2 „

с -

з: "а ^

s a tr s x-N

S чз л = »

5 -o g ~ -g

S

2 о X

w — v n s

№

0 s £ 2 g

£ w a о S

1 s I ^ § a ^ ^ £ s: o w E

О С CC ÇS Ci

■3 s

я 3

S £

s ч

s >

S a к в

3 -

Я =

ç "5

с g

т. = tí -

f? --

« —

z -Er

' ti

«i

G: ей

3 S

EJ О

00

ч »

5 а

в т

■о о

ai п>

я> £

Й *

Ö I

"О о

Ü1 (Ъ

относительное количество сигналов, %

относительное количество сигналов, %

иммунофлуоресцентной гибридизации с пробами, узнающими специфические для этих хромосом последовательности альфоидного сателлита) (рис 2 Г, Д) После этого не менее чем в 150 случайно выбранных ядрах радиальные позиции этих центромер определялись таким же способом, как и в эксперименте с неэкстрагированными ядрами Результаты этого анализа представлены на рис 2 Е, Ж

Центромеры хромосомы 19 сохранили свое более центральное расположение, по сравнению с центромерами Х-хромосомы Среднее расстояние от центромеры до центра ядра составило 48 3% для хромосомы 19 и 62 6% для Х-хромосомы (относительно радиуса ядра) Эти значения и распределение центромер в целом очень сходны с данными, полученными на необработанных ядрах Проведенный статистический анализ (х2-тест) показал, что полученные экспериментальные данные не противоречат утверждению о том, что специфическое пространственное распределение центромер не изменилось после удаления ДНК, как для Х-хромосомы, так и для хромосомы 19 Отсюда можно сделать вывод характерные радиальные позиции центромерных районов как центральных (19), так и периферических (X) хромосом сохраняются даже после удаления большей части хроматина Выбор между ДНКазой I и ДНКазой II в процессе приготовления препаратов ядерных матриксов не оказал никакого влияния на характер полученных распределений (данные не показаны) Особенно следует подчеркнуть, что выявленные распределения положений центромерных областей, характерные для каждой из исследуемых хромосом, не стали случайными в результате удаления значительного количества хроматина Уровень статистической значимости (х2-тест) этого утверждения достаточно высок (вероятность ошибки составляет менее 0,0001 для хромосомы 19 и 0,025 для Х-хромосомы) Следовательно, электростатическое отталкивание хромосомных территорий друг от друга не может играть ключевую роль в поддержании пространственной организации хромосом в интерфазе

Чтобы проверить справедливость сделанного заключения в отношении других хромосом, все вышеописанные эксперименты были проведены повторно с пробой к а-сателлитаым повторам, располагающимся в центромерной области хромосомы 1 Биотинилированная проба к альфоидному сателлиту, характерному для хромосомы 1, была любезно предоставлена Ю Б Юровым Положение центромер хромосомы 1 было определено и проанализировано в ядрах первичных фибробластов человека до и после удаления из них 60-80% хроматина так же, как это было сделано в случае хромосом X и 19 Положение центромер этой хромосомы также не изменилось после удаления хроматина, и, что особенно важно, ни в контрольных ядрах, ни в препаратах ядерных матриксов распределение центромер этой хромосомы не было случайным, что было подтверждено статистическим

Рисунок 3 Радиальные позиции центромер хромосомы 1 в интактных ядрах фибробластов (белые столбцы) и в полученных из них in situ ядерных матриксах (серые стобцы) Так же как на предыдущих гистограммах, полученные нами распределения сравниваются со случайным равномерным (черные столбцы) Вертикальными линиями показано стандартное отклонение

i 30 _

§ 20

20 40 60 80 100

относительное удаление от центра ядра, %

анализом (р<0,0001, х2-тест) Результаты представлены на рис 3

Полученные результаты позволяют говорить о том, что специфическая пространственная организация хромосом в интерфазном ядре поддерживается ядерным матриксом

3 Дополнительное удаление РНК не влияет на радиальные позиции центромерных участков в препаратах ядерного матрикса.

Существует мнение, что ядерная РНК, являющаяся составной частью ядерного матрикса, играет важную роль в поддержании архитектуры ядра, и целостность матрикса зависит от сохранности этой РНК при удалении хроматина в процессе приготовления препаратов (Nickerson et al ,1989, 2001, Barboro et al, 2003) Более того, авторы еще одной работы по изучению взаимодействия хромосом с ядерным матриксом (Ма, 1999) сообщали, что целостные хромосомные территории, выявляемые с помощью набора уникальных специфических проб, разрушаются при обработке препаратов РНКазой А и последующей высокосолевой экстракции 2М раствором NaCl Однако этого не происходит, если высокосолевой экстракции не предшествует РНКазная обработка

На следующем этапе работы мы решили проверить, играет ли ядерная РНК существенную роль в поддержании специфических радиальных позиций хромосомных территорий Для этого положения центромерных областей хромосом 1 и 19 были выявлены и проанализированы в препаратах ядерных матриксов, полученных при совместной обработке ДНКазой и РНКазой Предварительно мы убедились, что при такой обработке 90% РНК переходит в кислоторастворимую фракцию и, следовательно, удаляется из ядра Результаты проведенного анализа, представленные на рис 4, показали, что специфические радиальные

m 40

u ф

I 30

О

g 20

20 40 в0 80 100 относительное удаление от центра ядра, %

20 40 60 80 100 относительное удаление от центра ядра, %

Рисунок 4.

Пространственное распределение центромер хромосом 1 (А) и 19 (Б) в необработанных ядрах (белые столбцы), после удаления 60-80% хроматина (светло-серые столбцы) и в ядерных матриксах, из которых дополнительно удалили РНК посредством одновременной обработки ядер РНКазой А и ДНКазой I (темно-серые столбцы) Тонкие вертикальные линии, как обычно, отражают стандартное отклонение

позиции центромер исследуемых хромосом не изменились после дополнительного удаления РНК и, в частности, их распределения статистически значимо отличаются от случайного равномерного (р<0,0001, х2"тест) Таким образом, РНК, присутствующая в ядерном матриксе, не играет существенной роли в поддержании специфического пространственного распределения хромосомных территорий в ядре

4. Альфоидные сателлиты, специфичные для хромосом X и 19, не являются участками прикрепления к ядерному матриксу.

