Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Исследование действия химических стимулов и нейромодуляторов на устойчивость водных беспозвоночных животных к высокой температуре среды

ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Калинникова, Татьяна Борисовна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Действие температуры на организмы пойкилотермных животных.В

1.2. Интегративное действие нейромодуляторов на системы нейронов и нервную систему беспозвоночных животных.

1.3. Хемосенсорные системы позвоночных и беспозвоночных животных.

ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

ГЛАВА 3. РЕГУЛЯЦИЯ ТЕПЛОУСТОЙЧИВОСТИ ОРГАНИЗМОВ ВОДНЫХ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ С МАЛЕНЬКИМИ РАЗМЕРАМИ ТЕЛА ХИМИЧЕСКИМИ СИГНАЛАМИ ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ.

3.1. Действие Сахаров на теплоустойчивость водных беспозвоночных с маленькими размерами тела.

3.2. Циклический 3'5'АМР как возможная сигнальная молекула, регулирующая физиологическое состояние организмов пресноводных беспозвоночных в их сообществах.

3.3. Сложная немонотонная функция "химический стимул-реакция организма" как возможный механизм приспособления пресноводных беспозвоночных животных с маленькими размерами тела к среде обитания.

ГЛАВА 4. ДЕЙСТВИЕ НЕЙРОМОДУЛЯТОРОВ НА УСТОЙЧИВОСТЬ

ЕпсЬуЬгаеиз а1Мс1ив К УВЕЛИЧЕНИЮ ТЕМПЕРАТУРЫ СРЕДЫ.

ГЛАВА 5. О МЕХАНИЗМАХ ПОЯВЛЕНИЯ ЭКСТРЕМАЛЬНОЙ ФУНКЦИИ "СТИМУЛ-РЕАКЦИЯ" ПРИ ДЕЙСТВИИ ХИМИЧЕСКИХ СТИМУЛОВ НА ТЕПЛОУСТОЙЧИВОСТЬ ОРГАНИЗМОВ ПРЕСНОВОДНЫХ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ С МАЛЕНЬКИМИ РАЗМЕРАМИ ТЕЛА.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Исследование действия химических стимулов и нейромодуляторов на устойчивость водных беспозвоночных животных к высокой температуре среды"

Нервная система играет ключевую роль в приспособлении организма животных к окружающей среде. Информация об изменении окружающей среды воспринимается сенсорными системами, и результатом восприятия и переработки этой информации нервной системой является включение нейрональных программ адаптивных форм поведения животных и адаптивного изменения метаболизма, регулируемого вегетативной нервной системой [19-20, 34, 55, 126, 132]. Одним из основных физических факторов среды, лимитирующих численность популяций пойкилотермных животных является температура. Стратегии адаптации гомойотермных и пойкилотермных животных к изменению температуры среды диаметрально противоположны. В первом случае включаются механизмы терморегуляции, обеспечивающие поддержание постоянной температуры тела [126], а во втором изменение температуры среды вызывает сходные изменения температуры тела животного [19]. Как следствие, нервная система гомойотермного животного функционирует при постоянной температуре нейронов, а нервная система пойкилотермного животного - в достаточно широком диапазоне температур нейронов, соответствующем диапазону температур, переносимых организмом [19]. Хорошо известно, что, во-первых, диапазоны переносимых пойкилотермными животными температур лимитируются диапазонами температур, в которых могут функционировать их нервные системы, и, во-вторых, диапазоны температур, в которых высшие нервные центры этих животных способны осуществлять центральную нервную интеграцию, уже диапазонов температур, в которых сохраняется функция периферических нервных центров или отдельных нейронов [19, 50, 183, 190, 196]. Два основных следствия, вытека-юндае из этих выводов, сделанных при изучении действия температуры на нервные системы пойкилотермных животных [191, заключаются в следующем: 1) Теплоустойчивость и холодоустойчивость организмов гомойотермных и пойкилотермных животных являются признаками, которые обусловлены эффективностью функционирования принципиально различных физиологических механизмов: у гомойотермных - эффективностью системы терморегуляции, а у пойкилотермных - эффективностью быстрой адаптации высших нервных центров к изменению температуры нейронов; 2) Измерение устойчивости пойкилотермного животного к действию высокой или низкой температуры среды может быть использовано в качестве метода оценки температурной устойчивости его центральной нервной системы (ЦНС), проявляющейся в сохранении или потере (кома и последующая гибель организма) центральной нервной интеграции при изменении температуры тела и нейронов. Широкие диапазоны температур среды, переносимых организмами многих беспозвоночных животных, свидетельствуют о том, что их высшие нервные центры способны быстро адаптироваться к сильным изменениям температуры нейронов. В связи с тем, что чувствительность большинства нейронов к изменению температуры высока и варьирует в широких пределах у нейронов одного ганглия [19, 129, 155, 157, 176, 205], очевидно, что адаптация высших нервных центров беспозвоночных к изменению температуры нейронов происходит на уровне систем нейронов, и ее целью является сохранение интеграции. Известно, что нейромодуляторы (нейромедиаторы с медленными рассеянными эффектами, рецепторы которых не связаны с ионными каналами,) играют ключевую роль в процессах интеграции как в локальных системах нейронов, так и в нервной системе в целом у беспозвоночных с небольшими размерами тела [23]. Увеличение температуры среды приводит у Annelida к стимуляции серотонинэргических нейронов в ЦНС [110] и к усилению нейросекреции катехоламинов нейросекреторными клетками ЦНС [82, 1783. Поэтому можно предположить, что процесс адаптации систем нейронов высших нервных центров беспозвоночных к изменению температуры нейронов, быстрый по отношению к хорошо известному процессу акклимации пойкилотермных животных (дни и недели) [19], но медленный (десятки минут и часы) по отношению к большинству процессов в нервной системе, регулируется нейромодуляторами.

Одной из целей работы явилась проверка этой гипотезы в экспериментах по действию экзогенных нейромодуляторов (серотонин, дофамин) и ингибиторов их действия на устойчивость организмов пресноводных и почвенных беспозвоночных с небольшими размерами тела к действию высокой температуры среды.

Известно, что сенсорные нейроны I порядка у беспозвоночных используют в качестве нейромедиаторов не только ацетилхолии, но и нейромедиаторы с медленными рассеянными эффектами (серотонин и гиетамин) С1163, которые оказывают интегративное действие на системы нейронов [23, 116, 121, 1673. Показано также, что химические стимулы вызывают возбуждение ееротоиинэргических нейронов в ЦНС у медицинской пиявки Hirudo medicinalis С110]. Поэтому можно предположить модулирующее действие хемосенсорных нейронов беспозвоночных с небольшими размерами тела на процессы адаптации систем нейронов в ЦНС к увеличению температуры нейронов и, как следствие, изменение теплоустойчивости организмов беспозвоночных при действии химических стимулов. В связи с этим второй целью работы явилось исследование действия различных химических стимулов на теплоустойчивость пресноводных и почвенных беспозвоночных. 7

Основные положения, которые выносятся на защиту:

1. Химические стимулы (сахара, нециклические пурины и сАМР) вызывают сильные изменения устойчивости организмов пресноводных беспозвоночных животных с маленькими размерами тела к увеличению температуры среды.

2. Сложная немонотонная функция "стимул-реакция" с несколькими оптимальными значениями интенсивности химического стимула при его действии на теплоустойчивость беспозвоночного животного свидетельствует об участии в процессах кодирования интенсивности хемосенсорной информации нейронов, их систем или нейросекреторных клеток с экстремальной функцией "вход-выход".

