Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Активность аминотрансфераз сыворотки крови свиней в зависимости от питательного состава корма

ВАК РФ 03.01.04, Биохимия

Автореферат диссертации по теме "Активность аминотрансфераз сыворотки крови свиней в зависимости от питательного состава корма"

На правах рукописи

-

ШУМСКИЙ ЮРИЙ НИКОЛАЕВИЧ

АКТИВНОСТЬ АМИНОТРАНСФЕРАЗ СЫВОРОТКИ КРОВИ СВИНЕЙ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ПИТАТЕЛЬНОГО СОСТАВА КОРМА

03.01.04 - биохимия

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

2 4 МАЙ 2012

Курск- 2012

005044936

Работа выполнена в ФГБОУ ВПО «Воронежский государственный аграрный университет имени императора Петра I»

Научный руководитель: доктор ветеринарных наук, профессор

Никулин Иван Алексеевич

Официальные оппоненты: Ярован Наталья Ивановна, доктор биологических наук, профессор, ФГБОУ ВПО «Орловский государственный аграрный университет», зав. кафедрой химии;

Миненков Николай Александрович, кандидат биологических наук, ФГБОУ ВПО «Курская государственная сельскохозяйственная академия им. проф. И.И. Иванова», доцент кафедры физиологии и химии

Ведущая организация: ФГБОУ ВПО «Брянская государственная

сельскохозяйственная академия»

Защита состоится «15» июня 2012 года в Ю30 часов на заседании диссертационного совета Д.220.040.03 при ФГБОУ ВПО «Курская государственная сельскохозяйственная академия имени профессора И.И. Иванова» по адресу: 305021, г. Курск, ул. К. Маркса, 70. Тел. (4712) 53-13-30, факс (4712) 53-84-36.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГБОУ ВПО «Курская государственная сельскохозяйственная академия имени профессора И.И. Иванова».

Автореферат разослан «14» мая 2012 г.

Ученый секретарь

диссертационного совета ______Г.Ф. Рыжкова

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. В соответствии с отраслевой целевой программой «Развитие свиноводства в Российской Федерации на 2010-2012 годы» предусмотрено увеличение производства свинины к 2012 году до 2,7 млн. т, а численности свиней до 23,3 млн. голов, что позволит произвести импортозаме-щение свинины на отечественном рынке с 29% в 2009 г. до 14% в 2012 г., а к 2020 г. полностью обеспечить рынок отечественной продукцией.

Достичь вышеуказанных показателей в свиноводстве возможно только при использовании здорового поголовья. Для оценки состояния здоровья животных и своевременного выявления патологии необходимы точные критерии его оценки, в том числе и основанные на лабораторной диагностике. Одним из критериев оценки биохимического статуса животных является определение активности аминотрансфераз, в частности, аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы, несущих информацию о состоянии белкового обмена у животных и функционального состояния печени. Вместе с тем у исследователей (Н.И. Кузнецов и др., 1985, 1989; В.Д. Мисайлов и др., 1997; А.Н. Гречухин, 2010; В.М. Холод, Г.Ф. Ермолаев, 1988; Ион Морару, 2011) нет единого мнения об оптимальных величинах активности аминотрансфераз у свиней.

При этом ряд исследователей (А.Н. Гречухин, 2010; В.М. Холод, Г.Ф. Ермолаев, 1988; Ион Морару, 2011) указывают, что активность аминотрансфераз у свиней зависит не только от состояния печени, но и от возраста животного, пола и интенсивности эксплуатации.

По данным Всероссийского научно-исследовательского ветеринарного института патологии фармакологии и терапии (2005) оптимальными значениями активности аспартатаминотрансферазы для свиней являются 0,4-0,8 , а активности аланинаминотрансферазы - 0,3-0,7 ммоль/ л-ч.

Проведенный анализ ветеринарной отчетности Воронежской области, в том числе и отчетной информации ГУ «Воронежская областная ветеринарная лаборатория» (годовые отчеты 2004-2010 гг.), свидетельствует о том, что в последнее время в крупных свиноводческих хозяйствах области значительно снизилось распространение клинически выраженной незаразной патологии у свиней. Вместе с тем довольно часто отмечается повышение активности аминотрансфераз (аспартатаминотрансферазы более 0,8, а аланинаминотрансферазы более 0,7 ммоль/ л-ч) при отсутствии клинических признаков заболевания печени у животных, что вызывает беспокойство у животноводов.

Цель и задачи исследований. Целью наших исследований было выяснение причин повышения активности аминотрансфераз в сыворотке крови клинически здоровых свиней в условиях современного ведения свиноводства и целесообразности ее коррекции за счет изменения питательного состава корма.

В связи с этим были поставлены следующие задачи: • дать оценку активности аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы сыворотки крови клинически здоровых свиней различных

половозрастных групп в условиях промышленной технологии ведения современного свиноводства;

• изучить морфологические изменения печени клинически здоровых поросят на доращивании при повышенной активности аминотрансфераз;

• определить зависимость между питательным составом корма и активностью аминотрансфераз сыворотки крови свиней;

• изучить возможность и целесообразность коррекции активности аминотрансфераз путем изменения питательного состава рациона.

Научная новизна исследований. Определены нормативы активности аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы в сыворотке крови клинически здоровых свиней при интенсивном выращивании.

Установлена зависимость активности аминотрансфераз от уровня протеинового, аминокислотного, витаминного и минерального состава корма и показано, что повышение активности АсАТ и АлАТ соответственно до 1,3 и 2,0 ммоль/л-ч в сыворотке крови у поросят на доращивании не является отражением гепатопатий.

Разработана и испытана в практических условиях модель рациона, обеспечивающая поддержание активности аминотрансфераз в пределах принятых норм и показано, что использование такого рациона снижает интенсивность роста поросят и ведет к экономическим потерям.

Практическая значимость работы. Предложены нормативы активности аминотрансфераз в сыворотке крови свиней для лабораторного контроля за состоянием здоровья животных в условиях современного свиноводства. Подтверждена целесообразность использования высокого протеинового и аминокислотного питания поросят в период их доращивания.

Материалы диссертации используются в учебном процессе для студентов факультета ветеринарной медицины Воронежского ГАУ, Ставропольского ГАУ, Донского ГАУ, Кубанского ГАУ, Волгоградской ГСХА.

Апробация работы. Основные материалы диссертации были представлены на межрегиональной научно-практической конференции молодых ученых «Инновационные технологии и технические средства для АПК» (Воронеж, 2009); межрегиональной научно-практической конференции «Ресурсосберегающие технологии в сельскохозяйственном производстве и технические средства их реализации (Воронеж, 2009); международной научно-практической конференции, посвященная 40-летию ГНУ ВНИВИПФиТ (Воронеж, 2010); научно-практических конференциях профессорско-преподавательского состава и аспирантов ВГАУ им. К.Д. Глинки (2008-2010); международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина XXI века. Инновации, обмен опытом и перспективы развития» (Саратов, 2012).

Публикации результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 7 научных статей, в том числе 2 в издании, рекомендованном ВАК.

Основные положения, выносимые на защиту:

- активность аланин- и аспартатаминотрансферазы сыворотки крови клинически здоровых свиней различных половозрастных групп в условиях современного промышленного свиноводства;

- морфологическое состояние печени поросят на доращивании при повышенной активности аминотрансфераз;

- влияние питательного состава рациона поросят на активность аминотрансфераз;

- возможность и целесообразность коррекции активности аминотрансфераз сыворотки крови поросят путем изменения питательного состава корма.

Структура и объем диссертации. Диссертационная работа изложена на 140 страницах компьютерного текста и включает следующие разделы: введение, обзор литературы, материалы и методы исследований, собственные исследования, выводы, практические предложения, список использованной литературы и приложение. Работа содержит 29 рисунков и 11 таблиц. Список литературы включает 142 источника, в том числе 58 на иностранных языках.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Работа выполнена в 2007-2011 годы на кафедре терапии, клинической диагностики и радиобиологии ФГБОУ ВПО «Воронежский государственный аграрный университет имени императора Петра I» в соответствии с тематическим планом «Разработка и внедрение научно-обоснованных, экологически безопасных методов диагностики, лечения и профилактики массовых болезней животных в условиях ЦЧЗ». Ряд лабораторных исследований проведены в ГУ «Воронежская областная ветеринарная лаборатория».

Активность аминотрансфераз сыворотки крови изучена у 396 свиней различных половозрастных групп: 173 свиноматок (54 - ремонтные свинки, 19 — холостые, 82 - супоросные и 18 — подсосные свиноматки), 9 хряков, 107 поросят группы доращивания и 107 свиней на откорме, принадлежащих 7 специализированным свиноводческим хозяйствам Воронежской области: ООО «СГЦ», ООО «Вишневский» Верхнехавского р-на, ЗАО «9-ая Пятилетка» Лискинского, ООО «Красная Поляна», Грибановского, ООО «Октябрь» Бутурлиновского, ЗАО «Родина» Россошанского р-на) и Белгородской области (ООО «Стригуновский» Борисовского р-на) на свиньях крупной белой породы, дюрок, ландрас и их гибридных помесей с выраженными мясными качествами.

Для оценки здоровья животных было проведено их клиническое исследование, выяснена продуктивность, проведена оценка эпизоотического состояния на основе анализа результатов лабораторных исследований, амбулаторных журналов и схемы противоэпизоотических мероприятий, проведены исследования кормов по показателям питательности и безопасности в соответствии с существующим законодательством.

Для изучения морфологического состояния печени у клинически здоровых свиней с уровнем активности аминотрансфераз выше общепринятых нормативов был произведен убой 16 поросят. Была дана визуальная оценка состояния печени и других внутренних органов. Морфологические исследо-

вания печени выполнены в ГУ «Воронежская областная ветеринарная лаборатория». Гистологические исследования проведены в соответствии с методическими указаниями по патогистологической технике, утвержденными начальником Управления ветеринарии Федерального агентства по сельскому хозяйству от 04 октября 2005 г. При гистологическом исследовании в качестве фиксирующего средства использовали 4% водный раствор формалина, парафиновый метод проводки, изготовление гистологических срезов на санном микротоме, окраску гематоксилин-эозином и исследование полученных гис-топрепаратов под световым микроскопом.

Для изучения влияния питательного состава корма на активность ами-нотрансфераз сыворотки крови поросят на доращивании и определения оптимальных концентраций питательных компонентов корма, обеспечивающих поддержание активности аминотрансфераз в пределах принятых норм, было сформировано 12 опытных групп поросят на доращивании (107 гол.) нескольких свиноводческих комплексов с различным уровнем кормления. В течение 20 - 30 дней за животными велось клиническое наблюдение, учитывались случаи падежа. Во время опытов не проводилась смена кормов. В конце опыта от животных отбирали кровь и корма для лабораторных исследований. Лабораторную оценку кормов проводили по показателям безопасности и питательности.

Для оценки питательной ценности кормов проведен общий зоотехнический анализ: сырой протеин (ГОСТ Р 50466-93; ГОСТ 13496.4-93), сырая клетчатка (ГОСТ 13496.2-91), сырой жир (ГОСТ 13496.15-97), сырая зола (ГОСТ 26226-95), кальций (ГОСТ 26570-95), фосфор (ГОСТ 26657-97), влага

- с использованием влагомеров «ЯаЛопиз». Микроэлементы Ге, Мп, Си) определяли методом атомной абсорбции (ААС) - ГОСТ Р 51637-2000, ГОСТ 30692-2000, аминокислотный состав с использованием аминокислотного анализатора ААА-400 (жидкостная хроматография с использованием нингидри-нового реактива), витамины А, Д3, Е с помощью жидкостной хроматографии

- ГОСТ Р 50928-96.

Содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина в крови животных определяли с помощью гематологического анализатора АЬасг^'ипюгуе! 5, общий белок рефрактометрическим методом, белковые фракции нефеломет-рическим методом, неорганический фосфор, мочевину, аминотрансферазы (АсАТ, АлАТ) с использованием наборов ЬасЬета, общий кальций с использованием наборов Витал, микроэлементы (Ъп, Ре, Мп, Си) - методом атомной абсорбции (ААС), витамины А, Д и Е с использованием жидкостной хроматографии, аминокислотный состав - с использованием аминокислотного анализатора ААА-400.

Для изучения влияния питательного состава корма на активность аминотрансфераз сыворотки крови свиней проведен корреляционный анализ между содержанием отдельных питательных веществ корма и активностью АсАТ и АлАТ. Для выяснения оптимальных концентраций отдельных компонентов корма, обеспечивающих активность аминотрансфераз сыворотки крови поросят в пределах принятых норм, проведен графический анализ ме-

жду изменением концентрации питательных веществ корма и активностью аминотрансфераз у этих животных.

Для определения состояния белкового питания поросят на доращивании в современных свиноводческих хозяйствах Центрально-Черноземного региона России относительно полученных данных по нормализации активности аминотрансфераз сыворотки крови были проведены исследования 17 проб комбикормов.

Для изучения возможности и целесообразности коррекции активности аминотрансфераз у свиней путем изменения питательного состава комбикорма была разработана модель рациона для поросят на доращивании, обеспечивающая поддержание активности аминотрансфераз в пределах принятых норм, и проведены его производственные испытания в условиях ООО с-з «Вишневский» Верхнехавского р-на Воронежской области.

По принципу парных аналогов было сформировано 2 группы животных, опытная и контрольная по 430 голов. От 30 поросят каждой группы в начале и конце опыта была отобрана кровь для проведения морфологических и биохимических исследований; проведено взвешивание поросят. Поросята контрольной группы находились на общехозяйственном рационе (ОР). Животные опытной группы в течение 21 дня получали комбикорм, разработанный по нашей рецептуре. Для снижения стресса, связанного с переходом на новые корма, в первые три дня комбикорм СК-4 скармливали в смеси с престартером: в первый день концентрация комбикормов СК-4 составляла 1/3, второй Vi и третий 2/3 от общего количества корма.

В течение опыта за поросятами вели ежедневное наблюдение, при этом учитывали их клиническое состояние и потребление корма.

Расчет опытного рецепта комбикорма производился с помощью специальной компьютерной программы «Корм - Оптима». На основании разработанного рецепта в ООО «Верхнехавский Элеватор» был произведен комбикорм для опытной группы, там же и комбикорм для контрольной группы по общехозяйственному рациону.

Для определения реального состава полученных комбикормов были проведены их лабораторные исследования.

Для обработки материалов использовались статистические методы, а также методы математического моделирования и аппроксимации, принятые в биологии и медицине.

Обработка результатов исследований проводилась с использованием пакета прикладных программ Microsoft Excel 2007 для PC.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Активность аминотрансфераз сыворотки крови свиней различных половозрастных групп в условиях промышленных свиноводческих

комплексов

Результаты изучения активности аминотрансфераз у свиней представлены в таблице 1 (единицы измерения активности АлАТ и АсАТ ммоль/л-ч).

Таблица 1. Активность аминотрансфераз сыворотки крови свиней промыш-_ленных комплексов Центрально-Черноземного региона России_

Показатели тт-тах Среднее значение Выше нормы, % Ниже нормы, % Кратность превышения нормы,%

1,5 | 2,0 | 3,0 | 4,0

Хряки (п= 9)

АсАТ 0,3-2,28 1,05±0,39 77,78 22,22 71,42 14,29 14,29

АлАТ 0,61-1 0,72±0,09 22,22 55,56 100

АсАТ/ АлАТ 0,46-3,17 1,47±0,54 22,22 77,78 50 50

Свинки ремонтные (п=54)

АсАТ 0,22-1,30 0,67±0,26 35,19 24,07 84,22 15,78

АлАТ 0,28-2,56 1,30±0,48 77,78 0 19,04 57,15 19,04 4,77

АсАТ/ АлАТ 0,23-1,01 0,59±0,24 1,85 87,04

Свиноматки холостые (п=19)

АсАТ 0,26-0,70 0,39±0,10 0 63,16

АлАТ 0,26-1,65 0,63±0,30 21,04 0 25 75

АсАТ/ АлАТ 0,23-1,32 0,77±0,26 0 68,42

Свиноматки супоросные (п=82)

АсАТ 0,12-1,14 0,49±0,19 13,41 43,90 100

АлАТ 0,22-2,61 1,02±0,50 57,32 1,22 38,30 36,17 21,28 4,25

АсАТ/ АлАТ 0,12-1,55 0,57±0,22 0 87,80

Подсосные свиноматки (п=18)

АсАТ 0,3-0,71 0,41 ±0,09 0 66,67

АлАТ 0,21-1,54 0,69±0,38 27,78 0 100

АсАТ/ АлАТ 0,33-1,09 0,74±0,23 0 72,22

Поросята на доращивании (п=107)

АсАТ 0,25-2,23 0,91±0,37 49,53 10,28 52,73 43,64 3,63

АлАТ 0,25-2,5 1,09±0,35 79,44 0 49,41 41,17 9,41 1,17

АсАТ/ АлАТ 0,26-4,05 0,88±0,37 3,74 60,75 75 25

Откорм (п=107)

АсАТ 0,2-1,3 0,54±0,18 14,95 29,91 87,5 12,5

АлАТ 0,22-2,5 0,73±0,28 32,71 0 65,71 14,29 20

АсАТ/ АлАТ 0,25-1,83 0,84±0,28 0,93 64,49

По данным таблицы, активность аспартатаминотрансферазы в сыворотке крови свиней, содержащихся в условиях промышленных свиноводческих комплексов Центрально-Черноземного региона России, находится в пределах 0,12-2,28 ммоль/л-ч, активность аланинаминотрансферазы - 0,21- 2,61 ммоль/л-ч, коэффициент де Ритиса в - 0,12-4,05.

Активность аспартатаминотрансферазы повышена (относительно общепринятых нормативов 0,8 ммоль/л-ч) у 77,78 % хряков, 39,19% ремонтных

свинок, 13,41% супоросных свиноматок, 49,53% поросят на доращивании и у 14,95% свиней на откорме. Повышенная активность аланинаминотрансфера-зы (выше 0,7 ммоль/л-ч) установлена у 22,22% хряков, 77,78% ремонтных свинок, 21,04% холостых свиноматок, 57,32% супоросных свиноматок, 27,78%) подсосных свиноматок, - 79,44 поросят на доращивании и у 32,71% свиней на откорме. Коэффициента де Ритиса повышен у 22,22% хряков, 1,85% ремоншых свинок, 3,74% поросят на доращивании и у 0,93% свиней на откорме.

При этом степень увеличения активности аминотрансфераз составляет 1,5-3 раза от верхней границы общепринятых нормативов, что в соответствии с классификацией, принятой в медицине (Курбатова Е.А., 2006), относится к легкой степени ферментации. Умеренная степень увеличения активности аланинаминотрансферазы (в 4 раза) отмечена у 3,7% ремонтных свинок, у 2,43% супоросных свиноматок и 0,93% поросят на доращивании.

3.2. Гистологическая характеристика печени поросят при легкой степени повышения активности аминотрансфераз

Для изучения морфологического состояния печени животных с повышенным уровнем активности аминотрансфераз был произведен убой 16 поросят на доращивании. Результаты биохимических исследований крови поросят перед убоем представлены в таблице 2, а результаты гистологических исследований на рисунках 1 и 2.

Из таблицы 2 видно, что активность аспартатаминотрансферазы у подопытных поросят находилась в пределах 0,64-1,30 ммоль/л-ч и в среднем составляла 1,02 ммоль/л-ч, при этом у 81,25% животных уровень активности АсАТ превышал установленную норму. Кратность превышения активности АсАТ находилась в пределах 1,15-1,62 раза. Активность аланинаминотрансферазы находилась в пределах 1,16-1,96 и в среднем составляла 1,62 ммоль/л-ч. Активность АлАТ была повышенной у всех животных, при этом кратность превышения находилась в пределах 1,65-2,80 раза.

Таким образом, у поросят, отобранных для изучения гистологической структуры печени, активность аминотрансфераз была повышена в легкой степени, то есть в пределах трехкратного увеличения, что оказалось характерным для современного свиноводства.

При визуальной оценке печени убитых поросят патологических изменений не установлено. Печень темно-коричневого цвета, равномерно окрашена, умеренно плотной консистенции с острыми краями.

При исследовании гистологических срезов от 16 поросят у 14 голов (87,5%) морфологических изменений в печени не обнаружено (рис. 1). Центральные и междольковые вены умеренно кровенаполнены, балочное строение клеток не нарушено, ядра нормальной формы и величины, изменения в гепатоцитах отсутствуют.

Таблица

Биохимические показатели крови поросят перед убоем_

№ п/п АсАТ, ммоль/л-ч АлАТ ммоль/л-ч АсАТ/ АлАТ Общий белок, г/л Белковые фракции, % Мочевина, ммоль/л

Альбумины а-глобулины Р-глобулины у-глобулины

1 0,71 1,76 0,4 77 39,51 16,18 20,18 24,13 5,16

2 1,16 1,92 0,6 75,5 46,20 16,21 20 17,59 5,17

3 0,76 1,48 0,51 75,2 40,80 17,85 18,20 23,15 4,18

4 1,3 1,87 0,69 80,8 42,87 18,82 19,56 18,75 5,64

5 0,84 1,76 0,47 82,9 41,50 15,20 20,10 23,20 4,34

6 1,06 1,96 0,54 78,9 45,38 16,22 18,56 19,84 4,86

7 1,3 1,63 0,8 75,9 41,10 16,41 19,10 23,39 5,72

8 1Д 1,39 0,8 74,6 42,81 17,10 17,95 22,14 4,54

9 0,92 1,57 0,52 80,2 44,10 15,80 18,41 21,69 3,92

10 0,94 1,5 0,62 78,5 45,11 19,83 16,11 18,95 5,09

11 1,03 1,48 0,7 79 42,00 14,81 19,30 23,89 5,08

12 1,16 1,84 0,63 76 42,59 19,28 18,84 19,29 4,26

13 0,96 1,37 0,7 77,1 39,90 17,40 19,70 23,00 4,2

14 0,64 1,16 0,4 82,2 41,27 19,67 20,00 19,06 5

15 1,28 1,44 0,89 81,4 43,29 19,10 20,17 17,44 4,1

16 1,11 1,42 0,78 76,6 42,13 18,60 17,33 21,94 4,32

Норма 0,4-0,8 0,3-0,7 0,91-1,75 75-85 40-50 14-20 16-21 17-25 3,0-5,0

гшп-тах 0,64-1,3 1,16-1,96 0,40-0,89 75,2-82,9 39,51-46,20 14,81-19,83 17,33-20,18 18,75-24,13 3,83-5,72

Среднее 1,02±0,17 1,62±0,20 0,63±0, 12 78,24±2,25 42,54±1,51 17,41±1,41 18,97±0,92 21,09±2,09 4,72±0,49

В печени от двух поросят (рис. 2) установлены незначительные изменения. У них повышена васкуляриза-ция, в печеночных клетках находится небольшое количество капелек жира. По мнению Иванова И.В. и Ковальского П.А. (1969), такие включения жира характерны для определенного физиологического состояния печени и не * • следует принимать их как патологиче-

РЙс.1. Гистологический срез печени по"- ские явления жирового перерождения.

росенка (микрофото, ув.хЮОО) 0ни возникают, когда количество жи-

а ра значительно превышает возможно-

сти его использования. Естественно, . »1* - ¿Л | '' такие изменения являются обратимы-. ' * « ми и не приводят к выходу в кровь "Ж ¿Ш аминотрансфераз. | Таким образом, проведенные ис-

*■■.■„ 'М Щ следования свидетельствуют о том, * . к:- Щ что в условиях современных про-а мышленных свиноводческих ком-

. • • ..,'§ х. " М*-* ££ плексов при повышении в сыворотке

, ,, ЯшАт Ы крови клинически здоровых поросят

Рис.2. Гистологическии срез печени по-

/ л. 1 аап\ на доращивании активности аспартат

росенка (микрофото, ув.хЮОО) 1 г

- и аланинаминотрансферазы соответственно до 1,3 и 2,0 ммоль/л-ч, макроскопических и микроскопических патологических изменений в печени не наблюдается.

3.3. Активность аминотрансфераз сыворотки крови поросят в зависимости от питательного состава корма

Результаты изучения корреляционной зависимости между активностью аминотрансфераз в сыворотке крови поросят на доращивании и питательным составом корма представлены в таблице 3. Эти данные свидетельствуют о влиянии питательного состава корма на активность аминотрансфераз у свиней.

Установлена положительная корреляционная зависимость между содержанием сырого протеина в кормах и активностью АсАТ (г = +0,25) и АлАТ (г = +0,46), то есть увеличение концентрации сырого протеина в кормах поросят приводит к повышению активности аминотрансфераз.

Существует средняя обратная корреляционная зависимость (г от - 0,40 до - 0,70) между содержанием в кормах аргинина, гистидина, лейцина, фени-лаланина, треонина, валина, аспарагиновой и глютаминовой кислот, серина, пролина, глицина, аланина и тирозина и активностью аминотрансфераз сыворотки крови. Лизин оказывает слабо выраженное влияние на активность АсАТ (г= - 0,24), но среднее на АлАТ (г= - 0,51).

Таблица 3. Корреляционная зависимость между показателями питательного _ состава корма и активностью аминотрансфераз_

№ п/п Показатели корма АсАТ АлАТ

1 Сырой протеин 0,25 0,46

2 Аргинин -0,45 -0,69

3 Гистидин -0,61 -0,45

4 Изолейцин -0,09 -0,21

5 Лизин -0,24 -0,51

6 Лейцин -0,45 -0,45

7 Метионин 0,35 -0,02

8 Цистин 0,46 0,61

9 Метионин+Цистин -0,11 0,19

10 Фенил аланин -0,41 -0,52

11 Треонин -0,46 -0,62

12 Валин -0,40 -0,42

13 Аспарагиновая кислота -0,48 -0,61

14 Глютаминовая кислота -0,46 -0,58

15 Серии -0,56 -0,63

16 Пролин -0,52 -0,57

17 Глицин -0,70 -0,58

18 Аланин -0,63 -0,52

19 Тирозин -0,67 -0,70

20 Витамин А -0,71 -0,43

21 Витамин Е -0,22 0,07

22 Витамин Д 0,41 -0,10

23 Сырой жир -0,12 -0,04

24 Сырая клетчатка 0,14 0,31

25 Кальций 0,04 0,27

26 Фосфор 0,07 0,16

27 Медь 0,39 -0,17

28 Цинк 0,38 -0,29

29 Марганец 0,41 0,02

30 Железо 0,34 0,11

Повышение концентрации метионина и цистина в кормах приводит к повышению активность аспартатаминотрансферазы (г=+0,35 и + 0,46), изменение концентрации метионина не оказывает влияния на активность алани-наминотрансферазы (г=-0,02), в то время как увеличение концентрации цистина приводит к повышению активности АлАТ (г=+0,61).

Установлена обратная корреляционная зависимость между содержанием витамина А в кормах и активностью аспартатаминотрансферазы (г = - 0,71) и аланинаминотрансферазы (г = - 0,43) в сыворотке крови, и положительная -между концентрацией витамина Д и активностью аспартатаминотрансферазы (г = + 0,41). На активность аланинаминотрансферазы витамин Д влияния не оказывает (г = — 0,10). Влияние витамина Е на активность аминотрансфераз очень низкое (г = 0,07 - - 0,22).

Сырая клетчатка (г=+0,14 и +0,31) и сырой жир (г= - 0,04 и - 0,12) оказывают слабое и противоположное влияние на активность аспартатами-нотрансферазы и аланинаминотрансферазы.

Минеральные вещества корма (кальций и фосфор) оказывают слабое положительное влияние на активность аминотрансфераз (г=+0,04 - + 0,27), медь, цинк, марганец и железо - среднее (г=+0,34 - + 0,41) - на активность аспартатаминотрансферазы. Марганец и железо не оказывают влияния (г=+0,02 и + 0,11), а медь и цинк слабое отрицательное (г= - 0,17 и - 0,29) на активность аланинаминотрансферазы.

Таким образом, проведенные исследования свидетельствуют как о положительном, так и отрицательном влиянии отдельных питательных компонентов корма на активность аминотрансфераз, наиболее выраженное влияние оказывает белковый и, в частности, аминокислотный состав корма и витамин А, влияние витаминов Е и Д, сырой клетчатки, сырого жира, кальция, фосфора, меди, цинка, марганца и железа менее выражено.

3.4. Моделирование рациона поросят, обеспечивающего активность аминотрансфераз в пределах принятых нормативов

Учитывая установленную нами, зависимость между питательным составом корма и активностью аминотрансфераз, были проведены исследования по разработке модели рациона поросят, обеспечивающего поддержание активности аминотрансфераз в пределах принятых нормативов. С этой целью было построено и проанализировано 60 графиков, отражающих изменения активности аминотрансфераз под влиянием отдельных питательных компонентов корма. Шесть графиков, отражающих изменения активности аминотрансфераз сыворотки крови, общего белка и мочевины поросят под влиянием сырого протеина и аланина представлены в качестве примера (рис. 3-5).

При изучении зависимости между концентрацией сырого протеина в кормах и активностью аминотрансфераз (рис. 3) установлено, что при повышении концентрации сырого протеина до 14,23 % и более происходит увеличение активности АсАТ выше установленной верхней границы нормы, а активность АлАТ превышает верхнюю границу нормы уже при концентрации сырого протеина более 12,5 %.

При этом необходимо отметить, что эти изменения не приводят к чрезмерному повышению концентрации мочевины (верхняя граница нормы 5,8 ммоль/л) (рис. 4) в сыворотке крови при увеличении концентрации сырого протеина в кормах даже более 18,12%. Вместе с тем содержание общего белка в крови снижается за пределы нижней границы нормы (до 6,5 г%) уже при концентрации сырого протеина в кормах выше 13,9. Учитывая оптимальные значения мочевины (которая является конечным продуктом распада белков в организме и может служить критерием оценки усвояемости белка) в сыворотке крови поросят при скармливании кормов с концентрацией протеина от 12,16 до 18,12%, необходимо отметить, что корма с таким содержанием протеина усваиваются организмом поросят довольно полно.

Сырой протеин (14)

Г2.16 13.9 Î456 1S-3 (6.39 16.47 16.49 16.65 16.93 1S.12

Рис.3. Изменение активности аминотранс-фераз при различном содержании сырого протеина в кормах поросят.

9.00

Общий вепок(о%| Мочовина |ммоль/л|

J = -Q.592ln^: +6,5741

.__я -с;:?:1

Сырой ПрОТе>«н(%)

12.16 13.9 14.56 15.1 16.39 16.47 16.49 16.65 16.98 18.12

Рис.4. Изменение концентрации общего белка и мочевины в сыворотке крови поросят при различном содержании сырого протеина в кормах.

Рис.5. Изменение активности амино-трансфераз при различном содержании аланина в кормах.

При изучении линий тренда (рис. 5), отражающих зависимость между изменением концентрации аланина, одной из аминокислот, принимающих активное участие в процессах переаменирования (так как она является донором для ала-нинаминотрансферазы), в кормах для поросят на доращивании и активностью аминотрансфераз сыворотки крови, установлено, что активность АсАТ достигает оптимальных значений при концентрации аланина в кормах 0,69%, а АлАТ - 0,82%. В связи, с чем считаем, что активность аминотрансфераз в сыворотке крови поросят поддерживается в пределах принятых норм при содержании аланина в кормах от 0,7 до 1,0%.

При анализе графического материала, отражающего изменения активности аминотрансфераз под воздействием изменяющейся концентрации других аминокислот в корме, установлено что оптимальной концентрацией аргинина обеспечивающей активность аминотрансфераз в пределах принятых норм, является 1,10-1,37%, гисти-дина не менее 0,48%, метионина и цистина соответственно не более 0,34 и 0,22%, изолейцина в пределах 0,46%, лизина - 1,55, лейцина -0,98 - 1,40, фенилаланина - 0,80-0,95, треонина - 0,55, валина - 0,70-0,75, аспарагиновой кислоты - 1,5-2,0, глютаминовой кислоты - 2,5-3,5, серина - 0,5-1,5, пролина - 1,5-2,0, глицина - 0,5-1,0, тирозина-0,4-0,7%. Определение оптималь-

ных концентрации по остальным питательным компонентам корма не проводили, так как их влияние на активность аминотрансфераз незначительно.

3.5. Оценка белкового питания поросят на доращивании относительно рациона, поддерживающего активность аминотрансфераз в пределах принятых нормативов

Для оценки состояния белкового питания поросят на доращивании в условиях современных промышленных свиноводческих хозяйств Центрально-Черноземного региона России относительно полученной нами модели рациона, обеспечивающего активность аминотрансфераз сыворотки крови в пределах принятых нормативов, был проведен анализ 17 проб комбикормов, используемых в различных хозяйствах.

Как видно из таблицы 4, используемые рационы кормления поросят на доращивании в современных условиях свиноводства не позволяют поддерживать активность аминотрансфераз сыворотки крови в пределах общепринятых величин из-за относительно высокого содержания сырого протеина (94% партии комбикормов), изолейцина и лейцина (57%), метионина и цис-тина (соответственно 71 и 43%), треонина (72%) и низкой концентрации аргинина и гистидина (67%), лизина (57%), фенилаланина и треонина (43%), валина (50%), аспарагиновой кислоты (71%), пролина (57%) и аланина (43%), а также из-за пониженной концентрации глутаминовой кислоты в 29,0% партий комбикормов и 28,0% - повышенной.

Концентрация глицина в 14% партий комбикормов была пониженной и в таком же количестве - повышенной. При этом необходимо отметить, что используемые рационы в современных промышленных свиноводческих хозяйствах позволяют получать довольно высокие среднесуточные приросты массы тела поросят на доращивании (350-450 грамм в сутки) и при этом поддерживать здоровье на должном уровне.

Следовательно, в условиях современного свиноводства при выращивании свиней с интенсивным темпом роста и использовании современных кормов невозможно поддержание активности аминотрансфераз сыворотки крови в пределах принятых нормативов.

3.6. Изучение возможности и целесообразности коррекции активности аминотрансфераз у поросят путем изменения питательного состава

рациона

Для изучения возможности и целесообразности коррекции активности аминотрансфераз в практических условиях в сторону снижения до принятых нормативов путем изменения питательного состава комбикорма был проведен опыт на поросятах на доращивании в ООО с-з «Вишневский».

Из таблицы 5 видно, что в комбикорме поросят опытной группы снижена концентрация сырого протеина до 14,35% с 18,2% в контрольной группе и повышено соответственно содержание лизина до 1,59% с 0,96%; приближены к показателям, поддерживающим активность аминотрансфераз в пределах принятых норм, содержание аргинина, изолейцина, метионина, цистина, треонина, валина, серина, пролина.

Таблица 4

Состояние белкового питания поросят на доращивании относительно смоделированного рациона, обеспечивающего

Показатели ед. изм. Минимальное значение Максимальное значение Среднее значение Модель рациона Отклонения (%)

ниже в пределах рациона выше

Сырой протеин % 12,16 18,08 15,77 12,5 6,0 0 94,0

Аргинин % 0,62 1,11 1,00 1,10-1,37 67,0 33,0 0

Гистидин % 0,32 0,63 0,46 не менее 0,48 67,0 33,0 0

Изолейцин % 0,32 1,58 0,67 0,46 29,0 14,0 57,0

Лизин % 0,65 3,77 1,49 1,55 57,0 29,0 14,0

Лейцин % 0,47 1,39 1,00 0,98-1,40 29,0 14,0 57,0

Метионин % 0,23 0,93 0,46 не более 0,34 0 29,0 71,0

Цистин % 0,20 1,14 0,35 не более 0,22 0 57,0 43,0

Фенилаланин % 0,55 0,95 0,71 0,80-0,95 43,0 57,0 0

Треонин % 0,36 1,00 0,60 0,55 71,0 14,5 14,5

Валин % 0,68 0,76 0,64 0,70-0,75 50,0 50,0 0

Аспарагиновая Кислота % 0,84 2,12 1,39 1,5-2,0 71,0 29,0 0

Серин % 0,46 1,03 0,74 0,5-1,5 0 100 0

Глутаминовая Кислота % 1,92 4,34 3,03 2,5-3,5 29,0 43,0 28,0

Пролин % 0,71 1,61 1,18 1,5-2,0 57,0 29,0 14,0

Глицин % 0,42 1,13 0,75 0,5-1,0 14,0 72,0 14,0

Алании % 0,42 1,09 0,76 0,7-1,0 43,0 57,0 0

Тирозин % 0,26 0,77 0,50 0,4-0,7 14,0 86,0 0

Таблица 5. Питательный состав комбикорма опытной и контрольной

групп

Показатели Модель СК-4 (ОР) СК-4

рациона контрольная опытная

1 2 3 4

Кормовые единицы, в 1 кг 1,14 1,11

Влага, % 9,91±0,50 10,07±0,50

Сырой протеин, % 12,5 18,2±0,56 14,35±0,54

Сырой жир, % 1,78±0,45 1,58±0,45

Сырая зола, % 5,00±0,24 5,94±0,27

Сырая клетчатка, % 3,58±0,91 5,12±0,96

Кальций, % 0,46±0,07 1,01±0,12

Фосфор, % 0,45±0,08 0,47±0,08

Цинк, мг/кг 1910,0±382,0 1810,8±362,17

Железо, мг/кг 366,0±73,20 444,17±88,83

Марганец, мг/кг 63,12±12,62 67,7±13,54

Медь, мг/кг 164,1±32,81 174,5±34,90

Аминокислоты, %:

Аспарагиновая кислота 1,5-2,0 0,85 0,79

Треонин 0,55 0,48 0,54

Серин 0,5-1,5 0,46 0,43

Глютаминовая кислота 2,5-3,5 2,01 2,13

Пролин 1,5-2,0 1,41 1,46

Глицин 0,5-1,0 0,43 0,43

Алании 0,7-1,0 0,44 0,44

Цистин Не более 0,22 0,22 0,25

Валин 0,70-0,75 0,45 0,44

Метионин Не более 0,34 0,26 0,29

Изолейцин 0,46 0,38 0,37

Лейцин 0,98-1,40 0,76 0,76

Тирозин 0,4-0,7 0,28 0,25

Фенилаланин 0,80-0,95 0,52 0,49

Гистидин Не менее 0,48 0,26 0,25

Лизин 1,55 0,96 1,59

Аргинин 1,10-1,37 0,70 0,68

Результаты биохимических исследований крови (табл. 6) свидетельствуют о том, что за период опыта (в течение первых 21 дней) отмечено значительное повышение активности аспартатаминотрансферазы как в опытной, так и контрольной группе, соответственно от 0,64±0,11 до 1,16±0,35 и от 0,70±0,14 до 1,97±0,28 ммоль/л-ч, что соответствует увеличению в 1,81 и 2,81 раза (р<0,05).

При этом необходимо отметить, что активность аспартатаминотрансферазы в конце опыта в контрольной группе была выше, чем в опытной на 69,83%. Данные изменения, по нашему мнению, обусловлены усилением процессов переаминирования в организме поросят, которые сопровождают

более интенсивный прирост живой массы за счет прироста мышечной ткани. Кроме этого, полный переход от материнского молока (идеальный протеин для поросят) на комбикорма также повышает процессы переаминирования.

Изменений активности аланинаминотрансферазы в сыворотке крови поросят опытной группы в течение опыта не отмечено, а в контрольной в конце опыта она повысилась в 1,5 раза (р<0,05). Кроме повышения активности аспартатаминотрансферазы в течение опыта в опытной и контрольной группах было установлено повышение содержания общего белка в 1,17и 1,13 (р<0,05) и мочевины в 1,16 и 1,24 раза соответственно (р<0,05).

Таблица 6. Биохимические показатели сыворотки крови поросят __опытной и контрольной групп_

Показатели Норма Начало опыта Конец опыта

1 2 3 4

Опытная Контрольная Опытная Контрольная

АсАТ, мМ/л-ч 0,4-0,8 0,64±0,11 0,70±0,14 1,16±0,35* 1,97±0,28А*

АлАТ, мМ/л-ч 0,2-0,7 0,91±0,16 0,97±0,27 0,93±0,20 1,45±0,11А*

Коэф.Де Ритиса 0,91-1,75 0,70 0,72 1,24 1,36

Билирубин, мкМ/л 1,4-5,1 4,2±0,92 4,35±0,85 4,43±1,32 4,56±1,25

Белок общий, г/л 75,0-85,0 59,12±3,74 62,16±5,02 69,2±2,90* 70,8±2,60А

Альбумины,% 40-50 45,21±10,1 46,17±9,12 47,86±8,56 47,98±9,34

а- глобулины,% 14-20 15,62±4,32 16,23±7,32 14,56±9,82 15,64±8,64

[5- глобулины,% 16-21 19,56±6,32 18,54±7,84 20,04±6,32 19,54±8,56

у- глобулины,% 17-25 19,61±7,54 19,06±8,32 17,54±9,34 16,84±9,56

Мочевина, мМ/л 3,0-5,0 4,67±1,10 4,11±1,13 5,41±1,23* 5,13±0,84А

Глюкоза, мМ/л 3,0-5,0 4,5±0,12 4,32±0,14 4,54±0,16 4,44±0,15

Липиды общие, г/л 3,0-4,0 3,24±0,11 3,32±0,12 3,45±0,14 3,56±0,18

Холестерин, мМ/л 2,3-3,9 2,54±0,32 2,62±0,43 3,12±0,56 3,15±0,56

Креатинин, мМ/л 62-167 75,6±12,32 78,32±14,6 82,53±15,64* 84,32±17,2а

Са, общий,мМ/л 2,7-3,0 2,25±0,15 2,12±0,15 2,14±0,23 2,23±0,21

Р, неорг., мМ/л 1,9-2,4 2,67±0,10 2,61±0,26 2,58±0,32 2,61±0,24

Медь, мкМ/л 12,5-20,0 15,70±2,44 15,83±2,01 15,29±1,04 17,48±3,68

Цинк, мкМ/л 40,0-55,0 48,85±6,22 47,47±5,84 45,90±3,91 43,78±6,09

Марганец, мкМ/л 2,2-2,8 0,66±0,07 0,57±0,08 0,57±0,10 0,60±0ДЗ

Железо, мкМ/л 6,26-8,95 4,94±0,72 4,76±0,45 5,23±0,35 4,45±0,54

Примечание:*-Рьз<0,05; ж-Р2-4<0,05;*Р3-4<0,05

Результаты исследований, представленные в таблице 7, свидетельствуют о повышении концентрации свободных аминокислот в конце опыта в сыворотке крови поросят как опытной, так и контрольной групп. Увеличение концентрации отдельных свободных аминокислот в сыворотке крови поросят опытной группы произошло в 1,44-3,21 раза, а в контрольной в 1,04-3,14 раза и существенно не отличалось между группами животных.

Гематологические показатели у поросят как опытной, так и контрольной групп в основном были в пределах физиологических нормативов, за исключением пониженного содержания гемоглобина в эритроцитах обеих групп, как в начале, так и в конце опыта.

Таблица 7

Изменения концентрации свободных аминокислот (мкМ/л) в сыворотке крови поросят опытной и контрольной групп

Показатели Начало опыта Конец опыта

Опытная Контрольная Опытная Контрольная

Конец/начало Конец/начало

Аргинин 106,48±11,05 103,49±14,45 153,60±83,16 1,44 130,50±82,75 1,26

Гистидин 49,83±5,40 43,84±1,77 160,22±25,08 3,21 138,03±13,67 3,14

Изолейцин 90,99±23,37 88,47±29,16 141,00±26,43 1,55 134,75±28,32 1,52

Лейцин 82,40± 18,69 78,97±16,62 183,58±37,78 2,23 192,89±30,40 2,44

Лизин 183,24±44,53 184,08±32,76 402,80±275,37 2,2 375,38±101,11 2,04

Метионин 37,91±9,56 30,74±1,01 84,55±20,13 2,23 82,13±12,40 2,67

Треонин 234,24±28,56 215,13±19,26 413,28±89,04 1,76 258,38±31,99 1,2

Валин 154,11±34,31 180,38±37,05 333,96±50,55 2,17 188,96±35,57 1,05

Фенил аланин 57,51±12,11 61,74±13,63 154,38±35,71 2,68 160,43±9,68 2,6

Аспарагиновая к-та 54,09± 12,02 58,03±12,25 112,69±24,04 2,08 66,11±7,51 1,14

Серии 295,18±19,26 311,15±26,05 411,08±89,45 1,39 339,7±34,26 1,09

Глутаминовая к-та 275,95±64,57 210,79±22,43 687,85±82,24 2,49 453,35±48,25 2,15

Глицин 659,34± 121,21 546,42±63,94 1246,75±251,75 1,89 568,76±97,24 1,04

Аланин 677,89±99,89 695,17±120,09 1282,83±281,70 1,89 897,87±116,72 1,29

Результаты проведенных исследований свидетельствуют о том, что, не смотря на общее повышение активности аминотрансфераз у поросят обеих групп в течение опыта, нам удалось понизить активность аспартат- и алани-наминотрансферазы в 1,7 и 1,6 раза соответственно (с 1,97 до 1,16 и с 1,45 до 0,93 ммоль/л-ч ) (р<0,05) путем коррекции рациона, включающей снижение сырого протеина с 18,2 до 14,35% и повышение концентрации лизина до 1,59%, треонина - 0,54%, пролина -1,46% и метионина до 0,29%.

3.7. Влияние коррекции протеинового и аминокислотного состава комбикорма на производственные показатели выращивания поросят

Результаты анализа производственных показателей выращивания поросят при коррекции рациона с целью снижения активности аминотрансфераз представлены в таблице 8.

Из таблицы видно, что снижение концентрации сырого протеина и коррекция аминокислотного состава рациона приводит не только к снижению активности аминотрансфераз, но и к снижению производственных показателей. В частности, отмечено снижение среднесуточных привесов, увеличены расход и конверсия корма и в целом затраты на тонну живой массы. При этом коррекция рациона не оказала влияния на здоровье поросят.

Таким образом, проведенные исследования свидетельствуют о том, что у поросят на доращивании возможно снижение активности аминотрансфераз с помощью коррекции рациона, но экономически нецелесообразно (табл. 8).

Исходя из полученных данных по изучению гистологического состояния печени при легкой степени повышения активности аминотрансфераз, возможности и целесообразности коррекции активности аминотрансфераз у поросят путем изменения питательной ценности рациона и влияния этой коррекции на производственные показатели выращивания поросят, можно заключить, что в условиях современного свиноводства выявляемые показатели активности АсАТ и АлАТ в сыворотке крови поросят отражают состояние продуктивного здоровья животных и уровень происходящих процессов переаминирования.

Таблица 8

Производственные показатели поросят опытной и контрольной групп

Показатели Группы животных

опытная контрольная

Количество поросят, гол. 430 430

Масса тела животного на начало опыта, кг 10,00 10,00

Масса тела животного на конец опыта, кг 18,4 19,8

Среднесуточный прирост массы тела, г/сутки 400,0 467,0

Расход корма, кг/гол. 22,24 19,36

Потребление корма, г/сутки 1059 922

Конверсия корма, кг/кг 2,65 1,98

Стоимость 1 т. корма, руб. 17183 19891

Затраты на 1 тонну живой массы, руб. 45494 39295

Сохранность, % 100% 100%

Заболело,% 0 0

4. ВЫВОДЫ

1. У свиней крупной белой породы, дюрок, ландрас и их гибридных помесей с выраженными мясными качествами при интенсивной технологии выращивания и эксплуатации активность аспартатаминотрансферазы находится в пределах 0,12-2,28 ммоль/ л-ч, аланинаминотрансферазы - 0,21- 2,61 ммоль/л-ч, коэффициент де Ритиса - 0,12- 4,05.

2. Активность АсАТ и АлАТ повышена относительно общепринятых нормативов соответственно у 77,78 и 22,22% хряков, 39,19 и 77,78% ремонтных свинок, 13,41 и 57,32% супоросных свиноматок, 49,53 и 79,44% поросят на доращивании, 14,95% и 32,71% свиней на откорме. Коэффициент де Ритиса повышен у 22,22% хряков, 1,85% ремонтных свинок, 3,74% поросят на доращивании и у 0,93% свиней на откорме.

3. В условиях современных промышленных свиноводческих комплексов у поросят на доращивании повышение активности аспартат - и аланинаминотрансферазы соответственно до 1,3 и 2,0 ммоль/л-ч при отсутствии клинических признаков поражения печени и других положительных лабораторных тестов не является отражением гепатопатий.

4. Активность аминотрансфераз находится в корреляционной зависимости от содержания в кормах рациона сырого протеина (г = +0,25 - +0,46), метионина (г=+0,35 и + 0,46), цистина (г=+0,61), витамина Д (г = + 0,41), меди, цинка, марганца и железа (г=+0,34 - + 0,41), аргинина, гистидина, лейцина, фенилаланина, треонина, валина, аспарагиновой и глютаминовой кислот, серина, пролина, глицина, аланина и тирозина (г = - 0,40 - - 0,70), лизина (г=

- 0,24- - 0,51), витамина А (г = - 0,43 - - 0,71), витамина Е (г = 0,07 - - 0,22).

5. Используемые рационы кормления поросят на доращивании, направленные на увеличение темпов их роста, не позволяют поддерживать активность аминотрансфераз сыворотки крови на уровне общепринятых норм из-за относительно высокого содержания сырого протеина (94% партий комбикормов), изолейцина и лейцина (57%), метионина и цистина (соответственно 71 и 43%), треонина (72%) и низкой концентрации аргинина и гистидина (67%), лизина (57%), фенилаланина и треонина (43%), аспарагиновой кислоты (71%), пролина (57%) и аланина (43%).

6. Для оптимизации активности аминотрансфераз в сыворотке крови поросят на доращивании в комбикормах должна быть концентрация сырого протеина 12,5%, аргинина 1,10-1,37%, гистидина не менее 0,48%, метионина и цистина соответственно не более 0,34 и 0,22%, изолейцина в пределах 0,46%, лизина - 1,55, лейцина - 0,98-1,40, фенилаланина - 0,80-0,95, треонина

- 0,55, валина - 0,70-0,75, аспарагиновой кислоты - 1,5-2,0, глютаминовой кислоты - 2,5-3,5, серина - 0,5-1,5, пролина - 1,5-2,0, глицина - 0,5-1,0, аланина -0,7-1,0 и тирозина - 0,4-0,7%.

7. С корректированный рацион, поддерживающий активность аминотрансфераз в пределах общепринятых нормативов, экономически нецелесообразен ввиду снижения темпов прироста массы тела животных, повышения расхода и конверсии корма.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. В условиях интенсивного выращивания свиней при оценке результатов лабораторных исследований сыворотки крови считать, что активность аспартатаминотрансферазы до 1,3 ммоль/л-ч и аланинаминотрансферазы до 2,0 ммоль/л-ч у поросят на доращивании при отсутствии клинических признаков поражения печени и других положительных лабораторных тестов не является отражением гепатопатий, а зависит от уровня содержания в рационе сырого протеина, метионина+цистина, лизина, аргинина, гистидина, лейцина, фенилаланина, треонина, валина, аспарагиновой и глютаминовой кислот, се-рина, пролина, глицина, аланина, тирозина, витаминов А, Д, меди, цинка, марганца и железа.

2. Материалы диссертации рекомендуется использовать в учебном процессе по биохимии, физиологии, клинической диагностике и внутренним незаразным болезням животных при подготовке специалистов зооветеринарного профиля и включить их в соответствующие учебно-методические пособия.

6. СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ

1. Шумский Ю.Н. Функциональная активность печени и биохимический статус крови у свиноматок / Ю.Н. Шумский // Инновационные технологии и технические средства для АПК: Материалы межрегиональной научно-практической конференции молодых ученых,- Ч. III,- Воронеж: ФГОУ ВПО ВГАУ, 2009,- С. 113-115.

2. Шумский Ю.Н. Оптимизация технологии производства свинины/ Ю.Н. Шумский// Материалы межрегиональной научно-практической конференции «Ресурсосберегающие технологии в сельскохозяйственном производстве и технические средства их реализации»,- Воронеж, 2009.- С.59.

*3. Шумский Ю.Н. Активность аминотрансфераз сыворотки крови поросят в зависимости от минерального состава рациона / Ю.Н. Шумский, И. А. Никулин, Н.И. Шумский//Ветеринарный врач.- 2010.- №3.- С. 48-51.

4. Шумский Ю.Н. Активность аминотрансфераз у свиней в условиях современного свиноводства/ Ю.Н. Шумский, И.А. Никулин, Н.И. Шумский// Материалы международной научно-практической конференции, посвященной 40-летию ГНУ ВНИВИПФиТ «Актуальные проблемы болезни обмена веществ у сельскохозяйственных животных в современных условиях»,- Воронеж, 2010.- С. 276-278.

5. Шумский Ю.Н. Гистоморфологическая характеристика печени поросят при легком повышении активности аминотрансфераз сыворотки крови /Ю.Н. Шумский, И.А. Никулин, Н.И. Шумский// Материалы международной научно-практической конференции, посвященной 40-летию ГНУ ВНИВИПФиТ «Актуальные проблемы болезни обмена веществ у сельскохозяйственных животных в современных условиях».- Воронеж, 2010,- С. 279-281.

*6. Шумский Ю.Н. Влияние белкового и витаминного состава рациона на активность аминотрансфераз в сыворотки крови у свиней / Ю.Н. Шум-

ский, И.А. Никулин, Н.И. Шумский // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии.-Курск.-2012.-№ 1 .-С. 102-103.

7. Шумский Ю.Н. Активность аминотрансфераз сыворотки крови свиней современных мясных пород различных половозрастных групп / Ю.Н.Шумский, Н.И. Шумский, И.А. Никулин // Материалы Международной научно-практической конференции: Ветеринарная медицина XXI века. Инновации, обмен опытом и перспективы развития,- ФГБОУ ВПО «Саратовский ГАУ», 2012,- С.351-355.

*- издания из Перечня ведущих рецензируемых научных журналов и изданий ВАК РФ.

Подписано в печать 12.05.2012 г. Формат 60x84/16. Гарнитура «Times New Roman». Печать цифровая. Бумага офсетная. Усл. печ. л. 1,0. Тираж 100. Заказ 547

Отпечатано в типографии ООО РА «Оптовик Черноземья» 394043, Воронеж, ул. Ленина, д. 73 тел.: (473) 239-84-71

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Шумский, Юрий Николаевич

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Аминотрансферазы и факторы, вызывающие изменения их активности.

1.1.1. Морфофункциональное состояние печени при изменении активности аминотрансфераз.

1.1.2. Интерпретация результатов лабораторных исследований аминотрансфераз и диагностическая тактика при повышении их активности.

1.1.3.Коррекция активности аминотрансфераз.

1.2.Анализ литературных данных.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Активность аминотрансфераз сыворотки крови свиней различных физиологических групп в условиях промышленных свиноводческих комплексов.

3.2. Гистологическая характеристика печени поросят при повышенной активности аминотрансфераз.

3.3. Активность аминотрансфераз сыворотки крови поросят в зависимости от питательного состава корма.

3.4. Моделирование рациона поросят, обеспечивающего активность аминотрансфераз в пределах принятых нормативов.

3.5. Оценка белкового питания поросят на доращивании относительно рациона, поддерживающего активность аминотрансфераз в пределах принятых нормативов.

3.6. Изучение возможности коррекции активности аминотрансфераз у поросят путем изменения питательного состава рациона.

3.7. Влияние коррекции протеинового и аминокислотного состава комбикорма на производственные показатели выращивания поросят.

3.8. Анализ результатов собственных исследований.

4. ВЫВОДЫ.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Активность аминотрансфераз сыворотки крови свиней в зависимости от питательного состава корма"

Актуальность темы. В соответствии с отраслевой целевой программой «Развитие свиноводства в Российской Федерации на 2010-2012 годы» предусмотрено увеличение производства свинины к 2012 году до 2,7 млн. т, а численности свиней до 23,3 млн. голов, что позволит произвести импортоза-мещение свинины на отечественном рынке с 29% в 2009 г. до 14% в 2012 г., а к 2020 г. - полностью обеспечить рынок отечественной продукцией.

Достичь вышеуказанных показателей в свиноводстве возможно только при использовании здорового поголовья. Для оценки состояния здоровья животных и своевременного выявления патологии необходимы точные критерии его оценки, в том числе и основанные на лабораторной диагностике. Одним из критериев оценки биохимического статуса животных является определение активности аминотрансфераз, в частности, аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы, несущих информацию о состоянии белкового обмена у животных и функционального состояния печени. Вместе с тем у исследователей (Н.И. Кузнецов и др., 1985, 1989; В.Д. Мисайлов и др., 1997; А.Н. Гречухин, 2010; В.М. Холод, Г.Ф. Ермолаев, 1988; Ион Морару, 2011) нет единого мнения об оптимальных величинах активности аминотрансфераз у свиней.

При этом ряд исследователей (А.Н. Гречухин, 2010; В.М. Холод, Г.Ф. Ермолаев, 1988; Ион Морару, 2011) указывают, что активность аминотрансфераз у свиней зависит не только от состояния печени, но и от возраста животного, пола и интенсивности эксплуатации.

По данным Всероссийского научно-исследовательского ветеринарного института патологии фармакологии и терапии (2005) оптимальными значениями активности аспартатаминотрансферазы для свиней являются 0,4-0,8 , а активности аланинаминотрансферазы 0,3-0,7 ммоль/ л-ч.

Проведенный анализ ветеринарной отчетности Воронежской области, в том числе и отчетной информации ГУ «Воронежская областная ветеринарная лаборатория» (годовые отчеты 2004-2010 гг.), свидетельствует о том, что в последнее время в крупных свиноводческих хозяйствах области значительно снизилось распространение клинически выраженной незаразной патологии у свиней. Вместе с тем довольно часто отмечается повышение активности аминотрансфераз (аспартатаминотрансферазы более 0,8, а аланинами-нотрансферазы более 0,7 ммоль/ л-ч) при отсутствии клинических признаков заболевания печени у животных, что вызывает беспокойство у животноводов.

Цель и задачи исследований. Целью наших исследований было выяснение причин повышения активности аминотрансфераз в сыворотке крови клинически здоровых свиней в условиях современного ведения свиноводства и целесообразности ее коррекции за счет изменения питательного состава корма.

В связи с этим были поставлены следующие задачи:

• дать оценку активности аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы сыворотки крови клинически здоровых свиней различных половозрастных групп в условиях промышленной технологии ведения современного свиноводства;

• изучить морфологические изменения печени клинически здоровых поросят на доращивании при повышенной активности аминотрансфераз;

• определить зависимость между питательным составом корма и активностью аминотрансфераз сыворотки крови свиней;

• изучить возможность и целесообразность коррекции активности аминотрансфераз путем изменения питательного состава рациона.

Научная новизна исследований. Определены нормативы активности аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы в сыворотке крови клинически здоровых свиней при интенсивном выращивании.

Установлена зависимость активности аминотрансфераз от уровня протеинового, аминокислотного, витаминного и минерального состава корма и показано, что повышение активности АсАТ и АлАТ соответственно до 1,3 и 2,0 ммоль/л'Ч в сыворотке крови у поросят на доращивании не является отражением гепатопатий.

Разработана и испытана в практических условиях модель рациона, обеспечивающая поддержание активности аминотрансфераз в пределах принятых норм, и показано, что использование такого рациона снижает интенсивность роста поросят и ведет к экономическим потерям.

Практическая значимость работы. Предложены нормативы активности аминотрансфераз в сыворотке крови свиней для лабораторного контроля за состоянием здоровья животных в условиях современного свиноводства. Подтверждена целесообразность использования высокого протеинового и аминокислотного питания поросят в период их доращивания.

Материалы диссертации используются в учебном процессе для студентов факультета ветеринарной медицины Воронежского ГАУ, Ставропольского ГАУ, Донского ГАУ, Кубанского ГАУ, Волгоградской ГСХА.

Апробация работы. Основные материалы диссертации были представлены на межрегиональной научно-практической конференции молодых ученых «Инновационные технологии и технические средства для АПК» (Воронеж, 2009); межрегиональной научно-практической конференции «Ресурсосберегающие технологии в сельскохозяйственном производстве и технические средства их реализации (Воронеж, 2009); международной научно-практической конференции, посвященная 40-летию ГНУ ВНИВИПФиТ (Воронеж, 2010); научно-практических конференциях профессорско-преподавательского состава и аспирантов ВГАУ им. К.Д. Глинки (20082010); международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина XXI века. Инновации, обмен опытом и перспективы развития» (Саратов, 2012).

Публикации результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 7 научных статей, в том числе 2 в издании, рекомендованном ВАК.

Основные положения, выносимые на защиту:

- активность аланин- и аспартатаминотрансферазы сыворотки крови клинически здоровых свиней различных половозрастных групп в условиях современного промышленного свиноводства;

- морфологическое состояние печени поросят на доращивании при повышенной активности аминотрансфераз;

- влияние питательного состава рациона поросят на активность аминотрансфераз;

- возможность и целесообразность коррекции активности аминотрансфераз сыворотки крови поросят путем изменения питательного состава корма.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение Диссертация по теме "Биохимия", Шумский, Юрий Николаевич

4. ВЫВОДЫ

1. У свиней крупной белой породы, дюрок, ландрас и их гибридных помесей с выраженными мясными качествами при интенсивной технологии выращивания и эксплуатации активность аспартатаминотрансферазы находится в пределах 0,12-2,28 ммоль/ л-ч, аланинаминотрансферазы - 0,21- 2,61 ммоль/л'Ч, коэффициент де Ритиса - 0,12- 4,05.

2. Активность АсАТ и АлАТ повышена относительно общепринятых нормативов соответственно у 77,78 и 22,22% хряков, 39,19 и 77,78% ремонтных свинок, 13,41 и 57,32% супоросных свиноматок, 49,53 и 79,44% поросят на доращивании, 14,95% и 32,71% свиней на откорме. Коэффициент де Ритиса повышен у 22,22% хряков, 1,85% ремонтных свинок, 3,74% поросят на доращивании и у 0,93% свиней на откорме.

3. В условиях современных промышленных свиноводческих комплексов у поросят на доращивании повышение активности аспартат - и аланинаминотрансферазы соответственно до 1,3 и 2,0 ммоль/ л-ч при отсутствии клинических признаков поражения печени и других положительных лабораторных тестов не является отражением гепатопатий.

4. Активность аминотрансфераз находится в корреляционной зависимости от содержания в кормах рациона сырого протеина (г = +0,25 - +0,46), ме-тионина (г=+0,35 и + 0,46), цистина (г=+0,61), витамина Д (г = + 0,41), меди, цинка, марганца и железа (г=+0,34 - + 0,41), аргинина, гистидина, лейцина, фенилаланина, треонина, валина, аспарагиновой и глютаминовой кислот, се-рина, пролина, глицина, аланина и тирозина (г = - 0,40 - - 0,70), лизина (г= -0,24- - 0,51), витамина А (г = - 0,43 - - 0,71), витамина Е (г = 0,07 - - 0,22).

5. Используемые рационы кормления поросят на доращивании, направленные на увеличение темпов их роста, не позволяют поддерживать активность аминотрансфераз сыворотки крови на уровне общепринятых норм из-за относительно высокого содержания сырого протеина (94% партий комбикормов), изо лейцина и лейцина (57%), метионина и цистина (соответственно 71 и 43%), треонина (72%) и низкой концентрации аргинина и гистидина (67%), лизина (57%), фенил ал анина и треонина (43%), аспарагиновой кислоты (71%), пролина (57%) и аланина (43%).

6. Для оптимизации активности аминотрансфераз в сыворотке крови поросят на доращивании в комбикормах должна быть концентрация сырого протеина 12,5%, аргинина 1,10-1,37%, гистидина не менее 0,48%, метионина и цистина соответственно не более 0,34 и 0,22%, изолейцина в пределах 0,46%, лизина - 1,55, лейцина - 0,98-1,40, фенилаланина - 0,80-0,95, треонина - 0,55, валина - 0,70-0,75, аспарагиновой кислоты - 1,5-2,0, глютаминовой кислоты - 2,5-3,5, серина - 0,5-1,5, пролина - 1,5-2,0, глицина - 0,5-1,0, аланина -0,7-1,0 и тирозина - 0,4-0,7%.

7. С корректированный рацион, поддерживающий активность аминотрансфераз в пределах общепринятых нормативов, экономически нецелесообразен ввиду снижения темпов прироста массы тела животных, повышения расхода и конверсии корма.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1 .В условиях интенсивного выращивания свиней при оценке результатов лабораторных исследований сыворотки крови считать, что активность аспар-татаминотрансферазы до 1,3 ммоль/л-ч и аланинаминотрансферазы до 2,0 ммоль/л-ч у поросят на доращивании при отсутствии клинических признаков поражения печени и других положительных лабораторных тестов не является отражением гепатопатий, а зависит от уровня содержания в рационе сырого протеина, метионина+цистина, лизина, аргинина, гистидина, лейцина, фени-лаланина, треонина, валина, аспарагиновой и глютаминовой кислот, серина, пролина, глицина, аланина, тирозина, витаминов А, Д, меди, цинка, марганца и железа.

2. Материалы диссертации рекомендуется использовать в учебном процессе по биохимии, физиологии, клинической диагностике и внутренним незаразным болезням животных при подготовке специалистов зооветеринарного профиля и включить их в соответствующие учебно-методические пособия.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Шумский, Юрий Николаевич, Курск

1. Апросина З.Г. Клиническая иммунопатология, обусловленная вирусом гепатита В. / З.Г. Апросина, В.В. Серов // Рос. журн. гастроэнтерол. -1993.-№2.-С. 27-33.

2. Апросина З.Г. Последние достижения в изучении вирусных гепатитов: от молекулярной биологии к лечению вирусного гепатита В. / З.Г. Апросина // Рус. мед. журн., 1996.- Т.4, №3- С. 174-179.

3. Апросина З.Г. Хронический активный гепатит как системное заболевание /З.Г. Апросина.- М., 1981.- 146 с.

4. Бабак О.Я. Рациональная диагностика и фармакотерапия заболеваний органов пищеварения / О.Я. Бабак, Н.В. Харченко.- Справочник «VADEMECUM Доктор Гастроэнтеролог». Серия «Библиотека «Здоровья Украши» DJVU., 2007.- 134 с.

5. Балаян М.С.Вирусные гепатиты. Энциклопедический словарь / М.С. Балаян, Михайлов М.И.- М.: Амипресс, 1999 304 с.

6. Блюгер А. Ф. Основы гепатологии / А.Ф. Блюгер.- Руководство для врачей. Рига: Издательство «Звайгзне», 1988. 414 с.

7. Блюгер А. Ф. Проблемы перекисного окисления липидов в гепатологии / А.Ф. Блюгер, А.Я. Майоре // Успехи гепатологии.- Рига, РМИ: 1978 . -Вып . 7 . С. 22 - 54 .

8. Блюгер А.Ф. Механизмы гиперферментемии при патологических процессах / А.Ф. Блюгер // В сб.: Ферменты в медицине, пищевой промышленности и сельском хозяйстве.- Киев: Наукова думка, 1968.- С. 55-58.

9. Блюгер А.Ф. Тайны и парадоксы печени (Азбука гепатологии). М.: Знание, 1988.- 224 с.

10. Блюгер А.Ф. К вопросу о механизме повышения активности некоторых ферментов сыворотки крови при действии сильных раздражителей / А.Ф. Блюгер, Н.Л. Беленький, Я.Я. Шустер // Вопросы мед. химии.- 1964 Т. 10. -Вып. 1. - С. 12-15.

11. Блюгер А.Ф. и Новицкий И.Н. Практическая гепатология / А.Ф. Блюгер, И.Н. Новицкий.- Рига, 1984.- 205 с.

12. Браунштейн А.Е. Процессы и ферменты клеточного метаболизма / А.Е. Браунштейн. М.: Наука, 1987. - 546 с.

13. Великанов В.В. Натрия гипохлорит и энтеросорбент СВ-1 при токсической гепатодистрофии поросят / В.В. Великанов, С.С. Абрамов // Ветеринария. 1999. -№ 12. - С. 45-47.

14. Вилкинсон Д. Принципы и методы диагностической энзимологии / Д. Вилкинсон М.: Медицина, 1981.- 624 с.

15. Вислогузов A.M. Применение дипромония для профилактики и лечения гепатозов свиней: Автореф. дис. кан. вет. наук / A.M. Вислогузов. -Воронеж, 1996.-20 с.

16. Владимиров Ю.А. Роль нарушения барьерной и матричной функций липидного слоя биологических мембран в патологии / Ю.А. Владимиров //Актовая речь. М., 1986. - С. 3-39.

17. Гепатозы сельскохозяйственных животных и препараты для их лечения и профилактики/ И.А. Никулин, Н.И. Кузнецов, Б.М. Анохин и др. // Вестник.-1999.-№2.- С. 297-309.

18. Гибински К. (Gibinski К.) Заболевания органов пищеварения / К. Ги-бинский (К. Gibinski) // В кн.: Клиническая ферментология.- Варшава: Польское гос. мед. изд.- 1966.- С.310-346.

19. Годовые отчеты ГУ «Воронежская областная ветеринарная лаборатория» 2004-2010 гг.

20. Гранулематозный гепатит / В.В. Серов, Т.Н. Дрозд, С.П. Лебедев и др. // Арх. пат. 1985. - Вып. 2. - С. 23-29.

21. Гречухин А.Н. Практическое руководство по ветеринарным обработкам в свиноводческих хозяйствах/ А.Н. Гречухин. С.- Петербург, 2010.408 с.

22. Ион Морару. Кормление свиней. Практическое пособие / Ион Мора-ру.- Киев: ООО «Аграр Медиен Украина», 2011- 333 с.

23. Ипатова В.П.Инструментальная диагностика заболеваний печени / Ипатова В.П., Лясса Ф.М.- М.: Медицина, 1965 244 с.

24. Колб В.Г. Биохимические показатели и их интерпритация при заболеваниях печени / В.Г. Колб, B.C. Камышников // Здравоохр. Белорус, 1985.-№2- С.63-68.

25. Колб В.Г. Справочник по клинической химии / В.Г. Колб, B.C. Камышников: 2-е изд.,- Минск: Беларусь, 1982.-366 с.

26. Комаров Н.И.Биохимические показатели в клинике внутренних болезней / Н.И. Комаров, Б.Ф. Коровкин, М.- 2000.- 208 с.

27. Комарова Д.В. Морфологическая диагностика инфекционных поражений печени / Д.В.Комарова, В.А. Цинзерлин,- Санкт-Петербург: Сотис, 1999.-245 с.

28. Комплексная система мероприятий по борьбе с болезнями обмена веществ у свиней / Кузнецов Н.И., Елизарова Т.И., Бащев А.Д. и др.// Воронеж, 1989.- 29 с.

29. Крыштоп Е.А. Качественные показатели мясной свинины / Е.А. Крыштоп // Научный журнал «Труды Кубанского государственного аграрного университета», 2010 -№3 С. 129-133.

30. Кудрявцев А.П. Токсическая дистрофия печени поросят / А.П. Кудрявцев.- Иркутск: Из-во Иркут. ун-та, 1984.-260 с.

31. Кузнецов Н.И. Методические рекомендации по контролю за состоянием обмена веществ у свиней / Кузнецов Н.И., Насонов И.С., Елизарова Т.И. и др.-Воронеж., 1985.-40 с.

32. Кузнецов Н.И. Профилактика гепатоза у поросят / Н.И. Кузнецов, В.М. Шаронин, С.Р. Мелешкина // Ветеринария.-1999.-№4.- С. 37-38.

33. Курбатова Е.А. Активность гамма-глутамилтрансферазы как индикатор заболеваний печени и гепато-билиарного тракта /Е.А. Курбатова// Информационный бюллетень. Новосибирск: Вектор-Бест, №2 (40).- (http: //www. Vector-best/ru/nvb/n40/st404.htm).

34. Лифшиц В.М. Биохимические анализы в клинике: Справочник / В.М. Лифшиц, В.И. Сидельникова. М., МИА, 1998.-303 с.

35. Логинов A.C. Хронический вирусный гепатит / А.С Логинов, С.Д. Раевский // Рос. журн. гастроэнтерол., гепатол. 1993. - № 2. - С. 46-50

36. Логинов A.C. Клиническая морфология печени / A.C. Логинов, Л.И. Аруин.-М., 1985.- 240 с.

37. Лукьянова Е.М. Сравнительная морфологическая характеристика биоптатов печени у детей с хроническими вирусными гепатитами В и С / Е.М. Лукьянова, Т.Д. Задорожная // Доктор 2002 - №3.- С. 75-77.

38. Майер К.П. Гепатит и последствия гепатита / К.П. Майер.-М.:ГЭОТАР МЕДИЦИНА . 1999.- 432 с.

39. Мансурова И. Д. Обменные процессы при диффузном поражении печени / И.Д. Мансурова //Душанбе.:Медгиз, 1967.-288 с.

40. Марченко H.B.Bipycm гепатити / Н.В. Марченко, В.Г. Порохниць-кий, B.C. Топольницький.- К: Фешкс, 2002 296 с.

41. Меньшиков В.В.Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник / В.В. Меньшиков.- М.: «Медицина», 1987.- 368 с.

42. Методические рекомендации по диагностике, терапии и профилактике болезней органов размножения и молочной железы у свиней / Мисайлов В.Д., Шахов А.Г., Ануфриев А.И. и др.- Воронеж., 1997. 31 с.

43. Методические рекомендации по диагностике, терапии и профилактике нарушений обмена веществ у продуктивных животных. ГНУ Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт патологии, фармакологии и терапии. Воронеж, 2005.- 94 с.

44. Орлов Ф.М. Болезни свиней / Ф.М. Орлов. Изд. 3-е, перераб. и доп.-М.: «Колос», 1970.-432 с.

45. Отраслевая целевая программа «Развитие свиноводства в Российской Федерации на 2010-2012'годы», М., 2010, 61 с.

46. Пейсак 3. Болезни свиней; пер. с польского Д.В. Потапчука / З.Пейсак.- Брест: ОАО «Брестская типография», 2008.- 424 с.

47. Погребняк О.В. Клиникоморфобиохимическая характиеристика ге-патодистрофий у поросят в зоне химического загрязнения и при применении витаминсодержащих препаратов: автреф. дис. канд. веет, наук / О.В. Погребняк.- Воронеж, 2002.- 27 с.

48. Подымова С.Д. Болезни печени / С.Д. Подымова. М.: Медицина. Изд. 2-е, 1993. - 546 с.

49. Подымова С.Д. Болезни печени / С.Д. Подымова.-М. Медицина,1998.-480 с.

50. Подымова С.Д. Современная лабораторная диагностика заболеваний печени / С.Д. Подымова // Клиническая медицина.- 1981.-Вып. 59(4).- С. 104109.

51. Подымова С.Д. Болезни печени /С.Д. Подымова.- М., 1984.- 215 с.

52. Практическая гепатология / Н. А. Мухина, З.Г. Апросина, Т.М. JIo-паткина и др. М., 2004. -387 с.

53. Ройтберг Г.Е., Лабораторная и инструментальная диагностика заболеваний внутренних органов / Г.Е. Ройтберг, A.B. Струтынский.- М.: Бином,1999.- 662 с.

54. Руководство по гастроэнтерологии / Комаров Ф.И., Гребнев А.Л., Хазанов А.И., Подымова С.Д. и др. М.: Медицина. - 1995.-Т. 2. -241 с.

55. Серов В.В. Воспаление / В.В. Серов, B.C. Пауков.- М.: Медицина, 1995.-640 с.

56. Серов В.В. Морфологическая диагностика заболеваний печени / В.В. Серов, К. Лапшин. М.: Медицина, 1988.-336 с.

57. Серов В.В. Сравнительная морфологическая характеристика хронических вирусных гепатитов В и С / В.В. Серов // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии.-1999.-т. 9.-№ 1.-С. 36-40.

58. Современные препараты для профилактики и лечения гепатозов свиней / A.B. Вислогузов, Н.И. Кузнецов, A.A. Прасолов, Т.И. Елизарова // Вестник.- 2002.-Bbin.-5.- С. 193-198.

59. Тагинцев М.Д. Эффективность лечебно-профилактического дейчтвия эндовита при гепатозах свиней: автореф. дис. кан. вет. наук / М.Д. Тагинцев.-Воронеж, 1998. -22 с.

60. Трэвис С. П. JI. Гастроэнтерология / С.П.Л. Трэвис, Р.Х. Тейлор , Дж. Дж. Мисевич. М., 2002. -632 с.

61. Усольцева В.А. Ферменты и их клиническое значение / В.А. Усоль-цева // Иваново.- 1974.-С. 45-48.

62. Уша Б.В. Болезни печени крупного рогатого скота / Б.В. Уша.-М.: «Колос», 1969.-112 с.

63. Уша Б.В. Ветеринарная гепатология / Б.В. Уша.-М.: Колос, 1979.-263с.

64. Холод В.М. Справочник по ветеринарной биохимии / В.М. Холод, Г.Ф. Ермолаев.-Мн.: Ураджай, 1988.-168 с.

65. Хронический вирусный гепатит / В. В. Серова, 3. Г. Апросина, Игнатова Т.М. и др. М., 2002. 384 с.

66. Хронический вирусный гепатит / под ред. В.В. Серова, З.Г. Апроси-ной М.: Медицина, 2002 - 384 с.

67. Циркина A.C. Клинико-диагностическое значение определения активности некоторых ферментов / A.C. Циркина // Лабораторное дело.- 1982. -№ 6 .- С. 373 376.

68. Чебаторев Е.В. Лечебно-профилактичекое действие лирамида при гепатозах свиней: автореф. дис. канд. вет. наук / Е.В. Чебаторев; Воронеж, 2000.- 29 с.

69. Шулутко Б. И. Болезни печени и почек: монография / Б. И.Шулутко. Изд 2-е., испр. и доп. - СПб : Ренкор, 1995. - 479 с.

70. Шульпекова Ю.О. Лекарственные поражения печени. / Ю.О. Шуль-пекова// Гастроэнтерология. Приложение к CONSILIUM MEDICUM, 2007-№1.- С. 5-9.

71. Шумилин Ю.А. Диагностика, лечение и профилактика гепатозов у телят, сопровождающегося миокардиодистрофией: автореф. дис. канд. вет.наук / Ю.А. Шумилин.- Воронеж, 2007.-23 с.

72. A classification of chronic hepatitis / J.De Groote, V.G. Desmet, P. Ge-digk et al. // Lancet. 1968. - V.2. - P. 626-628.

73. Aleynik M.K. Polyenylphosphatidylcholine opposes the increase of cytochrome P-4502E1 by ethanol and corrects its iron-induced decrease / M.K.Aleynik, M.A. Leo, S.I. Aleynik, C.S. Lieber // Alcohol Clin Exp Res.-1999.-V.23. №1.-P. 96-100.

74. Altman H. Die granulomatosen Reactionen der Leber / H. Altman // Verh. dtsch; Ges. Path. 1980.-V. 64. - S. 152-177.

75. Angulo P. Nonalcoholic fatty liver disease / P. Angulo // N Engl J Med.- 2002.-V.346.-P. 1221-1231.

76. Arrieta J. J., Rodriguez-Inigo E., Gasgueiro M. et al. // Hepatology. — 2004. — Vol. 32. — P. 97—103.

77. Bayraktar M. Abnormalities in measures of liver fimtion and injury in thyroid disorders / M. Bayraktar, D.H., Van Thiel // Hepatogastroenterology.-1997.-V.44.-P. 1614-1618.

78. Betaine, a promising new agent for patients with nonalcoholic steato-hepatitis: results of a pilot study. / Abdelmalek M.F, Angulo P, Jorgersen R.A et al //Am J Gasstroenterol.-2001.-V.-96.-P. 2711-2777.

79. Bianchi L. Necroinflammatory liver disease / L. Bianchi // Seminars in liver disease. 1986. - V. 6. - № 3. - P. 185-198. .

80. Bianchi L. Гистоиммунология вирусного гепатита./L. Bianchi // Новые направления в гепатологии. Тезисы лекций. СПБ.-1996. С. 14-17.

81. Bonkovsky H.L. Porphyria cutanea tarda, hepatitis G, and HFE gene mutations in North America / H. L.Bonkovsky, M. Poh-Fitzpatrick, N. Pimstone et al //Hepatology.- 1998.- V.27.-P. 1661-1669.

82. Gadranel J.F.Practices of liver biopsy in France: results of a prospective , nationwide survey / J.F.Cadranel, P. Rufat, F. Degos // Hepatology 2000 - Vol. 32, P. 96-102.

83. Glemmesen J.O. Plasma phospholipid fatty acid pattern in severe liver disease / JiO: Glemmesen , C.E. Hoy, P.B. Jeppesen, P. Ott. J // Hepatol.r 2000. V. 32, № 3.- P. 481-487.

84. Gornish H.H. Problems posed by observations of serum enzyme changes in toxicology / H.H. Cornish.- CRC Crit. Rev. Toxicol.- 1971.- № 1.- P. 1

85. Eddeleston A.L. Immunology of chronic active hepatitis / A.L. Edde-leston // Quart. J. Med. 1985. - V. 55. - № 218. - P. 191-198.

86. Evidence for a substantial genetic influence on biochemical liver function tests: results from a population-based Danish twin study / L. Bathum, H.C. Petersen J.U. Rosholm at al. // Clin Chem.-2001.-V.-47.-P.81-87.

87. Green R.M. AGA technical review on the evaluation of liver chemistry tests / R.M Green, S. Flamm // Gastroenterology. 2002.-V.123.- P.1367-1384.

88. Grice H.C. Correlation between serum enzymes, isoenzyme patterns and histologically detectable organ damage / H.C. Grice, M.L. Barth, H.H. Cornish et al. // Food Cosmet. Toxicol.- 1971.-V. 9.- P. 847-885.

89. Grice H.C.The changing role of pathology in modern safety evaluation / H.C. Grice // CRC Crit. Rv. Toxicol.- 1972.- V.I.- P. 119-152.

90. Hepatic uroporphyrinogen decarboxylase activity in porphyria cutanea tarda patients: the influence of virus C infection / M.J. Moran, A. Fontanellas, E. Brudicux et al. //Hepatology.-1998.-Vol.27-P. 584-589.

91. High prevalence of hepatitis C virus infection in Japanese patients with porphyria cutanea tarda / M. Kondo,Y. Horie, J. Okano et al. // Hepatology.-1997.- V.26.- P.246-250.

92. Horberg J.The Consequences of lipid peroxidation in Isolated Hepato-cytes / J.Horberg, P.Moldeus, B.Arborgh et al. // Eur. J. Biochem. 1978. - V. 59. - № 2. - P. 457 - 462.

93. How are abnormal results for liver function tests dealt with in primary care? / P. Sherwood , I. Lyburn, S. Brown at al. // Audit of yield and impact. BMJ.- 2001.- V.322.- P. 276-278.

94. Imperiale T.F. Need for validation of clinical decision aids: use of the AST/ALT ratio in predicting cirrosis in chronic hepatitis C / T.F.Imperiale, A.T. Said, O.W. Cummings, L.J. Born// Amer. J. Gastroenterol.-2000-Vol. 95, P. 5664.

95. Kaplan M.M. What do abnormal liver function test results really mean /M. M .Kaplan, E.B. Keeff // Patient Care For The Nurse Practitioner.- 2003.-V.15.-P. 26-31.

96. Knodell R.G. Formulation and application of a numerical scoring system for assessing histological activity in asymptomatic chronic active hepatitis / R.G. Knodell, K.G. Ishak, W.C. Black et al. // Hepatology.-1981.- V.4.-P.431-435.

97. Kundrotas L.W. Serum alanine aminotransferase (ALT) elevation in asymptomatic US AiForce basic trainee blood donors / L.W. Kundrotas, D.J. Clement // DigDisSci.- 1993. V.38.-P. 2145-2150.

98. Kuntz E. Hepatology: Principles and practice / E Kuntz, H.D Kuntz.-Berlin; Heidelberg; Springer-Verlag.- 2002.-825 p.

99. Lamoril J.Epidemiology of hepatitis C and G in sporadic and familial porphyria cutanea tarda / J.Lamoril, C. Andant, C. Bogarad et al. //Hepatology.-1998.-Vol. 27.-P. 848-852.

100. Liver fibrosis progression is related to CD4 cell depletion in patients coinfected with hepatitis C virus and human immunodeficiency virus / M. Puoti, M.Bonacini, A. Spinetti et al. // J Infect Dis. 2001.-№ 183.- P.134-137.

101. Lum G. Serun gammaglutanspeptidasa activity as an indicator of desease of liver, pancreas and bone /G. Lum, S.R Gambino // Clin. Chem. 1972. V. 18. P. 358-362.

102. Marcellin P.Therapy of Hepatitis C: Patients with Normal Aminitrans-ferase Levels / P.Marcellin , S. Levy, S. Erlinger //Hepatology 1997 - V.26 - 301. P

103. Mason J.H. Serum glutamic oxaloacetic transaminase as an index of, hepatocellular integrity / J.H. Mason, F. Wroblewski // Arch. Int. Med.- 1957.-V. 99.- P. 245-250.

104. Meyer Zum Buschenfelde K.H. Mechanismus of autoimmune liver disease / K.H.Meyer Zum Buschenfelde, M. Manus // Semin. Liver Dis. 1984. - V. 4. -№ 1.-P. 26-35.

105. Molander D. W. Serum SGOT as an index of hepatocellular injury /

106. D.W. Molander. F. Wroblewshi, G.S. La Due // J. Lab. Clin. Med.-1955.-V. 46.-P.831-836.

107. Molander D.W. Serum transaminase in liver disease / D.W. Molander,

108. E. Sheppard, M.A. Payne // J. Am. Med. Assoc., 1957.- V.163.- P. 1461-1465.

109. Mori W. Shwartzman reaction as a pathogenetic mechanism in fiilmi-tant hepatitis / W.Mori, I. Shiga, H.Irie // Semin. Liver Dis. 1968. - V. 6. -№3.-P. 267-276.

110. Paul T. Mildly Elevated Liver Transaminase Levels in the Asymptomatic Patient / T. Paul, M.D. Giboney // Am Fam Physician. 2005.- V.71(6).-P.l 105-1110.

111. Plaa G.L., Evaluation of liver function methodology. In: Selected Par-macological testing methods (A. Burger ed.), 1968, V.3, P. 255-258, Dekker, New York.

112. Popper: H. Immune processes in the pathogenesis of liver disease / H.Popper, F.Paronetto, F. Schaffiier // Ann. N. Y. Acad: Sci. 1965. - V. 124.-№30.-P. 781-799.

113. Pratt D.S. Evaluation of abnormal liver-enzyme results in asymptomatr. ic patients / D.S. Pratt, M;M. Kaplan // N Engl J Med.- 2000.- V.342.- P. 12661271.

114. Amer. J: Clin. Path. -1957. V. 28. - № 8. - P. 56 - 63. /

115. Role of hepatitis C virus in non-B chronic liver disease./ W.N.Katkov, J.L. Dienstag, H. Cody et al //Arch. Intern. Med.1991.-V. 151.-P. 1548-1552.

116. Steinberg D. Serum transaminase as a measure of myocardial necrosis / D. Steinberg B.H. Ostrow // Proc. Soc. Exp. Biol. Med:- 1955:- V. 100.- P. 635638.

117. Teplick S.K. Diagnostic and therapeutic interventional procedures / S.K Teplick // Amer. J. Roentgenol:- 1999.- Vol: 152.- P. 46-52.

118. Test validity of periodic liver function tests in a* population of Japanese male bank employees / E. Yano, K. Tagawa, K. Yamaoka at al. // J Clin Epidemiol.- 2001 .-V.54.-P.945-951.

119. The role of liver biopsy in Chronic Hepatitis C / S.Sherif, G. Cammel, W.D. Carey et al. // Hepatology. 2001 .-Vol.33 .-№ 1.- P. 196-200.

120. Utility of a discriminant score for diagnosing advanced fibrosis or cirrhosis in patients with chronic hepatitis C / M.Bonachini, G. Hadi, S. Govinda-rayan, K.L. Lindsay // Amer. J. Gastroenterol 1997.-Vol. 99.- P. 43-56.

121. Vitamin E and vitamin C treatment improves fibrosis in patients with non-alcoholic steatohepatitis / S.A. Harrison, S. Torgerson , P. Hayashi et al. // Am J Gastroenterol 1987.- V. 82.- P. 650-654.

122. Vitamin E and vitamin C treatment improves fibrosis in patients with non-alcoholic steatohepatitis / Harrison S.A, Torgerson S., Hayashi P et al. // Am J Gastroenterol.- 1987.-V. 82.-P. 650-654.

123. Wroblewski. F. Serum glutamic oxaloacetic transaminase activity as an index of liver cell injury from cancer / F. Wroblewski, J.S. La Due // A preliminary report. Cancer.- 1955.-V. 8.-P. 1155-1163.

124. Zelman S. Transaminases in needle aspiration biopsies / S.Zelman, C.C. Wang, I. Appelhanz // Am. J. Med. Sci., 1959.- V. 237.- P. 323-333.