Полученные нами результаты можно объяснить двумя способами Характерные позиции центромер могут оставаться неизменными при удалении основной части ДНК и РНК, потому что положение всей хромосомной территории поддерживается ядерным матриксом, а центромера просто является ее частью Другая возможность состоит в том, что альфоидные сателлиты из центромерных областей сами по себе прикреплены к ядерному матриксу Тогда они не могут служить адекватным маркером хромосомных территорий в рамках поставленной экспериментальной задачи

Чтобы проверить, какая из этих возможностей отражает реальную ситуацию, мы проанализировали способность а-сателлитных повторов, специфичных для центромер хромосом X и 19 и использованных нами в качестве проб для FISH в этой работе,

связываться с ядерным матрнксом in vitro, т е выяснили, обладают ли они свойствами MAR-элементов (Matrix Attachment Regions - участки прикрепления к матриксу) (рис 5) Этот анализ был проведен согласно стандартной методике (Cockenll & Garrard, 1986, Cockerill et al, 1987) В два разных эксперимента брали смесь радиоактивно меченых фрагментов ДНК, состоящую из

• фрагмента исследуемого а-сателлитного повтора (специфичного для Х-хромосомы, размером 1400 п о , или специфичного для хромосомы 19, размером 670 п н ),

• фрагмента гена гистона Н4 дрозофилы, содержащего известный сильный MAR-элемент (Mirkovitch et al, 1984, Cockenll & Garrard, 1986), этот фрагмент (размером 1300 по в эксперименте с сателлитом хромосомы 19 и 1800 по в эксперименте с сателлитом Х-хромосомы) использовался в качестве положительного контроля,

• двух или более фрагментов плазмидной ДНК (пл) в качестве отрицательного контроля

Эта смесь (input) инкубировалась в течение двух часов с ядерным матриксом, выделенным отдельно путем исчерпывающей обработки пермеабилизованных клеток ДНКазой I и последующей экстракции 2М раствором NaCl Для предотвращения неспецифического связывания инкубация проводилась в присутствии конкурента - геномной ДНК Е coli (средний размер около 1000 п н), взятой в различных концентрациях (0-1 мг/мл) После инкубации несвязавшиеся фрагменты отмывались, а фрагменты, ассоциировавшие с ядерным матриксом, были очищены от белковых компонентов и разделены с помощью электрофореза в агарозном геле, после чего высушенный гель был экспонирован с рентгеновской пленкой Результаты этого эксперимента представлены на рисунке 5 Отчетливо видно, что обе сателяитные пробы вытесняются из матрикса таким же количеством неспецифического конкурента, как и контрольные фрагменты плазмидной ДНК В то же время фрагмент, содержащий известный MAR-элемент, остается связанным с ядерным матриксом, даже когда берется 50-кратный избыток конкурента Из этого эксперимента можно сделать вывод, что исследуемые фрагменты а- сателлитных повторов, специфичных для центромер хромосом X и 19, не обладают свойствами MAR-элементов, так как они не способны связываться с ядерным матриксом от vitro

Кроме того, ранее в нашей лаборатории было исследовано распределение пространственного положения альфоидных сателлитов, характерных для Х-хромосомы, на препаратах ядерного гало, полученного с помощью высокосолевой экстракции ядер (Iarovaia et al, 2004) На таких препаратах проводилась иммуяофлуоресцентная гибридизация (FISH) с пробой к этому сателлиту Большая часть сигналов была обнаружена в короне петель ДНК

Рисунок 5. Aua,щи способности а.1Ь<|)оидных сятедантов хромосом X и 19 сшпывэться с ндорнъш матриксом Ы vitro.

К зшрузочный контроль (input); «пл» - фрагменты плазМЙШГОй ДНК. в качестве отртп ia-'гел шр контроля; MAR - фрагмент гена i" исто па 44 дрозофилы, обладающий Сильным сродством к ядерному матриксу; X. 19 - фрагменты альфондттым сате.тл ичов соответствующих хромосом.

Это дополнительно подтверждает, исследованные сателлиты не связаны с остаточными структурами ядра ядерным матриксом.

Таким образом, нет никаких жепернмептальных доказательств, свидетельствующях, что специфические альфоидные сателлиты из центромер ных участков хромосом, использованные нами как маркеры хромосомной территории соответствующих хромосом, прикреплены к ядерному матриксу самостоятельно. Мы можем исключить этот частный случай при интерпретации полученных результатов. А следовательно, можно утверждать, что позиции центромер сохраняются низменными после удаления из ядер основной части нуклеиновых кислот, потому что являются частью хромосомной территорий, положение которой яожерживаетеж, по-видимому, белковыми компонентами ядерного матрикса. Можно даже сказать, что нптерфачные хромосомы интегрированы в ядерный матрикс, поскольку внутренним мащикс и остов меШфазных хромосом содержат много общих белков (ßerrios et al., 1985; Eanishaw e( al« 1985).

Анализ пространственного распределения хромосом в ядрах первичных фибробластов человека с полисемией по Х-хромосоме.

Нет никакого сомнения в том, что пространственная организация клеточного ядра является важнейшим фактором, определяющим эффективную и надежную реализацию генетической информации, заключенной в геномной ДНК Однако непосредственная роль конкретных особенностей этой организации пока не выяснена Вторая часть данной работы посвящена изучению функциональной значимости установленных к настоящему времени закономерностей пространственного положения хромосом для правильного функционирования генома

Как уже обсуждалось выше, хромосомные территории в ядерном пространстве расположены неслучайно относительно центра ядра По крайней мере, в нормальных нетрансформированных клетках положение всех хромосом характеризуется строго определенными радиальными позициями (Boyle et al, 2001, Cremer and Cremer, 2001, Croft et al, 1999) Вероятнее всего, локализация хромосом в ядре связана с их функциональной активностью Обнаружена тенденция, согласно которой, хромосомы с высокой плотностью генов расположены ближе к центру ядра, а хромосомы, несущие относительно мало генов, сдвинуты к периферии (Boyle et al, 2001, Cremer and Cremer, 2001) Эта закономерность обнаружена не только в клетках человека и приматов (Tanabe et al 2002), но и в куриных клетках (Habermann et al 2001) - т е у видов, разошедшихся в процессе эволюции более 300 миллионов лет назад Механизмы, определяющие положение каждой хромосомной территории пока не установлены Однако такая высокая консервативность основного принципа радиального расположения хромосом в зависимости от плотности генов дает основание полагать, что он имеет важное биологическое значение Если это действительно так, то изменение характерного для нормальных клеток пространственного распределения хромосом в ядре клетки может коррелировать с нарушениями работы определенных регуляторных механизмов или даже быть причиной таких нарушений В этой связи нам представлялось интересным выяснить, изменяются ли специфические радиальные позиции хромосом в ядре при появлении дополнительных копий отдельных хромосом Конкретная задача, которую мы решали в своих экспериментах, состояла в выяснении того, попадают ли эти дополнительные копии в свой ядерный слой и приводит ли их появление к изменению радиальных позиций других хромосом Для изучения этих вопросов мы сравнивали пространственное распределение хромосом X и 1 в ядрах первичных фибробластов человека с тетрасомией по Х-хромосоме (генотип XXXXY) и нормальным мужским генотипом XY Поскольку в первой части работы мы продемонстрировали, что положение центромер

адекватно отражает положение целых хромосомных территорий, по крайней мере, в отношении хромосом 1 и X, в данном исследовании мы снова анализировали пространственное распределение центромер этих хромосом

1. Положение Х-хромосом внутри ядра изменяется при появлении дополнительных копий этой хромосомы.

