Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Экзополисахариды сапротрофных микобактерий и условия их биосинтеза

ВАК РФ 03.00.07, Микробиология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Ботвинко, Ирина Васильевна

ВВЕДЕНИЕ.

0Е30Р ЛИТЕРАТУРЫ .б

ГЛАВА I. ЭКЗ ОПОЛИСАХАРИДЫ БАКТЕРИЙ.б

1.1. Грамотрицательные бактерии

1.2. Грамположительные бактерии

ГЛАВА 2. ВЛИЯНИЕ УСЛОВИЙ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ БАКТЕРИЙ НА

БИОСИНТЕЗ ИМИ ЭК30ГЛИКАН0В

2.1. Компоненты среды

2.2. Физико-химические факторы среды

2.3. Динамика роста бактерий и образования ими экзогликанов

2.4. О зависимости состава и структуры экзо-полисахаридов от условий культивирования продуцентов.

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

ГЛАВА I. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

1.1. Культивирование бактерий, изучение их роста и накопления полисахаридов

1.2. Выделение и очистка экзогликанов

1.3. Исследование полисахаридов

1.4. Изучение структуры экзогликана Mycobacterium. salivarium.

ГЛАВА 2. РОСТ САПРОТРОФНЫХ ШКОБАКТЕРИЙ И ОБРАЗОВАНИЕ

ИМИ ВНЕКЛЕТОЧНЫХ ПОЛИСАХАРИДОВ.

2.1. Способность к биосинтезу экзогликанов сапротрофными микобактериями

2.2. Динамика роста наиболее активных продуцентов и накопления ими экзогликанов

ГЛАВА 3. НЕКОТОРЫЕ УСЛОВИЯ БИОСИНТЕЗА ВНЕКЛЕТОЧНЫХ

ПОЛИСАХАРИДОВ МИКОЕАКТЕРИЯМИ

3.1. Источник углерода

3.2. Источник азота.

3.3. Кислотность среды

ГЛАВА 4. МОНОМЕРНЫЙ СОСТАВ И НЕКОТОРЫЕ СТРУКТУРНЫЕ

ОСОБЕННОСТИ ЭКЗОГЛИКАНОВ САПРОТРОФНЫХ МИ

КОБАКТЕРИЙ.

ГЛАВА 5. СТРУКТУРА ВНЕКЛЕТОЧНОГО ПОЛИСАХАРИДА

М.salivariura

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Введение Диссертация по биологии, на тему "Экзополисахариды сапротрофных микобактерий и условия их биосинтеза"

В настоящее время чрезвычайно возрос интерес к микробным полисахаридам. Они являются одним из объектов внимания биотехнологии, интенсивно развивающейся отрасли производства. Трудно перечислить все области их применения, уже реализованного или возможного. Как биологически активные соединения они применяются в медицине. Коллоидные и клеящие свойства их растворов, способность к образованию гелей и пленок, влияние на реологические характеристики жидкостей используются в пищевой, фармацевтической, косметической и текстильной промышленности, в металлургии и при добыче нефти. С успехом применяются они в лабораторной практике.

Особенно перспективны внеклеточные полисахариды. Во-первых, они, как правило, продуцируются в значительно больших количествах, чем клеточные, их легче выделять и очищать. Во-вторых, они отличаются большим разнообразием, нередко уникальностью состава и структуры. Это не только расширяет сферу потенциального их применения в здравоохранении и производстве, но интересно и с научной точки зрения.

Изучение экзогликанов углубляет знание о физиологических возможностях микроорганизмов и приводит к открытию новых, ранее неизвестных соединений. Поиск важных для биотехнологии продуцентов полисахаридов предполагает всестороннее исследование особенностей развития бактерий, что имеет целью подбор оптимальных условий для биосинтеза этих полимеров. Исследование строения полисахаридов необходимо для объяснения того или иного эффекта, вызываемого ими.

Накоплено немало сведений об экзополисахаридах различных бактерий. Часто это определяется их практической значимостью. Но есть группы бактерий, в этом плане изученные мало. К таким относятся и коринеформные бактерии, включающие исследованные в настоящей работе сапротрофные микобактерии.

Целью данной работы явилось изучение способности сапротрофных микобактерий к биосинтезу внеклеточных полисахаридов, а также исследование химического строения последних.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

- выяснение возможности биосинтеза свободных экзогликанов рядом сапротрофных микобактерий;

- исследование некоторых закономерностей их продуцирования;

- определение условий образования полисахаридов наиболее активными продуцентами;

- изучение мономерного состава и особенностей строения экзогликанов активных продуцентов;

- исследование структуры полисахарида Mycobacterium salivari-um , перспективного как биологически активное вещество.

Диссертационная работа выполнена в соответствии с планом научно-исследовательских работ кафедры микробиологии биологического факультета МГУ (государственный регистрационный номер 0I8II004030); тема включена в координационный план АН СССР (шифр координационного плана АН СССР 2-28-9-56).

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ *

Заключение Диссертация по теме "Микробиология", Ботвинко, Ирина Васильевна

ОСНОВНЫЕ ВЫВОДЫ

1. Установлена способность 19 штаммов сапротрофных микобактерий, относящихся к 15 видам, продуцировать внеклеточные полисахариды при развитии в минеральной среде с глюкозой и н-гексадеканом в качестве единственного источника углерода. Наиболее активными про,пуцентами являются Mycobacterium album, M.convolutum, M.cyaneum, M.flavum var.methanicum, M.mucosum и M.salivarium.

2. Биосинтез экзогликанов происходит параллельно росту микобактерий.

3. Природа источников углерода и азота, а также значение рН среды определяют возможность биосинтеза и количественный выход экзополисахаридов, но не влияют на их моносахаридный состав.

4. Полисахариды, синтезируемые всеми исследованными слизистыми вариантами микобактерий, представляют собой высокомолекулярные кислые гетерогликаны с регулярной структурой, имеющие повторяющееся звено из трех или четырех моносахаридных остатков. R-вари-ант M.iacticolum 104 образует нейтральный полимер.

5. В составе всех исследованных экзогликанов идентифицирована глюкоза, в большинстве - гексуроновые кислоты, распространены галактоза, манноза и фукоза, встречаются рамноза, арабиноза и неуглеводные заместители пируват и лактат.

6. Установлено химическое строение полисахарида М.salivarium. Полимер такой структуры обнаружен впервые. Он имеет следующее повторяющееся звено:

- 4-Б-ГлкУр]з1 - 4-Б-Глкрв1 - З-В-Ман 131 ~

3 2 6 4 / \ *

Я я

Н3С СООН Н3С СООН

- но

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Ботвинко, Ирина Васильевна, Москва

1. Гоголева Е.В., Гречушкина Н.Н., Егоров Н.С. Внеклеточные полисахариды, синтезируемые Mycobacterium lacticolum на средах с глюкозой и рамнозой. - Микробиол., 1973а, т. 42, вып. 3,с. 409-411.

2. Гоголева Е.В., Гречушкина Н.Н., Егоров Н.С. Внеклеточные полисахариды, синтезируемые Mycobacterium lacticolum на средах с н-додеканом, н-тетрадеканом и н-гексадеканом. Микробиол., 19736, т. 42, вып. 5, с. 806-808.

3. Гоголева Е.В., Гречушкина Н.Н., Егоров Н.С. Развитие Mycobacterium lacticolum и синтез ею экзополисахарида в условиях различной кислотности среды. Микробиол., 1975, т. 44, вып. 5, с. 828-831.

