Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Функциональные взаимосвязи эндокринных и свободнорадикальных процессов у крыс при изменении освещенности

ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Содержание диссертации, доктора биологических наук, Кондратенко, Елена Игоревна

Введение.

ГЛАВА 1. Современные представления о биосинтезе, секреции тиреоидных гормонов и механизмах их регуляции.

1.1. Биосинтетический и секреторный процессы в щитовидной железе и различные аспекты их регуляции тиротропином.

1.2. Регуляция биосинтеза и секреции тиреотропного гормона.

1.3. Факторы, модулирующие механизмы регуляции функции щитовидной железы. Влияние половых гормонов на щитовидную железу.

1.4. Роль биоантиоксидантов в регуляции функционального состояния щитовидной железы. Физиологическая роль перекисного окисления липидов (ПОЛ).

1.5. Антиоксидантньге и специфические функции витамина Е.

1.5.1. Роль витамина Е в регуляции эндокринных функций.

1.5.2. Влияние витамина Е на функцию щитовидной железы.

ГЛАВА 2. Материал и методы исследования.

ГЛАВА 3. Хронобиологические и половые особенности свободнорадикальных и эндокринных процессов у крыс в условиях световой депривации и предварительном введении витамина Е.

3.1. Свободнорадикальные процессы в условиях световой депривации и предварительного введения витамина Е.

3.2. Морфофункциональные изменения щитовидной железы и надпочечников при световой депривации и предварительном введении витамина Е.

3.3. Изменения функции щитовидной железы и интенсивности свободнорадикальных процессов у самцов и самок неполовозрелых крыс в условиях световой депривации и введения витамина Е.

3.4. Изменение интенсивности перекисного окисления липидов у неполовозрелых самцов и самок крыс в условиях световой депривации и предварительного введения витамина Е.

ГЛАВА 3. Хронобиологические и половые особенности свободнорадикальных и эндокринных процессов у крыс при холодовом воздействии и предварительном введении витамина Е.

4.1. Перекисное окисление липидов у крыс при холодовом воздействии и предварительном введении витамина Е.

4.2. Изменение интенсивности перекисного окисления липидов у неполовозрелых самцов и самок крыс при холодовом воздействии и предварительном введении витамина Е.

4.3. Морфофункциональное состояние щитовидной железы самцов и самок крыс в условиях холодового воздействия и предварительного введения витамина Е.

ГЛАВА 5. Современные представления о физиологических механизмах женского репродуктивного цикла.

5.1. Функциональная связь эстрального цикла с обменными процессами и механизмом их регуляции.

5.2. Особенности динамики биохимических процессов в ходе эстрального цикла.

5.3. Перекисное окисление липидов в динамике эстрального цикла.

5.3.1. Изменения уровня МДА в гомогенатах печени в динамике эстрального цикла.

5.3.2. Содержание промежуточных продуктов ПОЛ в плазме крови.

5.4. Морфофункциональные изменения щитовидной железы в динамике эстрального цикла.

5.4.1. Изменение гистоструктуры щитовидной железы в динамике эстрального цикла.

5.4.2. Морфометрический анализ паренхимы щитовидной железы.

5.5. Ориентировочное поведение самок белых крыс в динамике эстрального цикла и его зависимость от хэндлинга.

ГЛАВА 6. Физиологические особенности самок крыс в.условиях 30-дневных световой депривации и световой экспозиции.

6.1. Изменение интенсивности свободнорадикальных процессов у самок крыс в альтернативных условиях освещенности.

6.1.1. Циркадианные особенности перекисного гемолиза самок крыс в условиях круглосуточного освещения и световой депривации.

6.1.2. Перекисное окисление липидов печени самок крыс при изменении светового режима.

6.1.3. Скорость аскорбатзависимого ПОЛ печени самок крыс t при изменении светового режима.

6.2. Показатели липидного обмена самок крыс в условиях световой депривации и круглосуточного освещения.

6.3. Ориентировочное поведение самок крыс в условиях круглосуточного освещения и световой депривации.

6.4. Изменения относительной массы надпочечников, яичников и щитовидной железы в условиях световой депривации , ^ и круглосуточного освещения.

6.5. Особенности гистоструктуры щитовидной железы самок крыс в условиях световой депривации и круглосуточного освещения.

ГЛАВА 7. Характер морфофункциональных и биохимических изменений у самок крыс в условиях длительного круглосуточного освещения и предварительного введения витамина £.

7.1. Исследование гистоструктуры яичников.

7.2. Особенности свободнорадикальных процессов у самок крыс в условиях длительного круглосуточного освещения и введения витамина Е.

7.2.1. Изменение уровня промежуточных продуктов ПОЛ в плазме крови самок крыс при длительном круглосуточном освещении и введении витамина Е.

7.2.2. Изменение содержания малонового диалъдегида в ткани печени самок крыс при длительном круглосуточном освещении и введении витамина Е.

7.2.3. Изменение степени перекисного гемолиза эритроцитов самок крыс при длительном круглосуточном освещении и введении витамина Е.

7.3. Особенности липидного метаболизма в условиях длительного круглосуточного освещения и введения витамина Е.

7.4. Изменения относительной массы надпочечников в условиях световой депривации и круглосуточного освещения.

7.5. Морфофункциональное состояние щитовидной железы в условиях длительного круглосуточного освещения и вве дения витамина Е.

7.6. Изучение параметров ориентировочной реакции самок крыс в условиях круглосуточного освещения и введения витамина Е.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Функциональные взаимосвязи эндокринных и свободнорадикальных процессов у крыс при изменении освещенности"

Актуальность проблемы. Жизнедеятельность всех организмов детерминирована таким важным природным фактором, как изменение сезонной освещенности, а также сменой дня и ночи в течение суток. Современная цивилизация, внедрившая искусственное освещение во все сферы деятельности человека, существенно изменила сложившиеся в течение многих тысячелетий режимы освещенности, в результате чего произошли нарушения

14 в адаптационных механизмах циркадианнои системы, которые проявляются в патологии эндокринных органов животных и человека. Кроме того, давно установлено, что состояние женской репродуктивной системы регламентируется длительностью светового дня (Савченко О.Н., 1967; Меннинг О., 1982; Бабичев В.Н., 1984). Содержание животных в условиях хронического круглосуточного освещения приводит к разбалансировке гипоталамо-гипофизарно-гонадной оси и к развитию гиперэстрогенного состояния (Хоффманн Дж., # 1973; Смирнова О.И., 1966; Bolliet V. et al, 1994). Эпифиз, являясь важнейшим звеном эндокринной системы, получает информацию об изменениях светового режима от сетчатки глаза и адаптирует организм к суточным и сезонным колебаниям освещенности посредством своего основного гормона — мелатонина, что подтверждено исследованиями Reiter J. (1995), Kanemafsu N. et al (1994), Vanecek К. (1999) и др. Выраженные антиоксидантные свойства мелатонина позволяют рассматривать его не только в качестве регулятора циркадианных ^ ритмов, но и модулятора свободнорадикальных процессов организма (Ром-Бугославская Е.С. и др., 1981).

Сложившаяся в настоящее время теория (Владимиров Ю.А., Арчаков А.И., 1972; Журавлев А.И., 1975; Панкин В.З. и др., 1977; Храпова Н.Г., 1981; Бурлакова Е.Б. и др., 1986) раскрывает механизмы свободнорадикальных процессов и дает представление о роли перекисного окисления липидов (ПОЛ) в условиях стресса (Шорин Ю.П. и др., 1985; Колосова Н.Г., 2000). Выявлено, что при различных токсических воздействиях активация ПОЛ

Ii* является одним из фундаментальных молекулярных механизмов патогенеза (Меерсон Ф.З., 1981; Кондратенко Е.И. и соавт., 2000). Результаты изучения антиоксидантного эффекта мелатонина указывают на его зависимость от дозы, времени суток, в которое осуществляется воздействие, исходного состояния эндокринной системы организма и его антиоксидантного статуса (Эе Ргоэро N.0., 1975; КпЛем^сИ М. е1 а1, 1994).

На основании этого можно утверждать, что процессы в эндокринной системе и перекисное окисление липидов тесно взаимосвязаны. Экспериментальные и клинические эндокринологические исследования без учета этой взаимосвязи приводят к ряду противоречий. Это противоречия: между длительностью циркуляции в крови гормонов надпочечников, щитовидной железы и антиоксидантным статусом организма; между условиями освещенности и изменениями, происходящими в репродуктивной системе;

Существование названных противоречий обусловливает актуальность выявления функциональных взаимосвязей эндокринных и свобод-норадикальных процессов при изменении режима освещенности.

Цель исследования состояла в обосновании и разработке концепции функциональной взаимосвязи эндокринных и свободнорадикальных процессов у крыс разного пола при изменении режима освещенности.

Задачи исследования:

1. Установить характер зависимости параметров тиреоидной системы и интенсивности процессов перекисного окисления липидов от фактора естественной смены светлого и темного периодов суток и оценить роль фактора половой принадлежности животных в формировании циркадианных флук-туаций параметров эндокринных и свободнорадикальных процессов.

2. Изучить циркадианную специфику морфофункциональных изменений щитовидной железы и интенсивности ПОЛ на модели нефармакологической функциональной активации эпифиза ( 60-ти часовой световой де-привации).

3. Выявить зависимость степени активации реакций ПОЛ в условиях холодового воздействия от времени суток, установить половую и возрастную специфики этой зависимости.

4. Сопоставить изменения процессов ПОЛ и тиреоидной функции в динамике нормального эстрального цикла у самок крыс.

5. Исследовать эндокринные и свободнорадикальные процессы, протекающие у самок крыс в экспериментальных условиях освещенности: 30-ти дневных световой экспозиции и световой депривации. приспособительные и дезадаптивные черты эндокринного и биохимического статуса животных.

6. Выделить функциональные взаимосвязи между параметрами эндокринной сферы и липидного метаболизма самок крыс в условиях длительного круглосуточного освещения (117 сут).

Основные положения, выносимые на защиту

1. Функциональные взаимосвязи эндокринных и свободнорадикальных процессов, протекающих у животных при изменении режима освещенности, определяются совокупностью следующих факторов: половой принадлежностью, временем суток и длительностью световой экспозиции и световой депривации.

2. Морфофункциональное состояние щитовидной железы зависит от условий освещенности. Эта зависимость опосредована деятельностью эпифиза и стероидным статусом животных.

3. Циркадианные колебания функции щитовидной железы проявляются только на фоне сформированного стероидного профиля. У неполовозрелых крыс зависимость функции щитовидной железы от светлого и темного времени суток отсутствует.

4. Изменения функции щитовидной железы и интенсивности сво-боднорадикальных процессов у самок крыс происходит в соответствии со сменой фаз эстрального цикла. Наиболее интенсивно перекисное окисление липидов происходит в периоды активного стероидогенеза (проэструс и метаэструс), наименее интенсивно - в фазы эструса и диэструса.

5. При экспериментальных режимах освещенности, модулирующих функциональную активность эпифиза, циркадианные колебания интенсивности процессов свободнорадикального окисления согласованы с серединами светлого и темного периодов суток.

Научная новизна исследования Впервые экспериментально обоснована различная чувствительность эндокринных органов к изменению условий освещенности. Разработана модель функциональных взаимосвязей эндокринных и свободнорадикальных процессов с учетом роли эпифиза. Исследован механизм изменения активности тиреоидной системы при стимуляции эпифизарной секреции. Сформулирован принцип циркадианной специфичности стресс-реактивности животных в условиях холодового воздействия и введения природного антиксиданта витамина Е. Предложены механизмы, объясняющие возникновение различий в интенсивности свободнорадикальных процессов, стресс-реактивности и адаптивного потенциала в зависимости от пола животных. Осуществлена оценка параметров изменения эндокринного и биохимического статуса крыс в результате одновременного влияния циркадианного, возрастного и полового факторов.

Впервые установлено, что содержание животных в условиях постоянной темноты в течение 60 часов приводит к значительному уменьшению содержания уровня свободнорадикальных продуктов в ткани печени половозрелых самцов. Обнаружены половые различия и циркадианные особенности изменения интенсивности свободнорадикальных процессов в условиях световой депривации. Показано, что у взрослых самцов угнетение функции щитовидной железы происходит независимо от времени суток, а у самок она обнаружена только в середине темного периода суток.

Установлено, что половые различия проявляются лишь на фоне сформированного стероидного профиля. У неполовозрелых животных кратковременная световая депривация вызывает однонаправленные изменения эндокринных и свободнорадикальных параметров у животных разного пола.

Получены новые данные о том, что уровни продуктов ПОЛ в крови и печени коррелируют между собой и изменяются периодически в связи со сменой фаз эстрального цикла. Морфофункциональное состояние щитовидной железы также изменяется по синусоидальному закону в соответствии с изменением стероидного профиля в динамике репродуктивного цикла.

Впервые показано, что в условиях 30-дневной постоянной темноты сохраняется нормальная структура и длительность эстрального цикла. Охарактеризованы основные черты «поведенческого десинхроноза», который развивается в условиях световой экспозиции и депривации. Получены новые данные об изменениях липидного метаболизма и показателей свободнорадикального окисления в условиях длительного круглосуточного освещения. Впервые проведено исследование морфофункционального состояния щитовидной железы в условиях нефармакологической активации деятельности эпифиза - кратковременной световой депривации. Обнаружено угнетение функции щитовидной железы на фоне повышения уровня тиреоидных гормонов в крови.

Получены новые данные о том, что степень проявления антиокси-дантного эффекта витамина Е зависит от времени суток.

Теоретическая и практическая ценность работы

Настоящая работа вносит вклад в понимание механизмов циркади-анных колебаний параметров липидного метаболизма и интенсивности ПОЛ. Проведенные комплексные исследования продемонстрировали наличие функциональной взаимосвязи эндокринных и свободнорадикальных процессов в организме животных и их зависимость от режима освещенности. Полученные результаты могут быть полезны при разработке способов использования токоферола не только как стресс-протектора при холодовом воздействии, но и как модулятора циркадианной системы организма.

Изученная динамика поведенческих, биохимических и эндокринных изменений при длительном круглосуточном освещении позволила определить те эндокринные органы, которые наиболее чувствительны к изменению условий освещенности и определяют характер адаптивных перестроек организма. Разра

II ботана система экспериментов по проверке влияния светового режима на функцию щитовидной железы и интенсивность процессов ПОЛ в крови и печени крыс, учитывающая естественную смену освещенности в течение суток. Обнаруженная в исследовании зависимость степени перекисного гемолиза эритро цитов от состояния про- и антиоксидантного баланса организма позволяет рекомендовать использование этого показателя для контроля адаптивных преобразований свободнорадикальных процессов при изменении условий освещен-(Р ности. Выявленная корреляционная связь между изменением содержания МДА в ткани печени и уровнем ацилщцроперекисей в крови в динамике эстрального цикла и зависимость морфофункционального состояния щитовидной железы от стадии репродуктивного цикла могут служить основой для разработки критериев зависимости тиреоидной функции и свободнорадикального окисления от периодически изменяющегося стероидного фона в женском организме.

Изучение эндокринных, репродуктивных и биохимических измене-^ ний в организме самок крыс при различных сроках постоянного освещения дает возможность выявить наиболее чувствительные звенья функциональных систем, оказывающих влияние на формирование десинхроноза.

Гипотеза исследования. Функциональное состояние желез внутренней секреции и интенсивность свободнорадикальных процессов у крыс в различных режимах освещенности согласуются лишь в том случае, когда они опосредуются нормальной функцией эпифиза. и

Различия в протекании эндокринных и свободнорадикальных процессов при изменении условий освещенности у особей разного пола определяются их стероидным профилем.

Логика исследования представлена на рис. 1.

6. Разработана концепция функциональных взаимосвязей эндокринных и свободнорадикальных процессов у крыс разного пола при изменении режима освещенности.

Обоснован выбор наиболее чувствительных к изменению условий освещенности эндокринных органов. Предложена модель функциональных взаимосвязей эндокринных и свободнорадикальных процессов с учетом роли эпифиза. Исследован механизм изменения активности тиреоидной системы при стимуляции эпифизарной секреции. Сформулирован принцип циркадианной специфичности стресс-реактивности животных в условиях холодового воздействия и введения витамина Е. Раскрыты основные причины возникновения различий в интенсивности свободнорадикальных процессов, стресс-реактивности и адаптивного потенциала в зависимости от пола животных. Разработана система экспериментов по проверке влияния режима освещенности на функцию щитовидной железы и интенсивность процессов ПОЛ в крови и печени крыс, учитывающая естественную смену освещенности в течение суток. Осуществлена оценка параметров изменения эндокринного и биохимического статуса крыс в результате одновременного влияния циркадианного, возрастного и полового факторов.

Апробация работы

Материалы диссертации представлены и доложены: на всероссийских конференциях «Нейроэндокринология» (Санкт-Петербург) 1995,2000 и 2003гг., Международных конференциях «Структурные преобразования органов и тканей на этапах онтогенеза в норме и при воздействии антропогенных факторов» (Астрахань) 1996,1999гг., региональной конференции «Астраханский край: история и современность» (Астрахань) 1997г., ХУЛ Съезде физиологов России (Ростов-на-Дону) 1998г., Международных симпозиумах «Эколого-физиологические проблемы адаптации» (Москва, РУДН) 2001-2003 гг., на международной конференции, посвященной 55-летию Института возрастной физиологии РАО (Москва) 2000г., международной конференции «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург) 1999г., XVII Российской конференции по электронной микроскопии (Черноголовка) 1998г., конференции «Хроноструктура и хроноэкология репродуктивной функции» (Москва) 1999г., П Конгрессе по патофизиологии (Москва) 2000г., II Региональной научной конференции по органической химии (Липецк) 2000г., межрегиональной конференции "Физиологические проблемы адаптации" (Ставрополь) 2003г., Всероссийских конференциях "Эколош-биологические проблемы Волжского региона и Северного Прикаспия" (Астрахань) 1996-2003 гг. По результатам работы автору в 2000 году был предоставлен грант ФЦП "Интеграция", на средства которого осуществлена поездка в Японию для участия в работе XII Международного тиреоидного конгресса (Киото).

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Кондратенко, Елена Игоревна

ВЫВОДЫ

1. У интактных крыс интенсивность процессов свободнорадикального окисления и функциональная активность щитовидной железы имеют циркадианные колебания, не имеющие четкой зависимости от середины светлого и темного периодов суток.

2. Интенсивность свободнорадикальных процессов в печени у самцов крыс в условиях 60 часовой световой депривации уменьшается независимо от времени суток, а у самок - только ночью. Изменение параметров морфофункционального состояния щитовидной железы в условиях 60щ часовой световой депривации происходит у самцов независимо от времени суток, а у самок - только ночью. Обнаружено, что изменение интенсивности свободнорадикальных процессов в печени у взрослых крыс разного пола происходит в соответствии с изменением функциональной активности щитовидной железы.

3. У неполовозрелых самцов и самок крыс в условиях 60-часовой световой депривации увеличиваются уровень тиреоидных гормонов и содержание продуктов СРО в крови.

4. Увеличение интенсивности процессов перекисного окисления липидов у взрослых крыс при холодовом воздействии более выражено у самцов, чем у самок. Интенсификация свободнорадикальных процессов в условиях холодовой экспозиции зависит от времени суток: в середине ночи она выше, чем днем.

5. Холодовое воздействие, осуществляемое в середине темного периода суток, активизирует функцию щитовидной железы в большей степени, чем в дневное время.

6. Изменение интенсивности свободнорадикальных процессов и функции щитовидной железы у неполовозрелых крыс в условиях холодо-вой экспозиции происходит согласованно и не зависит от времени суток и пола животного.

7. Функциональная активность щитовидной железы изменяется периодически со сменой фаз эстрального цикла. Уровни продуктов ПОЛ в крови и печени тесно коррелируют между собой и имеют максимальные значения в периоды проэструса и метаэструса, а наименьшие значения — в фазах эструса и диэструса. Основные поведенческие параметры в тесте «открытое поле» у самок крыс изменяются согласованно со сменой фаз эстрального цикла.

8. В условиях-30-дневной световой экспозиции длительность эстрального цикла самок крыс увеличивается, в условиях 30-дневной постоянной темноты она не изменяется. Интенсивность перекисного окисления липидов уменьшается в крови и печени самок крыс в условиях световой депривации, а при световой экспозиции происходит рассогласование показателей СРО: в крови уровень промежуточных продуктов ПОЛ увеличивается, в печени содержание МДА и скорость его накопления уменьшаются.

9. В условиях 30-дневной световой экспозиции увеличивается уровень общих липидов, холестерина, триглицеридов в плазме крови самок. При этом исчезают их циркадианные различия. В условиях световой депривации околосуточные колебания уровней общих липидов и холестерина сохраняются такими же, как при естественной смене дня и ночи.

10. Экспериментально подтверждено формирование фолликулярных кист яичников при воздействии длительного круглосуточного освещения и показано, что причина изменения интенсивности свободнорадикальных процессов и функции щитовидной железы заключается в первичном нарушении деятельности эпифиза и яичников.

11. В условиях длительной круглосуточной световой экспозиции (117 сут.) уровень продуктов ПОЛ в крови увеличивается, а содержание МДА в ткани печени самок крыс и скорость спонтанного ПОЛ уменьшаются. Световая экспозиция способствует увеличению уровня холестерина и исчезновению циркадианных различий в содержании общих липидов в плазме крови.

Выражаю сердечную признательность научному консультанту — доктору биологических наук, профессору Давиду Львовичу Теплому за помощь и пристальное внимание в процессе моей работы над диссертацией.

Считаю своим приятным долгом выразить искреннюю благодарность идейному вдохновителю седьмой главы - доктору медицинских наук, профессору Владимиру Николаевичу Анисимову (Санкт-Петербург), а также сотрудникам и выпускникам кафедры анатомии и физиологии Астраханского государственного университета A.C. Дураловой, Д. А. Кругло-вой, С.П. Дегтяревой, H.A. Зайцевой, Т. Кузьминой, А. В. и С. В. Котель-никовым за плодотворную совместную работу.

Заключение

Таким образом, подводя итог экспериментальному исследованию влияния альтернативных условий освещенности на эндокринную и метаболическую сферы организма млекопитающих, необходимо отметить, что круглосуточная темнота и постоянное освещение неравнозначны как в направлении, так и в силе своих эффектов. Отсутствие светлого периода суток не отменяет характерных для контрольных животных околосуточных колебаний эндокринных и метаболических показателей, не нарушает репродуктивную функцию.

Условия круглосуточного освещения приводят к ломке биологических ритмов, по-видимому, за счет выключения функции эпифиза, а также к гиперэстрогенному состоянию и развитию на его фоне эндокринопатий. При длительном воздействии такого освещения во много раз повышается вероятность развития онкологических заболеваний эндокринной сферы. Практический аспект этой проблемы состоит в том, что требования современной жизни объективно приводят к удлинению светлого периода суток, причем спектральная характеристика источников искусственного освещения приближается к солнечному свету. Работа многих тысяч людей носит сменный или вахтовый характер. Обитатели тюрем, пациенты больниц и психиатрических клиник наряду с обслуживающим персоналом подвергаются действию круглосуточного освещения. Наконец, многие люди имеют привычку спать со включенным приглушенным светом и поэтому подвергают себя опасному хроническому воздействию.

На основании полученных экспериментальных данных предложена схема функциональных взаимосвязей эндокринных органов и свободноради-кальных процессов при изменении режима освещенности. В условиях естественной смены светлого и темного периодов суток эпифиз ограничивает интенсификацию свободнорадикальных процессов и повышение функциональной активности щитовидной железы. В условиях круглосуточного освещения и угнетения функции эпифиза возрастает

СХЕМА ФУНКЦИОНАЛЬНЫХ ВЗАИМОСВЯЗЕЙ ЭНДОКРИННЫХ ОРГАНОВ И СВОБОДНОРАДИКАЛЬНЫХ ПРОЦЕССОВ ПРИ ИЗМЕНЕНИИ РЕЖИМА ОСВЕЩЕННОСТИ

Щитовидная железа V

Естественный режим освещенности

ЭПИФИЗ V

СРО

ЯИЧНИКИ

Щитовидная железа

Световая экспозиция:

- тормозной эффект

- стимулирующий эффект - эффект отсутствует влияние яичников на процессы свободнорадикального окисления и тирео-идную функцию.

Анализ полученных результатов позволил нам сделать следующие выводы.

Библиография Диссертация по биологии, доктора биологических наук, Кондратенко, Елена Игоревна, Астрахань

1. Агаджанян H.A., Губин Г.Д, Губин Д.Г., Радыш И.В. Хроноархитекто-ника биоритмов и среда обитания. Тюмень, 1998.

2. Агаджанян H.A., Радыш И.В., Краюшкин С.И. Хроноструктура репродуктивной функции. М., 1998.

3. Акимов В.Г., Лашманова А.П. Поддержание высоких концентраций кортикостероидов в крови при помощи альфа-токоферола // Тез. докл. III Всесоюзн. конф. «Биоантиоксиданты». М., 1989. T. II. С. 51.

4. Алешин Б.В., Губский В.И. Гипоталамус и щитовидная железа. М., 1983.

5. Анисимов В.Н., Арутюнян A.B., Хавинсон В.Х. Влияние мелатонина и эпиталамина на активность системы антиоксидантной защиты у крыс // Докл. акад. наук. 1997. Т. 352. №6. С. 831-833.

6. Анисимов В.Н., Жукова О.В., Бениашвили Д.Ш., Биланишвили В.Г., Менабзе М.З., Гупта Д. Влияние светового режима и электромагнитных полей на канцерогенез молочной железы у самок крыс // Биофизика. 1996. Т. 41. №4. С. 807-813.

7. Анищенко Т.Г. Половые аспекты проблемы стресса и адаптации // Успехи совр. биологии. 1991. Т. 111. Вып. 3. С. 460-475.

8. Арушанян Э.Б. Эпифиз и организация поведения // Успехи физиологических наук. 1991. Т. 22. №4 С. 122-134.

9. Арушанян Э.Б., Боровкова Г.К., Конеев C.B., Терешкин О.В. Зависимость переобучения крыс в У-образном лабиринте и их чувствительности к галоперидолу от фазы эстрального цикла // Жури. высш. нерв, де-ят. 1988. Т. 38. №6. С. 1093-1097.

10. П.Арушанян Э.Б., Боровкова Г.К., Конеев C.B., Терешкин О.В. Зависимость переобучения крыс в У-образном лабиринте и их чувствительности к галоперидолу от фазы эстрального цикла // Журн. высш. нерв, де-ят. 1988. Т. 38. №6. С. 1093-1097.

11. Бабаянц А.Р., Аншина М.Б. и др. Перекисное окисление липидов сыворотки крови в различные фазы нормального менструального цикла // Акушерство и гинекология. 1985. №76. С. 45—47

12. З.Бабичев В.Н. Нейрогормональная регуляция овариального цикла. М.: Медицина, 1984.

13. Бабичев В.Н. Нейроэндокринология пола. М.: Наука, 1981.

14. Бабичев В.Н., Адамская Е.И. Изменение содержания моноаминов в различных областях гипоталамуса в зависимости от стадии эстрального цикла // Пробл. эндокринологии. 1976. Т. 22. №4. С. 44-49.

15. Бабичев В.Н., Перышкова Т.А., Озоль Л.Ю. Внутирклеточное распределение экстрадиолсвязывающих мест в гипоталамусе самок крыс в ходе эстрального цикла // Проблемы эндокринологии. 1983. Т.29. №6. С. 4651.

16. Бабичев В.Н. Самсонова В.М. Современные представления о механизме взаимодействия гипоталамо-гипофизарно-тиреоидной, и гипотала-мо-гипофизарно-гонадной систем в организме // Успехи современной биологии. 1983. Т. 95. Вып. 2. С. 281-291.

17. Баевский P.M. Прогнозирование состояний на грани нормы и патологии. М., 1979.

18. Балаболкин М.И. Эндокринология. М., 1998.

19. Балбатурин O.A., Жмакин И.К. Изменение кислородно-транспортной функции крови в динамике эстрального цикла у крыс // Физиол. журн. 1996. Т.82. №7. С. 93-99.

20. Березин В.А., Гербильский J1.B., Корниловская И.Н. Тиреоглобулин // Проблемы эндокринологии. 1993. Т. 39. С. 54-59.

21. Бобырев В.Н., Почерняева В.Ф., Стародубцев С.Г., Бобырева Л.Е. Специфичность систем антиоксидантной защиты органов и тканей основа дифференцированной фармакологии антиоксидантами // Эксперимент и клинич. фармакология. 1994. Т. 57. №1. С. 33-36.

22. Бондаренко Л.А. Влияние избытка и недостатка териойдных гормонов на уровень мелатонина в крови самцов крыс в условиях полового созревания. //Бюл. эксп. биол. и мед. 1991. С. 590-591.

23. Бондаренко Л.А. Современные представления о физиологии эпифиза // Нейрофизиология. 1997. Т. 29. №3. С. 212-327.

24. Буреш Я., Бурешова О., Хьюстон Д.П. Методики и основные эксперименты по изучению мозга и поведения. М., 1991.

25. Буреш Я., Бурешова О., Хьюстон Д.П. Методики и основные эксперименты по изучению мозга и поведения. М., 1991.

26. Бурлакова Е.Б., Храпова Н.Г. Перекисное окисление мембран и природные антиоксиданты//Биохимия. 1985. Т. 54. №2. С. 1840-1858.

27. Виноградова Е.П. Изменения в поведении животных при последовательной смене доминант, связанных с репродукцией // Физиол. журн. СССР им. И.М. Сеченова. 2000. Т. 86. №8. С. 979-985.

28. Виноградова Е.П., Чаадаева Е.В. Изменение уровня тревожности у самок белых крыс в течение астрального цикла // Журн. высш. нерв. деят. 1994. Т. 44. №2. С. 277-282.

29. Виноградова Е.П., Чаадаева Е.В. Изменение уровня тревожности у самок белых крыс в течение астрального цикла // Журн. высш. нерв. деят. 1994. Т. 44. №2. С. 277-282.

30. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М., 1972.

31. Волкова О.В., Миловидова Н.С., Петропавловская М.С. Становление фолликулогенеза в неонатальном периоде развития яичника // Арх. анатомии, гистологии и эмбриологии. 1987. Т. 92. Вып. 5. С. 71-77.

32. Волкова О.В., Структура и регуляция функций яичников. М., 1970.

33. Волчегорский И.А., Налимов А.Г., Яровинский Б.Г., Лифшиц Р.И. // Вопросы медицинской химии. 1989. №1. С. 127-131.

34. Воскресенский О.Н. Биофизические и физико-химические исследования в витаминологии. М., 1981. С. 115-127.

35. Вундер П.А. Половые различия в функционировании мозга и связанные с ними эффекты // Успехи совр. биол. 1978. Т. 86. Вып. 1(4). С. 129-142.

36. Вундер П.А., Сметанина М.Д. О механизме возникновения постоянного эструса у крыс после трансплантации яичников в среду с пониженной температурой // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1983. Т. 95. №3. С. 103-105.

37. Гилинский М.А., Колосова Н.Г, Петракова Г.М. Влияние стресса и стресс-протективных факторов на холодовую устойчивость и эффективность адаптации к холоду // Вестник РАМН. 1998. №10. С.22-25.

38. Гратынь В.А. Содержание моноаминов и активность некоторых ферментов в аркуатном ядре гипоталамуса у молодых и стареющих крыс на протяжении эстрального цикла // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1976. Т. 82. №7. С. 861-864.

39. Грищенко В.И. Роль эпифиза в физиологии и патологии женской половой системы. Харьков, 1979.

40. Демиденко Н.С., Мамина В.В. Реакция гипоталамуса и щитовидной железы на гипофизэктомию и механическое повреждение головного мозга //Проблемы эндокринологии. 1970. Т. 16.

41. Дитятева Г.В., Красновская И.А. Влияние окситоцина на тироциты крысы in vitro // Тез. докл. симп. «Физиологическое и клиническое значение регуляторных пептидов». Горький, 1990. С. 45.

42. Добровольская С.П. и др. О зависимости патологического процесса в печени крыс от фазы эстрального цикла. Томск, 1981. С. 159-161.

43. Држевецкая И.А. Основы физиологии обмена веществ и эндо-кринной системы. 3-е издание, перераб. и доп. М., 1994.

44. Дроздовская Т.Б., Блюдаин Ю.А., Вилкова В.А., Ещенко Н.Д., Путили-на Р.Н. Антиоксидантная роль тироксина // Тез. докл. III Всесоюзн. конф. «Биоантиоксиданты». М., 1989. Т. 1. С. 171.

45. Халиулин И .Г., Ю.Б. Лишманов, Л.Н., H.A. Барабаш. Ограничение интенсивности стресс-реакции в условиях теста открытого поля посредством адаптации крыс к холоду и физической нагрузке // Журн. высш. нерв. деят. 1993. Т. 43. Вып. 1. С. 1218-1224.

46. Караченцев А.Н., Мельченко И.А. Перекисное окисление липидов в аорте крысы при действии половых гормонов // Экспериментальная и клиническая фармакология. 1997. Т.60. №6. С. 13-16.

47. Карпезо H.A. Состояние гипоталамо-тиреоидной системы после воздействия на адрено- и холинорецепторы // Проблемы эндокринологии. 1990. Вып. 24. С. 48-53.

48. Кольс О. Р., Максимов Г.В. Ритмическое возбуждение в соматических нервах. М., 1987.

49. Колосова Н.Г., Куликов В.Ю. Влияние дексаметазона на распределение токоферола в организме // Бюл. Сибирск. отдел. АМН СССР. 1989. С. 93-95.

50. Колосова Н.Г., Куликов В.Ю., Матаев Р.Н. Гормоноподобные эффекты токоферола. Тез. Всесоюзн. конференции «Биоантиоксидант». Черноголовка. 1986. Т.2-С.220.

51. Колосова Н.Г., Куликов В.Ю., Матаев Р.Н. Гормоноподобные эффекты токоферола // Тез. докл. II Всесоюзн. конф. «Биоантиоксиданты». Черноголовка, 1986. С. 220.

52. Колосова Н.Г., Матаев Р.Н., Куликов В.Ю. Влияние а-токоферола на физико-химические свойства мембран клеток печени адреналэктомиро-ванных крыс // Бюл. эксп. биол. 1987. №7. С. 108-110.

53. Колосова Н.Г., Мельников В.Н., Шорин Ю.П., Хаснулин В.И. Роль све-топериодики и суочного ритма глюкокортикойдов в синхронизации колебаний свободнорадикального окисления липидов у крыс // Бюл. эксп. биол. 1983. №3. С.99-100.

54. Колосова Н.Г., Селятицкая В.Г., Куликов В.Ю., Шорин Ю.П. О механизме антистрессорного эффекта токоферола при действии холода. Механизмы адаптации растений и животных к экспериментальным факторам среды. Ростов на - Дону. 1987. С.61-62.

55. Колосова Н.Г., Шабалина И.Г., Соловьева H.A., Салганик Р.И. Содержание токоферола и продуктов перекисного окисления липидов в тканях крыс с наследственной способностью к гиперпродукции свободных радикалов // Бюл. эксп. биол. 1996. №3. С. 331-334:

56. Колосова Н.Г., Шорин Ю.П., Куликов В.Ю. Реакции перекисного окисления липидов в печени и легких крыс при долговременной адаптации к холоду. // Бюл. эксп. биол. 1981. №4. С.436-437.

57. Колосова Н.Г., Шорин Ю.П., Селятицкая В.Г., Куликов В.Ю. Механизм повышения надежности организма с помощью антиоксидантов. Надежность и гомеостаз биологических систем. Киев. Наукова думка. 1987. С.162-168.

58. Комаров Ф.И. Хронобиология и хрономедицина. М., 1989. С. 52-70.

59. Кондратенко Е.И., Дегтярева С.С., Ломтева H.A. // Материалы 2-й Все-росс. науч. конф. «Эколого-биологические проблемы Волжского региона и Северного Прикаспия». Астрахань, 1999. С. 49.

60. Кондратенко Е.И., Теплый Д.Л., Зайцева H.A. // Материалы 2-й Всеросс. науч. конф. «Эколого-биологические проблемы Волжского региона и Северного Прикаспия». 1999. С. 51.

61. Кондратенко Е.И., Теплый Д.Л., Маслов А.К. Экспериментальная оценка функционального состояния щитовидной железы белых крыс при введении антиоксидантов, трийодтиронина и их сочетаний // Ученые записки. 1996. №2. С. 47-55.

62. Константинова М.С. Морфофункциональные основы эволюции моно-аминэргических структур гипоталамо-гипофизарного комплекса позвоночных. Л., 1982.

63. Красновская И.А. Влияние тиролиберина на функциональное состояние нонапептидерического супраоптического ядра гипоталамуса у крыс // Тез. докл. симп. «Физиологическое и клиническое значение регулятор-ных пептидов». Горький, 1990. С. 99.

64. Красновская И.А. Нейроэндокринология. СПб., 1994. С. 49-65. Ч. II.

65. Красновская И.А. О функциональном различии крупноклеточных ней-росекреторных ядер гипоталамуса у крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1978. №7. С. 3-5.

66. Красновская И.А. Реакция некоторых нейросекреторных центров гипоталамуса крысы при охлаждении и введении тиролиберина // Проблемы эндокринологии. 1984. Т. 30. №2. С. 52-55.

67. Красновская И.А., Воропанова Л.С., Поленов А.Л. Блокирующее влияние адреналина на тиростимулирующий эффект вазопрессина у крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1993. Т. 115. №2. С.142-144.

68. Кремневская С.И., Гельман В.Я., Зацепин Э.П., Королев С.М. Выделение различных компонентов ориентировочной реакции крыс в условиях открытого поля // Физиол. журн. СССР им. И.М.Сеченова. 1991. Т. 77. №2. С. 124-129.

69. Кремневская С.И., Гельман В.Я., Зацепин Э.П., Королев С.М. Выделение различных компонентов ориентировочной реакции крыс в условияхоткрытого поля» // Физиол. журн. СССР им. И.М. Сеченова. 1991. Т. 77. №2.

70. Кузьмёнко И.В., Куница Н.И., Донченко Г.В. Влияние токоферола, его аналогов и антЬоксиданта ионола на перекисное окисление липидов in vitro // Украинский биохимический журнал. 1993. Т. 65. №3. С. 94-99.

71. Лакин Г.Ф; Биометрия. М., 1980.

72. Ланкин В.З., Герасимов E.H., Касаткина Л.В., Тихадзе А.К. и др. Перекиси липидов и атеросклероз, ферментативная детоксикация перекисей липидов в крови больных ИБС, обусловленной атеросклерозом коронарных артерий //Кардиология. 1977. №6. С. 71-74.

73. Ланкин В.З., Тихадзе А.К., Согоян С.М. Вихерт A.M. Роль антиокси-дантных ферментов в патогенезе атеросклероза //Тез. докл. II Всесоюзн. конф. «Биоантиоксиданты». Черноголовка, 1986. С. 29.

74. Линчевская A.A., Яхнина Д.Н. Содержание свободных жирных кислот и перекисное окисление липидов при воздействии холода и введении а-токоферола // Патол. физиология и эксперим. терапия. 1986. №5. С. 1012.

75. Ловчиков В.А., Липовский С.М., Стрельцова H.A., Алтухов В.В. Динамика возбудимости нервной системы и уровень овариальной секреции вразличные фазы астрального цикла у белых крыс // Физиологический журнал. 1978. Т. 24. №1. С. 115-118.

76. Макина Д.М. Исследование непосредственного влияния окситоцина на функциональное состояние фрагментов щитовидной железы в динамике in vitro // Тез. 4-ой Всероссийской конференции «Нейроэндокриноло-гия-95». СПб., 1995. С. 80.

77. Маленысих Л.Б., Паливода О.М., Донченко Г.В. Исследование механизма действия альфа-токоферола на дыхание митохондрий // Тез. докл. III Всесоюзн. конф. «Биоантиоксиданты». М., 1989. Т. I. С. 57.

78. Маркель А.Л. К оценке основных характеристик поведения крыс в тесте «открытого поля» // Журн. высш. нерв. деят. 1981. Т. 31. №2. С. 301— 307.

79. Милку, Вайсмер Л., Костинер Э.//Пробл. эндокринол., 1993, №2, С. 4348.

80. Миронова Г.Л., Сирота Т.В. Участие пероксидазы и опосредованного цитохромоксидазой действия кислорода в процессе образования АТФ // Биофизика сложных систем и радиационных нарушений. М., 1977. С. 228-236.

81. Науменко Е.В., Попова Н.К. Серотонин и мелатонин в регуляции эндокринной системы. Новосибирск, 1975. 220 С.

82. Нестеров Ю.В. Сурфактантная система легких и перекисное окисление липидов при стресс-индуцирующих воздействиях. Астрахань, 1998.

83. Панин Л.Е., Шабалина И.Г., Колпаков А.Р., Колосова Н.Г., Соловьвев

84. B.Н. Энергетическое состояние печени крыс в динамике адаптации к холоду//Биохимия. 1995. №3. С.323-329.

85. Плинер Л.И., Ледовская С.М. Морфологические изменения щитовидной железы крыс в различных фазах эстрального цикла // Арх. анатомии, гистологии и эмбриологии. 1975. Т. 69. Вып. 8. С. 86-89.

86. Поленов А.Л. Взаимодействие пептидных и моноаминовых нейрогор-монов основной принцип двойной нейроэндокринной регуляции // Успехи физиологических наук. 1979. Т. 10. №1. С. 28-53.

87. Поленов А.Л. Гипоталамическая нейросекреция. Л., 1968.

88. Полыпин В.В., Мхитаров В.А. Зависимость двигательной активности самок белых крыс от эстрогенных гормонов // Физиол. журн. СССР им. И.М. Сеченова. 1984. Т. LXX. №2. С. 138-140.

89. Пошивалов В.П. Экспериментальная психофармакология агрессивного поведения. Л., 1986.

90. Радченко Н.Д. и др. О роли матки в реализации циклической функции яичников у человека // Проблемы эндокринологии. 1982. Т. 28. №6.1. C. 42-47.

91. Ракицкая В.В., Проймина Ф.И., Чудинов Ю.В. Адренергическая иннервация матки крысы в различные фазы эстрального цикла // Физиол. журнал им. И.М. Сеченова. 1986. Т. 72. №7. С. 987-991.

92. Рачев P.P.; Ещенко Н.Д. Тиреоидные гормоны и субклеточные структуры. М., 1975.

93. Розен Б.В. Основы эндокринологии. М., 1980.

94. Ром-Бугославская Е.С. Эпифиз и щитовидная железа // Пробл. эндокринологии, 1988. С. 60-66.

95. Ром-Бугославская Е.С., Гончарко О.Ю. //Пробл. эндокринол., 1983, №3, С. 54-58.

96. Ром-Бугославская Е.С., Озерова М.Р. // В кн.: Химия, биохимия и фармакология производных индола. Тбилиси, 1981, С. 169.

97. Савченко О.Н., Проймина Ф.И. Взаимосвязь циркадных и овуля-торных ритмов секреции половых и гонадотропных гормонов // Проблемы эндокринологии. 1985. Т. 31. №6. С. 62-65.

98. Садыкова М.Ш., Зигизмунд В.А., Моисеева О.М. и др. Функциональное состояние гипоталамо-яичниковой и тиреоидной систем в динамике менструального цикла // Акушерство и гинекология. 1987. Т. 29. №6. С. 46-51.

99. Самохвалова Т.Н. Роль взаимодействия стриатума и гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы в регуляции адаптивного поведения у крыс. Ставрополь, 1999.

100. Сапронов Н.С., Федотова Ю.О. Влияние L-триптофана на условно-рефлекторное обучение и поведение крыс при экспериментальной патологии щитовидной железы // Жури. высш. нерв. деят. 2001. Т. 51. №3. С. 367-372.

101. Сейфулла Р.Д., Борисова И.Г. Проблемы фармакологии антиокси-дантов// Фармакология и токсикология. 1990. Т. 53. №6. С. 3-10

102. Семенова Т.П. Роль взаимодействия серотонин- и норадренергиче-ской систем в регуляции поведения // Жури. высш. нерв. деят. 1997. Т. 47. №2. С. 358-361.

103. Серкиз Я.И., Ковтун T.B. Сверхслабое свечение альфа- и бета-липопротеидов плазмы крови крыс на разных стадиях астрального цикла // Физиологический журнал. 1978. Т. 24. №4. С. 560-562.

104. Сиднева Д.Д. Роль гипоталамуса в восстановлении функциональной активности системы гипофиз-щитовидная железа после введения тиреоидина // Проблемы эндокринологии. 1972 Т. 18. №2. С. 71-74.

105. Сидорова И.С., Логвиненко Н.В. Овариальный цикл и его регуляция // Проблемы эндокринологии. 1987. Т. 33. №3. С. 86-90.Скулачев В.П. Кислород в живой клетке: добро и зло // Соросовский образовательный журнал. 1996. №3. С. 4-11.

106. Смирнова И.О. Экспериментальные основы лечения мастопатии микродозами йода. М., 1966.

107. Соколов E.H., Незлина Н.И., Полянский В.Б., Евтихин Д.В. Ориентировочный рефлекс: «реакция прицеливания» и «прожектор внимания» // Журн. высш. нерв. деят. 2001. Т. 51. №4. С. 421-437.

108. Сперанская Н.В., Фанченко Н.Д. Современные представления о нейроэндокринном контроле менструального цикла // Акушерство и гинекология. 1987. №5. С. 12-17.

109. Ставицкая Д.И. Молекулярные и функциональные основы онтогенеза. М., 1970.

110. Стальная Д.Д., .Гаришвили Т.Г. Метод определения малонового ди-альдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты // Современные методы в биохимии. М., 1977.

111. Сторожок Н.М., Храпова Н.Г. Совместное действие токоферола и фосфолипидов на окисление многокомпонентных липидных систем природного происхождения // Тез. докл III Всесоюзн. конф. «Биоанти-оксиданты». М., 1989. Т. II. С. 23.

112. Теплый Д.Л. Влияние витамина Е на нейросекреторные клетки гипоталамуса белых крыс // Цитология. 1990. Т. 32. №12. С. 1161-1167.

113. Тёплый Д.Л. Влияние витамина Е на нейросекреторные клетки гипоталамуса белых крыс// Цитология. 1990, Т. 32, №12. С.1161-1167.

114. Теплый Д.Л. К механизму влияния витамина Е на проницаемость гемато-энцефалического барьера // Физиол. журнал СССР. 1979. Т. 65. №10. С. 1506-1512.

115. Теппермен Дж., Теппермен X. Физиология обмена, веществ и эндокринной системы. Вводный курс / Пер. с англ. М., 1989.

116. Туракулов Я.Х. Щитовидная железа // Физиология эндокринной системы. Руководство по физиологии. Л., 1979. С. 52-55.

117. Туракулов Я.Х., Буриханов Р.Б. Участие норадреналина в регуляции функциональной активности щитовидной железы кроликов // Проблемы эндокринологии. 1993. Т. 39. №4. С. 45-48.

118. Тюрин В.А., Корольков С.Н., Каган В.Е. Трансбислойное распределение альфа-токоферола и асимметрия липидов в мембранах нервной ткани // Биохимия. 1989. Т. 54. Вып. 6. С. 940-947.

119. Фанченко Н.Д., Анашкина Г.А., Бибикова А.Д., Кубанова А.Г. О роли матки в реализации циклической функции яичников // Проблемы эндокринологии. 1982. №5. С. 42-45.

120. Федотова Ю.О. Сравнительная характеристика процессов обучения и поведения в условиях повышенного уровня половых гормонов. СПб., 1998.

121. Фёрдман Т.Д. Содержание половых гормонов в моче и витамина Е в крови у женщин с преждевременными родами. Киев, 1963.

122. Физиология человека / Пер. с англ.; Под ред. Р. Шмидта и Г. Тевса. М., 1996. Т. 2. С. 394-412.

123. Фильгус Т.А., Кожевников В.Н. Изучение эстрального цикла крыс при облучении шейки матки гелий-неоновым лазером. Тюмень, 1980. С. 69-73

124. Харабаджахьян A.B., Кожин A.A. К эндокринной регуляции экспериментального поликистоза яичников у крыс // Проблемы эндокринологии. 1983. Т. 9. №5. С. 166-173.

125. Ходоровский Г.И. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1976. Т. 82. №9. С. 1110.

126. Храпова Н.Г. Перекисное окисление липидов и системы, регулирующие его интенсивность // Биохимия липидов и их роль в обмене веществ. М., 1981. С. 147-155.

127. Храпова Н.Г. Перекисное окисление липидов и системы, регулирующие его интенсивность // Биохимия липидов и их роль в обмене веществ. М., 1981. С. 147-155.

128. Хронобиология и хрономедицина / Под ред. Ф.И. Комарова. М., 1989. С. 52-70.

129. Чернышева М.П. Гормоны животных. Введение в физиологическую эндокринологию. СПб., 1995.

130. Чумаченко П.А. // Проблемы эндокринологии. 1977. Т. 23. №1. С. 65.

131. Шамовский И.JI, Яровская И.Д. Теоретическое исследование кон-формационной лабильности молекулы токоферола // Хим.-фармацевт. журнал. 1990. Т. 24. №2. С. 100-103.

132. Шелудько В.В., Курьянова Н.Н. Изменение тканей и органов женщин, погибших от алкогольной интоксикации // Естественные науки. Астрахань, 2001. №3. С. 91-92.

133. Шорин Ю.П., Селятицкая В.Г., Колосова Н.Г., Куликов В.Ю. Влияние а-токоферола на реакцию надпочечников при холодовом стрессе // Бюл. эксп. биол. 1985. №6. С.669-670.

134. Шорин Ю.П., Селятицкая В.Г., Колосова Н.Г., Куликов В.Ю. О механизмах адаптогенного эффекта токоферола при длительном действии холода//Физиол. журнал. 1986. Т.32. Вып.2. С. 184-188.

135. Эскин И.А., Самсонова В.М. О роли паравентрикулярных ядер гипоталамуса в регуляции тиреотропной функции гипофиза // Проблемы эндокринологии. 1967. Т. 13. №1. С. 56-60.

136. Abalovich М., Repetto М., Loto М., Llesuy S., Alcaraz G., Gutierrez S. Peripheral parameters oxidative stress in graves' disease. The effects of methimazole and 131 iodine treatments // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 145.

137. Alfonso M., Duran R., Marco J. Ethanol-induced alterations in gonadonrophins secretion during the estrous cycle of rats // Alcohol-Alcohol. 1993 Nov. V. 28. №6. P. 667-674.

138. Ali M.K., Tayyab S. Calcium-induced bilirubin-dependent hemolysis of human erythrocytes // Biochim-Biophys-Acta. 1997. May 22. 1326(1). P 124-130.

139. Ambadkar P.M., Killendar S.J., Raval A.R. Influences of oestrous cycliciny on some aspects of carbohydrate metabolism // Indian J. Exp. Biol. 1994 Feb. V. 32. №2. P. 89-91.

140. Andersen H.R., Nielsen I.B., Nielsen F., Grandjean P. Antioxidative enzyme activities in human erithrocytes // Clin-Chem. 1997. V. 43. №4. P. 562-568.

141. Aza-Blanc P., Di-Lauro R., Santistebaw P. Identification of a cis regulatory element and thyroid peroxidase promoter activity // Mol. Endocrinol. 1993. V. 7. №10. P. 1297-1306.

142. Bagchi N., Brown T.R., Herdegen D.M., Dhar A., Sundick R.S. Antioxidants delay the onset of thyroiditis in obese strain chickens // Endocrinology. 1990. V 127. №4. P. 1590-1595.

143. Bagchi N., Fawcelt D.M. Selenium deficiency, thyroid hormone metabolism, thyroid hormone deiodinases // Biochim. Biophys.Acta. 1973. V. 318. P. 235-251.

144. Bagchi N. Shivers B., Brown T.R. Effects of castration and sex steroids on the thyroid response to thyrotropin // Endocrinology. 1984. V. 114. №9 (5). P. 1652-1656.

145. Bartsch H., Bartsch C., Mecke D., Lippert T. Seasonality of pineal melatonin production in the rat: possible synchronization by the geomagnetic field // Chronobiol-Int. 1994. V.l 1. №1. P. 21-26.

146. Bastianelli E., Pochet R. Sexual dimorphism among calbindin-D28K im-munoreactive cells in the rat pineal body // Histochemistry. 1993. V.l00. №6. P. 449-455.

147. Bionti B., Fazio S., Napoli R., Palmieri E.A., Cittadini Angellottti G. A., Sacca L., Lombardi G. Effect of thyroid hormone on cardiac function // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.78.

148. Bolliet V., Begay V., Ravault J.P., Ali M.A., Collin J.P., Falcon J. Multiple circadian oscillators in the photosensitive pike pineal gland: a study using organ and cell culture // J-Pineal-Res. 1994. V.16. №2. P.77-84.

149. Bonnyns M. Thyroid gland and female sexual.function // J.Cynecol. Obstet. Biol. Reprod. Paris. 1982. V. 11. №4. P. 457^169.

150. Boucharev B., Kharoubi M., Khiat A., Touitou Y. Thyroid hormones and TSH circadien rythm during ramadan fasting // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.175.

151. Brainard G.C., Barker F.M., Hoffman R.J., Stetson M.H., Hanifin J.P., Podolin P.L., Rollag M.D. Ultraviolet regulation of neuroendocrine and cireadian physiology in rodents // Vision-Res. 1994. V.34. № 11. P. 15211533.

152. Brsesinski A. The "darkness hormone" letter. // Fertil-Steril. 1993. V.60. №5.P.927-928.

153. Cardoso L.C., Martins D.CL., Figueiredo M.DL., Campos D. VB., Rosenthal D., Vaisman M., Violante A. HD., Carvalho D.P. Ca+2 /NADPH-Dependent H2O2 generation is inhibited by iodid human thyroids // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 154.

154. Carrasco N. Iodide transport in the thyroid gland // Biophys acta. 1993. V. 1154. P. 65-82.

155. Carvalho D.P., Ferreira C.F., Cardoso C., Figueriredo D.L. Hydrogen peroxide generation in human thyroids and pendred syndrome // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.101.

156. Centanni M., Viceconti N., Luisi S., Reis F.M., Gargano L.thyroid homeostasis affects serum inhibit a and activin a levels // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.230/

157. Chakraborti P., Bhattacharva S. Influence of gonadotropins gonadal hormones on climbling perch thyroid nucleic acid // Endocrinologie. 1982. V. 80. №2. P. 213-219.

158. Chambard M., Gabrion J., Mauchamp J. Thyroid monolayer system //J. Cell. Biol. V. 91. P. 157-166.

159. Chazenbalk G., Nagayama Y., Rauafman K.D. and Rapoport B. The receptor for the TSH in rat thyroid cells // Endocrinology. 1990. V. 127. P. 1240-1244.

160. Cheng Sheue-yann. Thyreoid hormon reseptors and cofactors // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.79.

161. Childs G.V., Westund K.N., Unabia G. Chracterisation of anterior pituitary target cells for argenine vasopressin, including cells that store adrenocorticotropin, thyrotropin, and both hormones // Endocrinol. 1989. V. 125. P. 554-559.

162. Chomincka L.K. Biogenic amines and the activity of the hypotalamo-pituitary-ovarian axis in ewes // J. Physiol. Pharmacol. 1992 Dec. V. 43. №4. Suppl. 1. P. 57-68.

163. Chow S.Y., Yen-Chow Y.S., White H.S., Woodbury D.M. Rapid stimulation of J efflux in FRTL-5 Cells // Am. J. Physiol. 1986. V. 250. P. E464-E469.

164. Clin. Chim. Acta. 1994. V. 225. №2. P. 123-36.

165. Cohen M., Rossele D., Chabner B., Schmidt T.J. Lippman M. Evidens for a cytoplasmic melatonin receptor // Nature , 1978. p. 894-895.

166. Consiglio E., Acquaviva A.M., Formisano S. et al. Mechanism of maturation thyroglobulin // J. Biol. Chem. 1987. V. 262. №21. P. 1030410314.

167. Cortorn J., Valdes G. Variations in uterine kallikreine during cycle and early pregnancy in the rat // Biol.Reprod. 1994 Jun. V. 50. №6. P. 12611264.

168. Costa V.M.C., Moreira D.G., Rosenthal D. Effect aging pituitary-thyroid fuction // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 173.

169. Criasuddin A.S.M., Dip)ock A.T. The influence of vitamin E and selenium on the grouth and plasma membrane permeability of mouse fibroblasts in culture //Arch. Biochem. Biophys. 1979. V. 196. P. 270-280.

170. Cruffat D., Gonzalvez S., Chabaud O. Thyroperoxidase and Thyroid Autoimmun Deseases. Paris; London, 1990. P. 137-138.

171. D. van der Heide, Schroder J.P. — van der Elst. The thyroid, thyroid hormones and flavonoids // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 78.

172. De La Vieja A., Ginter C.S., Carrasco N. Several hydroxyl-containing amino acid residues in transmembrane segment IX are important for sodium/iodide symporter activity // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 162.

173. De La Vieja A., Ginter C.S., Carrasco N. Topology the sodium/iodide symporter // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 162.

174. De Proso N.D., Melgar M. //J. Endocr. 1975. V. 66. P. 295-296.

175. Dindiaev S.V., Pogorelov Iu.V. The intraorganic complex of bioamine supply (ICBS) to the ovaries: its component elements and their cooperation // Usp. Fiziol. Nauk. 1993 Oct-Dec. V. 24. №4. P. 71-78.

176. Diploclc A.T. The role of vitamin E in biological embranes: Biology of vitamin E. Pitman Book. London, 1983. P. 45-55.

177. Djurjevic Dj., Molnar O., Gvozdic D. Effects of various quantities of dietary iodine on total serum T3 and T4 in gilt's during various phases of the reproductive cycle// Glas. Srp. Acad. NaukaMed. 1992. №42. P. 123-129.

178. Doan A., Urbanski H.F. Diurnal expression of Fos in luteinizing hormone-releasing hormone neurons of Syrian hamsters // Biol. Reprod. 1994 Feb. V. 50. №2. P. 301-308.

179. Donnelly H., Saibaba P. Light intensity and the oestrus cycle in albino and normally pigmented mice. // Lab. Anim. 1993 Oct. V. 27. №4. P. 385390.

180. Dow R.C., Williams B.C., Bennie J., Carrol S., Fink G. A central 5HT2 receptor mechanism plays a key role in the proestrous surge of luteinizing hormone in the rat // Psychoneuroendocrinology. 1994. V. 19. №4. P. 395399.

181. Downs L.G., Zani V., Wills J.M., Crispin S.M., Boltone C.H. Changes in plasma lipoprotein during the oestrous cycle on the bitch // Res. Vet. Sci. 1994 Jan. V. 56. №1. P. 82-88.

182. Eison A.S., Eison M.S. Serotonergic mechanisms in anxiety // Progr. Neuro-Psychopharmacol. & Biol. Psychiatry. 1994. Vol. 18. P. 47-62.

183. Eldon J. Effect of exogenous melatonin andexposure to a ram on the time of onset and duration of the breeding season in the Icelandic sheep // J. Reprod Fertil. 1993 Sep. V. 99. №1. P. 1-6.

184. Endo T., Shimura H., Ohmori M., Onaya T. Expression mechanism of thyroid-selective proteins in the thyroid // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.87.

185. Engler H., Reisen W.F., Keller B. Anty-thyroid peroxidas (anti-TPO) antibodies in thyroid diseases, non-thyroidal illness and controls. Cinical validity of a new commercial method for detection of anti-TRO (thyroid microsomal) autoantybodies

186. English J., Arendt J. Characterizetion of melatonin binding site in the rat hipothalamus using 2-(125I)-idomelatonin // Chinse J. Physiol. 1988. No. 4 P. 236.

187. Fayet G., Hovsepian S. Wortmannin and hexamethylene bisacetamide: two positive modulators of NIS biolojical activity // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.165.

188. Ferriera A.C.F., Moraes J.M., Carvaiho D.P. thyroperoxidase inhibitory flavonoids and their H202 scavengigng effects // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 174.

189. Field J.B., Ealy PA., Marchall N.J., Cockcroft.S.E. Thyroxine excess and pregnancy // J. Biochem. 1987. V. 247. P. 119-124.

190. Fields M., Lewis C. G. Impraired endocrine and exocrin pancreatic functions in copper-deficient rats: the effect of gender // I. Am.-Coll-Nutr. 1997. V. 16. №4. P. 346-351.

191. Ford D.H., Gross J. The metabolism of ,31J-labeled thyroid hormones in the hypophysis and brain of the rabbit. // Endocrinol. 1985. V. 62. P. 416436.

192. Frane L., Girand A., Lanet J. Formation of thyroid hormones // Eidocrinology. 1990. V. 126. №3. P. 1464-1470.

193. Frawley L.S., Leong D., Neill J.D.Oxytoxin attenuates TRH-induced TSH-release from rat pituitary pells // Neuroendocrinol. 1985. V. 40. №3. P. 201-204.

194. Fuse Y., Polk D.H., Lam R.W., at al. Distribution of thyrotropin releasing hormone (TRH) and precursor peptide (TRH-Gly) in adult rat tissue //Endocrinology. 1990. V. 127. P. 2501-2505.

195. Gaberscek S., Pezdire M., Kalisnik M., Hojker S. Influens lithium on cell growth and viability in three different cell systems // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.141.

196. Galton V.1A. Deiodination is important modulator of thiroid hormone action in vertebrate species // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.89.

197. Gareia B., Santisteban P. IGF-I inhibits TSH stimulation of sodium iodid symporter (NIS) transcription // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 164.

198. Gauer, F., Masson-Pevet, M., Pevet, P. The NMDA1 antagonist MK-801 blocks light effect on melatonin receptor density in rat suprachiasrnatic nuclei //Neurosci-Lett. 1994. V. 171. №1-2. P. 24-26.

199. Gillman A.G. TSH increase J" accumulation // Annu. Rev. Biochem. 1987. V. 56. P. 615-649.

200. Golstein P., Abramov M., Dumont J.E., Beauwens.R. J" transport by bovine thyroid membrane vesicles // Am. J. Physiol. 1992. V. 263. P. 590597.

201. Grosse J., Maywood E.S., Ebling F.J., Hastings M.H. Testicular regression in pinealectomized Syrian hamsters following infusions of melatonin delivered on non-circadian -schedules // Biol-Reprod. 1993. V.49. № 4. P. 666-674.

202. Guerin M. V., Napier A. J., Matthews C. D. Effect of exogenous melatonin and extending the dark period at dusk before the summer solstice on the onset of oestrus in Romney marsh ewes // J. Reprod. Fertil- 1994 May.1. V. 101. № l.P. 145-150.

203. Helliwel R.J., Williams L.M. The development of melatonin-binding sites in the ovine fetus // J. Endocrinol. 1994. V. 142. P. 475-484.

204. Henault M.A., Killian G.J. composition and morphology of lipid dropletsfrom oviduct epithelial cells.// Anat. Rec. 1993 Dec. V. 237 №4. P. 466-474.

205. Hinkle P.M., Yu R., Romoser V.A., Zhu C., Smith J. Molecular mechanism^ if TRH action // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.95.

206. Hoffmann J.C. // Biology of reproduction. V. 5. №4. 1973 May. P. 473480.

207. Hojvat S., Emanuele N., Baker G., et. Al. Brain thyroidstimulating-0 hormone: effects of endocrine manipulations // Brain Res. 1985. V. 360. №.1,2. P. 257-263.

208. Houssay A.B., Pazo J.H., Epper C. E. Effects of the pineal gland upon their hair cycles in mice // J. Invest. Dermatol. 1966. V.47 P. 230-234.

209. Husmark J., Nilsson O., Grande M., Nilson M. N-cadherin expression in normal and neoplastic thyrocytes // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 182.

210. Iff H.W., Willbrandt W. Thyroid secretion // Biochim. Biophys. Acta. 1963. V. 70. P. 711-752.

211. Inoue H., Oshimo K., Miki H., Kawano M., MondenY. Immounohitoistochemical study of estrogen receptors and the responsiveness to estrogen in papillary thyroid carcinoma // Cancer. 1993. V. 72. №4. P. 1364-1368.

212. Inoue H., Oshimo K., Miki H., Monden Y., Morimoto T. Sex hormone receptors in human thyroid tissues // Cancer. 1990. V. 66. № 8. P. 17591762.

213. Ireland J.L., Good T.E, Knite P.G., Ireland J.J. Alterations in amounts of different forms of inhibin during follicular atresia.// Biol. Reprod. 1994 Jun. V. 50. № 6. P. 1265-1276.

214. Isabelle B., Marie-Therese G-P., Micheline M. Mechanism if the polarized traffic of the TSH receptor // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 182.

215. Ishibashi T., Hahn D.W., Srivastava L. et al. // Proc. Soc. Exp. Biol (N. Y.), 1966, v. 122, p. 644-647.

216. Jaldo Alba.F., Munoz H.A., Molina-Carballo A., Molina-Font J.A., Acuna-Castroviejo D. Light deprivation increases plasma levels of melatonin during the first 72 h of life in human infants // Acta-Endocrinol-Copenh. 1993. V.129. №5. P. 442-445.

217. Jansen M., Krenning E.P., Dostdijk W. et al. Thyroid hormone metabolism. Lancet. 1994. V. 162. № 8303. P. 849-851.

218. John T.M., Brown M.C., Widernan L., Brown G.M. Melatonin replacement nullifies the effect of light-induced functional pinealectoniy on nociceptive rhythm in the rat // Physiol-Behav. 1994. V.55. № 4. P. 735-739.

219. Juvenal G., Noseda P., Thomasz L., Pisarev M.,Bocanera L., Agot M. Norepinephrine inhibits thyroglobuline synthesis // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.221.

220. Kaiserling E., Schafer R., Weckermann J. Brown bowel syndrome with manifestation in the gastrointestinal tract and thyroid gland // Pathol. Res. Pract. 1988. V. 183. № 1. P. 65-79.

221. Kambe F., Iseki A., Okumura K., Seo H. Regulatin of thyroid follicular cell function intracellular redox-activ copper // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.242.

222. Kaminsky S.M:, Levy O., Salvador C., Dai G., Carrasco N. The Na/K symporter of the thyroid gland // Soc. Gen. Physiol. Ser. 1993. №8. P. 251— 262.

223. Kanematsu N., Honma S., Katsuno Y., Honma K. Immediate response to light of rat pineal melatonin rhythm: analysis by in vivo micro-dialysis // Am J - Physiol. 1994. V.66. №6. P. 1849-1855.

224. Kao P.S. Intraoperative monitoring of parathyroidectomy with an automatic commercially available ptf assay // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 174.

225. Kaufman D.L., Mitchell J.A. Intrauterine oxygen tension during the oestrous cycle in the hamster: patterns of change // Comp. Biochem. Phisiol A. 1994 Apr. V. 107. № 2. P. 956-964.

226. Kennett G.A., Dickinson S.L., Curson G. Enhansement of some5-HT-dependent behavioural responses following repeated immobilization in rats // Brain Res. 1985. Vol. 330. P. 253-263.

227. Kim C.Y., Wakabayashi K., Nobunaga T. Time-depended ovulation-bloking effect of ether anesthesia differs from pentobarbital in rats // Tohoku. J. Exp. Med. 1994 Mar. V. 172. № 2. P. 237-242.

228. Klencki M., Slowinska-Klencka D., Kunert-Radec J., Lewinski A. Mela-tonin-induced decrase of the size of thirocyte nuclei in rat thyroids incubated in vitro // Citobios.1994. V.78 P. 159-162.

229. Kocic G., Pavlovie D., Kocic R., Cvetkovie T., Jevtovic T., Stojanovic I. The relationship between xanthin oxidase and thyroid hormones during hypo and hyperthyroidism // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 132.

230. Kocic R., Pavlovie D., Kocic G., Radencovic S., Mikic D. Cu, Zn, superoxide dismutase and lipid peroxidation in erytrocytes are better predictors than serum changes in recent onset hyperthyroidism // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.232.

231. Koehrle J., Baur A., Winzer R., Grimmer G., Feustel H., Schutzler C. Expression of type II 5-deiodinase (5 DIL) and plasma glutathione peroxidase (PGPX)transcripts in human thyroid // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.175.

232. Korf H.W. The pineal organ as a component of the biological clock. Phylogenetic and ontogenetic considerations // Ann-N-Y-Acad-Sci. 1994. V.719. P. 13-42.

233. Kosugi Shinji. Sodium/iodid symporter gene mutations causing iodide transport defect//Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.81.

234. Krawczuk-Rubakowa M., Urban M. Hormonal evalution of the functional state of the gonads, thyroid and adrenal glands in obese children // Pediatr. Pol. 1985. V. 60. №8. P. 558-564.

235. Krotewicz M., Lewinski A., Wajs E. The inhibitory effect of late afternoon melatonin injections, but not of melatonin-containing subcutaneous implants, on thyroid hormone secretions in male Wistar rats // Neuroendocrinol. 1992. № 14. P. 405-411.

236. Krotewicz M., Lewinski A. Effects of pinealectomy and of late afternoon injections of pineal indol substanses on thyroid hormon secretion in male Wistar rats // Biomed. 1994. Lett.50. P. 101-107.

237. Krotewicz M., Lewinski A. Thyroid hormone secretion in male Wistar rats treated with melatonin and/or thyrotropin; dependens of effects on the used doses. Neuroendocrinol. 1994. № 16. P. 263-268.

238. Kundurovic Z., Mornjacovic Z. Morfometric characteristics of thyroid cells in irradiations-stressed rays treated with pinealectomy and melatonin (In Serbo-Croatian-Roman). // Med. Arh.l992.V.46 P.9-10.

239. Lange P., Beneduce L., Moreno M., Lombardi A., Silvestri E., Goglia F., Lanni A. Thyroid state and uncoupling protein 3 levels in mitohondria from diferent rat tissues // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 168.

240. Laurent E., Moekel J., Van Sande J., Graff J., Dumont J.E. ActD stimulated accumulation of J // Mol. Cell. Endocrinol. 1987. V. 52. P. 273.

241. Leadem C.A., Burns D.M. // The Pineal Gland and Cancer. Eds. Gupta D., Attanasio A., Reiter R.J. London: Brain Res promotion ,1998. P. 221.

242. LencsesG.,Mezes M. Effect of sexual steroids on lipid and lipidsoluble vitamin transport in domestic fowl // Acta Vet. Acad. Sci. Hung. 1982. V. 30. №4. P. 213-216.

243. Lewinski A., Sewerynek E. Melatonin inhibits the basal and TSH-stimulated mitotic activity of follicular cells in vivo and in organ culture // J. Pineal Res. 1986. V.3 P. 291-299.

244. Lewinski A., Powlikowski, M. Melatonin Suppression of colloid droplet formation in the thyroid is not related to the alteration of prostacycylin synthesis // J. Pineal Res. 1986 . V. P. 285-289.

245. Lewinski A., Sewerynek E., Kunert-Radek J., Pawlikowski M. Karasec E. Influens of melatonin and N-acetylserotonin on the cyclic AMP consen-tration in the rat thyroid lobated in vitro // J.Pineal Res. 1989. V.7. P. 55-61.

246. Lewinski A., Wajs E., Mordrzejewska H., Klencki M., Karbownik M. Greger J. Ingibitori influens of melatonin on thymidin kinase activity in the rat thyroid lobes incubated in vitro // Neuroendocrinol. 1994. V.16 P. 221226.

247. Lewinski A., Webb S.M., Reiter R.J. Possible mehanisms of TSH-independent thiroid grows // Med. Hypotheses. 1984, No. 14 P. 141-160.

248. Lewinski A., Wejs E., Klenski M. et al. Pineal-thyroid interrelationships update: 1996. Pineal update. PJD USA: 173-179. 1997.

249. Lienhard J.E., Kim H.H., Ransome K.H., Gorda J.C. Glucose carrier molecules to the plasma membrane // Biochem. Biophys.Res.Commun. 1982. V. 105. P. 1150-1156.

250. Lima L.P., Barros L.A., Lisboa P.S., Ferreira A.C.F., Cabanelas A., Adnet J., Pazos-Moura C.C., Carvalho D.P. Estrogen modulates thyroperoxidase activity in female rats // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 173.

251. Lisboa P.C., Ortiga-Carvalho T.M., Oliveira K.J., Nascimento-Saba C. CA., Lima L.P., Barros I.A., Morieira R.M. Studies of rat thyroidal type 2 5-iodothyronine deiodinase activity regulation // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 172.

252. Liu Y. The damade role of free radical in iodine deficent disorders children // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.246.

253. Lockwood J.C., Lewis C.A., Alvarez A.J., Novotny M.X., Bogacz J.P., Llende M.X. Performance of the abbot axsym 3 rd generation TSH assay // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.243.

254. Maitra, S.K., Dey, M. Castration and testosterone induced changes in the pinealocytes of roseringed parakeet, Psittacula krarneri, during different phases of the annual testicular cycle // Anat-Anz. 1934. V.176. № 4. P. 363368.

255. Makino M., Oda N., Ito Y., Kato S., Mokuno T. Relationship between thyroid function and free fatty acid // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.222.

256. Malthiery Y., Marrio C., Berge-Lefrano J.L. et al. Processing of thyroglobulin // Biochemic. 1989. V. 71. № 2. P. 195-209.

257. Mansen A.S., Johansson C., Thoren P., Forrest D., Vennstrom B. Thyroid hormone recepyor a and (3 have distinct roles in mediating the cardiovascular effects of thyroid hormones // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 169.

258. Mariash C.N., Zhu Q., Mariash A. Spot 14, thyroid hormon, and lipid metabolism // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.96.

259. Matsuo T., Takamatsu J., Ito M., Fukao A., Yoshida S. Acute effects of thyroid hormone administration on serum consentrations of lipids and the related substances // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.251.

260. Meek I.R., Lee T.M. Female meadow voles have a preferred mating pattern predicted by photoperiod, which influences fertility // Physiol. Behav. 1993 Dec. V. 54. №6. P. 1201-1210.

261. Menard C.S., Dohanich G.P. Estrogen dependence of cholinergic systems that regulate lordosis in cycling female rats // Pharmacol. Biochem. Behav. !994 Jun. V. 48. №2. P. 417-421.

262. Menendez-Pelaez A., Sainz R. M., Mayo J. C., Rodriguez-Colunda M.J.,ф

263. Vazquez-Rojo J., Antolin I., Carbajo M.P., Tolivia D. Mast cells in the Harderifn gland of female Syrian hamsters during the estrous cycle and pregnancy: effect of the light/ dark cycle // J. Reprod Immunol. 1993 Сер. V. 25. №1. P. 51-61.

264. Moon B.S., Shin W.S., Yim C.H., Park D.J., Kim W.B., Cho B.Y. Regulation of phospholipase с activiti by protein kinase a and cc in FRTL-5 cells // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 141.

265. Morissette M., Di-Paolo T. Sex and estrous cycle variations of rat striatal dopamine uptake sites//Neuroendocrinology 1993 Jul. V. 58. №1. P. 16-22.

266. Muakkassah-Kelly S.F., Krinke A.L., Malinowski W. The effect of short term feeding of the antioxiants on serum thyrotropin and thyroid hormones in the male rat//Toxicol-Appl-Pharmacol. 107(1): 129-140. 1991.

267. MustiA.M., Awedimento E.V., Polistina C., Ursini V.M. at al. Endocytosis of thyroglobulin // Proc. Natl. Acad. Sci (USA). 1986. №83. P. 323-327.

268. Nacamura M., Ohtaki S. Molekular mechanism of thyroid hormone syntesis//Nippon. Rinsho. 1994. V. 51. №4. P. 857-863.

269. Nacamura Y., Ohtaki S., Yamazaki J. Lipidrichresidual bodies in the human thyroid gland // J. Biochem. 1988. V. 104. P. 544-549.

270. Neves F.A., Cavalieri R.R., Simeoni L.A., Gardner D.G., Scharschmidt B.F. T3 transport in primary cells: efflux exhibits considereable variation and appears to differ erom influx // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.219.

271. Ng T.B., Chan W.Y. Action of pineal indoleamines on the reproductive systems of the male C57 mouse and golden hamster // J-Neural-Transrn-Gen-Sect. 1993. V.93. №2. P. 87-98.

272. Nilsson M., Bjorkman U., Ekholm R., Ericson L.E. Mechanisms of vectorial iodid transport and organification in the thyroid // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.87.

273. Nilsson M., Bjorkman V., Echolm R., Ericson L.E. Bicameral system as an open folliele // Eur. J. Cell. Biol. 1990. V. 52. P. 270-281.

274. Niswender G. D., Juengel J.L., McGuire W.J., Belfiore C.J., Witbank M.C. Luteal function: the estrouse cycle and early pregnancy // Biol. Reprod. 1994 Ftb. V. 50. №2. P. 239-247.

275. Nunez J., Pommier J. Formation of thyroid hormones // Vitam.Horm. 1982. V. 39. P. 175-229.

276. Ohctaki S., Nakagawa H., Nakamura M., Yaniazaki I. One and two-electron oxidations of tyrosine, monoiodotyrosine, and diiodotyrosine catalysed by hog thyroid peroxidase // J. Biol. Chem. 1982. V. 257. № 22. P. 13598-13403.

277. Ohtaki S., Nakagawa H., Nakamura M., Yamazaki I. Reactions of purified hog thyroid peroxidase with H202, tyrosine, and methylmercaptomidazole (goitrogen) in comparison with boyine lactoperoxidase // J. Biol. Chem. 1982. V. 257. №22. P. 761-766.

278. Oka Y., Czech M.P. Na+/J" symporter molecules // J. Biol.Chem. 1984. V. 252. P. 8125-8133.

279. Onitsuka T. Sex hormones in papillary carcinoma of thyroid gland and pleomorphic adenoma of parotid gland // Acta. Otolaryngol. Stockh. 1994. V. 114. №2. P. 218-222.

280. Ossendorp F.A., Leer L.M., Bruning P. Fatal TSH-stimulating iodination of thyroglobulin // Mol. Cell. Endocrinol. 1989. V. 66. № 2. P. 199-205.

281. Pare W.R., Redei E. Sex differences and stress response of WKY rats // Physiol. Behav. 1993 Dec. V. 54. №6. P. 1179-1185.

282. Pickard, G.E., Tang, W.X. Pineal photoreceptors rhythmically secrete melatonin //Neurosci-Lett. 1994. V. 171. № 1-2. P. 109-112.

283. Pierpaoli W., Lesnikov V.A. The pineal aging clock. Evidence, models, mechanisms, interventions//Ann-N-Y-Acad-Sci. 1994. V.719. P. 461-473.

284. Powers J. B., Jetton A.E., Clarke I.J. Interactive effects of food deprivation and exercise on reproductive function in female hamsters // Am. J. Physiol. 1994 Jul. V. 267. №1. Pt. 2. P. R185-190.

285. Printz V.J., Silvia W.J., Edgerton L.A. Changes in peripheral concentrations of 13,14-dihidro-15-keto-prostaglandin F2 flpha induced by progesterone in swine // J. Anim. Sci. 1994 Feb. V. 72. № 2. P. 459-463.

286. Prunier A., Dourmad J. Y., Etienne M. Effect of light regimen under various ambient temperatures on sow and litter performance // J. Anim. Sci. 1994 Jun. V. 72. № 6. P. 1461-1466.

287. Przybylska B., Wyrzykowski Z., Kaleczyc J. Effect of ovariectomy followed by administration of ovarian steroid hormones on the pig pinealocyte ultrastructure // Steroids. 1993. V.58. № 10. P. 466-471.

288. Rapoport R., Sklan D., Wolfenson D. // Biohim-Biophys-Acta. 1998 Mar. 12. 1380(1). P. 133-140.

289. Reed Larsen P. Regulation of the tissue expression of the types 2 and 3 iodothyronine deiodinase // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.81.

290. Reiter RJ. Oxidative processes and antioxidative defense mechanisms in the aging brain // Faseb. J. 1995. V. 9. P. 526-533.

291. Reiter R.J., Mtlchiorri D., Seweryneck E. // J.Pineal Res. 1995. V. 18. P. 1-11.

292. Rose R.C., Bode A.M. Biology of free radical scavengers: an evaluation of ascorbate // Faseb J. 1993. №9 (7). P. 1135-1142.

293. Rousset B., Selmi S., Alouier C. et al. Hydrolis of thyroglobulin // Biochemie. 1989. V. 71. № 2. P. 247-262.

294. Saidapur S.K., Kamath S.R. Morphometric study of ovarian follicular growth during the estrous cycle of the laboratory-maintained Indian desert gerbil, Meriones hurrianae (Jerdom) // Acta. Anat. Dasei. 1993. V. 148. № 4. P. 189-196.

295. Saito Tsukasa, Endo Totoshi, Onaya Toshimasa. NIS expressions in thyroid diseases // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.81.

296. Schneider M., Fiering S., German D.L., Galton V.A. Targeted disruption of the type 2 selenodeiodeiodenase gene results in a pituitary thyroid hormone resistance //Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 184.

297. Schultz S.G. Curran P.F. Thyroid iodide transport // Phisiol. Rev. 1970. V. 50. P. 637-712.

298. Seitz H.J., Weitzel J., Akgun E., Pioch K. Thyroid hormone action on stimulation mitochondrial activity // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.88.

299. Serino I., d'Istria M., Monteleone P. A comparative study of melatonin production in the retina, pineal gland and harderian gland of Bufo viridis and Rana esculenta// Comp-Biochem-Physiol-C. 1993. V. 106 № l.P. 189-193.

300. Shimizu H., bray G.A. Effect of castration, estrogen replacement and estrus cycle on monoamine metabolism in the nucleus accumbens, measured by microdialysis // Brain. Res. 1993 Sep. 10. V. 621. № 2. P. 200-206.

301. Silva I., Swerdlow A.J. Sex differences in the risks of hormono-dependent cancers // Am. J. Epidemiol. 1993. V. 138. № 1. P. 10-28.

302. Sing D.V., Turner C.W. //Acta endocr. (Kbh.), 1972, v.69, P. 35-40.

303. Slowinska-Klenska D., Klenski M., Sporny S., Lewinski A. Image cytometry in the preoperative diagnostics of thyroid lesions // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.131.

304. Smyth P.P., Dwyer R.M., Smith D.F., Shering S., Hill A., Kibane M., McDermott E. Higgins N.O. The thyroid in breast cancer // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 128.

305. Smyth P.P., Wijayaratne C., Premawardhana L., Parkes A., Smith D., Herlihy C.O., Gulu S., De Silva D., Lazarus J. The normal in pregnancy: influence of dietary iodine // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.163.

306. Spicer L.J., Vernon R.K., Turker W.B., Wettemann R.P., Hogue J.F., Adams G.D. Effect of inert fat on energy balance, plasma concentrations ofhormones. And reproduction in dairy cows // J. Dairy. Sci. 1993 Sep. V. 76. № 9. P.2664-2673.

307. Spiro M., Spiro R., Preferential inhibition of thyroxine and 3,5,3 -triiodthyronine formation//Endocrinology. 1988. V. 123. № 1. P. 56-65.

308. Stellfug J.N., Rodriguez F., Lavoice V.A., Glimp H.A. influence of simulated photoperiod alteration and induced estrus on reproductive perfomance of spring-born Columbia and targhee ewe lambs // J. Anim. Sci. 1994 Jan. V. 72. № 1. P. 29-33.

309. Stevenson K.R., Riley P.R., Stewart H.J., Flint A.P., Wathes D.C. Localization of oxitocin receptor mRNA in the ovine uterus during the oestrous cycle and early pregnancy // J. Mol. Endocrinol. 1994 Feb. V. 12. № l.P. 93-105.

310. Stewart R.E., Stevenson J.S., Mee M.O., Rettmer I. Induction of estrus after thyroidectomy in nonlactating Holstein cows // J. Dairy. Sci. 1993 Sep. V. 76. №9 P. 2619-2623.

311. Stewart R.E., Stevenson J.S., Minton J.E. Serum hormones during the estrous cycle and estrous behavior in heifers after administration of prorylthioracil fad thiroxine // Domest. Anim. Endocrinol. 1994 Jan. V. 11. №1. P. 1-12.

312. Sugawara M., Hagen G.A. Thyroid hormone formation catalyzed by human thyroid peroxidase: a new and physiological measurement of thyroid peroxidase // J. Lab. Clin. Med. 1982. V. 99. № 4. P. 580-588.

313. Sureshkumar P.K., Janakiraman K. Differences in biochemical profile from active and inactive ovarian tissue in relation to oestrous cycle phases // Acta. Vet. Hung. 1993. V. 41. № 3-4. P.301-313.

314. Swierczynska-Machura D., Sewerynek E., Wiktorska J., Lewinski A. Effect melatonin on the stress indused in rats by different doses of iodine // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.238.

315. Szaboles I., Farcas I., Wenzel B. Plasma selenium, glutathione peroxidase and thyroid hormone parameters in areas of different iodine intake // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.251.

316. Takeshita Acira. Nuclear receptor coactivayors in thyroid hormone action // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.79.

317. Takeuchi Y., Katoh Y., Takahashi K. Classical acetylcholine receptors do not play a direct role in neuronal transmission of photic information in the suprachiasrnatic nucleus in rats // Neurosci-Lett. 1993. V.158. №1: P.71-74.

318. Takezava H., Hayashi H., Tsyda M., Sano H., Saitou H., Ebihara S. Estrous cycle related variation of blood pressure and htart rate in the female rat // Jpn. J. Psychiatry. Neurol. 1993 Jun. V. 47. № 2. P. 488.

319. Tamir H., Liu E.P., Hsiung S., Adiersberg M., Gershon M.D. Serotonin binding protein: Synthesis, Secretion, and recicling // J.Nemochem. 1994. V. 63. №1. P. 97-107.

320. Taurog A., Dorris M., Doerge D.R. Evidence for a radical mechanism in peroxidase-catalyzed coupling. I. Steady-state experiments with various peroxidases // Arch. Biochem. Biophys. 1994. M. 315. № 1. P. 82-89.

321. Tejani-Butt S.M., Yang J. A time course of altered thyroid states on the noradrenergic system in rat brain by guantitative autoradiography // Neuroendocrinology. 1994. V. 59. №3. P. 235-244.

322. Thapliyal J.P., Lai P. Light, thyroid, gonad, and photorefactory state in the migratory redheaded bunting, Emberiza bruniceps // Gen. Comp. Endocrinol. 1984. V. 56. №1. P. 41-52.

323. Tisdall D.J., Hudson N., smith P., Mcnatty K.P. localization of ovine follistatin and alpha and beta A inhibin mRNA in the sheep ovary during the oestrous cycle // J. Mol. Endocrinol. 1994 Apr. V. 12. №2. P. 181-193.

324. Uchida, K., Morita, Y. Spectral sensitivity and mechanism of interaction between inhibitory and excitatory responses of photosensory pineal neurons // Pflugers-flrch. 1994. V.277. №2. P. 373-377.

325. Van der Geyten S., Segers I., Kuhn E.R., Darras V.M. Regulation of io-dophironin deiodinases in the developing chicken brain // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 171.

326. Vega-Matuszyk J., Hillegaart V., Larsson K., Ahlenius S. Effect of exposure to an estrous female on forebraine monoaminergic neurotransmission in the non-copulating male ran // Brain. Res. 1993 Dec 10. V. 630. № 1-2. P. 82-87.

327. Vieja A., Dohan O., Ginter C., Rieder C., Tazebay U., Wapnir I., Carrasco N. Molecular analisis and patofisiological relevans of the sodium/iodide symporter (NIS) // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.81.

328. Visser T.J. Regulation of the release ofTSH // Front. Horm. Res. 1985. V. 14. P. 100-136.

329. Vitale M. L., Chiocchio S.R. Serotonin, a neurotransmitter involved in the regulation of luteinizing hormone release // Endocr. Rev. 1993 Aug. V. 14. №4. P. 480-493.

330. Vollrath L. The pineal organ. Handbuuch der microscopischen Anayomie des Menschen. Springer. Verlag. Berlin. 1981. 411 P.

331. Von Brackel-Bodenhausen A., Wuttke W., Holtz W. Effects of photoperiod and slow-release preparations of bromocryptine and melatonin on reproductive activity and prolactin secretion in female goats // J. Anim. Sci. 1994 Apr. V. 72. № 4. P. 955-962.

332. Wang Y.X., Crofton J.T., Liu H., Brooks D.P., Share L. Effects of gonadectomy on sexually dimorphic antidiuretic action of vasopressin in conscious rats // Am. J. Phisiol. 1994 Aug. V. 267. № 2. Pt.2. P. R536-241.

333. Wassen F. W. J. S., Kuiper G. G. J., Dunker D. J. G. M., Visser T. J. Characterization of deiodinases in the pig // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 174.

334. Weesner G.D., Praff D.W. Disruption of estrous cyclicity following administration of a luteinizing hormone-releasing hormone antagonist to the preoptic area of the rat // Biol. Reprod. 1994 May. V. 50. № 5. P. 1178-1182.

335. Weiser H., Achterrath U., Boguth W. Vitamin E and thyroid system //Acta agricultural candinavica. 1973 suppl. 19. P. 208-218.

336. Weiss S.J., Philp N.J., Grollman E.F. Polarity of thyroid follicular cells and J transport // Endocrinology. 1984. V. 114. P. 1090-1098.

337. Wiktorska J., Sewerinek E., Lewinski A. Effect of melatonin and other antioxidants on the schiff bases induses thyrotoxicosis in rats // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.239.

338. Williams Y.A. The passive transference of J to the colloid compartment // Am. J. Physiol. 1969. V. 217. P. 1094-1100.

339. Willson R.L. Hydroxyl radicals and biological damage in vitro: what relevance in vivo? // Oxygen free radicals and tissue damage. Excerpta Medica. 1979. C.F.S. 65. P. 19-42.

340. Woodbuiy D.M., Woodbary J.W. Electrophysiologics investiga-tions of thyroid cells //J. Physiol. (London). 1963. V. 169. P. 553-567.

341. Woodfill C.J., Wayne N.L., Moenter S.M., Karsch F.J. Photoperiodic synchronisation of a circannual reproductive rhythm in sheep: identification of season-specific time cues // Biol-Reprod. 1994. V.50. №4. P.965-976.

342. Wyngaarden J.B., Wright B.M., Ways P. Thyroid membrane vesicles //Endocrinology. 1952. V. 52. P. 537-549.

343. Xiang J.M., Chen Z.P., Yan Y.Q. Effect of iodine excess on antioxidative capacity in mice //Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P.243.

344. Yamamoto K., Degroot L.J. Affinity chromatogrphy of peroxidase using tyrosine coupled to Agarose // J. Biochem. Tokyo. 1982. V. 91. №3. P. 775782.

345. Yamashita H., Noguchi S., Murakami T., Uchino S., Watanabe S., Toda M., Takatsu K., Koike E., Yamashita H. High prevalence of vitamin D deficiency in japanese female patients with graves disease // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. Y.47. P. 152.

346. Yan Y.Q., Fang H., Xiang J.M., Chen Z.P. A study on iodine metabolism, thyroid function and autoimmunity response in rat of iodine deficiency and iodine excesss // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 164.

347. Yoshinari M., Taurog A. Thyroglobulin // Endocrinology. 1985. V. 117. P. 1621-1631.

348. Zahedi-Asl S., Saboor H. Seasonal variation of urinary iodine excretion in healthy subjects in an area with endemic goiter // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 160.

349. Zandieh Doulabi B., Platvoet M., Lamers W.H., Fliers E., Bakker O., Wiersinga W. M. TR p1 expression in rat liver: zonal distribution and diurnal rhythm // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 167.

350. Zatz M. Photoendocrine transduction in cultured chick pineal cells: IV. What do vitamin A depletion and retinaldehyde addition do to the effects of light on the melatonin rhythm? // J-Neurochern. 1994. V.62. №5. P.2001-2011.

351. Zhang X., Arvan P. Cell-type dependent i8n thyroid peroxidase trafficking resolve discrepancies about its cell surface expression // Endocrine Journal (Jap.). Suppl. 2000. V.47. P. 182.