Сначала мы решили сравнить пространственное распределение Х-хромосом в клетках, несущих одну (генотип ХУ) и четыре (генотип ХХХХУ) копии Х-хромосомы, чтобы выяснить занимают ли 4 копии Х-хромосомы в ХХХХУ клетках тот же ядерный слой, что и одна копия X хромосомы в ХУ клетках Приблизительное положение хромосомных территорий оценивали посредством визуализации специфичных для этой хромосомы последовательностей альфоидного сателлита Эксперименты проводили подобно тому, как было описано в предыдущих разделах Как видно из результатов гибридизации, представленных на рисунке 6, количество сигналов в каждой линии соответствовало количеству Х-хромосом Относительные радиальные позиции каждого сигнала определялись так же, как это делалось ранее Объем выборки составил 800 наблюдений для линии ХХХХУ и 669 наблюдений для линии ХУ Для анализа полученных данных было вычислено

Рисунок 6 Результаты иммунофлуоресцентной гибридизации фибробластов, имеющих генотип ХХХХУ, а также нормальных мужских фибробластов с пробой к альфоидному сателлиту Х-хромосомы

Верхний ряд - нормальные фибробласты, нижний - фибробласты с полисомией ХХХХУ На левой панели ядра, окрашенные БАР1, в центре гибридизационные сигналы, справа совмещение двух предыдущих снимков Стрелки указывают на положение гибридизационных сигналов внутри ядра

распределение сигналов между 10 концентрическими зонами с границами, проведенными через одинаковые промежутки, то есть находящимися на расстояниях 10%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80 и 90% от радиуса ядра Площадь каждой зоны при таком разбиении линейно возрастает по направлению от центра ядра к периферии Количество интервалов группирования было увеличено по сравнению с экспериментами в первой части работы для того, чтобы более детально изучить пространственное распределение исследуемых хромосом Кроме этого было проанализировано распределение гибридизационных сигналов между 10 концентрическими зонами равной площади с границами, проведенными на расстоянии 32%, 45%, 55%, 63%, 71%, 77%, 84%, 89%, 95% от радиуса ядра Результаты проведенного анализа пространственного распределения центромерной области хромосомы X представлены в виде гистограмм на рисунке 7 Радиальные позиции центромерной области Х-хромосомы в ядрах фибробластов с тетрасомией по X статистически достоверно отличается от позиций центромерной области этой хромосомы в ядрах нормальных клеток (р<0,0001, % тест) Оба типа анализа показывают, что при появлении дополнительных копий Х-хромосомы происходит значительное перемещение этой хромосомы в сторону периферии ядра Действительно, в клетках с одной Х-хромосомой 66% наблюдаемых сигналов

25 20. 15. 10.

20 40 60 80 100

Относительное удаление от центра ядра, %

12 3 4 Концентрические э

центр

6 7 8 I, равные по —край

9 10 площади

Рисунок 7. Положение Х-хромосомы в ядрах первичных фибробластов человека, имеющих одну (генотип ХУ) или четыре (генотип ХХХХУ) копии этой хромосомы.

Площадь ядра была поделена на 10 концентрических зон с границами, установленными через равные промежутки на расстоянии 10%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80 и 90% от радиуса ядра, (А) или на 10 концентрических зон, равных по площади, с границами, проходящими на расстоянии 32%, 45%, 55%, 63%, 71%, 77%, 84%, 89%, 95% (Б) Распределение сигналов между этими зонами в клетках ХХХХУ отражают темные столбцы, в клетках ХУ - светлые столбцы Приведены кривые сглаживания и ЭвБ (вертикальные линии)

расположены в центральной половине ядра на расстоянии не более 71% от ядерного радиуса, в то время как в клетках с генотипом XXXXY в этой же области ядра находится только 46% сигналов (х2 тест, р<0 01) В дополнение стоит отметить, что анализ распределения сигналов между концентрическими зонами равной площади более наглядно отражает положение хромосом, потому что разница в количестве сигналов между разными зонам не зависит от площади этих зон В дальнейшем мы использовали только такой вид анализа

2. Хромосомные территории активных и неактивных копий Х-хромосомы характеризуются разными радиальным позициями в ядрах с генотипом XXXXY.

Существуют данные о том, что в человеческой клетке все копии Х-хромосомы, кроме одной, инактавируются (Lyon, 1989, Lyon, 1999) Неактивные Х-хромосомы компактно упаковываются, образуя так называемые тельца Барра, и сдвигаются на периферию ядра Значит, в клетках с генотипом XXXXY три из четырех могут быть неактивными, в то время как в клетках с нормальным мужским генотипом имеется только одна активная X-хромосома В таком случае обнаруженные в предыдущем эксперименте изменения в положении Х-хромосомы при появлении дополнительных копий могут объясняться различной ядерной локализацией активных и неактивных копий Х-хромосом

Чтобы проверить выдвинутое предположение, нам необходимо было различить активные и неактивные Х-хромосомы на наших препаратах Неактивные копии X-хромосомы были выявлены путем флуоресцентной rn situ гибридизации с пробой к Xist (X (mactive)-specific transcript, специфичный для неактивной Х-хромосомы транскрипт) РНК Эта РНК, не кодирующая белок, транскрибируется только с неактивных копий Х-хромосомы и является важным компонентом механизма ее инакцивации (Brown et al, 1992, Rastan, 1994)

Фрагмент размером 3 т п о из первого экзона гена, кодирующего Xist РНК, был получен путем ПЦР-амплификации с использованием специфических праймеров Этот фрагмент клонировали в векторе pGEM-T Easy (Promega) и использовали для приготовления пробы, синтез которой осуществлялся путем ник-трансляции в присутствии модифицированного биотином дезокси-УТФ Приготовленную таким способом пробу гибридизовали с фиксированными препаратами первичных фибробластов человека, обладающими генотипом XXXXY Как видно из результатов гибридизации (рис 8 All), в клетках с генотипом XXXXY три копии Х-хромосомы ассоциированы с Xist РНК, и следовательно, неактивны Фактически это означает, что все дополнительные копии X-хромосомы инактавируются

препаратах путем обработки их раствором параформальдегида Затем препараты обрабатывали щелочью для денатурации ДНК, после чего гибридизовали их с центромерной пробой Сигнал, соответствующий центромерам Х-хромосомы детектировался с помощьюантител против дигоксигенина, коньюгированных с Alexa 488, флуоресцирующим в зеленой части спектра Биотинилированную пробу, узнающую Xist РНК, выявляли с использованием флуорохрома, флуоресцирующего в красной части спектра Единственный зеленый сигнал, не совпадающий с красным, соответствовал активной Х-хромосоме