4. Гоголева Е.В., Гречушкина Н.Н., Егоров Н.С. Экзополисахарид, образуемый Mycobacterium lacticolum на средах с некоторыми сахароспиртами и разными источниками азота. Вестн. Моск. ун-та. Сер. биология, 1978, № I, с. 54-57.

5. Гоголева Е.В., Гречушкина Н.Н., Егоров Н.С., Бирюзова В.И. Полисахариды свободной слизи, капсулы и клеточной стенки Mycobacterium lacticolum . Микробиол., 1976а, т. 45, вып. 6, с. 984-986.

6. Гоголева Е.В., Максимов В.Н., Гречушкина Н.Н., Егоров Н.С. Оптимизация среды и значение некоторых её компонентов для биосинтеза экзополисахарида Mycobacterium lacticolum . -Микробиол., 19766, т. 45, вып. 5, с. 800-805.

7. Гордон А., Форд Р. Спутник химика. М.: Мир, 1976, 541 с.

8. Егоров A.M., Платоненкова JI.C., Захарова Е.В., Нетрусов А.И. Новый штамм метилотрофных бактерий Pseudomonas oleovorans -продуцент полисахарида. Прикл. биохим. микробиол., 1976,т. 12, № 4, с. 524-527.

9. Егоров Н.С., Гречушкина Н.Н., Гоголева Е.В., Рассадин А.С. О физиологических функциях свободного экзополисахарида Mycobacterium lacticolum . Микробиол., 1978, т. 47, вып. 2, с. 241-245.

10. Егоров Н.С., Гречушкина Н.Н., Гоголева Е.В., Ткаченко А.П., Колесникова Н.С., Денисова С.В., Розанова Л.И. Внеклеточные полисахариды, синтезируемые Mycobacterium lacticolum на средах с жидкими н-алканами. Микробиол. пром., 1973, вып. I (97), с. 30-36.

11. Езепчук Ю.В. Биомолекулярные основы патогенности бактерий. -М.: Наука, 1977.-215 с.

12. Блинов Н.П. Некоторые микробные полисахариды и их практическое применение. Успехи микробиол., 1982, вып. 17, с. 158177.

13. Кац Л.Н. Поверхностные структуры бактериальной клетки. Успехи соврем, биол., 1973, т. 76, вып. 3 (6), с. 395-414.

14. Квасников Е.И., Писарчук Е.Н., Нестеренко О.А. Бактерии рода Arthrobacter Conn et Dimmick , 1947 и пути их использования. Успехи микробиол., 1977, вып. 12, с. 136-163.

15. Красильников Н.А. Определитель бактерий и актиномицетов. -М.: АН СССР, 1949.-830 с.

16. Логинова Н.В., Троценко Ю.А. Образование экзополисахарида Blastobacter viscosus при росте на среде с метанолом. -Прикл. биохим. микробиол., 1980, т. 16, № 3, с. 331-334.

17. Лойцянская М.С., Ткаченко А.А., Элисашвили Т.А. О левансаха-разе уксусно-кислых бактерий. Микробиол., 1971, т. 40, вып. 3, с. 505-508.

18. Методы исследования углеводов (Ред. Кочетков Н.К.). М.: Мир, 1967.-512 с.

19. Методы химии углеводов (Ред. Хорлин А.Я.). М.: Мир, 1975.445 с.

20. Милько Е.С., Ботвинко И.В., Степанова Р.А., Егоров Н.С. Сравнительное изучение химического состава и некоторых свойств полисахаридов капсул M-,S- и R-вариантов Mycobacterium lac-ticolum . Микробиол., 1983, т. 52, вып. 3, с. 388-391.

21. Милько Е.С., Егоров Н.С., Обухова Н.А. Естественная изменчивость микобактерий и родственных им организмов. Виол, науки, 1980, № 3, с. 5-19.

22. Милько Е.С., Егоров Н.С., Угарова Н.Н., Ревенко А.А. Образование биологически активных соединений s- , R- и М-формами Mycobacterium lacticolum на среде с н-гексадеканом. Микробиол., 1976, т. 45, вып. 5, с. 808-811.

23. Никитина К.А., Гречушкина Н.Н. К методике учета количества микроорганизмов при развитии на средах с жидкими углеводородами. Вестн. Моск. ун-та. Сер. биол., почвовед., 1965, № 5, с. 45-49.

24. Практикум по микробиологии (Ред. Егоров Н.С.). М.: Изд. Моск. ун-та, 1976.-307 с.

25. Преображенская М.Е. Декстраны и декстраназы. Успехи биол. химии, 1975, т. 16, с. 214-235.

26. Ткаченко А.А. Влияние некоторых факторов питательной среды на биосинтез леванаAcetobacter suboxydans var.levanicum. Прикл. биохим. микробиол., 1971, т. 7, № 3, с. 319-323.

27. Толленс В., Эльснер К. Краткий справочник по химии углеводов.- Л.-М.: ГОНТИ, 1938.-685 с.

28. Хроматография на бумаге (Ред. Хайс И.М., Мацек К.). М.: Изд. Ин. лит., 1962.-851 с.

29. Чижов О.С. Гликолактиловые кислоты. Успехи биол. химии, 1979, т. 20, с. II3-I27.то

30. Шашков А.С., Чижов О.С. Спектроскопия С-ЯМР в химии углеводов и родственных соединений. Биоорган, химия, 1976,т. 2, № 4, с. 437-497.

31. Элисашвили В.И. Рост Acetobacter suboxydans var. levanicum Л-I и активность левансахаразы в питательных средах различного состава. Вестн. Ленингр. ун-та, 1973, № 21, с.102-107.

32. Элисашвили В.И. Биосинтез левана уксуснокислыми бактериями, выделенными из природных источников. Прикл. биохим. микро-биол., 1982, т. 18, № 2, с. 180-185.

33. Adams G.A., Young R. Constitution of extracellular and capsular polysaccharides of Serratia marcescens. Ann. IT.Y.Acad. Sci., 1966, v.133, № 2, p. 527-545.

34. Aman P., Franzen L.-E., Darvill J.E.,McNeil M., Darvill A.G., Albersheim P. The structure of the acidic polysaccharide secreted by Rhizobium phaseoli strain 127K38. Carbohydr. Res., 1982, v. 103, Ш 1, p. 77-100.

35. Amemura A., Harada T. Structural studies on extracellular acidic polysaccharides secreted by three non-nodulating rhizobia.- Carbohydr. Res., 1983a, v. 112, Hi 1, p. 85-93.9 *- 114

36. Amemura A., Harada Т. Structural studies on the extracellular acidic polysaccharide from Rhizobium trifolii 4S. Carbohydr. Res*, 1983b, v. 115, p. 165-174.

37. Amemura A., Hisamatsu M., Ghai S.K., Harada T. Structural studies on a new polysaccharide, contaning D-riburonic acid, from

38. Rhizobium meliloti IPO 13336. Carbohydr. Res., 1981, v. 91,1, p. 59-65.

39. Amemura A., Hisamatsu M., Mitani H., Harada Т.- Cyclic (1»2)-B-D-glucan and the octasaceharide repeating units of extracellular acidic polysaccharides, produced by Rhizobium. Carbohydr. Res., 1983, v. 114, В 2, p. 277-285.

40. Andreesen Ш., Schlegel H.G. A new coryneform hydrogen bacterium: Corynebacterium autotrophicum strain 7C. II, Isolation of a slime-free mutant. Arch. Mikrobiol., 1974, v. 100, m 4, p. 351-361.

