Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Влияние 2-хлорэтилфосфоновой и бета-индолилуксусной кислот на биосинтез ДНК топинанбура (HELIANTHUS TUBEROSUS L.)

ВАК РФ 03.00.04, Биохимия

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Бирюкова, Ирина Владимировна

ВВЕДЕНИЕ . 5'

ГЛАВА I. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР.

1.1. Фитогормоны и их действие на растительный организм.

1.2. Фитогормональная регуляция биосинтетических процессов

1.3. Изменение физико-химических свойств ДНК растений при действии фитогормонов

ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.1. Условия культивирования эксплантатов топинамбура в системе in vitro

2.2. Определение кинетики синтеза ДНК топинамбура

2.3. Определение кинетики синтеза РНК и белков топинамбура

2. 4.Выделение ДНК

2.5. Плавление ДНК.

2.6. Измерение содержания ДНК, РНК и белков

2.7. Определение коэффициента распределения суммарной

ДНК в градиенте нейтрального CsCi

2.8. Определение коэффициента распределения нов.осинтезированной меченой ДНК топинамбура в градиенте нейтрального csci

2.9. Мечение ДНК топинамбура in vivo

2.10.Определение температуры плавления новосинтезированной ДНК. 48 *

2.II.Определение нуклеотидного состава ДНК топинамбура 48 2.12.Фракционирование и определение дяины фрагментов

ДНК топинамбура

2.13. Кинетика реаосоциации ДНК топинамбура

2.14. Выделение митохондрий и ядер из тканей клубней топинамбура и определение коэффициента распределения ДНК органелл в градиенте нейтрального CsCi

2.15. Определение содержания эндогенного и экзогенного этилена

2.16. Цитологическое исследование эксплантатов топинамбура

2.17. Статистические методы обработки результатов

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

ГЛАВА III. ВЛИЯНИЕ 2-ХЛОРЭТИЛФОСФОНОВОЙ И р -ИНДОЛИЛУКСУСНОЙ МОЛОТ НА СИНТЕЗ ДНК, РНК И БЕЛКОВ.

3.1. Влияние различных концентраций регуляторов роста растений на интенсивность синтеза ДНК топинамбура

3.2. Продолжительность лаг-периода, предшествующего началу синтеза ДНК в зависимости от возраста клубней топинамбура

3.3. Продолжительность лаг-периода и интенсивность синтеза ДНК под влиянием 2-хлорэтилфосфоновой кислоты

3.4. Действие >-индолилуксусной кислоты на продолжительность лаг-периода и интенсивность синтеза ДНК топинамбура

3.5. Влияние 2-хлорэтилфосфоновой и /-индолилуксусной кислот на биосинтез РНК и белков топинамбура в период, предшествующий началу s фазы митотического цикла

ГЛАВА ЗУ. ВЛИЯНИЕ 2-ХЛОРЭТИЛФОСФОНОВОЙ И р-ИНДОЛИЛУКСУСНОЙ КИСЛОТ НА ФИЗИКО-ХИМЙЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ДНК

ТОПИНАМБУРА

4.1. Характеристика ДНК топинамбура

4.2. Определение температуры плавления ДНК топинамбура, выделенной из тканей обработанных и необработанных регуляторами роста

4.3. Распределение ДНК в градиенте csci в зависимости от обработки 2-хлорэтилфосфоновой и р-индолилуксусной кислотами

4.4. Изучение структурной организации ДНК топинамбура с помощью кинетики реассоциации

ГЛАВА У. ВЛИЯНИЕ 2-ХЛОРЭТИЛФОСФОНОВОЙ И Р-ИНДОЛИЛУКСУСНОЙ КИСЛОТ НА ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА Н0В0СИНТЕЗИР0ВАНН0Й ДНК ТОПИНАМБУРА

5.1. Действие 2-хлорэтилфосфоновой и Р-индолилуксусной кислот на термальную денатурацию новосинтезированной ДНК топинамбура

5.2. Определение коэффициента распределения новосинтезированной ДНК топинамбура в градиенте нейтрального csci при экзогенной обработке тканей 2-хлорэтилфосфоновой и /> -индолилуксусной кислотами.

5.3. Определение плавучей плотности новосинтезированной ДНК митохондрий и ядер топинамбура

Введение Диссертация по биологии, на тему "Влияние 2-хлорэтилфосфоновой и бета-индолилуксусной кислот на биосинтез ДНК топинанбура (HELIANTHUS TUBEROSUS L.)"

Изучение действия фитогормонов на различные физиологические и биохимические процессы является важным направлением исследования систем регуляции жизнедеятельности растений. Работы, ведущиеся в области изучения биологически активных веществ, используемых в качестве регуляторов ростовых и других жизненных процессов растений, относятся к молодой, но интенсивно развивающейся области знаний, тесно связанной с запросами практики. За сравнительно короткий период времени в этой области получен целый ряд важнейших достижений: синтезировано большое количество разнообразных химических соединений, являющихся средствами воздействия на растительные объекты; получен обширный фактический материал, характеризующий физиологическое действие этих соединений в зависимости от дозы, особенности растительных объектов и условий окружающей среды. На основе этих материалов сделаны важные обобщения, касающиеся природы действия биологически активных веществ; найдены разнообразные формы и направления использования этих веществ в качестве эффективных средств воздействия на растения; налажен промышленный синтез биологически активных веществ и организовано применение их в народном хозяйстве •

В настоящее время наряду с природными (эндогенными) регуляторами роста растений в практике сельского хозяйства применяется ряд их синтетических аналогов. Положительные результаты дает применение химических соединений, высвобождающих биологически активное вещество при трансформации в растительных тканях. К ним прежде всего следует отнести препараты, созданные на основе 2-хлорэтилфосфоновой кислоты, действующим началом которых является выделяющийся при гидролизе этилен.

Однако, несмотря на широкое применение как природных, так и искусственных регуляторов роста растений в практике растениеводства, до сих пор нет единой теории механизма действия тех или иных биологически активных веществ. Это связано прежде всего с разнообразием изучаемых растительных систем и неоднозначностью реакций растительных тканей, вызываемых одним и тем же регулятором в различных условиях роста. Большое значение имеет также доза применяемого биологичеоки активного вещества, так как в небольших количествах многие йз них у сшивают (стимулируют) жизнедеятельность растений, в повышенных -ослабляют (затормаживают) ее, в больших - необратимо повреждают и убивают растения (гербицидное действие). При этом следует учитывать физиологическое состояние растительных тканей и то, что действие различных фитогормонов в растительном организме может быть взаимосвязанным. Имеется ряд исследований о взаимном влиянии абсцизовой кислоты и этилена на ростовые процессы в растениях, о взаимодействии ауксина и цитокинина во время индукции клеточных делений в растительных тканях. Имеются данные о связи синтеза этилена с накоплением ауксина в клетках растений, чем и объясняется, по-видимому, ингибиторное воздействие ауксина на ростовые процессы при повышении концентраций. Причем в различных растительных системах эти взаимосвязи неодинаковы и также зависят от концентраций, физиологического состо-яни тканей и ряда других факторов.

Существующие исследования механизма действия гормонов в основном затрагивают физиологические реакции растительного организма в ответ на воздействие ими. При изучении растяжения клеток в колеоптилях или зоне междоузлий механизм действия связывается с изменением рй среды. При этом происходит изменение скорости поступления различных веществ как внутрь, так и из клеток. Кроме того, существует мнение об изменении структуры клеточной стенки при воздействий ауксинов, что также может обусловливать ускорение растяжения клеток. Во время растяжения клеток под воздействием экзогенных регуляторов роста происходит накопление ДНК, РНК и белков, причем считается, что изменение соотношения определенных белков нарушает пропорцию индукторов и репрессоров основных биосинтетических процессов и при этом происходит изменение направленности роста. В этом случае создаются благоприятные условия для деления клеток. Однако механизм клеточного ускорения деления природными и синтетическими регуляторами роста до сих пор не имеет объяснения. Не выясненной остается также природа ингибирования роста растений под действием регуляторов ретардантного характера - абсцизинов и этилена.