Теперь мы могли отдельно проанализировать распределение центромер активных и неактивных копий Х-хромосомы в ядрах с генотипом XXXXY Результаты этого анализа представлены на рисунке 8 Б Объем выборки в этом эксперименте составил 114 наблюдений для активной и 810 наблюдений для неактивной копии Х-хромосомы Полученные диаграммы четко демонстрируют, что, как и ожидалось, позиции активной и неактивных копий Х-хромосом в ядре сильно отличаются Неактивные Х-хромосомы располагаются на периферии ядра, в то время как активные копии сдвинуты ближе к центру (р<0,001,х2-тест) Это наблюдение позволяет заключить, что локализация хромосомных территорий в центре ядра связана не только с генной плотностью, но и непосредственно с транскрипционным статусом генов Действительно, активные и неактивные копии Х-хромосомы занимают абсолютно разные ядерные позиции, несмотря на сходное содержание ДНК и одинаковую плотность генов Следует отметить, что согласно литературным данным именно эти параметры считаются определяющими при локализации хромосом ближе или дальше относительно центра ядра (Croft et al, 1999, Boyle et al, 2001, Bolzer et al, 2005)

Еще более интересный вывод был сделан при сравнении пространственного распределения активной Х-хромосомы в полисомных ядрах и единственной Х-хромосомы в ядрах с нормальным генотипом (рис 8В) Радиальные позиции этих хромосом отличались друг от друга центромеры Х-хромосомы в линии XY чаще (в 40% случаев) занимали центральную часть ядерного пространства, составляющую треть от общей площади ядра, в то время как активные копии Х-хромосомы в клетках линии XXXXY встречались в этой области значительно реже (всего в 28% случаев) (р<0,02, х2-тест) Это означает, что в клетках с генотипом XXXXY позиция активной Х-хромосомы смещена к периферии ядра по сравнению с нормальными клетками Таким образом, нами было обнаружено, что, несмотря на инактивацию дополнительных копий Х-хромосомы, они оказывают влияние на ядерную локализацию единственной активной копии этой хромосомы, выражающуюся в смещении к периферии ядра

3. Сравнение локализации хромосомы 1 в ядрах нормальных фибробластов и фибробластов с полисомией по Х-хромосоме.

На следующем этапе работы мы решили выяснить, влияет ли появление дополнительных копий Х-хромосомы на положение других хромосом Для этого мы сравнили относительные радиальные позиции хромосомы 1 в ядрах нормальных фибробластов и фибробластов с полисомией XXXXY Все экспериментальные процедуры были выполнены точно так же, как для Х-хромосомы Положение хромосомы 1 выявлялось путем флуоресцентной in situ гибридизации с пробой, специфичной для центромерных а-сателлитных повторов этой хромосомы Объем выборки составил 487 наблюдений в ядрах нормальных фибробластов и 256 наблюдений в XXXXY клетках Пространственные распределения ценромер хромосомы 1 в ядрах, имеющих одну (XY) или четыре (XXXXY) копии Х-хромосомы, представлены на рисунке 9 Оказалось, что радиальная позиция хромосомы 1 в ядрах фибробластов с генотипом XXXXY статистически значимо отличаются от позиции этой хромосомы в ядрах нормальных фибробластов (х2 тест, р<0 01) В ядрах с генотипом XY гибридизационные сигналы гораздо чаще (в 37% случаев) располагались в центральной зоне, составляющей 20% от общей площади ядра, по сравнению с клетками, в ядрах которых присутствовало 4 копии X хромосомы (х2 тест, р<0 01) Таким образом, при появлении лишних копий Х-хромосомы хромосома 1 сдвигается к периферии ядра

центр Зоны, равные по площади край

Рисунок 9.

Сравнение радиального распределения хромосомы 1 в ядрах нормальных фибробластов (светлые прямоугольники) и фибробластов с полисомией по X-хромосоме (темные прямоугольники) между 10 концентрическими зонами, одинаковыми по площади Так же как на предыдущих рисунках показаны кривые сглаживания и ввБ (вертикальные линии)

Итак, во второй части работы нами было обнаружено, что в случае тетрасомии по X-хромосоме (генотип XXXXY) три лишние копии этой хромосомы инактивируются и занимают периферические позиции Тем не менее, при этом происходит изменение ядерной локализации как активной копии Х-хромосомы, так и представленной нормальным числом копий хромосомы 1, самой большой хромосомы человека как по размеру так и по количеству генов Позиции этих хромосом сдвигаются к периферии ядра

Стоит отметить, что большой спектр возможных положений исследуемых хромосом в разных клетках одной линии никоим образом не понижает значимость сделанных выводов Дело в том, что положение хромосом в ядре подчиняется законам теории вероятности Это значит, что распределение хромосомных позиций дает статистическое представление о наиболее вероятном месте нахождения исследуемой хромосомы Однако нельзя точно указать, где будет находиться эта хромосома в каждой конкретной клетке, потому что в каждой конкретной клетке она может находиться в любом положении, но с разной вероятностью (Parada, 2003, Nagele, 1995, 1998) При этом пространственное распределение большинства хромосом воспроизводится с высокой точностью в нормальных клетках, зачастую принадлежащих даже разным тканям Так, все распределения для нормальных фибробластов, полученные в наших экспериментах, точно воспроизводились несколько раз на разных линиях и разных пассажах Поэтому изменение пространственных позиций хромосом в ядрах клеток с генотипом XXXXY достоверно и заслуживает пристального внимания

Как известно, многие случаи полисомии сопровождаются тяжелыми наследственными заболеваниями Так, синдром Дауна (трисомия по хромосоме 21) является причиной задержки интеллектуального развития (Newberger and Blyth, 2003) Синдром Эдвардса (трисомия по хромосоме 18) характеризуется нарушениями функционирования жизненно важных органов, таких как мозг, сердце, почки и кишечник, приводящими 90% пациентов к смерти на первом году жизни (Hassold and Jacobs, 1984) Обычно причиной этих наследственных болезней считается несбалансированная экспрессия генов с дополнительных хромосом Однако это может быть, по крайней мере, не единственной причиной Ведь благодаря инактивации Х-хромосом активной остается только одна копия (Lyon, 1989, Lyon, 1999) Это явление было продемонстрировано в данной работе в отношении полисомии XXXXY Несмотря на инактивацию дополнительных копий Х-хромосомы, этот вид полисомии тоже сопровождается тяжелыми патологиями (задержка умственного развития, многочисленные дефекты скелета), которые приводят в большинстве случаев к смерти в раннем возрасте (Kim et al, 2006) Известен также синдром Кляйнфельтера (47,ХХУ, 48,XXXY), характеризующийся бесплодием (олигосмермия или азооспермия), остеопорозом,

