Биолого-продуктивный потенциал и потребительские свойства мяса цыплят-бройлеров при использовании в рационах биологически активных добавок

Кокаева, Марина Гурамовна

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Биолого-продуктивный потенциал и потребительские свойства мяса цыплят-бройлеров при использовании в рационах биологически активных добавок
ВАК РФ 03.02.14, Биологические ресурсы

Автореферат диссертации по теме "Биолого-продуктивный потенциал и потребительские свойства мяса цыплят-бройлеров при использовании в рационах биологически активных добавок"

На правах рукописи

Кокасва Марина Гурамовна

БИОЛОГО-ПРОДУКТИВНЫЙ ПОТЕНЦИАЛ И ПОТРЕБИТЕЛЬСКИЕ СВОЙСТВА МЯСА ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ В РАЦИОНАХ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ДОБАВОК

03.02.14 - биологические ресурсы

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

2 7 ЯНВ 2011

Владикавказ - 2010

4843457

Работа выполнена в ГОУ ВПО «Северо-Осетинский государственный университет имени K.JI. Хетагурова»

Научный руководитель: доктор сельскохозяйственных наук,

профессор Темираев Рустем Борисович

Официальные оппоненты: доктор биологических наук, профессор

Дзагуров Борис Авдрахманович

доктор биологических наук, профессор Кожоков Мухамед Кадирович

Ведущая организация: ГНУ «Северо-Кавказский научно-исследовательский институт животноводства», РАСХН

Защита состоится «/С? » января 2011 года в 11 часов на заседании диссертационного совета Д.220.023.04 при ФГОУ ВПО «Горский государственный аграрный университет» по адресу:

362040, PCO - Алания, г. Владикавказ, ул. Кирова, 37 тел. (8-8672) - 53-99-26, факс. (8-8672) - 53-99-26

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Горский государственный аграрный университет», с авторефератом - на официальном сайте:\уту.§ог5к^аи.ги

Автореферат диссертации разослан «./5» декабря 2010 i

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат биологических наук, доцент

С.А. Гревцова

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. В настоящее время в кормлении птицы максимально стали использовать зерно собственного производства. В комбикормах на основе зерна злаковых культур, жмыхов и шротов без добавок жира обычно содержится пониженное количество обменной энергии, а при добавках кормового животного жира в рационах увеличивается концентрация насыщенных жирных кислот, что приводит к снижению пищевой ценности птичьего мяса.

Избежать этого можно при включении в рационы цыплят-бройлеров фосфолипидных препаратов, в первую очередь лецитина, технология получения которого разработана учеными Кубанского ГТУ, с максимальным сохранением биологически ценных свойств ненасыщенных жирных кислот (Е.О. Герасименко и др., 1999). Включение лецитина в рацион цыплят приводит к улучшению роста и повышению концентрации в печени витамина А, активации многих ферментов, связанных с мембранами, кроме того, он благоприятно воздействует на костеобразование (А.Н. Васильев, 1979; А.Е. Чиков и др., 2009).

Известно также, что потенциал этих кормов не в полной мере используется организмом бройлеров, так как отличаются высоким содержанием клетчатки. Наряду с клетчаткой, в них присутствуют в значительных количествах другие некрахмалистые полисахариды, к которым относится р-глюканы и пентозаны. Они сильно набухают, образуя вязкие клееобразные растворы, ограничивающие всасывание мономеров уже переваренного протеина, крахмала, жира и других важных биологических соединений, способствуют развитию условно патогенной микрофлоры в нижних отделах кишечника (Т.М. Околелова и др., 2001).

С целью интенсификации производства продукции птицеводства необходим поиск способов, повышающих переваримость и использование питательных веществ организмом птицы, снижающих отрицательные факторы кормов местного производства. Для этого используются мультиэнзимные композиции (МЭК), применение которых в кормлении птицы при оптимальной дозе их введения, повышает переваримость и использование питательных веществ рациона, конверсию корма в продукцию, улучшает обмен веществ в организме (B.C. Крюков, 1996; Н.Ю. Плесовских, 1999). Все эти ферменты представляют собой целлюлазы, синтезируемые грибами родов Trichoderma и Aspergillus. Сочетание бактериальных и грибных целлюлаз в рационах птицы -путь к дальнейшему повышению их продуктивности (JI. Эрнст, Г. Лаптев, 2006).

Успехи, достигнутые в области изучения роли микрофлоры кишечника в гидролизе сложных органических соединений кормов, в формировании и развитии ферментативного звена пищеварительной системы, явились предпосылкой использования в качестве биологически активных добавок и лечебно-профилактических препаратов пробиотиков, главным назначением которых является подавление кишечных гнилостных бактерий, ликвидация дисбиотических нарушений в пищеварительном тракте (Б.Г. Цугкиев и др., 2003). Особенно перспективным является препарат Бифидум СХЖ на основе живых бифидобактерий, которые в симбиозе с лактобациллами, пропионовокислыми

бактериями и др. выделяют ферменты, повышающие переваримость и использование питательных веществ корма (В.В, Тедтова и др., 2004).

Цель и задачи исследований. Целью исследований являлось изучение биолого-ресурсного потенциала и потребительских свойств мяса цыплят бройлеров при использовании в их рационах на основе зерна кукурузы, ячменя и соевого жмыха МЭК Ронозим \Ф, фосфолипидного препарата лецитина и пробиотика Бифидум СХЖ.

В соответствии с поставленной целью решались следующие задачи:

- определить оптимальную схему применения биологически активных добавок и фосфолипидного препарата в комбикормах подопытных цыплят;

- изучить сохранность поголовья, рост и оплату корма продукцией цыплят при скармливании комбикормов с добавлением испытуемых кормовых добавок;

- установить влияние условий кормления на ферментативную активность содержимого пищеварительной системы бройлеров, а также на переваримость и усвояемость питательных веществ кормов;

- дать характеристику состояния промежуточного обмена, а также ферментативной активности некоторых органов и тканей подопытной птицы.

- провести оценку убойных и мясных качеств цыплят с учетом влияния испытуемых препаратов, как стимуляторов проявления биологических резервов организма;

- научно и экономически обосновать использование апробируемых добавок в комплексе в рационах цыплят-бройлеров.

Научная новизна исследований состоит в том, что впервые для реализации биоресурсного потенциала экспериментально установлена и теоретически обоснована эффективность совместного использования пробиотика Бифидум СХЖ и смеси МЭК Ронозим УР + лецитин в рецептуре комбикормов цыплят-бройлеров на основе зерна кукурузы, ячменя и соевого жмыха. Получены новые данные, характеризующие влияние смеси испытуемых препаратов на уровень пищеварительного и промежуточного метаболизма, на активность ферментативных процессов в организме и на рост бройлеров, а также на пищевую и биологическую ценность их мяса

Практическая ценность работы заключается в разработке рекомендаций по рациональному использованию в качестве биологически активных добавок в составе рационов кукурузно-ячменно-соевого типа мясных цыплят пробиотика Бифидум СХЖ в количестве 1 дозы и смеси МЭК Ронозим УР в дозе 750 г/т + лецитин в дозе 1% от массы корма для повышения энергии роста, убойных и мясных качеств, интенсификации пищеварительного и промежуточного метаболизма, а также увеличения рентабельности производства птичьего мяса.

На защиту выносятся следующие основные положения диссертации:

- обоснование рекомендуемых сочетаний испытуемых . биологически активных добавок в рационах цыплят-бройлеров;

- показатели, характеризующие жизнеспособность, скорость роста и конверсию корма в продукцию у подопытной птицы;

- характеристика ферментативной активности желудочно-кишечного тракта, а также переваримости и использования питательных веществ корма;

- морфологические и биохимические показатели крови цыплят, а также изменения у них активности некоторых ферментов органов и тканей;

- оценка убойных показателей, а также пищевой и биологической ценности мяса бройлеров под влиянием изучаемых препаратов;

- экономическое обоснование использования в комплексе испытуемых препаратов в рационах цыплят-бройлеров.

Апробация работы. Материалы диссертации были доложены и получили положительную оценку на научно-практических конференциях СОГУ (Владикавказ, 2007-2009); на XII всероссийской научно-практической конференции «Агропромышленный комплекс и актуальные проблемы экономики регионов» (Майкоп, 2008); на международной научно-практической конференции «Научные основы повышения продуктивности сельскохозяйственных животных» (Краснодар, 2008, 2009, 2010); на международной научно-практической конференции «Инновационные пути развития животноводства» (Ставрополь, 2009); на всероссийской научно-производственной конференции «Новые направления в решении проблем АПК на основе современных ресурсосберегающих инновационных технологий» (Владикавказ, 2010); на заседании кафедры анатомии, физиологии и гигиены человека и животных ГОУ ВПО «СОГУ им. K.JI. Хетагурова» (Владикавказ, 2010).

Публикация результатов исследований. По материалам диссертации опубликованы 9 научных статей, из них 3 - в изданиях, рекомендованных ВАК РФ и 2 патента РФ.

Объем и структура работы. Диссертация изложена на 128 страницах компьютерного текста, состоит из введения, обзора литературы, материала и методов исследований, результатов исследований и их обсуждения, выводов, предложения производству, списка использованной литературы и приложений. Работа включает 31 таблицу, 2 рисунка и 39 приложений. Список использованной литературы включает 218 наименований, из них 40 на иностранных языках.

2. МАТЕРИАЛ II МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Экспериментальная часть работы выполнена в период с 2007 по 2010 гг. в условиях птицефермы колхоза «40 лет Октября» Моздокского района PCO -Алания и состояла из 3 научно-хозяйственных и 3 физиологических обменных опытов. Объектом исследований были здоровые, выровненные по живой массе, из одной партии вывода цыплята кросса «Смена-7». При постановке всех трех научно-хозяйственных опытов из цыплят суточного возраста были сформированы по 4 группы, которые комплектовались по методу групп-аналогов (В.А. Александров и др., 1988) по 200 голов в каждой.

Цыплята сравниваемых групп содержались в клеточных батареях КБУ-3. Зоогигиенические параметры содержания поголовья, фронт кормления и поения соответствовали требованиям, изложенным в «Рекомендациях по выращиванию цыплят и содержанию племенной и промышленной птицы» (1987). Продолжительность выращивания цыплят-бройлеров составляла 49 дней.

Кормление подопытной птицы в ходе всех экспериментов (табл. 1) было двухфазным в соответствии с «Рекомендациями по кормлению

сельскохозяйственной птицы» (ВНИТИП, 1999). Цыплята-бройлеры в первую фазу выращивания от 1 до 28-дневного возраста получали комбикорм, приготовленный по рецептуре ПК-5, а во вторую фазу в возрасте от 29 до 49-дневного возраста - по рецептуре ПК-6. Зерновую основу этих комбикормов в обе фазы выращивания составляли зерно кукурузы (40,0-42,5), ячменя (15,017,5%) и жмых соевый (20,3-23,5%).

Таблица 1 - Схема научно-хозяйственных методов

п=200

Группа Особенности кормления цыплят-бройлеров Дозы добавок препаратов

Ронозим VP, г/т корма лецитин, % от массы корма Бифидум СХЖ

1 опыт

Контрольная ОР (кукурузно-ячменно-соевый) - - -

1 опытная ОР + МЭК Ронозим VP 500 - -

2 опытная OP + МЭК Ронозим VP 750 - -

3 опытная ОР +МЭК Ронозим VP 1000 - -

II опыт

Контрольная ОР (кукурузно-ячменно-соевый) - - -

1 опытная ОР+МЭК Ронозим VP 750 - -

2 опытная ОР + лецитин - 1 -

3 опытная ОР + МЭК Ронозим VP + лецитин 750 1 -

III опыт

Контрольная ОР (кукурузно-ячменно-соевый) - - -

1 опытная ОР + МЭК Ронозим VP + лецитин 750 1 -

2 опытная ОР + Бифидум СХЖ - - I доза*

3 опытная ОР + МЭК Ронозим VP + лецитин + Бифидум СХЖ 750 1 1 доза*

♦Примечание: 1 дозаБифидум СХЖ-10 млн. живых клеток

В состав стандартных комбикормов с помощью дозаторов ступенчатым способом вводили испытуемые добавки МЭК Ронозим VP, лецитин и пробиотик Бифидум СХЖ. Это обеспечило более равномерное смешивание биологически активных добавок с кормом.

Пробиотик Бифидум СХЖ (бифидумбактерин) - лиофилизированная микробная масса живых антагонистически активных бактерий штамма Bifidumbacterium bifldum № 1 на лактулозной основе. В одной дозе данного препарата содержится 10 млн. клеток бифидобактерий и представляет собой порошок бежевого или беловато-серого цвета.

МЭК Ронозим VP - карбогидразный препарат производства фирмы «Ново-Нордиск» (Дания), полученный путем глубинной ферментации микроорганизмов Aspergillus aculeatus. Данная препарат обладает пентоназной, р-глюканазной, гемицеллюлазной и пектиназной активностями. Поставляется на рынок в виде гранул светло-коричневого цвета, покрытых оболочкой (СТ). Общие

рекомендации фирмы-производителя в зависимости от состава корма по его дозировке: 300-1200 г/тонна корма.

Лецитины (грсч. ХекШос; - яичный желток) - сложные эфиры аминоспирта холина и диглицсридфосфорных кислот. В его молекулу входят остатки жирных кислот (пальмитиновой, стеариновой, олеиновой и др.). Нами использовался препарат лецитина, технология получения которого разработана учеными Кубанского ГТУ, с максимальным сохранением биологически ценных свойств ненасыщенных жирных кислот (Е.О. Герасименко и др., 1999).

Ежедневно вели учет сохранности поголовья подопытной птицы и причины ее падежа. С целью изучения скорости роста проводились индивидуальные контрольные взвешивания бройлеров сравниваемых групп раз в неделю.

В возрасте 29-35 дней на подопытной птице провели 3 физиологических обменных опыта по методике А.И. Фомина и А.Я Аврутиной (1967) с применением инертного индикатора оксида хрома в количестве 0,5% от массы корма. Для определения переваримости и использования питательных веществ рациона из каждой группы по 5 типичных по живой массе голов индивидуально помещали в специальные клетки с сетчатым полом из оцинкованной жести, чтобы помет свободно проваливался на выдвижной противень с вкладышем из полиэтиленовой пленки.

Для определения усвояемости азота корма по методу М.И. Дьякова (1959) проводили разделение азотистых веществ кала и мочи. При этом в ходе физиологических опытов вели строгий учет поедасмости кормов, с регулярным отбором средних проб, их остатков и помета.

После убоя птицы изучали по методикам, изложенным М.К. Гильмановым и др., (1981), ферментативную активность содержимого мышечного желудка и двенадцатиперстной кишки: протеолитическую - по модифицированному методу Ансона, целлюлозолитическую - по методике Е.Ф. Федия и Л.Г. Хайдарова (1992), амилолитическую - по методике Н.И. Уголева и др. (1969), липолитическую - по методу Н.Г. Шлыгина и др. (1974).

Морфологический и биохимический состав крови бройлеров изучали по методам, описанным И.П. Кондрахиным и И.Д. Шпильманом (1985). В крови у подопытной птицы определяли следующие показатели: эритроциты и лейкоциты - путем подсчета в камере Горяева, гемоглобин - по Сали, общий белок -рефрактометрически прибором «РЛУ», фракции белка - методом электрофореза на бумаге, холестерол - по методу Илька, основанному на реакции Либермана-Бурхарда, кальций - по Де-Ваарду, фосфор - по Юделевичу, сахар - по методу M.J. Sommoqqi, щелочную фосфатазу - по методу O.A. Bessey et. al. (1966).

В печени и грудной мышце цыплят-бройлеров изучали активность ферментов лактатдегидрогеназы по методике R,A. Feedland (1967) и изоцитратдегидрогеназы - по методике S. Ochoa (1955).

В образцах печени по общепринятым методикам определили также содержание сухого вещества, белка, гликогена, холестерина, нейтральных липидов и фосфолипидов методом сканирующей денситометрии (ВНИИжиров).

При достижении 49-дневного возраста в соответствии с ГОСТом 18292-85 проводили контрольный убой подопытной птицы, для чего из каждой группы с учетом живой массы и упитанности отбирались по пять типичных голов.

В соответствии с методикой Г.М. Поливановой (1967) для изучения морфологического состава провели анатомическую разделку тушек бройлеров. При этом определили массу полупотрошеной, потрошеной тушек, убойный выход и категорию тушек - в соответствии с ГОСТом 25391-82.

Химический анализ средних образцов грудной и бедренной мышц цыплят-бройлеров проводили по методике П.Т. Лебедева и А.Г. Усочева (1976). Согласно ГОСТу 7702-74, в средних образцах грудной мышцы определяли жирнокислотный состав липидов на газожидкостном хроматографе «Хром-5». Белково-качественный показатель (БКП) грудной мышцы бройлеров изучали по методике Т.В. Замараевой (1977).

В соответствии с методикой ВАСХНИЛ (1984) была проведена производственная апробация результатов научно-хозяйственных опытов. По этим данным методом прямых затрат была рассчитана экономическая эффективность использования испытуемых препаратов в кормлении цыплят-бройлеров.

Экспериментальные данные, полученные в ходе исследований, были обработаны методом вариационной статистики по Стьюденту (Е.К. Меркурьева, 1970).

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Сохранность поголовья, продуктивность и расход корма на единицу продукции цыплят-бройлеров. Использование биологически активных добавок положительно сказалось на сохранности поголовья, энергии роста и расходе корма на единицу продукции цыплят-бройлеров (табл. 2).

