Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Паразитарные болезни растительноядных и акклиматизируемых рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края

ВАК РФ 03.00.19, Паразитология

Автореферат диссертации по теме "Паразитарные болезни растительноядных и акклиматизируемых рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края"

□ОЗ163334

На правах рукописи

ФЕНДРИКОВ Петр Вадимович

ПАРАЗИТАРНЫЕ БОЛЕЗНИ РАСТИТЕЛЬНОЯДНЫХ И АККЛИМАТИЗИРУЕМЫХ РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ (паразитофауна, эпизоотология, патогенез и профилактика)

Специальность 03 00 19 - паразитология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

2 4 Я Н В 2008

003163334

На правах рукописи

ФЕНДРИКОВ Петр Вадимович

ПАРАЗИТАРНЫЕ БОЛЕЗНИ РАСТИТЕЛЬНОЯДНЫХ И АККЛИМАТИЗИРУЕМЫХ РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ (паразитофауна, эпизоотология, патогенез и

профилактика)

Специальность 03 00 19 - паразитология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Работа выполнена на кафедре эпизоотологии и вирусологии ФГОУ ВПО «Кубанский государственный аграрный университет», в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края

Научный руководитель

доктор ветеринарных наук, профессор Лысенко Александр Анатолиевич

Официальные оппоненты

- доктор ветеринарных наук Косяев Николай Иванович (ФГОУ ВПО «Чувашская государственная сельскохозяйственная академия»)

- кандидат ветеринарных наук, доцент Сорокина Ирина Борисовна (ФГОУ ВПО «Ивановская государственная сельскохозяйственная академия имени академика ДК Беляева»)

Ведущая организация ГНУ «Самарская научно-исследовательская ветеринарная станция» Россельхозакадемии

Защита диссертации состоится « ^ » ¿уьДлЪй--^ 2008 года в У?— часов на заседании диссертационного совета Д220 029 Оупри ФГОУ ВПО «Ивановская государственная сельскохозяйственная академия им академика Д К Беляева» С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Ивановской ГСХА ( 153012, г Иваново, уп Советская, 45) Автореферат опубликован на официальном сайте ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА им академика ДК Беляева» http //www ivgsha tpi ru % января 2008г

Автореферат разослан «¿£» декабря 2007г

Ученый секретарь диссертационного совета,

доцент

С В Егоров

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность диссертации. Рыбоводство - одна из рентабельных отраслей сельскохозяйственного производства, базирующаяся на выращивании в естественных и искусственных водоемах различной товарной рыбы карпа, белого и пестрого толстолобиков, белого амура и других видов рыб Развитию прудового рыбоводства в России способствует громадные водные площади и благоприятный климат Современные формы ведения прудового рыбоводства предусматривают уплотненные посадки рыб в пруды, что обуславливает тесный контакт выращиваемых рыб, а отсюда и благоприятные условия для распространения различных болезней (Г В Васильков, 1983) Наибольший удельный вес продолжают занимать инвазионные заболевания, распространенность которых составляет 66% от общего числа неблагополучных хозяйств из них ботриоцефалез - 42%, филометроидоз - 11%, воспаление плавательного пузыря - 11% (Яременко НА, Селиверстов ВВ, 2003, Павлович ГМ 2006, А А Лысенко, 2006) В рыбоводных хозяйствах зоны Северного Кавказа часто отмечаются вспышки паразитарных и инфекционных заболеваний, которые являются существенным фактором, снижающим продуктивность прудов рыбоводных хозяйств Часто паразитарные заболевания у рыб, как и у других животных организмов, протекают в ассоциации, что осложняет течение заболеваний (Ю Ф Петров, 1997,2001,, М Д Новак и др , 2001, Е П Семененков, Н И Вовк и др, 2001, А А Лысенко и др , 2003, 2004, 2006) В литературе недостаточно сведений о путях заражения рыб простейшими, вызываемых ими патологических изменениях, а также мерах по их оздоровлению и профилактике

Цель и задачи исследования Основная цель исследования - разработка комплекса профилактических мероприятий в условиях интенсивного ведения прудового рыбоводства при различных болезнях рыб, вызванных одним или несколькими возбудителями, на основании знаний их цикла развития В соответствии с этим в задачи исследований входило

- изучить динамику изменения видового состава паразитов растительноядных рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края,

- изучить видовой состав паразитов некоторых видов рыб естественных водоемов бассейна реки Кубань,

- уточнить некоторые особенности биологического цикла миксоспоридий Myxobolus pavlovskn - паразитов толстолобиков,

- изучить сезонную и возрастную динамику основных паразитарных заболеваний растительноядных рыб, наносящих ущерб рыбоводным хозяйствам Краснодарского края,

- разработать комплекс профилактических и оздоровительных мероприятий при миксоболезе белых и пестрых толстолобиков, вызываемых М pavlovskn, ихтиофтириозе прудовых рыб,

- разработать новые методы профилактики смешанных заболеваний прудовых рыб,

- изучить паразитофауну веслоноса - перспективного объекта рыборазведения в прудовых хозяйствах Краснодарского края

Научная новизна. Впервые в условиях Краснодарского края проведен анализ паразитофауны веслоноса (Ро1уос1оп зраШЫа) - акклиматизируемого объекта прудового рыбоводства, завезенного из США Паразитофауна веслоноса в прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена тремя видами паразитов ¡сЬ^уорИиги« тЫиШпБ, Оа^у^угиэ \vastator и Сугос1ас1у1из сурпт Основным источником и резервуаром заражения веслоноса данными видами паразитов является «сорная» рыба - красноперка, лещ, уклея Впервые в прудовых хозяйствах Краснодарского края выявлено, что наиболее опасный паразит для веслоноса - круглоресничная инфузория I тик^ИнБ, вызывающая 1ибель до 10% молоди рыб Предложен новый способ лечения ихтиофтириоза молоди веслоноса при температуре воды в водоемах выше 23°С

Доказан прямой путь развития простейших МухоЬо1иБ рау1оузки Продолжительность развития спор в водоемах Краснодарского края — 140 дней

Практическая значимость. Разработана и внедрена в ветеринарную практику комплексная система мероприятий по профилактике и борьбе с паразитарными болезнями растительноядных и акклиматизируемых рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края, которая позволяет снизить заболеваемость и гибель рыбы на 50%, что дает возможность каждому хозяйству получить дополнтельно до 50 тысяч рублей прибыли за рыбоводный сезон Результаты исследований вошли в следующие нормативные документы

1. «Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике миксоболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Крснодарского края» (Утверждены Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004)

2 «Рекомендации по профилактике миксоболеза пестрых толстолобиков в рыбоводных хозяйствах» (утверждены Россельхозакадемией, 2004)

3 Методические указания «Биология и патология рыб и пчел», часть 1 (Утверждены методической комиссией Кубанского государственного аграрного университета, 2004 г)

4 Методические указания «Биология и патология рыб и пчел», часть 2 (Утверждены методической комиссией Кубанского государственного аграрного университета, 2005 г)

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и одобрены на ежегодных «Конференциях молодых ученых Кубанского ГАУ по итогам НИР» (2004, 2005, 2006, 2007 гг), Всероссийской научно-практической конференции «Современные проблемы устойчивого развития агропромышленного комплекса России» (Ростов-на-Дону, 2005), Международной научно-практической конференции «Исследования молодых ученых в решении проблем животноводства» (Витебск, 2006), «Научно-практической конференции студентов, магистрантов и аспирантов (Витебск, 2008 г)»

Основные положения, выносимые на защиту

- состав и структура паразитофауны растительноядных рыб (белый и пестрый толстолобик, белый амур) в прудовых хозяйствах Краснодарского края,

- паразитофауна основных «сорных» рыб естественных водоемов Краснодарского края,

- состав и структура паразитофауны веслоноса (Polyodon spatula) -акклиматизируемого объекта прудовых хозяйств Краснодарского края,

- патогенез, клиника, диагностика, меры борьбы и профилактика миксоболеза толстолобиков,

- меры борьбы и профилактики паразитарных заболеваний растительноядных и акклиматизируемых рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края

Публикации. По материалам диссертации опубликованы 6 научных работ, в том числе 2 работы в изданиях, регламентированных ВАК РФ для кандидатских и докторских диссертаций Результаты исследований автора защищены патентом (получено положительное решение о выдаче патента)

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 169 страницах компьютерного текста, состоит из введения, обзора литературы, 4 глав собственных исследований, выводов, практических предложении Работа иллюстрирована 16 таблицами и 6 рисунками Список литературы включает 275 источников, в том числе 58 - иностранных авторов

2 1 МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Основным объектом исследования являлась прудовая рыба рыбоводных хозяйств - пестрый и белый толстолобик, белый амур, а так же акклиматизируемая рыба - веслонос Вскрывали «сорную» рыбу, имеющую постоянный контакт с прудовой с целью выявления ее роли как резервуара различных видов паразитов

Вскрытие рыб осуществляли по методике полного ихтиопаразитологического вскрытия, разработанной В А Догелем (1933) А П Маркевичем (1950), ЭМЛяйманом (1951), впоследствии усовершенствованной И Е Быховской-Павловской (1969, 1985, 1989) За период с 2004 по 2007 годы исследовано методом полного паразитологического вскрытия исследовано 1915 экз рыб 9 вмдов, обитающих в зоне бассейна реки Кубань

Паразитофауну рыб и распространение миксоболеза изучали в 11 рыбоводных хозяйствах, Краснодарского края - рыбхозах Шапариевский, имени Суворова, Синюхинский, Приморско-Ахтарский, РАФ «За Родину», «15 лет октября», рыборазводным заводе «Горяче-Ключевской», рыбхозах «Ангелинский», «8 марта», «Октябрьский», «Курчанский», Краснодарском специализированном рыборазводном заводе растительноядных рыб

Сбор и обработка паразитов осуществлялась по общепринятым методикам Видовое определение паразитов проводилось с помощью «Определителей паразитов пресноводных рыб» под редакцией ОН Бауэр (1962, 1984, 1985, 1987) в лабораториях кафедры паразитологии факультета ветеринарной медицины Кубанского госагроуниверситета, лаборатории РАФ «За Родину» Тимашевского района Центральной лаборатории ихтиопатологической службы (ЦЛИС), межобластной ветбаклаборатории «Краснодарская-1» Сезонную динамику миксоболеза пестрых и белых толстолобиков изучали в рыбопитомнике рыбоводной агрофирмы "За Родину", Тимашевского района, вскрывая ежедекадно с июля по сентябрь и ежемесячно с октября по июнь по 10 экз мальков, сеголетков и годовиков

Для обнаружения и концентрации спор миксоспоридий в нескольких опытах использовали переваривание тканей рыбы в искусственном желудочном соке с последующим центрифугированием Переваривающий раствор составляли по прописи пепсина медицинского - 3,0 г, концентрированной соляной кислоты -0,75 мл, воды - 100,0 Измельченную ткань помещали в переваривающий раствор, в соотношении 1 20 в колбу Эленмеера и инкубировали при 37°С 3-4 часа Затем пробы центрифугировали 15 минут при 3000 об/мин Осадок исследовали под микроскопом на присутствие спор миксоспоридий Данный метод запатентован Лысенко А А Гаркави Б Л , Звержановский МИ в 2006 году

Нами в сравнительном аспекте изменены параметры переваривания тканей Так мы вместо экспозиции 3-4 часа и температуры 37°С, инкубировали споры 2025 минут при температуре 40°С Сравнивания эти два метода доказали, что диагностическая ценность не изменилась, а трудозатраты и время на исследования значительно сокращены Нами подана заявка на изобретение и получено положительное решение на данное изменение параметров переваривания тканей рыб для исследования на миксоспоридиозы

Гематологические показатели зараженных миксоспоридиями и здоровых рыб определяли по методикам Н А Головиной (1974, 1975, 1976, 1978, 1979), Н ТИвановой (1970, 1974, 1976), А А Кудрявцева и др (1979)

Количество гемоглобина в крови рыб определяли по Сали, скорость оседания эритроцитов (СОЭ) аппаратом Панченкова Количество лейкоцитов и эритроцитов подсчитывали в камере Горяева Мазки окрашивали раствором Май-Грюнвальда Для определения форменных элементов крови использовали "Аглае клеток крови рыб" Н Т Ивановой (1983)

Эпизоотологию миксоболеза толстолобиков изучали, вскрывая в различных хозяйствах по 15-25 экз рыб в различные сезоны года и подсчитывая экстенсивность инвазии и интенсивность инвазии инвазии спорами миксоспоридий

Жизнеспосодность спор Myxobolus pavlovskn определяли по методике Шумельфедера

Опыты по воспроизведению цикла развития Myxobolus pavlovskn проводили в аквариумах, заражая мальков толстолобиков, полученных заводским способом из аппаратов ВНИИПРХ различными способами Скармливали хранившиеся в течение 4 месяцев и свежевыделенные споры per os (А В Успенская, 1955, 1978, ОН Юнчис, 1979) Роль олигохет в жизненном цикле миксоспоридий изучали заражая малощетинковых червей спорами Myxobolus pavlovskn по методике Вольфа и Маркив (Wolf & Maikiw, 1984)

Бактериологическое исследование с целью изучения влияния бактерий и миксоспоридий на организм толстолобиков проводили по общепринятым методикам

Делали посевы из патматериала от больных рыб на МПА, МПБ с глюкозой Биохимические признаки микроорганизмов изучали методами Р Стамер (Stamer, 1966) и НС Егоровой и др (1976)

Штаммы микроорганизмов определяли по Берги (Bergi, 1974, 1977) Названия рыб даны по сводке Г Линдберга и А С Гердта (1972)

Коэффициент упитанности вычисляли по формулам Фультона и Кларк (Г В Никольский, 1971)

Гидрохимические показатели воды в прудах (температура, количество растворенного кислорода, окнсляемость, рН воды и тд) определялись в гидрохимических лабораториях хозяйств по общепринятым методикам

Базовыми хозяйствами, где проводились поизводственные испытания по оздоровлению прудовых рыб от аэромоноза, псевдомоноза, ассоциативных заболеваний (аэромоноз+сапролегниоз, псевдомоноз+миксоболез,

ботриоцефалез+триходиноз), ихтиофтириоза, миксоболеза, РАФ «За Родину», Краснодарском специализированном рыборазводном заводе растительноядных рыб, прудах КрасННИРХа, рыбзаводе «Горячеключевской», рыбопитомнике «Новоленинский

Нами проведено 10 серий опытов по изучению биологического цикла развития Myxobolus pavlovskn «in vitro», 15 производственных опытов по оздоровлению пестрых толстолобиков от миксоболеза и 10 опытов по оздоровлению веслоноса от ихтиофтириоза

2.2 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 2 2.1. Анализ эпизоотической ситуации по заболеваниям прудовых рыб в

Краснодарском крае

Согласно данным отчетов по болезням рыб за 2000-2005 годы, эпизоотическая ситуация в Краснодарском крае была напряженной 11 рыбоводных хозяйств стационарно неблагополучны по аэромонозу, псевдомонозу, ботриоцефалезу, филометроидозу, ихтиофтириозу Бактериологическими исследованиями рыб, прудовой воды и воды водоисточников данных хозяйств выделялись лишь непатогенные штаммы Ветеринарными лабораториями края (включая и краевую) проведено по болезням рыб 6256 экспертиз, патолого-анатомпческич исследований - 6256, микроскопических - 6256, бактериологических - 807, копрологических - 1188, при этом получено положительных результатов - 449 проб, в т ч гельминтозы-209, протозоонозы -67, арахноэнтомозы — 173 По состоянию на 2007 год в Краснодарском крае остаются неблагополучными по заболеваниям рыб 13 хозяйств, в т ч по аэромонозу карпов - 8,по псевдомонозу толстолобиков - 1,по филометроидозу карпов - 4 Все неблагополучные хозяйства находятся на контроле госвету правления

Серьезную проблему представляют ассоциативные заболевания рыб, так называемые микстинвазии, мониторинг по которым практически не проводится Изучение наиболее опасных ассоциаций не носит планомерного характера Имеются лишь отрывочные сведения по этой серьезной проблеме

В связи с вышеизложенным, можно сделать вывод о том, что статистические данные по заболеваниям прудовых рыб рыбоводных хозяйств Краснодарского края не в полной мере отражают реальную ситуацию по заболеваемости рыб в бассейне реки Кубань

2.2.2. Краткая рыбоводная характеристика рыбоводной агрофирмы (РАФ) «За Родину», Тимашевского района

На территории хозяйства находится рыбопитомный цех, благодаря которому имеется возможность инкубировать икру и получать посадочный материал непосредственно в хозяйстве В хозяйстве используются возможности естественной кормовой базы Для увеличения количества фито-и зоопланктона вносятся минеральные удобрения

Товарную рыбу реализуют по договорам преимущественно в Краснодарском крае Личинку карпа и растительноядных, а также подрощенную молодь (сеголеток) реализуют по всей России по договорам под контролем ветеринарной службы

Уровень рентабельности хозяйства в 2007г уменьшился более чем в 6 раз по сравнению с 2006 г, что связано с удорожанием электроэнергии и увеличением налогов за использование водных площадей и земельных угодий, а также повышением стоимости комбикормов для кормления карпа

В 2007 году снизился выход рыбы с единицы площади водоема Так, по сравнению с 2006 годом средний показатель выхода продукций составил от 60 до 66%

2.2 3. Биологические особенности растительноядных рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края

В прудовых хозяйствах Краснодарского края принято поликультурное выращивание карпа с растительноядными рыбами Дальневосточного комплекса Возможность одновременного выращивания этих видов рыб обусловлено различным спектром их питания Белый толстолобик во взрослом состоянии питается фитопланктоном, процеживая через плотно прилегающие жаберные лепестки растительные микроорганизмы, находящиеся в толще воды

Пестрый толстолобик питается в основном животными микроорганизмами, те зоопланктоном, только при неблагоприятных условиях переходя на питание фитопланктоном

Белый амур питается мягкой и жесткой водной растительностью Данный вид используется в прудовых хозяйствах Краснодарского края как биологический мелиоратор для борьбы с зарастанием водоемов

2 2.4 Акклиматизация веслоноса (Ро1уо11оп храИиИа) в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

Интенсификация прудового рыбоводства в Краснодарском крае и в бассейне реки Кубань достигнута благодаря оптимальной структуре поликультурного рыбоводства на основе культивирования карпа с растительноядными видами — обыкновенным и пестрым толстолобиками и белым амуром, удобрением прудов, кормлением рыбы, увеличения плотности посадки на 1 га площади прудов и механизации производственных процессов Один из путей интенсификации данной отрасли - акклиматизация и разведение новых видов рыбы

В 1974 г из Северной Америки в Краснодарский край был завезен

удивительный представитель семейства осетровых - веслонос Polyodon spathula (Walbaum, 1792) (из Г В Никольского, 1971) Акклиматизация веслоноса осуществлялась на Горячеключевском рыбопитомнике В настоящее время он встречается в естественных условиях в Краснодарском водохранилище и в нижнем течении р Кубань (M X Емтыль, 1997)

В США веслонос является своеобразным национальным символом, в России - один из интересных объектов акклиматизации Однако не исключено, что в силу особенностей своей биологии он может стать важнейшим объектом рыбного хозяйства наших внутренних водоемов И даже не потому, что обладает высокими гастрономическими качествами и имеет черную икру, а потому, что является единственным представителем осетровых, питающимся зоопланктоном (зоопланктофаг), который составляет основу кормовой базы и продуктивности многих наших внутренних водоемов

2.2.5. Паразитофауна белого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края

У белого толстолобика паразитируют простейшие организмы - 15 видов (60%), из них миксоспоридий обнаружено - 3 вида или 12%, 3 вида моногенетических сосальщиков (12%) , 2 вида личинок трематод (8%), 1 вид цестод (4%) и 4 вида паразитических ракообразных (16%) 22 из 25 описанных видов (88%) это паразиты с прямым циклом развития Более половины обнаруженных видов (60,9%) паразитируют на жабрах или жабрах и поверхности кожи Вид M ellipsoïdes обнаруживается во всех органах и тканях белого толстолобика Строгой анаюмической специфичностью отмечаются личинки трематод D spathaceum, паразитирующие в хрусталике глаз белых толстолобиков Они вызывают серьезные нарушения общего физиологического состояния своих хозяев при различных формах заболевания

В кишечнике белого толстолобика обнаруживали два вида простейших Eimeria cheni и Eimeria sinensis и цестоду Ligula intestinalis

Большинство видов описанных от белого толстолобика регистрируются в форме носительства с незначительной интенсивностью и экстенсивностью Увеличение числа паразитов отмечается в летнее время, тк большинство из них теплолюбивые виды

Белый толстолобик устойчив к большинству паразитарных заболеваний Миксоспоридии вида Myxobolus pavlovskn, наносящие серьезный ущерб пестрому толстолобику, содержащемуся в поликультуре, у белого толстолобика не вызывают значительных изменении на жабрах и практически не приводят к гибели Вид Myxobolus Haemophilus у белого толстолобика не регистрируется Видимо, это обусловлено характером питания или особенностями видового иммунитета

Другие виды, способные вызвать заболевание и гибель белых толстолобиков - инфузории Ichthyophthirius multifiliis, Tr nigra, моногенея Dactylogyrus hypophthalmichthys, личинки трематод Diplostomum spathaceum, Posthodiplostomum cuticola, цестода Ligula intestinalis В начале 21 века в прудовых хозяйствах Краснодарского края на белом толстолобике постоянно обнаруживается только 8 видов паразитов из 29 завезенных из Китая 5 или 62,5% это паразитические

простейшие, 2 вида (25%) - моногенетические сосальщики и один вид паразитических рачков (12,5%)

2.2.6. Возрастная динамика паразитарных заболеваний белого толстолобика на Краснодарском специализированном рыборазводном заводе растительноядных рыб (КСРЗРР)

На сеголетках чаще всего встречались простейшие и моногенеи, паразитирующие на жабрах Триходины и дактилогирусы регистрировались при каждом обследовании Максимальное развитие Trichodina acuta наблюдалось в августе, а Dactylogyrus hypophthalmichthys - в июле-августе К осени интенсивность инвазии заметно снизилась Это связано с тем, что триходины и дактилогирусы - теплолюбивые паразиты Максимальное их развитие происходит при 22-25°С

Cryptobia branchialis, Diplostomum spathaceum, Lernea ctenopharyngodoms встречались у сеголеток реже Максимальное развитие паразитов наблюдалось в августе-сентябре Когда температура стала падать, экстенсивность заражения уменьшилась на 5-7%

На двухлетках белого толстолобика паразитировали 2 вида простейших (Chylodonella piscicola и Cryptobia branchialis), 1 вид моногеней (Dactylogyrus hypophthalmichthys), 2 вида трематод (Diplostomum spathaceum, Posthodiplostomum cuticola), 1 вид ленточных червей (Ligula intestinalis) и 2 вида паразитических рачков (Lernea elegans и Sinergasilus lieni)

У двухлеток белого толстолобика чаще всего паразитировали моногенеи и сосальщики - Dactylogyrus hypophthalmichthys и Posthodiplostomum cuticola Максимальное развитие дактилогирусов так же, как и у сеголеток, наблюдалось летом (июль-август) Posthodiplostomum cuticola - возбудитель черно-пятнистого заболевания - обнаружен у двухлеток в подкожной клетчатке Паразит образовывал выпуклую округлую капсулу в виде темного пятна Экстенсивность инвазии постодиплостомоза имела максимальные значения в августе-сентябре (75%) В октябре ЭИ снизилась на 5%

Из простейших у двухлеток обнаружены Chylodonella piscicola, паразитирующая на поверхности тела, и Cryptobia branchialis, паразитирующие на жабрах Паразиты встречались на рыбе в единичных экземплярах Chylodonella piscicola - в октябре, а Cryptobia branchialis - в августе-сентябре Развитие хилодонеллы происходит особенно интенсивно при температуре 5-18°С, те в те периоды выращивания, когда рыба плохо питается

Lernea ctenopharyngodoms и Lernea elegans встречались у двухлеток чаще, чем у сеголеток (ЭИ Diplostomum spathaceum для сеголеток - 10 %, ЭИ для двухлеток - 12 %, ЭИ Lernea elegans для сеголеток - 10 %, для двухлеток - 14 %) Diplostomum spathaceum и Lernea elegans - теплолюбивые паразиты С повышением температуры ускоряется их развитие Оптимальные температуры развития - 25-28°С В Краснодарском крае Diplostomum spathaceum и Lernea elegans регистрируются в течение всего вегетационного сезона Максимальное их развитие наблюдалось в июле-августе Заражение сеголеток и двухлеток лернеозом связано с тем, что чешуйный покров у них развит значительно слабее, чем у старших

возрастных групп

Ligula intestinalis зарегистрирован у двухлеток, как и у сеголеток, в единичных экземплярах У двухлеток белого толстолобика паразитировал веслоногий рачок Sinergasiius lieni, не обнаруженный у сеголеток Место локализации паразита - жабры Оптимальные температуры развития - 25-30°С Наиболее высокая зараженность наблюдалась в августе в нагульных прудах

На трехлетках, как и на двухлетках, было обнаружено 8 видов паразитов 3 вида простейших (Chylodonella piscicola, Tnchodina acuta, Apiosoma piscicola), 1 вид моногеней (Dactylogyius hypophthalmichthys), 1 вид трематод (Posthodiplostomum cuticola), 1 вид цестод (Ligula intestinalis), 2 вида паразитических рачков (Sinergasiius lieni и Argulus foliaceus)

Максимальное развитие паразитов наблюдалось в июле-августе Толстолобики, зараженные лигулами, были заметно ослаблены и истощены Брюшко у них раздуто Заражение белого толстолобика лигулезом в таком возрасте свидетельствует о недостатке в пруду фитопланктона и поэтому вынужденном питании зоопланктоном

Поражение трехлеток паразитическим рачком Sinergasiius lieni наблюдалось несколько ниже, чем у двухлеток Максимальные значения экстенсивности инвазии зарегистрированы в августе - 15 %, в начале лета и осенью экстенсивность инвазии составляла 7 -8%

На четырехлетках паразитировали 6 видов паразитов 1 вид простейших (Apiosoma piscicola), 1 вид моногеней (Dactylogyrus hypophthalmichthys), 1 вид трематод (Posthodiplostomum cuticola), 1 вид ленточных червей (Ligula intestinalis) и 2 вида паразитических рачков (Argulus foliaceus и Sinergasiius lieni) По сравнению с другими возрастными группами на четырехлетках менее всего встречались простейшие Обнаружен только один вид простейших - Apiosoma piscicola, паразитирующая на жабрах рыб Степень заражения четырехлеток дактилогирозом и постодиплостомозом ниже, чем двухлеток и трехлеток ЭИ трехлеток Dactylogyrus hypophthalmichthys 80%, двух- и трехлеток - 90% ЭИ Posthodiplostomum cuticola четырехлеток 70%, а двух- и трехлеток - 75% Уменьшение зараженности рыб черно-пятнистым заболеванием связано, по-видимому, с образованием чешуйного покрова, препятствующего проникновению церкарий в рыбу

2 2 7 Паразитофауна пестрого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края

Всего от пестрого толстолобика описано 28 видов паразитов принадлежащих к различным систематическим группам Преобладают паразиты с прямым циклом развития - 24 из 28 видов (85,7%) развиваются без участия промежуточных хозяев В фауне паразитов пестрого толстолобика, как и белого, преобладают простейшие - 17 видов, или 60,7%, моногенетических сосальщиков 4 вида - 14,3%, цестод - 2 вида (7,1%), как и личинок трематод (7,1%) и 3 вида паразитических рачков, составляет 10,7% в структуре паразитофауне Из 29 видов паразитов-вселенцев, завезенных акклиматизированными рыбами из Китая, описанных В А Мусселиус (1966, 1973), в наших исследованиях на пестрых толстолобиках обнаружено 9

видов - это простейшие Cryptobia branchiahs, Eimerria sinensis, E cheni, Myxobolus pavlovski, M drjagini, Apiosoma cylindnformis, 2 вида моногенетических сосальщиков - Dactylogyrus nobilis и G ctenopharyngodontis и 1 вид паразитических ракообразных - Lernea ctenopharyngodontis Так же, как у белого толстолобика, наибольшее число паразитов-вселенцев, 6 из 9 (66,7%), принадлежат к простейшим 16 видов из числа обнаруженных паразитируют на жабрах, что составляет 57,1%, 2 вида - в кишечнике и 2 - в полости тела рыб, 6 видов преимущественно паразитируют на поверхности кожи, 1 вид Diplostomum spathaceum специфический паразит глаз и один вид простейших - Myxobolus Haemophilus обнаруживается как в крови, так и практически во всех органах и тканях толстолобиков Кстати, вид Myxobolus Haemophilus, впервые описанный от пестрых толстолобиков Б Л Гаркави и др (1986) в прудовых хозяйствах Краснодарского края является моногостальным видом

2.2 8 Паразитофауна белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского

края

Паразитофауна белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края согласно нашим исследованиям представлена 22 видами паразитов, принадлежащих к различным систематическим группам Структура видов значительно отличается от паразитофауны карпа и толстолобиков, что обусловлено характером питания, биологией развития, анатомо-физиологическими особенностями, а также плотностями посадки белого амура в прудах

Простейших из числа описанных - 10 видов или 45,5%, моногеней - 1 вид (4,5%) 4 вида цестод (18%), 2 вида паразитов вызываемые личинками трематод (9%), редкий вид нематоды - Garkawillanus amuri ,1 вид пиявок (4,5%) и 3 вида паразитических ракообразных (13,6%)

Процент паразитов развивающихся с участием промежуточных хозяев у белого амура значительно выше, чем у толстолобиков и составляет 31,8%

Простейшие обнаруживаются у белого амура в форме носительства с незначительной экстенсивностью и интенсивностью инвазии Из 22 видов паразитов, описанных нами от белого амура, только 4 вида заведенные с акклиматизируемыми рыбами из Китая Это простейшая Apiosoma cylindrifoimis, моногенея D ctenopharyngodontis, цестода Bothriocephalus opsanichthydis и паразитический рачок Lernea ctenopharyngodontis

Данные виды в течение 40 лет после завоза с акклиматизируемыми рыбами приспособились к паразитированию на белом амуре, несмотря на разреженные посадки данного вида растительных рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края Наиболее вероятными причинами хорошей адаптации этих паразитов на белом амуре является широкий круг хозяев, высокая плодовитость и эвритермность

2 2.9 Паразитофауна веслоноса (Polyodon spathula) — акклиматизируемого объекта прудовых хозяйств Краснодарского края.

В Краснодарском крае для разведения веслоноса выделялись отдельные водоемы Не допускалось поликультурное выращивание рыбы Водоемы перед

посадкой веслоноса дезинфицировались На водоподаче функционировали рыбосороуловители Строго соблюдали сроки карантина, проводилось ихтиопаразитологическое вскрьпие завозимых производителей

Все это повлияло, по нашим данным, на формирование фауны паразита веслоноса в прудовых хозяйствах Краснодарского края Так нами от веслоноса описано всего 3 вида паразитов Один относящихся в группе простейших -Ichthyophthirius multifíliis и два вида моногеней - Dactylogyrua vastator и Gyrodactylus cypnni Интенсивность заражения Dactylogyrua vastator и Gyrodactylus cyprini была незначительной - интенсивность инвазии - 1-2 экземпляров на жаберном аппарате сеголеток веслоноса, при экстенсивности до 15% Вероятной причиной заражения сеголеток веслоноса моногенемиями явился широкий круг хозяев данных паразитов, носительство их «сорной» рыбой

2.2 10. Паразитофауна некоторых видов "сорных" рыб в прудовых хозяйствах

Краснодарского края

От 5 видов "сорных" рыб нами выделено 24 вида паразитов, принадлежащих к различным систематическим группам Из них простейших 15 видов (62,5%), моногенетических сосальщиков - 2 вида (8,3%), цестод- 3 вида (12,5%), трематод - 2 вида (8,3%) и паразитических ракообразных - 2 вида, или 8,3% в общей структуре паразитофаны сорных рыб Большинство обнаруженных видов одновременно паразитируют и на растительноядных рыбах Из 30 видов паразитов, завезенных из Китая, согласно наших исследований, получили широкое распространение простейшие Myxobolus pavlovskii и цестоды- Bothriocephalus opsarnchthydis Красноперка, лещ и уклея являются резервуаром миксоспридиозной инвазии для растительноядных рыб

2.3.МИКС0СП0РИДИ03Ы РАСТИТЕЛЬНОЯДНЫХ РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ.

В рыбоводных хозяйствах Краснодарского края у карпа выявлены слизистые споровики Sphaerospora carassn и Myxobolus cyprini, известные как возбудители сфероспороза жабр и злокачественной миксоболезной анемии карпа Однако, в связи с небольшой интенсивностью и экстенсивностью инвазии, эти паразиты представляют только потенциальную опасность

2.3.1. Эпизоотологнческие особенности миксоболеза толстолобиков, вызываемого видом Myxobolus pavlovskii Нами споры Myxobolus pavlovskii обнаружены у белых и пестрых толстолобиков в 10 из II обследованных хозяйств с экстенсивностью от 6,7% до 90%, при интенсивности от 1-4 до 1200 цист на жаберном аппарате рыбы Таким образом, наши данные согласуются с работами К Мольнара (1971, 1979) В весеннее время у годовиков толстолобиков в зимовальных прудах экстенсивность поражения достигала 20% при интенсивности от 17 до 173 цист на жаберном аппарате В летнее время экстенсивность заражения толстолобиков спорами М pavlovskii резко нарастает и к концу июля достигает максимального значения 91,198,1%, при интенсивности от 115 до 1180 цист на жаберном аппарате рыбы В

осенний период процент поражения сеголетков несколько ниже, хотя держится на довольно высоком уровне - 75-77,7% , при интенсивности от 8 до 115 цист на жаберном аппарате

Наиболее чувствительны к заражению миксоболезом пестрые толстолобики, экстенсивность заражения у которых в 3,5-4 раза, а интенсивность в несколько десятков раз выше, чем у обыкновенных толстолобиков

Так, при совместном содержании пестрого и белого толстолобиков экстенсивность их заражения в июле-августе составляла 31,1-98,1% и 6-8% соответственно

2.3.2. Цикл развития Myxobolus pavlovskn

Перед нами была поставлена задача воспроизвести "in vitro" цикл развития миксоспоридий вида М pavlovskn

В аквариумы, объемом 40 л, помещали по 100 экземпляров личинок пестрых толстолобиков, взятых из аппаратов Вейса, инкубированных заводским способом в благополучном по миксоспоридиозам хозяйстве - головном предприятии "Кубаньрыбпром"

В аквариумы первой опытной группы рыб помещали очищенные споры Myxobolus pavlovskn хранившиеся в холодильнике в чашках Петри в течение 4-х месяцев споры получены методом переваривания, естественно зараженных пестрых толстолобиков разработанном Б Л Гаркави и др (1996) и модернизированном нами (П В Фендриков и др , 2007)

Вторую опытную группу рыб содержали в аквариумах с грунтом, где были олигохеты (преимущественно вид Tubifex tubifex, взятый из водоема, где не было рыб) непосредственно в грунт добавили свежевыделенные споры М pavlovskn

В третьем аквариуме подрощенным малькам задавали свежевыделенные споры М pavlovskn пероралыю при помощи резиновой трубки Четвертая группа рыб служила контролем

Рыбу кормили искусственными кормами В аквариумы заливали отстоянную водопроводную воду Аэрацию осуществляли при помощи микрокомпрессоров Температура воды во всех аквариумах во время опытов была в пределах 18-20 С В каждый аквариум, кроме контрольного, внесено по 10-12 тыс спор миксоспоридий

Проводили регулярные вскрытие по 5 мальков из каждого аквариума с интервалом 10 дней, начиная с десятого дня с момента постановки опыта Вскрывали также всех погибших во время опыта мальков

Опыты проведены в трех повторностях Во всех случаях получены аналогичные результаты

Заражение мальков пестрых толстолобиков спорами М pavlovskn, хранившимися в течение 4-х месяцев, отмечено на 30-е сутки с начала опыта Затем с интервалом в тридцать дней в данном аквариуме дважды обнаруживали единичные цисты М pavlovskn жабрах мальков толстолобиков

При скармливании спор М pavlovskn олигохетам заражение отмечено у мальков пестрых толстолобиков на 110-й день с начала опыта В контрольном аквариуме у рыб случаев обнаружения спор не установлено При заражении

мальков толстолобика свежими спорами М pavlovskn (третья группа) цист на жабрах не обнаружены

Таким образом, согласно полученным данным, пестрые толстолобики заражаются спорами М pavlovskn прямым путем При использовании "зрелых" спор, хранившихся в течение 4-х месяцев в холодильнике, заражение мальков отмечено на 30-е сутки

Олигохеты, вероятнее всего, выполняют роль механических переносчиков спор миксоспоридий

2 3.3. Ассоциативное заболевание толстолобиков, вызванное миксоболезом и псевдомонозом.

Нами в Тимашевском районе Краснодарского края в рыбопитомнике НовоЛенинский в течение ряда зимних сезонов регистрировалось заболевание сеголетков толстолобиков и карпа Причины заболевания и гибели рыб некоторое время оставались не выясненными

Первые случаи вспышки болезни выявлены во второй половине декабря в зимовальных прудах Заболевание и гибель молоди продолжалась в январе и феврале, при этом было поражено более 10% рыбы В течение зимних месяцев погибало около 900 тыс сеголетков толстолобиков и карпов

Больные рыбы беспорядочно плавали, у них наблюдали увеличение брюшка, у некоторых пучеглазие, точечные и полосчатые кровоизлияния на жаберных крышках, боках, в перепонках между лучами плавников Больные рыбы, помещенные в аквариум, гибли на 2-3 сутки

При вскрытии в брюшной полости сеголетков отмечали скопления кровянистого транссудата и сгустки крови Печень бледно-фиолетового цвета, желчный пузырь растянут желчью, почки дряблые, кишечник наполнен газом, слизистая оболочка кишечника воспалена Селезенка набухшая, кровенаполненная

При паразитологическом исследовании больных рыб отмечали единичные экземпляры триходин и дактилогирусов На жабрах обнаруживали от 12 до 28 цист Myxobolus pavlovskn у сеголетков толстолобиков При такой интенсивности паразиты не могли самостоятельно вызвать заболевание, но, несомненно, отягощали патологический процесс, тк в первую очередь гибли толстолобики, наиболее интенсивно зараженные миксоспоридиями

Для бактериологического исследования у больных пестрых и белых толстолобиков из экссудата брюшной полости, почек и печени были сделаны посевы на МПА и МПБ с глюкозой Изученные штаммы микроорганизмов отнесены по Берджи (1977) к Pseudomonas fluorescens биотип 2 по отсутствию потребности к дополнительным факторам роста, отсутствию роста при 40-41° С, наличию оксидазной и аргинин дегидролазной активности, и так же денитрифицирующей активности, гидролиза желатина, отсутствию гидролиза крахмала, роста на соответствующих источниках углерода - глюкозе, тригалозе, а-валине, ß-аланине, а - аргинине, а-арабинозе, сахарозе, пропионаге, бутираге, ацетате, сорбите, адените и этиловом спирте

2.3.4. Ассоциативные заболевания толстолобиков при интенсивном рыборазведении в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

У сеголетков и годовиков белого толстолобика отмечается ассоциативное поражение постодиплостомами - Posthodiplostomum cuticola (ЭИ-1-3%, ИИ-3-7 экз на рыбе) и миксососпоридиями Myxobolus pavlovskii (ЭИ-3-5%, ИИ-5-10 цист на жаберном аппарате) Иногда дополнительно регистрируется лернеоз (Lernea ctenopharyngodonis ЭИ-1-2% при ИИ-2-3 экз на рыбе)

Наибольшая пораженность жабр простейшими Myxobolus pavlovskii отмечается у сеголетков пестрых толстолобиков

У толстолобиков наряду с Myxobolus pavlovskii регистрировали дактилогирусов вида Dactylogyrus aristychthidis (ЭИ-30-40%, ИИ-5-7 экз на жаберной дуге), причем пик зараженности дактилогирозом совпал с максимальной зараженностью миксоспоридиями

В период максимальной зараженности в августе п толстолобики практически не росли (прибавка навески составила 0,1-0,2 г при норме 2-3 г) отмечалась гибель толстолобиков (летальность 3-5%)

Белые толстолобики устойчивы к большинству паразитов и в форме носительства (ЭИ - 1-3%), у них регистрируются личинки трематод -Posthodiplostomum cuticola и миксоспоридии Myxobolus pavlovskii

В большей степени подвержены паразитарным заболеваниям пестрые толстолобики В августе месяце экстенсивность заражения простейшими Myxobolus pavlovskii составила 100% при интенсивности более 1100 зрелых спор на жаберном аппарате

Заболевание осложнялось поражением жабр моногенеями Gyrodactylus ctenopharyngodonis, с экстенсивностью заражения 38%, при интенсивности инвазии 5-7 экземпляров на одной жаберной дуге

Был поставлен диагноз - ассоциативное течение миксоболеза толстолобиков, вызванного Myxobolus pavlovskii, с гиродактилезом (G ctenopharyngodonis)

В рыбоводных хозяйствах Краснодаркого края от пестрого толстолобика нами были выявлены следующие ассоциации паразитов, вызываемые видами Myxobolus pavlovskii, Dactylogyrus aristychthidis, Tnchodina acuta

Наиболее опасным для пестрого толстолобика является ассоциативное течение миксоболеза и дактилогироза Пик максимальной зараженности пестрых толстолобиков миксоболезом и дактилогирозом совпадает и обычно приходится на июль месяц

При миксоболезе и дактилогирозе отмечается летальность сеголетков пестрого толстолобика, достигающая 10%

В период максимальной зараженности прирост массы сеголетков пестрого толстолобика составил всего 0,1-0,2 г за декаду, при норме ежедекадного прироста массы 2-3 г

2 3.5. Гематологичекие показатели пестрых толстолобиков в норме и при миксоболезе.

Нами изучались изменения в картине крови сеголетков пестрых толстолобиков в период вспышки миксоболеза в РАФ «За Родину» Проводили гематологическое исследование, зараженных цистами Myxobolus pavlovskii

(интенсивность 100 и более цист на жаберной дуге), сеголетков пестрых толстолобиков Контролем служила рыба, интенсивность заражения которой не превышала 1-2 цисты на жаберной дуге

У зараженных сеголетков пестрых толстолобиков снижено содержание гемоглобина, незначительно увеличена скорость оседания эритроцитов (СОЭ) и увеличено число лейкоцитов в 1 мкл крови Значительных различий в лейкоцитарной формуле у здоровых и зараженных сеголетков не выявлено Отмечается эозинофилия у зараженных толстолобиков и снижение количества моноцитов (с 1,6% у здоровых до 0,8% у зараженных М pavIovsk.ii)

Таким образом, при изучении гематологических показателей сеголетков пестрых толстолобиков, зараженных М рау1оУ5кн с интенсивностью инвазии более 100 цист на жаберной дуге отмечали умеренную эозинофилию, снижение на 7 3% количества гемоглобина (с 88,2 г/л до 81,8 г/л у зараженных толстолобиков), увеличение числа лейкоцитов в 1 мкл крови

2.3 6. Ветеринарио - санитарная экспертиза толстолобиков при миксоспоридиозах

Г1о нашему мнению, пестрых и белых толстолобиков, пораженных спорами МухоЬо1ия pav!ovsk!l, при ИИ > 20 цист на жаберной пластинке необходимо подвергать следующим видам обработки

• Сеголетков направлять в корм животным после проварки в течение 10 мин с момента закипания,

• Годовиков можно использовать для приготовления консерв после предварительной декапитации Головы после проварки направляются на корм животным,

При незначительной интенсивности поражения жабр толстолобиков простейшими МухоЬо1из рау1оузкп (до 20 цист на жаберной пластинке), реализация рыбы в торговой сети разрешается без ограничений

2.3 7 Опыт ликвидации вспышки миксоболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края

В целях ликвидации вспышки миксоболеза и недопущения широкого распространения заболевания в мальковых прудах Горячеключеского рыборазводного завода был разработан комплекс лечебно-профилактических мероприятий, который включал следующие пункты На мальковые пруды рыборазводного завода наложены ограничения

По условиям ограничений запретили продажу сеголетков пестрого толстолобика Рыбоводам хозяйства необходимо было выполнить следующие мероприятия

1 Закрепить за каждым прудом индивидуальный инвентарь - орудия лова, лодки, весла, сачки и тд В случае невозможности выполнения данного пункта при переходе с одного пруда на другой проводить обработку инвентаря, одежды, обуви рыбаков 1%-ным раствором едкого нагрия

2 Отремонтировать, а где отсутствуют, поставить рыбосороуловители на водоподаче, для разрыва или уменьшения контакта с сорной рыбой являющейся

переносчиком паразитарных заболеваний

3 С учетом чувствительности спор МухоЬо1иБ рауЬузки и М ЬаеторМив, к различным химическим веществам (А А Лысенко и др 2004), вносить при выращивании сеголетков негашеную известь по воде из расчета 200 кг/га в течение 30 дней равными частями, под контролем рН воды

4 Получать личинку растительноядных рыб только заводским способом, не допускать близкородственного скрещивания

5 Осуществлять ежедекадный контроль за ростом и развитием рыбы, эпизоотическим состоянием водоемов, проводить ихтиопаразитологические вскрытия рыбы не реже одного раза в десять дней в период с марта по ноябрь месяц

6 Осуществлять оперативный гидрохимический контроль за всем водоемами, и выборочно периодическое химикотоксикологическое исследование прудов

7 Строго соблюдать 30-дневный карантин в случае закупки производителей из других, благополучных по инвазионным заболеваниям рыбоводных хозяйств, ориентируясь в основном на воспроизводство за счет собственных производителей

8 Продажу растительноядных рыб осуществлять на стадии личинки, полученной заводским способом

Комплекс мероприятий, разработанный нами для ликвидации вспышки миксоболеза и профилактики данного заболевания осуществляли работники рыбоводного завода

Благодаря выполнению аналогичного комплекса лечебо-профилактических мероприятий удалось полностью оздоровить Краснодарский специализированный рыборазводный завод растительноядных рыб от миксоболеза пестрых толстолобиков в течении одного года

2.4. ИХТИОФТИРИОЗ ПРУДОВЫХ РЫБ В РЫБОВОДНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ.

Наиболее остро с летальным исходом болезнь протекает у молоди Эпизоотии ихтиофтириоза наблюдаются во все сезоны года, но чаще весной и летом при температуре воды 16-26°С и высокой плотности посадки рыбы в прудах Основным источником инвазии в природе служат больные рыбы и парази гоносители

Перезимовывают ихтиофтириусы в организме рыбы и, возможно, часть инцистированных паразитов на дне водоемов

После гибели больной рыбы ихтиофтириусы независимо от стадии развития в течение 3-4 ч выходят в воду При этом мелкие трофонты погибают, не инвазируя новых хозяев, а крупные через 3-6 ч инцистируются и делятся

Из сорных рыб основными резервуарами возбудителя ихтиофтириоза в условиях Краснодарского края являются плотва, красноперка, окунь, обитающие в источниках водоснабжения (Л И Грищенко и др , 1999)

2.4 1 Опыты по изучению эффективности различных препаратов против инфузории Ichlhiophthinus multifilns

Опыты по изучению лечебной эффективности различных препаратов против ихтиофтириоза проводились на аквариумных рыбах меченосцах (Xiphophrus hellen) Возраст рыб 5 месяцев

Заражение меченосцев провели, посадив больную рыбу с клиническими признаками ихтиофтириоза в аквариумы Через 36-48 часов у рыб появилось беспокойство, на плавниках были заметны дермоидные бугорки, напоминающие маннообразный налет

Экстенсивность заражения составила 100%, а интенсивность 1-2 инфузории в поле зрения микроскопа (увеличение 7*8) После развития клинически\ признаков ихтиофтириоза в каждый из 7-ми аквариумов посадили по 10 зараженных рыб Один аквариум, использовался как контрольный Во всех аквариумах усилили фильтрацию и аэрацию воды В каждый аквариум, кроме контрольного, внасились следующие препараты - поваренная соль, метиленовая синь + поваренная соль, малахитовая зелень + поваренная соль, трипафлавин, риванол, препарат «Faunamor», применяемые для противопаразитарных обработок рыб

«Faunamor» - это новый комплексный противопаразитарный препарат немецкого производства, рекомендованный для лечения болезней аквариумных рыб, вызываемых простейшими Доза препарата согласна нас 0,33 мл на 10 л ЬЬО

Из 10 рыб в контрольном аквариуме через 14 дней в живых осталось только 2 рыбы Таким образом, процент летальности составил 80% Это соответствуе, данным ОН Бауера и В А Мусселиус (1981), которые сообщали, что при отсутствии лечения самовыздоровления рыбы практически не происходит

В аквариуме, где лечение проводилось только поваренной солью выздоровление рыб наступило через 12 дней, причем летальность составила 50% Это говорит о низкой эффективности солевых ванн и длительном периоде лечения В третьем аквариуме, где использовалась метиленовая синь и поваренная соль выздоровление наступило через 8 дней, которые мы определили по отсутствию маннообразного налета на поверхности тела Процент отхода составил 30%

В четвертом аквариуме, где использовался раствор малахитового зеленого с поваренной солью, признаки выздоровления отметили на 7-й день Процент летальности рыб составил также 30%

В аквариумах, где использовались растворы трипафлавина и риванола, выздоровление наступило через 7-8 дней Летальность рыб в каждом аквариуме составила по 20 %

Наиболее эффективным препаратом при лечении ифтиофтириоза, по нашим данным, был Faunamor Признаки выздоровления наблюдали на 3-4 день Гибели рыбы в этом аквариуме не отмечено Из полученных данных можно сделать вывод о том, что наиболее эффективный препарат при лечении ихтиофтириоза это комплексный npenapai Faunamor При использовании препарата продолжительность лечения рыбы не превышала трех дней При использовании риванола и трипафлавина, где продолжительность лечения составила от 7 до 12

дней, летальность была в пределах 20%

2.4.2 Производственный опыт ликвидации ихтиофтириоза сеголетков рыб в Краснодарском рыборазводном заводе растительноядных рыб

Нами отмечалась массовая гибель годовиков карпа и толстолобиков в зимовальных прудах Краснодарского рыборазводного завода растительноядных рыб При пересадке в октябре месяце сеголетков рыб в зимовальные пруды у них регистрировали единичные экземпляры [сШуорШшиз гтшШШпз на поверхности тела Профилактическая обработка рыбы неорганическими красителями не проводилась С середины января при I воды +3 4 °С началось заболевание рыбы с признаками обильного ослизнения, скопления возле водоподачи Рыба заглатывала воздух с поверхности воды Регистрировали «маннообразный» налет на коже, беспокойство сеголетков Летальность достигала 30%

Принятые экстренные меры по ликвидации данного заболевания в первую очередь включали увеличение водоподачи, тк больная рыба гибнет от недостатка растворенного в воде кислорода, вследствие нарушения кожного дыхания Второй экстренной мерой было внесение раствора малахитового зеленого из расчета 1г на Юл воды при экспозиции 24-48 часа, трехкратно Через 7-9 дней гибель рыбы практически прекратилась

Признаки ихтиофтириоза у оставшихся сеголетков, подвергнутых обработкам, исчезли Состояние рыбы улучшилось Дальнейшая зимовка карпов и толстолобиков прошла нормально Гибели рыбы не отмечали При контрольных ихтиопаразитологических исследованиях в соскобах с поверхности кожи отмечали единичные экземпляры бродяжек в 100 полях зрения микроскопа при увеличении 7x8

2 4.3. Производственный опыт ликвидации ихтиофтириоза производителей толстолобиков в Горячеключевском рыборазводном заводе

В Горячеключевском рыборазводном заводе, где проводится акклиматизация различных видов рыб в летнее время (июль месяц) при температуре воды более 27°С нами была зарегистрирована гибель производителей толстолобиков от ихтиофтириоза

В течение двух суток заболевания погибло более 20% производителей белых и пестрых толстолобиков Видовой устойчивости какого-либо вида рыб не отмечено Погибали в равной степени все породы рыб

При ихтиопарацитологическом исследовании соскобов с поверхности кожи отмечено более 10-ти экземпляров инфузорий 1сЬтЬуорЫ1ипи5 тиН^ИБ в поле зрения микроскопа (7x8) Проточность воды в пруду практически отсутствовала Содержание растворенного в воде кислорода было в пределах 5 мг/л В первую очередь в водоеме наладили водоподачу Дополнительно в водоем в присутствии рыбы вносили свежсгашеную известь из расчета 100 кг на 1 га водной площади Это дало возможность повысить рН воды до 8,5, увеличить котичество растворенного в воде кислорода до 9 мг\л, уничтожить значительное число бродяжек - распространителей ихтиофтириоза В качестве лечебного препарата в порядке производственного опыта нами рекомендован препарат «Раипатог», показавший хороший лечебный эффект при оздоровлении меченосцев от ихтиофтириоза в условиях аквариумов Препарат вносили в водоем из расчета 30

мл на 1м3 воды Экспозиция обработки составляла до 24 часов Препараты вносили трехкратно в течение 3-х суток

Гибель рыбы прекратилась после первой дач л фаунамора Клинические признаки завоевания начали затухать Уменьшилось беспокойство производителей Количество слизи на поверхности кожи рыб и характерный маннобразний налет исчезли При исследовании соскобов с поверхности кожи под микроскопов обмечены единичные экземпляры бродяжек в 100 полях зрения микроскопа при увеличении 7xg

2 4.4 Опыт оздоровления веслоноса (Poliodon spathula) от ихтиофтириоза в ФГУП «Южный производственный осетрово-рыбоводный

центр»

Наиболее опасным и очень распространенным инвазионным заболеванием для молоди веслоноса является ихтиофтириоз (Ю А Стрелков 2000, АП Чепурная, В Н Шподин 2003, Е В ЕВ Шестаковская, 2006)

Одной из причин этого является то, что тело веслоноса удлиненное, голое или покрытое мелкими разрозненными костными бляшками Этим в основном и объясняется большое количество паразитов на поверхности тела веслоноса по сравнению с другими осетровыми

Данное заболевание возникает чаще всего летом, при высоких температурах воды- вызывая массовую гибель рыбы В июле-августе температура воды в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края может достигать 25,0-28,0 °С Проблема осетровых хозяйств, оздоравливающих рыбу от ихтиофтириоза, в том, что существующие способы профилактики и лечения этого заболевания разработаны для температурных пределов, не превышающих 20°С ( С С Сулейманян и др Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб, 1983)

С целью разработки комплекса оздоровительных и профилактических мероприятий в условиях интенсивного ведения прудового рыбоводства при различных болезнях веслоноса - объекта акклиматизации, вызванных одним или несколькими возбудителями, на основании знаний анатомических и физиологических особенностей жизненного цикла нами был проведен опыт по испытанию препаратов против ихтиофтириоза при температурах воды выше +23°С

В сборнике Инструкций по борьбе с болезнями рыб (С С Сулейманян и др , 1983) рекомендованная концентрация ванн из малахитового зеленого 0,1-0,2 г'м3, ванн из фиолетового «К» 0,6-0,8 г/и3, экспозиция 15-20 мин Однако обработку рыб при температуре воды выше 23С проводить не рекомендуется Ванны из фиолетового «К» и малахитового зеленого с такими концентрациями и экспозицией рыба перенесла абсолютно спокойно Обработку проводили 2 раза в сутки в течение 4-х дней

Фиолетовый «К» не оказал особого губительного действия на Ichthyophthinus multifiliis Экстенсивность инвазии снизилась на 33%, но полного освобождения рыбы от инфузорий не произошло

Наилучшие результаты получены при использовании раствора малахитового зеленого Даже при температуре воды выше 23°С и концентрации органического красителя 0,2 г Ом3 сеголетки продолжали активно плавать, а после окончания курса

лечения наблюдалось полное освобождение от паразита Отход рыб после ванн из фиолетового «К» и малахитового зеленого был единичным Данные представлены в таблице 16

Таким образом, на основании собственных исследований нам удалось впервые оздоровить сеголетков веслоноса от ихтиофтириоза при температуре воды выше 23 °С

выводы-

1 Паразитофауна белого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена 25 видами, в том числе - 15 видов простейшие - (60,0%), 3 вида - моногеней (12%), дигенетические трематоды — 2 вида (8,0%), 1 вид — цестод (4,0%) и паразитические ракообразные - 4 вида (16%) Наибольшую опасность для сеголетков и годовиков белого толстолобика представляют микроспоридии Myxobolus pavlovskii, инфузория Ichthyophthirius multifilns, моногенея Dactylogyrus hypophthalmichthys, трематоды Diplostomum spathaceum и Posthdiplostomum cuticola и цестода Ligula intestinalis 8 видов из числа обнаруженных паразитов рыб Краснодарского края были завезены из Китая во второй половине 20 века

2 Паразитофауна пестрого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена 28 видами в том числе 17 видов простейших (60,7%), 4 вида моногеней (14,3%), 2 вида трематод (7,1%), 2 вида цестод (7,1%) и 3 вида паразитических ракообразных (10,7%) У сеголетков и годовиков часто паразитируют Myxobolus pavlovskii и Myxobolus haemophilus, Ichthyophthirius multifilns, Dactylogyrus aristichthidis и Ligula intestinalis 9 видов паразитов пестрых толстолобиков из числа обнаруженных у рыб Краснодарского края были завезены из Китая во второй половине 20 века

3 Паразитофауна белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена 22 видами, в том числе 10 видов простейших (45,5%), 1 вид моногеней (4,5%), 4 вида цестод (18%), 2 вида трематод (9%), 1 вид нематод (4,5%), 1 вид пиявок и 3 вида паразитических ракообразных (13,6%) Большинство обнаруженных видов регистрируются у белого амура с незначительной интенсивностью и эктенсивностью инвазии Наибольшую опасность для белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края представляет нифузория Ichthyophthirius multifilns, цестоды Bothnocephalus opsarnchthydis, Digramma interrupta 4 вида паразитов пестрых толстолобиков из числа обнаруженных у рыб Краснодарского края были завезены из Китая во второй половине 20 века

4 У пяти видов «сорных» рыб, имеющих постоянный контакт с прудовой рыбой в водоемах Краснодарского края паразитофауна представлена 24 видами Наибольшую опасность в качестве резервуара паразитарных заболеваний для прудовых рыб представляют красноперка - (у них паразитирует 21 вид паразитов), лещ (12 видов) и уклея (10 видов)

5 Myxobolus pavlovskii развивается прямым путем, срок развития спор в естественных водоемах Краснодарского края составляет 140-150 дней Олигохеты для этих паразитов являются механическими переносчиками спор

6 Миксоспоридии вида Myxobolus pavlovskii вызывают при высокой интенсивности инвазии у сеголетков и годовиков пестрых и белых толстолобиков

умеренную эозинофилию, снижение гемоглобина, увелечение лейкоцитов почти на 25%, уменьшение массы тела, нарушение жаберного дыхания, некроз жаберных лепестков Летальность достигает 10%

7 У растительноядных рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края паразитарные болезни протекают в форме микстинвазии с высокой летальностью Наиболее опасные микстинвазии у белых толстолобиков — МухоЬо1из рау1оузкп РоБ^фЬзШтит ссШсоЫ, у пестрых толстолобиков - МухоЬо1из рауЬуБкп + Оаау1о§угиз апвЦс^ЬкЬБ

8 Ихтиофтириоз встречается во всех прудовых рыбоводных хозяйствах Краснодарского края и при высокой интесивности инвазии вызывает заболевание и гибель растительноядных рыб различных возрастов до 20%

9 У веслоноса (Ро1уос1оп Бра^Ыа) - (объекта акклиматизации прудовых хозяйств Краснодарского края) часто паразитируют к^Ьуор^Ьшиз гпЫцШнб, Оас1у^уги5 уав1а1ог и Сугос1ас1у1и5 сурпт Источником и резервуаром этих паразитов является «сорная» рыба естественных водоемов

10 Впервые в прудовых хозяйствах Краснодарского края для оздоровления сеголетков веслоноса от ихтиофтириоза предложен препарат малахитовый зеленый при температуре воды выше +23°С Эффективность данной обработки достигает 100%

11 Разработанный нами комплекс профилактических и оздоровительных мероприятий для рыбоводных хозяйств Краснодарского края позволяет свести к минимуму вероятность заражение растительноядных рыб и веслоноса паразитарными и ассоциативными заболеваниями

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

На основании собс'твенных исследований разработан и внедрен в прудовых хозяйствах Краснодарского края следующий комплекс мероприятий по профилактике

1 Для лабораторной диагностики миксоспоридиозов предложен способ переваривания тканей рыбы в искусственном желудочном соке, что позволяет сократить время диагностики одной пробы с 3 часов (по методике Б Л Гаркави и др , 1996) до 40 минут по нашей методике

2 Для оздоровления сеголетков веслоноса при остром ихтиофтириозе необходимо при температуре воды выше 23 °С в водоем необходимо вносить раствор малахитового зеленого из расчета 0,2 г/^ в течение 4 суток

Разработанные диссертантом мероприятия вошли в следующие нормативные документы

1 «Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике миксоболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Крснодарского края» (Утверждены Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004 г)

2 «Рекомендации по профилактике миксоболеза пестрых толстолобиков в рыбоводных хозяйствах» (утверждены Россельхозакадемией, 2004)

3 Методические указания «Биология и патология рыб и пчел», час!ь 1 (Утверждены методической комиссией Кубанского государственного аграрною

университета, 2004 г)

4 Методические указания «Биология и патология рыб и пчел», часть 2 (Утверждены методической комиссией Кубанского государственного аграрного университета, 2005 г)

Список работ, опубликованных по теме диссертации:

1 Фендриков П.В., Лысенко A.A., Куклева Я.В. Эффективность различных способов лечения ихтиофтириоза // Труды КубГАУ. -Краснодар, 2004, в. 5. - С. 79-82

2 Фендриков П В , Куклева Я В , Лысенко А А Эпизоотология и цикл развития миксоболеза пестрых толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края // Материалы 3-й Всерос дистанц нучно-практ конф «Современные проблемы устойчивого развития агропромышленного комплекса России» - ДонГАУ- пос Персиановский, 2005 - С 88-91

3 Фендриков П В, Куклева Я В Заражение толстолобиков спорами миксоспоридий Myxobolus pavlovskn в экспериментальных условиях //Материалы 5-й Междун научно-практ конф «Исследования молодых ученых в решении проблем животноводства»- Витебск, 2006 -с 255-256

4 Фендриков П В Кудренко Ю В, Беретарь И М Акклиматизация веслоноса в рыбоводных хозяйствах Кубани и новый способ лечения ихтиофтириоза рыб // Журнал «Ветеринария Кубани» - Краснодар, №- , 2007г -с

5 Лысенко А А , Кудренко Ю В , Фендриков П В Паразитофауна веслоноса (Polyodon spathula) - акклиматизируемого объекта прудовых хозяйств Краснодарского края // Материалы научи практ конф Студентов, магистрантов и аспирантов Витебск, 2007 С-

6. Фендриков П.В, Кудренко Ю.В. Возрастная динамика заболеваний белого толстолобика на Краснодарском специализированном рыборазводном заводе растительноядных рыб.// Журнал «Труды Кубанского госагроуниверситета»- Краснодар, № 1(10) 2008г-с.

г

Подписано в печать 03 12 2007 Формат издания 60x84 1/16 Печ л 1,5 Уел п л 1,39 Тираж 100 экз Заказ 489

Полиграфический отдел ФГОУ ВПО «Ивановская ГСХА имени академика Д К Беляева» 153012, г Иваново, ул Советская, 45

Содержание диссертации, кандидата ветеринарных наук, Фендриков, Петр Вадимович

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.2.РЕЗУЛБТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.2.1 Анализ эпизоотической ситуации по заболеваниям прудовых рыб в Краснодарском крае.

2.2.2. Краткая рыбоводная характеристика рыбоводной агрофирмы РАФ «За Родину», Тимашевского района.

2.2.3. Биологические особенности растительноядных рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.2.4.Акклиматизация веслоноса (Polyodon spathula) в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края.

2.2.5. Паразитофауна белого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.2.6. Возрастная динамика паразитарных заболеваний белого толстолобика на Краснодарском специализированном рыборазводном.^/.?.!^.^.:.

2.2.7. Паразитофауна пестрого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.2.8. Паразитофауна белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.2.9. Паразитофауна веслоноса (Polyodon spathula) - акклиматизируемого объекта прудовых хозяйств Краснодарского края.

2.2.10. Паразитофауна некоторых видов "сорных" рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.3. МИКСОСПОРИДИОЗЫ РАСТИТЕЛЬНОЯДНЫХ РЫБ В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ.

2.3.1. Эпизоотологические особенности миксоболеза толстолобиков, вызываемого видом Myxobolus pavlovskii.

2.3.2. Цикл развития Myxobolus pavlovskii.

2.3.3. Ассоциативное заболевание толстолобиков, вызванное миксоболезом и псевдомонозом.

2.3.4. Ассоциативные заболевания толстолобиков при интенсивном рыборазведении в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.3.5. Гематологичекие показатели пестрых толстолобиков в норме и при миксоболезе.

2.3.6. Ветеринарно - санитарная экспертиза толстолобиков при миксоспоридиозах

2.3.7. Опыт ликвидации вспышки миксоболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

2.4. ИХТИОФТИРИОЗ ПРУДОВЫХ РЫБ В РЫБОВОДНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КРАСНОДАРСКОГО КРАЯ.

2.4.1. Эпизоотологическая характеристика возбудителя ихтиофтириоза.

2.4.2. Опыты по изучению эффективности различных препаратов против инфузории Ichthiophthirius multifiliis.

2.4.3. Производственный опыт ликвидации ихтиофтириоза сеголетков рыб в Краснодарском рыборазводном заводе растительноядных рыб.

2.4.4. Производственный опыт ликвидации ихтиофтириоза производителей толстолобиков в Горячеключевском рыборазводном заводе.

2.4.5. Опыт оздоровления веслоноса (Poliodon spathula) от ихтиофтириоза в

ФГУП «Южный производственный осетрово-рыбоводный центр».

ВЫВОДЫ.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Паразитарные болезни растительноядных и акклиматизируемых рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края"

Актуальность диссертации. Рыбоводство - одна из рентабельных отраслей сельскохозяйственного производства, базирующаяся на выращивании в естественных и искусственных водоемах различной товарной рыбы: карпа, белого и пестрого толстолобиков, белого амура и других видов рыб. Развитию прудового рыбоводства в России способствует громадные водные площади и благоприятный климат. Современные формы ведения прудового рыбоводства предусматривают уплотненные посадки рыб в пруды, что обуславливает тесный контакт выращиваемых рыб, а отсюда и благоприятные условия для распространения различных болезней (Г.В. Васильков, 1983). Наибольший удельный вес продолжают занимать инвазионные заболевания, распространенность которых составляет 66% от общего числа неблагополучных хозяйств: из них ботриоцефалез - 42%, филометроидоз - 11%, воспаление плавательного пузыря - 11%. (Яременко Н.А., Селиверстов В.В., 2003, Павлович Г.М. 2006, А.А. Лысенко, 2006). В рыбоводных хозяйствах зоны Северного Кавказа часто отмечаются вспышки паразитарных и инфекционных заболеваний, которые являются существенным фактором, снижающим продуктивность прудов рыбоводных хозяйств. Часто паразитарные заболевания у рыб, как и у других животных организмов, протекают в ассоциации, что осложняет течение заболеваний (Ю.Ф. Петров, 1997,2001;, М.Д. Новак и др., 2001; Е.П. Семененков, Н.И. Вовк и др., 2001; А.А. Лысенко и др., 2003, 2004, 2006). В литературе недостаточно сведений о путях заражения рыб простейшими, вызываемых ими патологических изменениях, а также мерах по их оздоровлению и профилактике.

Цель и задачи исследования. Основная цель исследования -разработка комплекса профилактических мероприятий в условиях интенсивного ведения прудового рыбоводства при различных болезнях рыб, вызванных одним или несколькими возбудителями, на основании знаний их цикла развития. В соответствии с этим в задачи исследований входило:

- изучить динамику изменения видового состава паразитов растительноядных рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края;

- изучить видовой состав паразитов некоторых видов рыб естественных водоемов бассейна реки Кубань;

- уточнить некоторые особенности биологического цикла миксоспоридий Myxobolus pavlovskii - паразитов толстолобиков;

- изучить сезонную и возрастную динамику основных паразитарных заболеваний растительноядных рыб, наносящих ущерб рыбоводным хозяйствам Краснодарского края;

- разработать комплекс профилактических и оздоровительных мероприятий при миксоболезе белых и пестрых толстолобиков, вызываемых М. pavlovskii; ихтиофтириозе прудовых рыб;

- разработать новые методы профилактики смешанных заболеваний прудовых рыб;

- изучить паразитофауну веслоноса- перспективного объекта рыборазведения в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

Научная новизна. Впервые в условиях Краснодарского края проведён анализ паразитофауны веслоноса (Polyodon spathula) -акклиматизируемого объекта прудового рыбоводства, завезённого из США. Паразитофауна веслоноса в прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена тремя видами паразитов: Ichthyophtirius multifiliis, Dactylogyrus wastator и Gyrodactylus cyprini. Основным источником и резервуаром . заражения веслоноса данными видами паразитов является «сорная» рыба -краснопёрка, лещ, уклея. Впервые в прудовых хозяйствах Краснодарского края выявлено, что наиболее опасный паразит для веслоноса -круглоресничная инфузория I. multifiliis, вызывающая гибель до 10% молоди рыб. Предложен новый способ лечения ихтиофтириоза молоди веслоноса при температуре воды в водоёмах выше 23°С.

Доказан прямой путь развития простейших Myxobolus pavlovskii. Продолжительность развития спор в водоёмах Краснодарского края - 140 дней.

Практическая значимость. Разработана и внедрена в ветеринарную практику комплексная система мероприятий по профилактике и борьбе с паразитарными болезнями растительноядных и акклиматизируемых рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края, которая позволяет снизить заболеваемость и гибель рыбы на 50%, что даёт возможность каждому хозяйству получить дополнтельно до 50 тысяч рублей прибыли за рыбоводный сезон. Результаты исследований вошли в следующие нормативные документы:

1. «Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике миксоболёза толстолобиков в прудовых хозяйствах Крснодарского края» (Утверждены Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004).

2. «Рекомендации по профилактике миксоболёза пёстрых толстолобиков в рыбоводных хозяйствах» (утверждены Россельхозакадемией, 2004).

3. Методические указания «Биология и патология рыб и пчёл», часть

1. (Утверждены методической комиссией Кубанского государственного аграрного университета, 2004 г.)

4. Методические указания «Биология и патология рыб и пчёл», часть

2. (Утверждены методической комиссией Кубанского государственного аграрного университета, 2005 г.)

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и одобрены на: ежегодных «Конференциях молодых учёных Кубанского ГАУ по итогам НИР» (2004; 2005; 2006; 2007 гг.); Всероссийской научно-практической конференции «Современные проблемы устойчивого развития агропромышленного комплекса России» (Ростов-на-Дону, 2005); Международной научно-практической конференции «Исследования молодых учёных в решении проблем животноводства» (Витебск, 2006); «Научно-практической конференции студентов, магистрантов и аспирантов (Витебск,

2008 г.)»

Основные положения, выносимые на защиту:

- состав и структура паразитофауны растительноядных рыб (белый и пёстрый толстолобик, белый амур) в прудовых хозяйствах Краснодарского края;

- паразитофауна основных «сорных» рыб естественных водоёмов Краснодарского края;

- состав и структура паразитофауны веслоноса (Polyodon spatula) -акклиматизируемого объекта прудовых хозяйств Краснодарского края;

- патогенез, клиника, диагностика, меры борьбыи профилактика миксоболёза толстолобиков;

- меры борьбы и профилактики паразитарных заболеваний растительноядных и акклиматизируемых рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края.

Публикации. По материалам диссертации опубликованы 6 научных работ, в том числе 2 работы в изданиях, регламентированных ВАК РФ для кандидатских и докторских диссертаций. Результаты исследований автора защищены патентом (получено положительное решение о выдаче патента).

Объём и структура диссертации. Диссертация изложена на 169 страницах компьютерного текста, состоит из введения, обзора литературы, 4 глав собственных исследований, выводов, практических предложений. Работа иллюстрирована 16 таблицами и 6 рисунками. Список литературы включает 275 источников, в том числе 58 - иностранных авторов.

Заключение Диссертация по теме "Паразитология", Фендриков, Петр Вадимович

ВЫВОДЫ

1.Паразитофауна белого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена 25 видами, в том числе - 15 видов простейшие - (60,0%), 3 вида - моногеней (12%), дигенетические трематоды - 2 вида (8,0%), 1 вид - цестод (4,0%) и паразитические ракообразные - 4 вида (16%). Наибольшую опасность для сеголетков и годовиков белого толстолобика представляют микроспоридии Myxobolus pavlovskii, инфузория Ichthyophthirius multifiliis, моногенея Dactylogyrus hypophthalmichthys, трематоды Diplostomum spathaceum и Posthdiplostomum cuticola и цестода Ligula intestinalis. 8 видов из числа обнаруженных паразитов рыб Краснодарского края были завезены из Китая во второй половине 20 века.

2.Паразитофауна пёстрого толстолобика в прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена 28 видами в том числе 17 видов простейших (60,7%), 4 вида моногеней (14,3%), 2 вида трематод (7,1%), 2 вида цестод (7,1%) и 3 вида паразитических ракообразных (10,7%). У сеголетков и годовиков часто паразитируют Myxobolus pavlovskii и Myxobolus haemophilus, Ichthyophthirius multifiliis, Dactylogyrus aristichthidis и Ligula intestinalis. 9 видов паразитов пёстрых толстолобиков из числа обнаруженных у рыб Краснодарского края были завезены из Китая во второй половине 20 века.

3.Паразитофауна белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края представлена 22 видами, в том числе 10 видов простейших (45,5%), 1 вид моногеней (4,5%), 4 вида цестод (18%), 2 вида трематод (9%), 1 вид нематод (4,5%), 1 вид пиявок и 3 вида паразитических ракообразных (13,6%). Большинство обнаруженных видов регистрируются у белого амура с незначительной интенсивностью и эктенсивностью инвазии. Наибольшую опасность для белого амура в прудовых хозяйствах Краснодарского края представляет нифузория Ichthyophthirius multifiliis, цестоды Bothriocephalus opsariichthydis, Digramma interrupta. 4 вида паразитов пёстрых толстолобиков из числа обнаруженных у рыб Краснодарского края были завезены из Китая во второй половине 20 века.

4. У пяти видов «сорных» рыб, имеющих постоянный контакт с прудовой рыбой в водоемах Краснодарского края паразитофауна представлена 24 видами. Наибольшую опасность в качестве резервуара паразитарных заболеваний для прудовых рыб представляют красноперка - (у них паразитирует 21 вид паразитов), лещ (12 видов) и уклея (10 видов).

5. Myxobolus pavlovskii развивается прямым путем, срок развития спор в естественных водоёмах Краснодарского края составляет 140-150 дней. Олигохеты для этих паразитов являются механическими переносчиками спор.

6.Миксоспоридии вида Myxobolus pavlovskii вызывают при высокой интенсивности инвазии у сеголетков и годовиков пестрых и белых толстолобиков умеренную эозинофилию, снижение гемоглобина, увелечение лейкоцитов почти на 25%, уменьшение массы тела, нарушение жаберного дыхания, некроз жаберных лепестков. Летальность достигает 10%.

7. У растительноядных рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края паразитарные болезни протекают в форме микстинвазии с высокой летальностью. Наиболее опасные микстинвазии у белых толстолобиков -Myxobolus pavlovskii + Posthdiplostomum cuticola; у пестрых толстолобиков -Myxobolus pavlovskii + Dactylogyrus aristichthidis.

8. Ихтиофтириоз встречается во всех прудовых рыбоводных хозяйствах Краснодарского края и при высокой интесивности инвазии вызывает заболевание и гибель растительноядных рыб различных возрастов до 20%.

9.У веслоноса (Polyodon spathula) - (объекта акклиматизации прудовых хозяйств Краснодарского края) часто паразитируют Ichthyophthirius multifiliis, Dactylogyrus vastator и Gyrodactylus cyprini. Источником и резервуаром этих паразитов является «сорная» рыба естественных водоемов.

10. Впервые в прудовых хозяйствах Краснодарского края для оздоровления сеголетков веслоноса от ихтиофтириоза предложен препарат малахитовый зеленый при температуре воды выше +23°С. Эффективность данной обработки достигает 100%.

И. Разработанный нами комплекс профилактических и оздоровительных мероприятий для рыбоводных хозяйств Краснодарского края позволяет свести к минимуму вероятность заражение^эастительноядных рыб и веслоноса паразитарными и ассоциативными заболеваниями.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

На основании собственных исследований разработан и внедрен в прудовых хозяйствах Краснодарского края следующий комплекс мероприятий по профилактике:

1. Для лабораторной диагностики миксоспоридиозов предложен способ переваривания тканей рыбы в искусственном желудочном соке, что позволяет сократить время диагностики одной пробы с 3 часов (по методике Б.Л. Гаркави и др., 1996) до 40 минут по нашей методике.

2. Для оздоровления сеголетков веслоноса при остром ихтиофтириозе необходимо при температуре воды выше 23°С в водоём необходимо вносить раствор малахитового зеленого из расчета 0,2 г/м3 в течение 4 суток.

Разработанные диссертантом мероприятия вошли в следующие нормативные документы:

1. «Временные рекомендации по оздоровлению и профилактике миксоболеза толстолобиков в прудовых хозяйствах Краснодарского края» (Утверждены Департаментом сельского хозяйства и продовольствия Краснодарского края, 2004 г.).

2. «Рекомендации по профилактике миксоболёза пёстрых толстолобиков в рыбоводных хозяйствах» (утверждены

Россельхозакадемией, 2004).

3. Методические указания «Биология и патология рыб и пчёл», часть 1. (Утверждены методической комиссией Кубанского государственного аграрного университета, 2004 г.)

4. Методические указания «Биология и патология рыб и пчёл», часть 2. (Утверждены методической комиссией Кубанского государственного аграрного университета, 2005 г.)

Библиография Диссертация по биологии, кандидата ветеринарных наук, Фендриков, Петр Вадимович, Краснодар

1. Акишева К.С. Этапы и пути формирование паразитофауны рыб в водохранилищах рек Казахстана // В. сб.: Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. М., 2003, С. 20-22

2. Алиев А.А. Об эпизоотических последствиях акклиматизации растительноядных рыб в водоёмах Дагестана // Мат. 2-й Междунар. научно-практ. конфер. Ставрополь, 2004, с. 111-114.

3. Анисимова И.М., Лавровский В.В. Ихтиология// М., Высшая школа, 1983,246 с.

4. Анюханов A.M. Пути повышения эффективности работы сооружений по очистке сточных вод от яиц гельминтов в Условиях Башкирского Зауралья// Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2001, с.26.

5. Апажева Ж.М. Паразитофауна лососевых рыб, разводимых в водоемах КБР.// Наука и практика: Сборник научных трудов ученых и соискателей. Нальчик, 2005, С. 33-34.

6. Асеева Н.Л. К фауне миксоспоридий рыб Японского моря// Всероссийская научная конференция «Взаимоотношение паразита и хозяина». М., 1998,5с.

7. Асеева Н.Л. Фауна миксоспоридий рыб семейства Cottidae Японского моря.//Изв. ТИНРО. М., 2005, 142, С. 282-295.

8. Атаев A.M., Ахмедрабсиданов К.А., Дефтаков В.М., Дадамгоджиев Д.А., Зубарова М.М. Гельминтозоозы ассоциативные болезни овец в

9. Дагестане // В сб. «Теория и практика борьбы с паразитернвми болезнями». М., 2003, С.47-50.

10. Ю.Ахмеров А.Х. О сопряженных видах нового рода миксоспоридий// Доклады АН СССР. 1954, т.97,1101-11-Зс.

11. Бадмаев М.Д., Пронина С.В. Особенности инкапсуляции Myxidium rhodei (Myxozoa; myxosporea) в почках плотвы сибирской// Всероссийская научная конференция «Взаимоотношение паразита и хозяина».- М., 1998,6 с.

12. Бауер О.Н. Популяционная экология паразитов рыб, некоторые итоги и перспективы // Морфология, систематика и фаунистика паразитических животных. Л., 1986, 185 с.

13. Бауер О.Н. Методические указания по борьбе с дактилогирозом карпа в прудовых хозяйствах// Л., Наука, 1959, 16 с.

14. Бауер О.Н., Мусселиус В.А., Стрелков Ю.А. Болезни прудовых рыб// М., Легкая и пищевая промышленность. 1981, 319 с.

15. Белова Л.М., Крылов М.В. Кокцидии (Eimeriidae) рыб (Cypriniformes) континентальных вод России//}^ «Паразитология»*. М., 2006, 40, № 5, С. 447-461.

16. Буторина Т.Е. Фауна эктопаразитов бухты Северной // Труды международной научной конференции. «Рыбохозяйственные исследования мирового океана». Владивосток, 1999, с. 108.

17. Быховская Павловская И.Е. Паразитологическое исследование рыб// Л., Наука, 1989,108с.

18. Быховская Павловская И.Е. Класс дигенетические сосальщики Trematoda рыб., 1808// Определитель паразитов пресноводных рыб СССР. М.-Л., издательство АН СССР, 1962, с.438-520.

19. Васильков Г.В., Грищенко Л.И. и др. Справочник по болезням рыб// М., Колос, 1988,269 с.

20. Вовк Н.И., Бучацкий Л.П., Пирус Р.И. Ихтиопатологический мониторинг внутренних водоемов Украины // Материалы 1 Всеукраинской конференции Проблемы ихтиопатологии. Киев, 2001, с.31-36.

21. Воронин В.Н. Новые подходы к проблеме профилактики миксоспоридиозов рыб// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.45-46.

22. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Лысенко А.А. Слизистые споровики молоди толстолобиков в прудовых хозяйствах Кубани // В кн.: «Инвазионные болезни сельскохозяйственных животных». Сборник научных трудов. Л.:, 1989,45-50 с.

23. Гаркави Б.Л, Денисов А.И., Звержановский М.И., Лысенко А.А. Метод диагностики миксоспоридий в крови рыб// Материалы Всесоюзн. совещания по болезням рыб «Профилактика, лечение и диагностика инфекционных болезней рыб». М., 1986, С. 47-48.

24. Гинецинская Т.А., Добровольский А.А. Частная паразитология. Паразитические простейшие и плоские черви// М., 1998,- 302 с.

25. Головин П.П., Головина Н.А. К проблеме внутриэритроцитарных включений у дальневосточных лососей// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.50-51.

26. Головина Н.А., Ванятинский В.Ф. Картина крови рыб при хилодонеллезе в различные сезоны года // В кн.: «9-я конференция Украинского общества паразитологов». Киев., 1980,25-26 с.

27. Головина А.Н. Изменения в составе белой крови карпа при заражении Dactylogyrus extensus (Monogenoidea, Dactylogyridae) // Ж-л «Паразитология». М., 1976, т. 10, вып.2,178-182 с.

28. Головина А.Н. Современные подходы к организации лечебно-профилактических мероприятий в рыбоводных хозяйствах// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.51-52.

29. Гончаренко J1.A. и др. Химиопрофилактика ассоциативных инфекционных и инвазионных болезней рыб в тепловодных хозяйствах // В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». Душанбе, 1988, с.147-150.

30. Грищенко Л.И. и др, Болезни рыб и основы рыбоводства //М., Колос, 1999, 456 с.

31. Грищенко Л.И. Эпизоотология, течение и проявление асцитно-язвенного синдрома карпов в тепловодных рыбоводных хозяйствах// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.53-54.

32. Грищенко Л.И., Давыдова О.Е., Лебедев P.O., Иренков И.П. Основные ветеринарно-санитарные мероприятия при выращивании пресноводных креветок в условиях аквакультуры// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.55-57.

33. Гусев А.В. Некоторые особенности биологии и морфологии моногеней в теплых водах // В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». Душанбе. Дониш. 1986, С. 114-120.

34. Дарченкова Н.Н. Использование карт районирования и структуры нозоареала в повышении эффективности борьбы с биогельминтозами // Материалы доклада научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2001, 74-76 с.

35. Догель В.А. Паразитофауна и окружающая среда. Некоторые вопросы экологии пресноводных рыб // В кн.: «Основные проблемы паразитологии рыб». JL, 1958, 9-54 с.

36. Жарикова Г.И. О соотношении мелких и крупных видов жаберных эктопаразитов рыб в водоемах разной степени загрязненности// Зоологический журнал. М., 2001,80, №5, с.515-519.

37. Жарикова Т.И., Степанова М.А., Жохов А.Е. О зараженности эктопаразитами ряда видов рыб озера Плещеево// Ж-л «Паразитология». М, 2002,36, №2, с.140-145.

38. Житнева Т.С. Влияние теплых вод, сбрасываемых Костромской ГРЭС на ихтиофауну Горьковского водохранилища// Отчет. Ярославль, п. Борок, институт биологии и внутренних вод РАН, 1992,16 с.

39. Жохов А.Е., Молодожникова Н.М. Таксономическое разнообразие паразитов рыбообразных и рыб бассейна Волги// Ж-л «Паразитология». М., 2006,40, № 3, С. 244-274.

40. Жохов А.Е., Пугачева М.Н. Чужеродные виды паразитов рыб в бассейне Волги// Тезисы докладов 9 Съезда Гидробиологического общества РАН, Тольятти, Самара, 2006, С. 161.

41. Евланов И.А., Рубанова М.В. Основные закономерности формирования многовидовой ассоциации гельминтов окуня Саратовского водохранилища // Тезисы доклада Всероссийской научной конференции «Взаимоотношение паразита и хозяина». М., 1998,25 с.

42. Елисеева В.Г. и др. Основы гистологии и гистологической техники// М., 1967,268 с.

43. Зимин H.JI. Принципы профилактики и борьбы с болезнями рыб и других водных животных в Российской Федерации// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.61-63.

44. Иванов В.М. К вопросу о возникновении очагов заболеваний рыб // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.65-66.

45. Иванова Н.Т., Головина Н.А. Современные гематологические исследования в ихтиопатологии и их диагностическое значение //В кн.: «Биологические основы рыбоводства: паразиты и болезни рыб». М., 1984, с.135-144

46. Иванова Н.Т Атлас клеток крови рыб// М., 1983, 184 с.

47. Ивашевский Г.А. Изменение видового состава паразитов рода Myxobolus в урбанизированной среде// Совещание паразитологического общества при РАН "Паразитологические проблемы больших городов". С.-Пб., 1996, С.42.

48. Игнатьева J1.H., Марасинская Е.И., Сапожников Г.И. Гельминты и гельминтозы речных и прудовых рыб Удмуртской Республики// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.66-67.

49. Иешко Е.П., Румянцев Е.А. Особенности формирования видового состава паразитофауны рыб внутренних водоемов Севера Европы.

50. Итоги и перспективы исследований// Материалы Всероссийского семинара «Роль российской школы гельминтологов в развитии паразитологии». М., 1998, 164-170 с.

51. Иешко Е.П. Популяция биология гельминтозов рыб // JL, Наука, 1988, 118с.

52. Извекова Г.И. Некоторые аспекты паразитохозяинных отношений в системе Ligula intestinalis // Известия РАН. Серия биологии. М., 1999, №4, с. 432-438.

53. Изюмова Н.А., Жарикова Т.И., Степанова М.А. Гельминты леща, щуки и судака в водоеме охладителе Костромской ГРЭС Горьковского водохранилища// В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». Душанбе, Дониш, 1986, С. 136-139.

54. Изюмова Н.А. Паразитофауна рыб в водохранилищах СССР и пути ее формирования// JL, 1977,284 с.

55. Исков М.П. Фауна Украины// Справочники, книдоспоридии, микроспоридии. Киев, Наукова Думка, 1989, т. 37,212 с.

56. Каменев В.П. Характеристика санитарного состояния водоемов Ахтарского и Бейсугского рыбхозов// Ученые записки Краснодарского пединститута. Краснодар, 1956, вып. 17, с. 104-107.

57. Канаев А.И. Ветеринарная санитария в рыбоводстве// М., „' / Агропромиздат, 1985, 280 с.

58. Козлов В.И. Влияние солености воды на зараженность рыб постодиплостомозом // «Гидробиологический журнал». М., 1972, т.8, №3,112-113 с.

59. Коромыслов Г.Ф., Борисова М.Н. Проблемы патологии и профилактики болезней рыб в аквакультуре России // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.15-16.

60. Кудрявцев А.А., Кудрявцева JI.A., Привольнев Т.Н. Гематология рыб и животных// М., 1979,320 с.

61. Кулаковская О.П. К биологии и распространению гвоздичников Khawia sinensis Hsii, 1935 // В кн.: «Проблемы паразитологии». Киев, 1963, с. 200205.

62. Куперман Б.И., Жохов А.Е., Цветкова Г.Н., Таликина М.Г. Динамика зараженности лигулидами лещей Волжских внутренних вод и паразито-хозяинные отношения при лигулезе // Ж-л «Биология внутренних вод». М„ 1997, №2, с.41-49. I

63. Куровская Л.Я. Влияние смешанной инвазии на содержание общего белка в органах годовиков карпа, выращиваемых на теплых водах // Ж-л «Гидробиология животных». М., 2000,36, №5, с.91-97.

64. ЛиндбергГ,Ц., Гердт А.С. Словарь названий пресноводных рыб СССР на языках народов СССР и европейских стран//Л., 1972,368 с.

65. Линник В.Я., Янченко В.Ф. Озон для профилактики диплостомоза рыб // Ж-л «Ветеринария». М., 1982, №7, с. 46.

66. Лысенко А.А. и др. Рекомендации по профилактике миксоболеза пестрых толстолобиков в рыбоводных хозяйствах// Труды Всероссийского института гельмитологии им. К.И. Скрябина. М., 2004, С. 448-454.

67. Лысенко А.А. Ассоциативные заболевания прудовых рыб при интенсивном рыборазведении// Ж-л «Ветеринария». М., 2003, №12, С.32-34.

68. Лысенко А.А., Сапожников Г.И. Миксоболез пестрых толстолобиков // Ж-л «Ветеринария». М., 2004, №1, С. 17-20.

69. Лысенко А.А., Гаркави Б.Л., Паразитофауна прудовых рыб // Сборник научных трудов КубГАУ «Профилактика и лечение болезней сельскохозяйственных животных». Краснодар, 1999, С. 168-171.

70. Лысенко А.А., Хахов А.Л. Эпизоотология и диагностика ассоциативных заболеваний пестрых толстолобиков в прудовых хозяйствах при интенсивном рыборазведении // Труды КубГАУ «Студенчество и наука». Краснодар, 2002, вып.З. С. 267-270.

71. Лысенко А.А. и др. Эффективность различных способов лечения ихтиофтириоза // Труды КубГАУ «Студенчество и наука». Краснодар, 2004, вып.5, С. 79-82.

72. Ляйман Э.М. Влияние температуры воды на размножение моногенетического сосальщика Dactylogyrus vastator // Тр. Мосрыбвтуза. М., 1951, вып.4, с. 190-196.

73. Ляйман Э.М. Курс болезней рыб// М., Высшая школа, 1966,331 с.

74. Ляйман Э.М. Практическое руководство по болезням рыб// М., 1951, 150с.

75. Маргаритов Н., Нгуен Ван Тхан. Паразиты молоди растительноядных рыб в Болгарии// В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». Душанбе, 1988,66-75 с.

76. Маркевич А. П. Методика и техника паразитологического обследования рыб//Киев, 1950,24 с.

77. Маркевич А.П. Методы изучения паразитологической ситуации и борьба с паразитами с/х ж-х // Изд-во АН Украинской ССР. Киев, 1961, 352 с.

78. Маркевич А.П. Паразитофауна пресноводных рыб УССР// Киев, 1951, 375 с.

79. Меркулов Г.А. Курс патологической техники// Л., 1969,423 с.

80. Микряков Д.В. Роль кортикостероидных гормонов в регуляции иммунореактивности рыб // Тез. доклада Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и др. гидробионтов». М., 2003, с.83-86.

81. Мирошниченко А.И. О состоянии гиродактилюсов и дактилогирусов в фауне// X конференция паразитологов. Киев, Наукова Думка, 1986,ч.2, с. 30.

82. Митенев В.К. К истории формирования пресноводной фауны паразитов рыб Европейского Севера России // Сборник научных трудов Полярного общества «Болезни морских и пресноводных рыб Северного бассейна». Мурманск, 1998, с.34-49.

83. Митенев В.К., Шульман Б.С. Паразитофауна налима Lota Iota L. водоемов Кольского региона// Ж-л «Паразитология». М., 2006, 40, № 3, С. 290-298.

84. Мусселиус В.А. Паразиты и болезни растительноядных рыб дальневосточного комплекса в прудовых хозяйствах СССР// Труды ВНИИПРХ. 1973, т.22, с. 4-129.

85. Мусселиус В.А. Лабораторный практикум по болезням рыб// М., Легкая и пищевая промышленность. 1983, 129с .

86. Мусселиус В.А. Паразитарные заболевания белых амуров, белых и пестрых толстолобиков в прудовых хозяйствах РСФСР// В кн.: «Болезни рыб и меры борьбы с ними». Алма-Ата, 1966, с.99-105.

87. Наумова A.M. К эпизоотологии миксоболёза толстолобиков на Украине //Итоги науки и техники ВИНИТИ. М., 1975, №4, 77-118 с.

88. Наумова A.M. Экологические основы охраны здоровья рыб в сельскохозяйственных водоемах комплексного использования// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.90-92.

89. Наумова А.Ю. Эпизоотологический мониторинг в рыбоводном хозяйстве, применяющим рыбосевоборот// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.89-90.

90. Низова Г.А. Паразитические простейшие рыб в донских прудовых хозяйствах// В кн.: «Комплексное использование биологических ресурсов Каспийского и Азовского морей». Астрахань, 1983, с.61-62.

91. Низова Г. А. Эколого-паразитологический мониторинг промысловых рыб Азовского и черного морей// Тезисы докладов 9 Съезда Гидробиологического общества РАН. Тольятти, Самара, 2006, С. 60-61.

92. Никитин И.Н., Шаманов М.Х., Воскобойников В.Ф. Организация и экономика ветеринарного дела// М., "Колос", 1996,272 с.

93. Никольский Г.В. Частная ихтиология// М., 1971,471 с.

94. Новак М.Д., Новак А.И. Модель паразитарной системы «Toxoplasma gondii животные, люди» // В сб.: «Теория и практика борьба с паразитарными болезнями». М., 2003, с.291-293.

95. Новак М.Д., Новак А.И. Паразитоценозы водных экосистем// Кострома, Издательство Костромской ГСХА, 2003,139 с.

96. Новак М.Д., Новак А.И., Феоктистов С.К. Модель паразитарной системы «Ligula intestinalis карповые рыбы» // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. М., 2003, с.288-290.

97. Новак М.Д., Петухов А.Н., Новак А.И. Микстинвазии леща на Костромском участке Горьковского водохранилища // Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьба с паразитарными болезнями». М., 2001, с .179-181.

98. Быховский Б.Е. Определитель паразитов пресноводных рыб СССР// М.-Л., 1962,776 с.

99. Быховский Б.Е. Определитель паразитов позвоночных Черного и Азовского морей//Киев, Наукова Думка, 1975, 551 с.

100. Бауер О.Н. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР // Л., Наука, 1984, т.1,488 с.

101. Бауер О.Н. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР // Л., 1985, т.2, с.426, т.З, с.583.

102. Бауер О.Н. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР // Л., Наука, 1985, т.2,425 с.

103. Осетров B.C. и др. Болезни рыб// Справочник, М., Агропромиздат, 1989, 288 с.

104. Османов С.О. Паразиты рыб УзбекистанаЛ Ташкент, 1971, 532 с.

105. Павлович Г.М. Эпизоотическая обстановка в рыбоводных хозяйствах Росрыбхоза// Тезисы докладов Международной научной конференции. Ростов-на-Дону, 2006, С. 68-69.

106. Панасенко В.В. Эпизоотология, патогенез при ихтифтириозе прудовых рыб и меры борьбы в условиях промышленного рыбоводства // Автореф. дис. канд. биол.наук. ВИЭВ, М., 1985,22 с.

107. Панасенко В.В., Корочанская С.П. Некоторые вопросы патогенеза при ихтифтириозе // В кн.: «Профилактика и меры борьбы с болезнями рыб при интенсивных методах выращивания». Краснодар, 1978, с.84-85.

108. Петров Ю.Ф. и др. Рекомендации по профилактике паразитарных и ассоциативных заболеваний шмелей Bombus terestis (L.) в условиях их круглогодичного лабораторного разведения для опыления с.х. культур закрытого грунта, Иваново, 2001,18с.

109. Петрушевский Т.К., Шульман С.С. Паразитарные заболевания рыб в промысловых водоемах СССР// В кн.: «Основные проблемы паразитологии рыб». M.-JL, 1958,301-321 с.

110. Поддубная А.В. Изменчивость и специфичность лерней прудовых рыб//Тр. ВНИИПРХ. М„ 1973, т.22,159-173 с.

111. Привезенцев Ю.А. Интенсивное прудовое рыбоводство// «Агропромиздат». M.V 1991,3 с.

112. Пронин Н.М. Пронина С.В. Сфероспороз почек окуня // Ж-л «Паразитология». М., 1985, т. 19, вып.3,238-241 с.

113. Пронина С.В., Пронин Н.М. Взаимоотношения в системах

114. Пугачев О.Н. Гельминты пресноводных рыб Северо-Востока Азии // Исследования по морфологии фаунистике паразитических червей. Тр.

115. Зоол. института АН СССР. Л., 1983, т.121, с.90-113. 141. Пугачев О.Н. Паразитарные сообщества и нерест рыб //

116. Ройтман В.А. Изменение численности возбудителей гельминтозов карпов при выращивании в тепловодном рыбопитомнике // В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». Душанбе, Дониш, 1986, С. 143-145.

117. Ройтман В.А. Системология паразитизма новая область паразитологических исследований// Матер. Всеросс. научн. конф. «Взаимоотношения паразита и хозяина», М., 1998, с. 52.

118. Ройтман В. А. Трансграничное проникновение возбудителей опасных паразитозов рыб в Российскую Федерацию // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.30-31.

119. Ройтман В.А., Молоканова И.А., Казаков Б.Е., Беэр С.А., Перевертин К.А. К методологии изучения взаимодействующих паразитарных систем // Труды института паразитологии РАН. 2002, с.43.

120. Рокицкий П.Ф. Биологическая статистика// Минск, Высшая школа, 1973,320 с.

121. Роскин Г.И., Левинсон Л.Б. Микроскопическая техника// М., 1957,

122. Румянцев Е.А. К истории формирования фауны паразитов рыб внутренних водоемов Европейского Севера// Ж-л «Паразитология». М.,

123. Гельминты-рыбы»// М.; Наука, 1988,287 с.467 с.2001,35, № 3, с.213-220.

124. Румянцев Е.А. Становление фауны паразитов рыб в озерах разного типа // Тезисы докладов Всероссийской научной конференции «Взаимоотношения паразита и хозяина». М., 1998, с. 82.

125. Русинек О.Т. История формирования паразитофауны рыб озера Байкал// Ж-л «Паразитология». М., 2006,40, № 3, С. 275-289.

126. Рыжников А.И., Дмитриев В.Л., Саркисян В.И. Лигулез пестрого толстолобика в прудах юга Украины// Материалы I Всеукраинской конференции «Проблемы ихтиопатологии». Киев, 2001, с.98-100.

127. Садковская О.Д. Изменение лейкоцитарной формулы карпа при инвазии // В кн.: «Работы по гельминтологии к 80-летию академика К.И.Скрябина». М, 1967, с.320-321.

128. Сапожников Г.И., Игнатьева А.Д. Гематологические показатели растительноядных рыб при паразитарных заболеваниях// Труды НИИ проектно-технологического института жидких удобрений. 1985, №46, с.56-58.

129. Сапожников Г.И. Профилактика диплостомозов растительноядных рыб // Растительноядные рыбы в промысловом рыбоводстве// Тезисы докладов 9 Всесоюзного совещания. Ташкент, 1980, с. 192-193.

130. Сапожников Г.И. Биологические методы борьбы с гельминтозами рыб// Тезисы докладов Всероссийского симпозиума «Роль рос. гельминтол. школы в развитии паразитологии». М., 1997, с. 45.

131. Сапожников Г.И., Лысенко А.А. Временная инструкция о мероприятиях по борьбе с постодиплостомозом пресноводных рыб// Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. М., 1999, ч.2, С. 4853.

132. Сапожников Г.И., Лысенко А.А. Инструкция по борьбе с миксоболезом толстолобиков в прудовых рыбоводных хозяйствах// Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. М., 1998, ч.1, С. 206212.

133. Сапожников Г.И. Постодиплостомоз пресноводных рыб// Ж-л «Ветеринария». М., 2001, №8, с. 27-32.

134. Сапожников Г.И. и др. Рекомендации по профилактике кишечных цестодозов прудовых рыб// Труды ВИГИС. М., 2004, С. 437445.

135. Сапожников Г.И., Исков М.П., Камышина Л.Д. К изучению клиники некоторых ассоциативных болезней толстолобика// Тезисы докладов II Всесоюзного съезда паразитоценологов. Киев, Наукова Думка, 1983,304 с.

136. Сапожников Г.И., Маштаков А.В., Козаченко Н.Г. Система мероприятий по борьбе со смешанными болезнями // Ж-л «Ветеринария». М„ 1994, №9, с. 17-20.

137. Сахнина З.М. К изучению ихтиопаразитофауны рыбхозов Краснодарского края// В кн.: «Материалы 3-й зоологической конференции пединститута РСФСР». Волгоград, 1967, с.232-233.

138. Сахнина 3. М. Паразиты рыб реки Кубань// В кн.: «Работы по паразитофауне Юго-Запада СССР». Волгоград, 1983, с. 120-121.

139. Седов В. А., Зимин H.JL, Сапожников Г.И. Организация диагностики болезней рыб: состояние и перспективы // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с. 19-21.

140. Селиверстов В.В., Мамонтов Ю.П. Современное состояние и перспективы развития аквакультуры в России// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.8-10.

141. Семененков E.IL, Петров Ю.Ф. Возрастная динамика диплостомоза карпов// Тезисы докладов научно-практической конференции «Актуальные проблемы науки в сельскохозяйственном производстве». Иваново, 1997,193 с.

142. Семененков Е.П. Паразитофауна и меры борьбы с основными гельминтозами рыб в рыбоводных хозяйствах центрального района Нечерноземья Российской Федерации// Автореф. дисс. канд. вет. наук. -Иваново, 1998,26 с.

143. Семененков Е.П., Петров Ю.Ф. Кавиоз карпов в прудовых хозяйствах Ивановской области// Тезисы докладов научно-практической конференции «Актуальные проблемы науки в сельскохозяйственном производстве». Иваново, 1997, 165 с.

144. Семенова Н.Н., Иванов В.М. Нематоды возбудители заболеваний рыб в дельте Волги// Материалы докладов научной конференции

145. Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 1999, 84-85 с.

146. Сергеева Е.Г., Беэр С. А. Факторы паразито-хозяинной специфичности // Тр. Института паразитологов РАН. 2000,42 с.

147. Скачков Д.П., Борисова М.Н. Современные методы терапии некоторых гельминтозов карпа// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.117-118.

148. Скрябин К.И. Девастация в борьбе с гельминтозами и др. болезнями человека и животных// Фрунзе, Изд-во Кирг. фил. АН СССР, 1947,98 с.

149. Скурат Э.К., Дегтярик С.М., Гребнева Е.И., Бенецкая Н.А. Фитопрепараты для профилактики эктопаразитарных заболеваний рыб// Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре. М., 2000, с.116-117.

150. Смирнов A.M., Скира В.Н. Задачи ветеринарной науки в рыбоводстве России // Тез. доклада Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и др. гидробионтов». М., 2003, с. 123-124.

151. Сондуева Л.Д. Паразиты плотвы сибирской и ельца сибирского оз. Байкал: сообщества и пространственное распределение// Тезисы Всероссийской конференции с международным участием. Улан-Удэ, 2006, С.178-179.

152. Соторов П.П. Справочник ветеринарного врача-ихтиопатолога // М., Росзоовестснабпром, 1999,247 с.

153. Стрелков Ю.А. Влияние особенностей современного рыбоводства на эпизоотическое состояние рыбоводных хозяйств// В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с.119-120.

154. Сулейманян B.C., Панасенко В.В., Денисов А.И. Сборник нормативных документов по профилактике и борьбе с инфекционными и инвазионными болезнями прудовых рыб// Краснодар, 1983,40 с.

155. Третьяк О.М., Онученко О.В., Кулишов О.В., Ганкевич Б.О. Лернеоз сеголеток веслоноса в условиях прудового развития // Проблемы ихтиопатологии: Мат. 1 Всеукр. Конференции. Киев, 2001, с.113-116.

156. Тромбицкий И.Д. Гематологические показатели толстолобиков и буффало в норме и при болезнях // В кн: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». Душанбе, 1988, 76-79 с.

157. Тромбицкий И.Д. Картина крови белых и пестрых и большеротого буффало при зараженности метацеркариями рода Diplostomum (Trematoda , Diplostomidae) // Ж-л «Паразитология». JL, 1987, т.21, вып.1, с.43-49.

158. Успенская А. В. Цитология миксоспоридий// JL, Наука, 1984,112 с.

159. Успенская А.В., Райкова Е.В. Цитологические аспекты, сходство и\ \ Iразличия миксоспоридий и книдарий // Ж-л^ «Цитология». 2001, 43, №3, 248-309с.

160. Фаттахов Р.Г. Динамика паразитофауны рыб в водоемах г.Тюмени// Проблемы взаимодействия человека и природной среды. 2001, № 2, с. 100103.

161. Федоров Ю.Н. и др. Иммунодефицита домашних животных// М., 1996, 95с.

162. Хайбулаев К.Х., Газимагомедов А.А. Об эпизоотологии миксоболёза толстолобиков в водоемах Дагестана // Ж-л «Цитология». 1992, т.34, №4, с.157-158.

163. Хайбулаев К.Х. О распределении некоторых новых болезней рыб во внутренних водоемах Дагестана// В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном хозяйстве». Душанбе, 1988, с.94-97.

164. Хайбулаев К.Х., Атаев A.M., Алигаджиев А.Д., Газимагомедов А.А., Димплостоматоз толстолобиков в прудных хозяйствах Дагестана// Проблемы паразитологии. Киев, 1975, ч.2, с. 236-238.

165. Харри Б.И. Опыты по заражению Carassius auratus спорами Myxobolus carassii (Myxozoa) // Ж-л «Цитология». 1992, т.34, №4, с. 158159.

166. Чепурная А.Г. Миксоспоридиозы рыб дельты Волги// Тез. доклада Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и др. гидробионтов». М., 2003, с.135-136.

167. Чепурная А.Г. Роль безпозвоночных в элиминации спор Myxobolus pavlovskii (Achmerov. 1954) (Myxosporea, Myxobolidae) // Сб. трудов ВНИИПРХ. 1991, № 63, с. 58-62.

168. Чепурная А.Г. Эпизоотологический мониторинг и профилактика заболеваний рыб в рыбоводных фермерских хозяйствах юга России.// Тезисы докладов Международной научной конференции. Ростов-на-Дону, 2006, С.97-99.

169. Шаова Н.Д. Паразитофауна рыб бассейна р. Кубань // В кн. Всесоюзное совещание по болезням и паразитам рыб и водных беспозвоночных. JL, 1968, с.130-131.

170. Шедько М.Б. Распространение метацеркарий трематод семейства Diplostomidae в пресноводных экосистемах приморья // Материалы докладов науч. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2002, в.З, С.379-380.

171. Шестаковская Е.В. Профилактика заболеваний культивируемых рыб в прудовых хозяйствах юга России.// Тезисы докладов Международной научной конференции. Ростов-на-Дону, 2006, С. 99101.

172. Шигин А.А. Гельминты водных животных // М., 1982.

173. Шигин А.А. Опыт профилактики диплостомозов рыб в Куйбышевском рыбхозе Таджикистана // Материалы докладов науч. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями ».- М., 1999.-c.316.

174. Шульман С.С. Миксоспоридии фауны СССР// M.-JI., «Наука», 1966, с.507.

175. Щербина А.К. Суховерхов Ф.М. Болезни рыб и основы рыбоводства//М., «Колос», 1984, с.190.

176. Юнчис О.Н. Некоторые особенности эпизоотологии миксоспоридиозов // В кн.: «Биологические основы рыбоводства: паразиты и болезни рыб». М., «Наука», 1984, с. 127-129.

177. Яковчук Т.А. О биологии Myxobolus pavlovskii (Myxosporea, Myxobolidae)// Ж-л «Паразитология». М., 1981,15, №5, с.473-475.

178. Яковчук Т.А. О биологии Myxobolus pavlovskii (Myxosporea, Myxobolidae)// В кн.: «Тезисы докладов 7 Всесоюзного совещания по паразитологии и болезням рыб». Л., 1979, с. 124-125.

179. Яковчук Т.А., Нестерова Р.А. Паразиты и болезни карпа в садковом хозяйстве Краснодарской ТЭЦ// В кн.: «Болезни и паразиты в тепловодном рыбном хозяйстве». Душанбе, Дониш, 1986, С. 139-143.

180. Яковчук Т.А. Паразиты, инвазионные болезни рыб и меры борьбы с ними в прудовых хозяйствах Краснодарского края// Афтореф. канд. дисс. Л, 1974, с.21.

181. Яременко Н.А., Мачнев А.Н. Эпизоотическая обстановка по заразным болезням рыб в Российской Федерации // В сб.: «Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре». М., 2000, с. 10-13.

182. Black J.J., Holmes M. Pymerslci P.P., Zapisek W.F. Hydrocarbons and Halogenated Hydrocarbons Aquat. Environ. Proc. Int. Symp. Anal. Hydrocarbons and Halogenated Aquatic Environ. Ontario, 1978. N.Y. -London, 1980, p. 525-528.

183. Chacko A., Hoffmann J. et al. Cudoa thyrsilles detected in the muscules of famed atlantic salmon from Chile// 10th int. conf. desease of fish and shellfish. Dublin. - 2001.-p.52

184. Csaba Y. An unidentifiable extracellular sporozoan parasite from the blood of the carp // Parasitol. 1 lung.-1976.-v.9.-p.21-24.

185. Diamant A. Stydies of the transmission of Myxidium leei a myxosporian gut parasite of gilthead siabrean // Abstr. int. simp, biochem. and mol. Approaches seabream. Bamidgeb. - 1998. - 50. - N4. P.212

186. Dykova Y., Lom Y. Hystopathological changes in fish gills infected with Myxosporidian parasites of the genus Henneguya // Y.Fish Biol.-1978.-vol.12.-p. 197-202.

187. Ergonul M.B., Altindag A. The occurence and dynamics of Ligula intestinalis in its cyprinid fish host, tench, Tinea tinea, in Mogan Lake (Ankara, Turkey).// Vet. med. 2005. - 50, № 12. - P. 537-542.

188. El-Matbouli M. Hoffmann R.W. Prevention of experimentally induced whirling disease in rainbow trout oncorhynchus mykiss by Fumagillin // Dis. aquat. Org.-1991.-vol. 10-p 109-113.

189. Feist S.W. et al. Observations on Myxidium gadi (Georgevitch, 1916) in sai Polachins virens L. // Eur. Y. Protistol.-1992.-28.-N 3.-p.339.

190. Garkawi B.L. Zverzhanovski M.Y. Lysenko A.A. Parasitemia of big head (Arysthichthys nobilis) caused by Myxodolus sp. // Yn: Problems of Fish Parasitology/Abstr. Ill International simposium.-Petrozavodsk.-1991.-p.23.

191. Gowen, D.E. 1983. The myxosporean parasites of six species of fish (Cyprinidae) from Lake Sasajewun. Algonquin Park, Canada. M.Sc. Thesis. University of Toronto, Toronto. Ontario. 424 p.

192. Grodnik. G. and W. korting. 1992. First evidence that Hoferellus cyprini (Doflein. 1898) is transmitted by Nats sp. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists 12: 17-20.

193. Hamilton A.Y., Canning E.U. Studies on the proposed role of Tubifex tubifex (Muller) as an intenntdiate host in the life cycle of Myxosoma cerebralis Hofer, 190J // Y. Fish Dis. 1987.-10.-p.l45-151,

194. Hedrick R.P. et al. Oral administration of Fumagillin DCH protects Chinook salmon Oncorinhynchus tshawytscha from experimentally induced proliferativ; kidney disease// Dis. aquat. Org.-1988.-vol.4.-p. 165-168.

195. Hines R., Spira D. Ychthyophthirius multifiliis in the mirrop carp (Cyprinus carpio L.) // Leykocyte response/ Y. Fish Biol.-1973.-5.-N 4.-p.527-531.

196. Hoffmann G.L., Desinfection of contaminated water by ultraviolet irradiation with emphasis on whirling disease (Myxosoma cerebralis) and its effect on fish//Trans. Amer. Fish Soc.-1974.-vol. 103.-p.541-550.

197. Janiszewska. J. 1955. Actinomyxidia: Morphology, ecology, history, investigations, systematics, development. Acta Parasitologica Polonica 2: 405-453.

198. Korting W. Protozoan parasites associated with swim bladder inflammation (SBI) in young carp // Bull. European Association Fish Pathol.-1982.-voL2.-N l.-p.25-28.

199. Kovaes-Gayer E. et al. Studies on the protozoan etilogy of swim bladder inflammation in common carp fry // Bull. European Association Fish Pathol.-1982.vol.2.-Nl .-p.22-24.

200. Lom Y., Dykova V. Fine structure of Sph. renicola Dykova ET Lom, 1982 Myxosporean from carp kidney and comments on the origin of pansporoblasts // Protistologica.-1982.-vol. 18.-p.489-502.

201. Lom Y., Dykova Y. Pavlaskova M. "Unidentified" mobile protozoans from the blood of carp and some unsolved problems of Myxosporean life cycles // Y. Protozool.-1983.-N 30.-p.447-508.

202. Luky Z. Investigation on invasive diseases of tne herbivorous fish and their treatment // Fish, Pathogens and Invironment in European Polyculture.-1984.-p.l73-180.t

203. Makkiw. M. E. and K. Wolf . 1983. Myxosoma cercbralis (Myxozoa: Myxosporea) ethiologic agent of salmonid whirling disease requires tubificid worm (Annelida: Oligochaeia) in its life cycle. Journal of Protozoology 30: 561-564.

204. Maroles. A. 1984. Contribution a la connaissance des Actinomyxidies: Ultrastructure. cycle biologique. systematique. Ph.D. Thesis. Universite des Sciences el Techniques du Languedoc. France, 218 p.

205. Mitchell L.G. Myxosporidia. In: Parasitic Protozoa / Ed. J.P. Kreier. Ohio State. - 1977. - vol. 4. - p. 115-155.

206. Moffit Ch., Haukenes A. et al. Dstributions of Myxobolus cerebralisin three-ranging fish populations in Idaho: association with landscape ♦hvariables // 4 int. symp. on aquatic animal health.-New 0rlean.-2002.-p. 154

207. Molnar K. Kovacs-Gayer E. The pathogenicity and development within the host fish of Myxobolus cyprini Doflein, 1898 // Parasitology.-1985.-90.-p.549-555.

208. Molnar К . Myxobolus pavlovskii (Achmerov, 1954) (Myxosporidia) Infection in the silver carp and bighead // Acta vet. hung . 1979. - XXVII ( 3).-p. 207-216.

209. Molnar K., Baska F., Szekely Y. Fumagillin. an efficacious drug against renal sphaerosporosis of the common carp Cyprinus carpio // Dis. aquat. Org.-1987.-vol.2.-p. 187-190.

210. Molnar K., Szekely C., Dian A. Morphological and molecular biological studies on intramuscular Myxobolys spp. of cyprinid fish // Journal Fish deseases 2002.-25 N11 .-p.643-652

211. Noble E.R. 1944. Life cycles in the Myxosporidia. Quart. Rev. Biol., p. 213-235.

212. Nouth W.M. Hoffmann R. et al. Cellular defence systems of susceptible and non-susceptible tuboficied oligohaetes pro- and postinfections with Myxobolus cerebralis // 10th int. conf. desease of fish and shellfish. Dublin. - 2001 .-p. 156

213. Obiekezie A., Schmahl G. Henneguya laterocapsulata Laudsberg, 1987 (Myxosporea, Myxozoa) in cultered hybrid African catfisch: ultrastructure of the parasite-host interface// Eur. Y. Protistol.-1993.-29.-N l.-p.38-41.

214. Palm H., Klimpel S., Bucher C. Cheehest of metazoan fish parasites of German coastal waters // Ber. inst. merest. 1999.-N307.-p. 1-148

215. Panzuella O., Redondo M. et al. Investigation of the life cycle of entheromyxym spp (myxozoa). A two-host cycle? //4th int. symp. on aquatic animal health.-New 0rlean.-2002.-p.164

216. Paperna Y. Some observations on the biology and ecology of Dactylogyrus vastator in Ysrael // Bull. Fish Cult. Ysrael.-Bamidgeh.1963.-vol.15.-N l.-p.8-28.

217. Paperna Y. Host reaction to infestation of carp with Dactylogyrus vastator Nybelin, 1924 (Monogenea) // Bull. Fish Cult. Ysrael.-Bamidgeh.1964.-v.l6.-N4.-p.l29-141.

218. Ruidisch. S., M. El-Matbouli, and R. W. Hoffmann. 1991. The role of tubificid worms as an intermediate host in the life cycle of Myxobolus pavlovskii (Akhmerov. 1954). Parasitology Research 77: 663-667.

219. Schaperclaus W . Fishkrancheiten . Berlin . - 1954. - p . 708 ,

220. Schott A., Hoffmann R. et al. Afficasy of TNP-470 on the development of the experimentally induced whirling desease in rainbow trout // 10th int. conf. desease offish and shellfish. Dublin. - 2001.-p. 164

221. Segal R. Autolion R. et al. The use of polyclonal antibodies for detection of myxidium leei infections in fish // J. Aquacult. 1998.-50.-N4.-p.161-166

222. Smith C.E., Inslee Т. Association diseases of fishes in ponds New Caroline//Y. Fish Diseases,-1980.-3.-p.257-260.

223. Sommervillh C. and R. Wootten. 1997. Studies of actinosporean myxozoan stages parasitic in oligochaetes from the sediments of a hatchery where Atlantic salmon harbour Sphaerospora irutlac infection. Diseases of Aquatic Organisms 30: 107-1 19.

224. Styer, E. L. L. R. Harrison, and G. J. Burtle. 1991. Experimental production of proliferative gill disease in channel catfish exposea to a myxozoan-infected oligochaete. Dero digitata. Journal of Aquatic Animal Health 3:288-291.

225. Szekely G., Molnar K., Racz O. Complete developmental cycle of Myxobolus pseudodispar // Journal Fish deseases 2001 .-24 N8.-p.461-468

226. Thelohan P. Recherches sur les Myxosporidies // Bull. sci. France et Belgique.-1985.-t.26.-p. 100-394.

227. Zhang J.Y., Wang J.G., Li A.H., Gong X.L., Cai T.Z. Redescription of Myxobolus pyramidis Chen, 1958 (Myxosporea: Bivalvulida).// Parasitol. res. 2006. - 99, № 1. - P. 65-69.

228. Xu D.-H., Klesius P.H., Panangala V.S. Induced cross-protection in channel catfish, Ictalurus punctatus (Rafinesque), against different immobilization serotypes of Ichthyophthirius multifiliis.// Journal Fish diseases. 2006. - 29, № 3. - P. 131-138.

229. Wardlaw A. J. Eosinophils biology and role in disease / A. J. Wardlaw. R. Moqbel. A. B. Kay//Adv. Immunol. 1995. - V. 60. -P.151.266.

230. Wolf, К., and M. E. Markiw. 1984. Biology contravenes taxonomy ii the Myxozoa: New discoveries show alternation of invertebrate and vertebrate hosts. Science 225: 1449-1452.

231. Wu-Pao-Hua et al. Twist diseases of Hypophthalmichthys molitrix in Hangchow region of Chekiang province//Acta Zool. Sinica.-1975.-21.-p.190

232. Yokoyama H. et al. Development of Myxidium spp. (myxozoa) in the intestine of tiger puffer experimentally fed with infected gut tissue //4th int. symp. on aquatic animal health.-New 0rlean.-2002.-p.195