Наряду с изучением физиологических реакций растительного организма на эндогенные и экзогенные регуляторы роста, внимание исследователей привлечено к изучению биохимических и молекулярных аспектов действия этих веществ. Оказывая влияние на кинетику и интенсивность биосинтеза ДНК и РНК, фитогормоны могут регулировать синтез метаболических и структурных белков. Эти изменения могут быть вовлечены в регуляцию ростовых процессов растительных тканей. При этом может происходить изменение в активности ранее имеющихся ферментов, либо синтезироваться ряд новых активных, в данных условиях роста, белков. В настоящее время вопрос о первичности воздействия фитогормонов в растительном организме остается нерешенным. Имеется ряд исследований влияния регуляторов роста на кинетику синтеза ДНК в ранние часы роста растительных тканей в период, предшествующий делению и растяжению клеток, а также дифференциации. Были исследованы также физико-химические характеристики ДНК растений, синтезированной при действии экзогенных регуляторов роста. Однако данные этих исследований неоднозначны и нуждаются в более глубоком изучении. Особый интерес представляют исследования механизма действия синтетических регуляторов роста, которые в настоящее время широко используются в растениеводстве. С этой точки зрения внимание исследователей привлечено к изучению основ действия высокоэффективного этиленпродуцируюшего вещества 2-хлор-этилфосфоновой кислоты (2-ХЭФК) и препаратов, созданных на ее основе. Это вещество оказывает влияние на различные физиологические процессы, важнейшими из которых являются подавление ростовых процессов и ускорение созревания плодов. Однако, несмотря на широкое использование 2-ХЭФК в сельском хозяйстве и исследование физиологического действия этого вещества, в литературе до сих пор нет данных о его действии на биохимические процессы растительного организма. Изучение механизма действия этого этиленпродуцирукшего вещества расширит представление исследователей о диапазоне его действия, концентрационных зависимостях и создаст предпосылки для поиска новых перспектив его применения в растениеводстве.

Целью настоящей работы послужило исследование биохимических основ действия 2-ХЭФК в ранние часы роста эксплантатов запасающих тканей клубней топинамбура в регулируемых условиях роста в культуре in vitro при сравнении с действием / -индолил-уксусной кислоты ( £ -ИУК). Представляло интерес исследование влияния регуляторов роста растений на кинетику синтеза ДНК топинамбура и свойства новосинтезированной ДНК.

Заключение Диссертация по теме "Биохимия", Бирюкова, Ирина Владимировна

119 ВЫВОДЫ

1. 2-ХЭФК оказывала ингибируюшее действие на интенсивность синтеза ДНК, увеличивала длительность лаг-периода, предшествующего началу его и подавляла митотические деления в эксплантатах клубней топинамбура. Показано, что основное количество этилена выделялось при гидролизе 2-ХЭФК во время лаг-периода и на протяжении синтеза ДНК в течение первых 44 часов роста эксплантатов в культуре.

2. р-ИУК уменьшала длительность лаг-периода, предшествующего началу синтеза ДНК, увеличивала интенсивность синтеза ДНК и способствовала значительному увеличению количества делящихся клеток в эксплантатах - 55,5 % по отношению к 5,4 % делящихся клеток е контроле.

3. Синтез РНК е эксплантатах топинамбура начинался через 2 часа после их вычленения из клубней, продолжался на протяжении всего лаг-периода и не нуждался в дополнительном введении экзогенных фитогормонов. Добавление в среду j> -ЮТ снижало, а 2-ХЭФК не оказывало влияния на интенсивность синтеза РНК. Временные параметры синтеза РНК под влиянием регуляторов роста растений не изменялись по сравнению с контролем.

4. Синтез белка в эксплантатах топинамбура осуществлялся в период между двумя пиками синтеза РНК и егР начало приходилось на 5-ый час роста ткани в культуре, f -ИУК вызывала ингибирова-ние синтеза белка при экзогенном введении в концентрации

5 х 10 М, а 2-ХЭФК не влияла на интенсивность его синтеза по сравнению с контролем.

5. Суммарный препарат ДНК топинамбура, выделенный из ткани, обработанной 2-ХЭФК и р-ИУК, не отличался от контрольного препарата ДНК по температуре плавления, плавучей плотности и молокулярной гетерогенности. Т^ = 86,5 °С, плавучая плотность в градиенте нейтрального csci составила 1,695 г/см3, моль.% ГЦ = = 41 %9 а моль»% м^С = 5-6/1

6. НовосинтезироЕанная ДНК топинамбура, меченая 3Н-тимиди-ном, имела бифазные кривые плавления при экзогенном влиянии 2-ХЭФК и f -ИУК. Основной компонент ДНК плавился с оксиапатита при t = 91 °с, тогда как дополнительный компонент имел Т^ = 97 °С. Новосинтезированная ДНК, выделенная из эксплантатов, не обработанных регуляторами роста растений, имела унимодальный характер кривых термоэлюции и Тдд = 91 °С.

7. Выделена сателлитная фракция ДНК из эксплантатов топинамбура, обработанных регуляторами роста растений, при ультрацентрифугировании новосинтезированной ДНК в градиенте плотности нейтрального CsCl. Основной компонент ДНК имел j = 1,700 г/см3, а сателлитная ДНК фракция - j> = 1,714 г/см3. 2-ХЭФК вызывала уменьшение основного компонента новосинтезированной ДНК, тогда как j) -ИУК активировала синтез основной фракции ДНК.

8. Установлена митохондриальная природа сателлитного компонента новосинтезированной ДНК топинамбура с у = 1,714 г/см3, а основной компонент ДНК соответствовал ядерной ДНК при разделений в градиенте плотности нейтрального CsCl имел j> = 1,700 г/см3.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Изучение влияния регуляторов роста растений на синтез ДНК топинамбура проводилось нами в регулируемых условиях культивирования in vitro.

Результаты проведенных исследований отражают ингибирующее влияние 2-ХЭФК на ростовые и биосинтетические процессы, происходящие в эксплантатах топинамбура. При изучении кинетики включения 3Н-тимидина в ДНК эксплантатов топинамбура показано, что 2-ХЭФК снижает интенсивность включения меченого предшественника в концентрации 50 мг/л. При этом происходило значительное увеличение лаг-периода, пре.шествующего началу синтеза ДНК по сравнению с контролем. В опытном варианте начало синтеза ДНК приходилось на 28-ой час роста эксплантатов в культуре, тогда как в контроле начало интенсивного включения метки отмечалось на 20-ом, часуро-ста. Изменение кинетики включения 3Н-тимидииа под влиянием экзогенного ауксина получено при концентрации f> -ИУК 5 х 10 М. Ауксин ускорял начало синтеза ДНК и значительно повышал интенсивность включения меченого предшественника в ДНК топинамбура. Стимулирующий эффект ^-ИУК на биосинтез ДНК в эксплантатах запасающих тканей в дальнейшем отражался и на усилении интенсивности митотического деления. При действии регуляторов роста растений происходило изменение в накоплении ДНК при расчете на клетку эксплантата топинамбура. Показано, что ^-ИУК способствует увеличению содержания ДНК, тогда как 2-ХЭФК не оказывал влияния на увеличение количества ДИК в клетке топинамбура.

При исследовании биосинтетических процессов, происходящих в период до начала синтеза ДНК в тканях топинамбура методом включения 3Н-уридина и 3Н-лейцина в РНК и белки, нами выяснено, что синтез РНК осуществляется в два этапа и начинается через 2 часа после вычленения эксплантатов из тканей клубней. При экзогенном влиянии р -ИУК синтез РНК ингибируется на всем протяжении лаг-периода. Синтез белков, начинающийся с 5-го часа роста и достигающий максимума между двумя пиками синтеза РНК, также ингибиру-ется ауксином. 2-ХЭФК не оказывает сколько-нибудь значительного влияния на интенсивность синтеза РНК и белков во время лаг-фазы.

В связи со значительными изменениями в параметрах, а также в интенсивности синтеза ДНК топинамбура при экзогенном влиянии 2-ХЭФК и / -ИУК в оптимальных концентрациях, проведено исследование физико-химических свойств ДНК. Установлено, что величина температуры плавления ДНК топинамбура составила 86,5 °С. С помощью дифференциальных кривых плавления ДНК нами были получены 5 фракций, различающихся по температурам плавления - 78,0; 82,0; 84,5; 87,0 и 88,5 °С. Содержание ГЦ-пар в исследуемом препарате ДНК составило 41 мол.$. Эти величины оставались постоянными при экзогенном введении 2-ХЭФК либо р -ИУК. Величина плавучей плотности препарата ДНК в градиенте нейтрального csci равна 1,695 г/см3 Экзогенная обработка регуляторами роста растений не вызвала изменений в величине плавучей плотности. Нами также не обнаружены са-теллитные компоненты в препарате ДНК топинамбура. При исследовании кинетики реассоциации мы не получили различия во фракции повторов при обработке тканей топинамбура 2-ХЭФК и р -ИУК.

Таким образом, при исследовании свойств суммарного препарата ДНК топинамбура при воздействии регуляторов роста растений мы не получили ожидаемых различий. Учитывая небольшой процент гор-мониндуцированных изменений в структуре ДНК топинамбура, синтезирующейся на начальных этапах роста эксплантатов в культуре, в дальнейших исследованиях проведено изучение новосинтезированной ДНК. Это исследование стало возможным при использовании меченой ДНК топинамбура.

При термоэлюции с окснапатита новосинтезированной ДНК нами были получены данные термальной денатурации ДНК. Кривые термоэлюции ДНК при использовании экзогенных 2-ХЭФК и j -ИУК носили бимодальный характер, тогда как в контроле плавление ДНК описывалось унимодальной кривой. Основной компонент ДНК плавился при 91 °С. При воздействии регуляторов роста была обнаружена дополнительная фракция ДНК с Т^ = 97 °С. Под влиянием 2-ХЭФК величина этой фракций й ее процентное отношение к основному компоненту было выше, чем при обработке ауксином.

Исследование коэффициента распределения новосинтезированной ДНК в градиенте CsCi показало, что при экзогенной обработке фито-гормонами появляется ранее отсутствовавшая сателлитная фракция ДНК, которая отличается от основной фракции величиной плавучей плотности. Коэффициент распределения сателлитного компонента составляет 1,714 г/см3, тогда как основной компонент имеет коэффициент распределения 1,700 г/см3. Нами было сделано предположение о неядерной природе этого сателлитного компонента новосинтезированной ДНК топинамбура. В связи с этим из фракции очищенных митохондрий и ядер была выделена меченая ДНК и исследована ее плавучая плотность. Коэффициент распределения митохондриальной ДНК был равен 1,714 г/см3, а ядерная ДНК имела плавучую плотность, равную 1,700 г/см3. Таким образом, основной компонент новосинтезированной ДНК топинамбура являлся ядерной ДНК, а сателлитный, гормояиндуцированный компонент, имел митохондриальную природу.

Таким образом, нами получено, что при действии 2-ХЭФК на синтез ДНК топинамбура происходит значительное снижение интенсивности синтеза ядерной ДНК. Эти данные подтверждаьэтся результатами исследования регуляции клеточных делений 2-ХЭФК, которые отражают ингибирующее влияние этого вещества на митоз в клетках эксплантатов топинамбура. При действии 2-ХЭФК не отмечается торможения синтеза ДНК в митохондриях, так как при исследовании радиоактивности новосинтезированной ДНК нами показано, что наблюдалось включение метки в ГЦ-обогашенную фракцию новосинтезированной ДНК, имеющей митохондриальную природу. Аналогичные данные были недавно получены при исследовании природы новосинтезированной ДНК в стареющих пропростках пшеницы /15, 10/. В результате этих исследований было показано, что в сформированном колеоптиле клетки перестают делиться и продолжающийся в них синтез ДНК осуществляется в митохондриях. Причем при исследований растущих и нера-стуших тканей было получено, что синтез новой ДНК осуществляется как за счет ядерной, так и за счет митохондриальной ДНК пшеницы, однако при остановке ростовых процессов синтез ДНК происходит практически только в митохондриях. Митохондриальная ДНК пшеницы также отличалась более высоким содержанием ГЦ (56 мол Л) по сравнению с новосинтезированной ядерной ДНК (41 шол.%) и разделялась отдельным пиком при ультрацентрифугированйй е градиенте нейтрального CsCl.

На основании вышеизложенного материала можно заключить, что 2-ХЭФК, ингибируя клеточные деления и ростовые процессы в эксплантатах тканей клубней топинамбура, снижает интенсивность синтеза ядерной ДНК в этих клетках. В процессе ингибированного роста происходит синтез ГЦ-обогашенной ДНК, имеющей митохондриальную природу. С другой стороны, jb -ИУК, активируя митотйческие деления в запасающих тканях топинамбура и способствуя формированию каллу сной ткани, влияет на интенсивный синтез ядерной ДНК. Во время s фазы под действием р -ИУК также происходит синтез митохондриальной ДНК, однако уровень его интенсивности значительно ниже, чем под влиянием 2-ХЭФК.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Бирюкова, Ирина Владимировна, Киев

1. Бартон К. Определение концентрации ДНК с помощью дифениламина. В кн.: Методы исследования нуклеиновых кислот. М., 1970, с. 7 - 9.

2. Бутенко Р.Т. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток растений. В кн.: ХХХУ Тимирязевское чтение, М., 1975. - 51 с.

3. Ванюшин Б.Ф. Метилирование ДНК и клеточная дифференцировка у высших растений. В кн.: Рост растений и дифференцировка. М., 198I, с. 176 - 192.

4. Гамбург К.З. Ауксины, как регуляторы деления клеток растений. Укр. бот. журн., 1982, т. 3, В 39, с. 58 - 64.

5. Гамбург К.З., Леонова Л.А., Рекославская Н.И. Гормональная автономность растительных клеток в изолированной культуре. -В кн.: Рост и гормональная регуляция жизнедеятельности растений. Иркутск, 1974, с. 85 102.

6. Даскалюк А.П. Введение радиоактивной метки в ДНК проростков растений. Физиол. и биох. культ, раст., I9SI, т. 13, № 3, с. 321 - 323.

7. Деева В.П. Ретарданты регуляторы роста растений. - Минск: Наука и техника, 1980. - 175 с.

8. Жуковский П.М. Топинамбур (Heliauthus tuberosus L.). -В КН.: Культурные растения и их сородичи. Л., 1964, с. 326 328.

9. Кабачник М.И., Российская П.А. Фосфорноорганические соединения. I. Взаимодействие окиси этилена с трихлоридфосфатом. -Изв. АН СССР. Сер. хим., 1946, т. 406, № 3, с. 295 304.

10. Ю.Кирнос М.Д., Бакеева М.Б., Волкова С.А. и др. Митохондриаль-ная природа новообразованной ДНК в стареющих колеоптилях этиолированных проростков пшеницы. Биохимия, 1983, т. 48, № 9, с. 1505 - 1512.

11. Конарев В.Т., Тютерев С.Я. Методы биохимии и цитохимии нуклеиновых кислот растений. Л.: Колос, Ленингр. отд-дие, 1970. - 204 с.

12. Кораблева Н.П. Биохимические аспекты действия обсцизовой кислоты в растениях. В кн.: Метаболизм и механизм действия фитогормонов: Тр. Всесоюз. конф. - Иркутск,1979, с. 143 - 151.

13. Кораблева Н.П. Успехи и проблемы изучения биохимии покоя растений, В кн.: Обменные процессы и их регуляция у растений и животных. Саранск, 1980, с, 35 - 38.

14. Кораблева Н.П., Метлицкий Л.В. Влияние регуляторов роста на синтез нуклеиновых кислот в растениях. Усп. совр. биол.,1973, т. 76, вып. 3 (6), с. 431 446.

15. Кудряшова И.Б., Волкова С.А., Кирнос М.Д., Ванюшин Б.Ф. Метилирование новообразованной ДНК в развивающихся проростках пшеницы. Биохимия, 1983, т. 48, Л 6, с, 1031 - 1035.

16. Кулаега О.Н. О механизме действия цитокининов. В кн.: Рост растений и природные регуляторы. М., 1977, с. 216 - 234.

17. Мандель М., Мармур Дж. Определение содержания гуанина и ци-тозина в ДНК с помощью кривых плавления. В кн.: Методы исследования нуклеиновых кислот. М., 1970, с. 183 - 192.

18. Мандель М., Шильдкраут К., Мармур Д. Определение содержания Гранина и цитозина в ДНК с помощью ультрацентрифугирования в градиенте плотности CsCl. В кн.: Методы исследования нуклеиновых кислот. М., 1970, с. 175 - 183.

19. Мельников М.Н. Химия и технология пестицидов. М.: Химия,1974. 766 с.

20. Меркис А.И. Ауксин и рост растений. Вильнюс: Москлас, 1982. - 199 с.

21. Нактинис В.И., Малеева Н.Е., Санько Д.Ф., Мирзабеков А.Д. Два простых метода выделения ДНК из различных источниковс применением цетавлона. Биохимия, 1977, т. 42, 10, о. 1783 - 1789.

22. Одинцова М.С. ДНК хлоропластов и митохондрий (структура, репликация, физико-химические свойства). '-Итоги науки и техники. Сер. Биологическая химия, т. 10. М., 1976. 179 с.

23. Наносян Г.А., Гирацуян С.Г., Вардеванян И.О., Вардепетян П.Р. Изменения в хроматине при прорастании и обработке гибберелли-ном изолированных зародышей пшеницы. Докл. АН СССР, 1982, т. 265, В 3, с. 768

24. Паушева З.П. Цитология растений. М.: Колос, 1970. - 170 с.

25. Полевой В.В. Фитогормоны. Л.: Изд-во Л1У, 1982. - 248 с.

26. Ракитин Ю.В. Биологически активные вещества как средства управления жизненными процессами растений. В кн.: Научные основы зашиты урожая. М., 1963, с. 7-42.

27. Ракитин Ю.В. Химические регулятор жизнедеятельности растений. Избранные труды. М.: Наука, 1983. - 260 с.

28. Регуляторы роста растений. М.: Колос, 1979. - 246 с.

29. Рокицкий П.Ф. Биологическая статистика. Минск: Выш. школа, 1967. - 328 с.

30. Романов Г.А., Кирьянов Г.И., Дворкин М.В., Ваншин Б.Ф. Влияние гидрокортизона на метилирование и молекулярную популяцию ДНК в печени крыс. Биохимия, 1976, т. 41, вып. 6, с. 1038 - 1044.

31. Романовская О.И., Крейцберг О.Э., Павулиня Д.А. и др. Определение и динамика содержания остаточных количеств 2-хлорэтилфосфоновой кислоты в растениях озимой ржи. Агрохимия, 1982, 3, с. 119 - 123.

32. Салькова Е.Г., Буланцева Е.А. Выделение этилена при взаимодействии тканей яблок с 2-ХЭФК и ее солями и влияние ингибиторов биосинтеза белка на этот процесс. Докл. АН СССР,1982, т. 263, J> I, с. 253 256.

33. Сулимова Т.Е., Дрожденюк С.С., Ванюшин Б,Ф. Выделение и очистка ДНК из высших растений с помощью бромистого цетил-триметиламмония в сочетании с хроматографией на оксипатите.- Биоорганическая химия, 1976, т. 2 (19), с. 1182 1188.

34. Холодный Н.Г. Фитогормоны: очерки эндокринологии растений. Избранные тр. Киев: Изд-во АН УССР, т. 2, 1957, с. 159 -369.

35. Чайлахян М.Х. Действие ретардантов на растения. Усп. совр. биол., 1970, т. 69, вып. 2, с. 306 - 318.

36. Чкаников Д.И., Макеев A.M., Микитюк О.Д., Петелина Г.Т. Факторы коррелятивного ингибирования. В кн.: Рост растений. Первичные механизм. М., 1978, с. 75 - 80.

37. Шубина Е.А. Применение метода молекулярной гибридизации ДНК в микросистематических исследованиях (на примере позвоночных). В кн.: Молекулярные основы геносистематики. М., 1980, с. 185 - 202.

38. Яковлева Л.А., Клячко Н.Л., Кулаева О.Н. Действие 6-бензила-минолурина на включение ^С-лейцина в белок в бесклеточной системе у изолированных семядолей тыквы. Мол. биол., 1977, т. II, JS 4, с. 868 - 876.

39. Abeles Р.В. Abscission role of cellulase. Plant physiol., 1969, v. 44, N 3, P. 447 - 449.

40. Abeles F.B. Biosynthesis and mechanism of action of ethylene.- Annual Rev, Plant. Physiol., 1972, v. 23, p. 259 292.

41. Abeles F.B. Ethylene in plant biology. New York: Acad. Press, 1973. - 248 p.

42. Abeles P.В., Holm R.E. Enhancement of Шк synthesis. Protein synthesis and Abscission by ethylene. Plant. Physiol., 1966, v. 41, N 8, p. 1337 - 1339.

43. Abeles P.В., Holm R.E., Gahagan H.E. Biochemistry and physiology of plant growth substances. Ottawa: Runge Press, 1968. - 1515 P.

44. Abeles P.В., Leather G.R. Abscission: control of cellulase secretion by ethylene. Planta, 1971, v. 97, N I, p. 87-92.

45. Adamson D. Expansion and division in auxin-treated plant cells. Can. J. Bot*, 1962, v. 40, N 4, p. 719 - 744.

46. Apelbaum A., Burg S.P. Effect of ethylene on cell division and deoxyribonucleic acid synthesis in Pisum salivum. -Plant Physiol., 1972, v. 50, N I, p. 117 124.

47. Apelbaum A., Burg S.P. Effect of ethylene and 2,4-diochloro-phynoxy acetic acid on cellular expansion in Pisum sativum. Plant Physiol., 1972, v. 50, Ж I, p. 125 132.

48. Apelbaum A., Sfakiotakis В., Dilley D.R. Reduction in extrao-table deoxyribonucleic acid polymerase activity in Pisum sativum seedlings by ethylene. Plant Physiol., 1974, v. 54,1. Ж I, p. 125 128.

49. Andley B.G., Wilson H.M. Metabolism of 2-chloroethylphospho-nic acid (Ethephon) in suspension cultures of Hevea brasi-lensis. J. Exp. Bot., 1978, v. 29, N 113, p. 1329 - 1336.

50. Atkinson A., Bradford P.A., Selmes J.P. A large scale preparation of chromatografic grade hydroxylapatite ahd iuts application in protein separation procedures. J. Apply chem. Biotechnol., 1973, v. 23, p. 517 - 529.

51. Balasz J., Schiedkraut A. DNA replication in sinochromized culture mammalian cells. II. Replication of ribosomal cist-rons in thymidine synchronized Hela sells. J. Mol. Biol., 1971, v. 57, N I, p. 153 - 158.

52. Basak S., Basu P.S., Biswas B.B. Inhibition of transcription by abscisic acid in relation to the binding with DNA.- In; Proc. of the symposium of structural and function aspects of chomosomes. Bombay, 1975, p. 420 431.

53. Bhandal J.S., Malik G.P. Total and polar lipids biosynthesis during Crotaria juncea. Liun. pollen tube growth: effect of gibberellic acid, indoleacetic acid and (2-chloroethyl) pho-sphonic acid. J. Exp. Bot., 1980, v. 31, N 123, p. 931 -935.

54. Bedbrook J.R., Jones J., O'Dell M. et al. A molecular description of telometric hetегоchromatin in secale species. -Cell, 1980, v. 19, N 4, p. 545 560.

55. Birecka H., Catalfano J.L., Urban P. Cell isoperoxidases in sevect potato plants in rebation to mechanical injury and ethylene. Plant Physiol., 1976, v. 57, N I, p. 74 - 79.

56. Bopp M. Synthese d?ADN et croissance en longueur des cellules. Physiol. Veg., 1970, v. 8, N 2, p. 215 - 230.3

57. Bopp M. Uber den Einbau von "n-thymidin in etiaberenden Sprossanchsen. J. Pflauzenphysiol., 1970, Bd. 3, N I, S. 10 - 14.

58. Bopp M. Interactions in the regulation of development in lower plants. In: Regulation of developmental processes in plants. Yena: VEB, Gustav Fisher. Verlag, 1977, p. 278 - 297.

59. Bostock C.J., Prescott D.M. Shift in buoyant density of DNA during the synthetic period and it's relation to euchromatin and heterochromatin in mammalian cells. J. Mol. Biol., 1971, v. 60, p. 151 - 162.

60. Bradshaw M.J., Edelman J. Euzyme formation in higher plants. The production of a gibberellin preceeding invertase symthesis in aged tissue. J. Exp. Botany, I9b9, v. 62, N 20, p. 87-93.

61. Britten R.J., Kohne D.E. Nucleotide sequences repetition in DNA. Carnegie Inst. Wash. Yearbook., 1966, v. 65, p. 78

62. Britten R.J., Kohne D.Б.Repeated nucleotide sequences. -Carnegie Inst. Wash. Year Book, 1967, v. 66, p. 73 88.

63. Bitten R.J., Kohne D.E. Repeated sequences in DNA. Science, 1968, v. 161, N 3931, p. 529 - 540.

64. Brown P.R. The rapid separation of nucleotidees in cell extracts using high-pressure liquid chromatography. J. Chromatogr., 1970, v. 51, N 2, p. 183 - 194.

65. Brown R. Significance of division in the higher plant. -In: Cell division in higher plants. New York: Acad. Press., 1976, p. 3 46.

66. Bryant J.A. The Cell cycle. In: Molecular aspects of gene expression in plants. London - New York - San Francisco: Acad. Press., 1976, p. 177 - 249.

67. Bryant J.A., Rees T. Nucleic acid synthesis and induced respiration by disks of carrot storage tissue. Phytoche-mistry, 1971, v. 10, N 6, p. II9I - 1197.

68. Buiatti M. DNA amplification and tissue cultures. In: Applied and fundamental aspects of plant cell, tissue,and organ culture. Berlin New York: Spriger-Verlag, 1977, p. 358 - 464.

69. Burg S.P. Ethylene in plant growth. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1973, v. 70, N 5, p. 591 - 597.

70. Burg S.P., Apelbaum A., Eisinger W., Kang B.G. Physiology and mode of action of ethylene. Hort. Science, 1971, v. 6, N 4, p. 359 - 364.

71. Caboche M., Lark K.G. Puferential replication of repeated. DNA sequences in nuclei isolated from soybean cells growth in suspension culture. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1981,v. 78, N 3, p. 1731 1735.

72. Capesius J., Loeben S. Changes of nuclear DNA composion after induction of succulence in L.obularia maritina. Z. Pflanzenphysiol., 1983, Bd. 110, N 3, S. 259 - 267.

73. Capesius J., Reiter H.J. Characterization of GC-sattelite DNA from sinapis alba. Z. Pflanzenphysiol., 1982, Bd. 108, N 5, S. 437 - 443.

74. Callebaut A., Osterveldt P.V., Van Parijs R. Stimulation of endomitotic DNA synthesis and cell elongation by gibbe-rellic acid in epicotyls grown from gamma irradiation pea seeds. Plant Physiol., 1980, v. 65, N I, p. 13 - 16.

75. Cli^k R.E., Haskett D.P. The role of protein synthesis and nucleic acid in the development respiration in potato tuber slices. Proc. Natl. Acad. Sci., U.S.A., 1963, v. 50, N 2, p. 243 - 250.

76. Cooke R., Meyer Y. Hormonal control of tobacco protoplast nucleic acid metabolism during in vitro culture. Planta, 1981, v. 152, N I, p. I - 7.

77. Cooke A.R., Randall D.J. 2-Halocthanphosphonic asids as erhylene releasing agents for induction of flowering in peneaples. Nature )London), 1968, v. 218, N 5145, p. 974975.

78. Craker L.E., Abeles P.B. Abscission: quantitative measurement with recording abscissor. Plant Physiol., 1969, v. 44, N 8, p. 1139.

79. Cristoffersen R.E., Laties G.G. Ethylene regulation of gene expression in Carrots. Proc. Nath. Acad. Sci. USA, 1982, v. 79, N 13, P. 4060 - 4063.

80. Dalessandro G. Interaction of auxin, cytokinin and gibbe-rellin on cell division and xylen differentation in cultured explants of Jerusalem artishoke. Plant Cell Physiol.,1973, v. 14, N 6, p. 1164 И76.

81. Davies P.J. Carrent theories on the mode of action of auxin.- Bot. Rev., 1973, v. 39, N 2, p. 139 171.

82. Davidson E.H., Hough B.G., Amerson C.S., Britten R.J. General interspresion of repetitive with non-repetitive sequence elements in the DNA of Xenopus. J. Mol. Biol., 1973, v. 77, N I, p. I - 23.

83. Davidson D., MacLeod R.D. Changes in mitotic indices in roots of Vicia faba. I. Antagonistic eggects of colhicine and IAA.- Chromosoma, 1966, v. 18, N 3, p. 421 437.

84. Davidson A.W., Yeoman M.M. A phytochrome mediated sequence of reactions regulating cell division in developing callus cultures. Ann. Bot., 1974, v. 38, N 155, p. 545 - 554.

85. Degani Y., Atsmon D., Halwy A.H. DNA synthesis and hormone induced elogation in the cucumber hypocotyl. Nature (London), 1970, v. 228, N 5271, p. 554 - 555.

86. Degani Y., Atsmon D. Enhancement of non-nuclear DNA synthesisassociated with hormone induced elongation in the cucumber hypocotyl. Exp. Cell. Res., 1971, v. 64, N I, p. 226 - 229.

87. Deumling B. Sequence arrangement of a highly methylated satellite DNA of a plant seilla: a taudenely repeated inverted repeats. Proc. Nat. Acad. Sci.,USA, 1981, v. 78, N 3, p.338 348.

88. Domir S.C., Foy C.L. A study of ethylene and C02 evolution from ethephon in tobacco. Pestic. Biochem., Physiol., 1978, v. 9, N I, p. I - 8.

89. D'orffling K. Growth. Progr. Bot., 1976, v. 38, p. 149-166.

90. Encyclopedia of Plant physiology. Hormonal regulation of development. I. Molecular aspects of plant hormones.- Berlin-Heidelberg-New York: Springer-Verlag, 1980, v. 9. 681 p.

91. Evans M.L., Ray P.J. Timing of the auxin response in coleop-tiles and its implications regarding auxin action. J. Gener. Physiol., 1969, v. 53, N I, p. I - 21.

92. Evans M.L., Vesper M.J. An improved method for detecting auxin-induced hydrogen ion efflux from corn coleoptiles segments. Plant Physiol., 1980, v. 66, N 4, p. 561 - 565.

93. Fellenberg G. Veranderungen des nucleoproteids von erbsenepicotylen durch synthetisches auxin bei der induction der Wurzelneubilding. Planta, 1969, v. 84, N 2, p. 195-198.

94. Fosket D.E. The regulation of the plant cell cycle by cyto-kinin. In: Mechanism and control of cell division, Dowden, Hutchinson and Koss, Inc., 1977, p. 62 - 91.

95. Frazer R.S.S. Synchronous cell division in cultured explants of Jerusalem artishoke tubers: the effects of 5-fluorouracil on messenger RNA synthesis and induction of cell division. -J.Exp. Bot., 1975, v. 26, N 93, p. 555 568.

96. Fraser R.S.S. Studies on messenger and ribosomal RNA synthesis in plant tissue cultures induced to indergo synchronous cell division. Eur. J. Biochem., 1975, v. 50, N 4, p.529 537.

97. Fraser R.S.S., Loening N.E. RNA synthesis during synchronous cell division in cultured explants of Jerusalem artishoke tuber. J. Exp. Bot., 1974, v. 25, N 88, p. 847 - 851.

98. Fuch J., Lieberman M. Effects of kinetin, JAA and gibberel-lin on ethylene production and theis interactions in growth sedlings. Plant Physiol., 1968, v. 43, N Ю, p. 2029-2036.

99. Gautheret R. Action conjugee de l'actele gibberellin, de la cinetine et de l'acide indoleaeetique sur les tissues culti-ves in vitro particulierement sur coux de Topinambour. -G.R. Acad. Sci. (Paris), 1981, v. 253, p. 1381 1385.

100. Gimmler G.M., Schweizer E. R-DNA replication in a synchronized culture of saccaromyces cerevisiae. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1972, v. 46, N I, p. 143 - 129.

101. Gorter C.J., Lweep van der W. Morphogenetic effects of her-becides. New Yort; Acad. Press. Inc., 1964. - 275 p.

102. Grisward J., Tuffet-Aughileri. Variations in the sattelite DNA content of Gucumis melo in relation to differentiation and hormone concentration. Nucl. Acid. Res., 1980, v. 8, К 12, p. 2843 - 2857.

103. Guille E., Quetier P. Heterochromatic, redundant and metabolic DNAs: a new hypothesis about their structure and function. Progr. Biophys. Mol. Biol., 1973, v. 27, N I, p. 123142.

104. Hanson J.В., Trewavas A.J. Regulation of plant cell growth: the changing perspective. New.Phytologist, L982, v. 90,1. N I, p. I 18.

105. Harland J., Jackson J.P., Yeoman M.M. Changes in some enzymes involved in DNA biosynthesis following induction of division in cultured plant cells. J. Cell Sci., 1973, v. 13, N I, p. 121 - 138.

106. Hase Y., Hase A., Tanifuji S. Constancy of r-DNA content during dedifferentiation of carrot and Jerusalem artishoke explants. Plant Cell Physiol., 1982, v. 23, N 2, p. 323333.

107. Hase Y., Yakura K., Tanifuji S. Differential replication ofsattelite and main band DNA during early stages of callus formation in carrot root tissue. Plant Cell Physiol., 1979, v. 20, N 8, p. 146I - 1469.

108. Henry E.W., Nehelwube C., Russo J. Physiological responses of draft pea (Pisum sativum, var. "Little Marvel") sedlings to ethrel an UV irradiation. Z. Pflanzenphysiol., 1977,1. Bd. 81, H 5, S. 459 465.

109. Henry ЕЛ/., Richard L.B. A study of the effects of applied ethephon on enzyme (polyphenol Oxidase, peroxidase, cata-lase, ATP-ase) activity in tobacco (Nicotiana tabacum) apical tissue chloroplasts. Z. Pflanzenphysiol., 1979, Bd. 92, H I, S. II - 22.

110. Heyn А.Ы. J. Molecular basis of auxin regulated extension growth and role of dextranase. Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 1981, v. 78, N II, p. 6608 - 6612.

111. Holm R.E., Abeles P.B. Abscission: the role of RNA synthesis. Plant Physiol., 1967, v. 42, N 8, p. 1094 - Ю96.

112. Holm R.E., Abeles P.B. The role of ethylene in 2,4-D-in-duced growth inhibition. Planta, 1967, v. 78, N 3, p. 293 - 304.

113. Howath C. High-performance ion-exchange chromatography with narrow-bore columns. Rapid analysis of nucleic acid constituents at the subnanomole level. Methods Biochem. Anal., 1973, v. 21, N I, p. 79 - 154.

114. Hulme A.C., Jones J.D. Tanine inhibition of plant motochond-ria. In: Enzyme Chem. Phenol. Compaunds. Oxford-London-New York, Paris: Pergamon Press, 1963, p. 97 - 120.

115. Ingle J., Rearson G.G., Singlair J. Species distribution and properties of nuclear sattelite DNA in higher plants. -Nature New Biol., 1973, v. 242, N 5394, p. 193 197.

116. Ingle J., Timmis J.N., Singlair J. The relationship between sattelite DNA, ribosomal RNA, gene redudancy and genome size. Plant Physiol., 1975, v. 55, N 3, p. 496 - 501.

117. Jacobs W.P. Plant hormones and plant development. New York: Cambridge University press., 1979. - 168 p.

118. Jajima Y., Yamada Y., Yasuda T. Induction of DNA synthesisby 2,4-dichlorophenoxyacetic acid during callus induction in Jerusalem artishoke tuber tissues. Physiol. Plant, 1980, v. 48, Ease. 4, p. 564 - 567.

119. Jeanirin G., Melet D., Kovoor A. Differential expaction of nucleic asids from large quantities of plant tissue: DNA and transfer RNA from Jerusalem artishoke rhizomes. J. Exp. Botany, 1972, v. 24, N 77, p. 863 - 874.

120. Jonannean J.P., Tandeau de Marsac N. Stepwise effect of cy-tokinin activity and DNA synthesis upon mitotic cycle events in partially synchronized tobacco cells. Exp. Cell Res., 1973, v. 77, N 1-2, p. 167-174.

121. Kadouri A., Atsmon D., Edelman M. Sattelite-rich DNA in cucumber: hormonal enhancement of synsethis and subcellular identification. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1975, v. 72,1. N 6, p. 2260-2264.

122. Kahl G. Genetic and metabolic regulation in differentiating plant storage tissue cells. Bot. Rev., 1973, v. 39, N 3, p. 274-299.

123. Kende H., Gardner G. Hormone binding in plants. Ann. Rev. Plant Physiol., 1976, v. 27, p. 267-292.

124. Key J.Y. Hormones and nucleic acid metabolism. Ann. Rev. Plant Physiol., 1969, v. 20, p. 449-474.

125. Key J.L., Ingle J. RNA metabolism in response to auxin. -In: Biochemistry and physiology of plant growth substanses. Ottawa: Runge Press., 1968, p. 711-722.

126. Key J.Y., Shanoon J. Enchancement by auxin of ribonucleic acid synthesis in excised soybean hypocotyl tissue. -Plant Physiol., 1964, v. 39, N 3, p. 360-365.

127. Key J.L., Wanderhoef L.W. Plant hormones and developmental regulation: role of transcription and translation. In: Developmental regulation: aspects of cell differentiation.

128. New York London: Academic Press, 1973, p. 49 - 83.

129. Kovoor A., Melet D. Rapidly reassociating DNA in Jerusalem artishoke rhizome and auxin-treated explants. In: Symp. Biol. Nucleic acids and protein in plants. Hungary, 1972, v. 13, p. 29 - 32.

130. Kwong P.Y., Lagerstedt H.B. Translocation of ethephon in beans and peas. J. Amer. Soc. Hort. Sci., 1977, v. 102, N 4, p. 437 - 440.

131. Lee T.T. Interaction of cytokinin, auxin and gibberellinon peroxidase isoenzymes in tobacco tissue cultured in vitro. Can. J. Bot., 1972, v. 50, N 12, p. 2471-2477.

132. Lefler H.R., O'Brien T.J., Glover D.V., Cherry J.H. Enhanced deoxyribonicleic acid polymerase activity of chromatin from soybean hypocotyls treated with 2,4-dichloro-phenoxyacetic acid. Plant Physiol., 1971, v. 48, N I, p. 43-45.

133. Leschem Y. The molecular and hormonal basis of plant growth regulation. New York: Pergamon Press, 1973. - 271 p.

134. Lewis L.N., Warner J.E. Synthesis of cellulase during abscission of phaseolus vulgaris leaf explants. Plant Physiol., 1970, v. 46, N 2, p. 194-196.

135. Lieberman M. Biosynthesis and action of ethylene. Ann. Rev. Plant Physiol., 1979, v. 30, p. 533-591.

136. Looney N.E., Patterson H.E. Chlorophyllase activity in apples and bananas during the climacteric phase. Nature (London), 1967, v. 214, N 5094, p. 1245-1246.

137. Lowry O.H., Rosenbrough N.J., Parr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Polin Penol reagent. J. Biol. Chem., 1951, v. 193, N I, p. 265 - 275.

138. Maas H., Klambt D. Cytokinin effect on protein synthesisin vivo in higher plants. Planta, 1977, v. 133, N I, p. 117 - 120.

139. Maiaver C.L., Phillips J.H. The cell cycle in relation to induction of xylem differentiation: treated thymidine incorporation in cultured tuber explants of Helianthus tube-rosus L. Plant Sci. Lett., 1979, v. 15, N I, p. 47-55.

140. Marmur J. A procedure for the isolation of deoxyribonucleic acid from microorganisms. J. Mol. Biol., 1961, v. 3, N 2, p. 208-218.

141. Marmur J., Doty P. Thermal renaturation of deoxyribonucleic acids. J. Mol. Biol., 1961, v. 3, N 5, p. 585 - 594.

142. Marre Б. Fusicoccin: a tool in plant physiology. Ann. Rev. Plant Physiol., 1979, v. 30, p. 273 - 288.

143. Masuda Y., Kamisake S. Rapid stimulation of RNA biosynthesis by auxin. Plant Cell Physiol., 1969, v. 10, N I, p. 79-89.

144. Maynard J.A., Swan J.M. Organophosphorous compounds. I, 2-chloroalkylphosphonic acid as phosphorylating agents. -Australian J. Chem., 1963, v. 16, N 4, p. 596 608.

145. Meyer Y., Chartier Y. Hormonal control of mitotic development in tobacco protoplasts. Two dimensional distribution of newly-synthesised proteins. Plant Physiol., 1981, v. 68, N 6, p. 1273 - 1279.

146. Miller C.O. Control,of deoxysoflavone synthesis in soybean tissue. Planta, 1969, v. 87, N I, p. 26 - 35.

147. Miller C., Skoog P., Saltza M. von, Strong P. Kinetin a cell division factor from deoxyribonucleic acid. J. Amer. Chem. Boc., 1955, v. 77, N 1392, p. 1392.

148. Minabo Т., Kibuta Y., Okajawa Y. The changes in auxin levels of potato tuber plugs in respouse to СЕРА (2chloroethyl)phosphonic asid and kinetin. Jap. J. Crop. Sci., 1980, v. 49, N 3, p. 461 - 466.

149. Minocha S.C. Abscisic acid pro-motion of cell d.ivision and DNA synthesis in Jerusalem artishoke tuber tissue cultured in vitro. Z. Pflanzenphysiol., 1979, Bd. 92, H 4, S. 327 - 339.

150. Minocha S.C. Effect of auxin and abscisic acid on RNA and protein synthesis prior to the first cell division in Jerusalem artishoke tuber tissue cultured in vitro. Z. Pflanzenphysiol., 1979, Bd. 92, H 4, S. 367 - 374.

151. Minocha S.C. The role of auxin and absoisic acid in the induction of cell division in Jerusalem artishoke tuber tissue cultured in vitro. Z. Pflanzenphysiol., 1979, Bd. 92, H 5, P. 431 - 441.

152. Minocha S., Halperin W. Hormones and metabolited which control tracheid differentiation with or without concomitant effects on growth in cultured tuber tissue of Helian-thus tuberosus L., Planta, 1974, v. 116, N 4, p. 319 -351.

153. Mitchell J.P. DNA synthesis during the early division cycles of Jerusalem artishoke callus culture. Ann. Bot., 1967,v. 31, N 123, p. 427 435.

154. Mitchell J.P. The pattern of protein accumulation in relation to DNA replication in Jerusalem artishoke callus cultures. Ann. Bot., 1968, v. 32, N 126, p. 315 - 326.

155. Mitchell J.P. RNA accumulation in relation to DNA and pro-tion accumulation in Jerusalem artishoke callus cultures. Ann. Bot., 1969, v. 33, N 128, p. 25 - 34.

156. Murashige T.Plant propagation through tissue cultures. -Ann. Rev.Plant. Physiol., 1974, v. 25, p. 135 166.

157. Nagl W. DNA synthesis in tissue and cell cultures. Ins

158. Tissue culture and plant science. New York: Acad. Press.,1974, p. 19 42.

159. Nagl W. Differential DNA replication in plants: a critical review. Z. Pflanzenphysiol., 1979, Bd. 95, H.4, S. 283 -314.

160. Nagl ¥., Rttker W. Effect of phytohormones on thermal denatu-ration profiles of Cymbidium DNA: indication of differential DNA replication. Nucl. Acid. Res., 1976, v. 3, N 8, p. 2033 - 2039.

161. Nickell L.G. Controlling biological behavior with chemicals. Chem. England News, 1978, v. 56, N I, p. 18 - 34.

162. Nir G., Lavee S. Persistence, uptake and translocation "^C-ethephon in Perlette and Cardinal grapwines. Austral. J. Plant Physiol., 1981, v. 8, N I, p. 57 - 63.

163. Nitsan J., Lang A. DNA synthesis in the elongating non-dividing cells of the lentil epicotyl and its promotion by gibberellin. Plant Physiol., 1966, v. 41, N 6, p. 965 -970.

164. Osborne D.J. Ethylene as a plant hormone. In: Biochemistry and physiology of plant growth substanses. Ottawa: Runge Press, 1968, p. 8i5 - 817.

165. Oswald Т.Н., Smith, Phillips D.V. Callus and plantled regeneration from cell cultures of ladino clover and soybean. -Physiol. Plantar., 1977, v. 39, Fasc. 2, p. 127 134.

166. Overbeek J., Loeffler J.E., Mason M.G.K. Mode of action of abscisic asid. In: Biochemistry and physiology of plantgrowth substances. Ottawa: Runge Ress, 1968, p. 1593-1607.

167. Palmer J.M. Rapid isolation of active mitochondria from plant tissue. Nature (London), 1967, v. 216, N 5121, p.1208.

168. Parenti R., Guille E., GrisvarcL J., Durante M. et al. Transient DM sattelite in dedifferentiating pith tissue. Natute New Biol., 1973, v. 246, p. 237 - 239.

169. Patan K., Das U.K. The relation of DNA synthesis and mitosis in tobacco pith tissue cultured in vitro. Chromoso-ma, 1961, v. II, N 5, p. 553 - 572.

170. Peaud-Lenool G. The hormonal regulation of the cell division cycle. In: Plant Growth Regulation. Berlin-New York: Springer-Verlag, 1977, p. 240 - 248.

171. Pearson J.A., Wareing P.F. Effect of abscisic acid on activity of hromatin. Nature (London), 1969, v. 221, N 5181, p. 672 - 673.

172. Penny P., Penny D. Rapid responses to phytohormones. -In: Plant hormones and related compounds. North Holland: Elsevier, 1978, v. II, p. 537 587.

173. Penon P., Gecohini J.P., Miassod R. et al. Peroxidase associated with lentil root ribosomes. Phytochemistry, 1970, v. 9, N I, p. 73 - 87.

174. Phyllips R. Characterization of mitotic cycles preceeding xylogenssis in cultured explants of Jerusalem artishoke (Helianthus tuberosus L.). Ann. Bot., I9SI, v. 47, N 4, p. 785 - 792.

175. Phillips R., Doods J.H. Rapid differentiation of trachery elements in cultured explants of Jerusalem artishoke. -PIanta, 1977, v. 135, N 2, p. 207 212.

176. Pryor A.K., Faulkner M.M., Rhoades W., Peacock J. Asynchronous replication of heterochromatin in maize. Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 1980, v. 77, N II, p. 6705-6709.

177. Puech A.A., Reberz C.A., Crane J.C. Pigment changes asso-siated with application of ethephon (2-chloroethylphospho-nic-acid) to fig (Ficus carica L.) fruits. Plant Physiol.,1976, v. 57, N 4, p. 504 509.

178. Quetier P., Guille E., Vedel P. Etude des acides desoxyri-bonucleique des vegetaux. Isolement et proprietes d'un ADN nucleaire riche en G + G. Compt. Reud., 1968, v. 266,1. N 8, p. 735 738.

179. Rather A., Goren R., Mouselise S.P. Activity of pectin esterase and cellulase in the abscission zone of citrus leaf explants. Plant Physiol., 1969, v. 44, N 8, p.I7I7.

180. Ray P.M. Auxin-binding site of maize coleoptiles are loka-lized on membranes of the endoplasmic retikulum. Plant Physiol., 1977, v. 59, N 4, p. 594 - 599.

181. Ritzert R.W., Turin B.A. Formation of peroxidases in response to indole-3-acetic acid in culturedd tobacco cells.- Phytochemistry, 1970, v. 9, N 5, p. 1701 1705.

182. Rizzo P.J., Pedersen K., Cherry J.H. Stimulation of transcription by a soluble factor isolated from soybean hypocotyl by 2,4-D affinity chromatography. Plant Sci. Lett.,1977, v. 8, N 3, p. 205 211.

183. Roberts L.W. The initiation of xylem development, Bot. Rev., 1969, v. 35, N 3, p. 201 - 250.

184. Roy P., Biswas B.B. A receptor protein for indoleacetic acid from plant chromatin and its role for transcription.- Biochim. Biophys. Res. Commun., 1977, v. 74, N 6, p. 1597 1606.

185. Sato Т., Watanabe A., Imaseki H. Effect of ethylene on DNA synthesis in potato tuber tissue disks. Plant Cell Physiol., 1976, v. 17, N 6, p. 1255 - 1262.

186. Schafer A., Blaschke J.R., Neuman K.H. On DNA metabolism of carrot tissue culture. Planta, 1978, v. 139, N I, p. 97 - 101.

187. Scott N.C., Jngle J. The genus for cytoplasmic ribosomal ribonucleic acid in higher plants. Plant Physiol., 1973, v. 51, N 4, p. 677 - 684.

188. Setterfield G. Growth regulation in excised slices of Jerusalem artishoke tuber tissue. Symp. Soc. Exp. Biol., 1963, v. 17, p. 98 - 126.

189. Sfakictakis E.M., Dilley D.R. Induction of autocatalic ethylene production in apple puits by propylene in relation to maturity and oxygen. J. Amer. Soc. Hortic. Sci., 1973, v. 98, N 5, p. 504 - 508.

190. Shannon L., Uritani b., Imaseki H. De novo synthesis of peroxidase isozymes in sweet potato slices. Plant Physiol., 1971, v. 47, N 5, P. 493 - 498.

191. Shimokawa K., Kasai L. A possible incorporation of ethylene into RNA in Japanese morning glory seedlings. Agric. Biol. Chem., 1968, v. 32, N 5, p. 680 - 682.

192. Shininger T.L. The control of vascular development. Ann. Rev. Plant Physiol., 1979, v. 30, p. 313 - 337.

193. Simard A. Initiation of DNA synthesis by kinetin and experimental factors in tobacco pith tissues in vitro. -Canad. J. Bot., 1971, v. 49, N 9, p. 1541 1551.

194. Simpson S.P., Torrey J.G. Hormonal control of deoxyribonucleic acid and protein synthesis in pea root cortical ex-plants. Plant Physiol., 1977, v. 59, N I, p. 4-9.

195. Skoog P., Armstrong D.J. Cytokinins. Ann. Rev. Plant Physiol., 1970, v. 21, p. 359 - 384.

196. Stavart I. McD., Hsu C.L. Influence of phytohormones on the response of cultured cotton ovules to (2-chloroethyl)phosphonic acid. Physmol. Plantar., 1977, v. 39, Pasc. I, P. 79 - 85.

197. Stosser R. Localization of RNA and protein synthesis inthe developing abscission layer in fruit of Prunus cera-sus L., Z. Pflanzenphysiol., 1971, Bd. 64, H. 4, S. 328 - 335.

198. Stoutmeyer V.T., Britt O.K. Ethrel and plant tissue cultures. Bioscience (abstr.), 1970, v. 20, p. 914.

199. Suyama Y., Bonner W.D. DNA from plant mitochondria. -Plant Physiol., 1966, v. 41, N 3, p. 383 388.

200. Tanimoto E.C., Douglas C., Halperin W. Factor affecting crown gall tumorogenesis in tuber slices of Jerusalem artishoke (Helianthus ;tuberosus L.). Plant Physiol., 1979, v. 63, N 6, p. 989 - 994.

201. Teissere M., Penon P., Van Huystec R.B. et al. Hormonal control of transcription in higher plant. Biochem. Biophys. Acta, 1975, v. 402, N 3, p. 391 - 402.

202. Timmis J.H., Deumling В., Ingle J. Localization of sattelite DNA sequences in nuclei and chromosomes of two plants. Nature (London), 1975, v. 257, N 5522, p. 152 - 155.

203. Theologis A., Laties G.G. Potentiating effect of pureoxygen on the enhancement of respiration by ethylene in plant storage organs: a comparative study. Plant Physiol., 1982, v. 69, N 5, P. Ю31 - 1035.

204. Thimann K.V. The action of hormone in plants and in vertebrates. New York: Acad. Press, 1952, p.23 - 40.

205. Thimann K.V. The auxins. In: Physiology of plant growth and development. London: Mac Graw Hill, 1969, p. 3 - 45.

206. Torrey J.G., Fosket D.E. Cell division in relation to cy-todifferentiation in cultured pea root segments. Amer. J. Bot., 1970, v. 57, N 9, p. Ю72 - 1080.

207. Torrey J.G., Fosket D.E., Hepler P.K. Zylem formation: a paradigm of cytodifferentiation in higher plants. Amer.

208. Sci., 1971, v. 59, N 3, p. 338 352.

209. Trewavas A. Relationship between plant growth hormones and nucleic acid metabolism. In: Progress in phytоchemistry. Willey, 1968, v. I, p. 113 - 161.

210. Uchimiya H., Murachige T. Influence of the nutrient medium on the recovery of dividing cells from tobacco protoplasts.- Plant Physiol., 1976, v. 57, N 3, p. 424 429.

211. Vanderhoef L.V. Auxin-regulated cell enlargement. In: Ge-mon organization and expression in plants. New York: Plenumpress, 1980, p. 159 173.

212. Verma D.P.S., Maclachan G.A., Byrne H., Evings D. Regulation and in vitro translation of messenger ribonucleic acid for cellulase from auxin-treated pea epicotyls. J. Biol. Chem., 1975, v. 250, N 4, p. Ю19 - 1026.

213. Y/alker J.G., Key J.L. Isolation of cloned cDNA-s to auxin responsive poly(A)+RNAs of elongating soybean hypoco.tyl. -Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1982, v. 79, N 23, p. 7185-7189.

214. Waring M., Britten R.J. Nucleotide sequence repetition :: a rapidly reassociating fraction of mouse DNA. Science, 1966, v. 154, N 3750, p. 791 - 794.

215. Watanabe A., Imaseki H. Induction of deoxiribonucleic acid synthesis in potato tuber slices. Role of protein synthesis.- Plant Physiol., 1976, v. 57, N 4, p. 568 571.

216. Webster B.D. Anatomical aspects of abscission. Plant Physiol., 1968, v. 43, И 98, p. 1512 - 1544.

217. Wilde R.G. Practical application of (2-chlorocthyl) pho-sphonic acid in agricultural production. Hort. Sci., 1971, v. 6, N 4, p. 12 - 18.

218. Yamada Y., Yasuda T. Changes in the basicity of histone fractions during callus induction. Biochem. Biophis. Res. Commun., 1971, v. 43, N 2, p. 488 - 493.

219. Yasuda Т., Yajima Y., Yamada Y. Induction of ША synthesis and callus formation from tuber tissue of Jerusalem artishoke by 2,4-dichlorophenoxyacetic acid. Plants Cell Physiol., 1974, v. 15, N 2, p. 321 - 329.

220. Yeoman M.M. Division synchrony in cultured cells. In: Tissue culture and plant science. New York - London:

221. Acad. Press., 1974, p. I 17.

222. Yeoman M.M., Evans P.K. Growth and differentiation in plant tissue cultures. II. Synchronous cell division in developing callus cultures. Ann. Bot. (London), 1967, v. 31, N 122, p. 323 - 332.

223. Yeoman M.M., Davidson A.W. Effect of light on cell division in developing callus cultures. Ann. Bot., 1971, v. 35, N 143, P. Ю85 - 1100.

224. Zenk M.H. Isolation biosynthesis and function of indo-leacetic acid conjugates. In: Regulateurs Naturels de ed croissance veglrale., Paris, 1964, p. 241 - 249.

225. Zobel R.W. Effects of low concentration of ethylene on cell division and cytodifferentiation in lettuce pith explants. Can. J. Bot., 1978, v. 56, N 8, p. 987-990.

226. Zobel R.W., Roberts L. Control, of morphogenesis in the ethylene requiring mutant diadeotripic. Can. J. Bot., 1974, v. 52, N 4, p. 735 - 741.

227. Zurfluh L.L., Guilfoyle T.J. Auxin-induced changes in the patterns of protein synthesis of soybean hypocotyls. -Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1.980, v. 77, N 2, p. 357 361.

228. Zurfluh L.L., Guilfoyle T.J. Auxin-indiced nucleic acid and protein synthesis in soybean hypocotyl. In: Levels of genetic control in development. New York: U.K. Abbott. Alan R. Liss. Juc., 1981, p. 99 - 118.

229. Zurfluh L.L., Guilfoyle T.J. Auxin-induced changes in the population of translatable m-RNA in elongating soybean hypocotyl. Plant Physiol., 1982, v. 69, N 2, p. 332 337.

230. Zurfluh L.L., Guilfoyle T.J. Auxin and ethylene-induced changes in intact soybean hypocotyl. Plant Physiol., 1982, v. 69, N 2, p. 338 - 340.