Культивирование Digitalis purpurea L. в условиях in vitro и получение сердечных гликозидов на её основе

Смольникова, Яна Викторовна

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Культивирование Digitalis purpurea L. в условиях in vitro и получение сердечных гликозидов на её основе
ВАК РФ 03.01.06, Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)

Автореферат диссертации по теме "Культивирование Digitalis purpurea L. в условиях in vitro и получение сердечных гликозидов на её основе"

На правах рукописи

Смольникова Яна Викторовна

КУЛЬТИВИРОВАНИЕ DIGITALIS PURPUREA L. В УСЛОВИЯХ IN VITRO И ПОЛУЧЕНИЕ СЕРДЕЧНЫХ ГЛИКОЗИДОВ НА ЕЁ ОСНОВЕ

03.01.06 - биотехнология (в том числе бионанотехнологии)

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата технических наук

5 л p. р ¿ріу

Красноярск - 2012

005020124

Работа выполнена в ФГБОУ ВПО «Сибирский государственный технологический университет» на кафедре «Химическая технология древесины и биотехнология», г. Красноярск.

Научный руководитель: доктор технических наук, профессор Величко Надежда Александровна

Официальные оппоненты:

Войнов Николай Александрович, доктор технических наук, профессор, Сибирский государственный технологический университет, кафедра «Машины и аппараты промышленных технологий», профессор.

Балдаев Николай Сергеевич, кандидат технических наук, доцент, ФГБОУ ВПО «Восточно-Сибирский государственный университет технологий и управления», Институт пищевой инженерии и биотехнологии, кафедра «Биотехнология», доцент.

Ведущая организация - Институт леса им. В. Н. Сукачева СО РАН

Защита диссертации состоится 19 апреля 2012 г. в 10:00 часов на заседании диссертационного совета Д 212.253.01 Сибирского государственного технологического университета по адресу: 660049, г. Красноярск, проспект Мира, 82. E-mail: dissovetsibgtu01@mail.ru

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Сибирского государственного технологического университета.

Отзывы (в двух экземплярах) с заверенными подписями просим направлять ученому секретарю диссертационного совета по адресу: 660049, г. Красноярск, проспект Мира, 82.

Автореферат разослан 16 марта 2012 г.

Ученый секретарь диссертационного совета

Исаева Елена Владимировна

Общая характеристика работы

Актуальность работы. Среди лекарственных средств, применяемых в современной фармакотерапии сердечно-сосудистых заболеваний, препараты наперстянки занимают особое место. Хотя они насчитывают несколько веков истории, их мощное кардиотоническое действие пока ничем не удалось заменить, и все лекарства этой группы вырабатываются только из растений.

В то же время выход сердечных гликозидов из растения является непостоянной величиной и зависит от климатических условий, срока вегетации растения, от времени суток, в которое производится сбор. Календарные сроки уборки ограничены.

Одним из решений данной проблемы является использование в качестве сырья культуры ткани. Культивируемые клетки высших растений способны синтезировать традиционно используемые продукты растительного происхождения, создавать принципиально новые вещества, трансформировать дешевые предшественники в ценный продукт.

Известны работы, описывающие производство сердечных гликозидов в культуре ткани наперстянки пурпурной {Digitalis purpurea L.), однако выход продукта остается довольно низкий. Ряд проведенных исследований показывает, что при правильном подборе условий культивирования, использовании различных гормональных сред, изменении светового режима, воздействии эли-ситоров или других стрессогенных факторов (ультрафиолетового излучения) можно существенно повлиять на синтез вторичных метаболитов.

Цель работы - разработать условия культивирования in vitro и установить их влияние на повышение продуктивности клеточной культуры Digitalis purpurea L.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить ряд задач:

- изучить особенности введения в культуру Digitalis purpurea L., установить закономерности влияния способов культивирования на продуктивность клеточных тканей;

- исследовать влияние эпигенетических, стрессогенных факторов на рост, развитие и накопление сердечных гликозидов в каллусной ткани Digitalis puprurea L.;

- установить закономерности влияния физико-химических факторов на прирост биомассы и накопление гликозидов и провести оптимизацию процесса культивирования каллусной ткани Digitalis puprurea L.;

- определить химический состав полученной каллусной ткани Digitalis puprurea L.;

- разработать математическую модель и подобрать условия выделения гликозидов из каллусной ткани Digitalis puprurea L.;

- разработать принципиальную технологическую схему получения сердечных гликозидов в культуре ткани Digitalis puprurea L.

Положения, выносимые на защиту:

В рамках специальности 03.01.06 Биотехнология (в том числе бионано-технологии), пункт 3, решена задача, состоящая в изучении и разработке технологических режимов выращивания культуры клеток Digitalis puprurea L. для получения биомассы и производства сердечных гликозидов на ее основе. В частности:

- оптимальные технологические режимы культивирования каллусной ткани Digitalis purpurea L., обеспечивающие высокую скорость роста культуры и накопление гликозидов в каллусной ткани. Использование пенополиуретано-вых пластин в качестве инертного носителя для иммобилизации и облучение каллусной ткани Digitalis purpurea L. УФ-излучением позволяет повысить содержание сердечных гликозидов в культуре и выход дигитоксина;

- математическая модель и принципиальная технологическая схема выделения гликозидов из каллусной ткани Digitalis puprurea L., позволяющие использовать культуру клеток Digitalis puprurea L. в качестве альтернативного сырья для производства фармацевтических препаратов сердечных гликозидов.

Научная новизна. Определены условия введения в культуру in vitro Digitalis puprurea L., установлены зависимости влияния фитогормонов, условий и способов культивирования на цитофизиологические и биохимические характеристики каллусной ткани.

Установлены закономерности влияния условий культивирования на выход биомассы и накопление гликозидов в каллусной ткани; разработана математическая модель их выделения.

Практическая значимость работы. В результате проведенных исследований получена высокопродуктивная клеточная культура Digitalis puprurea L. с содержанием дигитоксина в 3,5 раза выше, чем в растении, что дает возможность использовать полученную каллусную ткань в качестве альтернативного источника сырья для производства сердечных гликозидов.

Разработаны оптимальные условия культивирования и извлечения гликозидов из каллусной ткани Digitalis puprurea L.

Апробация работы. Материалы диссертационной работы докладывались и обсуждались на международной конференции «Проблемы современной аграрной науки» (Красноярск, 2009, 2010); всероссийских научно-практических конференциях «Инновации в науке и образовании: опыт, проблемы, перспективы развития» (Красноярск, 2009, 2010); «Лесной и химический комплексы -проблемы и решения» (Красноярск, 2009, 2010); «Молодые ученые в решении актуальных проблем науки» (Красноярск, 2010, 2011); региональной научно-практической конференции «Химия и жизнь» (Новосибирск, 2010).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 11 (из них автора 1,49 п. л.) печатных работ, в том числе 2 статьи в журналах, рекомендованных ВАК.

Структура и объем работы. Диссертационная работа состоит из введения, 4 глав, выводов, библиографического списка и приложений. Работа изложена на 120 страницах. Диссертация содержит 32 рисунка и 16 таблиц. Библиографический список включает в себя 145 источников, из них 52 на иностранных языках.

Список принятых сокращений:

2,4-Д-2,4-дихлорфеноксиуксусная кислота, 6-БАП - 6-бензиламинопурин, а-НУК - а-нафтилуксусная кислота, ИУК - индолилуксусная кислота, УФ-излучение - ультрафиолетовое излучение.

Содержание работы

Во введении обоснована актуальность проблемы, сформулированы цели и задачи исследований, показаны научная новизна и практическая ценность результатов работы.

Глава 1. Аналитический обзор содержит анализ и обобщение литературы по использованию метода культуры растительных клеток как альтернативного способа производства промышленно значимых метаболитов. Проанализированы данные о способах регуляции вторичного метаболизма в культуре in vitro, показана возможность использования биомассы, полученной в результате выращивания клеток и тканей in vitro, с целью получения экономически значимых целевых продуктов. Рассмотрены примеры технологий получения лекар-стенных препаратов, биологически активных добавок и лечебно-профилактических косметических средств, основанных на использовании культуры тканей. Приведены данные по фармацевтической значимости и использованию представителей рода Digitalis. Особое внимание уделено поиску информации о культивировании in vitro представителей рода Digitalis, показана целесообразность использования биомассы клеток Digitalis puprurea L. как альтернативного источника сырья для получения сердечных гликозидов.

Глава 2. Объекты и методы исследования

Объект исследований: исходные, интактные растения и каллусная ткань Digitalis puprurea L. Материалом для введения в культуру являлись семена D. purpurea L., предоставленные Ивановской государственной сельскохозяйственной академией имени академика Д. К. Беляева.

Методы исследования. Для получения стерильных интактных растений семена наперстянки пурпурной стерилизовали при различных условиях и высаживали на агаризованную питательную среду с различным минеральным составом. Побеги культивировали на свету (3500 люкс) с фотопериодом 16 ч день, 8 ч ночь по методике Р. Г. Бутенко.

Для получения каллусных тканей Digitalis purpurea L. каллусообразова-ние стимулировалось искусственными регуляторами роста гормональной природы (2,4-Д, 6-БАП, а-НУК, ИУК, кинетин).

Иммобилизацию каллусных тканей Digitalis purpurea L. проводили в ла-минар-боксе на пенополиуретановые пластины толщиной слоя 20 мм и диаметром около 50 мм и силикагель. Для получения суспензионной культуры кусочки ткани инкубировали в колбе объемом 500 мл, на качалке с частотой 80 об/мин, амплитудой вращения 2 см.

Анализ цитофизиологических параметров проводили на 3, 9, 12, 15, 18, 21, 24, 30, 33-е сутки культивирования. Массу сырого каллуса оценивали на основании взвешивания не менее 10 трансплантов. Плотность каллуса (количество клеток на 1 мг сырой биомассы) определялась в 5-кратной повторности путем подсчета клеток в камере Фукса Розенталя после мацерации 100 мг каллуса в 20 %-й хромовой кислоте при 60 °С. Жизнеспособность клеток оценивали после окраски 0,5 %-м метиленовым синим и анализа не менее 500 клеток в 3-кратной повторности. Удельную скорость роста определяли как отношение разности между конечной и начальной массой к начальной массе каллусной ткани в единицу времени. Результаты обрабатывали статистически с вычислением средних арифметических и доверительных интервалов при 95 %-м уровне значимости.

Изучение химического состава интактного растения и каллусной ткани проводили по стандартным методикам.

Определение суммарного содержания флавоноидов осуществляли спек-трофотометрическим методом с использованием комплексообразующей реакции с алюминия хлоридом, суммарное содержание сапонинов - гравиметрическим методом, содержание аскорбиновой кислоты - титриметрическим методом (реакция Тильмана).

Хлорофиллы а, b и каротиноиды определяли спектрофотометрически, измерением оптической плотности вытяжки пигментов при длинах волн, соответствующих максимумам поглощения хлорофиллов а (663 нм), b (645 нм), каро-тиноидов (440,5 нм), с последующим расчетом концентрации пигментов по уравнениям Ветштейна и Хольма для 100 %-го ацетона.

Общее содержание гликозидов определяли по методу А. И. Ермакова с изменениями П. М. Лошкарева (Всероссийский НИИ лекарственных и ароматических растений — ВИЛАР). Количественное определение дигитоксина осуществляли хроматоспектрофотометрическим методом.

Определение гликозидов методом высокоэффективный жидкостной хроматографии проводили на приборе Agilent Technologies 1200 (США).

Обработку полученных результатов производили с использованием программного обеспечения ПП «Мультихром» 1.5 (Ampersand Ltd. 2005).

Математическое моделирование проводили с использованием методов регрессионного анализа с помощью пакетов программ Statistica 11, DataFit 8.1. и Maple.

Глава 3. Культивирование in vitro Digitalis purpurea L.

Для культивирования стерильных проростков наперстянки были использованы агаризованные среды без добавления гормонов с минеральными основами по Мурасиге и Скугу, Блейдза, Гамборга и Уайта.

Наиболее подходящей для прорастания и развития стерильных семян наперстянки оказалась среда с минеральной основой по Мурасиге и Скугу. На этой среде наблюдались высокая жизнеспособность (93,52 %) и быстрое прорастание семян - 10 сут (прорастание семян в почве составляет в среднем 14 сут).

В ходе эксперимента, направленного на выяснение роли экзогенных регуляторов роста в индукции каллусогенеза, определяли качественные характеристики каллусной ткани, начало и частоту каллусогенеза. На каждую среду высаживалось по 40 эксплантов.

Максимальная частота каллусогенеза (80,3 %) наблюдалась на среде с содержанием гормона 2,4-Д в концентрации 0,1 мг/л.

Для накопления биомассы полученную каллусную ткань переносили на среды с минеральной основой по Мурасиге и Скугу, с 3 %-м содержанием сахарозы, с разными концентрациями гормонов и пассировали. Масса транспланта составляла 40 мг. Для пересадки брали зеленые рыхлые участки каллуса. Для выяснения влияния гормонального состава сред на рост и развитие каллусной ткани и накопление биомассы была изучена динамика роста каллусной ткани Digitalis purpurea L., определены удельные скорости роста. В конце культивирования определяли суммарную концентрацию гликозидов.

Результаты по влиянию фитогормонов на цитофизиологические параметры и накопление гликозидов в каллусной ткани Digitalis purpurea L. приведены в таблице 1.

Таблица 1 — Влияние фитогормонов на цитофизиологические параметры

Соотношение гормонов в среде, мг/л Максимальный прирост биомассы, мг а. с. м./мл среды Максимальная удельная скорость роста, сут""1 Содержание гликозидов, % от а. с. м.

