Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Исследование биофизических процессов в сенсибилизированной жировой ткани при воздействии лазерного и светодиодного излучения

ВАК РФ 03.01.02, Биофизика

Автореферат диссертации по теме "Исследование биофизических процессов в сенсибилизированной жировой ткани при воздействии лазерного и светодиодного излучения"

На правах рукописи 005531909

Янина Ирина Юрьевна

ИССЛЕДОВАНИЕ БИОФИЗИЧЕСКИХ ПРОЦЕССОВ В СЕНСИБИЛИЗИРОВАННОЙ ЖИРОВОЙ ТКАНИ ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ ЛАЗЕРНОГО И СВЕТОДИОДНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ

Специальность 03.01.02 - биофизика

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата физико-математических наук

-8 АВГ 2013

Саратов - 2013

005531909

Работа выполнена на кафедре оптики и биофотоники ФГБОУ ВПО Саратовского государственного университете имени Н. Г. Чернышевского» Министерства образования и науки РФ и на кафедре

медбиофизики имени проф. В.Д. Зернова ГБОУ ВПО Саратовского государственного медицинского университете имени В.И. Разумовского Министерства здравоохранения РФ

Научные руководители:

Официальные оппоненты:

Заслуженный деятель науки РФ, доктор физико-математических наук, профессор Тучин Валерий Викторович; Почетный работник высшего профессионального образования РФ, кандидат физико-математических наук, доцент Дубровский Валерий Александрович

доктор медицинских наук, профессор Брилль Григорий Ефимович ГБОУ ВПО Саратовский ГМУ имени В.И. Разумовского Минздрава РФ

кандидат физико-математических наук, Скапцов Александр Александрович образовательно-научный институт наноструктур и биосистем СГУ

Ведущая организация:

ФГБУ «Саратовский научно-исследовательский институт кардиологии» Минздрава РФ, г. Саратов

Защита состоится 6 сентября 2013 года в 17:30 часов на заседании диссертационного совета Д 212.243.05 в Саратовском государственном университете им. Н. Г. Чернышевского по адресу: 410012, Саратов, ул. Астраханская, 83.

С диссертацией можно ознакомиться в Научной библиотеке Саратовского государственного университета.

Автореферат разослан 1>С 2013 г.

Ученый секретарь диссертационного совета д.ф.-м.н., профессор

В. Л. Дербов

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Настоящая работа относится к фотобиологии животной клетки, она посвящена экспериментальному изучению влияния световых потоков видимого и ближнего ИК диапазонов на клетки сенсибилизированной жировой ткани in vitro и in vivo.

Исследования последних десятилетий позволили по-новому взглянуть на причины и механизмы развития многих заболеваний, прежде всего таких социально значимых, как атеросклероз и ишемическая болезнь сердца, артериальная гипертензия, сахарный диабет 2-го типа, болезни печени, ортопедических заболеваний, ряд онкологических заболеваний (липома, липосаркома и т.п.). Получены убедительные доказательства взаимосвязи этих заболеваний с избыточным накоплением жира в организме, т. е. с ожирением. В этой связи возрос интерес к изучению функций жировой ткани и их роли в норме и при патологии, а также к разработке способов удаления избыточных отложений. В настоящее время общепризнано, что жировая ткань играет большую роль в метаболической регуляции как энергетического равновесия в организме, так и сосудистого гомеостаза. Знание физиологических функций жировой ткани необходимо не только для понимания патогенеза ожирения и связанных с ним заболеваний, но и для их эффективной профилактики и лечения.

Ожирение, как правило, лечится диетой, физическими упражнениями и уменьшением слоя подкожной жировой клетчатки с помощью пластической хирургии, липосакции, ультразвуковой и лазерной терапии. Благодаря быстрому темпу жизни современного общества, многим трудно поддерживать здоровую диету и регулярно заниматься спортом, чтобы предотвратить ожирение. В связи с этим предпочтение отдается инвазивным процедурам. Инвазивные процедуры являются объектом риска для пациента из-за инфекций, кровотечения, риска здоровью при анестезии и других после - хирургических осложнений.

В настоящее время ведутся активные поиски новых оптических технологий, позволяющих селективно разрушать жировую ткань. Одним из самых простых способов физического воздействия на жировые клетки, является гипертермия. Известны методы селективного нагрева подкожной жировой ткани оптическим, в том числе лазерным, излучением. В ряде случаев, оптический нагрев активизирует кровообращение и биологические рецепторы, в зону воздействия привлекаются макрофаги, которые утилизируют разрушенные жировые клетки. Создание новых лазерных источников стимулирует интерес к исследованию взаимосвязей

между параметрами лазерного излучения и оптическими свойствами жировой ткани.

Анализ литературы показывает, что действие света на сенсибилизированную ткань, в том числе и жировую, является вполне актуальной задачей как с точки зрения теоретической (фундаментальная «фотобиология животной клетки»), так и прикладной, например, фототерапия. Особый интерес вызывают задачи подбора типа фотосенсибилизатора для различных биотканей, изучение механизмов действия.

Из краткого обзора, представленного в диссертации, следует, что изучение воздействия источников оптического излучения на сенсибилизированную жировую ткань является малоизученным и перспективным для приложений направлением в фотомедицине. Существует ряд нерешенных проблем, в том числе малоисследованны спектральные характеристики сенсибилизированной жировой ткани, особенности их изменения в зависимости от параметров излучения, несмотря на то, что знание этих данных является принципиально важным для обеспечения хорошо контролируемой послойной лазерной деструкции ткани при лечении ожирения и целлюлита. В литературе отсутствуют рекомендации и критерии для выбора параметров источников излучения и самих источников, способных вызвать щадящую послойную деструкцию сенсибилизированной подкожной жировой клетчатки без её полного разрушения.

Недостаточно внимание исследователей уделено изучению теплового воздействия на сенсибилизированную жировую ткань, а также комбинированному фотодинамическому и тепловому влиянию на сенсибилизированную жировую ткань. В литературе нет данных о влиянии фотодинамического действия на подкожную жировую клетчатку in vivo, не известны пути гибели адипоцитов в данном случае.

Поэтому актуальным является поиск методов минимально инвазивных процедур, в результате которых клетки гибели по апоптотическому сценарию, без воспалительного ответа. Также, до конца нераскрыты механизмы действия лазерного и светодиодного излучения на сенсибилизированную жировую ткань.

Решение вышеописанных проблем и вопросов является актуальным и определило цель настоящей диссертационной работы.

Цель диссертационной работы состояла в экспериментальном исследовании биофизических процессов при воздействии оптического излучения на клетки жировой ткани при ее сенсибилизации красителями. Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:

• исследования спектральных характеристик подкожной жировой клетчатки, красителей различной концентрации и сенсибилизированной этими красителями жировой ткани как до, так и после облучения биообъекта,

• подбор источника излучения для обеспечения эффективного действия на биоткань в видимой и ИК областях спектра с учетом используемого красителя,

• исследование воздействия лазерного и светодиодного излучения на сенсибилизированную жировую ткань

• исследование теплового и комбинированного (фотодинамическое / тепловое) воздействия на жировую ткань,

• исследование кинетики изменения оптических свойств жировой ткани, сенсибилизированной красителями, in vitro как результат фотодинамического действия, а также определение биофизических механизмов взаимодействия химических агентов со структурными компонентами жировой ткани,

• исследование механизмов, приводящих к липолизу адипоцитов, с помощью цифровой микроскопии и оптической когерентной томографии, на основе анализа изображений сенсибилизированной и облученной светом жировой ткани,

• анализ патоморфологических изменений в подкожной жировой клетчатке при фотодинамическом воздействии на кожу крыс in vivo

Научная новизна работы: о исследована кинетика изменения оптических свойств сенсибилизированной красителями жировой ткани ш vitro как результат фотодинамического/фотохимического действия. Впервые

экспериментально продемонстрирован эффект оптического иммерсионного просветления сенсибилизированной жировой ткани в результате фотодинамического воздействия.

о впервые на основе анализа изображений жировой ткани, сенсибилизированной красителями, при фотодинамическом воздействии in vitro выдвинута гипотеза о механизме, вызывающем липолиз адипоцитов. На основе оптической цифровой микроскопии впервые зарегистрированы небольшие образования в проекции мембраны жировой клетки, наличие

которых при фотодинамическом действии на ткань статистически достоверно связаны с ее просветлением.

о впервые показано увеличение эффективности процесса просветления сенсибилизированной жировой ткани после облучения при нагреве в пределах температур от 40 до 50 °С.

о впервые сделан анализ патоморфологических изменений подкожной жировой клетчатки при фотодинамическом воздействии на кожу крыс ш vivo.

Научная и практическая значимость работы

Результаты диссертационной работы развивают и дополняют теоретические и экспериментальные основы фотобиологии животной клетки и служат для разработки эффективных методов коррекции жировых отложений, борьбы с опухолевыми новообразованиями, для выяснения механизмов клеточной гибели (апоптоз или некроз). Результаты работы открывают новые возможности для изучения мембраны жировых клеток.

В работе предложен оптический метод фотодинамического/ теплового воздействия на жировые клетки, способный обеспечить минимально инвазивное уменьшение объема подкожной жировой ткани путем контролируемого липолиза.

Основные результаты и положения, выносимые на защиту:

1. Анализ кинетики изменения оптического пропускания слоя жировой ткани, сенсибилизированной водно-спиртовым раствором бриллиантового зеленого при концентрации 6 мг/мл, при фотовоздействии на длинах волн 442 и 597 нм с общей плотностью мощности излучения не превышающей 75 мВт/см2 позволил предложить метод «мягкой» редукции объема ткани путем липолиза жировых клеток без их существенной деструкции.

2. Вблизи поверхности мембран клеток жировой ткани впервые экспериментально зарегистрированы небольшие образования (структуры), размерами от 2 до 8 мкм, которые характеризуются изменяющимся во времени оптическим пропускание и трактуются как капельки внутриклеточной жидкости, секретируемой через образованные поры в мембране. Исследовано количество и размеры этих образований (структур) в зависимости от условий фотовоздействия. Среднее количество наблюдаемых «образований» на одну клетку составляло 5-10 без фотовоздействия и 15 — 30 при облучении сенсибилизированных водно-спиртовым раствором бриллиантового зеленого жировых клеток.

Коэффициент корреляции между временными зависимостями пропускания Т и количества "образований" (пор) составил 0.87.

3. Экспериментальное обнаружение и исследование оптического просветления при фотовоздействии на сенсибилизированную жировую ткань, что связывается с повышением оптической однородности ткани за счет иммерсии компонентов ткани продуктами липолиза.

4. При in vivo подкожном введении водно-спиртовых растворов бриллиантового зеленого и индоцианинового зеленого и чрезкожном облучении излучением диодной лампы (625 нм, плотность энергии 720 Дж/см2) и диодного лазера (808 нм, плотность энергии 960 Дж/см2) у экспериментальных животных в коже, жировой и мышечной ткани развиваются выраженные изменения, в том числе в подкожной жировой клетчатке наблюдается распространенная деструкция клеток.

Личный вклад автора диссертации

В ходе работы над диссертационным исследованием соискателем принято участие в разработке экспериментальной установки, выявлены ее метрологические характеристики и проведена калибровка; разработана методика проведения экспериментов, состоящая в подборе концентраций красителя, доз облучения, способных вызвать значительные изменения в биоткани; постановка экспериментов, проведенных совместно с сотрудниками Саратовского государственного университета имени Н.Г. Чернышевского и Саратовского государственного медицинского университета имени В.И. Разумовского; статистическая, компьютерная обработка экспериментальных результатов; участие в обсуждении экспериментальных результатов и трактовки наблюдаемых эффектов.

Разработка и отладка установки осуществлялась с помощью профессора кафедры оптики и биофотоники СГУ, д.ф.-м.н. Симоненко Г.В. Спектральные измерения были проведены совместно с профессором той же кафедры, д.ф.-м.н. Кочубеем В.И. Эксперименты на оптическом когерентном томографе проводились совместно с аспиранткой Труниной H.A. Эксперименты и обсуждение результатов по фотодинамическому действию на подкожную жировую клетчатку in vivo проведены совместно с сотрудниками кафедры патологической анатомии СГМУ (зав. кафедрой, д.м.н., проф. Маслякова Г.Н.). Формулировка темы диссертационной работы, постановка исследовательских задач, обсуждение результатов, объяснение наблюдаемых явлений, подготовка статей к публикации и обсуждение текста

диссертационной работы, ее основных положений и выводов, осуществлялись Тучиным В.В. - руководителем диссертационной работы от СГУ. Под руководством Дубровского В.А. были выявлены метрологические характеристики и проведена калибровка экспериментальной установки, предложены методики проведения экспериментов и обработки экспериментальных результатов по ряду задач. Он также принял участие в обсуждении экспериментальных результатов, трактовке наблюдаемых явлений, подготовке совместных статей и обсуждении текста диссертационной работы.

Достоверность полученных в работе результатов и выводов обусловлена адекватностью используемых методов измерения, обработки и анализа экспериментальных данных. Результаты проведенных исследований подвергались статистической обработке. Все оригинальные результаты воспроизводятся при повторении экспериментов.

Апробация работы.

Основные результаты работы докладывались на Международной молодежной научной школе по оптике, лазерной физике и биофизике (20082012), на межрегиональной научно-практической конференции студентов и молодых учёных с международным участием «Молодежь и наука, итоги и перспективы» (2008, 2009), на международной конференции Optics in Tissue Engineering and Regenerative Medicine III (San Jose, USA, 2009), на научно-практической конференции студентов и молодых учёных Саратовского медицинского университета. «Молодые ученые - здравоохранению региона» (2010-2011), на III Евразийском конгрессе по медицинской физике и инженерии «Медицинская физика - 2010», на международных конференциях Dynamics and Fluctuations in Biomedical Photonics, Mechanisms for Low-Light Therapy VI (San Francisco, California, USA) (2010-2013), Medical Laser Applications and Laser-Tissue Interactions V (Munich, Germany) (2011, 2013), на студенческой научно-практической конференции в рамках первой Всероссийской недели науки с международным участием, посвященной дню российской науки «Молодые ученые - здравоохранению» (2012), на международной конференции Biophotonics: Photonic Solutions for Better Health Care (Brussels, Belgium) (2012), на Российско-китайском семинаре по биофотонике и биомедицинской оптике 2012 и на международной конференции 1st International Biophotonics Meeting in Israel (Tel Aviv, Israel) (2012).

Публикации. Основные результаты работы опубликованы в 35 печатных работах, из которых 17 научных статей - в рецензируемых журналах из списка ВАК, 18 статей в трудах международных конференций.

Структура и объем диссертации. Диссертация состоит из введения, шести глав, заключения и списка цитируемой литературы, состоящего из 191 наименований. Диссертация изложена на 178 страницах, содержит 76 рисунков.

Работа выполнена на кафедре оптики и биофотоники Саратовского государственного университета им. Н.Г. Чернышевского и на кафедре медбиофизики им. проф. В.Д. Зернова Саратовского государственного медицинского университета им. В.И. Разумовского.

КРАТКОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Во Введении обоснована актуальность темы, изложена цель и задачи исследования, кратко изложено содержание работы и сформулированы основные положения, выносимые на защиту.

В первой главе получены спектральные характеристики подкожной жировой ткани, индоцианинового зеленого и бриллиантового зеленого. Измерены спектры поглощения жировой ткани человека при ее сенсибилизации красителями.

На рисунках 1 и 2 приведены истинные (восстановленные с учетом рассеяния света) спектры поглощения жировой ткани 2>„(Л.), окрашенной индоцианиновым зеленым (ИЗ) и истинные спектры поглощения жировой ткани А,(Л), окрашенной бриллиантовым зеленым (БЗ), соответственно.

На основе анализа измеренных спектров поглощения можно утверждать о сдвиге положения максимумов полосы поглощения фотосенсибилизаторов в жировой ткани по сравнению с их спектрами в растворах. Сдвиг обусловлен взаимодействием молекул ИЗ и БЗ с коллагеном и другими белковыми молекулами, входящими в основном в состав межклеточного матрикса (септа, диаметр волокон порядка 50-200 нм). Анализируя спектры красителей в растворах и в тканях, важно отметить также изменение формы спектров. Пик молекул-мономеров спектра поглощения значительно снизился и стал сравнимым с пиком -молекул-димеров. На основе полученных спектров были рассчитаны относительные концентрации красителей в ткани.