В ходе I опыта лучшей сохранностью поголовья отличалась птица 2 опытной группы, опередив по данному показателю контрольных аналогов на 3%, по результатам же II эксперимента - бройлеры 3 опытной группы, получавшие совместно препараты лецитина и МЭК Ронозим VP, на 4% превзойдя контроль.

Наиболее высоким уровнем сохранности поголовья по итогам III научно-производственного опыта характеризовалась птица 3 опытной группы, в злаково-соевые рационы которых добавляли пробиотик Бифидум СХЖ и смесь препаратов МЭК Ронозим VP + лецитин. Это позволило им опередить аналогов из контрольной группы на 5%.

По результатам I опыта было установлено, что лучшей дозой скармливания МЭК Ронозим VP в составе рационов кукурузно-ячменно-соевого типа является 750 г/т корма, что позволило увеличить абсолютный и среднесуточный прирост живой массы бройлеров 2 опытной группы на 10,6% (Р>0,95), чем в контроле.

Известно, что включение фосфолипидов в сочетании с ферментными препаратами в рационы оказывает ростостимулирующий эффект. Прямым следствием этого явилось достоверное (Р>0,95) увеличение к концу II эксперимента абсолютного и среднесуточного прироста живой массы птицы 3 опытной группы на 12,6%, чем в контроле.

Таблица 2 - Сохранность поголовья, продуктивность и расход корма на единицу продукции цыплят-бройлеров

п-200

Показатель Группа

конгрольная 1 опытная 2 опытная 3 опытная

I опыт

Сохранность, % 92 94 94 95

Живая масса 1 головы, г:

в начале опыта 39,9±0,86 39,7±0,88 40,0+0,98 39,8±0,99

в конце опыта 2036,5+10,0 2144,0+13,3* 2248,8±12,2* 2168,0+16,2*

Прирост живой массы, г: абсолютный 1996,6±15,8 2104,3±17,2* 2208,8+12,1* 2128,2±15,2*

среднесуточный 40,75±0,18 42,94+0,11* 45,08+0,30* 43,43+0,27*

В % к контролю 100 105,4 110,6 106,6

Расход корма на 1кг прироста, кг 2,50 2,38 2,30 2,37

II опыт

Сохранность, % 92 95 94 96

Живая масса 1 головы, г: в

начале опыта 39,810,82 39,7+0,90 40,0+0,87 39,7±0,83

в конце опыта 2025,6+14,8 2241,0±12,9* 2235,0+14,1* 2275,0±15,0*

Прирост живой массы, г: абсолютный 1985,8±15,9 2201,3±13,2* 2195,0±13,0* 2235,3±14,9*

среднесуточный 40,53+0,24 44,92+0,19* 44,80+0,32* 45,62+0,37*

В % к контролю 100,0 110,8 110,5 112,6

Расход корма на 1кг прироста, кг 2,52 2,33 2,35 2,29

III опыт

Сохранность, % 93 96 96 98

Живая масса 1 головы, г: в

начале опыта 39,7±0,34 39,8+0,38 36,9+0,37 36,8+0,30

в конце опыта 2031,0±10,2 2279,5±10,9* 2240,9+11,0* 2334,0+11,3*

Прирост живой массы, г: абсолютный 1991,3+10,7 2239,7+10,9* 2204,0+11,2* 2297,2+11,2*

среднесуточный 40,64+0,17 45,71+0,22* 44,98+0,30* 46,88+0,33*

В % к контролю 100,0 112,5 110,7 115,3

Расход корма на 1 кг прироста, кг 2,53 2,32 2,39 2,22

*Р>0,95

По результатам III опыта установлено, что при включении в рационы цыплят 3 опытной группы пробиотика Бифидум СХЖ и смеси МЭК Ронозим VP + лецитин, у них относительно контроля произошло достоверное (Р>0,95) повышение абсолютного и среднесуточного прироста живой массы на 15,3%.

Наиболее высокому уровню конверсии питательных веществ корма в продукцию к концу III опыта способствовало также совместное скармливание Бифидум СХЖ и смеси МЭК Ронозим VP + лецитин, что позволило цыплятам 3 опытной группы на единицу продукции израсходовать на 12,2% комбикорма меньше, чем в контроле.

Причиной этого считаем то, что в организме цыплят не вырабатываются (3-гшоканаза и гемицеллюлаза, что затрудняет доступ ферментам пищеварительной системы к питательным веществам растительных компонентов комбикормов. Поэтому взаимообогащение ферментативного спектра химуса кишечника птицы энзимами МЭК Ронозим УР и бифидобактерий в сочетании с фосфолипидами, улучшающими всасывание ненасыщенных жирных кислот, оказало наиболее высокое ростостимулирующее действие на бройлеров 3 опытной группы.

Результаты физиологических обменных опытов. По результатам физиологических экспериментов были рассчитаны коэффициенты переваримости питательных веществ рационов бройлерами сравниваемых групп (табл. 3).

Таблица 3. - Коэффициенты переваримости питательных веществ рационов подопытной птицы, %

я=5

Группа Коэффициенты переваримости

сухое вещество органическ ое вещество сырой протеин клетчатка жир БЭВ

I физиологический опыт

Контрольная 79,8±0,43 81,4±0,39 83,9±0,44 11,2±0,31 85,0±0,74 86,7±0,45

1 опытная 82,2±0,37* 83,6±0,41* 86,5±0,51* 13,9±0,55* 87,4±0,68 88,7±0,52*

2 опытная 84,0±0,38* 85,5±0,44* 88,0±0,61* 15,1±0,57* 89,3±0,65 90,7±0,54*

3 опытная 82,6±0,46* 84,04=0,49* 86,9±0,54* 14,9±0,61* 88,3±0,94 88,9±0,55*

II физиологический опыт

Контрольная 81,3±0,61 82,7±0,47 86,3±0,49 13,5±0,37 86,6±0,39 87,5±0,63

1 опытная 82,9±0,51* 84,4±0,56* 86,6±0,62* 14,2±0,65* 88,1±0,68 89,7±0,36*

2 опытная 84,4±0,46* 85,7±0,37* 88,8±0,44* 15,5±0,35* 89,3±0,59 90,6±0,46*

3 опытная 85,3±0,55* 85,6±0,50* 89,9±0,32* 16,7±0,48* 91,7±0,62 91,4±0,61*

III физиологический опыт

Контрольная 80,9±0,41 82,3±0,46 85Д±0,54 13,7±0,39 85,1±0,47 87,2±0,56

1 опытная 82,6±0,52* 83,9±0,51* 86,5±0,39* 15,0±0,28* 87,1±0,71 89,1±0,44*

2 опытная 83,4±0,49* 84,9±0,34* 87,6±0,42* 15,9±0,37* 87,8±0,59 90,1 ±0,53*

3 опытная 84,3±0,55* 85,8±0,56* 88,8±0,52* 17,1±0,35* 88,7±0,57 90,8±0,61*

*Р>0,95

В ходе I физиологического опыта более высокие коэффициенты переваримости питательных веществ имели цыплята 2 опытной группы, получавшие МЭК Ронозима УР в дозе 750 г/т корма. Они имели достоверное (Р>0,95) преимущество по коэффициентам переваримости сухого вещества на 4,1%, органического вещества - на 4,1%, сырого протеина - на 4,1%, сырой клетчатки - на 3,9%, жира - на 4,3% и БЭВ - на 4,0%, чем в контроле.

По данным II физиологического опыта, относительно контроля цыплята 3 опытной группы, получавшие в составе комбикорма смесь МЭК Ронозим УР, лецитин, имели достоверно (Р>0,95) более высокие коэффициенты переваримости сухого вещества на 4,0%, органического вещества - на 2,9%, сырого протеина - на 3,6%, сырой клетчатки - на 3,3%, сырого жира - на 5,1% и БЭВ - на 3,9%. Это явилось следствием стимулирующего действия ферментов МЭК Ронозим УР на процессы пищеварительного метаболизма и оптимизации отношения ненасыщенных жирных кислот к насыщенным.

Наиболее положительное влияние на переваримость питательных веществ рационов цыплят 3 опытной группы в ходе III физиологического эксперимента оказали совместные добавки пробиотика Бифидум СХЖ в сочетании с препаратами МЭК Ронозим VP и лецитина, что позволило им иметь достоверно (Р>0,95) более высокие коэффициенты переваримости сухого вещества на 3,4%, органического вещества - на 3,9%, сырого протеина - на 3,7%, сырой клетчатки - на 3,4%, сырого жира - на 3,6% и БЭВ - на 3,7%, чем в контроле.

Питательные вещества, всосавшиеся в кровь из пищеварительного тракта, вступая в окислительно-восстановительные процессы, не полностью приносят физиологический эффект, так как их определенная часть выводится из организма с мочой. Исходя из этого, по результатам физиологических обменных опытов был рассчитан баланс азота у подопытной птицы (табл. 4).

Таблица 4. - Баланс азота у цыплят-бройлеров, г

п = 5

Группа Принято с кормом Выделено Баланс Использовано от принятого, %

в кале в моче в помете

I физиологический опыт

Контрольная 3,155± 0,015 0,508± 0,016 1,005± 0,031 1,513± 0,016 1,642± 0,007 52,05± 0,46

1 опытная 3,167± 0,032 0,426± 0,003* 1,011± 0,026 1,437± 0,019* 1,730± 0,015* 54,62± 0,61*

2 опытная 3,123±. 0.031 0,408± 0,006* 0,898± 0,037* 1,306± 0,014* 1,817± 0,018* 58,18± 0,51*

3 опытная 3,155± 0,02 0,378± 0,002* 1,027± 0,021* 1,405± 0,012* 1,750± 0,03* 55,47± 0,79*

11 физиологический опыт

Контрольная 3,123± 0,015 0,429± 0,016 1,061± 0,017 1,490± 0,014 1,633± 0,021 52,29± 0,33

1 опытная 3,141± 0,017 0,417± 0,014* 0,987± 0,014* 1,404± 0,012* 1,737± 0,017* 55,30± 0,63*

2 опытная 2,995± 0,07 0,355± 0,020* 0,898± 0,013* 1,253± 0,006* 1,742± 0,04* 58,17± 0,42*

3 опытная 3,192± | 0,321± 0,05 | 0,014* 1,107± 0,015* 1,428± 0,007* 1,764± 0,02* 55,26± 0,47*

III физиологический опыт

Контрольная 3,192± 0,022 0,475± 0,022 ' 1,079± 0,011 1,554± 0,001 1,638± 0,002 51,31± 0,20

1 опытная 3,155± 0,012 0,427± 0,021* 0,886± 0,026* 1,313± 0,019* 1,842± 0,016* 58,39± 0,60*

2 опытная 3,155± 0,021 0,391± 0,031* 0,951± 0,021* 1,342±0 ,002* 1,813± 0,001* 57,47± 0,45*

3 опытная 3,155± 0,012 0,355± 0,032* 0,911± 0,023* 1,266± 0,002* 1,889± 0,004* 59,88± 0,39*

* Р>0,95

По результатам I физиологического опыта лучшему усвоению азота кукурузно-ячменно-соевых рационов способствовали добавки МЭК Ронозим УР в

дозе 750 г/т корма, что позволило птице 2 опытной группы относительно

контроля в течение суток откладывать в организме на 0,175 г (Р>0,95), а также лучше использовать его от принятого количества - на 3,13%.

Сочетание в комбикормах МЭК Ронозим и лецитина при проведении II физиологического эксперимента способствовало тому, что птица 3 опытной группы за сутки в теле откладывала достоверно (Р>0,95) больше азота на 0,131 г, а также лучше использовала его от принятого количества - на 2,97% (Р>0,95), чем в контроле.

Наиболее эффективный уровень трансформации азота корма в белок мышечной ткани цыплят обеспечило совместное скармливание препаратов Ронозим VP, лецитина и бифидумбактерина, что позволило цыплятам 3 опытной группы в ходе III физиологического опыта достоверно (Р>0,95) превзойти контрольных аналогов по суточному отложению в теле азота на 0,251 г и использованию его от принятого с кормом количества - на 8,57%.

Следовательно, при совместных добавках лецитина, МЭК Ронозим VP и Бифидум СХЖ наблюдался процесс нормализации отношения экзогенных и эндогенных ферментов в желудочно-кишечном тракте бройлеров. Кроме того, всасывание насыщенных жирных кислот снижается в присутствии ненасыщенных кислот, имеющихся в составе фосфолипидов.

Ферментативная активность содержимого желудочно-кишечного тракта цыплят-бройлеров. Как показали результаты исследований, лучшему уровню гидролиза сложных полимеров кукурузно-ячменно-соевых рационов способствовали ферменты, продуцируемые бифидобактериями, и входящими в состав МЭК Ронозим VP. Кроме того, лецитин с высоким содержанием ненасыщенных жирных кислот, повышал всасываемость их мономеров через слизистую кишечника в кровь. Исходя из этого, в таблице 5 приведены показатели ферментативной активности содержимого мышечного желудка, то есть до попадания в агрессивную кислую среду желудочного сока, и химуса двенадцатиперстной кишки цыплят в ходе III опыта.

Наиболее эффективный уровень ферментативной активности в содержимом мышечного желудка обеспечило совместное скармливание препаратов Ронозим VP, лецитина и бифидумбактерина, что позволило цыплятам 3 опытной группы достоверно (Р>0,95) превзойти контрольных аналогов по активности протеиназ на 11,6%, целлюлаз - на 22,0%, липаз - на 17,2% и амилаз - на 15,5%.

В химусе тонкого отдела кишечника активность ферментов возрастала, что соответствует физиологическим особенностям пищеварения птицы. В ходе III научно-хозяйственного опыта было установлено, что на синтез гидролитических ферментов в желудочно-кишечном тракте цыплят-бройлеров более высокое стимулирующее действие оказали добавки пробиотика Бифидум СХЖ смеси МЭК Ронозим VP + лецитин. Благодаря этому относительно контроля цыплята 3 опытной группы имели самые высокие показатели ферментативной активности химуса двенадцатиперстной кишки, достоверно (Р>0,95) опередив по активности протеиназ на 12,8%, целлюлаз - на 13,0%, липаз - на 11,5% и амилаз - на 12,9%.

Следует отметить, что показатели активности протеиназ, целлюлаз, липаз и амилаз в различных отделах желудочно-кишечного тракта подопытной птицы

согласуются с коэффициентами переваримости сырого протеина, клетчатки, жира и БЭВ корма в ходе физиологических обменных опытов.

Таблица 5. - Ферментативная активность содержимого мышечного желудка и двенадцатиперстной кишки цыплят в ходе III опыта, ед./г

п=5

Активность ферментов

Группа нротеиназ целлюлаз липаз амилаз

В содержимом мышечного желудка

Контрольная 0,517+0,04 0,211±0,03 0,598+0,05 0,605±0,05

1 опытная 0,572+0,03* 0,235±0,03* 0,710+0,03* 0,679±0,03*

2 опытная 0,570+0,05* 0,237+0,04* 0,694+0,04* 0,681+0,05*

3 опытная 0,577±0,06* 0,240±0,05* 0,701+0,06* 0,699+0,07*

В химусе двенадцатиперстной кишки

Контрольная 1,586+0,02 1,212±0,06 1,545+0,05 1,739±0,04

1 опытная 1,767+0,03* 1,345+0,04* 1,704+0,07* 1,942±0,06*

2 опытная 1,701+0,05* 1,359+0,03* 1,710+0,05* 1,929±0,05*

3 опытная 1,790±0,03* 1,369+0,06* 1,722+0,03* 1,963±0,06*

*Р>0,95

Морфологические и биохимические показатели крови подопытной птицы. Особенности ферментолиза питательных веществ корма в пищеварительном тракте накладывают свой отпечаток на состояние промежуточного метаболизма. С учетом этого мы решили изучить влияние испытуемых биологически активных добавок на морфологические показатели крови подопытной птицы.

В ходе III эксперимента наиболее высокое стимулирующее действие на гсмо- и эритропоэз у бройлеров оказало совместное скармливание препаратов Ронозим VP, лецитина и бифидумбактерина. Поэтому по количеству эритроцитов и гемоглобина в крови цыплята 3 опытной группы превзошли . контроль соответственно на 0,42х1012 /л и 4,0 г/л. Но разница в обоих случаях была не достоверной (Р<0,95).

Наряду с морфологическими показателями были изучены также некоторые биохимические показатели сыворотки крови в ходе III опыта (табл. 6).

Установлено, что скармливание лецитина в сочетании с энзимами в составе МЭК Ронозим VP и ферментами, продуцируемыми бифидобактериями, способствовало интенсификации обмена кальция и фосфора. Поэтому в ходе III опыта эти препараты в комплексе содействовали достоверному (Р>0,95) увеличению в крови цыплят 3 опытной группы относительно контроля уровня кальция на 2,17 ммоль/л и фосфора - на 0,53 ммоль/л соответственно.

Между содержанием фосфолипидов и холестерола в крови бройлеров сравниваемых групп существовала обратная биологическая зависимость. Поэтому при проведении III эксперимента по концентрации холестерола в сыворотке крови цыплята 3 опытной группы достоверно (Р>0,95) уступали контрольным аналогам на 21,5%, но по уровню фосфолипидов превзошли - на 38,1% (Р>0,95).

