Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Продукционный процесс и регуляция фотосинтеза C3-растений в изменяемых условиях углеродного и азотного питания

ВАК РФ 03.00.12, Физиология и биохимия растений

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Новичкова, Наталья Степановна

Список сокращений.

Введение.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Глава 1. Ассимиляция углерода и азота при фотосинтезе.

1.1 Механизмы усвоения углекислоты при фотосинтезе.

1.1.1. Автотрофная ассимиляция углерода на свету (фотоавтотрофия).

1.1.2. Фотодыхание и гликолатный путь фотосинтеза.

1.1.3. Рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилаза - основной фермент авто-трофной ассимиляции С02.

1.1.4. Карбоангидраза.

1.1.5. Конечные продукты фотосинтеза.

1.2. Регуляция ассимиляции углекислоты в'листьях.

1.3. Влияние повышенной концентрации СО2 на морфофизиологические и биохимические параметры растений.

1.3.1. Предварительные наблюдения.

1.3.2. Изменения морфологических параметров при повышении концентрации СО2.

1.3.3. Фотосинтез при повышенной концентрации С02.

1.3.4. Проблемы, связанные с механизмами фенотипической адаптации к повышенной концентрации СО2.

1.3.5. Параметры регуляции фотосинтеза.

1.3.6. Ферменты при повышенной концентрации СО2.

1.3.6.1. Карбоангидраза.

1.3.6.2. Рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилаза.

1.3.6.3. Сахарозофосфатсинтаза.

1.3.7. Неструктурные углеводы при повышенной концентрации СО

1.3.8. Роль морфогенеза в проявлении признаков акклимации у растений при повышенной концентрации СО2.

1.3.9. Взаимодействие углерода и азота.

1.4. Ассимиляция азота при фотосинтезе.

1.4.1. Азот в атмосфере и почве.

1.4.2. Ассимиляция нитрата при фотосинтезе.

1.4.3. Ассимиляция аммония.

1.5. Симбиотическая фиксации молекулярного азота и ее связь с фотосинтезом

1.5.1. Механизмы симбиотической фиксации азота.

1.5.2. Связь азотфиксации с фотосинтезом.

1.5.3. Симбиотическая азотфиксация и минеральное питание растений

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

Глава 2. Объекты и методы исследования.

2.1. Объекты исследования.

2.2. Морфометрические параметры.

2.3. Методы биохимического анализа.

2.3.1.Определение содержания белка.

2.3.2. Определение содержания хлорофилла.

2.3.3. Определение содержания углеводов.

2.4. Измерение скорости СОг-газообмена (нетто-фотосинтез).

2.5. Определение карбоксилазной активности рибулозо-1,5-бис-фосфаткарбоксилазы / оксигеназы.

2.5.1. Получение ферментного препарата.

2.5.2. Определение карбоксилазной активности рибулозо-1,5-бисфос-фаткарбоксилазы / оксигеназы.

2.5.3. Оценка "реальной" активности рибулозо-1,5-бисфосфаткарбок-силазы / оксигеназы.

2.6. Определение активности ферментов азотного метаболизма

2.6.1. Получение ферментного препарата.

2.6.2. Активность глутаминсинтетазы.

2.6.3. Активность Фд-спедифичной глутаматсинтазы.

2.6.4. Активность НАДН-специфичной глутаматсинтазы.

2.7. Измерение параметров корневой деятельности

2.7.1. Измерение скорости дыхания корневой системы.

2.7.2. Измерение скорости симбиотической азотфиксации.

Глава 3. Влияние повышенной концентрации С02 на физиолого-биохи-мические параметры Сз-растений.

3.1. Влияние повышенной концентрации С02 на рост и биохимический состав листьев гороха.

3.2. Влияние удвоенной концентрации С02 на морфо-физиологические параметры и биохимический состав листьев сахарной свеклы.

3.3. Обсуждение к главе 3.

Глава 4. Влияние типа азотного питания на физиолого-биохимические характеристики клевера лугового.

4.1. Рост и структура биомассы.

4.2 Биохимический состав листьев.

4.2.1. Неструктурные углеводы.

4.2.2. Водорастворимый белок.

4.2.3. Хлорофилл.

4.3. Фотосинтез и рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилаза.

4.3.1. С02-газообмен (нетто-фотосинтез) в реальных условиях.

4.3.2. Потенциальная скорость фотосинтеза.

4.3.3. Световые кривые фотосинтеза.

4.3.4. Карбоксилазная активность рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксила-зы / оксигеназы in vitro.

4.3.4.1. Активность рибулозо-1,5-бисфосфат-карбоксилазы в условиях, имитирующих условия роста.

4.3.4.2. Полностью активированная рибулозо-1,5-бисфосфаткарбокси-лаза.

4.4. Ферменты ассимиляции азота.

4.4.1. Глутаминсинтетаза.

4.4.2. Фд-зависимая глутаматсинтаза.

4.4.3. НАДН- зависимая глутаматсинтаза.

4.5. Дыхание корневой системы и симбиотическая азотфиксация.

4.5.1. Дыхание корневой системы.

4.5.2. Симбиотическая азотфиксация.

4.6. Обсуждение к главе 4.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Продукционный процесс и регуляция фотосинтеза C3-растений в изменяемых условиях углеродного и азотного питания"

Углерод и азот - важнейшие элементы питания высших растений, составляющие соответственно 40 - 50% и 2 - 5% от сухой массы [Крето-вич, 1971].

Современная концепция автотрофной ассимиляции углерода в восстановительном пентозо-фосфатном цикле (ВПФЦ) фотосинтеза создана Кальвином и Бенсоном в конце 40-х - начале 50-х годов XX столетия [Bassham, Calvin. 1957] и позднее дополнена схемой гликолатного пути фото дыхания [Tolbert, 1971]. Широкие исследования зависимости фотосинтеза от ряда факторов окружающей среды, проведенные в экспериментальных условиях, показали, что процесс фотосинтеза подвержен многоуровневой регуляции такими факторами, как онтогенез, свет, температура, концентрация С02 ([С02]) [Эдварде, Уокер, 1986; Берри, Да-унтон, 1987].

Основная масса сведений о росте, фотосинтезе и метаболизме углерода и азота была получена при современной концентрации С02, которая обеспечивает фотосинтез не более, чем на 50% [Bowes, 1993]. Начиная с середины прошлого века, концентрация диоксида углерода в атмосфере повышается с заметной скоростью, и по имеющимся прогнозам, в первой четверти следующего столетия [С02] в атмосфере может удвоиться по сравнению с нынешней [Джиффорд, 1987]. Этот непреложный факт поставил перед физиологией растений новые задачи выявления последствий прогнозируемых [С02] для общей продуктивности растительного покрова Земли, качества продукции и видового состава земной флоры. Имеющиеся данные о влиянии повышенной [С02] на механизм адаптации к повышению [С02] не всегда согласуются между собой, а множественность действующих факторов, помимо [С02], затрудняет интерпретацию результатов. Поэтому постановка новых целенаправленных исследований, дающих возможность исключать влияние одних факторов, чтобы оценить эффективность действия других, является чрезвычайно актуальной.

Фотосинтез - главная, хотя и не единственная, составляющая продуктивности автотрофов. Теория продуктивности растений, на протяжении многих лет разрабатывавшаяся A.A. Ничипоровичем, содержит фундаментальное понятие о необходимости гармоничного сочетания элементов минерального питания, прежде всего, углеродного и азотного [Ничипорович, 1956].

Азот поступает в растение в процессе корневого питания. Его источниками, как правило, являются минеральные соединения (ионы нитрата или аммония). Концепция о механизмах и локализации процессов ассимиляции азота создавалась и развивалась параллельно с обоснованием концепции фотосинтеза [Кретович, 1987; Miflin, Lea, 1976; Wallsgrove Lea, 1985].

Метаболические реакции ассимиляции азота у автотрофов тесно связаны с процессом фотосинтеза, который, с одной стороны, является прямым или косвенным источником энергии, и с другой стороны, продуцирует углеродные цепочки, необходимые для построения азотсодержащих метаболитов. Исследования взаимозависимости фотосинтеза и метаболизма азота [Андреева, 1969; Измайлов, 1986; Guerrero et al., 1981] получили развитие во второй половине XX века, по мере накопления информации о частных механизмах и способах их регуляции.

В ряде случаев источником азота для высших растений могут служить продукты, образуемые некоторыми симбиотическими микроорганизмами в процессе ассимиляции молекулярного азота воздуха. Изучению возможностей использования симбиотической Ыг-фиксации как рациональному и экономичному способу азотного питания растений было уделено особое внимание ввиду его дешевизны и экологической чистоты. Активные поиски повышения продуктивности и экономической эффективности растений при симбиотической ^-фиксации путем снижения доз связанного минерального азота показали, что в некоторых уеловиях симбиотические отношения могут превращаться в паразитизм микроорганизма в отношении растения-хозяина [Кретович, 1987]. Вопрос о последствиях для углеродного метаболизма растения-хозяина перехода исключительно на азотфиксацию, чрезвычайно мало исследован.

Сложность метаболических связей в растении требует проведения комплексных исследований, в идеале системных, с привлечением опыта исследователей разных направлений и даже специальностей. В конечном счете, при высоком уровне знаний механизмов индивидуальных реакций ассимиляции углерода и азота "системный подход - единственный подход, который позволяет получить единственно правильные результаты и сделать соответствующие выводы" [Селье, 1972].

Настоящая работа представляет собой посильный вклад в разработку схем системного подхода к решению ряда конкретных задач, связанных с углеродным и азотным питанием высших растений.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Глава 1.

АССИМИЛЯЦИЯ УГЛЕРОДА И АЗОТА ПРИ ФОТОСИНТЕЗЕ.

Заключение Диссертация по теме "Физиология и биохимия растений", Новичкова, Наталья Степановна

ВЫВОДЫ

1. Сходство реакции растений гороха и сахарной свеклы на длительное воздействие повышенной [С02] при стандартной дозе нитрата заключалось в увеличении веса сухой массы и удельной скорости нетто-фотосинтеза, измеряемого в условиях роста.

2. У однолетнего растения гороха обнаружены признаки фенотипической адаптации к повышенной [С02], состоящие в увеличении отношения корень/надземная часть и накоплении неструктурных углеводов в листьях. У сахарной свеклы, характеризующейся растянутой вегетативной фазой роста, подобные признаки отсутствовали как при стандартной дозе азота, так и при его дефиците. Следовательно, проявление признаков фенотипической адаптации к повышенной [С02] обусловлено спецификой онтогенеза, но не дефицитом азота.

3. Конкурентные отношения между углеродным и азотным метаболизмом при фотосинтезе могут проявляться на уровне ростовой функции.

4. Симбиотическая азотфиксация в отсутствие связанного азота не способна обеспечить полноценное развитие клевера при атмосферной [С02] в условиях водного культивирования. Это выражалось в задержке роста растения, уменьшении удельного значения Рп, снижении плато световой кривой фотосинтеза и активности ключевых ферментов ассимиляции углерода и азота при высоких скоростях азотфиксации.

5. Ухудшение энергетического обеспечения фотосинтеза путем снижения интенсивности света привело к прекращению роста растения, таким образом, деятельность фотосинтетического аппарата в отсутствие нитрата была направлена преимущественно на поддержание жизнедеятельности симбиотических микроорганизмов и высокой скорости азотфиксации.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Анализ результатов влияния повышенных [С02] на рост гороха и сахарной свеклы показал, что несмотря на большую разницу использованных [С02] приросты массы листьев у обоих растений были сравнимы. Фотосинтез, увеличение удельной скорости которого также было сравнимо в обоих случаях, был близок к теоретически возможному для РБФК/О.

Первым признаком адаптации к повышенной [С02] следует считать потерю обоими растениями способности ассимилировать С02 с соответствующей скоростью при измерениях в обычном воздухе. Это явление связано с вероятным повреждением механизма концентрирования С02, а не с активностью карбоксилирующего фермента.

Существенными признаками фенотипической адаптации являются морфологические изменения, выражающиеся в увеличении отношения Я/БЬ и биохимические, сводящиеся к увеличению отношения НСУ/белок, которые наблюдались у гороха, склонного к быстрому образованию дополнительных органов-акцепторов на ранней вегетативной стадии роста. Следствием исключения влияния морфогенеза при изучении сахарной свешш, растения с растянутой фазой вегетативного роста, явилось отсутствие признаков, присущих акклимации. Ограничение питания нитратом вызывало существенные физиолого-биохимические перестройки в растении сахарной свеклы, но не способствовало появлению комплекса признаков, наблюдавшихся у гороха. Т.о., ни повышение [С02], ни дефицит нитрата сами по себе не являются причинами указанных морфологических и биохимических изменений.

Взаимный эффект замедления прироста надземных органов под влиянием увеличивающихся концентраций С02 и нитрата, обнаруженный у сахарной свеклы, обусловлен тесной связью путей их ассимиляции и зависимостью от фотосинтеза. Можно полагать, что конкуренция первичных процессов восстановления и ассимиляции С02 и Ы03" находит отражение и в

107 дальнейшем сложном ходе процессов, приводящих в конечном счете к изменениям ростовой функции.

Вопрос о возможности роста с высокой продуктивностью в отсутствие "связанного" азота даже при наличии его "стартовой дозы" для клевера в условиях наших опытов решается отрицательно. При водном культивировании растений в отсутствие нитрата повреждались такие фундаментальные процессы как рост, фотосинтез и азотный обмен при многократном возрастании скорости азотфиксации. По существу азотфиксирующий микроорганизм в отсутствие нитрата конкурирует с самим растением за продукты фотосинтеза, являясь активным их потребителем, результатом чего является нарушение фотосинтеза и замедление роста растения - хозяина. Экспериментальное снижение скорости фотосинтеза путем уменьшения интенсивности света обостряло трофические взаимоотношения растения и микроорганизма, что привело к проявлению отчетливых признаков паразитизма, главным из которых является практически полная остановка роста растений, не получавших нитрат.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Новичкова, Наталья Степановна, Пущино

1. Алехина Н.Д., Кренделева Т.Е., Полесская О.Г. Взаимосвязь процесса усвоения азота и фотосинтеза в клетке листа Сз-растений // Физиология растений. 1996. Т.43. N 1. С. 136-148.

2. Андреева Т.Ф. Значение фотосинтеза для восстановления нитратов и синтеза белка в листе // Доклады АН СССР. 1951. Т.78. N 5. С.1033-1036.

3. Андреева Т.Ф. Фотосинтез и азотный обмен листьев. М: Наука. 1969. 162с.

4. Андреева Т.Ф., Авдеева Т.А. Белок фракции 1 и фотосинтетическая активность листьев // Физиология растений. 1970. Т. 17. Вып. 2. С.225.

5. Андреева Т.Ф., Авдеева Т.А., Власова М.П., Нгуен-тхыу-Тхыок, Ни-чипорович A.A. Влияние азотного питания растений на структуру и функцию фотосинтетического аппарата // Физиология растений. 1971. Т. 18. Вып. 4. С.701-707.

6. Андреева Т.Ф., Маевская С.Н., Воевудская С.Ю. Взаимосвязь фотосинтеза и азотного обмена в различных условиях фосфорного и азотного питания растений горчицы // Физиология растений. 1992. Т.39. Вып. 4. С.680-686.

7. Андреева Т.Ф., Маевская С.Н., Воевудская С.Ю. Взаимосвязь фотосинтеза с ассимиляцией азота у растений горчицы при воздействии возрастающих доз нитрата в питательном растворе // Физиология растений. 1998. Т.45. N 6. С.813-816.

8. Барри Д.А., Даунтон У.Д.С. Зависимость фотосинтеза от факторов окружающей среды // В кн.: Фотосинтез. Под ред. Говинджи. Т.2. М.: Мир. 1987. С.273-364.

9. Ю.Вавилов П.П., Посыпанов Г.С., Антогонизм и синергизм минерального и симбиотического азота // В кн.: Бобовые культуры и проблема растительного белка. М.: Россельхозиздат. 1983. С.73-81.

10. Вильяме М.В., Ягодин Б.А., Сазонов Ю.Г. Симбиотическая фиксация азота у растений люпина в зависимости от условий фотосинтеза и азотного питания // Физиология растений. 1985. Т.32. N 1. С. 97-103.

11. Гуляев Б.И. Влияние концентрации СОг на фотосинтез, рост и продуктивность растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1986. Т. 18. N 6. С.574-591.

12. Демидов Э.Д., Павлова Е.А., Романова А.К. Участие фотосинтеза и дыхания в ассимиляции минерального азота клетками хлореллы в норме и при азотном голодании // Физиология растений. 1992. Т.39. Вып. 4. С.796-806.

13. Н.Демидов Э.Д., Павлова Е.А., Смолов А.П. Светозависимое восстановление нитрата клетками хлореллы // Физиология растений. 1986. Т.ЗЗ. Вып. 5. С.913-931.

14. Джиффорд P.M. Глобальный фотосинтез и проблема пищевых и энергетических ресурсов // В кн.: Фотосинтез. Т.2. Под ред. Говинджи. М.: Мир. 1987. С.411-453.

15. Евстигнеева З.Г. Глутаматсинтазный цикл у растений // Прикладная биохимия и микробиология. 1993. Т.29. Вып. 1. С.5-17.

16. П.Евстигнеева З.Г., Радюкина H.A., Пушкин A.B. Переведенцев О.В., Шапошников Г.Л., Кретович В.Л. Очистка и физико-химические свойства глутаминсинтазы хлоропластов листьев гороха // Биохимия. 1979. Т. 44. Вып. 7. С. 1303-1309.

17. Измайлов С.Ф. Азотный обмен в растениях. М.: Наука. 1986.' 320с.

18. Карпушкин Л.Т. Газометрический метод изучения СОг-газообмена высших растений: Автореф. дисс. . канд. биол. наук. М.: Институт физиологии растений им. К.А.Тимирязева АН СССР. 1972. 21с.

19. Кондратьева E.H., Гоготов И.Н. Молекулярный водород в метаболизме микроорганизмов. М.: Наука. 1981. 342с.

20. Кретович В.Л. Основы биохимии растений. М.: Наука. 1971. 474с.

21. Кретович В.JI. Усвоение и метаболизм азота у растений. М.: Наука. 1987. 486с.

22. Кретович В.Л., Асеева К.Б., Евстигнеева З.Г., Шапошников Г.А., Ра-дюкина H.A., Романов В.И., Мартынова Е.М. Изменение интенсивности симбиотической фиксации азота в процессе вегетации // Физиология растений. 1973. Т. 20. Вып. 6. С. 1209-1211.

23. Кузнецова Л.Г., Новичкова Н.С., Шевелева Е.В., Ракитина Т.Я., Кефе-ли В.И. Азотный стресс, рост и содержание цитокининов в листьях клевера // Тезисы докладов Второго Всесоюзного общества физиологов растений. Минск. 1990. С. 49.

24. Лонг С.П., Холлгрен Дж.Е. Измерение ассимиляции С02 растениями в п олевых условиях //.Фотосинтез и продуктивность: методы определения. М. Агропромиздат. 1989. С. 165-171.

25. Мокроносов А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М.: Наука. 1981. 196с.

26. Нгуен Тхи Чи, Андреева Т.Ф., Строгорова Л.У., Маевская С.Р., Жиз-невская Г.Я., Ничипоровия A.A. Изаимосвязь фотосинтеза с азотфик-сацией у растений люпина // Физиология растений 1983. Т.30. Вып. 5. С.925-930.

27. Ничипорович A.A. Фотосинтез и теория получения высоких урожаев. 15-е Тимирязевское чтение // М.: Изд-во АН СССР. 1956. 94с.

28. Пухальская Н.В., Ромин Н., Аканов Э.Н. Рост и С02-газообмен при проростании пшеницы в атмосфере, обогащенной С02 // Физиология растений. 1997. Т.44. N 2. С. 172-176.

29. Романов В.Р., Четкова С.А., Тихонович И.А., Черменская И.Е., Крето-вич В.Л. Азотфиксация и динамика поступления 14С, ассимилированного листьями в клубеньки хлорофильных мутантов гороха // Физиология растений. 1987. Т.34. Вып. 3. С. 486-492.

30. Романова А.К. Биохимические методы изучения автотрофии у микроорганизмов//М.: Наука. 1980. 159с.

31. Романова А.К. Рибулозобисфосфаткарбоксилазы/оксигеназы // В кн.: Успехи биологической химии. 1991. Т.32. С.87-113.

32. Романова A.K. Механизмы биосинтеза и генная инженерия рибулозо-бисфосфаткарбоксилазы/оксигеназы // В кн.: Успехи биологической химии. 1997. Т.37. С.211-260.

33. Селье Г. На уровне целого организма. М.: Наука. 1972. 122с.

34. Семененко В.Е. Молекулярно-биологические аспекты эндогеннной регуляции фотосинтеза // Физиология растений. 1978. Т.25. Вып. 5. С.903-923.

35. Семененко В.Е., Абрамова С., Георгиев Д., Пронина H.A. Сравнительное изучение активности и локализации карбоангидразы в клетках Chlorella и Scenedesmus// Физиология растений. 1977. Т. 24. Вып. 5. С. 1055-1059.

36. Умаров М.М. Ацетиленовый метод изучения азотфиксации в почвен-но-микробиологических исследованиях // Почвоведение. 1976. N 11. С. 119-,

37. Федорова Е.Э., Потатуева Ю.А. Ультраструктура и азотфиксирующая активность клубеньков красного клевера при внесении молибдена // Физиология растений. 1984. Т.31. Вып. 6. С.1120-1126.

38. Цюрюпа С.Н., Новичкова Н.С., Романова А.К. Кинетические характеристики рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилазы in vivo. II. Зависимость от режима выращивания фотосинтезирующих листьев тритикале // Физиология растений. 1993. Т. 40. N 4. С. 546-552.

39. Четкова С.А., Четверикова А.Г., Романов В.И., Тихонович И.А. Характеристика фотосинтетического аппарата хлорофильных мутантов гороха как модели для изучения взаимосвязи между фотосинтезом и симбиотической азотфиксацией// С.-х. биол. 1987. N 9. С.50-54.

40. Чмора С.Н., Мокроносов А.Т. Глобальное повышение С02 в атмосфере и адаптивная стратегия растений // Физиология растений. 1994. Т.41. N 5. С.768-778.

41. Шапошников Г.Л., Евстигнеева З.Г., Асеева К.Б., Кретович B.JI. Изменение интенсивности фиксации молекулярного азота, содержания свободных аминокислот и аммиака в клубеньках люпина в течение суток//Физиология растений. 1975. Т. 22. Вып. 4. С.786-793.

42. Эдварде Дж., Уокер Д. Фотосинтез С3 и С4 растений: механизмы и рефляция // М.: Мир. 1986. 598с.

43. Abu-Shakra S.S., Phillips D.A., Huffaker R.C. Nitrogen Fixation and Delayed Leaf Senescence in Soybeans // Science. 1978. V. 199. P. 973-975.

44. Anderson J.M. Photoregulation of the composition, function and structure of thylakoid membranes//Ann. Rev. Plant Physiol. 1986. V.37. Р.93-136Г"

45. Andrews T.J., Lorimer G.H. Rubisco: structure, mechanisms and prospects of improvement. // In: The Biochemistry of Plants. Eds. Hatch M.D. and Boardman N.R. N.-Y. Academic Press. 1987. Y. 10. Photosynthesis. P. 131218.

46. Amon D.I. Copper Enzymes in Isolated Chloroplasts. Polyphenoloxydase in Beta vulgaris II Plant Physiol. 1949. V.24. P.1-15.

47. Arp W.J., Drake B.G. Increased photo synthetic capacity of Sciipus olneyi after 4 years of exposure to elevated C02 // Plant Cell Environ. 1991. V. 14. P. 1003-1006.

48. Badger M.R., Price G.D. The role of carbonic anhydrase in photosynthesis // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V. 45. P.369-392.

49. Baker J.Т., Allen L.H.Jr., Boote K.J. Growth and yield responses of rice to carbon dioxide concentration // J.Agric. Sci. Camb. 1990. V. 115. P.313-320.

50. Barneix A.J., Breteler H., van de Geijn S.C. Gas and Ion Exchanges in Wheate Roots after Nitrogen Supply // Physiol. Plantar. 1984. V.61. P.357-362.

51. Bassham, Calvin. The path of carbon in photosynthesis. Englewood Cliffs. N.J.Prentice-Hall. Inc. 1957. 207 p.

52. Becana M., Sprent Y.I., Nitrogen fixation and nitrat reduction in the root nodules of legumes //Physiol. Plantar. 1987. V.70. P.757-765.

53. BenZioni A., Vaadia Y., Lips S.H. Nitrate uptake by roots reduction products of the shoot// Physiol. Plantar. 1971. V.24. P.288-290.

54. Besford R.T., Ludwig L.J., Withers A.C. The greenhouse effect: acclimation of tomate plants growing in high C02, photosynthesis and ribulose-bisphosphate carboxylase protein//J. Exp. Bot. 1990. V.40. P.925-931.

55. Bethlenfalvay G.J., Abu-Shakra S.S., Phillips D.A. Interdependence of nitrogen and photosynthesis in Pisum sativum // Plant Physiol. 1978. V. 62. P. 127-133.

56. Bethlenfalvay G.J., Phillips D.A. Effect of light intensity on efficiency of carbon dioxide and nitrogen reduction in Pisum sativum // Plant Physiol. 1977. V. 60. P. 868-871.

57. Bowes G. Growth at elevated C02: photosynthetic response mediated through Rubisco // Plant Cell Environ. 1991. V.14. P. 795-806.

58. Bowes G. Facing the Inevitable: Plants and Increasing Atmospheric C02 // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. V. 44. P.309-332

59. Bunce J. A. Effect of doubled atmospheric carbon dioxide concentration on the responses of assimilation // Plant Cell Environ. 1993. V.16. P. 189-197.

60. Bumell J.H., Gibbs M.J. Mason J.J. Spinach chloroplastic carbonic anhy-drase. Nucleotide sequence of cDNA. // Plant Physiol. 1990. V.92. P.37-40.

61. Campbell W.J., Allen L.H.,Jr., Bowes G. Effect of C02 Concentration on Rubisco Activity, Amount and Photosynthesis in Soybean Leaves // Plant Physiol. 1988. V.88. P.1310-1316.

62. Campbell W.J., Allen L.H.,Jr., Bowes G. Response of soybean canopy photosynthesis to CO2 concentration, light and temperature // J. Exp. Bot. 1990. V.41. P.427-433.

63. Cave G., Tolley L.C., Strain B.R. Effect of carbon dioxide enrichment on chlorophyll content, starch content and starch grain structure in Trifolium subterraneum leaves // Plant Physiol. 1981. V.51. P. 171-174.

64. Cervigni T., Teofani F., Bassanelli C. Effect of CO2 on carbonic anhydrase in Avena sativa and Zea mays // Phytochemistiy. 1971. V. 10. P.2991-2994.

65. Chang C.W. Carbon Dioxide and Senescence in Cotton Plant // Plant Physiol. 1975. V.55. P.515-519.

66. Ching T.M., Hedtke S., Russell S.A., Evans H.J. Energy State and Nitrogen Fixation in Soybean Nodules of Dark- grown Plants // Plant Physiol. 1975. V.55. P.796-798.

67. Chu A.C.P., Robertson A.G. The effect of shading and defoliation on nodulation and nitrogen fixation by white clover // Plant and Soil. 1974. V. 41. P. 509-519.

68. Conroy J.P. Influence of elevated atmospheric C02 concentrations on plant nutrition//Austr. J. Bot. 1992. V.40. P.445-456.

69. Conroy J.P., Milham P.J., Barlow E.W.R. Effect of nitrogen and phosphorus availability on the growth response of Eucalyptus grundis to high C02 // Plant Cell Environ. 1992. V.15. P.843-847.

70. Conroy J.P., Smillie R.M., Kuppers M., Beverge E.W. Chlorophyll a fluorescence and photosynthetic and growth responses of Pinus radiata to phosphorus deficiency, drought stress and high CO2// Plant Physiol. 1986. V.81. P.423-429.

71. Coronado C., Zuanazzi J.A.S., Sallaud C., Quirion J-C., Esnault R., Husson H.-P., Kondorosi A., Patet P. Alfalfa Root Flavonoid Production is Nitrogen Regulated // Plant Physiol. 1995. V. 108. P.533-542.

72. Cullimore J.V., Gerhardt C., Saarelainen R., Miflin B.J., Idler K.B., Barker R.F. Glutamine synthetase of Phaseolus vulgaris L.: organ-specific expression of a multigene family // J.Mol. Genet. 1984. V.2. P.589-599.

73. Cure T.D., Acock B. Crop response to carbon dioxide doubling: a literature survey//Agric. For. Meteorol. 1986. V.38. P. 127-145.

74. Deroche M.E., Carragol E., Jolivet E. Phosphoenolpyruvate carboxylase in legume nodules // Physiol. Veg. 1983. V. 21. P. 1075-1081.

75. Drake B.G., Gonzales-Meler M.A., Long S.P. More Efficient Plants: A Consequence of Rising Atmospheric C02? // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1997. V.48. P.609-639.

76. DuBois M., Gilles K.A., Hamilton J.K., Roberts R.A., Smith E. Colorimet-ric Method for Deteimination of Sugars and Related Substances // Anal.™ Chem. 1956. V.28. P.350-356.

77. Fader G.M., Koller H.R. Relationship between carbon assimilation, partitioning and export in leaves of two soybean cultivars // Plant Physiol. 1983. V.73. P.297-303.

78. Farage P.K., McKee I.F., Long S.P. Does a Low Nitrogen Supply Necessarily Leads to Acclimation of Photosynthesis to Elevated C02? // Plant Physiol. 1998. V. 118. P.573-580.

79. Fett J.P., Coleman J.R. Characterization and expression of two cDNA's encoding carbon anhydrase in Arabidopsis thaliana II Plant Physiol. 1994. V.105. P.707-713.

80. Frydrych J. Photo synthetic characteristics of cucumber seedlings grown under two levels of carbon dioxide // Photosynthetica. 1976. V.10. P.335-338.

81. Gifford R.M. Growth Pattern, Carbon Dioxide Exchange and Diy Weight Distribution in Wheat Growing under Differing Photo synthetic Environments // Aust. J. Plant Physiol. 1977. V.4. P. 99-110.

82. Graumlich L.J., Brubaker L.B., Grier Ch. Long-term trends in forest net primary productivity: Cascade mountains Washington // Ecology. 1989. V.70. P.405-410.

83. Guerrero M.G., Vega J.M., Losada M. The assimilatory nitrate-reducing system and its regulation // Annu. Rev. Plant Physiol. 1981. V.32. P. 169204.

84. Hardy R.W.E., Havelka U.D. Nitrogen Fixation on Research: a Key to World Food // Science. 1975. V.188. P. 633-645.

85. Harper J.E. Soil and symbiotic nitrogen requirement of optimum soybean production//Crop. Sci. 1974. N 14. P. 255-260.

86. Haitman F.C., Haipel M.R. Chemical and genetic probes of the active site of D-ribulose-l,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase: a retrospective based on the three-dementional structure // Adv. in Enzymol. 1993. V.67. P. 1-57.

87. Hartman F.C., Haipel M.R. Structure, function, regulation and assemble of D-ribulose-l,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase // Annu. Rev. Bio-chem., 1994. V.63. P. 197-234.

88. Hatch M.D., Burnell J.N. Carbonic anhydrase activity in leaves and its role in the first step of photosynthesis // Plant Physiol. 1990. V.93. P.825-828

89. Hicklenton P.R., Jolliffe P.A. Alterations in the physiology of C02 exchange in tomato plants growth in C02-enriched atmospheres // Can. -Jr Botany. 1980. V.58. P.2181-2189

90. Hopfner M., Reifferscheid G., Wild A. Molecular composition of gluta-mine synthetase of Sinapis alba L. // Z.Naturforsch. 1988. N 43. P. 194-198.

91. Huber S.C., Huber J.L. Role and regulation of sucrosephosphat synthase in higher plants. // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1996. V.47. P.431-444.

92. Jackson W.A., Kwik K.D., Volk R.G. Nitrate uptake during recovery from nitrogen deficiency // Physiol.Plant. 1976. V.36. P. 174-181.

93. Jang J.C., Sheen J. Sugar sensing in higher plants // Plant Cell. 1994. V.6. P. 1665-1679.

94. Jones P., Allen L., Jones J.W., Valle R. Photosynthesis and transpiration responses of soybean canopies to short- and long-term CO2 treatments // Agron. J. 1985. V.77. P. 119-126.

95. Kachru R.B., Anderson L. Chloroplast and cytoplasmic enzymes. V. Pea-leaf carbonic anhydrase // Planta. 1974. V.118. P.235-240.

96. Kefeli V.I., Kuznetsova L.G., Novichkova N.S., Rakitina T.A. The effect of various levels of nitrogen on cytokinin in clover leaves and plant growth // In: Sowiet-Indian Symposium of regulation of photosynthesis (Abstracts). Pushino. 1990. P. 45-46.

97. Kendall A.C., Turner J.C., Thomas S.M. Effects of C02 enrichment at different irradiance on growth and yield of wheat // J. Exp. Botany. 1985. V.36. P.252-273.

98. Kennedy I.R., Rigaud J., Trinchant J.C. Nitrate reductasefrom bacteroid-sof Rhizobium japonicum: enzyme characteristics and possible interaction with nitrogen fixation // Biochim. Biophys. Acta. 1975. V.397. P. 24-35.

99. Khayal E., Zieslin N. Translocation of 14C, carbogydrate content and activity of the enzymes of sucrose metabolism in rose petals at different night temperature//Physiol. Plantar. 1989. V.76. P.581-585.

100. Kimball B.A. Carbon dioxide and agricultural yield: an assamblage and analysis of 430 prior observations // Agron. J. 1983. V.75. P.779-788.

101. Klein R.R., Crafts-Brandner S.J., Salvucci M.E. Cloning and developmental expression of the sucrose-phosphate-synthase gene from spinach // Planta. 1993. V.190. P.498-510

102. Koch K.E. Carbohydrate-modulated gene expression in plant // Ami. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1996. V.46. P.509-540.

103. Koch K.E. Molecular crosstalk and the regulation of C- and N-response genes // In: A Molecular Approach to Primary Metabolism of Higher Plants. Foyer C.H., Quick W.P. (eds.). Taylor & Francis. London. 1997. P. 105-' 124.

104. Krapp A., Hoffman B., Schafer C., Stitt M. Regulation of the expression of rbS and other photosynthetic genes by carbohydrate: a mechanism for the "sink- regulation of photosynthesis // Plant J. 1993. V.3. P.817-828.

105. Lara M., Porta H., Padilla J. Folch J., Sanchez F. Heterogenity of gluta-mine synthetase polypeptides in Phaseolus vulgaris L. // Plant Physiol. 1984. V.76. P. 1019-1023.

106. Larigauderie A., Roy J., Berger A. Long term of high CO2 concentration on photosynthesis of water hiacinth (Eichomia crassipea (Mart.) Solms) // J. Exp. Bot. 1986. V.37. P. 1303-1312.

107. Lown R.J., Brun W.A. Symbiotic N2-fixation in soybeans. Effect of pho-tosynthetic source-siks manipulations//Crop. Sci. 1974. V.14. P. 11-16.

108. Lowry O.H., Rosenbrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein Measurement with the Folin Reagent // J. Biol. Chem. 1951. V. 193. P.265-275.

109. Mack G., Tischner R. Glutamine synthetase oligomers and isoforms in sugar beet (Beta vulgaris L.) // Planta. 1990. V.181. P. 10-17.

110. Majeau N., Amoldo M.A., Coleman J.R. Modification of carbonic anhy-drase activity by antisence and overexpression constructs in transgenic tobacco // Plant Mol. Biol. 1994. V.25. P.377-385.

111. Majeau N., Coleman J.R. Isolation and characterization of a cDNA coding for pea chloroplastic carbonic anhydrase // Plant Physiol. 1991. V.95. P.264-268.

112. Majeau N., Coleman J.R. Effect of C02 Concentration on Carbonic Anhydrase and Ribulose-l,5-bisphosphate Carboxylase/Oxygenase Expression in Pea // Plant Physiol. 1996. V.112. P.569-574.

113. Mann A.F., Fentem P.A., Steward G.R. Tissue localization of bailey (Hordeum vulgare) glutamine synthetase isoenzymes // FEBS Lett. 1980. V.110. P.265-267.

114. McFadden B.A., Small L. Cloning, expression and directed mutegenesis of the genes for ribulose bisphosphate carboxylase/oxygenase // Minireview. Photosynth. Res. 1988. V. 18. P. 245-260.

115. McNally S., Hirel B. Glutamine synthetase isoforms in higher plants // Physiol, veg. 1983. V.21. P.761-774.

116. Meldyn B.E. The optimal allocation of nitrogen within the C3 photosyn-thetic system at elevated C02 // Austral. J. Plant Physiol. 1996. V.23. P.593-603

117. Miflin B.J., Lea P.J. The Pathway of Nitrogen Assimilation in Plants // Phytochem. 1976. V.15. P.873-885.

118. Milford G.F.J., Pearman J. The relationship between photosynthesis and concentration of carbohydrates in the leaves of sugar beet // Photosyn-thetica. 1975. V.9. P. 78-83.

119. Miller A., Tsai Ch.-H., Hemphill D., Enares M., Rodermel S., Spalding M. Elevated C02 Effects during Leaf Onthogeny // Plant Physiol. 1997. V. 115. P. 1195-1200

120. Miller R.E., Stadtman E.R. Glutamate synthase from Escherichia coli. An irohnsuleide elavoprotein // J. Biol. Chem. 1972. V.247. N 22. P.7407-7419.

121. Minchin F.R., Pate J.S. The carbon balance of a legume and the functional of its root nodules // J. Exp. Bot. 1973. V.24. P. 259-363.

122. Moore B.D., Cheng S. H., Rice J., Seemann J.R. Sucrose cycling, Rubisco expression, and prediction of photo synthetic assimilation to elevated atmospheric C02 // Plant Cell Environ. 1998. V.21. P.905-915.

123. Nafziger E.D., Koller H.R. Influence of leaf starch concentration on C02 assimilation in soybean // Plant Physiol. 1976. V.57. P.560-563.

124. Nahon T., Ida S., Takahashi E. Isolation and characterisation of NADH-glutamate synthase from pea (Pisum sativum L) // Plant Cell Physiol., 1980. V.21. P.1461-1474.

125. Nie G.Y., Long S.P., Webber A.N. The effect of nitrogen supply on down-regulation of photosynthesis in spring wheat grown in an elevated C02 concentration (abstract N 785) // Plant Physiol. 1993. V. 102. S-138.

126. Pate J.S., Herridge D.F. Partitioning and utilization of net photosynthate in a nodulated annual legume // J. Exp. Bot. 1978. V.29. P. 401-412.

127. Patterson D.T., Flint E.P. Potential effects of global atmospheric C02 enrichment on the growth and competitiveness C3 and C4 weed crop plants // Weed Sci. 1980. V.28. P.71-75.

128. Paul M.J., Driscoll S.P. Sugar repression of photosynthesis: role of carbohydrates in signalling nitrogen deficiency through source sink imbalance // Plant Cell Environ. 1997. V.20. P. 110-116.

129. Peaz A., Hellmers H., Strain B.R. C02 effect on apical dominance in Pisum sativum // Physiol. Plantarum. 1980. V.50. P.43-46.

130. Peet M.M. Acclimation to high C02 in Monoecious Cucumbers. I. Vegetative and reproductive growth // Plant Physiol. 1986. V.80. P.59-62.

131. Peet M.M., Huber S.C., Patterson D.T. Acclimation to High C02 in Monoecious Cucumbers. II. Carbon Exchange Rates, Enzyme Activities, and Starch and Nutrient Concentrations // Plant Physiol. 1986. V.80. P.63-67.

132. Peet M.M., Willits D.H. Source-sink factors affecting response of greenhouse tomatoes to C02 enrichment // Acta Holticulture. 1984. V. 162. P.121-128.

133. Phillips D.A., Newell K.D., Hassell S.A., Felling C.E. The effect of C02 enrichment on root nodule development and symbiotic N2 reduction in Pisum sativum L. // Amer. J. Bot. 1976. V.63. P.356-362.

134. Porter M.A., Grodsinski B. Acclimation to Hight C02 in Bean. Carbonic Anhydrase and Ribulose Bisphosphate Carboxylase // Plant Physiol. 1984. V.74. P.413-416.

135. Portis A.R. Regulation of ribulose 1,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase activity // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V.43. P.415-437.

136. Radin J.W., Kimball B.A., Hendrix D.L., Mauney J.R. Photosynthesis of cotton plants exposed to elevated levels of carbon dioxide in the field // Photosynth. Res. 1987. V. 12. P. 191-203.

137. Reed M.I., Graham D. Carbonic anhydrases in plants: distribution, properties and possible physiological roles // Progress in Phytochemictry.

138. J.B.Harbome, Swain T. (eds.) V. 7. Pergamon Press. Oxford. UK. 1981. P.47-94.

139. Rigaud J., Bergersen F.J., Turner G.I., Daniel R.M. Nitrate dependent anaerobic acetylene-reduction and nitrogen-fixation by soybean bacteroids // J. Gen. Microbiol. 1973. V. 77. P. 137-144.

140. Rigaud J., Puppo A. Effect nitrite upon leghemoglobin and interaction with nitrogen-fixation // Biochem. Biophys. Acta. 1977. V. 497. P. 702706.

141. Robinson S.P. Osmotic adjustment by intact isolated chloroplasts ir. response to osmotic stress and its effect on photosynthesis and chloroplast volume // Plant Physiol. 1985. V.79. P.996.

142. Roeske C.A., Ogren W.I. Nucleotide sequence of pea cDNA encoding chloroplast carbonic anhydrase // Nucleic Acids Res. 1990. V. 18. P.3413-3418.

143. Rogers G.S., Milham P.J., Gillings M., Conroy J.P. Sink strengh may be the key to growth and nitiogen responses in N-deficient wheat at elevated C02 // Aust. Plant Physiol. 1996. V.23. P.253-264.

144. Rogers H.H., Cure J.D., Thomas J.F., Smith J.M. Influence of elevated C02 on growth of soybean plants // Crop Sci. 1984. V.24. P.361-366.

145. Rogers H.H., Thomas J.F., Bingham G.E. Responce of Agronomic and Forest Species to Elevated Atmospheric Carbon Dioxide // Science. 1980. V.220. P.428-429.

146. Rowland-Bamford A.J., Baker J.T., Allen L.H., Bowes G. Acclimation of rice to changing atmospheric carbon dioxide oncentration // Plant Cell Environ. 1991. V. 14. P.577-583.

147. Rufty T.W., Jr., MacKown Ch.T., Volk R.J. Alterations in nitiogen assimilation and partitioning in nitiogen stressed plants // Physiol. Plantar. 1990. V.79. P.85-95.

148. Sage R.F., Sharkey T.D., Seeman J.R. Acclimation of Photosynthesis to Elevated Carbon Dioxide in Five C3 Species // Plant Physiol. 1989. V.89. P.590-596.

149. Salvucci M.E. Regulation of rubisco in vivo // Physiol. Plantar. 1989. V.77. P. 164-171.

150. Shapiro R.S., Stadtman E.R. Glutaminsynthetase of Escherichia coli // Methods in enzymology N.-Y., San Francisco, L.: Academic Press. .1976':™ V. 17. Part A. P.910-912.

151. Sheen J. Feedback-control of gene expression // Photosynth. Res. 1994. V.39. P.427-438.

152. Silbery Y.H., Hancock T.W., Growth Responces of Cultivars of Subterranean Clover to Temperature, Plant Density and Nitrate Supply // Aust. J. Agric. Res. 1990. V.41. P. 101-114.

153. Sionit N., Hellmers H., Strain B.R. Growth and yield of wheat under C02 enrichment and water stress // Crop Sci. 1980. V.20. P.687-690.

154. Small J.J.C., Leonardo O.A. Translocation of 14C labeled photosynthate in nodulated legumes as influenced by nitrate nitrogen // Amer. J. Bot. 1969. V.56. P.187-194.

155. Socias F.X., Medrano H., Sharkey T.D. Feedback limitation of photosynthesis of Phaseolus vulgaris L. grown at elevated carbon dioxide // Plant Cell Environ. 1993. V.16. P.81-86.

156. Spencer W., Bowes G. Photosynthesis and growth of water hyacinth under C02 enrichment // Plant Physiol. 1986. V.82. P.528-533.

157. Sprent Y.J. Growth and nitrogen fixation in Lupinus arboreus as affected by shadding and water supply // New Phytol. 1973. V. 72. P. 1005-1012.

158. Stitt M. Rising C02 levels and their potential significans for carbon flow in plant cells // Plant Cell Environ. 1991. V.14. P.741-762.

159. Stitt M., Krapp A. The interaction between elevated carbon dioxide and nitrogen nutrition: the physiological and molecular background // Plant Cell Environ. 1999. V.22. P.583-621

160. Streitzer R.J. Genetic dissection of rubisco structure and function. // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1993. V.44. P.411-434.

161. Suzuki S., Nakamoto H., Ku M.S.B., Edwards G.E. Influence of Leaf Age on Photosynthesis, Enzyme Activity and Metabolic Levels in Wheat. // Plant Physiol. 1987. V. 84. P. 1244-1248.

162. Teramura A.H., Sullivan J.H., Ziska L.H. Interaction of elevated ultra-violet-B radiation and CO2 on productivity and photosenthetic characteristics in wheat, rice and soybean // Plant Physiol. 1990. V.94. P.470-176.

163. Tingey S.V., Walker E.L., Coruzzi G.M. Glutamine synthetase genes of pea encode distinct polypeptides, which are differentially expressed in leaves, roots and nodules. EMBO J. 1987. V.6. P. 1-9.

164. Tissue D.T., Thomas R.B., Strain B.R. Long-term effect of elevated C02 and rubisco in loblolly pine seedlings // Plant Cell Environ. 1993. V. 16. P.859-865.

165. Tolbert N.T. Photosynthesis and Photorespiration // Eds M.D.Hatch, C.B.Osmond and R.O.Stalyer. Wiley (Interscience). New York. 1971. 491p.

166. Trinchant J.C., Rigaud J. Nitrate inhibition of nitrogenase from soybean bacteroids //Arch. Microbiol. 1980. V.124. P.49-54.

167. Vah.ua T.A.T., Miller D.A. Effect of shadding on the N2-fixation yield and plant composition of field-grown soybeans // Agron. J. 1978. V.79. P.387-392.

168. Veau de E.J., Robinson J.M., Warmbrodt R.D., van Berkenn P. et al. Photosynthesis and Photosynthate Partitioning in N2-fixing soybeans // Plant Physiol. 1990. V.94. P.259-267.

169. Wallsgrove R.M., Lea P.J. Photosynthetic Nitrogen Metabolism // In: Photosynthetic Mechanisms and the Environment. Eds. Barber J., Baker N.R. Amsterdam: Elsevier Sci Publ. Biopmedical Division. 1985. P. 389418.

170. Watson R.T., Rodhe H., Oesheger H., Siegenthaler U. Greenhouse gases and aerosols // In: Climate: Scientific Assessment. J.T. Houghton, G.J. Jenkins, J.J. Ephranums (eds.). Cambridge University Press. Gambridge 1990. P. 1-40.

171. Webber A.N., Nie G.Y., Long S.P. Effects of rising C02 concentration on expression of photosynthetic proteins // Photosynth. Res. 1994. V.39. P.413-425.

172. Williams J.H.H., Farrar J.F. Endogenous control of photosynthesis in leafblades of barley // Plant Physiol. Biochem. 1988. V.26. P.503.

173. Williams J.H.H., Winters A.L., Pollock C.J., Farrar J.F. Regulation of leaf metabolism by sucrose // Физиология растений. 1992. T.39. Вып. 4. С.687-691.

174. Williams L.E., de Long T.M., Phillips D.A. Effect of changes in short carbon-exchanges rate on soybean root nodule activity // Plant Physiol. 1982. V.69. P.432-436.

175. Wintermans J.F.G.M., De Mots A. Spectrophotometric Characteristics of Chlorophyll a and b and their Pheophytins in Ethanol // Biochem. Biophys. Acta. 1965. V.109. P.448-453.

176. Wong S.C. Elevated atmospheric partial pressure of C02 and plant growth. I. Interactions of nitrogen nutrition and photosynthetic capacity in C3 and C4 plants. Oecologia. 1979. V.44. P.68-74.

177. Wong S.C. Elevated atmospheric partial pressure of C02 and plant growth. 2. Non-structural carbohydrate content in cotton plants and its effect on growth parameters // Photosynth. Res. 1990. V.23. N 2. P. 171-180.

178. Wulf R.D., Strain B.R. Effects of C02 enrichment on growth and photosynthesis in Desinodium peniculatum // Can. J. Bot. 1982. V.60. P. 10841091.

179. Xu D.-Q., Gifford R.M., Chow W.S. Photosynthetic Acclimation in Pea and Soybean to High Atmospheric C02 Partial Pressure // Plant Physiol. 1994. V.106. P.661-671.

180. Yelle S., Beeson R.C., Jr., Trudel M.J., Gosselin A. Acclimation of Two Tomato Species to High Atmospheric C02. // Plant Physiol. 1989. V.90. P. 1465-1477.