Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Молекулярно-клеточные механизмы стимулирующего действия низкоинтенсивного лазерного (когерентного) и некогерентного (светодиодного) излучений на процесс заживления ран

ВАК РФ 03.00.02, Биофизика

Содержание диссертации, кандидата медицинских наук, Шураева, Наталия Юрьевна

Введение б

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Применение низкоинтенсивных лазерных и светодиодных источников в 10 медицине

1.2 Гипотезы о механизмах биологического действия 15 низкоинтенсивного лазерного излучения

1.3 Влияние низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучения на 26 процессы в клетках и тканях

1.4 3 аживление ран и влияние лазерного и светодиодного излучения 33 на раневой процесс

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1 Материалы

2.2 Препаративные методы

2.2.1. Животные

2.2.2. Экспериментальная модель полнослойной плоскостной раны

2.2.3. Получение раневого экссудата и выделение полиморфноядерных 39 лейкоцитов раневого экссудата

2.2.4. Выделение полиморфноядерных лейкоцитов крови человека

2.2.5. Выделение клеток перитонеального экссудата крыс

2.2.6. Культивирование перитонеальных макрофагов и клеток раневого экссудата 42 для определения ионов нитрита (ТМОг")

2.2.7. Получение общей фракции фосфолипидов из желтков куриных яиц

2.2.8. Приготовление многослойных фосфолипидных липосом

2.3 Биофизические методы исследования и модельные системы 44 2.3.1. Измерение люминол-зависимой хемилюминесценции полиморфноядерных 47 лейкоцитов крови, клеток перитонеального экссудата крыс, клеток раневого экссудата крыс

2.3.2.Определение содержания ионов нитрита (N02") по методу Грисса

2.3.3. Определение активности супероксиддисмутазы в клетках перитонеального 48 экссудата

2.3.4. Определение накопления ТБК-активных продуктов в раневом экссудате 49 крыс

2.3.5. Измерение антиоксидантной активности раневого экссудата в модельной системе водно-гомогенной модельной системы на основе азосоединения АДБА в присутствии раневого экссудата

2.3.6. Измерение антиоксидантной активности раневого экссудата в модельной 50 системе окисления суспензии фосфолипидных липосом, индуцированного ионами двухвалентного железа

2.4 Изучение морфологии и скорости заживления ран 51 2.4.1 .Планиметрические исследования

2.4.2. Фотографирование ран

2.4.3. Патоморфологические исследования

2.5 Обработка клеток и экспериментальных ран лазером и светодиодом

2.5.1. Облучение суспензии клеток для определения ЛХЛ и СОД

2.5.2. Облучение перитонеальных макрофагов для определения ионов нитрита 52 (ИОг")

2.5.3. Процедура облучения ран

2.6 Статистическая обработка результатов

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ 53 3.1. Сравнительное исследование влияния красного когерентного лазерного) и некогерентного (светодиодного) излучения на свободнорадикальные механизмы активации фагоцитов

3.1.1. Исследование особенностей влияния светодиодного и лазерного излучения в красном диапазоне спектра на функциональную активность лейкоцитов периферической крови человека

3.1.2. Изучение механизмов действия ГНЛ и КСД на продукцию оксида азота 58 перитонеальными макрофагами крыс

3.1.3. Изучение механизмов действия ГНЛ и КСД на активность 60 супероксидцисмутазы перитонеальных макрофагов крыс

3.2. Сравнительное исследование влияния ГНЛ и КСД на 62 параметры заживления модельных ран у крыс

3.2.1. Определение влияния облучения ГНЛ и КСД на скорость заживления и 63 морфологию экспериментальных ран у крыс

3.2.2.Изучение действия ГНЛ и КСД на функциональную активность 68 фагоцитов в динамике заживления модельных ран у крыс

3.2.3. Исследование действия лазерного и светодиодного излучений 71 на уровень продукции оксида азота синтетическими лейкоцитами экссудата в динамике заживления ран

3.2.4 Изучение влияние лазерного и светодиодного излучений на уровень активности СОД в динамике заживления модельных ран у крыс

3.2.5.Изучение действия ГНЛ и КСД на антиоксидантную активность раневого экссудата и уровень перекисного окисления липидов в процессе заживления модельных ран у крыс

Введение Диссертация по биологии, на тему "Молекулярно-клеточные механизмы стимулирующего действия низкоинтенсивного лазерного (когерентного) и некогерентного (светодиодного) излучений на процесс заживления ран"

Актуальность исследования.

В настоящее время в клинической практике весьма успешно применяется низкоинтенсивное лазерное излучение. Наряду с эти постепенно развивается применение и некогерентных источников для лечения различных заболеваний [63].

Предполагается, что специфичностью действия лазерного излучения на биообъект в разных диапазонах спектра являются: пространственная и временная когерентность, поляризуемость и высокая степень монохроматичности. Но к настоящему времени известно, что по мере проникновения вглубь биологической ткани когерентность и поляризация лазерного излучения сохраняется только на глубине 200-500 мкм, а далее распространяется некогерентный, монохроматический свет [57]. Например, в работе Синякова B.C. показано, что при прохождении через образцы биологической ткани (кожа, кость, скелетная мышца, печень, мозг крысы) толщиной 200 мкм лазерный луч (длина волны 630 нм) не сохраняет когерентности [76]. Следовательно, можно предположить, что проникающее вглубь организма излучения от лазерного источника действует наподобие обычного некогерентного света в соответствующей спектральной области. По мнению Данилова Н.К. и Малова А.Н. [24] сложное и оптически анизотропное строение биологических объектов, имеющих жидкокристаллическую структуру и содержащих связанную воду, обуславливает широкое многообразие оптических явлений при распространении когерентного излучения в них. Общеизвестно, что биологические ткани в организме, за исключением прозрачных тканей глаза, ведет себя в пределах глубины проникновения НИЛИ как сильно рассеивающие среды. Уже на небольшой глубине в одну точку приходит большое число рассеянных волн и при суперпозиции не наблюдается привычной для интерференции когерентных волн упорядоченной картины.

Помимо всего вышеперечисленного, вопрос о роли когерентности излучения, используемого в терапевтических целях, давно беспокоит исследователей, изучающих и механизмы действия лазерного света [112, 126, 127, 136, 179, 180, 215]. Так, например, авторы работ [196, 197] полагают, что когерентность необходима для того, что бы лазерное излучение эффективно воздействовало на биологические объекты. Действительно, по данным работы Reddy G.K.; [196] обнаруженные автором отличия в эффектах красного и инфракрасного лазерного света на заживление ран зависели не только от длины волны лазера, но и от когерентности излучения. В то же время, в работе [224] было показано, что пролиферацию фибробластов можно регулировать с помощью некогерентного излучение светодиодов. К сожалению, в этой работе [224] лазерное излучение использовали только в инфракрасной области спектра и, кроме того, ограничились только гистологическим исследованием. В исследовании [231] также был показан стимулирующий эффект некогерентного света на заживление ран, однако опять же излучение было в инфракрасном диапазоне. В работе [136] было показано положительное влияние красного лазерного излучения на заживление ран, в то время как излучение диодов действия не оказывало.

Кроме того, известно, что в процессе заживления ран активное участие принимают клетки лейкоцитарного звена [230]. Однако большинство работ посвящено действию когерентного лазерного излучения на лейкоциты [117, 118, 121], в то время как эффектам некогерентного света вообще не уделено должного внимания.

В связи с изложенным выше, в настоящей работе, возникла необходимость провести сравнительное исследование действия когерентного (He-Ne лазер) и некогерентного (светодиод) излучений на лейкоциты и на процессы заживления кожных ран у крыс. И на основании полученных данных выяснить эффективность действия некогерентного излучения на эти биологические объекты.

Цель и задачи исследования.

Целью настоящей работы являлось изучение некоторых звеньев молекулярно-клеточных механизмов стимулирующего воздействия лазерного и светодиодного излучений на лейкоциты и на процессы заживления ран. Задачи исследования:

1.Исследовать особенности влияния светодиодного и лазерного излучения в красном диапазоне спектра на функциональную активность лейкоцитов периферической крови i человека, продукцию оксида азота и активность супероксиддисмутазы макрофагов in vitro.

2.Изучить особенности влияния низкоинтенсивного оптического излучения в красном диапазоне спектра на функциональную активность лейкоцитов в динамике заживления модельных ран у крыс.

3. Исследовать влияние лазерного и светодиодного излучений в красном диапазоне спектра на уровень продукции оксида азота лейкоцитами экссудата в динамике заживления ран.

4. Изучить влияние лазерного и светодиодного излучений в красном диапазоне спектра на уровень активности фермента-антиоксиданта СОД в динамике заживления модельных ран у крыс.

5. Изучить влияние лазерного и светодиодного излучений в красном диапазоне спектра на уровень свободнорадикальных параметров экссудата, таких как антиоксидантную активность и уровень перекисного окисления липидов в процессе заживления модельных ран у крыс.

6. Определить влияние облучения ГНЛ и КСД на скорость заживления и морфологию экспериментальных ран у крыс.

Научная новизна. В лабораторных условиях на лейкоцитах, перитонеальных макрофагах крыс и модельных ранах у крыс изучена роль и вклад свободнорадикальных, молекулярно-клеточных и иммунохимических механизмов на процессы заживления ран при лечении их с применением низкоинтенсивного лазерного и светодиодного излучений.

Установлено, что оптимальной стимулирующей дозой для лазерного и некогерентного излучения является 1,5 Дж/см2.

Светодиодное излучение оказывают такое же стимулирующее действие на фагоцитарную активность лейкоцитов, продукцию оксида азота, активность супероксиддисмутазы перитонеальными макрофагами крыс, на скорость заживления модельных ран у экспериментальных животных как и когерентный лазерный свет.

Практическая значимость. В результате проведённой работы было установлено, что облучение экспериментальных ран у крыс лазерным и светодиодным излучением позволяло ускорить заживление ран по сравнению с контрольной группой животных в 1,4 раза. Результаты и подобранные оптимальные дозы облучения, полученные в данном исследовании, позволят разработать схемы комплексной терапии применения светодиодной аппаратуры и традиционных методов лечения. Что в свою очередь позволит сократить сроки очищения ран от гноя и некротических масс и соответственно ускорить заживление ран у больных людей в клинике и как следствие, уменьшить время пребывания пациентов в стационаре, что имеет важное медико-социальное и экономическое значение.

Все обнаруженные эффекты светодиодного и лазерного излучений свидетельствуют о том, что такие специфические свойства когерентного лазерного излучения как когерентность, поляризуемость и высокая степень монохроматичности для формирования клеточных ответов не обязательны. Помимо этого, светодиодные медицинские приборы обладают рядом преимуществ и значительно дешевле лазерных аналогов, что может быть поводом для более широкого применения их в клинической практике.

Апробация диссертации. Материалы диссертации были представлены на заседании кафедры медицинской биофизики с курсом лабораторной диагностики 27 мая 2005 года, а также на Международной конференции «Лазерные и информационные технологии в медицине 21 века» (Санкт-Петербург 2001г.), на 3-ем съезде фотобиологов России (Воронеж 2001 г.), на конференции «Актуальные аспекты лазерной медицины» (Москва-Калуга 2002г.), на международной конференции «Системные проблемы качества, матем. моделиров,. информ., электронных и лазерных технологий» (Сочи 2001г.).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 13 печатных работ.

Структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, результатов исследования и их обсуждения, выводов и списка цитируемой литературы, включающего 239 источника, из них 147 иностранных. Работа изложена на 104 страницах печатного текста. Иллюстративный материал представлен 32 рисунком и 5-ю таблицами.

Заключение Диссертация по теме "Биофизика", Шураева, Наталия Юрьевна

ВЫВОДЫ

Сравнительное исследование действия излучения Не-Ие лазера (Я =630,8 нм) и светодиода У-322Б (Я =630 нм) на экспериментальные кожные раны у крыс показало следующее:

1. При ежедневном облучении ран в течение трех дней, начиная со второго дня после нанесения раны, как лазером, так и светодиодом наблюдается изменение образования активных форм кислорода фагоцитами раневого экссудата. Используя метод люминол-зависимой хемилюминесценции, мы обнаружили, что максимальное увеличение продукции активных форм кислорода в 2-4 раза наблюдается на четвертый день при ежедневной дозе 1,5 Дж/см как при облучении лазером, так и светодиодом. При дозе 4,4 Дж/см2 наблюдается ингибирование активности клеток в обоих случаях.

2. Использование метода Грисса для измерения образования нитрит-ионов фагоцитами раневого экссудата показало, что наибольшая концентрация нитрита наблюдается на четвертый день после нанесения раны и соответствует ежедневной дозе облучения 1,5 Дж/см2 как при облучении лазером, так и при облучении светодиодом. Дальнейшее увеличение дозы облучения до 4,4 Дж/см приводит к снижению концентрации исследуемых ионов, независимо от источника облучения.

3. Аналогичные дозовые зависимости были получены при измерении активности супероксиддимутазы раневого экссудата крыс. Оказалось, что независимо от источника излучения (лазер или светодиод) максимальное значение активности соответствует одинаковой дозе

1,5 Дж/см2) и наблюдался на 4 день после нанесения раны. Наибольшее увеличение активности супероксиддисмутазы составило 6,5 раз для лазерного и 7,3 раз для светодиодного излучений.

4. Результаты гистологического исследования ран, подверженных облучению как лазером, так и светодиодом на протяжении одиннадцати дней после нанесения раны, при ежедневной дозе 1,5 Дж/см2, обнаружили интенсификацию процессов заживления. Сравнительный гистологический анализ динамики заживления ран показал, что облучение лазером или светодиодом ускоряет переход воспалительной фазы раневого процесса в репаративную (пролиферативную) фазу, а затем в фазу рубцевания.

5. Изучение действия света лазера и светодиода на процесс перекисного окисления липидов (ТБК-активные продукты) и уровень антиоксидантов (хемилюминесцентные системы липосом или АДБА) в раневом экссудате обнаружило ингибирование процесса окисления и увеличение общего количества антиоксидантов. Действительно, измерение ТБК-активных продуктов и латентного периода хемшноминесценции, при облучении экспериментальных ран у крыс ежедневной дозой 1,5 Дж/см2 в течение четырех дней после нанесения раны, приводило к снижению количества продуктов перекисного окисления липидов и возрастанию антиокислительной активности раневого экссудата крыс как после облучения лазером, так и светодиодом. Так, в контрольной группе концентрация ТБК-активных продуктов в раневом экссудате к четвёртому дню возрастала примерно в 3 ± 0,4 раза, а после облучения лазером или светодиодом увеличение уровня продуктов окисления липидов составляло к этому времени 1,8 ± 0,4 раза (лазер) или 1,5 ± 0,3 (светодиод).

6. Полученные нами результаты влияния лазерного и светодиодного света на функции фагоцитов in vitro (индукция синтеза iNOS, СОД, выработка АФК), а также на функциональную активность фагоцитов, процессы перекисного окисления липидов и на др. в раневом экссудате у крыс позволяют предположить, что такие свойства лазерного излучения как когерентность, поляризованность и монохроматичность не играют важной роли в реализации его физиологического действия.

Работа посвящается светлой памяти профессора кафедра биофизики РГМУ д.б.н. Клебанова Геннадия

Иосифовича, благодаря пионерским работам которого сделан большой вклад в понимание молекулярно-клеточных механизмов действия низкоинтенсивного лазерного излучения (НИЛИ). Г.И. Клебановым и соавторами убедительно показано, что НИЛИ оказывает стимулирующее действие на фагоциты, приводя к коренной перестройке клеточного метаболизма. Данная работа является продолжением исследований профессора Г.И. Клебанова. благодарности

Выражаю благодарность проф. д.б.н. А.Н. Осипову, к.лин. Т.В. Чичук, акад. РАМН Ю.А. Владимировукб.н, О.Б. Любицкому, к.т.н. Голяеву Ю.Д., к.м.н, Долгиной Е. А. и другим коллегам.

антиокислительной активности экссудата, продемострированным в двух модельных системах. При этом качественно когерентное излучение лазера и некогерентное излучение светодиода приводили к одинаковым эффектам. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В данной работе и литературе обсуждалась концепция свободнорадикального механизма активации в лейкоцитах синтеза ряда белков [49]. Напомним коротко её положения. Первичной 4 стадией запуска синтеза белков в лейкоцитах является внутриклеточное образование небольшого (микромоли) количества АФК. АФК индуцируют переход транскрипционного NF-кВ - фактора в активное состояние. При этом NF-kB диффундируя из цитозоля в ядро, активирует ген, запускающий транскрипцию с образованием соответствующих т-РНК, которые затем выходят в цитоплазму и на рибосомах запускается синтез соответствующих белков, среди которых важное значение в контексте рассматриваемой проблемы имеет наработка de novo индуцибельной NO-синтазы, супероксиддимутазы, различных цитокинов. Следовательно, можно предположить, что образование некоторого количества АФК идёт за счёт инициации фотосенсибилизированных СРР с участием эндогенных ФС.

Полученные результаты in vitro свидетельствуют о том, что пролонгированная активация МФ (индукция синтеза iNOS, СОД) и кратковременный прайминг лейкоцитов (выработка АФК) периферической крови, вызванные облучением ГНЛ и красным светодиодом, определяются в значительной степени инициацией фотосенсибилизированных свободнорадикальных реакций. Причём, как было показано в данной работе, для активации которых такое специфическое свойство лазерного излучения как когерентность по-видимому не обязательно.

Также в работе были получены данные влияния облучения ран ГНЛ и КСД на изменение параметров свободнорадикального статуса экссудата ран (активность фагоцитов в экссудате, антиокислительную активность экссудата и окисляемость липидного материала экссудата), а также на активность СОД и продукцию оксида азота. Динамика этих показателей в процессе регулярного облучения ран развивается в направлении положительного развития процесса заживления ран. Об этом же свидетельствуют данные измерения планиметрии ран, фотографии резаных ран и данные гистологического исследования, подвергнутых световому воздействию. Следует ещё отметить, что оптимальная экспериментальная доза облучения, по данным полученным в настоящей работе, при которой достигается наилучший, позволяющий стимулировать заживление ран эффект это - 1,5 Дж/см2.

И, возвращаясь к концепции свободнорадикального механизма, можно заключить, что для формирования процесса фотосенсибилизированного лечения ран не требуется привлечения особых свойств лазерного излучения: когерентности, поляризуемости и монохроматичности, поскольку при облучении поверхности резаных ран у крыс светодиодным, некогерентным излучением сам процесс заживления и свободнорадикалъные и иммунохимические реакции, участвующие в заживлении активируются совершенно одинаковым образом по отношению к использованным дозам лазерного облучения.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата медицинских наук, Шураева, Наталия Юрьевна, Москва

1. Булынин ВИ, Глухов АА, and Мошуров ИП. Лечение ран, 1998.

2. Кару Т.Й., Календо Г.С., Летохов B.C., and и др. Зависемость биологического действия низкоинтенсивного света на клетки HeLa от когерентности, дозы, длины волны и режима облучения. Квантовая электроника: 1761-1767, 1982.

3. Клебанов Г.И., Полтанов Е.А., and Владимиров Ю.А. Влияние красного низкоинтенсивного лазерного излучения на активность супероксиддисмутазы макрофагов. Биофизика 48: 462-474, 2003.

4. Кузин МИ and Костюченок БМ. Раны и раневая инфекция. 591, 1990.

5. Острахович Е.А., Илич-Стоянович О., and Афанасьев И.Б. Вестн Росс Акад Мед наук 5: 23-32, 2002.

6. Утц С.Р. and Волнухин В.А. Низкоинтенсивная лазротерапия в дерматологии. 1998.

7. Чернух А. Воспаление-. 448,1979.

8. Бобров В.А., Залесский В.Н., and Заворотная P.M. Лазерная биостимуляциционная терапия в кардиологии. Кардиология 27: 121-125, 1988.

9. Борисенко Г.Г., Постнов С.С., Казаринов К.Д., Осипов А.Н., and Владимиров Ю.А. Нитрозильные комплексы цитохромов митохондриальной цепи первичные хромофоры в механизме фотоактивации дыхания. 2000.

10. Брилль А.Г., Брилль Г.Е., Киричук В.Ф., Шенкман Б., Тамарин И., Дардик Р., Варон Д., and Савион Н. Влияние излучения гелий-неонового лазера на активацию и агрегацию тромбоцитов. Бюлл эксп биол и мед 128: 48-50,1999.

11. Васильева О.В. Определение антиоксид антной активности фармакологических препаратов методом хемшюминесценции. Москва: РГМУ, 2000.

12. Васильева О.В., Любицкий О.Б., Клебанов Г.И., and Владимиров Ю.А. Действие антиоксидантов на кинетику цепного окисления липидов в липосомах. Биологические мембраны 15: 177-183, 1998.

13. Велыпер Л.З. and Стаханов М.Л. Применение светодиодной матричной терапии в лечении больных с отёком верхней конечности. Использование лазеров для диагностики и лечения заболеваний- приложение «Лазер-информ» 3: 76-79, 2001.

14. Велынер Л.З., Стаханов М.Л., Жаров В.П. МВМ, and Чочуа Г.И. Применение лазерных и светодиодных излучателей при сочетанной фототерапии больных артрозом. Лазерная медицина 3: 9-11,1999.

15. Владимиров Ю. А., Азизова О. А., Деев А. И., Козлов А. В., Осипов А. Н., and Рощупкин Д. И. Свободные радикалы в живых системах. Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР: Сер Биофизика 29: 3 210, 1991.

16. Владимиров Ю.А. Лазерная терапия: настоящее и будующее. Соровский образовательный журнал: 2-8, 1999.

17. Владимиров Ю.А. Три гипотезы о механиме действия лазерного облучения на клетки и организм человека. Эфферентная медицина: Сб статей: 51-67, 1994.

18. Владимиров Ю.А. РДЮ, Потапенко А.Я., Деев А.И. Биофизика. Москва: Медицина, 1983.

19. Волотовская A.B., Улащик B.C., and Филипович В.Н. Антиоксидантное действие и терапевтическая эффективность лазерного облучения крови у больных ишемической болезнью сердца. Вопр Курортол Физиотер Леч Физ Культ: 22-25, 2003.

20. Воробьёва Л.Н., Веселовский А.Б., and Власов Д.Т. Влияние светодиодного излучения на состояние микроциркуляции. Проблемы лазерной медицины, материалы 4 международного конгресса: 247,1997.

21. Гаврилов В.Б., Гаврилова А.П., and Мажуль Л.М. Анализ методов определения продуктов перекисного определения липидов в сыворотке крови по тесту с тиобарбитуровой кислотой. Вопр Мед Химии 33: 118-122,1987.

22. Горбатенкова ЕА, Владимиров ЮА, Парамонов HB, and Азизова OA. Красный свет гелий-неонового лазера реактивирует супероксиддисмутазу. Бюлл эксп биол и мед 107: 302-305, 1989.

23. Грубина Л. А. Методы изучения нарушения порфиринового обмена и анализ его при онкологических заболеваниях. Минск: Ин-т физики им. Б. И. Степанова АН БССР, 1991.

24. Данилов Н.К. and Малов« А.Н. О роли когерентности лазерного излучения при взаимодействии с биологическими объектами. Применение лазеров в науке и технике: материалы 5-го семинара'. 98-99, 1992.

25. Девятков Н.Д., Зубкова С.М., Лапрун И.Б., and Макеева Н.С. Успехи совр. биологии. 103: 31-43, 1987.

26. Долгина E.H. and. Рецепторная (цитокин-опосредованная и нерег{епторная (лазер-индуцированная) активация оффекторных функций фагоцитов. Москва, 2001.

27. Дремина Е.С., Шаров B.C., and Владимиров Ю.А. Использование кинетики Fe2+-индуцированной хемилюминесценции в трис-буферной суспензии липосом для исследования антиоксидантной активности плазмы крови. Биофизика 38: 1047-1051,1993.

28. Жаров В.П., Калинин К.И., Борисов А.А, Велынер Л.З., Стаханов М.Л., and и др. Фотоматричная терапия постмастэктомических осложнений. Лазерная медицина 3: 29-34,1999.

29. Жемков В.Ф., Лапотников В.А., Савинов И.П., Пастухова Н.К., and и др. Сравнительная оценка воздействия светодиодного и лазерного гелий-неонового облучения крови на клинические проявления атеросклероза. Лазерная медицина 2: 37-38,1998.

30. Жуков Б.Н., Лысов H.A., and Махова А.Н. Экспериментальное обоснование использования лазерного излучения при аутодермопластике. Лазерная медицина 7, 2003.

31. Жуманкулов М. С., Шабуневич И. В., Башладзе Л. И., and Александрова Л. А. Фотоактивация церулоплазмина как один из механизмов действия гелий-неонового лазера на кровь. Москва: Медицина, 1989.

32. Захаров С.Д., Еремеев Б.В., and Перов С.Н. Сравнение эффектов лазерного воздействия на эритроциты на длинах волн 1226, 630 нм. Краткие сообщения по физике 1: 15-16, 1989.

33. Захаров С.Д. and Иванов A.B. Светокислородный эффект в клетках и перспективы его применения в терапии опухолей. Квантовая электроника 29: 192-213, 1999.

34. Захаров С.Д. and Корочкин И.М. Свет и тени лазерной терапии. 12 (195), 2000.

35. Зубкова С.М., Лапрун И.Б., Соколова З.А., and Попов В.И. Окислительные и синтетические процессы в тканях печени и мозга при действии излучений гелий-неонового лазера. Биологнауки 4: 24-31, 1981.

36. Илларионов В.Е. and Ларюшин А.И. Оптико-электронные устройства в медицине. Казань: «Абак», 2000.

37. Илларионов В.Е. and Ларюшин А.И. Оптико-электронные устройства в медицине. 2000.

38. Кару Т. Й. Фотобиология низкоинтенсивной лазерной терапии. Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР: Сер Физ основы лазерной и пучковой технол 4: 44-84, 1989.

39. Кару Т. И., Рябых Т. П., Федосеева Г. Е., and Пучкова Н. И. Влияние излучения гелий-неонового лазера на хемилюминесценцию клеток селезенки мыши. Радиобиология 2: 230 234, 1989.

40. Кару Т.И. Клеточные механизмы низкоинтенсивной лазерной терапии. Лазерная медицина 5, 2001.

41. Кару Т.Й., Афанасьева Н.И., and Кольяков C.B. Изменение спектра полщения живых клеток после низкоинтенсивного лазерного облучения. ДоклАН 360: 267-270,1998.

42. Кару Т.Й., Летохов B.C., Лобко В.В., and Новиков В.Ф. Светолечение больных язвенной болезнью и 12-ти перстной кишки на основе стимуляции клеток низкоинтенсивным красным светом. Вопросы курортологии, физиотер и спортмед: 36-39, 1984.

43. Кару Т.Й., Пятибрат Л.В., and Есеналиев P.O. Влияние излучения He-Ne-лазера на адгезивные свойства клеточной мембраны. Бюллэкспербиол 3: 622-623, 1993.

44. Клебанов Г. И., Теселкин Ю. О., Бабенкова И. В., Модестова Т.М., Стеклова О.С., and Владимиров Ю.А. Бюлл эксп биол и мед 123: 395, 1997.

45. Клебанов Г. И., Толстых М.П., Климов Ю.А., and Раджабов A.A. Биомедицинская электроника 2: 15, 2001.

46. Клебанов Г.И. Влияние перекисного окисления липидов на структуру и функционирование мембран и липопротеидов. Диссдоктбиолнаук: 267,1991.

47. Клебанов Г.И. Молекулярно-клеточные механизмы лазеротерапии. Использование лазеров для диагностики и лечения заболеваний: 21-24, 2001.

48. Клебанов Г.И. and Владимиров Ю.А. Успехи соврем биол 119: 462-475, 1999.

49. Клебанов Г.И., Полтанов Е.А., Долгина E.H., and Никанкина JI.A. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на продукцию оксида азота и цитокинов лейкоцитами. Биол мембраны 19: 391-402, 2002.

50. Клебанов Г.И., Страшкевич И.В., Чичук Т.В., Модестова Т.М., and Владимиров Ю.А. Биол мембраны 15: 273-285,1998.

51. Клебанов Г.И., Чичук Т.В., and Владимиров Ю.А. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на пероксидацию мембранных липидов и концентрацию ионов кальция в цитозоле фагоцитов. Биологические мембраны 18: 42-50, 2001.

52. Клебанов Г.И., Чичук Т.В., Шутова Л.Н., and Владимиров Ю.А. Биол мембраны 14: 486494, 1997.

53. Клебанов Г.И., Шураева Н.Ю., Толстых М.П., Овчарова Т.В., and. Иммунохимические механизмы квантовой терапии ран. Актуальные аспекты лазерной медицины, Сборник трудов конференции: 422-423, 2002.

54. Клебанов ГИ, Крейнина MB, Чукаева ИИ, Барбараш ОЛ, Корочкин ИМ, and Владимиров ЮА. Измерение активности супероксиддисмутазы в процессе стимуляции полимофрноядерных лейкоцитов периферической крови. Бюлл Эксп Биол и Мед 109: 334 336, 1990.

55. Козель А.И. and Попов Г.К. Механизм действия лазерного облучения на тканевом и клеточном уровнях. Вестник РАМН№2, 2000.

56. Козлов В. И. and Буйлин В. А. Лазеротерапия. М: Центр "Астр": 2-75, 1993.

57. Кольцов В.А., Блюменталь Л.Я., and Просвиров Е.Ю. В сборннике "Применение лазеров в хирургии и медицине": 78, 1988.

58. Королёв Б.А., Новиков В.Ф., and Онучан П.Г. Фототерапия ГНЛ и некогерентным красным светом хирургических больных. Тезисы междконфер «Новое в лазерной медицине и хирургии» 1: 110-111, 1990.

59. Корочкин И.М., Капустина Г.М., Фандеев A.B., Романова Г.Р., Лешаков С.Ю., and Беркинбаев С.Ф. Применение излучения гелий-неонового лазера для лечения ишемической болезни сердца. Москва, 1987.

60. Кубатиев А. А. Порфирины, витамин В ¡2 и рак. Тула: Приокское кн. изд-во, 1973.

61. Кузнецова Н. П., Панков Б. С., Чубарова А. С., Кривошеев Б. A., and Капралов И. К. Порфирии. Москва: Медицина, 1981.

62. Ларюшин АИ, Никитина MB, and Хизбуллин PH. Компактные оптико-электронные устройства на основе светодиодов для локальной физиотерапии. Казань: КГЭУ, 2003.

63. Логинов A.C., Соколова Г.И., and Соколова C.B. Влияние лазеротерапии на некоторые механизмы саногннеза длтельно незаживающих ран язв желудка. Тер архив 62: 58-61, 1990.

64. Ляпис М. A. and Казиброда Л.И. Перекисное окисление липидов в тканях гнойной раны у больных сахарным диабетом. Проблемы эндокринологии 40: 17-18, 1994.

65. Москвин C.B. Низкоинтенсивная лазерная терапия-. ТОО Фирма «Техника», 2000.

66. Назаренко Г.И., Сугурова И.Ю., and Глянцев С.П. Рана, повязка, больной. М.: Медицина, 2002.

67. Петухов М.И., Козлов В.И., Норманнский В.Е., and Картусова Л.Н. О новом методе скрининга фотосенсибилизаторов для фото динамической терапии рака. Использование лазеров для диагностики и лечения заболеваний- приложение «Лазер-информ» 2, 1998.

68. Плохинский НА. Алгоритмы биометрии. 150, 1980.

69. Понаморёв Л.Е., Настенко В.П., Зинкин А.Н., and и др. Низкоинтенсивный красный свет в комплексном лечении хронического тонзиллита у детей. Тезисы междконфер «Новое в лазерной медицине и хирургии» 1: 165-166, 1990.

70. Потякина O.K., Сидорина Н.Г., and Клебанов Г.И. Способ лечения хронических отитов с использованием сверхъярких светодиодов. Book of abstrakts 1-го Российского конгресса медицинской лазерной ассоциации: 67, 2001.

71. Рагимов ИР, Хохлов АП, Мамедов ЛН, and Гаранина СС. Вопр мед химии 38: 25-26, 1992.

72. Ракчеев А.П. Основные аспекты применения лазеров в дерматологии и косметологии. Вестн дерматологии и венерологии: 10-13, 1993.

73. Росс Р. Заживление ран. М.: Мир, 1970.

74. Синяков ВС. Голографическая интерферометрия и когерентное световое излучение в физиологических исследованиях, автореферат дисс на соиск учёной степени доктора биологичнаук: 29,1988.

75. Слуцкий Л.И. Биохимия нормальной и патологически измененной соединительной ткани. Ленинград, 1969.

76. Сосунов A.A. Оксид азота как межклеточный посредник. Соросовский образовательный журнал 6: 27-34, 2000.

77. Спасов A.A., Негода В.В., and Копан К. Бюллэкспербиол 126: 45-48, 1998.

78. Спасов A.A., Негода В.В., Островский О.В., and Копан К. Лазер и здоровье Материалы 1-го международного конгресса-. 412-415, 1997.

79. Странадко Е. Ф. Труды 3-го Всероссийского симп "Фотодинамическая терапия": 3, 1999.

80. Странадко Е.Ф., Толстых П.И., Копаева В.Г., Корабоев В.Г., Рябов М.В, and и др. Современное состояние и перспективы развития фотодинамической терапии неопухолевых заболеваний. Использование лазеров для диагностики и лечения заболеваний 3: 42, 2001.

81. Стручков В.И., Григорян A.B., and Гостищев К.К. «Гнойная рана». 311, 1975.

82. Сюч Н.И. and ИлларионовВ.Е. Влияние различных видов лазеротерапии на реактивность нейтрофилов периферической крови у больных ишемической болезнью сердца. Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физкультуры: 5-7, 1995.

83. Тогайбаев A.A. and Т.С. А. Внутривенное лазерное облучения крови в комплексной терапии пациентов с инфарктом миокарда. Анестезиол и Реаниматол: 45-47, 1993.

84. Толстых ПИ, Клебанов ГИ, and Шехтер АБ. Антиоксиданты и лазерное излучение в терапии ран и трофических язв: «Эко», 2002.

85. Утц И.А., Лагутина Л.Е., Кротков В.Л., Вдовухина И.В., and Абаева Т.П. Педиатрия 2: 52-56, 1994.

86. Фримель Г. Иммунологические методы: Пер. с нем.: 427, 1987.

87. Фут X. Фотосенсибилизированное окисление и синглетный кислород. Биологические следствия. Москва: Мир, 1979.

88. Храпова Н.В., Маленкова И.В., and Ванин А.Ф. Биофизика 40: 117-121, 1995.

89. Чичук Т.В. Свободнорадикальный механизм дейтвия низкоинтенсивного лазерного излучения на лейкоциты, дисс на соиск учёной степени кмн, 1997.

90. Чудновский В.М., Леонова Г.М., Скопинов С.A., and и др. Биологические модели и физические механизмы лазерной терапии. Владивосток Дальнаука: Дальнаука, 2002.

91. AnifraCarr and and Balz Frei. The role of natural antioxidants in preserving the biological activity of endothelium derived nitric oxide. Free Rad Biol Med 28: 1806-1814, 2000.

92. Arvanitaki A. and Chalazonitis N. Reactiones bioelectriques a la photoactivation des cytocromes. Arch SciPhisiol 1: 385-405,1947.

93. Babenko E.V., Eremeev B .V., Kapustina G.M., and Korochkin I.M. Application of coopper laser for identification of a primary photoacceptor in treatment by low-intensity laser radiation. TRuss Laser Research 16: 181-185, 1995.

94. Bachowski B.J., Moreharse K.M., and Girotti A.W. Photochem And Photobiol 47: 635-645, 1988.

95. Baldvin A. The Nf-kB and IkB proteins: New discoveris and insights. AnnuRev Immunol 14: 649-681, 1996.

96. Baluerle PA and. The inducible transcription activator Nf-kB: regulation by distinct protein subunits. BiochimBiophys Acta 10: 63-80, 1991.

97. Bangham A.D., Standish M.M., and Watkins J.C. Diffusion of univalent ions across the lamallae of swollen phospholipids. JMol Biol 13: 238-252, 1965.

98. Belkin M and Schwartz M. New biological phenomena associated with laser radiation. Health Phys 56: 687-690,1989.

99. Ben Hur E., Dubbelman T. M., and Van Steveninck J. Phthalocyanine-induced photodynamic changes of cytoplasmic free calcium in Chinese hamster cells. Photochem Photobiol 54: 163-166, 1991.

100. Berki T. and et. al. Biological effect of low-power helium-neon laser irradiation. Laser in medicin science 3: 35, 1988.

101. Borisenko G. G., Osipov A. N., Kazarinov K. D., and Vladimirov Yu. A. Photochemical Reactions of Nitrosyl Hemoglobin during Exposure to Low-Power Laser Irradiation. Biochemistry 62: 661-666, 1997.

102. Bouchera J. L., Moalia C., and Tenub J. P. Nitric oxide biosynthesis, nitric oxide synthase inhibitors and arginase competition for L-arginine utilization. Cell Mol Life Sci 55: 1015-1028, 1999.

103. Boulton M. and Marchall J. Lasers Life Sci 1: 125-134, 1986.

104. Boyum A. Isolation of mononuclear cells and granulocytes from human blood. Scand J Clin Invest 21: 77-89, 1968.

105. Brookes P.S., Bolanos J.P., and Heales S.J. FEBSLett 446: 261-263, 1999.

106. Brown G.C. Nitric oxide and mitochondrial respiration. Biochem Biophys Acta 1411: 351-369, 1999.

107. Buettner G. R., KelleyE. E., and Burns C. P. Membrane lipid free radicals produced from L1210 murine leukemia cells by photofrin photosensitization: an electron paramagnetic resonance spin trapping study, 1993.

108. Byrnes KR, Barna L, Chenault VM, Waynant RW, Ilev IK, Longo L, Miracco C, Johnson B, and Anders JJ. Photobiomodulation improves cutaneous wound healing in an animal model of type II diabetes. PhotomedLaser Surg 22: 281-290, 2004.

109. Casas A, Fukuda H, Riley P, and del CBAM. Enhancement of aminolevulinic acid based photodynamic therapy by adriamycin. Cancer Lett 121: 105-113, 1997.

110. Cho H. J., Lim S. C., Kim S. G., Kim Y. S., Kang S. S., Choi S. H., Cho Y. S., and Bae C. S. Effect of low-level laser therapy on osteoarthropathy in rabbit. In Vivo 18: 585-591, 2004.

111. Coombe AR, Ho CT, Darendeliler MA, Hunter N, Philips JR, Chappie CC, and Yum LW. The effects of low level laser irradiation on osteoblastic cells. Clin Orthod Res 4: 3-14, 2001.

112. Davidson JD and Mustoe TA. Oxygen in wound healing: more than a nutrient. Wound Repair Regen 9: 175-177, 2001.

113. Dube A., Bansal H., and Gupta P. K. Modulation of macrophage structure and function by low level He-Ne laser irradiation. Photochem Photobiol Sci 2: 851-855, 2003.

114. Ducrocq C., Blanchard B., Pignatelli B., and Ohshima H. Peroxynitrite: an endogenous oxidizing and nitrating agent. Cell Mol Life Sci 55: 1068 1077, 1999.

115. Eisen D and Alster TS. Use of a 585 nm pulsed dye laser for the treatment of morphea. Dermatol Surg 28: 615-616,2002.

116. El Batanouny M., Korraa S., and FekryO. Mitogenic potential inducible by He:Ne laser in human lymphocytes in vitro. J Photochem Photobiol B 68: 1-7, 2002.

117. Foccetti F., Vermi W., Fiorentini S., Chilosi M., Careso A., Duse M., Noterenselo L.D., and and Badolato R. Amer JPathol, 54: 145, 1999.

118. Folch J., Lees M., and Stanley G.H.S. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. JBiol Chem 226: 497-509, 1957.

119. Foley P.A. Recent advances: Dermatology. Biomedical journal 320: 850-853, 2000.

120. Freas W., Hart J. L., Golightly D., McClure H., Rodgers D. R., and Muldoon S. M. Vascular interactions of calcium and reactive oxygen intermediates produced following photoradiation. J Cardiovasc Pharmacol 17: 27-35, 1991.

121. Fung D. T., Ng G. Y., Leung M. C., and Tay D. K. Effects of a therapeutic laser on the ultrastructural morphology of repairing medial collateral ligament in a rat model. Lasers Surg Med 32: 286-293, 2003.

122. Gaida K., Koller R., Isler C., Aytekin O., Al-Awami M., Meissl G., and Frey M. Low Level Laser Therapy—a conservative approach to the burn scar? Burns 30: 362-367, 2004.

123. Gamaley I.A. and Klyubin I.V. IntRev Cytology 188: 203-255,1999.

124. Graudenz K., Greve B., and and Raulin C. Diffused traumatic dirt and decorative tattooing. Removal by Q-switched lasers. Hautarzt 54: 756-759, 2003.

125. Grema H and C. Raulin. The excimer laser in dermatology and esthetic medicine. Hautarzt 55: 48-57,2004.

126. Haas A.F., Wong J.W. t>, Iwahashi C.K., Halliwell B., Cross C.E., and Davis P.A. Free Rad Biol Med 25: 998-1005, 1998.

127. Haina D. and et.al. Animal Experiments on Light-Induced Woundhealing. Biophysica35: 227230, 1973.

128. Hamajima S, Hiratsuka K, Kiyama-Kishikawa M, Tagawa T, Kawahara M, Ohta M, Sasahara H, and Abiko Y. Effect of low-level laser irradiation on osteoglycin gene expression in osteoblasts. Lasers Med Sci 18: 78-82,2003.

129. Hart J. J Wound Care 11: 205-209, 2002.

130. Hartmann K.M. Action spectroscopy. The Biophysics ch.3.2.7: 115-144, 1983.

131. Hopkins J. T., McLoda T. A., Seegmiller J. G., and David Baxter G. Low-Level Laser Therapy Facilitates Superficial Wound Healing in Humans: A Triple-Blind, Sham-Controlled Study. J Athl Train 39: 223-229, 2004.

132. Ignarro L., Lippton H., Edwards G.C., Baricos W.H., and Hyman A.L. JPharmacolExp Ther 218: 739-749, 1981.

133. Irene A.M. Vind, John C. Foreman, and and Bengamin M.Chain. EurJImmunul 24: 19611965, 1994.

134. Joshi P. G., Joshi K., Mishra S., and Joshi N. B. Ca2+ influx induced by photodynamic action in human cerebral glioma (U-87 MG) cells: possible involvement of a calcium channel. Photochem Photobiol 60: 244-248, 1994.

135. Jung J, Cho SB, and Chung KY. Recalcitrant adverse reaction to vitamin K: response to pulsed dye laser. Dermatol Surg 30: 931-933, 2004.

136. Kanagalingam J, Hurley R, Grant HR, and et al. A new technique for the management of inaccessible anteriorglottic lesions. Journal of Laryngology & Otology 117: 302-306, 2003.

137. Karu T. Laser Therapy 4: 5-24, 1988.

138. Karu T. and 704. -. Photobiology of low-power laser effects. 56: 691-704, 1989.

139. Karu T., Pyatibrat L., and Kalendo J. Irradiation with He-Ne-leser increases ATP level incell cultivated in vitro. JPhotochemPhotobiol 27: 219-223,1995.

140. Karu T., Ryabykh T. P., Fedoseyeva G. E., and Puchkova N. I. Helium-neon laser-induced respiratory burst of phagocytic cells. Lasers Surg Med 9: 585 588, 1989.

141. Karu T. I. Photobiology of low-power laser effects. Health Phys 56: 691-704, 1989.

142. Karu T. I., Pyatibrat L., and Kalendo G. -. Irradiation with He-Ne laser increases ATP level in cells cultivated in vitro. JPhotochem Photobiol B: Biol 27: 219-223, 1995.

143. Karu T. J. Photochem and Photobiol B 49: 1-17, 1999.

144. Karu T.I. Stimulation of metabolic process by low-intensity visible light. Laser Application in biology and Medicine 5: 1-47, 1991.

145. Karu T.I., Andreichuk T., and Ryabyrh T. Changes in oxidative metabolism of murine spleen following diode laser (660-950 nm) irradiation: effect of cellular compoaition and radiation parameters. Lasers Surd Med 13: 453-462, 1993.

146. Karu TJ. in Low-Power Laser Therapy: 4825-4841, 2003.

147. Karu TI. Photobiology of Low-Power Laser Therapy. Harwood Academic Press, 1989.

148. Karu TI, Pyatibrat Ludmila V., and Kalendo Galina S. Photobiological modulation of cell attachment via cytochrome c oxidase. Photochem,PhotobiolSci 3:211-216, 2004.

149. Kim Y. G., Pak S. C., and Lee S. R. Hairless mouse epidermal antioxidants and lipid peroxidation assessed by He-Ne laser. Lasers Surg Med 27: 420-426, 2000.

150. Kipshidze N, Nikolaychik V, Michael KH, Shankar LR, Khann A, Kamowski. R., and. Lasers in Surgery and Medicine 28: 355-364, 2001.

151. Klaus S chulze-Osthoff, Marek Los, and P atrick B aeuerle. Biochem Pharmacol 5 0:7 35-741, 1995.

152. Klebanov G.I., Poltanov E.A., and. Primary free radical and secondary cell molecular mechanisms of laser therapy. Laser Physics 13: 1-14, 2003.

153. Klebanov G.I., Teselkin Yu.O., Babenkova I.V., Bashkueva T.Yu., Chichuk T.V., and and Vladimirov Yu.A. Gen Physiol Biophys 17: 365-376, 1998.

154. Korbelik M. Photosensitizers in PDT. Period biol 93: 563 574, 1991.

155. KovalchukL.V., Klebanov G.I., Ribarov S.R., Kreinina M.V., Aptsiauri N.E., Gankovskaya L.V., Karaseva M.V., Shuikina E.E., and Vladimirov Yu.A. Biomed Sci 2: 221-231, 1991.

156. Kubota J. and OhshiroT. The effects of diode laser low reactive-level lasertherapy on flap survival in a rat model. Laser Therapy 1: 127, 1989.

157. Kujawa J, Zavodnik L, Zavodnik I, Buko V, Lapshyna A, and Bryszewska M. Effect of low-intensity (3.75-25 J/cm2) near-infrared (810 nm) laser radiation on red blood cell ATPase activities and membrane structure. J Clin Laser Med Surg 22: 111-117, 2004.

158. Laakso E.L. and et al. Plasma ASTH and p-endorphin levels in response to low level lasertherapy for myofascial trigger points. Laser in Surgery and Medicine 5: 31-39, 1985.

159. Legraund-Poels Sylvie, Schoonbroodt Sonia, Matroule Jean-Yves, and Jacques P. J Photochem Photobiol 45: 1-8, 1998.

160. Lissi E., Salim-Hanna M., Pascual C., and Del Castielo M.D. Evaluation of total antioxidant potential (TRAP) and total antioxidant reactivity from luminol-enhanced chemiluminescence measurements. Free Rad Biol and Med 18: 153-158,1995.

161. Los M., Droge W., and Stucker K. Hydrogene peroxide as a potent activator of T-lymphocytes function. Immunol 25: 159-165, 1995.

162. Lubart R., Friedmann H., Levinshal T., Lavie R., and Breitbart H. Effect of light on calcium transport in bull sperm cells. J Photochem Photobiol 15: 337-341, 1992.

163. Lucas C., Stanborough R.W., Freeman C.L., and De Haan R.J. REVffiW-Efficacy of Low-Level Laser Therapy on Wound Healing in Human Subjects: A Systematic Review. Lasers Med Sci 2000,15:84-93. Lasers Med Sci 15: 84-93,2000.

164. MacMicking J., Qiao-Wei Xie, and Nathan C.F. Ann Rev Immunol 15: 323-350, 1997.

165. Marek Los, Wulf Droge, Kirstin Strucker, Patrick H. Baeuerle, and and Klaus Schulze-Osthoff. Eur J. Immunol. 25: 159-165, 1995.

166. Martin A. The use of antioxidants in healing. Dermatol Surg 22: 156-160,1996.

167. Matic M, Lazetic B, Poljacki M, Duran V, and Ivkov-Simic M. Low level laser irradiation and its effect on repair processes in the skin. MedPregl 56: 137-141, 2003.

168. Matroule J.Y., Bonzini G., Morliere P., Paillous N. SRJ, and. BiolChem 274: 2988-3000, 1999.

169. Matsuo H., Morimoto Y., Arai T., Wada M., Higo R., Tabata S., Nakai K., and Kikuchi M., and Sci LM. Heat and Photolytic Nitric Oxide are Essential Factors for Light-induced Vascular Tension Changes. 15: 181-187, 2000.

170. Mcdaniel DH, Ash K, Lord J, Newman J, and Zukowski M. Dermatol Surg 24: 661-664, 1998.

171. Medrado A. R., P ugliese L. S., R eis S . R., a nd A ndrade Z. A. Influence o f 1 ow 1 evel 1 aser therapy on wound healing and its biological action upon myofibroblasts. Lasers Surg Med 32: 239244, 2003.

172. Mendez T. M., Pinheiro A. L., Pacheco M. T., Nascimento P. M., and Ramalho L. M. Dose and wavelength of laser light have influence on the repair of cutaneous wounds. J Clin Laser Med Surg 22: 19-25, 2004.

173. Michael R. Schaffer, Udaya Tantry, Francic J. Thornton, and and Adrian Barbul. Inhibition of nitric Oxide Synthesis in Wounds. Pharmacology and Effect on Accumulation of Collagen in Wounds in Mice. Eur J Surg 165: 262-267, 1999.

174. Mileva M., Zlateva G., Karabasheva S., Hadjimitova V., and Antonov I. Effect of He-Ne laser treatment on the level of lipid peroxidation products in experimental cataract of rabbit eyes. Methods Find Exp Clin Pharmacol 22: 679-681, 2000.

175. Miller KL and Dvoretskii DP. Effect of infrared low power laser irradiation on blood acid-base balance and respiratory gases tension. Ross Fiziol Zh Im IMSechenova 89: 1503-1506, 2003.

176. Milojevic M and Kuruc V. Low power laser biostimulation in the treatment of bronchial asthma. MedPregl 56: 413-418, 2003.

177. Mirphy J.G., Smith T.W., and Marsh J.D. Mechanisms of reoxyxygenation-induced calcium overlaoad in cultured chick embryo heart cells. AmJPhysiol 254: 1133-1141, 1988.

178. Morel F., Doussierre J., and Vignais P.V. EurJBiochem 201: 523-546, 1991.

179. Musalmah M, Fairuz AH, Gapor MT, and Ngah WZ. Effect of vitamin E on plasma malondialdehyde, antioxidant enzyme levels and the rates of wound closures during wound healing in normal and diabetic rats. Asia PacJClin Nutr 11 Suppl 7: S448-451, 2002.

180. NanxinL.I. andMichael Karin. TheFASEBJ 13: 1137-1143.1193, 1999.

181. Nomura K., Yamaguchi M., and Abiko Y. Inhibition of Interleukin-1 Production and Gene Expression in Human Gingival Fibroblasts by Low-energy Laser Irradiation. Lasers Med Sci 16: 218223,2001.

182. Ohshiro T. and Calderhead R.G. Low-Level Laser Therapy: A Practical Introduction, 1988.

183. Parlato G., Cimmino G., De Vendittis E., Monfrecola G., and Bocchini V. Superoxide dismutase activity in the skin of rats irradiated by He-Ne laser. Experientia 39: 750-751,1983.

184. Passarella S., Roncall L., Cicero R., and and Quagliariello E. Laser Life Sci 2: 161-165, 1988.

185. Pontinen P. The effect of hair laser on skin blood flow. Laser in Surgery and Medicine 5: 9, 1995.

186. Rasik A. M. and Shukla A. Antioxidant status in delayed healing type of wounds. Int J Exp Pathol 81: 257-263, 2000.

187. Reddy G. K. Comparison of the photostimulatory effects of visible He-Ne and infrared Ga-As lasers on healing impaired diabetic rat wounds. Lasers Surg Med 33: 344-351, 2003.

188. Ricevuti G., Mazzone A., Monaia C., Fratino P., Degiulio R., Dell Acqua R., Leonardi G., Jucci A., and and Sacchi S. Inflammation 13: 507-527, 1989.

189. Robson MC. Cytokine manipulation of the wound. Clin Plast Surg 30: 57-65, 2003.

190. Saitoh D, Okada Y, Ookawara T, Yamashita H, Takahara T, Ishihara S, Ohno H, and Mimura K. Prevention of ongoing lipid peroxidation by wound excision and superoxide dismutase treatment in the burned rat. Am JEmerg Med 12: 142-146, 1994.

191. Sakurai Y, Yamaguchi M, and Abiko Y. Inhibitory effect of low-level laser irradiation on LPS-stimulated p rostaglandin E 2 p roduction and c yclooxygenase-2 i n h uman g ingival fibroblasts. Eur J Oral Sci 108: 29-34, 2000.

192. Santos A.E., Laranjinchna J.A.M., and Almeida L.M. Photochem and Photobiol 67: 378-385, 1998.

193. Sarti P., Giuffre A., Forte E., Mastronicola D., and Baron M.C. Biochem Biophys ResCommun 274,2000.

194. Sazonov A. M., Romanov G. A., Portnoi L. M., Odinokova V. A., Karu T. I., Lobko V. V., and and Letokhov V. S. Sovetskaya Meditsina 12,1989.

195. Schaffer M. R., Tantry U., Thornton F. J., and Barbul A. Inhibition of nitric oxide synthesis in wounds: pharmacology and effect on accumulation of collagen in wounds in mice. Eur J Surg 165: 262-267, 1999.

196. Schuhfiied O., Korpan M., and Fialka-Moser V. Helium-Neon Laser Irradiation: Effect on the Experimental Pain Threshold. Lasers Med Sci 15: 169-173,2000.

197. Schwartz F, Brodie C, Appel E, Kazimirsky G, and Shainberg A. Effect of helium/neon laser irradiation on nerve growth factor synthesis and secretion in skeletal muscle cultures. J Photochem Photobiol B 66: 195-200, 2002.

198. Sen CK, Khanna S, Babior BM, Hunt TK, Ellison EC, and Roy S. Oxidant-induced vascular endothelial growth factor expression in human keratinocytes and cutaneous wound healing. J Biol Chem 277: 33284-33290, 2002.

199. Senel O, Cetinkale O, Ozbay G, Ahcioglu F, and Bulan R. Oxygen free radicals impair wound healing in ischemic rat skin. Ann Plast Surg 39: 516-523, 1997.

200. Shi H. P., Most D., Efron D. T., Tantry U., Fischel M. H., and Barbul A. The role of iNOS in wound healing. Surgery 130: 225-229, 2001.

201. Shi X., Dong Z., Huang. C., Ma W., Liu K., Ye J., Chen F., Leonard S.S., Ding M., Castranova V., and And Vallyathan V. Mol And Cellular Biochem 195: 63-70, 1999.

202. Shukla A, Rasik AM, and Patnaik GK. Free Radic Res 26: 93-101, 1987.

203. Shukla A, Rasik AM, and Patnaik GK. Depletion of reduced glutathione, ascorbic acid, vitamin E and antioxidant defence enzymes in a healing cutaneous wound. Free Radic Res 26: 93-101,1997.

204. Simon GA, P. Schmid, W.G. Reifenrath, T. van Ravenswaay, and B.E. Stuck. Wound healing after laser injury to skin--the effect of occlusion and vitamin E. JPharm Sci 83: 1101-1106, 1994.

205. Smol'yaninova NK, Karu TI, Fedoseeva GE, and Zelenin AV. Effects of He-Ne laser irradiation on chromatin properties and synthesis of nucleic acids in human peripheral blood lymphocytes. Biomed Sci 2: 121-126, 1991.

206. Sohn S, S. Kim, and and W.H. Kang. Recurrent pigmented macules after q-switched alexandrite laser treatment of congenital melanocytic nevus. Dermatol Surg, 30: 898-907, 2004.

207. Stadler I, Evans R,KolbB, Nairn JO, Narayan V,BuehnerN, and LanzafameRJ. Invitro effects of low-level laser irradiation at 660 nm on peripheral blood lymphocytes. Lasers Surg Med 27: 255-261, 2000.

208. Tadakuma T. P ossible application of the 1 aser in immunobiology. Keio J Med42: 1 80-182, 1993.

209. Tiphlova O. and Karu T. Crit Rev Biomed Eng 18: 387-412, 1991.

210. Tsunawaki S, Sporn M, Ding A, and Nathan C. Deactivation of macrophages by transforming growth factor-beta. Nature 334: 260-262,1988.

211. Turner J. and Hode L. L aser therapy in dentistry and medicine. Stockholm, Sweden: Prima Books, 1996.

212. Vinck E. M., Cagnie B. J., Cornelissen M. J., Declercq H. A., and Cambier D. C. Increased fibroblast proliferation induced by light emitting diode and low power laser irradiation. Lasers Med Sei 18:95-99, 2003.

213. Vladimirov YA, Osipov AN, and and Klebanov GI. Photobiological Principles Therapeutic Application of Laser Radiation. Biochemistry 69: 81-90, 2004.

214. Vladimirov Yu.A., Borsenko G.G., Kazarinov K.D., and Osipov A.N. JPhotochem and Photobiol59: 155-122, 2000.

215. Vladimirov Yu.A., Gorbatenkova E.A., Paramonov N.V., and Azizova O.A. Free Rad Biol Med\ 281-286, 1988.

216. Weinstein GS, Maves MD, and McCormack ML. Deferoxamine decreases necrosis in dorsally based pig skin flaps. Otolaryngol Head Neck Surg 101: 559-561, 1989.

217. Weiss JL. Acta Physiol Scand Suppl 548: 9-57, 1984.

218. Werner S. and Grose R. Regulation of Wound Healing by Growth Factors and Cytokines. Physiol Rev 83: 835-870, 2003.'

219. Woodruff LD, Bounkeo JM, Brannon WM, Dawes KS, Barham CD, Waddell DL, and Enwemeka CS. The efficacy of laser therapy in wound repair: a meta-analysis of the literature. PhotomedLaser Surg 22: 241-247, 2004.

220. Yaakobi Tali, Shoshany Yariv, Levkovitz Sara, Ofer Rubin, and and all. Long-term effect of low energy laser irradiation on infarction and reperfusion injury in the rat heart. JAppl Physiol 9 0: 2411-2419, 2000.

221. Yaakobi Tali, Shoshany Yariv x., Levkovitz Sara, Rubin Ofer, and and all. Long-term effect of low energy laser irradiation on infarction and reperfusion injury in the rat heart. JAppl Physiol 90.2001:2411-2419, 2001.

222. Yamamoto M., Tamura K., Hiratsuka K., and Abiko Y. Stimulation of MCM3 Gene Expression in Osteoblast by Low Level Laser Irradiation. Lasers Med Sei 16: 213-217, 2001.

223. Yonekura A., Kawakatsu K., Suzuki K., and et al. Laser midline glossectomy and lingual tonsillectomy as treat-ments for sleep apnea syndrome. Acta Oto-Laryngologica-Supplement 550: 5658,2003.

224. Yu W, Nairn JO, and Lanzafame RJ. The effect of laser irradiation on the release of bFGF from 3T3 fibroblasts. Photochem Photobiol 59: 167-170,1994.

225. Zinman LH, Ngo M, Ng ET, Nwe KT, Gogov S, and Bril V. Low-intensity laser therapy for painful symptoms of diabetic sensorimotor polyneuropathy: a controlled trial. Diabetes Care 27: 921924, 2004.