а-НУК 0,1 /6-БАП 0,1 4,50±0,22 0,15±0,03 0,49±0,02

а-НУК 0,2 / 6-БАП 0,1 3,24±0,15 0,13±0,01 0,56±0,01

2,4-Д 0,1 /кинетин 0,1 4,96±0,34 0,16±0,02 0,35±0,03

2,4-Д 0,2/кинетин 0,1 4,06±0,22 0,20±0,04 0,42±0,03

ИУК 0,2 / 2,4-Д 0,1 7,92±0,21 0,17±0,02 0,65±0,04

ИУК 0,2/2,4-Д 0,2 10,32±0,31 0,22±0,03 0,67±0,01

Таким образом, наиболее эффективной для получения биомассы и накопления наибольшего количества гликозидов оказалась среда с гормональным составом ИУК 0,2 мг/л и 2,4-Д 0,2 мг/л. В дальнейшем культивирование проводили с использованием этой среды.

Для получения суспензионной культуры с Digitalis purpurea L. использовали питательные среды того же состава, что и для выращивания поверхностным способом, но без добавления агара.

Продолжительность культивирования суспензионной культуры составляла около 24-27 сут, в этот период культура уже находилась в фазе старения, прирост биомассы уменьшался, тогда как при культивировании поверхностным способом рост культуры продолжался в течение 36-40 сут.

Индекс роста при суспензионном, культивировании был ниже, чем при культивировании поверхностным способом, и составил 8,92.

Содержание гликозидов в суспензионной культуре приведено в таблице 2.

Таблица 2 — Содержание гликозидов в каллусной ткани при различных способах культивирования и в интактном растении Digitalis purpurea L.

Способ культивирования Гликозиды, % от а. с. м. Дигитоксин, мкг/г а. с. м.

Интактное растение 0,71±0,02 12,10±0,03

Каллусная ткань, культивируемая на агаре 0,67±0,03 11,50±0,03

Каллусная ткань суспензионной культуры 0,64±0,02 9,81±0,01

Из результатов таблицы 2 видно, что содержание гликозидов и дигиток-сина в суспензионной культуре снижено относительно содержания в растении и в каллусной ткани, культивируемой на агаре. Учитывая также снижение индекса роста и быстрое старение суспензионной культуры, можно предположить недостаточную эффективность данного способа культивирования.

Одним из способов повышения продуктивности каллусных штаммов является иммобилизация на инертные носители.

В качестве инертных носителей для иммобилизации клеток наперстянки пурпурной были выбраны пенополиуретановые пластины и силикагель марки КСМ-7. В качестве контроля использовали агаризованную среду.

Максимальный прирост биомассы наблюдался у тканей, культивируемых на пенополиуретановых пластинах: за цикл выращивания биомасса каллусной ткани увеличивалась более чем в 10 раз; ростовой индекс в конце цикла выращивания достигал 11,16; максимальная скорость роста составляла 0,23 сут"1. Минимальный прирост биомассы наблюдался при культивировании на силика-геле: ростовой индекс составлял 5,04; максимальная скорость роста составляла 0,08 сут . Динамика изменения сырой массы каллусной ткани D. purpurea на различных носителях приведена на рисунке 1.

Максимальная плотность каллуса наблюдалась у ткани, культивируемой на пенополиуретановых пластинах (8435 клеток/мг), жизнеспособность клеток составила 90,10 %; минимальная плотность и жизнеспособность отмечены при культивировании на силикагеле - 6350 клеток/мг и 70,9 % соответственно.

3000

Продолжительность культивирования, сут "■♦•агар -в-пенополиуретаиовые пластины силикагель

Рисунок 1 — Динамика изменения сырой массы каллусной ткани D. purpurea на различных носителях

Изменения плотности и жизнеспособности каллусной ткани представлены на рисунках 2 и 3.

_ 9000 §

и 8500 | 8000 g 7500

J 7000 в

0 6500

1 6000

1 5500 а,

5 5000

g 4500

і 4000 1---------------------------------—.....J-----J-----------------------------------'--------*---------J

H 0 4 8 12 16 20 24 28 32 36 40 44 48 Продолжительность культивирования, сут "♦■агар -в-пенополиуретаиовые пластины • силикагель

Рисунок 2 — Плотность каллусной ткани D. purpurea на различных носителях

Продолжительность культивирования, сут -♦•агар пенополиуретановыепластины силікагель

Рисунок 3 — Жизнеспособность клеточной популяции D. purpurea на различных носителях

Исследование биохимического состава иммобилизованных каллусных тканей показало отличие в содержании биологически активных веществ в ткани наперстянки пурпурной, выращенной на агаре, силикагеле и пенополиуретане. Содержание биологически активных веществ в каллусной ткани приведено в таблице 3.

Таблица 3 — Биологически активные вещества каллусной ткани Digitalis purpurea L., иммобилизованной на различные носители_

Наименование компонента Содержание компонента

агар пенополиуретановые пластины силикагель

Хлорофилл А, мг% 132,79±3,05 217,15±4,10 15,13±0,22

Хлорофилл В, мг% 102,21±2,21 173,15±2,02 11,53±0,30

Каротиноиды, мг% 12,30±0,51 13,40±0,21 12,10±0,35

Сапонины, % а. с. м. 6,12±0,12 6,39±0,08 1,91±0,05

Флавоноиды, % а. с. м. 1,84±0,04 2,53±0,03 2,62±0,02

Витамин С % а. с. м. 0,76±0,05 0,92±0,04 0,67±0,03

Витамин В!, мг% 0,05±0,02 0,06±0,02 0,04±0,05

Гликозиды, % от а.с.м. 0,67±0,04 0,68±0,03 0,34±0,01

Дигитоксин, мг% 1,15±0,03 1,51±0,01 0,77±0,03

Наибольшее содержание дигитоксина установлено в каллусной ткани, иммобилизованной на пенополиуретане. Наименьшее в каллусной ткани, выращенной на силикагеле.

Одним из способов повышения выхода вторичных метаболитов в культуре ткани является воздействие на клетки стрессогенными факторами.

Для наших исследований в качестве стрессогенного фактора было выбрано УФ-излучение. Интенсивность излучения составляла 0,39 Вт/м мин. Диапазон активного излучения - 280-320 нм. Облучение тканей УФ-светом стимулировало каллусогенез, сокращая время лаг-фазы до 3 суток, тогда как фаза логарифмического роста удлинялась.

Максимальный прирост биомассы (715,11 мг сырой массы) был получен при облучении ткани в течение 1 ч. Результаты по динамике роста представлены на рисунке 4.

Продолжительность культивирования, сут

0,5ч 1ч -•■1,5ч -О-кжгроль

Рисунок 4 —Влияние продолжительности воздействия УФ-облучения на рост каллусной ткани Digitalis purpurea L.

Содержание биологически активных веществ в каллусной ткани Digitalis purpurea. L. после УФ-облучения представлено в таблице 4.

Таблица 4 - Содержание биологически активных веществ в каллусной ткани Digitalis purpurea L. после УФ-облучения

Наименование компонента

Сумма хлорофиллов А+В, мг%

Каротиноиды, мг%

Сапонины, % а. с. м.

Флавоноиды, % а. с. м.

Витамин С, % а. с. м.

Витамин В,, мг %

Гликозиды, % от а. с. м.

Дигитоксин, мг/% а. с. м.

Контроль

390,31±6,03

1,34±0,02

б,39±0,01

2,5310,03

0,92±0,04

0,06±0,02

0,68±0,03

1,15±0,01

Продолжительность облучения, ч

0,5

421,12±7,02

1,89±0,03

6,42±0,04

3,65±0,05

0, №0,03

0,05±0,03

0,72±0,01

1,96±0,01

462,36±5,02

2,13±0,04

6,44±0,03

4,32±0,05

0,1б±0,02

0,05±0,01

0,78±0,02

4,23±0,03

1,5

480,14±8,02

2,22±0,01

б,64±0,03

6,45±0,02

0,12±0,03

0,04±0,02

0,71±0,03

3,42±0,03

Как следует из результатов, при увеличении продолжительности воздействия УФ-излучения наблюдается повьннение содержания флавоноидов и фотосинтетических пигментов, что хорошо согласуется с литературными данными. Также у полученных каллусных линий наблюдали увеличение содержания гликозидов, что может быть связано с повышением концентрации хлорофилла в клетках. Максимальное содержание дигитоксина было обнаружено в клеточной линии, полученной после часового облучения, и превышало содержание дигитоксина в контроле и растении в 3,6 и 3,5 раза соответственно.

Таким образом, в результате проведенных исследований получена кал-лусная линия Digitalis purpurea L. с повышенным содержанием гликозидов и дигатоксина, а также с максимальным приростом биомассы.

Для установления зависимости влияния физико-химических параметров культивирования на прирост биомассы и накопление сердечных гликозидов в каллусной ткани Digitalis purpurea L. проведено математическое моделирование.

В качестве варьируемых параметров были выбраны фотопериод - продолжительность световой фазы *ь температура х2 и концентрация сахарозы в среде *3. В качестве функции отклика были выбраны прирост биомассы за период культивирования уи мг а. с. м., и концентрация гликозидов в каллусной ткани Digitalis purpurea L. % от а. с. м.

Оценка прироста биомассы ух представлена следующей функциональной зависимостью:

/2(х],х2,х3) = Ь0 +6Л +Ь2х2 + Ь3х3 + b,x ,х2 +Ьіхіхз +Ь6х2х3 + e(xvx2,x}), (1)

где ¿0=183,775; ¿,=-2,644; Ь2=-3,938; ¿3=-3,1115; ¿„=0,0323; ¿5=0,0455; ¿6=0,06775 — вычисленные коэффициенты регрессии.

На основании полученных коэффициентов регрессии можно сделать вывод, что все три исследуемых параметра оказывают влияние на прирост биомассы.

В замкнутой области £l = [l2; 18]х [22; 30]х [20; 30] функция трёх переменных yl = f2[x), х = [х¡, х2, х3) достигает максимума (прирост биомассы 52,45 мг а. с. м.) в точке х*=(12; 22; 20), что соответствует минимальным значениям исследуемых параметров. Функция достигает минимума (прирост биомассы 27,70 мг а. с. м.) в точке х*=(18; 30; 30), что соответствует максимальным значениям фотопериода, температуры и концентрации сахарозы.

Оценка содержания гликозидов в каллусной ткани Digitalis purpurea L. у2 представлена следующей функциональной зависимостью:

/3 (д^, х2, х3) = b0 + bxxx + b2x2 + ¿>3х3 + ¿>4х, х2 + b5xtx3 + Ь6х2хъ + e(xt, х2, хъ), (2)

где ¿>о=1 >975625; ¿,=0,011875; Ь2=-0,05406; ¿>3=-0,035625; ¿>4=-0,0001042; ¿>5=-8,333; ¿»6=0,0010625 - вычисленные коэффициенты регрессии.

Из полученного уравнения регрессии следует, что фотопериод, концентрация сахарозы и температура оказывают меньшее влияние на накопление гликозидов в каллусной ткани, чем на прирост биомассы. Причем отрицательные значения ¿>2 и ¿>з можно трактовать как факторы, оказывающие ингиби-рующее действие на процесс накопления гликозидов.

Графическое отображение модели процесса накопления гликозидов в каллусной ткани приведено на рисунке 5.

а б

Рисунок 5 - Содержание гликозидов в каллусной ткани Digitalis purpurea L. при средних значениях фотопериода (а) и температуры (б)

В замкнутой области П = [l2;18]x[22; 30]х [20; 30] функция трёх переменных у=/3(х), х=(х\,х2, х3) достигает максимума 0,68% от а. с. м. в точке х*=(18,22,20), что соответствует значениям параметров - фотопериод 18 ч, температура 22 °С и концентрация сахарозы 20 г/л, и минимума 0,32 % от а. с. м. в точке х«=(12,30,30), что соответствует значениям параметров - фотопериод 12 ч, температура 30 °С и концентрация сахарозы 30 г/л.

В результате проведенного моделирования установлено, что оптимальные режимы культивирования каллусной ткани Digitalis purpurea L. для прироста биомассы и накопления гликозидов различаются только по одному параметру -фотопериоду. Для максимального прироста биомассы необходимо проводить культивирование при фотопериоде 12 ч, а для накопления гликозидов ткань следует культивировать при 18-часовом фотопериоде, таким образом, оптимальным можно считать среднее значение фотопериода 16 ч.

Так как каллусная ткань представляет собой новый вид сырья, для сравнительного анализа было проведено исследование химического состава и содержания минеральных компонентов в каллусной ткани и в исходном растении Digitalis purpurea L.

Данные химического состава каллусной ткани и растения Digitalis purpurea L. приведены в таблице 5 в пересчете на абсолютно-сухое сырье.

Таблица 5 - Химический состав Digitalis purpurea L.

В процентах

Наименование компонента Листья растения Каллусная ткань

Экстрактивные вещества 41,33±0,24 38,52±0,53

Легкогидролизуемые полисахариды 23,52±0,17 39,35±0,33

Труднощдролизуемые полисахариды 17,76±0,29 15,83±0,17

Лигноноподобные вещества 5,40±0,03 3,45±0,03

Зольные вещества 6,44±0,02 4,90±0,03

Из приведенных результатов следует, что на долю углеводов в растении Digitalis purpurea L. приходится 41,28 %, в каллусной ткани углеводы составляет 55,18 %. Экстрактивные вещества составляют 41,33 и 38,52 % в исходном растении и каллусной ткани соответственно.

Содержание минеральных компонентов приведено в таблице 6.

Таблица 6 - Минеральный состав каллусной ткани и растения Digitalis purpurea L.

Наименование компонента Единицы измерения Содержание компонента

исходное растение интактное растение каллусная ткань

Железо мг/кг 440,12 411,54 449,45

Медь мг/кг 6,21 6,68 13,16

Цинк мг/кг 141,32 149,31 76,02

Марганец мг/кг 24,56 15,48 15,55

Хром мг/кг 0,43 0,69 0,92

Калий г/кг 29,61 34,51 30,01

Натрий г/кг 1,87 1,89 1,61

Кальций г/кг 2,06 1,80 0,99

Магний г/кг 2,82 1,75 1,51

Из результатов таблицы 6 следует, что минеральный состав каллусной ткани близок по составу к растению. Расхождения в концентрациях могут быть объяснены тем, что содержание микро- и макроэлементов в почве может существенно отличаться от содержания минеральных компонентов среды, используемой при культивировании растений in vitro.

Проведенные исследования показали схожесть химического и минерального состава каллусной ткани и растения. Это дает возможность рекомендовать каллусную ткань в качестве альтернативного сырья для производства гликози-дов.

С целью установления оптимального режима выделения гликозидов из каллусной ткани Digitalis purpurea L. проведена оптимизация процесса экстракции.

В качестве варьируемых параметров были выбраны: продолжительность экстракции X], соотношение массы сырья и объема экстрагента х2, размер частиц Ху В качестве функции отклика выбрали выход сердечных гликозидов у, % от а. с. м.

Модель оптимизации состоит из трёх расчётных схем, описывающих изменение выхода гликозидов (рисунок 6).

OO M H О Л Я га Si

Ш'

1—1 О

Í9 st р§>

г , У

■і ti л

Н "С

3 Я

s X

рэ

_ CD

Р s

u> ra К

m Я

'—V ja

У ft

<=> S p »

U> о V S

"з* -Я ^ » h ^ Il ra -—.

я о

S 04

S oo

S vo oo

о <з-

2 M

ra H

s -• S л я

Сґ

o\ ^

^ о

_ Il

«Me-

2 o- + g 11

S p X +

Q-

to^

l-h +

JS-

J< +

Jp"

<3- M tl oh

b $

8% 00 ^

a os ю -• й

» Il

s -2

и о

u u •в*",! ^ IS II

S о

H --—

га О Я о H -J ---Jaw

О я га

Я p

fa p

"І а s я о u>

За

о »

ti о

H g

ta ra Я w о

га Я:

-8-<á Я я J5 S О Ж

<г я о Sc

S ^

Я s

Q о

g 3

я *

Я ON

s I

S- td

4 E

5 X

s a

43 tl О -I

g 3

о s

s §

я ^tl

® 2 —-- со

чз -a

S s s із

ra ^

"О

л № О в я я

fa я я X

га я s

•а

fa о Й и

s -

га

о4 Ж О о H

Таким образом, для достижения максимального выхода гликозидов из каллусной ткани Digitalis purpurea L. экстракцию необходимо проводить при следующих параметрах: продолжительность экстракции 12 ч, гидромодуль 10, размер частиц 3 мм.

Глава 4. Технология культивирования in vitro Digitalis purpurea L. и выделения гликозидов из каллусной ткани

На основании результатов по оптимизации процессов культивирования и выделения гликозидов была разработана технология производства гликозидов из биомассы каллусной ткани Digitalis purpurea L.

Твердофазное культивирование клеток Digitalis purpurea L. предполагается осуществлять в установках для твердофазного культивирования на основе аппарата, разработанного ВНИИбиотехника. Аппарат представляет собой вертикальный сосуд прямоугольной формы. Внутри он разделен перфорированными пластинами, на которые устанавливают кюветы с инертным носителем. Питательную среду подают через верхний люк, а готовую культуру выгружают через нижний. Выращивание производится в кюветах - 50-60 мм высотой, объемом 10 л, в оптимальных условиях.

За цикл культивирования с 10 л среды можно получить около 1,6 кг сырой биомассы. Производительность аппарата, содержащего 30 кювет, будет составлять 48 кг сырой биомассы за цикл культивирования (576 кг сырой биомассы в год).

На основании результатов оптимизации процесса культивирования каллусной ткани Digitalis purpurea L. при разработке технологии выращивания биомассы определены следующие параметры культивирования: возраст посевного материала 21-24 сут; концентрация сахарозы в среде 20 г/л; фотопериод 16 ч; температурный режим выращивания культуры (22±1) °С.

В промышленном производстве гликозидов можно выделить следующие основные стадии: ферментация сырья, экстрагирование действующих веществ, очистка вытяжки, выделение суммы гликозидов, перекристаллизация.

Предварительная ферментация сырья увеличивает выход гликозидов благодаря гидролизу первичных гликозидов до вторичных. С этой целью измельченное сырье замачивают водой (37-40 °С) и оставляют при этой температуре на 40-48 ч.

Биомассу после ферментации помещают в экстрактор с мешалкой и экстрагируют смесью этанола и хлороформа и соотношении (1:9) при гидромодуле 10, продолжительности экстракции 12 ч.

Полученную вытяжку упаривают под вакуумом при температуре 50 °С. Концентрированный экстракт обрабатывают формамидом и проводят очистку (жидкостную экстракцию), обрабатывая вытяжку бензолом 5 раз, смесью бензола и хлороформа (3:2) до 10 раз. Вытяжку упаривают под вакуумом, остаток растворяют в хлороформе.

Блок-схема производства гликозидов из биомассы Digitalis purpurea L. представлена на рисунке 7.

Рисунок 7 — Блок-схема производства гликозидов из биомассы каллусной ткани Digitalis purpurea L.

Для выделения индивидуальных гликозидов хлороформный раствор сердечных гликозидов переносят на колонку с алюминия оксидом для их распределения.

Дигитоксин элюируют с алюминия оксида метанолом. Элюат, содержащий дигитоксин, упаривают под вакуумом. Остаток растворяют в ацетоне, упаривают под вакуумом, добавляют бензол и оставляют для перекристаллизации дигитоксина. Перекристаллизацию проводят несколько раз при комнатной температуре. Кристаллы промывают этанолом и высушивают на воздухе. Выделение и очистку гитоксина проводят аналогично.

Послеэкстракционный остаток каллусной ткани Digitalis purpurea L. содержит значительное количество легко- и трудногидролизуемых полисахаридов, микро- и макроэлементов и может быть использован в качестве удобрения или субстрата для культивирования микроорганизмов.

Проведенные технико-экономические расчеты показали эффективность использования каллусной ткани Digitalis purpurea L. в качестве альтернативного сырья для получения препаратов сердечных гликозидов. Спроектированное экспериментальное предприятие по производству гликозидов является рентабельным.

Основные результаты и выводы по работе

В результате проведенных исследований можно сделать следующие выводы:

1. Введена в культуру in vitro Digitalis purpurea L. Установлен состав среды, позволяющий получить максимальный прирост биомассы (51,6мг/га. с. м.), обеспечивающий высокую скорость роста культуры (0,22 сут-1) и накопление наибольшего количества гликозидов (0,67 % от а. с. м.).

2. Установлено, что наиболее эффективным способом культивирования каллусной ткани Digitalis purpurea L., обеспечивающим наибольшее накопление гликозидов, является иммобилизация каллусной ткани на пенополиуре-тановые пластины.

3. В результате УФ-облучения ткани получена высокопродуктивная клеточная линия с максимальным ростовым индексом (18,78), приростом биомассы (715,11 мг сырой массы) и выходом гликозидов (0,78 % от а. с. м.).

4. Исследование биохимического и минерального состава каллусной ткани показало, что ее состав соответствует составу исходного растения.

5. Проведено математическое моделирование процессов культивирования и извлечения оптимальными условиями культивирования каллусной ткани Digitalis purpurea L., обеспечивающими максимальный прирост биомассы и накопление гликозидов: концентрация сахарозы в среде 20 г/л; фотопериод 16 ч; температурный режим выращивания культуры 22 °С. Для максимального из-

влечения гликозидов из каллусной ткани Digitalis purpurea L. процесс экстракции необходимо проводить при следующих параметрах: продолжительность экстракции 12 ч, гидромодуль 10, размер частиц 3 мм.

6. На основании полученных экспериментальных данных разработана технологическая схема получения гликозидов из биомассы Digitalis purpurea L,, рассчитаны основные технико-экономические показатели. Экспериментальное предприятие по производству гликозидов из каллусной ткани Digitalis purpurea L. является рентабельным, чистая прибыль данного производства составит 3965,82 тыс. руб. Данное предприятие окупит вложенные в него затраты в срок 3,5 года.

Основные материалы диссертации изложены в следующих работах:

Статьи в журналах, рекомендованных ВАК:

1. Смольникова, Я. В. Влияние стрессогенных факторов на каллусную ткань Digitalis purpurea L. / Я. В. Смольникова, Н. А. Величко // Вестник Крас-ГАУ. - 2011. - Вып. 7. - С. 86-89, автора - 0,125 п. л.

2. Смольникова, Я. В. Химический состав растения и каллусной ткани Digitalis purpurea LJ Я. В. Смольникова, Н. А. Величко // Химия растительного сырья. - 2011. - № 4. - С. 239-243, автора - 0,19 п. л.

Материалы конференций:

3. Смольникова, Я. В. Получение сердечных гликозидов методом культуры in vitro наперстянки пурпурной (Digitalis purpurea L.) / Я. В. Смольникова, Н. А. Величко // Инновации в науке и образовании: опыт, проблемы, перспективы развития: материалы всерос. очно-заоч. науч.-практ. конф. с мевдунар. участием. - Красноярск, 2009. - Ч. 2. - С. 132-134, автора - 0,125 п. л.

4. Смольникова, Я. В. Биологически активные вещества каллусной ткани наперстянки пурпурной / Я. В. Смольникова, Н. А. Величко // Проблемы современной аграрной науки: материалы междунар. заоч. науч. конф. - Красноярск, 2009. - Т. 3. - С. 265-268, автора - 0,125 п. л.

5. Смольникова, Я. В. Влияние гормонального состава среды на рост и структуру каллусной ткани наперстянки пурпурной / Я. В. Смольникова, Н. А. Величко // Лесной и химический комплексы - проблемы и решения: сб. ст. всерос. науч.-практ. конф. - Красноярск, 2009. - Т. 3. - С. 342-349, автора -0,25 п. л.

6. Величко, Н. А. Влияние ультрафиолетового излучения на ростовые и морфофизиологические характеристики каллусной ткани Digitalis purpurea L. / Н. А. Величко, Я. В. Смольникова, М. Ю. Бражкина, И. А. Овчинникова // Химия и жизнь: сб. материалов IX регион, науч.-практ. конф. с междунар. участием. - Новосибирск. - 2010. - Т.1. - С. 162-165, автора - 0,125 п. л.

7. Смольникова, Я. В. Культивирование методом in vitro Digitalis purpurea L. с применением методов иммобилизации на инертных носителях / Я. В. Смольникова // Инновации в науке и образовании: опыт, проблемы, перспективы развития: материалы всерос. очно-заоч. науч.-практ. конф. с междунар. участием. - Красноярск, 2010.-Ч. 2.-С. 112-114, автора-0,1 п. л.

8. Величко, Н. А. Влияние иммобилизации на инертные носители на накопление биологически активных веществ в каллусной ткани Digitalis purpurea L. / Н. А. Величко, Я. В. Смольникова, И. А. Овчинникова // Молодые ученые в решении актуальных проблем науки: сб. ст. всерос. науч.-практ. конф. - Красноярск, 2010. - Т. 2. - С. 43-45, автора - 0,1 п. л.

9. Величко, Н. А. Влияние УФ-стресса на накопление биологически активных веществ в каллусной ткани Digitalis purpurea L. / Н. А Величко, Я. В. Смольникова, М. Ю. Бражкина // Молодые ученые в решении актуальных проблем науки: сб. ст. всерос. науч.-практ. конф. - Красноярск, 2010. - Т. 2. -С. 37-39, автора-0,1 п. л.

10. Смольникова, Я. В. Элементный состав интактного растения и каллусной ткани наперстянки пурпурной (Digitalis purpurea L.) / Я. В. Смольникова, Н. А. Величко // Проблемы современной аграрной науки: материалы междунар. заоч. науч. конф. - Красноярск, 2010. - Т. 5. - С. 265-268, автора- 0,125 п. л.

11. Смольникова, Я. В Суспензионное культивирование Digitalis purpurea L. / Я. В. Смольникова, Н. А. Величко // Лесной и химический комплексы - проблемы и решения: сб. ст. всерос. науч.-практ. конф. - Красноярск, 2010. - Т. 2. - С. 20-23, автора - 0,125 п. л.

Санитарно-эпидемиологическое заключение № 24.49.04.953.П. 000381.09.03 от 25.09.2003 г. Подписано в печать 13.03.2012. Формат 60x84/19. Бумага тип. № 1 Печать - ризограф. Усл. печ. л. 1,0 Тираж 100 экз. Заказ № 1648 Издательство Красноярского государственного аграраного университета 660017, Красноярск, ул. Ленина, 117

Текст научной работыДиссертация по биологии, кандидата технических наук, Смольникова, Яна Викторовна, Красноярск

61 12-5/3160

ФГБОУ ВПО «Сибирский государственный технологический университет»

На правах рукописи

Смольникова Яна Викторовна

КУЛЬТИВИРОВАНИЕ DIGITALIS PURPUREA L. В УСЛОВИЯХ IN VITRO И ПОЛУЧЕНИЕ СЕРДЕЧНЫХ ГЛИКОЗИДОВ НА ЕЕ ОСНОВЕ

03.01.06 - биотехнология (в том числе бионанотехнологии)

Диссертация на соискание ученой степени кандидата технических наук

Научный руководитель:

доктор технических наук, профессор

Величко Надежда Александровна

Красноярск - 2012

Содержание

Введение...................................................................................................................4

Глава 1. Аналитический обзор...............................................................................8

1.1 Описание и фармацевтическая значимость представителей рода

Digitalis.....................................................................................................................^

1.2 Сердечные гликозиды, химическое строение и классификация.........12

1.3 Культура растительных клеток как альтернативный способ производства промышленно значимых метаболитов........................................15

1.4 Способы регуляции вторичного метаболизма в культуре in vitro.......19

1.5 Культивирование in vitro представителей рода Digitalis......................26

Глава 2. Объекты и методы исследования..........................................................30

2.1 Объект исследования...............................................................................30

2.2 Получение каллусной ткани и исследование Digitalis purpurea L. в культуре in vitro.....................................................................................................31

2.3 Химический состав интактного растения и каллусных тканей Digitalis

purpurea L...............................................................................................................38

Глава 3. Культивирование in vitro Digitalis purpurea L.....................................47

3.1 Получение интактных стерильных растений Digitalis purpurea L. в культуре in vitro.....................................................................................................47

3.2 Индукция каллусогенеза Digitalis purpurea L.......................................52

3.3 Подбор гормонального состава среды для культивирования каллусной ткани Digitalis purpurea. L.....................................................................................58

3.4 Суспензионное культивирование Digitalis purpurea L.........................66

3.5 Иммобилизация каллусной ткани Digitalis purpurea L. на инертные носители.................................................................................................................68

3.6 Повышение продуктивности каллусной ткани Digitalis purpurea L. под действием стрессогенных факторов.............................................................74

3.7 Оптимизация условий культивирования каллусной ткани

Digitalis purpurea L................................................................................................78

3.8 Химический состав каллу сной ткани Digitalis purpurea L...................83

Глава 4. Технология культивирования in vitro Digitalis purpurea L. и выделения гликозидов из каллу сной ткани........................................................88

4.1 Влияние параметров экстракции на извлечение экстрактивных веществ из каллу сной ткани и исходного растения Digitalis purpurea L........88

4.2 Оптимизация выхода гликозидов из биомассы каллусной ткани Digitalis purpurea L................................................................................................93

4.3 Технологический процесс получения гликозидов из каллусной ткани

Digitalis purpurea L................................................................................................96

Библиографический список................................. ...............................................104

Приложения.........................................................................................................120

Приложение А. Статистическая обработка результатов.................................121

Приложение Б. ВЭЖХ — Хроматографический профиль сердечных

гликозидов............................................................................................................123

Приложение В. и планирование организации производства гликозидов из каллусной ткани Digitalis purpurea L................................................................124

Введение

Актуальность проблемы

В настоящее время перед биотехнологией как наукой и отраслью промышленности стоит актуальная задача поиска альтернативных источников и разработки методов получения биологически активных веществ растительного происхождения, применяемых для разных целей в сельском хозяйстве, пищевой промышленности, в медицине.

Сложившаяся ситуация в ассортименте лекарственного растительного сырья и его продукции показывает, что почти вся сырьевая база, обеспечивающая потребность в препаратах на фармацевтическом рынке России, оказалась на территории ближнего зарубежья.

Потери сырьевых источников, расположенных на территории бывших союзных республик, освоение минеральных ресурсов, интенсивные технологии в сельском хозяйстве, негативное влияние промышленных предприятий — все эти факторы обострили проблему обеспечения медицины и других отраслей лекарственным растительным сырьем в полном объеме и ассортименте. Особенно это актуально для регионов с повышенной антропогенной нагрузкой [1].

Растения являются незаменимым источником получения очень многих практически ценных веществ. При этом следует подчеркнуть, что промышленное получение некоторых соединений, например, сердечных гликозидов, флавоноидов, кумаринов, эфирных масел достигается только путем выделения их из растительного сырья. Между тем возможности получения так называемых «метаболитов интереса» в достаточном количестве зачастую ограничены. Это связано с сокращением ресурсов некоторых ценных дикорастущих растений, принадлежностью многих лекарственных растений к группам эндемов, редким и исчезающим видам. В

связи с этим большой интерес в качестве источника биологически активных веществ представляют культуры растительных клеток [2].

Культуры растительных клеток могут синтезировать самые разнообразные по химической природе вещества. Среди них эфирные масла, фенольные соединения, алкалоиды, стероиды, терпеноиды и др. Но, несмотря на то, что биомасса культивируемых клеток с начала 80-х годов используется в качестве источника экономически значимых продуктов, ряд трудностей и нерешенных вопросов сдерживает широкомасштабное применение культивируемых клеток, обусловливает нерентабельность

биотехнологических производств многих ценных видов растений.

Неотселектированные дедифференцированные клетки накапливают, как правило, незначительное, по сравнению с интактным растением, количество веществ специализированного обмена. Только благодаря правильно разработанной стратегии получения высокопроизводительных штаммов к настоящему времени получены культуры тканей, в которых содержание вторичных продуктов достаточно велико, чтобы служить лекарственным сырьем [2].

Культивируемые клетки высших растений способны синтезировать традиционно используемые продукты растительного происхождения, создавать принципиально новые вещества, трансформировать дешевые предшественники в ценный продукт. Преимуществом данного метода является возможность получения продукта независимо от внешних климатических, почвенных условий, круглогодично, и сохраняя при этом естественные ареалы ценных лекарственных растений.

Среди лекарственных средств, применяемых в современной фармакотерапии сердечно-сосудистых заболеваний, препараты наперстянки занимают особое место. Хотя они насчитывают несколько веков истории, их мощное кардиотоническое действие пока ничем не удалось заменить. Это единственная группа, не имеющая заменителей химического происхождения,

и все лекарственные препараты этой группы вырабатываются только из растений.

В то же время, выход сердечных гликозидов из растения является непостоянной величиной и зависит от климатических условий, срока вегетации растения, от времени суток, в которое производится сбор. Календарные сроки уборки ограничены. Исходя из этих фактов, экономически интересным и перспективным представляется создание технологии, при которой осуществлялось бы круглогодичное, независимое от внешних факторов, культивирование растения и получение гликозидов на его основе.

Известны работы, описывающих производство сердечных гликозидов в культуре ткани наперстянки пурпурной [3], но в целом, выход продукта остается довольно низким, и, кроме того, в течение нескольких субкультивирований способность к синтезу карденолидов в культуре in vitro часто сокращалась или исчезала полностью.

Однако часть проведенных исследований показывает, что при правильном подборе условий для культивирования, использовании различных гормональных сред, изменении светового режима, воздействия элиситоров, или других стрессогенных факторов (ультрафиолетового излучения) можно существенно повлиять на синтез вторичных метаболитов.

В связи с этим культивирование тканей и клеток Digitalis purpurea L. in vitro с целью их промышленного использования для получения соединений специализированного определяет актуальность данного исследования.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить ряд

задач:

- определить химический состав полученной каллусной ткани Digitalis puprurea L.;

- разработать математическую модель и подобрать условия выделения гликозидов из каллусной ткани Digitalis puprurea L;

Глава 1. Аналитический обзор

1.1 Описание и фармацевтическая значимость представителей рода Digitalis

Digitalis — род травянистых растений, принадлежащий по системе классификации APG II к семейству подорожниковых (Plantaginaceae) (ранее, в системе классификации Кронквиста, растение относили к семейству норичниковые (Scrophulariaceae), включает в себя около 36 различных видов, большинство видов произрастает в Европе, а также Западной Азии, Северной Африке и на Канарских островах.

Несмотря на то, что все виды рода Digitalis содержат сердечные гликозиды, за рубежом только два из них используются для получения дигитоксина, дигоксина и их близкородственных производных: греческая наперстянка или наперстянка шерстистая - Digitalis lanata Ehrh. (дигоксин и другие составляющие) и наперстянка пурпурная - Digitalis purpurea L. (дигитоксин) [3].

В России Государственная фармакопея разрешает к применению наравне с наперстянкой пурпурной наперстянку крупноцветковую Digitalis grandiflora Mill. (syn. Digitalis ambigua Murr.), произрастающую в лесах Урала, прилегающих к нему районах Западной Сибири, на Северном Кавказе, в Карпатах, предгорьях Алтая [4].

Родина наперстянки пурпурной - центральные и западные области Западной Европы. В России этот вид не произрастает. Промышленные плантации были разработаны на Украине и Северном Кавказе.

Последние исследования, в частности изучение динамики численности вида, показали значительное уменьшение количества особей и площади зарослей на 50 % за последние 10 лет [1].

Наперстянка шерстистая произрастает в диком виде на Балканах. Это многолетнее травянистое растение с одиночным стеблем, равномерно

облиственным. Цветочная кисть длинная, очень густая ось соцветия, как и прицветника и доли чашечки, густо опушенные (отсюда и название «шерстистая») [5].

От всех видов наперстянок заготавливают листья. В медицинской практике используют лист наперстянки в качестве сырья для получения порошка, настоя, сухого экстракта, препаратов: дигитоксин, гитоксин, кордигит и др. [6].

Листья содержат различные глюкозиды сердечной группы: пурпуреаглюкозид А, пурпуреаглюкозид В, дигитоксин, гитоксин, гиталоксин, гиторин, дигиталеин, дигиталин, дигипрозид и ряд других глюкозидов; ряд стероидных сапонинов: дигитонин, гитонин, тигонин; флавоноиды: лютеолин и дигитолютеин, кофейную и другие органические кислоты, холин и другие вещества.

История применения наперстянки исчисляется веками. Имеются сведения, что наперстянка (Digitalis) числится в ряду лекарственных растений не менее 4 тысяч лет. Но более достоверные сведения датируются V веком н. э. [7].

Другие источники свидетельствуют, что наперстянка введена в научную медицину из народной в Западной Европе, где она росла в диком виде - ее применяли при лечении водянки в Англии и Германии еще в XI веке. Первое описание наперстянки появилось в травнике 1543 г. немецкого врача Фукса, который и дал ей название по наперстковидной форме цветка. [8].

В России применение наперстянки описано в рукописи С. А. Рейха «О пользе Digitalis purpurea при лечении водянки», из которой стало известно, что изучение лечебного эффекта наперстянки в России датируется 80-ми годами XVIII столетия [6].

По современным представлениям, во всех применяемых в медицине видах наперстянки содержатся карденолиды, агликонами которых являются

следующие пять генинов: дигитоксигенин, гитоксигенин, гиталоксигенин, дигоксигенин и дигинатигенин. Сахарами, с которыми этерифицированы перечисленные генины, являются дигитоксоза, дигиталоза, фукоза, глюкоза, глюкометилоза.

Наперстянка пурпурная и наперстянка крупноцветковая содержат три основных первичных гликозида: пурпуреагликозид А, пурпуреагликозид В и глюкогиталоксин.

Вследствие протекающих ферментативных процессов наряду с первичными гликозидами в листьях пурпурной и крупноцветковой наперстянки содержатся вторичные гликозиды, образовавшиеся после отщепления молекул глюкозы: дигитоксин (из пурпуеагликозида А); гитоксин (из пурпуреагликозида В) и гиталоксина (из глюкогиталоксина).

Помимо пурпуреагликозидов А и В и глюкогиталоксина, в листьях пурпурной и крупноцветковой наперстянок в незначительных количествах всегда присутствуют другие первичные гликозиды, содержащие те же генины. К ним нужно отнести содержащие моносахарид с оксиметильной группой дигиталозид-дигиталин верум и глюковеродоксин.

Химический состав карденолидов наперстянки шерстистой более сложный, чем у наперстянки пурпурной. В растениях наперстянки шерстистой найдено 49 сердечных гликозидов, их сумма составляет 0,48-0,56 %. В ней содержатся первичные гликозиды, именуемые ланатозидами: А, В, С, Б и Е.

Ланатозиды отличаются от пурпуреагликозидов ацетилированной молекулой дигитоксозы, соседней с глюкозой. В связи с этим, ферментативное расщепление ланатозидов идет не в два, а в три этапа и вторичными продуктами являются ацетилированные соединения.

В незначительных количествах в листьях шерстистой наперстянки могут также находиться глюко-дигитоксигенин-глюкометилоксид, глюко-

дигифукозид, глюкогиторозид, глюкоаланодоксин, глюковеродоксин и некоторые другие гликозиды.

Помимо гликозидов типа карденолидов, в листьях всех видов наперстянки обнаружены стероидные гликозиды, известные под названием дигитанолгликозидов. Из других веществ, присутствующих в наперстянках, следует указать на флавоны, обладающие диуретическим свойством, и на стероидные сапонины дигитонин и гитонин в листьях наперстянки шерстистой [5].

Листья, кроме того, содержат: макроэлементы - К - 29,6, Са - 20,6, Мв - 2,8, Бе - 1,4 мг/г; микроэлементы - Мп - 0,24, Со - 0,18, Си - 0,62, Ъп -1,41, Мо - 8,53, Сг - 0,43, А1 - 0,82, Ва - 1,27, V - 0,59, 8е - 1,7, № - 0,25, Бг -0,38, Сё - 16,6, РЬ - 0,13, - 8,0, В -51,6 мкг/г; концентрируют Бе, Ъп, Мо, Ва, Эе, Сс1, Ag, особенно Сс1. Могут накапливать Мп, Мо, Сг [6].

В числе составных частей наперстянки имеются белковые вещества, инозит, наперстянковая кислота (род дубильной кислоты), минеральные соли (в количестве 7,5-12,8 %) [7].

Под влиянием сердечных гликозидов уменьшается общепериферическое сопротивление сосудов, улучшается кровоснабжение тканей и процесс оксигенации, причём кровоснабжение сердечной мышцы улучшается за счёт нормализации общей гемодинамики [9].

Из гликозидов наперстянки шерстистой также получены ценные медицинские препараты. Так, новогаленовый препарат ланатозид, а также препарат целанид, содержащие сумму гликозидов наперстянки шерстистой, применяются при хронической недостаточности 1-Ш степени, сопровождающейся тахикардией, тахиаритмией и мерцанием предсердий, суправентрикулярной форме пароксизмальной тахикардии [10].

1.2 Сердечные гликозиды, химическое строение и классификация

Сердечными гликозидами называются гликозиды, агликоном которых являются производные циклопентанопергидрофенантрена, содержащие в положении 17 ненасыщенное лактонное кольцо и оказывающие специфическое действие на сердечную мышцу [11].

Сердечные гликозиды не имеют себе равных синтетических заменителей; растения служат единственным источником их получения.

Несмотря на то, что арсенал лекарственных препаратов, применяемых при сердечной недостаточности, велик, лишь кардиостероидные препараты способны оказывать благоприятный и длительный эффект. Очевидно, поэтому кардиостероидные препараты не теряют своего значения на протяжении по�

Информация о работе

Смольникова, Яна Викторовна
кандидата технических наук
Красноярск, 2012
ВАК 03.01.06

Диссертация

Культивирование Digitalis purpurea L. в условиях in vitro и получение сердечных гликозидов на её основе - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы