Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Морфофункциональная организация сердца в разных филогенетических группах животных
ВАК РФ 03.00.25, Гистология, цитология, клеточная биология
Содержание диссертации, доктора биологических наук, Мартынова, Марина Георгиевна
Список встречающихся в тексте сокращений.
1. ВВЕДЕНИЕ.
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.Ю
2.1. КЛАССИФИКАЦИЯ МЫШЕЧНЫХ ТКАНЕЙ.
2.2. СОМАТИЧЕСКИЙ МИОГЕНЕЗ.
2.2.1. Общие черты соматического миогенеза.
2.2.2. Клетки-сателлиты.
2.2.3. Стволовые клетки.
2.2.4. Генетическая программа соматического миогенеза.
2.2.5. Особые виды соматической мускулатуры.
2.3. КАРДИОМИОГЕНЕЗ.
2.3.1. Общие черты кардиомиогенеза.
2.3.2. Полиплоидиация кардиомиоцитов.
2.3.3. Стволовые клетки.
2.3.4. Кардиомиоциты сосудов.
2.3.5. Развитие сердца в эмбриогенезе.
2.3.5. Генетическая программа кардиомиогенеза.
2.3.6. Эндокринная функция миокарда.
2.4. ЛЕЙОМИОГЕНЕЗ.
2.4.1. Общие черты лейомиогенеза.
2.4.2. Миофибробласты.
2.5. МИОЭПИТЕЛИАЛЬНЫЕ КЛЕТКИ ЖЕЛЕЗ.
2.6. МИОНЕЙРАЛЬНАЯ ТКАНЬ.
2.7. СТРОЕНИЕ ЦИРКУЛЯТОРНОЙ СИСТЕМЫ В РАЗНЫХ
ГРУППАХ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ.
2.7.1. Плоские черви, Нематоды и Немертины.
2.7.2. Аннелиды.
2.7.3. Моллюски.
2.7.4. Членистоногие.
2.7.5. Щупальцевые.
2.7.6. Погонофоры.
2.7.7. Вторичноротые.
2.7.8. Иглокожие.
2.7.9. Полухордовые.
2.7.10. Оболочники.
2.7.11. Ланцетник.
3. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА.
3.1. Экспериментальные животные.
3.2. Цитофотометрия.
3.3. Электронная микроскопия.
3.4. Электронно-микроскопическая авторадиография.
3.5. Светооптическая авторадиография.
3.6. Опыты с отставленным временем фиксации.
3.7. Подсчет количества недифференцированных и меченых клеток.
3.8. Анализ действия экдистерона на синтез ДНК в клеткахсателлитах речного рака.
3.9. Сцинтилляционный счет.
3.10. Опыты с травмированием миокарда.
3.11. Электронно-микроскопическая иммуноцитохимия.
3.12. Электрофорез в полиакриламидном геле с додецилсульфатом Na.
3.13. Иммуноблоттинг.
4. РЕЗУЛЬТАТЫ.
4.1. СТРОЕНИЕ СЕРДЦА И СОЕДИНИТЕЛЬНОТКАННОЙ ОБОЛОЧКИ ЖЕЛУДКА БРАХИОПОДЫ RHYNCHONELLA PSITTACEA.
4.1.1. Соединительнотканная оболочка желудка.
4.1.2. Сердце.
4.1.3. Внеклеточный матрикс.
4.1.4. Эндотелиальные клетки.
4.2. СТРОЕНИЕ СЕРДЦА И СОЕДИНИТЕЛЬНОТКАННОЙ
ОБОЛОЧКИ ЖЕЛУДКА ПОЛИХЕТЫ ARENICOLA MARINA.
4.2.1. Соединительнотканная оболочка кишки.
4.2.2. Сердце.
4.2.3. Включение 3Н-тимидина в клетки соединительнотканной оболочки желудка и сердца полихеты.
4.3. МОРФО-ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ОСОБЕННОСТИ СЕРДЦА
МОЛЛЮСКОВ.
4.3.1. Сравнительный анализ строения желудочка и предсердия виноградной улитки.
4.3.2. Недифференцированные и слабо дифференцированные мышечные клетки в миокарде моллюсков.
4.3.3. Синтез ДНК в клетках сердца брюхоногих моллюсков.
4.3.4. Судьба меченых 3Н-тимидином недифференцированных клеток в миокарде брюхоногих моллюсков.
4.3.5. Попытки активизации синтеза ДНК в клетках миокарда виноградной улитки путем экспериментальных повреждений сердца.
4.3.6. Рецепторы к экдистероидным гормонам в тканях сердца виноградной улитки.
4.3.7. Клеточная локализация натрийуретического пептида в сердце брюхоногих моллюсков.
4.4. СТРОЕНИЕ СЕРДЦА ДЕСЯТИНОГИХ РАКОВ.
4.4.1. Эпикард.
4.4.2. Миокард.
4.4.2.1. Мышечные волокна.
4.4.2.2. Клетки-сателлиты.
4.4.3. Включение 3Н-тимидина и 3Н-уридина в клетки сердца десятиногих раков.
4.4.4. Зависимость активности синтеза ДНК в клеткахсателлитах от линочного цикла.
4.4.5. Судьба меченых 3Н-тимидином клеток-сателлитов.
4.4.6. Влияние экзогенного экдистерона на синтез ДНК в клетках-сателлитах речного рака.
4.4.7. Рецепторы к экдистерону в тканях сердца кубинского рачка.
4.4.8. Реакция тканей сердца речного рака на механическое повреждение.
4.5. СТРОЕНИЕ СЕРДЦА АСЦИДИИ.
4.5.1. Перикард.
4.5.2. Миокард.
4.5.3. Переходная зона.
4.5.4. Включение 3Н-тимидина в клетки сердца асцидии.
4.6. УРОВЕНЬ ПЛОИДНОСТИ И ЧИСЛО ЯДЕР В
КАРДИОМИОЦИТАХ МИНОГИ И РЫБ.
5. ОБСУЖДЕНИЕ.
5.1. Тканевая организация сердца брахиоподы и гипотеза возникновения кровеносной системы в онто- и филогенезе.
5.2. Миогенные клетки в перитонеальном эпителии и сердце брахиоподы.
5.3. Тканевая организация сердца полихеты.
5.4. Миогенные клетки в перитонеальном эпителии и сердце полихеты.
5.5. Строение миокарда моллюсков.
5.6. Эндокринная функция сердца моллюсков.
5.7. Миогенные клетки в миокарде моллюсков.
5.8. Строение сердца членистоногих.
5.9. Клетки-сателлиты в миокарде десятиногих раков.
5.10. Строение сердца асцидии.
5.11. Полиплоидизация кардиомиоцитов низших позвоночных.
5.12. Ткане-специфические стволовые клетки сердечной мышечной ткани беспозвоночных.
5.13. Классификация мышечных тканей про пульс аторных органов
5.14. Гомология сердечной мышечной ткани в разных таксономических группах и индуктивная регуляция развития сердца.
5.15. Особенности кардиомиогенеза хордовых.
5.16. Гормональная регуляция миогенеза.
6. ВЫВОДЫ.
Введение Диссертация по биологии, на тему "Морфофункциональная организация сердца в разных филогенетических группах животных"
Исследования проводились в рамках клеточной кардиологии. Важность этого самостоятельного направления современной биологии клетки во многом определяет актуальность представленной работы. Основные концепции клеточной кардиологии сложились в результате изучения миокарда позвоночных. Насколько эти концепции являются всеобщими и распространяются на пропульсаторные органы беспозвоночных можно определить только путем сравнительного анализа сердечных тканей широкого спектра филогенетических групп животных.
Сердце является первым органом, начинающим функционировать у эмбриона. Интенсивная сократительная деятельность сердечной мышцы и, следовательно, высокая степень дифференциации мышечных клеток необходимо сочетаются с продолжающимся ростом органа. Одним из важнейших положений клеточной кардиологии является концепция немиобластического способа кардиогенеза. Убедительно показано, что рост миокарда позвоночных происходит в отсутствии недифференцированных камбиальных элементов вначале за счет пролиферации, а затем полиплоидизации самих дифференцированных кардиомиоцитов. Клеточные механизмы роста сердечной мышечной ткани у беспозвоночных оставались совершенно не изученными. Обнаружение нами недифференцированных клеток, способных к пролиферации и миодифференциации, в сердечной мышечной ткани беспозвоночных проясняет этот вопрос, и, кроме того, приобретает особый интерес в связи с тем вниманием, которое сегодня привлекают ткане-специфические стволовые клетки взрослых тканей.
Весьма существенной проблемой изучения сердечной мышечной ткани является обнаружение и анализ воздействия на нее ростовых факторов, контролирующих пролиферацию и дифференциацию клеток. Выявленная нами определяющая роль экдистерона в контроле роста миокарда десятиногих раков указывает на еще недостаточно оцененное значение стероидных гормонов в регуляции кардиомиогнеза.
В результате изучения миокарда позвоночных к настоящему времени прочно устоялось представление о сердце, как эндокринном органе, вырабатывающем вещества, участвующие в поддержании сердечно-сосудистого гомеостаза, и о кардиомиоцитах как бифункциональных клетках. В ответ на повышение кровяного давления и механическое растяжение камер сердца кардиомиоциты секретируют натрийуретические пептиды, которые оказывают вазодиляторное и гипотензивное воздействия, что в свою очередь ослабляет гидродинамическую нагрузку на сердце. Весьма важным представляется выяснение вопросов, насколько секреция натрийуретических пептидов, регулирующих состояние кровеносной системы, является общим принципом работы пропульсаторных органов, и какие варианты организации эндокринной функции сердца сложились в эволюции.
Широкое сравнительное изучение сердечной мышечной ткани беспозвоночных представляет значительный интерес, как с точки зрения эволюционной, так и общей гистологии. Оно помогает понять возникновение и развитие структур и функций сердца в филогенезе, а также определить степень вариабельности и границы пластичности сердечной мышечной ткани, и вскрыть некоторые ее свойства, завуалированные в высоко дифференцированном миокарде позвоночных. Ткани беспозвоночных в силу их часто более простого устройства предоставляют также удобные модельные системы для решения многих биологических проблем.
Создание классификаций тканей продолжает составлять одну из актуальных проблем гистологии, и каждая новая классификация отражает имеющиеся на данный момент знания о свойствах тканей. Тогда как для позвоночных определены основные подтипы или, иными словами, гистогенетические программы развития мышечной ткани, то проводимые в течение многих десятилетий попытки создания общей гистогенетической классификации мышечных тканей неизменно наталкиваются на недостаточность данных по строению и генеративным свойствам мышечных тканей беспозвоночных.
Основная цель настоящей работы была определена как составление морфофункциональных характеристик центральных пропульсаторных органов в разных таксономических группах животных. Предстояло выяснить, как единая пропульсаторная функция сердца в разных филогенетических группах коррелирует с организацией и репликативными свойствами сердечной мышечной ткани, с ее камбиальностью, каковы механизмы регуляции ее роста, а также, каким образом происходит сопряжение сократительной и секреторной функций сердца.
Для достижения поставленной цели были поставлены следующие задачи:
1. Исследовать тканевую организацию сердца и структуру сердечной мышечной ткани у представителей 5 крупных таксономических подразделений беспозвоночных животных, а именно брахиопод, аннелид, моллюсков, ракообразных и асцидий, при этом особое внимание уделить выявлению недифференцированных клеток в миокарде.
2. Проанализировать соотношение процессов пролиферации и дифференциации в клетках сердечной мышечной ткани беспозвоночных.
3. Исследовать организацию эндокринной функции сердца моллюсков.
4. Изучить воздействие гормона линьки экдистерона на поведение клеток-сателлитов в миокарде десятиногих раков.
5. Провести анализ плоидности кардиомиоцитов низших хордовых.
В качестве основных методов работы использовали электронную микроскопию, светооптическую и электронно-микроскопическую авторадиографию. Широко привлекали также такие методы как морфометрия, цитофотометрия, гель-электрофорез, иммуноблотинг, электронно-микроскопическая иммуноцитохимия и другие.
Полученные данные о тканевой организации и генеративном потенциале клеток сердца у представителей 5-и крупных таксономических подразделений оказались достаточно репрезентативными для составления общей картины морфофункциональных решений в эволюции сердца и создания гистогенетической классификации сердечных мышечных тканей.
Результаты работы позволяют сделать вывод о независимом возникновении в эволюции и уникальности миокарда хордовых, который развивается по немиобластическому пути, и клетки которого характеризуются совмещением синтеза ДНК и мышечных белков, полиплоидизацией, а также сопряжением сократительной и эндокринной функций. Все эти свойства отсутствуют у мышечных элементов сердца других групп животных.
Принципиально иные, чем у позвоночных, строение, генеративные свойства и организация эндокринной функции сердца беспозвоночных указывают на необходимость учитывать эти факторы при использовании сердечной мышечной ткани беспозвоночных в качестве модельного объекта для изучения функционирования миокарда.
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
Заключение Диссертация по теме "Гистология, цитология, клеточная биология", Мартынова, Марина Георгиевна
6. ВЫВОДЫ
1. В разных таксономических группах сократимую часть пропульсаторных органов формируют три подтипа мышечной ткани, берущей начало от целомической мезодермы. Принадлежность ткани к тому или иному подтипу определяет сочетание морфологических, гистогенетических и функциональных характеристик, таких как: 1) структура мышечных элементов (миоэпителий, совокупность мышечных клеток, многоядерное мышечное волокно); 2) особенность пролиферативной активности (наличие ткане-специфических стволовых клеток. способность к митозу и полиплоидизации у кардиомиоцитов); 3) совмещение у кардиомицитов сократительной и эндокринной функций или их функциональная специализация.
2. Первый подтип мышечной ткани состоит из одноядерных миоэпителиальных или мышечных клеток, в которых не происходит синтез ДНК, и недифференцированных клеток, способных к пролиферации и миодифференциации. Этот подтип мышц представлен в сердце брахиопод, аннелид и моллюсков. Развитие этого подтипа мышечной ткани в филогенезе идет в направлении превращения миоэпителиальных клеток в мышечные клетки; в ходе этого процесса миоэпителиальные клетки утрачивают поляризацию в распределении органелл, межклеточные контакты эпителиального типа и связь с базальной пластинкой.
3. Второй подтип мышечной ткани состоит из многоядерных мышечных волокон и одноядерных клеток-сателлитов. В ядрах мышечных волокон синтез ДНК заблокирован. Клетки-сателлиты способны к делению и миодифференциации. Этот подтип мышц представлен миокардом десятиногих раков. Поведение клеток-сателлитов связано со стадиями линочного цикла; они находятся в состоянии покоя в межлиночный период, активно пролиферируют в период ранней предлиньки и сливаются с мышечным волокном во время экдизиса.
4. Третий подтип мышечной ткани состоит из миоэпителиальных или мышечных клеток, важной характеристикой которых является совмещение миодифференциации и синтеза ДНК. Этот подтип сердечной мышцы обнаружен только у хордовых. В то время как в миокарде асцидий еще сохраняются недифференцированные миогенные клетки, локализованные в особых камбиальных зонах, в миокарде позвоночных камбиальные элементы полностью отсутствуют.
5. Полиплоидизация мышечных элементов сердца является частью программы кардиомиогенеза у хордовых. При этом в миокарде низших хордовых - асцидий происходит полиплоидизация клеток (двуядерные миоэпителиальные клетки), а в миокарде позвоночных (в том числе и низших позвоночных - круглоротых и рыб) происходит полиплоидизация и клеток (многоядерные кардиомиоциты), и ядер.
6. Экдистерон, гормон линьки, является ростовым фактором для мышечной ткани сердца десятиногих раков. Он активизирует пролиферацию клеток-сателлитов миокарда на стадии ранней предлиньки, когда эти клетки приобретают компетентность к реакции на гормон. Выявление рецепторов к экдистерону в
147 тканях сердца виноградной улитки свидетельствует о том, что этот гормон оказывает влияние на миокард не только у членистоногих.
7. В эволюции сложились две формы выполнения эндокринной функции пропульсаторными органами: осуществление этой функции кардиомиоцитами и выполнение этой функции немышечными клетками сердца. Совмещение секреторной и сократительной функций в мышечных элементах является отличительной чертой миокарда позвоночных. Сердце моллюсков, подобно сердцу позвоночных, является эндокринным органом, продуцирующим натрийуретические пептиды, однако секреторную функцию в нем осуществляют не кардиомиоциты, а примыкающие к ним гранулярные клетки.
Библиография Диссертация по биологии, доктора биологических наук, Мартынова, Марина Георгиевна, Санкт-Петербург
1. Андрее Н.В. 1973. О соотношении синтеза ДНК, синтеза специфических и неспецифических белков при дифференцировке сердечной и скелетных мышц куриного эмбриона. Автореф. канд. дис. Тбилиси.
2. Анисимов А.П. 1999а. Клеточное размножение и соматическая полиплоидия в тканях брюхоногих моллюсков: Обзор VI. Общие закономерности пролиферации и эндорепродукции клеток. Цитология 41: 23-31.
3. Анисимов А.П. 19996. Клеточное размножение и соматическая полиплоидия в тканях брюхоногих моллюсков: Обзор VII. Соматическая полиплоидия как морфогенетический фактор. Цитология 41: 32-39.
4. Баженов Д.В. 1986. Изменения миосателлитоцитов при повреждении мышц пищевода. Арх. Анат. Гистол. Эмбриол. 90 (6): 54-59.
5. Баженов Д.В. 1989. Гистогенез поперечнополосатой мышечной ткани пищевода человека. Арх. Анат. Гистол. Эмбриол. 96 (6): 87-91.
6. Беклемишев В.Н. 1964. Основы сравнительной анатомии беспозвоночных. Изд. Сов. Наука. М.
7. Бушмарина М.С., Румянцев П.П. 1982. Центриоли в раннем миогенезе. В сб.: VI Всесоюзн. Совещание эмбриологов. Стр. 25. М.
8. Данилов Р.К., Ишмеева З.Б. 1989. Пролиферация и дифференцировка в развитии мионейральной ткани у птиц. Арх. Анат. Гистол. Эмбриол. 97 (10): 56-62.
9. Данилов Р.К., Ишмеева З.Б. 1991. Ультраструктура поперечнополосатой ткани радужки птиц. Арх. Анат. Гистол. Эмбриол. 100 (6): 72-75.
10. Догель В.А. 1947. Явления полимеризации и олигомеризации гомологичных органов в животном царстве и их эволюционное значение. Изв. АН СССР. Сер. Биол. 4: 471-486.
11. Догель В.А. 1954. Олигомеризация гомологичных органов как один из главных путей эволюции животных. Изд. ЛГУ. JI.
12. Догель В.А. 1975. Зоология беспозвоночных (изд. шестое). Изд. Высшая школа. М.
13. Долматов И.Ю. 1998. Происхождение и становление соматической мускулатуры в филогенезе Deuterostomata. Изв. АН. Сер. биол. 6: 645-657.
14. Долматов И.Ю., Ивантей В.А. 1993. Гистогенез продольных мышечных лент у голотурии. Онтогенез 24 (6): 67-72.
15. Ерохина И.Л. 1968. Динамика пролиферации клеточных элементов дифференцирующегося миокарда мыши. Цитология 10: 1391-1409.
16. Ерохина И.JI. 1971. Синтез ДНК и пролиферация клеточных элементов развивающегося миокарда мыши. Автореф. Канд. дис. Л.
17. Ерохина И.Л., Румянцев П.П. 1979. Ультраструктура синтезирующих ДНК клеток синоатриального узла сердца эмбрионов мыши по данным электронно-микроскопической авторадиографии. Цитология 21: 1131-1138.
18. Заварзин A.A. 1936. Эволюционная теория и теоретическая медицина. В сб. Совр. Пробл. Теор. Мед. Л.
19. Заварзин A.A. 1938. Курс общей гистологии для медвузов, ветвузов и биофаков. Изд. Ленгиз. Л.
20. Заварзин A.A. 1941. Очерки по эволюционной гистологии нервной системы. Избр. Труды. Т. 3. 1950. Изд. АН СССР. М., Л.
21. Заварзин A.A. 1976. Основы частной цитологии и сравнительной гистологии многоклеточных животных. Изд. Наука. Л.
22. Иванов A.B. 1976. Соотношение между Protostomia и Deuterostomia и система животного мира. Зоол. Журн. 55: 1125-1137.
23. Иванова-Казас О.М. 1995. Эволюционная эмбриология животных. Изд. Наука.1. СПб.
24. Клишов A.A., Королева Г.Д. 1985. Мионейральная ткань. Арх. Анат. Гистол. Эмбриол. 88 (5): 85-91.
25. Кнорре Л.Г. 1971. Эмбриональный гистогенез (морфологические очерки). Изд. Медицина. Л.
26. Колосс Е.И. 1956. К экологической гистологии мускулатуры радужины прыткой ящерицы. Докл. АН СССР 108: 337-340.
27. Комаров С.А. 1976. Изменение содержания ДНК в ядрах межсегментных абдоминальных волокон у личинок тутового шелкопряда в межлиночных период. Цитология 18:458-463.
28. Комаров С.А. 1983. Включение 3Н-тимидина в ядра дифференцированных мышечных волокон личинок тутового шелкопряда. Цитология 25: 1128-1131.
29. Комарова Н.И. 1996. Ультраструктура клеток трубчатого сердца личинок тутового шелкопряда Цитология 38: 482-487.
30. Кроленко С.А. 1975. Т-система мышечных волокон. Структура и функция. Изд. Наука. JI.
31. Крылова М.И. 1997. Реакция мышечной ткани лимфатического сердца взрослой травяной лягушки на аутотрансплантацию. Исследование методами электронной микроскопии и электронно-микроскопической авторадиографии. Цитология 39: 969-978.
32. Лопашев Г.В., Строева О.Г. 1963. Развитие глаза в свете экспериментальных исследований. Изд. АН СССР. М.
33. Ливанов H.A. 1910. Морфологические исследования над Hirudinea. К анатомии кровеносной системы. Биол. Журн. 1.
34. Ливанов H.A. 1914. Пограничные образования у Polychaeta. Труды Общ-ва Естеств. Казанск. Унив. 46.
35. Малахов В.В. 1982. Новый взгляд на происхождение хордовых. Природа 5: 12-19.
36. Маркозашвили М.И., Румянцев П.П. 1983. Гистогенез мышечной ткани лимфатических сердец куриных эмбрионов. Цитология 25: 1120-1127.
37. Малахов В.В., Медведева Л.А. 1991. Эмбриональное развитие двустворчатых моллюсков в норме и при воздействии тяжелых металлов. Изд. Наука. М.
38. Муравьев Г.Н., Бычков В.М. 1986. Структура и функции миоэпителия. Арх. Анат. Гистол. Эмбриол. 90 (2): 98-102.
39. Румянцев П.П. 1973. Морфология миоцитов сердца в различные периоды нормального и реактивного митотического цикла по данным электронной микроскопии и субмикроскопической авторадиографии. Арх. Анат. Гистол. Эмбриол. 65 (7): 15-21.
40. Румянцев П.П., Ерохина И.Л. 1981. Морфологические аспекты дифференцировки и пролиферации в гистогенезе скелетных, сердечной и гладких мышц позвоночных. В сб.: Проблемы миогенеза. Стр. 22-50. Изд. Наука. JI.
41. Румянцев П.П., Миракян В.О. 1968. Интенсификация синтеза ДНК и митозов в предсердных мышечных клетках крыс при инфаркте миокарда желудочка и при локальных повреждениях ушка. Цитология 10: 1276-1287.
42. Румянцев П.П., Соколовская И.Л. 1964. Синтез ДНК и кинетика пролиферации ядер в ходе дифференцировки мышцы сердца. В сб.: Исследование клеточных циклов и метаболизма нуклеиновых кислот при дифференцировке клеток. Стр. 71-82. Л.
43. Строева О.Г. 1971. Морфогенез и врожденные аномалии глаза млекопитающих. Изд. Наука. М.
44. Строева О.Г., Маршак Т.Л. 1974. Пролиферативная активность клеток радужины и цилиарного тела у новорожденных крыс (радиоавтографическое исследование). Онтогенез 5:508-513.
45. Строева О.Г., Маршак Т.А., Лобачева В.А. 1977. Пролиферативная активность и дифференцировка клеток в период интенсивного роста радужины, цилиарных складок и сфинктера зрачка у крыс. Цитология 19: 495-500.
46. Хлопин Н.Г. 1946. Общебиологические и экспериментальные основы гистологии. Изд. АН СССР. М., Л.
47. Хлопин Н.Г. 1961. Развитие сосудистой системы в филогенезе. Арх. Анат. Гистол. Эмбриол. 41 (7): 3-20.
48. Aardal S., Helle К.В. 1991. Comparative aspects of the endocrine myocardium. Acta Physiol Scand. 142, Suppl. 599: 31-46.
49. Aburaya M., Minamino N., Kangawa K., Tanaka K., Matsuo H. 1989. Distribution and molecular forms of brain natriuretic peptide in porcine heart and blood. Biochem. Biophys. Res. Commun. 165: 872-879.
50. Adler C.P., Friedburg H., Herget G.W., Neuburger M., Schwal H. 1996. Variability of cardiomyocyte DNA content, ploidy level and nuclear number in mammalian hearts. Virchows Arch. 429: 159-164.
51. Aguinaldo A.M., Turbeville J.M., Linford L.S., Rivera M.C., Garey J.R., Raff R.A., Lake J.A. 1997. Evidence for a clade of nematodes, arthropods and other moulting anamals. Nature 387: 489-493.
52. Aizu S. 1973. Fine structure of the prawn heart muscle. Tohoku J. Exp. Med. Ill: 101117.
53. Allen R.E., Dodson M.V., Luiten L.S. 1984. Regulation of skeletal muscle satellite cell proliferation by bovine pituitary fibroblast growth factor. Exp. Cell Res. 152: 154-160.
54. Anatskaya O.V., Vinogradov A.E., Kudryavtsev B.N. 2001. Cardiomyocyte ploidy level in birds with different growth rates. J. Exp. Zool. 289: 48-58.
55. Anderson D.T. 1966. The comparative embryology of the Polychaeta. Acta Zool. 47: 142.
56. Anderson D.T. 1982. Embryology. In: The Biology of Crustacea. Vol. 2. Pp. 1-41. Ed. D. Bliss. Acad. Press. New York.
57. Antin P.B., Taylor R.G., Yatskievych T. 1994. Precardiac mesoderm is specified during gastrulation in quail. Dev. Dyn. 200: 144-154.
58. Arceci R.J., King A.A., Simon M.C., Orkin S.H., Wilson D.B. 1993. Mouse GATA-4: a retinoic acid-inducible GATA-binding transcription factor expressed in endodermally derived tissues and heart. Mol. Cell Biol. 13: 2235-2246.
59. Argenin S., Ardati A., Tremblay S., Lihrmann I., Robitaille L., Drouin J., Nemer M. 1994. Developmental stage-specific regulation of atrial natriuretic factor gene transcription in cardiac cells. Mol. Cell Biol. 14: 777-790.
60. Argüello C., Cruz M.V., de la Sánchez C. 1978. Ultrastructural and experimental evidence of myocardial cell differentiation into connective tissue cells in embryonic chick heart. J. Mol. Cell. Cardiol. 10: 307-315.
61. Armand O., Boutineau A.M., Mauger A., Pautou M.P., Kieny M. 1983. Origin of satellite cells in avian skeletal muscles. Arch. Anat. Microsc. Exp. 72: 163-181.
62. Armstrong M.T., Lee D.Y., Armstrong P.B. 2000. Regulation of proliferation of the fetal myocardium. Dev. Dyn. 219: 226-236.
63. Baccetti B., Bigliardi E. 1969. Studies on the fine structure of the dorsal vessel of Arthropods. I. The "heart" of an Orthopteran. Z. Zellforsch. 99: 13-24.
64. Bachmann S., Goldschmid A. 1978. Fine structure of the axial complex of Sphaerechinus granulans (Lam.) (Echinodermata: Echinoidea). Cell Tiss. Res. 193: 107-123.
65. Bader D. 1991. Origin and determination of cardiac progenitor cells. In: The Development and Regenerative Potential of Cardiac Muscle. Pp. 5-18. Eds J.O. Oberpriller, J.C. Oberpriller, A. Mauro. Harwood Acad. Publ. Chur, Switzerland.
66. Baiser E.J., Ruppert E.E. 1990. Structure, ultrastructure, and function of the preoral heart-kidney in Saccoglossus kowalevskii (Hemichordata; Enteropneusta) including new data on the stomochord. Acta Zool. 71: 235-249.
67. Bargmann W., Hehn G. 1968. Über das Axialorgan ("mysterious gland") von Asterias rubens L. Z. Zellforsch. 88: 262-277.
68. Barnes D.M. 1988. Joint Soviet-U.S. attack on heart muscle dogma. Science 242: 193194.
69. Barnes R.D. 1980. Invertebrate Zoology (Fourth Edition). Philadelphia. Saunders College.
70. Barrett T.B., Sampson P., Owens G.K., Schwartz S.M., Benditt E.P. 1983. Polyploid nuclei in human artery wall smooth muscle cells. Proc. Natl. Acad. Sei. U.S.A. 80: 882-885.
71. Bateson R.G., Woodrow D.F., Sloper J.C. 1967. Circulating cells as a source of myoblasts in regenerating injured mammalian skeletal muscle. Nature 213: 1035-1036.
72. Bauchau A.G. 1981. Crustaceans. In: Invertebrate Blood Cells. Vol. 2. Pp. 386-420. Acad. Press. New York.
73. Beinlich C.J., Rissinger C.J., Morgan H.E. 1995. Mechanisms of rapid growth in the neonatal pig heart. J. Mol. Cell. Cardiol. 27: 273-281.
74. Beltrami A.P., Urbanek K., Kajstura J., Yan S.M., Finato N., Bussani R., Nadal-Ginard B., Silvestri F., Leri A., Beltrami C.A., Anversa P. 2001. Evidence that human cardiac myocytes divide after myocardial infarction. N. Engl. J. Med. 344: 1750-1757.
75. Benninghoff A. 1930. Blutgefässe und Herz. In: Möllendorffs Handbuch der mikroskopischen Anatomie des Menschen. Vol. 6. Pt 1. Pp. 153-160. Springer, Berlin.
76. Berrill N.Y. 1950. The Tunicata, with Account of the British Species. Ray Soc. London.
77. Berrill N.J., Sheldon H. 1964. The fine structure of the connections between muscle cells in ascidian tadpole larva. J. Cell. Biol. 23: 664-669.
78. Billington T., Pharmawati M., Gehring C.A. 1997. Isolation and immunoaffinity purification of biologically active plant natriuretic peptide. Biochem. Biophys. Res. Commun. 235: 722-725.
79. Birchmeier C., Brohmann H. 2000. Genes that control the development of migrating muscle precursor cells. Curr. Opin. Cell Biol. 12: 725-730.
80. Bischoff R. 1975. Regeneration of single muscle fibers in vitro. Anat. Rec. 182: 215-236.
81. Bird C.C., Willis R.A. 1965. The production of smooth muscle by the endometrial stroma of the adult human uterus. Pathol. Bacteriol. 90: 75-81.
82. Bischoff R. 1986a. Proliferation of muscle satellite cells on intact myofibers in culture. Dev. Biol. 115: 129-139.
83. Bischoff R. 1986b. A satellite cell mitogen from crushed adult muscle. Dev. Biol. 115: 140-147.
84. Bischoff R., Holtzer H. 1969. Mitosis and the processes of differentiation of myogenic cells in vitro. J. Cell. Biol. 41: 188-200.
85. Black B.L., Olson E.N. 1998. Transcriptional control of muscle development by myocyte enhancer factor-2 (MEF2) proteins. Annu. Rev. Cell. Dev. Biol. 14: 167-196.
86. Blau H.M., Baltimore D. 1991. Differentiation requires continuous regulation. J. Cell Biol. 112: 781-783.
87. Blau H.M., Brazelton T.R., Weimann J.M. 2001. The evolving concept of a stem cell: entity or function? Cell 105: 829-841.
88. Boilly B., Wissocq J.-C. 1977. Présence de fibres striées transversalement dans un vaisseau contractile d'Annélide Polychète: le coeur dorsal de Magelona papillicornis. Biol. Cellulair. 28: 131-136.
89. Bone Q., Ryan K.P. 1973. The structure and innervation of the locomotor muscles of s alps (Tunicata: Thaliacea). J. Mar. Biol. Ass. UK. 53: 873-883.
90. Borges A.5 Liew C.C. 1997. Telomerase activity during cardiac development. J. Mol. Cell. Cardiol. 29: 2717-2724.
91. Braun T., Buschhausen-Denker G., Bober E., Tannich E., Arnold H.H. 1989. A novel human muscle factor related to but distinct from MyoDl induces myogenic conversion in 10T1/2 fibroblasts. EMBO J. 8: 701-709.
92. Brinkmann A.O. 1994. Steroid hormone receptors: activators of gene transcription. J. Pediatr. Endocrinol. 7: 275-282.
93. Brittingham J., Phiel C., Trzyna W.C., Gabbeta V., McHugh K.M. 1998. Identification of distinct molecular phenotypes in cultured gastrointestinal smooth muscle cells. Gastroenterology 115:605-617.
94. Brockes J.P. 1997. Amphibian limb regeneration: rebuilding a complex structure. Science 276: 81-87.
95. Brodsky V.Y. 1991. Cell ploidy in the mammalian heart. In: The Development and Regenerative Potential of Cardiac Muscle. Pp. 253-292. Eds J.O. Oberpriller, J.C. Oberpriller, A. Mauro. Harward Acad. Publ. Chur, Switzerland.
96. Brodsky W.Y., Areiyeva A.M., Uryvaeve I.V. 1980. Mitotic polyploidization of mouse heart myocytes during the first postnatal week. Cell Tiss. Res. 210: 133-144.
97. Brodsky V.Ya., Sarkisov D.S., Arefyeva A.M., Panova N.W., Gvasava I.G. 1994. Polyploidy in cardiac myocytes of normal and hypertrophic human hearts; range of values. Virchows Arch. 424: 429-435.
98. Brody M.D., Chang E.S. 1989. Development and utilization of crustacean ling-term primary cell cultures: ecdysteroid effects in vitro. Invertebr. Reprod. Devel. 16: 141-147.
99. Brownlee D.J., Faiweather I., Johnston C.F., Smart D., Shaw C., Halton D.W. 1993. Immunocytochemical demonstration of neuropeptides in the central nervous system of the roundworm, Ascaris suum (Nematoda: Ascaroidea). Parasitology 106: 305-316.
100. Bruserud A. 1985. The ultrastructure of the larval heart and aortic diverticula in Caenagrion hastulatum Charpentier (Odonata, Zygoptera). Zool. Anz. 214: 25-32.
101. Buckingham M. 1994. Molecular biology of muscle development. Cell 78: 15-21. Burrage T.G., Sherman R.G. 1978. Cellular organization of the embryonic lobster heart. Cell Tiss. Res. 188: 171-187.
102. Canavan J.P., Holt J., Goldspink D.F. 1994. The influence of thyroid hormones on the growth of the atria and ventricles of the heart in immature rats. J. Endocrinol. 142: 171-179.
103. Capers C.R. 1960. Multinucleation of skeletal muscle in vitro. J. Biophys. Biochem. Cytol. 7: 553-566.
104. Carle K.J., Ruppert E.E. 1983. Comparative ultrastructure of the bryozoan funiculus: a blood vessel homologue. Z. Zool. Syst. Evol. Forsch. 211: 181-193.
105. Carrow R., Calhoun M.L. 1964. The extent of cardiac muscle in the great veins of the dog. Anat. Rec. 150: 249-256.
106. Cavey K.W., Cloney R.A. 1972. Fine structure and differentiation of ascidian muscle. I. Differentiated caudal musculature of Distaplia occidentals tadpoles. J. Morphol. 138: 349-374.
107. Cavey K.W., Cloney R.A. 1974. Fine structure and differentiation of ascidian muscle. II. Morphometries and differentiation of the caudal muscle cells of Distaplia occidentals tadpoles. J. Morphol. 144: 23-78.
108. Cavey K.W., Cloney R.A. 1976. Ultrastructure and differentiation of ascidian muscle. I. Caudal musculature of the larva of Diplosoma macdonaldi. Cell Tiss. Res. 174: 289-313.
109. Chalmers A.D., Slack J.M. 2000. The Xenopus tadpole gut: fate maps and morphogenetic movements. Development 127: 381-392.
110. Chaudhry A.P., Cutler L.S., Leifer C., Labay G., Satchidanand S., Yamane G.M. 1989. Ultrastructural study of the histogenesis of salivary gland mucoepidermoid carcinoma. J. Oral Pathol. Med. 18: 400-409.
111. Chen H.H., Burnett J.C.Jr. 1998. C-type natriuretic peptide: the endothelial component of the natriuretic peptide system. J. Cardiovasc. Pharmacol. 32, Suppl. 3: S22-S28.
112. Chen J.-N., Fishman M.C. 2000. Genetics of heart development. Trends Genet. 16: 383388.
113. Chen L., Krause M., Sepanski M., Fire A. 1994. The Caenorhabditis elegans MYOD homoloque HLH-1 is essential for proper muscle function and complete morphogenesis. Development 120: 1631-1641.
114. Chevallier A. 1979. Role of the somatic mesoderm in the development of the thorax in bird embryos. II. Origin of thoracic and apendicular musculature. J. Embryol. Exp. Morphol. 49: 73-88.
115. Chien R. 1992. Signaling mechanisms for the activation of an embryonic gene program during the hypertrophy of cardiac ventricular muscle. Basic. Res. Cardiol. 87: 49-58.
116. Christ I. 1982. The cardiac ultrastructure of Cypridina norvegica Baird (Crustacea, Ostracoda). Zool. Anz. 208: 323-329.
117. Christ B., Jacob H.J., Jacob M. 1974. Über den Ursprung der Flügelmuskulatur. Experimentelle Untersuchungen mit Wachtel- und Hühnerembryonen. Experientia 30: 14461448.
118. Christ B., Jacob H.J., Jacob M. 1978. On the formation of the myotomes in avian embryos. An experimental and scanning electron study. Experientia 34: 514-516.
119. Church J.C.T. 1969. Satellite cells and myogenesis; a study in the fruit bat web. J. Anat. 105:419.
120. Clement A.C. 1962. Development of the Ilyanassa following removal of the D blastomere at successive cleavage stages. J. Exp. Zool. 149: 193-215.
121. Cluzeaut F., Maurer-Schultze B. 1986. Proliferation of cardiomyocytes and interstitial cells in the cardiac muscle of the mouse during pre- and postnatal development. Cell Tissue Kinet. 19:267-274.
122. Cobb J.L.S., Bennett T. 1970. An ultrastructural study of mitotic division in differentiated gastric smooth muscle cells. Z. Zellforsch. 108: 177-189.
123. Cohen-Gould L., Mikawa T. 1996. The fate diversity of mesodermal cells within the heart field during chicken early embryogenesis. Dev. Biol. 177: 265-273.
124. Collo G., Domanico S.Z., Klier G., Quaranta V. 1995. Gradient of integrin alpha 6A distribution in the myocardium during early heart development. Cell Adhesion Commun. 3: 101 -113.
125. Cornelison D.D., Wold B.J. 1997. Single-cell analysis of regulatory gene expression in quiescent and activated mouse skeletal muscle satellite cells. Dev. Biol. 191: 270-283.
126. Cossu G., Molinaro M., Pacifici M. 1983. Differential response of satellite cells and embryonic myoblasts to a tumor promoter. Dev. Biol. 98: 520-524.
127. Cossu G., Ranaldi G., Molinaro M., Vivarelli E. 1987a. Early mammalian myoblasts are resistant to phorbol ester-induced block of differentiation. Development 102: 65-69.
128. Cossu G., Eusebi F., Grassi F., Wanke E. 1987b. Acetylcholine receptor channels are present in undifferentiated satellite cells but not in embryonic myoblasts in culture. Dev. Biol. 123:43-50.
129. Crescenzi M., Soddu S., Sacchi A., Tato F. 1995. Adenovirus infection induces reentry into the cell cycle of terminally differentiated skeletal muscle cells. Ann. N.Y. Acad. Sci. 752: 918.
130. Dagnino L., Drouin J., Nemer M. 1991. Differential expression of natriuretic peptide genes in cardiac and extracardiac tissues. Mol. Endocrinol. 5: 1292-1300.
131. Danieli G.A., Rodino E. 1967. Larval moulting cycle and DNA synthesis in Drosophila hydei salavary glands. Nature 213: 424-425.
132. Dannhorn D.R., Seitz K.A. 1986. Ultrastructure and function of the circulatory organs of Leiobunum limbatum and two other species of Harvestmen (Arachnida: Opiliones) J. Morphol. 190: 93-107.
133. Daury L., Busson M., Casas F., Cassar-Melek I., Wrutniak-Cabello C., Cabello G. 2001. The triiodthyronine nuclear receptor c-ErbAalphal inhibits avian MyoD transcriptional activity in myoblasts. FEBS Lett. 508: 236-240.
134. David J.D., See W.M., Higginbotham C.-A. 1981. Fusion of chick embryo skeletal myoblasts: role of calcium influx preceding membrane union. Dev. Biol. 82: 297-307.
135. Davis R.L., Weintraub H., Lassar A. 1987. Expression of a single transfected cDNA converts fibroblasts to myoblasts. Cell 51: 987-1000.
136. De Bold A.J., Borenstein H.B., Veress A.T., Sonnenberg H. 1981. A rapid and potent natriuretic response to intravenous injection of atrial myocardial extract in rats. Life Sci. 28: 8994.
137. Dettman R.W., Denetclaw W.Jr., Ordahl C.P., Bristow J. 1998. Common epicardial origin of coronary vascular smooth muscle, perivascular fibroblasts, and intermyocardial fibroblasts in the avian heart. Dev. Biol. 193: 169-181.
138. Dewel R.A. 2000. Colonial origin for Emetazoa: major morphological transitions and the origin of bilaterian complexity. J. Morphol. 243: 35-74.
139. Dichoso D., Brodigan T., Chwoe K.Y., Lee J.S., Llacer R., Park M., Corsi A.K., Kostas S.A., Fire A., Ahnn J., Krause M. 2000. The MADS-Box factor CeMEF2 is not essential for Caenorhabditis elegans myogenesis and development. Dev. Biol. 223: 431-440.
140. Dietrich H., Fischer G., Hiller U. 1988. The smooth muscle of the iris of the gray parrot (Psittacus erithacus). Z. mikr.-anat. Forsch. 102: 239-250.
141. Dilly P.N., Welsch U., Rehkamper G. 1986. Fine structure of heart, pericardium and glomerular vessel in Cephalodiscus gracilis M'lntoch, 1882 (Pterobranchia, Hemichordata). Acta Zool. 67: 73-179.
142. Dodson M.V., Mathison B.A. 1988. Comparison of ovine and rat muscle-derived satellite cells: response to insulin. Tissue Cell 20: 909-918.
143. Doi K., Itoh H., Nakagawa O., Igaki T., Yamashita J., Chun T.H., Inoue M., Masatsugu K., Nakao K. 1997. Expression of natriuretic peptide system during embryonic stem cell vasculogenesis. Heart Vessels. Suppl. 12: 18-22.
144. Doyle W.L. 1967. Vesiculated axons in haemal vessels of an holothurian: Cucumaria frondosa. Biol. Bull. 132: 329-336.
145. Durliat M., Moriniere M., Porcheron P. 1988. Changes in ecdysteroides in Astacus leptodactylus during the molting cycle. Comp. Biochem. Physiol. 89A: 223-229.
146. Durocher D., Chen C.Y., Ardati A., Schwartz R.J., Nemer M. 1996. The atrial natriuretic factor promoter is a downstream target for Nkx-2.5 in the myocardium. Mol. Cell. Biol. 16: 4648-4655.
147. Durocher D., Charron F., Warren R., Schwartz R.J., Nemer M. 1997. The cardiac transcription factor Nkx2-5 and GATA-4 are mutual cofactors. EMBO J. 16: 5687-5696.
148. Durocher D., Grepin C., Nemer M. 1998. Regulation of gene expression in the endocrine heart. Recent Prog. Horm. Res. 53: 7-23.
149. Dussaule J.C. 1994. Current knowledge on the atrial natriuretic factor. Rev. Prat. 44: 505513.
150. Eales J.G. 1997. Iodine metabolism and thyroid-related functions in organisms lacking thyroid follicles: are thyroid hormones also vitamins? Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 214: 302-317.
151. Edwards G.A., Challice C.E. 1960. The ultrastructure of the heart of the cockroach, Blattella germanica. Ann. Entomol. Soc. Amer. 53: 369-383.
152. El Haj A.J., Harrison P., Chang E.S. 1994. Localization of ecdysteroid receptor immunoreactivity in eyestalk and muscle tissue of the american lobster, Homarus amaricanus. J. Exp. Zool. 270: 343-349.
153. Emig C.C. 1977. Sur la structure des parois de l'appareil circulatoire de Phoronis psammophila Cori (Phoronida, Lophophorata). Zoomorphology 87: 147-153.
154. Endo H., Mifune H., Kurohmaru M., Hayashi Y. 1994. Cardiac musculature of the cranial vena cava in the rat. Acta Anat. 151: 107- 111.
155. Endo T., Nadal-Ginard B. 1998. Reversal of myogenic terminal differentiation by SV40 large Tantigen results in mitosis and apoptosis. J. Cell. Sci. Ill: 1081-1093.
156. Everett A.W., Umeda P.K., Sinha A.M., Rabinowitz M., Zak R. 1986. Expression of myosin heavy chains during thyroid hormone-induced cardiac growth. Fed. Proc. 45: 2568-2572.
157. Farrell A.P., Olson K.R. 2000. Cardiac natriuretic peptides: a physiological lineage of cardioprotective hormones? Physiol. Biochem. Zool. 73: 1-11.
158. Farrell M.J., Kirby M.L. 2001. Cell biology of cardiac development. Int. Rev. Cytol. 202:99.158.
159. Ferguson D.J. 1985. Ultrastructural characterization of the proliferative (stem?) cells within the parenchyma of the normal "resting" breast. Virchows Arch. A. Pathol. Anat. Histopathol. 407: 379-385.
160. Ferguson D.J. 1988. An ultrastructural study of mitosis and cytokinesis in normal "resting" human breast. Cell Tiss. Res. 252: 581-587.
161. Ferrari G., Cusella-De Angelis G., Coletta M., Paolucci E., Stornaiuolo A., Cossu G., Mavilio F. 1998. Muscle regeneration by bone marrow-derived myogenic progenitors. Science 279: 1528-1530.
162. Ferrari P.A., Koch W.E. 1984a. Development of the iris in the chicken embryo. I. A study of growth and histodifferentiation utilizing immunocytochemistry for muscle differentiation. J. Embryol. Exp. Morphol. 81: 153-167.
163. Ferrari P.A., Koch W.E. 1984b. Development of the iris in the chicken embryo. II. Differentiation of the irideal muscles in vitro. J. Embryol. Exp. Morphol. 81: 169-183.
164. Fingerman W., Fingerman M. 1976. Effects of time of year and limb removal on rats of ecdysis of eyed and eyestalkless fiddler crabs, Ucapugilator. Marine Biol. 37: 357-362.
165. Fishman M.C., Chien K.R. 1997. Fashioning the vertebrate heart: earliest embryonic decisions. Development 124: 2099-2117.
166. Forssmann W.G., Richter R., Meyer M. 1998. The endocrine heart and natriuretic peptides: histochemistry, cell biology, and functional aspects of the renal urodilatin system. Histochem. Cell Biol. 110: 335-357.
167. Forterre P. 2001. Genomics and early cellular evolution. The origin of the DNA world. C. R. Acad. Sci. III. 324: 1067-1076.
168. Foschini M.P., Scarpellini F., Gown A.M., Eusebi V. 2000. Differential expression of myoepithelial markers in salivary, sweat and mammary glands. Int. J. Surg. Pathol. 8: 29-37.
169. Fu X.-Y., Zhang J.J. 1993. Transcription factor p91 interacts with the epidermal factor receptor and mediates activation of the c-fos gene promoter. Cell 74: 1135-1145.
170. Fukuda K. 2001. Development of regenerative cardiomyocytes from mesenchymal stem cells for cardiovascular tissue engineering. Artif. Organs 25: 187-193.
171. Fuller S.J., Gillespie-Brown J., Sugden P.H. 1998. Oncogenic sre, raf, and ras stimulate a hypertrophic pattern of gene expression and increase cell size in neonatal rat ventricular myocytes. J. Biol. Chem. 273: 18146-18152.
172. Gabella G. 1979. Hypertrophic smooth muscle. I. Size and shape of cells, occurence of mitoses. Cell Tiss. Res. 201: 63-78.
173. Gabella G., Clarke E. 1983. Embryonic development of the smooth and striated musculatures of the chicken iris. Cell Tiss. Res. 229: 37-59.
174. Gajewski K., Kim Y., Choi C.Y., Schulz R.A. 1998. Combinatorial control of Drosophila meß gene expression in cardiac and somatic muscle cell lineages. Dev. Genes Evol. 208: 382392.
175. Gal-Levi R., Leshem Y., Aoki S., Nakamura T., Halevy O. 1998. Hepatocyte growth factor plays a dual role in regulating skeletal muscle satellite cell proliferation and differentiation. Biochem. Biophys. Acta 1402: 39-51.
176. Galli R., Borello U., Gritti A., Minasi M.G., Bjornson C., Coletta M., Mora M., De Angelis M.G., Fiocco R., Cossu G., Vescovi A.L. 2000. Skeletal myogenic potential of human and mouse neural stem cells. Nat. Neurosci. 3: 986-991.
177. Garayoa M., Villaro A.C., Sesma P. 1994. Myoendocrine-like cells in invertebrates: occurence of noncardiac striated secretory-like myocytes in the gut of the ant Formica polyctena. Gen. Comp. Endocrinol. 95: 133-142.
178. Garcia M., Gharbi J., Girault J.-P., Hetru C., Lafont R. 1989. Ecdysteroid metabolism in leeches. Int. J. Invert. Reprod. Dev. 15: 57-68.
179. Garcia M., Boilly Y., Blanckaert V., Gharbi J., Girault J.-P., Lafont R. 1990. Ecdysteroid metabolism in Annelids. Int. J. Invert. Reprod. Dev. 18: 113-114.
180. Garcia M., Griffond B., Lafont R. 1995. What are origins of ecdysteroids in gastropods? Gen. Comp. Endocrinol. 97: 76-85.
181. Gardiner S.L., Rieger R.M. 1980. Rudimentary cilia in muscle cells of annelids and echinoderms. Cell Tiss. Res. 213: 247-252.
182. Garfield R.E. 1979. Regeneration of smooth muscle: ultrastructure and multipotential properties of smooth muscle. In: Muscle Regeneration. Pp. 383-404. Raven Press. New York.
183. Garry D.J., Meeson A., Elterman J., Zhao Y., Yang P., Bassel-Duby R., Williams R.S. 2000. Myogenic stem function is impaired in mice lacking the forkhead/winged helix protein MNF. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97: 5416-5421.
184. Gerhard J. 2000. Inversion of the chordate body axis: Are there alternatives? Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97: 4445-4448.
185. Gerhart J. 2001. Evolution of the organizer and the chordate body plan. Int. J. Dev. Biol. 45 (1 Spec. No): 133-153.
186. Goldspink G. 1972. Postembryonic growth and differentiation of striated muscle. In: The Structure and Function of Muscle (Second Edition). Vol. 1. Pp. 179. New York.
187. Goldstein M.A., Claycomb W.C., Schwartz A. 1974. DNA synthesis and mitosis in well-differentiated mammalian cardiocytes. Science 183: 212-213.
188. Goodman S.L., Deutzmann R., Nurcombe V. 1989. Locomotory competence and laminin-specific cell surface binding sites are lost during myoblast differentiation. Development 106: 795-802.
189. Gordon D., Mahai L.G., Schwartz S.M. 1986. Induction of polyploidy in cultures of neonatal rat aortic smooth muscle cells. Circ. Res. 59: 633-644.
190. Gorski D.H., Walsh K. 2001. Control of vascular cell differentiation by homeoiobox transcription factors. Circ. Res. 88: 7-11.
191. Gould R.P. 1973. The microanatomy of muscle. In: The Structure and Function of Muscle. Vol. 2. Structure. Part 2. Pp. 185-241. Ed. G.H. Bourne. Acad Press. New-York-London.
192. Grabner W., Pfitzer P. 1974. Number of nuclei in isolated myocardial cells of pig. Virchows Arch. B 15: 279-294.
193. Grepin C., Dagnino L., Robitaille L., Haberstroh L., Antakly T., Nemer M. 1994. A hormone-encoding gene identifies a pathway for cardiac but not skeletal muscle gene transcription. Mol. Cell Biol. 14: 3115-3129.
194. Grimstone A.V., Rotherdam S., Salt G. 1967. An electron-microscope study of capsula formation by insect blood cells. J. Cell. Sei. 2: 281-292.
195. Grounds M.D., McGeachie J.K. 1989. Myogenic cells of regenerating adult chicken muscle can fuse into myotubes after a single cell division in vivo. Exp. Cell. Res. 180: 429-439.
196. Grownd M.D., McGreachi J.K. 1989. Myogenic cells of regenerating adult chicken muscle can fuse into myotubes after a single cell division in vivo. Exp. Cell. Res. 180: 429-439.
197. Gu W., Schneider J.W., Condorelli G., Kaushal S., Mahdavi V., Nadal-Ginard B. 1993. Interaction of myogenic factors and the retinoblastoma protein mediates muscle cell commitment and differentiation. Cell 72: 309-324.
198. Gupta B.L., Little C. 1975. Ultrastructure, phylogeny and Pogonophora. Z. Zool. Syst. Evol. Forsch. Sonderheft: The Phylogeny and Systematic Position of Pogonophora. Pp. 45-63.
199. Gussoni E., Soneoka Y., Strickland C.D., Buzney E.A., Khan M.K., Flint A.F., Kunkel L.M., Mulligan R.C. 1999. Dystrophin expression in the mdx mouse restored by stem cell transplantation. Nature 401: 390-394.
200. Hadzi J. 1963. The Evolution of the Metazoa. London.
201. Halanych K.M., Bacheller J.D., Aguinaldo A.M., Liva S.M., Hillis D.M., Lake J.A. 1995. Evidence from 18S ribosomal DNA that the lophophorates are protostome animals. Science 267: 1641-1643.
202. Hama K. 1960. The fine structure of some blood vessels of the earth worm, Eisenia foetida. J. Biophys. Biochem. Cytol. 7: 717-724.
203. Hammersen F., Staudte H.W. 1969. Beiträge zum Feinbau der Blutgefäße von Invertebraten. I. Die Ultrastruktur des Sinus lateralis von Hirudo medicinalis L. Z. Zellforsch. 100:215-250.
204. Hanani M., Brading A.F. 2000. Electrical coupling in smooth muscles. Is it universal? J. Basic Clin. Physiol. Pharmacol. 11: 321-330.
205. Hanzliková V., Macková E., Hnik P. 1975. Satellite cells of the rat soleus muscle in the process of compensatory hypertrophy combined with denervation. Cell Tiss. Res. 160: 411-421.
206. Hartley R.S., Bandman R.S., Yablonka-Reuveni Z. 1991. Myoblasts from fetal and adult skeletal muscle regulate myosin expression differently. Dev. Biol. 148: 249-260.
207. Harvey R.P. 1996. NK-2 homeobox genes and heart development. Dev. Biol. 178: 203216.
208. Haun C., Alexander J., Stainier D.Y., Okkema P.G. 1998. Rescue of Caenorhabditis elegans pharyngeal development by a vertebrate heart specification gene. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95: 5072-5075.
209. Hawkins W.E., Howse H.D. 1982. Ultrastructure of cardiac hemocytes and related cells in the oyster Crassostrea virginica. Trans. Amer. Microsc. Soc. 101: 241-252.
210. Hawkins M.G., McGhee J.D. 1995. elt-2, a second GATA factor from the nematode Caenorhabditis elegans. J. Biol. Chem. 270: 14666-14671.
211. Hay D.A., Low F.N. 1972. The fine structure of progressive stages of myocardial mitosis in chick embryos. Amer. J. Anat. 134: 175-202.
212. Hayes R., Kelly R.E. 1969. Dense bodies of the contractile system of cardiac muscle in Venus mercenaria. J. Morphol. 127: 151-161.
213. Hedin U., Roy J., Tran P.K., Lundmark K., Rahman A. 1999. Control of smooth muscle cell proliferation the role of the basement membrane. Thromb. Haemost. 82 (Suppl 1): 23-26.
214. Hegstrom C.D., Truman J.W. 1996. Steroid control of muscle remodeling during metemorphosis in Manduca sexta. J. Neurobiol. 29: 535-550.
215. Helle K.B., Lenning S. 1973. Sarcoplasmic reticulum in the portal vein and the ventricle of the cyclostome Myxine glutinosa. J. Cell. Mol. Cardiol. 5: 433-439.
216. Herman W.S. 1972. Molt initiation in response to phytoecdysones and low doses of animal ecdysones in the chelicerate Arthropod, Limulus polyphemus. Gen. Comp. Eddocrinol. 18:301-305.
217. Herreid C.F.II., LaRussa V.F., DeFesi C.R. 1976. Blood vascular system of the sea cucumber, Stichopus moebii. J. Morphol. 150: 423-452.
218. Hirakow R. 1985. The vertebrate heart in phylogenetic relation to the prochordates. Forschr. Zool. 30: 367-369.
219. Holley S.A., Jackson P.D., Sasai Y., Lu B., De Robertis E.M., Hoffmann F.M., Ferguson E.L. 1995. A conserved system for dorsal-ventral pattering in insects and vertebrates involving sog and chordin. Nature 376: 249-253.
220. Holtzer H. 1978. Cell lineages stem cells and the "quantal" cell cycle concept. In: Stem Cells and Tissue Homeostasis. Pp. 1-28. Eds B.J. Lord e.a. Cambridge Univ. Press. Cambridge e.a.
221. Holtzer H., Weintraub H., Mayne R., Mochan B. 1972. The cell cycle, cell lineages, and cell differentiation. Curr. Top. Dev. Biol. 7: 229-256.
222. Hoffmann J.A., Charlet M. 1985. Les ecdystéroïdes chez les invertébrés. Ann. Sei. Natur. Zool. 7:215-228.
223. Hopkins P.M. 1989. Ecdysteroids and regeneration in the fiddler crab Uca pugilator. J. Exp. Zool. 252: 293-299.
224. Horn D.H.D., Wilkie J.S., Thomson J.A. 1974. Isolation of ß-eedysone (20-hydroxyecdysterone) from the parasitic nematode Ascaris lumbricoides. Experientia 30: 11091110.
225. Howse H.D., Ferrans V.J., Hibbs R.G. 1970. A light and electron microscopic study of the heart of a crayfish Procambarus clarkii (Giraud.). I. Histology and histochemistry. J. Morphol. 131:237-242.
226. Howse H.D., Ferrans V.J., Hibbs R.G. 1971. A light and electron microscopic study of the heart of a crayfish Procambarus clarkii (Giraud.). II. Fine structure. J. Morphol. 133: 353374.
227. Jackson K.A., Mi T., Goodell M.A. 1999. Hematopoietic potential of stem cells isolated from murine skeletal muscle. Proc, Natl. Acad. Sei. U.S.A. 96: 14193-14195.
228. Jackson K.A., Majka S.M., Wang H., Pocius J., Hartley C.J., Majesky M.W., Entman M.Z., Michael L.H., Hirschi K.K., Goodell M.A. 2001. Regeneration of ishemic cardiac muscle and vascular endothelium by adult stem cells. J. Clin. Invest. 107: 1395-1402.
229. Jacob M., Christ B., Jacob H.J. 1979. Ultrastrukturelle Untersuchungen zur Migration myogener Zellen der Beinanlagen von Huhnerembryonen. Anat. Anz. 146: 533-536.
230. Jacob M., Jacob H.J., Wachtler F., Christ B. 1984. Ontogeny of avian extrinic ocular muscles. Cell Tiss. Res. 237: 549-557.
231. Jacobs S.C., Wokke J.H., Bar P.R., Bootsma A.L. 1995. Satellite cell activation after muscle damage in young and adult rats. Anat. Rec. 242: 329-336.
232. Jacobson A.G. 1960. Influences of ectoderm and endoderm on heart differentiation in the newt. Dev. Biol. 2: 138-154.
233. Jacobson A.G. 1961. Heart determination in the newt. J. Exp. Zool. 146: 139-151. Jacobson A.G., Sater A.K. 1988. Features of embryonic induction. Development 104: 341-359.
234. Jamieson B.G.M. 1981. The Ultrastructure of the Oligochaeta. Acad. Press Inc. (London)1.D.
235. Jamieson J.D., Palade G.E. 1964. Specific granules in atrial muscle cells. J. Cell Biol. 23: 151-172.
236. Jeffery R., Swalla B.J. 1992. Evolution of alternate modes of development in ascidians. BioEssays 14: 219-226.
237. Jellies J., Kopp D.M. 1995. Sprouting and connectivity of embryonic leech heart excitor (HE) motor neurons in the absence of their peripheral target. Invert. Neurosci. 1: 145-157.
238. Jensen H. 1974. Ultrastructural studies on the hearts in Arenicola marina L. (Annelida: Polychaeta). Cell Tiss. Res. 156: 127-144.
239. Jensen H. 1975. Ultrastructure of the dorsal hemal vessel in the sea-cucumber Parastichopus tremulus (Echinodermata: Holothuroidea). Cell Tiss. Res. 160: 355-369.
240. Jensen H., Myklebust R. 1975. Ultrastructure of the muscle cells in Siboglinum fiordicum (Pogonophora). Cell Tiss. Res. 163: 185-197.
241. Jensen H., Tj0nneland A. 1977. Ultrastructure of the heart muscle cells of the cuttlefish Rossia macrosoma (Delle Chiaje) (Mollusca: Cephalopoda). Cell Tiss. Res. 185: 147-158.
242. Jones J.C. 1971. On the heart of the orange tunicate, Ecteinascidia turbinata Herdman. Biol. Bull. 141: 130-145.
243. Jones N.C., Fedorov Y.V., Rosenthal R.S., Olwin B.B. 2001. ERK1/2 is required for myoblast proliferation but is dispensable for muscle gene expression and cell fusion. J. Cell. Physiol. 186: 104-115.
244. Kablar B., Tajbakhsh S., Rudnicki M.A. 2000. Transdifferentiation of esophageal smooth to skeletal muscle is myogenic bHLH factor-dependent. Development 127: 1627-1639.
245. Kajstura J., Leri A., Finato N., Di Loreto C., Beltrami C.A., Anversa P. 1998. Myocyte proliferation in end-stage cardiac failure in humans. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95: 88018805.
246. Kalk M. 1970. The organization of a tunicate heart. Tissue Cell 2: 99-118.
247. Kalman F., Viragh S., Modis L. 1995. Cell surface glycoconjugates and the extracellular matrix of the developing mouse embryo epicardium. Anat. Embryol. 191: 451-464.
248. Kang M.J., Koh G.Y. 1997. Differential and dramatic changes of cyclin-dependent kinase activities in cardiomyocytes during the neonatal period. J. Mol. Cell. Cardiol. 29: 1767-1777.
249. Kardami E. 1990. Stimulation and inhibition of cardiac myocyte proliferation in vitro. Mol. Cell. Biochem. 92: 129-135.
250. Karrer H.E. 1959. The striated musculature of blood vessels. I. General cell morphology. J. Biophys. Biochem. Cytol. 6: 383-392.
251. Kashiwagi M., Katafuchi T., Kato A. 1995. Cloning and properties of a novel natriuretic peptide receptor, NPR-D. Eur. J. Biochem. 233: 102-109.
252. Katoh Y., Molkentin J.D., Dave V., Olson E.N., Periasamy M. 1998. MEF2B is component of a smooth muscle-specific complex that binds an A/T-rich element important for smooth muscle myosin heavy chain gene expression. J. Biol. Chem. 273: 1511-1518.
253. Katz B. 1961. The termination of the afferent nerve fiber in the muscle spindle of the frog. Phil. Trans. R. Soc. London Ser. B 243: 221-240.
254. Kawaguti S. 1963a. Electron microscopy on the heart muscle of the cuttlefish. Biol. J. Okayama Univ. 9: 27-40.
255. Kawaguti S. 1963b. Electron microscopy on the heart muscle of the snail. Biol. J. Okayama Univ. 9: 140-148.
256. Kawaguti S. 1963c. Electron microscopy on the heart muscle of a freshwater bivalve, Unio douglasiae nipponensis. Biol. J. Okayama Univ. 9: 149-155.
257. Kelley C., Blumberg H., Zon., Evans T. 1993. GATA-4 is a novel transcriptional factor expressed in endocardium of the developing heart. Development 118: 817-827.
258. Kelly A.M. 1978. Perisynaptic satellite cells in the developing and mature rat soleus muscle. Anat. Res. 190: 891-903.
259. Kelly R.E., Hayes R.L. 1969. The ultrastructure of smooth cardiac muscle in the clam, Venus mercenaria. J. Morphol. 127: 163-175.
260. Kelly A.M., Zacks S.I. 1969. The histogenesis of rat intercostal muscle. J. Cell Biol. 42: 135-153.
261. Kessler P.D., Byrne B.J. 1999. Myoblast cell grafting into heart muscle: cellular biology and potential applications. Annu. Rev. Physiol. 61: 219-242.
262. Khaitlina S.Yu. 2001. Functional specificity of actin isoforms. Int. Rev. Cytol. 202: 3598.
263. Kisch B. 1956. Electron microscopy of the atrium of the heart. I. Guinea pig. Exp. Med. Surg. 14:99-112.
264. Kling G., Schipp R. 1987. Comparative ultrastructural and cytochemical analysis of the cephalopod systemic heart and its innervation. Experientia 43: 502-511.
265. Kohidai L., Csaba G., Karsa J. 1995. Effects of atrial natriuretic peptide on the unicellular Tetrahymenapyriformis model. Microbios 82: 27-40.
266. Koide M., Akins R.E., Harayama H., Yasui K., Yokota M., Tuan R.S. 1996. Atrial natriuretic peptide accelerates proliferation of chick embryonic cardiomyocytes in vitro. Differentiation 61: 1-11.
267. Komarov S.A. 1985. DNA synthesis in the nuclei of differentiating muscle fibers of the silkworm, Bombyx mor i L. Experientia 41: 746-747.
268. Kompmann M., Paddags J., Sandritter W. 1966. Feulgen cytophotometric DNA determination on human hearts. Arch. Patol. 82: 303-308.
269. Komuro T. 1970. Unusual neuromuscular junctions in the heart of the crayfish {Procambarus clarkií). Z. Zellforsch. 105: 317-324.
270. Kon K., Fujiwara T. 1994. Transformation of fibroblasts into endothelial cells during angiogenesis. Cell Tiss. Res. 278: 625-628.
271. Konigberg I.R., Pfister K.K. 1986. Replicative and differentiative behavior in daughter pairs of myogenic stem cells. Exp. Cell Res. 167: 63-74.
272. Königsberg I.R., Solimán P.A., Mixture L.O. 1978. The duration of the terminal Gi of fusing myoblasts. Dev. Biol. 63: 11-26.
273. Koolman J., Walter J., Zahner H. 1984. Ecdysteroids in helminths. In: Biosynthesis, Metabolism and Mode of Action of invertebrate Hormones. Pp. 323-330. Eds. J. Hoffman, M. Porchet. Springer-Verlag. Berlin.
274. Korecky B., Sweet S., Rakusan K. 1979. Number of nuclei in mammalian cardiac myocytes. Can. J. Physiol. Pharmacol. 57: 1122-1129.
275. Korpsmeier K.H. 1979. Proliferation kinetics in the mammary gland of the mouse during postnatal development. Anat. Anz. 145: 313-318.
276. Kramer A.W.Jr., Marks L.S. 1965. The occurence of cardiac muscle in the pulmonary veins of Rodentia. J. Morphol. 117: 135-150.
277. Krause M., Fire A., Harrison S.W., Priess J., Weintraub H. 1990. CeMyoD Accumulation defines the body wall muscle cell fate during C. elegans embryogenesis. Cell 63: 907-919.
278. Krause R. 1895. Zur Histologie der Speicheldrüsen. Arch. mikr. Anat. 45: 93-133.
279. Kriebel M.E. 1967. Conduction velocity and intracellular action potentials of the tunicate heart. J. Gen. Physiol. 50: 2097-2107.
280. Kriebel M.E. 1968. Electrical characteristics of tunicate heart cell membranes and nexuses. J. Gen. Physiol. 52: 46-59.
281. Kriebel M.E. 1970. Wave front analysis of impulses in tunicate heart. Amer. J. Physiol. 218: 1194-1200.
282. Kriebel M.E., Hanna R.B. 1980. Single-channel conductance of gap junctions in the tunicate heart. Eur. J. Cell. Biol. 22: 247.
283. Krishnakumaran A., Schneiderman H.A. 1970. Control of molting in mandibulate and chelicerate arthropods by ecdysones. Biol. Bull. 139: 520-538.
284. Krishnakumaran A., Berry S.J., Oberlander H., Schneiderman H.A. 1967. Nucleic acid synthesis during insect development. II. Control of DNA synthesis in the Cecropia silkworm and other Saturniid moths. J. Insect Physiol. 13: 1-57.
285. Krishnakumaran A., Schneiderman H.A. 1969. Induction of molting in Crustacea by an insect molting hormone. Gen. Comp. Endocrinol. 12: 513-518.
286. Krumlauf R. 1992. Evolution of the vertebrate Hox homeobox genes. BioEssays 14: 245252.
287. Majalahti-Palviainen T., Hirvinen M., Tervonen V., lives M., Ruskoaho H., Vuolteenaho O. 2000. Gene structure of a new cardiac peptide hormone: a model for heart-specific gene expression. Endocrinilogy 141: 731-740.
288. Majesky M.W., Schwartz S.M. 1991. Smooth muscle regeneration. In: The Development and Regenerative Potential of Cardiac Muscle. Pp. 415-438. Eds J.O. Oberpriller, J.C. Oberpriller, A Mauro. Harwood Acad. Publ. Chur, Switzerland.
289. Maldonado C., Forssmann W.G., Aoki A. 1992. Ultrastructural and innunocytochemical study of the myoendocrine cells of the fish Hypostomus cordovae. Anat. Embryol. 186: 557-561.
290. Malouf N.N., Coleman W.B., Grisham J.W., Lininger R.A., Madden V.J., Sproul M., Anderson P.A. 2001. Adult-derived stem cells from the liver become myocytes in the heart in vivo. Amer. J. Pathol. 158: 1929-1935.
291. Manasek F.J. 1968. Embryonic development of the heart. I. A tight and electron microscopic study of myocardial development in the early chick embryo. J. Morphol. 125: 329366.
292. Manasek F.J. 1970. Sulfated extracellular matrix production in the embryonic heart and adjacent tissues. J. Exp. Zool. 174: 415-439.
293. Manasek F.J. 1973. Some comperative aspects of cardiac and skeletal myogenesis. In: Developmental Regulation. Aspects of Cell Differentiation. Pp. 193-218. Ed. S.J. Coward. Acad. Press. New York, London.
294. Mann I. 1964. The Development of the Human Eye. Raven Press. New York.
295. Manner J. 1999. Does the subepicardial mesenchyme contribute myocardioblasts to the myocardium of the chick embryo heart? A quail-chick chimera study tracing the fate of the epicardial primordium. Anat. Rec. 255: 212-226.
296. Marchal S., Cassar-Malek I., Pons F., Wrutniak C., Cabello G. 1993. Triiodothyronine influences quil myoblast proliferation and differentiation. Biol. Cell. 78 (3): 191-197.
297. Markozashvili M.I., Rumyantsev P.P. 1984. Ultrastructure of muscle fibers and cells synthesizing DNA in lymph hearts of developing frogs and chick embryos. Cell Tiss. Res. 238: 369-379.
298. Markwald R., Eisenberg C., Eisenberg L., Trusk T., Sugi Y. 1996. Epithelial-mesenchymal transformations in early avian heart development. Acta Anat. 156 (3): 173-186.
299. Martin A.W. 1980. Some invertebrate myogenic hearts: The hearts of worms and molluscs. In: Hearts and Heart-Like Organs. Vol. 1. Comparative Anatomy and Development. Pp. 1-38. Ed. G.H. Bourne. Acad. Press. New York.
300. Matlock D.B., Dornfield E.J. 1982. The effect of crustecdysone on DNA synthesis in polyploid somatic cells of an isopod. Comp. Biochem. Physiol. 73B: 602-605.
301. Matsuda R., Spector D.H., Strohman R.C. 1983. Regenerating adult chicken skeletal muscle and satellite cell cultures express embryonic patterns of myosin and troponin isoforms. Dev. Biol. 100:478-488.
302. Mauro A. 1961. Satellite cells of skeletal muscle fibers. J. Biophys. Biochem. Cytol. 9: 493-497.
303. McAllister H.A., Hooker C.W., Weedon F.R. 1963. Occurence of cardiac muscle in the azygos vein of mammals. Anat. Rec. 145: 258.
304. McGeachie J.K. 1971. Ultra-structural specificity in regenerating smooth muscle. Experientia 27: 436-437.
305. McGreachie J., Allbrook D. 1978. Cell proliferation in skeletal muscle following denervation or tenotomy. Cell Tiss. Res. 193: 259-267.
306. McMahon B.R. 2001. Control of cardiovascular function and its evolution in Crustacea. J. Exp. Biol. 204: 923-932.
307. Meedel T.H., Hastings K.E. 1993. Striated muscle-type tropomyosin in a chordate smooth muscle, ascidian body-wall muscle. J. Biol. Chem. 268: 6755-6764.
308. Meister P. 1998. Myofibroblasten. Übersicht und Ausblick. Pathologe 19: 187-193.
309. Meloche S., Pelletier S., Servant M.J. 2000. Functional cross-talk between the cyclic AMP and Jak/STAT signaling pathway in vascular smooth muscle cells. Mol. Cell. Biochem. 212:99-109.
310. Mercer J.G., Barker G.C., McCall J.W. 1989. Studies of the biosynthesis and fate of ecdysteroids in filarial nematodes. Trop. Med. Parasitol. 40: 429-433.
311. Miano J.M., Cserjesi P., Ligon K.L., Periasamy M., Olson E.N. 1994. Smooth muscle myosin heavy chain exclusively marks the smooth muscle lineage during mouse embryogenesis. Circ. Res. 75: 803-812.
312. Midsukami M. 1964. Electron microscopic studies of satellite cells in the cardiac muscle of Brachyura. Okajamas Folia Anat. Jap. 40: 173-185.
313. Midsukami M. 1981. The structure and distribution of satellite cells of cardiac muscles in decapod crustaceans. Cell Tiss. Res. 219: 69-83.
314. Mifüne H., Suzuki S., Nöda Y., Mohri S., Mochizuki K. 1991. Fine structure of atrial natriuretic peptide(ANP)-granules in the atrial cardiocytes in the pig, cattle and horse. J. Vet. Med. Sei. 53: 561-568.
315. Mifune H., Suzuki S., Nokihara K., Nöda Y. 1996. Distribution of immunoreactive atrial and brain natriuretic peptides in the heart of the chicken, quail, snake and frog. Exp. Anim. 45: 125-133.
316. Miller J.B., Stockdale F.E. 1986. Developmental origin of skeletal muscle fibers: Clonal analysis of myogenic cell lineages based on fast and slow myosin heavy chain expression. Proc. Natl. Acad. Sei. U.S.A. 83: 3860-3864.
317. Mohun T., Sparrow D. 1997. Early steps in vertebrate cardiogenesis. Curr. Opin. Genet Dev. 7: 628-633.
318. Molkentin J.D., Black B.L., Martin J.F., Olson E.N. 1995. Cooperative activation o1 muscle gene expression by MEF2 and myogenic bHLH proteins. Cell 83: 1125-1136.
319. Moller P.C., Philpott C.W. 1973. The circulatory system of Amphioxus (Branchiostomc floridae). I. Morphology of the major vessels of the pharyngeal area. J. Morphol. 139: 389-406.
320. Moses R.L., Claycomb W.C. 1982. Disorganization and reestablishment of cardiac muscle cell ultrastructure in cultured adult rat ventricular muscle cells. J. Ultrastruct. Res. 81: 358-374.
321. Moss F.P., Leblond C.P. 1971. Satellite cells as the source of nuclei in muscles of growing rats. Anat. Ree. 170: 421-436.
322. Moubayed P.A., Pfitzer P. 1975. DNS-Gehalt und Zahl der Kerne in den myokardialen Zellen atrophischer Herzen. Verhandl. Deutsch. Ges. Pathol. 59: 338-340.
323. Mouly V., Toutant M., Fiszman M.Y. 1987. Chick and quail limb bud myoblasts, isolated at different times during muscle development, express stage-specific phenotypes when differentiated in culture. Cell Differ. 20: 17-25.
324. Mufitic M. 1969. Metamorphosis of miracida into cercariae of Schistosoma mansoni in vitro. Parasitology 59: 365-371.
325. Muir A.R. 1970. The structure and distribution of satellite cells. In: Regeneration of Striated Muscle and Myogenesis. Pp. 91-100. Eds A. Mauro, S.A. Shafiq, A.T. Milhorat. Escerpta Medica. Amsterdam.
326. Muller W.E. 2001. Review: How was metazoan threshold crossed? The hypothetical Urmetazoa. Comp. Biochem. Physiol. A. Mol. Integr. Physiol. 129: 433-460.
327. Murre C., McCaw P.S., Baltimore D. 1989a. A new DNA binding and dimerization motif in immunoglobulin enhancer binding, daughterless, MyoD, and myc proteins. Cell 56: 777-783.
328. Myklebust R., Tj0nneland A. 1975. The membrane systems of the cardiac muscle cell of Munida tenuimana G.O. Sars (Crustacea, Decapoda). Cell Tiss. Res. 159: 339-349.
329. Nadal-Ginard B. 1978. Commitment, fusion and biochemical differentiation of a myogenic cell line in the absence of DNA synthesis. Cell. 15: 855-864.
330. Nag A.C., Cheng M., Fischman D.A., Zak R. 1983. Long-term cell culture of adult mammalian cardiac myocytes: electron microscopic and immunofluorescent analyses of myofibrillar structure. J. Mol. Cell. Cardiol. 15: 301-317.
331. Nakamura A., Manasek F.J. 1978. Experimental studies of shape and structure of cardiac jelly. J. Embryol. Exp. Morphol. 43: 167-183.
332. Nakano K.E., Nakamura H. 1985. Origin of the irideal striated muscle in birds. J. Embryol. Exp. Morphol. 88: 1-13.
333. Nakao K. 1992. Natriuretic peptide family. Nippon. Naibunpi Gakkai Zasshi 68 (3): 134142.
334. Nakao T. 1974. An electron microscopic study of thr circulatory system in Nereis japónica. J. Morphol. 144: 217-236.
335. Nazario B., Hu R.M., Pedram A., Prins B., Levin E.R. 1995. Atrial and brain natriuretic peptides stimulate the production and secretion of C-type natriuretic peptide from bovine aortic endothelial cells. Clin. Invest. 95: 1151-1157.
336. Nehls M., Reinecke M., Lang R.E., Forssmass W.G. 1985. Biochemical and immunological evidence for a cardiodilatin-like substance in the snail neurocardiac axis. Proc Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82: 7762-7766.
337. Nielsen C. 1991. The development of the brachiopod Crania (Neocrania) anómala (O.F. Miiller) and its phylogenetic significance. Acta Zool. 72: 7-28.
338. Nishino A., Satoh Y., Morisawa M., Satoh N. 2000. Muscle actin genes and muscle cells in the appendicularian, Oikopleura longicauda: phylogenetic relationships among muscle tissues in the urochordates. J. Exp. Zool. 288: 135-150.
339. Nolte A., Kollman J., Dorlochter M., Straub H. 1986. Ecdysteroids in the dorsal bodies of pulmonates (Gastropoda): synthesis and release of ecdysone. Comp. Biochem. Physiol. 84A: 777-782.
340. Norrevang A. 1970. The position of pogonophora in the phylogenetic system. Z. Zool. Syst. Evol. Forsch. 8: 161-172.
341. North R.J. 1963. The fine structure of the myofibers in the heart of the snail Helix aspersa. J. Ultrastruct. Res. 8: 206-218.
342. Nunzi M.G., Burighel P., Schiaffino S. 1979. Muscle cell differentiation in the ascidian heart. Dev. Biol. 68: 371-380.
343. Nylund A. 1981. The heart ultrastructure of Praunus flexuosus (Miiller) and Mysis relicta (Lovén) (Crustacea, Mysidacea). J. Crust. Biol. 1: 558-566.
344. Nylund A. 1985. The myocardial ultrastructure of Hemilamprops rosea and Leucon nacica (Crustacea, Cumacea) and its phylogenetic implications. Zool. Scr. 14: 231-237.
345. Nylund A. 1986. Myocardial ultrastructure of Tanais cavolinii (Crustacea: Tanaidacea) and some phylogenetic considerations. J. Crustaceans Biol. 6: 199-206.
346. Nylund A., Komarova N.I., Rumyantsev P.P., Tj0nneland A., 0kland S. 1986. Heart ultrastructure in Petrobius brevistylis (Archaeognatha: Microcoryphia). Entomol. Gener. 11 (3/4): 263-272.
347. Nylund A., Ruhberg H., Tj0nneland A., Meidell B. 1988. Heart ultrastructure in four species of Onychophora (Peripatopsidae and Peripatidae) and phylogenetic implications. Zool. Beitr. 32: 17-30.
348. O'Hanlon G.M., Cleator M., Mercer J.G., Howells R.E., Rees H.H. 1991. Metabolism and fate of ecdysteroids in the nematodes Ascaris suum and Parascaris equorum. Mol. Biochem. Parasitol. 47: 179-187.
349. Odelberg S.J., Kollhoff A., Keating M.T. 2000. Dedifferentiation of mammalian myotubes induced by msx 1. Cell 103: 1099-1109.
350. Ogawa Y., Itoh H., Nakao K. 1995. Molecular biology and biochemistry of natriuretic peptide family. Clin Exp. Pharmacol. Physiol. 22: 49-53.
351. Oliphant L.M., Cloney R.A. 1972. The ascidian myocardium: sarcoplasmic reticulum and excitation-contraction coupling. Z. Zellforsch. 129: 395-412.
352. Olivetti G., Cigola E., Maestri R., Corradi D., Lagrasta C., Gambert S.R., Anversa P. 1996. Aging, cardiac hypertrophy and ischemic cardiomyopathy do not affect the myocytes in the human heart. J. Mol. Cell. Cardiol. 28: 1463-1477.
353. Olson E.N. 1992. Interplay between proliferation and differentiation within the myogenic lineage. Dev. Biol. 154: 261-272.
354. Ontell M. 1974. Muscle satellite cells: a validated technique for light microscopic identification and a quantitative study of changes in their population following denervation. Anat. Rec. 178:211-228.
355. Ontell M. 1975. Evidence for myoblastic potential of satellite cells in denervated muscle. Cell Tiss. Res. 160: 345-353.
356. Orlic D., Kajstura J., Chimenti S., Jakoniuk I., Anderson S.M., Li B., Pickel J., McKay R., Nadal-Ginard B., Bodine D.M., Leri A., Answersa P. 2001. Bone marrow cells regenerate infarcted myocardium. Nature 410: 701-705.
357. Owens G.K. 1989. Control of hypertrophic versus hyperplastic growth of vascular smooth muscle cells. Am. J. Physiol. 257 (6 Pt 2): H1755-H1765.
358. Owens G.K. 1998. Molecular control of vascular smooth muscle cell differentiation. Acta Physiol. Scand. 164: 623-635.
359. Owens G.K., Rabinovitch P.S., Schwartz S.M. 1981. Smooth muscle cell hypertrophy versus hyperplosia in hypertension. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 78: 7759-7763.
360. Page E., Fozzard H.A. 1973. Capacitive, resistive, and syncytial properties of heart muscle ultrastructural and physiological considerations. In: The Srtucture and Function of Muscle. Pt 2. Pp. 91-158. Ed. G.H. Bourne. Acad. Press. New York, London.
361. Pardos F., Benito J. 1988. Blood vessels and related structures in the gill bars of Glossobalanus minutus (Enteropneusta) Acta Zool. 69: 87-94.
362. Patapoutian A., Wold B.J., Wagner R.A. 1995. Evidence for developmentally programmed transdifferentiation in mouse esophageal muscle. Science 270: 1818-1821.
363. Patricolo E., Cammarata M., D'Agati P. 2001. Presence of thyroid hormones in ascidian larvae and their involvement in metamorphosis. J. Exp. Zool. 290: 426-430.
364. Paul G., Li J.Y., Brundin P. 2002. Stem cells: hype or hope? Drug. Discov. Today 7: 295302.
365. Paulson C.R., Skinner D.M. 1991. Effects of 20-hydroxyecdysone on protein synthesis in tissue of the land crab Gecarcinus lateralis. J. Exp. Zool. 257: 70-79.
366. Peng J., Dennis J.E., Rodriguez-Boulan E., Fischman D.A. 1990. Polarized release of enveloped viruses in the embryonic chick heart: demonstration of epithelial polarity in the presumptive myocardium. Dev. Biol. 141: 164-172.
367. Perez-Pomares J.M., Macias D., Garcia-Garrido L., Munoz-Chapuli R. 1998. The origin of the subepicardial mesenchyme in the avian embryo: an immunohistochemical and quail-chick chimera study. Dev. Biol. 200: 57-68.
368. Perry R.L.S., Rudnicki M.A. 2000. Molecular mechanisms regulating myogenic determination and differentiation. Fronties in Bioscience 5: d750-767.
369. Pertseva M. 1991. The evolution of hormonal signalling systems. Comp. Biochem. Physiol. A 100: 775-787.
370. Peterson K.J., Eernisse D.J. 2001. Animal phylogeny and the ancestry of bilaterians: inferences from morphology and 18S rDNA gene sequences. Evol. Dev. 3: 170-205.
371. Peterson K.J., Irvine S.Q., Cameron R.A., Davidson E.H. 2000a. Quantitative assessment of Hox complex expression in the indirect development of the polychaete annelid Chaetopterus sp. Proc. Natl. Acad. Sei. U.S.A. 97: 4430-4433.
372. Peterson K.J., Cameron R.A., Davidson E.H. 2000b. Bilaterian origins: significance of new experimental observations. Dev. Biol. 219: 1-17.
373. Pfitzer P. 1971a. Nuclear DNA content of human myocardial cells. Curr. Top. Pathol. 54: 125-168.
374. Pfitzer P. 1971b. Der DNS-Gehalt der Zellkerne im Herzmuskel des Truthahns. Virchows Arch. B 8: 175-178.
375. Pfitzer P. 1972. Polyploide Zellkerne im Herzmuskel von Affen. Virchows Arch. B 10: 268-274.
376. Pinney D.F., Pearson-White S.H., Konieczny S.F., Latham K.E., Emerson C.P.Jr. 1988. Myogenic lineage determination and differentiation: evidence for a regulatory gene pathway. Cell 53: 781-793.
377. Poolman R.A., Brooks G. 1998. Expressions and activities of cell cycle regulatory molecules during the transition from myocyte hyperplasia to hypertrophy. J. Mol. Cell. Cardiol. 30:2121-2135.
378. Porchet M., Gaillet N., Sauber F., Charlet M., Hoffmann J.A. 1984. Ecdysteroids in annelids. In: Biosynthesis, Metabolism and Mode of Action of invertebrate Hormones. Pp. 346348. Eds. J. Hoffman, M. Porchet. Springer-Verlag. Berlin.
379. Poulos J.E., Gower W.R.Jr. Friedl F.E., Vesely D.L. 1995. Atrial natriuretic peptide gene expression within invertebrate hearts. Gen. Comp. Endocrinol. 100: 61-68.
380. Powell D.W., Mifflin R.C., Valentich J.D., Crowe S.E., Saada J.I., West A.B. 1999. Myofibroblasts. I. Paracrine cells important in health and disease. AJP-Cell Physiol. 277: Cl-C19.
381. Przybylski R.J. 1971. Occurence of centrioles during skeletal and cardiac myogenesis. J. Cell Biol. 49: 214-221.
382. Quinn L.S., Holtzer H., Nameroff M. 1985. Generation of chick skeletal muscle cells in groups of 16 from stem cells. Nature 313: 692-694.
383. Rähr H. 1981a. The ultrastructure of the blood vessels of Branchiostoma lanceolatum (Pallas) (Cephalochordata). I. Relations between blood vessels, epithelia, and "connective tissue". Zoomorphology 97: 53-74.
384. Rähr H. 1981b. The ultrastructure of the blood vessels of Branchiostoma lanceolatum (Pallas) (Cephalochordata). II. Blood vessels of the caudal region. Zoomorphology 97: 297-308.
385. Randall D.J., Davie P.S. 1980. The hearts of urochordates and cephalochordates. In: Hearts and Heart-like Organs. Vol. 1. Pp. 41-59. Ed. G.H. Bourne. Acad. Press. New York.
386. Ranganayakulu G., Elliott D.A., Harvey R.P., Olson E.N. 1998. Divergent roles for NK-2 class homeobox genes in cardiogenesis in flies and mice. Development 125: 3037-3048.
387. Rao K.R., Fingerman S.W., Fingerman M. 1973. Effects of exogenous ecdysones on the molt cycle of fourth and fifth stage Amarican lobster, Homarus americanus. Comp. Biochem. Physiol. 44A: 1105-1120.
388. Rapuano M., Ross A.F., Prives J. 1989. Opposing effect of calcium entry and phorbol esters on fusion of chick muscle cells. Dev. Biol. 134: 271-278.
389. Redman R.S. 1994. Myoepithelium of salivary glands. Microsc. Res. Tech. 27: 25-45.
390. Reed C.G., Cloney R.A. 1977. Brachiopod tentacles: Ultrastructure and functional significance of the connective tissue and myoepithelial cells in Terebratalia. Cell Tiss. Res. 185: 17-42.
391. Rees H.H., Mercer J.G. 1986. Occurence and fate of parasitic helminth ecdysteroids. In: Advances in invertebrate Reproduction. Vol. 4. Pp. 173-186. Eds. M. Porchet, J.-C. Andries, A. Dhainaut. Elsevier. Amsterdam.
392. Reinecke M., Nehls M., Forssmann W.G. 1985. Phylogenetic aspects of cardiac hormones as revealed by immunocytochemistry, electronmicroscopy, and bioessay. Peptides 6, Suppl. 3: 321-331.
393. Reincke H., Poppa V., Murry C.E. 2002. Skeletal muscle stem cells do not transdifferentiate into cardiomyocytes after cardiac grafting. J. Mol. Cell. Cardiol. 34: 241-249.
394. Reiss K., Cheng W., Giorando A., De Luca A., Li B., Kajstura J., Anversa P. 1996. Myocardial infarction is coupled with activation of cyclins and cyclin-dependent kinases in myocytes. Exp. Cell. Res. 225: 44-54.
395. Rhodes S.J., Konieczny S.F. 1989. Identification of MRF4: a new member of the muscle regulatory factor gene family. Genes Dev. 3 (12B): 2050-2061.
396. Rieger R.M., Lombardi J. 1987. Ultrastructure of coelomic lining in echinoderm podia: significance for concepts in the evolution of muscle and peritoneal cells. Zoomorphology 107: 191-208.
397. Roberts P., McGeacgie J.K., Grounds M.D., Smith E. 1989. Initiation and uration of precursor cell replication in transplants of intact skeletal muscles: an autoradiographic study in mice. Anat. Rec. 224: 1-6.
398. Roldan C., Pardos F., Benito J., Aguirre A 1989. The musculature of the lophophore of Phoronis australis (abstract). Cienc. Biol. Mol. Cell. Biol. 14: 151.
399. Romer F. 1979. Ecdysteroids in snails. Naturwissenschaften 66: 471-472.
400. Rosenquist G.C. 1966. A radioautographic study of labeled grafts in the chick blastoderm. Development of primitive-streak stages to stage 12. Carnegie Inst. Wash. Publ. 625. Contrib. to Embryol. 38: 111-121.
401. Ross R., Klebanoff S.J. 1971. The smooth muscle cell. I. In vitro synthesis of connective tissue proteins. J. Cell Biol. 50: 159-171.
402. Roth S.M., Martel G.F., Ivey F.M., Lemmer J.T., Metter E.J., Hurley B.F., Rogers M.A. 2000. Skeletal muscle satellite cell population in healthy young and older men and women. Anat. Rec. 260: 351-358.
403. Royuella M., Fraile B., Garcia-Anchuelo R., Paniagua R. 1995. Ultrastructurally different muscle cell types in Eisenia foetida (Annelida, Oligochaeta). J. Morphol. 224: 87-96.
404. Royuella M., Fraile B., Paniagua R. 1997b. Immunocytochemical electron microscopic study and Western blot analysis of several muscle cell types. Eur. J. Cell. Biol. 73: 276-280.
405. Ruiz G.C., Pisano A., Paz D.A. 1995. Differentiation of myoendocrine cardiac cells from presumptive heart mesoderm explants of Bufo arenarum. Int. J. Dev. Biol. 39: 1033-1039.
406. Rumyantsev P.P. 1966. Autoradiographic study on the synthesis of DNA, RNA and protein in normal cardiac muscle cells and those changed by experimental injury. Folia Histochem. Cytochem. 4: 397-424.
407. Rumyantsev P.P. 1991. Growth and Hyperplasia of Cardiac Muscle Cells. Ed. B.M. Carlson. Harwood Acad. Publ. Chur, Switzerland.
408. Rumyantsev P.P., Krylova M.I. 1990. Ultrastructure of myofibers and cells synthesizing DNA in the developing and regenerating lymph-heart muscle. Int. Rev. Cytol. 120: 1-52.
409. Rumyantsev P.P., Erokhina I.L., Antipanova E.M., Martynova M.G. 1990. DNA and sex chromatin content in nuclei of conductive system and working myocytes of normal and hypertrophied human heart. Acta Histochem. Suppl. 39: 225-237.
410. Ruppert E.E., Carle K.J. 1983. Morphology of metazoan circulatory system. Zoomorphology 103: 193-208.
411. Rutherford J.G. 1972. The structure of the ventricle of Elliptio complanatus, a freshwater Lamellibranch. J. Morphol. 136: 421-432.
412. Ryu H„ Cho K.W., Kim S.H., Oh S.H., Hwang Y.H., Lee G.Y. 1992. Frog lymph heart syntheses and stores immunoreactive atrial natriuretic peptide. Gen. Comp. Endocrinol. 87: 171177.
413. Samaha F.F., Ip H.S., Morrisey E.E., Seltzer J., Tang Z., Solway J., Parmacek M.S. 1996. Developmental pattern of expression and genomic organization of the calponin-hl gene. A contractile smooth muscle cell marker. J. Biol. Chem. 271: 395-403.
414. Sanger J.W. 1979. Cardiac fine structure in selected arthropods and molluscs. Amer. Zool. 19: 9-27.
415. Sanger J., McCann F. 1968. Ultrastructure of the myocardium of the moth Hyalophora cecropia. J. Insect Physiol. 14: 1105-1 111.
416. Santini M.T., Indovina P.L., Hausman R.E. 1988. Prostaglandin dependence of membrane order changes during myogenesis in vitro. Biochim. Byophys. Acta: Biomembranes; 938 (Ml 56): 489-492.
417. Sasaki R., Morishita T., Yamagata S. 1970. Autoradiographic studies on heart muscle cells in normal rats. Tohuku J. Exp. Med. 100: 1-13.
418. Satoh N., Deno T., Nishida H., Nishikata T., Makabe K.W. 1990. Cellular and molecular mechanisms of muscle cell differentiation in ascidian embryos. Int. Rev. Cytol. 122: 221-258.
419. Scapolo P. A., Peirone S.M., Filogamo G., Veggetti A. 1988. Histochemical. immunohistochemical, and ultrastructural observation of the iris muscle of Gallus gallus. Anat. Rec. 221: 687-699.
420. Schiaffino S., Burighel P., Nunzi M.G. 1974. Involution of the caudal musculature during metemorphosis in the ascidian, Botryllus schlosseri. Cell Tiss. Res. 153: 293-305.
421. Schiaffino S., Nunzi M.G., Burighel P. 1976. T system in ascidian muscle: organizatior of the sarcotubular system in the caudal muscle cells of Botryllus schlosseri tadpole larvae Tissue Cell 8: 101-110.
422. Schiaffino S., Bormioli S.P., Aloisi M. 1979. Fiber branching and formation of nev fibers during compensatory muscle hypertrophy. In: Muscle Regeneration. Pp. 177-188. Ed. A Mauro. Raven Press. New York.
423. Schipp R. 1987. General morphological and functional characteristics of the Cephalopod circulatory system. An introduction. Experientia 43: 474-477.
424. Schipp R., Schäfer A. 1969. Vergleichende elektronmikroskopische Untersuchungen an der zentralen Herzorganen von Cephalopoden {Sepia officinalis). Die Feinstructur des Herzens. Z. Zellforsch. 98: 576-598.
425. Schmalbruch H., Hellhammer U. 1976. The number of satellite cells in normal human muscle. Anat. Ree. 185: 279-288.
426. Schmid V., Alder H., Plickert G., Weber C. 1988. Transdifferentiation from striated muscle of medusae in vitro. Cell Differ. Dev. 25 (Suppl): 137-146.
427. Schultheiss T.M., Xydas S., Lassar A.B. 1995. Induction of avian cardiac myogenesis by anterior endoderm. Development 121: 4203-4214.
428. Schultheiss T.M., Burch J.B., Lassar A.B. 1997. A role for bone morphogenetic proteins in the induction of cardiac myogenesis. Genes Dev. 11: 451-462.
429. Schultz E., McCormick K.M. 1994. Skeletal muscle satellite cells. Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 123: 213-257.
430. Schultz E., Jaryszak D.L., Gibson M.C., Albright D.J. 1986. Absence of exogenous satellite cell contribution to regeneration of frozen skeletal muscle. J. Muscle Res. Cell Motil. 7: 361-367.
431. Schweitz H., Vigne P., Moinier D., Freiin C., Lazdunski M. 1992. A new member of the natriuretic peptide family is present in the venom of the green mamba (Dendroaspis angusticeps). J. Biol. Chem. 267: 13928-13932.
432. Seale P., Rudnicki M.A. 2000. A new look at the origin, function, and "stem-cell" status of muscle satellite cells. Dev. Biol. 218: 115-124.
433. Seale P., Sabourin L.A., Girgis-Gabardo A., Mansouri A., Gruss P., Rudnicki M.A. 2000. Pax7 is required for the specification of myogenic satellite cells. Cell 102: 777-786.
434. Searcy R.D., Yutzey K.E. 1998. Analysis of Hox gene expression during early avian heart development. Dev. Dyn. 213: 82-91.
435. Seed J., Hauschka S.D. 1988. Clonal analysis of vertebrate myogenesis. VIII. Fibroblast growth factor (FGF)-dependent and FGF-independent muscle colony types during chick wing development. Dev. Biol. 128: 40-49.
436. Seidman C.E., Wong D.W., Jarcho J.A., Bloch K.D., Seidman J.G. 1988. Cis-acting sequences that modulate atrial natriuretic factor gene expression. Proc. Natl. Acad. Sei. U.S.A. 85: 4104-4108.
437. Sellheyer K., Spitznas M. 1988. Differentiation of the ciliary muscle in the human embryo and fetus. Graefes Arch. Clin. Exp. Ophtalmol. 226: 281-287.
438. Senni M.I., Castrignano F., Poiana G., Cossu G., Scarsella G. 1987. Expression of adult fast pattern of acetylcholinesterase molecular forms by mouse satellite cells in culture. Differentiation 36: 194-198.
439. Severtsov A.N. 1931. Morphologische Gesetzmässigkeiten der Evolution. Ed. G. Fischer.1. Jena.
440. Shinohara Y., Konishi K. 1982. Ultrastructure of the body-wall muscle of the ascidian Halocynthia roretzi: smooth muscle cell with multiple nuclei. J. Exp. Zool. 221: 137-142.
441. Sieber-Blum M., Ito K. 1995. In vitro clonal analysis of cardiac outflow tract mesenchyme. Ann. N.Y. Acad. Sci. 752: 92-100.
442. Sisto Daneo L., Corvetti G., Filogamo G. 1988. Origin of the iris sphincter muscle in chick embryo. Biol. Struct. Morphol. 1 (2): 89-92.
443. Slack J.M.W., Holland P.W.H., Graham C.F. 1993. The zootype and the phylotypic stage. Nature 361: 490-492.
444. Slama K., Koudela K., Tenora J., Mathova A. 1996. Insect hormones in vertebrates: anabolic effects of 20-hydroxyecdysone in Japanese quail. Experientia 52: 702-706.
445. Sminia T., Borghart-Reinders E., Van de Linde A.W. 1974. Encapsulation of foreign materials experimentally introduced into the freshwater snail Lymnea stagnalis. Cell Tiss. Res. 153: 307-326.
446. Smith P.R. 1986. Development of blood system in Sabellaria cementarium (Annelida, Polychaeta). An ultrastructural investigation. Zoomorphology 106: 67-74.
447. Smith D.S., Anderson M.E. 1972. The desposition of membran system in cardiac muscle of lobster, Homarus americanus. Tissue Cell 4: 629-645.
448. Snow M.H. 1977. Myogenic cell formation in regenerating rat skeletal muscle injured by mincing. II. An autoradiographic study. Anat. Ree. 188: 201-218.
449. Snow M.H. 1979. Origin of regenerating myoblasts in mammalian skeletal muscle. In: Muscle Regeneration. Pp. 91-100. Ed. A. Mauro. Raven Press. New York.
450. Snow M.H. 1983. A quantitative ultrastructure analysis of satellite cells in denervated fast and slow muscle of the mouse. Anat. Ree. 207: 593-604.
451. Snow M.H. 1990. Satellite cell response in rat soleus muscle undergoing hypertrophy due to surgical ablation of synergists. Anat. Ree. 227: 437-446.
452. Soonpaa M.H., Field L.J. 1997. Assessment of cardiomyocyte DNA synthesis in normal and injured adult mouse hearts. Am. J. Physiol. 272 (1 Pt 2): H220-H226.
453. Soonpaa M.H., Koh G.Y,m Pajak L., Jing S., Wang H., Franklin M.T., Kim K.K., Field L.J. 1997. Cyclin D1 overexpression promotes cardiomypcyte DNA synthesis and multinucleation in transgenic mice. J. Clin. Invest. 99: 2644-2654.
454. Spies R.B. 1973. The blood system of the flabelligerid polychaete Frabelliderma commensalis (Moore). J. Morphol. 139: 465-490.
455. Spieth J., Shim Y.H., Lea K., Conran R., Blumenthal T. 1991. elt-1, an embryonically expressed Caenorhabditis elegans gene homologous to the GATA transcription factor family. Mol. Cell Biol. 11: 4651-4659.
456. Spindler K.-D., Dinan L., Londershausen B. 1984. On the mode of action of ecdysteroids in Crustaceans. In: Biosynthesis, Matabolism and Mode of Action of Invertebrate Hormones. Pp. 255-264. Eds J. Hoffman, M. Porchet.
457. Stein R.J., Richter W.R., Zussmann R.A., Brynjolfsson G. 1966. Ultrastructural characterization of Daphnia heart muscle. J. Cell Biol. 29: 168-170.
458. Steinier D.Y.R., Lee R.K., Fshman M.C. 1993. Cardiovascular development in the zebrafish: I. Myocardial fate map and heart tube formation. Development 119: 31-40.
459. Steinsland A.J. 1982. Heart ultrastructure in Daphnia pulex de Geer (Crustacea, Branchiopoda, Cladocera). J. Crustacean Biol. 2: 54-58.
460. Stevenson J.R., Tschantz J.A. 1973. Acceleration by ecdysterone of premolt substages in the crayfish. Nature 242: 133-134.
461. Stevenson J.R., Guckert R.H., Cohen J.D. 1968. Lack of correlation of some proecdysal growth and developmental processes in the crayfish. Biol. Bull. 134: 160-175.
462. Stevenson J.D., AmstrongP.W., Chang E.S., O'Connor J.D. 1979. Ecdysone titers during the molt cycle of the crayfish Orconectes sanborni. Gen. Comp. Endocrinol. 39: 20-25.
463. Stingo A.J., Clavell A.L., Heublein D.M., Wei C.M., Pittelkow M.R., Burnett J.C.Jr. 1992. Presence of C-type natriuretic peptide in cultured human endothelial cells and plasma. Am. J. Physiol. 263 (4 Pt 2): H1318-H1321.
464. Stringer B.M., Rowson J., Greer W., Wynford-Thomas D., Williams E.D. 1990. Effect of sustained serum prolactin elevation on breast epithelial and myoepithelial cell proliferation. Cell Tiss. Kinet. 23: 17-30.
465. Stockdale F.E., Holtzer H. 1961. DNA synthesis and myogenesis. Exp. Cell. Res. 24: 508-520.
466. Storch V., Welsch U. 1976. Electronenmikroskopische und enzymhistochemische Untersuchungen über Lophophor und Tentakeln von Lingula unguis L. (Brachiopoda). Zool. Jb. Anat. 96: 225-237.
467. Sudoh T., Minamino N., Kangawa K., Matsuno H. 1990. C-type natriuretic peptide (CNP): a new member of natriuretic peptide family identified in porcine brain. Biochem. Biophys. Res. Commun. 168: 863-870.
468. Suzuki H.R., Solursh M., Baldwin H.S. 1995. Relationship between fibronectin expression during gastrulation and heart formation in the rat embryo. Dev. Dyn. 204: 259-277.
469. Tadkowski T.M., McCann F.V. 1980. Ultrastructure and electrical activity in developing heart cells (insect). Dev. Biol. 74: 387-400.
470. Takahama H., Mizuhira V., Sasaki F., Watanabe K. 1984. Satellite cells in the tail muscles of the urodelan larvae during development. Cell Tiss. Res. 236: 431-438.
471. Takano M., Sasayama Y., Takei Y. 1994. Molecular evolution of shark C-type natriuretic peptides. Zool. Sci. 11: 451-454.
472. Takei Y. 2000. Structural and functional evolution of the natriuretic peptide system in vertebrates. Int. Rev. Cytol. 194: 1-66.
473. Takei Y., Ueki M., Nishizawa T. 1994. Eel ventricular natriuretic peptide: cDNA cloning and mRNA expression. J. Mol. Endocrinol. 13: 339-345.
474. Talbot W.S., Swyryd E.A., Hogness D.S. 1993. Drosophila tissues with different metamorphic responses to ecdysone express different ecdysone receptor isoforms. Cell 73: 13231337.
475. Tarn P.P., Parameswaran M., Kinder M., Weinberger R.P. 1997. The allocation of epiblast cells to the embryonic heart and other mesodermal lineages: The role of ingression and tissue movement during gastrulation. Development 124: 1631-1642.
476. Tamura T., Smelser G.K. 1973. Development of the sphincter and dilatator muscle of the iris. Arch. Ophth. 89: 332-339.
477. Tanaka M., Kasahara H., Bartunkova S., Schinke M., Komuro I., Inagaki H., Lee Y., Lyons G.E., Izuma S. 1998. Vertebrate homologs of tinman and bagpipe: roles of the homeobox genes in cardiovascular development. Dev. Genet. 22: 239-249.
478. Tanaka E.M., Drechsel D.N., Brockes J.P. 1999. Thrombin regulates S-phase re-entry by cultured newt myotubes. Curr. Biol. 9: 792-799.
479. Tatsumi R., Sheehan S.M., Iwasaki H., Hattori A., Allen R.E. 2001. Mechanical stretch induces activation of skeletal muscle satellite cells in vitro. Exp. Cell. Res. 267: 107-114.
480. Teracado K., Obinata T. 1987. Structure of multinucleated smooth muscle cells of the ascidian Halocynthia roretzi. Cell Tiss. Res. 247: 85-94.
481. Tjenneland A., Midttun B., 0kland S., Liebich H.O. 1980. Heart ultrastructure in Lepidurus arcticus Pallas (Crustacea, Branchiopoda, Notostraca). Cell Tiss. Res. 212: 203-212.
482. Tj0nneland A., 0kland S., Midttun B. 1985. Myocardial ultrastructure in five species of scorpions (Chelicerata). Zool. Anz. 214: 7-17.
483. Tj0nneland A., 0kland S., Nylund A. 1987. Evolutionary aspects of the arthropod heart. Zool. Scr. 16: 167-175.
484. Tomanek R.J., Butters C.A., Zimmerman M.B. 1993. Initiation of cardiac hypertrophy in response to thyroxine is not limited by age. Am. J. Physiol. 264 (4 Pt. 2): H1041-HI047.
485. Toop T., Grozdanovski D., Potter I.C. 1998. Natriuretic peptide binding sites in the gills of the pouched lamprey Geotria australis. J. Exp. Biol. 201 (Pt. 11): 1799-1808.
486. Toselli P.A., Pepe F.A. 1968. The fine structure of the ventral intersegmental abdominal muscles of the insect Rhodnius prolixus during the molting cycle. II. Muscle changes in preparation for molting. J. Cell Biol. 37: 462-481.
487. Towbin H., Staehelin T., Gordon J. 1979. Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure/and some applications. Proc. Natl.Acad. Sci. U.S.A. 76: 4350-4354.
488. Traub M., Gellissen G., Spindler K.D. 1987. 20(OH)ecdysone-induced transition from intermolt to premolt protein biosynthesis patterns in the hypodermis of the crayfish, Astacus leptodactylus, in vitro. Gen. Comp. Endocrinol. 56: 469-477.
489. Truman J.W., Reiss S.E. 1995. Neuromuscular metamorphosis in the moth Manduca sexta: hormonal regulation of synapses loss and remodeling. J. Neurosci. 15 (7 Pt. 1): 48154826.
490. Tsai R.Y., McKay R.D. 2000. Cell contact regulates fate choice by cortical stem cells. J. Neurosci. 20: 3725-3735.
491. Turbeville J.M., Ruppert E.E. 1985. Comparative ultrastructure and the evolution of nemertines. Amer. Zool. 25: 53-71.
492. Uhrik B., Rydlovâ K., Zacharovâ D. 1989. The role of haemocytes during degeneration and regeneration of crayfish muscle fibers. Cell Tiss. Res. 255: 443-449.
493. Van Gansen P. 1962. Plexus sanguin du lombricien Eisenia foetida: étude au microscope électronique de ses constituants conjonctif et musculaire. J. Microsc. 1: 363-376.
494. Velloso C.P., Simon A., Brockes J.P. 2001. Mammalian postmitotic nuclei reenter the cell cycle after serum stimulation in newt/mouse hybrid myotubes. Curr. Biol. 11: 855-858.
495. Venkatasubramanian K., Solarch M. 1984. Chemotactic behavior of myoblasts. Dev. Biol. 104: 428-433.
496. Veraksa A., Del Campo M., McGinnis W. 2000. Developmental pattering genes and their conserved functions: from model organisms to humans. Mol. Genet. Metabol. 69: 85-100.
497. Vesely D.L., Giordano A.T. 1992a. Atrial natriuretic factor-like peptide and its prohormone within single cell organisms. Peptides 13: 177-182.
498. Vesely D.L., Giordano A.T. 1992b. The most primitive heart in the animal kingdom contains the atrial natriuretic hormonal system. Comp. Biochem. Physiol. C 101: 325-329.
499. Vesely M.D., Vesely D.L. 1999. Environmental upregulation of atrial natriuretic peptide gene in the living fossil, Limuluspolyphemus. Biochem. Biophys. Res. Commun. 254: 751-756.
500. Vesely D.L., Gower W.R Jr. Giordano A.T. 1993. Atrial natriuretic peptides are present throughout the plant kingdom and enhance solute flow in plants. Amer. J. Physiol. 265 (3 Pt 1): E465-E477.
501. Vesely M.D., Gower W.R.Jr., Perez-Lamboy G., Overton R.M., Graddy L., Vesely D.L. 2001. Evidence for an atrial natriuretic peptide-like gene in plants. Exp. Biol. Med. 226: 61-65.
502. Viragh Sz., Challice C.E. 1973. Origin and differentiation of cardiac muscle cells in the mouse. J. Ultrastruct. Res. 42: 1-24.
503. Volpe P., Biral D., Pizzo P., Salviati G., Margreth A. 1993. Ontogenesis of chick iris intrinsic muscles: evidence for a smooth-to-striated muscle transition. Dev. Biol. 159: 441-449.
504. Von der Mark K., Ocalan M. 1989. Antagonistic effects of laminin and fibronectin on the expression of the myogenic phenotype. Differentiation 40: 150-157.
505. Vranckx R., Durliat M. 1978. Comparison of the gradient of setal development of uropods and of scaphognathites in Astacus leplodactylus. Biol. Bull. 155: 627-639.
506. Wakayama Y., Schotland D.L. 1979. Muscle satellite cell population in Duchenne dystrophy. In: Muscle Regeneration. Pp. 121-129. Ed. A. Mauro. Raven Press. New York.
507. Walker S.M., Schrodt G.R., Currier G.J. 1975. Relationship of the sarcoplasmic reticulum to fibril and triadic junction development in skeletal muscle fibers of fetal monkeys and humans. J. Morphol. 146: 97-127.
508. Warejcka D.J., Harvey R., Taylor B.J., Young H.E., Lucas P.A. 1996. A population o1 cells isolated from rat heart capable of differentiating into several mesodermal phenotypes. J Surg. Res. 62: 233-242.
509. Warner A.C., Stevenson J.R. 1972. The influence of ecdysones and eyestalk removal or the molt cycle of the crayfish Orconecles obscurus. Gen. Comp. Endocrinol. 18: 454.
510. Watkins S.C., Cullen M.J. 1988. A quantitative study of myonuclear and satellite eel nuclear size in Duchenne's muscular dystrophy, polymyosits and normal human skeletal muscle Anat. Rec. 222: 6-11.
511. Watt D.J., Lambert K., Morgan J.E., Partridge T.A., Sloper J.C. 1982. Incorporation o donor muscle precursor cells into an area of muscle regeneration in the host muscle. J. Neuro Sci. 57:319-331.
512. Watt D.J., Morgan J.E., Cliffort M.A., Partridge T.A. 1987. The movement of muscle precursor cells between adjacent regenerating muscles in the mouse. Anat. Embryol. 175: 527536.
513. Watts J.A., Koch R.A., Greenberg M.J., Pierce S.K. 1981. Ultrastructure of the heart of the marine mussel, Geukensia demissa. J. Morphol. 170: 301-319.
514. Webb H.M. 1977. Eyestalk regulation of molt and vitellogenesis in Uca pugilator. Biol. Bull. 153: 630-642.
515. Wei Q., Paterson B.M. 2001. Regulation of MyoD function in the dividing myoblast. FEBS Letters 490: 171-178.
516. Weinstein R.B., Hay E.D. 1970. Deoxyribonucleic acid synthesis and mitosis in differentiated cardiac muscle cells of chick embryos. J. Cell Biol. 47: 310-316.
517. Weiss J., Goldman Y., Morad M. 1976. Electromechanical properties of the single cell-layered heart of the tunicate Boltenia ovifera (sea potato). J. Gen. Physiol. 68: 503-518.
518. Weissman I.L. 2000. Stem cells: units of development, units of regeneration, and units in evolution. Cell 100: 157-168.
519. Wells M.J., Smith P.J.S. 1987. The performance of the octopus circulatory system: A triumph of engineering over design. Experientia 43: 487-499.
520. Wentworth B., Donoghue M.J., Engert J., Berglund E., Rosenthal N. 1991. Paired MyoD binding sites regulate myosin light chain gene expression. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88: 1242-1246.
521. White N.K., Bonner P.H., Nelson D.R., Hauschka S.D. 1975. Clonal analysis of vertebrate myogenesis. IV. Medium-dependent classification of colony-forming cells. Dev. Biol. 44: 346-361.
522. White P., Burton K.A., Fowden A.L., Dauncey M.J. 2001. Developmental expression analysis of thyroid hormone receptor isoforms reveals new insights into their essential functions in cardiac and skeletal muscles. FASEB J. 15: 1367-1376.
523. Whitehead D.L., Sellheyer K. 1982. The identification of ecdysterone (20-hydroxyecdysone) in 3 species of molluscs (Gastropoda: Pulmonata). Experientia 38: 12491251.
524. Wiens D., Sullins M., Spooner B.S. 1984. Precardiac mesoderm differentiation in vitro. Actin-isotype synthetic transitions, myofibrillogenesis, initiation of heartbeat, and the possible involvement of collagen. Differentiation 28: 62-72.
525. Wilkens J.L. 1987. Cardiac and circulatory control in decapod Crustacea with comparisons to molluscs. Experientia 43: 990-994.
526. Willing A., Keller R. 1973. Molting hormone content, cuticle growth and gastrolith growth in the molt cycle of the crayfish Orconectes limosus. J. Comp. Physiol. 86: 377-388.
527. Wokke J.H.J., Van den Oord C.J.M., Leppink G.J., Jennekens F.G.I. 1989. Perisynaptic satellite cells in human external intercostal muscle: a quantitative and qualitative study. Anat. Rec. 233: 174-180.
528. Wright W.E., Sassoon D.A., Lin V.K. 1989. Myogenin, a factor regulating myogenesis, has a domain homologous to MyoD. Cell 56: 607-617.
529. Yablonka-Reuveni Z., Quinn L.S., Nameroff M. 1987. Isolation and clonal analysis of satellite cells from chicken pectoralis muscle. Dev. Biol. 119: 252-259.
530. Yamashita T., Sohal G.S. 1986. Development of smooth and skeletal muscle cells in the iris of the domestic duck, chick and quail. Cell Tiss. Res. 244: 121-131.
531. Yamauchi A. 1980. Fine structure of the fish heart. In: Heart and Heart-like Organs. Vol. 1. Pp. 119-148. Ed. G.H. Bourne. Acad. Press. New York.
532. Yatskievych T.A., Ladd A.N., Antin P.B. 1997. Induction of cardiac myogenesis in avian pregastrula epiblast: the role of the hypoblast and activin. Development 124: 2561-2570.
533. Yokota R., Burnstock G., Jones R., Brown M.D. 1978. An ultrastructural study of regeneration of minced smooth muscle in the vas deferens of the guinea-pig. Cell Tiss. Res. 190: 481-493.
534. Yokota R., Yamauchi A. 1985. Occurrence of cardiac muscle in the hepatic portal vein wall of the mouse and rat. Anat. Rec. 212: 23-32.
535. Yoon P.D., Kao R.L., Magovern G.J. 1995. Myocardial regeneration. Transplanting satellite cells into damaged myocardium. Tex. Heart Inst. J. 22: 119-125.
536. Young H.M. 1999. Embryological origin of interstitial cells of Cajal. Microsc. Res. Tech. 47: 303-308.
537. Yu S.T., Yu C.C., Wong H.W, Yuan H.T. 1991. Effect of endothelin-1 on the vascular smooth muscle cell cycle. J. Cardiovasc. Pharmacol. 17, Suppl. 7: S239-S241.
538. Yunge L., Benchimol S., Cantin M. 1980. Ultrastructural cytochemistry of atrial muscle cells. VIII. Radioautographic study of synthesis and migration of proteins. Cell Tiss. Res. 207: 111.
539. Zalin R. 1979. The cell cycle myoblast differentiation as a developmental signal. Dev. Biol. 71:274-288.
540. Zavizion B., van Duffelen M., Schaeffer W., Politis I. 1996. Establishment and characterization of a bovine mammary myoepithelial cell line. In vitro Cell Dev. Biol. Anim. 32: 149-158.
541. Zhinkin L.N., Andreeva L.F. 1963. DNA synthesis and nuclear reproduction during embryonic development and regeneration of muscle tissue. J. Embryol. Exp. Morphol. 11: 353367.
542. Zs.-Nagy I., S.-Rozsa K. 1970. The ultrastructure and histochemical properties of the granulated cells in the heart of the snail Lymnaea stagnalis L. Acta Biol. Acad. Sci. Hung. 21: 121-133.1918. ИЛЛЮСТРАЦИИ
543. Рис. 1. Схема организации сердца и соединительно-тканной оболочки кишки брахиоподы МупсЬопеПа рвШасеа
544. Э, эпителиальные клетки; М, гладкомышечные клетки; ВКМ, внеклеточный матрикс; К, кишечный эпителий. Масштабная линейка 2 мкм.
545. Рис. 4. Ультраструктура клеток сердца брахиоподы ЯЬупсЬопеПа рэ^иасеа.
546. Рис. 6. Ультраструктура клеток внешнего (А, Б) и внутреннего (В, Г) слоев сердца Arenicola marina.
547. ВМК, внеклеточный матрикс; МЭ, миоэпителиальные клетки; Э, эпителиальные клетки; ПС, полость сердца; ПТ, полость тела; Стрелка указывает на меченые эпителиальные клетки, головки стрелок на меченые эндотелиальные клетки. Масштабная линейка - 2 мкм.
548. Рис. 7. Ультраструктура клеток внутреннего слоя сердца Arenicola marina.
549. Масштабная линейка -1 мкм (А, Б-вставка), 2 мкм (Б, В, Г).
550. Crenomytilus grayanus (Bivaivia)1. Helix aspersa
551. Achatina fúlica (Gastropoda)йКОСОИСЧЕРЧЕННАЯ МЫШЦА Rossia macrosoma (Cephalopoda)
552. Рис. 9. Схема, представляющая использованных в экспериментах моллюсков и организацию сократительного аппарата в кардиомиоцитах моллюсков разных классов (микрофотографии).
553. Рис. 10. Микрофотографии полутонких срезов предсердия (А) и желудочка (Б) виноградной улитки.
554. М, миокард; ПС, полость сердца; ПТ, полость тела. Стрелки отмечают эпикард.
555. Рис. 11. Ультраструктура клеток сердца ахатины. А К зрелому кардиомиоциту (М) со стороны полости сердца (ПС) примыкают эндотелиальная клетка (ЭТ) и нервное окончание, состоящее из нервного волокна (Н) и глиоинтерстициальной клетки (Г).
556. Б Интеркалярный диск (стрелка), соединяющийкардиомиоциты.1. Масштабная линейка 1 мкм.
557. Рис. 13. Недифференцированные клетки в миокарде мидии (А) и каракатицы (Б). М, кардиомиоциты. Масштабная линейка 2 мкм.
558. Рис. 15. ЭМ автографы меченых ЗН-тимидином клеток миокарда ахатины через 2 ч (А) и 14 сут (Б, В) после введения изотопа.
559. А Недифференцированная клетка. Стрелка отмечает центриоль. Б -Слабо-дифференцированный кардиомиоцит. В - Зрелый кардиомиоцит. М, кардиомиоциты; ЭТ, эндотелиальные клетки; Н, нервное окончание. Масштабная линейка - 1 мкм.
560. Левая полоска представляет электрофорез стандартных белков для определения молекулярного веса.
561. Рис. 19. Микрофотография полутонкого среза предсердия виноградной улитки. Фиксация ткани проведена весной. М, миокард; ПС, полость сердца. Стрелки отмечают гранулярные клетки.
562. Рис. 20. Гранулярные клетки (Г) на ранней (А), средней (Б) и поздней (В) стадиях созревания в сердце виноградной улитки.
563. М, кардиомиоциты; Н, нервные окончания. На вставке -мечение хлопьевидного вешества гранулы антителами к натрийуретическому пептиду. Масштабная линейка -1 мкм.1. Л V - - Vе1. К^Ч'^ *Л- *. а** ■ .1. Ч4
564. Рис. 22. Иммуноэлектронная локализация натрийуретического пептида в гранулах (Г) гранулярных клеток предсердия виноградной улитки.
565. Н, нервные окончания; ЭТ, эндотелиальная клетка. Масштабная линейка 1 мкм.
566. Рис. 23. Иммуноэлектронная локализация натрийуретического пептида в гранулах гранулярной (А) и эндотелиальной (Б) клеток сердца ахатины.
567. Г, аппарат Гольджи. Стрелки отмечают меченые гранулы. Масштабная линейка 1 мкм.
568. Рис. 24. Микрофотографии полутонких срезов сердца (А) и трабекул миокарда (Б) краба Сагстиз таепаз. М, миокард; ПС, полость сердца; Э, эпикард. Стрелки отмечают отложения гликогена в саркоплазме.
569. Рис. 25. Ультраструктура мышечных волокон сердца десятиногих раков Сагстш таепаз (А, Б, В) и Аз1аси8 аз1асш (Г). А Миофибрилла в сердечном мышечном волокне. Б - Поперечные трубочки Т-системы на уровне Ъ (Тг) и Н (ТЬ) дисков.
570. В Интеркалярный диск между мышечными волокнами. Стрелка отмечает нексус, головка стрелки - десмосому в составе интеркалярного диска. Г - Нервное окончание (Н), контактирующее смышечным волокном (М). Масштабная линейка 0,2 мкм (А, Б, В), 1 мкм (Г).
571. Рис. 26. Клетки-сателлиты в миокарде Carcinus maenas (А), Cancer pagurus (Б) и Astacus astacus (В.Г). Масштабная линейка 2 мкм.. тщ!.- . ; о ^в А
572. Рис. 28. Выведение ЗН-тимидина из гемолимфы речного рака после однократной инъекции. Процент радиоактивности вычисляли по отношению к радиоактивности первой пробы, взятой сразу после введения изотопа.
573. Рис. 29. ЭМ автографы сердечной мышечной ткани речного рака.
574. А Меченая ЗН-тимидином клетка-сателлит (25 сут после введения изотопа) в миокарде рака, не прошедшего линьку.
575. Б Меченое ЗН-тимидином ядро мышечного волокна (25 суток после введения изотопа) в миокарде рака, прошедшего линьку.
576. В Фрагменты клеточных мембран (стрелки) вокруг меченого ЗН-тимидином ядра мышечного волокна в миокарде рака, прошедшего линьку. Масштабная линейка - 2 мкм.
577. Рис. 31. Схема, показывающая изменение числа меченых ЗН-тимидином клеток-сателлитов в миокарде речного рака на разных стадиях линочного цикла (толстая линия) и под воздействием экзогенного экдистерона (тонкая линия). Объяснения в тексте.
578. Рис. 32.Микрофотография капсулы, образованной клетками крови вокруг синтетической нити, введенной в сердце речного рака.
579. М, миокард. Линия показывает толщину капсулы.
580. НЕДИФФЕРЕНЦИРОВАННАЯ ЛИНИЯ
581. Рис. 33. Строение сердца асцидии Ascidia obliqua.
582. А Общее строение сердца асцидии (из N.Y. Berrill, 1950).
583. Б Микрофотография поперечного среза сердца.
584. В Реконструкция фрагмента сердца.
585. ПМ, полость миокарда; ПП, перикардиальнаяполость.
586. Рис. 34. Ультраструктура перикардиальных клеток асцидии.
587. А Перикардиальный эпителий. Стрелкаотмечает центриоль. Г, аппарат Гольджи.
588. Б Лабиринто-видный контакт междуперикардиальными клетками.
589. В ЭМ автограф меченой ЗН-тимидиномперикардиальной клетки.
590. ПМ, полость миокарда; ПП, перикардиальнаяполость.
591. Масштабная линейка 2 мкм (А), 1 мкм (Б, В)
592. Рис. 35. Ультраструктура клеток миокарда асцидии. А Миоэпителиальная клетка миокарда. Стрелка отмечает расположение двух центриолей и базального тельца реснички. Г, аппарат Гольджи; М, миофиламенты; ПП, перикардиальная полость.
593. Б Миофибриллы в двух соседних миоэпителиальных клетках. ПМ, полость миокарда. В - ЭМ автограф меченой ЗН-тимидином миоэпителиальной клетки. М, миофиламенты. Масштабная линейка - 2 мкм (А, Б), 1 мкм (В).
594. Рис. 37. Содержание кардиомиоцитов с разным количеством ядер в миокарде миноги.1. BRACHIOPODA1. CRUSTACEA1. КАРИОКИНЕЗ1. КАМБИАЛЬНАЯ Л ЗОНА |1. POLYCHAETA1. MOLLUSCA1 «
-
Мартынова, Марина Георгиевна
-
доктора биологических наук
-
Санкт-Петербург, 2002
-
ВАК 03.00.25
- Хронотопография интрамурального распространения возбуждения в сердце позвоночных животных
- Филогенетические отношения основных групп внутри типа Nematoda по результатам анализа структуры гена РНК малой субъединицы рибосомы
- Соматическая полиплоидия в слюнных железах брюхоногих моллюсков
- Структурно-функциональные адаптации сердечно-сосудистой системы к нырянию у млекопитающих
- Закономерности формирования и изменчивость ушек сердца в филогенезе
