Формирование паразитарной системы у рыб в прудовых хозяйствах и естественных водоемах и меры борьбы с паразитозами в условиях Краснодарского края

Лысенко, Александр Анатолиевич

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Формирование паразитарной системы у рыб в прудовых хозяйствах и естественных водоемах и меры борьбы с паразитозами в условиях Краснодарского края
ВАК РФ 03.00.19, Паразитология

Автореферат диссертации по теме "Формирование паразитарной системы у рыб в прудовых хозяйствах и естественных водоемах и меры борьбы с паразитозами в условиях Краснодарского края"

На правах рукописи

ЛЫСЕНКО Александр Анатолиевич

ФОРМИРОВАНИЕ ПАРАЗИТАРНОЙ СИСТЕМЫ У РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ И ЕСТЕСТВЕННЫХ ВОДОЕМАХ И МЕРЫ БОРЬБЫ С ПАРАЗИТОЗАМИ В УСЛОВИЯХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ

Специальность: 03.00.19 — паразитология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук

Иваново - 2006

Работа выполнена на кафедре эпизоотологии, вирусологии и паразитологии, ветсанэкспертизы, зоогигиены ФГОУ ВПО «Кубанский государственный аграрный университет» и в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

Научный консультант:

- заслуженный деятель науки РФ, академик РАСХН, доктор ветеринарных наук, профессор Петров Юрий Филиппович

Официальные оппоненты:

доктор биологических наук Пономарев Всеволод Алексеевич

доктор ветеринарных наук Косяев Николай Иванович

доктор ветеринарных наук, профессор Архипов Иван Алексеевич

Ведущее учреждение: ГНУ Научно-исследовательский ветеринарный институт Нечерноземной зоны Российской Федерации Россельхозакадемии.

Защита диссертации состоится « » июля 2006г. в 10— часов на заседании диссертационного совета Д 220.029.01 в ФГОУ ВПО «Ивановская государственная сельскохозяйственная академия», С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Ивановской ГСХА. Адрес: 153012, г. Иваново, ул. Советская, 45.

Автореферат разослан «_ мая 2006г.

Ученый секретарь диссертационного совета, р

доцент с в- Егоров

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Рыбоводство - одна из перспективных отраслей сельскохозяйственного производства, базирующаяся на выращивании в естественных и искусственных водоемах товарной рыбы: карпа, форели, белого и пестрого толстолобика, белого амура и других (Ю.А. Привезенцев, 1985). Развитию прудового рыбоводства в России способствует громадные водные площади и благоприятный климат. Краснодарский край расположен в VI географической зоне, самой благоприятной для прудового рыбоводства. В крае выращивается более 20% всей прудовой рыбы, производимой в России. Интенсификация прудового рыбоводства в Краснодарском крае и в бассейне реки Кубань достигнута благодаря оптимальной структуре поликультурного рыбоводства на основе культивирования карпа с растительноядными видами — обыкновенным и пестрым толстолобиками и белым амуром, удобрением прудов, кормлением рыбы, увеличения плотности посадки на 1 га площади прудов и механизации производственных процессов.

Современные формы ведения прудового рыбоводства предусматривают уплотненные посадки рыб в пруды, что обуславливает тесный контакт выращиваемых рыб, а отсюда и благоприятные условия для распространения различных болезней (Г.В. Васильков, 1983). Результаты анализа данных ветеринарной отчетности показали, что в настоящее время наибольший удельный вес продолжают занимать инвазионные заболевания, распространенность которых составляет 66% от общего числа неблагополучных хозяйств: из них ботриоце-фалез - 42%, филометроидоз- 11%, воспаление плавательного пузыря - 11%. (H.A. Яременко, В.В. Селиверстов, 2003).

К сожалению, неблагополучным регионом по инвазионным заболеваниям рыб является Краснодарский край. В рыбоводных хозяйствах зоны Северного Кавказа часто отмечаются вспышки паразитарных заболеваний, которые являются существенным фактором, снижающим продуктивность прудов рыбоводных хозяйств.

Часто паразитарные заболевания у рыб протекают в ассоциации, что осложняет течение заболеваний (Е.П. Семененков, 1997, 1998; Н.И. Вовк и др., 1997, 1998, 2001; Ю.Ф. Петров, 2001; М.Д. Новак и др., 2001, 2003; A.A. Лысенко и др., 2001, 2003, 2004). Все смешанные болезни рыб протекают более тяжело и труднее поддаются лечению. При обследовании рыб в ряде случаев при смешанных болезнях проявляются сходные клинические признаки, что затрудняет их диагностику (Г.И. Сапожников и др., 1997,2000, 2003; М.Д. Новак, А.И. Новак, 2003 и др.).

Паразитарные заболевания прудовых рыб в РФ изучали И.Е. Быхов-ская, Б.Е. Быховский (1940), В.П. Каменев (1953, 1956), З.М. Сахнина (1967, 1983), В.А. Мусселиус (1969), Б.Л. Гаркави (1972), Т.А. Яковчук (1974), В.В. Панасенко (1980, 1985), В.И. Афанасьев (1981), B.C. Сулейманян (1983), Б.Л. Гаркави, A.A. Лысенко (1986, 1991, 1995) и др. У карпа описан 51 вид паразитов, от белого и пестрого толстолобиков - 35 видов, белого амура — 34 вида, паразитов из числа простейших, гельминтов и ракообразных.

Из паразитов прудовых рыб широкое распространение имеют слизистые споровики — миксоспоридии. У карпов и растительноядных рыб они локализуются в жабрах, подкожной клетчатке, почках, плавательном пузыре, головном мозге и других органах, что нередко приводит к гибели рыб (С.С. Шуль-ман, 1966; О.Н. Пугачев, 1983; A.B. Успенская, 1984, О.Н. Бауэр, 1986; А.Г. Че-пурная, 2003). Так, миксоболез толстолобиков, вызванный Myxobolus pavlàvskii, наносит значительный экономический ущерб рыбоводству. Летальность сеголетков пестрого толстолобика достигает 10-12% (Б.Л. Гаркави и др., 1989). Трудность оздоровления толстолобиков от миксоболезов связана с тем, что до Сих пор нет точных данных о жизненном цикле миксоспоридии и тем, что растительноядные рыбы не используют искусственные корма. Это делает практически неосуществимым введение в кишечник с комбикормом лечебных препаратов.

' ' ' В литературе недостаточно сведений о путях заражения рыб этими простейшими, вызываемых ими патологических изменениях, а также мерах по их оздоровлению и профилактике. Малоизученным заболеванием является дер-моцистидиоз карпов, возбудитель которого Dermocystidium erschowi локализуется в подкожной клетчатке и вызывает опухолевидные образования, что ведет к потере товарного вида рыбы и снижению продуктивности.

В условиях изменяющейся экологической ситуации, связанной в первую очередь с антропогенным воздействием на природу, в таких биоценозах как прудовые водоемы происходит изменение характера паразитофауны, изменяется течение и характер проявления различных заболеваний. (C.B. Пронина, Н.М. Пронин, 1988; О.В. Романцова. Г.И. Сапожников, 2002; М.Д. Новак, А.И. Но-вак, 2003 и др.)

Цель и задач» исследований. Основная цель исследования - разработка комплекса профилактических противопаразитарных мероприятий в условиях интенсивного ведения прудового рыбоводства в Краснодарском крае. Для выполнения необходимо было решить следующие задачи:

- определить паразитофауну рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края; '

- определить паразитофауну рыб в естественных водоемах бассейна реки Кубань;

, - определить формирование паразитоценозов в условиях прудового рыбоводства и в естественных водоемах Краснодарского края;

- расшифровать биологический цикл развития миксоспоридии Myxobolus pavlovskii (Achmerov, 1954) и M. .Haemophilus (Garkawi, Zverhanovskii, Lysenko, 1989) паразитов толстолобиков;

- провести скрининг устойчивости спор миксоспоридий к различным химическим веществам и физическим факторам;

- изучить эпизоотологию, патоморфологические изменения и вопросы диагностики при дсрмоцистидиозе карпов;

. - изучить сезонную и возрастную динамику основных паразитарных заболеваний прудовых'рыб, наносящих ущерб рыбоводным хозяйствам Краснодарского края;

- разработать комплекс профилактических и оздоровительных мероприятий при миксоболезе пестрых толстолобиков, вызываемом М. Haemophilus, миксоболезе белых и пестрых толстолобиков, вызываемом М. pavlovskii; бот-риоцефалезе карповых рыб, ихтиофтириозе прудовых рыб;

- усовершенствовать методы профилактики и борьбы с ассоциативными заболеваниями рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

. Научная новизна. Впервые в условиях Краснодарского края проведен системный анализ паразитофауны 9 видов «сорной» и 4 видов прудовых рыб, культивируемых в рыбоводных хозяйствах. Выявлено, что паразитофауна рыб здесь представлена 52 видами, в т.ч. у красноперки - 21 вид, плотвы — 18, леща -11, уклейки — 10, щуки — 7, ерша — 5, окуня и тиляпии - по 3 вида, судака - 2, у карпа — 32, белого и пестрого толстолобиков — 22 вида и белого амура — 20 видов, принадлежащих к разным систематическим группам. Установлено, что в условиях Краснодарского края основным источником и резервуаром заражения прудовых рыб является «сорная» рыба, а также растительноядные рыбы, завозимые из Китая и Дальнего Востока РФ для акклиматизации.

Впервые у рыб изолирован вид паразитического простейшего — Myxobolus Haemophilus (Garkawi, Zverhanovskii, Lusenko, 1989), который паразитирует в крови, паренхиматозных органах, мышцах, головном мозге пестрых толстолобиков. Вид моногостальный, моноксенный. Выявлено, что при миксоболезе сеголеток пестрого и белого толстолобиков, вызываемом Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus, наблюдается скопление рыбы возле водоподачи, заглатывание воздуха с поверхности воды, анемичность и обильное ослизнение жабр, снижение содержания гемоглобина, эозинофилия, увеличение СОЭ и лейкоцитов. Летальность среди сеголетков пестрых толстолобиков достигает 15%. ' .

В условиях Краснодарского края впервые установлен дермоцистидиоз у годовиков карпов, вызываемый простейшими Dermocystidium erschowi (Garkawi, Denisov et Afanasiev, 1980). Изучены особенности эпизоотологии, патогенеза, клиники заболевания, разработаны методы диагностики и профилактики паразитоза.

Выявлено широкое распространение в прудовых хозяйствах Краснодарского края ихтиофтириоза, вызываемого круглореснитчатой инфузорией Ichthyophthirius multifiliis. Изучены особенности эпизоотологии, патогенеза, клиники заболевания, разработаны методы диагностики, лечения и профилактики паразитоза.

Разработана система лечебно-профилактических мероприятий против основных паразитарных болезней прудовых рыб (миксоболез, дермоцистидиоз, ихтиофтириоз, ботриоцефалез), которая в настоящее время с большим экономическим эффектом применяется в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

Материалы диссертации защищены двумя патентами на изобретения Российской Федерации (получено положительное решение о выдаче патента).

зволяет повысить сохранность рыбы на 10-15%, что дает возможность получать дополнительную прибыль каждому рыбоводному хозяйству' от 50 до 100 тыс. рублей ежегодно. Основные научные разработки автора вошли в 11 нормативных документов:

1. «Методические указания к лабораторно-практическим занятиям по болезням рыб» (утверждены методической комиссией КубГАУ, 1994 г.).

2. «Инструкция по борьбе с миксоболезом толстолобиков в прудовых рыбоводных хозяйствах» (утверждены Россельхозакадемией, 1998 г.).

3. «Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с хлоромиксозом карповых рыб» (утверждены Россельхозакадемией, 1999 г.).

4. «Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с постодипло-стомозом пресноводных рыб» (утверждены Россельхозакадемией, 1999 г.).

5. «Общие методы диагностики отравлений рыб» (утверждены методической комиссией КубГАУ, 2001г.).

6. «Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике мик-соболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края» (утверждены Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского кра,я, 2004 г.).

7. «Рекомендации по профилактике миксоболеза пестрых толстолобиков в рыбоводных хозяйствах» (утверждены Россельхозакадемией, 2004 г.).

8. «Рекомендации по профилактике кишечных цестодозов прудовых рыб» (утверждены Россельхозакадемией, 2004).

9. Методические указания «Биология и патология рыб и пчел», часть 1 (утверждены методической комиссией КубГАУ, 2004 г.).

" 10. «Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с дермоцисти-дозом карпов в рыбоводных хозяйствах Северного Кавказа» (утверждены Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004

11. Методические указания «Биология и патология рыб и пчел», часть 2 (утверждены методической комиссией КубГАУ, 2005 г.).

совещания по ветеринарной паразитологии, центрального совета общества гельминтологов РАН и секции «Инвазионные болезни животных» РАСХН (Москва, 1999-2005); международной конференции «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов» (Петрозаводск, 2003); ежегодных конференциях по итогам НИР в КубГАУ (1986-2005); третьей всесоюзной дистанционной научно- практической конференции «Современные проблемы устойчивого развития агропромышленного комплекса России» (Дон ГЛУ, п. Персиановский, 2005).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Паразитофауна рыб в прудовых хозяйствах и естественных водоемах Краснодарского края.

2. Динамика формирования паразитоценозов в организме рыб в рыбоводных хозяйствах и естественных водоемах Краснодарского края.

3. Биология миксоспоридий МухоЬо1из рау1оузкп (АсЬтеют, 1954) и М.ЬаеторИПт (Сагкаш1, гуегЬапоувкп, Ьуэепко, 1989) — паразитов толстолобиков. ' 11

4. Патогенез, клиника, диагностика и меры борьбы при миксоболезе толстолобиков!

5. Биология ГЭегтосух^сПит егесЬочу! (Сагка\у!, СетБОУ й ЛГалаз1еу, 1980), патогенез, диагностика и меры борьбы при дермоцистидиозе карпов.

6. Меры борьбы с ихтиофтириозом прудовых рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

7. Особенности эпизоотологии и меры борьбы с цестодозами рыб в прудовых рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 37 научных работ, в том числе 13 работ в изданиях, регламентированных ВАК РФ для докторских диссертаций. В опубликованных работах изложены основные положения и выводы по изучаемому вопросу. Результаты исследований автора защищены 2 патентами (получено положительное решение о выдаче патента).

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 252 страницах компьютерного текста, состоит из введения, обзора литературы, четырех глав собственных исследований, заключения, выводов, практических предложений. Работа иллюстрирована 36 таблицами, 45 рисунками. Список литературы включает 353 источников, из них 269 отечественных, 84 зарубежных.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Основным объектом исследования являлась прудовая рыба в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края (карп, пестрый и белый толстолобики, белый амур). Кроме того, здесь исследовали и «сорную» рыбу, имеющую постоянный контакт с прудовой и являющуюся резервуаром многих видов паразитов.-

Исследование рыб осуществляли путем полного ихтиопаразитолог'иче-ского вскрытия по В.А. Догелю (1933), А.П. Маркевичу (1951), Э.М. Ляйману

(1951), усовершенствованной И.Е. Быховской-Павловской (1969, 1985, 1989). Всего за период с 1984 по 2005 годы вскрыто 5178 экз. рыб 13 видов. Исследовали мальков, сеголеток, годовиков, 2-3-5-леток рыб. Паразитофауну и распространение миксоболеза изучали в 20 рыбоводных хозяйствах, расположенных в различных почвенно-климатических зонах Краснодарского края.

Сбор и обработка паразитов осуществляли по общепринятым методикам. Определяли паразитов до вида с помощью «Определителей паразитов пресноводных рыб» под редакцией О.Н. Бауэра (1962; 1984; 1985; 1987) на кафедре паразитологии Кубанского госагроуниверситета, Краснодарского филиала ВНИИПРХ, межобластной ветлаборатории «Краснодарская-1», в музее ВИГИС, на кафедре паразитологии Ивановской ГСХА.

■ Сезонную динамику миксоболеза пестрых и белых толстолобиков изучали в рыбопитомнике рыбоводной агрофирмы "За Родину" Тимашевского района, вскрывая ежедекадно с июля по сентябрь и с октября по июнь по 15-25 экз. мальков, сеголетков, годовиков и рыб старших возрастных групп.

Для гистологического исследования зараженную рыбу фиксировали в 10%-ном нейтральном растворе формалина и смесью Буэна. Парафиновые срезы толщиной 6-8 мкм окрашивали гематоксилин-эозином, метиленовой синью по общепринятым методикам (Г.И. Роскин, Н.Б. Левинсон, 1957; В.Г. Елисеев и др., 1967; Г.А. Меркулов, 1969). Сделано более 600 гистосрезов различных органов и тканей рыб.

Для обнаружения спор миксоспоридий в нескольких опытах использовали переваривание тканей рыбы в искусственном желудочном соке с последующим центрифугированием. Переваривающий раствор составляли по прописи: пепсина медицинского - 3,0 г; концентрированной соляной кислоты - 0,75 мл; воды -100,0. Измельченную ткань помещали в переваривающий раствор, в соотношении 1:20 в колбу Эленмеера и инкубировали при 37С 3-4 часа. Затем пробы центрифугировали 15 минут при 3000 об/мин. Осадок исследовали под микроскопом на присутствие спор миксоспоридий.

У пестрых толстолобиков исследовали плазму крови для обнаружения и подсчета спор миксоспоридий. Кровь брали из сердца или хвостовой артерии при помощи шприца "Рекорд". 0,5 мл крови смешивали с 0,5 мл 4% раствора лимоннокислого натрия, доливали до 10 мл дистиллированную воду. Пробы центрифугировали при 1500 об/мин. Споры и вегетативные формы миксоспоридий концентрировались в осадке.

Гематологические показатели зараженных миксоспоридиями и здоровых рыб определяли по H.A. Головиной (1974, 1975, 1976, 1978, 1979), Н.Т. Ивановой (1970, 1974, 1983), A.A. Кудрявцеву и др. (1979). Количество гемоглобина в крови рыб определяли по Сапи, скорость оседания эритроцитов (СОЭ) аппаратом Панченкова. Количество лейкоцитов и эритроцитов подсчитывали в камере Горяева. Мазки окрашивали раствором Май-Грюнвальда. Для определения форменных элементов крови использовали "Атлас клеток крови рыб" Н.Т.Ивановой (1983).

Эпизоотологию миксоболеза толстолобиков изучали, вскрывая в каждом хозяйстве по 15-25 экз. рыб в различные сезоны года и подсчитывали экстенсивность (ЭИ) и интенсивность (ИИ) инвазии спорами миксоспоридий.

Устойчивость спор миксоспоридий к различным физическим факторам (промораживание, высушивание, гниение) изучали in vitro в лаборатории кафедры паразитологии. Всего провели 32 опыта. Устанавливали время, в течение которого споры сохраняют жизнеспособность. Погибшими считали споры с разрушенной оболочкой или окрашенные акридином в оранжевый цвет. Споры с зеленоватым свечением под люминесцентным микроскопом считали жизнеспособными (Schummelfeder, 1950).

Устойчивость спор Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus к 10 дезинфек-тантам исследовали, испытывая различные концентрации этих препаратов, применяемых в рыбоводстве и ветеринарии для уничтожения простейших, вирусов и бактерий. Критерием гибели споры считали разрыв ее оболочки, выстреливание полярных нитей, или разрушение спороплазмы. Подсчитывали процент погибших и живых спор в ста полях зрения под микроскопом при увеличении (7x40).

Устойчивость спор дермоцистидий во внешней среде изучали по разработанной нами методике, считая погибшими споры Dermocystidium erschowi с разрушенной оболочкой. Всего провели 16 опытов.

Опыты по изучению биологии Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus проводили в аквариумах, заражая мальков толстолобиков, полученных заводским способом из аппаратов ВНИИПРХ различными способами. Скармливали хранившиеся в течение 4 месяцев и свежевыделенные споры per os (А.В. Успенская, 1955, 1978; О.Н. Юнчис, 1979). Роль олигохет в жизненном цикле миксоспоридий изучали, заражая малощетинковых червей спорами Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus по методике Вольфа и Маркив (Wolf & Markiw, 1984). С целью изучения биологического цикла Dermocystidium erschowi (Protozoa in-certae sedis) заражали личинок карпа, полученных заводским способом, спорами дермоцистидий различными способами: перорально, подкожно, внутри-брюшинно.

Коэффициент упитанности рыб вычисляли по формулам Фультона и Кларк(Г.В. Никольский, 1971).

Гидрохимические показатели воды в прудах (температура, количество растворенного кислорода, окисляемость, рН воды и т.д.) определяли в гидрохимических лабораториях хозяйств по общепринятым методикам.

Базовыми хозяйствами, где проводили производственные испытания по оздоровлению прудовых рыб от ихтиофтириоза, миксоболеза, ботриоцефалеза, дермоцистидиоза, лигулсза и диграммоза, были РАФ «За Родину», КрРРЗРР, пруды КрасННИРХ, рыбхозы «Синюхинский», «Шапариевский», «Батурин-ский», «8 марта», «15 лет октября», рыбзавод «Горячеключевской», рыбопитомник «Новоленинский», рыбоводное хозяйство Краснодарской ТЭЦ.

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2.1. ФАУНА РЫБ В БИОЦЕНОЗАХ ВОДОЕМОВ КРАСНОДАРСКОГО < КРАЯ

Объектом цаших исследований с 1984 по 2005 годы были 13 видов рыб, обитающих в рыбоводных хозяйствах и естественных водоемах Краснодарского края. Ниже приводим полный список исследованных видов рыб.

ТИП Хордовые- Chordata КЛАСС Высшие рыбы - Teleostomi ОТРЯД Щукообразные - Esociformes СЕМЕЙСТВО Щуковые-Esocidae РОД Щуки -Esox 1. Вид Щука обыкновенная - Esox lucius (Linnaeus, 1758)

Питается рыбой, мелкие особи (молодь) — планктоном. Щуку разводят в прудовых хозяйствах с целью борьбы с малоценной рыбой (ершом, верховкой, уклеей и др.).

ОТРЯД Карпообразные - Cyprini formes СЕМЕЙСТВО Карповые - Cyprinidae РОД Плотва - Rutilus 2. Вид Плотва - Rutilus rutilus (Linnaeus, 1758)

Распространена повсеместно. Питается растительной пищей, водными беспозвоночными (черви, ракообразные, моллюски, личинки насекомых) и детритом.

РОД Красноперки - Scardinius

3. Вид Красноперка - Scardimus erytrophthalmus (Linnaeus, 1758)

, - Обитает в степных реках, лимапах, водохранилищах, ирригационных системах и в бассейне реки Кубани. Живет в медленно текущих и стоячих водоемах с прозрачной водой и зарослями приводных растений.

РОД Белый амур - Ctenopharyngodon

4. Вид Амур белый - Ctenopharyngodon idella (Valenciennes, 1844)

Естественный ареал - Восточная Азия (Китай) от Амура на юг до Сицзя-

на. С целью акклиматизации в 1960-1970-е годы выпускался во многие водоемы России и республик бывшего СССР (системы Днепра, Дона, Волги, Кумы, Кубани, Урала, Амударьи, Сырдарьи, оз. Балхаш и на Сахалине) и в ряде из них размножается. В связи с разведением амура в искусственных условиях неизбежно его проникновение в естественные водоемы. Наряду с карпом он является одним их важнейших объектов прудового рыбоводства, особенно в поликультуре с другими растительноядными рыбами - белым и пестрым толстолобиками. Белый амур - прекрасный биологический мелиоратор и может использоваться во многих водоемах для борьбы с зарастаемостью высшей водной растительностью.

РОД Уклейки - Alburnus S. Вид У клен -Alburnus alburnus (Linnaeus, 1758)

Обитает в пресных водоемах и в опресненных приустьевых участках моря в чистой воде, предпочитает стоячие и медленно текущие водоемы. Держит-

ся главным образом в открытой части. Распространение: Кубанские лиманы, водохранилища, Кубань и степные реки.

РОД Лещи - ЛЬ га mis 6. Вид Лещ-Abramis brama (Linnaeus, 1758) Распространен в реке Кубань и ее бассейне, водохранилищах, х каналах, лиманах, Азовском море, степных реках (Челбас, Бейсуг, Кирпили). Ценная промысловая рыба. Местное название чебак.

РОД Сазаны — Cyprinus 7. Вид Сазан, или Карп - Cyprinus carpio (Linnaeus, 1811) Карп внешне незначительно отличается от своего предка - дикого сазана. Имеет крепкое, удлиненное, относительно высокое тело, несколько утолщенное в передней части и покрытое крупной желто-золотистой чешуей.

Карп очень неприхотлив. Предпочтение отдает тихим и глубоким местам, заросших рдестом, кувшинками, камышом и рогозом. В реках предпочитает участки со спокойным течением, живет на плесах, в заливах и старицах с хорошо развитой водной растительностью. Ведет стайный образ жизни и не совершает далеких перекочевок. Осенью, с понижением температуры воды, отходит на глубокие места, где в малоподвижном состоянии проводит зиму.

Карп - культурная форма сазана, в Краснодарском крае является объектом выращивания в прудовых рыбоводных хозяйствах. Исходной формой домашнего карпа явился сазан, более 500 лет разводимый в Китае. В результате длительной селекции были созданы породы, отличающиеся различной приспо-сабливаемостью к климатическим условиям разных регионов страны. В Краснодарском крае выращивают рамчатого, зеркального, румынского карпа.

В прудовых хозяйствах Краснодарского края этот вид рыб является основным объектом рыбоводства. При интенсивном рыборазведении карпа используют как искусственные корма, так и естественную кормовую базу водоемов. Он поедает зоопланктон и представителей бентоса.

РОД белые толстолобики — Hipophthalmichthys

8. Вид Толстолобик белый - Hypophthalmichthys molitrix (Valenciennes,

1844)

Сегодня это массовый вид в искусственных и ряде естественных водоемов Краснодарского края. Ценная промысловая рыба. Выращивается в прудах в поликультуре совместно с карпом, пестрым толстолобиком и белым амуром.

РОД пестрые толстолобики — Aristichthys 9. Вид Толстолобик пестрый -Aristichthys nobiiis Rich.

1 Питается фито- и зоопланктоном. Обитает в водоемах Китая, в том числе в южной части бассейна реки Амур. В прудовых хозяйствах Краснодарского края самки достигают половой зрелости к 4-му году жизни, и нерестятся в естественных условиях при 21 °С. ■ f

ОТРЯД окунеобразные - Perciformes ПОДОТРЯД окуневые - Percoidei СЕМЕЙСТВО окуневые - Percidae

РОД судаки - Lucioperca 10. Вид Судак обыкновенный - Lucioperca lucioperca, (Linnaeus, 17SS)

Питается плотвой, лещсм, чехонью и другими мелкими рыбами. Полупроходная или туводная пресноводная рыба. Распространен в Азовском море, нижнем и среднем течении Кубани и ее лиманах, в рисовых чеках и ирригационных системах.

РОД Окуни - Perca 11. Окунь обыкновенный — Perca fluviatilis (Linnaeus, 1758)

Держится в придонных частях воды, среди зарослей водных растений. Совершает небольшие миграции. В некоторых водоемах молодь окуня начинает хищничать уже на первом году жизни. Взрослые питаются рыбой, ракообразными, икрой и беспозвоночными. Распространен в бассейне Кубани (реки, озера, лиманы, водохранилища и др.).

РОД ерши - Acerina 12. Вид £/?ш - Acerina cernua (Linnaeus, 1758)

Держится в придонных слоях воды в местах с песчаным и заиленным грунтом. Больших перемещений не совершает. Питается донными организмами (личинки насекомых, черви). Распространен в реке Кубань, степных реках, ирригационных системах.

СЕМЕЙСТВО цихлндовые, или хромисы — Cichlidae РОД-Tilapia

13. Вид Тиляпия мозамбиксная- Tilapia mossambica, Peters

Естественной средой обитания данного вида является восточная часть Африки от верховьев р. Пил до провинции Натал (ЮАР). Тиляпии распространены в водоемах с пресной и с солоноватой водой, могут на короткое время выходить в море.

В 70-80-е годы XX века в тепловодном хозяйстве Краснодарской ТЭЦ были сделаны попытки акклиматизировать тиляпию с целью использования как объект садкового рыбоводства. К сожалению, даже кратковременное снижение температуры воды в садках до 13-14 °С, ежегодно имеющее место в .условиях тепловодного хозяйства зимой, приводило к температурному шоку среди производителей и гибели рыбы. Таким образом, от акклиматизации тиляпии в Краснодарском крае отказались. На данный момент является объектом аквариумного рыбоводства.

2.2.2. ПАРАЗИТОФАУНА РЫВ ВОДОЕМОВ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ

Путем паразитологических вскрытий 5178 экземпляров 13 видов рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края нами выделено 52 вида паразитов, перечень которых приводим ниже.

КЛАСС Kinetoplastomonada, Honinberg, 1963 ОТРЯД Bodomonadida, Hollande, 1952 СЕМЕЙСТВО Bodonidae Stein, 1878 РОД Cryptobia Leidy, 1846

1. Вид Cryptobia branchialis Nie (in: Chen, 1956)

Хозяева: Cyprinus carpió L., Hypophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis Rich.

Локализация - жабры.

Места обнаружения: рыбхозы «Шапариевский», «Ангелинский», «За Родину», «8 марта».

Паразит - вселенец. Завезен в водоемы России с рыбами дальневосточного комплекса (В.А. Мусселиус, 1969). Обнаружен у сеголетков и годовиков карпа и растительноядных рыб. ЭИ=50-60%, ИИ - 15 экземпляров в мазке.

2. Вид Cryptobia cypríni (Plehn, 1903)

Хозяева: Cyprinus carpió L.

Локализация - плазма крови.

Места обнаружения - рыбхозы «15 лет Октября», «Рязанский», «Синю-хинский», «Шапариевский», «За Родину». ЭИ=20%, ИИ=1-3 экземпляра в мазке.

РОД Costia Leclergue, 1890 Cos tía necatrix (Henneguy, 1884)

Хозяева: Cyprinus carpió L., Aristichthis nobilis Rieh., Hypophthalmichthus molitrix, Ctenophoryngodon idclla, Rutilus rutilus, Scardimus erythrophthalmus, Albramis brama, Alburnus alburnus, Perca flaviatilis, Esox lucius, Lucioperca lucioperca, Acerina cernua, Tilapia mossambica.

Локализация: кожа, жабры.

Места обнаружения - рыбхозы «За Родину», «15 лет Октября», рыбоводное хозяйство ТЭЦ. ЭИ = 20%, ИИ=1-3 экземпляра.

КЛАСС Coccidiomorpha Doflein, 1901 ОТРЯД Coccidia Labbe, 1889, einend . Krylov, 1980 СЕМЕЙСТВО Eimeriidae Leger, 1911 РОД Eimeria Schneider, 1875

4. Вид Eimeria carpelli Leger et Stankovitch, 1921.

Хозяева: Cyprinus carpió L., Scardinius erythrophthalmus L., Rutilus rutilus L.

Локализация: стенки кишечника.

Места обнаружения: во всех обследуемых прудовых хозяйствах Кубани. ЭИ=5-45%, ИИ=40 ооцист в поле зрения микроскопа. Ооцисты обнаруживаются у мальков в 20-дневном возрасте. Карп и сорная рыба в возрасте одного года являются носителями данного вида паразитов: ЭИ у них не превышает 10%, при интенсивности 1-5 ооцист в поле зрения микроскопа.

5. Вид Eimeria cheni (Chen, 1956) Schulman etZaika, 1962.

Хозяева: Hypophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis Rieh.

Локализация: слизистая оболочка кишечника.

ЭИ=20% при максимальной ИИ=20 ооцист в поле зрения микроскопа. Паразит был завезен в прудовые хозяйства нашей страны из Китая. Мальки заражаются с 20-дневного возраста.

6. Вид Eimeria sinensis Chen, 1956

Хозяева: Hypophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis Rich.

Локализации: содержимое кишечника.

Места обнаружения: все рыбоводные хозяйства. Паразит - вселенец. Завезен во время акклиматизации растительноядных рыб из Китая. Заражаются мальки с 20-дневного возраста. ЭИ=5% при ИИ=2-5 ооцист в поле зрения микроскопа. Максимальную зараженность регистрировали в июне-июле, при температуре воды 23-25°С. В осенний период зараженность снижается. В зимнее время регистрируются единичные ооцисты у годовиков растительноядных рыб.

ТИП Книдоспоридни Cnidosporidia Doflein, 1901 emend Schulman et Podlipaev, 1980 КЛАСС Myxosporidia Butschli, 1881 ОТРЯД Bivalvulea Schulman, 1959 Подотряд Eurysporca Kudo, 1919

СЕМЕЙСТВО Sphaerosporidas Davis, 1917 РОД Sphaerospora Thelohan, 1892

7. Вид Sphaerospora carassi Kudo, 1919

Хозяева: Cyprinus carpió L., Ctenopharyngodon ideüa V., Rutilus rutilus L.

Локализация: жаберные лепестки.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства. ИИ - 1-2 экземпляра, ЭИ= 10-45% сеголетков карпа. У годовиков и двухлеток карпа, а также у плотвы находили единичные споры S. carassi при низкой ИИ - 1-2 экземпляра спор в 100 полях зрения. Для водоемов бассейна реки Кубань паразит регистрируется впервые.

СЕМЕЙСТВО Myxoboüdae Thelohan, 1892 РОД Myxobolus Butschli, 1882

8. Вид Myxobolus paviovskii (Achmerov, 1954)

Хозяева: Ilipophthalmichthys molitrix V, Aristichthys nobilis Rich.

Локализация: жаберные лепестки.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Кубани. Вид завезен из Китая во время акклиматизационных перевозок в прудовые хозяйства нашей страны в 1954-1962 годы. Возбудитель регистрируется у сеголетков и годовиков пестрого толстолобика. ЭИ в июне-июле достигает 100% при высокой ИИ заражения (у отдельных особей обнаруживали более 1000 цист на жаберном аппарате). При совместном содержании пестрого и белого толстолобиков ЭИ и ИИ у последнего значительно ниже и не превышает обычно 50%, при ИИ - 1015 цист на жаберной дуге.

9. Вид Myxobolus muelleri Butschli, 1882

Хозяева: Rutilus rutilus'L., Scardinius erythrophthalmus L., Alburnus albur-nus L., Abramis brama L.

Локализация: жабры, подкожная соединительная ткань, мышцы, желчный и мочевой пузырь. 1

Места обнаружения - рыбхозы «Курчанский», «Рязанский», «За Родину». Зараженность рыб невысокая (ЭИ=5-10%, ИИ - 1-2 споры в 100 полях зрения микроскопа). .,

10. Вия Myxobolus scltulmani Donee, 1962 . Хозяева: Abramis brama L., Alburnus albumus L.

Локализация: жабры, мышцы, почки.

Места обнаружения: рыбхозы «За Родину», «Шапариевский», «Курчанский», «Рязанский». Обследованные сеголетки и годовики «сорной» рыбы были с незначительной ЭИ и ИИ. В летнее время зараженность несколько возрастает. При контакте сорной рыбы с прудовой случаев обнаружения спор М. schulmani на карпе или растительноядных не зарегистрировано.

11. Вид Myxobolus cyprlni Do/lein, 1898

Хозяева: Cyprinus carpió L., Scardimus erytrophthalmus L.

Локализация: почки, мышцы.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Кубани. Споры паразита обнаруживали в теплое время года с невысокой экстенсивностью (20%) и интенсивностью инвазии (1-2 экземпляра в поле зрения микроскопа).

12. Вид Myxobolus drjagini Achmerov, 1954

Хозяева: Hipophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis Rich.

Локализация: подкожная клетчатка.

Места обнаружения - рыбхозы: «Шапариевский», «Синюхинский», «Го-ряче-Ключевской», «Октябрьский», КрасНИИРХ, «Курчанский», «8 марта», «За Родину». Паразит - вселенец. Завезен в прудовые хозяйства Кубани с акклиматизированными толстолобиками из Китая. Цист обнаруживали в области головы в виде беловатых бугорков в подкожной клетчатке. Характерна зимне-весенняя сезонность. Максимальный процент поражения (25%) регистрировали весной. Единичных рыб, пораженных М. drjagini, обнаруживали летом и осенью, чаще пораженность белых толстолобиков выявляется в поликультурс с пестрыми. Заражаются сеголетки в 25-30 дневном возрасте. У рыб старше 2-летнего возраста цист М. drjagini не обнаруживали.

' 13. Вид Myxobolus dogieliJ. et В. Bychowski, 1940'

Хозяева: Cyprinus carpió L., Scardinius erythrophthalmus L., Rulilus rutilus L., Acerina cernua L., Abramis brama L.

Локализация: жабры, почки, кишечник, желчный пузырь.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Кубани. Заражение рыб происходит в первые месяцы жизни. В течение года ЭИ сеголетков карпа колеблется от 10% до 25%.

Максимальную ЭИ регистрировали в июне-июле, ИИ не превышала 1-5 экземпляров в поле зрения микроскопа. В зимний период полного освобождения рыбы от М. dogieli не происходит, хотя ИИ снижается до 1 -2 экземпляров спор. 14. Вид Myxobolus bramae Reuss, 1906

Хозяева: Cyprinus carpió L, Abramis brama L., Scardinius erythrophthalmus L.

Локализация: кожа, жаберные лепестки, стенки ротовой полости, почки, желчный пузырь, плавательный пузырь, мышцы.

Места обнаружения - рыбхозы «За Родину», «15 лет Октября», им. Суворова, «Шапарисвский», «Приморско-Ахтарский», «Рязанский», ТЭЦ. Сеголетки заражаются в 25-30 дневном возрасте. Максимальную ЭИ сеголетков карпа регистрировали в июне-июле месяце (15%), при ИИ=1-5 цист на жабрах. Споры обнаруживали во все сезоны года у сеголетков и годовиков карпа и у «сорных» рыб.

15. Вид Myxobolus ellipsoïdes Thelohart, 1892

Хозяева: Cyprinus carpio L., Rutilus rutilus L., Hypophthalmichthys molitrix V., Ctenopharyngodon ¡délia V., Acerina cernua L., Abramis brama L., Alburnus al-burnus L.

Локализация: жабры, почки, желчный пузырь, мышцы.

Места обнаружения: все рыбоводные хозяйства Кубани. Цист обнаруживали на жабрах у сеголетков и годовиков различных видов рыб. ЭИ в летний период была 20% при ИИ до 10 цист на рыбе. В осенне-зимний период обнаруживали единичные споры чаще на жабрах и в почках, реже в мышцах и желчном пузыре.

16. Вид Myxobolus carassii Klocaceva, 1914.

Хозяева: Cyprinus carpio L., Rutilus rutilus L., Scardinius crylhrophthalmus L. ' "

Локализация: жабры, полость тела.

Места обнаружения: все рыбоводные хозяйства Кубани/ В различные сезоны года ЭИ= 10-20% у сеголетков и годовиков карпа при ИИ - 3-5 спор в 100 полях зрения микроскопа. У рыб старших возрастных групп спор не обнаруживали, зараженность в летний период несколько выше.

17. Вид Myxobolus Itaemophilus Garkawi, Zverhanovski, Lysenko, 1989.

Хозяин: Aristichthys nobilis R.

Локализация: почки, печень, подкожная клетчатка, плавательный пузырь, слизистая оболочка кишечника, головной мозг, плазма крови.

Места обнаружения: рыбхозы «За Родину», «Шапариевский», «Курчан-ский», «Рязанский», КрасНИИРХ, Крюковское водохранилище.

КЛАСС Cyrtostomata Yankowski, 1978 ОТРЯД Hypostomatida Schewiakoff СЕМЕЙСТВО Chilodinellidae Deroux, 1970 РОД Chilodonella Straud, 1926

18. Вид Chilodonella piscicola (.Zacharias, 1894) Yankowski, 1980.

Хозяева: Cyprinus carpio L., Hypophthalmichthys molitrix V., Ctenopharyngodon ¡délia У., Rutilus rutilus L., Scardinius erythrophthalmus L.

Локализация: жабры, кожа, плавники.

Места обнаружения: рыбхозы «За Родину», «15 лет Октября», рыбхозы «Шапариевский», «Октябрьский». Паразит является холодолюбивым видом. Массовое размножение происходит во второй половине зимовки при температуре воды 5-10°С. При неблагоприятных условиях паразит образует цисты покоя, которые длительное время сохраняются в толще воды на дне водоема.

СЕМЕЙСТВО Ophryoglenidae Kent, 1882 РОД Ichthyophthirius Fouguet, 1876 19. Вид Ichthyophthirius multifiliis Fouquet, 1876.

Хозяева: Cyprinus carpió L., Hypophthalmichthys molitrix V., Anstichthys nobilis R., Scardinius crythrophthalmus L., Alburnus alburnus L., Rutilus rutilus L., Tilapia mossambica.

Локализация: под эпителием кожи и жабр.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Часто встречаемый паразит прудовых и аквариумных рыб. Мальки заражаются с 3-недельного возраста. ЭИ и ИИ нарастает и может достигать в летнее время -90% при интенсивности более 40 инфузорий в поле зрения микроскопа.

КЛАСС Peritricha, 1859 ОТРЯД Peritrichida F. Stein, 1859 ПОДСЕМЕЙСТВО Apiosomatinae Banina, 1977 , РОД Apiosoma Blanchard, 1885 ПОДРОД Apiosoma Blanchard, 1885 20. Вид Apiosoma piscicolum Blanchard, 1885

Хозяева: Cyprinus carpió L., Hypophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis R., Ctenopharyngodon idella V., Scardinius erythrophthalmus L., Alburnus alburnus L.

Локализация: поверхность тела, плавники, жабры.

Места обнаружения: рыбхозы Курчанский, «8 марта», «Ангелинский», «Октябрьский». Зараженность сеголетков карпа чаще, чем сеголетков растительноядных рыб. Мальки заражаются с 2-недельного возраста. ИИ не превышала 4-5 экземпляров в поле зрения микроскопа.

СЕМЕЙСТВО Trichodinidae Claus, 1874 РОД Trichodina Ehrenberg, 1830

21. Вид Trichodina acuta Lom, 1966

Хозяева: все прудовые рыбы.

Локализация: жабры, поверхность тела.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Заражение мальков происходит в первые 14 дней жизни. ЭИ в летнее время держится на уровне 40% при интенсивности 1-2 экземпляров инфузорий в поле зрения микроскопа. В зимнее время зараженность достигает 60%. При высокой плотности посадки рыбы в зимовальных прудах интенсивность поражения от 5 до 15 экземпляров в поле зрения микроскопа.

22. Una Trichodina nigra Lorn, I960

Хозяева: Cyprinus carpió L., Hypophthalmichthys molitrix. V., Aristichthys nobilis R.,. Scardinius erythrophthalmus L., Rutilus rutilus L., Esox lucius L., Perca fluviatilis L.

Локализация: поверхность тела, плавники, жабры.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства. Заражение мальков происходит с двухнедельного возраста. ЭИ держится на уровне 20-40%, ИИ=1-5 экземпляра в поле зрения микроскопа, в течение всего года. Рыба старших возрастных групп, а также сорная рыба, находящаяся в прудах, является паразито-носителем данного вида.

23. Вид Tríchodina nobilis Chert, 1963.

Хозяева: Cyprinus carpió L., Ctenopharyngodon idella V., Hypophthalmich-thys molitrix V.

Локализация: поверхность тела, плавники, жабры.

Места обнаружении: рыбхозы «За Родину», «15 лет Октября», «Шапари-евский», «Ангелинский». Паразит - вселенец. Нами обнаружен при низких температурах воды (5-8°С) у сеголетков, годовиков карпа и растительноядных рыб с невысокой экстенсивностью и интенсивностью поражения (ЭИ=10-15% при ИИ=1-2 экземпляра Tr. nobilis в 100 полях зрения микроскопа. В летнее время паразит практически не регистрируется.

24. Вид Tríchodina rostrata Kulemína, 1968

Хозяева: Cyprinus carpió L., Aristichthys nobilis R., Rutilus rutilus L.

Локализация: поверхность тела, жабры.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Кубани. Паразит завезен в прудовые хозяйства нашей страны с акклиматизированной рыбой из Китая. Регистрируется инфузория во все сезоны года с незначительной экстенсивностью и интенсивностью (ЭИ не более 10%, при ИИ - 1-2 экземпляра в поле зрения). У рыб старше 2 летнего возраста паразит не регистрируется.

РОД Trichodinella Sramer-Huser, 1953

25. Вид Trichodinella epizoótica Raabe, 1950

Хозяева: Cyprinus carpió L., Hypophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis R., Ctenopharyngodon idella V., Acerina cernua L., Abramis brama L., Rutilus rutilus L., Esox lucius L.

Локализация: жабры, поверхность кожи.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства. Заражаются мальки в возрасте трех недель, ЭИ=20%, ИИ=1-3 экземпляра в поле зрения микроскопа. Регистрируется паразит в течение всего года, хотя экстенсивность снижается до 10%. Прудовая рыба более старших возрастных групп и сорная рыба являются носителем данного паразита.

Protozoa incertae sedis РОД Dermocystidium Perez, 1907

26. Вид Dermocistidium erschowi Garkawi, Denisov et Afanasiev, 1980

Хозяин: Cyprinus carpió L.

Локализация: подкожная клетчатка.

Места обнаружения: рыбхозы «15 лет Октября», Шапариевский, «Си-нюхинский». Возбудителя регистрировали в весеннее время при температуре воды 13-15°С, заражению подвержены годовики и двухлетки карпа. ЭИ не превышает 10-15%.

ТИП Plathelminthes КЛАСС Monogenea Bychowsky, 1937 ПОДКЛАСС Polyonchoinea Bychowsky, 1937 ОТРЯД Dactylogyridea Bychowsky, 1937 СЕМЕЙСТВО Dactylogyridae Bychowsky, 1933 РОД Dactylogyrus Diesing, 1850. 27. Вид Dactylogyrus achmerowi Gus sew, 1955

Хозяин: Cyprinus carpió L.

Локализация: жаберные лепестки.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Заражение мальков карпов происходит в возрасте трех недель. В течение летнего времени ЭИ возрастает и достигает 40%. Регистрируется у всех возрастных групп, хотя сеголетки и годовики заражены значительно сильнее. Карпы старших возрастных групп являются паразитоносителями.

28. Вид Dactylogyrus arisiiehthys Long et Yu, 1958

Хозяин: Aristíchthys nobilis L.

Локализация: жаберные лепестки.

Места обнаружения: рыбхозы «Синюхинский», «Шапариевский», «Октябрьский», КрасНИИРХ, ТЭЦ, «За Родину», «15 лет Октября», Крюковское водохранилище. Паразит - вселенец. Заражение мальков происходит в возрасте 20 дней. Теплолюбивый вид. Пик ЭИ наблюдается в июле-августе (60%) при ИИ - 10-40 экз. К осени зараженность снижается, что связано с изменением характера питания молоди карпа.

29. Вид Dactylogyrus ctenopharyngodonis Achmerow, 1952

Хозяин: Ctenopharyngodon idella V.

Локализация: жаберные лепестки.

Места обнаружения: рыборазводный завод «Горячий Ключ», рыбхозы «Рязанский», «За Родину», «15 лет Октября», им. Суворова. Паразит - вселенец. Нами D. ctenopharyngodonis выявлялся только в летнее время с незначительной ЭИ=10%, при ИИ=2-5 экземпляров на жаберном аппарате годовиков белого амура. У рыб более старших возрастных групп паразит не найден. Вид является мопогостальным.

30. Вид Dactylogyrus hypophthalmichthys Achmerowi, 1952.

Хозяин: Hypophthalmichthys molitrix V.

Локализация: жаберные лепестки.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Паразит завезен во время акклиматизации растительноядных рыб из Китая. Заражение сеголетков наблюдается с 20 дневного возраста, в течение летнего периода инвазия нарастает, достигая максимума к концу июля - началу августа (ЭИ=40-65%, ИИ=20-30 экз. на жаберном аппарате). Начиная с сентября зараженность снижается и в зимний период не превышает 10% (ИИ=5-10 экземпляров паразита на жабрах).

31. Вид Dactylogyrus nobilis Long et Yu, 1958

Хозяин: Aristichthys nobilis R.

Локализация: жаберные лепестки.

Места обнаружения: рыбхозы «За Родину», им. Суворова, «Синюхин-ский». Паразит - вселенец. Обнаруживали у сеголеток и годовиков пестрых толстолобиков в течение летнего периода часто в ассоциации с D. aristichthys при ИИ=3-5 экземпляров на жаберном аппарате рыбы. ЭИ нарастала с июня (40%) и к началу августа достигала 80%. В зимнее время возбудителя практически не регистрировали.

■32. Вид Dactylogyrus vastatorNybclin, 1924

Хозяин: Cyprinus carpió L.

Локализация: жаберные лепестки. .

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Мальки заражаются с 5-7-дневного возраста, ЭИ=15-20% и с повышением температуры воды зараженность нарастает. Мы отмечали активное размножение D. vastator при более высоких температурах воды (24-27°С). В июне-июле ЭИ сеголетков и годовиков достигала 60-70% с ИИ - 1-8 экземпляров паразитов на рыбе. ЭИ в осенне-зимний период снижалась до 10-15% при ИИ 1-4 экземпляров паразитов на жаберном аппарате рыбы. D. vastator встречается у карпов всех возрастов, но 2 и 3 летки чаще являются носителями возбудителя с незначительной интенсивностью заражения (1-3 экземпляра на жабрах).

33. Вид Dactylogyrus extensus Mueller et Van Cleave, 1932

Хозяин: Cyprinus carpió L.

Локализация: жаберные лепестки.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Заражение мальков происходит в 3-недельном возрасте. В мае-июне у сеголетков и годовиков карпа отмечена максимальная ЭИ - 65-70% при ИИ-35-40 экз. на рыбе. Возбудитель регистрировался нами в течение всего года, но с меньшей экстенсивностью, чем в мае-июне. Нам не удалось обнаружить данный вид на растительноядных рыбах при выращивании в поликультуре с карпом. Не регистрировали мы одновременного паразитирования на рыбах D. extensus и D. vastator.

34. Вид Dactylogyrus difformoides Glaser et Gussev, 1971. -'■' Хозяин: Scardinius erythrophthalmus L. ;

Локализация: жаберные лепестки.

Места обнаружения: рыбколхоз «За Родину». Обнаружены единичные экземпляры на жаберном аппарате в апреле (ЭИ=15%). Вид является моногос-тапьным. Более подробными данными по эпизоотологии и биологии D. difformoides не располагаем. .

ОТРЯД Gyrodactylidea Bychowsky, 1937.

СЕМЕЙСТВО Gyrodactylidae Van Beneden et Hesse, 1863.

Подсемейство Gyrodactylinae Van Beneden et Hesse, 1863.

РОД Gyrodactylus Nordmann,1832.

35. Вид Gyrodactylus cyprini Diarova, 1964.

Хозяин: Cyprinus carpió L.

Локализация: поверхность тела, жабры.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Паразиты обнаруживаются в зимовальных прудах при высокой плотности посадки и температуре воды 8-13°С.

36. Вид Gyrodactylus katharineri Malmberg,1964.

Хозяин: Cyprinus carpio L.

Локализация: жабры, плавники, поверхность тела.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства. Чаще обнаруживали у сеголетков карпа в зимне-весенний период. Максимальный процент пораже-ния(50-60%) регистрировали в марте, при ИИ - 5-20 паразитов на рыбе. В летнее время ЭИ и ИИ снижается до 8% при 1-3 экземпляра на рыбе.

37. Вид Gyrodactylus carassii Malmberg, 1957.

Хозяева: Scardinius erythrophtalmus, Alburnus alburnus L., Rutilus rutilus.

Локализация: жабры, плавники, носовая полость, поверхность кожи.

Места обнаружения: рыбхозы «Курчанский», «Рязанский», «За Родину».

Широко распространенный вид. Регистрируется во все сезоны с невысокой ЭИ и ИИ (20% и 3-8 экз. на жабрах). Видимых патологических изменений у рыб при низкой интенсивности заражения паразит не вызывает. Па прудовой рыбе при контакте с сорной в прудах рыбоводных хозяйств не регистрировали.

ТИП Plathelminthes КЛАСС Cestoda Rudolpbi, 1808 ОТРЯД Caryopgyllidea Van Beneden in Cams, 1863 СЕМЕЙСТВО Lytocestidae Hunter, 1927 РОД Khawia Hsu, 1935 38. Вид Khawia sinensis Hsu, 1935

Хозяин: Cyprinus carpio L., Ctenopharyngodon idella V.

Локализация: кишечник.

Места обнаружения: рыбхозы «За Родину», им. Суворова, «15 лет Октября», «Шапариевский», РВХ ТЭЦ, Краснодарский РРЗРР. Чаще регистрируется в русловых хозяйствах, что связано с наличием промежуточного хозяина -трубочника. Обнаруживали паразита начиная с марта на годовиках карпа и белого амура. ЭИ=5-10%, ИИ - 1-4 экз. в кишечнике рыбы. Затем процент поражения нарастал, достигая к концу июля ЭИ 30-45% при ИИ=5-15 экземпляров в кишечнике. В зимнее время зараженность снижается до 5-10%, при ИИ=1-2 экземпляров в кишечнике. Однако полного освобождения рыбы во время зимовки от К. sinensis не отмечали. Двухлетки и рыба старших возрастных групп, как правило, является носителем гвоздичника.

ОТРЯД Pseudophyllidea Carus, 1863 СЕМЕЙСТВО Bothriocephalidae Blanchard, 1849 РОД Bothriocephalus Rudolphi, 1808 39. Вид Bothriocephalus opsariichthydis Yamaguti, 1934

Хозяева: Cyprinus carpio L., Ctenopharyngodon idella V., Rutilus rutilus L., Abramis brama L., Scardinius erythrophthalmus L. (табл. 2).

Локализация: кишечник.

, Места обнаружения: все прудовые хозяйства. Паразит - вселенец. Завезен в прудовые хозяйства Краснодарского края вместе с белым амуром из Китая в 1952-1964 годы. В 1968 году впервые зарегистрирована вспышка ботрио-цефалеза среди сеголетков и годовиков карпов в рыбколхозе «Разнокол» (Т.А. Яковчук, 1974).

В дальнейшем паразит широко распространился в прудовых хозяйствах. Быстрой адаптации В. opsariichthydis в новых условиях способствовали его эври-термность, широкий круг промежуточных и дефинитивных хозяев.

СЕМЕЙСТВО Ligulidae Claus, 1885 ПОДСЕМЕЙСТВО Ligulinae Monticelli et Grety, 1891 РОД Lígula Bloch, 1782 40. Вид Lígula intestinalis Linnaens, 1758

Хозяева: Abrarnus brama L., Rutilus rutilus L., Aristichthys nobilis R., Cteno-pharyngodon ideüa V., Scardinius erythrophthalmus L.

Локализация: полость тела.

Места обнаружении: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Регистрируется в мелкопроточных водоемах в летнее время. ЭИ=15-20% при ИИ=2-20 экз. в полости тела рыбы. Чаще поражаются сеголетки пестрого толстолобика при выращивании в поликультуре. Иногда при высокой интенсивности инвазии (15-20 экз.) отмечали истончение брюшной стенки, и даже ее разрыв, вследствие чего сеголетки гибли. В зимнее время ЭИ и ИИ значительно не меняется, хотя отмечается освобождение отдельных экземпляров рыб от паразитов.

РОД Digramma Cholodkovsky, 1914 41. Вид Digramma interrupta Rudolphi, 18JO

Хозяева: Aristichthys nobilis Rich., Ctenopharyngodon idcJla V., Scardinius erythrophthalmus L., Abramis brama L.

Локализация: полость тела.

Места обнаружения: рыбхозы «Курчанский», «Шапариевский», «Ахтар-ский»; «Синюхинский», «Горяче-Ключевской», КрасНИИРХ, «15 лет Октября», «За Родину». Из прудовых рыб, выращиваемых в поликультуре, наиболее восприимчивы к диграммозу пестрые толстолобики, сеголетки которого поражены на 60% при ИИ от 2 до 25 экз. паразитов в полости тела рыбы.

42. Вид Diplostomum spathaceum Rudolphi, 1819

Хозяева: Hypophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis Rich., Ctenopharyngodon idella V., Alburnus alburnus L., Scardinius erythrophthalmus L., Rutilus rutilus L.

Локализация: хрусталик глаз. :

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Наиболее восприимчивы сеголетки белого и пестрого толстолобиков. Заражение молоди регистрировали с раннего возраста. ЭИ в августе составляла 15-20% при ИИ=1-3 экз. метацеркариев у рыбы. Другие виды рыб заражены значительно слабее и ЭИ не превышает 10% при ИИ=1-2 экз.

РОД Postbodiplostomum Dubois, 1936 43. Вид Posthodiplosfomum cuticola Nordmann, 1832

Хозяева: Hipophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis Rich., Cypri-nus carpió L., Scardinius erythrophthalmus L., Alburnus alburnus L.

Локализация: кожа, плавники.

Места обнаружения: все прудовые хозяйства Краснодарского края. Наиболее восприимчивы мальки и сеголетки пестрого и белого толстолобика. В летние месяцы ЭИ=30-45%, ИИ=2-20 личинок на теле рыбы.

ТИП Nemathelminthes КЛАСС Nematode Rudolphi, 108 ПОДКЛАСС Secernentea Linstow, 1905

ОТРЯД Spirurida Chitwood, 1933 ПОДОТРЯД Camallanata Chitwood, 1936 СЕМЕЙСТВО Skrjabillanidae Schigin et Schigina, 1958 РОД Garkavillanus Lomakin et Tschernova, 1980

44. Вид Garkavillanus amuri Garkawi, 1972

Хозяин: Ctenopharyngodon idella V.

Локализация: полость тела.

Места обнаружения: Горяче-Ключевской рыбзавод, рыбхозы «Рязанский», им. Суворова. Моногостапьный паразит. Обнаружен в брюшной полости годовиков и двухлеток белого амура в летнее время (ЭИ=20%, ИИ — 2-10 экз.) в полости тела. В зимнее время паразита не регистрировали. В последнее время ЭИ и ИИ заражения белого амура нематодой G. amuri резко снизилась. Возбудитель в последние годы практически не регистрируется.

СЕМЕЙСТВО Philometridae Baylis et Daubney, 1926 РОД Philometra Costa, 1845

45. Вид Phttometroides lusiana Vismanis, 1966

Хозяева: Cyprinus carpió L.

Локализация: мышечная ткань, чешуйчатые кармашки, внутренние органы.

Места обнаружения: рыбхоз «Ангелинский». Возбудитель завезен с производителями карпов из Ростовской области в 1990 году при нарушении правил карантинирования рыбы. Нематода развивается с участием промежуточных хозяев - циклопов различных видов. Наличие значительного количества циклопов в водоемах способствует широкому распространению паразита, как в прудовых, так и естественных водоемах. Наиболее подвержены заболеванию 2-летки карпа. Чешуйчатые формы чаще поражаются филометрами, чем зеркальные. Заражается рыба преимущественно весной. ЭИ=25-30%, ИИ - от нескольких десятков до сотен личинок. Летальность среди сеголетков карпов от филометроидоза не превышает 10%.

ТИП Annelida КЛАСС Hirudinca Lamarck, 1818 ПОДКЛАСС Hirudiniones nom. n.

ОТРЯД Rhynchobdcllida Blanchard, 1894 СЕМЕЙСТВО Piscicolidae Yohnston, 1865 РОД Piscicola Blainville, 1818

46. Вид Piscícola geómetra Linnaeus, 1761

Хозяева: Cyprinus carpió L., Esox lucius L., Scardinius erythrophthalmus L.

Локализация: поверхности тела, плавники, ротовая полость.

Места обнаружения: рыбхозы «Шапариевский», «Курчанский», «За Родину», «15 лет Октября», им. Суворова. Встречается возбудитель в непроточных водоемах, рыбхозах с низкой ветеринарно-санитарной культурой, поскольку коконы, где пиявки откладывают яйца, прикрепляются к высшим водным растениям. Чаще поражаются годовики карпа и щуки в зимовальных прудах. ЭИ в весеннее время не превышает 15% при ИИ=1-3 экз. на рыбе. В летнее время пиявки встречаются реже, массовых вспышек заболевания не регистрировали. -РОД Ergasilus Nordmann, 1832

47. Вид Ergasilus sieboldi Nordmann, 1832

Хозяева: Cyprinus carpió L., Esox lucius L.

Локализация: жабры.

Места обнаружения: рыбхозы «Шапариевский», «Курчанский», Крюковское водохранилище, им. Суворова, «За Родину». Паразитических рачков обнаруживали в летнее время с небольшой ЭИ (10%) при ИИ 1-2 экз. на жабрах сеголетков карпа и щуки. Оптимальная температура размножения паразита 20-25°С(Е.И. Змерзлая, 1972).

РОД Sinergasilus Yin, 1949 48. Вид Sinergasilus lient Yin, 1949

Хозяева: Hypophthalmichthys molitrix V:, Aristichthys nobilis Rich.

Локализация: жабры.

Места обнаружения: рыбхозы «15 лет Октября», «За Родину», «8 марта», «Курчанский», «Шапариевский», «Синюхинский», «Приморско-Ахтарский», Крюковское водохранилище. Паразит - вселенец. Завезен во время акклиматизационных перевозок растительноядных рыб из Китая. Обнаруживали чаще в летнее время у сеголетков с ЭИ до 20% при интенсивности 1 -3 экз: на жаберном аппарате. Сильнее заражен пестрый толстолобик, чему способствует анатомические особенности строения жабр. С понижением температуры воды в осенне-зимний период ЭИ значительно снижается:

49. Вид Sinergasilus major Markcwitsch, 1940

Хозяин: Ctenopharyngodon idella V.

Локализация: жабры.

Места обнаружения: рыбхозы «15 лет Октября», им. Суворова, «Шапариевский». Паразит - вселенец. Завезен из Китая с акклиматизированным бе-

лым амуром. В основном обнаруживали синергазилюсов у сеголетков белого амура в июле-августе с экстенсивностью 10-15% и ИИ=1-3 экземпляра паразита на жаберном аппарате рыбы.

Подотряд Cyclopoida Sars, 1886 СЕМЕЙСТВО Lernaeidae Cobbold, 1879 РОД Lernaea Linnaeus, 1758

50. Вид Lernaea cyprinacea Linnaeus, 1758

Хозяева: Cyprinus carpió L., Hypophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis Rich., Ctenopharyngodon idella V.

Локализация: поверхность кожи.

Места находок - рыбхозы: «За Родину», «15 лет Октября», «Шапариев-ский», «Курчанский», «Синюхинский», «Ангелинский», «Горячий Ключ», Крюковское водохранилище. Мальки рыб заражены в раннем возрасте. Обычная ЭИ в июле-августе среди сеголетков составляет 15-20% при ИИ=3-15 экз. лерней на рыбе.

51. Вид Lernea elegans morpha ctenopharyngodontis Yin, 1960 "

Хозяин: Ctenopharyngodon idella V.

Локализация: кожа.

Места находок: рыбхозы «8 марта», «15 лет Октября». Паразит-вселенец. Паразитирует на сеголетках белого амура. ЭИ в июле-августе - 15% при ИИ — до 5 экз. лерней на рыбе. Отмечено носительство паразита рыбой более старших возрастных групп. Часто находили их на сеголетках белого амура в ассоциации с L. elegans и L. cyprinacea в равном соотношении. Гибели рыбы от лер-неоза не отмечали, но зараженные сеголетки имеют меньшую массу, в среднем на 10-15%, чем незараженные.

Подкласс Branchiura Thorell, 1864 СЕМЕЙСТВО Argulidae Muller, 1785 РОД Argulus Müller, 1875

52. Вид A rgulus foliaceus Linnaeus, 1758

Хозяева: Cyprinus carpió L., Hypophthalmichthys molitrix V., Aristichthys nobilis Rich., Ctenopharyngodon idella V., Scardinius erythrophthalmus L.

Локализация: поверхность кожи.

Места обнаружения: рыбхозы «За Родину», им. Суворова, «Шапариев-ский», «Синюхинский», «Приморско-Ахтарский», Крюковское водохранилище. Теплолюбивый паразит. Максимального развития достигает в середине июля -начале августа. ЭИ достигает 20% при ИИ до 15 рачков на сеголетке. Оптимальной температурой для развития А. foliaceus является температура воды 25-28°С.

2.2.3. ОСОБЕННОСТИ ФОРМИРОВАНИЯ ПАРАЗИТАРНОЙ СИСТЕМЫ У РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ

2.2.3.1. Формирование паразитарной системы у карпов в прудовых хозяйствах Краснодарского края

В прудовых хозяйствах Краснодарского края личинку карпа получают двумя способами: от естественного нсреста и заводским способом. При естественном нересте в маточные пруды в конце мая сажают половозрелых самцов и самок в соотношении 1:4 - 1:6. Пруды подготавливают заранее: ложе должно быть спланировано, вода прогрета, в толще воды - достаточное количество стартового корма — зоопланктона. Из икры, выметываемой самками после оплодотворения молоками самцов, идет выклев личинки. Продолжительность его зависит от температуры воды и составляет от 1 до 3 суток. После чего производителей из прудов отлавливают, а личинки начинают интенсивно питаться зоопланктоном и находятся в данных водоемах до осени. К октябрю-ноябрю сеголетки достигают массы 18-20 г. Их отлавливают и пересаживают в зимовальные пруды (1 технологическая пересадка). С повышением температуры воды (10-12 С) весной следующего года карпов из зимовальных прудов пересаживают в нагульные водоемы (2 технологическая пересадка). Недостатки получения личинок карпа при естественном нересте заключаются в том, что здесь происходит контакт личинок с производителями и заражение их паразитами с первых дней жизни.

При заводском способе инкубации производителям делают инъекцию гормонов гипофиза для одновременного созревания икры и молок. Через 6-12 часов у самок выдавливают икру и помещают в эмалированные тазы с водой, туда добавляют молоки самца и аккуратно перемешивая икру происходит оплодотворение. Оплодотворенные икринки помещают в аппараты для инкубации - ВНИИПРХ. В зависимости от температуры воды выклев личинок в аппаратах ВНИИПРХ идет также несколько суток. Из инкубационных аппаратов выклюнувшуюся личинку перевозят в мальковые пруды, где должно быть достаточное количество зоопланктона — стартового корма для личинок. Этот способ позволяет получить до 90% личинок из оплодотворенной икры, не допускать контакта личинок с производителями.

Нами в прудовых хозяйствах Краснодарского края у карпа выявлено 32 вида паразитов, в том числе 18 видов (56,2%) простейших, 5 видов моногеней (15,6%), 2 вида (6,2%) цестод, 1 вид трематод (3,1%), 4 вида (12,5%) паразитических ракообразных, 1 вид нематод (3,1%) и 1 вид паразитов (3,1%) Оегтосуз-Н<3шт егесЬоич неопределенного систематического положения. Большинство видов (26 или 82%) в прудовых хозяйствах Краснодарского края развиваются прямым путем.

Из обнаруженных 32 видов паразитов карпа моногостальными являются 8 видов — СгургоЫа сурпш, Оегтосуз^сПит ег5сЬо\у1, Оасгу^угиз асЬтегоуу!, Вас1у^уги5 сх^шив, Оас1у1о£угиз Уаз1а1:ог,Суго(1ас1у1из сурпш, Оуго<1ас1у1и5 каЛаппсп и РЫ1оте1го!с1е5 ^¡апа.

В прудовых хозяйствах большинство паразитов карпа регистрируются с незначительной ЭИ и ИИ. Однако паразиты-вселенцы китайского комплекса -

миксоспоридии Sphaerospora carassi, Myxobolus cyprini,Myxobolus dogieli, инфузории Ichthyophthirius multifliis, Trichodina acuta, Trichodina nigra, моногенс-тические сосальщики — Dactylogyrus vastator, Dactylogyrus extensus, цестоды Bothriocephalus opsariichthidis и завезенная из европейской. части нематода Philometroides lusiana имеют не только зоологическое и фаунистическое, но и ветеринарное значение, вызывая заболевание и гибель карпов в прудовых хозяйствах.

2.2.3.2. Формирование паразитарной системы у белого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края

Личинок растительноядных рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края получают только заводским способом, т.к. в природных условиях (бассейн рек Уссури, Сунгари, Амур) температура воды выше, чем на Кубани и естественный нерест растягивается во времени из-за неодновременного созревания икры.

В 20 рыбоводных хозяйствах Краснодарского края у белого толстолобика паразитируют простейшие 15 видов, (65,2%, из них миксоспоридии — 3 вида, или 13%), 1 вид моногенетических сосальщиков, 2 — личинок трематод, 1 вид цестод и 3 вида паразитических ракообразных. 19 из 22 описанных видов (86,4%) паразитов развиваются прямым путем. Более половины обнаруженных видов (60,9%) паразитируют на жабрах и поверхности кожи. Вид M.ellipsoides обнаруживается во всех органах и тканях белого толстолобика.

Строгой анатомической специфичностью отмечаются личинки трематод D.spathaceum, паразитирующие в хрусталике глаз белых толстолобиков. Возбудители диплостомозов вызывают серьезные нарушения общего физиологического состояния своих хозяев при различных формах заболевания.

При острой форме у мальков наблюдается уменьшение общего белка в сыворотке крови с 3,35±0,24 до 3,17±0,10%, снижение уровня альбуминов и глобулинов, атакже увеличение содержания а- и ß- глобулинов с 10,38±1,31 до 13,72±1,72%. Наблюдалось снижение Hb в крови с 9,4±0,30 до 8,8±0,31. Изменения элементов белой крови были более значительными, у больных рыб констатировали лейкоцитоз (110,0±2,7 тыс. в 1 мкл) по сравнению с контролем -65,0±1,08 тыс. в 1 мкл. Возрастает содержание моноцитов, полиморфноядерных клеток и нейтрофилов, уменьшается содержание лимфоцитов. У больных хронической формой диплостомозов сеголетков и годовиков белых толстолобиков развивается авитаминоз, снижается содержание жира и запасов гликогена.

