Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Исследование механизмов развития окислительного стресса при воспалительных процессах

ВАК РФ 03.00.04, Биохимия

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Зенков, Николай Константинович

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ . б

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Механизмы возникновения биохемилюминесценции.

1.1.1. Свечение сыворотки- и плазмы крови .141.2. Хемилюминесценция фагоцитирующих клеток

1.2.1. Фагоциты как источник активных форм кислорода

1.2 .2. Механизмы ХЛ фагоцитирующих клеток

1.2.3. Активаторы и ингибиторы ХЛ фагоцитов

1.3. Окислительный стресс при воспалении

1.3.1. Альтерация

1.3.2. Экссудация

1.3.3. Цитотоксическое действие АКМ

1.3.4. Репарация, апоптоз и пролиферация

Глава 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ.

2.1. Среды, реактивы, люминофоры

2.2. Оборудование

2.3. Объекты исследования

2.4. Регистрация БХЛ и ХЛ.

2.5. Анализ данных

ГЛАВА 3. ИССЛЕДОВАНИЕ РАДИКАЛЬНЫХ ОКИСЛИТЕЛЬНЫХ ПРОЦЕССОВ

В СИСТЕМАХ IN VITRO

3.1. Влияние кислорода на метаболическую активность фагоцитирующих клеток

3.2. Действие макрофаг-активирующего фактора.

3.3. Изменение окислительного метаболизма макрофагов при культивировании с модифицированными ЛНП

ГЛАВА 4. ХЕМИЛЮМИНЕСЦЕНЦИЯ ГРАНУЛОЦИТОВ КРОВИ ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ПРОЦЕССАХ У ЖИВОТНЫХ.

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

АТФ - аденозинтрифосфат БА - бронхиальная астма БХЛ - биохемилюминесценция ГПО - глутатионпероксидаза (КФ 1.11.1.9) Г-КСФ - гранулоцитарный колониестимулирующий фактор ГМ-КСФ - гранулоцитарно-моноцитарный колониестимулирующий фактор

ИБС - ишемическая болезнь сердца ИЛ - интерлейкин

ЛНП - липопротеины низкой плотности МАФ - макрофаг-активирующий фактор МДА - малоновый диальдегид

МПО - миелопероксидаза (Н202-оксидоредуктаза, КФ 1.11.1.7) НАД+, НАДН - никотинамидадениндинуклеотид окисленный, восстановленный НАДФ+, НАДФН - никотинамидадениндинуклеотидфосфат окисленный, восстановленный НСТ - нитросиний тетразолий ПОЛ - перекисное окисление липидов

СОД - супероксиддисмутаза (супероксид оксидоредуктаза,

КФ 1.15.1.1) ФАД - флавинадениндинуклеотид ФМА - форболмиристатацетат ФМН - флавинмононуклеотид ФИО - фактор некроза опухоли ХБ - хронический бронхит ХЛ - хемилюминесценция

ХНЗЛ - Хронические неспецифические заболевания легких - формил-метионил-лейцил-фенилаланин

CoQ - коэнзим Q

GSSG - окисленный глутатион

GSH - восстановленный глутатион

Н202 - перекись водорода

НОС1 - гипохлорная кислота

N0' - оксид азота (нитроксильный радикал)

С>2 - супероксидный анион-радикал

ОН' - гидроксильный радикал

R0' - алкоксильный радикал

R02 , ROO' - перекисный радикал (радикал органической гидроперекиси) ROOH - органическая гидроперекись

Введение Диссертация по биологии, на тему "Исследование механизмов развития окислительного стресса при воспалительных процессах"

В организмах человека и животных постоянно протекают реакции с участием высокореакционных активированных кислородных метаболитов (АКМ: , ОН", Н202, N0' и др.), на образование которых у животных и человека расходуется от 5 до 10% потребляемого кислорода [144]. Высокий уровень продукции АКМ может быть причиной их цитотоксического действия в отношении клеток и тканей организма [11]. Для защиты от АКМ в организмах служит многоуровневая система антиоксидантов -соединений, снижающих концентрацию АКМ или ингибирующих окислительные реакции с их участием. Изменение баланса продукции АКМ и активности антиоксидантной защиты, приводящее к усилению деструктивных процессов, получило в последние годы название "окислительный стресс" [297].

Начальный период исследования окислительных процессов с участием АКМ был значительно осложнен отсутствием адекватных методов их регистрации. В 1961 году Б.Н.Тарусовым и сотрудниками было обнаружено явление биохемилюминесценции тканей различных органов животных в оптическом диапазоне (360 -г 800 нм) длин волн [18] . Последующие исследования, проведенные на клеточном, субклеточном и молекулярном уровнях, привели к заключению, что свечение возникает в результате рекомбинации перекисных радикалов липидов и ненасыщенных жирных кислот [10,46]. Регистрация собственной биохемилюминесценции позволила исследователям изучать свободнора-дикальные окислительные процессы с участием АКМ. В 1972 году R.C.Alien впервые описал усиление биохемилюминесценции при стимуляции фагоцитирующих клеток и связал ее с продукцией АКМ [72]. Выяснилось, что микробицидная функция фагоцитов, осуществляющих защиту ортанизма от бактериальных инфекций, во многом зависит от способности клеток нарабатывать АКМ, при этом снижение продукции АКМ ослабляет неспецифический иммунитет и может являться причиной бактериального инфицирования.

В настоящее время развитие окислительного стресса показано при многих бронхо-легочных и сердечно-сосудистых заболеваниях, воспалительных и аутоиммунных процессах [195] . Исследования, проведённые в последнее десятилетие, показали, что АКМ являются не только цитотоксическими молекулами, но и участвуют в регуляции многих биохимических и физиологических процессов на всех уровнях: от регуляции активности внутриклеточных ферментов до нервной регуляции сократительной функции желудка и внешнего дыхания. Окислительные реакции с участием АКМ не только влияют на течение патологического процесса, но и могут являться причиной его хронизации, в частности при воспалении [43], что делает актуальным изучение причин и механизмов развития окислительного стресса.

Целью настоящего исследования явилось изучение молеку-лярно-клеточных механизмов развития окислительного стресса при воспалительных процессах.

Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:

1. Создать комплекс измерительных устройств для изучения биохемилюминесценции культур клеток и свечения с поверхности тела человека.

2. На культурах фагоцитирующих клеток в условиях, моделирующих их' состояние в организме, изучить особенности окислительного метаболизма.

3. Исследовать изменение показателей ХЛ ответа гранулоцитов в динамике типовых экспериментальных воспалительных процессов у животных,

4. С помощью комплекса БХЛ и ХЛ методов исследовать прооксидантные и антиоксидантные параметры окислительного стресса у людей с хроническими воспалительными заболеваниями разной локализации.

5. Изучить биохемилюминесценцию с поверхности тела человека и возможности ее диагностического применения.

Научная новизна. Посредством изучения ХЛ фагоцитирующих клеток с разными люминофорами впервые показано, что продукция гипогалоидов и супероксидного радикала в разной степени зависит от содержания кислорода в культуральной среде. В отличие от НАДФН-оксидазы, активность которой снижается при концентрациях 02 в культуральной среде меньше 100 мкМ, наработка гипогалоидов гранулоцитами сохраняется даже при концентрациях 02 меньше 5 мкМ. Макрофаг-активирующий фактор, выделяемый митоген-стимулированными лимфоцитами, снижает продукцию супероксидного радикала, и одновременно усиливает образование других форм АКМ, вызывающих ХЛ люминола. Культивирование макрофагов с модифицированными ЛНП приводит к накоплению в клетках свободного и эстерифицированного холестерина и сопровождается снижением спонтанной ХЛ с люци-генином, отражающей внутриклеточную продукцию О митохондриями; интенсивность зимозац-усиленной ХЛ не изменялась, что указывает на сохранение функциональной активности НАДФН-оксидазы.

На экспериментальных моделях патологических процессов у животных показано, что изменение ХЛ ответа гранулоцитов крови отражает развитие воспаления мононуклеарного типа (зимозан-индуцированное воспаление); при экссудативном поражении легких в условиях гипероксии XJI ответ не изменялся.

Исследование параметров окислительного стресса при хронических неспецифических заболеваниях легких (XH3JI), ишемической болезни сердца (ИБС) и язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки показало, что степень тяжести патологического процесса сопряжена с выраженностью дисбаланса окислительных процессов и систем их детоксикации.

Впервые исследована собственная БХЛ с поверхности тела человека, изучен спектральный состав излучения. Показано, что у больных ХНЗЛ наблюдается усиление свечения в области груди и изменяется соотношения интенсивностей БХЛ различных участков тела (грудь/ладонь).

Практическая значимость. Разработан комплекс БХЛ и ХЛ методов оценки параметров окислительного стресса, включающий в себя определение: а) метаболической активности гра-нулоцитов крови, б) опсонической активности сыворотки, в) активности процессов ПОЛ в сыворотке, г) суммарной антиокислительной активности сыворотки. Показана возможность выполнения комплекса методов в микроварианте с использованием 0,1 мл крови.

Положения, выносимые на защиту.

1. Условия, моделирующие состояния фагоцитирующих клеток в организме (содержание кислорода, действие цитокинов, захват модифицированных липопротеинов), в значительной степени определяют основные механизмы генерации АКМ и ХЛ ответ клеток в присутствии разных люминофоров и стимуляторов, изучение которых позволяет более адекватно прогнозировать пути развития окислительного стресса in vivo.

2. У животных в условиях индукции типовых патологических процессов макрофаги примируют гранулоциты крови, в результате чего воспаление мононуклеарного типа сопровождается изменением ХЛ ответа клеток, в то время как при воспалении экссудативно-деструктивного типа такие изменения не наблюдаются.

3. С помощью комплекса БХЛ и ХЛ методов показано развитие окислительного стресса при хронических заболеваниях воспалительной этиологии (ХНЗЛ, ИБС, язвенная болезнь). Степень тяжести патологического процесса сопряжена с изменением параметров окислительного стресса.

4. Интенсивность собственной БХЛ с поверхности тела человека находится в интервале 10 до 50 фотон/схем2, максимум свечения лежит в синей области спектра (360-420 нм) . При ХНЗЛ повышается свечение в области груди, что указывает на возможность применения БХЛ в целях клинической диагностики.

Апробация работы. Результаты работы были представлены и обсуждены на Всесоюзной конференции "Био-хемилюминесценция" (Красноярск, 1983); школе-конференции молодых ученых "Актуальные вопросы патофизиологии" (Новосибирск, 1985); IV Всесоюзной конференции по патологии клетки (Москва, 1987); Всесоюзном семинаре "Гомеостатика живых и технических систем" (Иркутск, 1987); III Всесоюзном совещании по хемилюми-несценции (Рига, 1990); Всесоюзной школе-семинаре "Био-термо-хемилюминесценция" (Суздаль, 1990); Всесоюзном симпозиуме с международным участием "Патогенез хронического воспаления" (Новосибирск, 1991); научно-практической конференции "Биохемилюминесценция. Практическое применение" (Москва, 1991); Международном симпозиуме по аллергологии и клинической иммунологии (Алма-Ата, 1992); I съезде иммунологов России (Новосибирск, 1992); II съезде физиологов Сибири и

11

Дальнего Востока (Новосибирск, 1995); симпозиуме, посвященном 110-летию со дня рождения H.H. Аничкова (Санкт-Петербург, 1995); 6 Национальном Конгрессе по болезням органов дыхания (Новосибирск, 1996).

По материалам диссертации опубликовано 20 научных работ .

Заключение Диссертация по теме "Биохимия", Зенков, Николай Константинович

выводы

1. Условия ишемии, возникающие при развитии воспалительного процесса, не оказывают существенного влияния на кислород-зависимую цитотоксичность гранулоцитов; продукция О2 мембрансвязанной НАДФН-оксидазой макрофагов снижается при концентрациях 02 в среде меньше 100 мкМ, что указывает на изменение иммунорегуляторной роли клеток.

2. Макрофаг-активирующий фактор, выделяемый стимулированными лимфоцитами, дозозависимо снижает продукцию 0^ пе-ритонеальными макрофагами и люцигенин-усиленную ХЛ, но усиливает продукцию других форм АКМ, инициирующих ХЛ люминола, что может лежать в основе повышения цитотоксичности клеток.

3. Захват макрофагами модифицированных ЛНП приводит к снижению продукции О^ митохондриями и спонтанной ХЛ, при этом способность клеток к развитию дыхательного взрыва не изменяется, что указывает на сохранение их цитотоксического потенциала с одновременным угнетением энергозависимых функций .

4. Функциональное состояние циркулирующего в крови пула гранулоцитов регулируется макрофагами, в результате чего при мононуклеарном воспалении наблюдается примирование по-лиморфноядерных лейкоцитов, в то время как воспаление экс-судативно-деструктивного типа (окислительное поражение легких в условиях гипероксии) не сопровождается изменением метаболической активности гранулоцитов.

5. При хронических заболеваниях воспалительной этиологии (ХНЗЛ, ИБС, язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки) наблюдается развитие "окислительного стресса", что проявляется в усилении способности гранулоцитов крови к генерации АКМ (0^, Н202/ НОС1), интенсификации процессов ПОЛ

131 генерации АКМ (О;, Н202, НОС1), интенсификации процессов ПОЛ в сыворотке с одновременным снижением ее антиокислительной активности. Обнаружено, что степень тяжести патологического процесса сопряжена с выраженностью дисбаланса окислительных процессов и систем их детоксикации.

6. Интенсивность собственной биохемилюминесценции с поверхности тела человека лежит в диапазоне от 10 до 50 о квант/секхсм , максимум свечения находится в синей области спектра (380-420 нм) . У больных ХНЗЛ усиливается свечение в области груди, что делает перспективным изучение механизмов данного явления с целью разработки новых диагностических критериев.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Зенков, Николай Константинович, Новосибирск

1. Барабой В.А., Орел В.Э. Свечение движущейся по сосудам крови связано с трибоэлектризацией клеток крови //Доклады АН УССР.- 1983.- № 2.- С.62-65.

2. Барабой В.А., Брехман И.И., Голоткин В.Г. Кудряшов Ю.Б. Перекисное окисление и стресс.- Санкт-Петербург: Наука, 1992.- 149 с.

3. Барсуков A.A., Ярцев М.Н., Безносенко С.А. и др. Хемотаксис и образование активных форм кислорода нейтрофилами детей с синдромом гипериммуноглобулинемии Е //Иммунология.- 1985.- № 6.- С.68-71.

4. Барсуков A.A., Земсков В.М., Безносенко С.А. Анализ функциональной активности макрофагов при адгезии //Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.- 1986.- № 1.- С.3-8.

5. Белоцкий С.М., Филюкова О.Б., Пашутин С.Б. и др. Хемилю-минесценция нейтрофилов человека под действием условнопа-тогенных микробов //Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.- 198 6.- № 3.- С.8 9-92.

6. Биленко М. В. Ишемические и реперфузионные повреждения органов.- М. : Медицина, 1989.- 368 с.

7. Васильева Г.И., Киселева А.К., Рублев Б.Д и др. Тканевая гетерогенность системы мононуклеарных фагоцитов при взаимодействии с Yersinia pestis //Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.- 1990.- № 11.- С.75-78.

8. Владимиров Ю.А., Крейнина М.В., Клебанов Г. И. и др. Влияние окисленных фосфолипидов липосомальных мембран на активность полиморфноядерных лейкоцитов крови //Биол. мембраны.- 1988.- Т.5, № 11.- С.1192-1198.

9. Владимиров Ю.А. , Шерстнев М.П. Хемилюминесценция клеток животных //Итоги науки и техники. Сер. Иммунология.-М., 1989.- Т.26.- С.1-176.

10. Владимиров Ю.А., Азизова O.A., Деев А.И. и др. Свободные радикалы в живых системах //Итоги науки и техники. Сер. Биофизика.- Т.29.- М., 1991.- С.1-24 9.

11. Вольский H.H., Кашлакова Н.В., Козлов В.А. Влияние супероксидного радикала на пролиферацию лимфоцитов, стимулированную митогеном //Цитология.- 1988.- Т.30, № 7.1. D Q Q Q Л О

12. Говорова Н.Ю., Лызлова С.Н., Шаронов Б.П., Янковский О.Ю. Особенности хемилюминесценции люминола, возбуждаемой при каталитическом действии миелопероксидазы // Биохимия.- 1987.- Т.52, № 10.- С.1670-1676.

13. Гусев В.А., Даниловская Е.В. Роль активных форм кислорода в патологии пневмокониозов //Вопр. мед. химии.-1987.- № 5.- С.9-15.

14. Гуткин B.C., Горбатов В.А., Востряков А.П., Кадошников В.И. Бактерицидная активность и хемилюминесценция моно-нуклеарных фагоцитов животных //С.-х. биология.- 1986.-№ 6.- С.78-86.

15. Гущин И.С., Цынкаловский О.Р. Система свободных радикалов и активация клеток-мишеней аллергии //Патол. физиология и эксперим. терапия.- 1990.- № 6.- С.3-10.

16. Журавлев A.И., Журавлева A.И. Сверхслабое свечение сыворотки крови и его значение в комплексной диагности™ ке.= М.: Медицина, 1975.

17. Журавлёв А.И. Развитие идей Б.Н. Тарусова о роли цепных процессов в биологии //Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии.- М. : Наука, 1982.п Ъ — 1-7 С . О > I .

18. Журавлев А.И. Спонтанная биохемилюминесценция животных тканей //Биохемилюминесценция.- М: Наука, 1983.- С.З-30.

19. Земсков В.М. Электронно-цитохимический анализ процессов, протекающих при фагоцитозе у макрофагов //Фагоцитоз и иммунитет.- М., 1983.- С.98.

20. Зенков Н.К., Меньшикова Е.Б., Шергин С.М. Биохимия окислительного стресса. Оксиданты и антиоксиданты.- Новосибирск, 1994.- 203 с.

21. Зурочка A.B. Влияние различных фракций нейтрофилокинов на фагоцитирующие клетки //Факторы клеточного и гуморального иммунитета при различных физиологических и патологических состояниях.- Челябинск, 1988.- С.50.

22. Казначеев C.B., Молчанова JI.B. Свет в жизни природы и человека.- Новосибирск, 1998.- 238 с.

23. Калиниченко И.Е., Пилипенко А.Т., Ткачук Т.М. Сравнение различных способов очистки люминола в связи с его применением в хемилюминесцентном анализе //Журн. аналит. химии.- 1982.- № 2.- С.213-215.

24. Калмыков C.B., Романовская В.Г. Фиалковский В.И. Люми-нолзависимая хемилюминесценция лейкоцитов цельной крови больных инфарктом миокарда //Лаб. дело.- 198 9.- № 11.1. С . / Z — / ч .1 Г}п -L J J

25. Кетлинский С.А., Симбирцев A.C., Воробьев A.A. Зндогент ir TV-y т-гтт т ^Ti jm т тт i-r m лт-it^t f —- TT f-^. . I' "Пт* г-т п r-i m ïi Я О Q Оjnca^ VXJVlJxiy Г1. WJ.VJ.W Д У Ji^l l OpDl . — -L У1XX11UCl -L , L J/Z- •

26. Клебанов Г.И., Крейнина М.В., Позин В.M. и др. Динамика изменения функциональной активности полиморфноядерных лейкоцитов крови при обратимой ишемии миокарда у собак //Бюл. эксперим. биологии и медицины.- 1988.- № 9.-С.297-299.

27. Климов А.Н., Никульчева Н.Г. Липиды, липопротеиды и атеросклероз.- С-Пб: "Питер", 1995.- 298 с.

28. Комаров Ф.И., Родбиль О.С. Некоторые новые данные о патогенезе, клинике и лечении язвенной болезни.- М. : "Медицина", 1978.- 185 с.

29. Куликов В.Ю., Семенюк A.B., Колесникова Л.И. Перекисное окисление липидов и холодовой фактор.- Новосибирск: "Наука", 1988.- 192 с.

30. Куликова Л.А., Мамонтова Л.В., Каменская В.В. и др. Использование хемилюминометрического показателя в терапевтической клинике //Биохемилюминесценция.- М:.:Наука, 1983.- С.196-209.

31. Ланкин В.З., Вихерт A.M., Косых В.А. и др. Ферментативная детоксикация супероксидного анион-радикала и липо-пероксидов в интиме и медии аорты при атеросклерозе //Бюл. эксперим. биологии и медицины.- 1982.- № 9.-С.48-50.

32. Ланкин В.З., Вихерт A.M., Тихазе А.К. и др. Роль пере-кисного окисления липидов в этиологии и патогенезе атеросклероза //Вопр. мед. химии.- 1989.- № 3.- С.18-24.

33. Лебедев A.B., Коренева Л.Г., Лунин Е.Е. и др. Индуцированная УФ-облучением люминесценция интактной кожи человека //Биофизика.- 1989.- № 5.- С.858-862.1 -з а1. Л. V

34. Ломакин М.С. Иммунологический надзор.- М.:Медицина,1990.- 256 с.

35. Лопухин Ю.М., Владимиров Ю.А., Молоденков М.Н. и др. Регистрация хемилюминесценции составных частей сыворотки крови в присутствии двухвалентного железа //Бюл. эксперим. биологии и медицины.- 1983.- № 2.- С.61-63.

36. Маянский А.Н., Невмятуллин А.Л., Маянская И.В., Зелено-ва Е.Г. Структурные и функциональные аспекты прямого взаимодействия бактерий с фагоцитами //Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.- 198 6.- № 4.-С.90-96.

37. Маянский А.Н., Невмятуллин А.Л., Чеботарь И.В. Реактивная хемилюминесценция в системе фагоцитоза //Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.- 1987.- № 7.- С.109-115.

38. Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге.- Новосибирск: Наука, 1989.

39. Маянский А.Н. Кондиционирование нейтрофила //Успехи соврем. биологии.- 1990.- Т.109, вып.1.- С.90-105.

40. Маянский Д.Н. Хроническое воспаление.- М. : Медицина,1991.- 272 с.л о 1 о .

41. Меньщикова Е.Б., Зенков Н.К. Окислительный стресс при воспалении //Успехи соврем, биологии.- 1997.- Т.117, в ып • 2 . ~~ С • 15 Ъ 171.

42. Новиков Д.К., Новикова В.И. Клеточные методы иммуно

43. ТТТ^Г -1—I ТТ г—> ГПТ* ТУ Т./Г Мт)Г7 Т Т/1 1 ОП dдиах'пи^ тили . — Luj/irn^xv , / у .

44. Осипов A.H., Якутова Э.И1., Владимиров Ю.А. Образование гидроксильных радикалов при взаимодействии гипохлорита с ионами железа //Биофизика.- 1993.- Т.38, вып.З.-С.390-396.

45. Палеев K.P., Царькова Л.Н., Ворохов А.И. Хронические неспецифические заболевания легких.- М.:Медицина,1985.-240 с.

46. Панин Л.Е. Биохимические механизмы стресса.- Новосибирск: Наука, 1983.- 233 с.

47. Поликар А. Воспалительные реакции и их динамика.- Новосибирск: Наука, 1969.- 232 с.

48. Реутов В.П., Сорокина Е.Г., Охотин В.Е., Косицын Н.С. Циклические превращения оксида азота в организме млекопитающих.- М.: Наука, 1997,- 156 с.

49. Сергеев П.В. Духанин A.C., Патрашев Д.В., Никитин В.Б. Молекулярные механизмы реализации начальных этапов глю-кокортикоид-индуцированного апоптоза тимоцитов //Иммунология.- 1998.- № 1.- С.18-21.

50. Сидорова Л.Д., Шанин И.А., Логвиненко A.C., Закирова H.A. Неспецифические заболевания легких в условиях Западной Сибири.- Новосибирск:Наука, 1984.- 222 с.

51. Скулачев В.П. В своем межмембранном пространстве митохондрия таит "белок самоубийства", который, выйдя в ци-тозоль, вызывает апоптоз //Биохимия.- 1997.- Т.61, № 11.- С.2060-2063.

52. Смирнов C.B., Сухарев С.А., Шадрин Б.П., Садовников

53. B. Б. Ингибирование нормальной сывороткой крови восста-ыовления нитросинего тетразолия фагоцитирующими клетками //Иммунология.- 1989.- № 6,- С.35-39.

54. Сходова С.А., Ляшенко В.А., Мартынов А.И., Михайлова A.A. Влияние миелопептидов на фагоцитоз и хемилюминес-ценцию макрофагов //Иммунология.- 1990.- № 2.- С.35-37.

55. Тартаковский И.С., Белый Ю.Ф., Прозоровский C.B. Механизмы внутрифагоцитарного паразитизма легионелл и других бактерий //Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.- 1989.- № 12.- С.93-100.

56. Тарусов Б.Н., .Иванов И.И., Петрусевич Ю.М. Сверхслабое свечение биологических систем.- М. : Изд-во МГУ, 1967.69 с.

57. Токмаков A.A., Васильев В.Ю. Влияние экзогенной перок-сидазы на интенсивность люминолзависимой хемилюминес-ценции макрофагов //Цитология.- 1990.- Т.32,№ 9.1. C.888-892.

58. Фрейдлин И.С. Система мононуклеарных фагоцитов.- М. : Медицина, 1984.-253 с.

59. Черепанова Е.А., Тузов М.Ю., Гордиенко С.М. Хемилюми-несценция очищенном популяции гранулоцитов и дельной крови. Действие различных факторов //Лаб. дело.- 1987.-№ 8.- С.610-614.

60. Шарманов А.Т., Айдарханов Б.В., Курмангалиев С.М. Влияние витамина Е на окислительный метаболизм макрофагов //Бюл. эксперим. биологии и медицины.- 1986.- № 6.

61. П "7 О "5 т о с, ч^ • / I ¿L •

62. Шаронов Б.П., Говорова Н.Ю. Антиокислительные свойства и деградация белков сыворотки активными формами кислорода (02, ОС1") , генерируемыми стимулированными нейтро-филами //Биохимия.- 1988.- Т.53,№ 5.- С.816-825.

63. Шаронов Б.П., Чурилова И.В. Окислительная модификация и инактивация супероксиддисмутазы гипохлоритом //Биохимия.- 1992.- Т.57, вып.5.- С.719-727.

64. Шерстнев М.П., Атанаев Т.Б., Владимиров Ю.А. Активированная родамином Ж хемилюминесценция плазмы крови в присутствии ионов двухвалентного железа //Биофизика.-1989.- Т.34,№ 4.- С.684-687.

65. Янбастиев М.И. Сверхслабое биологическое излучение -основа спектроскопического подхода к некоторым медицинским проблемам //Мед. архив, Болгария.- 1976.- № 9.-С.49-54.

66. Яркова Л.Н., Васин Ю.А., Дубровская Е.С., Земсков В.М. Анализ хемилюминесценции при синхронном фагоцитозе мак• рофагов //Иммунология.- 1986.- К? 3.- С.31-34.

67. Albina J.Е., Caldwell M.D., Henry Jr. W.L., Mills C.D. Regulation of macrophage functions by L-arginine //J. Exp. Med.- 1989.- Vol.169.- P.1021-1029.

68. Albina J.E., Cui S., Mateo R.B., ReichnerwLa L.CU ayu^ tuoio JII ILLL4.J .JCI J. uuncax ILLCLL w ^phages //J. Immunol.- 1993.- Vol.150.- P.5080-5085.

69. Albina J.E. On the expression of nitric oxide synthase by human macrophages. Why no NO? //J. Leukocyte Biol.-1995.- Vol.58.- P.643-649.

70. Allen R.C. Biochemiexcitation: Chemiluminescence and the study of biological oxygenation reactions //Chem. and Biol. Generation of Excited States.- New York: Acad. Press, 1982.- P.309-344.

71. Allred G.D., Margetts I., Hill R.H. Luminol-induced neutrophil chemiluminescence //Biochem. et Biophys. Acta.- 1980.- Vol.631.- P.380-385.

72. Al-Ramadi B.K., Meissler J.J., Huang D., Eisenstein T.K. Immunosuppression induced by nitric oxide and itsn n / /inhibition by interleukin-4 //Eur. J. Immunol.- 1392.-Vol.22.- P.2249- 2254.

73. Anderson R., Lukey P.T., Theron A.J., Dippenaar U. Ascorbate and cysteine-mediated selective neutralization of extracellular oxidants during N-formil peptide activation of human phagocytes //Agents and Actions.-1987.- Vol.20.- P.77-87.

74. Aviram M. Modified forms of low density lipoprotein and atherogenesis //Atherosclerosis.- 1993.- Vol.98.-P.1-9.

75. Aviram M. LDL modifications by phospholipases increase macrophage cholesterol accumulation //Advances in Lipoprotein and Atherosclerosis Research, Diagnostics and Treatment.- Jena: Gustav Fisher, 1995.- P.28-33.

76. Avogaro P., Bon G.B., Cazzolato G. Presence of a modified low density lipoprotein in humans //Arteriosclerosis.- 1988.- Vol.8.- P.79-87.

77. Babior B.M., Kipnes R.S., Carnutte J.T. Biological defense mechanisms. The production by leukocytes of superoxide, a potential bactericidal agent //J. Clin. Invest.- 1973.- Vol.52.- P.741-744.

78. Barroso M.P., Gomez-Diaz C., Lopez-Lluch G. et al. Ascorbate and a-tocopherol prevent apoptosis induced by serum removal independent of Bel-2 //Arch. Biochem and Biophys.- 1997.- Vol.343.- P.243-248.

79. Beckman J.S., Beckman K.M., Chen J. et al. Apparent hydroxyl radical production by peroxynitrite: Implications for endothelial injury from nitric oxide and superoxide //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1990.- Vol.87.-P.1620-1624.

80. Bellative P. The superoxide^forming enzymatic system of phagocytes //Free Radic. Biol, and Med.- 1988.- Vol.4.-P.225-261.

81. Berkow R.L., Dodson R.W. Functional analysis of the marginating pool of human polymorphonuclear leukocytes //Am. J. Hematol.- 1987.- Vol.24.- P.47-54.

82. Bjerrum O.W. Human neutrophil structure and function with special reference to cytochrome b559 and ^-microglobulin //Danish Med. Bull.- 1993.- Vol.40.- P.163-189.

83. Blake D.R., Allen R.E., Lunec J. Free radicals in biological systems a review orientated to inflammatory processes //Brit. Med. Bull.- 1987.- Vol.43.-P.371-385.

84. Bottu G. The effect of quenchers on the chemilumines-cence of luminol and lucigenin //J. Bioluminescence and Chemiluminescence.- 1989.- Vol.3.- P.59-65.

85. Bouvet J.-P., D'Azambaja S., Roux C. et al. Human seminal plasma suppresses the chemiluminescence of polymorphonuclears without modifying phagocytosis //Am. J. Reproduct. Immunol.- 1990.- Vol.33.- P.64-71.

86. Bredberg A., Forsgren A. Long wavelength UV radiation affects chemiluminescence of human polymorphonuclear leucocytes //Photochem. and Photobiol.- 1985.- Vol.41.-P.337-341.

87. Brennan P.C., Kirchner F.R. Quantitative assessment of rabbit alveolar macrophage function by chemiluminescence //Environ. Res.- 1985.- Vol.37.- P.452-461.1 A O J- -i J

88. Briheim G., Stendahl O. , Dahlgren C. Intra- and extracellular events in luminol-dependent chemiluminescence of polymorphonuclear leukocytes //Infect, and Immun.-1984.- Vol.45.- P.1-5.

89. Brooks M.M. Activation of eggs by oxidation-reduction indicators //Science.- 1947.- Vol.106.- P.320.

90. Brown M.S., Goldstein J.L. Lipoprotein metabolism in the macrophage: implications for cholesterol depositions in atherosclerosis //Ann. Rev. Biochem.- 1983.-Vol.52.- P.223—261.

91. Brune B., Golkel C., von Knethen A. Cytokine and low-level nitric oxide prestimulation block p53 accumulation and apoptosis of RAW 264.7 macrophages //Biohem. and Biophys. Res. Commun.- 1996.- Vol.229.- P.396-401.

92. Brune B., Gotz C., Mebmer U.K. et al. Superoxide formation and macrophage resistance to nitric oxide-mediated apoptosis //J. Biol. Chem.- 1997.- Vol.272.-P.7253-7258.

93. Bürde R. , Seifert R. , Buschauer A., Schultz G. Histamine inhibitors activation of human neutrophils and HL-60 leukemic cells via H2-receptors //Naunyn-Schmiedebergs Arch. Pharmacol.- 1989.- Vol.340.- P.671-678.

94. Buttke T.M., Sandstrom P.A. Oxidative stress as a mediator of apoptosis //'Immunol. Today.- 1994.- Vol. 15.1. T) 1 /1r . x -t .

95. Cardillo C., De Sole P., Savi L., Mores N. Effects of induced hypercholesterolemia on circulating rabbit polymorphonuclear leukocyte activation studied by chemr 1 ununescence //Acta Med. Romana.- 1987.- Vol.25.-P.447-454.

96. Cerutti P., Larsson R., Krupitza G. et al. Pathophysiological mechanisms of active oxygen //Mutat. Res.-1989.- Vol. 214.- P.81-88.

97. Cheung K., Archibald A.C., Robinson M.F. The origin of chemiluminescence produced by neutrophils stimulated by opsonized zymosan //J. Immunol.- 1983.- Vol.130.-P.2324-2330.

98. Cheson B.D., Christensen R.L., Sperling R. et al. The

99. Clement M.V., Stamenkovic I. Superoxide anion is a natural inhibitor of Fas-mediated cell death. // EMBO J.- 1996.- Vol.15.- P.216-225.

100. Cooke J.P., Tsao P.S. Cytoprotective effects of nitric oxide //Circulation.- 1993.- Vol.88.- P.2451-2454.

101. Coonrod J. The role of leukocytes in lung defenses //Lung and Respir.- 1988.- Vol.5.- P.1-2.

102. Corbett J.A., Wang J.L., Sweetland M.A. et al. IL-1{3 induces the formation of nitric oxide by f^-cells purified from rodent islets of Langerhans //J. Clin. Invest.- 1992.- Vol. 90.- P.2384-2391.

103. Corbett J.A., Sweetland M.A., Wang J.L. et al. Nitric oxide mediates cytokine-induced inhibition of insulin secretion by human islets of Langerhans //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1993.- Vol.90.- P.1731-1735.

104. Corey S.J., Rosoff P.M. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor primes neutrophils by activating a pertussis toxin sensitive G protein not associated1. Withphosphatidylturnover //J. Biol. Chem.- 1989.-Vol.264.- P.14165-14171.

105. Cornaglia-Ferraris P., Cornara L., Melodia A. Sensory neuropeptides (substance P) and 4-11 SP enhance humanneutrophils chemiluminescence: The role of L-arginine //J. Immunopharmac.- 1986.- Vol.8.- P.463-468.

106. Corradin S.B., Fasel N., Buchmuller-Rouiller Y. et al. Induction of macrophage nitric oxide production by interferon-y and tumor necrosis factor-a is enhanced by interleukin-10 //Eur. J. Immunol.- 1993.- Vol.23.-P.245-248.

107. Cree I.A., Blair A.L., Beck J.S. Use of a microtitre plate chemiluminescence reader to study surface phagocytosis by human monocytes /'/'J. Bioluminescence and Chemiluminescence.- 1989.- Vol.3.- P.71-74.

108. Cuellar A.B., Homo-Delarche F., Orbach-Arbouys S. Phospholipase A2 an in vivo immunomodulator //Prosta-gland. Leukotrienes and Essent. Fatty Acids.- 1990.-Vol.40.- P.31-38.

109. Curzio M., Esterbauer H., Di Mauro C. et al. Chemotac-tic activity of the lipid peroxidation product 4-hyd-roxynonenal and homologous hydroxyalkenals //Biol. Chem. Hoppe Seyler.- 1986.- Vol.367.- P.321-329.

110. Curzio M., Esterbauer H., Poli G. et al. Possible role of aldehydic lipid peroxidation products as chemoat-tractants //Int. J. Tissue React.- 1987.- Vol.9.-P.295-306.

111. Curzio M. Interaction detween neutrophils and 4-hyd-roxyalkenals and consequences on neutrophil motility //Free Radical Res. Commun.- 1988.- Vol.5.- P.55-66.

112. Dahlgren C., Aniansson H., Magnusson K.-E. Pattern of phormyl-methionyl-leucyl-phenylalanine-induced lumi-nol- and lucigenin-dependent chemil uiui n e s c ence in human neutrophils //Infect, and Immun.- 1985.- Vol.47.-P.326-328.

113. De Chatelet L.R., Long G.D., Shirley P.S. et al. Mechanism of the luminol-dependent chemiluminescence of human neutrophils //J. Immunol.- 1982.- Vol.129.1. D HQO.UO')x." • -lou -y -j-^z-yo •I

114. De Sole P., Lippa S., Littaru G.P. Chemiluminescence of phagocytic cells //Acta Med. Romana.- 1984.-Vol.22.- P.178-195.

115. Debono D.P., Yang W.D. Exposure to low concentrations of hydrogen peroxide causes delayed endothelial cell death and inhibits proliferation of surviving cells //Atherosclerosis.- 1995.- Vol.114.- P.235-245.

116. Dickson H. , Stevens P. The role of protein synthesis

117. Dimatteo M.A., Loweth A.C., Thomas S. et al. Superoxide, nitric oxide, peroxynitrite and cytokine combinations all cause functional impairment and morphologi

118. C-n "I n r-l /"X r~\ С* 1 +- П О ~l £N "t~ С y-N -F T onrrovb one1 tï VI -l-K^on-ll-IV"!

119. Л -L. V^llUll^CO xli J. a L. l -L sHi lw О XJUil^CiliailO P.X 1ЧЯ J-ilO Ы--L. -1-11secreting cell lines, but dictate cell death by different mechanisms //Apoptosis.- 1997.- Vol.2.-P.164-177.

120. Di Mauro C., Cavalli G., Amprimo M.C. et al. Influence of 4-hydroxynonenal on chemiluminescence production bynr\ г f n mi ST^^ о АП i T Q/^ Г7 T тт с -Г} -r>о -I rrn i 1 —i V> ТГР "П

121. Uiio и xiiLuxa ucu caiiu. u^oUnx^cu ¿l, jriLLW о an о LXiuuxa l-cU iioliuciiineutrophils //Cell Biochem. and Function.- 1990.1. Я p 1Л7-1ЦЦ

122. Dobmeyer T.S., Findhammer S., Dobmeyer J.M. et al. Ex

123. ТТЛ т т /-s -i yч /-^it t V> /-S -P -v—\ v^» +- /""n о v^i T т rrviv> V"> /~i t r +- О ТС? VI /-•« sA -i -f—

124. V J- V J-IiuliL- L±VJ11 W -L- il U^ro ХЬ lLL<3ula Lcu

125. V> \т AVi H 1 ттл о "mo с • у/л 1 1т rm-r-N /лгп7-(- о о ~î -кл UTUiu у v7Àxua l.1 v с о u» х. о о • lui х. Jy ill^hvL^ «—О j w о о их vinfection //Free Radical Biol. and Med.- 1997.-Vol.22.- P.775-785.

126. Dowling E.J., Symons A.M., Parke D.V. Free radical production at the site of an acute inflammatory reaction as measured by chemiluminescence //Agents and Actions.- 1986.- Vol.19.- P.203-208.

127. UAjycli ^Uil^CllLi-aLO-U'll / / XJ X- W^XX^XLL • U • -L U ^ . V O -i- . -L / .1. D Q;iQi;/i1. J- . \J ^J -L. kj -1.

128. DMNH A new sensitive indicator for measuring the chemiluminescence .of granulocytes and monocytes //Klin. Wochenschr.- 1985.-Vol.63.- P.1218-1225.

129. Esterbauer H., Striegl G. , Puhl H., Rotheneder M. Continuous monitoring of in vitro oxidation of human low density lipoprotein //Free Radical Res. Common.-1989.- Vol.6.- P.67-75.

130. Esterbauer K. Cytotoxicity and genotoxicity of lipid-oxidation products //Amer. J. Clin. Nutr.- 1993.-Vol.57, Suppl.- P.779S-786S.

131. Forman H.J., Thomas M.J. Oxidant production and bactericidal activity of phagocytes //Ann. Rev. Physiol.-1986.- Vol.48.- P.669-680.

132. Freeman B. Free radical chemistry of nitric oxide. Looking at the dark side //Chest.- 1994.- Vol.105, Suppl.3 P.S79-S84.

133. Fredlund H., Olsen P., Danielsson D. A reference procedure to study chemiluminescence induced in polymorphonuclear leukocytes by Neisseria meningitidis //Acta Pathol. Microbiol, et Immunol. Scand.- 1988.- Vol.96.-P.941-950.

134. Fritzsche R., Deweck A.L. Chemiluminescence microscopy reveals functional heterogeneity in single neutrophilsundergoing oxygen burst //Eur. J. Immunol.- 198 8.-Vol.18.- P.817-821.

135. Fukase Y., Fukase S., Sendo F. Priming activity for chemiluminescence reaction of PMN in the culture supernatant of streptococcal preparation(OK-432)-stimulated spleen cells //Microbiol. Immunol.- 1988.-Vol.32.- P.621-633.

136. Geng Y.J., Hellstrand K. , Wennmalm A., Hansson G. K. Apoptotic death of human leukemic cells induced by vascular cells expressing nitric oxide synthase in response to y-interferon and tumor necrosis factor-a //Cancer Res.- 1996.- Vol.56.- P.866-874.

137. Ginsburg I., Misgav R., Pinson A. et al. Synergism among oxidants, proteinases, phosholipases, microbial hemolysins, cationic proteins, proteinases and cytokines //Inflammation.- 1992.- Vol.16.- P.519-538.

138. Ginsburg I., Varani J. Interaction of viable group A streptococci and hydrogen peroxide in killing of vascular endothelial cells //Free Radical Biol and Med.1993.- Vol.14.- P.495-500.

139. Ginsburg I., Kohen R. Synergistic effects among oxidants, membrane-damaging agents, fatty acids, proteinases and xenobiotics: Killing of epithelial cells and the release of arachidonic acid //Inflammation.1994.- Vol.19.- P.101-118.

140. Glasser L., Friedlein R.L. The effect of various cell separation procedures on assays of neutrophil function: A critical appraisal //Am. J. Clin. Pathol.-1990.- Vol.93.- P.662-669.

141. Glette J., Solberg C.O., Lehmann Y. Factors influencing human polymorphonuclear chemiluminescence //Acta Pathol, and Microbiol. Scand.- 1982.- Vol.90.-P.91-95.

142. Goldstein J.L., Ho Y.K., Basu S.K., Brown M.S. Binding site on macrophages that mediates uptake and degradation of acetylated low density lipoprotein, producing massive cholesterol deposition //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1979.- Vol.76.- P.333-337.

143. Gorman A., Mcgowan A., Cotter T.G. Role of peroxide and superoxide anion during tumour cell apoptosis //FEBS Letters.- 1997.- Vol. 404.- P.27-33.

144. Greenwald R.A., Moak S.A. Degradation of hyaluronic acid by polymorphonuclear leukocytes //Inflammation.-1986.- Vol.10.- P.15-30.

145. Gruner S., Volk H., Falck P., Von Baehr R. The influence of phagocytic stimuli on the expression of HLA-DR antigens: Role of reactive oxygen intermediates //Eur. J. Immunol.- 1986.- Vol.16.- P.212-215.

146. Guillarg O., Lauwerys R. In vitro and in vivo effect of mercury, lead, and cadmium on the generation of chemiluminescence by human whole blood //Biochem. Pharmacol.- 1989.- Vol.38.- P.2819-2825.

147. Gyllenhammar H. Effects of extracellular pH on neutrophil superoxide anion production, and chemiluminescence augmented luminol, lucigenin or DMNH //J. Clin, and Lab. Immunol.- 1989.- Vol.28.- P.97-102.

148. Halliwell B., Grootveld M. The measurement of free radical reactions in humans: Some thoughts for future experimentation //FEBS Lett.- 1987.- Vol.213.- P.9-14.

149. Halliwell B. Superoxide, iron, vascular endothelium and reperfusion injury //Free Radical Res. Commun.-1989.- Vol.5.- P.315-318.

150. Harris L.R., Cake M.H., Macey D.J. Iron release from ferritin and its sensitivity to superoxide ions differs among vertebrates //Biochem. J.- 1994.- Vol.301.-P.385-389.

151. Heberer M., Ernst M., During M. et al. Measurement of chemiluminescence in freshly drawn human blood //Klin. Wochenschr.- 1982.- Vol.60.- P.1443-1448.

152. Henderson W.R., Klebanoff S.J. Leukotriene B4, C4, D4, and E4 inactivation by hydroxyl radicals //Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1983.- Vol.110.- P.266-272.

153. Hetherington S.V., Quie P.G. Human polymorphonuclear leukocytes of the bone marrow, circulation, and marginated pool: function and granule protein content //Amer. J. Hematol.- 1985.- Vol.20.- P.235-246.

154. Hibbs Jr.J.B., Westenfelder C., Taintor R.R. et al. Evidence for cytokine-inducible nitric oxide synthesisfrom L-arginine in patients receiving interleukin-2 therapy //J. Clin. Invest.- 1992.- Vol.89.- P.867-877.

155. Hibbs Jr.J.B. Cytokine induced synthesis of nitric oxide from L-arginine: a cytotoxic mechanism that targets intracellular iron //Iron in Central Nervous System Disorders.- Vienna: Springer-Verlag, 1993.-P.155-171.

156. Hill H.R., Hogan N.A., Bale J.F., Hemming V.G. Evaluation of nonspecific (alternative pathway) opsonic activity by neutrophil chemiluminescence //Int. Arch. Allergy and Appl. Immun.- 1977.- Vol.53.- P.490-497.

157. Hiramatsu K. , Arimori S. Increased superoxide production by mononuclear cells of patients with hypertriglyceridemia and diabetes //Diabetes.- 1988.- Vol.37.-P.832-837.

158. Hogg N,, Darley-Usmar V.M., Wilson M.T., Moncada S. Production of hydroxyl radicals from the simultaneous generation of superoxide and nitric oxide //Biochem. J.- 1992.- Vol. 281.- P.419-424.

159. Huang J., Hitt N.D., Kleinberg M.E. Stoichiometry of p22-phox and gp91-phox in phagocyte cytochrome b558 //Biochemistry.- 1995.- Vol.34.- P.16753-16757.

160. Hurst N.P. Molecular basis of activation and regulation of the phagocyte respiratory burst //Ann. Rheum. Dis.- 1987.- Vol.46.- P.265-272.

161. Ialenti A., Ianaro A., Moncada S., Di Rosa M. Modulation of acute inflammation by endogenous nitric oxide //Eur. J. Pharmacol.- 1992.- Vol211.- P.177-182.

162. Ignarro L.J., Buga G.M., Wood K.S. et al. Endothelium-derived relaxing factor produced and released from artery and vein is nitric oxide //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1987.- Vol.84.- P.9265-9269.

163. Imlay J.A., Linn S. DNA damage and oxygen radical toxicity //Science.- 1988.- Vol.240.- P.1302-1309.

164. Ito M. , Bognacki J., Broxmeyer H. et al. Augmentation of human monocyte chemiluminescence by iron-saturated lactoferrin //Int. J. Immunopharmacol.- 1983.- Vol.5.-P.359-364.

165. Jahr J., Baehr R. Oxygen-dependent and oxygen-independent lysis of human erythrocytes by phagocytes and lymphocytes //Wiss. Beitr. M.-Luther-Univ. Halle-Wittenberg.- 1987.- R,№ 100.- P.95-97.

166. James S.L. Role of nitric oxide in parasitic infections //Microbiol. Revs.- 1995.- Vol.59.- P.533-547.

167. Jamieson D., Chance B., Cadenas E., Boveris A. The relation of free radical production to hyperoxia //Ann. Rev. Physiol.- 1986.- Vol.48.- P.703-719.

168. Kapp A., Dieterle T., Wokalek H. et al. Detection of complement-activation in human serum using complement C5a-induced chemiluminescence of granulocytes //Allergologie.- 1986.- Vol.9.- P.409-410.

169. Kapp A., Freudenberg M., Galanos C. Induction of human granulocyte chemiluminescence by bacterial lipopolysaccharides //Infect. and Iramun.- 1987.- Vol.55.-P.758-761.

170. Karu T.I., Ryabykh T.P., Fedoseyeva G.E., Puchkova N.I. Helium-neon laser-induced respiratory burst of phagocytic cells //Lasers Surg. and Med.- 1989.-Vol.9.- P.585-588.

171. Kasahara Y., Iwai K., Yachie A. et al. Involvement of reactive oxygen intermediates in spontaneous and CD95(fas/APO-1)-mediated apoptosis of neutrophils //Blood.- 1997.- Vol.89.- P.1748-1753.

172. Kasai K., Hattori Y., Nakanishi N. et al. Regulation of inducible nitric oxide production by cytokines in human thyrocytes in culture //Endocrinology.- 1995.-Vol.136.- P.4261-4270.

173. Kasiske B.L., Keane W.F. Role of lipid peroxidation in the inhibition of mononuclear cell proliferation by normal lipoproteins //J. Lipid Res.- 1991.- Vol.32.-P.775-781.

174. Kehrer J.P., Smith C.V. Free radicals in biology: sources, reactivities, and roles in the etiology of human diseases //Natural Antioxidants in Human Health and Disease.- N.Y.: Acad. Press, 1994.- P.25-62.

175. Kerr J.F., Wyllie A.H., Currie A.R. Apoptosis: a basic biologicak phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics //Brit. J. Cancer.- 1972.- Vol.26.-P.239-257.

176. Kettritz R., Gaido M.L., Haller H. et al. Interleukin-8 delays spontaneous and tumor necrosis factor-a-medi-ated apoptosis of human neutrophils //Kidney Int.-1998.- Vol.53.- P.84-91.

177. Kharasmi A., Nielsen H., Bendtzen K. Modulation of human neutrophil and monocyte chemotaxis and superoxide responses by recombinant TNF-alpha and GM-CSF //Immunobiol.- 1988.- Vol.177.- P.363-370.

178. Kilbourn R.G., Belloni P. Endothelial cell production of nitrogen oxides in response to interferon in combination with tumor necrosis factor, interleukin-1, or endotoxin //J. Natl. Cancer Inst.- 1990.- Vol.82.-P.772-776.

179. Kilbourn R.G., Jubran A., Gross S.S. et al. Reversal of endotoxin-mediated shock by NG-methyl-L-arginine, an inhibitor of nitric oxide synthesis //Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1991.- Vol.172.- P.1132-1138.

180. Klebanoff S.J. Oxygen metabolites from phagocytes //Inflammation: Basic Principles and Clinical Correlates.- N.Y.: Raven Press, 1992.- P.541-588.

181. Klebanoff S.J. Reactive nitrogen intermediates and antimicrobial activity: Role of nitrite //Free Radical Biol, and Med.- 1993.- Vol.14.- P.351-360.

182. Klimetzen V., Muller S. Characteristics and changes of phagocytic and pinocytic signals of chemiluminescence (CL) emitted by differentiating bone marrow macrophages //Immunobiol.- 1980.- Vol.157.- P.233-234.

183. Knysznski A., Fischer H. Circadian fluctuations in the activity of phagocytic cells in blood, spleen, and peritoneal cavity of mice as measured by zymosan-induced chemiluminescence //J. Immunol.- 1981.-Vol. 127.- P.2508-2511.

184. Kobayashi T., Robinson J.M., Seguchi H. Identification of intracellular sites of superoxide production instimulated neutrophils //J. Cell Science.- 1998.-Vol.Ill.— P.81-91.

185. Kricka L.J., Thorpe G.H.G. Chemiluminescent and bioluminescent methods in analytical chemistry //Analyst.-1982.- Vol.108.- P.1274-1297.

186. Kusner D.J., King S.H. Protease-modulation of neutrophil superoxide response //J. Immunol.- 1989.-Vol.143.- P.1696-1702.

187. Li P.F., Dietz R., Vonharsdorf R. Differential effect of hydrogen peroxide and superoxide anion on apoptosisand proliferation of vascular smooth muscle cells //Circulation.- 1997:- Vol.10.- P.3602-3609.

188. Libby P., Hansson G.K. Involvement of the immune system in human atherogenesis: Current knowledge and unanswered questions //Lab. Invest.- 1991.- Vol.64.-P.5-15.

189. Lian C.-Z., Pai C.H. Inhibition of human neutrophil chemiluminescence by plasmid-mediated outer membrane proteins of Yersinia enterocolitica //Infect, and Immun.- 1985.- Vol.49.- P.145-151.

190. Libon C., Forestier F., Cotte-Laf fitte J. et al. Effects of ethanol on superoxide production by mouse alveolar macrophages //Exp. Cell. Biol.- 198 9.- Vol.57.-P.104-105.

191. Liew F.Y. Regulation of nitric oxide synthesis in infectious and autoimmune diseases //Immunol. Lett.1994.- Vol.43.- P.95-98.

192. Lin K.T., Xue J.Y., Nomen M. et al. Peroxynitrite-in-duced apoptosis in HL-60 cells //J. Biol. Chem.1995.- Vol.270.- P.16487-16490.

193. Lindena J., Burkhardt H., Dwenger A. Mechanisms of non-opsonized zymosan-induced and luminol-enhanced chemiluminescence in whole blood and isolated phagocytes //J. Clin. Chem. and Clin. Biochem.- 1987.-Vol.25.- P.765-778.

194. Lindgren F.T., Jensen L.C., Hatch F.F. Blood lipids and lipoproteins //Ed. Nelson G.J.- Berlin: Wiley.-1972.- P.181-247.

195. Linke S., Heinle H. Metabolic indicators of macrophage activation //Exp. Cell. Biol.- 1989.- Vol.57.- P.105.

196. Lipton B.A., Parthasarathy S., Ord V.A. et al. Components of the protein fraction of oxidized low density lipoprotein stimulate interleukin-la production by rabbit arterial macrophage-derived foam cells //J. Lipid Res.- 1995.- Vol.36.- P.2232-2242.

197. Littaru G.P., Lippa S., De Sole P. et al. Quenching of singlet oxygen by D-a-tocopherol in human granulocytes //Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1984.- Vol.119.-P.1056-1061.

198. Liu R.H., Hotchkiss J.H. Potential genotoxicity of chronically elevated nitric oxide: A review //Mutation Res.- 1995.- Vol.339.- P.73-89.

199. Lock R., Dahlgren C. Characteristics of the granulocyte chemiluminescence reaction following an interaction between human neutrophils and Salmonella Typhimurium bacteria //Acta Pathol. Microbiol, et Immunol. Scand.1988.- Vol.96.- P.299-306.

200. Lojek A., Ciz M., Marnila P. et al. Measurement of whole blood phagocyte chemiluminescence in the wistar rat //J. Biolum. Chemilum.- 1997.- Vol.12.- P.225-231.

201. Lomax K.J., Malech H.L., Gallin J.I. The molecular biology of selected phagocyte defects //Blood Reviews.1989.- Vol.3.- P.94-105.

202. Loweth A.C., Williams G.T., Scarpello J.H.B., Morgan. N.G. Evidence for the involvement of cGMP and protein kinase G in nitric oxide-induced apoptosis in the pancreatic ß-cell line, HIT-tl5 //FEBS Lett.- 1997.-Vol.400.- P.285-288

203. Magnusson K.-E., Dahlgren C., Sjolander A. Distinct patterns of granulocyte luminol-dependent chemilumi-1 r-iOinescence response to lectins WGA and RCA-1 //Inflammation.- 1988.- Vol.12.- P.17-25.

204. Markert M. , Vaglio M., Frei J. Activation of the human neutrophil respiratory burst by an anion channel blocker //J. Lab. and Clin. Med.- 1988.- Vol.111.-P.577-583.

205. Masihi K.N., Lange W., Rohde-Schulz B. et al. Depressed chemiluminescence response by influenza virus is enhanced after conjugation of viral subunits to mu-ramyl dipeptide //Infect, and Immun.- 1985.- Vol.5.-P.146-151.

206. McCord J.M. Superoxide radical: Controversies, contradictions, and paradoxes //Proc. Soc. Exp. Biol, and Med.- 1995.- Vol.209.- P.112-117.

207. McKenna S.M., Davies K.I.A. Bacterial killing by phagocytes: Potential roie(s) of hypochlorous acid and hydrogen peroxide in protein turnover, DNA synthesis, and RNA synthesis //Oxygen Radicals in Biology and Medicine.- N.Y.; L., 1988.- P.829-837.

208. Mehta S., Bashford C.L., Knox P., Pasternak C.A. Chemiluminescence in neutrophils and lettre cells induced by mixoviruses //Biochem. J.- 1985.- Vol.227.-P.99-104.

209. Miesel R., Sanocka D., Kurpisz M., Kroger H. Antiinflammatory effects of NADPH oxidase inhibitors //Inflammation.- 1995.- Vol.19.- P.347-362.

210. Minuk G.Y., Rascanin N., Woods D.E. Effect of amino acids on luminol-dependent chemiluminescence generated by peripheral blood polymorphonuclear leukocytes //J. Clin. Microbiol.- 1986.- Vol.24.- P.307-309.

211. Miyanoshita A., Takahashi T., Endou H. Inhibitory effect of cyclic AMP on phorbol ester-stimulated production of reactive oxygen metabolites in rat glomeruli //Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1989.- Vol.165.-P.519-525.

212. Moilanen E., Vapaatalo H. Nitric oxide in inflammation and immune response //Ann. Med.- 1995.- Vol.27.-P.359-367.

213. Moncada S., Palmer R.M.J., Higgs E. A. Nitric oxide: physiology, pathophysiology, and pharmacology //Pharmacol. Revs.- 1991.- Vol.43.- P.109-142.

214. Morel D.W., DiCorle.to P.E., Chisolm G.M. Endothelial and smooth mudcle cells alter low density lipoprotein in vitro by free radical oxidation //Arteriosclerosis.- 1984.- Vol.4.- P.357-364.

215. Moreno J.J., Pryor W.A. Inactivation of a-l-proteinase inhibitor by peroxynitrite //Chem. Res. Toxicol.-1992.- Vol.5.- P.425-431.

216. Morita A., Werf el T., Stege H. et al. Evidence that singlet oxygen-induced human T helper cell apoptosis is the basic mechanism of ultraviolet A radiation phototherapy //J. Exp. Med.- 1997.- Vol.186.- P.1763-1768.

217. Muller T., Devies E.V., Campbell A.K. Pholasin chemi-luminescence detects mostly superoxide anion released from activated human neutrophils //J. Biolumines. and Chemilumines.- 1989.- Vol.3.- P.1-5-113.

218. Muller-Peddinghaus R. In vitro determination of phagocyte activity by luminol- and lucigenin-amplifiedchemiluminescence //Int. J. Immunopharmacol.- 1984.-Vol.6.- P.455-466.

219. Murrell G., Bromley F.N. Modulation of fibroblast proliferation by oxygen f.ree radicals //Biochem. J.-1990.- Vol.265.- P.659-665.

220. Nathan C. Nitric oxide as a secretory product of mammalian cells //FASEB J.- 1992.- Vol.6.- P.3051-3064.

221. Neumann M., Kownatzki E. The effect of adherence on the generation of reactive oxygen species by human neutrophilic granulocytes //Agents and Actions.-1989.- Vol.29.- P.183-186.

222. Nishida A., Kimura H., Nakano M. , Goto T. A sensitive and specific chemiluminescence method for estimating the ability of human granulocytes and monocytes to generate //Clin. Chim. Acta.- 1989.- Vol.179.-P.177-182.

223. Nishihara S., Seki K., Ikigai H., Masuda S. Luminol-dependent chemiluminescence in antibody-sensitized neutrophils stimulated with protein A-bearing Staphylococci //Microbiol, and Immunol.- 1988.- Vol.32.-P.535-541.

224. Nishio E., Watanabe Y. Nitric oxide donor-induced apoptosis in smooth muscle cells is modulated by protein kinase C and protein kinase A //Eur. J. Pharmacol.- 1997.- Vol.339.- P.245-251.

225. Nohl H., Koltover V., Stolze K. Ishemia/reperfusion impairs mitochondrial energy conservation and triggers o; release as a byproduct of respiration //Free Radical Res. Commun.- 1993.- Vol.18.- P.127-137.

226. Nussler A.K., Di Silvio M. Billiar T.R. et al. Stimulation of the nitric oxide synthase pathway in human hepatocytes by cytokines and endotoxin //J. Exp. Med.-1992.- Vol.176.- P.261-264.

227. Nussler A.K., Billiar T.R. Inflammation, immunoregulation, and inducible nitric oxide synthase //J. Leukocyte Biol.- 1993.- Vol.54.- P.171-178.

228. Ochoa J.B., Udekwu A.O., Billiar T.R. et al. Nitrogen oxide levels in patients after trauma and sepsis //Ann. Surg.- 1991.- Vol.214.- P.621-626.

229. Ochoa J.B., Curtis B., Peitzman A.B. et al. Increased circulating nitrogen oxides after human tumor immunotherapy: correlation with toxic hemodynamic changes //J. Natl. Cancer. Inst.- 1992.- Vol.84.- P.864-867.

230. Oyanagui Y. Nitric oxide and superoxide radical are involved in both initiation and development of adjuvant arthritis in rats //Life Sci.- 1994.- Vol.54.-P. PL285-PL289.

231. Ozaki Y., Iwata J., Ohashi T. Mechanism of neutrophil chemiluminescence induced by wheat germ agglutinin: Partial characterization of the antigens recognized by wheat germ agglutinin /'/Blood.- 1984.- Vol. 64.-P.1094-1103.

232. Palmer R.M.J., Ferrige A.G., Moncada S. Nitric oxide release accounts for the biological activity of endothelium-deriv'ed relaxing factor //Nature.- 1987.-Vol.327.- P.524-526.

233. Palmer R.M.J., Hickery M.S., Charles I.C. et al. Induction of nitric oxide synthase in human chondrocytes //Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1993.- Vol.193.-P.398-405.

234. Payne A.N., Cheng J.B. PMNs and airway inflammation/ hyperreactivity //'Agents and Actions.- 1990.- Vol.29.-P.181-183.

235. Pearson R.D., Harcus J.L., Symes P.H. et al. Failure of the phagocytic oxidative responses to protect human monocyte-derived macrophages from infection by Leish-mania donovani //J. Immunol.- 1982.- Vol.129.- P.1282-1286.

236. Pertilla J., Lehtonen O.-P., Salo M. , Tertti R. Effects of coronary bypass surgery under high-dose fen-tanyl anesthesia on granulocyte chemiluminescence //Brit. J. Anaesth.- 1986.- Vol.58.- P.1027-1030.

237. Petros A., Bennett D., Vallance P. Effect of nitric oxide synthase inhibitors on hypotension in patients with septic shock //Lancet.- 1991.- Vol.338.- P.1557-1558.

238. Petros A., Lamb G., Leone A. et al. Effects of a nitric oxide synthase inhibitor in humans with septic shock //Cardiovasc. Res.- 1994.- Vol.28.- P.34-39.

239. Porsti I., Paakkari I. Nitric oxide- based possibilities for pharmacotherapy //Ann. Med.- 1995.- Vol.27.-P.407-420.

240. Posner G.H., Lever J-.R., Kyo M. . et al. A chemilumines-cent probe specific for singlet oxygen //Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1984.- Vol.123.- P.869-873.

241. Prasad K., Kalra J., Chaudhary A.K., Debnath D. Effect of polymorphonuclear leukocyte-derived oxygen free radicals and hypochlorous acid on cardiac function and some biochemical parameters //Am. Heart J.- 1990.-Vol.119, Pt.l.- P.538-550.

242. Pugliese C., LaSalle M.D., DeBari V.A. Relationships between the structure and function of lipopolysaccha-ride chemotypes with regard to their effects to the human polymorphonuclear neutrophils //Mol. Immunol.-1988,- Vol.25.- P.631-637.

243. Radi R., Beckman J.S., Bush K.M., Freeman B.A. Peroxy-nitrite-induced membrane lipid peroxidation: The cytotoxic potential of superoxide and nitric oxide //Arch. Biochem. and Biophys.- 1991.- Vol.288.- P.481-487.

244. Radi R., Beckman J.S., Bush K.M., Freeman B.A. Peroxy-nitrite oxidation of sulfhydryls. The cytotoxic potential of superoxide and nitric oxide //J. Biol. Chem. -1991.- Vol.266.- P.4244-4250.

245. Rao P.S., Luber J.M., Milinowicz J. et al. Specificity of oxygen radical scavengers and assessment of freeradical scavenger efficiency using luminol enhanced chemiluminescence //Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1988.- Vol.150.- P.39-44.

246. Remick D.G., Villarete L. Regulation of cytokine gene expression by reactive oxygen and reactive nitrogen intermediates //J. Leukocyte Biol.- 1996.- Vol.59.-P.471-475.

247. Richards D.M.C., Dean R.T., Jessup W. Membrane proteins are critical targets in free radical mediated cytolysis //Biochim. et Biophys. Acta.- 1988.-Vol.946.- P.281.-288.

248. Rolletlabelle E., Grange M.J., Elbim C. et al. Hydro-xyl radical as a potential intracellular mediator of polymorphonuclear neutrophil apoptosis //Free Radical Biol, and Med.- 1998.- Vol.24.- P.563-572.

249. Rosen G.M., Pou S., Ramos C.L. et al. Free radicals and phagocytic cells/'/FASEB J.-1995 .-Vol. 9 .-P. 200-209 .

250. Rosen H., Michel B.R., Wu A.Y., VanDevanter D.R. Inhibition of bacterial DNA synthesis by myeloperoxidase-derived oxidants //Free Radical Biol, and Med.- 1993.-Vol.15.- P.516.

251. Rosenkranz-Weiss P., Sessa W.C., Milstien S. et al. Regulation of nitric oxide synthesis by proinflammato-ry cytokines in human umbilical vein endothelial cells //J. Clin. Invest.- 1994.- Vol.93.- P.2236-2243.

252. Rubanyi C.M. Vascular effects of oxygen-derived free radicals //Free Radical Biol, and Med.- 1988.- Vol.4.-P.107-121.

253. Rush D.N., Keown P.L. Human monocyte chemiluminescence triggered by IgG aggregates: Requirement of phospholi-pase activation and modulation by Fc receptor ligands //Cell. Immunol.- 1984.- Vol.87.- P.252-259.

254. Russell L.E., Trush M. A. Lucigenin chemiluminescence and its relationship to mitochondrial respiration in phagocytic cells //Biochem. and Biophys. Res. Commun.-1989.- Vol.159.- P.584-591.

255. Ryan T.P., Aust S.D. The role of iron in oxygen-mediated toxicities //Crit. Rev. Toxicol.- 1992.- Vol.22.-P.119-141.

256. Saito K., Kato C., Teshigawara H. Saliva inhibits the chemiluminescence response, phagocytosis, and killing of Staphylococcus epidermidis by polymorphonuclear leukocytes //Infect. and Immun.- 1988.- Vol.56.-P.2125-2132.

257. Sakagami H., Satoh K. Prooxidant action of two antioxidants: ascorbic acid and gallic acid //Anticancer Res.-1997.- Vol.17.- P. 221-224.

258. Salgo M.G., Stone K., Squadrito G.L. et al. Peroxynit-rite causes DNA nicks in plasmid pBR322 //Biochem. and Biophys. Res. Commun.- 1995.- Vol.210.- P.1025-1030.

259. Samokyszyn V.M., Thomas C.E., Reif D.W. et al. Release of iron from ferritin and its role on oxygen radicalstoxicities //Drug Metab. Rev.- 1988.- Vol.19.- P.283-303.

260. Scharfetter-Kochanek K., Wlaschek M., Briviba K., Sies H. Singlet oxygen induces collagenase expression in human skin fibroblasts //FEBS Lett.- 1993.- Vol.331.-P.304-306.

261. Schinetty M.L., Lazzarino G. Inhibition of phorbol ester-stimulated chemiluminescence and superoxide production in human neutrophils by fructose 1,6-diphos-phate //Biochem. Pharmacol.-1986.-Vol.35.-P.17.62-1764.

262. Scivittaro V., Boggs S., Mohr S., Lapetina E.G. Per-oxynitrite protects RAW 2 64.7 macrophage from lipopo-lysaccharide/interferon-y-induced cell death //Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1997.- Vol.241.- P.37-42.

263. Slater A.F.G., Stefan C., Nobel I. et al. Intracellular redox changes during apoptosis //Cell Death and Differentiation.- 1996.- Vol.3.- P.57-62.

264. Smet E.G., De Smet W., Brys L., De Baetselier P.C. A monoclonal antibody recognizing the complement type 3 receptor in the rabbit //Immunol.- 1986.- Vol.59.-P.419-426.

265. Someya A., Nagaoka I., Yamashita T. Purification of the 260 kDa cytosolic complex involved in the superoxide production of guinea pig neutrophils //FEBS Lett.- 1993.- Vol.330.- P.215-218.

266. Spallholz J.E., Boylan L.M. Effect of dietary selenium on peritoneal macrophage chemiluminescence //FASEB J.-1989.- Vol.3.- P.778.

267. Stadler J., Harbrecht B.G., Di Silvio M. et al. Endogenous nitric oxide inhibits the synthesis of cyclo-oxygenase products and interleukin-6 by rat Kupffer cells //J. Leukocyte Biol.- 1993.- Vol.53.- P.165-172.

268. Staite N.D., Messner R.P., Zoschke D.C. Inhibition of human T lymphocyte E rosette formation by neutrophils and hydrogen peroxide: Differential sensitivity between helper and suppressor T lymphocytes //J. Immunol.- 1987.- Vol.139.- P.2424-2430.

269. Stave J.W., Robertson B.S. Hydrocortisone suppresses the chemiluminescent response of striped bass phagocytes //Dev. and Comp. Immunol.- 1985.- Vol.9.- P. 7784.

270. Stefanelli C., Stanic I., Bonavita F. et al. Oxygen tension influences DNA fragmentation and cell death in glucocorticoid-treated thymocytes //Biochem. and Bio-phys. Res. Commun.- 1995.- Vol.212.- P.300-306.

271. Stevens D.L., Mitten J., Henry C. Effects of a and 0 toxins from Clostridium perfringens on human polymorphonuclear leukocytes //J. of Infect. Dis.- 1987.-Vol.156.- P.324-333.

272. Stoian I., Oros A., Moldoveanu E. Apoptosis and free radicals //Biochem. and Mol. Med.- 1996.- Vol. 59.-P.93-97.

273. Struck A.T., Hogg N., Thomas J.P., Kalyanaraman B. Nitric oxide donor compounds inhibit the toxicity of oxidized low-density lipoprotein to endothelial cells //FEBS Lett.- 1995.- Vol.361.- P.291-294.

274. Styrt B., Walker R.D., White J.C. Neutrophil oxidative metabolism after exposure to bacterial phospholipase C //J. Lab. and Clin. Med.- 1989.- Vol.114.- P.51-57.

275. Suzuki H., Wildhirt S.M., Dudek R.R. et al. Induction of apoptosis in myocardial infarction and its possible relationship to nitric oxide synthase in macrophages //Tissue and Cell.- 1996.- Vol.28.- P.89-97.

276. Suzuki M., Asako H., Kubes P. et al. Neutrophil-deriv-ed oxidants promote leukocyte adherence in postcapillary venules//Microvasc. Res.-1991.-Vol.42.-P.125-138.

277. Sweeney J.F., Nguyen P.K., Omann G.M., Hinshaw D.B. Ultraviolet irradiation accelerates apoptosis in human polymorphonuclear leukocytes: protection by LPS and GM-CSF //J. Leukocyte Biol.- 1997.- Vol.62.- P.517-523.

278. Szabo C., Salzman A.L. Endogenous peroxynitrite is involved in the inhibition of mitochondrial respiration in immunostimulated J774.2 macrophages //Biochem. and Biophys. Res. Coiranun.- 1995.- Vol.209.- P.739-743.

279. Takahashi H. , Tida T., Nakagawa S. Effect of methionine on the luminol-dependent chemiluminescence and oxygen radical release from peritoneal macrophages //Nichidai Igaki Zassi.- 1990.- Vol.49.- P.111-116.

280. Tanabe F. Inhibitory effect of PMN-oxidized LDL on natural killer cell activity //Fukusima Med. J.~ 1986.- Vol.36.- P.433-439.

281. Tannenbaum S.R., Fett D., Young V.R. et al. Nitrite and nitrate are formed by endogenous synthesis in the human intestine //Science.- 1978.- Vol.200.- P.1487-1489.

282. Tatsumi N., Hashimoto K., Okuda K., Kyougoku T. Neutrophil chemiluminescence induced by platelet activating factor and suppressed by C-reactive protein //Clin, and Chim. Acta.- 1988.- Vol.172.- P.85-92.

283. Tatsumi T., Fliss H. Hypochlorous acid and chloramines increase endothelial permeability: possible involvement of cellular zinc //Amer. J. Physiol.- 1994.-Vol.36.- P.H1597-H1607.

284. Thomas M.J. Urate causes the human polymorphonuclear leukocyte to secrete superoxide //Free Radical Biol, and Med.- 1992.- Vol.12.- P.89-91.

285. Tilkes F., Schroeres G. Influence of different aldehydes on the chemiluminescence activity of rat alveolar macrophages //Eur. Meeting Environ. Hyg., 2nd: Abstr.- Düsseldorf, 1988.- P.128.

286. Till G.Ö. , Lutz M.J., Ward P.A. Hydroxyl radical as autotoxin in chemotactically activated neutrophils //Biomed. and Pharmacother.- 1987.- Vol.41.-P.34 9-355.

287. Torrielli M.V., Dianzani M.U. Free radicals in inflammatory disease //Free Radicals in Molecular Biology, Aging, and Disease.- N.Y.:Raven Press,1984.-P.355-379.

288. Uchida T., Kanno T., Hosaka S. Direct measurement of phagosomal reactive oxygen by luminol-binding microspheres //J. Immunol. Meth.- 1985.- Vol.77.- P.55-61.

289. Umeki S. Mechanisms for the activation/electron transfer of neutrophil NADPH-oxidase complex and molecular pathology of chronic granulomatous disease //Ann. Hematol.- 1994.- Vol. 68.- P.267-277.

290. Vanderkooi J.M., Erecinska M., Silver I.A. Oxygen in mammalian tissue: methods of measurement and affinities of various reactions //Amer. J. Physiol.- 1991.-Vol.260.- P.C1131-C1150.

291. Vieweg R. , Leslie R.G.Q. Soluble immune complexes triggering of a respiratory burst in macrophages: The role of complex aggregation at the phagocyte surface //Eur. J. Immunol.- 1987.- Vol.17.- P.149-151.

292. Vinceti M. , Rovesti S., Marchesi C. et al. Changes in drinking water selenium and mortality for coronary disease in a residential cohort //Biol. Trace Elem. Res.- 1994.- Vol.40.- P.267-275.

293. Virk K.J., Prasad R.N., Ganguly N.K. et al. Comparative chemiluminescence response of Kuppfer cells, blood monocytes, and peritoneal macrophages of guinea pigs //Ind. J. Med. Res.- 1987.- Vol.85.- P.422-426.

294. Vissers M.C.M., Winterbourn C.C. Oxidative damage to fibronectin. 2. The effect of H202 and the hydroxyl radical //Arch. Biochem. and Biophys.- 1991.-Vol.285.- P.357-365.

295. Wach F., Ruediger H., Bernhard C., Krieg T. Inhibition of fibroblast chemotaxis by superoxide dismutase //Eur. J. Cell. Biol.- 1987.- Vol.44.- P.124-127.

296. Walz A., Peveri P., Aschauer H. et al. Structure and properties of a novel neutrophil-activating factor

297. NAF) produced by human monocytes //Agents and Actions.- 1989.- Vol.26.- P.148-150.

298. Ward P.A. Mechanisms of endothelial cell injury //J. Lab. and Clin. Med.- 1991.- Vol.118.- P.421-426.

299. Warren J.B. Vascular control of inflammatory oedema //Clin. Sci.- 1993.- Vol.84.- P.581-584.

300. Webb D.S.A., Jeska E.L. Enhanced luminol-dependent chemiluminescence of stimulated rat alveolar macrophages by pretreatment with alveolar lining material //J. Leukocyte Biol.- 1986.- Vol.40.- P.55-65.

301. Weiss S.J. Tissue destruction by neutrophils //New Engl. J. Med.- 1989.- Vol.320.- P.365-376.

302. Weiss S.J. The interplay of oxidants and proteinases in neutrophil-rnediated tissue damage //J. Cell. Bio-chem.- 1991.- Suppl.5c.- P.210.

303. Weitzman S.A., Gordon L.I. Inflammation and cancer -role of phagocyte-generated oxidants in carcinogenesis //Blood.- 1990.- Vol.76.- P.655-663.

304. Westman J.A. Influnce of pH and temperature on the luminol-dependent chemiluminescence of human polymorphonuclear leucocytes //Scand. J. Clin, and Lab. Invest.-1986.- Vol.46.- P.427-435.

305. Westrick M.A., Shirley P.S., De Chat^let L.R. Generation of chemiluminescence by human neutrophils exposed to soluble stimuli of oxidative metabolism //Infect, and Immun.- 1980.- Vol.30.- P.385-390.

306. Williams J.D., Topley N., Alobaidi H.M., Harber M.J. Activation of human polymorphonuclear leukocytes by particulate zymosan is related to both its major carbohydrate components: glucan and raannan //Immunology.-1986.- Vol.58.- P.117-124.

307. Williams J.G., Jutkovich G.J., Hahnel G.B., Mailer R.W. Macrophage priming by interferon y: a selective process with potential harmful effects //J. Leukocyte Biol.- 1992.- Vol. 52.- P.579-584.

308. Wright D.T., Cohn L.A., Li H. et al. Interactions of oxygen radicals with airway epithelium //Environ. Health Perspect.- 1994.- Vol.102 (Suppl.10).- P.85-90.

309. Yamaga S., Okamura S., Otsuka T., Niho Y. Effect of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor on chemiluminescence of human neutrophils //Int. J. Cell Cloning.- 1989.- Vol.7.- P.50-59.177

310. Yasukawa M., Inoue Y., Ohminami H. et al. Apoptosis of CD4+ T lymphocytes in human herpesvirus-6 infection //J. of Gen. Virol.- 1998.- Vol.79.- P.143-147.

311. Yu B.P. Cellular defenses against damage from reactive oxygen species //Physiol. Revs.- 1994.- Vol.74.-P.139-162.

312. Zgliczynsky J.M., Kwasnowska E., Stelmaszynska T. et al. Functional states of neutrophils as suggested by whole blood chemiluminescence //Acta Biochim. Pol.-1988.- Vol.35.- P.331-342.

313. Zhao B.L., Duan S.J., Xin W.J. Lymphocytes can produce respiratory burst and oxygen radicals as polymorphonuclear leukocytes //Cell Biophys.- 1991.- Vol.17.-P.205-212.

314. Zhu L., Gunn C., Beckman J.S. Bactericidal activity of peroxynitrite //Arch. Biochem. and Biophys.- 1992.-Vol.298.- P.452-457.