Таблица 6. - Биохимические показатели крови бройлеров в ходе III опыта

Показатель Группа

контрольная 1 опытная 2 опытная 3 опытная

Глюкоза моль/л 59,34±2,55 58,75±2,42 59,05 ±2,30 60,65 ±2,35

Кальций, ммоль/л 23,45±0,26 25,33±0,24* 25,48±0,14* 25,62±0,14*

Фосфор, ммоль/л 5,64±0,005 5,85±0,007* 5,91±0,009* 6,17±0,013*

Холестерол, ммоль/л 2,74 ±0,005 ■ 2,30 ±0,004* 2,27 ±0,007* 2,15±0,005*

Фосфолипиды, мг/100 см* 103,3±0,50 134,2±0,71* 138,4±0,77* 142,7±0,81*

Щелочная фосфатаза, ед./г в % к контролю 866,7 ±3,3 100,0 944,2 ±4,7* 108,9 993,7 ± 3,4* 114,6 1026,9±3,7* 118,5

*Р>0,95

Дополнительным критерием уровня обмена фосфора и кальция служит уровень щелочной фосфатазы, относящейся к группе никотинамид (НАМ)-зависимых металлоферментов. Результаты исследований показали, что между уровнем фосфора и активностью щелочной фосфатазы в сыворотке крови при использовании испытуемых препаратов существовала прямая пропорциональная связь. При проведении III эксперимента наиболее эффективное действие на синтез щелочной фосфатазы в организме цыплят-бройлеров оказало совместное скармливание пробиотика Бифидум СХЖ в сочетание со смесью препаратов МЭК Ронозим VP + лецитин. Поэтому по активности щелочной фосфатазы в крови птица 3 опытной группы превзошла контроль на 18,5% (Р>0,95).

В ходе всех трех научно-хозяйственных опытов при использовании испытуемых препаратов в различных комбинациях ни в одном случае не было установлено достоверных (Р<0,95) различий между аналогами из контрольных и опытных групп по концентрации сахара в сыворотке крови, что свидетельствует об устойчивости у них энергетического обмена.

Обмен сывороточных белков в организме мясной птицы напрямую связан с обменом углеводов, так как для синтеза белка в органах и тканях требуется значительное количество энергии, поэтому мы изучили содержание общего белка и его фракций в крови подопытной птицы в ходе III эксперимента (табл.

7).

Установлено, что в ходе III опыта самая высокая концентрация сывороточных белков было в крови цыплят 3 опытной группы - 66,57 г/л, что на 4,1 г/л больше, чем в контроле, но разница была статистически недостоверной (Р<0,95). Это свидетельствует о стабильности белкового метаболизма у современных быстрорастущих кроссов цыплят-бройлеров.

Анализируя колебания показателей белковых фракций, отмечалась тенденция не достоверного увеличения (Р<0,95) в сыворотке крови альбуминов в связи с добавками испытуемых препаратов в рационы. По результатам III опыта в сыворотке крови бройлеров контрольной группы уровень альбуминов был 47,25%, а у цыплят 3 опытный группы - на 3,07% (Р<0,95) больше.

В ходе всех трех научно-хозяйственных опытов морфологические и биохимические показатели крови у птицы сравниваемых групп находились в пределах физиологической нормы.

Таблица 7. - Содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови подопытной птицы в ходе III опыта

Показатель Группа

контрольная 1 опытная 2 опытная 3 опытная

Общий белок, г/л 62,47±2,9 66,11 ±3,4 65,69±2,8 66,57±3,2

Альбумины,% 47,25±2,5 49,46±2,9 49,12±2,4 50,32±3,0

а-глобулины, % 20,58±2,4 19,71±1,8 19,84±1,6 19,37±2,7

р-глобулины, % 13,71±0,8 13,14±0,5 13,22±0,4 12,92+0,6

у-глобулины, % 18,46±1,7 17,69±0,8 17,82±1,5 17,39+1,3

Общее количество глобулинов, % 52,75±1,6 50,54±1,1 50,88±U 49,68+1,5

Коэффициент А/Г 0,89 0,98 0,96 1,01

Активность НАД- и НАДФ-зависимых дсгндрогеназ в печени и грудной мышце бройлеров. Фосфолипиды и ферменты в значительной степени влияют на синтез в организме сельскохозяйственной птицы никотинамиддинуклеотида (НАД) и никотинамидцинуклеотидфосфата (НАДФ), которые являются производными витамина В5. Они регулируют активность НАДи НАДФ-зависимых дегидрогеназ лактат- и изоцитратдегидрогеназы (табл. 8).

Таблица 8. - Активность лактат- (ммоль НАДФ/мин/г белка) и изоцитратдегидрогеназы (ммоль НАДН/мин/г белка) в печени и грудной мышцах

в ходе III опыта

п= 5

Группа

Показатель контрольная 1 опытная 2 опытная 3 опытная

Печень:

лактатдегидрогеназа 589±2,4 656±2,7* 667+1,9* 685±2,1*

изоцитратдегвдрогенза 26,0+0,27 35,9±0,32* 36,0±0,21* 37,2+0,16*

Грудная мышца:

лактатдегидрогеназа 115±1,5 128+1,7* 137+1,1* 144+1,6*

изоцитратдегидрогеназа 10,9+0,13* 12,3+0,14* 12,7+0,19* 14,1+0,17*

*Р>0,95

Установлено, что между активностью лактатдегидрогеназы и изоцитратдегидрогеназы существует прямая биологическая закономерность. При проведении III эксперимента установлено, что пробиотик Бифидум СХЖ в сочетании с добавками смеси МЭК Ронозим VP + лецитин оказал более благоприятное влияние на активность этих дегидрогеназ в органах и тканях подопытной птицы. Благодаря этому цыплята 3 опытной группы имели самые высокие показатели лактат- и изоцитратдегидрогеназной активности, достоверно (Р>0,95) превзойдя контрольных аналогов по синтезу этих ферментов в печени на 16,3 и 43,1% и в грудной мышце - на 25,2 и 29,3% соответственно. Причиной этого является то, что оба фермента вносят основной вклад в накопление энергии в макроэргических связях АТФ, сопряженное со скоростью изменения НАД под действием лактатдегидрогеназы в присутствии пировиноградной кислоты и НАДФ под действием изоцитратдегидрогеназы в присутствии изоцитрата в

дыхательной цепи митохондрий, обусловленное фосфорилированием 3 молей АТФ (В.П. Скулачев, 1969).

Масса и химический состав печени бройлеров. Важно было изучить влияние испытуемых кормовых добавок в составе кукурузно-ячменно-соевых рационов на массу и химический состав печени подопытной птицы по результатам III научно-хозяйственного опыта (табл. 9).

Таблица9. - Масса и химический состав печени подопытной птицы (111 опыт)

п=5

Показатель Группа

контрольная 1 опытная 2 опытная 3 опытная

Масса печени, г 53,1±0,65 53,5±0,71 54,2±0,49 54,4±0,59

Гликоген, мг% 793,6± 1,7 863,4± 1,4* 880,5±1,8* 918,6±2,2*

Сухое вещество, % 28,67±0,06 28,98±0,10* 29,04±0,11* 29,34±0,12*

Белок. % 24,33±0,25 25,17±0,11* 25,29±0,23* 25,51*0,27*

Массовая доля, %: нейтральных липидов 6,47±0,12 4,12±0,15* 3.63±0,1б* 3,37±0,19*

фосфолипидов от общей суммы липидов 37,7±0,61 45,0±0,29* 45,7±0,62* 48,1±0,65*

холестерина 0,398±0,002 0,323±0,003* 0,320±0,004* 0,285±0,002*

*Р>0,95

Установлено, что скармливание различных комбинаций биологически активных добавок не оказало существенного влияния на массу печени цыплят-бройлеров сравниваемых групп.

Совместное использование пробиотика Бифидум СХЖ и смеси МЭК Ронозим VP + лецитин оказало более высокое стимулирующее действие на функциональную деятельность печени цыплят 3 опытной группы, что по сравнению с контрольными аналогами у них выразилось в достоверном (Р>0,95) увеличении содержания сухого вещества на 0,67%, белка - на 1,18%, гликогена-на 15,7% и массовой доли фосфолипидов от общей суммы липидов - на 10,4%.

Между уровнем массовой доли фосфолипидов от общей суммы липидов в печени, с одной стороны, а также показателями массовой доли нейтральных липидов и холестерина, с другой, существовала обратная пропорциональная зависимость. Исходя из этого, по результатам III эксперимента бройлеры 3 опытной группы относительно контрольных аналогов имели в печени достоверно (Р>0,95) меньше нейтральных липидов на 3,1% и холестерина - на 0,113%.

На наш взгляд, улучшению химического состава печени бройлеров способствовали ферменты, продуцируемые бифидобактериями, и входящими в состав МЭК Ронозим VP. Кроме того, лецитин повышал всасываемость через слизистую оболочку кишечника в кровь ненасыщенных жирных кислот.

Результаты контрольного убоя цыплят-бройлеров. По результатам контрольного убоя изучили влияние испытуемых препаратов на убойные показатели подопытной птицы (табл. 10).

В ходе I опыта установлено что лучшей дозой включения МЭК Ронозим VP в комбикорма является 750 г/т корма, что у бройлеров 2 опытной группы обеспечило относительно контроля достоверное (Р>0,95) повышение

предубойной массы на 10,3%, массы полупотрошеной тушки - на 10,8% и потрошеной - на 11,0%, а также убойного выхода - на 0,3% соответственно.

Таблица 10. - Результаты убоя подопытной птицы

п=5

Показатель Группа

контрольная | 1 опытная | 2 опытная | 3 опытная

I опыт

Предубойная масса, г 1941,0+6,4 2039,3+5,9* 2141,7+6,5* 2062,4+6,2*

Масса полупотрошеной тушки, г 1618,8+5,9 1705,3+6,2* 1794,3+5,1* 1738,2+5,4*

Масса потрошеной тушки, г 1260,5+3,8 1330,5±4,4* 1399,8+3,6* 1354,2+4,8*

Убойный выход, % 64,9 65,2 65,3 65,6

II опыт

Предубойная масса, г 1930,1+6,7 2139,9+6,1* 2131,2+6,6* 2164,7+6,4*

Масса полупотрошеной тушки, г 1592,7+5,8 1789,0+6,4* 1791,9+6,1* 1827,9+5,7*

Масса потрошеной тушки, г 1248,8+3,5 1391,4+4,1* 1392,5+3,9* 1419,7+5,3*

Убойный выход, % 64,7 65,0 65,3 65,6

III опыт

Предубойная масса, г 1934,8±6,6 2165,5+6,3* 2105,2+6,7* 2231,1+6,9*

Масса полупотрошеной тушки, г 1577,7±6,2 1785,2+6,5* 1757,1+6,4* 1871,4±5,6*

Масса потрошеной тушки, г 1244,9±3,6 1415,3+4,6* 1383,1+4,1* 1470,3+5,5*

Убойный выход, % 64,3 65,3 65,7 65,9

*Р>0,95

При проведении II эксперимента лучшее действие на убойные качества птицы оказали совместные добавки МЭК Ронозим VP и лецитина, что выразилось в достоверном (Р>0,95) превосходстве цыплят 3 опытной группы над контрольными аналогами по массе полупотрошеной тушки на 14,7% и потрошеной - на 13,7%, а также по убойному выходу - на 0,9%.

В ходе III эксперимента благодаря выделению бифидобактериями протеиназ, целлюлаз, наряду с добавками смеси МЭК Ронозим VP и лецитина, в организме цыплят-бройлеров 3 опытной группы активизировался синтез белка и липидов с высоким уровнем ненасыщенных жирных кислот, что содействовало росту мышечной ткани. В связи с этим у птицы этой группы против контрольных аналогов отмечалось превосходстве по массе полупотрошеной на 20,1% (Р>0,95) и потрошеной тушек - на 18,1% (Р>0,95), а также убойного выхода - на 1,6%.

В процессе проведения III эксперимента было установлено, что наиболее благоприятное влияние на морфологические показатели тушек оказало совместное применение пробиотика и смеси МЭК Ронозим VP + лецитин из-за синергизма их действия. Это позволило цыплятам-бройлерам 3 опытной группы увеличить показатели, характеризующие отношение съедобных частей к несъедобным на 17,0% и выход тушек I категории - на 8,1%, чем в контроле.

В ходе исследований изучили влияние испытуемых препаратов на химический состав образцов грудной и бедренной мышц цыплят (табл. 11).

Таблица 11. - Химический состав грудной и бедренной мышц цыплят, %

Показатель Группа

контрольная | 1 опытная | 2 опытная | 3 опытная

Грудная мышца

I опыт

Сухое вещество 24,95+0,15 25,59+0,12 25,99+0,17* 25,83±0,11*

Белок 21,57±011 22,02±0,12 22,32+021* 22,1410,19*

Жир 2,34±0,04 2,4910,05* 2,44±0,04 2,5310,02*

11 опыт

Сухое вещество 25,37+0,18 26,32+0,12* 26,67±0,14* 26,8210,13*

Белок 22,34+0,14 22,9910,17* 23,11±0,13* 23,29+0,11*

Жир 2,26±0,03 2,31 ±0,05 2,46+0,03* 2,5110,05*

Ш опыт

Сухое вещество 25,34+0,15 26,59±0,12 26,7410,11* 27,09+0,17*

Белок 22,291011 23,04±0,12* 23,19+0,19* 23,34+021*

Жир 2,27±0,04 2,4910,05* 2,36±0,02* 2,58+0,04*

Бедренная мышца

I опыт

Сухое вещество 22,68+0,14 23,83±0,22 24,14+0,19* 23,9810,24*

Белок 19,16+0,10 19,81+0,22 20,11 ±0,17* 19,9910,20*

Жир 2,72±0,05 3,05±0,08 3,00±0,10 3,09+0,06*

II опыт

Сухое вещество 22,79±0,20 23,8710,17* 24,55±0,11* 24,58+0,14*

Белок 19,1310,12 20,19±0,14* 20,43+0,15* 20,5510,19*

Жир 2,74±0,04 2,70±0,03 3,11±0,03* 3,1710,05*

Зола 0,92 0,98 1,01 1,12

III опыт

Сухое вещество 23,03±0,14 24,3510,22* 24,30+0,24* 24,77+0,19*

Белок 19,18+0,10 20,3410,22* 20,49+0,20* 20,7210,17*

Жир 2,67±0,05 3,05±0,04* 2,76±0,06 3,2110,10*

Зола 0,96 1,02 1,05 1,14

*Р>0,95

В ходе I научно-хозяйственного опыта было установлено, что повышение уровня МЭК Ронозим УР в комбикормах до 750 г/т корма, наряду с ростстимулирующим эффектом, оказывало положительное влияние на химический состав белого и красного мяса, что выразилось в достоверном (Р>0,95) превосходстве цыплят 2 опытной группы над контролем по насыщенности образцов грудной и бедренной мышц сухим веществом на 1,04 и 1,46%, белком - на 0,75 и 0,95% соответственно, а по содержанию жира в грудных и бедренных мышцах достоверных (Р<0,95) различий между птицей сравниваемых групп не было.

В процессе проведения II эксперимента было установлено, что совместные добавки МЭК Ронозим УР и лецитина оказали положительное влияние на химический состав мяса бройлеров 3 опытной группы, что нашло подтверждение в достоверно (Р>0,95) более высоком содержании у них в изучаемых мышцах относительно их контрольных аналогов сухого вещества на 1,45 и 1,79%, белка-на 0,95 и 1,42% и жира - на 0,25 и 0,43% соответственно.

Результаты III опыта показали, что наиболее высокое стимулирующее действие на синтез белка и жира в мышечной ткани обеспечили совместные добавки пробиотика Бифидум СХЖ и смеси МЭК Ронозим VP + лецитин, благодаря чему у цыплят 3 опытной группы относительно контроля в грудной и бедренной мышцах было достоверно (Р>0,95) больше содержание сухого вещества на 1,75 н 1,74%, белка - на 1,05 и 1,54% и жира - на 0,31 и 0,54% соответственно.

Это свидетельствует о том, что за счет ферментов, входящих в состав МЭК Ронозим VP, а также протеиназ, продуцируемых бифидобактериями, повышается усвояемость белка, что способствовало увеличению белка в белом и красном мясе бройлеров 3 опытной группы. Кроме того, за счет высокого уровня ненасыщенных жирных кислот в составе лецитина у цыплят этой группы активизировался жировой обмен.

Однако известно, что увеличение содержания жира в мясе сопровождается повышением энергетической ценности и одновременным снижением его потребительских качеств. Анализ данных III эксперимента показал, что при обогащении кукурузно-ячменно-соевых рационов пробиотиком Бифидум СХЖ и смесью МЭК Ронозим VP + лецитин наблюдалось наиболее высокое содержание в мясе цыплят 3 опытной группы ненасыщенных жирных кислот, превзойдя по этому показателю контрольных аналогов на 8,7%, а также по величине отношения суммы непредельных жирных кислот к предельным - на 44,2%.

Следовательно, при совместном включении в комбикорма кукурузно-ячменно-соевого типа лецитииа, пробиотика и мультиэнзимного комплекса, наряду с количественным повышением содержания жира в мышечной ткани, произошло существенное улучшение жирнокислотного состава сухого вещества грудной мышцы мясных цыплят за счет накопления ненасыщенных жирных кислот.

Биологическая полноценность мяса бройлеров. По результатам контрольного убоя рассчитали белково-качественный показатель (БКП) грудной мышцы цыплят сравниваемых групп (табл. 12).

В ходе I опыта при скармливании МЭК Ронозим VP в количестве 750 г/т корма произошло улучшение биологической полноценности мяса, то есть БКП грудной мышцы у птицы 2 опытной группы был достоверно (Р>0,95) выше, чем в контроле на 11,9%.

В ходе II эксперимента было установлено, что совместные добавки МЭК Ронозим VP с лецитином способствовали достоверному (Р>0,95) повышению против контроля у цыплят 3 опытной группы БКП на 16,7% и триптофана - на 5,9% соответственно.

Результаты III опыта показали, что при выращивании мясных цыплят наиболее эффективное действие на БКП грудной мышцы оказали совместные добавки пробиотика и смеси МЭК Ронозим VP + лецитин. Это позволило птице 3 опытной группы по данному показателю достоверно (Р>0,95) превзойти своих контрольных аналогов на 21,4%.

Таблица 12. - Биологическая полноценность мяса (грудной мышцы) цыплят

Показатели Группы

контрольная 1 1 опытная 2 опытная 3 опытная

1 опыт

Триптофан, % 1,97±0,002 2,01 ±0,001* 2,08±0,003* 2,05±0,002*

Оксипролин, % 0,52±0,004 0,50±0,006 0,49±0,004 0,50±0,005

БКП 3,79±0,03 4,02±0,04* 4,24±0,06* 4,10±0,03*

II опыт

Триптофан, % 2,03±0,002 2,09±0,003* 2,13±0,003* 2,15±0,010*

Оксипролин, % 0,54±0,005 0,52±0,004 0,51±0,004 0,49±0,011*

БКП 3,76±0,03 4,02±0,05* 4,18±0,04* 4,39±0,005*

III опыт

Триптофан, % 2,07±0,003 2,16±0,002* . 2,19±0,003* 2,23±0,003*

Оксипролин, % 0,54±0,003 0,51±0,004 0,50±0,012 0,48±0,002*

БКП 3,83±0,04 4,24±0,05* 4,38±0,008* 4,65±0,06*

*Р>0,95

Следовательно, использование в составе рационов на основе зерна кукурузы, ячменя и соевого жмыха пробиотика Бифидум СХЖ и смеси МЭК Ронозим V? + лецитин оказывает положительное действие на биологическую полноценность белка и пищевую ценность мяса цыплят-бройлеров.

Экономическая оценка результатов производственного опыта. В ходе производственного опыта птица контрольной группы получала основной рацион (ОР) на основе зерна кукурузы, ячменя и соевого жмыха, а бройлеры опытной группы - ОР + пробиотик Бифидум СХЖ и смесь МЭК Ронозим УР + лецитин.

Установлено, что по сохранности поголовья мясные цыплята опытной группы опередили своих контрольных аналогов на 5,0%, по абсолютному приросту живой - на 11,8%.

Следовательно, результаты производственного опыта подтвердили обоснованность данных, полученных при постановке научно-хозяйственных опытов на цыплятах-бройлерах.

Экономическая оценка результатов производственного опыта проводились методом прямых затрат в расчете на одну голову в ценах на 1 сентября 2010 г.

Установлено, что от реализации цыплят контрольной группы в расчете на одну голову было получено прибыли 23,57 руб., а в опытной - на 11,62 руб. больше. С учетом этого, уровень рентабельности производства птичьего мяса в контрольной группе составила 21,79%, что на 10,04% меньше, чем в опытной группе.

Таким образом, для повышения экономической эффективности выращивания бройлеров на рационах кукурузно-ячменно-соевого типа следует использовать добавки пробиотика Бифидум СХЖ и смеси МЭК Ронозим УР + лецитин.

выводы

1. Сравнительная оценка данных, полученных в ходе трех проведенных экспериментов, показала, что в наибольшей мере реализации биолого-ресурсного потенциала цыплят-бройлеров, выращиваемых на рационах кукурузно-ячменно-соевого типа, способствовали совместные добавки пробиотика Бифидум СХЖ в количестве 1 дозы (содержит 10 млн. клеток бифидобактерий) и смеси МЭК Ронозим VP в дозе 750 г/т + лецитин в дозе 1% по массе корма.

2. Использование в комплексе указанных препаратов в ходе III опыта позволило у цыплят 3 опытной группы против контрольных аналогов повысить сохранность поголовья на 5,0%, прирост живой массы - на 15,3% (Р>0,95) и снизить расход корма на единицу продукции - на 12,2%.

3. Наиболее высокий уровень деградации молекул сложных органических соединений корма в желудочно-кишечном тракте цыплят-бройлеров обеспечило совместное скармливание препаратов Ронозим VP, лецитина и Бифидум СХЖ, что позволило цыплятам 3 опытной группы достоверно (Р>0,95) увеличить в содержимом мышечного желудка и двенадцатиперстной кишки активности протеиназ на 11,6 и 12,8%, целпюлаз - на 22,0 и 13,0%, липаз - на 17,2 и 11,5% и амилаз - на 15,5 и 12,9% соответственно.

4. По результатам физиологических обменных опытов установлено, что усиление гидролиза сложных органических соединений кормов под действием смеси испытуемых препаратов выразилось против контроля в достоверном (Р>0,95) увеличении коэффициентов переваримости сухого вещества на 3,4%, органического вещества - на 3,9%, сырого протеина - на 3,7%, сырой клетчатки - на 3,4%, сырого жира - на 3,6% и БЭВ - на 3,7%, а также в лучшем усвоении азота корма - на 15,3%.

5. При тенденции недостоверных (Р<0,95) изменений у птицы сравниваемых групп количества эритроцитов, гемоглобина, глюкозы, общего белка и его фракций под влиянием смеси биологически активных добавок у бройлеров 3 опытной группы произошло достоверное (Р<0,05) увеличение в сыворотке крови уровня кальция на 2,17 ммоль/л и неорганического фосфора - на 0,53 ммоль/л. Причем между содержанием фосфолипидов и холестерола в крови бройлеров существовала обратная биологическая зависимость, т.е. против контроля цыплята 3 опытной группы по уровню фосфолипидов в крови превзошли на 38,1% (Р>0,95), но уступили по уровню холестерола - на 21,5% (Р>0,95).

6. В ходе III эксперимента наиболее эффективное действие на синтез щелочной фосфатазы, служащей дополнительным критерием оценки уровня обмена фосфора и кальция в организме цыплят-бройлеров оказало совместное скармливание пробиотика Бифидум СХЖ в сочетание со смесью МЭК Ронозим VP + лецитин. Поэтому птица 3 опытной группы достоверно (Р>0,95) превзошла контроль по активности щелочной фосфатазы в крови на 18,5%, а также по усвоению кальция и фосфора кормов - на 11,1 и 12,0% соответственно.

7. Совместные добавки фосфолипидного препарата, МЭК Ронозим VP и пробиотика Бифидум СХЖ активизировали процесс окисления и восстановления НАД+ и НАДФ+, за счет чего относительно контроля у птицы 3 опытной группы

произошло достоверное (Р>0,95) повышение активности лактат- и изоцитратдегидрогеназы в печени на 16,3 и 43,1% и в грудной мышце - на 25,2 и 29,3% соответственно.

8. Использование смеси испытуемых препаратов оказало более высокое стимулирующее действие на функциональную деятельность печени цыплят 3 опытной группы, что по сравнению с контролем у них выразилось в достоверном (Р>0,95) увеличении в этом органе содержания сухого вещества на 0,67%, белка -на 1,18%, гликогена - на 15,7%, массовой доли фосфолипидов от общей суммы липидов - на 10,4%, а также снижении уровня нейтральных липидов - на 3,1% (Р>0,95) и холестерина - на 0,113% (Р>0,95).

9. Скармливание Бифидум СХЖ и смеси МЭК Ронозим VP + лецитин способствовало повышению убойных и мясных качеств цыплят-бройлеров 3 опытной группы, что против контрольных аналогов выразилось:

- в достоверном (Р>0,95) увеличении массы полупотрошеной тушки на 20,1%, потрошеной - на 18,1%, убойного выхода - на 1,6%, а также в повышении выхода тушек I категории - на 8,1 %;

- в улучшении химического состава мяса за счет достоверного (Р>0,95) повышения в грудных и бедренных мышцах содержания сухого вещества на 1,75 и 1,74%, белка - на 1,05 и 1,54% и жира - на 0,31 и 0,54% соответственно;

- в увеличении концентрация в мясе ненасыщенных жирных кислот на 8,7%, а также в повышении величины отношения суммы непредельных жирных кислот к сумме предельных - на 44,2%.

- в оптимизации биологической ценности мяса за счет достоверного (Р>0,95) повышения в образцах грудной мышцы БКП на 21,4% и уровня триптофана - на 7,7%;

- в увеличении общей оценки органолептических показателей белого мяса на 0,72 бал.

10. При совместном введении в кукрузно-ячменно-соевые рационы бройлеров испытуемых биологически активных добавок уровень рентабельности производства птичьего мяса возрос на 10,04%.

ПРЕДЛОЖЕНИЕ ПРОИЗВОДСТВУ

Для повышения биолого-ресурсного и продуктивного потенциала цыплят-бройлеров, а также рентабельности производства птичьего мяса рекомендуем включать в их рационы на основе зерна кукурузы, ячменя и соевого жмыха пробиотик Бифидум СХЖ в количестве 1 дозы на 200 голов в сочетании со смесью МЭК Ронозим VP в дозе 750 г/т + лецитин в дозе 1 % по массе корма.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

Список работ, опубликованных в изданиях, рекомендуемых ВАК РФ

1.Баева A.A. Применение биологически активных добавок в кормлении цыплят-бройлеров. / A.A. Баева, A.A. Столбовская, М.Г. Кокаева, З.Г. Дзидзоева, Ю.С. Гусова, О.Ю. Леонтьева, Г.К. Кибизов // «Труды Кубанского государственного аграрного университета» - Краснодар. - 2008. - № 4(13). - С. 179-182.

2. Темираев Р.Б. Повышение качества мяса кур-бройлеров. / Р.Б. Темираев, A.A. Баева, М.Г. Кокаева // Мясная индустрия. - 2009. - №6 - С. 25-27.

3. Темираев Р.Б. Особенности пищеварительного обмена у бройлеров при добавках в рационы биологически активных веществ. / Р.Б. Темираев, A.A. Баева, М.Г. Кокаева // «Труды Кубанского государственного аграрного университета» -Краснодар. - 2010. - №5(26). - С. 88-90.

Патенты

4. Темираев Р.Б. Способ получения пробиотического кисломолочного продукта на основе соевого молока. / Р.Б. Темираев, Н.Г. Тер-Терьян, В.В. Тедтова, М.Г. Кокаева, К.В. Нетребко // Патент на изобретение № 2385565. -Владикавказ. - 2010.

5. Темираев Р.Б. Способ кормления цыплят-бройлеров. / Р.Б. Темираев, М.Г. Кокаева, A.A. Баева // Патент на изобретение № 2396005. - Владикавказ. -2010.

Статьи, опубликованные в других изданиях

6. Кокаева М.Г. Повышение пищевой ценности мяса бройлеров. / М.Г. Кокаева // Материалы XII всероссийской научно-практической конференции «Агропромышленный комплекс и актуальные проблемы экономики регионов». -Майкоп. - 2008. - С. 200-201.

7. Баева A.A. Эффективность использования ферментных препаратов в рационах цыплят-бройлеров. / A.A. Баева, Н.Г. Тер-Терьян, М.Г. Кокаева, З.Г. Дзидзоева, К.В. Нетребко // Сборник научных трудов международной научно-практической конференции «Научные основы повышения продуктивности сельскохозяйственных животных». - Краснодар. - 2008. - Ч. 2/СКНИИЖ - С. 3-4.

8. Баева A.A. Эффективность использования биологически активных добавок в рационах цыплят-бройлеров. / A.A. Баева, М.Г. Кокаева, К.В. Нетребко, З.С. Хамицаева // Сборник научных трудов юбилейной международной (2-ой) научно-практической конференции, посвященной 40-летию образования СКНИИЖ «Научные основы повышения продуктивности сельскохозяйственных животных». - Краснодар. - 2009. - Ч. 2 - С. 152-153.

9. Баева A.A. Биологические ресурсы производства экологически чистого мяса бройлеров. / A.A. Баева, З.Р. Ибрагимова, М.Г. Кокаева, С.К. Абаева // Сборник научных трудов по материалам международной научно-практической конференции «Инновационные пути развития животноводства». - Ставрополь. -2009. - С. 207-208.

10. Баева A.A. Оценка технологических и пищевых свойств мяса цыплят-бройлеров. / A.A. Баева, З.Р. Ибрагимова, А.Т. Багаева, М.Г. Кокаева // Сборник научных трудов международной научно-практической конференции «Научные основы повышения продуктивности сельскохозяйственных животных». -Краснодар. - 2010. - Ч. 2/СКНИИЖ - С.73-74.

11. Баева A.A. Качество мяса цыплят-бройлеров с учетом содержания Б АД в рационах. / A.A. Баева, З.С. Хамицаева, М.Г. Кокаева // Труды всероссийской научно-производственной конференции «Новые направления в решении проблем АПК на основе современных ресурсосберегающих инновационных технологий». -Владикавказ.-2010.-С. 135.

Сдано в набор И.12.10г. Подписано в печать 13.12.10г. Гарнитура Тайме. Печать трафаретная. Формат 60x84 1/16. Бумага офсетная. Усл. печ. л. 1,0. Тираж 100 экз. Заказ № 332.

Типография ООО НПКП «МАВР», Лицензия Серия ПД №01107, 362040, г. Владикавказ, ул. Августовских событий, 8, тел. 44-19-31

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Кокаева, Марина Гурамовна

Введение

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ ^ Физиолого-биохимические особенности пищеварения сельскохозяйственной птицы

Роль и значение ферментов в процессах пищеварения и обмена веществ сельскохозяйственной птицы

Биологическое значение пробиотиков в питании сельскохозяйственной птицы

Роль и значение фосфолипидов в процессах обмена веществ 1. сельскохозяйственной птицы

2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3 РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1 Особенности кормления подопытной птицы

Сохранность поголовья, продуктивность и расход корма на

3.2 56 единицу продукции цыплят-бройлеров

3.3 Результаты физиологических обменных опытов

Коэффициенты переваримости питательных веществ рацио

3.3.1 63 нов подопытной птицы

3.3.2 Использование азота корма подопытной птицей

3.3.3 Использования кальция корма цыплятами-бройлерами

3.3.4 Использования фосфора корма цыплятами-бройлерами

Ферментативная активность содержимого желудочно

3.4 73 кишечного тракта цыплят-бройлеров

3.5 Результаты исследований крови

Морфологические и биохимические показатели крови

3.5.1 77 подопытной птицы

3.5.2 Активность щелочной фосфатазы в сыворотке крови подопытной птицы

Активность НАД- и НАДФ-зависимых дегидрогеназ в печени

3.6 87 и грудной мышце бройлеров

3.7 Масса и химический состав печени бройлеров

3.8 Результаты контрольного убоя цыплят-бройлеров

3.8.1 Убойные качества мяса цыплят-бройлеров

3.8.2 Химический состав мяса подопытной птицы

3.8.3 Биологическая полноценность мяса бройлеров

3.9 Результаты производственного опыта 104 ЗЛО Экономическая оценка результатов производственного опыта

Выводы

Предложение производству

Введение Диссертация по биологии, на тему "Биолого-продуктивный потенциал и потребительские свойства мяса цыплят-бройлеров при использовании в рационах биологически активных добавок"

Актуальность проблемы. Увеличение производства продукции птицеводства и снижение ее себестоимости требует мобилизации всех ресурсов на основе широкого внедрения достижений науки. Одним из факторов, определяющим биоресурсный потенциал и продуктивность птицы, является, полноценность кормления, которая достигается не только набором кормовых средств, но и включением в рацион биологически активных веществ (Т. Околелова и др., 2008; Л.Н. Скворцова, 2010).

В настоящее время в кормлении птицы стало очень важно максимально использовать зерно собственного производства. Поэтому в корма вынуждены вводить все больше зерна кукурузы, ячменя, ржи, жмыхи, шроты и др. В комбикормах на основе зерна злаковых культур, жмыхов и шротов без добавок жира обычно содержится пониженное количество обменной энергии, а при добавках кормового животного жира в рационах увеличивается концентрация насыщенных жирных кислот, что приводит к снижению пищевой ценности птичьего мяса.

Избежать этого можно при включении в рационы цыплят-бройлеров фосфолипидных препаратов, в первую очередь лецитина, технология получения которого разработана учеными Кубанского государственного технологического университета, с максимальным сохранением биологически ценных свойств ненасыщенных жирных кислот (Е.О. Герасименко и др., 1999). Включение лецитина в рацион сельскохозяйственной птицы приводит к улучшению роста и повышению концентрации в печени витамина А, активации многих ферментов, связанных с мембранами, кроме того, он благоприятно воздействует на костеобразование. Известно синергическое действие лецитина со многими биологически активными веществами (А.Н. Васильев, 1979; А.Е. Чиков и др., 2009).

Известно также, что потенциал этих кормов при кормлении бройлеров не в полной мере используется организмом, так как отличаются высоким содержанием клетчатки. Низкая питательность ряда зерновых также обусловлена тем, что наряду с клетчаткой, в них присутствует в значительных количествах другие некрахмалистые полисахариды, к которым относятся ß-глюканы и пентоза-ны (Н.Г. Макарцев, 1999; 0:А. Нигоев, 2001).

Некрахмалистые полисахариды обладают отрицательным свойством -они сильно набухают, образуя вязкие клееобразные растворы, ограничивающие всасывание уже переваренного белка, крахмала, жира и других важных биологических, соединений, поэтому в кишечном содержимом повышается концентрация не всосавшихся питательных веществ, которые способствуют развитию условно патогенной микрофлоры в нижних отделах кишечника, что в дальнейшем создает проблемы для здоровья и продуктивности птиц (Т.М. Околелова и др., 2001; Т.А. Фаритов, 2002).

С целью интенсификации производства продукции птицеводства, необходим поиск способов, повышающих переваримость и использование питательных веществ организмом птицы, снижающих отрицательные факторы кормов местного производства. Для этого используются отечественные и зарубежные мультиэнзимные композиции (МЭК), использование которых в кормлении птицы при оптимальной дозе их введения, повышает переваримость и использование питательных веществ рациона, конверсию корма в продукцию, улучшает обмен веществ в организме, увеличивает продуктивность птицы (B.C. Крюков, 1996; Н.Ю. Плесовских, 1999).

Сегодня на рынке присутствуют ферментные препараты с различным спектром действия, которые позволяют вводить в рацион более дешевые компоненты с высоким содержанием клетчатки. Все эти ферменты представляют собой целлюлазы, синтезируемые грибами родов Trichodemia и Aspergillus. Сочетание бактериальных и грибных целлюлаз в рационах птицы - путь к дальнейшему повышению их продуктивности. Это сочетание обеспечивает лучшее переваривание и усвоение кормов (Л. Эрнст, Г. Лаптев, 2006).

Успехи, достигнутые в области изучения роли микрофлоры кишечника в гидролизе сложных органических соединений кормов и всасывания их метаболитов через слизистую оболочку кишечника, в формировании и развитии ферментативного звена пищеварительной системы, явились предпосылкой разработки и использования в качестве биологически активных добавок и лечебно-профилактических препаратов пробиотиков, главным назначением' которых является подавление кишечных гнилостных бактерий, ликвидация дисбиотиче-ских нарушений в пищеварительном тракте за счет введения-в организм больших количеств живых антагонистических молочнокислых бактерий (Б.Г. Цуг-киев и др., 2003; А.Г. Тохтиев, 2006).

Особенно перспективным пробиотиком является препарат Бифидум СХЖ на основе живых бифидобактерий, которые в симбиозе с другими микроорганизмами, в том числе с лактобациллами, пропионовокислыми бактериями, приживляясь в желудочно-кишечном тракте, выделяют ферменты, повышающие переваримость и использование питательных веществ кормов (И.Д. Тменов и др., 2003; В.В. Тедтова и др., 2004).

На основании вышесказанного следует, что проведение исследований по определению влияния ферментных препаратов, бифидумбактерина в сочетании с фосфолипидами на биолого-продуктивный потенциал цыплят-бройлеров остается весьма актуальным направлением в науке и производстве.

Цель и задачи исследований. Целью исследований являлось изучение биолого-ресурсного потенциала и потребительских свойств мяса цыплят бройлеров при использовании в их рационах на основе зерна кукурузы, ячменя и соевого жмыха МЭК Ронозим УР, фосфолипидного препарата лецитина и про-биотика Бифидум СХЖ.

В соответствии с поставленной целью решались следующие задачи:

- определить оптимальную схему применения биологически активных добавок и фосфолипидного препарата в комбикормах кукурузно-ячменно-соевого типа мясных цыплят;

- дать характеристику состояния промежуточного обмена, а также изучить ферментативную активность некоторых органов и тканей подопытной птицы.

- провести оценку убойных и мясных качеств мясных цыплят с учетом влияния испытуемых препаратов, как стимуляторов проявления биологических резервов организма;

Научная новизна исследований состоит в том, что впервые применительно к рецептуре комбикормов цыплят-бройлеров на основе зерна кукурузы, ячменя и соевого жмыха удалось экспериментально установить и теоретически обосновать эффективность совместного использования пробиотика Бифидум СХЖ и смеси МЭК Ронозим УР + лецитин. Получены новые данные, характеризующие влияние смеси испытуемых кормовых добавок на уровень пищеварительного и промежуточного метаболизма, на активность ферментативных процессов в организме мясной птицы, а также на рост, пищевую и биологическую полноценность птичьего мяса

Практическая ценность работы заключается в разработке рекомендаций по рациональному использованию в качестве биологически активных добавок в составе рационов кукурузно-ячменно-соевого типа для мясных цыплят пробиотика Бифидум СХЖ в количестве 1 дозы (содержит 10 млн. клеток би-фидобактерий) и смеси МЭК Ронозим УР в дозе 750 г/т + лецитин в дозе 1% по массе корма для повышения энергии роста, убойных и мясных качеств, интенсификации пищеварительного и промежуточного метаболизма, а также увеличения рентабельности производства птичьего мяса.

На защиту выносятся следующие основные положения диссертации:

- обоснование рекомендуемых сочетаний испытуемых биологически активных добавок в рационах цыплят-бройлеров;

- морфологические и биохимические показатели крови цыплят сравниваемых групп, а также изменения у них активности некоторых ферментов органов и тканей;

- экономическое обоснование использования испытуемых препаратов в комплексе в рационах цыплят-бройлеров на основе зерна кукурузы, ячменя и соевого жмыха.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 Физиолого-биохимические особенности пищеварения сельскохозяйственной птицы

Знание особенностей пищеварения и обмена веществ у птицы имеет решающее значение в повышении ее продуктивности (Викторов П.Й. 2003). Для поддержания жизни и производства продукции птица должна получать достаточное количество энергии и необходимый комплекс питательных веществ. Прием корма, переваривание и всасывание питательных веществ — начальные этапы функциональной цепи, дальнейшие звенья которой - промежуточный обмен и выделение.

К физиологическим особенностям строения и функционирования пищеварительной системы птицы следует отнести, прежде всего, отсутствие в ротовой полости зубов, именно поэтому пища захватывается клювом и проглатывается целиком. Принятый корм во время короткого пребывания в ротовой полости смачивается богатой муцином слюной и проглатывается, а затем попадает в зоб, состоящий из левого и правого мешков. В зобе корм смешивается с водой, муцином слюны, муциносодержащим секретом (амилаз и протеаз), содержащимся в корме и выделяемым микрофлорой. В связи с тем, что среди корма, как правило, кислая рН содержимого зоба значительно ниже 7 (4,5-5,8), кислая среда благоприятна для интенсивных бактериальных процессов расщепления корма (В.И. Георгиевский, 1978; В.Н. Агеев, Ю.П. Квиткин и др., 1982; А.Р. Вальдман, К.М. Солнцев, 1973; В.Ф. Вракин, М.В. Сидорова, 1984).

Содержимое зоба поступает в железистый желудок, в котором имеется пепсин, соляная кислота, сычужный фермент и муцин (рН содержимого желудка у кур - 4,7-3,6 и уток -3,4). Поступающий в железистый желудок корм перемешивается с его соком, а затем перемещается в мускульный желудок.

Кормовые массы в мышечном желудке интенсивно перетираются при помощи мышечных сокращений, которые приводят в движение кутикулу и находящийся в желудке гравий, и перемешиваются с секретом железистого и мускульного желудков и их микрофлорой. Кислая среда химуса мускульного желудка (pH 3,9 - 2,6 - у кур и 2,3 - у уток) способствует действию пепсина, который расщепляет легко растворимые белки до полипептидов, а ферменты микрофлоры продолжают гидролизовать углеводы (В.И. Фисинин, 1999; Е.Т. Гнеушев, H.H. Шитов и др., 1979; J. Okumura and oth., 1975; S.P. Rose, M.C. Ud-din, 1996).

Мускульный желудок опорожняется рефлекторно при открытии пилору-са, и содержимое попадает в тонкий отдел кишечника, а затем в подвздошную кишку. При прохождении через тонкий отдел кишечника химус перемешивается с соками кишечника (в нем содержатся амилаза, инвертаза и трипсин) поджелудочной железы (в ней имеются амилаза, инвертаза, трипсин, эрипсин, липаза) и желчью (содержит амилазу), что способствует дальнейшему расщеплению основных питательных веществ корма. Главный поставщик пищеварительных ферментов - сок поджелудочной железы (А. Ленинджер, 1974).

Обмен веществ связан с превращением питательных веществ, принимаемых организмом в виде пищи из внешней среды, в сложные структурные элементы цитоплазмы. Обмен включает изменение и всасывание всех веществ, поступающих в организм. Но процессы обмена отдельных веществ имеют свои особенности, поэтому изучают отдельно белковый, жировой, углеводный, минеральный, водный и витаминный обмен. Все эти процессы протекают в одном и том же организме и тесно взаимосвязаны (В.Н. Агеев и др., 1987; Д.Л. Ферд-ман, 1966).

Белки являются главной составной частью живого вещества и материальной основой процессов жизнедеятельности организма. Белковый минимум для птиц разного вида, физиологического состояния — различный (А.Н. Васильев и др., 1979; A.B. Езерская, B.C. Мальцев, 1979).

Переваривание белков в тонком отделе кишечника начинается с предварительного переваривания под действием соляной кислоты, пепсина и химази-на желудочного сока в 12-перстной кишке и заканчивается в тощей и подвздошной кишках в стадии аминокислот под действием, протеаз сока поджелудочной железы. При этом протеин животных кормов переваривается на 85-95%, растительных на 80-85%, однако, несмотря на это, азотистую часть корма птица использует только на 45-55% (А.П. Калашников и др.,. 1993; А.К. Данилова , 1993 ; П.Т. Лебедев, 1969; A.B. Езерская, B.C. Мальцев, 1979; А.П. Костин и др., 1983; И.В; Щенникова, О.В. Лищенко, .1997; Н.В. Пристач, 1999);

Наиболее частыми причинами снижения перевариваемости питательных веществ корма птицей являются, всевозможные морфофункциональные изменения в органах желудочно-кишечного тракта. При этом снижается концентрация ферментов в пищеварительных соках. Снижение активности пищеварительных ферментов отличается при неполноценном питании птицы, особенно при длительной протеиновой и аминокислотной недостаточности, дефиците в рационе витаминов и микроэлементов, что в совокупности нарушает схему ферментных систем в организме и адаптацию пищеварительных желез к характеру корма (А. Архипов, Л.В. Топорова, 1984; В.В. Леонович, 1953; E.H. Кондратьева, 1984). ^

В толстом отделе кишечника птиц происходит гидролиз труднорастворимых белков, чему способствуют сохранившиеся ферменты микроорганизмов, содержащихся в слепой кишке. Освободившиеся аминокислоты в слепой кишке частично всасываются в кровь, а большая их часть дезаминируется и также используется организмом (Т.И. Каблучеева, 2000; В.М. Газдаров и др., 1969; A.B. Архипов, Л:В. Топорова, 1984)l

Углеводы расщепляются до моносахаридов под действием амилазы сока поджелудочной железы и частично под влиянием амилазы желчи. Процессы набухания в зобе и дальнейшее перемешивание корма с желудочно-кишечной флорой играют определенную роль в расщеплении углеводов (А. Г. Малахов, В. Фисинин и др., 2008; А.Г. Малахов, С.И. Вишняков, 1984; A.B. Езерская, B.C. Мальцев, 1979).

Зерновые корма являются основным источником углеводов для птицы, и их уровень в рационах достигает от 65 до 80%. Из резервных углеводов главным компонентом является крахмал, из основных углеводов основными являются гемицеллюлоза, целлюлоза и лигнин (А.Г. Малахов, С.И. Вишняков, 1984; В.Л. Кретович, 1981).

Жиры начинают расщепляться после поступления в 12-перстную кишку под действием смеси желчи и панкреатического сока. Этот процесс завершается образованием моноглицеридов, глицерина и жирных кислот (И.П. Кондрахин и др., 1985; В. Гнатив, 1979; Алиев А.А и др., 1987).

В слепой кишке продолжается расщепление углеводов, белков и жиров под действием остаточных ферментов тонкого отдела кишечника и ферментов, выделяемых микроорганизмами. Участие ферментов микроорганизмов в переваривании клетчатки невелико, так как в слепую кишку попадает лишь незначительная доля проходящего через пищеварительный тракт химуса. В связи с быстрым прохождением корма по пищеварительному тракту, интенсивным пищеварением в тонком отделе кишечника и незначительным участием микрофлоры слепой кишки в переваривании клетчатки птице нельзя давать богатые клетчаткой корма. В целом энергия корма, трансформируемая* из углеводов, жира, клетчатки и частично из протеина, используется птицей на 70-80% (Б.С. Калоев, 2003; Н.П. Воронов, 1962; A.B. Архипов, 1989).

Скорость продвижения химуса по пищеварительному тракту у птицы зависит в основном от типа кормления, состава и размера частиц компонентов в рационе. При сухом типе кормления полнорационным рассыпным комбикормом кормовые массы проходят через пищеварительный тракт у цыплят и кур-несушек в течение 3-4 ч (М.И. Дьяков, 1959).

У птицы отмечено конкурентное торможение всасывания аминокислот в тонком отделе кишечника. Так, метионин тормозит всасывание лейцина, фени-лаланина и глутаминовой кислоты. Всасывание метионина может тормозиться фенилаланином и лейцином и не изменяться в присутствии глутаминовой кислоты. Фруктоза и манноза всасываются в 1,5-2 раза медленнее, чем галактоза и глюкоза (A.M. Кононский, 1992; И.Т. Маслиев, 1968; A.M. Уголев, 1977).

Всасывание насыщенных жирных кислот (пальмитиновой и стеариновой) повышается в присутствии ненасыщенных кислот. В связи с этим эффективность использования жиров у птицы можно повысить включением в рацион компонентов с благоприятным соотношением насыщенных и ненасыщенных жирных кислот, которое составляет 3:1(С.А. Данкос, 1991; В. Назаров, 1992; Р. Муртазаева и др., 1996; И. Егоров, В. Пономаренко, 1973; A.B. Архипов, 1989).

Интенсивность всасывания кальция зависит от используемых в рационе кальциевых соединений, а также от присутствия желчи и витамина D3. Его использование у кур-несушек не превышает 50-60%. На всасывание и использование фосфора влияют соотношение его с кальцием и потребность в нем организма.

В целом использование питательных веществ комбикормов птицей зависит от обеспеченности витаминами и интенсивности их всасывания (В.К. Менькин,1997; Ф.Н. Цогоева, 2009; Георгиевский В.И. и др., 1979; Б.Д. Каль-ницкий, 1988; А. Лапшин, В.И. Матяев др., 1991).

Непереваренная часть корма накапливается в прямой кишке и выделяется через клоаку в виде помета (кал и моча). С мочой выводятся соли мочевой кислоты (в основном соли аммиака) (И.В. Пигарев и др., 1981).

Усвоенные питательные вещества корма используются птицей для построения органов и тканей или в качестве источника энергии. В последнем случае питательные вещества окисляются, а освобождаемая энергия расходуется на поддержание процессов жизнедеятельности и служит источником энергии для роста молодняка и образования яиц и спермы у взрослой птицы (В.Н. Агеев, Ю.П. Квиткин и др., 1982; В.Н. Агеев и др., 1987; В. Фатеев, 1992; В.К. Менькин, 1997).

В процессах пищеварения, обмене питательных веществ и терморегуляции организма большое значение имеет вода. В зависимости от возраста количество воды в организме птицы различное. В теле эмбриона — 98%, в конце инкубации - 79,5%, в теле взрослой птицы - 60% (И.В. Щенникова, О.В. Лищен-ко, 1987).

Вода потребляется птицей в определенной пропорции к количеству принятого корма. Количество воды для поения птицы должно отвечать требованиям ГОСТа — 2874 - 82 «Вода питьевая». С повышением температуры окружающей среды потребление воды повышается. Так, при температуре воздуха 12

16°С курица потребляет в сутки около 250-300 мл питьевой воды, утка - 600750, индейка - 50-600, гусь до 1000 мл. Доступ к воде должен быть свободным, постоянным (Ф.Ф. Алексеев, М.А. Асриян и др., 1991; В.Н. Агеев и др.,1987).

Из выше сказанного можно сделать вывод, что физиолого-биохимические особенности пищеварения сельскохозяйственной птицы составляют одну из биологических основ интенсификации птицеводческой отрасли.

1.2 Роль и значение ферментов в процессах пищеварения и обмена веществ сельскохозяйственной птицы

В связи с высокой стоимостью кормов в последние годы возрос интерес к биологически активным веществам. К таким веществам, в частности, относятся ферментные препараты, действующее начало которых - ферменты, расщепляющие до легкоусвояемых форм питательные вещества высокомолекулярной природы (крахмал, белки, липиды, компоненты клетчатки) (H.A. Натарова, 2001).

Объективные предпосылки для использования ферментных препаратов в кормлении птицы: концентратный тип кормления, характеризующийся в целом низкой доступностью питательных веществ и энергии; отсутствие в пищеварительном тракте птицы ферментов, расщепляющих сложные полисахариды типа целлюлозы, гемицеллюлозы, пектиновых веществ и др.; несовершенство ферментной системы пищеварения птицы, особенно у молодняка (Д.И. Данилюк и др., 1977; Н.В. Ездаков, 1971).

Получение максимальной продуктивности и снижение себестоимости продукции на современных породах и кроссах птицы, реализация их генетического потенциала возможны только при использовании качественных и полноценных комбикормов, включающих различные биологически активные вещества. Один из способов реализации поставленной цели - введение экзогенных ферментов непосредственно в корм (В. Чегодаев и др., 2004).

Ферменты представляют собой белковые вещества, вырабатываемые растениями, животными и микроорганизмами, способные ускорять химические реакции, не входя в состав конечных продуктов. В организме животных они выполняют роль биологических катализаторов, вступая на какое-то время в контакт с субстратом, образуя неустойчивое соединение фермент-субстрат. Неустойчивый комплекс разлагается на свободный фермент и продукты реакции (A.A. Брантюк, 1991; С. Бернхард, 1971; В.М. Газдаров, JI.H. Нечипуренко, 1968).

Такие питательные вещества, как углеводы, протеин и жиры, в том виде, в каком они находятся в корме, не могут быть усвоены организмом животных и птицы. Только после воздействия на них различных ферментов и расщепления до более простых веществ они могут всасываться через стенки желудка и кишечника, переноситься кровью по всем органам и тканям и использоваться для пластических и энергетических целей (С.Н. Коломиец, 2001; В.И. Фисинин, 1999; Н.П. Воронов, 1962; В.Ф. Вракин, М.В. Сидорова, 1991).

Ферменты важную роль играют в окислении веществ, освобождении химической энергии и других процессах обмена веществ. Они также принимают участие в процессах обмена веществ между организмом и внешней средой (H.H. Шабетов и др., 2002; С. Бернхард, 1971).

В зависимости от типа катализуемой реакции ферменты делятся на шесть основных классов: оксидоредуктазы, трансферазы, гидролазы, липазы, изомеразы и лигазы. Различают эндоферменты и экзоферменты, ферменты-протеины и ферменты-протеиды, конститутивные и адаптивные.

Эндогенные ферменты животных образуются в слюнных железах, желудке, поджелудочной железе, кишечнике, печени. К пищеварительным ферментам относятся протеолитические (протеазы), расщепляющие протеин; амилолитические ферменты (карбогидразы), расщепляющие углеводы, и липо-литические ферменты (эстеразы), расщепляющие жиры (И.В. Куваева, 1976; Н.В. Ездаков, 1976).

Экзогенные ферменты целесообразно использовать в птицеводстве для улучшения усвояемости питательных веществ рационов и повышения интенсивности обмена веществ (А.Р. Вальдман, K.M. Солнцев, 1973).

Одно из наиболее поразительных свойств ферментов их специфичность. Специфичность ферментов проявляется по-разному и может быть выражена в разной степени. Прежде всего, следует различать специфичность по отношению к субстрату и к типу химической реакции, катализируемой ферментом. Также различают специфичность по отношению к реакции. Каждый фермент катализирует одну химическую реакцию или группу реакций одного типа. Наиболее ярким проявлением этого вида специфичности могут служить довольно частые случаи, когда одно и то же химическое соединение выступает как субстрат действия нескольких ферментов, причём каждый из них катализирует специфическую для него реакцию, приводит к образованию как в организме птицы, так и у других животных, в энергетический и пластический материал (Н.В. Ездаков, 1976; С.И. Сметнев, 1978; R. Duchmann et.al., 1999).

В пищеварительных железах птицы не образуются ферменты, расщепляющие целлюлозную и другие сложные полисахаридные комплексы некрахмальной природы, а влияние микрофлоры желудочно-кишечного тракта, синтезирующей эти ферменты, на переваривание клетчатки незначительно. Это приводит к тому, что большое количество питательных веществ, которые содержатся в структурах растительных клеток, недоступно воздействию пищеварительных ферментов, что снижает их усвоение (Д.И. Данилюк и др., 1977).

Пищеварительный тракт у птиц сравнительно короче, чем у млекопитающих. Корм в основном переваривается и адсорбируется в тонком отделе кишечника под влиянием пищеварительных ферментов, секретируемых поджелудочной железой, стенкой кишечника и желчи, секретируемой печенью. Поверхность кишечника птиц увеличена за счет многочисленных структур - крипт, содержащих специальные эпителиальные клетки, в основе которых капилляры приносят кровь.

Толстый отдел кишечника у птиц очень короткий. В ротовой полости частицы корма не претерпевают изменений. Слюнные железы расположены группами в области языка, глотки, секретируя 7-30 мл слюны в день, которая служит для смачивания пищи (Н.В. Ездаков, 1976; R. Fuller, 1984; 1989).

К моменту выхода из яйца у цыплят завершается становление ферментного статуса пищеварительного тракта, чем и обеспечивается высокая активность пищеварительных ферментов в первый период жизни при использовании кормов соответствующей природы и доступности. В первый месяц жизни цыплят процесс переваривания корма происходит при относительно более высокой ферментативной активности, чем в последующие периоды роста (В.М. Газдаров, Л.И. Нечипуренко, 1968; Н.В. Ездаков, 1976; В.М. Газдаров и др., 1969).

Ферментные препараты в кормлении животных и птицы используют двумя способами: введением экзогенных ферментов в пищеварительный тракт в составе рациона или путем использования их для гидролиза компонентов рациона до скармливания (Л.Г. Боярский и др., 1985). Это способствует повышению эффективности использования питательных веществ кормов (М.Т. Мельников, 1986). Некоторые ферментные препараты применяются для профилактики заболеваний животных и птицы (Т.А. Дементьева, 1986; В.М. Коршунов и др., 1986).

Как отмечают A.M. Головин и др. (1983), К.А. Калунянц и др. (1980), G.Piva (1992), нет единого мнения, объясняющего стимулирующее действие ферментных препаратов на животных. По утверждению одних авторов, при скармливании препаратов происходит восполнение недостающих ферментов, синтезируемых в самом организме пищеварительными железами. В этом случае настоящее значение могут иметь те ферменты, которых не хватает в пищеварительной системе животных. По мнению других, действие ферментных препаратов проявляется в стимулировании образования эндогенных пищеварительных ферментов в организме животных и птицы или в снижении ингибирующего действия на соответствующие ферменты кормов (A.M. Головин и др., 1983).

Под действием ферментных препаратов с протеазной или гликозид-гидролазной активностью проявляется усиление гидролиза белков и крахмала в пищеварительном тракте. Непосредственным результатом этого является увеличение концентрации мономеров в химусе и повышение фона аминокислотного и углеводного питания. Использование этих препаратов обычно приводит к повышению переваримости сухого и органического вещества, жира и в большинстве случаев сырого протеина, увеличению усвояемости и отложения азота, кальция и фосфора в организме цыплят. В итоге увеличивается прирост живой массы, сокращается;расход корма (В.М. Коршунов и др., 1986; В. Фатеев, 1992).

Учеными в конце 60-х годов было установлено, что недостаточность ферментной активности пищеварительного тракта молодых животных и птиц снижает коэффициент использования питательных веществ в организме. Экзогенные ферментные препараты участвуют в гидролизе полимеров, как в отдельности, так и в сочетании с эндогенными ферментами кишечника цыплят. Увеличение прироста живой массы цыплят наблюдалось после 15-дневного возраста, когда происходило снижение активности эндогенных пищеварительных ферментов. Под влиянием фермента протеолитического действия живая масса цыплят к 30-дневному возрасту увеличилась на 15 % по сравнению с контролем. Местом участия ферментных препаратов в пищеварительных процессах являются, по мнению автора, передние отделы пищеварительного тракта птиц (В.М. Газдаров, Л.И. Нечипуренко, 1968; Н.В. Ездаков, 1976; В.М. Газдаров и др., 1969).

Ферментные препараты весьма чувствительны к реакции среды рН. При оптимальных значениях рН эти препараты проявляют наибольшую активность, а отклонение от оптимума рН способствует замедлению и полному прекращению их каталитического действия. Ферментативная активность в большой степени зависит и от температуры субстрата или среды. Повышение температуры до 50 °С способствует активизации ферментов, но дальнейшее ее повышение ведет к снижению их активности и денатурации белка (Н.В. Ездаков, 1974; Мюгг, 1990).

В зернах ячменя, ржи, гороха, сои и ее производных (жмыхи и шроты), хлопковом шроте, бобах содержатся ингибирующие вещества, снижающие секрецию пищеварительных ферментов и продуктивность птицы. Введенные ферментные препараты способствуют нейтрализации ингибирующих веществ (JI.A. Леванова, и др., 2002; Г. И. Квестенидзе, 1990; В.И. Фисинин и др., 1990).

Повышение ферментов усвояемости энергии и протеина дает специалистам две возможности:

1) добавлять ферменты к стандартным комбикормам свиней и птицы для повышения продуктивности;

2) использовать более дешевые, доступные и простые составы рационов из кормов собственного производства, сохраняя при этом с помощью ферментов имеющийся уровень продуктивности (Черепанов С., 1996).

С. Кислюк, С. Черепанов (1996) отмечают, что по мере роста птица повышает способность своего организма секретировать такие ферменты, как про-теазы. Однако они никогда не секретируют собственные ферменты, разлагающие клетчатку. По мнению авторов, ферменты оказывают влияние на эффективность использования кормов за счет четырех основных механизмов:

1) частичной деградации стенок клеток эндосперма зерна, состоящих из клетчатки, и освобождения заключенных в этих капсулах крахмала и протеинов;

2) частичной деградации растворимой клетчатки, экстрагированной из структурных элементов зерна, и благодаря этому снижению вязкости, липкости содержимого кишечника;

3) частичной деградации и инактивации протеиновых антипитательных факторов, таких, как ингибиторы протеаз и.лектины;

4) дополнение недостаточной собственной секреции ферментов у молодых животных.

Основное направление исследований в птицеводстве - это изучение эффективности введения в рацион птицы биологически активных веществ (аминокислот, витаминов, ферментных препаратов и др.).

По мнению A.B. Модянова (1973), это направление возникло практически одновременно с началом индустриализации птицеводства в тесной связи с принципом полнорационного кормления сухими кормосмесями и развивается в настоящее время наиболее интенсивно.

В.А. Александров и Л.Ф. Хлыстова (1990) в своих исследованиях рассматривали применение ферментных препаратов в комбикормах как один из способов повышения доли ячменя в структуре рациона. Ими было установлено, что при замене зерна кукурузы ячменем и обогащении комбикормов комплексом ферментов отмечено повышение живой массы бройлеров на 7%. При этом наибольший эффект был в первый период выращивания бройлеров, а также на низкопитательных комбикормах (М. Александрова, 2002).

В 1997 Е.К. Хрищатая установила, что добавки МЭК-СХ-2 и МЭК-ЦГАП в комбикорма для ремонтного молодняка кур кросса «Родонит», содержащих до 25% необрушенного ячменя, обеспечивает повышение переваримости протеина, жира и клетчатки соответственно на 2,0 - 4,1%; 1,1 - 4,1% и 4,1 -6,0%. При этом повышалось использование азота на 2,0 - 4,1%; кальция - на 2,4 - 4,3% и фосфора - на 6,1 - 8,3%. Улучшение показателей пищеварения у ремонтных молодок, получавших мультинэнзимные композиции, способствует повышению живой массы на 1,50 - 10,93% при снижении затрат кормов на прирост на 5,91 - 16,11%. Автором также установлено улучшение физиологических показателей у кур, получивших эти же препараты, повышение яйценоскости на 2,0 - 8,21% при снижении затрат кормов на 10 яиц - на 4,27 - 0,76%.

Кормление цыплят-бройлеров рационом с добавлением 30 - 40% ячменя вместо пшеницы снижало массу тела в 42-дневном возрасте и эффективность использования корма, ухудшало состояние подстилки. Добавление жидкой смеси фермента авизим в количестве 0,1% в рацион увеличивало прирост живой массы и эффективность использования корма на 4,8 и 3,0 % соответственно по сравнению с обычным рационом без добавки фермента, а также улучшало состояние подстилки. Живая масса цыплят-бройлеров в 49-дневном возрасте при кормлении по контрольному пшенично-кукурузному или ячменному рациону с добавкой ферментов достоверно не различалась и составляла в среднем 2348 и 2326 г соответственно (D.S. Farner, 1960).

По результатам исследований Н.В. Ездакова (по определению эффективности протеолитических и амилолитических препаратов) добавка ами-лосубтилина в комбикорма для бройлеров в количестве 0,05% способствовала повышению прироста живой массы на 8-14 %, выходу тушек первой категории - на 4-5 %, а расход корма на единицу прироста живой массы снижался на 6-10 %. В балансовых опытах было отмечено, что при добавке препарата в комбикорм улучшалось использование азота, кальция, фосфора и БЭВ. О положительном влиянии ферментных препаратов на рост цыплят-бройлеров, их мясные качества и процессы метаболизма в организме свидетельствуют Э. Удалова и др. (1985).

При одновременном введении амилосубтилипа и протосубтилина в комбикорма для бройлеров было показано, что различия в живой массе цыплят в 30-дневном возрасте на сбалансированных комбикормах при равной даче препаратов (по 0,05 %) составляли 27,4, а к концу выращивания - 16,2%. Эти данные подтверждают необходимость дачи ферментных препаратов именно в первые дни жизни цыплят. Затраты корма на прирост были также ниже в опытной группе, чем в контроле (на 6%) (Е. Нага 1978; В.М. Газдаров, Л.И. Не-чипуренко, 1968; Н.В. Ездаков, 1976).

Положительное действие протеолитических ферментных препаратов проявляется, прежде всего, на рационах с пониженным содержанием протеина или при уменьшении доступности одной или нескольких незаменимых аминокислот (Р.Б. Темираев, 2000).

С. Баранаускас и Р. Науджюс (1991), Г. Йоцюс (1991) также сообщали о положительном действии ферментных препаратов. В частности, отмечалось улучшение роста молодняка на 1,7 - 7,6% и снижение затрат корма на прирост на 1,8 - 4,5%; повышение яйценоскости кур на 3,4 - 5,2%, при снижении затрат кормов на продукцию на 3,8 - 7,6%, а при использовании комбикормов пониженной питательности - соответственно - на 4,2 - 8,2% и 4,6 - 8,1%. Улучшение зоотехнических показателей происходило на фоне повышения переваримости протеина, жира, БЭВ и клетчатки. Отмеченое улучшение физиологических показателей сопровождалось улучшением качества яиц и мяса птицы (С. Баранау-скас, Р. Науджюс, 1991; С.С. Васильченко, 1974).

В исследованиях Р. Zosac et. al. (1992) при применении ферментного препарата «Энерджекс» фирмы «Ново-Нордикс» (Дания) в кормлении цыплят-бройлеров живая масса бройлеров опытной группы в 21-, 35-, 49-дневном возрасте увеличивалось соответственно на 25%, 11,5% и 5,38% по сравнению с контролем без ферментов. Эффективность использования корма за весь период выращивания повышалась на 3,3%. При этом в физиологических опытах не выявлено изменения активности протеаз в химусе кишечника, но целлюлазная активность повышалась в 2,5 раза (S. Blum et al., 1999).

В 1990 году А .Я. Трумпицкене установила, что применение ферментных премиксов ГПЛ и ЦТ в оптимальной дозе (0,1% от массы корма) повысило использование курами питательных веществ кормов: азота на 4,2 - 1,5%, энергии на 5,8 - 1,2% и жира - на 2,4 - 0,6% по сравнению с контролем. Ферментный препарат ГПЛ повысил протеолитическую активность содержимого мышечного желудка на 14,5%, химуса 12-перстной кишки на 10,6%, а ферментный премикс ЦТ в аналогичной дозе - соответственно на 8,3% и 7,3% (С. Лисон, 1999; Г.А. Магидов, Г.А. Покатилова, 1970).

Изучалось влияние ферментных препаратов — протосубитилина и пекта-воморина на особенности метаболизма в грудных и ножных мышцах цыплят-бройлеров. Установлено положительное влияние этих ферментных препаратов в качестве добавки к основному рациону на общий рост и продуктивность цыплят-бройлеров. Параллельно выявлено увеличение содержания сухих веществ в мышечной ткани, уменьшение количества воды и коллагенных белков, возрастные уровни полноценных белков, аминоазота и фосфолипидов в ножных мышцах, особенно под влиянием протосубтилина. Увеличение содержания гликогена в мышечной ткани и концентрации лактата в ней положительно сказывалось на вкусовых качествах мяса при хранении. Отмеченные изменения происходили на фоне повышения продуктивности цыплятбройлеров (З.Т. Кадалаева, 2002; H.A. Гагкоева, 2003; С.А. Мирошников, С.С. Мартыненко, 2000).

По мнению JI.A. Литвина, В.М. Коростель и др. (2000) добавки в рацион цыплят-бройлеров ферментных препаратов способствуют регулированию метаболизма в мышцах, что сказывается на повышении продуктивности цыплят-бройлеров.

Положительное действие протеолитических ферментных препаратов проявляется прежде всего на рационах с пониженным содержанием протеина или при уменьшении доступности одной или нескольких незаменимых аминокислот.

Исходя из приведенного материала можно сделать вывод, что скармливание ферментных препаратов оказывает положительное влияние на:

- продуктивность сельскохозяйственной птицы;

- качество мяса и яиц;

- переваримость и усвояемость питательных веществ рациона;

- ферментативную активность химуса кишечника;

- показатели промежуточного обмена.

1.3 Биологическое значение пробиотиков в питании сельскохозяйственной птицы

В условиях интенсивного птицеводства, когда на ограниченных площадях концентрируется большое поголовье птицы, постоянное применение кормовых антибиотиков приводит к селекции и последующей циркуляции в хозяйствах условно-патогенных и патогенных микроорганизмов с повышенной резистентностью к препаратам этой группы. Результатом многолетнего бесконтрольного применения кормовых антибиотиков в промышленном птицеводстве стало широкое распространение желудочно-кишечных заболеваний, которые занимают второе место после вирусных и являются основной причиной гибели молодняка в птицеводческих хозяйствах Российской Федерации (Г. Бовкун, 2002; Ю.Г.

Анакина, 1991; А.Н. Маянский , 1999; П.В. Пинегин, В.В. Мальцев и др., 1984; С.А. Артемьева, 1977).

Эти и другие обстоятельства привели к необходимости разработки нового поколения безопасных и эффективных препаратов, направленных на коррекцию кишечного биоценоза и повышение колонизационной резистентности, слизистой кишечника. Мировой опыт свидетельствует, что в решении этих проблем все большее значение обретает заместительная терапия, направленная на восстановление кишечного биоценоза путем введения в ЖКТ живых бактерий с водой или кормом. Вытесняя из кишечника патогенную микрофлору, они не влияют на представителей нормальной кишечной микрофлоры и способствуют нормализации пищеварения. Препараты, в состав которых входят такие бактерии, получили название пробиотики (JI.A. Леванова и др., 2002; С.А. Мирошни-ков, 2002; A.M. Алимов, М.Ш. Алиев, 2000).

В настоящее время в арсенале ветеринарных специалистов и зоотехников имеется большое разнообразие пробиотических препаратов различного видового состава, применение которых, судя по результатам исследований, приводит к положительным эффектам. Однако широкому внедрению пробиотиков в технологию выращивания бройлеров в нашей стране мешает ряд причин, главная из которых, пожалуй, нежелание специалистов хозяйств отказываться от «надежных» и привычных для них кормовых антибиотиков. Другая причина - зачастую не все выпускаемые пробиотические продукты способны обеспечить заявленную производителями эффективность применения, что надолго отбивает у опробовавших их специалистов-новаторов весь энтузиазм и желание отказаться от кормовых антибиотиков в пользу пробиотиков. Одной из причин снижения эффективности «традиционных» пробиотиков на основе бифидо- и лактобакте-рий может быть несоблюдение жестких температурных условий хранения. Поэтому некоторые из них поступают к потребителю с большими потерями жизнеспособных бактерий, что бы ни писалось при этом на этикетках (М.Э. Ми-кельсар и др., 1986; A.B. Платонов, 1985; Т.А. Сафонов и др., 1992).

Основоположником концепции пробиотиков является И.И. Мечников, который еще в 1903 г. предложил практическое использование микробных культур-антагонистов для борьбы с болезнетворными бактериями. Первоначально название «пробиотик» применяли для описания субстанций, продуцируемых одним простейшим, который стимулировал рост других, а позднее - кормовых добавок, оказывающих полезный эффект на животное - хозяина путем влияния на его кишечную микрофлору. В последнее время роль пробиотика определяли как «организм и вещества (субстанции), которые делают вклад в микробный баланс кишечника» (Б.В. Тараканов, 2006; Б.А. тендеров, А.Ф. Доронин, 2002).

JI. Ричард и Р. Паркер (1977) термин «пробиотик» использовали для обозначения живых микроорганизмов и продуктов их ферментации, обладающих антагонистической активностью по отношению к патогенной микрофлоре.

В 1981 г. Т. Riise предложил под названием «пробиотик» понимать «.увеличение полезных микроорганизмов в пищеварительном тракте животного-хозяина путем введения больших количеств желательных бактерий для переустановления и поддержания идеальной ситуации в кишечнике», а в 1989 г. R. Fuller - «живую микробную кормовую добавку, которая оказывает полезное действие на животное-хозяина путем улучшения его кишечного микробного баланса». Последнее определение было принято в научной литературе. Оно подчеркивает важность живых микробных клеток как необходимого компонента эффективного пробиотика и устраняет беспорядок, создаваемый использованием слов «субстанции» или «вещества», имеющие очень широкое значение и включающие антибиотики и другие антибактериальные химиотерапевтические средства (Т.А. Спасская, Е.В. Клименко, 2001; R.Fuller , 1989).

М. Vanbelle et al. (1990) определяли понятие «пробиотик» как антоним антибиотиков, т.е. «промотор жизни». Пробиотики в отличие от антибиотиков не оказывают отрицательного воздействия на нормальную микрофлору, поэтому их широко применяют для профилактики и лечения дисбактериозов. В то же время эти биопрепараты характеризуются выраженным клиническим эффектом при лечении некоторых острых кишечных инфекций. Они способны повышать противоинфекционную устойчивость организма, оказывать в ряде случаев антиаллергенное действие, регулировать и стимулировать пищеварение.

Т.Р. Lyons и R.J. Fallon (1992) назвали наше время «наступающей эпохой пробиотиков». И действительно, многочисленные исследования по разработке новых биопрепаратов и дальнейшее изучение механизма их лечебно-профилактического действия дают основание утверждать, что в XXI веке про-биотики в значительной степени потеснят на рынке традиционные и небезопасные для организма препараты, особенно те, которые применяются с профилактической целью (К.Я. Мотовилов, JI.A. Литвина, 1995; T.R. Lyons, 1988; В. Mohan, 1996).

Попытку внести еще большую определенность в толкование этого термина предприняли английские ученые, предложившие называть пробиотиками только пищевые добавки микробного происхождения, проявляющие свои позитивные эффекты на организм хозяина через регуляцию кишечной микрофлоры (A.S. Gissen, 1995).

По мнению Б.А. Шендерова (2002), наиболее соответствующим современному уровню знаний является следующее определение: пробиотики - это живые микроорганизмы и вещества микробного и иного происхождения, оказывающие при естественном способе введения благоприятные эффекты на физиологические функции, биохимические и поведенческие реакции организма хозяина через оптимизацию его микроэкологического статуса. Это определение предполагает, что любые живые или убитые микроорганизмы, их структурные компоненты, метаболиты, а также вещества другого происхождения, оказывающие позитивное влияние на функционирование микрофлоры хозяина, способствующие лучшей адаптации к окружающей среде в конкретной экологической нише, могут рассматриваться как пробиотики (Б.А. Шендеров, А.Ф. Доронин, 2002).

В России наряду с термином «пробиотики» широко используют в качестве его синонима термин «эубиотики». Чаще всего этим термином обозначают фармакопейные бактерийные препараты из живых микроорганизмов, предназначенных для коррекции микрофлоры хозяина. Однако по своей сути эубиоти-ки, согласно современным представлениям, следует рассматривать как частную разновидность пробиотиков.

В результате многолетних исследований предложено следующее определение: пробиотики - это стабилизированные культуры микроорганизмов и продуктов их ферментации, обладающие свойством оптимизировать кишечные микробиоценозы, подавлять рост и развитие патогенной и условно-патогенной микрофлоры, повышать обменные процессы и защитные реакции организма, активизируя клеточный и гуморальный иммунитет (А.Н. Панин, 1999; А.Е. Чи-ков, JI.H. Скворцова и др., 2006). Пробиотики широко применяются с профилактической и лечебной целью.

В зависимости от природы составляющих пробиотиков, компонентов и форм пользования их, предложено классифицировать на следующие группы:

- препараты, содержащие живые микроорганизмы (монокультуры или их комплексы);

- препараты, содержащие структурные компоненты микроорганизмов -представителей нормальной микрофлоры или их метаболиты;

- препараты микробного или иного происхождения, стимулирующие рост и активность микроорганизмов - представителей нормальной микрофлоры;

- препараты, представляющие собой комплекс живых микроорганизмов, их структурных компонентов и метаболитов в различных сочетаниях и соединениях, стимулирующих рост представителей нормальной микрофлоры;

- препараты на основе живых генно-инженерных штаммов микроорганизмов, их структурных компонентов и метаболитов с заданными характеристиками;

- продукты функционального питания на основе живых микроорганизмов, их метаболитов и других соединений микробного происхождения, способных поддерживать и восстанавливать здоровье через коррекцию микробной экологии организма хозяина (L. Chaitov, 1990; G. Perdigón, 1992).

Существующие на сегодняшний день средства, активно влияющие на микробиоценозы человека и животных, условно можно подразделить на 5 групп: пробиотики, пребиотики, синбиотики, бактерийные препараты, обладающие селективной антагонистической активностью, продукты питания с пробиотиками (Р.Г. Шайдулина и др., 2000).

Для создания пробиотических препаратов используются следующие микроорганизмы:

- аэробы (спорообразующие бактерии рода Bacillus);

- анаэробы (спорообразующие бактерии рода Clostridium)-,

- бактерии, продуцирующие молочную кислоту (энтерококки, бифидо-бактерии, лактобактерии);

- дрожжи.

Пробиотики делят на две группы: прямого и непрямого действия.

Первые представляют собой живые симбионтные микроорганизмы, а вторые - продукты их метаболизма, обладающие антагонистической активностью по отношению к патогенной микрофлоре (P.A. Barrow, 1992; R. Fuller, 1997).

Микробы, используемые как пробиотики классифицируют на 4 основные группы:

- бактерии, продуцирующие молочную и пропионовую кислоты (роды Lactobacterium, Bifidobacterium, Propionibacterium, Enterococcus и др.);

- спорообразующие аэробы рода Bacillus (Вас. subtilis, Вас. circus, Вас. li-cheniforms, Вас. coagulans) (М.П. Кирилов и др., 2006);

- дрожжи, которые чаще используются в качестве сырья при изготовлении пробиотиков (Saccharomyces, Candida);

- комбинации перечисленных микроорганизмов (L. Chaitov, N. Tpenew, 1990; A.S. Gissen, 1995).

Пробиотики могут оказывать действие четырьмя основными способами: подавление численности специфических бактерий, изменение метаболизма микробов, нейтрализация токсинов, а также стимуляция иммунитета (R. Fuller, 1997).

Несмотря на хорошую осведомленность о пробиотиках, специалисты многих благополучных по инфекционным болезням хозяйств, занимающихся производством товарных яиц и мяса, сомневаются в их целесообразности. Относительно пробиотиков расходятся во мнениях и ученые. Одни считают, что полученной микрофлорой следует регулярно-заселять пищеварительный тракт сельскохозяйственных животных и птиц, используя специальные культуры, и тем самым подавлять негативную деятельность патогенов (В.А. Антипов, В.М. Субботин, 1980; А.Н. Борисенкова, 1993).

Другие полагают, что поскольку полученная микрофлора в организме животных имеется всегда, ее нужно лишь подпитывать, создавая благоприятную среду, например, с помощью органических кислот. Такая среда будет губительна для нежелательных микроорганизмов. Последователи этой идеи считают, что целесообразно использовать только пробиотики.

Проблема- профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний животных в том числе и птиц, имеет не только экономическое, но и социальное значение. Снижение у них колонизационной резистентности кишечника приводит к проникновению в органы и ткани болезнетворных микроорганизмов.

Полезный эффект пробиотиков базируется на следующих фактах: безмикробные животные более чувствительны к заболеваниям, чем их сородичи с кишечной флорой (В.В. Сорокин и др., 1973; И. Панин и др., 2008; А.Н. Панин, 1993; 1992).

В последние годы в практике птицеводства для профилактики колибак-териоза у цыплят широко применяют пробиотики (С.А. Артемьева, 1977; А.Г. Венедиктов, 1989; Т.П. Лазарева, 1991; И.А. Мымрин, 1983). Они имеют ряд преимуществ перед антибиотиками, химиотерапевтическими средствами и вакцинами.

Чаще всего в кишечнике уменьшается количество бифидо - или лакто-бактерии, которые выполняют в организме ряд функций: защищают слизистую кишечника от проникновения в кровь патогенных микроорганизмов; в процессе жизнедеятельности синтезируют антибиотикоподобные вещества, органические кислоты (уксусную, молочную, пропионовую), участвуют в синтезе витаминов группы В и других, делая их биодоступными в метаболизме и усвоении микро-и макроэлементов, в частности кальция, железа и др.; стимулируют иммунную защиту организма (И. Егоров, Ф. Мягких, 2003; J.L. Rasik, J.A. Kuraian, 1982).

В настоящее время в птицеводстве, как и в других отраслях животноводства, широко применяют пробиотик бифидумбактерин, как сухой лиофилизи-рованный, так и жидкий. Бифидумбактерин содержит живые, физиологически активные, структурно и функционально дифференцированные клетки бифидо-бактерий, потенциально способные к приживлению в желудочно - кишечном тракте (Т.И. Лазарева, 1991; A.M. Лянная, М.М. Интизаров и др., 1986; H.S. Gill, J. Rutherford, 2000).

В 1973 В. Сорокин и М. Тимошко изучая эффективность применения би-фидобактерий при выращивании цыплят, пришли к выводу, что скармливание цыплятам в возрасте от 1 до 10 суток культуры Bifidobacterium thermophilum axiom повышало содержание этих бактерий в кишечнике на 9,3% , введение бифидобактерий повышало также количество молочнокислых бактерий на 28,7%, снижало количество лактозоотрицательных вариантов эширихий в кишечнике цыплят на 5,5% и позволяет повысить средний вес цыплят на 12,6% (Е.Ф. Цагараева, 2006; В. Biavati, P. Mattarelli, 1991).

Пробиотик Бифидум СХЖ применяется с 1991 года для профилактики гнойно-инфекционных заболеваний и лечения диарей разной этиологии. Вместе с тем доказано его положительное влияние на рост и развитие птицы.

Для уточнения действия этого препарата на цыплят - бройлеров при вскармливании его в течение всего периода выращивания были проведены исследования в отделе кормления птицы ВНИТИП.

Пробиотик содержащий живые бифидобактерии, способствует пристеночному пищеварению и усвояемости корма и таким образом в целом улучшает деятельность желудочно-кишечного тракта птицы.

Бифидобактерии выделены в самостоятельный род Bifidobacterium, который включен в семейство Actinomicetacea и насчитывает 24 вида, различающихся между собой по биохимическим, физиологическим и серологическим признакам. Они проявляют антагонистическую активность по отношению к условно-патогенным бактериям (Н.И. Бевз, A.M. Лянная, 1988).

Антагонистическое действие бифидобактерий связано с тем, что они являются сильными кислотобразователями. Бифидобактерии в процессе жизнедеятельности продуцируют уксусную и, в небольшом количестве, муравьиную, янтарную и молочную кислоты. Создавая в кишечнике кислую среду, они, тем самым, препятствуют как размножению патогенной и гнилостной микрофлоры, так и образованию ими других вредных веществ, предотвращая нарушение обменных реакций (Т.Н. Грязнева, Л.Я. Ставцева, 1991; Н.С. Воронин и др., 1992; Г.Ф. Бовкун и др., 1993; Е. Нага, К. Yazawa et al., 1978; R. Mulder, 1991;).

Микроорганизмы, присутствующие в желудочно-кишечном тракте стимулируют перистальтику тонкого и толстого отделов кишечника, опорожнение желудка, сокращают транзитное время прохождения пищи. В основе воздействия микроорганизмов на моторную функцию кишечника лежат несколько механизмов: продукция бактериями соединений, стимулирующих образование микробных простагландинов; изменение метаболизма желчных кислот с накоплением в кишечнике веществ, схожих с рациналовой кислотой касторового масла; снижение метаболизации дигидрооксижелчных кислот с учетом, что желчные кислоты увеличивают перистальтику толстого отдела кишечника (М.Е. Hume, 1993; S.P. Borriello, 1984; 1986).

Так, по результатам исследований И. Егорова, Ф. Мягких (2003), наилучшие результаты,наблюдались в группе цыплят, получавших Бифидум СХЖ первые 4 дня жизни с 3%-ным раствором глюкозы, а с 5-го дня - с кормом по 0,1x10 КОЕ бифидобактерий на одну голову в сутки до конца эксперимента.

Пробиотики, в основном, применяют перорально, с кормом или питьевой водой, начиная с суточного возраста. Но в последние годы появились I данные и об их аэрогенном применении. Голландские ученые доказали целесообразность аэрозольного метода профилактики сальмонеллоносительства (J.H. Gummings, et. all., 2001; В.М. Газдаров и др., 1969).

По данным Г.Ф.Бовкун аэрозольная обработка цыплят культурой Bifidobacterium adolescentis - штамм М-42, позволяет колонизировать толстый отдел кишечника бифидобактериями (Г.Ф. Бовкун и др., 1993).

После использования пробиотика Бифидум СХЖ улучшилась микрофлора кишечника цыплят, также у них достоверно повысился популяционный уровень бифидобактерий и лактофлоры. Пробиотик Бифидум СХЖ может заменять кормовые антибиотики, угнетающие полезные микроорганизмы и снижающие усвояемость питательных веществ (И. Егоров, Ф. Мягких, 2003).

На основе бифидобактерий фирмой АО «Партнер» выпускается пробиотик Бифидум СХЖ, а в ВНИИ биотехнологии и ВНИИ генетики микроорганизмов на основе бифидобактерий, молочнокислого стрептококка — 75, ацидофильной палочки - 200 млн/г.

Указанные препараты проявляют антагонистическую активность в отношении патогенных микроорганизмов, угнетая их рост и снижая патогенность (О.Л. Корочкин, 1996).

По результатам исследований, З.Ф. Джанова (1995) рекомендует совместное применение пробиотика бифидумбактерина сухого ветеринарного (БСВ) и иммуномодулятора тималина с целью профилактики колибактериоза у цыплят раннего возраста и повышения их иммунного статуса. Введение БСВ и тималина также рекомендуется в куриные эмбрионы 17-18 суточного возраста для более раннего заселения кишечника будущих цыплят бифидобактериями и повышение их иммунного статуса (З.Ф. Джанова, 1995).

Пробиотика энтеробифидина рекомендуется примененять для профилактики желудочно-кишечных заболеваний. Использование пробиотика впервые дни жизни цыплят - бройлеров предотвращает развитие возрастных иммунных дефицитов и заболеваний дисбактериозного происхождения, значительно повышает сохранность, стимулирует рост цыплят — бройлеров, улучшает качество мясной продукции (Г.И. Гончарова, 1970).

Применение пробиотиков вызывает также иммунную стимуляцию, основанную на взаимодействии между системой хозяина и резидентной кишечной микрофлорой (G. Perdigón, S. Alvarez, 1992).

Первый отечественный комплексный биопрепарат, содержащий живые бифидобактерии - бификол - был создан на основе производственных штаммов В. Bifidum и Е. Coli (М-17). В ходе его конструирования был использован природный синергизм между микробами двух названных видов и сохранено их оптимальное количественное соотношение, имеющее место в условиях естественного биотопа (H.A. Пышманцева, 2006; D. Meluzzi, 1986;).

В последнее время в птицеводстве используют также пробиотики, обогащенные дополнительно ферментами. К ним относится комплексный препарат Ц-люкс, в состав которого входят молочнокислые и пропионовокислые бактерии, молочный стрептококк и фермент (А.Н. Борисенкова, Т.Н. Рожденствен-ная, 1993).

Для профилактики желудочно-кишечных заболеваний млекопитающих животных и птиц, наряду со стандартными препаратами применяют содержимое кишечника здоровых кур, содержащее многие виды микроорганизмов, являющихся физиологичными для микроорганизма, и обладающих защитным действием против патогенных и условно - патогенных микробов. К ним относится и препарат Broilact, который был создан в 1971 году (R.W. Mulder, 1991).

Таким образом, можно сделать выводы об эффективности применения пробиотиков в промышленном птицеводетве. При применении пробиотиков снижается процент заболеваний желудочно-кишечного тракта, увеличивается сохранность птицы, темпы прироста живой массы птицы. Немаловажны экологические аспекты применения пробиотиков - сокращается объем и время дачи антимикробных средств, продукция выходит чистой от антимикробных средств.

1.4 Роль и значение фосфолипидов в процессах обмена веществ сельскохозяйственной птицы

В последние годы значительно возрос объем информации о путях метаболизма жиров, а также о зависимости жирно-кислотного состава тканей организма от алиментарного фактора. Характер биологического* действия; жира корма зависит от многочисленных структурных особенностей, содержащихся в нем жирных кислот, которые в свою очередь определяют пути обмена липидов в животном организме. Все это поставило вопрос и стало предметом обсуждения представлений о соответствии жирно-кислотного состава корма и получаемых продуктов птицеводства. Под понятием сбалансированности жирно-кислотного состава рациона стали понимать степень соответствия содержащихся в нем жирных кислот метаболическим потребностям организма.

Жиры необходимы в питании как энергетический и структурный материал. Кроме того, они содержат фосфолипиды и участвуют в обмене других пищевых веществ, например способствуют усвоению витаминов А и D, а животные жиры являются источником этих витаминов (В.И. Авраменко, 2002; A.B. Архипов, 1988; S. Blum, S., et al., 1999).

Дефицит витамина А в организме снижает гуморальный иммунный ответ, вызывает истощение лимфоцитов в лимфоидных органах, приводит к более низкому весу тимуса и фабрициевой сумки и ухудшает состояние слизистой оболочки эпителия, который обеспечивает барьер, препятствующий вторжению микроорганизмов.

Изменения жирно-кислотного состава тканевых липидов, зависящие от спектра жирных кислот корма, происходят в организме лишь в определенных границах. Алиментарному влиянию в большей степени подвержены триглице-риды жировых депо и в меньшей степени - липиды, являющиеся структурными компонентами тканей (A.B. Архипов, 1980)

Вопросы, связанные с изучением липидного питания сельскохозяйственных животных и птиц, разработку рецептов комбикормов с добавками растительных и животных жиров в разные годы изучали A.B. Архипов (1973, 1978,

1980), В.Н. Агеев и др. (1982), И.А.Егоров, Т.М.Околелова и др. (1987), A.A. Алиев и др. (1987), И.А.Егоров и др. (1995).

Жиры, как растительного, так и животного происхождения стали основным ингредиентом рационов птицы. Они выполняют целый' ряд важнейших функций в организме, являясь структурным и резервным материалом. Рационы и комбикорма, обогащенные жирами эффективны в биологическом и экономическом отношении. Их применение в составе рационов птиц позволяет значительно повысить интенсивность роста, снизить затраты кормов на единицу продукции и, что не менее важно для потребителя, повысить качество получаемой продукции.

Большинство проведенных в этом направлении исследований не имеют глубокого физиолого-биохимического обоснования, так как в них учитывалось в основном влияние различных доз жиров вводимых в комбикорма для птицы на основные зоотехнические показатели (С.Т. Калмыков, 1976; Ahmad Khan, 1991; Е.А. Garcia, 1993). Исследований по влиянию на процессы обмена веществ различных жиров мало. И многие сведения в этом плане противоречивы. Только глубокая оценка, выявленных различий в метаболизме у птиц может быть использована для обоснованных рекомендаций по уровню и соотношению различных фракций жира в их рационах.

Использование жиров в качестве источников энергии и незаменимых жирных кислот имеет большое значение в кормлении сельскохозяйственных животных. Недостаток их приводит к задержке роста, расстройству воспроизводительной функции, к снижению продуктивности и ухудшению качества продукции. При интенсивном промышленном откорме птицы в определенные сроки в рационы животных необходимо вводить кормовые жиры, в которых в настоящее время ощущается острый дефицит (П.С. Черкасова, М.Ф. Мережин-ский, 1961; П.П. Царенко, 1988).

Концентрат кальциевых солей жирных кислот (ККСЖК) может быть использован в качестве жировой добавки в кормовой рацион животных и птиц (особенно при кальциевой недостаточности). Исследования ВНИИЖ показали достаточно хорошую ассимиляцию животным организмом ККСЖК, обеспечив тем самым ему условия для нормального роста и развития (коэффициент всасывания 92% по нейтральному жиру, 73% по ККСЖК, в целом по жиромассе 82%). Он рекомендован головными институтами для введения в кормовой рацион сельскохозяйственных животных, в первую очередь, птицам. Кормовая ценность ККСЖК для бройлеров (в расчете на жир) лежит на уровне питательности кормовых жиров I и II сортов.

Оптимальное количество введения ККСЖК в комбикорма для бройлеров в качестве жировой добавки составляет 2-4% (в расчете на жир) в зависимости от энергетического уровня основного рациона. Вес бройлеров в четырехнедельном возрасте при добавке 5% ККСЖК увеличивается на 5-10% по сравнению с 5% добавкой растительного масла. Замена кукурузы в комбикормах 5% и 10% жиромассой увеличивает вес бройлеров на 9,3 и 6,6% по сравнению с контрольной группой. Введение 5% ККСЖК в комбикорма увеличило сохранность подопытных цыплят на 2,2%, и к концу опыта наибольшей живой массой цыплята опытной группы превзошли своих сверстников из контрольной группы по весу на 4,96% (П.С. Черкасова, М.Ф. Мережинский, 1961; С.А. Данкос, 1991).

Жиры и жироподобные вещества являются энергетическим материалом в организме птицы, участвуют в построении оболочек и входят в состав протоплазмы и при участии желчи жир расщепляется на глицерин и жирные кислоты. Из кишечника жир поступает в лимфу и частично в кровь. Жиры, всосавшиеся в кровь, задерживаются в печени, а поступившие в лимфу депонируются. Регуляция жирового обмена осуществляется центральной нервной системой и гормонами щитовидной железы, а также гипофиза (И.П. Кондрахин и др., 1985; Е.А. Васильев, 1979). Жиры животного происхождения состоят, главным образом, из насыщенных жирных кислот, а растительного — из ненасыщенных.

Жиры являются также источниками арахидоновой и линоленовой незаменимых жирных кислот, которые в организме птицы не синтезируются. Поэтому для нормализации процессов пищеварения необходимо вводить в рационы птицы добавки жиров растительного или животного происхождения до нормы, если требуемое количество не обеспечивается за счет используемых кормов (А.П. Калашников и др., 1993). Кроме того, желательно включать жиры в рационы всех видов и возрастных групп птицы для повышения энергетической ценности и улучшения структуры кормосмесей (В. Шапочкин, 2004; R. Renner, F.W., Hill, 1958).

Обеспечение уровня обменной энергии в рационах бройлеров (2950-3100 ккал/кг), высокопродуктивных несушек (2650-2780 ккал/кг) или других видов птицы (2750-2900 ккал/кг) при использовании зерновых кормов, за исключением кукурузы, вызывает большие трудности. В комбикорма, в составе которых преобладает кукуруза, жиры вводят в меньшем количестве, чем в комбикорма, в составе которых преобладают другие зерновые корма. Следовательно, жиры должны стать неотъемлемым компонентом комбикормов и кормосмеси для птиц (Отчет ВНИИЖ за 1977).

Птицы лучше усваивают растительные масла и животные жиры, характеризующиеся низкой точкой плавления. Усвояемость организмом цыплят различных жиров такова: твердый говяжий жир усваивается на 79%, кукурузное рафинированное масло - на 97%, птичий жир - на 94%. Потребность цыплят в линолевой кислоте составляет 0,9-1,8% от веса рациона. По норвежскому стандарту корма для бройлеров не должны содержать менее 1,1% линолевой кислоты (В.Н. Агеев, 1985; N.A. Musharat, R.E. Vargas, 1984).

Нормы ввода жиров в комбикорма для сельскохозяйственных птиц составляют (в % по весу): для молодняка, откармливаемого на мясо (цыплят-бройлеров - до 5-8, индюшат - до 3-5, утят - до 2-3, гусят - до 3-5); для племенного молодняка (цыплят (5-60 дней) - до 2-3, индюшат (5-180 дней) - до 2-5, утят (1-150 дней) - до 1-3, гусят (1-180 дней) - до 1-5). Необходимым условием эффективного использования кормов птицей следует считать также сбалансированность рационов по энергии, аминокислотам, витаминам, минеральным и липотропным веществам (метионин, цистеин, холин, витамины Е и В) (A.C. Буйный, 1975; R. Rys, 1974; Н.П. Дрозденко, 1981; A.J. Evans 1986).

В скандинавских странах в целях экономии импортной кукурузы основную массу комбикормов для бройлеров готовят с использованием отечественного ячменя с обязательным включением в них жиров для повышения обменной энергии корма до 3000-3100 ккал/кг (И.А. Егоров, М.Р. Варданян, 1995; R. Rys, 1974).

Американские исследователи (R.E. Beal, V.E. Sohns, 1972) успешно использовали нейтрализованный высушенный соапсток (НВС), полученный при щелочной нейтрализации соевого масла, в качестве жировой добавки в корм бройлерам. При введении НВС в количестве 4% в стандартный рацион бройлеров вместо кормового жира было показано, что этот продукт по кормовой ценности ему не уступает. Использование НВС в рационе бройлеров позволило получить тушки с лучшим товарным видом за счет их пигментации. Лучшая пигментация тушек бройлеров (в баллах 6,83 против 4,84) обусловлена тем, что кормосмесь с НВС содержит значительно больше ксантофиллов (200-300 мкг/г), чем кормовой жир (4 мкг/г).

В Польше профессором Рысем были проведены исследования по использованию в кормовых целях жирных кислот, выделенных из соапстоков растительных масел. Энергетическая ценность 1 кг этих кислот соответствует 2,5 кормовым единицам (овсяные единицы). Их использование возможно в рационах бройлеров с целью уменьшения доли или замены импортной кукурузы более низкокалорийными зернофуражными культурами. При сравнении стандартного рациона бройлеров, содержащего 50% кукурузы, с рационом, в котором энергия кукурузы была заменена пшеничной, ячменной, овсяной и ржаной дертью и 3% жирных кислот из соапстоков, было обнаружено, что в контрольной группе (кукуруза) средний вес бройлеров через 7 недель был 1147 г, в опытной (без жирных кислот) - 1032,5 г, а в опытной с жирными кислотами -1165 г (R.E. Beal, V.E. Sohns, 1972).

Липидами (от греч. lipos - эфир) называют сложную смесь эфироподоб-ных органических соединений с близкими физико-химическими свойствами, которая содержится в клетках растений, животных и микроорганизмах. Липиды широко распространены в природе и вместе с белками и углеводами составляют основную массу органических веществ всех живых организмов, являясь обязательным компонентом каждой клетки. Они широко используются при получении многих продуктов питания, являются важными компонентами пищевого сырья, полупродуктов и готовых пищевых продуктов, во многом определяя их пищевую и биологическую полноценность и вкусовые качества (А.П. Нечаев, 2004; А.Н. Васильев, 1979; Г.А. Грибанов, 1975; В.И. Скороход, 1997).

По строению и способности к гидролизу липиды разделяют:

- омыляемые;

- неомыляемые.

Омыляемые липиды при гидролизе образуют несколько структурных компонентов, а при взаимодействии со щелочами - соли жирных кислот.

По физиологическому значению липиды делят:

- запасные (резервные);

- структурные.

Резервные липиды депонируются в больших количествах и при необходимости расходуются для энергетических нужд организма. К резервным липи-дам относят триглицериды (А.П. Нечаев, 2004; Ю.Е. Миркин и др., 1960; Das S.K. at all., 1975).

Структурные липиды (в первую очередь, фосфолипиды) образуют сложные комплексы с белками (липопротеиды), углеводами, из которых построены мембраны клеток и клеточных структур, и участвуют в разнообразных сложных процессах, протекающих в клетках (J.O. Attch, S. Leeson, 1983). По массе они составляют значительно меньшую группу липидов.

Липиды делят на две основные группы:

- простые (нейтральные);

- сложные.

К простым нейтральным липидам (не содержащим атомов азота, фосфора, серы) относят^ производные высших жирныхлсислот и спиртов: глицероли-пиды, воски, эфиры холестерина, гликолипиды и другие соединения.

К основным биологическим функциям липидов относят следующие:

- энергетическая - при окислении липидов в организме выделяется энергия (при окислении 1 г липидов выделяется 39,1 кДж);

- структурная - входят в состав различных биологических мембран;

- транспортная - участвуют в транспорте веществ через липидный слой биомембраны;

- механическая - липиды соединительной ткани, окружающей внутренние органы, и подкожного жирового слоя предохраняют органы от повреждений при внешних механических воздействиях;

- теплоизолирующая - благодаря своей низкой теплопроводности сохраняют тепло в организме (Н.И. Ковалевская, 2005; В.Г. Янович, П.З. Лагодюк, 1991; W.W. Christie, 1984)

Важнейшими представителями сложных липидов являются фосфолипи-ды. Молекулы фосфолипидов построены из остатков спиртов (глицерина, сфингозина), жирных кислот, фосфорной кислоты (Н3Р04), а также содержат азотистые основания (чаще всего холин [НО-СН2-СН2-(СНз)зК]+ОН или этано-ламин HO-CH2-CH2-NH2), остатки аминокислот и некоторых других соединений.

Одним из основных функций фосфолипидов - способность замедлять процесс продвижения пищи в кишечнике, улучшение ее усвоения, активация процессы обмена углеводов и жиров и повышение детоксицирующих функцию печени (Н.И. Чернышев и др., 2007; Андин И.С., 2000; В.В. Сорокин и др., 1972).

Входя в состав клеточных оболочек, фосфолипиды имеют существенное значение для их проницаемости и обмена веществ между клетками и внутриклеточным пространством (A. Akinwade, 1981).

Лецитин (греч. XskiGoc; - яичный желток) - сложный эфир аминоспирта холина и диглицеридфосфорных кислот, является важнейшими представителями фосфолипидов (Е.М. Крепе, 1967; А.Г. Малахов, 1984).

Лецитин — одна из самых удачных «умных» пищевых добавок, разработанных человеком. Это питательный компонент, впервые выработанный из яичных желтков в 1850 г. Морисом Бобли. Соевые бобы, зерновые, пивные дрожжи, рыба так же, как и яичные желтки, являются хорошим источником лецитина. В состав лецитина входит фосфатидилхолин. Он является важнейшим структурным компонентом клеток мозга (около 30% мозга состоит из лецитина) (A.B. Архипов, 1988; R.T. Holman, 1968).

Включение лецитина в рацион пищи сельскохозяйственной птицы приводят к улучшению роста и повышению концентрации в печени витамина А, кроме того он благоприятно воздействует на костеобразование. Применение лецитина не только ускоряет рост птиц, но и предупреждает появление перозиса. Замедленное развитие цыплят из-за дефицита витамина Е можно избежать только при кормлении лецитином одновременно с альфатокоферолом. Как только исключается лецитин, действие токоферола прекращается, четко демонстрируя синергическое действие лецитина (А.Н. Васильев, 1979; Г.А. Грибанов, 1975; Е. Kefels, 1987).

Лецитин имеет огромное значение при разведении куриц-несушек для защиты их от «синдрома ожирения печени». Сокращенный период яйцекладки и повышенная смертность в результате этой болезни, часто возникающей в коммерческих птичниках, ведет к значительным финансовым потерям. Исследования в этой области не выявили причины возникновения этой болезни. Однако, очевидно, что патологическое отложение жира в печени и неспособность организма выводить этот жир существенно зависит от кормления (В .Г. Янович, П.З. Лагодюк, 1991; J. Brake, 1990).

Огромное количество публикаций на эту тему показывает, что холин, инозитол, витамин В12, витамин Е, линолевая кислота и, возможно, другие вещества, которые еще предстоит исследовать, играют важную роль в мобилизации и выводе жира из печени (В. Шапочкин, 2004). Добавление 250, 500 и 1000 мг инозитола и 1320 мг.холина на кг основного рациона зерна привело к значительному увеличению помеси в период яйцекладки. Курицы, которым давали повышенную дозу инозитола (1000 мг/кг), несли на 7,4% больше яиц и потребляли на 5% меньше корма в процессе яйцекладки. Более того, вес яиц был на 3,2% больше. Так как лецитин является важным источником холина и инозитола, добавление его в корм для кур-несушек приносит огромную пользу (A.C. Буйный, 1975).

Следовательно, выполняя столь значимые функции в организме сельскохозяйственных животных, жиры являются важной составляющей пищевого рациона. Для поддержания оптимального здоровья сельскохозяйственной птицы необходимо придерживаться общих правил рационального питания и потребления жиров, в частности.

На основании анализа библиографического материала можно сделать заключение, что для реализации биолого-продуктивного потенциала в рационы сельскохозяйственной птицы, в том числе и цыплят-бройлеров целесообразно вводить комплекс биологически активных веществ.

Информация о работе

Кокаева, Марина Гурамовна
кандидата биологических наук
Владикавказ, 2010
ВАК 03.02.14

Диссертация

Биолого-продуктивный потенциал и потребительские свойства мяса цыплят-бройлеров при использовании в рационах биологически активных добавок - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы