Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему

Адаптация пробирочных растений ягодных культур и последействие криосохранения

ВАК РФ 06.01.07, Плодоводство, виноградарство

Содержание диссертации, кандидата сельскохозяйственных наук, Карпова, Ольга Викторовна

Введение.

Научная новизна результатов исследований.

Практическая ценность работы.

1. Обзор литературы.

1.1. Проблема адаптации растений к нестерильным условиям и пути её решения.

1.2. Фитоалексины и их роль в формировании иммунитета растений.

1.3. Иммунизация элиситорами.

1.3.1. Биотические элиситоры, особенности иммунизации растительных объектов.

1.3.2. Биопрепараты нового поколения эмистим, экост 1/3 и возможность их практического применения.

1.4. Коллекции растительных объектов in vitro и их значение.

1.4.1. Пересадочные коллекции.

1.4.1. Депонированные коллекции.

1.5. Использование криосохранения для консервации генетических ресурсов.

1.6. Сомаклональные и эпигенетические вариации.

1.6.1. Происхождение и причины сомаклональных вариаций.

1.6.2. Частота сомаклональных вариаций.

1.7. Цель,задачи исследований.

2. Материалы, методика и условия проведения экспериментов.

3. Объекты исследований.

4. Результаты экспериментов и обсуждение.

4.1. Эффект элиситоров при клональном микроразмножении ягодных культур in vitro.

4.2. Повышение адаптивной способности растений в нестерильных условиях под влиянием элиситоров.

4.3. Последействие криосохранения на рост и развитие малины и земляники в открытом грунте.

5. Влияние типа экспланта на стабильность проявления признаков у растений земляники в полевых условиях.

6. Экономическая эффективность применения элиситоров при производстве посадочного материала методом клонального микроразмножения.

7. Выводы.

8. Рекомендации.

10. Литература.

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Адаптация пробирочных растений ягодных культур и последействие криосохранения"

Актуальность темы. В настоящее время серьёзные опасения вызывает увеличивающееся антропогенное воздействие на биосферу. Сложнейшая экологическая обстановка, сложившаяся на нашей планете, привела к тому, что сельскохозяйственные растения постоянно находятся в условиях экологического стресса, поскольку страдают от болезней, вредителей, бесконтрольного применения пестицидов, переизбытка удобрений.

Химическое и инфекционное давление на растения часто превышает порог возможностей их адаптации. Поэтому сейчас особенно важно не только глубокое понимание природы фиторезистенции, но и разработка различных средств иммунокоррекции, с тем чтобы эффективно контролировать иммунный ответ растений, преодолевая его дефицитность.

Пока единственным способом защиты восприимчивых к болезням форм растений является обработка их пестицидами. Между тем, почти все пестициды входят в классы соединений, среди которых встречаются мутагены и канцерогены. Часто пестициды поражают не только болезнетворные мишени, на которые направлено их действие, но и организмы, которые мишенями не являются. Поэтому необходимы альтернативные методы защиты растений. Они нужны для получения экологически чистой продукции и оздоровления окружающей среды. Одним из наиболее перспективных принципов защиты растений является метод индуцирования их устойчивости.

Метод основан не на подавлении фитопатогенов, как это имеет место в случае использования пестицидов, а на индуцировании естественного потенциала растений по тому образцу как это происходит в природе (О.Л. Озерецковская, 1994).

Специфической проблемой клонального микроразмножения является перевод растений из пробирок в нестерильные условия. Изучение природы фитоиммунитета позволит повысить адаптивные способности растений - регенерантов. С этой целью используют биогенные элисито-ры фитопатогенов, вызывающие образование фитоалексинов, веществ, играющих главную роль в формировании фитоиммунитета. Индуцирование устойчивости растений может стать альтернативой создания трансгенных растений или удачным дополнением процесса трансгенеза.

Кроме того, хозяйственная деятельность человека приводит к изменению биогеохимических циклов и не оставляет места для существования в них представителей флоры и фауны. В настоящее время происходит наиболее сильный в истории Земли период силового уничтожения видов, в результате которого из существующих более 5 тысяч видов ежегодно исчезают от 3 до 5. Потеря биологического разнообразия - это потеря ценного генофонда и потеря устойчивости экосистем.

К началу XXI столетия под угрозой реального исчезновения находится примерно 9 % существующих на Земле представителей флоры и фауны. Исходя из этого главной задачей цивилизованного общества должно быть всемерное стремление к поддержанию эволюционно обусловленного разнообразия видов, как в рамках биоценозов, так и в отдельных популяциях (Б.Л. Астауров, 1974).

Наиболее простым способом сохранения генофонда является создание условий для существования популяций. Однако, по подсчётам специалистов для сохранения только основных типов популяций из землепользования необходимо исключить более 30 % территорий. В настоящее время в мире в государственном ведении находится примерно 2,5 % территорий. А при всё возрастающей потребности в продовольствии даже небольшое увеличение отчуждённых земель сразу же столкнется с противодействием сельскохозяйственных структур. Кроме того, ограниченные популяции в заповедниках и заказниках не способны сохранить разнообразия вида в результате спонтанного дрейфа генов (Б.Н. Вепренцев, H.H. Ротт, 1984).

Возможным решением проблемы становится культура ткани (L.A. Withers, М.М. Engels, 1990). Для некоторых видов культура ткани является единственно возможным способом сохранения генетического разнообразия. Хотя этот метод и имеет большие потенциальные возможности для вегетативно размножаемых культур и видов с рекальцит-ратными семенами, возникают две технические проблемы: первая - генетическая нестабильность материала в культуре ткани, возникающая из-за сомаклональных вариаций во время регенерации растения, вторая -время сохранения ткани лимитировано.

Значительная работа проведена в обоих направлениях. Развитие техники культуры ткани для некоторых видов значительно снизило уровень сомаклональных вариаций. Быстрый прогресс в области криокон-сервации даёт возможность сохранять растительные материалы в течение длительного периода. Хотя обе проблемы еще далеки от решения, дальнейшие исследования в этой области сделают консервацию растительных генетических ресурсов вполне экономически эффективной (М. Simpson, L.A. Withers, 1986; Rao Ramanatha, 1992; М.М. Engels, 1993; Rao Ramanatha, W.R. Kennet, 1994).

Научная новизна результатов исследований. Впервые проведено детальное изучение эффекта элиситоров при клональном микроразмножении ягодных растений. Выявлено положительное влияние препаратов-индукторов комплексной устойчивости на размножение побегов ежевики и на укоренение побегов ежевики, малины, земляники и малино-ежевичного гибрида in vitro.

Определены оптимальные концентрации препарата эмистим в питательных средах для размножения и укоренения для каждой культуры, обеспечивающие повышение выхода растений.

Изучено влияние препаратов эмистим и экост 1/3 на адаптивные способности растений. Впервые продемонстрировано положительное влияние этих препаратов на выживаемость растений ягодных культур в нестерильных условиях, что легло в основу оригинального способа адаптации пробирочных растений, на который подана заявка на изобретение.

Изучено последействие криосохранения апексов на стабильность основных признаков у растений - регенерантов земляники и малины.

Проведена оценка вегетативной и генеративной продуктивности растений земляники после криосохранения в полевых условиях.

Определено влияние типа исходного экспланта на изменчивость растений земляники, полученной в культуре пыльников и листовых дисков.

Практическая значимость результатов исследований. Использование эффекта элиситоров позволит увеличить общий выход растений при клональном микроразмножении земляники, малины, ежевики и других видов, как минимум, на 15-20 % за счёт увеличения коэффициента размножения, скорости сроков укоренения и снизить затраты на питательные среды.

Разработанный способ последовательного применения эмистима и экоста 1/3 существенно повышает выход жизнеспособных растений при переводе их в нестерильные условия, причём отпадает необходимость в использовании стерильных субстратов, что значительно ускоряет как сам процесс адаптации, так и уменьшает энерго- и трудозатраты на стерилизацию субстратов.

Наблюдения за растениями, прошедшими этап криоконсервации, свидетельствуют о возможности включения этого процесса в систему хранения ценных форм, методика регистрации и оценка стабильности проявления признаков может быть рекомендована для аналогичных исследований.

Полученным в результате работы материалом заложены маточные насаждения в отделе размножения ВСТИСП, методика повышения иммунитета и стрессоустойчивости растений при пересадке в нестерильные условия использованы в НПЦ "Фитогенетика" (Тульская область).

Результаты работы были доложены на совещании-семинаре отделения РАЕН "Научные проблемы агропромышленного комплекса" по теме: "Экост и эмистим - экологически чистые препараты нового поколения и их применение в сельском хозяйстве" (Москва, 1998), на V Международной конференции "Регуляторы роста и развития растений" (Москва, МСХА, 29 июня - 1 июля 1999 г.), на Всероссийской научно-практической конференции "Молодые учёные - возрождению сельского хозяйства в России в XXI веке" (1-5 ноября 1999 г., Брянск), на XXI рабочем совещании "Консервация генетических ресурсов" (23-24 ноября 2000 г., Пущино), на заседаниях учёного совета ВСТИСП, секции ягодных культур учёного совета ВСТИСП. По результатам исследования опубликовано 4 печатных работы.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Проблемы адаптации пробирочных растений к нестерильным условиям и пути их решения.

Одной из нерешённых проблем биотехнологии остается перевод пробирочных растений в нестерильные условия и связанные с этим вопросы повышения устойчивости растений (О.С. Broome, R.N. Zimmerman, 1978; Р.М. Hasegawa, 1979; R.M. Skirvin, M.S. Chy, 1979).

Перенос растений в нестерильные условия создает стрессовую ситуацию и приводит во многих случаях к их гибели. Объясняется это влиянием большого количества внешних и внутренних факторов на процесс адаптации (A. Fabbi et al, 1986), среди которых выделены следующие.

1) Длительное пребывание в стерильных условиях in vitro, постоянная температура и высокая влажность ослабляет защитные свойства растений.

2) Изменяется анатомо-морфологическая структура листьев. Они становятся тонкими, имеют один слой мелких, плохо сформированных клеток паренхимы, в то время как полевые растения имеют паренхиму из трех - четырёх слоев клеток (К.Е. Brainerd, L.H. Fuchigami, 1982). Как отмечает Н.В. Катаева (1987), у пробирочных растений, выращенных почти при 100 % влажности воздуха, устьица широко открыты. К тому же у листьев отсутствует эпикутикулярный воск (N.C. Lindsey, J.C. Antony, 1984), что приводит к чрезмерной потере воды и плохой фотосинтетической способности (W. Barz, W. Husemann, 1982; DJ. Donnelly et al, 1984; B.W. Grout, S. Millam, 1985).

3) Корневая система растений, выращенных in vitro, практически нежизнеспособна и после пересадки в нестерильные условия часто отмирает. Видимо, желеобразная консистенция агаровой среды не позволяет растениям некоторых видов формировать полноценные корни.

4) Одной из причин гибели при пересадке является и низкая степень лигнификации тканей, что приводит при высокой влажности субстрата к загниванию растений.

Решению проблемы перевода растений в нестерильные условия посвящено много исследований, предложен ряд методов и способов. Например, во избежании водного стресса необходимо при адаптации создать условия культивирования пробирочных растений: I = 20-26 °С, влажность воздуха 90-100 %, 16 ч. фотопериод с освещенностью 2000 лк. (Н.Л. Туровская, О.В. Стрыгина, 1990).

Выдерживание пробирочных растений косточковых в течение 40-60 дней перед высадкой в нестерильные условия при I = +5+6 °С вызывает интенсивный рост, активную перестройку системы транспирации (Н.В. Кухарчик, 1998). Положительных результатов достигали с помощью этого приёма и у пробирочных растений яблони (В.Г. Трушечкин и др., 1982).

Погружение корней в 0,02 % раствор 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты (2,4-Д) вследствие прикрывания устьиц приводило к ингибиро-ванию транспирации у листьев фасоли и тополя (Е.М. Мелехов, 1979).

А.З. Насимов и В.А. Зленко (1987) закрывали пробирки целлофаном, проницаемым для воздуха, что позволяло проводить адаптацию к более низкой влажности на стадии укоренения. А.Б. Бургутин (1988) рекомендовал для адаптации винограда снять покрытие с тех пробирок, в которых побег достиг пробки, и через 1,5-2 недели пересадить растение вместе с агаровой средой в почвенный субстрат с сильным заглублением побега. При данном способе пересадки отпадает необходимость в ту-манообразующей установке.

Разработан способ адаптации непосредственно в пробирках, при котором в пробирках снимают покрытия, а защиту питательной среды от инфекции осуществляют путем нанесения раствора фунгицида (С.А. Корнацкий и др., 1989).

Критическим периодом при адаптации пробирочных растений являются первые две недели после пересадки, когда необходимо поддерживать 100 % влажность воздуха. Чтобы увеличить влажность, большинство исследователей предлагают помещать растения внутри ограниченного пространства, например, укрывая их полиэтиленовой плёнкой. Однако, при локальном поражении грибной микрофлорой появляется опасность заражения всего посадочного материала, находящегося под плёнкой. Избежать этого можно, используя индивидуальные стеклянные сосуды.

100 % выживаемости растений ежевики удаётся достичь применяя метод адаптации, разработанный М.Т. Упадышевым и В.А. Высоцким (1992). Суть адаптационного метода состояла в использовании адаптационного сосуда со специальным покрытием, позволяющим постепенно снизить влажность воздуха в окружающем растение пространстве. Это способствовало повышению в 8,3 раза приживаемости пробирочных растений, высаженных в нестерильные условия, по сравнению с контролем.

Адаптацию пробирочных растений можно начинать уже в культивационном сосуде со снятым покрытием. Для этого сосуды со снятым покрытием вращали на аппарате роллерного типа в вертикальной плоскости. Горизонтальное расположение сосудов предотвращало инфицирование питательной среды и растений. Вращение сосудов в вертикальной плоскости обеспечивало рост побегов в длину (по направлению из сосуда) вследствие равномерного влияния сил земного притяжения на все органы растений.

Положительные результаты в раде случаев давала предварительная подготовка растений к пересадке. Как показали исследования, для улучшения процесса ризогенеза можно использовать промежуточное культивирование на средах без регуляторов роста. В питательных средах для укоренения целесообразно уменьшать количество Сахаров до 20 г/л и агара до 5,5 г/л. Лучшими регуляторами роста для косточковых являлись - ИМК и феруловая кислота в концентрации соответственно 2 мг/л и 0,02 мг/л(Н.В. Кухарчик, 1998).

Важное значение для успешного проведения пересадок в нестерильные условия имеет срок высадки. Наиболее благоприятным периодом дня пересадки считается конец зимы - начало лета (Э.Э. Савздарг и др., 1983; O.A. Леонтьев-Орлов, 1986; Н.И. Туровская, 1990).

Ю.Г. Попов (1976) отмечал, что пересадка регенерантов может быть одно- и двухступенчатой. В первом случае пробирочные растения высаживали непосредственно в горшки с почвой, а во втором - сначала в нейтральный субстрат и лишь затем в почву. Несмотря на громоздкость метода, именно двухступенчатая пересадка давала наиболее надёжные результаты.

Добавление в питательную среду микроэлементов по Готре способствовало образованию у растений земляники механических тканей (В.Ф. Бленда, Е.Д. Кириленко 1982; Э.Э. Савздарг, 1983). Стимулирующее влияние бора на процессы лигнификации у растений показано в опытах Жиоли (F. Gioeli, 1938).

Новые исследования проблемы адаптации пробирочных растений показали положительный эффект арбускулярно-везикулярной микоризы на рост и развитие микрорастений (F. Ravalanirina et al., 1989; B.G. Branzanti et al., 1992; P. Lovato et al., 1992; A. Schubert et al, 1992; G. Berta et al., 1993; D. Atkinson et al., 1994).

Изучали эффект арбускулярной микоризы на инициацию корней in vitro и развитие микропобегов сливы (Р. Fortuna et al., 1998). Результаты показали, что арбускулярная микориза, выделенная из грибов-эндофитов подсолнечника, приводит к значительным изменениям в морфологии корневой системы. Акклиматизация и рост in vitro укоренённых микропобегов происходит успешней в симбиозе с микоризой. После 6 недель укоренения in vitro арбускулярно-микоризные грибы индуцировали развитие более разветвлённой корневой системы и увеличивали длину корней. В конечном итоге показатели роста микоризных растений были значительно выше контрольных. Более того, симбиоз с микоризой индуцирует быстрое возобновление апикального роста побегов в течение периода акклиматизации.

Большое внимание рядом исследователей было уделено подбору субстратов для достижения максимальной выживаемости р астений-регенерантов.

Например, растения-регенераты декоративных сортов роз реали-зовывали полную потенциальную способность к приживаемости на субстратах - торф : цеолит (1:1) и торф : цеолит : песок (1:1:1), для диких видов - сосновая кора : листовая земля : цеолит (1:2:1). Установлено, что включение цеолита в субстрат положительно влияло на приживаемость растений и развитие их корневой системы (Т.А. Красильникова, 1999).

Различные виды субстратов испытывали дня адаптации растений хризантем. Исследовали физические и химические свойства субстратов на основе торфа, льняной костры, коры хвойных деревьев и перепревших древесных отрубей. Наибольший процент приживаемости наблюдали на субстрате с участием торфа, льняной костры и коры хвойных пород (Й. Цветков, С. Кръстанова, 1991). Сложные субстраты, состоящие из льняной костры (60 %), разложившегося торфа (30 %), навоза (5 %) и речного песка (5 %) рекомендованы для адаптации растений винограда. Растения показывали хороший линейный рост, период адаптации сократился на 10-15 дней. Акклиматизация длилась 20-25 дней. Хорошие результаты были получены также на субстрате из 50 % льняной костры, 20 % торфа, 5 % навоза, 20 % оболочек риса и 5 % речного песка (С. Панделиев и др., 1995). Все используемые субстраты по общепринятой технологии подвергают стерилизации. Во избежание быстрого заселения их патогенной микрофлорой необходимо использовать фунгициды.

Большинство вышеизложенных способов имели свои недостатки -требовали либо специальных приспособлений, либо условий. Все это приводило к лишним затратам труда и не решало проблемы полностью. Поэтому основная задача - устранить причину возникновения проблемы адаптации растений, а именно повысить устойчивость растений к стрессам, болезням и вредителям, подготовить их к неблагоприятным условиям среды.

Одним из перспективных методов защиты может стать метод индуцирования устойчивости растений, основанный не на подавлении фи-топатогенов, как это имеет место в случае использования пестицидов, а на индуцировании защитных сил организма.

В настоящее время не подлежит сомнению тот факт, что фитоим-мунитет подобно иммунитету животных и человека является индуцированной категорией, а, следовательно, его, в принципе, можно вызывать. К настоящему времени возможность иммунизации решена положительно. Вопрос заключается в экономической целесообразности иммунизации и разработке биотехнологий её использования.

Иммунитет растений - комплексное явление, он основан на многих защитных реакциях и является результатом взаимодействия многих слагаемых (Н.И. Вавилов, 1935).

Заключение Диссертация по теме "Плодоводство, виноградарство", Карпова, Ольга Викторовна

6. ВЫВОДЫ.

1. Препараты группы элиситоров эмистим и экост 1/3 обладают широким спектром действия на культивируемые in vitro экспланты на всех этапах клонального микроразмножения - пролиферации, укоренения, адаптации к нестерильным условиям.

2. Эффект эмистима зависит от используемой концентрации, видовых и сортовых особенностей растений - источников эксплантов, и этапа культивирования in vitro.

3. Присутствие эмистима в питательной среде для размножения в интервале концентраций 10 6 - lO9 увеличивает число и длину побегов у испытанных сортов ежевики Агавам и Торнфри.

4. Включение препарата эмистим в среду для укоренения в разведениях 10-7 -10"9 ускоряет укореняемость побегов ежевики, малины, земляники и малино-ежевичного гибрида на 5-25 дней в зависимости от вида и сорта растений, а также существенно увеличивает число корней у ежевики и длину корней у ежевики, малины и м алино-ежевичного гибрида Логанберри.

5. На этапе адаптации пробирочных растений к нестерильным условиям двухэтапное применение элиситоров обеспечивает практически 100 % выживаемость растений ежевики, малины, малино-ежевичного гибрида и земляники, благоприятно сказывается на последующем росте и развитии растений.

6. Наибольший эффект обработка элиситорами оказывает на выживаемость пробирочных растений в случае использования нестерильных почвенных субстратов, что, видимо, является следствием индукции развития полезной микрофлоры в зоне корнеобитання.

7. Растения-регенеранты земляники сорта Трибьют, малины сорта Скромница, полученные из меристем, подвергнувшихся криосохране-нию, после замораживания двумя способами - постепенное (программное) и быстрое (прямое погружение в жидкий азот) в полевых условиях не проявили признаков аномального развития, среди регене-рантов сорта Кокинская поздняя (после криосохранения) в первый вегетационный период зафиксировано появление единичных растений с карликовым габитусом.

8. Использование в качестве инициальных эксплантов для кло-нального микроразмножения земляники листовых дисков и пыльников приводит к значительному варьированию ряда количественных признаков, однако появление аномальных форм зарегистрировано не было.

9. РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ.

В процессе клонального микроразмножения ягодных растений (земляники, малины, ежевики и малино-ежевичного гибрида) для повышения коэффициента размножения рекомендуем обогащать среду для размножения препаратом эмистим в разведении 10"6 - Ю-9.

Для сокращения периода укоренения проводить стимуляцию ризо-генеза на питательных средах с включением эмистима в разведении 106 -Ю-9.

На этапе адаптации пробирочных растений к нестерильным условиям практиковать ступенчатое использование препаратов группы эли-ситоров: укоренять побеги на среде с эмистимом в разведении 10-6 - Ю-9, а непосредственно перед высадкой в нестерильный почвенный субстрат опудривать корневую систему препаратом экост 1/3.

Одноступенчатую аппликацию эмистима перед высадкой пробирочных растений в нестерильные условия проводить с помощью замачивания, используя разведение Ю-4 при экспозиции 1 час или разведение Ю-6 при экспозиции 10 час.

При криосохранении меристем атических верхушек земляники и малины использовать программное замораживание или прямое погружение в азот после стандартных этапов закаливания, что обеспечивает сохранение основных, изученных помологических признаков растений-регенерантов.

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, кандидата сельскохозяйственных наук, Карпова, Ольга Викторовна, Москва

1. Астауров Б.Л. Наследственность и развитие.-М.: Наука, 1974.-С. 381.

2. Березин И.В. (ред.) Биохимия иммунитета, покоя и старения. М.: Наука.-1984.-С. 263.

3. Белоус Н.В., Чепурной B.C. Технология размножения и возделывания ягодных культур // Учебное пособие.-1995.-Краснодар.-С. 123.

4. Бленда В.Ф., Кириленко Е.Д. Регенерация черной смородины из апикальных меристем II Физиология и биохимия культурных растений.-1982.-Т. 14.-N& З.-С. 244-247.

5. Бургутин А.Б. Микроклональное размножение растений винограда. Перевод пробирочных растений в почвенную культуру // Биология культивируемых клеток и биотехнология / Международная конференция.-Новосибирск.-1988.-С. 12.

6. Вепренцев Б.Н., Ротт H.H. Проблема сохранения генофонда // Пущино: НЦБИ ИБФ АН СССР.-1984.-С. 47.

7. Вавилов H.H. Учение об иммунитете растений к инфекционным заболеваниям / М.: Сельхозгиз.-1935. С. 5-7.

8. Вакуленко В.В. Результаты испытания эмистима на капусте белокочанной, картофеле, яблоне зимних сортов, рисе и сахарной свёкле II Аграрная Россия.- 1999.-N& 1(2).-С. 27-35.

9. Высоцкий В.А. О генетической стабильности при клональном микроразмножении плодовых и ягодных культур // С/х биология.-1995.-N& 5.-С. 57-63.

10. Высоцкая О.Н., Попов A.C. Криоконсервация меристем земляники садовой (Fragaria ananassa Duch) // Криоконсервация генетических ресурсов / Материалы рабочего совещания 28-30 мая 1996.-Пущино.-1996.

11. Гельцер Ф.Ю. Симбиоз с микроорганизмами основа жизни растений / МСХА.-Москва.-1990.-С. 23-34.

12. Диас С., Долгих Ю. Роль физиологических факторов в повышении эффективности регенерации растений из культивируемых тканей кукурузы // Биотехноло-гия.-1997.-№ 11-12.-С. 32-36.

13. Дорошенко Н.П., Хохлова H.A. Способы создания коллекции генофонда "in vitro" II Виноград и вино России.-1993.-№ 6.-С. 32.

14. Казаков И.В. Малина и ежевика.-1994.-М.: Колос.-С. 33.

15. Касаева K.A. Использование гаплоидии в селекции зерновых культур //Агропромышленное производство: опыт, проблемы и тенденции развития.-1988.-№ 2.-С. 23-30.

16. Катаева Н.В. Особенности микроразмножения трудноукореняемых сортов яблони // С/х биология.-1987.4.-С. 18-20.

17. Катаева Н.В., Аветисов В.А. Клональное размножение в культуре ткани // Культура клеток растений-1981.-М.: Наука.-С. 137.

18. Ковалев В.М., Янина М.М. Методологические принципы и способы применения росторегулирующих препаратов нового поколения в растениеводстве // Аграрная Россия.-1999.1(2).-С. 9-11.

19. Козлова JI.H., Гашников Э.Г., Богомаз В.И., Испытание биопрепаратов эмистим и экост 1/3 на хлопчатнике в условиях Таджикистана // Аграрная Россия.-1999.-№ 1(2).-С. 17-22.

20. Косулина Л.Г. Физиология устойчивости растений к неблагоприятным факторам среды / Ростов-на-Дону.-1993.-С. 24-29.

21. Красильникова Т.А. Факторы оптимизации репродукции in vitro различных представителей рода Rosa L. // Автореферат дисс. канд с/х наук.-М.-198б.

22. Кудрявцев H.A. и др. Эффективность и безопасность применения препарата эмистим в льноводстве // Аграрная Россия.-1999.-N» 1(2).-С. 22-27.

23. Курсанова Т.А. Развитие представлений о природе иммунитета растений / М.: Наука.-1988.-С. 3-35.

24. Леонтьев-Орлов O.A. Разработка клонального микроразмножения яблони // Автореферат дисс. канд с/х наук.-М.-198б.-С. 24.

25. Липсиц Д.В. Белковый субстрат и устойчивость растений к заболеваниям / Физиология и биохимия здорового и больного растения.-М.: 1970.-С. 20.

26. Мануильский В.Д., Шамин А.Ю. Проблемы длительного хранения растительных объектов в условиях низкотемпературного криобанка // Генетические коллекции растений.-Новосибирск.-Вып. 3.-1995.-С.45- 56.

27. Метлицкий JI.B., Озерецковская O.JI. Как растения защищаются от болезней / М.: Наука.-1985.-С. 187.

28. Метлицкий JI.B., Озерецковская O.JI., Васюкова Н.И. и др. // Прикладная биохимия и микробиология.-}^ 6.-В. 5.-С. 568.

29. Музыкантов В.П., Дорохов Д.Б., Янина М.М. Препараты экост эффективные регуляторы роста овощных растений // Тезисы докладов "Регуляторы роста и развития растений".-M.: 1997.-С. 255.

30. Мусияка В.К. Влияние эмйстима и других регуляторов на рост и морфогенез изолированных тканей кукурузы // Физиология и биохимия культурных расте-НИЙ.-1998.-Т. ЗО.-МЬ 4.-С. 213-215.

31. Нам И.Я., Миненко А.И., Залкин В.В. Применение экологически чистого регулятора роста эмистим для увеличения урожайности ряда с/х культур // Тез. докл. IV Международной конференции "Регуляторы роста и развития растений".-М.: 1997.-С. 246.

32. Озерецковская O.JL Индуцирование устойчивости растений // Аграрная Россия.-1999.1(2).-С. 4-9.

33. Озерецковская O.JI. Индуцирование устойчивости растений биогенными элиситорами фитопатогенов // Прикладная биохимия и микробиология.-Т. 30.-В. 3.-С. 325 .

34. Озерецковская О.Л., Ильинская Л.И., Васюкова Н.И. Механизмы индуцирования элиситорами системной устойчивости к болезням // Физиология растений.-1994.-W& 44(4).-С. 626-633.

35. Острейко С.А., Дроздовский Э.М. О генетической и фенотипической стабильности при культуре растений in vitro // Плодоовощное хозяйство.-1987.-Мв 12.-С. 30-31.

36. Пирузян Э.С., Андрианов В.М. Плазмиды агробактерий и генетическая инженерия растений.-М.: Наука.-1985.-С. 280.

37. Попов A.C. Культура клеток растений.-М.: Наука.-1981.-С. 150.

38. Попов A.C. Сохранение семян и меристем высших растений с помощью глубокого замораживания / Пущино. НЦБИ АН СССР.-1982.-С. 14.

39. Попов A.C. Некоторые механизмы криоповреждений клеток растений in vitro и особенности их криосохранения // Физиология растений.-1993.-Т. 40.-М& З.-С. 485-493.

40. Попов A.C., Черняк Н.Д., Пауков В.Н // Физиология растений.-1984.-Т. 30.1. B. З.-С. 602.

41. Попов Ю.Г. Оздоровление и размножение плодовых и ягодных растений методом культуры меристематических верхушек // Методические указания.-М.-1979. -С. 3-5.

42. Потапов В.А., Кашин В.И., Курсаков А.Г. Методы обработки экспериментальных данных в плодоводстве.-М.: Колос.-1997.-С. 47.

43. Прусакова Л.Д., Ежов М.Н., Сальников А.И. Антистрессовые функции экоста и эпибрассинолида на яровой пшенице в условиях ЦНЗ // Аграрная Россия,-1999.-№ 1(2).-С. 39-41.

44. Рожнова H.A., Геращенков М.Н., Янина М.М., Гелязетдинов Ш.Я. Эмис-тим индуктор устойчивости к вирусным болезням паслёновых // Аграрная Россия.-№ 1(2).-С. 35-39.

45. Степонкус П.Л., Вист С.К. // Холодостойкость растений.-М.: Колос.-1983.1. C. 64.

46. Троян В., Романюк Н., Мусияка В., Безвенюк 3., Николаенко Т., Понома-ренко С. Физиологическая активность регулятора роста растений эмистима // Тез. докл. IV Международной конференции "Регуляторы роста и развития растений". М.: -1997.-С. 248.

47. Туманов И.И., Бутенко Р.Г., Оголевец И.В. // Физиология растений.-1968.-Т. 15.-В. 5.-С. 749.

48. Туровская Н.И., Стрыгина О.В. Микроклональное размножение малины // Садоводство и виноградарство.-1990.-М5» 8.-С. 26-29.

49. Упадышев М.Т., Высоцкий В.А. Способ подготовки растений-регенерантов к посадке в нестерильные условия // А.с. 1720597.-Бюл.-№ 11.-1992.

50. Abo-El-Nil М.М., Rildebrandt А.С. Origin of androgenez callus and haploid geranium plants // CanJ.Bot. 1971. V. 51.-P. 2107-2109.

51. Altermann W., Reinard E. Isolierung anthocyanhaltiger und anthocuanfrier Gewebestamme von Daucus carota: Einfluss von Auxinen auf die Anthjcyanbildung // Experientia.-1971 27.-P. 353-354.

52. Amato F.D. The problem of genetic stability in cultivation of plant tissue and cell // International biological programm 2: Crop Genetic resources for today and tomorrow.-New York, 1975.-P. 373.

53. Anderson H.M., Abbott A.J., Wiltsheire S. Micropropagation of strawberry plants in vitro effect of growth regulators on incidence of multi-apex abnormality // Sci. Hort.-1982.-V. 16.-P. 331-341.

54. Armstrong C., Phillips R. Genetic and cytogenetic variation in plants regenerated from organogenic and friable, embryogenic tissue cultures of maize // Crop.Sci.-1988.-V. 28.-P. 363-369.

55. Barlass M., Skene K.G.M. Long-term storage of grape in vitro // FAO/IBPGR PI. Genet.Resources Newsl. 1983.-V. 52.-P. 19-21.

56. Barz W., Husemann W. Aspects of photoautotrophic cell suspension cultures // In: Plant Tissue Culture. Ed. A.Fujiwara. Japanese Association for Plant Tissue Culture.-1982.-P. 245-248.

57. Bayliss M.W. The effects of growth in vitro on the chromosome complement of Daucus carota L. suspension cultures // Chromosoma.-1975.-V. 51.-P. 401-411.

58. Bayliss M.W. Chromosomal variation in plant tissues in culture // Int. Rev. Cytol.-1980.-V. 11A.-P. 113-144.

59. Berta G., Fusconi A., Trotta A. VA mycorrhizal infection and the morphology and function of root systems //Environmental and Experimental Botany. 1993.-V. 33(1). P. 159-173.

60. Bennici A.M. Nuclear conditions in haploid Pelargonium in vivo and in vitro // Chromosoma.- 1968.-V. 24.-P. 194-201.

61. Bennici A.M. Habituation in Nicotiana begelovii tissue cultures. Different behaviour of two varieties // Plant. Cell. Physiol. 1972.-V. 13.-P. 1-6.

62. Binding H. Selektion in kallus kulturen mit haploiden Zellen // Z. Pflzucht.1972.-V. 67.-P. 33-38.

63. Bingham E.T., McCoy J.T. Somaclonal variation in alfalfa // Plant Breeding. 1986.-Rev. 4.-P. 123-152.

64. Binns A., Meins Jr. Habituation of tobacco pith cell for factors promoting cell division in heritable and potentially reversible // Proc. natn. Acad.Sci.-USA.-1973.-V. 70.-P. 2660-2662.

65. Binns A.N. Developmental variation in plant tissue culture // Environmental and Experimental Botany.-198l.-V. 21.-Nb. 3/4.-P. 325-332.

66. Bouriguet R., Vasseur J. Croissance et bourgeonnement destissus de euilles d'endive en fonction de l'âge et du lieu de prelevement des explantats // Bull. Soc.Bot. Fr.1973.-V. 120.-P. 27-32.

67. Brainerd K.E., Fuchigami L.N. Acclimatization of aseptically cultured apple plants to low relative humidity // Jj\m. Soc. Hort.Sci.-198l.-V. 106.-№ 4.-P. 515-518.

68. Brainerd K.E., Fuchigami L.H. Stomatal function of in vitro and greenhouse apple leaves in darkness, mannitol, ABA, and CO2 // J. Exp.Bot.-1982.- V. 33.-P. 388-392.

69. Branzanti B.G. Influence of phosphate fertilization on growth and nutrient status of micropropagated apple infected with endomycorrhizal fungi during the weaving stage // Agronomie.-1992.-V. 12.-M> 10.-P. 841-846.

70. Broome O.C., Zimmerman R.H. In vitro propagation of blackberry. // HortScience.-1978.-V. 13.-№ 2.-P. 151-153.

71. Brossard D. Influence of kinetin on formation and ploidy level of buds arising from Nicotiana tabacum pith tissue grown in vitro // Z. Ptl. Physiol.-1976.-V.78. P. 323-333.

72. Bostock R., Kuc J., Laine R. Eicosapentaenoic and arachidonic acids from Phytophtora infestans elicit fungitoxic sesquiterpenes in potato // Science.-198l.-V. 212.-P. 67-69.

73. Cameron J.S., Hancock J.F., Nourse T.M. The field performance of strawberry nursery stock produced originally from runners of micropropagation // Adv. Strawberry Prod. 1985.-V. 4.-P. 56-58.

74. Carlson P.S. Somatic cell genetics as a tool for plant breeding // In: Induced mutation in vegetatively propagated plans. Proceedings of a panel IAEA.-Vienna.-1973.-P. 167-178.

75. Carlson P.S., Polacco J.C. Plant cell cultures: genetic aspects of crop improvement // Sciece.-1975.-V. 188.-P. 622-625.

76. Chaleff R., Carlson P. Higher plant cell as experimental organisms // Modification of the information content of plant cell. North-Holland Publishing Company .-Amsterdam.-1975.-P. 197-214.

77. Chaleff R.S., Carlson R.S. Somatic cell genetics of higher plants // A. Rev. Genet.-1974.-V. 8.-P. 267-278.

78. Chalutz E., Stanmann M. Induction of pisatin by ethylene // Phytopathology.-1969.-V. 59.-P. 1972-1973.

79. Clement W. Stability of chromosome numbers in tissue cultures of alfafa // Am. J. Bot.-1964.-V. 51.-P. 670.

80. Collins G.B. Chromosome numbers in anther-derived haploids in two Nicotiana species // J.Hered.-1972.-V. 63.-P. 113-118.

81. Corley R.H.V. Abnormal flower development in oil palm clones // Planter.-1986.-V. 62.-P. 233-240.

82. Cruickshank I.A., Peirin D.R. The Isolation and partial characterization of monilicolin A, a polypeptide with phaseolin-inducing activity from Monilinia fructicola // Life Sci.-1968.-V. 7.-P. 449-458.

83. D'Amano F. Nuclear changes in cultured plant cell // Cariologia.-1991.-V. 44.-P. 217-224.

84. Damiano C. Strawberry micropropagation // In: Proc conf. on nursery production of fruit plants through tissue culture-applications and feasibility. SDA-SEA, Agr.Res. Results, Arr-NE-II.-1980.-P. 11-22.

85. Dayuan Wang, Yao-lin Gui., Jiang-San Sun. Tissue Culture of Fruit Crops in China // Hort.Scdenc.-1988.-V. 23.-№ 6-P. 962-965.

86. Davey M.R., Fowler M.W., Street H.E. Cell clones contrasted in growth morfolody and pigmentation isoleted from a callus culture of Atroppa belladonna var. lutea // Phytochemicstry.-1971 .-V. 10.-P. 2559-2575.

87. De Klerk G.-J. How to measure somaclonal variation // Acta Botanica Neeriandica.-1990.-V. 39.-№ 2.-P. 129-144.

88. Deus-Neumann B., Zenk M.N. Instability of indol alkaloid production in Catharanthus roseus cell suspension cultures // Planta Medica.-1984.-V. 47.-P. 427-431.

89. Dixon R. The phytoalexin response: elicitation, signalling and control of host gene expression // Biol.Rev.-1986.-V. 61.-P. 239-291.

90. Donnelly D.J. Fixation of CO2 in tissue cultured red raspberry prior to and after transfer to soil // Plant Cell Tissue Organ Cult.-1984.-V. 3.-P. 313-17.

91. Donnelly D.J., Vidaver W.E. Leaf anatomy of red raspberry transferred from culture to soil // J.Am.Soc.Hortic.Sci.-1984 a.-V. 109.-P. 172-176.

92. Donnelly D.J., Vidaver W.E. Pigment content and gas exchange of red raspberry in vitro and ex vitro // JAmer.Soc.Hortic.Sci.-1984 b.-V. 109.-P. 177-181.

93. Druart Ph., In vitro germplasm preservation techniques for fruit trees // In: Schafer-Menuhr(ed.). In vitro techniques. Propagation and long term storage. Martinus Nijhoff, Dordreecht, Netheriands.-1985.-P. 167-171.

94. Ebel J., Cosio E. Elicitors of plant defense responses // Inter. Rev. Cytol.-1994.-V. 148.- P. 1-36.

95. Ellis R.H., Hong T.D., Roberts E.H. Handbook of Seed Technology for genebanks. Principles and Methodology. Rome. IBPGR.-1985.-V. 2.-P. 234.

96. Engels J.M.M. How can biotechnology be exploited in conservation and use of biological diversity? // In GTZ Workshop on Plant biotechnology in Technical Cooperation Programmes.-1993.-P. 6-11.

97. Enyedi. Signal molecules in systemic resistans to phatogen sand pests // Cell.-1992.-V. 70.-P. 879-855.

98. Eriksson T. Effects of ultraviolet and X-ray radiation on in vitro cultivated cells of Haplopappus gracilis // Physiol. Plant.-1967.-V. 20.-P. 507-518.

99. Escobar R.H. Cryopreservation of cassava root tips // In: Proceeding of the first International Scientific Meeting of the Cassava Biotechnology Network., Cartagena, Colombia.-1992.-P. 116-121.

100. Evans D., Sharp W. Single gene mutation in tomato plants regenerated from tissue culture // Sccience.-1983.-V. 221.-P. 949-951.

101. Evans D.A., Bravo J.E. Application of Somaclonal Variation // Bio/Technology.-1986.-V. 4.-P. 528-532.

102. Evans D.A. Aplications of somaclonal variation // Biotechnology in agriculture.-Allan.2 Iiss.-N. York.-1988.-P. 456-467.

103. Fortuna P. Influence of arbuscular mucorrhizas and phosphate fertilization on shoot apical growth of micropropropagated apple and plum root stocks // Tree Physiology.-1996.-V. 16.-Me 10.-P. 757-763.

104. Fortuna P. Effects of arbuscular mycorrhizal fungi on in vivo root initiation and development of micropropagated plum shoots // J. of Hortic. Sci. and Biotechnology.-1998.-V. 73.-№ l.-P. 19-28.

105. Fox J.E. Growth factor requirements and chromosome number in tobacco tissue cultures // Physiol. Plant 1963.-V. 16.-P. 793-803.

106. Frank J.A., Paxton J.D. An inducer of soybean phytoalexin and role in the resistance of soybeans to Phytophthora rot U Phytopathology.-1970.-V. 60.-P. 1292-1297.

107. Fuchigami L.N., Cheng T.Y., Soeldner A. Abaxial transpiration and water loss in aseptically cultured plum // J.Amer. Soc. Hort. Sci.-1981.-V. 106.-M>. 4.-P. 519-522.

108. Furuchi N., Suzuki J. Purification and properties of suppression glucan isolated from Phitophthora infestans // Ann. Phytopathol. Soc.Jpn.-1990.-V. 56.-P. 457-467.

109. Fabbri A., Sutler E., Dunston S.K. Anatomical changes in persistent leaves of tissue-cultured strawberry plants after removal from culture // Scientia Horticulturae.-1986.-V. 28.-P. 331-337.

110. Feucht W., Schmid P.P.S., Schimmelpfeng H., Theiler-Hedtrich C., Schmidtt A. Lage-scale trial of raspberries propagated in vitro: 0,68 % of off- types and enzymepattern of atypical fruits // Erwerbsobstbau.-1985.-J. 27.-P. 167-169.

111. Gautheret R.J. The nutrition of plant tissue cultures // A.Rev. PI. Physiol.-1955.-V. 6.-P. 433-484.

112. Gioelli F. Morfologia, gistologia, fisiologia, e fisiopatologia di meristemi secondart in vitro // Atti.Acad.Sci. Ferrara.-1938.-V. 16.-P. 1-87.

113. Green C.E. Prospects for crop improvement in the field of cell culture // Hort.Sci.-1977.-V. 12-P.131-134.

114. Griesbach R. Tissue culture in the improvement of Eustoma // HortScience.-1988.-V. 23.-P. 791.

115. Grout B.W., Millan S. Photo synthetic development of micropropagation strawberry plantlets following transplanting // Ann.Bot.-1985.-V. 55.-P.129-131.

116. Gunning J., Lagrstedt H.B. Long-term storage techniques for in vitro plant germplasm // Proc. Intl. Plant.Soc.-1985.-P. 199-205.

117. Hartmann H., Kester. Plant propagation // Prentice-Hall Englewood. Cliffs N.J.(ed).-1983.

118. Hartmann G. Identification of new mitochondrial genome organizations on wheat plant regenerated from somatic tissue cultues // Theor.Appl.Genet.-1989.-V. 77.-P. 169-175.

119. Hasegawa P.M. In vitro propagation of rose //HortScience.-1979.-V. 14.-W& 5.-P. 610-612.

120. Hedtrich C.M., Feucht W., Schimmelpfeng H. Pathogeneliminierung und Vermehrung von Himbeeren durch Meristemspitzen Kulturen // Erwerbsobstbau.-1980.-B. 22.-№ 7.-S. 159-163.

121. Heinz D.J., Mee G.W.P. Plant differentiation from callus tissue of Saccharum species // Crop.Sci.-l969.-V. 9.-P. 346-348.

122. Heinz D.J., Mee G.W.P. Morphologic, cytogenetic, and enzymatic variation in saccharum species hybrid clones derived from callus culture //Amer.J.Bot.-1971.-V. 58.-P. 257-262.

123. Hussey G. In vitro propagation of horticultural and agricultural crops // In: Mantell S.H. and Smith H.(Eds): Plant Biotechnology.-1983.-Cambrige.-University Press, Cambridge.-P. 111-138.

124. Jackson J.A., Dale P.J. Somaclonal variation in Lolium multiflorum L., L. temulentum L. // Plant Cell Rep.-1989.-V. 8.-P. 161-164.

125. Jarret R.L., Florkowski W.J. In vitro active vs. field genebank maintenance of sweet potato germplasm: major costs and considerations // HortScience. 1990.-V. 25.-P. 141-146.

126. Johnson L.B., Stuteville D.L., Schlarbaum S.E., Skinner D.Z. Variation in phenotype and chromosome number in alfalfa protoclones regenerateet from non-mutagenized calli // Crop.Sci.-1984.-V.-24.-P. 946-951.

127. Jones L.H. Longterm survival of embryoids of carrot//Pl.Sci.Lett. 1974.-V. 2.-P. 221-224.

128. Jones L. (ed.) Biotechnological innovation in crop improvement. Open University, Heerlen, Netherlands and Thames Polytechnic, London. Oxford, UK,

129. Butterwort-Heineman., Kartha K.K., Leung N.L., Pahl K. Cryopreservation of strawberry meristems and mass propagation of plantlets//J.Amer.Soc. Hort.Sci.-1980.-V. 105.-P. 481-484.

130. James D.J. Cell and Tissue culture technology for the genetic manipulation of temperate fruit trees // Biotechnol. Gen.Engineer.Rev.-1987 a.-V. 5.-P. 33-80.

131. Jones O.P., Waller B.J., Beech M.G. The production of strawberry plants from callus cultures // Plant Cell Tissue Organ Cult.-1988.-V. 12.-M» 3.-P. 235-241.

132. Katano M., Iskihara A., Sakai A. Survival of dormant apple shoot tips after immersion in liquid nitrogen // Hort.Sci.-I983.-V. 18.-№ 5.-P. 707-708.

133. Kuc J. Resistance of plant to infection agents // Ann.Rev.Microbiology.-1966.-V. 20.-P. 337-370.

134. Kunakn V.A. Relationship between ploidy and spontaneous organogenesis in Crepis Capillaris and Haplopappus gracilis strains // Cytology Genet.- 1974.-V. 8.-P. 312-315.

135. Kurtz S., Lineberger R. Genotypic differences in morfogenic capacity of cultured leaf explant of tomato // J.Amer.Soc. Hort.Sci.-1983.-V. 108.-P. 710-714.

136. Larkin P.S., Ryan S.A., Brettell R.I.S., Scowcroflt W.R. Heritable somaclonal variation in wheat // Theor.Applied.Genet.-1984.-V. 64.-P. 443-455.

137. Lee E.S.M., De Fossard R.A. Regeneration of strawberry plants from tissue cultures // Proc. Intern. Pl.Propag.Soc.-1975.- V. 25.-P. 277-285.

138. Lee M., Geadelmann J.L., Phillips R.L. Agronomic evaluation of inbred lines derived from tissue cultures of maize // Theor.Appl.Genet.-1988.-V. 75.-P. 841-849.

139. Lindsey N.C., Antony J.C. Comparative water loss from leaves of Solanum laciniatum plants cultured in vitro and in vivo // Plant.Sci.-1984.-V. 36.-№ 3.-P. 241-246.

140. Lovato P. Application of commercial arbuscular endomycorrhizalfungal inoculants to the establishment of micropropagated grapevine rootstock and pineapple plants // Agronomie.-1992.-V. 12.-№ 10.

141. Lovato P., Guillemin J.P., Gianinazzis S. Aplication of commercial arbuscular endomycorrhizal fungal inoculants to the establishment of micropropagated grapvine rootstosck and pineapple plants // Agronomie.-1992.-V. 12/10.- P. 873-881.

142. Lundergan C., Janick J. Low temperature storage of in vitro apple shoots // Hort.Sci.-V. 14.-P. 514.

143. M aliga P. Streptomycin-resistant plant from callus culture of haploid tobacco // Nat.New. Biol.-1973.-V. 244.-P. 29-30.

144. Marino G.P.,Rosati P., Sagrati F. Storage of in vitro cultures of Prunus rootstocks // Plant Cell Tissue Organ Cult.-1985.-V. 5.-P. 73-78.

145. Mc.Clintock B. The significance of responses of the genome to challenge // Science.-1984.-V. 226.-P. 792-801.

146. McPheeters K., Skirvin R. Somaclonal variation among ex vitro "Thornless Evergreen" Trailing blackberries // Euphytica.-1989.-V. 42.-P. 155-162.

147. Meins F. Stability of the tumor phenotype in crown gall tumors of tobacco // Prog. Exp. Tumor.Res.-1972.-V. 15.-P. 93-109.

148. Meins F. Mechanisms underlying the persistence of tumor anatomy in crown gall disease // In: Street H.E.(ed).Tissue Culture and Plant Science.-1974.-Academic Press. N.York. P. 233-264.

149. Meins F. Heritable variation in plant cell culture // Ann. Rev.Plant Physiol.-1983.-V. 34.-P. 327-346.

150. Mitra J., Steward F.C. Growth induction in cultures of Haplopappus gracilis. The behavior of the nucleus // Am J. Bot.-1961.-V. 48.-P. 358-368.

151. Morel G. The impact of plant tissue culture on plant breeding // In: VI Congress of Eucarpia. June 29.-Cambridge.-England.-1971.-P. 345.

152. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol.Plant.-l 962.-V. 15.-№ 3.-P. 473-497.

153. Moriguchi T., Yamaki S. Prolonged storage of grap nodal culture using a low concentration of ammonium nitrate // HortScience.-1989.-V. 24.-P. 372-373.

154. Muir W.H. Influence of variation in chromosome number on differentiation in plant tissues cultures // In: White P.R., Grove A.R. (Eds). Proc.Int. Conf. Plant Tissue Culture.-1965.-Berkley.-P. 485.

155. Muir W.H. Influence of variation in chromosome number on differentiation in plant tissue cultures // In: White P.R., Grove A.R.(Eds). Proc. int. Conf. Plant Tissue Culture.-1965.-P. 485.

156. Nehra N.S., Stushnofif C., Kartha K.K. Direct shoot regeneration from strawberry leaf disks // J.Am.Soc. Hortic.Sci.-1989.-V. 114.-№ 6.-P. 1014-1018.

157. Nehra N.S., Chibbar R.N., Kartha K.K., Dalta R.S.S., Crosby W.L., Stushnoff C. Genetic transformation of strawberry by Agrobacterium turnefaciens using a leaf disc regeneration system // Plant Cell Rep.-1990.-V. 9.-№ 6.-P. 293-298.

158. Nehra N.S., Kartha K.K., Stushnoff C. Nuclear DNA content and isozyme variation in relation to morphogenic potential of strawberry (Fragaria ananassa) callus cultures // CanJ.Bot.-1991 .-V. 69.-P. 239-244.

159. Nehra N.S. The influence of plant growth regulator concentrations and callus age on comaclonal variation in callus culture regenerants of strawberry // Plant Cell Tiss. Org. Cult.-1992.-V. 29.-P. 257-268.

160. Orton T.J. Genetic instability during embryogenic cloning of celery // Plant Cell, Tissue Organ Culture. 1985.- V. 4-P. 159-169.

161. Orton T.J. Somaclonal variation: Teoretical and Practical Consideratins // Gene manipulation in plant improvement 16th stadler Genetic Sumposium.-1986.-P. 427-467.

162. Paigen K. Gene regulation on and its role in evolutionary process // In: Karlin S. and Nevo E. (eds): Evolutionary Process and Theory.- Academic Press, Orlando .-1986.-V. 3.-M 36.-P. 567.

163. Partenen G.R. Plant tissue culture in relation to developmental cytology // Int. Rev.Cytol.-1963.-V. 15.-P. 215-243.

164. Patterson C. Introduction // In Patterson C.(ed): Molecules and Morphology in Evolution: Conflict or Compromise. Cambridge University Press, Cambridge University Press, Cambridge.-1987.-P. 1-22.

165. Ramanatha Rao V. Genetic diversity and conservation and utilization of plant genetic resources // Keynote address presented at the Gregor Mendel Birthday. Lecture Series and Symposium.-Cochin.-1992.-P. 234.

166. Ramanatha Rao V., Kenneth W.R. The use of Biotechnology for conservation and utilization of plant genetic resources II Plant Genet. Resources Newsletter.-1994. 97.-P. 3-19.

167. Ravolanirina F., Blal B., Gianinazzi S., Gianinazzi-Pearson V. Mise au point d'une methode rapide d'endomycorrhizal infection de vitroplant // Fruit.-1989.-V. 44.-M> 3.-P. 165-170.

168. Ranansky J., Erdersky K., Ziegler W., Pavlovkin J. Fungal elicitors active biological substances of fungi attacking cell of higher plants // Biología, Bratislava.- 1996.-V. 51.-J* 4.-P. 471-477.

169. Reed B. M. Cold storage of strawberries in vitro: A comparison of three storage systems // Fruit Var. J.-1992.-V. 46.-P. 98-102.

170. Reed B.M. Improved survival of in vitro stored Rubus Germplasm // J.Amer.Soc. Hort.Sci.-1993.-V. 118.-M 6.-P. 890-895.

171. Rosati P., Gaggioli D., Giunchi L. Genetic stability of micro propagated loganberry plants // J. of Hort. Sci.-1986.-V. 61.-№ l.-P. 33-41.

172. Ryan C.A., Farmer E.E. Oligosaccharide signals in plants, a current assessment // Ann.Rev. Plant.Physiol. Mol.Biol.-1991.-V. 42.-P. 651-674.

173. Schimmeipfeng H., Himbeerpflanzen aus Gewebekulturen-Erfahrungen beider Weiterkultur und im praktischen Anbau // Obstbau (Bonn).-1983.-Jg. 8.-№ 7.-S. 321-324.

174. Schubert A., Bodrino C., Gribaudo I. Vesicular-arbuscular mycorrhizal inoculation ofkivifruit micropropagated plants //Agronomie.-1992.-V. 12.-№ 10.-P. 847-850.

175. Skirvin R., Janick J. "Velvet Rose" Pelargonium, a scented geraniun // Hort.Science.-1976.-V. ll.-P. 61-62.

176. Skirvin R.M. Natural and induced variation in tissue culture // Euphytica.-1978.-V. 27.-P. 241-263.

177. Skirvin R.M., Chu M.C. In vitro propagation of "Forever Yours" rose // Hort.Science.-V. 14.-№ 5.-P. 608-610.

178. Skirvin R.M., Shy M.C., Gomez E. In vitro propagation of tornless trailing blackberries // Hort.Science.-1981.-V. 16.-№ 3.-P. 310-312.

179. Skirvin R.M. Sources and frequency of somaclonal variation // Hort.Science.-1994.-V. 29.-M& ll.-P. 1232-1236.

180. Sharp W.R. et al. Production of Coffee arabica callus of threeploidy levels and subsequent stability in tissue cultures // In: Ledoux L. (ed) Genetic manipulation with plant material. Plenum and Co., London.-1973.-P. 263-295.

181. Sharp J. Comparison of the structures and elisitor activities of a synthetic and mycelialwall-derived hexa (B-D-glycopuranosyl)-D-glucitol // J.Biol.Chem.-1984.-V. 259.-P. 11341-11345.

182. Shepard J. Potato protoplasts in crop improvement // Science.-1980.-V. 208.-P.17.24.

183. Shoemaker R. Effect of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid concentration on somatic embryogenesis and heritable variation in soybean // In vitro Cell Dev.Biol.-1991.-V. 27.-P. 84-88.

184. Smith M. K., Drew R.A. Current application of tissue culture in plant propagation and improvement // Austral. J. Plant Physiol. 1990. - V. 17. - P. 267-289.

185. Snir I. Red Raspberry (Rubus idaeus) // Biotechnology in Agriculture and Forestry. 6. Crops.-1988.V. 6.-P. 124-141.

186. Street H.E. Plant cell cultures: present and projected applications for studies in genetics II In: Ledoux L.(Ed). Genetic manipulations with plant material. Plenum Press, New York.-1974.-P. 213-244.

187. Sutter E., Langhaus R.W. Formation of epicuticular wax and effect on water loss in cabbage plants regenerated from shoot-tip culture // Can. J.Bot.-1982.-V. 60.-P. 2896-2902.

188. Swartz H.G., Galetta G.J., Zimmerman R.H. Field performance and phenotypic stability of tissue culture propagated strawberries // J.Am.Soc.Hort. Sci.-1981.-V. 106.-P. 667-675.

189. Swartz H.J., Ruth J. Histogenic instability in tissue culture-proliferated strawberry plant // J.Am.Soc.Hort.Sci.-1987.-V. 112.-M» 3.-P. 583-587.

190. Syono K., Furuya T. Induction of auxin-nonrequiring tobacco calluses and its reversal by treatments with auxins // Pl.Cell Physiol.-1974.-Y. 15.-P. 7.

191. Thomas E. Variation amongst protoplast-derived potato plants // Theor. Applied Genet.-1982.-V. 62.-P. 65-68.

192. Theiler-Hedtrich. Oewebekultur bei Strauchbeerenobst und Resultate in der Praxisan wendung // Rheinische Monats.-Schrift.-1983.-Jg. 71 2.-S. 52-54.

193. Torrey J.G. Kihetin as a trigger for mitosis in mature endomitotic plant cells // Expl.Cell.Res.-1961 .-V. 23.-P. 281-299.

194. Torrey J.G. Cytological evidence of cell selection by plant tissue culture media // Proceedings of the International conference on Plant Tissue Culture Berkeley.-1965.-P. 473-483.

195. Torrey J. Morphogenesis in relation to chromosomal constitution in long-term plant tissue cultures // Physiol.Plant.-J967.-V. 20.-P. 265-275.

196. Wanas W.H., Callow J.A., Withers L.A. Growth limitation for the Conservation of pear genotypes // In: Withers L.A. and Alderman P.G. (Eds). Plant tissue culture and its agricultural applications. Butterworths, London.-1986.-P. 285-290.

197. Wilkins C.P., Dodds J.H. Tissue culture conservation of woody species / Tissue culture of trees. Ed. J.H.Dodds. Croom Helm, London, Canberra.- 1983.-P. 113-136.

198. Wilkins C.P., Newbyry H.J., Dodds J.H. tissue culture conservation of fruit trees // Plant genetic resources Newsletter.-1988.-Ms 73/74.-P. 9-19.

199. Withers L. Tissue culture storage for genetic conservation.-Rome.-1980.-P. 91.

200. Withers L.A., Engels M.M. The test tube genebank a safe after native to Field conservation IBPGR NL for Asia and the Pacific.-1990.-V. 3.- P. 1-2.

201. Withers L.A. Biotechnology and plant genetic resources conservation // IN: Plant Genetic Resourcs Conservation and Management Concept and Approaches.-New Delhi.-IBPGR .-ROSSEA.-1991 .-P. 273-297.

202. Yamada A. Induction of phytoalexin formation in suspension-cultured rice cells by N-acetylchitooligosacharides H Biosci. Biotech. Biochem.-1993.-V. 57. P. 405-409.