нарушением моторной функции, речи и т д (Wattendorf and Muenke, 2005) Обнаруженные изменения радиальных позиций хромосом в клетках с полисомией XXXXY дают основания полагать, что нарушение пространственного распределения хромосом может быть одной из причин развития патологических эффектов

выводы

1 Продемонстрировано, что специфическая пространственная организация хромосом в ядрах первичных фибробластов человека под держивается ядерным матриксом

2 Установлено, что РНК, присутствующая в составе ядерного матрикса, не оказывает существенного влияния на поддержание специфических позиций хромосом 1 и 19 внутри ядра

3 Показано, что дополнительные копии Х-хромосомы в ядрах первичных фибробластов человека с полисомией 49, ХХХХУ инактивируются и локализуются на периферии ядра, тогда как активная копия Х-хромосомы располагается существенно ближе к центру ядра

4 Продемонстрировано, что при полисомии ХХХХУ изменяются предпочтительные ядерные позиции активной копии X хромосомы и представленной нормальным числом копий хромосомы 1 по сравнению с позициями этих хромосом в нормальных клетках

Список печатных работ, опубликованных по теме диссертации.

1 Petrova NV, Iarovaia OV, Verbovoy VA Razm SV Specific radial positions of centromeres of human chromosomes X, 1, and 19 remain unchanged m chromatm-depleted nuclei of primary human fibroblasts evidence for the organizing role of the nuclear matrix Journal of Cellular Biochemistiy, 2005, 96(4) 850-857

2 Петрова H В, Яровая О В, Разин С В Специфическая пространственная организация хромосом в ядрах первичных фибробластов человека поддерживается ядерным матриксом Доклады Академии Наук, 2006, т 406, №1, стр 1-3

3 Петрова H В , Якутенко И И, Яровая О В , Разин С В Взаимное расположение хромосом в интерфазных ядрах первичных фибробластах человека с полисомией по Х-хромосоме и хромосоме 18 VI Международная конференция по молекулярной генетике соматических клеток 12-15 декабря, 2005, Звенигород

4 Петрова H В, Яровая О В, Разин С В Роль ядерного матрикса в пространственной организации интерфазных хромосом 10-ая Международная Пущинская школа-конференция молодых ученых "Биология - Наука XXI Века", 16 - 21 апреля 2006, Пущино, Россия

5 Якутенко И И, Петрова H В Локализация хромосом в интерфазных ядрах первичных фибробластов человека с нормальным фенотипом и полисомиями по Х-хромосоме и хромосоме 18 10-ая Международная Пущинская школа-конференция молодых ученых "Биология - Наука XXI Века", 16 - 21 апреля 2006, Пущино, Россия

Заказ № 226/04/07 Подписано в печать 25 04 2007 Тираж 100 экз Уел пл 1,5

ООО "Цифровичок", тел (495) 797-75-76, (495) 778-22-20 у\>м>~н> с/г ги, е-тт1 т/о@с/г ги

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Петрова, Наталья Валентиновна

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Понятие о хромосомных территориях

Позиционирование и границы хромосомных территорий

Механизмы формирования хромосомных территорий

Позиционирование генов внутри XT

Компьютерное моделирование XT

Общая картина функциональной архитектуры ядра

Введение Диссертация по биологии, на тему "Пространственная организация хромосомных территорий в ядрах нормальных и анеуплоидных клеток"

В последнее время фокус исследований, посвященных принципам регуляции экспрессии генов, смещается от детального анализа молекулярных механизмов, контролирующих активность отдельных генов, к глобальному изучению общей картины структурно-функциональной организации генома в пространственном и временном отношении. Становится все более и более очевидным, что слаженное и оперативное функционирование генома не может обеспечиваться только регуляторными элементами, присутствующими в линейной ДНК. Огромную роль в регуляции экспрессии генов и реализации генетических программ играют эпигенетические механизмы (метилирование ДНК, модификации гистонов. замещение нормальных гистонов на их вариантные формы) и пространственная организация клеточного ядра. Активное развитие микроскопии и усовершенствование экспериментальных подходов позволили установить, что внутреннее пространство ядра - это не беспорядочная смесь различных составляющих, а четко структурированная система, отдельные компоненты которой связаны друг с другом сложными иерархическими взаимоотношениями.

Хромосомы на любой стадии клеточного цикла представляют собой более или менее компактные структуры, занимающие отдельные не перекрывающиеся друг с другом области ядерного пространства, получившие название хромосомных территорий (ХТ). Хромосомные территории - не просто способ компактной упаковки больших объемов хроматина в ограниченном ядерном пространстве, но и, главным образом, аппарат, наилучшим образом приспособленный для обеспечения слаженного функционирования генома. Динамичная структура хромосомных территорий обеспечивает доставку нужных генов к системам транскрипции, репарации и сплайсинга, в то время как неактивные гены остаются компактно упакованными во внутреннем пространстве хромосомной территории. Локализация генов внутри хромосомной территории, взаимное расположение хромосомных территорий и позиционирование их относительно центра ядра имеют важное значения для проявления активности тех или иных генов.

Хотя последние в последние 15 лет принципы организации хромосомных территорий очень активно изучались, многое еще остается непонятным. Так, согласно многочисленным наблюдениям локализация ХТ внутри ядра определенным образом связана с генной плотностью. Но общие закономерности, определяющие позицию каждой ХТ, пока остаются мало понятными. Да и сами структуры и механизмы, обеспечивающие целостность и надлежащую организацию хромосомных территорий, неизвестны до сих пор.

Настоящая работа посвящена исследованию роли ядерного матрикса в поддержании упорядоченной пространственной организации хромосом в интерфазе клеточного цикла, а также изучению нарушений этой организации, возникающих при появлении дополнительных копий Х-хромосомы.

Заключение Диссертация по теме "Молекулярная биология", Петрова, Наталья Валентиновна

выводы

1. Продемонстрировано, что специфическая пространственная организация хромосом в ядрах первичных фибробластов человека поддерживается ядерным матриксом.

2. Установлено, что РНК, присутствующая в составе ядерного матрикса, не оказывает существенного влияния на поддержание специфических позиций хромосом 1 и 19 внутри ядра.

3. Показано, что дополнительные копии Х-хромосомы в ядрах первичных фибробластов человека с полисомией 49, ХХХХУ инактивируются и локализуются на периферии ядра, тогда как активная копия Х-хромосомы располагается существенно ближе к центру ядра.

4. Продемонстрировано, что при полисомии ХХХХУ изменяются предпочтительные ядерные позиции активной копии X хромосомы и представленной нормальным числом копий хромосомы 1 по сравнению с позициями этих хромосом в нормальных клетках.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Петрова, Наталья Валентиновна, Москва

1. Abranches R., Beven A.F., Aragón-Alcaide L., Shaw P.J. (1998) Transcription sites are not correlated with chromosome territories in wheat nuclei. J Cell Biol. 143(1):5-12.

2. Barboro P., C. D'Arrigo, M. Mormino, R. Coradeghini, S. Parodi, E. Patrone, C. Balbi (2003) An intranuclear frame for chromatin compartmentalization and higherorder folding. J. Cell. Biochem. 88: 113-120.

3. Barr M.L. and BertramE.G. (1949) A morphological distinction between neurons of the male and female behavior of the nucleolar satellite during accelerated nucleoprotein synthesis. Nature 163: 676-677.

4. Belgrader P., A.J. Siegel, R. Berezney, (1991 )A comprehensive study on the isolation and characterization of the HeLa S3 nuclear matrix. J. Cell. Sci. 98, Pt 3: 281-291.

5. Belmont A.S., Bignone F., Ts'o P.O. (1986). The relative intranuclear positions of Barr bodies in XXX non-transformed human fibroblasts. Exp Cell Res. 165(1): 165179.

6. Berezney R & Coffey DS (1974) Identification of a nuclear protein matrix. Biochem. Biophys. Res. Commun. 60: 1410-1417.

7. Berezney R & Coffey DS (1977) Nuclear matrix. Isolation and characterization of a framework structure from rat liver nuclei. J Cell Biol. 73(3):616-637.

8. Berezney R, Mortillaro MJ, Ma H, Wei X, Samarabandu J. (1995). The nuclear matrix: A structural milieu for genomic function. Int Rev Cytol 162A:l-65

9. Berrios M., N. Osheroff, P.A. Fischer (1985) In situ localization of DNA topoisomerase II, a major polypeptide component of the Drosophila nuclear matrix fraction. Proc. Natl. Acad. Sei. USA 82 4142-4146.

10. Bickmore W.A. & Chubb J.R. (2003). Chromosome position: now, where was I? CurrBiol. 13(9):R357-9.

11. Bolzer A, Kreth G, Solovei I, Koehler D, Saracoglu K, Fauth C, Muller S, Eils R, Cremer C, Speicher MR, Cremer T. 2005. Three-dimensional maps of all chromosomes in human male fibroblast nuclei and prometaphase rosettes. PLoS Biol 3(5):el57.

12. Borden, J. & Manuelidis, L. (1988). Movement of the X chromosome in epilepsy. Science 242, 1687-1691.

13. Bornfleth, H., Edelmann, P., Zink, D., Cremer, T. & Cremer, C. (1999). Quantitative motion analysis of subchromosomal foci in living cells using four-dimensional microscopy. Biophys. J. 77,2871-2886.

14. Bourque G, Pevzner PA. 2002. Genome-scale evolution: reconstructing gene orders in the ancestral species. Genome Res 12(l):26-36.

15. Boveri T. (1909) Die Blastomerenkerne von Ascaris megalocephala und die Theorie der Chromosomenindividualita't Arch Zellforsch, 3:181-268.

16. Boyle S, Gilchrist S, Bridger JM, Mahy NL, Ellis J A, Bickmore WA. 2001. The spatial organization of human chromosomes within the nuclei of normal and emerin-mutant cells. Human Mol Genet 10:211-219.

17. Brown CJ, Hendrich BD, Rupert JL, Lafreniere RG, Xing Y, Lawrence J, Willard HF. 1992. The human XIST gene: analysis of a 17 kb inactive X-specific RNA that contains conserved repeats and is highly localized within the nucleus. Cell 71(3):527-542.

18. Brown K.E., Guest S.S., Smale S.T., Hahm K., Merkenschlager M., Fisher A.G. (1997). Association of transcriptionally silent genes with Ikaros complexes at centromeric heterochromatin. Cell. 91(6):845-854.

19. Carvalho C., Pereira H.M., Ferreira J et al. (2001). Chromosomal G-dark bands determine the spatial organization of centromeric geterochromatin in the nucleus. Mol Biol Cell 12: 3563-3572.

20. Chaly N., Little J.E., Brown D.L. (1985) Localization of nuclear antigens during preparation of nuclear matrices in situ. Can. J. Biochem. Cell Biol. 63,644-653.

21. Cockerill P. N., W.T. Garrard (1986) Chromosomal loop anchorage of the kappa immunoglobulin gene occurs next to the nenhancer in a region containing topoisomerase II sites Cell 44: 273-282.

22. Cockerill P.N., M.-H. Yuen, W.T. Garrard (1987) The enhancer of the immunoglobulin heavy chain locus is flanked by presumptive chromosomal loop anchorage elements. J.Biol. Chem. 262: 5394-5397.

23. Cremer M., von Hase J., Volm T., Brero A., Kreth G., Walter J., Fischer C., Solovei I., Cremer C., Cremer T. (2001). Non-random radial higher-order chromatin arrangements in nuclei of diploid human cells. Chromosome Res. 9(7):541-67.

24. Cremer T, Cremer C. 2001. Chromosome territories, nuclear architecture and gene regulation in mammalian cells. Nat Rev Genet 2(4):292-301.

25. Cremer t., Dietzel S., Eils R.L., Cremer C. (1995). Chromosome territories, nuclear matrix filaments and nuclear architecture and function. Paper presented at: Kew Chromosome Conference (The Royal Botanical Gardens, Kew, Richmond, Surrey, UK).

26. Croft JA, Bridger JM, Boyle S, Perry P, Teague P, Bickmore WA. 1999. Differences in the localization and morphology of chromosomes in the human nucleus. J Cell Biol 145(6): 1119-1131.

27. Csink, A.K. & Henikoff, S. (1998). Large-scale chromosomal movements during interphase progression in Drosophila. J. Cell Biol. 143, 13-22.

28. De Boni, U. (1994). The interphase nucleus as a dynamic structure. Int. Rev. Cytol. 150, 149-171.

29. Dernburg A.F., Broman K.W., Fung J.C., Marshall W.F., Philips J., Agard D.A., Sedat J.W. (1996). Perturbation of nuclear architecture by long-distance chromosome interactions. Cell. 85(5):745-59.

30. Dietzel S., Schiebel K., Little G., Edelmann P., Rappold G.A., Eils R., Cremer C., Cremer T. (1999). The 3D positioning of ANT2 and ANT3 genes within female X chromosome territories correlates with gene activity. Exp Cell Res. 252(2):363-75.

31. Earnshaw, W.C., B. Halligan, C.A. Cooke, M.M.S. Heck, L.F. Liu (1985) Topoisomerase II is a structural component of mitotic chromosome scaffolds. J. Cell. Biol. 100: 1706-1715

32. Edelmann P., Bornfleth H., Zink D., Cremer T and Cremer C. (2001). Morphology and dynamics of chromosome territories in living cells. Biochim et Biophys Acta 1551, M29-M40.

33. Ferreira, J., Paolella, G., Ramos, C. & Lamond, A. I. (1997). Spatial organization of large-scale chromatin domains in the nucleus: a magnified view of single chromosome territories. J. Cell Biol 139, 1597-1610.

34. Fryns JP, Kleczkowska A, Kubien E, Van den Berghe H. 1995. XYY syndrome and other Y chromosome polysomies. Mental status and psychosocial functioning. Genet Corns 6(3): 197-206.

35. Gerlich D., Beaudouin J., Kalbfuss B., Daigle N. Eils R., Ellenberg J. (2003). Global chromosome positions are transmitted through mitosis in mammalian cells. Cell. 112(6):751-64.

36. Gilbert N., Boyle S., Fiegler H„ Woodfine K., Carter N.P., Bickmore W.A. (2004). Chromatin architecture of the human genome: gene-rich domains are enriched in open chromatin fibers. Cell. 118(5):555-66.

37. Habermann FA, Cremer M, Walter J, Kreth G, von Hase J, Bauer K, Wienberg J, Cremer C, Cremer T, Solovei I. 2001. Arrangements of macro- and microchromosomes in chicken cells. Chromosome Res 9(7):569-584.

38. Hassold TJ, Jacobs PA. 1984. Trisomy in man. Annu Rev Genet 18:69-97.

39. Henikoff S. (1997). Nuclear organization and gene expression: homologous pairing and long-range interactions. Curr Opin Cell Biol. 9(3):388-95.

40. Hentzel, M.J., Decluve, G.P., Davie, J.R. 1991. Histone deacetylase is a component of the internal nuclear matrix. J. Biol. Chem. 266: 21936-21942

41. Hentzel, M.J.,Sun, J.M., Chen, H.Y., Rattner, J.B., Davie, J.R. 1994. Hystone acetyltransferase is associated with the nuclear matrix. J. Biol. Chem. 269: 2289422901.

42. Hochstrasser M., Mathog D., Gruenbaum Y., Saumweber H., Sedat J.W. (1986). Spatial organization of chromosomes in the salivary gland nuclei of Drosophila melanogaster. J Cell Biol. 102( 1): 112-23.

43. Iarovaia OV, Bystritskiy A, Ravcheev D, Hancock R, Razin SV. (2004) Visualization of individual DNA loops and a map of loop-domains in the human dystrophin gene. Nucl Acids Res 32:2079-2086.

44. Jackson, D.A., McCready, S,J. and Cook, P.R. (1984). Replication and transcription depend on attachment of DNA to the nuclear cage. J. Cell. Sci. Suppl. 1. 59-79.

45. Kanda T, Sullivan KF, Wahl GM. (1998). Histone-GFP fusion protein enables sensitive analysis of chromosome dynamics in living mammalian cells. Curr Biol. 26, 8(7):377-85.

46. Kim HJ, Kim D, Shin JM, Chung HK, Lee G. 2006. 49,XXXXY syndrome with diabetes mellitus. Horm Res 65(1): 14-17.

47. Kosak S.T. & Groudine M. (2002). The undiscovered country: chromosome territories and the organization of transcription. Dev Cell 2(6):690-2.

48. Kuroda M, Tanabe H, Yoshida K, Oikawa K, Saito A, Kiyuna T, Mizusawa H, Mukai K. (2004). Alteration of chromosome positioning during adipocyte differentiation. J Cell Sci\\l(?X 24):5897-5903.

49. LaSalle J.M., Lalande M. (1996). Homologous association of oppositely imprinted chromosomal domains. Science. 272(5262):725-8.

50. Lemaitre J.M., Geraud G., and Mechali M. (1998). Dynamics of the genome during early Xenopus laevis development: karyomeres as independent units of replication. J Cell Biol 142,1159-116.

51. Lukacs G.L., Haggie P., Seksek 0., Lechardeur D., Freedman N., Verkman A.S. (2000). Size-dependent DNA mobility in cytoplasm and nucleus. J Biol Chem. 275(3): 1625-9.

52. Lukasova E, S. Kozubek, M. Kozubek, M. Falk, J. Amrichova, The 3D structure of human chromosomes in cell nuclei, Chromosome Res. 10 (2002) 535-548.

53. Lundgren M., Chow C.M., Sabbattini P., Georgiou A., Minaee S., Dillon N. (2000). Transcription factor dosage affects changes in higher order chromatin structure associated with activation of a heterochromatic gene. Cell. 103(5):733-43.

54. Lyon MF. (1989). X-chromosome inactivation as a system of gene dosage compensation to regulate gene expression. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol 36:119130.

55. Lyon MF. (1999). X-chromosome inactivation. Curr Biol 9(7):R235-237.

56. Ma H., Siegel A.J., Berezney R. (1999). Association of chromosome territories with the nuclear matrix. Disruption of human chromosome territories correlates with the release of a subset of nuclear matrix proteins. J Cell Biol. 146(3):531-42.

57. Mahy N.L., Perry P.E., Bickmore W.A. (2002b). Gene density and transcription influence the localization of chromatin outside of chromosome territories detectable by FISH. J Cell Biol. 159(5):753-63.

58. Mahy N.L., Perry P.E., Gilchrist S„ Baldock R.A., Bickmore W.A. (2002a). Spatial organization of active and inactive genes and noncoding DNA within chromosome territories. J Cell Biol. 157(4):579-89.

59. Manders, E.M., Kimura, H. & Cook, P.R. (1999). Direct imaging of DNA in living cells reveals the dynamics of chromosome formation. J. Cell Biol. 144, 813-821.

60. Manuelidis, L. (1990). A view of interphase chromosomes. Science 250, 15331540.

61. Mayer R, Brero A, von Hase J, Schroeder T, Cremer T, Dietzel S. (2005). Common themes and cell type specific variations of higher order chromatin arrangements in the mouse. BMC Cell Biol 6:44.

62. McCready SJ, Akrigg A, Cook PR (1979) Electron-microscopy of intact nuclear DNA from human cells. J Cell Sci 39: 53-62

63. Mirkovitch J., M.-E. Mirault, U.K. Laemmli, (1984) Organization of the higherorder chromatin loop: specific DNA attachement sites on nuclear scaffold. Cell 39 223-232.

64. Misteli T. (2001). Protein dynamics implications for nuclear architechture and gene expression. Science 291, 813-817.

65. Mongelard F., Vourc'h C., Robert-Nicoud M. and Usson Y. (1999). Quantitative assessment of the alteration of chromatin during the course of FISH procedures. Cytometry 36:96-101.