41. Azuma I., Kimura H., Minaka T., Aoki Ш., Yamamura Y. The isolation and purification of polysaccharides from culture filtrate of human tubercle bacilli strain H^yR^ Japan. J. Microbiol., 1968, v. 12, Hi 3, p. 367-369.

42. Bailey R.W. Transglucosidase activity of rumen strains of Streptococcus bovis. 2. Isolation and properties of dextransucrase.- Biochem. J.', 1959, v. 72, ib 1, p. 42-49.

43. Ball D.H., Adams G.A. A mannan produced by Bacillus polymyxa.- Can. J. Chem., 1959, v. 37, IB 6, p. 1012-1017.

44. Balza P., Cyr IT., Hamer G.K., Perlin A.S., Koch H.J., Stuart R.S. Applications of catalytic, hydrogen-deuterium exchange in ^C-n.m.r. spectroscopy. Carbohydr. Res., 1977, v. 59, № 1, p. C7-C11.

45. Bebault G.M., Dutton G.G.S., Punnell 1Т.А.Г, Mackie K.L. Structural investigation of Klebsiella serotype КЗ2 polysaccharide.

46. Behrens U., Klima M., Fiedler S. Growth and accumulation of polysaccharide by Xanthomonas campestris. Z. Allg. Microbiol., 1980, v. 20, K2 3, p. 209-213.

47. Вelsky I., Gutnick D.b., Rosenberg E. Emulsifier of Arthro-bacter RAG-1: determination of emulsifier>-bound fatty acids. FEBS Lett., 1979, v»' 101, Ш 1, p. 175-178.

48. Bennett L.G., Bishop C.T. The pyruvate ketal as a stereospe-cific immunodeteiminant in the type XXVII Streptococcus pneumoniae (pneumococcal) capsular polysaccharide. Immuno-chem., 1977, v. 14, В 9, p. 693-696.

49. Bergan Т., Hovig B. Hyaluronic acid capsule in a Streptococcus faecalis var.^rmogenes. Acta Path. Microbiol. Scand., 1969, v. 75, H3 1, p. 97-103.

50. Beringer J.E. Rhizobium recognition. Nature (L.), 1978, v.i271, IS 5642, p. 206-207.

51. Bhattacharjее A.K., Jennings H.J., Kenny C.P. Structural elucidation of 3-deoxy-D-manno-octulosonic acid contaning meningococcal 29-e capsular polysaccharide antigen using carbon-13 nuclear magnetic resonance. Biochem., 1978, v. 17, IB 4, p. 645-651.

52. Bhattacharjee A.K., Jennings H.J., Kenny C.P., Martin A., Smith I.C.P. Structural determination of the sialic acid polysaccharide antigens of Neisseria meningitidis serogroups

53. В and С with carbon-13 nuclear magnetic resonance. J. Biol, Chem., 1975, v. 250, Ш 5, p. 1926-1932.

54. Bimbaum S.E., Affronti L.F.,Chemical and serological relationships between the heteropolysaccharides of Mycobacterium tuberculosis and l^cobacterium kansasii. J. Bacterid.', 1968, v. 95, Ш 2, p.; 559-564.

55. Bishop CVT., Adams G.A., Hughes E.O. A polysaccharide from the blue-green alga, Anabaena cylindrica. Can. J. Chem., 1954, v. 32, lit 11, p. 999-1004.

56. BjSrndal H., Lindberg В., Pilotti A., Svensson S. Mass spectra of partially methylated alditol acetates. Part II. Deuter »rium labelling experiments. Carbohydr. Res., 1970, v. 15, ®3, p. 339-349.

57. Bourgeau G., McBride B.C. Dextran-mediated intern-bacterial aggregation between dextran-synthesizing streptococci and Actinomyces viHeosus. Infect. Immun., 1976, v. 13, KS 4, p. 1228-1234.

58. Bouveng Н.О., Bremner I., Lindberg B. A mannan elaborated by a Scarcina species. Acta Chem. Scand., 1965, v. 19, HS 4, P. 967-973.

59. Branefors-Helander P., Kenne L., Lindberg B., Petersson K., Unger P. Structural studies of two capsular polysaccharides elaborated by different strains of Haemophilus influenzae type e . Carbohydr. Res., 1981a, v. 88, m 1, p. 77-84.

60. Branefors-Helander P., Kenne L., Lindberg В., Petersson K., Unger P. Structural studies of the capsular polysaccharide elaborated by Haemophilus influenzae type d. Carbohydr. Res., 1981b, v. 97, IS 2, p. 285-291.

61. Branefors-Helander P., Kenne L., Lindqvist B. Structural studies of the capsular antigen from Haemophilus influenzae ty*pe f. Carbohydr. Res., 1980, v. 79, № 2, p. 308-312.

62. Виске C., Deavin L., Lawson C.J., Pindar D.P. The production of industrially important bacterial polysaccharides. Bio-chem. Soc. Trans., 1975, v. 3, HS 6, p. 844-847^

63. Cadmus M.C., Burton K.A., Slodki M.E. Growth-related substi-tuent changes in exopolysaccharides of fast-growing rhizobia. Appl. Environ. Microbiol., 1982, v. 44, И 1, p. 242-245.

64. Cadmus M.C., Gasdorf H., Lagoda A.A., Anderson R.P., Jackson R.Y/. Hew bacterial polysaccharide from Arthrobacter. Appl. Microbiol., 1963, v. 11, IB 6, p. 488-492.

65. Carlson D.M., Matthews L.W. Polyuronic acids produced by Pse-udomonas aeruginosa. Biochem., 1966, v. 5, N2 9, p. 28172828;

66. J. Bacterid;, 1980, v. 141, Ю 2, p. 971-972. 74» Chaudhari A.S., Bishop C.T., Dudman W.F. Structural studies on the specific capsular polysaccharide from Rhizobium trifolii,r

67. TA-1. Carbohydr. Res., 1973, v. 28, Ш 2, p. 221-231.

68. Cheng K.-J., Hironaka R., Jones G.A., Mcas Т., Costerton J.W. Frothy feedlot bloat in cattle: production of extracellular polysaccharides and development of viscosity in cultures of Streptococcus bovis. Can. J. Microbiol., 1976, v. 22, P 4, p. 450-459.

69. Cherniak R., Henderson B.G. Immutiochemistry of the capsular polysaccharides from Clostridium perfringens: selected Hobbs strains 1, 5, 9, and 10. Infect. Imnran., 1972, v. 6, Ш 1, p. 32-37.

70. Choy Y.-M., Dutton G.G.S. Structure of the capsular polysaccharide of Klebsiella K-type 56. Can. J. Chem., 1973, v.51, IB 18, p. 3021-3026.

71. Choy Y.-M., Dutton G.G.S. The structure of the capsular polysaccharide of Klebsiella K-type 72; occurence of 3,4-0-(1-carboxyethylidene)-L-rhaHniose. Can. J. Chem., 1974, v. 52, K2 4, p. 684-687.

72. Cifonelli J.A., Rebers P.A., Heddleston K.H. The isolation and characterization of hyaluronic acid from Pasteurella mul-tocida. Carbohydr. Res., 1970, v. 14, IS 2, p. 272-276.

73. Colvin J.R., Beer M. The formation of cellulose microfibrils in suspensions of Acetobacter xylinum. Can. J. Microbiol., 1960, v. 6, in 6, p. 631-637.

74. Comb D.G., Roseman S. The sialic acids, I. The structure and enzymatic synthesis of N-acetylneuraminic acid,1 J, Biol. Chem,, 1960, v. 235, !•>» 9, p. 2529-2537.

75. Cooke A,A,, Percival E. Structural investigations of the extracellular polysaccharides elaborated by Beijerinckia mobilis. Carbohydr. Res., 1975, v. 43, 11, p, 117-132.

76. Corpe V/.A. The extracellular polysaccharide of gelationous strains of Chromobacterium violaceum. Can. J. Microbiol., 1960, v,' 6, m 2, p. 153-163.

77. Courtois В., Homez J.P., Derieux J.C. Effet de la synthese d'acide 2-ceto-gluconique sur la production d*exopolysaccha-rides par une souche de Rhizobium meliloti. Can. J, Microbiol., 1979, v, 25, H2 10, p. 1191-1196.

78. Crisel R.M., Baker R.S., Dorman D.E. Capsular polymer of Haemophilus influenzae, type b. J. Biol. Chem., 1975, v. 250, N2 13, p. 4926-4930.

79. Darby G.K., Jones A.S., Kennedy J.F., Walker R.T. Isolation and analysis of the nucleic acids and polysaccharides from Clostridium welchii. J. Bacteriol., 1970, v. 103, Ш 1, p.4 i159.165.

80. Darke A., Morris E.R., Rees D.A., Welsh E.J. Spectroscopic characterization of ordeivdisorder transitions for extracellular polysaccharides of Arthrobacter species. Carbohydr. Res., 1978, v. 66, p. 133-144.

81. Dedonder R.A., Hassid W.Z, The enzymatic synthesis of a (B-1,2-)-linked glucan by an extract of Rhizobium japonicum. -Biochem. Biophys. Acta, 1964, v. 90, КЗ 2, p. 239-248.

82. Deinema M,H,, Zevenhuizen Ь.Р.Т.М, Formation of cellulose fibrils by Gram-negative bacteria and their role in bacterial flocculation. Arch. Mikrobiol., 1971, v. 78, m 1, p. 42-57.

83. Dell A., Dutton G.G.S., Jansson P.E., Idndberg В., Lindquist U», Sutherland I.W. Absence of O-formyl groups in Klebsiella polysaccharides. Carbohydr. Res., 1983, v. 122, is 2, p. 340343.

84. Dellweg H., John M., Forster B. Characterization of an extracellular polysaccharide from Pseudomonas stutzeri, Eur. J. АррГ. Microbiol., 1975, v. 1, № 4, p.' 307-312.

85. Dias P.P., Bhat J.V. Nutritional properties of Coxynebacterium laevanifoimans. Antonie van Leeuwenhoek J. Microbiol. Se• ё *rol.,1964, v. 30, P 2, p. 176-184.

86. Dubois M., Gilles K.A., Hamilton J.K., Rebers P.A., Smith P. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal. Chem., 1956, v. 28, № 3, p. 350-356.

87. Dudman W.P. Cellulose production by Acetobacter strains in submerged culture. J. Gen. Microbiol., 1960, v. 22, IIS 1, p. 25-39.

88. Dudman W.P. Capsulation in Rhizobium species. J. Bacterid., 1968, r. 95, ® 3, P. 1200-1201.

89. Dudman W.P. The role of surface polysaccharides in natural environments. In: Surface Carbohydrates of the Prokaryotic Cell (Ed. Sutherland I.), L.: Acad. Press, 1977, p. 357-414.

90. Ъу Rhizobium phaseoli strain 127K87. Carbohydr. Res., 1983b, v. 117, p. 169-183.

91. Dunican L.K., Seeley H.W. Temperature-sensitive dextransuc-rase synthesis by a Lactobacillus. J. Bacterid., 1963, v. 86, № 5, p.' 1079-Ю83.V

92. Dunican L.K., Seeley H.W. Extracellular polysaccharide synthesis by members of the genus Lactobacillus: conditions for formation and accumulation. J. Gen. Microbiol., 1965, v. 40, Ш 3, P. 297-308.

93. Dutton G.G.S., DiPabio J. The capsular polysaccharide of Klebsiella serotype K60; a novel, structural pattern. Carbohydr. Res., 1980, v. 87, E2 1, p. 129-139.

94. Dutton G.G.S., Savage A.V. Structural investigation of the capsular polysaccharide of Klebsiella serotype K12. Carbohydr. Res, 1980a, v. 83, И 2, p. 351-362.

95. Dutton G.G.S., Yang M.-T. The structure of the capsular polysaccharide of Klebsiella K-type 5. Can. J. Chem., 1973, v. 51, Ш 11, p. 1826-1832.

96. Eagon R.G. Studies on polysaccharide foiraation by Pseudomo-nas fluoresceins. Can. J. Microbiol., 1956, v. 2, p 7, p. 673-676.

97. Egan W., Liu T.-Y., Dorow D., Cohen J.S., Robbins J.D., Got-schlich E.C., Robbins J.B. Structural studies on the sialic acid polysaccharide antigen of Escherichia coli strain Bos

98. Biochem., 1977, v. 16, IS 16, p. 3687-3692.

99. Egan Т/., Tsui F.-P., Climenson P.A., Schneerson R. Structural and immunological studies of the Haemophilus influenzae type с capsular polysaccharide. Carbohydr. Res., 1980a, v.480, IS 2, p. 305-316./

100. Egan W., Tsui F.-P., Schneerson R. Structural studies of the Haemophilus influenzae type f capsular polysaccharide. -Carbohydr. Res., 1980b, v. 79, Ш 2, p. 271-277.

101. Elliott S.D., Tai J.Y. The type-specific polysaccharides of Streptococcus suis. J. Exp. Med., 1978, v. 148, ГШ 6, p. 1699-1704.

102. Evans L.R., Linker A. Production and characterization of the slime polysaccharide of Pseudomonas aeruginosa.1 ~ J. Bacte-riol., 1973, v. 116, IS 2, p. 915-924.

103. Eveleigh D.E. Microbial monosaccharides and polysaccharides. In: Handbook of Microbiology (Ed. Laskin A.I., Lechevalier H.A.), Cleveiland (Ohio): CRC Press, 1973, v. II, p. 87-239.

104. Fareed V.S., Percival E. Structural investigations of the extracellular polysaccharide elaborated by S19, a Xanthomonas-type bacterium. Carbohydr. Res., 1976, v. 49, p. 427-438.

105. Pranzen L.-E., Dudman W.F., McNeil M., Darvill A.G., Alber-sheim P. The structure of the acidic polysaccharide secreted by Rhizobium phaseoli strain 127K44. Carbohydr. Res.,ф r ' *1983, v. 117, p. 157-167.

106. Preedman M., Birkhed D., Granath K. Analyses of glucans from cariogenic and mutant Streptococcus mutans. Infect. Immun,,•r '4 " *1978, v. 21, m 1, p. 17-27.

107. Puchs A. Synthesis of levan by Pseudomonads. Nature, 1956, v. 178, K2 4539suppl., p. 921.

108. Garegg P.J., Jansson P.-E., Lindberg В., Lindh P., LSnngren J., Kvarastrom I., Nimmich W. Configuration of the acetal carbon atom of pyruvic acid acetals in some bacterial polysaccharides. Carbohydr. Res., 1980, v. 78, N2 1, p. 127-132.

109. Garegg P.J., Lindberg В., KvarnstrSm I. Preparation and n.m. r. studies of pyruvic acid and related acetals of pyranosi-des: configuration at the acetal carbon atoms.' Carbohydr. Res., 1979, v. 77, p. 71-78.

110. Garegg P.J., Lindberg В., Onn Т., Sutherland I.W. Comparative structural studies on the M-antigen from Salmonella ty-phimurium, Escherichia coli and Aerobacter cloacae. Acta Chem. Scand., 1971, v. 25, КЗ 6, p. 2103-2108.

111. Garszczynski S.M., Edwards J.R. Synthesis of a broth levan by a cell-bound levansucrase from Streptococcus salivarius (SS2). Arch. Oral. Biol., 1973, v. 18, IB 2, p. 239-251.

112. Gaudy E., Wolfe R.S. Composition of an extracellular polysaccharide produced by Sphaerotilus natans. Appl. Microbiol., 1962, v. 10, N3 3, p. 200-205.

113. Ghai S.K., Hisamatsu M., Amemura A., Harada T. Production and chemical composition of extracellular polysaccharides of

114. Rhizobium. J. Gen. Microbiol., 1981, v. 122, В 1, p. 3340.

115. Gibbons R.J., Hygaard M, Synthesis of insoluble dextran and its significance in the formation of gelatinous deposits by plaque-forming streptococci. Arch. Oral Biol., 1968, v. 13, IS 10, p. 1249-1262.

116. Gorin P.A.J. Deuterium isotope effect on shifts of maginetic resonance signals of sugars: signal assgnment studies. Can. J. Chem., 1974, v. 52, H2 3, p. 458-461.

117. Gorin P.A.J., bjazurek M. Further studies on the assignment of signals in ^C magnetic resonance spectra of aldoses and derived methyl glycosides. Can. J. Chem., 1975, v. 53, Ш 8, p. 1212-1223.

118. Gorin P.A.J., Spencer J.F.T. Extracellular acidic polysaccharides from C. insidiosum and other Corynebacterium spp. -Can. J. Chem., 196la,v. 39, H3 11, p. 2274-2281.

119. Gorin P.A.J., Spencer J.F.T., Lindberg В., Lindh F. Structure of the extracellular polysaccharide from Corynebacterium insidiosum. Carbohydr. Res., 1980, v. 79, HS 2, p. 313315.

120. Goto S., Enomoto S.,Takahashi Y., Motomatsu R. Slime production by Pseudomonas aeruginosa. I. Conditions for slime production by the cellophane plate method. Japan. J. Microbiol., 1971, v. 15, K2 4, p. 317-324.

121. Goto S., Murakawa Т., Kuwahara Sh. Slime production by Pseudomonas aeruginosa. II. A new synthetic medium and cultural conditions suitable for slime production by Pseudomonas aeruginosa. Japan. J. Microbiol., 1973, v. 17, В 1, p. 45-51.1. M.

122. Govan J.R.W., Fyfe J.A., Jarman Т.Е. Isolation of alginate-producing mutants of Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas putida and Pseudomonas mendocina. J. Gen. Microbiol., 1981, v. 125, N2 1, p. 217-220.

123. Grant W.D., Sutherland I.W., Wilkinson J.F. Exopolysaccha-ride colanic acid and its occurence in the Enterobacteria-ceae. J. Bacterid., 1969, v. 100, № 3, p. 1187-1193.

124. Guggenheim B. Extracellular polysaccharides and microbial plaque. Int. Dent. J., 1970, v. 20, IB 4, p. 657-678.

125. Hagiwara S., Yamada K. Studies on the utilization of petrochemicals by microorganisms. Part III. Production of polysaccharide from 1,2-propanediol by Corynebacterium species. Agric. Biol., Chem., 1971, v. 35, ib 9, p. 1402-1406.

126. Hakomori S. A rapid permethylation of glycolipid, and polysaccharide catalyzed by methylsulfinyl carbanion in dimethyl sulfoxide. J. Biochem., 1964, v. 55, Ш 2, p. 205-208.

127. Hammond B.F. Studies on encapsulated lactobacilli. III.Human oral strains. J. Dent. Res., 1967, v. 46, № 2, p. 340-346.

128. Hanessian S., Haskell Т.Н. Structural studies on staphylococcal polysaccharide antigen. J. Biol., 1964, v. 239, p. 2758-2764.■ *

129. Harada Т., Masada M., Fujimori K., Maeda I. Production of a firm resilient gel-forming polysaccharide by a mutant of Al-caligenes faecalis var. myxogenes 10C3. Agric. Biol. Chem., 1966, v. 30, p. 196-202.

130. Harada Т., Misaki A., Saito H. Curdlan: a bacterial gel-forming B-1,3-glucan. Arch. Biochem. Biophys., 1968, v. 124,

131. Heyns K., Kiessling G. Strukturaufklarung des Yi-antigensaus Citrobacter freundii (E. coli) 5396/38. Carbohydr. Res., 1967, v. 3, Ш 3, p. 340-353.

132. Higton P.R., Weigel H. The structure of an extracellular, water-soluble polysaccharide elaborated by the cariogenic Streptococcus mutans GS-5. Carbohydr. Res., 1980, v. 86,■ * 41, p. 105-112.

133. Microbiol., 1982, v. 128, Ш 8, p. 1873-1879.

134. Hisamatsu M., Ott I., Amemura A.1, Harada Т., Uakanishi I., Kimura K. Change in ability of Agrobacterium to produce water-soluble and water-insoluble B-glucans. J. Gen. Micro4 »biol.1, 1977, v. 103, Ш 2, p. 375-379;

135. Hobson P.U. Polysaccharide degradation in the rumen. In: Microbial Polysaccharides and Polysaccharases (Ed, Berkeley R.C.W., Gooday G.W., Ellwood D.C.), L.: Acad. Press, 1979, P. 377-397.

136. Holt S.C. The comparative ultrastructure of Sarcina maxima and Sarcina ventriculi. Antonie van beeuv/enhoek J. Microbiol. Serol., 1966, v. 32, lit 4, p. 451.

137. Hough b., Jones J.K.H., Wadman W.H. An investigation of the polysaccharide components of certain fresh-water algae. -J. Chem. Soc., 1952, p. 3393-3399.

138. How C.T., baskin A.I., Patel R.U. Growth and polysaccharide production by Methylocystis parvus OBBP on methanol. Appl. Environ. Microbiol., 1978, v. 37, К 5, p. 800-804.

139. Ikeda P., Shuto H., Saito Т., Fukui Т., Tomita K. An extracellular polysaccharide produced by Zoogloea ramigera 115. -Eur. J. Biochem., 1982, v. 123, Ш 2, p. 437-445.

140. Jackson L.K., Slodki M.E., Plattner R.D., Burton K.A., Cadmus M.C. Capsular and extracellular polysaccharides from Rhizobium microsymbionts of Acacia decurrens, Carbohydr. Res., 1982, v. 110, W 2, p. 267-276.>

141. Jann K., Jann В., Schmidt M.A., Vann W.P. Structure of the Escherichia coli K2 capsular antigen, a teichoic acid-like polymer. J. Bacteriol., 1980, v. 143, КЗ 3, p. 1108-1115.

142. Jansson P.-E., Kenne L., Lindberg B. Structure of the extracellular polysaccharide from Zanthomonas campestris. Carbohydr. Res., 1975, v. 45, p. 275-282.

143. Jansson P.-E., bindberg В., Lindquist U., Carlo D.J. Structural studies of the capsular polysaccharide from Streptococcus pneumoniae type 17A. Carbohydr. Res., 1983a, v. 118,* *p. 157-171.

144. Jansson P.-E., Lindberg В., Ljunggren H. Structural studies of the Rhizobium trifolii extracellular polysaccharide. -Carbohydr. Res., 1979, v. 75, p. 207-220.

145. Jansson P.-E., Lindberg В., Sandford P.A. Structural studiesof gellan gum, an extracellular polysaccharide,elaboratedby Pseudomonas elodea. Carbohydr. Res., 1983b, v. 124, Ш 1, P. 135-139.

146. JaimarL T.R. Bacterial alginate synthesis, In: Microbial Polysaccharides and Polysaccharases (Ed, Berkeley R.C.W., Gooday G.Y/,, Ellwood D.C.), b.: Acad, Press, 1979, p. 35-50,

147. Jarman T.R., Deavin L,, Slocombe S., Righelato R.C, Investigation of the effect of environmental conditions on the rate of exopolysaccharide synthesis in Azotobacter vinelandii, -J. Gen. Microbiol,, 1978, v. 107, MS 1, p. 59-64.

148. Jarvis P.G., Mesenko M.T., Tibbs K.E. Production of Vi antigen on a chemically defined medium by a coliform bacterium. J. Bacterid., 1960, v. 80, m 5, p. 673-676.

149. Jeanes A. Extracellular microbial polysaccharides. Hew hyd-rocolloids of interest to the food industry. Pood Tech-nol., 1974, v. 28, Ш 5, p. 34-36.

150. Jennings H.J.', Katzenellenbogen E., Lugowski 0., Kasper D.L. Structure of native polysaccharide antigens of type la and lb group В Streptococcus. Biochem., 1983a, v. 22, 112 5, p, 1258-1264,

151. Jennings H.J., Lugowski C.W., Ashton P.E., Ryan J.A. The structure of the capsular polysaccharide obtained from a new serogroup (L) of neisseria meningitidis. Carbohydr, Res.,1. У ' * 4 * * в1983b, v. 112, K2 1, p. 105-111.

152. Jennings H.J., Rosell K.-G., Kasper D.L. Structural determination and serology of the native polysaccharide antigen of type-Ill group В Streptococcus. Can. J. Biochem;, 1980,1. V,- 58, № 2, p. 112-120.

153. Jennings H.J., Bosell K.-G., Kenny C.P. Structural elucidation of the capsular polysaccharide antigen of Neisseria meningitidis serogroup Z using nuclear magnetic resonance. Can. J. Chem., 1979, v. 57, IB 22, p. 2902-2907.4

154. Kanamaru K., Iwamuro Y., Mikami Y., Obi Y., KLsaki T. 2-0-methyl-D-mannose in an extracellular polysaccharide from Hyphomicrobium sp. Agric. Biol. Chem., 1982, v. 46, N2 10, p. * *2419-2424.

155. Kaushal R., Walker Т.К. Formation of cellulose by certainspecies of Acetobacter. Biochem. J., 1951, v. 48, Ш 5, p. * *618.621,

156. Kelstrup J. Extracellular polysaccharides of smooth and rough variants of Streptococcus salivarius. Scand. J. Dent. Res., 1981, v. 89, 18 5, p. 374-383.

157. Kendall F.E., Heidelberger M., Dawson M.H. A serologically inactive polysaccharide elaborated by micoid strains of group A hemolytic streptococcus. J. Biol. Chem., 1937, v. 118, p. 61-69.

158. Kennedy J.F., Jones P., Barker S.A., Banks G.T. Factors affecting microbial growth and polysaccharide production during the fermentation of Xanthomonas campestris cultures. -. Enzyme Microbial Teclmol., 1982, v. 4, Ш 1, p. 39-43.

159. Kita Y., Isono M. Biologically active polysaccharides produced by bacteria. J. Takeda Res. Lab., 1975, v. 34, is 4, p. 530-568.

160. Kochetkov U.K., Sviridov A.F., Arifkhodzhaev Kh.A., Chizhov O.S., Shashkov A.S. The structure of the extracellular polysaccharide from Mycobacterium lacticolum strain 121. Carj ■ * *bohydr. Res., 1979, v. 71, p. 193-203.

161. Knox K.L., Hall E.A.,The relationship between the capsularand cell wall polysaccharides of strains of Lactobacillluscasei var. rhamnosus. J. Gen. Microbiol., 1964, v. 37, H3 3, p. 433-438.

162. Knutson C.A., Pittsley J.E., Jeanes A. Composition and properties of -the extracellular polysaccharide produced by Arthrobacter stabilis URRL B-3225. Carbohydr. Res., 1979, v. 73, P. 159-168.

163. LaRiviere J.W.M., Kooiman P., Schmidt K. Kefiran, a novelpolysaccharide produced in the kefir grain by Lactobacillus*brevis. Arch. Mikrobiol., 1967, v. 59, Ш 1-3, p. 269-278.

164. Larm 0., Lindberg B. The pneumococcal polysaccharides: a reexamination. Adv. Carbohydr. Chem., 1976, v. 33, p. 295

165. Lawford G;R., Kligerman A., Williams T. Dextran biosynthesis and dextransucrase production by continuous culture of Leu-conostoc mesenteroides. Biotechnol. Bioeng., 1979, v. 21,4 * i * , 'm 7, p. 1121-1131.

166. Lawson G.J., Stacey M. Immunopolysaccharides. Part I. Preliminary studies of a polysaccharide from Azotobacter chroo-coccum, contaning a uronic acid. J. Chem. Soc., 1954, K2 6, P. 1925-1931.

167. Lewis B.A., Cyr M.J.St., Smith P. The constitution of the fructan produced by Leuconostoc mesenteroides strain C. -Carbohydr. Res., 1967, v. 5, H2 2, p. 194-201.

168. Lindberg A.A. Bacterial surface carbohydrates and bacteriophage adsorption. In: Surface Carbohydrates of the Proka-ryotic Cell (Ed. Sutherland I.), L.: Acad. Press, 1977, p. 289-356.

169. Lindberg В., Lindqvist В., Lonngren J., Uimmich W. Structural studies of the capsular polysaccharide of Klebsiella type 37. Carbohydr. Res., 1977, v. 58, № 2, p. 443-451.

170. Lindberg В., Lindqvist В., Lb'nngren J., Powell D.A. Structural studies of the capsular polysaccharide from Streptococcus pneumoniae type 1. Carbohydr. Res., 1980, v. 78, Ш 1, p. 111-117.-

171. Lowiy O.H., Rosebrough IT,J., Parr A,L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem., 1951, v. 193, № 1, p. 265-275.

172. Lyne R.R., Peat S., Stacey M. Polysaccharides. Part XXXIX. The constitution of certain levans foiraed by bacterial actiл 0on. J. Chem. Soc., 1940, p. 237-241.

173. Maloney P.C., Schneider H., Brandt B.L. Production and ge-gradation of serogroup В Neisseria meningitidis polysaccharide. Infect. Immun.-, 1972, v. 6, Ш 5, p. 657-661.

174. Manning J.H., Green J.W. A comparison of the reduction of alginic acid by different methods, J. Chem. Soc. (C), 1967, v. 22, p. 2357-2363.

175. Markovitz A. Genetics and regulation of bacterial capsular polysaccharide biosynthesis and radiation sensitivity. In: Surface Carbohydrates of the Prokaryotic Cell (Ed. Suther4land I.), L.: Acad. Press, 1977, p. 415-462.

176. Matthysse A.G., Holmes K.Y., Gurlitz R.H.G. Elaboration of cellulose fibrils by Agrobacterium tumefaciens during attachment to carrot cells. J. Bacterid., 1981, v. 145, © 1,p. 583-595.