0,5-

о"

Ú °'4"

о

х

о 0,3 -

с

о:

™ 02-

О)

X

с 0,1 - . о

0,0-

а * »

ti ^ .о»

2ÍS»*!..-"

600 700 800

длина волны, нм

Л

, 1 У V ХвЛ Ь

Л

г

1 ** 5 Нт^.....-íi»|g

8?«

500 600 700 длина волны, нм

Рисунок 1 - Истинные спектры Рисунок 2 - Истинные спектры

поглощения подкожной жировой поглощения подкожной жировой ткани,

ткани, окрашенной растворами ИЗ окрашенной растворами БЗ

концентрации 1.6*10"4 моль/л - ■, концентраций 1,05*10"4 моль/л - ■,

Í^IO"4 моль/л - о, 3.2*10"4 моль/л - 1.16*10"4 моль/л - о, 1.5*10"4 моль/л - Д,

А, 6.45*10"4 моль/л - V и 12.9*10"4 1.68*10"4 моль/л - V и 2.1 *10"4 моль/л -

моль/л - 0, Dx — оптическая 0, Dx — оптическая плотность раствора

плотность раствора ИЗ в ткани. БЗ в ткани.

Во второй главе рассмотрены материалы и методы исследования, представлены красители, источники излучения, описана подготовка образцов, микроскоп, камера, дана методика обработки изображений.

Материалом исследования служила подкожная жировая ткань. Проводились серии экспериментов как in vitro, так и in vivo. В серии экспериментов in vitro использовалась подкожная жировая ткань, извлеченная после хирургической пластической операции. Для микроскопических исследований необходимо было изготовление тонких срезов жировой ткани толщиной порядка 100-150 мкм, только при таких толщинах было возможно получение изображений в проходящем свете. Исследуемая ткань предварительно замораживалась в течение суток. В серии исследований с помощью оптического когерентного томографа приготавливались срезы жировой ткани толщиной порядка 200-600 мкм.

В in vivo исследованиях для изготовления гистологического препарата были подготовлены образцы кожи вместе с подкожной жировой клетчаткой, изъятые у лабораторных животных. В дальнейшем после фиксации и окраски, изготавливались срезы размерами 5 мкм, подвергавшиеся патоморфологическому анализу.

Основными методами исследования были цифровая микроскопия, спектроскопия, оптическая когерентная томография и гистологический патоморфологический анализ препаратов.

В работе использовали красители трифенилметанового (бриллиантовый зеленый) и цианинового (индоцианиновый зеленый) рядов. Красители трифенилметанового ряда широко применяют в аналитической химии, фотохимии и др. областях. Индоцианиновый зеленый успешно используется в фототермической иммунной терапии рака, а также для фотодинамической и фототермической терапии воспалительных заболеваний, например, угревой сыпи и инфекционных дерматитов.

Выбор источников излучения обусловлен попаданием максимумов спектров излучения в полуширину спектров поглощения красителей.

Подготовка образцов для экспериментов in vitro:

Приготовленный образец (срез) замороженной жировой ткани человека размещался на предметном стекле микроскопа, окрашивался выбранным красителем в течение 10 мин. Затем образец термостабилизировался с помощью жидкостного термостата ТЖ-ТС-01 (его температура изменяется в пределах +30...+150°С, с точностью ±0.1°С). Через 15 мин, когда температура образца достигала требуемой величины в диапазоне от 37° до 43°С, проводилась регистрация цифровых изображений образца в проходящем свете. Далее жировая ткань в течение заданного времени подвергалась облучению с помощью источника, который размещался вплотную к образцу. Эффективность фотодинамического действия обеспечивалась совпадением спектра излучения источника со спектром поглощения красителя. По окончании облучения светом исследуемая жировая ткань каждые 5 мин проводилась регистрация цифровых изображений образца в проходящем свете.

С целью расширения динамического диапазона измерений проводилась аппроксимация световой характеристики ПЗС камеры типа DCM500 - зависимости яркости В от пропускания образца Т. Затем компьютерное преобразование найденной аппроксимации В(Т) в зависимость Т(В) позволяло найти калибровочную кривую, по которой каждому измеренному значению яркости В можно поставить в соответствие пропускание биообъекта Т. Все последующие расчеты проводились с учетом найденной калибровочной кривой.

Подготовка образцов для экспериментов in vivo:

Группу 2-х летних крыс-самцов из 30 особей содержали 14 суток, кроме стандартного рациона они получали 5 г сахара, 5 г сухого молока, 5 г подсолнечного масла и 5 г яичного порошка с тем, чтобы вызвать алиментарное ожирение. Ожирение для крыс-самцов считается при весе >400 г. На 15 сутки крыс декапитировали. Группу разбивали на 3 подгруппы по 10 особей. На каждой особи в области ребер делалась разметка. Первая зона была контрольная и данная область не подвергалась никакому воздействию (ни окраска, ни облучение). В зону 2 делалась инъекция красителя. Зона 3 подвергалась воздействию облучения источника. В зону 4 сначала делалась инъекция красителя, а затем производилось облучения источником. Крысы всё время воздействия находились под действием местного наркоза (золетил). Через 1 час после воздействия крыс декапитировали. Кусочки кожи и подкожной жировой клетчатки фиксировали в 10% растворе формалина. Парафиновые срезы толщиной 5 мкм окрашивали гематоксилин-эозином. С помощью этих препаратов определяли изменения, происходящие в подкожной жировой клетчатке после фотодинамического воздействия.

В качестве математической обработки использовали преобразование массива данных яркостей полученных изображений в массивы данных пропускания с помощью калибровочной кривой, были вычислены стандартные статистические параметры (среднее значение, стандартное отклонение, дисперсия), для оценки достоверности полученных результатов и корреляций в in vivo экспериментах применяли непараметрическую статистику (критерий Кохрена (Кокрена), вычисление коэффициента Спирмена).

В третьей главе описано тепловое воздействие, оказываемое на жировую ткань при одновременном фотодинамическом воздействии.

На рисунках 3 (а-д) представлены изображения жировой ткани, окрашенной БЗ до и после ее облучения светодиодной лампой Ultra Lume Led 5, излучающей на А.=442 нм и ¡>.=597 нм при плотности мощности W=75 мВт/см2 в течение 5 минут при 50°С в течение времени наблюдения 118 минут. На рисунке 3 (е) представлен график зависимости пропускания жировой ткани от времени наблюдения, окрашенной БЗ до и после ее облучения светодиодной лампой Ultra Lume Led 5, излучающей на Х=442 нм и \=597 нм при плотности мощности W=75 мВт/см2 в течение 5 минут при 50°С в течение времени наблюдения 118 минут.

ВРЕМЯ НАБЛЮДЕНИЯ, МИН

г) д) е)

Рисунок 3 - Изображение жировых клеток, полученных при окрашивании БЗ в течение 10 мин и облучении светодиодной лампой Ultra Lume Led 5, излучающей на Х=442 нм и А,=597 нм при плотности мощности W=75 мВт/см2 в течение 5 минут в течение времени наблюдения 118 минут при 50°С (а) 0 мин, б) 5 мин, в) 64 мин, г) 91 мин, д) 118 мин, е) зависимость пропускания ткани от времени наблюдения)

В результате были зарегистрированы заметные изменения формы и размеров жировых клеток, наблюдаемая кинетика для морфологии клеток согласуется с гипотезой об индуцированном липолизе, изменения существенно ускорились за счет фотодинамического воздействия.

В четвертой и пятых главах описано фотодинамическое воздействие на сенсибилизированную бриллиантовым зеленым и индоцианиновым зеленым жировую ткань в видимой и ИК области светодиодного и лазерного излучения, соответственно. Обсуждено влияние излучения на спектры поглощения жировой ткани человека при ее сенсибилизации красителями.

Было обнаружено, что под действием света поглощение во всем спектре сначала спадает, а затем восстанавливается. Восстановление спектра образца, окрашенного БЗ происходит через 150 мин, а ИЗ - через 180 мин (см. рисунки 4 и 5, соответственно). Однако восстановление спектров происходит не полностью, при этом меняется как соотношение

амплитуд полос, соответствующих мономерам и димерам молекул красителей, так и полуширины полос. Это может свидетельствовать об изменении связи красителя с окружающими молекулами в результате действия излучения (начальный этап изменений) и последующим восстановлением состояния красителя. Однако неполное соответствие начального и конечного спектров говорит о возможном изменении окружения молекул красителя. При этом в начале процесса, краситель находится частично в окружении растворителя, частично - в жировой ткани, а в конце процесса из-за испарения растворителя с поверхности образца основной вклад дает краситель, который взаимодействует с жировой тканью. Наблюдаемые изменения спектров поглощения могут быть также связаны с обесцвечиванием красителя и длительностью взаимодействия раствора красителя с тканью в процессе измерений, возможно влияние рассеяния света, обусловленного фазовыми переходами липидов, которые лежат в исследуемой области температур.

н 0 3 о '

0

1 н о

S 0,2 «

РЗ М О

2 0,1

к

v

/Л

400 500 600 700 800 длина волны, нм

3" К

н е О

0,6

0,4

0,2

Лйіи^Чі

г*

4 2' * Я*

■ * 8* .А'

500

600 700 800 длина волны,нм

Рисунок 4 - Спектр поглощения подкожной жировой ткани, окрашенной БЗ, до (■) и после облучения в течение 15 мин, непосредственно после облучения (о) И после 30 (Ж), 60 (V), 90 (♦), 120 (<) и 150 (►) мин. Концентрация раствора БЗ 6 мг/мл. Время окрашивания 10 мин. Температура образца 34°С.

Рисунок 5 - Спектр поглощения подкожной жировой ткани, окрашенной ИЗ, до (и) и после облучения в течение 1 мин, непосредственно после облучения (о) и после 30 (А), 60 (V), 90 (♦), 120 (<), 150 (►) и 180 (*) мин. Концентрация раствора ИЗ 6 мг/мл. Время окрашивания 10 мин. Температура образца 34°С.

Проанализирована кинетика оптических свойств жировой ткани in vitro как результат фотодинамического действия.

Пт

■ 11

Л ІГ

л

■■¡и ' ■■■ 11

Рисунок 6 - Изображение в Рисунок 7 - Изображение в проходящем свете БЗ- проходящем свете ИЗ-

сенсибилизированной жировой сенсибилизированной жировой ткани при температуре 41°С до ее ткани при температуре 34 °С до ее фотооблучения (обозначены зоны фотооблучения (отмечены 5 зон ткани для их статистической для статистической обработки), обработки).

Для каждой из пяти выбранных зон (для рисунка 6 и рисунка 7) рассчитывались значения Тсри о(7) в зависимости от времени наблюдения ^ (всего 30 пар значений параметров). В качестве примера на рисунках 7 и 8 приведены результаты для среднего по зоне наблюдения значения пропускания 7"ср и среднеквадратического отклонения а(7) величины Т от Гер в зависимости от времени наблюдения t для вторых зон.

Анализ кинетики оптического пропускания сенсибилизированной жировой ткани после ее облучения светом позволил предположить, что возможным механизмом наблюдаемого явления является липолиз жировых клеток с сохранением их структуры и отсутствием их полной деструкции.

ВРЕМЯ НАБЛЮДЕНИЯ, МИН

Рисунок 7 - Среднее по зоне наблюдения значение пропускания биоткани Тср и отклонение а(Т) величины Т от Гср как функция времени наблюдения для 2-ой зоны рисунка 6 ■ — экспериментальные значения Гср; о и Д -нижняя и верхняя границы отклонения о(Т).

0,60-

Р 0,54-ь- 0,48

0,42

>¿4 к -

.-О'

- -0эосР----'

О 10 20 30

ВРЕМЯ НАБЛЮДЕНИЯ, МИН

Рисунок В - Среднее по зоне наблюдения значение пропускания биоткани Тср и отклонение а(Т) величины Т от 7ср как функция времени наблюдения для 2-ой зоны рисунка 7 ■ - экспериментальные значения Гср; о и Д-нижняя и верхняя границы отклонения а{Т).

Увеличенное изображение участка жировой ткани представлено на рисунке 9, основное поле зрения занимает одна клетка размером около 50 мкм, в проекции мембраны клетки наблюдаются образования, три из них выделены прямоугольниками и пронумерованы.

Рисунок 9 - Изображение жировой клетки, объектив 90х

Поскольку количество таких образований N для различных экспериментальных условий определяет характер воздействия красителей, тепла и излучения на жировые клетки, то в диссертации изучались зависимости для числа таких образований от условий воздействия на клетки.

20 40 60 80

время, мин

150 =

а) б)

Рисунок 10 - Зависимости пропускания Т (кривые 1, 2, 4 и 5) и количества "образований" (кривая 3 и 6) от времени (а) -необлученные жировые клетки; б) облученные жировые клетки диодной лампой Ultra Lume Led 5, Я.=442 нм и Х=597 нм при плотности мощности W=75 мВт/см2 в течение 5 минут): 1 и 4 - ■

- образцы жировой ткани, обработанные водно-спиртовым раствором, 2 и 5 - ■

- образцы жировой ткани, окрашенные водно-спиртовым раствором БЗ, 3 и 6 -■ - количество «образований» (пор) в проекции мембраны жировых клеток, окрашенных водно-спиртовым раствором БЗ. Левая вертикальная ось - для кривых 1, 2, 4 и 5, а правая - для кривых 3 и 6. Точки - экспериментальные данные, кривые - аппроксимация.

Исследованию подвергались 24 образца жировой ткани от одного донора по 3 образца для каждого из 4 типов экспериментов: изучение влияния водного и водно-спиртового растворов БЗ на жировую ткань,

анализ влияния водно-спиртового раствора на тот же биообъект, а также «контроль» - жировая ткань без какого-либо химического воздействия - 12 образцов. В то же время все вышеупомянутые эксперименты проводились в двух режимах - без облучения биообъекта (рисунок 10а) и при облучении (рисунок 106), что суммарно соответствует 24 анализируемым срезам жировой ткани. Следует отметить, что графики на этих рисунках соответствуют лишь тем регистрируемым «образованиям», возможно порам, через которые выходит значительное количество цитоплазмы. Более мелкие поры оптически не регистрируются, хотя их количество может быть и большим. Зарегистрированные с помощью оптической цифровой микроскопии «образования» в проекции мембраны жировой клетки трактуются нами как капельки внутриклеточной жидкости, вытекающей через поры в мембране. В пользу такой связи свидетельствуют следующие результаты экспериментов:

- линейное возрастание числа наблюдаемых «образований» от концентрации спирта в растворе;

- наличие зависимости числа «образований» для образцов жировой ткани от типа химического и/или светового действия по сравнению с образцами жировой ткани в естественном состоянии.

Оптическая когерентная томография (ОКТ) позволяет неинвазивно визуализировать структуру биообъектов in vivo и широко используется в биомедицинских целях, в том числе для визуализации морфологических изменений после ФДТ. Методом ОКТ было проведено исследование изменения показателя преломления жировой ткани при фотодинамическом воздействии in vitro. Поведение показателя преломления показывает его монотонное уменьшение с ростом времени наблюдения. Уменьшение эффективного показателя преломления в течение времени наблюдения до сотен минут составляет от 1.46 до 1.44 в экспериментах с БЗ и от 1.38 до 1.34 в экспериментах с ИЗ. Это может быть связано с уменьшением относительного показателя преломления рассеивателей, указывающего на иммерсионное оптическое просветление.

В шестой главе представлен гистологический анализ подкожной жировой клетчатки при фотодинамическом воздействии на кожу крыс in vivo.

Рисунок 11 - Гистология (окраска гематоксилин-эозином) подкожной жировой клетчатки не подверженной никакому воздействию. Контрольный образец. Объектив 40 х

■Ж шШ^'.ш т> *

Рисунок 12 Гистология (окраска гематоксилин-эозином) подкожной жировой клетчатки при

подкожном введении раствора БЗ (10~4 мг/мл)

Рисунок 13 Гистология (окраска гематоксилин-эозином) подкожной жировой клетчатки после

облучения диодной лампой. Диодная

лампа, 625 нм; плотность энергии, 720 Дж/см2 . Длительность облучения, 15 мин. Объектив 40 х.

Рисунок 14 Гистология (окраска гематоксилин-эозином) подкожной жировой клетчатки при

подкожном введении раствора БЗ (Ю-4 мг/мл в физиологическом растворе) и

последующем облучении диодной лампой. Диодная

лампа, 625 нм; плотность энергии, 720 Дж/см2 . Длительность облучения, 15 мин. Объектив 40 х.

При подкожном введении ИЗ/БЗ, растворенного в физиологическом растворе изменения минимальны и характеризуются признаками отека. Особенностью морфологических изменений в тканях под действием лазерного облучения и облучения лампой является увеличение в размерах жировых клеток и разрушение клеточной мембраны у отдельных жировых клеток.

При сочетанном воздействии красителей и облучения в тканях развивались самые выраженные изменения, которые затрагивали все слои

кожи: эпидермис, дерму, жировую и мышечную ткани. В эпидермисе развивались дистрофия и некроз со слущиванием клеток эпителия. В подкожной жировой клетчатке - распространенная деструкция. В дерме -дезорганизация соединительной ткани в виде фибриноидного набухания и деструкция.

Рисунок 15 Гистология (окраска гематоксилин-эозином) подкожной жировой клетчатки при

подкожном введении раствора ИЗ (0.5 мг/мл): раствор 2 (ИЗ в физиологическом растворе)

Рисунок 16 Гистология (окраска гематоксилин-эозином) подкожной жировой клетчатки после

лазерного облучения. Диодный лазер, 808 нм; плотность энергии, 960 Дж/см2. Длительность облучения, 1 мин. Объектив 40х.

Рисунок 17 Гистология (окраска гематоксилин-эозином) подкожной жировой клетчатки при

подкожном введении раствора 2 ИЗ (ИЗ 0.5 мг/мл; в

физиологическом растворе) и

последующем лазерном облучении (960 Дж/см2, время облучения 1 мин). Объектив 40х

Подкожное введение красителей БЗ/ИЗ приводит к увеличению поглощения излучения светодиодной лампы/лазера жировой тканью. Совместным действием красителя и источника излучения можно достигнуть полной деструкции жировой ткани.

В заключении приведены основные результаты работы.

ОСНОВНЫЕ ВЫВОДЫ И РЕЗУЛЬТАТЫ РАБОТЫ

1. На основе анализа измеренных спектров поглощения можно утверждать о сдвиге положения максимумов полосы поглощения фотосенсибилизаторов в жировой ткани по сравнению с их спектрами в растворах. Сдвиг обусловлен взаимодействием молекул ИЗ и БЗ с коллагеном и другими белковыми молекулами, входящими в основном в состав межклеточного матрикса (септа, диаметр волокон порядка 50-200 нм). Анализируя спектры красителей в растворах и в тканях, важно

отметить также изменение формы спектров. Интенсивность пика, соответствующего вкладу молекул-мономеров, существенно снижается и становится сравнимой с интенсивностью пика от вклада молекул-димеров. На основе полученных спектров были рассчитаны концентрации красителей в ткани.

2. Для эффективного возбуждения используемых в работе молекул красителей были подобраны выпускаемые промышленностью и применяемые для медицинских целей источники излучения со спектрами излучения, максимально возможно соответствующими спектрам поглощения, используемых красителей. Например, широкополосные линии испускания диодной лампы (442 и 597 нм) достаточно хорошо соответствуют также широким полосам поглощения бриллиантового зеленого (440 и 650 нм). Максимум испускания диодного лазера (808 нм) попадает в полосу поглощения молекул индоцианинового зеленого, находящихся в связанном состоянии с белками в биоткани (805-810 нм) (см. рисунок 5).

3. Экспериментально обнаружено повышение оптического пропускания сенсибилизированной водно-спиртовым раствором бриллиантового зеленого при концентрации 6 мг/мл жировой ткани человека после ее облучения на длинах волн 442 и 597 нм с общей плотностью мощности излучения не превышающей 75 мВт/см2. Расчет временного и пространственного изменения оптического пропускания жировой ткани на основе статистической обработки цифровых изображений, полученных в проходящем свете, позволяет количественно оценить степень и кинетику процессов в жировой ткани в ответ на фотодинамическое действие. Анализ кинетики оптического пропускания сенсибилизированной жировой ткани после ее облучения позволил предложить метод «мягкой» редукции объема ткани путем липолиза жировых клеток без их существенной деструкции.

4. Вблизи поверхности мембран клеток жировой ткани впервые экспериментально зарегистрированы небольшие образования (структуры), размерами от 2 до 8 мкм, которые характеризуются изменяющимся во времени оптическим пропусканием и трактуются как капельки внутриклеточной жидкости, секретируемой через образованные поры в мембране.

5. Показано увеличение эффективности процесса просветления жировой ткани, вызванного фотодинамическим эффектом, при нагреве ткани до температур 40-50 °С.

6. Впервые сделан анализ патоморфологических изменений подкожной жировой клетчатки при фотодинамическом воздействии на кожу крыс in vivo. Было показано, что выбором красителя (концентрации, способа введения в ткань) и параметров светового облучения (длина волны, плотность энергии) можно обеспечить контролируемую редукцию жировой ткани вплоть до ее полной деструкции. Например, при подкожном введении водно-спиртовых растворов бриллиантового зеленого и индоцианинового зеленого и чрезкожном облучении излучением диодной лампы (625 нм, плотность энергии 720 Дж/см2) и диодного лазера (808 нм, плотность энергии 960 Дж/см2) соответствующих областей на теле экспериментальных животных в коже, жировой и мышечной ткани животных развивались выраженные изменения, в том числе в подкожной жировой клетчатке наблюдалась распространенная деструкция.

СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

Статьи в реферируемых изданиях и журналах:

1. Янина И.Ю., Симоненко Г.В., Кочубей В.И., Тучин В.В. Спектры поглощения жировой ткани человека при ее сенсибилизации красителями // Оптика и спектроскопия. — 2010. — Т.109, №2. — С. 1303-1311

2. Tuchin V.V., Altshuler G.B., Yanina I.Yu., Kochubey V.I., Simonenko G.V. Fat tissue staining and photodynamic/photothermal effects // Proc. SPIE. Dynamics and Fluctuations in Biomedical Photonics VII, San Francisco, California, USA. — 2010. — V.7563. — P. 75630V1-7.

3. Doubrovsky V.A., Yanina I.Yu., Tuchin V.V. Inhomogeneity of photo-induced fat cell lipolysis // Proc. SPIE. — 2011. — V. 7999. — P. 7999-21

4. Дубровский B.A., Дворкин Б.А., Янина И.Ю., Тучин В.В. Фотовоздействие на клетки жировой ткани человека in vitro // Цитология. —2011. — Т.53, №5. — С. 423-432.

5. Yanina I.Y., Orlova T.G., Tuchin V.V., Altshuler G.B. The morphology of apoptosis and necrosis of fat cells after photodynamic treatment at a constant temperature in vitro И Proc.SPIE Mechanisms for Low-Light Therapy VI, edited by Michael R. Hamblin, Ronald W. Waynant, Juanita Anders. — 2011. — V.7887. — P. 78870X-1-7.

6. Yanina I.Yu., Bochko V.A., Alander J.T., and Tuchin V.V. Optical image analysis of fat cells for indocyanine green mediated near-infrared laser treatment // Laser Phys Lett. — 2011. — V.8, No.9. — P. 684-690.

7. Yanina I.Yu., Tuchin V.V., Suleymanova L.V., Bycharskaya A.B., Maslyakova G.N. Fat tissue histological study at NIR laser treatment of the human skin in vitro II Proc. SPIE. — 2011 — Vol.8092. — P. 809215-1-8.

8. Дубровский B.A., Янина И.Ю., Тучин B.B. Кинетика оптических свойств жировой тканшп vitro как результат фотодинамического действия // Биофизика. — 2012. — Т.57, №1. — С. 115-119.

9. Yanina I.Yu., Tuchin V.V., Navolokin N.A., Matveeva O.V., Bucharskaya A.B., Maslyakova G.N., Altshuler G.B. Fat tissue histological study at ICG- mediated photothermal/photodynamic treatment of the skin in vivo II JBO — 2012. — V.17, No.5. — P. 058002-1-9

10. Yanina I.Yu., Kochubey V.l., Tuchin V.V., Portnov S.A., Svenskaya Yu.I., Gorin D.A., Ponomareva E.G., Nikitina V.E. Effect of bacterial lectin on acceleration of fat cell lipolysis at in vitro diode laser treatment using encapsulated ICG // Proc. SPIE. — 2012. — V. 8337. — P. 83370F-1-7.

11. Yanina I.Yu., Navolokin N.A., Nikitina V.V., Bucharskaya A.B., Maslyakova G.N., and Tuchin V.V. Studies of lipid peroxidation of rat blood after in vivo photodynamic treatment // Proc. SPIE. — 2012. — V. 8337. — P. 83370G-1-7.

12. Yanina I.Yu., Trunina N.A., Tuchin V.V. Temporal change of adipose tissue refractive index at photodynamic treatment: in vitro study using OCT // Proc. SPIE. — 2012. — Vol. 8222. — P. 82221G- 1-6.

13. Doubrovsky V.A., Yanina I.Yu., Tuchin V.V. Porosity of photo-induced fat cell lipolysis // Proc. SPIE. — 2012. — Vol. 8427. — P. 842748-1-9.

14. Yanina I.Yu., Trunina N.A., Tuchin V.V. Optical coherence tomography of adipose tissue at photodynamic/photothermal treatment in vitro // Journal of Innovative Optical Health Sciences on Advances. — 2013. — V. 6, No.2. — P. 1350010-1-7

15. Yanina I.Yu., Doubrovsky V.A., Tuchin V.V. Control of optical transmittance of fat tissue slices at NIR photodynamic action mediated by indocyanine green // Proc. SPIE. — 2013. — V. 8699. — P. 86990C-1-7.

16. Янина И.Ю., Дубровский B.A., Тучин B.B. Оптическая регистрация пор в мембране жировой клетки / И. Ю. Янина, В. А. Дубровский, В. В.Тучин // Оптика и спектроскопия — 2013. — Т.115, №2. — С. 62-67.

17. Ганилова Ю.А., Долмашкин A.A., Дубровский В.А., Янина И.Ю., Тучин В.В. Оптическая цифровая микроскопия для цито- и гематологических исследований in vitro // Оптика и спектроскопия. — 2013 — Т. 115, №2, —С. 68-74.

Статьи в материалах международных и российских конференциях:

1. Genina Е.А., Zubkova Е.А., Korobko A.A., Yanina I.Yu., Bashkatov A.N., Kamenskikh T.G., Galanzha V.A., Tuchin V.V. Diffusion of Cortexin and Retinalamin in eye sclera // Saratov Fall Meeting 2006: Optical Technologies in Biophysics and Medicine VIII, edited by Valéry V. Tuchin, Proc. SPIE. — 2007. — Vol. 6535. — P. 65351 Y- 1-6

2. Tuchin V.V., Yanina I.Yu., Simonenko G.V. Destructive fat tissue engineering using photodynamic and selective photothermal effects // Proc SP1E. — 2009. — V.7179. — P.71790C.1-11

3. Янина И.Ю., Симоненко Г.В., Тучин B.B. Физические способы воздействия на жировую ткань // Проблемы оптической физики, Материалы 11-ой Международной молодежной научной школы по оптике, лазерной физике и биофизике, Изд.-во «Новый ветер», Саратов. —

2008. —С. 64-76

4. Тучин В.В., Дубровский В.А., Янина И.Ю. Статистическая обработка цифровых фотографий как метод анализа фотодинамической деструкции жировой ткани in vitro // Проблемы оптической физики, Материалы 12-ой Международной молодежной научной школы по оптике, лазерной физике и биофизике, Изд.-во «Новый ветер», Саратов. —

2009. — С. 40-45

5. Бочко В.А., Аландер Я.Т., Тучин В.В., Янина И.Ю. Медицинская визуализация и терапия с использованием индоцианина зеленого // Проблемы оптической физики, Материалы 12-ой Международной молодежной научной школы по оптике, лазерной физике и биофизике, Изд.-во «Новый ветер», Саратов. — 2009. — С. 56-63

6. Yanina I.Yu., Bochko V.A., Simonenko G.V., Välisuo P.O., Alander J.T., and Tuchin V.V. Photo analysis methods for fat cell destructive engineering // Proc. SPIE. — 2010. — Vol. 7547. — P. 754708-1-8

7. Дубровский B.A., Янина И.Ю., Тучин B.B. Регистрация неравномерности фотоиндуцированного липолиза жировых клеток методом цифровой микрофотографии действия // Проблемы оптической физики, Материалы 13-ой Международной молодежной научной школы по оптике, лазерной физике и биофизике, Изд.-во «Новый ветер», Саратов. — 2011, —С. 96-105

8. Янина И.Ю., Симоненко Г.В., Тучин В.В., Медведев Б.А. Лабораторная работа «Фотодинамическая терапия жировой ткани» // Проблемы оптической физики, Материалы 13-ой Международной

молодежной научной школы по оптике, лазерной физике и биофизике, Изд.-во «Новый ветер», Саратов. — 2011. — С. 122-130

9. Козина A.M., Янина И.Ю., Свенская Ю.И., Генина Э.А., Портнов С.А., Башкатов А.Н., Тучин В.В. Фотодинамический липолиз с использованием индоцианина зеленого // Проблемы оптической физики, Материалы 13-ой Международной молодежной научной школы по оптике, лазерной физике и биофизике, Изд.-во «Новый ветер», Саратов. —2011. — С.113-118

10. Ганилова Ю.А., Дубровский В.А., Янина И.Ю., Тучин В.В. Особенности методики оптической цифровой микроскопии для биомедицинских исследований in vitro // Проблемы оптической физики, Материалы 14-ой Международной молодежной научной школы по оптике, лазерной физике и биофизике, Изд.-во «Новый ветер», Саратов. — 2012. — С. 30-38

11. Янина И. Ю. Фотодинамическое локальное разрушение жировой ткани in vitro // Материалы межрегиональной научно-практической конференции студентов и молодых учёных с международным участием. Молодежь и наука, итоги и перспективы YSRP'08.— 2009.— С. 7

12. Янина И. Ю. Выявление фотодинамической деструкции жировой ткани с помощью непараметрических статистических критериев // Материалы межрегиональной научно-практической конференции студентов и молодых учёных с международным участием. Молодежь и наука, итоги и перспективы YSRP'09. — 2010. — С. 59

13. Янина И. Ю. Статистическая обработка цифровых фотографий как метод анализа фотодинамической деструкции жировой ткани in vitro // Материалы 70 научно-практической конференции студентов и молодых учёных Саратовского медицинского университета. «Молодые ученые -здравоохранению региона» МУ-ЗР'09. — 2010. — С. 238-239.

14. Янина И. Ю. Изменение оптических свойств жировой ткани в результате фотодинамического действия in vitro II Материалы 71 научно-практической конференции студентов и молодых учёных Саратовского медицинского университета. «Молодые ученые - здравоохранению региона» МУ-ЗР' 10. — 2011. — С. 265-266.

15. Козина A.M., Янина И.Ю. Фотодинамический липолиз с использованием индоцианина зеленого // Материалы 71 научно-практической конференции студентов и молодых учёных Саратовского

медицинского университета. «Молодые ученые - здравоохранению региона» МУ-ЗР'10. — 2011. — С. 259.

16. Янина И.Ю., Ганилова Ю.А. Опыт цитологических исследований на основе оптической цифровой микрофотографии // Материалы 72 научно-практической конференции студентов и молодых учёных Саратовского медицинского университета. «Молодые ученые - здравоохранению региона» МУ-ЗР' 11. — 2012. — С. 268

17. Янина И.Ю., Гордеев A.B., Дахчуков Ш.Р. Исследование фотохимического образования пор в мембране жировой клетки на основе цифровой микроскопии // Материалы 73-й студенческой научно-практической конференции в рамках первой Всероссийской недели науки с международным участием, посвященной дню российской науки «Молодые ученые - здравоохранению», Издательство Саратовского медицинского университета. — 2012. — С. 192

18. Янина И.Ю., Симоненко Г.В., Тучин В.В. Инженерия жировой ткани при фотодинамической и фототермической деструкции in vitro / И. Ю. Янина, Г. В. Симоненко, В. В. Тучин // III Евразийский конгресс по медицинской физике и инженерии «Медицинская физика - 2010» 21-25 июня 2010. Сборник материалов. Москва, Секция Оптико-информационные технологии и биомедицинская фотоника. Устные доклады. — 2010. — Т.З. — С. 35-37

Подписано к печати 11.07.2013 года. Формат 60x48 1/16. Бумага офсетная. Гарнитура Тайме. Печать цифровая. Усл. печ. л. 1,75 Тираж 100 экз. Заказ № 149-Т

Отпечатано в типографии СГУ Саратов, Большая Казачья 112-а Тел. (8452) 27-33-85

Текст научной работыДиссертация по биологии, кандидата физико-математических наук, Янина, Ирина Юрьевна, Саратов

Министерство образования и науки РФ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ Н.Г. ЧЕРНЫШЕВСКОГО»

На правах рукописи

04201360981

Янина Ирина Юрьевна

ИССЛЕДОВАНИЕ БИОФИЗИЧЕСКИХ ПРОЦЕССОВ В СЕНСИБИЛИЗИРОВАННОЙ ЖИРОВОЙ ТКАНИ ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ ЛАЗЕРНОГО И СВЕТОДИОДНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ

03.01.02 - биофизика

Диссертация на соискание ученой степени кандидата физико-математических наук

Научные руководители д.ф.-м.н., проф. Тучин В.В. к.ф.-м. н, доц. Дубровский В.А.

Саратов-2013

ОГЛАВЛЕНИЕ

Оглавление: 2

Введение 6

Глава 1. Спектры поглощения жировой ткани человека при ее сенсибилизации красителями

1.1 Введение 22

1.2 Материалы и методы 22

1.3 Результаты и обсуждение 23

1.4 Выводы 35 Глава 2. Материалы исследования и методы, красители, источники излучения, подготовка образцов, микроскоп, камера, обработка изображений2.1 Материалы исследования 36

2.2. Методы исследования 36

2.3 Фотодинамические красители

2.3.1 Трифенилметановые красители 40

2.3.2 Цианиновые красители 41

2.4 Источники излучения 42

2.5 Подготовка образцов 45

2.6 Характеристики микроскопа и камеры (аппроксимация и подбор коэффициентов)

2.6.1 Микроскоп 46

2.6.2 Камера 50

2.7 Статистическая обработка изображений 53

2.8 Математическая обработка изображений 54

2.9 Параметрические и непараметрические методы. Достоверное 1Ь результатов 56

2.10 Выводы 59 Глава 3. Тепловое воздействие

3.1 Введение 60

3.2 Материалы и методы 61

3.3 Результаты и обсуждение 63

3.4 Выводы 69 Глава 4. Фото динамическое воздействие на сенсибилизированную бриллиантовым зеленым жировую ткань в видимой области светодиодного излучения

4.1 Влияние облучения на спектры поглощения жировой ткани человека при

ее сенсибилизации бриллиантовым зеленым

4.1.1 Материалы и методы 70

4.1.2 Результаты и обсуждение 70

4.1.3 Выводы 72

4.2 Некроз и ano птоз жировой ткани

4.2.1. Введение 72

4.2.2. Результаты и обсуждение 76 4.2.3 Выводы 78

4.3 Кинетика оптических свойств жировой ткани in vitro как результат фотодинамического действия 78

4.3.1. Результаты и обсуждение

4.3.1.1 Экспериментальные результаты 79

4.3.1.2. Статистическая обработка изображений, их оптическая интерпретация 81

4.3.1.3. Обсуждение результатов. 89 4.3.2 Выводы 93

4.4 Регистрация пор в мембране жировой клетки на основе оптической цифровой микроскопии

4.4.1 Введение 94

4.4.2 Материалы и методы 95

4.4.3 Результаты и обсуждение 96

4.4.4 Выводы 109

4.5 Исследование изменения показателя преломления жировой ткани при фотодинамическом воздействии in vitro методом оптической когерешной томографии (ОКТ)

4.5.1 Экспериментальная установка 111

4.5.2 Исследуемые образцы и красители 112

4.5.3 Алгоритм обработки полученных данных 112

4.5.4 Результаты и их обсуждение 113

4.5.5 Выводы 118 Глава 5. Фото динамическое воздействие на сенсибилизированную индоцианиновым зеленым жировую ткань в ИК области лазерного излучения

5.1 Влияние облучения на спектры поглощения жировой ткани человека при ее сенсибилизации индоцианиновым зеленым

5.1.1 Материалы и методы 119

5.1.2 Результаты и обсуждение 120

5.1.3 Выводы 121

5.2 Некроз и апоптоз жировой ткани 121

5.2.1. Результаты и обсуждение 122

5.2.2 Выводы 124

5.3 Кинетика оптических свойств жировой ткани in vitro как результат фотодинамического действия

5.3.1. Материалы и методы 124

5.3.2. Результаты и обсуждение

5.3.2.1 Экспериментальные результаты 125

5.3.2.2. Статистическая обработка изображений, их оптическая интерпретация 127

5.3.3. Сравнение фотодинамического воздействия, оказываемого бриллиантовым зеленым и индоцианиновым зеленым 131

5.3.3 Выводы 133

5.4 Исследование изменения показателя преломления жировой ткани при фотодинамическом воздействии in vitro методом оптической когерентной

томографии (ОКТ)

5.4.1 Результаты и их обсуждение 134

5.4.2 Выводы 137 Глава 6. Гистологический анализ подкожной жировой клетчатки при фотодинамическом воздействии на кожу крыс in vivo

6.1. Введение 138

6.2. Материалы и методы 140

6.3. Результаты и обсуждение

6.3.1 Выбор параметров лазерного излучения 142

6.3.2 Гистологический анализ контрольных образцов 142

6.3.3 Гистологический анализ образцов

после инъекции красителя 143

6.3.4 Гистологический анализ образцов

после облучения источником 145

6.3.5 Гистологический анализ образцов после инъекции красителя и

последующего облучения источником. 147

6.4 Выводы 151

Заключение 152

Список литературы 159

Введение

Настоящая работа относится к фотобиологии животной клетки, она посвящена экспериментальному изучению влияния световых потоков видимого и ближнего ИК диапазонов на клетки сенсибилизированной жировой ткани in vitro и in vivo.

Исследования последних десятилетий позволили по-новому взглянуть на причины и механизмы развития многих заболеваний, прежде всего таких социально значимых, как атеросклероз и ишемическая болезнь сердца, артериальная гипертензия, сахарный диабет 2-го типа, болезни печени, ортопедических заболеваний, ряд онкологических заболеваний (липома, липосаркома и т.п.). Получены убедительные доказательства взаимосвязи этих заболеваний с избыточным накоплением жира в организме, т. е. с ожирением. В этой связи возрос интерес к изучению функций жировой ткани и их роли в норме и при патологии, а также к разработке способов удаления избыточных отложений [1, 2, 3]. В настоящее время общепризнано, что жировая ткань играет большую роль в метаболической регуляции как энергетического равновесия в организме, так и сосудистого гомеостаза. Однако она не пассивный проводник, служащий для сохранения и расходования энергии, отвечающий за сдвиги в энергетическом балансе. Несмотря на кажущуюся нежелательность жира, жировая ткань выполняет много очень важных физиологических функций [4, 5]. Знание этих функций необходимо не только для понимания патогенеза ожирения и связанных с ним заболеваний, но и для их эффективной профилактики и лечения.

Ожирение, как правило, лечится диетой, физическими упражнениями и уменьшением слоя подкожной жировой клетчатки с помощью пластической хирургии, липосакции, ультразвуковой и лазерной терапии. Благодаря быстрому темпу жизни современного общества, многим трудно поддерживать здоровую диету и регулярно заниматься спортом, чтобы предотвратить ожирение. В связи с этим предпочтение отдается инвазивным процедурам.

Инвазивные процедуры являются объектом риска для пациента из-за инфекций, кровотечения, риска здоровью при анестезии и других после -хирургических осложнений. Липосакция подразумевает введение в жировые слои зондов около 5 мм в диаметре через отверстия в коже для удаления жировой ткани. Недостатки липосакции включают создание видимых неоднородностей в виде углублений в зоне введения зонда, чрезмерное кровотечение и неселективное удаления клеток жира и стромы. В результате лазерной липосакции клетки гибнут по пути некроза и на теле могут остаться рубцы или синяки. Явным эффектом лазерного воздействия является нагрев не только жировой ткани, но и её окружения. Важным является вопрос поддержания физиологической температуры во время проведения процедур лазерной липосакции.

В настоящее время ведутся активные поиски новых оптических технологий, позволяющих селективно разрушать жировую ткань. Одним из самых простых способов физического воздействия на жировые клетки, является гипертермия [6, 7, 8, 9, 10, 11]. Известны методы селективного нагрева подкожной жировой ткани оптическим, в том числе лазерным, излучением [10]. В ряде случаев, оптический нагрев активизирует кровообращение и биологические рецепторы, в зону воздействия привлекаются макрофаги, которые утилизируют разрушенные жировые клетки [12, 13, 14]. Создание новых лазерных источников стимулирует интерес к исследованию взаимосвязей между параметрами лазерного излучения и оптическими свойствами жировой ткани.

ИК лазерное излучение обладает селективным тепловым воздействием на жировую ткань, что обусловлено достаточно сильными полосами поглощения липидов на 915, 1210 и 1720 нм. [10, И, 12, 13, 14, 15]

Лазерная липосакция / липопластика или лазерный липолиз является одним из современных способов удаления жировых отложений. Лазерный липолиз, основанный на тепловых процессах (селективный фототермолиз), позволяет локально нагревать и разрушать жировые клетки, оставляя их в сжиженном состоянии, что облегчает их удаление из тела с помощью специальных устройств

или за счет естественного метаболизма жиров. Процедура лазерной липосакции проводится с помощью тонкого оптико-волоконного лазерного зонда, который вводится под кожу [12, 13, 14, 15,16,17,18,19,20,21,22]. Головка эюго зонда излучает высоко интенсивное излучение. Под действием этого лазера происходит селективное разрушение жировых клеток.

Гистологический анализ воздействия Nd: YAG лазера (1060 им) и CW диодного лазера (980 нм) на жировой клетки человека показали обратимое повреждение клеток (набухание клеток), а также необратимые повреждения (лизис клеток) [20, 22].

Механизмы, приводящие к лазерному липолизу, зависят от температуры. Во-первых, при низкой энергии лазерного излучения и, следовательно, низкого повышения температуры, наблюдалось только набухание аднпоцитов [20]. При использовании более высокой энергии лазерного излучения, гистологическая оценка, выполненная в работе [17] на образцах ткани, взятых после воздействия, показала разрыв жировых клеток, а также коагуляцию мелких сосудов в жировой ткани. Так как тепло концентрируется внутри адипоцитов, это приводит к разрыву его мембраны. Эффект получается не только тепловой, но и термомеханический.

Более того, степень набухания и лизис изменялись пропорционально количеству накопленной энергии. Конвекционная липосакция вызывает больше необратимых повреждений, чем лазерный липолиз с использованием света с энергией 1000 Дж [20]. Для лазера с длиной волны 1064 нм и энергией лежащей в диапазоне от 1000 Дж до 12.000 Дж, было отмечено, что чем выше энергия, тем больший объем ткани был подвержен сокращению [16]. Обычно, сокращение объема 5 см3 жира наблюдается при 3000 Дж, 20 см3 при 12.000 Дж. Все эти исследования ясно показывают, что при лазерном липолизе должны учитываться два основных параметра: 1) длина волны, так как взаимодействие лазера с тканью достигается за счет поглощения лазерной энергии светочувствительными хромофорами, создавая достаточное количество тепла в жировой ткани, чтобы вызвать желаемые термические повреждения; 2) используемая энергия, так как

существует взаимосвязь доза-реакция [16, 23]. Тепловые эффекты па жировые клетки и внеклеточный матрикс вызывают как обратимые, так и необратимые повреждения клеток. Это делает лазерную липосакцию менее травматичной и с малыми кровопотерями, по сравнению с традиционной липосакцией. Основным результатом лазерного липолиза является некроз адипоциюв. Некроз - процесс необратимый, характеризуется разрывом цитоплазматической и внутри клеточных мембран [24, 25, 26, 27, 28, 29]. Это приводит к разрушению органелл, высвобождению лизосомальных ферментов и выходу цитоплазмы в межклеточное пространство. При относительно благоприятном исходе вокруг омертвевших тканей возникает реактивное воспаление, которое отграничивает мертвую ткань. В таких случаях образуется рубец. В отличие от некроза при ano птозе воспаления окружающих тканей не наблюдается. Ano птоз — это форма гибели клетки, проявляющаяся в уменьшении ее размера, конденсации и фрагментации хроматина, уплотнении наружной и цитоплазматических мембран без выхода содержимого клетки в окружающую среду [23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35]. Морфологически апоптоз проявляется гибелью единичных, беспорядочно расположенных клеток, что сопровождается формированием округлых, окруженных мембраной телец ("апоптотические тельца"), которые тут же фагоцитируются окружающими клетками.

Другой метод оптического разрушения жировых тканей, а именно фотодинамический / тепловой метод (ФД / ТМ), может обеспечить снижение региональных или специфичных скоплений внутрибрюшпой или подкожной жировой ткани наименее инвазивным путем, вызывая апоптоз клеток или контролируемой некроз небольшого количества жировой ткани [36, 37]. В частности, это связано с использованием локализованного оптического (лазерного) излучения соответствующей длины волны и мощности, которые также могут быть объединены в сочетании с окрашиванием локализованных специфических жировых отложений и / или применением линолитических агентов, приводя к неинвазивному и не - или наименее разрушительному уменьшению объема жировой ткани и тем самым к изменению контура / формы

скоплений жировой ткани. Фото динамическое действие (ФДД) - это необратимое повреждение светом биологических структур (или функций) в присутствии кислорода, сенсибилизированное введенными в клетки или организмы хромофорами (например, красителями) [38, 39]

Принцип оптического метода разрушения жировой ткани заключается в том, что за счет предварительной обработки биоткани красителем, увеличивается поглощательная способность объекта.

В видимой и ближней ИК областях спектра жировая ткань является слабо поглощающей и поэтому необходима ее окраска для увеличения эффективности взаимодействия со светом. В видимой области основным поглотителем является гемоглобин крови (сильная полоса Соре на 405-430 нм и более слабые а и (3 -полосы на 540 и 575 нм за счет снабжения кровью каждой жировой клетки через кровеносную капиллярную сеть), кроме того Р - каротин с основной полосой на 465 нм также может давать некоторый вклад в поглощение [40].

Существуют два способа локального увеличения поглощения свега тканью и запуска фототепловых или фотобиохимических реакций. Подбором длины волны излучения использовать поглощение 1) эндогенными (собственными) хромофорами ткани [41] или 2) экзогенными хромофорами - красители или фотосенсибилизаторы. В случае применения экзогенных хромофоров эффективность взаимодействия света с тканью может быть существенно более высокой. Существует много фотосенсибилизаторов (ФС), но предметами данного исследования явились индоцианиновый зеленый (ИЗ) и бриллиантовый зеленый (БЗ). Применение ИЗ обусловлено его сильным поглощением в ближней ИК области спектра, низкой токсичностью и быстрым выводом из организма. При внутривенном введении ИЗ эффективно связывается с альбумином плазмы крови и быстро выводится из плазмы паренхиматозными клетками печени, выделяясь полностью в желчь. При местном введении он связывается с белками в тканях и выводится с трудом [42, 43, 44]. Показано, что сильное поглощение лазерного излучения на длине волны 810 нм окрашенной ИЗ опухолевой ткани индуцирует ее локальный нагрев и последующее разрушение [45, 46, 47, 48, 49, 50],

и

обусловленное фотодинамичееким действием, оказываемым ИЗ [45-50]. В оптических технологиях гораздо реже используется такой краситель, как БЗ ¡ 51], однако он обладает бактерицидными свойствами, его спектр лежит в видимой области, следовательно, возможно его возбуждение источниками видимого света [51, 52].

Узкие пики поглощения красителей позволяют эффективно использовать их для селективной лазерной деструкции ткани, однако при окраске взаимодействие молекул красителя с органическими молекулами ткани может изменить спектр поглощения красителя [45-47].

Интенсивность и положение пиков поглощения красителей зависят от используемых растворителей [53, 54, 55]. При использовании в качестве растворителя физиологического раствора, краситель имеет тенденцию к образованию больших агрегатов. Это также приводит к сдвигу пика поглощения. Растворы, имеющие сложный состав, например, такие как вода-спиртдлицерин, стабилизируют пики поглощения [54].

Спиртовая составляющая в растворе также удобна, чтобы сделать клеточную мембрану более проницаемой для красителя за счет растворения липидной компоненты биологической мембраны [56, 57, 58]. Следующий шаг взаимодействия красителя с клеткой связан с воздействием излучения ис точника. Биологический ответ сенсибилизированной клетки на воздействие света может привести к большим областям повреждений в клеточной мембране и их последующем преобразовании в фактические поры как выход из клетки для свободных жирных кислот (FFAs), потому что молекулярный размер FFAs не превышает диаметр 1-2 нм [59].

Метод основан на том, что молекулы фотосенсибилизатора прикрепляются к мембране клеток. Облучение светом с определенной длиной волны, соответствующей пику поглощения фото сенсибилизатор а, приводит к образованию атомарного (синглентного) кислорода, который нарушает целостность мембран клеток, приводя к увеличению их пористости. Была показана возможность запуска ano птоза в следствие ФДТ [60, 61]. Клеточный

липолиз может наблюдаться как процесс оптического просветления образцов при фотодинамическом воздействии на жировую ткань, основные этапы дей