3. Серотонин и дофамин являются нейромодуляторами, которые увеличивают устойчивость организмов пресноводных беспозвночных животных к действию высокой температуры среды.

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Калинникова, Татьяна Борисовна

выводы

1. Показано., что одной из стереотипных форм изменения физиологического состояния при действии химических стимулов на организмы беспозвоночных животных является изменение устойчивости животных к действию экстремальной высокой температуры среды

2. Химическими сигналами среды, регулирующими теплоустойчивость организмов пресноводных беспозвоночных животных, являются сахара, нециклические пурины и сAMP, выделяемые в среду фитопланктоном и организмами животных.

3. Изменения устойчивости организма животного к действию высокой температуры среды, индуцированные химическими стимулами, выявлены у трех видов беспозвоночных животных с маленькими размерами тела - Enchytraeus aibidus, Tubifex tubifex и личинки Chironomus sp., относящихся к двум типам - Annelida и Arthropods.

4. Изменения устойчивости организма к высокой температуре среды при действии пуринов в качестве химических стимулов обусловлены наличием у Е.aibidus двух типов хеморецепторов с высокой избирательностью к нециклическим пуринам и к сАМР.

5. Сложная немонотонная функция ''с тимул-реакция'1 при действии химических стимулов на теплоустойчивость организмов беспозвоночных животных свидетельствует о функционировании в процессах кодирования интенсивности хемосенсорной информации нейронов, их систем или нейросекреторных клеток с экстремальной функцией "вход-выход".

6. Серотонин и дофамин являются нейромодуляторами, увеличивающими устойчивость организма Е. aibidus к действию высокой температуры среды в качестве нейромедиаторов или нейрогормонов.

7. Увеличение устойчивости организма Е.aibidus к действию экстремальной высокой температуры среды антагонистами ^-рецепторов гистамина цетиризина и т-холинолитика атропина свидетельствует о том, что эндогенные гистамин и ацетилхолин регулируют теплоустойчивость Е.а1Ыс1из при связывании соответственно ^-рецепторами и мускариновыми рецепторами. -1 о о -L ÎOÎC

- 116 -ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Особенностью этой работы явилось использование в качестве объектов исследования беспозвоночных животных с очень маленькими размерами тела. За редким исключением, "модельными" видами в физиологических исследованиях как на уровне организма, так и на клеточном уровне являются беспозвоночные животные с относительно большими размерами тела. В то же время в процессе эволюции появилось большое количество видов водных и почвенных беспозвоночных животных, размеры тела которых сопоставимы с размерами крупных одноклеточных организмов Protozoa СЮ]. Ранее высказывались предположения о том, что следствием очень сильных различий размеров нейронов, обусловленных различиями размеров тела животных, могут быть качественные различия в механизмах передачи информации у нейронов беспозвоночных животных даже одного рода [24]. В этом случае могут проявляться и особенности функционирования целостной нервной системы беспозвоночного животного с очень маленькими размерами тела. Одной из таких особенностей функционирования нервных систем миниатюрных водных беспозвоночных животных, по-видимому, является обнаруженная нами регуляция химическими сигналами внешней среды устойчивости организмов пресноводных животных к действию высокой температуры (Глава 3). Известно, что в соответствии с принципом доминанты Ухтомского устойчивость организмов позвоночных животных и беспозвоночных животных с большими размерами тела к действию высокой температуры определяется их генотипом и поступлением в нервную систему информации об изменении температуры среды, но не зависит от сенсорной информации о химическом составе среды. Напротив, теплоустойчивость миниатюрных пресноводных беспозвоночных животных, согласно нашим данным (Глава 3), претерпевает сильные изменения при поступлении сенсорной информации об изменении химического состава воды. Этот феномен, по-видимому, достаточно универсален для миниатюрных водных беспозвоночных, так как выявлен в экспериментах с тремя видами беспозвоночных (Enohytraeus aibidus, Tubifex tubifex и личинки Chironomus sp.), относящихся к двум типам (Annelida и Arthropoda),

Химическими сигналами среды, регулирующими теплоустойчивость, являются гидрофильные молекулы метаболитов, выделяемые в среду организмами водных растений и животных. Низкие действующие концентрации этих метаболитов (10~7 М для глюкозы, 10~i0 М для аденозина и 10~1с5 М для сАМР), которые на несколько порядков ниже их концентрации в клетках и гемолимфе, в соответствии с современными представлениями об организации хемосенсорных систем животных, показывают наличие у миниатюрных пресноводных беспозвоночных животных хеморецепторных клеток, чувствительных к сахарам, нециклическим пуринами и сАМР. Чувствительность хемосенсорных систем этих животных к нециклическим пуринам и сАМР на несколько порядков выше химической чувствительности организмов позвоночных и беспозвоночных животных, выявляемой при действии этих метаболитов в качестве химических стимулов на поведение позвоночных и беспозвоночных животных [46, 72, 160, 219].

Известно, что теплоустойчивость организма пойкилотермного животного лимитируется способностью его высшего нервного центра сохранять центральную нервную интеграцию в условиях увеличения температуры тела и, соответственно, нейронов [19, 50, 183, 190, 196], Действие многих сенсорных стимулов на поведение беспозвоночных животных опосредовано интегративным действием на системы нейронов и на нервную систему в целом нейромодуляторов - нейроме-диаторов с медленными рассеянными эффектами или нейрогормонов, которые секретируются сенсорными нейронами, интернейронами и ней-росекреторными клетками [22-23, 90, 95, 115-117, 121, 165-167, 229]. Согласно нашим данным, экзогенные нейромодуляторы (серото-нин и дофамин) и антагонисты эндогенных нейромодуляторов оказывают на теплоустойчивость миниатюрных беспозвоночных животных действие, сходное с действием химического стимула. Эти данные и данные других авторов о возбуждении серотонинэргических нейронов при действии на организм химических и термальных стимулов [23, 110] и секреции катехоламинов нейросекреторными клетками у Annelida при увеличении температуры [23, 82, 110, 116, 1783 показывают ключевую роль нейромодуляторов в процессах быстрой адаптации нервной системы к увеличению температуры тела и модулирующем действии химических стимулов на эти процессы.

Сложная экстремальная функция "стимул-реакция" с несколькими оптимальными значениями интенсивности химического стимула при его действии на теплоустойчивость организмов миниатюрных пресноводных беспозвоночных животных (Глава 3) может быть следствием особенностей как периферического (хеморецепторные клетки), так и центрального кодирования интенсивности хемосенсорной информации. Оба варианта объяснения, рассмотренные в главе , предполагают причинами появления сложной экстремальной функции "стимул-реакция" маленькие размеры тела животных и большую длительность действия химического стимула в наших экспериментах. Предельное уменьшение размеров хеморецепторных клеток предполагает возможность изменения механизмов передачи в них информации и, как следствие, появления экстремальной функции "стимул-реакция", а сильное уменьшение объемов ганглиев и гемолимфы усиливает роль "объемного механизма" передачи информации диффузией нейромодуляторов, у которых, согласно нашим данным (Глава 4), функция "вход-выход" при дейс

- 119 твии на нервную систему экстремальна. Длительность действия химического стимула в наших экспериментах также предполагает возможность появления экстремальной функции "вход-выход" у нейронов, их систем или нейросекреторных клеток ЦНС, через которые проходит сигнал, в результате развития процесса частичной адаптации.

Регуляция устойчивости организмов миниатюрных беспозвоночных животных к действию высокой температуры химическими сигналами среды может быть механизмом интеграции особей в систему продуцируемыми ими в среду химическими сигналами и во многом объясняет неустойчивость организмов этих животных, проявляющуюся в резких колебаниях численности их оппортунистических популяций, высокой смертности и "гибели по неизвестным причинам" в лабораторных условиях С17, 303. Одним из механизмов приспособления популяций миниатюрных беспозвоночных животных к увеличению температуры среды является адаптивное изменение их структуры (генетическая, возрастная) , и неустойчивость организмов является фактором, усиливающим процесс естественного отбора, определяющего изменение структуры популяции.

Сложная экстремальная функция "химический стимул-реакция организма" из-за неопределенности реакции организма на химический сигнал среды также является фактором, усиливающим неустойчивость организмов миниатюрных водных беспозвоночных, но, как это рассмотрено в главе 3, позволяет использование хемосенсорной системы беспозвоночных одного вида для восприятия сенсорной информации о суточных и сезонных ритмах изменения концентрации метаболитов в пресноводных экосистемах с сильно различающимся химическим составом воды.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Калинникова, Татьяна Борисовна, Казань

1. Албертс Б., Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М., Роберте К., Уот-сон Дж. Молекулярная биология клетки : В 3 т. М.: Мир, 1994. -Т. 3. - 504 с.

2. Александров В.Я. Реактивность клеток и белки. Л.: Наука, 1985. - 318 с.

3. Бажин Е.В. Атропиновые комы. -Л.: Медицина, 1984. 128

4. Бедер К.И., Макаров В.В. Концентрационная зависимость характера влияния адреналина на возбудимость гигантских нейронов // Фармакология и токсикология. 199?. - 40, N 2. - С. 148-153.

5. Бурмистров Ю.М. Проблемы нейрофизиологии ракообразных: нейронные аспекты. М., 1991. - С, 4-99. - (Итоги науки и техники. Сер. Физиология человека и животных; Т. 50).

6. Гайнутдинов М.Х., Яргунов В.Г., Красноперова И.А., Плеханова В.А., Лобода В.И., Кузнецова Т.В., Петрова Р.Б. О возможности существования программы гибели Daphnia magna (Cladocera) // Доклады Академии наук. 1997. - 355. M 5. - С. 708-711.

7. Гайнутдинов М.Х., Яргунов В.Г., Красноперова И.А., Калинникова Т.Е., Плеханова В.А., Лобода В.И., Зайнулгабидинов Э.Р. Сахара как сигнальные молекулы в системе управления сообществ гидробионтов // Доклады Академии наук. 1997. 3S7, N 2. - С. 269-272.

8. Галковская Г.А., Сущеня Л.М. Рост водных животных при переменных температурах. Минск: Наука и техника, 1978. - 140 с.

9. Кикнадзе И.И., Колесников H.H., Лопатин O.E. Хирономус Chironomus thummi Kleff, (лабораторная культура) // Объекты биологии развития. М.: Наука, 1975. - 0. 95-127.

10. Константинов A.C. Биология хирономид и их разведение // Труды Саратовского отделения ВНИОРХ. 1958. - 5. - С. 1-358.

11. Машковский М.Д. Лекарственные средства : В 2 т. Харьков: Торсинг, 1998. - Т. 1. - 560 с.

12. Мещеряков В.Н. Трубочник Tubifex tubifex Mull. // Объекты биологии развития. М.: Наука, 1975. - С. 31-52.

13. Новалес Р., Гилберт Л., Браун Ф. Эндокринные механизмы // Сравнительная физиология животных / Под ред. Л.Проссера. М.: Мир, 1977. - Т. 3. - С. 411-507.

14. Пианка Э. Эволюционная экология. М.: Мир, 1981, 400 с.

15. Плохинский H.A. Алгоритмы биометрии. М.: йзд-во Моск. ун-та, 1980. 150 с.

16. Проссер Л. Температура // Сравнительная физиология животных / Под ред. Л.Проссера. М.: Мир, 1977.- Т. 2. - С. 84-209.

17. Проссер Л. Хеморецепция // Сравнительная физиология животных / Под ред. Л.Проссера. М.: Мир, 1977. - Т. 2, - С.1. A QO А Р.'У 40iC 40/ .

18. Сазанов Л.А., Зайцев С.В. Действие сверхмалых доз биологически активных веществ // Биохимия. 1992, - 57, N 10. - С. 1443-1460.

19. Самойлов М.О. Базисные молекулярно-клеточные механизмыадаптивных реакций мозга // Физиологический журнал им. И.М.Сеченова. 1995. -81, М 8. - С. 3-10.

20. Сахаров Д.А. Интегративная функция ееротонина у примитивных Metazoa // Ж. общ. биол. 1990. - 51, N 4. - С. 437-449.

21. Свидерский В.Л. Локомоция насекомых. Нейрофизиологические аспекты. Л.: Наука, 1988. - 258 с.

22. Сомьен Дж. Кодирование сенсорной информации. М., Мир, 1975. - 415 с.

23. Стриганова Б.Р. Содержание и культивирование некоторых почвенных беспозвоночных-сапрофагов в лаборатории // Методы поч-венно-зоологических исследований / Под ред. М.С.Гилярова. М.: Наука, 1975. - С. 128-137.

24. Суслова И.В. Температурная зависимость локомоторного ритма пелагического моллюска морского ангела /./ Простые нервные системы. Тез. Всес. конф. "Простые нервные системы и их значение для теории и практики". Казань, 1985. - Ч. 2. - С. 86-88.

25. Ушаков Б.П. Анализ теплоустойчивости клеток и белков пойкилотермных животных в связи с проблемой вида : Дис. . д-ра биол. наук в форме научн. докл. Ленинград, 1964. - 71 с.

26. Ушаков Б.П., Пашкова И.М, Анализ повышения теплоустойчивости Daphnia magna в процессе ведения культуры в ряду поколений // Генетика. 1983. - 19, N 8. - С. 1251-1256.

27. Чекановская О,В. Водные малощетинковые черви фауны СССР. Определители по фауне СССР. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1962. - 4121. С .

28. Чиженкова Р.А., Сафрошкина А.А. Математическая модель управления временной связью в популяциях нейронов моторной коры с поведенческим эффектом // Успехи соврем, биологии. 1995. - 115, вып. 4. - С. 419-426.

29. Эволюционная эндокринология поджелудочной железы. Л.: Наука, 197?. - 350 с.

30. Яниг В. Вегетативная нервная система // Физиология человека / Под ред. Р.Ф.Шмидта и Дж.Тьюиса. М.: Мир, 1985. - Т. 1. Нервная система. - С. 167-219

31. Abrams T.W., Goldsmith В.А. cAMP modulation of multiple К+ currents contributes to both action potential broadening1 and increased excitability in Aplysia sensory neurons // Soc. Neurosci. Abstr. 1992, - 18. -P. 16.

32. Ache B.W. Ohemoreception and thermoreception // The Biology of Crustacea : Vol. 3. Neurobiology: Structure and Function / Eds. H.L,Atwood, D.С.Sandeman, Mew York: Academic Press, 1982. - P. 369-398.

33. Alberts J.J., Bowling J.W., Emmons M. Dissolved carbohydrate distribution and dynamics in two southeastern U.S.A. reservoirs // Can. J. Fish. Aquat. Soi. 1988, - 45, - P.1. OOC QOO1. OiCD-OOC.

34. Alger B,E,, Nicoll R.A. Pharmacological evidence for two kinds of GABA receptor on rat hippocampal pyramidal cells studied- 126 in vitro /./ J. Physiol. 1982. - 328. - P. 125-141.

35. Altner H., Hatt H., Altner I. Structural and functional properties of the mechanoreceptors arid chemoreceptors in the anterior oesophageal sensilla of the cryfish, Astacus astacus // Cell Tiissue Res. 1986. - 244. - P. 537-547.

36. Amakawa T., Ozaki M., Kawata K. Effects of cyclic GMP on the sugar taste receptor cell of the fly Phormia regina // J. Insect Physiol. 1990. - 36. - P. 281-286.

37. Appenzeller 0. The Autonomic Nervous System. 2nd Ed. -Amsterdam-Oxford, New York: American Elsevier Publishing Co,, 1976. - 453 p.

38. Armstrong M.C., Montminy M.R, Transsynaptic control of gene expression // Ann. Rev. Neurosci. 1993. 16. - P. 17-29.

39. Atema J. Smelling and tasting underwater // Oceanus. 1980. 23. - P. 4-18.

40. Avery L., Horvitz H.R. Effects of starvation and neuroactive drugs on feeding in Caenorabditis elegans // J. Exp. Zool. 1990. - 253. - P. 263-270.

41. Bargmann C.I., Horvitz H.R. Chemosensory neurons with overlapping functions direct Chemotaxis to multiple chemicals in C.elegans // Neuron. 1991. - 7. - P. 729-742,

42. Bargmann C.I., Horvitz H.R. Control of larval development by chemosensory neurons in Caenorabditis elegans // Sciense. 1991. - 251. - P. 1243-1246.

43. Bargmann C.I., Hartweig E., Horvitz H.R. Odorant-selective genes and neurons mediate olfaction in C.elegans // Cell. 1993. - 74. - P. 515-527.

44. Baskai B.J., Hocher B., Manaut-Smith M., Adams S.R., Kaang B.K., Kandel E.R., Tsien R.Y. Spatially resolved dynamics- 127 of cAMP and protein kinase A subunits in Aplysia sensory neurons // Science. 1993. - 260. - P. 222-226.

45. Battle H.I. Lethal temperatures in relations to reflexes of skate // Trans. Roy. Soc. Canad. 1926. - 20. - P. 127-143.

46. Bauer U., Dudel J., Hatt H. Characteristics of single chemoreceptive units sensitive to amino acids and related substances in the cryfish leg // J, Comp. Physiol. 1981. - 144. - P. 67-74.

47. Baxter D.A., Byrne J.H. Serotoninergic modulation of two potassium currents in the pleural sensory neurons of Aplysia // J. Neurophysiol. 1989. - 62. - P. 665-679.

48. BeltzB.S., Kravitz E.A. Physiological identification, morphological analysis., and development of identified serotonin-proctolin containing neurons in the lobster ventral nerve cord // J. Neurosci. 1987. - 7. - P. 533-546.

49. Benjamin P.R., Elliott C.J.H. Snail feeding oscillator: the central pattern generator and its control by modulatory interneurons // Neuronal and Cellular Oscillators / Ed. J.W.Jacklet. New York: Dekker, 1989. - P. 173-214.

50. Bentley D. Neural control of behavior // Ann. Rev. Neurosci. 1978. - 16 - P. 35-59.

51. Bernardt S.J., Nairn M., Zehavi U., Lindemann B. Signal pathways in taste transduction: the emerging complexity of the sweet response (Abstract) // Symp. Europ. Chemoreceptive Res. Org. 11th Blois France. 1994. - P. 103.

52. Bernardt S.J., Nairn M., Zehavi U., Lindemann B. Changes in IP3 and cytosolic Ca*+ in response to sugars arid non-sugar sweeteners in transduction of sweet taste in the rat // J. Physiol. Lond. 1996. - 490. - P. 325-336.

53. Black I, B., Adler J.E., Dreyfus C.F., Friedman W.F., Lagamma E.F., et al. Biochemistry of information storage in the nervous system // Science. 1987. - 238. - P. 1263-1268,

54. Bligh J. Mechanism of sweat secretion // Envir. Res. -1967. 1. - P.28-45.

55. Braha 0., Dale N., Klein m., Kandel E.R. Protein kinase C may contribute to the increase in spontaneous release evoked by 5-HT at cultured Aplysia sensory-motor synapses // Soc. Neurosci. Abstr. 1990. - 16. - P. 1013.

56. Brand J.G., Teeter J.H., Kumazawa T., Huque T., Bayley D.L. Transduction mechanisms for the taste of amino acids // Physiol. Behav. 1991. - 49. - P. 899-904.

57. Breer H., Klemm T., Boekhoff I. Nitric oxide mediated formation of cyclic GMP in olfactory system // Meureport. 1992. - 3. - P. 1030-1032.

58. Brett l.R. Lethal temperatures of freshwater fish // J. Fish Res. Bd. Canad. 1963. - 9. - P. 265-323.

59. Buffington J.D. Temperature acclimation in Culex // Comp. Biochem. Physiol. 1969. - 30,- P. 865-878.- 129

60. Bullitt E. Induction of c-fos-like protein within lumbar spinal cord and thalamus of the rat following peripheral stimulation // Brain. Res. 1989, - 493. - P. 391-397.

61. Bullock T.H. Pit viper perceptions of heat // Fed. Proc.- 1953, 12. - P. 666-672.

62. Calabrese R.L. Modulation of muscle and neuromuscular junctions in invertebrates // Semin. Neurosci. 1989. - 1, - P.1. OC ~> Aicu"o4.

63. Oaprio J. High sensitivity of catfish taste receptors to amino acids // Comp. Biochem. Physiol. A : Comp. Physiol. 1975.- 52. P. 247-251.

64. Caprio J. Olfaction and taste in the channel catfish: an electrophysiological study of the responses to amino acids and derivatives // J. Comp. Physiol. 1978. - - P. 357-371.

65. Carr W.E.S., Glleson R.A., Ache B,W., MiLstead M.L. Olfactory receptors of the spiny lobster ATP-sensitive cells with similarities to Pr-type purinoreceptors of vertebrates // J. Comp. Physiol. A. 1986, - 158. - P. 331-338.

66. Carr W.E.S., Ache B.W., Gleeson R.A, Chemoreceptors of crustaceans: similarities to receptors for neuroactive substances in internal tissues // Environ. Health Perspec. 1987. - 71. -P. 31-46.

67. Case J. Properties of the dactyl chemoreceptors of Cancer antennarius Stimpson and C.productus Randall // Biol. Bull. 1964. - 127. - P. 428-446.

68. Castelucci V.F., Nairn A,., Greengard P., Schwartz J.H., Kandel E.R. Inhibitor of adenosine 3*:5'-monophosphate-dependent protein kinase blocks presynaptic facilitation in Aplysia // J. Neurosci. 1982. - 2. - P. 1673-1681.- 130

69. Chiel H.J., Weiss K.R,, Kupfermann I. An identified histaminergic neuron modulates feeding motor circuitry in Aplysia. J. Neurosci. 1986. - 6. - P. 2427-2450.

70. Chiel H.J., Kupfermann I., Weiss K.R. An identified histaminergic neuron can modulate the outputs of buccal-cerebral interneurons in Aplysia via presynaptic inhibition // J. Neurosci. 1988. - 8. - P. 49-63.

71. Clarac F., El Manira A., Cattaert D. Presynaptic control as a mechanism of sensory-motor integration // Curr. Opin. Neurol. 1992. - 2. - P. 764-769.

72. Colbert H.A., Bargmann C.I. Odorant-specific adaptation pathways generate olfactory plasticity in C.elegans // Neuron. 1995. 14. - P. 803-812.

73. Collins F., Dawson A. An effect of nerve growth factor on parasympathetic neurite outgrowth // Proc. Natn. Acad. Sci. U.S.A. 1983. - 80. - P. 2091-2096.

74. Curran T., Morgan J.¡.Memories of fos // Bioassays. 1987. 7. - P. 255-258.

75. Daahake D.L. Effect of thermal stress on the neurosecretory cells of the cerebral gagnglion in meguscolecid earthworm, Endichogaster prashadi (Gates) // J, Current. Biosci.- 1984. 1, N 4. - P. 161-165.

76. Dahl D., Sarvey J.M. Norepinephrine induced pathway-specific long-lasting potentiation and depression in the hippocampal dentate gyrus // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989.- 86. P. 4776-4780.

77. Dawson T.M., Snyder S.H. Gases as biological messehgers: nitric oxide and carbon monoxide in the brain .// J. Neurosci. 1994. 14. - P. 5147-5159.- 131

78. Dawson W.R. , Denny M.S., Hulbert A.J. Thermal balance in marsupial Macropus // Comp. Biochem. Physiol. 1969. - 31. - P. 645-653.

79. Derby G.D., Atema J. Chemosensitivity of walking legs of the lobster Homarus americanus: neurophysiological response spectrum and thresholds // J. Exp. Biol, 1982. - 98, - P. 303-316.

80. Dickinson P. Modulation of simple motor patterns /V Semin. Neurosci. 1989. 1. P. 15-24.

81. Dunwiddie T.V., Taylor M., Heginbotham L.R,, Proctor W.R. Long-term increases in excitability in the CAi region of rat hippocampus induced by 3-adrenergic stimulation: Possible mediation by cAMP // J. Neurosci. 1992. - 12. - P. 506-517,

82. Dusenbery D,B, Analysis of chemotaxis in the nematode Caenorabditis elegans by countercurrent separation // J, Exp. Zool. 1974. - 188. - P. 41-47.

83. Epstein I,R., Marder E, Multiple modes in of a conditional neural oscillator /./ Biol. Cybern. 1990, - 63. - P. 25-34.

84. Evans W.G. Infared receptors in buprestid beetles // Nature. 1964. - 202. - P. 211.

85. Evans W.G. Infared receptors in beetles // Ann. Entomol, Soc, Amer. 1966, - 59. - 873-876.

86. Fadool D.A., Ache B,W, Plasma membrane inositol 1,4,5-triphosphate-activated channels mediate signal transduction in lobster olfactory receptor neurons // Neuron. 1992. - 9. -P. 907-918.

87. Fitzsimonds R.M., Poo Mu-Ming Retrograd signaling in the development and modification of synapses // Physiol. Rev. 1998.-78, Ml. P. 143-170.

88. Flamm R.E., Harr is-War-rick P.M. Aminergic modulation in lobster stomatogastric ganglion, II, Target neurons of dopamine, octopamine arid serotonin within the pyloric circuit // J. Neurophysiol. 1986. - 55. - P. 866-881.

89. Folkow B., Neil E. Circulation. New York-London-Toronto-Oxford: University Press, 1971. - 423 p.9?. Fraenkel G. Resistance to high temperature in snail Littorina // Ecology. 1961. - 42. - P. 604-616.

90. Fraenkel J., Gunn D.L. Orientation of Animals. New York: Dover Press, 1961. - 185 p.

91. Frank P.W. Prediction of population growth form in Daphnia pulex cultures // Am. Nat, 1960. - 94. - P. 357-372.

92. Fry F.E.J. Environmental effects on activity of fish // Publ. Ontario Fish Res. Lab. 1947. - 68. - P. 1-52.

93. Fuzessery Z.M. Quantitative stimulation of antennular chemoreceptors of the spiny lobster, Panulirus argus // Comp. Blöchern Physiol. 1978. - 60. P. 303-308.

94. Garthwaite J., Boulston C.L. Nitric oxide signaling in the central nervous system // Annu. Rev. Physiol. 1995. - 57. -P. 683-706.

95. Gerfen C.R., Engber T.M., Mahan L.C., Süsel Z., Chase T.N., et al. D1 and D2 dopamine-receptor-regulated gene expression of striatonigral and striatopallidal neurons // Science. 1990. - 250. - P. 1429-1431.

96. Getting P.A., Dekin M.S. Tritonia swimming: a model system for integration within rhythmic motor systems // Model Neural Networks and Behavior / Ed. A.I.Selverston. New York: Plenum, 1985. - P. 3-20,- 133

97. Gierschik P., Camps M. Stimulation of phospholipase C by G protein B¥ subunits // GTPases in Biology. Handbook of Experimental Pharmacology / Eds. B.Dickey, L.Birnbaumer. Heidelberg, Germany: Springer, 1993. 108/31, chapt. 59. - P. 251-264.

98. Ginrich K.J,, Byrne J.H. Simulation of synaptic depression, post-tetanic potentiation, and presynaptic facilitation of synaptic potentials from sensory neurons mediating gill-withdrawal reflex in Aplysia // J. Meurophysiol. -1985. 53. P. 652-669.

99. Glover J.C., Kramer A.P. Serotonin analog selectively ablates identified neurons in the leech embryo // Science. 1982. 2166. - P. 317-319.

100. Golden J.W., Riddle D.L. A pheromone influences larval development in the nematode Caenorabditis elegans Science. 1982. - 218. - P. 578-580.

101. Groome J.R. , Vaugham D.K., Lent C.U. Ingestive sensory inputs excite serotonin effector neurons and promote serotonin depletion from the leech central nervous system and periphery // J. Exp. Biol. 1995. - 198, N 6. - P. 1233-1242.

102. Grothe C., Sedl K., Pfannenstree H.D. Cytochemical and biochemical characterization of neurosecretory material in the brain of annelid, Ophryotrocha puerilis (Polychaeta) // Gen. and Comp. Endocrinol. 1987. 68, N 1. - P. 1-5.

103. Hanegan J.L., Heath J.E. Control of body temperature in moth Hvalophora // J. Exp. Biol. 1970. - 53. . P.349-362.

104. Hansen Bay C.M. The control of enzyme secretion from fly salivary glands // J. Physiol. 1978. - 274. - P. 421.

105. Hanson F.E. Chemoreception in the fly: the search of the liverwurst receptor // Perspectives in Chemoreception and Behavior / Eds. R.F.Chapman, E.A.Bernays, J,G.Stoffolano. Springer, Berlin, Heidelberg, New York, 1987. P. 99-122.

106. Harris-Warrick R.M. Chemical modulation of central pattern generators // Neural Control of Rhythmic Movements in Vertebrates / Eds. A.H.Cohen, S.Rossignol, S. Griliner. New York: Wiley & Sons, 1988. - P. 285-331.

107. Harris-Warrick R.M. Modulation of neural networks for behavior // Ann. Rev. Neurosci. 1991. - 14. - P. 39-57.

108. Harris-Warrick R.M., Flamm R.E. Multiple mechanisms of bursting in a conditional bursting neuron // J. Neurosci. 1987, - 7. - P. 2113-2128.

109. Harris-Warrick R.M., Nagy F., Musbaum M.P. Dynamic biological networks // The Stomatogastric Nervous System / Eds. R.M.Harris-War-rick, E.Marder, A, I.Selverston, M.Moulins. Cambridge: MIT Press, 1992. P. 87-137,

110. Haslett B.A. Stimuli involved in the feeding behavior of the hermit crab Clibanarius vitanus (Decapoda, Paguridea) // Crustaceana. 1968. - 15. - P. 305-311.

111. Haslett B.A. Chemical and chemotactio stimulation of feeding behavior in the hermit crab, Petrochirus diogenes // Comp. Biochem. Physiol. 1971. - 39A. - p. 665-670.

112. Hawkins R.D., Kandel E.R.; Siegelbaum S.A. Learning to modulate transmitter release: themes and variations in synapticplasticity // Ann. Rev. Neurosci. 1993. - 16. P. 625-665.

113. Hawkins R.D., Shuo M., Arancio 0. Nitric oxide and carbon monoxide as possible retrograde messengers in hippocampal long-term potentiation // J. Neurobiol. 1994. - 25. - P. 652-665.

114. Hazel J. Effects of mitochondrial lipids on succinic dehydrogenase // Ph. D. Thesis. University of Illinois, 1971. -55 p.

115. Hebert P.D.N. The population biology of Daphnia (Crustacea, Daphniidae) // Biol. Ravs. Cambridge Phil. Soc. -1978. 53, N 3. - P. 387-426.

116. Hempel C.M., Vinsent P., Adams R.Y., Tsien R.G., Selverston A.I. Spatio-temporal dynamics of cyclic AMP signals in an intact neuron circuit // Nature. 1997. - 384, N 14, - P. 166-169.

117. Hensel H. Neural processes in thermoregulation // Physiol. Rev. 1973. - 53. - P. 948-1017.

118. Hochner B., Klein M., Schacher S., Kandel E.R. Additional component in the cellular mechanism of presynaptic facilitation contributes to behavioral dishabituation in Aplysia // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. - 83. P. 8794-8798.

119. Hodkin A.L., Katz B. Effect of temperature on action potentials in squid giant axon // J. Physiol. 1949. - 109, - P. 240-249.- 136

120. Hunt S.P., Pini A., Evan G. Induction of c-fos-like protein in spinal cord neurons following sensory stimulation // Nature. 1987. - 328. - P. 632-634.

121. Ikeda K. On a new seasoning (in Japanese) // J. Tokyo Chem. Soc. 1990. - 30. - P. 820-836.

122. Iversen S.D. , Iversen L.L. Behavioral Pharmacology. -New York Oxford: Oxford University Press, 1977. - 497 p.

123. Jakinovich W., Sugarman D. Sugar taste perception in mammals // Chem. Senses. 1988. - 13. P. 13-31.

124. Jansky L, Noradrenaline thermogenesis in rats // Physiol. Bohemoslov. 1967. - 166. - P. 366-371.

125. Jansky L., Hart J.S. Nonshivering thermogenesis in cold-acclimated rats // Canad. J. Biochem. 1963. - 41. - P. 953-964.

126. Johnson B.R,, Atema J. Narrow-spectrum ohemoreceptor cells in the antennules of the american lobster, Homarus americanus // Neurosci. Lett. 1983. - 41. - P^Jl45-150.

127. Johnson B.R., Voigt R., Borroni P.F., Atema J. Response properties of lobster chemoreceptors: tuning of primary taste neurons in walking legs // J. Comp. Physiol. A. 1984. - 155. -P. 593-604.

128. Johnson B.R., Harris-Warrick R.M. Aminergic modulation of graded synaptic transmission in the lobster stomatogastric ganglion // J. Neurosci. 1990. - 10. - P. 2066-2076.

129. Jorgensen N.O.G. Dissolved organic carbon (DOC) in lakes // Carbon Dynamics in Eutrophic Temperate Lakes / Eds. B.Riemann and M.Sondergaarol. Amsterdam: Elsevier, 1986. - P.1. R-9Rw i-^O,

130. Kalinoski D.L., Huque T., Lamorte V.J., Brand J.G.1 ^f? —

131. Second-messenger events in taste // Chemical Senses 1: Receptor Events and Transduction in Taste and Olfaction / Eds. J.G.Brand, J.H.Teeter, R.H.Cagan, M.R.Kare. New York: Dekker, 1989. - 1. -P. 85-101.

132. Kaplan J., Horvitz H. A dual mechanosensory and chemosensory neuron in Caenorabditis elegans // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. - 90. - P. 2227-2231.

133. Katz P.S., Harris-Warrick R.M. Neuromodulation of the crab pyloric central pattern generator by serotonergic/' cholinergic proprioceptive afferents // J. Neurosci. 1990. -10. - P. 1495-1512.

134. Kessler J.A., Adler J.E., Black LB. Substance P and somatostatin regulate sympathetic noradrenergic function // Science. 1983. - 221. - P. 1059-1061.

135. KijimaH., Nagata K., Mishiyama A., Morita H. Receptor current fluctuation analysis in the labellar sugar receptor of the fleshfly // J. Gen. Physiol. 1988. - 91. - P. 29-47.

136. Kloppenburg P., Hildebrand J.G. Neuromodulation by 5-hydroxytryptamine in the antennal lobe of the sphinx moth

137. Manduca sexta // J. Exp. Biol. 1995, - 198, N 3. - P. 603-611.

138. Kohbara J., Michel W. , Caprio J. Responses of single facial taste fibers in the channel catfish, Ictalurus punctatus, to amino acids /7 J. Neurophysiol. 1992. - 88. - P. 1012-1026.

139. Kolesnikov S.S,, Margolskee R.F. A cyclic-nucleotide-supressible conductance activated by transducin in taste cells // Nature Lond. 1995. - 376, - P. 85-88.

140. Koller P., Fathi M., Reichert H. Serotoninerglc neuromodulation of the locust wing stretch receptor // Neural Mechanisms of Behavior / Eds. J.Erber, R.Menzel, H-J.Pfluer, D.Todt. Stuttgart: Georg Thieme Verglad, 1989. P. 233,

141. Kravitz E.A. Hormonal control of behavior: amines and the biasing of behavioral output in lobster // Sciense. 1988. -241. - P. 1775-1781.

142. Kravitz E., Glusman S., Harris-Warrick R.M., Livingstone M.S., Schwartz T., God M.F. Amines and a peptide as neurohormones in lobsters // J. Exp. Physiol. 1980. - 89. - P. 159-175.

143. Kuffler S.W., Nichols J,G., Martin A.R. From Neuron to Brain. 2nd Ed. - Sunderland, MA: Sinauer. P., 1984, - P. 207-302.

144. Kupfermann I., Weiss K.R. The role of serotonin in arousal of feeding behavior of Aplysia // Serotonin neurotransmission and behavior / Eds. A.Gelperin, B.Jacobs. Cambridge: MIT Press, 1981. P. 255-287,

145. Lagerspetz K.Y.H., Talo A. Temperature acclimation and conduction in nerve fibers, Lumbricus // J, Exp. Biol. 1967. -47. - P. 471-480.

146. Lau L.F., Nathans D. Expression of a set, of growth- 139 related immediate early genes in BALB/c 3T3 cells: coordinate regulation with c-fos and c-myc // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1987. 84. - P.1182-1186.

147. Laverack M.S. Effect of temperature on activity of nerve earn of earthworm // Comp. Biochem. Physiol. 1961. - 3. -P. 136-140.

148. Lent C.M., Dickinson M.H. Serotonin integrates feeding behaviour of the medicinal leech // J. Comp. Physiol. 1984. -154A. - P. 457-471.

149. Levitan E.S., Levitan I.B. Serotonin acting via cyclic AMP enhances both the hyperpolarizing and depolarizing phases of bursting pacemaker activity in the Aplysla neuron R15 // J. N'eurosci. 1988. - 8. - P. 1152-1161.

150. Lindemann B. Taste reception // Physiol. Rev. 1996. -76, N 3. - P. 719-766.

151. Lischka F.W., Schild D. Effects of nitric oxide upon olfactory receptor neurons in .Xenopus laevis // Neuroreport. 1993. 4. - P. 582-584.

152. Livingstone M.S., Harris-Warrick R.M,, Kravitz E.A. Serotonin and octopamine produce opposite postures in lobsters // Science. 1980. - 208. N 1. - P. 76-79.

153. Loftus R. Antennal cord receptors in Periplaneta // Z. Vergl. Physiol. 1968. - 59. - P. 413-455.

154. Long T.F., Murdock L.L. Stimulation of blowfly feeding behaviour by octopaminergic drugs // Proc. Natl, Acad, Sci. USA. 1983. 80. P. 4159.

155. Lotshaw D.P., Levitan E.S., Levitan I.B, Fine tuning of neural electrical activity: modulation of several ion channels by intracellular messengers in a single identified nerve cell // J.- 140

156. Exp. Biol. 1986. - 124. - P. 307-322.

157. Marder E., Meyrand P. Chemical modulation of an oscillatory neural circuit .// Neuronal and Cellular Oscillators / Ed. J.W.Jacklet. New York: Dekker, 1989. - P. 317-338.

158. Marder E., Calabrese R.L. Principles of rhythmic motor pattern generation // Physiol. Rev. 1996. - 76. N 3. - P. 687-717.

159. Mayeri E., Rothman B.S. Neuropeptides and the control of egg-laying behavior in Aplysia /./ Model Neural Networks and Behavior / Ed. A.I.Selverston. Mew York: Plenum, 1985. - P. 285-301.

160. Mayeri E., Rothman B.S,, Browne 11 P., Brant, on W.D., Padgett. L. Non-synaptic characteristics of neurotransmission mediated by egg-laying hormone in the abdominal ganglion of Aplysia // J. Neurosc-i. 1985. - 5. - P. 2060-2077.

161. McCue J.F., Thorson R.E. Behavior of perssitic helminth in thermal gradient. .// J. Parasitol. 1964. - 50. - P. 67-71.

162. McLaughlin S.K., McKinnon P.J., Margolskee R.F. Gustducin is a taste-cell-specific G protein closely related to the transducins. Nature Lond. 1992. - 357. - P. 563-569.

163. Morgan J. I., Cur-ran T. Stimulus-transcript ion coupling in neurons: role of cellular immediate early genes .// Trends Neurosci. 1989. - 12. - P. 459-462.

164. MuHoney B., Acevedo L.D., Bradbury A.G. Modulation ofthe crayfish swimmered rythm by octopamine and the neuropeptide proctolin // J. Neurophysiol. 1987. -58. - P. 584-597.

165. Munster V, Distribution, dynamics aid structure of free dissolved carbohydrates in the Plussee, a North German eutrophic lake // Verh. Int. Verein Limnol. 1984. - 22. - P. 929-935.

166. Murray R.W. Temperature effect on membrane properties of neurons in Aplysia // Сотр. Biochem. Physiol. 1966. - 18. -P. 291-303.

167. Nanda O.K., Chaudnuri P.S. Effects of thermal stress on the ventral nerve cord neurosecretory system of tropical earthworm, Metap'nire peguana (Rosa, 1890) // J, Current Biosci, -1980, 5, N 3. - P. 67-71.

168. Newell R.C. , Northcraft H.R. Metabolic independence of temperature over limited ranges in poikilitherms // J. Zool. (London). 1967. - 151. - P. 277-298.

169. Newell R.C., Pye V.I. Relation between metabolism and temperature in Littorina // Сотр. Biochem. Physiol. 1971, 38B. - P. 635-650.

170. Qrr P.R. Heat death, whole animal and tissues // Physiol. Zool. 1955. - 22. - P. 290-302.

171. Ozaki M., Amakawa T. Adaptation-promoting effect of IP3j Ca^4", and phorbol ester on the sugar taste receptor cell of the blowfly, Phormia regina // J. Gen. Physiol. 1992. - 100. -P. 867-879.

172. Pasztor V.M. Modulation of sensitivity in invertebrate sensory receptors // Semin. Neurosci. 1989. - 1. - P. 5-14.

173. Pasztor V.M., Bush B.M.H. Primary afferent responses of a crustacean mechanoreceptor are modulated by proctoline, octopamine and serotonin // J. Neurobiol. 1989. - 20 - P. 234-254.

174. Platzer I. Temperature adaptations in tropical chironomids // Z, Vergl. Physiol. 54. - P. 58-74.

175. Preston R.R., Usherwood P.N.R. L-Glutamate-induced membrane hyperpolarization and behavioural responses in Paramecium tetraurelia // J. Comp. Physiol. A. 1988. - 164.1.. i tJ Oiv/ .

176. Pretch H. Theory of temperature adaptation in cold-blooded animals // Physiological Adaptation / Edited by C.L.Prosser. Washington D.C.: Amer. Physiol. Soc., 1958. - P. 50-78.

177. Prosser C.L. , Nagai T. The Central Nervous System .and Fish Behavior. Chicago: University of Chicago Press, 1968. -579 p.

178. Rittschof D., Sutherland J.P. Field studies of chemically mediated behavior in land hermit crabs: volatile and nonvolatile odors // J. Chem. Ecol. 1989. - 12. - P. 1273-1284.

179. Robertson A.D.J. Biphasic Responces, Quantal Signals and Cellular Behaviour // J. Theor. Biol. 1987. - 125. - P. 41-60.

180. Rodriguer-Moreno A., Herreras 0., Lerma J. Kainate receptors presynaptically down-regulate GABAergic inhibition in the rat hippocampus // Neuron. 1997. - 19. - P. 893-901.

181. Roots B.I., Prosser C.L. Temperature acclimation and nervous system of fish // J. Exp. Biol. 1962. - 39. - P. 617-629.

182. Rusmussen H., Goodman B.P. Relationship between calcium and cyclic nucleotides in cell activation // Physiol, Rev. -1977. 57. ~ P. 421-455.

183. Sactor T.C., Schwartz J.H, Sensitizing stimuli cause translocation of protein kinase C in Aplysia sensory neurons // Proc. Natl. Acad. Sci. 1990. - 87. - P. 2036-2039.

184. Sato M., Yamashita S., Ogawa H. Potentiation ofgustatory response to monosoclium glutamate in rat chorda tvmpani fibers by addition 5'-ribonucleotides // Jpn. J. Physiol. 1970. - 20. - P. 444-464.

185. Schild D., Restrepo D. Transduction mechanisms in vertebrate olfactory receptor cells // Physiol, Rev. 1998. 78, N 2. - P. 429-465.

186. Schmidt- M,, Gnatzy W. Specificity and response characteristics of gustatory sensilla (funnel-canal organs.) on the dactyls of the shore crab, Carcinus maenas (Crustacea, Decapoda) // J. Comp. Physiol. A. 1989. - 166. - P. 227-242.

187. Schmidt-Nielsen K., Dawson W.R. Terrestrial animals in dry heat // Handbook of Physiology. / Edited by D.B.Dill. -Washington D.C.: Amer. Physiol. Soc. 1963. - Sec. 4. - P. 467-480.

188. SeelInger G. Response characteristics and specificity of chemoreceptors in Hemilepistus reaumuri (Crustacea, Isopoda) // J. Comp. Physiol, 1983. - 152. - P. 219-229.

189. ShesS., Sigafoos D., Scott D. Thermoexcitability of Callinectes nerve // Comp. Biochem. Physiol. 1969. - 28, - P, 701-708.

190. Sivam S.P., Breese G.R., Krause J.K., Napier T.C., Mueller R.A,, et al. Neonatal and adult 6-hydroxydopamine-induced lesions differentially alter tachykinin and enkephalin gene expression .// J. Neurochem, 1987, - 49. - P. 1623-1633.

191. Sorensen P.W. Biological responsivenes to pheromones provides fundamental arid unique insight into olfactory function // Chem. Sens. 1996. - 21. - P. 245-256.

192. Spielman A,I,, Huque T., Whitney G., Brand J.G. The diversity of bitter taste signal transduction mechanisms //

193. Sensory Transduction / Eds. D.P.Corey, S.D.Roper. Mew York: Rockefeller Univ. Press, 1992. - P. 307-324.

194. Spielman A.I., Huque T., Nagai H., Whitney G., Brand J.G. Generation of inositol phosphates in bitter taste transduction // Physiol. Behav. 1994. - 56. - P. 1149-1155.

195. Stanton P.K., Sarvey J.ML Depletion of norepinephrine, but not serotonin, reduced long-lasting potentiation in the dentate gyrus of rat hippocampal slices // J. Neurosci. 1985. -5. - P. 2169-2176.

196. Stengl M. Inositol-triphosphate-dependent calcium curents precede cation currents in inse ct olfactory receptor neurons in vitro // J. Comp. Physiol. A : Sens. Neural Behav. Physiol. 1994. - 174. - P. 187-194.

197. Stengl M., Hatt H., Breer H. Peripheral processes in insect olfaction // Annu. Rev. Physiol. 1992. - 54. - P. 665-681.

198. Tank A.W., Lewis E.J., Chikaraishi D.M., Weiner N. Elevation of RNA coding for tyrosine hydroxylase in rat adrenal gland by reserpine treatment, and exposure to cold // J.Neurochem.- 1985. 45. P. 1030-1033.

199. Teeter J.H., Brand J.G., Kumazawa T. A stimulus-activated conductance in isolated taste epithelial membranes // Biophys. J. 1990. - 58. - P. 253-259.

200. Thomas J.D. The comparative ecological biochemistry of sugar chemoreception and transport in freshwater snails and other aquatic organisms // Comp. Biochem. Physiol. 1989. - 93A, N 2.- P. 353-374.

201. Tromel E.R., Chou J.H., Dwyer N.D., Colbert H.A., Bargmann C. Divergent seven transmembrane reseptors are candidatechemosensory receptors in C.elegans // Cell. 1995. - 83. - P. 207-218.

202. Trott Th.J., Robertson J.B. Chemical stimulants of cheliped flexion behaviour by the Western Atlantic ghost crab Ocypoda quadrata (Fabricius) // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1984. - 78. P. 287-252.

203. Van Calker D.Muller M., Hamprecht B. Adenosine regulates via two different types of receptors the accumulation of cyclic AMP in cultured brain cells // J. Neurochem. 1979. -33. - P. 999-1005.

204. Vicker M.G., Schill W., Drescher K. Chemoattractation ahd chemotaxis in Dictyostelium discoideum: myxamoebue cannot read spatial gradients of cyclic adenosine monophosphate // J. Cell. Biol. 1984. 98. P, 2204-2209

205. Voorn P., Roest G., Groeneweggen H.J. Increase of enkephalin and decrease of substance P immunoreactivity in the dorsal and ventral striatum of the rat after midbrain 6-hydroxydopamine lesions // Brain. Res. 1987. - 412, - P. 391-396.

206. Wachtel H., Kandel E.R, A direct synaptic connection mediating both excitation and inhibition // Science, -1967. 158, N 1. P. 1206-1208.

207. Wachtel H., Kandel E.R. Conversion of synaptic excitation to inhibition at a dual chemical synapse // J. Neurophysiol. 1971. - 34. - P. 56-68.

208. Walker R.J., Hoiden-Dye L. Commentary on the evolution of transmitters, receptors and ion channels in invertebrates // Comp. Biochem. Physiol. 1989. - 93a, N 1. - P. 25-39.

209. Ward S. Chemotaxis by the nematode Caenorabditiselegans: identification of attractants and analysis of the response by use of mutants // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1973.- 70. P. 817-821.

210. Ward S., Thompson N., White J.G., Brenner S. Electron microscopical reconstruction of the anterior sensory .anatomy of the nematode Caenorabditis elegans // J. Comp. Neurol. 1975. -160. - P. 313-337.

211. Ware R.W., Clark D., Crossland K.3 Russell R.L. The nerve ring of the nematode Caenorabditis elegans: sensory input and motor output // J. Comp. Neurol. 1975. - 162. - P. 71-110.

212. Weiss K.R, , Shapiro E.Kupfermann I. Modulatory synaptic actions of an identified histaminergic neuron on the serotonergic metacerebral cell of Aplysia // J. Neurosci. 1986.- 6. P. 2393-2402.

213. White J.G., Southgate E.» Thompson J.N., Brenner S. The structure of the nervous system of the nematode Caenorabditis elegans // Phil Trans. Roy. Soc. (Lond.) B. 1986. - 314. - P. 1-340.

214. Willard A.L. Effects of serotonin on the generation of the motor programme for swimming by the medicinal leech // J. Neurosci. 1981. - 1. - P. 936-944,

215. Yamaguchi S. Basic properties of umami and effects on humans // Physiol. Behav. 1991. - 49. - P. 833-841.

216. Yamashita S., Ogawa H., Sato M. The enhancing action of 5'-ribonucleotide on rat gustatory nerve fiber response to monosodium glutamate // Jpn. J. Physiol. 1973. - 23. - P. 59-68.

217. Yoshida M., Salto S. Multidimensional scaling of the taste of amino acids // Jpn. Psychol. Res. 1969. - 11. - P,149.166.

218. Yoshii K. . Yokouchi C,, Kurihara K. Synergistic effects of 5*-nucleotides on rat taste responses to various amino acids // Brain Res. 1986. - 3©?. - P. 45-51,

219. Zhu X., Gilbert M.3 Birnbaumer M., Birnbaumer L. Dual signalling potential is common among Gs-coupled receptors and dependent on receptor density // Mol. Pharmacol, 1994. - 46. -P. 460-469.

220. Zimmer R.K. Cook D.P., Case J.F. Chemosensory induced bradycardia in the kelp crab, Pugettia producta (Randall) // J. Exp. Mar. Biol. Ecol, 1979. - 38. - P. 135-150.

221. Zufall F., Hatt H. Dual activation of a sex pheromone-dependent ion channel from insect olfactory dendrites by protein kinase C activators aid cyclic GMP // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. - 88. - P. 8520-8524.

222. Zufall F., Lenders-Zufal T. Identification of a long-lasting form of odor adaptation that, depends on the carbon monoxide/cGMP second-messenger system // J. Neurosci. 1997. -17. - P. 2703-2712.- 149 -ПРИНЯТЫЕ СОКРАЩЕНИЯ

223. ЦНС центральная нервная система1. AMP аденозинмонофосфат1. GMP гуанозинмонофосфатсАМР циклический 3"5'аденозинмонофосфатcGMP циклический 3"'5'гуанозинмонофосфат1.з инозитол-1'4"5'-трифосфат1.P инозинмонофосфат

224. MOPS 3-CN-morphoiino. propanesulfonic acid РОВ - растворенные в воде органические вещества