Биоэкологическая характеристика микстинвазий птиц и оптимизация охранных мер в условиях Кабардино-Балкарии

Арамисов, Асланби Мухамедович

Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Биоэкологическая характеристика микстинвазий птиц и оптимизация охранных мер в условиях Кабардино-Балкарии
ВАК РФ 03.00.32, Биологические ресурсы

Автореферат диссертации по теме "Биоэкологическая характеристика микстинвазий птиц и оптимизация охранных мер в условиях Кабардино-Балкарии"

На правах рукописи

АРАМИСОВ АСЛАНБИ МУХАМЕДОВИЧ

БИОЭКОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА МИКСТИНВАЗИЙ ПТИЦ И ОПТИМИЗАЦИЯ ОХРАННЫХ МЕР В УСЛОВИЯХ КАБАРДИНО-БАЛКАРИИ

Специальность 03.00.32 — Биологические ресурсы

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Владикавказ — 2006

Работа выполнена в ФГОУ ВПО «Кабардино-Балкарская государственная сельскохозяйственная академия»

Научный руководитель: кандидат ветеринарных наук, доцент

Кожоков Мухамед Кадирович

Научный консультант: доктор биологических наук, профессор

Шахмурзов Мухамед Музакнрович

Официальные оппонентькдоктор биологических наук, профессор

Калабеков Артур Лазаревич

доктор биологических наук, профессор Дзуев Руслан Исмагилович

Ведущая организация: Министерство сельского хозяйства и

продовольствия РСО-Алания

Защита диссертации состоится « 28 » декабря 2006 г. в 12 ч. на заседании диссертационного совета К 220.023.02 при ФГОУ ВПО «Горский государственный аграрный университет» по адресу: 362000, г. Владикавказ, ул. Кирова, 37, Горский ГАУ, факультет биотехнологии и стандартизации, компьютерный зал.

Тел./факс: (8-8672) 53-99-26

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Горский государственный аграрный университет»

Автореферат разослан « ¿7-» ноября 2006 года

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат биологических наук, доцент

З.Л.Дзиццоева

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. В настоящее время численность и видовое разнообразие птиц быстро сокращается, а восстанавливать исчезающие популяции и виды становится все труднее. Птицы — обязательный элемент многих природных экосистем и «индикаторы» состояния окружающей среды. Вместе с тем, птицы, как источник разнообразной продукции (мяса, яиц, пуха, пера и т.д.), имеют огромное народнохозяйственное значение. Центром сохранения редких и ценных видов птиц являются национальные зоопарки, заповедники, племенные птицеводческие предприятия и т.д. Важным резервом сохранения диких и домашних птиц является профилактика различных заболеваний, в первую очередь, инвазионных. Инвазии, в основном, встречаются и протекают в виде эколого-паразитарных комплексов — микстинвазий. Особую тревогу вызывают «перекрестные» инвазии, которые совершают круговорот от перелетных и диких птиц к домашним и наоборот. Такая циркуляция возбудителей болезней вызывает природную очаговость — длительную циркуляцию в природе, что причиняет большие экологические и экономические потери орнитофауне и продуктивному птицеводству. Нарушается местообитание птиц, обедняется фауна, снижается продуктивность и жизнеспособность домашней птицы, нарушается иммуногенез, увеличиваются расходы на охранные, диагностические и профилактические мероприятия. Все это диктует необходимость изучения фауны и эколого-паразитарной ситуации в продуктивном птицеводстве, что представляет важную проблему, имеющую большое биоэкологическое и народнохозяйственное значение, что и определило направление и актуальность исследований.

Диссертационная работа выполнялась в соответствии с Всероссийской координационной научно-технической программой (НТП - задание 03) и тематическим планом НИР КБГСХА «Диагностика, профилактика и терапия симбиоценозов птиц в условиях Юга России с учетом экологических особенностей региона и -охраны окружающей среды и населения от зоонозов» (шифр 02.06.03) и программой Проблемной научно-исследовательской лаборатории орнитологии и болезней птиц при КБГСХА.

Цель и задачи исследований. Цель работы — биоэкологическая характеристика микстинвазий птиц, коррекция и оптимизация охранных мер.

В задачи исследований, результаты которых выносятся на защиту, входило изучить:

- биологическое разнообразие диких и домашних птиц в условиях Центрального Кавказа;

- эколого-видовой состав паразитов домашних птиц;

- морфовозрастную динамику микстинвазий птиц;

- биологическую активность системы «паразит — хозяин» при мик-стинвазиях птиц;

- . влияние микстинвазий на систему эритрона;

- разработать интегрированную систему профилактики микстинвазий птиц.

Научная новизна. Впервые в условиях Кабардино-Балкарии изучено биологическое разнообразие.зоопарковых птиц, биоценотические взаимоотношения диких и домашних птиц. Комплексно изучен популяционный состав клеток эритрона птиц с построением дифференциальных цитометрических кривых распределения эритроцитов по объему. Разработана интегрированная система профилактики микстинвазий птиц.

Практическая значимость работы и реализация результатов исследований. Результаты исследований послужили основой для коррекции и оптимизации охранных мер диких и домашних птиц в условиях Центрального Кавказа, разработана интегрированная система профилактики микстинвазий птиц. Основные положения результатов работы вошли в разработанные нами рекомендации «Методика сочетанного исследования популяции клеток эритроидного ряда с определением их осмотической резистентности при смешанных инвазиях птиц» (утв. МСХ КБР, Нальчик, 2004 г.) и «Методические рекомендации по диагностике и профилактике основных гельминтозов зоопарковых птиц» (утв. на секции «Инвазионные болезни животных» РАСХН, Москва-Нальчик, 2006 г., прот. №1 от 22.02.2006 г.). Материалы исследований используются в учебном процессе Кабардино-Балкарской ГСХА, научной работе Проблемной НИЛ орнитологии и болезней птиц при КБГСХА, а также сотрудниками Института экологии горных территорий и специалистами Госветслужбы республики. = ;

Апробация работы. Основные результаты работы доложены и одобрены на научно-производственной конференции КБГСХА «Аграрные реформы: опыт, проблемы, перспективы» (Нальчик, 2003); на заседаниях кафедры эпизоотологии и паразитологии КБГСХА (2004, 2005); Всероссийской научной конференции РАСХН, ОГ РАН, ВИГИС «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями (Москва, 2005); Международной конференции РАН, ИЭГТ КБНЦ «Горные экосистемы и их компоненты» (Нальчик, 2005); Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы и перспективные направления прикладной биологической науки в начале XXI века» (Москва-Нальчик, 2006); секции «Инвазионные болезни с.-х. животных» РАСХН (Москва-Нальчик, 2006 г.). !

Публикации. По теме диссертации опубликовано 5 научных работ, в том числе 2 рекомендации, в которых изложены основные материалы диссертации.

Объем и структура работы. Диссертация изложена на 120 страницах машинописного текста и включает введение, обзор литературы, материал и методику исследований, результаты собственных исследований, выводы и предложения, список литературы. Работа иллюстрирована 21 таблицей и 7 рисунками. Список литературы включает 241 источник, в том числе 93 иностранных авторов.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЙ

Экспериментальные исследования проводились в период с 2001 по 2005 гг. на базе МУК «Нальчикский зоопарк» и птицехозяйствах Кабардино-Балкарской республики на диких, синантропных и домашних птицах постна-тального, ювенального и продуктивного периодов выращивания;

Изучение биологического разнообразия зоопарковых птиц проводилось с использованием атласов-определителей птиц и учебных пособий (Р Л., Бе-ме, 1958; В.Г. Иванов, Г.Г. Чунихин, 1959; В.М. Храбрый, 1988), Красной книги КБР (И.В. Иванов, Р.И. Дзуев, С.Х. Шхагапсоев и др., 2000).

Для изучения видового состава кишечных паразитов птиц провели полные и неполные гельминтологические вскрытия по Скрябину К.И. (1928). Определение видового состава гельминтов проводили с помощью определителей (Скрябин К.И., Шихобалова Н.П., Шульц Р.С., 1954) и атласа по дифференциальной диагностике гельминтозов по морфологической структуре яиц и личинок возбудителей (Черепанов А.А., Москвин А.С., Котельников Г.А., Хренов В.М., 2001). Интенсивность инвазии устанавливали по количеству гельминтов, обнаруженных в кишечнике вскрытых птиц. Материалом для исследования на зараженность кокцидиями служили пробы помета из кишечника птиц и мазки-отпечатки со слизистой оболочки кишечника погибших и убитых цыплят. Весь кишечник птиц разделили на 6 условных частей для определения локализации гельминтов и отдельных видов ооцист простейших (кокцидиид) на каждом участке кишечника. Для копроскопической диагностики паразитов птиц применялся набор для диагностики паразитарных болезней «ДИАПАР» (А.В. Успенский, А.С. Бессонов, Н.В. Шеховцов, 2001).

Для дифференциации видов эймерий по ооцистам пользовались описаниями Хейсина Е.М. (1967), Гобзема В.Р. (1972), Колабского Н.Н. и Пашкина П.И. (1974) и определителем простейших Крылова М.В. (1996). Интенсивность кокцидиозной инвазии определяли в соответствии с ГОСТом 25383-82 (ст. СЭВ. — 2547-80) «Методы лабораторной диагностики кокцидиоза». При необходимости длительного хранения к пробам помета и выделенной культуре ооцист добавляли 2,5%-ный раствор бихромата калия и хранили их в холодильнике при температуре 4°С.

Для выявления инвазированности птиц криптоспоридиями помет исследовали по общепринятым и специальным методикам.

Определение простейших рода Cryptosporidium проводили, в основном, с помощью консультаций и публикаций Т.В. Бейер, П.И. Пашкина, А.Г. Рахмановой и др. (1987), Т.А. Шибаловой (1987), Никитина В.Ф., Павласека И.Ф. (1989), Тайчинова У.Г. (1992), Кожокова М.К. (1994), Upton S.I., Current W.L. (1985).

Ооцисты криптоспоридий выделяли флотацией, без центрифугирования, по методу Фюллеборна, в насыщенном растворе поваренной соли. Сконцентрированные на поверхности флотационного раствора ооцисты

криптоспоридий собирали на предметное стекло, на него предварительно наносили 2-3 капли плазмы крови' и подсушивали при комнатной температуре.

При определении паразйто-хозяинных отношений, было сформировано

5 групп цыплят по 30 голов в каждой. В каждой из этих групп, кроме 5-й (контрольной), заражали 10 цыплят культурой ооцист эймерий, 10 - яйцами аскаридий и оставшиеся 10 — смешанной культурой ооцист эймерий и яиц аскаридий. Были применены следующие заражения: I группа — по 200 инва-зивных яиц аскаридий и по 40000 спорулированных ооцист эймерий; II группа - 300 и 10000; III группа - 500 и 20000; IV группа - 800 и 30000; V группа — контроль (не заражены).

Результаты эксперимента учитывали путем полного гельминтологического вскрытия (К.И. Скрябин, 1928) цыплят в 50-дневном возрасте и микро-скопирования мазков-отпечатков.

Для морфофункЦиональной характеристики эритроцитов и изучения их устойчивости при микстинвазиях птиц, исследования проводились на 5 группах продуктивной птицы разных возрастов, по 20 голов в каждой. Изучались морфологические параметры и показатели функциональной активности эритроцитов: RBC — общее количество эритроцитов в 1 мкл; RDW — характер распределения эритроцитов по объему; MCV — средний объем эритроцитов; соотношение малых, средних и больших эритроцитов. В 5 группе дополнительно к вышесказанному определялась осмотическая резистентность эритроцитов. Данные параметры изучались с помощью кондуктометрического счетчика частиц Picoscale (Psl-4). Полученные результаты были основанием для построения дифференциальных цитометрических кривых распределения эритроцитов по объему (В.Н. Никитин, 1956; М.Г. Абрамов, 1978; A.A. Кудрявцев и др., 1984; ГШ. Когут, 1985; И.М. Карпуть, 1986; И.И. Войтенко и др., 1988; Е.Д. Гольдберг, 1989; Л.С. Бондарев и др., 1990; А.П. Васильев, 1991). Исследования по эритроцитам проведены совместно с A.M. Алабовым (2005). - •

Оптимизацию охранных мер проводили путем разработки схем лечения и профилактики микстинвазий птиц.

Для выяснения эффективности применения комплексного препарата аривитак («A+V»), определения оптимальной дозы и кратности его применения, были проведены 2 серии опытов на продуктивных птицах. Кормление и условия содержания были идентичными. В первом опыте было использовано

6 групп кур-несушек по 120 голов. Первые 5 групп получали «A+V» в различных дозах соответственно - 10, 30, 60, 80, 120 мг/кг массы. 6-я группа служила контролем. Период скармливания «A+V» — 10 дней.

; Во второй серии опытов было использовано 6 групп по 120 голов кур-несушек. Первые 5 групп кур-несушек получали «A+V» в дозе 60 мг/кг массы, но с разным периодом скармливания «A+V» соответственно — 3, 5, 7, 10, 15 дней. Для проведения опытов по изучению различных способов лечения и профилактики микстинвазий птиц, было сформировано* 5 групп из 10-дневных цыплят по 30 голов в каждой. Все цыплята (за исключением 5 груп-

пы) были экспериментально заражены смесью инвазионных яиц аскаридий и ооцист эймерий соответственно 500 инвазионных яиц А. galli и 15000 спору-лированных ооцист эймерий (смешанная культура) на каждого цыпленка.

Опыт проводился в течение 60 дней. Цыплят взвешивали на 1 и 60 день после заражения. Проводили исследования цыплят на наличие яиц аскаридий и ооцист эймерий с определением их количества в 1 г. помета (методами флотации).

Цыплятам 1 группы в возрасте 12 дней задавали внутрь с кормом культуру кокцидий, согласно инструкции ВНИВИП, в 17-дневном возрасте — кокцидиовит Б в дозе 500 мг/кг корма в течение 7 дней тремя курсами с интервалом в 5 дней, «А+У» в дозе 60 мг/кг массы птицы в 2 приема по 10 дней с интервалом 13 дней, а в возрасте 45 дней — ринтал в дозе 10 мг/гол. с кормом 2 дня подряд (схема 1). Цыплятам 2 группы задавали культуру кокцидий ВНИВИП, кокцидиовит Б, «А+У» и ринтал в тех же дозах по той же схеме и лизоцим ГЗх в дозе 0,3% к корму в 3 приема в течение 5 дней с интервалом 3 дня (схема 2). Цыплятам 3 группы задавали культуру кокцидий ВНИВИП, кокцидиовит 8 в дозе 1000 мг/кг корма и ринтал — 10 мг/гол. в те же сроки (схема 3). Цыплята 4 группы служили контролем с заражением, а 5 группы -контролем без заражения. ■ • . „ .

Для дезинвазии испытали дезинвазионное средство дезоформ по общепринятым методикам.

Результаты исследований обработаны методами вариационной статистики (Е.К. Меркурьева, 1970).

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 3.1. Биоценотические взаимоотношения диких и домашних птиц в условиях Кабардино-Балкарии 3.1.1. Биологическое разнообразие орнитофауны

По результатам анализа биологического разнообразия орнитофауны в условиях Нальчикского зоологического парка выявлено 65 видов птиц.

Орнитофауна зоопарка представлена следующими видами птиц: африканский страус, эму, серая цапля, выпь болотный, пеликан кудрявый, лебедь-шипун, лебедь-кликун, белолобый гусь, серый гусь, горный белый гусь, горный гусь, голубой гусь, канадская казарка, нильский гусь, огарь, пеганка, дикая мускусная утка, домашняя мускусная утка, гривистая утка, кряква, белая кряква, красноголовый нырок, хохлатая чернеть, черный гриф, белоголовый сип, болотный лунь, ястреб-перепелятник, ястреб-тетеревятник, ястребиный сарыч, малый подорлик, степной орел, могильник, беркут, сокол балобан, пустельга, индейка обыкновенная, индейка белая, куропатка, обыкновенный перепел, королевский фазан, серебряный фазан, банкивская курица, бентамки, голошейные куры, куры Брама, мохноногие куры, домашние куры, обыкновенный фазан, золотой фазан, обыкновенный павлин, цесарки, лысуха, серебристая чайка, озерная чайка, горлица обыкновенная, нимфа, волнистый попугай, розовощекий неразлучник, синежелтый ара, филин, западносибир-

ский филин, неясыть, домовой сыч, зеленый дятел, черный дрозд, дубонос, канарейка, сойка, сорока, галка, грач, серая ворона, ворон и другие. В настоящее время разрабатываются программы по отдельным угрожаемым видам животных и птиц. В целом, список редких и исчезающих видов и подвидов птиц представлен 11 отрядами и 30 семействами, в том числе: отряд Ку-рообразные (Galliformes) — 2 семейства, отряд Журавлеобразные (Gruiformes)

— 2 семейства, отряд Соколообразные (Falconiformes) — 4 семейства, отряд Ржанкообразные (Charadriiformes) — 1 семейство, отряд Чайки (Larus) — 1 семейство, отряд Гусеобразные (Anseriformes) - 1 семейство, отряд Листообразные (Ciconiiformes) — 3 семейства, отряд Фламинго (Phoenicopteriformes) — 1 семейство, отряд Веслоногие (Pelecaniformes) - 1 семейство, отряд Дятлообразные (Piciformes) — Г семейство, отряд Воробьиные (Passeriformes) — 13 семейств.

3.1.2. Дикие и синатпротше птицы — этиологический фактор микстинвазий домашних птиц

Большую роль в распространении микстинвазий домашней птиц играют дикие и синантропные птицы. Вольноживущие особи распространяют среди домашней птицы возбудителей микстинвазий, как во время гнездования, так и при перелетах, рассеивая в водоемах большое количество яиц гельминтов. Этому особенно способствуют стоячие водоемы. В связи с этим, нами проведены паразитологические обследования птиц трех отрядов: Anseriformes (гусеобразные), Passeriformes (воробьеобразные), Columbiformes (голубиные) (табл. 1).

Из данных таблицы 1 видно, что из диких и синантропных птиц наиболее пораженными микстинвазиями являются представители семейства утиных. От них выделено шесть видов трематод: Echinostoma revolutum (ЭИ — 5,2 %), Е. recurvatum (ЭИ - 1,7 %), Notocotylus attenuatus (ЭИ - 6,4 %), Prost-hogonimus ovatus (ЭИ - 2,0 %), P. cuneatus (ЭИ — 0,7 %), Bilharziella polonica (ЭИ — 3,7 %), три вида цестод: Drepanidotaenia lanceolata (ЭИ — 3,9 %), Mi-crosomacanthus microsoma (ЭИ — 2,6 %), Sobolevicanthus gracilis (ЭИ — 1,3 %) и пять видов нематод: Amidostomum anseris (ЭИ - 4,3 %), Ganguleterakis dispar (ЭИ-4,8%), Tominx contorta (ЭИ — 3,0 %), Streptocara crass ¿cauda (ЭИ

- 2,6 %) и Echinuria uncinata (ЭИ - 1,3 %). Из отряда маллофагов выявлено два вида: Anaticola crassicornis (ЭИ — 2,9 %) и Colpocephalum pectiniventre (ЭИ-1,1%).

У птиц отряда воробьеобразных выделено два вида трематод: Prost-hogonimus ovatus (ЭИ — 3,1 %), P. cuneatus (ЭИ — 1,7 %) и три вида перопу-хоедов: Goniocotes hologaster (ЭИ — 2,9 %), Menacanthus cornutus (ЭИ — 1,7 %) и Menopon gallinae (ЭИ - 3,9 %).

Установлено, что свободными от гельминтов оказались только голуби, отловленные на гусефермах, однако, у них выявлены маллофаги — Columbi-cola columbae (ЭИ — 6,5 %) и Colpocephalum pectiniventre (ЭИ — 2,7 %).

Таблица 1

Виды паразитов, выделенные от диких и синантропных птиц (ЭИ, %)

Вид инвазии Гусеобразные (п=161) Воробьеоб-разные (n=193) Голубиные (n=27)

Echinostoma revolutum 5,2

Echinostoma recurvatum 1,7

Notocotylns attenuatus 6,4

Prosthogonimus ovatus 2,0 3,1

Prosthogonimus cuneatus 0,7 1,7

Bilharziella polonica 3,7

Drepanidotaenia lanceolata 3,9

Microsomacanthus microsoma 2,6

Sobolevicanthus gracilis 1,3

Ligiila intestinalis

Amidostomum anseris 4,3

Tominx contorta 3,0

Streptocara crassicauda 2,6

Ganguleterakis dispar 4,8

Echinuria uncinata 1,3

Actornithoophilus patellatus

Anaticola crassicornis 2,9

Colpocephalum pectiniventre 1,1 2,7

Columbicola columbae 6,5

Goniocotes hologaster 2,9

Menacanthus cornutus 1,7

Menopon gallinae ■ 3,9

Philopterus ocellatus

Таким образом, дикие и синантропные водоплавающие птицы отряда гусеобразных (утка серая, утка-кряква, гусь серый и др.) являются возможными источниками поддержания неблагополучия домашней птицы по мик-стинвазиям: эхиностоматидозу, нотокотилидозу, простогонимозу, бильхар-циеллезу, дрепанидотениозу, микросомакантозу, амидостомозу, гангулетера-кидозу, томинксозу, стрептокарозу, эхинуриозу.

В перекрестном заражении микстинвазиями водоплавающих птиц большую роль играют гидробионты, являясь промежуточными, дополнительными или резервуарными хозяевами гельминтов и простейших. При бессистемной эксплуатации водоемов более двух лет, они являются источником заражения птиц гельминтами.

Гельминтологическое обследование водоемов, расположенных в Майском, Терском, Прохладненском, Эльбрусском и Черекском районах Кабардино-Балкарской республики и используемых в хозяйственных целях, пока-

зало, что все обследованные водоемы представляют собой естественные озера и являются местом гнездования диких водоплавающих и болотных птиц. В обследованных озерах обнаружены: циклопы, дафнии, бокоплавы (табл. 2).

1 Таблица 2

Пораженность гидробионтов в исследованных водоемах

Название водоема Циклопы Дафнии Гаммарусы Моллюски Личинки стрекоз

Озеро Тамбукан 0,03-2,3 н/о н/о н/о н/о

Озеро В.Голубое 0,1-4,5 0,008-0,2 0,02-0,07 н/о н/о

Озеро Н. Голубое 0,08-2,8 0,008-0,03 н/о н/о н/о

Комплекс Майских карьерных озер: озеро №1 0,05-5,7 0,008-0,02 0,02 0,1 0,1

озеро №2 0,01-0,07 н/о н/о н/о н/о

Озера Прохлад-ненского района 0,04-3,1 0,008-0,04 н/о н/о н/о

Озера Терского района 0,01-0,1 н/о н/о н/о н/о

Примечание: и/о - не обнаружено

В наибольшей степени инвазированы личиночными стадиями гельминтов мелкие ракообразные — циклопы (0,01-5,7 %) и дафнии (0,008-0,2 %). Меньше поражены гаммарусы, их инвазированность составляла 0,02-0,07 % и регистрировалась только в озере В. Голубое (0,02-0,07 %) и озере №1 комплекса Майских карьерных озер (0,02 %). Пораженных моллюсков партени-тами трематод выявили лишь в озере №1 комплекса Майских карьерных озер при экстенсивности 0,1 %, там же установлены единичные случаи поражения личинок стрекоз.

Установлено, чтоколичество инвазированных гидробионтов напрямую зависит от срока использования водоема. Наибольшее количество пораженных гидробионтов наблюдалось в водоемах В. Голубое и озере №1 комплекса Майских карьерных озер, которые использовались на протяжении всего исследуемого периода, причем, процент инвазированных гидробионтов ежегодно увеличивался, начиная с 0,07-0,4 % в 1999 году до 5,1-6,7 % в 2003 году. В водоемах, которым периодически давали отдых, количество инвазированных гидробионтов уже на следующий год снижалось, а через год встречались лишь единичные экземпляры — носители инвазии, очевидно, поддерживаемые дикими птицами.

3.2. Эколого-паразитарные патогенетические системы диких и домашних птиц Кабардино-Балкарии 3.2.1. Паразитофауна птиц

Исследования показали, что у птиц разных пород и видов наблюдается преимущественно одновременное. паразитирование возбудителей разных таксономических групп, в результате чего у них возникают микстинвазии. У кур, цесарок, индеек, фазанов, павлинов и тетеревов преимущественно паразитируют следующие гельминты: Ascaridia galli, Heterakis gallinarum, Capillar ia obsignata, C.caudinflata, Singamns trachea, Raillietina echinobothrida, Scrjabinia caucasica, Davainea proglottina, Echinostoma revolutum, Prosthogo-nimns ovatus. Простейшие из них представлены Cryptosporidium baileyi, Eimeria tenella, E.brunetti, E.maxima, E. acervulina, E.praecox, E.mitis, Trichomonas galli, Eimeriapacifica, E.duodenalis.

У гусей преобладающими паразитами являются: Drepanidotaenia lanceolata, Filicollis anatis, Notocotylus attenuatus, Ganguleterakis dispar, Ami-dostomum anseris, Capillaria anseris, Cryptosporidium meleagridis, Eimeria duo-denalis, E.pacifica. Часто регистрируется полиинвазия, реже — моноинвазия.

У уток преобладающими паразитами являются: Echinostoma revolutum, Echinochasmus beleocephalus, Filicollis anatis,Bilharziella polonica, Notocotylus attenuatus, Polimorphus magnus, Singamus trachea, Hystrichis tricolor. Полиинвазии также доминирует над моноинвазиями.

Часто встречаются ассоциации райниетин, аскаридий, гетеракисов, сингамусов, капиллярий, томиникс, эймерий, реже — ассоциации райетин, сингамусов, капиллярий, гетеракисов, томинксов, боррелий.

Зараженность птиц паразитами колеблется 18,9-100%, при интенсивности инвазии 4-28 экз.гол.

3.2.2. Эколого-видоеой состав паразитов домашних птиц

Установлено, что у птиц отряда куриных преимущественно паразитируют два вида гельминтов: Ascaridia galli (сем. Ascariidae, подотряд Ascari-data) и Heterakis gallinarum (сем. Heterakidae, подотряд Oxyurata), 8 видов простейших типа Apicomplexa, класс Sporozoa, подкласс Coccidia: Eimeria tenella, E.acervulina, E.maxima, E.necatrix, E.praecox, E.mitis, E.brunetti (сем. Eimeridae) и Cryptosporidium baileyi (сем. Cryptosporidiidae).

Чаще всего встречаются эймерии видов Emeria tenella (ЭИ — 71,2%), E.acervulina (13,7%) и E.maxima (8,6%). У 67,7% обследованной птицы обнаружены аскаридии (A.galli). Выделение ооцист криптоспоридий (Cr.baileyi) отмечается у 29,4% птицы. Остальные виды выявленных паразитов обнаруживаются значительно реже (рис. 1).

Выявлено, что у птиц часто наблюдается одновременное паразитирование простейших и гельминтов. Так, из числа обследованной птицы у 46,5% обнаруживаются одновременно аскаридии и эймерии (A.galli+ Eimeria Sp), у 13,4% — аскаридии и криптоспоридии (A.galli+ Cr. baileyi), что суммарно составляет 59,9%.

□ А. ¿аШ ШН^аИтагит

□ Е. 1епе11а

■ Е. асегуиНпа

□ Е. гпахппа

■ Е.тШз НСг.ЬаЛеу;

Рис. 1. Диаграмма соотношения кишечных паразитов у птиц

Следовательно, в структуре инвазированности птиц паразитами преобладает смешанная гельминто-протозойная инвазия.

3.2.3. Морфовозрастная динамика микстинвазий птиц

Изучение возрастной динамики инвазированности кишечными паразитами молодняка продуктивной птицы показало, что первое выделение ооцист эймерий начинается с 12-дневного возраста (ЭИ-6%) с последующим нарастанием экстенсивности инвазии. С 24-дневного возраста уже более половины (52%) обследованного молодняка были инвазированы эймериями. Максимальная зараженность наблюдается в 30 и 45-дневном возрасте (97% и 94% соответственно). В дальнейшем ЭИ эймериями снижалась незначительно, до уровня 52% к 3-месячному возрасту.

Первое выделение ооцист криптоспоридий обнаруживается с 17-дневного возраста у 14% обследованных птиц. До 27-дневного возраста наблюдается плавное нарастание ЭИ до 22%, затем отмечается резкое повышение инвазированности (с пиком на 50-й день жизни) до 60% с последующим снижением на 80-й день жизни до 7%. .

Аскаридии впервые обнаруживаются в месячном возрасте с постепенным подъемом инвазированности к 3-месячному возрасту до максимума. Одновременное ггаразитирование простейших и гельминтов впервые выявили в 30-дневном возрасте, а аскаридий и криптоспоридий — в ограниченный срок с 50-дневного возраста (3%), с максимумом в 60-дневном возрасте (у 6%) и до 80-го дня жизни у 1% цыплят. Сочетание аскаридий, эймерий и криптоспоридий обнаруживали в 60 и 70-дневном возрасте у 1-2% обследованных цыплят (рис.2). : - .

40 35 30 25 20 15 10

я»

0 II 1 1

У 1! 1 1 1 Ж1 Жз. 1 1 ■-г-

29 30 35 40 45 50 55 60 65 70 75 80 85 BA.aallKE.sp ■А.даШ+Сг.ЬаНву] КЗА.даШ+Е.$р+Сг.ЬаН«у1

Рис. 2. Возрастная динамика инвазированности птиц смешанными кишечными паразитами

3.3. Биологическая активность системы «паразит-хозяин» при микстинвазиях птиц

Установлено, что на 21-й день после заражения выявлена следующая закономерность: повышение дозы заражения цыплят с 200 до 800 инвазионных яиц аскаридий сопровождалось уменьшением числа личинок аскаридий в среднем с 20,4 ±1,1 экз. до 2,1 ± 0,4 экз.

При заражении смешанной культурой (яйца аскаридий и ооцисты эй-мерий) отмечалась тенденция к снижению числа обнаруживаемых личинок аскаридий с увеличением дозы заражения. При этом число обнаруженных личинок у вскрытых цыплят колебалось от 37,7±2,9 до 4,0±0,8 экз. В отличие от данных по заражению яйцами аскаридий, повышение дозы заражения ооцистами эймерий сопровождалось увеличением числа обнаруживаемых эймерий. При эймериозной моноинвазии количество ооцист в одном поле зрения микроскопа увеличилось от 27±4,1 (при заражении 10 тыс. экз. ооцист) до 51,8±4,4 экз. (при заражении 40 тыс. экз. ооцист). При смешанной инвазии также повышение дозы заражения сопровождалось увеличением числа обнаруживаемых ооцист с 25±3,2 до 66,0±5,3 экз. соответственно.

Выявлена зависимость среднесуточного прироста от дозы и вида заражения. Среднесуточные приросты у инвазированных цыплят были значительно ниже, чем в контрольной группе. При увеличении дозы заражения

среднесуточные приросты снижались во всех группах. Наименьшие приросты отмечались в группах, зараженных смешанными культурами.

При аскаридиозе среднесуточный прирост цыплят составил 54,4% по отношению к контрольной группе, при эймериозе — 40,2, при смешанной инвазии — 35,9%. Потери в живой массе у цыплят, зараженных смешанной культурой, были на 60-70 г больше, по сравнению с моноинвазией, вызванной ооцистами эймерий и на 170 г больше по сравнению с моноинвазией, вызванной аскаридиями. При смешанной аскаридиозно-эймериозной инвазии наблюдается более значительное отставание в росте и развитии цыплят, чем при моноинвазии. Это указывает на синергетический тип взаимоотношений между вышеуказанными видами паразитов.

У цыплят, зараженных смешанной культурой инвазионных возбудителей, аскаридии были крупнее, средний вес их популяции составил — 1749 мг. У цыплят с моноинвазией средний вес популяции аскаридий был в 2,7 раз меньше и составил 641,9 мг. Единичные экземпляры аскаридий были меньше при моноинвазиях. При смешанной инвазии вес половозрелой нематоды равен в среднем по группам — 31,9 мг, а при моноинвазиях — 29,2 мг.

Таким образом, с увеличением интенсивности заражения цыплят смесью инвазионных возбудителей, снижается приживаемость гельминтов и увеличивается обнаружение ооцист эймерий в одном поле зрения микроскопа. С увеличением степени заражения цыплят двойной инвазией, снижаются их среднесуточные приросты. Это связано с усиливающейся ответной реакцией организма и внутривидовой конкуренцией между гельминтами и простейшими.

3.4. Морфофункциональные показатели эритроцитов птиц при микстинвазиях — как тест оценки патогенности паразитарного звена 3.4.1. Соотношение субпопуляций эритроцитов птиц разных возрастов Установлено, что у цыплят 12-дневного возраста общее количество эритроцитов (RBC) составило 2,51 ±0,03 млн/мкл; у 30-дневных - 2,60 ±0,19, у 40-дневных - 2,75 ± 0,04, у 58-дневных - 2,89 ± 0,19, а у 240-дневных птиц - 3,47 ± 0,03 млн/мкл (Р<0,01). Соотношение субпопуляций эритроцитов в исследуемых группах приводится в таблице 3.

Таблица 3

Соотношение субпопуляций эритроцитов в крови птиц разных возрастов'

Возраст, дней Содержание эритроцитов с объемами, %

32,4-75,6 мкм3 86,4-151,2 мкм3 162,0-216,0 мкм3

12 45,0 50,7 4,3

30 73,5* 25,0* 1,5*

40 81,5* 18,2* 0,3*

58 94,5* 5,5* 0*

240 9,2* 65,3*-. 25,5*

* - достоверность отличий от соотношения субпопуляций эритроцитов 12-дневных

цыплят при Р<0,001

Установлено, что популяционный состав эритроцитов зависит от возраста: от 12- до 58-дневного возраста отмечался рост малых, а у 240-дневных — средних и больших. У 12-дневных цыплят средний объем эритроцитов был больше, чем у 30-, 40- и 58-дневных и меньше, чем у взрослых. При прослеживании динамики общего количества и популяционного состава эритроцитов у 12-, 30-, 40- и 58-дневных цыплят замечено, что общее количество эритроцитов изменилось незначительно. У взрослых птиц оно достоверно возросло, увеличился и их средний объем. Наблюдается закономерное уменьшение размеров эритроцитов птиц до 58-дневного возраста. Эритроциты с малыми объемами более устойчивы к патологиям. Они легко проникают в мельчайшие капилляры и осуществляют там газообмен. Исходя из этого, можно констатировать, что у птиц 58-дневного возраста отмечается максимальное напряжение адаптационных процессов в системе эритрона при неблагоприятных условиях.

3.4.2. Характеристика субпопуляций эритроцитов птиц при микстинвазиях Общее количество эритроцитов у здоровых и больных микстинвазиями птиц различалось несущественно — 2,89 ±0,19 млн/мкл у здоровых птиц и 2,77 ± 0,22 — у больных. Более существенная разница обнаружена в популяциях эритроцитов (табл.4).

Таблица 4

Распределение эритроцитов по объему у здоровых и больных птиц

Объем эритроцитов, мкм Соотношение субпопуляций эритроцитов, RDW, %

здоровые, X ± тх больные, X ± шх

32,4 1,9 + 0,16 4,9 ± 0,63*

43,2 41,6 ± 1,41 39,8 ±2,21

54,0 27,9 + 0,81 26,2 ± 1,75

64,8 13,2 ±0,27 12,2 ±0,35

75,6 9,9 ±0,11 8,2 ±0,17*

86,4 3,6 ±0,18 5,3 ± 0,21*

97,2 1,1 ±0,18 1,7 ±0,14

108,0 0,5 ±0,16 0,7 ±0,14

118,8 0,1 ±0,11 0,4 ±0,14

129,6 0,2 ± 0,05 0,4 ±0,11

140,4 0,1 ±0,07

151,2 - 0,1 ±0,11

162,0 - ■ -

172,8 - -

183,6 -

194.4 - -

205,2

216,0 - -

RBC, млн/мкл 2,89 2,77

* - достоверность отличий от ГШ\У здоровых птиц при Р<0,001

Эритроцитов с объемом клетки 32,4 мкм3 в крови инвазированных птиц содержалось значительно больше (4,9 ± 0,63%), чем у здоровых (1,9 ± 0,16%). Последующие 4 объема клеток преобладали в крови здоровых птиц, в сравнении с больными (Р<0,001). В сумме процент эритроцитов этих объемов был равен у здоровых 92,6%, у больных — 84,4% (Р<0,01). Клетки с большими объемами чаще регистрировались у зараженных птиц, составив в сумме 8,7% против 5,5% у сравниваемой; группы. Средний объем эритроцитов у здоровых птиц был равен 54,7 мкм3, у больных - 55,3 мкм3.

У больных птиц в крови было повышено содержание мелких и больших эритроцитов, а у здоровых преобладали клетки со средними объемами. Вышеотмеченная разница показана на цитометрических кривых распределения эритроцитов по объему (рис.3).

Рис.3. Цитометрические кривые распределения эритроцитов по объему у больных (инвазированных) и здоровых птиц >

ИХ^ у здоровых птиц более гомогенный, чем у больных и представлен преимущественно средними эритроцитами. В связи с этим, основание кривой здоровых птиц более узкое, чем у больных. В первом случае основание ци-тометрической кривой расположено между 32,4 мкм3 и 129,6 мкм3, а во втором-32,4 мкм3 и 151,2 мкм3.

Вершины кривых в обоих случаях находятся на оси абсцисс на 43,2 мкм3, но у больных она расположена ниже. Левые ветви обеих кривых отвесные, правые — более пологие. Цитометрическая кривая больных микстинва-зиями птиц смещена вправо относительно цитометрической кривой, построенной на параметрах популяции эритроцитов здоровых птиц.

Циркулируя в кровеносном русле и, проникая в мелкие капилляры, молодые формы эритроцитов максимально деформируются, чтобы пройти через меньшее, чем сама клетка, сечение капилляров. При этом, часть больших

эритроцитов подвергается фрагментации, то есть делению на малые клетки, на что указывает возрастание в популяции эритроцитов больных птиц субпопуляции клеток с малыми объемами. Часть молодых клеток при деформации гемолизируется с истечением гемоглобина в плазму крови. В связи с тем, что в крови одновременно идут процессы гемолиза и фрагментации, общее количество эритроцитов у инвазированных птиц мало отличается от этого показателя в группе здоровых птиц. Патологические сдвиги в популяции эритроцитов и выявленные закономерности процессов адаптации системы эритрона к микстинвазиям могут рассматриваться как диагностический и прогностический фактор болезни.

3.4.3. Осмотическая резистентность эритроцитов инвазированных птиц В популяции эритроцитов инвазированных птиц есть субпопуляции как высокоустойчивых, так и низкоустойчивых к гемолизу клеток. Субпопуляция низкоустойчивых клеток начинает разрушаться в слабогипотоничном растворе, что проявляется более высоким процентом гемолиза. За счет наличия субпопуляции высокоустойчивых клеток в условиях высокогипотоничного раствора гемолизировался лишь небольшой процент эритроцитов инвазированных птиц. Под воздействием токсинов, вырабатываемых возбудителями микстинвазий, в организме инвазированных птиц происходят процессы, способствующие выбросу в кровеносное русло молодых и незрелых клеток.

3.5. Оптимизация охранных мер диких и домашних птиц 3.5.1. Профилактика микстинвазий Экспериментальными исследованиями установлено, что скармливание курам-несушкам в течение 10 дней комплексного препарата аривитак («А+У») в дозах 10-120 мг/кг массы тела птицы положительно влияет на качественные показатели инкубационных яиц (массу яиц, содержание кароти-ноидов и витаминов в яйце) и жизнеспособность молодняка (процент выводимости и сохранности цыплят). При этом, «А+У» в дозе 60 мг/кг массы тела кур-несушек является самым эффективным. Масса яиц кур-несушек, получавших аривитак в дозе 60 мг/кг массы тела, была выше, по сравнению с контрольной на 2,5 %, содержание каротиноидов в яйце — 15,9 %, витамина А — на 14,6 %, рибофлавина (в желтке) — на 14,2 %, витамина Е - на 14,6 %, рибофлавина (в белке) — на 5,3 %. Максимальный процент выводимости цыплят составил 80,3 %, против 69,3 % в контрольной группе.

Самым эффективным является скармливание аривитака в дозе 60 мг/кг массы птицы двумя 10-дневными курсами с интервалом в 13 дней. Аривитак является активным биологическим препаратом, так как помимо влияния на инкубационные качества яиц, он оказывает активное влияние на жизнеспособность выведенных цыплят, следовательно, на резистентность организма.

3.5.2. Коррекция и оптимизация схем лечения и профилактики микстинвазий птиц Разработанная нами схема лечения и профилактики микстинвазий включает применение цыплятам в возрасте 12 дней культуры кокцидий ВНИВИП; в 17-дневном возрасте - кокцидиовита-Б в дозе 500 мг/кг корма в течение 7 дней в три курса с интервалом в 5 дней; аривитака — в дозе 60 мг/кг массы птицы в 2 приема по 10 дней с интервалом в 13 дней и лизоцима в дозе 0,3 % к корму в три приема по 5 дней с интервалом 3 дня; в возрасте 45 дней — ринтала в дозе 10 мг/гол. с кормом два дня подряд.

Данная схема показала достаточно высокие результаты в отношении аскаридий (ЭЭ=89,6 %) и эймерий (82,1 %); количество инвазионных яиц и ооцист эймерий в 1 г помета снижалось на 91,3 и 83,5 % соответственно. Применение этой схемы привело к повышению сохранности цыплят и получению дополнительного мяса (табл. 5).

Таблица 5

Эффективность различных схем лечения микстинвазий

(гельминто-протозойного комплекса) _, - ■

Показатели Номер группы

. 1 2 3 4 (зараж.) 5 (незар.)

Количество цыплят 30 30 30 30 30

Пало цыплят 1 0 3 9 1

Среднесут. приросты, г 213*03 25,9Ш,8 182*03 123*0,9 223*0,4

Получено дополнительно мяса на 100 цыплят, кг - 3,6 - - -

3.5.3. Дезинвазия как охранное мероприятие Наиболее эффективным методом одновременной дезинвазии и дезинфекции в птицеводстве является аэрозоль дезоформа при помощи термомеханического аэрозольного генератора ГА-2 (АГ-УД-2). Использование данной смеси показало высокий дезинвазионный и дезинфекционный эффект.

3.6. Использование математического планирования в оптимизации охранных мер

При широком распространении в промышленном животноводстве и птицеводстве смешанных инвазий (из двух, трех и более возбудителей), выбор оптимальных схем лечения и профилактики нескольким препаратами можно проводить с помощью метода математического планирования эксперимента, а затем в производственных условиях проверять экспериментально полученные результаты.

ВЫВОДЫ

1. Орнитофауна Нальчикского зоологического парка представлена 65 видами, 11 отрядами и 30 семействами.

2. Дикие и синантропные птицы отряда гусеобразных (утка серая, утка-кряква, гусь серый и др.) являются источниками поддержания неблагополучия домашней птицы по микстинвазиям: эхиностоматидозу, нотокотилидозу, простогонимозу, бильхарциеллезу, дрепанидотениозу, микросомакантозу, амидостомозу, гангулетеракидозу, томинксозу, стрептокарозу, эхинуриозу.

3. В перекрестном заражении микстинвазиями водоплавающих птиц значительную роль играют гидробионты. Высокой интенсивности заражения их микстинвазиями способствуют водоемы, эксплуатирующиеся в хозяйственных целях более двух лет.

4. У птиц отряда куриных преимущественно паразитируют следующие простейшие и гельминты: простейшие типа Apicomplexa — класс Sporozoa, подкласс Coccidia: Eimeria tenella, E.acervulina, E. maxima, E.necatrix, E.praecox, E.mitis, E.brunetti (сем. Eimeridae), Cryptosporidium baileyi (сем. Cryptosporidiidae); гельминты типа Nemathelminthes - класс Nematoda: As-caridia galli (сем. Ascariidae, подотряд Ascaridata) и Heterakis gallinarum (сем. Heterakidae, подотряд Oxyurata). Наиболее часто встречается одновременное заражение птицы аскаридиями и эймериями, аскаридиями и криптоспори-диями. Более чем у половины обследованного поголовья выявлена смешанная (гельминто-протозойная) инвазия. При смешанной инвазии наблюдается более значительное отставание в росте и развитии цыплят, чем при моноинвазии.

5. С увеличением интенсивности заражения цыплят смесью инвазионных возбудителей, снижается приживаемость гельминтов и увеличивается количество ооцист простейших. Это связано с усиливающейся ответной реакцией организма и внутривидовой конкуренцией между простейшими и гельминтами.

6. Морфофункциональные показатели эритроцитов можно использовать как тест оценки патогенности при микстинвазиях. Популяционный состав эритроцитов зависит от возраста: от 12- до 58-дневного возраста отмечается рост малых, а у 240-дневных - средних и больших. У 12-дневных цыплят средний объем эритроцитов больше, чем у 30-, 40- и 58-дневных, и меньше, чем у взрослых. При прослеживании динамики общего количества и попуЛяционного состава эритроцитов у 12-, 30-, 40- и 58-дневных цыплят, обнаружены незначительные изменения. У взрослых птиц общее количество эритроцитов возрастает, увеличивается их средний объем.

7. Установлены различия в количественно-качественных показателях эритроцитов здоровых и инвазированных птиц: RBC у здоровых птиц больше, чем у инвазированных, у последних молодые формы эритроцитов максимально деформированы за счет фрагментации больших эритроцитов. Снижение общего количества эритроцитов и возрастание субпопуляций малых клеток расценивается как адаптационный синдром при паразитозах птиц.

Определение осмотической резистентности эритроцитов может применяться для оценки резервных возможностей системы эритрона при микстин-вазиях. , . _

8. Разработанная схема лечения и профилактики микстинвазий, включающая применение цыплятам в возрасте 12 дней" культуры кокцидий ВНИВИП; в 17-дневном возрасте — кокцидиовита-Б в дозе 500 мг/кг корма в течение 7 дней в три курса с интервалом в 5 дней; аривитака — в дозе 60 мг/кг массы птицы в 2 приема по 10 дней с интервалом в 13 дней и лизоцима ГЗх в дозе 0,3 % к корму в три приема по 5 дней с интервалом 3 дня; в возрасте 45 дней — ринтала в дозе 10 мг/гол. с кормом два дня подряд является наиболее эффективным методом коррекции охранных мер, оказывающим влияние на инкубационные качества яиц, жизнеспособность цыплят, повышая резистентность организма в целом.

9. Дезинвазия является одной охранных мероприятий. Наиболее эффективным средством для проведения дезинвазии и дезинфекции птицеводческих помещений является дезоформ.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Для повышения эффективности и оптимизации охранных мер диких и домашних птиц в условиях Кабардино-Балкарии, рекомендуем использовать: ■ . ■

- методические рекомендации по диагностике и профилактике основных гельминтозов зоопарковых птиц с целью сохранения биологического разнообразия орнитофауны; .

- методику сочетанного исследования популяции клеток эритроидно-го ряда при микстинвазиях птиц с целью повышения эффективности охранных мер;

- использовать разработанную интегрированную систему профилактики микстинвазий в птицеводстве для повышения физиологического статуса и биологического потенциала продуктивности домашней птицы.

2. Морфофункциональные исследования эритроцитов птиц рекомендуется использовать как тест оценки патогенности паразитарного звена.

3. Материалы исследований используются в учебном процессе Кабардино-Балкарской ГСХА, работе Проблемной научно-исследовательской лаборатории орнитологии и болезней птиц, а также сотрудниками Института экологии горных территорий и специалистами Госветслужбы республики. .

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Кожоков М.К., Арамисов A.M., Сабанчиев З.Х., Алабов A.M. Проблемы изучения симбиоценозов птиц в современных условиях // Сб. науч. трудов ученых и соиск. «Аграрные реформы: этап четвертый (Опыт, проблемы, перспективы)». - Нальчик, 2003. — Вып. 4. - С.49-51.

2. Кожоков М.К., Алабов A.M., Арамисов A.M. Методика сочетанного исследования популяции клеток эритроидного ряда с определением их осмотической резистентности при смешанных инвазиях птиц (рекомендации). - Нальчик, 2004. - 20 с.

3. Кожоков М.К., Арамисов A.M. Симбиоценотические факторы возникновения микстинвазий птиц в условиях Центрального Кавказа // Матер, докл. Всерос. науч. конф. РАСХН, ОГ РАН, ВИГИС «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями».- Москва, 2005 — Вып. 6 — С. 165-167.

4. Кожоков М.К., Арамисов A.M. Разнообразие и экология птиц Нальчикского зоопарка // Тр. Международной конференции РАН, ИЭГТ КБНЦ «Горные экосистемы и их компоненты».— Нальчик, 2005 — Т.1.-С. 168-170.

5. Кожоков М.К., Мигачева Л.Д., Арамисов A.M., Кожоков A.M. Методические рекомендации по диагностике и профилактике основных гельминто-зов зоопарковых птиц. — Москва-Нальчик, 2006. — 24 с.

Сдано в набор 14.11.2006 г., подписано в печать 24.11.2006 г.

Гарнитура Тайме. Печать трафаретная. Формат 60x84 1/16. Бумага офсетная. Усл. печ. л. 1,25. Тираж 100 экз. Заказ № 191.

Типография ООО НПКП «МАВР», Лицензия Серия ПД № 01107, 362040, г. Владикавказ, ул. Августовских событий, 8, тел. 44-19-31

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Арамисов, Асланби Мухамедович

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Проблемы сохранения биологического разнообразия птиц.

1.2. Паразито-хозяинные взаимоотношения при микстинвазиях птиц

1.3. Эпизоотология микстинвазий птиц и формирование эколого-паразитарных патогенетических систем.

1.4. Влияние микстинвазий на систему эритрона.

1.5. Интегрированная система профилактики микстинвазий птиц

ГЛАВА 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Материал и методика исследований.

2.2. Биоценотические взаимоотношения диких и домашних птиц в условиях Кабардино-Балкарии.

2.2.1. Биологическое разнообразие орнитофауны.

2.2.2. Дикие и синантропные птицы - этиологический фактор микстинвазий домашних птиц.

2.3. Эколого-паразитарные патогенетическое системы диких и домашних птиц в условиях Кабардино-Балкарии.

2.3.1. Паразитофауна птиц.

2.3.2. Эколого-видовой состав паразитов домашних птиц.

2.3.3. Морфовозрастная динамика микстинвазий птиц.

2.4. Биологическая активность системы «паразит-хозяин» при микстинвазиях птиц.

2.5. Морфофункциональные показатели эритроцитов птиц при микстинвазиях - как тест оценки патогенности паразитарного звена.

2.5.1. Соотношение субпопуляций эритроцитов птиц разных возрастов.

2.5.2. Характеристика субпопуляций эритроцитов птиц при микстинвазиях.

2.5.3. Осмотическая резистентность эритроцитов инвазированных птиц.

2.6. Оптимизация охранных мер диких и домашних птиц.

2.6.1. Профилактика микстинвазий.

2.6.2. Коррекция и оптимизация схем лечения и профилактики микстинвазий птиц.

2.6.3. Дезинвазия как охранное мероприятие.

2.7. Использование математического планирования в оптимизации охранных мер.

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Биоэкологическая характеристика микстинвазий птиц и оптимизация охранных мер в условиях Кабардино-Балкарии"

Актуальность темы. В настоящее время численность и видовое разнообразие птиц быстро сокращается, а восстанавливать исчезающие популяции и виды становится все труднее. Птицы - обязательный элемент многих природных экосистем и «индикаторы» состояния окружающей среды. Вместе с тем, птицы, как источник разнообразной продукции (мяса, яиц, пуха, пера и т.д.), имеют огромное народнохозяйственное значение. Центром сохранения редких и ценных видов птиц являются национальные зоопарки, заповедники, племенные птицеводческие предприятия и т.д. Важным резервом сохранения диких и домашних птиц является профилактика различных заболеваний, в первую очередь, инвазионных. Инвазии, в основном, встречаются и протекают в виде эко-лого-паразитарных комплексов - микстинвазий. Особую тревогу вызывают «перекрестные» инвазии, которые совершают круговорот от перелетных и диких птиц к домашним и наоборот. Такая циркуляция возбудителей болезней вызывает природную очаговость - длительную циркуляцию в природе, что причиняет большие экологические и экономические потери орнитофауне и продуктивному птицеводству. Нарушается местообитание птиц, обедняется фауна, снижается продуктивность и жизнеспособность домашней птицы, нарушается иммуногенез, увеличиваются расходы на охранные, диагностические и профилактические мероприятия. Все это диктует необходимость изучения фауны и эколого-паразитарной ситуации в продуктивном птицеводстве, что представляет важную проблему, имеющую большое биоэкологическое и народнохозяйственное значение, что и определило направление и актуальность исследований.

Диссертационная работа выполнялась в соответствии с Всероссийской координационной научно-технической программой (НТП - задание 03) и тематическим планом НИР КБГСХА «Диагностика, профилактика и терапия сим-биоценозов птиц в условиях Юга России с учетом экологических особенностей региона и охраны окружающей среды и населения от зоонозов» (шифр

02.06.03) и программой Проблемной научно-исследовательской лаборатории орнитологии и болезней птиц при КБГСХА.

Цель и задачи исследований. Цель работы - биоэкологическая характеристика микстинвазий птиц, коррекция и оптимизация охранных мер в условиях Кабардино-Балкарии.

В задачи исследований, результаты которых выносятся на защиту, входило изучить:

- биологическое разнообразие диких и домашних птиц в условиях Кабардино-Балкарии;

- эколого-видовой состав паразитов домашних птиц;

- морфовозрастную динамику микстинвазий птиц;

- биологическую активность системы «паразит - хозяин» при микстин-вазиях птиц;

- влияние микстинвазий на систему эритрона;

- разработать интегрированную систему профилактики микстинвазий птиц.

Научная новизна. Впервые в условиях Кабардино-Балкарии изучено биологическое разнообразие зоопарковых птиц, биоценотические взаимоотношения диких и домашних птиц. Разработана интегрированная система профилактики микстинвазий птиц. Комплексно изучен популяционный состав клеток эритрона птиц с построением дифференциальных цитометрических кривых распределения эритроцитов по объему.

Практическая значимость работы и реализация результатов исследований. Результаты исследований послужили основой для коррекции и оптимизации охранных мер диких и домашних птиц в условиях Кабардино-Балкарии, разработана интегрированная система профилактики микстинвазий птиц. Основные положения результатов работы вошли в разработанные нами рекомендации «Методика сочетанного исследования популяции клеток эритро-идного ряда с определением их осмотической резистентности при смешанных инвазиях птиц» (утв. МСХ КБР, Нальчик, 2004 г.) и «Методические рекомендации по диагностике и профилактике основных гельминтозов зоопарковых птиц» (утв. на секции «Инвазионные болезни животных» РАСХН, Москва-Нальчик, 2006 г., прот. №1 от 22.02.2006 г.). Материалы исследований используются в учебном процессе Кабардино-Балкарской ГСХА, научной работе Проблемной НИЛ орнитологии и болезней птиц при КБГСХА, а также сотрудниками Института экологии горных территорий и специалистами Госветслужбы республики.

Заключение Диссертация по теме "Биологические ресурсы", Арамисов, Асланби Мухамедович

ВЫВОДЫ

1. Орнитофауна Нальчикского зоологического парка представлена 65 видами, 11 отрядами и 30 семействами.

2. Дикие и синантропные птицы отряда гусеобразных (утка серая, утка-кряква, гусь серый и др.) являются источниками поддержания неблагополучия домашней птицы по микстинвазиям: эхиностоматидозу, нотокотилидозу, про-стогонимозу, бильхарциеллезу, дрепанидотениозу, микросомакантозу, амидо-стомозу, гангулетеракидозу, томинксозу, стрептокарозу, эхинуриозу.

4. У птиц отряда куриных преимущественно паразитируют следующие простейшие и гельминты: простейшие типа Apicomplexa - класс Sporozoa, подкласс Coccidia: Eimeria tenella, E.acervulina, E.maxima, E.necatrix, E.praecox, E.mitis, E.brunetti (сем. Eimeridae), Cryptosporidium baileyi (сем. Cryptosporidii-dae); гельминты типа Nemathelminthes - класс Nematoda: Ascaridia galli (сем. Ascariidae, подотряд Ascaridata) и Heterakis gallinarum (сем. Heterakidae, подотряд Oxyurata). Наиболее часто встречается одновременное заражение птицы ас-каридиями и эймериями, аскаридиями и криптоспоридиями. Более чем у половины обследованного поголовья выявлена смешанная (гельминто-протозойная) инвазия. При смешанной инвазии наблюдается более значительное отставание в росте и развитии цыплят, чем при моноинвазии.

6. Морфофункциональные показатели эритроцитов можно использовать как тест оценки патогенности при микстинвазиях. Популяционный состав эритроцитов зависит от возраста: от 12- до 58-дневного возраста отмечается рост малых, а у 240-дневных - средних и больших. У 12-дневных цыплят средний объем эритроцитов больше, чем у 30-, 40- и 58-дневных, и меньше, чем у взрослых. При прослеживании динамики общего количества и популяционного состава эритроцитов у 12-, 30-, 40- и 58-дневных цыплят, обнаружены незначительные изменения. У взрослых птиц общее количество эритроцитов возрастает, увеличивается их средний объем.

8. Разработанная схема лечения и профилактики микстинвазий, включающая применение цыплятам в возрасте 12 дней культуры кокцидий ВНИВИП; в 17-дневном возрасте - кокцидиовита-S в дозе 500 мг/кг корма в течение 7 дней в три курса с интервалом в 5 дней; аривитака - в дозе 60 мг/кг массы птицы в 2 приема по 10 дней с интервалом в 12 дней и лизоцима ГЗх в дозе 0,3 % к корму в три приема по 5 дней с интервалом 3 дня; в возрасте 45 дней - ринтала в дозе 10 мг/гол. с кормом два дня подряд является наиболее эффективным методом коррекции охранных мер, оказывающим влияние на инкубационные качества яиц, жизнеспособность цыплят, повышая резистентность организма в целом.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Для повышения эффективности и оптимизации охранных мер диких и домашних птиц в условиях Кабардино-Балкарии, рекомендуем использовать:

- методические рекомендации по диагностике и профилактике основных гельминтозов зоопарковых птиц с целью сохранения биологического разнообразия орнитофауны;

- методику сочетанного исследования популяции клеток эритроидного ряда при микстинвазиях птиц с целью повышения эффективности охранных мер;

2. Морфофункциональные исследования эритроцитов птиц использовать как тест оценки патогенности паразитарного звена.

3. Материалы исследований используются в учебном процессе Кабардино-Балкарской ГСХА, работе Проблемной научно-исследовательской лаборатории орнитологии и болезней птиц, специалистами Госветслужбы республики.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Арамисов, Асланби Мухамедович, Владикавказ

1. Абрамов М.Г. Гематологический атлас. М.: Медицина, 1978. - 280 с.

2. Агапович Ж.А. Гельминтозы кур в промышленном производстве и меры борьбы с ними //Изв. АН ТССР. Сер. биол.наук.- 1986. №3. -С.44-48.

3. Агапович Ж.А., Рустамова М.С. Гельминтологическая оценка специализированных птицеводческих хозяйств // Ветеринария. 1978. - №12. - С.50-52.

4. Азарова Л.А., Ковальчук И.П. Сравнение показателей крови, изученных с помощью автоматизированных гематологических систем // Клиническая лабораторная диагностика, 1993. №2. - С.40-41.

5. Алабов A.M. Морфофункциональная адаптивность эритроцитов птиц при смешанных инвазиях. Автореф. дис. . канд. биол. наук. Махачкала. -2005.-24 с.

6. Алимов В.Д. Снижение мясной продуктивности кур, пораженных аскари-диями // Гельминты пищевых продуктов: Тез.докл.межресп. конференции 22-25 декабря 1972г. Самарканд, 1972. - С.47-48.

7. Аллергант Г.И. Терапия кишечных нематодозов кур аскаридиоза, гетера-кидоза и капилляриоза: Автореф. дис. канд. вет. наук. -М. - 1970. - С.22.

8. Андреева Н.Л., Дмитриева М.Е., Климов А.А. и др. Изучение бактериальных инфекций на птицефабриках // Ветеринария, 2004,- №5 С. 14-16.

9. Апатенко В.М., Еверская Н.В., Ливощенко Н.В., Ассоциированные инфекции птиц в иммуноморфологическом аспекте // Тез.докл.2-го Всес.съезда паразитоценологов. 1983. -С.30-31.

10. Арнольди К.В., Арнольди Л.В. О биоценозе как основном из основных понятий экологии // Зоол. ж. 1963. Т. 48- №2. - С. 161-183.

11. П.Артамонова С.В. Взаимоотношения аскаридий, капиллярий и кокцидий в кишечнике кур. Дис. . канд. вет. наук. - М. - 1970. - С. 169.

12. Афанасьев В.И. К вопросу о взаимоотношении микробов и гельминтов в организме курицы // Матер, к науч. конф. ВОГ. М. - 1961. - Ч. 1. - С.26.

13. Афтахов В.А., Бурзинцева А.В., Голубков В.Ф., Муллагулов А.Н. Применение фуридина, нилверма и пиперазина в комбинации с фенотеазином при аскаридиозе и гетеракидозе кур // Труды Башкир, с.-х. ин-т. 1972. - Т. 17. -С.30-32.

14. Бакулин В.А., Илюшечкин Ю.П., Дорофеев Г.А., Дорофеева P.M. Патомор-фология ассоциированного течения кокцидиоза и колибактериоза цыплят // Тез.докл.2-го Всес.съезда паразитоценологов.- 1983. С.36-37.

15. Бейер Т.В. Клеточная биология споровиков возбудителей протозойных болезней животных и человека// Ленинград. - 1989. - С.130-141.

16. Бейер Т.В., Пашкин П.И., Рахманова А.Г. и др. Диагностика, клиника, лечение и профилактика криптоспоридиоза: Методические рекомендации. Ленинград. - 1987.-С.1-24.

17. Беме Р.Л. Птицы Кабардино-Балкарии // Учен. зап. Сев.-Осет. пед. ин-та. -Т.23. Вып. 1.- 1958.-С. 11-185.

18. Березкина С.В., Солоненко И.Г. Влияние бенацила, БМК и гидрохлорида бе-напила на организм цыплят // Бюлл. Всесоюз. ин-та гельминтологии. 1981. -Вып. 28.-С.18-22.

19. Бондарев Д.П. Определение относительного объема эритроцитов как критерия, характеризующего степень обезвоженности организма // Тезисный доклад обл. науч.-практ. конференции. (Смоленск, 13 февраля, 1988.). Смоленск, 1988. - С.9-10.

20. Бондарев Л.С., Зайцев И.А., Жидких Ю.П. и др. Влияние некоторых воздействий на осмотическую способность эритроцитов // Лабораторное дело, 1990. №7. - С.29-31.

21. Борзова Л.В., Сукласова Т.Г. Фракционирование эритроцитов периферической крови: Обзор // Гематология и трансфузиология, 1983. Т.28. - №9. -С.50-54.

22. Бутвиловский В.Э., Давыдов В.В. Проницаемость эритроцитарных мембран белых крыс при экспериментальном трихинеллезе // Материалы докладов седьмой научной конференции по трихинелллезу человека и животных. -М., 1996.-С.17-19.

23. Васильев А.П. Определение индекса деформируемости эритроцитов // Лабораторное дело, 1991. №9. - С.44-46.

24. Величкин П.А., Глухов Е.П. Влияние аскаридиозной инвазии на напряженность иммунитета при вакцинации цыплят против болезни Ньюкасла // Тез.докл.2-го Всес.съезда паразитоценологов. Киев, 1983. - С.59-60.

25. Величкин П.А., Голубков В.Ф., Советников В.М. // Опыт массового применения нилверма при аскаридиозе и гетеракидиозе кур // Труды Всесоюз.с.-х.ин-та заочн.образования. 1973. - Вып.71. - С.76-80.

26. Величкин П.А., Голубков В.Ф., Советников В.М. Опыт оздоровления совхозов Пензенского треста «Птицепром» от аскаридиоза и гетеракидоза кур // Труды Всесоюз. с.-х. ин-та заочн. образования. 1975. - Вып.88. - С.29-33.

27. Величкин П.А., Урумова В., Штукарь Д. Эффективность малых доз антгель-минтиков // Птицеводство. 1968. - №3. - С.38.

28. Вернадский В.И. Биосфера // М. 1926. - С. 4-5.

29. Верхолетов В.А. Морфология клеток костного мозга и возрастные изменения миелограммы у нормально развивающихся цыплят. Учебные записи Казанского ветеринарного института, 1965. -Т.97. - С. 32-44

30. Веселова Т.П. К токсичности бенацила // Бюл. Всесоюз. ин-та гельминтологии. 1981. - Вып.28. - С.28-31.

31. ЗГВеселова Т.П. Токсикология нилверма // Ветеринария 1972.- №12.-С.88-89.

32. Веселова Т.П. Фармакологическая характеристика нилверма // Ветеринария. 1979. - №5. - С.66-68.

33. Войтенко И.И., Танашкин С.Ф. Средний объем эритроцитов и их деформируемость и осмополярность сыворотки крови у больных вирусным гепатитом // Лабораторное дело, 1988. №8.-С. 14-16.

34. Волгорева Е.А. Феномен функциональной неравнозначности эритроцитов в детском возрасте // Педиатрия, 1986. №5. - 76 с.

35. Володин П.А., Теплов О.В. Влияние аскаридиоза на экономические показатели откорма петушков в условиях птицекомбината // Бюл. Всесоюз. ин-та гельминтологии. 1972. - Вып.9. - С.25-30.

36. Воробушков А.Г. Заболевание кур, вызываемое аскаридиями и микрофлорой в ассоциации //Автореф. дис. канд. вет. наук. М. - 1989.

37. Воробушков А.Г., Петров Ю.Ф. Влияние аскаридиозной инвазии на иммунитет к болезни Ньюкасла // Тез.докл.2-го Всес.съезда паразитоценологов. -Киев, 1983. С.65-66.

38. Гаврилов O.K., Козинец Г.Н., Черняк Н.В. Клетки костного мозга и периферической крови (структура, биохимия, функция). М.: Медицина, 1985. -286 с.

39. Газарян К.М., Кульминская А.С., Ананьянц Т.Г. и др. Изменение механизма инактивации генома эритроцитов птиц. Характеристика дифференцирующейся системы эритроидных клеток. Онтогенез, 1971. - Т.2, - №3. - С. 22-23.

40. Гиляров М.С. Место паразитоценологических исследований в биологии // Итоги и перспективы исследований по паразитоценологии в СССР. -М., 1978.-С. 74-87.

41. Гиляров М.С. Паразитоценологические исследования и их место в биоценологии/ЯТаразитоценозы и ассоциативные болезни- М.,1984-С.3-5.

42. Гительзон И.И. Эритрограмма как метод клинического исследования крови. Красноярск: Изд. СОАН СССР, 1959. - 247 с.

43. Глазунова Г.А., Григорьев Г.П., Барказян З.С. Влияние гепарина на повреждение эритроцитов при различных токсических ДВС. Синдромах // Гема-тол. и трансфуз., 1990. - Т.35. - №7. - С.3-5.

44. Гобзем В.Р. Система химиопрофилактики кокцидиозов с.-х. животных лечебными дозами лекарственных веществ // Тез. докл. н.-пр. конф. по проблемам параз. бол. с.-х. животных. Минск - 1972. - С.41-42.

45. Голубков В.Ф. Опыты по искусственному заражению цыплят пулло-розом и аскаридиозом // Птицеводство. 1969. - № 2. - С. 48-49.

46. Голубков В.Ф. Экспериментальный аскаридиоз молодняка кур // Труды Все-союз.с.-х.ин-т заочн.образования. 1969. - Вып.31. - С. 149-154.

47. Гольдберг Е.Д. Справочник по гематологии с атласом микрофотографий. -Томск: Изд. Томского университета, 1989. 468 с.

48. Горелова Т.И., Зон Г.А. Изучение взаимодействия патогенных кишечных палочек и кокцидий у цыплят // Тез.докл.2-го Всес.съезда паразитоценоло-гов. Киев, 1983. -С.83-84.

49. Горизонтов П.Д., Белоусова О.И., Федотова М.М. Стресс и система крови. -М.: Медицина, 1983. С. 11-18.

50. Даугалиева Э.Х. Изыскание методов химиопрофилактики аскаридиоза и ге-теракидоза // Вестн.с.-х.науки. Алма-Ата, 1966. - №5. - С.47-49.

51. Даугалиева Э.Х. Особенности патогенеза и иммунологических сдвигов в организме животных при различных гельминтозах // Тр. Каз. НИВИ. 1978. -Т.17. -С.71-74.

52. ДаштаянцГ.А. Клиническая гематология-Киев: Здоровье, 1968.-361 с.

53. Демидов Н.В. Демидова Н.В. Новые антгельминтики: Обзор // С.-х. за рубежом. 1979. - №6. - С.50-53.

54. Демидов Н.В., Вишняускас A.M., Солоненко И.Г., Березкина С.В. Успехи и задачи дальнейшего развития химиотерапии гельминтозов животных в СССР // Материалы науч. конф. Всесоюз. о-ва гельминтол. 1976. - Вып.28. - С.27-44.

55. Дьяконов Л.П., Панасюк Д.И. и др. Паразитоценозы и ассоциативные болезни//В АСХНИЛ. М., 1984.-303 с.

56. Иванов В.Г., Чунихин Г.Г. Зимняя авифауна Кабардино-Балкарии // Учен, зап. Каб.-Балк. госунив. Нальчик, 1959. - Вып. 5.- С. 183-198.

57. Иванов И.В., Дзуев Р.И., Шхагапсоев С.Х. и др. Красная книга Кабардино-Балкарской Республики: Справочник о редких и находящихся под угрозой исчезновения видах животных и растений. Нальчик, 2000. - 308 с.

58. Карабанов Г.Н. Деформируемость эритроцитов (обзор) // Анестезиология и реаниматология, 1984. -№1,-С.71-73.

59. Карпуть И.М. Гематологический атлас сельскохозяйственных животных. -Минск.: Ураджай, 1986. 183 с.

60. Кассирский И.А., Алексеев Г.А. Клиническая гематология. М.: Медицина, 1978.-С. 84-86.

61. Кацова Л.Б., Рамазанов В.Т., Бочекалова B.C. Показатели белкового обмена при экспериментальном эхонококкозе овец // Тр. Каз. НИВИ. 1978. - Т. 17. - С.97-99.

62. Кидалов В.Н., Нысак В.Ф. Квантитативная эритрограмма и возможность ее использования в клинике и эксперименте // Лабораторное дело, 1989. №8. -С.36-40.

63. Когут П.П. Оценка аналитической возможности прибора Пикоскель при подсчете эритроцитов // В кн.: Лабораторная диагностика: Тез. III Всесоюзного съезда, 4.1. -М., 1985. С. 166-168.

64. Кожоков М.К. Гельминто-протозойные кишечные инвазии кур на Северном Кавказе // Дис. . канд. вет. Наук. М., 1994. - 157 с.

65. Кожоков М.К. Криптоспоридиоз кур в Кабардино-Балкарии // Бюл. Всес. инта гельминтологии (ВИГИС). 1991. - Вып.55. - С.47-49.

66. Кожоков М.К., Арамисов A.M. Разнообразие и экология птиц Нальчикского зоопарка // Тр. Международн. конф. РАН, ИЭГТ КБНЦ «Горные экосистемы и их компоненты». Нальчик, 2005.-Т. 1.-С. 168-170.

67. Колабский Н.Н., Пашкин П.И. Кокцидиозы сельскохозяйственных животных. Л.: Колос. - 1974. - 160 с.

68. Коржуев П.А. Нормальное кроветворение и его регуляция. М., 1976. - С. 41-46.

69. Котельников Г.А. Аскаридиоз кур // Справочник ветер, врача птицеводческого предприятия. М. - 1982. - С. 169-172.

70. Кошкина В.И. Материалы к фауне, возрастной и сезонной динамике кокцидий кур в Казахстане. Автореф. канд. дис. Алма-Ата. - 1951.

71. Крылов В.Ф., Лизоркин А.В. Криптоспоридиоз птиц // Ветеринария. М., 1989.-№3.-С. 45-47.

72. Крылов М.В. Определитель паразитических простейших (человека, домашних животных и с/х растений) // Санкт-Петербург, 1996. 607 с.

73. Крюков А.Н. Морфология крови. Вып. I-III. М., 1920. - С.23-27.

74. Кудрявцев А.А., Кудрявцева Л.А. Клиническая гематология животных. М.: Колос, 1984.-399 с.

75. Куртоева Л.Ю. Желудочно-кишечные инвазии телят // Ветеринария. 1991. - №12. - С.35-37.

76. Лебедев Л.А. Количество и морфология форменных элементов и некоторые физико-химические свойства крови здоровых кур. Тр. Омского ветеринарного института, 1940.-Т. 12.-С. 14-17.

77. Лукина Е.А. Изменение кроветворения у телят при анемии // Ветеринария, 2001. №3. -С.39-43.

78. Малахов А.В., Назаров В.Г. Рекомендации по борьбе с гельминтозами кур (аскаридиозом и гетеракидозом) // М. 1987. - С.2-4.

79. Маркевич А.П. Методологические проблемы паразитоценологии и ее задачи по созданию синтетической (номотетической) науки и паразитизме // Паразитоценология на начальном этапе. Киев, 1985. - С. 7-18.

80. Мачинский А.П. Разработка некоторых вопросов эпизоотологии, терапии и профилактики кокцидиоза кур // Автореф. канд. дис. М. - 1954.

81. Медведев Г.А. Биохимические механизмы старения ядерных клеток и безъядерных эритроцитов // Цитология, 1973. №8. - С. 8-10.

82. Меркулов Е.В. Вопросы эпизоотологии аскаридиоза кур и опыт оздоровления племенных птицеводческих хозяйств от этой инвазии в предгорной зоне Северного Кавказа// Дис. .канд.вет.наук. М., 1973. - С. 36-39.

83. Меркурьева Е.К. Биометрия в селекции и генетике с.-х. животных. М.: Колос.- 1970.-424 с.

84. Мещеряков Н.П. Применение вигозина в качестве стресс-корректора // Ветеринария, 2002. №11. - С. 14-16.

85. Ненашев А.А., Тищенко И.М. Определение функциональной активности популяции эритроцитов при различных гипоксических состояниях // Лабораторное дело, 1985. №3. - С.134-136.

86. Никитин В.Н. Гематологический атлас сельскохозяйственных и лабораторных животных. М.: Сельхозгид, 1956. - 260 с.

87. Никитин В.Ф., Павласек И. Ассоциация гельминтов и кокцидий у телят в промышленных комплексах // II Всесос. съезд паразитоценологов. Тез. докл. -Киев.- 1983.-С.235-236.

88. Павловский Е.Н. Биоценология и паразитология // Зоол. ж. 1955. - Т. 27. - N 2.-С. 97-112.

89. Павловский Е.Н. Учение о биоценозах в приложении к некоторым па-разитологическим проблемам // Изв. АН СССр. 1937. - № 4. - С. 13851422.

90. Панасюк Д.И., Куюмджи З.М., Егоров Н. Е. Биоценоз аскаридий, гетеракисов и сальмонелл, его значение в патогенезе тифа кур // Ветеринария. 1969. № 8. - С. 46-47.

