Поиск ферментов, контролирующих ядерно-цитоплазматическое распределение белка YB-1 в клетках млекопитающих

Сорокин, Алексей Витальевич

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Поиск ферментов, контролирующих ядерно-цитоплазматическое распределение белка YB-1 в клетках млекопитающих
ВАК РФ 03.00.03, Молекулярная биология

Автореферат диссертации по теме "Поиск ферментов, контролирующих ядерно-цитоплазматическое распределение белка YB-1 в клетках млекопитающих"

На правах рукописи

---

СОРОКИН Алексей Витальевич

ПОИСК ФЕРМЕНТОВ, КОНТРОЛИРУЮЩИХ ЯДЕРНО-ЦИТОПЛАЗМАТИЧЕСКОЕ РАСПРЕДЕЛЕНИЕ БЕЛКА УВ-1 В КЛЕТКАХ

МЛЕКОПИТАЮЩИХ

03.00.03 - Молекулярная биология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Москва - 2007

003053846

Работа выполнена в Институте белка РАН

Научный руководитель:

академик РАН, доктор биологических наук, профессор

Овчинников Лев Павлович

Официальные оппоненты:

доктор биологических наук, профессор

Карпов Вадим Львович

доктор биологических наук, профессор

Бурьянов Ярослав Иванович

Ведущая организация:

Институт биологии гена РАН

Защита состоится " 2-2- " марта 2007 г. в /О часов на заседании диссертационного совета Д. 501.001.76 при Московском государственном университете им. М.В. Ломоносова по адресу: 119992, Москва, Ленинские горы, МГУ, НИИ физико-химической биологии им. А.Н. Белозерского.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Биологического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова.

Автореферат разослан " 2/~> " февраля 2007 г. Ученый секретарь диссертационного совета,

доктор биологических наук _ Н.О. Калинина

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Y-бокс связывающий белок 1 (YB-1) - это внутриклеточный мультифункциональный белок млекопитающих с молекулярной массой около 36 кДа. Этот белок контролирует различные стороны жизнедеятельности клеток и организма в целом, включая такие процессы, как клеточный рост, дифференцировка, ответ на различные стрессы и программируемая гибель клеток (апоптоз) (Скабкин и др., 2004). Отсутствие этого белка у мышей приводит к постнатальной гибели животных (Lu et al., 2005). YB-1 необходим для адаптации культивируемых клеток к росту при субоптимальных температурах (Matsumoto et al., 2005). Содержание этого белка сильно повышается в ряде опухолей, и в некоторых случаях YB-1 рассматривается как один из главных маркеров рака (Kohno et al., 2003). Повышение концентрации белка в клетках за счет синтеза с плазмиды может приводить к увеличению количества центросом, к ошибкам при расхождении хромосом в митозе и, как следствие, к нестабильности набора хромосом и к онкотрансформации (Bergmann et al., 2005). Хотя в последнем случае YB-1 ведет себя как онкобелок, в других он, наоборот, предотвращает онкогенную трансформацию клеток, например, по инозитол-З-фосфат/АЙ-киназному сигнальному пути (Bader et al., 2003). YB-1 повышает устойчивость клеток к ионизирующей радиации и ксенобиотикам и может служить в качестве одного из ранних маркеров множественной лекарственной устойчивости раковых клеток (Kohno et al., 2003).

Участие YB-1 в таком широком спектре внутриклеточных процессов объясняется, прежде всего, достаточно уникальной способностью этого белка взаимодействовать как с ДНК, так и с РНК, а также связываться с большим числом других клеточных белков (Kohno et al., 2003). Взаимодействуя с определенными регуляторными последовательностями в ДНК, в том числе с участками, содержащими Y-боксы в промоторах и энхансерах генов, YB-1 позитивно или негативно влияет на экспрессию ряда важнейших клеточных генов (Kohno et al., 2003). Среди них гены факторов роста, гены, участвующие в делении клеток, апоптозе, иммунном ответе, развитии множественной лекарственной устойчивости, стрессовых ответах, регуляции опухолевого роста, а также ряд вирусных генов. YB-1 обладает повышенным сродством к участкам ДНК с поврежденной вторичной структурой и способствует процессу их репарации, а ускоряя обмен комплементарных нуклеотидных последовательностей в двойных спиралях, он, как предполагается, может участвовать в рекомбинации ДНК (Skabkin et al., 2001; Ise et al.,

1999). Имеются данные о вовлечении YB-1 и в процесс репликации ДНК (Levenson et al.,

2000). Таким образом, YB-1, по-видимому, играет роль практически во всех ДНК-зависимых процессах. В ходе синтеза мРНК YB-1 связывается с их предшественниками еще на хромосомах и потом сопровождает молекулы мРНК на протяжении всей их жизни

(Kohno et al., 2003). В клеточном ядре белок участвует в альтернативном сплайсинге предшественников мРНК (Chansky et al., 2001). В цитоплазме подавляющая часть YB-1 может находиться в ассоциации с транслируемыми и нетранслируемыми мРНК, определяя их функциональную активность, стабильность, а также локализацию трансляционно активных мРНК на актиновом скелете (Davydova et al., 1997; Evdokimova et al., 2001; Ruzanov et al., 1999).

Характер действия белка на клеточные процессы зависит не только от содержания его в клетке, но также и от его распределения между ядром и цитоплазмой, которое постоянно регулируется. Как правило, основная масса YB-1 локализуется в цитоплазме, однако в ряде случаев значительная часть белка может переходить в клеточное ядро. Такой переход YB-1 в ядро был обнаружен в цикле митотического деления клеток в узком интервале времени на границе G1 и S фаз. При переходе в ядро YB-1 активирует транскрипцию гена циклина A. YB-1 также накапливается в ядре на границе G2 и М фаз. В это время YB-1 активирует транскрипцию гена циклина В1. Таким образом, цикл-зависимый переход YB-1 в ядро необходим для продвижения клеток по циклу (Jurchott et al., 2003). Переход YB-1 в ядро также стимулируется при УФ-облучении клеток и под действием некоторых противоопухолевых препаратов, повреждающих ДНК, например цисплатина (Koike et al., 1997; Gaudreault et al., 2004). В этом случае YB-1 вовлекается в репарацию ДНК. Наконец, описано перемещение YB-1 в ядра эндотелиальных клеток кровеносных сосудов в ответ на воздействие тромбина, что сопровождается активацией ряда генов, обеспечивающих клеточную пролиферацию (Steninaet al., 2001).

Эксперименты с делеционными мутантами YB-1 обнаружили в С-концевой части этого белка сигнал ядерной локализации, за которым располагается сигнал цитоплазматического удержания (Stenina et al., 2001; Jurchott et al., 2003; Bader et al., 2005). Переход YB-1 в некоторых случаях происходит в результате протеолитического отщепления от белка С-концевого пептида с сигналом цитоплазматического удержания (например, в случае эндотелиальных клеток, стимулированных тромбином) (Stenina et al., 2001), тогда как в других случаях в клеточном ядре обнаруживался полноразмерный YB-1. Переход полноразмерного YB-1 в ядро может быть связан с ассоциацией YB-1 с другими белками, такими как супрессор опухолей р53 и фактор сплайсинга SRp30c (Kohno et al., 2003). Недавно появилось сообщение о том, что переход YB-1 в ядро обусловлен его фосфорилированием киназой Akt по Ser-102 (Sutherland et al., 2005).

Цель и задачи исследования. Исходной целью данной работы являлось выяснение молекулярных механизмов, регулирующих переход YB-1 из цитоплазмы в клеточное ядро. В связи с этим были поставлены следующие экспериментальные задачи: (1) идентифицировать протеолитическую систему, осуществляющую избирательное отщепление от YB-1 С-концевого пептида с сигналом цитоплазматического удержания; (2)

проверить, влияет ли фосфорилирование YB-1 киназой Akt на его ядерно-цитоплазматическое распределение.

Научная новизна работы. В работе впервые показано, что избирательное отщепление С-концевого пептида с сигналом цитоплазматического удержания от молекулы YB-1 может происходить in vitro под действием 20S протеасомы. Расщепление наблюдается перед Gly-220 и происходит по убиквитин-независимому механизму, не требует присутствия АТР и ингибируется при связывании YB-1 с мРНК. С-концевое укорочение YB-1 in vivo также происходит под действием протеасомы и наблюдается в условиях генотоксического стресса. Как и ожидалось, оно ведет к накоплению укороченного белка в клеточных ядрах. Показано, что фосфорилирование YB-1 киназой Akt в клетках NIH3T3 не приводит к изменению внутриклеточной локализации белка, однако уменьшает его сродство к кэп-структуре мРНК и снижает способность YB-1 ингибировать кэп-зависимую трансляцию in vitro.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на международных конференциях: «Translational Control» Meeting (Cold Spring Harbor, New York, USA, 2002), International Conference in honor of Alexander Spirin (Pushchino, Moscow Region, Russia, 2001), 7lh Conference on Signalling in Normal and Cancer Cells (Banff, Alberta, Canada, 2006), 8th International Engelhardt Conference on RNA-protein interactions (Sergiev Pasad, Russia, 2006), XXXIs1 Symposium on Hormones and Regulation: Cancer Cell Signalling (Hostellerie du Mont Sainte-Odile, France, 2006); на российских конференциях: на 6-ой Пущинской школе-конференции молодых ученых (Пущино, 2002), на III Съезде биохимического общества России (Санкт-Петербург, 2002), на 18-й Зимней молодёжной научной школе-конференции «Перспективные направления физико-химической биологии и биотехнологии» (Москва, 2006), на 10-ой Пущинской школе-конференции молодых ученых (Пущино, 2006), на ежегодных конференциях Института белка РАН (Пущино, 2002 и 2005).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 12 печатных работ, в том числе 3 статьи в реферируемых журналах.

Структура диссертации. Диссертационная работа изложена на /36 страницах машинописного текста и состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты, обсуждение результатов, выводы и список литературы. Работа содержит '2Л рисунков и •5~таблиц. Библиографический указатель включает (fûf цитированных работ.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

1. Обнаружение, выделение и идентификация протеазы, отщепляющей С-концевой фрагмент YB-1. YB-1 - это белок, состоящий из 324 аминокислотных остатков, с молекулярной массой около 36 кДа и изоэлектрической точкой около 9,5. Белок имеет аномальную электрофоретическую подвижность при SDS-гель электрофорезе, характерную для белка 50 кДа. YB-1 состоит из трех доменов. N-концевой домен (АР домен) богат аланиновыми и пролиновыми остатками. Исключительно консервативный в эволюции, центральный домен «холодового шока» (CSD) имеет пространственную структуру ß-барреля. С-концевой домен (CTD) характеризуется чередующимися кластерами положительно и отрицательно заряженных аминокислотных остатков, по четыре кластера каждого знака. Аномальную электрофоретическую подвижность белка при SDS-гель электрофорезе связывают именно с наличием этих заряженных кластеров в С-домене. CTD богат пролиновыми остатками, и в изолированном белке этот домен, по всей видимости, не имеет фиксированной пространственной структуры. В CTD был обнаружен сигнал ядерной локализации (в районе остатков 186-205) и сигнал цитоплазматического удержания (в районе остатков 267 - 293) (Рис. 1). Отщепление С-концевой части белка с сигналом цитоплазматического удержания приводит к переходу укороченного белка в клеточное ядро. Это явление наблюдалось в эндотелиальных клетках эпителия кровеносных сосудов как результат действия неидентифицированной протеазы.

сигнал ядерной место сигнал удержания в

локализации (186-205) расщепления цитоплазме (267-293)

1 55_128 , ^324

АР CSD CTD

Рнс. 1. Схематическое изображение доменной организации YB-1. АР - А1а/Рго-богатый домен, CSD -домен холодового шока, CTD - С-концевой домен. Расположение кластеров заряженных аминокислотных остатков в CTD отмечено схематически (+ и соответственно). Показан сигнал ядерной локализации и сигнал цитоплазматического удержания (согласно Bader et al., 2005). Стрелкой указано примерное место расщепления YB-1 в эндотелиальных клетках, обработанных тромбином (Stenina et al., 2000).

В наших экспериментах инкубация YB-1 с некоторыми фракциями пострибосомного экстракта ретикулоцитов кролика вызывала расщепление белка на два фрагмента. Больший из них имел электрофоретическую подвижность при SDS-гель электрофорезе близкую к той, которую имел ядерный фрагмент YB-1, появляющийся в эндотелиальных клетках после их обработки тромбином. Мы провели очистку обнаруженной протеазы по схеме, показанной на рисунке 2А. На последней стадии очистки на Superóse 12 протеаза выходила во фракциях, соответствующих размеру белка -700 кДа.

DEAE cellulose (150 uM NüCt)

I 40% AS

Sephscryl S-300 (150 мМ NaCI)

Mono Q HR S/S (150 мМ -1 M Na С!)

Superóse ' 2 (2 M Wa С!)

11666453525-

iê

Ч «6 1 ■ 5

2 3

12 3 4 5 6 7 В 91011121314

№ Название Счёт Субъединица

белка протеасомы

1 PSMB5 166 lis

2 PSMB3 105 цз

3 PSMA2 128 «2

4 PSMB4 53 Р*

5 PSMA7 162 (14

6 PSMA4 90 «3

7 PSMA3 138 (¡7

S PSMA6 116 (il

9 HSP90(1 264

20%

[градиент

сахарозы

VB-1 ----

Фракция; 1 2 3 4 S e 7 8 В 10111213141516

MG132

VU 102

Эпонсом.

Лакгацис.

6актен,-5

чкМ: 5 3"" «Si

Протеаза: - 4- + + + * - -*- + + + ■*■ -- t • ,

PMSF о

о о о

л S а о

Líl WÎ - + + + + ■*■

«YB-1 ч рзг

ч ргг

1 2 3 4 5 6 7 В 9101112 131415161710 192021222324 252627282930313233343536

Pite. 2. Идентификация YB-1-специфичной пратеазы как 20S нротсасомм. (А) Схема выделения YB-I-протеазы. (К) Селективное расщепление YB-1 выделенной лротеазой. YB-1, щ>ли(А)-связывающиЙ белок (í'Alíl'i. гликоген фосфорилаза (GP), глутатион S-трансфераза ■; С i >1). казеин, тубулин или бьгчш! сывороточный альбумин (BSA) инкубировали с выделенной протеаной I час. разделяли в SDS-ПААГ, гель окрашивали Coomassie R250 (В) Очищенный препарат протеазы после SDS-ПААГ электрофона окрашивали Coomassic R250 или анализировали иммуноблогттингом (Iii) с антителам» против а5 или аб субъединиц 20S протеасомы. {Г) Список полипептидов из препарата протеазы, идентифицированных масс-спектральным анализом номер полосы как в (В); Название белка, согласно банку данных NCBI; счСт, высчитан программой MASCOT, достоверным считается определение белка со счетом больше 70: название субъединиц протеасомы приведено в соответствии с систематической номенклатурой (Groll el al., 1997). (Д) Седимептационное распределение протеазион активности Очищенная лротеаза (-30 мкг) была центрифугирована при 45000 об/мин (ротор SW 60; Beckman Instruments) 4 часа в линейном 5-20% (w/v) градиенте сахарозы Фракции (275 мкл) собирали со дна и анализировали на способность расщеплять YB-I Y!î-I после инкубации с фракциями градиента разделяли а SDS-ПААГ, гель окрашивали Coomassie R250. Коэффициент седиментации YB-1-специфической протеазы определяли но положению относительно 2SS и I8S рРНК и 9S а-глобиновой l'1-IK, сеинмонтировавших в параллельных пробирках того же ротора. (В) Влияние протеасомных и протеаэных ингибиторов на расщепление YB-1. YR-I инкубировали с очищенной YB-) -специфической протеазой в присутствии указанных ингибиторов в приведенных микромолярных концентрациях. После I часа инкубации Y'B-1 и продукты его деградации разделяли в SDS-ПААГ, гели окрашивали Coomassie R250 Положение маркеров молекулярного веса (кДа) отмечено слева от гелей.

Присутствие 2 М NaCl при хроматографии белков на Superóse 12 не изменяло хроматографического поведения протеолитической активности. Это свидетельствует о том, что протеаза представляет собой очень стабильный мультисубъединичный белковый комплекс. Очищенная протеаза проявляла высокую субстратную специфичность: из ряда проверенных белков в её присутствии расщеплялся лишь YB-1 (Рис. 2Б). Электрофоретический анализ очищенного препарата протеазы показал, что она состоит из нескольких полипептидов с молекулярными массами в диапазоне 22-32 кДа и одного полипептида -90 кДа (Рис. 2В, дорожка 1). Так как сходное субъединичное строение характерно для 20S протеасомы, были использованы антитела против а5 и аб субъединиц протеасомы для проверки их наличия в препарате нашей протеазы. Оба препарата антител выявили в протеазе субъединицы ожидаемого размера (Рис. 2В, дорожки 2 и 3). Более того, 8 мажорных полипептидов из препарата протеазы были идентифицированы масс-спектральным анализом триптических фрагментов как субъединицы 20S протеасомы (Рис. 2Г). Полипептид с относительной молекулярной массой 90 кДа был идентифицирован тем же методом, как белок теплового шока Hsp90a (Hsp86), который, как было показано (Tsubuki et al., 1994), часто соочищается с 20S протеасомой. Коэффициент седиментации очищенного протеазного комплекса, определённый центрифугированием в градиенте сахарозы, был приблизительно 20S (Рис. 2Д), что также характерно для 20S протеасомы. Расщепление YB-1 под действием выделенной протеазы подавлялось специфичными ингибиторами протеасомы, включая такие ингибиторы как MG132, YU102, эпоксомицин, лактацистин и бактенецин-5, в то время как протеазный ингибитор широкого спектра действия фенилметансульфонилфторид (PMSF) не оказывал влияния на расщепление YB-1 (Рис. 2Е).

Сопоставив все результаты этих экспериментов, мы заключили, что специфичное расщепление YB-1 на два фрагмента осуществляет 20S протеасома. Следует отметить, что YU102, который ингибирует каспазоподобную активность 20S протеасомы (расщепление после кислых остатков), значительно подавлял расщепление YB-1 уже при низких концентрациях (0,2-5 мкМ). MG132, который ингибирует каспазоподобную и химотрипсиноподобную активности протеасомы, предотвращал расщепление YB-1 при концентрации 10 мкМ. Ингибиторы, преимущественно подавляющие химотрипсиноподобную активность протеасомы (эпоксомицин, лактацистин и бактенецин-5), были значительно менее эффективны, из чего можно заключить, что в расщепление YB-1 вовлечена преимущественно каспазоподобная активность 20S протеасомы.

2. 20S протеасома расщепляет YB-1 убиквитип- и АТР-незаеисимьш образом. На

данный момент большинство мировых исследований сфокусировано на роли протеасомы в

убиквитин (иЬ)-зависимой деградации белков. Установлено, что это АТР-зависимый процесс, требующий полиубиквитинилирования белков-мишеней (образования Ub-белковых конъюгатов), протекающий под действием 26S протеасомы (Hershko et al., 1998). Тем не менее, последние данные свидетельствуют в пользу того, что 26S протеасома и её каталитическая часть, 20S протеасома, могут расщеплять некоторые белки Ub- и АТР-независимым способом (Orlowski et al., 2003). Для проверки, может ли YB-1 расщепляться 26S протеасомой, использовали коммерческий препарат и выделенную нами 26S протеасому параллельно с препаратами 20S протеасомы. Все препараты протеасом показали сравнимую активность в расщеплении модельного субстрата Suc-LLVY-AMC (Рис. ЗБ). В то же время, оба препарата 26S протеасомы не расщепляли YB-1 (Рис. ЗА, дорожки 4 и 5). В противоположность казеину, известному субстрату 26S протеасомы, YB-1 оставался интактным даже после 6 часовой инкубации (Рис. ЗВ). Эти результаты не исключают участия 26S протеасомы в расщеплении YB-1 in vivo после убиквитинилирования, но расщепление неубиквитинилированного YB-1 in vitro осуществляется только 20S протеасомой.

Для проверки необходимости АТР для расщепления YB-1 инкубировали в присутствии АТР и АТР-регенерирующей системы (креатинкиназы и креатинфосфата) или без АТР в присутствии АТР-истощающей системы (гексокиназы и глюкозы) для удаления следовых количеств АТР. Как видно из рисунка ЗГ, YB-1 расщеплялся независимо от наличия или отсутствия АТР. Маловероятно, что расщепление YB-1 в наших опытах является Ub-зависимым, так как используемые YB-1 и протеасома были электрофоретически чисты. Более того, использовался рекомбинантный YB-1, выделенный из Е. coli, что исключает вероятность его изначального полиубиквитинилирования. Эти данные указывают на то, что YB-1 расщепляется 20S протеасомой in vitro АТР- и Ub-независимым образом.

Так как большая часть цитоплазматического YB-1 находится в комплексах с мРНК (Minich et al., 1992), мы проверили, будет ли связывание YB-1 с мРНК влиять на его способность к расщеплению. Как оказалось (Рис. ЗД), прединкубация YB-1 с а-глобиновой РНК полностью предотвращала его расщепление 20S протеасомой (дорожка 4). Если же комплекс YB-1-мРНК обработать РНКазами, то YB-1 вновь становится чувствительным к протеасоме (дорожка 5). Ингибирование расщепления YB-1 в присутствии РНК происходит не из-за подавления энзиматической активности 20S протеасомы молекулами РНК, поскольку эта активность сохраняется в отношении модельного субстрата (Рис. ЗЕ). Вероятнее всего, связывание с мРНК защищает YB-1, и только не связанный, свободный от мРНК YB-1 может служить мишенью для протеасомного расщепления.

и> <п О) in о о ш щ Протеасома: — oí cj <v (ч

Протез сома: -2100

г г- 2000

5 g зоо

§ i 200

I i too о «

(л А а>

О О ф

н w «

В Время

V8-1 И

р32 >

чКазеин

III

1 2 3 4 5

Г КК+КФ: ----

ГК+глнж - - + -

АТР:---+

20S: - + + + YB-1: + + + t

д РИК

м РНКаза

ч р22

20S: РНК:

! £ Ig

й X

1 2 3

Рис. 3. 20S протеасома расщепляет YB-1 убнквнтин- п АТ^иоавппшим образом. (А) Сравнение протеоднтичееккх активностей различи^ препаратов 20S и 26S протеасом в отношении YB-1. YB-1 (1,5 мкг) инкубировали с очищенной нами 20S протеасомой (0,5 и к г), коммерческой (к) 20S протеасомой (0,5 мкг), очищенной нами 26S протеасомой (1,5 мкг) или коммерческой (к) 26S протеасомой {I мкг). Инкубацию проводили в течение 1 часа После SDS-ПААГ электрофореза гель окрашивали Cciomassie R250 (Б) Протеолнтичсскне активности протеасом, использованных н (А), анализировали с помощью флуоресцирующего пептида Siic-LLVY-AMC с флуоресцентной меткой (100 мкМ). Инкубацию проводили в течение 1 часа. Свечение отшеплСнного AMC детектировали на 430 им при возбуждении на 360 им. Активность очищенной 20S протеасомы принимали за 100% (В) Кинетика растепления белков 26S протеасомой. В каждой точке YB-I (3 мкг) или казеин {] мкг) инкубировали с коммерческой 26S протеасомой (I мкг) Продукты деградации разделяли электрофорезом в SDS-ПААГ, гель окрашивали Coomassie R250. Числа под гелем показывают процент белка, оставшегося не расщеп ленным после инкубации. Количество белка, взятого для инкубации (0 мин), принимали за 100%. (Г) Влияние АТР на расщепление YB-1. YB-1 инкубировали с 20S протеасомой в присутствии АТР и АТР-регеиернруюшей системы (10 мМ креатинфоефат (КФ), 10 мг/мл креатинкиназа (КК)) или в отсутствие АТР и а присутствии A TP-истощающей системы (10 мМ глюкоза, 1 мг^мл гексокнназа (ГК)), как отмечено. Приведены гели, окрашенные Coomassie R250 (Д) Влияние мРНК на расщепление YB-1 YB-1 (1 мкг, 28 пмоль) инкубировали с а-глобиновой мРНК (1 мкг: 5 нмоль) в течение 15 мин. Затем комплексы YB-1 с мРНК либо сразу инкубировали с 20S протеасомой 60 мин, либо после обработки РНКазой А (0,15 мг/мл) и микрококковой нуклеазой (0,05 ед/мл) в течение 3D мин Приведены гели, окрашенные Coomassie R250 (В) Влияние мРПК на нротео.тнтическую активность 20S протеасомы 20S протеаеому {0,5 мкг) инкубировали с Suc-LLVY-AMC (100 мкМ) в присутствии или в отсутствиеа-глобиновой мРНК (7,5 мкг). Активность протеасомы при расщеплении Suc-U.VY-AMC без мРНК принимали за 100%. Положение маркеров молекулярного веса (кДа) отмечено слева от гелей.

3. Определение мести расщепления YB-¡ 20S протеасомой, Расщепление Ylí-I 2ÜS протеасомой было достаточно быстрым, с периодом полураспада -30 мин (Рис. 4А). Видно, что при растеплении сразу образуются два фрагмента, которые накапливаются со временем, из чего можно предположить, что YB-1 расщепляется 20S протеасомой эндопротеолитически, а не деградирует процеесивно с концов. Для определения места расщепления мы использовали различные фрагменты YB-1, которые представляют его отдельные домены (Рис. 4Б). Как видно из рисунка 4В, 20S и роте асом а специфично расщепляет С TD па дна фрагмента и не влияет ни на АР-CSD, ни на фрагмент YB-1 (1 -204). Можно заметить, что больший фрагмент, образующийся при расщеплении СТО (фрагмент II), имеет сходный размер с меньшим фрагментом, образующимся при расщеплении полноразмерного YB-1 (Рис. 4В, сравните дорожки 4 и 2).

Д Время

. , о о о о о о о

(мин): о

3 4 5 6 7 В

Б АР CSD CTD

YB-1 Щ I-------

1 55 128 324

YB-1 (1-204) "I......I

1 55 128

AP-CSD УЛ I—.....-J

1 55 128 His tag

CTD Í++--

204

20S:

YB-1(1-15aa>; Пептид I:_

MSSEA ETQQP РАДРР -SSEA ETQQP P

128

324

YB-1(216-230 aa): EVMEG ADNQG AGEQG Пептид II: G ADNQG AGEQ

Pue. J. Определение места расщепления в молекуле YB-1. (А) Кинетика расщепления YB-1 20S протеасомой. В каждой точке YB-1 (I мкг) инкубировали с очищенной 20S протеасомой (0,5 мкг) Исходный белок » продукты протеолиза разделяли SDS-ПААГ электрофорезом, гель окрашивали Coomassie R250 (G) Схематичное представление YI3-I и его фрагментов, использованных для протеолиза Отмечены N-конпевой АР доме», CSD н CTD. (В) Расщепление YB-I п его фрагментов 20S протеасомой. Полноразмерный YIÎ-I и его фрагменты (1-1,5 мкг) инкубировали с очищенной 20S протеасомой (0,5 мкг) 60 мнн к разделяли SDS-ПААГ электрофорезом, гель окрашивали Coomassie R250. Пептиды, образующиеся прн расщеплении полноразмерного YB-!, отмечены как 1 и II. (Г) Сравнение аминокислотной последовательности Y13-1 с N-концевым» последовательностями пептидов I н 11, которые были определены аминокислотным секвенироваиием. Положение маркеров молекулярного веса (кДа) отмечено слева от гелей.

Так как только два мажорных фрагмента образуются при расщеплении полноразмерного YB-1 и CTD, можно заключить, что 20S протеасома расщепляет YB-1 специфично по сайту, расположенному примерно в середине CTD. Для точной локализации места расщепления пептиды I и II, полученные при расщеплении YB-1, были просеквенированы. Сравнение N-концевых последовательностей этих пептидов с последовательностью полноразмерного YB-1 показало, что больший фрагмент является N-концевой частью YB-1 и начинается с Ser-2 (Рис. 4Г). Отсутствие первого метионина можно объяснить его ко- или посттрансляционным отщеплением. Другой пептид начинался с Gly-220 и, следовательно, этот С-концевой пептид должен состоять из 105 аминокислотных остатков. Можно предположить, что протеасома расщепляет в YB-1 только одну пептидную связь сразу после глутаминовой кислоты (Glu-219). Это предположение согласуется с тем результатом, что за расщепление YB-1 была ответственна каспазоподобная активность протеасомы (Рис. 2Е).

4. YB-1 расщепляется протеасомой in vivo в ответ па ДНК-повреждающий стресс.

Ранее уже отмечалось, что в стрессовых условиях YB-1 может переходить из цитоплазмы в ядро и участвовать в регуляции транскрипции различных генов, активирующихся при стрессе. Моделью для этих исследований мы выбрали клетки NIH3T3, в которых с плазмиды синтезировался YB-1 с гемагглютининовым тагом (HA-YB-1). Это позволило использовать кроличьи анти-YB-l антитела для иммунопреципитации (IP) YB-1 и мышиные анти-НА антитела для иммуноблоттинга (IB). Таким образом, мы избежали перекрывания сигналов от тяжелых цепей иммуноглобулинов и YB-1 при иммуноблотгинге. На этой модели мы проверили, не является ли транслокация YB-1 в ядро в стрессовых условиях результатом его фрагментации протеасомой. Для этого клетки подвергали стрессу, добавляя в инкубационную среду различные химические вещества, используемые в качестве терапевтических препаратов при онкологических заболеваниях. Проверка показала, что в клетках NIH3T3, трансформированных K-Ras и обработанных доксорубицином (ингибитор топоизомеразы II), наблюдается существенное уменьшение содержания полноразмерного YB-1 (Рис. 5А, дорожка 2). Эффект оказался очень сильным и специфичным: происходило практически полное исчезновение полноразмерного эндогенного YB-1 и HA-YB-1 и появление р32-фрагмента в течение первых 24 часов обработки доксорубицином, в то время как количество другого мРНК-связывающего белка TIAR оставалось постоянным (Рис. 5А). Фрагментация YB-1 не зависела от клеточной линии и наблюдалась также в нетрансформированных клетках NIH3T3 и в линиях раковых клеток Юинга и MCF10A (данные не приводятся). При этом другие вещества, оказывающие сильное противораковое действие, 17-AAG (ингибирует активность белка теплового шока Hsp 90), нокодазол (разрушает микротрубочки) и дексаметазон, не влияли

С = С ï 1 Ü Cl H s Cl = 31 Э ^

Z £ ? m

5. S' Я ¥ Щ 3 Ш

F 5 î

si =i ! — ~ .

S S I

S s:

in Ы £ s •©■

, Si S =

i "Я =

>» 3 TS 3 £ S £ ö í-i « t! 1 П "" " —

= О

S =

- m S. о 3 ч -j

J S ¿ H tt 4 - ж О Г -p 5

" c

5= 2 да

Я ^ i

¿3 -

y Pi *

- y. _

i S 1 ™Л ?

£ a = g1 s = С

3 = s § с 8

— О ? ^ — ç/î

s И

-i ^ S ^ =

Г" I Ii

-S I

— и g .

° * z.

s I

X (j £

I s

T, 3 Я I I

A К ° - С л ^ —

cï ¿í *

S S 2

5 л 5

> < :

Í I

' о я г-

S я g P.

&î T3 ^

~ g s

- Ю

'fi S¡

г >

s s = ESfl

-i 31Z' ? i =

* £ e s = *

3 Л

0 S

1 3 = 5

■ S H

Cl £ ~ ~

C (| О

о -о*

s 2 s »

^ P и ж

— — r;

-о = g ¿ "

£ s

~Э IL ~¿

; а ; ç 5

¡1 •5 s

г I

J =: 3

■Э- г.

I ^

= 2 й

S í - й

с = -з ш

ь; с г.

= = 2 =

gl i г

Е 5 3 =

5 5 Ü =

tt ta "d

J S г

< S К .

= g

5 S

, — t ■ P S

о s = _ о

ГЪ £ * <7:

4 ~ se

И „ ï -1Ï ,J F -£ Í s Í Ч Й

III ' > I

I Г-1

1-Í

5 u ç -I о =

о a: >

S Ï

î p I

xi S

" ¡Ü > *

E s

? s

^ |ï

a vj ^

j£ Z » С 15 - ïï t

? " 2 > " -

> I

Ûo "

К G w d ЕЕ

HJ S : í ¿ : = с

2 I

S s

S 2 t» 2

. tj

= ± — n

ï : a > i

2 g - ж -

* s ;

ï - -s S ~ || S

i о?

2 i

= С — -

-о —

I -

Sí v>

_ г

03 н

_ =

s S

3 g ■ э í

n s

= -t

85 *

í Э

~ 3 J

ñ H

s - >

¿ >

«S ^ ^

- Ю

= I ÍLÍ

s 4

- К ь

■ 5 "

ГО

DM SO ALLN MG 132 Инги бит. I RMSF Лаупепт. Пепстат. Апрот.

> m

А.

■<

к с- тз

5 S S

й о о

ц тз -а

Я V г

0\ ^

□s

to lo

- г (

го 1 ( 1 ( i

CJ * »

и 1 1 i

Ol t » I

"О

< I

СП >

Доке. I7.AAG Нокод. Дексам

-< CD

¡5 - S

íq Л S

О s

■Я

—

* E

Е —

L3 n

S о

— с

£3 S

тз "S"

S с

s: fi

s 7!

с о

2 S

* S

s y?

s =

г зз >

о -

& к

Оказалось, что уровень YB-1 значительно уменьшался в клетках, обработанных веществами, ингибирующими топоизомеразу II (этопозид) или топоизомеразу I (камптотецин), или вызывающими образование сшивок в ДНК (цисплатин) (Рис. 5Б, дорожки 3, 4, 5, соответственно). Есть данные, что в определённых условиях эти вещества могут вызывать ER (endoplasmic reticulum) стресс, при котором существенно активируется деградация белков протеасомами (Reddy et al., 2003). Другие вещества, такие как туникамицин, тапсигарджин, брефелдин А и ДТТ, активирующие ER стресс и индукцию стрессовых маркеров (например, BiP (Grp78)), не изменяли содержание полноразмерного YB-1 (Рис. 5Б, дорожки 6-9). Важно, что деградация YB-1 в ответ на обработку этими веществами не была вызвана активацией апоптоза, так как, согласно данным проточной цитофлуорометрии (FACS анализ), под действием этих веществ не наблюдалось значительного увеличения доли мёртвых клеток (данные не приводятся). Для того, чтобы подтвердить, что доксорубицин-индуцированная деградация YB-1 осуществляется протеасомой, мы использовали несколько специфических ингибиторов протеасомы (ALLN, MG132 и Ингибитор I) и общих протеазных ингибиторов (PMSF, леупептин, пепстатин или апротинин). Все протеасомные ингибиторы (Рис. 5В, дорожки 3-5), но не протеазные ингибиторы (Рис. 5В, дорожки 6-9), предотвращали деградацию YB-1, что свидетельствует в пользу протеасомозависимой деградации YB-1. Известно, что большая часть субстратов протеасомы убиквитинилируется. В то же время, в опытах in vitro ранее мы показали, что YB-1 способен расщепляться 20S протеасомой независимо от убиквитинилирования.

Чтобы проверить, способен ли YB-1 подвергаться деградации протеасомой по «каноническому» Ub-зависимому пути, мы провели иммунопреципитацию всех Ub-конъюгированных белков антителами к Ub из экстрактов клеток, обработанных доксорубицином и/или протеасомным ингибитором MG132 (как указано на Рис. 5Г). Для повышения специфичности в обнаружении YB-1 среди Ub-конъюгатов использовали клеточную линию, в которой YB-1 экспрессировался с НА-тагом (HA-YB-1). При обработке клеток только доксорубицином, запускающим фрагментацию YB-1, мы не обнаружили никаких убиквитинилированных форм YB-1 (Ub-YB-1-конъюгаты), возможно, из-за быстрой их деградации (Рис. 5Г, дорожка 1). При обработке клеток только MG-132, ингибирующим протеасому, Ub-YB-1-конъюгаты также не формировались (Рис. 5Г, дорожка 2), вероятно, из-за отсутствия сигнала, инициирующего процессинг YB-1. Но в экстрактах клеток, которые были одновременно обработаны MG132 и доксорубицином, обнаруживалось накопление убиквитинилированных форм YB-1 (Рис. 5Г, дорожка 3), что указывает на возможность деградации YB-1 протеасомой по «каноническому» Ub-зависимому пути in vivo. Остаётся непонятным, для чего необходимо убиквитинилирование YB-1 в клетке: для расщепления YB-1 на крупные фрагменты или для его полной деградации по традиционному Ub-зависимому пути.

5. При ДНК-повреждающем стрессе укороченный YB-1 накапливается в ядрах клеток

Как и следовало ожидать, обработка клеток ДНК-повреждающими веществами приводила к накоплению 32 кДа фрагмента YB-1 в ядерных фракциях, в то время как полноразмерный YB-1 обнаруживался преимущественно в цитоплазме (Рис. 6А). Кроме того, содержание полноразмерного YB-1 в ядерной и цитоплазматической фракциях уменьшалось в стрессовых условиях по сравнению с необработанными клетками контроля. Эти данные подтверждаются также результатами иммунофлуоресцентной микроскопии. В необработанных клетках НА-иммуноположительный материал находился преимущественно в цитоплазме и переходил в ядро в ответ на обработку доксорубицином (Рис. 6Б, верхняя панель). После 6 часов обработки доксорубицином более чем у 50% клеток наблюдалось смешанное ядерно-цитоплазматическое или исключительно ядерное НА-положительное окрашивание HA-YB-1 (в контроле такое окрашивание наблюдалось менее чем у 1% необработанных клеток). Обработка клеток доксорубицином в течение 16 часов приводила к полному переходу HA-YB-1 в ядро (Рис. 6Б, верхняя панель). Другой мажорный мРНК-связывающий белок РАВР, напротив, окрашивался диффузно в цитоплазме, и его локализация не изменялась при обработке доксорубицином. Этот результат вместе с данными о внутриклеточной локализации укороченного YB-1 (Рис. 6А) даёт основание предполагать, что именно укороченный YB-1 накапливается в клетках, обработанных доксорубицином. В соответствии с тем, что ингибитор протеасомы MG132 предотвращает расщепление YB-1 (Рис. 6Г, дорожки 5 и 6), MG132 препятствует накоплению НА-положителыюго материала в ядрах клеток, обработанных доксорубицином (Рис. 6В). Из этого можно заключить, что расщепление YB-1 является необходимым условием для транслокации YB-1 в ядра в условиях ДНК-повреждающего стресса. Вероятно, что при отщеплении С-концевой части YB-1 теряет некий сигнал, удерживающий его в цитоплазме. И действительно, укороченный YB-1 (1-204) в клетках локализуется преимущественно в ядрах даже без обработки клеток доксорубицином (Рис. 6Д). Можно добавить, что укороченный YB-1 (1-204) не подвергается дальнейшей деградации (Рис. 6Е, сравните дорожки 3 и 6), что подтверждает необходимость С-концевой части YB-1 для его протеасомной деградации in vivo.

/ / / / цяцяцяця

Дочс:

49.9

36.2

49,9

36.281 -

4HA-YB-1

* НА-р32

< YB-1

Ч рЭ2

< РДВР

< Гистон ИЗ

кНА

12 3 4 5 6 7

ндложекне HA-YB1 и РАВР

DAPI

Cl Г F

Г2

О tf

12 3 -(5 6

Вектор

HA-YS1

HA-YB1(1-2<M)

Доке.

ifHA

DAPI

- HA-YB-1

12 3 4 S 6

Гнс. 6. При ДНК-повреждающем стрессе укороченный УВ-1 накапливается к ядрах. (А) Клетки NIH3T3, стабильно экспресс» ругощне HA-YB-I (N ШЗТЗ-НА- Y fel ), инкубировали 14 часои с доксорубицином (0,6 мкг/мл), этопозидом (Ю мкМ) или цис плати ном ( 10 мкМ) Цито плазматические (Ц) и ядерные (Я) ж страны зпих клеток анализировали IB. (Б) NIH3T3-HA-YB-1 инкубировании с доксорубицином указанное время и анализировали Иммуиофлуоресцентнон микроскопией, используя мьнпипые аш-и-НА и кроличьи анти-РАВР акгитела и вторые ан&и-минзииые (Alexa Muor 4R8j H акти-кроличьи (Alcva Fluor 594) антитела. Ядра (ЛИК) окрашивали DAP! (В) N1I-BT3-! ÎA-YH-1 инкубировали 16 часов с Доксорубицином (0,6 мкг/мл) и MGI32 (20 мкМ), как отмечено KA-VB-1 детектировали йммунофлуоресuetпной микроскопией с анти-НА антителами. (Г) Ш нитоплазматическич и ядерных фракций из клеток, обработанных как в (13) (Д, Е) NII13T3 были временно тринефенированы пустым вектором (вектор) или плазмидами, с которых синтезировался полноразмерный или укороченный YB-1 под 11Л-тагом Через 24 часа после граисфекции клетки использовали для иммунофлуоресцентной микроскопии (Д), или культивировали ещё 1S часов в отсутствие или в присутствии доксорубицина. Клеточные экстракты згтих клеток анализировали И с анти-1 IA или анти-РАВР антителами (Е)

tí. Появление укороченного YB-I в ядрах можем приводить к лекарственной устойчивости клеток. Наши результаты весьма интересны в свете более ранних исследований, показывающих корреляцию накопления YB-I в ядре и устойчивости раковых клеток к ДНК-повреждающим агентам. Более того, ядерная локализация Y В-! рассматривается как маркер на множественную лекарственную устойчивость раковых клеток. Однако в этих исследованиях ядерное накопление Y В- i наблюдалось только иммунофлуоресцснтпой микроскопией или ймму но гистохимией, что не даёт никакой информации о том, полноразмерный или укороченный YB-t накапливается в ядрах. Для анализа корреляции между чувствительностью к лекарствам и накоплением укороченного YB-1 в ядре мы провели следующий пробный эксперимент: клетки, полученные из плевральных жидкостей от больных с разными типами рака, обрабатывали рядом терапевтических агентов. Как видно из рисунка 7Л, п ответ на обработку лекарствами наблюдалось накопление укороченного YR-I, тогда как содержание полноразмерного белка не изменялось. 11акопление укороченного, а не полноразмерною белка, даёт основание предполагать, что именно укороченный белок отвечает за возникновение множественной лекарственной устойчивости клеток.

Рак: Молоч.жсл. Легкого

Яичника

Обр: _ a 5 ■ 49.9 - i — —

, ,55 и ч> ¡= g " п. К s

ОпХп G я I ri

- 4Ï JÍ - et £ rri-!

36.2

IYB-1

4 р32

81 H---

5ЭЕ-ЕНЫЭ-» равр

123 45 673 S Ю 11 12 1314 15

120 100 30 « | 60 g g 40 É 20

I -

1 О

23 Л 5 6 7 8 9 1Ü Доксорубицин (Дни)

Доке, (дни}: 0 1 2 3 4 s 6 7

HA-YB-1 ►

36.2

РАВР* Гисток НЗ *■

1 2345 6 7 39 10

Доке, (дни): 0

HA-YB-1 >-

РАВР ► Гистон НЗ >

Рис. 7. Укороченный YB-t накапливается к раковых клетках различной этиологии к Ответ ни cTjiccc. (А) Первичные раковые клетки, полученные из плевральных жидкостей от больных с указанными типами рака (подробности см. Richard, 2005) инкубировали 24 часа с доксорубицнном (0,3 мкг/мл}, карбоплатином (I80 мкМ), цисплатином (8,8 мкМ) или таксоном (9.4 мкМ). Яизаты выживших и прикрепившихся к Чашкам клеток анализировали IB с анти-YB-l или антн-PABI' антителами (fi) Влияние доксорубицнна на выживание клеток K.-Ras-NI!13T3, стабильно экспрсссиругошис ! IA-YB-], выращивали 9 дней в присутствии локсорубицнна (0,3 мкг/мл) Сидящие на чашке клетки подсчитывали каждый лень Цитодпазматическне (В) н ядерные(Г) фракции, полученные для каждой временной точки, анализировали IB с аптн-НА Предварительно нагрузка была выравиеиа с использованием аитн-РАВР и апти-МЗ гистоновых антител.

Для дальнейшей проверки этого предположения, мы проследили уровень YB-1 в клетках, которые выращивали на доксорубнцине в течение 9 дней. Видно, что уровень полноразмерного белка значительно снижается как в цитоплазме (Рис. 7В, дорожки 1-5), так и в ядре (Рис. 7Г, дорожки 1-5) в течение первых 5 дней обработки, В этот же период происходит накопление укороченного YB-1 исключительно в ядрах (Рис. 7Г, дорожки 2-9). Начиная с 5-го дня, уровень полноразмерного белка возрастает. Если посмотреть на количество клеток по дням (Рис. 7Б), то видно, что увеличение содержания полноразмерного белка совпадает с возобновлением роста клеток, что может быть обусловлено возникновением у клеток устойчивости к доксорубицину. Следует отметить, что уровень полноразмерного белка в доксорубицин-устойчивых клетках такой же, как и в клетках, чувствительных к доксорубицину. Похоже, что уровень полноразмерного YB-1 отражает, прежде всего, пролиферативный статус клетки. Уровень укороченного белка повышается сразу же после обработки доксорубицином и остаётся достаточно высоким в доксорубицин-устойчивых клетках. Это даёт основание предполагать, что повышенное содержание именно укороченного YB-1 в ядрах является маркером устойчивости к доксорубицину и, возможно, к другим агентам.

7. Поиск сигнального пути, вовлечённого в фосфорилирование YB-1 in vivo.

Фосфорилирование белков - одна из самых распространённых регуляторных модификаций. Известно, что YB-1 фосфорилируется in vitro и in vivo, но данные о влиянии фосфорилирования на функции YB-1 весьма скудны. Недавно на раковых клетках было показано, что в регуляцию перехода YB-1 из цитоплазмы в ядро может быть вовлечено фосфорилирование YB-1 по Ser-102 киназой Akt (Sutherland et al., 2005). Мы тоже предприняли поиск протеинкиназ, которые могут быть вовлечены в фосфорилирование белка YB-1 и регуляцию его локализации в клетке. При подтверждении данных об участии Akt в фосфорилировании YB-1, мы планировали продолжить исследование механизмов регуляции перехода YB-1 под действием этой киназы. В клетках NIH3T3 мы проверили, изменяется ли уровень фосфорилирования YB-1 в ответ на пролиферативные стимулы. Для этого клетки стимулировали EGF, FBS, IGF-I или TGF-ßl в присутствии [32Р]ортофосфата. После преципитации YB-1 из клеточных лизатов анализировали степень фосфорилирования белка по включению радиоактивности. Как видно из результатов, представленных на рисунке 8А, фосфорилирование YB-1 увеличилось после стимуляции клеток IGF-I или FBS, но не EGF или TGF-ßl. Оказалось, что в ответ на стимуляцию IGF-I активируется, главным образом, сигнальный путь PI3K.-Akt, о чем свидетельствует накопление активированных (фосфорилированных) форм Akt и её нижележащих киназ-мишеней: GSK3ß, FKHR и mTOR. Однако можно заметить, что активируются и МЕК1/2 с

Егк1/2, т.е. кипазы другого, МАРК сигнального пути (Рис. 8Б, дорожка 4). Для определения вклада сигнальных путей Р13К-Ак( и МАРК в фо сформирован не У В-1 мы использовали ингибиторы МЕК1/2 (Р0098059 или и0126) и Р1Ж (ЬУ294002 или вортманнин).

и_ ч-

Обр: . Й Й £

Б I ||

Обр: ■ § 1 ^ 1 I

63.6-:- - (Ч 3гРУВ-1

т — 300

" <

5 £ 100

53 6 63 6

НА-УВ-1

Обр:. . ЮМ: -++ + + +

1 2 3 4 5

« а|1 |я|Н

т 202 53.8 53.6' 53.5

19 1 53 е

- <рА(«

* К>1а1 Ак!

ч рйзк-зр

ч ЧР. чрГКНР?

ч ртТОЯ

ч Ма1 гпТОК ч рЕгк1 3 рЕгк2

- - —- - , чрМЕК1/2

ч Ю1а1 МЕК1/2

р * -г- я- * * ч 4ЕВР1

ч УВ-1

1 2 э 4 Б

53.6 53.6

63.5 202 202-| 536

53.6 53.6

-'-" " -Ь р£рк-зр

19.7-1

53 е

~]чрАк( "¡1ч ЮЫ Ак!

--- •

ртТОН

Я 31

Обр: - - а В О-КЗЧ - + + + + 53.5

гг^ч Ю(а1 тТОЯ

---рЕ()(1

- - --Р рЕгк2

(1МЕК1/2 к>Ш1 МЕК1/2

1]ч 4ЕВР1

" -——УВ-1

~-»-]ч 3!Р-УВ-1 НА-УВ-1

12 345 6 7

Рнс. 8, УВ-! фосфорнлирустея при активацни ккшииоп) ну ги Р13К-Лк1 (А и Б) Клетки N111373, стабильно экспресскрующне НЛ-УВ-1, выращивали до плотности -80%, инкубировали 24 часа без сыворотки (ПК), после чего стимулировали 2 часа 100 иг/мл ЕСР, 20% НВ5, 50 нг/мл КГ-1 или 10 нг/мл ТОНМ. (А) Во время стимуляции в среду добавляли [ р]ортофосфат Клетки лидировали, и УВ-1 п ре пи пит провал и апти-УВ-1 антителами. Преципитаты разделяли ЗПЯ-ИААГ электрофорезом н анализировали радиоавто граф иен или с антн-НА ат^ителами. Столбики пол гелями отображают относительное содержание 12Р-мечепного УВ-1 ('!Р-УВ-1), нормализован по го но тотальному количеству УВ-1 в нммунопреципитатах. (Б) После стимуляции клетки лизнровалн. Лнзаты разделяли ЕОЭ-ПААГ электрофорезом и анализировали 1В со специфичными антителами против киназ. Положение маркеров молекулярного веса {кДа) отмечено слева, а киназ и их фосфо рил ирова иных иэоформ - справа от гелей (В и Г) Клетки N1! 1ЭТЗ стимулировали ЮР-! как описано выше, но за 1 чае до стимуляции к клеткам добавляли рапамицип (20 нг/мл), вортманнин (0,1 мкМ), ЬУ294002 (100 мкМ), 1)0126 (50 мкМ) или РЮ98059 (100 мкМ). (В) Клетки анализировали, как описано в (Б). (Г) Клетки анализировали, ке>к описано в (А).

Был также проверен рапамицин, специфичный ингибитор mTOR киназы, чья активность может регулироваться фосфорилированием Akt (Hay et al., 2004). Как и ожидалось, PD098059 специфично ингибировал фосфорилирование МЕК1/2 с Erkl/2 и не повлиял на фосфорилирование Akt и её мишеней (Рис. 8В, дорожка 3). По непонятной причине U0126 частично ингибировал фосфорилирование белков сигнального пути PI3K-Akt (Рис. 8В, дорожка 4), поэтому был исключен из дальнейших экспериментов. Мы также обнаружили, что LY294002 незначительно снижает фосфорилирование МЕК1/2 в этой клеточной линии (Рис. 8В, дорожка 5), поэтому в дальнейшем использовался только вортманнин. Для окончательного ответа на вопрос, какой же сигнальный путь вовлечён в фосфорилирование YB-1 при стимуляции клеток IGF-I, мы проверили, как изменится статус фосфорилирования YB-1 в присутствии ингибиторов каждого из сигнальных путей. Для этого клетки выдерживали в среде с ингибиторами, после чего в среду добавляли [32Р]ортофосфат и IGF-I. После иммунопреципитации YB-1 из клеточных лизатов и электрофореза в SDS-ПААГ анализировали радиоактивность, включившуюся в YB-1. Как видно из представленных результатов, вортманнин, но не PD098059, полностью подавлял фосфорилирование YB-1 (Рис. 8Г, дорожки 4 и 5), что указывает на вовлечение в фосфорилирование YB-I именно сигнального пути PI3K-Akt. Можно заметить, что фосфорилирование YB-1 также блокируется и рапамицином (Рис. 8Г, дорожка 3). Но если обратить внимание на то, что рапамицин ингибировал не только mTOR, но и Akt (Рис. 8В, дорожка 7), остаётся неясным, вовлечена ли mTOR в фосфорилирование YB-1. Из всех этих результатов можно заключить, что фосфорилирование YB-1, а значит и его функции и локализация в клетке, могут зависеть от условий роста и регулироваться главным образом через сигнальный путь PI3K-Akt.

8. YB-1 фосфорилируется киназой Akt in vitro. Для подтверждения фосфорилирования YB-1 киназой Akt мы провели фосфорилирование YB-1 in vitro. В этих опытах использовали рекомбинантный YB-1 и коммерческие препараты активированной или неактивной форм Akt. Как видно из результатов, представленных на рисунке 9, YB-1 способен фосфорилироваться in vitro активированной, но не неактивной формой Akt (Рис.

9, дорожка 2). Белок с подвижностью ~60 кДа, вероятно, соответствует киназе Akt, так как известно, что она способна автофосфорилироваться (Toker et al., 2000). Таким образом, мы подтвердили ранее опубликованные данные о том, что YB-1 способен фосфорилироваться in vitro киназой Akt (Sutherland et al., 2005).

HeaKT.Akt: — — +■ — — + airr.Akt: — — + — YB-1: + + +---

«32P-Akt ч32 P-YB-1

Put. 9. YB-1 фосфорилируется киназой Akt in vitrp. YB-l инкубировали с активированной или неактивной Akt в присутствии [у-"Р]АТР, как отмечено на рисунке. Реакционную смесь разделяли электрофорезом в SDS-ПААГ н анализировали ради оа иго графией. Положение маркеров

молекулярной» веса (кДа) отмечено слева

9. Фосфорилирование YB-1 киназой Akt не оказывает существенного влияния па локализацию YB-I в клетке. Для тот, чтобы проверить, способствует ли фосфорилирование YB-l киназой Akt переходу YB-l в клеточное ядро, мы проанализировали содержание белка в ядерной и цитоплазматической фракции после активации фосфорилирования YB-l киназой Akt (обработка (GF-i) и ингибироваиия фосфорилирования YB-1 киназой Akt (обработка вортманиииом). Как видно из результата этого эксперимента, распределение YB-l между ядром и цитоплазмой не изменяется (рисунок 10, дорожки 2 и 3, 5 и 6). Из этого можно сделать вывод, что фосфорилирование YB-1 киназой Akt не приводит к транслокации белка в клеточное ядро.

Фракциями топ л. ядерн. Бортм: - + - - + -IGF-I:,- - + - - +,

53.6-g — ----\< YB-1

53.6-I*" " ИрАМ

l^jp^y^iaiw *"'"' Akt

93.6-|------нуклеолин

i9.Sf ---и Гистон нз

g3.61----—[4 BiP

1 2 3 4 5 6

Рис. 10. Влияние фосфорндарования YB-I кииязой Akt на распределение белка мга'л ядром и цитоплазмой. Клетки NIH3T3 выращивали до плотности -80%, инкубировали 24 часа без сыворотки (FBS), после чего I час обрабатывали ворманниЕюм (0,1 мкМ) п стимулировали 2 часа IGF-1 (50 иг/мл). Ядерные и цитоплазматические экстракты разделяли электрофорезом в SDS-ПААГ и анализировали Iß. Положение маркеров молекулярного веса (кДа) отмечено слева

10. Фосфорилирование YB-1 киназой Akt снижает ингибирующее влияние ¥6-1 на кзп-зависнмую трансляцию. Было замечено, что мутация с заменой Scr- 102-Д1а в белке YB-1 предотвращает формирование опухоли, но молекулярный механизм этого эффекта предложен не был (Sutherland et а]., 2005). Часто раковая трансформаций клетки связана с активным вовлечением в трансляцию мРНК потенциальных онкобелков, являющихся «слабыми» матрицами. Такими бедками могут быть регуляториые белки, необходимые для нормального функционирования клетки. К раковому перерождению клеток могут

приводить мутации в генах этих регуляторных белков или повышение их содержания в клетке.

Известно, что YB-1, связываясь с мРНК, может подавлять их трансляцию, вытесняя eIF4E с кэп-структуры мРНК. Мы решили проверить, как фосфорилирование YB-1 по Ser-102 повлияет на его мРНК-связывающие свойства и способность ингибировать кэп-зависимую трансляцию. Оказалось, что после фосфорилирования Akt киназой по Ser-102 сродство YB-1 к некэпированной мРНК не изменяется (Рис. 11А, нижняя панель), при этом способность YB-1 связываться с кэпированным 5'-концом мРНК значительно снижается (Рис. 11Б, сравните дорожки 2 и 5). Наряду с этим происходит снижение ингибирующей активности белка YB-1 на кэп-зависимую трансляцию. Как видно из результатов, представленных на рисунке 11В, после фосфорилирования YB-1 заметно хуже ингибирует синтез хлорамфениколацетилтрансферазы (CAT), кодируемой первым цистроном использованной бицистронной мРНК, который транслируется с использованием кэп-зависимого механизма инициации (Рис. 11В, дорожки 7 и 14). Снижение ингибирующего действия YB-1 на кэп-зависимую трансляцию более наглядно представлено на рисунке 11Г.

Согласно ранее опубликованным данным, лимитирующим в белковом синтезе часто оказывается фактор инициации eIF4E, взаимодействующий с кэп-структурой мРНК. Повышение концентрации этого фактора в клетке благоприятствует активации трансляции «слабых» мРНК и вызывает раковую трансформацию клеток. Активность eIF4E в инициации контролируется его фосфорилированием (Morley et al., 1989; Amick et al., 1992), a также взаимодействием с е1Г4Е-связывающим белком 4Е-ВР (Mader et al., 1995). В свою очередь, 4Е-ВР фосфорилируется протеинкиназой mTOR, активируемой по PI3K/Akt киназному пути (Beretta et al., 1996; Lin et al., 1996). Фосфорилирование 4E-BP приводит к его диссоциации из комплекса с eIF4E и вовлечению последнего в процесс инициации белкового синтеза, что способствует усилению трансляции «слабых» мРНК онкобелков и трансформации клеток (Beretta et al., 1996). Эти данные хорошо объясняют явление трансформации клеток при активации PI3K/Akt киназного сигнального пути. Однако недавно было показано, что раковая трансформация клеток по этому пути может быть предотвращена путем повышения концентрации YB-1 за счет его экспрессии с плазмиды (Bader et al., 2005). Причем антионкогенное действие YB-1 развивается в цитоплазме и наблюдается даже при блокировании поступления YB-1 в клеточное ядро. Было предположено, что оно происходит на уровне белкового синтеза. Наши данные хорошо объясняют механизм антионкогенного действия YB-1.

YB-1 : WT S102A

(МКГ) {M "tf CO CM CM CO См - О* О О - О* Ö Ö т-"

mrG*ppp -Г~ГОС~1 *PPP H LUC i

YB-

фосф. нефосф. фосф нефосф.

WT i S102А < OJ . ä 1 < см и- ° - 5 И < t S - ? «

** m л

--» —

12 34 5 6 78 9 10 11 12

cap*-i ел Г

1 pVI 1RES I

нефосф.

фосф.

-«Luc

ÏÛ

<1>

$ % si

с о

_(□ VB1i fcpYßl !

S _

I , -

I Ii I !" S I Г s

8 9 10 11 12 13 14 YB-1 (мкг):

0,2 0,4 0,8 1,2

Рис. 11. Фосфорплировanне книазой Akt снижает способность YB-1 связывать копированный 5'-конец м PI [(С it ингнбировагь вэй-завнсимую трансляцию.

(A) Эксперимент по замедлению подвижности в геле с йею пировав ной CAT мРНК (I мкг) н увеличивающимся количеством (и мкг) YB-I без мутации (WT) или с заменой Ser-102-Ala (S102A) Белки были фосфорнлированы активированной или неактивной формой Akt (фосф и нефосф, соответственно). Комплексы YÜ-I с мРНК разделяли в 1% агарозиом геле и окрашивали бромистым этидием.

(B) UV перешивка YB-1 без мутации (WT) или с заменой Ser-102-Ala (SI02A) с кэп-меченной или меченной по 5'-кониу LUC мРНК. Перед инкубацией с Р-меченнЫми LUC мРНК белки были фосфорилированы активированной или неактивной формой Aki. После перешивки комплексы обрабатывали РНКазамн. разделяли в SDS-ПААГ и анализировали радиоавтографней (верхний гель) или окрашивали Coomassie R25Ü (нижний гель).

(В) Трансляция кэпированной (cap*) САТ-РУ1 IRES-LUC мРНК (0,25 мкг) в лизате ретикулоцитов кролика в присутствии [^Б]метионпна и увеличивающегося количества YB-!, фосфорилнрованпого активированной формой Akt или инкубированного с неактивной формой Akt в присутствии АТР После фосфорилнроаания YB-! был дополнительно очищен от Akt на renapWK-Sepharose После 1 часа инкубации реакционной смеси белки разделяли в SDS-ÎIAAI и анализировали радиоавтограф и ей. Дорожки с добавленным в систему трансляции фосфорилированным и иефосфорилиронанным YB-1 отмечены (фосф ) и (нефосф.) соответственно Положение LUC и CAT показано справа от геля, положение маркеров молекулярного веса (кДа) - слева.

(Г) Столбики отражают изменение активности трансляции с кэп-зав не им ого цистрона (Cat) относительно активности трансляции с IRES-зависимого цистрона (Lue). Отношение Cat" I,не без добавления белка в систему трансляции принималось за единицу

Можно предположить, что раковая трансформация клеток по PI3K/Akt киназному пути происходит не только в результате фосфорилирования 4Е-ВР и повышения за счет этого концентрации активного eIF4E, но также и за счет фосфорилирования YB-1 киназой Akt, которое понижает сродство YB-1 к кэп-структуре мРНК, снижает его конкуренцию с eIF4E и облегчает связывание eIF4E с мРНК. В конечном счете это приводит к тому же самому результату, что и фосфорилирование 4Е-ВР или фосфорилирование eIF4E - к повышению трансляции «слабых» мРНК онкобелков. В свете этого предположения становится понятным, почему замена Ser-102 в молекуле YB-1 на другую аминокислоту предотвращает образование опухоли. В этом случае YB-1 утрачивает способность фосфорилироваться киназой Akt и сохраняет свое высокое сродство к кэп-структуре мРНК (Рис. 11 Б, дорожка 3), что мешает посадке eIF4E на мРНК и препятствует трансляции слабых матриц онкобелков.

ВЫВОДЫ

1. Выделена и идентифицирована протеаза, вызывающая расщепление YB-1 на два фрагмента. Этой протеазой оказалась 20S протеасома.

2. 20S протеасома расщепляет YB-1 перед Gly-220.

3. Расщепление YB-1 20S протеасомой осуществляется по Ub- и АТР-независимому механизму.

4. Расщеплению подвергается только свободный, не связанный с мРНК YB-1.

5. Расщепление YB-1 протеасомой в клетке происходит в ответ на ДНК-повреждающий стресс.

6. Ядерная локализация укороченного YB-1 коррелирует с активацией защитных механизмов клетки в ответ на обработку терапевтическими препаратами.

7. Фосфорилирование YB-1 киназой Akt не оказывает влияния на его распределение между ядром и цитоплазмой в клетках NIH3T3.

8. Показано, что YB-1, фосфорилированный киназой Akt, хуже взаимодействует с кэп-структурой мРНК и проявляет меньшую активность в ингибировании кэп-зависимой трансляции.

Материалы диссертации опубликованы в следующих работах:

1. Valentina Evdokimova, Peter Ruzanov, Michael S. Anglesio, Alexev Sorokin. Lev Ovchinnikov, Jonathan Buckley, Timothy J. Triche, Nahum Sonenberg, and Poul H.B. Sorensen. Akt-mediated YB-1 phosphorylation activates translation of silent mRNA species. Molecular and Cellular Biology (2006), 26(1), 277-292.

2. A.B. Вайман, Т.П. Стромская, Е.Ю. Рыбалкина, А.В. Сорокин. С.Г. Гурьянов, Т.Н. Заботина, Е.Б. Мечетнер, Л.П. Овчинников, А.А. Ставровская. Содержание и локализация белка YB-1 в опухолевых клетках с множественной лекарственной устойчивостью. Биохимия (2006), 71(2), 190-200.

3. Alexev V. Sorokin. Anastasia A. Selyutina, Maxim A. Skabkin, Sergey G. Guryanov, Igor V. Nazimov, Christina Richard, John Th'ng, Jonathan Yau, Poul H.B. Sorensen, Lev P. Ovchinnikov and Valentina Evdokimova. Proteasome-mediated cleavage of the Y-box binding protein 1 is linked to DNA-damage stress response. The EMBO Journal (2005), 24(20), 3602-12.

4. Alexev Sorokin. Michael S. Anglesio, Prateek Gulhati, Peter Ruzanov, Nahum Sonenberg, Lev

Ovchinnikov, Poul H.B. Sorensen and Valentina Evdokimova (2006). Role of YB-1 in Cell Growth and Stress Response. XXXIst Symposium on Hormones and Regulation: Cancer Cell Signalling, p. 70. Hostellerie du Mont Sainte-Odile, France.

5. Alexev V. Sorokin. Anastasia A. Selyutina, Maxim A. Skabkin, Sergey G. Guryanov, Igor V. Nazimov, Christina Richard, John Th'ng, Jonathan Yau, Poul H.B. Sorensen, Valentina Evdokimova, Lev P. Ovchinnikov (2006). Proteasome-mediated cleavage of the Y-box binding protein 1 is linked to DNA-damage stress response. 8th International Engelhardt Conference on RNA-protein interactions, p. 80. Seriev Pasad, Russia.

6. Сорокин A.B.. Селютина A.A., Гурьянов С.Г., Скабкин М.А., Евдокимова В.М., Овчинников Л.П. (2006). Белок YB-1 расщепляется протеасомой в ответ на ДНК-повреждающий стресс. Тезисы стендового сообщения на 10-ой Пущинской школе-конференции молодых ученых, с. 50. Пущино.

7. Сорокин А.В.. Селютина А.А., Гурьянов С.Г., Скабкин М.А., Евдокимова В.М., Овчинников Л.П. (2006). Расщепление белка YB-1 протеасомой в ответ на ДНК-повреждающий стресс. 18-я зимняя молодёжная научная школа - конференция «Перспективные направления физико-химической биология и биотехнологии», с. 10, Москва.

8. Alexev Sorokin. Michael S. Anglesio, Prateek Gulhati, Peter Ruzanov, Nahum Sonenberg, Lev

Ovchinnikov, Poul H.B. Sorensen and Valentina Evdokimova (2006). Role of YB-1 in Cell Growth and Stress Response. 7ft Conference on Signalling in Normal and Cancer Cells, p. 28. Banff, Alberta, Canada.

9. Сорокин А.В.. Скабкин М.А., Гурьянов С.Г., Овчинников Л.П. (2002). Мажорный белок цитоплазматичееких мРНП р50 (YB-1) расщепляется протеасомой. Тезисы стендового сообщения на III съезде биохимического общества России, с. 21, Санкт-Петербург.

10. Сорокин А.В., Скабкин М.А., Овчинников Л.П. (2002). Поиск протеинкиназ, специфично фосфорилирующих мажорный белок мРНП р50. Тезисы стендового сообщения на 6-ой Пущинской школе-конференции молодых ученых, с. 328-329. Пущино.

11. Сорокин А.В.. Скабкин М.А., Гурьянов С.Г., Овчинников Л.П. (2002). Мажорный белок цитоплазматичееких мРНП расщепляется протеасомой. Тезисы стендового сообщения на 6-ой Пущинской школе-конференции молодых ученых, с. 328. Пущино.

12. Sorokin А.V.. Skabkin М.А., Guryanov S.G., and Ovchinnikov L.P. (2002). The major core mRNP protein YB-1 (p50) is cleaved by proteasome. "Translational Control" meeting (2002), p. 323, Cold Spring Harbor, New York, USA.

Принято к исполнению 13/02/2007 Исполнено 15/02/2007

Заказ № 99 Тираж: 100 экз.

Типография «11-й ФОРМАТ» ИНН 7726330900 115230, Москва, Варшавское ш., 36 (495) 975-78-56 www.autoreferat.ru

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Сорокин, Алексей Витальевич

ВВЕДЕНИЕ.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

I. Ядерно-цитоплазматический транспорт белков.

1. Введение.

2. Кап-зависимый ядерно-цитоплазматический транспорт белков.

2.1. Сигналы ядерно-цитоплазматического транспорта и транспортные факторы

2.1.1. Сигналы ядерной локализации и кариоферины-а.

2.1.2. Сигналы ядерной локализации и импортины.

2.1.3. Сигналы ядерного экспорта и экспортины.

2.2. Строение ядерного порового комплекса, нуклеопорины.

2.3. Модель Кап-зависимого транспорта.

2.3.1. Кап, регуляторы Кап.

2.3.2. Посадка комплекса кариоферин-а/импортин-р1/сЖ8-белок на №С.

2.3.3. Прохождение комплекса кариоферин-а/импортин-Р1/сЫЬ8-белок через центральный канал ядерной поры.

2.3.4. Разборка комплекса кариоферин-а/импортин-р1/с№Л>-белок.

2.3.5. Перемещение белков из ядра в цитоплазму.

2.3.6. Яап-связывающие белки.

2.4. Транспорт белков внутренней ядерной мембраны.

3. Кап-независимый ядерно-цитоплазматический транспорт белков.

4. Регуляция ядерно-цитоплазматического транспорта.

4.1. Регуляция транспорта за счёт модуляции взаимодействий импортина/экспортина с сигналом ЫЬБ/ЫЕБ субстрата.

4.1.1. Маскирование сигналов ЫЬБ/ЫЕБ субстрата от узнавания импортином/экспортином.

4.1.1.1. Внутримолекулярное маскирование сигналов ЖБ/ЫЕБ субстрата.

4.1.1.2. Межмолекулярное маскирование сигналов ЫЬБ/ЫЕБ субстрата.

4.1.2. Регуляция транспорта за счёт усиления связывания импотрина/экспортина с сигналом ЫЬБ/ЫЕБ субстрата.

4.1.3. Регуляция транспорта за счёт удержания в цитоплазме или в ядре.

4.1.4. Регуляция транспорта за счёт котранспортировки и изменения субстрат-связывающих свойств кариоферина.

4.2. Регуляция транспорта за счёт изменения состава импортинов и экспортинов

4.3. Регуляция транспорта за счёт изменения состава нуклеопоринов.

II. Мультифункциональный ядерно-цитоплазматический белок УВ-1.

1. История открытия белков семейства УВ-1.

2. Структурно-функциональная организация УВ-1.

2.1. Домен холодового шока.

2.2. С-концевой домен.

3. Функции УВ-1 в ядре.

3.1. Участие УВ-1 в регуляции транскрипции.

3.2. Участие УВ-1 в репликации и репарации ДНК.

3.3. Участие УВ-1 в сплайсинге.

3.4. Участие УВ-1 в разборке ядрышек.

4. Функции УВ-1 в цитоплазме.

4.1. Участие YB-1 в трансляции.

4.2. Участие YB-1 в упаковке мРНК.

4.3. Участие YB-1 в регуляции стабильности мРНК.

4.4. Участие YB-1 в локализации мРНК.

4.5. Участие белков семейства YB-1 в процессинге мРНК.

5. Ядерно-цитоплазматический транспорт YB-1.

5.1. Сигнальные последовательности в молекуле YB-1.

5.2. Механизм ядерно-цитоплазматического транспорта YB-1.

5.3. Возможные механизмы регуляции ядерно-цитоплазматического транспорта YB-1.

5.3.1. Регуляция транспорта YB-1 за счёт взаимодействия с мРНК.

5.3.2. Тромбин стимулирует переход YB-1 в ядро в эндотелиальных клетках

5.3.3. Переход YB-1 в ядро в комплексе с другими белками.

5.3.4. Фосфорилирование YB-1 может влиять на его ядерно-цитоплазматическое распределение.

6. УВ-1ирак.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Поиск ферментов, контролирующих ядерно-цитоплазматическое распределение белка YB-1 в клетках млекопитающих"

Пространственное разделение синтеза мРНК и трансляции позволило эукариотам достичь совершенной регуляции экспрессии генов. Такое разграничение двух основополагающих клеточных процессов привело к формированию очень сложного механизма транспортировки макромолекул через ядерную мембрану. Упрощённо, ядерно-цитоплазматический транспорт сводится к тому, что ядерные белки импортируются в ядро, а РНК экспортируется в цитоплазму. На самом деле, транспорт и белков и РНК через ядерную мембрану может быть двунаправленным, и, в последние годы, список белков, постоянно перемещающихся между цитоплазмой и ядром, существенно расширился. Создаётся впечатление, что именно такие ядерно-цитоплазматические «белки-челноки» являются ключевыми звеньями в передаче информации между двумя основными компартментами клетки. Первые свидетельства, указывающие на возможность перемещения белков между цитоплазмой и ядром, были получены в 1950-х годах (Goldstein, 1958). Тем не менее, потребовалось ещё около 30 лет пока был идентифицирован первый «белок-челнок» - нуклеолин (Borer et al., 1989). К настоящему времени список белков, перемещающихся между цитоплазмой и ядром, включает транспортные рецепторы и адаптеры (Gorlich and Kutay, 1999; Nakielny and Dreyfiiss, 1999), рецепторы стероидных гормонов (Hache et al., 1999), факторы транскрипции (Cartwright and Helin, 2000), регуляторы клеточного цикла (Pines, 1999; Yang and Kornbluth, 1999) и множество РНК-связывающих белков (Nakielny and Dreyfiiss, 1999; Shyu and Wilkinson, 2000).

Y-бокс связывающий белок 1 (YB-1) - это внутриклеточный ядерно-цитоплазматический белок млекопитающих с молекулярной массой около 36 кДа. YB-1 - белок мультифункциональный, его участие в широком спектре внутриклеточных процессов объясняется прежде всего достаточно уникальной способностью взаимодействовать как с ДНК, так и с РНК, а также связываться с большим числом других клеточных белков (Kohno et al., 2003). Взаимодействуя с определенными регуляторными последовательностями в ДНК, в том числе с участками, содержащими Y-боксы в промоторах и энхансерах генов, YB-1 позитивно или негативно влияет на экспрессию ряда важнейших клеточных генов (Kohno et al., 2003). Среди них гены факторов роста, гены, участвующие в делении 6 клеток, апоптозе, иммунном ответе, развитии множественной лекарственной устойчивости, стрессовых ответах, регуляции опухолевого роста, а также ряд вирусных генов. YB-1 обладает повышенным сродством к участкам ДНК с поврежденной вторичной структурой и способствует процессу их репарации, а ускоряя обмен комплементарных нуклеотидных последовательностей в двойных спиралях, он, как предполагается, может участвовать в рекомбинации ДНК (Ise et al, 1999; Skabkin et al., 2001). Имеются данные о вовлечении YB-1 и в процесс репликации ДНК (Levenson et al., 2000). Одним словом, YB-1, по-видимому, играет роль практически во всех ДНК-зависимых процессах. В ходе синтеза мРНК, YB-1 связывается с их предшественниками ещё на хромосомах и потом сопровождает молекулы мРНК на протяжении всей их жизни (Kohno et al., 2003). В клеточном ядре белок участвует в альтернативном сплайсинге предшественников мРНК (Chansky et al., 2001). В цитоплазме подавляющая часть YB-1 может находиться в ассоциации с транслируемыми и нетранслируемыми мРНК, определяя их функциональную активность, стабильность, а также локализацию трансляционно активных мРНК на актиновом скелете (Davydova et al., 1997; Evdokimova et al., 2001; Ruzanov et al., 1999).

Участие YB-1 в таком широком спектре клеточных процессов позволило прийти к выводу, что характер действия YB-1 на клеточные процессы зависит не только от его содержания в клетке, но также и от его распределения между ядром и цитоплазмой, которое должно строго регулироваться. Если общие механизмы ядерно-цитоплазматического транспорта белков изучены достаточно детально, то информация о транспортировке YB-1 скудна и никогда не обобщалась. В связи с этим, нам показалось очень важным и интересным проанализировать известные механизмы регуляции ядерно-цитоплазматического транспорта белков, включая данные об YB-1 по этой теме.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

ЯДЕРНО-ЦИТОПЛАЗМАТИЧЕСКИЙ ТРАНСПОРТ БЕЛКОВ: РЕГУЛЯЦИЯ

РАСПРЕДЕЛЕНИЯ YB-1 В КЛЕТКЕ

I, Ядерно-цитоплазматический транспорт белков 1. Введение

В эукариотических клетках цитоплазма и ядро сообщаются через ядерные поровые комплексы, встроенные в ядерную мембрану. Ядерный поровый комплекс -NPC (nuclear pore complex), состоящий из -30 различных белков нуклеопоринов (nucleoporin) (Rout and Aiíchison, 2000), образует канал и регулирует ядерно-цитоплазматический транспорт различных типов РНК (Franke and Scheer, 1974), мембранных белков (рецепторов) (King et ai, 2006) и растворимых белков (S unth a ra 1 i ng am and Wente, 2003).

А Б В ii

NPC

Рисунок 1. Упрощённая модель транспорта через ядерную мембрану. (А) Схематичное изображение ядерного норового комплекса (NPC). Обозначения: ЯМ - ядерная мембрана, ЦФ -цитоплазматическая фибрилла, ЯФ - ядерная фибрилла. «FG-поверхность» - образована FG-нуклеопоринами (подробно рассмотрены в главе 2.2. раздела I «Обзора литературы»). Считается, что именно за счёт взаимодействий с FG-нуклеопоринами осуществляется активный транспорт белков через ядерный поровый комплекс. Селективный фильтр - представляет собой сеть из несвернутых гидрофобных полипептидных цепей нуклеопоринов, выстилающих центральный канал NPC. (Б) Ионы и маленькие нейтральные белки способны проходить через селективный фильтр порового комплекса за счёт диффузии. (В) Большие молекулы или комплексы проникают через NPC только в составе транспортных комплексов.

Ядерный поровый комплекс - это большой транспортёр, пронизывающий ядерную мембрану. Ионы и маленькие нейтральные белки, не связывающиеся с нуклеопоринами, проникают через ядерный поровый комплекс за счёт диффузии (Gorlich and Kutay, 1999). В этом случае они проходят через туннель диаметром 8-10 нм и длиной около 45 нм (Keminer and Peters, 1999; Paine et al, 1975) (рисунок 1Б). Если молекулы связываются с нуклеопоринами, диаметр туннеля увеличивается до 40 нм (Pante and Капп, 2002) и транспортировка идёт намного быстрее (рисунок 1В) (Ribbeck and Gorlich, 2001; Siebrasse and Peters, 2002). Селективный фильтр для малых бежов представляет собой сеть из несвернутых гидрофобных полипептидных цепей нуклеопоринов, выстилающих центральный канал NPC (рисунок 1Б). Тем не менее, не смотря на сравнительно большой диаметр туннеля, некоторые, даже маленькие белки (меньше 20-30 кДа), такие как гистоны, проходят через NPC только с посредниками (Breeuwer and Goldfarb, 1990). Основным является транспорт при помощи посредника Ran (Ran-зависимый транспорт). Этот вид транспорта достаточно хорошо изучен. Основной отличительной его чертой является гидролиз GTP, катализируемый Ran. В транспорте, помимо Ran, принимают участие и другие консервативные транспортные факторы.

2. Ran-зависимый ядерно-цитоплазматический транспорт белков

Импорт/экспорт большинства белков, в том числе мембранных, рибосомных субчастиц и некоторых типов РНК происходит при помощи большого, эволюционно консервативного семейства транспортных факторов - кариоферинов-Р (karyopherin-Р). Большинство кариоферинов-Р осуществляют или ядерный импорт и называются импортинами, или ядерный экспорт и называются экспортинами; лишь некоторые из них принимают участие как в экспорте, так и в импорте. Большинство кариоферинов-Р напрямую взаимодействует со своими белками-субстратами, но иногда и через адаптерный белок. Самым изученным адаптерным белком является эволюционно консервативный белок кариоферин-а (kaiyopherin-а), другое название - импортин-a (importin-a). Импортины связываются с сигналом ядерной локализации - NLS (nuclear localization signal) - в транспортируемом белке и перемещают субстрат в ядро. Экспортины связываются с сигналом ядерного экспорта - NES (nuclear export sequence) - в транспортируемом белке и обеспечивают его транспортировку в цитоплазму. Помимо перечисленных, в транспорте в ядро и из ядра участвует дополнительно целый набор транспортных белков. Одним из ключевых белков среди них является GTP-аза Ran. Упрощённая модель Ran-зависимого ядерного транспорта схематически представлена на рисунке

2. Роль Ran в транспорте более подробно будет описана ниже (смотри главу 2.3.1. раздела I «Обзора литературы»).

Рисунок 2, Упрощённая модель Ran-ззвисимого ядерно-цнтоплазматического транспорта белков. (А) Транспорт в ядро. Импорт белков с сигналом ядерной локализации (NLS) осуществляется гетеродимером кар иоферин-а/им порти н -р ] (обозначены а и р). Транспорт белков опосредованный участием только импортинов-p на схеме не показан. (Б) Транспорт из ядра. Большая часть экспорта белков с сигналом ядерного экспорта (NES) осуществляется экспортином Crml (обозначен ехр).

Заключение Диссертация по теме "Молекулярная биология", Сорокин, Алексей Витальевич

выводы

2. 20S протеасома расщепляет YB-1 перед Gly-220.

3. Расщепление YB-1 20S протеасомой осуществляется по Ub- и АТР-независимому механизму.

4. Расщеплению подвергается только свободный, не связанный с мРНК YB-1.

5. Расщепление YB-1 протеасомой в клетке происходит в ответ на ДНК-повреждающий стресс.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Сорокин, Алексей Витальевич, Пущино

1. Adam E.J. and Adam S.A. (1994) Identification of cytosolic factors required for nuclear location sequence-mediated binding to the nuclear envelope. J Cell Biol, 125, 547-555.

2. Akey C.W. and Radermacher M. (1993) Architecture of the Xenopus nuclear pore complex revealed by three-dimensional cryo-electron microscopy. J Cell Biol, 122, 119.

3. Akopian T.N., Kisselev A.F. and Goldberg A.L. (1997) Processive degradation of proteins and other catalytic properties of the proteasome from Thermoplasma acidophilum. J Biol Chem, 272, 1791-1798.

4. Allen N.P., Huang L., Burlingame A. and Rexach M. (2001) Proteomic analysis of nucleoporin interacting proteins. J Biol Chem, 276, 29268-29274.

5. Amici M., Sagratini D., Pettinari A., Pucciarelli S., Angeletti M. and Eleuteri A.M. (2004) 20S proteasome mediated degradation of DHFR: implications in neurodegenerative disorders. Arch Biochem Biophys, 422, 168-174.

6. Amick G.D. and Damuni Z. (1992) Protamine kinase phosphorylates eukaryotic protein synthesis initiation factor 4E. Biochem Biophys Res Commun, 183, 431-437.

7. Ansari S.A., Safak M., Gallia G.L., Sawaya B.E., Amini S. and Khalili K. (1999) Interaction of YB-1 with human immunodeficiency virus type 1 Tat and TAR RNA modulates viral promoter activity. J Gen Virol, 80 (Pt 10), 2629-2638.

8. Aoki M., Blazek E. and Vogt P.K. (2001) A role of the kinase mTOR in cellular transformation induced by the oncoproteins P3k and Akt. Proc Nail Acad Sci USA, 98, 136-141.

9. Argentaro A., Sim H., Kelly S., Preiss S., Clayton A., Jans D.A. and Harley V.R. (2003) A SOX9 defect of calmodulin-dependent nuclear import in campomelic dysplasia/autosomal sex reversal. J Biol Chem, 278, 33839-33847.

10. Asher G., Tsvetkov P., Kahana C. and Shaul Y. (2005) A mechanism of ubiquitin-independent proteasomal degradation of the tumor suppressors p53 and p73. Genes Dev, 19,316-321.

11. Auerbach S. and Pederson T. (1975) Phosphorylation of messenger RNA-bound proteins in HeLa cells. Biochem Biophys Res Commun, 63, 149-156.

12. Bader A.G., Felts K.A., Jiang N, Chang H.W. and Vogt P.K. (2003) Y box-binding protein 1 induces resistance to oncogenic transformation by the phosphatidylinositol 3-kinase pathway. Proc Natl Acad Sci USA, 100, 12384-12389.

13. Bader A.G. and Vogt P.K. (2004) An essential role for protein synthesis in oncogenic cellular transformation. Oncogene, 23, 3145-3150.

14. Bader A.G. and Vogt P.K. (2005) Inhibition of protein synthesis by Y box-binding protein 1 blocks oncogenic cell transformation. Mol Cell Biol, 25, 2095-2106.

15. Balda M.S. and Matter K. (2000) The tight junction protein ZO-1 and an interacting transcription factor regulate ErbB-2 expression. Embo J, 19, 2024-2033.

16. Baugh J.M. and Pilipenko E.V. (2004) 20S Proteasome Differentially Alters Translation of Different mRNAs via the Cleavage of eIF4F and eIF3. Mol Cell, 16, 575-586.

17. Beals C.R., Sheridan C.M., Turck C.W., Gardner P. and Crabtree G.R. (1997) Nuclear export of NF-ATc enhanced by glycogen synthase kinase-3. Science, 275, 1930-1934.

18. Beg A.A., Ruben S.M., Scheinman R.I., Haskill S., Rosen C.A. and Baldwin A.S., Jr. (1992) I kappa B interacts with the nuclear localization sequences of the subunits of NF-kappa B: a mechanism for cytoplasmic retention. Genes Dev, 6, 1899-1913.

19. Ben-Efraim I. and Gerace L. (2001) Gradient of increasing affinity of importin beta for nucleoporins along the pathway of nuclear import. J Cell Biol, 152, 411-417.

20. Beretta L„ Gingras A.C., Svitkin Y.V., Hall M.N. and Sonenberg N. (1996) Rapamycin blocks the phosphorylation of 4E-BP1 and inhibits cap-dependent initiation of translation. Embo J, 15, 658-664.

21. Birnboim H.C. (1983) A rapid alkaline extraction method for the isolation of plasmid DNA.Methods Enzymol, 100, 243-255.

22. Bischoff F.R., Klebe C., Kretschmer J., Wittinghofer A. and Ponstingl H. (1994) RanGAPl induces GTPase activity of nuclear Ras-related Ran. Proc Nail Acad Sci U SA, 91, 2587-2591.

23. Bischoff F.R., Krebber H., Smirnova E., Dong W. and Ponstingl H. (1995) Co-activation of RanGTPase and inhibition of GTP dissociation by Ran-GTP binding protein RanBPl. Embo J, 14, 705-715.

24. Bischoff F.R. and Ponstingl H. (1991) Catalysis of guanine nucleotide exchange on Ran by the mitotic regulator RCC1. Nature, 354, 80-82.

25. Black B.E., Holaska J.M., Rastinejad F. and Paschal B.M. (2001) DNA binding domains in diverse nuclear receptors function as nuclear export signals. CurrBiol, 11, 1749-1758.

26. Blobel G. (1972) Protein tightly bound to globin mRNA. Biochem Biophys Res Commun, 47, 88-95.

27. Borer R.A., Lehner C.F., Eppenberger H.M. and Nigg E.A. (1989) Major nucleolar proteins shuttle between nucleus and cytoplasm. Cell, 56, 379-390.

28. Bourne H.R., Sanders D.A. and McCormick F. (1991) The GTPase superfamily: conserved structure and molecular mechanism. Nature, 349, 117-127.

29. Bouvet P., Matsumoto K. and Wolffe A.P. (1995) Sequence-specific RNA recognition by the Xenopus Y-box proteins. An essential role for the cold shock domain. J Biol Chem, 270, 28297-28303.

30. Bouvet P. and Wolffe A.P. (1994) A role for transcription and FRGY2 in masking maternal mRNA within Xenopus oocytes. Cell, 77,931-941.

31. Brazil D.P., Park J. and Hemmings B.A. (2002) PKB binding proteins. Getting in on the Akt. Cell, 111,293-303.

32. Breeuwer M. and Goldfarb D.S. (1990) Facilitated nuclear transport of histone HI and other small nucleophilic proteins. Cell, 60, 999-1008.

33. Cai Y., Gao Y., Sheng Q., Miao S., Cui X., Wang L., Zong S. and Koide S.S. (2002) Characterization and potential function of a novel testis-specific nucleoporin BS-63. Mol Reprod Dev, 61, 126-134.

34. Capowski E.E., Esnault S., Bhattachaiya S. and Malter J.S. (2001) Y box-binding factor promotes eosinophil survival by stabilizing granulocyte-macrophage colony-stimulating factor mRNA. J Immunol, 167, 5970-5976.

35. Cartwright P. and Helin K. (2000) Nucleocytoplasmic shuttling of transcription factors. Cell Mol Life Sci, 57, 1193-1206.

36. Chan C.K. and Jans D.A. (1999) Synergy of importin alpha recognition and DNA binding by the yeast transcriptional activator GAL4. FEBS Lett, 462, 221-224.

37. Chan C.K. and Jans D.A. (2001) Enhancement of MSH receptor- and GAL4-mediated gene transfer by switching the nuclear import pathway. Gene Ther, 8, 166171.

38. Chansky H.A., Hu M., Hickstein D.D. and Yang L. (2001) Oncogenic TLS/ERG and EWS/Fli-1 fusion proteins inhibit RNA splicing mediated by YB-1 protein. Cancer Res, 61, 3586-3590.

39. Chen C.Y., Gherzi R., Andersen J.S., Gaietta G., Jurchott K., Royer H.D., Mann M. and Karin M. (2000) Nucleolin and YB-1 are required for JNK-mediated interleukin-2 mRNA stabilization during T-cell activation. Gems Dev, 14, 1236-1248.

40. Chi N.C., Adam E.J. and Adam S.A. (1997) Different binding domains for Ran-GTP and Ran-GDP/RanBPl on nuclear import factor p97. J Biol Chem, 272, 6818-6822.

41. Cingolani G., Bednenko J., Gillespie M.T. and Gerace L. (2002) Molecular basis for the recognition of a nonclassical nuclear localization signal by importin beta. Mol Cell, 10, 1345-1353.

42. Cingolani G., Petosa C., Weis K. and Muller C.W. (1999) Structure of importin-beta bound to the IBB domain of importin-alpha. Nature, 399, 221-229.

43. Coles L.S., Diamond P., Occhiodoro F., Vadas M.A. and Shannon M.F. (1996) Cold shock domain proteins repress transcription from the GM-CSF promoter. Nucleic Acids Res, 24, 2311-2317.

44. Coles L.S., Lambrusco L., Burrows J., Hunter J., Diamond P., Bert A.G., Vadas M.A. and Goodall G.J. (2005) Phosphorylation of cold shock domain/Y-box proteins by ERK2 and GSK3beta and repression of the human VEGF promoter. FEBS Lett, 579, 5372-5378.

45. Corbett A.H., Koepp D.M., Schlenstedt G., Lee M.S., Hopper A.K. and Silver P.A. (1995) Rnalp, a Ran/TC4 GTPase activating protein, is required for nuclear import. J Cell Biol, 130, 1017-1026.

46. Craig E., Zhang Z.K., Davies K.P. and Kalpana G.V. (2002) A masked NES in INIl/hSNF5 mediates hCRMl-dependent nuclear export: implications for tumorigenesis. EmboJ, 21, 31-42.

47. Cronshaw J.M., Krutchinsky A.N., Zhang W., Chait B.T. and Matunis M.J. (2002) Proteomic analysis of the mammalian nuclear pore complex. J Cell Biol, 158, 915927.

48. Darnbrough C.H. and Ford P.J. (1981) Identification in Xenopus laevis of a class of oocyte-specific proteins bound to messenger RNA. Eur J Biochem, 113, 415-424.

49. Davies H.G., Giorgini F., Fajardo M.A. and Braun R.E. (2000) A sequence-specific RNA binding complex expressed in murine germ cells contains MSY2 and MSY4. DevBiol, 221, 87-100.

50. Davies T.H., Ning Y.M. and Sanchez E.R. (2002) A new first step in activation of steroid receptors: hormone-induced switching of FKBP51 and FKBP52 immunophilins. J Biol Chem, 277, 4597-4600.

51. Davydova E.K., Evdokimova V.M., Ovchinnikov L.P. and Hershey J.W. (1997) Overexpression in COS cells of p50, the major core protein associated with mRNA, results in translation inhibition. Nucleic Acids Res, 25, 2911-2916.

52. Decker C.J. and Parker R. (2002) mRNA decay enzymes: decappers conserved between yeast and mammals. P roc Natl Acad Sci USA, 99, 12512-12514.

53. Delphin C., Guan T, Melchior F. and Gerace L. (1997) RanGTP targets p97 to RanBP2, a filamentous protein localized at the cytoplasmic periphery of the nuclear pore complex. Mol Biol Cell, 8, 2379-2390.

54. Denegri M., Chiodi I., Corioni M., Cobianchi F., Riva S. and Biamonti G. (2001) Stress-induced nuclear bodies are sites of accumulation of pre-mRNA processing factors. Mol Biol Cell, 12, 3502-3514.

55. Deschamps S., Viel A., Garrigos M., Denis H. and le Maire M. (1992) mRNP4, a major mRNA-binding protein from Xenopus oocytes is identical to transcription factor FRG Y2. J Biol Chem, 267, 13799-13802.

56. Devos D., Dokudovskaya S., Alber F., Williams R., Chait B.T., Sali A. and Rout M.P. (2004) Components of coated vesicles and nuclear pore complexes share a common molecular architecture. PLoS Biol, 2, e380.

57. Didier D.K., Schiffenbauer J., Woulfe S.L., Zacheis M. and Schwartz B.D. (1988) Characterization of the cDNA encoding a protein binding to the major histocompatibility complex class II Y box. Proc Natl Acad Sci U SA, 85, 7322-7326.

58. Dingwall C., Kandels-Lewis S. and Seraphin B. (1995) A family of Ran binding proteins that includes nucleoporins. Proc Natl Acad Sci USA, 92, 7525-7529.

59. Efthymiadis A., Briggs L.J. and Jans D.A. (1998) The HIV-1 Tat nuclear localization sequence confers novel nuclear import properties. J Biol Chem, 273, 1623-1628.

60. Evdokimova V., Ruzanov P., Anglesio M.S., Sorokin A.V., Ovchinnikov L.P., Buckley J., Triche T.J., Sonenberg N. and Sorensen P.H. (2006) Akt-mediated YB-1 phosphorylation activates translation of silent mRNA species. Mol Cell Biol, 26, 277292.

61. Evdokimova V., Ruzanov P., Imataka H., Raught B., Svitkin Y., Ovchinnikov L.P. and Sonenberg N. (2001) The major mRNA-associated protein YB-1 is a potent 5' cap-dependent mRNA stabilizer. Embo J, 20,5491-5502.

62. Evdokimova V.M. and Ovchinnikov L.P. (1999) Translational regulation by Y-box transcription factor: involvement of the major mRNA-associated protein, p50. Int J Biochem Cell Biol, 31, 139-149.

63. Fagotto F., Gluck U. and Gumbiner B.M. (1998) Nuclear localization signal-independent and importin/karyopherin-independent nuclear import of beta-catenin. CurrBiol, 8, 181-190.

64. Fang X., Chen T., Tran K. and Parker C.S. (2001) Developmental regulation of the heat shock response by nuclear transport factor karyopherin-alpha3. Development, 128, 3349-3358.

65. Ferrigno P., Posas F., Koepp D., Saito H. and Silver P.A. (1998) Regulated nucleo/cytoplasmic exchange of HOG 1 MAPK requires the importin beta homologs NMD5 and XPOl. Embo J, 17, 5606-5614.

66. Fineberg K., Fineberg T., Graessmann A., Luedtke N.W., Tor Y., Lixin R., Jans D.A. and Loyter A. (2003) Inhibition of nuclear import mediated by the Rev-arginine rich motif by RNA molecules. Biochemistry, 42, 2625-2633.

67. Fischer U., Huber J., Boelens W.C., Mattaj I.W. and Luhrmann R. (1995) The HIV-1 Rev activation domain is a nuclear export signal that accesses an export pathway used by specific cellular RNAs. Cell, 82, 475-483.

68. Floer M. and Blobel G. (1996) The nuclear transport factor karyopherin beta binds stoichiometrically to Ran-GTP and inhibits the Ran GTPase activating protein. J Biol Chem, 271,5313-5316.

69. Fornerod M., van Deursen J., van Baal S., Reynolds A., Davis D., Murti K.G., Fransen J. and Grosveld G. (1997) The human homologue of yeast CRM1 is in a dynamic subcomplex with CAN/Nup214 and a novel nuclear pore component Nup88. Embo J, 16, 807-816.

70. Frank-Kamenetskii M.D. and Mirkin S.M. (1995) Triplex DNA structures. Annu Rev Biochem, 64, 65-95.

71. Franke W.W. and Scheer U. (1974) Pathways of nucleocytoplasmic translocation of ribonucleoproteins. Symp Soc Exp Biol, 249-282.

72. Freedman N.D. and Yamamoto K.R. (2004) Importin 7 and importin alpha/importin beta are nuclear import receptors for the glucocorticoid receptor. Mol Biol Cell, 15, 2276-2286.

73. Fried H. and Kutay U. (2003) Nucleocytoplasmic transport: taking an inventory. Cell Mol Life Sci, 60, 1659-1688.

74. Fukada T. and Tonks N.K. (2003) Identification of YB-1 as a regulator of PTP1B expression: implications for regulation of insulin and cytokine signaling. Embo J, 22, 479-493.

75. Geahlen R.L., Anostario M., Jr., Low P.S. and Harrison M.L. (1986) Detection of protein kinase activity in sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gels. Anal Biochem, 153, 151-158.

76. Giorgini F., Davies H.G. and Braun R.E. (2001) MSY2 and MSY4 bind a conserved sequence in the 3' untranslated region of protamine 1 mRNA in vitro and in vivo. Mol Cell Biol, 21, 7010-7019.

77. Goldberg A.L. (2003) Protein degradation and protection against misfolded or damaged proteins. Nature, 426, 895-899.

78. Goldfarb D.S., Corbett A.H., Mason D.A., Harreman M.T. and Adam S.A. (2004) Importin alpha: a multipurpose nuclear-transport receptor. Trends Cell Biol, 14, 505514.

79. Goldsmith M.E., Madden M.J., Morrow C.S. and Cowan K.H. (1993) A Y-box consensus sequence is required for basal expression of the human multidrug resistance (mdrl) gene. J Biol Chem, 268, 5856-5860.

80. Goldstein L. (1958) Localization of nucleusspecific protein as shown by transplantation experiments in Amoeba proteus. Exp Cell Res, 15, 635-637.

81. Gonda K., Wudel J., Nelson D., Katoku-Kikyo N., Reed P., Tamada H. and Kikyo N. (2006) Requirement of the protein B23 for nucleolar disassembly induced by the FRGY2a family proteins. J Biol Chem, 281, 8153-8160.

82. Gorlich D., Dabrowski M., Bischoff F.R., Kutay U., Bork P., Hartmann E., Prehn S. and Izaurralde E. (1997) A novel class of RanGTP binding proteins. J Cell Biol, 138, 65-80.

83. Gorlich D., Kostka S., Kraft R., Dingwall C., Laskey R.A., Hartmann E. and Prehn S. (1995a) Two different subunits of importin cooperate to recognize nuclear localization signals and bind them to the nuclear envelope. CurrBiol, 5, 383-392.

84. Gorlich D. and Kutay U. (1999) Transport between the cell nucleus and the cytoplasm. Annu Rev Cell Dev Biol, 15, 607-660.

85. Gorlich D„ Pante N., Kutay U., Aebi U. and Bischoff F.R. (1996) Identification of different roles for RanGDP and RanGTP in nuclear protein import. Entbo J, 15, 55845594.

86. Gorlich D., Prehn S., Laskey R.A. and Hartmann E. (1994) Isolation of a protein that is essential for the first step of nuclear protein import. Cell, 79, 767-778.

87. Gorlich D., Vogel F., Mills A.D., Hartmann E. and Laskey R.A. (1995b) Distinct functions for the two importin subunits in nuclear protein import. Nature, 377, 246248.

88. Grant C.E. and Deeley R.G. (1993) Cloning and characterization of chicken YB-1: regulation of expression in the liver. Mol Cell Biol, 13, 4186-4196.

89. Graumann P.L. and Marahiel M.A. (1998) A superfamily of proteins that contain the cold-shock domain. Trends Biochem Sci, 23, 286-290.

90. Groll M., Ditzel L., Lowe J., Stock D., Bochtler M., Bartunik H.D. and Huber R. (1997) Structure of 20S proteasome from yeast at 2.4 A resolution. Nature, 386, 463471.

91. Gu C., Oyama T., Osaki T., Kohno K. and Yasumoto K. (2001) Expression of Y box-binding protein-1 correlates with DNA topoisomerase Ilalpha and proliferating cell nuclear antigen expression in lung cancer. Anticancer Res, 21, 2357-2362.

92. Gu W., Tekur S., Reinbold R., Eppig J.J., Choi Y.C., Zheng J.Z., Murray M.T. and Hecht N.B. (1998) Mammalian male and female germ cells express a germ cell-specific Y-Box protein, MSY2. Biol Reprod, 59, 1266-1274.

93. Guay D., Gaudreault I., Massip L. and Lebel M. (2006) Formation of a nuclear complex containing the p53 tumor suppressor, YB-1, and the Werner syndrome gene product in cells treated with UV light. Int J Biochem Cell Biol, 38, 1300-1313.

94. Hache R.J., Tse R., Reich T., Savory J.G. and Lefebvre Y.A. (1999) Nucleocytoplasmic trafficking of steroid-free glucocorticoid receptor. J Biol Chem, 214, 1432-1439.

95. Haglund K., Di Fiore P.P. and Dikic I. (2003a) Distinct monoubiquitin signals in receptor endocytosis. Trends Biochem Sci, 28,598-603.

96. Haglund K. and Dikic I. (2005) Ubiquitylation and cell signaling. EmboJ, 24, 33533359.

97. Haglund K., Sigismund S., Polo S., Szymkiewicz I., Di Fiore P.P. and Dikic I. (2003b) Multiple monoubiquitination of RTKs is sufficient for their endocytosis and degradation. Nat Cell Biol, 5, 461-466.

98. Hall M.N., Craik C. and Hiraoka Y. (1990) Homeodomain of yeast repressor alpha 2 contains a nuclear localization signal. Proc Natl Acad Sci USA, 87, 6954-6958.

99. Harel A. and Forbes D.J. (2004) Importin beta: conducting a much larger cellular symphony. Mol Cell, 16, 319-330.

100. Hartmann E. and Gorlich D. (1995) A Ran-binding motif in nuclear pore proteins. Trends Cell Biol, 5, 192-193.

101. Hay N. and Sonenberg N. (2004) Upstream and downstream of mTOR. Genes Dev, 18, 1926-1945.

102. Hayman M.L. and Read L.K. (1999) Trypanosoma brucei RBP16 is a mitochondrial Y-box family protein with guide RNA binding activity. J Biol Chem, 274, 1206712074.

103. Hershko A. and Ciechanover A. (1998) The ubiquitin system. Annu Rev Biochem, 67, 425-479.

104. Hicke L. and Dunn R. (2003) Regulation of membrane protein transport by ubiquitin and ubiquitin-binding proteins. Annu Rev Cell Dev Biol, 19, 141-172.

105. Higashi K., Inagaki Y., Fujimori K., Nakao A., Kaneko H. and Nakatsuka I. (2003a) Interferon-gamma interferes with transforming growth factor-beta signaling through direct interaction of YB-1 with Smad3. J Biol Chem, 278, 43470-43479.

106. Higashi K., Inagaki Y., Suzuki N., Mitsui S., Mauviel A., Kaneko H. and Nakatsuka I. (2003b) Y-box-binding protein YB-1 mediates transcriptional repression of human alpha 2(1) collagen gene expression by interferon-gamma. J Biol Chem, 278, 51565162.

107. Hingorani K., Szebeni A. and Olson M.O. (2000) Mapping the functional domains of nucleolar protein B23. J Biol Chem, 275, 24451-24457.

108. Hinshaw J.E., Carragher B.O. and Milligan R.A. (1992) Architecture and design of the nuclear pore complex. Cell, 69, 1133-1141.

109. Hodges J.L., Leslie J.H., Mosammaparast N., Guo Y., Shabanowitz J., Hunt D.F. and Pemberton L.F. (2005) Nuclear import of TFIIB is mediated by Kapll4p, a karyopherin with multiple cargo-binding domains. Mol Biol Cell, 16, 3200-3210.

110. Hogarth C., Itman C., Jans D.A. and Loveland K.L. (2005) Regulated nucleocytoplasmic transport in spermatogenesis: a driver of cellular differentiation? Bioessays, 27, 1011-1025.

111. Holaska J.M., Black B.E., Love D.C., Hanover J.A., Leszyk J. and Paschal B.M. (2001) Calreticulin Is a receptor for nuclear export. J Cell Biol, 152, 127-140.

112. Holaska J.M., Black B.E., Rastinejad F. and Paschal B.M. (2002) Ca2+-dependent nuclear export mediated by calreticulin. Mol Cell Biol, 22, 6286-6297.

113. Hood J.K. and Silver P.A. (1998) Cselp is required for export of Srplp/importin-alpha from the nucleus in Saccharomyces cerevisiae. J Biol Chem, 273,35142-35146.

114. Hood J.K. and Silver P.A. (1999) In or out? Regulating nuclear transport. Curr Opin Cell Biol, 11,241-247.

115. Hopper A.K., Traglia H.M. and Dunst R.W. (1990) The yeast RNA1 gene product necessary for RNA processing is located in the cytosol and apparently excluded from the nucleus. J Cell Biol, 111, 309-321.

116. Horton P. and Nakai K. (1997) Better prediction of protein cellular localization sites with the k nearest neighbors classifier. Proc Int Conflntell SystMol Biol, 5, 147-152.

117. Huang J., Tan P.H., Li K.B., Matsumoto K., Tsujimoto M. and Bay B.H. (2005) Y-box binding protein, YB-1, as a marker of tumor aggressiveness and response to adjuvant chemotherapy in breast cancer. Int J Oncol, 26, 607-613.

118. Hubner S., Xiao C.Y. and Jans D.A. (1997) The protein kinase CK2 site (Serl 11/112) enhances recognition of the simian virus 40 large T-antigen nuclear localization sequence by importin. J Biol Chem, 272, 17191-17195.

119. Hutten S. and Kehlenbach R.H. (2006) Nup214 is required for CRM 1-dependent nuclear protein export in vivo. Mol Cell Biol, 26, 6772-6785.

120. Imataka H., Gradi A. and Sonenberg N. (1998) A newly identified N-terminal amino acid sequence of human eIF4G binds poly(A)-binding protein and functions in poly(A)-dependent translation. EmboJ, 17, 7480-7489.

121. Irwin D., Kumar A. and Malt R.A. (1975) Messenger ribonucleoprotein complexes isolated with oligo(dT)-ceIIulose chromatography from kidney polysomes. Cell, 4, 157-165.

122. Itoh M., Adachi M., Yasui H., Takekawa M., Tanaka H. and Imai K. (2002) Nuclear export of glucocorticoid receptor is enhanced by c-Jun N-terminal kinase-mediated phosphorylation. Mol Endocrinol, 16, 2382-2392.

123. Jain S.K., Pluskal M.G. and Sarkar S. (1979) Thermal chromatography of eukaryotic messenger ribonucleoprotein particles on oligo (dT)-cellulose. Evidence for common mRNA-associated proteins in various cell types. FEBS Lett, 97, 84-90.

124. Jakel S. and Gorlich D. (1998) Importin beta, transportin, RanBP5 and RanBP7 mediate nuclear import of ribosomal proteins in mammalian cells. Embo J, 17, 44914502.

125. Jans D.A., Xiao C.Y. and Lam M.H. (2000) Nuclear targeting signal recognition: a key control point in nuclear transport? Bioessays, 22, 532-544.

126. Johnson A.W., Lund E. and Dahlberg J. (2002) Nuclear export of ribosomal subunits. Trends Biochem Sci, 27, 580-585.

127. Juan G., Pan W. and Darzynkiewicz Z. (1996) DNA segments sensitive to single-strand-specific nucleases are present in chromatin of mitotic cells. Exp Cell Res, 227, 197-202.

128. Kaffinan A. and O'Shea E.K. (1999) Regulation of nuclear localization: a key to a door. Annu Rev Cell Dev Biol, 15, 291-339.

129. Kaffman A., Rank N.M. and O'Shea E.K. (1998) Phosphorylation regulates association of the transcription factor Pho4 with its import receptor Psel/Kapl21. Genes Dev, 12, 2673-2683.

130. Kamura T., Yahata H., Amada S., Ogawa S., Sonoda T., Kobayashi H., Mitsumoto M., Kohno K., Kuwano M. and Nakano H. (1999) Is nuclear expression of Y box-binding protein-1 a new prognostic factor in ovarian serous adenocarcinoma? Cancer, 85, 2450-2454.

131. Kandala J.C. and Guntaka R.V. (1994) Cloning of Rous sarcoma virus enhancer factor genes. I. Evidence that RSV-EF-I is related to Y-box (inverted CCAAT) binding proteins and binds to multiple motifs in the RSV enhancer. Virology, 198, 514-523.

132. Katagiri Y., Takeda K., Yu Z.X., Ferrans V.J., Ozato K. and Guroff G. (2000) Modulation of retinoid signalling through NGF-induced nuclear export of NGFI-B. Nat Cell Biol, 2,435-440.

133. Kehlenbach R.H., Dickmanns A. and Gerace L. (1998) Nucleocytoplasmic shuttling factors including Ran and CRM1 mediate nuclear export of NFAT In vitro. J Cell Biol, 141, 863-874.

134. Kehlenbach R.H., Dickmanns A., Kehlenbach A., Guan T. and Gerace L. (1999) A role for RanBPl in the release of CRM1 from the nuclear pore complex in a terminal step of nuclear export. J Cell Biol, 145, 645-657.

135. Keminer 0. and Peters R. (1999) Permeability of single nuclear pores. Biophys J, 77, 217-228.

136. Kick D., Barrett P., Cummings A. and Sommerville J. (1987) Phosphorylation of a 60 kDa polypeptide from Xenopus oocytes blocks messenger RNA translation. Nucleic Acids Res, 15, 4099-4109.

137. Kim V.N. (2004) MicroRNA precursors in motion: exportin-5 mediates their nuclear export. Trends Cell Biol, 14, 156-159.

138. King M.C., Lusk C.P. and Blobel G. (2006) Karyopherin-mediated import of integral inner nuclear membrane proteins. Nature, 442, 1003-1007.

139. Kisselev A.F., Akopian T.N. and Goldberg A.L. (1998) Range of sizes of peptide products generated during degradation of different proteins by archaeal proteasomes. J Biol Chem, 273, 1982-1989.

140. Kisselev A.F. and Goldberg A.L. (2001) Proteasome inhibitors: from research tools to drug candidates. Chem Biol, 8, 739-758.

141. Kloks C.P., Spronk C.A., Lasonder E., Hoffmann A., Vuister G.W., Grzesiek S. and Hilbers C.W. (2002) The solution structure and DNA-binding properties of the cold-shock domain of the human Y-box protein YB-1. JMol Biol, 316, 317-326.

142. Kohler M., Ansieau S., Prehn S., Leutz A., Haller H. and Hartmann E. (1997) Cloning of two novel human importin-alpha subunits and analysis of the expression pattern of the importin-alpha protein family. FEBSLett, 417, 104-108.

143. Kohno K., Izumi H., Uchiumi T., Ashizuka M. and Kuwano M. (2003) The pleiotropic functions of the Y-box-binding protein, YB-1. Bioessays, 25, 691-698.

144. Kohwi-Shigematsu T. and Kohwi Y. (1985) Poly(dG)-poly(dC) sequences, under torsional stress, induce an altered DNA conformation upon neighboring DNA sequences. Cell, 43, 199-206.

145. Koike K., Uchiumi T., Ohga T., Toh S., Wada M., Kohno K. and Kuwano M. (1997) Nuclear translocation of the Y-box binding protein by ultraviolet irradiation. FEBS Lett, 417, 390-394.

146. Komeili A. and O'Shea E.K. (1999) Roles of phosphorylation sites in regulating activity of the transcription factor Pho4. Science, 284, 977-980.

147. Kose S., Imamoto N., Tachibana T., Shimamoto T. and Yoneda Y. (1997) Ran-unassisted nuclear migration of a 97-kD component of nuclear pore-targeting complex. J Cell Biol, 139, 841-849.

148. Krappmann D. and Scheidereit C. (2005) A pervasive role of ubiquitin conjugation in activation and termination of IkappaB kinase pathways. EMBO Rep, 6, 321-326.

149. Kudo N., Taoka H., Toda T., Yoshida M. and Horinouchi S. (1999) A novel nuclear export signal sensitive to oxidative stress in the fission yeast transcription factor Papl. J Biol Chem, 274, 15151-15158.

150. Kuge S., Arita M., Murayama A., Maeta K., Izawa S., Inoue Y. and Nomoto A. (2001) Regulation of the yeast Yaplp nuclear export signal is mediated by redox signal-induced reversible disulfide bond formation. Mol Cell Biol, 21, 6139-6150.

151. Kumar A. and Pederson T. (1975) Comparison of proteins bound to heterogeneous nuclear RNA and messenger RNA in HeLa cells. J Mol Biol, 96,353-365.

152. Kunzler M., Gerstberger T., Stutz F„ Bischoff F.R. and Hurt E. (2000) Yeast Ran-binding protein 1 (Yrbl) shuttles between the nucleus and cytoplasm and is exported from the nucleus via a CRM1 (XPOl)-dependent pathway. Mol Cell Biol, 20, 42954308.

153. Kunzler M. and Hurt E.C. (1998) Cselp functions as the nuclear export receptor for importin alpha in yeast. FEBS Lett, 433, 185-190.

154. Kutay U., Lipowsky G., Izaurralde E., Bischoff F.R., Schwarzmaier P., Hartmann E. and Gorlich D. (1998) Identification of a tRNA-specific nuclear export receptor. Mol Cell, 1, 359-369.

155. Kutay U. and Muhlhausser P. (2006) Cell biology: taking a turn into the nucleus. Nature, 442, 991-992.

156. Ladomery M. and Sommerville J. (1994) Binding of Y-box proteins to RNA: involvement of different protein domains. Nucleic Acids Res, 22, 5582-5589.

157. Laemmli U.K. (1970) Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227, 680-685.

158. Lasham A., Lindridge E., Rudert F., Onrust R. and Watson J. (2000) Regulation of the human fas promoter by YB-1, Puralpha and AP-1 transcription factors. Gene, 252, 1-13.

159. Lasham A., Moloney S., Hale T., Homer C., Zhang Y.F., Murison J.G., Braithwaite A.W. and Watson J. (2003) The Y-box-binding protein, YB1, is a potential negative regulator of the p53 tumor suppressor. J Biol Chem, 278, 35516-35523.

160. Lee B.J., Cansizoglu A.E., Suel K.E., Louis T.H., Zhang Z. and Chook Y.M. (2006) Rules for nuclear localization sequence recognition by kaiyopherin beta 2. Cell, 126, 543-558.

161. Lei E.P. and Silver P.A. (2002) Protein and RNA export from the nucleus. Dev Cell, 2, 261-272.

162. Lenz J., Okenquist S.A., LoSardo J.E., Hamilton K.K. and Doetsch P.W. (1990) Identification of a mammalian nuclear factor and human cDNA-encoded proteins that recognize DNA containing apurinic sites. Proc Natl Acad Sci U SA, 87, 3396-3400.

163. Leslie D.M., Zhang W., Timney B.L., Chait B.T., Rout M.P., Wozniak R.W. and Aitchison J.D. (2004) Characterization of karyopherin cargoes reveals unique mechanisms of Kapl21p-mediated nuclear import. Mol Cell Biol, 24, 8487-8503.

164. Levenson V.V., Davidovich I.A. and Roninson I.B. (2000) Pleiotropic resistance to DNA-interactive drugs is associated with increased expression of genes involved in DNA replication, repair, and stress response. Cancer Res, 60,5027-5030.

165. Levine A.J. (1997) p53, the cellular gatekeeper for growth and division. Cell, 88, 323331.

166. Li J., Hawkins I.C., Harvey C.D., Jennings J.L., Link A.J. and Patton J.G. (2003) Regulation of alternative splicing by SRrp86 and its interacting proteins. Mol Cell Biol, 23, 7437-7447.

167. Li S„ Ku C.Y., Farmer A.A., Cong Y.S., Chen C.F. and Lee W.H. (1998) Identification of a novel cytoplasmic protein that specifically binds to nuclear localization signal motifs. J Biol Chem, 273, 6183-6189.

168. Li W.W, Hsiung Y., Wong V., Galvin K., Zhou Y., Shi Y. and Lee A.S. (1997) Suppression of grp78 core promoter element-mediated stress induction by the dbpA and dbpB (YB-1) cold shock domain proteins. Mol Cell Biol, 17, 61-68.

169. Li X., Lonard D.M., Jung S.Y., Malovannaya A., Feng Q., Qin J., Tsai S. Y., Tsai M.J. and O'Malley B.W. (2006) The SRC-3/AIB1 coactivator is degraded in a ubiquitin-and ATP-independent manner by the REGgamma proteasome. Cell, 124, 381-392.

170. Lin L. and Ghosh S. (1996) A glycine-rich region in NF-kappaB pl05 functions as a processing signal for the generation of the p50 subunit. Mol Cell Biol, 16, 2248-2254.

171. Lin T.A. and Lawrence J.C., Jr. (1996) Control of the translational regulators PHAS-I and PHAS-II by insulin and cAMP in 3T3-L1 adipocytes. J Biol Chem, 271, 3019930204.

172. Lindberg U. and Sundquist B. (1974) Isolation of messenger ribonucleoproteins from mammalian cells. J Mol Biol, 86, 451-468.

173. Lindsay M.E., Holaska J.M., Welch K., Paschal B.M. and Macara I.G. (2001) Ran-binding protein 3 is a cofactor for Crml-mediated nuclear protein export. J Cell Biol, 153, 1391-1402.

174. Liu C.W., Corboy M.J., DeMartino G.N. and Thomas P.J. (2003) Endoproteolytic activity of the proteasome. Science, 299, 408-411.

175. Liu J. and DeFranco D.B. (2000) Protracted nuclear export of glucocorticoid receptor limits its turnover and does not require the exportin 1/CRM1-directed nuclear export pathway. Mol Endocrinol, 14,40-51.

176. Lixin R., Efthymiadis A., Henderson B. and Jans D.A. (2001) Novel properties of the nucleolar targeting signal of human angiogenin. Biochem Biophys Res Commun, 284, 185-193.

177. Lloberas J., Maki R.A. and Celada A. (1995) Repression of major histocompatibility complex I-A beta gene expression by dbpA and dbpB (mYB-1) proteins. Mol Cell Biol, 15, 5092-5099.

178. Lounsbury K.M. and Macara I.G. (1997) Ran-binding protein 1 (RanBPl) forms a ternary complex with Ran and karyopherin beta and reduces Ran GTPase-activating protein (RanGAP) inhibition by karyopherin beta. J Biol Chem, 272, 551-555.

179. Lutz M., Wempe F., Bahr I., Zopf D. and von Melchner H. (2006) Proteasomal degradation of the multifunctional regulator YB-1 is mediated by an F-Box protein induced during programmed cell death. FEBS Lett, 580, 3921-3930.

180. Macara I.G. (2001) Transport into and out of the nucleus. Microbiol Mol Biol Rev, 65, 570-594, table of contents.

181. MacDonald G.H., Itoh-Lindstrom Y. and Ting J.P. (1995) The transcriptional regulatory protein, YB-1, promotes single-stranded regions in the DRA promoter. J Biol Chem, 270, 3527-3533.

182. Mader S., Lee H., Pause A. and Sonenberg N. (1995) The translation initiation factor eIF-4E binds to a common motif shared by the translation factor eIF-4 gamma and the translational repressors 4E-binding proteins. Mol Cell Biol, 15, 4990-4997.

183. Makkerh J.P., Dingwall C. and Laskey R.A. (1996) Comparative mutagenesis of nuclear localization signals reveals the importance of neutral and acidic amino acids. CurrBiol, 6, 1025-1027.

184. Manival X., Ghisolfi-Nieto L., Joseph G., Bouvet P. and Erard M. (2001) RNA-binding strategies common to cold-shock domain- and RNA recognition motif-containing proteins. Nucleic Acids Res, 29, 2223-2233.

185. Marelli M., Dilworth D.J., Wozniak R.W. and Aitchison J.D. (2001) The dynamics of karyopherin-mediated nuclear transport. Biochem Cell Biol, 79,603-612.

186. Mathe E., Bates H„ Huikeshoven H., Deak P., Glover D.M. and Cotterill S. (2000) Importin-alpha3 is required at multiple stages of Drosophila development and has a role in the completion of oogenesis. Dev Biol, 223, 307-322.

187. Matsubayashi Y., Fukuda M. and Nishida E. (2001) Evidence for existence of a nuclear pore complex-mediated, cytosol-independent pathway of nuclear translocation of ERK MAP kinase in permeabilized cells. J Biol Chem, 276, 4175541760.

188. Matsumoto K., Tanaka K.J. and Tsujimoto M. (2005) An acidic protein, YBAP1, mediates the release of YB-1 from mRNA and relieves the translational repression activity of YB-1. Mol Cell Biol, 25, 1779-1792.

189. Matsumoto K. and Wolffe A.P. (1998) Gene regulation by Y-box proteins: coupling control of transcription and translation. Trends Cell Biol, 8, 318-323.

190. McBride K.M., Banninger G., McDonald C. and Reich N.C. (2002) Regulated nuclear import of the STAT1 transcription factor by direct binding of importin-alpha. EmboJ, 21, 1754-1763.

191. Melchior F., Paschal B., Evans J. and Gerace L. (1993) Inhibition of nuclear protein import by nonhydrolyzable analogues of GTP and identification of the small GTPase Ran/TC4 as an essential transport factor. J Cell Biol, 123, 1649-1659.

192. Mertens P.R., Harendza S., Pollock A.S. and Lovett D.H. (1997) Glomerular mesangial cell-specific transactivation of matrix metalloproteinase 2 transcription is mediated by YB-1. J Biol Chem, 272, 22905-22912.

193. Mertens P.R., Steinmann K., Alfonso-Jaume M.A., En-Nia A., Sun Y. and Lovett D.H. (2002b) Combinatorial interactions of p53, AP2 and YB-1 with a single enhancer element regulate gelatinase A expression in neoplastic cells. J Biol Chem, 24, 24.

194. Meyer T. and Vinkemeier U. (2004) Nucleocytoplasmic shuttling of STAT transcription factors. Eur J Biochem, 271, 4606-4612.

195. Michael W.M., Eder P.S. and Dreyfuss G. (1997) The K nuclear shuttling domain: a novel signal for nuclear import and nuclear export in the hnRNP K protein. Embo J, 16, 3587-3598.

196. Mingot J.M., Kostka S., Kraft R., Hartmann E. and Gorlich D. (2001) Importin 13: a novel mediator of nuclear import and export. Embo J, 20, 3685-3694.

197. Minich W.B., Maidebura I.P. and Ovchinnikov L.P. (1993) Purification and characterization of the major 50-kDa repressor protein from cytoplasmic mRNP of rabbit reticulocytes. Eur J Biochem, 212, 633-638.

198. Minich W.B. and Ovchinnikov L.P. (1992) Role of cytoplasmic mRNP proteins in translation. Biochimie, 74, 477-483.

199. Moore M.S. (1998) Ran and nuclear transport. J Biol Chem, 273, 22857-22860.

200. Moore M.S. and Blobel G. (1993) The GTP-binding protein Ran/TC4 is required for protein import into the nucleus. Nature, 365, 661-663.

201. Moore M.S. and Blobel G. (1994) Purification of a Ran-interacting protein that is required for protein import into the nucleus. Proc Natl Acad Sci USA, 91, 1021210216.

202. Morel C., Kayibanda B. and Scherrer K. (1971) Proteins associated with globin messenger RNA in avian erythroblasts: Isolation and comparison with the proteins bound to nuclear messenger-likie RNA. FEBSLett, 18, 84-88.

203. Morley S.J. and Traugh J.A. (1989) Phorbol esters stimulate phosphorylation of eukaryotic initiation factors 3, 4B, and 4F. J Biol Chem, 264, 2401-2404.

204. Mosammaparast N., Ewart C.S. and Pemberton L.F. (2002a) A role for nucleosome assembly protein 1 in the nuclear transport of histones H2A and H2B. Embo J, 21, 6527-6538.

205. Mosammaparast N., Guo Y., Shabanowitz J., Hunt D.F. and Pemberton L.F. (2002b) Pathways mediating the nuclear import of histones H3 and H4 in yeast. J Biol Chem, 277, 862-868.

206. Mosammaparast N., Jackson K.R., Guo Y., Brame C.J., Shabanowitz J., Hunt D.F. and Pemberton L.F. (2001) Nuclear import of histone H2A and H2B is mediated by a network of karyopherins. J Cell Biol, 153, 251-262.

207. Mosammaparast N. and Pemberton L.F. (2004) Karyopherins: from nuclear-transport mediators to nuclear-function regulators. Trends Cell Biol, 14,547-556.

208. Mossink M.H., de Groot J., van Zon A., Franzel-Luiten E., Schoester M., Scheffer G.L., Sonneveld P., Scheper R.J. and Wiemer E.A. (2003) Unimpaired dendritic cell functions in MVP/LRP knockout mice. Immunology, 110, 58-65.

209. Mueller L., Cordes V.C., Bischoff F.R. and Ponstingl H. (1998) Human RanBP3, a group of nuclear RanGTP binding proteins. FEBSLetl, 427, 330-336.

210. Muhlhausser P., Muller E.C., Otto A. and Kutay U. (2001) Multiple pathways contribute to nuclear import of core histones. EMBO Rep, 2,690-696.

211. Murray M.T. (1994) Nucleic acid-binding properties of the Xenopus oocyte Y box protein mRNP3+4. Biochemistry, 33, 13910-13917.

212. Murray M.T., Krohne G. and Franke W.W. (1991) Different forms of soluble cytoplasmic mRNA binding proteins and particles in Xenopus laevis oocytes and embryos .J Cell Biol, 112, 1-11.

213. Murray M.T., Schiller D.L. and Franke W.W. (1992) Sequence analysis of cytoplasmic mRNA-binding proteins of Xenopus oocytes identifies a family of RNA-binding proteins. Proc Natl Acad Sci U SA, 89, 11-15.

214. Nachury M.V., Ryder U.W., Lamond A.I. and Weis K. (1998) Cloning and characterization of hSRPl gamma, a tissue-specific nuclear transport factor. Proc Natl Acad Sci USA, 95, 582-587.

215. Nadler S.G., Tritschler D., Haffar O.K., Blake J., Bruce A.G. and Cleaveland J.S. (1997) Differential expression and sequence-specific interaction of karyopherin alpha with nuclear localization sequences. J Biol Chem, 212, 4310-4315.

216. Nakielny S. and Dreyfuss G. (1998) Import and export of the nuclear protein import receptor transportin by a mechanism independent of GTP hydrolysis. Carr Biol, 8, 89-95.

217. Nakielny S. and Dreyfuss G. (1999) Transport of proteins and RNAs in and out of the nucleus. Cell, 99, 677-690.

218. Nandi D., Tahiliani P., Kumar A. and Chandu D. (2006) The ubiquitin-proteasome system. JBiosci, 31, 137-155.

219. Nashchekin D., Zhao J., Visa N. and Daneholt B. (2006) A novel Dedl-like RNA helicase interacts with the Y-box protein ctYB-1 in nuclear mRNP particles and in polysomes. J Biol Chem, 281, 14263-14272.

220. Nehrbass U. and Blobel G. (1996) Role of the nuclear transport factor plO in nuclear import. Science, 272, 120-122.

221. Nemergut M.E., Lindsay M.E., Brownawell A.M. and Macara I.G. (2002) Ran-binding protein 3 links Crml to the Ran guanine nucleotide exchange factor. J Biol Chem, 211, 17385-17388.

222. Nemergut M.E., Mizzen C.A., Stukenberg T., Allis C.D. and Macara I.G. (2001) Chromatin docking and exchange activity enhancement of RCC1 by histones H2A and H2B. Science, 292, 1540-1543.

223. Nikolaev A.Y., Li M., Puskas N., Qin J. and Gu W. (2003) Pare: a cytoplasmic anchor for p53. Cell, 112, 29-40.

224. Norvell A., Kelley R.L., Wehr K. and Schupbach T. (1999) Specific isoforms of squid, a Drosophila hnRNP, perform distinct roles in Gurken localization during oogenesis. Genes Dev, 13, 864-876.

225. Oda Y., Sakamoto A., Shinohara N., Ohga T., Uchiumi T., Kohno K., Tsuneyoshi M., Kuwano M. and Iwamoto Y. (1998) Nuclear expression of YB-1 protein correlates with P-glycoprotein expression in human osteosarcoma. Clin Cancer Res, 4, 22732277.

226. Ogura T. and Tanaka K. (2003) Dissecting various ATP-dependent steps involved in proteasomal degradation. Mol Cell, 11, 3-5.

227. Ohba H., Chiyoda T., Endo E., Yano M., Hayakawa Y., Sakaguchi M., Darnell R.B., Okano H.J. and Okano H. (2004a) Sox21 is a repressor of neuronal differentiation and is antagonized by YB-1. Neurosci Lett, 358, 157-160.

228. Ohba T., Schirmer E.C., Nishimoto T. and Gerace L. (2004b) Energy- and temperature-dependent transport of integral proteins to the inner nuclear membrane via the nuclear porq. J Cell Biol, 167, 1051-1062.

229. Ohga T., Uchiumi T., Makino Y., Koike K., Wada M., Kuwano M. and Kohno K. (1998) Direct involvement of the Y-box binding protein YB-1 in genotoxic stress-induced activation of the human multidrug resistance 1 gene. J Biol Chem, 273, 59976000.

230. Ohmori M., Shimura H., Shimura Y. and Kohn L.D. (1996) A Y-box protein is a suppressor factor that decreases thyrotropin receptor gene expression. Mol Endocrinol, 10, 76-89.

231. Ohno M., Segref A., Bachi A., Wilm M. and Mattaj I.W. (2000) PHAX, a mediator of U snRNA nuclear export whose activity is regulated by phosphorylation. Cell, 101, 187-198.

232. Okamoto T., Izumi H., Imamura T., Takano H., Ise T., Uchiumi T., Kuwano M. and Kohno K. (2000) Direct interaction of p53 with the Y-box binding protein, YB-1: a mechanism for regulation of human gene expression. Oncogene, 19, 6194-6202.

233. Oki M. and Nishimoto T. (2000) Yrblp interaction with the gsplp C terminus blocks Moglp stimulation of GTP release from Gsplp. J Biol Chem, 275, 32894-32900.

234. Orlowski M. and Wilk S. (2003) Ubiquitin-independent proteolytic functions of the proteasome. Arch Biochem Biophys, 415, 1-5.

235. Ovchinnikov L.P., Skabkin M.A., Ruzanov P.V. and Evdokimova V.M. (2001) Major mRNP proteins in the structural organization and function of mRNA in eukaryotic cells. Mol Biol (Mosk), 35, 548-558.

236. Ozer J., Faber M., Chalkley R. and Sealy L. (1990) Isolation and characterization of a cDNA clone for the CCAAT transcription factor EFIA reveals a novel structural motif. J Biol Chem, Vol. 265, pp. 22143-22152.

237. Paine P.L., Moore L.C. and Horowitz S.B. (1975) Nuclear envelope permeability. Nature, 254, 109-114.

238. Pante N. and Aebi U. (1996) Sequential binding of import ligands to distinct nucleopore regions during their nuclear import. Science, 273, 1729-1732.

239. Pante N. and Kann M. (2002) Nuclear pore complex is able to transport macromolecules with diameters of about 39 nm. Mol Biol Cell, 13,425-434.

240. Paraskeva E., Izaurralde E., Bischoff F.R., Huber J., Kutay U., Hartmann E., Luhrmann R. and Gorlich D. (1999) CRMl-mediated recycling of snurportin 1 to the cytoplasm. J Cell Biol, 145, 255-264.

241. Paschal B.M. and Gerace L. (1995) Identification of NTF2, a cytosolic factor for nuclear import that interacts with nuclear pore complex protein p62. J Cell Biol, 129, 925-937.

242. Pelletier M. and Read L.K. (2003) RBP16 is a multifunctional gene regulatory protein involved in editing and stabilization of specific mitochondrial mRNAs in Trypanosoma brucei. Rna, 9,457-468.

243. Pemberton L.F. and Paschal B.M. (2005) Mechanisms of receptor-mediated nuclear import and nuclear export. Traffic, 6, 187-198.

244. Perez-Terzic C., Jaconi M. and Clapham D.E. (1997) Nuclear calcium and the regulation of the nuclear pore complex. Bioessays, 19, 787-792.

245. Perez-Terzic C., Pyle J., Jaconi M., Stehno-Bittel L. and Clapham D.E. (1996) Conformational states of the nuclear pore complex induced by depletion of nuclear Ca2+ stores. Science, 273, 1875-1877.

246. Peters R. (2005) Translocation through the nuclear pore complex: selectivity and speed by reduction-of-dimensionality. Traffic, 6, 421-427.

247. Picard D., Kumar V., Chambon P. and Yamamoto K.R. (1990) Signal transduction by steroid hormones: nuclear localization is differentially regulated in estrogen and glucocorticoid receptors. Cell Regul, 1,291-299.

248. Picard D. and Yamamoto K.R. (1987) Two signals mediate hormone-dependent nuclear localization of the glucocorticoid receptor. Embo J, 6,3333-3340.

249. Pines J. (1999) Four-dimensional control of the cell cycle. Nat Cell Biol, 1, E73-79.

250. Pinol-Roma S. (1999) Association of nonribosomal nucleolar proteins in ribonucleoprotein complexes during interphase and mitosis. Mol Biol Cell, 10, 77-90.

251. Pokrovskaya I.D. and Gurevich V.V. (1994) In vitro transcription: preparative RNA yields in analytical scale reactions. Anal Biochem, 220, 420-423.

252. Pollard V.W., Michael W.M., Nakielny S., Siomi M.C., Wang F. and Dreyfiiss G. (1996) A novel receptor-mediated nuclear protein import pathway. Cell, 86, 985-994.128

253. Poon I.K. and Jans D.A. (2005) Regulation of nuclear transport: central role in development and transformation? Traffic, 6, 173-186.

254. Poukka H., Karvonen U., Yoshikawa N., Tanaka H., Palvimo J.J. and Janne O.A. (2000) The RING finger protein SNURF modulates nuclear trafficking of the androgen receptor. JCellSci, 113 (Pt 17), 2991-3001.

255. Pratt W.B. and Toft D.O. (1997) Steroid receptor interactions with heat shock protein and immunophilin chaperones. Endocr Rev, 18, 306-360.

256. Preobrazhensky A.A. and Spirin A.S. (1978) Informosomes and their protein components: the present state of knowledge. In Progress in Nucleic Acid Research and Molecular Biology. Acad Press Inc New York, San Francisco, London, Vol. 21, pp. 1-38.

257. Pruschy M., Ju Y., Spitz L., Carafoli E. and Goldfarb D.S. (1994) Facilitated nuclear transport of calmodulin in tissue culture cells .J Cell Biol, 111, 1527-1536.

258. Pyhtila B. and Rexach M. (2003) A gradient of affinity for the karyopherin Kap95p along the yeast nuclear pore complex. J Biol Chem, 278, 42699-42709.

259. Raj G.V., Safak M., MacDonald G.H. and Khalili K. (1996) Transcriptional regulation of human polyomavirus JC: evidence for a functional interaction between RelA (p65) and the Y-box-binding protein, YB-1. J Virol, 70, 5944-5953.

260. Ranjan M., Tafuri S.R. and Wolffe A.P. (1993) Masking mRNA from translation in somatic cells. Genes Dev, 1, 1725-1736.

261. Rapp T.B., Yang L., Conrad E.U., 3rd, Mandahl N. and Chansky H.A. (2002) RNA splicing mediated by YB-1 is inhibited by TLS/CHOP in human myxoid liposarcoma cells. J Orthop Res, 20, 723-729.

262. Reichelt R., Holzenburg A., Buhle E.L., Jr., Jarnik M., Engel A. and Aebi U. (1990) Correlation between structure and mass distribution of the nuclear pore complex and of distinct pore complex components. J Cell Biol, 110, 883-894.

263. Rexach M. and Blobel G. (1995) Protein import into nuclei: association and dissociation reactions involving transport substrate, transport factors, and nucleoporins. Cell, 83, 683-692.

264. Ribbeck K. and Gorlich D. (2001) Kinetic analysis of translocation through nuclear pore complexes. EmboJ, 20, 1320-1330.

265. Richard C., Matthews D., Duivenvoorden W., Yau J., Wright P.S. and Th'ng J.P. (2005) Flavopiridol Sensitivity of Cancer Cells Isolated from Ascites and Pleural Fluids. Clin Cancer Res, 11, 3523-3529.

266. Richter J.D. and Smith L.D. (1984) Reversible inhibition of translation by Xenopus oocyte-specific proteins. Nature, 309, 378-380.

267. Riviere Y., Blank V., Kourilsky P. and Israel A. (1991) Processing of the precursor of NF-kappa B by the HIV-1 protease during acute infection. Nature, 350, 625-626.

268. Rosenblum J.S., Pemberton L.F., Bonifaci N. and Blobel G. (1998) Nuclear import and the evolution of a multifunctional RNA-binding protein. J Cell Biol, 143, 887899.

269. Rout M.P. and Aitcliison J.D. (2000) Pore relations: nuclear pore complexes and nucleocytoplasmic exchange. Essays Biochem, 36, 75-88.

270. Rout M.P. and Aitchison J.D. (2001) The nuclear pore complex as a transport machine. J Biol Chem, 276, 16593-16596.

271. Ruzanov P.V., Evdokimova V.M., Korneeva N.L., Hershey J.W. and Ovchinnikov L.P. (1999) Interaction of the universal mRNA-binding protein, p50, with actin: a possible link between mRNA and microfilaments. J Cell Sci, 112 (Pt 20), 3487-3496.

272. Safak M., Gallia G.L., Ansari S.A. and Khalili K. (1999a) Physical and functional interaction between the Y-box binding protein YB-1 and human polyomavirus JC virus large T antigen. J Virol, 73, 10146-10157.

273. Safak M., Gallia G.L. and Khalili K. (1999b) Reciprocal interaction between two cellular proteins, Puralpha and YB-1, modulates transcriptional activity of JCVCY in glial cells. Mol Cell Biol, 19, 2712-2723.

274. Safak M., Gallia G.L. and Khalili K. (1999c) Reciprocal interaction between two cellular proteins, Puralpha and YB- 1, modulates transcriptional activity of JCVCY in glial cells. Mol Cell Biol, 19, 2712-2723.

275. Saji H., Toi M., Saji S., Koike M., Kohno K. and Kuwano M. (2003) Nuclear expression of YB-1 protein correlates with P-glycoprotein expression in human breast carcinoma. Cancer Lett, 190, 191-197.

276. Sakura H., Maekawa Т., Imamoto F., Yasuda K. and Ishii S. (1988) Two human genes isolated by a novel method encode DNA-binding proteins containing a common region of homology. Gene, 73, 499-507.

277. Saporita A.J., Zhang Q., Navai N., Dincer Z., Hahn J., Cai X. and Wang Z. (2003) Identification and characterization of a ligand-regulated nuclear export signal in androgen receptor. J Biol Chem, 278, 41998-42005.

278. Sapru M.K., Gao J.P., Walke W., Burmeister M. and Goldman D. (1996) Cloning and characterization of a novel transcriptional repressor of the nicotinic acetylcholine receptor delta-subunit gene. J Biol Chem, 271, 7203-7211.

279. Savkur R.S. and Olson M.O. (1998) Preferential cleavage in pre-ribosomal RNA byprotein B23 endoribonuclease. Nucleic Acids Res, 26, 4508-4515.

280. Savory J.G., Hsu В., Laquian I.R., Giffin W., Reich Т., Hache R.J. and Lefebvre Y.A. (1999) Discrimination between NL1- and NL2-mediated nuclear localization of the glucocorticoid receptor. Mol Cell Biol, 19, 1025-1037.

281. Schindelin H., Jiang W., Inouye M. and Heinemann U. (1994) Crystal structure of CspA, the major cold shock protein of Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci U SA, 91, 5119-5123.

282. Schlenstedt G., Wong D.H., Koepp D.M. and Silver P.A. (1995) Mutants in a yeast Ran binding protein are defective in nuclear transport. EmboJ, 14, 5367-5378.

283. Schmalz D., Hucho F. and Buchner K. (1998) Nuclear import of protein kinase С occurs by a mechanism distinct from the mechanism used by proteins with a classical nuclear localization signal. J Cell Sci, 111 (Pt 13), 1823-1830.

284. Scott M.P., Storti R.V., Pardue M.L. and Rich A. (1979) Cell-free protein synthesis in lysates ofDrosophilamelanogaster cells. Biochemistry, 18, 1588-1594.

285. Senger В., Simos G., Bischoff F.R., Podtelejnikov A., Mann M. and Hurt E. (1998) MtrlOp functions as a nuclear import receptor for the mRNA-binding protein Npl3p. EmboJ, 17,2196-2207.

286. Shah S. and Forbes D.J. (1998) Separate nuclear import pathways converge on the nucleoporin Nupl53 and can be dissected with dominant-negative inhibitors. Curr Biol, 8, 1376-1386.

287. Shah S., Tugendreich S. and Forbes D. (1998) Major binding sites for the nuclear import receptor are the internal nucleoporin Nupl53 and the adjacent nuclear filament protein Tpr. J Cell Biol, 141, 31-49.

288. Shank L.C. and Paschal B.M. (2005) Nuclear transport of steroid hormone receptors. Crit Rev Eukaryot Gene Expr, 15, 49-73.

289. Shannon M.F., Coles L.S., Attema J. and Diamond P. (2001) The role of architectural transcription factors in cytokine gene transcription. J Leitkoc Biol, 69, 21-32.

290. Shibao K., Takano H., Nakayama Y., Okazaki K., Nagata N., Izumi H., Uchiumi T., Kuwano M., Kohno K. and Itoh H. (1999) Enhanced coexpression of YB-1 and DNA topoisomerase II alpha genes in human colorectal carcinomas. Int J Cancer, 83, 732737.

291. Shnyreva M., Schullery D.S., Suzuki H., Higaki Y. and Bomsztyk K. (2000) Interaction of two multifunctional proteins. Heterogeneous nuclear ribonucleoprotein K and Y-box-binding protein. J Biol Chem, 275, 15498-15503.

292. Shulga N. and Goldfarb D.S. (2003) Binding dynamics of structural nucleoporins govern nuclear pore complex permeability and may mediate channel gating. Mol Cell Biol, 23, 534-542.

293. Shyu A.B. and Wilkinson M.F. (2000) The double lives of shuttling mRNA binding proteins. Cell, 102, 135-138.

294. Siebrasse J.P. and Peters R. (2002) Rapid translocation of NTF2 through the nuclear pore of isolated nuclei and nuclear envelopes. EMBO Rep, 3, 887-892.

295. Simental J.A., Sar ML, Lane M.V., French F.S. and Wilson E.M. (1991) Transcriptional activation and nuclear targeting signals of the human androgen receptor. J Biol Chem, 266, 510-518.

296. Skabkin M.A., Evdokimova V., Thomas A.A. and Ovchinnikov L.P. (2001) The major messenger ribonucleoprotein particle protein p50 (YB-1) promotes nucleic acid strand annealing. J Biol Chem, 276, 44841-44847.

297. Skabkin M.A., Kiselyova O.I., Chernov K.G., Sorokin A.V., Dubrovin E.V., Yaminsky I.V., Vasiliev V.D. and Ovchinnikov L.P. (2004) Structural organization of mRNA complexes with major core mRNP protein YB-1. Nucleic Acids Res, 32, 5621-5635.

298. Smith D.B. and Johnson K.S. (1988) Single-step purification of polypeptides expressed in Escherichia coli as fusions with glutathione S-transferase. Gene, 67, 3140.

299. Sommerville J. (1990) RNA-binding phosphoproteins and the regulation of maternal mRNA inXenopus. JReprodFertil Suppl, 42, 225-233.

300. Sommerville J. and Ladomery M. (1996) Masking of mRNA by Y-box proteins. FasebJ, 10,435-443.

301. Soullam B. and Worman H.J. (1995) Signals and structural features involved in integral membrane protein targeting to the inner nuclear membrane. J Cell Biol, 130, 15-27.

302. Stein U., Bergmann S., Scheffer G.L., Scheper R.J., Royer H.D., Schlag P.M. and Walther W. (2005) YB-1 facilitates basal and 5-fluorouracil-inducible expression of the human major vault protein (MVP) gene. Oncogene, 24, 3606-3618.

303. Stenina O.I., Poptic E.J. and DiCorleto P.E. (2000) Thrombin activates a Y box-binding protein (DNA-binding protein B) in endothelial cells. J Clin Invest, 106, 579587.

304. Stenina O.I., Shaneyfelt K.M. and DiCorleto P.E. (2001) Thrombin induces the release of the Y-box protein dbpB from mRNA: a mechanism of transcriptional activation. Proc Natl Acad Sci USA, 98, 7277-7282.

305. Stewart M., Kent H.M. and McCoy A.J. (1998) Structural basis for molecular recognition between nuclear transport factor 2 (NTF2) and the GDP-bound form of the Ras-family GTPase Ran. JMolBiol, 277,635-646.

306. Stickeler E., Fraser S.D., Honig A., Chen A.L., Berget S.M. and Cooper T.A. (2001) The RNA binding protein YB-1 binds A/C-rich exon enhancers and stimulates splicing of the CD44 alternative exon v4. EmboJ, 20, 3821-3830.

307. Stochaj U. and Rother K.L. (1999) Nucleocytoplasmic trafficking of proteins: With or without Ran? BioEssays, 21, 579-589.

308. Stofiler D., Fahrenkrog B. and Aebi U. (1999) The nuclear pore complex: from molecular architecture to functional dynamics. Curr Opin Cell Biol, 11,391-401.

309. Su K., Roos M.D., Yang X., Han I., Paterson A.J. and Kudlow J.E. (1999) An N-terminal region of Spl targets its proteasome-dependent degradation in vitro. J Biol Chem, 274, 15194-15202.

310. Suntharalingam M. and Wente S.R. (2003) Peering through the pore: nuclear pore complex structure, assembly, and function. Dev Cell, 4, 775-789.

311. Svitkin Y.V., Ovchinnikov L.P., Dreyfuss G. and Sonenberg N. (1996) General RNA binding proteins render translation cap dependent. EmboJ, 15, 7147-7155.

312. Swamynathan S.K., Nambiar A. and Guntaka R.V. (1997) Chicken YB-2, a Y-box protein, is a potent activator of Rous sarcoma virus long terminal repeat-driven transcription in avian fibroblasts. J Virol, 71, 2873-2880.

313. Swamynathan S.K., Nambiar A. and Guntaka R.V. (1998) Role of single-stranded DNA regions and Y-box proteins in transcriptional regulation of viral and cellular genes. FasebJ, 12, 515-522.

314. Sweitzer T.D. and Hanover J.A. (1996) Calmodulin activates nuclear protein import: a link between signal transduction and nuclear transport. Proc Natl Acad Sci USA, 93, 14574-14579.

315. Tafuri S.R., Familari M. and Wolffe A.P. (1993) A mouse Y box protein, MSY1, is associated with paternal mRNA in spermatocytes. J Biol Chem, 268, 12213-12220.

316. Tafuri S.R. and Wolffe A.P. (1990) Xenopus Y-box transcription factors: molecular cloning, functional analysis and developmental regulation. Proc Natl Acad Sci U SA, 87, 9028-9032.

317. Tafuri S.R. and Wolffe A.P. (1992) DNA binding, multimerization, and transcription stimulation by the Xenopus Y box proteins in vitro. New Biol, 4, 349-359.

318. Tago K., Tsukahara F., Naruse M., Yoshioka T. and Takano K. (2004) Regulation of nuclear retention of glucocorticoid receptor by nuclear Hsp90. Mol Cell Endocrinol, 213, 131-138.

319. Tekotte H., Berdnik D., Torok T., Buszczak M., Jones L.M., Cooley L., Knoblich J.A. and Davis I. (2002) Dcas is required for importin-alpha3 nuclear export and mechano-sensory organ cell fate specification in Drosophila. Dev Biol, 244, 396-406.

320. Ting J.P., Painter A., Zeleznik-Le N.J., MacDonald G., Moore T.M., Brown A. and Schwartz B.D. (1994) YB-1 DNA-binding protein represses interferon gamma activation of class II major histocompatibility complex genes. J Exp Med, 179, 16051611.

321. Titov A.A. and Blobel G. (1999) The karyopherin Kapl22p/Pdr6p imports both subunits of the transcription factor IIA into the nucleus. J Cell Biol, 147, 235-246.

322. Tofaris G.K., Layfield R. and Spillantini M.G. (2001) alpha-synuclein metabolism and aggregation is linked to ubiquitin-independent degradation by the proteasome. FEBS Lett, 509, 22-26.

323. Toker A. and Newton A.C. (2000) Akt/protein kinase B is regulated by autophosphorylation at the hypothetical PDK-2 site. J Biol Chem, 215, 8271-8274.

324. Touitou R., Richardson J., Bose S., Nakanishi M., Rivett J. and Allday M.J. (2001) A degradation signal located in the C-terminus of p21WAFl/CIPl is a binding site for the C8 alpha-subunit of the 20S proteasome. Embo J, 20, 2367-2375.

325. Traenckner E.B., Wilk S. and Baeuerle P.A. (1994) A proteasome inhibitor prevents activation of NF-kappa B and stabilizes a newly phosphorylated form of I kappa B-alpha that is still bound to NF-kappa B. Embo J, 13, 5433-5441.

326. Tsubuki S., Saito Y. and Kawashima S. (1994) Purification and characterization of an endogenous inhibitor specific to the Z-Leu-Leu-Leu-MCA degrading activity in proteasome and its identification as heat-shock protein 90. FEBS Lett, 344, 229-233.

327. Tsuji L., Takumi T., Imamoto N. and Yoneda Y. (1997) Identification of novel homologues of mouse importin alpha, the alpha subunit of the nuclear pore-targeting complex, and their tissue-specific expression. FEBS Lett, 416, 30-34.

328. Uchiumi T., Kohno K., Tanimura H., Matsuo K., Sato S., Uchida Y. and Kuwano M. (1993) Enhanced expression of the human multidrug resistance 1 gene in response to UV light irradiation. Cell Growth Differ, 4, 147-157.

329. Watermann D.O., Tang Y., Zur Hausen A., Jager M., Stamm S. and Stickeler E. (2006) Splicing factor Tra2-betal is specifically induced in breast cancer and regulates alternative splicing of the CD44 gene. Cancer Res, 66, 4774-4780.

330. Weirich C.S., Erzberger J.P., Berger J.M. and Weis K. (2004) The N-terminal domain of Nupl59 forms a beta-propeller that functions in mRNA export by tethering the helicase Dbp5 to the nuclear pore.Mol Cell, 16, 749-760.

331. Weis K. (2003) Regulating access to the genome: nucleocytoplasmic transport throughout the cell cycle. Cell, 112, 441-451.

332. Welch K., Franke J., Kohler M. and Macara l.G. (1999) RanBP3 contains an unusual nuclear localization signal that is imported preferentially by importin-alpha3. Mol Cell Biol, 19, 8400-8411.

333. Wen W., Meinkoth J.L., Tsien R.Y. and Taylor S.S. (1995) Identification of a signal for rapid export of proteins from the nucleus. Cell, 82, 463-473.

334. Wolffe A.P. (1994) Structural and functional properties of the evolutionarily ancient Y-box family of nucleic acid binding proteins. Bioessays, 16, 245-251.

335. Wolffe A.P., Tafuri S., Ranjan M. and Familari M. (1992) The Y-box factors: a family of nucleic acid binding proteins conserved from Escherichia coli to man. New Biol, 4, 290-298.

336. Wu X., Kasper L.H., Mantcheva R.T., Mantchev G.T., Springett M.J. and van Deursen J.M. (2001) Disruption of the FG nucleoporin NUP98 causes selective changes in nuclear pore complex stoichiometry and function. Proc Natl Acad Sci U S A, 98,3191-3196.

337. Yang J. and Kornbluth S. (1999) All aboard the cyclin train: subcellular trafficking of cyclins and their CDK partners. Trends Cell Biol, 9, 207-210.

338. Yang Q., Rout M.P. and Akey C.W. (1998) Three-dimensional architecture of the isolated yeast nuclear pore complex: functional and evolutionary implications. Mol Cell, 1,223-234.

339. Yen Y.M., Roberts P.M. and Johnson R.C. (2001) Nuclear localization of the Saccharomyces cerevisiae HMG protein NHP6A occurs by a Ran-independent nonclassical pathway. Traffic, 2, 449-464.

340. Ylikomi T., Bocquel M.T., Berry M., Gronemeyer H. and Chambon P. (1992) Cooperation of proto-signals for nuclear accumulation of estrogen and progesterone receptors. EmboJ, 11, 3681-3694.

341. Yokoyama N., Hayashi N., Seki T., Pante N., Ohba T., Nishii K., Kuma K., Hayashida T., Miyata T., Aebi U. and et al. (1995) A giant nucleopore protein that binds Ran/TC4. Nature, 376, 184-188.

342. Yoshida K. and Blobel G. (2001) The karyopherin Kapl42p/Msn5p mediates nuclear import and nuclear export of different cargo proteins. J Cell Biol, 152, 729-740.

343. Yu J., Hecht N.B. and Schultz R.M. (2002) RNA-binding properties and translation repression in vitro by germ cell-specific MSY2 protein. Biol Reprod, 67, 1093-1098.

344. Zeng Y. and Cullen B.R. (2004) Structural requirements for pre-microRNA binding and nuclear export by Exportin 5. Nucleic Acids Res, 32, 4776-4785.

345. Zhang T., Delestienne N., Huez G., Kruys V. and Gueydan C. (2005) Identification of the sequence determinants mediating the nucleo-cytoplasmic shuttling of TIAR and TIA-1 RNA-binding proteins. J Cell Sci, 118, 5453-5463.

346. Zhang Y.F., Homer C., Edwards S.J., Hananeia L., Lasham A., Royds J., Sheard P. and Braithwaite A.W. (2003) Nuclear localization of Y-box factor YB1 requires wildtype p53. Oncogene, 22, 2782-2794.

347. Zhu J. and McKeon F. (1999) NF-AT activation requires suppression of Crml-dependent export by calcineurin. Nature, 398,256-260.

348. Правильный путь таков: усвой то, что сделали твои предшественники, и иди дальше.1. Лев Николаевич Толстой1. P.S.

349. Очень признателен моим бывшим студентам, ныне самостоятельным исследователям: Сергею Гурьянову и Анастасии Селютиной за помощь, поддержку, дискуссии и желание работать. Надеюсь, их работа также будет интересно и успешно развиваться.

350. Я очень признателен Евгении Викторовне Серебровой за помощь в написании статей, автореферата и диссертационной работы.

351. Благодарю также всех сотрудников Института бежа РАН, с которыми я работал и общался.

Информация о работе

Сорокин, Алексей Витальевич
кандидата биологических наук
Пущино, 2007
ВАК 03.00.03

Диссертация

Поиск ферментов, контролирующих ядерно-цитоплазматическое распределение белка YB-1 в клетках млекопитающих - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы