Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Этиологическая структура гнойно-воспалительных заболеваний у хирургических и ожоговых больных на примере стационаров г. Якутска

ВАК РФ 03.00.07, Микробиология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Шамаева, Степанида Харитоновна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ, ПРИНЯТЫХ В ДИССЕРТАЦИИ.

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 .Распространенность гнойно-воспалительных заболеваний в стационарах хирургического профиля.

1.2.Этиология гнойно-воспалительных заболеваний.

1.3.Особенности антибиотикорезистентности ведущих возбудителей ГВЗ.

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1.Характеристика обследованных групп больных.

2.2. Объем и методы микробиологических исследований.

2.3.Объем и методы санитарно-бактериологических исследований.

2.4.Методы статистической обработки результатов.

ГлаваЗ. СПЕКТР, ЧАСТОТА ВЫДЕЛЕНИЯ И

АНТИБИОТИКОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ГВЗ У ХИРУРГИЧЕСКИХ И ОЖОГОВЫХ БОЛЬНЫХ

3.1.Мониторинг возбудителей ГВЗ у хирургических и ожоговых больных.

3.2.Спектр и частота выделения возбудителей ГВЗ у пациентов хирургического профиля.

3.3.Спектр и частота выделения возбудителей ГВЗ у ожоговых больных.

3.4.Динамика микрофлоры очагов воспаления хирургических и ожоговых больных.

3.5.Чувствительность к антибиотикам ведущих микроорганизмов, выделенных из очага воспаления хирургических и ожоговых больных.

Глава 4.ЧАСТОТА ВСТРЕЧАЕМОСТИ И РЕЗИСТЕНТНОСТЬ К ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИМ СРЕДСТВАМ МИКРООРГАНИЗМОВ,

ВЫДЕЛЯЕМЫХ ИЗ ОБЪЕКТОВ СРЕДЫ, ОКРУЖАЮЩЕЙ БОЛЬНОГО В СТАЦИОНАРЕ

4.1.Частота выделения микроорганизмов, выделяемых из объектов среды, окружающей больного в стационаре.

4.2.Резистентность к дезинфицирующим средствам ведущих микроорганизмов, выделяемых из объектов среды, окружающей больного.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Этиологическая структура гнойно-воспалительных заболеваний у хирургических и ожоговых больных на примере стационаров г. Якутска"

Актуальность темы. Настоящее исследование посвящено изучению этиологической структуры гнойно-воспалительных заболеваний (ГВЗ) у больных в стационарах хирургического профиля и ожоговых отделений. Важность этой проблемы определяется тем, что гнойно-воспалительные процессы приобретают особую актуальность в общей структуре хирургической заболеваемости и при ожоговой болезни. Это обусловлено широким распространением и выраженной тяжестью их клинических проявлений, значительным увеличением сроков стационарного лечения, трудностями диагностики и высокой летальностью.

Некоторые авторы отмечают, что гнойно-септические осложнения, в том числе внутрибольничного характера, могут поражать в некоторых хирургических стационарах 35 - 70% больных, а средний показатель послеоперационных раневых инфекций составляет около 6,1 на 1000 выписавшихся больных [97, 69, 17, 129, 84, 87]. Ряд исследований показывает, что количество гнойных осложнений у обожженных практически не имеет тенденции к снижению, и их процент колеблется от 7 до 48% случаев [7,41].

Важность данной проблемы усугубляется и в связи с заметным расширением видового спектра микрофлоры, способной играть этиологическую роль в развитии гнойно-воспалительных заболеваний. Фактически доказано, что бактерии, считавшиеся ранее не способными вызывать заболевания у здорового человека, теперь нередко могут быть причиной гнойно-воспалительных процессов различной локализации, что особенно отчетливо проявляется у иммунокомпрометированного контингента [159].

Для возбудителей гнойно - септических осложнений, в том числе, госпитальной природы, характерна высокая устойчивость к антибактериальным препаратам (устойчивость к наиболее часто применяемым антибиотикам может достигать 70-90%) [24, 116, 132, 173, 178].

Интерес к данной проблеме определяется также изучением возможного влияния климато - географических особенностей на распространение и этиологию ГВЗ. Существуют работы, посвященные анализу частоты и этиологической структуры указанной патологии в различных регионах как нашей страны, так и за рубежом [110, 56, 8, 43]. Вместе с тем, в доступной литературе мы не встретили работ, посвященных исследованию этой проблемы в условиях криолитозоны; отсутствуют данные об этиологической структуре ГВЗ и их отношения к антибактериальным препаратам у хирургических и ожоговых больных региона Якутии, а также данные по сравнительному мониторингу таксономии возбудителей ГВЗ.

Таким образом, актуальность изучения ГВЗ в условиях региона Якутии определяется: широкой распространенностью гнойно-воспалительных заболеваний в общей структуре хирургической заболеваемости; широкой распространенностью инфекционных осложнений у обожженных больных; отсутствием данных по частоте встречаемости и сравнительному мониторингу таксономии возбудителей ГВЗ у хирургических и ожоговых больных в условиях криолитозоны.

ЦЕЛЬЮ настоящего исследования явилось изучение этиологической структуры ГВЗ у больных хирургического профиля и отделения термической травмы г.Якутска (на примере Якутского Республиканского Центра экстренной медицинской помощи).

Поставленная цель достигалась решением следующих задач:

1.Изучить видовой состав микроорганизмов - возбудителей ГВЗ у хирургических и ожоговых больных в условиях криолитозоны (стационары г. Якутска).

2.Изучить чувствительность к антибактериальным препаратам и дезинфицирующим средствам ведущих возбудителей ГВЗ

3.Оценить санитарно-гигиеническое состояние среды, окружающей больного, с целью выявления причинно-следственных связей в распространении внутрибольничной инфекции.

4.Создать основу базы данных, включающих информацию о структуре возбудителей и частоте встречаемости ГВЗ в Республике Саха (Я), для проведения полноценного эпидемиологического анализа и контроля.

Тема диссертации является разделом инициативной научно-исследовательской работы кафедры гистологии с курсом микробиологии медицинского института Якутского государственного университета «Микроэкологические аспекты состояния здоровья человека на Севере». НАУЧНАЯ НОВИЗНА

1 .В ходе работы впервые изучены этиологическая структура гнойно-воспалительных заболеваний (ГВЗ) в стационарах хирургического профиля и отделения термической травмы г. Якутска, проблемными патогенами в которых являются S.aureus, P.aeruginosa и Proteus spp.

2.Впервые проведен сравнительный анализ антибиотикочувствительности ведущих возбудителей ГВЗ в условиях Республики Саха (Я), свидетельствующий, что до 40% S.aureus устойчивы к макролидам, тетрациклинам, аминогликозидам, фторхинолонам; до 74% Proteus spp. - к ампициллину, тетрациклинам, аминогликозидам и фторхинолонам; до 71,5% P.aeruginosa - к аминогликозидам, тетрациклинам, фторхинолонам, цефалоспоринам.

3. Впервые выявлена прямая корреляционная связь между возбудителями ГВЗ (S.aureus, P.aeruginosa, E.coli) и штаммами микроорганизмов, выделенными из объектов среды, окружающей больного в условиях стационаров г. Якутска.

4.Впервые осуществлен комплексный анализ изучения биологических свойств наиболее частых возбудителей ГВЗ в условиях криолитозоны, который позволил констатировать отсутствие влияния климато - географического фактора на проявления биологических свойств данных возбудителей. Этот факт позволил выполнить исследования по классической идентификации выделенных микроорганизмов.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ

Проведенные исследования являются первым и основным этапом работы по мониторингу ВБИ в Республике Саха (Я). По результатам исследований разработана и внедрена в практическое здравоохранение Республики Саха (Я) электронная база данных по микробиологическому мониторингу указанных заболеваний, для более детальных исследований этой проблемы и контроля над эпид. ситуацией в условиях хирургических стационаров.

ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫДВИГАЕМЫЕ НА ЗАЩИТУ

1 .Ведущими возбудителями ГВЗ у хирургических и ожоговых больных в стационарах хирургического профиля и отделения термической травмы в условиях криолитозоны (стационары г.Якутска) являются S.aureus, P.aeruginosa и Proteus spp. с высокой резистентностью к ряду антибактериальных препаратов различных групп ( пенициллины, тетрациклины, аминогликозиды, макролиды, фторхинолоны, цефалоспорины I - III поколений).

2.При микробиологическом исследовании смывов с предметов среды, окружающей больного, чаще всего встречаются S.aureus, P.aeruginosa, E.coli резистентные к дезинфицирующим средствам.

3. Анализ этиологической структуры ГВЗ и резистентности ведущих инфекционных агентов к различным антибактериальным препаратам, а также распространенность этих же микроорганизмов во внешней среде обследованных стационаров является основанием для утверждения о наличии циркуляции госпитальных штаммов в данных медицинских учреждениях.

ВНЕДРЕНИЕ В ПРАКТИКУ

Подготовлена электронная база данных «Микробиологический мониторинг возбудителей внутрибольничных инфекций в лечебно-профилактических учреждениях Республики Саха (Я)» М.:ВНТИЦ, 2006.-№50200600236.

Материалы, доложенные на II Республиканской научно-практической конференции молодых ученых, 2003 г. и на семинарах для врачей - бактериологов ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии Республики Саха (Якутия), 2004 г. способствовали широкой информации врачей и научной общественности РС(Я) о проведенных исследованиях и получили высокую оценку.

Полученные данные используются в бактериологических лабораториях ГУ ЯНИИТ, Республиканского Центра экстренной медицинской помощи (РЦЭМП) и учебном процессе при проведении лабораторно-практических занятий по микробиологии со студентами медицинского института Якутского государственного университета (ЯГУ).

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

При отсутствии в настоящее время данных об этиологической структуре гнойно-воспалительных заболеваний у больных региона Якутии рекомендуется: продолжить работу по мониторингу гнойно-воспалительных заболеваний в условиях РС(Я) с целью отслеживания этиологической динамики этих заболеваний. созданную в ходе работы электронную базу данных рекомендуется использовать в практике хирургических стационаров для осуществления корректного подхода к тактике ведения больных, выбору рациональной антибиотикотерапии и использованию адекватных дезинфектантов, как одного из направлений профилактики ГВЗ в стационарах, целесообразно провести подобные исследования в терапевтических стационарах, что позволит дополнить имеющиеся данные и сравнить этиологический характер в зависимости от нозологии, для получения полной информации о возбудителях гнойно-воспалительных процессов различной локализации у больных региона РС(Я).

Заключение Диссертация по теме "Микробиология", Шамаева, Степанида Харитоновна

выводы

1 .Наиболее частой причиной ГВЗ у больных в условиях криолитозоны, находящихся в хирургическом и ожоговом отделениях являются представители семейства Enterobacteriaceae: E.coli, Kl.pneumoniae, Proteus spp; из неферментирующих грамотрицательных бактерий - P.aeruginosa, а также S.aureus и по ряду заболеваний -Enterococcus spp.

2.Изученные группы условно-патогенных микроорганизмов, вызывающие ГВЗ в условиях стационаров г.Якутска, обладают широким спектром резистентности к антибиотикам из групп тетрациклинов, аминогликозидов, макролидов, пенициллинового ряда и к растворам дезинфектантов (0,2% раствор жавель-солида, 0,05% р-р хлормиксидина и 0,015% р-р сульфахлорида).

3.При санитарно-гигиеническом обследовании среды, окружающей больного, было выявлено широкое распространение УПМ, аналогичных возбудителям ГВЗ у хирургических и ожоговых больных. Это позволяет сделать заключение о наличии связи между циркуляцией УПМ во внешней среде стационаров и возбудителями гнойно-септических осложнений у пациентов этих ЛПУ.

4.Созданная на основе проведенных исследований база данных о структуре возбудителей и частоте встречаемости ГВЗ у хирургических и ожоговых больных в Республике Саха (Я) позволяет выявить особенности динамики возбудителей ГВЗ, формирование у них резистентности к антибиотикам и дезинфицирующим средствам, что в конечном итоге должно положительно сказаться на процессе лечения и сроках выздоровления данных пациентов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Гнойно-воспалительные заболевания, вызванные условно-патогенными микроорганизмами, продолжают оставаться одной из актуальных проблем современной медицины.

Приведенные в настоящем исследовании материалы об этиологических особенностях ГВЗ у хирургических и ожоговых больных позволили придти к определенному заключению.

В результате анализа данных 2024 проб, анализированных в 2001 -2004 г.г. было установлено, что у хирургических больных с ГВЗ, находящихся на стационарном лечении, происходили определенные изменения спектра и частоты встречаемости возбудителей. Они выразились в уменьшении частоты выделения грамположительных кокков (с 61,7% в 2001 г. до 58,6% в 2004 г.). В основном это происходило за счет снижения встречаемости стафилококков (с 34,6% до 22,7%) и стрептококков (с 16,5% до 12,8%), при одновременном росте количества проб, обсемененных энтерококками (с13,4% до 22,4%).

Вместе с тем, за проанализированный период было отчетливо заметно увеличение роли грамотрицательных палочек в возникновении ГВЗ у хирургических больных. Этот рост был обусловлен более высокой частотой встречаемости представителей семейства Еп1егоЬас1епасеае, в том числе Е.соН (с 13,4% в 2001 г. до 21,9% в 2004 г.). Частота выделения неферментирующих грамотрицательных палочек за проанализированный период, несмотря на некоторые колебания, оставалась стабильной (23,1% в 2001 г., 20,3% в 2002 г., 18,5% в 2003 г., 24,6% в 2004 г.).

Данное изменение в спектре и частоте встречаемости возбудителей ^ ГВЗ можно объяснить тактикой антибактериальной терапии у хирургических больных, находящихся на лечении в хирургическом отделении ЯРЦЭМП.

При ожоговой инфекции из 707 проб, проанализированных в 2001 -2004 г.г., в среднем 85,2% имели положительный результат. Тенденции к ф росту количества положительных проб по годам зафиксировано не было, процент обсемененности колебался в пределах 144,8 - 153,6 %, однако количество выделенных культур за год неуклонно возростало: в 2001 г. -126 культур, а в 2004 г. - 355 культур. Это позволило сделать заключение, что практически каждая проба в OTT содержит микробные ассоциации, что значительно выше, чем в хирургическом отделении. Данный факт может быть объяснен более тяжелым состоянием ожоговых больных ^ (большой процент ожога, снижение защитных сил организма на фоне термической травмы, большая площадь открытых раневых поверхностей).

Кроме того, если хирургические больные перед операцией, как правило, проходили предхирургическую подготовку, то у ожоговых больных в момент получения термической травмы вероятность инфицирования открытой раны была многократна выше.

Ведущие этиологические агенты в ожоговом отделении были менее разнообразны по видовому составу, тем не менее грамположительная флора в раневом отделяемом доминировала над грамотрицательными палочками. Наибольшее значение в этиологии ГВЗ у ожоговых больных имели микробы рода Staphylococcus spp. (в т.ч. S.aureus) и энтеробактерии (в частности микробы рода Proteus spp.) и P.aeruginosa. Эти результаты согласуются с данными литературы, в которых имеются указания на ведущих возбудителей ГВЗ у ожоговых больных [83,221].

Как уже было отмечено, частота микробных ассоциаций при ожоговых состояниях было значительно выше, чем у пациентов хирургических стационаров.

Таким образом, в целом за проанализированный период мы смогли уловить определенные колебания частоты встречаемости грамположительной и грамотрицательной флоры по годам. Если за первые три года было зафиксировано явное преобладание грамположительных микроорганизмов над грамотрицательными, то в 2004 году констатировали смену приоритетных возбудителей, что выражалось в превалировании грамотрицательных бактерий над грамположительными как в составе монокультур, так и в 2-х компонентных ассоциациях. Вероятно, мы смогли уловить именно тот момент, когда естественные колебания частоты встречаемости тех или иных микроорганизмов приводят к радикальной смене ведущих этиологических факторов ГВЗ - вероятно возбудителей ВБИ.

Данные, полученные в результате проведения мониторинга свидетельствуют, что при существующих в последние годы и в настоящее время тактике антибактериальной терапии и определенном контингенте хирургических и ожоговых больных с гнойно-воспалительными заболеваниями, происходит смена микрофлоры очага воспаления. Этот факт еще раз доказывает необходимость проведения мониторинга с учетом всех выделенных УПМ.

В доступных публикациях, в которых авторы анализируют частоту встречаемости и смену возбудителей ГВЗ, полученных в разных странах и регионах, мы не встретили работ, посвященных мониторингу возбудителей ГВЗ у хирургических и ожоговых больных в условиях стационаров криолитозоны (г.Якутск). Это послужило причиной для более глубокого анализа обсемененности проб клинического материала у данных больных.

Анализ видового состава возбудителей ГВЗ с учетом отдельных биотопов, проведенный у больных в 2004 г., свидетельствовал что при анализе проб из брюшной полости доминирующей флорой являлись грамотрицательные микроорганизмы. Чаще других встречались Klebsiella spp. 28%, E.coli 20% и P.aeruginosa 16 %. Среди оставшейся доли наибольшее значение принадлежит энтерококкам (21 % от всей массы грамположительной микрофлоры). Пробы материала были обсеменены в основном монокультурами (52%) и 2-х компонентными ассоциациями (44%).

Обсемененность проб плеврального выпота при небольшом числе наблюдений не позволяла судить о доминирующей флоре.

В раневом отделяемом доминировали грамположительные кокки (84,6%), при частоте высеваемости грамотрицательных палочек 69,2%. Среди грамположительных кокков преобладали стафилококки (57,6%) (преимущественно S.aureus - 38,4%); грамотрицательные палочки были представлены неферментирую щими грамотрицательными бактериями (38,%) с P.aeruginosa - 30,7%; обнаруживали также Kl.pneumoniae (11,5%) и Proteus spp (7,6 %). Обсемененность проб раневого отделяемого представлена монокультурами (46,1%) и 2-х компонентными ассоциациями (50%).

При изучении обсемененности содержимого желчного пузыря, было установлено преобладание грамотрицательных палочек (100%) при наличии грамположительных кокков в 71,% проб. Обсемененность проб материала монокультурами и 2-х компонентными ассоциациями составляла по 42,8%.

Следует отметить, что в пробах изученных биотопов вне зависимости от структуры микрбоного пейзажа частота встречаемости S.aureus колебалась от 0 (выпот брюшной и плевральной полостей, содержание желчного пузыря) до 16,6% (раневое отделяемое); Enterococcus spp. - от 23% (раневое отделяемое) до 0% (плевральная полость); P.aeruginosa - во всех пробах, кроме плевральной полости - от 16% (брюшная полость) до 42,7% (содержимое желчного пузыря); E.coli -от 3,8% (раневое отделяемое) до 28,5% (содержимое желчного пузыря); Proteus spp. - от 4,0% (брюшая полость) до 7,6% (раневое отделяемое).

Изучение видового состава УПМ в исследованных биотопах выявило увеличение этиологической роли грамнегативных палочек по направлению от поверхностных биотопов к закрытым полостям, а грампозитивных кокков - по направлению от закрытых полостей к поверхностным биотопам. Также установлено большее видовое разнообразие по направлению от закрытых полостей организма к поверхностным биотопам.

Из приведенных данных следует, что в пробах клинического материала от хирургических больных втсречаются как грамположительные (68,3%), так и грамотрицательные микроорганизмы (83,3%). Среди них доминируют Kl.pneumoniae (20,0%), P.aeruginosa (20,0%), S.aureus (16,6%), S.epidermidis (11,6%), E.coli (10,0%). Также характерно преобладание монокультур (50,0%) и 2-х компонентных ассоциаций (45,0%). Среди выделенных микроорганизмов наиболее часто встречаются S.aureus (16,6%), P.aeruginosa (13,3%), E.coli (10%), K.pneumoniae (10%) - для монокультур и P.aeruginosa (33,3%), E.faecalis (29,6%), K.pneumoniae (29,6%) - для 2-х компонентных ассоциаций.

Таким образом, полученные данные о видовом составе микрофлоры пациентов с хирургической патологией находятся в соответствии с результатами исследований других авторов, касающихся возбудителей ГВЗ, полученных в других странах, регионах и стационарах, находящихся вне криолитозоны [105, 59,70,68, 134, 12 ].

Анализ спектра и структуры микробного пейзажа ожоговой раны выявил наличие роста в 94,9% проб, со средней обсемененностью пробы

158,9%. При этом 57,3% составили монокультуры; 50,6% и 52% изолятов обнаруживали в составе 2х и Зх компонентных ассоциаций, соответственно. Грамположительные кокки составили 85,3% от общей обсемененности пробы, с преобладанием стафилококков (62,6%). На долю грамнегативной флоры приходилось 74,6%, при этом преобладали энтеробактерии 50,6%. Среди них наиболее часто встречается Proteus spp. 30,6; из неферментирующих грамотрицательных бактерий на долю синегнойной палочки приходилось 21,8%.

Из представленных данных следует, что в спектре микрофлоры ГВЗ у ожоговых больных преобладали в основном грамположительные кокки с явным доминированием стафилококков. Из грамотрицательной микрофлоры чаще встречаются Proteus spp. и P.aeruginosa. Изложенное согласуется с литературными данными [ 83,25, 84].

Таким образом, следует отметить, что в условиях криолитозоны нам не удалось зафиксировать особенности этиологической структуры ГВЗ и частоту распространенности этой патологии. В этой связи мы делаем заключение, что видовое разнообразие, частота и характер инфекционных осложнений у хирургических и ожоговых больных соответствует тем же общепринятым данным, которые существуют как в России, так и за рубежом.

Анализ результатов изменения видового состава возбудителей ГВЗ позволил установить, что для хирургического стационара характерна смена патогенов с грамположительного на грамотрицательный спектр с увеличением видового разнообразия. Указанные изменения сопровождались увеличением бактериальной обсемененности очагов воспаления, что могло привести к увеличению длительности инфекционного процесса и сроков пребывания больных в стационарах.

У ожоговых больных смена возбудителей в динамике наблюдения имеет обратную направленность. Если первоначально из раневого отделяемого высевали грамотрицательные УПМ, то при последующих исследованиях мы отмечали смену ведущих этиологических агентов с грамотрицательной флоры на грамположительную.

Таким образом, видовой состав возбудителей ГВЗ при хирургической инфекции и ожоговой болезни изменяется в зависимости от срока пребывания в стационаре, указанное изменение сопровождается значительным увеличением видового разнообразия бактериальных патогенов (от 9 до 12 видов у хирургических больных, от 11 до 12 у ожоговых больных).

Проведенные нами исследования показали, что чувствительность грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов -возбудителей ГВЗ у хирургических и ожоговых больных ко всем изученным антибактериальным препаратам достоверно не различалась. Наиболее активными антибиотиками против Б.аигеиз, при хирургической и ожоговой инфекциях, являлись ванкомицин (100 %), оксациллин ( 100%), рифампицин (100 - 89,4%, соответственно), и цефазолин (70,0 - 71,0%). Наименьшую активность проявляли препараты из групп аминогликозидов

- гентамицин (60 - 55,2), макролидов - эритромицин (60 - 52,6%), фторхинолонов - ципрофлоксацин (60 - 44,7%). Данный возбудитель характеризовался более низким, статистически достоверным уровнем чувствительности к антибактериальным препаратам из группы тетрациклинов (20 - 34,2%).

Абсолютной и высокой активностью в отношении Proteus spp. обладали препараты из групп карбапенемов (имипенем) - 100-82,6%; из цефалоспоринов III поколения (цефтриаксон) - 83,3-78,2%; из аминогликозидов (амикацин) - 83,3-78,2%; из фторхинолонов (ципрофлоксацин) - 83,3-78,2%. Наименьшую активность проявляли цефалоспорины I поколения (цефазолин, цефалотин) - 66,6-52,1%. Минимальная активность отмечалась у препаратов группы тетрациклинов (тетрациклин, доксициклин) - 50,0-52,1%, 16,6-26,0%; аминогликозидов (гентамицин, тобрамицин) - 33,3-39,1. Среди неферментирующих грамотрицательных палочек у P.aeruginosa высокая чувствительность обнаружена по отношению к имипенему - 85,7-75,0%; цефтазидиму - 85,774,9%; амикацину - 92,8-81,2%; ципрофлоксацину - 64,2-81,2. Наименьший уровень чувствительности отмечен по отношению к аминогликозидам - 28,5-25,0%; тетрациклинам - 21,4 -18,7%. Таким образом, полученные данные в целом совпадают с данными литературы [119, 118, 54, 70, 80].

Учитывая, что больные исследовались на 4 - 5 день от поступления в стационар естественно встает вопрос о вероятности и возможности развития ВБИ. С этой целью было проведено исследование предметов среды, окружающей больного стационара.

Данные отечественных и зарубежных авторов [91,93,95,94] свидетельствовали о большей обсемененности больничной среды, предметов обихода и оборудования санитарно-показательными микроорганизмами, которые обладают устойчивостью одновременно как к антибактериальным препаратам, так и к дезинфицирующим средствам. Установлена роль таких микроорганизмов в качестве возбудителей гнойно-септических осложнений в стационарах хирургического профиля.

По нашим данным изучение УПМ, выделенных из объектов среды, окружающей больного в хирургическом стационаре, показало, что большая половина выделенных изолятов приходилось на грамотрицательные бактерии (78,5%), среди которых преобладали энтеробактерии (59,1%). Из последних наиболее часто встречались Serratia spp. (15,3%), Enterobacter spp. (14,2%), E.coli (13,2%).

Остальные УПМ высевались с частотой менее 7,1%. Из неферментирующих грамотрицательных бактерий следует отметить высокий уровень встречаемости P.aeruginosa (19,3%) - практически в каждой пятой положительной пробе смывов с объектов внешней среды обнаруживалась синегнойная палочка. Грамположительные микроорганизмы встречались реже и в основном были представлены бактериями рода Staphylococcus spp.(21,4%), среди которых доминировал S. aureus (21,4%).

Анализ смывов с окружающих предметов в ожоговом отделении показал, что наиболее часто высевались грамотрицательные палочки (57,2%). Среди них доминировали E.coli (19%), Serratia spp. (13,6%) и P.aeruginosa (6,3%). Другие УПМ высевались с частотой менее 5,4%.Грамположительные кокки составляли 42,6%. Среди них на долю S.aureus приходилось 27,2%, а на долю S.epidermidis - 15,4%.

В хирургическом и ожоговом отделении УПМ высевались наиболее часто со следующих объектов: раковины, подоконники, вентили кранов, дверные ручки, полотенца, руки мед.персонала, халаты и др. Наиболее часто микрофлора высевалась в палатах, перевязочном и процедурном кабинетах.

Все изученные УПМ обладали высоким уровнем резистентности к хлормиксидину (90,2%), сульфахлориду (84,6%) и жавель-солиду (84,6%). Наиболее активными дезинфицирующими средствами в отношении подавляющего большинства грамположительных кокков и грамотрицательных палочек являлись септабик (88,7%) и гипохлорид натрия (52,1%).

Приведенные выше результаты о частоте встречаемости отдельных микроорганизмов сопоставимы с результатами микробиологического исследования клинического материала пациентов, находившихся на лечении в данном стационаре (таблица 17).

Так, по нашим данным причиной ГВЗ у оперированных пациентов в 50 % случаев были представители сем. Enterobacteriaeceae, а в 20,0%

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Шамаева, Степанида Харитоновна, Якутск

1. Aôpамзон О.М. и др. Лечение острых гнойно-воспалительных заболеваний легких и плевры под контролем факторов персистенции микроорганизмов // Вестник хирургии. 2004. №2. — С. 13 - 16.

2. Азолов В.В., Жегалов В.А., Перетягин С.П. Российская ожоговая служба на современном этапе проблемы и возможности их решения // Материалы VII Всероссийской научно-практической конференции по проблеме термических поражений. - Челябинск, 1999. - С.З - 6.

3. Акимкин В.Г. Группы внутрибольничных инфекций и системный подход к их профилактике в многопрофильном стационаре // Эпидемиол. и инфекц. болезни. 2003. - №5. - С. 15 - 19.

4. Алексеев Д.А., Шамаева С.Х., Варфоломеева В.В. Некоторые показатели санитарио-бактериологического состояния лечебно-профилактических учреждений г.Якутска // Тез. докл. российск. научно-практ.конфер. с межд.участием. М., 2004. - С. 6 - 8.

5. Алексеев А.А., Яковлев В.П., Федоров В.Д., Крутиков М.Г. Инфекция у обожженных: вопросы патогенеза, профилатии и лечения // Хирургия, 1999, №6. С.4 - 9.

6. Андреева Т.А., Болдырева Е.Е., Шишкина Л.И. Проблема ВБИ в ЛПУ Тульской области // Эпидемиол. и профилактика внутрибольничных инфекций / под ред. Е.Н.Беляева, А.А.Ясинского. М., 2003.- С. 86 88.

7. Балаклиец Н.И., Балаклиец Т.Н. Чувствительность к антибиотикам и дезинфицирующим веществам условно-патогенных микроорганизмов // Эксп.клин.мед. 1999. - №2. - С. 33 - 35.

8. Ю.Бельский В.В., Шаталова Е.В. Взаимное влияние возбудителей при смешанной инфекции ожоговой травмы // Журн. микр., эпидемиол. и иммун. 1999. - №4. - С.З - 7.

9. П.Беребицкий С.Я., Баранович С.Ю., Уманцева Н.П. Хирургическая инфекция на пороге XXI века // Труды Астрах, гос. мед.акад. 2000. -С. 124-127.

10. Березняков И.Г. Резистентность микробов к антибиотикам // Клин.антибиотикотер. 1999. - №1. - С.27 -31.

11. Бисенова Н.М., Бухановская J1.B., Саркулова М.Н. Микрофлора послеоперационных осложнений // Тез. докл. российск. научно-практ.конфер. с межд.участием. М., 2004. - С. 13 - 14.

12. Блатун JI.A., Павлова М.В., Терезова Р.П. Лечение и профилактика раневой инфекции // Нов.мед.журн. 1998, №3. - С.7 -11.

13. Богомолова Н.С., Большаков J1.B., Орешкина Т.Д. Роль бактериологического мониторинга в профилактике и лечении послеоперационных осложнений // Тез. докл. российск. научно-практ.конфер. с межд.участием. М., 2004. — С. 16.

14. Большая медицинская энциклопедия. В 30-ти т., Т. 17/ Гл.ред.Б.В.Петровский. 3-е изд. - М.: Сов.энциклопедия, 1987. - 512 с.

15. Брусина Е.Б. Эволюция эпидемиологического процесса госпитальных гнойно-септических инфекций в хирургии // Эпидемиол. и инф.б-ни. 2001. - №2 - С. 10-12.

16. Бут О.М., Шеремет О.В., Ясенкова O.E., Кручинецкая Т.М., Бадалова И.М., Жигалова Т.А., Веранян М.Б. Микробный пейзаж отделяемого ран в стационарах хирургического профиля // Тез. докл. российск. научно-практ.конфер. с межд.участием. М., 2004. - С.22.

17. Ведерникова O.JI., Верхнев В.А., Аганина E.H. Результаты лечения больных с тяжелой термической травмой // Материалы VII Всероссийской научно-практической конференции по проблеме термических поражений. Челябинск, 1999. - С. 12 - 13.

18. Верещагина С.А., Фадеева Т.В. Ведущие возбудители внутрибольничных инфекций в многопрофильной хирургической клинике // Тез. докл. российск. научно-практ.конфер. с межд.участием. -М., 2004. С. 23.

19. Виленская И.Ф., Шепринский П.Е., Осипова А.Н. и др. особенности послеоперационных осложнений в хирургическом стационаре // Тез. докл.Н российск. научно-практ. конф. с межд.участием. М., 1999. - С.51 - 53.

20. Габриэлян Н.И., Илюхина H.H., Спирина Т.С., Арефьева Л.И., Горская Е.М. Антибиотикорезистентность возбудителей как причина развития послеоперационных инфекционных осложнений // Материалы

21. VIII съезда Всеросс.эпидем., микробиол. и паразитологов. М., 2002. -С. 144-145.

22. Гаврилкина М.В., Савицкая К.И., Круглов Е.Е., Галкин В.В. Антибиотикорезистентность возбудителей воспалительных процессов у наиболее тяжелых больных Московской области // Тез. докл. российск. научно-практ.конфер. с межд.участием. М., 2004. - С.ЗО.

23. Гаврилкина М.В., Савицкая К.И., Брагина И.В. результаты санитарно-бактериологических исследований в ЛПУ и роддомах Московской области // Тез. докл. российск. научно-практ.конфер. с межд.участием. М., 2004. - С. 29 - 30.

24. Герасимчик Л.Ф., Кузнецова А.Ю., Середа Т.А. Микробный пейзаж и формирование антибиотикорезистентности возбудителей ГСИ в ожоговом отделении МУЗМСЧ «Северосталь» // Тез. докл. российск. научно-практ.конфер. с межд.участием. М., 2004. - С. 23.

25. Гудкова Е.И., Красильников А.П. «Временная инструкция по применению методики контроля дезинфектантов и антисептиков» утв. МЗ СССР. 1988 г. Минск.

26. Дворник В.Ф., Ольшанский В.М., Гермизин А.П., Дегтярева Э.Ф. К эпидемиологической характеристике госпитальной инфекции // Военно-медицинский журнал. 1991. - №6. - 67.

27. Дегтева Г.К., Любимова A.B., Зуева Л.П. и др. Возможности применения комбинированных методов типирования Candida albicans для установления эпидемиологических связей // Журн.микробиол., эпидемиол. и иммунол. 1997. - №1. - С.27 - 30.

28. Донцов В.И., Попова Т.А., Башкова Н.М., Юровская А.И. Внутрибольничные инфекции в г. Екатеринбурге в 90-е г.г. XX века // Тез. докл. II российск. научно-практ. конф. с межд.участием. М., 1999. -С. 87-95.

29. Евстропов А.Д., Ильина В.Н., Шмырин A.A., Хмельницкая H.A., Дружинин И.А. Этиология бактериемии у обожженных // Материалы

30. VIII съезда Всеросс.эпидем., микробиол. и паразитологов. М., 2002. -С. 147 - 148.35.3айцев В.Т., Бойко В.В., Пархоменко К.Ю. Микробный пейзаж неклостридиального анаэробного перитонита // Госпитальная хирургия. -1999. -№2.-С.41-42.

31. Карабак В.И. Микробиологический мониторинг за возбудителями нозокомиальных инфекций // Антибиотики и химиотерапия. 2000. -№3. - С.20-23.

32. Кочетков Г.А., Кузин В.Б. Проблема множественной устойчивости к антибиотикам золотистого стафилококка // Нижег.мед.журн. 2000. -№3.-С.81 -87.

33. Крутиков М.Г. Контроль инфекции в ожоговом стационаре // РМЖ. 2003. - №14. - С.

34. Крутиков М.Г., Бобровников А.Э., Лагвилова М.Г., Кашин Ю.Д., Гришина И.А. Опыт клинического применения цифрана при лечении инфекций ожоговых ран и инфекционных осложнений ожоговой болезни // Антибиотики и химиотерапия, 2000,45, №7. С.37 - 40.

35. Любимова A.B., Зуева Л.П. и др. Вспышка внутрибольничного кандидоза в гематологическом отделении // Журн.микробиол., эпидемиол. и иммунол. 1997. - №1. - С.23 - 26.

36. Милонов О.Т., Тоскин К.Д., Жебровский В.В. Послеоперационные осложнения и опасности в абдоминальной хирургии. М.: Медицина, 1990.-560с.

37. Миронов А.Ю., Савицкая К.И., Воробьев A.A. Микрофлора гнойно-септических заболеваний у больных в Московской области // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунол. 2000. - №5. - С. 11 - 15.

38. Мороз В.Ю., Терехова Р.П., Галкин В.В. и др. Госпитальная инфекция в хирургической клинике // Внутрибольн. инфекций -проблемы эпидем. Тез. докл.Н российск. научно-практ. конф. с межд.участием. - М., 1999. -С.161 - 163.

39. Морозов В.В., Трифонов В.А., Нурулова Н.С. Об опыте по профилактике ВБИ в Республике Татарстан // Эпидемиол. и профилактика внутрибольничных инфекций / под ред. Е.Н.Беляева, А.А.Ясинского. М., 2003.- С. 119 120.

40. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам /Метод.указания 4.2.1890 04. М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора МЗ России, 2004 - 91 с.

41. Пасечник Г.Б. Характер выделенной микрофлоры из интраперитонеального экссудата у больных с послеоперационным перитонитом // Гос. ун-т мед. и фармации. — Кишинев, 2000. 6с.

42. Патютко Ю.И., Котельников А.Г., Косырев В.Ю., Сагайдак И.В. Пути улучшения переносимости гастропанкреатодуоденальной резекции // Хирургия. 2002. - №10. - С.29 - 32.

43. Пахомова JI.А., Гилева C.B. опыт работы по профилактике ВБИ в ЛПУ г.Тюмени // Эпидемиол. и профилактика внутрибольничных инфекций / под ред. Е.Н.Беляева, А.А.Ясинского. М., 2003 С. 185 -188.

44. Ползун Л.В., Долот В.Д., Швецов B.C., Клименко Л.А. опыт оказания специализированной помощи обожженным в Киевской области // Материалы XIX съезда хирургов Украины. Харьков, 2000. -С. 343-344.

45. Потапов А.Ф. Гнойно-септическая патология: комплексная терапия // Актуальные проблемы экстренной медицинской помощи. Вып.1. Якутск, 2000. -С.209- 211.

46. Потапов А.Ф., Аржакова Т.С., Петрова K.M., Свешникова H.H. Микробиологические аспекты острой хирургической абдоминальной инфекции // Актуальные проблемы экстренной медицинской помощи. Тез.докл. Т.4. Якутск, 2003. - С. 128 - 130.

47. Приказ №720 «Об улучшении мед.помощи больным с гнойно-хирургическими заболеваниями и усиление мероприятий с внутрибольничной инфекцией» от 31.06.78.

48. Рогутский C.B., Брызгалова Л.М., Сухорукова М.В. О состоянии эпид.надзора за внутрибольничными инфекциями в Смоленской области

49. Эпид. и профилактика внутрибольничных инфекций /под ред.Е.Н.Беляева, А.А.Ясинского. М., 2003. С.77 - 81.

50. Рыбдылов Д.Д. Профилактика внутрибольничных инфекций, обусловленных синегнойной палочкой в ожоговой хирургии // Журн. «Сибирь Восток» №7, 1999. - С. 16.

51. Савчук Т.Д. Гнойный перитонит. М.: Медицина, 1979. 188с.

52. Сан.Правила 2.1.3.1375.-03. «Гигиенические требования к размещению, устройству, оборудованию и эксплуатацию больниц род.домов и других лечебных стационаров» от 30.06.03.

53. Семина H.A., Ковалева Е.П. Галкин В.В. Эпидемиологическое значение дезинфекции и стерилизации в системе мероприятий по профилактике внутрибольничных инфекций // Сибирь Восток. - 2003. -№11.-3.

54. Сидоренко C.B., Мамонтова O.A., Гельфанд Е.Б. Госпитальные инфекции, вызванные синегнойной палочкой. Значение для интенсивной терапии // Анестезиол.реаниматол. 1999. - №3. - С.46 -54.

55. Сидоренко C.B. Клинические значение антибиотикорезистентности грамположительных микроорганизмов // Клин.фармакология и терапия. 2004, №13 (2). - С. 16 - 25.

56. Скала JI.3., Нехорошева А.Г., Винокуров А.Е., Карп В.П., Никитин А.П., Лукин И.И., Поликарпова C.B., Островская Э.А. Современные аспекты автоматизации в микробиологии, эпидемиологии и химиотерапии // Клинлаб.жиагностика №2, 1998. С. 17 - 19.

57. Собещук О.Н., Адарченко A.A. Коагулазоотрицательные стафилококки и их роль в возникновении внутрибольничных инфекций // Мед.новости. 1999. - №3. - С.8 - 12.

58. Соловьева С.А., Тарасова В.П., Маракулин В.П., Опарин В.П., Антонина Т.А. Оценка влияния внутрибольничной среды и медицинских отходов на заболеваемость ГСИ в акушерских и хирургических стационарах г. Томска // Сибирь-Восток. 2003. - №5. -С.4-6.

59. Соловьева Т.С., Игнатьев В.Г., Репина Г.А., Дудкова Н.И., Османов Г.А. Гнойно-септические осложнения у больных после операций по поводу острых заболеваний органов брюшной полости //

60. Неотложная хирургия: Сб.ст.: К 120 летаю Мытищ, центр, клинич. гор.больницы. - М., 1999. - С.92.

61. Степанова Н.К., Каленчук A.A. Опыт работы центра Госсанэпиднадзора в Курской области по профилактике внутрибольничных инфекций // Эпидемиол. и профилактика внутрибольничных инфекций / под ред. Е.Н.Беляева, А.А.Ясинского. М., 2003.-С. 109-114.

62. Тоскин К.Д., Жебровский В.В., Березницкий Ф.Г. Послеоперационные внутрибрюшинные и внебрюшинные абсцессы // Послеоперационные осложнения и опасности в абдоминальной хирургии. М.: Медицина, 1990. С.84 - 133.

63. Тулупов В.П., Тулянкина Н.Е. Циркуляция эпидермального стафилококка в ЛПУ Мед. центра УД Президента РФ // Кремл.мед: Клин. Вестн. 2001. - №4. - С. 45 -48.

64. Фадеев С.Б., Чернова O.JI., Киргизова С.Б., Бухарин О.В. Особенности хирургической инфекции мягких тканей // Хирургия. -2001.-№7.-С. 42-44.

65. Фадеев С.Б. Некоторые этиологические аспекты хирургической инфекции мягких тканей // Ан.травм. и ортопедии. 2001. - №2. — С. 61 -63.

66. Филатов H.H., Храпунова И.А., Матвеев С.И. Проблема гнойно-септических инфекций в стационарах хирургического профиля // Тез. докл. II российск. научно-практ. конф. с межд.участием. М., 1999. -С.254 -259.

67. Хохлявина P.M., Мефодьев В.В., Козлов Л.Б. Этиология возбудителей гнойно-септических заболеваний и ихантибиотикорезистентность // Научн.вестник Тюмен.мед.акад. 2000. -№1. -С.79-81.

68. Шаталова Е.В., Жиляева Л.В., Бартенева Т.В. Особенности течения mixt инфицированной экспериментальной ожоговой травмы // Материалы VIII съезда Всеросс.эпидем., микробиол. и паразитологов. -М., 2002. - С.181 - 182.

69. Шевченко Ю.Л. Роль современных факторов во взаимодействии человека и микроорганизмов. Значение национального здравоохранения в профилактике и лечении инфекционных болезней // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунол. 2000. - №6. - С.З - 6.

70. Шилова В.П., Розанова С.М., Перевалова Е.Ю. Мониторинг госпитальной флоры реанимационных отделений // Тез. докл. российск. научно-практ.конфер. с межд.участием. М., 2004. - С.95 -96.

71. Яковлев С.В. Клиническое значение резистентности микроорганизмов для выбора режима антибактериальной терапии в хирургии // Consilium medicum . 2000; 4(2):31-33.

72. Яковлев С.В. Когда нужны цефалоспорины четвертого поколения?// Антибиотики и химиотерапия. 1999; 44(11). - С.4-6.

73. Яковлев С.В. Госпитальные инфекции, вызванные резистентными грамотрицательными микроорганизмами: клиническое значение и современные возможности терапии // Consilium medicum. Том 4/N. 4. -2004.

74. Acar J., Rostel В. Antimicrobial resistance. An overview // Rev.sci. et teehn./ Off.int. epizoot. 2001. - 20, №3. - P.797 - 810.

75. Agarwal Meena, Hamilton Stewart Peter., Dixon Ronald A. Contaminated operating room boots: The potencial for infection // Amer. J. Infec.contr. - 2002. - 30. - P. 179 - 183.

76. Bang R.L., Gang R.K., et al. Burn septicaemia: an analysis of 79 patients // Burns. 1998. - 24(4). - P.354 -415.

77. Belba M., Belba G. Acute Renal Failure In Severe Burns. Conclusions After Analuses Of Deaths During 1998 // Annals of Burns and Fire Disasters. vol. XIII - n.2 - June, 2000.

78. Bergey's Manual of Determinative Bacteriology. Baltimore, Williams and Wilkins, 1994.

79. Blumberg H., Jarvis W., Soucie J. et al. Risk factors for candidal bloodstream infections in surgical intensive care unit patients: the NEMIS prospective multicenter study // Clin.Infec Dis. 2001, 33. - P. 177.

80. Boukind L., Chlili A., Chafiki N., Alibou F., et al. Zerouali Ox Etude De La Mortalité Par Brulure A Propos De 414 Cas De Deces Annals of Burns and Fire Disasters vol. VIII - n. 4 - December, 1995.

81. Brun-Buisson Christian, Giron Emmanuelle. Les infections nosocomiales: Bilan et perspectives// M/S: Med. Sci. 2000. №8.- P.892-899.

82. Brusaferro S. Infezioni di prevenzione: Rapp. del Convegno «2e infezioni ospedalere: dall ospedale ail assistenza integrata» , Biblione, 15 ott., 1999 // Ann.ig.: Med. Prev. e comunita. 2001. - 13, №1. - P.3 - 19.

83. Cameron J., Pitt H., Yeo Ch. Et al. 145 consecutive pancreaticoduodenectomies without mortality // Ann.Surg. 1993: - 217: -P.430 -438.

84. Campo R.E., ratzan K.R., Melnik S.J. Subcutáneos nodules as a dermatalogic manifestation of bacteria due to Pseudomonas aeruginosa // South.Med.J. 1999. - V.87. - P.233 - 235.

85. Chen M., Zhihua L., Xiangdong G. Zhonshan yike daxue xuebao // Acad. J. Sun Yat Sen Univ. Med. Sci. - 1999. 20, №4. - P.293 - 295.

86. Claejs G., Verschraegen G. Multiresistentie: een uitdaging // Tijdschr. Geneesk. 1997, 53(7).- P.479-487.

87. Colizza S., picconi A., Blasi G., Amaturo A. et al. Monitoring of antimicrobial prophylaxis in general surgery: Pap. 3rd Symp. Contr. Surgical Infect. Florence, Apr. 14 -16, 1999// J.Chemother. 1999. №6. - P. 573 -576.

88. Crump J., Collignon P. Inpravascular catheter-associated infection // Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2000; 19. - P.l - 8.

89. Dayoub A., Zeidan F., Radidy S. Infection in Burns: Experience Of A teaching Hospital in Syria Ann. Medit. Burns Club vol. VIII - n.l - March, 1995.

90. Deknitch A., Kretchikova O., Kozlov R., Stratchounski L. Antibiotic resistance of enterococci isolated from premature born infants. In: European Congress of Chemotherapy; 1998 May 10-13, Hamburg, Germany. P. 104. Abstract: T273.

91. Delzell J.E., Lefevre M.L. Urinari tract infections during pregnancy // Am Fam Physician. 2000, Feb 1; 61(3). - P. 713 - 721.

92. De Moraes Bianca Aguiar, Cravo Cristiane Andrade Nery, Loureiro Marcio Martins. Epidemiological analysis of bacterial strains involved in hospital infection in a University Hospital from Brazil // Rev.Inst.med.trop. Sao Paulo. 2000. № 4. - P.201-207.

93. Denton M., Kerr KG. Microbiological and clinical aspects of infection associated with Stenotrophomonas maltophilia // Clin Microbiol Rev. 1998. №11.- P.57 - 80.

94. Eckmanns T., Rath A., Brauer H., Daschner F., Ruden H., Gastmeier P. Complianse der handedesinfektion auf Intensivstationen // DMW: Dtsch. med. Wochenschr. 2001. - 126, № 25 - 26. - P.745 - 749.

95. Edge S.B., Schmig R.E., Rosenlof L.R. et al. Pancreas Cancer Resection Outcome in American University Centers in 1989 1990. Cancer. - 1993; 71:11: - P.3502 - 3508.

96. Egimann P., Harbarth S. et al. Impact of prevention strategy targeted at vascular-access on incidence of infection acquired in intensive care unit. Lancet. 2000; 355. - P. 1864 - 1872.

97. Eltahawy A.T.A.E., Khalaf R.M.F. Antibiotic resistance among gramnegative non-fermentative bacteria at a teaching hospital in Saudi Arabia // J.Chemother. 2001. - 13, № 3. - P.260 - 264.

98. Enright Mark C., Robinson D. Ashley, Randle Gaunar, Feil Edward J., Grundmann Hajo, Spratt Brian G. The evolutionary history of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) // Proc.Nat.Acad. Sci. USA. 2002. .№ 11.- P.7687 - 7692.

99. Fadaak R., Balial S.G., Hegazi M., Al-Hoqail R., Al-Awad N. Analyses and Outcome of 835 Burn Injury Admissions To The Burn Unit, King fahd hospital, Al-Khobar, Saudi Arabia Annals of burns and Fire Disasters vol. XII - n.4. - December, 1999.

100. Franchi D., Ober Janis F., Yelon Jay A., Hall Gaye O. // Outbreak of vancomycin resistant E.faecium (VPEF) in-a tertiary care center burn unit: astr. Annu. IDSA Meet., 1999 // Clin.Ibfec.Diseases. - 1999. - 29. №4. - P. 1048.

101. Gang Raj Kumar, Sanyal Suhas C., Bang Rameswar Lai et al. Staphylococcal septicaemia in burns // Burns. 2000. - 26, № 4. - C.359 -366.

102. Giamarallou H.J. Antimicrob Chemother. 2002; №49. - P.229 -262.

103. Giannola L.I., de Curo V., Adragna E., et.al. A New Delivery system Of Antibiotics In The Treatment Of Burn Wounds // Annals of Burns and Fire Disasters. vol. XII - n. 1. - March, 1999.

104. Goodwin C.W., Yurt R.W. : epidemiology of burn wounds. In: Galling J.I., Fauci A.S. (Eds): «Advances in host defence mechanisms» Vol.6// Raven Press, New York/ 1986. - P.5 - 18.

105. Haberal M., Ugar N., Bilgin N. Epidemiological Survey Of Burns Treated in Ankara // Turkei and Desirable Burn Prevention Strategies Burns. - 1995.- №21. - P. 601 - 607.

106. Jang T.N., Wang F.D. et al. Xanthomonas maltophilia bacteremia: an analysis of 32 cases // J Formos Med Assoc. 2992; 91. - P.l 170 - 1176.

107. Kad A., Brandt m., Pruitt W. et al. The Epidemilogy of candidemia in two United States Hospitals: a three year analysis // Clin. Intec Dises. -1999, 29. - P.239 - 244.

108. Kim Hong Bin, Park Wan Beom, Lee ki Deok, Choi Young Joo, Park Sang Won. Nationwide surveillance for Staphylococcus aureus with reduced susceptibility to vancomycin in Korea // J.Clin.Microbiol. 2003. №6 -P.2279-2281.

109. Klein D.G. et al. Wound infection following trauma and burn injuries // Crit Care Nurs Clin North Am 1995 Dec; 7(4). P.627 - 669.

110. Labarca J.A., Leber A.L. et al. Outbreak of Stenotrophomonas maltophilia bacteremia in allogenle bone marrove transplant patients // Clin Infect Dis. 2000; 30. - P. 195 - 197.

111. Lad A.R., Alaghebandan R., Nikui R. Epidemiological Study Of 3341 Burn Patients During Three Years in Tehran // Iran Burns. 2001,26. - P. 49 -53.

112. Landman D., Volkert F., Manikal V., Saureina G., Ruan Y. Vancomycin resistant enterococci in Brooklyn, New York. A moment in time // Clin. Infec. Diseases. - 1999. 29, № 6. - P. 1587 - 1588.

113. Lavigne J.-P., Jordan N., Dereure O. et al. Complications infectieuses des plaies: revue de la literature // J.plaies et cicatris. 2003. №38. - P. 7 -13.

114. Leclercg Roland. Les pricipales bacteries a Gram positif des infections nosocomiales et leur resistance aux antibiotiques // Med.ther. 2000. №1. P.l 1-15.

115. Levy S.B. The challenge of antibiotic resistance // Scientific American. 1998. - V.278. - P.32 - 39.

116. Magliacani G., Stella M. et al. Antimicrobial therapy problems in burn sepsis // Ann. Medit. Burns Club. 1994; 7(2). - P.84 - 87.

117. Martino R., Cornez L. et al. Bacteraemia caused by glucose-fermenting gram-negative bacilli and Aeromonas species in patients withhaematological malignancies and solid tumours // Eur.J Clin Microbiol Infect Dis. 2000; 19. - P.320 - 323.

118. Matas L., Corcoy F., Galsos A. et al. Estudio prospective de las bacteriemias observadas en 13 hospitales comarcaees durante 1997 // Enferm infecc. у microbial. Clin. 1998.- V.10. Suppl.№2. -P.107.

119. Mayhall C.G. (Мэйхолл К.Г.). Хирургические инфекции и инфекционные осложнения после ожогов // Внутрибольничные инфекции /В.П.Венцел. ред. М., 1990. - С.259-338.

120. McNeil Shelly A., Nordstrom L.L., Malani Preeti N., Jervos Marcus, Kauffman Carab A. Outbreak of Sternal surgical site infections due to Ps.aeruginosa trared to a scrub nurse with onychomycosis // Clin. Infec. Diseases. 2001. - 33, №3. - P. 317 - 323.

121. Micozzi A., Venditti M. et al. Bacteremia due to Stenotrophomonas maltophilia in patients with hematology malignancies // Clin Infect Dis. -2000; 31. P.705 711.

122. Mino De Kaspar H., Neubauer A.S. et al. Rapid direct antibiotic susceptibility testing in endophthalmitis // Ophtalmology. 2002; 109. P.687 -693.

123. Moores B., Rahman M.M., A discriminant function analusis of the likelihood of a patient contracting pseudomonas. Burns, 1975. 22-25.

124. Murphy Cathryn L., McLaws M.L. Methodologies used in surveillance of surgical wound infections and bacteremie in Australien hospitals // Amer. J. Infec. Contr. 1999. - № 6.- P. 474 - 481.

125. National Nosocomial Infections Survelillance (NNIS) System report, data summary from January 1990 May 1999, issued June 1999 // Amer. J .Infec. Contr. 1999. 27, № 6. P. 520 - 532.

126. National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System: National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System report, data summary from October 1986-April 1998, issued June 1998. Am J Infect Control 1998 Oct; 26(5). P.522 - 555.

127. Natsch S., van Kasteren M.E.E. Vortdurende strijd tegen multiris istente verwekkers // Pharm. Weekbl. 2000, 135 (26). P. 938 - 943.

128. Pauw B. Epidemiology and frequency of systemic fungal infections In book: Serious Candida infections: diagnosis, treatment, and prevention Ed B.Pauw, G. Bodey Health Communications Press. 1998. - P.l - 3.

129. Rapp R.P. Antimicrobial resistance in gram positive bacteria: The myth of the MIC // Pharmacotherapy. - 1999. 19, № 8, Pt 2. - P. 1129 - 1199.

130. Rice Louis B. Successful interventions for gram-negative resistance to extended spectrum P-lactam antibiotics // Pharmacotherapy. - 1999. № 8, Pt 2. P. 120-128.

131. Roehtborn A., Thomas L. et al. The microbiology of postoperative peritonitis//Clin. Infec. Diseases. -2001. -33. №9. -P.1513 1519.

132. Rotschafer J.C., Peterson M., Hoang A., Wright D. Management of antibiotic resistant gram positive infections // J.Infec. Disease Pharmacother. - 1998. 3, №1. - P. 29 - 39.

133. Samore M., Burke J. Infections of long intravenous lines: new developments and controversies. In: Remington J., Swartz M. eds. Curerent clinical topics in infections diseases. Boston, MA: Blackwell Science, 2000: 256-70.

134. Sang-soo L., Shiomi M., Ito N. et al. Вспышка псевдомонадного сепсиса, связанного с внутрибольничной инфекцией в педиатрической больнице // J.Jap.assoc. Infec. Diseases. 1995. - V.67. - Р.361 - 365.

135. Schaumann R., Stein K. et al. Infections caused by Stenotrophomonas maltophilia a prospective // Infection. - 2001. - №29. - P.205 - 208.

136. Schlager Т., Sadler J., Weber D. et all. Hospital acquired infections in pediatric burn patients // South. Med.J. - 1994. - V.84. - P.481 - 484.

137. Smith David. Decreased antimicrobial resistance after changes in antibiotic use I I Pharmacotherapy. 1999. № 8, Pt 2. P. 129 - 132.

138. Towner K.J. The problem of resistance. In: Greenwood D., editor. Antimicrobial chemotherapy. 4th ed. Oxford, New York // Oxford University Press, 2001. - P. 137 - 144.

139. Towner K.J. Mechanisms of acquired resistance. In: Greenwood D., editor. Antimicrobial chemotherapy. 4th ed. Oxford, New York // Oxford University Press, 2001. - P. 145 - 155.

140. TroilIet N., Samore M., Carmeli Y. Imipenem resistant Ps.aeruginosa. Risk factors and antibiotic susceptibility patterns // Clin. Infec. Diseases. - 1997. - 25, № 5. P. 1094 - 1098.

141. Wu An-hua, Wen Xi-mao, ren Nan, Xu Xin-hua. Китайская система по наблюдению ВБИ (CNISS): патогены и их изменения при ВБИ респираторного, мочевого и ЖКТ// Zhangguo ganran kongzhi zazhi=Chin.J.Infec.contr.-2003. №4 P.252-255.

142. Wu An-hua, Wen Xi-mao, Ren Nan, Xu Xin-hua. Китайская система по наблюдению за внутрибольничными инфекциями (CNISS) между 1999 2001 г.г. // Clin. J. Infec. Contr. - 2003. №4 - P. 252-255.

143. Wurtz R., Karajovic M. et al. Nosocomial infections in a burn intensive care unit//Burns. 1995: 21(3). - P. 181 - 185.