91. Панасюк Д.И. Ветеринарная паразитоценология // Ветеринария. 1984. -№1.-С.45-47.

92. Панасюк Д.И. Микрофлора и ее место обитания при диктиокаулезе овец // Ветеринария. 1970. - № 3. - С. 76-77.

93. Паршина А.В. Влияние аскаридий на разных стадиях развития на морфологический состав крови цыплят // Сб. тр. Сиб. н.-и. вет. ин-та. 1970. -Вып.17. -С.263-269.

94. Петров Ю.Ф. Биоценотические связи гельминтов и микробов в желудочно-кишечном тракте уток // АН СССР, ВАСХНИЛ, АМН СССР / Тез. докл. I. Всесоюз. съезда паразитоценологов / Киев. 19878. - 4.2 - С.234-236.

95. Петров Ю.Ф. Паразитоценозы и ассоциативные болезни сельскохозяйственных животных. Л.: Агропромиздат. - 1988. - С.1-147.

96. Петров Ю.Ф., Воробушков А.Г., Ефимова Н.А. Динамика микрофлоры кишечника кур при аскаридиозе // Ветеринария. №7. - 1972. - С.43-46.

97. Ю8.Петроченко В.И., Корчагин А.И. Химиопрофилактика аскаридиоза и гете-ракидоза кур антгельминтиками в комбикормах // Сб.трудов / Всесоюз.н.-и.ин-т по болезням птиц, 1966. Т.2. - С.149-156.

98. Петроченко В.И., Котельников Г.А. Гельминтозы птиц. 2-е изд., перераб. и допол. // М.: Колос. - 1976. - С.352.

99. Ю.Плященко С.И., Сидоров В.Т. Стрессы у сельскохозяйственных животных. -М.: Агропромиздат, 1987. С. 39-41.

100. Поэтова В.Т. Изменение в качественном составе эритроцитов, продуцируемых при напряженном эритропоэзе: Автореф. дисс. на соиск. учен, степени канд. мед. наук. Красноярск, 1965. - 221 с.

101. Протасевич В.М. Взаимоотношение и профилактика гистомоноза индеек путем проведения комплекса противогетеракидозных мероприятий: Автореф. дис. на соискание ученой степени канд. вет. наук: 03.00.20. М. -1968.-24 с.

102. Пухов В.И. Экономическое обоснование различных способов лечения цыплят от смешанной инвазии аскаридиоз и эймериоз с помощью математических методов// Автореф. дис. . канд. вет. наук. - М. - 1987.

103. Пухов В.И., Ефимов А.В., Лысенко А.А. Опыт массовой терапии нема-тодозов (гетеракидоза, аскаридиоза) и цестодозов (давениоза) кур // Тр. Сев. Кавк. н.-и. вет. профилакт. ин-та. 1934. Вып. 2. - С. 216-217.

104. Пухов В.И., Миловзоров В.П. Роль паразитических червей кур в инокуляции холерной инфекции // Тр. Сев.-Кавказ. и вет. профилакт. ин-та. 1934. - Вып.2. - С.214-215.

105. Иб.Разбесов O.K., Постников B.C., Хрусталева И.В. Динамика гематологических показателей у кур в зависимости от возраста и условий содержания. -Сб. трудов MBA, 1977. Т.90. - С. 31 -33

106. Риган В., Сандерс Т., Денипола Д. Атлас ветеринарной гематологии. М.: Аквариум ЛТД, 2000. - С. 12-18.

107. Русяев В.Ф., Чернов А.И. Кондуктометричеекий способ исследования деформации эритроцитов // Лабораторное дело, 1988. №12. - С. 10-12.

108. Сазикова Т.Г. Влияние аскаридий на вес и яйценоскость кур породы «Белый леггорн» // Вопр. зоол. Челябинск. - 1975. - Вып.4. - С.40-43.

109. Салаутин В.В. Адаптивная реакция у цыплят при стрессах // Ветеринария, 2003. №1. - С.23-25.

110. Скрябин К.И. Метод полных гельминтологических вскрытий позвоночных, включая человека. М.: ИздЛ-го МГУ. - 1928. - 49 с.

111. Скрябин К.И. Симбиоз и паразитизм в природе // М. 1923. - С. 14-17.

112. Тайчинов У.Г. Кишечные паразиты, их сочетания и роль в этиологии диареи у телят на Южном Предуралье // Матер. III Всес. съезда паразитоцено-логов 4-6 декабря 1991 г. Киев. - 1991. - С. 159.

113. Тайчинов У.Г. Совершенствование мер профилактики и терапии паразитарных энтеритов телят, вызванных кокцидиями, стронгилоидами и их ассоциациями // Рекомендации Башагропромсоюза. 1990. - С. 1-6.

114. Тайчинов У.Г. Эпизоотология кишечных инвазионных болезней телят и меры борьбы с ними в Башкирии // Дис. канд. вет. наук. М. - 1992. - С. 14-15.

115. Тайчинов У.Г., Кротенков В.П., Грибко С.М. Способ лечения диарей новорожденных телят // Рац. предложение Смоленского Управления продовольствия, закупок и государственных служб агропромышленного комплекса. Смоленск. - 1990. - С. 1-3.

116. Тараненко И.Л. Эффективность некоторых антгельминтиков при аскари-диозе и гетеракидозе птиц // Тез. докл. науч. конф. Гельминтология сегодня. Проблемы и перспективы. -М. 1963. -Т.2 - С.127.

117. Твердохлебов П.Т. Методика культивирования яиц Ascaridia galli и за-рание ими подопытных цыплят в лабораторных условиях // Матер, к науч. конф. всес. об-ва гельм. 1965. - Ч. 1 - С. 206-210.

118. Тегаева О.Х. Изменения в системе эритрона у больных стенокардией в зависимости от стадии недостаточности кровобращения и возраста // Материалы Международной научной конференции. Нальчик: «Полиграфсер-вис и Т», 2003. - С.200-203.

119. Уиллоуби М. Детская гематология. М.: Медицина, 1981. - 672 с.

120. Умняшкин В.Г. Оздоровление кур от аскаридиоза и гетеракидоза // Птицеводство. 1970. - №3. - С.44.

121. Успенский А.В., Бессонов А.С., Шеховцов Н.В. Универсальный трихинел-лоскоп и набор для диагностики паразитарных болезней Диапар // Труды ВИГИС. Т.37. - М. - 2001. - С. 170-174.

122. Федотова М.Н. Производственное испытание гигроветина и фуридина при аскаридиозе и гетеракидозе // Бюл. Всесоюз. ин-та гельминтол. 1970 а. -Вып. 4. - С.167-169.

123. Федотова М.Н. Реинвазия кур аскаридиями после дегельминтизации фури-дином // Бюл. Всесоюз. ин-та гельминтол. 1970 б. - Вып.4. - С. 165-166.

124. Фурдуй Ф.И. Физиологические механизмы стресса и адаптации при остром действии стресс-факторов. Кишинев, 1986. - 240 с.

125. Хейсин Е.М. Жизненные циклы кокцидий домашних животных.- JI. 1967. -С. 33-38.

126. Храбрый В.М. Атлас-определитель птиц. М., 1988. - 224 с.

127. Цветаева Н.П. Патогенная роль гельминтов // Ветеринария. 1963. - №12. -С.16-17.

128. Цветаева Н.П. Патоморфология основных гельминтозов птиц // М. Колос. -1971.-С.255.

129. Черепанов А.А., Москвин А.С., Котельников Г.А., Хренов В.М. Атлас. Дифференциальная диагностика гельминтозов по морфологической структуре яиц и личинок возбудителей / Под ред. А.А. Черепанова. М.: Колос, 2001.-76 с.

130. Чубис А.И., Данилова А.К. О системе борьбы с кокцидиозами и эшерихия-ми кур в хозяйствах промышленного типа. В кн.: Тезисы докладов первой научной конференции Целиноградской НИВС. - Целиноград. - 1979.

131. Шибалова Т. А. Новые данные по криптоспоридиозу // Сб. науч. тр. Ленинград. вет. ин-т. 1987. - N 91. - С. 66 - 71. МЗ.Шульц Р.С., Давтян Э.А. Материалы к познанию патогенеза гельминто-зов // Матер, науч. конф. ВОГ. - М., 1969. - ч.2. - с. 75-118.

132. Шульц Р.С., Даугалиева З.Х. Иммунологическая толерантность в патологии и эпизоотологии гельминтозов // Материалы VII Всесоюз. конф. по природ, очаговости болезней общ. вопр. паразитол. животных. Алма-Ата.- Самарканд: 1969. - С.80-87.

133. Якимов В.Л. Болезни домашних животных, называемых простейшими (Protozoa) // Москва. 1931. - С. 184-285.

134. Якубовский М.В. Кишечные нематодозы животных (эпизоотология, патогенез, меры борьбы и профилактика). Автореф. дис. . д-ра вет. наук. -М.- 1987.-33 с.

135. Яровой П.Ф., Коломакин Г.А. О некоторых причинах отхода инкубаторных цыплят // Тр. НИИ Каз. акад. с.-х. наук 1961.-Т. 10 - с. 450453.

136. Яшина Т.И. Опыт оздоровления цыплят от аскаридоза и кокцидиоза // Матер, докл. Всес. науч. конф, посвящ. 90-лет Каз. вет. ин-та. 1963. -С. 202.

137. Altoif B.J. Comparative evalution of efficacies of tetramisole and piperazine against Ascaridia galli in chickens. Am. J. Veter. Hes. - 1972. - Vol.33. -P. 1547-1549.

138. Anderson B.C. Enteritis caused by Cryptosporidium in calves // Vet.Med./small Anim. Clin., 1981. Vol.76. - №6. - S.865-868.

139. Anderson B.C., Hall K.F. Cryptosporidia! infection in Idaho calves // J. Amer. Vet. Med. Assoc. 1982. - Vol. 181.- N5.- S.484-485.

140. Andrews J. M. J. Parasitism and allergy // Parasitology. 1962. - V.48, №1.- P.l-38.

141. Barker J.K., Carbonell P.L. Cryptosporidium agnii sp. n. from lambs and Cryptosporidium bovis sp. n. from calves with observations on the cocyst // Z. Parasitenkd. 1974. - N44. - P.289.

142. Backer A.D. Some observation on the development of caecal worm Het-erakia gallinarum // Sci. Agric. 1933. - V.13, №6. - P. 356-363.

143. Bearup A.J. The Coccidia of carnivores in Sidney // Aust. Vet. J. 1954. - N30. -P.185.

144. Birova V., Biro J. Tetramisol antihelmintikum pre hydinarsku prax.// Veteri-narstvi. - 1970. - R.20. - c.j.p - P.33-35.

145. Cannon L.R.G. Concurent Ascaridia galli and Eimeria spp. infection on fowle // Aust. Vet. J. 1966. - Vol.42. - N.7. - P.250-251.

146. Cockerell B.Y., Valerio M.C., Garner F.M. Criptosporidiosis in the intestines of Rhesus monkeys (Macaca mulatta) // Lab. Anim. Sci. 1974. - Vol.24. - P.881.

147. Current W.L., Upton S.J., Haynes T.B. The Life cycle Cryptosporidium baileyi n.sp. (Apicomplexa, Cryptosporididae) infecting chickens // J.Protozool, 1986. -Vol.33.-P.289-296.

148. Dhillon A.S., Thacker H.L. Dietsel A.V., Winterfield R.W. Respiratory Criptosporidiosis in breiler chickens // Av.Dis. 1981. - V.25. - P.747-751.

149. Dorman H.R. Studies of the lifecyela of Heterakis papillosa //Trans. Amer. Micr. Soc. 1928. - V.47, № 4. - P. 379-413.

150. Doster A.R., Mahaffey B.A., McClearen J.K. // Av. Dis. 1979. - 23. -N3.

151. Dubey J.P., Pande B.P. Observations on the coccidian cocysts from Indian Jungle cat (Felis chaus) // Indian J. Microbiol. 1963. - Vol.3. - P. 103.

152. Dvisetol D. The nature and role of immunologia control in gastrointestinal helminthiosis. The Epidemiology and control of gastrointestinal parasites of shee in Australia. - 1971. - 8. -P.121-135.

153. Edgar S.A., Seibold C.Q. New coccidium of chickens, Eimeria mivati sp. n. (Protozoa, Eimeriidae) with detalis of its life history. "J. Parasitol.", 1964. -50.-P.2.

154. Enig В. Die Behandlung des Ascaridis, Heterakis und Cappilaria-Befalles des Hausgefltigels.// Tierarstl. Umach. - 1975. - V.30. - N7. - P. 324-329.

155. Everett L.E. et al. Die Behandlung des Ascaridis, Heterakis und Capillaria-Befalles des Hausgeflugels. // Tierarstl. Umach., 1975. - Vol.30. - №7. - P.324-329.

156. Fenwick W. Cryptosporidiosis in a neonatal gasella // J.Amer. Vet. Med. Assoc., 1983. Vol.183.-№11.-P.1331-1332.

157. Fletcher O.L., Nunnell J.F., Page R.K Criptosporidiosis of the bursa of Fabricius of chickens // Av. Dis. 1975. - V. 19. - P.630-639.

158. Forgracs P., Tashis A., Ma P. et al. Intestinal and bronchial ciyptosporidiosis in immunodeficient homosexual man // Ann.Inter.Med., 1983. Vol.99. - №6. -P.793-794.

159. Gardiner C.H., Jmes C.D. // J.of the America vet.med.association, 1984. -Vol.185-№11.

160. Glission J., Brown Т., Brugh M. et al. Sinisitis turkeys associated with respiratory Criptosporidiosis // Avian Dis. 1984. - V.28. - P.783-790.

161. Graybill H.W. The incidence of biack head and cocurent of Heterakis papulosa in a fiack of artificially reared turkeys // J. Exper. Med. 1921. - V.33. -P.667.

162. Graybill H.W., Smith T. Production of fatal blac head in turkeys by feeding embriynate eggs of Heteracis Papillosa // G. Exper. Med. 1920. V.31. -P.647-662.

163. Guest E.M. Osmometrie behaviour of normal and adnormal human erythrocytes // In the book: George R. Minot Symposinm on hematology. - New York, 1949.-P.652-666.

164. Harris H., Brown F. Fractionation of the avian erythrocyte: an ultrastructural study. J.Ultrastr., 1971. - Vol.6

165. Henriksen I.S.A., Krohg H.V. Bovine Criptosporidiosis in Denmark // Nord. Vet. Med. 1985.- Vol.37. - N1. - P.34-37.

166. Hoerr F.J., Ranck F.M., Hastings T.F. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1978. -1978.- 173.-N12.

167. Iseki M. Criptosporidium felis sp. n. (Protozoa: Eimeriorina) from the domestic cat // Jap. J. Paras. 1979. - V.28, - N9. - P.489-498.

168. Itakura C., Goryo M., Umemura T. Criptosporidia infection in chickens // Av. Pathol. 1984. - V.13. - P.487-499.

169. Itakura C., Nakamura H., Umemura Т., Coryo M. // Av. Pathology. 1985. 14. -N2.

170. Jensen.W.N. Fragmentation and the "Freaksish poikilocyte." // Am. I. med. Sci, 1969.-Vol.257.-h.355.

171. Jervis H.R., Merrill T.G., Sprins H. Coccidiosis in the guinea pig small intestine due to a Criptosporidium // Am. J. Vet. Res. 1966. - Vol.27. - P.408.

172. Joyner L. P. Infection with Heterakis gallinarum in chickens following recovery from histomonasis // Parasitology. 1966. V.56, № 1. - P. 171 -177.

173. Kendall S.B. Some factors influence resstance to histomonasis in turkeys // Brit.Vet. 1957. - V. 113,№ 110. - P.45-439.

174. Kennedy C. R. Ecological animal parasitology. England: Blackwell Scientific publication, 1975. - 163 p.

175. Knesik J., Jantosovic J., Gernak V. Perovnanie usinku niektoruch antihelmintik pri ascaridiozo a heterakidoze kura domacoho // Vet. Med. (CSSR). 1973. -V. 18. - N9. - S.569-577.

176. Kozhokov M.K., Petrov Yu.F. Symbiocenosis of poultry and wild birds in Kabardino-Balkaria//10 th European poultry conference, Jerusalem, Israel, june 21-26, 1998.

177. Lebion P.L. //1. Union Medikal du Canada, 1976.-Vol.105.-P.l-24.

178. Leonardt H., Grigoleit H. // G., Reinhardt J. Vasa, 1977. - Vol.6. -P.316-320.

179. Levine N.D. Taxonomy and Reriew of the Coccidien genus Criptosporidium (Protozoa, Apicomplexca) // J. Protozoolog. 1984 - Vol.31. - N1. - P.94-98.

180. Levine P.P. A new coccidium pathogenic for chicken, Eimeria brunetti n. sp. (Protozoa: Eimeriidae) // "Cornell Vet." 1942. - P.32.

181. Levine P.P. Eimeria hagani n. sp. (Protozoa: Eimeriidae) a new coccidium of the chicken // "Cornell. Vet." 1938. - 28.

182. Lund E.E. Growth and development of Heterakis gallinae in turkeys and chickens infected with Histomonas meleagridis // Parasitology. 1958. -V.44, № 3. - P.297-300.

183. Madsen H. On the interaction between Heterakis gallinarum, Ascaridia galli, "Blackhead" and the chicken // J. Helmint. 1962. - V.36. -Nl. -P.107-142.

184. Mason R.W., Hartley W.J. //Av.Dis, 1980. Vol. 24. - №3.

185. Meiselman, Herbert I. Morphological determinants of red cell deformability // Scand. J. Clin.Lab. Invest. 41, suppl. 156, 1981. -P.27-34.

186. Metcalf D., Moor M. Hacmopoietic cells. London, 1971.

187. Mohandas N., Shohet S. //Clin. Haematol. 1980.-Vol.10-P.223-237.

188. Mohandas N.I. Clark M.R., Jacobs M.S. et al. J. din. Invest, 1980. - Vol.66. -P.563-573.

189. Morin M., Lariviere S., Lallier R. Patological and microbiological observations made on spontaneous cases of acute neonatal calf diarrhoea // Can. J. Сотр. Med. 1976. - V.40. - P.228-240.

190. Nagy В., Antal A., Ratz F. A borjan cryptosporidiosis anak maguarorzagi elo-fordulasa // Magy. Allatorv. Lapja. 1979. - Vol.34. - N9. - S.585-588.

191. Nime Т., Burek J. Page D. et al. Acute enterocolitis in a human being infected with the protozoan Criptosporidium // Gasteroenterology. 1976. - N70. -P.592-598.

192. Nishikawa N. // J. Japan Vet. Med. Assn. 1984. - V.37. - N16.

193. Norton james ett all // Broc. Soc. Ex. P.Biol and Med., 1981. Vol.166. - P. 449-456.206.0' Donoghue P.J. Criptosporidium infection in man, animal, bird's and fish // Austral. Vet. J. 1985. - Vol.62. - N8. - P.253-258.

194. Panciera R., Thomassen R., Carrier F. Criptosporidian infection in calf // Vet. Patrol.- 1971.-N8.-P.479-484.

195. Pavlasek I., Palkovic L. Spentanni kryptosporidiczi infekce u kurat // Veterinar-stvi. 1986. V.36.-p. 131-132.

196. Pavlicek J., Dykova J. Locda umele inyase Ascaridia galli u rusne starych kurat tetramisolen, piperasinem a metrifonatom // Veter., Med. - 1976. —1.21. — c.6. - S.353-358.

197. Pellerdy L.P. Die Differentialdiagnose der Gefliigelkokzidiose // "Angew.Parasitol.", 1965. №5.

198. Phyllis A., Clapham Ph.D. The Relation of Helminthiasis to Leukaemia in Domestic Fowls // J. Helmintology. '1938. - V. 16. N1. - P.53-56.

199. Pohlens I., Moon H., Cheville N., Bemrick W. Criptosporidiosis as a probable factor in neonatal diarrhea of calves // J. Amer. Vet. Med. Ass. 1978. -Vol.178.-P.452-457.

200. Proctor S.J., KempH.L. // J. Protozool. 1974.-21.-N5.

201. Przyjalkowski Z.L.L. L'influence de certaines bacteries sur I,etallisement de tri-chines dans le tude didestif de la souris // Bull. Acad. Veter. Fr. 1967. - V.37. -N3. -P.131-135.

202. Radu S., Dan B. // Rev. Cresterea amm. 1985. - 35. - N6.

203. Reid W.M. Progress in the control of coccidiosis with anticoccidials and planned immunisation // Amer. I. Vet. Res.- 1975.- Vol.36.- N4. P.593-596.

204. Riedel B.B. The effect of ascarid infection on the susceptibility of chicken to coccidiosis // Poultry Sci. 1950. - V.29. - N2. - P.200-203.

205. Riedel B.B. The of cecal coccidiosis upon the susceptibility of chickens to Ascaridia galli// Poultry Sol., 1950.-Vol.29. №4,-P.530-532.

206. Ritter D., Ley D., Lerry N. // Av. Dis. 1986. - V.30. - N3.

207. Roberts F. A note on the occurence of entroheparatitis or "Blackhead" in chickens//Austral. Vet. J. 1937.-V. 13.-PI 74-185.

208. Schloemer L. Die Ubertragung von Cryptosporidium spec.des Kalbes auf Mause, Hamster und Merschweinchen, sowie Schweine, Schafe und Ziegen // Vet.-Med.Diss. Munchen, 1982.

209. Schoop С., Lamina G. Die endoparasitare verseuchung des Haushnes imm Raume Suar Hessen // Dtsch. tieraritt. Wsch. 1959. - Bd. 66. - S.496-501.

210. Slavin D. Criptosporidium meleagridis (sp.nov.) // J.Comp. Pathol. 1955. -Vol.65. -S.262-266.

211. Snyder S., England J., McChesney A. Criptosporidiosis in immunodeficient arabian foals // Vet. Pathol. 1978. - Vol.15. - N12. - P.17.

212. Stefanski W., Zebrowski 1. Untersuchungen uber die Rolle der Ascaridia galli als Virustrager in der Pseudo-Geflugelpest (Nowcastre diseasl) sowie uber den Synergisms beider Factoren // Ceskoslovenska parasitol. 1958. - V.5. - N2. -S.181.

213. Stephens J.F., Barnett B.D., Holtman D.E. Concurrent Salmonella typhi-murium and Eimeria necatrix infections in chickens // Poultry Sei. 1964, -V. 43. -P.392-356.

214. Stoicke E. Contributil la studiul valoril antihelmintico nilvermulni in terapio unor hematodese la gaina si porumbe. Hev. Crestor. anim. - 1974. - an.24. -N12.-P.68-71.

215. Tham V.L., Kniesberg S., Dixin B.R. // Av.Pathol., 1982. Vol. 11. - №4.

216. Thomas L. Association relation. Antogonism of microbes and antibiotic substances // Poultry Sci. 1947. -V. 12. -N2. - P.25-28.

217. Triffit N.E. Observations on two species of coccidia parasitik snakes // Proto-zool. 1925. -Nl. -P.19.

218. Tsai S.S., Ho L.F., Chang C.F., Chu R.M. // J.Microbiol.and Immunol., 1983. -Vol. 16.-№4.

219. Tyzzer E.E. An extracellular coccidium Criptosporidium muris (gen. et sp. nov.) of the gastritic glands of common mouse // J. Med. Res. 1910. - Vol.23. -P.487-509.

220. Tyzzer E.E. Coccidiosis in gallinaceous birds // Amer. J. Hyg. 1929. - Vol.10. -P.269-383.

221. Tyzzer E.E. Criptosporidium parvum (sp. nov.) a coccidium found in the small intestine of the common mouse // Arch. Protistenk 1912 - Vol.26.- P.394-412.

222. Tzipori S., Campbell I., Angus K. The therapeutic effect of 16 antimicrobial agents on Criptosporidium infection in mice // Austr. J. Exp. Biol. Med. Sci. -1982. Vol.32. - N5. - P.187-190.

223. Tzipori S., Smith V., Halpin C. et al. Experimental criptosporidiosis in calves: clinical manifestations and pathological findings // Vet. Rec. 1983. - Vol.112. -N6.-P.116-120.

224. Upton S.J., Current W.L., The species of Cryptosporidium (Apicomplexa, Cryptosporididae) infecting mammals // J. Parasitol. 1985. - Vol. 71. - N 5. -p. 625-629.

225. Viga J. The effect of Eimeria tenella infection and tectosterone treatment on weight of the bursa of fabricius in young chickens // Poultry Sci. 1973. - V.52. -N3. -P.1034.

226. Whitmore R.L. // Biorheology, 1981. Vol. 18. - P.557-562.

227. Whitmore R.L. // Microvac. Res., 1980. Vol.19. - P.261.

228. Wilson R.B., Holscher M.A., Lyle S.J. Criptosporidiosis in a pup // 1984. -V.183. -N9. -P.1005-1006.

Информация о работе

Арамисов, Асланби Мухамедович
кандидата биологических наук
Владикавказ, 2006
ВАК 03.00.32

Диссертация

Биоэкологическая характеристика микстинвазий птиц и оптимизация охранных мер в условиях Кабардино-Балкарии - тема диссертации по биологии, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы