Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Микромицеты как потенциальные агенты биоповреждения культурных ценностей и стратегия защиты от них в Государственном Эрмитаже

ВАК РФ 03.00.24, Микология

Автореферат диссертации по теме "Микромицеты как потенциальные агенты биоповреждения культурных ценностей и стратегия защиты от них в Государственном Эрмитаже"

На правах рукописи

Сиио^-—

Смоляницкая Ольга Львовна

МИКРОМИЦЕТЫ КАК ПОТЕНЦИАЛЬНЫЕ АГЕНТЫ БИОПОВРЕЖДЕНИЯ КУЛЬТУРНЫХ ЦЕННОСТЕЙ И СТРАТЕГИЯ ЗАЩИТЫ ОТ НИХ В ГОСУДАРСТВЕННОМ ЭРМИТАЖЕ

03 00 24 - «Микология»

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Санкт-Петербург - 2007

003173141

Работа выполнена в Лаборатории систематики и географии грибов Ботанического института им В Л Комарова РАН и в Лаборатории биологического контроля Государственного Эрмитажа

Научный руководитель

доктор биологических наук Мельник Вадим Александрович

Официальные оппоненты

доктор биологических наук Нгокша Юлия Петровна

кандидат биологических наук, доцент Власов Дмитрий Юрьевич

Ведущая организация

Всероссийский научно-исследовательскии институт защиты растений Российской академии сельскохозяйственных наук

Защита состоится 14 ноября 2007 г. в 14 часов на заседании диссертационного совета Д 002.211 01 при Ботаническом институте им В Л Комарова РАН по адресу 197376, Санкт-Петербург, ул. Профессора Попова, 2, БИН РАН, факс (812) 3460839

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Ботанического института им В.Л. Комарова РАН

Автореферат разослан_октября 2007 г

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат биологических наук

Чаплыгина О. Я.

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Биоповреждения произведений искусств наносят непоправимый ущерб культурному наследию Защита памятников культуры от процессов деструкции, протекающих с участием грибов, является одним из важных направлений исследований в области биоповреждений материалов

Большинство имеющихся к настоящему времени сведений о биоповреждениях произведений искусств касается аварийных ситуаций, различного рода нарушений условий хранения, исследования археологических находок Многие исследования выполнены на отдельных предметах или коллекциях Накоплено множество сведений о негативном воздействии на материалы произведений искусств как микромицетов, так и уничтожающих грибы обработок (Курицына, 1968, Ребрикова, 1999, Florian, 2003, Nugari, Salva-don, 2003, и др)

Микологические обследования крупных музейных зданий вне аварийных ситуаций, включающие анализ микобиоты помещений, вентиляционных систем, экспонатов, до сих пор не проводились. Между тем современный подход к сохранению культурного наследия требует разработки комплекса мер именно профилактического характера, частью которого должен стать микологический контроль

В настоящее время основной концепцией практической и исследовательской работы Лаборатории биологического контроля Государственного Эрмитажа является обеспечение защиты музейных коллекций методами превентивной консервации Исследования в данной области открывают перспективы поиска эффективных мер, направленных на защиту произведений искусств от биоповреждений. В связи с этим изучение количества и видового состава микромицетов в зданиях Государственного Эрмитажа, а также изыскание и внедрение методов защиты, высокоэффективных против агентов биоповреждений, безопасных для экспонатов и людей, представляют особенный интерес Именно поэтому и было запланировано проведение нашей работы

Цели и задачи исследования. Целями данной работы было изучение количества и видового состава микромицетов в помещениях, климатических установках и на предметах Государственного Эрмитажа, а также исследование безопасных и эффективных методов защиты произведений искусства от биоповреждений

Для достижения поставленной цели были определены следующие задачи

- определить видовой состав микромицетов в помещениях, в установках систем поддержания микроклимата и на предметах с признаками биоповреждений,

- выявить наиболее часто встречающиеся, доминирующие и приспособленные к условиям музея виды микромицетов,

- сравнить влияние разных способов обеспечения микроклимата на состояние микобиоты помещений,

- оценить эффективность разных способов биоцидной обработки препаратами, внедряемыми в реставрационную практику

Научная новизна. Впервые проведено комплексное обследование Государственного Эрмитажа - крупнейшего музейного комплекса, микроклимат в котором в целом неблагоприятен для развития микромицетов.

Проведена оценка влияния средств обеспечения микроклимата на за-споренность воздуха в музейных помещениях

Обследованы установки обеспечения микроклимата в музее Проведена сравнительная оценка антигрибных свойств 3 химических соединений при нанесении их различными способами - традиционным и с помощью ультразвукового распылителя

Практическая значимость. Результаты исследований могут быть использованы при решении теоретических и практических задач хранения и реставрации произведений искусства.

Установлены виды грибов, наиболее часто встречающиеся в условиях Государственного Эрмитажа. Определена численность грибов в некоторых залах и хранилищах музея

Проведена оценка микобиоты внутри установок системы кондиционирования воздуха

Инженерным службам музея рекомендовано регулярное обследование установок вентиляционных систем с участием специалиста-миколога.

Разработаны рекомендации по способам биоцидной обработки для хранителей реставраторов Для обеспечения щадящего режима биоцидной обработки экспонатов предложено использование ультразвукового распылителя

Апробация работы. Материалы диссертации доложены на Международной конференции реставраторов стран Балтики, Северной Европы и России в Вильнюсе (1993 г), на 4-й Европейской конференции по материалам и технологиям (Санкт-Петербург, 1993 г), на заседании Санкт-Петербургской гильдии реставраторов в Академии художеств (1995 г.), на 8-м Международном конгрессе по микологии и бактериологии (Иерусалим, 1996 г); на 6-м Международном микологическом конгрессе (Иерусалим, 1998 г), на 2-й Международной научно-практической конференции «Проблемы хранения, консервации и реставрации музейных ценностей» (Киев, 1999 г ), на семинаре Фонда сохранения художественного наследия (Санкт-Петербург, 2000 г), на Международной научно-практической конференции «В новый век - с новыми технологиями» (Санкт-Петербург, 2000 г), на Международной конференции «Грибы как источник опасности для культурных ценностей и людей» (Мюнхен, 2001 г), на Международном конгрессе «Методы молекулярной биологии и художественное наследие» (Севилья, 2003 г), на заседаниях секции биоповреждений РБО (2005 и 2007 гг), на XV Конгрессе Европейских микологов (Санкт-Петербург, 2007 г)

Публикации. По материалам диссертации имеется 16 публикаций.

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, 4 глав, выводов, практических рекомендаций, заключения и списка литературы Работа изложена на 174 страницах, содержит 13 таблиц и 35 рисунков Список литературы насчитывает 296 названий, из них 132 - работы отечественных и 164 - иностранных авторов

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Дан анализ сведений о видовом составе, биоэкологических особенностях, а также причинах и условиях развития микромицетов на памятниках культуры. Представлены сведения о методах исследований микологических повреждений культурных ценностей, а также о способах защиты произведений искусства от микодеструкции Рассмотрены преимущества и недостатки различных методов уничтожения грибов на материалах

ГЛАВА 2. МЕТОДЫ ВЫДЕЛЕНИЯ И ИЗУЧЕНИЯ МИКРОМИЦЕТОВ В ГОСУДАРСТВЕННОМ ЭРМИТАЖЕ

Предметом исследования стали микромицеты, выделенные из воздушной среды, пылевых осаждений, систем обеспечения микроклимата и некоторых экспонатов Государственного Эрмитажа, а также некоторые реставрационные соединения и препараты, используемые для защиты от микроскопических грибов Исследования выполнены в 1994-2006 гг Всего исследовано около 250 проб воздуха, 100 проб пылевых осаждений и 200 проб с предметов с признаками биоповреждений

Для микологического исследования воздуха использовался аспираци-онный пробоотборник МВ-8 (БаЛопиз, Германия). При отборе пробы заданный объем воздуха прокачивался через желатиновый фильтр диаметром 80 мм, улавливающий споры микроорганизмов, после чего фильтр помещали на поверхность питательной среды в чашку Петри Объем одной пробы обычно составлял 300 л воздуха

При исследовании пылевых осаждений пробы отбирали двумя способами. хлопковыми тампонами и дисками из увлажненной фильтровальной бумаги диаметром 45 мм

При использовании хлопковых тампонов пробы отбирали с поверхности определенной площади Для подсчета микромицетов применяли модифицированный нами метод разведений, широко используемый при оценке видового разнообразия и количественной представленности грибов в почве (Литвинов, 1969, Методы , 1982) Диски из фильтровальной бумаги использовали следующим образом* с помощью стерильного пинцета диск прижимали к поверхности исследуемого предмета, а затем переносили на поверхность питательной среды в чашках Петри, через 30 мин диск убирали Данный метод был разработан в Российской Национальной Библиотеке, где

его уже много лет применяют для обследования поверхностей мебели и документов (Беликова, 2005)

При наличии видимых очагов повреждений на мебели, керамике и настенной живописи использовали посевы при помощи стерильных ватных тампонов, а также метод отпечатков на липкую ленту (Ребрикова, 1999) Метод отпечатков на липкую ленту также использовался при отборе проб для микроскопического исследования фильтров и поверхностей узлов систем кондиционирования и вентиляции

В отдельных случаях образцы материалов (штукатурки в местах протечек, поврежденной настенной живописи и древесины) размещали в чашках Петри на питательной среде

Для выделения грибов были использованы следующие питательные среды агар Чапека, агар Чапека-Докса, агар Сабуро, сусло-агар и «голодный» агар, содержащий минеральную часть среды Чапека + 01% сахарозы Ксеротолерантные грибы выделяли на сусло-агар с 10 % и 20 % NaCl и агаровую среду, содержащую 1 % дрожжевого экстракта и 35 % сахарозы О ксерофильности и ксеротолерантности микромицетов судили по данным литературы, а также по их способности расти на средах для ксерото-лерантных грибов

Идентификацию микромицетов проводили на основании их морфоло-го-культуральных особенностей, используя определители отечественных и зарубежных авторов (Raper et al, 1968, Rifai, 1969, Raper, Fennell, 1977, Ellis, 1971, von Arx, 1981, Егорова, 1986, Samson, van Reenen-Hoekstra, 1988, Domsh et al ,1993, Ainsworth, Bisby, 1995, De Hoog et al, 2000, и др)

Частота встречаемости, плотность популяции и удельное обилие видов грибов определялась модифицированным нами методом Т Г Мирчинк (1988) Для характеристики видового разнообразия применяли индекс Шеннона Сравнение видого состава грибов в различных помещениях проводили с использование коэффициентов сходства видового состава Жаккара и Съе-ренсена-Чекановского (Василевич, 1969, Методы . , 1982) Для сравнения двух выборок использовали методы непараметрической статистики (U-критерий Манна-Уитни) (Рунион, 1982, Ивантер, Коросов, 2003) Для обработки результатов использовалась программа Statistica

Метод световой микроскопии применяли при исследовании образцов, взятых из очагов биоповреждений, анализе экспериментальных образцов и идентификации микромицетов; использовали микроскопы МБИ-15 и Leica MZ-16, а также бинокуляр Zeis Axioplan.

Детальное изучение микромицетов на поврежденных материалах и фильтрах вентиляционных систем проводили на сканирующем электронном микроскопе (Hitachi)

Развитие штаммов микромицетов Acremonium charticola, Alternaría al-ternata, Aspergillus Jlavus, A mger, A sydowu, A versicolor (штаммы №№ 307, 310, 316), A ustus, Cladosporium cladosporioides, С herbarum, Eurotium repens

(штаммы №№ 274, 308, 329, 418) , Fusarium verticillioides, Pénicillium auran-tiogriseum (№№ 417, 615), P brevicompactum, P fumculosum, P variabile, Ulocladium chartarum при относительной влажности воздуха 69 и 78 % ± 2 % исследовали с использованием силикагеля марки АСКГ (Россия) Испытания проводили на образцах нового реставрационного холста, проклеенного осетровым клеем Эксикаторы с образцами, зараженными суспензией спор грибов для каждого штамма в отдельности, выдерживали при температуре 20-22 °С в течение 120 суток Просмотр опытных образцов проводили на 30, 60, 90 и 120 сутки Для оценки развития грибов использовалась шкала ГОСТ 9 048-89

Для испытаний грибостойкости реставрационных полимеров полибу-тилметакрилата, поливинилбутираля и кремнийорганической смолы К9, а также изучения эффективности использования фунгицидов для их защиты использовали культуры грибов Aspergillus flavus, A niger, Cladospormm her-Ъагит, Pénicillium aurantiogriseum, P chrysogenum, P fumculosum, Tricho-derma viride Образцы мрамора, обработанные полимерами, выдерживали при 20-22 °С и относительной влажности воздуха 100 % в течение 60 суток

Биоциды Септодор, Лизоформин-специаль и Роцима 110 испытывали на штаммах микромицетов Aspergillus niger, A versicolor, Chaetomium globo-sum, Fusarium culmorum, Pénicillium aurantiogriseum, P variabile, Tricho-derma viride При выборе микромицетов учитывали частоту их встречаемости не только в музее, но и на предметах, привозимых из археологических экспедиций. Для предварительной оценки эффективности биоцидов использовали метод лунок (Харченко, 1982, Сэги, 1983) Дальнейшие испытания проводились на образцах древесины, кожи, масляной живописи на холсте Водные растворы препаратов (1% и 2%) наносили на поверхность образцов двумя способами кистью и распылителем В качестве распылителя использовался опытный вариант медицинского ингалятора, в методической разработке которого участвовал коллектив Лаборатории биологического контроля Государственного Эрмитажа (Славошевская, 2005) Обработанные биоцидами образцы помещали в чашки Петри на поверхность питательной среды (агар Чапека-Докса), зараженной суспензией спор, и инкубировали при 26 0 С в течение 21 сут Биоцидная активность оценивалась по 6-баллыюй шкале (ГОСТ 9 048-89)

ГЛАВА 3. КОЛИЧЕСТВО И ВИДОВОЙ СОСТАВ МИКРОМИЦЕТОВ В ЭКСПОЗИЦИОННЫХ ЗАЛАХ, ХРАНИЛИЩАХ И СИСТЕМАХ ОБЕСПЕЧЕНИЯ МИКРОКЛИМАТА ГОСУДАРСТВЕННОГО ЭРМИТАЖА

При анализе численности микромицетов в воздушной среде музея мы учитывали такие факторы, как сезонность, особенности систем поддержания микроклимата, этажность, наличие/отсутствие посетителей, в хранилищах принимали во внимание также свойства материалов, из которых изготовлены экспонаты Для обеспечения определенных параметров микроклимата в му-

зее используются 3 системы кондиционирования воздуха (далее - СКВ), а также воздухо-отопительная система (далее - ВОС), их устройство подробно представлено в диссертации Воздух в СКВ подвергается четырехкратной фильтрации, для его увлажнения используется камера орошения В тепло-центрах ВОС воздух подвергается однократной фильтрации, увлажнение воздуха не применяется В настоящее время в музее ведутся работы по модернизации ВОС, в теплоцентрах новой конструкции предусмотрено увлажнение воздуха

Нами была исследована микобиота фильтров, доводчиков (так называется устройство, через которой очищенный воздух подается в зал) и увлажняющей камеры одного из узлов СКВ РЬЕКТ (Швеция), введенной в действие в начале 1990-х гг, а также проведен мониторинг одного из залов, микроклимат в котором обеспечивается работой этой установки - Малого Итальянского просвета

Микобиота ВОС была исследована в теплоцентре № 10 Данная установка относится к теплоцентрам старой конструкции и обслуживает ряд помещений в Зимнем дворце, из которых для мониторинга микобиоты воздуха был выбран Александровский зал

Исследования микобиоты воздуха в этих залах проводили ежемесячно, пробы брали дважды в день - утром, сразу после открытия залов, и вечером, перед закрытием музея, одновременно с пробами внутри помещений брали пробы наружного воздуха

Кроме того, для дополнительных исследований был обследован ряд залов, расположенных на разных этажах музея, а также 7 хранилищ, расположенных на разных этажах Зимнего дворца

Представленные на рис 1 и 2 данные отражают наиболее характерные тенденции численности микромицетов в обследованных залах, средние значения температуры и относительной влажности воздуха представлены на рис. 3.

Результаты исследований показали, что среднее количество микромицетов за весь период наблюдений в Малом Итальянском просвете составляло 92 ± 20 КОЕ/ м3, в Александровском зале - 122 ±14 КОЕ/м3. Минимальное и максимальное зарегистрированное количество микромицетов составляло 10 - 730 КОЕ/ м3 в Малом Итальянском просвете и 10 - 532 КОЕ/ м3 в Александровском зале

Первоначальные замеры, сделанные в 1997 - 2002 гг, а также более поздние наблюдения (2003 г ) показали, что в воздухе Малого Итальянского просвета, оборудованного СКВ, количество микромицетов было наименьшим по сравнению с другими обследованными экспозиционными залами и оставалось более стабильным в течение суток, за исключением небольшого увеличения в июле-августе (рис 1) В Александровском зале наблюдались более значительные колебания их численности (рис 2) количество микромицетов к концу дня увеличивалось почти в два раза В 2004 - 2005 гг наблюдалась меньшая стабильность показателей

1 2 3 4 5 6 7 8 9

" Зал, утро В Зал, вечер

" А Улица, утро -■ Улица, вечер

10

Рис. 1

--- --л»; ^ __- ----— ---1*_

. Количество микромицетов в воздухе зала Малый Итальянский просвет, 2003 г.

V

\

\

8

10

"Зал, утро ■ £г Улица, утро

Н - Зал, вечер ■ Улица, вечер

11 12 Месяц

Рис. 2. Количество микромицетов в воздухе Александровского зала, 2003 г.

15 -10 5 -

0 J-----1--1--и--1---

2002 2003 2004 2005 2006 -♦—Александровский зал T, о С —Александровский зал ОВВ, % - ¿f Малый просвет Т, о С_—н Малый просвет ОВВ, % _

Рис. 3. Средние значения температуры (Т) и относительной

влажности воздуха (ОВВ) в Александровском зале и Малой Итальянском просвете в 2002-200б гг.

По сравнению с более ранними наблюдениями, в 2005 г. мы наблюдали постепенное увеличение заспоренности воздуха в Малом Итальянском просвете. В целом же количество микромицетов в нем оставалось меньшим, чем в Александровском зале.

В литературных источниках имеются противоречивые данные относительно влияния кондиционирования на качество воздуха. Микробиологи рассматривают СКВ как возможный источник размножения и распространения микроорганизмов в здании (Riley, 1979; Molina, 1986; Grillot et al., 1990; Parat, 2004). В то же время многие исследователи отмечают снижение содержания микромицетов в помещениях с кондиционированием (см., например, Solomon et al., 1980; Maroni et al., 1993), что согласуется с полученными нами результатами.

Ожидаемого существенного влияния посетителей на количество микромицетов в воздухе залов обнаружено не было. Состояние воздушной среды главным образом зависело от способа и интенсивности вентиляции. Пробы воздуха, взятые нами январе - феврале 2001 г. в Зимнем Дворце Петра I, демонстрируют зависимость между качеством фильтрации и количеством спор микромицетов в воздухе (рис. 4). Во время первичных исследований мы наблюдали резкое увеличение концентрации спор микромицетов во второй половине дня (с 48 до 350 КОЕ/м3). После того, как в.вентиляционной установке были установлены фильтры высокой степени очистки воздуха (EU 7 вместо EU 2), была прове-

дена серия повторных исследований: число микромицетов во второй половине снижалось (со 85 до 38 КОЕ/м3). 2

ю 400

Утро, Вечер, Утро, Вечер, Утро, Вечер,

EU2 _EU2 EU7_____EU7 EU7____EU7

И Коридор под столовой Ш Портретная галерея □ Вентиляционная шахта □ Наружный воздух

Рис. 4 . Количество микромицетов в воздухе Зимнего Дворца Петра I.

Число микромицетов в воздухе хранилищ составляло в среднем 40-179 КОЕ/м3 . Влияние на заспоренность хранилищ оказывали следующие факторы: этажность, в отдельных случаях - наличие протечек, характеристики материалов - наиболее загрязнены хранилища с недавними археологическими находками, однако четкой зависимости загрязненности воздуха от этих факторов мы не наблюдали. Число спор микромицетов в пылевых осаждениях на поверхности мебели составляло от 3 - 6 КОЕ/дм2 (в хранилище органических материалов) до 8 - 18 КОЕ/ дм2 (в хранилище станковой живописи), наиболее высокие значения наблюдались в запасном хранилище под Висячим садом (40-76 КОЕ/ дм2). По данным исследований, проведенных в Государственном Научно-исследовательском институте реставрации (ГосНИИР) и в Российской Национальной библиотеке (Ребрикова, 1999; Беликова, 2005), при соблюдении температурно-влажностного режима число грибных пропагул не выше 50 КОЕ/ дм2 можно расценивать как безопасное; при концентрации грибных пропагул выше 80-100 КОЕ/ дм2 рекомендуется дезинфекция.

Нормы содержания микромицетов в воздухе помещений в настоящее время находятся в стадии разработки: по данным разных авторов, численность микромицетов в зависимости от ряда факторов может составлять от 50 до нескольких тысяч КОЕ / м3 (Hunter et al., 1988; Bürge, 1990, и др.). Количество микромицетов в обследованных помещениях Государственного Эрмитажа не превышало, а часто и оказывалось существенно ниже известных по

литературным источникам данных, что позволило сделать вывод о благополучном состоянии воздуха музея

В результате микологических исследований в музее было выделено 85 видов грибов из 37 родов, 7 семейств, 5 порядков, 6 классов из отделов Zy-gomycota, Ascomycota, Basidiomycota, а также анаморфных грибов Отдел Zygomycete. представлен 1 классом, 1 порядком, 1 семейством, 2 родами и 5 видами, 4 из которых относятся к роду Мисог Отдел Ascomycota представлен 2 классами, 3 порядками, 3 семействами 3 родами и 4 видами Обнаружен один базидиомицет из рода Anttodia (Meripilaceae, Polyporales, Agaricomy-cetes) Наибольшее количество видов (71) относится к анаморфным грибам из класса Hyphomycetes Грибы из семейства Momhaceae относятся к 15 родам, Dematiaceae - также к 15 родам Наибольшим числом видов представлен род Pemcillium (22 вида), далее следуют род Aspergillus (12 видов), Асгетотит и Cladosporium (по 4 вида) Остальные роды представлены 1-2 видами Класс Coelomycetes представлен 2 видами рода Phoma

Таблица 1

Видовой состав микромицетов, изолированных в помещениях, установках обеспечения микроклимата и на предметах с признаками биоповре-ждсннй в Государственном Эрмитаже

Уста- Предме-

Виды микромицетов Экспо- Храни- новки ты с при-

зици- лища обеспе- знаками

онные чения биопо-

залы микроклимата врежде-ний

Огдел Zygomycota Класс Zygomycetes Порядок Mucorales Семейство Мисоюсеае

Мисог hiemahs Wehmer + + - -

М lamprosporus Lendn + + - -

М plumbeus Bonord + + + -

M racemosus Fresen + + + -

Rhizopus stolomfer (Ehrenb Fr) Lmd var stolomfer + + + -

Отдел Ascomycota Класс Pyrenomycetes Порядок Sordariales Семейство Chaetomiaceae

Chaetomium elatum Kunze - -

Fr. + +

Ch globosum Kunze Fr + + + -

Класс Piectomycetes Порядок Eurotiales Семейство Trichocomaceae

Eurotmm repens de Вагу + + + -

Порядок Onygenales Семейство Myxotrichiaceae

Myxotrichum chartarum Kunze Fr + + + -

Отдел Basidiomycota Класс Agaricomycetes Порядок Polyporales Семейство Meripilaceae

Antrodia sp - - - +

Анаморфные грибы Класс Hyphomycetes Семейство Momhaceae

Acremomum butyri (J F H Beyma) W Gams + - - -

A charticola (Lindau) W Gams + + - -

A murorum (Corda) W. Gams + + - -

A strictum W. Gams + + + +

Aphanocladium album (Preuss) W Gams + - - -

Aspergillus Candidus Link Fr + + +

A flavus Link + + + -

A fumigatus Frcscn + + + -

A niger Tiegh + + + +

A ochraceus G. Wilh - - + -

A sulphureus (Fresen) Thom et Church + + - -

A sydown (Bainier et Sar-tory) Thom et Church + + + -

A terreus Thom + + - -

A terricola Marchal + + - -

A ustus (Bainier) Thom et Church + + + -

A versicolor (Vuill) Tirab + + +

Aspergillus sp - - - +

Botryotrichum piluliferum Sacc et Marchal + + - -

Chrysomlia sitophila (Mont) Arx + + + -

Chrysosporium merdarium (Link Fr) Carmich + + - -

Fusarium solam (Mart ) Sacc + - - +

F verticillioides (Sacc) N1-renberg + + - -

Geotrichum candidum Link + - - -

Gliocladium roseum Bainier + - - -

Paecilomyces variotn Bainier + + + -

Pemcillium atramentosum Thorn + - + -

P aurantiogriseum Dierckx + + + +

P brevi-compactum Dierckx + + + -

P chrysogenum Thom + + + +

P citrinum Thom + + - -

P commune Thom + - - -

P cyaneo-fulvum Biourge + + + -

P decumbens Thom + + + +

P expansum Link + - + -

P frequentans Westling + + + -

P fumculosum Thom + + + -

P jantinellum Biourge + - - -

P lanosum Westling + + + -

P lanoso-coeruleum Thom + + + +

P luteum Sopp - - + -

P purpurogenum Stoll + + - -

P roqueforti Thom + - + -

P thomu Maire + - - -

P variabile Sopp + + + +

P verrucosum Dierckx + + - -

P vmdicatum Westling + + - -

P waksmanu K M Zalessky + -

Trichoderma harzianum Rifai + + + +

T viride Pers Fr + + + -

Trichothecium roseum (Pers) Link + - - -

Tritirachium roseum J F H Beyma + - - -

Verticillium tenerum Nees - - - +

Verticillium sp + - - -

Семейство Dematiaceae

Alternaria alternata (Fr) Keissl + + + +

Aureobasidium pullulans (de Bary)G Arnaud + + + -

Botrytis cinerea Pers Fr. + - - -

Cladosporium brevi-compactum Pidopl et Deniak + + - -

C cladosporioides (Fresen) GA deVnes + + + -

C herbarum (Pers Fr) Link + + + +

C sphaerospermum Penz + + + +

Geomyces pannorum (Link) Sigler et Carmich + + + -

Doratomyces stemonitis (Pers) F J Morton & G Sm - - - +

Gilmamella humicola G L Barron + - - -

Humicola grisea Traaen + - + -

Oidiodendron truncatum Barron + - + -

Phialophora fastigiata (Lagerb et Melin) Conant + + - -

Scopulariopsis brevicauhs (Sacc) Bainier + + + +

S Candida (Gueg ) Vuill + + + -

Stachybotrys chartarum (Ehrenb Fr ) S Hughes + + - -

Torula herbarum (Pers ) Link + - - +

Ulocladium botrytis Preuss + + + +

U chartarum (Preuss) Simmons + + - +

Wallemia sebi (Fr.) Arx - - + -

Класс Coelomycetes

Phoma eupyrena Sacc + + - -

Ph herbarum Westend + + + -

Сравнение видового состава грибов в залах, оборудованных разными системами поддержания микроклимата, обнаружило различия между ними В Александровском зале было обнаружено 70 видов, в Малом Итальянском просвете - 55 видов микромицетов Рассчитанный для двух залов коэффициент Съеренсена-Чекановского оказался равным 0 86, коэффициент Жаккара -0 76 Следует отметить что различие в количестве видов наблюдалось за счет

редко встречающихся и случайных видов и оооих залах наиоолынее количество видов было обнаружено у рода Pénicillium (19 в Александровском зале и 15 - в Малом Итальянском просвете), род Aspergillus был представлен 8 видами в обоих залах, численность рода Cladosporium составляла 4 и 3 вида соответственно

Виды, для которых зарегистрированы наиболее высокие показатели плотности популяции, представлены в таблице 2

Таблица 2

Виды микромицетов с наиболее высокими показателями плотности популяции и частоты встречаемости, обнаруженные

Виды микромицетов Александровский зал (BOC) Малый Итальянский просвет (СКВ)

Плотность популяции Частота встречаемости (%) Плотность популяции Частота встречаемости (%)

Aspergillus flavus 0 98 9 80 2 52 14 29

A mger 2 26 13 73 0 21 4 76

A versicolor 1 71 1961 18 57 52.38

Eurotium repens 0 43 3.92 5.67 11 90

Cladosporium herbarum 20.59 37.25 11.05 50 00

Pénicillium aurantiogriseum 66 88 90 20 33 57 83 33

P brevi-compactum 3.76 5 88 1 98 7.14

P decumbens 2 10 1 73 0 33 7.14

P frequentans 3 14 13 73 1 38 4 76

P funiculosum 2 18 17 65 3 60 19 05

В обоих залах по частоте встречаемости, численности и обилию доминировал Pénicillium aurantiogriseum, однако в Александровском зале эти показатели были значительно выше, чем в Малом Итальянском просвете. На втором месте в Александровском зале был Cladosporium herbarum, в Малом Итальянском просвете - Aspergillus versicolor Индекс видового разнообразия Шеннона составил 1 9 в Александровском зале и 2 2 в Малом Итальянском просвете Несколько меньшее значение индекса Шеннона в Александровском зале, вероятно, объясняется большим доминированием вида Р aurantiogriseum в этом помещении

Обращает на себя внимание значительно большие значения плотности и встречаемости Aspergillus versicolor и Eurotmm repens в Малом Итальян-

ском просвете, чем в зале без СКВ. Для Cladosporium herbarum наблюдается обратная закономерность, что, вероятно, объясняется большей зависимостью ВОС от наружного воздуха. Различия в общей плотности количества мик-ромицетов в залах оказались достоверными на уровне значимости < 0.05 (U-критерий Манна-Уитни оказался равен 724.5). Были также обнаружены достоверные различия в представленности отдельных видов микромицетов: плотность популяции Aspergillus versicolor и Eurotium repens в Малом Итальянском просвете была больше их плотности в Александровском зале с достоверностью на уровне < 0.05 (U-критерий равен 686.0 и 770.0 соответственно). Плотность Pénicillium aurantiogriseum была выше в Александровском зале (U-критерий равен 645.50).

Суммарные значения удельного обилия основных родов микромицетов представлены на рис. 5 и 6. В зале с ВОС удельное обилие рода Pénicillium было значительно выше и составляло 71.7 %, в то время как на долю рода Aspergillus приходилось около 4.9 %. В зале, оборудованном СКВ, удельное обилие рода Pénicillium составляло 50.1 %, однако доля рода Aspergillus была значительно выше и составляла 29.9 %. Необходимо заметить, что разница наблюдалась главным образом за счет представленности видов Pénicillium aurantiogriseum и Aspergillus versicolor.

Aspergillus

остальные микромицеты-3.1

4.9

Cladosporium

/

19.3

Pénicillium 71.7

Рис. 5. Удельное обилие микромицетов (%) в Александровском зале.

остальные

Pénicillium 50.1

Cladosporium 14.3

микромицеты 3.8

Aspergillus 29.9

Рие. 6. Удельное обилие микромицетов (%) в Малом Итальянском просвете.

В хранилищах было идентифицировано 56 видов грибов, относящихся к 21 роду из отделов Zygomycota, Ascomycota, а также анаморфных грибов. В воздушной среде хранилищ обнаружено 45 видов грибов, в составе пылевых осаждений - 36 видов. По видовому разнообразию и встречаемости грибов преобладали виды родов Pénicillium (15) и Aspergillus (10) и Cladosporium (4 вида). Наиболее высокая частота встречаемости наблюдалась у Pénicillium aurantiogriseum (73.16 % в воздухе и 63.38 % в пылевых осаждениях), далее следовали Aspergillus versicolor (26.96 % и 19.86 %), Cladosporium herbarum (23.17 % и 11.27 % соответственно).

В большинстве сообщений о видовом составе микромицетов в музеях и книгохранилищах наиболее часто отмечается присутствие представителей родов Aspergillus, Cladosporium, Pénicillium, Fusarium, Alternaria, Ulocladium, Chrysosporium (Апрелева, Никитин, 1984; Нюкша, 1994; Мантуровская, 1995; Покровская, 1995; Ребрикова, 1999; Кондратюк, Жданова, 2002; Митковская, Коваль 2004), с чем согласуются полученные нами данные.

Видовой состав грибов, обнаруженных в залах и хранилищах музея, в целом традиционен для помещений (Samson, 1985; Hunter at al, 1988; Garrett et al., 1997; Богомолова и др., 1999; Петрова-Никитина и др., 2000; Антропова и др., 2003).

Присутствие большого числа ксерофильных и ксеротолерантных грибов объясняется температурно-влажностным режимом музея. Микроклиматические условия в Эрмитаже можно рассматривать как очень засушливые для грибов. Во многих залах относительная влажность воздуха в летние месяцы не превышает 50-60 %, во время отопительного сезона снижается до 2030 % (рис. 3).

Внутри установок СКВ и ВОС было выделено 48 видов грибов, в воздухе внутри фильтровочной камеры ВОС обнаружено 17 видов грибов, внутри установки СКВ - 20 видов грибов Особенный интерес для нас представляла увлажняющая установка СКВ (камера орошения) в связи с возможностью размножения микроорганизмов По сравнению с другими узлами СКВ, из камеры орошения было выделено наименьшее количество видов микроми-цетов В посевах на питательных средах были выделены Aspergillus Candidus, A ochraceus, Chaetomium globosum, Cladosporium sphaerospermum, Eurotium repens, Pénicillium auranttogriseum, также было зарегистрировано развитие бактерий В камере орошения СКВ обнаружено 6 видов микромицетов На фильтрах установок было идентифицировано 38 видов микромицетов

Микромицеты Eurotium repens, Cladosporium sphaerospermum и Pénicillium aurantiogriseum были обнаружены на всех изученных элементах установок Проведенное обследование не выявило существенных различий в количестве и обилии микромицетов внутри установок СКВ и ВОС По обилию и встречаемости доминировал Pénicillium aurantiogriseum, далее следовали Cladosporium herbarum, Eurotium repens, Aspergillus versicolor По сравнению с результатами, полученными в залах, которые обслуживаются этими установками, на фильтрах вентиляционных систем было выявлено большее количество изолятов Eurotium repens

Микроклимат в помещениях Государственного Эрмитажа в целом неблагоприятен для развития грибов Тем не менее, одной из задач этого исследования было выявление очагов биоповреждения в музее

Признаки небольших очагов развития грибов в здании музея мы наблюдали в отдельных редких случаях- на стенах с поврежденной гидроизоляцией в подвалах зданий, а также на запасной деревянной мебели в помещении, расположенном под Висячим садом до его капитального ремонта

Микроскопическое исследование отпечатков на липкую ленту, взятых из мест повреждений, позволило обнаружить конидиеносцы Aspergillus sp В препаратах наблюдали большое количество спор разного размера, а также многочисленные крупные споры Из данного очага повреждений было выполнено 40 посевов на питательные среды Посевы на питательные среды из мест образования колоний показали, что обнаруженный вид Aspergillus sp крайне плохо развивался на стандартных питательных средах (среде Чапека-Докса и сусло-агаре) При посевах на сусло-агар с 20 % NaCl в 14 пробах наблюдался рост мелких светлоокрашенных колоний. Видовую принадлежность гриба установить не удалось

H Л Ребрикова с коллегами (Ребрикова, Мантуровская, 1994, Ребрико-ва, Дмитриева, 2002, 2003) неоднократно наблюдали развитие светлоокрашенных колоний грибов в условиях стресса. Колонии, развивающиеся в таких условиях, имеют выраженные морфологические и физиологические отличия от колоний грибов, развивающихся в благоприятных условиях

Среды, содержащие легко доступные грибам углеводы, способствуют быстрому росту так называемых сахарных грибов и часто затрудняют разви-

тие микромицешв, вызывающих разрушение произведений искусства Выявлению грибов из очагов биоповреждений способствует применение специализированных сред, состав которых соответствует пищевым потребностям микромицетов и условиям их развития (Hocking, Pitt, 1980, Новикова, Коваль, 1990, Горбушина, 1997, Ребрикова, 1999, Власов и др, 2001; Кондратюк, Жданова, 2002, Hoekstra, Samson, 2002)

Во многих опубликованных работах по изучению микобиоты помещений музеев и библиотек сообщается о применении стандартных питательных сред (среда Чапека и Чапека-Докса, сусло-агар, сред с целлюлозой) Основываясь на опыте исследований, проведенных в Эрмитаже, мы считаем, что использование питательных сред для ксерофильных и ксеротолерантных грибов существенно расширяет число выделяемых в музейных помещениях микромицетов

Большинство обнаруженных нами внутри музея микромицетов известны как биодеструкторы самых разнообразных материалов; в работах по биоповреждениям содержится множество данных об их высокой метаболической активности (Коваль и др, 1983, Горленко, 1984, Каневская, 1984, Злочевская, 1987, Лугаускас и др , 1987, Нюкша, 1994, Лебедева и др, 1997, Ермилова и др 2000). Оценивая потенциальную опасность выявленных микромицетов, мы исследовали способность штаммов микромицетов Асгетопшт charticola, Alternaría alternata, Aspergillus flavus, A mger, A sydowii, A versicolor, A us-tus, Cladosporium cladosporioides, С herbarum, Eurotium repens, Fusarium ver-ticillioides, Penicillium aurantiogriseum, P brevicompactum, P fumculosum, P variabile, Ulocladium chartarum развиваться при значениях относительной влажности воздуха, наблюдающихся в помещениях с нарушениями микроклимата.

Результаты наблюдений показали, что при относительной влажности воздуха 69 % наблюдалось развитие только штаммов Eurotium repens, при влажности 78 % из всех испытанных грибов развивались все штаммы мик-ромицета Eurotium repens и Penicillium aurantiogriseum (рис. 7).

Часто встречающиеся в залах и в системе кондиционирования Государственного Эрмитажа микромицеты Aspergillus versicolor и Cladosporium herbarum в условиях нашего эксперимента не развивались Наибольшая скорость развития была отмечена (3 балла на 30 сутки инкубирования) у штамма Eurotium repens 21 А, проявившего способность развиваться при OB воздуха 69 %

ж- —

ж

30

60

90

120

Сутки

E.repens 274 Е. repens 329

* Е repens 418

Е. repens 308

-* P. aurantiogriseum 417 -> P. aurantiogriseum 615

Рис.7. Степень обрастания мнкромицетами Eurotium repens и Pénicillium aurantiogriseum образцов холста при относительной влажности воздуха 78 %.

Параметры микроклимата Государственного Эрмитажа отличаются от этих значений и обеспечивают безопасное хранение произведений искусства Однако в музее имеются не связанные с хранением отдельные помещения с нарушениями гидроизоляции, эти помещения должны находиться под постоянным микологическим наблюдением

ГЛАВА 4. ИССЛЕДОВАНИЕ ГРИБОСТОЙКОСТИ НЕКОТОРЫХ РЕСТАВРАЦИОННЫХ МАТЕРИАЛОВ И ПРОТИВОГРИБНОГО ДЕЙСТВИЯ БИОЦИДОВ, ВНЕДРЯЕМЫХ В РЕСТАВРАЦИОННУЮ ПРАКТИКУ

Несмотря на то, что негативные стороны антигрибных обработок хорошо известны, в реальной музейной практике полностью отказаться от применения биоцидов не удается

Была исследована способность микромицетов развиваться на некоторых соединениях, используемых в реставрации полибутилметакрилате, поливи-нилбутирале и кремнийорганической смоле К9 В опытах использовали штаммы Aspergillus flavus, A niger, Cladosporium herbarum, Pénicillium aurantiogriseum, P chrysogenum, P fumculosum, Trichoderma viride

Испытания показали, что на незащищенных биоцидами материалах развивались грибы Для защиты полимерных пленок предложено использовать биоциды катапол (1 % раствор) и Роцима 110(1%)

В нашей работе мы ставили задачу сравнить эффективность биоцидов, внедряемых в реставрационную практику Лизоформин-специаля, Септодора и Роцима 110 Эксперименты проводили на штаммах микромицетов Aspergillus niger, A versicolor, Chaetomium globosum, Fusarium culmorum, Pemcillium aurantiogriseum, P variabile, Trichoderma viride. Предварительные испытания подтвердили ожидаемую низкую фунгицидную активность Лизоформина-специаль Результаты исследования эффективности Септодора и Роцима 110 при различных концентрациях, на разных материалах и при разной технике обработки (нанесенных традиционным способом - слегка отжатой кистью и при помощи ультразвукового распылителя), представлены в таблице 3

Таблица 3

Степень обрастания грибами (по 6-балльной шкале) образцов древесины, живописи и кожи, обработанных биоцидами Септодор и Роцима 110 с помощью кисти и ингалятора

Образец Септодор Роцима 110

Кисть Ингалятор Кисть Ингалятор

1 % 2% 1 % 2% 1 % 2% 1% 2%

Древесина 3 2 4 3 0 *3 0 * 7 0 *3 0 *3

Живопись 3 3 4 3 2 *2 0 *2 1 1 *2

Кожа 4 2 4 2 2 *3 0 *7 2 *2 1 *2

Примечание: *- размер зоны ингибирования, мм

Септодор оказался активнее Лизоформин-специаля, но его действие на микромицеты было значительно слабее, чем у Роцима 110. Наибольшую фунгицидную активность проявил Роцима 110, который на всех опытных образцах полностью подавлял рост микромицетов, за исключением Тпско-с1егта У1г^е Результаты обработки кистью и ингалятором образцов древесины, кожи и живописи свидетельствуют о том, что по эффективности эти методы нанесения биоцидов принципиально не различаются. Обработка материала кистью и распылителем может дать одинаковый фунгицидный эффект Однако у распылителя есть важное преимущество - он обеспечивает щадящую материал обработку

Рекомендуемые условия хранения в музеях, библиотеках и архивах не способствуют длительному сохранению жизнеспособности грибов Во многих случаях биоцидная обработка может быть заменена механической чисткой, при условии строго соблюдаемого температурно-влажностного режима хранения.

ВЫВОДЫ

1 В результате исследования помещений Государственного Эрмитажа выделены и идентифицированы 85 видов грибов, относящиеся к 37 родам, 7 семействам, 5 порядкам, 6 классам из отделов Zygomycota, As-comycota, Basidiomycota, а также анаморфных грибов Преобладающими среди них были виды родов Pénicillium и Aspergillus Остальные роды представлены 1-4 видами

2. Подсчеты частоты встречаемости и плотности популяции микромице-тов в экспозиционных залах и хранилищах музея показали, что типичным доминирующим видом является Pénicillium aurantiogriseum, часто встречающимися видами - Aspergillus versicolor, Cladosporium herbarum и Eurotium repens, с небольшими вариациями их количества в разных помещениях Остальные виды микромицетов относятся к редким или случайным

3 Сравнение численности микромицетов в залах, обслуживаемых различными средствами обеспечения микроклимата, показало, что количество микромицетов в этих залах различалось В помещениях, оборудованных системой кондиционирования, среднее число микромицетов составляло 92 ± 20 17 КОЕ/м3, в помещениях с воздухо-отопительной системой -122 ± 14.02 КОЕ/м3

4 В экспозиционном зале, оборудованном системой кондиционирования воздуха, плотность популяции и частота встречаемости микромицетов Aspergillus versicolor и Eurotium repens была выше, чем в зале с воздухо-отопительной системой Представленность Pénicillium aurantiogriseum, наоборот, была выше в залах с воздухо-отопительной системой

5 В пробах из установок обеспечения микроклимата выделено 48 видов грибов, относящихся к 24 родам из отделов Ascomycota, Zygomycota и анаморфных грибов Проведенное обследование не выявило существенных различий в количестве и обилии микромицетов внутри установок воздухо-отопительной системы и системы кондиционирования воздуха По обилию и частоте встречаемости в обеих системах доминировал Pénicillium aurantiogriseum По сравнению с результатами, полученными в залах, в пробах внутри установок было выявлено большее количество Eurotium repens

6 Исследования показали, что вопреки некоторым ожиданиям, заспорен-ность воздуха в изученных помещениях не зависела от числа посетителей музея Решающее влияние на качество воздуха оказывала вентиляция и ее интенсивность

7 Опытным путем установлено, что способность развиваться в условиях низкой относительной влажности воздуха (69 %) присуща лишь Eurotium repens, при 78 % развивались Eurotium repens и Pénicillium aurantiogriseum Эти виды можно рассматривать как наиболее опасные при определенных условиях среды, которые могут сложиться в музейных помещениях.

0 Очагов видимых, бионовреждений в обследованных помещениях не обнаружено Исключение составило одно из помещений под Висячим садом, где на древесине были обнаружены колонии Aspergillus sp

9 Изучение развития грибов Aspergillus flavus, A mger, Cladosporium herbarum, Pénicillium aurantiogriseum, P chrysogenum, P funiculosum, Trichoderma viride на используемых в реставрации полимерных соединениях (поливинилацетат, бутилметакрилат, кремнийорганическая смола К9), показало, что эти полимеры не обладают достаточной биостойкостью Их применение должно в возможных случаях сочетаться с использованием четвертичных аммонийных или оловоорганических соединений

10.Эксперименты по действию 1 и 2 % концентраций биоцидов Лизофор-мин-специаль, Септодор, Роцима 110 на микромицеты Aspergillus mger, A versicolor, Chaetomium globosum, Fusarium culmorum, Pénicillium aurantiogriseum, P variabile и Trichoderma viride показали, что наиболее эффективным был препарат Роцима 110 Разные способы нанесения препаратов (кистью и при помощи ультразвукового распылителя) одинаковы по эффективности, однако распылитель обеспечивает бесконтактную, щадящую материал обработку.

11 Полученные в ходе многолетних исследований данные показывают, что положение с заспоренностью помещений и биоповреждениями культурных ценностей в Государственном Эрмитаже в целом благополучно. Количество выявленных в воздухе помещений музея микроми-цетов не превышало, а часто было гораздо ниже обычно отмечаемых показателей в помещениях другого назначения. Тем не менее, учитывая возраст зданий, гидрологические и геологические особенности грунта, климат и экологическую ситуацию в Санкт-Петербурге, необходимо вести постоянный контроль микологической безопасности музея Такая профилактика в сочетании с применением в необходимых и возможных случаях биоцидных препаратов составляет концепцию стратегии защиты произведений искусств в Государственном Эрмитаже

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1 Смоляницкая О Л, Новикова О Г, Славошевская Л В , Панина Л.К, Курочкин В Е. Влияние художественных водных красок на плесневые грибы // Материалы 4-й Европейской конференции по материалам и технологиям «Восток-Запад». СПб , 1993.

2 Мельникова Е.П., Смоляницкая О Л., Славошевская Л В, Лебедева Е В , Панина Л К Исследование биоцидных свойств полимерных композиций // Тезисы докладов Всесоюзной конференции «Биоповреждения в промышленности». Пенза, 1993. С 18-19.

3 Smolyanitskaya О L , Slavoshevskaya L V , Svetlichnaya V A , Zhizhina N К, Krumbein W E, Swings J Mycological investigation of a wooden sarcophagus from excavation m Nymphei (Black Sea) // Proceedings of the 8th International Congress of Mycology Division (IUMS) Jerusalem, 1996 P 103

4 Лебедева E В , Назаренко А В , Днепровская M Б , Смоляницкая О Л Микроорганизмы - разрушители настенной живописи церкви Св Николая в с Кинцвиси (Грузия) II Микол и фитопатол 1997. Т 31, вып 6 С 37-42

5 Lebedeva Е, Nazarenko А, Smolyanitskaya О , Dneprovskaya M Biodete-noration of wall painting // Proceedings of the International Conference "Ecological Effects of Microorganism Action" Vilnius, 1997 P 47-50

6 Slavoshevskaya L.V , Smolyanitskaya О L , Mozgovoy V S , Petrova S L, Rybalchenko O.V Mycological investigation of deteriorated ancient Greece and Rome marble monuments from the collection of the Hermitage Museum // Proceedings of the 4th International Symposium "Conservation of Monuments in the Mediterranean" Rhodes, 1997 P 437-451

7 Smolyanitskaya О L, Mel'mkova E P , Slavoshevskaya L V, Petrova S L, Mozgovoy V S , Rybalchenko О V , Geller N M Micromycetes from the deteriorated marble monuments and the new protective compositions for the sculpture conservation // Procedings of the 6th International Mycological Congress (IMC) Jerusalem, 1998 P 127

8 Рыбальченко О В , Смоляницкая О Л, Славошевская Л В , Беликова Т Д Применение сканирующей электронной микроскопии для выявления биодеструктивных изменений памятников культуры // Теория и практика сохранения памятников культуры. Сборник научных трудов СПб.. РНБ, 1998. Вып. 19 С 93-101

9 Славошевская Л В , Смоляницкая О Л, Мельникова Е П, Петрова С Л, Мозговой В С, Рыбальченко О В , Геллер H M Микромицеты поврежденных мраморных скульптур двух архитектурных памя1 ников Санкт-Петербурга и новые защитные композиции для реставрации // Материалы Всероссийской конференции «Экологические проблемы биодеградации промышленных, строительных материалов и отходов производств». Пенза, 1998 С 140-145

10 Смоляницкая О Л., Светличная В А Микологический контроль в Государственном Эрмитаже // Материалы 2-й Международной научно-практической конференции «Проблемы хранения, консервации и реставрации музейных ценностей» Киев, 1999 С 177-178

11 Ракотонираини M, Беликова Т Д, Смоляницкая О Л Сравнение различных методов оценки зараженности помещений // Материалы 3-й Международной научно-практической конференции «В новый век - с новыми технологиями» СПб РНБ, 2000 С 75

12 Smolyanitskaya О L , Slavoshevskaya L V , Svetlichnaya V A. Mycological analysis of the wooden sarcophagus from the necropolis of Nymphaeum //

Nothern Pontic antiquities in the State Hermitage Museum Eds Boardman J , Solovyov S , Tsetskhladze G London Brill, 2001. P 60-64.

13.Смоляницкая О JI Видовой состав микромицетов в некоторых экспозиционных залах и хранилищах Государственного Эрмитажа // Микол и фитопатол 2004. Т. 38, вып 4. С 51 - 58

14 Smolyanitskaya О, Vehkova Т , Rakotoniramy М , Gorbushina A Mould contamination in museum and library storage rooms evaluation of spore presence and viability by different methods of air and contact sampling // Proceedings of the International Conference "Fungi, A Threat for People and Cultural Heritage through Micro-Organisms" Stuttgart Theiss, 2004. P. 194 -197

15 Славошевская Л В , Светличная В А, Смоляницкая О Л Опыт применения биоцидов, содержащих четвертичные аммониевые соединения, для защиты музейных коллекций // Художественное наследие, 2005. № 22 (52) С 84-86

16 Smolyanitskaya О L Mycological investigation of air conditioning system in museum building // Proceedings of the 15th International Congress of European Mycologists St Petersburg Komarov Botanical Institute 2007. P 101

Подписано в печать Об 10 07 Формат 60*84 1/16 Бумага офсетная Печать офсетная Печ л 1,5 Тираж 100 экз Заказ 117

Отпечатано с готового оригинал-макета в типографии Издательства СПбГЭТУ "ЛЭТИ"

Издательство СПбГЭТУ "ЛЭТИ" 197376, С -Петербург, ул Проф Попова, 5

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Смоляницкая, Ольга Львовна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Микромицеты, развивающиеся на произведениях искусства: видовой состав и биоэкологические особенности.

1.2. Причины и условия развития микромицетов на произведениях искусства.

1.3. Микромицеты как источник опасности для здоровья людей.

1.4. Методы исследований микологических повреждений культурных ценностей.

1.5. Методы защиты культурных ценностей от биоповреждений.

1.5.1. Методы уничтожения грибов на произведениях искусства.

1.5.1.1. Физические методы.

1.5.1.2. Химические методы.

1.5.2. Превентивные методы консервации культурных ценностей.

2. МЕТОДЫ ВЫДЕЛЕНИЯ И ИЗУЧЕНИЯ МИКРОМИЦЕТОВ В ГОСУДАРСТВЕННОМ ЭРМИТАЖЕ.

3. КОЛИЧЕСТВО И ВИДОВОЙ СОСТАВ МИКРОМИЦЕТОВ В ЭКСПОЗИЦИОННЫХ ЗАЛАХ, ХРАНИЛИЩАХ И СИСТЕМАХ ОБЕСПЕЧЕНИЯ

МИКРОКЛИМАТА ГОСУДАРСТВЕННОГО ЭРМИТАЖА.

3.1. Количество и видовой состав микромицетов в экспозиционных залах и хранилищах.

3.1.1. Средства обеспечения микроклимата в

Государственном Эрмитаже.

3.1.2. Количество микромицетов в экспозиционных залах и хранилищах.

3.1.3. Видовой состав микромицетов, изолированных в экспозиционных залах и хранилищах.

3.2. Количество и видовой состав микромицетов в установках обеспечения микроклимата.

3.3. Микромицеты на предметах с признаками биоповреждений.

3.4. Исследование способности микромицетов развиваться в условиях низкой влажности.

4. ИССЛЕДОВАНИЕ ГРИБОСТОЙКОСТИ НЕКОТОРЫХ РЕСТАВРАЦИОННЫХ МАТЕРИАЛОВ И ПРОТИВОГРИБНОГО ДЕЙСТВИЯ БИОЦИДОВ, ВНЕДРЯЕМЫХ В РЕСТАВРАЦИОННУЮ ПРАКТИКУ.

4.1. Исследование грибостойкости реставрационных материалов.

4.2. Исследование эффективности биоцидов. выводы.:.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Микромицеты как потенциальные агенты биоповреждения культурных ценностей и стратегия защиты от них в Государственном Эрмитаже"

Актуальность темы. Биоповреждения произведений искусств наносят непоправимый ущерб культурному наследию. Защита памятников культуры от процессов деструкции, протекающих с участием грибов, является одним из важных направлений исследований в области биоповреждений материалов.

Первые исследования, связанные с биоповреждениями памятников культуры, появились еще в XIX и в первой половине XX в. (Goppert, 1860; Fry, 1922, 1927; Mel-lor, 1923). Изучение биодеструкции различных материалов стало особенно интенсивно развиваться начиная со второй половины XX в. (Громов, 1963; Благник, Зано-ва, 1965; Флеров, 1972; Горшин, 1977; Андреюк и др., 1980; Бочаров, 1984; Горлен-ко, 1984; Злочевская, 1984; Каневская, 1984; Ильичев и др., 1985; Allsopp, Seal, 1986; Лугаускас и др., 1987). В 1967 г. в СССР при Академии наук был создан Научный совет по биоповреждениям. Председателем совета был известный миколог и материаловед проф. Б.К. Флеров. В работе совета активно участвовали проф. М.В. Гор-ленко, Н.П.Наумов, В.Д.Ильичев и др. Как в нашей стране, так и за рубежом за прошедшие десятилетия были проведены многочисленные исследования биоповрежде-пия микроскопическими грибами самых различных материалов: древесины, бумаги, полимеров, тканей, строительных и горюче-смазочных материалов, фото- и кинопленок, косметики и пр. (Woodward, Namara, 1970; Нюкша, 1972; Ермилова, Каневская, 1977; Каневская, Лебедева, 1980, 1984; Ермилова и др., 1996, 1999, 2000; Лебедева, 1997; Корре, 2004; Abrusci et al., 2005).

Одновременно с изучением биоповреждения материалов накапливался материал, касающийся разрушения произведений искусств. Сведения о микромицетах, развивающихся на произведениях искусства, накапливались в течение десятилетий. Первоначальные работы были связаны, в основном, с аварийными ситуациями, однако во второй половине XX века микологические исследования постепенно стали частью разработки методов консервации культурных ценностей. Изучение проблемы биоповреждения музейных объектов проводилось по трем основным направлениям - это исследование микроорганизмов-деструкторов, разработка мер борьбы с ними и профилактика заражения (Bourcart et al., 1949; Tonolo, Giacobini, 1961, 1963; Wazny, 1965; Курицына, 1968; Нюкша, 1972, 1994; Szczepanowska, 1986; Krumbein, 1988; Caneva et al., 1991; Griffin et al., 1991; Florian, 1993; Gallo, 1993; Горбушина и др., 1996; Koestler et al., 1997; Ребрикова, 1999; Flieder, Capderou,1999; Blanchette, 2000; Власов и др., 2001; Karbowska-Berent, 2003; Nugari, Salvadori, 2003; Valentin, 2003).

Большинство имеющихся к настоящему времени сведений о биоповреждениях произведений искусств касается аварийных ситуаций, различного рода нарушений условий хранения, исследования археологических находок. Многие исследования выполнены на отдельных предметах или коллекциях. Накоплено множество сведений о негативном воздействии на материалы произведений искусств как мик-ромицетов, так и уничтожающих грибы обработок.

В последние годы, в связи с возросшим интересом к изучению микобиоты помещений, начались исследования микромицетов в воздухе библиотек и музеев. Микологические обследования крупных музейных зданий вне аварийных ситуаций, включающие анализ микобиоты помещений, вентиляционных систем, экспонатов, до сих пор не проводились. Между тем современный подход к сохранению культурного наследия требует разработки комплекса мер именно профилактического характера, частью которого должен стать микологический контроль.

Государственный Эрмитаж занимает шесть зданий, расположенных вдоль Невы в самом центре Санкт-Петербурга. В музейный комплекс входят также восточное крыло здания Главного штаба, Меныииковский дворец и недавно построенное

Фондохранилище в районе «Старая деревня». Почти за два с половиной столетия в Эрмитаже собрана крупнейшая коллекция, насчитывающая около трех миллионов произведений искусства и памятников мировой культуры, начиная с каменного века и до нашего столетия. Общая площадь зданий, расположенных вдоль Невы, составляет 187 тысяч кв.м, экспозиционно-выставочная площадь - 54 тысячи кв.м., площадь фондов - 32 тысячи кв. м. В музее эксплуатируются две системы отопления -воздушная и водяная, а также три системы кондиционирования воздуха.

Первые исследования микобиоты в Государственном Эрмитаже были проведены И.В. Мамоновой (1988), однако они не носили систематического характера и были связаны с биоповреждением отдельной коллекции. В настоящее время основной концепцией практической и исследовательской работы Лаборатории биологического и климатического контроля Государственного Эрмитажа является обеспечение защиты музейных коллекций методами превентивной консервации. Исследования в данной области открывают перспективы поиска эффективных мер, направленных на защиту произведений искусств от биоповреждений. В связи с этим изучение количества и видового состава микромицетов в зданиях Государственного Эрмитажа, а также изыскание и внедрение методов защиты, высокоэффективных против вредителей, безопасных для экспонатов и людей, представляют особенный интерес. Именно поэтому и было запланировано проведение нашей работы.

Цели и задачи исследования

Целями данной работы было изучение количества и видового состава микромицетов в помещениях, климатических установках и на предметах Государственного Эрмитажа, а также исследование безопасных и эффективных методов защиты произведений искусства от биоповреждений.

Для достижения поставленной цели были определены следующие задачи:

- определить видовой состав микромицетов в помещениях, в установках систем поддержания микроклимата и на предметах с признаками биоповреждений;

- выявить наиболее часто встречающиеся, доминирующие и приспособленные к условиям музея виды микромицетов;

- сравнить влияние разных способов обеспечения микроклимата на состояние мико-биоты помещений;

- оценить эффективность разных способов биоцидной обработки препаратами, внедряемыми в реставрационную практику.

Научная новизна

Впервые проведено комплексное обследование Государственного Эрмитажа -крупнейшего музейного комплекса, микроклимат в котором в целом неблагоприятен для развития микромицетов.

Проведена оценка влияния средств обеспечения микроклимата на заспорен-ность воздуха в музейных помещениях.

Обследованы установки обеспечения микроклимата в музее. Проведена сравнительная оценка антигрибных свойств 3 химических соединений при нанесении их различными способами - традиционным и ультразвуковым распылителем.

Практическая значимость

Результаты исследований могут быть использованы при решении теоретических и практических задач хранения и реставрации произведений искусства.

Установлены виды грибов, наиболее часто встречающиеся в условиях Государственного Эрмитажа. Определена численность грибов в некоторых залах и хранилищах музея.

Проведена оценка микобиоты внутри установок системы кондиционирования воздуха.

Инженерным службам музея рекомендовано регулярное обследование установок вентиляционных систем с участием специалиста-миколога.

Разработаны рекомендации по способам биоцидной обработки для хранителей реставраторов. Для обеспечения щадящего режима биоцидной обработки экспонатов предложено использование ультразвукового распылителя.

Апробация работы

Материалы диссертации доложены на Международной конференции реставраторов стран Балтики, Северной Европы и России в Вильнюсе (1993 г.); на 4-й Европейской конференции по материалам и технологиям (Санкт-Петербург, 1993 г.); на заседании Санкт-Петербургской гильдии реставраторов в Академии художеств (1995 г.); на 8-м Международном конгрессе по микологии и бактериологии (Иерусалим, 1996 г.); на 6-м Международном микологическом конгрессе (Иерусалим, 1998 г.); на 2-й Международной научно-практической конференции «Проблемы хранения, консервации и реставрации музейных ценностей» (Киев, 1999 г.); на семинаре Фонда сохранения художественного наследия (Санкт-Петербург, 2000 г.); на Международной научно-практической конференции «В новый век - с новыми технологиями» (Санкт-Петербург, 2000 г.); па Международной конференции «Грибы как источник опасности для культурных ценностей и людей» (Мюнхен, 2001 г.); на Международном конгрессе «Методы молекулярной биологии и художественное наследие» (Севилья; 2003 г.); на заседаниях секции биоповреждений РБО (2005 и 2007 гг.); на XV Конгрессе Европейских микологов (Санкт-Петербург, 2007 г.).

Публикации

По материалам диссертации имеется 16 публикаций.

Автор благодарит за руководство работой и постоянную помощь, внимание и советы своего научного руководителя, доктора биологических наук В.А. Мельника. Выражаю глубокую признательность кандидату биологических наук Елене Валентиновне Лебедевой за многолетнюю поддержку, консультации и большую помощь в проведении исследований. Выражаю искреннюю благодарность профессору В.Е. Крумбайну и доктору биологических наук А.А. Горбушиной за дружескую поддержку, советы и возможность выполнения исследований на сканирующем электронном микроскопе.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение Диссертация по теме "Микология", Смоляницкая, Ольга Львовна

ВЫВОДЫ

1. В результате исследования помещений Государственного Эрмитажа выделены и идентифицированы 85 видов грибов, относящиеся к 37 родам, 7 семействам, 5 порядкам, 6 классам из отделов Zygomycota, Ascomycota, Basidio-mycota, а также анаморфных грибов. Преобладающими среди них были виды родов Penicillium и Aspergillus. Остальные роды представлены 1 - 4 видами.

2. Расчеты частоты встречаемости и плотности популяции микромицетов в экспозиционных залах и хранилищах музея показали, что типичным доминирующим видом является Penicillium aurantiogriseum, часто встречающимися видами - Aspergillus versicolor, Cladosporium herbarum и Eurotium repens, с небольшими вариациями их количества в разных помещениях. Остальные виды микромицетов относятся к редким или случайным.

3. Сравнение численности микромицетов в залах, обслуживаемых различными средствами обеспечения микроклимата, показало, что количество микромицетов в этих залах различалось. В помещениях, оборудованных системой конЛ диционирования, среднее число микромицетов составляло 92 ±20.17 КОЕ/м ; в помещениях с воздухо-отопительной системой -122 ± 14.02 КОЕ/м3.

4. В экспозиционном зале, оборудованном системой кондиционирования воздуха, плотность популяции и частота встречаемости микромицетов Aspergillus versicolor и Eurotium repens была выше, чем в зале с воздухо-отопительной системой. Представленность Penicillium aurantiogriseum, наоборот, была выше в залах с воздухо-отопительной системой.

5. В пробах из установок обеспечения микроклимата выделено 48 видов грибов, относящихся к 24 родам из отделов Ascomycota, Zygomycota и анаморфных грибов. Проведенное обследование не выявило существенных различий в количестве и обилии микромицетов внутри установок воздухо-отопительной системы и системы кондиционирования воздуха. По обилию и частоте встречаемости в обеих системах доминировал Penicillium aurantiogriseum. По сравнению с результатами, полученными в залах, в пробах внутри установок было выявлено большее количество Eurotium repens.

6. Исследования показали, что вопреки некоторым ожиданиям, заспоренность воздуха в изученных помещениях не зависела от числа посетителей музея. Решающее влияние на качество воздуха оказывала вентиляция и ее интенсивность.

7. Опытным путем установлено, что способность развиваться в условиях низкой относительной влажности воздуха (69 %) присуща лишь Eurotium repens; при 78 % развивались Eurotium repens и Penicillium aurantiogriseum. Эти виды можно рассматривать как наиболее опасные при определенных условиях среды, которые могут сложиться в музейных помещениях.

8. Очагов видимых биоповреждений в обследованных помещениях не обнаружено. Исключение составило одно из помещений под Висячим садом, где на древесине были обнаружены колонии Aspergillus sp.

9. Изучение развития грибов Aspergillus flavus, A. niger, Cladosporium herbarum, Penicillium aurantiogriseum, P. chrysogenum, P. funiculosum, Trichoderma viride на используемых в реставрации полимерных соединениях (поливинилацетат, бутилметакрилат, кремнийорганическая смола К9), показало, что эти полимеры не обладают достаточной биостойкостью. Их применение должно в возможных случаях сочетаться с использованием четвертичных аммонийных или оловоорганических соединений.

10. Эксперименты по действию 1 и 2 % концентраций биоцидов Лизоформин, Септодор, Роцима 110 на микромицеты Aspergillus niger, A.versicolor, Chaetomium globosum, Fusarium culmorum, Penicillium aurantiogriseum, P. variabile, Trichoderma viride показали, что наиболее эффективным был препарат Роцима 110. Разные способы нанесения препаратов (кистью и при помощи ультразвукового распылителя) одинаковы по эффективности, однако распылитель обеспечивает бесконтактную, щадящую материал обработку.

11. Полученные в ходе многолетних исследований данные показывают, что положение с заспоренностью помещений и биоповреждениями культурных ценностей в Государственном Эрмитаже в целом благополучно. Количество выявленных в воздухе помещений музея микромицетов не превышало, а часто было гораздо ниже обычно отмечаемых показателей в помещениях другого назначения. Тем не менее, учитывая возраст зданий, гидрологические и геологические особенности грунта, климат и экологическую ситуацию в Санкт-Петербурге, необходимо вести постоянный контроль микологической безопасности музея. Такая профилактика в сочетании с применением в необходимых и возможных случаях биоцидных препаратов составляет концепцию стратегии защиты произведений искусств в Государственном Эрмитаже.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Мониторинг микобиоты музейных помещений - комплекс мероприятий, включающий наблюдения за состоянием помещений, предметов и средств обеспечения микроклимата. Проведенные исследования показали важность наблюдения за системами кондиционирования и вентиляции, оказывающими решающее влияние на состояние воздуха в Государственном Эрмитаже. Мы предполагаем вести постоянное наблюдение за работой систем, содержащих увлажняющие установки (системой кондиционирования и теплоцентрами новой конструкции). Это связано с тем, что, несмотря на то, что за период наших наблюдений система кондиционирования зарекомендовала себя в целом положительно, она остается потенциальным источником размножения микроорганизмов.

В Лаборатории биологического контроля Государственного Эрмитажа используется широкий арсенал средств борьбы с микроскопическими грибами, однако стратегия защиты произведений искусств от биоповреждений в музее заключается прежде всего в расширении спектра профилактических мероприятий. Изучение окружающей среды и поддержание оптимальных условий хранения произведений искусства - главные направления превентивной консервации в Государственном Эрмитаже.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Смоляницкая, Ольга Львовна, Санкт-Петербург

1. Антропова А.Б., Мокеева В.Л., Биланенко Е.Н., Чекунова Л.Н., Желтикова Т.М., Петрова-Никитина А.Д. Аэромикота жилых помещений г. Москвы // Микол. и фито-патол. 2003. Т. 37, вып. 6. С. 1-11.

2. Апрелева М.В., Никитин М.К. Грибные поражения памятников истории и культуры // Теория и практика сохранения книг в библиотеке. Сб. науч. тр. Л.: ГПБ, 1984. Вып. 12. С. 53-61.

3. Артамонова В.Г., Соболев А.В., Кириллов Ю.А. Микромицеты и профессиональные заболевания органов дыхания // Проблемы медицинской микологии. 2000. Т. 2, № 1. С. 17-21.

4. Богомолова Т.С., Васильева Н.В., Горшкова Г.И. Микобиота некоторых жилых помещений в Санкт-Петербурге и Ленинградской области // Проблемы медицинской микологии. 1999. № 3. С.41-42.

5. Большакова Т.Ф. Стабилизация и мониторинг окружающей среды в Государственном Эрмитаже как одно из направлений превентивной консервации // Эрмитажные чтения памяти Б.Б. Пиотровского. Тез. докл. СПб: Государственный Эрмитаж, 2003. С. 12-18.

6. Василевич В.И. Статистические методы в геоботанике. Л.: Наука, 1969. 232 с. Беликова Т.Д. Исследование биоцидного действия препарата «Септодор» фирмы «Дорвет ЛТД» на музейных культурах микромицетов // Микол. и фитопатол. 1999. Т. 33, вып. 6. С. 446.

7. Беликова Т.Д. Микроорганизмы в библиотеках // Защита документов от биоповреждения. СПб.: РНБ, 2005. С. 73-84.

8. Беликова Т.Д., Хазова С.С., Лебедева Е.В. Применение Metatin GT для обработки кожи // В новый век с новыми технологиями. Мат-лы научно-практической конф. СПб.: РНБ, 2000. С. 54- 56.

9. Воронина Л.И. Меры борьбы с плесневыми грибами на произведениях живописи // Сообщения ВЦНИЛКР. М., 1968. Вып. 20. С. 57-65.

10. Воронина Л.И. Некоторые сведения о грибах, разрушающих произведения живописи // Сообщения ВЦНИЛКР. М, 1969. Вып. 24-25. С. 103-104.

11. Днепровская М.Б., Яговкина М.А., Лебедева Е.В., Назаренко А.В. Причины разрушения красочного слоя настенных росписей Кинцвиси // Художественное наследие. 2000. Т.18. С. 73-79.

12. Егорова Л.Н. Почвенные грибы Дальнего Востока. Гифомицеты. Л.: Наука, 1986. 168 с.

13. Загуляева З.А. Дезинфекция библиотечных и архивных материалов токами высокой частоты // Сообщения ВЦНИЛКР. М., 1960. Вып. 2. С. 87-91.

14. Загуляева З.А. Микромицеты разрушители бумаги и некоторые меры борьбы с ними. Автореф. дисс. . канд. биол. наук. 1964.18 с.

15. Загуляева З.А., Азизова Г.Н. Защита реставрируемых документов от разрушения грибами как один из факторов, определяющих качество реставрации // Критерии оценки качества реставрации музейных художественных ценностей. Тез. докл. 1990. М.: ВНИИР. С. 71-72.

16. Защита архивных документов от биоповреждений: метод, рекомендации / Сост. Ж.В. Полякова. М.: Главархив СССР, ВНИИДАД, 1988. 63 с.

17. Злочевская И.В. Повреждение живописи микроорганизмами // Биоповреждения, методы защиты. М.: АН СССР, 1985. С. 131-138.

18. Злочевская И.В. Бактерии и грибы источники биоповреждений // Биоповреждения. Ред. В.Д. Ильичев. М.: Высш.шк., 1987. С. 41-87.

19. Ивантер Э.В., Коросов А.В. Введение в количественную биологию. Петрозаводск: ПетрГУ, 2003. 304 с.

20. Ильина В.Я., Богомолова Т.С., Чилина Г.А. Микоэкология больничных помещений // Современная микология в России. Первый съезд микологов. Тез. докл. М.: Национальная Академия Микологии, 2002. С. 54.

21. Ильичев В.Д. Биоповреждения как эколого-технологическая проблема // Биоповреждения. Ред. В.Д.Ильичев. М.: Высш.шк., 1987. С. 8-27.

22. Ильичев В.Д., Бочаров Б.В., Горленко М.В. Экологические основы защиты от биоповреждений. М., 1985.261 с.

23. Каневская И.Г. Биологическое повреждение промышленных материалов. JL: Наука, 1984. 232с.

24. Кобякова В.И. Консервация кожи: защита от микоповреждений // Мат-лы научно-практической конф. «Будущее прошлого: расширение доступа и сохранность коллекций». СПб., 2000. С. 72-79.

25. Коваль Э.З., Свидерский В.А., Сидоренко Л.И. Влияние экологических факторов на физиологические особенности грибов, вызывающих повреждения различных материалов // Экология. 1983. № 4. С. 64-65.

26. Лебедева Е.В., Назаренко А.В., Днепровская М.Б., Смоляницкая О.Л. Микроорганизмы разрушители настенной живописи церкви Св. Николая в с. Кинцвиси (Грузия) // Микол. и фитопатол. 1997. Т.31, вып.6. С.37- 42.

27. Литвинов М.Л. Методы изучения почвенных микроскопических грибов. Л.: Наука, 1969. 118 с.

28. Лопатина Т.Ф. Опыт борьбы с биоповреждениями в Музее Антропологии и Этнографии им. Петра Великого (Кунсткамера) // Мат-лы научно-практической конф. «Будущее прошлого. Расширение доступа и сохранность коллекций». СПб., 2000. С. 69-71.

29. Лугаускас А. Микромицеты окультуренных почв Литовской ССР. Вильнюс: Мокс-лас, 1988.263 с.

30. Лугаускас А.Ю., Микульскене А.И., Шляужене Д.Ю. Каталог микромицетов -биодеструкторов полимерных материалов. М.: Наука, 1987. 344 с. Мамонова И.В. Микофлора воздуха и экспонатов Эрмитажа // Микол. и фитопатол. 1988. Т. 22. вып. 5. С. 410-412.

31. Марфенина О.Е., Каравайко Н.М., Иванова А.Е. Особенности комплексов микроскопических грибов урбанизированных территорий // Микробиология. 1996. Т. 65. № 1. С. 119-124.

32. Марфенина О.Е. Антропогенная экология почвенных грибов. М.: Медицина для всех. 2005. 196 с.

33. Медведева Н.Г., Блинов Н.П., Борисова О.Г., Никитина И.П., Куликова И.Л. Действие ликводека на микромицеты контаминанты библиотечных фондов // Микол. и фитопатол. 2000. Т. 34, вып. 2. С. 53-58.

34. Мельникова Е.П., Смоляницкая О.Л., Славошевская Л.В. и др. Исследование био-цидных свойств полимерных композиций // Биоповреждения в промышленности: Тез. докл. Всесоюз. конф. Пенза, 1993. С. 18-19.

35. Методы экспериментальной микологии. Справочник. Ред. В.И.Билай. Киев: Наукова думка, 1982.550 с.

36. Митковская Т.И., Коваль Э.З. Микодеструкторы археологической керамики музеев Украины // Микол. и фитопатол. 2004. Т. 38, вып. 4. С. 27-33.

37. Новикова Г.М. Микромицеты, повреждающие музейную керамику: Автореф. дисс. . канд. биол. наук. 1989. 21 с.

38. Нюкша Ю.П. Биологическое повреждение бумаги и книг. СПб.: Библиотека РАН, 1994. 236 с.

39. Нюкша Ю.П., Степанова О.А. Производные фенола для защиты документов от повреждения микроорганизмами // Теория и практика сохранения книг в библиотеке. Сб. науч. тр. Л: ГПБ, 1986. Вып. 13. С.5-43.

40. Петрова-Никитина А.Д., Мокеева В.Л., Желтикова Т.М., Чекунова Л.Н., Антропова А.Б., Мокроносова М.А., Биланенко Е.Н., Сизова Т.П. Микобиота домашней пыли г. Москвы // Микол. и фитопатол. 2000. Т. 34. № 3. С.25-33.

41. Покровская Ю.В. Микромицеты на документах в библиотеках, архивах и музеях. Автореф. дисс. канд. биол. наук. 1995. 25 с.

42. Покровская Ю.В., Нюкша Ю.П. Сообщества микромицетов на документах в хранилищах разных регионов России и сопредельных стран // Микол и фитопатол. 1995. Т. 29, вып.З. С. 20-26.

43. Ребрикова Н.Л. Биологические повреждения живописи и методы их предупреждения. Микроскопические грибы // Технология, исследование и хранение произведений станковой и настенной живописи. Ред. Ю.И. Гренберг. М.: Изобразительное искусство, 1987. С. 290-308.

44. Ребрикова Н.Л. Исследование причин разрушения льняных бинтов египетской мумии. Микологическое обследование // Консервация и реставрация памятников истории и культуры. Исследование археологических тканей. Экспресс-информация. М.: РГБ, 1996. С. 1-3.

45. Ребрикова Н.Л. Биология в реставрации. М.: ГосНИИР, 1999. 184 с.

46. Ребрикова Н.Л. Эволюция взглядов на применение специфических антимикробных обработок произведений искусства за последние два десятилетия // Художественное наследие. 2003. Т.20, № 50. С. 68-75.

47. Ребрикова Н.Л., Дмитриева М.Б. Биологические разрушения настенной живописи и строительных материалов // Микроклимат церковных зданий. Москва: ГосНИИР, 2000. С. 69-72.

48. Ребрикова Н.Л., Дмитриева М.Б. Исследование рукописного пергамента, поврежденного микроорганизмами, методом электронной микроскопии // Художественное наследие. 2000. Т. 18. С. 36-40.

49. Ромейс В. Микроскопическая техника. М.: ИЛИ, 1953. 718 с.

50. Роскин Г.И. Микроскопическая техника. М.: Сов. наука, 1967.447 с.

51. Рунион Р. Справочник по непараметрической статистике: Современный подход. М.:

52. Финансы и статистика, 1982. 198 с.

53. Саттон Д., Фотергилл А., Ринальди М. Определитель патогенных и условно патогенных грибов. М.: Мир, 2001. 468 с.

54. Склярова О.А. Гембицкий П.А. Оценка грибостойкости бумаги, обработанной поли-гексаметиленгуанидинфосфатом // Теория и практика сохранения книг в библиотеке. Сб. науч. тр. СПб: РНБ, 1992. Вып. 16. С. 59-66.

55. Славошевская Л.В. Биоповреждения в музее // Мат-лы научно-практической конф. «Будущее прошлого. Расширение доступа и сохранность коллекций». СПб., 2000. С. 59-68.

56. Славошевская Л.В., Мельникова Е.П. Катапол в реставрации и защите художественных ценностей // Мат-лы 4-й Европейской конф. «Восток-Запад» по материалам и технологиям. СПб., 1993. С. 135.

57. Смоляницкая O.J1. Видовой состав микромицетов в некоторых экспозиционных залах и хранилищах Государственного Эрмитажа // Микол. и фитопатол. 2004. Т. 38, вып. 4. С. 51 -58.

58. Сэги Й. Методы почвенной микробиологии. М.: Колос, 1983. 296 с.

59. Флеров Б.К. Биологические повреждения промышленных материалов и изделий из них // Проблемы биологических повреждений и обрастаний материалов, изделий и сооружений. М.: Наука, 1972. С. 3-10.

60. Хазова С.С., Беликова Т.Д., Лебедева Е.В. Разрушение кожи микромицетами, выделенными из книгохранилищ // Мат-лы IV Междунар. конф. «Консервация памятников культуры в единстве и многообразии». СПб., 2003. С.61-67.

61. Харченко С.Н. Изучение антибиотических свойств грибов // Методы экспериментальной микологии. Справочник. Ред. В.И. Билай. Киев: Наукова думка. 1982. С. 269-287.

62. Шишкова Е.Г. Средневековая живопись из Хара-Хото в собраниях Государственного Эрмитажа. К вопросу реставрации и хранения // Мат-лы IV Междунар. конф. «Консервация памятников культуры в единстве и многообразии». СПб., 2003. С.90-92.

63. Шуленкова Е.И. Применение биоцидного препарата метатин GT для защиты документов от поражения микромицетами // Теория и практика сохранения памятников культуры. Сб. науч. тр. СПб.: ГПБ, 1998. Вып. 19. С. 87-92.

64. Abrusci С., Martin-Gonzalez, Del Amo A., Catalina F., Collado J., Platas G. Isolation and identification of bacteria and fungi from cinematographic films // Intern. Biodeter. Bio-degr. 2005. Vol. 56. P. 58-68.

65. Adams S., Kunz В., Weidenborner M. Mycelial deformations of Cladosporium herbarum due to the application of eugenol or carvacrol // Journal of Essential Oil Research. 1996. N 8. P. 535-540.

66. Allsopp D., Seal K. Introduction to Biodeterioration. Arnold E. (ed.). 1986. London. P. 113-115.

67. Alpert G.D., Alpert L.M. Integrated pest management: a program for museum environments // A Guide to museum pest control. Zycherman L.A., Schrock J.R. (eds.). Washington: Foundation of the AIC; Association of systematics collections. 1988. P. 169-173.

68. Arai H. Biological investigations. Wall paintings of the Tomb of Nefertari. Scientific studies for their conservation. Ed.: Corszo M.A. CA: The Getty Conservation Institute. 1984. P. 117-124.

69. Bonetti M., Gallo F., Magaudda G., Marconu C., Montanari M. Essais sur l'utilisation des rayons gammas pour la sterilization des materiaux libraries // Studies in Conservation. 1979. Vol. 24. P. 54-58.

70. Bourcart J., Noetzlin J., Pochon J. Etude des deteriorations des pierres des monuments his-toriques // Annales Inst. Techn. Batiment. 1949. 108. 4 16.

71. Braams J. Ecological studies on the fungal microflora inhabiting historical sandstone monuments. Promotionsschrift, Oldenburg. 1992. 128 p.

72. Briski F., Krstic D., Jagic R. Microbial species on a polychrome sculpture from a ruined church: evaluation of the microbiocide PBK against further biodeterioration // Studies in Conservation. 2001. Vol. 46. P. 14-22.

73. Brokerhof A.W. Control of fungi and insects in objects and collections of cultural value "a state of the art". Amsterdam: Central Research Labiratiry for Objects of Art and Science, 1989. P. 1-77.

74. Burge H.A., Pierson D.L., Groves Т.О., Strawn K.F., Mishra S.K. Dynamics of airborne fungal populations in large office building // Current Microbiology. 2000. Vol. 40. P. 1016.

75. Butterfield F.J.The potential long term effects of gamma radiation on paper // Studies in Conservation. 1987. Vol. 32. P. 181-191.

76. Caneva G., Nugari M.P., Salvadori O. Biology in conservation of works of art. Rome: IC-CROM, 1991. P. 26-43.

77. Cooke R.C., Whipps J.M. Ecophysiology of fungi. Blackwell Scientific Publ.: London, 1993.373 p.

78. Chew G.L., Douwes J., Doekes G., Higgins K.M., Strien R.V., Spithoven J., Brunekreef B. Fungal extracellular polysaccharides, beta (1-3) glucans and culturable fungi in repeated sampling of house dust // Indoor air. 2001. N. II. P. 171-178.

79. Chew G.L., Rogers C., Burge H.A., Muilenberg M.L.,Gold D.R. Dustborne and airborne fungal propagules represent a different spectrum of fungi with differing relations to home characteristics // Allergy. 2003. Vol. 58, Issue 1. P. 13-20.

80. De Hoog G.S., Guarro J., Gene J., Figueras M.J. Atlas of clinical fungi. CBS, Utrecht: Universitat Rovira i Virgili Reus, 2000. 1126 p.

81. Delfino R., Zeiger R., Seltzer J. The effect of outdoor fungal spore concentrations on daily asthma severity // Environ. Health Perspect. 1997. Vol. 105. P. 622-635.

82. Denyer S., Stewart G. Mechanism of action of disinfectants // Intern. Biodeter. Biodegr. 1998. Vol. 41. P. 261-268.

83. Ebner M.R., Haselwantedter К., Frank A. Seasonal variations of airborne fungal allergens //Mycological Res. 1989. V. 92. P. 170-176.

84. Ellis M.B. Dematiaceous Hyphomycetes. Kew: Commonw. Mycol. Inst., 1971. 607 p. Erhardt D., Mecklenburg M. Relative humidity re-examined // ICOM Committee for Conservation 10th Triennal Meeting. Washington, 1994. P. 32-38.

85. Filipello V., Caramiello R., Mariuzza L. Outdoor airborne fungi: sampling strategies // Aerobiologia. 1989. Vol. 5. P. 145-153.

86. Flannigan В., Beardwood K., Ricaud P.M. Growth and toxin production in moulds isolated from houses // Proc. 8th Intern. Congr. Biodeter. Bioderg. Canada: Windsor, 1990. P. 487489.

87. Flieder F. La concervation des documents graphiques. Paris: Recherches experimentales Eyrolles, 1969.288 р.

88. Flieder F., Capderou C. Sauvegarde des collections du patrimone. Paris: CNRS Editions, 1999. 256 p.

89. Flieder F., Rakotonirainy M., Leroy M., Fohrer F. Disinfection of paper using gamma rays, electron beams and microwaves // Proc. 3rd Intern. Conference on Biodeterioration of Cultural Property. Bangkok, 1995. P. 174-182.

90. Florian M.L. Conidial fungi (mould) activity on artifact materials a new look at prevention, control, and eradication // ICOM 10th Triennal Meeting. Washington, 1993. P. 868874.

91. Florian M.L. Heritage Eaters. Insects & Fungi in Heritage Collections. London: James & James, 1997. 160 p.

92. Gallo F., Botti L. Investigation of the fungicidal activity of sodium tetraborate and on its resistance to the biological attacks of a polyvinyl alcohol // Restaurator. 1984. Vol. 6. N 1/2. P. 1-20.

93. Gilbert M. Inert atmosphere fumigation of museum objects // Studies in Conservation. 1989. Vol. 34. P. 80-84.

94. Goppert H.R. Uber den EinfluB der Planzen auf felsige Unterlage // Flora (Jena). 1860, Vol. 11. P. 161-171.

95. Griffin P.S., Indictor N., Koestler R.J. The biodeterioration of stone: a review of deterioration mechanisms, conservation case histories and treatment // Intern. Biodeter. 1991. Vol. 28. P. 187-207.

96. Heyn Ch., Petersen K., Krumbein W.E. Microbial attack on synthetic polymers // Proc. Intern. Conf. "Fungi, A Threat for People and Cultural Heritage through Micro-Organisms". Stuttgart: Theiss, 2004. P. 208-214.

97. R.A., van Reenen-Hoekstra E.S. Utrecht: Centraalbureau voor schimmelcultures, 2002. P. 298-305.

98. Hun Yoon Young, Brimblecombe P. Contribution of dust at floor level to particle deposit within the Sainsbury Centre for Visual Arts // Studies in Conservation. 2000. Vol. 45. P. 127-137.

99. Jones A.M. Passive and active conservation of the hull timbers of the Mary Rose // Art, Biology, and Conservation. Biodeterioration of Works of Art. Ed.: Koestler R.J. 2002. New York: The Metropolitan Museum of Art. P. 12.

100. Korpi A., Pasanen A.-L., Pasanen P., Kalliokoski P. Microbial growth and metabolism inhouse dust // Intern. Biodeter. Biodegr. 1997. Vol. 40. Issue 1. P. 19-27.

101. Kowalik R. Microbiodeterioration of library materials // Restaurator. 1980. Vol.4 P.99114.

102. Krumbein W.E. Colour changes of building stones and their direct and indirect biological causes // Proc. of 7th Intern. Congr. on Deterioration and Conservation of Stone. Lissabon: LNEC, 1992. P. 443-452.

103. Krumbein W.E., Gorbushina A.A. Organic pollution and rock decay // Preservation and restoration of the cultural heritage. Ed: Pancella, R. Proc. of 1995 LPC Congress. Lausanne: EPFL, 1996. P. 277-284.

104. Marfenina O.E. The distribution of some opportunistic fungi in the urban ecosystems // III Intern. Mycol. Symp. "Pathogenesis, diagnostics and therapy of mycoses and mycogenic allergy". St. Peterburg, 1995. P. 86.

105. Marfenina O.E. Do we have the "microfungal risk" problem in urban ecosystems? // Proc. Intern. Conf. "Ecology of Cities". Rhodes, 1998. P. 299-305.

106. Mellor E. Lichens and their action on the glass and leadings of church windows // Nature. 1923. Vol. 112. P. 299-300.

107. Nielsen K.F. Mycotoxin production by indoor molds // Fung. Genet. Biol. 2003. Vol. 39. P. 103-117.

108. Rakotonirainy M.S., Flieder F. L'assainissement des aires de stockage par thermonebulisa-tion // Nouvelles de l'ARSAG, 1994. Vol. 10. P. 16-17.

109. Rakotonirainy M.S., Fohrer F., Flieder F. Research on fungicides for aerial disinfection by thermal fogging in libraries and archives // Intern. Biodeter. Biodegr. 1999. Vol. 44. P. 133-139.

110. Rakotonirainy M.S., Lavedrine B. Screening for antifungal activity of essential oils and related compounds to control the biocontamination in libraries and archives storage areas // Intern. Biodeter. Biodegr. 2005. Vol. 55. P. 141-147.

111. Ramiere R., Tran Q. Nucleart: nuclear techniques applied to art // Nucl. Europe. 1989. Vol. 7. P. 50.

112. Raper K.B., Fennell D.I., Austwik P.K. The genus Aspergillus. Florida: Robert E. Krieger Publishing Company, 1977. 686 p.

113. Raper K.B., Thom Ch., Fennell D.I. A manual of Penicillia. New York: Hafner Publishing Company, 1968. 875 p.

114. Raschle P. Experience of combating moulds during restoration of ceiling paintings in a Swiss baroque monastery church // Biodeterioration 5. Eds.: Oxley T.A., Barry S. New York, 1983. P. 427-433.

115. Rebrikova N.L. Study of microflora of museum textiles and methods of their disinfection and prophylaxis // 5th Triennal Meeting ICOM. Zagreb: ICOM Committee for Conservation. 1978. P.971-975.

116. Rifai A. Revision of he genus Trichoderma // Mycol. Papers. 1969. N 116. P. 1-56. Riley R.L. Indoor spread of respiratory infection by recirculation of air // Am. J. Epidem. 1979. Vol. 107. P. 421-432.

117. Sampo S., Mosca A.M.L. A study of the fungi occurring on 15th century frescoes in Florence, Italy // Intern. Biodeter. 1989. Vol. 25, N 5. P. 343-353.

118. Samson R.A., van Reenen-Hoekstra E.S. Introduction to food-borne fungi. Baarn: Cen-traalbureau voor schimmelcultures, 1988. 299 p.

119. Santoro E., Koetler R. A methology for biodeterioration testing of polymers and resins // Intern. Biodeter. 1991. Vol. 28. P.81-90.

120. Savulescu A., Ionita I. Contributions to the study of the Biodeterioration of the works of art and historic monuments. Species of fungi isolated from frescoes // Revue Roumaine de Biologie. 1971. Vol.16. P. 201-206.

121. Scott W. J. Water relations of food spoilage microorganisma // Advances in Food Research. 1957. Vol. 7. P. 83-127.

122. Scott G. Moisture, ventilation and mould growth // ICOM Committee for Conservation 9th Triennal Meeting. London: James and James, 1990. P. 149 -153.

123. Sterflinger K. Geomicrobiological investigations on the alteration of marble monuments by dematiaceous fungi (Sancutuary of Delos, Cyclades, Greece). Promotionsschrift, Oldenburg, 1995. 137 p.

124. Strang Т., Dawson J. Controlling museum fungal problem // Technical bulletin №12. Ottawa: Canadian Conservation Institute, 1991. P. 1-8.

125. Szczepanowska H. Biodeterioration of art obiects on paper // The Paper Conservator. 1986. Vol.10. P. 31-39.

126. Koestler V.H., Charola E., Nieto-Fernandes F. New York: The Metropolitan Museum of Art, 2003. P. 426-437.

127. Tonolo A., Giacobini C. Microbiological changes on frescoes // Contributions to the IIC Rome Conference. 1961. P. 62-64.

128. Tonolo A., Giacobini C. Microbiological changes on frescoes // Recent Advances in Conservation. London: Butterworth, 1963. P. 62-64.

129. Van der Molen J., Garty J., Aardema B.W., Krumbein W. Growth control of algae and cyanobacteria on historical monuments by a mobile UV unit (MUVI) // Studies in Conservation. 1980. Vol. 25. P. 71-77.

130. Valentin N. Comparative analysis of insect control by nitrogen, argon and carbon dioxide in museum, archive and herbarium collections // Intern. Biodeter. Biodegr. 1993. Vol. 32. P. 263-278.

131. Valentin N. Microbial contamination in museum collections: Organic materials // Molecular Biology and Cultural Heritage. Ed.: Saiz-Jimenez C. Netherlands: Lisse, Swets & Zeitlinger, 2003. P. 85-91.

132. Valentin N., Garcia R., de Luis O., Maekawa S. Microbial Control in archives, libraries and museums by ventilation systems // Restaurator. 1998. Vol.19. P. 85-107.

133. Valentin N., Garcia R., Ibanez J.L., Maekawa S. Air ventilation for arresting microbial growth in Archieves // Quatriemes Journeees Internationales d'Etudes de l'ARSAG. Paris, 2002. P. 139-150.

134. Verhoeff A.P., Burge H.A. Health risk assessment of fungi in home environments // Ann. Allergy Asthma Immunol. 1997. Vol. 78. P. 544-554.

135. Verhoeff A.P., Wijnen J.H., Boleij J., Brunekreef В., Reenen-Hoekstra E.S., Samson R.A. Enumeration and identification of airborne viable mould propagules in houses // Allergy. 1990. Vol.45. P. 275-284.

136. Weirich G. Untersuchungen bei Microorganismen von Wandmalereien // Material und Or-ganismen. 1989. V. 24. S. 139-159.

137. Wellheiser J. Non chemical treatment processes for disinfestations of insects and fungi in libraries collections // IFLA Publications. 1992. N 60. P. 5-7.

138. Woodward C.R., Namara T.F. Microbiological consideration of cosmetic emulsions // Amer. Perfum. and Cosmet. 1970. N 85. P. 73-76.

139. Wollenzien U., de Hoog G.S., Krumbein W.E., Urzi C. On the isolation of microcolonial fungi occuring on and in the marble and other calcareous rocks // Scien. Tot. Environm. 1995. Vol. 167. P. 287-294.