В кишечнике белого толстолобика мы часто обнаруживали простейших Eimeria cheni и Eimeria sinensis и плероцеркоидов цестод Ligiila intestinalis. !

Большинство паразитов белого толстолобика регистрируется с незначительной ЭИ и ИИ. Увеличение числа паразитов отмечается в летнее время, т.к. большинство из них теплолюбивые виды.

Белый толстолобик устойчив' к большинству паразитарных заболеваний^ Миксоспоридии Myxobolus pavlovskii, наносящие серьезный ущерб пестрому толстолобику, содержащемуся в поликультуре, у белого толстолобика lie вызывают значительных' изменений И не приводят к гибели. К виду Myxobolus haé-

mophilus у белого толстолобика, по- видимому, имеется иммунитет, т.к. нами не было обнаружено ни одной споры М. haemophilus у белого толстолобика. Это дает основание для использования биологического метода профилактики миксоболеза пестрых толстолобиков, вызываемого миксоспоридиями вида М. haemophilus, а именно, используя для выращивания гибриды белого и пестрого толстолобика.

Инфузории Ichthyophthirius multifiliis, Tr. nigra, моногенеи Dactylogyrus hypophthalmichthys, личинки трематод Diplostomum spathaceum, Posthodiplostomum cuticola, цестода Ligula intestinalis, часто паразитируют у белых толстолобиков и способны вызвать заболевание и гибель рыб.

2.23.3. Формирование паразитарной системы у белого толстолобика в спе-v циализированном рыборазводном заводе

Белый толстолобик — Hypophthalmichthys molitrix завезен на Кубань из Китая в 1956 году. В настоящее время из рыб дальневосточного комплекса, разводимых в Краснодарском крас, он является одним из распространенных объектов выращивания. Однако введение новых объектов повлекло за собой появление болезней, которые ранее не регистрировались в хозяйствах Краснодарского края.

Среди рыб дальневосточного комплекса белый толстолобик оказался одним из наиболее восприимчивых к некоторым видам местных паразитов, к таким, как возбудители диплостомоза, лигулеза, диграммоза. Эти заболевания часто возникают в прудовых хозяйствах, где создаются благоприятные условия для развития их промежуточных и окончательных хозяев.

У белого толстолобика на Краснодарском рыборазводном заводе мы нашли 11 видов паразитов: простейших — 4 вида, трематод — 2, моногеней — 1, цестод — 2, ракообразных — 2 вида. У сеголеток белого толстолобика обнаружены 6 видов паразитов: простейших — 2 вида (Trichodina acuta, Cryptobia branchi-aHs),''моногеней — 1 вид (Dactylogyrus hypophthalmichthys), трематод - 2 вида (Diplostomum spathaceum, Posthodiplostomum cuticola), ракообразных — 1 вид (Lernea elegans). На сеголетках чаще всего встречались простейшие и моногенеи, паразитирующие на жабрах. Триходины и дактилогирусы обнаруживались при каждом обследовании. Максимальное развитие Trichodina acuta наблюдалось в августе, а Dactylogyrus hypophthalmichthys — в июле-августе. К осени ИИ заметно снизилась. Это связано с тем, что триходины и дактилогирусы - теплолюбивые паразиты. Максимальное их развитие происходит при 20-25°С. Cryptobia branchialis, Diplostomum spathaceum, Lemea elegans встречались у сеголеток реже. Максимальное развитие паразитов наблюдалось в августе-сентябре при понижении температуры воды (8-10°С), экстенсивность заражения снижалась до 2-3 %.

На двухлетках белого толстолобика паразитировали 2 вида простейших (Chilodonella piscicola и Cryptobia branchialis), 1 вид моногеней (Dactylogyrus hypophthalmichthys), 2 вида трематод (Diplostomum spathaceum, Posthodiplostomum cuticola), 1 вид ленточных червей (Ligula intestinalis) и 2 вида паразитических рачков (Lerrieä elegans и Sinergasilus lieni). У двухлеток белого толстрло-

бика чаще всего паразитировали и сосальщики - Dactylogyrus hypophthalmich-thys и трематода Posthodiplostomum cutäcola. Максимальное развитие дактило-гирусов также, как и у сеголеток, наблюдалось летом (июль-август). Posthodiplostomum cuticola — возбудитель черно-пятнистого заболевания — обнаружен у двухлеток в подкожной клетчатке. Паразит образовывал выпуклую округлую капсулу в виде темного пятна. Пигментированные пятна портили товарный вид рыбы. ЭИ постодиплостомоза имела максимальные значения в августе-сентябре (75 %). В октябре ЭИ снизилась на 5 %.

Из простейших у двухлеток обнаружены инфузории Chilodonella piscícola, паразитирующие на поверхности тела, и Cryptobia branchialis, паразитирующие на жабрах. Паразиты встречались на рыбе в единичных экземплярах: Chilodonella piscícola - в октябре, Cryptobia branchialis — в августе-сентябре. Развитие хилодонеллы происходит особенно интенсивно при температуре от 5 до 18°С, т.е. в те периоды выращивания, когда рыба плохо питается.

Diplostomum spathaceum и Lernea elegans встречались у двухлеток чаще, чем у сеголеток (ЭИ.Diplostomum spathaceum для сеголеток — 10 %, для двухлеток — 12 %; ЭИ Lernea elegans для сеголеток — 10 %, для двухлеток - 14 %). Diplostomum spathaceum и Lernea elegans — теплолюбивые паразиты. С повышением температуры ускоряется их развитие. Оптимальные температуры развития -20-28°С. Так как в Краснодарском крае температура воды с середины апреля до конца октября не опускается ниже 8-15°С, а в середине лета часто достигает 24-27°С - Diplostomum spathaceum и Lernea elegans встречаются в течение всего вегетационного периода. Максимальное их развитие наблюдалось в июле-августе. Заражение сеголеток и двухлеток лернсозом связано с тем, что чешуйный покров у них развит значительно слабее, чем у старших возрастных групп.

У двухлеток белого толстолобика паразитировал веслоногий рачок Siner-gasilus lieni, не обнаруженный у сеголеток. Локализация паразита — жабры. Оптимальные температуры развития — 25-27°С. Наиболее высокая зараженность наблюдалась в августе в нагульных прудах.

На трехлетках, как и на двухлетках, обнаружено 8 видов паразитов: 3 вида простейших (Chilodonella piscícola, Trichodina acuta, Apiosoma piscícola), 1 вид моногеней (Dactylogyrus hypophthalmichthys), 1 вид трематод (Posthodiplostomum cuticola), 1 вид цестод (Ligula intestinalis), 2 вида паразитических рачков (Sinergasilus lieni и Argulus foliaceus).

У трехлеток белого толстолобика из простейших чаще всего встречалась Chilodonella piscícola (ЭИ — 10 %). Все виды простейших были обнаружены на рыбе в конце вегетационного сезона. Трехлетки в основном были поражены дактилогирозом (ЭИ 90 %) и черно-пятнистым заболеванием (ЭИ 75 %).

У трехлеток, в отличие от сеголеток и двухлеток, были обнаружены ленточный червь Ligula intestinalis и паразитический рачок Argulus foliaceus. Максимальное развитие паразитов наблюдалось в июле-августе. Толстолобики, зараженные лигулами, были заметно ослаблены и истощены.

Поражение трехлеток паразитическим рачком Sinergasilus lieni наблюдалось с меньшей экстенсивностью, чем у двухлеток. Максимальные значения ЭИ

зарегистрированы в августе — 15 %, в начале лета и осенью ЭИ составляла 78%.

На четырехлетках белых толстолобиков нами выявлено 6 видов паразитов: простейшие - Apiosoma piscícola, моногенея - Dactylogyrus hypophthalmich-thys, трематода - Posthodiplostomum cuticola, ленточный червь - Lígula intestinalis и 2 вида паразитических рачков - Argulus foliaceus и Sinergasilus lieni. По сравнению с другими возрастными группами на четырехлетках менее всего встречались простейшие. Обнаружен только один вид простейших - Apiosoma piscícola, паразитирующая на жабрах рыб.

Степень заражения четырехлеток дактилогирозом и постодиплостомозом ниже, чем двухлеток и трехлеток. ЭИ четырехлеток Dactylogyrus hypophthal-michthys 80 %, двух- и трехлеток — 90%. ЭИ Posthodiplostomum cuticola четырехлеток 70 %, а двух- и трехлеток - 75 %. Уменьшение зараженности рыб черно-пятнистым заболеванием связано, по-видимому, с образованием чешуйного покрова, препятствующего проникновению церкарий в рыбу. Для белого толстолобика в условиях'хозяйства 2 вида обнаруженных трематод считаются патогенными, а заболевания паразитарная катаракта и черно-пятнистое заболевание, вызываемые метацеркариями этих видов трематод, очаговыми. КрСРРЗРР является условно неблагополучным хозяйством по черно-пятнистому заболеванию. По остальным заболеваниям белый толстолобик оказался лишь паразито-носителем. '

На КрСРРЗРР у четырехлеток зараженность лигулёзом, аргулезом и си-лергазилезом была несколько выше, чем у других возрастных групп. Такое явление в отношении лигулеза' можно объяснить тем, что в летнее время за счет нового заражения развиваются молодые стадии паразита, которые крупных размеров достигают только на 2-ой год. Максимальное развитие лигул наблюдалось в сентябре-октябре, а рачков - в июле-августе. Sinergasilus lieni встречался чаще всего у трех- и четырехлеток белого толстолобика, т.к. у младших возрастных групп величина жаберных лепестков недостаточна для прикрепления такого крупного паразита. Максимальное развитие заболеваний наблюдалось во второй половине вегетационного сезона (конец июля — начало сентября). Это объясняется тем, что большая часть паразитов — теплолюбивые виды.

Особенности паразитофауны белого толстолобика Краснодарского специализированного рыборазводного завода заключается в том, что рыба содержится в монокультуре. Раздельновозрастное содержание белого толстолобика способствует объединению видового состава паразитов. Из 11 описанных от белого толстолобика видов только три имеют в данном хозяйстве ветеринарное значение и вызывают снижение темпов роста и заболеваемость рыбы. Это простейшие Trichodina acuta, моногенетический сосальщик Dactylogyrus hy-pophthalmichthys и личиночная стадия трематоды Posthodiplostomum cuticola. Остальные 8 видов регистрируются в форме носительства. Тем не менее белый толстолобик является резервуаром выявленных паразитов и при бесконтрольной продаже, перевозке такой рыбы в благополучные хозяйства существует реальная угроза заражения здоровой рыбы. Большинство описанных видов могут заражать как прудовую рыбу — карпа, пестрого толстолобика, белого амура, так

и рыбу естественных водоемов, что способствует формированию стационарно неблагополучных очагов по таким паразитозам как хилодонеллез, лернеоз, ар-гулез, синергазилез.

2.2.3.4. Формирование паразитарной системы у пестрого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края

С пестрым толстолобиком во время акклиматизационных перевозок из Китая в водоемы Краснодарского края завезено значительное число паразитов, которые в новых для себя природно — климатических условиях значительно усилили патогенность как для своего естественного хозяина — пестрого толстолобика, так и для поликультуры других обитателей местных биоценозов. К таким паразитам можно отнести простейших Eimeria cheni и Е. sinensis,, миксос-поридий Myxobolus pavlovskii, инфузорий I. multifiliis, Tr. acuta, цестоды Ligula intestinalis, Digramma interrupta, ракообразных - Sinergasilus lieni, Lernaea cypri-nacea.

С учетом своих биологических особенностей данные виды в системе «паразит — рыба» значительно расширили ареал распространения. Факторы, способствующие этому — большое количество природных и искусственных водоемов, высокие температуры воды с марта по октябрь месяцы. Широкий спектр промежуточных и дефинитивных хозяев , для паразитов, имеющих сложный цикл развития, и, самое главное, высокая плотность посадки прудовой рыбы в водоемах.

В условиях Краснодарского края у пестрого толстолобика паразитирует 22 вида, в т.ч. простейших — 13 видов или 59,2%, 2 — моногенетических сосальщиков (9,0%), 2 — личинок трематод (9,1%), 2 - цестод (9,1%), 3 — паразитических ракообразных (13,5%). Четыре вида паразитов пестрого толстолобика имеют сложный цикл развития. Основная доля обнаруженных видов развиваются без участия промежуточных хозяев.

Жаберных паразитов из числа обнаруженных — 9 видов, на поверхности кожи обитают 7 видов, в кишечнике — 2, в полости тела — 2, в хрусталике глаза - 1 вид (D. spataceum) и 1 моногостальный вид паразитирует в крови и в других органах и тканях пестрых толстолобиков (Myxobolus haemophilus).

.. , Пестрый толстолобик оказался наиболее подвержен таким паразитарным заболеваниям, как миксоболез (М. pavlovskii и М. haemophilus), ихтйофтириоз, триходиноз, дактилогирозы. Серьезную опасность для пестрых толстолобиков в .прудовых хозяйствах Краснодарского края представляют трематодозы (D.spataceum и P.cuticola) и цестодозы (Ligula intestinalis и Digramma interrupta).

Самыми опасными заболеваниями для сеголетков и годовиков пестрых толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края являются мйксобо-лезы, вызываемые жаберным паразитом М. pavlovskii и моногостальным видом М. haemophilus, паразитирующим во всех органах и тканях толстолобиков.

2.2.3.5. Формирование паразитарной системы у белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края

Паразитофауна белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена 20 видами паразитов. Структура видов значительно отличается от паразитофауны карпа и толстолобиков, что обусловлено характером питания, биологией, анатомо-физиологическими особенностями, а также плотностью посадки белого амура в прудах. Простейшие составляют 10 видов (50%), цестоды - 4 вида (20%), личинки трематод — 1 вид (5%), нематоды Garkawillanus amuri -1 вид (5%) и 4 вида паразитических ракообразных (20%). Доля паразитов, развивающихся с участием промежуточных хозяев, у белого амура значительно выше, чем у толстолобиков и карпа и составляет — 31,6%. Простейшие обнаруживаются у белого амура в форме носительства с незначительной экстенсивностью и интенсивностью инвазии. •

Наибольшую проблему для сеголетков и годовиков белого амура представляют цестоды Bothriocephalus opsariichthydis, Khawia sinensis. Заболеваемость в летнее время достигает 60%. Полного освобождения белого амура от цестод в течение года не происходит. Часто обнаруживается ассоциативное на-разитирование кавий и ботриоцефалюсов. Белый амур, наряду с сорными рыбами красноперкой и плотвой, является одним из основных резервуаров цестод в антропогенных биоценозах, т. е. прудовых хозяйствах.

В условиях теплого климата Краснодарского края нами отмечалось до трех подъемов зараженности сеголетков и годовиков белого амура ботриоцефа-лезом в течение одного сезона. Первый пик инвазии (ЭИ достигает 60%, при ИИ более 10 цестод в кишечнике рыб) отмечается в конце июня. Затем, вследствие выхода зрелых цестод из кишечника, гибели определенного процента рыб (до 5%) заболеваемость стабилизируется на уровне 15-20%. После чего происходит размножение второй генерации цестод и очередной пик инвазии при температуре воды +23..+25С отмечается в конце июля. Как правило, к осени идет частичное снижение ЭИ ботриоцефалезной инвазии. Однако если температура воды в августе достаточно высокая (более 20-22°С) отмечается третий подъем зараженности белого амура цестодами (В. opsariichthidis и Kh. sinensis).

Полостная нематода — Garkawillanus amuri наносит сеголеткам и годовикам белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края определенный ущерб, вызывая снижение темпов роста и развития, токсическое и механическое воздействие, паразитируя в полости тела. При высоких плотностях посадки белого амура в горячеключевском рыбозаводе, рыбхозах «8 марта» и «15 лет Октября» обнаруживали в полости тела рыб более 10-15 нематод, при экстенсивности до 20%. Цикл развития нематоды G. amuri до конца не расшифрован, но известно, что некоторые виды циклопов — промежуточные хозяева данного паразита.

2.2.3.6. Формирование паразитарной системы у прудовых рыб в хозяйствах на теплых водах Краснодарской ТЭЦ

Рыбоводное хозяйство на теплых водах ТЭЦ расположено в междуречье реки Кубань и ее старого русла в юго-восточной части города Краснодара. С

1976 г. это хозяйство существовало как опытное хозяйство КрасНИИРХ. С 1981 г, в PBX ТЭЦ была начата активная деятельность по разведению и выращиванию прудовых рыб. На территории хозяйства находятся инкубационный цех для воспроизводства различных видов рыб мощностью 50 млн. личинок, инкубационный цех для воспроизводства осетровых рыб мощностью 1,5 млн. личинок. Имеются отстойник (или головной пруд), мальковые, выростные пруды, бассейны для подращивания личинок и молоди, ремонтные и маточные пруды, зимовальные пруды, садки для выдерживания и передерживания производителей. "

Нагульная часть хозяйства включает садки, предназначенные для выращивания товарной рыбы, склады кормов и удобрений, технический отдел, где сосредоточена техника для раздачи кормов и внесения удобрений, а также зимовальные пруды для содержания в них сеголеток. Передача получаемой в выростных прудах рыбы бригаде, работающей на нагульной системе, осуществляется осенью. Зимовальные пруды подготавливают специально для сеголетков. Иногда вместе с ними держат ремонтную рыбу. Содержание производителей с сеголетками запрещается. Имеются специальные садки, где концентрируется рыба перед продажей в торговую сеть. '

Основной процесс выращивания рыбы идет в садках. В хозяйстве имеется 4 садковых линии на сваях из нержавеющей сетки. Всего линии включают 636 садков. Площадь каждого 4 кв. м, глубина 2 м, объем составляет 8 куб.м. Глубина канала под садком 5 м. Плотность посадки рыбы составляет 900-1000 штук на 1 Садок. Особенностью, способствующей быстрому росту рыбы,' является температура воды, которая в зимнее время независимо от температуры окружающей среды не опускается ниже +10 - +12 градусов С. Это позволяет кормить рыбу круглый год и сроки выращивания до товарной массы значительно сокращены. При такой технологии карп достигает массы 800-900 граммов за календарный год. ' '

В хозяйстве за период его существования проводилась акклиматизация и разведение нескольких десятков пород рыбы. В настоящее время основным объектом рыбоводства'является карп. Кроме карпа в порядке Эксперимента выращивают американского канального сомика, веслоноса, русского осетра.

По результатам паразитологического вскрытия рыбы в рыбоводном хозяйстве ТЭЦ было описано 14 видов паразитов. От карпа описано 9 видов паразитов, от белого толстолобика - 7, от пестрого толстолобика — 5, белого амура — 4 вида, тилялии мозамбикской — 3 вида паразитов.

Из 9 видов, описанных от карпа, 5 видов относятся к простейшим, 3 вида моногенетические сосальщики и 1 вид - Bothriocepholus opsariichthydis относится к цестодам. 8 из 9-ти видов паразитов карпа, разводимого в садках (88,8%), с прямым циклом развития. Эта особенность определяется высокой проточностью воды. Один вид цестоды, паразитирующий в кишечнике, развивается с участием промежуточных хозяев (Bothriocephalius opsariichthydis). Паразит — вселенец. Завезен в прудовые хозяйства Краснодарского края вместе с белым амуром во время акклиматизационных перевозок из Китая в период с 1952г. по 1964г. Впоследствии паразит широко распространился в прудовых

хозяйстцах во всех зонах разведения карпа. Быстрой адаптации Bothriocephalus opsariichthydis в новых условиях способствовали его эвритермность, широкий круг промежуточных и дефинитивных хозяев. Промежуточными хозяевами цестоды являются практически все веслоногие рачки, обитающие в пресноводных водоемах: Cyclops strenuus, Cyclops vicinus, Acanthocyclops bicuspidatus, Acanthocyclops vernalis, Acanthocyclops viridis, Mesocyclops oithonoides, Meso-cyclops Icuckarti. Заражение мальков происходит в первые дни жизни при переходе на питание зоопланктоном. Все стадии развития находятся в прямой зависимости от температуры воды. В рыбоводном хозяйстве ТЭЦ ЭИ нарастает с конца мая - до середины августа с 10% до 30% при ИИ от 1 — 3 экз. до 5 — 10 экз. ботриоцефапюсов в кишечнике рыбы. В осеннее время зараженность сеголетков и годовиков снижается, что связано с уменьшением численности зоопланктона.

Сравнивая ЭИ сеголетков и годовиков карпа и белого амура, содержащихся в аналогичных условиях в садках, можно сделать вывод, что белый амур заражается менее интенсивно (в пределах от 3 до 5% при ИИ 1—3 экз. цестод).

Сравнивая ихтиофауну карпа в рыбоводном хозяйстве на теплых водах Краснодарской ТЭЦ, описанную Т.А.Яковчук и др. (1986) в 80 - е годы прошлого столетия, и в двухтысячные годы нынешнего века можно сделать вывод, что наиболее устойчивые системы «паразит — хозяин» в межвидовой системе «карп-паразит» у простейших Ichthyophthirius multifliis ,инфузории Trichodina acuta и моногенетических сосальщиков Dactylogyrus vastator и Dactylogyrus ех-tensus. Вместо описанных ранее Т.А.Яковчук и др. (1986) паразитов карпа — Apiosoma piscícola, Gyrodactylus katharineri, Endiplozoon nipponicum, Lernea cyprinacea и глохидии Unió pictorum нами описаны 5 видов ранее не регистрировавшиеся на карпе в условиях тепловодного хозяйства ТЭЦ. Это простейшие — Costia necatrix, Eimeria carpelli, миксоспоридия Sphaerospora carasii, моноге-нея Gyrodactylus cyprini и паразит, развивающийся с участием циклопов различных видов — Bothriocephalus opsariichthydis .

В условиях монокультурного выращивания, высоких температур и большой проточности воды значительно снижена ЭИ и ИИ рыб рыбоводного хозяйства ТЭЦ. Как правило, все простейшие за исключением инфузории Ich.multiflliis обнаруживались в форме носительства. Сезонные пики, увеличение числа паразитов, четко прослеживаемые в обычных прудовых хозяйствах и естественных водоемах выражены в тепловодном хозяйстве незначительно. Одним из главных факторов, лимитирующих развитие и размножение паразитов карпа в тепловодном хозяйстве является высокая проточностъ воды. В таких условиях наиболее приспособленными в системе «рыба — паразит» являются виды, обитающие на жаберном аппарате. Жабры рыб, наряду с поверхностью кожи и в природных биоценозах и в прудовых хозяйствах, включая тепло-водные, наиболее привлекательная среда обитания для паразитов всех видов рыб. В структуре паразитов рыб в тепловодном хозяйстве на теплых водах ТЭЦ виды, паразитирующие на жабрах, составляют у карпа — 77,8%, у белого толстолобика — 71,4%,пестрого толстолобика — 60%, белого амура - 50%.

Таким образом, в антропогенных биоценозах, к которым можно отнести выращивание рыбы в садках на термальных водах, значительно меняется состав и структура паразитизма в системе «рыба — паразит». Тем не менее эволюцио-ная приспособленность простейших, моногеней, гельминтов, ракообразных к паразитированию на рыбе способствует быстрой адаптации в антропогенных системах и экстремальной среде обитания, которую хотелось иметь в термальных рыбоводных хозяйствах создать не удастся. В связи с этим постоянно существует угроза возникновения паразитарных заболеваний. В рыбоводных хозяйствах необходимо строго соблюдать весь комплекс рыбоводно — мелиоративных и ветеринарно — санитарных мероприятий, чтобы не допускать вспышек паразитарных заболеваний, в первую очередь ихтиофтириоза, миксоболеза толстолобиков, ботриоцефалеза карпов и таких опасных инфекционных болезней как аэромоноз и псевдомоноз.

2.2.3.7. Паразитофауна «сорных» рыб в водоемах Кубани

В водоемах Кубани в большом количестве встречается «сорная» рыба, которая, постоянно попадая в прудовые хозяйства,. контактирует с прудовой рыбой (карп, белый и пестрый толстолобик, белый амур) и часто является для последней источником заражения.

У сорных рыб нами обнаружено 27 видов паразитов. Наибольшее число видов паразитов нашли у красноперки (21), плотвы (18), леща (11), наименьшее — у щуки (6), ерша (5), окуня (3) и судака (2). Ограниченный видовой состав паразитов у хищных рыб мы объясняем особенностью питания, разреженной посадкой их, анатомо-физиологическими особенностями строения организма рыб.

Такими образом, наибольшую опасность как резервуара инвазий прудовых рыб в хозяйствах Кубани представляют красноперка, плотва, лещ и уклея. Большинство видов паразитов, вызывающих заболевания у карпа и растительноядных рыб, поддерживают красноперка и уклея. Случаев массового заболевания и гибели от костиоза, миксоболеза, ихтиофтириоза, триходиноза, ботриоцефалеза «сорных» рыб нами не выявлено. Однако обнаружение с ЭИ 10-15% простейших, трематод, цестод, ракообразных дает основание считать, что сформировались устойчивые паразитоценозы, в которых рыба естественных водоемов является постоянным резервуаром для наиболее опасных возбудителей паразитарных болезней прудовых рыб рыбоводных хозяйств Краснодарского края. Хищных рыб, наоборот, мы рекомендуем использовать в прудах в качестве биологического метода для оздоровления от заболеваний, вызываемых простейшими, моногснеями, трематодами, цестодами и ракообразными.

2.2.4. МИКСОБОЛЕЗЫ РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ

В прудовых хозяйствах Краснодарского края карп, белый и пестрый толстолобики, белый амур интенсивно поражены слизистыми споровиками — ЭрЬаегозрога сагавкп, МухоЬо1из рау1оуккп, М.с1г^а§Ы, М.тиеНеп, М.всЬиЬпаш,

M.cyprini, M.dogieli, M.bramae, M.ellipsoides, M.carassii. Мы в 1986 году выделили впервые из крови, мышц, паренхиматозных органов, головного мозга пестрого толстолобика вид Myxobolus haemophilus.

2.2.4.1. Биология Myxobolus pavlovskii (Achmerov, 1954) и M. haemophilus (Garkawi, Zverhanovskii, Lysenko, 1989)

Миксоспоридии - паразиты желчного и мочевого пузыря, мочевых канальцев и разных тканей рыб. В России описано 215 видов этих простейших. Вегетативные формы миксоспоридии — подвижные многоядерные плазмодии от 15 мкм до 11 мм с вегетативными ядрами и активно передвигающимися внутри плазмодия генеративными клетками. У тканевых миксоспоридий плазмодий • неподвижен и часто окружен цистой (диаметром до 6 см) из соединительной ткани хозяина.

Размножение их (С.С. Шульман, 1966) бесполое (деление ядер, а затем цитоплазмы) и половое: из генеративных клеток после ряда делений (последнее из них - мейоз) образуется одна или несколько многоклеточных спор диаметром оТ 5 до 25 мкм со створками, полярными капсулами и двуядерным амебоидным зародышем; при слиянии его гаплоидных ядер образуется зигота. Споры через'кишечник, мочеточники, разрыв тканей выводятся из организма рыбы в воду, где заглатываются новым животным-хозяином. В его кишечнике амебоидный зародыш внедряется в слизистую оболочку и с кровью попадает в соответствующие органы и ткани, где происходит рост и формирование плазмодия. Созревшие споры миксоспоридий попадают в кишечный тракт нового хозяина с водой и пищей. Там из них выстреливаются нити стрекательных клеток, которые задерживаются в клетках стенок кишечника, давая время зародышу выйти из споры. Зародыш проникает между клетками в ткани хозяина и там из него формируется новый многоядерный плазмодий. Может происходить и вторичное заражение прежнего хозяина при попадании спор в его собственный кишечник — за счет того, что размножающиеся плазмодии разрушают окружающие их ткани (С.С. Шульман, 1966; О.Н. Юнчис, 1979; A.B. Успенская, 1984; Hoffman, 1969; Г.И. Сапожников, 1985 и др.).

Миксоспоридии наносят существенный ущерб рыбоводству, являясь возбудителями ряда заболеваний, приводящих к гибели рыб. Например, бубонная болезнь карпа (опухоли на тканях, достигающие 7 см, в которых развиваются плазмодии) вызывается миксоспоридией Myxobolus preiffeli, а вертеж форели — видом Myxobolus cerebrales.

Пути заражения рыб слизистыми споровиками и их биологический цикл развития до конца не выяснены. С.С. Шульман (1966) высказывал мнение о прямом заражении при заглатывании спор миксоспоридий. Однако попытки заразить рыб свежевыделенными как правило, заканчивались безрезультатно. Была выдвинута гипотеза о необходимости периода "дозревания" спор. A.B. Успенская (1955) показала, что для достижения инвазионности споры Myxosoma cerebralis должны пробыть' в воде не менее четырех месяцев. В последнее время ряд зарубежных авторов (Wolf, Markiw, 1984; El-Matbouli & Hoffman,

1989,1991) сделали сообщения о том, что малощетинковые черви - промежуточные хозяева миксоспоридий.

В связи с вышеизложенным и тем, что цикл развития Myxobolus haemophilus не изучался, нами была поставлена задача воспроизвести "in vitro" цикл развития двух видов миксоспоридий M.pavlovskii и M.haemophilus. Для чего в каждый из 6 аквариумов, объемом по 40 л поместили по 100 экз. личинок пестрых толстолобиков, взятых из аппаратов Вейса, инкубированных заводским способом в благополучном по миксоспоридиозам хозяйстве - головном предприятии "Кубаньрыбпром".

В 1-й аквариум поместили очищенные споры M.pavlovskii, хранившиеся в течение 4-х месяцев в чашках Петри в холодильнике. Во 2-й аквариум поместили очищенные споры M.haemophilus, хранившиеся аналогично спорам M.pavlovskii из 1-го аквариума. В 3-й аквариум с грунтом, содержащим олигохет (преимущественно вид Tubifex tubifex, взятых из водоема, где не было рыб) добавили свежевыделенные споры M.pavlovskii. В 4-й аквариум с грунтом, содержащим олигохет (Tubifex tubifex) добавили свежевыделенные споры M.haemophilus. В 5-м аквариуме подрощенным малькам задавали свежевыделенные споры M.haemophilus перорально при помощи резиновой трубки. 6-й аквариум служил контролем.

Рыбу кормили искусственными кормами. В аквариумы заливали отстоянную водопроводную воду. Аэрацию осуществляли при помощи микрокомпрессоров. Температура воды во всех аквариумах во время опытов была в пределах 18-20° С. В каждый аквариум, кроме контрольного, внесено по 10-12 тыс. спор миксоспоридий. В дальнейшем проводили плановое вскрытие по 5 мальков из каждого аквариума с интервалом 10 дней, начиная с десятого дня с момента постановки опыта, а также всех погибших во время опыта мальков.

Наши попытки заразить пестрых толстолобиков спорами M.pavlovskii различными способами были безуспешны. Заражение одного малька пестрого толстолобика спорами M.haemophilus, хранившимися в течение 4-х месяцев, отмечено на 30-е сутки опыта в аквариуме №2. Затем с интервалом в тридцать дней в данном аквариуме дважды обнаруживали единичные споры M.haemophilus в плазме крови и других внутренних органах у двух мальков толстолобиков. При скармливании спор M.haemophilus олигохетам заражение отмечено у одного малька пестрого толстолобика на 110-й день с начала опы-та.При пероральном заражении мальков пестрых толстолобиков спорами M.haemophilus обнаружены споры в плазме крови у одного малька на 90-е сутки после заражения. В контрольном аквариуме у рыб случаев обнаружения спор не установлено. '

Таким образом, пестрые толстолобики заражаются спорами M.haemophilus прямым путем. При использовании "зрелых" спор, хранившихся в течение 4-х месяцев в холодильнике, заражение мальков отмечено на 30-е сутки. Олигохеты, вероятнее всего, выполняют роль механических переносчиков спор миксоспоридии. Попытки заразить пестрых толстолобиков спорами M.pavlovskii были безрезультатны.

■ 2.2.4.2. Эпизоотологические особенности миксоболеза у белого толстолобика, вызываемого видом Myxobolus drjagini

Вид Myxobolus drjagini нами обнаружен в 8 из 20 обследованных хозяйствах Кубани. Э И рыб достигала 25% в зимне-весенний период при ИИ 1-22 цист на рыбе. Цисты с многочисленными спорами размером до 2 мм локализовались в подкожной клетчатке головы и под слизистой оболочкой ротовой полости. ' ■' ■' *' . * ■. '

Заражаются мальки в первые дни пребывания в водоемах. Зрелые цисты появляются в сентябре и регистрируются зимой и весной следующего года. У зараженных рыб наблюдается нарушение координации движения. Иногда отмечается гибель толстолобиков. Более восприимчивы к заражению сеголетки и годовики белых толстолобиков при содержании в поликультуре. Рыба старше двухлетнего возраста устойчива к заражению данным паразитом.

Данный вид не представляет серьезной угрозы для рыбоводных хозяйств Краснодарского края и регистрируется с незначительной экстенсивностью и интенсивностью в форме тюсительства. Однако полного оздоровления толстолобиков от М. drjagini в прудовых хозяйствах достичь не удается. В связи с этим необходимо вести постоянный мониторинг по данному паразитозу. '

f - 2.2.4.3. Эпизоотологические особенности миксоболеза у пестрых и белых , толстолобиков, вызываемого видом Myxobolus pavlovskii

Споры Myxobolus pavlovskii обнаружены нами у белых и пестрых толстолобиков во всех обследованных хозяйствах с ЭИ=6,7%-90% при ИИ=1-1200 цист на жаберном аппарате рыбы. Миксоспоридии вида M.pavlovskii впервые завезены в прудовые хозяйства Краснодарского края во время акклиматизационных перевозок растительноядных рыб из Китая. В первые годы при незначительной ИИ паразит не оказывал патогенного воздействия и не представлял . опасности для рыборазведения. В дальнейшем паразит акклиматизировался в условиях Кубани и в новой климатической зоне возросла его патогенность.

Нами выявлено, что заражение спорами M.pavlovskii происходит в первые дни пребывания в выростных прудах. Зрелые цисты этих споровиков обнаруживаются в июле у 20-дневной молоди толстолобиков. В весеннее время у годовиков толстолобиков в зимовальных прудах Кубани ЭИ достигала 20% при ИИ от 17 до 173 цист на жаберном аппарате. В летнее время ЭИ толстолобиков . спорами М. pavlovskii резко нарастает и к концу июля достигает максимального значения (91,1-98,1%) при ИИ=115-1180 цист на жаберном аппарате рыбы. В осенний период зараженность сеголетков несколько ниже, хотя держится на довольно высоком уровне (75-77,7%) при ИИ от 8 до 115 цист на жаберном аппарате. .::•. . -..;

2.2.4.4. Эпизоотологические особенности миксоболеза у пестрого толстоло-. бика, вызываемого видом Myxobolus haemophilus

Выявленный нами впервые вид Myxobolus haemophilus (Garkawi, Zver-hanovski, Lysenko, 1989) зарегистрирован в условиях Кубани у пестрых толстолобиков в 8 из 20 обследованных хозяйств. У пестрых толстолобиков возбуди-

теля обнаруживали во все сезоны года: ЭИ=9,1%-66,6% при ИИ 1-15 спор в поле зрения микроскопа (увеличение 7x40). В период вспышки заболевания у толстолобиков в августе ИИ достигала более 15 спор в поле зрения микроскопа. Ярко выраженной сезонности мы не отмечали. В течение всего года зараженность держится на высоком уровне. При неблагоприятных условиях зимовки пестрых толстолобиков (резкое снижение температуры, высокая плотность посадки) ЭИ достигает 80%, отмечали гибель рыбы.

В течение года у сеголетков и годовиков пестрых толстолобиков в крови паразитирует большое число спор M.haemophilus - от 63,4 в марте до 158,5 в ноябре. Значительное снижение интенсивности заражения с июля 1986 г. связано с проведением комплекса оздоровительных мероприятий, позволивших прекратить гибель пестрых толстолобиков и уменьшить заболеваемость их миксо-болезом, вызываемом M.haemophilus.

При исследовании белых толстолобиков различных возрастных групп в течение всего года спор M.haemophilus у них обнаружено не было. Не имело значения раздельное или совместное содержание белого и пестрого толстолобика в водоемах. Цисты и споры M.haemophilus не были зарегистрированы ни у одной из обследованных нами других 12 видов рыб, обитающих в прудовых хозяйствах и естественных водоемах Краснодарского края. Следовательно, с высокой степенью вероятности можно говорить о том, что вид M.haemophilus является моногостальным для пестрых толстолобиков.

Кроме плазмы крови цист и отдельных спор данного вида мы обнаруживали в подкожной клетчатке, плавательном пузыре, печени, желчном пузыре, почках, головном мозге, слизистой кишечника с ИИ от 1 до 5 спор в поле зрения микроскопа. Чаще обнаруживали споры в подкожной клетчатке и почках пестрых толстолобиков. Трофозоиты со зрелыми спорами находили в плазме крови пестрых толстолобиков. В других органах регистрировали отдельные споры. Сведения о находках трофозоитов и спор миксоспоридий в крови рыб не многочислены. Lom, el al. (1983) обнаружили в крови споры и трофозоиты Sphaerospora molnari, обычно локализующиеся в жабрах карпа.

Ранние стадии развития миксоспоридий в организме рыб не описаны. Lom, Dykova et Pavlaskova (1983); Csaba et al. (1984) предполагают, что так называемые простейшие типа "С" являются ранней стадией развития миксопори-дий. В плазме крови пестрых толстолобиков мы обнаруживали организмы сферической формы диаметром 1,5 мкм с зернистой цитоплазмой. Не исключено, что это предспоровая стадия миксоболюсов.

При неблагоприятных условиях содержания рыб - высокая плотность посадки, ослабление резистентности, температурные стрессы - количество спор возрастало до 8-20 экз. в поле зрения микроскопа, и при такой интенсивности M.haemophilus оказывал существенное патогенное воздействие на организм пестрых толстолобиков, выражавшееся в задержке роста, патоморфологических изменениях в различных органах и тканях.

Заражение мальков пестрых толстолобиков происходит в первые дни после пересадки в мальковые пруды. Наиболее интенсивно заражаются сеголстки и годовики пестрых толстолобиков. У двух - трехлетков отмечены единичные

экземпляры спор в отдельных органах (1-2 экз. в 100 полях зрения). На других видах рыб при совместном с пестрыми толстолобиками содержании споры и цисты M.haemophilus не обнаруживали.

В осадке на дне аквариума, в котором содержали толстолобиков, зараженных спорами M.haemophilus постоянно находили споры этих паразитов. Выделение спор из организма рыб, по-видимому, происходит через кишечник, куда они попадают из печени с желчью и с мочой из почек.

Анализируя полученные данные можно заключить, что описанный нами вид Myxobolus haemophilus (Garkawi, Zverhanovskii, Lysenko, 1989) является специфичным для пестрых толстолобиков. Поражает он мальков с первых дней жизни. Наиболее подвержены заболеванию сеголетки, у рыб старших возрастных групп встречается в единичных экземплярах.

2.2.4.5. Клиника, гематологические показатели, патоморфологические изменения у толстолобиков при миксоболезе, вызываемом Myxobolus pav-

lovskii и M.haemophilus

Клинику и патоморфологические изменения при миксоболезе, вызываемый видами Myxobolus pavlovskii и М. haemophilus, мы изучили у белых и пестрых толстолобиков в период острой вспышки заболевания в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

В наших исследованиях клиническая картина миксоболеза сеголетков толстолобиков выражалась в следующем: в летнее время отмечали массовую гибель сеголетков пестрых толстолобиков (8-10%). Больные сеголетки скапливались возле водоподачи , заглатывали воздух с поверхности воды, не реагировали на внешние раздражители. Отмечали исхудание больной рыбы, анемичность жабр, их обильное ослизнение. При паразитологическом исследовании пестрых толстолобиков регистрировали массовое поражение жабр цистами Myxobolus pavlovskii (ИИ=900-1200 цист на жаберном аппарате рыбы).

Во внутренних органах сеголеток пестрых толстолобиков, в мышечной ткани, головном мозге обнаруживали споры М. haemophilus (ЭИ=8,5-65% при ИИ=1Л5 спор в п.з. микроскопа).

У больных сеголетков пестрых толстолобиков снижено содержание гемоглобина, увеличена скорость оседания эритроцитов (СОЭ), увеличено число лейкоцитов. Значительных различий в лейкоцитарной формуле у здоровых и зараженных сеголетков мы не выявили, но отмечали эозинофилию и снижение моноцитов.

Во время вспышки миксоболеза толстолобиков мы отмечали отставание зараженных рыб в росте и развитии. С целью изучения объективного влияния миксоспоридий Myxobolus pavlovskii и М. haemophilus на рост и развитие сеголетков пестрых толстолобиков мы провели взвешивание зараженных и незара-женных рыб, которые показали, что у сильно зараженных цистами Myxobolus pavlovskii сеголеток пестрого толстолобика масса тела была в 2,3 раза меньше, чем у здоровых. Коэффициент упитанности зараженных рыб составил 1,36 и 1,64, что на 35% и 18% ниже коэффициента упитанности здоровых сеголеток. Средняя масса тела пестрых толстолобиков, зараженных спорами

М. ЬаеторЫЫэ, составила 1,55, что в 2,6 раза меньше показателей здоровых рыб.

При гистологическом исследовании органов и' тканей толстолобиков, павших от миксоболеза, регистрировали сдавливание клеток выстилающего эпителия жабр, их деформацию. Зрелые цисты, заполненные спорами, достигают размеров 1,5 мм и при высокой ИИ заполняют поверхность жабр. Отмечали сжатие и гибель кровеносных сосудов в жаберных лепестках, уменьшение дыхательной поверхности жабр. При высокой ИИ (более 100 спор в пробе) спор М. ЬаеторЫ1из регистрировали уменьшение почек в 1,5-2 раза, исчезновение артериальных клубочков и уменьшение канальцев. Сохранившиеся канальцы выстланы эпителием с признаками дистрофии и некроза. Количество рыхлой неоформленной соединительной ткани в почках резко возрастает. Она богато инфильтрована лейкоцитами, среди которых преобладают малые лимфоциты. В интерстициалыюй ткани и клетках эпителия находятся плазмодии МухоЫЯив ЬаепторЫ1и5. В печени отмечали отек переваскулярной клетчатки, эозинофи-лию стенок сосудов, вакуольную дистрофию гепатоцитов, слизистую дистрофию, пикноз ядер клеток желчных протоков. В мышечной ткани у пестрых толстолобиков отмечали зернистую дистрофию и атрофию мышечных волокон, ценкеровский., некроз, пикноз и лизис ядер. В просвете кишечника находили единичные зрелые споры М. ЬаешорЬНиз, которые, по-видимому, проникают туда из кровяного русла.

Следует отметить, что у пестрых толстолобиков, зараженных спорами М. ЬавшорИЛив, мы не обнаруживали некротических очагов в жабрах и коже, селезенке и почках, которые обычно наблюдается при инвазии М.сурпш, как это описано К.Мольнаром и К.Гайером (Мо1паг&Сауег, 1985). Однако в нашем случае регистрировали более глубокие дистрофические изменения во внутренних органах и мышцах. Это, по-видимому, обусловлено общей интоксикацией организма рыб субстанцией, секретируемой спорами М. ЬаеторЬПиз.

2.2.4.6. Устойчивость спор М. рау1оу$кн и М.НаеторЬПиз во внешней

среде

Теоретической основой для проведения наших экспериментов было высказывание А.В.Успенской (1984) о том, что в разных климатических условиях спорообразование происходит в неодинаковые сроки, а при определенной системе ведения рыбного хозяйства накопление спор паразитов идет с неодинаковой скоростью. - '

Принимая во внимание вышеизложенное,' а также противоречивые данные относительно устойчивости спор различных видов миксоспоридий к физическим факторам, нами проведены опыты со спорами М.рау1оу$кн и М.ЬаеторЫ1и5, которые позволили сделать следующие выводы:

- в гниющих остатках рыбы в воде в летнее время (1 воды 20-22 °С) сроки жизнеспособности'спор не превышают 60' дней для М.рау1оувкн и 90 дней для М.ЬаешорЬИиз. •' .....

- при температуре воды 4-6 °С (в зимнее время) сроки выживания спор значительно выше. Через 210 дней (время опыта) сохраняли способность к заражению 10% спор M.pavlovskii и 30% M.haemophilus;

- в летнее время очищенные споры в среднем на 30-45 дней дольше сохраняют жизнеспособность.

Достоверных различий в сроках выживания очищенных спор и спор в тканях рыб при низкой температуре не отмечено.

Влияние высушивания на жизнеспособность спор изучали путем моделирования летования водоемов прудовых хозяйств «in vitro». В грунт, взятый со дна прудов, помещали споры двух вышеназванных видов миксоспоридий послойно через 5 см. Общий слой грунта составлял 25 см. Пробы подвергали высушиванию под действием солнечных лучей и исследовали споры послойно с интервалом 5-10-30 дней. Жизнеспособность спор определяли по методике Шуммельфедера (Schummelfeder, 1950). Процент погибших спор подсчитывали в 100 полях зрения при увеличении 7*40. По результатам опытов можно сделать следующее заключение:

- споры миксоспоридий под действием прямых солнечных лучей погибают в течение нескольких дней (до 5 суток). При этом отмечатся гибель спор вследствие распада оболочки и выстреливании стрекательных нитей;

- в слое грунта толщиной 5 см споры М. pavlovskii и. M.haemophilus погибают под действием солнечных лучей на 20-й день;

- с увеличением слоя грунта до 20 см к 9 дню погибают 60% спор M.pavlovskii и 45% спор M.haemophilus.

2.2.4.7. Устойчивость спор М. pavlovskii и M.haemophilus к химическим 1 веществам

Трудность борьбы с миксоболезом толстолобиков заключается в том, что растительноядные рыбы не употребляют в пищу искусственные корма. Воздействовать на споры, находящиеся в организме рыб, практически не возможно. Поэтому основным способом оздоровления от миксоболеза является уничтожение спор, находящихся в водоемах при помощи химических веществ. Изыскание эффективных химических препаратов для борьбы с миксоспоридиями весьма актуальная задача, стоящая перед ихтиопатологами различных стран.

Мы изучили устойчивость спор М. pavlovskii и M.haemophilus к химическим веществам, которые применяются в рыбоводстве и ветеринарии для уничтожения простейших, бактерий и вирусов. Опыты показали, что для уничтожения спор миксоспоридий наиболее приемлемыми являются 1% раствор едкого натрия, 1% раствор едкого калия, 0,5-2% раствор негашеной извести, раствор хлорной извести из расчета 100-200 г/л, 1-2% раствор формалина. Этими препаратами следует обрабатывать ложе прудов во время летования, а рыбоводный инвентарь, лодки, одежду рабочих - 1-2% раствором формалина или едкого натрия.

Растворы медного купороса, марганцевокислого калия, бриллиантового зеленого, гашеной извести, фурадонина хотя и вызывают гибель части спор,

однако не могут быть использованы при оздоровлении прудовых хозяйств от миксоболеза пестрых толстолобиков, вызванного M.pavlovskii и М.Haemophilus, из-за низкой эффективности.

2.2.4.8. Опыт борьбы с миксоболезом пестрого толстолобика

В 1994-1995 гг. в летнее время в выростных прудах рыбопитомника РАФ "За Родину" было отмечено заболевание и массовая гибель сеголетков нестрого толстолобика. Больная рыба скапливалась возле водоподачи, заглатывала воздух, не реагировала на приближение человека. Отмечали исхудание сеголетков, анемичность жабр и обильное их ослизнение. Гибель сеголетков достигала 810%.

При паразитологическом исследовании павших пестрых толстолобиков зарегистрировано массовое поражение жабр цистами Myxobolus pavlovskii. ИИ достигала от 900 до 1200 цист на жаберном аппарате рыбы. Заболевание осложнялось поражением жабр грибами рода Saprolegnia. При исследовании внутренних органов, крови, подкожной клетчатки, головного мозга пестрых толстолобиков обнаружены в массовом количестве споры M.haemophilus у 87,5% погибших рыб с высокой интенсивностью поражения (15 и более экземпляров спор в поле зрения микроскопа). Был поставлен диагноз - миксоболез толстолобиков, вызванный двумя видами миксоспоридий Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus, осложненный вторичным паразитированием гриба рода Saprolegnia.

В целях ликвидации вспышки миксоболеза и недопущения широкого распространения заболевания в рыбопитомнике нами был разработан и внедрен комплекс лечебно-профилактических мероприятий, который включал:

1. Закрепить за каждым прудом индивидуальный инвентарь - орудия лова, лодки, весла, сачки и т.д. В случае невозможности выполнения данного пункта при переходе с одного пруда на другой проводить обработку инвентаря, одежды, обуви рыбаков 1%-ным раствором едкого натрия.

2. Отремонтировать, а где отсутствуют, поставить рыбосороуловители на водоподаче, для разрыва или уменьшения контакта с сорной рыбой являю-' щейся переносчиком паразитарных заболеваний.

, 3. С.учетом чувствительности спор Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus, исследованных in vitro к различным химические веществам, вносить при выращивании сеголетков негашеную известь по воде из расчета 200 кг/га в течение 30 дней равными частями, под контролем рН воды.

4. Получать личинку карпа и растительноядных рыб только заводским способом, не допускать близкородственного скрещивания.

-5. Осуществлять ежедекадный контроль за ростом и развитием рыбы, эпизоотическим состоянием водоемов, проводить ихтиопаразитологическое вскрытие с целью раннего выявления возбудителя.

6. Осуществлять оперативный гидрохимический контроль за всем водоемами и выборочно периодическое химикотоксикологическое исследование прудов.

7. Строго соблюдать 30-дневный карантин в случае закупки производителей из других, благополучных по инвазионным заболеваниям рыбоводных хозяйств, ориентируясь в основном на воспроизводство за счет собственных производителей.

8. Продажу растительноядных рыб осуществлять на стадии личинки, полученной заводским способом.

Негашеную известь вносили при выращивании сеголетков и после сброса воды при пересадке рыбы в зимовальные пруды. После осушения прудов и внесения извести ложе подвергали дискованию.

При пересадке в зимовальные пруды из выростных сеголетков обрабатывали органическими красителями - основным ярко-зеленым или фиолетовым "К" в живорыбных машинах в концентрации 0,1-0,2 г красителя на 1 л воды,при экспозиции 45-60 минут.. Аналогичную обработку проводили весной при пересадке годовиков из зимовальных в нагульные пруды.

Инвентарь, орудия лова, лодки, резиновую обувь подвергали обработке 1%-ным раствором едкого натрия при переходе к отлову рыбы из одного пруда в другой.

Не допускали переуплотненных посадок рыбы, строго следили за гидрохимическим состоянием водоемов.

Зимовка сеголетков прошла успешно. Отхода рыбы практически не было. При весенней пересадке в нагульные пруды и исследовании пестрых толстолобиков во время контрольных отловов интенсивность поражения цистами М. pavlovskii в июле-августе не превышала 10-15 на жаберном аппарате, а в плазме крови и других внутренних органах отмечали единичные споры M.haemophilus в 100 полях зрения микроскопа,

У мальков пестрых толстолобиков, подращиваемых в неблагополучном пруду, в июле-августе ЭИ цистами M.pavlovskii была в пределах 60% при интенсивности 15-30 цист на жаберном аппарате. У белого толстолобика ЭИ=10% при ИИ 2-4 цисты на жабрах рыбы. Споры M.haemophilus обнаруживали у 2025% сеголетков пестрых толстолобиков при интенсивности 2-4 споры в 100 полях зрения.

Таким образом, после проведения рекомендованных нами мероприятий прекратилась гибель рыбы и улучшилась эпизоотическая обстановка по миксо-болезу толстолобиков, вызываемому ассоциацией Myxobolus pavlovskii и М. haemophilus.

2.2.5. ДЕРМОЦИСТИДИОЗ РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ

Дермоцистидиоз — паразитарное заболевание карповых рыб, вызываемое простейшими рода Dermocystidium, и характеризующееся поражением жабр, подкожной клетчатки в форме разросшихся узлов грибовидной формы, что ведет к задержке роста рыб. Возбудитель дермоцистидиоза карпов Dermocystidium erschowi (Garkawi, Denisov et Afanasiev, 1980) впервые выделен в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края (Б.Л. Гаркави и др., 1980). У окуня Reichenbach — Klinke (1950) описал вид Dermocystidium регсае, который обна-

ружен на плавниках, жаберных крышках и роговице глаз. Н.М.Пронин (1976) доказал патогенное влияние паразита не молодь окуня в озере БольшойУндугун Читинской области. ' .■■■.:-

2.2.5.1. Биология БсгтосуэНсПит ег$сЬо>*1 (Сагка\У1;Оышоу с! АГапа$1еу,

1980) - ■■<:

Дермоцистидиоз, по сведениям многих авторов (БЛ.Гаркави и др., 1980; Н.М.Пронин, 1976; О.П.Кулаковская, О.И.Стрижак, 1980;Г.А.Низова, В.В.Шестаковская, 1988), имеет весеннюю сезонность и оптимальная температура для развития дермоцистилий составляет 15-17 °С. В связи с этим нами проведена серия опытов по изучению жизненного цикла О-егесЬолУ! в различных температурных режимах — при оптимальной температуре 15-17°С и в условиях пониженной температуры — 3-5сС. Заражение годовиков карпа проводили перорально, внутрибрюшинно и подкожно. При пероральном введении суспензию с материалом в дозе 0,5 мл задавали через синтетический зонд непосредственно в желудок рыб. Внутрибрюшинно каждой рыбе задавали шприцем по 0,3 мл суспензии. Подкожно методом скарификации вводили в область спинного плавника по 0,1 мл материала В среднем в 0,1 мл суспензии находилось до 1000 спор дермоцистидий.

Заражение годовиков карпа, взятых из благополучного по дермоцисти-диозу хозяйства, проводили суспензией спор, отобранных непосредственно из дермоцистидиозного узла. Суспензию центрифугировали 5 минут при 1500 оборотах в минуту. Недостаточную жидкость сливали, осадок использовали для заражения. Рыбу содержали в 40 литровых аквариумах с аэрацией воздушным компрессором. Кормили карпа независимо от способа заражения искусственными кормами. Продолжительность опытов составила 70 дней.

У одного годовика карпа при пероральном заражении на 60 день в области хвостового придатка обнаружили узелок диаметром около 15 мм и незначительная припухлость. Содержание узелка представляло скопление" недифференцированных клеток; это начальная стадия развития 0.егесЬо\УК При подкожном и внутрибрюшинном способах заражения признаков дермоцистидиоза не отмечали.

Во второй серии опытов при содержании зараженных рыб в условиях низкой температуры (3-5°С) ни в одном случае признаков дермоцистидиоза не выявили. Это подтверждает факт замедления процессов размножения спор дермоцистидий при понижении температуры воды ниже 5°С. Во время опытов отмечали отход годовиков карпа, пораженных спорами О. егвсЬо^лч при всех способах заражения. -""

Отхода рыб в контрольных группах не было'. При гистологическом исследовании органов и тканей контрольных рыб паЬзморфологических изменений не наблюдали.

Н.М.Пронину (1976) в лабораторных опытах при различных способах заражения спорами О.регсае не удалось воспроизвести заболевание у окуня.

Wootten et Mc Vicar (1982) напротив провели успешное заражение лососей, вводя в желудок споры Dermocystidium sp. Авторы считают, что дермоцисти-диумы имеют прямой цикл развития. Однако Б.Л. Гаркави и др. (1983) не удалось заразить спорами D. erschowi 5 годовиков карпа путем введения им спор через рот, но у одной лабиринтовой рыбки из 5 зараженных таким же образом через два месяца в полости тела развился паразитарный узелок. Г.Аллену и др. (Allen et all., 1968) удалось заразить рыб спорами Dermocystidium sp.

На основании наших экспериментов следует заключить, что Dermocystidium erschowi развивается прямым путем; заражение рыб происходит алиментарным путем. Оптимальная температура воды для развития спор D. erschowi составляет 15-17°С.

2.2.5.2. Особенности эпизоотического процесса при дсрмоцистилиозе

карпов

Дермоцистидиоз карпов, вызванный Dermocystidium erschowi, регистрировали в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края, с апреля по июнь при температуре воды 12-20°С после пересадки рыбы из зимовальных прудов в нагульные. Чаще поражались годовики карпа, у которых ЭИ была в пределах от 5 до 15%. У двух- и трехлеток ЭИ не превышала 3%. У сеголетков возбудителя мы не обнаружили, что связано, очевидно, с особенностями питания, либо с достаточно длительным сроком развития дермоцистидиума в организме хозяина.

Dermocystidium erschowi имеет годичный цикл развития. Заражение карпов происходит в выростных и зимовальных прудах. Развитие паразитов идет медленно и цисты созревают с наступлением теплой погоды. В этот период проявляется клиника заболевания.

Таким образом, дермоцистидиоз карпов распространен в различных зонах, где занимаются разведением карпа, наносит определенный экономический ущерб карповодству.

2.2.5.3. Клинические признаки и патоморфологические изменения при

дермоцистидиозе

У зараженных рыб в подкожной клетчатке на боках и брюшке развиваются паразитарные узлы грибовидной формы диаметром до 20мм. На месте поражения кожный покров гиперемирован, окрашен в вишнево — красный цвет. Ткань узла состоит из нитевидных цист, заполненных спорами. Паразитарный узел отделен от здоровой ткани лимфоцитарным инфильтратом.

При сильном заражении у рыб отмечается пучеглазие и скопление транссудата в брюшной полости. У некоторых рыб узлы изъязвлялись. Язвы неправильной формы. Паразитарные узлы могут образовываться и на внутренних органах — печени и задней кишке. По мере созревания узлы увеличиваются в размере, кожный покров некротизируется и образуются язвы. Цисты и пораженная ткань отторгаются, а дефект замещается рубцовой тканью.

У пораженных Dermocystidium erschowi двухлеток карпа мы выявили многочисленные язвы, которые располагались в области головы диаметром 20 — 25 мм. Незрелые опухоли представляли собой плотные узлы, покрытые эпите-

лием, чешуя над которыми несколько раздвинута. В зрелых опухолях обнаруживали нитевидные цисты, переплетенные в различных направлениях, легко отделяющиеся друг от друга. Длина цист до 20мм, ширина до - 0,2мм. Споры округлые диаметром 15— 16мкм. Диаметр вакуоли 6 — 8мкм.

При гистологическом исследовании карпов, пораженных дермоцисти-диями, выявили, что содержимое паразитарных узелков представляет собой нитевидные цисты, имеющие вид трубочек 0,1 — 0,6мм в диаметре, переплетенных в клубок. Полость цист заполнена круглыми спорами диаметром 15 - 16мкм, ядро которых окрашивается в ярко- фиолетовый цвет, а эксцентрично расположенная вакуоль в светло — розовый. Пространство между цистами заполнено рыхлой соединительной тканью. В глубоко лежащих слоях цисты внедряются в мышечную ткань. Прорастают цисты паразита в виде нитей, напоминающих гифы грибов, идущих параллельными пучками. Видны поперечные разрезы проросших цист возбудителя ОегтосузШшт егесЬо^, ограниченных соединительной тканью. Это ответная реакция организма на размножение паразита. Отдельные споры возбудителя размножаются в тканях хозяина. Наблюдаются дегенеративные перерождения мышечной ткани, инфильтрация её форменными элементами белой крови. В криптах слизистого слоя кишечника наблюдается неравномерное окрашивание клеток, вследствие дистрофических явлений. При окраске на белок бокаловидные клетки заполнены слизью и находятся в состоянии белковой дистрофии. В печени регистрировали снижение содержания белка в клетках, нарушены границы клеток, выражены дистрофические явления. Ядра клеток в состоянии кариорексиса. Большое количество погибших клеток. В почках наиболее значительные изменения регистрируются в канальцах. Клетки канальцев более светлого цвета, вследствие нарушений в цитоплазме. Характерна эпителизация канальцев.

Таким образом, дермоцистидии вызывают образование язв в подкожной клетчатке, а также дегенеративные изменения печени, почек, кишечника.

2.2.5.4. Устойчивость спор ОегтосувНсЦит ег$с1ю№1 к различным физическим факторам и химическим веществам

Влияние солнечных луней на споры 0.егсс1)оуук В первой серии опытов изучили влияние прямых солнечных лучей на споры О.егесИоууи Для чего споры, взятые из дермоцистидиозных узлов годовиков карпа, помещали на предметные стекла и оставляли под прямыми солнечными лучами. Температура в тени составляла 23-25°С. С интервалом 20 минут просматривали споры дермоцистидии при большом увеличении микроскопа. Определяли процент спор с разрушенной оболочкой и в состоянии пикноза и рексиса. В результате выявили, что под действием прямых солнечных лучей обезвоживание отдельных спор О. егзс1ю\У1 начинается через 10 минут. Через час под действием ультрафиолетовых лучей гибнет более 40% спор. Через 2 часа практически все споры 1)сг-тосузШшт егесЬоху! становятся нежизнеспособными: оболочка спор разрушается, сморщивается.

Влияние температуры на жизнеспособность спор 0.ег8с1ю\у1. Во второй серии опытов изучили влияние температуры на споры 0.егес1ю\У1. Споры, взятые из дермоцистидиозных узлов естественно зараженных годовиков карпа, помещали на предметные стекла и подвергали действию различных температур. Экспозиция воздействия была от 5 до 10 минут. Опыты показали, что гибель спор начинается при температуре 30 С, хотя она крайне незначительна и составляет не более 5%. Затем, с повышением температуры более 40°С, гибель спор нарастает и при температуре 55-60°С практически все споры Б. егес1юлу1 нежизнеспособны.

Устойчивость спор БегтосувйсНит егесИоуу! к дезинфектантам, применяемым в рыбоводстве. Мы провели серию опытов для изучения влияния наиболее часто применяемых для дезинвазии водоемов химических препаратов — свежегашенной извести, хлорной извести, каустической соды и формалина на жизнеспособность спор О.егБсЬочу!". Для этого в условиях лаборатории подвергали обработке споры дермоцистидий, взятые от естественно зараженных карпов, химическими веществами различной концентрации. Опыты проводили при комнатной температуре 21 — 23 °С. В качестве контрольного использовали физиологический раствор. Анализируя полученные данные можно сделать вывод о чувствительности спор О. ег5сЬо\у1 практически ко всем дезинфицирующим средствам, применяемым в рыбоводстве. Оптимальным для обработки инвентаря при оздоровлении рыбоводных хозяйств от дермоцисти-диоза может быть 3-5% формалина, 3% раствор каустической соды.

При летовании водоемов можно вносить по ложу как свежегашеную, так и хлорную известь по общепринятым в рыбоводстве нормам. Такой прием надежно профи лактирует размножение дермоцистидий и может быть использован при оздоровлении карпов в рыбоводных хозяйствах от дермоцистидиоза.

2.2.5.5. Разработка системы профилактики дермоцистидиоза в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края

Специфических средств лечения дермоцистидиоза карпов не разработано. Однако известно, что окислители замедляют рост цист простейших (Нойтап'& Сго<1тк, 1977). В неблагополучном по дермоцистидиозу хозяйстве мы разработали комплекс оздоровительных мероприятий против данного заболевания, включающий общие и специальные мероприятия.

В хозяйстве провели комплекс рыбоводно-мелиоративных мероприятий, направленных на повышение культуры рыбоводства. Проводили внесение хлорной извести по воде в зоне прибрежного мелководья в пруду, где регистрировалась пораженная дермоцистидиозом рыба. Нормы расхода препарата 20г/м2. По кормовым дорожкам развешивали мешочки с перманганатом калия из полупроницаемой ткани в течение 5 дней. Одновременно, в целях подавления условнопатогенной и патогенной микрофлоры, накапливающейся в язвах у карпов, проводили лечебное скармливание фуразолидона. Курс лечения составил 10 дней.

Как правило, после проведения вышеуказанных мероприятий отторжение опухолей у больных рыб наблюдали в течение 4 — 5 дней с начала проведения

лечебных мероприятий. Причем, опухоли не увеличивались в размерах с момента внесения препаратов. Отхода рыбы в таких прудах не регистрировали. При естественном течении заболевания в расположенном рядом с опытным прудом заболеваемость составляла 15%, летальность годовиков и двухлетков карпа достигала 3-5%.

'' 2.2.6. ИХТИОФТИРИОЗ РЫБ В РЫБОВОДНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ

2.2.6.1-2. Особенности эпизоотического процесса, клиника ихтнофтириоза в рыбоводных хозяйствах Краснодарского край

В условиях Кубани в естественных водоемах ихтиофтириоз возникает крайне редко, но, по нашим данным, пресноводные рыбы всех видов являются носителями возбудителя болезни и тем самым создают естественный резервуар инвазии в природе. Ихтиофтириус - типичный паразит рыб. В его жизненном цикле различают три стадии: стадия паразитирования в толще кожи хозяина; стадия цисты размножения (циста на грунте растительности или на плавающем предмете); стадия свободно плавающей в воде инфузории-«бродяжки».

Оптимальной температурой для развития паразита считается 25-26 С. С понижением температуры задерживается инцистирование, замедляются деление и рост паразита, удлиняются сроки жизни «бродяжек» (О.Н. Бауер, 1959). При 32С наступает гибель цист (О.Н. Бауер, 1955). Непаразитические стадии ихтиофтириуса чувствительны к различным факторам окружающей среды. В темноте бродяжки живут дольше, чем на свету. Не переносят бродяжки высыхания. При величине pH менее 5 наступает гибель ихтиофтириусов. При концентрации кислорода менее 0,8 мг/л паразиты погибают (A.B. Успенская, 1964). На паразитарной стадии основное влияние на трофонтов оказывают температура и иммунитет. Интенсивность повторного заражения всегда значительно ниже, чем первичного. Чем сильнее первичное заражение, тем выше напряженность иммунитета (О.Н. Бауер, 1959).

В условиях Кубани возбудитель распространен повсеместно, где занимаются прудовым рыбоводством, и нередко является причиной массовой гибели рыб. Ихтиофтириозу подвержены все культивируемые на Кубани рыбы. Наиболее восприимчивы карп и толстолобики. Больше всего от ихтиофтириоза страдают мальки и сеголетки, но при большой интенсивности инвазии болеют, нередко погибают ремонтные рыбы и даже производители.

Особенно опасно первичное заражение, приводящее к массовому развитию инфузорий. При повторных инвазиях заражение бывает, как правило слабое в результате образования постинвазионного иммунитета. Имеются сведения о наличии разных штаммов ихтиофтириуса, к которым и образуется иммунитет (О.Н. Бауер, 1986).

В рыбоводных хозяйствах Кубани возбудитель в основном распространяется при перевозках живой рыбы из неблагополучных хозяйств. Кроме того, бродяжки могут заноситься водой из выше расположенных прудов или с инвентарем.

Ихтиофтириус, паразитируя между поверхностным эпителиальным и ниже лежащим соединительнотканными слоями кожи, плавников и жабр, вызывает воспаление этих органов. В начале болезни жабры темно-вишневого цвета вследствие переполнения капилляров венозной кровью и наличия кровоизлияний. С развитием болезни одни участки жабр становятся анемичными, другие некротизируются. На этих участках поселяются сапролегнии и другая сапрофитная микрофлора (О.Н. Бауер, 1958). Кожа больных рыб выглядит как бы усеянной мелкими беловатыми дермоидными бугорками, похожими на манную крупу. При массовом поражении паразит поселяется на роговице глаз и даже в ротовой полости. При поражении глаз развивается кератит и рыба слепнет. В начале болезни в поведении рыб не отмечается отклонений от нормы. По мере усиления зараженности рыба начинает проявлять беспокойство, она мечется, быстро переходит из нижних слоев воды в верхние, вспенивает ил, плавает по кругу, а затем ложится на дно. В дальнейшем сильно пораженная рыба теряет активность, держится у берега пруда и почти не реагирует на внешние раздражения. Кожа сходит клочьями и при движении рыбы тянется за ней по воде в виде мелких лент и лоскутов. .

Вокруг паразита, внедрившегося в эпидермис кожи рыбы, эпителиальные клетки уплощаются, протоплазма становится темнее и ядро более плотным. На гистологических препаратах хорошо заметна полость, окруженная несколькими слоями веретеновидной формы эпителиальных клеток. В губчатом слое отмечаются инфильтрация форменными элементами крови и расширение кровеносных сосудов. Внутренняя сторона полости содержит клетки на разной стадии распада. Увеличиваясь, паразит расширяет полость, образуя бугорок в эпидер-малыюм слое, а в губчатом — впадину. При паразитировании в соединительной ткани жабр респираторные складки в результате развивающегося воспаления склеивают вершинами друг с другом, образуя полость. Вокруг молодого паразита располагаются клетки соединительной ткани, частично лизированные на разной стадии распада. Зрелый паразит полностью заполняет полость, образованную респираторными складками. Вокруг него развивается застойная гиперемия и инфильтрация тканей. Зрелый трофонт растворяет полость и выпадает наружу. Из разорванных капилляров наблюдается кровотечение.

Таким образом, воздействие ихтиофтириуса проявляется в дегенеративных процессах кожных покровов и жабр. В результате этого снижается газообмен, нарушаются экскреторные и осморегулирующие процессы. В паренхиматозных органах (печени, почках) наблюдаются дистрофические явления при интенсивности инвазии 20-30 паразитов в поле зрения.

При ихтиофтириозе у рыб мы отмечали изменения в картине крови: по-лихромазию, лейкопению и лимфопению, характеризующуюся как лимфопения и нейтрофилез со сдвигом ядра влево.

Диагноз ставится на основании клинических признаков и при обнаружении в соскобах с поверхности слизи и жабр ихтиофтириусов. Интенсовность инвазии, при которой отрицательное влияние ихтиофтириуса на рыбу минимально, принято за пограничный удельный индекс интенсивности (УИИ). Он определяется отношением средней интенсивности инвазии к средней массе ры-

бы и разделяет относительно безопасное паразитоносительство от опасных для рыб уровней инвазии. Для ихтиофтириоза он равен 1,7 экз. за 1 г массы рыбы. При УИИ более 1,7 экз./г назначают лечебную обработку (А.К. Щербина, 1984).

2.2.6.3. Опыты по изучению «in vitro» действия различных химических препаратов на инфузории Ichthyophthirius multifiliis

Опыты по изучению лечебной эффективности различных препаратов против ихтиофтириоза мы проводили по следующей методике. Использовали 8 аквариумов, по 10 литров воды в каждом. В качестве экспериментальных рыб взяты аквариумные меченосцы (Xiphophorus helleri) в возрасте 5 месяцев. Для экспериментального заражения рыбы ихтиофтириозом с высокой интенсивностью создали следующие условия: увеличили плотность посадки рыб, резко понизили температуру в аквариуме, уменьшили аэрацию и фильтрацию воды. Заражение меченосцев провели, посадив больную рыбу с клиническими признаками ихтиофтириоза.

Через 36-48 часов у рыб появилось беспокойство, на плавниках заметны дермоидные бугорки, напоминающие маннообразный налет. Рыбы терлись о стенки аквариума, стараясь избавиться от паразитов. По мере усиления ИИ рыба отказывалась от корма, не реагировала на внешние раздражители. Диагноз поставили на основании клинических признаков и обнаружения при микроскопическом исследовании соскобов с кожи и жабр ихтиофтириусов. ЭИ составила 100%, ИИ - 1-2 инфузории в поле зрения микроскопа. После развития клинических признаков ихтиофтириоза в каждый из 8 аквариумов посадили по 10 зараженных рыб. Один аквариум использовался как контрольный. Во всех аквариумах усилили фильтрацию и аэрацию воды. В аквариум, кроме контрольного, были внесены следующие препараты — поваренная соль, метиленовая синь, малахитовая зелень, трипафлавин, риванол, препараты «Faunamor» и «Blitz-Icht», применяемые для противопаразитарных обработок рыб.

Первый аквариум служил контролем. Во второй аквариум внесли поваренную соль в дозе 20 г на 10 литров; третий аквариум - метиленовую синь в дозе 2 мг и поваренную соль - 20 г; в четвертом аквариуме рыбу обрабатывали раствором малахитового зеленого в дозе 2 мг и поваренной солью — 20 г; в пятый аквариум внесли трипафлавин в дозе 0,02 г на 10 литров воды; в шестой -риванол — 0,03 г; в седьмой внесли «Faunamor» 0,33 мл на 10 литров воды (это новый противопаразитарный препарат немецкого производства, рекомендованный для лечения болезней аквариумных рыб, вызываемых простейшими). В восьмом аквариуме использовали препарат «Blitz-Icht» китайского производства в дозе 0,33 мл.

Рыбу во всех 8 аквариумах содержали в аналогичных условиях, кормили искусственными кормами, сбалансированными по аминокислотному составу и протеиновому соотношению, и обогащенному витаминами и микроэлементами. Кормление проводили 3 раза в день: утром в 9 часов, днем в 13 часов, вечером в 18 часов. Температура воды в период опыта во всех аквариумах была 22-23° С.

Исследования выявили, что из 10 рыб в контрольном аквариуме через 14 дней в живых осталось только 2 рыбы (летальность составила 80%). Это соот-

ветствует данным О.Н. Бауера и В.А. Мусселиуса (1981), которые сообщали, что при отсутствии лечения самовыздоровление рыбы практически не происходит. В аквариуме, где лечение проводили только поваренной солью, выздоровление рыб наступило через 12 дней, причем летальность составила 50%. Это говорит о низкой эффективности солевых ванн и длительном периоде лечения. В третьем аквариуме, где использовали метиленовую синь и поваренную соль, выздоровление наступило через 8 дней, которые мы определили по отсутствию маннообразного налета на поверхности тела. Отход рыб составил 30%. В четвертом аквариуме, где использовали раствор малахитового зеленого с поваренной солью, признаки выздоровления отметили на 7 день. Летальность рыб составила 30%. В аквариумах, где использовали растворы трипафлавина и риванола, выздоровление наступило через 7-8 дней. Летальность рыб в каждом аквариуме составила 20%. Наиболее эффективными препаратами при ихтиофти-риозе являются «Раипашог» и «В1117.-1сЫ». Признаки выздоровления наблюдали на 3-4 день. Гибели рыбы в этих аквариумах не отмечено. Из полученных данных можно заключить, что наиболее эффективными при ихтиофтириозе являются импортные комплексные препараты Раипашог (Германия) и В1кг-1сЬ1 (Китай). При использовании их продолжительность лечения рыбы не превышает трех дней, тогда как при применении растворов поваренной соли, малахитовой зелени, метиленовой сини и трипафлавина, продолжительность лечения составляет от 7 до 12 дней. Кроме того, при использовании растворов натрия хлорида, риванола, трипафлавина отмечали гибель рыбы, которая варьировала от 20 до 50%.

2.2.6.4. Опыт борьбы с ихтиофтириозом сеголетков рыб в краснодарском рыборазводном заводе растительноядных рыб (КрСРРЗРР)

В 1997-1998 годы мы наблюдали массовую гибель годовиков карпа и толстолобиков в зимовальных прудах Краснодарского рыборазводного завода растительноядных рыб. При пересадке в октябре сеголетков рыб в зимовальные пруды у них регистрировали единичные экземпляры [сЬШуорЬЛтив ти№П1ш на поверхности тела. Профилактическая обработка рыбы неорганическими красителями не проводилась. С середины января при температуре воды +3...4 °С началось заболевание рыбы с признаками обильного ослизнения, скопления возле водоподачи! Рыба заглатывала воздух с поверхности воды. Регистрировали «маннообразньш» напет на коже, беспокойство сеголетков. Летальность дос-тигала30%. '

При микроскопическом исследовании в соскобах с поверхности тела обнаруживали 3-5 экз. зрелых инфузорий и большое количество т.н. «бродяжек». Принятые экстренные меры по ликвидации данного заболевания в первую очередь включали увеличение водоподачи. Второй экстренной мерой было внесение раствора малахитового зеленого из расчета 1г на Юл воды при экспозиции 24-48 часа, трехкратно. Через 7-9 дней гибель рыбы практически прекратилась.

Признаки ихтиофтириоза у оставшихся сеголетков, подвергнутых обработкам, исчезли. Состояние рыбы улучшилось. Дальнейшая зимовка карпов и толстолобиков прошла нормально. Гибели рыбы не отмечали. При контроль-

ных ихтиопаразитологических исследованиях в соскобах с поверхности кожи отмечали единичные экземпляры бродяжек в 100 п.з. микроскопа . Полного оздоровления добиться не удалось, т.к. «бродяжки» находятся в чешуйчатых карманах, а при повышении концентрации рабочего раствора в пруду, может наблюдаться гибель рыбы от токсикоза. Перед зарыблением годовиков обработали малахитовым зеленым из расчета 0,5г/м3 при экспозиции 2-Зчаса.

Таким образом, рыба была условноблагополучной по ихтиофтириозу. Дополнительно нами рекомендовано выполнение комплекса рыбоводно-мелиоративных и ветеринарно-санитарных мероприятий, разработанных совместно со специалистами КрСРРЗРР. Выполнение данной системы профилактических мер позволило данному рыбоводному предприятию не допускать случаев гибели рыбы от ихтиофтириоза в течение последних лет.:

2.2.6.5. Опыт борьбы с ихтиофтириозом производителей толстолобиков в горячеключевском рыборазводном заводе

В 1996 году в Горячеключевском рыборазводном заводе, где проводится акклиматизация различных видов рыб, в летнее время (июль) при температуре воды более 27° С нами была зарегистрирована гибель производителей толстолобиков от ихтиофтириоза, В течение двух суток после появления заболевания погибло более 20% производителей белых и пестрых толстолобиков.

При ихтиопаразитологическом исследовании соскобов с поверхности кожи отмечено более 10 экземпляров инфузорий [сЬЛуорЬйипиз тиШПШэ в поле зрения микроскопа.' Проточность воды в пруду практически отсутствовала. Содержание растворенного в воде кислорода было в пределах 5 мг/л. Необходимо было срочно принимать оперативные меры по ликвидации данного заболевания. В первую очередь в водоеме наладили водоподачу. Дополнительно в водоем в присутствии рыбы вносили свежегашеную известь из расчета 100 кг на 1 га водной площади. Это дало возможность повысить рН воды до 8,5, увеличить количество растворенного в воде кислорода до 9 мг/л, уничтожить значительное число бродяжек — распространителей ихтиофтириоза. В качестве лечебного препарата в порядке производственного опыта нами рекомендован препарат «Раипашог», показавший хороший лечебный эффект при оздоровлении меченосцев от ихтиофтириоза в условиях аквариумов. Препарат вносили в водоем из расчета 0,03 г на 1 м3 воды. Экспозиция обработки составляла до 24 часов. Препараты вносили трехкратно в течение трех суток.

Гибель рыбы прекратилась после первой дачи фаунамора. Клинические признаки заболевания начали затухать. Уменьшилось беспокойство производителей. Уменьшилось количество слизи на поверхности кожи рыб и исчез ман-нообразный налет. При исследовании соскобов с поверхности кожи под микроскопом отмечены единичные экземпляры бродяжек в 100 полях зрения микроскопа при увеличении 7x8. Повторных случаев заболевания производителей ихтиофтириозом в данном рыбозаводе не регистрировали.

Таким образом, рекомендованный нами препарат фаунамор показал хороший лечебный эффект при оздоровлении производителей толстолобиков от

ихтиофтириоза. Схема применения препарата: трехкратно с интервалом 24 часа из расчета 0,03 г на 1 м3 воды непосредственно в водоем.

Совместно с руководством Горячеключевского рыбозавода был разработан комплекс лечебно-профилактических мероприятий, позволяющий надежно защищать производителей растительноядных рыб и карпа, а также сеголетков и годовиков как от ихтиофтириоза, так и других инвазионных болезней. Этот комплекс включал проведение следующих мероприятий:

- соблюдение 30-дневного карантина при завозе производителей всех видов рыб из других рыбоводных хозяйств, особенно при акклиматизационных закупках рыб из других зон рыбоводства и из-за рубежа;

- карантинные водоемы должны иметь независимое водоснабжение и быть полностью сбросными, находиться ниже по течению относительно основных прудов. Сброс воды должен осуществляться в естественные водоемы;

- в период карантина не менее 3 раз с интервалом 10 дней исследуют со-скобы с поверхности кожи и с жабр для контроля за интенсивностью заражения производителей различными видами паразитов. Соскобы берут с соблюдением правил асептики и антисептики, минимально травмируя рыбу. От каждой партии производителей, закупленных в одном хозяйстве, необходимо исследовать 10% рыбы; '

- в период с марта по октябрь необходимо проводить ежедневное гидрохимическое исследование всех водоемов по основным показателям - температура воды, рН, количество растворенного в воде кислорода, окисляемость;

- в весенне-летний период ежедекадно проводить клиническое обследование рыбы и выборочное ихтиопаразитологическое вскрытие не менее 10 экз. сеголетков и годовиков всех видов рыб для контроля за состоянием зараженности возбудителями паразитарных заболеваний;

- при пересадке сеголетков в зимовальные пруды и весенней реализации годовиков с учетом интенсивности обнаруженных паразитов оперативно решается вопрос противопаразитарных обработок как во время транспортировки, пересаживаемой партии рыбы, так и непосредственно в водоемах. Наиболее эффективным препаратом при профилактике и оздоровлении от ихтиофтириоза можно считать фаунамор;

- проводить летование водоемов, в соответствии с действующими правилами не реже 1 раза в 6 лет;

- соблюдать комплекс ветеринарно-сапитарпых правил в рыбоводном хозяйстве, проводя плановые дезинфекции инвентаря, оборудования, одежды рыбоводов, не допуская на водоемы посторонних лиц;

- выполнять организационно-хозяйственные и селекционные мероприятия при выращивании рыбы; ,

- использовать биологические методы профилактики паразитарных заболеваний. В качестве биологических мелиораторов рекомендовали внесение маточной культуры ветвистоусых ракообразных — дафний и моин из расчета 450500 г/га водной площади в апреле-мае.

Выполнение вышеуказанного комплекса мероприятий позволило предотвратить вспышки инвазионных болезней в Горячеключевском рыбозаводе.

2.2.7. ОПЫТ БОРЬБЫ С БОТРИОЦЕФАЛЕЗОМ РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ

В прудовых хозяйствах Краснодарского края карп и белый амур интенсивно заражены цестодами ВоШпосерИа!!« орзагнсЬ^усЛэ (Уагс^и^, 1934). Биология паразита, патогенез, клиническая картина и диагностика заболевания в настоящее время в литературе освещены достаточно подробно (В.А. Муссе-лиус, 1973, 1979; Н.А. Головина, 1976; Г.В. Васильков, 1983; О.Н. Бауср, 1986; Ю.А. Стрелков, 2000; Л.И. Грищенко, 2000; Г.И. Сапожников, 1999, 2000; Д.П. Скачков, 2000 и др.). Однако методы профилактики и лечения данного заболевания применительно для рыбоводных хозяйств Краснодарского края не разработаны. В .связи с этим мы в 1999-2003 годы в рыбхозах Краснодарского края провели оздоровительные мероприятия, которые состояли из следующих основных положений:

- получение личинок карпа и белого амура заводским способом в аппаратах ВНИИПР;

- залитие мальковых прудов не ранее, чем за 5 дней до пересадки туда личинок; ;

- недопущение посадок в пруды рыб разных возрастных групп;

- обеспечение личинок рыб с первых дней жизни достаточным количеством стартового корма;

- подготовка мальковых прудов к следующему сезону: на зиму их ложе вспахали, спланировали, обрабатывали дезрастворами; пруды должны быть сбросными;

- не допускается наличие в пруду после сброса воды ям, мочежин, луж;

- дезинвазию мальковых прудов осенью после их использования осуществляли негашеной известью из расчета 20 ц/га;

- не реже одного раза в 5 лет водоем выводили на летование, т.е. не использовали в течение 12 месяцев для рыборазведения;

- в качестве дезинфектанта весной однократно перед посадкой личинок рыб вносили в пруды жидкий аммиак из расчета 300-350 г/м3;

- проводили" мероприятия для предотвращения попадания в мальковые пруды «сорной» рыбы, для чего на водоподаче устанавливали металлическую сетку;

- ежедневно после заполнения мальковых прудов водой проводили контроль основных гидрохимических показателей (температура воды, окисляе-мость, рН, количество растворенного в воде кислорода);

- зарыбление прудов личинками осуществляли строго в соответствии с нормами посадки для конкретного водоема;

- для усиления процессов элиминации корацидиев ботриоцефалюсов и ограничения численности веслоногих рачков (Сорерос1а) - промежуточных хозяев возбудителя ботриоцефалеза, в мальковые и выростные пруды вносили культуру ветвистоусых рачков — дафний и моин (С1ас1осега), что создавало оптимальную кормовую базу для мальков, сеголеток и годовиков рыб. При внесении неорганических удобрений здесь интенсивно развиваются ветвистоусые

рачки — биологические элиминаторы корацидиев цестод, что снижает вероятность заражения молоди рыб ботриоцефалюсами;

- дегельминтизацию сеголеток и годовиков карпов и белых амуров проводили гранулированными комбикормами — циприноцестин-2 (на 1 тонну комбикорма добавляли 20 кг микросала (микронизированный фенасал) в обычной дозе, который скармливают рыбе без предварительной голодной диеты. Первую дегельминтизацию сеголеток, годовиков карпа и белого амура проводили в начале июня, однократно, повторную — через 20 дней, третью (по необходимости) в начале августа.

Проведение комплекса мероприятий позволило резко уменьшить пора-женность рыб ботриоцефалезом. Так, в 1999-2000 годы ЭИ карпов ботриоцефа-лезом в рыбхозе «Батуринский» составила 60%, при ИИ=10-30 экз. цестод. После проведения рекомендованных нами мероприятий зараженность годовиков карпа в 2001-2002 годы резко снизилась — ЭИ=20%, ИИ=1-3 экз. В этот период прекратился отход рыбы, а средняя масса годовиков стала на 3,5-4 г больше, чем в период заболевания. Аналогичную систему мы провели в горячеключев-ском рыбозаводе при выращивании белого амура. Так, в 1999-2000 годы у годовиков белого амура ЭИ ботриоцефалюсами составила — 30%, ИИ=8-15 экз. цестод. После проведения комплекса рекомендованных нами мероприятий ЭИ рыб снизилась до 10% при ИИ=1-3 экз. Начиная с 2001 года, ботриоцефалез у белого амура практически не встречался, средняя масса годовиков увеличилась на 2,7 г. ,

Таким образом внедрение разработанного нами комплекса лечебно-профилактических мероприятий позволяет оздораапивать рыбоводное хозяйство от ботриоцефалеза в течение одного-двух лет. Это дает возможность получать здоровых карпов и белых амуров, значительно сокращая экономические затраты на выращивание рыбы и получать каждому хозяйству ежегодно дополнительной продукции на 50-100 тыс. рублей.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В естественных водоемах Краснодарского края широко представлены «сорные» рыбы, основными представителями которых являются лещ, красноперка, плотва, ерш, уклея, щука, судак, которые с водой из естественных водоемов Кубани попадают в рыбоводные хозяйства, вследствие чего постоянно контактируют с культивируемыми рыбами — карпом, белым и пестрым толстолобиком и белым амуром. В последние 50-60 лет для поликультурного выращивания карпа и растительноядных рыб широко используются искусственные пруды, приспособленные водоемы. Разводимые в прудах растительноядные рыбы - белый толстолобик, пестрый толстолобик, белый амур — завезены в • Краснодарский край из Китая и Дальнего Востока.

Одним из сдерживающих факторов дальнейшего развития прудового рыбоводства являются паразитарные болезни, которые наносят существенный экономический ущерб (Т.А. Яковчук, 1969; Г.И. Сапожников, 2000; В.В. Пана-сенко, 1980, 1985; З.Н. Сахнина, 1983; B.C. Сулейманян и др., 1983).

Нами при паразитологическом исследовании 13 видов рыб естественных водоемов и прудовых рыбоводных хозяйств Краснодарского края выделено 52

вида паразитов, принадлежащих к различным систематическим группам: простейшие — 26 видов (из них миксоспоридий 11 видов), моногенетические сосальщики — 11, цестоды — 4, трематоды — 2 вида; нематоды - 2 вида и паразитические ракообразные — 7 видов..

Анализ полученных данных свидетельствует об обеднении видового состава паразитов-пресноводных рыб, по сравнению с данными, полученными Т.А. Яковчук (1974) и другими исследователями в шестидесятые годы 20 века. Так, от карпа нами описаны 32 вида паразитов, что составляет 64,0% от числа видов, описанных Т.А. Яковчук, от пестрого толстолобика — 22 вида (75,8%), от белого толстолобика — 22 вида (75,8%) и белого амура — 20 (62,5%).

В прудовые хозяйства Кубани растительноядными рыбами завезены из Китая и Дальнего Востока 8 видов паразитов. Следует отметить, что из числа обнаруженных 52 видов паразитов, 11 видов являются общими для карпа и толстолобиков, 8 видов — для карпа и растительноядных рыб.

Широко распространенными и общими для «сорных» и прудовых рыб являются простейшие Costia necatrix, Chilodonella piscícola, tchtyophthirius mul-tifiliís, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Trichodinella epizoótica, цестоды Bothriocephalus opsariichthydis и Ligula intestinalis, трематоды Diplostornum spathaceum и Posthodiplostomum cuticola. Эти виды паразитов при соблюдении ветеринарно-санитарных правил выращивания рыбы обнаруживаются у них в единичных экземплярах, но при нарушении технологии выращивания карпа и растительноядных рыб они получают широкое распространение и могут нанести большой экономический ущерб рыбоводным хозяйствам Краснодарского края.

Из 7 моногостальных видов карпа (Cryptobia cyprini, Dermocystidium er-schowi, Dactylogyrus achmerowi, D.vastator, D.extensus, Gyrodaclylus cyprini, G.katharineri) 5 паразитируют на жабрах карпа, а вид D. erschowi паразитирует на коже. Кроме того, у карпов и белых амуров широкое распространение имеет Bothriocephalus opsariichthydis, завезенный с белым амуром во время акклиматизации перевозок из Китая и Дальнего Востока.

Пять видов паразитов обнаружены только у обыкновенного и пестрого толстолобиков (Eimeria sinensis, E.cheni, Myxobolus pavlovskii, M.drjagini, Siner-gasilus lieni). Среди них в прудовых хозяйствах наибольшее распространение имеют Е. sinensis и М. pavlovskii, вид M.drjagini в большей степени поражает белых, М. pavlovskii — пестрых толстолобиков.

Три вида паразитов встречаются только у пестрого толстолобика (Myxobolus haemophilus, Dactylogyrus aristichthys и D.nobilis). У белого толстолобика моногостальным является вид D.hypophthalmichthys, у белого амура 4 вида (D.ctenophaiyngodontis, Garkawillanus amuri, Sinergasilus major, Lernea ele-gans morpha ctenopharyngodontis). Вид M. haemophilus, паразитирующий у пестрого толстолобика, и вид G. amuri — паразит белого амура - регистрируются только в прудовых хозяйствах Краснодарского края. В последние десятилетия в Краснодарском крае мы начали регистрировать у карпа нематоду Philometroides lusiana.

Таким образом, в условиях Краснодарского края стационарными паразитами, которые передаются от «сорных» рыб к культивируемым, являются 22 вида паразитов, а 8 видов паразитов завезены растительноядными рыбами из Китая и Дальнего Востока. Следовательно, паразитофауна карпа и растительноядных рыб (белый толстолобик, пестрый толстолобик, белый амур), ЭИ и ИИ их этими паразитами находится в прямой зависимости от паразитов «сорной» рыбы и, наоборот, паразитофауна сорных рыб зависит от прудовых.

Нами в условиях Краснодарского края впервые выявлен • новый вид Myxobolus Haemophilus (Garkawi, Zverhanovskii, Lysenko, 1989), который является моногостальным и моноксенным видом пестрого толстолобика. Этот возбудитель высокопатогенен и паразитирует во всех органах и тканях пестрых толстолобиков, вызывая наибольшие патологические изменения в почках, печени и мышечной ткани. Заболеваемость сеголетков пестрых толстолобиков этим паразитом в прудовых хозяйствах достигает 100%, при летальности до 15%. Кроме этого вида у растительноядных рыб паразитируют виды миксоспо-ридий — Sphaerospora carassi, Myxobolus pavlovskii, M.drjagini, M.ellipsoides, которые чаше всего паразитируют в ассоциации, вызывая тяжелое заболевание. Наши данные свидетельствуют, что при ассоциативном паразитировании мик-соспоридий М. pavlovskii и М. haemophilus у сеголетков пестрых толстолобиков снижается масса тела, ухудшаются гематологические показатели, происходят глубокие дегенеративные изменения жабр и внутренних органов, что приводит к массовой гибели сеголетков. > • > . >

Нами установлено, что споры миксоспоридий отличаются достаточной устойчивостью к факторам внешней среды и химическим веществам. В гниющих остатках рыб они сохраняют жизнеспособность до 90 дней, наиболее эффективными дезинфектантами против них являются 1% раствор едкого натрия и 1 ^2% раствор формалина.

Нами в условиях Краснодарского края разработана система лечебно-профилактических мероприятий при ассоциированном течении миксоболеза толстолобиков, включающая рыбоводно- мелиоративные и ветеринарно-caiгитарные мероприятия (получение' гибридов белого и пестрого толстолобиков, дезинфекцию и летование водоемов, соблюдение норм посадки рыбы, контроль за гидрохимическими показателями, технологические обработки неорганическими красителями и т.д.), которые позволили резко снизить заболеваемость пестрых толстолобиков миксоболезом и значительно повысить доходность выращивания растительноядных рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

Нами в условиях Краснодарского края впервые выявлено широкое распространение дермоцистидиоза годовиков карпов, вызываемого видом Dermo-cystidium erschowi (Garkawi, Denisov, Afanasiev, 1980), паразитирующим в под! кожной клетчатке и внутренних органах. При сильном заражении у рыб отмечается ерошение чешуи, скопление экссудата в брюшной полости и образование узлов грибовидной формы до 20 мм в диаметре в подкожной клетчатке. Заболеваемость достигала 30%, определенный процент годовиков погибал вследствие глубоких дегенеративных изменений и интоксикации организма.

Нами разработана система лечебно-профилактических мероприятий при дермоцистидиозе карпов, включающая воздействие химических веществ и физических факторов на споры паразитов, комплекс рыбоводно-мелиоративных мероприятий, позволивший практически ликвидировать в прудовых хозяйствах Краснодарского края это опасное заболевание и повысить доходность выращивания карпа. -

Большое влияние в рыбоводных хозяйствах Краснодарского следует уделять такому широко распространенному, и наносящему значительный экономический ущерб многим видам прудовых рыб заболеванию, как ихтиофтириоз, вызываемому инфузорией (сИЛуорЫЫпиз тиШШш. Заболевание регистрируг ется практически во всех рыбоводных хозяйствах Краснодарского края вызывая, при нарушении технологии рыборазведения, заболеваемость и гибель как сеголетков и годовиков рыб, так и производителей во все сезоны года. Нами изучена клиника заболевания, эпизоотологические особенности ихтиофтириоза в Краснодарском крае, уточнены методы диагностики. Разработанная нами система мер по профилактике и ликвидации ихтиофтириоза в прудовых хозяйствах Краснодарского края позволяет уничтожать инвазионное начало в водоеме, эффективно лечить больную рыбу. В настоящее время, благодаря выполнению наших рекомендаций по профилактике ихтиофтириоза, эпизоотическая обстановка по данному паразйтозу стабильна и ихтиофтириоз не представляет опасности для рыбоводных хозяйств Краснодарского края.

Цестодозы рыб и, в частности, ботриоцефалез, вызываемый видом Во1ЬпосерЬа1из орзагнсИШусНв, представляет значительную угрозу для рыбоводных хозяйств Краснодарского края. Возбудитель поражает молодь карпа и белого амура, вызывая снижение массы тела, общую интоксикацию организма и летальность до 30%. Нами разработана система лечебно-профилактических мероприятий, включающая биологические методы борьбы (внесение культуры ветвистоусых рачков - биологических элиминаторов циклопов, промежуточных хозяев ботриоцефалюсов), использование химических веществ (дегельминтизации лечебным комбикормом с учетом пика инвазии в прудах Краснодарского края), агромелиоративных и ветеринарно-санитарных правил при выращивании рыбы в прудовых хозяйствах по интенсивной технологии. Данная система мероприятий позволяет оздоровить рыбоводное хозяйство от ботриоцефа-леза в течение двух лет с наименьшими экономическими затратами.

Наша работа проводилась в течение более 20 лет и позволила разработать систему лечебно-профилактических мероприятий по борьбе с болезнями прудовых рыб для рыбоводных хозяйств Краснодарского края. Результаты исследований рассмотрены и одобрены Министерством сельского хозяйства РФ, Российской академией сельскохозяйственных наук, Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, они вошли в 11 нормативных документов и в настоящее время широко применяются во всех рыбоводных хозяйствах Краснодарского края, обеспечивая устойчивое благополучие по наиболее опасным паразитозам1 рыб.

Экономическая эффективность применения нашей системы мероприятий в рыбхозах края, по данным Департамента сельского хозяйства Краснодарского края, составляет 4,3 рубля на 1 рубль затрат.

ВЫВОДЫ:

1. В естественных водоемах и рыбоводных хозяйствах Краснодарского края фауна «сорной» рыбы представлена девятью видами (красноперка, плотва, лещ, уклея, щука, окунь, ерш, судак и тиляпия), а фауна культивируемых в прудовых хозяйствах - четырьмя видами рыб (карп, белый толстолобик, пестрый толстолобик, белый амур).

2. В водоемах Краснодарского края паразитофауна рыб представлена 52 видами, в т.ч. простейших —26 видов (из них миксоспоридий - 11, инфузорий -6), моногенетических сосальщиков — 11 видов, трематод — 2, цестод — 4 вида, нематод — 2, паразитических ракообразных — 7 видов.

3. Паразитофауна карпа, выращиваемого в прудовых хозяйствах Краснодарского края, представлена 32 видами: Cryptobia branchialis, Cr.cyprini, Costia necatrix, Eimeria carpelli, Sphaerospora carassii, Myxobolus cyprini, M.dogieli, M.bramae, M.ellipsoides, M.carassi, Chilodoneila piscícola, Ichthyophthirius mülti-filiis, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Tr.nigra, Tr.nobilis, Tr.rostratá, Trichodinella epizootica, Dermocystidium erschowi, Dactylogyrus achmerowi, D.vastator, D.extensus, Gyrodactylus cyprini, G.katharineri, Khawia sinensis, Bothriocephalus opsariiehthydis, Posthodiplostomum cuticola, Philometroides lusi-ana, Piscícola geómetra, Ergasilus sieboldi, Lernea cyprinacea, Argulus foliaceus. В условиях Краснодарского края значительный ущерб карповодству наносят такие простейшие, как Ichthyophthirius multifiliis, Dermocystidium erschowi, цесто-ды - Bothriocephalus opsariiehthydis, Khawia sinensis и нематода Philometroides lusiana.

4. Паразитофауна пестрого толстолобика, культивируемого в прудовых хозяйствах Краснодарского края, представлена 22 видами: Costia necatrix, Eimeria cheni, E.sinensis, Myxobolus pavlovskii, M.drjagini, M.haemophilus, Ichthyophthirius multifiliis, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Tr.nigra, Tr.nobilis, Trichodinella epizootica, Dactylogyrus arystichthys, D.nobilis, Lígula intestinalis, Digramma ¡nterrupta, Díplostomum spathaceum, Posthodiplostomum cuticola, Sinergasilus lieni, Lernaea cyprinacea, Argulus foliaceus. В условиях Краснодарского края большой ущерб рыбоводству наносят миксоспоридии - Myxobolus pavlovskii и моногостальный вид M.haemophilus. Заболеваемость сеголетков пестрых толстолобиков достигает 100%, а летальность - до 15%.

5. Паразитофауна белого толстолобика, выращиваемого в прудовых хозяйствах Краснодарского края, представлена 22 видами: Cryptobia branchialis, Costia necatrix, Eimeria cheni, E.sinensis, Myxobolus pavlovskii, M.dryagini, M.ellipsoides, Chilodoneila piscícola, Ichthyophthirius multifiliis, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Tr.nigra, Tr.nobilis, Tr.rostrata, Trichodinella epizootica, Dactylogyrus hypophthalmichthis, Ligula intestinalis, Díplostomum spathaceum, Posthodiplostomum cuticola, Sinergasilus lieni, Lernaea cyprinacea, Argulus foliaceus. Основными паразитами, имеющими большое экономическое значение,

здесь являются простейшие — Myxobolus pavlovski!, Ichthyophthirius multifiliis, личинки трематод Diplostomum spathaceum и Posthodiplostomum cuticola.

6. Паразитофауна белого амура, выращиваемого в прудовых хозяйствах Краснодарского края, представлена 20 видами: Costia necatrix, Sphaerospora carassii, Myxobolus ellipsoïdes, Chilodonella piscícola, Ichthyophthirius multifiliis, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Tr.nobilis, Trichodinella epizoótica, Dac-tylogyrus hypophthalmichthis, Khawia sinensis, Bothriocephalus opsariichthydis, Ligula intestinalis, Digramma interrupta, Diplostomum spathaceum, Garkawillanus amuri, Sinergasilus major, Lernaea cyprinacea, Lernea elegans morpha ctenopharyn-godontis, Argulus foliaceus. Из перечисленных видов здесь большой экономический ущерб рыбоводству наносят Bothriocephalus opsariichthydis и Khawia sinensis, способные вызывать заболевание и гибель сеголетков и годовиков рыб.

; 7. Паразитофауна «сорных» рыб в естественных водоемах и прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена 27 видами, в т.ч. простейших - 17, моногеней — 2, трематод — 2, цестод — 3 и ракообразных — 3 вида.

8. Впервые в Российской Федерации у пестрых толстолобиков выделен новый вид Myxobolus haemophtlus (Garkawi, Zverhanovskii, Lysenko, 1989), который паразитирует в крови, паренхиматозных органах, мышцах и головном мозге рыб. Паразит моногостальный, моноксенный. Вызывает массовую гибель сеголетков пестрых толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

9. При миксоболезе толстолобиков, вызываемых видами Myxobolus pav-lovskii и M.haemophilus, наблюдается скопление сеголетков возле водоподачи, нарушение жаберного дыхания, анемичность и обильное ослизнение жабр. У больных рыб падает концентрация гемоглобина, ускоряется СОЭ, наблюдается эозинофилия и лейкоцитоз. Изучены патоморфологические изменения в органах и тканях рыб, павших при миксоболезе.

10. В рыбоводных хозяйствах Краснодарского края впервые диагностирован дермоцистидиоз у годовиков карпа, вызываемый простейшими Dermo-cystidium erschowi (Garkawi, Denisov, Afanasiev, 1980). Возбудитель y больных рыб в подкожной клетчатке образует паразитарные узлы грибовидной формы, ■диаметром до 20 мм.

11. Споры D.erschowi гибнут под действием прямых солнечных лучей через 5-10 минут, не устойчивы они к воздействию 3-4% раствора формалина, 3% раствора каустической соды.

Споры миксоспоридий Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus более устойчивы во внешней среде: под действием прямых солнечных лучей они погибают через 3-5 суток. Из химических средств наиболее губительными для спор Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus являются 1% раствор едкого натра и едкого калия, 0,5% раствор негашеной извести и 1-2% раствор формалина.

12. В прудовых хозяйствах Краснодарского края опасным заболеванием является ихтиофтириоз, вызываемый инфузорией Ichthyophthirius multifiliis. Летальность рыб достигает 30%. Возможны вспышки как в летнее, так и зимнее время. Изучены эпизоотология, патогенез и клиника заболевания, разработаны методы лечения рыб.

13. Для оздоровления рыбы в рыбоводных хозяйствах от опасных парази-тозов (миксоболезы толстолобиков, демоцистидиоз карпов, ихтиофтириоз и ботриоцефалез рыб) нами предложена комплексная система лечебно-профилактических мероприятий (биологические и химические методы).

14. Разработанная система лечебно-профилактических мероприятий,1 основные положения которой утверждены управлением ветеринарии МСХ РФ, Россельхозакадемией в настоящее время с большим экономическим эффектом (от 50 до 100 тыс. руб. в год) применяется в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ Выполнение рекомендованных нами комплексных мероприятий по профилактике паразитоценозов прудовых рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края позволяет повысить сохранность рыбы на 10-15%, что в денежном выражении позволяет получить дополнительную прибыль' в каждом хозяйстве от 50 до 100 тыс. руб. в год. Разработанные нами мероприятия по оздоровлению рыбоводных хозяйств от паразитозов вошли в следующие нормативные документы:

1. «Методические указания к лабораторно-практическим занятиям по болезням рыб» (утвержд. методической комиссией КубГАУ, 1994 г.).

5. «Общие методы диагностики отравлений рыб» (утверждены методической комиссией КубГАУ, 2004 г.).

6. «Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике мик-соболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края» (утвержд. Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004 г.).

8. «Рекомендации по профилактике кишечных цестодозов прудовых рыб» (утверждены Россельхозакадемией, 2004).

9. Методические указания «Биология и патология рыб и пчел», часть 1 (утверждены методической комиссией КубГАУ, 2005 г.).

10. «Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с дермоцисти-дозом карпов в рыбоводных хозяйствах Северного Кавказа» (утверждены Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004 г.).

Список

научных работ, опубликованных по материалам диссертации

1. Гаркави Б.Л., Денисов А.И., Звержановский М.И., Лысенко A.A. Метод диагностики миксоспоридий в крови рыб// Материалы Всесоюзн. совещания по болезням рыб «Профилактика, лечение и диагностика инфекционных болезней рыб».-М., 1986. -С. 47-48.

2. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Лысенко A.A. Миксоболез молоди толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края// 10-я конференция Украинского общества паразитологов.-Киев, 1986, ч. 1,С. 134-135.

3. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Коростслсва Л.А., Ляпкало Я.М., Лысенко A.A. Простейшие и псевдомонады в микропаразитоценозе толстолобиков и карпов в прудовом хозяйстве // Материалы пленума секции паразитоценоло-гии,- Витебск, 1988.-С. 5-6.

4. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Лысенко A.A. Слизистые: споровики молоди толстолобиков в прудовых хозяйствах Кубани// Сб. научных »трудов: Инвазионные болезни сельскохозяйственных животных.- Л-д, 1989.- С.-45-50.

5. Лысенко A.A. Эпизоотология и зтиопатогенез миксоспоридиозов прудовых рыб Краснодарского края //Эффективность ветеринарных мероприятий в промышленном животноводстве Кубани. Труды КубГАУ, Краснодар, 1991, вып.319, С. 37-40.

6. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Коростелева Л.А., Ляпкало Я.М., Лысенко A.A. Псевдомоноз молоди толстолобиков и карпов в зимовальных прудах// VI-е Всесоюзное совещание по профилактике, лечению и диагностике инфекционных и смешанных болезней рыб,- М., 1991.-С. 121-124

7. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Коростелева Л.А., Ляпкало Я.М., Лысенко A.A. Псевдомоноз молоди толстолобиков и карпов в зимовальных прудах// Эффективность ветеринарных мероприятий в промышленном животноводстве Кубани. Труды КубГАУ, Краснодар, 1991, вып.319^ С. 33-37.

8. Garkawi B.L. Parasitemia of big head (Arysthichthys nobilis) caused by myxobolus sp. / B.L. Garkawi, M.I. Zverzhanovski, A.A. Lysenko // Problems of Fish parasitology. Abstr. Ill International symposium. - Petrozavodsk, 1991. - P. 23 ;

9. Лысенко A.A. Паразитофауна прудовых рыб бассейна реки Кубань// Материалы 3-й Всероссийской научно-производственой конференции «Гигиена, ветсанитария и экология животноводства. - Чебоксары, 1994, С. 260-261

10. Лысенко A.A. Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике миксоболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края// Краснодар, 1994,17с.

П.ЛыСенко A.A., Белоконь И.К. Методические указания к лабораторно-практическим занятиям по болезням рыб// Краснодар, 1994, 26с.

12. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Коростелева Л.А., Ляпкало Я.М., Лысенко A.A. Ассоциативное заболевание толстолобиков псевдомо'нозом и мик-соболезом// Материалы научной конференции «Ассоциативные паразитарные болезни, проблемы экологии и терапии». - М., 1995, С.45-46.

13. Гаркави Б.Л., Лысенко A.A. Паразитофауна прудовых рыб рыбколхоза "За Родину" Тимашевского района Краснодарского края // Материалы научной

конференции «Систематика, таксономия и фауна паразитов». - М., 1996, С. 3132.

14. Сапожников Г.И., Лысенко A.A. Инструкция по борьбе с миксоболезом толстолобиков в прудовых рыбоводных хозяйствах// Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. -М., 1998, ч. 1, С. 206-212.

15. Лысенко A.A., Гаркави Б.Л. Паразитофауна прудовых рыб // Сборник научных трудов КубГАУ «Профилактика и лечение болезней сельскохозяйственных животных». Краснодар, 1999. - С. 168-171

16. Сапожников Г.И., Лысенко A.A. Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с хлоромиксозом карповых рыб// Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб.-М., 1999, ч.2, С. 36-41.

17. Сапожников Г.И., Лысенко A.A. Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с постодиплостомозом пресноводных рыб// Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. — М., 1999, ч.2, С. 48-53.

18. Лысенко A.A., Федорова И.И. Паразитофауна прудовых рыб рыбоводного хозяйства на теплых водах ТЭЦ// Труды КубГАУ, Краснодар, 2001, С. 42

19. Лысенко A.A., Хахов Л.А., Хахова М.А. Общие методы диагностики отравлений рыб // Методические указания для студентов факультета ветеринарной медицины. КубГАУ.-Краснодар, 2001, 16с.

20. Лысенко A.A., Хахова М.А. Меры борьбы и профилактики ботриоцефа-леза карпов в прудовых хозяйствах Краснодарского// Студенчество и наука. Труды КубГАУ, Краснодар, 2002, вып. 3, С. 264-266

.21. Лысенко A.A., Хахов А.Л. Эпизоотология и диагностика ассоциативных заболеваний пестрых толстолобиков в прудовых хозяйствах при интенсивном рыборазведении// Труды КубГАУ, Краснодар, 2002, вып. 3, С. 267-270

22. Лысенко A.A. Ассоциативные болезни прудовой рыбы при интенсивном рыборазведении в прудовых хозяйствах Краснодарского края// Материалы научно-производственной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями».-М., 2002, вып.З, С. 205-207

23. Лысенко A.A. Изучение цикла развития Myxobolus pavlovskii и М. > Haemophilus (Myxosporidia) паразитов пестрых толстолобиков// Сборник трудов международной конференции и 3-го съезда паразитологического общества РАН. - Санкт-Петербург, 2003, ч.1, С. 239-240

24. Лысенко A.A., Яровая Л.Д. Ассоциативные болезни прудовых рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края// Сборник трудов международной конференции и 3-го съезда паразитологического общества РАН. - Санкт-Петербург, 2003, ч.2, С. 5-8

25. Лысенко A.A. Цикл развития Myxobolus pavlovskii и М. Haemophilus паразитов толстолобиков// Всероссийская научно-практическая конференция «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидро-бионтов» - М., 2003, С. 76-77

26. Лысенко A.A., Яровая Л.Д. Ассоциативные болезни прудовых рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края // Всероссийская научно-практическая конференция «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов» - М., 2003, С. 77-79

27. Лысенко A.A. К вопросу о рыбоводстве// Агровестник Кубани. Краснодар, 2003, №2. С.23

28. Лысенко A.A. Ассоциативные заболевания прудовых рыб при интенсивном рыборазведении // Ветеринария, М., 2003 - №12. - С.32-34

29. Лысенко A.A., Сапожников Г.И. Миксоболсз пестрых толстолобиков// Ветеринария, М., 2004 - №1. - С. 17-20

30. Лысенко A.A., Гаркави Б.Л., Сапожников Г.И. Рекомендации по профилактике миксоболеза пестрых толстолобиков в рыбоводных хозяйствах.// Труды Всероссийского института гельмитологии им. К.И. Скрябина. - М., 2004, Т. 40, С. 448-454

31. Лысенко A.A., Фендриков П.В., Куклева Я.В. Эффективность различных способов лечения ихтиофтириоза// Труды КубГАУ. -Краснодар, 2004, вып.5, С. 79-82

32. Сапожников Г.И., Скачков Д.П., Лысенко A.A. Рекомендации по профилактике кишечных цестодозов прудовых рыб// Труды Всероссийского института гельмитологии им. К.И. Скрябина. - М., 2004, Т.40, С. 437-445

33. Лысенко A.A., Сердюченко И.В. Биология и патология рыб и пчел // Методические указания для студентов факультета ветеринарной медицины. КубГАУ.- Краснодар, 2004, ч.1, 52с.

34. Лысенко A.A., Куклева Я.В. Ассоциативные заболевания рыбы при разведении в прудовых хозяйствах Краснодарского края// Труды КубГАУ «Новые методы профилактики и лечения болезней животных». Краснодар, 2004, С. 5761

35. Лысенко A.A., Сердюченко И.В. Биология и патология рыб и пчел // Методические указания для студентов факультета ветеринарной медицины. КубГАУ.- Краснодар, 2005, ч.2, 96с.

36. Фендриков П.В., Куклева Я.В., Лысенко A.A. Эпизоотология и цикл развития миксоболеза пестрых толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края// Материалы 3-й Всерос. дистанц. нучно-практ. конф. «Современные проблемы устойчивого развития агропромышленного комплекса России» - Дон-ГАУ- пос. Персиановский, 2005. - С. 88-91.

37. Кудренко Ю.В., Лысенко A.A. Особенности паразитофауны белых толстолобиков в Краснодарском специализированном рыборазводном заводе// Труды КубГАУ, Краснодар, 2006.

ЛЫСЕНКО Александр Анатолиевич

ФОРМИРОВАНИЕ ПАРАЗИТАРНОЙ СИТСТЕМЫ У РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ И ЕСТЕСТВЕННЫХ ВОДОЕМАХ И МЕРЫ БОРЬБЫ С ПАРАЗИТОЗАМИ В УСЛОВИЯХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук

Подписано в печать 07.04 2006 г. Формат 60x84 1/16 Печ.л. 4,13. Усл. печ. л. 3,84 Тираж 100 экз. Заказ 349

ФГОУ ВПО Ивановская ГСХА 153012, г. Иваново, ул. Советская, 45

Содержание диссертации, доктора ветеринарных наук, Лысенко, Александр Анатолиевич

ВВЕДЕНИЕ.

1 .ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1.Паразитофауна рыб в рыбоводных хозяйствах и естественных водоемах.

1.2.Формирование паразитоценозов в организме рыб.

1.3.Миксоболезы рыб. Миксоспоридиозы.

1.4.Дермоцистидиоз ы.

1.5.Меры борьбы с паразитозами рыб.

2.СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1.МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.2.РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.2.1.ФАУНА РЫБ В БИОЦЕНОЗАХ ВОДОЕМОВ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ.

2.2.2. ПАРАЗИТОФАУНА РЫБ ВОДОЕМОВ КРАСНОДАРСКОГО

КРАЯ.

2.2.3.ОСОБЕННОСТИ ФОРМИРОВАНИЯ ПАРАЗИТАРНОЙ СИСТЕМЫ

У РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО

КРАЯ.

2.2.3.1.Формирование паразитарной системы у карпов в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.2.3.2.Формирование паразитарной системы у белого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.2.3.3.Формирование паразитарной системы у белого толстолобика в Краснодарском специализированном рыборазводном заводе растительноядных рыб.

2.2.3.4.Формирование паразитарной системы у пестрого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.2.3.5.Формирование паразитарной системы у белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.2.3.6.Формирование паразитарной системы у прудовых рыб в хозяйствах на теплых водах Краснодарской ТЭЦ.

2.2.3.7.Паразитофауна «сорных» рыб в водоемах Кубани.

2.2.4. МИКСОБОЛЕЗЫ РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ

КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ.

2.2.4.1.Биология Myxobolus pavlovskii (Achmerov, 1954) и

M.haemophilus (Garkawi, Zverhavskii, Lysenko, 1989).

2.2.4.2.Эпизоотологические особенности миксоболеза у белого толстолобика, вызываемого видом M.drjagini.

2.2.4.3.Эпизоотологические особенности миксоболеза у пестрых и белых толстолобиков, вызываемого видом Myxobolus pavlovskii.

2.2.4.4.Эпизоотологические особенности миксоболеза у пестрого толстолобика, вызываемого видом M.haemophilus.

2.2.4.5.Клиника, гематологические показатели, патоморфологические изменения у толстолобиков при миксоболезе, вызываемом М. pavlovskii и M.haemophilus.

2.2.4.6.Устойчивость спор миксоспоридий Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus во внешней среде.

2.2.4.7.Устойчивость спор Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus к химическим веществам.

2.2.4.8.Опыт борьбы с миксоболезом пестрого толстолобика.

2.2.5.ДЕРМОЦИСТИДИОЗ РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ.

2.2.5.1.Биология Dermocystidium erschowi (Garkawi, Denisov,

Afanasiev, 1980).

2.2.5.2.Особенности эпизоотического процесса при дермоцистидиозе карпов на Краснодарском крае.

2.2.5.3. Клинические признаки и патоморфологические изменения при дермоцистидиозе.

2.2.5.4.Устойчивость спор Dermocystidium erschowi к различным физическим факторам и химическим веществам.

2.2.5.5.Разработка системы профилактики дермоцистидиоза в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

2.2.6.ИХТИОФТИРИОЗ РЫБ В РЫБОВОДНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ.

2.2.6.1.Общие закономерности эпизоотического процесса при ихтиофтириозе рыб.

2.2.6.2.0собенности эпизоотического процесса, клиника ихтиофтириоза в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

2.2.6.3.Опыты по изучению «in vitro» действия различных химических препаратов на инфузорий Ichthyophtiris multibiliis.

2.2.6.4.0пыт борьбы с ихтиофтириозом сеголетков рыб в Краснодарском рыборазводном заводе растительноядных рыб.

2.2.6.5.Опыт борьбы с ихтиофтириозом производителей толстолобиков в Горячеключевском рыборазводном заводе.

2.2.7.Опыт борьбы с ботриоцефалезом рыб в прудовых хозяйствах

Краснодарского края.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Формирование паразитарной системы у рыб в прудовых хозяйствах и естественных водоемах и меры борьбы с паразитозами в условиях Краснодарского края"

Актуальность темы. Рыбоводство - одна из перспективных отраслей сельскохозяйственного производства, базирующаяся на выращивании в естественных и искусственных водоемах товарной рыбы: карпа, форели, белого и пестрого толстолобика, белого амура и других (ЮЛ. Привезенцев, 1985). Развитию прудового рыбоводства в России способствует громадные водные площади и благоприятный климат. Краснодарский край расположен в VI географической зоне, самой благоприятной для прудового рыбоводства. В крае выращивается более 20% всей прудовой рыбы, производимой в России. Интенсификация прудового рыбоводства в Краснодарском крае и в бассейне реки Кубань достигнута благодаря оптимальной структуре поликультурного рыбоводства на основе культивирования карпа с растительноядными видами - обыкновенным и пестрым толстолобиками и белым амуром, удобрением прудов, кормлением рыбы, увеличения плотности посадки на 1 га площади прудов и механизации производственных процессов.

Современные формы ведения прудового рыбоводства предусматривают уплотненные посадки рыб в пруды, что обуславливает тесный контакт выращиваемых рыб, а отсюда и благоприятные условия для распространения различных болезней (Г.В. Васильков, 1983). Результаты анализа данных ветеринарной отчетности показали, что в настоящее время наибольший удельный вес продолжают занимать инвазионные заболевания, распространенность которых составляет 66% от общего числа неблагополучных хозяйств: из них ботриоцефалез - 42%, филометроидоз-11%, воспаление плавательного пузыря -11%. (Н.А. Яременко, В.В. Селиверстов, 2003).

Часто паразитарные заболевания у рыб протекают в ассоциации, что осложняет течение заболеваний (Е.П. Семененков, 1997, 1998; Н.И. Вовк и др., 1997, 1998, 2001; Ю.Ф. Петров, 2001; М.Д. Новак и др., 2001, 2003; А.А. Лысенко и др., 2001, 2003, 2004). Все смешанные болезни рыб протекают более тяжело и труднее поддаются лечению. При обследовании рыб в ряде случаев при смешанных болезнях проявляются сходные клинические признаки, что затрудняет их диагностику (Г.И. Сапожников и др., 1997, 2000, 2003; М.Д. Новак, А.И. Новак, 2003 и др.).

Паразитарные заболевания прудовых рыб в РФ изучали И.Е. Быхов-ская, Б.Е. Быховский (1940), В.П. Каменев (1953, 1956), З.М. Сахнина (1967, 1983), В.А. Мусселиус (1969), Б.Л. Гаркави (1972), Т.А. Яковчук (1974), В.В. Панасенко (1980, 1985), В.И. Афанасьев (1981), B.C. Сулейманян (1983), Б.Л. Гаркави, А.А. Лысенко (1986, 1991, 1995) и др. У карпа описан 51 вид паразитов, от белого и пестрого толстолобиков - 35 видов, белого амура - 34 вида паразитов из числа простейших, гельминтов и ракообразных.

Из паразитов прудовых рыб широкое распространение имеют слизистые споровики - миксоспоридии. У карпов и растительноядных рыб они локализуются в жабрах, подкожной клетчатке, почках, плавательном пузыре, головном мозге и других органах, что нередко приводит к гибели рыб (С.С. Шульман, 1966; О.Н. Пугачев, 1983; А.В. Успенская, 1984, О.Н. Бауэр, 1986; А.Г. Чепурная, 2003). Так, миксоболез толстолобиков, вызванный Myxobolus pavlovskii, наносит значительный экономический ущерб рыбоводству. Летальность сеголетков пестрого толстолобика достигает 10-12% (Б.Л. Гаркави и др., 1989). Трудность оздоровления толстолобиков от миксоболезов связана с тем, что до сих пор нет точных данных о жизненном цикле миксоспоридий и тем, что растительноядные рыбы не используют искусственные корма. Это делает практически неосуществимым введение в кишечник с комбикормом лечебных препаратов.

В литературе недостаточно сведений о путях заражения рыб этими простейшими, вызываемых ими патологических изменениях, а также мерах по их оздоровлению и профилактике. Малоизученным заболеванием является дермоцистидиоз карпов, возбудитель которого Dermocystidium erschowi локализуется в подкожной клетчатке и вызывает опухолевидные образования, что ведет к потере товарного вида рыбы и снижению продуктивности.

В условиях изменяющейся экологической ситуации, связанной в первую очередь с антропогенным воздействием на природу, в таких биоценозах как прудовые водоемы происходит изменение характера паразитофауны, изменяется течение и характер проявления различных заболеваний. (С.В. Пронина, Н.М. Пронин, 1988; О.В. Романцова, Г.И. Сапожников, 2002; М.Д. Новак, А.И. Новак, 2003 и др.)

Цель и задачи исследования. Основная цель исследования - разработка комплекса профилактических противопаразитарных мероприятий в условиях интенсивного ведения прудового рыбоводства в Краснодарском крае. Для выполнения необходимо было решить следующие задачи:

- определить паразитофауну рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края;

- определить паразитофауну рыб в естественных водоемах бассейна реки Кубань;

- определить формирование паразитоценозов в условиях прудового рыбоводства и в естественных водоемах Краснодарского края;

- расшифровать биологический цикл развития миксоспоридий Myxobolus pavlovskii (Achmerov, 1954) и М. haemophilus (Garkawi, Zver-hanovskii, Lysenko, 1989) паразитов толстолобиков;

- изучить эпизоотологию, патоморфологические изменения и вопросы диагностики при дермоцистидиозе карпов;

- изучить сезонную и возрастную динамику основных паразитарных заболеваний прудовых рыб, наносящих ущерб рыбоводным хозяйствам Краснодарского края;

- разработать комплекс профилактических и оздоровительных мероприятий при миксоболезе пестрых толстолобиков, вызываемом М. Haemophilus, миксоболезе белых и пестрых толстолобиков, вызываемом М. pavlovskii; ботриоцефалезе карповых рыб, ихтиофтириозе прудовых рыб;

Научная новизна. Впервые в условиях Краснодарского края проведен системный анализ паразитофауны 9 видов «сорной» и 4 видов прудовых рыб, культивируемых в рыбоводных хозяйствах. Выявлено, что паразито-фауна рыб здесь представлена 52 видами, в т.ч. у красноперки - 21 вид, плотвы - 18, леща -11, уклейки - 10, щуки - 7, ерша - 5, окуня и тиляпии - по 3 вида, судака - 2, у карпа - 32, белого и пестрого толстолобиков - 22 вида и белого амура - 20 видов, принадлежащих к разным систематическим группам. Установлено, что в условиях Краснодарского края основным источником и резервуаром заражения прудовых рыб является «сорная» рыба, а также растительноядные рыбы, завозимые из Китая и Дальнего Востока РФ для акклиматизации.

Впервые у рыб изолирован вид паразитического простейшего -Myxobolus haemophilus (Garkawi, Zverhanovskii, Lusenko, 1989), который паразитирует в крови, паренхиматозных органах, мышцах, головном мозге пестрых толстолобиков. Вид моногостальный, моноксенный. Выявлено, что при миксоболезе сеголеток пестрого и белого толстолобиков, вызываемом Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus, наблюдается скопление рыбы возле водоподачи, заглатывание воздуха с поверхности воды, анемичность и обильное ослизнение жабр, снижение содержания гемоглобина, эозинофи-лия, увеличение СОЭ и лейкоцитов. Летальность среди сеголетков пестрых толстолобиков достигает 15 %.

В условиях Краснодарского края впервые установлен дермоцисти-диоз у годовиков карпов, вызываемый простейшими Dermocystidium erschowi (Garkawi, Denisov et Afanasiev, 1980). Изучены особенности эпизоотологии, патогенеза, клиники заболевания, разработаны методы диагностики и профилактики паразитоза.

Разработана система лечебно-профилактических мероприятий против основных паразитарных болезней прудовых рыб (миксоболез, дермоци-стидиоз, ихтиофтириоз, ботриоцефалез), которая в настоящее время с большим экономическим эффектом применяется в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

Практическая значимость работы. Выполнение рекомендованных нами комплексных мероприятий по профилактике и борьбе с паразитарными болезнями прудовых рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края позволяет повысить сохранность рыбы на 10-15%, что дает возможность получать дополнительную прибыль каждому рыбоводному хозяйству от 50 до 100 тыс. рублей ежегодно. Основные научные разработки автора вошли в 11 нормативных документов:

3. «Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с хлоромиксо-зом карповых рыб» (утверждены Россельхозакадемией, 1999 г.).

5. «Общие методы диагностики отравлений рыб» (утверждены методической комиссией КубГАУ, 2001 г.).

6. «Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике миксоболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края» (утвержд. Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004 г.).

8. «Рекомендации по профилактике кишечных цестодозов прудовых рыб» (утверждены Россельхозакадемией, 2004).

10. «Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с дермоци-стидозом карпов в рыбоводных хозяйствах Северного Кавказа» (утверждены Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004 г.).

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и одобрены на: пятом всесоюзном симпозиуме по инфекционным болезням рыб (Москва, 1986); десятой конференции Украинского общества паразитологов (Киев, 1986); втором съезде паразитоценологов (Витебск, 1988); третьем Международном симпозиуме по проблемам паразитарных заболеваний рыб (Петрозаводск, 1991); пятом всесоюзном совещании «Профилактика, лечение и диагностика инфекционных и смешанных болезней рыб» (Егорьевск, 1991); всероссийской научно-практической конференции «Гигиена, ветсани-тария и экология животноводства» (Чебоксары, 1994); научной конференции «Ассоциативные паразитарные болезни, проблемы экологии и терапии» (Москва, 1995); научной конференции РАН «Систематика, таксономия и фауна паразитов» (Москва, 1996); краевых и городских совещаниях по проблемам рыбоводства и болезням прудовых рыб Краснодарского края (1997, 1998, 2000, 2003); всероссийской конференции ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями (зоонозы)» (Москва, 2000-2005); объединенной сессии координационного совещания по ветеринарной паразитологии, центрального совета общества гельминтологов РАН и секция «Инвазионные болезни животных» РАСХН (Москва, 1999-2005); международной конференции «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов» (Петрозаводск, 2003); ежегодных конференциях по итогам НИР в КубГАУ (1986-2005); третьей всесоюзной дистанционной научно- практической конференции «Современные проблемы устойчивого развития агропромышленного комплекса России» (Дон ГАУ, п. Персиановский, 2005).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Паразитофауна рыб в прудовых хозяйствах и естественных водоемах Краснодарского края.

3. Биология миксоспоридий Myxobolus pavlovskii (Achmerov, 1954) и M.haemophilus (Garkawi, Zverhanovskii, Lysenko, 1989) - паразитов толстолобиков.

4. Патогенез, клиника, диагностика и меры борьбы при миксоболезе толстолобиков.

5. Биология Dermocystidium erschowi (Garkawi, Denisov et Afanasiev, 1980), патогенез, диагностика и меры борьбы при дермоцистидиозе карпов.

6. Меры борьбы с ихтиофтириозом прудовых рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 253 страницах компьютерного текста, состоит из введения, обзора литературы, четырех глав собственных исследований, заключения, выводов, практических предложений. Работа иллюстрирована 36 таблицами, 44 рисунками. Список литературы включает 353 источников, из них 269 отечественных, 84 зарубежных.

Заключение Диссертация по теме "Паразитология", Лысенко, Александр Анатолиевич

ВЫВОДЫ:

2. В водоемах Краснодарского края паразитофауна рыб представлена 52 видами, в т.ч. простейших - 26 видов (из них миксоспоридий -11, инфузорий - 6), моногенетических сосальщиков - 11 видов, трематод - 2, цестод -4 вида, нематод - 2, паразитических ракообразных - 7 видов.

3. Паразитофауна карпа, выращиваемого в прудовых хозяйствах Краснодарского края, представлена 32 видами: Cryptobia branchialis, Cr.cyprini, Costia necatrix, Eimeria carpelli, Sphaerospora carassii, Myxobolus cyprini, M.dogieli, M.bramae, M.ellipsoides, M.carassi, Chilodonella piscicola, Ichthyo-phthirius multifiliis, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Tr.nigra, Tr.nobilis, Tr.rostrata, Trichodinella epizootica, Dermocystidium erschowi, Dactylogyrus achmerowi, D.vastator, D.extensus, Gyrodactylus cyprini, G.katharineri, Khawia sinensis, Bothriocephalus opsariichthydis, Posthodiplostomum cuticola, Philo-metroides lusiana, Piscicola geometra, Ergasilus sieboldi, Lernaea cyprinacea, Argulus foliaceus. В условиях Краснодарского края значительный ущерб карпо-водству наносят такие простейшие как Ichthyophthirius multifilus, Dermocystidium erschowi, цестоды - Bothriocephalus opsariichthydis, Khawia sinensis и нематоды Philometroides lusiana.

4. Паразитофауна пестрого толстолобика, культивируемого в прудовых хозяйствах Краснодарского края, представлена 22 видами: Costia necatrix, Eimeria cheni, E.sinensis, Myxobolus pavlovskii, M.drjagini, M.haemophilus, Ichthyophthirius multifilus, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Tr.nigra, Tr.nobilis, Trichodinella epizootica, Dactylogyrus arystichthys, D.nobilis, Ligula intestinalis, Digramma interrupta, Diplostomum spathaceum, Posthodiplostomum cuticola, Sinergasilus lieni, Lernaea cyprinacea, Argulus foliaceus. В условиях Краснодарского края большой ущерб рыбоводству наносят миксоспоридии -Myxobolus pavlovskii и моногостальный вид M.haemophilus. Заболеваемость сеголетков пестрых толстолобиков достигает 100%, а летальность до 15%.

5. Паразитофауна белого толстолобика, выращиваемого в прудовых хозяйствах Краснодарского края, представлена 22 видами: Cryptobia branchialis, Costia necatrix, Eimeria cheni, E.sinensis, Myxobolus pavlovskii, M.dryagini, M.ellipsoides, Chilodonella piscicola, Ichthyophthirius multifiliis, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Tr.nigra, Tr.nobilis, Tr.rostrata, Trichodinella epizootica, Dactylogyrus hypophthalmichthis, Ligula intestinalis, Diplostomum spathaceum, Posthodiplostomum cuticola, Sinergasilus lieni, Lernaea cyprinacea, Argulus foliaceus. Основными паразитами, имеющими большое экономическое значение, здесь являются простейшие - Myxobolus pavlovskii, Ichthyophthirius multifiliis, личинки трематод Diplostomum spathaceum и Posthodiplostomum cuticola.

6. Паразитофауна белого амура, выращиваемого в прудовых хозяйствах Краснодарского края, представлена 20 видами: Costia necatrix, Sphaerospora carassii, Myxobolus ellipsoides, Chilodonella piscicola, Ichthyophthirius multifiliis, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Tr.nobilis, Trichodinella epizootica, Dactylogyrus hypophthalmichthis, Khawia sinensis, Bothriocephalus opsariichthydis, Ligula intestinalis, Digramma interrupta, Diplostomum spathaceum, Garkawillanus amuri, Sinergasilus major, Lernaea cyprinacea, Lernaea elegans morpha ctenopharyngodontis, Argulus foliaceus. Из перечисленных видов здесь большой экономический ущерб рыбоводству наносят Bothriocephalus opsariichthydis и Khawia sinensis, способные вызывать заболевание и гибель сеголетков и годовиков рыб.

7. Паразитофауна «сорных» рыб в естественных водоемах и прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена 27 видами, в т.ч. простейших -17, моногеней - 2, трематод - 2, цестод - 3 и ракообразных - 3 вида.

8. Впервые в Российской Федерации у пестрых толстолобиков выделен новый вид Myxobolus haemophilus (Garkawi, Zverhanovskii, Lysenko, 1989), который паразитирует в крови, паренхиматозных органах, мышцах и головном мозге рыб. Паразит моногостальный, моноксенный. Вызывает массовую гибель сеголетков пестрых толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

9. При миксоболезе толстолобиков, вызываемых видами Myxobolus pavlovskii и M.haemophilus, наблюдается скопление сеголетков возле водопо-дачи, нарушение жаберного дыхания, анемичность и обильное ослизнение жабр. У больных рыб падает концентрация гемоглобина, ускоряется СОЭ, наблюдается эозинофилия и лейкоцитоз. Изучены патоморфологические изменения в органах и тканях рыб, павших при миксоболезе.

10. В рыбоводных хозяйствах Краснодарского края впервые диагностирован дермоцистидиоз у годовиков карпа, вызываемый простейшими Dermocystidium erschowi (Garkawi, Denisov, Afanasiev, 1980). Возбудитель у больных рыб в подкожной клетчатке образует паразитарные узлы грибовидной формы, диаметром до 20 мм.

12. В прудовых хозяйствах Краснодарского края опасным заболеванием является ихтиофтириоз, вызываемый инфузорией Ichthyophthirius multi-filiis. Летальность рыб достигает 30%. Возможны вспышки как в летнее, так и зимнее время. Изучены эпизоотология, патогенез и клиника заболевания, разработаны методы лечения рыб.

13. Для оздоровления рыбы в рыбоводных хозяйствах от опасных пара-зитозов (миксоболезы толстолобиков, демоцистидиоз карпов, ихтиофтириоз и ботриоцефалез рыб) нами предложена комплексная система лечебно-профилактических мероприятий (биологические и химические методы).

14. Разработанная система лечебно-профилактических мероприятий, основные положения которой утверждены управлением ветеринарии МСХ РФ, Россельхозакадемией в настоящее время с большим экономическим эффектом (от 50 до 100 тыс. руб. в год) применяется в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Выполнение рекомендованных нами комплексных мероприятий по профилактике паразитоценозов прудовых рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края позволяет повысить сохранность рыбы на 10-15%, что в денежном выражении позволяет получить дополнительную прибыль в каждом хозяйстве от 50 до 100 тыс. руб. в год. Разработанные нами мероприятия по оздоровлению рыбоводных хозяйств от паразитозов вошли в следующие нормативные документы:

2. «Инструкция по борьбе с миксоболезом толстолобиков в прудовых рыбоводных хозяйствах» (утверждена Россельхозакадемией, 1998 г.).

3. «Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с хлоромиксо-зом карповых рыб» (утверждена Россельхозакадемией, 1999 г.).

4. «Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с постодипло-стомозом пресноводных рыб» (утверждена Россельхозакадемией, 1999 г.).

5. «Общие методы диагностики отравлений рыб» (утверждены методической комиссией КубГАУ, 2001 г.).

6. «Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике миксоболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края» (утверждены Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004 г.).

8. «Рекомендации по профилактике кишечных цестодозов прудовых рыб» (утверждены Россельхозакадемией, 2004).

10. «Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с дермоци-стидозом карпов в рыбоводных хозяйствах Северного Кавказа» (утверждена Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004 г.).

222

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В естественных водоемах Краснодарского края широко представлены «сорные» рыбы, основными представителями которых являются лещ, красноперка, плотва, ерш, уклея, щука, судак, которые с водой из естественных водоемов Кубани попадают в рыбоводные хозяйства, вследствие чего постоянно контактируют с культивируемыми рыбами - карпом, белым и пестрым толстолобиком и белым амуром. В последние 50-60 лет для поликультурного выращивания карпа и растительноядных рыб широко используются искусственные пруды, приспособленные водоемы. Разводимые в прудах растительноядные рыбы - белый толстолобик, пестрый толстолобик, белый амур - завезены в Краснодарский край из Китая и Дальнего Востока.

Одним из сдерживающих факторов дальнейшего развития прудового рыбоводства являются паразитарные болезни, которые наносят существенный экономический ущерб (Т.А. Яковчук, 1969; Г.И. Сапожников, 2000; В.В. Панасенко, 1980,1985; З.Н. Сахнина, 1983; B.C. Сулейманян и др., 1983).

Нами при паразитологическом исследовании 13 видов рыб естественных водоемов и прудовых рыбоводных хозяйств Краснодарского края выделено 52 вида паразитов, принадлежащих к различным систематическим группам: простейшие - 26 видов (из них миксоспоридий 11 видов), моногенетические сосальщики - 11, цестоды - 4, трематоды - 2 вида; нематоды - 2 вида и паразитические ракообразные - 7 видов.

Анализ полученных данных свидетельствует об обеднении видового состава паразитов пресноводных рыб, по сравнению с данными, полученными Т.А. Яковчук (1974) и другими исследователями в шестидесятые годы 20 века. Так, от карпа нами описаны 32 вида паразитов, что составляет 64,0% от числа видов, описанных Т.А. Яковчук, от пестрого толстолобика - 22 вида

75,8%), от белого толстолобика - 22 вида (75,8%) и белого амура - 20 (62,5%).

В прудовые хозяйства Кубани растительноядными рыбами завезены из Китая и Дальнего Востока 8 видов паразитов. Следует отметить, что из числа обнаруженных 52 видов паразитов, 11 видов являются общими для карпа и толстолобиков, 8 видов - для карпа и растительноядных рыб.

Широко распространенными и общими для «сорных» и прудовых рыб являются простейшие Costia necatrix, Chilodonella piscicola, Ichtyophthirius multifiliis, Apiosoma piscicolum, Trichodina acuta, Trichodinella epizootica, цес-тоды Bothriocephalus opsariichthydis и Ligula intestinalis, трематоды Diplosto-mum spathaceum и Posthodiplostomum cuticola. Эти виды паразитов при соблюдении ветеринарно-санитарных правил выращивания рыбы обнаруживаются у них в единичных экземплярах, но при нарушении технологии выращивания карпа и растительноядных рыб они получают широкое распространение и могут нанести большой экономический ущерб рыбоводным хозяйствам Краснодарского края.

Из 7 моногостальных видов карпа (Cryptobia cyprini, Dermocystidium erschowi, Dactylogyrus achmerowi, D.vastator, D.extensus, Gyrodactylus cyprini, G.katharineri) 5 паразитируют на жабрах карпа, а вид D. erschowi паразитирует на коже. Кроме того, у карпов и белых амуров широкое распространение имеет Bothriocephalus opsariichthydis, завезенный с белым амуром во время акклиматизации перевозок из Китая и Дальнего Востока.

Пять видов паразитов обнаружены только у обыкновенного и пестрого толстолобиков (Eimeria sinensis, E.cheni, Myxobolus pavlovskii, M.drjagini, Sinergasilus lieni). Среди них в прудовых хозяйствах наибольшее распространение имеют Е. sinensis и М. pavlovskii, вид M.drjagini в большей степени поражает белых, М. pavlovskii - пестрых толстолобиков.

Три вида паразитов встречаются только у пестрого толстолобика (Myxobolus haemophilus, Dactylogyrus aristichthys и D.nobilis). У белого толстолобика моногостальным является вид D.hypophthalmichthys, у белого амуpa 4 вида (D.ctenopharyngodontis, Garkawillanus amuri, Sinergasilus major, Ler-nea elegans morpha ctenopharyngodontis). Вид M. haemophilus, паразитирующий у пестрого толстолобика, и вид G. amuri - паразит белого амура - регистрируются только в прудовых хозяйствах Краснодарского края. В последние десятилетия в Краснодарском крае мы начали регистрировать у карпа нематоду Philometroides lusiana.

Нами в условиях Краснодарского края впервые выявлен новый вид Myxobolus haemophilus (Garkawi, Zverhanovskii, Lysenko, 1989), который является моногостальным и моноксенным видом пестрого толстолобика. Этот возбудитель высокопатогенен и паразитирует во всех органах и тканях пестрых толстолобиков, вызывая наибольшие патологические изменения в почках, печени и мышечной ткани. Заболеваемость сеголетков пестрых толстолобиков этим паразитом в прудовых хозяйствах достигает 100%, при летальности до 15%. Кроме этого вида у растительноядных рыб паразитируют виды миксоспоридий - Sphaerospora carassi, Myxobolus pavlovskii, M.drjagini, M.ellipsoides, которые чаще всего паразитируют в ассоциации, вызывая тяжелое заболевание. Наши данные свидетельствуют, что при ассоциативном паразитировании миксоспоридий М. pavlovskii и М. haemophilus у сеголетков пестрых толстолобиков снижается масса тела, ухудшаются гематологические показатели, происходят глубокие дегенеративные изменения жабр и внутренних органов, что приводит к массовой гибели сеголетков.

Нами установлено, что споры миксоспоридий отличаются достаточной устойчивостью к факторам внешней среды и химическим веществам. В гниющих остатках рыб они сохраняют жизнеспособность до 90 дней. Наиболее эффективными дезинфектантами против них являются 1% раствор едкого натрия и 1-2% раствор формалина.

Нами в условиях Краснодарского края разработана система лечебно-профилактических мероприятий при ассоциированном течении миксоболеза толстолобиков, включающая рыбоводно-мелиоративные и ветеринарно-санитарные мероприятия (получение гибридов белого и пестрого толстолобиков, дезинфекцию и летование водоемов, соблюдение норм посадки рыбь^ контроль за гидрохимическими показателями, технологические обработки неорганическими красителями и т.д.), которые позволили резко снизить заболеваемость пестрых толстолобиков миксоболезом и значительно повысить доходность выращивания растительноядных рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

Нами в условиях Краснодарского края впервые выявлено широкое распространение дермоцистидиоза годовиков карпов, вызываемого видом Dermocystidium erschowi (Garkawi, Denisov, Afanasiev, 1980), который паразити-руюет в подкожной клетчатке и внутренних органах. При сильном заражении у рыб отмечается ерошение чешуи, скопление экссудата в брюшной полости и образование узлов грибовидной формы до 20 мм в диаметре в подкожной клетчатке. Заболеваемость достигала 30%, определенный процент годовиков погибал вследствие глубоких дегенеративных изменений и интоксикации организма.

Большое влияние в рыбоводных хозяйствах Краснодарского следует уделять такому широко распространенному, и наносящему значительный экономический ущерб многим видам прудовых рыб заболеванию, как ихтиофтириоз, вызываемому инфузорией Ichthyophthirius multifiliis. Заболевание регистрируется практически во всех рыбоводных хозяйствах Краснодарского края вызывая, при нарушении технологии рыборазведения, заболеваемость и гибель как сеголетков и годовиков рыб, так и производителей во все сезоны года. Нами изучена клиника заболевания, эпизоотологические особенности ихтиофтириоза в Краснодарском крае, уточнены методы диагностики. Разработанная нами система мер по профилактике и ликвидации ихтиофтириоза в прудовых хозяйствах Краснодарского края позволяет уничтожать инвазионное начало в водоеме, эффективно лечить больную рыбу. В настоящее время, благодаря выполнению наших рекомендаций по профилактике ихтиофтириоза, эпизоотическая обстановка по данному паразитозу стабильна и ихтиофти-риоз не представляет опасности для рыбоводных хозяйств Краснодарского края.

Цестодозы рыб и, в частности, ботриоцефалез, вызываемый видом Bothriocephalus opsariichthydis, представляет значительную угрозу для рыбоводных хозяйств Краснодарского края. Возбудитель поражает молодь карпа и белого амура, вызывая снижение массы тела, общую интоксикацию организма и летальность до 30%. Нами разработана система лечебно-профилактических мероприятий, включающая биологические методы борьбы (внесение культуры ветвистоусых рачков - биологических элиминаторов циклопов, промежуточных хозяев ботриоцефалюсов), использование химических веществ (дегельминтизации лечебным комбикормом с учетом пика инвазии в прудах Краснодарского края), агромелиоративных и ветеринарно-санитарных правил при выращивании рыбы в прудовых хозяйствах по интенсивной технологии. Данная система мероприятий позволяет оздоровить рыбоводное хозяйство от ботриоцефалеза в течение двух лет с наименьшими экономическими затратами.

РФ, Российской академией сельскохозяйственных наук, Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, они вошли в 11 нормативных документов и в настоящее время широко применяются во всех рыбоводных хозяйствах Краснодарского края, обеспечивая устойчивое благополучие по основным, наиболее опасным паразитозам рыб.

Библиография Диссертация по биологии, доктора ветеринарных наук, Лысенко, Александр Анатолиевич, Краснодар

1. Акишева К.С. Этапы и пути формирования паразитофауны рыб в водохранилищах рек Казахстана// В. сбор.: «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» -М.: 2003 - С. 20-22

2. Анисимова И.М., Лавровский В.В. Ихтиология// М.: Высшая школа, 1983.- 246 с.

3. Анюханов A.M. Пути повышения эффективности работы сооружений по очистке сточных вод от яиц гельминтов в Условиях Башкирского Зауралья// Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» М., 2001, с.26

4. Асеева Н.Л. К фауне миксоспоридий рыб Японского моря //Всероссийская научная конференция «Взаимоотношение паразита и хозяина»-М.: 1998.-5 с.

5. Асеева Н.Л. Фауна миксоспоридий рыб семейства тресковых дальневосточных морей//Паразитология, 2002, 36, №2, 167-174 с.

6. Афанасьев В.И., Яковчук Т.А. Болезни промысловых рыб// Краснодар, 1981,96 с.

7. Ахмеров А.Х. О сопряженных видах нового рода миксоспоридий// Доклады АН СССР, 1954. -т.97. 1101-11-3 с.

8. Бадмаев М.Д., Пронина С.В. Особенности инкапсуляции Myxi-dium rhodei (Myxozoa; myxosporea) в почках плотвы сибирской// Всероссийская научная конференция «Взаимоотношение паразита и хозяина» М., 1998, 6 с.

9. Банина Н.Н., Исакова Л.С. Опыт экологического анализа паразитофауны колюшек// Труды ГосНИИОРХ. 1973. -т.80. - 89-114 с.

10. Банина Н.Н. Некоторые особенности организации апиозом и их систематическое положение// Паразитология, 1977, т.-11, вып.2, 153-157 с.

11. Бауер О.Н., Стрелков Ю.А. Заболевания и паразиты молоди дальневосточных рыб во время карантинизации// В кн.: «Проблемы рыбхоз, использования растительноядных рыб в водоемах СССР».-Ашхабад.-1963.- 150-153 с.

12. Бауер О.Н. Популяционная экология паразитов рыб, некоторые итоги и перспективы// Морфология, систематика и фаунистика паразитических животных,- JI-д: 1986. 185 с.

13. Бауер О.Н. Методические указания по борьбе с дактилогирозом карпа в прудовых хозяйствах// Л-д: Наука, 1959 6.-16 с.

14. Бауер О.Н. Паразитарные заболевания рыб в прудовых, нерестовых хозяйствах и рыбопитомниках, меры борьбы с ними //В кн.: «Основные проблемы паразитологии рыб». Л-д, 1958,- С. 267-301

15. Бауер О.Н. Применение антибиотиков в рыбоводстве и в борьбе с болезнями рыб// Рыбная промышленность за рубежом. М., 1979. - С. 23-25.

16. Бауер О.Н. Экология паразитов пресноводных рыб// Известия Гос НИИОРХ.-1959а.-т.49,- 206 с.

17. Бауер О.Н., Мусселиус В.А., Стрелков Ю.А. Болезни прудовых рыб// М., «Легкая и пищевая промышленность». 1981. 319 с.

18. Бауер О.Н., Никольская Н.П. Динамика паразитофауны ладожского сига и ее эпизоотическое значение// Изв. ВНИИОРХ.-1957.-т.42.-с.227-242.

19. Бауер О.Н., Столяров В.П. Формирование паразитофауны и паразитические болезни рыб в водохранилищах// Основные проблемы паразитов и рыб Л.: Издательство ЛГУ, 1958, 248-255с.

20. Березина Н.А. Гидоробиология// М.: «Пищевая промышленность», 1973. -496 с.

21. Быков В.П. Зюзин И.Е. Зараженность рыб возбудителями гель-минтозоонозов в дельте Волги// Ветеринария, №10, 2001. с.28

22. Быков В.П., Зюзин И.Е., Гельминтозоозы рыб в Астраханской области// Ветеринария, 2001, №6 с. 15-16

23. Быховская Павловская И.Е. Паразитологическое исследование рыб// Л-д: Наука, 1989.-108с.

24. Быховская Павловская И.Е. Класс дигенетические сосальщики, Trematoda рыб 1808// Определитель паразитов пресноводных рыб СССР. М,-Л-д., издательство АН СССР, 1962. - с.438-520

25. Быховская Павловская И.Е. Паразиты рыб. Руководство по изучению. -Л-д., Наука, 1985.-121 с.

26. Быховская И.Е., Быховский Б.Е. Паразитофауна рыб Ахтарских лиманов (Азовское море, дельта р.Кубань)// Паразитологический сборник ЗИН АН СССР,- 1940.-Т.8-131-161 с.

27. Быховский Б.Е. Моногенетические сосальщики, их систематика и филогения//М.: 1957.-509 с.

28. Ванятинский В.Ф., Мирзоева Л.М., Поддубная А.В. Болезни рыб// М: «Пищевая промышленность», 1979. -232 с.

29. Васильков Г.В. Гельминтозы рыб// М.: Изд-во «Колос», 1983. 208с.

30. Васильков Г.В., Грищенко Л.И. и др. Справочник по болезням рыб// М.: Колос, 1988,- 269 с.

31. Владимиров В.Л. Иммунитет у рыб при дактилогирозе// Парази-тология.-1971 .-т.5-вып. 1.- 51-58 с.

32. Владимиров В.Л. Жизненный цикл и биология Posthodiplostomum cuticola (Nordmann, 1832) // В кн.: Тезисы докладов научной конференции ВОГ.-М., 1962.-ч.2.-с.33-35.

33. Вовк Н.И. Бучацкий Л.П. Пирус Р.И. Ихтиопатологический мониторинг внутренних водоемов Украины// Материалы 1 Всеукраинской конференции «Проблемы ихтиопатологии». Киев: 2001. - с.31-36

34. Воловик С.В. Жизненный цикл и биология Dactylogyrus hypophthalmichthys Achmerow, 1952 паразита обыкновенного толстолобика (Hypophthalmichthys molitrix)//Труды ВНИИПРХа. -1973.-т.22.-с.130-142.

35. Воронин В.Н. Новые подходы к проблеме профилактики миксос-поридиозов рыб// В сб.: Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре. М., 2000.-С.45-46

36. Воронин В.Н., Юнчис О.Н., Грибкова Н.Ю. Патогенное влияние миксоспоридий на карпов в тепловодных хозяйствах// ЦНИИТРЭИРХ. Сер.Аквакультура.-М.: 1988.-вып.5.- с.10-11

37. Гаркави Б.Л., Денисов А.И., Гриц К.Н. Дермоцистидиоз подкожной клетчатки карпа// В кн.: Совершенствование мер борьбы с инвазионными болезнями рыб при интенсивном рыборазведении. М.: 1983,- с.42-43.

38. Гаркави Б.Л., Денисов А.И., Афанасьев В.И. Новый вид гаплос-поридий Dermocystidium erschowi sp.n. от карпа// Паразитология. 1980.-t.14,-вып.-6.-с.533-537.

39. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Лысенко А.А. Слизистые споровики молоди толстолобиков в прудовых хозяйствах Кубани// В кн. «Инвазионные болезни сельскохозяйственных животных», Сборник научных трудов.-Л-д: 1989.-45-50 с.

40. Гаркави Б.Л Метод диагностики миксоспоридий в крови рыб// Материалы Всесоюзн. совещания по болезням рыб «Профилактика, лечение и диагностика инфекционных болезней рыб».-М., 1986. -С. 47-48

41. Гаркави Б.Л. Миксоболез молоди толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края// 10-я конференция Украинского общества паразитологов. Киев, 1986,4. 1 .--С. 134-135

42. Гаркави Б.Л. Простейшие и псевдомонады в микропаразитоцено-зе толстолобиков и карпов в прудовом хозяйстве// Материалы пленума секции паразитоценологии,- Витебск, 1988.-С. 5-6.

43. Гаркави Б.Л. Новая нематода Skrjabillanus amuri (Camallanata: Skrjabilanidae) из белого амура // Паразитология.-1972.-т. VI. с.87-88

44. Гаркави Б.Л., Лысенко А.А. Паразитофауна прудовых рыб рыб-колхоза "За Родину" Тимашевского района Краснодарского края// Материалы научной конференции «Систематика, таксономия и фауна паразитов». М., 1996,-С. 31-32

45. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Коростелева JI.A., Ляпкало Я.М. Псевдомоноз молоди толстолобиков и карпов в зимовальных прудах// Труды КубГАУ, вып.319. Краснодар, 1991 С. 33-37

46. Гафина Т.Э. Моногенетические сосальщики рыб реки Обь в районе г. Новосибирска // 1-я научная конференция №4 Новосибирск.: 1996. -с.34-35

47. Гинецинская Т.А. Трематоды, их жизненные циклы, биология, эволюция. Л-д: Наука, 1968.-410 с.

48. Гинецинская Т.А., Добровольский А.А. Частная паразитология. Паразитические простейшие и плоские черви.// М.: 1998. 302 с.

49. Головин П.П., Головина Н.А. К проблеме внутриэритроцитарных включений у дальневосточных лососей// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-С.50-51

50. Головина Н.А. Морфологический анализ клеток крови у эмбрионов карпа // В кн.: «Пути повышения рыбопродуктивности прудов», Труды ВНИИПРХ.-1975.-вып.15.-с.211-219.

51. Головина Н.А. Использование лейкоцитарного профиля для оценки лейкоцитоза рыб // Тр. ВНИИПРХ.-1978.-т.26,- с.65-72.

52. Головина Н.А. Морфологический анализ клеток крови при заражении карпа инфузорией// Материалы II Всесоюзного съезда прото-зоологов. Киев.: 1976, с.38-39

53. Головина Н.А. О лейкоцитарной формуле крови карпа при воспалении плавательного пузыря в свете новой классификации форменных элементов// В кн.: Материалы VI Всесоюзного совещания по болезням и паразитам рыб.- М.:1974,- 67-70 с.

54. Головина Н.А., Ванятинский В.Ф. Картина крови рыб при хи-лодонеллезе в различные сезоны года// В кн.: 9-я конференция Украинского общества паразитологов. Киев.: 1980,25-26 с.

55. Головина А.Н. Изменения в составе белой крови карпа при заражении Dactylogyrus extensus (Monogenoidea, Dactylogyridae)// Паразитоло-гия.-1976,т. 10.-вып.2.- 178-182 с.

56. Головина Н.А. Морфология клеток карпа в норме // Тру-дыВНИИПРХ.-1979, вып. 23. с.200-209

57. Головина Н.А. Методы гематологических исследований в их-тиопатологической практике// В сб. «Рыбохозяйственное использование внутренних водоемов».-1979, вып.4,- с.8-18.

58. Головина Н.А. Использование гематологических методов для оценки здоровья рыб// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-С.52-53

59. Головина Н.А. Современные подходы к организации лечебно-профилактических мероприятий в рыбоводных хозяйствах// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-е.51-52

60. Гордон JI.M., Кудряшов С.Б. Эффективность используемых кормов, трудовых ресурсов и себестоимость продукции прудового рыбоводства // «Повышение эффективности товарного рыбоводства». М.: 1980.- 45 с.

61. Горовая Т.В. Экспериментальное изучение роли листоногих рачков в элиминации церкарий рода Diplostomum // Тр. ГЕЛАН СССР -М.: Наука, 1975.-т.25-с.17-26.

62. Горохов В.В. Экологические основы борьбы с вредными моллюсками. М.: Колос, 1983. - 207 с.

63. Грищенко Л.И., Акбаев М.М., Васильков Г.В. Болезни рыб и основы рыбоводства// М.: Колос, 1999. 456 с.

64. Грищенко Л.И. Эпизоотология, течение и проявление асцитно-язвенного синдрома карпов в тепловодных рыбоводных хозяйствах // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-е.53-54.

65. Грищенко Л.И., Давыдова О.Е., Лебедев P.O., Иренков И.П. Основные ветеринарно-санитарные мероприятия при выращивании пресноводных креветок в условиях аквакультуры// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-С.55-57.

66. Грищенко Л.И., Енгашев В.Г., Юхименко Л.Н. Эффективность препаратов из группы фторхинолонов при бактериальных болезнях рыб. // Ветеринария, 2003. №7 - с.13-14.

67. Грищенко Л.И., Зимин Н.Л. Подготовка ветеринарных специалистов по борьбе с болезнями рыб и других водных животных // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-С.24-25.

68. Грищенко Л.И., Рудиков Н.И. Проблемы патологии и иммунитета при инфекционных болезнях рыб// В сб.: Итоги науки и техники. Серия ихтиология. Инфекционные болезни рыб. М.:ВИНИТИ, 1985. - т.1. -с.190-211.

69. Грищенко Л.И., Смирнова В.В. Оздоровительные мероприятия при неспецифическом аэромонозе карпов// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-С.54-55.

70. Гусев А.В. Методика сбора и обработки материалов по моногениям, паразитирующим у рыб/ А.В. Гусев. -Л.: наука, 1983. 48 с.

71. Гусев А.В. Некоторые особенности биологии и морфологии моно-геней в теплых водах// В кн. «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». -Душанбе. Дониш. - 1986. - С. 114-120

72. Дарченкова Н.Н. Использование карт районирования и структуры нозоареала в повышении эффективности борьбы с биогельминтозами // Материалы доклада научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями.» М.: 2001. - 74-76 с.

73. Денисов А.И., Афанасьев В.И. Биологические основы борьбы с постодиплостомозом прудовых рыб // Ветеринария, №7, 1974. 63-65 с.

74. Диарова Г.С. Заболевания рыб в прудовых хозяйствах Казахстана // В кн.: «Проблемы паразитологии». Киев.: 1969, Ч. 2. - 225-226 с.

75. Догель В.А. Курс общей паразитологии. Л-д: 1947. - 372 с.

76. Догель В.А. Общая паразитология. Л-д: 1962. - 464 с.

77. Догель В.А. Паразитарные заболевания рыб.Л-д: 1931. 151 с.

78. Догель В.А. Паразитофауна и окружающая среда. Некоторые вопросы экологии пресноводных рыб // В кн.: «Основные проблемы паразитологии рыб». JI-д: 1958. - 9-54 с.

79. Догель В.А. Проблемы исследования паразитологии рыб (методика и проблематика ихтиопаразитологических исследований) // Тр. Ленинградского общества естествоиспытателей. 1933.-т.-62.-№3. - с.247-268

80. Донец З.С., Шульман С.С. О методах исследования Мухо-sporidia (Protozoa, Cnidosporidia) // Паразитология. 1973. - т.7. - вып.-З -с.191-193

81. Елисеева В.Г. и др. Основы- гистологии и гистологической техники. -М.: 1967.-268 с.

82. Емтыль М.Х. Рыбы Краснодарского края и р.Адыгея// Краснодар, Кубанский госуниверситет, 1997. 157 с.

83. Житнева Т.С. Влияние теплых вод, сбрасываемых Костромской ГРЭС на ихтиофауну Горьковского водохранилища// Отчет Ярославль, п. Борок - институт биологии и внутренних вод РАН.: 1992. - 16 с.

84. Жохов А.Е., Пугачева М.Н. Паразиты вселенцы бассейна Волги: история проникновения, перспективы распространения, возможности эпи-зоогий // Паразиитология. - 2001. - 35, №3. - 201-212 с.

85. Заика В.Е., Хейсин Е.М. Кокцидиоз карпов в Валдайском рыбхозе

86. Изв. ГосНИИОРХ.-1959.-т.49,- 217-221 с.

87. Змерзлая Е.И. Ergasilus sieboldi Nordmann 1832, его развитие, биология и эпизоотическое значение // Известия Гос НИИОРХа. -1972.-t.80.-с.132-177.

88. Ибрагимов А.Ю. Полярные нити спор миксоспоридий// Цитология .-2001.-43, №8. 742-746 с.

89. Иванова Н.Т. Методика некоторых гематологических исследований рыб // В кн.: Типовые методики исследования продуктивности видов рыб в пределах их ареалов.-Вильнюс.: 1974.- с.83-90

90. Иванова Н.Т. Паразитические инфузории (Urcelariidae Peri-tricha) прудовых рыб. //Acta Protozoologica.-1970.-vol.8. -p.210-216.

91. Иванова Н.Т., Васильков Г.В. Изучение гематологических показателей крови и клинические наблюдения при болезнях карпов// Тезисы докладов к годичной конференции ВИГИС.- М.: 1989.- с.121.

92. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб,- М.: 1983.-184 с.

93. Ивасик В.М. Болезни и паразиты рыб и меры борьбы с ними в прудовых хозяйствах западных областей УССР // Автореферат канд. дис. ВНИИОРПХ,- 1955,- 18 с.

94. Ивасик В.М. Карпенко И.М., Кулаковская О.П. О паразитофауне са-зано-карповых гибридов и их исходных форм // Гидробиологический журнал, 1968, №6. с.62-63

95. Иешко Е.П. Популяционная биология гельминтозов рыб. JI-д: наука, 1988,- 118 с.

96. Изюмова Н.А., Жарикова Т.И., Степанова М.А. Гельминты леща, шуки и судака в водоеме охладителе Костромской ГРЭС Горьковского водохранилища// В кн. «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». -Душанбе. -Дониш,- 1986. -С. 136-139.

97. Изюмова Н.А. О специфичности некоторых представителей рода Dactylogyrus // Паразитология. 1970. -т.4. - №5. - с.466-471.

98. Исков М.П. Сфероспороз прудовых рыб// В кн.: «Совершенствование мер борьбы с инвазионными болезнями рыб при интенсивном рыборазведении»,- М.: 1983,- с.51 -53.

99. Исков М.П. Фауна Украины. Справочник: книдоспоридии, микроспоридии. Киев.: Наукова Думка, 1989, т.37,212 с.

100. Каменев В.П. Паразитофауна Кубанского судака Lucioperca lucioperca L. в связи с его миграцией // Ученые записки Краснодарского пединститута.-Краснодар.: 1953.-в. П.-с.21-33.

101. Каменев В.П. Характеристика санитарного состояния водоемов Ахтарского и Бейсугского рыбхозов // Ученые записки Краснодарского пединститута.-Краснодар.: 1956.-вып. 17.-с. 104-107.

102. Каменев В.П., Сахнина З.М. Паразитофауна рыбца (Vimba Vimba) и шемаи в связи с их миграцией // Ученые записки Краснодарского пединститута.- Краснодар.: 1953.-вып.11,- с.3-15

103. Канаев А.И. Ветеринарная санитария в рыбоводстве// М.: Агро-промиздат, 1985. 280 с.

104. Кириченко Л.М. Паразиты и болезни рыб в прудовых хозяйствах Волгоградской области// Автореферат диссертации кандидата биологических наук, Киев, 1976, 21 с.

105. Козлов В.И. Влияние солености воды на зараженность рыб посто-диплостомозом //Гидробиологический журнал.-1972.-t.8.-N 3,-112-113с.

106. Кудрявцев А.А., Кудрявцева J1.A., Привольнев Т.Н. Гематология рыб и животных. М.: 1979.-320 с.

107. Кудряшова Ю.В., Наумова A.M. Влияние гемогрегарины на организм карпа//Ветеринария,-М., 1978.-N4.- с. 76-78.

108. Кулаковская О.П. Коваль В.П. Паразитофауна рыб бассейна Дуная//Киев.: 1973.-211 с.

109. Кулаковская О.П. К биологии и распространению гвоздичников Kliawia sinensis Hsii, 1935 // В кн.: «Проблемы паразитологии»,- Киев.: 1963, с. 200-205.

110. Кулаковская О.П., Стрижак О.И. Дермоцистидиоз карпа //В кн.: тезисы докладов 9-й конференции УРНОП,- Киев, 1980.- т.2.-с.194-195

111. Куровская Л.Я., Стрилько Г.А. Изменения процессов пищеварения у карповых рыб при ботриоцефалезе // Материалы X конференции Украинского общества паразитологов. Киев.: Наукова Думка, 1986. - ч.1 - с.332

112. Ланько З.И. Изучение диплостомоза в рыбхозах западных областей Украины.// Автореферат диссертация кандидата биологических наук, Львов, 1975,16 с.

113. Лелякова В.Я., Сверба В.А., Остапчук А.А. Дермоцистидиоз карпов// ЭИ. сер. 8. Рыбохоз. Использование внутренних водоемов,- 1980,-вып. 4., с.12-14.

114. Линдберг Г.Ц., Гердт А.С. Словарь названий пресноводных рыб СССР на языках народов СССР и европейских стран,- Л-д, 1972.-368 с.

115. Лом И., Дыкова И. Паразитические простейшие карпа Cyprinus carpio в Чехословакии // В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве».-Душанбе, 1988.- с. 43-50

116. Лысенко А.А. Рекомендации по профилактике миксоболеза пестрых толстолобиков в рыбоводных хозяйствах// Труды Всероссийского института гельмитологии им. К.И. Скрябина. М., 2004 - С. 448-454

117. Лысенко А.А. Ассоциативные болезни прудовых рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края// Сборник трудов международной конференции и 3-го съезда паразитологического общества при РАН. Санкт-Петербург - 2003, 4.2, С. 5-8.

118. Лысенко А.А. Ассоциативные заболевания прудовых рыб при интенсивном рыборазведении//Ветеринария, 2003 №12. - С.32-34.

119. Лысенко А.А. Ассоциативные заболевания рыбы при разведении в прудовых хозяйствах Краснодарского края// Труды КубГАУ «Новые методы профилактики и лечения болезней животных». Краснодар, 2004, №406 (434), С. 57-61.

120. Лысенко А.А. Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике миксоболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края. Краснодар, 1994 - 17с.

121. Лысенко А.А. Миксоболез пестрых толстолобиков// Ветеринария, 2004 №1. - С.17-20

122. Лысенко А.А. Общие методы диагностики отравлений рыб// Методические указания для студентов факультета ветеринарной медицины -КубГАУ,- Краснодар, 2001,16с.

123. Лысенко А.А.Федорова И.И. Паразитофауна прудовых рыб рыбоводного хозяйства на теплых водах ТЭЦ// Труды КубГАУ. Краснодар, 2001 -С. 42.

124. Лысенко А.А. Цикл развития Myxobolus pavlovskii и М. haemophilus паразитов толстолобиков// Всероссийская научно-практическая конференция «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов» М., 2003. - С. 76-77

125. Лысенко А.А. Эффективность различных способов лечения ихти-офтириоза// Труды КубГАУ. -Краснодар, 2004, вып. 5, С. 79-82

126. Ляйман Э.М. Влияние температуры воды на размножение моногенетического сосальщика Dactylogyrus vastator // Тр. Мосрыбвтуза,- 1951, вып.4.-с.190-196.

127. Ляйман Э.М. Болезни рыб (Практическое руководство для вет. врачей). М. Сельхозиздат. - 1963 . - 370 с.

128. Ляйман Э.М. Курс болезней рыб. М.: Высшая школа, 1966. - 331с.

129. Ляйман Э.М. Практическое руководство по болезням рыб. М.: 1951 6.-150 с.

130. Маргаритов Н., Нгуен Ван Тхан. Паразиты молоди растительноядных рыб в Болгарии// В кн.: Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве. Душанбе.: 1988,- 66-75 с.

131. Мариц Н.М., Брума И.Х. Паразитарные болезни растительноядных рыб в водоемах Молдавии // Комплексное использование водоемов Молдавии.-Кишинев.: 1981,- 94-102 с.

132. Маркевич А. П. Методика и техника паразитологического обследования рыб,- Киев.: 1950.-24 с.

133. Маркевич А.П. Паразитофауна пресноводных рыб УССР. Киев.: 1951.-375 с.

134. Мельянцев В.Г. Рыбы// Петрозаводск. 1974. 119 с.

135. Меркулов Г.А. Курс патологической техники. Л-д: - 1969. - 423с.

136. Микитюк П.В. Справочник по болезням прудовых рыб. -Киев.: -1984.-247 с.

137. Микряков В.Р., Попов А.В. Влияние карбофоса на некоторые показатели неспецифического гуморального иммунитета карпа// Информ. бюлл. «Итоги научно-практических работ в ихтиопатологии» М., 1997 - С.74-76

138. Микряков В.Р., Половков Д.В. Экспериментальные исследования некоторых гербицидов на гуморальные факторы иммунитета карпа// Информ. бюлл. «Итоги научно-практических работ в ихтиопатологии» М., 1997 - С.78-79.

139. Микряков Д.В. Роль кортикостероидных гормонов в регуляции иммунореактивности рыб// Тез. доклада Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и др. гидробионтов». М., 2003.-С.83-86.

140. Микряков Д.В., Микряков В.Р. Влияние некоторых кортикостероидных гормонов на антителообразовательную функцию карпа (Cyprinus caprio) // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-С.87-89.

141. Мирошниченко А.И. О состоянии гиродактилюсов и дактилогиру-сов в фауне. // X конференция паразитологов,- Киев.: Наукова Думка, 1986 4.2. -с. 30

142. Митенев В.К. К истории формирования пресноводной фауны паразитов рыб Европейского Севера России // Сборник научных трудов Полярного общества «Болезни морских и пресноводных рыб Северного бассейна». -Мурманск.: 1998а.-с.34-49

143. Митенев В.К. Паразитофауна щуки Esox lucius L. водоемов Кольского Севера // Сборник научных трудов Полярного общества «Болезни морских и пресноводных рыб Северного бассейна». Мурманск.: 1998 б. - с.88-96

144. Митенев В.К. Паразиты карповых рыб Cyprinidae Кольского Севера: фауна, экология зоогеография. Мурманск.: Издательство ПИНРО, 2000 -84 с.

145. Мольнар К. Экспериментальные исследования роли миксоспоридий Sphaerospora renicola в этилогии ВПП карпа// В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве».- Душанбе, 1988.-с.50-56.

146. Мусселиус В.А. К биологии Dactylogyrus aristhichthys (Monogenoidea, Dactylogyridae)//Паразитология.- 1968.-т.2.-в.3,- 227-231 с.

147. Мусселиус В.А. Паразиты и болезни растительноядных рыб дальневосточного комплекса в прудовых хозяйствах СССР// Автореф. дисс. докт. вет. наук- JI-д, 1970.-30 с.

148. Мусселиус В.А. Паразиты и болезни растительноядных рыб дальневосточного комплекса в прудовых хозяйствах СССР// Труды ВНИИПРХ.-1973.-Т.22.- с. 4-129.

149. Мусселиус В.А. Лабораторный практикум по болезням рыб.-М.: Легкая и пищевая промышленность,- 1983. 129с.

150. Мусселиус В.А. Паразитарные заболевания белых амуров, белых и пестрых толстолобиков в прудовых хозяйствах РСФСР// В кн.: Болезни рыб и меры борьбы сними,- Алма-Ата.: 1966.-с.99-105.

151. Мусселиус В.А. Паразиты и болезни растительноядных рыб и меры борьбы с ними. М.: 1967.-82 с.

152. Мусселиус В.А. Паразиты растительноядных рыб дальневосточного комплекса при выращивании в прудовых хозяйствах Европейской части СССР// Паразитология, М., 1969.-т.3.-в.3,- с.236-243.

153. Мусселиус В.А., Пташук С.В. О развитии Dactylogyrus nobilis Long et Yu, 1958 паразита пестрых толстолобиков Aristichthys nobilis // В кн.: «Пара-зитологический сборник». - Л-д: 1969,- 192-196 с.

154. Наумова A.M. К эпизоотологии миксоболеза толстолобиков на Украине // Итоги науки и техники ВИНИТИ. 1975. - №4. - с.77-118.

155. Наумова А.Ю. Эпизоотологический мониторинг в рыбоводном хозяйстве, применяющим рыбосевоборот// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-С.89-90.

156. Низова Г.А. Паразитические простейшие рыб в донских прудовых хозяйствах// В кн.: «Комплексное использование биологических ресурсов Каспийского и Азовского морей». Астрахань, 1983. - с.61-62

157. Низова Г.А., Шестаковская Е.В. Некоторые данные по биологии Dermocystidium erschowi //В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве»,- Душанбе, 1988. с.110-112.

158. Никольский Г.В. О биологической специфике фаунистических комплексов и значение их анализа для зоогеографии // Очерки по общим вопросам ихтиологии. М. JI-д: Издательство АН СССР, 1953. - с.65-76

159. Никольский Г.В. Частная ихтиология. -М.: 1971. -471 с.

160. Никольский Г.В. Экология рыб. -М: 1963. 367 с.

161. Новак М.Д., Новак А.И. Модель паразитарной системы «Toxoplasma gondii животные, люди». // В сб.: «Теория и практика борьба с паразитарными болезнями». -М.: 2003. с.291-293

162. Новак М.Д., Новак А.И. Паразитоценозы водных экосистем. Кострома., 2003,139 с.

163. Новак М.Д., Новак А.И., Феоктистов С.К. Модель паразитарной системы «Lignla intestinalis карповые рыбы»// «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». - М.: 2003. - с.288-290.

164. Новак М.Д., Петухов А.Н., Новак А.И. Микстинвазии леща на Костромском участке Горьковского водохранилища // Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьба с паразитарными болезнями». -М.: 2001.-с.179-181.

165. Окопный Н.С., Тромбицкий М.Д. О ферментный активности ме-тацеркарий рода Diplostomum (Trematoda, Diplostomidae) // Паразитология. Л-д: Наука, 1984. -т.8.(3). -с.228-232

166. Определитель паразитов пресноводных рыб СССР.-М.-Л.: 1962.776 с.

167. Определитель паразитов позвоночных Черного и Азовского морей//-Киев.: Наукова Думка, 1975.-551 с.

168. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны.-Л-д: Наука, 1984.-т. 1.-488 с.

169. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. -JI-д: 1985.-т.2.-с.426,т.З-с.583.

170. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. -Л-д: Наука, 1985 -т.2,-425 с.

171. Османов С.О. К изучению моногенетических и дигенетических сосальщиков рыб Узбекистана // Вести. Каракалпак, фил. АН УзССР.-1965,-Т.4.- с.21-32.

172. Османов С.О. Паразиты и болезни прудовых рыб Узбекистана // Издательство Наука Узбек ССР.: 1965,115 с.

173. Османов С.О. Паразиты рыб Узбекистана. Ташкент.: 1971.-532 с.

174. Панасенко В.В. Эпизоотология, патогенез при ихтифтириозе прудовых рыб и меры борьбы в условиях промышленного рыбоводства // Автореф. дис. канд. биол. наук.-ВИЭВ.-М.: 1985.-22 с.

175. Панасенко В.В. К вопросу биологии ихтиофтириуса // В кн.: IX конф. Украинского паразитологического общества. Киев.: 1980.- 136 с.

176. Панасенко В.В., Корочанская С.П. Некоторые вопросы патогенеза при ихтифтириозе // В кн.: «Профилактика и меры борьбы с болезнями рыб при интенсивных методах выращивания»,- Краснодар, 1978,- с.84-85.

177. Петрушевский Т.К., Шульман С.С. Паразитарные заболевания рыб в промысловых водоемах СССР// В кн.: «Основные проблемы паразитологии рыб». М.-Л-д, 1958. - 301-321 с.

178. Поддубная А.В, Изменчивость и специфичность лерней прудовых рыб // Тр. ВНИИПРХ.-1973.-т.22.-с. 159-173

179. Поддубная А.В. К зоогеографии ракообразных рода Lernaea Linnaeus, 1746 // Тр. ВНИИПРХ. 1978. -т.27. - c.l 11-124

180. Подлипаев С.А. Полисахариды в спорах слизистых споровиков Myxobolidae// Паразитология.-1974.-т.8. -№6. 536-542 с.

181. Привезенцев Ю.А. Интенсивное прудовое рыбоводство// М.: «Аг-ропромиздат», 1991, 3 с.

182. Привезенцев Ю.А. Использование теплых вод для разведения рыбы//М.: Агропромиздат, 1985,176 с.

183. Пронин Н.М., Пронина С.В. Сфероспороз почек окуня// Паразитология,-1985.-т. 19,-вып.З 238-241 с.

184. Пронин Н.М. Распределение Dermocystidium регсае в озерах Забайкалья и некоторые вопросы эпизоотологии и этиологии дермоцистидиоза молоди окуня// В кн.: «Болезни и паразиты рыб Ледовитоморской провинции в пределах СССР».- Свердловск.: 1976,- с. 104-117

185. Пронина С.В., Пронин Н.М. Взаимоотношения в системах «Гельминты-рыбы». М.: Наука, 1988. - 287 с.

186. Пугачев О.Н. Гельминты пресноводных рыб Северо-Востока Азии// Тр. Зоол. института АН СССР. Л.: 1983. - т. 121, - с.90-113.

187. Пугачев О.Н. Паразитарные сообщества и нерест рыб// Паразитология. 2002. -36, №1. - с.3-10

188. Ройтман В.А. Системология паразитизма новая область парази-тологических исследований// Матер. Всеросс. научн. конф. «Взаимоотношения паразита и хозяина» - М., 1998 - с. 52

189. Ройтман В.А., Молоканова И.А., Казаков Б.Е., Беэр С.А., Перевер-тин К.А. К методологии изучения взаимодействующих паразитарных систем // Труды института паразитологии РАН. 2002. - с.43

190. Рокицкий П.Ф. Биологическая статистика. Минск.: Высшая школа, 1973.-320 с.

191. Романцова О.В., Сапожников Г.И. Болезни рыб Тверской области // Материалы документов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями (зоонозы)». В.З. - М.: 2002. - с.256-259

192. Роскин Г.И., Левинсон Л.Б. Микроскопическая техника.-М.-1957,467 с.

193. Сапожников Г.И., Игнатьева А.Д. Гематологические показатели растительноядных рыб при паразитарных заболеваниях// Труды НИИ проект-но-технологического института жидких удобрений,- 1985.-N46.- с.56-58

194. Сапожников Г.И., Козаченко Н.Г. Изучение лейкоцитарной формулы у толстолобиков при миксоболезе // Бюллетень ВИЭВ.-1975.-вып.20,-с.37-40.

195. Сапожников Г.И. Профилактика диплостомозов растительноядных рыб // Растительноядные рыбы в промысловом рыбоводстве/ Тезисы докладов 9 Всесоюзного совещания. Ташкент, 1980. - с. 192-193.

196. Сапожников Г.И. Биологические методы борьбы с гельминтозами рыб// Тезисы докладов Всероссийского симпозиума «Роль рос. гельминтол. школы в развитии паразитологии». М.: 1997. - с. 45.

197. Сапожников Г.И., Лысенко А.А. Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с постодиплостомозом пресноводных рыб// Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. М., 1999,4.2, С. 48-53.

198. Сапожников Г.И., Лысенко А.А. Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с хлоромиксозом карповых рыб// Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб.-М., 1999, 4.2, С. 36-41.

199. Сапожников Г.И., Лысенко А.А. Инструкция по борьбе с миксо-болезом толстолобиков в прудовых рыбоводных хозяйствах// Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. М., 1998, Ч. 1, С. 206-212.

200. Сапожников Г.И. Карпы в профилактике сангвиниколеза // Тез. доклада Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и др. гидробионтов». М., 2003.-c.110-112

201. Сапожников Г.И. О некоторых возбудителях трематодозов, паразитирующих у рыб, млекопитающих и птиц // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-С.100-103

202. Сапожников Г.И. Параценогонимоз рыб// Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». -М.: 2002. В.З.- с. 46-47

203. Сапожников Г.И. Постодиплостомоз пресноводных рыб// Ветеринария.-2001.-№8,- с. 27-32

204. Сапожников Г.И. Рекомендации по профилактике кишечных цес-тодозов прудовых рыб// Труды ВИГИС. М., 2004 - С. 437-445

205. Сапожников Г.И. Роль моллюсков в эпизоотологии трематодозов прудовых рыб// Тезисы докладов симпозиума гидропаразитологов при 4 съезде Всесоюзного гидробиологического общества.-Киев.: 1981,- с.35-36

206. Сапожников Г.И., Маштаков А.В., Козаченко Н.Г. Система мероприятий по борьбе со смешанными болезнями // Ветеринария. 1994. №9. - с. 17-20.

207. Сахнина З.М. К изучению ихтиопаразитофауны рыбхозов Краснодарского края// В кн.: Материалы 3-й зоологической конференции пединститута РСФСР.- Волгоград, 1967, с.232-233.

208. Сахнина З.М. Паризитофауна промысловых рыб водоемов Коре-новского рыбколхоза "15 лет Октября"// Сб. статей по зоологии Краснодарского пед. института.-Краснодар, 1967.-вьш.66. с. 102-110.

209. Сахнина З.М. Паразиты рыб реки Кубань//В кн.: «Работы по па-разитофауне Юго-Запада СССР».-1983.-с. 120-121.

210. Селиверстов В.В., Мамонтов Ю.П. Современное состояние и перспективы развития аквакультуры в России// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000 -с.8-10

211. Семененков Е.П., Петров Ю.Ф. Возрастная динамика диплостомо-за карпов// Тезисы докладов научно-практической конференции «Актуальные проблемы науки в сельскохозяйственном производстве». Иваново.: 1997. -193 с.

212. Семененков Е.П. Паразитофауна к меры борьбы с основными гель-минтозами рыб в рыбоводных хозяйствах центрального района Нечерноземья Российской Федерации// Автореф. дисс. канд. вет. наук. Иваново, 1998. - 26 с.

213. Семененков Е.П. Эпизоотологические особенности гельминтозов карпов и меры борьбы с ними в прудовых хозяйствах Ивановской области// Сборник научных трудов «Паразитарные и ассоциированные болезни животных и их профилактика». Иваново: 1997. - с.98-101.

214. Семененков Е.П., Петров Ю.Ф. Кавиоз карпов в прудовых хозяйствах Ивановской области// Тезисы докладов научно-практической конференции «Актуальные проблемы науки в сельскохозяйственном производстве». -Иваново.: 1997. 165 с.

215. Сергеева Е.Г., Беэр С.А. Факторы паразито-хозяинной специфичности // Тр. Института паразитологов РАН 2000. - 42 с.

216. Смирнов A.M., Скира В.Н. Актуальные задачи ветеринарной науки в рыбоводстве России // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000.-е. 13-15.

217. Смирнов A.M., Скира В.Н. Задачи ветеринарной науки в рыбоводстве России // Тез. доклада Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и др. гидробио-нтов». М., 2003,- с. 123-124.

218. Стрелков Ю.А. Влияние особенностей современного рыбоводства на эпизоотическое состояние рыбоводных хозяйств// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.119-120.

219. Стрелков Ю.А. Концепция охраны здоровья рыб в современной аквакультуре // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000 6.-С.15-16

220. Сулейманян B.C., Панасенко В.В., Денисов А.И. Сборник нормативных документов по профилактике и борьбе с инфекционными и инвазионными болезнями прудовых рыб.- Краснодар.: 1983.-40 с.

221. Тихомирова В.А., Рудометова Н.К. Новый вид нематоды Skijabillanus schigini sp.n. (C'amallanata; Skrjabillanidae) из белого амура // Пара-зитология.-1975.-т.9.-вып.6.- с. 547-549

222. Тромбицкий И.Д. Картина крови белых и пестрых и большеротого буффало при зараженности метацеркариями рода Diplostomum (Trematoda, Dip-lostomidae)//Паразитология. Л.: 1987. - т. 21. Вып.1 -с.43-49

223. Уразбаев А. Инфузории урцеолярииды рыб в прудах Каракалпакии // Вестник Каракалп. фил. АН Узбекской ССР.-Нукус.-1971.- вып.2(44).-№1.- с. 47-51

224. Уразбаев А., Алланиязова Т. Биология и цикл развития Bothriocephalus gowkongensis Yen. 1955 (Cestoda: Pseudophillidea) в Амударье // В кн.: «Болезни рыб и меры борьбы с ними» -Алма-Ата.: 1977,- с. 147-150.

225. Успенская А.В. К биологии и распространению Myxosoma cerebralis (Hofer. 1903; Plehn. 1905) возбудителя вертежа форели // Докл. АН CCCP.-1955-T.105.-N 5.-е. 11 32-1135.

226. Успенская А.В. Цитология миксоспоридий. — JT.: Наука 1984. 112с.

227. Успенская А. В. Экология и распространение возбудителя вертежа форелей Myxosoma cerebralis (Hofer, 1903 ; Plehg, 1905) в прудовых хозяйствах Советского Союза // Изв. ВНИОРХ. 1957 . - т. 42 . - с.43 - 52

228. Успенская А.В. Биологические особенности инвазионной стадии Myxosoma cerebralis (Myxosporidia)//Паразитология. 19786. -т. 12. -№ 1 .с. 1520.

229. Успенская А.В. Методические указания по борьбе с вертежом ло-сосевых.-Л-д, 1959,- 19 с.

230. Хайбулаев К.Х. О распределении некоторых новых болезней рыб во внутренних водоемах Дагестана// В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном хозяйстве». Душанбе. -1988.-С.94-97

231. Хайбулаев К.Х. О роли пиявок в жизненном цикле кровепаразитов рыб //Паразитология. 1970,- т.4 -№1,- с. 13-17

232. Хайбулаев К.Х., Атаев A.M., Алигаджиев А.Д., Газимагомедов А.А. Диплостомоз толстолобиков в прудных хозяйствах Дагестана// Проблемы паразитологии. Киев, 1975, ч. 2 с. 236-238.

233. Харри Б.И. Опыты по заражению Carassius auratus спорами Myxobolus carassii (Myxozoa)//Цитология. 1992.-t.34.-N4.-c. 158-159

234. Чепурная А.Г. Миксоболез толстолобиков и роль гидробионтов в элиминации и распределении возбудителей заболеваний // В кн.: «Пути повышения эффективности пресной аквакультуры». М.-1991, с. 70-71.

235. Чепурная А.Г. Роль безпозвоночных в элиминации спор Myxobolus pavlovskii (Achmerov. 1954) (Myxosporea, Myxobolidae) // Сб. трудов ВНИИПРХ,-1991 б.-N 63.-е. 58-62.

236. Чугалинская JI.O. Изыскание новых препаратов для профилактики и лечения аэромоноза рыб// Информ. бюлл. «Итоги научно-практических работ в ихтиопатологии» М., 1997 - С. 120-121

237. Шаова Н.Д. Влияние паводков на паразитофауну рыб р. Кубань// Паразитология. 1969.-т.3-в.5.-с.399-406.

238. Шаова Н.Д. Паразитофауна рыб бассейна р. Кубань II В кн. Всесоюзное совещание по болезням и паразитам рыб и водных беспозвоночных. -J1-д, 1968.-С.130-131.

239. Шигин А.А. Гельминты водных животных М., 1982

240. Шульман С.С. Миксоспоридии фауны СССР.-М.-Л-д.: «Наука», 1966.-с. 507.

241. Шульман С.С., Добровольский А.А. Паразитизм и смежные с ним явления//Паразитологический сборник. Л-д: «Наука», 1977.-Т.27.-С. 230-249

242. Щербина А.К. Суховерхов Ф.М. Болезни рыб и основы рыбоводства. М.-«Колос». - 1984. - с. 190

243. Юнчис О.Н. Некоторые особенности биологии миксоспоридий // В кн.: Тезисы докладов 6 Всесоюзного совещания по болезням и паразитам рыб. -М.-1974.- с.306-308

244. Юнчис О.Н. Некоторые особенности эпизоотологии миксоспори-диозов // В кн.: «Биологические основы рыбоводства: паразиты и болезни рыб». -М.: Наука, 1984.-е. 127-129.

245. Юнчис О.Н. Факторы, определяющие заражение рыб миксоспори-диями и возникновение миксоспоридиозов //В кн.: Тезисы докладов 7 Всесоюзного совещания по паразитам и болезням рыб. Л-д,- 1979.-С.121-122.

246. Яковчук Т.А. Заболевания растительноядных рыб в рыбхозах Краснодарского края // В кн.: 7-я Всесоюзная конференция по природной очаговости болезней и общим вопросам паразитологии животных. -Алма-Ата. -1969 6.-С.86-87

247. Яковчук Т.А. О биологии Myxobolus pavlovskii (Myxosporea, Myxobolidae)// Паразитология. 1981.15.-№5,- с.473-475

248. Яковчук Т.А. О биологии Myxobolus pavlovskii (Myxosporea, Myxobolidae)// В кн.: Тезисы докладов 7 Всесоюзного совещания по паразитологии и болезням рыб. JI-д, 1979. - с. 124-125

249. Яковчук Т.А. Паразитофауна прудовых рыб Краснодарского края // Сборник научно-технической информации.- Краснодар.-1969в.-вып. 1.-е.36-39.

250. Яковчук Т.А., Нестерова Р.А. Паразиты и болезни карпа в садковом хозяйстве Краснодарской ТЭЦ// В кн. «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». Душанбе. - Дониш. - 1986. - С. 139-143.

251. Яковчук Т.А. Паразиты, инвазионные болезни рыб и меры борьбы с ними в прудовых хозяйствах Краснодарского края// Афтореферат канд. диссертации. -Л-д.-1974.-с.21.

252. Яременко Н.А., Мачнев А.Н. Эпизоотическая обстановка по заразным болезням рыб в Российской Федерации // В сб.: Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре. -М., 2000. с. 10-13.

253. Allen J. et al. Mortality among Clinook Salmon Associates with the Fungus Dermocystidium // Y.Fish Res.-1968.-25.-p.2467-2475.

254. Athanassopoulou F., Sommerville С The significance of Myxosporean infections in roach, Rutilus rutilus L., in different habitats // Y.Fish Diseases.-1993.-16.-N 1.-C.39

255. Audogdu A., Orturk M., Oguz M. Investigations on metazoan parasites of common carp in Dalyan Lagoon // Acta vet. -2001.-N5-6. p.351-358

256. Bond F.F. Resistance of Myxosporidian spores to conditions outside of the host//Y.Parasitol.-1938.-vol.24.-N 5.-p.470-471.

257. Cervinka Y., Vitovec Y., Lom Y., Hoska Y., Kubu F. Dermocystidium a gill disease of the carp due to Dermocystidium cyprini nov. sp. //Y.Fish Biol.-1974.-6.-p.689-699.

258. Chacko A., Hoffmann J. et al. Cudoa thyrsilles detected in the musill cules of famed atlantic salmon from Chile//10 int. conf. desease of fish and shellfish. Dublin. - 2001.-p.52.

259. Csaba Y. et al. Studies into the possible protozoan aetiology of swim-bladder inflammation in the carp fry // Y.Fish Diseases.-1984.-vol.7.-p.39-56.

260. Csaba Y. An unidentifiable extracellular sporozoan parasite from the blood of the carp // Parasitol. 1 lung.-1976.-v.9.-p.21-24.

261. Diamant A. Stydies of the transmission of Myxidium leei a myxospo-rian gut parasite of gilthead siabrean // abstr. int. simp, biochem. and mol. Approaches seabream. Bamidgeb. - 1998. - 50. -N4. P.212

262. Dykova Y., Lom Y. Hystopathological changes in fish gills infected with Myxosporidian parasites of the genus Henneguya // Y.Fish Biol.-1978.-vol.12.-p. 197-202.

263. El-Matbouli M., Hoffmann R.W. Prevention of experimentally induced whirling disease in rainbow trout oncorhynchus mykiss by Fumagillin// Dis. aquat. Org.-1991.-vol. 10-p 109-113,

264. El-Matbouli M. Hoffmann R.W. Experimental transmission of two Myxobolus spp. developing bisporogeny via tubificid worms // Parasitol. Res.-1989.-75.-p.461-464.

265. El-Matbouli, Т. H. Fischer and R. W. Hoffmann. 1992. Transmission of Sphaerosphora carassii Achmeroff. I960 to goldfish Carassius intrants via anaquatic oligochaeta. Bulletin on the European Association of Fish Parasitologist, 1989, s 12: 54-56.

266. Grodnik. G. and W. Korting. 1992. First evidence that Hoferellus cyprini (Doflein. 1898) is transmitted by Nats sp. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists 12:17-20.

267. Halliday M.M. Studies on Myxosoma cerebralis in Denmark Yreland and Scotland. IV. A preliminary immunofluorescent investigation of the spores of M.cerebralis//Nord. veterinanned.-1974.-bd.26.-s. 165-179.

268. Halliday M.M. The biology of Myxosoma cerebralis the causative organism of whirling disease of salmonids// Y. Fish Biol.-1976.-vol.9.-p.339-357.

269. Hamilton A.Y., Canning E.U. Studies on the proposed role of Tubifex tubifex (Muller) as an intenntdiate host in the life cycle of Myxosoma cerebralis Hofer, 190// Y. Fish Dis. 1987.-10.-p.l45-151,

270. Hedrick R.P. et al. Oral administration of Fumagillin DCH protects Chinook salmon Oncorinhynchus tshawytscha from experimentally induced prolif-erativ; kidney disease// Dis. aquat. Org.-1988.-vol.4.-p. 165-168.

271. Hines R., Spira D. Ychthyophthirius multifiliis in the mirrop carp (Cyprinus carpio L.) // Leykocyte response/ Y. Fish Biol.-1973.-5.-N 4.-p.527-531.

272. Hoffman G.L. Desinfection of contaminated water by ultraviolet irradiation with emphasis on whirling disease (Myxosoma cerebralis) and it's effect on fish // Trans. Amer. Fish Soc. 1974. - vol. 103. - p. 541 -550.

273. Hoffman G.L., Dunbar C.E., Bradford A. Whirling disease of trouts caused by Myxosoma cerebralis in the United States. Spec. sci. Fish. 1962. - p. 1-13.

274. Hoffmann G.L., Grodnick Y.Y., Control of whirling disease (Myxosoma cerebralis) effects of draying and disinfection with hydrated lime or chlorine//Y. Fish Biol.-1977.-vol. 10.-N2.-p. 175-179.

275. Hoffmann G.I., Putz R. Effect of freezing and aging on the spores of Myxosoma cerebralis the cause agent of salmonid whirling disease // Progr. Fish-Cult.-1971.-vol.33.-N 2.-p.95-98.

276. Hoffmann G.L. Putz R. Lost susceptibility and the effect of aging, freezing, heat and chemicals on spores of Myxosoma cerebralis // Progr. Fish-Cult.-1969.-vol.31 .-N1. -p.35-37.

277. Hoffmann G.L., Desinfection of contaminated water by ultraviolet irradiation with emphasis on whirling disease (Myxosoma cerebralis) and its effect on fish//Trans. Amer. Fish Soc.-1974.-vol. 103.-p.541-550.

278. Hristovski N. Parasitofauna of the common carp (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) from the Prespa Lake, Makedonia / Hristovski N., Stojanovski S., Hris• tovski. // Животновъд науку. 2001. - 38. - №5 - С. 53-56

279. Janiszewska. J, 1955. Actinomyxidia: Morphology, ecology, history t investigations, systematics, development. Acta Parasitologica Polonica 2: 405-453.

280. Kent M. L. , Margolis L. , and Corliss J . О . The demise of class of protists : Taxonomic and nomenclatural revisions proposed for the Proust phylum Myxozoa Grasse. Canadian journal of zoology. - 1994. - p. 932 - 937.

281. Korting W. Protozoan parasites associated with swim-bladder inflammation (SBI) in young carp// Bull. European Association Fish Pathol.-1982,-voL2.-N L-p.25-28.

282. Kovaes-Gayer E. et al. Studies on the protozoan etilogy of swim bladder inflammation in common carp fry // Bull. European Association Fish Pathol.-1982.vol.2.-Nl .-p.22-24.

283. Lom Y. Notes on the extrusion and some other features of Myxo-sporidian spores// Acta protozool.-1964.-t.2.-N 32.-s.322-327.

284. Lom Y. Current status of Myxo- and Microsporidia. In: Progress in protozoology: Abstr. IV Intern, congr. protozool. Clermont - Ferrand, 1973, p. 254.

285. Lom Y. et al. Sphaerospora molnari sp. nov. (Myxozoa. Myxosporea) an agent of gill, skin and blood sphaerosporosis of common carp in Europe // Para-sitology.-1983.-86.-N 3.-p.529-525.

286. Lom Y., Dykova V. Fine structure of Sph. renicola Dykova ET Lom, 1982 Myxosporean from carp kidney and comments on the origin of pansporoblasts //Protistologica.-1982.-vol. 18.-p.489-502.

287. Lom Y., Dykova Y. Biological and morphological features of two Myxozoans of the genera Sphaerospora and Mitrospora, infecting carps // Yn.:Progress in protozoology / Abstr. VI Intern, congr.protozool.-Warszawa.-1981.-p.222.

288. Lom Y., Dykova Y. Pavlaskova M. "Unidentified" mobile protozoans from the blood of carp and some unsolved problems of Myxosporean life cycles // Y. Protozool.-1983.-N 30.-p.447-508.

289. Lom. Y. and I. Dykova. 1992. Protozoan parasites of fishes. Elsevier Science Publishers B.V. Amsterdam, The Netherlands. 315 p.

290. Markiw. M.E. and K. Wolf. 1983. Myxosoma cercbralis (Myxozoa: Myxosporea) ethiologic agent of salmonid whirling disease requires tubificid worm (Annelida: Oligochaeia) in its life cycle. Journal of Protozoology 30: 561564.

291. Mitchell L.G. Myxosporidia. In: Parasitic Protozoa / Ed. J.P. Kreier. Ohio State. - 1977. - vol. 4. - p. 115-155.

292. Moffit Ch., Haukenes A. et al. Dstributions of Myxobolus cerebralis in three-ranging fish populations in Idaho: association with landscape variables // 4th int. symp. on aquatic animal health.-New 0rlean.-2002.-p.154

293. Mokhayer B. Dermocystisium and Lernaea infections in Cyprinids from Iranian fish farms with a note on treatment of Lernaeasis // In: Parasites and parasitic diseases offish. Abstracts of papers.-Ceske Budejovice.-1983.-p.73.

294. Molnar K. "Sphaerosporosis" a new kidney disease of the common carp // In: Aline W.(ed) Fish diseases.-Berlin-Heidelberg-New-York.-1980b.-p.157-164.

295. Molnar K. Gill sphaerosporosis in the common carp and grass carp // Acta vet. Acad, scince hungar.- 1979a.-vol.27.-p.99-113.

296. Molnar K. Protozoan diseases of the fry of herbivorous fishes // Acta vet. Hung.-1971.-XXI.-p.l-14.

297. Molnar К. Renal spluierosporosis in the common carp Cyprinus carpio L.//Y. Fish Diseases.-1980a.-vol.3.-N l.-p.l 1-19.

298. Molnar K., Sovenyi Y. Dermocysiidium anguillae infection in elvers cultures in Hungary//Aquacultura 14ungarica.-1984.-vol.IV.-p.71-78.

299. Molnar K. Kovacs-Gayer E. The pathogenicity and development within the host fish of Myxobolus cyprini Doflein, 1898 // Parasitology.-1985.-90,-p.549-555.

300. Molnar К . Myxobolus pavlovskii (Achmerov, 1954) (Myxosporidia) Infection in the silver carp and bighead // Acta vet. hung . 1979 b . - XXVII ( 3 ). -p. 207-216.

301. Molnar K., Baska F., Szekely Y. Fumagillin. an efficacious drug against renal sphaerosporosis of the common carp Cyprinus carpio // Dis. aquat. Org.-1987.-vol.2.-p. 187-190.

302. Molnar K., Szekely C., Dian A. Morphological and molecular biological studies on intramuscular Myxobolys spp. of cyprinid fish // Journal Fish de-seases 2002.-25 N11 .-p.643-652

303. Nouth W.M. Hoffmann R. et al. Cellular defence systems of susceptible and non-susceptible tuboficied oligohaetes pro- and post infections with Myxobolus cerebralis // 10th int. conf. desease of fish and shellfish. Dublin. -2001.-p.156

304. Obiekezie A., Schmahl G. Henneguya laterocapsulata Laudsberg, 1987 (Myxosporea, Myxozoa) in cultered hybrid African catfisch: ultrastructure of the parasite-host interface//Eur. Y. Protistol.-1993.-29.-N l.-p.38-41.

305. Palm H., Klimpel S., Bucher C. Cheehest of metazoan fish parasites of German coastal waters // Ber. inst. merest. 1999.-N307.-p. 1-148

306. Panzuella O., Redondo M. et al. Investigation of the life cycle of en-theromyxym spp (myxozoa). A two-host cycle? //4th int. symp. on aquatic animal health.-New 0rlean.-2002.-p.164

307. Paperna Y. Some observations on the biology and ecology of Dactylogyrus vastator in Ysrael// Bull. Fish Cult. Ysrael.-Bamidgeh.-1963.-vol.15.-N 1.-p.8-28.

308. Рарегпа Y. Adaptation of Dactylogyrus extensus Mueller and Van Cleave, 1932 to ecological conditions of artificial ponds in Israel // Y. Parasitol.-1964.-vol.50.-N 1.-p.90-93.

309. Рарегпа Y. Host reaction to infestation of carp with Dactylogyrus vastator Nybelin, 1924 (Monogenea) // Bull. Fish Cult. Ysrael.-Bamidgeh.-1964a.-v.16.-N4.-p. 129-141.

310. Paule G.B. Pre-spawning adult salmon mortality associated with a fungus of the genus Dermocystidium// Your, of the Fisheries Research Board of Canada.-1967.-24.-p.843-844.

311. Poulin R. The divercity of parasites / R. Poulin, S.Morand // Quart. Rev. Biol. 2000. - 75, №3 - C. 277-293.

312. Reichenbach-Klinke H.H. Der Entwicklungskreis der Dermocystidium sowie Beschreibung einen neur Haplosporidenart Dermocystidium percae n.sp. // Verhandlungen der Deutschen Zoologen.-1950.-2(60).-s. 192-193.

313. Reichenbacn-Klinke H.H, Dermocystidien bei tropischen Zierfischen Eine Revision der bisher bekannten arten der Gattung Dermocystidium // Tierarz-thiche praxis.-1982.-10.-N 3.-S.41 1-413.

314. Schaperclaus W. Fishkrancheiten . Berlin . - 1954. - p . 708 ,

315. Scheer D. Vorlaufige Mitteilung uber Dermocystidium percae n.sp. eine neue Fish-Haplosporidie//Zoologischer Anzeiger.-1952.-149(7-8).-s. 192-193.

316. Schott A., Hoffmann R. et al. Afficasy of TNP-470 on the developthment of the experimentally induced whirling desease in rainbow trout // 10 int. conf. desease of fish and shellfish. Dublin. - 2001.-p. 164

317. Schummelfeder N. Fluorochromierung des lebenden, uberlebenden und toten Protoplasmes mit dem ha si sen en Farbstoff acridin orange, 1950.

318. Scolari С Sullnnpiego dello stovarsolo nella profilassi dei "capos-torno" о "lentosporiasi" delle trote d'allevamento // Clin. vet.-Milano.-1954.-77.-N 2.-p.50-53.

319. Segal R. Autolion R. et al. The use of polyclonal antibodies for detection of myxidium leei infections in fish// J. Aquacult. 1998.-50.-N4.-p.161-166

320. Senaud Y., Schmahl Y., Mehlhorn H. Effects of toltrazuril on developmental stages of Henneguya sp. (Myxosporea, Myxozoa) from gill filaments of the tapir fish Ynathonemus petersi // Bull. Soc. fr. parasitol.-1990.-8.-N2.-p.1088.

321. Sitja-Bobadilla A. Franco-Sierra A. Alvarez-Pellitero P. Sphaero-spora (Myxosporea: Bivalvalida) infection in cultured gilt head sea bream, Sparus aurata L: a preliminary report // Y.Fish Diseases.-1992.-15.-N 4.-p.339-343.

322. Spangenberg R. Eine Kiemankrankheit bein Aoil, verursacht durch Dermocystidium anguillae n.sp. // Zeitschnfi fur du Binnenfischerei.-1975.-22,-p.363-367.

323. Szakolczai Y. Molnar K. Veterinar-medizinische untersuchungen an den in Ungarn eingeburgerten phlanzenfressenden Fischharten // Z. Fisch.-1966.-14.-S.139-152.

324. Szekely C. Studies on the possible role of aquatic oligochaetes in the life cycle of Myxosporeans // in: III international symposium / Problems offish parasitology.-Petrozavodsk.-l 991.-p.X 1-82.

325. Szekely G., Molnar K., Racz 0. Complete developmental cycle of Myxobolus pseudodispar // // Journal Fish deseases 2001 .-24 N8.-p.461-468

326. Tack E. Bekampfung der Drehkrankheit mil kalkstikstoff // Fischwirt.-1951.-bd.l-K 5 -s. 123-130

327. Thelohan P. Recherches sur les Myxosporidis // Bull. sci. France et Belgique. -1985.-t. 26.-p. 100-394.

328. Uspenskaja A.V. 1995. Alternation of actinosporean and myxosporean phases in the life cycle of Zschokkella nova (Myxozoa). Jour nal of Eukaryotic Microbiology 42: 665-668.

329. Wooten R., McVicar A.H. Dermocystidium from cultured eels Anguilla anguilla L. in Scotland // Y. Fish Diseases.-1982.-5.-p.215-222.

330. Wu-Pao-Hua et al. Twist diseases of Hypophthalmichthys mo-litrix in Hangchow region of Chekiang province//Acta Zool. Sinica.-1975.-21.-p.190

331. Yaronski S.T. C'yiochemical evidence for RNA synthesis inhibition by Fumagillin// Y.antibiotics.-1972.-25(6).-p.327-331.

332. Ybarra O.M. Gall A.E. Hedrick R.P. Experimental infection of rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum), with cryopreserved developmental and sporogomc stades of the Myxosporean Ceratomyxa shasta (Noble) IIY. Fish Diseases.-1992.-15.-N 4.-p.353-355.

333. Yokoyama H. et al. Development of Myxidium spp. (myxozoa) in the intestine of tiger puffer experimentally fed with infected gut tissue //4th int. symp. on aquatic animal health.-New 0rlean.-2002.-p.195

Информация о работе

Лысенко, Александр Анатолиевич
доктора ветеринарных наук
Краснодар, 2006
ВАК 03.00.19

Диссертация

Формирование паразитарной системы у рыб в прудовых хозяйствах и естественных водоемах и меры борьбы с паразитозами в условиях Краснодарского края - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы