Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Пробиотики в кормлении осетровых рыб при товарном выращивании

ВАК РФ 03.00.10, Ихтиология

Автореферат диссертации по теме "Пробиотики в кормлении осетровых рыб при товарном выращивании"

На правах рукописи

ШУЛЬГА Елена Александровна

ПРОБИОТИКИ В КОРМЛЕНИИ ОСЕТРОВЫХ РЫБ ПРИ ТОВАРНОМ ВЫРАЩИВАНИИ

Специальность 03.00.10 - ихтиология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

0034Ьиччи

Астрахань 2009

003460440

Работа выполнена в Астраханском государственном техническом

университете

Научный руководитель:

заслуженный работник рыбного хозяйства РФ доктор биологических наук,

профессор Пономарев Сергей Владимирович

Официальные оппоненты:

заслуженный работник рыбного хозяйства РФ доктор биологических наук,

профессор, Иванов Владимир Прокофьевич

заслуженный деятель науки РФ доктор биологических наук,

профессор, Воробьев Владимир Иванович

Ведущая организация: МГУТУ - Московский государственный университет технологий и управления

ео

Защита диссертации состоится <£</» а 2009 года в часов на

заседании диссертационного совета Д.307.001.05 при Астраханском государственном техническом университете по адресу: 414025, г. Астрахань, ул. Татищева, 16, АГТУ

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Астраханского государственного технического университета.

Автореферат разослан « ¿( » лиАаьи 2009 года

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат биологических наук Мелякина Э.И.

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы В условиях катастрофического снижения численности осетровых рыб развивающееся в последние годы товарное осетроводство является единственным способом производства этой ценной деликатесной продукции. Разработаны и эффективно реализуются различные интенсивные технологии товарного выращивания осетровых рыб, которые предусматривают получение продукции только за счет использования комбинированных комбикормов.

При выращивании осетровых рыб наблюдается увеличение уровня органического загрязнения и числа условно-патогенных бактерий в водной среде. При определенной концентрации микроорганизмов в воде рыбоводных емкостей происходит их увеличение в органах и тканях рыб (Юхименко, Викторова, 1979; Каховский, Михайловская, 1990; Каховский, Тромбицкий, 1991; Казарникова, Шестаков-ская, 2005). При этом отмечаются случаи ослабления общего состояния рыб и возникновения различных заболеваний, что ведет к необходимости проведения исследований, направленных на разработку лечебно-профилактических кормов.

В настоящее время в качестве средства, направленного на поддержание и восстановление нормального физиологического состояния человека и животных используют различные пробиотические препараты (Harbarth, Samore, 2005; Шендеров, 2007). Это связано с современным состоянием антибиотикорезистентности рыб, которая делает необходимым поиск альтернативных, физиологически обоснованных и безопасных средств для профилактики и лечения инфекций (Noga, 1995; Мирзоева, 2000; Головин и др., 2005)

В связи с этим, основной проблемой интенсивного товарного осетроводства является разработка новых биотехнологий выращивания, с использованием комбикормов, содержащих в своем составе современные препараты пробиотиков.

Типичным представителем пробиотиков является отечественный препарат «Субтилис», действующим началом которого являются Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis, они активно выделяют в ки-

U

шечнике биологически активные вещества, продуцируют различные пищеварительные ферменты и энзимы (Кулаков, 2003).

Таким образом, особую актуальность исследований представляет изучение возможности использования пробиотика «Субтилис» в составе комбикормов для осетровых рыб.

Цель и задачи исследований. Целью данной работы явилась научная оценка эффективности применения пробиотика «Субтилис» в составе сухих комбинированных кормов для осетровых рыб:

Поставленная цель определила следующие задачи:

- определить влияние пробиотика «Субтилис» на микробиологический фон комбикормов для осетровых рыб;

- изучить лечебные свойства пробиотического препарата «Субтилис» при раневых поражениях кожных покровов осетровых рыб;

- изучить биологическую эффективность использования пробиотического препарата «Субтилис» в составе стартовых комбикормов для осетровых рыб;

- установить целесообразность использования пробиотического препарата «Субтилис в продукционных кормах для осетровых рыб;

- проанализировать влияние пробиотического препарата «Субтилис» на микробный фон воды и выращиваемой рыбы.

Научная новизна. Впервые комплексно, на основании оценки рыбоводно-биологических и физиолого-биохимических показателей, научно обоснована целесообразность и эффективность применения пробиотического препарата «Субтилис» - биологически активной добавки в отечественные комбикорма для осетровых рыб серии ОСТ и ОТ, рекомендуемых и утвержденных в 2005-2006 гг. к использованию в рыбном хозяйстве России. Установлено, что введение этого пробиотика в рацион осетровых рыб позволяет повысить основные рыбовод-но-биологические показатели выращивания, снижает кормовые затраты, улучшает физиолого-биохимическое состояние выращенной молоди.

Выявлено, что препарат «Субтилис» снижает микробную контаминацию воды в бассейнах, поверхности тела выращиваемых рыб,

кормов. Установлена перспектива применения пробиотика для профилактики и лечения раневых повреждений осетровых рыб.

Практическая значимость. Полученные результаты могут служить основой для совершенствования технологий интенсивного выращивания осетровых рыб. Предложены методы снижения контаминации комбикормов с использованием пробиотика «Субтилис» в жидкой активной форме. Использование комбикормов с пробиотиче-ским препаратом позволяет снизить потери рыбоводной продукции, сократить затраты кормов.

Основные положения выносимые на защиту.

Совокупность новых научных результатов, обосновывающих использование пробиотического препарата «Субтилис» в составе комбикормов при промышленном выращивании осетровых рыб, что способствует увеличению выхода рыбоводной продукции, улучшению ее физиологического состояния.

Апробация работы. Основные материалы диссертационной работы докладывались на конференциях: Межрегиональной научно-практической конференции «Научные подходы к решению проблем производства продуктов питания (г. Ростов-на-Дону, 2003); Международной научно-практической конференции «Аквакультура и интегрированные технологии: проблемы и возможности» (г. Москва, 2005); международной научной конференции «Состояние и перспективы развития фермерского рыбоводства аридной зоны» (Ростов - на - Дону, 2006); на научных конференциях профессорско-преподавательского состава Астраханского государственного технического университета в 2004-2008 гг.; I и П научных конференциях студентов и аспирантов базовых кафедр Южного научного центра РАН (г. Ростов-на-Дону, 2005-2006 гг.); на Международной научно-практической конференции

«Фундаментальные аспекты биологии в решении актуальных экологических проблем» (Астрахань, 2008).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 10 работ.

Структура и объем диссертации. Диссертационная работа изложена на 120 страницах машинописного текста. Состоит из введе-

ния, семи глав, заключения, выводов, предложений производству, приложений. Список литературы содержит 246 источников, из них 52 иностранных авторов. Работа иллюстрирована 8 рисунками и 26 таблицами.

ГЛАВА I. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР

Обобщены и проанализированы сведения по вопросам кормления ценных объектов аквакультуры. Отдельное внимание уделено вопросам патологий рыб, вызванных использованием несбалансированных кормов, а также проблемам качества комбинированных кормов. Также представлена информация о введении в комбикорма для объектов аквакультуры пробиотика «Субтилис». Анализ литературных сведений показал актуальность и целесообразность проведения научных исследований.

ГЛАВА П. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Исследования выполняли в экспериментальном аквариальном комплексе и лабораториях инновационного центра «Биоаквапарк -Научно-технический центр аквакультуры» Астраханского государственного технического университета, на береговой научно-экспедиционной базе «Кагальник» Южного научного центра РАН (Ростовская область), Лебяжьем осетровом рыбоводном заводе (Астраханская область) и Волгоградском осетровом рыбоводном заводе (Волгоградская область) в период с 2003 по 2008 гг.

Для испытаний ООО «Провими» (г. Москва) были представлены опытные партии пробиотика «Субтилис» в жидкой и сухой формах. Схема проведения исследований представлена на рисунке 1.

При определении оптимальной нормы препарата «Субтилис», воздействующей на микробную контаминацию, различное количество жидкой формы препарата наносили на комбикорм с начальным уровнем обсемененности 5,3 х 10б КОЕ/кг и хранили его в течении 50 суток. Исследовали следующие нормы нанесения препарата: 0,1; 0,3; 0,5; 0,7 мг/кг корма. При длительном хранении кормов (150 суток) в опытном варианте использовали дозу 0,1 мл/кг.

Рнс.1. Схема проведения исследований

Лечебные свойства препарата «Субтилис» определяли в два этапа в производственных условиях. На первом этапе эксперимента молоди русского осетра начальной массой 14-16 г наносили надрезы кожных покровов. На втором этапе для исследований были отобраны особи стерляди с одинаковой степенью «потертостей» (после транспортировки).

Норму ввода пробиотика «Субтилис» в состав стартовых и продукционных комбикормов для осетровых рыб определили на основе анализа научной литературы, она составила 40 г/кг комбикорма (Кулаков, 2003). Сухую форму пробиотического препарата вводили в состав комбикормов в процессе изготовления.

Опытные партии сухих комбикормов (ОСТ-4, ОСТ-6, ОТ-7) изготавливали в лабораторных условиях, комбикорм ВОРЗ-Ст - на специальном оборудовании для производства влажных кормов Волгоградского ОРЗ.

Исследования по определению эффективности использования пробиотика «Субтилис» в составе стартовых комбикормов проводили в лабораторных и производственных условиях на ранней молоди стерляди, русского осетра и севрюги.

Изучение эффективности использования пробиотика «Субтилис» в продукционных комбикормах проводили в лабораторных условиях на молоди русского осетра и стерляди, в производственных условиях на сеголетках гибрида стерлядь х белуга.

Для характеристики интенсивности роста использовали показатели абсолютного и среднесуточного приростов, среднесуточной скорости роста, а также коэффициент массонакопления (Винберг, 1956; Са^И, "Пета, 1979; Резников и др., 1978; Баранов и др., 1979; Купинский и др., 1986).

Затраты корма рассчитывали в целом за опыт; как отношение количества корма внесенного в рыбоводную емкость к единице прироста массы (Щербина, Гамыгин, 2006). Выживаемость выражали в процентах от общего количества наблюдаемых рыб. Жизнестойкость молоди севрюги определяли методом функциональных нагрузок (Лукьяненко, 1989).

Общий химический анализ тела исследуемых рыб выполняли по общепринятым методикам. Они включали определение влаги высушиванием при температуре 105°С; жира - экстракционным методом в аппарате Сокслета; сырого протеина - путем колориметрического определения азота с применением реактива Несслера; содержание золы - сжиганием исследуемого материала в муфельной печи при температуре 500°С (Щербина, 1983).

Определение содержания гемоглобина проводили цианметге-моглобиновым фотометрическим методом, общий объем эритроцитов измеряли с использованием гематокритной центрифуги МГ6-02, количественное определение эритроцитов - пробирочным методом в счетной камере Горяева (Иванова, 1983), белка в сыворотке крови - с использованием рефрактометра.

Для проведения бактериологических исследований корма, воду, рыб отправляли в лабораторию микробиологии РостНИпчи (г. Ростов-на-Дону), полученные данные анализировались и использовались в работе.

Всего выполнено около 2500 взвешиваний и измерений осетровых рыб различного возраста. Обработано 300 гематологических и 280 биохимических проб. В экспериментах использовано около 12000 шт. осетровых рыб.

Опыты проводили в двукратной повторное™, данные подвергали статистической обработке по Г.Ф. Лакину (1990) с применением персонального компьютера.

ГЛАВА Ш. ОБЩАЯ САНИТАРНО-МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА КОМБИКОРМОВ, ИСПОЛЬЗУЕМЫХ ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ МОЛОДИ

ОСЕТРОВЫХ РЫБ

В настоящее время при товарном выращивании осетровых рыб достаточно остро стоит вопрос обеспечения безопасности комбикормов. Поэтому, наряду с традиционным контролем биологического качества комбикормов, весьма важное значение придается их санитарно-биологической характеристике (Бурлаченко, 2007). Комбикорма для

осетровых рыб содержат значительное количество продуктов животного происхождения, что является благоприятной основой для массового развития бактерий, токсины которых оказывают супрессивное действие на иммунную систему, провоцируя патологические изменения внутренних органов (Байрамова, Абросимова, 2006). Одним из возможных способов предотвращения такого негативного воздействия на организм рыб, является использование пробиотиков в составе комбикормов.

Основной особенностью пробиотика «Субтилис» является сочетание аэробной Bacillus subtilis и анаэробной Bacillus licheniformis форм бактерий. Первые - являются источником пищеварительных ферментов, вторые - проявляют выраженное антагонистическое действие в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий (Verweyen et al., 1999; Кулаков, Панасенко, 2004; Ларцева, Обухова, 2006).

На первом этапе провели определение оптимальной нормы введения пробиотического препарата «Субтилис», воздействующей на микробный фон комбикорма с повышенным уровнем контаминации.

В ходе наблюдений за бактериальным фоном кормов, обработанных жидким пробиотиком «Субтилис», было отмечено, что даже при минимальной дозе (0,1 мл/кг) пробиотического препарата происходило снижение уровня зараженности кормов бактериями.

На рыбоводных заводах кормление рыб осуществляется в течение длительного периода, особенно при круглогодичном содержании ремонтно-маточного стада, а закупка комбикормов, как правило, осуществляется 2-3 раза в год. Поэтому комбикорма хранятся непосредственно на предприятии. Во время хранения комбикормов их об-семененность изменяется, что приводит к накоплению бактериальных клеток и продуктов их метаболизма.

Через 2 месяца хранения зараженность контрольной партии корма, микроорганизмами увеличилась, а к концу четвертого месяца хранения его общая бактериальная обсемененность достигла достаточно высоких переделов и далее уже не изменялась (рисЛ).

й tu

2

«ООО» 45!) ИМ 400000 350000

зшюш

250000 200000 150000 100000 50000 0

/

/

„■^sr»

—«—»I1HI J'— comp 0.1

10

30 60

90

Ш 150

гуткн

Рис.1. Общая бактериальная обсемененность кормов при длительном

хранении

Примечание: опыт- комбикорм обработанный жидкой формой про-биотического препарата «Субтилис»; контроль - не обработанный комбикорм

В опытной партии кормов отмечали, что уровень бактериальной обсемененности был значительно ниже. Однако в период хранения комбикорма динамика микробной обсемененности имела аналогичную контрольному варианту картину. Бактерии рода Bacillus subti-lis и Bacillus licheniformis действуя, как антагонисты, при попадании в среду патогенных и условно-патогенных бактерий начинают активно развиваться, увеличивая свою численность, затем постепенно вытесняя их из сообщества (Кулаков, 2003).

Таким образом, проведенные исследования показали, что для увеличения срока хранения и уменьшения контаминации комбикормов для осетровых рыб, возможно использование пробиотика «Субтилис» в жидкой - активной форме.

ГЛАВА IV. ЛЕЧЕБНЫЕ СВОЙСТВА ПРОБИОТИКА «СУБТИЛИС» ПРИ РЕПАРАЦИИ КОЖНЫХ ПОКРОВОВ ОСЕТРОВЫХ РЫБ

Особый интерес представляло определение лечебных свойств пробиотического препарата «Субтилис» при репарации поврежденных кожных покровов у молоди русского осетра массой 14-16 г. Результаты оценки лечебных свойств пробиотика «Субтилис» показали, что полное заживление ран по первичному натяжению у рыб в опытном варианте произошло на 5 суток раньше, чем в контроле (рис. 2). Первая и вторая фазы, характеризующиеся сворачиваемостью крови и воспалением, протекали достаточно быстро - в течение одних суток. Уже через 48 часов наблюдали начало пролиферативной фазы (Яковлева, 1978; Гецадзе, 1984; Малеков, 2001), при которой отмечались первые признаки стягивания ран. В контрольном варианте начальные фазы репарации проходили медленнее, а стягивание повреждений началось лишь через 6 суток.

опыт контроль

Рис. 2. Влияние препарата «Субтилис» на скорость полной репарации ран при незначительном повреждении

Рана загрязняется микробами уже в момент ранения - первичное загрязнение раны (Кузов, Яглинский, 1991; Ибрагимов и др., 2007). Так у 20% интактных рыб наблюдали инфицирование ран. По-видимому, у рыб контрольной группы загрязнение поврежденных покровов продолжалось, что привело к вторичному микробному загрязнению раны и увеличению ее общей микробной обсемененности. Качественный состав выделенной микрофлоры с раневой поверхности рыб (по данным лаборатории микробиологии РостНИпчи) в контрольном варианте отличался большим разнообразием.

Результаты исследования количественного показателя общей микробной обсемененности показали, что контаминация воды из бассейнов опытного варианта была ниже и составила 2,1х103 КОЕ/мл, тогда как обсемененность воды в контроле составила 1,8x105 КОЕ/мл. На раневой поверхности рыб контрольного варианта обнаружили значительное количество различных микроорганизмов.

Формирование раневой инфекции является следствием нарушения общей защитной реакции организма (Балаханов, 1979; Банде-мир, 1985; Гаибов, Султанов, 1988; Чернуха, Флорова, 2006). В связи с тем, что пробиотик обладает иммуномодулирующим действием, благодаря активации макрофагов, индукции эндогенного интерферона и синтеза иммуноглобулинов, очевидно резистентность рыб опытного варианта к инфицированию была значительно выше.

Анализ рыбоводно-биологических показателей, полученных в ходе эксперимента, позволяет утверждать, что введение в корма для осетровых рыб пробиотического препарата «Субтилис», оказывает позитивный эффект на рост и выживаемость рыб с механическими повреждениями кожных покровов.

Среднесуточная скорость роста рыб контрольного варианта была на 1,6 % ниже, чем у рыб из опытного варианта, а абсолютный прирост - на 32%. При этом выживаемость рыб в контрольном варианте была ниже на 10% (табл. 1).

Таблица 1

Рыбоводно-биологические показатели выращивания молоди русского осетра с поврежденными кожными покровами

Показатели Опыт Контроль

Масса начальная, г 14,77±0,44 14,85±0,29

Масса конечная, г 31,57±0,62*** 23,65±0,52

Абсолютный прирост, г 16,80 8,80

Среднесуточная скорость роста, % 3,9 2,3

Коэффициент массонакопления, ед 0,04 0,02

Выживаемость, % 100 90

Период выращивания, сут 20 20

Примечание: различия достоверны при ***Р<0,001

Формирование ремонтно-маточных стад осетровых рыб возможно осуществлять методом доместикации рыб, отловленных из естественной среды обитания. При этом в результате отлова и транспортировки у значительного количества особей наблюдаются симптомы начала воспалительного процесса. Для экспериментальных исследований были отобраны особи с одинаковой степенью поражения кожных покровов.

Использование в течение 14 суток продукционного комбикорма ОТ-7, содержащего пробиотический препарат «Субтилис», способствовало лучшему заживлению пораженных кожных покровов. В контрольном варианте раны стали покрываться сапролегнией, состояние рыб ухудшилось. Через 2 недели эксперимента отход среди интактных рыб составил 8%, тогда как в опытном варианте - 2%.

Наблюдения показали, что в варианте, где рыба потребляла комбикорм с пробиотическим препаратом, отмечалось исчезновение покраснений кожных покровов уже на 4-е сутки эксперимента. Полное заживление поврежденных покровов наблюдалось на 10-е сутки. Это связано с тем, что, попадая в пищеварительный тракт, бактерии Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis начинают активно продуцировать аминокислоты, которые, вступая в процесс синтеза коллагена,

способствуют быстрому заживлению ран (Сорокулова, 1999; Колгано-ва и др., 2001; Малик и др., 2002; Кулаков, 2003).

Таким образом, использование комбикормов с пробиотиком благоприятно влияет на ряд фаз процесса заживления раны, улучшает иммунный ответ и опсонизацию бактерий.

ГЛАВА V. БИОЛОГИЧЕСКАЯ И ФИЗИОЛОГИЧЕСКАЯ

ОЦЕНКА ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ПРОБИОТИКА «СУБТИ-ЛИС» В СОСТАВЕ СТАРТОВЫХ КОМБИКОРМОВ ДЛЯ

ОСЕТРОВЫХ РЫБ

В современных экологических условиях для кормления осетровых рыб целесообразно применять комбикорма, которые отличались бы не только сбалансированностью состава по основным питательным и биологически активным веществам, но и высоким продуктивным и иммуномодулирующим действием, а также низкой стоимостью (Лукьяненко, 1989).

В связи с этим был проведен ряд исследований по оценке эффективности использования бактериального препарата «Субтилис» в составе стартовых комбикормов для осетровых рыб. Применение препарата при выращивании других видов рыб показало, что он способствует лучшей усваиваемости пищи (Кулаков, 2003; Кулаков, Пана-сенко, 2004; Панасенко, 2006).

В качестве контроля использовали вначале комбикорм рецептуры ОСТ- 4, через 10 суток по мере роста молоди использовали комбикорм ОСТ-6, содержащий легкоусваиваемый протеин (гидролизат).

При выращивании ранней молоди русского осетра и стерляди в течение 30 суток ростовой эффект в опытном варианте находился на уровне контроля (табл. 2).

При этом следует отметить, что введение в состав комбикорма пробиотического препарата «Субтилис» оказало положительное влияние на выживаемость личинок, как русского осетра, так и стерляди.

Таблица 2

Рыбоводно-биологические показатели выращивания личинок осетровых рыб

Показатели Русский осетр Стерлядь

Опыт Контроль Опыт Контроль

Масса начальная, г 0,06±0,004 0,06±0,004 0,04±0,002 0,04±0,002

Масса конечная, г 0,62±0,05 0,65±0,06 0,5б±0,04 0,50±0,03

Абсолютный прирост, г 0,56 0,59 0,52 0,46

Среднесуточный прирост, % 5,49 5,54 5,77 5,67

Кормовые затраты, ед. 1,1 1,0 1,20 1,25

Выживаемость, % 87 84 85 82

Продолжительность эксперимента, сут 30 30 30 30

Полученное положительное действие при введении в состав комбикорма пробиотического препарата «Субтилис», можно объяснить его возможностью вырабатывать разнообразные пищеварительные ферменты и витамины непосредственно в кишечнике, и, тем самым, оказывать на рыб, выраженный ростостимулирующий эффект.

Уровень гемоглобина и количество эритроцитов в составе красной крови рыб опытной группы были выше по сравнению с показателями рыб контрольной группы на 4%.

Исследование общего биохимического состава тела молоди русского осетра, выращенного на комбикорме с пробиотиком, показало, что весьма благоприятным следует считать более высокое количество белка в теле рыб по сравнению с контролем.

Кроме того, также следует отметить, что при выращивании молоди осетровых рыб на опытном варианте комбикорма увеличивалась интенсивность накопления основных питательных веществ в теле (рис. 3).

500 450 400 350 300 250 200 150 100 50 0

щ

11В

ш

; опыт

контроль

протеин

жир

зола

Рис. 3. Накопление питательных веществ в теле молоди русского осетра, мг/100 г

Исследования, проведенные в производственных условиях, показали, что применение пробиотического препарата «Субтилис» в составе стартового комбикорма в большей степени оказывает положительное влияние на жизнестойкость молоди севрюги. Уровень выживаемости во всех опытных вариантах был выше, чем в контроле на 510%. Причем лучший показатель выживаемости (на 10% выше по сравнению с контролем) отмечали в варианте, где на протяжении всего периода выращивания применяли стартовый комбикорм с пробио-тиком «Субтилис» (табл. 3).

В целом, следует отметить, что применение пробиотического препарата «Субтилис» в составе стартового комбикорма на протяжении всего периода выращивания (до массы 3 г) стимулирует рост ранней молоди осетровых рыб.

Терморезистентность молоди опытной группы оказалась относительно высокой - в среднем 249,3 мин. Наименее устойчивой была молодь севрюги в контроле: максимальный период выживания ее в аналогичных условиях (до момента гибели) составил не более 201,6 мин.

Таблица 3

Рыбоводно-биологические показатели выращивания

____молоди севрюги_________

Показатели Варианты опыта1'

I II III IV V К

Масса начальная, г 0,03±0,005 0,03±0,005 0,03±0,004 0,03±0,005 0,03±0,005 0,03±0,004

Масса конечная, г2> 3,29±0,01 3,31±0,02 3,34±0,02 4,05±0,05 4,26±0,06 3,01±0,02

Абсолютный прирост, г 3,26 3,28 3,31 4,02 4,23 2,98

Выживаемость, % 65 68 68 71 70 60

Продолжительность, сут. 56 56 56 56 56 56

Массонакопле ние, ед. 0.125 0.117 0.117 0.127 0.130 0.112

Кормовые затраты, ед., % к контролю 1,1 84,6 1Д 84,6 1,1 84,6 1,0 76,9 1,0 76,9 1,3 100

Примечание: 1) вариант I - в течение первых 10 суток кормили комбикормом ОСТ-4, содержащим пробиотик «Субтилис», далее комбикормом ОСТ-6; вариант И - в течение первых 20 суток кормили комбикормом ОСТ-4, содержащим пробиотик «Субтилис», далее комбикормом ОСТ-6; вариант III - в течение первых 30 суток кормили комбикормом ОСТ-4, содержащим пробиотик «Субтилис», далее комбикормом ОСТ-6; вариант IV - в течение первых 40 суток кормили комбикормом ОСТ-4, содержащим пробиотик «Субтилис», далее комбикормом ОСТ-6; вариант V - на протяжении всего эксперимента кормили комбикормом ОСТ-4, содержащим пробиотик «Субтилис»; контрольную группу на протяжении всего периода выращивания кормили комбикормом ОСТ-6 (без пробиотического препарата). 2) различия достоверны при Р<0,05.

Оценивая все установленные рыбоводно-биологические и фи-зиолого-биохимические показатели молоди осетровых рыб, следует отметить, что введение в состав комбикорма для осетровых рыб про-биотика «Субтилис» достоверно улучшает рост и выживаемость ранней молоди.

ГЛАВА VI. ОЦЕНКА ВОЗМОЖНОСТИ ПРИМЕНЕНИЯ ПРОБИОТИКА «СУБТИЛИС» В ПРОДУКЦИОННЫХ КОРМАХ

ДЛЯ ОСЕТРОВЫХ РЫБ

Постоянное и широкое применение антибиотиков в составе комбикормов вызывает появление и длительную циркуляцию в хозяйстве резистентных к антибиотикам штаммов патогенов, в результате чего возрастает вирулентность микроорганизмов, резко снижается выживаемость и темп роста выращиваемых объектов (Кулаков, 2003; Юхименко и др., 2001). Альтернативой кормовым антибиотикам могут выступать спорообразующие пробиотики. Их влияние на организм рыб еще не достаточно изучено.

Введение в состав продукционного комбикорма ОТ-7 сухой формы пробиотика «Субтилис» не оказало негативного влияния на рост молоди стерляди: рыба в данном варианте характеризовалась высокой среднесуточной скоростью роста - 4,32 %, по сравнению с таковой в контроле (1,95 %), выживаемость была выше на 12 %, чем в контроле.

В результате выращивания молоди русского осетра было также установлено преимущество введения в состав продукционного комбикорма ОТ-7 пробиотика «Субтилис». Лучшие рыбоводно-биологические показатели выращивания рыбы в этом варианте подтверждаются наиболее высоким среднесуточным приростом, высокой выживаемостью и наименьшими кормовыми затратами.

По химическому составу тела молодь стерляди и русского осетра ,выращенная на комбикорме с добавлением пробиотика «Субтилис», отличалась высоким содержанием белка и жира в теле, что свидетельствует об удовлетворительном физиологическом состоянии рыб.

Положительный эффект применения пробиотика можно объяснить тем что, в состав пробиотического препарата входят ферменты, которые способствуют быстрому расщеплению, а также лучшему усвоению пищи.

При изучении гематологических показателей молоди отмечали, увеличение уровня гемоглобина в опытном варианте у стерляди -

на 9%, у русского осетра - на 2 %. Общий объем эритроцитов был также выше у рыб опытной группы. Наибольшее количество белка в плазме крови было отмечено у рыб опытной группы. Количество лимфоцитов в крови было выше у рыб выращенных на комбикорме с пробиотиками.

Проведенный комплексный анализ рыбоводно-биологических и физиолого-биохимических показателей позволил установить целесообразность использования пробиотика «Субтилис» в составе продукционных комбикормов для осетровых рыб.

ГЛАВА УЛ. ВЛИЯНИЕ ПРОБИОТИКА «СУБТИЛИС» НА МИКРОБНЫЙ ФОН ВОДЫ И ВЫРАЩИВАЕМОЙ РЫБЫ

Бактериологическая оценка качества воды из рыбоводных бассейнов показала, что при кормлении рыб комбикормом, содержащим пробиотический препарат «Субтилис» общий микробный фон воды изменялся в сторону снижения общего микробного числа с 3,1 х 103 до 2,1 х 102 КОЕ/мл. Вода из контрольных бассейнов характеризовалась относительно стабильным микробным фоном от 3,5 х 103 до 7,9 х 103 КОЕ/мл. Кроме того, в воде контрольных бассейнов отмечалась условно-патогенная оксидазоположительная микрофлора - 3,7-7,6%, и была представлена микроорганизмами 7 видов: Aeromonas hydrophila, Aeromonas sp., Alcaligenes latus, Alcaligenes sp., Flavobacterium aquatile, Plesiomonas shigelloides, Plesiomonas sp. Доля их в общем водном микробиоценозе невелика, однако при воздействии неблагоприятных факторов среды они могут явиться причиной заболеваний рыб или сопутствовать септическим процессам.

Из жабр и поверхности тела выращиваемых рыб контрольной группы выделялись оксидазоположительные микроорганизмы, характерные для водного микробного пейзажа, однако этот спектр менее разнообразен и представлен 5 видами: Aeromonas hydrophila, Aeromonas sp., Flavobacterium aquatile, Plesiomonas shigelloides, Plesiomonas sp.

В воде из бассейнов, а также на поверхности тела рыб которых кормили комбикормом, содержащим пробиотический препарат «Суб-

тилис», условно-патогенной оксидазоположителыюй микрофлоры выявлено не было.

Результаты бактериологических исследований указывают на положительное влияние пробиотика «Субтилис» на микрофлору воды и выращиваемых рыб, что выражалось в отсутствии оксидазоположи-тельных микроорганизмов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В диссертационной работе научно обосновано применение пробиотика «Субтилис» в составе комбикормов для осетровых рыб. Спорообразующие пробиотики «Субтилис» производятся в виде двух форм: сухой и жидкой. В жидкой форме бактерии находятся в активной форме, однако ее достаточно сложно добавлять в корма. Сухая форма является наиболее технологичной, так как споровая культура легко выдерживает процесс приготовления комбикормов.

При проведении исследований нами установлено, что поверхностное нанесение на сухой комбикорм с повышенным уровнем контаминации пробиотика «Субтилис» в дозе 0,1 мл/кг приводит к уменьшению ее уровня и может незначительно продлить возможность использования кормов хранившихся на хозяйствах.

Значительный интерес представляет использование пробиоти-ческого препарата «Субтилис» для профилактики и лечения раневых поражений осетровых рыб, которые неизбежно возникают при их промышленном выращивании.

Введение в состав комбикорма пробиотического препарата «Субтилис» в количестве 40 г/кг корма оказало положительное влияние на рост, выживаемость и жизнестойкость осетровых рыб различных видов и возрастных групп.

Результаты бактериологических исследований указывают на положительное влияние пробиотика «Субтилис» на микрофлору воды и поверхностную микрофлору рыб, что выражается в отсутствии ок-сидазоположительных микроорганизмов в воде и на поверхности тела рыб.

ВЫВОДЫ

1. При обработке комбикормов жидкой формой пробиотика «Субтилис» в дозах от 0,1 до 0,7 мл/кг наблюдается постепенное снижение их обсемененности. Микробный фон начинает снижаться с 30-х

суток после нанесения препарата. Общая бактериальная обсеменен-ность кормов в этот период составляет 230-280 тыс. микробных клеток в 1 г. Оптимальной нормой нанесения пробиотика для снижения обсемененности кормов является 0,1 мл/кг.

2. Введение в корма для осетровых рыб пробиотического препарата «Субтилис», оказывает позитивный эффект на заживление кожных покровов осетровых рыб увеличивая ее скорость, а также приводит к увеличению выживаемости травмированных рыб на 6%.

3. Использование пробиотика «Субтилис» в составе стартовых комбикормов стимулирует рост молоди осетровых рыб, способствует повышению ее жизнестойкости и улучшению физиологического состояния. Наиболее эффективно длительное использования комбикорма с пробиотиком, которое приводит к увеличению прироста на 18%, а выживаемости на. 10%.

4. Выращивание на промышленных предприятиях осетровых рыб с использованием продукционных комбикормов с добавлением пробиотика «Субтилис» оказывает ростостимулирующий эффект -увеличение прироста в 1,8 раза по сравнению с контролем.

5. При кормлении рыб комбикормом, содержащим пробиоти-ческий препарат «Субтилис» общий микробный фон воды изменяется в сторону снижения общего микробного числа с 3,1 х 103 до 2,1 х 102 КОЕ/ мл, тогда как в контрольных бассейнах остается стабильным.

6. Установлено положительное влияние пробиотика «Субтилис» на микрофлору воды и выращиваемых рыб, что выражается в отсутствии оксидазоположительных микроорганизмов. При кормлении рыб комбикормом не содержащим пробиотик «Субтилис» в воде рыбоводных бассейнов отмечается наличие условно-патогенной окси-дазоположительной микрофлоры - 3,7-7,6% от общего микробного числа.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Осетровым рыбоводным заводам рекомендуется использовать пробиотический препарат «Субтилис» в составе стартовых и продукционных комбикормов, что позволяет получать устойчивые высокие результаты выращивания.

2. Для улучшения физиолого - биохимического состояния выращиваемой молоди осетровых рыб рекомендуется вводить «Субтилис» в состав комбикормов.

3. Для уменьшения обсемененности комбикормов патогенными и условно-патогенными бактериями, рекомендуется использовать пробиотик Субтилис в жидкой форме, в которой бактерии антагонисты находятся в активной форме

4. При наличии на поверхности тела выращиваемых рыб повреждений рекомендуется вводить в состав комбикорма пробиотиче-ский препарат «Субтилис».

СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Шульга Е.А., Болонина Н.В. Выращивание молоди донской стерляди на искусственном комбикорме ОТ-7 с добавлением пробиотика // Вестник КБ ГУ. Серия Биологические науки. - Вып. 6. -Нальчик: Каб.-Балк. ун-т, 2004. - С. 75-77.

2. Грозеску Ю.Н., Бахарева A.A., Харламова Ю.В., Митрофанова М.А., Шульга Е.А. Использование вкусовых добавок в составе комбикормов для осетровых рыб // Научные подходы к решению проблем производства продуктов питания: Межвузовский сборник научных трудов. - Ростов — на - Дону: Изд-во Рост, ун-та, 2004.-С. 125-127.

3. Пономарев С.И., Ларцева Л.В., Шульга Е.А., Пономарева E.H. Санитарно-микробиологическая характеристика искусственных кормов, используемых в осетроводстве // Вестник КБГУ. Серия Биологические науки. - Вып. 6. - Нальчик: Каб.-Балк. ун-т, 2004. - С. 7-10.

4. Ларцева Л.В., Шульга Е.А., Пузанков И.В. Санитарно-микробиологическая характеристика искусственных кормов, используемых в осетроводстве // Вестник АГТУ. - № 2(21). -Астрахань: Астр. гос. техн. ун-т, 2004. - С. 61-66.

5. Шульга Е.А., Лапухин Ю.А. Эффективность применения пробиотика «Субтилис» в составе продукционных комбикормов для осетровых рыб // Материалы первой ежегодной научной конференции студентов и аспирантов базовых кафедр Южного научного центра РАН- Ростов - на - Дону: 2005. - С. 340-341.

6. Ponomarev S.V., Ponomareva E.N., Grozesku J.N, Bahareva A.A., Sorokina M.N., Shulga E.A. Use biologically active substances injections to improve quality of sturgeon species gonadal material //

Extended Abstracts Aquaculture. 5th International Symposium on Sturgeon (Ramsar, Iran, 9-13 May 2005) - Ramsar, 2005. - P.105-106.

7. Шульга E.A., Потапов Д.Э., Федоровых Ю.В. «Субтилис» -эффективный препарат для повышения выживаемости молоди рыб // Материалы второй ежегодной научной конференции студентов и аспирантов базовых кафедр Южного научного центра РАН - Ростов -на-Дону: 2006.-С. 48-49.

8. Шульга Е.А. Пробиотик субтилис в комбикормах для стерляди // Состояние и перспективы развития фермерского рыбоводства аридной зоны: Тезисы докладов международной научной конференции. - Ростов - на - Дону: Изд-во Рост, ун-та, 2006. - С. 155167.

9. Шульга Е.А. Пробиотик субтилис в комбикормах для стерляди // Состояние и перспективы развития фермерского рыбоводства аридной зоны: Материалы международной научной конференции. - Ростов - на - Дону. 2007. - С. 101-103.

10. Шульга Е.А., Бахарева A.A., Грозеску Ю.Н. Общая санитарно-микробиологическая характеристика комбикормов, используемых при выращивании молоди осетровых рыб // Фундаментальные аспекты биологии в решении актуальных экологических проблем: Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 100-летию со дня рождения К.В. Горбунова, 10-12 декабря 2008 года, г. Астрахань: Астрахань, ООО «КПЦ «ПолиграфКом», 2008. - С. 295-297.

Подписано в печать 14.01.09 г. Тираж 110 экз. Заказ 5 Типография ФГОУ ВПО «АГТУ», тел. 61-45-23 г. Астрахань, Татищева 16ж.

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Шульга, Елена Александровна

Введение.

Глава I. Литературный обзор (пробиотики в комбинированных кормах для рыб). rj

1.1. Проблема качества комбинированных кормов в связи с их хранением. ^

1.2. Патологии рыб, вызванные несбалансированными по составу питательных веществ кормами. ^

1.3. Пробиотики в кормах для животных и рыб.

Глава II. Материал и методы исследований.

Глава III. Общая санитарно-микробиологическая характеристика комбикормов, используемых при выращивании молоди осетровых рыб. ^

Глава IV. Лечебные свойства пробиотика «Субтилис» при репарации кожных покровов осетровых рыб.

Глава V. Биологическая и физиологическая оценка использования пробиотика «Субтилис»в составе стартовых комбикормов для осетровых рыб. ^

Глава VI. Оценка возможности применения пробиотика «Субтилис» в продукционных кормах для осетровых рыб.

Глава VII. Влияние пробиотика «Субтилис» на микробный фон воды и выращиваемой рыбы.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Пробиотики в кормлении осетровых рыб при товарном выращивании"

Актуальность темы В условиях катастрофического снижения численности осетровых рыб развивающееся в последние годы товарное осетроводство является единственным способом производства ценной деликатесной продукции. Разработаны и эффективно реализуются различные интенсивные технологии товарного выращивания осетровых рыб, которые предусматривают получение продукции только за счет использования искусственных комбикормов.

При выращивании осетровых рыб наблюдается увеличение уровня органического загрязнения и число условно-патогенных бактерий в водной среде. При определенной концентрации микроорганизмов в воде рыбоводных емкостей происходит их резкое увеличение в органах и тканях рыб (Юхименко, Викторова, 1979; Каховский, Михайловская, 1990; Каховский, Тромбицкий, 1991; Казарникова, Шестаковская, 2005). При этом отмечаются случаи ослабления общего состояния рыб и возникновения различных заболеваний, что ведет к необходимости проведения исследований, направленных на разработку лечебно-профилактических кормов.

В настоящее время в качестве средства, направленного на поддержание и восстановление нормального физиологического состояния человека и животных используют различные пробиотические препараты (Harbarth, Samore, 2005; Шендеров, 2007).

Это связано с современным состоянием антибиотикорезистентности рыб, которая делает необходимым поиск альтернативных более физиологичных и безопасных средств для профилактики и лечения инфекций (Noga, 1995; Мирзоева, 2000; Головин и др., 2005)

В связи с этим, основной проблемой интенсивного осетроводства является разработка новых биотехнологий выращивания, с использованием активных и безопасных комбикормов, содержащих в своем составе современные препараты пробиотиков.

Типичным представителем пробиотиков является отечественный препарат «Субтилис», действующим началом которого являются Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis, они активно выделяют в кишечнике биологически активные вещества, продуцируют различные пищеварительные ферменты и энзимы (Кулаков, 2003).

Таким образом, особую актуальность представляет изучение возможности использования пробиотика «Субтилис» в составе комбикормов для осетровых рыб.

Цель и задачи исследований. Целью данной работы явилась научная оценка эффективности применения пробиотика «Субтилис» в составе сухих комбинированных кормов для осетровых рыб:

Поставленная цель определила следующие задачи:

- определить влияние пробиотика «Субтилис» на микробиологический фон комбикормов для осетровых рыб;

- изучить лечебные свойства пробиотического препарата «Субтилис» при раневых поражениях кожных покровов осетровых рыб;

- изучить биологическую эффективность использования пробиотического препарата «Субтилис» в составе стартовых комбикормов для осетровых рыб; установить целесообразность использования пробиотического препарата «Субтилис в продукционных кормах для осетровых рыб;

- проанализировать влияние пробиотического препарата «Субтилис» на микробный фон воды и выращиваемой рыбы.

Научная новизна. Впервые комплексно, на основании оценки рыбоводно-биологических и физиолого-биохимических показателей, научно обоснована целесообразность и эффективность применения пробиотического препарата «Субтилис» — биологически активной добавки в отечественные комбикорма для осетровых рыб серии ОСТ и ОТ, рекомендуемые и утвержденные в 2005-2006 гг. к использованию в рыбном хозяйстве России. Установлено, что введение этого пробиотика в рацион осетровых рыб позволяет повысить основные рыбоводно-биологические показатели выращивания, снижает кормовые затраты, улучшает физиолого-биохимическое состояние выращенной молоди.

Выявлено, что препарат «Субтилис» снижает микробную контаминацию воды в бассейнах, поверхности тела выращиваемых рыб, кормов. Установлена перспектива применения пробиотика для профилактики и лечения раневых повреждений осетровых рыб.

Практическая значимость. Полученные результаты могут служить основой для совершенствования технологий интенсивного выращивания осетровых рыб. Предложены методы снижения контаминации комбикормов с использованием пробиотика «Субтилис» в жидкой активной форме. Использование комбикормов с пробиотическим препаратом позволяет снизить потери рыбоводной продукции, сократить затраты кормов.

Основные положения выносимые на защиту.

Совокупность новых научных результатов, обосновывающих использование пробиотического препарата «Субтилис» в составе комбикормов при промышленном выращивании осетровых рыб, что способствует увеличению выхода рыбоводной продукции, улучшению ее физиологического состояния.

Апробация работы. Основные материалы диссертационной работы докладывались на конференциях: Межрегиональной научно-практической конференции «Научные подходы к решению проблем производства продуктов питания (г. Ростов-на-Дону, 2003); Международной научно-практической конференции «Аквакультура и интегрированные технологии: проблемы и возможности» (г. Москва, 2005); международной научной конференции «Состояние и перспективы развития фермерского рыбоводства аридной зоны» (Ростов-на-Дону, 2006); на научных конференциях профессорско-преподавательского состава Астраханского государственного технического университета в 2004-2008 гг.; I и II научных конференциях студентов и аспирантов базовых кафедр Южного научного центра РАН (г. Ростов-на-Дону, 2005-2006 гг.); на Международной научно-практической конференции

Фундаментальные аспекты биологии в решении актуальных экологических проблем» (Астрахань, 2008).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 10 работ.

Структура и объем диссертации. Диссертационная работа изложена на 120 страницах машинописного текста. Состоит из введения, семи глав, заключения, выводов, предложений производству, приложений. Список литературы содержит 246 источников, из них 52 иностранных авторов. Работа иллюстрирована 8 рисунками и 26 таблицами.

Заключение Диссертация по теме "Ихтиология", Шульга, Елена Александровна

ВЫВОДЫ

1. При обработке комбикормов жидкой формой пробиотика «Субтилис» в дозах от 0,1 до 0,7 мл/кг наблюдается постепенное снижение их обсемененности. Микробный фон начинает снижаться с 30-х суток после нанесения препарата. Общая бактериальная обсемененность кормов в этот период составляет 230-280 тыс. микробных клеток в 1 г. Оптимальной нормой нанесения пробиотика для снижения обсемененности кормов является 0,1 мл/кг.

2. Введение в корма для осетровых рыб пробиотического препарата «Субтилис», оказывает позитивный эффект на заживление кожных покровов осетровых рыб увеличивая ее скорость, а также приводит к увеличению выживаемости травмированных рыб на 6%.

3. Использование пробиотика «Субтилис» в составе стартовых комбикормов стимулирует рост молоди осетровых рыб, способствует повышению ее жизнестойкости и улучшению физиологического состояния. Наиболее эффективно длительное использования комбикорма с пробиотиком, которое приводит к увеличению прироста на 18%, а выживаемости на 10 %.

4. Выращивание на промышленных предприятиях осетровых рыб с использованием продукционных комбикормов с добавлением пробиотика «Субтилис» оказывает ростостимулирующий эффект - увеличение прироста в 1,8 раза по сравнению с контролем.

5. При кормлении рыб комбикормом, содержащим пробиотический препарат «Субтилис» общий микробный фон воды изменяется в сторону

3 2 снижения общего микробного числа с 3,1x10 до 2,1x10 КОЕ/ мл, тогда как в контрольных бассейнах остается стабильным.

6. Установлено положительное влияние пробиотика «Субтилис» на микрофлору воды и выращиваемых рыб, что выражается в отсутствии оксидазоположительных микроорганизмов. При кормлении рыб комбикормом не содержащим пробиотик «Субтилис» в воде рыбоводных бассейнов отмечается наличие условно-патогенной оксидазоположительной микрофлоры - 3,7-7,6% от общего микробного числа.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Осетровым рыбоводным заводам рекомендуется использовать пробиотический препарат «Субтилис» в составе стартовых и продукционных комбикормов, что позволяет получать устойчивые высокие результаты выращивания.

2. Для улучшения физиолога - биохимического состояния выращиваемой молоди осетровых рыб рекомендуется вводить «Субтилис» в состав комбикормов.

3. Для уменьшения обсемененности комбикормов патогенными и условно-патогенными бактериями, рекомендуется использовать пробиотик «Субтилис» в жидкой форме, в которой бактерии антагонисты находятся в активной форме

4. При наличии на поверхности тела выращиваемых рыб повреждений рекомендуется вводить в состав комбикорма пробиотический препарат «Субтилис».

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Шульга, Елена Александровна, Астрахань

1. Абросимова Н.А. Физиологические потребности осетра в протеине и жире: Тез. докл. Всесоюз. совещ. по пром. рыбоводству и проблемам кормов, кормопроизводства и кормления рыб, 19-21 дек. 1985. М., 1985. - С. 4-5.

2. Абросимова Н.А. Корма и кормление осетровых рыб в индустриальной аквакультуре: Автореф. дис. . докт. биол. наук. М., 1997.-76 с.

3. Абросимова Н.А., Васильева Л.М. Основные пути развития товарного осетроводства // Проблемы современного товарного осетроводства: Тез. докл. науч практ. конф., 24 - 25 марта 1999 г., Астрахань. - Астрахань, 1999,-С.3-5.

4. Абросимова Н.А., Абросимов С.С., Саенко Е.М. Кормовое сырье и добавки для объектов аквакультуры. Ростов-на-Дону: Эверест, 2005. - 144 с.

5. Аминева В.А., Яржомбек А. А. Физиология рыб. М.: Легкая и пищ. пром-ть, 1984. - 200 с.

6. Афанасьева В.Г., Пронин Н.М., Дагурова О.П. и др. О заболевании и гибели сеголетков байкальского осетра в аквакультуре // Проблемы охраныздоровья рыб в аквакультуре: Тез. докл. науч.-практ. конф. М.: МИК, 2000. -С. 38-39.

7. Байрамова А.С, Абросимова JI.M. Правила отбора проб клинического материала для бактериального анализа, хранения и транспортировка проб в бактериальную лабораторию: учеб. метод, пособие.- Астрахань: АГМА, 2006. -41с

8. Балаханов А.В. Репаративная регенерация кожи эмбрионов кур 16-го дня инкубации // Вестн. Ленингр. ун-та. 1979. - №3. - Биология, Вып. 1. - С. 14-18.

9. Бандемир Б. Роговый слой как пограничная мембрана // Вестн. дерматологии и венерологии. — 1985, №5. С. 26-30.

10. Баранов С.А., Резников В.Ф., Стариков Е.А., Толчинский Г.И. Основные управления роста биологических объектов // Биологические ресурсы внутр. вод.-в СССР. М.: Наука. 1979. - С. 156-168.

11. Бауер О.Н., Мусселиус В.А., Стрелков Ю.А. Болезни прудовых рыб. М.: Легкая и пищ. Пром-ть. 1981. 320 с.

12. Биохимический практикум: учеб. пособие, для студ. мед. вузов/под общ. ред. Д.М. Никулиной. Астрахань: АГМА, 2005. - 144 с.

13. Биохимический практикум: учеб. пособие, для студ. мед. вузов/под общ. ред. Д.М. Никулиной. Астрахань: АГМА, 2007. - 142с.

14. Бондаренко В.М. Факторы патогенности бактерий и их роль в развитии инфекционного процесса // ЖМЭИ. 1999. - № 5. - С 34-39.

15. Борисенко В.Ф. Свойства аэромонад и их значение в интенсивно эксплуатируемых рыбоводных прудах: Автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 1991.-30 с.

16. Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология: учеб. для студ. высш. зав, обучающихся по мед. спец. 4-е изд. перераб. к доп. - М.: МИА, 2005. - 734 с.

17. Бормотова С.В., Ларцева Л.В., Роготкина И.Ю. Санитарное состояние аквакультуры осетровых и среды ее обитания // Рыбное хозяйство. Болезни рыб. ВНИПРХ. 1995. Вып. 2. - С. 1- 7.

18. Бриллис В.И., Бриллене Т.А., Лейнцер Х.П. и др. Антибиотики и адгезивная активность микроорганизмов // Антибиотики и микроэкология: Труды института НИИ Антибиотиков. — М.: 1988. — С. 147.

19. Бурлаченко И.В. Теоретические и прикладные аспекты повышения резистентности осетровых рыб в аквакультуре: Автореф дисс. . д-ра биол. наук. М., 2007. 76 с.

20. Бурлаченко И.В., Аветисов К.Б., Бычкова Л.И., Юхименко JI.H. Бактериальная обсемененность комбикормов и ее влияние на молодь стерляди // Рыболовство и рыбоводство. 2001. - №2. - С. 16-18.

21. Бурлаченко И.В., Аветисов К.Б, Бычкова Л.И., Юхименко Л.Н. Влияние бактериальной обсемененности кормов на рост и физиологическое состояние молоди стерляди: Сб. трудов ВНИРО. М.: ВНИРО, 2002. - С. 194207.

22. Васильева Л.М. Биологические и технологические особенности товарной аквакультуры осетровых в условиях Нижнего Поволжья. Астрахань: БИОС.-2000-189 с.

23. Ветеринарные правила и нормы по безопасности кормового сырья, кормов и кормовых добавок (проект) 13.7.1 -00.2000 М.: Мин. Сельхоз РФ. -2000.-26 с.

24. Винберг Г.Г. Интенсивность обмена и пищевые потребности рыб. — Минск: Белорусский университет, 1956. 251 с.

25. Вовк Н.И., Руденко А.В. Микрофлора рыб как индикатор их физиологического состояния и экологии водной среды: Тез. докл. нучн. конф. Киев, 1984-С. 179- 180.

26. Вовк Н.И., Сидоров Н.А. Заболевания канального сома при индустриальном выращивании // Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре: Тез. докл. науч.-практ. конф. М.: МИК, 2000. - С. 44-45.

27. Волина Е.Г., Сухарева JI.E. Основы общей микробиологии, иммунологии и вирусологии: учеб. пособие для иностр. студ. мед. вузов. М.: Медицина, 2004. - 245с.

28. Воробьев А.А, Лыкова Е.А. Бактерии нормальной микрофлоры. Биологические свойства и защитные функции // ЖМЭИ. 1999. - №6. - С. 102105.

29. Гаибов А.Г., Султанов P.M. Морфология кожной раны в ее ранних сроках // Здравоохранение Таджикистана . 1988. - №3. - С. 98-100.

30. Галаш В.Т. Токсико-биологическое действие трихотеценовых ми-котоксинов на карпа и предельно допустимая концентрация Т-2-токсина в карповых комбикормах: Автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 1988. 27 с.

31. Галаш В.Т., Иванова Н.С. О небходимости изучения микотоксико-зов рыб//Рыбн. хоз-во. Сер. Рыбохоз. Использ. Внутр. водоемов: Экспресс-информация/ЦНИИТЭИРХ. 1986. - Вып. 4. - С. 9-17.

32. Гамыгин Е.А. Корма и кормление рыбы // Рыбное хозяйство. Обзорная инф. Сер.: Рыбохозяйственное использование внутренних водоемов. -М.: ЦНИИТЭРХ. -1987. Вып. 1.- 82с

33. Гамыгин Е.А. Кормление лососевых рыб в индустриальной аква-культуре: Дис. в виде научн. докл.док. биол. наук. -М.:ВНИИПРХ, 1996. 76 с.

34. Гамыгин Е.А., Лысенко В .Я., Скляров В .Я., Турецкий В.И. Комбикорма для рыб. М.: Агропромиздат, 1989. - 168 с.

35. Гамыгин Е.А., Щербина М.А., Передня А.А. Итоги работы по созданию новых кормов для ценных объектов аквакультуры // Вестник АГТУ. -Астрахань. 2 (21). - 2004. - С. 55-61.

36. Гецадзе Х.А. Пролиферативная способность фиборобластов кожи долгожителей in vitro // Сообщ. АН ГССР. 1984. - Т. 115, №2. - С. 413-416.

37. Гительзон И.И., Терсков И.А. О способе выражения гемоглобина в эритроците // Лабораторное дело. №6. - 1956. - С. 6-10.

38. Головин П.П., Головина Н.А., Гусева Н.В., Передняя А.А., Сушков И.В. С микотоксикозами рыб можно бороться (новые свойства хитозана) // Ветеринария. 1987. - №10. - С. 34-36.

39. Головин П.П. Головина Н.А., Цвылев О.П. Алиментарные болезни рыб: диагностика и профилактика: Тез. докл. науч.-практ. конф. "Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре". М.: МИК, 2000. - С. 49-50.

40. Головин П.П., Головина Н.А., Романова Н.Н. Кадастр лечебных перпаратов, используемых и апробированных в аквакультуре России и зарубе-жом. М. : ФГНУ «Росинформагротех», 2005.-56 с.

41. Головина Н.А. Использование гематологических показателей для оценки физиологического состояния организма рыб // Аквакультура и здоровье: матер. Первого росс.- амер. симп. М., 1998. - С 137-138.

42. Головина Н.А., Головин П.П. Повышение общей резистентности организма карпов во время зимовки в тепловодных рыбоводных хозяйствах: Тез. докл. Всерос. науч.-производ. совещ. "Проблемы развития пресноводной аквакультуры". М.: ВНИИПРХ. 1993.-С. 55-56.

43. Головина Н.А., Ланге М.А., Васильева Т.В., Головин П.П. Алиментарных токсикоз осетровых рыб и его последствия // Осетровые на рубеже XXI века: Тез. докл. межд. конф. Астрахань, 11-15 сент. 2000. Астрахань: Касп-НИРХ. - 2000. - С. 299-300.

44. Головина Н.А., Тромбицкий И.Д. Гематология прудовых рыб. — Кишенев: Штиинца, 1989. 156 с.

45. Головина Н.А., Бабьева И.П., Решетова И.С. Вздутие желудочного кишечного тракта у рыб//Рыбн. хоз-во. Сер. Аквакультура: Информ. пакет "Болезни рыб"/ВНИЭРХ. 1995. -Вып.-С. 1-4.

46. Головина Н.А., Головин П. П., Ващенко А. С. Синдром дефицита энергии у карпа: его диагностика, меры профилактики и терапии//Рыбн. хоз-во. Сер. Аквакультура: Информ. пакет "Болезни рыб'УВНИЭРХ. 1994. - Вып. 2. -С. 1-12.

47. Головина Н.А., Стрелков ЮА., Воронин В.Г., Головин П.П., Евдокимова Е.Б., Юхименко Л.Н. Ихтиопатология. М.: Мир, 2003. - 448 с.

48. Горская Е.М. Механизмы развития микробиологических нарушений в кишечнике и новые подходы к их коррекции: Автореф. дис. . д-ра мед.наук. -М., 1994.-57 с.

49. Гриценко В. А., Бухарин О. В. Экологические и медицинские аспекты симбиоза Escherichia coli и человека // ЖМЭИ. 2000 . - № 3. - 92-99 с.

50. Гриценко Л.И., Смирнова В.В. Оздоровительные мероприятия при неспецифическом аэромонозе карпа // Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре: Тез. науч.-практ. конф. М. - 2000. - 54 с.

51. Грозеску Ю.Н., Попивненко Т.М. Оценка эффективности применения вкусовых добавок к комбикормам // Проблемы и перспективы развития ак-вакультуры в России: Мат. междунар. научно — практич. конф. — Краснодар: «Здравствуйте», 2001. — С. 163-165 .

52. Домушин И.И. О значении иммунных механизмов в регуляции ре-паративных процессов // Патол. физиология и эксперим. терапия. — 1978. Вып. 6. - С. 30-32.

53. Дорофейчук В.Г., Постникова Н.В., Лекомцева Г.А. Ориентировочный способ оценки состояния кишечной микрофлоры по микрофлоре кожи // Детская гастроэнтерология и гепатология. Рига. - 1980. - С. 15-17.

54. Енгашев В.Г., Грищенко Л.И., Гаврилин К.В., Лечение миксобакте-риозов осетровых рыб при их индустриальном выращивании // Зооиндустрия. -2005. №6(64). - С. 18-19.

55. Зимоглядова Т.В., Карташева И.А., Шабалд. Практикум по микробиологии // Колос. М., 2007. - 147 с.

56. Зубаирова Д.М., Пазюк Е.В. Биохимия: учебное пособие // ГЭО-ТАР-Медиа. М., 2008. - 285 с.

57. Ибрагимов Ф.Х., Стешковская Н.И., Косарева В.П. Подвижность бактерий: учебно-методическое пособие. Астрахань: АГМА. - 2006. - 36 с.

58. Иванов Н.А., Данилова Е.Г. Количественное исследование микрофлоры здоровой кожи // Вестн. дерматологии и венерологии. 1984. - №2. - С. 59-61.

59. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб. М.: ВНИРО, 1983. - 166 с.

60. Иванова Н.С., Поддубная А.В. Заболевания рыб, связанны с погрешностями в кормлении // Рыбохозяйственное использование внутренних водоемов. М.: ЦНИИТЭИРХ, 1983. - С. 3 - 8.

61. Казарникова А.В., Шестаковская Е.В. Основные заболевания осетровых рыб в аквакультуре. М.: ВНИРО, 2005. - 104 с.

62. Канидьев А.Н. Методы качественной оценки молоди рыб по составу крови (на примере осенней кеты) // Прудовое рыбоводство: Сб. научн.-исслед. работ. М., 1970. - №5. - С. 236-268.

63. Канидьев А.Н. Биологические основы искусственного разведения лососевых рыб. М.: Легкая и пищ. пром.-ть. - 1984. - 215 с.

64. Катичева Л.Ю. Роль и задачи отраслевой ихтиопатологической службы в охране здоровья культивируемых рыб на рыбоводных хозяйствах // Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре: Тез. докл. науч.-практ. конф. -М.-2000.-21 с.

65. Каховский А.Е. Распределение сапрофитных бактерий родов Aeromonas и Pseudomonas по акватории рыбоводного пруда: Сб. науч. тр. ВНИ-ИПРХ. М., 1987. - Вып. 50. - С. 21 - 30.

66. Каховский А.Е. Профилактика болезней бактериальной этиологии в интенсивно эксплуатируемых рыбоводных прудах: Автореф. дис. . канд. биол. наук. — М., 1991.-20 с.

67. Каховский А.Е., Тромбицкий И.Д. Методы профилактики аэрома-ноза прудовых рыб и повышение продуктивности рыбоводных прудов //Рыбное хозяйство. Аквакультура. М.: Изд. ВНИЭРХ. 1991. -Вып.1. - С. 7-10.

68. Козлов В.И., Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Аквакультура. М.: Колос, 2006. - 445 с.

69. Колганова Т.А. К вопросу о механизме защитного действия пробиотиков // Биомедицинские технологии. 2001. - Вып. 16. - С. 23-29.

70. Колганова Т.А., Ермолаев А.А., Дойл Р.Н. Влияние ферментов ас-парагиназы и полифенолоксидазы на адгезивные свойства микроранизмов // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. — 2002. №1. - С. 71-74.

71. Кормейн Р.Х., Асгар С.С. Иммунология и болезни кожи / Пер. с англ. А.Я. Ольшанского. — М.: Медицина, 1983.- 255 с.

72. Коршунов В.М, Ефимов Б.А, Пикина А.П. Характеристика биологических препаратов и пищевых добавок для функционального питания и коррекции микрофлоры кишечника // ЖМЭИ. 2000. - №3. - С. 86-91.

73. Коун К., Сарджент Дж. Питание: Биоэнергетика и рост рыб. М. — 1983. - С. 8-69.

74. Кравченко JI.B. и др. К вопросу о высокой чувствительности карпа Cyprinus carpio к Т-2-микотоксину // Вопр. ихтиологии. 1989. - Т. 29. - Вып. 4. - С. 678-680.

75. Кузов Б.Г., Яглинский В.А. Клинико-морфологические особенности заживления гнойных ран в зависимости от метода лечения // Вестн. хирургии, им. Грекова. 1991. - Т. 146, №5/6. - С 31-32.

76. Кулаков Г.В. Субтилис натуральный концентрированный пробиотик. - М.: ООО Типография «Визави», 2003. - 48 с.

77. Купинский С.В., Баранов С.А., Резников В.Ф. Радужная форель — предварительные параметры стандартной модели массонакопления: Сб. науч. тр. «Индустриальное рыбоводство в замкнутых системах». М.: ВНИИПРХ, 1986.- Вып. 46.-С. 109-115.

78. Лабораторный практикум по общей микробиологии 2-е изд. Под редакцией Градовой Н.Б. -М.: ДеЛи принт, 2004. 144 с.

79. Лакин Г.В. Биометрия.- М.: Высш.шк., 1990. 182 с.

80. Ларцева Л.В., Катунин Д.Н. Микрофлора рыб биоиндикатор загрязнения Волги // Водные биоресурсы, воспроизводство и экология гидробио-нтов: Сб. научн. тр. -М. - 1999.-Вып. 69. - С. 155 -163.

81. Ларцева Л.В., Проскурина В.В., Вьюшкова Л.В., Нестерова Л.А., Болдырева Я.М., Лисицкая И.А. Санитарно-эпизоотологическая ситуация Вол-го-Каспийского региона на рубеже XXI века // Рыбное хозяйство. Сер. «Аква-культура», ВНИЭРХ, 2002. Вып.1. - 51 с.

82. Латреш X. Физиологические аспекты питания осетровых рыб в раннем постэмбриогенезе. Дисс. на соиск. уч. ст. канд. биол. наук. Астрахань, 1998.-152 с.

83. Лизько НН. Дисбактериозы экстремальных состояний // Антибиотики и медицинская биотехнология. 1987. - №3. - С. 159-164.

84. Лиманский В.В. Некоторые физиологические показатели карпов и линей при садковом содержании: Сб. науч. тр. В НИШ IPX, 1978. Вып. 12. - С. 255-266.

85. Лиманский В.В. Изменение характеристик крови рыб различной экологии при искусственном содержании: Тез. докл.У Всесоюзн. конф. по экологической физиологии и биохимии рыб. Киев: Наукова Думка, 1982. - 4.1. -С. 98-99.

86. Лиманский В.В., Яржомбек А.А., Бекина Е.Н., Андроников С.Б. Инструкция по физиолого биохимическим аномалиям у рыбы. - М., 1984. -60 с.

87. Лукьяненко В.И. Иммунология рыб. М.: Агропромиздат, 1989. —271 с.

88. Малеков А.Г., Ковалев И.Е. Кожа и происхождение человека // Природа. 2001. - №6 . - С. 76-83.

89. Малик Н.И, Панин А.Н, Вершинина И.Ю. Пробиотики: теоретические и практические аспекты // Био. 2002. - №3(18). - С. 25-28.

90. Матишов Г.Г., Матишов Д.Г., Пономарева Е.Н., Лужняк В.А., Чи-пинов В.Г. и др., Опыт выращивания осетровых рыб в условиях замкнутой системы водообеспечения для фермерских хозяйств. Ростов-на-Дону: ЮНЦ РАН, 2006. - 72 с.

91. Мезина В.В., Студенцова Н.А., Скляров В.Я., Хаблюк В.В. Определение качества кормов // Рыбоводство и рыболовство. 1995. - N 2. - С. 25-26.

92. Мирзоева Л.М. Алиментарные болезни рыб // Рыбн. хоз-во. Сер. рыбохоз. использ. внутрен. водоемов: Обзорная информация: ВНИЭРХ, 1990. -Вып. 4. 67 с.

93. Мирзоева Л.М. Патологии рыб, вызванные дефицитом минеральных веществ // Рыбн. хоз-во. Сер. Аквакультура. Инф. пакет Болезни рыб. М: ВНИЭРХ. - 1996. - Вып. 2. - С. 1-12.

94. Мирзоева Л.М. Патологии рыб, вызванные дефицитом и избытком витаминов // Рыбн. хоз-во. Сер. Аквакультура. Инф. пакет Болезни рыб. М.: ВНИЭРХ. - 1997. - Вып. 2. - С. 9-16.

95. Мирзоева Л.М. Иммуномодулирующие пищевые добавки для аква-культуры /Рыбное хозяйство/ Сер. Болезни гидробионтов в аквакультуре. Ана-лит. И реферативная информ. М.:ВНИЭРХ, 2000 - Вып. 2.- С.21-25.

96. Наумова A.M., Грищенко Л.И., Зайцев Н.В. и др. Тимпания кишечника у молоди сибирского осетра и стерляди в условиях аквакультуры // Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре: Тез. докл. науч.-практ. конф. М.: МИК, 2000. - С. 94-95.

97. Никоноров С.И. Аквакультура. Формирование современной научно-правовой базы в Российской Федерации. — М.: Экономика и информатика, 2006.-216 с.

98. Ниточина Ю.В., Ткачука В.А. Современный курс классической физиологии // Мое. гос. ун-т им. М.В. Ломоносова. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. -382 с.

99. Новоскольцева Т.М., Казаченко Н.Т., Борисова МН., Иренков И.П. Перспективы использования пробиотиков в рыбном хозяйстве // Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре: Тез. докл. науч.-практ. конф. М. - 2000 - С. 95-99.

100. Осипова И.Г. Некоторые аспекты механизма защитного действия колибактерина и споровых эубиотиков и новые методы их контроля: Автореф. дис. . канд.биол.наук. М., 1997. - 25 с.

101. Остроумова И.Н. Выращивание личинок, сеголетков и двухлетков радужной форели на сухих гранулированных кормах // Тр. ГосНИОРХ. Т.9. -1974.-С. 42-53 .

102. Остроумова И.Н. Потребности рыб в белке и ее особенности у личинок в связи с этапами развития пищеварительной функции // Вопросы физиологии и кормления рыб: Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. 1983. - Вып. 194. - С. 3-19.

103. Остроумова И.Н. Особенности пищевых потребностей у рыб с различной температурой обитания и пути повышения эффективности их кормления // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ, 1988. - № 275. - С. 5-25

104. Остроумова И.Н. Высококачественные корма условие эффективного воспроизводства // Рыбоводство и рыболовство. - 1996. - № 2. - с. 22-23.

105. Остроумова И.Н. Проблема повышения качества кормов в индустриальном рыбоводстве // Инф. пакет. Сер. Аквакультура корма и кормления рыб. М.: ВНИЭРХ, 1997. - Вып.1- С. 1-12.

106. Остроумова И.Н. Биологические основы кормления рыб. С.-Пб., ГосНИОРХ, 2001.-372 с.

107. Палий Г.К, Виевский А.Н. Биологические свойства некоторых энтеробактерий, устойчивых к антибактериальным препаратам // Антибиотики и КР: Труды НИИ АБ. М. - 1990. - 67 с.

108. Панасенко В.В. Использование пробиотиков в кормах для рыб компании «Провими» // Состояние и перспективы развития фермекрского рыбоводства аридной зоны: Тез. докл. междунар. науч. конф. (Азов, июнь 2006 г.). -Ростов н/Д: ЮНЦ РАН, 2006. С. 70-71.

109. Панасенко В.В., Бондаренко Л.Г., Скляров В.Я. Новый подход к оценке токсичности кормов // Аквакультура осетровых рыб: достижения и перспективы развития: Матер, докл. II междунар. науч.- практ. конф. Астрахань: Нова, 2001.-С. 139-140.

110. Перетц ЛГ. Значение нормальной микрофлоры для организма человека: об использовании микробов нормальной микрофлоры в терапии и профилактике. М. - 1955. — С. 56-62.

111. Петровская Н.Г., Давыдовой Н.В. Применение бактерийных биологических препаратов в практике лечения больных кишечными инфекциями. Диагностика и лечение дисбактериозов кишечника. Методические рекомендации.-М., 1986.-23 с.

112. Полунина И.И. Общая физиология регуляции функций. Астрахань: АГМА, 2000. - 112 с.

113. Пономарев С.В., Маринова Т.В. Проблемы товарного осетроводства и создание рецептов продукционных комбикормов // Первый конгресс ихтиологов России: Тез. докл. М., 1997. - С. 337-342.

114. Пономарев С.В. Гамыгин Е.А. Ноконоров С.И. Пономарева Е.Н., Грозеску Ю.Н, Бахарева А.Н Технологии выращивания и кормления объектов аквакультуры юга России. Астрахань: Нова плюс, 2002. - 264 с.

115. Пономарев С.В. Грозеску Ю.Н., Бахарева А.А. Индустриальное рыбоводство. М.: Колос, 2006. - 320 с.

116. Пономарева Е.Н. Оптимизация методов выращивания объектов индустриальной аквакультуры на ранних этапах онтогенеза. Дис. на соиск. уч. ст. д.б.н. -М.: ВНИИПРХ, 2003. 336 с.

117. Пономарева Е.Н., Бахарева А.А. Оптимизация состава стартовых комбикормов для ранней молоди осетровых рыб // Современные проблемы Каспия: Матер, межд. конф. посвящ. 105-летию КаспНИРХа. 2002. - С. 63-66.

118. Правдин П.Ф. Руководство по изучению рыб. М.: Пищ. пром., 1966-250 с.

119. Привезенцев Ю.А., Власов В.А. Рыбоводство. М.: Мир, 2004,456 с.

120. Пяткин К.Д, Кривошеин Ю.С. Микробиология. М. - 1980. - С.255.259.

121. Раденко В.Н. Использование стойких к разрушению заменителей аскорбиновой кислоты в комбикормах для рыб // Аквакультура. Сер. Корма и кормление рыб. Аналит. и реф. информ. М.: ВНИПКИЭН и АСУ.- 1997.- Вып. 2. С. 1-42.

122. Резников В.Ф., Баранов С.А., Стариков Е.А., Толчинский Г.И. Стандартная модель массонакопления рыбы // В кн.: Механизация и автоматизация рыбоводства и рыболовства во внутренних водоемах: Сб. науч тр. ВНИ-ИПРХ, 1978. Вып. 22. - С. 182-196.

123. Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. М.: Отдел маркетинга АМБ-агро, 1998. - Ч. 1. - 309 с.

124. Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. М.: Отдел маркетинга АМБ-агро, 1999. - Ч. 2. - 233 с.

125. Скляров В.Я. Способы повышения эффективности кормления рыб //Ресурсосберегающие технологии в аквакультуре: Тез. докл. II международного симпозиума, 4-7 октября, 1999 г., Адлер. Краснодар, Россия. 1999. -С. 217-218.

126. Скляров В.Я., Гамыгин Е.А., Рыжков Л.П. Справочник по кормлению рыб. М.: Легкая и пищевая пром-ть, 1984. — 120 с.

127. Скляров В .Я., Овчаров А.Ф., Селиванова В.А. Эффективность протеина и продуктов микробиологического синтеза в индустриальном рыбоводстве // Корма и кормление ценных объектов аквакультуры: сб. науч. трудов ВНИИПРХ. 1992. - Вып. 67. - С. 31-36.

128. Скляров В.Я., Студенцова Н.А. Биологические основы рационального использования кормов в аквакультуре.- М.: ФГНУ "Росинформагротех". -2001.- 56 с.

129. Скляров В .Я., Студенцова Н.А., Мезина В.В. Нетрадиционные кормовые средства в рационах рыб // Рыбн. хоз.-во. Сер. Аквакультура. Корма и кормление в аквакультуре. Аналит. и реф. информ. М.: ВНИЭРХ.- 1993.- Вып. 3.-С. 12-14.

130. Скурат В.А., Сиволоцкая В.Л., Дегтярин С.М., Говор Т.А., Гребнева Е.И. Пробиотики препарат для профилактики бактериальных заболеваний рыб // Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре: Тез. науч.-практ. конф. -М, 2000.-С. 114.

131. Смирнов В.В., Резник С.Р., Василевская ИА. Спорообразующие аэробные бактерии—продуценты биологически активных веществ. Киев, наукова думка, 1983. - С. 278-281 с.

132. Смирнов В.М. Нормальная физиология: учеб. пособие для студ. Вузов // Н.А. Агаджанян. М.: МИА, 2007. - 519 с.

133. Современное состояние рыбного хозяйства на внутренних водоемах Европейской части России: Доклад/ГосНИОРХ, 1999. 139 с.

134. Сорвачев К.Ф. Основы биохимии питания. М.:Легкая и пищевая промышленность, 1982. - 246 с.

135. Сорокулова ИБ. Теоретическое обоснование и практика применения бактерий рода Bacillus для конструирования новых пробиотиков. Дисс. на соиск. уч. степ, д.б.н. Киев, 1999. - 175 с.

136. Справочник по микробиологическим методам исследований // Под ред М.О. Биргера. М.: Медина, 1982. - 462 с.

137. Строганов Н.С. Экологическая физиология рыб. М.: МГУ, 1962.444 с.

138. Телль JI.3., Лысенков С.П., Шарипова Н.Г., Шастун С.А. Патофизиология и физиология в вопросах и ответах. М.: МИА, 2007. - 500 с.

139. Тец В.В. Справочник по клинической микробиологии. СПб.: Стройлеспечать, 1994. — 224 с.

140. Тимофеева М.А. Изучение крови гибрида белуга х стерлядь в сравнении с исходными видами // Тр. Саратовского отделения ГосНИОРХ. — 1960. -Т. 6.-С. 178-191.

141. Труфанов А.В. Биохимия витаминов и антивитаминов. М.: Колос, 1972.-165 с.

142. Чернуха A.M., Флорова Е.П. Кожа: (строение, функции, общая патология и терапия) / Под ред. A.M. Чернуха, Е.П. Флорова. — М.: Медицина, 2006. 336 с.

143. Чеснокова BJI. Варианты штамма E.coli Ml 7, перспективные для получения эубиотиков. Дисс. на соиск. уч. ст. к.м.н. М. - 1998. - 156 с.

144. Шабалина А.А. Теоретические предпосылки увеличения сроков хранения гранулированного корма для форели // Физиологические основы составления гранулированных кормов для радужной форели. Л.: Известие ГосНИОРХ, 1976. - Т. 72. - С. 42-65.

145. Шендеров Б.А. Значение колонизационной резистентности в патогенезе инфекционных заболеваний // Иммунология инфекционного процесса. -М.: 1994.-С. 112-121.

146. Шендеров БА. Медицинская микробная экология и функциональное питание. М: Грантъ, 1998. - С. 38-39.

147. Щербина М.А. Физиологическая оценка питательности искусственных кормов для рыб // Вопросы ихтиологии. М. - Т.15. Вып. 2. - 1975. -С. 338-345.

148. Щербина М.А. Методические указания по физиологической оценке питательности кормов для рыб. М.: ВНИИПРХ, 1983. — 83 с.

149. Щербина М.А., Абросимова Н.А., Сергеева Н.Т. Искусственные корма и технология кормления основных объектов промышленного рыбоводства. Рекомендации. Ростов-на-Дону, АЗНИИРХ, 1985. - 85 с.

150. Щербина М.А., Гамыгин Е.А. Кормление рыб в пресноводной аквакультуре. М.: Изд-во ВНИРО, 2006. - 360 с.

151. Шлегель Г.В. Общая микробиология. М.- Изд-во мир, 1992. 567 с.

152. Юхименко JI.H., Бычкова Л.И. Перспективы использования субо-лина для коррекции микрофлоры кишечника рыб и профилактики БГС // Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре: Тез. НТК. М. - 2005. - С. 133-136.

153. Юхименко Л.Н., Бычкова Л.И., Трифонова Е.С. Эпизоотическая ситуация на Можайском производственно — экспериментальном коллекционном осетровом рыбоводном заводе // Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре: тез. НТК: М. - 2000. - С. 131-138 с.

154. Юхименко Л.Н., Викторова В.Ф. Аэромонады рыб // Сб. науч. тр. ВНИИПРХ. М. - 1979 - Вып. 23 - С. 37-55.

155. Юхименко Л.Н., Койдан Г.С., Бычкова Л.И. Перспективы использования суболина для коррекции микрофлоры кишечника и профилактики БГС // Тезисы НПК: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре» М. - 2000 - С. 133-142.

156. Юхименко Л.Н., Койдан Г.С., Бычкова Л.И. Комбикорма с пробиотиком как средство профилактике заболеваний рыб // Сборник научных трудов. -М.: ВНИИПРХ, 20016. Вып.77. - С. 91-95.

157. Юнчис О.Н. Паразиты рыб как индикаторы состояния среды // Паразиты и болезни рыб. М.: ВНИРО, 2000. - С. 146-152.

158. Юнчис О.Н., Стрелков Ю.А. Паразиты рыб как индикаторы состояния водной среды // Проблемы паразитологии, болезней рыб и рыбоводства в современных условиях. СПб: ГосНИОРХ, 1997.-Вып. 321.-С. 81-111.

159. Ющук Н.Д., Бродов JI.E. Лечение острых кишечных инфекций. М., 1998.-145 с.

160. Яковлева Н.Д. Распределение гликогена в интактном и регенерирующем эпидермисе собак и поросят в разных экспериментальных условиях // Вестн. дерматологии и венерологии. 1978.- №8. - С. 56-60 .

161. Яржомбек А.А., Лиманский В.В., Щербина Т.В. Справочник по физиологии рыб. — М.: Агропромиздат, 1986. -192 с.

162. Яржомбек А.А., Шмаков Н.Ф., Лиманский В.В., Бекина Е.Н. Временные рекомендации по определению физиологического состояния рыб по физиолого-биохимическим данным. М. - 1981. - 54 с.

163. Яржомбек А.А., Лиманский В.В., Щербина Т.В., Бекина Е.Н., Лысенко П.В. Справочник по физиологии рыб. М.: Агропромиздат, 1986. - 190 с.

164. Alvarez-Olmos Ml., Oberhelman R.A. Probiotic agents and infectious diseases: a modem perspective on a traditional therapy // Clin Infect Dis. -2001. P. 67-76.

165. Asahara Т., Nomoto K., Watamiki M. Antimicrobial activity of intraure-ally administrated probiotic L.casei in a murine model of E.coli UTI // J.Antimicrob. Agents.Chemother. 2001. - P. 751-760.

166. Bautista-Garfias C.R. Effect of viable or dead Lactobacillus casei organisms administrated orally to mice on resistance against Trichinella spiralis infection // Parasite. 2001. - P. 226-231.

167. Cangemi R., Santos V. et al. Protective effect of intranasally inoculated Lactobacillus fermentum against Streptococcus pneumoniae challenge on the mouse respiratory tract // FEMS Immunol Med Microbiol. 2001. - P. 95-117.

168. Castell J.D., Tiews K. Report of the EIFAC, IUNS and ICES Working Group on the standardization of the methodology in fish nutrition research. Hamburg (Federal Republic of Germany), March 21-23, 1979 // EIFAC Tech. pap. 36. -1979.-P. 1-24.

169. Davidson G.P., Butler R.N. Probiotics in pediatric gastrointestinal disorders // Curr OpinPediatr. 2000. - P. 477-481.

170. Doyle M.P., Zhao Т., Harmon B.G., Brown C.A. Control of enterohem-orrhagic E. coli 0157-.H7 in cattle by probiotic bacteria and specific strains of E. coli. -London.-2004.-160p.

171. Dunne C, Murphy L, Flynn S, et al. Probiotics: from myth to reality. Demonstration of functionality in animal models of disease and in human clinical trials. Antonie Van Leeuwenhoek. 1999.-76(l-4):279-92.

172. Freter R., O'Brien P.C.M., Macsai M.S. Role of chemotaxis in the association of motile bacteria with intestinal mucosa: in vivo studies//Infec. Immun. -1981.-P. 234-240.

173. Fuller R. Probiotics in human medicine // Gut. 32 . 1991. - №4. - P. 439-442.

174. Fuller R. Probiotics in man and animals // J. Appl. Bacter. 1989. - №5. -P. 365-370.

175. Galash V.T. Trichothecene Mycotoxins and Fich Health // In Diseases of Fich and Shellfich, EAFP, IV Intern. Conf. Spain: Santiago de Compostela. Spain. - 1989. 25 p.

176. Hansen G.H., Olafsen J.A. Bacterial interaction in early life stages of marine cold water fish: a rewie article//J. Microb Ecol. 1999. - 31. - P. 1-26.

177. Harbarth S, Samore MH. Antimicrobial Resistance Determinants and Future Control. Emerg Infect Dis 2005; 11(6):794-801.

178. Horsley R.W. A review of bacterial flora of teleosts and elasmobranches including methods for its analysis//J. Fish Biol. 1977. - 10. - P. 529-553.

179. Horsley R.W. The bacterial flora of the atlantic salmon (Salmo salar L.) in relation to its environment//J.Appl.Bact. -1973. — 36. P. 376-386.

180. Jshibashi N., Yamazaki S. Probiotic and safety // Am J Clin Nutr,. 2001. -P. 465-470.

181. Капо H., Kaneko Т., Kaminogawa S. Oral intake of Lactobacillus del-bruecki subsp.Bulgaricus OLL1073R-1 prevents collagen-induced arthritis in mice // J Food Prat. 2002. -265 (1). - P. 153-160

182. Kaur I.P., Chopra K., Saini A. Probiotics: potential pharmaceutical application // Eur J Pharm Sci. 2002. - 15 (1). 1-9 p.

183. Kim S.H, Worobo R.W. Characterization and purification of a bacterio-cin produced by a potential probiotic culture, Lactobacillus acidophilus 30SC // Dairy SciDec. 2000. - 83 (12):2747-52. - 188 p.

184. Kirjavainen P.V., Ouwehand A.C., Isolauri E., Salminen S.J. The ability of probiotic bacteria to bind to human intestinal mucus // FEMS Microbiol Lett Oct 15.-1998.-P. 185-9

185. Kornegay E.T., Thomas H.R. Bacterial and yeast preparations for starter and growerrations // Virginia polytechnic Institute and State University, Research Division Report. Blacksburg, Virginia, USA. 1973. -N. 151. - 251 p.

186. Lilly D.M., Stillwell R.H. Probiotics: Growth promoting factors produced bymicroorganisms // Science 147. 1965. - P. 747-748.

187. Madsen K.L. The use of probiotics in gastrointestinal disease // Can J Gastroenterol. 2001.- 15 (12). P. 817-822

188. Matsumoto M., Tani H., Ono H., Ohishi H., Bonno Y. Adhesive property of bifidobacterium lactis LKM 512 and predominant bacteria of intestinal microflora to human intestinal mucin // Curr Microbiol. 2002. - 44 (3). P. 212-215.

189. Matsuzaki Т., Chin J. Modulating immune response with probiotic bacteria // ImmunolCell Biol. 2000. - 78 (1). - P.67-73.

190. Menozzi F.D., Debrie A.S., Tissier J.P., Locht C., Pethe K., Raze D. Interaction of humanTamm-Horsfall glycoprotein with Bordetella pertussis toxin // Microbiology Apr. 2002 . - 148 (Pt4). - P. 193-201

191. Mukai Т., Asasaka Т., Sato E et al. Inhibition of binding of Helicobacter pylori to the glicolipid receptors by probiotic Lactobacillus reuteri // FEMS Immunol Med Microbiol, 14 Jan. 2002. - 32 (2):105-110. - 184 p.

192. Noga E.J. Fihs Disease: Diagnosis and Treatment. Mosby-Year Book, Inc.: USA, 1995.-321 p.

193. Ouwehand A.C, Kirjavainen P.V, GroKnlund M.M., Isolauri E., Salmi-nen S.J. Adhesion of probiotic micro-organisms to intestinal mucus // International Daily Journal 9. 1999. P. 623-630.

194. Ouwehand A.C., Niemi P., Salminen S.J. The normal faecal microflora does not affect the adhesion of probiotic bacteria in vitro // FEMS Microbiol Lett Aug. 1999. - P. -26-35.

195. Ouwehand A.C., Tolkko S., Kulmala J., Salminen S., Salminen E. Adhesion of inactivated probiotic strains to intestinal mucus // Lett Appl Microbiol Jul. -2000. 3 l(l):82-6. - P. 326-328.

196. Parker R.B. Probiotics, the other half of the antibiotics story // Animal Nutrition and Health. 1974. - 29. - P. 4-8.

197. Raverty S. Sturgeon mortalities along the Harrison river British Columbia. Animal health center Newsletter Diagnosis diary. 1999. - P. 10-11.

198. Reid G. Probiotic Therapy and Functional Foods for Prevention of Urinary Tract Infections: State of the Art and Science // Curr Infect Dis Rep Dec. -2000.-2(6).-P. 518-522.

199. Reid G. Probiotic agents to protect the urogenital tract against infection // Am J ClinClin Nutr, 73 (suppl). 2001. P. 437-443.

200. Salminen S., Isolauri E., Salminen E. Clinical uses of probiotics for stabilizing the gutmucosal barrier: successful strains and future challenges//Antonie Van Leeuwenhoek. 1996. - P. 347-358.

201. Scheperclaus W. Fischkrankheiten. Berlin: Akademie Verlag. 1954. —708 p.

202. Scheperclaus W. Die Bauchwassersucht des Karpfens, eine bakteille infektionskrankheit, und neue Methoden zu ihrer erfolreichen Heilung und Bekempfiing durch antibiotische Mittel // Arch. Fischeriwiss. -1979 a. 510 p.

203. Scheperclaus W. Fischkrankheiten. Berlin: Akademie Verlag. 1979 b. — 510 p.

204. Tannock GW. Analysis of the intestinal microflora: A renaissance. Antonie van Leenwenhoek 1999;76:265-78.

205. Tuomola E.M., Ouwehand A.C., Salminen S.J. Chemical, physical and enzymatic pre-reatments of probiotic lactobacilli alter their adhesion to human intestinal mucus glycoproteins // Int J Food Microbiol Sep 15. 2000. - 60 (1). - P. 75-81.

206. Tuomola E.M., Ouwehand A.C., Salminen S.J. The effect of probiotic bacteria on the adhesion of pathogens to human intestinal mucus // FEMS Immunol Med Microbiol Nov. -1999. 26 (2). - P. 137-142.

207. Tuomola E.M., Salminen S.J. Adhesion of some probiotic and dairy Lactobacillus strains to Caco-2 cell cultures // Int J Food Microbiol May. -1998. P. 4551.

208. Verschuere L., Rombaut G., Sorgeloos P., Verstraete W. Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture // Microbiology and Molecular Biology Rewiews. 2000. - P. 655-671.

209. Verweyen H.M., Karch H., Allerberger F. et al. Enterohemorrhagic E.coli (EHEC) in pediatric hemolytic-uremic syndrome: a prospective study in Germany and Austria // Infection. 1999. - N 6. - P. 341-347.

210. Volf F., Havelka L. Dei Wirkung einiger Antibiotica auf die Erregen von bakteriellen Erkrankungen der Fisch (tschech.). Sbornik Beskoslovenske Akademie. Zemedelskych Ved. 1956. - V.29. - P. 23-28.

211. Wetscherek W. Milchsaurebakterien statt antibiotika in der Kalbermast//Forderungsdienst. 1987. - 35, N 1. - P. 19-21.

212. Wright von A., Salminen S. Probiotics: established effects and open questions // Eur JGastroenterol Hepatol Nov. 1999. - 11(11). - P. 1195-1198.

213. Zhao Т., Doyle M.P., Harmton B.G., Brown C.A. et al. Reduction of Carriage of enterohemorrhagic E.coli 0157:H7 in cattle by inoculation with probioticbacteria // J of Clin Microbiol. 1998. - V 36, No 3. - P. 641-647.

214. Zhou J.S., Shu Q., Rutherford K.J., Prasad J., Birtles M.J. Gopal P.K.,

215. Gill HS. Safety assessment of potential probiotic lactic acid bacterial strains Lactobacillus rhamnosus HN001, Lb. acidophilus HN017, and Bifidobacterium lactis HN019 in BALB/c mice // Int J Food Microbiol May 25. 2000. - 56 (1). - P. 87-96.