177. Mehta V.B^, Vaidya B.S. Cellular and extracellular polysaccharides of the blue-green alga Nostoc. J. Exp. Bot., 1978a,v. 29, Ш 113, p. 1423-1430.

178. Mehta V.B., Vaidya B.S. A study on production of extracellular polysaccharides by cyanobacterium Oscillatoria jasorvensis. Ind. J. Biochem., 1978b, v. 15suppl., нз 2, p. 2425.

179. Messner P., Unger P.M. Structure of the capsular polysaccharide (Кб-antigen) from Escherichia coli LP 1092. Biochem. Biophys. Res. Gommun., 1980, v. 96, m 3, p. 1003-1010.

180. Mian P.A., Jarman T.R., Righelato R.C. Biosynthesis of exopolysaccharide by Pseudomonas aeruginosa. J. Bacterid., 1978, v. 134, US 2, p. 418-422.

181. Minoda Y., Kodama T. Isolation, identification and cultivain:tion characteristics of thermophilic methane utilizer. The 2nd U.S.S.R.-Japan Sem. Fexm. Technol., Japan, 1980, p. 5.

182. Mirelman D*., Lotan R., Bernstein Y., Plowers H.M., Sharon IT. Purification and properties of an extracellular polysaccharide containing amino sugars formed by Bacillus cereus. J.i * *

183. Gen. Microbiol., 1973, v. 77, Ю 1, p. 5-10.

184. Misaki A., Torii M., Sawai Т., Goldstein I.J. Structure of the dextran of Leuconostoc mesenteroides B-1355. Carbohydr. Res., 1980, v. 84, © 2, p. 273-285.

185. Misaki A., Tsumuraya Y., Kakuta M., Takemoto H., Igarashi T. D-allose -containing polysaccharide synthesized from methanol by Pseudomonas sp. Carbohydr. Res., 1979, v. 75, p. C8-C10.

186. Miyaji H., Misaki A., Torii M. The structure of a dextran produced by Leuconostoc mesenteroides ШШЬ B-1397: the linkages and length of the branches. Carbohydr. Res., 1973, v. 31, K8 2, p. 277-287.

187. Miyazaki Т., Yamada H., Awaya J., Omura S. Isolation and structure of an extracellular polysaccharide from Streptomy4 * Л *ces sp. FERM-p1185. J. Gen. Microbiol., 1976, v. 95, !3 1, p. 31-38.

188. Moore B.G., Tischer R.G. Extracellular polysaccharides of algae: effects on life-support systems, Science, 1964, v. 145, IB 3632, p. 586-587.

189. Moore B.G., Tischer R.G. Biosynthesis of extracellular polysaccharides by the blue-green alga Anabaena flos-aquae. -Can. J. Microbiol., 1965, v. 11, IB 6, p. 877-885.

190. Morita XT., Takagi M., Murao S. A new gel-foiming polysaccharide produced by Bacillus subtilis FT-3. Its structure and its physical and chemical characteristics. Bull. Univ. Osaka Prefect., 1979, v. B31, p. 27-41.

191. Morrison I.M., Young R., Perry M.B., Adams G.A. The exocellular glycan produced by Myxobacterium 402." Can. J. Chem.,* * 1967, v. 45, Ш 17, p. 1987-1990.

192. Murphy D. Structure of a levan produced by Bacillus polymy-xa. Can'. J. Chem., 1952, v. 30, IB 11, p. 872-878.

193. Murphy S.V.K.H., Melly M.A., Harris Th.M., Hellerqvist C.G., Hash J.H. The repeating sequence of the capsular polysaccharide of Staphylococcus aureus M. Carbohydr. Res., 1983, v. 117, p. 113-123.

194. Pace G.W., Righelato R.C. Production of extracellular microbial polysaccharides. Adv. Biochem. Eng., 1980, v. 15, p. 41-70.

195. Pierce А.V/., White A.G.C. Hyaluronic acid formation by Streptococcus pyogenes. Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 1954, v.87, IS 1, p. 50-54.

196. Piggott N.H., Sutherland I.W., Jarman T.R. Alginate synthesis by mucoid strains of Pseudomonas aeruginosa РАО. Eur, J. Appl.Microbiol. Biotechnol., 1982, v. 16, lis 2-3, p. 131135.

197. Politis D.J., Goodman R.N. Pine structure of extracellular polysaccharide of Erwinia amylovora. Appl. Environ. Microbiol., 1980, v. 40, П2 3, p. 596-607.'

198. The Prokaryotes. A Handbook of Habitats, Isolation, and Identification of Bacteria (Ed. Starr M.P., Stolp H., Trii-per H.G., Balows A., Schlegel H.G.), Berlin: Springer-Ver4 4 < 'lag, 1981, v. I.-1102 p., v. IX.-2284 p.

199. Purakayastha S., Chatterjee B.P., Rao C.V.N. Structural studies on Pneumococcus type XXII capsular polysaccharide: a revision of earlier structure. Ind. J. Chem., 1979» v. 17B, 132 2, p. 118-122.

200. Rapp P., Beck Ch.H., Wagner P. Formation of exopolysacchari-des by Rhodococcus erythropolis and partial characterization of a heteropolysaccharide of high molecular weight.4

201. Eur. J. Appl. Microbiol. Biotechnol., 1979, v. 7, ® 1, p. 67-78.

202. Robyt J.P., Martin P.J. Mechanism of synthesis of D-glucansby D-glucosyltransferases from Streptococcus mutans 6715. * *

203. Carbohydr. Res., 1983, v. 113, H8 2, p. 301-315.

204. Romano A.H., Peloquin J.P. Composition of the sheath of Sphaerotilus natans. J. Bacteriol., 1963, v. 86, Ш 2, p. 252-258.

205. Rosan В., Hammond B.P. Extracellular polysaccharides of Actinomyces viscosus. Infect. Immun., 1974, v. 10, K2 2, p. 304-308.

206. Sandford P.A. Exocellular, microbial polysaccharides. Adv.1. J ■ 4

207. Carbohydr. Chem. Biochem., 1979, v. 36, p. 265-313.

208. Seastone C.7. The virulence of group С hemolytic streptococci of animal origin. J. Exp. Med,, 1939, v. 70, is 4, p. 361-378.

209. Seymour F.R., Khapp R.D., Jeanes A. Structural analysis of13levans by use of '^C-n.m.r. spectroscopy. Carbohydr. Res,,*1979b, v. 72, p. 222-228,

210. Sharon N. Polysaccharide containing amino-sugar from Bacillus subtilis, Nature (L.), 1957, v. 179, IE 4566, p. 919.

211. Sharpe M.E., Garvie E.I., Tilbuiy R.H. Some slime-forming heterofermentative species of the genus Lactobacillus. -Appl. Microbiol., 1972, v. 23, Ш 2, p. 389-397.

212. Shilo M. lysis of blue-green algae by Myxobacter. J, Bacterid., 1970, v. 104, IS 1, p. 453-461.

213. Slade M.B., Tiffin A.I. Serological cross-reactions between Erwinia amylovora and Ervyinia herbicola. ^"iroc. 4th Int. Conf. Plant Pathol. Bact., Angers, 1978, v. 1, p. 289-293.

214. Sloneker J.H., Orentas D.G., Knutson C.A,, Watson P.R,, Jeanes A, Structure of the extracellular bacterial polysaccharides from Arthrobacter viscosus NRRL B-1973. Can.J. Chem,,r1968, v. 46, m 21, p. 3353-3361,

215. Smith E.J. Purification and properties of an acidic polysaccharide isolated from Achromobacter georgiopolitanum. J. Biol. Chem., 1968, v. 243, IS 19, p. 5139-5144.

216. Somme R. Chemical analysis of exocellular, acid polysaccharides from seven Rhizobium strains. Carbohydr. Res., 1974,v. 33, Я2 1, p. 89-96.

217. Souw P., Demain А.Ъ. .nutritional studies on xanthan production by Xanthomonas campestris 1TRRL B1459. Appl. Environ, Microbiol., 1979, v. 37, IS 6, p. 1186-1192.

218. Stacey M., Barker S.A. Polysaccharides of Micro-organisms, -Oxford: Olaredon Press, 1960.-228 p.

219. Stahl S. Slime of Myxococcus virescens. Physiol. Plant.,ф1973, v. 28, Ш 3, p. 523-529.

220. Stanek J., Cerny M., Kocourek J., Pacak J. The Monosaccharides. Praque: Publishing House of the Czechoslovak Academy of Sciences, 1963.-1006 p.

221. Stauffer K.R., Leeder J.G. Extracellular microbial polysaccharide production by fermentation on whey or hydrolyzed whey. J. Pood Sci., 1978, v. 43, В 3, p. 756-758.

222. Strobel G.A. Purification and properties of a phytotoxic polysaccharide produced by Corynebacterium sepedonicum, -Plant Physiol., 1967, v. 42, Ш 10, p. 1433-1441.

223. Sutherland I.W. Microbial exopolysaccharides: control of synthesis and acylation. In: Microbial Polysaccharides and Polysaccharases (Ed. Berkeley R.C.W., Gooday G.W., Ellwood D.C.), Ъ.: Acad. Press, 1979, p. 1-34.

224. Sutherland I.W. Polysaccharides produced by Cystobacter, Ar-changium, Sorangium and Stigmatella species. J. Gen. Microbiol., 1979b, v. 111, H2 1, p. 211-216.

225. Sutherland I.W. Biosynthesis of microbial exopolysacchari-des. Adv. Microb. Physiol., 1982, v. 23, p. 79-150.

226. Sutherland I.W., Ellwood D.C. Microbial exopolysaccharides -industrial polymers of current and future potential. In: Microb. Technol.: Curr. State, Future Prospects. 29 Symp. Soc. Gen. Microbiol., Cambridge, 1979, p. 107- 150.

227. Sutherland I.?/., Thomson S, Comparison of polysaccharidesproduced Ъу Мухососсиз strains. J. Gen. Microbiol., 1975,* *v. 89, m 1, p. 124-132.

228. Sutherland I.W., Williamson J. A yellow polysaccharide-pro-ducing bacterium with unusual characteristics. Ear. J. Appl. Microbiol., 1979, v. 6, IIS 3, p. 233- 240.

229. Tannahill A.L., Finn R.K. Process for the production of he-teropolysaccharide by fermentation of methanol. Cornell Research Poundation Inc., P U.S.A., cl. 195-49, 1975.

230. Tare say L., Jann В., Jann K. Immunochemistry of the К antigens of Escherichia coli. The IC87 antigen from Escherichia* *coli 08:K87(B?):H19. Eur. J. Biochem., 1971, v. 23,,Ш 3, p. 505-514.

231. Taylor W.H.,Juni E. Pathways for biosynthesis of a bacterial capsular polysaccharide. I. Characterization of the organism and polysaccharide. J. Bacteriol;, 1961, v. 81, III 5, p. 688-693.

232. Tischer R.G., Davis E.B. The effect of various nitrogen sources upon the production of extracellular polysaccharide by the blue-green alga Anabaena flos-aquae A-37. J. Exp. Bot., 1971, v. 22, В 72, p. 546-551.

233. Torii M., Sakakibara K., Kuroda K. Occurence of 2-amino-2-deoxy-hexuronic acids as constituents of Vibrio parahaemoly-ticus K15 antigen. Eur. J.Biochem., 1973, v. 37, K! 3, p. 401-405.

234. Treasure P. Effects of fluoride, lithium and strontium on extracellular polysaccharide production by Streptococcus mu~tans and Actinomyces viscosus. J, Dent. Res., 1981, v. 60, p. 1601-1610.

235. Tsui F.-P., Boykins R.A., Egan W. Structural and immunological studies of the Escherichia coli K7 (K56) capsular po/ * ■lysaccharide. Carbohydr, Res,, 1982, v. 102, p. 263-271.t

236. Tsui F.-P., Schneerson R., Boykins R.A., Karpas A.B., Egan • W. Structural and immunological studies of the Haemophilus influenzae type d capsular polysaccharide. Carbohydr. Res., 1981a, v. 97, IB 2, p. 293-306.

237. Tsui F.P., Schneerson R., Egan W. Structural studies of the Haemophilus influenzae type e capsular polysaccharide. Саз> bohydr. Res,, 1981b, v. 88, IB 1, p, 85-92.

238. Tsumuraya Y., Misaki A. Structure of the water-insoluble oC- D-glucan of Streptococcus salivarius HHT. Carbohydr. Res., 1979, v. 74, p. 217-225.

239. Ueda S., Momii F., Osajima K., Ito K. Extracellular polysaccharide produced by strain Ho. 626 of Aeromonas hydrophila. Agric. Biol, ,Chem., 1981, v, 45, IB 9, p. 1977-1981.

240. Usui Т., Датаока IT., Matsuda K., Tuziraura K., Sugiyama H.,

241. Seto S. 13C nuclear magnetic гезопапсе spectra of glucobioses, glucotrioses, and glucans. J. Chem. Soc. Perkin Trans. 1973,1. № 20, p, 2425-2432,

242. Yalla S., Kjosbakken J. Isolation and characterization of a new extracellular polysaccharide from a cellulose-negative4 Лstrain of Acetobacter xylinum. Can. J. Microbiol., 1981, v, 27, IB 6, p. 599-603.1. W.

243. Vann F., Schmidt M.A,, Jann B,, Jann K. The structure of the capsular polysaccharide (K5 antigen) of urinary-tract infective Escherichia coli 010:K5:H4. A polymer similar to desul0 * 4fo-hepailn. Eur. J. Biochem., 1981, v. 116, m 2, p. 359364.

244. Wagner G.H., Cooper F.P., Bishop C.T. Extracellular carbohydrate antigens from some non-pathogenic Neisseria species. Can. J. Microbiol., 1973, v. 19, П8 6, p. 703-708.

245. Walker G.J., Hare M.D., Morrey-Jones J.G. Effect of variation in growth conditions on endo-dextranase production by* *

246. Streptococcus mutans. Carbohydr. Res., 1982, v. 107, № 1,p. 111-122." *

247. Williams A.G., Wimpenny J.W.T.' Exopolysaccharide production by Pseudomonas PB1 in batch and continuous culture: the effect of growth conditions. J. Appl. Chem. Biotechnol.,-1976, v. 26, K§ 6, p. 326-327.

248. Williams A.G., Wimpenny J.W.T. Exopolysaccharide production>by Pseudomonas NCIB11264 grown in continuous culture. J.* * '

249. Gen. Microbiol., 1978, v. 104, 18 1, p. 47-57.

250. Williams A.G., Y/impenny J.W.T.1, Lawson C.J, Preliminary studies on the composition and reological properties of the extracellular polysaccharide synthesized by Pseudomonas PB1 (NCIB 11264). Biochim. Biophys. Acta, 1979, v. 585, Ш 4, p. 611-619.new