66. Murphy WJ, Stanyon R, O'Brien SJ. (2001). Evolution of mammalian genome organization inferred from comparative gene mapping. Genome Biol 2(6):237-242.

67. Nagele RG, Freeman T, Fazekas J, Lee KM, Thomson Z, et al. (1998) Chromosome spatial order in human cells: Evidence for early origin and faithful propagation. Chromosoma 107: 330-338.

68. Nagele RG, Freeman T, McMorrow L, Lee HY (1995) Precise spatial positioning of chromosomes during prometaphase: Evidence for chromosomal order. Science 270: 1831-1835.

69. Newberger DS, Blyth SA. (2003). Hypothermia and phenytoin toxicity. Clin Neuropharmacol 26(4): 172-173.

70. Nickerson J. (2001) Experimental observations of a nuclear matrix, J. Cell. Sci. 114 463-474.

71. Nickerson J., G. Krochmalnic, K.M. Wan, S. Penman (1989) Chromatin architecture and nuclear RNA, Proc. Natl. Acad. Sei. USA 86: 177-181.

72. Parada LA, Roix JJ, Misteli T (2003) An uncertainty principle in chromosome positioning. Trends Cell Biol 13: 393-396.

73. Rabl C. (1885). Uber Zellteilung. In Morphologisches Jahrbuch, G. C., ed., pp. 214258.

74. Rastan S. (1994) X chromosome inactivation and the Xist gene. Curr Opin Genet Dev 4(2):292-297.

75. Razin S.V., Petrov A., Hair A., Vassetzky Y.S. (2004). Chromatin domains and territories: flexibly rigid. Crit Rev Eukaryot Gene Expr. 14(l-2):79-88

76. Razin, S.V. and Yarovaya, O.V. (1985). Initiated complexes of RNA polymerase II are concentrated in the nuclear skeleton associated DNA. Exp. Cell Res. 158: 273275.

77. Razin, S.V., Gromova I.I. (1995) The channels model of the nuclear matrix structure. Bioessays 17:443-450.

78. Rzeszowska-Wolny J, Razin S, Puvion E, Moreau J, Scherrer K (1988) Isolation and characterization of stable nuclear matrix preparations and associated DNA from avian erythroblasts. Biol. Cell. 64: 13-22.

79. Schardin M., T. Cremer, H.D. Hager, M. Lang (1985) Specific staining of human chromosomes in Chinese hamster x man hybrid cell lines demonstrates interphase chromosome territories. Hum. Genet. 71: 281-287.

80. Singer R.H. & Green M.R. (1997). Compartmentalization of eukaryotic gene expression: causes and effects. Cell. 91(3):291-4.

81. Stack, S.M., Brown, D.B. & Dewey. W.C. (1977). Visualization of interphase chromosomes. J. Cell Sei. 26, 281-299.

82. Stadler S, Schnapp V, Mayer R, Stein S, Cremer C, Bonifer C, Cremer T, Dietzel S. (2004). The architecture of chicken chromosome territories changes during differentiation. BMC Cell Biol 5(1):44.

83. Staufenbiel M., Deppert W. (1984) Preparation of nuclear matrices from cultured cells: subfractionation of nuclei in situ. J. Cell. Biol. 98, 1886-1894.

84. Sun H.B., Shen J., Yokota H. (2000). Size-dependent positioning of human chromosomes in interphase nuclei. Biophys J. 79(1): 184-90.

85. Swerdlow AJ, Hermon C, Jacobs PA, Alberman E, Beral V, Daker M, Fordyce A, Youings S. (2001). Mortality and cancer incidence in persons with numerical sex chromosome abnormalities: a cohort study. Ann Hum Genet 65(Pt 2): 177-188.

86. Tajbakhsh J., Luz H., Bornfleth H., Lampel S., Cremer C., Lichter P. (2000). Spatial distribution of GC- and AT-rich DNA sequences within human chromosome territories. Exp Cell Res. 255(2):229-37.

87. Tanabe H, Habermann F.A., Solovei I., Cremer M., Cremer T. (2002). Non-random radial arrangements of interphase chromosome territories: evolutionary considerations and functional implications. Mutat Res. 25;504(l-2):37-45. ???

88. Verheijen R, Kuijpers H, Vooijs P, van Venrooij W, Ramaekers F (1986) Protein composition of nuclear matrix preparations from HeLa cells: an immunochemical approach. J Cell Sci. 80: 103-22.

89. Verheijen R, van Venrooij W, Ramaekers F (1988) The nuclear matrix: structure and composition. J Cell Sci. 90:11 -36.

90. Visser A.E., Jaunin F., Fakan S., Aten J.A. (2000). High resolution analysis of interphase chromosome domains. J Cell Sci. 113 (Pt 14):2585-93.

91. Walter J., Schermelleh L., Cremer M., Tashiro S., Cremer T. (2003). Chromosome order in HeLa cells changes during mitosis and early Gl, but is stably maintained during subsequent interphase stages. J Cell Biol. 160(5):685-97.

92. Wattendorf DJ, Muenke M. (2005) Klinefelter syndrome. Am Fam Physician 72(11): 2259-2262.

93. Weierich C., Brero A., Stein S., von Hase J., Cremer C., Cremer T. & Solovei I. (2003). Three-dimensional arrangements of centromeres and telomeres in nuclei of human and murine lymphocytes. Chromosome Res. 11: 485-502.

94. Willard H.F. (1985). Chromosome-specific organization of human alpha satellite DNA. Am J Hum Genet. 37(3):524-32.

95. Williams R.R., Broad S., Sheer D., Ragoussis J. (2002). Subchromosomal positioning of the epidermal differentiation complex (EDC) in keratinocyte and lymphoblast interphase nuclei. Exp Cell Res. 272(2): 163-75.

96. Zink, D. et al. (1998).Structure and dynamics of human interphase chromosome territories in vivo. Hum. Genet. 102, 241-251.

97. Zink, D., Bornfleth, H., Visser, A., Cremer, C. & Cremer, T. (1999). Organization of early and late replicating DNA in human chromosome territories. Exp. Cell Res. 247,176-188.

98. Zirbel R.M., Mathieu U.R., Kurz A., Cremer T., Lichter P. (1993). Evidence for a nuclear compartment of transcription and splicing located at chromosome domain boundaries. Chromosome Res. 1(2):93-106.

99. Zirbel R.M., U.R. Mathieu, A. Kurz, T. Cremer, P. Lichter (1993) Evidence for a nuclear compartment of transcription and splicing located at chromosome domain boundaries, Chromosome Res. 1: 93-106.

100. Zorn, C., Cremer, C., Cremer, T. & Zimmer, J. (1979). Unscheduled DNA synthesis after partial UV irradiation of the cell nucleus. Distribution in interphase and metaphase. Exp. Cell Res. 124: 111-119.